JP2021183958A

JP2021183958A - 上皮系マーカー陰性の腫瘍細胞を検出する方法

Info

Publication number: JP2021183958A
Application number: JP2020122150A
Authority: JP
Inventors: 隆嗣桶川; Takatsugu Okegawa; 勇一熊木; Yuichi Kumaki; 誠大槻; Makoto Otsuki
Original assignee: Tosoh Corp; Kyorin University
Current assignee: Tosoh Corp; Kyorin University
Priority date: 2020-01-14
Filing date: 2020-07-16
Publication date: 2021-12-02
Anticipated expiration: 2040-07-16
Also published as: JP7521750B2

Abstract

【課題】試料中の上皮系マーカー陰性の腫瘍細胞を特異的かつ網羅的に検出可能な方法を提供すること。【解決手段】試料中の上皮系マーカー陰性かつＴＭ４ＳＦ１（Ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ４ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙｍｅｍｂｅｒ１）陽性の細胞を検出することにより、前記課題を解決する。【選択図】図７

Description

本発明は、上皮系マーカー陰性の腫瘍細胞の検出法に関する。

腫瘍細胞は、原発巣から離脱すると、血管内またはリンパ管内へと浸透し、血液中またはリンパ液中を循環した後、最終的に他臓器や組織に侵入することで、転移巣を形成する。ここで、血液中を循環する腫瘍細胞は循環腫瘍細胞（ＣｉｒｃｕｌａｔｉｎｇＴｕｍｏｒＣｅｌｌ；ＣＴＣ）とも呼ばれ、多くの臨床試験や研究がなされている。例えば、癌患者から採取した血液中に含まれるＣＴＣの数を測定すること（特許文献１）、または前記ＣＴＣにおけるタンパク質の発現または遺伝子の突然変異もしくは転座を調べることにより、前記患者の予後予測や癌再発予測に関する情報を提供できる。

ＣＴＣの検出には、一般的には、サイトケラチンやＥｐＣＡＭ（Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ
ｃｅｌｌａｄｈｅｓｉｏｎｍｏｌｅｃｕｌｅ）などの上皮系マーカーが用いられている。すなわち、ＣＴＣは、上皮系マーカー陽性の細胞として検出されている。

一方、非特許文献１において、上皮系細胞が多くを占める腫瘍組織の中に、上皮間葉転換（Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌｔｏｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｔｒａｎｓｉｔｉｏｎ；ＥＭＴ）を起こした、上皮系マーカーの発現が低い間葉系細胞が存在し、当該間葉系細胞が癌の転移に関わっていることが報告されている。すなわち、上皮間葉転換を起こした、上皮系マーカー陰性のＣＴＣの方が、上皮系マーカー陽性のＣＴＣよりも、悪性度が高く重要だと考えることができる。一例として、特許文献２において、上皮系マーカー陰性のＣＴＣが、癌患者の予後予測に有用であることが報告されている。

ここで、上皮系マーカーのみを指標として上皮系マーカー陰性のＣＴＣを特異的かつ網羅的に検出するのは難しい場合がある。上皮系マーカー陰性のＣＴＣを検出する方法としては、例えば、ビメンチン（Ｖｉｍｅｎｔｉｎ）や神経カドヘリン（Ｎ−Ｃａｄｈｅｒｉｎ）等の間葉系マーカー（特許文献３および４）や、ＴＲＯＰ２（特許文献５）を用いた方法が報告されている。しかしながら、ビメンチンは血液中の白血球でも高発現しているため、上皮系マーカー陰性のＣＴＣの特異的検出には向かない。また、神経カドヘリンおよびＴＲＯＰ２は上皮間葉転換を起こしたＣＴＣの一部のみでしか発現していないため、上皮系マーカー陰性のＣＴＣの網羅的検出には不十分である。そのため、上皮系マーカー陰性のＣＴＣを特異的かつ網羅的に検出するのにより有用なマーカーが求められている。

また、ＴＭ４ＳＦ１（Ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ４ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙｍｅｍｂｅｒ１）は、腫瘍細胞で高発現していることが報告されている（特許文献６）。

特表２００８−５３３４８７号公報特開２０１７−１２９５８４号公報特表２０１４−５３３８２８号公報特表２０１６−５１２１９７号公報特表２０１８−５１７８８８号公報ＷＯ２０１９／１７２０３０

Ｓｉｍｏｎ，Ａ．Ｊｏｏｓｓｅ．ｅｔａｌ．，ＣＡＮＣＥＲＲＥＳＥＡＲＣＨ，７３，８−１１（２０１３）

本発明の課題は、上皮系マーカー陰性の腫瘍細胞を特異的かつ網羅的に検出可能な方法を提供することである。

本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討した結果、ＴＭ４ＳＦ１（Ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ４ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙｍｅｍｂｅｒ１）が上皮系マーカー陰性ＣＴＣにおいて高発現していることを見出し、本発明を完成させた。

すなわち本発明は以下の通り例示できる。
［１］
試料中の標的細胞を検出する方法であって、
試料中の少なくとも１つの上皮系マーカーが陰性かつＴＭ４ＳＦ１（Ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ４ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙｍｅｍｂｅｒ１）が陽性の細胞を標的細胞として検出する工程
を含み、
前記標的細胞が、腫瘍細胞である、方法。
［２］
前記上皮系マーカーが、ＥｐＣＡＭ（Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌａｄｈｅｓｉｏｎｍｏｌｅｃｕｌｅ）および／またはサイトケラチンである、前記方法。
［３］
前記標的細胞が、循環腫瘍細胞である、前記方法。
［４］
前記標的細胞が、上皮間葉転換を起こした腫瘍細胞である、前記方法。
［５］
前記標的細胞が、骨転移に関係する前立腺癌由来腫瘍細胞である、前記方法。
［６］
前記試料が、被験体から得られた試料である、前記方法。
［７］
前記被験体が、癌被験体である、前記方法。
［８］
前記被験体が、ヒトである、前記方法。
［９］
前記試料が、血液由来試料である、前記方法。
［１０］
前記検出により、前記試料中の前記標的細胞の個数が測定される、前記方法。
［１１］
前記試料が、被験体から得られた試料であり、
前記被験体が、癌被験体であり、
前記検出により、前記試料中の前記標的細胞の個数が測定される、
前記方法。
［１２］
被験体の予後を予測する方法であって、
前記方法により前記試料中の前記標的細胞の個数を測定する工程、および
前記個数と前記被験体の予後とを関連付ける工程
を含む、方法。

本発明によれば、上皮系マーカー陰性の腫瘍細胞を特異的かつ網羅的に検出できる。

前立腺癌患者血液試料から検出したＣＴＣ各サンプルのＥｐＣＡＭ遺伝子発現を示す図である。前立腺癌患者血液試料から検出したＣＴＣ各サンプルのＫＲＴ８（サイトケラチン８）遺伝子発現を示す図である。前立腺癌患者血液試料から検出したＣＴＣ各サンプルのＴＭ４ＳＦ１（Ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ４ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙｍｅｍｂｅｒ１）遺伝子発現を示す図である。前立腺癌患者血液試料から検出したＣＴＣ各サンプルのビメンチン（Ｖｉｍｅｎｔｉｎ、ＶＩＭ）遺伝子発現を示す図である。前立腺癌患者血液試料から検出したＣＴＣ各サンプルのＢＭＰ４（Ｂｏｎｅｍｏｒｐｈｏｇｅｎｅｔｉｃｐｒｏｔｅｉｎ４）遺伝子発現を示す図である。前立腺癌細胞株ＶＣａＰ細胞およびＰＣ３細胞の染色結果を示す図（写真）である。パネル（ａ）は明視野像であり、パネル（ｂ）はＨｏｅｃｈｓｔ３３３４２染色像であり、パネル（ｃ）は抗ＴＭ４ＳＦ１蛍光標識抗体染色像であり、パネル（ｄ）は抗ＥｐＣＡＭ蛍光標識抗体染色像である。また白矢印はＶＣａＰ細胞（上皮系マーカー高発現細胞）であり、黒矢印はＰＣ３細胞（上皮系マーカー低発現細胞）である。前立腺癌細胞株ＶＣａＰ細胞およびＰＣ３細胞を健常者血液に添加し調製した血液試料から回収したＶＣａＰ細胞およびＰＣ３細胞の染色結果を示す図（写真）である。パネル（ａ）は明視野像であり、パネル（ｂ）はＨｏｅｃｈｓｔ３３３４２染色像であり、パネル（ｃ）は抗ＴＭ４ＳＦ１蛍光標識抗体および抗ＥｐＣＡＭ蛍光標識抗体染色像であり、パネル（ｄ）は抗ＥｐＣＡＭ蛍光標識抗体染色像であり、パネル（ｅ）は抗ＣＤ４５蛍光標識抗体染色像である。また白矢印はＶＣａＰ細胞（上皮系マーカー高発現細胞）であり、黒矢印はＰＣ３細胞（上皮系マーカー低発現細胞）である。

以下、本発明を詳細に説明する。

＜１＞検出方法
本発明の検出方法は、試料中の標的細胞を検出する方法である。

本発明の検出方法は、試料中の上皮系マーカー陰性かつＴＭ４ＳＦ１（Ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ４ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙｍｅｍｂｅｒ１）陽性の細胞を検出する工程を含む。同工程を「検出工程」ともいう。検出工程において検出される細胞が標的細胞である。すなわち、検出工程は、具体的には、上皮系マーカー陰性かつＴＭ４ＳＦ１陽性の細胞を標的細胞として検出する工程であってよい。

試料は、標的細胞を含有し得るものであれば、特に制限されない。試料は、例えば、被験体より得られた試料であってよい。試料としては、血液（全血）、希釈血液、血清、血漿、髄液、臍帯血、成分採血液等の血液試料；尿、唾液、精液、糞便、痰、羊水、腹水等の血液成分を含有し得る試料；肝臓、肺、脾臓、腎臓、皮膚、腫瘍、リンパ節等の組織の断片の懸濁液（組織懸濁液）；それらの分画物が挙げられる。組織懸濁液は、例えば、組織の断片を液体媒体で懸濁することにより取得できる。液体媒体としては、水や水性緩衝液が挙げられる。分画物としては、上記のような試料に由来する、細胞を含有する画分が挙げられる。分画物として、具体的には、上記のような試料を密度勾配遠心等の遠心分離に供することで得られる、細胞を含有する画分が挙げられる。試料としては、特に、血液
試料、血液成分を含有し得る試料、およびそれらの分画物（以下、総称して「血液由来試料」ともいう）が挙げられる。血液由来試料は、被験体からの採取が比較的容易であり得る。試料は、例えば、そのまま、あるいは適宜、希釈または濃縮等の操作に供してから、検出工程に用いてよい。試料は、例えば、懸濁液の形態で検出工程に用いてよい。

試料には、例えば、添加剤が添加されていてよい。添加剤は、特に、血液由来試料に添加されてよい。添加剤としては、抗凝固剤、抗血小板剤、ホルムアルデヒドドナー化合物（加水分解を受けることでホルムアルデヒドを放出可能な化合物）、ポリエチレングリコールが挙げられる。抗凝固剤としては、クエン酸やエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）等のキレート剤が挙げられる。これらの添加剤は、例えば、標的細胞の安定化に寄与し得る。添加剤としては、１種の添加剤を用いてもよく、２種またはそれ以上の添加剤を組み合わせて用いてもよい。添加剤は、例えば、被験体からの試料の採取時に添加されてもよく、被験体からの試料の採取後に添加されてもよい。２種またはそれ以上の添加剤を用いる場合、それらの添加剤は、同時に試料に添加してもよく、そうでなくてもよい。例えば、２種またはそれ以上の添加剤を含有する溶液を試料に添加してもよく、それらの添加剤のそれぞれを含有する溶液を個別に試料に添加してもよい。ホルムアルデヒドドナー化合物、抗血小板剤、および抗凝固剤を添加した血液由来試料（保存処理した血液由来試料）は、試料が凍らない低温から室温（例えば０℃から３０℃）で少なくとも７日間は安定に保存可能であり得る。

試料は、例えば、細胞の固定処理や膜透過処理等の処理に供してから検出工程に用いてもよい。固定処理剤としては、ホルムアルデヒド、ホルムアルデヒドドナー化合物、グルタルアルデヒド等のアルデヒド類、メタノール、エタノール等のアルコール類、重金属を含有する溶液が挙げられる。膜透過処理剤としては、メタノール、エタノール等のアルコール類や、サポニン等の界面活性剤が挙げられる。

被験体は、特に制限されない。被験体は、例えば、癌被験体であってよい。「癌被験体」とは、癌に罹患していたか、癌に罹患している被験体を意味する。被験体は、癌の治療前の被験体であってもよく、癌の治療中の被験体であってもよく、癌の治療後の被験体であってもよい。被験体は、特に、癌の治療後の被験体であってよい。被験体は、ヒトであってもよく、ヒト以外の動物であってもよい。ヒト以外の動物としては、マウス、ラット、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ウシ、ウマ、ブタ、サル、チンパンジー、鳥が挙げられる。被験体は、特に、ヒトであってよい。

癌の種類は、特に制限されない。癌は、原発癌でもよく、転移癌であってもよい。癌としては、造血細胞悪性腫瘍、頭頚部癌、脳腫瘍、乳癌、子宮体癌、子宮頚癌、卵巣癌、食道癌、胃癌、虫垂癌、大腸癌、肝癌、胆嚢癌、胆管癌、膵癌、腎癌、副腎癌、消化管間質腫瘍、中皮腫、甲状腺癌、肺癌、骨肉腫、骨癌、前立腺癌、精巣腫瘍、膀胱癌、皮膚癌、肛門癌が挙げられる。造血細胞悪性腫瘍としては、白血病、リンパ腫、多発性骨髄腫が挙げられる。リンパ腫としては、ホジキンリンパ腫や非ホジキンリンパ腫が挙げられる。頭頚部癌としては、口腔底癌、歯肉癌、舌癌、頬粘膜癌、唾液腺癌、副鼻腔癌が挙げられる。癌としては、特に、前立腺癌が挙げられる。

標的細胞は、上皮系マーカー陰性かつＴＭ４ＳＦ１陽性の細胞である。上皮系マーカー陰性かつＴＭ４ＳＦ１陽性の細胞は、腫瘍細胞とみなすものとする。すなわち、標的細胞は、腫瘍細胞であり、具体的には、上皮系マーカー陰性かつＴＭ４ＳＦ１陽性の腫瘍細胞である。腫瘍細胞としては、循環腫瘍細胞（ＣｉｒｃｕｌａｔｉｎｇＴｕｍｏｒＣｅｌｌ；ＣＴＣ）が挙げられる。ＣＴＣは、特に、血液由来試料に含有され得る。血液由来試料中の腫瘍細胞は、典型的には、ＣＴＣとみなしてよい。標的細胞は、上皮系マーカー陰性であることから、悪性度が高い腫瘍細胞であることが示唆される。悪性度が高い腫瘍
細胞としては、上皮間葉転換を起こした腫瘍細胞や骨転移に関係する腫瘍細胞が挙げられる。上皮間葉転換を起こした腫瘍細胞としては、ビメンチン（Ｖｉｍｅｎｔｉｎ）や神経カドヘリン（Ｎ−Ｃａｄｈｅｒｉｎ）等の間葉系マーカー陽性の腫瘍細胞が挙げられる。骨転移に関係する腫瘍細胞としては、骨転移に関係する前立腺癌由来腫瘍細胞が挙げられる。骨転移に関係する前立腺癌由来腫瘍細胞としては、ＢＭＰ４（Ｂｏｎｅｍｏｒｐｈｏｇｅｎｅｔｉｃｐｒｏｔｅｉｎ４）等の骨形成因子陽性の腫瘍細胞が挙げられる。「骨転移に関係する」とは、例えば、癌の骨転移の原因となることを意味してよい。標的細胞は、例えば、単一細胞として存在していてもよく、細胞クラスタ（細胞集塊）を形成していてもよい。細胞クラスタは、標的細胞を１個またはそれ以上含んでいてよい。細胞クラスタは、標的細胞に加えて、標的細胞以外の細胞を含んでいてもよく、いなくてもよい。

上皮系マーカーとしては、ＥｐＣＡＭ（Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌａｄｈｅｓｉｏｎｍｏｌｅｃｕｌｅ）やサイトケラチン（ＣＫ）が挙げられる。ＣＫとしては、ＣＫ１からＣＫ２０（すなわち、ＣＫ１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０）が挙げられる。ＣＫとしては、特に、サイトケラチン８（ＣＫ８；ＫＲＴ８ともいう）が挙げられる。上皮系マーカーとしては、１つの上皮系マーカーを用いてもよく、２つまたはそれ以上の上皮系マーカーの組み合わせを用いてもよい。「上皮系マーカー陰性」とは、少なくとも１つの上皮系マーカーが陰性であることを意味してよい。すなわち、２つまたはそれ以上の上皮系マーカーの組み合わせを用いる場合、標的細胞においては、少なくとも１つの上皮系マーカーが陰性であればよい。２つまたはそれ以上の上皮系マーカーの組み合わせを用いる場合、標的細胞においては、２つまたはそれ以上の上皮系マーカーが陰性であってもよい。

標的細胞は、試料中の細胞の上皮系マーカーおよびＴＭ４ＳＦ１を測定することにより、検出できる。すなわち、検出工程は、試料中の細胞の上皮系マーカーおよびＴＭ４ＳＦ１を測定し、上皮系マーカー陰性かつＴＭ４ＳＦ１陽性の細胞を検出する工程であってもよい。また、検出工程は、具体的には、試料中の細胞の上皮系マーカーおよびＴＭ４ＳＦ１を測定し、上皮系マーカー陰性かつＴＭ４ＳＦ１陽性の細胞を標的細胞として検出する工程であってもよい。

標的細胞の検出は、例えば、定性的な検出（例えば、試料中の標的細胞の有無の検出）であってもよく、定量的な検出（例えば、試料中の標的細胞の存在量の検出）であってもよい。標的細胞の存在量としては、標的細胞の個数が挙げられる。すなわち、検出工程においては、例えば、標的細胞の個数が測定されてよい。すなわち、検出工程は、試料中の細胞の上皮系マーカーおよびＴＭ４ＳＦ１を測定し、上皮系マーカー陰性かつＴＭ４ＳＦ１陽性の細胞の個数（すなわち標的細胞の個数）を測定する工程であってもよい。試料中の標的細胞の個数は、試料中の標的細胞を検出してその個数をカウントすることにより、測定できる。標的細胞の個数は、例えば、単位量（例えば、単位重量または単位体積）の試料当たりの標的細胞の個数として算出されてよい。

上皮系マーカーやＴＭ４ＳＦ１等のマーカーを測定する方法は、特に制限されない。「マーカーの測定」とは、マーカーの発現の測定を意味してよい。マーカーの発現の測定は、例えば、定性的な測定（例えば、マーカーの発現の有無の測定）であってもよく、定量的な測定（例えば、マーカーの発現の程度の測定）であってもよい。マーカーの発現の測定は、例えば、マーカーの発現産物を測定することにより、実施できる。マーカーの発現産物としては、マーカーの転写産物（すなわち、マーカータンパク質をコードするｍＲＮＡ）やマーカーの翻訳産物（すなわち、マーカータンパク質）が挙げられる。マーカーの発現産物としては、特に、マーカータンパク質が挙げられる。マーカーの発現産物の測定は、例えば、定性的な測定（例えば、発現産物の有無の測定）であってもよく、定量的な
測定（例えば、発現産物の存在量の測定）であってもよい。測定を「検出」ともいう。

標的細胞は、通常、標的細胞が保持するマーカーの発現産物を測定することにより、直接的に検出されてよい。また、マーカーの発現産物の分泌等により標的細胞外にマーカーの発現産物が存在する場合、標的細胞は、標的細胞外に存在するマーカーの発現産物を測定することにより、間接的に検出されてもよい。

マーカーの発現産物を測定する方法は、特に制限されない。マーカーの発現産物は、発現産物の種類に応じた適切な手法により測定することができる。マーカーの発現産物は、例えば、ｍＲＮＡまたはタンパク質を定量する公知の手法により測定することができる。

マーカータンパク質は、例えば、マーカータンパク質に対する抗体、マーカータンパク質に対するアプタマー、またはマーカータンパク質に特異的に染色可能な色素（例えば化学発光色素や蛍光色素）を利用して検出することができる。マーカータンパク質は、特に、マーカータンパク質に対する抗体を利用して検出してよい。マーカータンパク質に対する抗体を利用することにより、例えば、マーカータンパク質を簡便、高感度、かつ特異的に検出でき得る。抗体やアプタマーは、いずれも、適宜、標識物質で修飾されていてよい。標識物質としては、フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）、フィコエリスリン（ＰＥ）、ＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ（商品名）等の蛍光物質や、アルカリホスファターゼやホースラディッシュペルオキシダーゼ等の酵素、放射性物質が挙げられる。抗体またはアプタマーと標識物質との結合態様は、特に制限されない。抗体またはアプタマーは標識物質と直接結合していてもよく、そうでなくてもよい。例えば、抗体は、標識物質と化学結合等により直接結合していてもよく、標識物質と結合した二次抗体（標識二次抗体）と結合することによって間接的に標識物質と結合していてもよい。マーカータンパク質は、具体的には、例えば、マーカータンパク質に対する抗体を利用した、ＥＩＡ（ＥｎｚｙｍｅＩｍｍｕｎｏａｓｓａｙ）法またはウェスタンブロット法により、検出することができる。ＥＩＡ法としては、ＥＬＩＳＡ（Ｅｎｚｙｍｅ−ＬｉｎｋｅｄＩｍｍｕｎｏＳｏｒｂｅｎｔＡｓｓａｙ）法、ＣＬＥＩＡ（ＣｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔＥｎｚｙｍｅＩｍｍｕｎｏａｓｓａｙ）法、ＦＥＩＡ（ＦｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅＥｎｚｙｍｅＩｍｍｕｎｏａｓｓａｙ）法が挙げられる。マーカータンパク質は、手動で検出してもよく、測定装置を用いて自動的に検出してもよい。測定装置としては、ＡＩＡ−９００（東ソー）などのエンザイムイムノアッセイ装置やＡＩＡ−ＣＬ２４００（東ソー）などの化学発光酵素免疫測定装置が挙げられる。

マーカータンパク質をコードするｍＲＮＡは、例えば、同ｍＲＮＡに特異的にハイブリダイズするプローブを利用したハイブリダイゼーション法により検出することができる。また、マーカータンパク質をコードするｍＲＮＡは、同ｍＲＮＡを特異的に増幅できるプライマーセットを利用した、ＰＣＲ法、ＲＴ−ＰＣＲ法、ＴＲＣ（ＴｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎＲｅｖｅｒｓｅｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎＣｏｎｃｅｒｔｅｄ）法、ＮＡＳＢＡ（ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄＳｅｑｕｅｎｃｅ−ＢａｓｅｄＡｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）法、またはＴＭＡ（Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ−ＭｅｄｉａｔｅｄＡｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）法等により増幅して検出することもできる。マーカータンパク質をコードするｍＲＮＡは、試料を直接塩基配列解析に供して検出することもできる。

標識した標的細胞の検出および計数は、具体的には、例えば、顕微鏡、光学検出器、またはフローサイトメーターを用いて実施してよい。顕微鏡としては、蛍光顕微鏡が挙げられる。

標識した標的細胞は、例えば、染色像（例えば蛍光像）に基づいて検出および計数してよい。染色像（例えば蛍光像）に基づく標的細胞の検出および計数は、例えば、手動で実
施してもよく、標的細胞を自動で読み取るソフトウェアを用いて自動で実施してもよい。なお、標識した標的細胞の検出および計数の際には、例えば、染色像（例えば蛍光像）に加えて、明視野像による観察結果を参考にしてもよい。

複数のマーカーを測定する場合、それらのマーカーは、例えば、それぞれ別個に測定してもよく、まとめて同時に測定してもよい。上皮系マーカーおよびＴＭ４ＳＦ１をそれぞれ別個に測定する場合、例えば、標的細胞の網羅的検出のため、先にＴＭ４ＳＦ１陽性である細胞を検出し、次いで上皮系マーカー陰性であることを確認してよい。

マーカーの測定は、例えば、複数個の細胞を含有する試料に対して実施してもよいし、試料から分離した単一細胞に対して実施してもよい。

マーカーの陰性／陽性の判断基準は、所望の程度に標的細胞を検出できる限り、特に制限されない。陰性／陽性の判断基準は、例えば、標的細胞の検出の目的等の諸条件に応じて適宜設定できる。

例えば、マーカーの発現が全く認められない場合（例えば、マーカーの検出シグナルが全く認められない場合）に当該マーカーが陰性であると判断してよい。また、例えば、マーカーの発現レベルが所定の閾値未満である場合（例えば、マーカーの検出シグナルの強度が所定の閾値未満の場合）に当該マーカーが陰性であると判断してもよい。また、例えば、マーカーの発現レベルが陰性対照細胞におけるマーカーの発現レベルと同等以下である場合（例えば、マーカーの検出シグナルの強度が陰性対照細胞におけるマーカーの検出シグナルと同等以下である場合）に当該マーカーが陰性であると判断してもよい。また、例えば、マーカーの発現レベルが陽性対照細胞におけるマーカーの発現レベルの半分未満、１／３未満、１／５未満、または１／１０未満である場合（例えば、マーカーの検出シグナルの強度が陽性対照細胞におけるマーカーの検出シグナルの半分未満、１／３未満、１／５未満、または１／１０未満である場合）に当該マーカーが陰性であると判断してもよい。

例えば、マーカーの発現が少しでも認められる場合（例えば、マーカーの検出シグナルが少しでも認められる場合）に当該マーカーが陽性である判断してよい。また、例えば、マーカーの発現レベルが所定の閾値以上である場合（例えば、マーカーの検出シグナルの強度が所定の閾値以上の場合）に当該マーカーが陽性であると判断してもよい。また、例えば、マーカーの発現レベルが陽性対照細胞におけるマーカーの発現レベルと同等以上である場合（例えば、マーカーの検出シグナルの強度が陽性対照細胞におけるマーカーの検出シグナルと同等以上である場合）に当該マーカーが陽性であると判断してもよい。また、例えば、マーカーの発現レベルが陰性対照細胞におけるマーカーの発現レベルよりも有意に高い場合（例えば、マーカーの検出シグナルの強度が陰性対照細胞におけるマーカーの検出シグナルよりも一定の値以上高い、またはマーカーの検出シグナルの強度が陰性対照細胞におけるマーカーの検出シグナルの平均値＋２ＳＤ以上、平均値＋３ＳＤ以上、または平均値＋４ＳＤ以上である場合）に当該マーカーが陽性であると判断してもよい。

「陰性対照細胞」とは、マーカーが陰性である細胞を意味する。「陽性対照細胞」とは、マーカーが陽性である細胞を意味する。上皮系マーカーについての陰性対照細胞としては、血管内皮細胞や間葉系幹細胞が挙げられる。上皮系マーカーについての陽性対照細胞としては、上皮細胞が挙げられる。ＴＭ４ＳＦ１についての陰性対照細胞としては、白血球が挙げられる。

＜２＞予測方法
試料が被験体より得られた試料であり、且つ、該被験体が癌被験体である場合、検出工
程の結果に基づいて被験体の予後を予測することができる。すなわち、本発明の予測方法は、被験体の予後を予測する方法である。

被験体の予後は、例えば、被験体より得られた試料中の標的細胞の個数に基づいて予測できる。被験体の予後は、具体的には、例えば、被験体より得られた試料中の標的細胞の個数と被験体の予後とを関連付けることにより、予測できる。すなわち、本発明の予測方法は、被験体より得られた試料中の標的細胞の個数を測定する工程、および前記個数と被験体の予後とを関連付ける工程を含んでいてよい。前者の工程を「測定工程」、後者の工程を「関連付け工程」ともいう。測定工程は、検出工程の一例である。すなわち、測定工程は、本発明の検出方法の実施により、具体的には、検出工程の実施により、実施できる。関連付け工程は、具体的には、被験体より得られた試料中の標的細胞の個数と被験体の予後とを関連付けることにより被験体の予後を予測する工程であってよい。

関連付けは、被験体より得られた試料中の標的細胞の個数と被験体の予後との相関を示すデータ（以下、「相関データ」ともいう）に基づいて実施することができる。相関データは、例えば、癌個体群より得られた試料中の標的細胞の個数を測定し、それら癌個体群の予後を追跡調査し、標的細胞の個数と予後との相関を解析することで作成できる。相関データを作成するための個体については、被験体についての記載を準用できる。例えば、「癌個体」とは、癌に罹患していたか、癌に罹患している個体を意味する。相関データを作成するための個体数は、特に制限されないが、例えば、２個体以上、５個体以上、１０個体以上、２０個体以上、５０個体以上、または１００個体以上であってよい。相関データは、例えば、識別表やグラフ等の、扱いやすい形態で関連付けに使用されてよい。

例えば、被験体より得られた試料中の標的細胞の個数が少ないほど、予後が良いと予測してよい。また、例えば、被験体より得られた試料中の標的細胞の個数が所定の閾値と比較して少ない場合に、予後が良いと予測してよい。また、例えば、被験体において試料中の標的細胞の個数の減少が認められた場合に、予後が良いと予測してよい。また、例えば、被験体において、試料中の標的細胞の個数の減少の程度が大きい程、または試料中の標的細胞の個数の増加の程度が小さい程、予後が良いと予測してよい。

また、例えば、被験体より得られた試料中の標的細胞の個数が多いほど、予後が悪いと予測してよい。また、例えば、被験体より得られた試料中の標的細胞の個数が所定の閾値と比較して多い場合に、予後が悪いと予測してよい。また、例えば、被験体において試料中の標的細胞の個数の増加が認められた場合に、予後が悪いと予測してよい。また、例えば、被験体において、試料中の標的細胞の個数の減少の程度が小さい程、または試料中の標的細胞の個数の増加の程度が大きい程、予後が悪いと予測してよい。

予後の予測は、例えば、定性的な予測（例えば、予後が良または不良となるかどうかの予測）であってもよく、定量的な予測（例えば、予後が良または不良となる可能性の程度の予測や、予後が良または不良となる場合の良または不良の程度の予測）であってもよい。例えば、予後が良いと予測することとしては、予後が良となると予測すること、予後が良となる可能性が高いと予測すること、予後が良となる場合の良の程度が大きいと予測することが挙げられる。また、例えば、予後が悪いと予測することとしては、予後が不良となると予測すること、予後が不良となる可能性が高いと予測すること、予後が不良となる場合の不良の程度大きいと予測することが挙げられる。

予後は、癌に関連するものであれば、特に制限されない。予後としては、生存期間、生存率、癌の悪化の有無や可能性、癌の改善の有無や可能性、癌の再発の有無や可能性、癌の転移の有無や可能性が挙げられる。予後の予測の際には、標的細胞の個数に加えて、他のパラメータを考慮してもよい。他のパラメータとしては、根治群／再発群／要治療群等
の治療状態、ステージＩ／ＩＩ／ＩＩＩ／ＩＶ等の進行度、１年／３年／５年／１０年生存率等の生存率、グリーソンスコア（Ｇｌｅａｓｏｎｓｃｏｒｅ）等の悪性度が挙げられる。すなわち、予後として、具体的には、根治群／再発群／要治療群等の治療状態に基づく予後、ステージＩ／ＩＩ／ＩＩＩ／ＩＶ等の進行度に基づく予後、１年／３年／５年／１０年生存率等の生存率に基づく予後、グリーソンスコア（Ｇｌｅａｓｏｎｓｃｏｒｅ）等の悪性度に基づく予後も挙げられる。グリーソンスコアは、例えば、前立腺癌の悪性度の判定に用いられる。治療状態、進行度、生存率、悪性度等のパラメータと標的細胞の個数を組み合わせて評価することにより、正確に予後を予測することができると期待される。予後は、特に、治療予後であってよい。すなわち、例えば、癌の治療後の被験体に対して本発明の予測方法を実施することにより、治療予後を予測することができる。

関連付け工程は、例えば、医師が実施してもよく、医師以外の者が実施してもよい。関連付け工程は、例えば、医療補助者等の、医師以外の医療関係者が実施してもよい。また、関連付け工程は、コンピュータ（具体的には、例えば、測定装置やプログラム）により自動で実施してもよい。本発明の予測方法による予測結果は、例えば、医師等の医療関係者が被験体の予後を診断するために利用することができる。したがって、本発明の予測方法は、被験体の予後を診断するための予備的方法とみなしてもよい。

本発明の予測方法によれば、治療方針の決定や治療効果のモニタリングにおいて精度よい情報を提供できる。本発明の予測方法によれば、被験体が抱える病状における危険性や生存の確率に関する情報を医師に与えることで、最適な治療方法を選択できるため、不必要な治療を被験体に行なうリスクの低減に繋がる。そのため、本発明の予測方法によれば、不必要な治療に対する費用の節約だけでなく、最適な治療選択による被験体の予後改善に寄与できる。例えば、本発明の予測方法によって要治療群または低い生存率と予測された被験体には、さらに、抗癌剤投与、放射線療法、外科手術等の適切な医療行為を実施してよい。また、本発明の予測方法は、被験体の予後診断だけでなく、例えば、被験体における腫瘍の早期発見や転移診断にも展開可能であり、また、健常者に対する癌診断のスクリーニングにも展開できる。

＜３＞本発明のプログラム
本発明は、本発明の方法に含まれる工程をコンピュータに実行させるプログラムを提供する。同プログラムを、「本発明のプログラム」ともいう。「本発明の方法」とは、本発明の検出方法および本発明の予測方法を総称してよい。

すなわち、本発明においては、本発明の方法に含まれる工程をコンピュータが実行してもよい。コンピュータは、本発明の方法に含まれる工程の一部または全部を実行してよい。コンピュータは、例えば、検出工程および／または予測工程を実行してよい。

具体的には、例えば、医療関係者は、被験体から血液由来試料等の試料を取得し、必要により前処理を行ない、測定装置にセットすることができる。コンピュータは、測定装置に試料中の細胞の上皮系マーカーやＴＭ４ＳＦ１等のマーカーを測定させ、標的細胞を検出することができる。コンピュータは、さらに、標的細胞の検出結果に基づいて被験体の予後を予測することができる。コンピュータは、さらに、そのようにして得られた予測結果を出力することができ、以て医療関係者は予測結果を取得して被験体の予後の診断に利用することができる。

本発明のプログラムは、コンピュータが読み取り可能な記録媒体に記録され、提供されてよい。「コンピュータが読み取り可能な記録媒体」とは、データやプログラム等の情報が電気的、磁気的、光学的、機械的、または化学的作用等により蓄積され、さらに蓄積された情報をコンピュータから読み取ることのできる記録媒体をいう。そのような記録媒体
としては、フロッピー（登録商標）ディスク、光磁気ディスク、ＣＤ−ＲＯＭ、ＣＤ−Ｒ／Ｗ、ＤＶＤ−ＲＯＭ、ＤＶＤ−Ｒ／Ｗ、ＤＶＤ−ＲＡＭ、ＤＡＴ、８ｍｍテープ、メモリカード、ハードディスク、ＲＯＭ（リードオンリーメモリ）、ＳＳＤが挙げられる。また、本発明のプログラムは、コンピュータにより実行される各ステップが別個のプログラムとして記録されていてもよい。

以下、非限定的な実施例を参照して本発明をさらに具体的に説明する。

実施例１血中循環腫瘍細胞（ＣＴＣ）の遺伝子発現解析
以下の方法により、前立腺癌患者由来血液試料中に含まれるＣＴＣの遺伝子発現解析を行なった。

（１）前立腺癌患者より血液試料として全血を採取し、当該採取量に対し１０倍量の１×ＢＤＰｈａｒｍＬｙｓｅ（ＢｅｃｔｏｎＤｉｃｋｉｎｓｏｎ）を加え、室温で１０分間インキュベート後、０．５％（ｗ／ｖ）ＢＳＡと２ｍＭＥＤＴＡとを含むＤ−ＰＢＳ（−）（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓＰｈｏｓｐｈａｔｅ−ＢｕｆｆｅｒｅｄＳａｌｉｎｅ、Ｍｇ^２＋およびＣａ^２＋不含）（以下、単に「バッファ」と表記）で前記血液試料中に含まれる細胞を洗浄し、バッファに懸濁させた。

（２）（１）の細胞懸濁液５０μＬにＦｃＲＢｌｏｃｋｉｎｇＲｅａｇｅｎｔを５０μＬ（ＭｉｌｔｅｎｙｉＢｉｏｔｅｃ）加え混和した。その後、ＰＥ（フィコエリスリン）標識抗ＴＭ４ＳＦ１（Ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ４ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙ
ｍｅｍｂｅｒ１）抗体溶液５０μＬ（ＰＥ−ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎＴＭ４ＳＦ１Ａｎｔｉｂｏｄｙ、Ｒ＆Ｄｓｙｓｔｅｍｓ）、ＰＥ標識抗ＴＮＦＲＳＦ１２Ａ（Ｔｕｍｏｒｎｅｃｒｏｓｉｓｆａｃｔｏｒｒｅｃｅｐｔｏｒｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙｍｅｍｂｅｒ１２Ａ）抗体溶液２．５μＬ（ＰＥ−ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎＴＮＦＲＳＦ１２ＡＡｎｔｉｂｏｄｙ、Ｂｉｏｌｅｇｅｎｄ）、ＰＥ標識抗ＥｐＣＡＭ（Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌａｄｈｅｓｉｏｎｍｏｌｅｃｕｌｅ）抗体溶液１０μＬ（ＰＥ−ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎＥｐＣＡＭＡｎｔｉｂｏｄｙ、ＭｉｌｔｅｎｙｉＢｉｏｔｅｃ）、ＦＩＴＣ（フルオレセインイソチオシアネート）標識抗ＣＤ４５抗体溶液１０μＬ（ＣＤ４５−ＢＢ５１５、ＢｅｃｔｏｎＤｉｃｋｉｎｓｏｎ）、および細胞核染色試薬として１ｍｇ／ｍＬＨｏｅｃｈｓｔ３３３４２ｓｏｌｕｔｉｏｎ１．１μＬ（同仁化学研究所）を加え混和した。冷蔵で１０分間インキュベート後、バッファで細胞を洗浄し、バッファに懸濁させた。

（３）（２）の細胞懸濁液８０μＬに、Ａｎｔｉ−ＰＥＭｉｃｒｏｂｅａｄｓＵｌｔｒａＰｕｒｅ（ＭｉｌｔｅｎｙｉＢｉｏｔｅｃ）２０μＬを加え、冷蔵で１５分間インキュベート後、バッファで細胞を洗浄し、バッファに懸濁させた。

（４）ＭＳカラム（ＭｉｌｔｅｎｙｉＢｉｏｔｅｃ）を、ＭＡＣＳＳｅｐａｒａｔｏｒ（ＭｉｌｔｅｎｙｉＢｉｏｔｅｃ）に設置し、バッファで洗浄後、（３）の細胞懸濁液５００μＬを添加し、バッファ５００μＬで３回洗浄した。

（５）洗浄後のカラムをＭＡＣＳＳｅｐａｒａｔｏｒから外し、バッファ１ｍＬをカラムに添加後、当該カラムにプランジャーを押し入れることで細胞を回収した。

（６）回収した細胞をスライドガラス上に播種して蛍光顕微鏡下で観察し、ＰＥのシグナルを有する細胞（すなわち、少なくともＴＭ４ＳＦ１、ＴＮＦＲＳＦ１２Ａ、またはＥｐＣＡＭが陽性の細胞）をＣＴＣとして検出した。検出したＣＴＣは、いずれも、ＣＤ４
５陰性で、且つ細胞核を有していた。検出したＣＴＣはマイクロピックシステム（ネッパジーン）を用いて回収した。

（７）回収したＣＴＣ（計３１サンプル）について、ＳＭＡＲＴ−Ｓｅｑｖ４ＵｌｔｒａＬｏｗＩｎｐｕｔＲＮＡＫｉｔｆｏｒＳｅｑｕｅｎｃｉｎｇ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）によりｃＤＮＡの合成および増幅を行なった。

（８）（７）で得られたｃＤＮＡ１ｎｇ分を使用して、ＮｅｘｔｅｒａＸＴＤＮＡＬｉｂｒａｒｙＰｒｅｐａｒａｔｉｏｎＫｉｔ（Ｉｌｌｕｍｉｎａ）およびＮｅｘｔｅｒａＸＴｖ２ＩｎｄｅｘＫｉｔＳｅｔＡ（Ｉｌｌｕｍｉｎａ）によるライブラリー調製を行ない、Ｎｅｘｔ−ｓｅｑ５００（Ｉｌｌｕｍｉｎａ）を用いてリード長１５０ｂｐ、ｐａｉｒｅｄｅｎｄｒｅａｄの条件でシーケンス解析を行なうことで、一試料あたり１０００万リード以上の配列を解読した。

（９）（８）で解読したヌクレオチド配列（シーケンスデータ）をＴｏｐＨａｔ２（ＪＯＨＮＳＨＯＰＫＩＮＳ大学）およびＢｏｗｔｉｅ２（ＪＯＨＮＳＨＯＰＫＩＮＳ大学）を用いて、ヒトゲノム配列にマップした。なおヒトゲノム配列およびヒト遺伝子情報はＮＣＢＩ（ＮａｔｉｏｎａｌＣｅｎｔｅｒｆｏｒＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＩｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ）より公開されているＢＵＩＬＤＧＲＣｈ３８を使用した。マップしたヌクレオチド配列は、Ｃｕｆｆｌｉｎｋｓ（Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ大学）により、解読した各遺伝子のリード数から、ＦＰＫＭ（ＦｒａｇｍｅｎｔｓＰｅｒＫｉｌｏｂａｓｅｏｆｅｘｏｎｐｅｒＭｉｌｌｉｏｎｒｅａｄｓｍａｐｐｅｄ）を単位とする遺伝子ごとの発現値を求めた。

従来よりＣＴＣ検出に用いられる上皮系マーカーである、ＥｐＣＡＭ遺伝子は３１サンプル中１０サンプルで（図１）、サイトケラチンの一つであるＫＲＴ８（サイトケラチン８）遺伝子は３１サンプル中８サンプルで（図２）、それぞれ発現が認められなかった。したがって、これらサンプルは上皮系マーカー陰性のＣＴＣといえる。なお、ＥｐＣＡＭ遺伝子の発現が認められなかった１０サンプルのうち、２サンプル（７０＿５および７２＿２）はＫＲＴ８遺伝子の発現がわずかなサンプルであり、残り８サンプル（４７＿５、４７＿６、５７＿５、５８＿１、５８＿３、７０＿１、７０＿２および７０＿３）はＫＲＴ８遺伝子の発現が認められなかったサンプルである（図１および図２）。

一方、上皮系マーカー陰性のＣＴＣ１０サンプル（４７＿５、４７＿６、５７＿５、５８＿１、５８＿３、７０＿１、７０＿２、７０＿３、７０＿５および７２＿２）全てでＴＭ４ＳＦ１遺伝子を高発現していた（図３）。このことから、上皮系マーカー陰性のＣＴＣをＴＭ４ＳＦ１遺伝子の発現に基づき網羅的に検出できることが明らかとなった。すなわち、上皮系マーカーとＴＭ４ＳＦ１を組み合わせて測定することにより、上皮系マーカー陰性のＣＴＣを特異的かつ網羅的に検出できることが明らかとなった。

また、上皮系マーカー陰性のＣＴＣ１０サンプル全てで間葉系マーカーであるビメンチン（Ｖｉｍｅｎｔｉｎ、ＶＩＭ）遺伝子を高発現していた（図４）。よって前記サンプルに含まれるＣＴＣは上皮間葉転換を起こしたＣＴＣといえる。さらに、上皮系マーカー陰性ＣＴＣの１０サンプルのうち４７＿５を除く９サンプルでＢＭＰ４（Ｂｏｎｅｍｏｒｐｈｏｇｅｎｅｔｉｃｐｒｏｔｅｉｎ４）遺伝子を発現していた（図５）。ＢＭＰ４は骨転移した前立腺癌において発現が見られる骨形成因子であることから、前記サンプルに含まれるＣＴＣの多くは骨転移と関係したＣＴＣであることを示唆している。

以上をまとめると、癌に罹患していた、または癌に罹患している患者から採取した血液試料中にＥｐＣＡＭやサイトケラチンなど上皮系マーカー陰性かつＴＭ４ＳＦ１陽性のＣ
ＴＣが含まれていると、上皮間葉転換や骨転移を起こしている可能性があり、全生存予後が悪化していると予測できる。

実施例２上皮系マーカー陰性癌細胞のＴＭ４ＳＦ１による検出
以下の方法により、前立腺癌細胞の蛍光標識抗体法による検出を行なった。

（１）上皮系マーカー高発現のヒト前立腺癌細胞株としてＶＣａＰを、上皮系マーカー低発現のヒト前立腺癌細胞株としてＰＣ３をそれぞれ選択し、以下に示す培地を用いて、５％ＣＯ_２環境下３７℃で培養した。培養後、ＴｒｙｐＬＥＥｘｐｒｅｓｓ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて培養皿から細胞を剥離することで、癌細胞を回収した。
ＶＣａＰ：１０％（ｖ／ｖ）ＦＢＳ（ウシ胎児血清）を含むＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓＭｏｄｉｆｉｅｄＥａｇｌｅＭｅｄｉｕｍ）培地
ＰＣ３：１０％（ｖ／ｖ）ＦＢＳを含むＨａｍ’ｓＦ−１２Ｋ培地

（２）ＶＣａＰ細胞とＰＣ３細胞とを細胞数１：１で混合し、バッファ１００μＬに懸濁した。

（３）細胞懸濁液１００μＬに、ＦｃＲＢｌｏｃｋｉｎｇＲｅａｇｅｎｔ（ＭｉｌｔｅｎｙｉＢｉｏｔｅｃ）５０μＬ、１ｍｇ／ｍＬＨｏｅｃｈｓｔ３３３４２ｓｏｌｕｔｉｏｎ（同仁化学研究所）２．５μＬ、抗ＴＭ４ＳＦ１抗体（ＰＥ−ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎＴＭ４ＳＦ１Ａｎｔｉｂｏｄｙ、Ｒ＆Ｄｓｙｓｔｅｍｓ）５０μＬおよび抗ＥｐＣＡＭ抗体（ＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ６４７Ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎＣＤ３２６（ＥｐＣＡＭ）Ａｎｔｉｂｏｄｙ、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ）１０μＬを加え、冷蔵で１０分間インキュベートした。

（４）細胞をバッファで洗浄後、細胞をバッファ１００μＬに懸濁した。

（５）細胞をスライドガラス上に播種し、顕微鏡下で観察を行なった

染色結果を図６に示す。明視野像（図６のパネル（ａ））およびＨｏｅｃｈｓｔ３３３４２染色像（図６のパネル（ｂ））から、図６に示す観察範囲中に５つの細胞（図６のパネル（ａ）および（ｂ）の矢印）が存在していることがわかる。当該５つの細胞のうち、ＶＣａＰ（上皮系マーカー高発現細胞）に相当する、白矢印で示した２細胞は、従来よりＣＴＣ検出に用いられる上皮系マーカーであるＥｐＣＡＭに対する蛍光標識抗体では染色されている（図６のパネル（ｃ））が、ＴＭ４ＳＦ１に対する蛍光標識抗体では染色されていない（図６のパネル（ｄ））。一方、ＰＣ３（上皮系マーカー低発現細胞）に相当する、黒矢印で示した３細胞は、ＥｐＣＡＭに対する蛍光標識抗体で染色されていない（図６のパネル（ｃ））が、ＴＭ４ＳＦ１に対する蛍光標識抗体で染色されている（図６のパネル（ｄ））。以上の結果から、上皮系マーカーでの結果とＴＭ４ＳＦ１での結果とを組み合わせることで、上皮系マーカー低発現（陰性）の腫瘍細胞を特異的に検出できることがわかる。

実施例３血液試料中に含まれる癌細胞の識別
以下の方法により、血液試料中に含まれる前立腺癌細胞の回収、および蛍光標識抗体法による検出を行なった。

（１）上皮系マーカー高発現のヒト前立腺癌細胞株としてＶＣａＰを、上皮系マーカー低発現のヒト前立腺癌細胞株としてＰＣ３をそれぞれ選択し、以下に示す培地を用いて、５％ＣＯ_２環境下３７℃で培養した。培養後、ＴｒｙｐＬＥＥｘｐｒｅｓｓを用いて培
養皿から細胞を剥離することで、癌細胞を回収した。
ＶＣａＰ：１０％（ｖ／ｖ）ＦＢＳを含むＤＭＥＭ培地
ＰＣ３：１０％（ｖ／ｖ）ＦＢＳを含むＨａｍ’ｓＦ−１２Ｋ培地

（２）ＶＣａＰ細胞とＰＣ３細胞とを細胞数１：１で混合し、健常者より採取した全血に添加することで血液試料を調製した。

（３）（２）で調製した血液試料に対し、１０倍量の１×ＢＤＰｈａｒｍＬｙｓｅ（ＢｅｃｔｏｎＤｉｃｋｉｎｓｏｎ）を加え、室温で１０分間インキュベート後、バッファで前記血液試料中に含まれる細胞を洗浄し、バッファに懸濁させた。

（４）（３）の細胞懸濁液５０μＬにＦｃＲＢｌｏｃｋｉｎｇＲｅａｇｅｎｔを５０μＬ（ＭｉｌｔｅｎｙｉＢｉｏｔｅｃ）加え混和した。その後、ＰＥ標識抗ＴＭ４ＳＦ１抗体溶液５０μＬ（ＰＥ−ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎＴＭ４ＳＦ１Ａｎｔｉｂｏｄｙ、Ｒ＆Ｄｓｙｓｔｅｍｓ）、ＰＥ標識抗ＥｐＣＡＭ抗体溶液１０μＬ（ＰＥ−ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎＥｐＣＡＭＡｎｔｉｂｏｄｙ、ＭｉｌｔｅｎｙｉＢｉｏｔｅｃ）、ＡＰＣ（アロフィコシアニン）標識抗ＥｐＣＡＭ抗体溶液６μＬ（ＡＰＣ−ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎＥｐＣＡＭＡｎｔｉｂｏｄｙ、ＭｉｌｔｅｎｙｉＢｉｏｔｅｃ）、ＦＩＴＣ（フルオレセインイソチオシアネート）標識抗ＣＤ４５抗体溶液１０μＬ（ＣＤ４５−ＢＢ５１５、ＢｅｃｔｏｎＤｉｃｋｉｎｓｏｎ）、および細胞核染色試薬として１ｍｇ／ｍＬＨｏｅｃｈｓｔ３３３４２ｓｏｌｕｔｉｏｎ２．５μＬ（同仁化学研究所）を加え混和した。冷蔵で１０分間インキュベート後、バッファで細胞を洗浄し、バッファに懸濁させた。

（５）実施例１（３）から（５）と同様な方法で、（４）の細胞懸濁液８０μＬから細胞を回収した。

（６）回収した細胞をスライドガラス上に播種して蛍光顕微鏡下で観察を行なった。

染色結果を図７に示す。明視野像（図７のパネル（ａ））、Ｈｏｅｃｈｓｔ３３３４２染色像（図７のパネル（ｂ））、ＰＥ標識された抗体（ＴＭ４ＳＦ１に対する抗体およびＥｐＣＡＭに対する抗体）による染色像（図７のパネル（ｃ））およびＣＤ４５に対する抗体による染色像（図７のパネル（ｅ））から、図７に示す観察範囲中に核が染色され、ＰＥ標識された抗体で染色され、かつ、ＣＤ４５に対する抗体で染色されていない４つの癌細胞（図７のパネル（ａ）、（ｂ）および（ｃ）の矢印）が存在していることがわかる。当該４つの細胞のうち、ＶＣａＰ（上皮系マーカー高発現細胞）に相当する、白矢印で示した２細胞は、従来よりＣＴＣ検出に用いられる上皮系マーカーであるＥｐＣＡＭに対する蛍光標識抗体で染色されている（図７のパネル（ｄ））。一方、ＰＣ３（上皮系マーカー低発現細胞）に相当する、黒矢印で示した２細胞は、ＥｐＣＡＭに対する蛍光標識抗体で染色されていないことから（図７のパネル（ｄ））、ＰＥ標識ではＴＭ４ＳＦ１に対する抗体で染色されていることがわかる（図７のパネル（ｃ））。

以上の結果から、ＴＭ４ＳＦ１に対する抗体とＥｐＣＡＭに対する抗体とを組み合わせることで、上皮系マーカー低発現（陰性）の癌細胞および上皮系マーカー高発現（陽性）の癌細胞のどちらも血液中から回収できることがわかる。さらに、上皮系マーカー低発現の癌細胞と上皮系マーカー高発現の癌細胞とを識別して検出できることもわかる。

Claims

試料中の標的細胞を検出する方法であって、
試料中の少なくとも１つの上皮系マーカーが陰性かつＴＭ４ＳＦ１（Ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ４ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙｍｅｍｂｅｒ１）が陽性の細胞を標的細胞として検出する工程
を含み、
前記標的細胞が、腫瘍細胞である、方法。
前記上皮系マーカーが、ＥｐＣＡＭ（Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌａｄｈｅｓｉｏｎｍｏｌｅｃｕｌｅ）および／またはサイトケラチンである、請求項１に記載の方法。
前記標的細胞が、循環腫瘍細胞である、請求項１または２に記載の方法。
前記標的細胞が、上皮間葉転換を起こした腫瘍細胞である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
前記標的細胞が、骨転移に関係する前立腺癌由来腫瘍細胞である、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
前記試料が、被験体から得られた試料である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
前記被験体が、癌被験体である、請求項６に記載の方法。
前記被験体が、ヒトである、請求項６または７に記載の方法。
前記試料が、血液由来試料である、請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法。
前記検出により、前記試料中の前記標的細胞の個数が測定される、請求項１〜９のいずれか１項に記載の方法。
前記試料が、被験体から得られた試料であり、
前記被験体が、癌被験体であり、
前記検出により、前記試料中の前記標的細胞の個数が測定される、
請求項１〜１０のいずれか１項に記載の方法。
被験体の予後を予測する方法であって、
請求項１１に記載の方法により前記試料中の前記標的細胞の個数を測定する工程、および
前記個数と前記被験体の予後とを関連付ける工程
を含む、方法。