JP2020156336A - タンパク質細胞表層発現酵母 - Google Patents
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Abstract
Description
CCW12遺伝子、CCW14遺伝子、DAN1遺伝子、TIP1遺伝子、CWP1遺伝子、およびそれらに相当する遺伝子からなる群より選択される少なくとも1つの細胞壁関連遺伝子を保有する宿主酵母における少なくとも1つの該細胞壁関連遺伝子の機能を欠損しており、かつ
プロモーター、分泌シグナル配列、該タンパク質をコードするDNA、アンカードメインをコードするDNAおよびターミネーターを含むポリヌクレオチドが導入されている、
形質転換酵母を提供する。
CCW12遺伝子、CCW14遺伝子、DAN1遺伝子、TIP1遺伝子、CWP1遺伝子、およびそれらに相当する遺伝子からなる群より選択される少なくとも1つの細胞壁関連遺伝子を保有する宿主酵母における、該宿主酵母の少なくとも1つの該細胞壁関連遺伝子の機能を欠損させる工程、および
該宿主酵母に、プロモーター、分泌シグナル配列、該タンパク質をコードするDNA、アンカードメインをコードするDNAおよびターミネーターを含むポリヌクレオチドを導入する工程
を含む。
まず、本発明のタンパク質細胞表層発現酵母に採用される細胞表層提示方法について説明する。この細胞表層提示方法は、プロモーター、分泌シグナル配列、細胞表層に提示する目的のタンパク質(「目的タンパク質」)をコードするDNA、アンカードメインをコードするDNAおよびターミネーターを含むポリヌクレオチドを用いて行われる。
「アンカードメイン」とは、目的タンパク質を酵母の細胞表層に固定化するアンカー活性を有するドメインをいう。「アンカードメイン」としては、例えば、細胞表層局在タンパク質が用いられ得る。「細胞表層局在タンパク質」は、細胞表層に固定化または付着もしくは接着し、そこに局在するタンパク質をいう。細胞表層局在タンパク質としては、脂質で修飾されたタンパク質が知られており、この脂質が膜成分と共有結合することにより細胞膜に固定される。
「分泌シグナル配列」は、分泌シグナルペプチドをコードするDNAである。分泌シグナルペプチドは、ペリプラズムを含む細胞外に分泌される分泌性タンパク質のN末端に通常結合しているペプチドである。このペプチドは、生物間で類似した構造を有しており、例えば20個程度のアミノ酸からなり、N末端付近に塩基性アミノ酸配列を有し、その後に疎水性アミノ酸を多く含んでいる。分泌シグナルは、通常、分泌性タンパク質が細胞内から細胞膜を通過して細胞外へ分泌される際にシグナルペプチダーゼにより分解されることにより除去される。
目的タンパク質の種類、もしくはその起源は特に限定されない。目的タンパク質の種類として、例えば、酵素、抗体、リガンド、蛍光タンパク質などが挙げられる。酵素としては、例えば、セルロース分解酵素、デンプン分解酵素、グリコーゲン分解酵素、キシラン分解酵素、キチン分解酵素、脂質分解酵素などが挙げられ、より具体的には、例えば、エンドグルカナーゼ、セロビオヒドロラーゼ、およびβ−グルコシダーゼ、アミラーゼ(例えば、グルコアミラーゼおよびα−アミラーゼ)、リパーゼなどが挙げられる。
プロモーターは、プロモーター活性を有するDNAであり、「プロモーター活性」とは、プロモーター領域に転写因子が結合し、転写を惹起する活性をいう。プロモーターは、例えば、所望のプロモーター領域を保有する菌体、ファージなどから、制限酵素を用いて切り出し得る。必要に応じて制限酵素認識部位またはクローニングベクターとの重複部位を設けたプライマーを用い、PCRで所望のプロモーター領域を増幅することによりプロモーター領域のDNA断片を得ることができる。また、既に判明しているプロモーター領域の塩基配列情報をもとにして、所望のプロモーターを化学合成してもよい。目的の機能を果たすものであれば、プロモーターは、上記のように、1または2以上(例えば数個)のヌクレオチドが欠失、付加または置換などの変異された塩基配列を有するものであってもよい。このプロモーターを構成する塩基配列には、上記で説明した配列の同一性およびハイブリダイズ条件等が適用される。
ターミネーターは、ターミネーター活性を有するDNAであり、「ターミネーター活性」とは、ターミネーター領域において転写を終結させる活性をいう。ターミネーターは、例えば、所望のターミネーター領域を保有する菌体、ファージなどから、制限酵素を用いて切り出し得る。必要に応じて制限酵素認識部位またはクローニングベクターの挿入部位を設けたプライマーを用い、PCRで所望のターミネーター領域を増幅することによりターミネーター領域のDNA断片を得ることができる。また、既に判明しているターミネーター領域の塩基配列情報をもとにして、所望のターミネーターを化学合成してもよい。目的の機能を果たすものであれば、ターミネーターは、上記のように、1または2以上(例えば数個)のヌクレオチドが欠失、付加または置換などの変異された塩基配列を有するものであってもよい。このターミネーターを構成する塩基配列には、上記で説明した配列の同一性およびハイブリダイズ条件等が適用される。
本発明中において、「発現カセット」とは、目的タンパク質が発現し得るように、該目的タンパク質をコードするDNAと、その発現を調節するための種々の調節エレメントとが、宿主の微生物または細胞中で機能し得る状態で連結されているDNAまたはポリヌクレオチドをいう。ここで「機能し得る状態で連結されている」とは、目的タンパク質をコードするDNAが、プロモーターの制御下で、そして場合により他の調節エレメントの制御下で、発現されるように、発現カセットまたは発現ベクターに含まれる各構成要素が連結されていることを意味する。各構成要素は、目的タンパク質が発現し得る限りにおいて、それらの要素間にリンカーなどの配列をさらに含んで連結されていてもよい。
本発明の形質転換酵母は、上記1で説明した細胞表層提示方法を宿主酵母に適用することにより作製される。本発明の形質転換酵母は、目的のタンパク質を細胞表層にて発現して、その細胞表層に提示するため、「細胞表層発現酵母」または「細胞表層提示酵母」とも称することができる。
本発明によるセルロース分解酵素を細胞表層発現する酵母は、例えばエタノールの製造に用いられ得る。このような酵母は、例えば、エンドグルカナーゼ、セロビオヒドロラーゼ、およびβ−グルコシダーゼからなる群から選択される少なくとも1つの酵素を細胞表層提示する酵母(本明細書中、「セルラーゼ細胞表層提示酵母」ともいう)である。あるいは、このような酵母は、エンドグルカナーゼ、セロビオヒドロラーゼ、およびβ−グルコシダーゼからなる群から選択される2種の酵素;またはエンドグルカナーゼ、セロビオヒドロラーゼ、およびβ−グルコシダーゼを細胞表層提示する酵母であってもよい。
下記発現カセットX1を含むプラスミドを調製した:
X1:TEF1プロモーター+Cas9エンドヌクレアーゼ+CYC1ターミネーター
配列番号13:サッカロマイセス・セレビシエ由来のTEF1のプロモーターの塩基配列
配列番号14:ストレプトコッカス・パイロジェネス由来のCas9エンドヌクレアーゼをコードするDNAの塩基配列(両端にシミアンウイルス40由来の核移行シグナル(SV40 NLS)配列を含む)
配列番号15:ストレプトコッカス・パイロジェネス由来のCas9エンドヌクレアーゼのアミノ酸配列(両端にシミアンウイルス40由来の核移行シグナル(SV40 NLS)配列を含む)
配列番号16:サッカロマイセス・セレビシエ由来のCYC1のターミネーターの塩基配列
下記発現カセットX2〜X6をそれぞれ、または複数含むプラスミドを調製した:
X2:SNR52プロモーター+CCW12用gRNA+gRNAscafold+SUP4ターミネーター
X3:SNR52プロモーター+CCW14用gRNA+gRNAscafold+SUP4ターミネーター
X4:SNR52プロモーター+DAN1用gRNA+gRNAscafold+SUP4ターミネーター
X5:SNR52プロモーター+TIP1用gRNA+gRNAscafold+SUP4ターミネーター
X6:SNR52プロモーター+CWP1用gRNA+gRNAscafold+SUP4ターミネーター
配列番号23:サッカロマイセス・セレビシエ由来の核小体低分子RNA(snoRNA)遺伝子SNR52のプロモーターの塩基配列
配列番号24:CCW12用gRNAの塩基配列
配列番号25:CCW14用gRNAの塩基配列
配列番号26:DAN1用gRNAの塩基配列
配列番号27:TIP1用gRNAの塩基配列
配列番号28:CWP1用gRNA
配列番号29:gRNAscafoldの塩基配列
配列番号30:サッカロマイセス・セレビシエ由来のtRNA遺伝子SUP4のターミネーターの塩基配列
下記発現カセットX7およびX8をそれぞれ含むプラスミドを調製した:
X7:SED1プロモーター+SED1分泌シグナル+BGL1+SED1アンカードメイン+DIT1ターミネーター
X8:SED1プロモーター+SED1分泌シグナル+EGII+SED1アンカードメイン+DIT1ターミネーター
配列番号44:サッカロマイセス・セレビシエ由来のSED1の分泌シグナルペプチドをコードするDNAの塩基配列
配列番号45:サッカロマイセス・セレビシエ由来のSED1の分泌シグナルペプチドのアミノ酸配列
配列番号46:サッカロマイセス・セレビシエ由来のSED1のプロモーターの塩基配列
配列番号47:本発明の実施例においてSED1アンカードメインとして用いた、サッカロマイセス・セレビシエ由来のSED1アンカータンパク質のコーディング領域から開始コドンを除いた領域のDNAの塩基配列
配列番号48:本発明の実施例においてSED1アンカードメインとして用いた、サッカロマイセス・セレビシエ由来のSED1アンカータンパク質(但し開始メチオニンを含まない)のアミノ酸配列
配列番号49:アスペルギルス・アクレアタス由来β−グルコシダーゼ1(BGL1)をコードするDNAの塩基配列
配列番号50:アスペルギルス・アクレアタス由来β−グルコシダーゼ1(BGL1)のアミノ酸配列
配列番号51:トリコデルマ・リーセイ由来エンドグルカナーゼII(EGII)をコードするDNAの塩基配列
配列番号52:トリコデルマ・リーセイ由来エンドグルカナーゼII(EGII)のアミノ酸
配列番号53:サッカロマイセス・セレビシエ由来のDIT1のターミネーターの塩基配列
以下、本実施例で用いる遺伝子ノックアウト酵母のCRISPR-Cas9システムを介した調製手順について説明する。
以下、各種細胞表層発現酵母の調製手順について説明する。
調製例3に記載のプラスミドpIBG-SSSDをNdeIで処理し、それぞれ酵母サッカロマイセス・セレビシエBY4741株およびGPImutant株に供し、酢酸リチウム法により導入した。その後、SD培地(メチオニン、ロイシン、およびウラシルを補充)にて選択を行うことで、形質転換株を獲得した。これらの形質転換株をそれぞれBY-BG-SSSD株(BY4741株を宿主とするBGL細胞表層提示株)およびGPIm-BGSD株(5遺伝子ノックアウト株を宿主とするBGL細胞表層提示株)と称する。
調製例3に記載のプラスミドpIEG-SSSDをNdeIで処理し、それぞれ酵母サッカロマイセス・セレビシエBY4741株およびGPImutant株に供し、酢酸リチウム法により導入した。その後、SD培地(メチオニン、ロイシン、およびウラシルを補充)にて選択を行うことで、形質転換株を獲得した。これらの形質転換株をそれぞれBY-EG-SSSD株(BY4741株を宿主とするEG細胞表層提示形質転換株)およびGPIm-EGSD株(5遺伝子ノックアウト株を宿主とするEG細胞表層提示形質転換株)と称する。
調製例1に記載のプラスミドpCL-Cas9をBY-BG-SSSD株に供し、酢酸リチウム法により導入した。その後、SD培地(メチオニンおよびウラシルを補充)にて選択を行うことで、pCL-Cas9を保持する形質転換株を獲得した。次に、調製例2に記載のプラスミドp2gRNA-CCW12/CCW14と、CCW12およびCCW14遺伝子のコーディング領域とそれぞれ相同性を有し、かつ特定のアミノ酸コドンが終止コドンに置き換えられた配列を持つ2本鎖のオリゴDNA(配列番号58および59)を混合して上記の形質転換株に供し、酢酸リチウム法により導入した。その後、SD培地(メチオニンを補充)にて選択を行うことで、pCL-Cas9およびp2gRNA-CCW12/CCW14を保持する形質転換株を獲得した。得られた形質転換株のうち、シーケンス解析によりゲノム上のCCW12およびCCW14遺伝子の標的コドンがすべて終止コドンに置換されていることが確認できた株について、SD培地(メチオニン、ロイシン、およびウラシルを補充)にて数日間培養してプラスミドpCL-Cas9およびp2gRNA-CCW12/CCW14を菌体から脱落させた。その後、SD培地(メチオニンおよびロイシンを補充)およびSD培地(メチオニンおよびウラシルを補充)の両方において生育が見られないことが確認できた株を、CCW12およびCCW14遺伝子がノックアウトされた細胞表層発現酵母株として選択した。この株をccw12/ccw14-BGSD株と称する。
調製例1に記載のプラスミドpCL-Cas9をBY-BG-SSSD株に供し、酢酸リチウム法により導入した。その後、SD培地(メチオニンおよびウラシルを補充)にて選択を行うことで、pCL-Cas9を保持する形質転換株を獲得した。次に、調製例2に記載のプラスミドp2gRNA-TIP1/CWP1/DAN1と、DAN1、TIP1、およびCWP1遺伝子のコーディング領域とそれぞれ相同性を有し、かつ特定のアミノ酸コドンが終止コドンに置き換えられた配列を持つ2本鎖のオリゴDNA(配列番号60、61、および62)を混合して上記の形質転換株に供し、酢酸リチウム法により導入した。その後、SD培地(メチオニンを補充)にて選択を行うことで、pCL-Cas9およびp2gRNA-CCW12/CCW14/DAN1を保持する形質転換株を獲得した。得られた形質転換株のうち、シーケンス解析によりゲノム上のTIP1、CWP1、およびDAN1遺伝子の標的コドンがすべて終止コドンに置換されていることが確認できた株について、SD培地(メチオニン、ロイシン、およびウラシルを補充)にて数日間培養してプラスミドpCL-Cas9およびp2gRNA-TIP1/CWP1/DAN1を菌体から脱落させた。その後、SD培地(メチオニンおよびロイシンを補充)およびSD培地(メチオニンおよびウラシルを補充)の両方において生育が見られないことが確認できた株を、TIP1、CWP1、およびDAN1遺伝子がノックアウトされた細胞表層発現酵母株として選択した。この株をtip1/cwp1/dan1-BGSD株と称する。
PCR法により、サッカロマイセス・セレビシエBY4741sed1Δ株ゲノム(Biotechniques.2011, 50(5):325-328に記載の方法により調製した)を鋳型とし、プライマー対sed1-F(配列番号63)およびsed1-R(配列番号64)を用いて増幅し、SED1遺伝子のコーディング領域上流520bpの領域、抗生物質G418耐性マーカー遺伝子kanMX遺伝子、およびSED1遺伝子のコーディング領域下流526bpの領域をこの順番で含むDNA断片を調製した。このDNA断片をGPIm-BGSD株に供し、酢酸リチウム法により導入した。その後、SD培地(メチオニン、ロイシン、ウラシル、およびG418を補充)にて選択を行うことで、形質転換株を獲得した。この形質転換株をGPIm-sed1-BGSD株と称する。
酵母菌体のβ−グルコシダーゼ(BGL)活性(乾燥菌体重量当たりの活性量(U)の検討を以下の手順に従って行った。
(1)菌体を蒸留水で2回洗浄;
(2)反応液500μL(組成:10mM pNPG(p−ニトロフェニル−β−D−グルコピラノシド)100μL(最終濃度2mM);500mM クエン酸ナトリウム緩衝液(pH5.0) 50μL(最終濃度50mM);蒸留水250μL;および酵母懸濁液100μL)(最終菌体濃度1〜10g湿潤菌体/L))を調製し、500rpm、30℃にて10分間反応;
(3)反応終了後、3M Na2CO3 500μLを加え反応を停止;そして
(4)10,000gで5分間遠心後、上清の400nmにおける吸光度ABS400を測定。1分間で1μmolのpNP(p−ニトロフェノール)を遊離する酵素量を1Uとする。
酵母菌体のエンドグルカナーゼ(EG)活性(乾燥菌体重量当たりの活性量)の検討を以下の手順に従って行った。
(1)菌体を蒸留水で2回洗浄;
(2)反応液2500μL(組成:セラザイムCタブレット(Megazyme社製)1錠;500mM クエン酸ナトリウム緩衝液(pH5.0) 250μL(最終濃度50mM);蒸留水2000μL;および酵母懸濁液250μL(最終菌体濃度10g湿潤菌体/L))を調製し、静置、38℃にて3時間反応;
(3)反応終了後、10,000gで5分間遠心後、上清の590nmの吸光度ABS590を測定。
β−グルコシダーゼ(BGL)表層提示酵母を用いたセロビオースからのエタノール生産能力の検討を以下の手順に従って行った。
セロビオース 20g/L
酵母エキス 10g/L
ペプトン 20g/L
酵母菌体 10g湿潤菌体重量/L
合計 20mL
上記を回転式発酵装置に入れ、市販酵素剤を添加せずに、30℃、150rpm、8時間反応させた。
本実施例では、サッカロマイセス・セレビシエBY4741株およびその5遺伝子ノックアウト株を宿主として発現カセットX7を含むプラスミドを導入して得られた細胞表層提示形質転換酵母(BY-BG-SSSD株およびGPIm-BGSD株:それぞれ調製例5の5−1にて調製した)について、菌体のβ−グルコシダーゼ(BGL)活性を測定した。
本実施例では、サッカロマイセス・セレビシエBY4741株およびその5遺伝子ノックアウト株を宿主として発現カセットX8を含むプラスミドを導入して得られた細胞表層提示形質転換酵母(BY-EG-SSSD株およびGPIm-EGSD株:それぞれ調製例5の5−2にて調製した)について、菌体のエンドグルカナーゼ(EG)活性を測定した。
本実施例では、サッカロマイセス・セレビシエBY4741株、5遺伝子ノックアウト株、および5遺伝子のうちの2つ(CCW12およびCCW14)または3つ(TIP1、CWP1、およびDAN1)のみをノックアウトした株を宿主として発現カセットX1を含むプラスミドを導入して得られた表層提示形質転換酵母(BY-BG-SSSD株、GPIm-BGSD株(上記5−1)、ccw12/ccw14-BGSD株(上記5−3)、tip1/cwp1/dan1-BGSD株(上記5−4))について、菌体のBGL活性を測定した。
本実施例では、5遺伝子ノックアウト株を宿主として発現カセットX7を含むプラスミドを導入して得られた細胞表層提示形質転換酵母(GPIm-BGSD株)(上記5−1)およびその株のSED1遺伝子を追加でノックアウトした形質転換株(GPIm-sed1-BGSD株)(上記5−5)について、菌体のBGL活性を測定した。
本実施例では、サッカロマイセス・セレビシエBY4741株、CCW12およびCCW14の2遺伝子ノックアウト株、CCW12、CCW14、TIP1、CWP1、およびDAN1の5遺伝子ノックアウト株を宿主として発現カセットX7を含むプラスミドを導入して得られた細胞表層提示形質転換酵母(BY-BG-SSSD株、ccw12/ccw14-BGSD株、およびGPIm-BGSD株)(上記5−1、5−3)について、グルコース2分子の重合体であるセロビオースからのエタノール生産能力を比較した。
Claims (11)
- タンパク質を細胞表層発現する形質転換酵母であって、
CCW12遺伝子、CCW14遺伝子、DAN1遺伝子、TIP1遺伝子、CWP1遺伝子、およびそれらに相当する遺伝子からなる群より選択される少なくとも1つの細胞壁関連遺伝子を保有する宿主酵母における少なくとも1つの該細胞壁関連遺伝子の機能を欠損しており、かつ
プロモーター、分泌シグナル配列、該タンパク質をコードするDNA、アンカードメインをコードするDNAおよびターミネーターを含むポリヌクレオチドが導入されている、
形質転換酵母。 - CCW12遺伝子およびCCW14遺伝子の少なくとも一方の前記細胞壁関連遺伝子の機能を欠損している、請求項1に記載の形質転換酵母。
- CCW12遺伝子、CCW14遺伝子、DAN1遺伝子、TIP1遺伝子およびCWP1遺伝子の全ての上記細胞壁関連遺伝子の機能を欠損している、請求項1に記載の形質転換酵母。
- SED1遺伝子の機能をさらに欠損している、請求項1から3のいずれかに記載の形質転換酵母。
- 前記タンパク質が酵素である、請求項1から4のいずれかに記載の形質転換酵母。
- 前記酵素がセルロース分解酵素である、請求項5に記載の形質転換酵母。
- 前記宿主酵母がサッカロマイセス属酵母である、請求項1から6のいずれかに記載の形質転換酵母。
- タンパク質を細胞表層発現する形質転換酵母の製造方法であって、
CCW12遺伝子、CCW14遺伝子、DAN1遺伝子、TIP1遺伝子、CWP1遺伝子、およびそれらに相当する遺伝子からなる群より選択される少なくとも1つの細胞壁関連遺伝子を保有する宿主酵母における、該宿主酵母の少なくとも1つの該細胞壁関連遺伝子の機能を欠損させる工程、および
該宿主酵母に、プロモーター、分泌シグナル配列、該タンパク質をコードするDNA、アンカードメインをコードするDNAおよびターミネーターを含むポリヌクレオチドを導入する工程
を含む、方法。 - 請求項5または6に記載の形質転換酵母を含む、酵素剤。
- バイオマスを用いたエタノール製造のために用いられるエタノール製造のために用いられる、請求項9に記載の酵素剤。
- エタノールの製造方法であって、
請求項6に記載の形質転換酵母を、β-1,4結合したグルコース多糖を含む培地で培養する工程
を含む、方法。
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APPLIED MICROBIOLOGY AND BIOTECHNOLOGY, vol. 105, JPN6023008750, 2021, pages 5895 - 5904, ISSN: 0005005495 * |
MOLECULAR MICROBIOLOGY, vol. 52, no. 5, JPN6023008747, 2004, pages 1413 - 1425, ISSN: 0005005493 * |
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