JP2020152664A - 光曝露下に適用されるビタミンk剤及びそれを用いた皮膚外用剤、点眼剤、眼軟膏剤 - Google Patents
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Landscapes
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Abstract
Description
一般式(1)
即ち、本発明は、前記一般式(1)で表されるビタミンKヒドロキノンのカルボン酸エステルまたはその塩の少なくとも一種類を含有する遮光を必要とせず、遮光が困難な状態においても光安定性が高く且つ光毒性を示さないで活性型ビタミンK送達を可能にするビタミンK剤を提供する。
本発明は、上記一般式(1)で表される化合物またはその塩を用いる遮光を必要とせず遮光が困難な状態においても光安定性が高く且つ光毒性を示さないで活性型ビタミンK送達を可能にするビタミンK剤に関する。前記一般式(1)で表される化合物は、単独で製剤に含有させることもできるし、その塩として製剤に配合することもできる。本発明において、窒素置換基を有するカルボン酸残基R1、R2としては次のものが例示される。
窒素原子に対し水素原子ないし、1または2のアルキル基、アシル基が結合したもの。
前記アルキル基としては、炭素数1〜6の直鎖、もしくは分枝のアルキル基であり次のものが例示される。メチル基、エチル基、n−プロピル基、n−ブチル基、n−ペンチル基、n−ヘキシル基、イソプロピル基、イソブチル基、1−メチルプロピル基、tert−ブチル基、1−エチルプロピル基、イソアミル基。上記アルキル基としてはメチル基、エチル基が好ましい。また、アシル基を有する場合の炭化水素鎖も同様に定義可能である。
前記環状アルキレン基としては、次のものが例示される。
シクロペンタン環、シクロヘキサン環、あるいはメチルシクロヘキサン環などを構造中に含むもの。上記アルキレン基としては、メチレン基あるいはエチレン基が特に好ましい。
[皮膚外用剤]
本発明にかかるビタミンKヒドロキノン誘導体は、その優れた光安定性、低光毒性から、皮膚外用剤に用いることができる。
ビタミンKヒドロキノン誘導体を皮膚外用剤に用いる際の濃度は、0.01〜1質量%(以下、単に「%」と略す。)が好ましく、0.05〜0.5%が特に好ましい。この範囲内であれば、ビタミンKヒドロキノン誘導体を安定に配合することができ、優れた薬効を発揮することができる。
本発明のビタミンKヒドロキノン誘導体は、その優れた光安定性、低光毒性から、投与剤型としては、点眼剤も採用できる。添加剤として、等張化剤、緩衝剤、pH調節剤、可溶化剤、増粘剤(分散剤)、安定化剤(抗酸化剤)、保存剤(防腐剤)等を適宜配合することにより、周知の方法で製剤化することができる。また、pH調節剤、増粘剤、分散剤等を添加し、薬物を懸濁化させることによって、安定な点眼剤を得ることもできる。
本発明のビタミンKヒドロキノン誘導体の投与剤型としては、眼軟膏剤も挙げられ、白色ワセリン、プラスチベース若しくは流動パラフィン等の汎用される基剤を用いて調製することができる。
実施例1〜31
下記の製造方法A〜Iに示す方法により表1〜5に示すビタミンKヒドロキノン誘導体を製造した。また、得られた物質の質量スペクトル(イオン化方法;FD法およびFAB法)、1H-NMR スペクトルを表6〜8に示す。
アミノ酸0.1 molを蒸留水−ジオキサン(1:1、v/v) 100mlに溶解し、トリエチルアミン30 mlを加え、ジ−tert−ブチルジカルボネートを徐々に加え30分間室温で撹拌する。減圧下ジオキサンを留去し、炭酸水素ナトリウム水溶液(0.5M)50 mlを加え酢酸エチル100 mlで洗う。酢酸エチル層を50 mlの炭酸水素ナトリウム液で洗い、水層を合わせて氷冷下でクエン酸水溶液(0.5M)を加えて酸性(pH3)とし、塩化ナトリウムを飽和させた後、酢酸エチルで抽出する(100 ml×3回)、抽出液を無水硫酸ナトリウムで脱水後減圧下溶媒を留去し、油状残渣をイソプロピルエーテルを加えるか、または冷却にて結晶化させて、N−t−BOC−アミノ酸を得る。ビタミンK6.75 mmolをイソプロピルエーテル40 mlに溶解し、水素化ホウ素ナトリウム47 mmolをメタノール15 mlに溶解して加え、溶液の黄色が無色になるまで室温で撹拌する。反応液にイソプロピルエーテル60 mlと蒸留水100 mlを加え、イソプロピルエーテル層を分離し、更に水層にイソプロピルエーテル100 mlを加えて可溶画分を抽出し、イソプロピルエーテル層を合わせて無水硫酸ナトリウムで脱水後減圧下濃縮する。残渣に n−ヘキサンを加えて白色沈殿を析出させてビタミンKヒドロキノンを得る。
ビタミンK 6.75 mmolをイソプロピルエーテル40 mlに溶解し、水素化ホウ素ナトリウム47 mmolをメタノール15 mlに溶解して加え、溶液の黄色が無色になるまで室温で撹拌する。反応液にイソプロピルエーテル60mlと蒸留水100 mlを加え、イソプロピルエーテル層を分離し、更に水層にイソプロピルエーテル100 mlを加えて可溶画分を抽出、イソプロピルエーテル層を合わせて無水硫酸ナトリウムで脱水後減圧下濃縮する。残渣に n−ヘキサンを加えて白色沈殿を析出させてビタミンKヒドロキノンを得る。ビタミンKヒドロキノン、塩酸N,N−ジアルキルアミノ酸13.55 mmolまたは塩酸N,N,N−トリアルキルアミノ酸13.55 mmol、DCC 13.55 mmol を無水ピリジン50mlに加え室温で20時間撹拌する。溶媒を減圧下留去し、残渣を、蒸留水に懸濁させ炭酸水素ナトリウムを加えて溶液のpHを7〜8にした後に酢酸エチルで抽出する(100 ml×3回)、抽出液を無水硫酸ナトリウムで脱水後減圧下溶媒を留去し、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(溶離溶媒;イソプロピルエーテル−酢酸エチル)で分離精製し、ビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−N,N−ジアルキルアミノ酸エステルまたはビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−N,N,N−トリアルキルアミノ酸エステルを得る。
ビタミンK 6.75 mmolをイソプロピルエーテル40mlに溶解し、ハイドロサルファイトナトリウム50 mmolを蒸留水50mlに溶解して加え、イソプロピルエーテルが褐色を呈し、さらに無色になるまで室温で撹拌する。イソプロピルエーテル層を分離し、更に水層にイソプロピルエーテル100 mlを加えて可溶画分を抽出、イソプロピルエーテル層を合わせて無水硫酸ナトリウムで脱水後減圧下濃縮する。残渣にn−ヘキサンを加えて白色沈殿を析出させてビタミンKヒドロキノンを得る。ビタミンKヒドロキノンに塩酸N,N−ジアルキルアミノ酸6.75 mmol、DCC 6.75 mmolを加え無水ピリジン50ml中で20時間撹拌する。溶媒を減圧下留去し、残渣を、蒸留水に懸濁させ炭酸水素ナトリウムを加えて溶液のpHを7〜8にした後酢酸エチルで抽出する(100 ml×3回)、抽出液を無水硫酸ナトリウムで脱水後減圧下溶媒を留去し、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(溶離溶媒;イソプロピルエーテル−酢酸エチル、3:2)で分離精製し、ビタミンKヒドロキノン−1−N,N−ジアルキルアミノ酸エステルおよびビタミンKヒドロキノン−4−N,N−ジアルキルアミノ酸エステルを得る。
ビタミンK 6.75mmolをイソプロピルエーテル40 mlに溶解し、水素化ホウ素ナトリウム47 mmolをメタノール15 mlに溶解して加え、溶液の黄色が無色になるまで室温で撹拌する。反応液にイソプロピルエーテル60mlと蒸留水100 mlを加え、イソプロピルエーテル層を分離し、更に水層にイソプロピルエーテル100 mlを加えて可溶画分を抽出、イソプロピルエーテル層を合わせて無水硫酸ナトリウムで脱水後減圧下濃縮する。残渣に n−ヘキサンを加えて白色沈殿を析出させてビタミンKヒドロキノンを得る。ビタミンKヒドロキノンを無水ベンゼン−無水ピリジン(1:1、 v/v)30 mlに溶解し、塩酸ピリジンカルボン酸クロリドを加え室温で3時間撹拌する。不溶物を濾過で取り除き、濾液を減圧下濃縮する。残渣を蒸留水100 mlに懸濁させ、炭酸水素ナトリウムを加え(pH7〜8)、酢酸エチルに可溶分画を抽出する(100ml×3回) 、抽出液を減圧下濃縮し、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(溶離溶媒;イソプロピルエーテル−酢酸エチル、9:1)で分離精製し、ビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−ピリジンカルボン酸エステルを得る。
ビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−N,N−ジアルキルアミノ酸エステル又はビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−ピリジンカルボン酸2mmolをアセトン20mlに溶解し、塩酸−ジオキサン(2.5〜4.0 N)を塩酸量がエステルの10倍モル量に相当する量加え、溶媒を減圧下留去し、残渣をアセトン−メタノールで再結晶してビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−N,N−ジアルキルアミノ酸又はビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−ピリジンカルボン酸の塩酸塩を得る。
ビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−N,N−ジアルキルアミノ酸又はビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−ピリジンカルボン酸2mmolをジクロロメタン20mlに溶解し、アルキルスルホン酸2mmolを加え撹拌する。析出する結晶を濾取してビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−N,N−ジアルキルアミノ酸エステル又はビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−ピリジンカルボン酸エステルのアルキルスルホン酸塩を得る。
ビタミンK 4.55 mmolをイソプロピルエーテル40mlに溶解し、水素化ホウ素ナトリウム31.5 mmolをメタノール15 mlに溶解して加え、溶液の黄色が無色になるまで室温で撹拌する。反応液にイソプロピルエーテル60mlと精製水100mlを加え、イソプロピルエーテル層を分離し、更に水層にイソプロピルエーテル100mlを加えて可溶画分を抽出、イソプロピルエーテル層を合わせて、無水硫酸ナトリウムで脱水後、減圧下溶媒を留去する。残渣にジメチルアミノピリジン8.97 mmol、ジカルボン酸無水物18.0 mmolを加え、イソプロピルエーテル-ジオキサン(6:4、v/v)100mlに溶解して、室温で3時間撹拌後、50〜60℃に加熱しながら2時間反応させ、さらに室温で放冷しながら10時間反応させる。反応液に精製水100mlを加え、イソプロピルエーテル層を分離し、無水硫酸ナトリウムで脱水後、減圧下溶媒を留去する。残渣をイソプロピルエーテルに懸濁し、遠心して得た沈殿物に酢酸エチル100mlと精製水100mlを加え酢酸エチル可溶画分を抽出し、無水硫酸ナトリウムで脱水後、減圧下溶媒を留去する。残渣をイソプロピルエーテルに懸濁し不溶物を酢酸エチルで再結晶して、ビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−ジカルボン酸ヘミエステルを得る。
ビタミンK 6.75 mmol、亜鉛18.4 mmol、無水ジカルボン酸33.0 mmol、無水酢酸ナトリウム 13.8 mmol、酢酸161.5 mmolを100 mlのナスフラスコに入れ、ジムロートを取り付けよく撹拌しながら85℃で3時間加熱。室温冷却し生じた白い固形に酢酸エチル200 mlと精製水100mlを加え酢酸エチル可溶画分を抽出し、無水硫酸ナトリウムで脱水後、減圧下溶媒を留去する。残渣を酢酸エチルで再結晶して、ビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−ジカルボン酸ヘミエステルを得る。
ビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−ジカルボン酸ヘミエステル2mmolを2倍molの0.1N水酸化ナトリウム水溶液または2倍molのメグルミン水溶液を加え溶解させ凍結乾燥させる。メタノール−アセトニトリルで再結晶しビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−ジカルボン酸ヘミエステル−ビス-ナトリウム塩またはビタミンKヒドロキノン−1,4−ビス−ジカルボン酸ヘミエステル-ビス-メグルミン塩を得る。
ビタミンKヒドロキノン誘導体の人工太陽光に対する光安定性の評価
メナキノン−4(MK−4)、フィロキノン(PK)、メナヒドロキノン誘導体(化合物10(MKH−DMG)、化合物11、化合物12、化合物16、化合物27(MKH−SUC)、化合物29(MKH−GLU))、およびフィロヒドロキノン誘導体(化合物24(PKH−DMG)、化合物30(PKH−SUC)、化合物32(PKH−GLU))のエタノール溶液を栓つき石英セルに入れ、温度25℃、垂直方向から人工太陽光(SOLAX 100W XC-100B、seric)を照度12000lxで照射し、経時的に薬物濃度をLC/MS/MSで測定した。照度は照度計 (デジタル照度計 LX-1108, マザーツール) を用いて測定した。人工太陽光照射による光分解の典型例として、図1と図2に薬物残存量の経時変化を示した。図1はメナキノン−4とメナヒドロキノン誘導体)を、図2はフィロキノンとフィロヒドロキノン誘導体を示し、いずれも擬一次反応に従って分解し、その半減期を表9に示した。キノン型ビタミンKであるメナキノン−4とフィロキノンの半減期はそれぞれ0.08時間と0.1時間であり、極めて短時間で分解した。コハク酸エステルでは化合物27の半減期は0.31時間で、メナキノン−4に比較して約4倍安定であり、化合物30の半減期は0.67時間で、フィロキノンに比較して約6倍安定となったが、大きくは安定性を改善しなかった。一方、ビタミンKヒドロキノン誘導体であるメナヒドロキノン誘導体(化合物10、11、12、16、29)とフィロヒドロキノン誘導体(化合物24、32)の半減期は、各キノン型ビタミンKの約50倍以上長くなり人工太陽光に対して高い光安定性を確保できることが明らかとなった。
LC/MS/MS測定条件:質量分析装置:LCMS-8050 LIQUID CHROMATOGRAPH MASS SPECTROMETER (SHIMADZU)、高速クロマトグラフィー (HPLC)装置:Shimadzu HPLC System [System controller (CBM-20A), Pump (LD-20AD), Degasser (DGU-20As), UV detector (SPD-20A), Auto injector (SIL-20AC HT) ] を用いた。カラム CAPCELL PAK C18 MGII, 2.0mm I.D.×100mm, 3μm, SHISEIDO)を用いた。移動相は10mM 酢酸アンモニウムと0.1%酢酸を含む水及びメタノールをグラジエントモードで用いた。流速は0.4mL/min、サンプルクーラーは4℃、カラムオーブンは40℃、サンプル注入量は5μLとした。イオン化はElectrospray ionization (ESI) 法を用い、MRMモードで測定した。
ビタミンKヒドロキノン誘導体の光安定性の波長特性
メナキノン−4、フィロキノン、メナヒドロキノン誘導体(化合物10、11、12、27、29)およびフィロヒドロキノン誘導体(化合物24、30、32)のエタノール溶液を栓つき石英セルに入れ、温度25℃、分光照射器 (MM-3 多波長照射分光器, 分光計器) を用いて波長279-435 nmの光を照射し、経時的に試料中の薬物濃度を前述のLC/MS/MSで測定した。薬物残存率の対数値を照射エネルギーに対してプロットし、直線を得た。典型例として図3にメナキノン−4とメナヒドロキノン誘導体(化合物10、29)を、図4にフィロキノンとフィロヒドロキノン誘導体(化合物24、32)を示した。各波長における薬物量が初濃度の半分になる照射エネルギーを半減照射エネルギーとし、表10と表11に示した。照射エネルギーは(MM−3 多波長照射分光器照射エネルギー測定用パワーメータ, 分光計器)で測定した。メナキノン−4とフィロキノンは波長が短いほど低エネルギーで分解し、373 nm以下の波長では顕著に分解した(表10、11)。ビタミンKヒドロキノン誘導体の光安定性は、修飾基の数と種類に依存した(表10、11)。ビス−エステルタイプの化合物10、29、24、30は435-341 nmでは分解が観察されず、279nmで光分解が観察された。ビス−エステルの中でコハク酸エステル(化合物27と30)は、共に435-341 nmでは光に依存しない分解が観察され279 nmにおいて光分解が観察された。モノ−エステルの化合物11、12は435-373 nmでは分解が観測されないが、341 nm以下の波長では光分解が観察されビスエステルに比較して光分解を受ける波長が広かった。
キノン型ビタミンKとビタミンKヒドロキノン誘導体のUVA照射による一重項酸素の生成
試験化合物(200μM)を0.2%ポリオキシエチレン(40)硬化ヒマシ油 (日光ケミカルズ) 、 0.2% エタノール、 0.1 %グリセリン (wako) をリン酸緩衝液 (20 mM、pH7.4)に溶解し、さらに イミダゾール(50μM、wako)とp−ニトロソジメチルアニリン (50μM、東京化成) を溶解し、 96 ウェルプレートに200μL /well加え、UVA(UV Crosslinker CL-1000L 365 nm, UVP) を照射した。経時的に440 nm の吸光度を測定した。陽性対象としてケトプロフェン(wako)、陰性対象としてスリソベンゾン(Combi-Blocks)を使用した。図5に薬物にUVA照射時のUVA照射エネルギーに対する一重項酸素生成を示している。メナキノン−4はUVA照射量に依存して一重項酸素生成したが、メナヒドロキノン誘導体ではUVA照射では一重項酸素生成は極めて低かった(図5A)。フィロキノンは照射量に依存して一重項酸素生成したが、フィロヒドロキノン誘導体ではUVA照射による一重項酸素生成は極めて低かった(図5B)。キノン型ビタミンKはUVA照射によって一重項酸素を生成する光増感作用が観察されたことから、紫外線照射による一重項酸素発生によって皮表脂質の過酸化が引き起こされることが明らかであり、紫外線の皮膚に及ぼす損傷機構の一端を担う可能性が明らかになった。一方、ビタミンKヒドロキノン誘導体はUVA照射による一重項酸素の生成を起こさず、一重項酸素生成による皮表脂質過酸化の毒性を誘発しないことが示された。
キノン型ビタミンKとビタミンKヒドロキノン誘導体のUVA光照射によるヒト表皮角化細胞株中の活性酸素種(ROS)生成
ヒト表皮角化細胞株(HaCaT細胞)を96 well プレートに(1.0×104 cells/well)播種し、24時間培養後、培地をDCFH-DA(Invitrogen)のPBS溶液に置換し1時間37℃処理後PBSで洗浄、培地を試験化合物(メナキノン−4、メナヒドロキノン誘導体(化合物10)、フィロキノン、フィロヒドロキノン誘導体(化合物24))のPBS溶液(200μM)100 μl/well に置換し、UVA照射機(UV Crosslinker CL-1000L 365 nm, UVP)を用いてUVAを照射(15 J/cm2)。照射後プレートリーダーを用いて(励起波長 485nm 発光波長 530 nm )細胞内ROS量を測定した。図5に薬物投与時のUVA照射による細胞内ROS量の変化をコントロール群のUVA非照射と照射をそれぞれ0%と100%として示している。メナキノン−4存在下でUVA照射はヒト表皮角化細胞内のROS量を用量依存的に増加した(図5A)。一方、メナヒドロキノン誘導体(化合物10)存在下でのUVA照射は細胞内ROSを増加させなかった(図6A)。フィロキノンの場合はUVA照射によって細胞内ROSを用量依存的に増加し(図5B)、フィロヒドロキノン誘導体(化合物24)では細胞内ROSを増加させなかった(図6B)。キノン型ビタミンKは光照射によって細胞内ROSが高くなり光酸化毒性による細胞障害の可能性が示された。一方、ビタミンKヒドロキノン誘導体はROS生成をしないので光酸化毒性の可能性がないことが示された。
キノン型ビタミンKとビタミンKヒドロキノン誘導体のUVA光照射によるヒト表皮角化細胞株に対する光毒性
ヒト表皮角化細胞株(HaCaT細胞)を96 well プレートに(1.0×104 cells/well)播種し24時間培養後、培地を試験化合物のPBS溶液(200μM)100 μl/well に置換しUVA(15 J/cm2)照射、試験化合物溶液を取り除き培地に交換し23時間培養後cell titer blue viability assay (Promega)試薬を用いて細胞生存率を測定した。メナキノン−4のUVA照射によってヒト表皮角化細胞死がメナキノン−4の用量依存的に増加した(図7A)。一方、メナヒドロキノン誘導体(化合物10)のUVA照射はヒト表皮角化細胞死を示さなかった(図7A)。フィロキノンのUVA照射によってヒト表皮角化細胞死が用量依存的に増加し(図7B)、フィロヒドロキノン誘導体(化合物24)ではヒト表皮角化細胞死を増加させなかった(図7B)。薬物濃度200μMにおけるヒト表皮角化細胞生存率を表12に示した。図6と図7と表12の結果から、キノン型ビタミンKはUVA照射によって細胞内ROSが高くなり細胞毒性が誘発されたことから光酸化毒性が誘起されたと考えられる。一方、ビタミンKヒドロキノン誘導体はUVA照射によって細胞内ROS生成が高くならず細胞毒性も誘発されなかったことから、光酸化毒性による細胞障害がないことが示された。
ビタミンKヒドロキノン誘導体によるヒト表皮角化細胞株への活性型ビタミンK送達性とビタミンK依存性タンパク質のGla化の評価
ヒト表皮角化細胞株(HaCaT細胞)を24 ウェルプレートに播種(5.0×104cells/well) し48 時間培養後、試験化合物を添加した。継時的に細胞中のVKO量をLC-MS/MSで測定した。抽出法:各培養細胞にPBS 500μl加えスクレープ、ソニケートして得た細胞ホモジネート液 (200 μl) にメタノール(200μl)、n−ヘキサン(600μl)を加え攪拌後、4℃、3000 rpm、10分間遠心し上清500μlを窒素ガスで濃縮。残渣をメタノール(50μl)に再溶解しLC-MS/MS試料とした。タンパク濃度はBCA protein assay kit (Thermo Fisher Scientific)を用いて測定した。試験化合物のエタノール溶液(200μM)を人工似太陽光12000 lxで3時間照射し濃縮後エタノールで再溶解し培地で5μMとしヒト表皮角化細胞に加え48時間培養し人工太陽光照射群とした。試験化合物のエタノール溶液を遮光下で同様に操作しヒト表皮角化細胞に加え48時間培養し遮光群とした。
[化粧水]
下記成分(3)、(4)及び(8)〜(10)を混合溶解した溶液と、下記成分(1)、(2)、(5)〜(7)及び(11)を混合溶解した溶液とを混合して均一にし、化粧水を得た。
(成分) (%)
(1)グリセリン 5.0
(2)1,3−ブチレングリコール 6.5
(3)ポリオキシエチレン(20E.O.)ソルビタン 1.2
モノラウリン酸エステル
(4)エチルアルコール 8.0
(5)ビタミンKヒドロキノン誘導体 0.05
(6)乳酸 0.05
(7)乳酸ナトリウム 0.1
(8)パラメトキシケイ皮酸−2−エチルヘキシル 3.0
(9)防腐剤 適量
(10)香料 適量
(11)精製水 残量
下記成分(8)〜(9)を成分(12)に添加し膨潤後、成分(10)を加えて混合し、70℃に加温し水相を調製した。下記成分(1)〜(6)を70℃に加温し、これを前記水相に添加して、乳化した。この乳化物を室温まで冷却し、下記成分(7)、(11)及び(13)を添加し、均一に混合して乳液を得た。
(成分) (%)
(1)ポリオキシエチレン(10E.O.)ソルビタン 1.0
モノステアレート
(2)ポリオキシエチレン(60E.O.)ソルビット 0.5
テトラオレエート
(3)グリセリルモノステアレート 1.0
(4)ステアリン酸 0.5
(5)ベヘニルアルコール 0.5
(6)スクワラン 8.0
(7)ビタミンKヒドロキノン誘導体 0.1
(8)防腐剤 0.1
(9)カルボキシビニルポリマー 0.1
(10)水酸化ナトリウム 0.05
(11)エチルアルコール 5.0
(12)精製水 残量
(13)香料 適量
Claims (4)
- 下記一般式(1)
(式中、R1およびR2はそれぞれ水素原子、またはグリシン、N−アシルグリシン、N−アルキルグリシン、N,N−ジアルキルグリシン、N,N,N−トリアルキルグリシン、アシル、ジカルボン酸ヘミエステル及びその塩から選ばれる置換基を意味し、R1, R2の少なくとも一方はグリシン、N−アシルグリシン、N−アルキルグリシン、N,N−ジアルキルグリシン、N,N,N−トリアルキルグリシン、アシル、ジカルボン酸ヘミエステル及びその塩である。R3は下記一般式(2)
- 前記一般式(1)で表される化合物またはその塩を含有する皮膚外用剤。
- 前記一般式(1)で表される化合物またはその塩を含有する点眼剤。
- 前記一般式(1)で表される化合物またはその塩を含有する眼軟膏剤。
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Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2021187314A1 (ja) * | 2020-03-17 | 2021-09-23 | 学校法人福岡大学 | ミトコンドリア機能障害改善剤 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH054951A (ja) * | 1990-07-18 | 1993-01-14 | Eisai Co Ltd | 1,4−ジヒドロナフトキノン誘導体およびその製造方法 |
JP2005119990A (ja) * | 2003-10-15 | 2005-05-12 | Kose Corp | 皮膚外用剤 |
US20150031651A1 (en) * | 2012-03-02 | 2015-01-29 | Kappa Bioscience As | Prodrugs of vitamine k |
WO2015018858A1 (en) * | 2013-08-08 | 2015-02-12 | Kappa Bioscience As | Compositions comprising vitamin k derivatives and salts |
-
2019
- 2019-03-19 JP JP2019051295A patent/JP7394433B2/ja active Active
Patent Citations (4)
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