JP2020532316A - 局所用組成物及び使用 - Google Patents
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Abstract
Description
用語「1つ(a)」又は「1つ(an)」の実体は、その実体の1つ又は複数を指すことに留意されたい。例えば、「1つの抗体(an antibody)」は、1つ又は複数の抗体を表すと理解される。従って、用語「1つ(a)」(又は「1つ(an)」)、「1つ又は複数」、及び「少なくとも1つ」は、本明細書において互換的に使用することができる。
BoNTタンパク質の経皮送達は、市場で必要とされている。タンパク質の経皮送達は本質的に困難であり、特に皮膚の通過が困難である。皮膚は、表皮及び真皮として知られる細胞の2つの層で構成される。皮膚の最上層である表皮は、基底と分化したケラチノサイトとで構成される層状の扁平上皮である。ケラチノサイトは、表皮の主要な細胞型である。基底層のケラチノサイトは、有糸分裂を通じて増殖し、複数の細胞分化段階を経て、無核細胞になる。無核又は分化したケラチノサイトは、高度に組織化された組織構造であり、病原体等の侵入物質に対する保護バリアを提供するケラチンタンパク質及び脂質を分泌する。
本明細書で説明するように、本発明のジンクフィンガーモチーフ含有キメラ(融合)ポリペプチドは、効果的に経皮送達することができる。従って、キメラポリペプチドは、融合した治療用タンパク質に応じて、治療用途を有する。
本発明はまた、医薬品組成物を提供する。そのような組成物は、有効量のキメラポリペプチド及び許容可能な担体を含む。
現在、ラット指外転スコア(DAS)アッセイは、BoNT誘導性骨格筋麻痺の評価のための主要な生理学的モデルである。このアッセイは、完全に客観的ではなく、誤差が生じやすい。いくつかの実施形態において、本発明は、動物のBoNT誘導性骨格筋麻痺を定量的に測定するための新しい方法を説明する。
この実験は、BoNTA−CPP(細胞浸透性ペプチド)融合タンパク質を大腸菌細胞から発現及び精製できることを示している。
タンパク質発現
異なるBoNTA構築物を含むpET28bベクター(タンパク質番号1〜8、図1)を、BL21(DE3)大腸菌細胞に形質転換した。これらの構築物の配列は、配列番号10−17に示す。His6:ヒスチジンタグ;BoNTA−LC:BoNT A軽鎖;BoNTA−HC:BoNT A重鎖;ZFP2:タンデムジンクフィンガーペプチド(配列番号1);TAT:転写ペプチドの転写活性化因子;Pep−1:pep−1ペプチド。TAT及びPep−1は、細胞浸透性ペプチド(CPP)として知られている。
2リットルの培養物からの細胞ペレット(約30グラム)を200mLのBoNTA溶解バッファー(20mM HEPES、pH7.0、500μM NaCl、0.01%Triton X−100、1×プロテアーゼ混合物(ロシュ)、及び10%グリセロール)に再懸濁し、氷上で3回超音波分解した。溶解した細胞を、25,000gで1時間、4°Cで遠心分離し、上清を新しいチューブに移した。この上清に1mL(沈定体積((settled volume))の平衡Ni−NTA樹脂(Qiagen)を添加した。His6タグを含むBoNTAタンパク質を、30分間回転させて樹脂と結合させた。樹脂をカラムに移し、フロースルーは廃棄した。樹脂を50mLのBoNTA洗浄バッファー(20mM HEPES、pH7.0、500mM NaCl及び10%グリセロール、20mMイミダゾール)で洗浄し、次いで、50mLのBoNTA溶出バッファー(20mM HEPES、pH7.0、500mM NaCl及び10%グリセロール、300mMイミダゾール)で溶出した。次いで、溶出画分を濃縮した後、開始バッファー(20mM TrisHCl、pH8.5)及び終了バッファー(20mM TrisHCl、pH8.5、1M NaCl)を用いてイオン交換により更に精製した。最適な純度の画分を再度合わせ、スピン濃縮により濃縮し、10%グリセロールを添加した後、更なる使用のために−80℃で保存した。
ワンステップアフィニティー精製では、ごく低純度(only modest purity)のタンパク質を得た。第2段階のイオン交換後、純度が大幅に向上した。総収量は、1リットルの培養当たり0.1mgと推定され、最終産物の純度は90%だった(図2パネルA−B)。驚くべきことに、ZFPを用いた融合タンパク質は、細胞浸透性ペプチドを用いた融合よりも高いタンパク質発現及び精製をもたらした(TAT及びPep−1、図2、パネルA)。
この実験は、発現BoNTA−CPP融合タンパク質がBoNT基質SNAP−25に対して活性を有することを示している。
SNAPtide(ミリポア、Cat.No.567333−200NMOL)を、反応バッファー(20mM、pH7.4、0.25mM ZnCl2、5mM DTT、0.05%Tween−20)で5μMに希釈した。各組み換えBoNTA−ZFP融合タンパク質(200nM;タンパク質番号1〜8)を、SNAPtideを含む反応バッファーに添加した。反応は、37°Cで40分間インキュベートした。蛍光を、プレートリーダーを用いて励起波長320nm及び発光波長420nmで記録した。SNAPtideは、BoNTAの細胞内基質であるSNAP−25に由来する短いペプチドだった。SNAPtideは、BoNTAの切断部位、並びに蛍光色素基及び消光基の両方を含んでいた。ペプチドの切断により、蛍光色素が遊離し、蛍光が活性化される。反応ポジティブコントロールは、R&Dシステムズから購入した市販の組み換えBoNTA軽鎖(BoNTA−LC)タンパク質(Cat.No.4489−ZN−010)とした。全てのデータについて、3回再現した。
図3のデータは、平均±標準偏差で示され、片側スチューデントのt検定により分析されている。市販のBoNTA−LCを含めた全ての試験サンプルが、SNAPtideコントロール群よりも有意に(p<0.05)高いシグナルを有している。図3に示すように、ZFPのシングル末端及び2要素融合は、どちらも、SNAP−25由来のペプチド基質に対するBoNTAの活性を保持した。
この実験は、選択したBoNTA−ZFP融合タンパク質が、ヒトの皮膚線維芽細胞(hDF)を効果的に透過できることを示している。
hDF細胞を、ポリリジンでコーティングされた6ウェルプレートに播種した。播種から24時間後に、細胞をリン酸緩衝生理食塩水(PBS)で3回洗浄した。BoNTA−ZFPタンパク質(タンパク質番号5及び6)及びコントロールタンパク質(R&D BoNTA−LC、R&Dシステムズの市販のBoNTA軽鎖)を、DMEM無血清培地で希釈した。細胞を、BoNTA−ZFPタンパク質(0.15μM)及びBoNTA−LC(0.5μM)で37°Cで2時間処理した。次いで、細胞を0.5mg/mLのヘパリンを添加したPBSで3回洗浄して表面結合タンパク質を除去した後、トリプシン処理で採取した。収集した細胞を超音波分解により溶解し、BoNTA活性を上記のように分析した。
図4に示すデータは、平均±標準偏差で示され、片側スチューデントのt検定により分析されている。BoNTA−ZFPタンパク質(タンパク質番号5及び6)で処置したhDF細胞は、コントロール群よりも有意に高いシグナル(p<0.05)で明らかなBoNTA活性を示した。これは、BoNTA−ZFPタンパク質が細胞を効果的に透過できることを示している。
この実験は、無傷の又は極微針で処理したマウスの皮膚に適用した場合に、BoNTA−ZFP融合タンパク質が、指外転を特徴とする筋肉麻痺を引き起こすことを示している。
体重約36gの15匹のC57雌マウスを、ランダムに5つの群に分けた(n==3)。全てのマウスにおいて、左脚はコントロールとして処置せず、右脚を異なる薬物で処置した。処置前にマウスに麻酔をかけた。mock群(A)では、マウスに保存バッファー(20mM HEPES、pH7.0、300mM NaCl及び10%グリセロール)を投与した。BOTOX(アラガン)注射群(B)では、BOTOXを指示通りに0.9%NaCl生理食塩水で再構成し、5μLの45U/mL溶液を右脚に注射した。群Cでは、マウスの脚及び足を極微針ローラー(RoHS MR20、0.2mm、ハウス使用)で前処置した後、60μLの45U/mL BOTOXを局所適用した。群Dでは、マウスの脚及び足を極微針ローラー(RoHS MR20、0.2mm、ハウス使用)で前処置した後、保存バッファー(20mM HEPES、pH7.0、300mM NaCl及び10%グリセロール)中のBoNTA−ZFPタンパク質(タンパク質番号6)0.05mg/mLを60μL、局所適用した。群Eでは、保存バッファー(20mM HEPES、pH7.0、300mM NaCl及び10%グリセロール)中のBoNTA−ZFPタンパク質0.05mg/mLを60μL、局所適用した。極微針ローラー処置は、脚及び足を3回ローリングすることにより適用した。局所適用の場合は、脚及び足に薬物を均一に広げ、マッサージした後、風乾した。これを、全ての溶液が投与されるまで数回繰り返した。指外転は、0日目にマウスが目覚めた後、記録し、その後、続く4日間、毎日記録した。
注射BOTOXと、極微針による前処置を伴うBoNTA−ZFPは、どちらも、コントロール群Aよりも有意に高いスコア(p<0.05;スチューデントのt検定)で、注目すべき指外転を示した(図5)。BoNTA−ZFPの直接適用は、最小限の効果だった。指外転スコア(DAS)は、3人の別の研究者により盲検で評価した。DASは、2日目でピーク値に達した(図6)。従って、この実施例は、マウスの皮膚に適用した場合、細胞透過性BoNTA−ZFPは、NAP−25切断のin vivo活性を示す筋肉麻痺を引き起こすことを示している。
この実験は、BoNTA−ZFP融合タンパク質を昆虫細胞で高収率で発現できることを示している。天然のBoNTがバクテリアのクロストリジウム属ボツリヌス菌(原核生物)から産生されることを考慮すると、昆虫細胞(真核生物)からのBoNTAの大量産生は実に驚くべきことである。
タンパク質番号6(配列番号15)を含むpFastBacベクターを、バキュロウイルス(BV)にパッケージ化した。タンパク質番号6の組み換えタンパク質を含むBVを用いて、ヨトウガSf9昆虫細胞を感染させた。細胞生存率が60%未満となったとき、細胞を収穫した。約1mLの培養物を遠心分離して、細胞を収集した。これらの細胞を1mLのPBS緩衝液に再懸濁し、超音波分解した。約10μLの細胞溶解物をSDS−PAGEで分離した。タンパク質を抗His抗体を用いて検出し、画像化した。
可溶性BoNTA−ZFは、総タンパク質のほぼ100%に近い(図7)。タンパク質の量は、ローディングコントロール(5μgタンパク質)と比較して1μgであると定量した(図7)。従って、発現収量は、1リットルの培養物当たり100mgであると計算される。
方法
種々の用量のBoNTA−ZFPを、ハミルトン注射器を用いて、右腓腹筋に筋肉内注射した。筋肉麻痺を、実施例4で説明したようにモニターした。
BoNTA−ZFP(タンパク質番号6)の1又は3ngの筋肉内注射により、明らかな指外転がもたらされた。全てのマウスでスコア4に到達した(各群n=3)。
この実施例では、薬剤の筋肉麻痺作用を測定する方法を試験する。自発的な実施中の研究と比較して、この方法は、細胞浸透性BoNTA−ZFPの筋肉麻痺作用を客観的に反映することができる。
BoNTA−ZFPを、実施例4で説明したように、CJ57雌マウスに局所適用した。マウスに、以下の一連の角度及び速度の設定を受けさせた:0°/5m/分、3°/8m/分、6°/11m/分、9°/14m/分、12°/17m/分、12°/20m/分。マウスを各ステップで5分間維持した。合計距離を計測した。
Botox注射又は局所BoNTA−ZFPで処置したマウスは、緩衝生理食塩水の場合と比較して、トレッドミル実験で運動能力の低下を示した(図8)。
この実施例では、薬剤の筋肉麻痺作用を測定する別の方法を試験する。
BoNTA−ZFPを、実施例4で説明したように、CJ57雌マウスに局所適用した。マウスに平均台実験を受けさせた。マウスが平均台を通過する時間を計測した。
Botox注射又は局所BoNTA−ZFPで処置したマウスは、緩衝生理食塩水の場合と比較して、平均台実験で運動能力の低下を示した(図9)。
この実施例では、薬剤の筋肉麻痺作用を測定する別の方法を試験する。
BoNTA−ZFPを、実施例4で説明したように、CJ57雌マウスに局所適用した。マウスに足跡分析実験を受けさせた。足跡の幅を記録した。
Claims (42)
- (a)ボツリヌス毒素(BoNT)軽鎖と、(b)前記BoNT軽鎖のC末端に位置するか、又は前記BoNT重鎖のC末端に位置する第1のジンクフィンガーモチーフとを含み、前記BoNT重鎖は、前記BoNT軽鎖のC末端に位置するか、又は前記BoNT軽鎖にジスルフィド結合を介して結合している、キメラポリペプチド。
- 2000個以下のアミノ酸残基を含む、請求項1に記載のキメラポリペプチド。
- 前記BoNT軽鎖と前記第1のジンクフィンガーモチーフとが、同じペプチド鎖上にある、請求項1又は2に記載のキメラポリペプチド。
- 前記BoNT軽鎖と前記第1のジンクフィンガーモチーフとが、異なるペプチド鎖上にある、請求項1又は2に記載のキメラポリペプチド。
- 前記BoNT軽鎖又は前記BoNT重鎖のC末端に位置する更に1つのジンクフィンガーモチーフを含む、請求項1〜4のいずれか一項に記載のキメラポリペプチド。
- 前記BoNT軽鎖又は前記BoNT重鎖のC末端に位置する更に2つのジンクフィンガーモチーフを含む、請求項1〜5のいずれか一項に記載のキメラポリペプチド。
- 前記ジンクフィンガーモチーフが、直接又はペプチドリンカーを介して連結している、請求項5又は6に記載のキメラポリペプチド。
- 前記BoNT軽鎖のN末端に位置する第2のジンクフィンガーモチーフを更に含む、請求項1〜7のいずれか一項に記載のキメラポリペプチド。
- 前記BoNT軽鎖のN末端に位置する更に1つ又は2つのジンクフィンガーモチーフを更に含む、請求項8に記載のキメラポリペプチド。
- 前記ジンクフィンガーモチーフの少なくとも1つが、Cys2−His2ジンクフィンガーモチーフである、請求項1〜9のいずれか一項に記載のキメラポリペプチド。
- 前記ジンクフィンガーモチーフが、前記ジンクフィンガーモチーフのアルファ−ヘリカルフラグメントの残基1、2、3、又は6に少なくとも1つのアラニンを含む、請求項10に記載のキメラポリペプチド。
- 前記ジンクフィンガーモチーフの少なくとも1つが、配列番号1及び5〜7からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1〜11のいずれか一項に記載のキメラポリペプチド。
- 前記ジンクフィンガーモチーフが、配列番号1のアミノ酸配列を含む、請求項12に記載のキメラポリペプチド。
- 前記第1のジンクフィンガーが、BoNT軽鎖又はBoNT重鎖のC末端から200アミノ酸残基以下離れている、請求項1〜13のいずれか一項に記載のキメラポリペプチド。
- (a)ボツリヌス毒素(BoNT)軽鎖と、前記BoNT軽鎖のN末端に位置する3つのジンクフィンガーモチーフとを含む第1の鎖と、(b)BoNT重鎖と、前記BoNT重鎖のC末端に位置する3つのジンクフィンガーモチーフとを含む第2の鎖とを含み、前記BoNT軽鎖がジスルフィド結合を介して前記BoNT軽鎖に結合している、二本鎖ポリペプチド。
- N末端からC末端に、3つのジンクフィンガーモチーフ、ボツリヌス毒素(BoNT)軽鎖、BoNT重鎖、及び更に3つのジンクフィンガーモチーフを含む、キメラポリペプチド。
- 前記BoNTが、BoNT A、B、C、D、E、F、若しくはG、又はそれらと少なくとも90%の配列同一性を有する変異体から選択される、請求項1〜16のいずれか一項に記載のキメラポリペプチド。
- 前記BoNTが、BoNTのサブタイプA1〜A10、B1〜B8、E1〜E9、及びF1〜F7から選択される、請求項17に記載のキメラポリペプチド。
- 前記BoNTが、BoNT Aである、請求項17に記載のキメラポリペプチド。
- 前記BoNT軽鎖が、配列番号8のアミノ酸配列又は配列番号8と少なくとも90%の配列同一性を有するアミノ配列を含む、請求項1〜19のいずれか一項に記載のポリペプチド。
- 前記BoNT重鎖が、配列番号9のアミノ酸配列又は配列番号9と少なくとも90%の配列同一性を有するアミノ配列を含む、請求項1〜20のいずれか一項に記載のポリペプチド。
- 配列番号10〜17からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む一本鎖ポリペプチド、又は前記アミノ酸配列から処理された二本鎖ポリペプチドを含む、請求項1〜21のいずれか一項に記載のポリペプチド。
- ボツリヌス毒素(BoNT)軽鎖と少なくとも1つのジンクフィンガーモチーフとを含む、キメラポリペプチド。
- 前記ジンクフィンガーモチーフが、前記BoNT軽鎖のC末端に位置し、且つ、前記BoNT軽鎖から200アミノ酸残基しか離れていない、請求項23に記載のキメラポリペプチド。
- 治療用ペプチドと、前記治療用ペプチドのC末端に位置する少なくとも1つのジンクフィンガーモチーフとを含み、前記ジンクフィンガーモチーフのN末端が、前記治療用ペプチドのC末端から100アミノ酸残基しか離れていない、キメラポリペプチド。
- 前記治療用ペプチドが、上皮成長因子(EGF)及びスーパーオキシド・ジスムターゼ(SOD)からなる群から選択される、請求項25に記載のキメラポリペプチド。
- 請求項1〜24のいずれか一項に記載のキメラポリペプチドを含む製剤を局所に又は筋肉内に適用することを含む、BoNT軽鎖を哺乳動物に投与する方法。
- 前記局所適用は、皮膚、又は眼、耳、鼻、口、唇、尿道口、肛門、若しくは舌の粘膜に対してである、請求項27に記載の方法。
- 前記局所適用は、破壊された皮膚の角質層に対してである、請求項27に記載の方法。
- 前記破壊が、前記製剤の送達に使用される針又は極微針を用いて行われる、請求項29に記載の方法。
- 前記局所適用は、哺乳動物の顔又は首の皮膚に対してである、請求項27〜30のいずれか一項に記載の方法。
- 前記製剤が、クリーム、ゲル、又はスプレーを含む、請求項27〜30のいずれか一項に記載の方法。
- 前記哺乳動物は、顔の皺、ジストニア、痙縮、片側顔面痙攣、多汗症、又は唾液分泌過多症の処置の必要がある、請求項27〜30のいずれか一項に記載の方法。
- 請求項1〜26のいずれか一項に記載のキメラポリペプチドをコードする、ポリヌクレオチド。
- 請求項34に記載のポリヌクレオチドを含む、細胞。
- 細菌細胞である、請求項35に記載の細胞。
- 前記細菌細胞が、ボツリヌス菌細胞である、請求項36に記載の細胞。
- 昆虫細胞である、請求項35に記載の細胞。
- 前記昆虫細胞が、スポドプテラ細胞である、請求項38に記載の細胞。
- 前記ポリヌクレオチドにコードされるタンパク質を発現する条件下で、請求項35〜39のいずれか一項に記載の細胞を培養することを含む、タンパク質を産生する方法。
- 請求項1〜26のいずれか一項に記載のキメラポリペプチド及び薬学的に適切な担体を含む、製剤。
- 薬剤を試験動物に投与し、前記試験動物をトレッドミル又は平均台の上に置き、移動距離、足跡の大きさ、又は前記平均台を渡る時間を測定することを含み、コントロールと比較した前記移動距離、前記足跡の大きさ、又は前記平均台を渡る時間が、筋肉麻痺に対する前記薬剤の作用を反映する、筋肉麻痺に対する薬剤の作用を試験する方法。
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