JP2021514661A - サイトカインに連結させたecm親和性ペプチドを用いてがんを処置するための方法および組成物 - Google Patents
サイトカインに連結させたecm親和性ペプチドを用いてがんを処置するための方法および組成物 Download PDFInfo
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Abstract
Description
本出願は、2018年3月5日に出願された米国特許仮出願第62/638,520号および2018年9月5日に出願された米国特許仮出願第62/727,156号の優先権の恩典を主張する。前述の特許仮出願はすべて、参照によりその全体が本明細書に組み入れられる。
本発明は概して薬の分野に関する。より詳しくは、本発明は、血管透過性と関連している領域、例えば腫瘍をターゲティングするための、ヌクレオチド構築物およびタンパク質、例えば改変操作型サイトカインを伴う、組成物および方法に関する。
免疫系は、多種多様ながんの病因に極めて重要な役割を果たしている。がんが進行するときは、免疫系が充分に応答できていないか、または適切に応答できていないかのいずれかであり、がん細胞の増殖が可能となっていると広く考えられている。現在、がんに対する標準的な医療処置、例えば化学療法、手術、放射線療法および細胞治療は、有効性および毒性の両方に関して明らかに限界がある。これまで、これらのアプローチで達成される奏効の度合は、がんの型、患者の一般健康状態、診断時の疾患の病期などに応じてさまざまである。標準的な医療処置とがんに対する免疫応答の特異的操作とを組み合わせて併用する改善されたストラテジーにより、がん治療の有効性の向上および毒性の低減のための手段が提供され得よう。
97、198、199、200、201、202、203、204、205、206、207、208、209、210、211、212、213、214、215、216、217、218、219、220、221、222、223、224、225、226、227、228、229、230、231、232、233、234、235、236、237、238、239、240、241、242、243、244、245、246、247、248、249、250、251、252、253、254、255、256、257、258、259、260、261、262、263、264、265、266、267、268、269、270、271、272、273、274、275、276、277、278、279、280、281、282、283、284、285、286、287、288、289、290、291、292、293、294、295、296、297、298、299、300、301、302、303、304、305、306、307、308、309、310、311、312、313、314、315、316、317、318、319、320、321、322、323、324、325、326、327、328、329、330、331、332、333、334、335、336、337、338、339、340、341、342または343で終わるSEQ ID NO:15の断片;(E)アミノ酸1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99、100、101、102、103、104、105、106、107、108、109、110、111、112、113、114、115、116、117、118、119、120、121、122、123、124、125、126、127、128、129、130、131、132、133、134、135、136、137、138、139、140、141、142、143、144、145、146、147、148、149、150、151、152、153、154、155、156、157、158、159、160、161、162、163、164、165、166、167、168、169、170、171、172、173、174、175、176、177、178、179、180、181、182、183、184、185または186から始まり、アミノ酸10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99、100、101、102、103、104、105、106、107、108、109、110、111、112、113、114、115、116、117、118、119、120、121、122、123、124、125、126、127、128、129、130、131、132、133、134、135、136、137、138、139、140、141、142、143、144、145、146、147、148、149、150、151、152、153、154、155、156、157、158、159、160、161、162、163、164、165、166、167、168、169、170、171、172、173、174、175、176、177、178、179、180、181、182、183、184、185、186、187、188、189、190、191、192、193、194、195または196で終わるSEQ ID NO:34の断片を含む断片を含み得る。
を有するHisタグ化マウスIL-2。以下の配列:
を有するヒトIL-2。
サイトカインおよびケモカインは、本明細書において一般的にサイトカインと称し、相当な抗腫瘍活性を示すことが示されているが、以前の試験では狭い治療濃度域および/または処置関連有害事象の事例が報告されている。本明細書に記載の方法および組成物により、腫瘍内または腫瘍周囲に保持されるサイトカインでの局所療法が提供され、全身曝露が限定的になり、一部の場合において治療を中止しなければならないか、または有効用量が得られないかのいずれかであるほど重度であり得る副作用が少なくなる。本明細書に示した実施例により、ECM親和性ペプチドコンジュゲーション後では腫瘍組織内保持が向上して血漿中濃度が低下し、全身性副作用が低減されることを実証している。本明細書に記載の組成物の静脈内(iv)注射により、黒色腫および結腸がんのマウスモデルにおいて対照と比べて腫瘍の増殖が有意に遅延され、生存期間が長くなった。改変操作型ECM結合サイトカインのシンプルで応用可能なこのアプローチはがん治療における新規なアプローチである。
サイトカインは、細胞が刺激されると放出する一群のタンパク質である(非常にごくわずかのサイトカインしか細胞膜上に発現されない)。細胞によって産生されるサイトカインは標的細胞近傍で、または血液循環によって非常に低濃度で影響を及ぼし得る。サイトカインは、標的細胞の増殖、分化および活性化の促進に対して広範な機能を有する。多くのサイトカインは免疫細胞をターゲティングして免疫応答において役割を果たし得る。構造および機能の違いに基づいて、サイトカインは、ケモカイン、インターロイキン、増殖因子、トランスフォーミング増殖因子、コロニー刺激因子、腫瘍壊死因子およびインターフェロンに大別され得る。
コラーゲンは、正常組織および腫瘍組織の両方において細胞のさまざまな生物学的機能、例えば増殖、分化および接着を調節する細胞外マトリックス(ECM)タンパク質である(Ricard-Blum,Cold Spring Harb Perspect Biol 3:a004978,2011)。コラーゲンは、哺乳動物の体内に最も豊富に存在するタンパク質であり、ほぼすべての組織中に28種類のアイソフォームのうちの1種類または複数種で存在する(Ricard-Blum,Cold Spring Harb Perspect Biol 3:a004978,2011)。血管内皮下層スペースはコラーゲン高含有である。生理学的条件下において不溶性であるため、コラーゲンは血中にはほとんど存在しない(Dubois et al.,Blood 107:3902-06,2006;Bergmeier and Hynes,Cold Spring Harb Perspect Biol 4:a005132,2012)。腫瘍血管系は異常な構造であるため透過性であることが報告されている(Nagy et al.,British journal of cancer 100:865,2009)。したがって、その漏出性血管系により、腫瘍内にコラーゲンが露出する(Liang et al.,Journal of controlled release 209:101-109,2015;Liang et al.,Sci Rep 6:18205,2016;Yasunaga et al.,Bioconjugate chemistry 22:1776-83,2011;Xu et al.The Journal of cell biology 154:1069-80,2001;Swartz and Lund,Nat Rev Cancer 12:210-19)。また、腫瘍組織は、正常組織と比べて増大した量のコラーゲンを含有している(Zhou et al.J Cancer 8:1466-76,2017;Provenzano et al.BMC Med 6:11,2008)。
を有する。ペプチドの例は、SEQ ID NO:13の全部もしくは一部(すなわち、セグメント)、またはSEQ ID NO:3の全部もしくは一部を含む。一部の態様では、該ペプチドはvWF A1ドメインに由来する。vWF A1ドメインはヒト配列の残基1237〜1458(成熟vWFの474〜695)から得られ、以下の配列:
を有する。
である。例示的なペプチドは、SEQ ID NO:12の全部または一部および以下のペプチド:
を含む。
一部の特定の態様において、本開示は、サイトカインまたはケモカインに機能的に連結させた本発明のタンパク質、ポリペプチドおよびペプチド、例えばECM親和性ペプチドをコードしている組換えポリヌクレオチドに関する。したがって、一部の特定の態様は、サイトカインもしくはその断片と融合させたECM親和性ポリペプチドもしくはその断片および/またはECM親和性ポリペプチドをコードしているヌクレオチドに関する。
本開示のポリペプチドは、ベクター内に含められた核酸分子にコードされ得る。用語「ベクター」は、細胞内に導入されて該細胞で複製および発現され得る異種核酸配列が内部に挿入され得る担体核酸分子をいうために用いられる。核酸配列は「異種」であり得、これは、該核酸配列が、ベクターが導入されている細胞にとって、または組み込まれている核酸にとって外来の状況であることを意味し、該細胞または核酸内の配列に相同だが該宿主細胞または核酸において通常はみられない位置にある配列を含む。ベクターとしては、DNA、RNA、プラスミド、コスミド、ウイルス(バクテリオファージ、動物ウイルス、および植物ウイルス)、ならびに人工染色体(例えば、YAC)が挙げられる。当業者であれば、標準的な組換え手法によってベクターを構築するための充分な設備を整えられよう(例えば、Sambrook et al.,2001;Ausubel et al.,1996、ともに参照により本明細書に組み入れられる)。ベクターは、本開示のポリペプチドをコードしていることに加えて、他のポリペプチド配列、例えば1種類または複数種の他の細菌ペプチド、タグまたは免疫原性増強ペプチドをコードしていてもよい。かかる融合タンパク質をコードしている有用なベクターとしては、後の精製および分離または切断のための、pINベクター(Inouye et al.,1985)、ヒスチジン鎖をコードしているベクター、およびグルタチオンS-トランスフェラーゼ(GST)可溶性融合タンパク質の作製における使用のためのpGEXベクターが挙げられる。
「プロモーター」は制御配列である。プロモーターは典型的には、転写の開始と速度を制御する核酸配列領域である。これは、調節タンパク質および調節分子、例えばRNAポリメラーゼおよび他の転写因子が結合し得る遺伝子エレメントを含有し得る。語句「機能的に配置された」、「機能的に連結された」、「制御下の」および「転写制御下の」は、プロモーターが、核酸配列に対して転写の開始および該配列の発現を制御するのに正しい機能的位置および/または向きであることを意味する。プロモーターは、「エンハンサー」とともに使用してもしなくてもよく、エンハンサーは、核酸配列の転写活性化に関与するシス作用性調節配列をいう。
また、特定の開始シグナルがコード配列の効率的な翻訳のために必要とされる場合があり得る。このようなシグナルとしては、ATG開始コドンまたは隣接配列が挙げられる。外来性の翻訳制御シグナル、例えばATG開始コドンを備える必要があり得る。当業者であれば、これを判断して必要なシグナルを付与することが容易にできよう。
本発明の一部の特定の態様では、本開示の核酸構築物を含む細胞は、スクリーニング可能マーカーまたは選択マーカーを発現ベクターにコードすることによりインビトロまたはインビボで同定され得る。転写されて翻訳されるとマーカーは、該細胞に同定可能な変化を付与し、該発現ベクターを含む細胞の容易な同定を可能にする。一般的に、選択マーカーは、選択を可能にする特性を付与するものである。陽性選択マーカーは、マーカーの存在によって選択を可能にするものであり、一方、陰性選択マーカーは、その存在によって選択が妨げられるものである。陽性選択マーカーの一例は薬物耐性マーカーである。
本明細書で用いる場合、用語「細胞」、「細胞株」および「細胞培養物」は互換的に用いられ得る。また、これらの用語はすべて、その任意のあらゆる後続世代の子孫も包含している。意図的または偶発的な変異のため、すべての子孫が同一にはなり得ないことは理解されよう。異種核酸配列の発現との関連において、「宿主細胞」は、原核生物細胞または真核生物細胞をいい、ベクターを複製し得るか、またはベクターにコードされた異種遺伝子を発現し得る任意の形質転換可能な生物体を包含している。宿主細胞は、ベクターまたはウイルスのレシピエントとして使用することができ、使用されている。宿主細胞は「トランスフェクト」または「形質転換」され得、これは、外来性核酸、例えば組換えタンパク質コード配列が該宿主細胞内に移入または導入される過程をいう。形質転換細胞には対象の初代細胞およびその子孫が包含される。
上記に論考した組成物の少なくとも一部または全部を含む数多くの発現系が存在している。原核生物ベースの系および/または真核生物ベースの系が、核酸配列、またはその対応するポリペプチド、タンパク質およびペプチドを作製するために本発明での使用のために使用され得る。かかる系の多くは市販されており、広く入手可能である。
本開示の組成物および関連する方法、特に、サイトカインに機能的に連結させたECM親和性ペプチドの投与はまた、追加の治療の実施、例えば本明細書に記載の追加の治療薬の投与と併用して、または当技術分野で公知の他の従来の治療薬と併用して使用され得る。
用語「化学療法剤」は、とりわけがんを処置するために使用され得る治療用化合物および/または薬物をいう。例えば、化学療法剤としては、非限定的に、細胞分裂を妨害するか、微小管の正常な機能を破壊するか、代謝産物の利用を阻害するか、ヌクレオチドアナログの細胞内DNAへの置き換えを行なうか、またはDNAの複製に必要な酵素を阻害する任意の剤が挙げられ得る。
本明細書で用いる場合、「電離放射線」は、電離(電子の獲得または喪失)をもたらすのに充分なエネルギーを有するか、または電離をもたらすのに充分なエネルギーを核の相互作用によって生じ得る粒子または光子を含む放射線を意味する。例示的な好ましい電離放射線の一例はx線である。x線を標的の組織または細胞に送達するための手段は当技術分野において周知である。
一部の態様では、本方法は追加の剤の投与をさらに含む。一部の態様では、該追加の剤は免疫賦活薬である。用語「免疫賦活薬」は、本明細書で用いる場合、対象の免疫応答を刺激することができる化合物をいい、アジュバントを含む場合もある。一部の態様では、免疫賦活薬は、特異的抗原を構成しないが抗原に対する免疫応答の強度と長さを増大させることができる剤である。かかる免疫賦活薬としては、非限定的に、パターン認識受容体の刺激薬、例えばToll様受容体、RIG-1およびNOD様受容体(NLR)の刺激薬、鉱物塩、例えばミョウバン、ミョウバンと例えば大腸菌(Escherihia coli)、サルモネラ・ミネソタ(Salmonella minnesota)、サルモネラ・ティフィムリウム(Salmonella typhimurium)もしくはシゲラ・フレクスナー(Shigella flexneri)などのエンテロバクター属のモノホスホリルリピド(MPL)Aとの組み合わせ、または特に、上記の個々の細菌のMPL AであるMPL.RTM.との組み合わせ(ASO4)、サポニン、例えばQS-21、Quil-A、ISCOM、ISCOMATRIX、乳剤、例えばMF59、Montanide、ISA 51およびISA 720、AS02(QS21+スクアレン+MPL.)、リポソームおよびリポソーム製剤、例えばAS01、合成または特別に調製されたマイクロ粒子およびマイクロキャリア、例えば淋菌(N.gonorrheae)、クラミジア・トラコマチス(Chlamydia trachomatis)などの細菌由来外膜小胞(OMV)またはキトサン粒子、デポ形成剤、例えばプルロニックブロックコポリマー、特別に修飾または調製されたペプチド、例えばムラミルジペプチド、アミノアルキルグルコサミニド4-ホスフェート、例えばRC529、またはタンパク質、例えば細菌トキソイドもしくは毒素断片が挙げられ得る。
本方法および組成物は、がんを処置するための方法に関する。一部の態様では、該がんは固形腫瘍を含む。一部の態様では、該がんは非リンパ系である。一部の態様では、該がんは黒色腫または大腸がんである。
一部の態様では、薬学的組成物が対象に投与される。いろいろな局面が、有効量の組成物を対象に投与することを伴う。一部の態様では、抗がん剤を含む組成物が対象または患者に、がんを処置するため、または腫瘍の大きさを小さくするために投与され得る。さらに、かかる化合物を、追加のがん治療と併用して投与してもよい。
以下の実施例は、本開示の好ましい態様を実証するために含めている。当業者には、以下の実施例に開示した手法が、本発明者が、本開示の実施において充分に機能を果たすと見出した手法であり、したがって、その実施のための好ましい形態を構成しているとみなされ得ることが認識されよう。しかしながら、当業者は、本開示に鑑みると、開示している具体的な態様において、本開示の趣旨および範囲から逸脱することなく多くの変更が行なわれ得るが、それでもなお同様または類似の結果が得られることが認識されるはずである。
改変操作型コラーゲン結合インターロイキン-2は抗腫瘍有効性の向上および有害事象の低減を示す
インターロイキン-2(IL-2)を用いたサイトカイン免疫療法では、動物モデルおよび臨床において相当な抗腫瘍活性が示されている。ここで、本発明者らは、IL-2をフォン・ヴィレブランド因子(vWF)A3ドメイン由来のコラーゲン結合ドメイン(CBD)との融合タンパク質に改変操作した;この融合タンパク質は静脈内投与され得、血中タンパク質が腫瘍間質に到達するのを許容する漏出性血管系を経由して腫瘍微小環境をターゲティングする。ここで、本発明者らは、CBDタンパク質の腫瘍組織内局在を示す。CBD-IL-2は、注射後の血清中において血清炎症性サイトカイン濃度の低減を示した。CBD-IL-2は、野生型IL-2と比べて マウスの黒色腫モデルおよび結腸がんモデルにおいて腫瘍の増殖を有意に遅延させた。改変操作型コラーゲン結合サイトカインのシンプルで応用可能なこのアプローチは、がん免疫療法に対する新規なアプローチである。
CBD融合IL-2はコラーゲンおよびその受容体に結合する
本発明者らはまず、コラーゲンに対するCBD融合IL-2組換えタンパク質(CBD-IL-2)の結合能をインビトロで調べた。CBD融合IL-2を設計し、組換え発現させた(図1A)。SDS-PAGEにより、IL-2の分子量がCBD融合によって増大していることが示された(図1B)。CBD-IL-2はI型およびIII型コラーゲンに強い結合親和性(nM範囲の解離定数(KD)値)で結合した(図1C〜1D)。それと比べ、野生型IL-2は、これらのコラーゲンに結合しなかった。重要なことに、CBD-IL-2はIL-2Rαに野生型IL-2と同様のKD値で結合した。また、CBD-IL-2は、IL-2依存性NK細胞株であるCTLL-2細胞株の細胞増殖を誘導し、野生型形態と同様の効果を有した(図1E)。総合すると、このようなデータにより、CBD-IL-2はコラーゲンに、CBDの標的結合能もIL-2ドメインの標的結合能も損なうことなく結合することが示された。
本発明者らは、CBDが静脈内(i.v.)注射後に内因性コラーゲンに結合することによって腫瘍微小環境内に局在するかどうかを調べるため、インビボ体内分布解析を行なった。MMTV-PyMT乳がんをFVBマウスに接種した。腫瘍体積が500 mm3に達したら、DyLight 800標識CBDタンパク質を注射した。注射後2日目、腫瘍ならびに心臓、肺、腎臓、肝臓、脾臓および胃を含む臓器を採取した。蛍光検出により、CBDタンパク質は腫瘍内に優先的に局在することが示された(図2A)。
CBDタンパク質が腫瘍内に局在したため、注射後のCBD-IL-2の副作用は、腫瘍による競合および対応する全身曝露の低減のためIL-2と比べて少ないであろうという仮説をたてた。CBD-IL-2およびIL-2をB16F10黒色腫接種後4日目に投与し、次いで血清中のサイトカイン濃度を注射後24時間目に調べた。野生型IL-2投与では血清中のIFNγ濃度が上昇したが、CBD-IL-2では増大しなかった(図2B)。この結果は、CBD融合体によってIL-2の全身毒性が低減され得ることを示す。
本発明者らはCBD-IL-2の抗腫瘍有効性を、B16F10黒色腫およびCT26結腸がんを用いて調べた。B16F10細胞の接種後4日目、6μgのIL-2または12μg(同等のモル濃度)のCBD-IL-2を注射した。この用量で、野生型IL-2処置では明白な抗腫瘍効果は示されず、一方、CBD-IL-2処置では腫瘍サイズの縮小が誘導された(図3A)。CT26細胞の接種後5日目、6μgのIL-2または12μg(同等のモル濃度)のCBD-IL-2を注射した。この場合もCBD-IL-2ではCT26腫瘍の増殖が示されたが、IL-2では示されなかった(図3B)。このような一連のデータにより、CBD-IL-2療法は、その野生型形態と比べて卓越した抗腫瘍効果を有することが示された。
組換えvWF A3ドメインおよびマウスIL-2タンパク質の産生および精製
タンパク質の産生および精製は既報のとおりに行なった(Martino et al.,Science 343:885-88,2014)。GenscriptでヒトvWF A3ドメイン残基Cys1670〜Gly1874(成熟vWFの907〜1111)、マウスIL-2、ヒトvWF A3ドメインとマウスIL-2の融合タンパク質をコードしている配列が合成され、哺乳動物発現ベクターpcDNA3.1(+)内にサブクローニングされた。組換えタンパク質のさらなる精製のため、6個のHisをコードしている配列をN末端に付加した。懸濁に適合させたHEK-293F細胞を無血清FreeStyle 293 Expression Medium(Gibco)中に常套的に維持した。トランスフェクションの日、新鮮培地中に、1×106細胞/mlの密度で細胞を接種した。2μg/mlのプラスミドDNA、2μg/mlの線状25 kDaポリエチレンイミン(Polysciences)およびOptiPRO SFM培地(4%終濃度,Thermo Fisher)を逐次添加した。培養フラスコを135 rpmでのオービタルシェイキングにより、5%CO2の存在下、37℃でアジテーションした。トランスフェクション後6日目、細胞培養培地を遠心分離によって収集し、0.22μmフィルターに通して濾過した。培養培地を、AKTA pure 25(GE Healthcare)を用いてHisTrap HP 5 ml容カラム(GE Healthcare)にロードした。カラムを洗浄バッファー(20 mMイミダゾール,20 mM NaH2PO4,0.5 M NaCl,pH7.4)で洗浄した後、タンパク質を500 mMイミダゾール(20 mM NaH2PO4,0.5 M NaCl(pH7.4)中)の勾配で溶出した。溶出液をサイズ排除クロマトグラフィーにより、HiLoad Superdex 200PGカラム(GE healthcare)を用いてさらに精製した。精製工程はすべて4℃で行なった。ラミニンLGドメインの発現をウエスタンブロッティングにより抗Hisタグ抗体(BioLegend)を用いて調べ、SDS-PAGEによりタンパク質が>90%純粋であることを確認した。
測定は既報のとおりに行なう(Ishihara et al.,Sci Transl Med 9:doi:10.1126/scitranslmed.aan0401,2017)。SDS-PAGEは、4%から20%までの勾配のゲル(Bio-Rad)で行なった。電気泳動後、ゲルをSimplyBlue SafeStain(Thermo Fisher Scientific)で、製造業者の使用説明書に従って染色した。ゲルの画像はChemiDoc XRS+システム(Bio-Rad)を用いて収集した。
測定は既報のとおりに行なう(Ishihara et al.,,Sci Transl Med 9:doi:10.1126/scitranslmed.aan0401,2017)。96ウェルELISAプレート(Greiner Bio One)を、PBS中10μg/mLのコラーゲンI(EMD Millipore)、コラーゲンIII(EMD Millipore)または1μg/mLの組換えマウスIL-2Rα(SinoBiological)で37℃にて1時間コートした後、2%のBSAを含む0.05%のTween 20含有PBS(PBS-T)で室温にて1時間ブロックした。次いでウェルをPBS-Tで洗浄し、10μg/mLのCBD-IL-2または非修飾IL-2とともに室温で1時間さらにインキュベートした。PBS-Tでの3回の洗浄後、ウェルを室温で1時間、ラットIgGに対するHRPコンジュゲート抗体(Jackson ImmunoResearch)とともにインキュベートした。洗浄後、結合されたCBD-IL2およびIL-2を、テトラメチルベンジジン基質を用いて450 nmの吸光度を測定し、570 nmの吸光度を差し引くことによって検出した。見かけの解離定数(KD)値を、1つの部位に特異的に結合すると仮定してPrismソフトウェア(v7,GraphPad Software)の非線形回帰分析により得た。
CTLL-2細胞(ATCC)を、熱不活化ウシ胎仔血清、L-グルタミン、ピルビン酸ナトリウムおよびペニシリン-ストレプトマイシンならびに組換えマウスIL-2(Peprotech)を補給したRPMI 1640(ATCC)中で培養した。細胞を週に2回、10,000細胞/mLの密度まで継代した。増殖アッセイのため、細胞を100,000細胞/mLで播種し、マウスIL-2およびCBD-IL-2を、IL-2ベースで表示した濃度で、100μLの最終容量で添加した。細胞を48時間増殖させた。増殖は、CyQUANT Cell Proliferation Assay Kit(Invitrogen)を製造業者の使用説明書に従って用いることによって行なった。蛍光を、BioTek Cytation 3 Cell Imaging Multi-Mode Reader(fisher scientific)を用いて測定した。用量応答曲線フィットを非線形回帰により、GraphPad Prism 7ソフトウェア(GraphPad)を用いて実行した。
マウスおよび細胞株は既報のとおりに調製した(Ishihara et al.,Sci Transl Med 9:doi:10.1126/scitranslmed.aan0401,2017)。8〜12週齢のC57BL/6、FVBおよびBalb/cマウスをJackson laboratoriesから入手した。実験は、シカゴ大学の研究施設内動物実験委員会の承認を得て行なった。B16F10細胞およびCT26細胞をAmerican Type Culture Collectionから入手し、使用説明書に従って培養した。細胞株はすべて、マイコプラズマ汚染について病原体試験IMPACT I(IDEXX BioResearch)によって確認した。
vWF A3ドメインタンパク質をDyLight 800 NHSエステル(Thermo Fisher)を用いて蛍光標識し、未反応色素をZebaspinスピンカラム(Thermo Fisher)により、製造業者の使用説明書に従って除去した。50μLのPBS中に再懸濁させた合計8×105のMMTV-PyMT細胞を各FVBマウスの右側の乳腺脂肪体内に皮下注射した。腫瘍が500 mm3に達したら、50μgのDyLight 800標識CBDを静脈内注射した。注射後48時間目にマウスの臓器を取り出し、Xenogen IVIS Imaging System 100(Xenogen)により以下の条件下:エフ/ストップ:2;光学フィルター励起740 nm;励起800 nm;露光時間:5秒;ビニング設定small(small binning)でイメージングした。
測定は既報のとおりに行なう(Ishihara et al.,Sci Transl Med 9:doi:10.1126/scitranslmed.aan0401,2017)。5×105のB16F10黒色腫細胞を12週齢の各C57BL/6マウス(The Jackson Laboratory)の背部の左側に皮内注射した。4日後、マウスに6μgのIL-2および12μgのCBD-IL-2を投与した。5日目、血液試料をチューブ内に収集した後、4℃で一晩インキュベーションした。血清中のサイトカイン濃度をReady-SET-Go! ELISAキット(eBioscience)により製造のプロトコルに従って測定した。
測定は既報のとおりに行なう(Ishihara et al.,Sci Transl Med 9:doi:10.1126/scitranslmed.aan0401,2017)。50μLのPBS中に再懸濁させた合計5×105のB16F10細胞を各C57BL/6マウスの背部の左側の皮内に接種した。4日後、マウスにIL-2(6μg)またはCBD-IL-2(12μg)を静脈内注射した。デジタルキャリパーでの腫瘍の測定を腫瘍接種後4日目に開始し、体積を楕円体として算出した。ここで、V=4/3×3.14×奥行/2×幅/2×高さ/2。いずれかの腫瘍体積が500 mm3超に達した時点でマウスを致死させた。
50μLのPBS中に再懸濁させた合計5×105のCT26細胞を各Balb/cマウスの背部の左側の皮内に接種した。5日後、マウスにIL-2(6μg)またはCBD-IL-2(12μg)を静脈内注射した。上記のとおりのデジタルキャリパーでの腫瘍の測定を腫瘍接種後5日目に開始した。いずれかの腫瘍体積が500 mm3超に達した時点でマウスを致死させた。
実験はすべて、少なくとも2回反復する。動物試験のため、IL-2およびCBD-IL-2の注射の直前にマウスをケージ内の処置群に無作為化し、同様に処置した。B16F10腫瘍およびCT26腫瘍について腫瘍サイズが500 mm3超になったときを生存率エンドポイントとした。統計計算に使用したn値は図の説明に示している。実験群間の統計学的有意差をPrismソフトウェア(v7,GraphPad)を用いて調べた。一元配置ANOVAの後にテューキーのHSD事後検定を使用すると、群間分散はブラウン・フォーサイス検定により同様であることがわかった。単回比較では、スチューデントの両側t-検定を使用した。生存曲線を、ログランク(マンテル・コックス)検定を使用することによって解析した。統計計算に使用したn値は図の説明に示している。記号*および**は、それぞれ0.05未満および0.01未満のP値を示す;N.S.,有意でない。
IL-2以外にも、ケモカインを含むいくつかのサイトカインが抗腫瘍有効性を有することが示されており、現在、臨床試験において試験されている(Tokunaga et al.,Cancer treatment reviews 63:40-47,2017;Lin et al.,Cancers(Basel)6:1098-110,2014;Akdis et al.,The Journal of allergy and clinical immunology 127:701-21,2011;Waldmann,Nature reviews.Immunology 6:595-601,2006)。本発明者らは、CBD配列をサイトカインのN末端またはC末端に付加することによって、本発明者らが先のパートでCBD-IL-2を用いて示したように効率的な腫瘍ターゲティングが可能になると予測する。本発明者らは、T細胞を増殖させるサイトカイン:IFNα、IFNβ、IL-15、IL-15スーパーアゴニスト(IL-15とIL-15Rαの融合タンパク質)およびIL-21またはNK細胞:IL-12(Akdis et al.,The Journal of allergy and clinical immunology 127:701-21,2011;Waldmann,Nature reviews.Immunology 6:595-601,2006)を試験する。また、本発明者らは、リンパ脈管新生を誘導して免疫細胞浸潤の亢進をもたらすサイトカインであるVEGF-C(Fankhauser et al.,Sci Transl Med 9:doi:10.1126/scitranslmed.aal4712,2017;Lund et al.,Cell Rep 1:191-99,2012)も試験する。同様に、本発明者らは、報告によると抗腫瘍免疫細胞を腫瘍微小環境内に動員するケモカイン(例えば、XCL1、CCL4、CCL21、CXCL9およびCXCL10)(Tokunaga et al.,Cancer treatment reviews 63:40-47,2017;Lin et al.,Cancers(Basel)6:1098-110,2014)を試験する。
vWF A3ドメイン以外にも、タンパク質(vWF A1ドメイン(SEQ ID NO:11)およびデコリン(SEQ ID NO:15))ならびにペプチド(TKKLRT(SEQ ID NO:14))がコラーゲンに結合することが示されている(Addi et al.,Tissue Engineering Part B:Reviews,2016)。vWF A1ドメインおよびデコリンはvWF A3ドメインタンパク質と同様の分子量のタンパク質であり、vWF A3ドメインと同様の高い結合親和性を示すため、このようなvWF A1ドメインおよびデコリンの配列をサイトカインのN末端またはC末端に付加することによっても、CBD-IL-2で示されたのと同様に腫瘍微小環境がターゲティングされることが予測される。しかしながら、TKKLRT配列をサイトカインのN末端またはC末端に付加しても、その小さい分子量および低いコラーゲン親和性(μM範囲のKD)(Addi et al.,Tissue Engineering Part B:Reviews,2016)のため腫瘍微小環境ターゲティング能は示されないであろうと予想される。したがって、TKKLRT配列を付加してもサイトカインの抗腫瘍活性は改変されないであろう。
上記のCBD-IL-2のパートに記載のように、CBDをコードしている配列は哺乳動物発現ベクターpcDNA3.1(+)内にクローニングおよびサブクローニングされる。ヒスチジンタグがタンパク質配列のN末端またはC末端に付加される。このCBD融合サイトカイン組換えタンパク質を、懸濁に適合させたHEK-293F細胞内で無血清FreeStyle 293 Expression Medium中で発現させる。産生された組換えタンパク質は、ヒスチジンタグ化タンパク質精製カラムおよびサイズ排除を用いて精製される。
腫瘍細胞(例えば、B16F10)を皮内(id)に接種する。腫瘍が視認可能になったら、マウスに尾静脈からCBD-サイトカインまたは野生型サイトカインの静脈内注射を行なう。腫瘍サイズを、安楽死基準に達するまでモニタリングする。ここで、本発明者らは、CBD-サイトカインの静脈内注射により腫瘍微小環境内のコラーゲンとの結合によって腫瘍組織内における局在および保持の向上が示されると予測する。IL-2のパートで上記したのと同様の機構により、CBD融合体は腫瘍微小環境内のサイトカイン濃度を上昇させ、副作用の発生数の低減をもたらし、サイトカイン/ケモカインの抗腫瘍有効性を増強させる。
腫瘍標的指向型ケモカイン送達によるCD103+ DCの動員によってチェックポイント阻害薬での免疫療法の有効性が増強される
A.結果
CBD-CCL4組換えタンパク質を既報(Ishihara et al.,Sci Transl Med,2019)と同様の哺乳動物タンパク質発現手法を用いて産生させた。産生およびアフィニティ/サイズ排除クロマトグラフィーを用いた精製後、CBD-CCL4を、SDS-ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS-PAGE)を用いて評価した。CBDとの融合により、CCL4の分子サイズは天然状態の(WT)CCL4と比べて、vWFのA3ドメインのサイズと合致するおよそ20 kDa増大した(図6A)。表面プラズモン共鳴(SPR)を使用し、コラーゲンIおよびコラーゲンIIIに対する親和性は、それぞれ33.4 nMおよび14.5 nMと算出された(図6B、6C)。このような結果は、CBD修飾型免疫療法薬での以前のコラーゲン親和性と一致する(Ishihara et al.,Sci Transl Med,2019)。CCL4はGタンパク質共役受容体(GPCR)CCR5を介してシグナル伝達し(Alkhatib,Curr Opin HIV AIDS 4,96-103,2009)、活性化が起こるとカルシウム放出をもたらすため、次に、WT CCL4およびCBD-CCL4の活性をカルシウム流量アッセイを用いて評価した(図6D)。天然状態のCCL4およびCBD-CCL4はどちらも同様のGPCR活性化レベルを示し、CBD融合体はCCR5を介した自身のシグナル伝達能力を改変しないことが強調された。
組換えVWF A3ドメイン-CCL4融合タンパク質の産生および精製
GenscriptでヒトvWF A3ドメイン残基Cys1670〜Gly1874(成熟vWFの907〜1111)、(GGGS)2リンカーおよびマウスCCL4の融合体をコードしている配列が合成され、pcDNA3.1(+)CMV駆動型哺乳動物発現ベクター内にクローニングされた。下流での組換えタンパク質の精製のため、6×Hisタグをコードしている配列をN末端に付加した。懸濁に適合させたHEK-293F細胞を、無血清FreeStyle293 Expression Medium(商標)(Gibco)中に維持した。タンパク質の産生は、以前のプロトコル(Ishihara et al.,Sci Transl Med,2019;Ishihara et al.,Nat Commun 9,2163,2018)に従って行なった。簡単には、トランスフェクションの日、細胞を新鮮培地中に1×106細胞/mLの密度で移した。1μg/mLのプラスミドDNAを、OptiPRO(商標)SFM培地(Thermo Fisher)で希釈した2μg/mlの線状25kDaのポリエチレンイミン(Polysciences)と混合し、20分間インキュベートし、細胞に滴下した(4%v/v終濃度)。培養フラスコを加湿オービタルシェイキングインキュベータ内で、5%CO2の存在下、37℃にて135 rpmでアジテーションした。トランスフェクション後6日目、細胞培養培地を収集し、遠心分離し、0.22μmフィルターに通して濾過した。培養培地を、AKTA pure 25(GE Healthcare)を用いてHisTrap(商標)HP 5 mL容カラム(GE Healthcare)にロードした。カラムを洗浄バッファー(20 mMイミダゾール,20 mM NaH2PO4,0.5 M NaCl,pH7.4)で洗浄した後、タンパク質を500 mMイミダゾール(20 mM NaH2PO4,0.5 M NaCl,pH7.4中)の勾配で溶出した。溶出されたタンパク質をサイズ排除クロマトグラフィーにより、HiLoad(商標)Superdex 200PG カラム(GE Healthcare)を用いてさらに精製した。精製工程はすべて4℃で行なった。CBD-CCL4の発現をウエスタンブロッティングにより抗Hisタグ抗体(BioLegend,クローンJ099B12)を用いて調べ、SDS-PAGEによりタンパク質が>90%純粋であることを確認した。天然状態の形態のマウスCCL4タンパク質は市販品としてBiolegendから購入した。
測定は既報のとおりに行なった(Ishihara et al.,Sci Transl Med 9,2017)。SDS-PAGEは4%から20%までの勾配のゲル(Bio-Rad)で、CCL4またはCBD-CCL4をβ-メルカプトエタノールで還元した後に行なった。電気泳動後、ゲルをSimplyBlue SafeStain(商標)(Thermo Fisher Scientific)で、製造業者の推奨に従って染色した。ゲルの画像はChemiDoc XRS+システム(商標)(Bio-Rad)を用いて収集した。
SPR測定は、Biacore X100 SPRシステム(商標)(GE Healthcare)を用いて行なった。コラーゲンIまたはコラーゲンIIIをアミンカップリングにより、CM5チップ(GE Healthcare)上に約1000レゾナンスユニット(RU)で製造業者の使用説明書に従って固定化した。CBD-CCL4を90秒間(コラーゲンIの場合)および30秒間(コラーゲンIIIの場合)、ランニングバッファー中漸増濃度で、30μL/分で流した。各サイクルでのセンサーチップの再生は、50 mM NaOHを用いて行なった。コラーゲンに対するCBD-CCL4の特異的結合は、参照としての非機能化チャネルに対する応答を用いて自動計算された。結合曲線のフィッティングは、BIAevalution(商標)ソフトウェア(GE Healthcare)を用いて行なった。CBD-CCL4結合の結果を、Langmuirの結合速度論(1:1結合)を用いてフィッティングした。
天然状態の形態のCCL4またはCBD-CCL4との相互作用後のGPCRシグナル伝達を、カルシウム流量アッセイ(FLUOFORTE(商標)Calcium Assay Kit,Enzo Life Sciences)を用いて解析した。アッセイは、少し修正を加えて製造業者のプロトコルに従って行なった。試薬を再構成し、指示どおりに混合し、使用前に室温にした。24時間前に、CCR5を発現することが公知(Gouwy et al.,Eur J Immunol 41、963-73,2011)の1.5×105のThP1ヒト単球を組織培養液処理済み96ウェル丸底プレートの各ウェル内にプレーティングした。アッセイの日、細胞を2000 RPMで2分間スピンダウンし、培地を除去し、細胞を100μLのアッセイバッファー中に再懸濁させた。続いて細胞を37℃で45分間、次いで室温で15分間インキュベートした後アッセイした。次に試料をPBS中にて三連で別々に調製し、次いで、細胞に添加する際に1:4に希釈してCCL4を表示したモル濃度にした。化合物の添加後、充分な混合を確実にするために試料をマルチチャネルピペットを用いて数回混合した後、黒色壁のクリアボトム96ウェルプレートに移した。次いで、Cytation(商標)3マルチモードプレートリーダー(BioTek)を励起波長490 nmおよび発光波長525 nm、底面読み取り光学素子の使用、ゲイン設定100で用いて、カルシウムシグナル伝達を測定した。EC50値は、GraphPad Prism(商標)のlog(試験化合物)対応答を比較する非線形用量応答曲線フィッティングモデルを用いて算出した。
細胞はすべて、37℃および5%CO2の加湿インキュベータ内に維持した。細胞は、80〜90%コンフルエンスに達したらTrypLE Express(商標)(Thermo Fisher)を用いて常套的に継代した。B16F10黒色腫およびMC38結腸がん細胞を、10%(v/v)ウシ胎仔血清(FBS,認証済,米国産,熱不活化済,Gibco)および500 U/mL(1%v/v)のペニシリン-ストレプトマイシン(P/S,Gibco)を補給したダルベッコ改変イーグル培地(商標)(DMEM)中に維持した。EMT6乳がん、CT26結腸がんおよびThP1単球細胞を、10%(v/v)のFBSおよび1%(v/v)のP/Sを補給したRPMI1640中に維持した。細胞はすべて、MycoAlert Plus(商標)マイコプラズマアッセイ(Lonza)を用いてマイコプラズマフリーであることを確認した。8週齢〜12週齢の雌のC57BL/6マウスおよびBalb/CマウスをJackson Laboratoriesから入手した。4週齢〜6週齢の雌FVB/N-Tg(MMTV-PyVT)634Mul/J(MMTV-PyMT)マウスをJackson Laboratoriesから入手した。MMTV-PyMTマウスを、少なくとも4つの乳腺脂肪体において腫瘍が触知可能になるまで毎週検査した。マウスはすべて、そのケージ内で使用前に72時間馴化させた。ケージ特異的処置効果を最小限にするため、処置はケージ中で無作為化した。動物実験はすべて、シカゴ大学の研究施設内動物実験委員会の承認を得て、そのポリシーに従って行なった。
5×105のB16F10黒色腫細胞を各マウスの背部の左側に皮内注射した。WT CCL4およびCBD-CCL4をDylight(商標)800-NHS(Thermo Fisher)を用いて蛍光標識し、未反応色素をZebaspin(商標)スピンカラム(Thermo Fisher)により、製造業者の使用説明書に従って除去した。4日後、マウスに25μgのWT CCL4-DyLight(商標)800または等価モル(CCL4ベースで25μgまたは93μgの総合タンパク質)のCBD-CCL4-DyLight(商標)800を静脈内注射によって注射した。血液試料を、EDTAの入ったチューブ内に顔面からの採血によって、投与の1分後、5分後、10分後および30分後に収集した。次いで試料を2000 rpmで5分間、遠心分離し、血漿を収集した。血漿中のCCL4の濃度を、LI-COR(商標)Infrared Odyssey(商標)Imagerを用いて測定し、濃度は、標識したWT CCL4またはCBD-CCL4の標準的な希釈列から計算した。血漿中半減期は、1フェーズ減衰(one-phase decay)モデルを使用し、GraphPad Prism(商標)ソフトウェア(Version 7)を用いて求めた。
WT CCL4またはCBD-CCL4タンパク質をDyLight(商標)647 NHSエステル(Thermo Fisher)を用いて蛍光標識し、未反応色素をZebaspin(商標)スピンカラム(Thermo Fisher)により、製造業者の使用説明書に従って除去した。50μLのPBS中に再懸濁させた合計5×105のEMT6細胞を各Balb/Cマウスの右側の乳腺脂肪体内に皮下注射した。腫瘍がおよそ500 mm3に達したら、25μgのDyLight(商標)647標識CCL4または25μgのDyLight(商標)647標識CBD-CCL4(CCL4ベースで6.7μg)を30分間静脈内注射し、注射後、マウスを致死させ、腫瘍を取り出し、Xenogen IVIS Imaging System(商標)100(Xenogen)により以下の条件下:エフ/ストップ:2;光学フィルター励起640 nm;発光670 nm;露光時間:0.5秒;ビニング設定smallでイメージングした。各腫瘍内のCCL4濃度を、DyLight(商標)647で標識したWT CCL4またはCBD-CCL4の標準的な希釈列を基準にして算出し、腫瘍の重量に対して正規化した。
50μLのPBS中に再懸濁させた合計5×105のB16F10細胞を各C57BL/6マウスの背部の左側の皮内に接種した。4日(または確立された腫瘍の処置試験では7日)後、マウスに、WT CCL4(25μgを静脈内注射によって投与)または等価モルのCBD-CCL4(CCL4ベースで25μgまたは93μgのCBD-CCL4,静脈内注射によって投与)を、100μgずつのαPD-L1とαCTLA4とからなるCPI抗体療法薬の腹腔内注射による投与との組み合わせで注射した。CPI療法薬単独を対照として投与した。デジタルキャリパーでの腫瘍の測定を腫瘍接種後4日目に開始し、体積を楕円体として算出した。ここで、V=4/3×π×奥行/2×幅/2×高さ/2。腫瘍体積が500 mm3を超えたとき、またはマウスが健康不良のため早期除外基準を満たしたとき、マウスを致死させた。細胞浸潤解析の場合は、腫瘍接種後10日目にマウスを致死させた。
50μLのPBS中に再懸濁させた合計5×105のEMT6細胞を各Balb/Cマウスの右側の乳腺脂肪体内に皮下注射した。腫瘍接種後6日目および9日目、腫瘍にWT CCL4(25μgを静脈内注射によって投与)または等価モルのCBD-CCL4(CCL4ベースで25μgまたは93μgのCBD-CCL4、静脈内注射によって投与)を、100μgずつのαPD-L1とαCTLA4とからなるCPI抗体療法薬の腹腔内注射による投与との組み合わせで投与した。CPI療法薬単独を対照として投与した。上記のとおりのデジタルキャリパーでの腫瘍の測定を腫瘍接種後4日目に開始した。腫瘍接種後10日目にマウスを致死させ、免疫細胞浸潤を評価した。
50μLのPBS中に再懸濁させた合計5×105のCT26細胞またはMC38細胞を各Balb/cマウス(CT26の場合)またはC57BL/6マウス(MC38の場合)の背部の左側の皮内に接種した。5日後、マウスに非修飾CCL4(25μgを静脈内注射によって投与)または等価モルのCBD-CCL4(CCL4ベースで25μgまたは93μgのCBD-CCL4、静脈内注射によって投与)を、100μgのαPD-1抗体療法薬の腹腔内注射による投与との組み合わせで注射した。上記のとおりのデジタルキャリパーでの腫瘍の測定を腫瘍接種後5日目に開始した。腫瘍体積が500 mm3を超えたとき、マウスを致死させた。
全腫瘍体積がおよそ100 mm3に達したら、マウスをCBD-CCL4(CCL4ベースで25μgまたは93μgのCBD-CCL4、静脈内注射によって投与)で、100μgずつのαPD-L1とαCTLA4とからなるCPI抗体療法薬の腹腔内注射による投与との組み合わせで処置した。最初の治療後7日目および14日目に同一の処置を行なった。腫瘍をデジタルキャリパーで上記のとおりに隔週で測定し、腫瘍体積が1000 mm3を超えたら、またはマウスに腫瘍量による有害効果が起こったとき、マウスを致死させた。
B16F10腫瘍およびEMT6腫瘍はどちらも、最初の腫瘍接種後10日目に採取した。細胞単離手順はすべて、既報の方法(Ishihara et al.,Sci Transl Med 9,2017;Ishihara et al.,Sci Transl Med,2019)から適合させた。腫瘍を刻んで小片にした後、2%のFBS含有DMEM中2 mg/mLのコラゲナーゼDおよび40μg/mLのDNase I(Roche)からなる酵素的消化を37℃で30分間、穏やかなアジテーション下で行なった。酵素処理済み腫瘍を70μmセルストレーナーに通して穏やかにばらばらにすることによって単細胞懸濁液を得た。赤血球を、ACK溶解バッファー(Quality Biological)を用いて溶解させた後、細胞を遠心分離し、下流解析のため、2%のFBSを含有するPBSからなるフローサイトメトリー用染色バッファー中に再懸濁させた。
腫瘍の単細胞懸濁液は上記のとおりに調製した。すべての実験において、以下の分子:抗マウスCD3(145-2C11,BD Biosciences)、抗マウスCD4(RM4-5,BD Biosciences)、抗マウスCD8α(53-6.7,BD Biosciences)、抗マウスCD25(PC61,BD Biosciences)、抗マウスCD45(30-F11,Biolegend)抗マウスCD44(IM7,Biolegend)、抗マウスCD62L(MEL-14,BD Biosciences)、抗マウスPD-1(29F.1A12,Biolegend)、抗マウスNK1.1(PK136,Biolegend)、抗マウスFoxp3(MF23,BD Biosciences)、抗マウスF4/80(BM8,Biolegend)、抗マウスMHCII(M5/114.15.2,BioLegend)、抗マウスCD11b(M1/70,BioLegend)、抗マウスCD11c(N418,Biolegend)、抗マウスCD19(1D3,BD Biosciences)、抗マウスGr-1(RB6-8C5,Biolegend)および抗マウスCD103(M290,BD Biosciences)に対する抗体を使用した。生細胞/死細胞の判別はFixable Viability Dye eFluor 455(eBioscience)を製造業者の使用説明書に従って用いて行なった;また、非特異的抗体結合を最小限にするためにFC受容体ブロック工程(抗マウスCD16/32,クローン93,Biolegend)を含めた。表面染色は氷上で20分間行ない、細胞内染色はFoxP3-転写因子染色キットを製造業者の使用説明書(eBioscience)に従って用いて行なった。そうでない場合は、試料を2%のパラホルムアルデヒド含有PBS中に固定した。フローサイトメトリー解析はすべて、Fortessa(商標)(BD Biosciences)フローサイトメーターを用いて行ない、FlowJo(商標)ソフトウェア(Tree Star)を用いて解析した。
実験群間の統計学的有意差はPrism(商標)ソフトウェア(v7,GraphPad)を用いて評価した。多重比較では、ブラウン・フォーサイス検定によって群間は同様であることがわかった場合、ANOVAの後にテューキーのHSD事後検定を使用した。ノンパラメトリックデータでは、クラスカル・ウォリス検定の後、ダンの多重比較検定を使用した。2つの群間の比較では、スチューデントの両側t-検定を使用した。生存曲線はログランク(マンテル・コックス)検定を用いて解析した。*p<0.05;**p<0.01;***p<0.001;****p<0.0001。
Claims (45)
- コラーゲン結合ドメインを含む細胞外マトリックス(ECM)親和性ペプチドに機能的に連結させたサイトカインポリペプチドを含む、ポリペプチドであって、該ECM親和性ペプチドがフィブロネクチンに特異的に結合しない、ポリペプチド。
- 前記ECM親和性ペプチドが、フォン・ヴィレブランド因子(vWF)またはデコリンの100〜350個のアミノ酸のコラーゲン結合ドメインを含む、請求項1記載のポリペプチド。
- vWFペプチドがvWF A1またはA3ペプチドである、請求項2記載のポリペプチド。
- 前記ペプチドがSEQ ID NO:3;SEQ ID NO:11;SEQ ID NO:13;SEQ ID NO:15またはSEQ ID NO:34と少なくとも85%同一である、請求項2記載のポリペプチド。
- 前記ペプチドがSEQ ID NO:34を含む、請求項2記載のポリペプチド。
- 前記vWFペプチドが、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:34と少なくとも85%同一であるペプチドまたはその断片を含む、請求項2記載のポリペプチド。
- 前記vWFペプチドがSEQ ID NO:3またはSEQ ID NO:11またはSEQ ID NO:34を含む、請求項6記載のポリペプチド。
- 前記vWFペプチドが本質的にSEQ ID NO:3またはSEQ ID NO:11またはSEQ ID NO:34からなる、請求項6記載のポリペプチド。
- 前記ペプチドがデコリンペプチドを含む、請求項1記載のポリペプチド。
- 前記ペプチドがSEQ ID NO:15の10〜200個の連続アミノ酸を含む、請求項9記載のポリペプチド。
- 前記ペプチドがSEQ ID NO:15と少なくとも85%同一である、請求項9または10記載のポリペプチド。
- 前記ペプチドが前記サイトカインに共有結合されている、請求項1〜11のいずれか一項記載のポリペプチド。
- 前記ペプチドが前記サイトカインに二官能性クロスリンカーによって架橋されている、請求項1〜12のいずれか一項記載のポリペプチド。
- 前記サイトカインが、IL-2、IL-15、IL-15スーパーアゴニスト、IL-21、IL-12 p35、IL-12 p40、CCL4、CCL21、CXCL9、CXCL10、VEGF-C、IFNα2、IFNβ、XCL-1またはその活性断片から選択される、請求項1〜13のいずれか一項記載のポリペプチド。
- 前記サイトカインがSEQ ID NO:37、SEQ ID NO:16、SEQ ID NO:17、SEQ ID NO:18、SEQ ID NO:19、SEQ ID NO:20、SEQ ID NO:21、SEQ ID NO:22、SEQ ID NO:23、SEQ ID NO:24、SEQ ID NO:25、SEQ ID NO:26、SEQ ID NO:27、SEQ ID NO:28、SEQ ID NO:29、SEQ ID NO:30、SEQ ID NO:31、SEQ ID NO:32、SEQ ID NO:33、SEQ ID NO:39、SEQ ID NO:40、SEQ ID NO:41、SEQ ID NO:42、SEQ ID NO:43、SEQ ID NO:44、SEQ ID NO:45またはSEQ ID NO:46と少なくとも85%同一である、請求項1〜14のいずれか一項記載のポリペプチド。
- 前記サイトカインがIL-2である、請求項13または15記載のポリペプチド。
- サイトカインに対するペプチドの比が約1:1〜10:1である、請求項1〜16のいずれか一項記載のポリペプチド。
- 組成物が、vWFペプチドに機能的に連結させたIL-2サイトカインを含む、請求項1記載のポリペプチド。
- 請求項1〜18のいずれか一項記載のポリペプチドをコードしている異種コード領域を含む、核酸ベクター。
- 薬学的製剤中に含められた請求項1〜18のいずれか一項記載のポリペプチドを含む、組成物。
- 少なくとも1種類の抗がん化合物をさらに含む、請求項20記載の組成物。
- 請求項1〜18のいずれか一項記載の組成物を対象に投与することを含む、対象のがんを処置するための方法。
- 前記組成物が血管内投与されるか、全身投与されるか、または腫瘍内、腫瘍周囲、動脈内もしくは経カテーテル注射によって投与される、請求項22記載の方法。
- 血管内が静脈内である、請求項22記載の方法。
- 前記ペプチドに機能的に連結させた前記サイトカインの投与用量が、前記ペプチドなしで投与される前記サイトカインの最小有効用量より少ない、請求項22または23または24記載の方法。
- 前記ペプチドに機能的に連結させた前記サイトカインの投与用量が、前記ペプチドなしで投与される前記サイトカインの最小有効用量より少なくとも10%少ない、請求項25記載の方法。
- 患者が、がん免疫療法で以前に処置されたことがある、請求項22〜26のいずれか一項記載の方法。
- 抗がん治療薬を投与することをさらに含む、請求項22〜26のいずれか一項記載の方法。
- 前記対象に前記以前のがん治療でグレード2、3または4の副作用が起こった、請求項27記載の方法。
- 前記対象が、がんと診断されたことがある、請求項22〜29のいずれか一項記載の方法。
- 前記がんが黒色腫、結腸がん、肺がん、前立腺がん、卵巣がん、精巣がん、脳のがん、膠芽細胞腫、小児腫瘍、胚細胞腫瘍、直腸がん、胃がん、食道がん、気管のがん、頭頸部がん、膵がん、肝臓がん、乳がん、子宮頸がんおよび外陰がんを含む、請求項22〜30のいずれか一項記載の方法。
- 前記がんが黒色腫または結腸がんである、請求項31記載の方法。
- 前記がんが非血液系である、請求項22〜30のいずれか一項記載の方法。
- 前記がんが固形腫瘍を含む、請求項22〜33のいずれか一項記載の方法。
- さらなるがん治療の実施をさらに含む、請求項22〜34のいずれか一項記載の方法。
- 前記さらなるがん治療が放射線、ワクチン接種、化学療法、養子T細胞療法、サイトカイン療法、抗CD47抗体、抗GD2抗体または免疫アジュバントを含む、請求項35記載の方法。
- 請求項1〜18のいずれか一項記載のポリペプチドが、抗がん治療薬の投与の前、該投与の後、該投与中、該投与の前と該投与中、該投与の前と後、または該投与中と該投与の後に投与される、請求項35記載の方法。
- 前記さらなるがん治療がMUC-1インヒビター、CD40アクチベータ、IDOインヒビターおよびOX86アゴニストのうちの1種類または複数種を含む、請求項35または36記載の方法。
- 前記さらなるがん治療がインドキシモド、GDC-0919、1-メチル-D-トリプトファン、ノルハルマン塩酸塩、ノルハルマン、CAY10581、INCB024360および2-ベンジル-2-チオプソイド尿素塩酸塩のうちの1種類または複数種を含む、請求項38記載の方法。
- 細胞外マトリックス(ECM)親和性ペプチドに機能的に連結させたサイトカインを含む第2のポリペプチドの投与をさらに含む、請求項22〜39のいずれか一項記載の方法。
- 第1のポリペプチドと第2のポリペプチドが一緒に投与される、請求項40記載の方法。
- 前記第1のポリペプチドと前記第2のポリペプチドが合剤にされている、請求項41記載の方法。
- 請求項1〜18のいずれか一項記載のポリペプチドを作製する方法であって、宿主細胞内で該ポリペプチドを発現させること、および該宿主細胞により発現された該ポリペプチドを単離することを含む、方法。
- 前記宿主細胞が哺乳動物宿主細胞である、請求項43記載の方法。
- 前記ポリペプチドを単離することがアフィニティカラム精製および/またはサイズ排除カラム精製を含む、請求項43記載の方法。
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