JP2021525283A

JP2021525283A - ＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤を含む癌の予防または治療用薬学的組成物

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Publication number: JP2021525283A
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Inventors: チョン、ジェ−ウォン; チョン、ジュン−グ
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Abstract

本発明は、ＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤を含む癌の予防または治療用薬学的組成物等に関し、本発明によるＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤は、癌環境内で腫瘍浸潤リンパ球および細胞毒性Ｔリンパ球の数を増加させ、骨髄由来抑制細胞の数を減少させると共に、癌の成長および発達を効果的に抑制できるので、多様な癌の治療に免疫治療剤として効果的に使用され得るものと期待される。【選択図】図１２

Description

本発明は、ＣＤ３００ｃタンパク質の発現抑制剤または活性抑制剤を含む薬学的組成物等に関する。

癌は、現代人の死亡原因において最も大きい比重を占めている疾患の一つであり、様々な原因によって発生した遺伝子の突然変異により正常細胞が変化して発生した疾病であって、正常な細胞の分化、増殖、成長形態等に従わない腫瘍のうち悪性のものを指す。癌とは、「制御されない細胞成長」と特徴づけられ、このような異常な細胞成長によって腫瘍と呼ばれる細胞塊が形成されて、周囲の組織に浸透し、ひどい場合には、身体の他の器官に転移したりする。癌は、手術、放射線および薬物療法等で治療をしても、多くの場合に、根本的な治癒にならず、患者に苦痛を与え、究極的には、死に至らしめる難治性慢性疾患である。

癌の薬物治療、すなわち、抗癌剤は、一般的に細胞毒性を有する化合物であり、癌細胞を攻撃して死滅させる方式で癌を治療するが、癌細胞だけでなく、正常細胞にも損傷を与えるので、大きい副作用を示す。そこで、副作用を減少させるために標的抗癌剤が開発された。しかしながら、このような標的抗癌剤の場合には、副作用を低減することができるが、高い確率で耐性が生じるという限界点を示した（韓国特許公開１０−２０１８−００９９５５７号）。したがって、最近では、体内の免疫系を用いて毒性および耐性による問題点を減少させる免疫抗癌剤に対する関心が急増している傾向にある。このような免疫抗癌剤の一例として、癌細胞表面のＰＤ−Ｌ１に結合してＴ細胞のＰＤ−１との結合を抑制してＴ細胞を活性化させ、癌細胞を攻撃する免疫チェックポイント抑制剤が開発された。しかしながら、このような免疫チェックポイント抑制剤の場合にも、効果を示す癌の種類が多様でないため、多様な癌において同一の治療効果を示す新しい免疫チェックポイント抑制剤の開発が必要とされているのが現状である。

したがって、本発明者らは、多様な癌においてＰＤ−Ｌ１のように癌細胞の表面に発現してＴ細胞の発現を抑制するタンパク質について鋭意研究した結果、本発明を完成させた。

本発明は、上記のような従来技術上の問題点を解決するために案出されたものであって、多様な癌細胞の表面に存在するＣＤ３００ｃタンパク質の発現または活性を抑制させることによって、Ｔ細胞の活性を増加させ、癌細胞の増殖を抑制できることを確認し、ＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤を有効成分として含む癌の予防または治療用薬学的組成物などを提供することをその目的とする。

しかしながら、本発明が達成しようとする技術的課題は、以上で言及した課題に制限されず、言及されていない他の課題は、下記の記載から当業界における通常の知識を有する者に明確に理解され得る。

本発明は、ＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤を有効成分として含む癌の予防または治療用薬学的組成物を提供する。

本発明の一具体例において、前記ＣＤ３００ｃの発現抑制剤は、好ましくは、ＣＤ３００ｃ遺伝子のｍＲＮＡに相補的に結合するアンチセンスオリゴヌクレオチド（ＡＳＯ）、短ヘアピンＲＮＡ、低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、リボザイム等や、ＣＤ３００ｃ遺伝子の発現を減少または抑制する物質であれば、これに制限されない。前記物質がＣＤ３００ｃの発現を抑制させる機序は、特に制限されず、一例として転写、翻訳等の遺伝子発現を抑制する機序として作用することができる。

本発明の他の具体例において、前記ＣＤ３００ｃの活性抑制剤は、ＣＤ３００ｃタンパク質に相補的に結合する化合物、ペプチド、ペプチドミメティクス、基質類似体、アプタマー、抗体等や、ＣＤ３００ｃタンパク質に結合してＣＤ３００ｃの活性を減少または抑制する物質であれば、これに制限されない。前記物質がＣＤ３００ｃタンパク質の活性を抑制させる機序は、特に制限されず、一例として活性型を不活性型に転換させる機序として作用することができる。前記抗体の一例としては、ポリクローナル抗体であってもよく、モノクローナル抗体であってもよく、好ましくは、ヒトモノクローナル抗ＣＤ３００ｃ抗体であってもよく、または抗体断片であってもよいが、ＣＤ３００ｃに特異的に結合する抗体であれば、これに制限されない。前記可溶性受容体は、ＣＤ３００ｃに結合する受容体であって、好ましくは、配列番号１のアミノ酸配列に特異的に結合する配列を含むが、ＣＤ３００ｃに結合する受容体であれば、これに制限されない。

本発明のさらに他の具体例において、前記癌は、好ましくは、大腸癌、直腸癌、結腸癌、甲状腺癌、口腔癌、咽頭癌、喉頭癌、子宮頸癌、脳癌、肺癌、卵巣癌、膀胱癌、腎臓癌、肝癌、すい臓癌、前立腺癌、皮膚癌、舌癌、乳癌、子宮癌、胃癌、骨癌、血液癌等や、癌細胞の表面にＣＤ３００ｃタンパク質を発現する癌の種類であれば、これに制限されない。

本発明のさらに他の具体例において、前記薬学的組成物は、他の従来の抗癌剤をさらに含むことができ、前記抗癌剤は、好ましくは、ドキソルビシン、シスプラチン、ゲムシタビン、オキサリプラチン、５−ＦＵ、セツキシマブ、パニツムマブ、ニモツズマブ、ネシツムマブ、癌抗原、抗癌ウイルス等や現在抗癌剤として使用されている物質であれば、これに制限されない。前記癌抗原は、癌腫に特異的な癌ワクチンであって、好ましくは、膀胱癌特異的癌抗原としてＮＹ−ＥＳＯ−１、乳癌特異的癌抗原としてＨＥＲ２、大腸癌特異的癌抗原としてＣＥＡ、肺癌特異的癌抗原としてＶＥＧＦＲ１、ＶＥＧＦＲ２等であってもよいが、癌ワクチンとして知られている癌抗原の種類であれば、これに制限されない。抗癌ウイルスの一例としてイムリジック、ペクサベク等があるが、知られている抗癌ウイルスであれば、これに制限されない。前記抗癌剤をさらに含むことは、好ましくは、併用投与であるか、本願発明の抑制剤に結合された形態であってもよく、抗癌剤の送達体内に共に含まれている形態であってもよい。

本発明のさらに他の具体例において、前記薬学的組成物は、癌または癌幹細胞の増殖、生存、転移、再発、抗癌剤耐性等を抑制することを特徴とするが、本発明の薬学的組成物によって発生する効果であれば、これに制限されない。

また、本発明は、（ａ）ＣＤ３００ｃタンパク質が発現する癌細胞を培養するステップと；（ｂ）前記培養された癌細胞を候補物質で処理するステップと；（ｃ）前記候補物質で処理された細胞のＣＤ３００ｃ発現量を測定するステップと；（ｄ）前記ＣＤ３００ｃ発現量を減少させた候補物質を選別するステップと；を含む、癌の予防または治療用物質を選別する方法を提供する。

また、本発明は、（ａ）ＣＤ３００ｃタンパク質を候補物質で処理するステップと；（ｂ）前記ＣＤ３００ｃタンパク質に結合された候補物質を選別するステップと；を含む、癌の予防または治療用物質を選別する方法を提供する。

本発明の一具体例において、前記発現量を測定するステップとは、ｍＲＮＡおよび／またはタンパク質の発現水準を測定することであって、ｍＲＮＡの発現水準を測定することは、生物学的試料でＣＤ３００ｃｍＲＮＡの存在有無および発現程度を確認することであって、ｍＲＮＡの量を測定することによって確認することができる。このための分析方法としては、ＲＴ−ＰＣＲ、競争的ＲＴ−ＰＣＲ（ｃｏｍｐｅｔｉｔｉｖｅＲＴ−ＰＣＲ）、リアルタイムＲＴ−ＰＣＲ、ＲＮａｓｅプロテクションアッセイ法（ＲＰＡ）、ノーザンブロッティング、ＤＮＡマイクロアレイチップ等があるが、これらに限定されるものではない。また、タンパク質の発現水準を測定することは、生物学的試料からＣＤ３００ｃタンパク質の存在有無および発現水準を確認することであって、前記ＣＤ３００ｃタンパク質に対して特異的に結合する抗体を用いてタンパク質の量を確認したり、タンパク質の活性を測定することによって知ることができる。このための分析方法としては、ウェスタンブロッティング、ＥＬＩＳＡ（酵素結合免疫吸着アッセイ法）、ラジオイムノアッセイ、放射免疫拡散法（ｒａｄｉｏｉｍｍｕｎｏｄｉｆｆｕｓｉｏｎ）、オクタロニー（Ｏｕｃｈｔｅｒｌｏｎｙ）免疫拡散法、ロケット（Ｒｏｃｋｅｔ）免疫電気泳動、免疫組織化学染色、免疫沈降分析、補体結合分析、ＦＡＣＳ、プロテインチップ等があるが、これらに限定されるものではない。

本発明の他の具体例において、前記候補物質に結合する物質を選別するステップは、ＣＤ３００ｃタンパク質に結合する物質を選別する方法であって、このための分析方法としては、ウェスタンブロッティング、ＥＬＩＳＡ（酵素結合免疫吸着アッセイ法）、ラジオイムノアッセイ、放放射免疫拡散法、オクタロニー免疫拡散法、ロケット免疫電気泳動、免疫組織化学染色、免疫沈降分析、補体結合分析、ＦＡＣＳ、プロテインチップ等があるが、これらに限定されるものではない。

本発明のさらに他の具体例において、前記候補物質は、ヌクレオチド、ＤＮＡ、ＲＮＡ、アミノ酸、アプタマー、タンパク質、化合物、天然物、天然抽出物、ベクター等であって、制限されない。

また、本発明は、ＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤を有効成分として含む薬学的組成物を個体に投与するステップを含む癌の治療方法を提供する。

また、本発明は、ＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤を有効成分として含む薬学的組成物の癌の予防または治療用途を提供する。

本発明によるＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤は、多様な癌の表面で発現するＣＤ３００ｃに結合したり、ＣＤ３００ｃの発現を抑制することによって、Ｔ細胞を活性化させると同時に、癌細胞の増殖を抑制することによって、多様な癌の免疫治療剤として効果的に使用され得る。このような抑制剤は、癌環境内で腫瘍浸潤リンパ球および細胞毒性Ｔリンパ球の数を増加させ、骨髄由来抑制細胞の数を減少させると共に、癌の成長および発達を効果的に抑制できるので、本発明のＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤は、新しい免疫治療剤として癌の治療に効果的に使用され得るものと期待される。

図１は、本発明の一実施例によるｓＣＤ３００ｃ−ＦｃをＳＤＳ−ＰＡＧＥで確認した結果を示す図である。図２は、本発明の一実施例によるｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃが腫瘍浸潤リンパ球に及ぼす影響を確認した結果を示す図である。図３は、本発明の一実施例によるｓＣＤ３００ｃ−ＦｃがＮＦ−κＢのシグナル伝達機序に及ぼす影響を確認した結果を示す図である。図４は、本発明の一実施例による抗ＣＤ３００ｃ抗体がヒトＴ細胞に及ぼす影響を確認した結果を示す図である。図５は、本発明の一実施例による抗ＣＤ３００ｃ抗体の肺癌成長抑制効果を確認した結果を示す図である。図６は、本発明の一実施例による抗ＣＤ３００ｃ抗体の乳癌成長抑制効果を確認した結果を示す図である。図７は、本発明の一実施例による抗ＣＤ３００ｃ抗体の大腸癌成長抑制効果を確認した結果を示す図である。図８は、本発明の一実施例による抗ＣＤ３００ｃ抗体がｉｎｖｉｖｏで癌成長抑制効果を確認した結果を示す図である。図９は、本発明の一実施例による抗ＣＤ３００ｃ抗体がｉｎｖｉｖｏで癌成長抑制効果を確認した結果を示す図である。図１０は、本発明の一実施例によるＣＤ３００ｃｓｉＲＮＡの癌成長抑制効果を確認した結果を示す図である。図１１は、本発明の一実施例による抗ＣＤ３００ｃ抗体が抗癌免疫反応に及ぼす影響を確認した結果を示す図である。図１２は、ＣＤ３００ｃの機能および／または発現を抑制することによって抗癌効果を示す機序を簡略に示す概略図である。

本発明のＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤は、癌環境内で腫瘍浸潤リンパ球および細胞毒性Ｔリンパ球の数を増加させ、骨髄由来抑制細胞の数を減少させると共に、多様な癌の成長および発達を効果的に抑制できるので、ＣＤ３００ｃを表面に発現している多様な癌の治療に効果的に使用され得る。

本明細書において、「抗体」とは、免疫学的に特定抗原と反応性を有する免疫グロブリン分子を含み、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体およびその機能的な断片を全部含む。また、前記用語は、キメラ抗体（例えば、ヒト抗マウス抗体）および異種結合抗体（例えば、二重特異性抗体）のような遺伝工学により生産された形態を含むことができる。このうち、モノクローナル抗体は、単一抗原性部位（エピトープ）に対する高度に特異的な抗体であって、異なるエピトープに対する異なる抗体を含むポリクローナル抗体とは異なって、モノクローナル抗体は、抗原上の単一エピトープのみに対応するので、治療剤としての品質管理が容易である。前記抗体は、免疫グロブリン分子の構成のうち重鎖および／または軽鎖の可変領域を含み、前記可変領域は、その１次構造として抗体分子の抗原結合部位を形成する部分を含み、本発明の抗体は、前記可変領域を含む一部断片で構成され得、好ましくは、前記可変領域は、ＣＤ３００ｃに対する可溶性受容体に代替され得るが、本発明の抗ＣＤ３００ｃ抗体と同じ効果を示す限り、これに制限されない。

本明細書において、「予防」とは、本発明による薬学的組成物の投与によって癌等の疾患を抑制させたり発病を遅延させるすべての行為を意味する。

本明細書において、「治療」とは、本発明による薬学的組成物の投与によって癌等の症状が好転したり有利に変更されるすべての行為を意味する。

本明細書において、「個体」とは、本発明の薬学的組成物が投与され得る対象を言い、その対象には制限がない。

本明細書において、「薬学的組成物」とは、カプセル、錠剤、顆粒、注射剤、軟こう剤、粉末または飲料の形態であることを特徴とし、前記薬学的組成物は、ヒトを対象とすることを特徴とする。前記薬学的組成物は、これらに限定されるものではないが、それぞれ通常の方法によって散剤、顆粒剤、カプセル、錠剤、水性懸濁液等の経口型剤形、外用剤、坐剤および滅菌注射溶液の形態で剤形化して使用され得る。本発明の薬学的組成物は、薬剤的に許容可能な担体を含むことができる。薬剤学的に許容される担体は、経口投与時には、結合剤、滑沢剤、崩解剤、賦形剤、可溶化剤、分散剤、安定化剤、懸濁化剤、色素、香料等を使用することができ、注射剤の場合には、緩衝剤、保存剤、無痛化剤、可溶化剤、等張化剤、安定化剤等を混合して使用することができ、局所投与用の場合には、基剤、賦形剤、潤滑剤、保存剤等を使用することができる。本発明の薬学的組成物の剤形は、上述したような薬剤学的に許容される担体と混合して多様に製造され得る。例えば、経口投与時には、錠剤、トローチ、カプセル、エリクサー（ｅｌｉｘｉｒ）、サスペンション、シロップ、ウェハー等の形態で製造することができ、注射剤の場合には、単位投薬アンプルまたは多数回投薬形態で製造することができる。その他、溶液、懸濁液、錠剤、カプセル、徐放型製剤等で剤形することができる。

一方、製剤化に適した担体、賦形剤および希釈剤の例としては、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、キシリトール、エリスリトール、マルチトール、デンプン、アカシアゴム、アルギネート、ゼラチン、カルシウムホスフェート、カルシウムシリケート、セルロース、メチルセルロース、微晶質セルロース、ポリビニルピロリドン、水、メチルヒドロキシベンゾアート、プロピルヒドロキシベンゾアート、タルク、マグネシウムステアレートまたは鉱物油等が使用され得る。また、充填剤、抗凝集剤、潤滑剤、湿潤剤、香料、乳化剤、防腐剤等をさらに含むことができる。

本発明による薬学的組成物の投与経路は、これらに限定されるものではないが、口腔、静脈内、筋肉内、動脈内、骨髄内、硬膜内、心臓内、経皮、皮下、腹腔内、鼻腔内、腸管、局所、舌下または直腸が含まれる。経口または非経口投下が好ましい。本願に使用された用語「非経口」は、皮下、皮内、静脈内、筋肉内、関節内、滑液嚢内、胸骨内、硬膜内、病巣内および頭蓋骨内注射または注入技術を含む。本発明の薬学的組成物は、また、直腸投与のための坐剤の形態で投与され得る。

本発明の薬学的組成物は、使用された特定化合物の活性、年齢、体重、一般的な健康、性別、食事、投与時間、投与経路、排出率、薬物配合および予防または治療される特定疾患の重症を含む様々な要因によって多様に変わり得、前記薬学的組成物の投与量は、患者の状態、体重、疾病の程度、薬物形態、投与経路および期間によって異なるが、当業者により適切に選択され得、１日に０．０００１〜５００ｍｇ／ｋｇまたは０．００１〜５００ｍｇ／ｋｇで投与することができる。投与は、一日に一回投与することもでき、数回に分けて投与することもできる。前記投与量は、いかなる点においても本発明の範囲を限定するものではない。本発明による薬学的組成物は、丸剤、糖衣錠、カプセル、液剤、ゲル、シロップ、スラリー、懸濁剤で剤形化され得る。

以下、本発明の理解を助けるために下記実施例を提示する。しかしながら、下記の実施例は、本発明をより容易に理解するために提供されるものに過ぎず、下記実施例によって本発明の内容が限定されるものではない。

［実施例１：ｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃの作製］
癌細胞および免疫系でＣＤ３００ｃの機能を分析するために、可溶性ＣＤ３００ｃに抗体の重鎖領域のうちＦｃ部分が結合されたｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃを作製した。ｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃの作製のために、配列番号３のアミノ酸配列をコードする遺伝子（配列番号４）をｐｃＤＮＡ３．１に挿入し、これをＨＥＫ２９３Ｔ細胞株に形質転換させた。そして、ｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃの生産のために、形質転換された細胞、および細胞内遺伝子送達効率を増加させるポリマーを、ＩｇＧ含量が非常に低いウシ胎児血清が添加されたＲＰＭＩ培地に添加して、４日間細胞培養器で培養した。培養が完了した後には、遠心分離機を用いてｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃが含まれた上層液を分離し、０．２２μｍフィルターを用いて１回濾過させた。そして、組み換えプロテインＡセファロースカラム（ＧＥｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いてｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃを分離および精製し、精製されたｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃの吸光度を測定して濃度を決定した。そして、精製されたｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃ２μｇをそれぞれＲｅｄｕｃｉｎｇｓａｍｐｌｅｂｕｆｆｅｒとＮｏｎ−ｒｅｄｕｃｉｎｇｓａｍｐｌｅｂｕｆｆｅｒに添加した後に、ｐｒｅ−ｍａｄｅＳＤＳ−ＰＡＧＥｇｅｌ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて電気泳動した。その後、クマシーブルーを用いてタンパク質を染色した。その結果は、図１に示した。

図１に示されたように、純度９０％以上のｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃが精製されたことを確認した。

［実施例２：ｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃが腫瘍浸潤リンパ球に及ぼす影響確認］
ｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃが腫瘍浸潤リンパ球（ｔｕｍｏｒｉｎｆｉｌｔｒａｔｉｎｇｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅｓ；ＴＩＬ）に及ぼす影響を確認するために、実施例１と同じ方法で作製されたｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃを使用して実験を進めた。より詳しくは、６ウェルプレートに１％のウシ胎児血清（ＦＢＳ）が添加されたＥＢＭ培地（ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｂａｓａｌｍｅｄｉｕｍ，Ｌｏｎｚａ）を分注し、１×１０^６細胞／ｍＬのヒト血管内皮細胞（ヒト臍帯静脈内皮細胞；ＨＵＶＥＣ，ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ）と１×１０^５細胞／ｍＬの末梢血液単核球（ＰＢＭＣ，ＣＴＬ）を接種し、ｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃを１０、１、０．１、０．０１、および０．００１ｎＭの濃度で処理した。そして、３７℃、５％ＣＯ_２条件で１６時間の間培養した後に、ＯＤ４５０ｎｍで吸光度を測定して、腫瘍浸潤リンパ球を測定した。その結果は、図２に示した。

図２に示されたように、ｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃの濃度が増加するほど腫瘍浸潤リンパ球の数が増加することを確認し、これを通じて、ｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃの処理を通じて末梢血液単核球が分化してヒト血管内皮細胞に浸潤されるリンパ球の数が増加し、リンパ球の数は、処理されたｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃの濃度に依存的に増加することを確認した。前記結果を通じて、ｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃの処理を通じて免疫細胞を活性化し得ることを確認することができた。

［実施例３：ｓＣＤ３００ｃ−ＦｃがＮＦ−κＢシグナル伝達機序に及ぼす影響確認］
ｓＣＤ３００ｃ−ＦｃがＮＦ−κＢシグナリングに及ぼす影響を確認するために、実施例１と同じ方法で作製されたｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃを使用して実験を進めた。より詳しくは、ＴＨＰ−１ｂｌｕｅ細胞（単球細胞，Ｉｎｖｉｖｏｇｅｎ）を９６ウェルプレートにウェル当たり５，０００細胞になるように接種した後に、１２時間の間培養して、細胞を安定化させた。そして、ｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃ、ＬＰＳ（リポポリサッカライド）および／またはＩｇＧをそれぞれのウェルに処理した後に、３７℃、５％ＣＯ_２条件で４８時間の間培養した。そして、培養上層液を分離して、ＳＥＡＰ発色試薬（Ｉｎｖｉｖｏｇｅｎ）を処理し、１時間の間反応させた後に、６５０ｎｍで吸光度を測定して、ＮＦ−κＢのシグナル強度を測定した。その結果を図３に示した。

図３に示されたように、ＬＰＳのみを処理した対照群では、ＮＦ−κＢのシグナルが０．４程度を示し、ｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃを処理した対照群では、０．８程度の基本値を示すことを確認した。反面、ＬＰＳおよびｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃを共に処理した実験群では、ＮＦ−κＢシグナルが顕著に増加することを確認した。また、加熱して不活性化させたｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃ（ｈ．ｉ．ｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃ；ｈｅａｔｉｎａｃｔｉｖａｔｅｄｓＣＤ３００ｃ−Ｆｃ）の場合には、ＮＦ−κＢシグナルに影響を及ぼさないことを確認した。前記結果を通じて、ｓＣＤ３００ｃ−ＦｃがＮＦ−κＢのシグナル伝達機序を活性化させて、免疫細胞であるＴＨＰ−１単球が活性化し、マクロファージに分化を促進させて、先天性免疫系を効率的に活性化し得ることを確認することができた。

［実施例４：抗ＣＤ３００ｃ抗体の作製］
（４．１．抗ＣＤ３００ｃポリクローナル抗体の作製）
ＣＤ３００ｃに対するポリクローナル抗体を作製するために、抗原に使用するＣＤ３００ｃの細胞外ドメインの遺伝子（配列番号２）を６×ヒスチジンを発現するように、ｐＥＴ２８ａ（Ｎｏｖａｇｅｎ）発現ベクターに挿入し、大腸菌に形質転換させた。そして、形質転換された大腸菌を１００ｍｇ／ｍＬのアンピシリンが添加された１００ｍＬのＬＢ培地に接種した後に、吸光度がＯＤ_{６００ｎｍ}で０．８〜１．０になるように培養し、ＩＰＴＧを添加した。そして、２５℃で１６時間の間培養してＨｉｓタグを有するＣＤ３００ｃの発現を誘導した後に、培養液を遠心分離して上層液を除去し、細胞を獲得した。獲得された細胞は、５０ｍＭのＮａＨ_２ＰＯ_４および５００ｍＭのＮａＣｌ（ｐＨ８．０）が混合されている溶液を用いて再懸濁させ、超音波を用いて細胞を破砕した。そして、遠心分離および濾過過程を経てタンパク質の精製のために使用する細胞溶解物を確保した。細胞溶解物内に含まれているＨｉｓタグを有するＣＤ３００ｃ（配列番号５；ＣＤ３００ｃ−Ｈｉｓ）は、Ｎｉ−ＮＴＡＳｅｐｈａｒｏｓｅｃｏｌｕｍｎ（ＧＥｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いたａｆｆｉｎｉｔｙｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ方法を用いて精製し、ｓｔｅｐｇｒａｄｉｅｎｔｅｌｕｔｉｏｎを通じてＨｉｓタグを有するＣＤ３００ｃを溶出させた。精製されたＨｉｓタグを有するＣＤ３００ｃは、実施例１と同じ方法でＳＤＳ−ＰＡＧＥを実施し、純度９０％以上のＨｉｓタグを有するＣＤ３００ｃが精製されたことを確認した。

そして、精製されたＨｉｓタグを有するＣＤ３００ｃを用いてニュージーランド白ウサギに抗原免疫を実施した。より詳しくは、精製されたＨｉｓタグを有するＣＤ３００ｃ抗原を０．５ｍｇ／４００μＬの濃度でリン酸塩緩衝液（ＰＢＳ）を用いて希釈し、同量の完全フロイントアジュバント（Ｓｉｇｍａ）と混合して皮下注射する方法で１次免疫を行った。そして、２週後に０．５ｍｇ／４００μＬの抗原と同量の不完全フロイントアジュバント（Ｓｉｇｍａ）を混合して同じ方法で２次免疫を実施した後に、２週間隔で同じ方法で最終４次免疫まで実施した。３次免疫後には、尾静脈で採血して血液を獲得し、獲得された血液を１／１，０００で希釈してＥＬＩＳＡを実施して抗体の活性度を評価し、最終４次免疫後には、麻酔後にウサギの全血を採血して血しょうを獲得した。

（４．２．抗ＣＤ３００ｃ抗体の抗体特異性の確認）
実施例４．１と同じ方法で作製された抗ＣＤ３００ｃ抗体の特異性を確認するために、１ｎｇ、１０ｎｇ、１００ｎｇ、５００ｎｇ、および１μｇの濃度で希釈されたＣＤ３００ｃ抗原に対する特異性を１，０００倍で希釈された血しょうを用いてＥＬＩＳＡおよびウェスタンブロッティングを実施した。その結果、抗ＣＤ３００ｃ抗体がＣＤ３００ｃ抗原に対して特異的に反応することを確認した。

（４．３．抗ＣＤ３００ｃ抗体の精製）
実施例４．１と同じ方法で獲得された血しょうから抗ＣＤ３００ｃ抗体を精製するために、ａｆｆｉｎｉｔｙｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ方法を用いた。より詳しくは、ＣＤ３００ｃ抗原とＮＨＳａｃｔｉｖａｔｅｄｓｅｐｈａｒｏｓｅＦａｓｔＦｌｏｗｒｅｓｉｎ（ＧＥＨｅａｌｔｈｃａｒｅ）をｃｏｕｐｌｉｎｇｂｕｆｆｅｒ（０．２ＭのＮａＨＣＯ_３，０．５ＭのＮａＣｌ，ｐＨ８．３）を用いて共に混合してアフィニティーゲルを作製し、これをポリプロピレンカラムにパッキングした。そして、カラムに獲得された血しょうを添加して抗原に特異的に結合する抗体のみをカラムに残した後に、０．１Ｍのグリシン（ｐＨ２．５）および０．１Ｍのクエン酸（ｐＨ３．０）が混合された溶出緩衝液を使用して抗体を精製した。そして、精製された抗体は、リン酸塩緩衝液を用いて透析させた後に濃縮して、１．０ｍｇ／ｍＬの濃度で分けて分注し、−８０℃で使用前まで保管した。

（実施例５：抗ＣＤ３００ｃ抗体がＴ細胞に及ぼす影響の確認）
抗ＣＤ３００ｃ抗体がヒトＴ細胞に及ぼす影響を確認するために実験を進めた。より詳しくは、一次的にヒトの末梢血液単核細胞（ＰＢＭＣ）からＴ細胞分離キット（１３０−０９６−５３４，Ｍｉｌｌｔｅｎｙｉ）を用いて全体Ｔ細胞（ｐａｎＴｃｅｌｌｓ）を分離した。そして、分離したＴ細胞を９６ウェルプレートにウェル当たり５，０００細胞になるように接種した後に、６時間の間培養して細胞を安定化させ、抗ＣＤ３抗体（Ｂｉｏｌｅｇｅｎｄ）および抗ＣＤ２８抗体（Ｂｉｏｌｅｇｅｎｄ）を処理した。そして、実施例４．３と同じ方法で精製された抗ＣＤ３００ｃポリクローナル抗体を濃度別に処理した。そして、３７℃で４８時間の間培養した後に、培養上層液を分離してＩＬ−２の量を測定した。ＩＬ−２の量は、ＩＬ−２Ｑｕａｎｔｉｋｉｎｅキット（Ｒ＆Ｄｓｙｓｔｅｍｓ）を用いて確認した。その結果は、図４に示した。

図４に示されたように、抗ＣＤ３００ｃ抗体を処理した実験群の場合には、処理濃度によってＩＬ−２の量が増加することを確認した。これを通じて、抗ＣＤ３００ｃ抗体の場合には、ＩＬ−２の分泌量を増加させて適応性免疫系であるＴ細胞を活性化させることを確認することができた。

［実施例６：抗ＣＤ３００ｃ抗体のｉｎｖｉｔｒｏでの抗癌効果の確認］
（６．１．抗ＣＤ３００ｃ抗体の肺癌成長抑制効果の確認）
抗ＣＤ３００ｃ抗体が肺癌の成長を抑制する効果があるかを確認するために、一次的にＡ５４９細胞表面にＣＤ３００ｃ抗原を有しているかを確認した。より詳しくは、ヒト肺癌細胞株であるＡ５４９細胞を４％ホルムアルデヒドで固定させた後に、５％ヤギ正常血清を用いてブロッキングした。そして、１μｇの抗ＣＤ３００ｃ抗体を処理し、反応させた後に、ＦＩＴＣラベル抗ウサギＩｇＧ抗体を用いて染色した。そして、蛍光標識された細胞を、フローサイトメーター（ＦＡＣＳ）を用いて確認した。その結果は、図５Ａに示した。

図５Ａに示されたように、ヒト肺癌細胞株には、ＣＤ３００ｃ抗原を有していることを確認した。

また、肺癌の成長を抑制するかを確認するために、癌細胞の増殖抑制効果を確認した。より詳しくは、９６ウェルプレートにＡ５４９細胞をウェル当たり１０，０００細胞になるように接種した後に、１８時間の間培養して安定化させた。そして、０．１、１、および１０μｇ／ｍＬの抗ＣＤ３００ｃ抗体を処理し、７２時間の間培養した。そして、顕微鏡を用いて写真を撮影した。その結果は、図５Ｂに示した。また、それぞれのウェルにＣＣＫ−８（Ｄｉｊｉｎｄｏ）を１０μＬずつ添加し、４時間の間反応させた後に、４５０ｎｍで吸光度を測定した。その結果は、図５Ｃに示した。

図５Ｂおよび図５Ｃに示されたように、抗ＣＤ３００ｃ抗体の処理濃度が増加するほど肺癌細胞の増殖が抑制されることを確認し、これを通じて、抗ＣＤ３００ｃ抗体が肺癌の成長を抑制することを確認することができた。

（６．２．抗ＣＤ３００ｃ抗体の乳癌成長抑制効果の確認）
抗ＣＤ３００ｃ抗体が乳癌の成長を抑制する効果があるかを確認するために、実施例６．１と同じ方法で乳癌細胞株であるＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞を使用して細胞増殖抑制効果を確認した。その結果は、図６に示した。

図６に示されたように、抗ＣＤ３００ｃ抗体の処理濃度が増加するほど乳癌細胞の増殖が抑制されることを確認し、これを通じて、抗ＣＤ３００ｃ抗体が乳癌の成長を抑制することを確認することができた。

（６．３．抗ＣＤ３００ｃ抗体の大腸癌成長抑制効果の確認）
抗ＣＤ３００ｃ抗体が大腸癌の成長を抑制する効果があるかを確認するために、実施例６．１と同じ方法で転移性大腸癌細胞株であるＣＴ−２６細胞を使用して細胞増殖抑制効果を確認した。その結果は、図７に示した。

図７に示されたように、抗ＣＤ３００ｃ抗体の処理濃度が増加するほど大腸癌細胞の増殖が抑制されることを確認し、これを通じて、抗ＣＤ３００ｃ抗体が大腸癌の成長を抑制することを確認することができた。

［実施例７：抗ＣＤ３００ｃ抗体のｉｎｖｉｖｏでの抗癌効果確認］
（７．１．抗ＣＤ３００ｃ抗体の大腸癌成長抑制効果の確認）
抗ＣＤ３００ｃ抗体がｉｎｖｉｖｏでも癌細胞の成長を抑制する効果があるかを確認するために、８週齢のＢＡＬＢ／ｃマウスに転移性大腸癌細胞株であるＣＴ−２６細胞株を５×１０^５細胞になるようにマウスの右側の側面に皮下注射し、餌と水を与えながら飼育した。動物の飼育およびすべての実験手続きは、動物実験に対する法規および規制に基づいて進めた。そして、腫瘍のサイズが約７０ｍｍ^３に到達したとき、濃度０．１、１、および１０μｇの抗ＣＤ３００ｃ抗体を０、１、および５日目に腹腔注射で投与した後に、腫瘍のサイズを確認した。対照群としては、リン酸塩緩衝液を注射した。その結果は、図８に示した。

図８に示されたように、抗ＣＤ３００ｃ抗体の濃度が増加するほど転移性大腸癌のサイズの増加が減少すると共に、１０μｇを処理した実験群では、１５日まで腫瘍の成長が完全に抑制されて、これ以上腫瘍が成長しないことを確認した。

（７．２．抗ＣＤ３００ｃ抗体の肺癌成長抑制効果確認）
肺癌動物モデルを用いて実施例７．１と同じ実験を進めた。より詳しくは、４〜６週齢のＢＡＬＢ／ｃマウスにヒト肺癌細胞株であるＡ５４９細胞株を５×１０^６細胞になるようにマウスの右側脇に皮下注射し、餌と水を与えながら飼育した。そして、腫瘍の直径が約３〜５ｍｍに到達したとき、濃度１、１０、および１００ｍｇ／ｋｇの抗ＣＤ３００ｃ抗体を０、１、および５日目に腹腔注射で投与した後に、腫瘍のサイズを確認した。対照群としては、リン酸塩緩衝液を注射した。その結果は、図９に示した。

図９に示されたように、抗ＣＤ３００ｃ抗体の濃度が増加するほど肺癌の増殖が抑制されて腫瘍が成長しないことを確認した。前記結果を通じて、本発明の抗ＣＤ３００ｃ抗体がｉｎｖｉｖｏでも癌の成長を効果的に抑制することを確認することができた。

前記結果を通じて、抗ＣＤ３００ｃ抗体は、多様な癌の増殖を効果的に抑制することができ、抗ＣＤ３００ｃ抗体を抗癌剤として使用可能であることを確認することができた。

［実施例８：ＣＤ３００ｃｓｉＲＮＡの抗癌効果確認］
ＣＤ３００ｃが癌細胞の増殖に及ぼす影響を追加で確認するために、ＣＤ３００ｃの発現抑制が抗癌効果を示すかを確認した。より詳しくは、ＣＤ３００ｃに対するｓｉＲＮＡ（ｓｃ−９３６４６，ＳａｎｔａＣｒｕｚ）を用いて提供されるマニュアルに従って肺癌細胞株であるＡ５４９細胞でＣＤ３００ｃの発現を抑制した。対照群としては、ＳｃｒａｍｂｌｅｄＲＮＡを使用した。ｓｉＲＮＡをＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅＲＮＡｉＭａｘ（ＬｉｆｅＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を用いて細胞に形質感染させた後に、３０時間培養した。そして、培養された細胞に細胞溶解溶液（２０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、１５０ｍＭのＮａＣｌ、１ｍＭのＮａ_２ＥＤＴＡ、１ｍＭのＥＧＴＡ、１％のＴｒｉｔｏｎ、２．５ｍＭのピロリン酸ナトリウム、１ｍＭのグリセロリン酸、１ｍＭのＮａ_３ＶＯ_４、１μｇ／ｍＬのロイペプチン、および１ｍＭのＰＭＳＦ）を処理して、細胞溶解物を回収した。そして、溶解物内に含まれているタンパク質の量を、ＢＣＡ法を用いて定量した。そして、同量のＣＤ３００ｃに特異的に結合する抗体（ＰＡ５−８７０９７，Ｔｈｅｒｍｏｆｉｓｈｅｒ）を用いてウェスタンブロッティングを実施した。その結果は、図１０Ａに示した。そして、癌細胞の増殖抑制効果を確認するために、９６ウェルプレートにＡ５４９細胞をウェル当たり１０，０００細胞になるように接種した後に、１８時間の間培養して安定化させた。そして、ｓｉＲＮＡを処理した後に５日間培養し、ＣＣＫ−８を用いて吸光度を測定した。その結果は、図１０Ｂに示した。

図１０Ａに示されたように、ＣＤ３００ｃｓｉＲＮＡを用いて細胞でＣＤ３００ｃの発現を抑制できることを確認した。また、図１０Ｂに示されたように、癌細胞株にｓｉＲＮＡを処理すると、細胞増殖が抑制されることを確認した。

前記結果を通じて、ＣＤ３００ｃの発現を抑制させることによって、抗癌効果を示すことを確認することができ、ｓｉＲＮＡ（小分子干渉ＲＮＡ）、アンチセンスオリゴヌクレオチド（ＡＳＯ）、ｍｉＲＮＡ（マイクロＲＮＡ）等を用いてＣＤ３００ｃの発現を抑制し、またＣＤ３００ｃに特異的に結合する抗体、アプタマー等を用いてＣＤ３００ｃの活性を抑制することによって、多様な癌において抗癌治療効果を示すことができることを確認することができた。

［実施例９：ＣＤ３００ｃ機能および／または発現抑制を通した抗癌免疫効果の確認］
ＣＤ３００ｃの機能および／または発現を抑制することによって、抗癌免疫効果を示すかを確認するために、実施例７．１と同じ方法で大腸癌細胞株が移植されたＢＡＬＢ／ｃマウスに濃度１０μｇの抗ＣＤ３００ｃ抗体を０、１、および５日目に腹腔注射で投与し、７日目に安楽死させた後に、マウスの骨髄を分離した。そして、分離した骨髄から骨髄由来抑制細胞（Ｍｙｅｌｏｉｄ− ｄｅｒｉｖｅｄｓｕｐｐｒｅｓｓｏｒｃｅｌｌｓ；ＭＤＳＣ）、リンパ球、および細胞傷害性Ｔリンパ球を、フローサイトメーター（ＦＡＣＳ）を用いて確認した。その結果は、図１１に示した。

図１１に示されたように、抗ＣＤ３００ｃ抗体を処理したマウスの場合、リンパ球および細胞傷害性Ｔリンパ球（ＣＤ８＋）の場合には、数が増加し、リンパ球は、分化誘導（ＣＤ４＋）が促進されたことを確認した。反面、骨髄由来抑制細胞の数が減少したことを確認した。前記結果を通じて、ＣＤ３００ｃの機能および／または発現を抑制することによって、癌動物モデルの血液内で免疫系の活性化が誘導され、Ｔ免疫細胞の活性または増殖を抑制させる骨髄由来抑制細胞の数を減少させることによって、抗癌免疫効果を顕著に増加させて、癌治療効果を示すことを確認することができた。

図１２は、ＣＤ３００ｃの活性および／または発現を抑制することによって抗癌効果を示す機序について簡略に示す図であって、従前に知られている免疫チェックポイントを形成しているＢ７ファミリー（例えば、ＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１相互作用等）のように腫瘍の表面に発現するＣＤ３００ｃは、Ｔ細胞表面の相互結合分子（ＢｉｎｄｉｎｇＰａｒｔｎｅｒ）と結合してＴ細胞の活性化を抑制する作用をするが、ＣＤ３００ｃに対して特異的に結合する抗ＣＤ３００ｃ抗体を処理することによって、Ｔ細胞の活性および増殖を刺激して抗癌効果を示すと同時に、腫瘍細胞表面のＣＤ３００ｃに結合して直接的に腫瘍の増殖を抑制することが確認される。これは、ＣＤ３００ｃの発現を抑制するオリゴヌクレオチドを用いて、腫瘍表面のＣＤ３００ｃが発現しないようにしても、同じ効果を示すことが確認される。

したがって、前記結果を通じて、ＣＤ３００ｃの発現および／または機能を抑制することによって、癌環境内で腫瘍浸潤リンパ球および細胞毒性Ｔリンパ球の数を増加させ、骨髄由来抑制細胞の数を減少させて、体内の抗癌免疫反応を効果的に活性化させると共に、細胞の増殖を抑制して、癌の成長および発達を効果的に抑制できることを確認したので、ＣＤ３００ｃの発現および／または機能を抑制する物質を多様な癌の増殖、再発、転移等を抑制するのに効果的に使用可能であることを確認することができた。

上記に記述した本発明の説明は、例示のためのものであり、本発明の属する技術分野における通常の知識を有する者は、本発明の技術的思想や必須の特徴を変更することなく、他の具体的な形態で容易に変形が可能であることを理解することができる。したがって、以上で記述した実施例は、すべての面において例示的なものであり、限定的でないものと理解すべきである。

本発明は、多様な癌細胞の表面に存在するＣＤ３００ｃタンパク質の新規な用途に関し、ＣＤ３００ｃタンパク質の発現または活性を抑制させることによって、Ｔ細胞の活性を増加させ、癌細胞の増殖を抑制できることを確認したので、本発明のＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤は、多様な癌に適用可能であると共に、癌の予防および／または治療効果を顕著に増加させることができるので、多様な癌治療剤に適用されて幅広く使用可能なものと期待される。

Claims

ＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤を有効成分として含む、癌の予防または治療用薬学的組成物。
前記ＣＤ３００ｃの発現抑制剤は、ＣＤ３００ｃ遺伝子のｍＲＮＡに相補的に結合するアンチセンスオリゴヌクレオチド（ＡＳＯ）、短ヘアピンＲＮＡ、低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）およびリボザイムからなる群より選ばれるいずれか１つ以上であることを特徴とする、請求項１に記載の薬学的組成物。
前記ＣＤ３００ｃの活性抑制剤は、ＣＤ３００ｃタンパク質に相補的に結合する化合物、ペプチド、ペプチドミメティクス、基質類似体、アプタマーおよび抗体からなる群より選ばれるいずれか１つ以上であることを特徴とする、請求項１に記載の薬学的組成物。
前記癌は、大腸癌、直腸癌、結腸癌、甲状腺癌、口腔癌、咽頭癌、喉頭癌、子宮頸癌、脳癌、肺癌、卵巣癌、膀胱癌、腎臓癌、肝癌、すい臓癌、前立腺癌、皮膚癌、舌癌、乳癌、子宮癌、胃癌、骨癌および血液癌からなる群より選ばれるいずれか１つ以上であることを特徴とする、請求項１に記載の薬学的組成物。
前記薬学的組成物は、他の抗癌剤をさらに含むことを特徴とする、請求項１に記載の薬学的組成物。
前記薬学的組成物は、癌の増殖、生存、転移、再発または抗癌剤耐性を抑制することを特徴とする、請求項１に記載の薬学的組成物。
（ａ）ＣＤ３００ｃタンパク質が発現する癌細胞を培養するステップと；
（ｂ）前記培養された癌細胞を候補物質で処理するステップと；
（ｃ）前記候補物質で処理された細胞のＣＤ３００ｃ発現量を測定するステップと；
（ｄ）前記ＣＤ３００ｃ発現量を減少させた候補物質を選別するステップと；を含む、
癌の予防または治療用物質を選別する方法。
（ａ）ＣＤ３００ｃタンパク質を候補物質で処理するステップと；
（ｂ）前記ＣＤ３００ｃタンパク質に結合された候補物質を選別するステップと；を含む、
癌の予防または治療用物質を選別する方法。
ＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤を有効成分として含む組成物を個体に投与するステップを含む、癌の治療方法。
ＣＤ３００ｃの発現抑制剤または活性抑制剤を有効成分として含む組成物の癌の予防または治療用途。