JP2020055750A

JP2020055750A - 癌浸潤または転移阻害核酸薬

Info

Publication number: JP2020055750A
Application number: JP2017014912A
Authority: JP
Inventors: 賢二中野; Kenji Nakano; 林崔; Lin Cui; 聡小比賀; Satoshi Obika; 剛史山本; Takashi Yamamoto
Original assignee: Osaka University NUC
Current assignee: Osaka University NUC
Priority date: 2017-01-30
Filing date: 2017-01-30
Publication date: 2020-04-09
Also published as: WO2018139679A1

Abstract

【課題】浸潤性または転移能のある腫瘍に対して有効な抗腫瘍剤を提供すること。【解決手段】ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤を含む抗腫瘍剤が開示される。ＳＮＯＲＡ２３発現抑制剤は、以下の式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造：【化１】（式中ＢａｓeおよびＡは所定の置換基または構造である）を少なくとも１つ含むオリゴヌクレオチドまたはその薬理学上許容される塩であり得る。ＳＹＮＥ２遺伝子発現抑制剤を含む抗腫瘍剤もまた開示される。【選択図】なし

Description

本発明は、癌浸潤または転移を阻害し得る核酸および当該核酸を含む抗癌剤に関する。

膵癌または膵管腺癌（ＰＤＡＣ）は、浸潤性で転移能が高く、予後が不良である。古より病理学的検討によって、癌細胞の悪性度および予後不良に、核および核小体の異型度が関与することが知られている。

核内に存在する非翻訳ＲＮＡである核小体小分子ＲＮＡ（ｓｎｏＲＮＡ）は、リボソームやリボソームＲＮＡの合成および代謝を制御するハウスキーピング因子として考えられてきたが、近年、癌特異的に異常発現するｓｎｏＲＮＡの報告がなされている。このようなｓｎｏＲＮＡとして、例えば、ＳＮＯＲＡ４２（非特許文献１）、ＳＮＯＲＡ５５（非特許文献２）、ｈ５ｓｎ２（非特許文献３）、ＳＮＯＲＤ４４（非特許文献４）およびＳＮＯＲＤ５０Ａ／Ｂ（非特許文献５）が報告されている。

癌の治療において、ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）（例えば、ｓｉＲＮＡまたはｍｉＲＮＡの利用）、アンチセンス法などが核酸利用などの核酸を利用した標的遺伝子発現抑制が試みられている。アンチセンス法においては、種々の人工核酸が利用されている。例えば、アミド架橋核酸（ＡｍＮＡ：特許文献１）を用いたアンチセンスオリゴヌクレオチド（ＡＳＯ）の癌治療への応用が試みられている（非特許文献６）。

国際公開第２０１１／０５２４３６号

Mei YPら、Oncogene 2012;31:2794-804 Crea Fら、Mol Oncol 2016;10:693-703 Chang LSら、Biochem Biophys Res Commun 2002;299:196-200 Appaiah HNら、Breast Cancer Res 2011;13:R86 Siprashvili Zら、Nat Genet 2016;48:53-8 Shinkai Kら、Int J Cancer 2016;139:433-45

しかし、核内非翻訳ＲＮＡであるｓｎｏＲＮＡを標的遺伝子とする場合、生体内でｓｎｏＲＮＡの発現を抑制可能な核酸剤は未だ確立されていない。そして、ＰＤＡＣのような癌の浸潤および転移を解消するために有効な治療剤が求められている。

したがって、本発明は、核内非翻訳ＲＮＡの発現を生体内で抑制可能な核酸剤を提供することを目的とする。さらに、本発明は、癌の浸潤および転移に関与するｓｎｏＲＮＡの発現抑制剤を含む抗腫瘍剤を提供することを目的とする。

本発明は、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤を含む、抗腫瘍剤を提供する。

１つの実施形態では、上記ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤は、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子と結合し得、該ＳＮＯＲＡ２３遺伝子の発現を抑制する活性を有する核酸分子を含む。

１つの実施形態では、上記核酸分子は、配列番号１に示されるＳＮＯＲＡ２３遺伝子の塩基配列の一部である標的領域に相補的な配列でありかつ１２〜２０塩基の長さであるオリゴヌクレオチド、またはその薬理学上許容される塩を含む。

１つの実施形態では、上記オリゴヌクレオチドまたはその薬理学上許容される塩は、糖修飾部分を含む１個または２個以上のヌクレオチドを含む。

１つの実施形態では、上記オリゴヌクレオチドまたはその薬理学上許容される塩は、
以下の式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造：

を少なくとも１つ含み、
ここで、
Ｂａｓｅは、α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよいプリン−９−イル基、またはα群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよい２−オキソ−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基を表し、ここで、該α群は、水酸基、核酸合成の保護基で保護された水酸基、炭素数１から６の直鎖アルキル基、炭素数１から６の直鎖アルコキシ基、メルカプト基、核酸合成の保護基で保護されたメルカプト基、炭素数１から６の直鎖アルキルチオ基、アミノ基、炭素数１から６の直鎖アルキルアミノ基、核酸合成の保護基で保護されたアミノ基、およびハロゲン原子からなり、
Ａは、以下：

で表される二価の基であり、
Ｒ^１は、水素原子、分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルキル基、分岐または環を形成していてもよい炭素数２から７のアルケニル基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール部分を有するアラルキル基、または核酸合成のアミノ基の保護基を表し；
Ｒ^１３およびＲ^１４は、それぞれ独立して、水素原子；水酸基；分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルキル基；分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルコキシ基；アミノ基；および核酸合成の保護基で保護されたアミノ基；からなる群から選択される基であり；
ｍは、０から２の整数であり；
ｎは、０から１の整数であり；
Ｘは、酸素原子、硫黄原子、またはアミノ基である。

１つの実施形態では、上記式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造は、

で表される構造である。

１つの実施形態では、上記式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造は、上記式（Ｉ’）で表される構造であり、そして該式（Ｉ’）において、上記ｍは０であり、そして上記Ｒ^１は、水素原子、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、フェニル基、またはベンジル基である。

１つの実施形態では、上記オリゴヌクレオチドは、６〜１０塩基のギャップ領域、３〜５塩基の５’ウイングおよび３〜５塩基の３’ウイングからなるギャップマーであり、
該ギャップ領域が、該５’ウイングと該３’ウイングの間に位置づけられ、そして
該５’ウイングおよび該３’ウイングは、上記式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造を含む。

１つの実施形態では、上記ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤はＳＹＮＥ２の発現を抑制する。

本発明はまた、ＳＹＮＥ２発現抑制剤を含む、抗腫瘍剤を提供する。

１つの実施形態では、上記ＳＹＮＥ２発現抑制剤は、ＳＹＮＥ２と結合し得、該ＳＹＮＥ２の発現を抑制する活性を有する核酸分子を含む。

１つの実施形態では、上記抗腫瘍剤は、浸潤性または転移能のある腫瘍に対して用いられる抗腫瘍剤である。

１つの実施形態では、上記抗腫瘍剤は、膵癌、肺癌、卵巣癌または胃癌の治療または予防に用いられる抗腫瘍剤である。

本発明はさらに、上記抗腫瘍剤を含有する医薬組成物を提供する。

本発明によれば、核内非翻訳ＲＮＡの発現抑制が可能となる。本発明によって、核内非翻訳ＲＮＡであるｓｎｏＲＮＡの生体内における発現の抑制が可能となる。さらに、本発明によれば、癌の浸潤または転移に関与するｓｎｏＲＮＡの発現が抑制でき、その抗腫瘍効果に基づく治療剤を提供することができる。

Ｓｕｉｔ２およびＭＩＡＰａＣａ２癌細胞のＨＬＭＣ細胞および親細胞について、ｍＲＮＡおよび非翻訳ＲＮＡのｃＤＮＡマイクロアレイ解析の結果を示す図（図１ａ）、ならびにｑＲＴ−ＰＣＲによるＣＥＡｍＲＮＡ（図１ｂ）およびＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ（図１ｃ）の相対的発現量を示すグラフ；ならびに種々の膵癌細胞株、正常膵管上皮（ＮＰＤＥ）細胞、および癌関連線維芽細胞（ＣＡＦ）におけるＳＮＯＲＡ２３発現量を示すグラフ（図１ｄ）である。Ｓｕｉｔ２およびＭＩＡＰａＣａ２癌細胞のＨＬＭＣ細胞および親細胞ならびにＳＮＯＲＡ２３ノックダウン細胞を蛍光標識プローブでトランスフェクトしたもの標識蛍光顕微鏡画像である。ｑＲＴ−ＰＣＲ解析によるＰＤＡＣならびに正常な肝臓組織および膵臓組織におけるＳＮＯＲＡ２３の相対的発現についての箱ひげ図（ボックスプロット）である。カプラン・メイヤー法に従って作成した、ＳＮＯＲＡ２３高発現および低発現の各ＰＤＡＣ患者群についての無病生存率および全生存率のそれぞれの生存曲線を示すグラフである。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１でのトランスフェクション（「ＳＮ−ＡＳＯ＃１」）、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃２でのトランスフェクション（「ＳＮ−ＡＳＯ＃２」）、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合のｑＲＴ−ＰＣＲ解析によるＲＮＡの相対的発現量を示すグラフである。Ｓｕｉｔ２およびＭＩＡＰａＣａ２について、ＨＬＭＣ細胞（「ＨＬＭＣ」）および親細胞（「ＷＴ」）のｍａｔｒｉｇｅｌ浸潤アッセイの代表的な画像ならびに浸潤細胞数を示すグラフである。ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」）およびコントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のいずれかから４８時間後のＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞のｍａｔｒｉｇｅｌ浸潤アッセイの代表的な画像ならびに浸潤細胞数を示すグラフである。ＳＮＯＲＡ２３ｐＤＮＡのトランスフェクション（「ＳＮ−ＯＥ」）およびモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｍｏｃｋ」）のいずれかから７２時間後のＳｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２細胞のｍａｔｒｉｇｅｌ浸潤アッセイの代表的な画像ならびに浸潤細胞数を示すグラフである。Ｓｕｉｔ２およびＭＩＡＰａＣａ２につき、それらのＨＬＭＣ細胞（「ＨＬＭＣ」：四角）とその親細胞（「ＷＴ」：菱形）についての、足場依存性細胞増殖アッセイにおける細胞増殖の経時変化を示すグラフである。Ｓｕｉｔ２およびＭＩＡＰａＣａ２につき、それらのＨＬＭＣ細胞（「ＨＬＭＣ」）とその親細胞（「ＷＴ」）についての軟寒天コロニー形成アッセイの代表的な画像および形成されたコロニー数を示すグラフである。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣにつき、それらのＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」：四角）とコントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」：菱形）についての、足場依存性細胞増殖アッセイにおける細胞増殖の経時変化を示すグラフである。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣにつき、それらのＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」）とコントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）についての、軟寒天コロニー形成アッセイの代表的な画像および形成されたコロニー数を示すグラフである。Ｓｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２細胞につき、それらのＳＮＯＲＡ２３ｐＤＮＡでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＯＥ」：四角）とモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」：菱形）についての、足場依存性細胞増殖アッセイにおける細胞増殖の経時変化を示すグラフである。Ｓｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２細胞につき、それらのＳＮＯＲＡ２３ｐＤＮＡでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＯＥ」）とモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｍｏｃｋ」）についての軟寒天コロニー形成アッセイの代表的な画像およびその拡大画像である。Ｓｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２につき、それらのＳＮＯＲＡ２３ｐＤＮＡでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＯＥ」）とモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｍｏｃｋ」）についての全コロニーの数および大コロニー（１ｍｍを超える直径を有する）の数を示すグラフである。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞につき、（ａ）ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクション（ＳＮＯＲＡ−ＫＤ：四角）およびコントロールＡＳＯのトランスフェクション（Ｃｔｒｌ：菱形）ならびに（ｂ）ＬＧＲ５ｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（ＬＧＲ５−ＫＤ：四角）およびコントロールｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（Ｃｔｒｌ：菱形）についての、１日目（Ｄ１）〜４日目（Ｄ４）におけるスフェロイド形成変動を示すグラフである。ＡＳＯ移植前（「ＡＳＯ（−）」）、ＡＳＯエクスビボ移植（「ＡＳＯ（＋）エクスビボ」）を行った１週目（「１週」）および２週目（「２週」）、ならびにさらに皮下注射（「エクスビボ＋皮下注射」）を行ってから２週目（「２週」）および３週目（「３週」）の腫瘍組織におけるＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ発現量を示すグラフである。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞につき、それらのＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１で処理したマウス（「ＳＮ−ＫＤ」：四角）と、それらのコントロールマウス（「Ｃｔｒｌ」：菱形）とについての、ＩＶＩＳ画像化により測定したマウス全身のルシフェラーゼシグナル量の経日変化を示すグラフおよびシグナル分布を示す代表的な画像である。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞につき、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１で処理したマウス（「ＳＮ−ＫＤ」）と、コントロールマウス（「Ｃｔｒｌ」）とからそれぞれ採取した腫瘍組織のマトキシリンおよびエオシン染色後の試料の位相差顕微鏡写真および拡大写真である。ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞につき、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１で処理したマウス（ＳＮ−ＫＤ）と、コントロールマウス（Ｃｔｒｌ）とから切除した肝臓および膵臓のＩＶＩＳ画像化によるシグナル分布を示す代表的な画像および測定したルシフェラーゼシグナル量（フォトン／秒）を示すグラフである。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、それらのＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」）およびコントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合のｃＤＮＡマイクロアレイ解析のヒートマップ（Ａ）およびプロテオミクス解析のヒートマップ（Ｂ）を示す。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞においてＳＮＯＲＡ２３ノックダウンによりアップレギュレートされたタンパク質数およびダウンレギュレートされたタンパク質数について、スペクトルカウント法およびラベルフリー定量法を用いて調べた結果を示す模式図である。ラベルフリー定量法を用いて分析したプロテオミクスデータに関して、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、それらのＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」）およびコントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合のヒートマップを示す。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、それらの親細胞（ＷＴ）、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクション（「ＳＮＯＲＡＡＳＯ」）、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「ＣｔｒｌＡＳＯ」）および未処理の場合のそれぞれを行った場合のＳＹＮＥ２のウェスタンブロット、ならびにタンパク質の相対的発現量を示すグラフである。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、それらの親細胞（ＷＴ）および未処理（ＨＬＭＣ）の場合、ならびにＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１でのトランスフェクション（「ＳＮ−ＡＳＯ＃１」）、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃２でのトランスフェクション（「ＳＮ−ＡＳＯ＃２」）、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「ＣｔｒｌＡＳＯ」）および未処理の場合のそれぞれを行った場合のＳＹＮＥ２のｍＲＮＡ相対的発現量を示すグラフである。ＳＹＮＥ２ｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「ＳＹＮＥ２−ｓｉＲＮＡ」）およびコントロールｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」））のいずれかから４８時間後のＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞のｍａｔｒｉｇｅｌ浸潤アッセイの代表的な画像と、浸潤細胞数を示すグラフとを示す。ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯおよびＳＹＮＥ２ｐＤＮＡのトランスフェクション（「ＳＮＯＲＡ−ＡＳＯ＋ＳＹＮＥ２−ｐＤＮＡ」）、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯおよびモックｐＤＮＡトランスフェクション（「ＳＮＯＲＡ−ＡＳＯ＋Ｍｏｃｋ」）、ならびにコントロールＡＳＯおよびモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ−ＡＳＯ＋Ｍｏｃｋ」）のいずれかから４８時間後のＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞のｍａｔｒｉｇｅｌ浸潤アッセイの代表的な画像と、浸潤細胞数を示すグラフとを示す。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＹＮＥ２ｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「ＳＹＮＥ２−ｓｉＲＮＡ」）およびコントロールｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」））のそれぞれを行った場合の軟寒天コロニー形成アッセイの代表的な画像と、形成されたコロニー数を示すグラフとを示す。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＹＮＥ２ｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（ＳＹＮＥ２−ＫＤ；四角）およびコントロールｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（Ｃｔｒｌ：菱形）のそれぞれを行った場合についての、１日目（Ｄ１）〜４日目（Ｄ４）におけるスフェロイド形成変動を示すグラフである。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯおよびＳＹＮＥ２ｐＤＮＡのトランスフェクション（ＳＹＮＥ−ＯＥ＋ＳＮ−ＫＤ）、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯおよびモックｐＤＮＡトランスフェクション（ＳＮ−ＫＤ）、ならびにコントロールＡＳＯおよびモックｐＤＮＡトランスフェクション（Ｃｔｒｌ）のそれぞれを行った場合についての、１日目（Ｄ１）〜４日目（Ｄ４）におけるスフェロイド形成変動を示すグラフである。ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞、Ｈｓ７６６Ｔ細胞およびＳ２−０１３細胞の各細胞株について、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３でのトランスフェクション（「ＳＮ−ＡＳＯ＃３」）、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合のＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ発現（Ａ）およびＳＹＮＥ２ｍＲＮＡ発現（Ｂ）を示すグラフである。ＣＡＰＡＮ−２細胞、Ｈｓ７６６Ｔ細胞およびＳ２−０１３細胞の各細胞株につき、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３のトランスフェクション（×：「ＳＮ−ＡＳＯ＃３」）、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（菱形：「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合の足場依存性細胞増殖アッセイにおける細胞増殖（Ａ）およびスフェロイド形成（Ｂ）の経時変化を示すグラフである。ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞、Ｈｓ７６６Ｔ細胞およびＳ２−０１３細胞の各細胞株において、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３のトランスフェクション（（Ａ）「ＳＮＯＲＡ２３＃１５３」または（Ｂ）「ＡＮ−ＡＳＯ＃３」）、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合のトランスフェクションの４８時間後（ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞およびＨｓ７６６Ｔ細胞）または７２時間後（Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＳ２−０１３細胞）の細胞のmatrigel浸潤アッセイの代表的な画像（Ａ）および浸潤細胞数（Ｂ）を示すグラフである。

まず、本明細書中で用いられる用語を定義する。

本明細書において、用語「炭素数１から６の直鎖アルキル基」は、炭素数１から６の任意の直鎖アルキル基をいい、具体的にはメチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、ｎ−ブチル基、ｎ−ペンチル基、またはｎ−ヘキシル基をいう。

本明細書において、用語「炭素数１から６の直鎖アルコキシ基」は、炭素数１から６の任意の直鎖アルキル基を有するアルコキシ基を包含する。例えば、メチルオキシ基、エチルオキシ基、ｎ−プロピルオキシ基などが挙げられる。本明細書において、用語「炭素数１から６の直鎖または分岐鎖アルコキシ基」は、炭素数１から６の任意の直鎖または分岐鎖アルキル基を有するアルコキシ基を包含する。例えば、メチルオキシ基、エチルオキシ基、ｎ−プロピルオキシ基、イソプロピルオキシ基、ｎ−ブチルオキシ基、イソブチルオキシ基、ｔｅｒｔ−ブチルオキシ基、ｎ−ペンチルオキシ基、イソペンチルオキシ基などが挙げられる。

本明細書において、用語「炭素数１から６の直鎖アルキルチオ基」は、炭素数１から６の任意の直鎖アルキル基を有するアルキルチオ基を包含する。例えば、メチルチオ基、エチルチオ基、ｎ−プロピルチオ基などが挙げられる。本明細書において、用語「炭素数１から６の直鎖または分岐鎖アルキルチオ基」は、炭素数１から６の任意の直鎖または分岐鎖アルキル基を有するアルキルチオ基を包含する。例えば、メチルチオ基、エチルチオ基、ｎ−プロピルチオ基、イソプロピルチオ基、ｎ−ブチルチオ基、イソブチルチオ基、ｔｅｒｔ−ブチルチオ基、ｎ−ペンチルチオ基、イソペンチルチオ基などが挙げられる。

本明細書において、用語「炭素数１から６のシアノアルコキシ基」は、上記炭素数１から６の直鎖アルコキシ基を構成する少なくとも１つの水素原子がシアノ基で置換された基をいう。

本明細書において、用語「炭素数１から６の直鎖アルキルアミノ基」は、アミノ基を構成する水素原子の１つまたは２つが、炭素数１から６の直鎖アルキル基で置換された基を包含する。例えば、メチルアミノ基、ジメチルアミノ基、エチルアミノ基、メチルエチルアミノ基、ジエチルアミノ基などが挙げられる。本明細書において、用語「炭素数１から６の直鎖または分岐鎖アルキルアミノ基」は、アミノ基を構成する水素原子の１つまたは２つが、炭素数１から６の任意の直鎖または分岐鎖アルキル基で置換された基を包含する。例えば、メチルアミノ基、ジメチルアミノ基、エチルアミノ基、メチルエチルアミノ基、ジエチルアミノ基、ｎ−プロピルアミノ基、ジｎ−プロピルアミノ基、イソプロピルアミノ基、ジイソプロピルアミノ基などが挙げられる。

本明細書において、用語「分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルキル基」は、炭素数１から７の任意の直鎖アルキル基、炭素数３から７の任意の分岐鎖アルキル基、および炭素数３から７の任意の環状アルキル基を包含する。単に、「低級アルキル基」という場合もある。例えば、炭素数１から７の任意の直鎖アルキル基としては、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、ｎ−ブチル基、ｎ−ペンチル基、ｎ−ヘキシル基、およびｎ−ヘプチル基が挙げられ、炭素数３から７の任意の分岐鎖アルキル基としては、イソプロピル基、イソブチル基、ｔｅｒｔ−ブチル基、イソペンチル基などが挙げられ、そして炭素数３から７の任意の環状アルキル基としては、シクロブチル基、シクロペンチル基、シクロヘキシル基などが挙げられる。

本明細書において、用語「分岐または環を形成していてもよい炭素数２から７のアルケニル基」は、炭素数２から７の任意の直鎖アルケニル基、炭素数３から７の任意の分岐鎖アルケニル基、および炭素数３から７の任意の環状アルケニル基を包含する。単に、「低級アルケニル基」という場合もある。例えば、炭素数２から７の任意の直鎖アルケニル基としては、エテニル基、１−プロペニル基、２−プロペニル基、１−ブテニル基、２−ブテニル基、１−ペンテニル基、２−ペンテニル基、３−ペンテニル基、４−ペンテニル基、１−ヘキセニル基などが挙げられ、炭素数３から７の任意の分岐鎖アルケニル基としては、イソプロペニル基、１−メチル−１−プロペニル基、１−メチル−２−プロペニル基、２−メチル−１−プロペニル基、２−メチル−２−プロペニル基、１−メチル−２−ブテニル基などが挙げられ、そして炭素数３から７の任意の環状アルケニル基としては、シクロブテニル基、シクロペンテニル基、シクロヘキセニル基などが挙げられる。

本明細書において、用語「分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルコキシ基」は、炭素数１から７の任意の直鎖アルコキシ基、炭素数３から７の任意の分岐鎖アルコキシ基、および炭素数３から７の任意の環状アルコキシ基を包含する。単に、「低級アルコキシ基」という場合もある。例えば、炭素数１から７の任意の直鎖アルコキシ基としては、メトキシ基、エトキシ基、ｎ−プロポキシ基、ｎ−ブチロキシ、ｎ−ペンチルオキシ基、ｎ−ヘキシルオキシ基、およびｎ−ヘプチルオキシ基が挙げられ、炭素数３から７の任意の分岐鎖アルコキシ基としては、イソプロポキシ基、イソブチロキシ基、ｔｅｒｔ−ブチロキシ基、イソペンチルオキシ基などが挙げられ、そして炭素数３から７の任意の環状アルコキシ基としては、シクロブチロキシ基、シクロペンチルオキシ基、シクロヘキシルオキシ基などが挙げられる。

本明細書において、用語「ヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール基」は、炭化水素のみで構成された、炭素数６から１２の任意のアリール基と、当アリール基の環構造を構成する少なくとも１つの炭素原子がヘテロ原子（例えば、窒素原子、酸素原子、および硫黄原子、ならびにこれらの組合せ）で置換された、炭素数３から１２の任意のヘテロアリール基とを包含する。当該炭素数６から１２のアリール基としては、フェニル基、ナフチル基、インデニル基、アズレニル基などが挙げられ、そして当該炭素数３から１２の任意のヘテロアリール基としては、ピリジル基、ピロリル基、キノリル基、インドリル基、イミダゾリル基、フリル基、チエニル基などが挙げられる。

本明細書において、用語「ヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール部分を有するアラルキル基」の例としては、ベンジル基、フェネチル基、ナフチルメチル基、３−フェニルプロピル基、２−フェニルプロピル基、４−フェニルブチル基、２−フェニルブチル基、ピリジルメチル基、インドリルメチル基、フリルメチル基、チエニルメチル基、ピロリルメチル基、２−ピリジルエチル基、１−ピリジルエチル基、３−チエニルプロピル基などが挙げられる。

本明細書において、用語「アシル基」の例としては、脂肪族アシル基および芳香族アシル基が挙げられる。具体的には、脂肪族アシル基の例としては、ホルミル基、アセチル基、プロピオニル基、ブチリル基、イソブチリル基、ペンタノイル基、ピバロイル基、バレリル基、イソバレリル基、オクタノイル基、ノナノイル基、デカノイル基、３−メチルノナノイル基、８−メチルノナノイル基、３−エチルオクタノイル基、３，７−ジメチルオクタノイル基、ウンデカノイル基、ドデカノイル基、トリデカノイル基、テトラデカノイル基、ペンタデカノイル基、ヘキサデカノイル基、１−メチルペンタデカノイル基、１４−メチルペンタデカノイル基、１３，１３−ジメチルテトラデカノイル基、ヘプタデカノイル基、１５−メチルヘキサデカノイル基、オクタデカノイル基、１−メチルヘプタデカノイル基、ノナデカノイル基、アイコサノイル基およびヘナイコサノイル基のようなアルキルカルボニル基；スクシノイル基、グルタロイル基、アジポイル基のようなカルボキシ化アルキルカルボニル基；クロロアセチル基、ジクロロアセチル基、トリクロロアセチル基、トリフルオロアセチル基のようなハロゲノ低級アルキルカルボニル基；メトキシアセチル基のような低級アルコキシ低級アルキルカルボニル基；（Ｅ）−２−メチル−２−ブテノイル基のような不飽和アルキルカルボニル基が挙げられる。また、芳香族アシル基の例としては、ベンゾイル基、α−ナフトイル基、β−ナフトイル基のようなアリールカルボニル基；２−ブロモベンゾイル基、４−クロロベンゾイル基のようなハロゲノアリールカルボニル基；２，４，６−トリメチルベンゾイル基、４−トルオイル基のような低級アルキル化アリールカルボニル基；４−アニソイル基のような低級アルコキシ化アリールカルボニル基；２−カルボキシベンゾイル基、３−カルボキシベンゾイル基、４−カルボキシベンゾイル基のようなカルボキシ化アリールカルボニル基；４−ニトロベンゾイル基、２−ニトロベンゾイル基のようなニトロ化アリールカルボニル基；２−（メトキシカルボニル）ベンゾイル基のような低級アルコキシカルボニル化アリールカルボニル基；４−フェニルベンゾイル基のようなアリール化アリールカルボニル基などが挙げられる。好適には、ホルミル基、アセチル基、プロピオニル基、ブチリル基、イソブチリル基、ペンタノイル基、ピバロイル基、ベンゾイル基である。

本明細書において、用語「シリル基」の例としては、トリメチルシリル基、トリエチルシリル基、イソプロピルジメチルシリル基、ｔ−ブチルジメチルシリル基、メチルジイソプロピルシリル基、メチルジ−ｔ−ブチルシリル基、トリイソプロピルシリル基のようなトリ低級アルキルシリル基；ジフェニルメチルシリル基、ブチルジフェニルブチルシリル基、ジフェニルイソプロピルシリル基、フェニルジイソプロピルシリル基のような１〜２個のアリール基で置換されたトリ低級アルキルシリル基などが挙げられる。好適には、トリメチルシリル基、トリエチルシリル基、トリイソプロピルシリル基、ｔ−ブチルジメチルシリル基、ｔ−ブチルジフェニルシリル基であり、さらに好適にはトリメチルシリル基である。

本明細書において、用語「ハロゲン原子」としては、例えば、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、またはヨウ素原子が挙げられる。好適には、フッ素原子または塩素原子である。

本明細書において、用語「核酸合成のアミノ基の保護基」、「核酸合成の水酸基の保護基」、「核酸合成の保護基で保護された水酸基」、「核酸合成の保護基で保護されたリン酸基」、「核酸合成の保護基で保護されたメルカプト基」の「保護基」とは、核酸合成の際に安定してアミノ基、水酸基、リン酸基またはメルカプト基を保護し得るものであれば、特に制限されない。具体的には、酸性または中性条件で安定であり、加水素分解、加水分解、電気分解、および光分解のような化学的方法により開裂し得る保護基のことをいう。このような保護基としては、例えば、低級アルキル基、低級アルケニル基、アシル基、テトラヒドロピラニルまたはテトラヒドロチオピラニル基、テトラヒドロフラニルまたはテトラヒドロチオフラニル基、シリル基、低級アルコキシメチル基、低級アルコキシ化低級アルコキシメチル基、ハロゲノ低級アルコキシメチル基、低級アルコキシ化エチル基、ハロゲン化エチル基、１〜３個のアリール基で置換されたメチル基、「低級アルキル基、低級アルコキシ基、ハロゲン原子またはシアノ基でアリール環が置換された１〜３個のアリール基で置換されたメチル基」、低級アルコキシカルボニル基、「ハロゲン原子、低級アルコキシ基またはニトロ基で置換されたアリール基」、「ハロゲン原子またはトリ低級アルキルシリル基で置換された低級アルコキシカルボニル基」、アルケニルオキシカルボニル基、「低級アルコキシまたはニトロ基でアリール環が置換されていてもよいアラルキルオキシカルボニル基」、「シアノ基で置換された低級アルコキシカルボニル基」、「１〜４個のニトロ基で置換されたベンゼンスルホニル基」などが挙げられる。

より具体的には、テトラヒドロピラニル基またはテトラヒドロチオピラニル基としては、テトラヒドロピラン−２−イル基、３−ブロモテトラヒドロピラン−２−イル基、４−メトキシテトラヒドロピラン−４−イル基、テトラヒドロチオピラン−４−イル基、４−メトキシテトラヒドロチオピラン−４−イル基などが挙げられる。テトラヒドロフラニル基またはテトラヒドロチオフラニル基としては、テトラヒドロフラン−２−イル基、テトラヒドロチオフラン−２−イル基が挙げられる。低級アルコキシメチル基としては、メトキシメチル基、１，１−ジメチル−１−メトキシメチル基、エトキシメチル基、プロポキシメチル基、イソプロポキシメチル基、ブトキシメチル基、ｔ−ブトキシメチル基などが挙げられる。低級アルコキシ化低級アルコキシメチル基としては、２−メトキシエトキシメチル基などが挙げられる。ハロゲノ低級アルコキシメチル基としては、２，２，２−トリクロロエトキシメチル基、ビス（２−クロロエトキシ）メチル基などが挙げられる。低級アルコキシ化エチル基としては、１−エトキシエチル基、１−（イソプロポキシ）エチル基などが挙げられる。ハロゲン化エチル基としては、２，２，２−トリクロロエチル基などが挙げられる。１〜３個のアリール基で置換されたメチル基としては、ベンジル基、α−ナフチルメチル基、β−ナフチルメチル基、ジフェニルメチル基、トリフェニルメチル基、α−ナフチルジフェニルメチル基、９−アンスリルメチル基などが挙げられる。「低級アルキル基、低級アルコキシ基、ハロゲン原子またはシアノ基でアリール環が置換された１〜３個のアリール基で置換されたメチル基」としては、４−メチルベンジル基、２，４，６−トリメチルベンジル基、３，４，５−トリメチルベンジル基、４−メトキシベンジル基、４−メトキシフェニルジフェニルメチル基、４，４’−ジメトキシトリフェニルメチル基、２−ニトロベンジル基、４−ニトロベンジル基、４−クロロベンジル基、４−ブロモベンジル基、４−シアノベンジル基などが挙げられる。低級アルコキシカルボニル基としては、メトキシカルボニル基、エトキシカルボニル基、ｔ−ブトキシカルボニル基、イソブトキシカルボニル基などが挙げられる。「ハロゲン原子、低級アルコキシ基またはニトロ基で置換されたアリール基」としては、４−クロロフェニル基、２−フロロフェニル基、４−メトキシフェニル基、４−ニトロフェニル基、２，４−ジニトロフェニル基などが挙げられる。「ハロゲン原子またはトリ低級アルキルシリル基で置換された低級アルコキシカルボニル基」としては、２，２，２−トリクロロエトキシカルボニル基、２−トリメチルシリルエトキシカルボニル基などが挙げられる。アルケニルオキシカルボニル基としては、ビニルオキシカルボニル基、アリールオキシカルボニル基などが挙げられる。「低級アルコキシまたはニトロ基でアリール環が置換されていてもよいアラルキルオキシカルボニル基」としては、ベンジルオキシカルボニル基、４−メトキシベンジルオキシカルボニル基、３，４−ジメトキシベンジルオキシカルボニル基、２−ニトロベンジルオキシカルボニル基、４−ニトロベンジルオキシカルボニル基などが挙げられる。「シアノ基で置換された低級アルコキシカルボニル基」としては、シアノエトキシカルボニル基などが挙げられる。「１〜４個のニトロ基で置換されたベンゼンスルホニル基」としては、２−ニトロベンゼンスルホニル基、２，４−ジニトロベンゼンスルホニル基などが挙げられる。

「核酸合成の水酸基の保護基」としては、好適には、脂肪族アシル基、芳香族アシル基、１〜３個のアリール基で置換されたメチル基、「低級アルキル、低級アルコキシ、ハロゲン、シアノ基でアリール環が置換された１〜３個のアリール基で置換されたメチル基」、またはシリル基であり、さらに好適には、アセチル基、ベンゾイル基、ベンジル基、ｐ−メトキシベンゾイル基、ジメトキシトリチル基、モノメトキシトリチル基またはｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル基である。「核酸合成の保護基で保護された水酸基」の保護基としては、好適には、脂肪族アシル基、芳香族アシル基、「１〜３個のアリール基で置換されたメチル基」、「ハロゲン原子、低級アルコキシ基またはニトロ基で置換されたアリール基」、低級アルキル基、または低級アルケニル基であり、さらに好適には、ベンゾイル基、ベンジル基、２−クロロフェニル基、４−クロロフェニル基または２−プロペニル基である。「核酸合成のアミノ基の保護基」としては、好適には、アシル基であり、さらに好適には、ベンゾイル基である。「核酸合成の保護基で保護されたリン酸基」の「保護基」としては、好適には、低級アルキル基、シアノ基で置換された低級アルキル基、アラルキル基、「ニトロ基またはハロゲン原子でアリール環が置換されたアラルキル基」または「低級アルキル基、ハロゲン原子、またはニトロ基で置換されたアリール基」であり、さらに好適には、２−シアノエチル基、２，２，２−トリクロロエチル基、ベンジル基、２−クロロフェニル基または４−クロロフェニル基である。「核酸合成の保護基で保護されたリン酸基」を構成する保護基は１つまたはそれ以上であり得る。「核酸合成の保護基で保護されたメルカプト基」の「保護基」としては、好適には、脂肪族アシル基または芳香族アシル基であり、さらに好適には、ベンゾイル基である。

本明細書において、−Ｐ（Ｒ^２４）Ｒ^２５［式中、Ｒ^２４およびＲ^２５は、それぞれ独立して、水酸基、核酸合成の保護基で保護された水酸基、メルカプト基、核酸合成の保護基で保護されたメルカプト基、アミノ基、炭素数１から６の直鎖または分岐鎖アルコキシ基、炭素数１から６の直鎖または分岐鎖アルキルチオ基、炭素数１から６のシアノアルコキシ基、または炭素数１から６の直鎖または分岐鎖アルキルアミノ基を表す］で表される基のうち、Ｒ^２４がＯＲ^２４ａそしてＲ^２５がＮＲ^２５ａとして表すことができる基は、「ホスホロアミダイト基」という。ホスホロアミダイト基としては、好適には、式−Ｐ（ＯＣ_２Ｈ_４ＣＮ）（Ｎ（ｉＰｒ）_２）で表される基、または式−Ｐ（ＯＣＨ_３）（Ｎ（ｉＰｒ）_２）で表される基が挙げられる。ここで、ｉＰｒはイソプロピル基を表す。

本明細書において、用語「ヌクレオシド」は、プリンまたはピリミジン塩基と糖とが結合した「ヌクレオシド」、ならびに、プリンおよびピリミジン以外の芳香族複素環および芳香族炭化水素環でプリンまたはピリミジン塩基との代用が可能なものと糖が結合した「ヌクレオシド」を含む。天然型のヌクレオシドを「天然ヌクレオシド」ともいう。修飾された非天然型のヌクレオシドを「修飾ヌクレオシド」ともいい、特に糖部分が修飾されたヌクレオチドを「糖修飾ヌクレオシド」という。「ヌクレオチド」とは、ヌクレオシドの糖にリン酸基が結合した化合物を意味する。

本明細書において、用語「オリゴヌクレオチド」とは、同一または異なる「ヌクレオシド」がリン酸ジエステル結合または他の結合で２〜５０個結合した「ヌクレオチド」のポリマーであり、天然型のものと非天然型のものを含む。非天然型の「オリゴヌクレオチド」としては、好適には、糖部分が修飾された糖誘導体；リン酸ジエステル部分がチオエート化されたチオエート誘導体；末端のリン酸部分がエステル化されたエステル体；プリン塩基上のアミノ基がアミド化されたアミド体が挙げられ、さらに好適には、糖部分が修飾された糖誘導体が挙げられる。

本明細書において、用語「その塩」とは、後述の式（ＩＩ）で表される化合物の塩をいう。そのような塩としては、例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、リチウム塩のようなアルカリ金属塩、カルシウム塩、マグネシウム塩のようなアルカリ土類金属塩、アルミニウム塩、鉄塩、亜鉛塩、銅塩、ニッケル塩、コバルト塩などの金属塩；アンモニウム塩のような無機塩、ｔ−オクチルアミン塩、ジベンジルアミン塩、モルホリン塩、グルコサミン塩、フェニルグリシンアルキルエステル塩、エチレンジアミン塩、Ｎ−メチルグルカミン塩、グアニジン塩、ジエチルアミン塩、トリエチルアミン塩、ジシクロヘキシルアミン塩、Ｎ，Ｎ’−ジベンジルエチレンジアミン塩、クロロプロカイン塩、プロカイン塩、ジエタノールアミン塩、Ｎ−ベンジル−フェネチルアミン塩、ピペラジン塩、テトラメチルアンモニウム塩、トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン塩のような有機塩等のアミン塩；フッ化水素酸塩、塩酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩のようなハロゲン原子化水素酸塩、硝酸塩、過塩素酸塩、硫酸塩、リン酸塩等の無機酸塩；メタンスルホン酸塩、トリフルオロメタンスルホン酸塩、エタンスルホン酸塩のような低級アルカンスルホン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、ｐ−トルエンスルホン酸塩のようなアリールスルホン酸塩、酢酸塩、リンゴ酸塩、フマル酸塩、コハク酸塩、クエン酸塩、酒石酸塩、シュウ酸塩、マレイン酸塩等の有機酸塩；および、グリシン塩、リジン塩、アルギニン塩、オルニチン塩、グルタミン酸塩、アスパラギン酸塩のようなアミノ酸塩が挙げられる。

本明細書において、用語「その薬理学上許容される塩」とは、本発明の式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造を少なくとも１つ含有するオリゴヌクレオチド類縁体の塩であって、本発明のオリゴヌクレオチドの生理学的におよび製薬上許容される塩、すなわち、当該オリゴヌクレオチドの所望される生物学的な活性を保持し、そこで望まれない毒物学的効果を与えない塩のことをいう。そのような塩としては、例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、リチウム塩のようなアルカリ金属塩、カルシウム塩、マグネシウム塩のようなアルカリ土類金属塩、アルミニウム塩、鉄塩、亜鉛塩、銅塩、ニッケル塩、コバルト塩などの金属塩；アンモニウム塩のような無機塩、ｔ−オクチルアミン塩、ジベンジルアミン塩、モルホリン塩、グルコサミン塩、フェニルグリシンアルキルエステル塩、エチレンジアミン塩、Ｎ−メチルグルカミン塩、グアニジン塩、ジエチルアミン塩、トリエチルアミン塩、ジシクロヘキシルアミン塩、Ｎ，Ｎ’−ジベンジルエチレンジアミン塩、クロロプロカイン塩、プロカイン塩、ジエタノールアミン塩、Ｎ−ベンジル−フェネチルアミン塩、ピペラジン塩、テトラメチルアンモニウム塩、トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン塩のような有機塩等のアミン塩；フッ化水素酸塩、塩酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩のようなハロゲン原子化水素酸塩、硝酸塩、過塩素酸塩、硫酸塩、リン酸塩等の無機酸塩；メタンスルホン酸塩、トリフルオロメタンスルホン酸塩、エタンスルホン酸塩のような低級アルカンスルホン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、ｐ−トルエンスルホン酸塩のようなアリールスルホン酸塩、酢酸塩、リンゴ酸塩、フマル酸塩、コハク酸塩、クエン酸塩、酒石酸塩、シュウ酸塩、マレイン酸塩等の有機酸塩；および、グリシン塩、リジン塩、アルギニン塩、オルニチン塩、グルタミン酸塩、アスパラギン酸塩のようなアミノ酸塩が挙げられる。

以下、本発明について詳述する。

本発明は、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤を含む、抗腫瘍剤を提供する。本発明の１つの実施形態では、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤は、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子と結合し得、該ＳＮＯＲＡ２３の発現を抑制する活性を有する核酸分子を含む。本明細書において、「ＳＮＯＲＡ２３遺伝子との結合」とは、例えば、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子への直接結合、およびＳＮＯＲＡ２３遺伝子より発現したＲＮＡへの結合が挙げられる。「ＳＮＯＲＡ２３遺伝子と結合し得、該ＳＮＯＲＡ２３の発現を抑制する活性」とは、例えば、発現抑制剤が、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子より発現したノンコーディングＲＮＡであるＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡに結合し、次いで当該ＲＮＡをＲＮａｓｅＨの働きにより分解した結果、ＳＮＯＲＡ２３の発現ＲＮＡ量が抑制されることを包含する。

ここで、「結合し得る」とは、異なる複数の１本鎖のオリゴヌクレオチドまたは核酸が、核酸塩基の相補性により２本鎖以上の鎖の核酸を形成し得ることをいう。好適には、２本鎖の核酸を形成し得ることをいう。結合の熱安定性の指標である２本鎖以上の鎖の核酸の融解温度（Ｔ_ｍ）は特に限定されない。２本鎖核酸の融解温度（Ｔ_ｍ）は、例えば、下記のように決定され得る：緩衝液（８．１ｍＭＮａ_２ＨＰＯ_４，２．６８ｍＭＫＣｌ，１．４７ｍＭＫＨ_２ＰＯ_４，ｐＨ７．２）中で、オリゴヌクレオチドと標的ＲＮＡとを等モル混合し、９５℃にて５分間加熱後、室温まで徐冷してアニーリングさせ、２本鎖核酸を形成させる。２本鎖核酸の温度を２０℃から９５℃まで０．５℃／分の速度で加温していき、２６０ｎｍにおける吸光度（Ａ）の温度（Ｔ）による変化を測定し、この測定結果よりｄＡ／ｄＴｖｓＴのグラフを描き、ｄＡ／ｄＴの値が最も大きくなる温度、つまりＡのＴによる変化が最も大きくなる温度を、２本鎖核酸のＴ_ｍとする。融解温度（Ｔ_ｍ）は、例えば、４０℃以上であり、好ましくは５０℃以上である。

本明細書においては「相補的」とは、異なる２つの１本鎖のオリゴヌクレオチドまたは核酸が２本鎖核酸を形成することができる対合関係にあることをいう。好ましくは、２本鎖を形成する領域の塩基配列が完全に相補性を有するが、当該２本鎖核酸を形成し得、発現抑制効果作用を有する限り、１もしくは数個のミスマッチを有し得る。１もしくは数個のミスマッチとは、オリゴヌクレオチドの長さに依存し得るが、１〜４個、好ましくは１〜３個、さらに好ましくは１または２個のミスマッチを意味している。本発明のオリゴヌクレオチドは、好ましくは、２本鎖を形成する領域の塩基配列に対して完全に（１００％）相補性を有するものである。

このように、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子と結合し得、かつ該ＳＮＯＲＡ２３遺伝子の発現を抑制する活性を有する核酸分子として、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチド（ＡＳＯ）、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、ＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッドもしくはキメラオリゴヌクレオチド、アプタマーなどが挙げられる。アンチセンスオリゴヌクレオチド（ＡＳＯ）とは、標的遺伝子のＲＮＡ／ＤＮＡと結合し得、当該標的遺伝子の発現を抑制する活性を有し、そしてその標的遺伝子のＲＮＡ／ＤＮＡの配列に相補的である一本鎖オリゴヌクレオチドをいう。ｓｉＲＮＡ（ｓｍａｌｌｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇＲＮＡ）とは、通常２１〜２３塩基対からなる低分子二本鎖ＲＮＡである。ｓｉＲＮＡは、ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）と呼ばれる現象に関与しており、ｍＲＮＡの破壊によって配列特異的に遺伝子の発現を抑制し得る。ｓｈＲＮＡ（ｓｍａｌｌｈａｉｒｐｉｎＲＮＡ：小ヘアピンＲＮＡもしくはｓｈｏｒｔｈａｉｒｐｉｎＲＮＡ：短ヘアピンＲＮＡ）とは、ＲＮＡ干渉による遺伝子サイレンシングのために用いられるヘアピン型のＲＮＡ配列である。また、標的遺伝子の発現を阻害するＤＮＡとＲＮＡとからなる２本鎖オリゴヌクレオチド（例えば、特開２００３−２１９８９３号公報）は、２本鎖の一方がＤＮＡで、他方がＲＮＡであるＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッドであっても、同じ鎖の一部がＤＮＡで、他の部分がＲＮＡであるＤＮＡ／ＲＮＡキメラであってもよい。このような２本鎖オリゴヌクレオチドは、好ましくは１９〜２５塩基対、より好ましくは１９〜２３塩基対、さらに好ましくは１９〜２１塩基対の長さである。ＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッドの場合は、センス鎖がＤＮＡであり、アンチセンス鎖がＲＮＡであるものが好ましく、また、ＤＮＡ／ＲＮＡキメラの場合は、二本鎖オリゴヌクレオチドの上流側の一部がＲＮＡであるものが好ましい。このようなオリゴヌクレオチドは、公知の化学合成法に従って、任意の配列を有するものとして作製され得る。アプタマーとは、特定の分子と特異的に結合する核酸分子またはペプチドを総称していい、核酸はＲＮＡまたはＤＮＡのいずれでもよい。

ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤は、配列番号１の任意の一部である標的領域と結合し得る。上記標的領域は、ヒトＳＮＯＲＡ２３において、特に、ＳＮＯＲＡ２３の発現を抑制する活性またはノックダウン活性に関連する領域であることが好ましい。標的領域は、例えば、１２〜２５塩基長、好ましくは１２〜２３塩基長、より好ましくは１３〜２３塩基長、より好ましくは１４〜２３塩基長、特に好ましくは１５〜２３塩基長、特に好ましくは１５〜２０塩基長の領域であり得る。核酸分子またはオリゴヌクレオチドが「標的領域と結合」とは、当該核酸分子またはオリゴヌクレオチドが標的領域全体と必ずしも２本以上の鎖（好ましくは２本鎖）を形成する必要はなく、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子の発現を抑制する活性またはノックダウン活性を発揮する限り、標的領域の一部である領域と２本以上の鎖（好ましくは２本鎖）を形成するものであってもよい。ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤の核酸分子は、例えば、標的領域と相補的であり、好ましくは完全な相補性を有する。

本発明の１つの実施形態では、核酸分子は、配列番号１に示されるＳＮＯＲＡ２３遺伝子の塩基配列の一部である標的領域に相補的でありかつ１２〜２０塩基の長さであるオリゴヌクレオチド、またはその薬理学上許容される塩を含む。この「標的領域に相補的」とは、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子上の標的領域に相補的である場合、および、当該標的領域に対応するＲＮＡ上の領域の塩基と相補的である場合の両方またはいずれか一方を含む。このようなオリゴヌクレオチド（例えば、アンチセンスオリゴヌクレオチド）は、例えば１２〜２０塩基、好ましくは１３〜２０塩基、より好ましくは１４〜２０塩基、特に好ましくは１５〜１８塩基の長さである。オリゴヌクレオチドが上記のような長さであることにより、核内非翻訳ＲＮＡであるＳＮＯＲＡ２３遺伝子への結合および核内非翻訳ＲＮＡ発現抑制（例えば、ノックダウン）をより効果的に行い得る。

標的領域として、例えば、配列番号１の１位から３５位まで、７１位から１００位まで、１３１位から１７０位までの領域の中の１２〜２０塩基の連続した配列からなる領域が選択され得る。

ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤のオリゴヌクレオチドの塩基配列としては、例えば、下記の配列が挙げられる：
ｇａｔｇａａａｃｃｔａｔｇｃａ（配列番号２）；
ｇｃｃａｇｔｇｇｔａｇａｔｇｔ（配列番号３）；
ｔｇｇｃｃａｇｔｇｇｔａｇａｔ（配列番号４）。

配列番号２のオリゴヌクレオチドは、配列番号１に示されるＳＮＯＲＡ２３遺伝子の塩基配列の５’末端部位から１９番目〜３３番目の領域を標的とし、当該領域の塩基配列に対して相補的な配列を有するアンチセンスオリゴヌクレオチドであり得る。配列番号３のオリゴヌクレオチドは、配列番号１に示されるＳＮＯＲＡ２３遺伝子の塩基配列の５’末端部位から１５１番目〜１６５番目の領域を標的とし、当該領域の塩基配列に対して相補的な配列を有するアンチセンスオリゴヌクレオチドであり得る。配列番号４のオリゴヌクレオチドは配列番号１に示されるＳＮＯＲＡ２３遺伝子の塩基配列の５’末端部位から１５３番目〜１６７番目の領域を標的とし、当該領域の塩基配列に対して相補的な配列を有するアンチセンスオリゴヌクレオチドであり得る。配列番号２〜４の各塩基配列は５’から３’方向（５’→３’）で表したものであり、配列番号１中の各標的領域配列に対する逆相補配列である。

ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制活性（ノックダウン活性）は、公知の方法（例えば、定量的逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（ｑＲＴ−ＰＣＲ））により測定することが可能である。

本発明において「オリゴヌクレオチド」は、天然に存在するＤＮＡまたはＲＮＡが化学的に修飾されたオリゴヌクレオチドを含む。このような修飾は、オリゴヌクレオチドの活性を変更する。例えば、標的核酸に対する親和性を高め、核酸分解酵素（ヌクレアーゼ）に対する耐性を高め、オリゴヌクレオチドの薬物動態または組織分布を変更する。その標的に対するオリゴヌクレオチドの親和性を高めることにより、より短いオリゴヌクレオチドの使用を可能にし得る。

１つの実施形態では、本発明のオリゴヌクレオチドまたはその薬理学上許容される塩は、糖修飾部分を含む１個または２個以上のヌクレオチドを含む。本発明は、下述するようなオリゴヌクレオチドおよびその薬理学上許容され得る塩を包含する。

本発明のオリゴヌクレオチドは、糖修飾ヌクレオシドを任意の位置に少なくとも１つ含む。この糖修飾ヌクレオシドは、その糖環の２位と４位との間で所定の架橋を有する。本発明における糖修飾ヌクレオシドについて、以下に説明する。

本発明における糖修飾ヌクレオシドは、以下の式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造：

（ここで、
Ｂａｓｅは、α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよいプリン−９−イル基、またはα群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよい２−オキソ−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基を表し、ここで、該α群は、水酸基、核酸合成の保護基で保護された水酸基、炭素数１から６の直鎖アルキル基、炭素数１から６の直鎖アルコキシ基、メルカプト基、核酸合成の保護基で保護されたメルカプト基、炭素数１から６の直鎖アルキルチオ基、アミノ基、炭素数１から６の直鎖アルキルアミノ基、核酸合成の保護基で保護されたアミノ基、およびハロゲン原子からなり、
Ａは、以下：

で表される二価の基であり、
Ｒ^１は、水素原子、分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルキル基、分岐または環を形成していてもよい炭素数２から７のアルケニル基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール部分を有するアラルキル基、または核酸合成のアミノ基の保護基を表し；
Ｒ^１は、水素原子、分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルキル基、分岐または環を形成していてもよい炭素数２から７のアルケニル基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール部分を有するアラルキル基、または核酸合成のアミノ基の保護基を表し；
Ｒ^１３およびＲ^１４は、それぞれ独立して、水素原子；水酸基；分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルキル基；分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルコキシ基；アミノ基；および核酸合成の保護基で保護されたアミノ基；からなる群から選択される基であり；
ｍは、０から２の整数であり；
ｎは、０から１の整数であり；
Ｘは、酸素原子、硫黄原子、またはアミノ基であり；そして
該オリゴヌクレオチドが、核内非翻訳ＲＮＡに結合して発現を抑制し得、該核内非翻訳ＲＮＡの配列に相補的であり、そして１２〜２０塩基の長さである。）
を含む。

で表される構造である。式（Ｉ’）および（Ｉ”）中のＢａｓｅ、Ｒ^１、Ｘ、ｍおよびｎは、上述したとおりである。

式（Ｉ’）および（Ｉ”）において、Ｒ^１は、水素原子、分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルキル基、分岐または環を形成していてもよい炭素数２から７のアルケニル基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール基、または該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール部分を有するアラルキル基である。より好適には、Ｒ^１は、水素原子、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、フェニル基、またはベンジル基であり、さらに好適には、Ｒ^１は、水素原子またはメチル基である。

式（Ｉ’）において、ｍは、０から２の整数であり；そして式（Ｉ”）において、ｎは、０から１の整数である。すなわち、２’位、３’位、４’位、および架橋部を含む環は、５員環〜７員環である。

式（Ｉ”）において、Ｘは、酸素原子、硫黄原子、アミノ基、またはメチレン基である。好適には、Ｘは、酸素原子またはアミノ基である。なお、Ｘがアミノ基またはメチレン基である場合、低級アルキル基で置換されていてもよい。

１つの実施形態では、上記式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造は、上記式（Ｉ’）で表される構造であり、そしてこの式（Ｉ’）において、ｍは０であり、そしてＲ^１は、水素原子、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、フェニル基、またはベンジル基である。このようなヌクレオシド構造を、アミド架橋型核酸、アミドＢＮＡ（Bridged Nucleic Acid）、またはＡｍＮＡともいう。

式（Ｉ’）および（Ｉ”）にてそれぞれ表される化合物においては、糖部の２’位のアミノ基と４’位から伸長したカルボニル基との間にアミド結合が形成されている。このように、構造的に揺らぎが少なくかつ親水性に優れるアミド結合を有するため、ヌクレオシドの糖部の構造が、架橋により固定化されている。

上記式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造としては、上記式（Ｉ’）および（Ｉ”）に加えて、例えば、以下の式（ＩＩ）が挙げられる：

上記式（ＩＩ）中、Ｂａｓｅ、Ｒ^１３およびＲ^１４は上述したとおりである。ここで、Ｒ^１３およびＲ^１４がともに水素原子である場合、２’，４’−ＢＮＡまたはＬＮＡ（Locked Nucleic Acid）（本明細書においては、「２’，４’−ＢＮＡ／ＬＮＡ」または単に「ＬＮＡ」ともいう）と称される核酸に該当する。

上記「Ｂａｓｅ」は、プリン塩基（すなわち、プリン−９−イル基）またはピリミジン塩基（すなわち、２−オキソ−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基）である。これらの塩基は、水酸基、炭素数１から６の直鎖アルキル基、炭素数１から６の直鎖アルコキシ基、メルカプト基、炭素数１から６の直鎖アルキルチオ基、アミノ基、炭素数１から６の直鎖アルキルアミノ基、およびハロゲン原子からなるα群より選択される任意の置換基を１以上有していてもよい。

上記「Ｂａｓｅ」の具体例としては、アデニニル基、グアニニル基、シトシニル基、ウラシリル基、およびチミニル基、ならびに６−アミノプリン−９−イル基、２，６−ジアミノプリン−９−イル基、２−アミノ−６−クロロプリン−９−イル基、２−アミノ−６−フルオロプリン−９−イル基、２−アミノ−６−ブロモプリン−９−イル基、２−アミノ−６−ヒドロキシプリン−９−イル基、６−アミノ−２−メトキシプリン−９−イル基、６−アミノ−２−クロロプリン−９−イル基、６−アミノ−２−フルオロプリン−９−イル基、２，６−ジメトキシプリン−９−イル基、２，６−ジクロロプリン−９−イル基、６−メルカプトプリン−９−イル基、２−オキソ−４−アミノ−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基、４−アミノ−２−オキソ−５−フルオロ−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基、４−アミノ−２−オキソ−５−クロロ−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基、２−オキソ−４−メトキシ−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基、２−オキソ−４−メルカプト−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基、２−オキソ−４−ヒドロキシ−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基、２−オキソ−４−ヒドロキシ−５−メチル−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基、および４−アミノ−５−メチル−２−オキソ−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基が挙げられる。

中でも、「Ｂａｓｅ」は、核酸医薬への導入という観点から、以下の構造式：

でそれぞれ表される基（すなわち、チミニル基、シトシニル基、アデニニル基、グアニニル基、５−メチルシトシニル基およびウラシリル基）、ならびに２−オキソ−４−ヒドロキシ−５−メチル−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基、２−オキソ−４−アミノ−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基、６−アミノプリン−９−イル基、２−アミノ−６−ヒドロキシプリン−９−イル基、４−アミノ−５−メチル−２−オキソ−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基、および２−オキソ−４−ヒドロキシ−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基が好適であり、特に、２−オキソ−４−ヒドロキシ−５−メチル−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基およびチミニル基が好適である。また、オリゴヌクレオチドの合成の際には、水酸基およびアミノ基が保護基により保護されていることが好ましい。

上記のような糖修飾ヌクレオシド構造を少なくとも１つ含むオリゴヌクレオチドは、例えば、糖修飾ヌクレオシド化合物を用いて、例えば、国際公開第２０１１／０５２４３６号、特開２０１４−０４３４６２号公報および国際公開第２０１４／０４６２１２号に記載されるような方法を用いて合成することができる。

糖修飾ヌクレオシド化合物の例としては、以下の式（ＩＩＩ）で表される化合物またはその塩：

で表される二価の基であり、
Ｒ^１は、水素原子、分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルキル基、分岐または環を形成していてもよい炭素数２から７のアルケニル基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール部分を有するアラルキル基、または核酸合成のアミノ基の保護基を表し；
Ｒ^１３およびＲ^１４は、それぞれ独立して、水素原子；水酸基；分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルキル基；分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルコキシ基；アミノ基；および核酸合成の保護基で保護されたアミノ基；からなる群から選択される基であり；
ｍは、０から２の整数であり；
ｎは、０から１の整数であり；
Ｘは、酸素原子、硫黄原子、またはアミノ基であり；そして
Ｒ^２２およびＲ^２３は、それぞれ独立して、水素原子、核酸合成の水酸基の保護基、分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルキル基、分岐または環を形成していてもよい炭素数２から７のアルケニル基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール部分を有するアラルキル基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよいアシル基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよいシリル基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよいリン酸基、核酸合成の保護基で保護されたリン酸基、−Ｐ（Ｒ^２４）Ｒ^２５［式中、Ｒ^２４およびＲ^２５は、それぞれ独立して、水酸基、核酸合成の保護基で保護された水酸基、メルカプト基、核酸合成の保護基で保護されたメルカプト基、アミノ基、炭素数１から５のアルコキシ基、炭素数１から５のアルキルチオ基、炭素数１から６のシアノアルコキシ基、または炭素数１から６のアルキル基で置換されたアミノ基を表す］を表す）
が挙げられる。

上記のような糖修飾ヌクレオシドから、糖修飾ヌクレオチドを容易に調製することができる。例えば、三リン酸化は、M. Kuwaharaら、Nucleic Acids Res.，2008，vol.36, No.13，pp.4257−65に記載の方法に従って容易に行われ得る。

核内非翻訳ＲＮＡは、ノンコーディングＲＮＡの１つであり、核内に存在し、タンパク質へ翻訳されずに機能するＲＮＡをいう。このような核内非翻訳ＲＮＡである核小体小分子ＲＮＡ（ｓｎｏＲＮＡ）は、リボソームＲＮＡおよびその他のＲＮＡの化学修飾（例えば、メチル化、シュードウリジン化）を導く小さなＲＮＡ分子の一群である。ｓｎｏＲＮＡは核内の核小体に局在し、タンパク質と複合体（核小体低分子リボ核酸蛋白質（ｓｎｏＲＮＰ））を形成し、ＲＮＡ分子の修飾を触媒し得る。ｓｎｏＲＮＡは、その配列によって主にｂｏｘＣ／ＤとｂｏｘＨ／ＡＣＡの２種に分けられている。ｓｎｏＲＮＡの配列情報は遺伝子データベース（例えば、米国国立生物工学情報センター（ＮＣＢＩ）によるＧｅｎＢａｎｋ、国立大学法人宮崎大学のｓｎＯＰＹ等）から入手可能である。

ＳＮＯＲＡ２３は、「ＡＣＡ２３ｓｎｏＲＮＡ」または「ｓｍａｌｌｎｕｃｌｅｏｌａｒＲＮＡ，Ｈ／ＡＣＡｂｏｘ２３」として同定された核小体小分子ＲＮＡである。ヒトＳＮＯＲＡ２３遺伝子の塩基配列情報は、ＧｅｎＢａｎｋ登録番号：ＡＪ６０９４３８（「ＨｏｍｏｓａｐｉｅｎｃｅＡＣＡ２３ｓｎｏＲＮＡｇｅｎｅ」）、ＮＣＢＩ参照配列登録番号：ＮＲ＿００２９６２（ＨｏｍｏｓａｐｉｅｎｓｓｍａｌｌｎｕｃｌｅｏｌａｒＲＮＡ，Ｈ／ＡＣＡｂｏｘ２３（ＳＮＯＲＡ２３），ｓｍａｌｌｎｕｃｌｅｏｌａｒＲＮＡ）により入手可能であり、配列表の配列番号１に示した通りである。

上記糖修飾以外の当該分野で公知のヌクレオチドの修飾は、いずれも本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドに利用可能である。ヌクレオチドの修飾としては、リン酸修飾、核酸塩基修飾が知られている。このような核酸修飾は、当該分野で公知の方法に基づいて行うことができる。

リン酸修飾としては、例えば、天然の核酸が有するリン酸ジエステル結合、Ｓ−オリゴ（ホスホロチオエート）、Ｄ−オリゴ（ホスホジエステル）、Ｍ−オリゴ（メチルフォスフォネイト）、ボラノホスフェート等が挙げられる。Ｓ−オリゴ（ホスホロチオエート）は、ヌクレオシド間のホスホジエステル結合のリン酸基部の酸素原子が硫黄原子で置換されたＰＳ骨格を有する。この修飾は公知の方法に従って、オリゴヌクレオチドに取り込まれる。この修飾をオリゴヌクレオチド中に１もしくは複数もつアンチセンスオリゴヌクレオチドをＳ−オリゴ型（ホスホロチオエート型）という。

核酸塩基修飾としては、例えば、５−メチルシトシン、５−ヒドロキシメチルシトシン、５−プロピニルシトシン等が挙げられる。

本発明のオリゴヌクレオチドにおいて、糖修飾ヌクレオシドの位置および数は、特に限定されず、目的に応じて適宜設計され得る。２つ以上の糖修飾ヌクレオシドは、例えば、互いに同じものを含むか、または異なるものを含む。

本発明のオリゴヌクレオチド（特に１本鎖オリゴヌクレオチドの場合）は、ギャップマーであることが好ましい。ギャップマーとは、中心領域となる「ギャップ」と該ギャップの両側の領域、２つのウイング、すなわち、５’側の「５’ウイング」および３’側の「３’ウイング」を含むオリゴヌクレオチドを意味する。ギャップ領域は６〜１０塩基長、そしてウイング領域は３〜５塩基長であり得る。ギャップは、天然ヌクレオシドから構成されており、ウイングには、少なくとも１つの修飾ヌクレオチドが含まれ得る。本発明のオリゴヌクレオチドは、「５’ウイング」および／または「３’ウイング」に、糖修飾ヌクレオシドを少なくとも１つ、好ましくは１〜５、さらに好ましくは２〜３含む。１つの実施形態では、ギャップマーは、６〜１０塩基のギャップ領域、３〜５塩基の５’ウイングおよび３〜５塩基の３’ウイングからなり、ギャップ領域が５’ウイングと３’ウイングの間に位置づけられ、５’ウイングおよび３’ウイングは、少なくとも１つの上記式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造を含み得る。さらに、リン酸修飾、塩基修飾などを含んでいてもよい。一方のウイング内の修飾の種類、数、位置は、他方のウイングにおける修飾の種類、数、位置と同じであってもまたは異なっていてもよい。

このようなギャップマーとしては、例えば、３−８−３−１、３−９−３−１、３−１０−２−１、３−１０−３、５−１０−５などが挙げられる。例えば、３−８−３−１の表記の場合、ギャップの８塩基が天然ヌクレオシド（ＤＮＡ）であり、５’ウイング（５’末端から３塩基）が糖修飾ヌクレオシドであり、そして３’ウイング（３’末端から３塩基）のうち中心側からの３塩基が糖修飾ヌクレオシドであり、最後の１塩基（３’末端塩基）が天然ヌクレオシド（ＤＮＡ）である。配列に依存し得るが、３−８−３−１が好ましい。

上述したＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤のオリゴヌクレオチド、すなわち、配列番号２〜４のそれぞれについて、糖修飾ヌクレオシドにＡｍＮＡを用いて３−８−３−１のギャップマーを作製した場合、下記のように表され得る：
Ｇ＾Ａ＾Ｔ＾ｇ＾ａ＾ａ＾ａ＾ｃ＾ｃ＾ｔ＾ａ＾Ｔ＾Ｇ＾ｍＣ＾ａ（配列番号５）
Ｇ＾ｍＣ＾ｍＣ＾ａ＾ｇ＾ｔ＾ｇ＾ｇ＾ｔ＾ａ＾ｇ＾Ａ＾Ｔ＾Ｇ＾ｔ（配列番号６）
Ｔ＾Ｇ＾Ｇ＾ｃ＾ｃ＾ａ＾ｇ＾ｔ＾ｇ＾ｇ＾ｔ＾Ａ＾Ｇ＾Ａ＾ｔ（配列番号７）
（上記の大文字はＡｍＮＡであり、小文字はＤＮＡであり、「＾」はホスホロチオエート結合を示す。なおｍＣは５−メチルシトシンである）。

本発明のオリゴヌクレオチドは、上述したような糖修飾ヌクレオシドおよび天然ヌクレオシドを用いて、常法によって合成することができ、例えば、市販の核酸自動合成装置（例えば、ＡｐｐｌｉｅｄＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製、株式会社ジーンデザイン製など）によって容易に合成することができる。合成法はホスホロアミダイトを用いた固相合成法、ハイドロジェンホスホネートを用いた固相合成法等がある。例えば、Tetrahedron Letters，1981, vol. 22. pp.1859−1862、国際公開第２０１１／０５２４３６号等に開示されている。

本発明の１本鎖のアンチセンスオリゴヌクレオチドは、デリバリーデバイスを用いることなく単体での投与により、細胞内に取り込まれ得る。ＳＮＯＲＡ２３のような核内非翻訳ＲＮＡまたはｓｎｏＲＮＡのアンチセンスオリゴヌクレオチドは、例えば、２’，４’−ＢＮＡ／ＬＮＡを用いて作製された場合、ヌクレアーゼ耐性および生体内での安定性により、インビボでの核内非翻訳ＲＮＡまたはｓｎｏＲＮＡの発現抑制を達成し得、ＡｍＮＡを用いて作製された場合、ヌクレアーゼ（３’−エキソヌクレアーゼ）に対する分解耐性能を有し、よりＲＮＡ特異的であり、生体内での発現抑制効率および安全性の向上を示し得、インビボでの核内非翻訳ＲＮＡまたはｓｎｏＲＮＡの発現抑制を達成し得る。

ＳＮＯＲＡ２３は、高転移性癌細胞（例えば、高転移性膵管腺癌（ＰＤＡＣ）細胞（例えば、下記実施例の「高転移性ＰＤＡＣ細胞株のインビボ選択」に従って樹立したＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞））において特異的に高発現される。ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現および発現抑制の程度は、上述したように、公知の方法（例えば、ｑＲＴ−ＰＣＲ）により測定することが可能である。ＳＮＯＲＡ２３は腫瘍細胞の増殖、ならびに癌細胞（悪性腫瘍細胞）の浸潤性および転移能に関与し得る。ＳＮＯＲＡ２３の発現抑制（例えば、ノックダウン）により、腫瘍細胞の増殖抑制（腫瘍形成能の低下）、癌細胞（悪性腫瘍細胞）の播種抑制（浸潤性低下）および転移の減少（転移能低下）が生じ得る。腫瘍細胞増殖、浸潤および転移については、下記の実施例に記載の手順に基づいて決定し得る。本明細書において、「抗腫瘍」とは、腫瘍細胞の増殖抑制（腫瘍形成能の低下）、癌細胞（悪性腫瘍細胞）の播種抑制（浸潤性低下）および転移の減少（転移能低下）の少なくとも１つの効果を示し、好ましくはこれらの全ての効果を示す。

本発明の抗腫瘍剤によれば、生体内において、癌に特異的に高発現するｓｎｏＲＮＡ（ＳＮＡＲＡ２３）の発現が抑制され得る。本発明の抗腫瘍剤がアンチセンスオリゴヌクレオチドである場合、デリバリーデバイスを用いることなく単体投与により、そのような発現抑制を実施し得る。

本発明の抗腫瘍剤によれば、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤は、ＳＹＮＥ２遺伝子の発現を抑制し得る。ＳＹＮＥ２遺伝子は、「Homo sapiens spectrin repeat containing nuclear envelope protein 2 (SYNE2), RefSeqGene on chromosome 14」（ＧｅｎＢａｎｋ登録番号：ＮＧ＿０１１７５６）；「Homo sapiens spectrin repeat containing nuclear envelope protein 2 (SYNE2), transcript variant 1, mRNA」（ＧｅｎＢａｎｋ登録番号：ＮＭ＿０１５１８０）；「Homo sapiens spectrin repeat containing, nuclear envelope 2 (SYNE2), transcript variant 2, mRNA」（ＧｅｎＢａｎｋ登録番号：ＮＭ＿１８２９１０）として同定され、その塩基配列情報は当該登録番号により入手可能である。また、タンパク質のアミノ酸配列情報は、「nesprin-2 isoform 1 [Homo sapiens]」（ＧｅｎＢａｎｋ登録番号：ＮＰ＿０５５９９５）および「nesprin-2 isoform 2 [Homo sapiens]」（ＧｅｎＢａｎｋ登録番号：ＮＰ＿８７８９１４）により入手可能である。Variant１と、variant２とは、転写開始部位が異なり得る。ＳＹＮＥ２は、別にＥＤＭＤ５、ＮＵＡ、ＮＵＡＮＣＥ、Ｎｅｓｐ２、Ｎｅｓｐｒｉｎ−２、ＳＹＮＥ−２、ＴＲＯＰＨとも称され得る。下記の実施例に記載のＳＹＮＥ２、variant 2, mRNA（ＧｅｎＢａｎｋ登録番号：ＮＭ＿１８２９１０）の塩基配列を配列番号８に示し、対応するアミノ酸配列（ＧｅｎＢａｎｋ登録番号：ＮＰ＿８７８９１４）を配列番号９に示す。

本発明は、ＳＹＮＥ２遺伝子発現抑制剤を含む抗腫瘍剤もまた提供する。１つの実施形態では、ＳＹＮＥ２遺伝子発現抑制剤は、ＳＹＮＥ２遺伝子と結合し得、かつ該ＳＹＮＥ２遺伝子発現を抑制する活性を有する核酸分子を含む。このような核酸分子としては、上述したようなｓｉＲＮＡ、ＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッドもしくはキメラポリヌクレオチド、アンチセンスオリゴヌクレオチドなどが挙げられる。本明細書において、「ＳＹＮＥ２遺伝子との結合」は、ＳＹＮＥ２遺伝子への直接結合、およびＳＹＮＥ２遺伝子のｍＲＮＡもしくはｍＲＮＡ前駆体への結合を包含する。

１つの実施形態では、ＳＹＮＥ２遺伝子と結合し得、該ＳＹＮＥ２遺伝子の発現を抑制する活性を有する核酸分子は、ＳＹＮＥ２遺伝子のｓｉＲＮＡである。ＳＹＮＥ２のｓｉＲＮＡは、種々の供給会社（例えば、サーモフィッシャー・サイエンティフィック）より入手可能であり、一例として、サーモフィッシャー・サイエンティフィック製のｓｉＲＮＡＩＤ番号：ｓ２３３２８のｓｉＲＮＡが挙げられる。

本発明の抗腫瘍剤は、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤（例えば、ＳＮＯＲＡ２３と結合し得、該ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現を抑制する活性を有する核酸分子、ＳＮＯＲＡ２３アンチセンスオリゴヌクレオチドなど）またはＳＹＮＥ２遺伝子発現抑制剤（例えば、ＳＹＮＥ２遺伝子と結合し得、該ＳＹＮＥ２遺伝子の発現を抑制する活性を有する核酸分子、ＳＹＮＥ２遺伝子のｓｉＲＮＡなど）を含有する。上記抗腫瘍剤は、これらの両方を含有してもよい。本発明の抗腫瘍剤は製剤化されて、医薬組成物を製造し得る。

また、本発明の抗腫瘍剤および医薬組成物は、当該分野で公知の投与方法により投与され得る。これらは、局所的あるいは全身的な処置、または処置すべき領域に応じて様々な方法により投与することができる。

本発明は、前記抗腫瘍剤の有効量を、それを必要とする対象に投与することを含む、腫瘍または癌疾患を処置するための方法もさらに提供する。用語「処置」は、疾患（本発明においては腫瘍または癌疾患）の治癒、一時的寛解または予防などを目的とする医学的に許容される全てのタイプの予防的および／または治療的介入を包含するものとする。

本発明の方法において、用語「対象」は、任意の生物個体を意味し、好ましくは動物、さらに好ましくは哺乳動物、さらに好ましくはヒトの個体である。本発明において、対象は、腫瘍または癌疾患に罹患しているか、罹患するリスクを有する対象であり得る。

本発明の抗腫瘍剤によれば、腫瘍形成、浸潤および転移の抑制効果が示され得る。１つの実施形態としては、本発明の抗腫瘍剤は、浸潤性または転移能のある腫瘍に対して用いられる。本発明の抗腫瘍剤は、種々の癌の処置に用いられ得る：例えば、脳腫瘍、乳癌、子宮体癌、子宮頸癌、卵巣癌、食道癌、胃癌、虫垂癌、大腸癌、肝癌、胆嚢癌、胆管癌、膵癌、副腎癌、消化管間質腫瘍、中皮腫（胸膜、腹膜、心膜など）、頭頚部癌、喉頭癌、口腔癌、歯肉癌、舌癌、頬粘膜癌、唾液腺癌、副鼻腔癌、甲状腺癌、腎臓癌、肺癌、骨肉腫、前立腺癌、精巣腫瘍（睾丸がん）、腎細胞癌、膀胱癌、横紋筋肉腫、皮膚癌、肛門癌など。本発明の抗腫瘍剤は、例えば、膵臓癌、肺癌、腹膜播種（卵巣癌・胃癌）のような難治癌患者の癌の進展を阻害し、生存期間の延長をもたらす治療薬として医療応用できる。１つの実施形態としては、本発明の抗腫瘍剤は、膵癌、肺癌、卵巣癌または胃癌の処置に用いられる。

「有効量」とは、対象疾患の発症を低減し、症状を軽減し、または進行を防止する量であり、好ましくは、対象疾患の発症を予防し、または対象疾患を治癒する量である。また、投与による利益を超える悪影響が生じない量が好ましい。このような量は、培養細胞などを用いたインビトロ試験、マウス、ラット、イヌまたはブタなどのモデル動物における試験により適宜決定することができる。このような試験法は当業者にはよく知られている。

投与する医薬の具体的な用量は、処置を要する対象に関する種々の条件、例えば、症状の重篤度、対象の一般健康状態、年齢、体重、対象の性別、食事、投与の方法、時期および頻度、併用医薬、治療反応性、および治療に対するコンプライアンスなどを考慮して決定され得る。

投与の方法としては、例えば、局所的（点眼、膣内、直腸内、鼻腔内、経皮を含む）、経口的、または、非経口的であってもよい。非経口的投与としては、静脈内注射もしくは点滴、皮下、腹腔内もしくは筋肉内注入、吸引もしくは吸入による肺投与、髄腔内投与、脳室内投与等が挙げられる。

本発明の抗腫瘍剤を局所投与する場合、経皮パッチ、軟膏、ローション、クリーム、ゲル、滴下剤、坐剤、噴霧剤、液剤、散剤等の製剤を用いることができる。

経口投与用剤としては、散剤、顆粒剤、水もしくは非水性媒体に溶解させた懸濁液または溶液、カプセル、粉末剤、錠剤等が挙げられる。

非経口、髄腔内、または、脳室内投与用剤としては、バッファー、希釈剤およびその他の適当な添加剤を含む無菌水溶液等が挙げられる。

本発明の医薬は、本発明の抗腫瘍剤、またはＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤（例えば、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子と結合し得、該ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現を抑制する活性を有する核酸分子、ＳＮＯＲＡ２３アンチセンスオリゴヌクレオチドなど）もしくはＳＹＮＥ２発現抑制剤（例えば、ＳＹＮＥ２と結合し得、該ＳＹＮＥ２の発現を抑制する活性を有する核酸分子）の有効量にその剤型に適した賦形剤、結合剤、湿潤剤、崩壊剤、滑沢剤、希釈剤等の各種医薬用添加剤を必要に応じて混合して得ることができる。注射剤の場合には適当な担体と共に滅菌処理を行なって製剤とすればよい。

賦形剤としては、乳糖、白糖、ブドウ糖、デンプン、炭酸カルシウムまたは結晶セルロース等が挙げられる。結合剤としては、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ゼラチンまたはポリビニルピロリドン等が挙げられる。崩壊剤としてはカルボキシメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、デンプン、アルギン酸ナトリウム、カンテン末またはラウリル硫酸ナトリウム等が挙げられる。滑沢剤としてはタルク、ステアリン酸マグネシウムまたはマクロゴール等が挙げられる。坐剤の基剤としてはカカオ脂、マクロゴールまたはメチルセルロース等を用いることができる。また、液剤または乳濁性、懸濁性の注射剤として調製する場合には通常使用されている溶解補助剤、懸濁化剤、乳化剤、安定化剤、保存剤、等張剤等を適宜添加してもよい。経口投与の場合には嬌味剤、芳香剤等を加えてもよい。

以下、実施例を挙げて本発明を説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。

本実施例において用いた材料および手法について以下に説明する。

（オリゴヌクレオチド合成）
オリゴヌクレオチドは、既報（特許文献１）に準じて合成した。

具体的には、下記の２’，４’−ＢＮＡ／ＬＮＡ含有オリゴヌクレオチド（蛍光標識ＬＮＡプローブ、ＬＮＡ含有アンチセンスオリゴヌクレオチド）の合成は、株式会社ジーンデザインに委託した。本実施例で使用した２’，４’−ＢＮＡ／ＬＮＡの構造を、以下の式（ａ）に示す：

（式中、Ｂａｓｅは５−メチルシトシニル基（ｍＣ：５−メチルシトシン）、チミニル基（Ｔ：チミン）、アデニニル基（Ａ：アデニン）またはグアニニル基（Ｇ：グアニン）である。）

下記のアミドＢＮＡ（ＡｍＮＡ）含有オリゴヌクレオチド（ＡｍＮＡ含有アンチセンスオリゴヌクレオチド）の合成は、特許文献１に記載の方法を参照して行った。本実施例で使用したＡｍＮＡの構造を、以下の式（ｂ）に示す：

（式中、Ｂａｓｅは、５−メチルシトシニル基（ｍＣ：５−メチルシトシン）、チミニル基（Ｔ：チミン）、アデニニル基（Ａ：アデニン）またはグアニニル基（Ｇ：グアニン）であり、Ｍｅはメチル基である。）

２’，４’−ＢＮＡ／ＬＮＡまたはＡｍＮＡを含有する１４ｍｅｒ〜２０ｍｅｒのオリゴヌクレオチドは、核酸自動合成機（ｎＳ−８型、株式会社ジーンデザイン製）を用いて、０．２μｍｏｌスケールで合成した。鎖長の伸長は標準的なホスホロアミダイトプロトコール（固相担体：ＣＰＧレジン、硫化はＤＤＴ（３Ｈ−１，２−Ｂｅｎｚｏｄｉｔｈｉｏｌｅ−３−ｏｎｅ，１，１−ｄｉｏｘｉｄｅ）等を使用）にて実施し、末端の５’位の水酸基がＤＭＴｒ（ジメトキシトリチル）基で保護され、かつ３’位が固相に担持されたオリゴヌクレオチドを得た。続いて、酸処理により、ＤＭＴｒ基を除去した後、塩基処理することにより、目的物を固相担体から切り出した。希酸にて中和後、溶媒を留去し、得られた粗生成物をゲルろ過カラムクロマト、逆相ＨＰＬＣにて精製することにより目的物を得た。

本実施例で使用した２’，４’−ＢＮＡ／ＬＮＡまたはＡｍＮＡの架橋構造、ならびに得られた各オリゴヌクレオチドの純度および構造をＨＰＬＣおよびＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ（ＢＲＵＫＥＲＤＡＬＴＯＮＩＣＳ社製）により確認した。

（細胞株）
ヒト膵管腺癌（ＰＤＡＣ）細胞株（ＡｓＰＣ−１、ＭＩＡＰａＣａ−２、ＰＡＮＣ−１、ＣＦＰＡＣ−１、Ｈｓ７６６Ｔ、ＳＷ１９９０、ＢｘＰＣ−３、ＣＡＰＡＮ−１、ＣＡＰＡＮ−２、Ｓｕｉｔ−２、ＫＰ−２およびＫＰ−３）をアメリカンタイプカルチャーコレクション（American Type Culture Collection）またはヒューマンサイエンス研究資源バンク（Health Science Research Resources Bank）から購入した。Ｈ４８Ｎ細胞株、ＫＰ−１Ｎ細胞およびＨＰＣ−３細胞をDr. H. Iguchi（独立行政法人国立病院機構九州がんセンター）およびDr. Takahiro Yasoshima（北海道公立大学法人札幌医科大学）のそれぞれから提供いただいた。ＮＰＤＥ細胞をＤＳファーマバイオメディカル株式会社から入手した。ＨＰＤＥ細胞株をDr. Ming-Sound Tsao（トロント大学）より提供を受けた。３つのヒトＣＡＦ細胞株（ＣＡＦ−１／−２／−３）は既報に従って入手した（Cui Lら, PLoS One 2010;5:e12121）。高転移性のＰＤＡＣ細胞（Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣおよびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ）を下記の「高転移性ＰＤＡＣ細胞株のインビボ選択」に説明した通りに樹立した。細胞を、５％ＣＯ_２を含む加湿空気中３７℃にてダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ；ナカライテスク株式会社）（１０％熱不活性化ウシ胎児血清（ＦＢＳ；Gibco-Life Technologies)、ペニシリン（１００Ｕ／ｍＬ）およびストレプトマイシン（１００μｇ／ｍＬ）を補充）中で培養した。

（高転移性ＰＤＡＣ細胞株のインビボ選択）
Ｓｕｉｔ２−ｌｕｃ細胞またはＭＩＡＰａＣａ２−ｌｕｃ細胞（マウス当たり１×１０^６細胞（５０μｌＰＢＳ中））をヌードマウスの膵尾部に移植した。３〜６週後、肝臓中の転移結節を採取し、Ｉ型コラゲナーゼ（ロシェ）で消化し、そしてインビトロでの癌細胞の単離および培養に供した。続いて、培養した癌細胞を再度ヌードマウスの膵尾部に移植した。このプロセスを５回繰り返し、高肝転移性細胞株を樹立した。これらを、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣおよびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣと称した。

（患者検体）
膵臓組織検体をＰＤＡＣ（ｎ＝１３３）、ＩＰＭＮ（ｎ＝１６）およびＭＣＮ（ｎ＝１）を罹患する患者から得た。正常な膵臓（ｎ＝８）および肝臓（ｎ＝３）組織検体を、２００４年から２００８年までに国立研究開発法人国立がん研究センターで膵臓の外科的切除を受けた中から腫瘍、炎症のいずれも有さない被検体から得た。ＩＶ期疾患である全患者の診断は、傍大動脈リンパ節関与に基づいた。検体の使用は、国立研究開発法人国立がん研究センターの臨床研究の倫理審査委員会の指針に従って全ての患者から許可を受けた。

（ｃＤＮＡマイクロアレイ）
ＲＮＡ試料を細胞から抽出した。ＲＮＡ試料の品質をExperion RNA Analysis Kitおよび自動電気泳動システム（Bio-Rad Laboratories）を製造会社のプロトコルに従って用いて評価した。ビオチン化ｃＲＮＡをAmbion WT Expression Kit（サーモフィッシャー・サイエンティフィック）を用いて０．５μｇ総ＲＮＡから調製し、Human Gene 2.1 ST Arrayストリップとハイブリダイズさせた。Arrayスライドを洗浄して染色し、そして４５℃にて１６時間GeneAtlas System（アフィメトリクス）中で走査した。マイクロアレイデータ解析をGeneSpring GX 13.1ソフトウェア（Digital Biology）を用いて行った。

（定量的逆転写ポリメラーゼ連鎖反応：ｑＲＴ−ＰＣＲ）
総ＲＮＡをhigh pure RNA isolation kit（Roche Diagnostics GmbH）を用いて抽出した。ワンステップｑＲＴ−ＰＣＲを、既報（Fujita-Sato Sら、Cancer Res 2015；75：2851-62）の通り、LightCycler480 II System（Roche Diagnostics GmbH）で、プライマーセットと共にQuantiTect SYBR Green Reverse Transcription PCR Kit（株式会社キアゲン）を用いて行った。

（ＡＳＯ、ｓｉＲＮＡおよびｐＤＮＡのトランスフェクション）
細胞を６ウェルまたは２４ウェルのプレート中に７０％コンフルエンスで播種した。１６時間後、細胞を以下の分析のためにLipofectamin RNAiMaxまたはLipofectamin 2000試薬（サーモフィッシャー・サイエンティフィック）を用いて、以下でトランスフェクトした：その両端に２’，４’−ＢＮＡ／ＬＮＡまたはＡｍＮＡを配置したアンチセンスオリゴヌクレオチド（ＡＳＯ）、ｓｉＲＮＡ、またはＳＮＯＲＡ２３またはＳＹＮＥ２発現プラスミド（ｐＤＮＡ）（ＡＳＯ、ｓｉＲＮＡおよびｐＤＮＡについては最終濃度２０ｎＭで用いた）。

３’ＵＴＲ領域にＳＮＯＲＡ２３配列を有する緑色蛍光タンパク質（ＥｍＧＦＰ）の人工合成ｃＤＮＡをタカラバイオ社に合成委託し、その５’末端にＢａｍＨＩおよび３’末端にＨｉｎｄＩＩＩの制限酵素認識塩基配列が付加されたもの（この塩基配列を配列番号１０に示す。配列番号１０の１位〜７２３位がＥｍＧＦＰ（対応アミノ酸配列を配列番号１１に示す）、７３０位〜９１８位がＳＮＯＲＡ２３である。）を含むクローニングベクターの形態で入手した。クローニングベクターからｃＤＮＡ断片をＢａｍＨＩ／ＨｉｎｄＩＩＩの制限酵素で切り出し、pBApo-CMV Neo plasmid（タカラバイオ）のＢａｍＨＩとＨｉｎｄＩＩＩとの制限部位の間に挿入して、ＳＮＯＲＡ２３発現プラスミドを構築した。ヒトＳＹＮＥ２の人工合成ｃＤＮＡ（配列番号８の８９１位〜２１８０位の塩基配列をコドン最適化した配列）をＥｕｒｏｆｉｎ社に合成委託し、その５’末端にＢａｍＨＩおよび３’末端にＨｉｎｄＩＩＩの制限酵素認識塩基配列が付加されたもの（配列番号１２（対応アミノ酸配列を配列番号１３に示す）を含むクローニングベクターの形態で入手した。同様に、クローニングベクターからｃＤＮＡ断片をＢａｍＨＩ／ＨｉｎｄＩＩＩの制限酵素で切り出し、pBApo-CMV Neo plasmid（タカラバイオ）のＢａｍＨＩとＨｉｎｄＩＩＩとの制限部位の間に挿入して、ＳＹＮＥ２発現プラスミドを構築した。コントロールとして、モックｐＤＮＡ（ＳＮＯＲＡ２３やＳＹＮＥ２等のオープンリーディングフレームを含まないプラスミド）でのトランスフェクションを行った。

（細胞内ＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ検出のための共焦点レーザ顕微鏡観察）
ＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡの細胞内局在を調べるために、細胞をLipofectamine RNAiMaxおよび下記の２つの蛍光標識ＬＮＡプローブ（２０ｎＭ）を用いてトランスフェクトした。蛍光標識ＬＮＡプローブは、５’−［Ａｌｅｘａ４８８］−［アミノリンカー］−ＧＡＡａｃｃｔａｔｇｍＣＡｍＣａ−３’（配列番号１４）および５’−ｍＣＴＡｃｃａｇａｃａｍＣＡＧａ−［アミノリンカー］−［Ａｌｅｘａ６４７］−３’（配列番号１５）（大文字：ＬＮＡ；小文字：ＤＮＡ；ｍＣ：５’−メチルシトシン；ジーンデザイン株式会社）であり、これらはそれぞれ、配列番号１に示されるＳＮＯＲＡ２３の塩基配列の５’末端部位から１７〜３０番目および３２〜４５番目の隣接する配列領域を標的とするように設計したものである。１６時間後、細胞内ＳＮＯＲＡ２３シグナルをＣ２共焦点レーザ顕微鏡（株式会社ニコン）によって観察した。

（足場依存性細胞増殖アッセイ）
細胞を９６ウェルプレートに５×１０^３細胞／ウェルの密度で播種し、増殖率をCell Counting kit-8（ＣＣＫ−８；株式会社同仁化学研究所）を用いて決定した。簡単には、１０μｌのＣＣＫ−８溶液を各ウェルに添加した後、２時間インキュベートした。反応液の４５０ｎｍ（参照６００ｎｍ）での吸光度をGloMax-Multi+（プロメガ株式会社）で測定した。

（軟寒天コロニー形成アッセイ）
足場非依存性細胞増殖を以下に記載のように軟寒天コロニー形成アッセイにより評価した。

予め温めておいた０．７５ｍｌの２×ＤＭＥＭ（２０％ＦＢＳ、２００Ｕ／ｍｌペニシリン、および２００μｇ／ｍｌストレプトマイシンを含有する）および０．７５ｍｌの融解した１．２％アガロースゲル溶液を混合し、６ウェルプレートのウェルに移した。簡単には、示したＡＳＯでトランスフェクトした細胞（１×１０^４細胞／ウェル）を０．７５ｍｌの２×ＤＭＥＭ（０．６％寒天、および２０％ＦＢＳ、２００Ｕ／ｍｌペニシリン、および２００μｇ／ｍｌストレプトマイシンを含む）の上層に混合した。３週間後、培養した細胞をクリスタルバイオレット（シグマアルドリッチ）で染色し、コロニーの数を計数した。

（スフェロイド形成アッセイ）
足場非依存性細胞増殖をスフェロイド形成アッセイにより評価した。５×１０^４細胞／ｍｌの細胞懸濁液をUltra-Low Attachment Surface 96ウェルプレート（カタログ番号３４７４．コーニング）上に１００μｌ／ウェルで播種した。細胞を加湿インキュベータ中５％ＣＯ_２で３７℃にてインキュベートした。スフェロイド増殖を上記のようにＣＣＫ−８キットを用いて４日間毎日モニタリングした。

（細胞浸潤アッセイ）
若干の変更を加えた以外は既報（Cui Lら、PLoS One 2010;5:e12121）通りにＰＤＡＣ細胞の浸潤性を評価した。

フィルター（孔サイズ：８．０μｍ）の上部表面をmatrigel（２０μｇ／ウェル，BD Biosciences）でコーティングした。ＡＳＯトランスフェクションを行う場合はそのトランスフェクションから４８時間後またはｐＤＮＡ発現プラスミドでのトランスフェクションを行う場合はトランスフェクションから７２時間後、細胞を上部チャンバー中に２．５×１０^４細胞／ウェルの密度で播種し、４８時間（ＭＩＡＰａＣａ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞）または７２時間（Ｓｕｉｔ２細胞およびＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞）インキュベートした。フィルターの下側に移動した細胞を固定し、ヘマトキシリン−エオシンで染色し、次いでEclipse 55i光学顕微鏡（株式会社ニコン）下で計数した。

（動物処理）
全ての動物実験を国立大学法人九州大学の動物実験委員会により認可されたプロトコルに従って行った。雌の６週齢無胸線ヌードマウス（ＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣｒｊ−ｎｕ）を日本チャールズリバー株式会社から購入し、実験開始前１週間、馴化させた。外科的手順は、動物の苦痛を最小限にするためにイソフルラン麻酔下で行った。

Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、Lipofectamine RNAiMAX（インビトロジェン）を製造会社のプロトコルに従って用いてＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１（配列番号５）またはコントロールＡＳＯ（配列番号１８）（下記実施例３の表１：最終濃度２０ｎＭ）でトランスフェクトした。４８時間後、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣにつき１×１０^５細胞またはＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣにつき２×１０^５細胞にて細胞を懸濁し、ヌードマウスの脾臓の被膜下領域に移植した（各群につきｎ＝５）。１週間後、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯまたはコントロールＡＳＯを、３週間の間、週に一度でマウス頸部に皮下（ｓ．ｃ．）投与した（１０ｍｇ／ｋｇ体重）。イソフルラン麻酔下でＤ−ルシフェリン（１００ｍｇ／ｋｇ）を皮下注射後、４週まで、週に一度でIVIS Imaging System（パーキンエルマー）を用いてマウス全身の生物発光シグナル（ルシフェラーゼ活性）を測定し（「ＩＶＩＳ画像化」ともいう）、マウス体内における腫瘍増殖を評価した。マウスを２８日目に安楽死させ、その膵臓および肝臓を摘出し、ＩＶＩＳ画像化により腫瘍の浸潤および肝転移のレベルを定量した。

（組織化学）
腫瘍組織試料を異種移植腫瘍保有マウスから採取し、５μｍ厚に切断し、４％パラホルムアルデヒドで４℃にて１５分間固定した。切片をヘマトキシリンおよびエオシンで染色し、腫瘍浸潤の状態を解析した。

（統計学的解析）
JMP Pro 12.2.0ソフトウェア（SAS Institute）を用いて統計学的解析を行った。平均値±標準偏差として結果を示す。スチューデントｔ検定またはマン・ホイットニーＵ検定を用いて２群間の差を統計学的に解析した。ピアソンのχ^２検定を適用してＳＮＯＲＡ２３発現と臨床病理学的パラメーターとの間の相関を解析した。カプラン・マイヤー法によって生存曲線を作成し、ログランク検定を用いて解析した。Ｐ値が０．０５未満であるとき統計学的に有意であるとした。

（ウェスタンブロット解析）培養細胞をＳＤＳ緩衝液（６０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ６．８）、０．５％グリセロール、２％ＳＤＳ）中に採取した。抽出タンパク質試料（１５μｇ）を、既報（Shinkai Kら、Int J Cancer 2016;139:433-45）通りに、ＮｕＰＡＧＥドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミド電気泳動ゲル（Invitrogen）上で電気泳動し、二フッ化ポリビニリデン膜に転写し、以下の一次抗体を用いてウェスタンブロット解析に供した：（標的、供給会社、カタログ番号、力価の順に示す）ＳＹＮＥ２、Ｐｒｏｔｅｉｎｔｅｃｈ、２５２６５−１−ＡＰ、１：１０００；ＩＰＯ７、ＳａｎｔａＣｒｕｚ、ＳＣ−１３４９１３、１：１０００；ＬＧＲ５、Ａｂｃａｍ、ａｂ７５７３２、１：１０００；ｐ２１／Ｃｉｐ、ＢＤＰｈａｒｍｉｎｇｅｎ、５５６４３１、１：１０００；ＰＤＣＨ１１Ｘ、Ｐｒｏｔｅｉｎｔｅｃｈ、２００７０−１−ＡＰ、１：１０００。

（プロテオミクス解析）
プロテオミクスデータを下記のようにして得、スペクトルカウント法またはラベルフリー定量法を用いて解析に供した。

２％ＳＤＳ、７Ｍ尿素、および１００ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．８）からなる２００μｌ溶液に細胞（２×１０^６）を溶解し、次いでBioruptor（Diagenode社）を用いて超音波処理（５回処理。各回３０秒で間に３０秒）に供した。試料を等容量の水で希釈し、再度超音波処理に供した。タンパク質濃度をＢＣＡアッセイ（バイオ・ラッド）を用いて決定した。タンパク質試料（２００μｇ）をメタノール−クロロホルム沈降に供した。生じたペレットを消化緩衝液（０．５Ｍ炭酸水素トリエチルアンモニウム：７Ｍ水酸化グアニジンを含有する）中に溶解し、次いで５６℃にて３０分間加熱した。各試料を等容量の水で希釈し、タンパク質濃度をＢＣＡアッセイを用いて決定した。

残りの溶液（５０μｌ）を５０μｌの水で希釈し、リシルエンドペプチダーゼ（登録商標）（２μｇ，和光純薬工業株式会社）により３７℃にて４時間消化に供した。１００μｌの水を添加後、試料をトリプシン（２μｇ，サーモフィッシャー・サイエンティフィック）で３７℃にて４時間さらに消化した。システイン／シスチン残基をブロックするために、消化物を０．６２５ｍＭトリス（２−カルボキシエチル）ホスフィン塩酸塩（サーモフィッシャー・サイエンティフィック）で３７℃にて３０分間処理し、次いで３．１２５ｍＭ２−ヨードアセトアミド（シグマアルドリッチ）で室温にて３０分間アルキル化し、２．５ｍＭＮ−アセチル−Ｌ−システイン（シグマアルドリッチ）で反応停止した。

得られたペプチドを、ナノnanoLC装置（Advance LC，Michrom BioResources社）およびＨＴＣ−ＰＡＬオートサンプラー（CTC Analytics）と連結したLTQ Orbitrap Velos Pro質量分析計（サーモフィッシャー・サイエンティフィック）からなるシステムを用いてナノスケール液体クロマトグラフィー（ナノＬＣ）−ＭＳ／ＭＳ分析に供した。ペプチド分離を、３μｍＣ１８Ｌ−column（化学物質評価研究機構）を充填したヒューズドシリカキャピラリー（内径０．１ｍｍ；長さ１５ｃｍ；先端内径０．０５ｍｍ）を用いて行った。移動相は０．１％ギ酸／２％アセトニトリル（Ａ）および０．１％ギ酸／９０％アセトニトリル（Ｂ）であった。ペプチドを２５０ｎＬ／分の流速にてリニアグラジエント５％〜４０％Ｂで１００分、４０％〜９５％Ｂで１分間溶出し、９５％Ｂ中で９分間維持した。衝突誘起解離（ＣＩＤ）スペクトルを動的排除オプションによるデータ依存スキャンモードで自動取得した。フルＭＳスペクトルを３００〜２０００の質量／電荷（ｍ／ｚ）範囲でOrbitrapを用いて得た（ｍ／ｚ４００で６０，０００の分解能であった）。フルＭＳスペクトル中の１２の最も強い前駆イオン（最小イオンカウント閾値１，０００）を引き続くイオン捕捉ＭＳ／ＭＳ分析（自動利得制御（ＡＧＣ）モード）のために選択した。ＡＧＣをフルＭＳについて１×１０^６、ＣＩＤＭＳ／ＭＳについて１×１０^４に設定した。正規化した衝突エネルギー値を３５％に設定した。分析の間質量を最小化するようにロック質量関数を有効にした。生ファイルを、IPI human database version 3.1.6に対してＭＡＳＣＯＴアルゴリズム（ｖｅｒ．２．４．１）を用いてProteomeDiscovere 1.4（サーモフィッシャー・サイエンティフィック）によって加工処理した。使用酵素としてトリプシンを選択し、切れ残り（Missed Cleavage）の許容数を２に設定し、固定修飾としてシステインに対するカルバミドメチル化を選択した。Ｎ末端に対する酸化したメチオニンおよびアセチル化を変動修飾として調査した。前駆体質量許容差は１０ｐｐｍであり、ＭＳ／ＭＳイオンの許容差は０．８Ｄａであった。ＦＤＲ（false discovery rate）をPercolatorアルゴリズムによって決定した（ｑ値＜０．０１）。

（実施例１：転移性表現型のＰＤＡＣ細胞株におけるＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡの過剰発現の検出）
高転移性の膵管腺癌（ＰＤＡＣ）細胞（Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣおよびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ）を樹立した。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞株およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞株は５匹全てのマウス（１００％）においてより高い割合で肝臓転移を生じたのに対し、それぞれの親細胞株では肝転移が生じたのは５匹のうち２匹のマウス（４０％）および５匹のうち０匹（０％）であった。

（ａ）肝転移の原因となる要因を同定するために、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞、ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞およびそれらの親細胞株中のｍＲＮＡおよび非翻訳ＲＮＡのｃＤＮＡマイクロアレイ解析を行った。

図１−１のａは、Ｓｕｉｔ２およびＭＩＡＰａＣａ２癌細胞について、ＨＬＭＣ細胞（「ＨＬＭＣ」）中のｍＲＮＡおよび非翻訳ＲＮＡが親細胞（「ＷＴ」）の２倍以上であった遺伝子を表す模式図である。

図１−１のａに示されるように、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞においては８遺伝子（６遺伝子＋ＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡおよびＣＥＡｍＲＮＡ）、ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞においては６遺伝子（４遺伝子＋ＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡおよびＣＥＡｍＲＮＡ）が、それらのそれぞれの親細胞の２倍以上にアップレギュレートされた。また、これらの遺伝子の中で癌胎児性抗原（ＣＥＡ）およびＳＮＯＲＡ２３が、Ｓｕｉｔ２−ＨＭＬＣおよびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＭＬＣ細胞株の両方において共通にアップレギュレートされた。

（ｂ，ｃ）ＣＥＡｍＲＮＡおよびＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ発現のｑＲＴ−ＰＣＲ解析によって、マイクロアレイ解析の結果を検証した。

ｑＲＴ−ＰＣＲ解析によるＳＮＯＲＡ２３の発現測定に関して、用いたプライマーセットは下記である：
（ＳＮＯＲＡ２３）
フォワード：
５’−ＴＣＡＴＧＣＧＧＣＣＡＡＡＧＡＧＴＡＡＣ−３’（配列番号１６）
リバース：
５’−ＧＧＣＣＡＧＴＧＧＴＡＧＡＴＧＴＧＴＣＣ−３’（配列番号１７）
（１８ＳｒＲＮＡ）
フォワード：
５’−ＧＴＡＡＣＣＣＧＴＴＧＡＡＣＣＣＣＡＴＴ−３’（配列番号１８）
リバース：
５’−ＣＣＡＴＣＣＡＡＴＣＧＧＴＡＧＴＡＧＣＧ−３’（配列番号１９）

図１−１のｂおよびｃは、ｑＲＴ−ＰＣＲによる測定により得られた、Ｓｕｉｔ２およびＭＩＡＰａＣａ２の各々について、親細胞（「ＷＴ」）を１とした場合の高転移性ＰＤＡＣ細胞（「ＨＬＭＣ」）のＣＥＡｍＲＮＡ（図１ｂ）およびＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ（図１ｃ）の相対的発現量を示すグラフである。

図１−１のｂおよびｃに示されるように、ｑＲＴ−ＰＣＲ解析により、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞において、ＣＥＡおよびＳＮＯＲＡ２３ともに、それらの親細胞よりも発現がアップレギュレートされたことが確認された（ＣＥＡについては、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞は６．７４倍であり、およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞は２．６９倍；ＳＮＯＲＡ２３については、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞は１．６３倍であり、およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞は１．７２倍）。

（ｄ）ｑＲＴ−ＰＣＲによって、種々の膵癌細胞株、正常膵管上皮（ＮＰＤＥ）細胞、および癌関連線維芽細胞（ＣＡＦ）におけるＳＮＯＲＡ２３発現を測定した。

図１−１のｄは、１５種の膵癌（ＰＤＡＣ）細胞株（ＡｓＰＣ−１、ＭＩＡＰａＣａ−２、ＰＡＮＣ−１、ＣＦＰＡＣ−１、Ｈｓ７６６Ｔ、ＳＷ１９９０、ＢｘＰＣ−３、ＣＡＰＡＮ−１、ＣＡＰＡＮ−２、Ｓｕｉｔ−２、Ｈ４８Ｎ、ＫＰ−２、ＫＰ−３、ＫＰ−１Ｎ、およびＨＰＣ−３）、非癌性不死化ヒト膵管上皮（ＨＰＤＥ）細胞、正常膵管上皮（ＮＰＤＥ）細胞、および３種の癌関連線維芽細胞（ＣＡＦ−１、ＣＡＦ−２、ＣＡＦ−３）におけるＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡの相対的発現量を示すグラフである。ＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ発現を１８ＳｒＲＮＡによって正規化した。

図１−１のｄに示されるように、ＰＤＡＣ細胞におけるＳＮＯＲＡ２３発現レベルはＮＰＤＥ細胞およびＣＡＦにおけるよりも有意に高かった（１５〜６２倍）。不死化ヒト膵管上皮（ＨＰＤＥ）細胞株中の発現レベルは、低いレベルのＳＮＯＲＡ２３発現を伴ういくつかのＰＤＡＣ細胞株と同様であった。

したがって、ｑＲＴ−ＰＣＲ解析は、ＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡが、１５種の膵癌細胞株で中〜高発現レベル、非癌性不死化膵管上皮細胞（ＨＰＤＥ）で中発現レベルであるのに対し、正常ヒト膵管上皮細胞（ＮＰＤＥ）または３種の癌関連線維芽細胞（ＣＡＦ−１、ＣＡＦ−２、ＣＡＦ−３）では微発現レベルであることを実証した。

（ｅ）ＳＮＯＲＡ２３の細胞下局在を調べるために、ＳＮＯＲＡ２３に結合する蛍光標識プローブをＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞、ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞、それらの親細胞および、ならびにＮＰＤＥ細胞にトランスフェクトした。ＳＮＯＲＡ２３シグナルを正確に検出するために、ＳＮＯＲＡ２３中の近接する配列にそれぞれ結合する２種の蛍光標識２’，４’−ＢＮＡ／ＬＮＡプローブを用いた（それぞれＡｌｅｘａ−４８８およびＡｌｅｘａ−６４７で標識した。共に存在すれば、より多くのＳＮＯＲＡ２３特異的シグナルが示される）。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＮＯＲＡ２３をノックダウンした細胞（ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１（下記実施例３参照）でトランスフェクトした細胞）にも同様に２種の蛍光標識プローブをトランスフェクトした。

図１−２のｅは、Ｓｕｉｔ２およびＭＩＡＰａＣａ２の各々について親細胞（「ＷＴ」）、高転移性ＰＤＡＣ細胞（「ＨＬＭＣ」）およびＳＮＯＲＡ２３ノックダウン細胞（「ＨＬＭＣ−ＳＮ−ＫＤ」）のＡｌｅｘａ−４８８標識蛍光顕微鏡画像（「Ａｌｅｘａ−４８８」）、Ａｌｅｘａ−６４７標識蛍光顕微鏡画像（「Ａｌｅｘａ−６４７」）、およびそれらの合併画像（「合併」）、ならびにＮＰＤＥ細胞のＡｌｅｘａ−４８８標識蛍光顕微鏡画像（「Ａｌｅｘａ−４８８」）、Ａｌｅｘａ−６４７標識蛍光顕微鏡画像（「Ａｌｅｘａ−６４７」）および位相差顕微鏡画像、そして破線による四角部分に、ＭＩＡＰａＣａ２の親細胞（「ＷＴ」）および高転移性ＰＤＡＣ細胞（「ＨＬＭＣ」）の合併画像中の破断線四角部の拡大画像として、位相差顕微鏡画像および蛍光合併画像を示す。スケールバー：１００μｍ。

ＳＮＯＲＡ２３シグナルは、ＮＰＤＥ細胞よりも、Ｓｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２細胞で高かった。Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞で、それらの親細胞株に比較してより強い核局在ＳＮＯＲＡ２３シグナルが観察された。ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでトランスフェクトしたＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞では蛍光シグナルが消失した。これによってＳＮＯＲＡ２３シグナルの特異性が確認された。

（実施例２：ＰＤＡＣ患者におけるＳＮＯＲＡ２３過剰発現の検出および無病生存率との逆相関）
（ａ）ＰＤＡＣ罹患患者（ｎ＝１５０）（その中に、膵管内乳頭粘液性腫瘍（ＩＰＭＮ；ｎ＝１６）および粘液性嚢胞腫瘍（ＭＣＮ；ｎ＝１）に関連した浸潤癌を含む）から外科的に切除した臨床検体中のＳＮＯＲＡ２３発現を、ｑＲＴ−ＰＣＲによって評価した。比較のために、正常な肝臓組織（ｎ＝３）および膵臓組織（ｎ＝８）におけるＳＮＯＲＡ２３発現もまた調べた。

図２ａは、ｑＲＴ−ＰＣＲ解析によるＰＤＡＣ（ｎ＝１５０；ＩＭＰＮ／ＭＣＮ関連癌を含む）ならびに正常な肝臓組織（ｎ＝３）および膵臓組織（ｎ＝８）におけるＳＮＯＲＡ２３の相対的発現についての箱ひげ図（ボックスプロット）である。箱の中央の横線は中央値を示し、ひげ（箱の上下の短い横線）は範囲を示す（Ｐ＜０．００１，マン・ホイットニーＵ検定）。

ＳＮＯＲＡ２３発現の強さは、ＰＤＡＣ組織において正常な膵臓組織および肝臓組織よりも有意に高かった（０．５３±０．４３（ＰＤＡＣ組織）対０．０４３±０．０１６（正常膵臓組織）および０．０５５±０．０１５（正常肝臓組織）、それぞれＰ＜０．００１およびＰ＝０．００４）。共通型のＰＤＡＣにおけるＳＮＯＲＡ２３のレベル（ｎ＝１３３（ＩＭＰＮ／ＭＣＮ関連癌を除いたもの），０．５２±０．３９）は、ＩＰＭＮ／ＭＣＮ関連癌のＰＤＡＣ（ｎ＝１７，０．５３±０．７３）と有意差はなかった（Ｐ＝０．１２）。

（ｂ）ＰＤＡＣ患者を、ｑＲＴ−ＰＣＲ解析で決定した０．４５のカットオフ値によって、ＳＮＯＲＡ２３高発現（ｎ＝７６）またはＳＮＯＲＡ２３低発現（ｎ＝７４）のいずれかの群に振り分けた。

ＳＮＯＲＡ２３発現の強さは、化学療法歴との相関は有意であったが、性別、齢、ＣＥＡ／ＣＡ１９−９腫瘍マーカー、腫瘍の大きさ、またはＴＮＭ（腫瘍進行度分類）およびＵＩＣＣ（国際対がん連合）の病期の臨床パラメーターとは有意に関連するものでなかった（Ｐ＝０．０３６）。病理学的パラメーターに関しては、ＳＮＯＲＡ２３発現の強さは、血管浸潤（Ｐ＝０．０１５）およびＩＰＭＮ／ＭＣＮ（Ｐ＝０．０２１）と有意に関連した。逆に、リンパ管浸潤と境界的には関連したことを除いて、ＳＮＯＲＡ２３発現のレベルと組織構造および神経または神経叢浸潤との間で相関はなかった（Ｐ＝０．０７３）。

図２ｂは、カプラン・メイヤー法に従って作成した、ＳＮＯＲＡ２３高発現および低発現の各ＰＤＡＣ患者群について、無病生存率（ＤＦＳ）および全生存率（ＯＳ）のそれぞれの生存曲線を示す。無病生存率（ＤＦＳ）は、ＳＮＯＲＡ２３高発現のＰＤＡＣ患者において低発現の患者よりも有意に短かった（Ｐ＝０．０２１８）（生存期間の中央値：８．２ケ月（高発現）に対し１１．２ケ月（低発現）；５年生存率：１０．９％（高発現）に対し２９．２％（低発現））。他方、全生存率（ＯＳ）は２群間に有意差はなかった（Ｐ＝０．６６６；生存期間の中央値：１９．１ケ月（高発現）に対し２６．３ケ月（低発現）；５年生存率：２８．０％（高発現）に対し３７．２％（低発現））。

（実施例３：ＳＮＯＲＡ２３アンチセンスオリゴヌクレオドの設計およびＳＮＯＲＡ２３ノックダウンによるＲＮＡ発現の検討）
ＳＮＯＲＡ２３サイレンシングのために、表１に示すようにアンチセンスオリゴヌクレオチド（ＡＳＯ）の配列を設計した。ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１（配列番号５）および＃２（配列番号６）は、ＡｍＮＡを両末端領域に含むギャップマーオリゴヌクレオチド（３−８−３−１）である。コントロール（配列番号２０）として、ＬＮＡを両末端領域に含むギャップマーオリゴヌクレオチド（３−８−３−１）を用いた。

ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１（配列番号５）およびＡＳＯ＃２（配列番号６）は、配列番号１に示されるＳＮＯＲＡ２３遺伝子の塩基配列の５’末端部位から１９番目〜３３番目の領域および１５１番目〜１６５番目の領域をそれぞれ標的とするように設計した。配列番号５および配列番号６の各塩基配列は５’から３’方向（５’→３’）で表したものであり、配列番号１中の各標的領域配列に対する逆相補配列である。コントロールＡＳＯの配列（配列番号２０）は、哺乳類動物細胞のｍＲＮＡとの相同性がないホタルルシフェラーゼ遺伝子塩基配列に結合し、哺乳類動物細胞の遺伝子発現を変化させないように設計した。

ｑＲＴ−ＰＣＲ解析により、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１（配列番号５）およびＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃２（配列番号６）に関して、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞の双方ともにこれらのいずれか一方を用いてトランスフェクトした場合のＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ発現を検証した。

図３は、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１（配列番号５）でのトランスフェクション（「ＳＮ−ＡＳＯ＃１」）、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃２（配列番号６）でのトランスフェクション（「ＳＮ−ＡＳＯ＃２」）、コントロールＡＳＯ（配列番号２０）でのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合のｑＲＴ−ＰＣＲ解析によるＲＮＡの相対的発現量を示すグラフである。ＲＮＡ発現量は、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）の発現量を１とした相対値で表した。

ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１（配列番号５）およびＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃２（配列番号６）の両方とも、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞におけるＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ発現の抑制を示した。

（実施例４：ＰＤＡＣにおける浸潤性へのＳＮＯＲＡ２３の関与）
Ｓｕｉｔ２およびＭＩＡＰａＣａ２につき、（ａ）それらのＨＬＭＣ細胞（「ＨＬＭＣ」）とその親細胞（「ＷＴ」）：（ｂ）それらのＨＬＭＣ細胞のＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ（＃１（配列番号５））でのトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」）（比較のためにコントロールＡＳＯ（配列番号２０）でトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」））後の細胞；ならびに（ｃ）それらの親細胞のＳＮＯＲＡ２３ｐＤＮＡのトランスフェクション（「ＳＮ−ＯＥ」）（比較のためにモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｍｏｃｋ」））後の細胞を、ｍａｔｒｉｇｅｌ浸潤アッセイに供した。

図４ａは、Ｓｕｉｔ２およびＭＩＡＰａＣａ２について、ＨＬＭＣ細胞（「ＨＬＭＣ」）および親細胞（「ＷＴ」）のｍａｔｒｉｇｅｌ浸潤アッセイの代表的な画像と、浸潤細胞数を示すグラフとを示す。スケールバー：１００μｍ。

浸潤細胞数は、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣおよびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣにおいてそれらの親細胞株と比較して有意に増大した（共にＰ＜０．０００１）。

図４ｂは、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」）およびコントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のいずれかから４８時間後のＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞のｍａｔｒｉｇｅｌ浸潤アッセイの代表的な画像と、浸潤細胞数を示すグラフとを示す。スケールバー：１００μｍ。

Ｍａｔｒｉｇｅｌに浸潤した細胞の数は、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞において、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）に比較して、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクションにより生じたＳＮＯＲＡ２３ノックダウン（「ＳＮ−ＫＤ」）によって有意に減少した（共にＰ＝０．０００２）。

図４ｃは、ＳＮＯＲＡ２３ｐＤＮＡのトランスフェクション（「ＳＮ−ＯＥ」）およびモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｍｏｃｋ」）のいずれかから７２時間後のＳｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２細胞のｍａｔｒｉｇｅｌ浸潤アッセイの代表的な画像と、浸潤細胞数を示すグラフとを示す。スケールバー：１００μｍ。

Ｍａｔｒｉｇｅｌに浸潤した細胞の数は、ＳＮＯＲＡ２３を過剰発現するＳｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２細胞（「ＳＮ−ＯＥ」）において、モックｐＤＮＡトランスフェクトした細胞（「Ｍｏｃｋ」）と比較して有意に増加した（共にＰ＜０．０００１）。

（実施例５：ＰＤＡＣにおける足場依存性生存へのＳＮＯＲＡ２３の関与）
本実施例では、上記実施例４の（ａ）〜（ｃ）の各細胞を、足場依存性細胞増殖（ＣＣＫ−８使用のアッセイ）および足場非依存性細胞増殖（軟寒天コロニー形成アッセイ）について評価した。

（ａ，ｂ）Ｓｕｉｔ２およびＭＩＡＰａＣａ２につき、それらのＨＬＭＣ細胞（「ＨＬＭＣ」）とその親細胞（「ＷＴ」）。

図５ａは、Ｓｕｉｔ２およびＭＩＡＰａＣａ２につき、それらのＨＬＭＣ細胞（「ＨＬＭＣ」：四角）とその親細胞（「ＷＴ」：菱形）についての、足場依存性細胞増殖アッセイにおける細胞増殖の経時変化を示すグラフである。この結果、足場依存性増殖では、Ｓｕｉｔ２− ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞とそれらの親細胞との間で差はなかった。

図５ｂは、Ｓｕｉｔ２およびＭＩＡＰａＣａ２につき、それらのＨＬＭＣ細胞（「ＨＬＭＣ」）とその親細胞（「ＷＴ」）についての軟寒天コロニー形成アッセイの代表的な画像と、形成されたコロニー数を示すグラフとを示す。

コロニーの数は、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａｃａ２−ＨＬＭＣ細胞において、それらの親細胞株よりも有意に増大した（Ｐ＝０．０００５（Ｓｕｉｔ２）、Ｐ＝０．０２８（ＭＩＡＰａｃａ２））。

（ｃ，ｄ）Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞につき、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ（＃１（配列番号５））でのトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」）およびコントロールＡＳＯ（配列番号２０）でのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）。

図５ｃは、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣにつき、それらのＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」：四角）とコントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」：菱形）についての、足場依存性細胞増殖アッセイにおける細胞増殖の経時変化を示すグラフである。図５ｃ中、＊＊Ｐ＜０．０１，＋Ｐ＜０．００１。

足場依存性増殖は、ＳＮＯＲＡ２３ノックダウンで処理したＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞でコントロールと比較して有意に抑制されたが、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞では差は明確には見られなかった。

図５ｄは、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣにつき、それらのＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」）とコントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）についての、軟寒天コロニー形成アッセイの代表的な画像と、形成されたコロニー数を示すグラフとを示す。

コロニーの数は、ＳＮＯＲＡ２３ノックダウンを行ったＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞において、コントロールよりも有意に減少した（Ｐ＝０．００１７）。ＳＮＯＲＡ２３ノックダウンを行ったＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞でも有意差はないものの軽度の減少は見られた。

（ｅ，ｆ，ｇ）Ｓｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２細胞につき、ＳＮＯＲＡ２３ｐＤＮＡのトランスフェクション（「ＳＮ−ＯＥ」）およびモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」または「Ｍｏｃｋ」）。

図５ｅは、Ｓｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２につき、それらのＳＮＯＲＡ２３ｐＤＮＡでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＯＥ」：四角）とモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」：菱形）についての、足場依存性細胞増殖アッセイにおける細胞増殖の経時変化を示すグラフである。

足場依存性増殖は、ＳＮＯＲＡ２３ｐＤＮＡでトランスフェクトしたＳｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２細胞において、モックコントロールと比較して有意に抑制された。＊Ｐ＜０．０１。

図５ｆは、Ｓｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２につき、それらのＳＮＯＲＡ２３ｐＤＮＡでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＯＥ」）とモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｍｏｃｋ」）についての軟寒天コロニー形成アッセイの代表的な画像およびその拡大画像を示す。図５ｇは、Ｓｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２につき、それらのＳＮＯＲＡ２３ｐＤＮＡでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＯＥ」）とモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｍｏｃｋ」）についての全コロニーの数および大コロニー（１ｍｍを超える直径を有する）の数を示すグラフを示す。

コロニー総数（全コロニーの数）は、ＳＮＯＲＡ２３過剰発現（「ＳＮ−ＯＥ」）のＳｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２細胞でモックコントロールよりも有意に減少した（共にｐ＜０．０００１）。大コロニーの数は、ＳＮＯＲＡ２３過剰発現（「ＳＮ−ＯＥ」）のＳｕｉｔ２細胞およびＭＩＡＰａＣａ２細胞で、モックコントロールよりも有意に増大した（共にｐ＜０．０００１）。

（実施例６：Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞のスフェロイド形成に対するＳＮＯＲＡ２３ノックダウンの効果）
Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、（ａ）ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１（配列番号５）でのトランスフェクション（「ＳＮＯＲＡ−ＫＤ」）（比較のためにコントロールＡＳＯ（配列番号２０）でトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」））、および（ｂ）ロイシンリッチ反復含有Ｇプロテイン結合レセプター５（ＬＧＲ５）ｓｉＲＮＡ（サーモフィッシャー・サイエンティフィック、ｓｉＲＮＡＩＤ：ｓ１６２７５）でのトランスフェクション（「ＬＧＲ５−ＫＤ」）（比較のためにコントロールｓｉＲＮＡ（サーモフィッシャー・サイエンティフィック、ネガティブコントロール＃１）でのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」））のそれぞれを行った場合の足場非依存性生存能を、スフェロイド形成アッセイによって調べた。ＬＧＲ５はＰＤＡＣのstemnessマーカーとして考えられており、比較のために本実施例で使用した。トランスフェクションに用いたＡＳＯおよびｓｉＲＮＡは、最終濃度２０ｎＭであった。

図６は、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞につき、（ａ）ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクション（ＳＮＯＲＡ−ＫＤ：四角）およびコントロールＡＳＯのトランスフェクション（Ｃｔｒｌ：菱形）ならびに（ｂ）ＬＧＲ５ｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（ＬＧＲ５−ＫＤ：四角）およびコントロールｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（Ｃｔｒｌ：菱形）についての、１日目（Ｄ１）〜４日目（Ｄ４）におけるスフェロイド形成変動を示すグラフである。スフェロイド形成値は、１日目（Ｄ１）の量を１とした相対値で表した。図６中、＊Ｐ＜０．０５，＊＊Ｐ＜０．０１，＊＊＊Ｐ＜０．００１。

図６に示されるように、スフェロイド形成は、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞において、ＳＮＯＲＡ２３のノックダウンにより有意に抑制された。この抑制レベルは、ＬＧＲ５ノックダウンによる抑制レベルより大きかった。

（実施例７：ＳＮＯＲＡ２３ターゲティングＡＳＯ処理後の腫瘍組織におけるＳＮＯＲＡ２３発現の阻害）
エクスビボにてＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１（配列番号５）を導入したＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞を、ヌードマウスの側腹部に移植し、一週間後、移植後のマウスにＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１（配列番号５）またはコントロールＡＳＯ（配列番号２０）の溶液（１０ｍｇ／ｋｇＢＷ）を２週間にわたり週に一度皮下注射した。マウスから腫瘍組織を切除して取り出し、種々の時点でのＳＮＯＲＡ２３発現についてｑＲＴ−ＰＣＲ解析に供した。

図７は、ＡＳＯ移植前（「ＡＳＯ（−）」）、ＡＳＯエクスビボ移植（「ＡＳＯ（＋）エクスビボ」）を行った１週目（「１週」）および２週目（「２週」）、ならびにさらに皮下注射（「エクスビボ＋皮下注射」）を行ってから２週目（「２週」）および３週目（「３週」）の腫瘍組織におけるＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ発現量を示すグラフである。ＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ発現量は、ＡＳＯ移植前（ＡＳＯ（−））を１とした相対的発現量で表した。図７中、＊Ｐ＜０．０５（各々においてｎ＝３）。

図７に示されるように、ＡＳＯエクスビボ移植を行った１週目と、さらに皮下注射を行ってから２週目および３週目で、ＡＳＯ移植前よりも腫瘍組織におけるＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ発現量が有意に減少した（Ｐ＜０．０５）。

（実施例８：ＳＮＯＲＡ２３ターゲティングＡＳＯによるマウスのＰＤＡＣの播種および肝転移の抑制）
Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１（配列番号５）またはコントロールＡＳＯ（配列番号２０）でトランスフェクトした細胞を脾臓の被膜下領域に移植したヌードマウスに、同じＡＳＯを追加して皮下投与した。このようなＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１をエクスビボ移植後に皮下投与したマウスを「ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ処理マウス」、コントロールＡＳＯをエクスビボ移植後に皮下投与したマウスを「コントロールマウス」ともいう。

（ａ）次いでイソフルラン麻酔下でＤ−ルシフェリンをマウスに皮下注射した後、IVIS Imaging Systemを用いてマウス全身の生物発光シグナル（ルシフェラーゼ活性）を測定した。

図８ａは、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞につき、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ処理マウス（「ＳＮ−ＫＤ」：四角）と、コントロールマウス（「Ｃｔｒｌ」：菱形）とについての、ＩＶＩＳ画像化により測定したマウス全身のルシフェラーゼシグナル量の経日変化を示すグラフおよびシグナル分布を示す代表的な画像である。ルシフェラーゼシグナル量は、ＩＶＩＳ画像化の測定開始日を１とした場合の相対値にて表した。図８ａ中、＊Ｐ＜０．０５。

図８ａに示されるように、ＩＶＩＳ画像化により評価された腫瘍体積増大（ルシフェラーゼ活性増加）は、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１でのエクスビボのトランスフェクションで処理したＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞で、その後の３週間のＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１の毎週の皮下投与によって有意に抑制された（２８日目にて、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣに関して、２６倍（ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ）対７４５倍（コントロールＡＳＯ）、Ｐ＝０．０１８６；ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣに関して、１１９倍（ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ）対８９５倍（コントロールＡＳＯ）、Ｐ＝０．０２４）。

（ｂ）マウス全身の生物発光シグナル測定後、マウスを安楽死させて腫瘍組織試料を採取し、ヘマトキシリンおよびエオシン染色に供し、腫瘍浸潤の状態を調べた。

図８ｂは、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞につき、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ処理マウス（「ＳＮ−ＫＤ」）と、コントロールマウス（「Ｃｔｒｌ」）とからそれぞれ採取した腫瘍組織のマトキシリンおよびエオシン染色後の試料の位相差顕微鏡写真および拡大写真である。この位相差顕微鏡写真中のスケールバーは５００μｍ（二重線）、拡大写真中のスケールバーは１００μｍ（一重線）を表す。

図８ｂに示されるように、ヘマトキシリンおよびエオシン染色によって、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞ともにコントロールマウスでは脾臓の外側にかなり浸潤したのに対し、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ処理したマウスでは腫瘍は脾臓内に被包されたことが観察された。さらに、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ処理マウスでは、いくらかの変性した癌細胞が観察された。

（ｃ）安楽死させたマウスから膵臓および肝臓を摘出し、この膵臓および肝臓をIVIS Imaging Systemを用いたルシフェラーゼ活性測定に供し、腫瘍の浸潤および肝転移のレベルを定量した。

図８ｃは、ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞につき、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１で処理したマウス（ＳＮ−ＫＤ）と、コントロールマウス（Ｃｔｒｌ）とから切除した肝臓および膵臓のＩＶＩＳ画像化によるシグナル分布を示す代表的な画像および測定したルシフェラーゼシグナル量（フォトン／秒）を示すグラフである。

図８ｃに示されるように、ＩＶＩＳ画像化によって、隣接する膵臓および離れた肝臓ともに、ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ腫瘍（ルシフェラーゼ活性）が、コントロールマウスと比較してＳＮＯＲＡ２３−ＡＳＯ処理マウスで抑制されたことが示された（膵臓浸潤度：１．４±２．２×１０^９フォトン／秒（ＳＮＯＲＡ２３−ＡＳＯ）対３．４±１．６×１０^９フォトン／秒（コントロール），ｎ＝５，Ｐ＝０．１３５；ならびに肝転移体積：１．４±２．６×１０^８フォトン／秒（ＳＮＯＲＡ２３−ＡＳＯ）対１．３±１．０×１０^９フォトン／秒（コントロール），ｎ＝５，Ｐ＝０．０３７）。したがって、ＳＮＯＲＡ２３−ＡＳＯ処理により、ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ腫瘍の膵臓への播種および肝臓への転移が共に抑制されたことが分かった。

（実施例９：ＳＮＯＲＡ２３ノックダウンで処理したＰＤＡＣ細胞における遺伝子およびタンパク質発現のプロファイリング）
ＳＮＯＲＡ２３の下流因子を同定するために、ＳＮＯＲＡ２３ノックダウンを行った（ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ（ＡＳＯ＃１：配列番号５）でトランスフェクション）または行っていない（コントロールＡＳＯ（配列番号２０）でトランスフェクション）、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ｃＤＮＡマイクロアレイ解析を行った。

図９は、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、それらのＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」）およびコントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合のｃＤＮＡマイクロアレイ解析のヒートマップ（Ａ）およびプロテオミクス解析のヒートマップ（Ｂ）を示す。

ＳＮＯＲＡ２３ノックダウンは１５遺伝子（Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞）および２２６遺伝子（ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞）の発現をダウンレギュレートし、そして１２遺伝子（Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞）および８７遺伝子（ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞）の発現を２倍以上アップレギュレートした。ｃＤＮＡマイクロアレイ解析のヒートマップにより、両細胞株において共通して１２遺伝子（ＳＮＯＲＡ２３、ＰＲＫＤＣ、ＢＵＢ１、ＰＵＰＮ１２，ＧＰＲ１２６、ＬＧＲ５、ＷＷＣ２、ＨＳ２ＳＴ１、ＺＣＣＨＣ１１、ＰＥＡＫ１、ＩＰＯ７、ＨＭＧＣＳ２）がダウンレギュレートされ、６種の遺伝子（ＣＤＫＮ１Ａ、ＬＡＭＢ３、ＬＡＭＣ２、ＦＡＭ２５Ｃ、ＡＧＯ２、ＭＹＯ１Ｂ）がアップレギュレートされたことが示された（図９のＡ）。プロテオミクス解析のヒートマップにより、両細胞株において共通して１２種のタンパク質（ＡＤＩＲＦ、ＳＡＲＴ１、ＣＡＰＺＢ、ＣＣＡＲ１、ＨＰＣＡＬ１、ＳＭＣＨＤ１、ＭＳＨ２、ＫＨＤＲＢＳ３、ＳＹＮＥ２、ＫＲＴ１、ＭＡＰ４、ＰＨＢ２）がダウンレギュレートされ、１０種のタンパク質（ＳＱＳＴＭ１、ＲＰＦ２、ＰＣＤＨ１１Ｘ、ＮＯＭＯ１、ＧＯＴ１、ＰＩＴＲＭ１、ＰＳＭＣ６、ＭＥＴＡＰ２、ＭＡＲＳ、ＧＦＰＴ１）がアップレギュレートされたことが示された（図９のＢ）

遺伝子オントロジー解析では、ＡＭＰ活性化タンパク質キナーゼ、細胞周期、ＥＧＦ−ＥＧＦＲおよびＥｒｂＢのシグナル伝達経路がＳＮＯＲＡ２３ノックダウンにより影響を受けた。このことは、ＳＮＯＲＡ２３と、ＰＤＡＣにおける生存、増殖および浸潤の細胞機能との間に相互作用があることを支持した。

ＳＮＯＲＡ２３の下流因子候補を選択するために、スクリーニング目的で通常用いられるスペクトルカウント法およびラベルフリー定量法を用いてプロテオミクスデータを解析した。

図１０は、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞においてＳＮＯＲＡ２３ノックダウンによりアップレギュレートされたタンパク質数およびダウンレギュレートされたタンパク質数について、スペクトルカウント法およびラベルフリー定量法を用いて調べた結果を示す模式図である。

図１１は、ラベルフリー定量法を用いて分析したプロテオミクスデータに関して、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、それらのＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯでのトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」）およびコントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合のヒートマップを示す。

スペクトルカウント法を用いたデータ解析によれば、ＳＮＯＲＡ２３ノックダウンによってダウンレギュレートされたタンパク質１２種およびアップレギュレートされたタンパク質１０種が、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞株の両方で見出された（図１０）。ラベルフリー定量法を用いたデータ解析によれば、両細胞株において、ＳＮＯＲＡ２３ノックダウンによりダウンレギュレートされたタンパク質が６種（ＳＹＮＥ２、ＰＲＤＸ５、ＭＡＲＣＳＫＬ１、ＳＴＡＵ１、ＤＩＳ３、ＳＧＣ）であり、アップレギュレートされたタンパク質が６種（ＧＩＴ１、ＷＤＲ４３、ＬＲＲＣＣ１、ＹＫＵ８０、ＰＣＤＨ１１Ｘ、ＳＦＲＳ１０）であった（図１０および図１１）。

スペクトルカウント法およびラベルフリー定量法の両方とも、ＳＮＯＲＡ２３の下流タンパク質候補として、ＳＹＮＥ２／ｎｅｓｐｒｉｎ−２（「ＳＹＮＥ２」）およびprotocadherin 11 X-linkedタンパク質（「ＰＣＤＨ１１Ｘ」）を示す（図１０）。

（実施例１０：ＳＮＯＲＡ２３調節ｍＲＮＡおよびタンパク質の検証）
図９に列挙した遺伝子に関して、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞において、２つのＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ（ＡＳＯ＃１：配列番号５およびＡＳＯ＃２：配列番号６）を用いて、ｑＲＴ−ＰＣＲによりＳＮＯＲＡ２３ノックダウンによるｍＲＮＡ発現の変化を調べた。これらの因子のうち、ＳＹＮＥ２、ｉｍｐｏｒｔｉｎ−７（ＩＰＯ−７）、ＬＧＲ５、およびサイクリン依存性キナーゼインヒビター１Ａ（ＣＤＫＮ１Ａ）（これらについてはｑＲＴ−ＰＣＲに下記のプライマー対を用いた）のｍＲＮＡ発現について、両ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ（ＡＳＯ＃１および＃２）のトランスフェクションにより検証した：
（ＳＹＮＥ２）
フォワード：
５’−ＴＧＧＣＡＣＡＧＴＴＴＣＴＧＣＡＧＴＡＴＴＣ−３’（配列番号２１）
リバース：
５’−ＣＣＡＴＡＧＣＡＴＣＴＴＴＣＡＣＣＴＴＴＣＣ−３’（配列番号２２）
（ＩＰＯ７＃１）
５’−ＣＴＧＴＣＴＧＡＣＡＣＣＡＡＧＴＡＴＣＴＴＧＡＡＡ−３’ （配列番号２３）
５’−ＴＴＧＣＴＧＣＡＴＧＡＣＡＣＴＣＴＧＣ−３’ （配列番号２４）
（ＩＰＯ７＃２）
５’−ＧＴＧＡＡＣＡＧＧＧＡＴＧＴＡＣＣＴＡＡＴＧＡＡ−３’ （配列番号２５）
５’−ＡＴＧＴＡＡＧＧＣＣＣＡＣＴＴＣＴＴＧＣ−３’ （配列番号２６）
（ＩＰＯ７＃３）
５’−ＴＴＡＧＡＧＧＴＣＡＴＣＡＴＴＣＴＧＣＡＧＴＧ−３’ （配列番号２７）
５’−ＴＣＡＣＴＴＧＴＣＴＴＡＡＣＣＴＣＴＣＴＴＧＴＣＡ−３’ （配列番号２８）
（ＬＧＲ５）
５’−ＡＣＣＡＧＡＣＴＡＴＧＣＣＴＴＴＧＧＡＡＡＣ−３’ （配列番号２９）
５’−ＴＴＣＣＣＡＧＧＧＡＧＴＧＧＡＴＴＣＴＡＴ−３’ （配列番号３０）
（ＣＤＫＮ１Ａ）
５’−ＣＣＧＡＡＧＴＣＡＧＴＴＣＣＴＴＧＴＧＧ−３’ （配列番号３１）
５’−ＣＡＴＧＧＧＴＴＣＴＧＡＣＧＧＡＣＡＴ−３’ （配列番号３２）

次に、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞、ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞とそれらの親細胞との間のタンパク質発現レベルの差をウェスタンブロット解析により調べた。

図１２は、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、それらの親細胞（ＷＴ）、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１（配列番号５）でのトランスフェクション（「ＳＮＯＲＡＡＳＯ」）、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「ＣｔｒｌＡＳＯ」）および未処理の場合のそれぞれを行った場合のＳＹＮＥ２のウェスタンブロット、ならびにタンパク質の相対的発現量を示すグラフである。図１２中、＊＊Ｐ＜０．０１（ＷＴに対して：ｎ＝３）；＊Ｐ＜０．０５（コントロールＡＳＯに対して：ｎ＝４）。

図１３は、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、それらの親細胞（ＷＴ）および未処理（ＨＬＭＣ）の場合、ならびにＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃１（配列番号５）でのトランスフェクション（「ＳＮ−ＡＳＯ＃１」）、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃２（配列番号６）でのトランスフェクション（「ＳＮ−ＡＳＯ＃２」）、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「ＣｔｒｌＡＳＯ」）および未処理の場合のそれぞれを行った場合のＳＹＮＥ２のｍＲＮＡ相対的発現量を示すグラフである。図１３中、＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１（コントロールＡＳＯに対して：ｎ＝４）。

ＳＹＮＥ２タンパク質の発現は、親細胞と比較してＨＬＭＣ型細胞で２倍にて有意に増大したが（図１２）、ｍＲＮＡ発現はタンパク質発現に応じて変化したわけではなかった（図１３）。ＳＮＯＲＡ２３ノックダウンによりＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞でＳＹＮＥ２発現がそれぞれ５０％および４０％減少し（図１２）、ｍＲＮＡ発現の抑制を伴った（図１３）。

他方、ｃＤＮＡマイクロアレイによりスクリーニングした他の候補のＬＧＲ５、ＩＰＯ−７およびＣＤＫＮ１Ａ、ならびにプロテオミクス解析により同定したＰＣＤＨ１１Ｘに関しては、ＨＬＭＣ型細胞と親細胞との間でタンパク質発現の差が検出されなかった。

（実施例１１：Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞の浸潤および足場非依存性増殖に対するＳＹＮＥ２発現の効果）
（Ａ）Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＹＮＥ２ｓｉＲＮＡ（サーモフィッシャー・サイエンティフィック、ｓｉＲＮＡＩＤ：ｓ２３３２８）でのトランスフェクション（「ＳＹＮＥ２−ｓｉＲＮＡ」）およびコントロールｓｉＲＮＡ（サーモフィッシャー・サイエンティフィック、ネガティブコントロール＃１）でのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」））のそれぞれを行った場合を、ｍａｔｒｉｇｅｌ浸潤アッセイによって調べた。トランスフェクションに用いたｓｉＲＮＡは、最終濃度２０ｎＭであった。

図１４Ａは、ＳＹＮＥ２ｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「ＳＹＮＥ２−ｓｉＲＮＡ」）およびコントロールｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」））のいずれかから４８時間後のＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞のｍａｔｒｉｇｅｌ浸潤アッセイの代表的な画像と、浸潤細胞数を示すグラフとを示す。

Ｍａｔｒｉｇｅｌに浸潤した細胞の数は、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞において、コントロールｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）に比較して、ＳＹＮＥ２ｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「ＳＹＮＥ２−ｓｉＲＮＡ」）によって有意に減少した（図１４Ａ；共にＰ＜０．０１）。

（Ｂ）Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ（ＡＳＯ＃１：配列番号５）およびＳＹＮＥ２ｐＤＮＡのトランスフェクション（「ＳＮＯＲＡ−ＡＳＯ＋ＳＹＮＥ２−ｐＤＮＡ」）、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯおよびモックｐＤＮＡトランスフェクション（「ＳＮＯＲＡ−ＡＳＯ＋Ｍｏｃｋ」）、ならびにコントロールＡＳＯ（配列番号２０）およびモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ−ＡＳＯ＋Ｍｏｃｋ」）のそれぞれを行った場合を、ｍａｔｒｉｇｅｌ浸潤アッセイによって調べた。トランスフェクションに用いたＡＳＯおよびｐＤＮＡは、それぞれ最終濃度２０ｎＭであった。

図１４Ｂは、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯおよびＳＹＮＥ２ｐＤＮＡのトランスフェクション（「ＳＮＯＲＡ−ＡＳＯ＋ＳＹＮＥ２−ｐＤＮＡ」）、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯおよびモックｐＤＮＡトランスフェクション（「ＳＮＯＲＡ−ＡＳＯ＋Ｍｏｃｋ」）、ならびにコントロールＡＳＯおよびモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ−ＡＳＯ＋Ｍｏｃｋ」）のいずれかから４８時間後のＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞のｍａｔｒｉｇｅｌ浸潤アッセイの代表的な画像と、浸潤細胞数を示すグラフとを示す。

ＳＹＮＥ２ｐＤＮＡおよびＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯのトランスフェクションは、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞において、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ単独と比較してそれぞれ３．５倍および７．１倍浸潤細胞数を増大した（Ｐ＝０．０１０９およびＰ＜０．０００１）。ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯおよびＳＹＮＥ２ｐＤＮＡのトランスフェクション（「ＳＮＯＲＡ−ＡＳＯ＋ＳＹＮＥ２−ｐＤＮＡ」）は、コントロールＡＳＯおよびモックｐＤＮＡプラスミドでのトランスフェクトコントロールに対しては、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞においてそれぞれ１３５．３％および１８．８％であった（図１４Ｂ）。

（Ｃ）Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＹＮＥ２ｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「ＳＹＮＥ２−ｓｉＲＮＡ」）およびコントロールｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」））のそれぞれを行った場合の足場非依存性細胞増殖能を、軟寒天コロニー形成アッセイにて評価した。トランスフェクションに用いたｓｉＲＮＡは、最終濃度２０ｎＭであった。

図１４Ｃは、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＹＮＥ２ｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「ＳＹＮＥ２−ｓｉＲＮＡ」）およびコントロールｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」））のそれぞれを行った場合の軟寒天コロニー形成アッセイの代表的な画像と、形成されたコロニー数を示すグラフとを示す。

Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａｃａ２−ＨＬＭＣ細胞において、ＳＹＮＥ２ｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「ＳＹＮＥ２−ｓｉＲＮＡ」）が、コントロールの５３．４％および２．６％に軟寒天増殖コロニー数を有意に抑制した（Ｐ＝０．０１６４およびＰ＜０．０００１；図１４Ｃ）。

（Ｄ）Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＹＮＥ２ｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「ＳＹＮＥ２−ＫＤ」）およびコントロールｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」））のそれぞれを行った場合の足場非依存性細胞増殖能を、スフェロイド形成アッセイにて評価した。トランスフェクションに用いたｓｉＲＮＡは、最終濃度２０ｎＭであった。

図１４Ｄは、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＹＮＥ２ｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（ＳＹＮＥ２−ＫＤ；四角）およびコントロールｓｉＲＮＡでのトランスフェクション（Ｃｔｒｌ：菱形）のそれぞれを行った場合についての、１日目（Ｄ１）〜４日目（Ｄ４）におけるスフェロイド形成変動を示すグラフである。スフェロイド形成値は、１日目（Ｄ１）の量を１とした相対値で表した。図１４Ｄ中、＊Ｐ＜０．０５，＊＊Ｐ＜０．０１，＊＊＊Ｐ＜０．００１。

スフェロイド形成は、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞において、ＳＹＮＥ２ｓｉＲＮＡ（ＳＹＮＥ２ノックダウン）によりコントロールの約１４％および３０％に減少した（共にＰ＜０．００１（４日目）；図１４Ｄ）

（Ｅ）Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ（ＡＳＯ＃１：配列番号５）およびＳＹＮＥ２ｐＤＮＡのトランスフェクション（「ＳＹＮＥ−ＯＥ＋ＳＮ−ＫＤ」）、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯおよびモックｐＤＮＡトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」）、ならびにコントロールＡＳＯ（配列番号２０）およびモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合の足場非依存性細胞増殖能を、スフェロイド形成アッセイにて評価した。トランスフェクションに用いたＡＳＯおよびｐＤＮＡは、それぞれ最終濃度２０ｎＭであった。

図１４Ｅは、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞について、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯおよびＳＹＮＥ２ｐＤＮＡのトランスフェクション（「ＳＹＮＥ−ＯＥ＋ＳＮ−ＫＤ」）、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯおよびモックｐＤＮＡトランスフェクション（「ＳＮ−ＫＤ」）、ならびにコントロールＡＳＯおよびモックｐＤＮＡトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合についての、１日目（Ｄ１）〜４日目（Ｄ４）におけるスフェロイド形成変動を示すグラフである。スフェロイド形成値は、１日目（Ｄ１）の量を１とした相対値で表した。図１４Ｅ中、＊Ｐ＜０．０５，＊＊Ｐ＜０．０１，＋＜０．００１。

スフェロイド形成は、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞において、ＳＹＮＥ２発現プラスミドおよびＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯを共にトランスフェクトした場合（「ＳＹＮＥ−ＯＥ＋ＳＮ−ＫＤ」）、ＳＮＯＲＡ２３ノックダウン（「ＳＮ−ＫＤ」）による抑制をコントロール（「Ｃｔｒｌ」）のレベルに完全に回復した（図１４Ｅ）。

（実施例１１：追加のＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯによるＳＮＯＲＡ２３ノックダウンの検証）
ＳＮＯＲＡ２３サイレンシングのために、下記の配列のアンチセンスオリゴヌクレオチドのＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３を設計した：

ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３（配列番号７）は、配列番号１に示されるＳＮＯＲＡ２３遺伝子の塩基配列の５’末端部位から１５３番目〜１６７番目の領域を標的とするように設計した。配列番号７の塩基配列は５’から３’方向（５’→３’）で表したものであり、配列番号１中の各標的領域配列に対する逆相補配列である。コントロールとして、コントロールＡＳＯ（配列番号２０）でのトランスフェクションを用いた。

ｑＲＴ−ＰＣＲ解析により、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３（配列番号７）に関して、ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞、Ｈｓ７６６Ｔ細胞およびＳ２−０１３細胞（東北大学加齢医学研究所医用細胞資源センターより入手）の各細胞株にトランスフェクトした場合のＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ発現およびＳＹＮＥ２ｍＲＮＡ発現を検証した。

図１５は、ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞、Ｈｓ７６６Ｔ細胞およびＳ２−０１３細胞の各細胞株について、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３でのトランスフェクション（「ＳＮ−ＡＳＯ＃３」）、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合のＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ発現（Ａ）およびＳＹＮＥ２ｍＲＮＡ発現（Ｂ）を示すグラフである。ＲＮＡ発現量は、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）の発現量を１とした相対値で表した。図１５中、＊Ｐ＜０．０５。

ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３でトランスフェクトした場合、いずれの細胞株でも、ＳＮＯＲＡ２３ＲＮＡ発現およびＳＹＮＥ２ｍＲＮＡ発現ともに抑制が見られた。

足場依存性細胞増殖アッセイおよびスフェロイド形成アッセイにて、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３に関して、ＣＡＰＡＮ−２細胞、Ｈｓ７６６Ｔ細胞およびＳ２−０１３細胞の各細胞株にトランスフェクトした場合の効果を検証した。

図１６は、ＣＡＰＡＮ−２細胞、Ｈｓ７６６Ｔ細胞およびＳ２−０１３細胞の各細胞株につき、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３のトランスフェクション（×：「ＳＮ−ＡＳＯ＃３」）、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（菱形：「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合の足場依存性細胞増殖アッセイにおける細胞増殖（Ａ）およびスフェロイド形成（Ｂ）の経時変化を示すグラフである。図１６中、＊Ｐ＜０．０５，＊＊Ｐ＜０．０１。

ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３でトランスフェクトした場合、いずれの細胞株でも、コントロールに対して増殖の抑制およびスフェロイド形成の抑制が見られた。

matrigel浸潤アッセイにて、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３に関して、ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞、Ｈｓ７６６Ｔ細胞およびＳ２−０１３細胞の各細胞株にトランスフェクトした場合の効果を検証した。

図１７は、ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞、Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞、Ｈｓ７６６Ｔ細胞およびＳ２−０１３細胞の各細胞株において、ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３のトランスフェクション（（Ａ）「ＳＮＯＲＡ２３＃１５３」または（Ｂ）「ＡＮ−ＡＳＯ＃３」）、コントロールＡＳＯでのトランスフェクション（「Ｃｔｒｌ」）のそれぞれを行った場合のトランスフェクションの４８時間後（ＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞およびＨｓ７６６Ｔ細胞）または７２時間後（Ｓｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞およびＳ２−０１３細胞）の細胞のmatrigel浸潤アッセイの代表的な画像（Ａ）および浸潤細胞数（Ｂ）を示すグラフである。

ＳＮＯＲＡ２３ＡＳＯ＃３でトランスフェクトした場合、どの細胞株でも、コントロールに対して増殖の抑制およびスフェロイド形成の抑制が見られた。膵癌細胞株であるＨｓ７６６Ｔ細胞およびＳ２−０１３細胞では顕著に増殖およびスフェロイド形成の顕著な抑制が見られ、そして高転移性ＰＤＡＣ細胞であるＭＩＡＰａＣａ２−ＨＬＭＣ細胞およびＳｕｉｔ２−ＨＬＭＣ細胞でも有意な抑制効果が観察された。

本発明は、癌浸潤または転移を阻害し得る核酸に基づく治療薬の開発に寄与し得る。さらに、本発明は、難治癌を含む種々の癌の治療または予防のための医薬品の製造に有用となる。

Claims

ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤を含む、抗腫瘍剤。
前記ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現抑制剤が、ＳＮＯＲＡ２３遺伝子と結合し得、かつ該ＳＮＯＲＡ２３遺伝子発現を抑制する活性を有する核酸分子を含む、請求項１に記載の抗腫瘍剤。
前記核酸分子が、配列番号１に示されるＳＮＯＲＡ２３遺伝子の塩基配列の一部である標的領域に相補的な配列でありかつ１２〜２０塩基の長さであるオリゴヌクレオチド、またはその薬理学上許容される塩を含む、請求項２に記載の抗腫瘍剤。
前記オリゴヌクレオチドまたはその薬理学上許容される塩が、糖修飾部分を含む１個または２個以上のヌクレオチドを含む、請求項３に記載の抗腫瘍剤。
前記オリゴヌクレオチドまたはその薬理学上許容される塩が、
以下の式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造：
を少なくとも１つ含み、
ここで、
Ｂａｓｅは、α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよいプリン−９−イル基、またはα群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよい２−オキソ−１，２−ジヒドロピリミジン−１−イル基を表し、ここで、該α群は、水酸基、核酸合成の保護基で保護された水酸基、炭素数１から６の直鎖アルキル基、炭素数１から６の直鎖アルコキシ基、メルカプト基、核酸合成の保護基で保護されたメルカプト基、炭素数１から６の直鎖アルキルチオ基、アミノ基、炭素数１から６の直鎖アルキルアミノ基、核酸合成の保護基で保護されたアミノ基、およびハロゲン原子からなり、
Ａは、以下：
で表される二価の基であり、
Ｒ^１は、水素原子、分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルキル基、分岐または環を形成していてもよい炭素数２から７のアルケニル基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール基、該α群から選択される任意の置換基を１以上有していてもよくそしてヘテロ原子を含んでいてもよい炭素数３から１２のアリール部分を有するアラルキル基、または核酸合成のアミノ基の保護基を表し；
Ｒ^１３およびＲ^１４は、それぞれ独立して、水素原子；水酸基；分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルキル基；分岐または環を形成していてもよい炭素数１から７のアルコキシ基；アミノ基；および核酸合成の保護基で保護されたアミノ基；からなる群から選択される基であり；
ｍは、０から２の整数であり；
ｎは、０から１の整数であり；
Ｘは、酸素原子、硫黄原子、またはアミノ基である、
請求項３または４に記載の抗腫瘍剤。
前記式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造が、
で表される構造である、請求項５に記載の抗腫瘍剤。
前記式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造が、前記式（Ｉ’）で表される構造であり、そして該式（Ｉ’）において、前記ｍが０であり、そして前記Ｒ^１が、水素原子、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、フェニル基、またはベンジル基である、請求項６に記載の抗腫瘍剤。
前記オリゴヌクレオチドが、６〜１０塩基のギャップ領域、３〜５塩基の５’ウイングおよび３〜５塩基の３’ウイングからなるギャップマーであり、
該ギャップ領域が、該５’ウイングと該３’ウイングの間に位置づけられ、そして
該５’ウイングおよび該３’ウイングが、前記式（Ｉ）で表されるヌクレオシド構造を含む、
請求項５から７のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
前記ＳＮＯＲＡ２３発現抑制剤がＳＹＮＥ２遺伝子発現を抑制する、請求項１から８のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
ＳＹＮＥ２発現抑制剤を含む、抗腫瘍剤。
前記ＳＹＮＥ２発現抑制剤が、ＳＹＮＥ２遺伝子と結合し得、かつ該ＳＹＮＥ２遺伝子発現を抑制する活性を有する核酸分子を含む、請求項１０に記載の抗腫瘍剤。
浸潤性または転移能のある腫瘍に対して用いられる、請求項１から１１のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
膵癌、肺癌、卵巣癌または胃癌の処置に用いられる、請求項１から１１のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
請求項１から１３のいずれかに記載の抗腫瘍剤を含有する医薬組成物。