JP2021035931A - 細孔修飾メソポーラスシリカナノ粒子による薬物送達 - Google Patents
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Abstract
【課題】メソ細孔内に1種以上の生物活性成分を負荷することができる、メソ細孔の表面上に修飾を有するメソポーラスシリカナノ粒子、これを調製するプロセスおよびその適用の提供。
【解決手段】メソポーラスシリカナノ粒子であって、その細孔の表面に有機修飾を含み、100nm以下の粒子サイズおよび150nm以下の動的光散乱によって測定される媒体中の流体力学的サイズを有し、有機修飾が少なくとも1つの末端ヒドロカルビル部分を含み、前記媒体がリン酸緩衝生理食塩水と生物学的に類似または同等であることを特徴とする、メソポーラスシリカナノ粒子。
【選択図】なし
【解決手段】メソポーラスシリカナノ粒子であって、その細孔の表面に有機修飾を含み、100nm以下の粒子サイズおよび150nm以下の動的光散乱によって測定される媒体中の流体力学的サイズを有し、有機修飾が少なくとも1つの末端ヒドロカルビル部分を含み、前記媒体がリン酸緩衝生理食塩水と生物学的に類似または同等であることを特徴とする、メソポーラスシリカナノ粒子。
【選択図】なし
Description
本開示は(拡張された)メソ細孔の表面上に修飾を有するメソポーラスシリカナノ粒子に関し、これは、(拡張された)メソ細孔内に1種以上の生物活性成分をさらに負荷することができ、これを調製するプロセスおよびその適用に関する。
組合せ薬物療法は、がんや感染症など最も恐ろしい疾患の治療に最も広く用いられている。薬物組合せを使用する主な目的は相乗的な治療効果を達成し、投与量および有害作用を減少させ、薬物耐性の誘発を最小限に抑えることである。したがって、患者への2つ以上の薬物の同時投与は、通常、各薬物治療単独よりも大きな治療効果を示す。がん治療において、組合せ療法は薬剤耐性を克服し、治療成績を高めるためのスタンダードな臨床診療である。異なる作用機序をもつ2つ(またはそれ以上)の(異なる細胞周期チェックポイント、遺伝子、またはがんの代謝経路を標的とする)薬物の相乗効果は、がんを排除する機会を高める。しかし、組合せ薬物療法を開発する際には、薬物の物理化学的性質や薬物動態特性の違いが多くの課題につながる。組合せ薬物療法の開発に伴う主な問題は(1)適切な薬物組合せと薬物比率の同定、(2)in vitro試験とin vivo挙動との相関、(3)薬物が効果的な投与量と比率(薬物の薬物動態)で同じ腫瘍細胞に到達できるかどうか、である。ナノ粒子多剤共送達は、組合せ薬物療法におけるこれらの課題を解決する潜在的経路を提供する。
ナノ粒子製剤は(1)ナノ粒子が疎水性薬物および親水性薬物を同時に送達することができ、単一のナノ粒子において最適化された相乗効果薬物比率を維持することができる、(2)ナノ粒子が循環時間を延長し、薬物の腫瘍ターゲッティング能力を増強することができる、および(3)薬物カプセル化ナノ粒子が標的細胞中に多剤を同時に送達し、薬物間の薬物動態学的相違点を正常化することができるなど、多剤併用送達にいくつかの利点をもたらす。メソポーラスシリカナノ粒子(MSN)は大きな細孔容積、化学的/熱的安定性、高い負荷容量、調節可能な表面特性、および優れた生体適合性などの独特の物理的/化学的性質のために、薬物送達システムとして大きな可能性を有すると考えられてきた。MSNの外表面または細孔表面は、種々の官能基で個々に容易に修飾することができる。しかしながら、同じ粒子中の疎水性薬物および親水性薬物のカプセル化は通常、溶液中の粒子の単分散に影響を及ぼし、したがって、この送達システムは依然として課題を提示し、改善の必要がある。本発明では、拡大された細孔サイズ(任意選択で)および特定の官能基および比による細孔表面修飾を有する小サイズMSN(<100nm)が同じ粒子中に2つの薬物をカプセル化することができ(一実施形態では1つは疎水性であり、別のものは親水性)、抗多剤耐性がん細胞において相乗的治療効果を示す。本発明において言及される粒子による多剤共送達はまた、がん、多剤耐性がん、脳がん、転移性脳がん、および中枢神経系疾患などの様々な疾患を治療するために使用することができる。
本発明は、メソ細孔の表面上に修飾を有するメソポーラスシリカナノ粒子を提供する。メソポーラスシリカナノ粒子(MSN)は50nm未満の細孔サイズを有し、孔径が3nmより大きい(すなわち、細孔が「拡張」される)場合、「exMSN」と呼ぶことができる。
また、本発明は、(拡張された)メソ細孔内に1種以上の生物活性成分が負荷された細孔修飾MSNおよびexMSNを提供する。本出願はまた、生物活性成分を負荷して、または負荷せずに、細孔修飾MSNおよびexMSNを生成する方法を提供する。
一態様では、本発明が細孔の表面上に1種以上の生物活性成分を安定に捕捉または封入するために、細孔の表面が官能基で修飾されているメソポーラスシリカナノ粒子を提供する。
一実施形態では、メソポーラスシリカナノ粒子の細孔サイズが50nmより小さい。
一実施形態では、官能基が疎水性または親水性またはその両方である。
一実施形態では、官能基が疎水性または親水性またはその両方である。
一実施形態では、メソポーラスシリカナノ粒子の細孔の表面が末端ヒドロカルビル部分を有する官能基で修飾される。一実施形態では、末端ヒドロカルビル部分が末端芳香族部分、末端(シクロ)脂肪族部分、またはそれらの組合せを含む。
いくつかの実施形態では、末端芳香族部分が低級アルキルまたはハロゲンで置換されている。さらなる実施形態では、末端芳香族部分がトリメトキシフェニルシラン(TMPS)から誘導される。いくつかの実施形態では末端(シクロ)脂肪族部分が(シクロ)アルキル、(シクロ)アルケニルまたはその組合せを含み、これらは任意選択で低級アルキルまたはハロゲンで置換することができる。
いくつかの実施形態では、生物活性成分が親水性、疎水性、または親油性である。
いくつかの実施形態では、生物活性成分が小分子、化学薬物、酵素、タンパク質薬物、抗体、ワクチン、抗生物質またはヌクレオチドドラッグである。
いくつかの実施形態では、生物活性成分が小分子、化学薬物、酵素、タンパク質薬物、抗体、ワクチン、抗生物質またはヌクレオチドドラッグである。
いくつかの実施形態では、少なくとも2つの生物活性成分が細孔内、例えば、細孔の表面上に負荷される。一実施形態では、メソポーラスシリカナノ粒子が1つ以上の親水性生物活性成分および1つ以上の疎水性生物活性成分を細孔内、例えば細孔の表面上に負荷する。一実施形態では、メソポーラスシリカナノ粒子が細孔内、例えば細孔の表面上に、1つ以上の疎水性生物活性成分を負荷する。
別の態様では、本開示は、本発明のメソポーラスシリカナノ粒子を対象に投与することを含む、生物活性成分を対象に送達するための方法を提供する。
一実施形態では、本方法が本開示のメソポーラスシリカナノ粒子を送達して、血液脳関門および/または血液眼関門を透過することができる。
本明細書の開示の理解を容易にするために、本明細書で使用される用語は、以下で定義される。
明細書及び特許請求の範囲の文脈において、単数形「a」、「an」及び「the」は特に明記しない限り、複数の指示対象を含む。特に明記しない限り、本明細書で提供される任意のおよびすべての例または例示的な言語(例えば、「そのような(such as)」)は、本発明の範囲を限定するのではなく、単に本発明をより良く例示するために使用されるにすぎない。
明細書及び特許請求の範囲の文脈において、単数形「a」、「an」及び「the」は特に明記しない限り、複数の指示対象を含む。特に明記しない限り、本明細書で提供される任意のおよびすべての例または例示的な言語(例えば、「そのような(such as)」)は、本発明の範囲を限定するのではなく、単に本発明をより良く例示するために使用されるにすぎない。
本明細書に列挙される任意の数値範囲は、その中に包含される全てのサブ範囲を含むことが意図されることが理解されるべきである。例えば、「50〜70℃」の範囲には、50℃の規定最小値と70℃の規定最大値との間のすべてのサブ範囲および特定値(例えば58℃〜67℃、53℃〜62℃、60℃または68℃)が含まれる。開示された数値範囲は連続的であるので、それらは最小値と最大値との間の各数値を含む。特に明記しない限り、本明細書に示される様々な数値範囲はおおよそのものである。
本発明において、「約」という用語は当業者によって測定された所与の値の許容可能な偏差を指し、これは、部分的にはその値をどのように測定または決定するかに依存する。
本発明において、特に指定しない限り、本明細書で使用される接頭語「ナノ−」は約300nm以下のサイズを意味し、特に指定しない限り、本明細書で使用される接頭語「メソ−」は約50nm未満のサイズを意味する。
本発明において、本明細書で使用される「シラン」という用語は、SiH4の誘導体を意味する。通常、4つの水素のうちの少なくとも1つは、後述するように、アルキル、アルコキシル、アミノなどの置換基で置換されている。本明細書で使用される用語「アルコキシシラン」は、ケイ素原子に直接結合した少なくとも1つのアルコキシル置換基を有するシランを指す。本明細書で使用される用語「オルガノアルコキシシラン」は、ケイ素原子に直接結合した少なくとも1つのアルコキシル置換基および少なくとも1つのヒドロカルビル置換基を有するシランを指す。本明細書で使用される「シリカ源」という用語は、オルトケイ酸の塩の形態またはエステルの形態とみなすことができる物質、例えば、オルトケイ酸ナトリウム、メタケイ酸ナトリウム、テトラエチルオルトケイ酸(テトラエトキシシラン、TEOS)、テトラメチルオルトケイ酸、テトラプロピルオルトケイ酸を指す。場合により、ヒドロカルビル置換基はヘテロ原子でさらに置換されていてもよいし、中断されていてもよい。
本発明において、本明細書で使用される「ヒドロカルビル」という用語は、炭化水素に由来する1価のラジカルを意味する。本明細書で使用される「炭化水素」という用語は、炭素原子と水素原子のみからなる分子を指す。炭化水素の例としては(シクロ)アルカン、(シクロ)アルケン、アルカジエン、芳香族化合物などが挙げられるが、これらに限定されない。ヒドロカルビルが上記のようにさらに置換される場合、置換基は、ハロゲン、アミノ基、水酸基、チオール基などであり得る。ヒドロカルビルが上記のようにヘテロ原子で中断される場合、ヘテロ原子はS、OまたはNであり得る;本発明において、ヒドロカルビルは好ましくは1〜30個のC原子を含む。
本発明において、用語「アルキル」は、好ましくは1〜30個の炭素原子、より好ましくは1〜20個の炭素原子を含む飽和、直鎖または分岐アルキルを指す。アルキルの例としては、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、n−ブチル、sec−ブチル、イソブチル、tert−ブチル、2−エチルブチル、n−ペンチル、イソペンチル、1−メチルペンチル、1,3−ジメチルブチル、n−ヘキシル、1−メチルヘキシル、n−ヘプチル、イソヘプチル、1,1,3,3−テトラメチルブチル、1−メチルヘプチル、3−メチルヘプチル、n−オクチル、2−エチルヘキシル、1,1,3−トリメチルヘキシル、1,1,3,3−テトラメチルペンチル、ノニル、デシル、ウンデシル、1−メチルウンデシル、ドデシル、1,1,3,3,5,5−ヘキサメチルヘキシル、トリデシル、テトラデシル、ペンタデシル、ヘキサデシル、ヘプタデシル、オクタデシル等を含むが、これらに限定されない。
本発明において、本明細書で使用される「アルコキシル」または「アルコキシ」という用語は式「−O−アルキル」を有する基を意味し、前記式中の「アルキル」の定義は、上記の「アルキル」の意味を有する。
本発明において、用語「シクロアルキル」は、本明細書中で使用される場合、3〜10個の環状炭素原子およびより好ましくは3〜8個の環状炭素原子、ならびに場合により環上のアルキル置換基を含有する、飽和または部分的に不飽和の環状炭素ラジカルを意味する。シクロアルキルの例としてはシクロプロピル、シクロプロペニル、シクロブチル、シクロペンチル、シクロヘキシル、2−シクロヘキセン−1−イルなどが挙げられるが、これらに限定されない。
本発明において、「ハロゲン」または「ハロ」という用語は、フッ素、塩素、臭素またはヨウ素を意味する。
本発明において、「ハロゲン」または「ハロ」という用語は、フッ素、塩素、臭素またはヨウ素を意味する。
本発明において、本明細書で使用される「アミノ」という用語は式−NR1R2の官能基を意味し、式中、R1およびR2は、それぞれ独立して、水素または上で定義されたヒドロカルビル基を表す。
本発明において、用語「水相」は、本明細書中で使用される場合、水と実質的に混和性である相を意味する。水相の例としては水それ自体、水性緩衝液、水性ジメチルスルホキシド(DMSO)溶液、水性アルカノール溶液などが挙げられるが、これらに限定されない。水相は、合成の要求および/または水相中に存在する物質の安定性に基づいて、酸性、中性またはアルカリ性であるように調整することができる。
本発明において、用語「油相」は、本明細書中で使用される場合、上記のような水相と実質的に非混和相を意味する。油相の例としては液体、置換または非置換(シクロ)アルカン(例えば、ヘキサン、デカン、オクタン、ドデカン、シクロヘキサンなど);置換または非置換芳香族溶媒(例えば、ベンゼン、トルエン、キシレンなど)が挙げられるが、これらに限定されない。
本発明において、本明細書中で使用される「生物活性成分」という語は、生物において活性を有する物質を指す。生物活性成分の例としては低分子、化学薬物、酵素、タンパク質薬物、抗体、ワクチン、抗原、抗生物質またはヌクレオチド薬物が挙げられるが、これらに限定されない。
細孔修飾MSN
ナノ粒子製剤は、以下のような遊離薬物の組合せと比較して、多剤同時送達にいくつかの利点をもたらす。(1)ナノ粒子は疎水性薬物および親水性薬物を同時に送達することができ、単一のナノ粒子において最適化された相乗効果薬物比を維持することができる。(2)ナノ粒子は循環時間を延長し、薬物の腫瘍標的化能力を増強することができる。(3)薬物カプセル化ナノ粒子が標的細胞中に多剤を同時に送達し、薬物間の薬物動態学的相違点を正常化することができる。メソポーラスシリカナノ粒子(MSN)は大きな細孔容積、化学的/熱安定性、高い負荷容量、調節可能な表面特性、および優れた生体適合性などの独特の物理的/化学的性質のために、薬物送達システムとして大きな可能性を有すると考えられてきた。MSNの外表面または細孔表面は、種々の官能基で個々に容易に修飾することができる。しかしながら、同じ粒子中の疎水性薬物および親水性薬物のカプセル化は溶液中の粒子の単分散に影響を及ぼさなかったが、依然として課題であり、改善が必要である。本発明では、細孔サイズが拡大された(任意選択で)細孔表面が特定の官能基および比によって修飾された小さいサイズのMSN(<100nm)が同じ粒子中に2つの薬物をカプセル化することができ(1つの実施形態では1つは疎水性であり、別のものは親水性)、抗多剤耐性がん細胞において相乗的な治療効果を示す。本発明において言及される粒子による多剤共送達はまた、がん、多剤耐性がん、脳関連がん、転移性脳がん、および中枢神経系疾患などの様々な適応症を治療するために使用することができる。
ナノ粒子製剤は、以下のような遊離薬物の組合せと比較して、多剤同時送達にいくつかの利点をもたらす。(1)ナノ粒子は疎水性薬物および親水性薬物を同時に送達することができ、単一のナノ粒子において最適化された相乗効果薬物比を維持することができる。(2)ナノ粒子は循環時間を延長し、薬物の腫瘍標的化能力を増強することができる。(3)薬物カプセル化ナノ粒子が標的細胞中に多剤を同時に送達し、薬物間の薬物動態学的相違点を正常化することができる。メソポーラスシリカナノ粒子(MSN)は大きな細孔容積、化学的/熱安定性、高い負荷容量、調節可能な表面特性、および優れた生体適合性などの独特の物理的/化学的性質のために、薬物送達システムとして大きな可能性を有すると考えられてきた。MSNの外表面または細孔表面は、種々の官能基で個々に容易に修飾することができる。しかしながら、同じ粒子中の疎水性薬物および親水性薬物のカプセル化は溶液中の粒子の単分散に影響を及ぼさなかったが、依然として課題であり、改善が必要である。本発明では、細孔サイズが拡大された(任意選択で)細孔表面が特定の官能基および比によって修飾された小さいサイズのMSN(<100nm)が同じ粒子中に2つの薬物をカプセル化することができ(1つの実施形態では1つは疎水性であり、別のものは親水性)、抗多剤耐性がん細胞において相乗的な治療効果を示す。本発明において言及される粒子による多剤共送達はまた、がん、多剤耐性がん、脳関連がん、転移性脳がん、および中枢神経系疾患などの様々な適応症を治療するために使用することができる。
本発明の細孔修飾MSNおよびexMSNは生物活性成分を十分に負荷し、対象の循環系中で輸送することができるように、適切な見かけのサイズ、動的光散乱サイズ、および細孔サイズを有する。特定の実施形態に、細孔修飾MSNおよびexMSNは、血液脳関門(BBB)および/または血液眼関門さえ透過し得る。
MSNおよびexMSNの細孔サイズは、生物活性成分の負荷容量および/または効率に影響を及ぼし得る。細孔サイズが小さすぎると、より大きな分子の負荷容量が不十分になることがある。細孔サイズが大きすぎると、負荷効率が低くなり、負荷された薬物が細孔から容易に漏れることがある。一実施形態では、MSNおよびexMSNの細孔サイズが50nm以下、好ましくは1〜20nm、より好ましくは3〜10nm、1〜10nm、または1〜5nmである。細孔サイズは適切な合成手順および/または要求に基づく材料によって、例えば、細孔内に負荷されるべき生物活性成分のサイズに基づいて、適切に制御され得る。
MSNおよびexMSNのサイズは、循環系におけるその輸送を増強する際に重要な役割を果たし得る。サイズが大きすぎる場合、ナノ粒子は、免疫系によって迅速に同定され、除去され得る。サイズが小さすぎる場合、ナノ粒子は、腎臓濾過によって体から迅速かつ容易に除去され得る。一実施形態では、MSNおよびexMSNのサイズが100nm以下、好ましくは80nm以下、65nm以下、60nm以下または50nm以下、より好ましくは40nm以下である。一実施形態では、MSNおよびexMSNのサイズが少なくとも60nm、好ましくは少なくとも40nm、より好ましくは少なくとも30nmである。一実施形態では、MSNおよびexMSNのサイズが数値範囲の終点として本明細書に開示される任意の点、例えば30nm〜100nmなどからなる実行可能な数値範囲から変動する。
MSNおよびexMSNの動的光散乱(DLS)サイズを使用して、異なる溶液中の懸濁液を評価する。DLSの大きさが大きすぎると、ストック溶液中または生理学的条件下で容易に凝集することがあり、これは、医薬的に安定な組成物を製造し、安定なプロセスを提供する際に不利であることがあり、組成物はまた、血液循環が不十分であり、血管閉塞の危険性が高いために、臨床用途に使用することができないことがある。生きている対象における適用のためのMSNおよびexMSNの可能性をより良く評価するために、DLSの大きさは、好ましくは水中およびリン酸緩衝生理食塩水(PBS)と生物学的に類似または同等である培地中の両方で測定される。一実施形態では、MSNおよびexMSNの動的光散乱サイズが少なくとも60nm、より好ましくは少なくとも30nmである。一実施形態では、MSNおよびexMSNの動的光散乱サイズが150nm以下、好ましくは100nm以下、より好ましくは60nm以下、または30nm以下である。一実施形態では、MSNおよびexMSNの動的光散乱サイズが数値範囲の終点として本明細書に開示される任意の点、例えば30nm〜150nmなどからなる実行可能な数値範囲からの範囲である。理論に束縛されるものではないが、150nmを超えるDLSサイズを有するナノ粒子は容易に凝集するか、または免疫系によって除去され得、したがって、生物活性成分を適切に送達することができない。
MSNおよびexMSNの細孔の表面が官能基で修飾され、これを以下、「内面修飾」と呼ぶ。内面修飾は、生物活性成分をより安定に細孔内に捕捉または封入することを可能にし得る。内面修飾はまた、MSNおよびexMSNの分散性に影響を及ぼし得る。内面修飾のための官能基は通常疎水性であり、特に芳香族である。一実施形態では、MSNおよびexMSNの細孔の表面が末端ヒドロカルビル部分を有する官能基で修飾される。一実施形態では、ヒドロカルビル部分がベンゼン(フェニル)、ナフタレン、アントラセン、フェナントレン、ジフェニルエーテル、エラグ酸、カルバゾリル、ケルセチンなどから選択される芳香族部分である。一実施形態では、芳香族部分が低級アルキル、アルケニル、アルコキシルまたはハロゲンで置換される。一実施形態では、芳香族部分は芳香族シロキサン、例えばトリメトキシフェニルシラン(TMPS)から誘導することができる。末端芳香族部分の量(含有量等)は、末端芳香族部分が充分であることを確実にするために測定することができる。一実施形態では、末端ヒドロカルビル部分が(シクロ)パンタニル、(シクロ)ヘキサニル、(シクロ)ヘプタニル、(シクロ)オクタニル、(シクロ)ノナニル、(シクロ)デカニル、(シクロ)ウンデカニル、(シクロ)ドデカニルなどから選択される(シクロ)脂肪族部分である。一実施形態では、末端ヒドロカルビル部分が芳香族部分、(シクロ)脂肪族部分、またはそれらの組合せを含む。理論に束縛されるものではないが、内面上の末端ヒドロカルビル部分の量が多すぎる場合、MSNおよびexMSNの分散性は不十分であり得、末端部分の量(比率)が低すぎる場合、疎水性生物活性成分の負荷容量/効率は不十分であり得る。
MSNおよびexMSNの「外側」表面、すなわち粒子の表面は官能基で修飾することができ、これはまた、MSNの特性を変化させ、それによって生体適用性能を変化させる。例えば、ポリ(アルコキシレングリコール)(PAG)型基修飾は、粒子を、培地中でのより良好な懸濁、より低い免疫原性、および体内でのより長い循環期間を示すようにすることができる。MSNはいかなる外側表面修飾も有さないが、通常、表面上に負電荷を有する。したがって、ポリエチレンイミン(PEI)、アルコキシルシラン末端(ポリ)アルキレン(ポリ)アミンまたはアミン含有有機アルコキシシラン修飾を適用して、粒子を正または弱い負の表面電荷を有するようにするか、または外側表面を電気的に中性にすることができる。一方、カルボキシル、ホスホリル、スルホネート含有有機アルコキシシラン修飾は、粒子を強い負電荷を有するようにすることができる。さらに、粒子の表面上の官能基の組合せは、多数の表面特性を提供する。
MSNとexMSNのEPR効果
一般に、EPR媒介受動ターゲッティングは、ナノキャリアの循環時間の延長に大きく依存する。透過性および保持性(EPR)増強効果に基づく腫瘍標的化は、(1)高密度PEG化;(2)表面の官能基の空間的制御;(3)小さなMSNおよびexMSNの作製;および(4)タンパク質コロナ形成の制御によって取り組むことができる。特に重要な2つのパラメータは粒子サイズおよび表面特性であり、これは、ナノキャリアの循環半減期、薬物動態、および生体内分布に重要な役割を果たすと予想される。典型的には、注射された材料が血清オプソニンによって認識され、迅速に結合され、続いて食作用を受け、肝臓および脾臓(単核食細胞系としても知られる)の両方に実質的に蓄積される。さらに、包括的な研究は標的化ナノ材料送達の開発における重大な設計としてタンパク質コロナニュートラル性をハイライトし、そして表面不均一性におけるわずかな差異でさえ、細胞および組織との著しく異なる相互作用を生じる機会を有し得ることを実証した。したがって、タンパク質コロナ組成物の制御および理解は、成功したEPR標的ナノ医薬を開発するために重要であり得る。
一般に、EPR媒介受動ターゲッティングは、ナノキャリアの循環時間の延長に大きく依存する。透過性および保持性(EPR)増強効果に基づく腫瘍標的化は、(1)高密度PEG化;(2)表面の官能基の空間的制御;(3)小さなMSNおよびexMSNの作製;および(4)タンパク質コロナ形成の制御によって取り組むことができる。特に重要な2つのパラメータは粒子サイズおよび表面特性であり、これは、ナノキャリアの循環半減期、薬物動態、および生体内分布に重要な役割を果たすと予想される。典型的には、注射された材料が血清オプソニンによって認識され、迅速に結合され、続いて食作用を受け、肝臓および脾臓(単核食細胞系としても知られる)の両方に実質的に蓄積される。さらに、包括的な研究は標的化ナノ材料送達の開発における重大な設計としてタンパク質コロナニュートラル性をハイライトし、そして表面不均一性におけるわずかな差異でさえ、細胞および組織との著しく異なる相互作用を生じる機会を有し得ることを実証した。したがって、タンパク質コロナ組成物の制御および理解は、成功したEPR標的ナノ医薬を開発するために重要であり得る。
BBB透過効果
血液脳関門(BBB)は脳内に輸送される治療薬のほとんどを制限する。ナノメディシンは、ナノ粒子サイズ、形状、表面電荷、結合型リガンドを調節して、BBBの透過を増加させることができる。トランスフェリン、ラクトフェリン、グルタチオンおよび低密度リポタンパク質受容体などの内皮細胞上の受容体に結合する標的化リガンドと結合したナノ粒子もまた、BBB透過を促進し得る。しかしながら、ナノ表面外面上の標的化リガンドによる修飾はまた、血液中のナノ表面の懸濁および循環に影響を及ぼし、ナノ表面の血液クリアランスを加速することができる。本発明者らは、PEG化MSNおよびexMSNのサイズ、表面組成、およびゼータ電位の変化および制御に基づいて、BBB透過能力を増加させた。これらの修飾、空間配置、および電荷により、MSNおよびexMSNは、最小限の非特異的結合、生理学的環境における適切な循環期間、および血液から脳へのその輸送を含む特性を明らかにする。
血液脳関門(BBB)は脳内に輸送される治療薬のほとんどを制限する。ナノメディシンは、ナノ粒子サイズ、形状、表面電荷、結合型リガンドを調節して、BBBの透過を増加させることができる。トランスフェリン、ラクトフェリン、グルタチオンおよび低密度リポタンパク質受容体などの内皮細胞上の受容体に結合する標的化リガンドと結合したナノ粒子もまた、BBB透過を促進し得る。しかしながら、ナノ表面外面上の標的化リガンドによる修飾はまた、血液中のナノ表面の懸濁および循環に影響を及ぼし、ナノ表面の血液クリアランスを加速することができる。本発明者らは、PEG化MSNおよびexMSNのサイズ、表面組成、およびゼータ電位の変化および制御に基づいて、BBB透過能力を増加させた。これらの修飾、空間配置、および電荷により、MSNおよびexMSNは、最小限の非特異的結合、生理学的環境における適切な循環期間、および血液から脳へのその輸送を含む特性を明らかにする。
血液眼関門透過効果
視力障害および失明の主な原因は、加齢黄斑変性、糖尿病性黄斑浮腫、緑内障、眼内炎などを含む後眼部関連疾患である。しかし、血液眼関門は血液脳関門と同様に、治療薬のほとんどが眼、特に眼の後眼部に運ばれることを控える。関門を克服するために、ナノ粒子サイズ、表面電荷、および構成などのようなMSNおよびexMSNの特性を調節して、眼の静的および動的障壁の透過を増加させ、それによって眼のバイオアベイラビリティを改善することができる。従って、MSNおよびexMSNは、眼疾患を処置するための潜在的な眼薬物送達担体である。このような用途におけるMSNおよびexMSNの投与経路は、局所(点眼剤)、硝子体内、結膜下、網膜下、球周囲、後部強膜、脈絡膜後球上、前房内、サブテノン、全身注射などであり得る。
視力障害および失明の主な原因は、加齢黄斑変性、糖尿病性黄斑浮腫、緑内障、眼内炎などを含む後眼部関連疾患である。しかし、血液眼関門は血液脳関門と同様に、治療薬のほとんどが眼、特に眼の後眼部に運ばれることを控える。関門を克服するために、ナノ粒子サイズ、表面電荷、および構成などのようなMSNおよびexMSNの特性を調節して、眼の静的および動的障壁の透過を増加させ、それによって眼のバイオアベイラビリティを改善することができる。従って、MSNおよびexMSNは、眼疾患を処置するための潜在的な眼薬物送達担体である。このような用途におけるMSNおよびexMSNの投与経路は、局所(点眼剤)、硝子体内、結膜下、網膜下、球周囲、後部強膜、脈絡膜後球上、前房内、サブテノン、全身注射などであり得る。
生物活性成分
本明細書中で使用される生物活性成分は、親水性、疎水性または親油性であり得る。一実施形態では、生物活性成分が親水性であってもよく、または親水性になるように修飾されていてもよく、水溶性であるか、または水相中に分散または溶解することができるようにする表面修飾を有するものから選択することができる。一実施形態では、生物活性成分が酵素、タンパク質薬物、抗体、ワクチン、抗生物質またはヌクレオチド薬物である。酵素の例としては、アガルシダーゼ、イミグルセラーゼ、タリグルセラーゼ、ベラグルセラーゼ、アルグルセラーゼ、セベリパーゼ、ラロニダーゼ、イデュルスルファーゼ、エロスルファーゼ、ガルスルファーゼ、アルグルコシダーゼ、アスパラギナーゼ、グルタミナーゼ、アルギニンデミナーゼ、アルギナーゼ、メチオニナーゼ、システイナーゼ、ホモシステイナーゼ、フェニルアラニン水酸化酵素、フェニルアラニンアンモニアリアーゼ、尿酸オキシダーゼ、カタラーゼ、西洋ワサビペルオキシダーゼ、スーパーオキシドジスムターゼまたはグルタチオンペルオキシダーゼなどが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
本明細書中で使用される生物活性成分は、親水性、疎水性または親油性であり得る。一実施形態では、生物活性成分が親水性であってもよく、または親水性になるように修飾されていてもよく、水溶性であるか、または水相中に分散または溶解することができるようにする表面修飾を有するものから選択することができる。一実施形態では、生物活性成分が酵素、タンパク質薬物、抗体、ワクチン、抗生物質またはヌクレオチド薬物である。酵素の例としては、アガルシダーゼ、イミグルセラーゼ、タリグルセラーゼ、ベラグルセラーゼ、アルグルセラーゼ、セベリパーゼ、ラロニダーゼ、イデュルスルファーゼ、エロスルファーゼ、ガルスルファーゼ、アルグルコシダーゼ、アスパラギナーゼ、グルタミナーゼ、アルギニンデミナーゼ、アルギナーゼ、メチオニナーゼ、システイナーゼ、ホモシステイナーゼ、フェニルアラニン水酸化酵素、フェニルアラニンアンモニアリアーゼ、尿酸オキシダーゼ、カタラーゼ、西洋ワサビペルオキシダーゼ、スーパーオキシドジスムターゼまたはグルタチオンペルオキシダーゼなどが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
一実施形態では、生物活性成分が親水性、疎水性、または両親媒性、および関連する障害/疾患に基づいて適切に選択することができる。生物活性成分の例は、以下を挙げることができるが、これらに限定されない:エベロリムス、トラベクテジン(trabectedin)、アブラキサン、TLK286、AV−299、DN−I0l、パゾパニブ、GSK690693、RTA744、ON 0910.Na、AZD6244(ARRY−142886)、AMN−107、TKI−258、GSK461364、AZD1152、エンザスタウリン、バンデタニブ、ARQ−197、MK−0457、MLN8054、PHA−739358、R−763、AT−9263、FLT−3阻害剤、VEGFR阻害剤、EGFR TK阻害剤、オーロラキナーゼ阻害剤、PIK−1モジュレーター、Bcl−2阻害剤、HDAC阻害剤、c−MET阻害剤、PARP阻害剤、Cdk阻害剤、EGFR TK阻害剤、IGFR−TK阻害剤,抗HGF抗体、PIキナーゼ阻害剤、AKT阻害剤、JAK/STAT阻害剤、チェックポイント1又は2阻害剤、焦点型接着キナーゼ阻害剤、Mapキナーゼキナーゼ(mek)阻害剤、VEGF trap抗体、ペメトレキセド、エルロチニブ、ダサタニブ、ニロチニブ、デカタニブ、パニツムマブ、アムルビシン、オレゴボマブ、Lep−etu、ノラトレキセド、azd2171、バタブリン、オファツムマブ、ザノリムマブ、エドテカリン、テトランドリン、ルビテカン、テスミリフェネ、オブリマーセン、チシリムマブ、イピリムマブ、ゴシポール、Bio 111、131−I−TM−601、ALT−110、BIO 140、CC 8490、チレンギタイド(cilengitide)、ギマテカン、IL 13−PE38QQR、INO 1001、IPdR1 KRX−0402、ルカントン、LY 317615、ニューラディアブ、バイテスパン、Rta 744、Sdx 102、タランパネル、アトラセンタン、Xr 311、ロミデプシン、ADS−I00380、スニチニブ、5−フルオロウラシル、ボリノスタット、エトポシド、ゲムシタビン、ドキソルビシン、リポソームドキソルビシン、5´−デオキシ−5−フルオロウリジン、ビンクリスチン、テモゾロミド、ZK−304709、セリシクリブ、PD0325901 、AZD−6244、カペシタビン、L−グルタミン酸、N−[4−[2−[2−アミノ−4,7−ジヒドロ−4−オキソ−1−H−ピロロ[2,3−d]ピリミジン−5−イル]エチル]ベンゾイル]−二ナトリウム塩、ヘプタハイドレート、カンプトテシン、PEG標識イリノテカン、タモキシフェン、クエン酸トレミフェン、アナストラゾール、エクセメスタン、レトロゾール、DES(ジエチルスチルベストロール)、エストラジオール、エストロゲン、結合型エストロゲン、ベバシズマブ、IMC−1C11、CHIR−258、3−[5−(メチルスルホニルピペラジネメチル)インドリル]キノロン、バタラニブ、AG−013736、AVE−0005、酢酸ゴセレリン、酢酸リュープロライド、トリプトレリンパモエート、メドロキシプロゲステロンアセテート、ヒドロキシプロゲステロンカプロエート、メグストールアセテート、ラロキシフェン、ビカルタミド、フルタミド、ニルタミド、メグストールアセテート、CP−724714;TAK−165、HKI−272、エルロチニブ、ラパタニブ、カネルチニブ、ABX−EGF抗体、エルビタックス、EKB−569、PKI−166、GW−572016、イオナファルニブ、BMS−214662、ティピファミブ;アミホスティン、NVP−LAQ824、ヒドロキサム酸サブエロイルアナリド、バルプロ酸、トリコスタチンA、FK−228、SU11248、ソラフェニブ、KRN951、アミノグルテチミド、アムサクレイン、アナグレライド、L−アスパラギナーゼ、バチルス・カルメットゲラン(BCG)ワクチン、ブレオマイシン、ブセレリン、ブスルファン、カルボプラチン、カルムスチン、クロラムブシル、シスプラチン、クラドリビン、クロドロネート、シプロテロン、シタラビン、ダカルバジン、ダクチノマイシン、ダウノルビシン、ジエチルスチルベストロール、エピルビシン、フルダラビンなど、フルドロコルチゾン、フルオキシメステロン、フルタミド、ゲムシタビン、ヒドロキシ尿素、イダルビシン、イフォスファミド、イマチニブ、リュープロリド、レバミソール、ロムスチン、メクロレスタミン、メルファラン、6−メルカプトプリン、メスナ、メトトレキサート、マイトマイシン、マイトタン、マイトキサントロン、ニルタミド、オクトレオチド、オキサリプラチン、パミドロネート、ペントスタチン、プリカマイシン、ポルフィマー、プロカルバジン、ラルチトレキセド、リツキシマブ、ストレプトゾシン、テニポシド、テストステロン、サリドマイド、チオグアニン、チオテパ、トレチノイン、ビンデシン、13−シス−レチノイン酸、フェニルアラニンマスタード、ウラシルマスタード、エストラムスチン、アルトレタミン、フロクスリジン、5−デオキシウリジン、シトシンアラビノシド、6−メカプトプリン、デオキシコホルマイシン、カルシトリオール、バルルビシン、ミトラマイシン、ビンブラスチン、ビノレルビン、トポテカン、ラゾキシン、マリマスタット、COL−3、ネオバスタット、BMS−275291、スクワラミン、エンドスタチン、SU5416、SU6668、EMD121974、インターロイキン12、IM862、アンジオスタチン、ビタキシン、ドロロキシフェン、イドキシフェン、スピロノラクトン、フィナステリド シミチジン、トラスツズマブ、デニロイキンジフチトックス、ゲフィチニブ、ボルテジミブ、パクリタキセル、クレモフォフリーパクリタキセル、ドセタキセル、イクサベピロン、エピチロンB、BMS−247550、BMS−310705、ドロロキシフェン、4−ヒドロキシタモキシフェン、ピペンドキシフェン、ERA−923、アルゾキシフェン、フルベストラント、アコルビフェン、ラソフォキシフェン、イドキシフェン、TSE−424、HMR−3339、ZK186619、トポテカン、PTK787/ZK222584、VX−745、PD 184352、ラパマイシン、40−O−(2−ヒドロキシエチル)ラパマイシン、テンシロリムス、AP−23573、RAD001、ABT−578、BC−210、LY294002、LY292223、LY292696、LY293684、LY293646、ワートマーミン、ZM336372、L−779,450、PEGフィルグラスチム、ダルベポエチン、エリスロポエチン、顆粒球コロニー刺激因子、ゾレンドロン酸、プレドニゾン、セツキシマブ、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子、ヒストレリン、ペグ化インターフェロンアルファ−2a、インターフェロンアルファ−2a,ペグ化インターフェロンアルファ−2b、インターフェロンアルファ−2b、アザシチジン、PEG−L−アスパラギナーゼ、レナリドミド、ゲムツズマブ、ヒドロコルチゾン、インターロイキン−11、デクスラゾキサン、アレムツズマブ、全トランス型レチノイン酸、ケトコナゾール、インターロイキン−2、メゲストロール、免疫グロブリン、窒素マスタード、メチルプレドニゾロン、イブリグモマブチウキセタン、アンドロゲン、デシタビン、ヘキサメチルメラミン、ベキサロテン、トシツモマブ、三酸化ヒ素、コルチゾン、エディトロネート、ミトタン、シクロスポリン、リポソームダウノルビシン、エドウィナアスパラギナーゼ、ストロンチウム89、カソピタント、ネツピタント、NK−1受容体拮抗薬、パロノセトロン、アプレピタント、ジフェンヒドラミン、ヒドロキシジン、メトクロプラミド、ロラゼパム、アルプラゾラム、ハロペリドール、ドロペリドール、ドロナビノール、デキサメタゾン、メチルプレドニゾロン、プロクロルペラジン、グラニセトロン、オンダンセトロン、ドラセトロン、トロピセトロン、ペグフィルグラスチム、エリスロポエチン、エポエチンアルファ、クルクミン、ALZ001、JM17およびダルベポエチンアルファ。
生物活性成分はそれらがMSNおよびexMSNにまたはそれらの上に適切に負荷され得るように、種々の形態であり得る。形態の例としては水性形態、分散形態、溶液または分散液中のイオン化形態、溶液または分散液中の水和物または溶媒和形態などが挙げられるが、形成に限定されない。
生理活性成分を負荷したMSNとexMSN
MSNおよびexMSNは、細孔内に生物活性成分を負荷し得る。確かに、本発明は、少なくとも1つの生物活性成分を負荷するMSNまたはexMSNを提供することができる。特に、本発明は、少なくとも2つの生物活性成分を負荷するMSNまたはexMSNを提供する。少なくとも2つの生物活性成分は、それらの疎水性が類似していても異なっていてもよい。一実施形態では、MSNまたはexMSNが親水性生物活性成分および疎水性生物活性成分を負荷する。一実施形態では、MSNまたはexMSNが少なくとも1つが親水性であり、残りが疎水性で少なくとも2つの生物活性成分を負荷する。一実施形態では、MSNまたはexMSNが少なくとも2つの生物活性成分を負荷し、少なくとも1つが疎水性であり、残りが親水性である。一実施形態では、MSNまたはexMSNが少なくとも2つの生物活性成分を負荷し、それらの全ては親水性である。一実施形態では、MSNまたはexMSNが少なくとも2つの生物活性成分を負荷し、それらの全ては疎水性である。1つの実施形態において、2つ以上の生物活性成分は、相乗的な効果を提供する。生物活性成分の比率は、意図される目的の要件を満たすように調整することができる。
MSNおよびexMSNは、細孔内に生物活性成分を負荷し得る。確かに、本発明は、少なくとも1つの生物活性成分を負荷するMSNまたはexMSNを提供することができる。特に、本発明は、少なくとも2つの生物活性成分を負荷するMSNまたはexMSNを提供する。少なくとも2つの生物活性成分は、それらの疎水性が類似していても異なっていてもよい。一実施形態では、MSNまたはexMSNが親水性生物活性成分および疎水性生物活性成分を負荷する。一実施形態では、MSNまたはexMSNが少なくとも1つが親水性であり、残りが疎水性で少なくとも2つの生物活性成分を負荷する。一実施形態では、MSNまたはexMSNが少なくとも2つの生物活性成分を負荷し、少なくとも1つが疎水性であり、残りが親水性である。一実施形態では、MSNまたはexMSNが少なくとも2つの生物活性成分を負荷し、それらの全ては親水性である。一実施形態では、MSNまたはexMSNが少なくとも2つの生物活性成分を負荷し、それらの全ては疎水性である。1つの実施形態において、2つ以上の生物活性成分は、相乗的な効果を提供する。生物活性成分の比率は、意図される目的の要件を満たすように調整することができる。
細孔修飾されたMSNまたはexMSNおよび生物活性成分を負荷したナノ粒子の製造方法
本願は、また、細孔上に内面有機修飾を有するMSNおよびexMSNの製造方法を提供する。一実施態様では、本方法は、以下の工程を含む:
(a)界面活性剤を含有するアルカリ性溶液を提供してミセルを形成する工程、
(b)第1のシリカ源と、末端ヒドロカルビル部分を提供する第2のシリカ源とを溶液に添加し、第1のシリカ源と第2のシリカ源とのモル比は5:1以上である工程、
(c)溶液に水熱処理を実施する工程および、
(d)溶液からMSNを抽出し、場合によっては精製する工程。
本願は、また、細孔上に内面有機修飾を有するMSNおよびexMSNの製造方法を提供する。一実施態様では、本方法は、以下の工程を含む:
(a)界面活性剤を含有するアルカリ性溶液を提供してミセルを形成する工程、
(b)第1のシリカ源と、末端ヒドロカルビル部分を提供する第2のシリカ源とを溶液に添加し、第1のシリカ源と第2のシリカ源とのモル比は5:1以上である工程、
(c)溶液に水熱処理を実施する工程および、
(d)溶液からMSNを抽出し、場合によっては精製する工程。
さらなる実施態様において、前記方法が以下の工程の少なくとも1つを更に含む:
(e)工程(a)の後かつ工程(b)の前に、細孔拡張のために、前記溶液に油相を導入する工程、
(f)工程(b)の後にさらなるシリカ源を添加する工程および、
(g)前記MSNの外面の表面修飾を行う工程であって、前記表面修飾は工程(b)の後に、または工程(f)が行われる場合には工程(f)の後に行われる工程。
(e)工程(a)の後かつ工程(b)の前に、細孔拡張のために、前記溶液に油相を導入する工程、
(f)工程(b)の後にさらなるシリカ源を添加する工程および、
(g)前記MSNの外面の表面修飾を行う工程であって、前記表面修飾は工程(b)の後に、または工程(f)が行われる場合には工程(f)の後に行われる工程。
末端ヒドロカルビル部分を提供する第1のシリカ源と第2のシリカ源との比は、このように調製されたMSNの生物活性成分の負荷容量および/または効率が特に5:1以上改善され得るように調節され得る。一実施形態では、シリカ源と末端芳香族部分提供試薬とのモル比が29:1〜4:1、好ましくは26:1〜5:1、より好ましくは21:1〜11:1の範囲である。さらに、前記比率は、MSNおよびexMSNのDLSサイズに影響を及ぼす重要な要因であり得る。理論に束縛されるものではないが、出願人は第2のシリカ源に対する第1のシリカ源の比率が低すぎる場合、DLSの大きさが150nmを超えて(劇的に)拡大するように、外面が有機修飾を有することになり、これが、生きた対象での生物活性成分の送達への適用を妨げると主張する。
内面修飾のための修飾剤は、MSNおよびexMSNの細孔の表面上に末端ヒドロカルビル部分を提供する。修飾剤の例は、トリメトキシフェニルシラン(TMPS)、トリエトキシフェニルシラン、ジフェニルジエトキシシラン、1−ナフチルトリメトキシシラン、2−ヒドロキシ−4−(3−トリエトキシシリルプロポキシ)ジフェニルケトン、O−4−メチルクマリニル−N−[3(トリエトキシシリル)プロピル]カルバメート、7−トリエトキシシリルプロポキシ−5−ヒドロキシフラボン、3−カルバゾリルプロピルトリエトキシシラン、ビス(2−ジフェニルホスフィノエチル)メチルシリルエチルトリエトキシシラン、2−(ジフェニルホスフィノ)エチルトリエトキシシラン、プロピルトリエトキシシラン、n−ブチルトリエトキシシラン、ペンチルトリエトキシシラン、ヘキシルトリエトキシシラン、ヘプチルトリエトキシシラン、オクチルトリエトキシシラン、ノニルトリエトキシシラン、デシルトリエトキシシラン、ウンデシルトリエトキシシラン、ドデシルトリエトキシシラン、シクロプロピルトリエトキシシラン、シクロブチルトリエトキシシラン、シクロペンチルトリエトキシシラン、シクロヘキシルトリエトキシシラン、シクロヘプチルトリエトキシシラン、シクロオクチルトリエトキシシラン、プロピルトリメトキシシラン、n−ブチルトリメトキシシラン、ペンチルトリメトキシシラン、ヘキシルトリメトキシシラン、ヘプチルトリメトキシシラン、オクチルトリメトキシシラン、ノニルトリメトキシシラン、デシルトリメトキシシラン、ウンデシルトリメトキシシラン、ドデシルトリメトキシシラン、シクロプロピルトリメトキシシラン、シクロブチルトリメトキシシラン、シクロペンチルトリメトキシシラン、シクロヘキシルトリメトキシシラン、シクロヘプチルトリメトキシシランおよびシクロオクチルトリメトキシシラン等。
MSNおよびexMSNの外側表面の修飾は、新た(de novo)に行うことができるか、または事後(post)修飾であり得る。修飾の例としては、ポリエチレングリコール(PEG)修飾、ポリエチレニミン(PEI)修飾、3−(トリヒドロキシシリル)プロピルメチルホスホネート(THPMP)修飾、N−(トリメトキシシリルプロピル)エチレンジアミン三酢酸(EDTAS)N−[3−(トリメトキシシリル)プロピル]エチレンジアミン修飾、N−[3−(トリメトキシシリル)プロピル]−N,N,N−トリメチルアンモニウム(TA−トリメトキシシラン)修飾、(3−メルカトプロピル)トリメトキシシラン(MPTMS)修飾、双性イオン性シラン修飾などの親水性修飾;バイオマーカーによる修飾、例えば抗体修飾、リンカー修飾、腫瘍標的化リガンド修飾などのような特異性修飾;または、シェルの表面特性の修飾、例えば、電荷の種類や分布の修飾など非特異的活性の修飾を挙げることができるが、これらに限定されるものではない。
また、本対象は、生物活性成分を負荷したMSNおよびexMSNを製造する方法を提供する。一実施形態では、方法が以下の工程を含む:
(a)上記の方法のいずれかで調製されたMSNまたはexMSNを提供すること;
(b)MSNまたはexMSNを第1の生物活性成分と接触させることにより第1の生物活性成分を負荷すること;
(c)第1の生物活性成分を負荷したMSNまたはexMSNと接触させることによって第2の生物活性成分を負荷すること;
(d)任意選択で、工程(c)を繰り返し、生物活性成分を負荷したMSNまたはexMSNをさらなる生物活性成分と独立して連続的に接触させることによって、さらなる生物活性成分を負荷すること。
(a)上記の方法のいずれかで調製されたMSNまたはexMSNを提供すること;
(b)MSNまたはexMSNを第1の生物活性成分と接触させることにより第1の生物活性成分を負荷すること;
(c)第1の生物活性成分を負荷したMSNまたはexMSNと接触させることによって第2の生物活性成分を負荷すること;
(d)任意選択で、工程(c)を繰り返し、生物活性成分を負荷したMSNまたはexMSNをさらなる生物活性成分と独立して連続的に接触させることによって、さらなる生物活性成分を負荷すること。
一実施形態では、第1および第2の生物活性成分が類似または同じ疎水性である。一実施形態では、第1および第2の生物活性成分が疎水性に関し異なる。特定の実施形態では、第1の生物活性成分は親水性であり、第2の生物活性成分は疎水性である。別の特定の実施形態では、第1の生物活性成分は疎水性であり、第2の生物活性成分は親水性である。一実施形態では、さらなる生物活性成分が独立して親水性または疎水性である。
生物活性成分を負荷したMSNとexMSNの用途
メソポーラスシリカナノ粒子(MSN)は大きな細孔容積、化学的/熱安定性、高い負荷容量、調節可能な表面特性、および優れた生体適合性などの独特の物理的/化学的性質のために、薬物送達システムとして大きな可能性を有すると考えられてきた。特に、本対象出願のMSNおよびexMSNは特定の用途に使用できるように、血液脳関門(BBB)および/または血液眼関門を透過する能力を有する可能性がある。
メソポーラスシリカナノ粒子(MSN)は大きな細孔容積、化学的/熱安定性、高い負荷容量、調節可能な表面特性、および優れた生体適合性などの独特の物理的/化学的性質のために、薬物送達システムとして大きな可能性を有すると考えられてきた。特に、本対象出願のMSNおよびexMSNは特定の用途に使用できるように、血液脳関門(BBB)および/または血液眼関門を透過する能力を有する可能性がある。
以下の実施例は、本発明が属する技術分野の通常の知識を有する者にとって本発明をより理解しやすくするために提供されるが、本発明の範囲を限定することを意図するものではない。
材料、方法および試験モデル
材料、方法および試験モデル
透過電子顕微鏡(TEM)
透過電子顕微鏡(TEM)を用いて、シリカナノ粒子の外観を直接調べ、検証した。TEM像は、75〜100kVの加速電圧で作動する日立H‐7100透過電子顕微鏡で撮影した。エタノールに分散した試料を炭素被覆銅グリッド上に滴下し、TEM観察のために空気乾燥した。
透過電子顕微鏡(TEM)を用いて、シリカナノ粒子の外観を直接調べ、検証した。TEM像は、75〜100kVの加速電圧で作動する日立H‐7100透過電子顕微鏡で撮影した。エタノールに分散した試料を炭素被覆銅グリッド上に滴下し、TEM観察のために空気乾燥した。
動的光散乱(DLS)
異なる溶液環境におけるシリカナノ粒子のサイズ測定を、Malvern Zetasizer Nano ZS(Malvern, UK)上で動的光散乱(DLS)を用いて行った。種々の溶液中で形成された(溶媒和された)粒子径を分析した:H2O、10% FBSを含むダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)、PBS緩衝液(pH7.4)および5%グルコースを室温で用いた。
異なる溶液環境におけるシリカナノ粒子のサイズ測定を、Malvern Zetasizer Nano ZS(Malvern, UK)上で動的光散乱(DLS)を用いて行った。種々の溶液中で形成された(溶媒和された)粒子径を分析した:H2O、10% FBSを含むダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)、PBS緩衝液(pH7.4)および5%グルコースを室温で用いた。
元素分析
シリカナノ粒子中の炭素、窒素、酸素および水素の質量パーセンテージを、元素分析器(elementar Vario EL cube type for NCSH, German)によって測定した。
ナノ粒子追跡分析(NTA)
サンプル液の粒子濃度(数/mg)は、Nanosight NS300によって測定する。
シリカナノ粒子中の炭素、窒素、酸素および水素の質量パーセンテージを、元素分析器(elementar Vario EL cube type for NCSH, German)によって測定した。
ナノ粒子追跡分析(NTA)
サンプル液の粒子濃度(数/mg)は、Nanosight NS300によって測定する。
ナノ粒子中の薬物の定量
5μLの薬物負荷ナノ粒子懸濁液(ストックから、200mg/mL)に、45μLのH2Oを10倍希釈のために添加し、次いで、19.6μLの希釈液(20mg/mL)を、32.4μLのDMSOおよび78μLのACN(0.5% HFを含む)と混合するために採取した。4℃で10分間振盪した後、HF残基を枯渇させるために、さらなる裸のシリカナノ粒子を溶液中に添加した。次に、溶液を14,000rpmで10分間遠心分離し、120μLの上清をHPLC分析のために採取した。
5μLの薬物負荷ナノ粒子懸濁液(ストックから、200mg/mL)に、45μLのH2Oを10倍希釈のために添加し、次いで、19.6μLの希釈液(20mg/mL)を、32.4μLのDMSOおよび78μLのACN(0.5% HFを含む)と混合するために採取した。4℃で10分間振盪した後、HF残基を枯渇させるために、さらなる裸のシリカナノ粒子を溶液中に添加した。次に、溶液を14,000rpmで10分間遠心分離し、120μLの上清をHPLC分析のために採取した。
ナノ粒子の生体内分布とEPR効果検出するためのin vivoイメージングシステム
ナノ粒子のin vivo生体内分布画像は、IVISイメージングシステム(Lumina)から得た。Balb/cマウス(4週齢)をBioLASCOから購入した。異所性移植用の4T1(ATCC(登録商標)CRL−2539TM)腫瘍細胞を皮下注射することにより、腫瘍担持マウスを樹立した。4T1細胞を2〜3週間増殖させた後、PBS中の試料を静脈内注射した。注射から24時間後、主要な器官(心臓、肺、脾臓、肝臓および腎臓)ならびに腫瘍、尿および血液を注意深く収集し、収集した試料の蛍光画像および強度をIVISイメージングシステムによって取得した。
ナノ粒子のin vivo生体内分布画像は、IVISイメージングシステム(Lumina)から得た。Balb/cマウス(4週齢)をBioLASCOから購入した。異所性移植用の4T1(ATCC(登録商標)CRL−2539TM)腫瘍細胞を皮下注射することにより、腫瘍担持マウスを樹立した。4T1細胞を2〜3週間増殖させた後、PBS中の試料を静脈内注射した。注射から24時間後、主要な器官(心臓、肺、脾臓、肝臓および腎臓)ならびに腫瘍、尿および血液を注意深く収集し、収集した試料の蛍光画像および強度をIVISイメージングシステムによって取得した。
脳血管内のナノ粒子を検出するための2光子蛍光顕微鏡法
健常ICRマウス(27〜30g)に200mg/kgのナノ粒子を静脈内注射し、マウスの耳たぶの動的イメージングを、調整可能な励起波長(800〜1000nm)を用いた多光子顕微鏡法(Olympus FVMPE−RS)によって行った。ナノ粒子がもはや脳血管中を循環しなくなった後、マウスを麻酔し、次いで頭蓋骨除去(開頭術)手術を行った。本研究では、短期観測のために脳表にガラスカバーを置く代わりに正常生理食塩水を使用した。血液血管系を画像化するために、0.6mLの2.5%(w/V)フルオレセインイソチオシアネートデキストラン(FITC−デキストラン、Mw:70kDa)を、マウスに静脈内注射した無菌生理食塩水に溶解した。マウス大脳におけるナノ粒子の深さプロフィールイメージングを、脳の表面下0〜300μm(軸方向間隔は1μm)で収集した。
健常ICRマウス(27〜30g)に200mg/kgのナノ粒子を静脈内注射し、マウスの耳たぶの動的イメージングを、調整可能な励起波長(800〜1000nm)を用いた多光子顕微鏡法(Olympus FVMPE−RS)によって行った。ナノ粒子がもはや脳血管中を循環しなくなった後、マウスを麻酔し、次いで頭蓋骨除去(開頭術)手術を行った。本研究では、短期観測のために脳表にガラスカバーを置く代わりに正常生理食塩水を使用した。血液血管系を画像化するために、0.6mLの2.5%(w/V)フルオレセインイソチオシアネートデキストラン(FITC−デキストラン、Mw:70kDa)を、マウスに静脈内注射した無菌生理食塩水に溶解した。マウス大脳におけるナノ粒子の深さプロフィールイメージングを、脳の表面下0〜300μm(軸方向間隔は1μm)で収集した。
In vitro抗腫瘍相乗効果試験による薬物組合せ投与量比率の決定
JM17(クルクミン類似体)およびドキソルビシン(Dox)の相乗的細胞毒性効果を、アラマーブルーアッセイ(Invitrogen)によって評価した。増殖アッセイのために、ウェルあたり5×104のMCF7/ADR細胞(Dox耐性乳がん細胞)を24ウェルプレートに播種した。種々の濃度のJM17、種々の濃度のDox、および種々の組合せ投与量比率のJM17+Doxを細胞と共にインキュベートした。48時間インキュベートした後、細胞を培養培地で2回洗浄し、続いてアラマーブルー試薬と共に37℃で2時間インキュベートした。アラマーブルーアッセイからの蛍光シグナルは生きた細胞数に比例し、シグナル(Ex/Em=560/590)はマイクロプレートリーダー(Bio−Rad、モデル68)を用いて測定した。Zheng‐Jun Jin法(Q法)またはChou‐Talalayの組合せ指数(CI)定理を用いて薬物組合せの相乗作用を解析した。
JM17(クルクミン類似体)およびドキソルビシン(Dox)の相乗的細胞毒性効果を、アラマーブルーアッセイ(Invitrogen)によって評価した。増殖アッセイのために、ウェルあたり5×104のMCF7/ADR細胞(Dox耐性乳がん細胞)を24ウェルプレートに播種した。種々の濃度のJM17、種々の濃度のDox、および種々の組合せ投与量比率のJM17+Doxを細胞と共にインキュベートした。48時間インキュベートした後、細胞を培養培地で2回洗浄し、続いてアラマーブルー試薬と共に37℃で2時間インキュベートした。アラマーブルーアッセイからの蛍光シグナルは生きた細胞数に比例し、シグナル(Ex/Em=560/590)はマイクロプレートリーダー(Bio−Rad、モデル68)を用いて測定した。Zheng‐Jun Jin法(Q法)またはChou‐Talalayの組合せ指数(CI)定理を用いて薬物組合せの相乗作用を解析した。
MCF7/ADRがん動物モデル
雌BALB/cヌードマウス(5〜6週齢)をNational Laboratory Animal Centerから購入した。実験期間中、マウスに飲水によるエストロゲンの持続的経口投与を行った。25μLのPBSおよび25μLのマトリゲルマトリックス中の5×106のMCF−7/ADR細胞を、BALB/cヌードマウスの左側腹部に皮下異種移植した。腫瘍増殖を約1ヶ月(大きさ〜50mm3)続けた後、0日目、4日目および8日目に全ての群に静脈内注射した。マウスの体重と腫瘍体積を週2回測定した。
雌BALB/cヌードマウス(5〜6週齢)をNational Laboratory Animal Centerから購入した。実験期間中、マウスに飲水によるエストロゲンの持続的経口投与を行った。25μLのPBSおよび25μLのマトリゲルマトリックス中の5×106のMCF−7/ADR細胞を、BALB/cヌードマウスの左側腹部に皮下異種移植した。腫瘍増殖を約1ヶ月(大きさ〜50mm3)続けた後、0日目、4日目および8日目に全ての群に静脈内注射した。マウスの体重と腫瘍体積を週2回測定した。
合成例1
細孔拡大MSN−PEG+TA(exMSN−PEG−TA)合成
細孔拡大メソポーラスシリカナノ粒子(exMSN)は、明確な構造、大きな細孔および高密度の表面シラノール基を有し、広範囲の有機官能基で修飾することができる。最初に、0.386gのCTABを、160gの水酸化アンモニウム溶液(0.22M)中に、所望の温度(50℃)で、密封ビーカー中に溶解した。10分後、16.2mLの希釈デカンアルコール溶液(7.4% v/v)を添加し、混合物を少なくとも8時間連続的に撹拌した(細孔サイズを拡大するために油相としてデカンを添加した)。その後、密封した蓋を取り外し、2.64mLのエタノール中の660μLのTEOSを混合物にさらに1時間撹拌しながら導入した。次に、3mLのエタノール中の550μL(2−[メトキシ(ポリエチレンオキシ)プロピル]トリメトキシシラン)(PEG)および300μLのN−[3−(トリメトキシシリル)プロピル]−N,N,Nトリメチルアンモニウムクロリド(TA)を反応系に導入した。混合物を30分間撹拌した後、溶液を一晩撹拌することなく所望の温度(50℃)でエージングした。次に、0.45μm、0.22μmのフィルターで溶液をろ過し、薄膜副産物を除去した後、ろ液を密閉し、80℃のオーブンに24時間入れ、水熱処理を行った。合成されたままの試料を洗浄し、クロスフロー濾過によって収集した。ナノ粒子の細孔中の界面活性剤を除去するために、合成したままの試料を、848μL(1回目)および50μL(2回目)の塩酸(37%)を含有する50mLの酸性エタノール中で、それぞれ60℃で1時間インキュベートした。生成物を洗浄し、クロスフロー濾過によって回収し、次いで90%エタノール中に保存した。
細孔拡大MSN−PEG+TA(exMSN−PEG−TA)合成
細孔拡大メソポーラスシリカナノ粒子(exMSN)は、明確な構造、大きな細孔および高密度の表面シラノール基を有し、広範囲の有機官能基で修飾することができる。最初に、0.386gのCTABを、160gの水酸化アンモニウム溶液(0.22M)中に、所望の温度(50℃)で、密封ビーカー中に溶解した。10分後、16.2mLの希釈デカンアルコール溶液(7.4% v/v)を添加し、混合物を少なくとも8時間連続的に撹拌した(細孔サイズを拡大するために油相としてデカンを添加した)。その後、密封した蓋を取り外し、2.64mLのエタノール中の660μLのTEOSを混合物にさらに1時間撹拌しながら導入した。次に、3mLのエタノール中の550μL(2−[メトキシ(ポリエチレンオキシ)プロピル]トリメトキシシラン)(PEG)および300μLのN−[3−(トリメトキシシリル)プロピル]−N,N,Nトリメチルアンモニウムクロリド(TA)を反応系に導入した。混合物を30分間撹拌した後、溶液を一晩撹拌することなく所望の温度(50℃)でエージングした。次に、0.45μm、0.22μmのフィルターで溶液をろ過し、薄膜副産物を除去した後、ろ液を密閉し、80℃のオーブンに24時間入れ、水熱処理を行った。合成されたままの試料を洗浄し、クロスフロー濾過によって収集した。ナノ粒子の細孔中の界面活性剤を除去するために、合成したままの試料を、848μL(1回目)および50μL(2回目)の塩酸(37%)を含有する50mLの酸性エタノール中で、それぞれ60℃で1時間インキュベートした。生成物を洗浄し、クロスフロー濾過によって回収し、次いで90%エタノール中に保存した。
NH2+COOH−exMSN−PEG合成
最初に、0.386gのCTABを、160gの水酸化アンモニウム溶液(0.22M)中に、所望の温度(50℃)で、密封ビーカー中に溶解した。10分後、16.2mLの希釈デカンアルコール溶液(7.4% v/v)を添加し、混合物を少なくとも8時間連続的に撹拌した。その後、密閉された蓋を取り外し、3.35mLエタノール中のTEOSの700μL、3‐(2‐アミノエチルアミノ)プロピルトリメトキシシラン(AAS)の50μLおよびN‐(トリメトキシシリル‐プロピル)エチレンジアミン三酢酸三ナトリウム塩(EDTAS)の5μLを混合物中に1時間撹はん導入した。次に、3mLのエタノール中の550μLのPEGを反応系に導入した。混合物を30分間撹拌した後、溶液を一晩撹拌することなく所望の温度(50℃)でエージングした。次に、0.45μm、0.22μmのフィルターで溶液をろ過し、薄膜副産物を除去した後、ろ液を密閉し、80℃のオーブンに24時間入れ、水熱処理を行った。合成されたままの試料を洗浄し、クロスフロー濾過によって収集した。ナノ粒子の細孔中の界面活性剤を除去するために、合成したままの試料を、848μL(1回目)および50μL(2回目)の塩酸(37%)を含有する50mLの酸性エタノール中で、それぞれ60℃で1時間インキュベートした。生成物を洗浄し、クロスフロー濾過によって回収し、次いで90%エタノール中に保存した。
最初に、0.386gのCTABを、160gの水酸化アンモニウム溶液(0.22M)中に、所望の温度(50℃)で、密封ビーカー中に溶解した。10分後、16.2mLの希釈デカンアルコール溶液(7.4% v/v)を添加し、混合物を少なくとも8時間連続的に撹拌した。その後、密閉された蓋を取り外し、3.35mLエタノール中のTEOSの700μL、3‐(2‐アミノエチルアミノ)プロピルトリメトキシシラン(AAS)の50μLおよびN‐(トリメトキシシリル‐プロピル)エチレンジアミン三酢酸三ナトリウム塩(EDTAS)の5μLを混合物中に1時間撹はん導入した。次に、3mLのエタノール中の550μLのPEGを反応系に導入した。混合物を30分間撹拌した後、溶液を一晩撹拌することなく所望の温度(50℃)でエージングした。次に、0.45μm、0.22μmのフィルターで溶液をろ過し、薄膜副産物を除去した後、ろ液を密閉し、80℃のオーブンに24時間入れ、水熱処理を行った。合成されたままの試料を洗浄し、クロスフロー濾過によって収集した。ナノ粒子の細孔中の界面活性剤を除去するために、合成したままの試料を、848μL(1回目)および50μL(2回目)の塩酸(37%)を含有する50mLの酸性エタノール中で、それぞれ60℃で1時間インキュベートした。生成物を洗浄し、クロスフロー濾過によって回収し、次いで90%エタノール中に保存した。
(異なるTEOS/BisTESB比を有する)BisTESB−exMSN−PEG+TA合成
最初に、0.386gのCTABを、160gの水酸化アンモニウム溶液(0.22M)中に、所望の温度(50℃)で、密封ビーカー中に溶解した。10分後、16.2mLの希釈デカンアルコール溶液(7.4% v/v)を添加し、混合物を少なくとも8時間連続的に撹拌した。その後、密閉した蓋を外し、2.8mLのエタノール中の583.3μLのTEOS/200μLの1,4−ビス(トリエトキシシリル)ベンゼン(BisTESB)(4:1)、636.4μLのTEOS/109μLのBisTESB(9:1)、または656.3μLのTEOS/75μLのBisTESB(14:1)を混合物に1時間撹拌しながら導入した。次に、3mLのエタノール中の550μLのPEGおよび300μLのTAを反応系に導入した。混合物を30分間撹拌した後、溶液を一晩撹拌することなく所望の温度(50℃)でエージングした。次に、0.45μm、0.22μmのフィルターで溶液をろ過し、薄膜副産物を除去した後、ろ液を密閉し、80℃のオーブンに24時間入れ、水熱処理を行った。合成したままの試料を洗浄し、クロスフローろ過により回収し、ナノ粒子の細孔中の界面活性剤を除去するために、合成したままの試料を、848μL(1回目)および50μL(2回目)の塩酸(37%)を含有する50mLの酸性エタノール中で、それぞれ60℃で1時間インキュベートした。生成物を洗浄し、クロスフロー濾過によって回収し、次いで90%エタノール中に保存した。
最初に、0.386gのCTABを、160gの水酸化アンモニウム溶液(0.22M)中に、所望の温度(50℃)で、密封ビーカー中に溶解した。10分後、16.2mLの希釈デカンアルコール溶液(7.4% v/v)を添加し、混合物を少なくとも8時間連続的に撹拌した。その後、密閉した蓋を外し、2.8mLのエタノール中の583.3μLのTEOS/200μLの1,4−ビス(トリエトキシシリル)ベンゼン(BisTESB)(4:1)、636.4μLのTEOS/109μLのBisTESB(9:1)、または656.3μLのTEOS/75μLのBisTESB(14:1)を混合物に1時間撹拌しながら導入した。次に、3mLのエタノール中の550μLのPEGおよび300μLのTAを反応系に導入した。混合物を30分間撹拌した後、溶液を一晩撹拌することなく所望の温度(50℃)でエージングした。次に、0.45μm、0.22μmのフィルターで溶液をろ過し、薄膜副産物を除去した後、ろ液を密閉し、80℃のオーブンに24時間入れ、水熱処理を行った。合成したままの試料を洗浄し、クロスフローろ過により回収し、ナノ粒子の細孔中の界面活性剤を除去するために、合成したままの試料を、848μL(1回目)および50μL(2回目)の塩酸(37%)を含有する50mLの酸性エタノール中で、それぞれ60℃で1時間インキュベートした。生成物を洗浄し、クロスフロー濾過によって回収し、次いで90%エタノール中に保存した。
(異なるTEOS/フェニルシラン比を有する)フェニル−exMSN−PEG+TA合成
exMSN構造は、無機テトラエトキシシラン(TEOS)と有機トリメトキシフェニルシラン(TMPS)の共縮合によって形成され、これはexMSN細孔への疎水性を与え、疎水性薬物負荷効率を改善することができる。拡大された細孔を有する単分散フェニル−exMSN−PEG+TAは、高度に希釈された界面活性剤を含むアンモニア溶液にデカンをさらに導入することによって調製された。最初に、0.386gのCTABを、160gの水酸化アンモニウム溶液(0.22Mまたは0.35M)中に、所望の温度(50℃)で、密封ビーカー中に溶解した。10分後、16.2mLの希釈デカンアルコール溶液(7.4% v/v)を添加し、混合物を少なくとも8時間連続的に撹拌した。その後、密閉したふたを外し、2.5mLの希釈APTMSアルコール溶液(10.7mM)と350μL〜700μLのTEOSを加え、1.9mL〜3.3mLのエタノールに混合した37μL、47μL、56μL、112μLのTMPS(TEOS/TMPSのモル比=16:1、13:1、11:1、および5:1、TEOS:TMPS比を変えて、様々な用途または負荷された薬物に対する細孔表面の疎水性を調節することができる)を溶液に激しく攪拌しながら加えた。3〜60分後、0.56mL〜1.4mLのEtOH中の140μL〜350μLのエタノール性TEOSをいくつかの条件(TEOS/TMPS=16:1、13:1および11:1)で添加し、反応の1〜2時間後、2mL〜3mLのEtOH中に混合した550μL〜1000μLのPEGおよび155.8μL〜450μLのTAを反応に導入した。混合物を60分間撹拌した後、混合物を一晩撹拌することなく、所望の温度(50℃)でエージングした。次に、0.45μm、0.22μmのフィルターで溶液をろ過し、薄膜副産物を除去した後、ろ液を密閉し、80℃のオーブンに24時間入れ、水熱処理を行った。合成されたままの試料を洗浄し、クロスフロー濾過によって収集した。フェニル−exMSN−PEG+TAの細孔中の界面活性剤を除去するために、合成したままの試料を、848μL(1回目)および50μL(2回目)の塩酸(37%)を含有する50mLの酸性エタノール中で、それぞれ60℃で1時間インキュベートした。生成物を洗浄し、クロスフロー濾過によって回収し、次いで90%エタノール中に保存した。異なる溶液環境において動的光散乱(DLS)によって測定された種々の内面修飾を有するフェニル−exMSN−PEG+TAの粒子サイズを表1に示す。DLSの結果は全てのMSNがH2O中で約40nm〜70nmの範囲内で良好に分散したが、高フェニル導入粒子(TEOS:TMPS=5:1)の分散性はPBS緩衝液中で影響を受けたことを示した。これは、部分フェニル基が高フェニル導入粒子の表面上で修飾されて、粒子の分散性に影響を及ぼし得ることを意味する。
exMSN構造は、無機テトラエトキシシラン(TEOS)と有機トリメトキシフェニルシラン(TMPS)の共縮合によって形成され、これはexMSN細孔への疎水性を与え、疎水性薬物負荷効率を改善することができる。拡大された細孔を有する単分散フェニル−exMSN−PEG+TAは、高度に希釈された界面活性剤を含むアンモニア溶液にデカンをさらに導入することによって調製された。最初に、0.386gのCTABを、160gの水酸化アンモニウム溶液(0.22Mまたは0.35M)中に、所望の温度(50℃)で、密封ビーカー中に溶解した。10分後、16.2mLの希釈デカンアルコール溶液(7.4% v/v)を添加し、混合物を少なくとも8時間連続的に撹拌した。その後、密閉したふたを外し、2.5mLの希釈APTMSアルコール溶液(10.7mM)と350μL〜700μLのTEOSを加え、1.9mL〜3.3mLのエタノールに混合した37μL、47μL、56μL、112μLのTMPS(TEOS/TMPSのモル比=16:1、13:1、11:1、および5:1、TEOS:TMPS比を変えて、様々な用途または負荷された薬物に対する細孔表面の疎水性を調節することができる)を溶液に激しく攪拌しながら加えた。3〜60分後、0.56mL〜1.4mLのEtOH中の140μL〜350μLのエタノール性TEOSをいくつかの条件(TEOS/TMPS=16:1、13:1および11:1)で添加し、反応の1〜2時間後、2mL〜3mLのEtOH中に混合した550μL〜1000μLのPEGおよび155.8μL〜450μLのTAを反応に導入した。混合物を60分間撹拌した後、混合物を一晩撹拌することなく、所望の温度(50℃)でエージングした。次に、0.45μm、0.22μmのフィルターで溶液をろ過し、薄膜副産物を除去した後、ろ液を密閉し、80℃のオーブンに24時間入れ、水熱処理を行った。合成されたままの試料を洗浄し、クロスフロー濾過によって収集した。フェニル−exMSN−PEG+TAの細孔中の界面活性剤を除去するために、合成したままの試料を、848μL(1回目)および50μL(2回目)の塩酸(37%)を含有する50mLの酸性エタノール中で、それぞれ60℃で1時間インキュベートした。生成物を洗浄し、クロスフロー濾過によって回収し、次いで90%エタノール中に保存した。異なる溶液環境において動的光散乱(DLS)によって測定された種々の内面修飾を有するフェニル−exMSN−PEG+TAの粒子サイズを表1に示す。DLSの結果は全てのMSNがH2O中で約40nm〜70nmの範囲内で良好に分散したが、高フェニル導入粒子(TEOS:TMPS=5:1)の分散性はPBS緩衝液中で影響を受けたことを示した。これは、部分フェニル基が高フェニル導入粒子の表面上で修飾されて、粒子の分散性に影響を及ぼし得ることを意味する。
合成例2
(異なるTEOS/フェニルシラン比を有する)フェニル−MSN−PEG+TA合成
フェニル‐MSN‐PEG+TAは、高度に希釈した低界面活性剤条件下でアンモニア塩基触媒法を用いて調製した。フェニル−MSN−PEG+TA中のフェニル基の量は種々のTEOSおよびTMPS量(TEOS/TMPS=29:1、26:1、21:1、20:1、15:1および11:1のモル比)を反応に導入することにより調節し、典型的には、0.29gのCTABを150mLの水酸化アンモニウム溶液(0.171Mまたは0.205M)中に、所望の温度(50℃)で溶解した。15分間撹拌した後、密封した膜を除去し、次いで、1mLのEtOH中に混合した16μL、20μL、24μL、32μLまたは40μLのTMPSを含む250μLのエタノール性TEOSを、激しく撹拌しながら溶液に添加した。10〜30分後、1mLまたは1.2mLのEtOH中の250μLまたは300μLのエタノール性TEOSを添加した。反応1〜2.5時間後、200μLのEtOHに溶解した50μLのエタノール性TEOSを10分間加え、2mL〜2.6mLのEtOHに混合した550μL〜825μLのPEGと300μL〜450μLのTAを導入した。混合物を1時間撹拌した後、混合物を、少なくとも12時間撹拌することなく、所望の温度(50℃)でエージングした。その後、溶液を密封し、70℃のオーブンに24時間水熱処理した。合成されたままの試料を洗浄し、クロスフロー濾過によって収集した。フェニル‐MSN‐PEG+TAの細孔中の界面活性剤を除去するために、合成したままの試料を、678μL(1回目)および40μL(2回目)の塩酸(37%)を含有する40mLの酸性エタノール中に、それぞれ60℃で1時間抽出して回収した。生成物を洗浄し、クロスフロー濾過によって回収し、次いで90%エタノール中に保存した。異なる溶液環境において動的光散乱(DLS)によって測定された種々の内面修飾を有するフェニル−MSN−PEG+TAの粒子サイズを表2に示す。DLSの結果はすべてのMSNがH2O中で約30nm〜50nmの範囲内で良好に分散したが、高フェニル導入粒子(TEOS:TMPS=11:1および15:1)の分散性はPBS緩衝液中で影響を受けたことを示した。これは、部分フェニル基が高フェニル導入粒子の表面上で修飾されて、粒子の分散性に影響を及ぼし得ることを意味する。
(異なるTEOS/フェニルシラン比を有する)フェニル−MSN−PEG+TA合成
フェニル‐MSN‐PEG+TAは、高度に希釈した低界面活性剤条件下でアンモニア塩基触媒法を用いて調製した。フェニル−MSN−PEG+TA中のフェニル基の量は種々のTEOSおよびTMPS量(TEOS/TMPS=29:1、26:1、21:1、20:1、15:1および11:1のモル比)を反応に導入することにより調節し、典型的には、0.29gのCTABを150mLの水酸化アンモニウム溶液(0.171Mまたは0.205M)中に、所望の温度(50℃)で溶解した。15分間撹拌した後、密封した膜を除去し、次いで、1mLのEtOH中に混合した16μL、20μL、24μL、32μLまたは40μLのTMPSを含む250μLのエタノール性TEOSを、激しく撹拌しながら溶液に添加した。10〜30分後、1mLまたは1.2mLのEtOH中の250μLまたは300μLのエタノール性TEOSを添加した。反応1〜2.5時間後、200μLのEtOHに溶解した50μLのエタノール性TEOSを10分間加え、2mL〜2.6mLのEtOHに混合した550μL〜825μLのPEGと300μL〜450μLのTAを導入した。混合物を1時間撹拌した後、混合物を、少なくとも12時間撹拌することなく、所望の温度(50℃)でエージングした。その後、溶液を密封し、70℃のオーブンに24時間水熱処理した。合成されたままの試料を洗浄し、クロスフロー濾過によって収集した。フェニル‐MSN‐PEG+TAの細孔中の界面活性剤を除去するために、合成したままの試料を、678μL(1回目)および40μL(2回目)の塩酸(37%)を含有する40mLの酸性エタノール中に、それぞれ60℃で1時間抽出して回収した。生成物を洗浄し、クロスフロー濾過によって回収し、次いで90%エタノール中に保存した。異なる溶液環境において動的光散乱(DLS)によって測定された種々の内面修飾を有するフェニル−MSN−PEG+TAの粒子サイズを表2に示す。DLSの結果はすべてのMSNがH2O中で約30nm〜50nmの範囲内で良好に分散したが、高フェニル導入粒子(TEOS:TMPS=11:1および15:1)の分散性はPBS緩衝液中で影響を受けたことを示した。これは、部分フェニル基が高フェニル導入粒子の表面上で修飾されて、粒子の分散性に影響を及ぼし得ることを意味する。
合成例3
(異なるTEOS/C8−シラン比を有する)C8−MSN−PEG+TA合成
C8‐MSN‐PEG+TAは、高希釈および低界面活性剤レベル溶液を用いたアンモニア塩基触媒法を用いて調製した。C8−MSN−PEG+TA中のオクチル基含有量は全TEOSおよびC8−反応量(TEOS/C8−反応のモル比は20:1、15:1、10:1、および5:1から変化する)によって調節した。典型的には0.29gのCTABを、密封ビーカー中で所望の温度(50℃)で150mlの水酸化アンモニウム溶液(0.205M)に溶解した。15分間撹拌した後、密封した膜を除去し、次いで、1mLのEtOH中に混合した39.2μL、52.2μL、78.4μLまたは156.8μLのC8−シランを含む250μLのエタノール性TEOSを、激しく撹拌しながら溶液に添加した。1.2mLのEtOH中の300μLのエタノール性TEOSの別の添加を、1時間後に導入した。反応の3時間後、2.6mLのエタノール中に混合した825μLのPEGおよび450μLのTAを、さらなる反応のために導入した。混合物を1時間撹拌した後、混合物を、少なくとも12時間、撹拌することなく、所望の温度(50℃)でエージングした。次に、得られた溶液を密閉し、70℃のオーブンに24時間水熱処理した。最後に、合成されたままの試料を洗浄し、生成物をクロスフローシステムによって収集した。C8−MSN−PEG+TAの細孔中の界面活性剤を除去するために、合成したままの生成物を、678μL(1回目)および40μL(2回目)の塩酸(37%)を含有する40mLの酸性エタノールに、60℃で1時間の抽出の2回導入した。生成物を洗浄し、クロスフローシステムによって回収して最終産物を得、最終産物を最終的に90%エタノール中に貯蔵した。種々の環境において動的光散乱(DLS)によって測定された種々の内面修飾を有するC8−MSN−PEG+TAの粒子サイズを表3に列挙する。すべてのMSNは良好に分散し、H2O中で約25nm〜40nmの大きさを有した;しかし、PBS緩衝液中の高C8導入粒子(TEOS:C8‐シラン=10:1および5:1)の分散性に影響を与えた。結果はより多い量のC8‐シランを使用すると、アルキル基の一部がC8導入粒子の外面に付着し、それによって粒子の分散性が低下したことを示す。
(異なるTEOS/C8−シラン比を有する)C8−MSN−PEG+TA合成
C8‐MSN‐PEG+TAは、高希釈および低界面活性剤レベル溶液を用いたアンモニア塩基触媒法を用いて調製した。C8−MSN−PEG+TA中のオクチル基含有量は全TEOSおよびC8−反応量(TEOS/C8−反応のモル比は20:1、15:1、10:1、および5:1から変化する)によって調節した。典型的には0.29gのCTABを、密封ビーカー中で所望の温度(50℃)で150mlの水酸化アンモニウム溶液(0.205M)に溶解した。15分間撹拌した後、密封した膜を除去し、次いで、1mLのEtOH中に混合した39.2μL、52.2μL、78.4μLまたは156.8μLのC8−シランを含む250μLのエタノール性TEOSを、激しく撹拌しながら溶液に添加した。1.2mLのEtOH中の300μLのエタノール性TEOSの別の添加を、1時間後に導入した。反応の3時間後、2.6mLのエタノール中に混合した825μLのPEGおよび450μLのTAを、さらなる反応のために導入した。混合物を1時間撹拌した後、混合物を、少なくとも12時間、撹拌することなく、所望の温度(50℃)でエージングした。次に、得られた溶液を密閉し、70℃のオーブンに24時間水熱処理した。最後に、合成されたままの試料を洗浄し、生成物をクロスフローシステムによって収集した。C8−MSN−PEG+TAの細孔中の界面活性剤を除去するために、合成したままの生成物を、678μL(1回目)および40μL(2回目)の塩酸(37%)を含有する40mLの酸性エタノールに、60℃で1時間の抽出の2回導入した。生成物を洗浄し、クロスフローシステムによって回収して最終産物を得、最終産物を最終的に90%エタノール中に貯蔵した。種々の環境において動的光散乱(DLS)によって測定された種々の内面修飾を有するC8−MSN−PEG+TAの粒子サイズを表3に列挙する。すべてのMSNは良好に分散し、H2O中で約25nm〜40nmの大きさを有した;しかし、PBS緩衝液中の高C8導入粒子(TEOS:C8‐シラン=10:1および5:1)の分散性に影響を与えた。結果はより多い量のC8‐シランを使用すると、アルキル基の一部がC8導入粒子の外面に付着し、それによって粒子の分散性が低下したことを示す。
実施例4
細孔修飾MSNおよびexMSNにおけるドキソルビシンおよびJM17共負荷
50mgのexMSNを最初にNaHCO3溶液(pH9.95)に30分間浸漬し、次いで溶液をVivaspin(登録商標)Turbo 15によって濃縮して濃縮物を得た。その後、濃縮物を脱イオン水で希釈し、次いで希釈液を再度濃縮した。このように濃縮した溶液にドキソルビシン(Dox)溶液を加え、混合物を4℃で30分間振盪した。その後、混合溶液(DoxおよびexMSNを含む)をJM17溶液(100% DMSO中)中にゆっくりと滴下し、4℃で2時間連続振盪した。次に、DMSO濃度をVivaspin膜の最大DMSO耐性のレベルまで低下させるために、激しく振盪しながら混合物にDI水を添加した。濃縮および洗浄プロセスの前に、溶液を低速度(3500g)で10分間遠心分離し、部分的なJM17沈殿物を分離する(必要であれば)。最後に、生成物をDI水中に貯蔵する。exMSN中のJM17およびDox負荷量は、薬物負荷プロセス中に種々の濃度のJM17およびDox溶液を使用することによって調節することができる。
細孔修飾MSNおよびexMSNにおけるドキソルビシンおよびJM17共負荷
50mgのexMSNを最初にNaHCO3溶液(pH9.95)に30分間浸漬し、次いで溶液をVivaspin(登録商標)Turbo 15によって濃縮して濃縮物を得た。その後、濃縮物を脱イオン水で希釈し、次いで希釈液を再度濃縮した。このように濃縮した溶液にドキソルビシン(Dox)溶液を加え、混合物を4℃で30分間振盪した。その後、混合溶液(DoxおよびexMSNを含む)をJM17溶液(100% DMSO中)中にゆっくりと滴下し、4℃で2時間連続振盪した。次に、DMSO濃度をVivaspin膜の最大DMSO耐性のレベルまで低下させるために、激しく振盪しながら混合物にDI水を添加した。濃縮および洗浄プロセスの前に、溶液を低速度(3500g)で10分間遠心分離し、部分的なJM17沈殿物を分離する(必要であれば)。最後に、生成物をDI水中に貯蔵する。exMSN中のJM17およびDox負荷量は、薬物負荷プロセス中に種々の濃度のJM17およびDox溶液を使用することによって調節することができる。
すべての種類のexMSNに、上記の方法によりJM17およびDoxを負荷した。JM17およびDoxはexMSN−PEG+TAおよびNH2+COOH−exMSN−PEGに同時に負荷することができず、これはMSNの細孔サイズを拡大するか、または細孔表面を修飾する方法(正荷電を有する、負荷電を有する、H結合ドナーを有する、またはH結合アクセプターを有する)だけではMSNが疎水性薬物(JM17)および親水性薬物(Dox)を同時に吸着させることができないことを意味することが注目された。BisTESB−exMSN−PEG+TAナノ粒子は構造中に疎水性フェニル基を有するように構築されたが、それらは依然として両方の薬物を粒子中にカプセル化することができない。対照的に、フェニル−exMSN−PEG+TAはJM17およびDoxを同時にカプセル化する能力を有し、これは、フェニル基が細孔の表面上で修飾され、それによって薬物負荷能力を増強したことを意味する。フェニル−exMSN−PEG+TA中の、TMPSから誘導される疎水性フェニル基は疎水性薬物負荷効率を改善するのに重要な役割を果たし、したがって、フェニル−exMSN−PEG+TA合成のTMPS/TEOS比は、溶液中の材料分散性に影響を及ぼすことなく、より高い薬物負荷能力を達成するために最適化される。したがって、5:1、11:1、13:1および16:1のTEOS/TMPS比をexMSN合成のために選択して、効果を評価する。結果は、11:1のTEOS/TMPS比によって合成されたナノ粒子が最良の薬物負荷能力(DOX:1〜5%;JM17:1〜5%)を示し、依然としてPBS中で優れた分散性(DLSサイズ/PDI:44.4nm/0.095)を維持することを実証する。他方、ナノ粒子はより低いTEOS/TMPS比、例えば5:1で合成される場合、薬物負荷プロセスの間に激しく凝集し得、そして凝集は粒子の表面に結合したフェニル基によって引き起こされ得、これは疎水性薬物が細孔の空間内ではなく、粒子の表面にも結合されることを可能にする。凝集したナノ粒子(H2O中でさえ>200nmの大きさ)は低い薬物負荷率を引き起こし、血行不良および血管閉塞の危険性のために、それらをインビボ実験に利用することができなくなる。さらに、低いTEOS/TMPS比(16:1)を有するナノ粒子は溶液中で良好な懸濁液を示すが、それらはJM17を効率的に吸着しない;負荷容量が使用するには低すぎる。
フェニル−MSN−PEG+TAはまた、材料の分散性に影響を及ぼすことなく、より高い薬物負荷能力で薬物をカプセル化することができる。6つのTEOS/TMPS比、29:1、26:1、21:1、20:1、15:1および11:1が、細孔修飾MSN合成のために選択される。29:1〜20:1の範囲のTEOS/TMPS比で合成されたナノ粒子は高い薬物負荷能力(>3%負荷質量%)を示し、PBS中で優れた分散性(DLSサイズ<60nm)を依然として維持することができる。一方、15:1または11:1のTEOS/TMPS比で合成された場合、ナノ粒子は負荷工程後に激しく凝集し、凝集したナノ粒子のDLSサイズはH2O中で約200nmを超える。
フェニル−exMSN−PEG+TA、フェニル−MSN−PEG+TA、およびC8−MSN−PEG+TAはまた、イクサベピロン、パクリタキセル、イリノテカンなどの様々な疎水性薬物をカプセル化することができる。試験結果によれば、細孔の比表面積修飾および官能基の比率の活性調節によって、MSNおよびexMSNは、同じ粒子中に異なる物理化学的特性を有する複数の薬物をカプセル化する能力を有することができる。
実施例5
フェニル−exMSNのフェニル基濃度
フェニル‐MSN‐PEG+TAおよびフェニル‐exMSN‐PEG+TA合成過程では、異なるモル比のTEOSおよびTMPSを、細孔の表面修飾を調節するための反応に使用した。MSNおよびexMSNナノ粒子の内面上のフェニル官能基を定量するために、フェニル−MSN粒子の元素組成を元素分析器によって測定した。粒子1mg当たりのフェニル基の数は、フェニル−MSNおよびフェニル−exMSN粒子の炭素の質量パーセントに由来する。元素分析から得られたフェニル(29:1)、(21:1)および(11:1)‐MSNのフェニル基の数はそれぞれ約6.68×1017、7.9×1017、1.03×1018(分子/mg)であり、元素分析から得られたフェニル(16:1)、(11:1)および(5:1)exMSNのフェニル基の数は、それぞれ約8.08×1017、1.04c1018、1.62×1018(分子/mg)である。サンプル液の粒子濃度(数/mg)は、ナノ粒子追跡分析によって測定した。フェニル(29:1),(21:1),(11:1)−MSNの濃度はそれぞれ2.29x1012,2.27×1012,3.02×1012(粒子/mg)であり、また、フェニル(16:1),(11:1),(5:1)−exMSNの濃度はそれぞれ2.98×1012,3.97×1012,4.44×1012(粒子/mg)である。結果から、フェニル(29:1)、(21:1)、(11:1)‐MSNの各ナノ粒子上のフェニル基の量はそれぞれ、2.92×105、2.85×105、3.41×105(フェニルの数/粒子)であり、フェニル(16:1)、(11:1)、(5:1)‐exMSNの各ナノ粒子上のフェニル基の量は、それぞれ、2.71×105、2.61×105、3.64×105(フェニルの数/粒子)である。
フェニル−exMSNのフェニル基濃度
フェニル‐MSN‐PEG+TAおよびフェニル‐exMSN‐PEG+TA合成過程では、異なるモル比のTEOSおよびTMPSを、細孔の表面修飾を調節するための反応に使用した。MSNおよびexMSNナノ粒子の内面上のフェニル官能基を定量するために、フェニル−MSN粒子の元素組成を元素分析器によって測定した。粒子1mg当たりのフェニル基の数は、フェニル−MSNおよびフェニル−exMSN粒子の炭素の質量パーセントに由来する。元素分析から得られたフェニル(29:1)、(21:1)および(11:1)‐MSNのフェニル基の数はそれぞれ約6.68×1017、7.9×1017、1.03×1018(分子/mg)であり、元素分析から得られたフェニル(16:1)、(11:1)および(5:1)exMSNのフェニル基の数は、それぞれ約8.08×1017、1.04c1018、1.62×1018(分子/mg)である。サンプル液の粒子濃度(数/mg)は、ナノ粒子追跡分析によって測定した。フェニル(29:1),(21:1),(11:1)−MSNの濃度はそれぞれ2.29x1012,2.27×1012,3.02×1012(粒子/mg)であり、また、フェニル(16:1),(11:1),(5:1)−exMSNの濃度はそれぞれ2.98×1012,3.97×1012,4.44×1012(粒子/mg)である。結果から、フェニル(29:1)、(21:1)、(11:1)‐MSNの各ナノ粒子上のフェニル基の量はそれぞれ、2.92×105、2.85×105、3.41×105(フェニルの数/粒子)であり、フェニル(16:1)、(11:1)、(5:1)‐exMSNの各ナノ粒子上のフェニル基の量は、それぞれ、2.71×105、2.61×105、3.64×105(フェニルの数/粒子)である。
実施例6
exMSNによるJM17とDox共送達のIn−vitro相乗効果
薬物組合せ投与量比の決定方法によると、JM17:Doxの比範囲(1:0.4〜1:0.6)はDox耐性がん細胞(MCF‐7/ADR)の抑制に対してより高い相乗効果を示した。したがって、exMSNによってカプセル化された特定のJM17:Dox用量比を合成し、粒子の相乗的細胞毒性効果を評価した。増殖アッセイのために、ウェルあたり5×104のMCF7/ADR細胞を24ウェルプレートに播種した。種々の濃度の(1)フェニル−exMSN−PEG+TA(NTT2_131)、(2)DOX@フェニル−exMSN−PEG+TA(Dox@NTT2_131)、(3)JM17@フェニル−exMSN−PEG+TA(JM17@NTT2_131)および(4)JM17+DOX@フェニル−exMSN−PEG+TA(JM17/Dox@NTT2_131)を含む4つの群を細胞と共にインキュベートした。JM17/Dox@NTT2_131処置群は、MCF−7/ADRがん細胞の効率的な阻害を示した;ナノ粒子によるJM17およびDox共送達がインビトロで良好な相乗効果を示し得ることが明らかにされた。結果を図1に示す。
exMSNによるJM17とDox共送達のIn−vitro相乗効果
薬物組合せ投与量比の決定方法によると、JM17:Doxの比範囲(1:0.4〜1:0.6)はDox耐性がん細胞(MCF‐7/ADR)の抑制に対してより高い相乗効果を示した。したがって、exMSNによってカプセル化された特定のJM17:Dox用量比を合成し、粒子の相乗的細胞毒性効果を評価した。増殖アッセイのために、ウェルあたり5×104のMCF7/ADR細胞を24ウェルプレートに播種した。種々の濃度の(1)フェニル−exMSN−PEG+TA(NTT2_131)、(2)DOX@フェニル−exMSN−PEG+TA(Dox@NTT2_131)、(3)JM17@フェニル−exMSN−PEG+TA(JM17@NTT2_131)および(4)JM17+DOX@フェニル−exMSN−PEG+TA(JM17/Dox@NTT2_131)を含む4つの群を細胞と共にインキュベートした。JM17/Dox@NTT2_131処置群は、MCF−7/ADRがん細胞の効率的な阻害を示した;ナノ粒子によるJM17およびDox共送達がインビトロで良好な相乗効果を示し得ることが明らかにされた。結果を図1に示す。
実施例7
In vivo抗MCF7/ADR腫瘍効果
雌BALB/cヌードマウスを6群(n=5〜6)に無作為に割りあてた:(1)対照、(2)DOX、(3)JM17+DOX(溶液形態)、(4)JM17+DOX@NTT2_131、(5)JM17+DOX@NTT2_131(半用量)、および(6)NTT2_131(粒子のみ)。(1)〜(4)群はDoxとJM17の用量が同じであった。25μLのPBSおよび25μLのマトリゲルマトリックス中の5×106のMCF−7/ADR細胞(Dox耐性乳がん細胞)を、BALB/cヌードマウスの左側腹部に皮下異種移植した。腫瘍増殖を約1ヵ月間(大きさ〜50mm3)継続した後、0、4および8日目に全群に静脈内注射し、12、16および20日目に半用量群にさらに3回注射した。マウスの体重と腫瘍体積を週2回測定した。結果によると、JM17とDox共送達は抗腫瘍効果において相乗効果を示した。JM17/Dox@NTT2_131(半用量)群は、JM17+Dox(溶液形態)群と同等の抗腫瘍効果および毒性が低く;さらにJM17/Dox@NTT2_131群(通常用量)が最も高い抗腫瘍効果を示した(図2)。この結果は、ナノ粒子が遊離薬物(溶液形態)の組合せと比較して、多剤同時送達のためのいくつかの利点を提供することができることを実証した:(1)ナノ粒子が疎水性および親水性薬物を同時に送達し、単一のナノ粒子において最適化された相乗効果薬物比率を維持することができる、(2)ナノ粒子が循環時間を延長し、薬物の腫瘍ターゲティング能力を増強することができる、および(3)多剤を標的細胞中に同時に送達することで、薬物カプセル化ナノ粒子が薬物間の薬物動態学的差異を正常化することができるなど。ナノ粒子製剤のこれらの利点は、抗腫瘍効力に対する組合せ薬物の相乗効果を増強するのであろう。
In vivo抗MCF7/ADR腫瘍効果
雌BALB/cヌードマウスを6群(n=5〜6)に無作為に割りあてた:(1)対照、(2)DOX、(3)JM17+DOX(溶液形態)、(4)JM17+DOX@NTT2_131、(5)JM17+DOX@NTT2_131(半用量)、および(6)NTT2_131(粒子のみ)。(1)〜(4)群はDoxとJM17の用量が同じであった。25μLのPBSおよび25μLのマトリゲルマトリックス中の5×106のMCF−7/ADR細胞(Dox耐性乳がん細胞)を、BALB/cヌードマウスの左側腹部に皮下異種移植した。腫瘍増殖を約1ヵ月間(大きさ〜50mm3)継続した後、0、4および8日目に全群に静脈内注射し、12、16および20日目に半用量群にさらに3回注射した。マウスの体重と腫瘍体積を週2回測定した。結果によると、JM17とDox共送達は抗腫瘍効果において相乗効果を示した。JM17/Dox@NTT2_131(半用量)群は、JM17+Dox(溶液形態)群と同等の抗腫瘍効果および毒性が低く;さらにJM17/Dox@NTT2_131群(通常用量)が最も高い抗腫瘍効果を示した(図2)。この結果は、ナノ粒子が遊離薬物(溶液形態)の組合せと比較して、多剤同時送達のためのいくつかの利点を提供することができることを実証した:(1)ナノ粒子が疎水性および親水性薬物を同時に送達し、単一のナノ粒子において最適化された相乗効果薬物比率を維持することができる、(2)ナノ粒子が循環時間を延長し、薬物の腫瘍ターゲティング能力を増強することができる、および(3)多剤を標的細胞中に同時に送達することで、薬物カプセル化ナノ粒子が薬物間の薬物動態学的差異を正常化することができるなど。ナノ粒子製剤のこれらの利点は、抗腫瘍効力に対する組合せ薬物の相乗効果を増強するのであろう。
実施例8
フェニル−exMSN−PEG+TA粒子の血液脳関門透過能
治療薬の脳内への送達は、血液脳関門(BBB)のため、依然として大きな課題である。100nm未満のナノ粒子は、BBBを横切る薬物輸送を改善する利点を提供する。表面上の正に荷電したTA分子で修飾された30nmのフェニル−exMSNは、BBBを横切る電位を有し得る。ナノ粒子in vivoのBBB浸透能力を理解するために、本発明者らは、マウスの脳の血管におけるナノ粒子の分布をモニターするために2光子蛍光分光法を使用した。蛍光標識ナノ粒子を尾静脈を通して投与した。注射の2日後に、本発明者らは、表面から0〜300μmの深さ内に位置する脳血管を検出した。一方、血管拡張をマッピングし、血管壁の境界を明らかにするために、FITC−デキストランをIVを通して注入した。ナノ粒子からの蛍光信号がFITC−デキストランの信号(緑色の信号)と重なった場合、黄色の信号(場合によっては赤色になる)として現れ、ナノ粒子が血管内に存在せず、BBBを越えて脳組織に入ってきた可能性があることを意味する。脳血管の3D画像は、血管壁および脳組織領域に分布したフェニル−exMSN−PEG+TAナノ粒子からの多数の赤色シグナルを示した。結果は、30nmのフェニル−exMSN−PEG+TAがBBBを脳組織に横切る可能性を示すことを示した。
フェニル−exMSN−PEG+TA粒子の血液脳関門透過能
治療薬の脳内への送達は、血液脳関門(BBB)のため、依然として大きな課題である。100nm未満のナノ粒子は、BBBを横切る薬物輸送を改善する利点を提供する。表面上の正に荷電したTA分子で修飾された30nmのフェニル−exMSNは、BBBを横切る電位を有し得る。ナノ粒子in vivoのBBB浸透能力を理解するために、本発明者らは、マウスの脳の血管におけるナノ粒子の分布をモニターするために2光子蛍光分光法を使用した。蛍光標識ナノ粒子を尾静脈を通して投与した。注射の2日後に、本発明者らは、表面から0〜300μmの深さ内に位置する脳血管を検出した。一方、血管拡張をマッピングし、血管壁の境界を明らかにするために、FITC−デキストランをIVを通して注入した。ナノ粒子からの蛍光信号がFITC−デキストランの信号(緑色の信号)と重なった場合、黄色の信号(場合によっては赤色になる)として現れ、ナノ粒子が血管内に存在せず、BBBを越えて脳組織に入ってきた可能性があることを意味する。脳血管の3D画像は、血管壁および脳組織領域に分布したフェニル−exMSN−PEG+TAナノ粒子からの多数の赤色シグナルを示した。結果は、30nmのフェニル−exMSN−PEG+TAがBBBを脳組織に横切る可能性を示すことを示した。
本発明の当業者は、本出願の趣旨および範囲から逸脱することなく、本発明の教示および開示に対して変形および修正を行うことができることを理解すべきである。上記の内容に基づいて、本出願は、その変更または修飾が添付の特許請求の範囲またはそれらの等価物に定義される範囲内に入ることを条件として、そのあらゆる変更および修飾を対象とすることを意図している。
Claims (21)
- メソポーラスシリカナノ粒子であって、その細孔の表面に有機修飾を含み、100nm以下の粒子サイズおよび150nm以下の動的光散乱(DLS)によって測定される媒体中の流体力学的サイズを有し、有機修飾が少なくとも1つの末端ヒドロカルビル部分を含み、前記媒体がリン酸緩衝生理食塩水(PBS)と生物学的に類似または同等であることを特徴とする、メソポーラスシリカナノ粒子。
- 前記メソポーラスシリカナノ粒子の細孔サイズが50nm以下である、請求項1に記載のメソポーラスシリカナノ粒子。
- 前記メソポーラスシリカナノ粒子の流体力学的サイズが100nm以下である、請求項1に記載のメソポーラスシリカナノ粒子。
- 末端ヒドロカルビル部分が末端芳香族部分、末端脂肪族部分またはそれらの組合せを含む、請求項1に記載のメソポーラスシリカナノ粒子。
- 末端芳香族部分が、トリメトキシフェニルシラン(TMPS)、トリエトキシフェニルシラン、ジフェニルジエトキシシラン、1−ナフチルトリメトキシシラン、2−ヒドロキシ−4−(3−トリエトキシシリルプロポキシ)ジフェニルケトン、O−4−メチルクマリニル−N−[3(トリエトキシシリル)プロピル]カルバメート、7−トリエトキシシリルプロポキシ−5−ヒドロキシフラボン、3−カルバゾリルプロピルトリエトキシシラン、ビス(2−ジフェニルホスフィノエチル)メチルシリルエチルトリエトキシシランおよび2−(ジフェニルホスフィノ)エチルトリエトキシシランからなる群から選択されるシラン源から誘導される、請求項4に記載のメソポーラスシリカナノ粒子。
- 末端脂肪族部分が、プロピルトリエトキシシラン、n−ブチルトリエトキシシラン、ペンチルトリエトキシシラン、ヘキシルトリエトキシシラン、ヘプチルトリエトキシシラン、オクチルトリエトキシシラン、ノニルトリエトキシシラン、デシルトリエトキシシラン、ウンデシルトリエトキシシラン、ドデシルトリエトキシシラン、シクロプロピルトリエトキシシラン、シクロブチルトリエトキシシラン、シクロペンチルトリエトキシシラン、シクロヘキシルトリエトキシシラン、シクロヘプチルトリエトキシシラン、シクロオクチルトリエトキシシラン、プロピルトリメトキシシラン、n−ブチルトリメトキシシラン、ペンチルトリメトキシシラン、ヘキシルトリメトキシシラン、ヘプチルトリメトキシシラン、オクチルトリメトキシシラン、ノニルトリメトキシシラン、デシルトリメトキシシラン、ウンデシルトリメトキシシラン、ドデシルトリメトキシシラン、シクロプロピルトリメトキシシラン、シクロブチルトリメトキシシラン、シクロペンチルトリメトキシシラン、シクロヘキシルトリメトキシシラン、シクロヘプチルトリメトキシシランおよびシクロオクチルトリメトキシシランからなる群から選択されるシラン源に由来する請求項4のメソポーラスシリカナノ粒子。
- 粒子当たりの末端ヒドロカルビル部分の量が1×106分子/粒子未満である、請求項1に記載のメソポーラスシリカナノ粒子。
- 細孔内に負荷された少なくとも1つの疎水性生物活性成分または少なくとも1つの親水性生物活性成分をさらに含む、請求項1に記載のメソポーラスシリカナノ粒子。
- 疎水性生物活性成分が、小分子、化学薬物、酵素、タンパク質薬物、抗体、ワクチン、抗生物質、ヌクレオチド薬物またはそれらの組合せである、請求項8に記載のメソポーラスシリカナノ粒子。
- 細孔内に負荷された少なくとも1つの親水性または疎水性生物活性成分をさらに含む、請求項8に記載のメソポーラスシリカナノ粒子。
- 生物活性成分が相乗効果を有する、請求項10のメソポーラスシリカナノ粒子。
- (1)請求項1のメソポーラスシリカナノ粒子の細孔内に生物活性成分を負荷すること、および
(2)(1)に記載のメソポーラスシリカナノ粒子を対象に投与することを含む、生物活性成分を対象に送達するための方法。 - メソポーラスシリカナノ粒子が血液脳関門を透過するように送達される、請求項12に記載の方法。
- メソポーラスシリカナノ粒子が血液眼球関門を透過するように送達される、請求項12に記載の方法。
- 細孔上に内面有機修飾を有するメソポーラスシリカナノ粒子(MSN)の製造法であって、
(a)界面活性剤を含有するアルカリ性溶液を提供してミセルを形成する工程、
(b)第1のシリカ源と、末端ヒドロカルビル部分を提供する第2のシリカ源とを前記溶液に添加し、第1のシリカ源と第2のシリカ源とのモル比が5:1以上である工程、
(c)前記溶液に水熱処理を実施する工程、および
(d)前記溶液からMSNを抽出し、場合によっては精製する工程
を含む方法。 - 前記方法が以下の工程の少なくとも1つをさらに含む、請求項15に記載の方法。
(e)工程(a)の後かつ工程(b)の前に、細孔拡張のために、前記溶液に油相を導入する工程、
(f)工程(b)の後にさらなるシリカ源を添加する工程、および
(g)前記MSNの外面の表面修飾を行う工程であって、前記表面修飾は工程(b)の後に、または工程(f)が行われる場合には工程(f)の後に行われる工程。 - 前記界面活性剤が、カチオン性界面活性剤、アニオン性界面活性剤、非イオン性界面活性剤、またはそれらの任意の組合せである、請求項15に記載の方法。
- 前記第1のシラン源が、テトラエトキシシラン(TEOS)、テトラメトキシシラン(TMOS)、ケイ酸ナトリウムまたはそれらの混合物を含む、請求項15に記載の方法。
- 第2のシラン源が、トリメトキシフェニルシラン(TMPS)、トリエトキシフェニルシラン(TEPS)、ジフェニルジエトキシシラン、1−ナフチルトリメトキシシラン、2−ヒドロキシ−4−(3−トリエトキシシリルプロポキシ)ジフェニルケトン、O−4−メチルクマリニル−N−[3(トリエトキシシリル)プロピル]カルバメート、7−トリエトキシシリルプロポキシ−5−ヒドロキシフラボン、3−カルバゾリルプロピルトリエトキシシラン、ビス(2−ジフェニルホスフィノエチル)メチルシリルエチルトリエトキシシラン、2−(ジフェニルホスフィノ)エチルトリエトキシシラン、プロピルトリエトキシシラン、n−ブチルトリエトキシシラン、ペンチルトリエトキシシラン、ヘキシルトリエトキシシラン、ヘプチルトリエトキシシラン、オクチルトリエトキシシラン、ノニルトリエトキシシラン、デシルトリエトキシシラン、ウンデシルトリエトキシシラン、ドデシルトリエトキシシラン、シクロプロピルトリエトキシシラン、シクロブチルトリエトキシシラン、シクロペンチルトリエトキシシラン、シクロヘキシルトリエトキシシラン、シクロヘプチルトリエトキシシラン、シクロオクチルトリエトキシシラン、プロピルトリメトキシシラン、n−ブチルトリメトキシシラン、ペンチルトリメトキシシラン、ヘキシルトリメトキシシラン、ヘプチルトリメトキシシラン、オクチルトリメトキシシラン、ノニルトリメトキシシラン、デシルトリメトキシシラン、ウンデシルトリメトキシシラン、ドデシルトリメトキシシラン、シクロプロピルトリメトキシシラン、シクロブチルトリメトキシシラン、シクロペンチルトリメトキシシラン、シクロヘキシルトリメトキシシラン、シクロヘプチルトリメトキシシランおよびシクロオクチルトリメトキシシランからなる群から選択される、請求項15に記載の方法。
- 工程(e)に記載の油相が、置換または非置換(シクロ)アルカン、置換または非置換芳香族溶媒またはそれらの組合せを含む、請求項15に記載の方法。
- 請求項15〜20のいずれか一項に記載の方法によって調製される、メソポーラスシリカナノ粒子。
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