JP2019530635A - Ｃｎｓの疾患および傷害を処置するために全身性調節性ｔ細胞のレベルまたは活性を低下させること - Google Patents

Abstract

本明細書は、ＣＮＳの疾患、障害、状態または傷害の処置において使用するための、個体における全身の免疫抑制レベルの低下を引き起こす活性な作用物質を含む薬学的組成物を開示する。その薬学的組成物は、少なくとも１コースの治療を含む投与レジメンによって投与され、各コースの治療は、処置セッションの後に非処置のインターバルセッションを順に含む。【選択図】なし

Description

（発明の分野）
本発明は、概して、循環中の全身免疫抑制のレベルを一過性に低下させることによって、中枢神経系（ＣＮＳ）の疾患、障害、状態または損傷を処置するための方法および組成物に関する。

ほとんどの中枢神経系（ＣＮＳ）の病態は、疾患の進行の一部である、共通の神経炎症性の構成要素を共有する。これらの病態には、進行性の記憶喪失および認知機能喪失を特徴とする加齢性の神経変性疾患であるアルツハイマー病（ＡＤ）があり、アルツハイマー病では、アミロイド−ベータ（Ａβ）ペプチド凝集物の蓄積が、ＣＮＳにおける炎症カスケードにおいて重要な役割を果たし、最終的には神経損傷および組織破壊に至ると示唆された（Ａｋｉｙａｍａ ｅｔ ａｌ，２０００；Ｈａｒｄｙ ＆ Ｓｅｌｋｏｅ，２００２；Ｖｏｍ Ｂｅｒｇ ｅｔ ａｌ，２０１２）。神経変性疾患における慢性神経炎症反応にもかかわらず、神経変性疾患における免疫抑制ベースの治療を研究した過去１０年間にわたる臨床研究および前臨床研究は、なぜ抗炎症薬が不十分であるかについての問題を提起した（Ｂｒｅｉｔｎｅｒ ｅｔ ａｌ，２００９；Ｇｒｏｕｐ ｅｔ ａｌ，２００７；Ｗｙｓｓ−Ｃｏｒａｙ ＆ Ｒｏｇｅｒｓ，２０１２）。

本発明者らは、ＡＤおよび類似の疾患ならびにＣＮＳ損傷の既存の治療の欠点を克服する新規の解決策を提供する；この方法は、ＣＮＳの維持および修復における全身および中枢の免疫系の種々の構成要素の役割の本発明者らのユニークな理解に基づく。

発明を解決するための手段

（発明の要旨）
１つの態様において、本発明は、自己免疫性神経炎症性疾患の再発寛解型多発性硬化症（ＲＲＭＳ）を含まないＣＮＳの疾患、障害、状態または損傷の処置において使用するための、個体における全身免疫抑制のレベルの低下を引き起こす活性な作用物質を含む薬学的組成物を提供し、ここで、前記薬学的組成物は、少なくとも２コースの治療を含む投与レジメンによる投与のための薬学的組成物であり、治療の各コースは、処置セッションに続く非処置のインターバルセッションを順に含む。

別の態様において、本発明は、自己免疫性神経炎症性疾患の再発寛解型多発性硬化症（ＲＲＭＳ）を含まない中枢神経系（ＣＮＳ）の疾患、障害、状態または損傷を処置するための方法を提供し、前記方法は、それを必要とする個体に、本発明にかかる全身免疫抑制のレベルの低下を引き起こす活性な作用物質を含む薬学的組成物を投与する工程を含み、ここで、前記薬学的組成物は、少なくとも２コースの治療を含む投与レジメンによって投与され、治療の各コースは、処置セッションに続く非処置期間のインターバルセッションを順に含む。

図１Ａ〜Ｂは、ＡＤの５ＸＦＡＤトランスジェニックマウスモデル（ＡＤ−Ｔｇ）における疾患進行に沿った脈絡叢（ＣＰ）活性を示している。（Ａ）同齢のＷＴコントロールに対する変化倍率（ｆｏｌｄ−ｃｈａｎｇｅ）として示されている、１、２、４および８月齢のＡＤ−Ｔｇマウスから単離されたＣＰにおける、ＲＴ−ｑＰＣＲによって測定された遺伝子ｉｃａｍ１、ｖｃａｍ１、ｃｘｃｌ１０およびｃｃｌ２のｍＲＮＡ発現レベル（１群あたりｎ＝６〜８；各時点についてスチューデントｔ検定）。（Ｂ）上皮タイトジャンクション分子クローディン−１、Ｈｏｅｃｈｓｔ核染色およびインテグリンリガンドＩＣＡＭ−１を免疫染色した、８月齢のＡＤ−Ｔｇマウスおよび同齢のＷＴコントロールのＣＰの代表的な顕微鏡像（スケールバー、５０μｍ）。すべてのパネルにおいて、エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊，Ｐ＜０．０５；^＊＊，Ｐ＜０．０１；^＊＊＊，Ｐ＜０．００１。

図２Ａ〜Ｃは、（Ａ）若年および高齢の非ＣＮＳ罹患患者およびＡＤ患者のヒト死後ＣＰにおけるＩＣＡＭ−１免疫反応性の定量（１群あたりｎ＝５；１元配置分散分析の後のＮｅｗｍａｎ−Ｋｅｕｌｓ ｐｏｓｔ−ｈｏｃ解析）；（Ｂ）８月齢のＡＤ−Ｔｇマウスおよび同齢のＷＴコントロールのＣＰにおけるＩＦＮ−γを発現している免疫細胞（細胞内染色され、ＣＤ４５で予めゲーティングされた）のフローサイトメトリー解析を示している。影付きヒストグラムは、アイソタイプコントロールを表している（１群あたりｎ＝４〜６；スチューデントｔ検定）；および（Ｃ）同齢のＷＴコントロールと比較された、４および８月齢のＡＤ−Ｔｇマウスから単離されたＣＰ組織における、ＲＴ−ｑＰＣＲによって測定されたｉｆｎ−γのｍＲＮＡ発現レベル（１群あたりｎ＝５〜８；各時点についてスチューデントｔ検定）。すべてのパネルにおいて、エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊，Ｐ＜０．０５；^＊＊，Ｐ＜０．０１；^＊＊＊，Ｐ＜０．００１。

図３Ａ〜Ｂは、（Ａ）８月齢のＡＤ−ＴｇおよびＷＴコントロールマウスにおけるＣＤ４^＋Ｆｏｘｐ３^＋脾細胞の出現率（ＴＣＲβで予めゲーティングされた）の代表的なフローサイトメトリープロット；および（Ｂ）１、２、４および８月齢のＡＤ−ＴｇおよびＷＴコントロールマウス由来の脾細胞の定量的解析（１群あたりｎ＝６〜８；各時点についてスチューデントｔ検定）を示している。すべてのパネルにおいて、エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊，Ｐ＜０．０５；^＊＊，Ｐ＜０．０１；^＊＊＊，Ｐ＜０．００１。

図４は、最後のＤＴｘ注射の１日後のＡＤ−Ｔｇ／Ｆｏｘｐ３−ＤＴＲ^{＋／ −}マウス由来の脾細胞のゲーティングストラテジーおよび代表的なフローサイトメトリープロットを示している。ＤＴｘを４日連続ｉ．ｐ．注射したところ、Ｆｏｘｐ３^＋細胞の約９９％枯渇が達成された。

図５Ａ〜Ｇは、ＡＤ−ＴｇマウスにおけるＴｒｅｇの一過性の枯渇の効果を示している。（Ａ）ＡＤ−Ｔｇ／Ｆｏｘｐ３−ＤＴＲ^＋（ＤＴＲ導入遺伝子を発現する）およびＤＴＲを発現しないＡＤ−Ｔｇ同腹仔（ＡＤ−Ｔｇ／Ｆｏｘｐ３−ＤＴＲ⁻）コントロール群を４日連続ＤＴｘで処置した。最後のＤＴｘ注射の１日後のＤＴｘで処置された６月齢のＡＤ−Ｔｇマウスにおける、ＲＴ−ｑＰＣＲによって測定された遺伝子ｉｃａｍ１、ｃｘｃｌ１０およびｃｃｌ２のＣＰにおけるｍＲＮＡ発現レベル（１群あたりｎ＝６〜８；スチューデントｔ検定）。（Ｂ〜Ｄ）最後のＤＴｘ注射の３週間後の、ＤＴｘで処置された６月齢のＡＤ−Ｔｇマウスおよびコントロールの脳実質（別個に切除された脈絡叢を除く）のフローサイトメトリー解析。ＤＴｘで処置されたＡＤ−Ｔｇ／Ｆｏｘｐ３−ＤＴＲ^＋マウスおよびＡＤ−Ｔｇ／Ｆｏｘｐ３−ＤＴＲ⁻コントロールのＣＤ１１ｂ^ｈｉｇｈ／ＣＤ４５^ｈｉｇｈｍｏ−ＭΦおよびＣＤ４^＋Ｔ細胞の数の増加を示す定量的フローサイトメトリー解析（Ｂ）、および代表的なフローサイトメトリープロット（Ｃ）、およびＣＤ４^＋Ｆｏｘｐ３^＋Ｔｒｅｇ出現率の定量的解析（Ｄ）（１群あたりｎ＝３〜７；スチューデントｔ検定）。（Ｅ）最後のＤＴｘ注射の３週間後の、ＤＴｘで処置された６月齢のＡＤ−Ｔｇ ＡＤ−Ｔｇ／Ｆｏｘｐ３−ＤＴＲ^＋およびＡＤ−Ｔｇ／Ｆｏｘｐ３−ＤＴＲ−コントロール）の脳実質におけるｆｏｘｐ３およびｉｌ１０のｍＲＮＡ発現レベル（１群あたりｎ＝６〜８；スチューデントｔ検定）。（Ｆ）最後のＤＴｘ注射の３週間後の、ＤＴｘで処置された６月齢のＡＤ−Ｔｇ／Ｆｏｘｐ３−ＤＴＲ^＋およびＡＤ−Ｔｇ／Ｆｏｘｐ３−ＤＴＲ⁻コントロールマウス由来の海馬切片において低減したアストログリオーシス（ａｓｔｒｏｇｌｉｏｓｉｓ）を示しているＧＦＡＰ免疫染色の定量的解析（スケールバー、５０μｍ；１群あたりｎ＝３〜５；スチューデントｔ検定）。（Ｇ）最後のＤＴｘ注射の３週間後の、脳実質におけるｉｌ−１２ｐ４０およびｔｎｆ−ａのｍＲＮＡ発現レベル（１群あたりｎ＝６〜８；スチューデントｔ検定）。すべてのパネルにおいて、エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊，Ｐ＜０．０５；^＊＊，Ｐ＜０．０１；^＊＊＊，Ｐ＜０．００１。

図６Ａ〜Ｅは、Ａβプラークの学習／記憶能力に対するＴｒｅｇの一過性の枯渇の効果を示している。最後のＤＴｘ注射の３週間後の、ＤＴｘで処置された５月齢のＡＤ−Ｔｇ／Ｆｏｘｐ３−ＤＴＲ^＋およびＡＤ−Ｔｇ／Ｆｏｘｐ３−ＤＴＲ⁻コントロールマウスの脳の、ＡβプラークおよびＨｏｅｃｈｓｔ核染色を免疫染色した（Ａ）代表的な顕微鏡像および（Ｂ）定量的解析（スケールバー、２５０μｍ）。海馬歯状回（ＤＧ）および大脳皮質５層におけるＡβプラークの平均面積および数を定量した（６μｍ脳切片において；１群あたりｎ＝５〜６；スチューデントｔ検定）。図６Ｃ〜Ｅ）は、最後のＤＴｘ注射の３週間後の、ＤＴｘで処置された６月齢のＡＤ−Ｔｇ／Ｆｏｘｐ３−ＤＴＲ^＋およびコントロールマウスのモーリス水迷路（ＭＷＭ）試験の成績を示している。一過性のＴｒｅｇ枯渇の後、ＡＤ−Ｔｇマウスは、ＡＤ−Ｔｇコントロールと比べて、ＭＷＭの（Ｃ）習得期、（Ｄ）探索期および（Ｅ）逆転期において、より良好な空間学習／空間記憶の能力を示した（１群あたりｎ＝７〜９；個別の対比較のための２元配置反復測定分散分析に続くボンフェローニの事後解析；^＊，習得、探索および逆転の全体についてＰ＜０．０５）。すべてのパネルにおいて、エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊，Ｐ＜０．０５；^＊＊，Ｐ＜０．０１；^＊＊＊，Ｐ＜０．００１。

図７は、同齢のＷＴコントロールと比べたときの、６および１２月齢のＡＰＰ／ＰＳ１ ＡＤ−Ｔｇマウス（アルツハイマー病のマウスモデル（材料および方法を参照のこと））から単離されたＣＰにおける、ＲＴ−ｑＰＣＲによって測定されたｉｆｎ−γのｍＲＮＡ発現レベルを示している（１群あたりｎ＝５〜８；スチューデントｔ検定）。エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊，Ｐ＜０．０５。

図８Ａ〜Ｉは、ＡＤ−Ｔｇマウスにおける毎週の酢酸グラチラマー（ＧＡ）の投与の治療効果を示している。（Ａ）毎週のＧＡ処置レジメンの模式図。マウス（５月齢）に、ＧＡ（１００μｇ）を第１週において２回（１および４日目に）およびその後４週間の全期間にわたって１週間ごとに１回、ｓ．ｃ．注射した。それらのマウスを、最後の注射の１週間後（ＭＷＭ）、１ヶ月後（ＲＡＷＭ）および２ヶ月後（ＲＡＷＭ、異なる実験空間設定を用いて）に認知能力について、ならびに海馬の炎症について調べた。図８Ｂ〜Ｄは、処置されていないＡＤ−Ｔｇマウスおよび毎週ＧＡで処置された６月齢のＡＤ−Ｔｇマウスの海馬における遺伝子のｍＲＮＡ発現レベルを示しており、毎週ＧＡで処置されたマウスにおける、（Ｂ）炎症促進性サイトカイン（例えば、ＴＮＦ−α、ＩＬ−１βおよびＩＬ−１２ｐ４０）の低発現、（Ｃ）抗炎症性サイトカインＩＬ−１０およびＴＧＦ−βの増加、および（Ｄ）神経向性因子（ｎｅｕｒｏｔｒｏｐｉｃ ｆａｃｔｏｒｓ）ＩＧＦ−１およびＢＤＮＦの増加を示している（１群あたりｎ＝６〜８；スチューデントｔ検定）。図８Ｅ〜Ｇでは、ＡＤ−Ｔｇマウス（５月齢）を毎週ＧＡまたはビヒクル（ＰＢＳ）で処置し、ＭＷＭタスクにおいて６月齢の同齢のＷＴ同腹仔と比較した。処置されたマウスは、コントロールと比べて、ＭＷＭの習得期（Ｅ）、探索期（Ｆ）および逆転期（Ｇ）において、より良好な空間学習／空間記憶の成績を示した（１群あたりｎ＝６〜９；個別の対比較のための２元配置反復測定分散分析に続くボンフェローニのｐｏｓｔ−ｈｏｃ解析；ＷＴマウス、黒丸；ＡＤ−Ｔｇコントロール、白丸；処置されたＡＤ−Ｔｇ、灰色丸）。図８Ｈ〜Ｉは、最後のＧＡ注射の１ヶ月後（Ｈ）または２ヶ月後（Ｉ）のＲＡＷＭタスクにおける同じマウスの認知能力を示している（１群あたりｎ＝６〜９；個別の対比較のための２元配置反復測定分散分析に続くボンフェローニのｐｏｓｔ−ｈｏｃ解析）。データは、少なくとも３回の独立した実験の代表である。すべてのパネルにおいて、エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊，Ｐ＜０．０５；^＊＊，Ｐ＜０．０１；^＊＊＊，Ｐ＜０．００１。

図９Ａ〜Ｈは、ＡＤ−Ｔｇマウスにおける毎週ＧＡの投与のさらなる治療効果を示している。Ａ〜Ｂは、毎週ＧＡまたはビヒクル（ＰＢＳ）で処置され、投与レジメンの第１週の終わり（合計２回のＧＡ注射の後）に調べられた、５ＸＦＡＤ ＡＤ−Ｔｇマウスを示している。同齢のＷＴコントロールと比べたときの、処置された６月齢のＡＤ−Ｔｇマウスにおける、ＣＤ４^＋Ｆｏｘｐ３^＋脾細胞の出現率（Ａ）およびＣＰにおけるＩＦＮ−γを発現している免疫細胞（Ｂ；細胞内染色され、ＣＤ４５で予めゲーティングされた）のフローサイトメトリー解析（１群あたりｎ＝４〜６；１元配置分散分析の後のＮｅｗｍａｎ−Ｋｅｕｌｓ ｐｏｓｔ ｈｏｃ解析）。（Ｃ）毎週ＧＡまたはビヒクルで処置され、毎週ＧＡレジメンの第１週または第４週の終わりに調べられた、４月齢のＡＤ−ＴｇマウスのＣＰにおける、ＲＴ−ｑＰＣＲによって測定された遺伝子ｉｃａｍ１、ｃｘｃｌ１０およびｃｃｌ２のｍＲＮＡ発現レベル（１群あたりｎ＝６〜８；１元配置分散分析の後のＮｅｗｍａｎ−Ｋｅｕｌｓ ｐｏｓｔ ｈｏｃ解析）。図９Ｄ〜Ｅは、毎週ＧＡ後の、６月齢のＡＤ−Ｔｇ／ＣＸ_３ＣＲ１^{ＧＦＰ／＋}ＢＭキメラ由来の脳切片の代表的な像を示している。ＣＸ_３ＣＲ１^ＧＦＰ細胞は、毎週ＧＡで処置されたＡＤ−Ｔｇマウスの第３脳室のＣＰ（３Ｖ；ｉ）、隣接する脳室腔（ｉｉ）、および側脳室のＣＰ（ＬＶ；ｉｉｉ）に局在した（Ｄ；スケールバー、２５μｍ）。共焦点のｚ軸スタックの代表的な正射影は、毎週ＧＡで処置された７月齢のＡＤ−Ｔｇ／ＣＸ_３ＣＲ１^{ＧＦＰ／＋}マウスのＣＰにおいて、ＧＦＰ^＋細胞と骨髄マーカーＣＤ６８との共局在化を示しているが、コントロールのＰＢＳで処置されたＡＤ−Ｔｇ／ＣＸ_３ＣＲ１^{ＧＦＰ／＋}マウスでは共局在を示さない（Ｅ；スケールバー、２５μｍ）。（Ｆ）ＣＸ_３ＣＲ１^ＧＦＰ細胞は、ＧＡで処置されたＡＤ−Ｔｇ／ＣＸ_３ＣＲ１^{ＧＦＰ／＋}マウスの脳においてＡβプラークの近くに骨髄マーカーＩＢＡ−１と共局在し、骨髄マーカーＩＢＡ−１を共発現する（スケールバー、２５μｍ）。図９Ｇ〜Ｈは、毎週ＧＡレジメンの第２週における、４月齢のＷＴマウス、処置されていないＡＤ−ＴｇマウスおよびＡＤ−Ｔｇマウスの海馬から単離された細胞の代表的なフローサイトメトリープロットを示している。ＣＤ１１ｂ^ｈｉｇｈ／ＣＤ４５^ｈｉｇｈ ｍｏ−ＭΦをゲーティングし（Ｇ）、定量した（Ｈ；１群あたりｎ＝４〜５；一元配置分散分析の後のＮｅｗｍａｎ−Ｋｅｕｌｓ ｐｏｓｔ ｈｏｃ解析）。すべてのパネルにおいて、エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊，Ｐ＜０．０５；^＊＊，Ｐ＜０．０１；^＊＊＊，Ｐ＜０．００１。

図１０Ａ〜Ｈは、ＡＤ−Ｔｇマウスにおけるｐ３００阻害剤（Ｃ６４６）の投与の治療効果を示している。図１０Ａ〜Ｂでは、高齢のマウス（１８ヶ月）を１週間にわたってｐ３００ｉまたはビヒクル（ＤＭＳＯ）で処置し、処置休止の１日後に調べた。ｐ３００ｉ処置後の、脾臓におけるＩＦＮ−γを発現するＣＤ４^＋Ｔ細胞の出現率の上昇（Ａ）およびＣＰにおけるＩＦＮ−γを発現する免疫細胞数の増加（Ｂ）を示す代表的なフローサイトメトリープロット。図１０Ｃ〜Ｅは、１週間にわたってｐ３００ｉまたはビヒクル（ＤＭＳＯ）を投与され、その後、さらに３週間後に調べられた、１０月齢のＡＤ−Ｔｇマウスの脳の代表的な顕微鏡像（Ｃ）およびその脳におけるＡβプラーク量の定量的解析を示している。脳のＡβプラークを免疫染色し、脳をＨｏｅｃｈｓｔ核染色によって免疫染色した（１群あたりｎ＝５；スケールバー、２５０μｍ）。海馬ＤＧ（Ｄ）および大脳皮質５層（Ｅ）における、Ａβプラークの平均面積および平均プラーク数を定量した（６μｍ脳切片において；１群あたりｎ＝５〜６；スチューデントｔ検定）。（Ｆ）１または２セッションにおける、７月齢の種々の群のＡＤ−Ｔｇマウスへのｐ３００ｉ処置（またはビヒクルとしてのＤＭＳＯ）投与レジメンの模式図。図１０Ｇ〜Ｈは、処置されていないＡＤ−Ｔｇ群と比べたときの、大脳皮質（５層）のＡβプラークのカバー率（ｐｅｒｃｅｎｔａｇｅ ｃｏｖｅｒａｇｅ）の平均変化（Ｇ）、ならびに大脳の可溶性Ａβ_１−４０およびＡβ_１−４２タンパク質の平均レベルの変化（Ｈ）を示している（非処置群のＡβ_１−４０およびＡβ_１−４２の平均レベル、それぞれ９０．５±１１．２および６３．８±６．８ｐｇ／ｍｇ全部分（ｔｏｔａｌ ｐｏｒｔｉｏｎ）；１群あたりｎ＝５〜６；一元配置分散分析の後のＮｅｗｍａｎ−Ｋｅｕｌｓ ｐｏｓｔ ｈｏｃ解析）。すべてのパネルにおいて、エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊，Ｐ＜０．０５；^＊＊，Ｐ＜０．０１；^＊＊＊，Ｐ＜０．００１。

図１１Ａ〜Ｄは、ＰＤ−１遮断が、ＡＤ−Ｔｇマウスにおいて、脾臓内のＩＦＮ−γ産生ＣＤ４＋Ｔ細胞のパーセンテージならびに脈絡叢でのＩＦＮ−γ発現を高めることを示している。１０月齢のＡＤ−Ｔｇマウスに、２５０ｕｇの抗ＰＤ−１またはコントロールＩｇＧを１日目および４日目にｉ．ｐ．注射し、７〜１０日目に全身免疫応答およびＣＰ活性に対する効果について調べた。（Ａ〜Ｂ）抗ＰＤ−１またはＩｇＧで処置されたＡＤ−Ｔｇマウスおよび処置されていないＡＤ−ＴｇおよびＷＴコントロールにおける、ＣＤ４^＋ＩＦＮ−γ^＋脾細胞の出現率（細胞内染色され、ＣＤ４５およびＴＣＲ−βで予めゲーティングされた）の代表的なフローサイトメトリープロット（Ａ）および定量的解析（Ｂ）（１群あたりｎ＝４〜６；一元配置分散分析の後のＮｅｗｍａｎ−Ｋｅｕｌｓ ｐｏｓｔ ｈｏｃ解析；^＊＊，示されている処置群間においてＰ＜０．０１；エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している）。（Ｃ）ＩｇＧで処置されたおよび処置されていないＡＤ−Ｔｇコントロールと比べたときの、ＰＤ−１で処置されたＡＤ−ＴｇマウスのＣＰにおける、ＲＴ−ｑＰＣＲによって測定されたｉｆｎ−ｇのｍＲＮＡ発現レベル、（Ｄ）同じマウスのＣＰにおけるＲＮＡ−Ｓｅｑにおいて濃縮されたＧＯアノテーションターム（１群あたりｎ＝３〜５；１元配置分散分析の後のＮｅｗｍａｎ−Ｋｅｕｌｓ ｐｏｓｔ ｈｏｃ解析；^＊，Ｐ＜０．０５）（灰色のスケールは、Ｐ値の底１０の対数に負号をつけたものに相当する）。

図１２Ａ〜Ｂは、ＰＤ−１遮断が、ＡＤ−Ｔｇマウスにおける認知機能低下を緩和することを示している。１０月齢のＡＤ−Ｔｇマウスに、１日目および４日目に、２５０μｇの抗ＰＤ−１またはコントロールＩｇＧをｉ．ｐ．注射し、１または２ヶ月後に、病態に対する効果についてそれらのマウスを調べた。（Ａ）は、抗ＰＤ−１またはＩｇＧコントロールによる１回の処置セッション後のＲＡＷＭにおけるＡＤ−Ｔｇマウスの成績を示しており、（Ｂ）は、単一の抗ＰＤ−１処置セッション、または１ヶ月間のインターバルを伴う２セッションの成績に対する効果を示している。単一矢印は、処置の時点を示し、二重矢印は、認知試験の時点を示す。同齢のＷＴマウスおよび処置されていないＡＤ−Ｔｇマウスと比べたときの、ＲＡＷＭ学習および記憶タスクにおける１日あたりの平均エラー数によって評価される、抗ＰＤ−１およびＩｇＧで処置されたマウスの認知能力（１群あたりｎ＝６〜８；個別の対比較のための二元配置反復測定分散分析に続くボンフェローニのｐｏｓｔ ｈｏｃ解析）。

図１３Ａ〜Ｄは、ＰＤ−１遮断がＡＤの病態を緩和すること示している代表的な顕微鏡像（Ａ）、ならびに１０月齢において抗ＰＤ−１（図１２Ａ〜Ｂ）に示されているような１または２セッション）またはＩｇＧコントロールで処置され、その後、１２月齢において調べられたＡＤ−Ｔｇマウスの脳におけるＡβプラーク量およびアストログリオーシスの定量的解析（Ｂ、Ｃ、Ｄ）を示している。脳におけるＡβプラーク（赤色）、ＧＦＡＰ（アストログリオーシス、緑色）を免疫染色し、Ｈｏｅｃｈｓｔ核染色によって染色した（１群あたりｎ＝４〜５；スケールバー、５０μｍ）。Ａβプラークの平均面積および平均プラーク数を、海馬歯状回（ＤＧ）および大脳皮質５層において定量し、ＧＦＡＰ免疫反応性を海馬において測定した（６μｍ脳切片において；１群あたりｎ＝５〜６；スチューデントｔ検定）。すべてのパネルにおいて、エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊，Ｐ＜０．０５；^＊＊，Ｐ＜０．０１；^＊＊＊，Ｐ＜０．００１。

図１４は、ＡＤ−Ｔｇマウスの認知機能低下に対する抗ＰＤ−１抗体の異なる投与および投与頻度の効果を示しており、投与スキーム、ならびに７月齢において放射状アーム水迷路（ＲＡＷＭ）タスクを用いた空間学習および空間記憶の成績に対する抗ＰＤ−１抗体処置の効果を図示している。黒矢印は、処置の時点を示しており、イラストは、認知試験の時点を示している。

図１５Ａ〜Ｈは、ＡＤ−Ｔｇマウスにおける認知機能低下に対する抗ＰＤ−１抗体の反復投与の効果を示している。５ＸＦＡＤマウスを、３月齢からＰＤ−１特異的抗体またはＩｇＧコントロールで処置し；処置を５月齢まで１ヶ月に１回続けた（合計３回の注射）。実験計画が（Ａ）に示されている。黒矢印は、処置の時点を示し、イラストは、認知試験の時点を示している。（Ｂ）抗ＰＤ−１で処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝７）、コントロール抗体（ＩｇＧ）で処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝９）および野生型（ＷＴ）（ｎ＝８）の５月齢におけるＲＡＷＭの成績。（Ｃ）抗ＰＤ−１で処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝７）、ＩｇＧで処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝９）および野生型（ＷＴ）（ｎ＝８）コントロールの６月齢におけるＲＡＷＭの成績。（２つの５ＸＦＡＤ処置群間の多重比較のために２元配置反復測定分散分析およびダネットのｐｏｓｔ ｈｏｃ検定）。（Ｄ）５および６ヶ月後における抗ＰＤ−１およびＩｇＧで処置された群の成績の比較；各マウスに対してエラーの数を示している値は、２日目の試験の最後の測定から取られている。抗ＰＤ−１で処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝９）、ＩｇＧで処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝１０）および野生型（ＷＴ）（ｎ＝６）コントロールの鉤状回におけるＮｅｕ−Ｎ＋ニューロンの（Ｅ）代表的な免疫蛍光像および（Ｆ）定量的解析。（Ｇ）抗ＰＤ−１で処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝５）と比較されている、ＩｇＧで処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝８）において高いカスパーゼ−３活性を示している海馬ニューロンの代表的な免疫蛍光像。（Ｈ）海馬ＣＡ３領域における活性化されたカスパーゼ−３ Ｎｅｕ−Ｎ＋免疫反応細胞の定量（１元配置分散分析およびフィッシャーの正確検定）。スケールバー、１００μｍ（ｅ，ｇ）。データは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．として表されている；^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、^＊＊＊Ｐ＜０．００１

図１６は、ＡＤ−Ｔｇマウスの認知機能低下に対する抗ＴＩＭ−３抗体の単回投与の効果を示しており、投与スキーム、ならびに７月齢において放射状アーム水迷路（ＲＡＷＭ）タスクを用いたときの空間学習および空間記憶の成績に対する抗ＴＩＭ−３抗体の処置の効果を図示している。黒矢印は、処置の時点を示しており、イラストは、認知試験の時点を示している。

図１７Ａ〜Ｊは、ＡＤ−ＴｇマウスにおけるＰＤ−Ｌ１の遮断が認知機能低下を軽減することを示している。５ＸＦＡＤマウス（７月齢）をＰＤ−１特異的抗体、ＰＤ−Ｌ１特異的抗体またはアイソタイプ一致コントロール抗体（ＩｇＧ）で処置した。実験計画が（Ａ）に示されている。黒矢印は、処置の時点を示し、イラストは、ＲＡＷＭを用いた認知スコアリングの時点を示している。（Ｂ）０．１ｍｇ／マウス（ｎ＝８）、０．５ｍｇ／マウス（ｎ＝９）もしくは１．５ｍｇ／マウス（ｎ＝９）のいずれかの抗ＰＤ−Ｌ１特異的抗体の単回投与の注射、または１．５ｍｇ／マウスでのＩｇＧコントロール（ｎ＝１０）で処置された５ＸＦＡＤマウス（雄および雌の動物を、ＩｇＧコントロールを含むすべての群において等しい割合で使用した）のＲＡＷＭの成績。同齢の野生型（ＷＴ）同腹仔をさらなるコントロール群（ｎ＝１０）として使用した。（Ｃ）０．５ｍｇの抗ＰＤ−１特異的抗体（ｎ＝１４）または０．５ｍｇの抗ＰＤ−Ｌ１特異的抗体（ｎ＝７）；ＩｇＧコントロール抗体（ｎ＝１５）で処置された５ＸＦＡＤマウスおよびＷＴコントロール（ｎ＝１９）のＲＡＷＭの成績の比較も試験した（各抗ＰＤ−１処置群とＩｇＧで処置された群との間の多重比較について２元配置反復測定分散分析およびダネットのｐｏｓｔ ｈｏｃ検定）。示されている結果は、プールされた２つの実験の結果である。（Ｄ）Ａβ（赤色）、ＧＦＡＰ（緑色）およびＤＡＰＩ核染色を免疫染色した脳の代表的な免疫蛍光像（スケールバー、１００μｍ）、ならびに（Ｅ、Ｆ）抗ＰＤ−１で処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝９）、抗ＰＤ−Ｌ１で処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝１０）およびＩｇＧで処置された（ｎ＝９）５ＸＦＡＤマウスにおけるＡβの定量的解析。（Ｇ）処置の１ヶ月後に評価された、抗ＰＤ−１で処置された（ｎ＝８）、抗ＰＤ−Ｌ１で処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝１０）、ＩｇＧで処置された（ｎ＝１５）５ＸＦＡＤマウス、ならびにＷＴ（ｎ＝６）におけるＧＦＡＰ。プラーク面積およびプラーク数の平均値を、歯状回（ＤＧ）および大脳皮質（Ｖ層）において定量し（６μｍの脳切片において）、海馬におけるＧＦＡＰの免疫反応性を測定した（１元配置分散分析およびフィッシャーの正確検定）。処置の１ヶ月後に評価された、抗ＰＤ−１で処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝６）、抗ＰＤ−Ｌ１で処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝８）およびＩｇＧで処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝８）の脳における、（Ｈ）代表的な免疫蛍光像および（Ｉ）シナプトフィジンの定量的解析。シナプトフィジンの免疫反応性を海馬ＤＧおよびＣＡ３の領域において測定した（１元配置分散分析およびフィッシャーの正確検定）。（Ｊ）ＩｇＧコントロール（ｎ＝５）、抗ＰＤ−１（ｎ＝５）または抗ＰＤ−Ｌ１（ｎ＝５）による処置の１ヶ月後に５ＸＦＡＤマウスから単離された海馬組織においてＲＴ−ｑＰＣＲによって測定されたｉｌ−１０発現に対するｉｌ−１２ｐ４０のｍＲＮＡ発現レベル（１元配置分散分析およびフィッシャーの正確検定）。（Ｂ〜Ｃ、Ｅ〜Ｇ、Ｉ〜Ｊ）データは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．として表されている；^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、^＊＊＊Ｐ＜０．００１

図１８Ａ〜Ｂは、ＰＤ−Ｌ１の発現が加齢に伴ってＣＰにおいて増加することを示しており、（Ａ）は、ＲＴ−ｑＰＣＲによって測定された、若齢マウス（左のバー）および高齢マウス（右のバー）のＣＰにおけるＰＤＬ１の発現を示しており；（Ｂ）は、若齢マウス（左の顕微鏡写真）および高齢マウス（右の顕微鏡写真）のＣＰにおけるＰＤ−Ｌ１の上皮での発現の免疫組織化学的染色を示している。ＬＶ；側脳室。

図１９Ａ〜Ｂは、Ｈ＆Ｅ染色に基づく組織学的解析を通じて、抗ＰＤ１ｍＡｂ（ｎ＝１０匹のラット；２０個の眼）、ＩｇＧ（ｎ＝１０匹のラット；２０個の眼）の腹腔内注射によって処置されたＲＣＳラットまたは非処置の動物（ｎ＝４匹のラット；８個の眼）の個々の眼において測定された網膜全体にわたる外顆粒層（ＯＮＬ）の厚さのプロットを示しており、（Ａ）は、すべての動物を示しており、（Ｂ）は、応答者だけを示している。データは、平均値±標準誤差値として表されている；^＊Ｐ＜０．０５；^＊＊Ｐ＜０．０１；^＊＊＊Ｐ＜０．００１。

図２０Ａ〜Ｂは、Ｈ＆Ｅ染色に基づく組織学的解析を通じて、抗ＰＤ１ｍＡｂ（ｎ＝６）もしくはＩｇＧ（ｎ＝５）の硝子体内注射によって処置されたＲＣＳラットの個々の眼において測定された網膜全体にわたる外顆粒層（ＯＮＬ）の厚さのプロットを示しており、（Ａ）抗ＰＤ１ｍＡｂ処置動物；および（Ｂ）ＩｇＧ処置動物の、両方の眼（注射された眼および反対側の注射されていない眼）を示している。データは、平均値±標準誤差値として表されている；有意差を各個別のサンプリング時点ごとにスチューデントのＴ検定によって判定し、アステリスクでマークしている（^＊Ｐ＜０．０５）。

図２１Ａ〜Ｅは、ＤＭ−ｈＴａｕマウスにおけるＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１軸の遮断が、脳への単球の動員を増強することを示している。０．５ｍｇの抗ＰＤ−Ｌ１（ｎ＝１０）またはＩｇＧ一致コントロール抗体（ＩｇＧ）（ｎ＝１７）で処置された１０月齢のＤＭ−ｈＴＡＵマウスおよび同齢のＷＴ同腹仔（ｎ＝１３）を、処置の１４日後にフローサイトメトリーを用いて調べた。ＣＤ４４^＋ＣＤ６２Ｌ^ｈｉｇｈセントラルメモリーＴ（Ｔ_ＣＭ）細胞に対する、（Ａ）脾細胞に対するフローサイトメトリーのゲーティングストラテジー、および（Ｂ）ＦｏｘＰ３^＋調節性Ｔ細胞の定量的解析、および（Ｃ）ＣＤ４４^＋ＣＤ６２Ｌ^{−／ｌｏｗ}エフェクターメモリーＴ（Ｔ_ＥＦ）細胞、および（Ｃ）ＣＤ４４^＋ＣＤ６２Ｌ^{−／ｌｏｗ}エフェクターメモリーＴ（Ｔ_ＥＦ）細胞。（Ｄ）脳のＣＤ４５^ｌｏｗＣＤ１１ｂ^＋およびＣＤ４５^ｈｉｇｈＣＤ１１ｂ^＋骨髄性細胞に対するフローサイトメトリーのゲーティングストラテジー。（Ｅ）同じマウス由来の脳を切除し、ＣＤ４５^ｈｉｇｈＣＤ１１ｂ^＋浸潤性骨髄性細胞の存在について解析した。ＩｇＧで処置されたＤＭ−ｈＴＡＵマウス（ｎ＝１６）およびＷＴ同腹仔（ｎ＝１３）に対する、ＰＤ−Ｌ１遮断（ｎ＝１０）の１４日後の浸潤性骨髄性細胞の頻度の増加を示している、脳のＣＤ４５^ｈｉｇｈＣＤ１１ｂ^＋細胞の定量的解析。２つの独立した実験の結果をプールする。データは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．として示されている；^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、^＊＊＊Ｐ＜０．００１。

図２２Ａ〜Ｇは、ＤＭ−ｈＴａｕマウスにおけるＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１軸の遮断が脳への単球の動員を増強することを示している。２つの変異（Ｋ２５７Ｔ／Ｐ３０１Ｓ；二重変異体、ＤＭ−ｈＴＡＵ）を有するヒト−タウ遺伝子を発現している雄マウス（コホートの平均月齢は８月齢）を抗ＰＤ−１特異的抗体、抗ＰＤ−Ｌ１特異的抗体またはアイソタイプ一致コントロール抗体（ＩｇＧ）で処置した（０．５ｍｇ／マウスの１回のｉ．ｐ．注射）；実験計画が（Ａ）に示されている。黒矢印は、処置の時点を示し、イラストは、認知試験の時点を示している。（Ｂ）Ｔ型迷路タスクを用いたときの空間記憶に対するＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１遮断の効果。抗ＰＤ−１（ｎ＝１０）または抗ＰＤ−Ｌ１（ｎ＝１０）で処置されたＤＭ−ｈＴＡＵマウスは、ＩｇＧコントロール（ｎ＝１６）よりも、新しいアームを好むことを示した（Ｂ〜Ｃ）。同齢の野生型（ＷＴ）同腹仔（ｎ＝１９）をさらなるコントロール群として使用した。２つの独立した実験の結果をプールする。（Ｃ）３つの処置群の異なるアームにおいて費やされた時間の代表的なヒートマッププロット。（Ｄ）抗ＰＤ−１（ｎ＝６）、抗ＰＤ−Ｌ１（ｎ＝４）またはＩｇＧアイソタイプコントロール（ｎ＝６）で処置されたＤＭ−ｈＴＡＵマウスおよび同齢のＷＴ同腹仔（ｎ＝５）のＹ型迷路認知タスクの成績。ＤＭ−ＴＡＵ＋ＩｇＧ（ｎ＝６）、ＤＭ−ｈＴＡＵ＋抗ＰＤ−１（ｎ＝６）、ＤＭ−ｈＴＡＵ＋抗ＰＤ−Ｌ１（ｎ＝４）および非処置のＷＴ同腹仔（ｎ＝５）の海馬における、処置の１ヶ月後に評価された、（Ｅ）代表的な免疫蛍光像および（Ｆ）ＧＦＡＰの免疫反応性の定量的解析。ＩｇＧで処置されたコントロールに対する、ＤＭ−ｈＴＡＵ＋ＩｇＧ（ｎ＝１１）、ＤＭ−ＴＡＵ＋抗ＰＤ−１（ｎ＝１１）、ＤＭ−ｔａｕ＋抗ＰＤ−Ｌ１（ｎ＝４）および非処置のＷＴ同腹仔（ｎ＝５）の脳におけるＧＦＡＰの免疫反応性（１元配置分散分析およびフィッシャーの正確検定）。スケールバー、１００μｍ。（Ｇ）ＩｇＧコントロール（ｎ＝５）、抗ＰＤ−１（ｎ＝６）または抗ＰＤ−Ｌ１（ｎ＝４）による処置の１ヶ月後にＤＭ−ｈＴＡＵマウスから単離された海馬においてＲＴ−ｑＰＣＲによって測定されたｔｎｆ−ａ；ｉｌ−６、およびｉｌ−１０発現に対するｉｌ−１２ｐ４０のｍＲＮＡ発現レベル（一元配置分散分析およびフィッシャーの正確検定）。（ｂ、ｄ、ｆ〜ｇ）データは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．として表されている；^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、^＊＊＊Ｐ＜０．００１。

図２３Ａ〜Ｇは、ＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１経路の遮断が、ＤＭ−ｔａｕマウスにおいて過剰リン酸化を減少させることを示している。抗ＰＤ−１、抗ＰＤ−Ｌ１もしくはアイソタイプ一致コントロール抗体またはアイソタイプ一致コントロール抗体（ＩｇＧ）による処置の１ヶ月後の８月齢のＤＭ−ｈＴＡＵマウスの脳における神経原線維変化（ＮＦＴ）の免疫染色（Ａ〜Ｆ）。ＡＴ−１００およびＡＴ−１８０の（Ａ、Ｄ）代表的な免疫蛍光像および（Ｂ、Ｃ、Ｅ、Ｆ）定量的解析。ＡＴ−１００およびＡＴ−１８０の免疫反応性を、ＤＭ−ｈＴＡＵ＋ＩｇＧ（ｎ＝１１）、ＤＭ−ｈＴＡＵ＋抗ＰＤ−１（ｎ＝１０）、ＤＭ−ｔａｕ＋抗ＰＤ−Ｌ１（ｎ＝４）の海馬ＣＡ１およびＣＡ３領域において測定した（１元配置分散分析およびフィッシャーの正確検定）。スケールバー、１００μｍ。（Ｂ〜Ｃ、Ｅ〜Ｆ）データは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．として表されている。（Ｇ）２つの変異（Ｋ２５７Ｔ／Ｐ３０１Ｓ；二重変異体、ＤＭ−ｈＴＡＵ）を有するヒト−タウ遺伝子を発現している雄および雌マウス（すべての試験群の間で等しく分配されている）（コホートの平均月齢は９月齢）を、０．１ｍｇ／マウス（ｎ＝７）、０．５ｍｇ／マウス（ｎ＝１０）もしくは１．５ｍｇ／マウス（ｎ＝９）の単回注射の抗ＰＤ−Ｌ１特異的抗体または１．５ｍｇ／マウスのＩｇＧコントロール（ｎ＝１０）で処置した。空間記憶に対するＰＤ−Ｌ１遮断の効果を、Ｔ型迷路タスクを用いて測定した。同齢の野生型（ＷＴ）同腹仔をさらなるコントロール群として使用した（ｎ＝１０）。（一元配置分散分析およびフィッシャーの正確検定）；^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、^＊＊＊Ｐ＜０．００１。

図２４Ａ〜Ｂは、ＰＤ−１の遮断が５ＸＦＡＤマウスにおいて海馬の神経発生を増強することを示しており、（Ａ）は、ニューロンのマーカーであるＮｅｕＮ（緑色）、ＤＣＸ（赤色）およびｈｏｅｃｈｓｔ核染色（青色）を免疫染色した傍矢状洞脳切片を示しており；（Ｂ）は、抗ＰＤ−１処置動物、ＩｇＧ免疫コントロールおよび同齢の野生型コントロールにおける染色を定量しているグラフを示している。

図２５Ａ〜Ｂは、ＰＤ−１の遮断が５ＸＦＡＤマウスにおいて海馬のシナプス可塑性を増強することを示しており、（Ａ）は、ＶｇｌｕＴ１（赤色）を免疫染色した傍矢状洞脳切片を示しており；（Ｂ）は、抗ＰＤ−１処置動物、ＩｇＧ免疫コントロールおよび同齢の野生型コントロールにおける染色を定量しているグラフを示している。

図２６Ａ〜Ｂは、ＰＤ−１の遮断が５ＸＦＡＤマウスの鉤状回においてニューロンの喪失を減少させることを示しており、（Ａ）は、ニューロンのマーカーであるＮｅｕＮ（緑色）を免疫染色した傍矢状洞脳切片を示しており；（Ｂ）は、抗ＰＤ−１処置動物、ＩｇＧ免疫コントロールおよび同齢の野生型コントロールにおける染色を定量しているグラフを示している。

発明の詳細な説明

免疫チェックポイント機構は、活性化Ｔ細胞の応答性の細胞固有のダウンレギュレーションおよび抑制性レセプターによるエフェクター機能を含み、全身の免疫ホメオスタシスおよび自己免疫寛容を維持している（Ｊｏｌｌｅｒ ｅｔ ａｌ，２０１２；Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２）。近年、プログラム死−１（ＰＤ−１）経路（Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ ｅｔ ａｌ，２０１０）などのこれらの免疫チェックポイントの遮断が、注目すべき抗腫瘍の有効性を示したことから、様々な悪性疾患と闘う際、免疫系の力の抑制を解くことの可能性に脚光が当てられた。最近、アルツハイマー病の動物モデルに抗ＰＤ−１抗体を投与することにより、Ａβのクリアランス、認知機能低下の回復がもたらされ、その投与は、神経炎症反応の消散に関連することが示された（ＷＯ２０１５／１３６５４１；Ｂａｒｕｃｈ ｅｔ ａｌ．，２０１６）。したがって、全身免疫抑制は、ＡＤの病態を退ける能力を干渉するので、全身免疫系に対する制限（ｒｅｓｔｒａｉｎｓ）を解除することによって、ＡＤの病態は、緩和され得る。

いかなる理論にも限定されることを望むものではないが、免疫チェックポイントの遮断は、末梢で開始して脳内で数多くの活性に至る免疫学的事象のカスケードを活性化する。最初に、免疫応答によって、２次リンパ系器官（リンパ節、脾臓など）でのＩＦＮ−γの利用可能性および末梢での循環単球の利用可能性が高まる。この免疫応答は、脳室における上皮層である脳の脈絡叢（ＣＰ）（血液脳脊髄液関門（Ｂ−ＣＳＦ−Ｂ）を形成し、ＣＮＳに侵入する白血球に対する選択的入口として働く）の免疫学的活性化に至る。白血球に対するＣＰ入口活性（ｇａｔｅｗａｙ ａｃｔｉｖｉｔｙ）に対する阻害性免疫チェックポイントの遮断の作用は、ＩＦＮ−γによって誘導されるＣＰ上皮による白血球輸送分子（接着分子およびケモカイン）の発現（この発現によって白血球の輸送が可能になる）によって媒介される。この発現の増加は、単球由来マクロファージおよび免疫調節性細胞を脳内の罹患部位に動員させる。重要なことに、この動員は、脳機能に対して幅広い作用をもたらし、その作用としては、プラーク量の減少、免疫学的バランスの回復、局所炎症の消散、グリオーシスの低減、シナプス喪失の減少、神経発生の増大、神経保護の増大および神経生存の増大（これらは集合的に、神経保護、および／または認知機能低下の低減をもたらす）が挙げられる。

免疫チェックポイントは、シグナルを増加させる（共刺激分子）またはシグナルを低下させる免疫系の分子である。４つの刺激性チェックポイント分子（ＣＤ２７、ＣＤ４０、ＯＸ４０、ＧＩＴＲおよびＣＤ１３７）が、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）レセプタースーパーファミリーのメンバーである。別の２つの刺激性チェックポイント分子（ＣＤ２８自体およびＩＣＯＳ）は、Ｂ７−ＣＤ２８スーパーファミリーに属する。多くのインヒビターチェックポイント分子が公知であり、それらとしては、Ａ２ａＲ、Ｂ７−Ｈ３、Ｂ７−Ｈ４、ＢＴＬＡ、ＣＴＬＡ−４、ＩＤＯ、ＫＩＲ、ＬＡＧ−３、ＰＤ−１、ＴＩＭ−３およびＶＩＳＴＡが挙げられるが、これらに限定されない。

本発明は、中枢神経系（ＣＮＳ）の疾患、障害、状態または傷害を処置するための方法を提供する。１つの実施形態において、中枢神経系（ＣＮＳ）の疾患、障害、状態または傷害を処置するための開示される方法は、自己免疫性神経炎症性疾患である再発寛解型多発性硬化症（ＲＲＭＳ）を含まない。開示される方法は、全身の免疫抑制レベルの低下を必要とする個体に、全身の免疫抑制レベルの低下を引き起こす活性な作用物質を投与する工程を含み、前記活性な作用物質は、少なくとも２コースの治療を含む投与レジメンによって投与され、各コースの治療は、処置セッションの後に、非処置のインターバルセッションを順に含む。

別の態様において、本発明は、個体において全身免疫抑制のレベルの低下を引き起こす活性な作用物質、または自己免疫性神経炎症性疾患の再発寛解型多発性硬化症（ＲＲＭＳ）を含まないＣＮＳの疾患、障害、状態または損傷の処置において使用するためのその活性な作用物質を含む薬学的組成物に関し、ここで、前記薬学的組成物は、少なくとも２コースの治療を含む投与レジメンによる投与のための薬学的組成物であり、治療の各コースは、処置セッションに続く非処置のインターバルセッションを順に含む。

ある特定の実施形態において、投与レジメンは、全身免疫抑制のレベルが一過性に低下するように調整される。

用語「処置する」は、本明細書中で使用されるとき、所望の生理学的効果を得る手段のことを指す。その効果は、ある疾患および／またはその疾患に帰する症状を部分的または完全に治癒することに関して治療的な効果であり得る。この用語は、疾患の阻害、すなわち、その発症の停止もしくは遅延；または疾患の回復、すなわち、疾患の後退のことを指す。

制御性Ｔ細胞またはエフェクターＴ細胞の「全身における存在」という用語は、本明細書中で使用されるとき、制御性Ｔ細胞またはエフェクターＴ細胞が循環免疫系、すなわち、血液、脾臓およびリンパ節に存在すること（それらのレベルまたは活性によって測定される）を指す。脾臓内の細胞集団のプロファイルが、血液中の細胞集団のプロファイルに反映されることは、免疫学の分野において周知の事実である（Ｚｈａｏ ｅｔ ａｌ，２００７）。

本処置は、全身免疫抑制の上昇を示す患者とそのような上昇を示さない患者の両方に適用できる。時折、本発明にかかる処置を必要とする個体は、ある特定の末梢免疫抑制レベルを有し、その末梢免疫抑制は、循環中のＴｒｅｇの出現率または数の増加ならびに／あるいはそれらの機能活性の増大ならびに／またはＩＦＮγ産生白血球の減少および／もしくは刺激に応答した白血球の増殖の減少によって反映される。Ｔｒｅｇの出現率または数の増加は、全ＣＤ４細胞の総数または全ＣＤ４細胞のパーセンテージの増加であり得る。例えば、アルツハイマー病の動物モデルでは、ＣＤ４細胞のうちＦｏｘｐ３の出現率が野生型マウスと比べて高いことが本発明に基づいて見出された。しかしながら、前記個体において、全身のＴｒｅｇ細胞のレベルが上昇していなかったか、それらの機能活性が高まっていなかったか、ＩＦＮγ産生白血球のレベルが低下していなかったか、または刺激に応答した白血球の増殖が減少していなかったとしても、全身免疫抑制のレベルまたは活性を低下させる本発明の方法は、自己免疫性神経炎症性疾患ＲＲＭＳを含まないＣＮＳの疾患、障害、状態または損傷の処置において有効である。重要なことには、前記全身免疫抑制は、骨髄由来サプレッサー細胞（ＭＤＳＣ）などのＴｒｅｇ以外のさらなる免疫細胞型も関係し得る（Ｇａｂｒｉｌｏｖｉｃｈ ＆ Ｎａｇａｒａｊ，２００９）。

全身免疫抑制のレベルは、当業者に周知の様々な方法によって検出され得る。例えば、Ｔｒｅｇのレベルは、Ｔｒｅｇの細胞表面マーカーまたは細胞内の核マーカー（Ｃｈｅｎ ＆ Ｏｐｐｅｎｈｅｉｍ，２０１１）、リンパ球のＣＤ４５、ＴＣＲ−βまたはＣＤ４マーカーで免疫染色された、末梢血単核球またはＴリンパ球のフローサイトメトリー解析、およびそれらの細胞に特異的に結合した抗体の量を測定することによって測定され得る。Ｔｒｅｇの機能活性は、様々なアッセイによって測定され得る；例えば、チミジン取り込みアッセイが通常使用され、このアッセイでは、抗ＣＤ３ｍＡｂによって刺激されるＣＤ４^＋ＣＤ２５⁻Ｔ細胞（従来のＴ細胞）の増殖の抑制を、［^３Ｈ］チミジンの取り込みまたはＣＦＳＥ（５−（および６）−カルボキシフルオレセインジアセテートスクシンイミジルエステル（これは細胞に入り込むことができ；ＣＦＳＥの蛍光強度の経時的な半減として細胞分裂を測定する））の使用によって測定する。ＩＦＮγ産生白血球の数またはそれらの活性もしくは増殖能は、当該分野で公知の方法を用いて当業者によって容易に評価され得る；例えば、ＩＦＮγ産生白血球のレベルは、短時間のエキソビボ刺激およびゴルジ停止後の末梢血単核球のフローサイトメトリー解析、ならびにＩＦＮγ細胞内染色（例えば、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｃｙｔｏｆｉｘ／ｃｙｔｏｐｅｒｍ^ＴＭ固定／透過処理キットを使用して）による免疫染色、これらの細胞の馴化培地（ｃｏｎｄｉｔｉｏｎ ｍｅｄｉａ）を回収し、分泌されたサイトカインのレベルを、ＥＬＩＳＡを用いて定量すること、またはその馴化培地中の種々のサイトカインの比、例えば、ＩＬ２／ＩＬ１０、ＩＬ２／ＩＬ４、ＩＮＦγ／ＴＧＦβなどを比較することによって、測定され得る。ヒト末梢血中のＭＤＳＣのレベルは、当業者によって、例えば、報告されているように（Ｋｏｔｓａｋｉｓ ｅｔ ａｌ，２０１２）、ＤＲ⁻／ＬＩＮ⁻／ＣＤ１１ｂ＋、ＤＲ⁻／ＬＩＮ⁻／ＣＤ１５＋、ＤＲ⁻／ＬＩＮ⁻／ＣＤ３３＋およびＤＲ（−／ｌｏｗ）／ＣＤ１４＋細胞の出現率のフローサイトメトリー解析を用いることによって、容易に評価され得る。

ヒトにおいて、循環中のＴｒｅｇの総数が、健康なコントロール集団よりも１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０もしくは１００％またはそれ以上高いか、全ＣＤ４＋細胞のうちのＴｒｅｇ細胞のパーセンテージが、健康なコントロール集団よりも１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０もしくは１００％またはそれ以上上昇しているか、またはＴｒｅｇの機能活性が、健康なコントロール集団よりも１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０もしくは１００％またはそれ以上上昇しているとき、末梢／全身免疫抑制は、増加していると見なされ得る。あるいは、ＩＦＮγ産生白血球またはそれらの活性のレベルが、健康なコントロール集団より１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０または１００％低下しているか；または刺激に応答した白血球の増殖が、健康なコントロール集団より１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０または１００％低下しているとき、末梢／全身免疫抑制は、増加していると見なされ得る。

ある作用物質をある個体に投与した際、この個体の循環中のＴｒｅｇの総数が、その作用物質の投与前のレベルと比べて１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０または１００％減少したとき、または全ＣＤ４＋細胞のうちのＴｒｅｇ細胞のパーセンテージが、健康なコントロール集団と比べて１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０または１００％低下したとき、またはＴｒｅｇの機能活性が、その作用物質の投与前のレベルと比べて１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０または１００％減少したとき、その作用物質は、全身免疫抑制のレベルの低下を引き起こす作用物質であると見なされ得る。あるいは、ある作用物質をある個体に投与した際、ＩＦＮγ産生白血球の総数またはそれらの活性が、１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０もしくは１００％またはそれ以上増加したとき；または刺激に応答した白血球の増殖が、健康なコントロール集団よりも１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０もしくは１００％またはそれ以上増加したとき、その作用物質は、全身免疫抑制のレベルの低下を引き起こす作用物質であると見なされ得る。

ある特定の実施形態において、上記活性な作用物質は、１つ以上の免疫チェックポイントによって免疫系に課された制限の解除によって、例えば、１つ以上の免疫チェックポイントの遮断によって、全身免疫抑制のレベルの低下を引き起こす。

ある特定の実施形態において、全身免疫抑制のレベルの低下は、ＩＦＮγ産生白血球の全身における存在または活性の増加を伴う。

ある特定の実施形態において、活性な作用物質は、全身免疫抑制のレベルの低下を引き起こし、それによって、エフェクターＴ細胞の全身における存在または活性の増加を引き起こす。

ある特定の実施形態において、全身の免疫抑制レベルの低下は、ＩＦＮγサイトカインの全身における存在または活性の増加を伴う。

ある特定の実施形態において、全身の免疫抑制レベルの低下は、調節性Ｔ細胞の全身における存在または活性の減少を伴う。

ある特定の実施形態において、全身の免疫抑制レベルの低下は、ＩＬ−１０サイトカインの全身における存在または活性の減少を伴う。

ある特定の実施形態において、全身の免疫抑制レベルの低下は、骨髄由来サプレッサー細胞（ＭＤＳＣ）の全身における存在または活性の減少を伴う。

ある特定の実施形態において、活性な作用物質は、全身の免疫抑制レベルの低下を引き起こし、それにより、エフェクターＴ細胞の全身における存在または活性の増加を引き起こす。

全身免疫抑制を解除するように操作され得るチェックポイントは、本明細書中で、免疫チェックポイントレセプターとその天然のリガンドとの対またはそれらの２つのパートナーのうちのいずれか１つとして言及される。例えば、ＰＤ−１は、２つの公知のリガンドを有し、本明細書中で「ＰＤ−Ｌ１」および「ＰＤ−Ｌ２」と称され、Ｂ７Ｈ３は、そのリガンドが特定されておらず、単に「Ｂ７Ｈ３」と称される。本発明に従って全身免疫抑制を解除するように操作され得るチェックポイントとしては、ＰＤ−１−ＰＤ−Ｌ１、ＰＤ−１−ＰＤ−Ｌ２、ＣＤ２８−ＣＤ８０、ＣＤ２８−ＣＤ８６、ＣＴＬＡ−４−ＣＤ８０、ＣＴＬＡ−４−ＣＤ８６、ＩＣＯＳ−Ｂ７ＲＰ１、Ｂ７Ｈ３、Ｂ７Ｈ４、Ｂ７Ｈ７、Ｂ７−ＣＤ２８様分子、ＢＴＬＡ−ＨＶＥＭ、ＫＩＲ−ＭＨＣクラスＩまたはＩＩ、ＬＡＧ３−ＭＨＣクラスＩまたはＩＩ、ＣＤ１３７−ＣＤ１３７Ｌ、ＯＸ４０−ＯＸ４０Ｌ、ＣＤ２７−ＣＤ７０、ＣＤ４０Ｌ−ＣＤ４０、ＴＩＭ３−ＧＡＬ９、Ｔ細胞活性化のＶ−ドメインＩｇサプレッサー（ＶＩＳＴＡ）、インターフェロン遺伝子の刺激物質（ＳＴＩＮＧ）、Ｔ細胞免疫グロブリンおよび免疫受容体抑制性チロシンモチーフ（ｉｍｍｕｎｏｒｅｃｅｐｔｏｒ ｔｙｒｏｓｉｎｅ−ｂａｓｅｄ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ ｍｏｔｉｆ）ドメイン（ＴＩＧＩＴ）、糖質コルチコイド誘発性腫瘍壊死因子レセプター関連タンパク質（ＧＩＴＲ）、Ａ２ａＲ−アデノシン、およびインドールアミン−２，３−ジオキシゲナーゼ（ＩＤＯ）−Ｌ−トリプトファンが挙げられるがこれらに限定されない。

免疫チェックポイントを遮断することができる作用物質は、当該分野で公知であり（Ｃｏｌｏｍｂｏ ＆ Ｐｉｃｏｎｅｓｅ，２００７）、これらの作用物質は、本発明に従って使用され得る。下記の引用文献およびＰａｒｄｏｌｌ，２０１２の各々は、完全に本明細書中に開示されたかのように参照により援用される。

ある特定の実施形態において、本発明に従って使用され得る活性な作用物質は、抗体であり得る。本明細書中に開示されるような抗体は、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、二量体、多量体、多重特異性抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体、組換え抗体、キメラ抗体、二機能性抗体、Ｉｇレセプターのような細胞に会合した抗体、鎖状抗体、ダイアボディ、ミニボディ（ｍｉｎｉｂｏｄｙ）またはナノボディ（ｎａｎｏｂｏｄｙ）、およびそれらの一本鎖誘導体（そのフラグメントが所望の生物学的活性を示す限り）であり得る。抗体は、ＶＨおよびＶＬドメインならびに軽鎖定常ドメイン（ＣＬ）ならびに重鎖定常ドメインであるＣＨ１、ＣＨ２およびＣＨ３を含む完全長の免疫グロブリン分子、または完全長の免疫グロブリン分子の免疫学的に活性なフラグメント（例えば、単一ドメイン抗体（ｓｄＡｂ）、一本鎖可変フラグメント（ｓｃＦｖ）、Ｆａｂフラグメント、Ｆ（ａｂ’）２フラグメント、Ｆｃフラグメント、Ｆｄフラグメント、Ｆｖフラグメント）であり得る。抗体は、任意の脊椎動物種（例えば、ヒト、ヤギ、ウマ、ロバ、マウス、ラット、ウサギまたはニワトリ）に由来し得、任意のタイプ（例えば、ＩｇＧ、ＩｇＥ、ＩｇＭ、ＩｇＤおよびＩｇＡ）、クラス（例えば、ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧおよびＩｇＭ）またはサブクラス（ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ１およびＩｇＡ２）であり得る。機能的に、本明細書中に開示される抗体は、生物学的活性を阻害する抗体を意味するアンタゴニスト抗体であり得るか、または本明細書中に開示される抗体は、生物学的活性を刺激する抗体を意味するアゴニスト抗体であり得る。同様に、本明細書中に開示される抗体は、生物学的活性を阻止または中和し得る抗体を意味する中和抗体であり得る。天然に存在する抗体、天然に存在しない抗体、および抗原性化合物に結合するそれらのフラグメントの構造についての一般的な開示として、例えば、Ｐｌｕｃｋｔｈｕｎ ｉｎ Ｔｈｅ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，ｖｏｌ．１１３，Ｒｏｓｅｎｂｕｒｇ ａｎｄ Ｍｏｏｒｅ ｅｄｓ．，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，ｐｐ．２６９−３１５（１９９４）；Ｂｏｒｒａｂｅｃｋ，Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，２ｄ ｅｄ．（Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ １９９５）（これらの各々の全体が参照により本明細書に援用される）を参照のこと。

本明細書中に開示される抗体は、抗ＰＤ−１、抗ＰＤ−Ｌ１、抗ＰＤ−Ｌ２、抗ＣＴＬＡ−４、抗ＣＤ８０、抗ＣＤ８６、抗Ｂ７ＲＰ１、抗Ｂ７−Ｈ３、抗Ｂ７−Ｈ４、抗Ｂ７−Ｈ７、抗ＢＴＬＡ、抗ＨＶＥＭ、抗ＣＤ−２７、抗ＣＤ４０、抗ＣＤ４０Ｌ、抗ＣＤ７０、抗ＣＤ８０、抗ＣＤ８６、抗ＣＤ１３７、抗ＣＤ１３７Ｌ、抗ＯＸ４０、抗ＯＸ４０Ｌ、抗ＴＩＭ−３、抗ガレクチン９、抗ＫＩＲ、抗ＬＡＧ−３、抗ＩＣＯＳ、抗ＶＩＳＴＡ、抗ＳＴＩＮＧ、抗ＴＩＧＩＴ、抗ＧＩＴＲまたはそれらの任意の組み合わせであり得るが、これらに限定されない。本明細書中に開示される抗体は、例えば、約０．１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇまたは１．５ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得る。

ＰＤ−１およびＣＤ２７９（表面抗原分類２７９）としても知られるプログラム細胞死タンパク質１は、免疫グロブリンスーパーファミリーに属する細胞表面レセプターであり、Ｔ細胞上およびプロＢ細胞上に発現される。ＰＤ−１は、２つのリガンドＰＤ−Ｌ１およびＰＤ−Ｌ２に結合する。免疫チェックポイントとして機能するとき、ＰＤ−１は、Ｔ細胞の活性化を妨げることによる免疫系のダウンレギュレーションにおいて重要な役割を果たし、そして自己免疫を低減させ、自己寛容を促進する。ＰＤ−１の阻害性の作用は、リンパ節における抗原特異的Ｔ細胞のアポトーシス（プログラム細胞死）を促進しつつ、同時に調節性Ｔ細胞（サプレッサーＴ細胞）のアポトーシスを減少させる、二重機構を通じて達成される。したがって、ＰＤ−１の機能を阻害する化合物（例えば、ＰＤ−１インヒビター、ＰＤ−Ｌ１インヒビターおよび／またはＰＤ−Ｌ２インヒビター）は、免疫系を活性化するのに役立つ。ＰＤ−１インヒビターの１クラスとしては、アンタゴニスト抗ＰＤ−１抗体、アンタゴニスト抗ＰＤ−Ｌ１抗体およびアンタゴニスト抗ＰＤ−Ｌ２抗体または中和抗ＰＤ−１抗体、中和抗ＰＤ−Ｌ１抗体および中和抗ＰＤ−Ｌ２抗体が挙げられる。多くのアンタゴニスト抗ＰＤ−１抗体、アンタゴニスト抗ＰＤ−Ｌ１抗体およびアンタゴニスト抗ＰＤ−Ｌ２抗体または中和抗ＰＤ−１抗体、中和抗ＰＤ−Ｌ１抗体および中和抗ＰＤ−Ｌ２抗体が、当該分野で公知である。例えば、本発明に従って使用される抗ＰＤ−１抗体は、Ｏｈａｅｇｂｕｌａｍら（Ｏｈａｅｇｂｕｌａｍ ｅｔ ａｌ，２０１５）（この全内容が参照により本明細書中に援用される）に開示されている抗体から選択され得る。ヒト抗ＰＤ−１抗体またはヒト化抗ＰＤ−１抗体の例としては、ＣＤ２７９（ヒト抗ＰＤ１モノクローナル抗体、Ｂｉｏ Ｘ Ｃｅｌｌ）、ＭＥＤＩ０６８０（ＡＭＰ−５１４；ヒト化ＩｇＧ４抗ＰＤ−１モノクローナル抗体；ＡｓｔｒａＺｅｎｅｃａ）、ニボルマブ（ＢＭＳ−９３６５５８；ヒトＩｇＧ４抗ＰＤ１モノクローナル抗体；Ｂｒｉｓｔｏｌ−Ｍｙｅｒｓ Ｓｑｕｉｂｂ）、ペムブロリズマブ（ランブロリズマブ、ＭＫ−３４７５；ヒト化ＩｇＧ４抗ＰＤ１モノクローナル抗体；Ｍｅｒｃｋ）、ピジリズマブ（Ｐｉｄｉｌｉｚｕｍａｂ）（ＣＴ−０１１；ヒト化ＩｇＧ１抗ＰＤ１モノクローナル抗体；Ｍｅｄｉｖａｔｉｏｎ）およびＴＳＲ−０４２（ヒト化ＩｇＧ４抗ＰＤ−１モノクローナル抗体；Ｔｅｓａｒｏ）が挙げられるがこれらに限定されない。ヒト抗ＰＤ−Ｌ１抗体またはヒト化抗ＰＤ−Ｌ１抗体の例としては、アベルマブ（ＭＳＢ００１０７１８Ｃ；ヒトＩｇＧ１抗ＰＤ−Ｌ１モノクローナル抗体；Ｍｅｒｃｋ−Ｓｅｒｏｎｏ）、アテゾリズマブ（ＭＰＤＬ３２８０Ａ、ＲＧ７４４６；ヒトＩｇＧ抗ＰＤ−Ｌ１モノクローナル抗体；Ｈｏｆｆｍａｎｎ−Ｌａ Ｒｏｃｈｅ）、ＢＭＳ−９３６５５９（ＭＤＸ−１１０５；ヒトＩｇＧ４抗ＰＤ−Ｌ１モノクローナル抗体；Ｂｒｉｓｔｏｌ−Ｍｙｅｒｓ Ｓｑｕｉｂｂ）、デュルバルマブ（ＭＥＤＩ４７３６；ヒト化ＩｇＧ１抗ＰＤ−Ｌ１モノクローナル抗体；ＡｓｔｒａＺｅｎｅｃａ）、ＫＮ０３５（抗ＰＤ−Ｌ１モノクローナル抗体；３Ｄ Ｍｅｄｉｃｉｎｅｓ）およびＬＹ３３０００５４（抗ＰＤ−Ｌ１モノクローナル抗体；Ｅｌｉ Ｌｉｌｌｙ）が挙げられるがこれらに限定されない。ヒト抗ＰＤ−Ｌ２抗体またはヒト化抗ＰＤ−Ｌ２抗体の例としては、ＡＭＰ−２２４（ＰＤ−Ｌ２のＩｇＧ２ａ Ｆｃ融合タンパク質；ＡｓｔｒａＺｅｎｅｃａ）が挙げられるがこれに限定されない。ある特定の実施形態において、抗ＰＤ−１抗体、抗ＰＤ−Ｌ１抗体および／または抗ＰＤ−Ｌ２抗体は、例えば、約０．１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇまたは１．５ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得る。

ある特定の実施形態において、ピジリズマブは、０．２〜６ｍｇ／ｋｇまたは１．５〜６ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得；ペムブロリズマブは、１〜１０ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得；ニボルマブは、０．３〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．３〜１０ｍｇ／ｋｇ、１〜１０ｍｇ／ｋｇまたは１もしくは３ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得；ＢＭＳ−９３６５５９は、０．３〜１０ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得；アテゾリズマブは、１〜２０ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得；デュルバルマブは、０．１〜１５ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得；アベルマブは、１〜２０ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得る。

Ｔ細胞免疫グロブリンおよびムチンドメイン−３（ＴＩＭ−３）は、マクロファージの活性化をダウンレギュレートすることおよび慢性免疫状態において生じるＣＤ８＋Ｔ細胞の枯渇において重要な役割を果たすことによって、リンパ球の活性を阻害する免疫チェックポイントとして作用するＴｈ１特異的細胞表面タンパク質である。ＴＩＭ−３は、そのリガンドであるガレクチン−９（Ｇａｌ９）との相互作用の際に細胞死を引き起こすことによって、Ｔｈ１／Ｔｃ１機能の負の制御因子として作用する。したがって、ＴＩＭ−３の機能を阻害する化合物（例えば、ＴＩＭ−３インヒビターおよび／またはＧａｌ９インヒビター）は、免疫系を活性化するのに役立つ。ＴＩＭ−３インヒビターの１クラスとしては、ＴＩＭ−３および／またはＧａｌ−９に対するアンタゴニスト抗体または中和抗体が挙げられる。多くのアンタゴニスト抗ＴＩＭ−３抗体およびアンタゴニスト抗Ｇａｌ９抗体または中和抗ＴＩＭ−３抗体および中和抗Ｇａｌ９抗体が、当該分野で公知である。ヒト抗ＴＩＭ−３抗体またはヒト化抗ＴＩＭ−３抗体の例としては、ＡＦ２３６５（ヒトＩｇＧ抗ＴＩＭ−３モノクローナル抗体；Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）、ＣＤ３６６（ヒトＩｇＧ１抗ＴＩＭ−３モノクローナル抗体；ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ）、Ｆ３８−２Ｅ２（ヒトＩｇＧ１抗ＴＩＭ−３モノクローナル抗体；Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）、Ｌ３Ｄ（ヒトＩｇＧ１抗ＴＩＭ−３モノクローナル抗体；ＣＮ１０２４９２０３８Ｂ）、ＭＡＢ２３６５（ヒトＩｇＧ２ａ抗ＴＩＭ−３モノクローナル抗体；Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）、ＭＡＢ２３６５１（ヒトＩｇＧ１抗ＴＩＭ−３モノクローナル抗体；Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）およびＴＳＲ−０２２（ヒト化ＩｇＧ４抗ＴＩＭ−３モノクローナル抗体；Ｔｅｓａｒｏ）が挙げられるがこれらに限定されない。ある特定の実施形態において、抗ＴＩＭ−３抗体および／または抗Ｇａｌ９抗体は、例えば、約０．１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇまたは１．５ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得る。

表面抗原分類１５２（ＣＤ１５２）としても知られる細胞傷害性Ｔリンパ球関連タンパク質４（ＣＴＬＡ−４）は、免疫応答をダウンレギュレートする免疫チェックポイントとして機能するタンパク質レセプターである。ＣＴＬＡ−４は、Ｔｒｅｇでは構成的に発現されるが、従来のＴ細胞では活性化後においてのみアップレギュレートされる。ＣＴＬＡ−４は、抗原提示細胞の表面上のＣＤ８０またはＣＤ８６に結合したとき、「オフ」スイッチとして作用する。したがって、ＣＴＬＡ−４の機能を阻害する化合物（例えば、ＣＴＬＡ−４インヒビター、ＣＤ８０インヒビターおよび／またはＣＤ８６インヒビター）は、免疫系を活性化するのに役立つ。ＣＴＬＡ−４インヒビターの１クラスとしては、ＣＴＬＡ−４、ＣＤ８０および／またはＣＤ８６に対するアンタゴニスト抗体または中和抗体が挙げられる。多くのアンタゴニスト抗ＣＴＬＡ−４抗体、アンタゴニスト抗ＣＤ８０抗体およびアンタゴニスト抗ＣＤ８６抗体または中和抗ＣＴＬＡ−４抗体、中和抗ＣＤ８０抗体および中和抗ＣＤ８６抗体が、当該分野で公知である。ヒト抗ＣＴＬＡ−４抗体またはヒト化抗ＣＴＬＡ−４抗体の例としては、イピリムマブ（Ｉｐｉｌｉｍｕｍａｂ）（ヒトＩｇＧ１抗ＣＴＬＡ−４モノクローナル抗体；Ｂｒｉｓｔｏｌ−Ｍｙｅｒｓ Ｓｑｕｉｂｂ）およびトレメリムマブ（Ｔｒｅｍｅｌｉｍｕｍａｂ）（ヒトＩｇＧ２抗ＣＴＬＡ−４モノクローナル抗体；Ｐｆｉｚｅｒ）が挙げられるがこれらに限定されない。ある特定の実施形態において、抗ＣＴＬＡ−４抗体、抗ＣＢ８０抗体および／または抗ＣＤ８６抗体は、例えば、約０．１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇまたは１．５ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得る。

キラー細胞免疫グロブリン様レセプター（ＫＩＲ）は、ナチュラルキラー（ＮＫ）細胞および少数のＴ細胞の原形質膜上に発現されるＩ型膜貫通糖タンパク質のファミリーである。それらは、すべての有核細胞型上に発現される主要組織適合（ＭＨＣ）クラスＩ分子と相互作用することによってこれらの細胞の殺滅機能を制御する。したがって、ＫＩＲは、リンパ球活性のインヒビターである。したがって、ＫＩＲの機能を阻害する化合物（例えば、ＫＩＲインヒビター）は、免疫系を活性化するのに役立つ。ＫＩＲインヒビターの１クラスとしては、ＫＩＲに対するアンタゴニスト抗体または中和抗体が挙げられる。多くのアンタゴニストまたは中和抗ＫＩＲ抗体が、当該分野で公知である。ヒト抗ＫＩＲ抗体またはヒト化抗ＫＩＲ抗体の例としては、リリルマブ（Ｌｉｒｉｌｕｍａｂ）（ＢＭＳ−９８６０１５；ヒト抗ＫＩＲモノクローナル抗体；Ｂｒｉｓｔｏｌ−Ｍｙｅｒｓ Ｓｑｕｉｂｂ）が挙げられるがこれに限定されない。ある特定の実施形態において、抗ＫＩＲ抗体は、例えば、約０．１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇまたは１．５ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得る。

表面抗原分類２２３（ＣＤ２２３）としても知られるリンパ球活性化遺伝子３（ＬＡＧ−３）は、Ｔ細胞の機能に対して多様な生物学的作用を有する細胞表面分子である。ＬＡＧ−３は、Ｔｒｅｇに対する作用による免疫応答を抑制することによって、ならびにＣＤ８＋Ｔ細胞に対する直接的な作用によって、リンパ球の活性を阻害する免疫チェックポイントである。したがって、ＬＡＧ−３の機能を阻害する化合物（例えば、ＬＡＧ−３インヒビター）は、免疫系を活性化するのに役立つ。ＬＡＧ−３インヒビターの１クラスとしては、ＬＡＧ−３に対するアンタゴニスト抗体または中和抗体が挙げられる。多くのアンタゴニスト抗ＬＡＧ−３抗体または中和抗ＬＡＧ−３抗体が、当該分野で公知である。ヒト抗ＬＡＧ−３抗体またはヒト化抗ＬＡＧ−３抗体の例としては、ＢＭＳ−９８６０１６（ヒト抗ＬＡＧ−３モノクローナル抗体；Ｂｒｉｓｔｏｌ−Ｍｙｅｒｓ Ｓｑｕｉｂｂ）が挙げられるがこれに限定されない。ある特定の実施形態において、抗ＬＡＧ−３抗体は、例えば、約０．１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇまたは１．５ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得る。

Ｃｌｕｓｔｅｒ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ １３４（ＣＤ１３４）としても知られるＯＸ４０は、レセプターのＴＮＦＲスーパーファミリーのメンバーである。ＯＸ４０は、エフェクターＴ細胞およびメモリーＴ細胞の拡大を促進するが、しかしながら、調節性Ｔ細胞の分化および活性を抑制する能力ならびにサイトカイン産生の制御でも有名である。ＯＸ４０は、Ｔ細胞レセプターとの会合の後に一過性に発現されると、炎症病変内のごく最近、抗原によって活性化されたＴ細胞上でのみアップレギュレートされる。そのリガンドは、Ｃｌｕｓｔｅｒ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ２５２（ＣＤ２５２）としても知られるＯＸ４０Ｌである。したがって、ＯＸ４０の機能を活性化または刺激する化合物（例えば、ＯＸ４０アクチベーターおよび／またはＯＸ４０Ｌアクチベーター）は、免疫系を活性化するのに役立つ。ＯＸ４０アクチベーターの１クラスとしては、ＯＸ４０およびＯＸ４０Ｌに対するアゴニスト抗体が挙げられる。ＯＸ４０および／またはＯＸ４０Ｌに対する多くのアゴニスト抗体が、当該分野で公知である。ヒト抗ＯＸ４０抗体またはヒト化抗ＯＸ４０抗体の例としては、ＧＳＫ３１７４９９８；ヒト化ＩｇＧ１抗ＯＸ４０モノクローナル抗体；ＧｌａｘｏＳｍｉｔｈＫｌｉｎｅ）、ＭＥＤＩ０５６２（ヒト化抗ＯＸ４０モノクローナル抗体；ＭｅｄＩｍｍｕｎｅ）およびＭＥＤＩ６３８３（ヒトＯＸ４０融合タンパク質；ＭｅｄＩｍｍｕｎｅ）が挙げられるがこれらに限定されない。他の抗ＯＸ４０抗体としては、ＭＥＤＩ６４６９（９Ｂ１２；マウス抗ＯＸ４０モノクローナル抗体；ＭｅｄＩｍｍｕｎｅ）が挙げられるがこれに限定されない。ある特定の実施形態において、抗ＯＸ４０抗体および／または抗ＯＸ４０Ｌ抗体は、例えば、約０．１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇまたは１．５ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得る。

抗ＧＩＴＲ抗体は、調節性Ｔ細胞（Ｔｒｅｇ）の表面上に恒常的に発現され、それらの活性化後にエフェクターＴ細胞の表面上に発現される、糖質コルチコイド誘発性腫瘍壊死因子レセプター関連タンパク質（ＧＩＴＲ）を標的化する。抗ＧＩＴＲ抗体は、複数のタイプのＴ細胞上に見られるＧＩＴＲとそのリガンドとの相互作用を阻止し、それにより、腫瘍抗原特異的Ｔエフェクター細胞の活性化を誘導し、かつ不適切に活性化された調節性Ｔ細胞によって誘導される抑制を無効にする。したがって、ＧＩＴＲの機能を活性化または刺激する化合物（例えば、ＧＩＴＲアクチベーター）は、免疫系を活性化するのに役立つ。ＧＩＴＲアクチベーターの１クラスとしては、ＧＩＴＲに対するアゴニスト抗体が挙げられる。ＧＩＴＲに対する多くのアゴニスト抗体が、当該分野で公知である。ヒト抗ＴＩＧＲ抗体またはヒト化抗ＴＩＧＲ抗体の例としては、ＧＷＮ３２３（ヒト化抗ＧＩＴＲモノクローナル抗体；Ｎｏｖａｒｔｉｓ）およびＴＲＸ５１８（ヒト化抗ＧＩＴＲモノクローナル抗体；ＧＩＴＲ，Ｉｎｃ．）が挙げられるがこれらに限定されない。ある特定の実施形態において、抗ＧＩＴＲ抗体は、例えば、約０．１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇまたは１．５ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得る。

ＣＤ２７は、腫瘍壊死因子レセプタースーパーファミリーのメンバーである。ＣＤ２７の活性は、リンパ球上および樹状細胞上の、そのリガンドであるＣＤ７０の一過性の利用可能性によって支配される。ＣＤ２７の活性化は、Ｂ細胞の活性化および免疫グロブリンの合成の制御において重要な役割を果たし、ナイーブＴ細胞の抗原特異的拡大を支持し、Ｔ細胞免疫の発生および長期間の維持に必要であり、Ｂ細胞のメモリマーカーである。ＣＤ２７は、ＮＦ−κＢおよびＭＡＰＫ８／ＪＮＫの活性化をもたらすシグナルを伝達する。したがって、ＣＤ２７の機能を活性化または刺激する化合物（例えば、ＣＤ２７アクチベーターおよび／またはＣＤ７０アクチベーター）は、免疫系を活性化するのに役立つ。ＣＤ２７アクチベーターの１クラスとしては、ＣＤ２７および／またはＣＤ７０に対するアゴニスト抗体が挙げられる。ＣＤ２７および／またはＣＤ７０に対する多くのアゴニスト抗体が、当該分野で公知である。ヒト抗ＣＤ２７抗体またはヒト化抗ＣＤ２７抗体の例としては、バルリルマブ（Ｖａｒｌｉｌｕｍａｂ）（ＣＤＸ−１１２７；ヒト抗ＣＤ２７モノクローナル抗体；Ｃｅｌｌｄｅｘ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ）が挙げられるがこれに限定されない。ある特定の実施形態において、抗ＣＤ２７抗体および／または抗ＣＤ７０抗体は、例えば、約０．１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇまたは１．５ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得る。

Ｃｌｕｓｔｅｒ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ２７８（ＣＤ２７８）としても知られる誘導性Ｔ細胞共刺激分子（ＩＣＯＳ）は、活性化Ｔ細胞上に発現されるＣＤ２８スーパーファミリー共刺激細胞表面レセプターである。これは、Ｔ細胞機能のアクチベーターである。したがって、ＩＣＯＳの機能を活性化または刺激する化合物（例えば、ＩＣＯＳアクチベーターまたはＢ７ＲＰ１アクチベーター）は、免疫系を活性化するのに役立つ。ＩＣＯＳアクチベーターの１クラスとしては、ＩＣＯＳおよび／またはＢ７ＲＰ１に対するアゴニスト抗体が挙げられる。多くのアゴニスト抗ＩＣＯＳ抗体およびアゴニスト抗Ｂ７ＲＰ１抗体が、当該分野で公知である。ある特定の実施形態において、抗ＩＣＯＳ抗体および／または抗Ｂ７ＲＰ１抗体は、例えば、約０．１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇ、０．２ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、０．３ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１５ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇ、１．５ｍｇ／ｋｇ〜６ｍｇ／ｋｇまたは１．５ｍｇ／ｋｇ〜５ｍｇ／ｋｇという投与量でヒトに投与され得る。

ある特定の実施形態において、抗体の組み合わせ（例えば：タンパク質ＣＤ２０に対するキメラモノクローナル抗体であるリツキシマブ（商品名Ｒｉｔｕｘａｎ、ＭａｂＴｈｅｒａおよびＺｙｔｕｘ）と併用されるＣＴ−０１１（例えば、各々３ｍｇ／ｋｇ）；イピリムマブ；例えば、３ｍｇ／ｋｇ）と併用されるニボルマブ（例えば、１ｍｇ／ｋｇ）；またはＨＬＡ−Ａ^＊０２０１拘束性マルチペプチドワクチン（Ｗｅｂｅｒ ｅｔ ａｌ，２０１３）と併用されるニボルマブ（例えば、１〜１０ｍｇ／ｋｇ）であるがこれらに限定されない）が使用され得る。

ある特定の実施形態において、本発明に従って使用され得る活性な作用物質は、抗体模倣物であり得る。抗体模倣物は、抗体のように抗原に特異的に結合し得るが、構造的には抗体と関係がない。抗体模倣物は、通常、約３ｋＤａ〜２０ｋＤａのモル質量を有する人工ペプチドまたは人工タンパク質である。この実施形態の態様において、本明細書中に開示される抗体模倣物は、アフィボディ（ａｆｆｉｂｏｄｙ）分子；アフィリン（ａｆｆｉｌｉｎ）；アフィマー（ａｆｆｉｍｅｒ）；アフィチン（ａｆｆｉｔｉｎ）；アルファボディ；アンチカリン（ａｎｔｉｃａｌｉｎ）；アビマー（ａｖｉｍｅｒ）；ＤＡＲＰｉｎ；フィノマー（ｆｙｎｏｍｅｒ）；Ｋｕｎｉｔｚドメインペプチド；またはモノボディであり得る。抗体模倣物の非限定的な例を表１に示す。

ある特定の実施形態において、本発明に従って使用され得る活性な作用物質は、アプタマーであり得る。アプタマーは、特異的な標的分子に結合するオリゴヌクレオチド分子またはペプチド分子である。この実施形態の態様において、本明細書中に開示されるアプタマーは、ＤＮＡアプタマー、ＲＮＡアプタマー、ＸＮＡアプタマーまたはペプチドアプタマーであり得る。

ある特定の実施形態において、本明細書中に開示される抗体は、アジュバントと併用され得る。アジュバントは、免疫応答を高めるまたは多様化する任意の物質または物質の混合物である。アジュバントは、防御的な免疫化のために必要な免疫化の回数または抗原の量を減少させるように働き得る。非限定的なアジュバントとしては、例えば、リポソーム、油相が挙げられ、それらには、フロイントタイプのアジュバント、例えば、フロイント完全アジュバント（ＦＣＡ）；フロイント不完全アジュバント（ＦＩＡ）；サポゲニングリコシド（例えば、サポニン）；カーボポール；Ｎ−アセチルムラミル−Ｌ−アラニル−Ｄ−イソグルタミン（通常、ムラミルジペプチドまたは「ＭＤＰ」として公知）；およびリポ多糖（ＬＰＳ）が含まれるが、これらに限定されない。そのようなアジュバントは、通常、水相とのエマルジョンの形態で、またはより一般的には水不溶性無機塩とともに使用される。これらの無機塩としては、水酸化アルミニウム、硫酸亜鉛、コロイド状水酸化鉄、リン酸カルシウムまたは塩化カルシウムが挙げられる。この実施形態の態様において、本明細書中に開示される抗体は、例えば、抗ＯＸ４０抗体およびＴＬＲ９リガンド、例えば、ＣｐＧ（Ｍａｒａｂｅｌｌｅ ｅｔ ａｌ，２０１３）と組み合わせて、抗ＣＴＬＡ−４抗体と併用され得る。

ある特定の実施形態において、本発明に従って使用され得る活性な作用物質は、小分子であり得る。この実施形態の態様において、本明細書中に開示される小分子は、（ａ）ｐ３００インヒビター（Ｌｉｕ ｅｔ ａｌ，２０１３）、例えば、ゲムシタビン（低用量）またはＣ６４６もしくはそのアナログ、すなわち、式Ｉの化合物：
（式中、Ｒ_１は、Ｈ、−ＣＯ_２Ｒ_６、−ＣＯＮＲ_６Ｒ_７、−ＳＯ_３Ｈまたは−ＳＯ_２ＮＲ_６Ｒ_７から選択され；Ｒ_２は、Ｈ、−ＣＯ_２Ｒ_６またはハロゲン、好ましくはＣｌから選択され；Ｒ_３は、ハロゲン、好ましくはＦ、−ＮＯ_２、−ＣＮ、−ＣＯ_２Ｒ_６、好ましくは、ＣＯ_２ＣＨ_３もしくはＣＯ_２ＣＨ_２ＣＨ_３、または−ＣＨ_２ＯＨから選択され；Ｒ_４およびＲ_５は、各々独立して、Ｈまたは−Ｃ_１−Ｃ_６アルキル、好ましくは、メチルであり；Ｒ_６は、Ｈまたは−Ｃ_１−Ｃ_６アルキル、好ましくは、Ｈ、メチルまたはエチルであり；Ｒ_７は、Ｈまたは−Ｃ_１−Ｃ_６アルキル、好ましくは、Ｈまたはメチルである）；（ｂ）スニチニブ（Ｓｕｎｉｔｉｎｉｂ）；（ｃ）ポリオキソメタレート−１（ＰＯＭ−１）（Ｇｈｉｒｉｎｇｈｅｌｌｉ ｅｔ ａｌ，２０１２）；（ｄ）α，β−メチレンアデノシン５’−二リン酸（ＡＰＣＰ）；（ｅ）三酸化ヒ素（Ａｓ_２Ｏ_３）；（ｆ）ＧＸ１５−０７０（Ｏｂａｔｏｃｌａｘ）；（ｇ）レチノイン酸アンタゴニスト、例えば、Ｒｏ４１−５２５３（合成レチノイドおよび選択的小分子アンタゴニスト）またはＬＥ−１３５；（ｈ）ＳＩＲＰα（ＣＤ４７）アンタゴニスト、例えば、唯一の作用物質としてのまたは抗ＣＤ４７抗体と組み合わされるＣＶ１−ｈＩｇＧ４（ＳＩＲＰαバリアント）；（ｉ）ＣＣＲ４アンタゴニスト、例えば、唯一の作用物質としてのまたは抗ＣＣＲ４抗体と組み合わされるＡＦ３９９／４２０／１８０２５；（ｊ）アデノシンレセプターアンタゴニスト；（ｋ）アデノシンＡ１レセプターアンタゴニスト；アデノシンＡ２ａレセプター；（ｍ）アデノシンＡ２ｂレセプターアンタゴニスト；（ｎ）Ａ３レセプターアンタゴニスト；（ｏ）インドールアミン−２，３−ジオキシゲナーゼのアンタゴニスト；または（ｐ）ＨＩＦ−１制御因子であり得る。

ある特定の実施形態において、上記作用物質は、その式が表２に列挙されるｐ３００インヒビター、すなわち、Ｃ６４６（４−（４−（（５−（４，５−ジメチル−２−ニトロフェニル）フラン−２−イル）メチレン）−３−メチル−５−オキソ−４，５−ジヒドロ−１Ｈ−ピラゾール−１−イル）安息香酸）、Ｃ１４６（４−ヒドロキシ−３−（（（２−（３−ヨードフェニル）ベンゾ［ｄ］オキサゾール−５−イル）イミノ）メチル）安息香酸）またはＣ３７５（２−クロロ−４−（５−（（２，４−ジオキソ−３−（２−オキソ−２−（ｐ−トリルアミノ）エチル）チアゾリジン−５−イリデン）メチル）フラン−２−イル）安息香酸）である。特に、ｐ３００インヒビターは、Ｃ６４６である。

アデノシンレセプターアンタゴニストは、ＣＧＳ１５９４３（９−クロロ−２−（２−フラニル）−［１，２，４］トリアゾロ［１，５−ｃ］キナゾリン−５−アミン）であり得る；アデノシンＡ１レセプターアンタゴニストは、ＰＳＢ３６（１−ブチル−８−（ヘキサヒドロ−２，５−メタノペンタレン−３ａ（１Ｈ）−イル）−３，７−ジヒドロ−３−（３−ヒドロキシプロピル）−１Ｈ−プリン−２，６−ジオン）であり得る；アデノシンＡ２ａレセプターアンタゴニストは、ＳＣＨ５８２６１（５−アミノ−７−（２−フェニルエチル）−２−（２−フリル）−ピラゾロ（４，３−ｅ）−１，２，４−トリアゾロ（１，５−ｃ）ピリミジン）、ＳＹＮ１１５（４−ヒドロキシ−Ｎ−［４−メトキシ−７−（４−モルホリニル）−２−ベンゾチアゾリル］−４−メチル−１−ピペリジンカルボキサミド）、ＦＳＰＴＰ（ＳＣＨ５８２６１（５−アミノ−７−［２−（４−フルオロスルホニル）フェニルエチル］−２−（２−フリル）−ピラゾロ［４，３−ε］１，２，４−トリアゾロ［１，５−ｃ］ピリミジンとも呼ばれる）、ＳＣＨ４４２４１６（２−（２−フラニル）−７−［３−（４−メトキシフェニル）プロピル］−７Ｈ−ピラゾロ［４，３−ｅ］［１，２，４］トリアゾロ［１，５−ｃ］ピリミジン−５−アミン）またはＺＭ２４１３８５（トザデナント（ｔｏｚａｄｅｎａｎｔ）（４−ヒドロキシ−Ｎ−（４−メトキシ−７−モルホリノベンゾ［ｄ］チアゾール−２−イル）−４−メチルピペリジン−１−カルボキサミドとも呼ばれる）であり得る；アデノシンＡ２ｂレセプターアンタゴニストは、ＰＳＢ６０３（８−｛４−［４−（４−クロロフェニル）ピペラジン−１−スルホニル］フェニル｝−１−プロピル−２，３，６，７−テトラヒドロ−１Ｈ−プリン−２，６−ジオン（Ｎａｋａｔｓｕｋａｓａ ｅｔ ａｌ，２０１１））であり得；Ａ３レセプターアンタゴニストは、ＭＲＳ３７７７（２−フェノキシ−６−（シクロヘキシルアミノ）プリンヘミオキサレート）であり得る。

ある特定の実施形態において、インドールアミン−２，３−ジオキシゲナーゼ経路の小分子インヒビターは、インドキシモド（ＮＳＣ−７２１７８２／ＮＬＧ−９１８９（１−メチル−Ｄ−トリプトファン），ＮｅｗＬｉｎｋ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ）、ＩＮＣＢ０２４３６０（（４Ｅ）−４−［（３−クロロ−４−フルオロアニリノ）−ニトロソメチリデン］−１，２，５−オキサジアゾール−３−アミン，Ｉｎｃｙｔｅ）またはＮＬＧ−９１９（１−シクロヘキシル−２−（５Ｈ−イミダゾ［５，１−ａ］イソインドール−５−イル）エタノール），ＮｅｗＬｉｎｋ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ）であり得る。

ＨＩＦ−１制御因子は、Ｚｈｅｎｇ ｅｔ ａｌ．（Ｚｈｅｎｇ ｅｔ ａｌ，２０１５）に記載されている（５−［Ｎ−メチル−Ｎ−プロパルギルアミノメチル］−８−ヒドロキシキノリン）であるＭ３０であり得る。

ある特定の実施形態において、本発明に従って使用され得る活性な作用物質は、本明細書中に開示される抗体と本明細書中に開示される小分子との任意の組み合わせであり得る。この実施形態の態様において、活性な作用物質は、本明細書中に開示される抗体と本明細書中に開示される小分子との任意の組み合わせであり得る。

ある特定の実施形態において、本発明に従って使用され得る活性な作用物質は、（ａ）ニーム葉の糖タンパク質（ＮＬＧＰ；（Ｒｏｙ ｅｔ ａｌ，２０１３））；および／または（ｂ）ｓＣＴＬＡ−４（ＣＴＬＡ−４の可溶性アイソフォーム）（Ｗａｒｄ ｅｔ ａｌ，２０１３）からなる群より選択されるタンパク質であり得る。

ある特定の実施形態において、本発明に従って使用され得る活性な作用物質は、サイレンシング分子であり得る。この実施形態の態様において、サイレンシング分子は、ｍｉＲ−１２６アンチセンス（Ｑｉｎ ｅｔ ａｌ，２０１３）および抗ガレクチン−１（Ｇａｌ−１；（Ｄａｌｏｔｔｏ−Ｍｏｒｅｎｏ ｅｔ ａｌ，２０１３））からなる群より選択される。

ある特定の実施形態において、本発明に従って使用され得る活性な作用物質は、ＯＫ−４３２（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓの凍結乾燥調製物）（Ｈｉｒａｙａｍａ ｅｔ ａｌ，２０１３）であり得る。

ある特定の実施形態において、本発明に従って使用され得る活性な作用物質は、ＩＬ−１２と抗ＣＴＬＡ−４との組み合わせであり得る。

ある特定の実施形態において、上記作用物質は、グラム陽性菌およびグラム陰性菌を標的とすることによりＴｒｅｇの免疫調節を促進する広範囲の抗生物質、例えば、グラム陽性菌を標的とし、Ｔｒｅｇのレベル／活性を減少させると示されているバンコマイシン（Ｂｒｅｓｔｏｆｆ ＆ Ａｒｔｉｓ，２０１３；Ｓｍｉｔｈ ｅｔ ａｌ，２０１３）に由来し得る。

ある特定の実施形態において、本発明に従って使用され得る活性な作用物質は、本明細書中に開示される抗体、本明細書中に開示される抗体模倣物、本明細書中に開示されるアプタマー、本明細書中に開示される小分子、本明細書中に開示されるニーム葉の糖タンパク質、本明細書中に開示されるｓＣＴＬＡ−４、本明細書中に開示されるサイレンシング分子、本明細書中に開示されるＯＫ−４３２および／または本明細書中に開示されるＩＬ−１２と抗ＣＴＬＡ−４との組み合わせの任意の組み合わせであり得る。

上で述べたように、上記活性な作用物質は、少なくとも２コースの治療を含む投与レジメンによって投与され、治療の各コースは、処置セッションに続く非処置のインターバルセッションを順に含む。

用語「処置セッション」は、本明細書中で用語「処置期間」または「処置の期間」と交換可能に使用され、本明細書中に開示される１つ以上の活性な作用物質が、処置されている個体に投与されるセッションのことを指す。下記でさらに詳細に論じられるように、処置セッションは、単回投与の事象であり得るか、またはある期間にわたって行われる複数回投与レジメンであり得る。処置セッションでは、本明細書中に開示される活性な作用物質の治療有効量が、その処置セッション全体にわたって一貫して維持される。

用語「非処置セッション」は、本明細書中で用語「非処置期間」、「非処置の期間」、「インターバルセッション」または「非処置のインターバルセッション」と交換可能に使用され、本明細書中に開示される活性な作用物質が、処置されている個体に投与されない期間のことを指す。非処置セッション中の活性な作用物質の投与の休止は、処置されている個体における本明細書中に開示される活性な作用物質のレベルを治療レベル未満まで低下させる。本明細書中に開示されるように、「非処置セッション」は、処置セッション中のある期間にわたって行われる複数回投与レジメンを構成する投与事象の間に介在する期間と同じ事象ではない。処置セッション中の本明細書中に開示される１つ以上の活性な作用物質の投与が、反復投与である場合、非処置セッションは、処置セッション中のこれらの反復投与間の介在期間より長い。

その投与レジメンは、いくつかの方法で決定され得る。例えば、免疫抑制のレベルは、ＩＦＮγ産生白血球のレベルもしくは活性または刺激に応答した白血球の増殖速度を個別にモニターし、モニタリングの結果から決定される、処置セッション、投与頻度およびインターバルセッションを経験的かつ個人的に調節することによって、処置されている各患者に対して所望のレベルに調整され得る（個別化医療）。

したがって、処置セッションは、個体への活性な作用物質または薬学的組成物の投与を含み得、処置セッションは、少なくともＩＦＮγ産生白血球の全身における存在もしくはレベルまたは刺激に応答した白血球の増殖速度が基準より高くなるまで維持され、その投与は、インターバルセッション中は休止され、インターバルセッションは、そのレベルが基準より高い限り維持され、その基準は、（ａ）前記投与前の前記個体から得られた最新の血液サンプルにおいて測定された、ＩＦＮγ産生白血球の全身における存在もしくは活性のレベルまたは刺激に応答した白血球の増殖速度；あるいは（ｂ）ＣＮＳの疾患、障害、状態または損傷に苦しんでいる個体の集団に特徴的な、ＩＦＮγ産生白血球の全身における存在もしくは活性のレベルまたは刺激に応答した白血球の増殖速度から選択される。

処置セッションおよび非処置セッション、あるいはインターバルセッションの長さは、ある特定の患者集団を対象にした臨床試験において医師によって決定され得、個人ベースで免疫抑制レベルをモニタリングする必要なく、この患者集団に一貫して適用され得る。

ある特定の実施形態において、処置セッションは、個体への活性な作用物質の投与を含み、処置セッションは、少なくとも、活性な作用物質の全身における存在が治療レベルに達するまで維持され、投与は、インターバルセッション中は休止され、インターバルセッションは、そのレベルが前記治療レベルの約９５％、９０％、８０％、７０％、６０％または５０％より高い限り維持される。用語「治療レベル」は、本明細書中で使用されるとき、癌治療などの公知の治療において免疫チェックポイントを遮断するために使用される薬物の一般に認められている全身レベルのことを指す（上記を参照のこと）。

ある特定の実施形態において、処置セッションは、活性な作用物質を個体に投与する工程を含み、処置セッションは、少なくとも、活性な作用物質の全身における存在または活性が治療レベルに達するまで維持され、治療レベルに達した時点で投与が停止され、非処置期間は、活性な作用物質の全身における存在または活性が治療レベル閾値より高く維持されている限り、維持される。この実施形態の態様において、治療レベル閾値は、例えば、治療レベルの少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％であるレベルである。用語「治療レベル」は、本明細書中で使用されるとき、癌治療などの公知の治療において（上記を参照のこと）免疫チェックポイントを遮断するために使用される薬物の一般に認められている全身レベルのことを指す。この実施形態の態様において、活性な作用物質は、抗ＰＤ−１抗体、抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＰＤ−Ｌ２抗体、抗ＣＴＬＡ−４抗体、抗Ｂ７ＲＰ１抗体、抗Ｂ７−Ｈ３抗体、抗Ｂ７−Ｈ４抗体、抗Ｂ７−Ｈ７抗体、抗ＢＴＬＡ抗体、抗ＨＶＥＭ抗体、抗ＣＤ−２７抗体、抗ＣＤ４０抗体、抗ＣＤ４０Ｌ抗体、抗ＣＤ７０抗体、抗ＣＤ８０抗体、抗ＣＤ８６抗体、抗ＣＤ１３７抗体、抗ＣＤ１３７Ｌ抗体、抗ＯＸ４０抗体、抗ＯＸ４０Ｌ抗体、抗ＴＩＭ−３抗体、抗ガレクチン９抗体、抗ＫＩＲ抗体、抗ＬＡＧ−３抗体、抗ＩＣＯＳ抗体、抗ＶＩＳＴＡ抗体、抗ＳＴＩＮＧ、抗ＴＩＧＩＴ、抗ＧＩＴＲまたはそれらの任意の組み合わせである。

ある特定の実施形態において、処置セッションは、活性な作用物質を個体に投与する工程を含み、処置セッションは、少なくとも、活性な作用物質の全身における存在または活性が治療レベルに達するまで維持され、治療レベルに達した時点で投与が停止され、非処置期間は、認知に対する有益な効果が処置開始前のレベルより高く維持されている限り、維持される。この実施形態の態様において、認知に対する有益な効果は、維持され、例えば、処置開始前の認知レベルよりも少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％高いという改善を示すものである。この実施形態の態様において、活性な作用物質は、抗ＰＤ−１抗体、抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＰＤ−Ｌ２抗体、抗ＣＴＬＡ−４抗体、抗Ｂ７ＲＰ１抗体、抗Ｂ７−Ｈ３抗体、抗Ｂ７−Ｈ４抗体、抗Ｂ７−Ｈ７抗体、抗ＢＴＬＡ抗体、抗ＨＶＥＭ抗体、抗ＣＤ−２７抗体、抗ＣＤ４０抗体、抗ＣＤ４０Ｌ抗体、抗ＣＤ７０抗体、抗ＣＤ８０抗体、抗ＣＤ８６抗体、抗ＣＤ１３７抗体、抗ＣＤ１３７Ｌ抗体、抗ＯＸ４０抗体、抗ＯＸ４０Ｌ抗体、抗ＴＩＭ−３抗体、抗ガレクチン９抗体、抗ＫＩＲ抗体、抗ＬＡＧ−３抗体、抗ＩＣＯＳ抗体、抗ＶＩＳＴＡ抗体、抗ＳＴＩＮＧ、抗ＴＩＧＩＴ、抗ＧＩＴＲまたはそれらの任意の組み合わせである。

ある特定の実施形態において、処置セッションは、活性な作用物質を個体に投与する工程を含み、処置セッションは、少なくとも、活性な作用物質の全身における存在または活性が治療レベルに達するまで維持され、治療レベルに達した時点で投与が停止され、非処置期間は、視覚に対する有益な効果が処置開始前のレベルより高く維持されている限り、維持される。この実施形態の態様において、視覚に対する有益な効果は、維持され、例えば、処置開始前の視覚レベルよりも少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％高いという改善を示すものである。この実施形態の態様において、活性な作用物質は、抗ＰＤ−１抗体、抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＰＤ−Ｌ２抗体、抗ＣＴＬＡ−４抗体、抗Ｂ７ＲＰ１抗体、抗Ｂ７−Ｈ３抗体、抗Ｂ７−Ｈ４抗体、抗Ｂ７−Ｈ７抗体、抗ＢＴＬＡ抗体、抗ＨＶＥＭ抗体、抗ＣＤ−２７抗体、抗ＣＤ４０抗体、抗ＣＤ４０Ｌ抗体、抗ＣＤ７０抗体、抗ＣＤ８０抗体、抗ＣＤ８６抗体、抗ＣＤ１３７抗体、抗ＣＤ１３７Ｌ抗体、抗ＯＸ４０抗体、抗ＯＸ４０Ｌ抗体、抗ＴＩＭ−３抗体、抗ガレクチン９抗体、抗ＫＩＲ抗体、抗ＬＡＧ−３抗体、抗ＩＣＯＳ抗体、抗ＶＩＳＴＡ抗体、抗ＳＴＩＮＧ、抗ＴＩＧＩＴ、抗ＧＩＴＲまたはそれらの任意の組み合わせである。

ある特定の実施形態において、処置セッションは、単回投与であり得るか、または指示された期間中に行われる複数回の投与を含み得る。この実施形態の態様において、処置セッションは、例えば、１日間〜４週間、２日間〜４週間、３日間〜４週間、４日間〜４週間、５日間〜４週間、６日間〜４週間、１週間〜４週間、１０日間〜４週間、２週間〜４週間、１７日間〜４週間または３週間〜４週間の期間中に行われる複数回の投与であり得る。例えば、２回目の投与は、１回目の投与の１、２、３、４、５または６日後に行われる。別の例として、処置セッションは、３回の投与を含み得、そのすべてが、１週間以内に行われ、例えば、直前の投与の１、２または３日後に行われる。別の例として、処置セッションは、３回の投与を含み得、そのすべてが、２週間以内に行われ、例えば、直前の投与の１、２、３、４または５日後に行われる。別の例として、処置セッションは、４回の投与を含み得、そのすべてが、２週間以内に行われ、例えば、直前の投与の１、２、３または４日後に行われる。別の例として、処置セッションは、４回の投与を含み得、そのすべてが、３週間以内に行われ、例えば、直前の投与の１、２、３、４、５または６日後に行われる。別の例として、処置セッションは、５回の投与を含み得、そのすべてが、３週間以内に行われ、例えば、直前の投与の１、２、３、４または５日後に行われる。

ある特定の実施形態において、非処置のインターバルセッションは、１週間〜６ヶ月間、例えば、２週間〜４週間、３週間〜４週間、２週間〜６週間、３週間〜６週間、４週間〜６週間、５週間〜６週間、２週間〜２ヶ月間、３週間〜２ヶ月間、４週間〜２ヶ月間、５週間〜２ヶ月間、６週間〜２ヶ月間、７週間〜２ヶ月間、２ヶ月間〜３ヶ月間、２ヶ月間〜４ヶ月間、３ヶ月間〜４ヶ月間、３ヶ月間〜５ヶ月間、３ヶ月間〜５ヶ月間、４ヶ月間〜５ヶ月間、１週間〜６ヶ月間、２週間〜６ヶ月間、３週間〜６ヶ月間、４週間〜６ヶ月間、６週間〜６ヶ月間、２ヶ月間〜６ヶ月間、３ヶ月間〜６ヶ月間、４ヶ月間〜６ヶ月間または５ヶ月間〜６ヶ月間であり得る。ある特定の実施形態において、非処置のインターバルセッションは、１〜２ヶ月間の長さ、１〜３ヶ月間の長さまたは２〜３ヶ月間の長さであり得る。

処置セッションにおいて、活性な作用物質または薬学的組成物の投与は、単回投与または反復投与であり得、例えば、活性な作用物質または薬学的組成物は、１回だけ投与され、次いで、そのすぐ後にインターバルが続き得るか、または活性な作用物質もしくは薬学的組成物は、毎日、または２、３、４、５もしくは６日ごとに１回、または１週間に１回、２週間ごとに１回、３週間ごとに１回、または４週間ごとに１回投与され得る。これらの頻度は、いずれの活性な作用物質にも当てはめることができ、当該分野において通常使用される慣習に基づき得、最終的には、臨床試験における医師によって決定され得る。あるいは、処置セッションにおける反復投与の頻度は、活性な作用物質の性質に応じて適合され得、ここで、例えば、ある小分子は、毎日投与され得、ある抗体は、３日ごとに１回投与され得る。ある作用物質が、処置セッション中に比較的低頻度で、例えば、１ヶ月の処置セッション中に１週間に１回または６ヶ月の処置セッション中に１ヶ月に１回、投与されるとき、この処置セッションの後に、処置セッション中の反復投与間の期間より長い（すなわち、この例ではそれぞれ１週間または１ヶ月より長い）長さの非処置インターバルセッションが続くことが理解されるべきである。この例における処置セッション中の投与間の１週間または１ヶ月という休止は、インターバルセッションと見なされない。

処置セッションおよび非処置セッション、あるいはインターバルセッションの長さは、例えば、活性な作用物質を３日ごとに１回投与するという頻度が、６または９日間の処置セッションおよびそれに応じて開始されるインターバルセッションをもたらし得るような投与の頻度に調整され得る。

処置セッションが、単回投与からなる場合、投与レジメンは、非処置インターバルの長さによって決定され、その単回投与の後、次の単回投与の処置セッション前に、７、８、９、１０、１４、１８、２１、２４または２８日またはそれより長い非処置インターバルが続く。特に、投与レジメンは、２、３または４週間の非処置インターバルが間に挿入された単回投与からなる。さらに、投与レジメンは、２〜４週間、２〜３週間または３〜４週間の非処置のインターバルが間に挿入された単回投与からなり得る。

処置セッションが、複数回投与からなる場合、投与レジメンは、非処置インターバルの長さによって決定され、１週間以内に行われる複数回投与の後、次の複数回投与の処置セッションの前に、７、１０、１４、１８、２１、２４または２８日またはそれより長い非処置インターバルが続く。特に、投与レジメンは、２または３または４週間の非処置のインターバルが間に挿入された、１週間以内に行われる複数回投与からなり得る。さらに、投与レジメンは、２〜４週間、２〜３週間または３〜４週間の非処置のインターバルが間に挿入された、１週間以内に行われる複数回投与からなり得る。

別の例として、投与レジメンは、２週間以内に行われる複数回投与に続いて、次の複数回投与の処置セッションの前に、２週間、３週間または１、２、３もしくは４ヶ月あるいはそれより長い非処置のインターバルを含み得る。特に、投与レジメンは、１、２、３または４ヶ月の非処置のインターバルが間に挿入された、２週間以内に行われる複数回投与からなり得る。さらに、投与レジメンは、１〜２ヶ月、１〜３ヶ月、１〜４ヶ月、２〜３ヶ月、２〜４ヶ月または３〜４ヶ月の非処置のインターバルが間に挿入された、２週間以内に行われる複数回投与からなり得る。

別の例として、投与レジメンは、３週間以内に行われる複数回投与に続いて、次の複数回投与の処置セッションの前に１、２、３、４、５もしくは６ヶ月またはそれより長い非処置を含み得る。特に、投与レジメンは、１、２、３、４、５または６ヶ月の非処置のインターバルが間に挿入された、３週間以内に行われる複数回投与からなり得る。さらに、投与レジメンは、１〜２ヶ月、１〜３ヶ月、１〜４ヶ月、１〜５ヶ月、１〜６ヶ月、２〜３ヶ月、２〜４ヶ月、２〜５ヶ月、２〜６ヶ月、３〜４ヶ月、３〜５ヶ月、３〜６ヶ月、４〜５ヶ月、４〜６ヶ月または５〜６ヶ月の非処置のインターバルが間に挿入された、３週間以内に行われる複数回投与からなり得る。

当然のことながら、ある特定のレジメンから開始され、別のもので置き換えられる、自在な投与レジメンが想定される。例えば、各１つの処置セッションが３日空けた２回の単回投与を含み、処置セッション間に例えば１週間のインターバルを含む処置セッションは、適切であると考えられるとき、例えば、２、３または４週間のインターバルによって分断された単回投与の処置セッションを含む投与レジメンによって置き換えられ得る。別の例として、各１つの処置セッションが７日空けた２回の単回投与を含み、処置セッション間に例えば２週間のインターバルを含む処置セッションは、適切であると考えられるとき、例えば、２、３、４、５または６週間のインターバルによって分断された単回投与の処置セッションを含む投与レジメンによって置き換えられ得る。別の例として、各１つの処置セッションが３日空けた３回の単回投与を含み、処置セッション間に例えば２週間のインターバルを含む処置セッションは、適切であると考えられるとき、例えば、２、３、４、５または６週間のインターバルによって分断された単回投与の処置セッションを含む投与レジメンによって置き換えられ得る。

いずれの場合も、投与レジメン、すなわち、処置セッションおよびインターバルセッションの長さは、免疫抑制レベルの低下が、例えば、その個体における制御性Ｔ細胞の全身における存在もしくは活性のレベルの低下またはＩＦＮγ産生白血球の全身における存在もしくは活性のレベルの上昇によって測定されるとき、一過性であるように調整される。

本発明にかかる方法、活性な作用物質または薬学的組成物は、障害または状態であるＣＮＳの疾患、障害または状態を処置するためのものであり得る。この実施形態の態様において、神経変性疾患、障害または状態は、アルツハイマー病、筋萎縮性側索硬化症、パーキンソン病 ハンチントン病、一次性進行型多発性硬化症；二次性進行型多発性硬化症、大脳皮質基底核変性症、レット症候群、タウオパチー、網膜変性障害；前部虚血性視神経症；緑内障；ブドウ膜炎；うつ病；外傷関連ストレス障害または外傷後ストレス障害、前頭側頭型認知症、レヴィー小体型認知症、軽度認識障害、後部皮質萎縮症、原発性進行性失語または進行性核上性麻痺である。ある特定の実施形態において、ＣＮＳの状態は、加齢性認知症である。この実施形態の特定の態様において、ＣＮＳの状態は、アルツハイマー病、筋萎縮性側索硬化症、パーキンソン病 ハンチントン病である。

タウオパチーは、ヒトの脳における神経原線維タングルまたはグリア線維タングル（ｇｌｉｏｆｉｂｒｉｌｌａｒｙ ｔａｎｇｌｅ）としてのタウタンパク質の病理学的な凝集を特徴とする臨床的、形態学的および生化学的に不均一なクラスの神経変性疾患である。タウは、微小管に結合してその重合を促進する微小管結合タンパク質（ＭＡＰ）である。タウは、軸索輸送およびニューロンの完全性の維持において重要な役割を果たすが、樹状突起では生理学的役割を有し、グリア細胞では低レベルで発現される。タウオパチーでは、タングルは、タウを不溶型で凝集させるタウの過剰リン酸化によって形成される。タウオパチーの非限定的な例としては、アルツハイマー病、嗜銀顆粒性疾患、慢性外傷性脳障害、大脳皮質基底核変性症、拳闘家認知症（ｄｅｍｅｎｔｉａ ｐｕｇｉｌｉｓｔｉｃａ）、前頭側頭型認知症、前頭側頭葉変性症、ハラーフォルデン・シュパッツ病、ハンチントン病、神経節膠腫、神経節細胞腫、球状グリア細胞タウオパチー、鉛脳障害、リポフスチン沈着症、リティコ・ボディグ病（グアムのパーキンソン・認知症複合）、髄膜血管腫症、１７番染色体に連鎖するパーキンソニズム疾患、ピック病、以前は神経原線維変化型認知症（ＮＦＴ−認知症）として知られていた原発性加齢性タウオパチー（ＰＡＲＴ）、脳炎後パーキンソニズム、進行性核上性麻痺、亜急性硬化性全脳炎および結節性硬化症が挙げられる。

網膜変性障害は、光受容体細胞の死滅に起因して網膜の変質をもたらす障害である。網膜変性にはいくつかの原因があり、それらとしては、動脈もしくは静脈閉塞、糖尿病性網膜症、水晶体後線維増殖症／未熟児網膜症または疾患（通常、遺伝性）が挙げられる。症状としては、視力の悪化、夜盲、網膜剥離、光感受性、グレア感度、トンネル視、深視力の喪失、コントラストの喪失、夜盲、中心視覚の喪失、周辺視の喪失および完全視力喪失が挙げられるがこれらに限定されない。網膜変性障害としては、加齢性黄斑変性症（滲出型および非滲出型）、網膜色素変性症、コロイデレミア、錐体桿体網膜ジストロフィー、脳回転状萎縮、若年性網膜分離症、卵黄様黄斑ジストロフィー（ベスト病）、無βリポタンパク質血症（バッセン・コーンツヴァイク病）、バルデー・ビートル症候群、青錐体単色症、優性ドルーゼン、ゴールドマン・ファーブル硝子体網膜性ジストロフィー（Ｓ錐体増強症候群）、カーンズ・セイヤー症候群、ローレンス・ムーン症候群、レーバー先天性黒内障、レーバーレフサム病（Ｌｅｂｅｒ’ｓ Ｒｅｆｓｕｍ ｄｉｓｅａｓｅ）、小口病、乳頭周囲（中心周囲）脈絡膜ジストロフィー、色素パターンジストロフィー（Ｐｉｇｍｅｎｔ Ｐａｔｔｅｒｎ Ｄｙｓｔｒｏｐｈｙ）、ソースビー黄斑ジストロフィー（Ｓｏｒｓｂｙ Ｍａｃｕｌａｒ Ｄｙｓｔｒｏｐｈｙ）、シュタルガルト病、スティックラー症候群、アッシャー症候群およびワーグナー硝子体網膜性ジストロフィーが挙げられるがこれらに限定されない。

ある特定の実施形態において、ＩＣＯＳ−Ｂ７ＲＰ１、Ｔ細胞活性化のＶドメインＩｇ抑制因子（ＶＩＳＴＡ）、Ｂ７−ＣＤ２８様分子、ＣＤ４０Ｌ−ＣＤ４０、ＣＤ２８−ＣＤ８０、ＣＤ２８−ＣＤ８６、Ｂ７Ｈ３、Ｂ７Ｈ４、Ｂ７Ｈ７、ＢＴＬＡ−ＨＶＥＭ、ＣＤ１３７−ＣＤ１３７Ｌ、ＯＸ４０Ｌ、ＣＤ２７−ＣＤ７０、ＳＴＩＮＧ、ＴＩＧＩＴおよびＡ２ａＲ−アデノシンおよびインドールアミン−２，３−ジオキシゲナーゼ（ＩＤＯ）−Ｌ−トリプトファンから選択される免疫チェックポイントの１つを遮断する上に記載された活性な作用物質（例えば、免疫チェックポイントの２つのパートナーのうちの１つに対する抗体）の各１つは、アルツハイマー病、筋萎縮性側索硬化症、パーキンソン病 ハンチントン病、一次性進行型多発性硬化症；二次性進行型多発性硬化症、大脳皮質基底核変性症、レット症候群、加齢性黄斑変性症および網膜色素変性症からなる群より選択される網膜変性障害；前部虚血性視神経症；緑内障；ブドウ膜炎；うつ病；外傷関連ストレスまたは外傷後ストレス障害、前頭側頭型認知症；レヴィー小体型認知症、軽度認識障害、後部皮質萎縮、原発性進行性失語または進行性核上性麻痺から選択される神経変性疾患、障害または状態のいずれか１つの処置において使用するためのものである。これらの活性な作用物質のいずれか１つの使用を含むこれらの疾患のいずれか１つの処置は、上に記載されたレジメント（ｒｅｇｉｍｅｎｔ）に従って行われ得る。

本発明にかかる方法、活性な作用物質および薬学的組成物はさらに、脊髄損傷、閉鎖性頭部損傷、鈍的外傷、鋭的外傷、出血性脳卒中、虚血性脳卒中、脳虚血、視神経損傷、心筋梗塞、有機リン中毒、および腫瘍切除術が原因の損傷から選択されるＣＮＳの損傷を処置するためのものであり得る。

ある特定の実施形態において、ＩＣＯＳ−Ｂ７ＲＰ１、Ｔ細胞活性化のＶドメインＩｇ抑制因子（ＶＩＳＴＡ）、Ｂ７−ＣＤ２８様分子、ＣＤ４０Ｌ−ＣＤ４０、ＣＤ２８−ＣＤ８０、ＣＤ２８−ＣＤ８６、Ｂ７Ｈ３、Ｂ７Ｈ４、Ｂ７Ｈ７、ＢＴＬＡ−ＨＶＥＭ、ＣＤ１３７−ＣＤ１３７Ｌ、ＯＸ４０Ｌ、ＣＤ２７−ＣＤ７０、ＳＴＩＮＧ、ＴＩＧＩＴおよびＡ２ａＲ−アデノシンおよびインドールアミン−２，３−ジオキシゲナーゼ（ＩＤＯ）−Ｌ−トリプトファンから選択される免疫チェックポイントの１つを遮断する上に記載された活性な作用物質（例えば、免疫チェックポイントの２つのパートナーのうちの１つに対する抗体）の各１つは、脊髄損傷、閉鎖性頭部損傷、鈍的外傷、鋭的外傷、出血性脳卒中、虚血性脳卒中、脳虚血、視神経損傷、心筋梗塞、有機リン中毒、および腫瘍切除術が原因の損傷から選択されるＣＮＳの損傷の処置において使用するためのものである。これらの活性な作用物質のいずれか１つの使用を含むこれらの損傷のいずれか１つの処置は、上に記載されたレジメンに従って行われ得る。

上で述べたように、本発明者らは、本発明が、アルツハイマー病を模倣するマウスにおいて認知機能を改善することを見出した。したがって、上記方法、活性な作用物質および薬学的組成物は、ＣＮＳの運動機能および／または認知機能の改善において使用するため、例えば、診断された疾患を有しない個体ならびに神経変性疾患に罹患している人々において生じ得る、加齢関連の認知機能喪失の軽減において使用するためのものであり得る。さらに、上記方法、活性な作用物質および薬学的組成物は、急性ストレスまたは外傷エピソードに起因する認知機能喪失の軽減において使用するためのものであり得る。本明細書中の上記で述べられた認知機能は、学習、記憶またはその両方を含み得る。

アルツハイマー病を模倣するマウス（５ＸＦＡＤ ＡＤ−Ｔｇマウス）における認知機能の改善が観察され、その改善が、疾患発現の様々な段階において本発明者らによって特徴付けられたこと；疾患の病態の初期と後期の両方の進行段階が、処置によって緩和され得ることは、強調されるべきである。５ＸＦＡＤ ＡＤ−Ｔｇマウスは、２．５月齢において大脳プラークの病態を示し始め、５月齢において失認を示し始める（Ｏａｋｌｅｙ ｅｔ ａｌ，２００６）。注目すべきは、下記の実施例２において、本発明者らは、６月齢の５ＸＦＡＤマウスにおいて治療効果を報告し、実施例５では、このモデルにおいてアミロイドベータプラークの沈着および失認が極めて進行した段階である１１および１２月齢の５ＸＦＡＤマウスにおいて治療効果を特徴付ける。ゆえに、提案される発明は、様々な疾患進行の段階（例えば、ステージ１−軽度／初期（２〜４年続く）；ステージ２−中等度／中期（２〜１０年続く）；およびステージ３−重度／後期（１〜３＋年続く））の患者にとって妥当であり得ると予想される。

用語「ＣＮＳ機能」は、本明細書中で使用されるとき、とりわけ、知覚情報の受け取りおよび処理、思考、学習、記銘、言語の認知、生成および理解、運動機能および聴覚的および視覚的応答の制御、バランスおよび平衡の維持、運動協調、知覚情報の伝導、ならびに呼吸、心拍および消化のような自律神経機能の制御のことを指す。

用語「認知」、「認知機能」および「認知能力」は、本明細書中で交換可能に使用され、学習、記憶、心象の創造、思考、自覚、推理、空間能力、発話および言語技能、言語習得、ならびに判断注意の能力を含むがこれらに限定されない任意の心理過程または心理状態に関する。認知は、脳の複数の領域（例えば、海馬、皮質および他の脳構造）において形成される。しかしながら、長期記憶は皮質の少なくとも一部に保存されると仮定され、知覚情報は、島皮質の中に存在する特定の皮質構造である味覚野によって獲得され、整理統合され、読みだされることが知られている。

ヒトでは、認知機能は、任意の公知の方法によって測定され得、その方法は、例えば、臨床全般印象変化尺度（ＣＩＢＩＣ−ｐｌｕｓスケール）；ミニメンタルステート検査（ＭＭＳＥ）；神経精神症状評価（ＮＰＩ）；臨床的認知症尺度（ＣＤＲ）；ケンブリッジ神経心理学的検査バッテリー（ＣＡＮＴＡＢ）またはサンド老年者臨床評価（ＳＣＡＧ）であるが、これらに限定されない。認知機能は、イメージング技術（例えば、ポジトロン放出断層撮影法（ＰＥＴ）、機能的磁気共鳴画像法（ｆＭＲＩ）、単一光子放射型コンピュータ断層撮影法（ＳＰＥＣＴ）または脳機能を測定することが可能な他の任意のイメージング技術）を用いても間接的に測定され得る。

患者における認知に影響する１つ以上のプロセスの改善は、前記患者における認知機能の改善を意味するので、ある特定の実施形態において、認知の改善は、学習、可塑性および／または長期記憶の改善を含む。用語「改善する」および「高める」は、交換可能に使用され得る。

用語「学習」は、新しい知識、行動、技能、価値もしくは好みの獲得もしくは増加、または既存の知識、行動、技能、価値もしくは好みの改変および強化に関する。

用語「可塑性」は、脳が学習によって変化する能力およびすでに獲得している記憶を変更する能力に関連する、シナプス可塑性、脳可塑性または神経可塑性に関する。可塑性を反映する１つの測定可能なパラメータは、記憶の消去である。

用語「記憶」は、情報がコード化され、保存され、検索されるプロセスに関する。記憶は、３つの識別可能なカテゴリー：感覚記憶、短期記憶および長期記憶を有する。

用語「長期記憶」は、長時間または無期限にわたって情報を維持する能力である。長期記憶は、２つの主要な部分：明確な記憶（陳述記憶）および暗黙の記憶（非陳述記憶）を含む。長期記憶は、記憶を最初に獲得した後に記憶痕跡を安定させるプロセスの１カテゴリーである記憶固定によって達成される。固定は、２つの特定のプロセス、すなわち、学習後の最初の数時間以内に行われるシナプス固定（ｓｙｎａｐｔｉｃ ｃｏｎｓｏｌｉｄａｔｉｏｎ）、および海馬依存性の記憶が数週間から数年間にわたって海馬から独立するようになるシステム固定（ｓｙｓｔｅｍ ｃｏｎｓｏｌｉｄａｔｉｏｎ）に分類される。

本発明の薬学的組成物の種々の特徴を説明する上記の実施形態は、本発明の方法にも関連する。なぜなら、本方法は、同じ薬学的組成物を使用するからである。

さらに別の態様において、本発明は、アルツハイマー病と診断された患者においてＡβプラーク量を減少させるための方法を提供し、その方法は、１つ以上の免疫チェックポイントによって免疫系に課された制限の解除によって全身免疫抑制のレベルの低下を引き起こす上記の本明細書中で定義されたような活性な作用物質または薬学的組成物を前記患者に投与する工程を含む。

なおも別の態様において、本発明は、アルツハイマー病と診断された患者において海馬グリオーシスを低減するための方法を提供し、その方法は、１つ以上の免疫チェックポイントによって免疫系に課された制限の解除によって全身免疫抑制のレベルの低下を引き起こす上記の本明細書中で定義されたような活性な作用物質または薬学的組成物を前記患者に投与する工程を含む。

本発明に従って使用するための薬学的組成物は、１つ以上の生理的に許容され得る担体または賦形剤を使用して、従来の様式で製剤化され得る。それらの担体は、その組成物の他の成分と適合しかつそのレシピエントにとって有害でないという意味において、「許容され得る」ものでなければならない。

以下の担体、投与様式、剤形などの例証は、使用される可能性のある公知のものとして列挙され、それらから本発明とともに使用するための担体、投与様式、剤形などが選択され得る。しかしながら、当業者は、まず、任意の所与の製剤および選択された投与様式が、所望の結果を達成するかを判定するために試験されるべきであることを理解するだろう。

投与方法としては、非経口的、例えば、静脈内、腹腔内、筋肉内、皮下、粘膜（例えば、経口、鼻腔内、頬側、膣、直腸、眼内）、鞘内（ｉｎｔｒａｔｈｅｃａｌ）、局所的および皮内経路が挙げられるが、これらに限定されない。投与は、全身投与または局所投与であり得る。

用語「担体」とは、活性な作用物質とともに投与される、希釈剤、アジュバント、賦形剤またはビヒクルのことを指す。薬学的組成物中の担体は、結合剤（例えば、微結晶性セルロース、ポリビニルピロリドン（ポリビドンまたはポビドン）、トラガカントゴム、ゼラチン、デンプン、ラクトースまたはラクトース一水和物）；崩壊剤（例えば、アルギン酸、トウモロコシデンプンなど）；潤滑剤または界面活性物質（例えば、ステアリン酸マグネシウムまたはラウリル硫酸ナトリウム）；および流動促進剤（例えば、コロイド状二酸化ケイ素）を含み得る。

経口投与の場合、薬学的調製物は、液体の形態、例えば、液剤、シロップ剤もしくは懸濁剤として存在し得るか、または使用前に水もしくは他の好適なビヒクルで再構成するための薬物製品として提供され得る。そのような液体調製物は、薬学的に許容され得る添加物（例えば、懸濁化剤（例えば、ソルビトールシロップ、セルロース誘導体または可食の硬化脂肪）；乳化剤（例えば、レシチンまたはアカシア）；非水性ビヒクル（例えば、アーモンドオイル、油性エステルまたは分画された植物油）；および保存剤（例えば、メチルもしくはプロピル−ｐ−ヒドロキシベンゾエートまたはソルビン酸））を用いて、従来の手段によって調製され得る。薬学的組成物は、薬学的に許容され得る賦形剤（例えば、結合剤（例えば、アルファ化トウモロコシデンプン、ポリビニルピロリドンまたはヒドロキシプロピルメチルセルロース）；充填剤（例えば、ラクトース、微結晶性セルロースまたはリン酸水素カルシウム）；潤滑剤（例えば、ステアリン酸マグネシウム、タルクまたはシリカ）；崩壊剤（例えば、ジャガイモデンプンまたはデンプングリコール酸ナトリウム）；または湿潤剤（例えば、ラウリル硫酸ナトリウム））とともに従来の手段によって調製される、例えば、錠剤またはカプセル剤の形態をとり得る。錠剤は、当該分野で周知の方法によってコーティングされてもよい。

経口投与用の調製物は、活性な化合物の制御放出をもたらすように適切に製剤化され得る。

頬側投与の場合、組成物は、従来の様式で製剤化される錠剤または舐剤の形態をとり得る。

組成物は、注射、例えば、ボーラス注射または持続注入による非経口投与用に製剤化され得る。注射用の製剤は、単位剤形で、例えばアンプル内に、または保存剤が加えられた複数回用量の容器内に、提供され得る。組成物は、油性または水性ビヒクルにおける懸濁液、溶液またはエマルジョンのような形態をとることがあり、懸濁化剤、安定化剤および／または分散剤などの製剤化剤（ｆｏｒｍｕｌａｔｏｒｙ ａｇｅｎｔｓ）を含むことがある。あるいは、活性成分は、使用する前に、好適なビヒクル、例えば、滅菌されたパイロジェンフリー水で構成するための粉末の形態であり得る。

組成物は、例えば、従来の坐剤用基剤（例えば、カカオバターまたは他のグリセリド）を含む、直腸組成物（例えば、坐剤または停留浣腸）にも製剤化され得る。

吸入による投与の場合、本発明に従って使用するための組成物は、好適な噴射剤、例えば、ジクロロジフルオロメタン、トリクロロフルオロメタン、ジクロロテトラフルオロエタン、二酸化炭素または他の好適なガスを使用して、加圧パックまたは噴霧器からエアロゾルスプレーを提供する形態で好都合に送達される。加圧エアロゾルの場合、投与量の単位は、一定量を送達するバルブを提供することによって決定され得る。化合物と好適な粉末基剤（例えば、ラクトースまたはデンプン）との粉末混合物を含む、吸入器または注入器において使用するための、例えばゼラチンでできた、カプセルおよびカートリッジが製剤化され得る。

ヒトにおいて使用するために使用される活性成分の用量の決定は、当該分野で通常用いられる慣習に基づき、臨床試験では最終的に医師が決定する。ヒトに投与する場合の近似の等価用量の予測値は、公知の式を用いて（例えば、Ｒｅａｇａｎ−Ｓｈｏｗ ｅｔ ａｌ．（２００７）Ｄｏｓｅ ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎ ｆｒｏｍ ａｎｉｍａｌ ｔｏ ｈｕｍａｎ ｓｔｕｄｉｅｓ ｒｅｖｉｓｉｔｅｄ．Ｔｈｅ ＦＡＳＥＢ Ｊｏｕｒｎａｌ ２２：６５９−６６１）、下記の本明細書中に開示されるインビボの実験的証拠に基づいて計算され得る。このパラダイムによると、成人の等価用量（ｍｇ／ｋｇ体重）は、マウスに投与される用量（ｍｇ／ｋｇ体重）に０．０８１を掛けた値に等しい。

本明細書の態様は、以下のようにも説明され得る：
１．中枢神経系の疾患、障害、状態または傷害の処置を必要とする個体に対してそれらを処置する処置する方法であって、その方法は、１つ以上の免疫チェックポイントによって免疫系に課された制限の解除によって全身の免疫抑制レベルの低下を引き起こす活性な作用物質を含む組成物をその個体に投与する工程を含み、その組成物は、少なくとも１コースの治療を含む投与レジメンによって投与され、各コースの治療は、その組成物が個体に投与される処置セッションの後に、組成物が個体に投与されない非処置セッションを順に含み、その非処置期間は、処置セッションより長く；処置セッション中の組成物の投与が、反復投与である場合、非処置期間は、処置セッション中の反復投与間の期間よりも長く；その組成物の投与は、全身の免疫抑制レベルを一過性に低下させ、中枢神経系への免疫細胞の選択的動員を促進する際に脈絡叢入口活性を高め、それにより、その個体を処置する、方法。
２．中枢神経系の疾患、障害、状態または傷害の処置の処置において使用するための、活性な作用物質またはその活性な作用物質を含む薬学的組成物であって、その活性な作用物質は、１つ以上の免疫チェックポイントによって免疫系に課された制限の解除によって全身の免疫抑制レベルの低下を引き起こし、その活性な作用物質または薬学的（ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａ）組成物は、少なくとも１コースの治療を含む投与レジメンによって投与され、各コースの治療は、その組成物が個体に投与される処置セッションの後に、組成物が個体に投与されない非処置セッションを順に含み、その非処置期間は、処置セッションより長く；処置セッション中の組成物の投与が、反復投与である場合、非処置期間は、処置セッション中の反復投与間の期間よりも長く；その組成物の投与は、全身の免疫抑制レベルを一過性に低下させ、中枢神経系への免疫細胞の選択的動員を促進する際に脈絡叢入口活性を高め、それにより、その個体を処置する、活性な作用物質またはその活性な作用物質を含む薬学的組成物。
３．中枢神経系の疾患、障害、状態または傷害の処置における、１つ以上の免疫チェックポイントによって免疫系に課された制限の解除によって全身の免疫抑制レベルの低下を引き起こす活性な作用物質の使用。
４．中枢神経系の疾患、障害、状態または傷害を処置するための薬の製造における、１つ以上の免疫チェックポイントによって免疫系に課された制限の解除によって全身の免疫抑制レベルの低下を引き起こす活性な作用物質の使用。
５．前記活性な作用物質が、抗体、抗体模倣物、アプタマー、小分子、ニーム葉の糖タンパク質、ｓＣＴＬＡ−４、サイレンシング分子、ＯＫ−４３２、ＩＬ−１２と抗ＣＴＬＡ−４との組み合わせ、またはそれらの任意の組み合わせである、実施形態１に記載の方法、実施形態２に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３もしくは４に記載の使用。
６．前記抗体が、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体である、実施形態５に記載の方法、実施形態５に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態５に記載の使用。
７．前記抗体が、二量体、多量体、多重特異性抗体、組換え抗体、キメラ抗体、二機能性抗体、Ｉｇレセプターのような細胞に会合した抗体、鎖状抗体、ダイアボディ、ミニボディまたはナノボディである、実施形態５もしくは６に記載の方法、実施形態５もしくは５に記載の活性な作用物質または薬学的組成物、または実施形態５もしくは６に記載の使用。
８．前記抗体が、ヒト抗体またはヒト化抗体である、実施形態５〜７のいずれか１つに記載の方法、実施形態５〜７に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態５〜７のいずれか１つに記載の使用。
９．前記抗体が、アンタゴニスト抗体またはアゴニスト抗体である、実施形態５〜８のいずれか１つに記載の方法、実施形態５〜８に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態５〜８のいずれか１つに記載の使用。
１０．前記抗体が、中和抗体である、実施形態５〜９のいずれか１つに記載の方法、実施形態５〜９に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態５〜９のいずれか１つに記載の使用。
１１．前記抗体が、完全長の免疫グロブリン分子または免疫学的に活性なフラグメントである、実施形態５〜１０のいずれか１つに記載の方法、実施形態５〜１０に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態５〜１０のいずれか１つに記載の使用。
１２．前記免疫学的に活性なフラグメントが、単一ドメイン抗体（ｓｄＡｂ）、一本鎖可変フラグメント（ｓｃＦｖ）、Ｆａｂフラグメント、Ｆ（ａｂ’）２フラグメント、Ｆｃフラグメント、Ｆｄフラグメント、Ｆｖフラグメントである、実施形態１１に記載の方法、実施形態１１に記載の活性な作用物質または薬学的組成物、または実施形態１１に記載の使用。
１３．前記抗体が、抗ＰＤ−１、抗ＰＤ−Ｌ１、抗ＰＤ−Ｌ２、抗ＣＴＬＡ−４、抗ＣＤ８０、抗ＣＤ８６、抗Ｂ７ＲＰ１、抗Ｂ７−Ｈ３、抗Ｂ７−Ｈ４、抗Ｂ７−Ｈ７、抗ＢＴＬＡ、抗ＨＶＥＭ、抗ＣＤ−２７、抗ＣＤ４０、抗ＣＤ４０Ｌ、抗ＣＤ７０、抗ＣＤ８０、抗ＣＤ８６、抗ＣＤ１３７、抗ＣＤ１３７Ｌ、抗ＯＸ４０、抗ＯＸ４０Ｌ、抗ＴＩＭ−３、抗ガレクチン９、抗ＫＩＲ、抗ＬＡＧ−３、抗ＩＣＯＳ、抗ＶＩＳＴＡ、抗ＳＴＩＮＧ、抗ＴＩＧＩＴ、抗ＧＩＴＲまたはそれらの任意の組み合わせである、実施形態５〜１２のいずれか１つに記載の方法、実施形態３もしくは４に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態４〜１１のいずれか１つに記載の使用。
１４．前記抗体模倣物が、アフィボディ分子、アフィリン、アフィマー、アフィチン、アルファボディ、アンチカリン、アビマー、ＤＡＲＰｉｎ、フィノマー、Ｋｕｎｉｔｚドメインペプチドまたはモノボディである、実施形態５に記載の方法、実施形態５に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態５に記載の使用。
１５．前記アプタマーが、ＤＮＡアプタマー、ＲＮＡアプタマー、ＸＮＡアプタマーまたはペプチドアプタマーである、実施形態５に記載の方法、実施形態５に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態４に記載の使用。
１６．前記小分子が、ｐ３００インヒビター、スニチニブ、ポリオキソメタレート−１、α，β−メチレンアデノシン５’−二リン酸、三酸化ヒ素、ＧＸ１５−０７０、レチノイン酸アンタゴニスト、ＣＣＲ４アンタゴニスト、アデノシンレセプターアンタゴニスト、アデノシンＡ１レセプターアンタゴニスト；アデノシンＡ２ａレセプター、アデノシンＡ２ｂレセプターアンタゴニスト、Ａ３レセプターアンタゴニスト、インドールアミン−２，３−ジオキシゲナーゼのアンタゴニストまたはＨＩＦ−１制御因子である、実施形態５に記載の方法、実施形態５に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態５に記載の使用。
１７．前記処置セッション中の前記組成物の投与が、単回投与である、実施形態１〜１６のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜１６のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜１６のいずれか１つに記載の使用。
１８．前記処置セッション中の前記組成物の投与が、反復投与である、実施形態１〜１６のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜１６のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜１６のいずれか１つに記載の使用。
１９．前記反復投与が、１日に１回、２日に１回、３日に１回、４日に１回、５日に１回または６日に１回、行われる、実施形態１８に記載の方法、実施形態１８に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態１８に記載の使用。
２０．前記反復投与が、１週間に１回または２週間に１回、３週間に１回または４週間に１回、行われる、実施形態１８に記載の方法、実施形態１８に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態１８に記載の使用。
２１．前記処置セッションが、１日間〜４週間である、実施形態１〜２０のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜２０のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜２０のいずれか１つに記載の使用。
２２．前記処置セッションが、３日間〜４週間である、実施形態２１に記載の方法、実施形態２１に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態２１に記載の使用。
２３．前記処置セッションが、１週間〜４週間である、実施形態２２に記載の方法、実施形態２２に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態２２に記載の使用。
２４．前記非処置期間が、１週間〜６ヶ月間である、実施形態１〜２３のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜２３のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜２３のいずれか１つに記載の使用。
２５．前記非処置期間が、２週間〜６ヶ月間である、実施形態２４に記載の方法、実施形態２４に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態２４に記載の使用。
２６．前記非処置期間が、３週間〜６ヶ月間である、実施形態２５に記載の方法、実施形態２５に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態２５に記載の使用。
２７．前記非処置期間が、１ヶ月間〜３ヶ月間である、実施形態２６に記載の方法、実施形態２６に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態２６に記載の使用。
２８．前記非処置期間が、１ヶ月間〜２ヶ月間である、実施形態２７に記載の方法、実施形態２７に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態２７に記載の使用。
２９．前記全身の免疫抑制レベルの一過性の低下が、ＩＦＮγ産生白血球の全身における存在もしくは活性の増加および／またはＩＦＮγサイトカインの全身における存在もしくは活性の増加を伴う、実施形態１〜２８のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜２８のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜２８のいずれか１つに記載の使用。
３０．前記全身の免疫抑制レベルの一過性の低下が、エフェクターＴ細胞の全身における存在もしくは活性の増加を伴う、実施形態１〜２９のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜２９のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜２９のいずれか１つに記載の使用。
３１．前記全身の免疫抑制レベルの一過性の低下が、調節性Ｔ細胞の全身における存在もしくは活性の減少および／またはＩＬ−１０サイトカインの全身における存在の減少を伴う、実施形態１〜３０のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜３０のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜３０のいずれか１つに記載の使用。
３２．前記全身の免疫抑制レベルの一過性の低下が、全身における存在または骨髄由来サプレッサー細胞（ＭＤＳＣ）の減少を伴う、実施形態１〜３１のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜３１のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜３１のいずれか１つに記載の使用。
３３．前記全身の免疫抑制レベルの一過性の低下が、１つ以上の免疫チェックポイントによって免疫系に課された制限の解除によって生じる、実施形態１〜３２のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜３２のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜３２のいずれか１つに記載の使用。
３４．前記組成物の投与が、前記１つ以上の免疫チェックポイントを遮断し、それによって、前記全身の免疫抑制レベルの一過性の低下を引き起こす、実施形態３３に記載の方法、実施形態３３に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３３に記載の使用。
３５．前記１つ以上の免疫チェックポイントが、ＰＤ−１−ＰＤ−Ｌ１、ＰＤ−１−ＰＤ−Ｌ２、ＣＤ２８−ＣＤ８０、ＣＤ２８−ＣＤ８６、ＣＴＬＡ−４−ＣＤ８０、ＣＴＬＡ−４−ＣＤ８６、ＩＣＯＳ−Ｂ７ＲＰ１、Ｂ７Ｈ３、Ｂ７Ｈ４、Ｂ７Ｈ７、Ｂ７−ＣＤ２８様分子、ＢＴＬＡ−ＨＶＥＭ、ＫＩＲ−ＭＨＣクラスＩもしくはＩＩ、ＬＡＧ３−ＭＨＣクラスＩもしくはＩＩ、ＣＤ１３７−ＣＤ１３７Ｌ、ＯＸ４０−ＯＸ４０Ｌ、ＣＤ２７−ＣＤ７０、ＣＤ４０Ｌ−ＣＤ４０、ＴＩＭ３−ＧＡＬ９、Ｔ細胞活性化のＶ−ドメインＩｇサプレッサー（ＶＩＳＴＡ）、インターフェロン遺伝子の刺激物質（ＳＴＩＮＧ）、Ｔ細胞免疫グロブリンおよび免疫受容抑制性チロシンモチーフドメイン（ＴＩＧＩＴ）、糖質コルチコイド誘発性腫瘍壊死因子レセプター関連タンパク質（ＧＩＴＲ）、Ａ２ａＲ−アデノシン、またはインドールアミン−２，３−ジオキシゲナーゼ（ＩＤＯ）−Ｌ−トリプトファンを含む、実施形態３４に記載の方法、実施形態３４に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３４に記載の使用。
３６．前記処置セッション中の前記組成物の投与が、少なくともＩＦＮγ産生白血球および／またはＩＦＮγサイトカインの全身における存在または活性が基準より高くなるまで維持され、基準より高くなった時点でその投与は停止され、前記非処置期間が、ＩＦＮγ産生白血球および／またはＩＦＮγサイトカインの全身における存在または活性が基準より高い限り維持され、その基準は、ａ）投与前の前記個体から得られた最新の血液サンプルにおいて測定されたＩＦＮγ産生白血球および／またはＩＦＮγサイトカインの全身における存在または活性のレベル；またはｂ）中枢神経系の疾患、障害、状態または傷害に苦しんでいる個体の集団に特徴的なＩＦＮγ産生白血球および／またはＩＦＮγサイトカインの全身における存在または活性のレベルを含む、実施形態１〜３５のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜３５のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜３５のいずれか１つに記載の使用。
３７．可溶性アミロイドベータペプチドの脳内レベルが、前記個体において低下し、脳内のアミロイドベータ（Ａβ）プラーク量が、その個体において減少するかまたは取り除かれ、海馬グリオーシスが、その個体において低減し、炎症促進性サイトカインの脳内レベルが、その個体において低下し、脳の炎症が、その個体において低減し、かつ／または認知機能が、その個体において改善される、実施形態１〜３６のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜３６のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜３６のいずれか１つに記載の使用。
３８．前記改善された認知機能が、学習、記憶、心象の創造、可塑性、思考、自覚、推理、空間能力、発話および言語技能、言語習得、判断注意の能力またはそれらの任意の組み合わせである、実施形態３７に記載の方法、実施形態３７に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３７に記載の使用。
３９．前記免疫細胞が、単球、マクロファージまたはＴ細胞を含む、実施形態１〜３８のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜３８のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜３８のいずれか１つに記載の使用。
４０．前記Ｔ細胞が、調節性Ｔ細胞を含む、実施形態３９に記載の方法、実施形態３９に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３９に記載の使用。
４１．前記中枢神経系の疾患、障害、状態または傷害が、アルツハイマー病、筋萎縮性側索硬化症、パーキンソン病 ハンチントン病、一次性進行型多発性硬化症、二次性進行型多発性硬化症、大脳皮質基底核変性症、レット症候群、前部虚血性視神経症、緑内障、ブドウ膜炎、うつ病、外傷関連ストレス障害または外傷後ストレス障害、前頭側頭型認知症、レヴィー小体型認知症、軽度認識障害、後部皮質萎縮症、原発性進行性失語または進行性核上性麻痺である、実施形態１〜４０のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜４０のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜４０のいずれか１つに記載の使用。
４２．前記中枢神経系の疾患、障害、状態または傷害が、タウオパチーである、実施形態１〜４０のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜４０のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態１〜４０のいずれか１つに記載の使用。
４３．前記タウオパチーが、アルツハイマー病、嗜銀顆粒性疾患、慢性外傷性脳障害、大脳皮質基底核変性症、拳闘家認知症、前頭側頭型認知症、前頭側頭葉変性症、ハラーフォルデン・シュパッツ病、ハンチントン病、神経節膠腫、神経節細胞腫、球状グリア細胞タウオパチー、鉛脳障害、リポフスチン沈着症、リティコ・ボディグ病（グアムのパーキンソン・認知症複合）、髄膜血管腫症、１７番染色体に連鎖するパーキンソニズム疾患、ピック病、以前は神経原線維変化型認知症（ＮＦＴ−認知症）として知られていた原発性加齢性タウオパチー（ＰＡＲＴ）、脳炎後パーキンソニズム、進行性核上性麻痺、亜急性硬化性全脳炎または結節性硬化症である、実施形態４２に記載の方法、実施形態４２に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態４２に記載の使用。
４４．前記中枢神経系の疾患、障害、状態または傷害が、網膜変性障害である、実施形態１〜４０のいずれか１つに記載の方法、実施形態２〜４０のいずれか１つに記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態３〜４０のいずれか１つに記載の使用。
４５．前記網膜変性障害が、滲出型（ｗｅｔ）加齢黄斑変性症、非滲出型（ｄｒｙ）加齢黄斑変性症、網膜色素変性症、コロイデレミア、錐体桿体網膜ジストロフィー、脳回転状萎縮、若年性網膜分離症、卵黄様黄斑ジストロフィー（ベスト病）、無βリポタンパク質血症（バッセン・コーンツヴァイク病）、バルデー・ビートル症候群、青錐体単色症、優性ドルーゼン、ゴールドマン・ファーブル硝子体網膜性ジストロフィー（Ｓ錐体増強症候群）、カーンズ・セイヤー症候群、ローレンス・ムーン症候群、レーバー先天性黒内障、レーバーレフサム病、小口病、乳頭周囲（中心周囲）脈絡膜ジストロフィー、色素パターンジストロフィー、ソースビー黄斑ジストロフィー、シュタルガルト病、スティックラー症候群、アッシャー症候群またはワーグナー硝子体網膜性ジストロフィーである、実施形態４４に記載の方法、実施形態４４に記載の活性な作用物質もしくは薬学的組成物、または実施形態４４に記載の使用。

以下の非限定的な実施例は、企図されている代表的な実施形態のより完全な理解を促すために、単に例証的な目的で提供される。これらの実施例は、本明細書中に開示される活性な作用物質、薬学的組成物または方法および使用に関する実施形態を含む、本明細書に記載されているいずれの実施形態も限定すると解釈されるべきでない。
（材料および方法）

(動物)
家族性ＡＤ変異型のヒトＡＰＰ（Ｓｗｅｄｉｓｈ変異、Ｋ６７０Ｎ／Ｍ６７１Ｌ；Ｆｌｏｒｉｄａ変異、Ｉ７１６Ｖ；およびＬｏｎｄｏｎ変異、Ｖ７１７Ｉ）およびＰＳ１（Ｍ１４６Ｌ／Ｌ２８６Ｖ）導入遺伝子をニューロン特異的マウスＴｈｙ−１プロモーター（Ｏａｋｌｅｙ ｅｔ ａｌ，２００６）の転写制御下で共過剰発現する５ＸＦＡＤトランスジェニックマウス（Ｔｇ６７９９）、ならびにＡＤダブルトランスジェニックＢ６．Ｃｇ−Ｔｇ（ＡＰＰｓｗｅ、ＰＳＥＮ１ｄＥ９）８５Ｄｂｏ／Ｊマウス（Ｂｏｒｃｈｅｌｔ ｅｔ ａｌ，１９９７）をＴｈｅ Ｊａｃｋｓｏｎ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙから購入した。先に記載されたように（Ｏａｋｌｅｙ ｅｔ ａｌ，２００６）、テイルＤＮＡのＰＣＲ解析によって、ジェノタイピングを行った。ヘテロ接合性変異ｃｘ_３ｃｒ１^{ＧＦＰ／＋}マウス（Ｊｕｎｇ ｅｔ ａｌ，２０００）（ＣＸ_３ＣＲ１ケモカインレセプターの対立遺伝子の１つがＧＦＰをコードする遺伝子で置換されたＢ６．１２９Ｐ−ｃｘ３ｃｒ１^{ｔｍ１Ｌｉｔｔ}／Ｊ）をＢＭキメラのドナーとして使用した。Ｆｏｘｐ３^＋Ｔｒｅｇの条件的枯渇を可能にするために、Ｆｏｘｐ３．ＬｕｃｉＤＴＲマウス（Ｓｕｆｆｎｅｒ ｅｔ ａｌ，２０１０）を５ＸＦＡＤマウスと交配させた。Ａｎｉｍａｌ Ｂｒｅｅｄｉｎｇ Ｃｅｎｔｅｒ ｏｆ ｔｈｅ Ｗｅｉｚｍａｎｎ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅが動物を飼育し、維持した。本明細書中で詳述されるすべての実験が、Ｗｅｉｚｍａｎｎ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ ＳｃｉｅｎｃｅのＩｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ａｎｉｍａｌ Ｃａｒｅ ａｎｄ Ｕｓｅ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ（ＩＡＣＵＣ）によって策定された規則に従った。

（ＲＮＡ精製、ｃＤＮＡ合成および定量的リアルタイムＰＣＲ解析）
海馬の歯状回（ＤＧ）の全ＲＮＡを、ＴＲＩ試薬（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｎｔｅｒ）を用いて抽出し、ＲＮｅａｓｙ Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いて溶解産物から精製した。脈絡叢の全ＲＮＡを、ＲＮＡ ＭｉｃｒｏＰｒｅｐ Ｋｉｔ（Ｚｙｍｏ Ｒｅｓｅａｒｃｈ）を用いて抽出した。Ｈｉｇｈ Ｃａｐａｃｉｔｙ ｃＤＮＡ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を用いて、ｍＲＮＡ（１μｇ）をｃＤＮＡに変換した。特定のｍＲＮＡの発現を、蛍光ベースの定量的リアルタイムＰＣＲ（ＲＴ−ｑＰＣＲ）を用いてアッセイした。ＲＴ−ｑＰＣＲ反応は、Ｆａｓｔ−ＳＹＢＲ ＰＣＲ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を用いて行った。定量反応は、検量線法を用いて各サンプルに対して３つ組で行った。ペプチジルプロリルイソメラーゼＡ（ｐｐｉａ）を参照（ハウスキーピング）遺伝子として選択した。増幅サイクルは、９５℃５秒、６０℃２０秒および７２℃１５秒であった。アッセイの終わりに、融解曲線を構築することにより、その反応の特異性を評価した。ｉｆｎ−γおよびｐｐｉａ遺伝子の解析のために、ｃＤＮＡを、製造者のプロトコル（ＰｒｅＡｍｐ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ Ｋｉｔ；Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）に従って、非ランダムＰＣＲプライマーを用いて１４ＰＣＲサイクルで事前に増幅することによって、その後のリアルタイムＰＣＲ解析の感度を高めた。ｍＲＮＡ発現を、製造者の指示書（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）に従って、ＴａｑＭａｎ ＲＴ−ｑＰＣＲを用いて測定した。すべてのＲＴ−ｑＰＣＲ反応を、ＳｔｅｐＯｎｅソフトウェアＶ２．２．２（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を用いて行い、解析した。以下のＴａｑＭａｎ Ａｓｓａｙｓ−ｏｎ−Ｄｅｍａｎｄ^ＴＭプローブを使用した：Ｍｍ０２３４２４３０＿ｇ１（ｐｐｉａ）およびＭｍ０１１６８１３４＿ｍ１（ｉｆｎ−γ）。

他のすべての遺伝子について調べるため、以下のプライマーを使用した：

ｐｐｉａ
ｆｏｒｗａｒｄ ５’−ＡＧＣＡＴＡＣＡＧＧＴＣＣＴＧＧＣＡＴＣＴＴＧＴ−３’（配列番号３３）および
ｒｅｖｅｒｓｅ ５’−ＣＡＡＡＧＡＣＣＡＣＡＴＧＣＴＴＧＣＣＡＴＣＣＡ−３’（配列番号３４）；

ｉｃａｍ１
ｆｏｒｗａｒｄ ５’−ＡＧＡＴＣＡＣＡＴＴＣＡＣＧＧＴＧＣＴＧＧＣＴＡ−３’（配列番号３５）および
ｒｅｖｅｒｓｅ ５’−ＡＧＣＴＴＴＧＧＧＡＴＧＧＴＡＧＣＴＧＧＡＡＧＡ−３’（配列番号３６）；

ｖｃａｍ１
ｆｏｒｗａｒｄ ５’−ＴＧＴＧＡＡＧＧＧＡＴＴＡＡＣＧＡＧＧＣＴＧＧＡ−３’（配列番号３７）および
ｒｅｖｅｒｓｅ ５’−ＣＣＡＴＧＴＴＴＣＧＧＧＣＡＣＡＴＴＴＣＣＡＣＡ−３’（配列番号３８）；

ｃｘｃｌ１０
ｆｏｒｗａｒｄ ５’−ＡＡＣＴＧＣＡＴＣＣＡＴＡＴＣＧＡＴＧＡＣ−３’（配列番号３９）および
ｒｅｖｅｒｓｅ ５’−ＧＴＧＧＣＡＡＴＧＡＴＣＴＣＡＡＣＡＣ−３’（配列番号４０）；

ｃｃｌ２
ｆｏｒｗａｒｄ ５’−ＣＡＴＣＣＡＣＧＴＧＴＴＧＧＣＴＣＡ−３’（配列番号４１）および
ｒｅｖｅｒｓｅ ５’−ＧＡＴＣＡＴＣＴＴＧＣＴＧＧＴＧＡＡＴＧＡＧＴ−３’（配列番号４２）；

ｔｎｆ−γ
ｆｏｒｗａｒｄ ５’−ＧＣＣＴＣＴＴＣＴＣＡＴＴＣＣＴＧＣＴＴ−３’（配列番号４３）
ｒｅｖｅｒｓｅ ＣＴＣＣＴＣＣＡＣＴＴＧＧＴＧＧＴＴＴＧ−３’（配列番号４４）；

ｉｌ−１β
ｆｏｒｗａｒｄ ５’−ＣＣＡＡＡＡＧＡＴＧＡＡＧＧＧＣＴＧＣＴＴ−３’（配列番号４５）および
ｒｅｖｅｒｓｅ ５’−ＴＧＣＴＧＣＴＧＣＧＡＧＡＴＴＴＧＡＡＧ−３’（配列番号４６）；

ｉｌ−１２ｐ４０
ｆｏｒｗａｒｄ ５’−ＧＡＡＧＴＴＣＡＡＣＡＴＣＡＡＧＡＧＣＡ−３’（配列番号４７）および
ｒｅｖｅｒｓｅ ５’−ＣＡＴＡＧＴＣＣＣＴＴＴＧＧＴＣＣＡＧ−３’（配列番号４８）；

ｉｌ−１０
ｆｏｒｗａｒｄ ５’−ＴＧＡＡＴＴＣＣＣＴＧＧＧＴＧＡＧＡＡＧＣＴＧＡ−３’（配列番号４９）および
ｒｅｖｅｒｓｅ ５’−ＴＧＧＣＣＴＴＧＴＡＧＡＣＡＣＣＴＴＧＧＴＣＴＴ−３’（配列番号５０）；

ｔｇｆβ２
ｆｏｒｗａｒｄ ５’−ＡＡＴＴＧＣＴＧＣＣＴＴＣＧＣＣＣＴＣＴＴＴＡＣ−３’（配列番号５１）および
ｒｅｖｅｒｓｅ ５’−ＴＧＴＡＣＡＧＧＣＴＧＡＧＧＡＣＴＴＴＧＧＴＧＴ−３’（配列番号５２）；

ｉｇｆ−１
ｆｏｒｗａｒｄ ５’−ＣＣＧＧＡＣＣＡＧＡＧＡＣＣＣＴＴＴＧ（配列番号５３）および
ｒｅｖｅｒｓｅ ５’−ＣＣＴＧＴＧＧＧＣＴＴＧＴＴＧＡＡＧＴＡＡＡＡ−３’（配列番号５４）；

ｂｄｎｆ
ｆｏｒｗａｒｄ ５’−ＧＡＴＧＣＴＣＡＧＣＡＧＴＣＡＡＧＴＧＣＣＴＴＴ−３’（配列番号５５）および
ｒｅｖｅｒｓｅ ５’−ＧＡＣＡＴＧＴＴＴＧＣＧＧＣＡＴＣＣＡＧＧＴＡＡ−３’（配列番号５６）；

（免疫組織化学）
パラフィン包埋切片にしたマウス（６μｍ厚）およびヒト（１０μｍ厚）脳において、組織の処理および免疫組織化学を行った。ヒトＩＣＡＭ−１染色の場合、１次マウス抗ＩＣＡＭ（１：２０ Ａｂｃａｍ；ａｂ２２１３）抗体を使用した。スライドを、３％Ｈ２Ｏ２とともに１０分間インキュベートし、２次ビオチンコンジュゲート抗マウス抗体を使用した後、Ｖｅｃｔａｓｔａｉｎ ＡＢＣキット（Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）を用いてビオチン／アビジン増幅を行った。続いて、３，３’−ジアミノベンジジン（ＤＡＢ基質）（Ｚｙｔｏｍｅｄキット）を適用し；スライドを脱水し、キシレンベースのマウント液を用いてマウントした。組織染色の場合、マウスをＰＢＳで経心的に灌流した後、組織切除および固定を行った。解剖顕微鏡（Ｓｔｅｍｉ ＤＶ４；Ｚｅｉｓｓ）下で、脳の側脳室、第３脳室および第４脳室からＣＰ組織を単離した。ホールマウントＣＰ染色の場合、組織を２．５％パラホルムアルデヒド（ＰＦＡ）で４℃にて１時間固定し、続いて、０．０５％アジ化ナトリウムを含むＰＢＳに移した。染色の前に、解剖した組織をＰＢＳで洗浄し、室温で１時間ブロッキングした（２０％ウマ血清、０．３％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００およびＰＢＳ）。１次抗体（２％ウマ血清および０．３％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を含むＰＢＳ中）または二次抗体によるホールマウント染色を室温で１時間行った。各工程の後、ＰＢＳで３回洗浄した。組織をスライドに載せ、Ｉｍｍｕ−ｍｏｕｎｔ（９９９０４０２、Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ製）を用いてマウントし、カバーガラスで覆った。切片にした脳の染色の場合、先に記載されたような（Ｂａｒｕｃｈ ｅｔ ａｌ，２０１３；Ｋｕｎｉｓ ｅｔ ａｌ，２０１３）２つの異なる組織調製プロトコル（パラフィン包埋切片またはミクロトームで切片にした浮遊切片）を適用した。以下の１次抗体を使用した：マウス抗Ａβ（１：３００，Ｃｏｖａｎｃｅ，＃ＳＩＧ−３９３２０）；ウサギ抗ＧＦＰ（１：１００，ＭＢＬ，＃５９８）；ラット抗ＣＤ６８（１：３００，ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ，＃１４−０６８１）；ラット抗ＩＣＡＭ−１（１：２００，Ａｂｃａｍ，＃ＡＢ２２１３）；ヤギ抗ＧＦＰ（１：１００，Ａｂｃａｍ，＃ａｂ６６５８）；ウサギ抗ＩＢＡ−１（１：３００，Ｗａｋｏ，＃０１９−１９７４１）；ヤギ抗ＩＬ−１０（１：２０，Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ，＃ＡＦ５１９）；ラット抗Ｆｏｘｐ３（１：２０，ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ，＃１３−５７７３−８０）；ウサギ抗ＣＤ３（１：５００，Ｄａｋｏ，＃ＩＳ５０３）；；マウス抗ＺＯ−１、マウス抗Ｅ−カヘドリン（Ｃａｈｅｄｒｉｎ）およびウサギ抗クローディン−１（すべて１：１００，Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，＃３３−９１００，＃３３−４０００，＃５１−９０００）；ウサギ抗ＧＦＡＰ（１：２００，Ｄａｋｏ，＃Ｚ０３３４）。二次抗体には、Ｃｙ２／Ｃｙ３／Ｃｙ５コンジュゲートロバ抗マウス／ヤギ／ウサギ／ラット抗体（１：２００；すべてＪａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ製）が含まれた。スライドをＨｏｅｃｈｓｔ核染色（１：４０００；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｐｒｏｂｅｓ）に１分間曝露した。免疫染色手順では、２つのネガティブコントロールを日常的に使用し、アイソタイプコントロール抗体で染色した後、二次抗体で染色するか、または二次抗体のみで染色した。Ｆｏｘｐ３細胞内染色の場合、パラフィン包埋スライドからの抗原回復を、Ｒｅｔｒｅｉｖａｇｅｎ Ｋｉｔ（＃５５０５２４，＃５５０５２７；ＢＤ Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ^ＴＭ）を用いて行った。顕微鏡解析は、蛍光顕微鏡（Ｅ８００；Ｎｉｋｏｎ）またはレーザー走査型共焦点顕微鏡（Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ，Ｉｎｃ．）を用いて行った。蛍光顕微鏡には、デジタルカメラ（ＤＸＭ １２００Ｆ；Ｎｉｋｏｎ）、および２０×ＮＡ０．５０または４０×ＮＡ０．７５対物レンズ（Ｐｌａｎ Ｆｌｕｏｒ；Ｎｉｋｏｎ）が備え付けられていた。共焦点顕微鏡には、ＬＳＭ５１０レーザー走査能（３つのレーザー：Ａｒ４８８、ＨｅＮｅ５４３およびＨｅＮｅ６３３）が備わっていた。後固定した組織に対して、取得ソフトウェア（ＮＩＳ−Ｅｌｅｍｅｎｔｓ，Ｆ３［Ｎｉｋｏｎ］またはＬＳＭ［Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ，Ｉｎｃ．］）を用いて、記録を行った。染色強度の定量の場合、細胞およびバックグラウンドの全染色を、ＩｍａｇｅＪソフトウェア（ＮＩＨ）を用いて測定し、特定の染色の強度を、先に記載されたように（Ｂｕｒｇｅｓｓ ｅｔ ａｌ，２０１０）計算した。Ｐｈｏｔｏｓｈｏｐ ＣＳ６ １３．０（Ａｄｏｂｅ）を用いて像を切り取り、マージし、最適化し、Ｉｌｌｕｓｔｒａｔｏｒ ＣＳ５ １５．１（Ａｄｏｂｅ）を用いて並べた。

（ヒトＣＰのパラフィン包埋切片）
若年および高齢の死後の非ＣＮＳ疾患個体ならびにＡＤ患者のヒト脳切片を、適切な同意および倫理委員会の承認（ＴＷ２２０）を得て、Ｏｘｆｏｒｄ Ｂｒａｉｎ Ｂａｎｋ（かつてはＴｈｏｍａｓ Ｗｉｌｌｉｓ Ｏｘｆｏｒｄ Ｂｒａｉｎ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＴＷＯＢＣ）として知られた）から入手した。これらの切片が関わる実験は、Ｗｅｉｚｍａｎｎ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｂｉｏｅｔｈｉｃｓ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅによって承認された。

（フローサイトメトリー、サンプル調製および解析）
マウスをＰＢＳで経心的に灌流し、組織を先に記載されたように（Ｂａｒｕｃｈ ｅｔ ａｌ，２０１３）処理した。脳を解剖し、解剖顕微鏡（Ｓｔｅｍｉ ＤＶ４；Ｚｅｉｓｓ）下にてＰＢＳ中で種々の脳領域を取り出し、ｇｅｎｔｌｅＭＡＣＳ^ＴＭ分離機（ｄｉｓｓｏｃｉａｔｏｒ）（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ）を用いて組織を分離させた。脈絡叢組織を、脳の側脳室、第３脳室および第４脳室から単離し、４００Ｕ／ｍｌコラゲナーゼＩＶ型（Ｗｏｒｔｈｉｎｇｔｏｎ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を含むＰＢＳ（Ｃａ^２＋／Ｍｇ^２＋を含む）中、３７℃で４５分間インキュベートし、次いで、手作業でピペッティングすることによってホモゲナイズした。脾臓をシリンジのプランジャーですりつぶし、ＡＣＫ（塩化アンモニウムカリウム）溶解緩衝液で処理して、赤血球を除去した。すべての場合において、製造者のプロトコルに従ってサンプルを染色した。すべてのサンプルを７０μｍナイロンメッシュで濾過し、抗Ｆｃ ＣＤ１６／３２（１：１００；ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）でブロッキングした。ＩＦＮ−γの細胞内染色の場合、細胞をパラ−メトキシアンフェタミン（１０ｎｇ／ｍｌ；Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）およびイオノマイシン（２５０ｎｇ／ｍｌ；Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）とともに６時間インキュベートし、最後の４時間にわたって、ブレフェルジン−Ａ（１０μｇ／ｍｌ；Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）を加えた。サイトカインの細胞内標識を、ＢＤ Ｃｙｔｏｆｉｘ／Ｃｙｔｏｐｅｒｍ^ＴＭＰｌｕｓ固定／透過処理キット（ｃａｔ．ｎｏ．５５５０２８）を用いて行った。Ｔｒｅｇ染色の場合、ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ ＦｏｘＰ３染色緩衝液セット（ｃａｔ．ｎｏ．００−５５２３−００）を使用した。以下の蛍光色素で標識されたモノクローナル抗体を、ＢＤ Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ、Ｒ＆Ｄ ＳｙｓｔｅｍｓまたはｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓから購入し、製造者のプロトコルに従って使用した：ＰＥまたはＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ４５０コンジュゲート抗ＣＤ４；ＰＥコンジュゲート抗ＣＤ２５；ＰｅｒＣＰ−Ｃｙ５．５コンジュゲート抗ＣＤ４５；ＦＩＴＣコンジュゲート抗ＴＣＲβ；ＡＰＣコンジュゲート抗ＩＦＮ−γ；ＡＰＣコンジュゲート抗ＦｏｘＰ３；Ｂｒｉｌｌｉａｎｔ−ｖｉｏｌｅｔコンジュゲート抗ＣＤ４５。細胞を、ＦｌｏｗＪｏソフトウェアを用いてＬＳＲＩＩ血球計算器（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）において解析した。各実験において、各組織に対する妥当なネガティブコントロール群、ポジティブコントロールおよび単一染色サンプルを用いて、目的の集団を特定し、他の集団を排除した。

（ＢＭキメラの調製）
ＢＭキメラを、先に記載されたように（Ｓｈｅｃｈｔｅｒ ｅｔ ａｌ，２００９；Ｓｈｅｃｈｔｅｒ ｅｔ ａｌ，２０１３）調製した。手短に言えば、同性のレシピエントマウスを、頭部を遮蔽しながら致死性の全身照射（９５０ｒａｄ）にさらした（Ｓｈｅｃｈｔｅｒ ｅｔ ａｌ，２００９）。次いで、それらのマウスの静脈内に、ＣＸ_３ＣＲ１^{ＧＦＰ／＋}ドナー由来の５×１０^６個のＢＭ細胞を注射した。ＢＭ移植後、マウスを８〜１０週間放置することにより、造血系の再構成を可能にした後、実験で使用した。血液サンプルのＦＡＣＳ解析によって、キメラ化のパーセンテージを、循環単球（ＣＤ１１ｂ^＋）のうちのＧＦＰ発現細胞のパーセンテージに従って測定した。この頭部遮蔽モデルでは、６０％のキメラ化の平均値が達成され、ＣＮＳに浸潤するＧＦＰ^＋骨髄性細胞が、単球由来のマクロファージであってミクログリアではないＣＤ４５^ｈｉｇｈ／ＣＤ１１ｂ^ｈｉｇｈ（Ｓｈｅｃｈｔｅｒ ｅｔ ａｌ，２０１３）であると立証された。

（モーリス水迷路）
プール（直径１．１ｍ）内の水面の１．５ｃｍ下に配置された隠れたプラットフォームを探す方法を習得させるために、マウスに、４日連続して、１日あたり３回の試行を行わせた。水の温度は、２１〜２２℃で維持した。水を粉乳で不透明にした。試験室内において、水没したプラットフォームの位置の特定を助けるためにマウスにとって利用可能な手がかりは遠位の視覚的形状および物体だけであった。逃避潜時、すなわち、プラットフォームを探してその上に上がるのに要した時間を最大６０秒間、記録した。各マウスをプラットフォーム上に１５秒間とどまらせ、次いで、迷路から取り出してホームケージに戻した。マウスが、６０秒以内にプラットフォームを探せなかった場合、そのマウスを手作業でプラットフォーム上に置き、１５秒後にホームケージに戻した。各マウスに対する試行の間のインターバルは、１０分間であった。５日目に、プラットフォームを除去し、マウスに、利用可能な逃避場所なしで６０秒間続く１回の試行を行わせた。６および７日目に、プラットフォームを、元の訓練の四半分と反対の四半分に置き、１日あたり３セッションでマウスを再訓練した。Ｅｔｈｏ Ｖｉｓｉｏｎ Ｖ７．１自動追跡システム（Ｎｏｌｄｕｓ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）を用いて、データを記録した。統計解析を、分散分析（ＡＮＯＶＡ）およびボンフェローニのｐｏｓｔ−ｈｏｃテストを用いて行った。すべてのＭＷＭ試験を、消灯期の間の午前１０時〜午後５時に行った。

（放射状アーム水迷路）
先に詳細に記載された（Ａｌａｍｅｄ ｅｔ ａｌ，２００６）放射状アーム水迷路（ＲＡＷＭ）を用いることにより、空間学習および空間記憶を試験した。簡潔には、６本のステンレス鋼挿入物をタンク内に置き、中央の開けた領域から放射状に伸びる６本の水泳アームを形成させた。逃避プラットフォームを、１本のアーム（ゴールアーム）の末端の、直径１．１ｍのプール内の水面の１．５ｃｍ下に配置した。水の温度を２１〜２２℃で維持した。水を粉乳で不透明にした。試験室内において、水没したプラットフォームの位置の特定を助けるためにマウスにとって利用可能な手がかりは遠位の視覚的形状および物体だけであった。ゴールアームの位置は、所与のマウスにおいて一定のままであった。１日目に、マウスを１５回の試行（３時間超、間隔をあける）で訓練し、試行は、見えるプラットフォームと隠れたプラットフォームとを交互に用い、最後の４回の試行は、隠れたプラットフォームだけを用いた。２日目に、隠れたプラットフォームを用いる１５回の試行でマウスを訓練した。間違ったアームに進入したとき、または１５秒以内にアームの選択をしなかったときは、エラーとしてスコア付けした。各試行におけるマウスのアーム進入エラーの回数または逃避潜時をカウントすることによって、空間学習および空間記憶を測定した。３回連続した試行の訓練ブロックについて、訓練データをエラーまたは逃避潜時の平均値として解析した。

（ＧＡの投与）
各マウスの皮下に（ｓ．ｃ．）、２００μｌのＰＢＳに溶解された１００μｇの総用量のＧＡ（バッチｎｏ．Ｐ５３６４０；Ｔｅｖａ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ，Ｐｅｔａｈ Ｔｉｑｖａ，Ｉｓｒａｅｌ）を注射した。毎週のＧＡレジメン（Ｂｕｔｏｖｓｋｙ ｅｔ ａｌ，２００６）または毎日のＧＡ投与（図８および図１６）に従って、マウスに注射した。各実験に対して示されているように、最後のＧＡ注射の１週間後または処置の１ヶ月後に、マウスを安楽死させた。

（Ｔｒｅｇの条件的除去）
ジフテリア毒素（ＤＴｘ；８ｎｇ／ｇ体重；Ｓｉｇｍａ）を、４日連続して、Ｆｏｘｐ３．ＬｕｃｉＤＴＲマウスの腹腔内に（ｉ．ｐ．）毎日注射した（Ｓｕｆｆｎｅｒ ｅｔ ａｌ，２０１０）。ＤＴｘの効率を血液および脾臓における免疫細胞のフローサイトメトリー解析によって確認したところ、ＧＦＰを発現しているＦｏｘＰ３^＋ＣＤ４^＋Ｔｒｅｇ細胞のほぼ完全な（＞９９％）枯渇が達成された（図４）。

（Ｐ３００の阻害）
マウスにおけるｐ３００の阻害を、先の記載（Ｌｉｕ ｅｔ ａｌ，２０１３）と同様に行った。ｐ３００ｉ（Ｃ６４６；Ｔｏｃｒｉｓ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）をＤＭＳＯに溶解し、１週間にわたって毎日ｉ．ｐ．注射した（８．９ｍｇｋｇ^−１ｄ^−１、ｉ．ｐ．）。ビヒクルで処置されるマウスにはＤＭＳＯを同様に注射した。

（ＡＴＲＡ処置）
マウスへのオールトランスレチノイン酸（ＡＴＲＡ）投与を、先の記載（Ｗａｌｓｈ ｅｔ ａｌ，２０１４）と同様に行った。ＡＴＲＡ（Ｓｉｇｍａ）をＤＭＳＯに溶解し、１週間にわたって１日おきにｉ．ｐ．注射した（８ｍｇｋｇ^−１ｄ^−１）。ビヒクルで処置されるマウスにはＤＭＳＯを同様に注射した。

（可溶性Ａβ（ｓＡβ）タンパク質の単離および定量）
組織の均質化およびｓＡβタンパク質の抽出を、先に記載されたように（Ｓｃｈｍｉｄｔ ｅｔ ａｌ，２００５）行った。簡潔には、大脳実質を解剖し、急凍し、ホモゲナイズするまで−８０℃で維持した。タンパク質をサンプルから連続的に抽出することにより、異なる溶解度のタンパク質を含む別個の画分を得た。サンプルを、２５０ｍＭのスクロース、２０ｍＭのＴｒｉｓ塩基、１ｍＭのエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）および１ｍＭのエチレングリコール四酢酸（ｐＨ７．４）を含む１０体積の氷冷組織均質化緩衝液中で、Ｄｏｕｎｃｅホモジナイザーにおいてすりガラス乳棒を用いてホモゲナイズした。６ストロークの後、ホモジネートを１００ｍＭ ＮａＣｌ溶液中の０．４％ジエチルアミン（ＤＥＡ）と１：１混合した後、さらに６ストローク行い、次いで、４℃にて１３５，０００ｇで４５分間遠心した。上清（細胞外およびサイトゾルのタンパク質を含むＤＥＡ可溶性画分）を回収し、１０％の０．５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ６．８）で中和した。Ａβ_１−４０およびＡβ_１−４２を、商業的に入手可能なキット（それぞれＢｉｏｌｅｇｅｎｄ；＃ＳＩＧ−３８９５４および＃ＳＩＧ−３８９５６）を製造者の指示書に従って使用して、可溶性画分から酵素結合免疫吸着測定法（ＥＬＩＳＡ）によって個別に測定した。

（Ａβプラークの定量）
各脳から、目的の領域（歯状回または大脳皮質）全体にわたる４つの異なる所定の深さから、６μｍの冠状切片を回収し、マウス１匹あたり８枚の切片を免疫染色した。陽染されたピクセルのヒストグラムベースの区分けを、Ｉｍａｇｅ−Ｐｒｏ Ｐｌｕｓソフトウェア（Ｍｅｄｉａ Ｃｙｂｅｒｎｅｔｉｃｓ，Ｂｅｔｈｅｓｄａ，ＭＤ，ＵＳＡ）を用いて行った。歯状回の領域または皮質Ｖ層において、区分けのアルゴリズムを各像に手作業で適用し、全Ａβ免疫染色によって占有された領域のパーセンテージを測定した。プラークの数を同じ６μｍ脳冠状切片から定量し、脳領域１つあたりのプラークの平均数として提示する。定量の前に、切片をコード化して実験群の同一性を隠し、群の同一性について盲検の観察者がプラーク量を定量した。

（統計解析）
各実験セットを解析するために用いられた具体的な試験を図の説明文に示す。２群間を比較するために両側スチューデントｔ検定を用いてデータを解析し、いくつかの群を比較するために１元配置分散分析を使用し、続いて帰無仮説が棄却された後（Ｐ＜０．０５）、群の対ごとの比較のためにＮｅｗｍａｎ−Ｋｅｕｌｓのｐｏｓｔ−ｈｏｃテストを用いた。行動試験のデータは、２元配置反復測定分散分析を用いて解析し、追跡の対ごとの比較のために、ボンフェローニのｐｏｓｔ−ｈｏｃテストを用いた。サンプルサイズは、文献および過去の経験に基づいて適切な統計的検出力によって選択し、マウスを齢、性別および遺伝子型に従って実験群に割り当てた。研究者は、実験中および結果の評価中、群の同一性について盲検であった。すべての選択規準および除外規準は、ＩＡＣＵＣガイドラインに従って予め決められていた。結果は、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．として示される。グラフにおいて、ｙ軸のエラーバーは、ｓ．ｅ．ｍ．を表す。統計的計算は、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍソフトウェア（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）を用いて行った。
実施例１．ＡＤのマウスモデルにおける疾患進行に沿った脈絡叢（ＣＰ）ゲートウェイ活性（ｇａｔｅｗａｙ ａｃｔｉｖｉｔｙ）

本発明者らは、最初に、ＡＤの５ＸＦＡＤトランスジェニックマウスモデル（ＡＤ−Ｔｇ）において疾患進行に沿ったＣＰ活性を調べた；これらのマウスは、家族性ＡＤに関連する５つの変異を共発現し、２月齢という早さで大脳のＡβ病態およびグリオーシスを発症する（Ｏａｋｌｅｙ ｅｔ ａｌ，２００６）。本発明者らは、疾患の病態の進行段階に沿って、ＡＤ−ＴｇマウスのＣＰが、同齢の野生型（ＷＴ）コントロールと比べて、有意に低いレベルの白血球ホーミングならびにｉｃａｍ１、ｖｃａｍ１、ｃｘｃｌ１０およびｃｃｌ２を含む輸送決定因子（ｔｒａｆｆｉｃｋｉｎｇ ｄｅｔｅｒｍｉｎａｎｔｓ）を示すこと（図１Ａ）を見出した（これらの輸送決定因子は、急性ＣＮＳ損傷に応答してＣＰによってアップレギュレートされると示され、白血球の経上皮遊走に必要である（Ｋｕｎｉｓ ｅｔ ａｌ，２０１３；Ｓｈｅｃｈｔｅｒ ｅｔ ａｌ，２０１３））。インテグリンリガンドであるＩＣＡＭ−１の免疫組織化学的染色によって、ＡＤ−ＴｇマウスのＣＰ上皮によるその発現の低下が確認された（図１ｂ）。さらに、ヒト死後脳におけるＩＣＡＭ−１の染色は、ＣＰ上皮においてその加齢関連の減少を示し、これは、本発明者らの以前の知見（Ｂａｒｕｃｈ ｅｔ ａｌ，２０１４）と一致し、この作用の定量的評価によって、ＣＮＳ疾患を有しない高齢個体と比べてＡＤ患者においてさらに減少することが明らかになった（図２Ａ）。ＣＰによる白血球の輸送決定因子の誘導は、上皮のインターフェロン（ＩＦＮ）γシグナル伝達に依存するので（Ｋｕｎｉｓ ｅｔ ａｌ，２０１３）、本発明者らは、次に、観察された作用が、ＣＰにおけるＩＦＮ−γの利用可能性の喪失を反映し得るかを試験した。細胞内染色のフローサイトメトリーを用いて５ＸＦＡＤ ＡＤ−ＴｇマウスのＣＰを調べることにより、このコンパートメントにおける有意に少ない数のＩＦＮγ産生細胞が明らかになり（図２Ｂ）、定量的リアルタイムＰＣＲ（ＲＴ−ｑＰＣＲ）解析から、ＡＤ−ＴｇマウスのＣＰにおいて、同齢のＷＴコントロールと比べてより低いｉｆｎ−γのｍＲＮＡ発現レベルが確かめられた（図２Ｃ）。
実施例２．Ｔｒｅｇ媒介性全身免疫抑制とＣＰゲートウェイ活性とＡＤの病態との間の機能的関係性

制御性Ｔ細胞（Ｔｒｅｇ）は、全身のエフェクター免疫応答の抑制において中心的役割を果たす（Ｓａｋａｇｕｃｈｉ ｅｔ ａｌ，２００８）。本発明者らは、Ｔｒｅｇ媒介性の全身免疫抑制が、ＣＰにおけるＩＦＮ−γの利用可能性に影響すると想定したので、ＡＤの病態へのＴｒｅｇの関与に注目した。ＡＤ患者ではＴｒｅｇレベルおよび抑制活性が高いという以前の報告と一致して（Ｒｏｓｅｎｋｒａｎｚ ｅｔ ａｌ，２００７；Ｓａｒｅｓｅｌｌａ ｅｔ ａｌ，２０１０；Ｔｏｒｒｅｓ ｅｔ ａｌ，２０１３）、５ＸＦＡＤ ＡＤ−Ｔｇマウスの脾細胞におけるＦｏｘｐ３^＋Ｔｒｅｇの出現率を同齢のＷＴ同腹仔と比べて評価することにより、疾患進行に沿ってそれらの高いレベルが明らかになった（図３Ａ、Ｂ）。Ｔｒｅｇ媒介性の全身免疫抑制とＣＰゲートウェイ活性とＡＤの病態との間の機能的関係性を研究するために、本発明者らは、５ＸＦＡＤ ＡＤ−ＴｇマウスをＦｏｘｐ３−ジフテリア毒素レセプター（ＤＴＲ^＋）マウスと交雑して、ＡＤ−Ｔｇ／ＤＴＲ^＋マウスにおいてジフテリア毒素（ＤＴｘ）の投与によってＦｏｘｐ３^＋Ｔｒｅｇの一過性の条件的インビボ枯渇を可能にした（図４）。Ｔｒｅｇの一過性の枯渇は、ＤＴｘで処置されたＡＤ−Ｔｇ／ＤＴＲ⁻同腹仔と比べて、ＡＤ−Ｔｇ／ＤＴＲ^＋マウスのＣＰによる白血球輸送分子のｍＲＮＡ発現を増加させた（図５Ａ）。脳実質に対する一過性のＴｒｅｇ枯渇の長期効果の解析（３週間後）から、浸潤性ｍｏ−ＭΦに相当する（Ｓｈｅｃｈｔｅｒ ｅｔ ａｌ，２０１３）ＣＤ４５^ｈｉｇｈ／ＣＤ１１ｂ^ｈｉｇｈ骨髄性細胞およびＣＤ４^＋Ｔ細胞の数の増加を含む免疫細胞の脳内蓄積が明らかになった（図５Ｂ）。さらに、Ｔｒｅｇの短期および一過性の枯渇は、フローサイトメトリーによって評価されたとき、脳内に蓄積したＣＤ４^＋Ｔ細胞の中でもＦｏｘｐ３^＋Ｔｒｅｇの顕著な富化をもたらした（図５Ｃ、Ｄ）。海馬のＲＴ−ｑＰＣＲ解析は、ｆｏｘｐ３およびｉｌ１０ ｍＲＮＡの高発現を示した（図５Ｅ）。

本発明者らは、次に、脳の病態の部位に免疫調節性細胞が蓄積する前のＴｒｅｇの短期枯渇が、脳機能に対する長期効果をもたらすかを調べた。本発明者らは、海馬グリオーシスの低減（図５Ｆ）、および炎症促進性サイトカイン（例えば、ｉｌ−１２ｐ４０およびｔｎｆ−α）の低いｍＲＮＡ発現レベル（図５Ｇ）を観察した。さらに、５ＸＦＡＤ ＡＤ−Ｔｇマウスにおいて頑強なＡβプラーク病態を示す２つの脳領域である海馬歯状回および大脳皮質（５層）（Ｏａｋｌｅｙ ｅｔ ａｌ，２００６）における大脳のＡβプラーク量は減少した（図６Ａ、Ｂ）。モーリス水迷路（ＭＷＭ）試験を用いて認知機能に対する効果を評価することにより、ＤＴｘで処置されたＡＤ−Ｔｇ／ＤＴＲ⁻同齢マウスと比べて、Ｔｒｅｇ枯渇後のＡＤ−Ｔｇ／ＤＴＲ^＋マウスにおいて空間学習および空間記憶の有意な改善が明らかになり、ＷＴマウスと同様の成績に達した（図６Ｃ〜Ｅ）。まとめると、これらのデータは、ＡＤ−ＴｇマウスにおいてＴｒｅｇ媒介性の全身免疫抑制を一過性に中断することにより、炎症を消散させる細胞（ｍｏ−ＭΦおよびＴｒｅｇを含む）の脳内蓄積がもたらされ、その中断の後、神経炎症反応の消散、Ａβのクリアランスおよび認知機能低下の回復が続くことを実証した。
実施例３．コポリマ−１の毎週投与は、Ｔｒｅｇ媒介性の全身免疫抑制を減少させ、ＣＰゲートウェイ活性を改善し、ＡＤの病態を緩和する。

全身免疫抑制とＣＰ機能とＡＤの病態との間の逆相関の原因となる性質をさらに裏付けるために、本発明者らは次に、免疫調節性化合物であるグラチラマー酢酸塩（ＧＡ；コポリマ−１またはＣｏｐａｘｏｎｅ（登録商標）としても知られる）を利用した。酢酸グラチラマーは、毎週投与レジメンでＡＤのＡＰＰ／ＰＳ１マウスモデルにおいて治療効果を有すると見出された（Ｂｕｔｏｖｓｋｙ ｅｔ ａｌ，２００６）；この効果は、疾患病態の大脳部位へのｍｏ−ＭΦの動員と機能的に関連した（Ｂｕｔｏｖｓｋｙ ｅｔ ａｌ，２００７）。ここでは、まず本発明者らは、５ＸＦＡＤ ＡＤ−Ｔｇマウスにおける本発明者らの知見と同様に、ＡＰＰ／ＰＳ１ ＡＤ−ＴｇマウスにおけるＣＰもＩＦＮ−γ発現レベルに関して不足しているかを調べた。本発明者らは、ＡＰＰ／ＰＳ１ ＡＤ−Ｔｇマウスにおいて、ＣＰにおけるＩＦＮ−γレベルが、同齢のＷＴコントロールと比べて低下していることを見出した（図７）。これらの結果は、ＡＰＰ／ＰＳ１マウスにおける毎週ＧＡの治療効果（Ｂｕｔｏｖｓｋｙ ｅｔ ａｌ，２００６）が、５ＸＦＡＤ ＡＤ−Ｔｇマウスにおいて再現され得るかを試験するように促し、ならびにもしそうであれば、それが全身のＴｒｅｇおよびｍｏ−ＭΦ輸送に対するＣＰの活性化に影響し得るかを試験するように促した。ゆえに、本発明者らは、４週間にわたって、５ＸＦＡＤ ＡＤ−ＴｇマウスをＧＡの毎週投与レジメンで処置した（以後、「毎週ＧＡ」；図８Ａに模式的に示される）。本発明者らは、毎週ＧＡで処置された５ＸＦＡＤ ＡＤ−Ｔｇマウスが、神経炎症の低減（図８Ｂ〜Ｄ）および認知能力の改善を示し、それは処置後最大２ヶ月続く（図８Ｅ〜Ｉ）ことを見出した。全身免疫およびＣＰに対する毎週ＧＡの効果をフローサイトメトリーによって調べたとき、本発明者らは、脾細胞のＦｏｘｐ３^＋Ｔｒｅｇレベルの低下（図９Ａ）、および処置された５ＸＦＡＤ ＡＤ−ＴｇマウスのＣＰにおいて、ＷＴコントロールで観察されたレベルと同様のレベルに達するＩＦＮ−γ産生細胞の増加（図９Ｂ）を見出した。毎週ＧＡで処置されたマウスのＣＰにおける高レベルのＩＦＮ−γ発現細胞は、白血球輸送分子の上皮発現のアップレギュレートを伴った（図９Ｃ）。

ＣＮＳへの浸潤性ｍｏ−ＭΦの進入を検出するために、本発明者らは、循環中の（緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）^＋で標識された）骨髄性細胞の可視化を可能にする５ＸＦＡＤ ＡＤ−Ｔｇ／ＣＸ_３ＣＲ１^{ＧＦＰ／＋}骨髄（ＢＭ）キメラマウス（頭部保護を用いて作製された）を使用した（Ｓｈｅｃｈｔｅｒ ｅｔ ａｌ，２００９；Ｓｈｅｃｈｔｅｒ ｅｔ ａｌ，２０１３）。本発明者らは、毎週ＧＡ処置の後に、ビヒクルで処置されたＡＤ−Ｔｇ／ＣＸ_３ＣＲ１^{ＧＦＰ／＋}コントロールと比べて、ＣＰおよび隣接する脳室腔へのＧＦＰ^＋ｍｏ−ＭΦのホーミングが増加することを見出した（図９Ｄ〜Ｅ）。脳実質の免疫組織化学から、大脳のプラーク形成部位におけるＧＦＰ^＋ｍｏ−ＭΦ蓄積の存在が明らかになり（図９Ｆ）、ＡＤ−Ｔｇ非キメラマウスにおける海馬のフローサイトメトリー解析による浸潤性の骨髄性細胞の定量から、ＣＤ１１ｂ^ｈｉｇｈＣＤ４５^ｈｉｇｈ発現細胞の数の増加が示された（図９Ｇ、Ｈ）。まとめると、これらの結果は、ＡＤの病態の部位へのｍｏ−ＭΦの動員と全身のＴｒｅｇレベルの低下とＣＰのＩＦＮ−γ依存的活性化との間の機能的関連を裏付けた。
実施例４．小分子ヒストンアセチルトランスフェラーゼ阻害剤を用いたＴｒｅｇ活性の干渉

Ｔｒｅｇ媒介性の全身免疫抑制が、ＡＤの病態と闘う能力を干渉することを示唆した上記の知見は、癌免疫療法（免疫系が効果的な抗腫瘍応答を開始する能力をＴｒｅｇが妨害する）におけるこれらの細胞に起因する機能を連想させる（Ｂｏｓ ＆ Ｒｕｄｅｎｓｋｙ，２０１２；Ｎｉｓｈｉｋａｗａ ＆ Ｓａｋａｇｕｃｈｉ，２０１０）。ゆえに、本発明者らは、Ｆｏｘｐ３^＋Ｔｒｅｇ細胞の活性を直接干渉する処置が、ＡＤにおいて有益であるだろうと考えた。本発明者らは、Ｔｒｅｇの機能を制御するヒストンアセチルトランスフェラーゼであるｐ３００の非ペプチド阻害剤である（Ｌｉｕ ｅｔ ａｌ，２０１３）ｐ３００ｉ（Ｃ６４６（Ｂｏｗｅｒｓ ｅｔ ａｌ，２０１０））を試験した；この阻害剤は、保護的なＴエフェクター細胞応答をインタクトなまま放置しつつ、Ｔｒｅｇ抑制活性に影響すると示された（Ｌｉｕ ｅｔ ａｌ，２０１３）。本発明者らは、ｐ３００ｉで処置されたマウスが、ビヒクル（ＤＭＳＯ）で処置されたコントロールと比べて、高レベルの全身性ＩＦＮ−γ発現細胞を脾臓（図１０Ａ）ならびにＣＰ（図１０Ｂ）において示すことを見出した。本発明者らは、次に、ＡＤ−Ｔｇマウスを１週間にわたってｐ３００ｉまたはビヒクルで処置し、３週間後に大脳のＡβプラーク量についてそれらの動物を調べた。免疫組織化学的解析から、ｐ３００ｉで処置されたＡＤ−Ｔｇマウスにおいて、大脳のＡβプラーク量の有意な減少が明らかになった（図１０Ｃ〜Ｅ）。本発明者らは、１コースの処置後のプラークの病態に対する効果が、３週間を超えて継続し得るかを試験し、およびもしそうであれば、さらなるコースの処置が長期間の効果に寄与し得るかも試験した。ゆえに、本発明者らは、単一コースのｐ３００ｉ処置を受けたＡＤ−Ｔｇマウスを、間に１ヶ月のインターバルを含む２コースの処置をこの期間中に受けた同齢群と比較し、２ヶ月後に調べた（図１０Ｆに模式的に示される）。本発明者らは、大脳のプラーク量の減少が、単一コースの処置の２ヶ月後でさえ明らかであったが、間に１ヶ月のインターバルを含む２コースの処置を受けたマウスにおいてより強力であったことを見出した（図１０Ｇ）。ＡＤにおけるシナプス可塑性および記憶の障害は、可溶性Ａβ_１−４０／Ａβ_１−４２（ｓＡβ）レベルの大脳レベルの上昇に関連するので（Ｓｈａｎｋａｒ ｅｔ ａｌ，２００８）、本発明者らは、単一または反復サイクルのｐ３００ｉ処置後のｓＡβレベルも測定した。また、本発明者らは、１コースと２コース（間に１ヶ月のインターバルを含む）の両方が、大脳のｓＡβの減少において効果的であるが、ｓＡＰ_１−４２に対する効果に関して、この効果が反復コースの後により強いことを見出した（図１０Ｈ）。これらの結果は、短期の単一コースの処置が効果的であるが、本発明者らの毎週ＧＡ処置後の知見と同様に、反復コースの処置が長期間の治療効果を維持するために有益であり得ることを示唆した。
実施例５．アルツハイマー病におけるＰＤ−１免疫チェックポイント遮断の治療的可能性

本発明者らは、まず、ＰＤ−１阻害経路を標的化することによって、家族性ＡＤに関連する５つの変異を共発現する５ＸＦＡＤ ＡＤトランスジェニック（ＡＤ−Ｔｇ）マウス（Ｏａｋｌｅｙ ｅｔ ａｌ，２００６）におけるＩＦＮ−γ関連の全身免疫が影響され得るかを試験した。大脳の病態が進行した時点である１０月齢のＡＤ−Ｔｇマウスに、ＰＤ−１に対する遮断抗体（抗ＰＤ−１）またはＩｇＧコントロール抗体の腹腔内（ｉ．ｐ．）注射を２回、１および４日目に投与し、次いで、７日目に調べた。フローサイトメトリー解析から、ＰＤ−１経路の遮断によって、ＩＦＮ−γ産生ＣＤ４^＋Ｔ脾細胞の高い出現率がもたらされることが明らかになった（図１１Ａ、Ｂ）。

本発明者らは、次に、この全身免疫応答がＣＰ活性に影響するかを調べた。ＣＰのゲノムワイドＲＮＡ配列決定（示さず；完全解析は、実施例５の表題を有する本発明者らによる報告に開示され、要請があれば本発明者らから入手することができる）は、ＩＦＮ−γに対する応答に関連する発現プロファイルを示し（図１１Ｄおよび表３）、リアルタイム定量的ＰＣＲ（ＲＴ−ｑＰＣＲ）は、ＩｇＧで処置されたまたは処置されていないＡＤ−Ｔｇコントロールと比べたとき、ＣＰにおけるＩＦＮ−γのｍＲＮＡレベルの上昇を立証した（図１１Ｃ）。これらの知見から、ＰＤ−１遮断後の全身性のおよびＣＰ組織特異的なＩＦＮ−γ免疫応答が確かめられ、次に疾患病態に対する効果を試験するように促された。

ＡＤの病態に対するＰＤ−１遮断の機能的影響を調べるために、本発明者らは、１０月齢のＡＤ−Ｔｇマウスを抗ＰＤ−１抗体またはＩｇＧコントロール抗体で処置し、放射状アーム水迷路（ＲＡＷＭ）タスクを用いて空間学習および空間記憶の能力に対する効果を評価した。

抗ＰＤ１で処置されたＡＤ−Ｔｇマウスは、処置（３日間のインターバルを含む２回のｉ．ｐ．注射）の１ヶ月後に、ＩｇＧで処置されたまたは処置されていない同齢のコントロールと比べて認知機能の有意な改善を示し、同齢のＷＴマウスと同様の認知レベルに達した（図１２Ａ）。本発明者らは、次に、ＡＤ−Ｔｇマウスの認知能力に対するＰＤ−１遮断の恩恵が１ヶ月を超えて継続するか、およびさらなる治療セッションが有益であるかを試験した。本発明者らは、ＡＤ−Ｔｇマウスを１０月齢において（「１セッション」）または１０月齢と１１月齢の両方において（「２セッション」）抗ＰＤ−１で処置し、１２月齢において認知能力に対する結果を調べた（図１２Ｂに模式的に示す）。コントロール群には、ＷＴマウス、処置されていないＡＤ−Ｔｇマウス、および２セッションのＩｇＧ処置を受けたＡＤ−Ｔｇマウスが含まれた。本発明者らは、単一セッションの抗ＰＤ−１投与が、処置の１ヶ月後に空間学習および空間記憶に対して有益な効果を及ぼすが（図１２Ａ）、単一セッションの処置を受け、２ヶ月後に試験されたマウスでは有意な効果を検出できなかった（図１２Ｂ）ことを見出した。対照的に、２セッションの抗ＰＤ−１を１ヶ月のインターバルで受けたＡＤ−Ｔｇマウスは、２ヶ月の時間枠の終わりに、ＷＴマウスと同様の認知能力を示した（図１２Ｂ）。

本発明者らは、ＰＤ−１遮断が、大脳のＡβプラーク量およびグリオーシスによって現れるＡＤの病態に影響するかを調べた。抗ＰＤ−１またはＩｇＧを１または２セッションで受けたＡＤ−Ｔｇマウスの脳を、Ａβおよびグリア線維性酸性タンパク質（ＧＦＡＰ）に対する免疫組織化学によって調べた。本発明者らは、大脳のＡβプラーク量が、海馬歯状回（図１３Ａ、Ｂ）、および大脳皮質（５層）（図１３Ａ、Ｃ）において減少することを見出した（これらの２つの脳領域は、５ＸＦＡＤマウスにおいて確固としたＡβプラークの病態を示す（Ｏａｋｌｅｙ ｅｔ ａｌ，２００６））。Ａβクリアランスに対する効果は、単一セッションの抗ＰＤ−１投与後に明らかであり、２セッション後にさらに強かった。ＧＦＡＰ免疫染色の定量的解析は、ＩｇＧで処置されたコントロールと比べて、１セッションのＰＤ−１遮断で処置されたＡＤ−Ｔｇマウスと２セッションのＰＤ−１遮断で処置されたＡＤ−Ｔｇマウスの両方において、海馬アストログリオーシスの低減を示した（図１３Ａ、Ｄ）。
投与量および投与頻度の影響を調べるために、雌５ＸＦＡＤ ＡＤトランスジェニックマウス（６ヶ月の平均コホート齢）を、抗ＰＤ−１特異的抗体（ＩｇＧ２ａ抗マウスＰＤ−１）またはＩｇＧコントロール（ラットＩｇＧ２ａ）で処置した。抗ＰＤ−１で処置されたマウスには、実験の１日目に５００ｕｇの抗体の注射を１回行うか、または２５０ｕｇの注射を２回、注射の間に３日間のインターバルを空けて行った。同齢の野生型（ＷＴ）マウスをさらなるコントロール群として用いた。抗ＰＤ−１で処置された５ＸＦＡＤマウス（１回の注射（ｎ＝７）または２回の注射（ｎ＝１１））、ＩｇＧ２ａで処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝１０）およびＷＴ（ｎ＝１４）コントロールの空間学習および空間記憶の成績に対する処置の効果を、７月齢において放射状アーム水迷路（ＲＡＷＭ）タスクを用いて評価した（図１４）。黒矢印は、処置の時点を示し、イラストは、認知試験の時点を示している。反復測定の結果を、２元配置分散分析およびダネットの事後検定を用いて解析した。エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、^＊＊＊Ｐ＜０．００１、抗ＰＤ−１処置（１回の注射）対ＩｇＧ処置コントロール。処置（３日間のインターバルを含む２回のｉ．ｐ．注射）の１ヶ月後に、抗ＰＤ１で処置されたＡＤ−Ｔｇマウスは、ＩｇＧで処置されたまたは処置されていない同齢のコントロールと比べて、認知機能の有意な改善を示し、同齢のＷＴマウスと同様の認知レベルに達した（図１４）。

最後に、雄５ＸＦＡＤ ＡＤトランスジェニックマウスを、反復処置セッションにおいて１ヶ月に１回、抗ＰＤ−１特異的抗体（ＩｇＧ２ａ抗マウスＰＤ−１）またはＩｇＧコントロール（ラットＩｇＧ２ａ）で処置した。１回目の注射は、３月齢において、２回目の注射は、４月齢において、および３回目の注射は、５月齢において行った。投与量は、実験計画のスキーム（図１５Ａ）に示されている。同齢の野生型（ＷＴ）マウスをさらなるコントロール群として用いた。空間学習および空間記憶の成績に対する処置の効果を、２つの異なる時点、すなわち５月齢（図１５Ｂ）および６月齢（図１５Ｃ）において、放射状アーム水迷路（ＲＡＷＭ）タスクを用いて評価した。黒矢印は、処置の時点を示し、イラストは、認知試験の時点を示す。抗ＰＤ−１で処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝７）、ＩｇＧ２ａで処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝９）およびＷＴ（ｎ＝８）コントロールのＲＡＷＭの成績である。反復測定は２元配置分散分析およびＤｕｎｎｅｔのｐｏｓｔ−ｔｅｓｔで解析を行った。エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、^＊＊＊Ｐ＜０．００１、抗ＰＤ−１で処置されたマウス対ＩｇＧで処置されたコントロール。５月齢において、コントロールＩｇＧで処置されたマウスは、空間学習／記憶の技能を完全に失っていなかったので、２日目の最後の試験においていくらかの学習を示した（図１５Ｂ）のに対して、６月齢では、疾患の進行が観察され、機能の成績がさらに低下した（図１５Ｃ、Ｄ）。図１５Ｄは、ＩｇＧで処置された５〜６月齢のマウスにおける低下を示しているが、抗ＰＤ−１抗体で処置された群は、学習能力を保持した。これらの知見は、ＰＤ−１遮断による反復セッションの処置が、疾患の進行段階の５ＸＦＡＤマウスに対して行われたときに疾患進行を逆転させることだけでなく、認知機能低下前の若齢において処置を開始したときに疾患の発症を遅延させることもできたことを実証する（図１５Ｂ〜Ｄ）。

ＡＤでは、ニューロンの喪失およびシナプス不全が空間学習／記憶の技能の障害と最も密接に相関すると報告された。５ＸＦＡＤトランスジェニックマウスは、著しいニューロンの喪失を示すＡＤの数少ない動物モデルの１つであり、その著しいニューロンの喪失は、６月齢のこれらのマウスにおいて明らかになっている。ゆえに、本発明者らは、最後の行動試験の後に、上に記載された実験に従ってマウスにおけるニューロンの生存を評価した（図１５Ａ〜Ｄ）。本発明者らは、このＡＤのマウスモデルにおいてニューロンの喪失を実証するために以前使用された鉤状回に焦点を当てて、これらのマウスの脳におけるニューロンの生存を解析した。免疫組織化学的解析から、ＩｇＧで処置された群と比べて、抗ＰＤ−１抗体で処置された５ＸＦＡＤマウスの鉤状回において、より多数のＮｅｕ−Ｎ^＋細胞が明らかになった（図１５Ｅ、Ｆ）。

ＡＤにおけるニューロン喪失の基礎をなす分子機構は、ニューロンのカスパーゼ−３の活性化と関係している。ゆえに、本発明者らは、抗ＰＤ−１で処置した後のニューロンのレスキューが、Ｎｅｕ−Ｎ^＋細胞における活性化されたカスパーゼ−３のレベルの低下と関連するかを評価した。本発明者らは、抗ＰＤ−１抗体で処置されたマウスが、ＩｇＧで処置された群と比べて、Ｎｅｕ−Ｎ^＋ニューロンにおいて、活性化されたカスパーゼ−３の免疫反応性の減少を示したことを見出し（図１５Ｇ、Ｈ）、さらに、ニューロンの生存に対する抗ＰＤ−１抗体処置の効果を実証した。
実施例６．アルツハイマー病におけるＴＩＭ−３免疫チェックポイント遮断の治療的可能性

ＡＤの病態に対するＴＩＭ−３遮断の機能的影響を調べるために、本発明者らは、６月齢の雌５ＸＦＡＤ ＡＤ−Ｔｇマウスを抗ＴＩＭ−３特異的抗体（抗マウスＴＩＭ−３）またはＩｇＧコントロール（ラットＩｇＧ２ａ抗体）で処置した。投与量は、実験計画のスキームに示されている（図１６）。この処置は、抗体の２回のｉ．ｐ．注射（それぞれ２５０μｇ、注射の間に３日間の間隔を空ける）という一貫したものだった。同齢の野生型（ＷＴ）マウスをさらなるコントロール群として使用した。抗ＴＩＭ−３で処置された５ＸＦＡＤマウス（ｎ＝９）、ＩｇＧで処置された（ｎ＝６）５ＸＦＡＤマウスおよびＷＴ（ｎ＝７）コントロールの空間学習および空間記憶の成績に対する処置の効果を、７月齢において放射状アーム水迷路（ＲＡＷＭ）タスクを用いて評価した（図１６）。黒矢印は、処置の時点を示し、イラストは、認知試験の時点を示している。反復測定の結果を、２元配置分散分析およびダネットの事後検定を用いて解析した。エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、^＊＊＊Ｐ＜０．００１、抗ＴＩＭ−３処置 対 ＩｇＧ処置コントロール。処置の１ヶ月後、抗ＴＩＭ−３で処置されたＡＤ−Ｔｇマウスは、ＩｇＧで処置された５ＸＦＡＤマウスまたは同齢のＷＴコントロールと比べて、認知能力の有意な改善を示した（図１６）。
実施例７．アルツハイマー病におけるＰＤ−Ｌ１免疫チェックポイント遮断の治療的可能性および抗ＰＤ−１処置との比較

ＰＤ−１は、数多くの免疫細胞、とりわけエフェクターＣＤ４Ｔ細胞によって発現される阻害性レセプターであり、それに対して、そのリガンドであるＰＤ−Ｌ１は、樹状細胞、上皮細胞および調節性Ｔ細胞によって発現される。したがって、本発明者らは、ＰＤ−Ｌ１の遮断が、ＰＤ−１の遮断の効果と同様の効果を及ぼし得るかを調べた（図１７Ａ）。この目的のために、まず、６月齢の５ＸＦＡＤマウスを、単回投与の抗ＰＤ−Ｌ１抗体（マウス１匹あたり０．１ｍｇ、０．５ｍｇまたは１．５ｍｇ）を腹腔内に注射して処置した。１ヶ月後の７月齢においてＲＡＷＭを用いてマウスを評価した。０．１ｍｇの抗ＰＤ−Ｌ１は、ＩｇＧアイソタイプコントロールによる処置と比べて、認知能力に対していかなる効果も及ぼさなかったが、０．５ｍｇと１．５ｍｇの両方の用量は、ＲＡＷＭタスクの成績に対して同様の有益な効果を及ぼした（図１７Ｂ）。次に、本発明者らは、認知能力および続いて大脳の病態に対する０．５ｍｇの抗ＰＤ−１抗体の単回注射の効果を０．５ｍｇの抗ＰＤ−Ｌ１抗体の単回注射の効果と比較した（図１７Ｃ〜Ｊ）。ＲＡＷＭタスクを用いて、本発明者らは、抗ＰＤ−Ｌ１抗体による処置が、５ＸＦＡＤマウスにおける機能的認知の結果の改善において抗ＰＤ−１抗体と同程度に効果的であることを見出した（図１７Ｃ）。行動試験後のこれらのマウスの脳の免疫組織化学的解析は、ＩｇＧで処置された群と比べて抗ＰＤ−１処置群または抗ＰＤ−Ｌ１処置群の両方において、海馬（ＨＣ）および皮質におけるプラーク量（プラークの数およびプラークが覆う面積によって測定した）、ならびにグリオーシス（グリア線維性酸性タンパク質（ＧＦＡＰ）の免疫反応性によって測定した）の同様の減少を明らかにした（図１７Ｄ）。本発明者らは、抗ＰＤ−１または抗ＰＤ−Ｌ１抗体で処置されたマウスの脳において、シナプス前活性のマーカーであるシナプトフィジンに特異的な、より高レベルの免疫反応性も観察したことから、より良好なシナプスの保存が示唆された（図１７Ｈ、Ｉ）。本発明者らは、処置された５ＸＦＡＤマウスの海馬におけるｉｌ−１２ｐ４０およびｉｌ−１０のレベルをリアルタイム（ＲＴ）−ｑＰＣＲによって解析した。結果は、ＩｇＧで処置された５ＸＦＡＤ動物と比べたときのｉｌ−１２ｐ４０／ｉｌ−１０比の低下によって明らかになるように、抗ＰＤ−１または抗ＰＤ−Ｌ１で処置されたマウスの海馬において抗炎症活性に対する偏りを示した（図１７Ｊ）。抗ＰＤ−１および抗ＰＤ−Ｌ１に対するアイソタイプ一致コントロール抗体が、それぞれＩｇＧ２ａおよびＩｇＧ２ｂであることに注意すべきである。しかしながら、本発明者らのすべての行動研究において、それらは、同様の結果をもたらしたので、これらの２つのコントロール群は、本明細書中に提示される最終的な解析において組み合わされた。

ＰＤ−Ｌ１は、活性化された免疫細胞（例えば、Ｔ細胞、Ｂ細胞、マクロファージ、樹状細胞およびミクログリア）ならびに非免疫細胞（例えば、内皮細胞および上皮細胞）によって発現される。したがって、本発明者らは、ＣＰ上皮によるＰＤ−Ｌ１の発現が、ＣＰ内のＰＤ−Ｌ１を発現している上皮細胞とのコミュニケーションにおいて、ＰＤ−１を発現するＩＦＮ−γ産生Ｔ細胞の活性を低下させることによってＣＮＳへの白血球の輸送のダウンレギュレーションに寄与し得ると予想した。免疫組織化学的解析は、若齢マウスよりも高齢マウスにおいて、ＣＰ上皮が有意に高いレベルのＰＤ−Ｌ１を発現したことを示す（図１８）。
実施例８．アルツハイマー病における免疫チェックポイント遮断の治療的可能性

免疫チェックポイントの遮断が、ＡＤの病態を弱め得るかを試験するために、ＡＤ−Ｔｇマウスを６〜１０月齢において以下の抗チェックポイント抗体のうちの１つで処置する：抗ＩＣＯＳ、抗Ｂ７ＲＰ１、抗ＶＩＳＴＡ、抗ＣＤ４０、抗ＣＤ４０Ｌ、抗ＣＤ８０、抗ＣＤ８６、抗Ｂ７−Ｈ３、抗Ｂ７−Ｈ４、Ｂ７−Ｈ７、抗ＢＴＬＡ、抗ＨＶＥＭ、抗ＣＤ１３７、抗ＣＤ１３７Ｌ、抗ＯＸ４０Ｌ、抗ＣＤ−２７、抗ＣＤ７０、抗ＳＴＩＮＧ、抗ＴＩＧＩＴ、または抗ＧＩＴＲ抗体。いくつかのマウスを、ポジティブコントロールとして抗ＰＤ−１抗体で、ネガティブコントロールとしてＩｇＧコントロールで、または抗ＰＤ１と上で述べた他の抗チェックポイント抗体のうちの１つとの併用で処置する。放射状アーム水迷路（ＲＡＷＭ）タスクを用いて空間学習および空間記憶の能力に対する処置の効果、Ａβの免疫組織化学によるＡβプラーク量およびグリア線維性酸性タンパク質（ＧＦＡＰ）の免疫組織化学による海馬アストログリオーシスを、処置の１ヶ月後に測定する。

抗体で処置されたマウスは、ＩｇＧで処置されたおよび処置されていないＡＤ−Ｔｇマウスと比較して有意な認知機能改善、ならびに大脳のプラーク量の有意な減少を示すと予想される。
実施例９．アルツハイマー病におけるＣＴＬＡ−４免疫チェックポイント遮断との併用でのＰＤ−１の治療的可能性

１０月齢の５ＸＦＡＤアルツハイマー病（ＡＤ）トランスジェニック（Ｔｇ）マウスに、２５０μｇの抗ＰＤ１抗体（ＲＭＰ１−１４；＃ＢＥ０１４６；Ｂｉｏｘｃｅｌｌ Ｌｉｆｅｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｐｖｔ．ＬＴＤ．）および２５０μｇの抗ＣＴＬＡ−４抗体（ＩｎＶｉｖｏＭＡｂ抗ｍＣＤ１５２；＃ＢＥ０１３１；Ｂｉｏｘｃｅｌｌ Ｌｉｆｅｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｐｖｔ．ＬＴＤ．）またはコントロールＩｇＧ抗体（ＩｇＧ２ａ、＃ＢＥ００８９またはポリクローナルシリアンハムスターＩｇＧ、＃ＢＥ００８７；Ｂｉｏｘｃｅｌｌ Ｌｉｆｅｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｐｖｔ．ＬＴＤ．）を実験の１日目および４日目にｉ．ｐ．注射し、３週間後に、上に記載されたような放射状アーム水迷路（ＲＡＷＭ）空間学習および空間記憶タスクによって認知能力について調べる。

一部のマウスには、３週間のインターバルセッションとともに、さらなる処置セッションを行う。コントロール群は、ＩｇＧで処置されるかまたは処置されず、すべての群のマウスを３週間後に認知能力について試験する。

抗体の組み合わせで処置されたマウスは、ＩｇＧで処置されたマウスおよび非処置のＡＤ−Ｔｇマウスと比較して有意な認知の改善を示し、大脳のプラーク量の有意な減少を示すと予想される。
実施例１０．ＰＴＳＤ病態における免疫チェックポイント遮断アプローチの治療的可能性

ひどくストレスの多い状態または慢性ストレスは、心的外傷後ストレス障害（ＰＴＳＤ）およびうつ病をもたらし得る。本発明者らは、マウスが、過剰に用心深い（ｈｙｐｅｒｖｉｇｉｌａｎｔ）行動、注意障害、リスク評価の増加および睡眠不足を示す生理学的ＰＴＳＤ様動物モデル（Ｌｅｂｏｗ ｅｔ ａｌ，２０１２）を採用した。ＰＴＳＤ誘導のこの実験モデルでは、マウスを、逆転した昼／夜サイクルに１０日間慣らし、「ＰＴＳＤ誘導」と称される２エピソードの電気ショック（外傷およびトリガー）を与え、外傷後の種々の時点において評価する。外傷性事象の後、マウスに、免疫チェックポイントを遮断する前記化合物を注射する。以下のレジメンのうちの１つに従って、マウスを処置する：

マウスを、以下の抗チェックポイント抗体のうちの１つで処置する：抗ＩＣＯＳ、抗Ｂ７ＲＰ１、抗ＶＩＳＴＡ、抗ＣＤ４０、抗ＣＤ４０Ｌ、抗ＣＤ８０、抗ＣＤ８６、抗Ｂ７−Ｈ３、抗Ｂ７−Ｈ４、Ｂ７−Ｈ７、抗ＢＴＬＡ、抗ＨＶＥＭ、抗ＣＤ１３７、抗ＣＤ１３７Ｌ、抗ＯＸ４０Ｌ、抗ＣＤ−２７、抗ＣＤ７０、抗ＳＴＩＮＧ、抗ＧＩＴＲもしくは抗ＴＩＧＩＴ抗体のみまたは抗ＣＴＬＡ−４抗体との併用。いくつかのマウスを、ポジティブコントロールとして抗ＰＤ−１抗体で、ネガティブコントロールとしてＩｇＧコントロールで、または抗ＰＤ１と上で述べた他の抗チェックポイント抗体のうちの１つとの併用で処置する。

いくつかのマウスに、適切なインターバルセッションを含むさらなる処置セッションを行う。

（Ｌｅｂｏｗ ｅｔ ａｌ，２０１２）に記載されている暗い／明るい迷路または他の行動タスクにおいて探索およびリスク評価に費やした時間によって評価されるとき、処置を受けたマウスは、この実験モデルにおいてＰＴＳＤに関連する不安行動を示さないと予想される。
実施例１１．パーキンソン病の病態における免疫チェックポイント遮断アプローチの治療的可能性

パーキンソン病（ＰＤ）トランスジェニック（Ｔｇ）マウスまたはＰＤのＭＰＴＰ誘発マウスモデルをこれらの実験において使用する。それらのマウスを、以下のレジメンのうちの１つに従って、疾患の進行段階において処置する：

ＰＤ−Ｔｇマウスを以下の抗チェックポイント抗体のうちの１つで処置する：抗ＩＣＯＳ、抗Ｂ７ＲＰ１、抗ＶＩＳＴＡ、抗ＣＤ４０、抗ＣＤ４０Ｌ、抗ＣＤ８０、抗ＣＤ８６、抗Ｂ７−Ｈ３、抗Ｂ７−Ｈ４、Ｂ７−Ｈ７、抗ＢＴＬＡ、抗ＨＶＥＭ、抗ＣＤ１３７、抗ＣＤ１３７Ｌ、抗ＯＸ４０Ｌ、抗ＣＤ−２７、抗ＣＤ７０、抗ＳＴＩＮＧ、抗ＧＩＴＲもしくは抗ＴＩＧＩＴ抗体のみまたは抗ＣＴＬＡ−４抗体との併用。いくつかのマウスを、ポジティブコントロールとして抗ＰＤ−１抗体で、ネガティブコントロールとしてＩｇＧコントロールで、または抗ＰＤ１と上で述べた他の抗チェックポイント抗体のうちの１つとの併用で処置する。

運動神経機能を、例えば、回転するロッド上にマウスが留まる能力を評価するロータロッド能力試験を用いて、評価する。

１処置セッションで処置されたＰＤ−Ｔｇマウスは、ＩｇＧで処置されたもしくはビヒクルで処置されたコントロール群または処置されていない群と比べて、有意に改善された運動能力を示すと予想される。２コースの治療を受け、適切なインターバルセッション後に調べられたＰＤ−Ｔｇマウスは、長期間の治療効果を示すと予想される。この治療効果を維持するために、マウスを、各処置セッション間に適切な非処置のインターバルセッションを含む有効な処置セッションに供する。
実施例１２．ハンチントン病の病態におけるＣＴＬＡ−４と組み合わせたＰＤ−１の免疫チェックポイント遮断の治療的可能性

これらの実験において用いられるモデルは、ハンチントン病（ＨＤ）Ｒ６／２トランスジェニックマウス（Ｔｇ）試験システムであり得る。Ｒ６／２トランスジェニックマウスは、疾患の進行段階において、複数のＣＡＧリピートマウスの挿入を含む変異したヒトハンチンチン遺伝子を過剰発現する。これらのマウスは、５〜６週齢という早さで進行性の行動運動障害を示し始め、１０〜１３週において成熟前に死亡する。これらの症状には、低体重、抱き締め行動（ｃｌａｓｐｉｎｇ）、振戦および痙攣が含まれる。

４５日齢になったとき、以下のレジメンのうちの１つに従って、マウスを処置する：

マウスを以下の抗チェックポイント抗体のうちの１つで処置する：抗ＩＣＯＳ、抗Ｂ７ＲＰ１、抗ＶＩＳＴＡ、抗ＣＤ４０、抗ＣＤ４０Ｌ、抗ＣＤ８０、抗ＣＤ８６、抗Ｂ７−Ｈ３、抗Ｂ７−Ｈ４、Ｂ７−Ｈ７、抗ＢＴＬＡ、抗ＨＶＥＭ、抗ＣＤ１３７、抗ＣＤ１３７Ｌ、抗ＯＸ４０Ｌ、抗ＣＤ−２７、抗ＣＤ７０、抗ＳＴＩＮＧ、抗ＴＩＧＩＴもしくは抗ＧＩＴＲ抗体のみまたは抗ＣＴＬＡ−４抗体との併用。いくつかのマウスを、ポジティブコントロールとして抗ＰＤ−１抗体で、ネガティブコントロールとしてＩｇＧコントロールで、または抗ＰＤ１と上で述べた他の抗チェックポイント抗体のうちの１つとの併用で処置する。

運動神経機能を、例えば、回転するロッド上にマウスが留まる能力を評価するロータロッド能力試験を用いて、評価する。

１処置セッションで処置されたＨＤ−Ｔｇマウスは、ＩｇＧで処置されたもしくはビヒクルで処置されたコントロール群または処置されていない群と比べて、有意に改善された運動能力を示すと予想される。２コースの治療を受け受け、適切なインターバルセッション後に調べられたＨＤ−Ｔｇマウスは、長期間の治療効果を示すと予想される。この治療効果を維持するために、マウスを、各処置セッション間に適切な非処置のインターバルセッションを含む有効な処置セッションに供する。
実施例１３．萎縮性側索硬化症の病態における免疫チェックポイント遮断アプローチの治療的可能性

この実験において用いられるモデルは、Ｇｌｙ９３→Ａｌａ（Ｇ９３Ａ）遺伝子を含む欠損ヒト変異体ＳＯＤ１対立遺伝子を過剰発現するトランスジェニックマウス（Ｂ６ＳＪＬ−ＴｇＮ（ＳＯＤ１−Ｇ９３Ａ）１Ｇｕｒ（本明細書中の「ＡＬＳマウス」）であり得る。このモデルは、運動ニューロン疾患を発症するので、ＡＬＳを試験するために認められた動物モデルである。

７５日齢になったとき、以下のレジメンのうちの１つに従って、それらのマウスを処置する：

マウスを以下の抗チェックポイント抗体のうちの１つで処置する：抗ＩＣＯＳ、抗Ｂ７ＲＰ１、抗ＶＩＳＴＡ、抗ＣＤ４０、抗ＣＤ４０Ｌ、抗ＣＤ８０、抗ＣＤ８６、抗Ｂ７−Ｈ３、抗Ｂ７−Ｈ４、Ｂ７−Ｈ７、抗ＢＴＬＡ、抗ＨＶＥＭ、抗ＣＤ１３７、抗ＣＤ１３７Ｌ、抗ＯＸ４０Ｌ、抗ＣＤ−２７、抗ＣＤ７０、抗ＳＴＩＮＧ、抗ＧＩＴＲもしくは抗ＴＩＧＩＴ抗体のみまたは抗ＣＴＬＡ−４抗体との併用。いくつかのマウスを、ポジティブコントロールとして抗ＰＤ−１抗体で、ネガティブコントロールとしてＩｇＧコントロールで、または抗ＰＤ１と上で述べた他の抗チェックポイント抗体のうちの１つとの併用で処置する。

運動神経機能を、例えば、回転するロッド上にマウスが留まる能力を評価するロータロッド能力試験を用いて、評価するか、またはマウスに、下端に小さいループを有する鉛直方向のワイヤ（直径２ｍｍ）を掴ませて、しがみつかせる。鉛直方向のワイヤは、マウスがワイヤに掴まるために前肢と後肢の両方を使用させる。そのワイヤを２４ｒｐｍの鉛直方向の円運動（円の半径は１０ｃｍ）で維持する。マウスがワイヤを放さずにいることができる時間をタイマーで記録する。

１処置セッションで処置されたＡＬＳマウスは、ＩｇＧで処置されたもしくはビヒクルで処置されたコントロール群または処置されていない群と比べて、運動能力の有意な改善を示すと予想される。２コースの治療を受け受け、適切なインターバルセッション後に調べられたＡＬＳマウスは、長期間の治療効果を示すと予想される。この治療効果を維持するために、マウスを、各処置セッション間に適切な非処置のインターバルセッションを含む有効な処置セッションに供する。
実施例１４．最小および最大用量範囲を決定する用量効果実験ならびに処置レジメンおよびその持続性の治療効果を明らかにする実験

本発明者らは、ＰＤ−１遮断を利用する単回処置セッションが、プラーク量の有意な減少、および処置（試験された最後の時点）後少なくとも２ヶ月間続く認知機能の改善をもたらすことをすでに示した。ここで、本発明者らは、５ＸＦＡＤ ＡＤトランスジェニックマウスに投与されるさらなる２用量を用いる用量反応研究を説明する。読み取る情報は、投与の１、２および３ヶ月後のアミロイドプラークの量であり得る。研究群は、１）非処置の５ＸＦＡＤマウス；２）５００μｇのコントロール抗ＰＤ−１（ＲＭＰ１−１４；＃ＢＥ０１４６；Ｂｉｏｘｃｅｌｌ Ｌｉｆｅｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｐｖｔ．ＬＴＤ．）の１回の注射を受ける５ＸＦＡＤマウス；３）２５０μｇのコントロール抗ＰＤ−１（ＲＭＰ１−１４；＃ＢＥ０１４６；Ｂｉｏｘｃｅｌｌ Ｌｉｆｅｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｐｖｔ．ＬＴＤ．）の１回の注射を受ける５ＸＦＡＤマウス；４）１００μｇのコントロール抗ＰＤ−１（ＲＭＰ１−１４；＃ＢＥ０１４６；Ｂｉｏｘｃｅｌｌ Ｌｉｆｅｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｐｖｔ．ＬＴＤ．）の１回の注射を受ける５ＸＦＡＤマウス；および５）５００μｇのコントロールＩｇＧ（ＩｇＧ２ａ；＃ＢＥ００８９；Ｂｉｏｘｃｅｌｌ Ｌｉｆｅｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｐｖｔ．ＬＴＤ．）の１回の注射を受ける５ＸＦＡＤマウスを含み得る。それらのマウスのすべてを実験の開始時に処置し、各群のマウスを、処置開始の１ヶ月後、２ヶ月後および３ヶ月後の間隔で屠殺し、脳を調べる。

抗ＰＤ−１抗体で処置されたマウスは、非処置のＡＤ−ＴｇマウスまたはコントロールＩｇＧで処置されたマウスと比較して、脳内のアミロイドベータプラーク量の有意な減少を示すと予想される。

最初の処置の１ヶ月後の抗ＰＤ−１によるさらなる処置セッションは、５ＸＦＡＤ ＡＤ−Ｔｇマウスにおいて認知能力の改善に対して効果を維持すると本発明者らによって見出された（実施例５）。これらの知見は、長期間にわたって有効であるために、処置セッションの反復が必要であることを示唆している。ここで、本発明者らは、治療の持続性の効果を維持するために反復注射を用いる研究を説明する。

５ＸＦＡＤ ＡＤ−Ｔｇマウスに、先の研究結果に従って決定される投与量で薬物を注射する。マウスに注射し、研究期間中および研究期間後に放射状アーム水迷路の学習および記憶タスクを用いて認知能力をモニターする。アミロイドプラークの量について脳の組織学的検査も行う。

異なるマウス群に、２、３または４週間の間隔の非処置を用いて、単回の注射（または実施例５に記載されたように３日空けて２回の注射）を繰り返し注射する（表４）。それらのマウスを、最初の処置の１、２または３ヶ月後に、上に記載されたようにモニターする。
実施例１５．ＲＣＳラットにおける抗ＰＤ−１モノクローナル抗体の全身投与は網膜変性を減弱する

この実験の目的は、抗ＰＤ１抗体の全身投与が、網膜変性疾患の動物モデルにおいて、外顆粒層の変性を減弱するかを判定することであった。

非滲出型ＡＭＤおよび網膜色素変性症ならびに他の網膜変性疾患および網膜変性状態の一般に認められた動物モデルであるＲＣＳラットは、３月齢までに網膜変性および完全失明をもたらす、ＭｅｒＴＫタンパク質をコードする遺伝子に欠失変異を有する。網膜の外顆粒層（ＯＮＬ）の厚さの有意かつ急速な悪化が、４週齢から観察される。ゆえに、このモデルにおけるＯＮＬの厚さの保存は、科学文献では、視力の保存と直接相関すると考えられている。

４週齢のＲＣＳラットの腹腔内に（ＩＰ）、抗ＰＤ１モノクローナル抗体（動物１匹あたり合計７６０μｇ；ｎ＝１０）または同じ濃度の好適なＩｇＧコントロール（ＩｇＧ２ａ）（ｎ＝１０）を注射した。さらなる群のＲＣＳラットを処置せず放置した（ｎ＝４）。６週齢である処置の２週間後に、動物を屠殺し、眼を切除し、それぞれ眼の網膜のＯＮＬ層の厚さを、Ｈ＆Ｅ染色を用いる組織学的解析によって測定した。網膜の長さ全体にわたってＯＮＬの厚さを測定し、データを水平方向にプロットして、網膜の任意の領域における処置の効果の確認を可能にするマップを作成することによって、処置の有効性を判定した。

各個別の眼が独立したデータセットとして機能する、処置されたすべての動物のＯＮＬ厚さの平均を解析したところ、６週齢（処置の２週間後）において、視神経乳頭のすぐ近くの網膜の中央領域におけるＯＮＬが、ＩｇＧ処置と非処置コントロールの両方と比べて、抗ＰＤ１処置動物において有意に厚かったことが示された（図１９Ａ）。

処置応答性動物のみにおいて、その効果の大きさを評価するために、動物を「陽性応答動物」として定義するための閾値を、ＩｇＧコントロール群の網膜中央の厚さの平均値より２標準誤差高い値に等しい値として設定した。この設定された閾値に基づくと、抗ＰＤ１群における解析された２０個のうち１３個の眼（６５％）が、陽性応答者として特徴づけられた。それに対して、ＩｇＧ処置群では、解析された２０個のうちたった１個（５％）の眼しか、陽性反応者として特徴づけられなかった；有意差（カイ二乗＝１５．８２、Ｐ＝０．００００７）。この処置群の抗ＰＤ１に正に反応するこの１３個の眼だけに注目すると、網膜の中央領域の厚さが、コントロール眼のそれの１．５〜２倍であることが示された。さらに、網膜中央のさらに広い領域が、コントロール群と比べて有意に厚かった（図１９Ｂ）。興味深いことに、この抗体は、全身投与されたので、両眼に対して同様のレベルで到達し、作用すると予想されるが、個々の動物の２つの眼の間に処置に対する応答性の違いが、抗ＰＤ−１で処置された動物のうち４匹において観察された。
実施例１６．ＲＣＳラットの硝子体に直接、抗ＰＤ−１モノクローナル抗体を局所投与すると網膜変性が減弱する

この実験の目的は、抗ＰＤ１抗体を眼の硝子体に直接局所投与することが、網膜変性疾患の動物モデルにおいて、外顆粒層の変性を減弱するかを判定することであった。

４週齢のＲＣＳラットに、抗ＰＤ１モノクローナル抗体（ｎ＝６）または好適なＩｇＧコントロール（動物１匹あたり５０μｇ）を注射した。各動物の片眼の硝子体に直接注射を行い、反対側の眼は、処置せず放置した。６週齢である処置の２週間後に、動物を屠殺し、眼を切除し、それぞれ眼の網膜のＯＮＬ層の厚さを、Ｈ＆Ｅ染色を用いる組織学的解析によって測定した。網膜の長さ全体にわたってＯＮＬの厚さを測定し、データを水平方向にプロットして、網膜の任意の領域における処置の効果の確認を可能にするマップを作成することによって、処置の有効性を判定した。

処置の２週間後に動物のＯＮＬ厚さの平均を解析したところ、抗ＰＤ１で処置された群において、処置された眼の網膜のいくつかの区分において、処置されていない反対側の眼と比べてＯＮＬが有意に厚かったことが示された（図２０Ａ）。このような効果は、ＩｇＧで処置された動物では見られなかった（図２０Ｂ）。
実施例１７．ＰＤ−１またはＰＤ−Ｌ１モノクローナル抗体の硝子体内注射による局所的なＰＤ−１の遮断は網膜変性を減弱する

抗ＰＤ−Ｌ１モノクローナル抗体もしくは抗ＰＤ−１モノクローナル抗体、抗ＰＤ−Ｌ１と抗ＰＤ−１モノクローナル抗体との併用、または抗原特異的可変領域を有しない好適なＩｇＧフラグメントを、４週齢のＲＣＳラットの硝子体に直接注射する。その後の８週間にわたって、視覚的刺激に応答する動物の視覚機能の評価を行う。重要なことには、各動物の片方の眼だけが処置を受けるのに対して、反対側の眼は、処置されず放置され、さらなるコントロールとして働く。さらに、この実験全体にわたって、各処置群からの指定の群のＲＣＳラットを、ニューロンの生存および局所免疫応答に関する網膜に対する処置の効果、ならびに白血球輸送分子および免疫チェックポイントリガンドの発現に関する網膜上皮細胞に対する効果の定量化および定性化（ｑｕａｌｉｆｙｉｎｇ）を目指す解析に供する。硝子体内注射によるＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１経路の局所的な遮断は、網膜変性の減弱、免疫の調節および視覚機能の保存をもたらすと予想される。
実施例１８．タウの病態のマウスモデルにおけるＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１経路の標的化は脳実質への単球由来マクロファージの動員を増強する

免疫チェックポイント遮断を用いる処置は、全身の免疫細胞を直接標的化するので、本発明者らは、その有効性が、ＡＤに関連する特異的な神経病理学的特徴に限定されないだろうと仮定した。ＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１経路処置を標的化することが、異なる疾患病因を刺激するＡＤの他のモデルにおいて有効であり得るかを試験するために、本発明者らは、前頭側頭型認知症に関連するヒト−タウ遺伝子の２つの変異（Ｋ２５７Ｔ／Ｐ３０１Ｓ；二重変異体、ＤＭ−ｈＴＡＵ）を発現するＡＤのマウスモデルを使用した。これらのマウスは、アルツハイマー病（ＡＤ）および他の神経変性疾患を含む広範囲のタウオパチーに特徴的な神経原線維変化（ＮＴＦ）の病態を発症する。これらのマウスにおける病理学的特徴としては、失認、神経炎症、グリア細胞の活性化、および脳内のタウタンパク質のリン酸化が挙げられる。

本発明者らは、以前に、５ＸＦＡＤマウスにおいて全身免疫抑制とＡＤの病態との間の逆の機能的関連性を実証した。さらに、ＡＤの５ＸＦＡＤマウスモデルとＪ２０マウスモデルの両方において、疾患の進行がＣＰにおけるＩＦＮ−γの利用可能性の喪失を伴うことが見出された。このＩＦＮ−γの減少は、５ＸＦＡＤマウスにおいてＦｏｘＰ３調節性Ｔ細胞の増加を伴い、抗ＰＤ−１抗体で処置すると、ＣＰにおいてＩＦＮ−γシグナル伝達が回復し、脳実質への単球由来マクロファージの動員が回復した（Ｂａｒｕｃｈ ｅｔ ａｌ，２０１６）。ここで、本発明者らはまず、ＰＤ−Ｌ１に対する抗体の投与が、ＤＭ−ｈＴＡＵマウスにおいて、全身のエフェクターメモリーＴ細胞または調節性細胞のレベルに影響し得るかを、抗体投与の２週間後の脾臓において測定して、試験した。本発明者らは、このマウスモデルにおいて、処置の非存在下では、同齢の野生型マウスと比べたとき、ＦｏｘＰ３調節性Ｔ細胞が全身において増加することおよびエフェクターメモリーＴ細胞（ＣＤ４４^＋ＣＤ−６２Ｌ^ｌｏｗ）の全身レベルが低下することも見出した（図２１Ａ〜Ｃ）。抗ＰＤ−Ｌ１抗体の投与は、フローサイトメトリー解析によって評価したとき、ＩｇＧで処置されたマウスと比べて、サプレッサー細胞のレベルを低下させなかったが、エフェクターメモリーＴ細胞のレベルを増加させた（図２１Ａ〜Ｃ）。本発明者らは、同じマウスの脳をさらに解析して、単球由来マクロファージのレベルを測定した。本発明者らは、ＩｇＧアイソタイプコントロールで処置されたマウスと比べたときの、抗ＰＤ−Ｌ１抗体で処置されたＤＭ−ｈＴＡＵマウスの脳における単球由来マクロファージの有意な増加を見出した（図２１Ｄ、Ｅ）。これらの知見は、末梢の免疫抑制がこのマウスモデルにおいて生じ、その末梢における免疫抑制の低減が、疾患を緩和する白血球が罹患している脳に侵入するのを促進するという本発明者らの仮説を支持する。これらの結果は、免疫チェックポイントの遮断が、さらなる病因を特徴とするＡＤに適用できるかもしれないという本発明者らの主張を補強する。
実施例１９．タウの病態のマウスモデルにおけるＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１軸の遮断は認知障害および大脳の病態を緩和する

本発明者らが５ＸＦＡＤマウスにおいて観察したような全身の免疫チェックポイント経路を標的化することによって脳実質への単球の輸送が増加するという本発明者らの知見は、タウマウスモデルにおける認知機能に対するＰＤ−１またはＰＤ−Ｌ１の標的化の効果を試験するように促した。本発明者らは、８月齢のＤＭ−ｈＴＡＵマウスを、５ＸＦＡＤマウスにおいて使用したのと同じ０．５ｍｇという用量を用いて抗ＰＤ−１または抗ＰＤ−Ｌ１で処置した（図２２Ａ）；無関係の抗原に対するアイソタイプ一致抗体をネガティブコントロールとして使用した（ＩｇＧ処置コントロール）。同齢の野生型マウスを、この研究において使用された試験における正常な学習／記憶の成績に対するさらなるコントロールとして評価した。このＡＤのマウスモデルでは、短期の空間記憶を測定するＴ型迷路およびＹ型迷路の試験を通常使用する。抗ＰＤ−１または抗ＰＤ−Ｌ１抗体を投与された２つの群が、抗体の単回注射の１ヶ月後に、Ｔ型迷路アッセイにおいて、ＩｇＧで処置されたコントロール群と比べて、新規アームを好むことが多かった（図２２Ｂ、Ｃ）。さらに、両方の処置群が、Ｙ型迷路試験において、ＩｇＧで処置されたコントロール群と比べて認知能力の改善を示した（図２２Ｄ）。

グリオーシスに対する上記処置の効果は、抗ＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１処置群の海馬におけるＧＦＡＰの免疫反応性の減少を明らかにした（図２２Ｅ、Ｆ）。本発明者らはさらに、グリオーシスに対するＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１軸の遮断の有益な効果が、炎症性サイトカイン環境の変化に関連し得るかを試験した。この目的のために、本発明者らは、ＣＮＳの炎症性の環境が処置の結果（ｒｅｕｌｔ）として歪められたかを判定するために、定量的ＲＴ−ｑＰＣＲを用いて、様々なサイトカインのレベルをモニターした。本発明者らは、抗ＰＤ−１と抗ＰＤ−Ｌ１の両方が、海馬において、抗炎症性サイトカインｉｌ−１０に対する炎症促進性サイトカインｉｌ−１２ｐ４０の発現レベルを低下させたことを見出した。さらに、両方の処置が、炎症促進性サイトカインｔｎｆαおよびｉｌ−６のレベルを低下させた（図２２Ｇ）。

タウの病態の動物モデルにおける神経炎症は、過剰リン酸化および疾患進行を増強すると示された。ゆえに、本発明者らは、タウの過剰リン酸化に対する抗ＰＤ−１および抗ＰＤ−Ｌ１の効果を試験した。ＤＭ−ｈＴＡＵマウス由来の脳切片の免疫組織化学的解析から、抗ＰＤ−１および抗ＰＤ−Ｌ１による遮断の後、ＩｇＧアイソタイプコントロール群と比べて、海馬ＣＡ１およびＣＡ３領域におけるＡＴ−１００（ホスホ−Ｔａｕ Ｔｈｒ２１２、Ｓｅｒ２１４）およびＡＴ−１８０（ホスホ−Ｔａｕ Ｔｈｒ２３１）エピトープの免疫反応性の低下が明らかになった（図２３Ａ〜Ｆ）。

癌免疫療法において、抗ＰＤ−Ｌ１抗体は、抗ＰＤ−１よりも高用量で使用されるので、最後に、本発明者らは、抗ＰＤ−Ｌ１抗体の用量の増加が優れた効果を及ぼし得るかを試験した。ゆえに、本発明者らは、９月齢の雌と雄（群（ａｇｒｏｕｐｓ）の間で等しく分配される）の両方のＤＭ−ｈＴＡＵマウスの短期記憶に対する様々な用量の効果を試験するさらなる研究を行った。単回注射の１．５ｍｇ／マウスのコントロール抗体に対して、０．１、０．５または１．５ｍｇ／マウスでの単回注射の抗ＰＤ−Ｌ１でマウスを処置した。ＷＴ同腹仔マウスを、インタクトな認知能力に対するコントロールとして使用した。０．５または１．５ｍｇ／マウスで処置されたマウスは、ＷＴマウスの成績とほぼ等しい成績を示した；１．５ｍｇ／マウスという抗ＰＤ−Ｌ１の用量は、わずかにより有効であったが、用量間の差は有意ではなかった（図２３Ｇ）。

まとめると、これらの結果は、アミロイドベータの病態の動物モデルで見られる広範な効果と同様に、全身の免疫の活性化が、タウの動物モデルにおいて疾患の病態に関連する脳における重要なプロセスを修正することを示唆している。
実施例２０．ＰＤ−１の遮断は５ＸＦＡＤマウスにおいて海馬の神経発生を増強する

ダブルコルチン（ＤＣＸ）は、ニューロンの前駆体細胞および未熟なニューロンによって発現される微小管結合タンパク質である。成体のニューロン組織では、ＤＣＸは、ほぼもっぱら発生中のニューロンによって発現されるので、神経発生のマーカーとして使用される。雌５ＸＦＡＤマウス（コホートの平均月齢は６月齢）を抗ＰＤ−１特異的抗体（ＩｇＧ２ａ抗マウスＰＤ−１；ｎ＝１７）またはＩｇＧコントロール（ラットＩｇＧ２ａ；ｎ＝７）で処置し、１ヶ月後に屠殺した。同齢の野生型（ＷＴ；ｎ＝９）マウスをさらなるコントロール群として使用した。代表的な動物由来の傍矢状洞の脳切片を調製し、歯状回の顆粒層を標識した（図２４Ａ）。脳切片をニューロンのマーカーであるＮｅｕＮ（緑色）、ＤＣＸ（赤色）およびｈｏｅｃｈｓｔ核染色（青色）について免疫染色した。ＤＣＸ＋細胞を、６ｍ厚の脳切片から二重盲検で定量した（図２４Ｂ）。反復測定の結果を、１元配置分散分析およびダネットの事後検定を用いて解析した。エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、^＊＊＊Ｐ＜０．００１。結果は、ＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１経路の全身における遮断が、海馬の神経発生を支持するように脳の環境を調節する防御免疫の活性（これは、行動障害および認知障害に対する有益な効果と以前に繰り返し相関した病態に対する効果である）を引き起こすことを示している。
実施例２１．ＰＤ−１遮断は５ＸＦＡＤマウスにおいて海馬のシナプス可塑性を高める

グルタミン酸作動性ニューロンによって発現される小胞グルタミン酸トランスポーター１（ＶＧＬＵＴ１）は、シナプス小胞内へのグルタミン酸の取り込みを媒介し、海馬のシナプス可塑性および海馬依存性の空間学習に寄与すると示された。雌５ＸＦＡＤマウス（コホートの平均月齢は６月齢）を抗ＰＤ−１特異的抗体（ＩｇＧ２ａ抗マウスＰＤ−１；ｎ＝１７）またはＩｇＧコントロール（ラットＩｇＧ２ａ；ｎ＝７）で処置し、１ヶ月後に屠殺した。同齢の野生型（ＷＴ；ｎ＝９）マウスをさらなるコントロール群として使用した。代表的な動物由来の傍矢状洞の脳切片を調製し、鉤状回の領域を標識した（図２５Ａ）。脳切片をＶｇｌｕＴ１について免疫染色した。蛍光（Ｆｌｏｒｅｓｃｅｎｃｅ）強度を、ＩｍａｇｅＪソフトウェアを用いて６ｍ厚の脳切片から二重盲検で定量した（図２５Ｂ）。反復測定の結果を、１元配置分散分析およびダネットの事後検定を用いて解析した。エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、^＊＊＊Ｐ＜０．００１。結果は、ＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１経路の全身における遮断が、末梢において防御免疫の活性を引き起こすことならびにシナプス可塑性を支持するようにおよび認知機能を保存するように脳環境を調節することを示している。
実施例２２．ＰＤ−１の遮断は５ＸＦＡＤマウスの鉤状回におけるニューロンの喪失を減少させる

５ＸＦＡＤトランスジェニックマウスモデルは、ヒト患者におけるＡＤの進行によく似た著しいニューロンの喪失を示す、数少ないアミロイド動物モデルの１つである。５ＸＦＡＤマウスにおけるニューロンの喪失を、鉤状回および皮層第５層において特徴づけた。雌５ＸＦＡＤマウス（コホートの平均月齢は６月齢）を抗ＰＤ−１特異的抗体（ＩｇＧ２ａ抗マウスＰＤ−１；ｎ＝１７）またはＩｇＧコントロール（ラットＩｇＧ２ａ；ｎ＝７）で処置し、１ヶ月後に屠殺した。同齢の野生型（ＷＴ；ｎ＝９）マウスをさらなるコントロール群として使用した。代表的な動物由来の傍矢状の脳切片を調製し、鉤状回の領域を標識した（図２６Ａ）。脳切片をＮｅｕＮについて免疫染色し、ニューロン（緑色）を標識した。鉤状回のニューロンを、ＩｍａｇｅＪソフトウェアを用いて６ｍ厚の脳切片から二重盲検で定量した（図２６Ｂ）。反復測定の結果を、１元配置分散分析およびダネットの事後検定を用いて解析した。エラーバーは、平均値±ｓ．ｅ．ｍ．を表している；^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、^＊＊＊Ｐ＜０．００１。結果は、ＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１経路の全身における遮断が、ニューロンの生存およびレスキューの支持を許容するようになるように脳環境を調節する防御免疫の活性を引き起こし、最終的にはより良好な認知能力に寄与することを示している。

最後に、本明細書の態様は、特定の実施形態に言及することによって強調されたが、当業者は、開示されたこれらの実施形態が、本明細書中に開示される主題の原理を単に例証していることを容易に認識するだろうということが理解されるべきである。ゆえに、開示される主題は、そのように明確に述べられていない限り、本明細書中に記載される特定の化合物、組成物、物品、装置、方法論、プロトコルおよび／または試薬などに決して限定されないことが理解されるべきである。さらに、当業者は、ある特定の変更、改変、並べ替え、変更、追加、削除およびそれらのサブコンビネーションが、本明細書の精神から逸脱することなく本明細書中の教示に従って行われ得ることを認識するだろう。ゆえに、以下の添付の請求項および今後導入される請求項が、それらの真の精神および範囲内にあるような変更、改変、並べ替え、変更、追加、削除およびサブコンビネーションのすべてを含むと解釈されると意図される。

本発明を実施するための、本発明者らに知られている最良の形式を含む、本発明のある特定の実施形態が、本明細書中に記載されている。当然のことながら、前述の説明を読むと、当業者には、これらの記載された実施形態に対するバリエーションが明らかになるだろう。本発明者らは、当業者がそのようなバリエーションを必要に応じて使用すると予想し、本発明者らは、本明細書中に具体的に記載されたものとは別の方法で本発明が実施されると意図している。したがって、本発明は、適用法で認められているように、添付される請求項に列挙される主題の改変および等価物のすべてを含む。さらに、別段本明細書中に示されないかまたは文脈によって別段明らかに矛盾しない限り、上に記載された実施形態の可能なすべてのバリエーションにおけるそれらの任意の組み合わせが、本発明によって包含される。

本発明の代替の実施形態、エレメントまたは工程のグループ化は、限定として解釈されるべきでない。各群のメンバーは、個別に、または本明細書中に開示される他の群のメンバーとの任意の組み合わせで、言及され得、特許請求され得る。ある群の１つ以上のメンバーは、便利さおよび／または特許性の理由で、１つの群に含められ得るかまたは１つの群から削除され得ることが予想される。そのような何らかの包含または削除が生じた場合、本明細書は、修正されたそのグループを含むと見なし、したがって、添付の請求項において使用されるすべてのマーカッシュ群の記載を満たすものと見なす。

別段示されない限り、本明細書および請求項において使用される特徴、項目、数量、パラメータ、特性、期間などを表すすべての数字は、すべての場合において用語「約」によって修飾されていると理解されるべきである。本明細書中で使用されるとき、用語「約」は、そのように形容される特徴、項目、数量、パラメータ、特性または期間が、述べられている特徴、項目、数量、パラメータ、特性または期間の値よりプラスまたはマイナス１０パーセント上および下の範囲を包含することを意味する。したがって、それとは反対のことが示されない限り、本明細書および添付の請求項に示される数値パラメータは、ばらつき得る近似値である。例えば、質量分析の機器は、所与の被検体の質量を測定する際にわずかにばらつき得るので、イオンの質量またはイオンの質量／電荷比の文脈における用語「約」は、＋／−０．５０原子質量単位のことを指す。最低限でも、また、均等論の適用を請求項の範囲に限定するものではなく、各数値の表示は、少なくとも、報告されている有効数字の数を考慮して、通常の丸め法を適用することによって、解釈されるべきである。

ある実施形態またはある実施形態の態様を言及する際の用語「〜し得る（ｍａｙ）」または「〜し得る（ｃａｎ）」の使用は、その用語に「〜しないかもしれない」または「〜できない」という代替の意味も保持させている。したがって、本明細書が、ある実施形態またはある実施形態の態様が、本発明の主題の一部として含められ得ることを開示する場合、その消極的な限定または排他的な条件は、ある実施形態またはある実施形態の態様が、本発明の主題の一部として含められないかもしれないかまたは含められることができないことを意味するとも明示的に意味される。同様に、ある実施形態またはある実施形態の態様を言及する際の用語「必要に応じて」の使用は、そのような実施形態または実施形態の態様が、本発明の主題の一部として含められ得るか、または本発明の主題の一部として含められないかもしれないことを意味する。そのような消極的な限定または排他的な条件が適用されるか否かは、その消極的な限定または排他的な条件が、特許請求される主題に列挙されているか否かに基づく。

本発明の広範な範囲を示す数値範囲および数値は、近似値であるが、特定の例において示されている数値範囲および数値は、可能な限り正確に報告される。しかしながら、いずれの数値範囲または数値も、本質的には、それぞれの試験測定値に見られる標準偏差に必然的に起因するある特定の誤差を含む。本明細書中の値の数値範囲の列挙は、単に、その範囲内に入る各別個の数値に個別に言及する簡潔な方法の役割をすると意図されている。本明細書中で別段示されない限り、数値範囲の各個別の値は、それが本明細書中に個別に列挙されたかのように、本明細書に組み込まれる。

本発明を説明している文脈（特に、以下の請求項の文脈）において使用される用語「ａ」、「ａｎ」、「ｔｈｅ」および同様の言及は、本明細書中に別段示されないかまたは文脈に明らかに矛盾しない限り、単数と複数の両方を包含すると解釈されるべきである。さらに、特定のエレメントに対する順序を表す表示（例えば、「第１」、「第２」、「第３」など）は、それらのエレメントを区別するために使用されるのであって、別段具体的に述べられない限り、そのようなエレメントの必要な数または限定される数を示さないかまたは暗示せず、そのようなエレメントの特定の位置または順序を示さない。本明細書中に記載されるすべての方法が、本明細書中に別段示されないかまたは別段文脈に明らかに矛盾しない限り、任意の好適な順序で行われ得る。いずれのおよびすべての例、または本明細書中に提供される例示的な言語（例えば、「例えば（ｓｕｃｈ ａｓ）」）の使用は、単に本発明をより良く明らかにすると意図され、別の方法で特許請求される本発明の範囲を限定しない。本明細書中のどの言語も、本発明の実施に不可欠な、特許請求されていない任意のエレメントを示していると解釈されるべきでない。

請求項において使用されるとき、出願されたとおりであるか補正によって追加されたものであるかに関わらず、「〜を含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」というオープンエンドの移行語（ならびに含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）、含む（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）および有するのようなその等価なオープンエンドの移行句）は、単独でまたは列挙されていない主題と組み合わせて、明示的に列挙されているエレメント、限定、工程および／または特徴をすべて包含する；挙げられているエレメント、限定および／または特徴は、必須であるが、他の挙げられていないエレメント、限定および／または特徴を追加してもよく、なおも請求項の範囲内である構成をなしている。本明細書中に開示される具体的な実施形態は、「〜を含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」の代わりにまたは補正としてクローズドエンドの移行句である「〜からなる」もしくは「本質的に〜からなる」を用いて請求項においてさらに限定され得る。請求項において使用されるとき、出願されたとおりであるか補正によって追加されたものであるかに関わらず、「〜からなる」というクローズドエンドの移行句は、請求項に明示的に列挙されていないあらゆるエレメント、限定、工程または特徴を排除する。「本質的に〜からなる」というクローズドエンドの移行句は、請求項の範囲を、明示的に列挙されたエレメント、限定、工程および／または特徴、ならびに特許請求される主題の基本的および新規な特徴に実質的に影響を与えない他のあらゆるエレメント、限定、工程および／または特徴に限定する。したがって、「〜を含む」というオープンエンドの移行句の意味は、具体的に列挙されているエレメント、限定、工程および／または特徴ならびにあらゆる随意のさらなる特定されていないものをすべて包含すると定義される。「〜からなる」というクローズドエンドの移行句の意味は、請求項に具体的に列挙されているエレメント、限定、工程および／または特徴のみを含むと定義されるのに対して、「本質的に〜からなる」というクローズドエンドの移行句の意味は、請求項に具体的に列挙されているエレメント、限定、工程および／または特徴ならびに特許請求されている主題の基本的および新規な特徴に実質的に影響を与えないエレメント、限定、工程および／または特徴のみを含むと定義される。ゆえに、「〜を含む」というオープンエンドの移行句（およびその等価なオープンエンドの移行句）は、その意味の範囲内で限定的な事例として、「〜からなる」または「本質的に〜からなる」というクローズドエンドの移行句によって特定される特許請求されている主題を含む。したがって、句「〜を含む」を用いて本明細書に記載されるかまたはそのように特許請求される実施形態は、句「本質的に〜からなる」および「〜からなる」に対して本明細書中で明示的にまたは本質的に明白に記載され、可能にされ、かつ支持される。

本明細書において参照および特定されるすべての特許、特許公開公報および他の刊行物は、それらの全体が、例えば、本発明に関して使用され得るそのような刊行物に記載されている組成物および方法論を記載および開示するために、個々にかつ明確に参照により本明細書中に援用される。これらの刊行物は単に、本願の出願日より前のそれらの開示のために提供されている。この点において、本発明者らが、先行発明を理由にまたは他のあらゆる理由のために、そのような開示に先行する権利がないということを自認するものとして解釈されるべきものは何もない。これらの文献の日付に関するすべての記載または内容に関する表現は、本出願人に利用可能な情報に基づくものであり、これらの文献の日付または内容の正確性に関するいかなる承認も構成するものではない。

最後に、本明細書中で使用される用語は、単に特定の実施形態を説明するためのものであって、本発明の範囲を限定する意図はなく、本発明の範囲は、請求項によってのみ定義される。したがって、本発明は、正確に示されるおよび記載されるものに限定されない。

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Claims (47)

1. タウオパチーの処置において使用するための、抗ＰＤ−１抗体、抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＴＩＭ−３抗体またはそれらの任意の組み合わせを含む薬学的組成物であって、
   該薬学的組成物は、少なくとも２コースの治療を含む投与レジメンによって投与され、各コースの治療は、該薬学的組成物が個体に投与される処置セッションの後に、該薬学的組成物が該個体に投与されない非処置期間を順に含み、
   該非処置期間は、該処置セッションより長く；
   該処置セッション中の該薬学的組成物の投与が、反復投与である場合、該非処置期間は、該処置セッション中の反復投与間の期間よりも長く；
   該薬学的組成物の投与は、全身の免疫抑制レベルを一過性に低下させ、中枢神経系への免疫細胞の選択的動員を促進する際に脈絡叢入口活性を高め、それにより、該個体を処置する、薬学的組成物。
2. 網膜変性障害の処置において使用するための、抗ＰＤ−１抗体、抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＴＩＭ−３抗体またはそれらの任意の組み合わせを含む薬学的組成物であって、
   該薬学的組成物は、少なくとも２コースの治療を含む投与レジメンによって投与され、各コースの治療は、該薬学的組成物が個体に投与される処置セッションの後に、該薬学的組成物が該個体に投与されない非処置期間を順に含み、
   該非処置期間は、該処置セッションより長く；
   該処置セッション中の該薬学的組成物の投与が、反復投与である場合、該非処置期間は、該処置セッション中の反復投与間の期間よりも長く；
   該薬学的組成物の投与は、全身の免疫抑制レベルを一過性に低下させ、中枢神経系への免疫細胞の選択的動員を促進する際に脈絡叢入口活性を高め、それにより、該個体を処置する、薬学的組成物。
3. 前記処置セッション中の前記薬学的組成物の投与が、単回投与である、請求項１または請求項２に記載の使用のための薬学的組成物。
4. 前記処置セッション中の前記薬学的組成物の投与が、反復投与である、請求項１または請求項２に記載の使用のための薬学的組成物。
5. 前記反復投与が、１日に１回、２日に１回、３日に１回、４日に１回、５日に１回または６日に１回行われる、請求項４に記載の使用のための薬学的組成物。
6. 前記反復投与が、１週間に１回または２週間に１回、３週間に１回または４週間に１回行われる、請求項４に記載の使用のための薬学的組成物。
7. 前記処置セッションが、１日間〜４週間である、請求項１〜６のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
8. 前記処置セッションが、３日間〜４週間である、請求項７に記載の使用のための薬学的組成物。
9. 前記処置セッションが、１週間〜４週間である、請求項８に記載の使用のための薬学的組成物。
10. 前記非処置期間が、１週間〜６ヶ月間である、請求項１〜６のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
11. 前記非処置期間が、２週間〜６ヶ月間である、請求項１０に記載の使用のための薬学的組成物。
12. 前記非処置期間が、３週間〜６ヶ月間である、請求項１１に記載の使用のための薬学的組成物。
13. 前記非処置期間が、１ヶ月間〜３ヶ月間である、請求項１２に記載の使用のための薬学的組成物。
14. 前記非処置期間が、１ヶ月間〜２ヶ月間である、請求項１３に記載の使用のための薬学的組成物。
15. 前記抗ＰＤ−１抗体が、中和抗ＰＤ−１抗体であり、前記抗ＰＤ−Ｌ１抗体が、中和抗ＰＤ−Ｌ１抗体であり、かつ／または前記抗ＴＩＭ−３抗体が、中和抗ＴＩＭ−３抗体である、請求項１〜１４のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
16. 前記抗ＰＤ−１抗体が、ヒト中和抗ＰＤ−１抗体またはヒト化中和抗ＰＤ−１抗体である、請求項１〜１４のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
17. 前記抗ＰＤ−Ｌ１抗体が、ヒト中和抗ＰＤ−Ｌ１抗体またはヒト化中和抗ＰＤ−Ｌ１抗体である、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
18. 前記抗ＴＩＭ−３抗体が、ヒト中和抗ＴＩＭ−３抗体またはヒト化中和抗ＴＩＭ−３抗体である、請求項１〜１６のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
19. 前記全身の免疫抑制レベルの一過性の低下が、ＩＦＮγ産生白血球の全身における存在もしくは活性の増加および／またはＩＦＮγサイトカインの全身における存在もしくは活性の増加を伴う、請求項１〜１８のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
20. 前記全身の免疫抑制レベルの一過性の低下が、エフェクターＴ細胞の全身における存在もしくは活性の増加を伴う、請求項１〜１９のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
21. 前記全身の免疫抑制レベルの一過性の低下が、調節性Ｔ細胞の全身における存在もしくは活性の減少および／またはＩＬ−１０サイトカインの全身における存在の減少を伴う、請求項１〜２０のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
22. 前記全身の免疫抑制レベルの一過性の低下が、全身における存在または骨髄由来サプレッサー細胞（ＭＤＳＣ）の減少を伴う、請求項１〜２１のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
23. 前記全身の免疫抑制レベルの一過性の低下が、１つ以上の免疫チェックポイントによって免疫系に課された制限の解除によって生じる、請求項１〜２２のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
24. 前記薬学的組成物の投与が、前記１つ以上の免疫チェックポイントを遮断し、それによって、前記全身の免疫抑制レベルの一過性の低下を引き起こす、請求項２３に記載の使用のための薬学的組成物。
25. 前記１つ以上の免疫チェックポイントが、ＰＤ１−ＰＤ−Ｌ１、ＰＤ１−ＰＤ−Ｌ２、ＴＩＭ−３−Ｇａｌ９またはそれらの任意の組み合わせを含む、請求項２４に記載の使用のための薬学的組成物。
26. 前記処置セッション中の前記薬学的組成物の投与が、少なくともＩＦＮγ産生白血球および／またはＩＦＮγサイトカインの全身における存在または活性が基準より高くなるまで維持され、基準より高くなった時点で該投与は停止され、前記非処置期間が、ＩＦＮγ産生白血球および／またはＩＦＮγサイトカインの全身における存在または活性が基準より高い限り維持され、
    該基準は、
    ａ）該投与前の前記個体から得られた最新の血液サンプルにおいて測定されたＩＦＮγ産生白血球および／またはＩＦＮγサイトカインの全身における存在または活性のレベル；または
    ｂ）タウオパチーに苦しんでいる個体の集団に特徴的なＩＦＮγ産生白血球および／またはＩＦＮγサイトカインの全身における存在または活性のレベル
    を含む、請求項１〜２５のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
27. 可溶性アミロイドベータペプチドの脳内レベルが、前記個体において低下し、脳内のアミロイドベータ（Ａβ）プラーク量が、該個体において減少するかまたは取り除かれ、海馬グリオーシスが、該個体において低減し、炎症促進性サイトカインの脳内レベルが、該個体において低下し、脳の炎症が、該個体において低減し、かつ／または認知機能が、該個体において改善される、請求項１〜２６のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
28. 前記改善される認知機能が、学習、記憶、心象の創造、可塑性、思考、自覚、推理、空間能力、発話および言語技能、言語習得、判断注意の能力またはそれらの任意の組み合わせである、請求項２７に記載の使用のための薬学的組成物。
29. 前記免疫細胞が、単球、マクロファージまたはＴ細胞を含む、請求項１〜２８のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
30. 前記Ｔ細胞が、調節性Ｔ細胞を含む、２９に記載の使用のための薬学的組成物。
31. 前記タウオパチーが、アルツハイマー病、嗜銀顆粒性疾患、慢性外傷性脳障害、大脳皮質基底核変性症、拳闘家認知症、前頭側頭型認知症、前頭側頭葉変性症、ハラーフォルデン・シュパッツ病、ハンチントン病、神経節膠腫、神経節細胞腫、球状グリア細胞タウオパチー、鉛脳障害、リポフスチン沈着症、リティコ・ボディグ病（グアムのパーキンソン・認知症複合）、髄膜血管腫症、１７番染色体に連鎖するパーキンソニズム疾患、ピック病、以前は神経原線維変化型認知症（ＮＦＴ−認知症）として知られていた原発性加齢性タウオパチー（ＰＡＲＴ）、脳炎後パーキンソニズム、進行性核上性麻痺、亜急性硬化性全脳炎または結節性硬化症である、請求項１〜３０のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
32. 前記網膜変性障害が、滲出型加齢黄斑変性症、非滲出型加齢黄斑変性症、網膜色素変性症、コロイデレミア、錐体桿体網膜ジストロフィー、脳回転状萎縮、若年性網膜分離症、卵黄様黄斑ジストロフィー（ベスト病）、無βリポタンパク質血症（バッセン・コーンツヴァイク病）、バルデー・ビートル症候群、青錐体単色症、優性ドルーゼン、ゴールドマン・ファーブル硝子体網膜性ジストロフィー（Ｓ錐体増強症候群）、カーンズ・セイヤー症候群、ローレンス・ムーン症候群、レーバー先天性黒内障、レーバーレフサム病、小口病、乳頭周囲（中心周囲）脈絡膜ジストロフィー、色素パターンジストロフィー、ソースビー黄斑ジストロフィー、シュタルガルト病、スティックラー症候群、アッシャー症候群またはワーグナー硝子体網膜性ジストロフィーである、請求項２〜３０のいずれか１項に記載の使用のための薬学的組成物。
33. タウオパチーの処置における、抗ＰＤ−１抗体、抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＴＩＭ−３抗体またはそれらの任意の組み合わせの使用。
34. タウオパチーを処置するための薬の製造における、抗ＰＤ−１抗体、抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＴＩＭ−３抗体またはそれらの任意の組み合わせの使用。
35. 前記抗ＰＤ−１抗体が、中和抗ＰＤ−１抗体であり、前記抗ＰＤ−Ｌ１抗体が、中和抗ＰＤ−Ｌ１抗体であり、かつ／または前記抗ＴＩＭ−３抗体が、中和抗ＴＩＭ−３抗体である、請求項３３または請求項３４に記載の使用。
36. 前記抗ＰＤ−１抗体が、ヒト中和抗ＰＤ−１抗体またはヒト化中和抗ＰＤ−１抗体である、請求項３３〜３５のいずれか１項に記載の使用。
37. 前記抗ＰＤ−Ｌ１抗体が、ヒト中和抗ＰＤ−Ｌ１抗体またはヒト化中和抗ＰＤ−Ｌ１抗体である、請求項３３〜３６のいずれか１項に記載の使用。
38. 前記抗ＴＩＭ−３抗体が、ヒト中和抗ＴＩＭ−３抗体またはヒト化中和抗ＴＩＭ−３抗体である、請求項３３〜３７のいずれか１項に記載の使用。
39. 前記タウオパチーが、アルツハイマー病、嗜銀顆粒性疾患、慢性外傷性脳障害、大脳皮質基底核変性症、拳闘家認知症、前頭側頭型認知症、前頭側頭葉変性症、ハラーフォルデン・シュパッツ病、ハンチントン病、神経節膠腫、神経節細胞腫、球状グリア細胞タウオパチー、鉛脳障害、リポフスチン沈着症、リティコ・ボディグ病（グアムのパーキンソン・認知症複合）、髄膜血管腫症、１７番染色体に連鎖するパーキンソニズム疾患、ピック病、以前は神経原線維変化型認知症（ＮＦＴ−認知症）として知られていた原発性加齢性タウオパチー（ＰＡＲＴ）、脳炎後パーキンソニズム、進行性核上性麻痺、亜急性硬化性全脳炎または結節性硬化症である、請求項３３〜３８のいずれか１項に記載の使用。
40. 網膜変性障害の処置における、抗ＰＤ−１抗体、抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＴＩＭ−３抗体またはそれらの任意の組み合わせの使用。
41. 網膜変性障害を処置するための薬の製造における、抗ＰＤ−１抗体、抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＴＩＭ−３抗体またはそれらの任意の組み合わせの使用。
42. 前記抗ＰＤ−１抗体が、中和抗ＰＤ−１抗体であり、前記抗ＰＤ−Ｌ１抗体が、中和抗ＰＤ−Ｌ１抗体であり、かつ／または前記抗ＴＩＭ−３抗体が、中和抗ＴＩＭ−３抗体である、請求項４０または請求項４１に記載の使用。
43. 前記抗ＰＤ−１抗体が、ヒト中和抗ＰＤ−１抗体またはヒト化中和抗ＰＤ−１抗体である、請求項４０〜４２のいずれか１項に記載の使用。
44. 前記抗ＰＤ−Ｌ１抗体が、ヒト中和抗ＰＤ−Ｌ１抗体またはヒト化中和抗ＰＤ−Ｌ１抗体である、請求項４０〜４３のいずれか１項に記載の使用。
45. 前記抗ＴＩＭ−３抗体が、ヒト中和抗ＴＩＭ−３抗体またはヒト化中和抗ＴＩＭ−３抗体である、請求項４０〜４４のいずれか１項に記載の使用。
46. 前記網膜変性障害が、滲出型加齢黄斑変性症、非滲出型加齢黄斑変性症、網膜色素変性症、コロイデレミア、錐体桿体網膜ジストロフィー、脳回転状萎縮、若年性網膜分離症、卵黄様黄斑ジストロフィー（ベスト病）、無βリポタンパク質血症（バッセン・コーンツヴァイク病）、バルデー・ビートル症候群、青錐体単色症、優性ドルーゼン、ゴールドマン・ファーブル硝子体網膜性ジストロフィー（Ｓ錐体増強症候群）、カーンズ・セイヤー症候群、ローレンス・ムーン症候群、レーバー先天性黒内障、レーバーレフサム病、小口病、乳頭周囲（中心周囲）脈絡膜ジストロフィー、色素パターンジストロフィー、ソースビー黄斑ジストロフィー、シュタルガルト病、スティックラー症候群、アッシャー症候群またはワーグナー硝子体網膜性ジストロフィーである、請求項４０〜４５のいずれか１項に記載の使用。
47. タウオパチーの処置を必要とする個体に対してタウオパチーを処置する方法であって、該方法は、抗ＰＤ−１抗体、抗ＰＤ−Ｌ１抗体、抗ＴＩＭ−３抗体またはそれらの任意の組み合わせを含む組成物を該個体に投与する工程を含み、
    該組成物は、少なくとも２コースの治療を含む投与レジメンによって投与され、各コースの治療は、該組成物が個体に投与される処置セッションの後に、該組成物が該個体に投与されない非処置期間を順に含み、
    該非処置期間は、該処置セッションより長く；
    該処置セッション中の該組成物の投与が、反復投与である場合、該非処置期間は、該処置セッション中の反復投与間の期間よりも長く；
    該組成物の投与は、全身の免疫抑制レベルを一過性に低下させ、中枢神経系への免疫細胞の選択的動員を促進する際に脈絡叢入口活性を高め、それにより、該個体を処置する、方法。