JP2022102451A - 空間用ウイルス不活性化剤及びウイルス不活性化方法 - Google Patents

Abstract

【課題】空間に放散することで安全にウイルス対策を行うことができるようにする。【解決手段】空間用ウイルス不活性化剤は、ベンジルアルコールをウイルス不活性化の有効成分として含有している。【選択図】図４

Description

本発明は、例えば部屋等に存在するウイルスを不活化させる空間用ウイルス不活性化剤及びウイルス不活性化方法に関する。

近年、感染症対策などで衛生意識が高まり、特にウイルスへの対策に注目が集まっている。ウイルス対策としては、消毒液を対象物に吹きかける対物処理が行われる場合が多い。このようなウイルス対策用の消毒液は有効成分としてエタノールを含んだものが一般的だが、この他にも、特許文献１に開示されている過酸化水素を含むもの、特許文献２に開示されている第４級アンモニウム塩を含むもの等が知られている。

また、空間用のウイルス対策剤として、例えば特許文献３に開示されている二酸化塩素ガスを用いたものも知られている。

特開２００９－４０７６０号公報 特開２０１３－４０１６７号公報 特開２０１５－１６５８９１号公報

ところで、感染症の原因となるウイルスはどこに付着しているか分からないことが多いので、特許文献１、２に開示されている対物処理だけではウイルス対策が十分とは言い難い場合がある。また、ウイルスは空気中に浮遊している場合もあり得る。

そこで、特許文献３に開示されている二酸化塩素を用いて空間全体を処理する方法が考えられるが、二酸化塩素は高濃度では安全性の面で懸念があるため、高濃度の二酸化塩素ガスによって短時間で空間を処理するという使用方法は一般家庭では難しい。また、二酸化塩素はそれ自体が不安定であるため、亜塩素酸塩と酸との化学反応等によって発生させる必要があるところ、安定した濃度で気中に放散するのが困難である。このため、二酸化塩素は剤型や使用方法について一定の制約があり、多種多様なニーズに応えることが難しいという課題がある。つまり、二酸化塩素ガスに代わる空間用ウイルス不活性化剤が求められている。

本発明は、かかる点に鑑みてなされたものであり、その目的とするところは、安全かつ安定しており、空間に放散することでウイルス対策を行うことができる空間用ウイルス不活性化剤及びウイルス不活性化方法を提供することにある。

上記目的を達成するために、第１の開示は、ベンジルアルコールをウイルス不活性化の有効成分として含有することを特徴とする空間用ウイルス不活性化剤である。

第２の開示は、ベンジルアルコールをウイルス不活性化の有効成分として空間に放散することを特徴とするウイルス不活性化方法である。

この構成によれば、ウイルス不活性化の有効成分としてベンジルアルコールを空間に放散させることにより、空気中に浮遊しているウイルスのみならず、当該空間内の物に付着しているウイルスも不活性化することができる。

ベンジルアルコールは、ジャスミンなどの香りの前駆体として天然に存在し、食品添加物としても用いられる化合物であり、安全性も高い。また化合物として安定しているため、安定した濃度で気中に放散させることができる。

第３の開示では、前記ベンジルアルコールを噴射剤と共に収容したエアゾール容器から前記ベンジルアルコールを空間に噴射することを特徴とするものである。この構成によれば、ベンジルアルコールを勢いよく空間に噴射することが可能になるとともに、広範囲に拡散させることが可能になる。

第４の開示では、前記ベンジルアルコールを含浸体に含浸させておき、当該含浸体に対して送風することにより、前記ベンジルアルコールを空間に放散させることを特徴とするものである。この構成によれば、ベンジルアルコールを長時間に亘って継続して空間に放散させることができ、ベンジルアルコールによる効果が継続して得られる。

第５の開示では、前記ベンジルアルコールの気中濃度が０．０５ｐｐｍ以上となるように前記ベンジルアルコールを空間に放散させることができる。これにより、ウイルスの不活性化効果がより一層高まる。

以上説明したように、ベンジルアルコールをウイルス不活性化の有効成分として空間に放散することにより、空気中に浮遊しているウイルス及び物に付着しているウイルスを不活性化してウイルス対策を安全に行うことができる。

本発明の実施形態１に係る空間用ウイルス不活性化器具を上方から見た斜視図である。 空間用ウイルス不活性化器具の縦断面図である。 カートリッジを上方から見た斜視図である。 本発明の実施形態２に係るエアゾール製品の斜視図である。 インフルエンザウイルスに対する空間接触効果を示すグラフである。 ネコカリシウイルスに対する空間接触効果を示すグラフである。 インフルエンザウイルスに対する直接接触効果を示すグラフである。 ネコカリシウイルスに対する直接接触効果を示すグラフである。 アンモニアに対する消臭効果を示すグラフである。 イソ吉草酸に対する消臭効果を示すグラフである。 ジアセチルに対する消臭効果を示すグラフである。 トリメチルアミンに対する消臭効果を示すグラフである。 メルカプタンに対する消臭効果を示すグラフである。

以下、本発明の実施形態を図面に基づいて詳細に説明する。尚、以下の好ましい実施形態の説明は、本質的に例示に過ぎず、本発明、その適用物或いはその用途を制限することを意図するものではない。

（実施形態１）
図１は、本発明の実施形態１に係る空間用ウイルス不活性化器具１を上方から見た斜視図である。本実施形態１の空間用ウイルス不活性化器具１の形状や構造はあくまでも一例であり、図示する形状や構造に限られるものではない。

空間用ウイルス不活性化器具１は、カートリッジ２（図２及び図３に示す）と、カートリッジ２が着脱自在に装着される装置本体５とを備えている。この実施形態１の説明では、説明の便宜を図るために、各図に示すように空間用ウイルス不活性化器具１の長手方向一側を前側とし、長手方向他側を後側とする。そして、空間用ウイルス不活性化器具１を前側から見たときに右となる側を右とし、左となる側を左とする。

まず、図２及び図３に示すように、カートリッジ２の構成について説明する。カートリッジ２は、ケース３と、ベンジルアルコールをウイルス不活性化の有効成分として含有する液剤（空間用ウイルス不活性化剤）を保持する液剤保持体（含浸体）４とを備えている。ケース３は、液剤保持体４を収容する収容体である。液剤保持体４に保持される液剤としては、常温で揮発する性質を有する液剤として、ベンジルアルコールをウイルス不活性化の有効成分として含有している空間用ウイルス不活性化剤を挙げることができる。空間用ウイルス不活性化剤を液剤保持体４に含浸させることによって保持させてもよいし、液剤保持体４の表面に付着させることによって保持させてもよい。空間用ウイルス不活性化剤には、ベンジルアルコール以外の成分が含まれていてもよい。

液剤保持体４は、連続する波形をなすように折り曲げ成形したプリーツ形状の布材で構成されている。布材としては、例えば不織布や織布等を用いることができるが、これら以外にも通気性を有し、かつ、液剤を保持することができるもの（通気性を有する発泡材等）であればよく、特に限定されない。液剤保持体４の全体に略均一に液剤が保持されている。

ケース３の上壁部には空気流通孔３ａが形成されている。また、図２に示すように、ケース３の下壁部にも空気流通孔３ｂが形成されている。

（装置本体５の構成）
図１及び図２に基づいて装置本体５の構成について説明する。装置本体５は、ベース部材３０と、送風機としてのファン５０と、ファン５０を駆動する電動モーター５１と、電動モーター５１に電力を供給する電池（図示せず）とを有している。ファン５０、電動モーター５１及び電池は、装置本体５のベース部材３０に収容されるようになっている。

すなわち、ベース部材３０は、例えば樹脂材を成形してなるものである。ベース部材３０の略中央部に電動モーター５１が固定されている。電動モーター５１の出力軸５１ａには、ファン５０の中心部が回転一体に固定されている。ファン５０は、周知のものであり、電動モーター５１によって回転駆動されると、上方から空気を吸い込んで側方から流出させるように送風する。

ファン５０の上方には、液剤保持体４を含むカートリッジ２を交換可能に収容するためのカートリッジ収容空間Ｒが形成されている。このカートリッジ収容空間Ｒは、装置本体５と、該装置本体５に取り付けられたカバー４０とによって形成された空間である。

図２に示すように、装置本体５のベース部材３０の左右両側には、ファン５０によって液剤保持体４に送風された空気を放出するための液剤放散孔５５がそれぞれ形成されている。液剤放散孔５５の上流端は、装置本体５におけるファン５０が配設された空間に連通している。液剤放散孔５５を流通した空気は矢印イで示すように空間用ウイルス不活性化器具１の外方へ向けて流れ易くなる。

図１に示すように、カバー４０は、例えば樹脂材を成形してなるものであり、カートリッジ収容空間Ｒを上方から覆うように形成されている。カバー４０には空気流通孔４０ａが形成されている。

（空間用ウイルス不活性化器具１の動作）
次に、空間用ウイルス不活性化器具１の動作について説明する。空間用ウイルス不活性化器具１の電源を入れると、電動モーター５１が作動する。電動モーター５１が作動すると、ファン５０が回転駆動され、ファン５０の上方から空気を吸い込んで側方から流出させる。この空気の流れにより、図２に矢印ロで示すようにカバー４０の上方の空気がカバー４０の空気流通孔４０ａからカートリッジ収容空間Ｒに吸入される。カートリッジ収容空間Ｒには、カートリッジ２が収容されているので、吸入された空気は、カートリッジ２に向けて流れて、カートリッジ２のケース３の上部に形成されている流入用開口部３ａからケース３の内部に流入する。ケース３の内部に流入した空気は、ケース３の下壁部に形成された空気流通孔３ｂからケース３の外部に流出する。ケース３の外部に流出した液剤を含む空気は、装置本体５の左右の液剤放散孔５５、５５にそれぞれ流入した後、図２に矢印イで示すように、各液剤放散孔５５から外部の空間に放散される。

尚、空間用ウイルス不活性化器具の構成は、これに限定されない。カートリッジ２のみで、空間用ウイルス不活性化器具を構成してもよい。この場合、強制的に空気を送るのではなく、空気の自然対流によって空間用ウイルス不活性化剤を空間に放散、拡散させることができる。また、カートリッジ２のケース３を省略し、空間用ウイルス不活性化剤を保持した保持体のみで、空間用ウイルス不活性化剤を空間に放散、拡散させるようにしてもよい。

（実施形態２）
図４は、本発明の実施形態２に係る空間用ウイルス不活性化エアゾール製品１００の斜視図である。エアゾール製品１００は、ウイルス不活性化の有効成分としてのベンジルアルコールを含有する空間用ウイルス不活性化剤と、噴射剤と、空間用ウイルス不活性化剤及び噴射剤を収容したエアゾール容器１０１と、噴射ボタン１０２と、噴射バルブ１０３とを備えている。空間用ウイルス不活性化剤には、ベンジルアルコール以外の成分が含まれていてもよい。噴射剤は、エアゾール容器１０１に収容されている空間用ウイルス不活性化剤を空間へ噴射させるためのものであり、例えば液化石油ガス（ＬＰＧ）やジメチルエーテル（ＤＭＥ）等である。液化石油ガスとジメチルエーテルの一方のみ用いてもよいし、任意の比率で混合して用いてもよい。

エアゾール容器１０１は従来から周知の耐圧性を有する金属製容器を用いることができる。エアゾール容器１０１の上部には、噴射バルブ１０３が取り付けられている。この噴射バルブ１０３は、噴射ボタン１０２によって操作され、上下方向に移動するとともにエアゾール容器１０１に収容されている内容物を吐出するための吐出管（図示せず）と、吐出管を上方に付勢するバネ等からなる付勢部材（図示せず）と、弁体（図示せず）とを有している。吐出管は上下方向に延びる姿勢とされており、上昇端位置にあるときには弁体によって吐出管の下端部（上流端部）が閉じられてエアゾール容器１０１の内部と吐出管とが連通しないようになる一方、吐出管が上昇端位置から下方へ押動操作されると吐出管の下端部が開かれてエアゾール容器１０１の内部と吐出管とが連通して内容物が吐出管の上端部から吐出されるように、上記バルブ機構が構成されている。

噴射ボタン１０２には、吐出管に連通する噴射ノズル１０２ａが形成されている。また、噴射ボタン１０２には、当該噴射ボタン１０２を押し下げ操作したときに、その位置で固定される図略のロック機構が設けられている。したがって、噴射ボタン１０２を押し下げ操作すると、吐出管が押し下げられた状態で固定される結果、吐出管の下端部が開かれた状態で保持されるので、内容物の全量が噴射ノズル１０２ａから噴射される。つまり、このエアゾール容器１０１は全量噴射型である。

尚、全量噴射型ではなく、一般的なエアゾール容器であってもよい。すなわち、噴射ボタンが押し下げ操作されている間だけベンジルアルコールが噴射され、噴射ボタンの操作を解除するとベンジルアルコールの噴射が停止する構成であってもよい。ただし、ベンジルアルコールの過剰な噴射を防止するという観点では、定量性を有するエアゾール容器が好ましく、この点では、一回に一定量を噴射する定量噴射型のエアゾール容器１０１であってもよい。この場合、例えば特開２０１４－２８６３１号公報に記載されている容器を使用することもできる。

（ウイルス不活性化方法）
次に、ウイルス不活性化方法について説明する。ウイルス不活性化方法は、実施形態１の空間用ウイルス不活性化器具１を用いて実行することができるとともに、実施形態２のエアゾール製品１００を用いて実行することもできる。対象となる空間は、例えば一般家庭の部屋、事務所、店舗、教室、各種イベントスペース、車両の室内、航空機の室内、船舶の室内等を挙げることができるが、これら以外の空間を対象とすることもできる。

すなわち、実施形態１の空間用ウイルス不活性化器具１を用いる場合、空間用ウイルス不活性化器具１を動作させることで、ベンジルアルコールをウイルス不活性化の有効成分として空間に放散することができる。空間用ウイルス不活性化剤の放散量は、液剤保持体４に保持させる空間用ウイルス不活性化剤の量によって調整できる。単位時間当たりの空間用ウイルス不活性化剤の放散量は、液剤保持体４に保持させる空間用ウイルス不活性化剤の量、ファン５０による送風量、液剤保持体４の表面積等によって調整できる。

また、実施形態２のエアゾール製品１００の場合、噴射ボタン１０２を押すことで、ベンジルアルコールをウイルス不活性化の有効成分として空間に放散することができる。空間用ウイルス不活性化剤の放散量は、エアゾール容器１０１に収容されている空間用ウイルス不活性化剤の量によって調整できる。単位時間当たりの空間用ウイルス不活性化剤の放散量は、噴射バルブ１０３の流量、噴射ノズル１０２ａのノズル径等によって調整できる。

実施形態１及び実施形態２のいずれの場合も、空間用ウイルス不活性化剤を空間に放散する前に部屋の戸や窓を閉めておくのが好ましいが、空間用ウイルス不活性化剤を空間に放散した直後に部屋の戸や窓を閉めてもよい。また、空間用ウイルス不活性化剤を空間に放散した後、所定時間経過後に当該空間を換気するのが好ましいが、ベンジルアルコールの気中濃度が極めて低濃度であれば、換気は不要である。また、実施形態１及び実施形態２のいずれの場合も、被処理空間の大きさに合わせて空間用ウイルス不活性化剤の放散量を設定することができるとともに、単位時間当たりの空間用ウイルス不活性化剤の放散量を設定することができる。これにより、被処理空間内のベンジルアルコールの気中濃度を適切な範囲に調整できる。

被処理空間内のベンジルアルコールの気中濃度の上限は、人体への影響を考慮して設定する。常時放散する剤型（実施形態１）の場合は慢性毒性を考慮する必要があり、この場合はベンジルアルコールの気中濃度が５．５６５ｐｐｍ以下、好ましくは５．００ｐｐｍ以下となるようにベンジルアルコールの放散量を設定するのが好ましい。一方、全量噴霧エアゾール（実施形態２）など、単発的に使用して使用後には換気をすることが前提のような剤型であれば単回毒性で良い場合があり、この場合は、気中濃度が２０００ｐｐｍ以下、好ましくは１５００ｐｐｍ以下となるようにベンジルアルコールの放散量を設定するのが好ましい。

実施形態１及び実施形態２のいずれの場合も、ベンジルアルコールの気中濃度が０．０５ｐｐｍ以上となるようにベンジルアルコールの放散量を設定するのが好ましい。これにより、各種ウイルスを不活性化することができる。本実施形態に係る空間用ウイルス不活性化剤及びそれを使用した空間用ウイルス不活性化方法は、例えばインフルエンザウイルス、ネコカリシウイルス等を不活性化することができる。

次に、本発明の実施例について説明するが、本発明は実施例に限定されるものではない。

（空間接触によるウイルス不活性化試験）
本試験は、ベンジルアルコールを有効成分とする空間用ウイルス不活性化剤を空間に揮発させ、当該空間内の物体表面のウイルスへの不活性化効果を確認したものである。
１．容積が１０Ｌのガラスシリンダーを設置し、ガラスシャーレに入れた目的量のベンジルアルコール（空間用消臭剤）をガラスシリンダー内に入れておく。ベンジルアルコールの量は０．００２ｍｇであり、ベンジルアルコールの全量が揮発すると、ガラスシリンダー内のベンジルアルコールの気中濃度は０．０５ｐｐｍとなる。また、ベンジルアルコールの量を０．０００９ｍｇとすることで、ガラスシリンダー内のベンジルアルコールの気中濃度は０．０２ｐｐｍとなる。
２．調湿用の飽和水溶液をガラスシリンダー内に入れる。
３．ウイルス５０μＬを２ｃｍ×２ｃｍの金巾布に塗布する。
４．当該金巾布を前記ガラスシリンダー内に配置し、揮発したベンジルアルコールを含む空気に、３０分間または１時間接触させる。
５．接触後の金巾布をガラスシリンダーから取り出し、マイクロチューブに入れる。
６．ＰＢＳ（リン酸緩衝液）３５０μＬを金巾布に浸透させるように入れ、上下にＰＢＳを移動させるようにマイクロチューブを叩く。
７．金巾布およびＰＢＳを入れたマイクロチューブの底部に熱したピンセットで穴をあけるとともに、その下に別のマイクロチューブを重ねる。２つのマイクロチューブを重ねた状態で、２５℃・１００００ｒｐｍで1分間遠分離する。
８．サンプル数×８のマイクロチューブを用意し、４５０μＬずつＤＭＥＭを分注しておく。
９．遠心分離後に、下のマイクロチューブに落ちたウイルス液を５０μＬとって、ＤＭＥＭを分注したマイクロチューブの１つに入れて希釈する。希釈後のウイルス液を５０μＬとって、前記同様に順次８段階希釈する。
１０．培養各細胞を培養した培養プレート用意し、各ウェルの培養液をアスピレーターで抜いておく。
１１．８段階に希釈したウイルス液を、それぞれ５０μＬウェルに分注する。
１２．３７℃、二酸化炭素５％のインキュベーターで６０分インキュベートする。
１３．反応後に、ウイルス液を除去し、ＤＭＥＭを各ウェルに１００μＬずつ打ち、４日間培養する。

このとき、インフルエンザウイルスの場合は、ＤＭＥＭ１００μＬ／ｗｅｌｌ＋３０μｇ／ｍＬ Ｔｒｙｐｓｉｎとなるように、各ウェルに混合液を注ぐ。
１４．エタノール：酢酸＝４：１（重量比）を各ウェルに１００μＬ程度注ぎ、固定化する。時間は、４０分程度である。
１５．固定化液を除いた後、アミドブラック０．５％ｉｎ４５％エタノール，１０％酢酸を３０μＬずつ注ぎ、細胞を染色する。
１６．水を溜めた容器にプレートごと浸し、細胞が傷つかないように染色液を洗い流す。
１７．常法によりウイルス感染価ＴＣＩＤ_５０を求めた。

以上の工程（工程１～１７）をインフルエンザウイルスと、ネコカリシウイルスとで行った。また、ブランクを用意し、ブランクでは上記工程１においてベンジルアルコールを入れず、上記工程４におけるウイルスとベンジルアルコールとの空間接触を行わない。また、上記工程１でガラスシリンダー内のベンジルアルコールの濃度を０．０２ｐｐｍ、０．０５ｐｐｍ、０．１ｐｐｍの３つに変えた試験系も用意し、それぞれについて、インフルエンザウイルスとネコカリシウイルスで試験を行った。

インフルエンザウイルスを用いた試験結果を図１０のグラフに示す。上記工程４で、インフルエンザウイルスをベンジルアルコールに３０分間空間接触させた場合と、１時間空間接触させた場合とを行っており、グラフの左側が３０分間空間接触させた場合を示し、グラフの右側が１時間空間接触させた場合を示している。ベンジルアルコールの濃度が０．０２ｐｐｍであってもインフルエンザウイルスを不活化する効果が得られるが、ベンジルアルコールの濃度が０．０５ｐｐｍ以上では、１時間空間接触させることでインフルエンザウイルスを９９％以上不活化させることができる。

ネコカリシウイルスを用いた試験結果を図１１のグラフに示す。ベンジルアルコールの濃度が０．０２ｐｐｍであっても１時間空間接触させれば、ネコカリシウイルスを不活化する効果が得られるが、ベンジルアルコールの濃度が０．０５ｐｐｍ以上では、１時間空間接触させることでネコカリシウイルスを９９％以上不活化させることができる。

（抗ウイルス効果の持続試験）
空間に放散された空間用ウイルス不活性化剤（ベンジルアルコール）は、少なくともその一部が空間内の物体の表面に付着する。本試験は、空間をベンジルアルコールで処理した後、当該空間内の物体表面にベンジルアルコールが付着したことを想定したもので、ベンジルアルコールが付着した後、当該物体表面における抗ウイルス作用がどれだけ持続するかを確認したものである。
１．２×２ｃｍの金巾布に指定量のベンジルアルコールを塗布し、解放空間にて指定日数（３日、７日、１４日、２１日）静置する。
２．指定日数経過後の金巾布に、インフルエンザウイルス、またはネコカリシウイルスを５０μＬ塗布し、２時間（ＩＳＯ基準）直接接触させる。
３．接触後の金巾布をマイクロチューブに入れる。
４．ＰＢＳ（リン酸緩衝液）３５０μＬを金巾布に浸透させるように入れ、上下にＰＢＳを移動させるようにマイクロチューブを叩く。
５．金巾布およびＰＢＳを入れたマイクロチューブの底部に熱したピンセットで穴をあけるとともに、その下に別のマイクロチューブを重ねる。２つのマイクロチューブを重ねた状態で、２５℃・１００００ｒｐｍで1分間遠分離する。
６．サンプル数×８のマイクロチューブを用意し、４５０μＬずつＤＭＥＭを分注しておく。
７．遠心分離後に、下のマイクロチューブに落ちたウイルス液を５０μＬとって、ＤＭＥＭを分注したマイクロチューブの１つに入れて希釈する。希釈後のウイルス液を５０μＬとって、前記同様に順次８段階希釈する。
８．培養細胞を培養した培養プレートを用意し、各ウェルの培養液をアスピレーターで抜いておく。
９．８段階に希釈したウイルス液を、それぞれ５０μＬウェルに分注する。
１０．３７℃、二酸化炭素５％のインキュベーターで６０分インキュベートする。
１１．反応後に、ウイルス液を除去し、ＤＭＥＭを各ウェルに１００μＬずつ打ち、４日間培養する。

このとき、インフルエンザウイルスの場合は、ＤＭＥＭ１００μＬ／ｗｅｌｌ＋３０μｇ／ｍＬ Ｔｒｙｐｓｉｎとなるように、各ウェルに混合液を注ぐ。
１２．エタノール：酢酸＝４：１（重量比）を各ウェルに１００μＬ程度注ぎ、固定化する。時間は、４０分程度である。
１３．固定化液を除いた後、アミドブラック０．５％ｉｎ４５％エタノール，１０％酢酸を３０μＬずつ注ぎ、細胞を染色する。
１４．水を溜めた容器にプレートごと浸し、細胞が傷つかないように染色液を洗い流す。
１５．常法によりウイルス感染価ＴＣＩＤ_５０を求めた。

以上の工程（工程１～１５）をインフルエンザウイルスと、ネコカリシウイルスとで行った。また、ブランクを用意し、ブランクでは工程１でベンジルアルコールの塗布を行わない。

インフルエンザウイルスを用いた試験結果を図７のグラフに示す。ベンジルアルコールの気中濃度３２ｐｐｍで空間を処理した場合と、４９ｐｐｍで空間を処理した場合を想定し、指定日数が３日間、７日間、１４日間、２１日間のそれぞれについて試験している。なお、ベンジルアルコールの気中濃度３２ｐｐｍで空間を処理すると想定した場合、例えば３．６ｍ×３．６ｍ×２．４ｍの部屋であれば、処理後にベンジルアルコールの全量が床面に付着すると考えた場合、その２ｃｍ×２ｃｍの領域には約１．４μｇのベンジルアルコールが付着する。そこで、３２ｐｐｍ想定の試験では、工程１において金巾布に塗布するベンジルアルコールの指定量を１．４μｇとした。同様に、ベンジルアルコールの気中濃度４９ｐｐｍで空間を処理すると想定した場合、２ｃｍ×２ｃｍの領域には２．１μｇのベンジルアルコールが付着する。そこで、４９ｐｐｍ想定の試験では、工程１において金巾布に塗布するベンジルアルコールの指定量を２．１μｇとした。

図７に示すように、ベンジルアルコールの気中濃度３２ｐｐｍ以上で空間を処理すれば、当該処理後、空間内の物体表面に付着したベンジルアルコールによって７日間にわたってインフルエンザウイルスを９９．９％以上不活化させることができる。

ネコカリシウイルスを用いた試験結果を図８のグラフに示す。図８に示すように、ベンジルアルコールの気中濃度４９ｐｐｍ以上で空間を処理すれば、当該処理後、空間内の物体表面に付着したベンジルアルコールによって７日間にわたってネコカリシウイルスを９９％以上不活化させることができる。

（浮遊ウイルス不活化試験）
次に、空気中に浮遊しているウイルス（浮遊ウイルス）の不活化試験について説明する。本試験における供試剤は、ベンジルアルコールを含む全量噴霧型エアゾールである。具体的には、表２に示すような組成のエアゾール剤としてエアゾール容器に収容し噴射ボタンを押し下げることで内容物の全量を噴霧するように構成されている。試験空間は、２畳程度の部屋を想定したチャンバーであり、具体的には、幅１８６ｃｍ、奥行１８６ｃｍ、高さ１８６ｃｍの大きさである。この試験空間で供試剤を全量噴霧したときのベンジルアルコールの気中濃度は２６ｐｐｍである。
１．ディープフリーザーに－４０℃で保管している大腸菌ファージを取り出し室温で融解させる。尚、本試験では、インフルエンザウイルス等の代わりに、大腸菌ファージを使用するが、大腸菌ファージはエンベロープウイルスに近い構造をしており、インフルエンザウイルス等の代替になると考えられる。
２．生理食塩水１０ｍＬに対して大腸菌ファージ１０μＬを加え攪拌する。
３．ネブライザーにファージ液を入れ、チャンバー内に１５分間噴霧する。
４．ファージ液の噴霧開始とほぼ同時に、供試剤の噴霧を開始する（全量噴霧が完了するまで数十秒程度 ）。
５．噴霧開始から１５分後、３０分後、１時間後、２時間後、３時間、４時間後のそれぞれのタイミングで、浮遊しているファージをインピンジャーにて回収する。
６．１．５ｍＬ滅菌チューブにＬＢ 液体培地を４５０μＬ加える。
７．回収したファージ液を前記１．５ｍＬチューブに加え、１０－５まで段階希釈を行う。
８．ファージ用の大腸菌の前培養液を５０ｍＬコニカルチューブに移し１５００ｒｐｍで１５分間遠心分離を行う。
９．遠心後、１０ｍＬまでメスアップする。
１０．新しい１．５ｍＬ滅菌チューブに大腸菌液を３５０μＬ分注する。
１１．チューブに分注した大腸菌液に、ファージ液の希釈液３５０μＬを加え、混合液とする。
１２．ＬＢ寒天培地（シャーレまたはＬＢ６穴プレート）を冷蔵庫から取り出し、４０℃インキュベーターに移動する。
１３．恒温槽で４０℃～４３℃に調整したＬＢソフトアガーに混合液を１００μＬ（６穴プレートを用いる場合）または２００μＬ（シャーレを用いる場合）加える。
１４．混合液を加えたソフトアガーを寒天培地に全量注ぎ、一定時間放置し固まるまで待つ。
１５．固まった後のシャーレ、または６穴プレートを４０℃のインキュベーターに保管し、２４時間後プラークを確認する。

試験結果を表１に示す。

ブランクは、工程４で供試剤による処理を行わないチャンバーである。ブランクにおける時間は、上記工程５の時間である。実施例は、上記工程３においてチャンバー内でファージ液を噴霧した直後に、チャンバー内で供試剤を全量噴霧した例である。表１における実施例の時間は、空間用ウイルス不活性化剤の噴射完了時からの経過時間であり、上記工程４の時間と殆ど同じである。

表１に示すように、実施例では噴射完了から１５分経過すると、大腸菌ファージが９９％以上不活化し、噴射完了から２時間経過すると、大腸菌ファージが９９．９９％以上不活化する。

（アンモニアに対する消臭効果確認試験）
本願発明者らの検討により、本発明の空間用ウイルス不活性化剤の有効成分であるベンジルアルコールは、空間での消臭効果があることが確認された。以下、この消臭効果について説明する。

本試験は、ベンジルアルコールを有効成分とする空間用ウイルス不活性化剤を空間に揮発させ、当該空間内の悪臭成分に対する消臭効果を確認した。すなわち、ベンジルアルコールが液の状態ではなく、蒸気の状態で空間に放散された場合における効力を確認したものである。

まず、家庭内の各種悪臭の一つであるアンモニアに対する空間用ウイルス不活性化剤による消臭効果確認試験について説明する。
１．容積が１０Ｌのガラスシリンダーを用意し、そのガラスシリンダーの上端をガラス製の蓋で閉塞し、下端も同様に閉塞する。
２．ガラスシリンダー内にろ紙（ＡＤＶＡＮＴＥＣ，Ｎｏ５Ａ，９０ｍｍ）を入れたシャーレを置いた。ろ紙にアンモニアを塗布した。アンモニアは、０．４％水溶液で準備し、その水溶液を０．２５ｍＬ塗布した。
３．ガラスシリンダー内にアンモニアが充満するまで待ち、充満した後、ろ紙をガラスシリンダーから取り出す。
４．別のろ紙に供試剤を所定量塗布し、ガラスシリンダー内に置く。供試剤は、空間用ウイルス不活性化剤（ベンジルアルコール）である。０．００２２ｍｇのベンジルアルコールをろ紙に塗布した。全量が揮発すると、ガラスシリンダー内のベンジルアルコールの気中濃度は０．０５ｐｐｍとなる。
５．供試剤を塗布したろ紙をガラスシリンダー内に置いて蓋をした直後から経過時間を測定するとともに、所定時間経過毎に、検知管を使用してガラスシリンダー内の気中の悪臭成分の濃度を測定した。検知管は、「ガステック 気体検知管 Ｎｏ．３６Ｌ アンモニア」である。

測定結果は図９のグラフに示す通りとなった。図９に示すグラフの横軸は経過時間であり、縦軸はブランクと比較した悪臭除去率（供試剤による悪臭除去率）である。ブランクは、工程４において供試剤を塗布したろ紙をガラスシリンダー内に置かない場合である。悪臭除去率Ａは以下の式で算出した。

Ａ＝（ブランクの測定値－供試剤を使用した場合の測定値）／ブランクの測定値×１００（％）

グラフに示すように、供試剤による悪臭除去率は、３０分経過時には６３％、１時間経過時には６７％、２時間経過時には８０％、３時間経過時には１００％であり、ガラスシリンダー内の空間に処理した後、３時間経過することで略全てのアンモニアがガラスシリンダー内から除去された。なお、芳香消臭脱臭剤協議が定めている判断基準では、同様の試験（ガラスシリンダーの代わりにエアーバッグを使用）で悪臭成分の９０％除去時間が１０時間以内であれば消臭効果ありとしている。今回は３時間で１００％除去だったので、上記判断基準に照らし、アンモニアに対する消臭効果があったといえる。

（イソ吉草酸に対する消臭効果確認試験）
次に、家庭内の各種悪臭の一つであるイソ吉草酸に対する空間用ウイルス不活性化剤による消臭効果確認試験について説明する。試験系はアンモニアの試験と同様である。異なる点は、工程２において、ろ紙にイソ吉草酸を塗布した点である。イソ吉草酸は、０．４％水溶液で準備し、その水溶液を０．３ｍＬ塗布した。工程５において濃度測定に用いた検知管は、「ガステック 気体検知管 Ｎｏ．８１Ｌ 酢酸」である。

測定結果は図１０のグラフに示す通りとなった。図１０に示すグラフの横軸は経過時間であり、縦軸はブランクと比較した悪臭除去率（供試剤による悪臭除去率）である。ブランクは、工程４において供試剤を塗布したろ紙をガラスシリンダー内に置かない場合である。悪臭除去率の算出式はアンモニアの試験と同じである。

グラフに示すように、供試剤による悪臭除去率は、１時間経過時には１３％、２時間経過時には３８％、３時間経過時には６２％、４時間経過時には８７％、５時間経過時には１００％であり、ガラスシリンダー内の空間に処理した後、５時間経過することで略全てのイソ吉草酸がガラスシリンダー内から除去されたので、消臭効果があったといえる。

（ジアセチルに対する消臭効果確認試験）
次に、家庭内の各種悪臭の一つであるジアセチルに対する空間用ウイルス不活性化剤による消臭効果確認試験について説明する。試験系はアンモニアの試験と同様である。異なる点は、工程２において、ろ紙にジアセチルを塗布した点である。ジアセチルは、０．１％溶液をイオン交換水で希釈し、３００μＬ塗布した。工程５において濃度測定に用いた検知管は、「ガステック 気体検知管 アセトアルデヒド」である。

測定結果は図１１のグラフに示す通りとなった。図１１に示すグラフの横軸は経過時間であり、縦軸はブランクと比較した悪臭除去率（供試剤による悪臭除去率）である。ブランクは、工程４において供試剤を塗布したろ紙をガラスシリンダー内に置かない場合である。悪臭除去率の算出式はアンモニアの試験と同じである。

グラフに示すように、供試剤による悪臭除去率は、３０分経過時には５０％、１時間経過時には１００％であり、ガラスシリンダー内の空間に処理した後、１時間経過することで略全てのジアセチルがガラスシリンダー内から除去されたので、消臭効果があったといえる。

（トリメチルアミンに対する消臭効果確認試験）
次に、家庭内の各種悪臭の一つであるトリメチルアミンに対する空間用ウイルス不活性化剤による消臭効果確認試験について説明する。試験系はアンモニアの試験と同様である。異なる点は、工程２において、ろ紙にトリメチルアミンを塗布した点である。トリメチルアミンは、０．１％溶液をイオン交換水で希釈し、３００μＬ塗布した。工程５において濃度測定に用いた検知管は、「ガステック 気体検知管 アミン類」である。

測定結果は図１２のグラフに示す通りとなった。図１２に示すグラフの横軸は経過時間であり、縦軸はブランクと比較した悪臭除去率（供試剤による悪臭除去率）である。ブランクは、工程４において供試剤を塗布したろ紙をガラスシリンダー内に置かない場合である。悪臭除去率の算出式はアンモニアの試験と同じである。

グラフに示すように、供試剤による悪臭除去率は、１時間経過時、２時間経過時及び３時間経過時には５０％、４時間経過時及び５時間経過時には７５％、６時間経過時には８５％、７時間経過時には９０％であり、ガラスシリンダー内の空間に処理した後、７時間経過することで大部分のトリメチルアミンがガラスシリンダー内から除去されたので、消臭効果があったといえる。

（メルカプタンに対する消臭効果確認試験）
次に、家庭内の各種悪臭の一つであるメルカプタンに対する空間用ウイルス不活性化剤による消臭効果確認試験について説明する。試験系はアンモニアの試験と同様である。異なる点は、工程２において、ろ紙にメルカプタン標準液を２００μＬ塗布した点である。工程５において濃度測定に用いた検知管は、「ガステック 気体検知管 メルカプタン」である。

測定結果は図１３のグラフに示す通りとなった。図１３に示すグラフの横軸は経過時間であり、縦軸はブランクと比較した悪臭除去率（供試剤による悪臭除去率）である。ブランクは、工程４において供試剤を塗布したろ紙をガラスシリンダー内に置かない場合である。悪臭除去率の算出式はアンモニアの試験と同じである。

グラフに示すように、供試剤による悪臭除去率は、１時間経過時には４０％、２時間経過時には４４％、３時間経過時及び４時間経過時には５０％、５時間経過時には６０％、６時間経過時には６５％、７時間経過時には８０％であり、ガラスシリンダー内の空間に処理した後、７時間経過することで大部分のメルカプタンがガラスシリンダー内から除去された。尚、他の消臭剤（高吸水性ポリマーによる市販の消臭剤、および公知の消臭成分である緑茶エキス）でメルカプタンに対する消臭試験を同様に行うと、いずれも７時間経過後の除去率は６０％以下であった。従って、他の消臭成分と比較して、ベンジルアルコールはメルカプタンに対する有効な消臭効果を示すといえる。

（トリクロロアニソールに対する消臭効果確認試験）
次に、家庭内の各種悪臭の一つであるトリクロロアニソール（２，４，６－トリクロロアニソール）に対する空間用ウイルス不活性化剤による消臭効果確認試験について説明する。なお、トリクロロアニソールの濃度を測定するための適当な検知管が入手できなかったことから、官能試験により消臭効果を確認した。
１．容積が１０Ｌのガラスシリンダーを用意し、そのガラスシリンダーの上端をガラス製の蓋で閉塞し、下端も同様に閉塞する。
２．４μｇ／ｍｌトリクロロアニソールｉｎ９９％エタノール１ｍＬをろ紙に滴下し、このろ紙をガラスシリンダー内に入れる。
３．ガラスシリンダー内にトリクロロアニソールが充満するまで待ち、充満した後、ろ紙をガラスシリンダーから取り出す。
４．別のろ紙に供試剤を所定量塗布し、ガラスシリンダー内に置く。供試剤は、空間用ウイルス不活性化剤（ベンジルアルコール）である。０．００２２ｍｇのベンジルアルコールをろ紙に塗布した。全量が揮発すると、ガラスシリンダー内のベンジルアルコールの気中濃度は０．０５ｐｐｍとなる。
５．供試剤を塗布したろ紙をガラスシリンダー内に置いて蓋をした直後から１時間経過した時点でのガラスシリンダー内のにおいを官能で確認した。尚、トリクロロアニソールの濃度は、東京家政大学オフフレーバー研究会の官能パネルの異臭識別能力測定法でのＴＣＡ濃度を参考にして設定した。

また、ブランクも用意した。ブランクは、工程４において、供試剤を塗布したろ紙をガラスシリンダー内に置かない場合である。

官能評価の被験者は１５人とした。無臭を「０」、やっと感知できるにおいを「１」、何のにおいであるかが分かる弱いにおいを「２」、らくに感知できるにおいを「３」、強いにおいを「４」、強烈なにおいを「５」として、各被験者にブランクと供試剤とでそれぞれ０～５の数字を示してもらった。その結果、１５人の平均値がブランクでは２．３３であったのに対し、供試剤の場合は１であった。芳香消臭脱臭剤協議会 消臭剤効力試験方法より、ブランクと比較して臭気強度が１段階以上低減しているため、供試剤による高い消臭効果が得られるといえる。

（ノネナールに対する消臭効果確認試験）
次に、家庭内の各種悪臭の一つであるノネナールに対する空間用ウイルス不活性化剤による消臭効果確認試験について説明する。試験系は、トリクロロアニソールの場合と同様である。異なる点は、工程２において、０．４％ノネナールｉｎ９９％エタノール０．４ｍＬをろ紙に滴下した点である。

官能評価の方法はノネナールの場合と同じである。官能評価の結果、１５人の平均値がブランクでは４．３３であったのに対し、供試剤の場合は３．２であった。芳香消臭脱臭剤協議会 消臭剤効力試験方法より、ブランクと比較して臭気強度が１段階以上低減しているため、供試剤による高い消臭効果が得られるといえる。

（黄色ぶどう球菌に対する効力試験）
また、本願発明者らの検討により、本発明の空間用ウイルス不活性化剤の有効成分であるベンジルアルコールは、除菌・抗菌の効果があることも確認されている。そこで次に、空間用ウイルス不活性化剤による効力試験として、黄色ぶどう球菌に対する効力試験について説明する。供試菌は、Staphlococcus aureus（黄色ブドウ球菌）NBRC12732：グラム陽性球菌である。前培地として、ニュートリエント液体培地（普通寒天培地の寒天抜き）を調製し、坂口フラスコに約３００ｍｌずつ分注する。坂口フラスコに綿線をセットし、オートクレーブで滅菌する。液体培地は体温程度まで下がれば使用可とする。継代培養中の菌を１白金耳取り、液体培地中に播種する。培養室の振盪培養器にて、４８時間振盪培養する。これにより、およそ10^8ＣＦＵ／ｍｌになる。なお、ニュートリエント液体培地は、１０００ｍｌ中、肉エキス５．０ｇ、ペプトン１０．０ｇ、塩化ナトリウム５．０ｇ、イオン交換水１０００ｇとしている。

本試験では、まず、10^7ＣＦＵ／ｍｌに調製した菌懸濁液１０ｍｌを摂取し、遠心分離機にかける。得られた菌の沈殿の上澄みを捨て、１ｍｌの生理食塩水を加えることで10^6ＣＦＵ／ｍｌの菌液を調製する。10^6ＣＦＵ／ｍｌに調製した菌液２００μｌを摂取し、２ｃｍ×２ｃｍの金巾布に塗布する。１０Ｌシリンダー内に、金巾布と、プラスチック製カップに入れた供試剤を別々に入れ、８時間と２４時間反応させる。供試剤は、空間用ウイルス不活性化剤（ベンジルアルコール） １３２μｌであり、１０Ｌシリンダー内で自然蒸散する。

反応後、金巾布から菌を洗い出し、10^-1～10^-5までＳＣＤＬＰ液体培地で希釈し、２００μｌをＳＣＤＬＰ寒天培地に播種する。４８時間後にコロニー数をカウントする。

試験結果は、８時間後、ブランクの場合は生菌数が590000ＣＦＵ／ｍｌであったのに対し、空間用ウイルス不活性化剤の場合は０ＣＦＵ／ｍｌであった。つまり、除菌率は９９．９９％以上であった。２４時間後、ブランクの場合は生菌数が105000ＣＦＵ／ｍｌであったのに対し、空間用ウイルス不活性化剤の場合は０ＣＦＵ／ｍｌであった。つまり、除菌率は９９．９９％以上であった。

なお、この供試剤がすべて蒸散したと仮定すれば、１０Ｌシリンダー内におけるベンジルアルコールの気中濃度は最大で２．９ｐｐｍとなる。ただし実際に蒸散したベンジルアルコールの量は初期量の７．５％程度だったので、本試験における１０Ｌシリンダー内の気中濃度は０．２ｐｐｍ程度であった。

（大腸菌に対する効力試験）
次に、空間用ウイルス不活性化剤による効力試験として、大腸菌に対する効力試験について説明する。供試菌は、Escherichia coli （大腸菌）である。前培地は「黄色ぶどう球菌に対する試験」で使用したものと同じである。ただし、振盪培養器による振盪培養は２４時間とする。これにより、およそ10^8ＣＦＵ／ｍｌになる。

本試験では、まず、10^7ＣＦＵ／ｍｌに調製した菌懸濁液１０ｍｌを摂取し、遠心分離機にかける。得られた菌の沈殿の上澄みを捨て、１ｍｌの生理食塩水を加えることで10^6ＣＦＵ／ｍｌの菌液を調製する。10^6ＣＦＵ／ｍｌに調製した菌液２００μｌを摂取し、２ｃｍ×２ｃｍの金巾布に塗布する。１０Ｌシリンダー内に金巾布と、プラスチック製カップに入れた供試剤を別々に入れ、８時間と２４時間反応させる。供試剤は、空間用ウイルス不活性化剤（ベンジルアルコール） １３２μｌであり、１０Ｌシリンダー内で自然蒸散する。

反応後、金巾布から菌を洗い出し、10^-1～10^-5までＳＣＤＬＰ液体培地で希釈し、２００μｌをＳＣＤＬＰ寒天培地に播種する。２４時間後にコロニー数をカウントする。

試験結果は、８時間後、ブランクの場合は生菌数が6000000ＣＦＵ／ｍｌであったのに対し、空間用ウイルス不活性化剤の場合は０ＣＦＵ／ｍｌであった。つまり、除菌率は９９．９９％以上であった。２４時間後、ブランクの場合は生菌数が6000000ＣＦＵ／ｍｌであったのに対し、空間用ウイルス不活性化剤の場合は０ＣＦＵ／ｍｌであった。つまり、除菌率は９９．９９％以上であった。

なお、この供試剤がすべて蒸散したと仮定すれば、１０Ｌシリンダー内におけるベンジルアルコールの気中濃度は最大で２．９ｐｐｍとなる。ただし実際に蒸散したベンジルアルコールの量は初期量の７．５％程度だったので、本試験における１０Lシリンダー内の気中濃度は０．２ｐｐｍ程度であった。

同様の試験条件において、ベンジルアルコールの気中濃度最大２．９ｐｐｍ（供試剤としてはベンジルアルコール１３２ｍｇ）、気中濃度最大１ｐｐｍ（供試剤としてはベンジルアルコール４６．５５ｍｇ）、気中濃度最大０．１ｐｐｍ（供試剤としてはベンジルアルコール４．６５ｍｇ）、気中濃度最大０．０１ｐｐｍ（供試剤としてはベンジルアルコール０．４７ｍｇ）、気中濃度最大０．００１ｐｐｍ（供試剤としてはベンジルアルコール０．０４７ｍｇ）で、それぞれ金巾布と８時間の反応させた場合の結果について説明する。これらいずれの気中濃度であっても、生菌数が０ＣＦＵ／ｍｌであり、除菌率は９９．９９％以上であった。すなわち、ベンジルアルコールの気中濃度は少なくとも０．００１ｐｐｍあれば十分な除菌効果が得られる。

（空間用ウイルス不活性化器具を使用した場合の試験結果）
次に、空間用ウイルス不活性化器具１による効力試験として、大腸菌に対する効力試験について説明する。供試菌は、Escherichia coli （大腸菌）である。前培地は、「黄色ぶどう球菌に対する試験」で使用したものと同じである。本試験では、まず、10^7ＣＦＵ／ｍｌに調製した菌懸濁液１０ｍｌを摂取し、遠心分離機にかける。得られた菌の沈殿の上澄みを捨て、１ｍｌの生理食塩水を加えることで10^6ＣＦＵ／ｍｌの菌液を調製する。10^6ＣＦＵ／ｍｌに調製した菌液２００μｌを摂取し、２ｃｍ×２ｃｍの金巾布に塗布する。

ピートグラディーチャンバー（縦１．８２ｍ×横１．８２ｍ×高さ１．８２ｍ）の底面の中央に空間用ウイルス不活性化器具１を静置する。この空間用ウイルス不活性化器具１の液剤保持体４には、空間用ウイルス不活性化剤としてのベンジルアルコールを２．０ｇ含浸させた。

ピートグラディーチャンバーの底面の空間用ウイルス不活性化器具１から３０ｃｍ離れた箇所（第１箇所）、６０ｃｍ離れた箇所（第２箇所）、９０ｃｍ離れた箇所（第３箇所）、１２０ｃｍ離れた箇所（第４箇所）にそれぞれ金巾布を設置する。また、ピートグラディーチャンバーの側面に、底面から上方へ６０ｃｍ離れた箇所（第５箇所）、底面から上方へ１２０ｃｍ離れた箇所（第６箇所）、底面から上方へ１８０ｃｍ離れた箇所（第７箇所）にそれぞれ金巾布を設置する。この状態で、空間用ウイルス不活性化器具１のファン５０を２４時間作動させる。

その後、金巾布から菌を洗い出し、10^-1～10^-5までＳＣＤＬＰ液体培地で希釈し、２００μｌをＳＣＤＬＰ寒天培地に播種する。２４時間後にコロニー数をカウントする。ブランクの場合は生菌数が20025000ＣＦＵ／ｍｌであった。これに対し、上記第１箇所、第２箇所、第３箇所、第４箇所では、生菌数が０ＣＦＵ／ｍｌであった。つまり、除菌率は９９．９９％以上であった。一方、上記第５箇所では、生菌数が３３６ＣＦＵ／ｍｌであり、第６箇所では、生菌数が１５６ＣＦＵ／ｍｌであったが、いずれも、除菌率は９９．９９％以上であった。

試験終了後にベンジルアルコールの蒸散量に基づいてピートグラディーチャンバー内におけるベンジルアルコールの気中濃度を算出したところ、０．０１１ｐｐｍであった。

なお、黄色ぶどう球菌については、世界保健機構（ＷＨＯ）の指針でバイオセーフティーレベル２の取り扱いが必要なため、上記のような空間（ピートグラディーチャンバー）での試験が困難という事情がある。しかしながら前記「黄色ぶどう球菌に対する試験」で示したように、ベンジルアルコールを蒸散させれば、黄色ぶどう球菌に対しても大腸菌と同様に良好な除菌効果が得られる。したがって上記のような空間（ピートグラディーチャンバー）においても、室内用空間除菌器具１を用いてベンジルアルコールを蒸散させることにより、黄色ぶどう球菌に対しても十分な除菌効果が得られると言える。

（大腸菌に対する効力試験）
次に、解放系における大腸菌に対する効力試験結果について説明する。まず、試験片として２ｃｍ×２ｃｍの金巾布を用意し、この金巾布をオートクレーブで滅菌する。その後、ベンジルアルコール溶液（１３２μｌ）を自然蒸散させ、金巾布に付着させる。この金巾布を３日、７日、１０日、１４日、２３日、３６日の間、開放系に静置する。規定日数静置した試験片それぞれに1.0×10＾6ＣＦＵ／ｍｌの大腸菌を１００μｌ塗布した後、２４時間培養し、ＳＣＤＬＰ液体培地で洗い出し、５段階希釈後、ＳＣＤＬＰ寒天培地に塗布し24時間培養する。その後、コロニー数をカウントした。

この結果、解放系において供試剤としてのベンジルアルコール付着後３日および７日間静置した金巾布の除菌率は、９９．９９％以上であった。すなわち、解放系においてベンジルアルコールの抗菌作用は少なくとも７日間は維持される。

次に、同様の試験を閉鎖系で行った結果について説明する。上記同様に減菌した金巾布に対して、ベンジルアルコール５０％溶液（２６０μｌ）を自然蒸散させて付着させる。この金巾布を３日、７日、１０日、１４日、２３日、３６日の間、閉鎖系（蓋を閉じたタッパー内）に静置する。規定日数静置した試験片それぞれに1.0×10＾6ＣＦＵ／ｍｌの大腸菌を１００μｌ塗布した後、１２時間培養し、ＳＣＤＬＰ液体培地で洗い出し、５段階希釈後、ＳＣＤＬＰ寒天培地に塗布し２４時間培養する。その後、コロニー数をカウントした。

この結果、閉鎖系においてベンジルアルコール付着後３日、７日、１０日、１４日、２３日および３６日間静置した金巾布のいずれも、除菌率は９９．９９％であった。すなわち、閉鎖系においてはベンジルアルコールの抗菌作用は少なくとも３６日間維持される。

（抗かび試験）
次に、抗かび試験（真菌に対する試験）について説明する。供試菌は白癬菌である。

まず、胞子懸濁液を作製する。始めに、かびスラント１本に０．０５％ポリソルベート８０－生理食塩水１０ｍｌを添加する。激しく混和し、薬さじ等でスラントから削り取るように胞子を充分に分散させる。胞子懸濁液を滅菌ガーゼ（７５ｍｍ×７５ｍｍ）でろ過し、ろ液を10^7個／ｍｌとなるように０．０５％ポリソルベート８０－生理食塩水で適宣希釈し、単一胞子懸濁液とする。必要な液量分、これを繰り返す。

次いで接触方法について説明する。１０Ｌシリンダーを用意し、２ｃｍ×２ｃｍの金巾布に調整した菌懸濁液を１００μｌ塗布する。金巾布を入れたシャーレと、ベンジルアルコール５０％液２６０ｍｇを１０Ｌシリンダー内に入れ、２４時間空間接触させる。試験結果は、シャーレ内に殆どかびが見られなかった。尚、ブランクとしたイオン交換水では、シャーレ内の約半分の領域にかびの発生が見られた。

以上説明したように、本実施形態によれば、ウイルス不活性化の有効成分としてベンジルアルコールを空間に放散させることにより、空気中に浮遊しているウイルスのみならず、物に付着しているウイルスも不活性化することができる。また、ベンジルアルコールを有効成分として含有しているので、安定しているとともに、高い安全性を確保できる。

上述の実施形態はあらゆる点で単なる例示に過ぎず、限定的に解釈してはならない。さらに、特許請求の範囲の均等範囲に属する変形や変更は、全て本発明の範囲内のものである。

以上説明したように、本発明に係る空間用ウイルス不活性化剤及び方法は、例えば家庭内や事務所、店舗等で使用することができる。

１ 空間用ウイルス不活性化器具
２ カートリッジ
４ 液剤保持体（含浸体）
５０ ファン

Claims (5)

1. ベンジルアルコールをウイルス不活性化の有効成分として含有することを特徴とする空間用ウイルス不活性化剤。
2. ベンジルアルコールをウイルス不活性化の有効成分として空間に放散することを特徴とするウイルス不活性化方法。
3. 請求項２に記載のウイルス不活性化方法におい
   て、
   前記ベンジルアルコールを噴射剤と共に収容したエアゾール容器から前記ベンジルアルコールを空間に噴射することを特徴とするウイルス不活性化方法。
4. 請求項２に記載のウイルス不活性化方法において、
   前記ベンジルアルコールを含浸体に含浸させておき、当該含浸体に対して送風することにより、前記ベンジルアルコールを空間に放散させることを特徴とするウイルス不活性化方法。
5. 請求項２から４のいずれか１つに記載のウイルス不活性化方法において、
   前記ベンジルアルコールの気中濃度が０．０５ｐｐｍ以上となるように前記ベンジルアルコールを空間に放散させることを特徴とするウイルス不活性化方法。
   

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