JP2019187284A - 脂肪族アルコール合成細菌及び脂肪族アルコールの製造方法 - Google Patents
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Abstract
【課題】生物学的な方法により脂肪族アルコールを製造する技術を提供する。【解決手段】Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株（ＮＩＴＥ Ｐ−０２６２０）又はその変異株、及び前記微生物を用いた脂肪族アルコールの製造方法。また、前記微生物株が有するポリヌクレオチド及び、前記ポリヌクレオチドを含む細胞を用いた脂肪族アルコールの製造方法。【選択図】なし
Description
本発明は、脂肪族アルコール合成細菌及び脂肪族アルコールの製造方法に関する。具体的には、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属に属する新規微生物、及び前記微生物が有する新規ポリヌクレオチド、並びに前記微生物又は前記ポリヌクレオチドを利用した脂肪族アルコールの製造方法に関する。
脂肪族アルコールは、化粧品、医薬品、食品などの添加剤、洗剤の原材料、燃料等の様々な製品に用いられている。脂肪族アルコールは、主に石油を原料として製造されている。
一方、近年、大腸菌等に、脂肪族アルコール合成に関与する遺伝子群を導入し、脂肪族アルコールを生産させる試みが報告されている。
例えば、非特許文献１には、チオエステラーゼ（‘ｔｅｓＡ）、アシル−ＣｏＡ合成酵素（ｆａｄＤ）及びＡｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｏｒ ｃａｌｃｏａｃｅｔｉｃｕｓ由来の脂肪酸アシル−ＣｏＡレダクターゼ（ａｃｒ１）を過剰発現させ、アシル−ＣｏＡ脱水素酵素（ｆａｄＥ）を欠失させることにより、大腸菌で脂肪族アルコールを高生産させる試みが報告されている。
また、非特許文献２には、Ｏｒｙｚａ ｓａｔｉｖａ（ｒｉｃｅ）由来のα−ジオキシゲナーゼ遺伝子（脂肪酸から炭素数が１つ少ない脂肪族アルデヒドを生産させる）を大腸菌に導入し、チオエステラーゼ（ｔｅｓＡ’）及びアルデヒドレダクターゼを過剰発現させることにより、奇数鎖脂肪族アルコールを高生産させる試みが記載されている。
また、非特許文献３にも、非特許文献１と同様の試みであるが、チオエステラーゼ（ｔｅｓＡ’）及びアシル−ＣｏＡ合成酵素（ｆａｄＤ）を過剰発現させ、アシル−ＣｏＡ脱水素酵素（ｆａｄＥ）を欠失させた大腸菌に、Ｍａｒｉｎｏｂａｃｔｏｒ ａｑｕａｅｏｌｅｉ由来の脂肪酸アシル−ＣｏＡレダクターゼ遺伝子（Ｍａｑｕ＿２２２０遺伝子）を導入することにより、脂肪族アルコールを高生産させる試みが報告されている。
例えば、非特許文献１には、チオエステラーゼ（‘ｔｅｓＡ）、アシル−ＣｏＡ合成酵素（ｆａｄＤ）及びＡｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｏｒ ｃａｌｃｏａｃｅｔｉｃｕｓ由来の脂肪酸アシル−ＣｏＡレダクターゼ（ａｃｒ１）を過剰発現させ、アシル−ＣｏＡ脱水素酵素（ｆａｄＥ）を欠失させることにより、大腸菌で脂肪族アルコールを高生産させる試みが報告されている。
また、非特許文献２には、Ｏｒｙｚａ ｓａｔｉｖａ（ｒｉｃｅ）由来のα−ジオキシゲナーゼ遺伝子（脂肪酸から炭素数が１つ少ない脂肪族アルデヒドを生産させる）を大腸菌に導入し、チオエステラーゼ（ｔｅｓＡ’）及びアルデヒドレダクターゼを過剰発現させることにより、奇数鎖脂肪族アルコールを高生産させる試みが記載されている。
また、非特許文献３にも、非特許文献１と同様の試みであるが、チオエステラーゼ（ｔｅｓＡ’）及びアシル−ＣｏＡ合成酵素（ｆａｄＤ）を過剰発現させ、アシル−ＣｏＡ脱水素酵素（ｆａｄＥ）を欠失させた大腸菌に、Ｍａｒｉｎｏｂａｃｔｏｒ ａｑｕａｅｏｌｅｉ由来の脂肪酸アシル−ＣｏＡレダクターゼ遺伝子（Ｍａｑｕ＿２２２０遺伝子）を導入することにより、脂肪族アルコールを高生産させる試みが報告されている。
Steen EJ, et al., 2010. Microbial production of fatty-acid-derived fuels and chemicals from plant biomass. Nature. 463: 559-562.
Cao YX, et al., 2015. Biosynthesis of odd-chain fatty alcohols in Escherichia coli. Metab Eng. 29: 113-123.
Liu A, et al., 2013. Fatty alcohol production in engineered E. coli expressing Marinobacter fatty acyl-CoA reductases. Appl Microbiol Biotechnol. 97: 7061-7071.
微生物による脂肪族アルコールの生産性は、脂肪族アルコールの細胞内蓄積量により制限されると考えられる。しかしながら、非特許文献１〜３に記載の形質転換体において、脂肪族アルコールの細胞内含有量は、それほど高いとはいえない。
例えば、非特許文献１及び２に記載の脂肪族アルコール生成量から算出される乾燥細胞重量あたりの脂肪族アルコール含有量は、最大でも１０％程度である。また、非特許文献３に記載の脂肪族アルコール生成量から算出される乾燥細胞重量あたりの脂肪族アルコール含有量は、最大でも１７％程度である。
例えば、非特許文献１及び２に記載の脂肪族アルコール生成量から算出される乾燥細胞重量あたりの脂肪族アルコール含有量は、最大でも１０％程度である。また、非特許文献３に記載の脂肪族アルコール生成量から算出される乾燥細胞重量あたりの脂肪族アルコール含有量は、最大でも１７％程度である。
そのため、生物学的な方法による脂肪族アルコールの製造を実用化するためには、脂肪族アルコールの生産能がより高い酵素及び細胞が求められる。
本発明は上記事情に鑑みて為されたものであり、生物学的な方法により脂肪族アルコールを製造する技術を提供することを目的とする。
本発明は以下の態様を含む。
〔１〕Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株（ＮＩＴＥ Ｐ−０２６２０）又はその変異株。
〔２〕下記（Ａ１）〜（Ａ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチド。
（Ａ１）配列番号２に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ２）配列番号２に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ３）配列番号２に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ４）配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド
（Ａ５）配列番号１に記載の塩基配列において１又は複数個の塩基が欠失、置換、付加、又は挿入された塩基配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ６）配列番号１に記載の塩基配列と８０％以上の配列同一性を有する塩基配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ７）配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
〔３〕下記（Ｂ１）〜（Ｂ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチド。
（Ｂ１）配列番号４に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ｂ２）配列番号４に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードし、且つ配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド（ｐｈｓＡ）とともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ３）配列番号４に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードし、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ４）配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド
（Ｂ５）配列番号３に記載の塩基配列において１又は複数個の塩基が欠失、置換、付加、又は挿入された塩基配列からなり、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ６）配列番号３に記載の塩基配列と８０％以上の配列同一性を有する塩基配列からなり、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ７）配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
〔４〕〔２〕に記載のポリヌクレオチド及び〔３〕に記載のポリヌクレオチドのいずれか又は両方を含む、ベクター。
〔５〕〔２〕に記載のポリヌクレオチドを含む、細胞。
〔６〕さらに、〔３〕に記載のポリヌクレオチドを含む、請求項５に記載の細胞。
〔７〕（ａ）Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株（ＮＩＴＥ Ｐ−０２６２０）又はその変異株を培養する工程、及び（ｂ）前記工程（ａ）で得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程、を含む、脂肪族アルコールの製造方法。
〔８〕（ａ’）〔５〕又は〔６〕に記載の細胞を培養する工程、及び（ｂ’）前記工程（ａ’）で得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程、を含む、脂肪族アルコールの製造方法。
〔１〕Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株（ＮＩＴＥ Ｐ−０２６２０）又はその変異株。
〔２〕下記（Ａ１）〜（Ａ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチド。
（Ａ１）配列番号２に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ２）配列番号２に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ３）配列番号２に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ４）配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド
（Ａ５）配列番号１に記載の塩基配列において１又は複数個の塩基が欠失、置換、付加、又は挿入された塩基配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ６）配列番号１に記載の塩基配列と８０％以上の配列同一性を有する塩基配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ７）配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
〔３〕下記（Ｂ１）〜（Ｂ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチド。
（Ｂ１）配列番号４に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ｂ２）配列番号４に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードし、且つ配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド（ｐｈｓＡ）とともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ３）配列番号４に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードし、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ４）配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド
（Ｂ５）配列番号３に記載の塩基配列において１又は複数個の塩基が欠失、置換、付加、又は挿入された塩基配列からなり、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ６）配列番号３に記載の塩基配列と８０％以上の配列同一性を有する塩基配列からなり、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ７）配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
〔４〕〔２〕に記載のポリヌクレオチド及び〔３〕に記載のポリヌクレオチドのいずれか又は両方を含む、ベクター。
〔５〕〔２〕に記載のポリヌクレオチドを含む、細胞。
〔６〕さらに、〔３〕に記載のポリヌクレオチドを含む、請求項５に記載の細胞。
〔７〕（ａ）Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株（ＮＩＴＥ Ｐ−０２６２０）又はその変異株を培養する工程、及び（ｂ）前記工程（ａ）で得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程、を含む、脂肪族アルコールの製造方法。
〔８〕（ａ’）〔５〕又は〔６〕に記載の細胞を培養する工程、及び（ｂ’）前記工程（ａ’）で得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程、を含む、脂肪族アルコールの製造方法。
本発明によれば、生物学的な方法により脂肪族アルコールを製造する技術が提供される。
［定義］
本明細書において、「脂肪族アルコール」とは、脂肪族炭化水素の１個の水素原子がヒドロキシ基に置換された化合物を意味する。脂肪族アルコールは、好ましくは、Ｒ−ＯＨ（Ｒは、直鎖状又は分岐鎖状のアルキル基又はアルケニル基を表す。）で表される化合物である。前記式Ｒ−ＯＨにおいて、Ｒは、炭素数１４、１６又は１８の直鎖状又は分岐鎖状のアルキル基又はアルケニル基であることが好ましい。脂肪族アルコールの具体例としては、１−テトラデカノール、１−テトラデセノール、１−ヘキサデカノール、１−ヘキサデセノール、１−オクタデカノール、１−オクタデセノール等が挙げられる。
本明細書において、「脂肪族アルコール」とは、脂肪族炭化水素の１個の水素原子がヒドロキシ基に置換された化合物を意味する。脂肪族アルコールは、好ましくは、Ｒ−ＯＨ（Ｒは、直鎖状又は分岐鎖状のアルキル基又はアルケニル基を表す。）で表される化合物である。前記式Ｒ−ＯＨにおいて、Ｒは、炭素数１４、１６又は１８の直鎖状又は分岐鎖状のアルキル基又はアルケニル基であることが好ましい。脂肪族アルコールの具体例としては、１−テトラデカノール、１−テトラデセノール、１−ヘキサデカノール、１−ヘキサデセノール、１−オクタデカノール、１−オクタデセノール等が挙げられる。
本明細書において、「脂肪族アルコール合成活性」とは、脂肪族アルコールの合成反応を触媒する酵素活性をいう。例えば、脂肪族アルコール合成活性は、アシル−ＣｏＡを還元して、脂肪族アルコールを生成する反応を触媒する活性である（図１参照）。例えば、評価対象のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを大腸菌に導入し、当該ポリヌクレオチドを導入しなかった大腸菌と比較して、当該大腸菌における脂肪族アルコールの生成量が増加し、かつ脂肪族アルデヒドの生成量が増加しなかった場合には、当該ポリペプチドは脂肪族アルコール合成活性を有すると判断することができる。大腸菌は、アシル−ＡＣＰ（acyl carrier protein）／脂肪酸／アシル−ＣｏＡを還元して、脂肪族アルデヒドやさらには脂肪族アルコールにまで変換する酵素は持たないが、脂肪族アルデヒドを還元して脂肪族アルコールに変換する酵素は持つ。例えば、脂肪族アルデヒドを合成するアシル−ＡＣＰレダクターゼを大腸菌で発現させた場合、脂肪族アルデヒドと脂肪族アルコールが両方蓄積されたことが報告されている（Schirmer et al., 2010, Science. 329, 559-562）。そのため、脂肪族アルコールの生成量の増加に加えて、脂肪族アルデヒドの生成量が増加しないことを確認することにより、より正確に対象ポリペプチドの脂肪族アルコール合成活性の有無を評価することができる。より具体的には、評価対象のポリペプチドをコードするポリヌクレオチド（対象ポリヌクレオチド）を、大腸菌で機能するプロモーターに機能的に連結して、発現ベクターを作製する。次いで、前記発現ベクターを大腸菌に導入し、前記大腸菌を定常期になるまで培養する。次いで、この培養物から脂肪族化合物を抽出する。前記抽出物中の脂肪族アルコール及び脂肪族アルデヒドを測定し、対象ポリヌクレオチドを導入しなかった大腸菌の抽出物と比較して、脂肪族アルコールが増加し、脂肪族アルデヒドが増加しなかった場合には、当該ポリペプチドは、脂肪族アルコール合成活性を有すると判断される。培養物からの脂肪族化合物の抽出は、菌体をｎ−ヘプタン等と混合することで行うことができる。抽出物における脂肪族アルコール及び脂肪族アルデヒドの測定は、例えば、ガスクロマトグラフィー質量分析法（ＧＣ−ＭＳ）により行うことができる。
なお、大腸菌では、通常、脂肪族アルコール及び脂肪族アルデヒドを生成しないことが知られており、対象ポリヌクレオチドを導入していない大腸菌の上記脂肪族化合物抽出物中の脂肪族アルコール及び脂肪族アルデヒドは、通常、検出限界以下である。そのため、対象ポリヌクレオチドを導入しなかった大腸菌の脂肪族化合物抽出物中で脂肪族アルコールが検出限界以下であり、対象ポリヌクレオチドを導入した大腸菌の脂肪族化合物抽出物中で脂肪族アルコールが検出された場合も、脂肪族アルコールの生成量が増加した場合に包含される。また、対象ポリヌクレオチドを導入した大腸菌において、細胞乾燥重量に対する脂肪族アルコール重量の割合（％，ｗ／ｗ）が、例えば５％（ｗ／ｗ）以上、好ましくは１０％（ｗ／ｗ）以上、より好ましくは１５％（ｗ／ｗ）以上である場合も、脂肪族アルコールの生成量が増加した場合に包含される。
また、対象ポリヌクレオチドを導入しなかった大腸菌の脂肪族化合物抽出物中で脂肪族アルデヒドが検出限界以下であり、対象ポリヌクレオチドを導入した大腸菌の脂肪族化合物抽出物中で脂肪族アルデヒドが検出限界以下である場合も、脂肪族アルデヒドの生成量が増加しなかった場合に包含される。また、対象ポリヌクレオチドを導入した大腸菌において、細胞乾燥重量に対する脂肪族アルデヒド重量の割合（％，ｗ／ｗ）が、例えば５％（ｗ／ｗ）以下、好ましくは３％（ｗ／ｗ）以下、より好ましくは１％（ｗ／ｗ）以下である場合も、脂肪族アルデヒドの生成量が増加しなかった場合に包含される。
なお、大腸菌では、通常、脂肪族アルコール及び脂肪族アルデヒドを生成しないことが知られており、対象ポリヌクレオチドを導入していない大腸菌の上記脂肪族化合物抽出物中の脂肪族アルコール及び脂肪族アルデヒドは、通常、検出限界以下である。そのため、対象ポリヌクレオチドを導入しなかった大腸菌の脂肪族化合物抽出物中で脂肪族アルコールが検出限界以下であり、対象ポリヌクレオチドを導入した大腸菌の脂肪族化合物抽出物中で脂肪族アルコールが検出された場合も、脂肪族アルコールの生成量が増加した場合に包含される。また、対象ポリヌクレオチドを導入した大腸菌において、細胞乾燥重量に対する脂肪族アルコール重量の割合（％，ｗ／ｗ）が、例えば５％（ｗ／ｗ）以上、好ましくは１０％（ｗ／ｗ）以上、より好ましくは１５％（ｗ／ｗ）以上である場合も、脂肪族アルコールの生成量が増加した場合に包含される。
また、対象ポリヌクレオチドを導入しなかった大腸菌の脂肪族化合物抽出物中で脂肪族アルデヒドが検出限界以下であり、対象ポリヌクレオチドを導入した大腸菌の脂肪族化合物抽出物中で脂肪族アルデヒドが検出限界以下である場合も、脂肪族アルデヒドの生成量が増加しなかった場合に包含される。また、対象ポリヌクレオチドを導入した大腸菌において、細胞乾燥重量に対する脂肪族アルデヒド重量の割合（％，ｗ／ｗ）が、例えば５％（ｗ／ｗ）以下、好ましくは３％（ｗ／ｗ）以下、より好ましくは１％（ｗ／ｗ）以下である場合も、脂肪族アルデヒドの生成量が増加しなかった場合に包含される。
本明細書において、「脂肪族アルコール合成補助活性」とは、対象のポリヌクレオチドを配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド（以下、「ｐｈｓＡ」ということがある。）とともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量を上昇させる、当該ポリヌクレオチドによってコードされるポリペプチドの活性をいう。ポリペプチドが、脂肪族アルコール合成補助活性を有するか否かは、例えば、以下のように確認することができる。大腸菌で機能するプロモーターに機能的に連結した、対象のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとｐｈｓＡとを含む発現ベクター（Ｉ）を作製する。同様に、ｐｓｈＡを含み且つ対象ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含まない発現ベクター（ＩＩ）を作製する。前記発現ベクター（Ｉ）及び（ＩＩ）をそれぞれ大腸菌に導入し、前記それぞれの大腸菌を定常期になるまで培養する。次いで、各大腸菌培養物から菌体を回収し、菌体から脂肪族アルコールを抽出して、脂肪族アルコールを定量する。発現ベクター（Ｉ）を導入した大腸菌の脂肪族アルコール含有量が、発現ベクター（ＩＩ）を導入した大腸菌の脂肪族アルコール含有量と比較して、上昇している場合には、当該ポリペプチドは、脂肪族アルコール合成補助活性を有すると判断される。
本明細書において、細胞の脂肪族アルコール含有量は、乾燥細胞重量に対する脂肪族アルコール重量の割合（％，ｗ／ｗ）で表される。乾燥細胞重量に対する脂肪族アルコール重量の割合（％，ｗ／ｗ）は、以下の式により求めることができる。脂肪族アルコールの割合を算出するための乾燥細胞重量測定用試料及び脂肪族アルコール重量測定用試料は、通常、同一の培養物から採取される。乾燥細胞重量の測定は、培養物から細胞を回収し、回収した細胞を乾燥して、重量を測定することにより行うことができる。細胞の乾燥は、例えば、エバポレーター等を用いた減圧乾燥や熱乾燥等（５０度など）により行うことができ、これらの方法を用いることで、速く細胞を乾燥することができる。
本明細書において、ポリヌクレオチドに関して用いる「機能的に連結」という語は、第一の塩基配列が第二の塩基配列に十分に近くに配置され、第一の塩基配列が第二の塩基配列又は第二の塩基配列の制御下の領域に影響を及ぼしうることを意味する。例えば、ポリヌクレオチドがプロモーターに機能的に連結するとは、当該ポリヌクレオチドが、当該プロモーターの制御下で発現するように連結されていることを意味する。
本明細書において「発現可能な状態」とは、ポリヌクレオチドを導入した細胞内で、該ポリヌクレオチドが転写され得る状態にあることをいう。
本明細書において、「発現ベクター」とは、対象ポリヌクレオチドを含むベクターであって、該ベクターを導入した細胞内で、対象ポリヌクレオチドを発現可能な状態にするシステムを備えたベクターをいう。
本明細書において、「発現ベクター」とは、対象ポリヌクレオチドを含むベクターであって、該ベクターを導入した細胞内で、対象ポリヌクレオチドを発現可能な状態にするシステムを備えたベクターをいう。
本明細書において、「変異株」とは、自然発生的又は人為的に、元の菌株のＤＮＡに変異が生じた菌株を意味する。ＤＮＡ変異を生じさせる人為的手法は、特に限定されず、紫外線照射、放射線照射、亜硝酸などによる化学的処理、遺伝子導入などの遺伝子工学的手法等が例示される。
本明細書において、「サイレント変異」とは、コードするタンパク質のアミノ酸配列が変化しない遺伝子変異を意味する。
本明細書において、「ストリンジェントな条件」とは、例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ａ ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ ＭＡＮＵＡＬ ＴＨＩＲＤ ＥＤＩＴＩＯＮ（Sambrookら、Cold Spring Harbor Laboratory Press）に記載の方法が挙げられる。ストリンジェントな条件としては、例えば、６×ＳＳＣ（２０×ＳＳＣの組成：３Ｍ塩化ナトリウム、０．３Ｍクエン酸溶液、ｐＨ７．０）、５×デンハルト溶液（１００×デンハルト溶液の組成：２質量％ウシ血清アルブミン、２質量％フィコール、２質量％ポリビニルピロリドン）、０．５質量％のＳＤＳ、０．１ｍｇ／ｍＬサケ精子ＤＮＡ、及び５０％フォルムアミドからなるハイブリダイゼーションバッファー中で、４２〜７０℃で数時間から一晩インキュベーションを行うことによりハイブリダイズさせる条件が挙げられる。インキュベーション後の洗浄の際に用いる洗浄バッファーとしては、好ましくは０．１質量％ＳＤＳ含有１×ＳＳＣ溶液、より好ましくは０．１質量％ＳＤＳ含有０．１×ＳＳＣ溶液が挙げられる。
［Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株及びその変異株］
１実施形態において、本発明は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株（ＮＩＴＥ Ｐ−０２６２０）又はその変異株を提供する。
１実施形態において、本発明は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株（ＮＩＴＥ Ｐ−０２６２０）又はその変異株を提供する。
（Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株）
Ｒeｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株（以下、「１−４株」という。）は、日本国高知県室戸市の沿海部で採取された表層海水（33°18’N, 134°11’E, 深度0.5m）から単離された海洋性の好気性従属栄養細菌である。１−４株は、２０１８年３月２８日付で、受託番号ＮＩＴＥ Ｐ−０２６２０として、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２−５−８）に寄託されている。
Ｒeｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株（以下、「１−４株」という。）は、日本国高知県室戸市の沿海部で採取された表層海水（33°18’N, 134°11’E, 深度0.5m）から単離された海洋性の好気性従属栄養細菌である。１−４株は、２０１８年３月２８日付で、受託番号ＮＩＴＥ Ｐ−０２６２０として、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２−５−８）に寄託されている。
１−４株の菌学的性質は、以下のとおりである。
（１）形態的性質
１つの極鞭毛を有する桿菌（０．３〜１．１×０．３〜８．２μｍ）であり（図３参照）、運動性がある。
（１）形態的性質
１つの極鞭毛を有する桿菌（０．３〜１．１×０．３〜８．２μｍ）であり（図３参照）、運動性がある。
（２）生理学的性質
１０〜３０℃（最適温度２０〜３０℃）の温度範囲で増殖し、４℃及び３５℃では増殖しない。１２μｇ／ｍＬのテトラサイクリン及び５０μｇ／ｍＬのゲンタマイシンに耐性である。２０μｇ／ｍＬのクロラムフェニコール及び１００μｇ／ｍＬのカナマイシンには耐性がない。カゼイン、スターチ、及び寒天を分解する。キチンは分解しない。
１０〜３０℃（最適温度２０〜３０℃）の温度範囲で増殖し、４℃及び３５℃では増殖しない。１２μｇ／ｍＬのテトラサイクリン及び５０μｇ／ｍＬのゲンタマイシンに耐性である。２０μｇ／ｍＬのクロラムフェニコール及び１００μｇ／ｍＬのカナマイシンには耐性がない。カゼイン、スターチ、及び寒天を分解する。キチンは分解しない。
（３）１６ｓｒＲＮＡ遺伝子解析
１−４株の１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属の細菌のものと最も類似していた。１−４株は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属の基準種の基準株であるＲｅｉｎｅｋｅａ ｍａｒｉｎｉｓｅｄｉｍｅｎｔｏｒｕｍ ＤＳＭ １５３８８Ｔに、ほぼ全長の１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列で比較して、９５．３％の類似性を示した。１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列に基づく系統樹では、１−４株は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属の細菌とクラスターを形成した（図４参照）。
以上より、１−４株は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属に属する新規な細菌であると推定し、Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株として寄託した。
１−４株の１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属の細菌のものと最も類似していた。１−４株は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属の基準種の基準株であるＲｅｉｎｅｋｅａ ｍａｒｉｎｉｓｅｄｉｍｅｎｔｏｒｕｍ ＤＳＭ １５３８８Ｔに、ほぼ全長の１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列で比較して、９５．３％の類似性を示した。１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列に基づく系統樹では、１−４株は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属の細菌とクラスターを形成した（図４参照）。
以上より、１−４株は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属に属する新規な細菌であると推定し、Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株として寄託した。
１−４株は、海洋性の好気性従属栄養細菌の培養に使用される公知の培地を用いて培養することができる。培地は、固体培地であってもよく、液体培地であってもよい。培地は、炭素源、窒素源、無機塩類等を含む公知の培地を用いることができる。炭素源としては、例えば、グルコース、デキストラン、スターチ、牛肉エキス、ピルビン酸、酢酸等が挙げられる。窒素源としては、アンモニウム塩類、硝酸塩類、アミノ酸、ペプトン、カゼイン、カザミノ酸、尿素、酵母エキス等が挙げられる。無機塩類としては、リン酸ナトリウム、塩化ナトリウム、モリブデンナトリウムなどのナトリウム塩；リン酸カリウム、塩化カリウムなどのカリウム塩；塩化カルシウム、リン酸カルシウムなどのカルシウム塩；塩化マグネシウム、硫酸マグネシウムなどのマグネシウム塩等が挙げられる。培地は、海水（表層海水、深層水等）に、上記炭素源、窒素源、無機塩類等を添加したものであってもよい。培地のｐＨは、６〜１０が好ましい。好ましい培地としては、後述する実施例に記載のｄＲ１培地、ｄＲ培地、ｄＲ２Ａ−ＳＷプレート等が挙げられる。
１−４株を液体培地で培養する場合、静置培養でも振とう培養でもよいが、増殖効率の観点から振とう培養が好ましい。さらに、通気攪拌培養してもよい。
培養温度は、１０〜３０℃が好ましく、２０〜３０℃がより好ましい。
培養温度は、１０〜３０℃が好ましく、２０〜３０℃がより好ましい。
１−４株は、脂肪族アルコールを細胞内に蓄積する細菌として単離された菌である。１−４株は、脂肪族アルコールの合成に関与する遺伝子として、配列番号１に記載のポリヌクレオチド及び配列番号３に記載のポリヌクレオチドを含んでいる。
後述する実施例で示すように、１−４株は、乾燥細胞重量の約０．９％の脂肪族アルコールを細胞内に蓄積し得る。この蓄積量は、自然界に存在する既報の脂肪族アルコール生成菌よりも高い値である。そのため、１−４株は、後述する脂肪族アルコールの製造方法に用いることができる。
後述する実施例で示すように、１−４株は、乾燥細胞重量の約０．９％の脂肪族アルコールを細胞内に蓄積し得る。この蓄積量は、自然界に存在する既報の脂肪族アルコール生成菌よりも高い値である。そのため、１−４株は、後述する脂肪族アルコールの製造方法に用いることができる。
（１−４株の変異株）
１−４株の変異株は、１−４株のＤＮＡに変異が生じた菌株である。１−４株の変異株は、１−４株と同等又はそれ以上の脂肪族アルコール生産能を有する菌株であることが好ましい。そのような変異株としては、例えば、ｄＲ培地で定常期になるまで培養したとき、乾燥細胞重量に対する脂肪族アルコールの割合が、０．３％以上、好ましくは０．５％以上、より好ましくは０．６％以上である変異株が例示される。
１−４株の変異株は、１−４株のＤＮＡに変異が生じた菌株である。１−４株の変異株は、１−４株と同等又はそれ以上の脂肪族アルコール生産能を有する菌株であることが好ましい。そのような変異株としては、例えば、ｄＲ培地で定常期になるまで培養したとき、乾燥細胞重量に対する脂肪族アルコールの割合が、０．３％以上、好ましくは０．５％以上、より好ましくは０．６％以上である変異株が例示される。
１−４株の変異株が生産する脂肪族アルコールは、Ｃ１４アルコール（１−テトラデカノール、１−テトラデセノールなど）、Ｃ１６アルコール（１−ヘキサデカノール、１−ヘキサデセノールなど）、及びＣ１８アルコール（１−オクタデカノール、１−オクタデセノールなど）を含むことが好ましい。
１−４株の変異株の好適な例としては、外来遺伝子が導入された１−４株の変異株；配列番号１に記載のポリヌクレオチド以外のＤＮＡに変異が生じた１−４株の変異株；配列番号１に記載のポリヌクレオチド及び配列番号３に記載のポリヌクレオチド以外のＤＮＡに変異が生じた１−４株の変異株；プロモーター領域やリボソーム結合領域などに変異が導入され、配列番号１に記載のポリヌクレオチド及び／又は配列番号３に記載のポリヌクレオチドの発現が増強された１−４株の変異株；サイレント突然変異が生じた１−４株の変異株；後述の（Ａ１）〜（Ａ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチドを含む１−４株の変異株；後述の（Ｂ１）〜（Ｂ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチドを含む１−４株の変異株；後述の（Ａ１）〜（Ａ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチド及び後述の（Ｂ１）〜（Ｂ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチドを含む１−４株の変異株；等が挙げられる。
１−４株の変異株は、１−４株と同様の培地及び培養条件により培養することができる。１−４株の変異株もまた、後述する脂肪族アルコールの製造方法に用いることができる。
好ましい態様において、１−４株の変異株は、１−４株に、後述の（Ａ１）〜（Ａ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチドを導入したものであり得る。また、別の好ましい態様において、１−４株の変異株は、１−４株に、後述の（Ｂ１）〜（Ｂ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチドを導入したものであり得る。また、さらなる別の好ましい態様において、１−４株の変異株は、１−４株に、後述の（Ａ１）〜（Ａ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチド、及び後述の（Ｂ１）〜（Ｂ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチド、を導入したものであり得る。
この場合、１−４株に導入するポリヌクレオチドは、例えば、後述の［ベクター］で記載するプロモーター等に機能的に連結してもよい。例えば、１−４株で遺伝子の高発現を誘導するプロモーターに前記ポリヌクレオチドを機能的に連結し、１−４株に導入することにより、脂肪族アルコール生産能が増強された１−４株の変異株を得ることができる。そのようなプロモーターとしては、例えば、Ｔ７プロモーター等が例示されるが、これに限定されない。なお、Ｔ７プロモーターを用いる場合には、Ｔ７ ＲＮＡポリメラーゼ遺伝子も１−４株内に共存することが好ましい。この場合、例えば、Ｔ７プロモーターに機能的に連結した遺伝子と共に、Ｔ７ ＲＮＡポリメラーゼ遺伝子を１−４株に導入してもよい。
あるいは、１−４株が有する任意の遺伝子のプロモーターを取得し、当該プロモーターに前記ポリヌクレオチドを機能的に連結してもよい。前記任意の遺伝子としては、例えば、配列番号１に記載の塩基配列を含む遺伝子、又は配列番号３に記載の塩基配列を含む遺伝子等が挙げられる。これらの遺伝子のプロモーターは、例えば、配列番号１又は配列番号３に記載の配列に基づいて設計したプライマーを用いて、ＴＡＩＬ−ＰＣＲ等により取得することができる。
この場合、１−４株に導入するポリヌクレオチドは、例えば、後述の［ベクター］で記載するプロモーター等に機能的に連結してもよい。例えば、１−４株で遺伝子の高発現を誘導するプロモーターに前記ポリヌクレオチドを機能的に連結し、１−４株に導入することにより、脂肪族アルコール生産能が増強された１−４株の変異株を得ることができる。そのようなプロモーターとしては、例えば、Ｔ７プロモーター等が例示されるが、これに限定されない。なお、Ｔ７プロモーターを用いる場合には、Ｔ７ ＲＮＡポリメラーゼ遺伝子も１−４株内に共存することが好ましい。この場合、例えば、Ｔ７プロモーターに機能的に連結した遺伝子と共に、Ｔ７ ＲＮＡポリメラーゼ遺伝子を１−４株に導入してもよい。
あるいは、１−４株が有する任意の遺伝子のプロモーターを取得し、当該プロモーターに前記ポリヌクレオチドを機能的に連結してもよい。前記任意の遺伝子としては、例えば、配列番号１に記載の塩基配列を含む遺伝子、又は配列番号３に記載の塩基配列を含む遺伝子等が挙げられる。これらの遺伝子のプロモーターは、例えば、配列番号１又は配列番号３に記載の配列に基づいて設計したプライマーを用いて、ＴＡＩＬ−ＰＣＲ等により取得することができる。
１−４株への上記ポリヌクレオチドの導入は、後述の［細胞］に記載の方法等により、行うことができる。
（Ａ１）〜（Ａ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチド、及び／又は（Ｂ１）〜（Ｂ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチドが導入された１−４株の変異株は、１−４株と比較して、脂肪族アルコールの産生能が増強された変異株であり得る。そのため、後述する脂肪族アルコールの製造方法に好適に用いることができる。
（Ａ１）〜（Ａ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチド、及び／又は（Ｂ１）〜（Ｂ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチドが導入された１−４株の変異株は、１−４株と比較して、脂肪族アルコールの産生能が増強された変異株であり得る。そのため、後述する脂肪族アルコールの製造方法に好適に用いることができる。
［ポリヌクレオチド］
（ポリヌクレオチド（Ａ））
１実施形態において、本発明は、下記（Ａ１）〜（Ａ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチドを提供する。
（Ａ１）配列番号２に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ２）配列番号２に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ３）配列番号２に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ４）配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド
（Ａ５）配列番号１に記載の塩基配列において１又は複数個の塩基が欠失、置換、付加、又は挿入された塩基配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ６）配列番号１に記載の塩基配列と８０％以上の配列同一性を有する塩基配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ７）配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（ポリヌクレオチド（Ａ））
１実施形態において、本発明は、下記（Ａ１）〜（Ａ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチドを提供する。
（Ａ１）配列番号２に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ２）配列番号２に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ３）配列番号２に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ４）配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド
（Ａ５）配列番号１に記載の塩基配列において１又は複数個の塩基が欠失、置換、付加、又は挿入された塩基配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ６）配列番号１に記載の塩基配列と８０％以上の配列同一性を有する塩基配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ７）配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
上記（Ａ２）において、欠失、置換、付加、又は挿入されるアミノ酸の数は、結果として生じるポリペプチドが脂肪族アルコール合成活性を有する限り、特に限定されない。欠失、置換、付加、又は挿入されるアミノ酸の数は、例えば１〜８０個であることができ、１〜６０個が好ましく、１〜５０個がより好ましく、１〜３０個がさらに好ましい。欠失、置換、付加、又は挿入されるアミノ酸の数としては、さらに、１〜２０個、１〜１０個、１〜５個等が例示される。
上記（Ａ３）において、配列同一性は、８０％以上である限り、特に限定されない。配列同一性は、８５％以上であることが好ましく、９０％以上であることがより好ましく、９５％以上であることがさらに好ましい。なお、アミノ酸配列どうしの配列同一性（又は相同性）は、２つのアミノ酸配列を、対応するアミノ酸が最も多く一致するように、挿入及び欠失に当たる部分にギャップを入れながら並置し、得られたアラインメント中のギャップを除くアミノ酸配列全体に対する一致したアミノ酸の割合として求められる。アミノ酸配列同士の配列同一性は、当該技術分野で公知の各種相同性検索ソフトウェアを用いて求めることができる。例えば、アミノ酸配列の配列同一性の値は、公知の相同性検索ソフトウェアＢＬＡＳＴＰにより得られたアライメントを元にした計算によって得ることができる。
上記（Ａ５）において、欠失、置換、付加、又は挿入される塩基の数は、結果として生じるポリヌクレオチドが、脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードする限り、特に限定されない。欠失、置換、付加、又は挿入される塩基の数は、例えば１〜１８０個であることができ、１〜１５０個であることが好ましく、１〜９０個であることがより好ましい。欠失、置換、付加、又は挿入される塩基の数としては、さらに、１〜６０個、１〜３０個、１〜１５個等が例示される。
上記（Ａ６）において、配列同一性は、８０％以上である限り、特に限定されない。配列同一性は、８５％以上であることが好ましく、９０％以上であることがより好ましく、９５％以上であることがさらに好ましい。塩基配列どうしの配列同一性（又は相同性）は、上記（Ａ３）で記載したアミノ酸配列どうしの配列同一性と同様に考えることができる。
上記（Ａ１）〜（Ａ３）において、縮重コドンは、宿主細胞のコドン使用頻度の高いものを選択することが好ましい場合もある。例えば、（Ａ１）の塩基配列は、配列番号１に記載の塩基配列であってよい。あるいは、配列番号１に記載の塩基配列がコードするアミノ酸配列と同一のアミノ酸配列をコードする塩基配列であって、宿主細胞において使用頻度の高いコドンへと変更した塩基配列であってもよい。コドンの変更は、例えば、公知の遺伝子改変技術又は人工遺伝子合成によって行うことができるが、これらに限定されず変更できる。
上記（Ａ１）〜（Ａ７）のポリヌクレオチドは、各種タグ、別種タンパク質、リンカー配列等をコードする塩基配列をさらに含んでいてもよい。
配列番号１に記載の塩基配列は、１−４株から、脂肪族アルコール合成酵素をコードする塩基配列として同定されたものである。後述する実施例で示すように、配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドを大腸菌に導入することにより、脂肪族アルコールを、大腸菌の乾燥細胞重量の約１９％（ｗ／ｗ）で、大腸菌に生産させることができた。この際、脂肪族アルデヒドは検出されなかった。したがって、配列番号１に記載の塩基配列は、脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチド（配列番号２）をコードする塩基配列である。
図１は、１−４株において推定される脂肪族アルコール合成経路を示す。図１中、配列番号１に記載の塩基配列がコードするポリペプチド（配列番号２）は、「ＰｈｓＡ」で表される。配列番号１に記載の塩基配列がコードするポリペプチドは、そのアミノ酸配列の相同性検索の結果から、図１に示すように、アシル−ＣｏＡを還元して脂肪族アルコールを生成する反応を触媒する可能性が高い（アシル−ＡＣＰや脂肪酸を還元して脂肪族アルコールを生成する可能性もある）。すなわち、配列番号１に記載の塩基配列がコードするポリペプチドは、脂肪族アルコールを生成するアシルーＣｏＡレダクターゼ（fatty-alcohol-forming fatty acyl-CoA reductase）として機能する可能性が高い。なお、以下、配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドを「ｐｈｓＡ」、配列番号２に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドを「ＰｈｓＡ」ということがある。
図１は、１−４株において推定される脂肪族アルコール合成経路を示す。図１中、配列番号１に記載の塩基配列がコードするポリペプチド（配列番号２）は、「ＰｈｓＡ」で表される。配列番号１に記載の塩基配列がコードするポリペプチドは、そのアミノ酸配列の相同性検索の結果から、図１に示すように、アシル−ＣｏＡを還元して脂肪族アルコールを生成する反応を触媒する可能性が高い（アシル−ＡＣＰや脂肪酸を還元して脂肪族アルコールを生成する可能性もある）。すなわち、配列番号１に記載の塩基配列がコードするポリペプチドは、脂肪族アルコールを生成するアシルーＣｏＡレダクターゼ（fatty-alcohol-forming fatty acyl-CoA reductase）として機能する可能性が高い。なお、以下、配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドを「ｐｈｓＡ」、配列番号２に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドを「ＰｈｓＡ」ということがある。
上記（Ａ１）のポリヌクレオチドは、ＰｈｓＡをコードするポリヌクレオチドであり、上記（Ａ４）のポリヌクレオチドはｐｈｓＡである。上記（Ａ２）、（Ａ３）、（Ａ５）〜（Ａ７）のポリヌクレオチドは、ＰｈｓＡの脂肪族アルコール合成活性を維持するｐｈｓＡの変異体である。
上記（Ａ１）〜（Ａ７）のポリヌクレオチドは、いずれも、脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチドである。そのため、これらのポリヌクレオチドのいずれかを、脂肪族アルコール生産能を有さない他種細胞に導入することにより、脂肪族アルコール生産能を有する細胞を得ることができる。また、元々脂肪族アルコール生産能を有する細胞であっても、これらのポリヌクレオチドのいずれかを導入することにより、脂肪族アルコール生産能を向上させることができる。
上記（Ａ１）〜（Ａ７）のポリヌクレオチドは、いずれも、脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチドである。そのため、これらのポリヌクレオチドのいずれかを、脂肪族アルコール生産能を有さない他種細胞に導入することにより、脂肪族アルコール生産能を有する細胞を得ることができる。また、元々脂肪族アルコール生産能を有する細胞であっても、これらのポリヌクレオチドのいずれかを導入することにより、脂肪族アルコール生産能を向上させることができる。
以下、上記（Ａ１）〜（Ａ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチドを「ポリヌクレオチド（Ａ）」ということがある。
（ポリヌクレオチド（Ｂ））
１実施形態において、本発明は、下記（Ｂ１）〜（Ｂ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチドを提供する。
（Ｂ１）配列番号４に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ｂ２）配列番号４に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードし、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ３）配列番号４に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードし、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ４）配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド
（Ｂ５）配列番号３に記載の塩基配列において１又は複数個の塩基が欠失、置換、付加、又は挿入された塩基配列からなり、且つ配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド（ｐｈｓＡ）とともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ６）配列番号３に記載の塩基配列と８０％以上の配列同一性を有する塩基配列からなり、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ７）配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
１実施形態において、本発明は、下記（Ｂ１）〜（Ｂ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチドを提供する。
（Ｂ１）配列番号４に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ｂ２）配列番号４に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードし、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ３）配列番号４に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードし、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ４）配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド
（Ｂ５）配列番号３に記載の塩基配列において１又は複数個の塩基が欠失、置換、付加、又は挿入された塩基配列からなり、且つ配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド（ｐｈｓＡ）とともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ６）配列番号３に記載の塩基配列と８０％以上の配列同一性を有する塩基配列からなり、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ７）配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
上記（Ｂ２）において、欠失、置換、付加、又は挿入されるアミノ酸の数は、結果として生じるポリペプチドが脂肪族アルコール合成補助活性を有する限り、特に限定されない。欠失、置換、付加、又は挿入されるアミノ酸の数は、例えば１〜６０個であることができ、１〜５０個が好ましく、１〜４０個がより好ましく、１〜３０個がさらに好ましい。欠失、置換、付加、又は挿入されるアミノ酸の数としては、さらに、１〜２０個、１〜１０個、１〜５個等が例示される。
上記（Ｂ３）において、配列同一性は、８０％以上である限り、特に限定されない。配列同一性は、８５％以上であることが好ましく、９０％以上であることがより好ましく、９５％以上であることがさらに好ましい。
上記（Ｂ５）において、欠失、置換、付加、又は挿入される塩基の数は、結果として生じるポリヌクレオチドが、脂肪族アルコール合成補助活性を有するポリペプチドをコードする限り、特に限定されない。欠失、置換、付加、又は挿入される塩基の数は、例えば１〜１００個であることができ、１〜８０個であることが好ましく、１〜６０個であることがより好ましい。欠失、置換、付加、又は挿入される塩基の数としては、さらに、１〜５０個、１〜３０個、１〜１５個等が例示される。
上記（Ｂ６）において、配列同一性は、８０％以上である限り、特に限定されない。配列同一性は、８５％以上であることが好ましく、９０％以上であることがより好ましく、９５％以上であることがさらに好ましい。
上記（Ｂ１）〜（Ｂ３）において、縮重コドンは、宿主細胞のコドン使用頻度の高いものを選択することが好ましい場合もある。例えば、（Ｂ１）の塩基配列は、配列番号３に記載の塩基配列であってよい。あるいは、配列番号３に記載の塩基配列がコードするアミノ酸配列と同一のアミノ酸配列をコードする塩基配列であって、宿主細胞において使用頻度の高いコドンへと変更した塩基配列であってもよい。
上記（Ｂ１）〜（Ｂ７）のポリヌクレオチドは、各種タグ、別種タンパク質、リンカー配列等をコードする塩基配列をさらに含んでいてもよい。
配列番号３に記載の塩基配列は、１−４株から、ｐｈｓＡとクラスターを形成する遺伝子の塩基配列として同定されたものである。後述する実施例で示すように、配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドをｐｈｓＡとともに大腸菌に導入することにより、ｐｈｓＡ単独で導入した場合と比較して、脂肪族アルコールの生成量が上昇し、乾燥細胞重量の約２４％の脂肪族アルコールを生産させることができた。したがって、配列番号３に記載の塩基配列は、脂肪族アルコール合成補助活性を有するポリペプチド（配列番号４）をコードする塩基配列である。また、配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドをｐｈｓＡとともに大腸菌に導入すると、ｐｈｓＡ単独で導入した場合と比較して、大腸菌の増殖速度が速くなった。
配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドがコードするポリペプチド（配列番号４）は、そのアミノ酸配列の相同性検索の結果から、潜在的にリパーゼ活性を有すると推定された。上述の結果は、配列番号４に記載のポリペプチドがリパーゼであることと矛盾しない。図１に示す脂肪族アルコール合成経路において、配列番号４に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドを「ＰｈｓＢ」で表す。図１に示すように、ＰｈｓＢは、アシルグリセロールを分解して、アシル−ＣｏＡの前駆体となる脂肪酸を生成するリパーゼと考えられる。以下、配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドを「ｐｈｓＢ」、配列番号４に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドを「ＰｈｓＢ」ということがある。
配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドがコードするポリペプチド（配列番号４）は、そのアミノ酸配列の相同性検索の結果から、潜在的にリパーゼ活性を有すると推定された。上述の結果は、配列番号４に記載のポリペプチドがリパーゼであることと矛盾しない。図１に示す脂肪族アルコール合成経路において、配列番号４に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドを「ＰｈｓＢ」で表す。図１に示すように、ＰｈｓＢは、アシルグリセロールを分解して、アシル−ＣｏＡの前駆体となる脂肪酸を生成するリパーゼと考えられる。以下、配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドを「ｐｈｓＢ」、配列番号４に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドを「ＰｈｓＢ」ということがある。
上記（Ｂ１）のポリヌクレオチドは、ＰｈｓＢをコードするポリヌクレオチドであり、上記（Ｂ４）のポリヌクレオチドはｐｈｓＢである。上記（Ｂ２）、（Ｂ３）、（Ｂ５）〜（Ｂ７）のポリヌクレオチドは、ＰｈｓＢの脂肪族アルコール合成補助活性を維持するｐｈｓＢの変異体である。
上記（Ｂ１）〜（Ｂ７）のポリヌクレオチドは、いずれも、脂肪族アルコール合成補助活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチドである。そのため、これらのポリヌクレオチドのいずれかを、上記ポリヌクレオチド（Ａ）と組合わせて他種細胞に導入することにより、脂肪族アルコール生産能が向上した細胞を得ることができる。
上記（Ｂ１）〜（Ｂ７）のポリヌクレオチドは、いずれも、脂肪族アルコール合成補助活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチドである。そのため、これらのポリヌクレオチドのいずれかを、上記ポリヌクレオチド（Ａ）と組合わせて他種細胞に導入することにより、脂肪族アルコール生産能が向上した細胞を得ることができる。
以下、上記（Ｂ１）〜（Ｂ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチドを「ポリヌクレオチド（Ｂ）」ということがある。
上記ポリヌクレオチド（Ａ）又はポリヌクレオチド（Ｂ）は、配列番号１若しくは３に記載の塩基配列又は配列番号２若しくは４に記載のアミノ酸配列に基づいて、公知の核酸合成法等を用いて合成することができる。あるいは、１−４株のＤＮＡをテンプレートとして、ＰＣＲ法や等温増幅法等を用いて、ＤＮＡ断片を増幅することにより、取得することができる。あるいは、１−４株のｍＲＮＡを逆転写して得たｃＤＮＡをテンプレートとして、ＰＣＲ法や等温増幅法等を用いて、ＤＮＡ断片を増幅してもよい。ＰＣＲ法や等温増幅法等で用いるプライマーは、例えば、配列番号１又は３に記載の塩基配列に基づき、融解温度（Ｔｍ値）等を考慮して設計することができる。
また、他の態様において、本発明は、下記（Ａ１’）〜（Ａ３’）及び（Ｂ１’）〜（Ｂ３’）からなる群より選択されるポリペプチドを提供する。
（Ａ１’）配列番号２に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチド
（Ａ２’）配列番号２に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチド
（Ａ３’）配列番号２に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチド
（Ｂ１’）配列番号４に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチド
（Ｂ２’）配列番号４に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチド
（Ｂ３’）配列番号４に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチド
（Ａ１’）配列番号２に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチド
（Ａ２’）配列番号２に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチド
（Ａ３’）配列番号２に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチド
（Ｂ１’）配列番号４に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチド
（Ｂ２’）配列番号４に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチド
（Ｂ３’）配列番号４に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチド
以下、上記（Ａ１’）〜（Ａ３’）からなる群より選択されるポリペプチドを「ポリペプチド（Ａ）」、上記（Ｂ１’）〜（Ｂ３’）からなる群より選択されるポリペプチドを「ポリペプチド（Ｂ）」ということがある。
上記ポリペプチド（Ａ）又はポリペプチド（Ｂ）は、配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列に基づいて、公知のペプチド合成法等を用いて合成することができる。あるいは、１−４株又はポリヌクレオチド（Ａ）又はポリヌクレオチド（Ｂ）を導入した細胞を増殖させて、その培養物からポリペプチド（Ａ）又はポリペプチド（Ｂ）を取得することができる。例えば、ポリペプチド（Ａ）又はポリペプチド（Ｂ）が細胞内に蓄積される場合には、遠心分離やフィルターろ過等により細胞を回収し、当該細胞から、公知の酵素精製技術等を用いてポリペプチド（Ａ）又はポリペプチド（Ｂ）の単離・精製を行なうことができる。また、例えば、浸透圧調製、溶菌剤、物理的破砕等により細胞を破壊し、当該細胞破壊物から、公知の酵素精製技術等を用いてポリペプチド（Ａ）又はポリペプチド（Ｂ）の単離・精製を行なうこともできる。あるいは、細胞を定常期まで増殖させた後しばらく放置する等、自発的に細胞が溶菌する条件に置く等してポリペプチド（Ａ）又はポリペプチド（Ｂ）が培養液に存在する場合には、当該培養液から公知の酵素精製技術等を用いてポリペプチド（Ａ）又はポリペプチド（Ｂ）の単離・精製を行なってもよい。あるいは、例えば、分泌シグナルペプチドのコード配列を付加する等したポリヌクレオチド（Ａ）又はポリヌクレオチド（Ｂ）を導入した細胞を用いる等してポリペプチド（Ａ）又はポリペプチド（Ｂ）を分泌させた場合には、当該細胞を培養した培養上清から、公知の酵素精製技術等を用いてポリペプチド（Ａ）又はポリペプチド（Ｂ）の単離・精製を行なってもよい。
なお、ポリペプチド（Ａ）又はポリペプチド（Ｂ）の単離・精製は、目的に応じた精製度まで行えばよく、単離・精製物は、ポリペプチド（Ａ）又はポリペプチド（Ｂ）の活性を妨げない範囲で、他の物質を含んでいてもよい。
なお、ポリペプチド（Ａ）又はポリペプチド（Ｂ）の単離・精製は、目的に応じた精製度まで行えばよく、単離・精製物は、ポリペプチド（Ａ）又はポリペプチド（Ｂ）の活性を妨げない範囲で、他の物質を含んでいてもよい。
［ベクター］
１実施形態において、本発明は、上記実施形態のポリヌクレオチドを含むベクターを提供する。
本実施形態のベクターは、上記ポリヌクレオチド（Ａ）を含むものであってもよく、上記ポリヌクレオチド（Ｂ）を含むものであってもよく、ポリヌクレオチド（Ａ）及びポリヌクレオチド（Ｂ）を含むものであってもよい。すなわち、本実施形態のベクターは、ポリヌクレオチド（Ａ）及びポリヌクレオチド（Ｂ）のいずれか又は両方を含む。
１実施形態において、本発明は、上記実施形態のポリヌクレオチドを含むベクターを提供する。
本実施形態のベクターは、上記ポリヌクレオチド（Ａ）を含むものであってもよく、上記ポリヌクレオチド（Ｂ）を含むものであってもよく、ポリヌクレオチド（Ａ）及びポリヌクレオチド（Ｂ）を含むものであってもよい。すなわち、本実施形態のベクターは、ポリヌクレオチド（Ａ）及びポリヌクレオチド（Ｂ）のいずれか又は両方を含む。
本実施形態のベクターは、ポリヌクレオチド（Ａ）及び／又はポリヌクレオチド（Ｂ）を発現可能な状態で含む発現ベクターであることが好ましい。発現ベクターにおいて、ポリヌクレオチド（Ａ）及び／又はポリヌクレオチド（Ｂ）は、通常、適切なプロモーターに機能的に連結されている。本実施形態のベクターが、ポリヌクレオチド（Ａ）及びポリヌクレオチド（Ｂ）の両方を含む場合、ポリヌクレオチド（Ａ）及びポリヌクレオチド（Ｂ）は、単一のプロモーターに機能的に連結されていてもよく、それぞれ別のプロモーターに機能的に連結されていてもよい。
プロモーターは、宿主細胞に応じて、宿主細胞で機能するプロモーターを適宜選択することができる。細菌で機能するプロモーターとしては、例えば、Ｔ７プロモーター（Ｔ７ ＲＮＡポリメラーゼの共存下で働く）、ｌａｃプロモーター、ｔｒｐプロモーター、ｔａｃプロモーター、λファージ由来のＰＲプロモーター若しくはＰＬプロモーター等が挙げられる。酵母で機能するプロモーターとしては、例えば、酵母解糖系遺伝子のプロモーター、アルコールデヒドロゲナーゼ遺伝子プロモーター、ＴＰＩ１プロモーター、ＡＤＨ２−４ｃプロモーター等が挙げられる。植物細胞で機能するプロモーターとしては、例えば、カリフラワーモザイクウイルス（ＣａＭＶ）の３５Ｓプロモーター、ノパリン合成酵素遺伝子のプロモーター（Ｐｎｏｓ）、トウモロコシ由来ユビキチンプロモーター、イネ由来のアクチンプロモーター、タバコ由来ＰＲタンパク質プロモーター等が挙げられる。昆虫細胞で機能するプロモーターとしては、例えば、ポリヘドリンプロモーター、Ｐ１０プロモーター、オートグラファ・カリホルニカ・ポリヘドロシス塩基性タンパクプロモーター、バキュロウイルス即時型初期遺伝子１プロモーター、バキュロウイルス３９Ｋ遅延型初期遺伝子プロモーター等が挙げられる。
本実施形態のベクターは、さらに、他の機能的配列を含んでいてもよい。例えば、本実施形態のベクターは、エンハンサー、ターミネーター等の調節配列、薬剤耐性遺伝子等の選択マーカー配列等を含み得る。また、ポリヌクレオチド（Ａ）及び／又はポリヌクレオチド（Ｂ）を、宿主のＤＮＡに挿入させる配列（トランスポゾンの配列、宿主のＤＮＡ配列など）を含み得る。また、宿主に応じて、スプライシングシグナル（ドナー部位、アクセプター部位、ブランチポイント等）、ポリＡ付加シグナル、リボソーム結合配列等の調節領域を含んでいてもよい。それぞれの配列の種類は、ベクターを導入する宿主に応じて、公知のものなどを適宜選択することができる。また、プロモーターとしてＴ７プロモーターを用いる場合であって、Ｔ７ ＲＮＡポリメラーゼ遺伝子を発現しない細胞を宿主として用いる場合には、本実施形態のベクターは、さらにＴ７ ＲＮＡポリメラーゼ遺伝子配列を含んでいてもよい。また、本実施形態のベクターが、トランスポゾンの配列を有する場合、プロモーターに機能的に連結されたポリヌクレオチド（Ａ）及び／又はポリヌクレオチド（Ｂ）の両側に、トランスポザーゼ（Ｔｒａｎｓｐｏｓａｓｅ）により認識される配列（組換えが起こる配列）を配置することが好ましい。
本実施形態のベクターの種類は、特に限定されないが、プラスミドベクター又はウイルスベクターが好ましい。プラスミドベクターとしては、例えば、大腸菌由来のプラスミド（ｐＢＩ系、ｐＰＺＰ系、ｐＳＭＡ系、ｐＵＣ系、ｐＢＲ系、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ系プラスミド等）、枯草菌由来のプラスミド（ｐＵＢ１１０、ｐＴＰ５等）、酵母由来のプラスミド（Ｙｅｐ１３、Ｙｅｐ２４、ＹＣｐ５０等）等を好適に使用できる。ウイルスベクターとしては、ファージ（λｇｔ１１、λＺＡＰ等のλファージ）、植物ウイルス（ＣａＭＶ、インゲンマメゴールデンモザイクウイルス（ＢＧＭＶ）、タバコモザイクウイルス（ＴＭＶ））、昆虫ウイルス（例えば、バキュロウイルス）等を好適に使用することができる。ベクターの種類は、導入する宿主に応じて適宜選択すればよい。
本実施形態のベクターは、市販の発現ベクターのクローニングサイトに、ポリヌクレオチド（Ａ）及び／又はポリヌクレオチド（Ｂ）を挿入したものであってもよい。また、本実施形態のベクターは、市販のトランスポゾンによる遺伝子導入システムのトランスポゾンベクターのクローニングサイトに、ポリヌクレオチド（Ａ）及び／又はポリヌクレオチド（Ｂ）を挿入したものであってもよい。
本実施形態のベクターは、市販の発現ベクターのクローニングサイトに、ポリヌクレオチド（Ａ）及び／又はポリヌクレオチド（Ｂ）を挿入したものであってもよい。また、本実施形態のベクターは、市販のトランスポゾンによる遺伝子導入システムのトランスポゾンベクターのクローニングサイトに、ポリヌクレオチド（Ａ）及び／又はポリヌクレオチド（Ｂ）を挿入したものであってもよい。
［細胞］
１実施形態において、本発明は、ポリヌクレオチド（Ａ）を含む細胞を提供する。
１実施形態において、本発明は、ポリヌクレオチド（Ａ）を含む細胞を提供する。
１態様において、本実施形態の細胞は、上記ポリヌクレオチド（Ａ）を、所望の細胞に導入することにより作製することができる。すなわち、上記ポリヌクレオチド（Ａ）が導入された細胞は、本実施形態の細胞の好適な例である。
ポリヌクレオチド（Ａ）は、発現可能な状態で、細胞に導入されることが好ましい。したがって、ポリヌクレオチド（Ａ）は、プロモーターに機能的に連結された状態で、細胞に導入されることが好ましい。ポリヌクレオチド（Ａ）は、上記実施形態のベクターの形態で、細胞に導入してもよい。この場合、上記実施形態のベクターは、ポリヌクレオチド（Ａ）を含む発現ベクター又はトランスポゾンベクターであることが好ましい。また、プロモーターに機能的に連結したポリヌクレオチド（Ａ）を含むＤＮＡ断片を、細胞に導入してもよい。また、プロモーターに機能的に連結されたポリヌクレオチド（Ａ）、及びその両末端側に付加されたトランスポザーゼにより認識される配列を含むＤＮＡ断片を、細胞に導入してもよい。
ポリヌクレオチド（Ａ）を導入する細胞は、特に限定されず、原核細胞及び真核細胞のいずれであってもよい。原核細胞としては、例えば、Ｅｘｉｇｕｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属、Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ属、Ｒｈｏｄｏｃｏｃｕｓ属、Ｂｒｅｖｉｂａｃｉｌｌｕｓ属、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ属、Ｂａｃｉｌｌｕｓ属等の細菌細胞が挙げられる。好適な例としては、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）が例示される。また、真核細胞としては、酵母（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属等）、真菌細胞、昆虫細胞、動物細胞、植物細胞等が挙げられる。
ポリヌクレオチド（Ａ）を導入する細胞は、特に限定されず、原核細胞及び真核細胞のいずれであってもよい。原核細胞としては、例えば、Ｅｘｉｇｕｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属、Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ属、Ｒｈｏｄｏｃｏｃｕｓ属、Ｂｒｅｖｉｂａｃｉｌｌｕｓ属、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ属、Ｂａｃｉｌｌｕｓ属等の細菌細胞が挙げられる。好適な例としては、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）が例示される。また、真核細胞としては、酵母（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属等）、真菌細胞、昆虫細胞、動物細胞、植物細胞等が挙げられる。
ポリヌクレオチド（Ａ）を細胞に導入する方法は、特に限定されず、細胞の種類に応じて、適宜公知の遺伝子導入法などを用いればよい。遺伝子導入法としては、例えば、ケミカルコンピテントセル法、エレクトロポレーション法、ＰＥＧ（ポリエチレングリコール）法、リン酸カルシウムトランスフェクション法、マイクロインジェクション法、パーティクルガン法、アグロバクテリウム法等が挙げられる。また、細胞の種類によっては、細胞懸濁液に、ポリヌクレオチド（Ａ）を含むベクター又はＤＮＡ断片を添加して、混合することにより、ポリヌクレオチド（Ａ）を細胞に導入できる場合もある。ポリヌクレオチド（Ａ）の細胞への導入方法は、そのような方法であってもよい。ポリヌクレオチド（Ａ）の細胞への導入方法は、上記の方法に限定されず、細胞への導入が可能な限り、任意の方法を用い得る。
細胞に導入されたポリヌクレオチド（Ａ）は、プラスミド等として細胞内に存在していてもよく、細胞のゲノムに挿入された状態で細胞内に存在していてもよい。例えば、プラスミドベクター等を用いてポリヌクレオチド（Ａ）を細胞に導入した場合、ポリヌクレオチド（Ａ）は、プラスミドとして細胞内に存在し得る。
また、例えば、トランスポザーゼにより認識される配列に挟まれたポリヌクレオチド（Ａ）を細胞に導入した場合、ポリヌクレオチド（Ａ）は、細胞のゲノムやプラスミドにランダムに挿入された状態で細胞内に存在し得る。この場合、トランスポザーゼにより認識される配列に挟まれたポリヌクレオチド（Ａ）とともに、トランスポザーゼ遺伝子配列を含むポリヌクレオチドやトランスポザーゼそのものを細胞に導入することが好ましい。
また、ポリヌクレオチド（Ａ）は、部位特異的に、細胞のゲノムやプラスミドに挿入されてもよい。例えば、標的部位のゲノム配列またはプラスミド配列の間に、ポリヌクレオチド（Ａ）を挿入したＤＮＡ断片又はこのＤＮＡ断片を含むベクターを作製し、当該ＤＮＡ断片又はベクターを細胞に導入すれば、相同組換えにより、ゲノムまたはプラスミドの標的部位にポリヌクレオチド（Ａ）が挿入され得る。この場合、例えば、ＣＲＩＳＰＥＲ／Ｃａｓシステム、転写活性化様エフェクターヌクレアーゼ（Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ Ａｃｔｉｖａｔｏｒ−Ｌｉｋｅ Ｅｆｆｅｃｔｏｒ Ｎｕｃｌｅａｓｅ：ＴＡＬＥＮ）、ジンクフィンガーヌクレアーゼ（Ｚｉｎｃ Ｆｉｎｇｅｒ Ｎｕｃｌｅａｓｅ：ＺＦＮ）等を用いるゲノム編集技術により、ポリヌクレオチド（Ａ）を部位特異的に細胞のゲノムやプラスミドに挿入してもよい。
上記において、ポリヌクレオチド（Ａ）は、発現可能な状態であることが好ましく、プロモーターに機能的に連結されていることが好ましい。また、細胞が真核細胞である場合、ゲノムは、核ゲノムであってもよく、オルガネラゲノムであってもよい。
細胞に導入されたポリヌクレオチド（Ａ）は、プラスミド等として細胞内に存在していてもよく、細胞のゲノムに挿入された状態で細胞内に存在していてもよい。例えば、プラスミドベクター等を用いてポリヌクレオチド（Ａ）を細胞に導入した場合、ポリヌクレオチド（Ａ）は、プラスミドとして細胞内に存在し得る。
また、例えば、トランスポザーゼにより認識される配列に挟まれたポリヌクレオチド（Ａ）を細胞に導入した場合、ポリヌクレオチド（Ａ）は、細胞のゲノムやプラスミドにランダムに挿入された状態で細胞内に存在し得る。この場合、トランスポザーゼにより認識される配列に挟まれたポリヌクレオチド（Ａ）とともに、トランスポザーゼ遺伝子配列を含むポリヌクレオチドやトランスポザーゼそのものを細胞に導入することが好ましい。
また、ポリヌクレオチド（Ａ）は、部位特異的に、細胞のゲノムやプラスミドに挿入されてもよい。例えば、標的部位のゲノム配列またはプラスミド配列の間に、ポリヌクレオチド（Ａ）を挿入したＤＮＡ断片又はこのＤＮＡ断片を含むベクターを作製し、当該ＤＮＡ断片又はベクターを細胞に導入すれば、相同組換えにより、ゲノムまたはプラスミドの標的部位にポリヌクレオチド（Ａ）が挿入され得る。この場合、例えば、ＣＲＩＳＰＥＲ／Ｃａｓシステム、転写活性化様エフェクターヌクレアーゼ（Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ Ａｃｔｉｖａｔｏｒ−Ｌｉｋｅ Ｅｆｆｅｃｔｏｒ Ｎｕｃｌｅａｓｅ：ＴＡＬＥＮ）、ジンクフィンガーヌクレアーゼ（Ｚｉｎｃ Ｆｉｎｇｅｒ Ｎｕｃｌｅａｓｅ：ＺＦＮ）等を用いるゲノム編集技術により、ポリヌクレオチド（Ａ）を部位特異的に細胞のゲノムやプラスミドに挿入してもよい。
上記において、ポリヌクレオチド（Ａ）は、発現可能な状態であることが好ましく、プロモーターに機能的に連結されていることが好ましい。また、細胞が真核細胞である場合、ゲノムは、核ゲノムであってもよく、オルガネラゲノムであってもよい。
ポリヌクレオチド（Ａ）が導入された細胞は、当該細胞の種類に応じて、適宜培地を選択し、培養して増殖させることができる。ポリヌクレオチド（Ａ）が、薬剤耐性遺伝子等のマーカー遺伝子と伴に導入された場合には、当該マーカー遺伝子が耐性を示す薬剤を用いて、形質転換体の選抜を行ってもよい。
ポリヌクレオチド（Ａ）を発現可能な状態で細胞に導入することにより、当該細胞において、ポリヌクレオチド（Ａ）が発現し、ポリペプチド（Ａ）が産生され得る。ポリペプチド（Ａ）は、脂肪族アルコール合成活性を有するため、当該細胞が脂肪族アルコールを生産しない場合は、脂肪族アルコール合成能を有するようになり得る。当該細胞が元々脂肪族アルコールを生産する場合は、ポリヌクレオチド（Ａ）の導入により、脂肪族アルコール生産能を向上させ得る。
本実施形態の細胞は、ポリヌクレオチド（Ａ）に加えて、ポリヌクレオチド（Ｂ）を含むことが好ましい。そのような細胞は、例えば、ポリヌクレオチド（Ａ）に加えて、ポリヌクレオチド（Ｂ）を、所望の細胞に導入することにより作製することができる。この場合、例えば、ポリヌクレオチド（Ａ）及びポリヌクレオチド（Ｂ）を含むベクター又はＤＮＡ断片を利用可能である。あるいは、ポリヌクレオチド（Ａ）を含むベクター又はＤＮＡ断片と、ポリヌクレオチド（Ｂ）を含むベクター又はＤＮＡ断片とを、それぞれ別々に、細胞に導入することにより作製することができる。この場合も、ポリヌクレオチド（Ａ）及びポリヌクレオチド（Ｂ）は、発現可能な状態であることが好ましく、プロモーターに機能的に連結されていることが好ましい。例えば、ベクターを用いる場合には、上記［ベクター］で説明した発現ベクター、トランスポゾンベクター又は部位特異的に細胞のゲノムやプラスミドに挿入させるベクター（上述）であることが好ましい。ポリヌクレオチド（Ａ）及びポリヌクレオチド（Ｂ）が発現可能な状態で細胞に導入された場合、当該細胞において、ポリヌクレオチド（Ａ）及びポリヌクレオチド（Ｂ）が発現し、ポリペプチド（Ａ）及びポリペプチド（Ｂ）が産生され得る。ポリペプチド（Ｂ）は、脂肪族アルコール合成補助活性を有するため、ポリペプチド（Ａ）が単独で産生される場合と比較して、細胞の脂肪族アルコール合成能がより向上し得る。
別の態様において、本実施形態の細胞は、ポリヌクレオチド（Ａ）を含む、野生株の細胞であってもよい。そのような細胞としては、例えば、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属に属する微生物であって、ポリヌクレオチド（Ａ）を含む微生物、が例示される。好ましい態様において、前記微生物は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属に属する微生物であって、ポリヌクレオチド（Ａ）及びポリヌクレオチド（Ｂ）を含む微生物、である。前記微生物において、ポリヌクレオチド（Ａ）、又はポリヌクレオチド（Ａ）及びポリヌクレオチド（Ｂ）は、発現可能な状態で含まれていることが好ましい。これにより、ポリペプチド（Ａ）、又はポリペプチド（Ａ）及びポリペプチド（Ｂ）が発現し、当該微生物は脂肪族アルコール合成能を有し得るか、または、もともともつ脂肪族アルコール合成能を向上し得る。
細胞が、ポリヌクレオチド（Ａ）を含むか否かは、ＰＣＲ法によるポリヌクレオチド（Ａ）またはその断片の増幅、ポリヌクレオチド（Ａ）またはその断片をプローブとして用いたサザンハイブリダイゼーション法、全ゲノム解析等の公知の方法により確認することができる。細胞が、ポリヌクレオチド（Ｂ）を含むか否かも同様に確認することができる。
［脂肪族アルコールの製造方法］
１実施形態において、本発明は、脂肪族アルコールの製造方法を提供する。
１実施形態において、本発明は、脂肪族アルコールの製造方法を提供する。
（第１実施態様）
本実施形態の製造方法は、１態様において、（ａ）１−４株又はその変異株を培養する工程、及び（ｂ）前記工程（ａ）により得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程、を含む。
本実施形態の製造方法は、１態様において、（ａ）１−４株又はその変異株を培養する工程、及び（ｂ）前記工程（ａ）により得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程、を含む。
＜工程（ａ）＞
工程（ａ）は、１−４株又はその変異株を培養する工程である。１−４株又はその変異株は、上記「Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株及びその変異株」で記載したものと同様である。
工程（ａ）は、１−４株又はその変異株を培養する工程である。１−４株又はその変異株は、上記「Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株及びその変異株」で記載したものと同様である。
１−４株又はその変異株の培養は、上記「Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株及びその変異株」で例示した条件で行うことができる。本工程の培養に用いる培地は、低栄養のものを用いることが好ましく、海水を含むものがより好ましく、深層水を含むものがより好ましい。例えば、細菌用の培地を海水（好ましくは深層水）で希釈した培地を好適に用いることができる。前記希釈倍率としては、１〜２０倍、４〜１５倍、５〜１２倍等が挙げられる。一例として、希釈倍率は１０倍である。好適な培地の具体例としては、実施例に記載のｄＲ１培地、ｄＲ培地等が挙げられる。中でも、ｄＲ培地が好ましい。
培養方法は、特に限定されず、好気性細菌の培養に一般的に用いられる方法を用いることができる。培養は、静置培養、振とう培養のいずれで行ってもよいが、増殖効率の観点から、振とう培養であることが好ましい。なお、静置培養とする場合には、ポンプ等を使用して、適時培地に空気を供給してもよい。
培養は、バッチ培養、流加培養、連続培養のいずれの方法で行ってもよい。
培養は、バッチ培養、流加培養、連続培養のいずれの方法で行ってもよい。
＜工程（ｂ）＞
工程（ｂ）は、工程（ａ）で得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程である。
工程（ｂ）は、工程（ａ）で得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程である。
本工程は、１−４株又はその変異株の性質、培養後の細菌の状態等に応じて、適宜適切な方法を選択して行うことができる。例えば、脂肪族アルコールを菌体内に溜め込む場合には、培養物から、菌体を回収し、当該菌体から脂肪族アルコールを得ることができる。培養物からの菌体の回収方法としては、遠心分離又はフィルターろ過等が挙げられる。フィルターろ過に用いるフィルターとしては、孔径０．２２μｍのフィルターが例示される。菌体からの脂肪族アルコールを回収する方法としては、例えば、菌体にｎ−ヘプタン等の有機溶媒を加えて振とう後に有機層を回収する方法が挙げられる。また、菌体に有機溶媒添加前に又は有機溶媒添加後の振とう前か振とうと同時に菌体の破砕を行ってもよい。菌体の破砕方法としては、例えば、ビーズ（ガラスビーズ、ジルコニアビーズ等）、乳鉢、超音波処理、フレンチプレス、ホモジナイザー、凍結融解処理などの物理的処理；中和処理、低張処理などの化学的処理等の公知の方法などが挙げられる。これらの処理は、単独で行ってもよく、２種以上の処理を組み合わせて行ってもよい。また、培養後に細菌が溶菌したり、脂肪族アルコールの分泌能を獲得した１−４株の変異株を用いる場合には、菌体を回収することなく、培養上清に浮遊する脂肪族アルコールをそのまま回収してもよい。また、脂肪族アルコールが、培養上清中に固体状態で存在する場合には、必要に応じて菌体を除去した後、培養上清をフィルター濾過すること等により固体状態の脂肪族アルコールを回収してもよい。また、培養物にｎ−ヘプタン等の有機溶媒を直接加えて脂肪族アルコールの抽出を行ってもよく、培養物又は培養上清の蒸留により脂肪族アルコールを回収してもよい。
＜任意工程＞
本実施態様の製造方法は、工程（ａ）及び工程（ｂ）に加えて、他の工程を含んでいてもよい。他の工程は、特に限定されないが、工程（ｂ）で得られた抽出物から脂肪族アルコールを精製する工程等が例示される。脂肪族アルコールの精製方法は、特に限定されず、有機化合物の分離・精製において一般的に用いられる方法を適宜組み合わせて用いることができる。精製方法としては、例えば、薄層クロマトグラフィ、液体クロマトグラフィ等の各種クロマトグラフィ法が挙げられる。
本実施態様の製造方法は、工程（ａ）及び工程（ｂ）に加えて、他の工程を含んでいてもよい。他の工程は、特に限定されないが、工程（ｂ）で得られた抽出物から脂肪族アルコールを精製する工程等が例示される。脂肪族アルコールの精製方法は、特に限定されず、有機化合物の分離・精製において一般的に用いられる方法を適宜組み合わせて用いることができる。精製方法としては、例えば、薄層クロマトグラフィ、液体クロマトグラフィ等の各種クロマトグラフィ法が挙げられる。
（第２実施態様）
本実施形態の製造方法は、１態様において、（ａ’）上記実施形態の細胞を培養する工程、及び（ｂ’）前記工程（ａ’）により得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程、を含む。
本実施形態の製造方法は、１態様において、（ａ’）上記実施形態の細胞を培養する工程、及び（ｂ’）前記工程（ａ’）により得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程、を含む。
＜工程（ａ’）＞
工程（ａ’）は、上記実施形態の細胞（上記［細胞］で記載した細胞）を培養する工程である。細胞の培養に使用する培地は、細胞の種類やプロモーターなどに応じて、適宜選択すればよい。例えば、炭素源として、グルコース、ピルビン酸、酢酸、リンゴ酸などを含む培地等が例示される。細胞が大腸菌である場合の好適な培地の具体例としては、実施例に記載のＭ９培地が挙げられる。また、ポリヌクレオチドＡ及び／又はＢに用いたプロモーターの種類に応じて、当該プロモーターの転写誘導に必要な化合物を培地に添加してもよい。
工程（ａ’）は、上記実施形態の細胞（上記［細胞］で記載した細胞）を培養する工程である。細胞の培養に使用する培地は、細胞の種類やプロモーターなどに応じて、適宜選択すればよい。例えば、炭素源として、グルコース、ピルビン酸、酢酸、リンゴ酸などを含む培地等が例示される。細胞が大腸菌である場合の好適な培地の具体例としては、実施例に記載のＭ９培地が挙げられる。また、ポリヌクレオチドＡ及び／又はＢに用いたプロモーターの種類に応じて、当該プロモーターの転写誘導に必要な化合物を培地に添加してもよい。
培養方法も、細胞の種類やプロモーターなどに応じて適宜選択すればよい。例えば、細胞が好気性細菌である場合には、増殖効率の観点から、振とう培養を行なうことが好ましい。培養は、バッチ培養、流加培養、連続培養のいずれの方法で行ってもよい。また、ポリヌクレオチドＡ及び／又はＢに用いたプロモーターが刺激応答性プロモーターである場合には、当該プロモーターの転写誘導に必要な刺激（光、温度、ｐＨ、化合物等）を培養中に付与するようにしてもよい。
＜工程（ｂ’）＞
工程（ｂ’）は、工程（ａ’）により得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程であり、上記第１実施態様における工程（ｂ）と同様に行うことができる。
工程（ｂ’）は、工程（ａ’）により得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程であり、上記第１実施態様における工程（ｂ）と同様に行うことができる。
＜任意工程＞
本実施態様の製造方法は、工程（ａ’）及び工程（ｂ’）に加えて、他の工程を含んでいてもよい。他の工程としては、上記第１実施態様で挙げた工程と同様の工程が挙げられる。
本実施態様の製造方法は、工程（ａ’）及び工程（ｂ’）に加えて、他の工程を含んでいてもよい。他の工程としては、上記第１実施態様で挙げた工程と同様の工程が挙げられる。
本実施形態の方法は、脂肪族アルコール生産能の高い細胞を用いて、生物学的に脂肪族アルコールを製造する。そのため、簡易な方法で効率よく脂肪族アルコールを製造することができる。
以下、実施例により本発明を説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
［材料及び方法］
（細胞株）
１−４株は、２０１１年の夏に、日本国高知県室戸市の沿海部で採取された表層海水（33°18’N, 134°11’E, 深度0.5m）から単離された。大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）ＤＨ５ａは、東洋紡から入手し、ＤＮＡ操作及び異種遺伝子発現のホスト株として用いた。
（細胞株）
１−４株は、２０１１年の夏に、日本国高知県室戸市の沿海部で採取された表層海水（33°18’N, 134°11’E, 深度0.5m）から単離された。大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）ＤＨ５ａは、東洋紡から入手し、ＤＮＡ操作及び異種遺伝子発現のホスト株として用いた。
（培地）
試験で用いた培地を表１に示す。
試験で用いた培地を表１に示す。
ｄＲ培地は、フィルター（0.22μm，express plus, Millipore）でろ過し、１１０℃で２秒間オートクレーブした。必要に応じて、培地に、０．５μｇ／ｍＬのナイルレッド、１ｍＭのイソプロピル−β−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）及び１００μｇ／ｍＬのアンピシリンを添加した。
（電子顕微鏡法）
透過電子顕微鏡法（JEM1200EX; JEOL）のために、増殖が濁度で観察されるまで、室温で、ｄＲ培地中で１−４株を増殖させた。細胞を、２％酢酸ウラニルでネガティブ染色した。細胞を、グルタルアルデヒドを２％で含む０．１Ｍリン酸バッファー（ｐＨ７．４）で前固定し、２％ ＯｓＯ４で後固定し、濃度勾配エタノール（５０〜１００％）で脱水し、Ｅｐｏｎ８１２に包埋し、薄片化（８０〜９０ｎｍ）した。最初に、２％酢酸ウラニルで染色し、その後、鉛染色液（Lead stain solution; Sigma-aldrich）で染色した。
透過電子顕微鏡法（JEM1200EX; JEOL）のために、増殖が濁度で観察されるまで、室温で、ｄＲ培地中で１−４株を増殖させた。細胞を、２％酢酸ウラニルでネガティブ染色した。細胞を、グルタルアルデヒドを２％で含む０．１Ｍリン酸バッファー（ｐＨ７．４）で前固定し、２％ ＯｓＯ４で後固定し、濃度勾配エタノール（５０〜１００％）で脱水し、Ｅｐｏｎ８１２に包埋し、薄片化（８０〜９０ｎｍ）した。最初に、２％酢酸ウラニルで染色し、その後、鉛染色液（Lead stain solution; Sigma-aldrich）で染色した。
（１６ＳｒＲＮＡ遺伝子の解析）
１−４株のほぼ全長の１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列を以前に記載された方法で得た（Teramoto, M., et al., 2009. Microbiology 155, 3362-3370.）。得られた配列を、ＣＬＵＳＴＡＬ Ｘ（ｖｅｒ．２．１）を用いて、公共データベースで利用可能なガンマプロテオバクテリア綱の細菌の配列とアライメントした。アライメントは、必要に応じて、手作業で修正し、ギャップのトリミングを行った。デフォルトパラメータ（Ｋｉｍｕｒａの補正を含む）を用いたＣＬＵＳＴＡＬ Ｘによる近隣結合法（Saitou, N. & Nei, M. 1987. Mol Biol Evol 4, 406-425.）及びＭＥＧＡ６．０６（Tamura, K., et al., 2013. Mol Biol Evol 30, 2725-2729.）による最尤法（Felsenstein, J. 1981. J Mol Evol 17, 368-376.）を用いて、１２５４ｂｐのアライメントした配列から系統樹を作製し、１０００回のリサンプリングに基づき、ブートストラップ法（Felsenstein, J. 1985. Evolution 39, 783-791.）で解析した。
１−４株のほぼ全長の１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列を以前に記載された方法で得た（Teramoto, M., et al., 2009. Microbiology 155, 3362-3370.）。得られた配列を、ＣＬＵＳＴＡＬ Ｘ（ｖｅｒ．２．１）を用いて、公共データベースで利用可能なガンマプロテオバクテリア綱の細菌の配列とアライメントした。アライメントは、必要に応じて、手作業で修正し、ギャップのトリミングを行った。デフォルトパラメータ（Ｋｉｍｕｒａの補正を含む）を用いたＣＬＵＳＴＡＬ Ｘによる近隣結合法（Saitou, N. & Nei, M. 1987. Mol Biol Evol 4, 406-425.）及びＭＥＧＡ６．０６（Tamura, K., et al., 2013. Mol Biol Evol 30, 2725-2729.）による最尤法（Felsenstein, J. 1981. J Mol Evol 17, 368-376.）を用いて、１２５４ｂｐのアライメントした配列から系統樹を作製し、１０００回のリサンプリングに基づき、ブートストラップ法（Felsenstein, J. 1985. Evolution 39, 783-791.）で解析した。
（脂肪族アルコールの生産及びＧＣ−ＭＳ解析）
１−４株は、ｄＲ培地中で、２８℃で３７−３８時間振とう培養して増殖させた。脂肪族アルコール定量のためには、１−４株は、約２００ｍＬのｄＲ培地で、ＯＤ６００が０．０５〜０．０６に達するまで増殖させた。大腸菌は、ＩＰＴＧ及びアンピシリンを添加したＭ９培地中で、２８℃で、振とう培養して完全に増殖させた。
１−４株は、ｄＲ培地中で、２８℃で３７−３８時間振とう培養して増殖させた。脂肪族アルコール定量のためには、１−４株は、約２００ｍＬのｄＲ培地で、ＯＤ６００が０．０５〜０．０６に達するまで増殖させた。大腸菌は、ＩＰＴＧ及びアンピシリンを添加したＭ９培地中で、２８℃で、振とう培養して完全に増殖させた。
脂肪族化合物の抽出には、１−４株の約３００μＬの濃縮細胞懸濁液、又は４００〜６２０μＬの大腸菌培養液を用いた。これらの液に、３００〜４００μＬのｎ−ヘプタンを加えて、６０℃で１０分間加熱し、１分間ボルテックスし、３０〜４０℃で５分間遠心分離して、ｎ−ヘプタン層に脂肪族化合物を抽出した。ｎ−ヘプタンによる抽出操作は、合計３回行った。遠心分離後に厚い中間層が現れたサンプルについては、サンプルを凍結融解させた後に再度遠心分離を行った。このようにして得たｎ−ヘプタン抽出物を硫酸ナトリウムにより脱水し、Ｎ２パージにより濃縮し、以前に記載の方法でＧＣ−ＭＳ解析を行った（Teramoto M, et al., 2013. PLoS One. 8: e66594.）。全てのサンプルにおいて、１μＬずつをスプリットレス注入法により解析した。
マススペクトル及びリテンションタイムに基づき、ＮＩＳＴライブラリー及び脂肪族アルコール標品（１−テトラデカノール、１−ヘキサデカノール、及び１−オクタデカノール）を用いて、脂肪族アルコールを同定した。定量は、標品のピーク面積との比較により行った。Ｃ１４アルコール（１−テトラデカノール及び１−テトラデセノール）は、１−テトラデカノール標品と比較した。Ｃ１６アルコール（１−ヘキサデカノール及び１−ヘキサデセノール）は、１−ヘキサデカノール標品と比較した。Ｃ１８アルコール（１−オクタデカノール及び１−オクタデセノール）は、１−オクタデカノール標品と比較した。
細胞乾燥重量は、培養液を遠心分離又はフィルター（0.22μm，express plus, Millipore）ろ過して細胞を回収した後、細胞を乾燥させて重量を測定することにより求めた。
（ゲノムシークエンス及びプラスミド構築）
１−４株からの全ＤＮＡの抽出を、特記しないかぎり以前に記載された方法（Misawa, N., et al., 1990. J. Bacteriol. 172, 6704-6712.）と同様に行った。１−４株の細胞を２ＬのｄＲ培地で増殖させた。細胞は、ＴＥＳバッファーで処理せず、１ｍＬのｓｏｌｕｔｉｏｎ Ｉに懸濁した。プロナーゼＥに替えて、プロテイナーゼＫを用いた。一回目のフェノール−クロロホルム抽出の後、５００μＬのＴＥバッファー（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ，１ｍＭ ＥＤＴＡ，ｐＨ８．０）を抽出物に添加した。この全ＤＮＡを用いて、ＨｉＳｅｑ２５００（Illumina）によるゲノムシークエンス、及び得られた配列のアセンブリを行った（Takara Bio Inc.）。その結果、合計５．５Ｍｂを含む２６９コンティグが得られた。
１−４株からの全ＤＮＡの抽出を、特記しないかぎり以前に記載された方法（Misawa, N., et al., 1990. J. Bacteriol. 172, 6704-6712.）と同様に行った。１−４株の細胞を２ＬのｄＲ培地で増殖させた。細胞は、ＴＥＳバッファーで処理せず、１ｍＬのｓｏｌｕｔｉｏｎ Ｉに懸濁した。プロナーゼＥに替えて、プロテイナーゼＫを用いた。一回目のフェノール−クロロホルム抽出の後、５００μＬのＴＥバッファー（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ，１ｍＭ ＥＤＴＡ，ｐＨ８．０）を抽出物に添加した。この全ＤＮＡを用いて、ＨｉＳｅｑ２５００（Illumina）によるゲノムシークエンス、及び得られた配列のアセンブリを行った（Takara Bio Inc.）。その結果、合計５．５Ｍｂを含む２６９コンティグが得られた。
プラスミド構築の詳細を表２に示す。ｐｈｓＡＢを含む５．９ｋｂのＤＮＡ断片を、１−４株の全ＤＮＡから、ＫＯＤ ｐｌｕｓ Ｎｅｏ（東洋紡）を用いて増幅した。
（他の方法）
運動性は、明視野顕微鏡（mil-kin；Aqua system, 日本）により確認した。増殖温度は、４℃、１０℃、１５℃、２０℃、２５℃、３０℃、又は３５℃で、１．５％（ｗ／ｖ）寒天を含むｄＭＢで３週間培養して試験した。カゼイン分解、スターチ分解及びキチン分解は、以前に記載されたように試験した（Teramoto M, et al., 2015. Int J Syst Evol Microbiol. 65:353-358.）。寒天分解及び抗生物質耐性は、ｄＲ２Ａ−ＳＷプレート上で試験した。
運動性は、明視野顕微鏡（mil-kin；Aqua system, 日本）により確認した。増殖温度は、４℃、１０℃、１５℃、２０℃、２５℃、３０℃、又は３５℃で、１．５％（ｗ／ｖ）寒天を含むｄＭＢで３週間培養して試験した。カゼイン分解、スターチ分解及びキチン分解は、以前に記載されたように試験した（Teramoto M, et al., 2015. Int J Syst Evol Microbiol. 65:353-358.）。寒天分解及び抗生物質耐性は、ｄＲ２Ａ−ＳＷプレート上で試験した。
［結果］
（１−４株の単離）
室戸の表層海水をＤＳＷ１プレートに直接プレーティングして、細菌を単離した。脂肪族アルコールを蓄積する単離株を、ナイルレッド（Greenspan P, et al., 1985. J Cell Biol. 100: 965-973.; Spiekermann P., et al., 1999. Arch Microbiol. 171: 73-80.）を含むＤＳＷ１プレート上でスクリーニングし、蓄積された化合物をＧＣ−ＭＳで解析することで選別した（データは示さず）。１個の単離株が脂肪族アルコールを蓄積することを見出し、その単離株が蓄積する主要な脂肪族アルコールとして、１−ヘキサデカノールを検出した（図２）。この単離株を１−４株と命名した。
（１−４株の単離）
室戸の表層海水をＤＳＷ１プレートに直接プレーティングして、細菌を単離した。脂肪族アルコールを蓄積する単離株を、ナイルレッド（Greenspan P, et al., 1985. J Cell Biol. 100: 965-973.; Spiekermann P., et al., 1999. Arch Microbiol. 171: 73-80.）を含むＤＳＷ１プレート上でスクリーニングし、蓄積された化合物をＧＣ−ＭＳで解析することで選別した（データは示さず）。１個の単離株が脂肪族アルコールを蓄積することを見出し、その単離株が蓄積する主要な脂肪族アルコールとして、１−ヘキサデカノールを検出した（図２）。この単離株を１−４株と命名した。
１−４株は、ＭＢ及びＲ２Ａ培地よりも、ｄＭＢ及びｄＲ１培地でよく増殖した。１−４株は、ｄＲ１培地では脂肪族アルコールを生産したが、ｄＭＢでは生産しなかった（データは示さず）。この結果は、脂肪族アルコール合成に関与する遺伝子が、比較的低栄養環境下で発現することを示唆する。１−４株は、ｄＲ１培地（表層海水ベース）よりも、ｄＲ培地（深層水ベース）において高濃度の脂肪族アルコールを細胞に蓄積するようであった（データは示さず）。一般的に海洋深層水は、表層海水と比べて窒素とリンを多く有機炭素を少なく含むので、これらの濃度差により脂肪族アルコールが高蓄積した可能性がある。ｄＲ培地で増殖させたとき、１−４株は、乾燥細胞重量の０．９±０．２％のＣ１４，１６，１８脂肪族アルコールを蓄積した。この脂肪族アルコール含有量は、自然界の生物の細胞において、最も高い含有量である可能性がある。Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｏｒ属の細菌では、ｎｕｔｒｉｅｎｔ−ｒｉｃｈ ｂｒｏｔｈで増殖させたとき、脂肪族アルコールの蓄積は、乾燥細胞重量の０．００１％以下であり、ヘキサデカン（脂肪族アルコールの前駆体となる）を含む無機培地で増殖させたときでさえ、脂肪族アルコールの蓄積は、乾燥細胞重量の０．０６％であると報告されている（Makula RA, et al., 1975. J Bacteriol. 121: 250-258.）。
（１−４株の一般的特徴）
１−４株は、１つの極鞭毛を有する桿菌（０．３〜１．１×０．３〜８．２μｍ）であり（図３）、運動性がある。１−４株は、１０〜３０℃（最適温度２０〜３０℃）の温度範囲で増殖し、４℃及び３５℃では増殖しない。１−４株は、海水を含まない（海水を水に置換した）dR1培地では増殖しない。１−４株は、１２μｇ／ｍＬのテトラサイクリン及び５０μｇ／ｍＬのゲンタマイシンに耐性であるが、２０μｇ／ｍＬのクロラムフェニコール及び１００μｇ／ｍＬのカナマイシンには耐性がない。１−４株は、カゼイン、スターチ、及び寒天を分解するが、キチンは分解しない。
１−４株は、１つの極鞭毛を有する桿菌（０．３〜１．１×０．３〜８．２μｍ）であり（図３）、運動性がある。１−４株は、１０〜３０℃（最適温度２０〜３０℃）の温度範囲で増殖し、４℃及び３５℃では増殖しない。１−４株は、海水を含まない（海水を水に置換した）dR1培地では増殖しない。１−４株は、１２μｇ／ｍＬのテトラサイクリン及び５０μｇ／ｍＬのゲンタマイシンに耐性であるが、２０μｇ／ｍＬのクロラムフェニコール及び１００μｇ／ｍＬのカナマイシンには耐性がない。１−４株は、カゼイン、スターチ、及び寒天を分解するが、キチンは分解しない。
基準株の中では、１−４株は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属の細菌に最も類似していた。１−４株のほぼ全長の１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属の基準種の基準株であるＲｅｉｎｅｋｅａ ｍａｒｉｎｉｓｅｄｉｍｅｎｔｏｒｕｍ ＤＳＭ １５３８８Ｔの配列と、９５．３％の類似性を有していた。このことは、１−４株が、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属に属することを示唆する（Tindall BJ, et al., 2010. Int J Syst Evol Microbiol 60, 249-266.）。１６ＳｒＲＮＡ遺伝子配列に基づく系統樹では、１−４株は、Ｒｅｉｎｅｋｅａ属の細菌とクラスターを形成し、Ｏｃｅａｎｏｓｐｉｒｉｌｌａｌｅｓ目に含まれた（図４）。
図４は、Ｇａｍｍａｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ綱の中での１−４株の位置を、１６Ｓ ｒＲＮＡ 遺伝子配列（１２５４ｂｐ）に基づいて示した近隣結合法による系統樹である。
図４は、Ｇａｍｍａｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ綱の中での１−４株の位置を、１６Ｓ ｒＲＮＡ 遺伝子配列（１２５４ｂｐ）に基づいて示した近隣結合法による系統樹である。
（脂肪族アルコール合成クラスター、ｐｈｓＡＢの同定）
１−４株のもつ脂肪族アルコール合成遺伝子を同定するため、１−４株のゲノムをシークエンスした。ｐｈｓＡと命名した遺伝子の遺伝子産物は、脂肪族アルコールを形成する脂肪族アシルＣｏＡレダクターゼと有意な相同性を有していた。ｐｈｓＡの遺伝子産物は、Ｍａｑｕ＿２５０７（accession no. CP000514；Willis RM, et al., 2011. Biochemistry. 50: 10550-10558）の遺伝子産物に５１％のアミノ酸同一性を示し、Ａｃｒ１（accession no. AAC45217；Reiser S and Somerville C. 1997. J Bacteriol. 179: 2969-2975.; Steen EJ, et al., 2010. Nature. 463: 559-562.）に４６％のアミノ酸同一性を示した。ｐｈｓＡは、ｐｈｓＢと命名した下流遺伝子とオペロンになっているようであった（図５）。ｐｈｓＢの遺伝子産物は、既知のタンパク質と有意な相同性を示さなかったが、リパーゼに非常に低い相同性を示した。例えば、Ａｅｒｏｍｏｎａｓ ｈｙｄｒｏｐｈｉｌａ（Anguita J, et al., 1993. Appl Environ Microbiol. 59: 2411-2417.）のリパーゼにアミノ酸配列で７％の同一性、及び４３％の類似性を示した。アシル−ＡＣＰ（acyl carrier protein）／脂肪酸／アシル−ＣｏＡレダクターゼをコードする遺伝子［Ｍａｑｕ＿２５０７遺伝子（www.genome.jp/kegg/）及びａｃｒ１（Reiser S and Somerville C. 1997. J Bacteriol. 179: 2969-2975.）を含む］は、リパーゼ遺伝子又はそのホモログとクラスターを形成しない。
１−４株のもつ脂肪族アルコール合成遺伝子を同定するため、１−４株のゲノムをシークエンスした。ｐｈｓＡと命名した遺伝子の遺伝子産物は、脂肪族アルコールを形成する脂肪族アシルＣｏＡレダクターゼと有意な相同性を有していた。ｐｈｓＡの遺伝子産物は、Ｍａｑｕ＿２５０７（accession no. CP000514；Willis RM, et al., 2011. Biochemistry. 50: 10550-10558）の遺伝子産物に５１％のアミノ酸同一性を示し、Ａｃｒ１（accession no. AAC45217；Reiser S and Somerville C. 1997. J Bacteriol. 179: 2969-2975.; Steen EJ, et al., 2010. Nature. 463: 559-562.）に４６％のアミノ酸同一性を示した。ｐｈｓＡは、ｐｈｓＢと命名した下流遺伝子とオペロンになっているようであった（図５）。ｐｈｓＢの遺伝子産物は、既知のタンパク質と有意な相同性を示さなかったが、リパーゼに非常に低い相同性を示した。例えば、Ａｅｒｏｍｏｎａｓ ｈｙｄｒｏｐｈｉｌａ（Anguita J, et al., 1993. Appl Environ Microbiol. 59: 2411-2417.）のリパーゼにアミノ酸配列で７％の同一性、及び４３％の類似性を示した。アシル−ＡＣＰ（acyl carrier protein）／脂肪酸／アシル−ＣｏＡレダクターゼをコードする遺伝子［Ｍａｑｕ＿２５０７遺伝子（www.genome.jp/kegg/）及びａｃｒ１（Reiser S and Somerville C. 1997. J Bacteriol. 179: 2969-2975.）を含む］は、リパーゼ遺伝子又はそのホモログとクラスターを形成しない。
ｐｈｓＡを導入した大腸菌株は、Ｃ１４，１６，１８脂肪族アルコールを蓄積したが、脂肪族アルデヒドは蓄積しなかった（図６のｐＢＳ２９ＳＮＸ）。一方、コントロールベクターを保持する大腸菌株は、脂肪族アルコール及び脂肪族アルデヒドのいずれも蓄積しなかった（図６のＣｏｎｔｒｏｌ ｖｅｃｔｏｒ）。配列相同性とともに、これらの結果は、ｐｈｓＡが、脂肪族アルコールを形成する脂肪族アシルＣｏＡレダクターゼをコードすることを示唆する。ｐｈｓＡを単独で保持する大腸菌株では、乾燥細胞重量の１９％の脂肪族アルコールが蓄積した（図６のｐｈｓＡ）。これは、脂肪族アルコール含有量として、これまでで最も高い値であり、しかもアシルーＡＣＰ／脂肪酸／アシル−ＣｏＡレダクターゼのみを発現させて得られた値である。報告されている吸光度（細胞密度を示す）又は増殖条件に基づいて推定すると、組換え大腸菌に蓄積される脂肪族アルコールのこれまでの最大量は、乾燥細胞重量の１７％までと推定でき、この値はアシル−ＡＣＰ／脂肪酸／アシル−ＣｏＡレダクターゼの発現とともにアシル−ＡＣＰチオエステラーゼを過剰発現させることで達成されている（Liu A, et al., 2013. Appl Microbiol Biotechnol. 97: 7061-7071.; 図１）。
一方、ｐｈｓＢのリパーゼ活性は、ｐｈｓＢ（ｐＢＳ２９ＳＮＣ）を導入した大腸菌株における脂肪酸の蓄積の変化をみたＴＬＣでは検出されなかった（データは示さず）。しかしながら、ｐｈｓＡＢ（ｐＢＳ２９ＳＮ）を導入した大腸菌株は、乾燥細胞重量の２４％という高濃度のＣ１４，１６，１８脂肪族アルコールを蓄積した（図７）。これは、ｐｈｓＡのみを導入した大腸菌株よりも高い値である（図７）。さらに、ｐｈｓＡＢ（ｐＢＳ２９ＳＮ）を導入した大腸菌株は、ｐｈｓＡ（ｐＢＳ２９ＳＮＸ）を導入した大腸菌よりも増殖速度が速かった。これらの結果は、新規遺伝子クラスターｐｈｓＡＢが、脂肪族アルコールの高生産性に有利であることを示している。そして、この２４％という蓄積量は、アシル−ＡＣＰチオエステラーゼの過剰発現によりさらに高くなる可能性がある。
これらｐｈｓＢによる脂肪族アルコールの高蓄積と増殖促進は、ｐｈｓＢ産物が潜在的にリパーゼとして機能することと一致する。すなわち、ｐｈｓＢは、アシルＣｏＡ（β酸化を介してエネルギー源及び炭素源となるとともに、レダクターゼの基質となる）のレベルを増加させると考えられる（図１）。
これらｐｈｓＢによる脂肪族アルコールの高蓄積と増殖促進は、ｐｈｓＢ産物が潜在的にリパーゼとして機能することと一致する。すなわち、ｐｈｓＢは、アシルＣｏＡ（β酸化を介してエネルギー源及び炭素源となるとともに、レダクターゼの基質となる）のレベルを増加させると考えられる（図１）。
本発明によれば、生物学的な方法により脂肪族アルコールを製造する技術が提供される。
Claims (8)
- Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株（ＮＩＴＥ Ｐ−０２６２０）又はその変異株。
- 下記（Ａ１）〜（Ａ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチド。
（Ａ１）配列番号２に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ２）配列番号２に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ３）配列番号２に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ４）配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド
（Ａ５）配列番号１に記載の塩基配列において１又は複数個の塩基が欠失、置換、付加、又は挿入された塩基配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ６）配列番号１に記載の塩基配列と８０％以上の配列同一性を有する塩基配列からなり、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ａ７）配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、且つ脂肪族アルコール合成活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド - 下記（Ｂ１）〜（Ｂ７）からなる群より選択されるポリヌクレオチド。
（Ｂ１）配列番号４に記載のアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
（Ｂ２）配列番号４に記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードし、且つ配列番号１に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド（ｐｈｓＡ）とともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ３）配列番号４に記載のアミノ酸配列と８０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードし、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ４）配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチド
（Ｂ５）配列番号３に記載の塩基配列において１又は複数個の塩基が欠失、置換、付加、又は挿入された塩基配列からなり、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ６）配列番号３に記載の塩基配列と８０％以上の配列同一性を有する塩基配列からなり、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド
（Ｂ７）配列番号３に記載の塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、且つｐｈｓＡとともに細胞に導入した場合に、ｐｈｓＡ単独で導入した細胞と比較して、細胞の脂肪族アルコール含有量が上昇する、ポリヌクレオチド - 請求項２に記載のポリヌクレオチド及び請求項３に記載のポリヌクレオチドのいずれか又は両方を含む、ベクター。
- 請求項２に記載のポリヌクレオチドを含む、細胞。
- さらに、請求項３に記載のポリヌクレオチドを含む、請求項５に記載の細胞。
- （ａ）Ｒｅｉｎｅｋｅａ ｓｐ． １−４株（ＮＩＴＥ Ｐ−０２６２０）又はその変異株を培養する工程、及び
（ｂ）前記工程（ａ）により得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程、
を含む、脂肪族アルコールの製造方法。 - （ａ’）請求項５又は６に記載の細胞を培養する工程、及び
（ｂ’）前記工程（ａ’）により得られた培養物から、脂肪族アルコールを得る工程、
を含む、脂肪族アルコールの製造方法。
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| LIU A, ET AL., FATTY ALCOHOL PRODUCTION IN ENGINEERED E. COLI EXPRESSING MARINOBACTER FATTY ACYL-COA, JPN6021049375, 2013, ISSN: 0004661491 * |
| LIU R, ET AL., METABOLIC ENGINEERING OF FATTY ACYL-ACP REDUCTASE-DEPENDENT PATHWAY TO IMPROVE FATTY, JPN6021049372, 2013, ISSN: 0004661493 * |
| LIU Y, ET AL., HIGH PRODUCTION OF FATTY ALCOHOLS IN ESCHERICHIA COLI WITH FATTY ACID STARVATION. MIC, JPN6021049371, 2016, ISSN: 0004661494 * |
| ZHENG YN, ET AL., OPTIMIZATION OF FATTY ALCOHOL BIOSYNTHESIS PATHWAY FOR SELECTIVELY ENHANCED PRODUC, JPN6021049373, 2012, ISSN: 0004661492 * |
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