JP2022500061A - コリネバクテリウム宿主細胞における操作した分解タグ変異体による制御可能なタンパク質分解 - Google Patents

Abstract

本発明は、発酵中のある時に重要な特定の生成物の分解を制限又は排除するための、かつ同じ重要な特定の生成物のより高い生成に向けて細胞の代謝フラックスの方向を変えるための、宿主細胞内の制御システムの作製に関する。【選択図】図１

Description

関連出願への相互参照
この出願は、２０１８年９月１９日出願の米国仮特許出願第６２／７３３，５２１号の優先権を主張するものであり、その内容は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。

発明の分野
本発明は、微生物の遺伝子及び組換えＤＮＡ技術の分野に関する。本教示は、細菌細胞、具体的にはコリネバクテリウム種においてタンパク質分解を制御可能に誘導及び調節するのに有用なポリヌクレオチド配列、ポリペプチド配列、ベクター、微生物、及び方法を提供する。

発明の背景
改変されていない細胞において、細胞生活環の異なる点で存在するタンパク質の量は、タンパク質合成のみならず、タンパク質分解の関数である。これを念頭に置いて、細胞内のタンパク質の半減期は数分から数日まで広く変化すること、及びタンパク質分解の差動的な速度は細胞調節装置の重要な態様であることは驚くことではない。例えば、転写因子などの調節分子は急速に分解されて、細胞がその環境において状態を変化させるために迅速に応答するのを可能にする。他のタンパク質は、特異的な代謝シグナルに応答して急速に分解され、細胞内酵素活性の調節のための別の機構を提供する。加えて、欠陥又は損傷したタンパク質が認識され細胞内で迅速に分解され、それによりタンパク質合成中に生じる誤りの結果を排除又は制限する。

細菌システムでは、タンパク質分解が起こり、損傷した及び／又は誤って折り畳まれたタンパク質を除去する。この能力で機能するシステムは、ｓｓｒＡ媒介タグ化分解システムである。ｓｓｒＡタグは、翻訳中にストールされたタンパク質のＣ末端に付加される１１個のアミノ酸ペプチドであり、プロテアーゼＣｌｐＸＰ及びＣｌｐＡｐによる分解のためのタンパク質を標的とする。ｓｓｒＡタグは、ＣｌｐＸに対する特異性増強因子（アダプタータンパク質としても知られている）であるＳｓｐＢと相互作用する。ＳｓｐＢ及びＣｌｐＸは共に働き、タンパク質分解のためのｓｓｒＡタグ付き基質を認識する。

しかし、天然のタンパク質分解システムは、タンパク質分解がｓｓｒＡ媒介タグ化のみによって誘発され得るので、効率的に機能しすぎる場合が多い。したがって、当技術は、特異的基質の分解速度及び特異的代謝相における分解の時期に対するより良い制御を含む、タンパク質分解をより良好に制御できる改良された方法を探索する。

本発明は、操作された微生物によって生成される所望の生成物の力価及び／又は収率を増加させる改良された方法を包含する。このような増強は、標的酵素の分解を誘導することによって達成され、ここで標的酵素は所望の生成物を代謝するか、又は標的酵素は、所望の生成物を生成するために使用される合成経路のための負のフィードバックとして機能する。標的酵素は、微生物の増殖期の必須酵素であり得るので、標的酵素の分解は、細胞成長が安定化するまで顕著に起こらないことが重要である。微生物の成長を遅くする又は停止させることができると、その後、標的酵素の分解を誘導できる。本発明は、アダプタータンパク質及び分解タグを含む異種タンパク質分解システムを発現するように微生物を組換え操作することによりこの目的を達成し、ここでアダプタータンパク質の発現は、タンパク質分解を誘発するために所望の時点で誘導できる。

したがって、一態様では、本発明は、アダプタータンパク質及び分解タグを含む異種タンパク質分解システムを発現するように組換え操作された微生物を提供する。いくつかの実施形態では、微生物はコリネバクテリウム種の宿主細胞である。ある実施形態では、微生物はコリネバクテリウム・グルタミカムである。いくつかの実施形態では、異種タンパク質分解システムは、黄色ブドウ球菌又はその機能的変異体から得られるアダプタータンパク質を含む。例えば、アダプタータンパク質は、配列番号４と少なくとも８０％、８５％、９０％、９２％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むＴｒｆＡアダプタータンパク質であり得る。いくつかの実施形態では、異種タンパク質分解システムは、５'から３'方向に、アダプター結合領域、任意のスペーサー領域、及びプロテアーゼ認識領域を含む分解タグを含み、アダプター結合領域は、ＴｒｆＡアダプタータンパク質を特異的に結合する。分解タグのプロテアーゼ認識領域は、分解タグによりタグ付けされた標的タンパク質がＣｌｐＣＰ、ＣｌｐＸＰ、又はＣｌｐＡＰなどのプロテアーゼにより認識されることを可能にする。好ましい実施形態では、プロテアーゼは、宿主細胞において天然のプロテアーゼである。特に、顕著な分解は、ＴｒｆＡアダプタータンパク質の発現が誘導され、ＴｒｆＡアダプタータンパク質が分解タグのアダプター結合領域に結合するまで起こらない。言い換えると、本発明の異種タンパク質分解システムは、（１）標的タンパク質が本発明による分解タグによりタグ付けされる時、及び（２）対応するアダプタータンパク質の発現を誘導する時、にのみ標的タンパク質の顕著な分解が起こることを確実にする。例えば、顕著な分解は、標的タンパク質の量がアダプタータンパク質の発現前と比較して、アダプタータンパク質が誘導された後に少なくとも１５％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、又は９０％低下されることを観察することにより、測定できる。

種々の実施形態では、本教示による分解タグは、配列番号２２のアミノ酸配列を有する黄色ブドウ球菌分解タグのバリアントである。より具体的には、本発明の分解タグバリアントは、そのＣ末端の最後の３個のアミノ酸として、ＤＱＰ、ＫＰＳ、ＤＧＡ、ＤＧＳ、ＤＱＡ、ＫＮＰ、ＱＰＳ、ＭＫＰ、ＤＱＳ、及びＨＰＰからなる群から選択されるアミノ酸配列を含む。例えば、本発明の分解タグバリアントは、配列番号２４、配列番号２６、配列番号２８、配列番号３０、配列番号３２、配列番号３４、配列番号４７、配列番号４８、配列番号４９、配列番号５０、配列番号５１、配列番号５２、配列番号５３、配列番号５４、配列番号５５、配列番号５６、配列番号５７、又は配列番号５８のアミノ酸配列を含んでよい。ある実施形態では、本発明の分解タグバリアントは、配列番号３０又は配列番号３２のアミノ酸配列を含んでよい。ある実施形態では、本発明の分解タグバリアントは、配列番号２８、配列番号３４、配列番号４７、配列番号４８、配列番号４９、配列番号５０、配列番号５１、配列番号５２、配列番号５３、配列番号５４、配列番号５５、配列番号５６、配列番号５７、又は配列番号５８のアミノ酸配列を含んでよい。ある実施形態では、本発明の分解タグバリアントは、配列番号２４又は配列番号２６のアミノ酸配列を含んでよい。

いくつかの実施形態では、本発明は、大腸菌又はその機能的変異体から得られるアダプタータンパク質を含む異種タンパク質分解システムを発現するように組換え操作された微生物を提供する。例えば、アダプタータンパク質は、配列番号２に少なくとも８０％、８５％、９０％、９２％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むＳｓｐＢアダプタータンパク質であり得る。いくつかの実施形態では、異種タンパク質分解システムは、５'から３'方向に、アダプター結合領域、任意のスペーサー領域、及びプロテアーゼ認識領域を含む分解タグを含み、ここでアダプター結合領域は、ＳｓｐＢアダプタータンパク質を特異的に結合する。分解タグのプロテアーゼ認識領域は、分解タグによりタグ付けされた標的タンパク質が、ＣｌｐＣＰ、ＣｌｐＸＰ、又はＣｌｐＡＰなどのプロテアーゼにより認識されることを可能にする。好ましい実施形態では、プロテアーゼは、宿主細胞において天然のプロテアーゼである。特に、顕著な分解は、ＳｓｐＢアダプタータンパク質の発現が誘導され、かつＳｓｐＢアダプタータンパク質が分解タグのアダプター結合領域に結合するまで起こらない。例えば、顕著な分解は、標的タンパク質の量がアダプタータンパク質の発現前と比較して、アダプタータンパク質が誘導された後に少なくとも１５％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、又は９０％低下されることを観察することにより、測定できる。

種々の実施形態では、本教示による分解タグは、配列番号８のアミノ酸配列を有する大腸菌分解タグのバリアントである。より具体的には、本発明の分解タグバリアントは、そのＣ末端の最後の３個のアミノ酸として、ＤＱＰ、ＫＰＳ、ＤＧＡ、ＤＧＳ、ＤＱＡ、ＫＮＰ、ＱＰＳ、ＭＫＰ、ＤＱＳ、及びＨＰＰからなる群から選択されるアミノ酸配列を含む。例えば、本発明の分解タグバリアントは、配列番号１０、配列番号１２、配列番号１４、配列番号１６、配列番号１８、配列番号２０、配列番号３５、配列番号３６、配列番号３７、配列番号３８、配列番号３９、配列番号４０、配列番号４１、配列番号４２、配列番号４３、配列番号４４、配列番号４５、又は配列番号４６のアミノ酸配列を含んでよい。ある実施形態では、本発明の分解タグバリアントは、配列番号１６又は配列番号１８のアミノ酸配列を含んでよい。ある実施形態では、本発明の分解タグバリアントは、配列番号１４、配列番号２０、配列番号３５、配列番号３６、配列番号３７、配列番号３８、配列番号３９、配列番号４０、配列番号４１、配列番号４２、配列番号４３、配列番号４４、配列番号４５、又は配列番号４６のアミノ酸配列を含んでよい。ある実施形態では、本発明の分解タグバリアントは、配列番号１０又は配列番号１２のアミノ酸配列を含んでよい。

いくつかの実施形態では、本発明は、２つの別々の異種タンパク質分解システム、具体的には、第１のアダプタータンパク質及び第１の分解タグバリアントを含む第１のタンパク質分解システムと、第２のアダプタータンパク質及び第２の分解タグバリアントを含む第２のタンパク質分解システムを発現するように組換え操作された微生物を提供する。第１及び第２の異種タンパク質分解システムは、それぞれが異なる標的タンパク質を標的とし、かつ最小のクロストークがあるように、直交して機能でき、例えば、第１のアダプタータンパク質は、第２の分解タグバリアントによって認識されるプロテアーゼを標的とせず、逆もまたそうである。

このような実施形態によれば、第１のアダプタータンパク質は、黄色ブドウ球菌から得ることができるか、又はその機能的変異体であり得る。例えば、第１のアダプタータンパク質は、配列番号４と少なくとも８０％、８５％、９０％、９２％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むＴｒｆＡアダプタータンパク質であり得る。いくつかの実施形態では、第１の分解タグバリアントは、５'から３'方向に、アダプター結合領域、任意のスペーサー領域、及びプロテアーゼ認識領域を含んでよく、アダプター結合領域はＴｒｆＡアダプタータンパク質を特異的に結合する。分解タグのプロテアーゼ認識領域は、分解タグによりタグ付けされた標的タンパク質が、ＣｌｐＣＰ、ＣｌｐＸＰ、又はＣｌｐＡＰなどのプロテアーゼにより認識されることを可能にする。第１の分解タグは、配列番号２２のアミノ酸配列を有する黄色ブドウ球菌分解タグのバリアントであり得る。より具体的には、第１の分解タグバリアントは、そのＣ末端の最後の３個のアミノ酸として、ＤＱＰ、ＫＰＳ、ＤＧＡ、ＤＧＳ、ＤＱＡ、ＫＮＰ、ＱＰＳ、ＭＫＰ、ＤＱＳ、及びＨＰＰからなる群から選択されるアミノ酸配列を含んでよい。例えば、第１の分解タグバリアントは、配列番号２４、配列番号２６、配列番号２８、配列番号３０、配列番号３２、配列番号３４、配列番号４７、配列番号４８、配列番号４９、配列番号５０、配列番号５１、配列番号５２、配列番号５３、配列番号５４、配列番号５５、配列番号５６、配列番号５７、又は配列番号５８のアミノ酸配列を含んでよい。第２のアダプタータンパク質は、大腸菌から得ることができるか、又はその機能的変異体であり得る。例えば、第２のアダプタータンパク質は、配列番号２と少なくとも８０％、８５％、９０％、９２％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むＳｓｐＢアダプタータンパク質であり得る。いくつかの実施形態では、第２の分解タグは、５'から３'方向に、アダプター結合領域、任意のスペーサー領域、及びプロテアーゼ認識領域を含んでよく、アダプター結合領域はＳｓｐＢアダプタータンパク質を特異的に結合する。分解タグのプロテアーゼ認識領域は、分解タグによってタグ付けされた標的タンパク質が、ＣｌｐＣＰ、ＣｌｐＸＰ、又はＣｌｐＡＰなどのプロテアーゼにより認識されることを可能にする。第２の分解タグは、配列番号８のアミノ酸配列を有する大腸菌分解タグのバリアントであり得る。より具体的には、第２の分解タグバリアントは、そのＣ末端の最後の３個のアミノ酸として、ＤＱＰ、ＫＰＳ、ＤＧＡ、ＤＧＳ、ＤＱＡ、ＫＮＰ、ＱＰＳ、ＭＫＰ、ＤＱＳ、及びＨＰＰからなる群から選択されるアミノ酸配列を含んでよい。例えば、第２の分解タグバリアントは、配列番号１０、配列番号１２、配列番号１４、配列番号１６、配列番号１８、配列番号２０、配列番号３５、配列番号３６、配列番号３７、配列番号３８、配列番号３９、配列番号４０、配列番号４１、配列番号４２、配列番号４３、配列番号４４、配列番号４５、又は配列番号４６のアミノ酸配列を含んでよい。

本発明の別の態様は、コリネバクテリウム種の宿主細胞などの微生物における第１の標的タンパク質の分解を制御する方法を提供し、ここで宿主細胞は、第１のアダプタータンパク質及び第１の分解タグバリアントを含む第１の異種タンパク質分解システムを発現するように組換え操作されており、宿主細胞はまた、第１の異種生合成経路を介して第１の生成物を生成するように組換え操作されている。本方法は、（ｉ）第１の標的タンパク質をタグ付けするように適合された第１の分解タグバリアントを発現すること、（ｉｉ）所望の成長速度に達するまで宿主細胞を成長させること、（ｉｉｉ）第１のアダプタータンパク質の発現を誘導すること、を含んでよく、ここで第１のアダプタータンパク質は、配列番号４と少なくとも８０％、８５％、９０％、９２％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むＴｒｆＡアダプタータンパク質であり得る。ＴｒｆＡアダプタータンパク質の発現が誘導された後に、宿主細胞中に存在する第１の標的タンパク質の量は、少なくとも１５％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、又は９０％減少し得る。この減少は、ＣｌｐＣＰ、ＣｌｐＸＰ及びＣｌｐＡＰからなる群から選択されるプロテアーゼによる分解により引き起こされ得る。

種々の実施形態では、第１の標的タンパク質は、宿主細胞の成長に必須のタンパク質であり得る。いくつかの実施形態では、第１の標的タンパク質の存在は、第１の生成物を生成するための第１の異種生合成経路における負のフィードバックとして機能できる。他の実施形態では、第１の標的タンパク質は、第１の生成物を代謝し、それにより第１の生成物の収集可能な量を低下させることができる。

種々の実施形態では、ＴｒｆＡアダプタータンパク質の発現は、温度変化、ｐＨ変化、光への暴露及び／又は宿主細胞内の所与の分子のレベルを変化させることにより誘導できる。種々の実施形態では、第１の分解タグのＣ末端の最後の３個のアミノ酸配列は、ＤＱＰ、ＫＰＳ、ＤＧＡ、ＤＧＳ、ＤＱＡ、ＫＮＰ、ＱＰＳ、ＭＫＰ、ＤＱＳ、及びＨＰＰからなる群から選択できる。

いくつかの実施形態では、本方法は、第２のアダプタータンパク質及び第２の分解タグバリアントを含む第２のタンパク質分解システムを発現するようにさらに組換え操作された宿主細胞を含み、宿主細胞もまた、第２の異種生合成経路を介して第２の生成物を生成するように組換え操作されている。本方法は、（ｉｖ）第２の標的タンパク質をタグ付けするように適合された第２の分解タグバリアントを発現すること、及び（ｖ）宿主細胞が所望の成長速度に達した後に、第２のアダプタータンパク質の発現を誘導すること、を含んでよく、ここで第２のアダプタータンパク質は、配列番号２と少なくとも８０％、８５％、９０％、９２％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むＳｓｐＢアダプタータンパク質であり得る。

ＳｓｐＢアダプタータンパク質の発現が誘導された後に、宿主細胞中に存在する第２の標的タンパク質の量は、少なくとも１５％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、又は９０％減少し得る。この減少は、ＣｌｐＣＰ、ＣｌｐＸＰ及びＣｌｐＡＰからなる群から選択されるプロテアーゼによる分解により引き起こされ得る。

種々の実施形態では、第２の標的タンパク質は、宿主細胞の成長に必須なタンパク質であり得る。いくつかの実施形態では、第２の標的タンパク質の存在は、第２の生成物を生成するための第２の異種生合成経路において負のフィードバックとして機能できる。他の実施形態では、第２の標的タンパク質は、第２の生成物を代謝し、それによって、第２の生成物の収集可能な量を低下させることができる。

種々の実施形態では、ＳｓｐＢアダプタータンパク質の発現は、温度変化、ｐＨ変化、光への暴露及び／又は宿主細胞内の所与の分子のレベルを変化させることにより誘導できる。種々の実施形態では、第２の分解タグのＣ末端の最後の３個のアミノ酸配列は、ＤＱＰ、ＫＰＳ、ＤＧＡ、ＤＧＳ、ＤＱＡ、ＫＮＰ、ＱＰＳ、ＭＫＰ、ＤＱＳ、及びＨＰＰからなる群から選択できる。

種々の実施形態では、第１の生成物及び／又は第２の生成物は、メチオニン、グルタミン酸、リジン、スレオニン、イソロイシン、アルギニン、及びシステインからなる群から選択されるアミノ酸であり得る。ある実施形態では、第１の生成物及び／又は第２の生成物は、Ｌ−メチオニン、Ｌ−グルタミン酸、Ｌ−リジン、Ｌ−スレオニン、Ｌ−イソロイシン、Ｌ−アルギニン、及びＬ−システインからなる群から選択されるＬ−アミノ酸であり得る。

本開示は、種々の修正及び代替形態を受けやすいが、その具体的な実施形態は、例として図面に示され、本明細書で詳細に説明される。しかし、本明細書に提示される図面及び詳細な説明は、開示された特定の実施形態に本開示を限定することを意図するものではなく、反対に、意図は、添付の特許請求の範囲によって定義される本開示の趣旨及び範囲内に入る全ての修正、均等物、及び代替物をカバーすることであることを理解すべきである。

本発明の他の特徴及び利点は、添付の図面を参照して、本発明の好ましい実施形態の以下の詳細な説明において明らかになるであろう。

図１は、どのように分解タグ２０が標的タンパク質１０に作動可能に連結されるかを示す。分解タグは通常、標的タンパク質のＣ末端付近に配置される。分解タグ２０は、アダプター結合領域２０２と、オプションのスペーサー領域２０４と、プロテアーゼ認識領域２０６とを含む。 図２は、どのようにｓｓｒＡ分解タグ（野生型大腸菌）及びそのバリアント（すなわち、合成で生成されたＣｌｐプロテアーゼ認識配列を有するもの）が、タグ付けされた標的タンパク質の分解に対して異なる調節効果を有し得るか、かつどのようにアダプタータンパク質ＳｓｐＢ（大腸菌由来）の発現を誘導しかつｓｓｒＡ分解タグ及びそのバリアントの使用と対にして、タグ付けされた標的タンパク質の分解を動的に制御することをさらに可能にするかを実証する。具体的には、レポータータンパク質ｍＣｈｅｒｒｙを標的タンパク質として使用し、その蛍光シグナルを測定して定量的な比較を可能にした。タグ付きｍＣｈｅｒｒｙで得られた蛍光測定値を、野生型ｍＣｈｅｒｒｙで得られた蛍光測定値に対して正規化した（左側の最初の２つのバー）。各データセットは、ＳｓｐＢの誘導なし（左）及びＳｓｐＢの誘導あり（右）での測定を含む。図２で、ｍＣｈｅｒｒｙの遺伝子発現を、強力なプロモーター（具体的にはｐＳＯＤ）により駆動した。 どのようにｓｓｒＡ分解タグ（野生型大腸菌）及びそのバリアント（すなわち、合成で生成されたＣｌｐプロテアーゼ認識配列を有するもの）が、タグ付けされた標的タンパク質の分解に対して異なる調節効果を有し得るか、かつどのようにアダプタータンパク質ＳｓｐＢ（大腸菌由来）の発現を誘導しかつｓｓｒＡ分解タグ及びそのバリアントの使用と対にして、タグ付けされた標的タンパク質の分解を動的に制御することをさらに可能にするかを実証する。具体的には、レポータータンパク質ｍＣｈｅｒｒｙを標的タンパク質として使用し、その蛍光シグナルを測定して定量的な比較を可能にした。タグ付きｍＣｈｅｒｒｙで得られた蛍光測定値を、野生型ｍＣｈｅｒｒｙで得られた蛍光測定値に対して正規化した（左側の最初の２つのバー）。各データセットは、ＳｓｐＢの誘導なし（左）及びＳｓｐＢの誘導あり（右）での測定を含む。図３で、ｍＣｈｅｒｒｙの遺伝子発現を、弱いプロモーター（具体的には、Ｍｉｎ５）により駆動した。 どのようにＴｒｆＡ分解タグ（野生型黄色ブドウ球菌）及びそのバリアント（すなわち、合成で生成されたＣｌｐプロテアーゼ認識配列を有するもの）が、タグ付けされた標的タンパク質の分解に対して異なる調節効果を有し得るか、かつどのようにアダプタータンパク質ＴｒｆＡ（野生型黄色ブドウ球菌由来）の発現を誘導しかつＴｒｆＡ分解タグ及びそのバリアントの使用と対にして、タグ付けされた標的タンパク質の分解を動的に制御することをさらに可能にするかを実証する。具体的には、レポータータンパク質ｍＣｈｅｒｒｙを標的タンパク質として使用し、その蛍光シグナルを測定して定量的な比較を可能にした。タグ付きｍＣｈｅｒｒｙで得られた蛍光測定値を、野生型ｍＣｈｅｒｒｙで得られた蛍光測定値に対して正規化した（左側の最初の２つのバー）。各データセットは、ＳｓｐＢの誘導なし（左）及びＳｓｐＢの誘導あり（右）での測定を含む。図４で、ｍＣｈｅｒｒｙの遺伝子発現を、強力なプロモーター（具体的にはｐＳＯＤ）により駆動した。 どのようにＴｒｆＡ分解タグ（野生型黄色ブドウ球菌）及びそのバリアント（すなわち、合成で生成されたＣｌｐプロテアーゼ認識配列を有するもの）が、タグ付けされた標的タンパク質の分解に対して異なる調節効果を有し得るか、かつどのようにアダプタータンパク質ＴｒｆＡ（野生型黄色ブドウ球菌由来）の発現を誘導しかつＴｒｆＡ分解タグ及びそのバリアントの使用と対にして、タグ付けされた標的タンパク質の分解を動的に制御することをさらに可能にするかを実証する。具体的には、レポータータンパク質ｍＣｈｅｒｒｙを標的タンパク質として使用し、その蛍光シグナルを測定して定量的な比較を可能にした。タグ付きｍＣｈｅｒｒｙで得られた蛍光測定値を、野生型ｍＣｈｅｒｒｙで得られた蛍光測定値に対して正規化した（左側の最初の２つのバー）。各データセットは、ＳｓｐＢの誘導なし（左）及びＳｓｐＢの誘導あり（右）での測定を含む。図４で、ｍＣｈｅｒｒｙの遺伝子発現を、弱いプロモーター（具体的にはＭｉｎ５）により駆動した。

詳細な説明
黄色ブドウ球菌のＴｒｆＡ。黄色ブドウ球菌のＴｒｆＡは、複数の役割、特に、タンパク質分解及び遺伝的能力に関与するアダプタータンパク質をコードする枯草菌のタンパク質分解アダプタータンパク質ｍｅｃＡに関連するアダプター遺伝子である。その欠失は、メチシリン感受性若しくはメチシリン耐性（ＭＲＳＡ）の臨床又は実験室の単離物のグリコペプチド中間体黄色ブドウ球菌（ＧＩＳＡ）誘導体においてオキサシリン及びグリコペプチド抗生物質に対する耐性のほぼ完全な喪失をもたらす。重要なことに、ＴｒｆＡアダプタータンパク質は、ＣｌｐＣＰと相互作用して、黄色ブドウ球菌におけるタンパク質分解を制御するのを助けることが見出されている。

特異性増強因子ＳｓｐＢ。ＳｓｐＢアダプタータンパク質は、広範囲の生物中に存在し、細胞プロテアーゼ、頻繁にはＣｌｐＸＰ又はＣｌｐＣＰプロテアーゼ複合体による分解についてｓｓｒＡタグ付きタンパク質を指示する。ＣｌｐＸＰとのＳｓｐＢの相互作用は、プロテアーゼ複合体の活性をさらに高めることが示されている。

ＣｌｐＸＰ。ＣｌｐＸＰは、構造化されていないタンパク質を認識し結合するように機能する４つのＣｌｐＸサブユニットと、ＡＴＰ依存性プロテアーゼとして機能する６つのＣｌｐＰサブユニットで形成されるタンパク質複合体である。ＣｌｐＸＰ複合体は、グラム陽性とグラム陰性生物の両方に見出され、細菌におけるタンパク質発現のための主たる品質制御機構の１つである。

以前の研究は、標的タンパク質のＣ末端にｓｓｒＡ分解タグを添加することによる、大腸菌における効果的なタンパク質分解を示した。制御は、ＳｓｐＢを介して達成され、ＳｓｐＢは上記のように、ＣｌｐＸＰプロテアーゼ複合体へのｓｓｒＡタグの効率的な結合に必要なアダプタータンパク質であり、その発現は、外因性誘導因子によって厳密に制御され得る。さらに、ｓｓｒＡタグの最後の３個のアミノ酸を変化させることは、ＳｓｐＢアダプタータンパク質の有無に関係なく、標的タンパク質分解の効率及び速度を調節することが示されている。

それにもかかわらず、本発明者らの知識によれば、コリネバクテリウム・グルタミカムにおける制御可能な誘導性異種タンパク質分解システムをうまく実証する、文献での特別な報告はない。さらに、本発明者らは、それ自体は天然プロテアーゼによる分解を誘発しない（又は最小限でしか誘導しない）が、大腸菌のＳｓｐＢ及び／又は黄色ブドウ球菌のＴｒｆＡの誘導発現時にそのような天然プロテアーゼによる顕著な分解のためのタグ付け基質を標的とする、新規な分解タグバリアントを開発した。

コリネバクテリウム・グルタミカムは、ビオチン制限下で大量のアミノ酸Ｌ−グルタミン酸を排出する能力により、日本で１９５７年に単離された。ここ数十年内に、Ｃ．グルタミカムは、アミノ酸の優れた生産プラットフォームであるように、また、有機酸を含む種々の他の代謝産物のために改変されてきた。さらに、コリネバクテリウムの固有の特性は、それを大規模な商業的生産のための優れた選択にする。このような固有の特性は、米国の生物学評価と研究のセンター及び米国の薬物評価と研究指針のセンターによってリストされているような所望の形質である病原性の欠如及び胞子形成能の欠如、並びにその高い成長速度、その相対的に制限された成長要件、低成長条件下での工業的なある株における自己分解の不在、コリネバクテリウムのゲノム自体の相対的安定性、及びコリネバクテリウム属を工業規模のタンパク質発現に非常に良好な宿主にさせることに寄与する天然の細胞外プロテアーゼ分泌の不在を含む。

これらの有望な特性にもかかわらず、合成生物学的生産のためのプラットフォームとしてのコリネバクテリウムの開発は、必須の細胞機能を損なうことなく、遺伝子転写、タンパク質分解、翻訳、及び所望の経路の全体的な活性を予測的に制御するための利用可能な合成生物学的ツールの欠如によって妨げられてきた。加えて、コリネバクテリウムにおける多様な遺伝子回路を開発し、その性能を完全に特徴付ける試みはまだ完了していない。さらに、大腸菌又は他の生物において開発され完成されたツールの多くは、必ずしもコリネバクテリウムに直接移せないか、又はコリネバクテリウムと相関せず、プラットフォーム生物としてのコリネバクテリウムにおける同様の機能性を開発するためにかなりの「回避策」を必要とする。そのため、ｓｓｒＡタグ化システムなどの遺伝子回路を同調させるためのツールの開発は、価値が付加された化合物を生成するコリネバクテリウムの代謝能力を完全にロック解除するために必要である。

加えて、天然の代謝酵素レベルの調節可能な制御は、生物燃料、生体高分子、及び治療特性を有する分子などの異種化合物の生成のためにコリネバクテリウム種の株を操作する重要な態様である。この状況では、ノックアウトは、高い力価の所望の化合物を生成するために細胞死又は障害をもたらし得る一方で、静的ノックダウンは、操作された株の不十分な成長及び／又は組換えタンパク質の不十分な発現などの望ましくない結果をもたらし、これらの全ては低い生産力価につながり得る。

本発明によれば、本発明者らは、コリネバクテリウム細胞での使用のための原核生物のｓｓｒＡタグ化システムを適合させた。本発明に従って改変された株は、適切な分解タグをそれらに付加することにより、１以上の標的タンパク質の調節可能な分解を可能にする。異なるタグを異なるタンパク質標的に付加でき、これは、並列制御システムのための単一生物における分解の程度と複数の誘導因子の使用の両方の点で、分解における差動制御を可能にする。レポーターシステムでは、シグナル検出と力学的分解能の競合要件は、追加のクローニング手順を必要とせずにバランスをとることができる。このシステムは、以前に記載したシステムに対しいくつかの利点を有する。分解は調節可能であり、複数のタンパク質標的に対して差動的に調節可能であり得る。分解タグは小さく、改変された宿主細胞内のタンパク質機能と干渉しにくい。タグのサイズは、ＰＣＲ増幅又はタグ付けベクターの使用によるタグ付き遺伝子の構築を単純化し、多くの遺伝子を並行してタグ付けできる。

本発明によれば、本発明者らは、大腸菌のＳｓｐＢアダプタータンパク質が天然のコリネバクテリウムのプロテアーゼと完全に適合性があり、この属における標的化タンパク質分解のためにｓｓｒＡタグシステムを使用する最初のデモンストレーションであることを実証した。本発明者らは、ｓｓｒＡタグのいくつかのバリアント（ＤＡＳ＋４バリアントなど）に基づくｓｓｒＡタグ付きタンパク質分解の一般的なパターンが、大腸菌とコリネバクテリウムの両方の間で一致することを確認した。本発明者らはまた、コリネバクテリウム中のＴｒｆＡアダプタータンパク質と結合された黄色ブドウ球菌ＴｒｆＡタグの使用を、ｓｓｒＡタグの代替として確認した。ｓｓｒＡ及びｔｒｆＡタグのアダプタータンパク質結合領域は、非常に異なっており、タグシステム間にクロストークはなく、成長サイクル中の異なる時点で複数のタンパク質の選択的標的化を潜在的に可能にする。最後に、本発明者らは、広く合理的に設計されたライブラリーのハイスループットスクリーニングにより、ＤＡＳ＋４ｓｓｒＡタグに対するいくつかの代替物の進化を実証した。新たに進化したｓｓｒＡタグが、ＳｓｐＢ又はＴｒｆＡアダプタータンパク質の非存在下でタンパク質分解のバックグラウンドレベルを低減することにより、より良好なダイナミックレンジを示し、一方でアダプターが誘導された後でも、タグ付きタンパク質を効率的に分解する。

重要な特徴
本発明のある重要な特徴は、ｓｓｒＡ及びｔｒｆＡタンパク質分解タグの使用を含む。これらのタグの両方は、２つの配列モチーフを含む。第１は、配列の第１の部分に含まれる、ＳｓｒＡ及びＴｒｆＡアダプタータンパク質の認識モチーフである。第２は、ＣｌｐＸＰなどの細胞プロテアーゼによって認識される分解モチーフを含むＣ末端の３個のアミノ酸である。３個の末端残基の正確なアミノ酸配列は、標的タンパク質の分解速度に影響する。以前に、ＤＡＳ＋４タグは、タンパク質分解速度のバランスに必須であることが証明された。本発明者らは、ＤＡＳ＋４タグよりも優れた活性を有する、ＱＰＳ、ＫＰＳ及びＤＱＡタグを含む新規タグを特定した。

微生物株の構築
アダプタータンパク質ＳｓｐＢ及びＴｒｆＡを、既知のＩＳエレメントの代替物としてＣ．グルタミカムの染色体に組込んだ。これらの部位を、天然のコリネバクテリウム代謝経路の破壊を最小にするように特異的に選択した。アダプターの遺伝子をいくつかの組込み部位の１つに配置し、レポータータンパク質に対するそれらの活性について試験した。使用した部位は、ＩＳＣｇ２ｃ、ＩＳＣｇ２ｅ、及びＩＳＣｇ６ｃであった。最終的に、部位ＩＳＣｇ６ｃを、最良の独立した調節を有する部位として選択した。２つのプロモーターをｓｓｐＢアダプター、具体的には、Ｃ．グルタミカムのリン酸誘導性プロモーター及びＣ．グルタミカム最適化した大腸菌のＴａｃプロモーターについて試験した。Ｔａｃプロモーターはまた、ｓｓｐＢアダプターオープンリーディングフレームの反対方向に配向されたｌａｃＩリプレッサーのＣ．グルタミカム最適化バージョンを含む。ｔｒｆＡアダプターを組込み、Ｔａｃプロモーターの制御下で、ＩＳＣｇ６ｃ染色体遺伝子座で試験した。ゲノム組込みは、隣接する相同性領域に基づく単一の交差ノックインを用いて先に記載したように行った。所望のノックインクローンをカナマイシン上での増殖を介して選択した。第２の単一の交差事象を、スクロース選択を用いて強制し、得られたコロニーを所望の変異体の存在についてスクリーニングした。最終的なＣ．グルタミカム株は、いかなる選択マーカーも含まなかった。

分解タグ
より良好に機能する分解タグを発見するために、本発明者らは、ｓｓｒＡ−ＤＡＳ＋４タグに取って代わる潜在的なｃ末端アミノ酸のライブラリーをスクリーニングした。ライブラリーは、以下の表２からの、カラム１＋カラム２＋カラム３中のアミノ酸の可能な組み合わせの各々を含む。以下の実施例により示されるように、本発明は、コリネバクテリウムにおけるタグ付きタンパク質の初期レベルと誘導分解速度の両方の独立した個別制御を可能にする分解タグバリアントを提供する。

実施例
方法及び材料：
以下の実施例では、以下の株を使用した。
（１）全ての実験について、Ｃ．グルタミカムＡＴＣＣ１３０３２を、元となるコリネバクテリウム株として使用した。
（２）Ｃ．グルタミカム−ｌａｃＩ−ｓｓｐＢを、コドン最適化大腸菌ｌａｃＩ（ｌａｃリプレッサー）により提供される抑制を有する大腸菌ｐＴａｃプロモーターの制御下で染色体組込みされたコドン最適化大腸菌ｓｓｐＢ遺伝子配列を用いて組換え操作した。
（３）Ｃ．グルタミカム−ｌａｃＩ−ｔｒｆＡを、コドン最適化大腸菌ｌａｃＩにより提供される抑制を有する大腸菌ｐＴａｃプロモーターの制御下で染色体組込みされたコドン最適化大腸菌ｔｒｆＡ遺伝子配列を用いて組換え操作した。
（４）大腸菌１０Ｇを、標準的なクローニング株として使用した。

以下の実施例において、以下のプラスミドを使用した。
ＣｇＤＶＫ−ｍＣｈｅｒｒｙは、ｐＳＯＤプロモーター（強力なプロモーター）又はＭｉｎ５プロモーター（弱いプロモーター）のいずれかの制御下でレポーター遺伝子（ｍＣｈｅｒｒｙ）を含むコリネバクテリウムシャトルベクターを示す。修飾された分解タグを含む全てのプラスミドを、このプラスミド骨格上のｍＣｈｅｒｒｙレポーター遺伝子のｃ末端を修飾することにより構築した。

形質転換 コリネバクテリウム株を、以下の表１に概説したタグ配列及び名称を有するｍＣｈｅｒｒｙ又はｍＣｈｅｒｒｙ−タグを発現するプラスミドで形質転換した。形質転換を、標準的なエレクトロポレーションプロトコールを用いて行った。形質転換体をＣａｓｏ−Ｋａｎ２５上で選択した。

表１．試験した精選分解タグの名前及びアミノ酸配列。試験されるタグをレポータータンパク質のＣ末端に付加し、続いて停止コドンを付加した。タグ配列は、アミノ酸フォーマットで示される。斜体で示される配列は、アダプタータンパク質（ＳｓｐＢ又はＴｒｆＡ）結合領域を表す。太字で示される配列は、細胞Ｃｌｐプロテアーゼにより認識される領域を表す。ｓｓｒＡ−ＬＡＡ及びｔｒｆＡ−ＶＡＡの配列は、天然宿主中のＷＴのアダプター／プロテアーゼ認識配列対を表す。

染色体上のｓｓｐＢ又はｔｒｆＡアダプター配列のいずれかを含む株を、ｋａｎ陽性選択マーカー及びｓａｃＢ陰性選択マーカーを含む自殺ベクターを用いる標準的な相同組換え技術を用いて作製し、最終的にマーカーのない修飾を得た。これらの操作した株を用いるプラスミド形質転換及びｍＣｈｅｒｒｙレポーターアッセイのプロトコルは、野生型コリネバクテリウムを使用する場合と同じである。

ＤＡＳ＋４変異体ライブラリーの構築及びスクリーニング。変異体を、ｐＣＢＭＫ−ｍＣｈｅｒｒｙ−ＤＡＳ＋４プラスミドからｐＳＯＤ−ｍＣｈｅｒｒｙ−ｓｓｒＡ−ＤＡＳ領域を増幅することによりギブソンアセンブリを用いて作製した。ライブラリーを作製するための変異を、リバースプライマーに導入した。増幅した領域を、ｐＺ８ベクターに挿入した。ギブソンアセンブリの生成物を、Ｃ．グルタミカムｌａｃＩ−ｓｓｐＢ株に直接エレクトロポレーションした。得られたコロニーを、Ｃａｓｏ＋Ｋａｎ２５選択上で再度選択した。

高スループットコロニー選択。選択プレートからの個々のコロニーを、自動化された液体ハンドラー上で機械の画像を介して採取し、６００μｌのＢＨＩ−Ｋａｎ２５に接種し、３０℃で一晩成長させた。一晩培養した物を、ＢＨＩ−Ｋａｎ２５又はＣＧＸＩＩ−Ｋａｎ２５のいずれかにさらに希釈し、アダプタータンパク質又はレポータータンパク質のいずれかの合成に必要とされるＩＰＴＧで誘導した。アッセイ培地の選択は、最終的な実験結果に顕著に影響を与えなかったが、ＢＨＩのバックグラウンド蛍光はＣＧＸＩＩのバックグラウンド蛍光よりも顕著に高かった。約４８時間後に、培養物からのアリコートを１：２０で２００μｌの水に希釈し、ＯＤ６５０及びｍＣｈｅｒｒｙ蛍光を、５８５ｎｍ〜６１５ｎｍの励起発光波長で測定した。

２つの９６ウェルプレートを、１８個の作成したライブラリーの各々から取り出し、最初にＢＨＩで培養した。ライブラリーが増殖したら、それらを、ＩＰＴＧを含むＣＧＸＩＩ培地と含まないＣＧＸＩＩ培地に播種して、ＳｓｐＢアダプタータンパク質の発現を誘導した。各培養物についての蛍光及び吸光度測定を、増殖の約４８時間後に行った。誘導培養物に対する非誘導培養物の蛍光の比を用いて、アッセイから最初の陽性ヒットを選択した。

最初のヒットを、詳細な成長曲線及び発現パターンを得るために、上記と同じプロトコルに従いＢｉｏＬｅｃｔｏｒマイクロバイオリアクターシステム（ｍ２ｐ−ｌａｂｓ ＧｍｂＨ、ドイツ）における４８ウェルプレートアッセイで２回目に確認した。プラスミドを、８つの最高性能単離物から単離した。ｍＣｈｅｒｒｙ及び新しいＤＡＳタグバリアントをコードする領域を配列決定して、最終的な変化を決定した。さらに、上位ヒットを、同じプロトコルに従い、より大きな培養容積で２回目に確認した。

結果：
Ｃ．グルタミカムにおけるＳｓｐＢ機能性の確認
標的タンパク質を選択的に分解する能力は、ｓｓｒＡ配列を結合し、かつ細胞Ｃｌｐプロテアーゼ複合体を介して標的タンパク質の分解を開始するのを助けるＳｓｐＢアダプタータンパク質の能力に依存する。ＳｓｐＢ／ｓｓｒＡシステムを大腸菌から単離した場合、まず、異種宿主におけるその機能性を決定することが不可欠であった。

その結果、ＳｓｐＢを、その活性のオン／オフ制御を有するために、誘導性プロモーターの制御（より正確には、誘導性ｌａｃリプレッサーｌａｃＩにより制御される構成的プロモーターｐＴａｃの結合）の下で、Ｃ．グルタミカム細胞の染色体に組込んだ。分解タグ（野生型ｓｓｒＡ分解タグ及びその合成バリアント、それらの配列を表１に提供する）を、ｍＣｈｅｒｒｙレポーターに付加し、宿主に導入した。得られたデータは、大腸菌ＳｓｐＢアダプタータンパク質が、Ｃ．グルタミカムにおける標的タンパク質の選択的分解を増加させる活性及び能力を維持することを示す。

具体的には、図２を参照して、標的タンパク質（この場合、ｍＣｈｅｒｒｙ）をｓｓｒＡ（ｍＣｈｅｒｒｙ−ＬＡＡ）によってタグ付けし強力なプロモーター（ｐＳＯＤ）により駆動した場合に、ほとんど全ての標的タンパク質がタンパク質分解されたことを見ることができる。ＳｓｐＢが誘導された場合には（ｍＣｈｅｒｒｙ−ＬＡＡ＋ｓｓｐＢ）、さらにより多くの標的タンパク質がタンパク質分解された。ｍＣｈｅｒｒｙレポーターが弱いプロモーター（Ｍｉｎ５）により駆動された場合には、分解速度は、ＳｓｐＢが誘導された場合とされない場合との間で同等であるようにみえた（図３）。

Ｃ．グルタミカムにおけるＴｒｆＡ機能性の検証
いくつかの宿主において広範に研究されてきたＳｓｐＢ／ｓｓｒＡシステムとは異なり、ＴｒｆＡアダプタータンパク質[配列番号４]の活性は、天然宿主の黄色ブドウ球菌においてのみ実証されている。さらに、改変されたＣｌｐ認識配列を用いる場合のＴｒｆＡ促進タンパク質分解の効率については、ほとんど研究されていない。いずれかの用途に使用する前に、任意の宿主におけるＴｒｆＡ活性の広範な検証が必要であった。ＴｒｆＡ機能を、最小限必要な活性のためのガイドとベースラインの両方としてＳｓｐＢ／ｓｓｒＡシステムを使用して評価した。図４及び図５は、ＴｒｆＡシステムが、野生型プロテアーゼ認識タグＴｒｆＡ［配列番号２２］を使用する場合に、Ｃ．グルタミカムにおけるＳｓｐＢシステムと比較して同様の様式で挙動することを実証する。２つのシステムは同様に機能するが、以下にさらに示すように、タンパク質分解速度論の効率に関して別々の特性を有するので、ＴｒｆＡシステム及びＳｓｐＢシステムは、２つの直交システムとして同じ宿主に組込むことができ、これは次に、少なくとも２つの異なる必須遺伝子の制御を必要とする、生合成生成法におけるタンパク質分解を微調整するための機構を提供する。

より良好に機能するタグバリアントのスクリーニング
タンパク質のＣ末端アミノ酸組成は、上記タンパク質が細胞プロテアーゼにより認識及び分解されるか否かに大きな役割を果たす。天然ｓｓｒＡ及びｔｒｆＡタンパク質分解タグは、それぞれ、標的タンパク質に付加された末端アミノ酸としてアミノ酸ＬＡＡ及びＶＡＡを特徴とする。これらの配列の両方は、アダプターが存在しなくても、標的タンパク質の迅速な分解をもたらす（図２〜３のｍＣｈｅｒｒｙ−ＬＡＡ及び図４〜５のｍＣｈｅｒｒｙ−ＬＡＡ参照）。この研究で試験したＤＡＳ及びＤＡＳ＋４配列などの、いくつかのバリアント配列が以前に探索された。しかし、本明細書で実証されるように、これらのタグのいずれかの付加は、アダプタータンパク質の誘導の前でさえ、細胞内の標的タンパク質の量を大幅に低下させるので、これらのタグのいずれも、誘導タンパク質分解の適用に最適ではない。標的タンパク質が細胞成長に必須なタンパク質である場合、存在するベースラインと比較して５０％超の低下は、細胞の健全さに対し非常に有害であり得る。

したがって、次の工程は、より良好な性能を示す、野生型と比較して改変されたプロテアーゼ認識配列（Ｃ末端領域の最後の３個のアミノ酸）、すなわち、アダプタータンパク質の非存在下で最小限のタンパク質分解を引き起こすがアダプタータンパク質の誘導発現後には高いレベルの分解を引き起こすタグを有するバリアントをスクリーニングすることであった。

これを行うために、本発明者らは、Ｃｌｐプロテアーゼ認識配列の合理的に設計されたコンビナトリアルライブラリーをスクリーニングするように設定した。このスクリーニングを、最終的な宿主生物であるＣ．グルタミカムに直接行った。アミノ酸及び対応するＤＮＡ配列を以下の表２及び３に示す。

表２．ｓｓｒＡ−ＤＡＳ＋４タグ／ｔｒｆＡ−ＤＡＳ＋４タグのより良好に機能するバリアントを選択するためにランダム化したライブラリーに組み込んだアミノ酸の組み合わせ。位置１、２、及び３は、それぞれ、ＤＡＳタグのアミノ酸Ｄ、Ａ、及びＳに対応する。

表３．新規ｓｓｒＡ−タグバリアント／ｔｒｆＡ−タグバリアントの選択に使用される各圧縮ライブラリーの破壊。ヌクレオチドの縮重ＩＵＰＡＣ名及び単一文字のアミノ酸の両方が、３つのランダム化された位置の各々においてスクリーニングされた各ライブラリーについて示される。

ライブラリーで宿主を形質転換した後、得られる形質転換体を、ＳｓｐＢ／ＴｒｆＡが存在しなかった場合の高レベルのレポータータンパク質とＳｓｐＢ／ＴｒｆＡ誘導後の低レベルのレポータータンパク質の両方についてスクリーニングした。このスクリーニングからの結果及び上位ヒットを表４に示す。最初のスクリーニングからの上位ヒットを用心深く選び、より大きな規模で再確認した。最後に、最良ヒットの機能性を、レポーター遺伝子の発現を駆動する複数のプロモーターにわたりｓｓｒＡとｔｒｆＡの両方の認識配列と対にして再びスクリーニングした。

表４．スクリーニングからの上位３つの機能的クローンを含む、スクリーニングからの８個の選択したプラスミドの配列決定により決定した新しいタグ配列。表中の「名前」は、プレートの位置による変異体を同定する。「配列」は、プラスミドの配列決定により評価されたＤＡＳバリアントのアミノ酸配列を指す。「スクリーニング１の比」は、最初のスクリーニングの間の非誘導条件下／誘導条件下でのｍＣｈｅｒｒｙ蛍光の比を指す。「ヒットピック比」は、スクリーニング１からの上位の機能的培養物を用心深く選び、再スクリーニングしてそれらの活性を検証した後のｍＣｈｅｒｒｙ蛍光の比を指す。

最終的に、選択したタグのいくつかが、以前に設計されたＤＡＳ＋４タグ、特に、ＫＰＳ＋４及びＤＧＡ＋４タグよりも良好な非誘導／誘導応答曲線を与えることが見いだされた（図２〜図５）。

具体的には、ＳｓｐＢシステムにおけるタンパク質分解に対する望ましい調節効果を示すバリアントを、図２及び図３に示す。これらのデータは、それによりＳｓｐＢがタンパク質分解を促進できる効率が、分解タグと標的遺伝子の発現を駆動するプロモーターの強度の両方に基づいて変化するという証拠をまとめて提供する。この発見は、必須タンパク質の早期分解が細胞死を引き起こす可能性があるので、重要であった。分解タグとアダプタータンパク質との望ましいペアリングは、標的タンパク質がタグ付けされた時に分解が最小であり、かつ顕著な分解がアダプタータンパク質の誘導時にのみ起こる場合を含む。ＳｓｐＢの誘導の前及び後の標的タンパク質シグナルの比（ここでは正規化蛍光強度の形態）を比較すると、ｓｓｒＡ−ＫＰＳ＋４タグ[配列番号１６]（ｍＣｈｅｒｒｙ−ＫＰＳ＋４＋ｓｓｐＢに対するｍＣｈｅｒｒｙ−ＫＰＳ＋４）がこの目的を達成することが分かる。より具体的には、タグ付けされたｍＣｈｅｒｒｙが強力なプロモーターにより駆動された場合、ある程度の分解（約７％）がＳｓｐＢの誘導の前にあったが、顕著な分解（約３２％）がＳｓｐＢの誘導後に観察されたことが分かる。図２を参照のこと。効果は、タグ付きｍＣｈｅｒｒｙが弱いプロモーターにより駆動された場合さらに顕著であった。この場合も、ある程度の分解（約７％）がＳｓｐＢの誘導の前にあったが、ＳｓｐＢの誘導後には、分解は劇的に増加した（約９３％）。

同様に、ＫＰＳ＋４タグ[配列番号３０]は、タグ付けされたｍＣｈｅｒｒｙがより強力なプロモーター（図４）又は弱いプロモーター（図５）により駆動されたか否かにかかわらず、ＴｒｆＡシステムにおけるタンパク質分解に対する望ましい調節効果を示した。

ＳｓｐＢシステムとＴｒｆＡシステムの間の限定されたクロストーク
上記のデータがＳｓｐＢ及びＴｒｆＡシステムはそれぞれ別々のシグナル配列を認識し、両方ともＣ．グルタミカム宿主細胞において活性を保持することをまとめて示すことを考慮して、本発明者らは、２つのアダプタータンパク質間にクロストークがあるか否かの調査に進んだ。２つのＴｒｆＡ及びＳｓｐＢシステムが、直交タグ化タンパク質の分解を引き起こすことなく、個々に機能できるならば、それは複数の細胞機能にわたり正確な時間制御を可能にする。例えば、第１のタグを使用して所望のバイオマスに到達したら、細胞の適合性において役割を果たす第１のタンパク質の分解を誘発することが可能である。その後、十分な量の中間体に到達したら、後の時点で第２の標的タンパク質の分解を誘発できるであろう。この時間的制御は、所望の生成物を生合成するのに最適な生成条件をうまく微調整するために重要である。この種の制御は、２つのタグが真に直交し、かつ他のタグの認識配列と交差反応しない場合にのみ可能である。これを、ＴｒｆＡアダプタータンパク質を含む株にｓｓｒＡタグ付きレポーターを導入し、ＳｓｐＢアダプタータンパク質を含む株にＴｒｆＡタグ付きレポーターを導入することにより試験した。ＷＴ ｔｒｆＡ及びｓｓｒＡ配列に加えて、いくつかの操作された配列も試験した。表５に提示されるデータは、２つのタンパク質分解システム間の重要でないクロストークを示し、その２つを並行して使用できることを示している。

表５．ＴｒｆＡ及びＳｓｐＢの特異性。ＴｒｆＡ及びＳｓｐＢアダプターをクロストークについてスクリーニングし、直交であることを見出した。レポーターのより大きな分解が、タグの種類が宿主アダプターと適合したときに観察された。分解を、アダプター誘導の前にレポーター濃度の百分位数として報告する。効果は、タグ付きレポーター遺伝子の強力な発現と弱い発現の両方について類似していた。

産業上の利用可能性／技術分野の記載
本開示は、食品、医薬、及び薬理学的産業における利用可能性を有する。本開示は一般に、改変された微生物株におけるタンパク質分解の計画的制御のための方法に関する。そのような改変は、関心のある化合物の生成の収率を向上させ、改変された細胞宿主への長期間の損傷を制限しながら、細胞環境全てにおいて最適化された化合物の持続期間を延長させる。

関心のある配列
配列番号１−ＷＴ ＳｓｐＢのＤＮＡ配列：

配列番号７ ＷＴ ｓｓｒＡタグのＤＮＡ配列：
GCCGCTAATGACGAAAACTATGCGCTTGCAGCA
配列番号８ ＷＴ ｓｓｒＡタグのアミノ酸配列：
AANDENYALAA
配列番号９ ｓｓｒＡ−ＤＡＳバリアントタグのＤＮＡ配列：
GCGGCGAATGATGAGAATTACGCTGACGCTTCG
配列番号１０ ｓｓｒＡ−ＤＡＳバリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYADAS
配列番号１１ ｓｓｒＡ−ＤＡＳ＋４バリアントタグのＤＮＡ配列：
GCGGCGAATGATGAGAATTACAGCGAGAACTACGCTGACGCTTCG
配列番号１２ ｓｓｒＡ−ＤＡＳ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYSENYADAS
配列番号１３ ｓｓｒＡ−ＤＱＰ＋４バリアントタグのＤＮＡ配列：
GCGGCGAATGATGAGAATTACAGCGAGAACTACGCTGATCAACCG
配列番号１４ ｓｓｒＡ−ＤＱＰ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
AAN DENYSENYADQP
配列番号１５ ｍＣｈｅｒｒｙ-ＳｓｒＡ−ＫＰＳ＋４ＤＮＡ：
GCGGCGAATGATGAGAATTACAGCGAGAACTACGCTAAGCCATCG
配列番号１６ ｓｓｒＡ−ＫＰＳ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYSENYAKPS
配列番号１７ ｓｓｒＡ−ＤＧＡ＋４バリアントタグのＤＮＡ配列：
GCGGCGAATGATGAGAATTACAGCGAGAACTACGCTGATGGCGCG
配列番号１８ ｓｓｒＡ−ＤＧＡ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYSENYADGA
配列番号１９ ｓｓｒＡ−ＤＧＳ＋４バリアントタグのＤＮＡ配列：
GCGGCGAATGATGAGAATTACAGCGAGAACTACGCTGATGGCTCG
配列番号２０ ｓｓｒＡ−ＤＧＳ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYSENYAＤＧＳ
配列番号２１ ＷＴ ＴｒｆＡタグのＤＮＡ配列：
GGCAAATCAAACAATAATTTCGCAGTAGCTGCC
配列番号２２ ＷＴ ｔｒｆＡタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFAVAA
配列番号２３ ｔｒｆＡ−ＤＡＳバリアントタグのＤＮＡ配列：
GGCAAATCAAACAATAATTTCGCAGACGCTTCG
配列番号２４ ｔｒｆＡ−ＤＡＳバリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFADAS
配列番号２５ ｔｒｆＡ−ＤＡＳ＋４バリアントタグのＤＮＡ配列：
GGCAAATCAAACAATAATTTCAGCAACAATTTCGCAGACGCTTCG
配列番号２６ ｔｒｆＡ−ＤＡＳ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFSNNFADAS
配列番号２７ ｔｒｆＡ−ＤＱＰ＋４バリアントタグのＤＮＡ配列：
GGCAAATCAAACAATAATTTCAGCAACAATTTCGCAGATCAACCG
配列番号２８ ｔｒｆＡ−ＤＱＰ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFSNNFADQP
配列番号２９ ｔｒｆＡ−ＫＰＳ＋４バリアントタグのＤＮＡ配列：
GGCAAATCAAACAATAATTTCAGCAACAATTTCGCAAAGCCATCG
配列番号３０ ｔｒｆＡ−ＫＰＳ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFSNNFAKPS
配列番号３１ ｔｒｆＡ−ＤＧＡ＋４バリアントタグのＤＮＡ配列：
GGCAAATCAAACAATAATTTCAGCAACAATTTCGCAGATGGCGCG
配列番号３２ ｔｒｆＡ−ＤＧＡ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFSNNFADGA
配列番号３３ ｔｒｆＡ−ＤＧＳ＋４バリアントタグのＤＮＡ配列：
GGCAAATCAAACAATAATTTCAGCAACAATTTCGCAGATGGCTCG
配列番号３４ ｔｒｆＡ−ＤＧＳ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFSNNFADGS
配列番号３５ ｓｓｒＡ−ＤＱＡ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYSENYADQA
配列番号３６ ｓｓｒＡ−ＱＰＳ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYSENYAQPS
配列番号３７ ｓｓｒＡ−ＨＰＰ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYSENYAHPP
配列番号３８ ｓｓｒＡ−ＤＱＳ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYSENYADQS
配列番号３９ ｓｓｒＡ−ＫＮＰ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYSENYAKNP
配列番号４０ ｓｓｒＡ−ＭＫＰ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYSENYAMKP
配列番号４１ ｓｓｒＡ−ＤＱＡバリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYADQA
配列番号４２ ｓｓｒＡ−ＱＰＳバリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYAQPS
配列番号４３ ｓｓｒＡ−ＨＰＰバリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYAHPP
配列番号４４ ｓｓｒＡ−ＤＱＳバリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYADQS
配列番号４５ ｓｓｒＡ−ＫＮＰバリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYAKNP
配列番号４６ ｓｓｒＡ−ＭＫＰバリアントタグのアミノ酸配列：
AANDENYAMKP
配列番号４７ ｔｒｆＡ−ＤＱＡ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFSNNFADQA
配列番号４８ ｔｒｆＡ−ＱＰＳ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFSNNFAQPS
配列番号４９ ｔｒｆＡ−ＨＰＰ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFSNNFAHPP
配列番号５０ ｔｒｆＡ−ＤＱＳ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFSNNFADQS
配列番号５１ ｔｒｆＡ−ＫＮＰ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFSNNFAKNP
配列番号５２ ｔｒｆＡ−ＭＫＰ＋４バリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFSNNFAMKP
配列番号５３ ｔｒｆＡ−ＤＱＡバリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFADQA
配列番号５４ ｔｒｆＡ−ＱＰＳバリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFAQPS
配列番号５５ ｔｒｆＡ−ＨＰＰバリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFAHPP
配列番号５６ ｔｒｆＡ−ＤＱＳバリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFADQS
配列番号５７ ｔｒｆＡ−ＫＮＰバリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFAKNP
配列番号５８ ｔｒｆＡ−ＭＫＰバリアントタグのアミノ酸配列：
GKSNNNFAMKP

Claims (22)

1. 第１の分解タグを発現するように組換え操作されたコリネバクテリウム種宿主細胞であって、前記第１の分解タグが、アダプター結合領域、任意のスペーサー領域、及びプロテアーゼ認識領域を含み、前記第１の分解タグの前記アダプター結合領域が、配列番号４と少なくとも９０％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むＴｒｆＡアダプタータンパク質を特異的に結合する、コリネバクテリウム種宿主細胞。
2. 前記第１の分解タグの前記プロテアーゼ認識領域が、ＴｒｆＡアダプタータンパク質が存在する場合にＣｌｐＣＰ、ＣｌｐＸＰ及びＣｌｐＡＰからなる群から選択されるプロテアーゼにより前記第１の分解タグによりタグ付けされた標的タンパク質が分解されることを可能にする、請求項１に記載の宿主細胞。
3. 前記第１の分解タグが、配列番号３０又は配列番号３２のアミノ酸配列を含む、請求項１に記載の宿主細胞。
4. 前記第１の分解タグが、配列番号２８、配列番号３４、配列番号４７、配列番号４８、配列番号４９、配列番号５０、配列番号５１、配列番号５２、配列番号５３、配列番号５４、配列番号５５、配列番号５６、配列番号５７、又は配列番号５８のアミノ酸配列を含む、請求項１に記載の宿主細胞。
5. 前記第１の分解タグが、配列番号２４又は配列番号２６のアミノ酸配列を含む、請求項１に記載の宿主細胞。
6. 第２の分解タグを発現するようにさらに組換え操作され、前記第２の分解タグが、アダプター結合領域、任意のスペーサー領域、及びプロテアーゼ認識領域を含み、前記第２の分解タグの前記アダプター結合領域が、配列番号２と少なくとも９０％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むＳｓｐＢアダプタータンパク質を特異的に結合する、請求項１〜５のいずれか一項に記載の宿主細胞。
7. 前記第２の分解タグの前記プロテアーゼ認識領域が、ＳｓｐＢアダプタータンパク質が存在する場合にＣｌｐＣＰ、ＣｌｐＸＰ及びＣｌｐＡＰからなる群から選択されるプロテアーゼにより前記第２の分解タグによりタグ付けされた標的タンパク質が分解されることを可能にする、請求項６に記載の宿主細胞。
8. 前記第２の分解タグが、配列番号１６又は配列番号１８のアミノ酸配列を含む、請求項６に記載の宿主細胞。
9. 前記第１の分解タグが、配列番号１４、配列番号２０、配列番号３５、配列番号３６、配列番号３７、配列番号３８、配列番号３９、配列番号４０、配列番号４１、配列番号４２、配列番号４３、配列番号４４、配列番号４５、又は配列番号４６のアミノ酸配列を含む、請求項１に記載の宿主細胞。
10. 前記第１の分解タグが、配列番号１０又は配列番号１２のアミノ酸配列を含む、請求項１に記載の宿主細胞。
11. コリネバクテリウム種宿主細胞における第１の標的タンパク質の分解を制御する方法であって、前記宿主細胞が、第１の分解タグを発現するようにかつ第１の異種生合成経路を介し第１の生成物を生成するように組換え操作されており、
    前記第１の標的タンパク質をタグ付けするように適合された第１の分解タグを発現すること；
    所望の成長速度が達されるまで前記宿主細胞を成長させること；及び
    ＴｒｆＡアダプタータンパク質の発現を誘導することであって、前記ＴｒｆＡアダプタータンパク質が、配列番号４と少なくとも９０％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、誘導すること
    を含み、
    前記宿主細胞中に存在する前記第１の標的タンパク質の量が、ＴｒｆＡアダプタータンパク質の発現が誘導される後に少なくとも約２０％減少し、かつそのような減少が、ＣｌｐＣＰ、ＣｌｐＸＰ及びＣｌｐＡＰからなる群から選択されるプロテアーゼによる分解により引き起こされる、方法。
12. 前記第１の標的タンパク質が、前記宿主細胞の成長に必須なタンパク質である、請求項１１に記載の方法。
13. 前記第１の標的タンパク質の存在が、前記第１の生成物を生成するための前記第１の異種生合成経路において負のフィードバックとして機能する、請求項１１に記載の方法。
14. 前記第１の標的タンパク質が、前記第１の生成物を代謝し、それにより前記第１の生成物の収集可能な量を低下させる、請求項１１に記載の方法。
15. ＴｒｆＡアダプタータンパク質の発現が、温度変化、ｐＨ変化、光への暴露により及び／又は宿主細胞内の所与の分子レベルを変化させることにより誘導される、請求項１１に記載の方法。
16. 前記第１の分解タグのＣ末端の最後の３個のアミノ酸配列が、ＤＱＰ、ＫＰＳ、ＤＧＡ、ＤＧＳ、ＤＱＡ、ＫＮＰ、ＱＰＳ、ＭＫＰ、ＤＱＳ、及びＨＰＰからなる群から選択される、請求項１１に記載の方法。
17. 前記宿主細胞が、第２の分解タグを発現するようにかつ第２の異種生合成経路を介し第２の生成物を生成するようにさらに組換え操作されており、
    前記第２の標的タンパク質をタグ付けするために前記第２の分解タグを発現すること；
    所望の成長速度が達されるまで前記宿主細胞を成長させること；及び
    ＳｓｐＢアダプタータンパク質の発現を誘導することであって、前記ＳｓｐＢアダプタータンパク質が、配列番号２と少なくとも９０％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、誘導すること
    をさらに含み、
    前記宿主細胞中に存在する前記第２の標的タンパク質の量が、前記ＳｓｐＢアダプタータンパク質の発現が誘導される後に少なくとも約２０％減少し、かつそのような減少が、ＣｌｐＣＰ、ＣｌｐＸＰ及びＣｌｐＡＰからなる群から選択されるプロテアーゼによる分解により引き起こされる、請求項１１〜１６のいずれか一項に記載の方法。
18. 前記第２の標的タンパク質が、前記宿主細胞の成長に必須なタンパク質である、請求項１７に記載の方法。
19. 前記第２の標的タンパク質の存在が、前記第２の生成物を生成するための前記第２の異種生合成経路における負のフィードバックとして機能する、請求項１７に記載の方法。
20. 前記第２の標的タンパク質が、前記第２の生成物を代謝し、それにより前記第２の生成物の収集可能な量を低下させる、請求項１７に記載の方法。
21. 前記ＳｓｐＢアダプタータンパク質の発現が、温度変化、ｐＨ変化、光への暴露により及び／又は宿主細胞内の所与の分子レベルを変化させることにより誘導される、請求項１７に記載の方法。
22. 前記第２の分解タグのＣ末端の最後の３個のアミノ酸配列が、ＤＱＰ、ＫＰＳ、ＤＧＡ、ＤＧＳ、ＤＱＡ、ＫＮＰ、ＱＰＳ、ＭＫＰ、ＤＱＳ、及びＨＰＰからなる群から選択される、請求項１７に記載の方法。

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