JP2021502068A - トランスグルタミナーゼバリアント - Google Patents

トランスグルタミナーゼバリアント Download PDF

Info

Publication number
JP2021502068A
JP2021502068A JP2020524379A JP2020524379A JP2021502068A JP 2021502068 A JP2021502068 A JP 2021502068A JP 2020524379 A JP2020524379 A JP 2020524379A JP 2020524379 A JP2020524379 A JP 2020524379A JP 2021502068 A JP2021502068 A JP 2021502068A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
transglutaminase
sequence
seq
engineered
polypeptide
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2020524379A
Other languages
English (en)
Inventor
ジョヴァナ ネイザー,
ジョヴァナ ネイザー,
ジエ ヤン,
ジエ ヤン,
ゴウタミ バナージー,
ゴウタミ バナージー,
シユン ザン,
シユン ザン,
ジェイムズ ニコラス リギンズ,
ジェイムズ ニコラス リギンズ,
エリカ エム. ミルチェク,
エリカ エム. ミルチェク,
ジェフリー シー. ムーア,
ジェフリー シー. ムーア,
Original Assignee
コデクシス, インコーポレイテッド
コデクシス, インコーポレイテッド
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by コデクシス, インコーポレイテッド, コデクシス, インコーポレイテッド filed Critical コデクシス, インコーポレイテッド
Publication of JP2021502068A publication Critical patent/JP2021502068A/ja
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10Transferases (2.)
    • C12N9/1025Acyltransferases (2.3)
    • C12N9/104Aminoacyltransferases (2.3.2)
    • C12N9/1044Protein-glutamine gamma-glutamyltransferase (2.3.2.13), i.e. transglutaminase or factor XIII
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/62Insulins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y203/00Acyltransferases (2.3)
    • C12Y203/02Aminoacyltransferases (2.3.2)
    • C12Y203/02013Protein-glutamine gamma-glutamyltransferase (2.3.2.13), i.e. transglutaminase or factor XIII

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

本発明は、操作されたトランスグルタミナーゼ酵素、前記酵素をコードするポリヌクレオチド、前記酵素を含む組成物、これらの酵素を産生する方法、および操作されたトランスグルタミナーゼ酵素を使用する方法を提供する。本発明は、例えば、配列番号2、6、34および/または256と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超える配列同一性を有する、操作されたトランスグルタミナーゼを提供する。

Description

本出願は、2017年11月7日に出願された米国仮特許出願第62/582,593号(これは、すべての目的のためにその全体が参照により組み込まれる)の優先権を主張する。
本発明は、操作されたトランスグルタミナーゼ酵素、前記酵素をコードするポリヌクレオチド、前記酵素を含む組成物、これらの酵素を産生する方法、および操作されたトランスグルタミナーゼ酵素を使用する方法を提供する。
配列表、表またはコンピュータープログラムの参照
配列表の公式コピーは、EFS−Webを介してASCII形式のテキストファイルとして本明細書と併せて提出されており、ファイル名は「CX2−164USP1_ST25.txt」であり、作成日は2017年11月7日であり、サイズは1,896キロバイトである。EFS−Webを介して提出された配列表は本明細書の一部であり、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
トランスグルタミナーゼ(TGase;EP2.3.2.13)(R−グルアミニル−ペプチド−アミナーゼ−ガンマ−グルタミルトランスフェラーゼ)は、タンパク質の翻訳後修飾を触媒する酵素ファミリーを構成し、ポリアミンまたはリジンにおける第1級アミン基(すなわち、アミン供与体)と、いくつかのタンパク質およびポリペプチドのグルタミル残基のガンマ−カルボキシアミド基(すなわち、アミン受容体)との間の共有結合的アミド結合をもたらす。この酵素作用の結果としては、タンパク質のコンフォメーションの改変、ならびに/または高分子量コンジュゲートを産生するための同じおよび異なるタンパク質の結合から生じる広範なコンフォメーション変化が挙げられる。これらの酵素は、食品、化粧品、繊維および製薬業界を含む様々な用途で使用される。
本発明は、操作されたトランスグルタミナーゼ酵素、前記酵素をコードするポリヌクレオチド、前記酵素を含む組成物、および操作されたトランスグルタミナーゼ酵素を使用する方法を提供する。
本発明は、配列番号2、6、34および/または256と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超える配列同一性を有する操作されたトランスグルタミナーゼを提供する。いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼは、配列番号6と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超える配列同一性と、位置79、101、101/201/212/287、101/201/285、101/287および327から選択される1つまたはそれを超える位置における少なくとも1つの置換または置換セットとを有し、前記位置は配列番号6に関してナンバリングされている。いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼは、配列番号2と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超える配列同一性と、位置48、48/67/70、48/67/70/181/203/256、48/67/70/181/256/345、48/67/70/181/296/345/373、48/67/70/203/256/296/345、48/67/70/203/256/345/354/373、48/67/70/203/345、48/67/70/256、48/67/70/256/296/345/373、48/67/203/256/296/373、48/67/203/256/345、48/70/170/203、48/70/203/254/296/343、48/70/203/256/345/373、48/70/203/256/345、48/70/203/373、48/170/203、48/170/203/254/296/346、48/170/203/254/296/346/373、48/170/203/254/346/373、48/170/203/254/346、48/170/203/296/343/346、48/170/203/296/346/373、48/170/203/343/346、48/170/203/346、48/170/203/346/373、48/170/203/373、48/170/254、48/170/296、48/170/296/343/346、48/170/343/346、48/181、48/181/203/256/345、48/181/203/345、48/181/256/296/345、48/181/296、48/181/296/345、48/203、48/203/254/296、48/203/254/296/343/373、48/203/254/296/346/373、48/203/254/346、48/203/254/346/373、48/203/256、48/203/256/296/345、48/203/296/343/346/373、48/203/296/343/373、48/203/296/346、48/203/296/346/373、48/203/343/346、48/203/343/346/373、48/203/345、48/203/346、48/203/346/373、48/254/296、48/254/346、48/256、48/256/296、48/256/296/345、48/296/345、48/296/373、48/343/346、48/345/373、67/256、67/296/345、68/74/190/215/346、68/136/215/255/282/297/346、68/136/215/297/346、68/136/234、68/158/174/234/282/297/346、68/158/215/297/346、68/215/297/346、68/234、68/282/297/346、68/297/346、74/136/174/282/346、74/136/174/297/346、74/136/346、74/158/255/297、74/255/346、74/346、136/158/190/215/255/297/346、136/158/215/297/346、136/174/215/255/282/297/346、136/190/215/297/346、136/215/234/282/297、136/215/234/297/346、136/215/297、136/297/346、158/215/255/346、158/215/346、170/203/254/296/343/346、170/203/254/343/373、170/203/343/346、174/190/234/297/346、174/215/234/297/346、174/215/255/297/346、174/282/297/346、190/255/282/346、190/297/346、203/296、203/343、203/343/346、203/346、215/255/297/346、215/234/297/346、215/255/297/346、215/297、215/297/346、215/346、234/255/346、255/297/346、255/346、297/346、343/346/373、および346から選択される1つまたはそれを超える位置における少なくとも1つの置換または置換セットとを有し、前記位置は配列番号2に関してナンバリングされている。いくつかのさらなる実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼは、配列番号2と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超える配列同一性と、33/67/70/181/203/256/296/373、36/48/203/254/346、48/67/70/181/203/256/296/373、48/67/70/203/256/296/373、48/67/181/203/256/296/373、48/67/181/203/256/373、48/67/181/256/296、48/67/203/256/296/373/378、48/67/203/256/373、48/67/203/296/373、48/67/256/296/373、48/70/181/203/256/296/373、48/70/181/203/256/373、48/70/181/203/296/373、48/70/203/256/296/373、48/70/203/256/373、48/70/203/296、48/70/203/296/373、48/70/203/373、48/70/256/296/373、48/70/296/373、48/176/203/254/346/373、48/181/203/256/296/373、48/181/203/256/373、48/181/203/296、48/181/203/373、48/181/256/296/373、48/203/254、48/203/254/343、48/203/254/343/346/373、48/203/254/343/355/373、48/203/254/343/373、48/203/254/346/373、48/203/254/373、48/203/256/296、48/203/256/296/373、48/203/256/373、48/203/296/373、48/203/296/373/374、48/203/343/373、48/203/373、48/254、48/254/343/346/373、48/254/343/373、48/254/346/373、48/254/373、48/256/296/373、48/256/373、48/373、67/70/181/203/256/296/373、67/70/181/256/296/373、67/70/181/373、67/181/203/256/296、67/181/203/256/296/373、67/181/203/256/373、67/203/256/296/373、67/256/296/373、70/181/203/256/296/373、70/181/203/296/373、70/203、70/203/256/296/373、70/203/256/373、70/203/296/373、74/136/215/234/282/297/346、74/136/215/234/282/346、74/136/215/234/297、74/136/215/234/297/343/346、74/136/215/234/297/346、74/136/215/234/346、74/136/215/282/297/346、74/136/215/282/346、74/136/215/297/346、74/136/215/346、74/136/234/282/297/346、74/136/234/346、74/136/282/297/346、74/215、74/215/234/282/297/346、74/215/282/297/346、74/215/346、136/215/234/282/297/346、136/215/282/297、136/215/282/297/346、136/215/282/346、136/215/297/346、136/215/346、136/234/297、136/234/297/346、136/234/346、136/282/297、181/203/256、181/203/256/296、181/203/256/296/373、181/203/256/373、181/203/296/373、181/203/373、181/256/296/373、181/296、203/224/254/373、203/254、203/254/343/346/373、203/254/343/373、203/254/346、203/254/346/373、203/254/373、203/346/373、203/373、203/209/256/373、203/256、203/256/296、203/256/296/320/373、203/256/296/373、203/256/296/373/386、203/256/373、203/296/373、203/373、215/234/282/297/346、215/234/282/346、215/234/346、234/282/346、254、254/346、254/346/373、254/373、256/296、256/296/373、256/373、282/297/346、343/373、および373から選択される1つまたはそれを超える位置における少なくとも1つの置換または置換セットとを有し、前記位置は配列番号2に関してナンバリングされている。いくつかのさらなる実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼは、配列番号34と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超える配列同一性と、48/49、49、50、50、331、291、292、330および331から選択される1つまたはそれを超える位置における少なくとも1つの置換または置換セットとを有し、前記位置は配列番号34に関してナンバリングされている。さらにいくつかのさらなる実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼは、配列番号256と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超える配列同一性と、27/48/67/70/74/234/256/282/346/373、27/48/67/70/136/203/215/256/282/346/373、27/48/67/70/346/373、27/48/67/74/203/256/346/373、27/67/2

34/296/373、45/287/328/333、45/292/328、48、48/284/292/333、48/287/292/297、48/287/297/328/333、48/292、48/292/297、48/49/50/292/331、48/49/50/292、48/49/50/331、48/49/330/331、48/49/50/349、48/49/50/291/292/331、48/49/50/292/331、48/67/70/203/215/234/256/346、48/67/70/234/256/282/297/346、48/67/70/346、48/67/74/203/234/256/282/346/373、48/67/74/234/297/346/373、48/67/74/346、48/67/203/346/373、48/67/234/256/297/346/373、48/67/234/256/346/373、48/67/215/282/297/346/373、48/67/346/373、48/70/74/297/346/373、48/70/203/215/256/282/346/373、48/70/215/234/256/346/373、48/74/203/234/256/346/373、48/74/234/256/297/346/373、48/136/256/346/373、48/203/234/256/297/346/373、48/203/234/256/346/373、48/203/234/346/373、48/203/296/373、48/215/234/346/373、48/215/346/373、48/234/256/296/346/373、48/234/256/346/373、48/256/373、49/50/292/331、49/50/292/331/349、49/50/331、49/50/331/349、50、67/70/74/136/203/215/256/346/373、67/70/74/203/215/234/346/373、67/70/74/215/234/297/346/373、67/70/74/215/256/373、67/70/136/203/297/346/373、67/70/203/215/256/346/373、67/70/203/373、67/70/215、67/74/136、67/74/203/234/256、67/74/215/256/297/346/373、67/74/215/346/373、67/74/256/346/373、67/136/203/215/256/346/373、67/136/203/256/346/373、67/203/234/256/346/373、67/203/297/346/373、67/215/234/297/346/373、67/297/346、70/74/203/215/346/373、136、136/346/373、203/234/346、203/234/346/373、203/373、234/282、287、234/346/373、287/292、287/292/295/297、287/292/297、287/295/297、287/330/333、292、292/297、292/330/331、292/330/331、292/331、292/331/349、292/349、295、295/297/333、297/328、297/373、328/333、330、330/331、331、331/349、333、346/373、および373から選択される1つまたはそれを超える位置における少なくとも1つの置換または置換セットとを有し、前記位置は配列番号256に関してナンバリングされている。いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼは、配列番号2、6、34および/または256と少なくとも90%の配列同一性を有する配列を含むポリペプチド配列を含む。いくつかの代替的な実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼは、配列番号2、6、34および/または256と少なくとも95%の配列同一性を有する配列を含むポリペプチド配列を含む。さらにいくつかのさらなる実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼは、配列番号2、6、34または256に記載されているポリペプチド配列を含む。さらにいくつかのさらなる実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼは、表8.1、9.1、9.2、10.1および/または11.1に提供されているバリアントをコードするポリペプチド配列を含む。いくつかのさらなる実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼは、配列番号4〜756に記載されている偶数番号の配列から選択されるポリペプチド配列を含む。
本発明はまた、本明細書で提供される操作されたトランスグルタミナーゼをコードする操作されたポリヌクレオチド配列を提供する。いくつかの実施形態では、操作されたポリヌクレオチド配列は、配列番号3〜755に記載されている奇数番号の配列から選択される配列と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超えて同一のポリヌクレオチド配列を含む。本発明はまた、本明細書で提供される操作されたポリヌクレオチド配列を含むベクターを提供する。いくつかの実施形態では、ベクターは、少なくとも1つの制御配列をさらに含む。本発明はまた、本明細書で提供されるベクターを含む宿主細胞を提供する。
本発明はまた、本明細書で提供される操作されたトランスグルタミナーゼを産生するための方法であって、宿主細胞を、少なくとも1つの操作されたトランスグルタミナーゼが前記宿主細胞により産生される条件下で培養することを含む方法を提供する。いくつかの実施形態では、宿主細胞は、操作されたトランスグルタミナーゼを産生する。いくつかの実施形態では、前記方法は、前記宿主細胞により産生された前記操作されたトランスグルタミナーゼを回収するステップをさらに含む。
本発明はまた、グルタミン供与体の存在下でインスリン中の遊離アミノ酸を改変することができる操作されたトランスグルタミナーゼを提供する。いくつかの実施形態では、本明細書で提供される操作されたトランスグルタミナーゼは、リジン供与体の存在下でインスリン中のグルタミンを改変することができる。
本発明はまた、インスリンを改変する方法であって、インスリンおよび少なくとも1つの本明細書で提供される操作されたトランスグルタミナーゼを提供すること、前記インスリンが改変されるような条件下で前記インスリン、グルタミンおよび少なくとも1つの操作されたトランスグルタミナーゼを組み合わせることを含む方法を提供する。本発明はまた、インスリンを改変する方法であって、インスリンおよび少なくとも1つの本明細書で提供される操作されたトランスグルタミナーゼを提供すること、前記インスリンが改変されるような条件下で前記インスリン、リジンおよび少なくとも1つの操作されたトランスグルタミナーゼを組み合わせることを含む方法を提供する。
本発明は、操作されたトランスグルタミナーゼ酵素、前記酵素をコードするポリヌクレオチド、前記酵素を含む組成物、および操作されたトランスグルタミナーゼ酵素を使用する方法を提供する。
本明細書で提供されるトランスグルタミナーゼバリアントは、配列番号2のStreptomyces mobaraensisトランスグルタミナーゼから操作され、以下に詳細に記載されているように、改善された酵素特性を生成するために様々な改変が導入されている。
本明細書で提供される説明では、単数の使用は、特に具体的な指定がない限り、複数を含む(逆もまた同じである)。例えば、単数形「a」、「an」および「the」は、文脈上特に明確な指示がない限り、複数の指示対象を含む。同様に、「含む(comprise)」、「含む(comprises)」、「含む(comprising)」、「含む(include)」、「含む(includes)」および「含む(including)」は互換的であり、限定的であることを意図しない。
様々な実施形態の説明が用語「含む(comprising)」を使用する場合、いくつかの具体的な例では、実施形態は、「から本質的になる」または「からなる」という文言を使用して代替的に記載され得ることを当業者は理解することをさらに理解すべきである。
図を含む前述の一般的な説明および以下の詳細な説明は両方とも、単に例示および説明のためのものであり、本開示を限定するものではない。また、本明細書で使用されるセクションの見出しは、単に構成目的のためのものであり、記載されている主題を限定すると解釈されるべきではない。
定義
本明細書で使用される場合、以下の用語は、以下の意味を有するものとする。本開示に関して、本明細書における説明で使用される科学技術用語は、特に明確な定義がない限り、当業者により一般的に理解されている意味を有する。したがって、以下の用語は、以下の意味を有するものとする。加えて、本明細書で言及される特許および刊行物はすべて、このような特許および刊行物に開示されているすべての配列を含めて、参照により明示的に組み込まれる。
特に指示がない限り、本発明の実施は、当業者に公知の分子生物学、発酵、微生物学および関連分野で一般的に使用される従来の技術を伴う。本明細書で特に定義がない限り、本明細書で使用されるすべての科学技術用語は、本発明が属する技術分野の当業者に一般的に理解されているものと同じ意味を有する。本明細書に記載されるものと類似または同等の任意の方法および材料を本発明の実施または試験において使用し得るが、好ましい方法および材料が記載されている。実際、本発明は、本明細書に記載される特定の方法論、プロトコールおよび試薬に限定されず、これらは、それらが使用される状況に応じて変動し得ることを意図する。本明細書で提供される見出しは、全体として本明細書を参照することにより得られ得る本発明の様々な態様または実施形態を限定するものではない。したがって、以下で定義される用語は、全体として本明細書を参照することにより、より詳細に定義される。
それにもかかわらず、本発明の理解を容易にするために、いくつかの用語を以下に定義する。数値範囲は、その範囲を規定する数値を含む。したがって、本明細書に開示されるあらゆる数値範囲は、このようなより広い数値範囲内に入るあらゆるより狭い数値範囲を、このようなより狭い数値範囲が本明細書にすべて明確に記載されているかのように包含することを意図する。本明細書に開示されるあらゆる最大(または最小)の数値限定は、あらゆるより低い(またはより高い)数値限定を、このようなより低い(またはより高い)数値限定が本明細書に明確に記載されているかのように包含することも意図する。
本明細書で使用される場合、用語「含む(comprising)」およびその同族の言語は、それらの包括的な意味で使用される(すなわち、用語「含む(including)」およびその対応する同族の言語と同等である)。
本明細書および添付の特許請求の範囲で使用される場合、単数「a」、「an」および「the」は、文脈上明確な指示がない限り、複数への言及を含む。したがって、例えば、「宿主細胞」への言及は、複数のこのような宿主細胞を含む。
特に指示がない限り、それぞれ、核酸は左から右に5’から3’方向で記載されており、アミノ酸配列は左から右にアミノからカルボキシ方向で記載されている。
本明細書で使用される場合、用語「タンパク質」、「ポリペプチド」および「ペプチド」は、長さまたは翻訳後修飾(例えば、グリコシル化、リン酸化、脂質化、ミリスチル化、ユビキチン化など)にかかわらず、アミド結合により共有結合的に連結された少なくとも2つのアミノ酸のポリマーを表すために本明細書で互換的に使用される。D−アミノ酸およびL−アミノ酸ならびにD−アミノ酸とL−アミノ酸との混合物は、この定義に含まれる。
本明細書で使用される場合、「ポリヌクレオチド」および「核酸」は、共有結合的に互いに連結された2つまたはそれを超えるヌクレオシドを指す。ポリヌクレオチドは、リボヌクレオシドから全体的に構成され得るか(すなわち、RNA)、2’デオキシリボヌクレオチドから全体的に構成され得るか(すなわち、DNA)、またはリボヌクレオシドと2’デオキシリボヌクレオシドとの混合物であり得る。ヌクレオシドは、典型的には、標準的なホスホジエステル連結を介して互いに連結されるが、ポリヌクレオチドは、1つまたはそれを超える非標準的な連結を含み得る。ポリヌクレオチドは一本鎖もしくは二本鎖であり得るか、または一本鎖領域および二本鎖領域の両方を含み得る。また、ポリヌクレオチドは、典型的には、天然に存在するコード核酸塩基(すなわち、アデニン、グアニン、ウラシル、チミンおよびシトシン)から構成されるが、1つまたはそれを超える改変核酸塩基および/または合成核酸塩基(例えばイノシン、キサンチン、ヒポキサンチンなど)を含み得る。好ましくは、このような改変核酸塩基または合成核酸塩基は、コード核酸塩基である。
本明細書で使用される場合、「ハイブリダイゼーションストリンジェンシー」は、核酸のハイブリダイゼーションにおけるハイブリダイゼーション条件、例えば洗浄条件に関する。一般に、ハイブリダイゼーション反応は、より低ストリンジェンシーの条件下で実施され、続いて、様々なより高ストリンジェンシーの洗浄が行われる。用語「中程度にストリンジェントなハイブリダイゼーション」は、標的DNAが、前記標的DNAと約60%の同一性、好ましくは約75%の同一性、約85%の同一性を有する;標的ポリヌクレオチドと約90%を超える同一性を有する相補的核酸に結合することを可能にする条件を指す。例示的な中程度にストリンジェントな条件は、50%ホルムアミド、5×デンハート液、5×SSPE、0.2%SDS中、42℃でのハイブリダイゼーション、続いて、0.2×SSPE、0.2%SDS中、42℃での洗浄と同等の条件である。「高ストリンジェンシーハイブリダイゼーション」は、一般に、規定のポリヌクレオチド配列についての溶液条件下で決定された熱融解温度Tから約10℃またはそれ未満の条件を指す。いくつかの実施形態では、高ストリンジェンシー条件は、0.018M NaCl中、65℃で安定なハイブリッドを形成する核酸配列のみのハイブリダイゼーションを可能にする条件を指す(すなわち、0.018M NaCl中、65℃でハイブリッドが安定ではない場合、それは、本明細書で企図されるように高ストリンジェンシー条件下で安定ではない)。高ストリンジェンシー条件は、例えば、42℃での50%ホルムアミド、5×デンハート液、5×SSPE、0.2%SDSと同等の条件のハイブリダイゼーション、続いて、0.1×SSPEおよび0.1%SDS中、65℃での洗浄により提供され得る。別の高ストリンジェンシー条件は、0.1%(w:v)SDSを含有する5×SSC中、65℃でハイブリダイズすることと同等の条件でハイブリダイズすること、および0.1%SDSを含有する0.1×SSC中、65℃で洗浄することである。他の高ストリンジェンシーハイブリダイゼーション条件および中程度にストリンジェントな条件は、当業者に公知である。
本明細書で使用される場合、「コード配列」は、タンパク質のアミノ酸配列をコードする核酸(例えば、遺伝子)の部分を指す。
本明細書で使用される場合、「コドン最適化」は、コードされるタンパク質が目的の生物内で効率的に発現されるように、タンパク質をコードするポリヌクレオチドのコドンを、特定の生物において優先的に使用されるものに変更することを指す。いくつかの実施形態では、トランスグルタミナーゼ酵素をコードするポリヌクレオチドは、発現のために選択された宿主生物からの最適な産生のためにコドン最適化され得る。遺伝子コードは、ほとんどのアミノ酸が、「同義」または「同義の」コドンと称されるいくつかのコドンにより表されるという点で縮重するが、特定の生物によるコドン使用頻度(codon usage)は非ランダムであり、特定のコドントリプレットに偏っていることが周知である。このコドン使用頻度バイアスは、所定の遺伝子、共通の機能または祖先起源の遺伝子、高度に発現されるタンパク質に関して、低コピー数タンパク質および生物のゲノムの凝集タンパク質コード領域に対して高くなり得る。いくつかの実施形態では、トランスグルタミナーゼ酵素をコードするポリヌクレオチドは、発現のために選択された宿主生物からの最適な産生のためにコドン最適化され得る。
本明細書で使用される場合、「好ましい最適な高コドン使用頻度バイアスのコドン」は、タンパク質コード領域において、同じアミノ酸をコードする他のコドンよりも高い頻度で使用されるコドンを互換的に指す。好ましいコドンは、1つの遺伝子、共通の機能もしくは起源の一連の遺伝子、高度に発現された遺伝子におけるコドン使用頻度、生物全体の凝集タンパク質コード領域におけるコドン出現頻度(codon frequency)、関連生物の凝集タンパク質コード領域におけるコドン出現頻度またはそれらの組み合わせに関して決定され得る。遺伝子発現のレベルと共にその頻度が増加するコドンは、典型的には、発現のための最適コドンである。例えば、クラスタ分析または対応分析を使用する多変量分析を含む、特異的生物におけるコドン出現頻度(例えば、コドン使用頻度、相対的同義コドン使用頻度)およびコドン優先度を決定するための様々な方法、ならびに遺伝子において使用されるコドンの有効数を決定するための様々な方法が公知である(例えば、GCG CodonPreference,Genetics Computer Group Wisconsin Package;CodonW,John Peden,University of Nottingham;McInerney,Bioinform.,14:372−73[1998];Stenicoら、Nucleic Acids Res.,222:437−46[1994];およびWright,Gene 87:23−29[1990]を参照のこと)。増大する生物リストについては、コドン使用頻度表が利用可能である(例えば、Wadaら、Nucleic Acids Res.,20:2111−2118[1992];Nakamuraら、Nucl.Acids Res.,28:292[2000];Duretら、前掲;Henaut and Danchin,“Escherichia coli and Salmonella,”Neidhardtら(eds.),ASM Press,Washington D.C.,[1996],p.2047−2066を参照のこと)。コドン使用頻度を得るためのデータソースは、タンパク質をコードすることができる任意の利用可能なヌクレオチド配列に依拠し得る。これらのデータセットは、発現タンパク質をコードすることが実際に公知の核酸配列(例えば、完全なタンパク質コード配列−CDS)、発現配列タグ(ESTS)またはゲノム配列の予測されるコード領域を含む(例えば、Uberbacher,Meth.Enzymol.,266:259−281[1996];Tiwariら、Comput.Appl.Biosci.,13:263−270[1997]を参照のこと)。
本明細書で使用される場合、「制御配列」は、本発明のポリヌクレオチドおよび/またはポリペプチドの発現に必要または有利なすべての成分を含むと本明細書で定義される。各制御配列は、目的のポリヌクレオチドに生来のものまたは外来のものでもあり得る。このような制御配列としては、限定されないが、リーダー、ポリアデニル化配列、プロペプチド配列、プロモーター、シグナルペプチド配列および転写ターミネーターが挙げられる。
本明細書で使用される場合、「作動可能に連結された」は、制御配列が目的のポリヌクレオチドおよび/またはポリペプチドの発現を指令または調節するように、制御配列が、目的のポリヌクレオチドに対する相対位置に適切に配置される(すなわち、機能的な関係)形状(configuration)として本明細書で定義される。
本明細書で使用される場合、「プロモーター配列」は、コード配列などの目的のポリヌクレオチドの発現のために宿主細胞により認識される核酸配列を指す。制御配列は、適切なプロモーター配列を含み得る。プロモーター配列は、目的のポリヌクレオチドの発現を媒介する転写制御配列を含有する。変異体プロモーター、短縮型プロモーターおよびハイブリッドプロモーターを含むプロモーターは、選択される宿主細胞において転写活性を示す任意の核酸配列であり得、宿主細胞と同種または異種のいずれかの細胞外ポリペプチドまたは細胞内ポリペプチドをコードする遺伝子から得られ得る。
本明細書で使用される場合、「天然に存在する」または「野生型」は、天然に見られる形態を指す。例えば、天然に存在するまたは野生型ポリペプチドまたはポリヌクレオチド配列は、生物中に存在する配列であって、天然の供給源から単離され得、人為的操作により意図的に改変されていない配列である。
本明細書で使用される場合、「天然に存在しない」、「操作された」または「組換え」は、(例えば、細胞、核酸またはポリペプチド)に関して本開示で使用される場合、そうでなければ天然に存在しない様式で改変された材料または前記材料の天然もしくは生来の形態に対応する材料、を指す。いくつかの実施形態では、材料は、天然に存在する材料と同一であるが、合成材料からおよび/もしくは組換え技術を使用する操作により産生もしくは生成された材料または前記材料の天然もしくは生来の形態に対応する材料を指す。非限定的な例としては、特に、生来の(非組換え)形態の細胞に見られない遺伝子を発現するか、またはそうでなければ異なるレベルで発現される生来の遺伝子を発現する組換え細胞が挙げられる。
本明細書で使用される場合、「配列同一性の割合」、「同一性率」および「同一率」は、ポリヌクレオチド配列間またはポリペプチド配列間の比較を指し、比較ウインドウにわたって最適にアライメントされた2つの配列を比較することにより決定され、比較ウインドウ内のポリヌクレオチドまたはポリペプチド配列の一部は、2つの配列の最適なアライメントの参照配列と比較して、付加または欠失(すなわち、ギャップ)を含み得る。この割合は、両配列において同一の核酸塩基もしくはアミノ酸残基が存在するか、または核酸塩基もしくはアミノ酸残基がギャップとアライメントする位置の数を決定して一致位置の数を求め、一致位置の数を比較ウインドウ内の位置の総数で割り、結果に100を乗じて配列同一性の割合を求めることにより計算される。最適なアライメントおよび配列同一性率の決定は、BLASTおよびBLAST2.0アルゴリズムを使用して実施される(例えば、Altschulら、J.Mol.Biol.215:403−410[1990];およびAltschulら、Nucl.Acids Res.3389−3402[1977]を参照のこと)。BLAST分析を実施するためのソフトウェアは、National Center for Biotechnology Informationウェブサイトを通じて公的に入手可能である。
簡潔に言えば、BLAST分析は、データベース配列中の同じ長さのワードとアライメントされる場合、いくつかの正の値の閾値スコアTと一致するかまたはそれを満たすクエリー配列中の短いワード長Wを特定することにより、高スコアの配列ペア(HSP)を最初に特定することを含む。Tは、隣接ワードスコア閾値と称される(Altschulら、前掲)。これらの初期隣接ワードヒットは、これらを含有するより長いHSPを見出すための検索を開始するためのシードとして作用する。次いで、累積アライメントスコアが増加し得る限り、ワードヒットを各配列に沿って両方向に拡張する。ヌクレオチド配列の場合、パラメータM(一致残基のペアの報酬スコア;常に>0)およびN(不一致残基のペナルティースコア;常に<0)を使用して、累積スコアを計算する。アミノ酸配列の場合、スコアリングマトリックスを使用して、累積スコアを計算する。累積アライメントスコアがその最大達成値から量Xだけ低下するか;1つもしくはそれを超える負のスコア残基アライメントの蓄積により、累積スコアが0もしくはそれ未満になるか;またはいずれかの配列の末端に到達したら、各方向へのワードヒットの拡張を中止する。BLASTアルゴリズムパラメータW、TおよびXは、アライメントの感度およびスピードを決定する。BLASTNプログラム(ヌクレオチド配列の場合)は、デフォルトとして、11のワード長(W)、10の期待値(E)、M=5、N=−4および両鎖の比較を使用する。アミノ酸配列の場合、BLASTPプログラムは、デフォルトとして、3のワード長(W)、10の期待値(E)およびBLOSUM62スコアリングマトリックスを使用する(例えば、Henikoff and Henikoff,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89:10915[1989]を参照のこと)。
2つの配列の同一性率を提供する際にBLASTと同様に機能する多数の他のアルゴリズムが利用可能であり、当技術分野で公知である。比較のための配列の最適なアライメントは、当技術分野で公知の任意の適切な方法を使用して(例えば、Smith and Waterman,Adv.Appl.Math.2:482[1981]の局所相同性アルゴリズムにより;Needleman and Wunsch,J.Mol.Biol.48:443[1970]の相同性アライメントアルゴリズムにより;Pearson and Lipman,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 85:2444[1988]の類似性調査法により;ならびに/または、これらのアルゴリズムのコンピュータ化実装により[GCG Wisconsin Software Package中のGAP、BESTFIT、FASTAおよびTFASTA])または当技術分野で一般に公知の方法を使用した視覚的な検査により行われ得る。加えて、配列アライメントおよび配列同一性率の決定は、提供されるデフォルトパラメータを使用してGCG Wisconsin Software package(Accelrys,Madison WI)中のBESTFITまたはGAPプログラムを用い得る。
本明細書で使用される場合、「実質的な同一性」は、少なくとも20残基位置の比較ウインドウにわたって、多くの場合には少なくとも30〜50残基の領域にわたって参照配列と比較される場合に、少なくとも80パーセントの配列同一性、少なくとも85パーセントの同一性および89〜95パーセントの配列同一性、より通常には少なくとも99パーセントの配列同一性を有するポリヌクレオチドまたはポリペプチド配列を指し、配列同一性の割合は、参照配列を、比較ウインドウにわたって参照配列の合計20パーセントまたはそれ未満となる欠失または付加を含む配列と比較することにより計算される。ポリペプチドに適用される具体的な実施形態では、用語「実質的な同一性」は、デフォルトギャップ重みを使用してプログラムGAPまたはBESTFITなどにより最適にアライメントした場合に、2つのポリペプチド配列が少なくとも80パーセントの配列同一性、好ましくは少なくとも89パーセントの配列同一性、少なくとも95パーセントの配列同一性またはそれを超える配列同一性(例えば、99パーセントの配列同一性)を共有することを意味する。いくつかの好ましい実施形態では、同一ではない残基位置は、保存的アミノ酸置換により異なる。
本明細書で使用される場合、「参照配列」は、別の配列が比較される規定の配列を指す。参照配列は、より大きな配列のサブセット、例えば全長遺伝子またはポリペプチド配列のセグメントであり得る。一般に、参照配列は、核酸またはポリペプチドの少なくとも20ヌクレオチドもしくはアミノ酸残基長、少なくとも25残基長、少なくとも50残基長または全長である。2つのポリヌクレオチドまたはポリペプチドはそれぞれ、(1)2つの配列間で類似する配列(すなわち、完全な配列の部分)を含み得、(2)2つの配列間で異なる配列をさらに含み得るので、2つの(またはそれを超える)ポリヌクレオチドまたはポリペプチド間の配列比較は、典型的には、比較ウインドウにわたって2つのポリヌクレオチドの配列を比較して、配列類似性の局所領域を同定および比較することにより実施される。用語「参照配列」は、野生型配列に限定されるものではなく、操作または変化された配列を含み得る。例えば、いくつかの実施形態では、「参照配列」は、予め操作または変化されたアミノ酸配列であり得る。
本明細書で使用される場合、「比較ウインドウ」は、少なくとも約20個の連続ヌクレオチド位置またはアミノ酸残基の概念的セグメントを指し、配列は、少なくとも20個の連続ヌクレオチドまたはアミノ酸の参照配列と比較され得、比較ウインドウ中の配列の部分は、2つの配列の最適なアライメントのために、(付加または欠失を含まない)参照配列と比較して20パーセントまたはそれ未満の付加または欠失(すなわち、ギャップ)を含み得る。比較ウインドウは、20個よりも長い連続残基であり得、必要に応じて30個、40個、50個、100個またはそれよりも長い領域を含む。
本明細書で使用される場合、「に対応する」、「を参照して」および「と比べて」は、所定のアミノ酸またはポリヌクレオチド配列のナンバリングの文脈で使用される場合、所定のアミノ酸配列またはポリヌクレオチド配列を参照配列と比較した場合の特定の参照配列の残基のナンバリングを指す。換言すれば、所定のポリマーの残基番号または残基位置は、所定のアミノ酸配列またはポリヌクレオチド配列内の残基の実際の番号位置によってではなく、参照配列に対して指定される。例えば、操作されたトランスグルタミナーゼのアミノ酸配列などの所定のアミノ酸配列は、2つの配列間の残基一致を最適化するためにギャップを導入することにより、参照配列に対してアライメントされ得る。これらの場合では、ギャップは存在するが、所定のアミノ酸配列またはポリヌクレオチド配列における残基のナンバリングは、それがアライメントされている参照配列に対して行われる。本明細書で使用される場合、以下にさらに記載される「Xn」などの残基位置への言及は、特に具体的な指示がない限り、「に対応する残基」への言及と解釈されるべきである。したがって、例えば、「X94」は、ポリペプチド配列の位置94の任意のアミノ酸を指す。
本明細書で使用される場合、「改善された酵素特性」は、参照トランスグルタミナーゼと比較して任意の酵素特性の改善を示すトランスグルタミナーゼを指す。本明細書に記載される操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドでは、比較は、一般に、野生型トランスグルタミナーゼ酵素に対して行われるが、いくつかの実施形態では、参照トランスグルタミナーゼは、別の改善された操作されたトランスグルタミナーゼである。改善が望まれる酵素特性としては、限定されないが、酵素活性(これは、指定量のトランスグルタミナーゼを使用して指定の反応時間における基質の変換率に関して表され得る)、化学選択性、熱安定性、溶媒安定性、pH活性プロファイル、補因子要件、阻害剤(例えば、生成物阻害)に対する不応性、立体特異性および立体選択性(エナンチオ選択性を含む)が挙げられる。
本明細書で使用される場合、「増加した酵素活性」は、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドの改善された特性(これは、参照トランスグルタミナーゼ酵素と比較した、比活性(例えば、生成された生成物/時間/タンパク質の重量)の増加、または生成物への基質の変換率(例えば、指定量のトランスグルタミナーゼを使用して指定期間における生成物への出発量の基質の変換率)の増加により表され得る)を指す。酵素活性を決定するための例示的な方法は、実施例に提供されている。K、Vmaxまたはkcatの古典的な酵素特性を含む酵素活性に関する任意の特性が影響され得、これらの変化は酵素活性の増加をもたらし得る。酵素活性の改善は、対応する野生型トランスグルタミナーゼ酵素の酵素活性の約1.5倍から、トランスグルタミナーゼポリペプチドが由来する天然に存在するトランスグルタミナーゼまたは別の操作されたトランスグルタミナーゼよりも2倍、5倍、10倍、20倍、25倍、50倍、75倍、100倍またはそれを超える酵素活性までであり得る。具体的な実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼ酵素は、親トランスグルタミナーゼ酵素の酵素活性の1.5〜50倍、1.5〜100倍の範囲の改善された酵素活性を示す。触媒ターンオーバー速度が、任意の必要な補因子を含む基質の拡散速度を超えることはできないように、任意の酵素の活性は拡散限界的であることが当業者により理解される。拡散限界またはkcat/Kの理論的最大値は、一般に、約10〜10(M−1−1)である。したがって、トランスグルタミナーゼの酵素活性の任意の改善は、トランスグルタミナーゼ酵素により作用される基質の拡散速度に関連する上限を有するであろう。トランスグルタミナーゼ活性は、当技術分野で利用可能な標準的なアッセイのいずれか1つ(例えば、ヒドロキシメートアッセイ)により測定され得る。酵素活性の比較は、本明細書にさらに詳細に記載されるように、酵素の規定の調製、セット条件下における規定のアッセイ、および1つまたはそれを超える規定の基質を使用して行われる。一般に、溶解物を比較する場合、細胞の数およびアッセイされるタンパク質の量を決定し、同一の発現系および同一の宿主細胞を使用して、宿主細胞により産生されて溶解物中に存在する酵素の量の変動を最小化する。
本明細書で使用される場合、「増加した酵素活性」および「増加した活性」は、操作された酵素の改善された特性(これは、本明細書に記載される参照酵素と比較した、比活性(例えば、生成された生成物/時間/タンパク質の重量)の増加、または生成物への基質の変換率(例えば、指定量のトランスグルタミナーゼを使用して指定の期間における生成物への出発量の基質の変換率)の増加により表され得る)を指す。K、Vmaxまたはkcatの古典的な酵素特性を含む酵素活性に関する任意の特性が影響され得、これらの変化は酵素活性の増加をもたらし得る。酵素活性の比較は、本明細書にさらに詳細に記載されるように、酵素の規定の調製、セット条件下における規定のアッセイ、および1つまたはそれを超える規定の基質を使用して行われる。一般に、細胞溶解物中の酵素を比較する場合、細胞の数およびアッセイされるタンパク質の量を決定し、同一の発現系および同一の宿主細胞を使用して、宿主細胞により産生されて溶解物中に存在する酵素の量の変動を最小化する。
本明細書で使用される場合、「変換」は、対応する生成物への基質の酵素的転換を指す。
本明細書で使用される場合、「変換率」は、特定の条件下で一定期間内に生成物に変換される基質のパーセントを指す。したがって、例えば、トランスグルタミナーゼポリペプチドの「酵素活性」または「活性」は、生成物への基質の「変換率」として表され得る。
本明細書で使用される場合、「化学選択性」は、化学または酵素反応において、ある生成物が別のものよりも優先的に形成されることを指す。
本明細書で使用される場合、「耐熱性の」および「熱安定な」は、一定期間(例えば、0.5〜24時間)にわたって一連の温度条件(例えば、40〜80℃)に曝露した場合に、未処理酵素と比較して不活化に対して耐性であり、したがって、高温への曝露後に特定のレベルの残存活性(例えば、60%超〜80%)を保持するポリペプチドを指すために互換的に使用される。
本明細書で使用される場合、「溶媒安定な」は、様々な濃度(例えば、5〜99%)の溶媒(例えば、イソプロピルアルコール、テトラヒドロフラン、2−メチルテトラヒドロフラン、アセトン、トルエン、酢酸ブチル、メチルtert−ブチルエーテルなど)への一定期間(例えば、0.5〜24時間)の曝露後に、未処理酵素と比較して同様の活性(例えば、例えば、60%超〜80%)を維持するポリペプチドの能力を指す。
本明細書で使用される場合、「pH安定な」は、高または低pH(例えば、4.5〜6または8〜12)への一定期間(例えば、0.5〜24時間)の曝露後に、未処理酵素と比較して同様の活性(例えば、60%超〜80%)を維持するトランスグルタミナーゼポリペプチドを指す。
本明細書で使用される場合、「熱および溶媒安定な」は、耐熱性および溶媒安定の両方であるトランスグルタミナーゼポリペプチドを指す。
本明細書で使用される場合、「親水性アミノ酸または残基」は、Eisenbergらの正規化コンセンサス疎水性尺度(normalized consensus hydrophobicity scale)(Eisenbergら、J.Mol.Biol.,179:125−142[1984])にしたがって0未満の疎水性を示す側鎖を有するアミノ酸または残基を指す。遺伝的にコードされる親水性アミノ酸としては、L−Thr(T)、L−Ser(S)、L−His(H)、L−Glu(E)、L−Asn(N)、L−Gln(Q)、L−Asp(D)、L−Lys(K)およびL−Arg(R)が挙げられる。
本明細書で使用される場合、「酸性アミノ酸または残基」は、アミノ酸がペプチドまたはポリペプチド中に含まれる場合、約6未満のpK値を示す側鎖を有する親水性アミノ酸または残基を指す。酸性アミノ酸は、典型的には、水素イオンの喪失により、生理的pHで負荷電側鎖を有する。遺伝的にコードされる酸性アミノ酸としては、L−Glu(E)およびL−Asp(D)が挙げられる。
本明細書で使用される場合、「塩基性アミノ酸または残基」は、アミノ酸がペプチドまたはポリペプチド中に含まれる場合、約6を超えるpK値を示す側鎖を有する親水性アミノ酸または残基を指す。塩基性アミノ酸は、典型的には、ヒドロニウムイオンとの会合により、生理的pHで正荷電側鎖を有する。遺伝的にコードされる塩基性アミノ酸としては、L−Arg(R)およびL−Lys(K)が挙げられる。
本明細書で使用される場合、「極性アミノ酸または残基」は、生理的pHで非荷電であるが、2つの原子により一般に共有される電子対が、原子の一方によってより密接に保持される少なくとも1つの結合を有する側鎖を有する親水性アミノ酸または残基を指す。遺伝的にコードされる極性アミノ酸としては、L−Asn(N)、L−Gln(Q)、L−Ser(S)およびL−Thr(T)が挙げられる。
本明細書で使用される場合、「疎水性アミノ酸または残基」は、Eisenbergらの正規化コンセンサス疎水性尺度(Eisenbergら、J.Mol.Biol.,179:125−142[1984])にしたがって0を超える疎水性を示す側鎖を有するアミノ酸または残基を指す。遺伝的にコードされる疎水性アミノ酸としては、L−Pro(P)、L−Ile(I)、L−Phe(F)、L−Val(V)、L−Leu(L)、L−Trp(W)、L−Met(M)、L−Ala(A)およびL−Tyr(Y)が挙げられる。
本明細書で使用される場合、「芳香族アミノ酸または残基」は、少なくとも1つの芳香族または芳香族複素環を含む側鎖を有する親水性または疎水性アミノ酸または残基を指す。遺伝的にコードされる芳香族アミノ酸としては、L−Phe(F)、L−Tyr(Y)およびL−Trp(W)が挙げられる。L−His(H)は、その芳香族複素環窒素原子のpKaにより塩基性残基として分類されるか、またはその側鎖が芳香族複素環を含むので芳香族残基として分類されることがあるが、本明細書では、ヒスチジンは、親水性残基または「拘束残基(constrained residue)」として分類される(以下を参照のこと)。
本明細書で使用される場合、「拘束アミノ酸または残基」は、拘束構造(constrained geometry)を有するアミノ酸または残基を指す。本明細書では、拘束残基としては、L−Pro(P)およびL−His(H)が挙げられる。ヒスチジンは、比較的小さなイミダゾール環を有するので、拘束構造を有する。プロリンもまた5員環を有するので、拘束構造を有する。
本明細書で使用される場合、「非極性アミノ酸または残基」は、生理的pHで非荷電であり、2つの原子により一般に共有される電子対が、一般に、2つの各原子により同等に保持される結合を有する側鎖を有する(すなわち、側鎖が非極性である)疎水性アミノ酸または残基を指す。遺伝的にコードされる非極性アミノ酸としては、L−Gly(G)、L−Leu(L)、L−Val(V)、L−Ile(I)、L−Met(M)およびL−Ala(A)が挙げられる。
本明細書で使用される場合、「脂肪族アミノ酸または残基」は、脂肪族炭化水素側鎖を有する疎水性アミノ酸または残基を指す。遺伝的にコードされる脂肪族アミノ酸としては、L−Ala(A)、L−Val(V)、L−Leu(L)およびL−Ile(I)が挙げられる。システイン(または「L−Cys」もしくは「[C]」)は、他のL−Cys(C)アミノ酸または他のスルファニル含有アミノ酸もしくはスルフヒドリル含有アミノ酸とジスルフィド架橋を形成し得るという点で異常であることに留意する。「システイン様残基」としては、システインおよびジスルフィド架橋の形成に利用可能なスルフヒドリル部分を含有する他のアミノ酸が挙げられる。還元型遊離−SHまたは酸化型ジスルフィド架橋形態のいずれかでペプチド中に存在するL−Cys(C)(および−SHを含有する側鎖を有する他のアミノ酸)の能力は、L−Cys(C)がペプチドへの正味の疎水性または親水性特徴に寄与するかどうかに影響を及ぼす。L−Cys(C)は、Eisenbergの正規化コンセンサス尺度(Eisenbergら、1984、前掲)にしたがって0.29の疎水性を示すが、本開示の目的では、L−Cys(C)は、それ自体のユニークなグループにカテゴリー化されることを理解すべきである。
本明細書で使用される場合、「小型アミノ酸または残基」は、合計3つまたはそれ未満の炭素および/またはヘテロ原子(α−炭素および水素を除く)から構成される側鎖を有するアミノ酸または残基を指す。小型アミノ酸または残基は、上記定義にしたがって、脂肪族、非極性、極性または酸性の小型アミノ酸または残基にさらにカテゴリー化され得る。遺伝的にコードされる小型アミノ酸としては、L−Ala(A)、L−Val(V)、L−Cys(C)、L−Asn(N)、L−Ser(S)、L−Thr(T)およびL−Asp(D)が挙げられる。
本明細書で使用される場合、「ヒドロキシル含有アミノ酸または残基」は、ヒドロキシル(−OH)部分を含有するアミノ酸を指す。遺伝的にコードされるヒドロキシル含有アミノ酸としては、L−Ser(S)L−Thr(T)およびL−Tyr(Y)が挙げられる。
本明細書で使用される場合、「アミノ酸差異」および「残基差異」は、参照配列中の対応する位置のアミノ酸残基と比べた、ポリペプチド配列の位置におけるアミノ酸残基の差異を指す。アミノ酸差異の位置は、一般に、本明細書では「Xn」(nは、残基差異が基づく参照配列における対応する位置を指す)と称される。例えば、「配列番号2と比較した位置X40の残基差異」は、配列番号2の位置40に対応するポリペプチド位置のアミノ酸残基の差異を指す。したがって、配列番号2の参照ポリペプチドが位置40にヒスチジンを有する場合、「配列番号2と比較した位置X40の残基差異」は、配列番号2の位置40に対応するポリペプチドの位置におけるヒスチジン以外の任意の残基のアミノ酸置換を指す。本明細書におけるほとんどの例では、ある位置における特定のアミノ酸残基差異は、「XnY」(「Xn」は、上記のように対応する位置を指定し、「Y」は、操作されたポリペプチドに見られるアミノ酸(すなわち、参照ポリペプチド中と異なる残基)の一文字識別子である)として示される。いくつかの場合では、本開示はまた、慣例的な表記「AnB」(Aは、参照配列中の残基の一文字識別子であり、「n」は、参照配列中の残基位置の番号であり、Bは、操作されたポリペプチドの配列中の残基置換の一文字識別子である)により表される特定のアミノ酸差異を提供する。いくつかの場合では、本開示のポリペプチドは、参照配列と比べて1つまたはそれを超えるアミノ酸残基差異(これは、参照配列と比べて残基差異が存在する特定の位置のリストにより示される)を含み得る。いくつかの実施形態では、1つを超えるアミノ酸がポリペプチドの特定の残基位置において使用され得る場合、使用され得る様々なアミノ酸残基は、「/」により区切られる(例えば、X192A/G)。本開示は、保存的アミノ酸置換および非保存的アミノ酸置換のいずれかまたは両方を含む1つまたはそれを超えるアミノ酸差異を含む操作されたポリペプチド配列を包含する。本開示の配列表に含まれる特定の組換え炭酸脱水酵素ポリペプチドのアミノ酸配列は、開始メチオニン(M)残基を含む(すなわち、Mは残基位置1を表す)。しかしながら、当業者は、例えば宿主細胞またはインビトロ翻訳系では、生物学的プロセシング機構によりこの開始メチオニン残基が除去されて、開始メチオニン残基を欠くが他の点では酵素の特性を保持する成熟タンパク質が生成され得ることを理解する。その結果として、用語「位置Xnにおける配列番号2と比べたアミノ酸残基差異」は、本明細書で使用される場合、開始メチオニンを欠くようにプロセシングされた参照配列内の位置「Xn」または対応する位置(例えば、位置(X−1)n)を指し得る。
本明細書で使用される場合、語句「保存的アミノ酸置換」は、類似側鎖を有する残基の互換性を指すので、典型的には、同じまたは類似の規定アミノ酸クラス内のアミノ酸によるポリペプチド中のアミノ酸の置換を伴う。一例として限定されないが、いくつかの実施形態では、脂肪族側鎖を有するアミノ酸は、別の脂肪族アミノ酸、例えば、アラニン、バリン、ロイシンおよびイソロイシンで置換され、ヒドロキシル側鎖を有するアミノ酸は、ヒドロキシル側鎖を有する別のアミノ酸、例えば、セリンおよびトレオニンで置換され、芳香族側鎖を有するアミノ酸は、芳香族側鎖を有する別のアミノ酸、例えば、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファンおよびヒスチジンで置換され、塩基性側鎖を有するアミノ酸は、塩基性側鎖を有する別のアミノ酸、例えば、リジンおよびアルギニンで置換され、酸性側鎖を有するアミノ酸は、酸性側鎖を有する別のアミノ酸(例えば、アスパラギン酸またはグルタミン酸)で置換され、ならびに/または疎水性または親水性アミノ酸は、それぞれ別の疎水性または親水性アミノ酸で置き換えられる。例示的な保存的置換は、表1に提供されている。
Figure 2021502068
本明細書で使用される場合、語句「非保存的置換」は、有意に異なる側鎖特性を有するアミノ酸によるポリペプチド中のアミノ酸の置換を指す。非保存的置換は、規定のグループ内ではなく規定のグループ間のアミノ酸を使用し得、(a)置換(例えば、グリシンからプロリン)領域内のペプチド骨格の構造、(b)電荷もしくは疎水性または(c)側鎖の大部分に影響を与える。一例として限定されないが、例示的な非保存的置換は、塩基性または脂肪族アミノ酸で置換された酸性アミノ酸、小型アミノ酸で置換された芳香族アミノ酸および疎水性アミノ酸で置換された親水性アミノ酸であり得る。
本明細書で使用される場合、「欠失」は、参照ポリペプチドからの1つまたはそれを超えるアミノ酸の除去によるポリペプチドの改変を指す。欠失は、酵素活性を保持し、および/または操作された酵素の改善された特性を保持しつつ、1個もしくはそれを超えるアミノ酸、2個もしくはそれを超えるアミノ酸、5個もしくはそれを超えるアミノ酸、10個もしくはそれを超えるアミノ酸、15個もしくはそれを超えるアミノ酸または20個もしくはそれを超えるアミノ酸、ポリペプチドを構成する総アミノ酸数の最大10%または総アミノ酸数の最大20%の除去を含み得る。欠失は、ポリペプチドの内部部分および/または末端部分を対象とし得る。様々な実施形態では、欠失は連続セグメントを含み得るか、または不連続であり得る。
本明細書で使用される場合、「挿入」は、参照ポリペプチドへの1つまたはそれを超えるアミノ酸の付加によるポリペプチドの改変を指す。いくつかの実施形態では、改善された操作されたトランスグルタミナーゼ酵素は、天然に存在するトランスグルタミナーゼポリペプチドへの1個またはそれを超えるアミノ酸の挿入、および操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドへの1個またはそれを超えるアミノ酸の挿入を含む。挿入は、ポリペプチドの内部部分にあり得るか、またはカルボキシ末端もしくはアミノ末端に対するものであり得る。本明細書で使用される場合、挿入は、当技術分野で公知であるように融合タンパク質を含む。挿入は、天然に存在するポリペプチドにおける連続アミノ酸セグメントであり得るか、または1つもしくはそれを超えるアミノ酸により分離され得る。
用語「アミノ酸置換セット」または「置換セット」は、参照配列と比較したポリペプチド配列内の一群のアミノ酸置換を指す。置換セットは、1個、2個、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個、11個、12個、13個、14個、15個またはそれを超えるアミノ酸置換を有し得る。いくつかの実施形態では、置換セットは、実施例に提供されている表に列挙されているバリアントトランスグルタミナーゼのいずれかに存在するアミノ酸置換のセットを指す。
本明細書で使用される場合、「断片」は、アミノ末端および/またはカルボキシ末端欠失を有するが、残りのアミノ酸配列が配列中の対応する位置と同一であるポリペプチドを指す。断片は、典型的には、全長トランスグルタミナーゼポリペプチド、例えば、配列番号2のポリペプチドの約80%、約90%、約95%、約98%または約99%を有し得る。いくつかの実施形態では、断片は、「生物学的に活性」である(すなわち、全長配列と同じ酵素活性を示す)。
本明細書で使用される場合、「単離されたポリペプチド」は、それに天然に付随する他の混入物、例えば、タンパク質、脂質およびポリヌクレオチドから実質的に分離されたポリペプチドを指す。この用語は、その天然に存在する環境または発現系(例えば、宿主細胞またはインビトロ合成)から回収または精製されたポリペプチドを包含する。改善されたトランスグルタミナーゼ酵素は、細胞内に存在し得るか、細胞培地中に存在し得るか、または様々な形態(例えば、溶解物または単離された調製物)で調製され得る。このように、いくつかの実施形態では、本開示の操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、単離されたポリペプチドであり得る。
本明細書で使用される場合、「実質的に純粋なポリペプチド」は、ポリペプチド種が存在する優勢種である(すなわち、モルまたは重量基準で、それが、組成物中の任意の他の個々の高分子種よりも豊富である)組成物を指し、一般に、目的種が、モル%または重量%で、存在する高分子種の少なくとも約50パーセントを構成する場合、実質的に精製された組成物である。一般に、実質的に純粋な操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチド組成物は、モル%または重量%で、組成物中に存在するすべての高分子種の約60%もしくはそれよりも多く、約70%もしくはそれよりも多く、約80%もしくはそれよりも多く、約90%もしくはそれよりも多く、約91%もしくはそれよりも多く、約92%もしくはそれよりも多く、約93%もしくはそれよりも多く、約94%もしくはそれよりも多く、約95%もしくはそれよりも多く、約96%もしくはそれよりも多く、約97%もしくはそれよりも多く、および約98%もしくはそれよりも多くまたは約99%を構成する。溶媒種、小分子(<500ダルトン)および元素イオン種は、高分子種と見なされない。いくつかの実施形態では、単離された改善されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、実質的に純粋なポリペプチド組成物である。
本明細書で使用される場合、核酸またはポリペプチドに関して使用される際の用語「異種」は、生物(例えば、野生型生物)により通常は発現および分泌されない配列を指す。いくつかの実施形態では、この用語は、天然に通常は見出されるものと互いに同じ関係で見出されないか、またはその発現レベルもしくは細胞もしくは構造内の他の核酸もしくは他の分子との物理的関係が天然に通常は見出されないように組換え操作された2つまたはそれを超える部分配列を含む配列を包含する。例えば、天然に見られない様式で配置された非関連遺伝子に由来する2つまたはそれを超える配列を有する異種核酸は、典型的には、組換え産生される(例えば、ベクターなどの発現カセットに挿入されたプロモーター配列に作動可能に連結された本発明の核酸オープンリーディングフレーム(ORF))。いくつかの実施形態では、「異種ポリヌクレオチド」は、実験室技術により宿主細胞中に導入される任意のポリヌクレオチドを指し、宿主細胞から取り出され、実験室操作に供され、次いで宿主細胞中に再導入されるポリヌクレオチドを含む。
本明細書で使用される場合、「適切な反応条件」は、本開示のトランスグルタミナーゼポリペプチドが目的の基質を改変することができる生体触媒反応溶液の条件(例えば、酵素負荷、基質負荷、補因子負荷、温度、pH、緩衝液、共溶媒などの範囲)を指す。いくつかの実施形態では、トランスグルタミナーゼは、低分子量基質およびタンパク質を含む様々な基質中の置換グルタミンおよび置換リジンを架橋する。いくつかの実施形態では、本発明のトランスグルタミナーゼは、生体高分子の部位特異的改変をすることができる。例示的な「適切な反応条件」は本開示に提供されており、実施例により例示されている。
本明細書で使用される場合、「化合物負荷」、「酵素負荷」または「補因子負荷」などの「負荷」は、反応開始時における反応混合物中の成分の濃度または量を指す。
本明細書で使用される場合、生体触媒媒介プロセスの文脈における「基質」は、生体触媒が作用する化合物または分子を指す。
本明細書で使用される場合、生体触媒媒介プロセスの文脈における「生成物」は、生体触媒の作用から生じる化合物または分子を指す。
本明細書で使用される場合、「平衡」は、化学反応または酵素反応の順方向速度定数および逆方向速度定数により決定される、立体異性体の相互変換を含む化学反応または酵素反応(例えば、2つの種AおよびBの相互変換)において化学種の定常状態の濃度をもたらすプロセスを指す。
本明細書で使用される場合、「トランスグルタミナーゼ」、「TG」、「TGase」および「トランスグルタミナーゼ活性を有するポリペプチド」は、ペプチド/タンパク質におけるガンマ−カルボキシアミド基(例えば、グルタミン残基)と、アミン供与体として作用する様々な第1級アミンとの間のアシル転移反応を触媒する能力を有する酵素を指す。いくつかの実施形態では、グルタミン酸の脱アミドによるグルタミンのグルタミン酸による置換反応がある。いくつかの実施形態では、リジンはアシル受容体として使用され、その結果、反応において使用されるタンパク質分子の富化をもたらす。ポリペプチド鎖におけるリジン残基へのアシルの転移は、架橋プロセス(すなわち、分子内または分子間架橋の形成)を誘導する(例えば、Kieliszek and Misiewicz、前掲;およびKashiwagiら、J.Biol.Chem.,277:44252−44260[2002]を参照のこと)。いくつかの実施形態では、トランスグルタミナーゼは、遊離アミン基の非存在下で、ただし、アシル受容体として作用する水の存在下で、脱アミノ化反応の触媒に使用される。これは、粘度、熱安定性、弾性および弾力性の変更を含む、影響を受けるタンパク質の物理的および化学的特性の有意な変化をもたらす(例えば、Kieliszek and Misiewicz、前掲;Motoki and Seguroa,Trends Food Sci.Technol.,9:204−210[1998];およびKuraishiら、Food Rev.Intl.,17:221−246[2001]を参照のこと)。トランスグルタミナーゼは、ヒト、細菌、線虫、酵母、藻類、植物および下等脊椎動物を含む様々な生物において広く分布することが公知である(例えば、Santos and Torne,Recent Pat.Biotechnol.,3:166−174[2009]を参照のこと)。
本明細書で使用される場合、「トランスグルタミネーション」、「アミノ基転移」および「トランスグルタミナーゼ反応」は、タンパク質/ポリペプチド/ペプチド由来のグルタミン残基のガンマ−グルタミニル(gamma-glutaminyl)が、第1級アミンまたはリジンもしくは水のイプシロン(episilon)−アミノ基に転移され、アンモニア分子が放出される反応を指す。
本明細書で使用される場合、操作されたトランスグルタミナーゼ酵素の文脈で使用される際の「由来する」は、元のトランスグルタミナーゼ酵素、および/または操作のベースとなったこのようなトランスグルタミナーゼ酵素をコードする遺伝子を同定する。例えば、配列番号296の操作されたトランスグルタミナーゼ酵素は、配列番号2のS.mobaraensisトランスグルタミナーゼをコードする遺伝子(配列番号1)を複数世代にわたって人工的に進化させることにより得られた。
したがって、この操作されたトランスグルタミナーゼ酵素は、配列番号2の天然に存在するまたは野生型トランスグルタミナーゼに「由来する」。
トランスグルタミナーゼ
本発明は、野生型S.mobaraensisトランスグルタミナーゼ酵素から開発されたバリアントトランスグルタミナーゼを提供する。S.mobaraensisはまた、Streptoverticilliium mobaraeseとして分類される。この酵素は約38kDaの分子量を有し、カルシウム非依存性である(例えば、Appl.Microbiol.Biotech.,64:447−454[2004];および米国特許出願公開第2010/0099610号(これらは、参照により本明細書に組み込まれる)を参照のこと)。
トランスグルタミナーゼは、様々なペプチドの特性を変化させるのに使用される。いくつかの実施形態では、前記酵素は、食品および乳業において、ならびに生理活性ペプチド、生物医学、生体材料、抗体、繊維産業(例えば、羊毛および皮革)、ペプチドコンジュゲーション方法、組織への薬剤の結合、化粧品などが関与する用途において有用なペプチドを架橋結合するために使用される(例えば、トランスグルタミナーゼ、それらの供給源および使用の議論については、欧州特許第950665号、欧州特許第785276号、国際公開第2005/070468号、国際公開第2006/134148号、国際公開第2008/102007号、国際公開第2009/003732号、米国特許第6,013,498号、米国特許出願公開第2010/0099610号;米国特許出願公開第2010/0249029号;および米国特許出願公開第2010/0087371号(これらはそれぞれ、参照により本明細書に組み込まれる);ならびにSato,Adv.Drug Deliv.Rev.,54:487−504[2002];Valdivia,J.Biotechnol.,122:326−333[2006];Wada,Biotech.Lett.,23:1367−1372[2001];Kieliszek and Misiewicz,Folia Microbiol.,59:241−250[2014];Yokoyamaら、Appl.Microbiol.Biotechol.,64:447−454[2004];Washizuら、Biosci.Biotech.Biochem.,58:82−87[1994];Kanajiら、J.Biol.Chem.,268:11565−11572[1993];Andoら、Agric.Biol.Chem.53:2613−2617[1989];Martinsら、Appl.Microbiol.Biotechnol.,98:6957−6964[2014];Jergerら、Angew.Chem.Int.,49:9995−9997[2010];Grunbergら、PLoS ONE 8:e60350[2013];Mindtら、Bioconj.Chem.,19:271−278[2008];Lhospiceら、Mol.Pharmaceutics 12:1863−1871[2015];Dennlerら、Bioconj.Chem.,25:569−578[2014];およびSantos and Torne,Rec.Patents Biotechnol.,3:166−174[2009]を参照のこと)。これらの酵素は、食品および他の製品の堅さ、粘度、弾性および水結合能力を改善することができる。
いくつかの実施形態では、本明細書で提供されるトランスグルタミナーゼバリアントは、食品(例えば、ゼリー、ヨーグルト、チーズ、麺、チューインガム、キャンディー、焼き製品、大豆タンパク質、グミキャンディー、スナック、ピクルス、肉およびチョコレート)の生産のために、食品産業において使用されるが、いくつかの他の実施形態では、トランスグルタミナーゼバリアントは、他の産業(例えば、繊維、医薬品、診断など)において使用される。
いくつかの実施形態では、本発明は、配列番号2、6、34および/または256と少なくとも約85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、または99%またはそれを超える配列同一性を有するアミノ酸配列を有する操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドを提供する。
いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、79、101、101/201/212/287、101/201/285、101/287および327から選択される1つまたはそれを超える位置における置換を含み、前記位置は配列番号6に関してナンバリングされている。いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、79K、101G、101G/201K/212K/287G、101G/201K/285Q、101G/287Gおよび327Rから選択される1つまたはそれを超える置換を含み、前記位置は配列番号6に関してナンバリングされている。いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、S79K、Y101G、Y101G/Q201K/R212K/S287G、Y101G/Q201K/R285Q、Y101G/S287GおよびG327Rから選択される1つまたはそれを超える置換を含み、前記位置は配列番号6に関してナンバリングされている。
いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、48、48/67/70、48/67/70/181/203/256、48/67/70/181/256/345、48/67/70/181/296/345/373、48/67/70/203/256/296/345、48/67/70/203/256/345/354/373、48/67/70/203/345、48/67/70/256、48/67/70/256/296/345/373、48/67/203/256/296/373、48/67/203/256/345、48/70/170/203、48/70/203/254/296/343、48/70/203/256/345/373、48/70/203/256/345、48/70/203/373、48/170/203、48/170/203/254/296/346、48/170/203/254/296/346/373、48/170/203/254/346/373、48/170/203/254/346、48/170/203/296/343/346、48/170/203/296/346/373、48/170/203/343/346、48/170/203/346、48/170/203/346/373、48/170/203/373、48/170/254、48/170/296、48/170/296/343/346、48/170/343/346、48/181、48/181/203/256/345、48/181/203/345、48/181/256/296/345、48/181/296、48/181/296/345、48/203、48/203/254/296、48/203/254/296/343/373、48/203/254/296/346/373、48/203/254/346、48/203/254/346/373、48/203/256、48/203/256/296/345、48/203/296/343/346/373、48/203/296/343/373、48/203/296/346、48/203/296/346/373、48/203/343/346、48/203/343/346/373、48/203/345、48/203/346、48/203/346/373、48/254/296、48/254/346、48/256、48/256/296、48/256/296/345、48/296/345、48/296/373、48/343/346、48/345/373、67/256、67/296/345、68/74/190/215/346、68/136/215/255/282/297/346、68/136/215/297/346、68/136/234、68/158/174/234/282/297/346、68/158/215/297/346、68/215/297/346、68/234、68/282/297/346、68/297/346、74/136/174/282/346、74/136/174/297/346、74/136/346、74/158/255/297、74/255/346、74/346、136/158/190/215/255/297/346、136/158/215/297/346、136/174/215/255/282/297/346、136/190/215/297/346、136/215/234/282/297、136/215/234/297/346、136/215/297、136/297/346、158/215/255/346、158/215/346、170/203/254/296/343/346、170/203/254/343/373、170/203/343/346、174/190/234/297/346、174/215/234/297/346、174/215/255/297/346、174/282/297/346、190/255/282/346、190/297/346、203/296、203/343、203/343/346、203/346、215/255/297/346、215/234/297/346、215/255/297/346、215/297、215/297/346、215/346、234/255/346、255/297/346、255/346、297/346、343/346/373、および346から選択される1つまたはそれを超える位置における置換を含み、前記位置は配列番号2に関してナンバリングされている。いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、48K/70L/203L/254Q/296L/343R、48K/170K/203L、48K/170K/203L/254Q/296L/346H、48K/170K/203L/254Q/296L/346H/373M、48K/170K/203L/254Q/346H/373M、48K/170K/203L/254Q/346H、48K/170K/203L/296L/343R/346H、48K/170K/203L/296L/346H/373M、48K/170K/203L/343R/346H、48K/170K/203L/346H/373M、48K/170K/203L/346H、48K/170K/203L/373M、48K/170K/254Q、48K/170K/296L、48K/170K/296L/343R/346H、48K/170K/343R/346H、48K/203L、48K/203L/254Q/296L、48K/203L/254Q/296L/343R/373M、48K/203L/254Q/296L/346H/373M、48K/203L/254Q/346H、48K/203L/254Q/346H/373M、48K/203L/296L/343R/346H/373M、48K/203L/296L/343R/373M、48K/203L/296L/346H、48K/203L/296L/346H/373M、48K/203L/343R/346H、48K/203L/343R/346H/373M、48K/203L/346H、48K/203L/346H/373M、48K/254Q/346H、48K/343R/346H、48V、48V/67E/70G、48V/67E/70G/181K/203V/256G、48V/67E/70G/181K/256G/345E、48V/67E/70G/181K/296R/345E/373V、48V/67E/70G/203V/256G/296R/345E、48V/67E/70G/203V/345E、48V/67E/70G/256G/296R/345E/373V、48V/67E/70N/203V/256G/345E/354H/373L、48V/67E/70N/256G、48V/67E/203V/256G/296R/373V、48V/67E/203V/256G/345E、48K/70D/170K/203L、48V/70G/203V/256G/345E/373V、48V/70N/203V/256G/345E、48V/70N/203V/373V、48V/181K、48V/181K/203V/256G/345E、48V/181K/203V/345E、48V/181K/256G/296R/345E、48V/181K/296R、48V/181K/296R/345E、48V/203V、48V/203V/256G、48V/203V/256G/296R/345E、48V/203V/345E、48K/254Q/296L、48V/256G、48V/256G/296R、48V/256G/296R/345E、48V/296R/345E、48V/296R/373V、48V/345E/373L、67E/256G、67E/296R/345E、68A/74T/190G/215N/346A、68A/136Y/215N/255R/282K/297W/346A、68A/136Y/215N/297W/346A、68A/136Y/234Y、68A/158I/174D/234Y/282K/297W/346A、68A/158I/215N/297W/346A、68A/215N/297W/346A、68A/234Y、68A/282K/297W/346A、68A/297W/346A、74T/136Y/174D/282K/346A、74T/136Y/174D/297W/346A、74T/136Y/346A、74T/158I/255R/297W、74T/255R/346A、74T/346A、136Y/158I/190G/215N/255R/297W/346A、136Y/158I/215N/297W/346A、136Y/174D/215N/255R/282K/297W/346A、136Y/190G/215N/297W/346A、136Y/215N/234Y/282K/297W、136Y/215N/234Y/297W/346A、136Y/215N/297W、136Y/297W/346A、158I/215N/255R/346A、158I/215N/346A、170K/203L/254Q/296L/343R/346H、170K/203L/254Q/343R/373M、170K/203L/343R/346H、174D/190G/234Y/297W/346A、174D/215N/234Y/297W/346A、174D/215N/255R/297W/346A、174D/282K/297W/346A、190G/255R/282K/346A、190G/297W/346A、203L/296L、203L/343R/346H、203L/343R、203L/346H、215H/255R/297W/346A、215N/234Y/297W/346A、215N/255R/297W/346A、215N/297W、215N/297W/346A、215N/346A、234Y/255R/346A、255R/297W/346A、255R/346A、297W/346A、343R/346H/373M、および346Aから選択される1つまたはそれを超える置換を含み、前記位置は配列番号2に関してナンバリングされている。いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、S48K/Y70L/G203L/R254Q/G296L/N343R、S48K/Q170K/G203L、S48K/Q170K/G203L/R254Q/G296L/E346H、S48K/Q170K/G203L/R254Q/G296L/E346H/K373M、S48K/Q170K/G203L/R254Q/E346H/K373M、S48K/Q170K/G203L/R254Q/E346H、S48K/Q170K/G203L/G296L/N343R/E346H、S48K/Q170K/G203L/G296L/E346H/K373M、S48K/Q170K/G203L/N343R/E346H、S48K/Q170K/G203L/E346H/K373M、S48K/Q170K/G203L/E346H、S48K/Q170K/G203L/K373M、S48K/Q170K/R254Q、S48K/Q170K/G296L、S48K/Q170K/G296L/N343R/E346H、S48K/Q170K/N343R/E346H、S48K/G203L、S48K/G203L/R254Q/G296L、S48K/G203L/R254Q/G296L/N343R/K373M、S48K/G203L/R254Q/G296L/E346H/K373M、S48K/G203L/R254Q/E346H、S48K/G203L/R254Q/E346H/K373M、S48K/G203L/G296L/N343R/E346H/K373M、S48K/G203L/G296L/N343R/K373M、S48K/G203L/G296L/E346H、S48K/G203L/G296L/E346H/

K373M、S48K/G203L/N343R/E346H、S48K/G203L/N343R/E346H/K373M、S48K/G203L/E346H、S48K/G203L/E346H/K373M、S48K/R254Q/E346H、S48K/N343R/E346H、S48V、S48V/R67E/Y70G、S48V/R67E/Y70G/R181K/G203V/S256G、S48V/R67E/Y70G/R181K/S256G/S345E、S48V/R67E/Y70G/R181K/G296R/S345E/K373V、S48V/R67E/Y70G/G203V/S256G/G296R/S345E、S48V/R67E/Y70G/G203V/S345E、S48V/R67E/Y70G/S256G/G296R/S345E/K373V、S48V/R67E/Y70N/G203V/S256G/S345E/G354H/K373L、S48V/R67E/Y70N/S256G、S48V/R67E/G203V/S256G/G296R/K373V、S48V/R67E/G203V/S256G/S345E、S48K/Y70D/Q170K/G203L、S48V/Y70G/G203V/S256G/S345E/K373V、S48V/Y70N/G203V/S256G/S345E、S48V/Y70N/G203V/K373V、S48V/R181K、S48V/R181K/G203V/S256G/S345E、S48V/R181K/G203V/S345E、S48V/R181K/S256G/G296R/S345E、S48V/R181K/G296R、S48V/R181K/G296R/S345E、S48V/G203V、S48V/G203V/S256G、S48V/G203V/S256G/G296R/S345E、S48V/G203V/S345E、S48K/R254Q/G296L、S48V/S256G、S48V/S256G/G296R、S48V/S256G/G296R/S345E、S48V/G296R/S345E、S48V/G296R/K373V、S48V/S345E/K373L、R67E/S256G、R67E/G296R/S345E、P68A/E74T/S190G/P215N/E346A、P68A/F136Y/P215N/S255R/R282K/F297W/E346A、P68A/F136Y/P215N/F297W/E346A、P68A/F136Y/H234Y、P68A/V158I/E174D/H234Y/R282K/F297W/E346A、P68A/V158I/P215N/F297W/E346A、P68A/P215N/F297W/E346A、P68A/H234Y、P68A/R282K/F297W/E346A、P68A/F297W/E346A、E74T/F136Y/E174D/R282K/E346A、E74T/F136Y/E174D/F297W/E346A、E74T/F136Y/E346A、E74T/V158I/S255R/F297W、E74T/S255R/E346A、E74T/E346A、F136Y/V158I/S190G/P215N/S255R/F297W/E346A、F136Y/V158I/P215N/F297W/E346A、F136Y/E174D/P215N/S255R/R282K/F297W/E346A、F136Y/S190G/P215N/F297W/E346A、F136Y/P215N/H234Y/R282K/F297W、F136Y/P215N/H234Y/F297W/E346A、F136Y/P215N/F297W、F136Y/F297W/E346A、V158I/P215N/S255R/E346A、V158I/P215N/E346A、Q170K/G203L/R254Q/G296L/N343R/E346H、Q170K/G203L/R254Q/N343R/K373M、Q170K/G203L/N343R/E346H、E174D/S190G/H234Y/F297W/E346A、E174D/P215N/H234Y/F297W/E346A、E174D/P215N/S255R/F297W/E346A、E174D/R282K/F297W/E346A、S190G/S255R/R282K/E346A、S190G/F297W/E346A、G203L/G296L、G203L/N343R/E346H、G203L/N343R、G203L/E346H、P215H/S255R/F297W/E346A、P215N/H234Y/F297W/E346A、P215N/S255R/F297W/E346A、P215N/F297W、P215N/F297W/E346A、P215N/E346A、H234Y/S255R/E346A、S255R/F297W/E346A、S255R/E346A、F297W/E346A、N343R/E346H/K373M、およびE346Aから選択される1つまたはそれを超える置換を含み、前記位置は配列番号2に関してナンバリングされている。
いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、33/67/70/181/203/256/296/373、36/48/203/254/346、48/67/70/181/203/256/296/373、48/67/70/203/256/296/373、48/67/181/203/256/296/373、48/67/181/203/256/373、48/67/181/256/296、48/67/203/256/296/373/378、48/67/203/256/373、48/67/203/296/373、48/67/256/296/373、48/70/181/203/256/296/373、48/70/181/203/256/373、48/70/181/203/296/373、48/70/203/256/296/373、48/70/203/256/373、48/70/203/296、48/70/203/296/373、48/70/203/373、48/70/256/296/373、48/70/296/373、48/176/203/254/346/373、48/181/203/256/296/373、48/181/203/256/373、48/181/203/296、48/181/203/373、48/181/256/296/373、48/203/254、48/203/254/343、48/203/254/343/346/373、48/203/254/343/355/373、48/203/254/343/373、48/203/254/346/373、48/203/254/373、48/203/256/296、48/203/256/296/373、48/203/256/373、48/203/296/373、48/203/296/373/374、48/203/343/373、48/203/373、48/254、48/254/343/346/373、48/254/343/373、48/254/346/373、48/254/373、48/256/296/373、48/256/373、48/373、67/70/181/203/256/296/373、67/70/181/256/296/373、67/70/181/373、67/181/203/256/296、67/181/203/256/296/373、67/181/203/256/373、67/203/256/296/373、67/256/296/373、70/181/203/256/296/373、70/181/203/296/373、70/203、70/203/256/296/373、70/203/256/373、70/203/296/373、74/136/215/234/282/297/346、74/136/215/234/282/346、74/136/215/234/297、74/136/215/234/297/343/346、74/136/215/234/297/346、74/136/215/234/346、74/136/215/282/297/346、74/136/215/282/346、74/136/215/297/346、74/136/215/346、74/136/234/282/297/346、74/136/234/346、74/136/282/297/346、74/215、74/215/234/282/297/346、74/215/282/297/346、74/215/346、136/215/234/282/297/346、136/215/282/297、136/215/282/297/346、136/215/282/346、136/215/297/346、136/215/346、136/234/297、136/234/297/346、136/234/346、136/282/297、181/203/256、181/203/256/296、181/203/256/296/373、181/203/256/373、181/203/296/373、181/203/373、181/256/296/373、181/296、203/224/254/373、203/254、203/254/343/346/373、203/254/343/373、203/254/346、203/254/346/373、203/254/373、203/346/373、203/373、203/209/256/373、203/256、203/256/296、203/256/296/320/373、203/256/296/373、203/256/296/373/386、203/256/373、203/296/373、203/373、215/234/282/297/346、215/234/282/346、215/234/346、234/282/346、254、254/346、254/346/373、254/373、256/296、256/296/373、256/373、282/297/346、343/373、および373から選択される1つまたはそれを超える位置における置換を含み、前記位置は配列番号2に関してナンバリングされている。いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、33D/67E/70G/181K/203V/256G/296R/373V、36E/48K/203L/254Q/346H、48K/176T/203L/254Q/346H/373M、48K/203L/254Q、48K/203L/254Q/343R、48K/203L/254Q/343R/346H/373M、48K/203L/254Q/343R/355T/373M、48K/203L/254Q/343R/373M、48K/203L/254Q/346D/373M、48K/203L/254Q/373M、48K/203L/343R/373M、48K/203L/373M、48K/254Q、48K/254Q/343R/346H/373M、48K/254Q/343R/373M、48K/254Q/346H/373M、48K/254Q/373M、48V/67E/70G/181K/203V/256G/296R/373V、48V/67E/70G/203V/256G/296R/373V、48V/67E/181K/203V/256G/296R/373V、48V/67E/181K/203V/256G/373V、48V/67E/181K/256G/296R、48V/67E/203V/256G/296R/373V/378D、48V/67E/203V/256G/373V、48V/67E/203V/296R/373V、48V/67E/256G/296R/373V、48V/70G/181K/203V/256G/296R/373V、48V/70G/181K/203V/256G/373V、48V/70G/181K/203V/296R/373V、48V/70G/203V/256G/296R/373V、48V/70G/203V/256G/373V、48V/70G/203V/296R、48V/70G/203V/296R/373V、48V/70G/203V/373V、48V/70G/256G/296R/373V、48V/70G/296R/373V、48V/181K/203V/256G/296R/373V、48V/181K/203V/256G/373V、48V/181K/203V/296R、48V/181K/203V/373V、48V/181K/256G/296R/373V、48V/203V/256G/296R、48V/203V/256G/296R/373V、48V/203V/256G/373V、48V/203V/296R/373V、48V/203V/296R/373V/374L、48V/203V/373V、48V/256G/296R/373V、48V/256G/373V、48V/373V、67E/70G/181K/203V/256G/296R/373V、67E/70G/181K/256G/296R/373V、67E/70G/181K/373V、67E/181K/203V/256G/296R、67E/181K/203V/256G/296R/373V、67E/181K/203V/256G/373V、67E/203V/256G/296R/373V、67E/256G/296R/373V、70G/181K/203V/256G/296R/373V、70G/181K/203V/296R/373V、70G/203V、70G/203V/256G/296R/373V、70G/203V/256G/373V、70G/203V/296R/373V、74T/136Y/215N/234Y/282K/297W/346A、74T/136Y/215N/234Y/282K/346A、74T/136Y/215N/234Y/297W、74T/136Y/215N/234Y/297W/343Y/346A、74T/136Y/215N/234Y/297W/346A、74T/136Y/215N/234Y/346A、74T/136Y/215N/282K/297W/346A、74T/136Y/215N/282K/346A、74T/136Y/215N/297W/346A、74T/136Y/215N/346A、74T/136Y/234Y/282K/297W/346A、74T/136Y/234Y/346A、74T/136Y/282K/297W/346A、74T/215N、74T/215N/234Y/282K/297W/346A、74T/215N/282K/297W/346A、74T/215N/346A、136Y/215N/234Y/282K/297W/346A、136Y/215N/282K/297W、136Y/215N/282K/297W/346A、136Y/215N/282K/346A、136Y/215N/297W/346A、136Y/215N/346A、136Y/234Y/297W、136Y/234Y/297W/346A、136Y/234Y/346A、136Y/282K/297W、181K/203V/256G、181K/203V/256G/296R、181K/203V/256G/296R/373V、181K/203V/256G/373V、181K/203V/296R/373V、181K/203V/373V、181K/256G/296R/373V、181K/296R、203L/224T/254Q/373M、203L/254Q、203L/254Q/343R/346H/373M、203L/254Q/343R/373M、203L/254Q/346H、203L/254Q/346H/373M、203L/254Q/373M、203L/346H/373M、203L/373M、203V/209Y/256G/373V、203V/256G、203V/256G/296R、203V/256G/296R/320Y/373V、203V/256G/296R/373V、203V/256G/296R/373V/386Y、203V/256G/373V、203V/296R/373V、203V/373V、215N/234Y/282K/297W/346A、215N/234Y/282K/346A、215N/234Y/346A、234Y/282K/346A、254Q、254Q/346H、254Q/346H/373M、254Q/373M、256G/296R、256G/296R/373V、256G/373V、282K/297W/346A、343R/373M、および373M/Vから選択される1つまたはそれを超える置換を含み、前記位置は配列番号2に関してナンバリングされている。いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、A33D/R67E/Y70G/R181K/G203V/S256G/G296R/K373V、A36E/S48K/G203L/R254Q/E3

46H、S48K/A176T/G203L/R254Q/E346H/K373M、S48K/G203L/R254Q、S48K/G203L/R254Q/N343R、S48K/G203L/R254Q/N343R/E346H/K373M、S48K/G203L/R254Q/N343R/A355T/K373M、S48K/G203L/R254Q/N343R/K373M、S48K/G203L/R254Q/E346D/K373M、S48K/G203L/R254Q/K373M、S48K/G203L/N343R/K373M、S48K/G203L/K373M、S48K/R254Q、S48K/R254Q/N343R/E346H/K373M、S48K/R254Q/N343R/K373M、S48K/R254Q/E346H/K373M、S48K/R254Q/K373M、S48V/R67E/Y70G/R181K/G203V/S256G/G296R/K373V、S48V/R67E/Y70G/G203V/S256G/G296R/K373V、S48V/R67E/R181K/G203V/S256G/G296R/K373V、S48V/R67E/R181K/G203V/S256G/K373V、S48V/R67E/R181K/S256G/G296R、S48V/R67E/G203V/S256G/G296R/K373V/G378D、S48V/R67E/G203V/S256G/K373V、S48V/R67E/G203V/G296R/K373V、S48V/R67E/S256G/G296R/K373V、S48V/Y70G/R181K/G203V/S256G/G296R/K373V、S48V/Y70G/R181K/G203V/S256G/K373V、S48V/Y70G/R181K/G203V/G296R/K373V、S48V/Y70G/G203V/S256G/G296R/K373V、S48V/Y70G/G203V/S256G/K373V、S48V/Y70G/G203V/G296R、S48V/Y70G/G203V/G296R/K373V、S48V/Y70G/G203V/K373V、S48V/Y70G/S256G/G296R/K373V、S48V/Y70G/G296R/K373V、S48V/R181K/G203V/S256G/G296R/K373V、S48V/R181K/G203V/S256G/K373V、S48V/R181K/G203V/G296R、S48V/R181K/G203V/K373V、S48V/R181K/S256G/G296R/K373V、S48V/G203V/S256G/G296R、S48V/G203V/S256G/G296R/K373V、S48V/G203V/S256G/K373V、S48V/G203V/G296R/K373V、S48V/G203V/G296R/K373V/Q374L、S48V/G203V/K373V、S48V/S256G/G296R/K373V、S48V/S256G/K373V、S48V/K373V、R67E/Y70G/R181K/G203V/S256G/G296R/K373V、R67E/Y70G/R181K/S256G/G296R/K373V、R67E/Y70G/R181K/K373V、R67E/R181K/G203V/S256G/G296R、R67E/R181K/G203V/S256G/G296R/K373V、R67E/R181K/G203V/S256G/K373V、R67E/G203V/S256G/G296R/K373V、R67E/S256G/G296R/K373V、Y70G/R181K/G203V/S256G/G296R/K373V、Y70G/R181K/G203V/G296R/K373V、Y70G/G203V、Y70G/G203V/S256G/G296R/K373V、Y70G/G203V/S256G/K373V、Y70G/G203V/G296R/K373V、E74T/F136Y/P215N/H234Y/R282K/F297W/E346A、E74T/F136Y/P215N/H234Y/R282K/E346A、E74T/F136Y/P215N/H234Y/F297W、E74T/F136Y/P215N/H234Y/F297W/N343Y/E346A、E74T/F136Y/P215N/H234Y/F297W/E346A、E74T/F136Y/P215N/H234Y/E346A、E74T/F136Y/P215N/R282K/F297W/E346A、E74T/F136Y/P215N/R282K/E346A、E74T/F136Y/P215N/F297W/E346A、E74T/F136Y/P215N/E346A、E74T/F136Y/H234Y/R282K/F297W/E346A、E74T/F136Y/H234Y/E346A、E74T/F136Y/R282K/F297W/E346A、E74T/P215N、E74T/P215N/H234Y/R282K/F297W/E346A、E74T/P215N/R282K/F297W/E346A、E74T/P215N/E346A、F136Y/P215N/H234Y/R282K/F297W/E346A、F136Y/P215N/R282K/F297W、F136Y/P215N/R282K/F297W/E346A、F136Y/P215N/R282K/E346A、F136Y/P215N/F297W/E346A、F136Y/P215N/E346A、F136Y/H234Y/F297W、F136Y/H234Y/F297W/E346A、F136Y/H234Y/E346A、F136Y/R282K/F297W、R181K/G203V/S256G、R181K/G203V/S256G/G296R、R181K/G203V/S256G/G296R/K373V、R181K/G203V/S256G/K373V、R181K/G203V/G296R/K373V、R181K/G203V/K373V、R181K/S256G/G296R/K373V、R181K/G296R、G203L/P224T/R254Q/K373M、G203L/R254Q、G203L/R254Q/N343R/E346H/K373M、G203L/R254Q/N343R/K373M、G203L/R254Q/E346H、G203L/R254Q/E346H/K373M、G203L/R254Q/K373M、G203L/E346H/K373M、G203L/K373M、G203V/N209Y/S256G/K373V、G203V/S256G、G203V/S256G/G296R、G203V/S256G/G296R/H320Y/K373V、G203V/S256G/G296R/K373V、G203V/S256G/G296R/K373V/H386Y、G203V/S256G/K373V、G203V/G296R/K373V、G203V/K373V、P215N/H234Y/R282K/F297W/E346A、P215N/H234Y/R282K/E346A、P215N/H234Y/E346A、H234Y/R282K/E346A、R254Q、R254Q/E346H、R254Q/E346H/K373M、R254Q/K373M、S256G/G296R、S256G/G296R/K373V、S256G/K373V、R282K/F297W/E346A、N343R/K373M、およびK373M/Vから選択される1つまたはそれを超える置換を含み、前記位置は配列番号2に関してナンバリングされている。
いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、48/49、49、50、50、331、291、292、330および331から選択される1つまたはそれを超える位置における置換を含み、前記位置は配列番号34に関してナンバリングされている。いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、48S/49W、49Y、50A/F/Q/R、331H/P/V、291C、292R、330H/Yおよび331Rから選択される1つまたはそれを超える置換を含み、前記位置は配列番号34に関してナンバリングされている。いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、K48S/D49W、D49Y、D50A/F/Q/R、L331H/P/V、T291C、S292R、S330H/YおよびL331Rから選択される1つまたはそれを超える置換を含み、前記位置は配列番号34に関してナンバリングされている。
いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、27/48/67/70/74/234/256/282/346/373、27/48/67/70/136/203/215/256/282/346/373、27/48/67/70/346/373、27/48/67/74/203/256/346/373、27/67/234/296/373、45/287/328/333、45/292/328、48、48/284/292/333、48/287/292/297、48/287/297/328/333、48/292、48/292/297、48/49/50/292/331、48/49/50/292、48/49/50/331、48/49/330/331、48/49/50/349、48/49/50/291/292/331、48/49/50/292/331、48/67/70/203/215/234/256/346、48/67/70/234/256/282/297/346、48/67/70/346、48/67/74/203/234/256/282/346/373、48/67/74/234/297/346/373、48/67/74/346、48/67/203/346/373、48/67/234/256/297/346/373、48/67/234/256/346/373、48/67/215/282/297/346/373、48/67/346/373、48/70/74/297/346/373、48/70/203/215/256/282/346/373、48/70/215/234/256/346/373、48/74/203/234/256/346/373、48/74/234/256/297/346/373、48/136/256/346/373、48/203/234/256/297/346/373、48/203/234/256/346/373、48/203/234/346/373、48/203/296/373、48/215/234/346/373、48/215/346/373、48/234/256/296/346/373、48/234/256/346/373、48/256/373、49/50/292/331、49/50/292/331/349、49/50/331、49/50/331/349、50、67/70/74/136/203/215/256/346/373、67/70/74/203/215/234/346/373、67/70/74/215/234/297/346/373、67/70/74/215/256/373、67/70/136/203/297/346/373、67/70/203/215/256/346/373、67/70/203/373、67/70/215、67/74/136、67/74/203/234/256、67/74/215/256/297/346/373、67/74/215/346/373、67/74/256/346/373、67/136/203/215/256/346/373、67/136/203/256/346/373、67/203/234/256/346/373、67/203/297/346/373、67/215/234/297/346/373、67/297/346、70/74/203/215/346/373、136、136/346/373、203/234/346、203/234/346/373、203/373、234/282、287、234/346/373、287/292、287/292/295/297、287/292/297、287/295/297、287/330/333、292、292/297、292/330/331、292/330/331、292/331、292/331/349、292/349、295、295/297/333、297/328、297/373、328/333、330、330/331、331、331/349、333、346/373、および373から選択される1つまたはそれを超える位置における置換を含み、前記位置は配列番号256に関してナンバリングされている。いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、27S/48V/67E/70G/74T/234Y/256G/282K/346A/373L、27S/48V/67E/70G/136Y/203V/215H/256G/282K/346A/373V、27S/48V/67E/70G/346A/373L、
27S/48V/67E/74T/203V/256G/346A/373M、27S/67E/234Y/296R/373M、45S/287S/328E/333P、
45S/292K/328E、48A、48A/284G/292K/333P、48A/287S/292K/297Y、48A/287S/297Y/328E/333P、
48A/292K、48A/292K/297Y、48S/49G/50A/292R/331P、48S/49W/50A/292R、48S/49W/50A/331V、
48S/49W/330Y/331V、48S/49W/50A/349R、48S/49Y/50A/291C/292R/331V、48S/49Y/50Q/292R/331V、
48V/67E/70G/203V/215H/234Y/256G/346A、48V/67E/70G/234Y/256G/282K/297W/346A、
48V/67E/70G/346A、48V/67E/74T/203V/234Y/256G/282K/346A/373M、48V/67E/74T/234Y/297W/346A/373M、48V/67E/74T/346A、48V/67E/203V/346A/373M、
48V/67E/215H/282K/297W/346A/373M、48V/67E/234Y/256G/297W/346A/373V、48V/67E/234Y/256G/346A/373M、48V/67E/346A/373M、48V/70G/74T/297W/346A/373M、
48V/70G/203V/215H/256G/282K/346A/373V、48V/70G/215H/234Y/256G/346A/373M、
48V/74T/203V/234Y/256G/346A/373V、48V/74T/234Y/256G/297W/346A/373V、
48V/136Y/256G/346A/373M、48V/203V/234Y/256G/297W/346A/373V、48V/203V/234Y/256G/346A/373M、48V/203V/234Y/346A/373M、48V/203V/296R/373M、
48V/215H/234Y/346A/373V、48V/215H/346A/373M、48V/234Y/256G/296R/346A/373M、
48V/234Y/256G/346A/373M、48V/256G/373L、49G/50A/292R/331V、49G/50Q/292R/331V/349R、
49W/50A/331V、49W/50A/331V/349R、50A、67E/70G/74T/136Y/203V/215H/256G/346A/373M、
67E/70G/74T/203V/215H/234Y/346A/373V、67E/70G/74T/215H/234Y/297W/346A/373L、
67E/70G/74T/215H/256G/373M、67E/70G/136Y/203V/297W/346A/373M、67E/70G/203V/215H/256G/346A/373L、67E/70G/203V/373M、67E/70G/215H、67E/74T/136Y、
67E/74T/203V/234Y/256G、67E/74T/215H/256G/297W/346A/373L、67E/74T/215H/346A/373V、
67E/74T/256G/346A/373M、67E/136Y/203V/215H/256G/346A/373V、67E/136Y/203V/256G/346A/373M、67E/203V/234Y/256G/346A/373V、67E/203V/297W/346A/373M、
67E/215H/234Y/297W/346A/373V、67E/297W/346A、70G/74T/203V/215H/346A/373V、136Y、
136Y/346A/373M、203V/234Y/346A、203V/234Y/346A/373V、203V/373M、234Y/282K、234Y/346A/373M、287S、287S/292K、287S/292K/295R/297Y、287S/292K/297Y、287S/295R/297Y、
287S/330G/333P、292K、292K/297Y、292R、292R/330Y/331P、292R/330Y/331V、292R/331V、
292R/331V/349R、292R/349R、295R、295R/297Y/333P、297Y/328E、297W/373M、328E/333P、330Y、330Y/331P、331V、331V/349R、333P、346A/373V、および373M/Vから選択される1つまたはそれを超える置換を含み、前記位置は配列番号256に関してナンバリングされている。いくつかの実施形態では、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドは、N27S/K48V/R67E/Y70G/E74T/H234Y/S256G/R282K/H346A/K373L、N27S/K48V/R67E/Y70G/F136Y/L203V/P215H/S256G/R282K/H346A/K373V、N27S/K48V/R67E/Y70G/H346A/K373L、N27S/K48V/R67E/E74T/L203V/S256G/H346A/K373M、
N27S/R67E/H234Y/G296R/K373M、A45S/P287S/N328E/A333P、A45S/S292K/N328E、K48A、
K48A/R284G/S292K/A333P、K48A/P287S/S292K/F297Y、K48A/P287S/F297Y/N328E/A333P、
K48A/S292K、K48A/S292K/F297Y、K48S/D49G/R50A/S292R/L331P、K48S/D49W/R50A/S292R、
K48S/D49W/R50A/L331V、K48S/D49W/S330Y/L331V、K48S/D49W/R50A/S349R、
K48S/D49Y/R50A/T291C/S292R/L331V、K48S/D49Y/R50Q/S292R/L331V、K48V/R67E/Y70G/L203V/P215H/H234Y/S256G/H346A、K48V/R67E/Y70G/H234Y/S256G/R282K/F297W/H346A、K48V/R67E/Y70G/H346A、
K48V/R67E/E74T/L203V/H234Y/S256G/R282K/H346A/K373M、K48V/R67E/E74T/H234Y/F297W/H346A/K373M、K48V/R67E/E74T/H346A、K48V/R67E/L203V/H346A/K373M、K48V/R67E/P215H/R282K/F297W/H346A/K373M、
K48V/R67E/H234Y/S256G/F297W/H346A/K373V、K48V/R67E/H234Y/S256G/H346A/K373M、
K48V/R67E/H346A/K373M、K48V/Y70G/E74T/F297W/H346A/K373M、K48V/Y70G/L203V/P215H/S256G/R282K/H346A/K373V、K48V/Y70G/P215H/H234Y/S256G/H346A/K373M、K48V/E74T/L203V/H234Y/S256G/H346A/K373V、K48V/E74T/H234Y/S256G/F297W/H346A/K373V、K48V/F136Y/S256G/H346A/K373M、K48V/L203V/H234Y/S256G/F297W/H346A/K373V、K48V/L203V/H234Y/S256G/H346A/K373M、
K48V/L203V/H234Y/H346A/K373M、K48V/L203V/G296R/K373M、K48V/P215H/H234Y/H346A/K373V、K48V/P215H/H346A/K373M、K48V/H234Y/S256G/G296R/H346A/K373M、K48V/H234Y/S256G/H346A/K373M、
K48V/S256G/K373L、D49G/R50A/S292R/L331V、D49G/R50Q/S292R/L331V/S349R、D49W/R50A/L331V、D49W/R50A/L331V/S349R、R50A、R67E/Y70G/E74T/F136Y/L203V/P215H/S256G/H346A/K373M、R67E/Y70G/E74T/L203V/P215H/H234Y/H346A/K373V、R67E/Y70G/E74T/P215H/H234Y/F297W/H346A/K373L、R67E/Y70G/E74T/P215H/S256G/K373M、R67E/Y70G/F136Y/L203V/F297W/H346A/K373M、R67E/Y70G/L203V/P215H/S256G/H346A/K373L、R67E/Y70G/L203V/K373M、R67E/Y70G/P215H、R67E/E74T/F136Y、R67E/E74T/L203V/H234Y/S256G、R67E/E74T/P215H/S256G/F297W/H346A/K373L、R67E/E74T/P215H/H346A/K373V、R67E/E74T/S256G/H346A/K373M、
R67E/F136Y/L203V/P215H/S256G/H346A/K373V、R67E/F136Y/L203V/S256G/H346A/K373M、
R67E/L203V/H234Y/S256G/H346A/K373V、R67E/L203V/F297W/H346A/K373M、
R67E/P215H/H234Y/F297W/H346A/K373V、R67E/F297W/H346A、Y70G/E74T/L203V/P215H/H346A/K373V、F136Y、F136Y/H346A/K373M、L203V/H234Y/H346A、
L203V/H234Y/H346A/K373V、L203V/K373M、H234Y/R282K、H234Y/H346A/K373M、P287S、
P287S/S292K、P287S/S292K/E295R/F297Y、P287S/S292K/F297Y、P287S/E295R/F297Y、P287S/S330G/A333P、S292K、S292K/F297Y、S292R、S292R/S330Y/L331P、S292R/S330Y/L331V、
S292R/L331V、S292R/L331V/S349R、S292R/S349R、E295R、E295R/F297Y/A333P、F297Y/N328E、
F297W/K373M、N328E/A333P、S330Y、S330Y/L331P、L331V、L331V/S349R、A333P、H346A/K373V、およびK373M/Vから選択される1つまたはそれを超える置換を含み、前記位置は配列番号256に関してナンバリングされている。
本発明はまた、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを提供する。いくつかの実施形態では、遺伝子発現を制御する1つまたはそれを超える異種調節配列にポリヌクレオチドを作動可能に連結して、前記ポリペプチドを発現することができる組換えポリヌクレオチドを作製する。操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドをコードする異種ポリヌクレオチドを含有する発現構築物を適切な宿主細胞に導入して、対応するトランスグルタミナーゼポリペプチドを発現させ得る。
様々なアミノ酸に対応するコドンが知られているおかげで、タンパク質配列が利用できることで、対象をコードすることができるすべてのポリヌクレオチドの説明が得られる。同じアミノ酸が代替または同義コドンによりコードされる遺伝子コードの縮重は、非常に多数の核酸を作製することを可能にし、これらはすべて、本明細書に開示される改善されたトランスグルタミナーゼ酵素をコードする。したがって、特定のアミノ酸配列を同定したら、当業者は、タンパク質のアミノ酸配列を変更しない方法で、1つまたはそれを超えるコドンの配列を単に改変することにより、任意の数の様々な核酸を作製し得る。これに関して、本開示は、可能なコドン選択に基づく組み合わせを選択することにより作製され得るポリヌクレオチドのそれぞれのおよびすべての可能なバリエーションを具体的に企図し、すべてのこのようなバリエーションは、本明細書の実施例の表に示されているアミノ酸配列を含む本明細書に開示される任意のポリペプチドについて具体的に開示されるとみなされるべきである。
様々な実施形態では、コドンは、好ましくは、タンパク質が産生されている宿主細胞に適合するように選択される。例えば、細菌において使用される好ましいコドンは、細菌において遺伝子を発現させるために使用され;酵母において使用される好ましいコドンは、酵母における発現に使用され、哺乳動物において使用される好ましいコドンは、哺乳動物細胞における発現に使用される。
いくつかの実施形態では、天然配列は好ましいコドンを含むので、および好ましいコドンの使用は、すべてのアミノ酸残基に必要とされない場合があるので、トランスグルタミナーゼポリペプチドのコドン使用頻度を最適化するために、すべてのコドンが置き換えられる必要はない。その結果として、トランスグルタミナーゼ酵素をコードするコドン最適化ポリヌクレオチドは、全長コード領域の約40%、50%、60%、70%、80%または90%を超えるコドン位置で好ましいコドンを含有し得る。
いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、配列番号2、6、34および/または256と少なくとも約85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%または99%またはそれを超える配列同一性を有するアミノ酸配列を有するトランスグルタミナーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、配列番号2、6、34および/または256と少なくとも85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%または99%またはそれを超える配列同一性を有するアミノ酸配列を有するトランスグルタミナーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、配列番号2、6、34および/または256のトランスグルタミナーゼアミノ酸配列をコードする。いくつかの実施形態では、本発明は、配列番号1、5、33および/または255と少なくとも約85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%または99%またはそれを超える配列同一性を有するポリヌクレオチド配列を提供する。いくつかの実施形態では、本発明は、配列番号1、5、33および/または255と少なくとも85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%または99%またはそれを超える配列同一性を有するポリヌクレオチド配列を提供する。
いくつかの実施形態では、単離されたポリヌクレオチドは、改善されたもの(an improved)をコードする。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、配列番号2、6、34および/または256と少なくとも約85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%または99%またはそれを超える配列同一性を有するアミノ酸配列を有するトランスグルタミナーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む。ポリペプチドは、ポリペプチドの改善された活性および/または発現を提供するための様々な方法で操作される。発現ベクターに応じて、ベクターへの挿入前に、単離されたポリヌクレオチドの操作が望ましいかまたは必要な場合がある。組換えDNA法を利用してポリヌクレオチドおよび核酸配列を改変するための技術は、当技術分野で周知である。
例えば、変異誘発および定向進化法をポリヌクレオチドに容易に適用してバリアントライブラリーを生成し得、これを発現させ、スクリーニングし、アッセイし得る。変異誘発および定向進化法は、当技術分野で周知である(例えば、米国特許第5,605,793号、第5,811,238号、第5,830,721号、第5,834,252号、第5,837,458号、第5,928,905号、第6,096,548号、第6,117,679号、第6,132,970号、第6,165,793号、第6,180,406号、第6,251,674号、第6,265,201号、第6,277,638号、第6,287,861号、第6,287,862号、第6,291,242号、第6,297,053号、第6,303,344号、第6,309,883号、第6,319,713号、第6,319,714号、第6,323,030号、第6,326,204号、第6,335,160号、第6,335,198号、第6,344,356号、第6,352,859号、第6,355,484号、第6,358,740号、第6,358,742号、第6,365,377号、第6,365,408号、第6,368,861号、第6,372,497号、第6,337,186号、第6,376,246号、第6,379,964号、第6,387,702号、第6,391,552号、第6,391,640号、第6,395,547号、第6,406,855号、第6,406,910号、第6,413,745号、第6,413,774号、第6,420,175号、第6,423,542号、第6,426,224号、第6,436,675号、第6,444,468号、第6,455,253号、第6,479,652号、第6,482,647号、第6,483,011号、第6,484,105号、第6,489,146号、第6,500,617号、第6,500,639号、第6,506,602号、第6,506,603号、第6,518,065号、第6,519,065号、第6,521,453号、第6,528,311号、第6,537,746号、第6,573,098号、第6,576,467号、第6,579,678号、第6,586,182号、第6,602,986号、第6,605,430号、第6,613,514号、第6,653,072号、第6,686,515号、第6,703,240号、第6,716,631号、第6,825,001号、第6,902,922号、第6,917,882号、第6,946,296号、第6,961,664号、第6,995,017号、第7,024,312号、第7,058,515号、第7,105,297号、第7,148,054号、第7,220,566号、第7,288,375号、第7,384,387号、第7,421,347号、第7,430,477号、第7,462,469号、第7,534,564号、第7,620,500号、第7,620,502号、第7,629,170号、第7,702,464号、第7,747,391号、第7,747,393号、第7,751,986号、第7,776,598号、第7,783,428号、第7,795,030号、第7,853,410号、第7,868,138号、第7,783,428号、第7,873,477号、第7,873,499号、第7,904,249号、第7,957,912号、第7,981,614号、第8,014,961号、第8,029,988号、第8,048,674号、第8,058,001号、第8,076,138号、第8,108,150号、第8,170,806号、第8,224,580号、第8,377,681号、第8,383,346号、第8,457,903号、第8,504,498号、第8,589,085号、第8,762,066号、第8,768,871号、第9,593,326号および関連するすべての米国および非米国の対応するもの;Lingら、Anal.Biochem.,254(2):157−78[1997];Daleら、Meth.Mol.Biol.,57:369−74[1996];Smith,Ann.Rev.Genet.,19:423−462[1985];Botsteinら、Science,229:1193−1201[1985];Carter,Biochem.J.,237:1−7[1986];Kramerら、Cell,38:879−887[1984];Wellsら、Gene,34:315−323[1985];Minshullら、Curr.Op.Chem.Biol.,3:284−290[1999];Christiansら、Nat.Biotechnol.,17:259−264[1999];Crameriら、Nature,391:288−291[1998];Crameriら、Nat.Biotechnol.,15:436−438[1997];Zhangら、Proc.Nat.Acad.Sci.U.S.A.,94:4504−4509[1997];Crameriら、Nat.Biotechnol.,14:315−319[1996];Stemmer,Nature,370:389−391[1994];Stemmer,Proc.Nat.Acad.Sci.USA,91:10747−10751[1994];国際公開第95/22625号;国際公開第97/0078号;国際公開第97/35966号;国際公開第98/27230号;国際公開第00/42651号;国際公開第01/75767号;および国際公開第2009/152336号(これらはすべて、参照により本明細書に組み込まれる)を参照のこと)。
いくつかの実施形態では、本発明のバリアントトランスグルタミナーゼは、コードされる酵素の活性を変化させないさらなる配列をさらに含む。例えば、いくつかの実施形態では、バリアントトランスグルタミナーゼは、エピトープタグ、または精製において有用な別の配列に連結される。
いくつかの実施形態では、本発明のバリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドは、それを発現する宿主細胞(例えば、酵母または糸状菌宿主細胞)から分泌され、シグナルペプチド(すなわち、ポリペプチドのアミノ末端に連結されたアミノ酸配列であって、コードされるポリペプチドを細胞の分泌経路に向けさせるアミノ酸配列)を含むプレタンパク質として発現される。
いくつかの実施形態では、シグナルペプチドは、内因性S.mobaraensisトランスグルタミナーゼシグナルペプチドである。いくつかのさらなる実施形態では、他のS.mobaraensis分泌タンパク質由来のシグナルペプチドが使用される。いくつかの実施形態では、宿主細胞および他の因子に応じて、他のシグナルペプチドが使用される。糸状菌宿主細胞のための有効なシグナルペプチドコード領域としては、限定されないが、Aspergillus oryzae TAKAアミラーゼ、Aspergillus niger中性アミラーゼ、Aspergillus nigerグルコアミラーゼ、Rhizomucor mieheiアスパラギン酸プロテイナーゼ、Humicola insolensセルラーゼ、Humicola lanuginosaリパーゼおよびT.reeseiセロビオヒドロラーゼIIから得られるシグナルペプチドコード領域が挙げられる。細菌宿主細胞のためのシグナルペプチドコード領域としては、限定されないが、Bacillus NClB11837マルトース生成アミラーゼ(maltogenic amylase)、Bacillus stearothermophilus α−アミラーゼ、Bacillus licheniformisサブチリシン、Bacillus licheniformis β−ラクタマーゼ、Bacillus stearothermophilus中性プロテアーゼ(nprT、nprS、nprM)およびBacillus subtilis prsAの遺伝子から得られるシグナルペプチドコード領域が挙げられる。いくつかのさらなる実施形態では、他のシグナルペプチドが本発明において使用される(例えば、Simonen and Palva,Microbiol.Rev.,57:109−137[1993](これは、参照により本明細書に組み込まれる)を参照のこと)。酵母宿主細胞のためのさらなる有用なシグナルペプチドとしては、Saccharomyces cerevisiae α−因子、Saccharomyces cerevisiae SUC2インベルターゼの遺伝子に由来するものが挙げられる(例えば、Taussig and Carlson,Nucl.Acids Res.,11:1943−54[1983];SwissProt Accession No.P00724;およびRomanosら、Yeast 8:423−488[1992]を参照のこと)。いくつかの実施形態では、これらのシグナルペプチドのバリアントおよび他のシグナルペプチドが使用される。実際、当技術分野で公知の任意の適切なシグナルペプチドが本発明において使用されるので、本発明は、いかなる特定のシグナルペプチドにも限定されるものではない。
いくつかの実施形態では、本発明は、本明細書に記載されるバリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドおよび/または生物学的に活性なその断片をコードするポリヌクレオチドを提供する。いくつかの実施形態では、遺伝子発現を制御する1つまたはそれを超える異種調節配列または制御配列にポリヌクレオチドを作動可能に連結して、ポリペプチドを発現することができる組換えポリヌクレオチドを作製する。いくつかの実施形態では、バリアントトランスグルタミナーゼをコードする異種ポリヌクレオチドを含有する発現構築物を適切な宿主細胞に導入して、バリアントトランスグルタミナーゼを発現させる。
当業者は、遺伝子コードの縮重に起因して、本発明のバリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列が多数存在することを理解する。例えば、コドンAGA、AGG、CGA、CGC、CGGおよびCGUはすべて、アミノ酸アルギニンをコードする。したがって、コドンによりアルギニンが指定される本発明の核酸内のすべての位置において、コドンは、コードされるポリペプチドを変化させずに、対応する上記コドンのいずれかに変化され得る。RNA配列内の「U」は、DNA配列内の「T」に対応することが理解される。本発明は、可能なコドン選択に基づいて組み合わせを選択することにより作製され得る本発明のポリペプチドをコードする核酸配列のそれぞれのおよびすべての可能なバリエーションを企図および提供する。
上記に示されているように、トランスグルタミナーゼをコードするDNA配列はまた、高コドン使用頻度バイアスのコドン(同じアミノ酸をコードする他のコドンより、タンパク質コード領域において高い頻度で使用されるコドン)について設計され得る。好ましいコドンは、1個の遺伝子、共通の機能もしくは起源の一連の遺伝子、高度に発現された遺伝子におけるコドン使用頻度、生物全体の凝集タンパク質コード領域におけるコドン出現頻度、関連する生物の凝集タンパク質コード領域におけるコドン出現頻度、またはそれらの組み合わせに関して決定され得る。遺伝子発現レベルと共にその頻度が増加するコドンは、典型的には、発現のための最適なコドンである。特に、DNA配列は、特定の宿主生物における発現のために最適化され得る。多変量分析(例えば、クラスタ分析または対応分析を使用する)を含む、特異的生物におけるコドン出現頻度(例えば、コドン使用頻度、相対的な同義コドン使用頻度)およびコドン優先度を決定するための様々な方法、ならびに遺伝子において使用されるコドンの有効数を決定するための様々な方法が当技術分野で周知である。コドン使用頻度を得るためのデータソースは、タンパク質をコードすることができる任意の入手可能なヌクレオチド配列に依拠し得る。これらのデータセットは、当技術分野で周知であるように、発現タンパク質をコードすることが実際に公知である核酸配列(例えば、完全なタンパク質コード配列−CDS)、発現配列タグ(EST)、またはゲノム配列の予測されるコード領域を含む。バリアントトランスグルタミナーゼをコードするポリヌクレオチドは、当技術分野で公知の任意の適切な方法を使用して調製され得る。典型的には、オリゴヌクレオチドを個々に合成し、次いで、(例えば、酵素的ライゲーション法もしくは化学的ライゲーション法またはポリメラーゼ媒介法により)結合して、基本的に任意の所望の連続配列を形成する。いくつかの実施形態では、本発明のポリヌクレオチドは、限定されないが、自動合成法を含む当技術分野で公知の任意の適切な方法を使用した化学合成により調製される。例えば、ホスホラミダイト法では、オリゴヌクレオチドを合成し(例えば、自動DNAシンセサイザーで)、精製し、アニーリングし、ライゲーションし、適切なベクターにクローニングする。いくつかの実施形態では、次いで、相補鎖を合成し、その鎖を一緒に適切な条件下でアニーリングすることにより、または適切なプライマー配列を有するDNAポリメラーゼを使用して相補鎖を付加することにより、二本鎖DNA断片を得る。本発明において有用な方法を提供する多数の一般的および標準的なテキストが当業者に周知である。
操作されたトランスグルタミナーゼは、天然に存在するトランスグルタミナーゼをコードするポリヌクレオチドを上記変異誘発および/または定向進化法に供することにより得られ得る。変異誘発は、ランダム変異誘発および部位特異的変異誘発を含む当技術分野で公知の技術のいずれかにしたがって実施され得る。定向進化法は、シャッフリングを含む、改善されたバリアントについてスクリーニングするための当技術分野で公知の技術のいずれかを用いて実施され得る。使用される他の定向進化法手順としては、限定されないが、互い違い伸長プロセス(StEP)、インビトロ組換え、変異誘発PCR、カセット変異誘発、オーバーラップ伸長によるスプライシング(SOEing)、ProSAR(商標)定向進化法など、ならびに任意の他の適切な方法が挙げられる。
変異誘発処理にしたがって得られたクローンは、所望の改善された酵素特性を有する操作されたトランスグルタミナーゼについてスクリーニングされる。発現ライブラリーからの酵素活性の測定は、生成物が形成される速度をモニタリングする標準的な生化学技術を使用して実施され得る。所望の改善された酵素特性が熱安定性である場合、酵素調製物を規定温度に供し、熱処理後に残存する酵素活性の量を測定した後に、酵素活性を測定し得る。次いで、トランスグルタミナーゼをコードするポリヌクレオチドを含有するクローンを単離し、配列決定してヌクレオチド配列の変化を同定し(存在する場合)、これを使用して酵素を宿主細胞で発現させる。
操作されたポリペプチドの配列が公知である場合、酵素をコードするポリヌクレオチドは、公知の合成方法にしたがって、標準的な固相法により調製され得る。いくつかの実施形態では、最大約100塩基の断片を個々に合成し、次いで、(例えば、酵素的ライゲーション法もしくは化学的ライゲーション法またはポリメラーゼ媒介法により)結合して、任意の所望の連続配列を形成し得る。例えば、本発明のポリヌクレオチドおよびオリゴヌクレオチドは、(典型的には、自動合成方法で実施されるので、例えば、Beaucageら、Tet.Lett.,22:1859−69[1981]に記載されている古典的なホスホラミダイト法、またはMatthesら、EMBO J.,3:801−05[1984]に記載されている方法を使用した)化学合成により調製され得る。ホスホラミダイト法によれば、オリゴヌクレオチドを、合成し(例えば、自動DNAシンセサイザーで)、精製し、アニーリングし、ライゲーションし、適切なベクターにクローニングする。加えて、基本的に任意の核酸が、様々な商業的供給源のいずれかから入手され得る(例えば、The Midland Certified Reagent Company,Midland,TX,The Great American Gene Company,Ramona,CA,ExpressGen Inc.Chicago,IL,Operon Technologies Inc.,Alameda,CAなど)。
本発明はまた、本明細書で提供されるように、少なくとも1つのバリアントトランスグルタミナーゼをコードする配列を含む組換え構築物を提供する。いくつかの実施形態では、本発明は、異種プロモーターに作動可能に連結されたバリアントトランスグルタミナーゼポリヌクレオチドを含む発現ベクターを提供する。いくつかの実施形態では、本発明の発現ベクターを使用して適切な宿主細胞を形質転換して、宿主細胞がバリアントトランスグルタミナーゼタンパク質を発現するのを可能にする。真菌および他の生物におけるタンパク質の組換え発現のための方法は当技術分野で周知であり、いくつかの発現ベクターが利用可能であるかまたはルーチンな方法を使用して構築され得る。いくつかの実施形態では、本発明の核酸構築物は、本発明の核酸配列が挿入されたベクター、例えばプラスミド、コスミド、ファージ、ウイルス、細菌人工染色体(BAC)、酵母人工染色体(YAC)などを含む。いくつかの実施形態では、バリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドを発現させるために適切な様々な発現ベクターのいずれか1つに本発明のポリヌクレオチドを組み込む。適切なベクターとしては、限定されないが、染色体DNA配列、非染色体DNA配列および合成DNA配列(例えば、SV40の誘導体)、ならびに細菌プラスミド、ファージDNA、バキュロウイルス、酵母プラスミド、プラスミドとファージDNAの組み合わせに由来するベクター、ワクシニア、アデノウイルス、鶏痘ウイルス、仮性狂犬病、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、レトロウイルスおよび多くの他のものなどのウイルスDNAが挙げられる。遺伝物質を細胞に形質導入し、複製が望まれる場合には関連宿主において複製可能かつ生存可能である任意の適切なベクターが本発明において使用される。
いくつかの実施形態では、構築物は、タンパク質をコードする配列に作動可能に連結された調節配列(限定されないがプロモーターを含む)をさらに含む。多数の適切なベクターおよびプロモーターが当業者に公知である。実際、いくつかの実施形態では、特定の宿主において高い発現のレベルを得るために、多くの場合、本発明のバリアントトランスグルタミナーゼを異種プロモーターの制御下で発現させることが有用である。いくつかの実施形態では、当技術分野で公知の任意の適切な方法を使用して、プロモーター配列をバリアントトランスグルタミナーゼコード配列の5’領域に作動可能に連結する。バリアントトランスグルタミナーゼを発現させるために有用なプロモーターの例としては、限定されないが、真菌由来のプロモーターが挙げられる。いくつかの実施形態では、真菌株においてトランスグルタミナーゼ遺伝子以外の遺伝子の発現を駆動するプロモーター配列が使用される。非限定的な例として、エンドグルカナーゼをコードする遺伝子由来の真菌プロモーターが使用され得る。いくつかの実施形態では、トランスグルタミナーゼが由来する真菌株以外の真菌株においてトランスグルタミナーゼ遺伝子の発現を駆動するプロモーター配列が使用される。糸状菌宿主細胞において本発明のヌクレオチド構築物の転写を指令するために有用な他の適切なプロモーターの例としては、限定されないが、Aspergillus oryzae TAKAアミラーゼ、Rhizomucor mieheiアスパラギン酸プロテイナーゼ、Aspergillus niger中性α−アミラーゼ、Aspergillus niger酸安定α−アミラーゼ、Aspergillus nigerまたはAspergillus awamoriグルコアミラーゼ(glaA)、Rhizomucor mieheiリパーゼ、Aspergillus oryzaeアルカリ性プロテアーゼ、Aspergillus oryzaeトリオースリン酸イソメラーゼ、Aspergillus nidulansアセトアミダーゼおよびFusarium oxysporumトリプシン様プロテアーゼの遺伝子から得られるプロモーター(例えば、国際公開第96/00787号(これは、参照により本明細書に組み込まれる)を参照のこと)、ならびにNA2−tpiプロモーター(Aspergillus niger中性α−アミラーゼの遺伝子由来のプロモーターとAspergillus oryzaeトリオースリン酸イソメラーゼの遺伝子由来のプロモーターのハイブリッド)、cbh1、cbh2、egl1、egl2、pepA、hfb1、hfb2、xyn1、amyおよびglaAなどのプロモーター(例えば、Nunbergら、Mol.Cell Biol.,4:2306−2315[1984];Boelら、EMBO J.,3:1581−85[1984];および欧州特許出願第137280号(これらはすべて、参照により本明細書に組み込まれる)を参照のこと)、ならびにその変異体プロモーター、短縮型プロモーターおよびハイブリッドプロモーターが挙げられる。
酵母宿主細胞では、有用なプロモーターとしては、限定されないが、Saccharomyces cerevisiaeエノラーゼ(eno−1)、Saccharomyces cerevisiaeガラクトキナーゼ(gal1)、Saccharomyces cerevisiaeアルコールデヒドロゲナーゼ/グリセルアルデヒド−3−リン酸脱水素酵素(ADH2/GAP)およびS.cerevisiae 3−ホスホグリセリン酸キナーゼの遺伝子由来のプロモーターが挙げられる。酵母宿主細胞に対して有用なさらなる有用なプロモーターは当技術分野で公知である(例えば、Romanosら、Yeast 8:423−488[1992](これは、参照により本明細書に組み込まれる)を参照のこと)。加えて、真菌におけるキチナーゼ産生に関連するプロモーターが本発明において使用される(例えば、Blaiseau and Lafay,Gene 120243−248[1992];およびLimonら、Curr.Genet.,28:478−83[1995](これらは両方とも、参照により本明細書に組み込まれる)を参照のこと)。
細菌宿主細胞については、本開示の核酸構築物の転写を指令するための適切なプロモーターとしては、限定されないが、大腸菌lacオペロン、大腸菌trpオペロン、バクテリオファージλ、Streptomyces coelicolorアガラーゼ遺伝子(dagA)、Bacillus subtilisレバンスクラーゼ遺伝子(sacB)、Bacillus licheniformis α−アミラーゼ遺伝子(amyL)、Bacillus stearothermophilusマルトース生成アミラーゼ遺伝子(amyM)、Bacillus amyloliquefaciens α−アミラーゼ遺伝子(amyQ)、Bacillus licheniformisペニシリナーゼ遺伝子(penP)、Bacillus subtilis xylA遺伝子およびxylB遺伝子、ならびに原核生物のβ−ラクタマーゼ遺伝子から得られるプロモーター(例えば、Villa−Kamaroffら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 75:3727−3731[1978]を参照のこと)、ならびにtacプロモーター(例えば、DeBoerら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 80:21−25[1983]を参照のこと)が挙げられる。
いくつかの実施形態では、クローニングされた本発明のバリアントトランスグルタミナーゼはまた、適切な転写ターミネーター配列(宿主細胞により認識されて転写を終結させる配列)を有する。ターミネーター配列は、ポリペプチドをコードする核酸配列の3’末端に作動可能に連結される。選択される宿主細胞内で機能的である任意のターミネーターが本発明において使用される。糸状菌宿主細胞のための例示的な転写ターミネーターとしては、限定されないが、Aspergillus oryzae TAKAアミラーゼ、Aspergillus nigerグルコアミラーゼ、Aspergillus nidulansアントラニル酸シンターゼ、Aspergillus niger α−グルコシダーゼおよびFusarium oxysporumトリプシン様プロテアーゼの遺伝子から得られるものが挙げられる(例えば、米国特許第7,399,627号(これは、参照により本明細書に組み込まれる)も参照のこと)。いくつかの実施形態では、酵母宿主細胞のための例示的なターミネーターとしては、Saccharomyces cerevisiaeエノラーゼ、Saccharomyces cerevisiaeチトクロムC(CYC1)およびSaccharomyces cerevisiaeグリセルアルデヒド−3−リン酸脱水素酵素の遺伝子から得られるものが挙げられる。酵母宿主細胞のための他の有用なターミネーターは当業者に周知である(例えば、Romanosら、Yeast 8:423−88[1992]を参照のこと)。
いくつかの実施形態では、適切なリーダー配列(これは、宿主細胞による翻訳に重要なmRNAの非翻訳領域)は、クローニングされたバリアントトランスグルタミナーゼ配列の一部である。リーダー配列は、ポリペプチドをコードする核酸配列の5’末端に作動可能に連結される。選択される宿主細胞内で機能的である任意のリーダー配列が本発明において使用される。糸状菌宿主細胞のための例示的なリーダーとしては、限定されないが、Aspergillus oryzae TAKAアミラーゼおよびAspergillus nidulansトリオースリン酸イソメラーゼの遺伝子から得られるものが挙げられる。酵母宿主細胞のための適切なリーダーとしては、限定されないが、Saccharomyces cerevisiaeエノラーゼ(ENO−1)、Saccharomyces cerevisiae 3−ホスホグリセリン酸キナーゼ、Saccharomyces cerevisiae α−因子およびSaccharomyces cerevisiaeアルコールデヒドロゲナーゼ/グリセルアルデヒド−3−リン酸脱水素酵素(ADH2/GAP)の遺伝子から得られるものが挙げられる。
いくつかの実施形態では、本発明の配列はまた、ポリアデニル化配列(核酸配列の3’末端に作動可能に連結される配列であって、ポリアデノシン残基を転写されたmRNAに付加するシグナルとして転写時に宿主細胞により認識される配列)を含む。選択される宿主細胞内で機能的である任意のポリアデニル化配列が本発明において使用される。糸状菌宿主細胞のための例示的なポリアデニル化配列としては、限定されないが、Aspergillus oryzae TAKAアミラーゼ、Aspergillus nigerグルコアミラーゼ、Aspergillus nidulansアントラニル酸シンターゼ、Fusarium oxysporumトリプシン様プロテアーゼおよびAspergillus niger α−グルコシダーゼの遺伝子から得られるものが挙げられる。酵母宿主細胞のための有用なポリアデニル化配列は、当技術分野で公知である(例えば、Guo and Sherman,Mol.Cell.Biol.,l5:5983−5990[1995]を参照のこと)。
いくつかの実施形態では、制御配列は、ポリペプチドのアミノ末端に連結されたアミノ酸配列をコードするシグナルペプチドコード領域を含み、コードされるポリペプチドを細胞の分泌経路に向けさせる。核酸配列のコード配列の5’末端は、翻訳読み枠において、分泌されるポリペプチドをコードするコード領域のセグメントと天然に連結されたシグナルペプチドコード領域を固有に含有し得る。あるいは、コード配列の5’末端は、このコード配列にとって外来であるシグナルペプチドコード領域を含有し得る。コード配列がシグナルペプチドコード領域を天然に含有しない場合、外来シグナルペプチドコード領域が必要とされ得る。
あるいは、ポリペプチドの分泌を増強するために、外来のシグナルペプチドコード領域で天然のシグナルペプチドコード領域を単に置き換え得る。しかしながら、選択される宿主細胞の分泌経路に発現したポリペプチドを誘導する任意のシグナルペプチドコード領域が本発明において使用され得る。
細菌宿主細胞のための有効なシグナルペプチドコード領域としては、限定されないが、Bacillus NClB11837マルトース生成アミラーゼ、Bacillus stearothermophilus α−アミラーゼ、Bacillus licheniformisサブチリシン、Bacillus licheniformis β−ラクタマーゼ、Bacillus stearothermophilus中性プロテアーゼ(nprT、nprS、nprM)およびBacillus subtilis prsAの遺伝子から得られるシグナルペプチドコード領域が挙げられる。さらなるシグナルペプチドは、当技術分野で公知である(例えば、Simonen and Palva,Microbiol.Rev.,57:109−137[1993]を参照のこと)。
糸状菌宿主細胞のための有効なシグナルペプチドコード領域としては、限定されないが、Aspergillus oryzae TAKAアミラーゼ、Aspergillus niger中性アミラーゼ、Aspergillus nigerグルコアミラーゼ、Rhizomucor mieheiアスパラギン酸プロテイナーゼ、Humicola insolensセルラーゼおよびHumicola lanuginosaリパーゼの遺伝子から得られるシグナルペプチドコード領域が挙げられる。
酵母宿主細胞のための有用なシグナルペプチドとしては、限定されないが、Saccharomyces cerevisiae α−因子およびSaccharomyces cerevisiaeインベルターゼの遺伝子が挙げられる。他の有用なシグナルペプチドコード領域は、当技術分野で公知である(例えば、Romanosら、[1992]、前掲を参照のこと)。
いくつかの実施形態では、制御配列は、ポリペプチドのアミノ末端に位置するアミノ酸配列をコードするプロペプチドコード領域を含む。得られるポリペプチドは、プロ酵素またはプロポリペプチド(またはいくつかの場合では、チモーゲン)として公知である。プロポリペプチドは、一般に不活性であり、プロポリペプチドからのプロペプチドの触媒的切断または自己触媒的切断により、成熟活性トランスグルタミナーゼポリペプチドに変換され得る。プロペプチドコード領域は、Bacillus subtilisアルカリ性プロテアーゼ(aprE)、Bacillus subtilis中性プロテアーゼ(nprT)、Saccharomyces cerevisiae α−因子、Rhizomucor mieheiアスパラギン酸プロテイナーゼおよびMyceliophthora thermophilaラクターゼの遺伝子から得られ得る(例えば、国際公開第95/33836号を参照のこと)。
シグナルペプチドおよびプロペプチド領域が両方とも、ポリペプチドのアミノ末端に存在する場合、プロペプチド領域は、ポリペプチドのアミノ末端の隣に配置され、シグナルペプチド領域は、プロペプチド領域のアミノ末端の隣に配置される。
いくつかの実施形態では、調節配列はまた、宿主細胞の成長に関連して、ポリペプチドの発現の調節を可能にするために使用される。調節系の例は、調節化合物の存在を含む化学的または物理的な刺激に応答して、遺伝子の発現をオンまたはオフするものである。原核生物宿主細胞では、適切な調節配列としては、限定されないが、lac、tacおよびtrpオペレーター系が挙げられる。酵母宿主細胞では、適切な調節系としては、例として、ADH2システムまたはGAL1システムが挙げられる。糸状菌では、適切な調節配列としては、TAKA α−アミラーゼプロモーター、Aspergillus nigerグルコアミラーゼプロモーターおよびAspergillus oryzaeグルコアミラーゼプロモーターが挙げられる。
調節配列の他の例は、遺伝子増幅を可能にするものである。真核生物の系では、これらとしては、メトトレキサートの存在下で増幅されるジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子および重金属で増幅されるメタロチオネイン遺伝子が挙げられる。これらの場合では、本発明のトランスグルタミナーゼポリペプチドをコードする核酸配列が調節配列に作動可能に連結される。
したがって、さらなる実施形態では、本発明は、導入される宿主の種類に応じて、操作されたトランスグルタミナーゼポリペプチドまたはそのバリアントをコードするポリヌクレオチドと、1つまたはそれを超える発現調節領域、例えばプロモーターおよびターミネーターと、複製起点などとを含む組換え発現ベクターを提供する。いくつかの実施形態では、上記様々な核酸および制御配列を一緒に結合させて、1つまたはそれを超える便利な制限部位(これは、このような部位において、ポリペプチドをコードする核酸配列の挿入または置換を可能にする)を含み得る組換え発現ベクターを産生する。あるいは、いくつかの実施形態では、核酸配列は、該核酸配列またはその配列を含む核酸構築物を、発現のための適切なベクターに挿入することにより発現させる。発現ベクターの作製では、コード配列は、コード配列が発現のための適切な制御配列と作動可能に連結されるようにベクター中に配置される。
組換え発現ベクターは、組換えDNA手順に簡便に供され得る任意の適切なベクターであって、ポリヌクレオチド配列の発現をもたらし得る任意の適切なベクター(例えば、プラスミドまたはウイルス)を含む。ベクターの選択は、典型的には、ベクターが導入される宿主細胞とのベクターの適合性に依存する。いくつかの実施形態では、ベクターは、線状または閉環状プラスミドである。
いくつかの実施形態では、発現ベクターは自律複製ベクター(すなわち、染色体外の実体として存在し、その複製が染色体複製とは独立するベクター、例えばプラスミド、染色体外因子、ミニ染色体または人工染色体)である。いくつかの実施形態では、ベクターは、自己複製を保証するための何らかの手段を含有する。あるいは、いくつかの他の実施形態では、ベクターは、宿主細胞中に導入されるとゲノムに組み込まれて、それが組み込まれた染色体(複数可)と一緒に複製される。さらに、さらなる実施形態では、宿主細胞のゲノム中またはトランスポゾン中に導入される全DNAを一緒に含有する1つのベクターもしくはプラスミドまたは2つもしくはそれを超えるベクターもしくはプラスミドが使用される。
いくつかの実施形態では、本発明の発現ベクターは、形質転換細胞の容易な選択を可能にする1つまたはそれを超える選択マーカーを含有する。「選択マーカー」は、その産物が殺生物剤耐性またはウイルス耐性、抗菌薬または重金属に対する耐性、栄養要求体への原栄養性などを与える遺伝子である。限定されないが、amdS(アセトアミダーゼ)、argB(オルニチンカルバモイルトランスフェラーゼ)、bar(ホスフィノトリシンアセチルトランスフェラーゼ)、hph(ハイグロマイシンホスホトランスフェラーゼ)、niaD(硝酸還元酵素)、pyrG(オロチジン−5’−リン酸脱炭酸酵素)、sC(硫酸アデニルトランスフェラーゼ)およびtrpC(アントラニル酸シンターゼ)ならびにこれらの等価物を含む、糸状菌宿主細胞において使用するための任意の適切な選択マーカーが本発明において使用される。Aspergillusなどの宿主細胞において有用なさらなるマーカーとしては、限定されないが、Aspergillus nidulansまたはAspergillus oryzaeのamdS遺伝子およびpyrG遺伝子、ならびにStreptomyces hygroscopicusのbar遺伝子が挙げられる。酵母宿主細胞のための適切なマーカーとしては、限定されないが、ADE2、HIS3、LEU2、LYS2、MET3、TRP1およびURA3が挙げられる。細菌選択マーカーの例としては、限定されないが、Bacillus subtilisまたはBacillus licheniformis由来のdal遺伝子またはアンピシリン、カナマイシン、クロラムフェニコールおよびまたはテトラサイクリン耐性などの抗生物質耐性を付与するマーカーが挙げられる。
いくつかの実施形態では、本発明の発現ベクターは、宿主細胞のゲノム中へのベクターの組み込みまたは細胞における、ゲノムとは独立したベクターの自律複製を可能にするエレメントを含有する。宿主細胞のゲノム中への組み込みを伴ういくつかの実施形態では、ベクターは、ポリペプチドをコードする核酸配列、または相同組換えもしくは非相同組換えによりゲノム中にベクターを組み込むためのベクターの任意の他のエレメントに依拠する。
いくつかの代替的な実施形態では、発現ベクターは、宿主細胞のゲノム中への相同組換えによる組み込みを指令するさらなる核酸配列を含有する。さらなる核酸配列は、ベクターが、宿主細胞のゲノム中に、染色体(複数可)の正確な位置(複数可)に組み込まれることを可能にする。正確な位置に組み込まれる可能性(likelihood)を増加させるために、組み込みエレメントは、相同組換えの確率を増強するために対応する標的配列と高度に相同なヌクレオチドを、好ましくは、100〜10,000塩基対、好ましくは400〜10,000塩基対、および最も好ましくは800〜10,000塩基対などの十分な数で含有する。組み込みエレメントは、宿主細胞のゲノム中の標的配列と相同な任意の配列であり得る。さらに、組み込みエレメントは、非コード核酸配列またはコード核酸配列であり得る。他方、ベクターは、非相同組換えにより宿主細胞のゲノムに組み込まれ得る。
自律複製のために、ベクターは、ベクターが問題の宿主細胞において自律的に複製することを可能にする複製起点をさらに含み得る。細菌複製起点の例は、P15A oriまたはプラスミドpBR322、pUC19、pACYCl77の複製起点(P15A oriを有するプラスミド)、または大腸菌における複製を可能にするpACYC184およびBacillusにおける複製を可能にするpUB110、pE194、pTA1060、もしくはpAMβ1である。酵母宿主細胞において使用するための複製起点の例は、2ミクロン複製起点、ARS1、ARS4、ARS1とCEN3の組み合わせおよびARS4とCEN6の組み合わせである。複製起点は、宿主細胞においてそれの機能性を温度感受性にする変異を有するものであり得る(例えば、Ehrlich,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 75:1433[1978]を参照のこと)。
いくつかの実施形態では、遺伝子産物の産生を増加させるために、1コピーを超える本発明の核酸配列を宿主細胞に挿入する。核酸配列のコピー数の増加は、配列の少なくとも1つのさらなるコピーを宿主細胞のゲノムに組み込むことにより、または増幅可能な選択マーカー遺伝子を核酸配列と共に含めることにより得られ得、この場合、細胞を適切な選択可能な薬剤の存在下で培養することにより、選択マーカー遺伝子の増幅されたコピーおよびそれにより核酸配列のさらなるコピーを含有する細胞が選択され得る。
本発明において使用するための発現ベクターの多くは市販されている。適切な市販の発現ベクターとしては、限定されないが、CMVプロモーターと、哺乳動物宿主細胞における発現のためのhGHポリアデニル化部位と、pBR322複製起点と、大腸菌における増幅のためのアンピシリン耐性マーカーとを含む、p3xFLAGTM(商標)発現ベクター(Sigma−Aldrich Chemicals)が挙げられる。他の適切な発現ベクターとしては、限定されないが、pBluescriptII SK(−)およびpBK−CMV(Stratagene)、ならびにpBR322(Gibco BRL)、pUC(Gibco BRL)、pREP4、pCEP4(Invitrogen)またはpPolyに由来するプラスミドが挙げられる(例えば、Latheら、Gene 57:193−201[1987]を参照のこと)。
したがって、いくつかの実施形態では、ベクターの増殖およびバリアントトランスグルタミナーゼ(複数可)の発現を可能にするために、少なくとも1つのバリアントトランスグルタミナーゼをコードする配列を含むベクターを宿主細胞に形質転換する。いくつかの実施形態では、バリアントトランスグルタミナーゼを翻訳後修飾して、シグナルペプチドを除去し、いくつかの場合では、分泌後に切断され得る。いくつかの実施形態では、上記形質転換宿主細胞を、バリアントトランスグルタミナーゼ(複数可)の発現を可能にする条件下、適切な栄養培地で培養する。限定されないが、適切な補充物質を含有する最小培地または複合培地を含む、宿主細胞を培養するために有用な任意の適切な培地が本発明において使用される。いくつかの実施形態では、宿主細胞をHTP培地中で成長させる。適切な培地は、様々な商業的供給者から入手可能であるか、または公開されているレシピ(例えば、American Type Culture Collectionのカタログ中)にしたがって調製され得る。
別の態様では、本発明は、本明細書で提供される改善されたトランスグルタミナーゼポリペプチドをコードするポリヌクレオチドであって、宿主細胞においてトランスグルタミナーゼ酵素を発現させるための1つまたはそれを超える制御配列に作動可能に連結されたポリヌクレオチドを含む宿主細胞を提供する。本発明の発現ベクターによりコードされるトランスグルタミナーゼポリペプチドの発現において使用するための宿主細胞は当技術分野で周知であり、限定されないが、細菌細胞、例えば、大腸菌(E. coli)、Bacillus megaterium,Lactobacillus kefir,Streptomyces and Salmonella typhimurium細胞;真菌細胞、例えば、酵母細胞(例えば、Saccharomyces cerevisiaeまたはPichia pastoris(ATCCアクセッション番号201178));昆虫細胞、例えば、Drosophila S2細胞およびSpodoptera Sf9細胞;動物細胞、例えば、CHO細胞、COS細胞、BHK細胞、293細胞およびBowes黒色腫細胞;ならびに植物細胞が挙げられる。上記宿主細胞に適切な培養培地および成長条件は、当技術分野で周知である。
トランスグルタミナーゼの発現のためのポリヌクレオチドは、当技術分野で公知の様々な方法により細胞に導入され得る。技術としては、特に、電気穿孔、微粒子銃衝撃(biolistic particle bombardment)、リポソーム媒介トランスフェクション、塩化カルシウムトランスフェクションおよびプロトプラスト融合が挙げられる。ポリヌクレオチドを細胞に導入するための様々な方法は、当業者に公知である。
いくつかの実施形態では、宿主細胞は、真核細胞である。適切な真核生物宿主細胞としては、限定されないが、真菌細胞、藻類細胞、昆虫細胞および植物細胞が挙げられる。適切な真菌宿主細胞としては、限定されないが、Ascomycota、Basidiomycota、Deuteromycota、Zygomycota、Fungi imperfectiが挙げられる。いくつかの実施形態では、真菌宿主細胞は、酵母細胞および糸状菌細胞である。本発明の糸状菌宿主細胞は、Eumycotina亜門およびOomycota亜門のすべての糸状形態を含む。糸状菌は、キチン、セルロースおよび他の複合多糖類で構成される細胞壁を有する栄養菌体を特徴とする。本発明の糸状菌宿主細胞は、酵母とは形態学的に別個のものである。
本発明のいくつかの実施形態では、糸状菌宿主細胞は、限定されないが、Achlya、Acremonium、Aspergillus、Aureobasidium、Bjerkandera、Ceriporiopsis、Cephalosporium、Chrysosporium、Cochliobolus、Corynascus、Cryphonectria、Cryptococcus、Coprinus、Coriolus、Diplodia、Endothis、Fusarium、Gibberella、Gliocladium、Humicola、Hypocrea、Myceliophthora、Mucor、Neurospora、Penicillium、Podospora、Phlebia、Piromyces、Pyricularia、Rhizomucor、Rhizopus、Schizophyllum、Scytalidium、Sporotrichum、Talaromyces、Thermoascus、Thielavia、Trametes、Tolypocladium、Trichoderma、Verticilliumおよび/またはVolvariellaならびに/またはそれらの完全世代もしくは不完全世代および同物異名、バシオニムもしくは分類学的等価物を含む任意の適切な属および種のものである。
本発明のいくつかの実施形態では、宿主細胞は、限定されないが、Candida、Hansenula、Saccharomyces、Schizosaccharomyces、Pichia、KluyveromycesまたはYarrowia種の細胞を含む酵母細胞である。本発明のいくつかの実施形態では、酵母細胞は、Hansenula polymorpha、Saccharomyces cerevisiae、Saccharomyces carlsbergensis、Saccharomyces diastaticus、Saccharomyces norbensis、Saccharomyces kluyveri、Schizosaccharomyces pombe、Pichia pastoris、Pichia finlandica、Pichia trehalophila、Pichia kodamae、Pichia membranaefaciens、Pichia opuntiae、Pichia thermotolerans、Pichia salictaria、Pichia quercuum、Pichia pijperi、Pichia stipitis、Pichia methanolica、Pichia angusta、Kluyveromyces lactis、Candida albicansまたはYarrowia lipolyticaである。
本発明のいくつかの実施形態では、宿主細胞は、藻類細胞、例えばChlamydomonas(例えば、C.reinhardtii)およびPhormidium(P.sp.ATCC29409)である。
いくつかの他の実施形態では、宿主細胞は、原核細胞である。適切な原核細胞としては、限定されないが、グラム陽性、グラム陰性およびグラム不定細菌細胞が挙げられる。限定されないが、Agrobacterium、Alicyclobacillus、Anabaena、Anacystis、Acinetobacter、Acidothermus、Arthrobacter、Azobacter、Bacillus、Bifidobacterium、Brevibacterium、Butyrivibrio、Buchnera、Campestris、Camplyobacter、Clostridium、Corynebacterium、Chromatium、Coprococcus、Escherichia、Enterococcus、Enterobacter、Erwinia、Fusobacterium、Faecalibacterium、Francisella、Flavobacterium、Geobacillus、Haemophilus、Helicobacter、Klebsiella、Lactobacillus、Lactococcus、Ilyobacter、Micrococcus、Microbacterium、Mesorhizobium、Methylobacterium、Methylobacterium、Mycobacterium、Neisseria、Pantoea、Pseudomonas、Prochlorococcus、Rhodobacter、Rhodopseudomonas、Rhodopseudomonas、Roseburia、Rhodospirillum、Rhodococcus、Scenedesmus、Streptomyces、Streptococcus、Synecoccus、Saccharomonospora、Staphylococcus、Serratia、Salmonella、Shigella、Thermoanaerobacterium、Tropheryma、Tularensis、Temecula、Thermosynechococcus、Thermococcus、Ureaplasma、Xanthomonas、Xylella、YersiniaおよびZymomonasを含む任意の適切な細菌生物が本発明において使用される。いくつかの実施形態では、宿主細胞は、Agrobacterium、Acinetobacter、Azobacter、Bacillus、Bifidobacterium、Buchnera、Geobacillus、Campylobacter、Clostridium、Corynebacterium、Escherichia、Enterococcus、Erwinia、Flavobacterium、Lactobacillus、Lactococcus、Pantoea、Pseudomonas、Staphylococcus、Salmonella、Streptococcus、StreptomycesまたはZymomonasの種である。いくつかの実施形態では、細菌宿主株は、ヒトに対して非病原性である。いくつかの実施形態では、細菌宿主株は、工業用株である。多数の細菌工業用株が公知であり、本発明において適切である。本発明のいくつかの実施形態では、細菌宿主細胞は、Agrobacterium種(例えば、A.radiobacter、A.rhizogenesおよびA.rubi)である。本発明のいくつかの実施形態では、細菌宿主細胞は、Arthrobacter種(例えば、A.aurescens、A.citreus、A.globiformis、A.hydrocarboglutamicus、A.mysorens、A.nicotianae、A.paraffineus、A.protophonniae、A.roseoparqffinus、A.sulfureusおよびA.ureafaciens)である。本発明のいくつかの実施形態では、細菌宿主細胞は、Bacillus種(例えば、B.thuringensis、B.anthracis、B.megaterium、B.subtilis、B.lentus、B.circulans、B.pumilus、B.lautus、B.coagulans、B.brevis、B.firmus、B.alkaophius、B.licheniformis、B.clausii、B.stearothermophilus、B.haloduransおよびB.amyloliquefaciens)である。いくつかの実施形態では、宿主細胞は、限定されないが、B.subtilis、B.pumilus、B.licheniformis、B.megaterium、B.clausii、B.stearothermophilusまたはB.amyloliquefaciensを含む工業用Bacillus株である。いくつかの実施形態では、Bacillus宿主細胞は、B.subtilis、B.licheniformis、B.megaterium、B.stearothermophilusおよび/またはB.amyloliquefaciensである。いくつかの実施形態では、細菌宿主細胞は、Clostridium種(例えば、C.acetobutylicum、C.tetani E88、C.lituseburense、C.saccharobutylicum、C.perfringensおよびC.beijerinckii)である。いくつかの実施形態では、細菌宿主細胞は、Corynebacterium種(例えば、C.glutamicumおよびC.acetoacidophilum)である。いくつかの実施形態では、細菌宿主細胞は、Escherichia種(例えば、大腸菌)である。いくつかの実施形態では、宿主細胞は大腸菌W3110である。いくつかの実施形態では、細菌宿主細胞は、Erwinia種(例えば、E.uredovora、E.carotovora、E.ananas、E.herbicola、E.punctataおよびE.terreus)である。いくつかの実施形態では、細菌宿主細胞は、Pantoea種(例えば、P.citreaおよびP.agglomerans)である。いくつかの実施形態では、細菌宿主細胞は、Pseudomonas種(例えば、P.putida、P.aeruginosa、P.mevaloniiおよびP.sp.D−0l 10)である。いくつかの実施形態では、細菌宿主細胞は、Streptococcus種(例えば、S.equisimiles、S.pyogenesおよびS.uberis)である。いくつかの実施形態では、細菌宿主細胞は、Streptomyces種(例えば、S.ambofaciens、S.achromogenes、S.avermitilis、S.coelicolor、S.aureofaciens、S.aureus、S.fungicidicus、S.griseusおよびS.lividans)である。いくつかの実施形態では、細菌宿主細胞は、Zymomonas種(例えば、Z.mobilisおよびZ.lipolytica)である。
本発明において使用される多くの原核生物株および真核生物株は、American Type Culture Collection(ATCC)、Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH(DSM)、Centraalbureau Voor Schimmelcultures(CBS)およびAgricultural Research Service Patent Culture Collection,Northern Regional Research Center(NRRL)などのいくつかの培養細胞保存機関(culture collection)から公的に容易に入手可能である。
いくつかの実施形態では、宿主細胞は、タンパク質分泌、タンパク質安定性ならびに/またはタンパク質の発現および/もしくは分泌のために望ましい他の特性が改善される特徴を有するように遺伝子改変される。遺伝子改変は、遺伝子工学の技術および/または古典的な微生物学的技術(例えば、化学的なまたはUV変異誘発およびその後の選択)により達成され得る。実際、いくつかの実施形態では、組換えによる改変と古典的な選択技術の組み合わせを使用して宿主細胞を産生する。組換え技術を使用して、核酸分子は、宿主細胞中および/または培養培地中でのトランスグルタミナーゼバリアント(複数可)の収量の増加がもたらされる様式で導入、欠失、阻害または改変され得る。例えば、Alp1機能のノックアウトは、プロテアーゼが欠損した細胞をもたらし、pyr5機能のノックアウトは、ピリミジン欠損表現型を有する細胞をもたらす。1つの遺伝子工学アプローチでは、コードされるタンパク質の発現を抑制するために、相同組換えを使用して、インビボで遺伝子を特異的にターゲティングすることによる標的遺伝子改変を誘導する。代替的なアプローチでは、遺伝子発現の阻害にsiRNA、アンチセンスおよび/またはリボザイム技術を使用する。限定されないが、タンパク質をコードする遺伝子の全部または一部の欠失、および遺伝子産物の発現または活性を破壊する部位特異的変異誘発を含む、細胞におけるタンパク質の発現を低下させるための様々な方法が当技術分野で公知である(例えば、Chaverocheら、Nucl.Acids Res.,28:22 e97[2000];Choら、Molec.Plant Microbe Interact.,19:7−15[2006];Maruyama and Kitamoto,Biotechnol Lett.,30:1811−1817[2008];Takahashiら、Mol.Gen.Genom.,272:344−352[2004];およびYouら、Arch.Micriobiol.,191:615−622[2009](これらはすべて、参照により本明細書に組み込まれる)を参照のこと)。ランダム変異誘発、その後の所望の変異についてのスクリーニングも使用される(例えば、Combierら、FEMS Microbiol.Lett.,220:141−8[2003];およびFironら、Eukary.Cell 2:247−55[2003](これらは両方とも、参照により本明細書に組み込まれる)を参照のこと)。
宿主細胞へのベクターまたはDNA構築物の導入は、限定されないが、リン酸カルシウムトランスフェクション、DEAE−デキストラン媒介トランスフェクション、PEG媒介形質転換、電気穿孔または他の当技術分野で公知の一般的な技術を含む、当技術分野で公知の任意の適切な方法を使用して達成され得る。いくつかの実施形態では、大腸菌発現ベクターpCK100900i(米国特許出願公開第2006/0195947号(これは、参照により本明細書に組み込まれる)を参照のこと)が使用される。
いくつかの実施形態では、本発明の操作された宿主細胞(すなわち、「組換え宿主細胞」)は、プロモーターを活性化するために、形質転換体を選択するために、またはトランスグルタミナーゼポリヌクレオチドを増幅するために必要に応じて改変された従来の栄養培地中で培養される。培養条件、例えば温度、pHなどは、発現のために選択された宿主細胞に以前使用したものであり、当業者には周知である。前述のように、細菌起源、植物起源、動物(特に哺乳動物)起源および古細菌起源の細胞を含む多くの細胞の培養および産生のために、多くの標準的な参考文献およびテキストが利用可能である。
いくつかの実施形態では、本発明のバリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドを発現する細胞を、バッチ発酵条件または連続発酵条件の下で成長させる。古典的な「バッチ発酵」は、閉鎖系であり、培地の組成は発酵の開始時に設定し、発酵中に人為的な交換には供さない。「フェドバッチ発酵」はバッチ系のバリエーションであり、これも本発明において使用される。このバリエーションでは、発酵が進行するにしたがって基質を徐々に増加させて添加する。フェドバッチ系は、異化産物抑制により細胞の代謝が阻害される可能性がある場合、および培地中の基質を限られた量にすることが望ましい場合に有用である。バッチ発酵およびフェドバッチ発酵は一般的であり、当技術分野で周知である。「連続発酵」は、開放系であり、規定の発酵培地をバイオリアクターに連続的に添加し、同時に処理のために等量の馴化培地を取り出す。連続発酵は、一般に、培養物を、細胞が主に対数期成長にある、一定の高密度に維持する。連続発酵系は、定常状態成長条件を維持するよう努める。連続発酵プロセスのために栄養分および成長因子をモジュレートするための方法ならびに生成物が形成される速度を最大にするための技術は、工業微生物学の技術分野で周知である。
本発明のいくつかの実施形態では、バリアントトランスグルタミナーゼ(複数可)の産生において、無細胞転写/翻訳系が使用される。いくつかの系が市販されており、前記方法は当業者に周知である。
本発明は、バリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドまたは生物学的に活性なその断片を作製する方法を提供する。いくつかの実施形態では、方法は、配列番号2、6、34および/または256に対して少なくとも約70%(または少なくとも約75%、少なくとも約80%、少なくとも約85%、少なくとも約90%、少なくとも約95%、少なくとも約96%、少なくとも約97%、少なくとも約98%または少なくとも約99%)の配列同一性を含み、本明細書で提供される少なくとも1つの変異を含むアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドで形質転換宿主細胞を提供すること;宿主細胞がコードされたバリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドを発現する条件下で、培養培地中で形質転換宿主細胞を培養すること;ならびに必要に応じて、発現されたバリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドを回収もしくは単離すること、および/または、発現されたバリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドを含有する培養培地を回収もしくは単離することを含む。いくつかの実施形態では、前記方法は、コードされるトランスグルタミナーゼポリペプチドの発現後に形質転換宿主細胞を必要に応じて溶解すること、ならびに発現されたバリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドを細胞溶解物から必要に応じて回収および/または単離することをさらに提供する。本発明は、バリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドで形質転換宿主細胞を、バリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドの生成に適切な条件下で培養すること、およびバリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドを回収することを含む、バリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドの作製方法をさらに提供する。典型的には、トランスグルタミナーゼポリペプチドの回収または単離は、宿主細胞の培養培地、宿主細胞またはその両方から、本明細書に記載されるものを含む当技術分野で周知のタンパク質回収技術を使用したものである。いくつかの実施形態では、宿主細胞を遠心分離により回収し、物理的または化学的手段により破壊し、得られた粗製抽出物をさらなる精製のために保持する。タンパク質の発現において用いられる微生物細胞は、限定されないが、凍結解凍サイクリング、超音波処理、機械的破壊、および/または細胞溶解剤の使用、ならびに当業者に周知の多くの他の適切な方法を含む任意の便利な方法により破壊され得る。
宿主細胞において発現された操作されたトランスグルタミナーゼ酵素は、特に、リゾチーム処理、超音波処理、濾過、塩析、超遠心分離およびクロマトグラフィーを含む、タンパク質精製のための当技術分野で公知の技術のいずれか1つまたはそれよりも多くを使用して細胞および/または培養培地から回収され得る。大腸菌などの細菌からのタンパク質の溶解および高効率での抽出のための適切な溶液は、商品名CelLytic B(商標)(Sigma−Aldrich)で市販されている。したがって、いくつかの実施形態では、得られたポリペプチドを回収/単離し、必要に応じて、当技術分野で公知のいくつかの方法のいずれかにより精製する。例えば、いくつかの実施形態では、ポリペプチドを、限定されないが、遠心分離、濾過、抽出、噴霧乾燥、蒸発、クロマトグラフィー(例えば、イオン交換、アフィニティー、疎水性相互作用、クロマトフォーカシングおよびサイズ排除)または沈殿を含む従来の手順により栄養培地から単離する。いくつかの実施形態では、所望のとおり、成熟タンパク質の形状の完成において、タンパク質リフォールディングステップを使用する。加えて、いくつかの実施形態では、最終的な精製ステップにおいて高速液体クロマトグラフィー(HPLC)を用いる。例えば、いくつかの実施形態では、当技術分野で公知の方法が本発明において使用される(例えば、Parryら、Biochem.J.,353:117[2001];およびHongら、Appl.Microbiol.Biotechnol.,73:1331[2007](これらは両方とも、参照により本明細書に組み込まれる)を参照のこと)。実際に、当技術分野で公知の任意の適切な精製方法が本発明において使用される。
トランスグルタミナーゼポリペプチドを単離するためのクロマトグラフィー技術としては、限定されないが、逆相クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル電気泳動およびアフィニティークロマトグラフィーが挙げられる。特定の酵素を精製するための条件は、正味の電荷、疎水性、親水性、分子量、分子の形などの要因に部分的に依存し、当業者には公知である。
いくつかの実施形態では、改善されたトランスグルタミナーゼ酵素の単離において、親和性技術が使用される。アフィニティークロマトグラフィー精製のために、トランスグルタミナーゼポリペプチドに特異的に結合する任意の抗体が使用され得る。抗体の産生のために、トランスグルタミナーゼによる注射により、限定されないが、ウサギ、マウス、ラットなどを含む様々な宿主動物を免疫し得る。側鎖官能基により、または側鎖官能基に結合したリンカーにより、トランスグルタミナーゼポリペプチドをBSAなどの適切な担体に結合させ得る。免疫学的応答を増加させるために、宿主種に応じて、限定されないが、フロイント(完全および不完全)、水酸化アルミニウムなどの無機ゲル、リゾレシチンなどの表面活性物質、プルロニック(登録商標)ポリオール、ポリアニオン、ペプチド、油乳剤、キーホールリンペットヘモシアニン、ジニトロフェノール、ならびにBCG(Bacillus Calmette Guerin)およびCorynebacterium parvumなどの潜在的に有用なヒトアジュバントを含む様々なアジュバントを使用し得る。
いくつかの実施形態では、トランスグルタミナーゼバリアントを調製し、酵素を発現する細胞の形態で、粗製抽出物として、または単離もしくは精製された調製物として使用する。いくつかの実施形態では、トランスグルタミナーゼバリアントを凍結乾燥物として、粉末(例えば、アセトン粉末)の形態で、または酵素溶液として調製する。いくつかの実施形態では、トランスグルタミナーゼバリアントは、実質的に純粋な調製物の形態である。
いくつかの実施形態では、トランスグルタミナーゼポリペプチドを任意の適切な固体基材に結合させる。固体基材としては、限定されないが、固相、面(surface)および/または膜が挙げられる。固体支持体としては、限定されないが、ポリスチレン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリフルオロエチレン、ポリエチレンオキシおよびポリアクリルアミド、ならびにそれらのコポリマーおよびグラフトなどの有機ポリマーが挙げられる。固体支持体はまた、無機物、例えばガラス、シリカ、細孔制御ガラス(CPG)、逆相シリカまたは金属、例えば金または白金であり得る。基材の形状は、ビーズ、球体、粒子、顆粒、ゲル、膜または面の形態であり得る。面は、平面、実質的に平面または非平面であり得る。固体支持体は、多孔性または非多孔性であり得、膨潤特性または非膨潤特性を有し得る。固体支持体は、ウェル、凹部(depression)または他の入れ物、容器、フィーチャまたは位置の形態で形成され得る。試薬のロボット送達が処理可能な様々な場所において、または検出方法および/もしくは機器により処理可能な様々な場所において、複数の支持体がアレイ上に配置され得る。
いくつかの実施形態では、免疫学的方法を使用してトランスグルタミナーゼバリアントを精製する。1つのアプローチでは、従来の方法を使用してバリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドに対して(例えば、配列番号2、6、34および/または256のいずれかを含むポリペプチドおよび/またはそれらの免疫原性断片に対して)生じさせた抗体をビーズ上に固定し、バリアントトランスグルタミナーゼが結合する条件下で細胞培養培地と混合し、沈殿させる。関連アプローチでは、免疫クロマトグラフィーが使用される。
いくつかの実施形態では、バリアントトランスグルタミナーゼを、非酵素部分を含む融合タンパク質として発現させる。いくつかの実施形態では、バリアントトランスグルタミナーゼ配列を、精製を容易にするドメインと融合する。本明細書で使用される場合、用語「精製を容易にするドメイン」は、それが融合するポリペプチドの精製を媒介するドメインを指す。適切な精製ドメインとしては、限定されないが、金属キレート化ペプチド、固定された金属上での精製を可能にするヒスチジン−トリプトファンモジュール、グルタチオンに結合する配列(例えば、GST)、赤血球凝集素(HA)タグ(インフルエンザ赤血球凝集素タンパク質に由来するエピトープに対応する;例えば、Wilsonら、Cell 37:767[1984]を参照のこと)、マルトース結合性タンパク質配列、FLAGS伸長/アフィニティー精製システムにおいて利用されるFLAGエピトープ(例えば、Immunex Corpから入手可能なシステム)などが挙げられる。本明細書に記載される組成物および方法における使用が企図される1つの発現ベクターは、エンテロキナーゼ切断部位により分離された、ポリヒスチジン領域と融合した本発明のポリペプチドを含む融合タンパク質の発現をもたらす。ヒスチジン残基は、IMIAC(固定された金属イオンアフィニティークロマトグラフィー;例えば、Porathら、Prot.Exp.Purif.,3:263−281[1992]を参照のこと)による精製を容易にし、エンテロキナーゼ切断部位は、バリアントトランスグルタミナーゼポリペプチドを融合タンパク質から分離するための手段を提供する。外来ポリペプチドをグルタチオンSトランスフェラーゼ(GST)との融合タンパク質として発現させるために、pGEXベクター(Promega)も使用され得る。一般に、このような融合タンパク質は可溶性であり、溶解細胞から、リガンド−アガロースビーズ(例えば、GST融合物の場合にはグルタチオン−アガロース)への吸着、その後の遊離のリガンドの存在下での溶出により容易に精製され得る。
実験
以下の代表的な実施例において、本開示の様々なフィーチャおよび実施形態を例証するが、これらは例示的なものであり、限定的なものではない。
以下の実験的開示では、以下の略語が適用される:ppm(百万分率);M(モル濃度);mM(ミリモル濃度)、uMおよびμM(マイクロモル濃度);nM(ナノモル濃度);mol(モル);gmおよびg(グラム);mg(ミリグラム);ugおよびμg(マイクログラム);Lおよびl(リットル);mlおよびmL(ミリリットル);cm(センチメートル);mm(ミリメートル);umおよびμm(マイクロメートル);sec.(秒);min(分);hおよびhr(時間);U(単位);MW(分子量);rpm(1分当たりの回転数);℃(摂氏度);RT(室温);CDS(コード配列);DNA(デオキシリボ核酸);RNA(リボ核酸);aa(アミノ酸);TB(Terrific Broth;12g/Lのバクト−トリプトン、24g/Lの酵母抽出物、4mL/Lのグリセロール、65mMのリン酸カリウム、pH7.0、1mMのMgSO);LB(ルリアベルターニブロス);CAM(クロラムフェニコール);PMBS(硫酸ポリミキシンB);IPTG(イソプロピルチオガラクトシド);PEG(ポリエチレングリコール);TFA(トリフルオロ酢酸);CHES(2−シクロヘキシルアミノ)エタンスルホン酸;アセトニトリル(MeCN);ジメチルスルホキシド(DMSO);ジメチルアセトアミド(DMAc);HPLC(高速液体クロマトグラフィー);UPLC(超高速液体クロマトグラフィー);FIOPC(陽性対照に対する改善倍率);HTP(ハイスループット);MWD(複数波長検出器);UV(紫外線);Codexis(Codexis,Inc.,Redwood City,CA);Sigma−Aldrich(Sigma−Aldrich,St.Louis,MO);Millipore(Millipore,Corp.,Billerica MA);Difco(Difco Laboratories,BD Diagnostic Systems,Detroit,MI); GeneOracle(GeneOracle,Santa Clara,CA);Boca Scientific(Boca Scientific,Ind.,Boca Raton,FL);Pall(Pall Corporation,Port Washington,NY); Vivaproducts(Vivaproducts,Inc.,Littleton,MA);Thermotron(Thermotron,Inc.,Holland,MI);Infors(Infors USA,Inc.,Annapolis Junction,MD);Genetix(Genetic USA Inc.,Beaverton,OR);Daicel(Daicel,West Chester,PA);Genetix(Genetix USA,Inc.,Beaverton,OR);Molecular Devices(Molecular Devices,LLC,Sunnyvale,CA);Applied Biosystems(Applied Biosystems、Life Technologies,Corp.の一部門、Grand Island,NY);Life Technologies(Life Technologies,Corp.,Grand Island,NY);Agilent(Agilent Technologies,Inc.,Santa Clara,CA);Thermo Scientific(Thermo Fisher Scientificの一部門、Waltham,MA);(Infors;Infors−HT,Bottmingen/Basel,Switzerland);Corning(Corning,Inc.,Palo Alto,CA);およびBio−Rad(Bio−Rad Laboratories,Hercules,CA);Microfluidics(Microfluidics Corp.,Newton,MA);Waters(Waters Corp.,Milford,MA)。
実施例1
野生型Streptomyces mobaraensisトランスグルタミナーゼ(MTG)遺伝子の取得および発現ベクターの構築
Streptomyces mobaraensisトランスグルタミナーゼ(MTG)をコードするプロ遺伝子を、報告されているアミノ酸配列(Shimonishiら、J.Biol.Chem.,268:11565−115720[1993])に基づいて、B.megateriumにおける発現のためにコドン最適化した。GenOracleにより遺伝子を合成し、専有のソフトウェアを使用してコドン最適化した。DNAを配列検証した。BsrGI/NgoMIVクローニング部位を使用して、B.megaterium「最適化」シグナルペプチド+スペーサー領域(アミノ酸残基トレオニンおよびセリンをコードする6塩基)の後ろにおいて、プロMTG遺伝子を大腸菌/B.megateriumシャトルベクターpSSBmにクローニングした。ベクターpSSBmは、シャトルベクターpMM1525(Boca Scientific)をベースとする改変ベクターである。シグナルペプチドおよびプロ遺伝子は、シャトルベクター上に存在するキシロースリプレッサー遺伝子(xylR)により調節されるキシロースプロモーター(Pxyl)の制御下にあった。ベクターは、Bacillusの「repU」複製起点と、テトラサイクリンアンピシリン耐性マーカーとを含有していた。ベクターはまた、pBR322複製起点と、大腸菌における維持のためのアンピシリン耐性マーカーとを含有していた。B.megateriumプロトプラストへのDNA移入の標準的なPEG媒介方法により、得られたプラスミド(pSSBm−プレプロMTG)を形質転換した。形質転換体由来のプレプロMTG配列を検証した。B.megateriumシグナルペプチドを含むプレプロMTGのポリヌクレオチド配列をシャトルpSSBmベクターにクローニングし、配列は配列番号6に提供されており、C末端ヒスチジン精製タグを有するプロMTGの配列は配列番号2を含み、成熟MTGの配列は配列番号4を含む。
実施例2
B.megaterium振盪フラスコ手順
プレプロMTG遺伝子を有するプラスミドを含有するB.megateriumの単一微生物コロニーを、10μg/mLテトラサイクリンを含有する3mlのルリア−ベルターニ(LB)ブロス(0.01g/Lカゼイン由来ペプトン、0.005g/L酵母抽出物、0.01g/L塩化ナトリウム)に接種した。細胞を、250rpmで振盪しながら37℃で少なくとも16時間一晩成長させた。次いで、培養物を、1000mlフラスコ中で100mLのA5培地(2g/L(NH4)SO、3.5g/L KHHPO、7.3g/L NaHPO、1g/L酵母抽出物、pH6.8まで)、100μLの微量元素溶液(49g/L MnCl.4HO、45g/L CaCl、2.5g/L(NH)Mo.O24.HO、2.5g/L CoCl.6HO)、1.5mLの20%グルコース、150μLの1M MgSO、100μLの10mg/mLテトラサイクリン、100μLの2.5g/L FeSO.7HOに希釈して、0.2の光学密度600nm(OD600)にし、37℃で成長させた。培養物のOD600が0.6〜0.8になったら、0.5%キシロース(最終濃度)でプレプロMTG遺伝子の発現を誘導し、少なくとも16時間一晩インキュベートした。遠心分離(4000rpm、15分間、4℃)により、細胞をペレット化した。分泌した成熟MTG酵素を含有する透明な培地上清を収集し、60mLの上清をJumbosepコンセントレーター(PES膜、細孔径3,000MWCO;Pall)の上部セルに移した。容量が20mL未満になるまで(約45分間)、上清を室温、4000rpmで遠心分離した。濾液を廃棄し、残った20mLの上清を濃縮液に添加し、40mLの最終容量にした。容量が約20mLに達するまで(約45分間)、40mLの遠心分離を室温、4000rpmで継続した。20mLの5×濃縮液をVivaspin 20コンセントレーター(PES膜、細孔径10,000MWCO;Vivaproducts)に移し、容量が約1mLになるまで(約60分間)遠心分離した。次いで、50mM NaOAcバッファー、pH=5.0を20mL容量まで添加し(1回目のバッファー交換)、容量が約1mLになるまで(約60分間)、遠心分離を室温、4000rpmで継続した。次いで、50mM NaOAcバッファーpH=5.0を20mL容量まで添加し(2回目のバッファー交換)、容量が約5mLになるまで(約60分間)、遠心分離を室温、4000rpmで継続した。20×濃縮液を十分に混合し、保存し、−20℃で保存した。本明細書に記載されるヒドロキシメートアッセイおよびインスリンアッセイを使用してMTG活性を確認した。
実施例3
改善されたMTGバリアントを同定するためのB.megateriumのハイスループットアッセイ
バリアントプレプロMTG遺伝子を含有するプラスミドライブラリーをB.megateriumに形質転換し、DM3再生培地(400mM二塩基性コハク酸ナトリウム、pH7.3、0.5%カザミノ酸、0.5%酵母抽出物、0.4%KHPO、0.2%KHPO、20mM MgCl、0.5%グルコースおよび0.2%BSA)オーバーレイと共に3μg/mLテトラサイクリンを含有するルリア−ベルターニ(LB)寒天プレートにプレーティングした。30℃で少なくとも18時間インキュベートした後、Q−bot(登録商標)ロボットコロニーピッカー(Genetix)を使用して、コロニーを、180μLのLBおよび10μg/mLテトラサイクリンを含有するシャロー96ウェルウェルマイクロタイタープレートにピッキングした。細胞を、200rpmで振盪しながら湿度85%、37℃で一晩成長させた。次いで、20μLのこの培養物を、10μg/mLテトラサイクリン、1%キシロースおよび0.25mM ZnSOと共に380μLの継代培養培地(実施例2に記載されているA5 0.3%グルコース培地)を含有する96ウェルマイクロタイタープレート(ディープウェル)に移した。次いで、プレートを、250rpmで振盪しながら湿度85%、37℃で約15〜18時間インキュベートした。次いで、これらのプレートを4000rpmで15分間遠心分離し、分泌した成熟MTG酵素を含有する透明な培地上清をハイスループットヒドロキシメートアッセイに使用した。
実施例4
組換えTG遺伝子を含有する大腸菌発現宿主
本発明の初期トランスグルタミナーゼ(TG)親酵素(配列番号6)を、大腸菌における発現のためにコドン最適化し、合成し、lacIリプレッサーの制御下でlacプロモーターに作動可能に連結してpCK110900ベクターにクローニングした(例えば、米国特許第7,629,157号および米国特許出願公開第2016/0244787号(これらは両方とも、すべての目的のためにその全体が参照により本明細書に組み込まれる)を参照のこと)。発現ベクターはまた、P15a複製起点とクロラムフェニコール耐性遺伝子を含有する。当技術分野で公知の標準的な方法を使用して、得られたプラスミドを大腸菌W3110に形質転換した。当技術分野で公知のように(例えば、米国特許第8,383,346号および国際公開第2010/144103号(これらは両方とも、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)を参照のこと)、細胞をクロラムフェニコール選択に供することにより、形質転換体を単離した。
実施例5
HTP TG含有湿細胞ペレットの調製
モノクローナルコロニーからの組換えTGコード遺伝子を含有する大腸菌細胞を、各ウェルにおいて1%グルコースおよび30μg/mLクロラムフェニコールを含有する180μlのLBを含有する96ウェルシャローウェルマイクロタイタープレートのウェルに接種した。プレートをO透過性シールで密封し、培養物を30℃、200rpmおよび湿度85%で一晩成長させた。次いで、10μlの各細胞培養物を、390mLのTBおよび30μg/mL CAMを含有する96ウェルディープウェルプレートのウェルに移した。ディープウェルプレートをO透過性シールで密閉し、0.6〜0.8のOD600が達成されるまで、30℃、250rpmおよび湿度85%でインキュベートした。次いで、IPTGにより細胞培養物を 1mMの最終濃度に誘導し、元々使用されているのと同じ条件下で一晩インキュベートした。次いで、4000rpmにおける10分間の遠心分離を使用して、細胞をペレット化した。上清を廃棄し、溶解前にペレットを−80℃で凍結した。
細胞を溶解させるために、20mMトリス−HClバッファー、pH7.5、1mg/mLリゾチームおよび0.5mg/mL PMBSを含有する225μlの溶解バッファーを細胞ペーストに添加した。細胞を、ベンチトップシェーカー上で振盪しながら室温で2時間インキュベートした。次いで、プレートを4000rpmおよび4℃で15分間遠心分離し、透明な上清をその後のステップで使用した。
プロ酵素を成熟酵素に活性化するために、60uLの50mMトリス−HClバッファー、pH8.0中の2mg/mLディスパーゼを175uLの上記大腸菌上清に添加し、37℃で1時間インキュベートした。
実施例6
TGバリアントのHTP精製
記載されているように改変した製造業者のプロトコールを使用して、HisPur(商標)Ni−NTAスピンプレート(Life Technologies,cat #88230)中で、活性化溶解物のHTP精製を行った。最初に、実施例5に記載されているように得た225uLのディスパーゼ活性化溶解物を、50mMリン酸Na、pH7.5、300mM NaClおよび10mMイミダゾールを含有する等体積の結合バッファーで希釈した。次いで、165uLの希釈溶解物を、結合バッファーで予め平衡化したHisPur(商標)Ni−NTAスピンプレートに適用し、室温で10分間インキュベートし、続いて、遠心分離した。このステップを1回繰り返した。次いで、スピンプレートを、50mMリン酸Na、pH7.5、300mM NaClおよび25mMイミダゾールから構成される600uLの洗浄バッファーで洗浄した。次いで、精製酵素を、50mMリン酸Na、pH7.5、300mM NaClおよび250mMイミダゾールを含有する105uLの溶出バッファーで溶出させた。
実施例7
振盪フラスコ(SF)培養物からの凍結乾燥溶解物の調製
上記のように成長させた選択したHTP培養物を、1%グルコースおよび30μg/ml CAMを含むLB寒天プレート上にプレーティングし、37℃で一晩成長させた。各培養物からの単一コロニーを、1%グルコースおよび30μg/ml CAMを含む6mlのLBに移した。培養物を30℃、250rpmで18時間成長させ、30μg/ml CAMを含有する250mlのTB中、約1:50で継代培養し、0.05の最終OD600にした。培養物を30℃、250rpmで約195分間成長させて0.6〜0.8のOD600にし、1mM IPTGで誘導した。次いで、培養物を30℃、250rpmで20時間成長させた。培養物を4000rpm×20分間遠心分離した。上清を廃棄し、ペレットを30mlの20mMトリス−HCl、pH7.5に再懸濁した。細胞をペレット化し(4000rpm×20分間)、−80℃で120分間凍結させた。凍結ペレットを30mlの20mMトリス−HCl pH7.5に再懸濁し、Microfluidizer(登録商標)プロセッサーシステム(Microfluidics)を使用して18,000psiで溶解させた。溶解物をペレット化し(10,000rpm×60分間)、上清を凍結させ、凍結乾燥させて、振盪フラスコ(shake flake)(SF)酵素を生成した。
実施例8
B.megateriumにより発現されたトランスグルタミナーゼの活性の改善
実施例3に記載されているように得たHTP B.megaterium細胞ペレットを4000rpmおよび4℃で15分間遠心分離し、透明な培地上清をその後の生体触媒反応で使用した。100μLの0.2Mトリス−HCl、pH8.0、0.04Mグルタミル供与体基質Z−Gln−Gly(Sigma,C6154)、0.1Mヒドロキシルアミン、0.01Mグルタチオンおよび5μlのHTP B.megaterium培養溶解物上清を含有する96ウェルディープウェルプレート中で、HTP反応を行った。Thermotron(登録商標)タイタープレートシェーカー(3mm振幅(throw)、モデル# AJ185,Infors)中で、HTPプレートを37℃、100rpmで35分間インキュベートした。0.3Mトリクロロ酢酸および2M FeCl.6HOを含有する100μlの0.8M HClを用いて、反応をクエンチした。サンプルの吸光度を525nmで記録した。
指定された反応条件下における対応する骨格の吸光度により正規化された生成物の吸光度として、陽性対照に対する改善倍率(FIOPC)を計算した。結果は以下の表8.1に示されている。
Figure 2021502068
実施例9
大腸菌において発現された活性トランスグルタミナーゼの改善
当技術分野で公知の十分に確立された技術(例えば、飽和変異誘発および以前に同定された有益な変異の組換え)を使用して、操作された遺伝子を含有する親酵素(配列番号2)のライブラリーを産生した。実施例4に記載されているようにHTPにおいて、各遺伝子によりコードされるポリペプチドを産生し、実施例5に記載されているように可溶性溶解物を生成した。以下のアッセイを使用して、これらのバリアントポリペプチドの活性を評価した。
アッセイA:グルタチオンアッセイ
100μLの0.2Mトリス−HCl、pH8.0、0.04M Z−Gln−Gly、0.1Mヒドロキシルアミン、0.01Mグルタチオンおよび10uLの活性化溶解物上清を含有する96ウェルディープウェルプレート中で、HTP反応を行った。Thermotron(登録商標)タイタープレートシェーカー(3mm振幅、モデル# AJ185,Infors)中で、HTPプレートを37℃、300rpmで30分間インキュベートした。0.8M HCl、0.3Mトリクロロ酢酸および2M FeCl.6HOを含有する100μlのクエンチング溶液を用いて、反応をクエンチし、ベンチトップシェーカーを使用して10分間混合した。次いで、プレートを4000rpmで5分間遠心分離し、吸光度を525nmで記録した。指定された反応条件下における対応する骨格のUVシグナルにより正規化されたバリアントのUVシグナルとして、陽性対照に対する改善倍率(FIOPC)を計算した。
アッセイB:インスリンアッセイ
200μLの0.1Mトリス−HCl、pH8.0、1g/Lインスリン、25mM EDTA、1.25mM Z−Gln−供与体基質および実施例6に記載されている70uLの精製溶解物を含有する96ウェルディープウェルプレート中で、HTP反応を行った。Thermotron(登録商標)タイタープレートシェーカー(3mm振幅、モデル# AJ185,Infors)中で、HTPプレートを30℃、300rpmで24時間インキュベートした。200μlのDMSOを用いて、反応をクエンチし、ベンチトップシェーカーを使用して5分間混合した。次いで、プレートを4000rpmで5分間遠心分離し、分析のために上清をLC−MSにロードした。LC−MSおよびUVシグナルの両方を収集した。指定された反応条件下における対応する骨格のUVシグナルにより正規化されたバリアント中の改変インスリンのUVシグナルとして、陽性対照に対する改善倍率(FIOPC)を計算した。
Figure 2021502068
Figure 2021502068
Figure 2021502068
Figure 2021502068
Figure 2021502068
Figure 2021502068
Figure 2021502068
Figure 2021502068
Figure 2021502068
Figure 2021502068
Figure 2021502068
Figure 2021502068
実施例10
大腸菌において発現されたトランスグルタミナーゼバリアントの活性改善
当技術分野で公知の十分に確立された技術(例えば、飽和変異誘発および以前に同定された有益な変異の組換え)を使用して、操作された遺伝子を含有する親酵素(配列番号34)のライブラリーを産生した。実施例4に記載されているようにHTPにおいて、各遺伝子によりコードされるポリペプチドを産生し、実施例5に記載されているように可溶性溶解物を生成した。
200μLの0.1Mトリス−HCl、pH8.0、1g/Lインスリン、25mM EDTA、5mMリジン供与体基質および実施例6に記載されている70uLの精製溶解物を含有する96ウェルディープウェルプレート中で、HTP反応を行った。Thermotron(登録商標)タイタープレートシェーカー(3mm振幅、モデル# AJ185,Infors)中で、HTPプレートを30℃、300rpmで22時間インキュベートした。200μlのDMSOを用いて、反応をクエンチし、ベンチトップシェーカーを使用して5分間混合した。次いで、プレートを4000rpmで5分間遠心分離し、分析のために上清をLC−MSにロードした。指定された反応条件下における対応する骨格の質量により正規化されたバリアント中の1つのリジン供与体で改変されたインスリンの質量として、陽性対照に対する改善倍率(FIOPC)を計算した。
Figure 2021502068
Figure 2021502068
実施例11
大腸菌において発現されたトランスグルタミナーゼバリアントの活性改善
当技術分野で公知の十分に確立された技術(例えば、飽和変異誘発および以前に同定された有益な変異の組換え)を使用して、操作された遺伝子を含有する親酵素(配列番号256)のライブラリーを産生した。実施例4に記載されているようにHTPにおいて、各遺伝子によりコードされるポリペプチドを産生し、実施例5に記載されているように可溶性溶解物を生成した。
200μLの0.1Mトリス−HCl、pH8.0、2g/Lインスリン、25mM EDTA、5mMリジン供与体基質、10%アセトニトリルおよび実施例6に記載されているように産生した70uLの精製溶解物を含有する96ウェルディープウェルプレート中で、HTP反応を行った。Thermotron(登録商標)タイタープレートシェーカー(3mm振幅、モデル# AJ185,Infors)中で、HTPプレートを30℃、300rpmで22時間インキュベートした。200μlのDMSOを用いて、反応をクエンチし、ベンチトップシェーカーを使用して5分間混合した。次いで、プレートを4000rpmで5分間遠心分離し、分析のために上清をLC−MSにロードした。指定された反応条件下における対応する骨格の質量により正規化されたバリアント中の1つのリジン供与体で改変されたインスリンの質量として、陽性対照に対する改善倍率(FIOPC)を計算した。
Figure 2021502068
Figure 2021502068
Figure 2021502068
Figure 2021502068
実施例12
TG産生形成の分析的検出
表12.1または12.2の分析方法を使用して、実施例8〜11に記載されているデータを収集した。グルタミンZ供与体によるインスリンの改変をもたらす生成物のLC−MS分析方法は、表12.1に提供されている。HTPアッセイ混合物を調製し、表12.1に示されている機器パラメータおよび条件を使用してLC−MS−UVにより、改変インスリン生成物化合物の形成を検出した。生成物の質量を使用して基質および生成物ピークを決定し、UVシグナルを使用してそれぞれの種を定量し、陽性対照と比較し、FIOPを計算した。
Figure 2021502068
リジン供与体基質によるインスリンの改変をもたらす生成物のLC−MS分析は、表12.2に示されている。HTPアッセイ混合物を調製し、表12.2に提供されている機器パラメータおよび条件を使用してLC−MS−UVにより、改変インスリン生成物化合物の形成を検出した。生成物の質量を使用して基質および生成物ピークを決定し、UVシグナルを使用してそれぞれの種を定量し、陽性対照と比較し、FIOPを計算した。
Figure 2021502068
具体的な実施形態を参照して本発明を説明したが、特定の状況、材料、物質の組成、プロセス、1つまたは複数のプロセスステップに適合させるように、様々な変更を行って、均等物を置換することができ、それにより、特許請求されている事項の範囲から逸脱せずに本発明の利益を達成することができる。
アメリカ合衆国におけるすべての目的のために、本開示で引用されるそれぞれのおよびあらゆる刊行物および特許文献は、このような各刊行物または文献が参照により本明細書に組み込まれることが具体的かつ個別に示されているかのように、参照により本明細書に組み込まれる。刊行物および特許文献の引用は、このような文献が関連先行技術であることを示すものではなく、その内容または日付に関する自認を構成するものではない。

Claims (22)

  1. 配列番号2、6、34および/または256と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超える配列同一性を有する、操作されたトランスグルタミナーゼ。
  2. 配列番号6と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超える配列同一性と、位置79、101、101/201/212/287、101/201/285、101/287および327から選択される1つまたはそれを超える位置における少なくとも1つの置換または置換セットとを有する操作されたトランスグルタミナーゼであって、前記位置が配列番号6に関してナンバリングされている、操作されたトランスグルタミナーゼ。
  3. 配列番号2と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超える配列同一性と、位置48、48/67/70、48/67/70/181/203/256、48/67/70/181/256/345、48/67/70/181/296/345/373、48/67/70/203/256/296/345、48/67/70/203/256/345/354/373、48/67/70/203/345、48/67/70/256、48/67/70/256/296/345/373、48/67/203/256/296/373、48/67/203/256/345、48/70/170/203、48/70/203/254/296/343、48/70/203/256/345/373、48/70/203/256/345、48/70/203/373、48/170/203、48/170/203/254/296/346、48/170/203/254/296/346/373、48/170/203/254/346/373、48/170/203/254/346、48/170/203/296/343/346、48/170/203/296/346/373、48/170/203/343/346、48/170/203/346、48/170/203/346/373、48/170/203/373、48/170/254、48/170/296、48/170/296/343/346、48/170/343/346、48/181、48/181/203/256/345、48/181/203/345、48/181/256/296/345、48/181/296、48/181/296/345、48/203、48/203/254/296、48/203/254/296/343/373、48/203/254/296/346/373、48/203/254/346、48/203/254/346/373、48/203/256、48/203/256/296/345、48/203/296/343/346/373、48/203/296/343/373、48/203/296/346、48/203/296/346/373、48/203/343/346、48/203/343/346/373、48/203/345、48/203/346、48/203/346/373、48/254/296、48/254/346、48/256、48/256/296、48/256/296/345、48/296/345、48/296/373、48/343/346、48/345/373、67/256、67/296/345、68/74/190/215/346、68/136/215/255/282/297/346、68/136/215/297/346、68/136/234、68/158/174/234/282/297/346、68/158/215/297/346、68/215/297/346、68/234、68/282/297/346、68/297/346、74/136/174/282/346、74/136/174/297/346、74/136/346、74/158/255/297、74/255/346、74/346、136/158/190/215/255/297/346、136/158/215/297/346、136/174/215/255/282/297/346、136/190/215/297/346、136/215/234/282/297、136/215/234/297/346、136/215/297、136/297/346、158/215/255/346、158/215/346、170/203/254/296/343/346、170/203/254/343/373、170/203/343/346、174/190/234/297/346、174/215/234/297/346、174/215/255/297/346、174/282/297/346、190/255/282/346、190/297/346、203/296、203/343、203/343/346、203/346、215/255/297/346、215/234/297/346、215/255/297/346、215/297、215/297/346、215/346、234/255/346、255/297/346、255/346、297/346、343/346/373、および346から選択される1つまたはそれを超える位置における少なくとも1つの置換または置換セットとを有する操作されたトランスグルタミナーゼであって、前記位置が配列番号2に関してナンバリングされている、操作されたトランスグルタミナーゼ。
  4. 配列番号2と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超える配列同一性と、33/67/70/181/203/256/296/373、36/48/203/254/346、48/67/70/181/203/256/296/373、48/67/70/203/256/296/373、48/67/181/203/256/296/373、48/67/181/203/256/373、48/67/181/256/296、48/67/203/256/296/373/378、48/67/203/256/373、48/67/203/296/373、48/67/256/296/373、48/70/181/203/256/296/373、48/70/181/203/256/373、48/70/181/203/296/373、48/70/203/256/296/373、48/70/203/256/373、48/70/203/296、48/70/203/296/373、48/70/203/373、48/70/256/296/373、48/70/296/373、48/176/203/254/346/373、48/181/203/256/296/373、48/181/203/256/373、48/181/203/296、48/181/203/373、48/181/256/296/373、48/203/254、48/203/254/343、48/203/254/343/346/373、48/203/254/343/355/373、48/203/254/343/373、48/203/254/346/373、48/203/254/373、48/203/256/296、48/203/256/296/373、48/203/256/373、48/203/296/373、48/203/296/373/374、48/203/343/373、48/203/373、48/254、48/254/343/346/373、48/254/343/373、48/254/346/373、48/254/373、48/256/296/373、48/256/373、48/373、67/70/181/203/256/296/373、67/70/181/256/296/373、67/70/181/373、67/181/203/256/296、67/181/203/256/296/373、67/181/203/256/373、67/203/256/296/373、67/256/296/373、70/181/203/256/296/373、70/181/203/296/373、70/203、70/203/256/296/373、70/203/256/373、70/203/296/373、74/136/215/234/282/297/346、74/136/215/234/282/346、74/136/215/234/297、74/136/215/234/297/343/346、74/136/215/234/297/346、74/136/215/234/346、74/136/215/282/297/346、74/136/215/282/346、74/136/215/297/346、74/136/215/346、74/136/234/282/297/346、74/136/234/346、74/136/282/297/346、74/215、74/215/234/282/297/346、74/215/282/297/346、74/215/346、136/215/234/282/297/346、136/215/282/297、136/215/282/297/346、136/215/282/346、136/215/297/346、136/215/346、136/234/297、136/234/297/346、136/234/346、136/282/297、181/203/256、181/203/256/296、181/203/256/296/373、181/203/256/373、181/203/296/373、181/203/373、181/256/296/373、181/296、203/224/254/373、203/254、203/254/343/346/373、203/254/343/373、203/254/346、203/254/346/373、203/254/373、203/346/373、203/373、203/209/256/373、203/256、203/256/296、203/256/296/320/373、203/256/296/373、203/256/296/373/386、203/256/373、203/296/373、203/373、215/234/282/297/346、215/234/282/346、215/234/346、234/282/346、254、254/346、254/346/373、254/373、256/296、256/296/373、256/373、282/297/346、343/373、および373から選択される1つまたはそれを超える位置における少なくとも1つの置換または置換セットとを有する操作されたトランスグルタミナーゼであって、前記位置が配列番号2に関してナンバリングされている、操作されたトランスグルタミナーゼ。
  5. 配列番号34と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超える配列同一性と、48/49、49、50、50、331、291、292、330および331から選択される1つまたはそれを超える位置における少なくとも1つの置換または置換セットとを有する操作されたトランスグルタミナーゼであって、前記位置が配列番号34に関してナンバリングされている、操作されたトランスグルタミナーゼ。
  6. 配列番号256と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超える配列同一性と、27/48/67/70/74/234/256/282/346/373、27/48/67/70/136/203/215/256/282/346/373、27/48/67/70/346/373、27/48/67/74/203/256/346/373、27/67/234/296/373、45/287/328/333、45/292/328、48、48/284/292/333、48/287/292/297、48/287/297/328/333、48/292、48/292/297、48/49/50/292/331、48/49/50/292、48/49/50/331、48/49/330/331、48/49/50/349、48/49/50/291/292/331、48/49/50/292/331、48/67/70/203/215/234/256/346、48/67/70/234/256/282/297/346、48/67/70/346、48/67/74/203/234/256/282/346/373、48/67/74/234/297/346/373、48/67/74/346、48/67/203/346/373、48/67/234/256/297/346/373、48/67/234/256/346/373、48/67/215/282/297/346/373、48/67/346/373、48/70/74/297/346/373、48/70/203/215/256/282/346/373、48/70/215/234/256/346/373、48/74/203/234/256/346/373、48/74/234/256/297/346/373、48/136/256/346/373、48/203/234/256/297/346/373、48/203/234/256/346/373、48/203/234/346/373、48/203/296/373、48/215/234/346/373、48/215/346/373、48/234/256/296/346/373、48/234/256/346/373、48/256/373、49/50/292/331、49/50/292/331/349、49/50/331、49/50/331/349、50、67/70/74/136/203/215/256/346/373、67/70/74/203/215/234/346/373、67/70/74/215/234/297/346/373、67/70/74/215/256/373、67/70/136/203/297/346/373、67/70/203/215/256/346/373、67/70/203/373、67/70/215、67/74/136、67/74/203/234/256、67/74/215/256/297/346/373、67/74/215/346/373、67/74/256/346/373、67/136/203/215/256/346/373、67/136/203/256/346/373、67/203/234/256/346/373、67/203/297/346/373、67/215/234/297/346/373、67/297/346、70/74/203/215/346/373、136、136/346/373、203/234/346、203/234/346/373、203/373、234/282、287、234/346/373、287/292、287/292/295/297、287/292/297、287/295/297、287/330/333、292、292/297、292/330/331、292/330/331、292/331、292/331/349、292/349、295、295/297/333、297/328、297/373、328/333、330、330/331、331、331/349、333、346/373、および373から選択される1つまたはそれを超える位置における少なくとも1つの置換または置換セットとを有する操作されたトランスグルタミナーゼであって、前記位置が配列番号256に関してナンバリングされている、操作されたトランスグルタミナーゼ。
  7. 配列番号2、6、34および/または256と少なくとも90%の配列同一性を有する配列を含むポリペプチド配列を含む、請求項1〜6のいずれかに記載の操作されたトランスグルタミナーゼ。
  8. 配列番号2、6、34および/または256と少なくとも95%の配列同一性を有する配列を含むポリペプチド配列を含む、請求項1〜7のいずれかに記載の操作されたトランスグルタミナーゼ。
  9. 配列番号2、6、34または256に記載されているポリペプチド配列を含む、請求項1〜8のいずれかに記載の操作されたトランスグルタミナーゼ。
  10. 表8.1、9.1、9.2、10.1および/または11.1に提供されているバリアントをコードするポリペプチド配列を含む、請求項1〜9のいずれかに記載の操作されたトランスグルタミナーゼ。
  11. 配列番号4〜756に記載されている偶数番号の配列から選択されるポリペプチド配列を含む、請求項1〜10のいずれかに記載の操作されたトランスグルタミナーゼ。
  12. 請求項1〜11のいずれかに記載の操作されたトランスグルタミナーゼをコードする、操作されたポリヌクレオチド配列。
  13. 配列番号3〜755に記載されている奇数番号の配列から選択される配列と少なくとも85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれを超えて同一のポリヌクレオチド配列を含む、請求項12に記載の操作されたポリヌクレオチド配列。
  14. 請求項12および/または13に記載の操作されたポリヌクレオチド配列を含む、ベクター。
  15. 少なくとも1つの制御配列をさらに含む、請求項14に記載のベクター。
  16. 請求項14および/または15に記載のベクターを含む、宿主細胞。
  17. 請求項1〜11のいずれかに記載の操作されたトランスグルタミナーゼを産生するための方法であって、請求項16に記載の宿主細胞を、前記操作されたトランスグルタミナーゼが前記宿主細胞により産生される条件下で培養することを含む、方法。
  18. 前記宿主細胞により産生された前記操作されたトランスグルタミナーゼを回収するステップをさらに含む、請求項17に記載の方法。
  19. グルタミン供与体の存在下でインスリン中の遊離アミノ酸を改変することができる、請求項1〜11のいずれかに記載の操作されたトランスグルタミナーゼ。
  20. リジン供与体の存在下でインスリン中のグルタミンを改変することができる、請求項1〜11のいずれかに記載の操作されたトランスグルタミナーゼ。
  21. インスリンを改変する方法であって、インスリンおよび少なくとも1つの請求項1〜11のいずれかに記載の操作されたトランスグルタミナーゼを提供すること、前記インスリンが改変されるような条件下で前記インスリン、グルタミンおよび少なくとも1つの操作されたトランスグルタミナーゼを組み合わせることを含む、方法。
  22. インスリンを改変する方法であって、インスリンおよび少なくとも1つの請求項1〜11のいずれかに記載の操作されたトランスグルタミナーゼを提供すること、前記インスリンが改変されるような条件下で前記インスリン、リジンおよび少なくとも1つの操作されたトランスグルタミナーゼを組み合わせることを含む、方法。
JP2020524379A 2017-11-07 2018-11-02 トランスグルタミナーゼバリアント Pending JP2021502068A (ja)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201762582593P 2017-11-07 2017-11-07
US62/582,593 2017-11-07
PCT/US2018/059049 WO2019094301A1 (en) 2017-11-07 2018-11-02 Transglutaminase variants

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JP2021502068A true JP2021502068A (ja) 2021-01-28

Family

ID=66439313

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2020524379A Pending JP2021502068A (ja) 2017-11-07 2018-11-02 トランスグルタミナーゼバリアント

Country Status (8)

Country Link
US (2) US11319531B2 (ja)
EP (1) EP3706780A4 (ja)
JP (1) JP2021502068A (ja)
CN (1) CN111511389A (ja)
CA (1) CA3080512A1 (ja)
IL (1) IL274284A (ja)
SG (1) SG11202003094PA (ja)
WO (1) WO2019094301A1 (ja)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2023058765A1 (ja) * 2021-10-07 2023-04-13 天野エンザイム株式会社 改変型トランスグルタミナーゼ

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US11319531B2 (en) 2017-11-07 2022-05-03 Codexis, Inc. Transglutaminase variants
US20230125821A1 (en) * 2020-03-03 2023-04-27 Amano Enzyme Inc. Modified transglutaminase
EP4114931A4 (en) * 2020-03-05 2024-05-01 Curie Co. Inc. METHODS FOR CELL PROTEIN EXPRESSION OF MATURE POLYPEPTIDES DERIVED FROM ZYMOGENS AND PROPROTEINS
JP2023518714A (ja) * 2020-03-13 2023-05-08 キュリー カンパニー インコーポレイテッド トランスグルタミナーゼ変種
EP4170034A4 (en) * 2020-06-18 2024-07-17 Amano Enzyme Inc NEW TRANSGLUTAMINASE
CA3194036A1 (en) * 2020-09-08 2022-03-17 Curie Co. Inc. Compositions and methods of use thereof
JPWO2022071061A1 (ja) 2020-09-29 2022-04-07
CN112553176B (zh) * 2020-12-29 2022-04-29 江南大学 一种热稳定性提高的谷氨酰胺转氨酶
WO2022192529A1 (en) 2021-03-10 2022-09-15 Curie Co. Inc. Activation of zymogens by immobilized protease enzymes
WO2024054236A1 (en) 2022-09-09 2024-03-14 Curie Co. Inc. Immobilized proteases for activation of the zymogen form of transglutaminase

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2002253272A (ja) * 2000-08-17 2002-09-10 Ajinomoto Co Inc 微生物由来トランスグルタミナーゼの改変方法
WO2009030211A2 (de) * 2007-09-07 2009-03-12 Martin-Luther-Universität Halle-Wittenberg Thermostabile transglutaminasen
JP2010518843A (ja) * 2007-02-22 2010-06-03 ノボ ノルディスク ヘルス ケア アーゲー 改善された特異性を有するトランスグルタミナーゼ変異体
WO2010101256A1 (ja) * 2009-03-06 2010-09-10 味の素株式会社 放線菌由来の耐熱性トランスグルタミナーゼ
WO2016170447A1 (en) * 2015-04-24 2016-10-27 Rinat Neuroscience Corp. Recombinant microbial transglutaminases

Family Cites Families (80)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA1338400C (en) 1983-08-31 1996-06-18 David H. Gelfand Recombinant fungal cellulases
US5837458A (en) 1994-02-17 1998-11-17 Maxygen, Inc. Methods and compositions for cellular and metabolic engineering
US6335160B1 (en) 1995-02-17 2002-01-01 Maxygen, Inc. Methods and compositions for polypeptide engineering
US5605793A (en) 1994-02-17 1997-02-25 Affymax Technologies N.V. Methods for in vitro recombination
US6117679A (en) 1994-02-17 2000-09-12 Maxygen, Inc. Methods for generating polynucleotides having desired characteristics by iterative selection and recombination
US5834252A (en) 1995-04-18 1998-11-10 Glaxo Group Limited End-complementary polymerase reaction
US6165793A (en) 1996-03-25 2000-12-26 Maxygen, Inc. Methods for generating polynucleotides having desired characteristics by iterative selection and recombination
US6309883B1 (en) 1994-02-17 2001-10-30 Maxygen, Inc. Methods and compositions for cellular and metabolic engineering
US5928905A (en) 1995-04-18 1999-07-27 Glaxo Group Limited End-complementary polymerase reaction
US6995017B1 (en) 1994-02-17 2006-02-07 Maxygen, Inc. Methods for generating polynucleotides having desired characteristics by iterative selection and recombination
US20060257890A1 (en) 1996-05-20 2006-11-16 Maxygen, Inc. Methods and compositions for cellular and metabolic engineering
US6406855B1 (en) 1994-02-17 2002-06-18 Maxygen, Inc. Methods and compositions for polypeptide engineering
US6395547B1 (en) 1994-02-17 2002-05-28 Maxygen, Inc. Methods for generating polynucleotides having desired characteristics by iterative selection and recombination
CN1192108C (zh) 1994-06-03 2005-03-09 诺沃奇梅兹生物技术有限公司 纯化的毁丝霉属漆酶及编码该酶的核酸
ATE294871T1 (de) 1994-06-30 2005-05-15 Novozymes Biotech Inc Nicht-toxisches, nicht-toxigenes, nicht- pathogenes fusarium expressionssystem und darin zu verwendende promotoren und terminatoren
WO1996006931A1 (en) 1994-08-26 1996-03-07 Novo Nordisk A/S Microbial transglutaminases, their production and use
WO1996010089A1 (fr) 1994-09-29 1996-04-04 Ajinomoto Co., Inc. Modification d'un peptide et d'une proteine
FI104465B (fi) 1995-06-14 2000-02-15 Valio Oy Proteiinihydrolysaatteja allergioiden hoitamiseksi tai estämiseksi, niiden valmistus ja käyttö
US6506602B1 (en) 1996-03-25 2003-01-14 Maxygen, Inc. Methods for generating polynucleotides having desired characteristics by iterative selection and recombination
US6096548A (en) 1996-03-25 2000-08-01 Maxygen, Inc. Method for directing evolution of a virus
US6620916B1 (en) 1996-09-26 2003-09-16 Ajinomoto Co., Inc. Modified physiologically active proteins and medicinal compositions containing the same
US6326204B1 (en) 1997-01-17 2001-12-04 Maxygen, Inc. Evolution of whole cells and organisms by recursive sequence recombination
US7148054B2 (en) 1997-01-17 2006-12-12 Maxygen, Inc. Evolution of whole cells and organisms by recursive sequence recombination
AU6029998A (en) 1997-01-17 1998-08-07 Regents Of The University Of Minnesota Dna molecules and protein displaying improved triazine compound degrading ability
DK1717322T3 (da) 1997-01-17 2012-10-22 Codexis Mayflower Holdings Llc Udvikling af hele celler og organismer ved rekursiv sekvensrekombination
US6821763B2 (en) 1997-07-04 2004-11-23 Ajinomoto Co., Inc. Process for producing microbial transglutaminase
US6013498A (en) 1997-07-04 2000-01-11 Ajinomoto Co., Inc. Process for producing microbial transglutaminase
EP1036198B1 (en) 1997-12-08 2012-09-26 California Institute Of Technology Method for creating polynucleotide and polypeptide sequences
IL138800A0 (en) 1998-04-02 2001-10-31 Tellus Genetic Resources Inc A method of identifying a plant with a lesion in a gene sequence
BR9910174A (pt) 1998-05-01 2001-03-06 Maxygen Inc Processo para se obter um gene recombinante otimizado de resistência à praga, biblioteca, e, processo para se obter um organismo que seja patogênico a uma praga de vegetal
EP1090024A2 (en) 1998-06-17 2001-04-11 Maxygen, Inc. Method for producing polynucleotides with desired properties
US6365408B1 (en) 1998-06-19 2002-04-02 Maxygen, Inc. Methods of evolving a polynucleotides by mutagenesis and recombination
AU5347999A (en) 1998-08-12 2000-03-06 Maxygen, Inc. Dna shuffling of monooxygenase genes for production of industrial chemicals
DE69922978T2 (de) 1998-10-06 2005-12-08 Emalfarb, Mark Aaron, Jupiter Transformationsystem in filamentösen fungiziden chrysosporium-wirtszellen
JP2002526107A (ja) 1998-10-07 2002-08-20 マキシジェン, インコーポレイテッド マイコトキシンの解毒のための核酸を生成するためのdnaシャッフリング
EP1129184A1 (en) 1998-11-10 2001-09-05 Maxygen, Inc. Modified adp-glucose pyrophosphorylase for improvement and optimation of plant phenotypes
JP4221100B2 (ja) 1999-01-13 2009-02-12 エルピーダメモリ株式会社 半導体装置
US6917882B2 (en) 1999-01-19 2005-07-12 Maxygen, Inc. Methods for making character strings, polynucleotides and polypeptides having desired characteristics
US6368861B1 (en) 1999-01-19 2002-04-09 Maxygen, Inc. Oligonucleotide mediated nucleic acid recombination
US6436675B1 (en) 1999-09-28 2002-08-20 Maxygen, Inc. Use of codon-varied oligonucleotide synthesis for synthetic shuffling
US6376246B1 (en) 1999-02-05 2002-04-23 Maxygen, Inc. Oligonucleotide mediated nucleic acid recombination
US7024312B1 (en) 1999-01-19 2006-04-04 Maxygen, Inc. Methods for making character strings, polynucleotides and polypeptides having desired characteristics
AU3210100A (en) 1999-01-19 2000-08-01 Maxygen, Inc. Methods for making character strings, polynucleotides and polypeptides having desired characteristics
US8457903B1 (en) 1999-01-19 2013-06-04 Codexis Mayflower Holdings, Llc Method and/or apparatus for determining codons
US20070065838A1 (en) 1999-01-19 2007-03-22 Maxygen, Inc. Oligonucleotide mediated nucleic acid recombination
US7873477B1 (en) 2001-08-21 2011-01-18 Codexis Mayflower Holdings, Llc Method and system using systematically varied data libraries
US7702464B1 (en) 2001-08-21 2010-04-20 Maxygen, Inc. Method and apparatus for codon determining
US6961664B2 (en) 1999-01-19 2005-11-01 Maxygen Methods of populating data structures for use in evolutionary simulations
IL144657A0 (en) 1999-02-11 2002-06-30 Maxygen Inc High throughput mass spectrometry
CA2364997A1 (en) 1999-03-05 2000-09-08 Maxygen, Inc. Encryption of traits using split gene sequences
US6703240B1 (en) 1999-04-13 2004-03-09 Maxygar, Inc. Modified starch metabolism enzymes and encoding genes for improvement and optimization of plant phenotypes
US7430477B2 (en) 1999-10-12 2008-09-30 Maxygen, Inc. Methods of populating data structures for use in evolutionary simulations
US6519065B1 (en) 1999-11-05 2003-02-11 Jds Fitel Inc. Chromatic dispersion compensation device
US6686515B1 (en) 1999-11-23 2004-02-03 Maxygen, Inc. Homologous recombination in plants
SG121902A1 (en) 2000-01-11 2006-05-26 Maxygen Inc Integrated systems for diversity generation and screening
WO2001075767A2 (en) 2000-03-30 2001-10-11 Maxygen, Inc. In silico cross-over site selection
JP2004508011A (ja) 2000-04-03 2004-03-18 マキシジェン, インコーポレイテッド スブチリシン変異体
CA2419453C (en) 2000-08-17 2010-03-09 Ajinomoto Co., Inc. Mutant transglutaminase from streptoverticillium having modified substrate specificity
US20050084907A1 (en) 2002-03-01 2005-04-21 Maxygen, Inc. Methods, systems, and software for identifying functional biomolecules
DK2278509T3 (en) 2002-03-01 2014-12-15 Codexis Mayflower Holdings Llc Methods, systems and software for identification of functional biomolecules
US7747391B2 (en) 2002-03-01 2010-06-29 Maxygen, Inc. Methods, systems, and software for identifying functional biomolecules
US7620500B2 (en) 2002-03-09 2009-11-17 Maxygen, Inc. Optimization of crossover points for directed evolution
US7629157B2 (en) 2003-08-11 2009-12-08 Codexis, Inc. Ketoreductase polypeptides and related polynucleotides
CA2552043A1 (en) 2004-01-21 2005-08-04 Novo Nordisk A/S Transglutaminase mediated conjugation of peptides
EP1893239A2 (en) 2005-06-15 2008-03-05 Novo Nordisk Health Care AG Transglutaminase mediated conjugation of growth hormone
EP2054436A1 (en) 2006-08-18 2009-05-06 Novo Nordisk Health Care AG Transglutaminase variants with improved specificity
EP2167116A2 (en) 2007-07-05 2010-03-31 Novo Nordisk A/S Peptides with high affinity for the prolactin receptor
DK2250595T3 (en) 2008-02-12 2017-09-04 Codexis Inc PROCEDURE FOR SELECTING AN OPTIMIZED VARIETY OF VARIETIES
US8768871B2 (en) 2008-02-12 2014-07-01 Codexis, Inc. Method of generating an optimized, diverse population of variants
US20090312196A1 (en) 2008-06-13 2009-12-17 Codexis, Inc. Method of synthesizing polynucleotide variants
WO2009152336A1 (en) 2008-06-13 2009-12-17 Codexis, Inc. Method of synthesizing polynucleotide variants
US8383346B2 (en) 2008-06-13 2013-02-26 Codexis, Inc. Combined automated parallel synthesis of polynucleotide variants
CN101691560B (zh) * 2008-12-19 2011-08-31 华南理工大学 大肠杆菌及其可溶性表达转谷氨酰胺酶酶原的方法
HUE042817T2 (hu) 2011-06-28 2019-07-29 Codexis Inc Fehérjevariánsok elõállítása régiókeveréssel
CN102517242A (zh) * 2011-12-30 2012-06-27 齐河百多安生物医药科技有限公司 一种提高茂原链轮丝菌谷氨酰胺转胺酶表达量的方法及其专用工程菌
US20150133698A1 (en) 2012-04-20 2015-05-14 Codexis, Inc. Production of fatty alcohols from engineered microorganisms
CN107406483B (zh) * 2014-12-19 2022-02-22 豪夫迈·罗氏有限公司 微生物转谷氨酰胺酶,其底物和其使用方法
US20180282712A1 (en) 2015-10-02 2018-10-04 Bristol-Myers Squibb Company Transglutaminase variants having increased specific activity
US20180265851A1 (en) * 2015-10-02 2018-09-20 Bristol-Myers Squibb Company Transglutaminase variants for conjugating antibodies
US11319531B2 (en) 2017-11-07 2022-05-03 Codexis, Inc. Transglutaminase variants

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2002253272A (ja) * 2000-08-17 2002-09-10 Ajinomoto Co Inc 微生物由来トランスグルタミナーゼの改変方法
JP2010518843A (ja) * 2007-02-22 2010-06-03 ノボ ノルディスク ヘルス ケア アーゲー 改善された特異性を有するトランスグルタミナーゼ変異体
WO2009030211A2 (de) * 2007-09-07 2009-03-12 Martin-Luther-Universität Halle-Wittenberg Thermostabile transglutaminasen
WO2010101256A1 (ja) * 2009-03-06 2010-09-10 味の素株式会社 放線菌由来の耐熱性トランスグルタミナーゼ
WO2016170447A1 (en) * 2015-04-24 2016-10-27 Rinat Neuroscience Corp. Recombinant microbial transglutaminases

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2023058765A1 (ja) * 2021-10-07 2023-04-13 天野エンザイム株式会社 改変型トランスグルタミナーゼ

Also Published As

Publication number Publication date
WO2019094301A1 (en) 2019-05-16
US20200263150A1 (en) 2020-08-20
US11319531B2 (en) 2022-05-03
US20220220456A1 (en) 2022-07-14
CA3080512A1 (en) 2019-05-16
CN111511389A (zh) 2020-08-07
IL274284A (en) 2020-06-30
EP3706780A4 (en) 2021-12-22
EP3706780A1 (en) 2020-09-16
SG11202003094PA (en) 2020-05-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US11319531B2 (en) Transglutaminase variants
JP6755886B2 (ja) ペニシリンgアシラーゼ
US12012618B2 (en) Engineered galactose oxidase variant enzymes
US11795445B2 (en) Engineered phosphopentomutase variant enzymes
US12110513B2 (en) Engineered pantothenate kinase variant enzymes
US20240301367A1 (en) Peroxidase activity towards 10-acetyl-3,7-dihydroxyphenoxazine
US20220243183A1 (en) Engineered sucrose phosphorylase variant enzymes
JP7019202B2 (ja) ペニシリンgアシラーゼ
KR102382489B1 (ko) 페니실린 g 아실라제
JP7244089B2 (ja) ペニシリンgアシラーゼ
JP2023526433A (ja) レダクターゼ酵素ならびにレダクターゼ酵素の製造方法および使用方法
US20230374486A1 (en) Engineered phosphopentomutase variant enzymes
CN116615534A (zh) 工程化泛酸激酶变体酶
JP2023553990A (ja) S-メチルチオリボースキナーゼポリペプチドならびにs-メチルチオリボースキナーゼポリペプチドの製造方法および使用方法

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20210816

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20220622

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20220704

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20221004

A02 Decision of refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02

Effective date: 20230126