JP2021518155A - 分岐鎖アミノ酸蛍光センサーおよびその使用 - Google Patents
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Abstract
本発明は、応答性ポリペプチドと光学活性ポリペプチドとを含む蛍光センサーであって、前記光学活性ポリペプチドが前記応答性ポリペプチドに挿入されている蛍光センサーを提供する。本発明は、本発明のいずれかの実施形態にかかる蛍光センサーをコードする核酸配列またはその相補配列を提供する。本発明は、発現制御配列と作動可能に連結される本発明に係る核酸配列またはその相補配列を含む発現ベクターを提供する。本発明は、本発明に係る発現ベクターを含む細胞を提供する。本発明は、本発明に係る蛍光センサーを発現するベクターを含む細胞を提供することと、前記細胞の発現条件下で前記細胞を培養することと、および前記蛍光センサーを分離することと、を含む本発明に係る蛍光センサーの製造方法を提供する。本発明は、本発明に係る蛍光センサーまたは本発明に係る方法で製造される蛍光センサーの、分岐鎖アミノ酸を検出するための使用を提供する。【選択図】図２
Description
本発明は蛍光タンパク質に関し、より具体的には、分岐鎖アミノ酸を検出するための蛍光センサーおよびその製造方法と使用に関する。
分岐鎖アミノ酸（ＢＣＡＡ）は、ロイシン、イソロイシンおよびバリンを含み、タンパク質合成速度を調節するための効果的な栄養シグナル分子として機能する。これらの３つの分岐鎖アミノ酸は、人間にとって必須の９つのアミノ酸に属し、筋肉タンパク質中の必須アミノ酸の３５％を、および哺乳類に必要なアミノ酸の４０％を占めている。それらは免疫、脳機能および他の生理的方面で重要な役割を担う（P.C. Calder, 2006; B.Skeieら, 1990）。３つの分岐鎖アミノ酸は全て、リンパ球の成長と増殖に必要なものである（K.TajiriとY. Shimizu, 2013）。分岐鎖アミノ酸は脳のタンパク質合成とエネルギー生産に影響を与え、且つさまざまな神経伝達物質の合成に関与する可能性がある（J. D. Fernstrom, 2005）。
ロイシンは分岐鎖アミノ酸の中で最も重要なアミノ酸であり（BuseとReid, 1975; Buseら, 1979 ; LiとJefferson, 1978 ; Anthonyら, 2000）、インスリン依存性および独立性の経路を介してｍＲＮＡの翻訳開始を刺激することで、筋肉タンパク質の合成を刺激することができる（Norton和Layman，2006）。ロイシンはある程度で血液脳関門を通過でき（Smithら, 1987）、他のアミノ酸よりも吸収されやすい（Grillら, 1992）。ロイシンは、タンパク質合成の翻訳制御（Kimball and Jefferson, 2001）や血糖調節（Layman and Baum, 2004）など、代謝においてユニークな調節的役割を果たす。研究により、分岐鎖アミノ酸の異常な含有量は通常、糖尿病（Hu, F. Bら, 2001；Wang, T. Jら, 2011；Mapstone, Mら, 2014）、肥満（Goffredoら, 2017）、老化（D'Antonaら, 2010）、癌（Tarlungeanu, D. Cら, 2016；Mayers, J. R.ら, 2014；Tonjes, Mら, 2013）などを含むいくつかの主要な代謝性疾患に関連していることが示された。
分岐鎖アミノ酸、特にロイシンは上記の重要な機能を持っているからこそ、それらの含有量の検出も特に重要になる。常用される検出方法としては、質量分析法（Pontoni, Gら, 2014, 1996）、クロマトグラフィー（Tateda Nら，Analytical sciences : the international journal of the Japan Society for Analytical Chemistry 2001, 17(6):775-778；Wadud Sら，Journal of chromatography B, Analytical technologies in the biomedical and life sciences 2002, 767(2):369-374）、キャピラリー電気泳動法（Li X-tら，Chem Res Chin Univ 2013, 29(3):434-438；Meng Jら，The Analyst 2010, 135(7):1592-1599）、紫外可視分光法（Hortala MAら，J Am Chem Soc 2003, 125(1):20-21；Pu Fら， Anal Chem 2010, 82(19):8211-8216；Du Jら， Chemical communications (Cambridge, England) 2013, 49(47):5399-5401；Engeser Mら，Chemical Communications 1999, (13):1191-1192）がある。しかし、これらの検出方法には、細胞の破壊が必要であることやサンプルの処理に時間がかかること、分離・抽出・精製が困難であることなど、技術的に大きな欠陥があるせいで、インシチュでハイスループット定量分析を行うことができず、分岐鎖アミノ酸の関連研究分野の発展はある程度制限されている。
従って、当技術分野では、高特異的な分岐鎖アミノ酸検出技術、特に生理的レベルおよび細胞下レベルに適した、インシチュで、リアルタイムで、動的で、ハイスループットで、時空間分解能の高い検出方法の開発が切望されている。
当技術分野はまた、蛍光分光測定法（Engeser Mら，Chemical Communications 1999, （13）：1191-1192）によって、Ｎｉ（ＩＩ）テトラアザ大環状錯体と共有結合したナフタレン断片の蛍光発光強度の変化の計測により分岐鎖アミノ酸を測定するが、前記のＮｉ（ＩＩ）テトラアザ大環状錯体は温度依存性のスピン交換相互作用を受ける必要がある。該方法では、依然として前記のようなモニターの要求を満たすことができない。
従来の低分子色素検出技術や急速に発展している量子ドット検出技術と比較して、蛍光タンパク質検出技術は、ほとんどの生細胞イメージングにおいてユニークで且つ圧倒的な利点を持っており、細胞、組織、ひいては臓器全体に遺伝的に導入することができるので、蛍光タンパク質は、全細胞マーカーまたは遺伝子活性化の指標とすることができる。
緑色蛍光タンパク質は元々オワンクラゲ（Aequorea victoria）から抽出されたものであり、野生型ＡｖＧＦＰは２３８個のアミノ酸からなり、分子量は約２６ ｋＤである。従来の研究で確認されたように、天然ＧＦＰタンパク質の６５〜６７番目の３つのアミノ酸Ｓｅｒ−Ｔｙｒ−Ｇｌｙは、自発的にｐ−ヒドロキシベンジリデンイミダゾリノン（p-hydroxybenzylideneimidazolinone）という蛍光発色団を形成することができ、その発光の本体となる。野生型ＡｖＧＦＰのスペクトル特徴は非常に複雑で、蛍光励起のメインピークは３９５ ｎｍにあり、４７５ ｎｍには別のサテライトピークがあるが、後者の蛍光強度は前者の約１／３である。標準的な溶液条件において、３９５ ｎｍで励起すると５０８ ｎｍで発光が得られ、４７５ ｎｍで励起すると５０３ ｎｍで最大発光波長が得られる（Heim，R.ら，Proc Natl Acad Sci U S A. 1994，V.91(26)，pp.12501-12504）。
ＧＦＰタンパク質変異に対する研究の深化に伴い、分子生物学技術を用いて、抜群のＧＦＰ誘導体が既に数多く開発されており、野生型ＧＦＰを基に異なる単一点変異またはその組み合わせを行うことで、例えば増強型のＧＦＰ（Ｓ６５Ｔ、Ｆ６４Ｌ）、ＹＦＰ（Ｔ２０３Ｙ）、ＣＦＰ（Ｙ６６Ｗ）などを得ることができる。一方、ＧＦＰタンパク質配列の再配列により、元の１４５〜２３８位のアミノ酸部分を新規タンパク質のＮ末端とし、元の１〜１４４位のアミノ酸を新規タンパク質のＣ末端とし、両者の断片を一つの柔軟な短ペプチド鎖を介して連結させ、空間変化に敏感な円順列変異蛍光タンパク質（circular permutation fluorescent protein）を形成した上で、元のタンパク質のＴ２０３Ｙに点変異を行うと、円順列変異黄色蛍光タンパク質ｃｐＹＦＰが形成される（Nagai，Ｔら，Proc Natl Acad Sci U S A. 2001，V.98(6)，pp.3197-3202）。
蛍光タンパク質に関する研究がますます深くなっているため、関連するいくつかの蛍光による分析・検出技術もさらに開発されている。例えば、従来で常用されている蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）技術の主な原理は、２つの蛍光発色団が十分に接近する場合、所定の周波数のフォトンを吸収したドナー分子がより高い電子エネルギー状態に励起され、該電子が基底状態に戻る前に、双極子相互作用によって隣接のアクセプター分子へのエネルギー移動が実現される（つまり、共鳴エネルギー移動が発生する）。ＦＲＥＴは非放射エネルギー遷移であって、分子間の電気双極子相互作用により、ドナーの励起状態のエネルギーがアクセプターの励起状態に移動する過程であり、ドナーの蛍光強度は低下するが、アクセプターはそれ自体の特徴的な蛍光よりも強く発光することができ（蛍光増感）、または蛍光を発光しなくてもよい（蛍光消光）。緑色蛍光タンパク質に関する従来のさらなる研究により、緑色蛍光タンパク質変異体から由来のシアン蛍光タンパク質（ＣＦＰ）と黄色蛍光タンパク質（ＹＦＰ）は、抜群のドナー／アクセプターペアであることが分かった。ＣＦＰの発光スペクトルとＹＦＰの吸収スペクトルはかなり重なり合っており、それらが十分に接近すると、ＣＦＰの吸収波長による励起で、ＣＦＰの発色団がエネルギーを効率的にＹＦＰの発色団に共鳴移動させることから、ＣＦＰの蛍光発光は弱くなるまたは消滅し、主要な発光はＹＦＰの蛍光になる。２つの発色団の間のエネルギー移動効率は、それらの間の空間距離の６乗に反比例し、空間位置の変化に非常に敏感である。従って、従来の研究報告では、遺伝子工学的な組換え手段を利用し、研究しようとするタンパク質遺伝子の両末端をそれぞれＣＦＰおよびＹＦＰと融合させ、新規な融合タンパク質を発現させ、該タンパク質とその特異的な標的分子との結合によって生じる空間の変化を、蛍光の変化によって直観的に表示させる。
従って、本文で用いられる蛍光タンパク質の配列は、オワンクラゲ（Aequorea victoria）の蛍光タンパク質およびその誘導体から由来のものであってもよく、黄色蛍光タンパク質（ＹＦＰ）、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、シアン蛍光タンパク質（ＣＦＰ）などの配列を含むが、これらに限定されず、そのうち、黄色蛍光タンパク質ＹＦＰの配列が好ましく、円順列変異型の黄色蛍光タンパク質ｃｐＹＦＰの配列がより好ましい。
分岐鎖アミノ酸とロイシンの結合タンパク質は両方とも、大腸菌（Escherichia coli）から由来するもの、或いはサルモネラから由来し且つ分岐鎖アミノ酸とロイシンの結合タンパク質と９０％以上の相同性を持つは分岐鎖アミノ酸とロイシンの結合タンパク質であり、ペリプラズム結合タンパク質の有する２つの典型的なα／β球状ドメインがヒンジで連結されてなる構造を含み、分岐鎖アミノ酸とロイシンに結合できる。
発明者らは、蛍光タンパク質を分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはロイシン結合タンパク質と融合させた蛍光センサーが、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはロイシン結合タンパク質と分岐鎖アミノ酸またはロイシンとの結合をリアルタイムで且つ直観的に表示できることを見出した。
本文に記載の参考文献に対する引用または検討は、これらの参考文献が本発明に対して従来技術であることを認めたものとして理解すべきではない。
本発明の目的は、細胞内外において、分岐鎖アミノ酸またはロイシンをリアルタイムで位置決め、ハイスループットで定量的に検出するための分岐鎖アミノ酸蛍光センサーまたはロイシン蛍光センサーを提供することである。
本発明は、ａ）ロイシン応答性ポリペプチドと、ｂ）光学活性ポリペプチドとを含む蛍光センサーであって、前記光学活性ポリペプチドが前記ロイシン応答性ポリペプチドに挿入されている蛍光センサーを提供する。一つの実施形態において、ロイシン応答性ポリペプチドはさらに、イソロイシンやバリンのような他の分岐鎖アミノ酸にも応答する。
一つの実施形態において、光学活性ポリペプチドは蛍光タンパク質、またはその機能性断片若しくは変異体である。一つの実施形態において、蛍光タンパク質は、緑色蛍光タンパク質、青色蛍光タンパク質、シアン蛍光タンパク質、オレンジ蛍光タンパク質、リンゴ赤色蛍光タンパク質、赤色蛍光タンパク質からなる群から選ばれる。一つの実施形態において、蛍光タンパク質は配列番号３〜１３に示される配列を有する。
一つの実施形態において、本発明にかかる蛍光センサーはさらに、ロイシン応答性ポリペプチドと光学活性ポリペプチドの間にある１つまたは複数のリンカーを含む。一つの実施形態において、本発明にかかる蛍光センサーはリンカーを含まない。本発明における前記リンカーは、任意のアミノ酸配列であってもよいが、その長さが４個のアミノ酸を超えないものは好ましい。
一つの実施形態において、本発明にかかる蛍光センサーはさらに、センサーを例えば細胞の特定の細胞小器官へ位置決めするための位置決め配列を含む。
一つの実施形態において、本発明における前記ロイシン応答性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片、およびロイシン結合タンパク質またはその機能性断片からなる群から選ばれる。
一つの実施形態において、本発明における前記ロイシン応答性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片であり、配列番号１に示される配列またはその機能性断片を有する配列、或いはそれと８５％の配列相同性を持つ配列が好ましい。
一つの実施形態において、本発明における前記ロイシン応答性ポリペプチドは、ロイシン結合タンパク質またはその機能性断片であり、配列番号２に示される配列またはその機能性断片を有する配列、或いはそれと８５％の配列相同性を持つ配列が好ましい。
本発明における前記光学活性ポリペプチドは、ロイシン応答性ポリペプチドの任意の位置にあってもよい。一つの実施形態において、本発明における前記光学活性ポリペプチドは、ロイシン応答性ポリペプチドの残基１１８〜１２０、残基２４８〜２５８または残基３２５〜３３１の間に位置し、番号は分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長またはロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである。一つの実施形態において、光学活性ポリペプチドは、ロイシン応答性ポリペプチドの残基１１８〜１２０、残基２４８〜２５８または残基３２５〜３３１の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号は分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長またはロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである。
一つの実施形態において、光学活性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の下記の部位に挿入される：１１８／１１９、１１８／１２０、１１９／１２０、２４８／２４９、２４８／２５０、２４８／２５１、２４８／２５２、２４８／２５３、２４８／２５４、２４８／２５５、２４８／２５６、２４８／２５７、２４８／２５８、２４９／２５０、２４９／２５１、２４９／２５２、２４９／２５３、２４９／２５４、２４９／２５５、２４９／２５６、２４９／２５７、２４９／２５８、２５０／２５１、２５０／２５２、２５０／２５３、２５０／２５４、２５０／２５５、２５０／２５６、２５０／２５７、２５０／２５８、２５１／２５２、２５１／２５３、２５１／２５４、２５１／２５５、２５１／２５６、２５１／２５７、２５１／２５８、２５２／２５３、２５２／２５４、２５２／２５５、２５２／２５６、２５２／２５７、２５２／２５８、２５３／２５４、２５３／２５５、２５３／２５６、２５３／２５７、２５３／２５８、２５４／２５５、２５４／２５６、２５４／２５７、２５４／２５８、２５５／２５６、２５５／２５７、２５５／２５８、２５６／２５７、２５６／２５８、２５７／２５８、３２５／３２６、３２５／３２７、３２５／３２８、３２５／３２９、３２６／３２７、３２６／３２８、３２６／３２９、３２７／３２８、３２７／３２９または３２８／３２９。
一つの実施形態において、光学活性ポリペプチドは、ロイシン結合タンパク質の下記の部位に挿入される：１１８／１１９、１１８／１２０、１１９／１２０、２４８／２４９、２４８／２５０、２４８／２５１、２４８／２５２、２４８／２５３、２４８／２５４、２４８／２５５、２４８／２５６、２４８／２５７、２４８／２５８、２４９／２５０、２４９／２５１、２４９／２５２、２４９／２５３、２４９／２５４、２４９／２５５、２４９／２５６、２４９／２５７、２４９／２５８、２５０／２５１、２５０／２５２、２５０／２５３、２５０／２５４、２５０／２５５、２５０／２５６、２５０／２５７、２５０／２５８、２５１／２５２、２５１／２５３、２５１／２５４、２５１／２５５、２５１／２５６、２５１／２５７、２５１／２５８、２５２／２５３、２５２／２５４、２５２／２５５、２５２／２５６、２５２／２５７、２５２／２５８、２５３／２５４、２５３／２５５、２５３／２５６、２５３／２５７、２５３／２５８、２５４／２５５、２５４／２５６、２５４／２５７、２５４／２５８、２５５／２５６、２５５／２５７、２５５／２５８、２５６／２５７、２５６／２５８、２５７／２５８、３２７／３２８、３２７／３２９、３２７／３３０、３２７／３３１、３２８／３２９、３２８／３３０、３２８／３３１、３２９／３３０、３２９／３３１または３３０／３３１。
一つの実施形態において、光学活性ポリペプチドは、ロイシン応答性ポリペプチドの残基３２５〜３２９の間に位置し、番号は分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長に相応するものである。一つの実施形態において、光学活性ポリペプチドは、ロイシン応答性ポリペプチドの残基３２５〜３２９の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号は分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長に相応するものである。好ましくは、光学活性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２６／３２７または３２７／３２８の間に位置する。
一つの実施形態において、光学活性ポリペプチドは、ロイシン応答性ポリペプチドの残基３２７〜３３１の間に位置し、番号は前記ロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである。一つの実施形態において、光学活性ポリペプチドは、ロイシン応答性ポリペプチドの残基３２７〜３３１の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号はロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである。好ましくは、光学活性ポリペプチドは、ロイシン結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２８／３２９または３２９／３３０の間に位置する。
本発明のもう一つは、ａ）分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチドと、ｂ）光学活性ポリペプチドとを含む蛍光センサーであって、前記光学活性ポリペプチドが前記分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチドに挿入されている蛍光センサーを提供する。
一つの実施形態において、光学活性ポリペプチドは蛍光タンパク質、またはその機能性断片若しくは変異体である。一つの実施形態において、蛍光タンパク質は、緑色蛍光タンパク質、青色蛍光タンパク質、シアン蛍光タンパク質、オレンジ蛍光タンパク質、リンゴ赤色蛍光タンパク質、赤色蛍光タンパク質からなる群から選ばれる。一つの実施形態において、蛍光タンパク質は配列番号３〜１３に示される配列を有する。
一つの実施形態において、蛍光センサーは、分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチドと光学活性ポリペプチドの間にある１つまたは複数のリンカーを含む。一つの実施形態において、蛍光センサーはリンカーを含まない。本発明における前記リンカーは、任意のアミノ酸配列であってもよいが、その長さが４個のアミノ酸を超えないものは好ましい。
一つの実施形態において、蛍光センサーは、センサーを例えば細胞の特定の細胞小器官へ位置決めするための位置決め配列を含む。
一つの実施形態において、分岐鎖アミノ酸はロイシン、イソロイシンバリンおよびバリンからなる群から選ばれる。
一つの実施形態において、分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片、およびロイシン結合タンパク質またはその機能性断片からなる群から選ばれる。
一つの実施形態において、分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片であり、配列番号１に示される配列またはその機能性断片を有する配列、或いはそれと８５％の配列相同性を持つ配列が好ましい。
一つの実施形態において、分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチドは、ロイシン結合タンパク質またはその機能性断片であり、配列番号２に示される配列またはその機能性断片を有する配列、或いはそれと８５％の配列相同性を持つ配列が好ましい。
本発明において、光学活性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチドの任意の位置にあってもよい。一つの実施形態において、光学活性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチドの残基１１８〜１２０、残基２４８〜２５８または残基３２５〜３３１の間に位置し、番号は分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長またはロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである。一つの実施形態において、光学活性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチドの残基１１８〜１２０、残基２４８〜２５８または残基３２５〜３３１の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号は分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長またはロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである。
一つの実施形態において、本発明における前記光学活性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の下記の部位に挿入される：１１８／１１９、１１８／１２０、１１９／１２０、２４８／２４９、２４８／２５０、２４８／２５１、２４８／２５２、２４８／２５３、２４８／２５４、２４８／２５５、２４８／２５６、２４８／２５７、２４８／２５８、２４９／２５０、２４９／２５１、２４９／２５２、２４９／２５３、２４９／２５４、２４９／２５５、２４９／２５６、２４９／２５７、２４９／２５８、２５０／２５１、２５０／２５２、２５０／２５３、２５０／２５４、２５０／２５５、２５０／２５６、２５０／２５７、２５０／２５８、２５１／２５２、２５１／２５３、２５１／２５４、２５１／２５５、２５１／２５６、２５１／２５７、２５１／２５８、２５２／２５３、２５２／２５４、２５２／２５５、２５２／２５６、２５２／２５７、２５２／２５８、２５３／２５４、２５３／２５５、２５３／２５６、２５３／２５７、２５３／２５８、２５４／２５５、２５４／２５６、２５４／２５７、２５４／２５８、２５５／２５６、２５５／２５７、２５５／２５８、２５６／２５７、２５６／２５８、２５７／２５８、３２５／３２６、３２５／３２７、３２５／３２８、３２５／３２９、３２６／３２７、３２６／３２８、３２６／３２９、３２７／３２８、３２７／３２９または３２８／３２９。本文において、「Ｘ／Ｙ」の形で表示される部位における２つの数字は連続した数字ではないと、光学活性ポリペプチドが該数字の間のアミノ酸を置換することを意味する。例えば、２５０／２５７とは、光学活性ポリペプチドがアミノ酸配列２５１〜２５６を置換することを意味する。
一つの実施形態において、本発明における前記光学活性ポリペプチドは、ロイシン結合タンパク質の下記の部位に挿入される：１１８／１１９、１１８／１２０、１１９／１２０、２４８／２４９、２４８／２５０、２４８／２５１、２４８／２５２、２４８／２５３、２４８／２５４、２４８／２５５、２４８／２５６、２４８／２５７、２４８／２５８、２４９／２５０、２４９／２５１、２４９／２５２、２４９／２５３、２４９／２５４、２４９／２５５、２４９／２５６、２４９／２５７、２４９／２５８、２５０／２５１、２５０／２５２、２５０／２５３、２５０／２５４、２５０／２５５、２５０／２５６、２５０／２５７、２５０／２５８、２５１／２５２、２５１／２５３、２５１／２５４、２５１／２５５、２５１／２５６、２５１／２５７、２５１／２５８、２５２／２５３、２５２／２５４、２５２／２５５、２５２／２５６、２５２／２５７、２５２／２５８、２５３／２５４、２５３／２５５、２５３／２５６、２５３／２５７、２５３／２５８、２５４／２５５、２５４／２５６、２５４／２５７、２５４／２５８、２５５／２５６、２５５／２５７、２５５／２５８、２５６／２５７、２５６／２５８、２５７／２５８、３２７／３２８、３２７／３２９、３２７／３３０、３２７／３３１、３２８／３２９、３２８／３３０、３２８／３３１、３２９／３３０、３２９／３３１または３３０／３３１。本文において、「Ｘ／Ｙ」の形で表示される部位における２つの数字は連続した数字ではないと、光学活性ポリペプチドが該数字の間のアミノ酸を置換することを意味する。例えば、２５０／２５７とは、光学活性ポリペプチドがアミノ酸配列２５１〜２５６を置換することを意味する。
一つの実施形態において、本発明における前記光学活性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２５〜３２９の間に位置し、番号は分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長に相応するものである。好ましくは、本発明における前記光学活性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２６／３２７または３２７／３２８の間に位置する。一つの実施形態において、本発明における前記光学活性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２５〜３２９の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号は分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長に相応するものである。
一つの実施形態において、本発明における前記光学活性ポリペプチドは、ロイシン結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２７〜３３１の間に位置し、番号はロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである。一つの実施形態において、本発明における前記光学活性ポリペプチドは、ロイシン結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２７〜３３１の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号はロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである。好ましくは、本発明における前記光学活性ポリペプチドは、ロイシン結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２８／３２９または３２９／３３０の間に位置する。
本発明はさらに、本発明にかかる蛍光センサーをコードする核酸配列またはその相補配列を提供する。
本発明はさらに、発現制御配列と作動可能に連結され、本発明にかかる蛍光センサーをコードする本発明にかかる核酸配列またはその相補配列を含む発現ベクターを提供する。
本発明はさらに、発現制御配列と作動可能に連結される本発明にかかる核酸配列またはその相補配列を含む本発明にかかる発現ベクターを含む細胞を提供する。
本発明は、本発明にかかる蛍光センサーを発現するベクターを含む細胞を提供することと、前記細胞の発現条件下で前記細胞を培養することと、および前記蛍光センサーを分離することと、を含む本発明にかかる蛍光センサーの製造方法を提供する。
本発明は、本発明にかかる蛍光センサーまたは本発明にかかる方法で製造される蛍光センサーをサンプルと接触させることと、および光学活性ポリペプチドの変化を検出することと、を含むサンプルにおけるロイシンの検出方法を提供する。
本発明は、本発明にかかる蛍光センサーまたは本発明にかかる方法で製造される蛍光センサーをサンプルと接触させることと、および光学活性ポリペプチドの変化を検出することと、を含むサンプルにおける分岐鎖アミノ酸の検出方法を提供する。一つの実施形態において、分岐鎖アミノ酸はロイシン、イソロイシンバリンおよびバリンからなる群から選ばれる。前記検出は、インビボ、インビトロ、細胞下またはインシチュレベルで行うことができる。
本発明は、本発明にかかる蛍光センサーまたは本発明にかかる方法で製造される蛍光センサーの、サンプルにおけるロイシンを検出するための使用を提供する。前記検出は、インビボ、インビトロ、細胞下またはインシチュレベルで行うことができる。
本発明は、本発明にかかる蛍光センサーまたは本発明にかかる方法で製造される蛍光センサーの、サンプルにおける分岐鎖アミノ酸を検出するための使用を提供する。一つの実施形態において、分岐鎖アミノ酸はロイシン、イソロイシンバリンおよびバリンからなる群から選ばれる。前記検出は、インビボ、インビトロ、細胞下またはインシチュレベルで行うことができる。
本発明はさらに、本発明にかかる蛍光センサーまたは本発明にかかる方法で製造される蛍光センサーを含むキットを提供する。
本発明の有益な効果は：本発明にかかる蛍光センサーは、成熟しやすく、蛍光動的変化が大きく、特異性が良好で、且つ遺伝子操作の方法によって細胞中で発現させることもでき、細胞内外において、分岐鎖アミノ酸とロイシンをリアルタイムで位置決め、ハイスループットで定量的に検出することができる。時間のかかるサンプル処理ステップを省略した。実験結果によれば、本発明で提供される分岐鎖アミノ酸蛍光センサーとロイシン蛍光センサーは、分岐鎖アミノ酸とロイシンに対して３倍以上の最大応答を有し、細胞質、ミトコンドリア、細胞核、小胞体、細胞外膜、細胞内膜、ゴルジ体、リゾソームなどの細胞下構造において細胞を位置決めて検出することができ、且つハイスループットの化合物スクリーニングを可能にする。
具体的な実施形態
Ｉ．定義：
数値や範囲が開示された場合、本文に用いられる用語の「約」とは、該数値や範囲が所定の数値や範囲の２０％以内、１０％以内および５％以内にあることを指す。
Ｉ．定義：
数値や範囲が開示された場合、本文に用いられる用語の「約」とは、該数値や範囲が所定の数値や範囲の２０％以内、１０％以内および５％以内にあることを指す。
本文に用いられる用語の「含む」、「含まれる」およびそれらの均等の形態（「含有する」や「……からなる」を含む）の意味は、例えばＸを「含む」組成物とは、Ｘのみからなるものであってもよいが、他の物質を含有するもの、例えばＸ＋Ｙであってもよい。
本文に用いられる用語の「分岐鎖アミノ酸」または「ＢＣＡＡ」は、分岐のある脂肪族側鎖（３つ以上の原子に結合した中心炭素原子）を有するアミノ酸である。タンパク質のアミノ酸の中に、ロイシン、イソロイシンおよびバリンという３種類の分岐鎖アミノ酸がある。非タンパク質由来の分岐鎖アミノ酸は、２−アミノイソ酪酸を含む。
本文に用いられる用語の「分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチド」とは、分岐鎖アミノ酸に応答するポリペプチドを指す。本文に用いられる用語の「ロイシン応答性ポリペプチド」とは、ロイシンに応答するポリペプチドを指す。本文において、両者を合わせて「応答性ポリペプチド」と総称してもよい。前記応答は、応答性ポリペプチドの相互作用に関連するポリペプチドの化学的、生物的、電気的または生理的なパラメータのいずれかの応答を含む。応答は微小な変化、例えば応答性ポリペプチドのアミノ酸またはペプチドフラグメントの方向の変化、並びにポリペプチドの一次、二次または三次構造の変化、例えばプロトン化、電気化学ポテンシャルおよび／または立体配座の変化を含む。「立体配座」は、分子におけるペンダント基含有分子の一次、二次および三次構造の三次元配置であり、分子の三次元構造は変化すると、立体配座は変化する。立体配座の変化の実例は、αヘリックスからβシートへの転換、またはβシートからαヘリックスへの転換を含む。蛍光タンパク質部分の蛍光が変化する限り、検出される変化が立体配座の変化である必要はないことが理解すべきである。
本発明における前記分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチドまたはロイシン応答性ポリペプチドは、「分岐鎖アミノ酸に結合するタンパク質」、「分岐鎖アミノ酸結合タンパク質」、「ロイシンに結合するタンパク質」および「ロイシン結合タンパク質」を含むが、それらに限定されない。本発明における例示的な分岐鎖アミノ酸結合タンパク質ＬｉｖＪまたはロイシン結合タンパク質ＬｉｖＫは、大腸菌（Escherichia coli）から由来するもの、或いはサルモネラから由来し且つ分岐鎖アミノ酸結合タンパク質やロイシン結合タンパク質と９０％以上の相同性を持つは分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはロイシン結合タンパク質であり、ペリプラズム結合タンパク質の有する２つの典型的なα／β球状ドメインがヒンジで連結されてなる構造を含み、分岐鎖アミノ酸またはロイシンに結合できる。分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはロイシン結合タンパク質は、ペリプラズムにおける分岐鎖アミノ酸やロイシンの濃度の変化を感知し、分岐鎖アミノ酸やロイシンの濃度の動的変化の過程において、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質やロイシン結合タンパク質の立体配座も大きく変化する。分岐鎖アミノ酸結合タンパク質やロイシン結合タンパク質は、生理的濃度の分岐鎖アミノ酸やロイシンと特異的に結合することで生じる立体配座の変化は、蛍光タンパク質の立体配座の変化を引き起こし、ひいては蛍光タンパク質の蛍光の変化を引き起こし、かつ異なる分岐鎖アミノ酸やロイシン濃度で測定した蛍光タンパク質の蛍光で標準曲線をプロットすることで、分岐鎖アミノ酸やロイシンの存在および／またはレベルを検出して分析する。例示的な分岐鎖アミノ酸結合タンパク質は配列番号１に示され、例示的なロイシン結合タンパク質のアミノ酸配列は配列番号２に示される。
本文に用いられる用語の「融合タンパク質」は、「蛍光融合タンパク質」および「組換え蛍光融合タンパク質」と同じ意味であり、第１のポリペプチドまたはタンパク質、或いはその断片、類似物または誘導体のアミノ酸配列と、異種のポリペプチドまたはタンパク質（即ち、第１のポリペプチドまたはタンパク質、或いはその断片、類似物または誘導体と異なる第２のポリペプチドまたはタンパク質、或いはその断片、類似物または誘導体）のアミノ酸配列とを含むポリペプチドまたはタンパク質を指す。一つの実施形態において、融合タンパク質は、異種のタンパク質、ポリペプチドまたはペプチドと融合した蛍光タンパク質を含む。この実施形態によれば、異種のタンパク質、ポリペプチドまたはペプチドは、異なるタイプの蛍光タンパク質であってもよいが、そうでなくてもよい。一つの実施形態において、異種のタンパク質、ポリペプチドまたはペプチドと融合する前の元のポリペプチドまたはタンパク質の活性と比較して、融合タンパク質は活性を保持または向上した。一つの具体的な実施形態において、融合タンパク質は、特異的な細胞下位置決めシグナルであってもよい異種のタンパク質、ポリペプチドまたはペプチドと融合した蛍光センサーを含む。
本文に用いられる用語の「蛍光センサー」とは、蛍光タンパク質と融合した応答性ポリペプチドを指し、前記応答性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチドまたはロイシン応答性ポリペプチド、具体的には分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはロイシン結合タンパク質であってもよい。前記蛍光センサーは、応答性ポリペプチドと分岐鎖アミノ酸（例えばロイシン、イソロイシンバリンおよびバリンからなる群から選ばれるもの）との結合で引き起こされる蛍光タンパク質の立体配座の変化を利用し、蛍光の発光・消滅または発光した蛍光の変化を引き起こし、これで分岐鎖アミノ酸の存在および／またはレベルの検出を実現する。
本発明にかかる蛍光センサーにおいて、光学活性ポリペプチド（例えば蛍光タンパク質）は、分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチドまたはロイシン応答性ポリペプチドであってもよい応答性ポリペプチドへ作動可能に挿入される。タンパク質に基づく「光学活性ポリペプチド」は、発光手段を含有するポリペプチドである。蛍光は光学活性ポリペプチドの光学的特性の一つであり、本発明にかかる蛍光センサーまたは応答性ポリペプチドの応答性を検出するため手段として有用である。本文に用いられるように、用語の「蛍光特性」とは、適切な励起波長でのモル消衰係数、蛍光の量子効率、励起スペクトルまたは発光スペクトルの形状、最大励起波長と最大発光波長、励起の比率、２つの異なる波長の振幅、２つの異なる波長の発光振幅の比率、励起状態の寿命または蛍光異方性を指す。
活性化状態と非活性化状態の間でのそれらの特性のいずれか一つの計測可能な差異は、本発明にかかる蛍光タンパク質基質の活性測定における使用にとって十分である。計測可能な差異は、いずれかの定量的な蛍光特性の量、例えば特定の波長での蛍光量または発光スペクトルにおける蛍光の積分を確認することで確認できる。好ましくは、未活性化と活性化の立体配座状態で容易に区別できる蛍光特性を持つようにタンパク質基質を選択する。
本文に用いられる用語の「蛍光団」は「蛍光タンパク質」と同じ意味であり、その自身が蛍光を発光するまたは照射により蛍光を発光するタンパク質を指す。例えば生物技術分野で常用される緑色蛍光タンパク質ＧＦＰおよび該タンパク質から突然変異で誘導されるＢＦＰ、ＣＦＰ、ＹＦＰ、ｃｐＹＦＰなどの蛍光タンパク質は、よく検出手段として用いられる。分子内再配列により蛍光を発光するタンパク質または蛍光を促進する補因子の添加も含めて、どんな蛍光タンパク質も本発明に利用できる。例示的な蛍光タンパク質の配列は配列番号３〜１３に示される。
本文に用いられる用語の「ＧＦＰ」は緑色蛍光タンパク質を指し、元々はオワンクラゲ（Aequorea victoria）から抽出されたものであり、野生型ＡｖＧＦＰは２３８個のアミノ酸からなり、分子量は約２６ ｋＤである。ＧＦＰは、１２本のβシート鎖によって形成されたユニークな樽状構造であり、その中には発色性トリペプチド（Ｓｅｒ６５−Ｔｙｒ６６−Ｇｌｙ６７）が包まれている。酸素の存在下で、それは自発的にｐ−ヒドロキシベンジリデンイミダゾリノンという発色団構造を形成し、蛍光を発光する。ＧＦＰの蛍光発光に補因子が必要とせず、しかも蛍光は非常に安定しているため、優れたイメージングツールである。従来の研究で確認されたように、天然ＧＦＰタンパク質の６５〜６７番目の３つのアミノ酸Ｓｅｒ−Ｔｙｒ−Ｇｌｙは、自発的にｐ−ヒドロキシベンジリデンイミダゾリノン（p-hydroxybenzylideneimidazolinone）という蛍光発色団を形成することができ、その発光の本体となる。野生型ＡｖＧＦＰのスペクトル特徴は非常に複雑で、蛍光励起のメインピークは３９５ ｎｍにあり、４７５ ｎｍには別のサテライトピークがあるが、後者の振幅強度は前者の約１／３である。標準的な溶液条件において、３９５ ｎｍで励起すると５０８ ｎｍで発光が得られ、４７５ ｎｍで励起すると５０３ ｎｍで最大発光波長が得られる。
本文に用いられる用語の「ＹＦＰ」は黄色蛍光タンパク質を指し、該タンパク質は緑色蛍光タンパク質ＧＦＰから誘導されるものであり、そのアミノ酸配列はＧＦＰと９０％以上もある相同性を持ち、ＹＦＰはＧＦＰと比較して、肝心な変化は２０３位のアミノ酸がトレオニンからチロシンへ突然変異したこと（Ｔ２０３Ｙ）にある。元のＡｖＧＦＰと比較して、ＹＦＰの励起メインピークの波長は５１４ ｎｍにレッドシフトし、発光波長は５２７ ｎｍに変化する。その上で、ＹＦＰの６５位のアミノ酸に部位特異的変異（Ｓ６５Ｔ）を行うと、蛍光強化型黄色蛍光タンパク質ＥＹＦＰが得られる。
本発明にかかる蛍光タンパク質は黄色蛍光タンパク質ｃｐＹＦＰであってもよく、黄色蛍光タンパク質ｃｐＹＦＰのアミノ酸配列は配列番号３に示される。本発明において、前記黄色蛍光タンパク質ｃｐＹＦＰは、ＧＦＰの元のＮ末端とＣ末端を一つの柔軟な短ペプチド鎖を介して連結させ、元のＧＦＰの発色団に近い位置で新たなＮ末端とＣ末端を作成し、元の１４５〜２３８位のアミノ酸部分を新規タンパク質のＮ末端とし、元の１〜１４４位のアミノ酸を新規タンパク質のＣ末端とし、両者の断片を５〜９個の柔軟な短ペプチド鎖を介して連結させ、空間変化に敏感な円順列変異黄色蛍光タンパク質ｃｐＹＦＰ（circular permutation yellow fluorescent protein）を形成する。本発明において、発色団に近い位置は、Ｙ１４４とＮ１４５位のアミノ酸のところが好ましい；前記柔軟な短ペプチド鎖は、ＶＤＧＧＳＧＧＴＧまたはＧＧＳＧＧが好ましい。
本発明において、前記赤色蛍光タンパク質ｃｐｍＫａｔｅは元々海洋中の珊瑚から抽出されたものであり、野生型ＲＦＰはオリゴタンパク質で、生命体での融合発現に不利であるが、その後、ＲＦＰを基に異なる発色波長領域を持つ赤色蛍光タンパク質をさらに誘導し、その中で最も常用されるのはｍＣｈｅｒｒｙとｍＫａｔｅである。
本発明の他の実施形態において、前記蛍光タンパク質はさらに、アミノ酸配列が配列番号６または配列番号１１に示される緑色蛍光タンパク質、アミノ酸配列が配列番号４または配列番号１２に示される青色蛍光タンパク質、アミノ酸配列が配列番号７に示されるシアン蛍光タンパク質ｃｐＴＦＰ、アミノ酸配列が配列番号８に示されるオレンジ蛍光タンパク質、アミノ酸配列が配列番号５に示されるリンゴ赤色蛍光タンパク質、アミノ酸配列が配列番号９または配列番号１３に示される赤色蛍光タンパク質ｃｐｍＫａｔｅ、およびアミノ酸配列が配列番号１０に示される赤色蛍光タンパク質ｍｃｈｅｒｒｙのうちの１種または複数種であってもよい。
本発明にかかる蛍光センサーにおいて、蛍光タンパク質またはその機能性断片若しくは変異体は、前記応答性ポリペプチドの任意の位置にあってもよく、前記応答性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸応答性ポリペプチドまたはロイシン応答性ポリペプチドであってもよい。具体的には、蛍光タンパク質またはその機能性断片若しくは変異体は、応答性ポリペプチドの柔軟な領域に位置し、前記柔軟な領域とは、タンパク質の高次構造に存在するループ状ドメインなどの特定の構造を指し、これらのドメインは、タンパク質の他の高次構造よりも移動性と柔軟性が高く、且つ該領域は、該タンパク質がリガンドと結合すると、空間構造と立体配座が動的に変化する。本発明における前記柔軟な領域は、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質とロイシン結合タンパク質の挿入部位が存在する領域であってもよい。
一つの実施形態において、本発明における前記蛍光タンパク質またはその機能性断片若しくは変異体は、前記応答性ポリペプチドの残基１１８〜１２０、残基２４８〜２５８または残基３２５〜３３１の間に位置し、番号は前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長または前記ロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである。一つの実施形態において、本発明における前記蛍光タンパク質またはその機能性断片若しくは変異体は、前記応答性ポリペプチドの残基１１８〜１２０、残基２４８〜２５８または残基３２５〜３３１の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号は前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長または前記ロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである。一つの実施形態において、本発明における前記蛍光タンパク質またはその機能性断片若しくは変異体は、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の下記の部位に挿入される：１１８／１１９、１１８／１２０、１１９／１２０、２４８／２４９、２４８／２５０、２４８／２５１、２４８／２５２、２４８／２５３、２４８／２５４、２４８／２５５、２４８／２５６、２４８／２５７、２４８／２５８、２４９／２５０、２４９／２５１、２４９／２５２、２４９／２５３、２４９／２５４、２４９／２５５、２４９／２５６、２４９／２５７、２４９／２５８、２５０／２５１、２５０／２５２、２５０／２５３、２５０／２５４、２５０／２５５、２５０／２５６、２５０／２５７、２５０／２５８、２５１／２５２、２５１／２５３、２５１／２５４、２５１／２５５、２５１／２５６、２５１／２５７、２５１／２５８、２５２／２５３、２５２／２５４、２５２／２５５、２５２／２５６、２５２／２５７、２５２／２５８、２５３／２５４、２５３／２５５、２５３／２５６、２５３／２５７、２５３／２５８、２５４／２５５、２５４／２５６、２５４／２５７、２５４／２５８、２５５／２５６、２５５／２５７、２５５／２５８、２５６／２５７、２５６／２５８、２５７／２５８、３２５／３２６、３２５／３２７、３２５／３２８、３２５／３２９、３２６／３２７、３２６／３２８、３２６／３２９、３２７／３２８、３２７／３２９または３２８／３２９。一つの実施形態において、本発明における前記蛍光タンパク質またはその機能性断片若しくは変異体は、ロイシン結合タンパク質の下記の部位に挿入される：１１８／１１９、１１８／１２０、１１９／１２０、２４８／２４９、２４８／２５０、２４８／２５１、２４８／２５２、２４８／２５３、２４８／２５４、２４８／２５５、２４８／２５６、２４８／２５７、２４８／２５８、２４９／２５０、２４９／２５１、２４９／２５２、２４９／２５３、２４９／２５４、２４９／２５５、２４９／２５６、２４９／２５７、２４９／２５８、２５０／２５１、２５０／２５２、２５０／２５３、２５０／２５４、２５０／２５５、２５０／２５６、２５０／２５７、２５０／２５８、２５１／２５２、２５１／２５３、２５１／２５４、２５１／２５５、２５１／２５６、２５１／２５７、２５１／２５８、２５２／２５３、２５２／２５４、２５２／２５５、２５２／２５６、２５２／２５７、２５２／２５８、２５３／２５４、２５３／２５５、２５３／２５６、２５３／２５７、２５３／２５８、２５４／２５５、２５４／２５６、２５４／２５７、２５４／２５８、２５５／２５６、２５５／２５７、２５５／２５８、２５６／２５７、２５６／２５８、２５７／２５８、３２７／３２８、３２７／３２９、３２７／３３０、３２７／３３１、３２８／３２９、３２８／３３０、３２８／３３１、３２９／３３０、３２９／３３１または３３０／３３１。一つの実施形態において、本発明における前記蛍光タンパク質またはその機能性断片若しくは変異体は、前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２５〜３２９の間に位置し、番号は前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長に相応するものである。一つの実施形態において、本発明における前記蛍光タンパク質またはその機能性断片若しくは変異体は、前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２５〜３２９の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号は前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長に相応するものである。好ましくは、本発明における前記蛍光タンパク質またはその機能性断片若しくは変異体は、前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２６／３２７または３２７／３２８の間に位置する。一つの実施形態において、本発明における前記蛍光タンパク質またはその機能性断片若しくは変異体は、前記ロイシン結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２７〜３３１の間に位置し、番号は前記ロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである。一つの実施形態において、本発明における前記蛍光タンパク質またはその機能性断片若しくは変異体は、前記ロイシン結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２７〜３３１の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号は前記ロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである。好ましくは、本発明における前記蛍光タンパク質またはその機能性断片若しくは変異体は、前記ロイシン結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２８／３２９または３２９／３３０の間に位置する。
例えば、黄色蛍光タンパク質は配列番号１に示される分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の３２５／３２６、３２５／３２７、３２５／３２８、３２５／３２９、３２６／３２７、３２６／３２８、３２６／３２９、３２７／３２８、３２７／３２９または３２８／３２９の間に挿入される場合、蛍光センサーのアミノ酸配列は配列番号１４〜２３に示される。例えば、黄色蛍光タンパク質は配列番号２に示される分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の３２７／３２８、３２７／３２９、３２７／３３０、３２７／３３１、３２８／３２９、３２８／３３０、３２８／３３１、３２９／３３０、３２９／３３１または３３０／３３１の間に挿入される場合、蛍光センサーのアミノ酸配列は配列番号２４〜３３に示される。
本発明において、蛍光団と融合する応答性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはロイシン結合タンパク質の全長またはその断片であってもよく、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質のアミノ酸１〜３４５またはロイシン結合タンパク質のアミノ酸１〜３４７が好ましい。
「リンカー」とは、本発明にかかるポリペプチド、タンパク質または核酸において、２つの部分を連結するアミノ酸または核酸配列を指す。本発明にかかるポリペプチドまたはタンパク質において連結を行う場合、リンカーの長さは６個のアミノ酸を超えず、好ましくは４個のアミノ酸を超えず、より好ましくは３個のアミノ酸である。本発明にかかる核酸において連結を行う場合、リンカーの長さは１８個のヌクレオチドを超えず、好ましくは１２個のヌクレオチドを超えず、より好ましくは９個のヌクレオチドである。
あるポリペプチドまたはタンパク質を言及する場合、本発明に用いられる用語の「変異体」は、前記ポリペプチドまたはタンパク質と同様な機能を有するが、配列が異なる変異体を含む。これらの変異体は、前記ポリペプチドまたはタンパク質の配列において、１つまたは複数（通常は１〜３０個、好ましくは１〜２０個、より好ましくは１〜１０個、最も好ましくは１〜５個）のアミノ酸を欠失、挿入、および／または置換し、且つそのＣ末端および／またはＮ末端に１つまたは複数（通常は２０個以内、好ましくは１０個以内、より好ましくは５個以内）のアミノ酸を付加することにより得られる配列を含むが、それに限定されない。例えば、本分野において、特性が接近するまたは類似するアミノ酸で置換する場合、普通はポリペプチドまたはタンパク質の機能を変化させない。本分野において、特性が類似するアミノ酸とは、類似の側鎖を有するアミノ酸ファミリーを指すことが多く、本分野で明確に定義されている。これらのファミリーは、塩基性側鎖を有するアミノ酸（例えばリジン、アルギニン、ヒスチジン）、酸性側鎖を有するアミノ酸（例えばアスパラギン酸、グルタミン酸）、および非荷電極性側鎖を有するアミノ酸（例えばグリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、トレオニン、チロシン、システイン）、非極性側鎖を有するアミノ酸（例えばアラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン、トリプトファン）、β−分岐側鎖を有するアミノ酸（例えばトレオニン、バリン、イソロイシン）、および芳香族側鎖を有するアミノ酸（例えばチロシン、フェニルアラニン、トリプトファン、ヒスチジン）を含む。また、例えば、Ｃ末端および／またはＮ末端に１つまたは複数のアミノ酸を付加しても、普通はポリペプチドまたはタンパク質の機能を変化させない。遺伝子クローニング操作では、適切な酵素切断部位を設計することがしばしば必要であり、発現されるポリペプチドまたはタンパク質の末端に１つまたは複数の無関係な残基を必然的に導入するが、これは標的ポリペプチドまたはタンパク質の活性に影響しないことは、当業者に公知される。さらにまた、融合タンパク質の構築、組換えタンパク質の発現の促進、宿主細胞外へ自動的に分泌される組換えタンパク質の取得、または組換えタンパク質の精製の便利化を目的として、組換えタンパク質のＮ−末端、Ｃ−末端、または該タンパク質における他の適切な領域内には、いくつかのアミノ酸を追加する必要がしばしばあり、例えば、適切なリンカーペプチド、シグナルペプチド、リーダーペプチド、末端伸長、グルタチオンＳ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）、マルトースＥ結合タンパク質、プロテインＡ、６ＨｉｓまたはＦｌａｇのようなタグ、或いは第Ｘａ因子またはトロンビンまたはエンテロキナーゼのタンパク質加水分解酵素部位が含まれるが、それらに限定されない。ポリペプチドまたはタンパク質の変異体は、相同性配列、保存的変異体、対立遺伝子変異体、天然変異体、誘導変異体、高または低ストリンジェンシー条件下で前記ポリペプチドまたはタンパク質のＤＮＡにハイブリダイズできるＤＮＡによってコードされるポリペプチドまたはタンパク質、および前記ポリペプチドまたはタンパク質に対する抗血清を使用することによって得られるポリペプチドまたはタンパク質を含んでもよい。これらの変異体はさらに、前記ポリペプチドまたはタンパク質と少なくとも約７０％、少なくとも約７５％、少なくとも約８０％、少なくとも約８５％、少なくとも約９０％、少なくとも約９５％、少なくとも約９８％、少なくとも約９９％または１００％の配列相同性を持つポリペプチドまたはタンパク質を含んでもよい。
２つまたは複数のポリペプチドまたは核酸分子の配列において、用語の「相同性」または「相同性百分率」とは、比較ウィンドウまたは指定領域で、シーケンス比較アルゴリズムのような本分野で既知される方法を利用し、手動アラインメントと目視検査によって最大対応を比較およびアラインする場合、２つまたは複数の配列またはサブシーケンスが同一であるか、それらの指定領域内で特定の百分率のアミノ酸残基またはヌクレオチドが同一である（例えば６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％または１００％が同一である）ことを指す。例えば、配列相同性百分率および配列類似性百分率を測定する適切な好ましいアルゴリズムは、ＢＬＡＳＴとＢＬＡＳＴ ２．０アルゴリズムであり、それぞれAltschulら(1977) Nucleic Acids Res. 25:3389とAltschulら(1990) J. Mol. Biol. 215:403を参照できる。
本文に用いられる用語の「機能性断片」、「誘導体」および「類似物」とは、実質的に元のポリペプチドまたはタンパク質と同じ生物学的機能または活性を保持するポリペプチドまたはタンパク質を指す。「機能性断片」、「誘導体」および「類似物」は、天然に存在するタンパク質と同じまたは実質的に同じアミノ酸配列を有してもよい。「実質的に同じ」とは、アミノ酸配列全体が同一ではないが、その大部分が同一であり、それに関連する配列機能活性を保留したことを指す。通常、２つのアミノ酸配列は、それらの少なくとも８５％が同一であれば、「実質的に同じ」または「実質的に相同」のものとする。天然に存在するタンパク質と異なる三次元構造を有する断片も含む。本発明のポリペプチド応答性機能性断片、誘導体または類似物は、（ｉ）１つまたは複数の保存的または非保存的アミノ酸残基（好ましくは保存的アミノ酸残基）が置換されたタンパク質（そのように置換されたアミノ酸残基は、遺伝子コドンによってコードされるものであってもよいが、そうでなくてもよい）、または（ｉｉ）１つまたは複数のアミノ酸残基中で置換基を持つタンパク質、または（ｉｉｉ）成熟タンパク質と別の化合物（例えばタンパク質の半減期を延長するポリエチレングリコールなどの化合物）の融合によって形成されたタンパク質、または（ｉｖ）該タンパク質配列に追加のアミノ酸配列を融合して形成されたタンパク質（例えばリーダー配列または分泌配列、或いは該タンパク質の精製に使用される配列またはプロタンパク質配列など、または抗原ＩｇＧ断片で形成された融合タンパク質）であってもよい。本文の教示により、これらの機能性断片、誘導体および類似物は当業者に公知される範疇に属する。
前記類似物と元のポリペプチドまたはタンパク質の差異は、アミノ酸配列での差異であってもよく、配列に影響しない修飾形態での差異であってもよく、またはその両方であってもよい。これらのタンパク質は天然または誘導の遺伝的変異体を含む。誘導変異体は各種の技術で、例えば放射線または変異剤への曝露によるランダム突然変異誘発で獲得することができ、さらに部位特異的突然変異誘発法または他の既知の分子生物学的技術で獲得することもできる。
前記類似物はさらに、天然L-アミノ酸と異なる残基（例えばD-アミノ酸）を有する類似物、および天然に存在しないまたは合成されるアミノ酸（例えばβ、γ-アミノ酸）を有する類似物を含む。本発明にかかる応答性ポリペプチドは、以上で挙げられた代表的なタンパク質、断片、誘導体および類似物に限定されないことが理解すべきである。修飾（通常は一次構造を変更しない）形態は、アセチル化やカルボキシル化など、インビボまたはインビトロでのタンパク質の化学的誘導形態を含む。修飾はさらにグリコシル化を含み、例えばタンパク質の合成およびプロセッシングまたは更なるプロセッシングステップにおいてグリコシル化修飾されてなるタンパク質を含む。このような修飾は、タンパク質をグリコシル化を行う酵素（例えば哺乳動物のグリコシラーゼまたはデグリコシラーゼ）に曝露させることによって達成できる。修飾形態はさらに、リン酸化アミノ酸残基（例えばホスホチロシン、ホスホセリン、ホスホトレオニン）を有する配列を含む。タンパク質加水分解に対する耐性を向上し、または溶解性を最適化するように修飾されたタンパク質も含む。
本発明に用いられる用語の「核酸」は、ＤＮＡ形態またはＲＮＡ形態であってもよい。ＤＮＡ形態はｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡまたは人工合成したＤＮＡを含む。ＤＮＡは一本鎖または二本鎖であってもよい。ＤＮＡはコード鎖または非コード鎖であってもよい。成熟タンパク質をコードするコード領域の配列は、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５または１７に示されるコード領域の配列と同一のもの、或いはその補同義変異体であってもよい。本文に用いられるように、本発明において、「補同義変異体」とは、本発明にかかるポリペプチドをコードするが、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５または１７に示されるコード領域の配列と差異のある核酸配列を指す。
核酸を言及する場合、本文に用いられる用語の「変異体」は、天然に存在する対立遺伝子変異体であっても、非天然に存在する変異体であってもよい。それらのヌクレオチド変異体は、補同義変異体、置換変異体、欠失変異体および挿入変異体を含む。本分野で知られるように、対立遺伝子変異体とは、一つまたは複数のヌクレオチドの置換、欠失または挿入であってもよいが、それでコードされるタンパク質の機能を実質的に変化させない核酸の代替形態である。本発明にかかる核酸は、前記核酸の配列と少なくとも約７０％、少なくとも約７５％、少なくとも約８０％、少なくとも約８５％、少なくとも約９０％、少なくとも約９５％、少なくとも約９８％、少なくとも約９９％または１００％の配列相同性を持つヌクレオチド配列を含んでもよい。
ここに用いられるように、用語の「ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする」とは、互いに少なくとも６０％の相同性を持つヌクレオチド配列が依然として互いにハイブリダイズできる典型的なハイブリダイゼーションおよび洗浄条件を意味する。好ましくは、ストリンジェントな条件は、その条件下で、互いに少なくとも６５％、より好ましくは少なくとも７０％、さらにより好ましくは少なくとも８０％、またはそれ以上の相同性を持つ配列が通常、依然として互いにハイブリダイズできるような条件である。該ストリンジェントな条件は当業者に公知される。ストリンジェントな条件の好ましくて非制限的な実例は、（１）低いイオン強度と高い温度下におけるハイブリダイゼーションと溶離、例えば０．２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、0 ℃；或いは（２）ハイブリダイゼーションのときに、５０％（ｖ／ｖ）ホルムアミド、０．１％仔牛血清／０．１％ Ｆｉｃｏｌｌ、４２℃などのような変性剤が添加されること；或いは（３）二本の配列の間の相同性が少なくとも９０％以上、より好ましくは９５％以上である場合のみにハイブリダイゼーションを行うことである。さらに、ハイブリダイズできる核酸でコードされるタンパク質は、配列番号4、５、６、７または８に示される成熟タンパク質と同様な生物学的機能と活性を有する。
本発明はさらに、前記配列とハイブリダイズする核酸断片に関する。本文に用いられるように、「核酸断片」の長さは、少なくとも１５個のヌクレオチド、好ましくは少なくとも３０個のヌクレオチド、より好ましくは少なくとも５０個のヌクレオチド、最も好ましくは少なくとも１００個以上のヌクレオチドである。核酸断片は核酸の増幅技術（例えばＰＣＲ）に適用できる。
本発明にかかる蛍光センサーまたは融合タンパク質の全長配列またはその断片は通常、ＰＣＲ増幅法、組換え法または人工合成方法で獲得できる。ＰＣＲ増幅法の場合、本発明に開示された相応のヌクレオチド配列、特にオープンリーディングフレーム配列に基づいてプライマーを設計し、市販のｃＤＮＡライブラリー又は当業者に既知の常法で調製されたｃＤＮＡライブラリーを鋳型として増幅し、相応の配列を獲得することができる。配列が長い場合、２回又は複数回のＰＣＲ増幅を行い、その後に各回で増幅された断片を正確な順序でライゲートすることが多い。蛍光センサーまたは融合タンパク質の全長配列またはその断片が例えば２５００ｂｐ未満である場合、人工合成方法を用いて合成することができる。前記人工合成方法は、本分野の通常のＤＮＡ人工合成方法であり、例えばまずは複数の小さな断片を合成し、その後にライゲーションを行うことにより、全長配列を獲得できる。
組換え法で相応の配列を大量に獲得することができる。通常、それをベクターにクローニングし、次に細胞にトランスフェクトし、その後に常法によって増殖された宿主細胞から相応のポリペプチドまたはタンパク質を分離・精製して獲得する。
また、特に断片の長さが短い場合、人工合成の方法によって相応の配列を合成することもできる。通常、複数の小さな断片を合成しておき、その後にライゲーションを行うことにより、配列が非常に長い断片を獲得できる。
現在、化学的合成によって本発明にかかるタンパク質（又はその断片、誘導体、類似物若しくは変異体）をコードするＤＮＡ配列を得ることは既に可能になっている。その後、該ＤＮＡ配列を本分野で既知の各種の従来のＤＮＡ分子（例えばベクター）や細胞に導入することができる。突然変異ＰＣＲや化学的合成などの方法によって突然変異を本発明にかかるタンパク質配列に導入することができる。
本文に用いられる用語の「発現ベクター」および「組換えベクター」は、互いに交換して使用することができ、例えば細菌プラスミド、ファージ、酵母プラスミド、植物細胞ウイルス、アデノウイルスなどの哺乳動物細胞ウイルス、レトロウイルス、または宿主体内に複製・安定かできる他のベクターのような、本分野で周知の原核生物または真核生物ベクターを指し、これらの組換えベクターの一つの重要な特徴は、通常、発現制御配列を含むことである。本文に用いられる用語の「発現制御配列」とは、標的遺伝子の転写、翻訳および発現を調節する、標的遺伝子と作動可能に連結できるエレメントを指し、複製起点、プロモーター、マーカー遺伝子、またはエンハンサー、オペロン、ターミネーター、リボソーム結合部位などを含む翻訳制御エレメントであってもよいが、発現制御配列は用いられる宿主細胞次第で選択される。本発明に適用される組換えベクターは細菌プラスミドを含むが、それに限定されない。組換え発現ベクターにおいて、「作動可能に連結される」とは、標的ヌクレオチド配列と調節配列はヌクレオチド配列の発現が許容される形態で連結されることを指す。本発明にかかる融合タンパク質コード配列および適切な転写／翻訳制御シグナルを含む発現ベクターを構築するために使用できる方法は、当業者に周知される。これらの方法は、インビトロ組換えＤＮＡ技術、ＤＮＡ合成技術、インビボ組換え技術などを含む。前記ＤＮＡ配列は、mRNA合成を導くために、発現ベクターの適切なプロモーターへ効果的に連結することができる。これらのプロモーターの代表的な例は、大腸菌のｌａｃまたはｔｒｐプロモーター；ラムダファージＰＬプロモーター；ＣＭＶ即時初期プロモーター、ＨＳＶチミジンキナーゼプロモーター、初期および後期ＳＶ４０プロモーター、レトロウイルスＬＴＲを含む真核生物プロモーター、並びに原核細胞または真核細胞またはそれらのウイルスにおける遺伝子発現を制御できる他の既知のプロモーターがある。発現ベクターはさらに、翻訳開始用のリボソーム結合部位および転写ターミネーターを含む。
当業者は、組換え発現ベクターの設計が、形質転換しようとする宿主細胞の選択、所望のタンパク質発現レベルなどの要因によるものであることを理解すべきである。また、組換え発現ベクターは、形質転換された宿主細胞の選択に適用される表現型特性を提供するために、好ましくは、例えば真核細胞用のジヒドロ葉酸レダクターゼ、ネオマイシン耐性、或いは大腸菌用のテトラサイクリンまたはアンピシリン耐性のような一つまたは複数の選択マーカー遺伝子を含む。
一つの実施形態において、本発明にかかる蛍光センサーまたは融合タンパク質のコード配列を、ＢａｍＨＩおよびＨｉｎｄＩＩＩで二重酵素切断した後、ＢａｍＨＩおよびＨｉｎｄＩＩＩで二重酵素切断されたｐＲＳＥＴｂベクターとライゲートし、大腸菌組換え発現ベクターが得られる。本発明にかかる発現ベクターを宿主細胞に転移して、融合タンパク質を含むタンパク質またはペプチドを生成することができる。このような転移過程は、形質転換やトランスフェクションなどの当業者に周知される通常技術で行うことができる。
本文に用いられる用語の「宿主細胞」または「細胞」は、レシピエント細胞とも呼ばれ、組換えＤＮＡ分子を受け取って収容できる細胞を指し、組換え遺伝子増幅の場所であり、理想的なレシピエント細胞は、入手および増殖が容易であるという２つの条件を満たす必要がある。本発明の「細胞」は、原核細胞と真核細胞を含んでもよく、具体的には、細菌細胞、酵母細胞、昆虫細胞および哺乳動物細胞を含む。
本発明にかかる発現ベクターは、原核細胞または真核細胞における本発明にかかる蛍光センサーまたは融合タンパク質の発現に適用できる。これで、本発明は、本発明にかかる発現ベクターが導入された宿主細胞、好ましくは大腸菌に関する。宿主細胞は、任意の原核細胞または真核細胞であってもよく、代表的な例は、大腸菌、ストレプトマイセス属、ネズミチフス菌の細菌細胞、酵母のような真菌細胞、植物細胞、ショウジョウバエＳ２またはＳｆ９の昆虫細胞、ＣＨＯ、ＣＯＳ、２９３細胞、またはボウズメラノーマ細胞のような動物細胞などを含むが、それらに限定されない。前記宿主細胞として、遺伝子産物の発現または発酵生産に関与する各種の細胞が好ましく、そのような細胞は、例えば各種の大腸菌細胞や酵母細胞など、本分野で周知されて常用されるものである。本発明の一つの実施形態において、大腸菌ＢＬ２１を用いて、本発明にかかる融合タンパク質を発現する宿主細胞を構築する。どのように適切なベクター、プロモーター、エンハンサーおよび宿主細胞を選択するかは、当業者によく知られている。
本文に用いられる用語の「形質転換」および「トランスフェクション」、「接合」および「形質導入」とは、外因性核酸（例えば、線状ＤＮＡまたはＲＮＡ（例えば、線状化ベクターまたはベクターなしの個別の遺伝子構築物））またはベクター形態の核酸（例えば、プラスミド、コスミド、ファージ、ファージミド、ファージミド、トランスポゾンまたは他のＤＮＡ）を宿主細胞に導入するための本分野で公知の様々な技術を意味し、リン酸カルシウムまたは塩化カルシウム共沈、ＤＥＡＥ−マンナン仲介トランスフェクション、リポフェクション、自然コンピテント、化学仲介転移またはエレクトロポレーションを含む。宿主が大腸菌のような原核生物である場合、ＤＮＡを吸収できるコンピテント細胞を指数増殖期後に収穫し、ＣａＣｌ２法で処理することができ、適用されるステップは本分野で周知される。もう一つの方法はＭｇＣｌ２によるものである。必要であれば、形質転換はエレクトロポレーション法によって行うこともできる。宿主細胞が真核細胞である場合、下記のＤＮＡトランスフェクション法を適用することができる：リン酸カルシウム共沈法、例えばマイクロインジェクション、エレクトロポレーション、リポソーム包装のような従来の機械的方法など。
得られた形質転換細胞は、前記宿主細胞の発現に適した常法により培養し、本発明にかかる融合タンパク質を発現させることができる。適用される宿主細胞に応じて、培養に用いられる培地は各種の通常培地であってもよい。宿主細胞の成長に適した条件下で培養する。宿主細胞が適切な細胞密度に成長した後、選択されたプロモーターを適切な方法（例えば温度変換や化学的誘導）によって誘導し、細胞をさらに一定期間培養する。
上記の方法における組換えタンパク質は、細胞内または細胞膜上に発現し、或いは細胞外に分泌することができる。必要であれば、組換えタンパク質は、その物理的、化学的およびその他の特性を利用して、各種の分離方法によって分離または精製することができます。これらの方法は当業者に周知される。これらの方法の例は、通常のリフォールディング処理、タンパク質沈殿剤による処理（塩析法）、遠心、浸透圧破壊、超処理、超遠心、分子篩クロマトグラフィー（ゲルろ過）、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）と他の各種の液体クロマトグラフィー技術、およびこれらの方法の組み合わせを含むが、それらに限定されない。好ましくは、Ｈｉｓタグを利用したアフィニティークロマトグラフィーによって行う。
上記の方法における組換えタンパク質は、細胞内または細胞膜上に発現し、或いは細胞外に分泌することができる。必要であれば、組換えタンパク質は、その物理的、化学的およびその他の特性を利用して、各種の分離方法によって分離または精製することができます。これらの方法は当業者に周知される。これらの方法の例は、通常のリフォールディング処理、タンパク質沈殿剤による処理（塩析法）、遠心、浸透圧破壊、超処理、超遠心、分子篩クロマトグラフィー（ゲルろ過）、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）と他の各種の液体クロマトグラフィー技術、およびこれらの方法の組み合わせを含むが、それらに限定されない。好ましくは、Ｈｉｓタグを利用したアフィニティークロマトグラフィーによって行う。
一つの実施形態において、本発明にかかる融合タンパク質のコード配列を含む大腸菌の発酵によって、本発明にかかる蛍光センサーまたは融合タンパク質を生産し、ニッケルカラムアフィニティークロマトグラフィーカラムによって精製し、純粋な形態の本発明にかかる蛍光センサーまたは融合タンパク質を得る。
本発明にかかる蛍光センサーまたは融合タンパク質の用途は、分岐鎖アミノ酸またはロイシンの検出、生理的状態での分岐鎖アミノ酸またはロイシンの検出、細胞下レベルでの分岐鎖アミノ酸またはロイシンの検出、分岐鎖アミノ酸またはロイシンのインシチュ検出などを含むが、それらに限定されない。
本発明はさらに、前記蛍光センサーの、分岐鎖アミノ酸またはロイシンをリアルタイムで位置決め、定量的に検出するため、並びにハイスループットの化合物スクリーニングのための使用を提供する。一つの実施形態において、前記分岐鎖アミノ酸蛍光センサーとロイシン蛍光センサーは、好ましくは細胞の異なる部分のシグナルペプチドに連結し、細胞内に転送し、細胞内の蛍光シグナルの強さを検出することで、分岐鎖アミノ酸とロイシンをリアルタイムで位置決める；分岐鎖アミノ酸とロイシンの標準的な滴下曲線により、相応の分岐鎖アミノ酸とロイシンを定量的に検出する。一つの実施形態において、前記分岐鎖アミノ酸とロイシンの標準的な滴下曲線は、異なる濃度の分岐鎖アミノ酸とロイシンの場合での分岐鎖アミノ酸蛍光センサーとロイシン蛍光センサーの蛍光シグナルに基づいてプロットされる。本発明にかかる蛍光センサーは直接に細胞内に転送し、分岐鎖アミノ酸とロイシンをリアルタイムで位置決め、定量的に検出する過程において、時間のかかるサンプル処理プロセスは不要となり、より正確的である。本発明にかかる蛍光センサーは、ハイスループットの化合物スクリーニングを行う時、異なる化合物を細胞培地に添加し、分岐鎖アミノ酸とロイシンの含有量の変化を測定し、それにより分岐鎖アミノ酸とロイシンの含有量の変化に影響を与える化合物をスクリーニングする。通常、本発明における前記使用は、疾患の診断と治療に関しない。
本文において、濃度、含有量、百分率およびその他の数値はいずれも範囲の形式で表示ことができる。このような範囲形式の使用は便利さと簡潔さのためだけであり、範囲の上限と下限で明示的に言及された数値も含むが、該範囲に含まれる全ての個々の数値またはサブ範囲も明示的に言及されたように、それらの個々の数値とサブ範囲も含むと柔軟に解読すべきであることも、理解すべきである。
例示的な実施形態
１．ａ）ロイシン応答性ポリペプチドと、
ｂ）光学活性ポリペプチドと、
を含む蛍光センサーであって、
前記光学活性ポリペプチドが前記ロイシン応答性ポリペプチドに挿入されている蛍光センサー。
１．ａ）ロイシン応答性ポリペプチドと、
ｂ）光学活性ポリペプチドと、
を含む蛍光センサーであって、
前記光学活性ポリペプチドが前記ロイシン応答性ポリペプチドに挿入されている蛍光センサー。
２．前記ロイシン応答性ポリペプチドはさらに、イソロイシンやバリンのような他の分岐鎖アミノ酸にも応答する、或いは、前記光学活性ポリペプチドは蛍光タンパク質、またはその機能性断片若しくは変異体である、実施形態１に記載の蛍光センサー。
３．さらに前記ロイシン応答性ポリペプチドと前記光学活性ポリペプチドの間にある１つまたは複数のリンカーを含む、前記実施形態のいずれかに記載の蛍光センサー。
４．さらに位置決め配列を含む、前記実施形態のいずれかに記載の蛍光センサー。
５．前記ロイシン応答性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片、およびロイシン結合タンパク質またはその機能性断片からなる群から選ばれる、前記実施形態のいずれかに記載の蛍光センサー。
６．前記ロイシン応答性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片であり、配列番号１に示される配列またはその機能性断片、或いはそれと８５％の配列相同性を持つ配列を有するものが好ましい、前記実施形態のいずれかに記載の蛍光センサー。
７．前記ロイシン応答性ポリペプチドは、ロイシン結合タンパク質またはその機能性断片であり、配列番号２に示される配列またはその機能性断片、或いはそれと８５％の配列相同性を持つ配列を有するものが好ましい、前記実施形態のいずれかに記載の蛍光センサー。
８．前記光学活性ポリペプチドは、前記ロイシン応答性ポリペプチドの残基１１８〜１２０、残基２４８〜２５８または残基３２５〜３３１の間に位置し、番号は前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長または前記ロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである、実施形態６または７に記載の蛍光センサー。
９．前記光学活性ポリペプチドは、前記ロイシン応答性ポリペプチドの残基１１８〜１２０、残基２４８〜２５８または残基３２５〜３３１の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号は前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長または前記ロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである、実施形態６または７に記載の蛍光センサー。
１０．前記光学活性ポリペプチドは、前記ロイシン応答性ポリペプチドの残基３２５〜３２９の間に位置し、番号は前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長に相応するものである、実施形態６に記載の蛍光センサー。
１１．前記光学活性ポリペプチドは、前記ロイシン応答性ポリペプチドの残基３２５〜３２９の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号は前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長に相応するものである、実施形態６に記載の蛍光センサー。
１２．前記光学活性ポリペプチドは、前記ロイシン応答性ポリペプチドの残基３２７〜３３１の間に位置し、番号は前記ロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである、実施形態７に記載の蛍光センサー。
１３．前記光学活性ポリペプチドは、前記ロイシン応答性ポリペプチドの残基３２７〜３３１の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号は前記ロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである、実施形態７に記載の蛍光センサー。
１４．前記蛍光タンパク質は、緑色蛍光タンパク質、青色蛍光タンパク質、シアン蛍光タンパク質、オレンジ蛍光タンパク質、リンゴ赤色蛍光タンパク質、赤色蛍光タンパク質からなる群から選ばれる、前記実施形態のいずれかに記載の蛍光センサー。
１５．前記蛍光タンパク質は配列番号３〜１３に示される配列を有する、前記実施形態のいずれかに記載の蛍光センサー。
１６．前記実施形態のいずれかに記載の蛍光センサーをコードする核酸配列またはその相補配列。
１７．発現制御配列と作動可能に連結される前記実施形態のいずれかに記載の核酸配列を含む発現ベクター。
１８．実施形態１７に記載の発現ベクターを含む細胞。
１９．実施形態１〜１５のいずれかに記載の蛍光センサーを発現するベクターを含む細胞を提供することと、前記細胞の発現条件下で前記細胞を培養することと、および前記蛍光センサーを分離することと、を含む実施形態１に記載の蛍光センサーの製造方法。
２０．実施形態１〜１５のいずれかに記載の蛍光センサーまたは実施形態１９に記載の方法で製造される蛍光センサーをサンプルと接触させることと、および光学活性ポリペプチドの変化を検出することと、を含むロイシンの検出方法。
２１．実施形態１〜１５のいずれかに記載の蛍光センサーまたは実施形態１９に記載の方法で製造される蛍光センサーをサンプルと接触させることと、および光学活性ポリペプチドの変化を検出することと、を含む分岐鎖アミノ酸の検出方法。ただし、前記分岐鎖アミノ酸は、例えばロイシン、イソロイシンおよびバリンから選ばれる。
２２．実施形態１〜１５のいずれかに記載の蛍光センサーまたは実施形態１９に記載の方法で製造される蛍光センサーの、サンプルにおけるロイシンを検出するための使用。
２３．実施形態１〜１５のいずれかに記載の蛍光センサーまたは実施形態１９に記載の方法で製造される蛍光センサーの、サンプルにおける分岐鎖アミノ酸を検出するための使用。ただし、前記分岐鎖アミノ酸は、例えばロイシン、イソロイシンおよびバリンから選ばれる。
２４．実施形態１〜１５のいずれかに記載の蛍光センサーまたは実施形態１９に記載の方法で製造される蛍光センサーを含むキット。
以下、具体的な実施例によって、さらに本発明を説明する。これらの実施例は本発明を説明するために用いるもので、本発明の範囲の制限にはならないと理解されるものである。
以下の実施例で特に具体的な条件を説明しない実験方法は、当業者に周知されるものであり、普通は通常の条件、例えばSambrookらの「Molecular Cloning - A Laboratory Manual」（New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989）；Jane Roskemesらの「Molecular Biology Experiment Reference Manual」；J. Sam Brook、D. W. Russellが編集し、黄培堂らが翻訳した「分子クローニング：実験マニュアル」（第３版、2002年8月、科学出版社出版、北京）；章静波、徐存シゥァンらが翻訳した、Frescheniらの「Culture of Animal Cells: a Manual of Basic Technique」（第５版）；章静波が翻訳した、J.S. Boni Fesnon, M. Dassaultらの「Short Protocols in Cell Biology」、或いはメーカーの薦めの条件で行われる。本文において、特に断らない限り、百分率と部はいずれも重量で表される。当業者は以下の実施例を参考にして、具体的な状況に応じて修正や変更をして本発明を容易に実施することができ、これらの修正や変更は全て本願の特許請求の範囲内に入る。
Ｉ．実験の材料と試薬
実施例で用いられるｐＲＳＥＴｂ−ｃｐＹＦＰ、ｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＪ、ｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＫに基づくプラスミドは華東理工大学タンパク質実験室によって構築し、ｐＲＳＥＴｂプラスミドベクターはＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社から購入した。ＰＣＲに用いられるプライマーは全て上海Ｇｅｎｅｒａｙ Ｂｉｏｔｅｃｈ株式会社によって合成、精製し、且つ質量分析で正しく同定した。実施例で構築された発現プラスミドは全てシーケンシングされており、シーケンシングは華大基因社および上海Ｇｅｎｅｂｉｏｓｅｑ社によって完成した。各実施例で用いられるＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼはＤｏｎｇｓｈｅｎｇ Ｂｉｏｔｅｃｈ社から購入し、ｐｆｕ ＤＮＡポリメラーゼはＴｉａｎｇｅｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ（北京）株式会社から購入し、ｐｒｉｍｅＳＴＡＲ ＤＮＡポリメラーゼはＴａＫａＲａ社から購入し、相応のポリメラーゼバッファーとｄＮＴＰは３種類のポリメラーゼの購入時のおまけとして付いていた。ＢａｍＨＩ、ＢｇｌＩＩ、ＨｉｎｄＩＩＩ、ＮｄｅＩ、ＸｈｏＩ、ＥｃｏＲＩ、ＳｐｅＩなどの制限エンドヌクレアーゼ、Ｔ４リガーゼ、Ｔ４ホスホリラーゼ（Ｔ４ ＰＮＫ）はＦｅｒｍｅｎｔａｓ社から購入し、購入時に相応のバッファーなどのおまけが付いていた。トランスフェクション試薬のＬｉｐ２０００ ＫｉｔはＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社から購入した。分岐鎖アミノ酸やロイシンなどはいずれもＳｉｇｍａ社から購入した。特に断らない限り、無機塩類などの化学試薬はいずれもｓｉｇｍａ−ａｌｄｒｉｃｈ社から購入した。ＨＥＰＥＳ塩、アンピシリン（Ａｍｐ）およびピューロマイシンはＡｍｅｒｅｓｃｏ社から購入した；９６ウェル検出用ブラックプレート、３８４ウェル蛍光検出用ブラックプレートはＧｒｅｎｉｅｒ社から購入した。
実施例で用いられるｐＲＳＥＴｂ−ｃｐＹＦＰ、ｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＪ、ｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＫに基づくプラスミドは華東理工大学タンパク質実験室によって構築し、ｐＲＳＥＴｂプラスミドベクターはＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社から購入した。ＰＣＲに用いられるプライマーは全て上海Ｇｅｎｅｒａｙ Ｂｉｏｔｅｃｈ株式会社によって合成、精製し、且つ質量分析で正しく同定した。実施例で構築された発現プラスミドは全てシーケンシングされており、シーケンシングは華大基因社および上海Ｇｅｎｅｂｉｏｓｅｑ社によって完成した。各実施例で用いられるＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼはＤｏｎｇｓｈｅｎｇ Ｂｉｏｔｅｃｈ社から購入し、ｐｆｕ ＤＮＡポリメラーゼはＴｉａｎｇｅｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ（北京）株式会社から購入し、ｐｒｉｍｅＳＴＡＲ ＤＮＡポリメラーゼはＴａＫａＲａ社から購入し、相応のポリメラーゼバッファーとｄＮＴＰは３種類のポリメラーゼの購入時のおまけとして付いていた。ＢａｍＨＩ、ＢｇｌＩＩ、ＨｉｎｄＩＩＩ、ＮｄｅＩ、ＸｈｏＩ、ＥｃｏＲＩ、ＳｐｅＩなどの制限エンドヌクレアーゼ、Ｔ４リガーゼ、Ｔ４ホスホリラーゼ（Ｔ４ ＰＮＫ）はＦｅｒｍｅｎｔａｓ社から購入し、購入時に相応のバッファーなどのおまけが付いていた。トランスフェクション試薬のＬｉｐ２０００ ＫｉｔはＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社から購入した。分岐鎖アミノ酸やロイシンなどはいずれもＳｉｇｍａ社から購入した。特に断らない限り、無機塩類などの化学試薬はいずれもｓｉｇｍａ−ａｌｄｒｉｃｈ社から購入した。ＨＥＰＥＳ塩、アンピシリン（Ａｍｐ）およびピューロマイシンはＡｍｅｒｅｓｃｏ社から購入した；９６ウェル検出用ブラックプレート、３８４ウェル蛍光検出用ブラックプレートはＧｒｅｎｉｅｒ社から購入した。
実施例で用いられるＤＮＡ精製キットはＢＢＩ社（カナダ）から購入し、汎用小規模プラスミド抽出キットはＴｉａｎｇｅｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ（北京）株式会社から購入した。クローニング菌株Ｍａｃｈ１はＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社から購入した。ニッケルカラムアフィニティークロマトグラフィーカラムおよび脱塩用カラムのフィラーはいずれもＧＥ ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社から購入した。
実施例で用いられる主な機器は、Ｂｉｏｔｅｋ Ｓｙｎｅｒｇｙ ２多機能マイクロプレートリーダー（アメリカＢｉｏ−Ｔｅｋ社）、Ｘ−１５Ｒ高速冷却遠心機（アメリカＢｅｃｋｍａｎ社）、Ｍｉｃｒｏｆｕｇｅ２２Ｒ卓上高速冷却遠心機（アメリカＢｅｃｋｍａｎ社）、ＰＣＲ増幅装置（ドイツＢｉｏｍｅｔｒａ社）、超音波破砕機（寧波新芝社）、核酸電気泳動装置（申能博彩社）、蛍光分光光度計（アメリカＶａｒｉａｎ社）、ＣＯ２恒温細胞インキュベーター（ＳＡＮＹＯ）、倒立蛍光顕微鏡（日本ニコン社）である。
ＩＩ．実施例で用いられる通常の分子生物学的方法および細胞実験方法
（一）ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）
１．標的断片増幅ＰＣＲ：
該方法は主に、遺伝子断片の増幅およびコロニーＰＣＲによる陽性クローンの同定に用いられる。前記ＰＣＲ増幅の反応系は表１に示し、増幅プログラムは表２に示す。
本発明に用いられる長断片増幅は主に、リバースＰＣＲでベクターを増幅し、下記の実施例において部位特異的変異を得るための技術である。変異部位についてリバースＰＣＲプライマーを設計し、そのうちの１本のプライマーの５’末端に変異したヌクレオチド配列が含まれる。増幅した産物はこれで相応の変異部位を有するものになる。長断片増幅ＰＣＲの反応系は表３に示し、増幅プログラムは表４または表５に示す。
（一）ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）
１．標的断片増幅ＰＣＲ：
該方法は主に、遺伝子断片の増幅およびコロニーＰＣＲによる陽性クローンの同定に用いられる。前記ＰＣＲ増幅の反応系は表１に示し、増幅プログラムは表２に示す。
本発明に用いられる長断片増幅は主に、リバースＰＣＲでベクターを増幅し、下記の実施例において部位特異的変異を得るための技術である。変異部位についてリバースＰＣＲプライマーを設計し、そのうちの１本のプライマーの５’末端に変異したヌクレオチド配列が含まれる。増幅した産物はこれで相応の変異部位を有するものになる。長断片増幅ＰＣＲの反応系は表３に示し、増幅プログラムは表４または表５に示す。
（二）核酸エンドヌクレアーゼによる酵素切断反応
プラスミドベクターの二重酵素切断系は表６に示し、ただし、ｎは体系が合計体積に達するのに必要な滅菌超純水のμＬ量を表す。
プラスミドベクターの二重酵素切断系は表６に示し、ただし、ｎは体系が合計体積に達するのに必要な滅菌超純水のμＬ量を表す。
（三）ＤＮＡ断片５’末端のリン酸化反応
微生物から抽出したプラスミドやゲノムの末端には全てリン酸基が含まれるが、ＰＣＲ産物には含まれていないため、ＰＣＲ産物の５’末端の塩基にリン酸基付加反応を行う必要があり、末端にリン酸基を含むＤＮＡ分子でしかライゲーション反応が発生しない。リン酸化反応系は表７に示し、ただし、Ｔ４ ＰＮＫはＴ４ポリヌクレオチドキナーゼの略称であり、ＤＮＡ分子の５’末端のリン酸基の付加反応に適用される。
微生物から抽出したプラスミドやゲノムの末端には全てリン酸基が含まれるが、ＰＣＲ産物には含まれていないため、ＰＣＲ産物の５’末端の塩基にリン酸基付加反応を行う必要があり、末端にリン酸基を含むＤＮＡ分子でしかライゲーション反応が発生しない。リン酸化反応系は表７に示し、ただし、Ｔ４ ＰＮＫはＴ４ポリヌクレオチドキナーゼの略称であり、ＤＮＡ分子の５’末端のリン酸基の付加反応に適用される。
（四）標的断片とベクターのライゲーション反応
異なる断片とベクターの間のライゲーション法は異なるが、本発明において、３種類のライゲーション法が適用される。
１．平滑末端の短断片と線状化ベクターの平滑末端ライゲーション
該方法の原理は、ＰＣＲで得られる平滑末端産物は、Ｔ４ ＰＮＫの作用でＤＮＡ断片の５’末端がリン酸化反応を行った後、ＰＥＧ４０００およびＴ４ ＤＮＡリガーゼの作用で線状化ベクターとライゲートし、組換えプラスミドを得る。相同組換えライゲーション系は表８に示す。
２．粘着末端を持つＤＮＡ断片と粘着末端を持つベクター断片のライゲーション
制限エンドヌクレアーゼで切断されたＤＮＡ断片は通常、突出した粘着末端を持つため、相補配列を含有する粘着末端ベクター断片とライゲートして組換えプラスミドを形成することができる。ライゲーション反応系は表９に示す。
３．リバースＰＣＲで部位特異的変異を導入した後の、５’末端がリン酸化されたＤＮＡ断片産物の自己環状化ライゲーション反応
５’末端がリン酸化されたＤＮＡ断片を、自己環状化ライゲーション反応により、線状化ベクターの３’末端と５’末端をライゲーション反応させ、組換えプラスミドを得る。自己環状化ライゲーション反応系は表１０に示す。
異なる断片とベクターの間のライゲーション法は異なるが、本発明において、３種類のライゲーション法が適用される。
１．平滑末端の短断片と線状化ベクターの平滑末端ライゲーション
該方法の原理は、ＰＣＲで得られる平滑末端産物は、Ｔ４ ＰＮＫの作用でＤＮＡ断片の５’末端がリン酸化反応を行った後、ＰＥＧ４０００およびＴ４ ＤＮＡリガーゼの作用で線状化ベクターとライゲートし、組換えプラスミドを得る。相同組換えライゲーション系は表８に示す。
２．粘着末端を持つＤＮＡ断片と粘着末端を持つベクター断片のライゲーション
制限エンドヌクレアーゼで切断されたＤＮＡ断片は通常、突出した粘着末端を持つため、相補配列を含有する粘着末端ベクター断片とライゲートして組換えプラスミドを形成することができる。ライゲーション反応系は表９に示す。
３．リバースＰＣＲで部位特異的変異を導入した後の、５’末端がリン酸化されたＤＮＡ断片産物の自己環状化ライゲーション反応
５’末端がリン酸化されたＤＮＡ断片を、自己環状化ライゲーション反応により、線状化ベクターの３’末端と５’末端をライゲーション反応させ、組換えプラスミドを得る。自己環状化ライゲーション反応系は表１０に示す。
（五）コンピテント細胞の調製と形質転換
コンピテント細胞の調製：
１．単一コロニー（例えばＭａｃｈ１）を掻き取り、５ｍＬのＬＢ培地に接種し、３７℃で一晩振とうした。
２．一晩培養した細菌液を０．５〜１ｍＬ取り、５０ｍＬのＬＢ培地に移し、ＯＤ６００が０．５に達するまで３７℃、２２０ｒｐｍで３〜５時間インキュベートした。
３．細胞を氷浴で２時間予冷した。
４．４℃、４０００ｒｐｍで１０ｍｉｎ遠心した。
５．上澄を捨て、５ｍＬの予冷した再懸濁緩衝液で細胞を懸濁させ、均一になったら、さらに再懸濁緩衝液を最終体積が５０ｍＬになるように添加した。
６．４５ｍｉｎ氷浴した。
７．４℃、４０００ｒｐｍで１０ｍｉｎ遠心し、５ｍＬの氷予冷した保存緩衝液で細菌を再懸濁した。
８．ＥＰチューブごとに細菌液を１００μＬ入れ、−８０℃または液体窒素で凍結保存した。
再懸濁緩衝液：ＣａＣｌ２（１００ｍＭ）、ＭｇＣｌ２（７０ｍＭ）、ＮａＡｃ（４０ｍＭ）
保存緩衝液：０．５ｍＬのＤＭＳＯ、１．９ｍＬの８０％グリセリン、１ｍＬの１０×ＣａＣｌ２（１Ｍ）、１ｍＬの１０×ＭｇＣｌ２（７００ｍＭ）、１ｍＬの１０×ＮａＡｃ（４００ｍＭ）、４．６ｍＬのｄｄＨ２Ｏ
形質転換：
１．コンピテント細胞を１００μｌ取り、氷浴で融解させた。
２．適切な体積でライゲーション産物を加え、軽くフリックして均一に混合し、３０ｍｉｎ氷浴した。通常、加えたライゲーション産物の体積はコンピテント細胞の体積の１／１０未満である。
３．細菌液を４２℃の水浴に入れて９０ｓヒートショックし、速やかに氷浴に移して５ｍｉｎ放置した。
４．５００μｌのＬＢを加え、３７℃恒温シェーカーで２００の回転数で１ｈ培養した。
５．細菌液を４０００ｒｐｍで３ｍｉｎ遠心し、上澄を２００μＬ残して細菌を均一にフリックし、適切な抗生物質を含む寒天プレートの表面に均一に撒き、プレートを上下逆にして３７℃恒温インキュベーターで一晩放置した。
コンピテント細胞の調製：
１．単一コロニー（例えばＭａｃｈ１）を掻き取り、５ｍＬのＬＢ培地に接種し、３７℃で一晩振とうした。
２．一晩培養した細菌液を０．５〜１ｍＬ取り、５０ｍＬのＬＢ培地に移し、ＯＤ６００が０．５に達するまで３７℃、２２０ｒｐｍで３〜５時間インキュベートした。
３．細胞を氷浴で２時間予冷した。
４．４℃、４０００ｒｐｍで１０ｍｉｎ遠心した。
５．上澄を捨て、５ｍＬの予冷した再懸濁緩衝液で細胞を懸濁させ、均一になったら、さらに再懸濁緩衝液を最終体積が５０ｍＬになるように添加した。
６．４５ｍｉｎ氷浴した。
７．４℃、４０００ｒｐｍで１０ｍｉｎ遠心し、５ｍＬの氷予冷した保存緩衝液で細菌を再懸濁した。
８．ＥＰチューブごとに細菌液を１００μＬ入れ、−８０℃または液体窒素で凍結保存した。
再懸濁緩衝液：ＣａＣｌ２（１００ｍＭ）、ＭｇＣｌ２（７０ｍＭ）、ＮａＡｃ（４０ｍＭ）
保存緩衝液：０．５ｍＬのＤＭＳＯ、１．９ｍＬの８０％グリセリン、１ｍＬの１０×ＣａＣｌ２（１Ｍ）、１ｍＬの１０×ＭｇＣｌ２（７００ｍＭ）、１ｍＬの１０×ＮａＡｃ（４００ｍＭ）、４．６ｍＬのｄｄＨ２Ｏ
形質転換：
１．コンピテント細胞を１００μｌ取り、氷浴で融解させた。
２．適切な体積でライゲーション産物を加え、軽くフリックして均一に混合し、３０ｍｉｎ氷浴した。通常、加えたライゲーション産物の体積はコンピテント細胞の体積の１／１０未満である。
３．細菌液を４２℃の水浴に入れて９０ｓヒートショックし、速やかに氷浴に移して５ｍｉｎ放置した。
４．５００μｌのＬＢを加え、３７℃恒温シェーカーで２００の回転数で１ｈ培養した。
５．細菌液を４０００ｒｐｍで３ｍｉｎ遠心し、上澄を２００μＬ残して細菌を均一にフリックし、適切な抗生物質を含む寒天プレートの表面に均一に撒き、プレートを上下逆にして３７℃恒温インキュベーターで一晩放置した。
（六）タンパク質の発現、精製および蛍光検出
１．ｐＲＳＥＴｂを基にする分岐鎖アミノ酸とロイシンセンサープラスミドをＪＭ１０９（ＤＥ３）に形質転換し、上下逆にして一晩培養し、プレートからクローンを２５０ｍＬの三角フラスコ中に掻き取り、３７℃のシェーカーに置いて、２２０ｒｐｍでＯＤ＝０．４〜０．８になるまで培養し、１／１０００（ｖ／ｖ）のＩＰＴＧ（１Ｍ）を加え、１８℃で発現を２４〜３６ｈ誘導した。
２．発現の誘導が完了してから、４０００ｒｐｍで３０ｍｉｎ遠心して細菌を回収し、リン酸塩緩衝液を５０ｍＭ加えて細菌の沈殿を再懸濁し、細菌が清澄になるまで超音波破砕した。９６００ｒｐｍ、４℃で２０ｍｉｎ遠心した。
３．遠心した上澄を自分で充填したニッケルカラムアフィニティークロマトグラフィーカラムで精製してタンパク質を獲得し、ニッケルカラムアフィニティークロマトグラフィー後のタンパク質をさらに自分で充填した脱塩用カラムを通過させて、２０ｍＭのＭＯＰＳバッファー（ｐＨ７．４）またはリン酸塩緩衝液ＰＢＳに溶解されたタンパク質を得た。
４．精製された分岐鎖アミノ酸とロイシンの結合タンパク質および突然変異タンパク質をＳＤＳ−ＰＡＧＥで同定してから、アッセイバッファー（１００ｍＭのＨＥＰＥＳ、１００ｍＭのＮａＣｌ、ｐＨ７．３）またはリン酸塩緩衝液ＰＢＳでセンサーを最終濃度が５〜１０μＭのタンパク質溶液に希釈した。アッセイバッファー（２０ｍＭのＭＯＰＳ、ｐＨ７．４）またはリン酸塩緩衝液ＰＢＳでヒスチジンを最終濃度が１Ｍの保存溶液に調製した。
５μＭのタンパク質溶液を１００μｌ取り、３７℃で５ｍｉｎインキュベートし、分岐鎖アミノ酸とロイシンをそれぞれ最終濃度が１００ｍＭになるように加えて均一に混合し、多機能蛍光マイクロプレートリーダーを利用して、タンパク質の３４０ｎｍでの光吸収を測定した。
１μＭの蛍光センサー溶液を１００μｌ取り、３７℃で５ｍｉｎインキュベートし、分岐鎖アミノ酸とロイシンを加えて滴定し、４８５ｎｍ蛍光で励起されたタンパク質が５２８ｎｍで発光した蛍光強度を測定した。サンプルの蛍光励起および発光測定は、多機能蛍光マイクロプレートリーダーによって完成した。
１μＭの蛍光センサー溶液を１００μｌ取り、３７℃で５ｍｉｎインキュベートし、分岐鎖アミノ酸とロイシンを加え、センサータンパク質の吸収スペクトルと蛍光スペクトルを測定した。サンプルの吸収スペクトルと蛍光スペクトルの測定は、分光光度計と蛍光分光光度計によって完成した。
１．ｐＲＳＥＴｂを基にする分岐鎖アミノ酸とロイシンセンサープラスミドをＪＭ１０９（ＤＥ３）に形質転換し、上下逆にして一晩培養し、プレートからクローンを２５０ｍＬの三角フラスコ中に掻き取り、３７℃のシェーカーに置いて、２２０ｒｐｍでＯＤ＝０．４〜０．８になるまで培養し、１／１０００（ｖ／ｖ）のＩＰＴＧ（１Ｍ）を加え、１８℃で発現を２４〜３６ｈ誘導した。
２．発現の誘導が完了してから、４０００ｒｐｍで３０ｍｉｎ遠心して細菌を回収し、リン酸塩緩衝液を５０ｍＭ加えて細菌の沈殿を再懸濁し、細菌が清澄になるまで超音波破砕した。９６００ｒｐｍ、４℃で２０ｍｉｎ遠心した。
３．遠心した上澄を自分で充填したニッケルカラムアフィニティークロマトグラフィーカラムで精製してタンパク質を獲得し、ニッケルカラムアフィニティークロマトグラフィー後のタンパク質をさらに自分で充填した脱塩用カラムを通過させて、２０ｍＭのＭＯＰＳバッファー（ｐＨ７．４）またはリン酸塩緩衝液ＰＢＳに溶解されたタンパク質を得た。
４．精製された分岐鎖アミノ酸とロイシンの結合タンパク質および突然変異タンパク質をＳＤＳ−ＰＡＧＥで同定してから、アッセイバッファー（１００ｍＭのＨＥＰＥＳ、１００ｍＭのＮａＣｌ、ｐＨ７．３）またはリン酸塩緩衝液ＰＢＳでセンサーを最終濃度が５〜１０μＭのタンパク質溶液に希釈した。アッセイバッファー（２０ｍＭのＭＯＰＳ、ｐＨ７．４）またはリン酸塩緩衝液ＰＢＳでヒスチジンを最終濃度が１Ｍの保存溶液に調製した。
５μＭのタンパク質溶液を１００μｌ取り、３７℃で５ｍｉｎインキュベートし、分岐鎖アミノ酸とロイシンをそれぞれ最終濃度が１００ｍＭになるように加えて均一に混合し、多機能蛍光マイクロプレートリーダーを利用して、タンパク質の３４０ｎｍでの光吸収を測定した。
１μＭの蛍光センサー溶液を１００μｌ取り、３７℃で５ｍｉｎインキュベートし、分岐鎖アミノ酸とロイシンを加えて滴定し、４８５ｎｍ蛍光で励起されたタンパク質が５２８ｎｍで発光した蛍光強度を測定した。サンプルの蛍光励起および発光測定は、多機能蛍光マイクロプレートリーダーによって完成した。
１μＭの蛍光センサー溶液を１００μｌ取り、３７℃で５ｍｉｎインキュベートし、分岐鎖アミノ酸とロイシンを加え、センサータンパク質の吸収スペクトルと蛍光スペクトルを測定した。サンプルの吸収スペクトルと蛍光スペクトルの測定は、分光光度計と蛍光分光光度計によって完成した。
（七）哺乳動物細胞蛍光検出
１．ｐＣＤＮＡ３．１＋を基にする分岐鎖アミノ酸とロイシンセンサープラスミドをトランスフェクション試薬のＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ２０００（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）によってＨｅＬａにトランスフェクトし、３７℃、５％ＣＯ２の細胞インキュベーターで培養した。外因性遺伝子の十分な発現から２４〜３６ｈ後、蛍光検出を行った。
２．誘導発現完了後、接着したＨｅＬａ細胞をＰＢＳで３回洗浄し、ＨＢＳＳ溶液に置いて、それぞれ蛍光顕微鏡およびマイクロプレートリーダーによる検出を行った。
１．ｐＣＤＮＡ３．１＋を基にする分岐鎖アミノ酸とロイシンセンサープラスミドをトランスフェクション試薬のＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ２０００（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）によってＨｅＬａにトランスフェクトし、３７℃、５％ＣＯ２の細胞インキュベーターで培養した。外因性遺伝子の十分な発現から２４〜３６ｈ後、蛍光検出を行った。
２．誘導発現完了後、接着したＨｅＬａ細胞をＰＢＳで３回洗浄し、ＨＢＳＳ溶液に置いて、それぞれ蛍光顕微鏡およびマイクロプレートリーダーによる検出を行った。
ｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＪおよびｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＫプラスミドの構築
大腸菌遺伝子のＬｉｖＪおよびＬｉｖＫ遺伝子をＰＣＲによって増幅し、ＬｉｖＪのＰＣＲ産物をゲル電気泳動後に回収してから、ＢａｍＨＩおよびＨｉｎｄＩＩＩで酵素切断した；ＬｉｖＫのＰＣＲ産物をゲル電気泳動後に回収してから、ＥｃｏＲＩおよびＨｉｎｄＩＩＩで酵素切断したと共に、ｐＲＳＥＴｂベクターも相応に二重酵素切断した。Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションを行ってから、ライゲーション産物でＭａｃｈＩを形質転換し、形質転換されたＭａｃｈＩをＬＢプレート（アンピシリン１００ｕｇ／ｍＬ）に撒き、３７℃で一晩培養した。成長したＭａｃｈＩ形質転換体からプラスミドを抽出してから、ＰＣＲによって同定した。陽性プラスミドは、正しくシーケンシングした後で、次のプラスミド構築を行った。
大腸菌遺伝子のＬｉｖＪおよびＬｉｖＫ遺伝子をＰＣＲによって増幅し、ＬｉｖＪのＰＣＲ産物をゲル電気泳動後に回収してから、ＢａｍＨＩおよびＨｉｎｄＩＩＩで酵素切断した；ＬｉｖＫのＰＣＲ産物をゲル電気泳動後に回収してから、ＥｃｏＲＩおよびＨｉｎｄＩＩＩで酵素切断したと共に、ｐＲＳＥＴｂベクターも相応に二重酵素切断した。Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションを行ってから、ライゲーション産物でＭａｃｈＩを形質転換し、形質転換されたＭａｃｈＩをＬＢプレート（アンピシリン１００ｕｇ／ｍＬ）に撒き、３７℃で一晩培養した。成長したＭａｃｈＩ形質転換体からプラスミドを抽出してから、ＰＣＲによって同定した。陽性プラスミドは、正しくシーケンシングした後で、次のプラスミド構築を行った。
ｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰ、ｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＫ−ｃｐＹＦＰ蛍光センサーの挿入点が異なるプラスミドの構築と検出
本実施例において、ｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＪプラスミドを基に、ＬｉｖＪ結晶構造に応じて、１１８／１１９、１１８／１２０、１１９／１２０、２４８／２４９、２４８／２５０、２４８／２５１、２４８／２５２、２４８／２５３、２４８／２５４、２４８／２５５、２４８／２５６、２４８／２５７、２４８／２５８、２４９／２５０、２４９／２５１、２４９／２５２、２４９／２５３、２４９／２５４、２４９／２５５、２４９／２５６、２４９／２５７、２４９／２５８、２５０／２５１、２５０／２５２、２５０／２５３、２５０／２５４、２５０／２５５、２５０／２５６、２５０／２５７、２５０／２５８、２５１／２５２、２５１／２５３、２５１／２５４、２５１／２５５、２５１／２５６、２５１／２５７、２５１／２５８、２５２／２５３、２５２／２５４、２５２／２５５、２５２／２５６、２５２／２５７、２５２／２５８、２５３／２５４、２５３／２５５、２５３／２５６、２５３／２５７、２５３／２５８、２５４／２５５、２５４／２５６、２５４／２５７、２５４／２５８、２５５／２５６、２５５／２５７、２５５／２５８、２５６／２５７、２５６／２５８、２５７／２５８、３２５／３２６、３２５／３２７、３２５／３２８、３２５／３２９、３２６／３２７、３２６／３２８、３２６／３２９、 ３２７／３２８、３２７／３２９、３２８／３２９部位を選択した。そのうち、分岐鎖アミノ酸に対する応答の検出が３倍を超えたものは、３２６／３２７、３２７／３２８位であった（図２に示す）。
pRSETb-LivKプラスミドを基に、ＬｉｖＫ結晶構造に応じて、１１８／１１９、１１８／１２０、１１９／１２０、２４８／２４９、２４８／２５０、２４８／２５１、２４８／２５２、２４８／２５３、２４８／２５４、２４８／２５５、２４８／２５６、２４８／２５７、２４８／２５８、２４９／２５０、２４９／２５１、２４９／２５２、２４９／２５３、２４９／２５４、２４９／２５５、２４９／２５６、２４９／２５７、２４９／２５８、２５０／２５１、２５０／２５２、２５０／２５３、２５０／２５４、２５０／２５５、２５０／２５６、２５０／２５７、２５０／２５８、２５１／２５２、２５１／２５３、２５１／２５４、２５１／２５５、２５１／２５６、２５１／２５７、２５１／２５８、２５２／２５３、２５２／２５４、２５２／２５５、２５２／２５６、２５２／２５７、２５２／２５８、２５３／２５４、２５３／２５５、２５３／２５６、２５３／２５７、２５３／２５８、２５４／２５５、２５４／２５６、２５４／２５７、２５４／２５８、２５５／２５６、２５５／２５７、２５５／２５８、２５６／２５７、２５６／２５８、２５７／２５８、３２７／３２８、３２７／３２９、３２７／３３０、３２７／３３１、３２８／３２９、３２８／３３０、３２８／３３１、３２９／３３０、３２９／３３１、３３０／３３１部位を選択した。そのうち、ロイシンに対する応答の検出が１．５倍を超えたものは、３２８／３２９、３２９／３３０位であった（図２に示す）。
本実施例において、ｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＪプラスミドを基に、ＬｉｖＪ結晶構造に応じて、１１８／１１９、１１８／１２０、１１９／１２０、２４８／２４９、２４８／２５０、２４８／２５１、２４８／２５２、２４８／２５３、２４８／２５４、２４８／２５５、２４８／２５６、２４８／２５７、２４８／２５８、２４９／２５０、２４９／２５１、２４９／２５２、２４９／２５３、２４９／２５４、２４９／２５５、２４９／２５６、２４９／２５７、２４９／２５８、２５０／２５１、２５０／２５２、２５０／２５３、２５０／２５４、２５０／２５５、２５０／２５６、２５０／２５７、２５０／２５８、２５１／２５２、２５１／２５３、２５１／２５４、２５１／２５５、２５１／２５６、２５１／２５７、２５１／２５８、２５２／２５３、２５２／２５４、２５２／２５５、２５２／２５６、２５２／２５７、２５２／２５８、２５３／２５４、２５３／２５５、２５３／２５６、２５３／２５７、２５３／２５８、２５４／２５５、２５４／２５６、２５４／２５７、２５４／２５８、２５５／２５６、２５５／２５７、２５５／２５８、２５６／２５７、２５６／２５８、２５７／２５８、３２５／３２６、３２５／３２７、３２５／３２８、３２５／３２９、３２６／３２７、３２６／３２８、３２６／３２９、 ３２７／３２８、３２７／３２９、３２８／３２９部位を選択した。そのうち、分岐鎖アミノ酸に対する応答の検出が３倍を超えたものは、３２６／３２７、３２７／３２８位であった（図２に示す）。
pRSETb-LivKプラスミドを基に、ＬｉｖＫ結晶構造に応じて、１１８／１１９、１１８／１２０、１１９／１２０、２４８／２４９、２４８／２５０、２４８／２５１、２４８／２５２、２４８／２５３、２４８／２５４、２４８／２５５、２４８／２５６、２４８／２５７、２４８／２５８、２４９／２５０、２４９／２５１、２４９／２５２、２４９／２５３、２４９／２５４、２４９／２５５、２４９／２５６、２４９／２５７、２４９／２５８、２５０／２５１、２５０／２５２、２５０／２５３、２５０／２５４、２５０／２５５、２５０／２５６、２５０／２５７、２５０／２５８、２５１／２５２、２５１／２５３、２５１／２５４、２５１／２５５、２５１／２５６、２５１／２５７、２５１／２５８、２５２／２５３、２５２／２５４、２５２／２５５、２５２／２５６、２５２／２５７、２５２／２５８、２５３／２５４、２５３／２５５、２５３／２５６、２５３／２５７、２５３／２５８、２５４／２５５、２５４／２５６、２５４／２５７、２５４／２５８、２５５／２５６、２５５／２５７、２５５／２５８、２５６／２５７、２５６／２５８、２５７／２５８、３２７／３２８、３２７／３２９、３２７／３３０、３２７／３３１、３２８／３２９、３２８／３３０、３２８／３３１、３２９／３３０、３２９／３３１、３３０／３３１部位を選択した。そのうち、ロイシンに対する応答の検出が１．５倍を超えたものは、３２８／３２９、３２９／３３０位であった（図２に示す）。
ｃｐＹＦＰのＤＮＡ断片をＰＣＲによって生成し、該ＤＮＡ断片を５’末端のリン酸化の手段によって不活性化させたと共に、リバースＰＣＲによって増幅し、異なる切断部位を含有するｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＪおよびｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＫ線状化ベクターを生成し、線状化のｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＪおよびｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＫを、５’末端がリン酸化されたｃｐＹＦＰ断片とＰＥＧ４０００およびＴ４ＤＮＡリガーゼの作用でライゲートして、組換えプラスミドを生成し、これらのプレートをＫｏｄａｋ多機能生体イメージングシステムに配置し、ＦＩＴＣチャンネルの励起で黄色蛍光を発光するクローンを掻き取り、シーケンシングは北京六合華大基因科技株式会社の上海支社によって完成した。
正しくシーケンシングした後で、組換えプラスミドをＪＭ１０９（ＤＥ３）に形質転換して発現を誘導し、且つタンパク質を精製し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ電気泳動により、そのサイズが６７ＫＤａであった。このサイズは、ｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰおよびｐＲＳＥＴｂ−ＬｉｖＫ−ｃｐＹＦＰによって発現するＨｉｓタグ精製タグ付きＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰおよびＬｉｖＫ−ｃｐＹＦＰ融合タンパク質のサイズに一致した。結果は図１に示す。
精製したＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰおよびＬｉｖＫ−ｃｐＹＦＰ融合タンパク質を、分岐鎖アミノ酸とロイシンの応答性についてスクリーニングし、１０ｍＭの分岐鎖アミノ酸とロイシンを含有する融合蛍光タンパク質の検出シグナルを分岐鎖アミノ酸とロイシンフリーの融合蛍光タンパク質の検出シグナルで割った。
結果は図２に示すように、検出結果から分かるように、分岐鎖アミノ酸蛍光センサーの分岐鎖アミノ酸に対する応答が３倍を超えたものは、３２６／３２７、３２７／３２８位であり、３２６／３２７および３２７／３２８位の４２０ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度は、分岐鎖アミノ酸濃度の増加に従って低下し、３２６／３２７および３２７／３２８位の４８５ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度は、分岐鎖アミノ酸濃度の増加に従って向上した。ロイシン蛍光センサーのロイシンに対する応答が１．５倍を超えたものは、３２８／３２９、３２９／３３０位であり、３２８／３２９および３２９／３３０位の４２０ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度は、分岐鎖アミノ酸濃度の増加に従って低下し、３２８／３２９および３２９／３３０位の４８５ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度は、分岐鎖アミノ酸濃度の増加に従って向上した。
ｃｐＢＦＰを基にする分岐鎖アミノ酸蛍光センサーの設計、構築および検出
実施例１における方法により、ｃｐＹＦＰを青色蛍光タンパク質ｃｐＢＦＰに入れ替えて、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質およびロイシン結合タンパク質に融合させ、それぞれ分岐鎖アミノ酸青色蛍光タンパク質蛍光センサーおよびロイシン青色蛍光タンパク質蛍光センサーを構築した。結果は図３に示すように、検出結果から分かるように、分岐鎖アミノ酸蛍光センサーの分岐鎖アミノ酸に対する応答が３倍を超えたものは、３２６／３２７、３２７／３２８位であり、ロイシン蛍光センサーのロイシンに対する応答が１．５倍を超えたものは、３２８／３２９、３２９／３３０位であった。
実施例１における方法により、ｃｐＹＦＰを青色蛍光タンパク質ｃｐＢＦＰに入れ替えて、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質およびロイシン結合タンパク質に融合させ、それぞれ分岐鎖アミノ酸青色蛍光タンパク質蛍光センサーおよびロイシン青色蛍光タンパク質蛍光センサーを構築した。結果は図３に示すように、検出結果から分かるように、分岐鎖アミノ酸蛍光センサーの分岐鎖アミノ酸に対する応答が３倍を超えたものは、３２６／３２７、３２７／３２８位であり、ロイシン蛍光センサーのロイシンに対する応答が１．５倍を超えたものは、３２８／３２９、３２９／３３０位であった。
ｃｐｍＡｐｐｌｅを基にする分岐鎖アミノ酸蛍光センサーの設計、構築および検出
実施例１における方法により、ｃｐＹＦＰをリンゴ赤色蛍光タンパク質ｃｐｍＡｐｐｌｅに入れ替えて、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質およびロイシン結合タンパク質に融合させ、それぞれ分岐鎖アミノ酸赤色蛍光タンパク質蛍光センサーおよびロイシン赤色蛍光タンパク質蛍光センサーを構築したが、結果は図４に示すように、検出結果から分かるように、分岐鎖アミノ酸蛍光センサーの分岐鎖アミノ酸に対する応答が３倍を超えたものは、３２６／３２７、３２７／３２８位であり、ロイシン蛍光センサーのロイシンに対する応答が１．５倍を超えたものは、３２８／３２９、３２９／３３０位であった。
実施例１における方法により、ｃｐＹＦＰをリンゴ赤色蛍光タンパク質ｃｐｍＡｐｐｌｅに入れ替えて、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質およびロイシン結合タンパク質に融合させ、それぞれ分岐鎖アミノ酸赤色蛍光タンパク質蛍光センサーおよびロイシン赤色蛍光タンパク質蛍光センサーを構築したが、結果は図４に示すように、検出結果から分かるように、分岐鎖アミノ酸蛍光センサーの分岐鎖アミノ酸に対する応答が３倍を超えたものは、３２６／３２７、３２７／３２８位であり、ロイシン蛍光センサーのロイシンに対する応答が１．５倍を超えたものは、３２８／３２９、３２９／３３０位であった。
実施例１〜３の結果から明らかなように、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質のリンカー領域の３２５〜３２９位は、ｃｐＦＰ蛍光タンパク質を融合させて分岐鎖アミノ酸に応答する融合蛍光タンパク質分岐鎖アミノ酸センサーを得ることに適切であり；ロイシン結合タンパク質のリンカー領域の３２７〜３３１位は、ｃｐＦＰ蛍光タンパク質を融合させてロイシンに応答する融合蛍光タンパク質センサーを得ることに適切であった。
蛍光タンパク質と分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の簡単な直接融合だけでは、分岐鎖アミノ酸蛍光センサーを生成できない
蛍光タンパク質ｃｐＹＦＰをＬｉｖＫまたはＬｉｖＪタンパク質のＮ末端またはＣ末端に直接融合させ、分岐鎖アミノ酸蛍光センサーを構築し、そしてｃｐＹＦＰを青色蛍光タンパク質ｃｐＢＦＰおよびリンゴ赤色蛍光タンパク質ｃｐｍＡｐｐｌｅに入れ替えて、それぞれ分岐鎖アミノ酸青色蛍光タンパク質蛍光センサーおよび赤色蛍光タンパク質蛍光センサーを構築した。結果は図５に示すように、蛍光検出の結果からわかるように、対照と比較して、前記分岐鎖アミノ酸蛍光センサーの分岐鎖アミノ酸に対する応答に変化はなかった。
蛍光タンパク質ｃｐＹＦＰをＬｉｖＫまたはＬｉｖＪタンパク質のＮ末端またはＣ末端に直接融合させ、分岐鎖アミノ酸蛍光センサーを構築し、そしてｃｐＹＦＰを青色蛍光タンパク質ｃｐＢＦＰおよびリンゴ赤色蛍光タンパク質ｃｐｍＡｐｐｌｅに入れ替えて、それぞれ分岐鎖アミノ酸青色蛍光タンパク質蛍光センサーおよび赤色蛍光タンパク質蛍光センサーを構築した。結果は図５に示すように、蛍光検出の結果からわかるように、対照と比較して、前記分岐鎖アミノ酸蛍光センサーの分岐鎖アミノ酸に対する応答に変化はなかった。
ＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰおよびＬｉｖＫ−ｃｐＹＦＰ蛍光センサーの特性の計測
精製したＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰおよびＬｉｖＫ−ｃｐＹＦＰをそれぞれ０ｍＭと５ｍＭのロイシンで１０ｍｉｎ処理した後、蛍光分光光度計で蛍光スペクトルを検出した。励起スペクトルの測定は、発光を５３０ｎｍに固定し、３５０〜５１５ｎｍの領域の励起スペクトルを検出した；発光スペクトルの測定は、励起を４９０ｎｍに固定し、５０５〜６００ｎｍの領域の発光スペクトルを検出した。ＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰおよびＬｉｖＫ−ｃｐＹＦＰ蛍光センサーのスペクトル曲線は図６Ａと６Ｂに示すが、以上の結果から明らかなように、ＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰ、ＬｉｖＫ−ｃｐＹＦＰ蛍光タンパク質の蛍光スペクトル特性はｃｐＹＦＰ蛍光タンパク質の蛍光スペクトル特性に似ている（Nagai, T.ら,Proc Natl Acad Sci USA. 2001,V.98(6),pp.3197-3202）。
精製したＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰおよびＬｉｖＫ−ｃｐＹＦＰをそれぞれ０ｍＭと５ｍＭのロイシンで１０ｍｉｎ処理した後、蛍光分光光度計で蛍光スペクトルを検出した。励起スペクトルの測定は、発光を５３０ｎｍに固定し、３５０〜５１５ｎｍの領域の励起スペクトルを検出した；発光スペクトルの測定は、励起を４９０ｎｍに固定し、５０５〜６００ｎｍの領域の発光スペクトルを検出した。ＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰおよびＬｉｖＫ−ｃｐＹＦＰ蛍光センサーのスペクトル曲線は図６Ａと６Ｂに示すが、以上の結果から明らかなように、ＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰ、ＬｉｖＫ−ｃｐＹＦＰ蛍光タンパク質の蛍光スペクトル特性はｃｐＹＦＰ蛍光タンパク質の蛍光スペクトル特性に似ている（Nagai, T.ら,Proc Natl Acad Sci USA. 2001,V.98(6),pp.3197-3202）。
それらから分岐鎖アミノ酸検出範囲が０．１μＭ〜１ｍＭにあるセンサーのＦ ＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａ（ＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰ ３２６／３２７）およびＦ ＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ｂ（ＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰ ３２７／３２８）、並びにＦ ＬｉｖＫ ｓｅｎｓｏｒ Ａ（Ｌｉｖｋ−ｃｐＹＦＰ ３２８／３２９）およびＦ ＬｉｖＫ ｓｅｎｓｏｒ Ｂ（Ｌｉｖｋ−ｃｐＹＦＰ ３２９／３３０）を選択し、濃度勾配（０〜１ｍＭ）で３種類の分岐鎖アミノ酸を検出した。精製したＬｉｖＪ−ｃｐＹＦＰおよびＬｉｖＫ−ｃｐＹＦＰをそれぞれ１０ｍｉｎ処理した後、４２０ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度と４８５ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度の比率の変化を検出し、結果は図７に示す。これで、サンプルにおける分岐鎖アミノ酸またはロイシンの含有量またはレベルについて、より適切な分岐鎖アミノ酸またはロイシンを選択して定量的に検出することができる。
ＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａ蛍光センサーの異なる細胞内小器官への位置決めおよび細胞内小器官内での蛍光センサーの特性の計測
本実施例において、異なる位置決めシグナルペプチドをＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａと融合させ、ＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａ分岐鎖アミノ酸蛍光タンパク質センサーを異なる細胞小器官へ位置決めした。
本実施例において、異なる位置決めシグナルペプチドをＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａと融合させ、ＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａ分岐鎖アミノ酸蛍光タンパク質センサーを異なる細胞小器官へ位置決めした。
異なる位置決めシグナルペプチドが融合されたＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａ遺伝子のプラスミドをＨｅＬａ細胞にトランスフェクトした３６時間後、ＰＢＳで洗浄してから、ＨＢＳＳ溶液に置いて、倒立蛍光顕微鏡によってＦＩＴＣチャンネルで蛍光を検出した。ＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａは異なる特異的な位置決めシグナルペプチドと融合することで、細胞質、細胞核、細胞外膜、細胞内膜、ミトコンドリア、ファゴソーム、リゾソーム、ゴルジ体へ位置決めできることが見出した。結果は図８に示すように、異なる細胞下構造においては、いずれも蛍光の発光が示されており、且つ蛍光の分布と強度が互いに相違した。
細胞質とミトコンドリアの異なる位置決めシグナルペプチドが融合されたＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａ遺伝子のプラスミドをＨｅＬａ細胞にトランスフェクトした３６時間後、ＰＢＳで洗浄してから、ＨＢＳＳ溶液に置いて、４０ｍｉｎの時間帯において、４２０ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度と４８５ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度の比率の変化を検出したが、結果は図９に示すように、分岐鎖アミノ酸の消耗に従って、比率４８５／４２０が徐々に低下し、それ後にＢＣＡＡを添加して検出を４３ｍｉｎ継続したが、分岐鎖アミノ酸が添加されたサンプルの比率４８５／４２０は徐々に増加したが、対照群の比率４８５／４２０は変化がなくなるまで低下し続けた。
生細胞レベルで、分岐鎖アミノ酸ＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａによりハイスループットの化合物スクリーニングを行った
本実施例において、分岐鎖アミノ酸ＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａを細胞質で発現するＨｅＬａ細胞により、ハイスループットの化合物スクリーニングを行った。
ＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａ遺伝子がトランスフェクトされたＨｅＬａ細胞をＰＢＳで洗浄してから、ＨＢＳＳ溶液（分岐鎖アミノ酸フリー）に置いて、１時間処理した後、１０μＭの化合物で１時間処理した。分岐鎖アミノ酸を滴下した。マイクロプレートリーダーにより、４２０ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度と４８５ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度の比率の変化を記録した。何の化合物で処理されていないサンプルを標準とした。結果は図１０に示すように、２０００種類の化合物で処理された細胞のうち、殆どの化合物は分岐鎖アミノ酸の細胞への侵入に対する影響が少なかった。１６種類の化合物は細胞の分岐鎖アミノ酸取り込み能を向上させることができたが、その他に、６種類の化合物は細胞の分岐鎖アミノ酸取り込み能を顕著に低下させることができた。
本実施例において、分岐鎖アミノ酸ＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａを細胞質で発現するＨｅＬａ細胞により、ハイスループットの化合物スクリーニングを行った。
ＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａ遺伝子がトランスフェクトされたＨｅＬａ細胞をＰＢＳで洗浄してから、ＨＢＳＳ溶液（分岐鎖アミノ酸フリー）に置いて、１時間処理した後、１０μＭの化合物で１時間処理した。分岐鎖アミノ酸を滴下した。マイクロプレートリーダーにより、４２０ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度と４８５ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度の比率の変化を記録した。何の化合物で処理されていないサンプルを標準とした。結果は図１０に示すように、２０００種類の化合物で処理された細胞のうち、殆どの化合物は分岐鎖アミノ酸の細胞への侵入に対する影響が少なかった。１６種類の化合物は細胞の分岐鎖アミノ酸取り込み能を向上させることができたが、その他に、６種類の化合物は細胞の分岐鎖アミノ酸取り込み能を顕著に低下させることができた。
分岐鎖アミノ酸蛍光センサーＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａにより、異なる細胞内小器官中において分岐鎖アミノ酸を定量した
実施例において、分岐鎖アミノ酸ＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａを細胞質で発現するＨｅＬａ細胞により、半定量を行った。ＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａ遺伝子がトランスフェクトされたＨｅＬａ細胞を下記のように分けた：その一つは、処理なしのものであり、もう一つは、ＰＢＳで洗浄してから、ＨＢＳＳ溶液（分岐鎖アミノ酸フリー）に置いて、１時間処理した後、１ｍＭの３種類の分岐鎖アミノ酸で１時間処理した、或いは引き続きＨＢＳＳ溶液に置いた。マイクロプレートリーダーにより、４２０ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度と４８５ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度の比率の変化を記録した。図１１に示すように、分岐鎖アミノ酸の代謝状況を検出できた。
実施例において、分岐鎖アミノ酸ＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａを細胞質で発現するＨｅＬａ細胞により、半定量を行った。ＦＬｉｖＪ ｓｅｎｓｏｒ Ａ遺伝子がトランスフェクトされたＨｅＬａ細胞を下記のように分けた：その一つは、処理なしのものであり、もう一つは、ＰＢＳで洗浄してから、ＨＢＳＳ溶液（分岐鎖アミノ酸フリー）に置いて、１時間処理した後、１ｍＭの３種類の分岐鎖アミノ酸で１時間処理した、或いは引き続きＨＢＳＳ溶液に置いた。マイクロプレートリーダーにより、４２０ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度と４８５ｎｍで励起されて５２８ｎｍで発光した蛍光の強度の比率の変化を記録した。図１１に示すように、分岐鎖アミノ酸の代謝状況を検出できた。
以上の実施例から分かるように、本発明で提供される蛍光センサーは、タンパク質の分子量が比較的に小さく、且つ成熟しやすく、蛍光動的変化が大きく、特異性が良好で、且つ遺伝子操作の方法によって細胞中で発現させることもでき、細胞内外において、分岐鎖アミノ酸をリアルタイムで位置決めて定量的に検出することができ、且つハイスループットの化合物スクリーニングを可能にする。
他の実施形態
本明細書では多くの実施形態が説明された。しかしながら、当業者にとって、本発明の原理から逸脱しない限り、いくつかの改善および変更をすることもでき、これらの改善および変更も本発明の保護範囲に入ると見なされるべきであることは、理解すべきである。
本明細書では多くの実施形態が説明された。しかしながら、当業者にとって、本発明の原理から逸脱しない限り、いくつかの改善および変更をすることもでき、これらの改善および変更も本発明の保護範囲に入ると見なされるべきであることは、理解すべきである。
Claims (15)
- ａ）ロイシン応答性ポリペプチドと、
ｂ）光学活性ポリペプチドと、
を含む蛍光センサーであって、
前記光学活性ポリペプチドが前記ロイシン応答性ポリペプチドに挿入されている蛍光センサー。 - 前記ロイシン応答性ポリペプチドはさらに、イソロイシンおよび／またはバリンにも応答することを特徴とする、請求項１に記載の蛍光センサー。
- 前記ロイシン応答性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片、およびロイシン結合タンパク質またはその機能性断片からなる群から選ばれることを特徴とする、前記請求項のいずれかに記載の蛍光センサー。
- 前記ロイシン応答性ポリペプチドは、分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片であり、配列番号１に示される配列またはその機能性断片、或いはそれと８５％の配列相同性を持つ配列を有するものである、或いは
前記ロイシン応答性ポリペプチドは、ロイシン結合タンパク質またはその機能性断片であり、配列番号２に示される配列またはその機能性断片、或いはそれと８５％の配列相同性を持つ配列を有するものである
ことを特徴とする、前記請求項のいずれかに記載の蛍光センサー。 - 前記光学活性ポリペプチドは、前記ロイシン応答性ポリペプチドの残基１１８〜１２０、残基２４８〜２５８または残基３２５〜３３１の間に位置し、番号は前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長または前記ロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである、或いは
前記光学活性ポリペプチドは、前記ロイシン応答性ポリペプチドの残基１１８〜１２０、残基２４８〜２５８または残基３２５〜３３１の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号は前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長または前記ロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである
ことを特徴とする、請求項４に記載の蛍光センサー。 - 前記光学活性ポリペプチドは、前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２５〜３２９の間に位置し、番号は前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長に相応するものである、或いは
前記光学活性ポリペプチドは、前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２５〜３２９の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号は前記分岐鎖アミノ酸結合タンパク質の全長に相応するものである
ことを特徴とする、請求項５に記載の蛍光センサー。 - 前記光学活性ポリペプチドは、前記ロイシン結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２７〜３３１の間に位置し、番号は前記ロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである、或いは
前記光学活性ポリペプチドは、前記ロイシン結合タンパク質またはその機能性断片の残基３２７〜３３１の間の１つまたは複数のアミノ酸を置換し、番号は前記ロイシン結合タンパク質の全長に相応するものである
ことを特徴とする、請求項５に記載の蛍光センサー。 - 前記光学活性ポリペプチドは蛍光タンパク質、またはその機能性断片若しくは変異体である、
前記光学活性ポリペプチドは、緑色蛍光タンパク質、青色蛍光タンパク質、シアン蛍光タンパク質、オレンジ蛍光タンパク質、リンゴ赤色蛍光タンパク質、赤色蛍光タンパク質からなる群から選ばれる、或いは
前記光学活性ポリペプチドは配列番号３〜１３に示される配列を有する
ことを特徴とする、前記請求項のいずれかに記載の蛍光センサー。 - 前記請求項のいずれかに記載の蛍光センサーをコードする核酸配列またはその相補配列。
- 発現制御配列と作動可能に連結される請求項９に記載の核酸配列を含む発現ベクター。
- 請求項１０に記載の発現ベクターを含む細胞。
- 請求項１〜８のいずれかに記載の蛍光センサーを発現するベクターを含む細胞を提供することと、前記細胞の発現条件下で前記細胞を培養することと、および前記蛍光センサーを分離することと、を含む請求項１〜８のいずれかに記載の蛍光センサーの製造方法。
- 請求項１〜８のいずれかに記載の蛍光センサーまたは請求項１２に記載の方法で製造される蛍光センサーをサンプルと接触させることと、および光学活性ポリペプチドの変化を検出することと、を含む分岐鎖アミノ酸の検出方法。ただし、前記分岐鎖アミノ酸は、ロイシン、イソロイシンおよびバリンから選ばれる。
- 請求項１〜８のいずれかに記載の蛍光センサーまたは請求項１２に記載の方法で製造される蛍光センサーの、サンプルにおける分岐鎖アミノ酸を検出するための使用。ただし、前記分岐鎖アミノ酸は、ロイシン、イソロイシンおよびバリンから選ばれる。
- 請求項１〜８のいずれかに記載の蛍光センサーまたは請求項１２に記載の方法で製造される蛍光センサーを含むキット。
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