JP2021169451A - 膀胱癌の治療、診断、及び予後判定方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、癌、例えば、膀胱癌のための治療、診断、及び予後判定方法ならびに組成物を提供する。本発明は、FGFR3、TP53、及び/またはEGFRを含む、表1に記載の遺伝子の少なくとも1つの発現レベル(例えば、基準試料に対して変化した発現レベル)の決定が、癌に罹患している患者を治療するため、癌に罹患している患者の予後を決定するため、癌を有する患者が抗癌療法剤での治療に応答する可能性があるかどうかを決定するため、及び/または癌を有する患者に対する抗癌療法剤の治療効果を最適化するために有用であるという発見に基づいている。一部の実施形態において、次いで、抗癌療法剤が患者に対して選択され得、更に、抗癌療法剤は、任意選択で患者に投与され得る。
「発現レベル」、「発現のレベル」、または「レベル」は、交換可能に使用され、概して、生物試料中のポリヌクレオチド(例えば、メッセンジャーRNA(mRNA)またはアミノ酸産生物若しくはタンパク質の量を指す。「発現」は、概して、遺伝子コードされた情報が、細胞内に存在し、作動する構造体内に転換されるプロセスを指す。したがって、本発明によると、遺伝子の「発現」は、ポリヌクレオチド(例えば、mRNA)への転写、ポリペプチド(例えば、タンパク質)への翻訳、または更にポリペプチドの翻訳後修飾を指し得る。転写されたポリヌクレオチドの断片、翻訳されたポリペプチド、または翻訳後修飾されたポリペプチドも、それらが、代替的なスプライシングにより生成された転写産物若しくは劣化した転写産物、または例えば、タンパク質分解によるタンパク質の翻訳後処理を起源とするかどうかにかかわらず、発現されたと見なされよう。「発現遺伝子」には、mRNAとしてポリヌクレオチドへと転写され、次いでタンパク質へと翻訳されるものと、また、RNAへと転写されるがタンパク質へと翻訳されないもの(例えば、トランスファーRNA及びリボソームRNA)とが含まれる。
本発明は、癌に罹患している患者の治療方法を提供する。癌という用語は、前癌性成長、良性腫瘍、及び悪性腫瘍を含むがこれらに限定されない、増殖性障害の集合を包含する。良性腫瘍は、依然として起源部位に位置し、遠隔部位へと浸潤、侵襲、または転移する能力を有しない。悪性腫瘍は、それらの周りの他の組織を侵襲及び損傷することになる。それらはまた、起源部位から離脱する能力を得て、通常は血流を通して、またはリンパ節が位置するリンパ系を通して体内の他の部分に広がる(転移する)ことができる。原発腫瘍は、それらが生じる組織のタイプによって分類され、転移性腫瘍は、癌細胞が由来する組織タイプによって分類される。経時的に、悪性腫瘍の細胞は、より異常になり、正常細胞のようには見えない。癌細胞の外観のこの変化は、腫瘍悪性度と呼ばれ、癌細胞は、良好に分化している(低悪性度)、中度に分化している、不良に分化している、または未分化(高悪性度)であると記載される。良好に分化した細胞は、比較的正常な外観であり、それらが起源とする正常細胞に類似する。未分化細胞は、異常になったため、もはや細胞の起源を特定することができない細胞である。特定の実施形態において、本発明は、膀胱癌の治療方法を提供する。
本発明は、癌に罹患している患者を診断するため、癌に罹患している患者の予後を決定するため、癌を有する患者が抗癌療法剤での治療に応答する可能性があるかどうかを決定するため、及び癌を有する患者に対する抗癌療法剤の治療効果を最適化するための方法を提供する。これらの方法は、特に、癌のサブタイプを診断するため、治療転帰を予測するため、及び患者への抗癌療法剤の投与が有効となる可能性を増加させるために有用である。いくつかの実施形態において、これらの方法は、患者から得られる試料中の、本発明のバイオマーカー(例えば、表1に列挙されるバイオマーカー)のうちの少なくとも1つの発現レベルを決定することと、その発現レベルを、本発明のバイオマーカーの基準レベルと比較することと、を含む。特定の実施形態において、これらの方法は、患者から得られる試料中の以下の遺伝子、FGFR3、TP53、及び/またはEGFRのうちの少なくとも1つの発現レベルを決定することと、この発現レベルを、少なくとも1つの遺伝子の基準レベルと比較することと、を含む。本発明のバイオマーカー(例えば、FGFR3、TP53、及び/またはEGFR)の発現レベルは、下記の方法若しくはアッセイのうちのいずれかを使用するか、または当該技術分野において既知の任意の方法若しくはアッセイによって決定され得る。特定の実施形態において、癌は、膀胱癌である。一部の実施形態において、膀胱癌は、NMIBCである。他の実施形態において、膀胱癌は、MIBCである。更に他の実施形態において、膀胱癌は、転移性膀胱癌である。患者は、任意選択で、進行性、難治性、再発性、及び/または化学療法耐性形態の癌を有し得る。例えば、一部の実施形態において、患者は、再発性膀胱癌、例えば、再発性NMIBCを有し得る。
スコア0:染色が観察されないか、または膜染色が腫瘍細胞の10%未満で観察される。
スコア1+:かすかな/ほとんど認識不可能な膜染色が、腫瘍細胞の10%超で検出される。細胞は、それらの膜の一部分が染色されるだけである。
スコア2+:弱〜中度の完全膜染色が、腫瘍細胞の10%超で観察される。
スコア3+:中〜強度の完全膜染色が、腫瘍細胞の10%超で観察される。
0=0〜90コピー/細胞、
1+=少なくとも約100コピー/細胞、
2+=少なくとも約1000コピー/細胞、
3+=少なくとも約10,000コピー/細胞。
本明細書に記載される遺伝的バイオマーカーは、当該技術分野において既知の任意の方法を使用して検出され得る。例えば、哺乳動物からの組織または細胞試料は、例えば、関心対象の遺伝的バイオマーカーからのmRNAまたはDNAに関して、ノーザン、ドットブロット、またはポリメラーゼ連鎖反応(PCR)解析、アレイハイブリダイゼーション、RNase保護アッセイを使用するか、またはDNAマイクロアレイスナップショットを含む、市販のDNA SNPチップマイクロアレイを使用して、便宜的にアッセイされ得る。例えば、定量的PCRアッセイ等のリアルタイムPCR(RT−PCR)アッセイは、当該技術分野において周知である。本発明の例示の実施形態において、生物試料中の関心対象の遺伝的バイオマーカーからのmRNAの検出方法は、少なくとも1つのプライマーを使用する逆転写によって試料からcDNAを産生することと、増幅cDNAの存在を検出することと、を含む。加えて、かかる方法は、生物試料中のmRNAのレベルを決定するのを可能にする(例えば、アクチンファミリーメンバー等の「ハウスキーピング」遺伝子の比較対照mRNA配列のレベルを同時に調べることによって)、1つ以上のステップを含み得る。任意選択で、増幅cDNAの配列が決定され得る。FGFR3の発現レベルの例示的な決定方法は、例えば、米国特許出願公開第2014/0030259号、及び米国特許第8,410,250号に提供され、両方が参照によりそれら全体が本明細書に組み込まれる。
1つの特定の実施形態において、表1に記載される遺伝子の発現は、RT−PCR技術によって行われ得る。PCRに使用されるブローブは、検出可能なマーカー、例えば、放射線同位体、蛍光化合物、生物発光化合物、化学発光化合物、金属キレート剤、または酵素等で標識されてもよい。かかるプローブ及びプライマーを使用して、試料中の表1に記載される発現遺伝子の存在を検出することができる。熟練者によって理解されるであろう通り、非常に多くの異なるプライマー及びプローブが、本明細書に提供されるシーケンスに基づいて調製され、それらを有効に使用して、表1及び/または表4に記載される発現遺伝子の存在及び/またはレベルを増幅、クローン化、及び/または決定することができる。一部の実施形態において、RT−PCRは、定量的RT−PCRであり得る。一部の事例において、定量的RT−PCRは、微小流体デバイス、例えば、Fluidigm BIOMARK(商標)BMK−M−96.96プラットフォームにおいて行われてもよい。
表1に列挙されるもの等のタンパク質バイオマーカーの検出に関して(例えば、FGFR3、TP53、及び/またはEGFR)、例えば、抗体ベースの方法、ならびに質量分光法及び当該技術分野において既知の他の類似手段を含む、様々なタンパク質アッセイが使用可能である。抗体ベースの方法の場合において、例えば、試料は、抗体−バイオマーカーの錯体が形成し、次いで当該錯体を検出するのに十分な条件下で、当該バイオマーカーに特異的な抗体と接触させてもよい。タンパク質バイオマーカーの存在の検出は、ウェスタンブロッティング(免疫沈降の有無を問わず)、二次元SDS−PAGE、免疫沈降、蛍光活性化細胞分類(FACS)、フローサイトメトリー、及び血漿または血清を含む多種多様な組織及び試料をアッセイするためのELISA手順等の多くの方法において達成され得る。かかるアッセイ形式を使用する広範囲のイムノアッセイ技法が使用可能であり、例えば、米国特許第4,016,043号、同第4,424,279号、及び同第4,018,653号を参照されたい。これらには、非競合型の単一部位及び二部位、または「サンドイッチ」アッセイ、ならびに伝統的な競合結合アッセイの両方が含まれる。これらのアッセイにはまた、標的バイオマーカーへの標識された抗体の直接結合が含まれる。
バイオマーカーの検出における使用の場合、製造元のキットまたは製品もまた本発明により提供される。かかるキットを使用して、例えば、癌(例えば、膀胱癌)に罹患しているか、または罹患していると疑われる患者を診断すること、癌、例えば、膀胱癌に罹患している患者の予後判定を提供すること、及び/または癌(例えば、膀胱癌)を有する患者が、抗癌療法剤に対して有効に応答性となるかどうかを決定することができる。これらのキットは、厳重な管理下で、バイアル、管等の1つ以上の容器手段を受容するように区分化された担体手段を備えてよく、容器手段のそれぞれは、本方法で使用される別個の要素のうちの1つを含む。例えば、容器手段のうちの1つは、検出可能に標識されるか、または検出可能に標識され得るプローブを備えてよい。かかるプローブは、タンパク質またはメッセージにそれぞれ特異的な抗体またはポリヌクレオチドであってもよい。キットが核酸ハイブリダイゼーションを用いて標的核酸を検出する場合、キットは、標的核酸配列の増幅のためのヌクレオチド(複数可)を含む容器、及び/または酵素、蛍光、若しくは放射性同位元素標識等のレポーター分子に結合されるアビジン若しくはストレプトアビジン等のビオチン結合タンパク質等のレポーター手段を含む容器も有し得る。
本発明に従って使用される、本発明に記載される抗癌療法剤(例えば、FGFR3アンタゴニスト、TP53アンタゴニスト、及び/またはEGFRアンタゴニスト等のアンタゴニストを含む抗癌療法剤)の療法剤(複数可)の治療製剤は、所望の純度を有する療法剤(複数可)を、凍結乾燥された製剤または水溶液の形態にある任意選択の薬学的に許容される担体、賦形剤、または安定剤と混合することにより、保管のために調製される。製剤に関する一般情報については、例えば、Gilman et al.,(eds.)(1990),The Pharmacological Bases of Therapeutics,8th Ed.,Pergamon Press、A.Gennaro(ed.),Remington′s Pharmaceutical Sciences,18th Edition,(1990),Mack Publishing Co.,Eastori,Pennsylvania、Avis et al.,(eds.)(1993)Pharmaceutical Dosage Forms:Parenteral Medications Dekker,New York、Lieberman et al.,(eds.)(1990)Pharmaceutical Dosage Forms:Tablets Dekker,New York、及びLieberman et al.,(eds.)(1990),Pharmaceutical Dosage Forms:Disperse Systems Dekker,New York,Kenneth A.Walters(ed.)(2002)Dermatological and Transdermal Formulations(Drugs and the Pharmaceutical Sciences),Vol 119,Marcel Dekkerを参照されたい。
腫瘍試料
204ホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)膀胱癌腫瘍試料の集合は、サンクトペテルブルグ市臨床腫瘍学病院の倫理委員会の承認及び書面によるインフォームドコンセントの適切な確認に続いて、Cureline,Inc.(South San Francisco,CA)から、または施設内審査委員会(スターリング施設内審査委員会)の承認に続いて、The MT Group(Van Nuys,CA)から入手した。臨床試料は、膀胱癌において典型的に観察される約80%/20%の予想男性/女性比を忠実に再現し、筋層非侵襲性膀胱癌(NMIBC;T0、T1)、筋層侵襲性膀胱癌(MIBC;T2、T3)、及び転移の割合は、それぞれ約75%及び約25%であり(図1)、膀胱癌集団におけるこれらの病期の臨床発症率と一致していた(Jemal et al.CA Cancer J.Clin.61(2):69−90,2011、Heney,Urol.Clin.North Am.19(3):429−433,1992、Hall et al.Urology 52(4):594−601,1998)。症例のサブセットは、それぞれの群に関して予想された臨床パラメータと同様に、付随の治療情報、無疾患生存(DFS)、及び全生存(OS)の注釈を有していた(図1、表3)。
遺伝子発現解析は、前述の通り、ENVIRENE(商標)による脱パラフィン化後に、高純度FFPE RNAマイクロキット(Roche Diagnostics,Indianapolis,IN)を使用してマクロ切開されたFFPE腫瘍試料から抽出されたRNA上で行った(Schleifman et al.PLoS One 9(2):e88401)。膀胱癌関連遺伝子の96の固有のmRNA転写産物の遺伝子発現解析(表1を参照されたい)は、SUPERSCRIPT(登録商標)III/PLATINUM(登録商標)Taq及び前置増幅反応ミックス(Invitrogen,Carlsbad,CA)を使用し、単一反応においてcDNAに逆転写され、前置増幅された合計100ngのRNAから開始して患者標本上で行った。全96のTAQMAN(登録商標)プライマー/プローブのセットは、元のTAQMAN(登録商標)アッセイ濃度(Applied Biosystems,Foster City,CA)の0.05倍の最終希釈での前置増幅反応に含まれた。熱循環条件は、以下の通りであった。50℃で15分間の1サイクル、70℃で2分間の1サイクル、95℃で15秒間の14サイクル、及び60℃で4分間の1サイクル。前置増幅されたcDNAを2倍に希釈し、次いで、製造元の指示に従い、TAQMAN(登録商標)ユニバーサルPCRマスターミックス(Applied Biosystems,Foster City,CA)を、BIOMARK(商標)BMK−M−96.96プラットフォーム(Fluidigm,South San Francisco,CA)上で使用して増幅させた。全ての試料を3回アッセイした。サイクル閾値(Ct)を、2−ΔCt法を使用して相対発現に変換し(Livak et al.Methods 25(4):402−408,2001)、式中、ΔCtは、標的遺伝子の平均からそれぞれの患者標本に関して計算された96Ct値の平均を引いたものである。表2は、指示された遺伝子に関して使用されたカスタムTAQMAN(登録商標)プローブ及びオリゴヌクレオチドのヌクレオチド配列を示す。
表1.カスタム膀胱癌マイクロフルイディクスパネル及び対応するアッセイ
HGNC=HUGO遺伝子命名委員会
表2:カスタムTAQMAN(登録商標)プローブ及びプライマーのオリゴヌクレオチド配列
突然変異解析は、ENVIRENE(商標)による脱パラフィン化後に、QIAAMP(登録商標)FFPEキット(Qiagen,Valencia,CA)を使用してマクロ切開されたFFPE組織から抽出されたゲノムDNA上で実行した(Schleifman et al.PLoS One 9(3):e90761)。PIK3CA、EGFR、KRAS、NRAS、HRAS、FGFR3、MET、BRAF、KIT、AKT1、FLT3における突然変異は、前述される通り、突然変異特異的qPCRを使用して検出した(Schleifman et al.PLoS One 9(3):e90761)。次世代シーケンシング(NGS)は、ION AMPLISEQ(商標)癌ホットスポットパネルv2(Life Technologies,Carlsbad,CA)を使用するION TORRENT(商標)次世代シーケンシングを使用し、製造元のガイドラインに従って実行した(例えば、Tsongalis et al.Clin.Chem.Lab.Med.52(5):707−714,2014を参照されたい)。表3は、膀胱癌試料(WT、野生型;MUT、突然変異体)のNGS突然変異解析の結果の要約を示す。
表3:膀胱癌試料のNGS突然変異解析
免疫組織化学(IHC)は、Ventana DISCOVERY(登録商標)XT自動染色器プラットフォーム(Ventana Medical Systems Inc,Tucson,AZ)を使用して、厚さ4μmのFFPE組織断片上で行った。FGFR3の検出の場合、スライドは、CC1伸長された抗原抽出に続いて、抗FGFR3、1μg/mLに希釈されたクローン15C3(Genentech)一次抗体での染色を用いる前処置を受け、室温で60分間インキュベートされた。FGFR3シグナルの増幅の場合、複合されていないウサギ抗マウスリンカー抗体(Jackson Immunoresearch,West Grove,PA)を、1μg/mLで適用し、室温で32分間インキュベートした。これに続いて、抗ウサギOMNIMAP(商標)西洋わさびペルオキシダーゼ(HRP)キット(Ventana Medical Systems Inc,Tucson,AZ)を用いた。
膀胱癌細胞株は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(ATCC,Manassas,VA)から、またはDeutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH(DSMZ,Braunschweig,Germany)から入手した。細胞株は、Genentech細胞バンクにおける早期部分に記録保管され、多重短タンデム反復アッセイによるか、または前述の通りのいずれかで認証された(O′Brien et al.Clin.Cancer Res.16(14):3670−3683,2010)。全ての細胞株は、10%胎仔血清(Sigma,St.Louis,MO)、非必須アミノ酸、及び2mmol/L L−グルタミンで補充されたRPMI 1640またはDMEM中で維持した。
組織試料クラスタ(下位群)を特定するために、ユークリッド距離及び完全連結法を使用して、無監督の階層クラスタリングを行った。ノンパラメトリック・マン・ホイットニー検定(例えば、Mann and Whitney,Annals of Mathematical Statistics 18(1):50−60,1947を参照されたい)、及びボンフェローニ補正(例えば、Bonferroni,Pubblicazioni del R Instituto Superiore di Scienze Economiche e Commerciali di Firenze 8:3−62,1936、及びMiller, Simultaneous Statistical Inference,2nd Ed.,Springer Verlag,pages 6−8,1981を参照されたい)を適用して、膀胱試料クラスタの中で差次的に発現された遺伝子を更に特定した。DFSは、手術日から再発または死亡日までの時間として定義した。OSは、手術日から死亡日までの時間として同様に定義した。生存転帰は、患者が無再発であるか(DFSの場合)、または生存であるか(OSの場合)が分かった最新の観察時点で打ち切られた。カプラン・マイヤー推定(例えば、Kaplan and Meier, Journal of the American Statistical Association 53(282):457−481,1958を参照されたい)を使用して、DFS可能性及び生存可能性を経時的に推定した。3年及び5年DFS率及び生存率もまた、カプラン・マイヤーDFS/OS曲線推定から計算した。クラスタ間の差次的突然変異頻度の有意性に関して、フィッシャーの直接検定を行った。フィッシャーの直接検定(例えば、Fisher,Journal of the Royal Statistical Society 85(1):87−94,1922を参照されたい)及び両側T検定(例えば、Student,Biometrika 6(1):1−25,1908を参照されたい)を、統計比較に関して示される通り使用した。
ゲノム解析が、膀胱癌の分子的基礎に関する価値ある洞察を提供したが、以前の研究の大半は、高品質の核酸を産生し、一般に臨床治験からのアーカイブ標本の特徴付けには十分に適していない冷凍組織の使用に依存する。しかしながら、臨床治験からのアーカイブ標本は、多くの場合、付随する治療情報、無疾患生存(DFS)及び全生存(OS)情報、ならびにそれらを癌ゲノム解析のための優れたプラットフォームにする他の情報と関連付けられる。ここで、我々は、ホルマリン固定パラフィン包埋組織の解析のために最適化されたマイクロフルイディクスに基づく膀胱癌遺伝子発現パネルを開発した。カスタム膀胱癌Fluidigmパネルは、膀胱癌生物学の重要な属性を捕捉するように選択された96の遺伝子からなる(表1を参照されたい)。表1に記載されるカスタム膀胱癌Fluidigmパネルは、91の固有の膀胱癌関連遺伝子と共に、データ品質制御及び正規化のための2つのハウスキーピング遺伝子を含む(図12Aを参照されたい)。
NMIBCの特徴的機能のうちの1つは、それらが、症例の約60〜70%において線維芽細胞成長因子受容体3(FGFR3)に体細胞活性化突然変異を担持することである(van Rhijn et al.J.Pathol.198(2):245−251、Tomlinson et al.J.Pathol.213(1):91−98,2007、Martinez−Torrecuadrada et al.Clin.Cancer Res.11(17):6280−6290,2005、Kompier et al.PLoS One 5(11):e13821,2010、Juanpere et al.Hum.Pathol.43(10):1573−1582,2012、Gust et al.Mol.Cancer Ther.12(7):1245−1254,2013、Cappellen et al.Nat.Genet.23(1):18−20,1999、Ah−Ahmadie et al.J.Pathol.224(2):270−279,2011)。FGFR3突然変異の大半は、細胞外または膜近傍ドメイン内のミスセンス置換であり、リガンド独立型受容体二量体化及び後次の活性化につながる(Tomlinson et al.上記、Cappellen et al.上記)。侵襲性及び転移性疾患におけるFGFR3における突然変異頻度が、11〜16%に低下するという事実は、FGFR3が進行した疾患において腫瘍化を駆動し続けるかどうか、またはその腫瘍化の役割が、膀胱癌発達の早期にほぼ限定されるかどうかに関する不確実性につながった(Tomlinson et al.上記、Al−Ahmadie et al.上記、Qing et al.J.Clin.Invest.119(5):1216−1229,2009、Liu et al.Genet.Mol.Res.13(1):1109−1120,2014)。
カスタム膀胱癌Fluidigmパネルは、NMIBCの転写的に定義された侵襲性サブセットを特定した。比較発現解析は、45/96遺伝子(47%)が、急速に再発するNMIBC緑色群と、より良性の赤色群との間で著しく差次的に発現されたことを示した(P<0.05、多重試験補正を伴う)。差次的に発現された遺伝子は、上記の通り、FGFR3経路に属し、また腫瘍抑制因子TP53、鳥類の赤芽球症発癌遺伝子B(ERBB)、上皮間葉転換(EMT)、ホスファチジルイノシトール−3−キナーゼ、及びタンパク質キナーゼB(PI3K−AKT)経路にも属する(図8)。
ERBB2における突然変異は、侵攻性微小乳頭組織像の腫瘍において報告されてきた(Ross et al.Clin Cancer Res.20(1):68−75,2014)。当患者群において、ERBB2突然変異は検出されなかったが、より良性の表層赤色群から、または侵襲性/転移性黄色群からの腫瘍ではなく、急速に再発するNMIBC緑色群からの腫瘍において、EGFR内の突然変異を特定した(図3A)。ERBBファミリーリガンド及び受容体のより詳細なゲノム解析を行い、膀胱癌の駆動因子としてのこの経路の潜在的役割を調査した(図10)。黄色群からの試料の2/39(約5%)においてEGFRコピー数、及び4/39(約10%)においてERBB2の増加を観察するとともに、赤色群からの1/30(約3%)の試料においてERBB2コピー数の増加を観察した(図10)。これらの見出は、以前の報告と一致しており(Weinstein et al.Nature 507(7492):315−322,2014、Capellen et al.Nat.Genet.23(1):18−20,1999)、この経路が膀胱癌生成において役割を果たし得ることを示す。
この実施例は、アーカイブFFPE膀胱癌臨床試料を含む、膀胱癌の転写解析のためのカスタム膀胱癌Fluidigmパネルの追加の開発及びインシリコ検証を説明する。実施例1及び2に記載される通り、パネルの遺伝子には、FGFR、ERBB、MET、PI3K/AKT、及びMAPK軸等の受容体チロシンキナーゼ(RTK)の構成要素;TP53等の細胞周期及びゲノム安定性遺伝子;ならびに細胞分化及び発達の制御、ならびに上皮間葉転換(EMT)に関与する遺伝子が含まれる(図12A)。
表4:基底群と管腔群との間で差次的に発現された遺伝子
公開データセットの解析
いくつかの公開データセットを使用して、カスタム膀胱癌Fluidigmパネル遺伝子が腫瘍病期、悪性度、基底/管腔状態等の疾患の重要な転写特徴を捕捉する能力を保証した。Sjodahl IlluminaヒトHT−12 V3.0遺伝子発現データ(Sjodahl et al.2012、上記)を、遺伝子発現オムニバス(GEO)ウェブサイト(ncbi.nlm.nih.gov/geo/GSE32894)からダウンロードした。発現データは、メジアンポリッシュを使用して正規化した(Tukey et al.Exploratory Data Analysis,Addison−Wesley,publishers,1977)。無監督の階層クラスタリング解析を、平均連結法、1−ピアソン相関距離メトリックを使用して適用し、試料のグループ分けを見出し、試料腫瘍の悪性度、TMN病期、及び分子クラスを報告した(Sjodahl et al.2012、上記)。重心分類器アプローチを使用して決定された腫瘍悪性度、TNM病期、及び分子クラスを正確に特定するために、カスタム膀胱癌Fluidigmパネルの91の固有の遺伝子の能力を評価した。相互検証誤分類エラー曲線は、PAMR Rライブラリを使用し(Tibshirani et al.Proc.Natl.Acad.Sci.USA 99:6567−6572,2002)、Sjodahl et al.(上記)発現データセットの全アレイまたは対応する125プローブサブセットを使用して作成した。カスタム膀胱癌Fluidigmパネルの遺伝子が、転写プロファイリングを通じて基底様及び管腔様試料を特定する能力を、4つの文献データセット(GSE32894、GSE5287、GSE13507、GSE48075)において評価した。
実施例1に記載される204のホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)膀胱腫瘍試料の集合を、本実施例に記載される実験で使用した。RNA及びDNAは、実施例1に記載されるマクロ切開された試料から抽出した。
遺伝子発現解析は、前述される通り、ENVIRENE(登録商標)による脱パラフィン化後に、高純度FFPE RNAマイクロキット(Roche Diagnostics,Indianapolis,IN)を使用して、マクロ切開されたFFPEから抽出したRNA上で実行した(O′Brien et al.Clin.Cancer Res.16:3670−3683,2010)。膀胱癌関連遺伝子の96の固有のmRNA転写産物の遺伝子発現解析は、Superscript III/Platinum Taq及び前置増幅反応ミックス(Invitrogen,Carlsbad,CA)を使用し、単一反応においてcDNAに逆転写され、前置増幅された合計100ngのRNAから開始して患者標本上で行った。全96のTaqmanプライマー/プローブのセットは、元のTAQMAN(登録商標)アッセイ濃度(Applied Biosystems,Foster City,CA)の0.05倍の最終希釈での前置増幅反応に含まれた。熱循環条件は、以下の通りであった。50℃で15分間の1サイクル、70℃で2分間の1サイクル、95℃で15秒間の14サイクル、及び60℃で4分間。前置増幅されたcDNAを2倍に希釈し、次いで、製造元の指示に従い、TAQMAN(登録商標)ユニバーサルPCRマスターミックス(Applied Biosystems,Foster City,CA)を、BIOMARK(商標)BMK−M−96.96プラットフォーム(Fluidigm,South San Francisco,CA)上で使用して増幅させた。全ての試料を3回アッセイした。サイクル閾値(Ct)を、ΔCt法(O′Brienら、上記)を使用して相対発現に変換し、式中、ΔCtは、標的遺伝子の平均からそれぞれの患者標本に関して計算された基準遺伝子の幾何学平均を引いたものであった。カスタム膀胱癌Fluidigmパネル上で評価された遺伝子の場合、サイクル閾値(Ct)は、メジアンポリッシュを使用して正規化した(Tukeyら、上記)。差次的に発現された遺伝子の階層クラスタリングは、距離メトリックとして1−ピアソン相関を使用する平均連結法を用いて、正規化されたデータ上で実行し、後次にRを使用して可視化した。
突然変異解析は、ENVIRENE(登録商標)による脱パラフィン化後に、QIAamp FFPEキット(Qiagen,Valencia,CA)を使用してマクロ切開されたFFPE組織から抽出されたゲノムDNA上で実行した(Lindgren et al.PLoS One 7:e38863,2012)。PIK3CA、EGFR、KRAS、NRAS、HRAS、FGFR3、MET、BRAF、KIT、AKT1、FLT3における突然変異は、前述される通り、突然変異特異的qPCRを使用して検出した(Schliefman et al.PLoS One 9:e88401,2014)。
免疫組織化学は、実施例1に記載の通り行った。
実施例1に記載される204の膀胱癌群FFPE試料からの試料の基底/管腔類似性スコアは、前述される通り、公開されたDamrauerらの発見データセットから基底/管腔発現プロファイルを最初に派生させることによって決定した(Damrauerら、上記)。次に、各プロファイルと平均値で中心化された単位変数により正規化された各FFPE試料との間の基底及び管腔ピアソン相関を決定した。これら2つの相関スコアを組み合わせて、全体B/L類似性スコアを産生した。B/Lスコア=(基底プロファイル相関−管腔プロファイル相関)/2.0。このB/Lスコアは、+1.0〜−1.0の範囲を有し、ゼロより上のスコアは、基底様試料を示し、ゼロ以下のスコアは、管腔様試料を示す。同様に、9つのマッチさせた原発及び転移試料のB/L類似性スコアも同様に計算した。マッチさせた試料が同じ患者からのものであることを確認するために、次世代シーケンシング(NGS)を、ION AMPLISEQ(商標)癌ホットスポットパネルv2(Life Technologies,Carlsbad,CA)を使用し、製造元のガイドライン(Tsongalis et al.CCLM/FESCC 52:707−714,2014)に従って実行し、ピアソン相関を、両方の試料が少なくとも100倍の読み取り範囲を有し、少なくとも1つの試料が10%超の対立遺伝子頻度を有していた全ての変異型部位における対立遺伝子の頻度を比較することによって計算した(平均して、任意の2つの試料間で120箇所を比較した)。原発−転移試料がミスマッチであった可能性は、それらの相関スコアを、ランダム試料対合の3,500相関と比較することによって見出した。プライマーとマッチさせた転移との間のB/Lスコアの差を、典型的なシステムエラーに起因すると予想される差と比較した。システムエラーの推定は、ランダムに選択された試料の置換と共に、カスタム膀胱癌Fluidigmパネルからの遺伝子をサンプリングし、100,000置換においてB/Lスコアを再計算することにより得た。クラスタ間の差次的突然変異頻度の有意性に関して、フィッシャーの直接検定を行った。フィッシャーの直接検定及び両側t検定を、全ての他の統計比較に使用した。
Claims (53)
- 膀胱癌に罹患している患者の治療方法であって、治療有効量の抗癌療法剤を前記患者に投与することを含み、前記患者から得られる試料中の、以下の遺伝子、FGFR3、TP53、及びEGFRのうちの少なくとも1つの発現レベルが、前記少なくとも1つの遺伝子の基準レベルに対して増加したことが決定されている、前記方法。
- 患者における膀胱癌の診断方法であって、
(a)前記患者から得られる試料中の、以下の遺伝子、FGFR3、TP53、及びEGFRのうちの少なくとも1つの発現レベルを決定するステップと、
(b)前記少なくとも1つの遺伝子の発現レベルを、前記少なくとも1つの遺伝子の基準レベルと比較するステップと、を含み、前記基準レベルに対する、前記患者試料中の前記少なくとも1つの遺伝子の発現レベルの増加が、膀胱癌を有する患者を特定する、前記方法。 - (c)膀胱癌を有していることを前記患者に通知することを更に含む、請求項2に記載の方法。
- (d)前記基準レベルに対する、前記患者試料中の前記少なくとも1つの遺伝子の発現レベルの増加が検出された場合に、前記患者の治療のための抗癌療法剤を選択することを更に含む、請求項2または3に記載の方法。
- (e)治療有効量の抗癌療法剤を前記患者に投与することを更に含む、請求項2〜4のいずれか一項に記載の方法。
- 膀胱癌に罹患している患者の予後判定のための方法であって、
(a)前記患者から得られる試料中の、以下の遺伝子、FGFR3、TP53、及びEGFRのうちの少なくとも1つの発現レベルを決定することと、
(b)前記少なくとも1つの遺伝子の発現レベルを、前記少なくとも1つの遺伝子の基準レベルと比較することと、
(c)前記患者の予後を決定することと、を含み、不良な予後が、前記基準レベルに対して増加した、前記患者試料中の前記少なくとも1つの遺伝子の発現レベルによって示される、前記方法。 - 前記予後が、生存の予後である、請求項6に記載の方法。
- 前記方法が、抗癌療法剤を前記患者に投与する前に実行される、請求項6または7に記載の方法。
- (d)前記患者が不良な生存予後を有すると決定された場合に、抗癌療法剤の投与から利益を享受する可能性があるとして、前記患者を特定することを更に含む、請求項6〜8のいずれか一項に記載の方法。
- (e)前記患者が不良な生存予後を有すると決定された場合に、治療有効量の抗癌療法剤を前記患者に投与することを更に含む、請求項6〜9のいずれか一項に記載の方法。
- 前記生存が、無疾患生存または全生存である、請求項6〜10のいずれか一項に記載の方法。
- 膀胱癌を有する患者が、抗癌療法剤での治療に応答する可能性があるかどうかの決定方法であって、
(a)前記患者から得られる試料中の、以下の遺伝子、FGFR3、TP53、及びEGFRのうちの少なくとも1つの発現レベルを決定することと、
(b)前記少なくとも1つの遺伝子の発現レベルを、前記少なくとも1つの遺伝子の基準レベルと比較することと、を含み、前記基準レベルに対する、前記患者試料中の前記少なくとも1つの遺伝子の発現レベルの増加が、抗癌療法剤を含む治療に応答する可能性がある患者を特定する、前記方法。 - 膀胱癌を有する患者に対する抗癌療法剤の治療効果の最適化方法であって、
(a)前記患者から得られる試料中の、以下の遺伝子、FGFR3、TP53、及びEGFRのうちの少なくとも1つの発現レベルを決定することと、
(b)前記少なくとも1つの遺伝子の発現レベルを、前記少なくとも1つの遺伝子の基準レベルと比較することと、を含み、前記基準レベルに対する、前記患者試料中の前記少なくとも1つの遺伝子の発現レベルの増加が、抗癌療法剤を含む治療に応答する可能性がある患者を特定する、前記方法。 - (c)治療有効量の抗癌療法剤を前記患者に投与することを更に含む、請求項12または13に記載の方法。
- 前記抗癌療法剤が、FGFR3アンタゴニスト、TP53アンタゴニスト、及び/またはEGFRアンタゴニストを含む、請求項1、4、5、または8〜14のいずれか一項に記載の方法。
- 前記抗癌療法剤が、FGFR3アンタゴニスト及びEGFRアンタゴニストを含む、請求項15に記載の方法。
- 前記FGFR3アンタゴニスト、EGFRアンタゴニスト、またはTP53アンタゴニストが、抗体またはその機能的断片である、請求項15または16に記載の方法。
- 前記FGFR3アンタゴニストが、抗FGFR3抗体またはその機能的断片である、請求項17に記載の方法。
- 前記EGFRアンタゴニストが、抗EGFR抗体またはその機能的断片である、請求項17に記載の方法。
- 前記TP53アンタゴニストが、抗TP53抗体またはその機能的断片である、請求項17に記載の方法。
- 前記FGFR3アンタゴニスト、TP53アンタゴニスト、またはEGFRアンタゴニストが、小分子アンタゴニストである、請求項15または16に記載の方法。
- 前記FGFR3アンタゴニストまたはEGFRアンタゴニストが、チロシンキナーゼ阻害剤である、請求項21に記載の方法。
- 前記EGFRアンタゴニストが、エルロチニブ(TARCEVA(商標))である、請求項22に記載の方法。
- 前記抗癌療法剤が、(i)抗新生物剤、化学療法剤、成長阻害剤、及び細胞毒性剤からなる群から選択される薬剤、(ii)放射線療法剤、または(iii)それらの組み合わせを更に含む、請求項15〜23のいずれか一項に記載の方法。
- 前記患者から得られる前記試料中の前記少なくとも1つの遺伝子の発現レベルが、mRNAを測定することによって決定されている、請求項1〜24のいずれか一項に記載の方法。
- 前記患者から得られる前記試料中の前記少なくとも1つの遺伝子の発現レベルが、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)アッセイによって決定されている、請求項25に記載の方法。
- 前記PCRアッセイが、定量的PCRアッセイである、請求項26に記載の方法。
- 前記患者から得られる前記試料中の前記少なくとも1つの遺伝子の発現レベルが、タンパク質を測定することによって決定されている、請求項1〜24のいずれか一項に記載の方法。
- 前記患者から得られる前記試料中の前記少なくとも1つの遺伝子の発現レベルが、免疫組織化学(IHC)法によって決定されている、請求項28に記載の方法。
- 前記患者から得られる前記試料が、腫瘍試料である、請求項1〜29のいずれか一項に記載の方法。
- 前記腫瘍試料が、ホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)腫瘍試料である、請求項30に記載の方法。
- 前記遺伝子のうちの少なくとも2つの発現レベルを決定することを更に含む、請求項1〜31のいずれか一項に記載の方法。
- 前記遺伝子のうちの3つ全ての発現レベルを決定することを更に含む、請求項32に記載の方法。
- FGFR3の発現レベルが、基準レベルに対して少なくとも2倍増加したことが決定されている、請求項1〜33のいずれか一項に記載の方法。
- FGFR3の発現レベルが、基準レベルに対して少なくとも4倍増加したことが決定されている、請求項34に記載の方法。
- EGFRの発現レベルが、基準レベルに対して少なくとも4倍増加したことが決定されている、請求項1〜35のいずれか一項に記載の方法。
- EGFRの発現レベルが、基準レベルに対して少なくとも8倍増加したことが決定されている、請求項36に記載の方法。
- 前記患者から得られる試料中の、DUSB3、FRS2、TSC1、ERBB3、CDKN1A、CCND1、TP63、MMP2、ZEB2、PIK3CB、PIK3R1、MDM2、SNAI2、AXL、ZEB1、BCL2B、TSC2、RB1、FGFR32、PIK3IP1、MTOR、PIK3CA、PTEN、AKT1、BCL2A、FRS3、ERBB2、FGFR31、FGF1、SNAI1、FGFR34、FGF9、及びFGF2からなる群から選択される少なくとも1つの追加遺伝子の発現レベルを決定することを更に含み、前記少なくとも1つの追加遺伝子の発現レベルは、前記少なくとも1つの追加遺伝子の基準レベルに対して変化している、請求項1〜37のいずれか一項に記載の方法。
- 前記膀胱癌が、筋層非侵襲性膀胱癌、筋層侵襲性膀胱癌、または転移性膀胱癌である、請求項1〜38のいずれか一項に記載の方法。
- 前記筋層非侵襲性膀胱癌が、再発性筋層非侵襲性膀胱癌である、請求項39に記載の方法。
- 膀胱癌に罹患している患者の治療方法であって、カルメット・ゲラン桿菌(BCG)ワクチン以外の治療有効量の抗癌療法剤を前記患者に投与することを含み、前記患者から得られる試料中のTP53の発現レベルが、TP53の基準レベルに対して増加したと決定されている、前記方法。
- 前記抗癌療法剤が、FGFR3アンタゴニスト、EGFRアンタゴニスト、及び/またはTP53アンタゴニストを含む、請求項41に記載の方法。
- 前記抗癌療法剤が、FGFR3アンタゴニスト及びEGFRアンタゴニストを含む、請求項42に記載の方法。
- 前記FGFR3アンタゴニスト、EGFRアンタゴニスト、またはTP53アンタゴニストが、抗体またはその機能的断片である、請求項42または43に記載の方法。
- 前記FGFR3アンタゴニストが、抗FGFR3抗体またはその機能的断片である、請求項44に記載の方法。
- 前記EGFRアンタゴニストが、抗EGFR抗体またはその機能的断片である、請求項44に記載の方法。
- 前記TP53アンタゴニストが、抗TP53抗体またはその機能的断片である、請求項44に記載の方法。
- 前記FGFR3アンタゴニスト、TP53アンタゴニスト、またはEGFRアンタゴニストが、小分子アンタゴニストである、請求項42または43に記載の方法。
- 前記小分子アンタゴニストが、チロシンキナーゼ阻害剤である、請求項48に記載の方法。
- 前記EGFRアンタゴニストが、エルロチニブ(TARCEVA(商標))である、請求項49に記載の方法。
- 前記抗癌療法剤が、(i)抗新生物剤、化学療法剤、成長阻害剤、及び細胞毒性剤からなる群から選択される薬剤、(ii)放射線療法、または(iii)それらの組み合わせを更に含む、請求項41〜50のいずれか一項に記載の方法。
- 前記患者から得られる前記試料中のTP53の発現レベルが、mRNAを測定することによって決定されている、請求項41〜51のいずれか一項に記載の方法。
- 前記患者から得られる前記試料中のTP53の発現レベルが、タンパク質を測定することによって決定されている、請求項41〜51のいずれか一項に記載の方法。
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