JP2018521103A - 保存安定性が向上した医薬組成物及びその製造方法 - Google Patents
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Abstract
Description
(式中、R1は、H又はCOCH3であり、R2は、フェニル又はO(CH3)3である。)
で示される類縁物質を0.17重量部未満の量で含む、医薬組成物を提供する。
(式中、R1は、H又はCOCH3であり、R2は、フェニル又はO(CH3)3である。)
で示される類縁物質を0.17重量部未満の量で含む。
で示される化合物を含んでもよい。
撹拌機を備えた500mLの丸底フラスコにモノメトキシポリエチレングリコール(mPEG、数平均分子量=2,000)150gを入れ、真空条件下120℃にて2時間撹拌して、水分を除去した。反応フラスコにトルエン200μLに溶解させたオクタン酸第1スズ(Sn(Oct)2)0.15gを加え、真空条件下1時間さらに撹拌して、トルエンを蒸留除去した。次いで、D,L−ラクチド150gを加え、窒素雰囲気下撹拌して溶解させた。D,L−ラクチドを完全に溶解させた後、反応器を密封し、120℃で10時間重合反応させた。反応終了後、マグネチックバーで撹拌下、反応器を真空ポンプに接続し、生成物を1torr以下の圧力下昇華法により7時間精製して、溶融状態のmPEG−PDLLA 262gを得た。モノメトキシポリエチレングリコールの末端基である−OCH3を基準にして適切なピークの相対強度(intensity)を得る1H−NMRで分析することにより、分子量(Mn:約3740)を計算した。
精製工程を行う前の製造例1の重合反応工程で得られたmPEG−PDLLA 30gを1口フラスコに入れ、80℃で溶解させた。マグネチックバーで撹拌下、反応器を真空ポンプに接続し、生成物を1torr以下の圧力下昇華法により24時間及び48時間精製した。
精製温度を100℃にしたことを除いて、製造例2と同じ方法により精製を行った。
精製温度を120℃にしたことを除いて、製造例2と同じ方法により精製を行った。
精製工程を行う前の製造例1の重合反応工程で得られたmPEG−PDLLA 30gを1口フラスコに入れ、アセトン(60mL)を加えることにより溶解させた。酸化アルミニウム(15g)をそこに加え、完全に混合した。1口フラスコをロータリーエバポレーターに接続し、50℃、60rpmで2時間混合した。その後溶液を室温にてPTFEろ過紙(1μm)でろ過して、酸化アルミニウムを除去した。ろ過したアセトン溶液は、真空下60℃にてロータリーエバポレーターを用いて蒸留して、アセトンを除去し、これにより、精製されたmPEG−PDLLAを得た。モノメトキシポリエチレングリコールの末端基である−OCH3を基準にして適切なピークの相対強度(intensity)を得る1H−NMRで分析することにより、分子量(Mn:約3690)を計算した。
パクリタキセル1gと製造例1で得られたmPEG−PDLLA 5gを秤量し、エタノール4mLをそこに加え、混合物が完全に溶解して澄明な溶液を形成するまで60℃で撹拌した。次いで、エタノールを、丸底フラスコを備えたロータリーエバポレーターを用いて減圧下60℃で3時間除去した。その後、温度を50℃に下げ、室温の蒸留水140mLを加え、溶液が青色の透明な溶液になるまで反応させて、高分子ミセルを形成させた。凍結乾燥補助剤として、無水ラクトース2.5gをそこに加え、完全に溶解させ、孔径200nmのフィルターを用いてろ過し、凍結乾燥して、粉末状のパクリタキセル含有高分子ミセル組成物を得た。
製造例3において24時間精製されたmPEG−PDLLAを用いたことを除いて、比較例1と同じ方法によりパクリタキセル含有高分子ミセル組成物を製造した。
製造例5において精製されたmPEG−PDLLAを用いたことを除いて、比較例1と同じ方法によりパクリタキセル含有高分子ミセル組成物を製造した。
6カ月の加速試験(温度:40℃)に付したパクリタキセル含有高分子ミセル組成物100mgを含むバイアルに、脱イオン水(DW)16.7mLを加え、完全に溶解させ、この液体全量を取り、20mLメスフラスコに移し、標線を合わせて、全量を20mLにした(5.0mg/mL)。この液体2mLを取り、10mLメスフラスコに移し、アセトニトリルで標線を合わせて、全量を10mLにした(1mg/mL)。上記組成物に対して、下記の液体クロマトグラフィーを用いて類縁物質を単離及び分取した。
1) カラム:Poroshell 120 PFP(4.6×150 mm, 2.7 μm, Agilent)
2) 移動相:A:DW/ B:アセトニトリル
4) 注入量:10μL
5) 検出器:UV吸光光度計(測定波長:227 nm)
実験例1において単離された類縁物質(RRT:0.87±0.02(0.85〜0.89))を液体クロマトグラフィー−質量分析計(LC/MS/MS)のMSスキャン及びプロダクトイオンスキャンにより定性分析した。下記測定において、LC/MS/MSとして、液体クロマトグラフィー1200シリーズ及びエレクトロスプレーイオン化質量分析計6400シリーズ(Agilent, 米国)を用いた。分析条件は、以下の通りである。
1) カラム:Poroshell 120 PFP(4.6×150 mm, 2.7μm, Agilent)
2) 移動相:A:DW/ B:アセトニトリル
4) 注入量:10μL
5) 検出器:UV吸光光度計(測定波長:227 nm)
1) イオン化:エレクトロスプレーイオン化、ポジティブ(ESI+)
2) MS法:MS2スキャン/ プロダクトイオンスキャン
3) イオン源:Agilent Jet Stream ESI
4) ネブライザーガス(圧力):窒素(35 psi)
5) イオンスプレー電圧:3500 V
6) 乾燥ガス温度(流速):350℃(7 L/min)
7) シースガス温度(流速):400℃(10 L/min)
8) フラグメンター:135 V
9) ノズル電圧:500 V
10) セル加速電圧:7 V
11) EMV:0 V
12) 衝突エネルギー:22 V
13) 前駆イオン:m/z 894.2
14) 質量スキャン範囲:m/z 100〜1500
実験例2における定性分析の結果、パクリタキセル含有高分子ミセル組成物のHPLC分析においてRRT0.87に出現する物質は、パクリタキセルが酸性条件下存在するとき生成される物質として推定された。これを確認するために、パクリタキセルに1N HClを加えることにより化合物を製造し、Prep−LCを用いることによりRRT0.87における物質を単離及び分取し、LC/MS/MSにより分析した。LC/MS/MS分析結果を図3に示し、LC/MS/MS分析におけるプロダクトイオンスキャンの結果を高分子ミセル組成物の6カ月の加速試験試料の結果と共に図4に示す。
1N HClをパクリタキセルに加えることにより製造した化合物をRRT0.87の位置にて単離及び分取し、その化学構造をNMRにより分析した。NMR分析における1H NMR分析結果を図5に示し、13C NMR分析結果を図6に示し、COSY(相関分光法、Correlation Spectroscopy)分析結果を図7に示し、そしてHMBC(異核間多結合相関分光法、Heteronuclear Multiple Bond Correlation Spectroscopy)分析結果を図8に示す。
1. 1H NMR
1) NMR装置:温度コントローラを備えたBrucker DRX-300, AVANCE-400
2) 試料/ 溶媒:5 mm o.d. NMRチューブ中試料1〜10 mg/ クロロホルム-d 0.6 mL(すべてのNMR実験において同じ試料を用いた)
3) プローブヘッド:Brucker 5 mm QNP又はC-Hデュアルプローブ
4) プロトン90°パルス幅/ 励起角度/ 観測時間:10.0〜11.0μ秒/ 30°/ 〜5.0秒
5) 遅延時間/ スキャン数:1.0〜5.0秒/ 4〜64
2. 13C NMR
1) プローブヘッド:Brucker 5 mm QNP又はC-Hデュアルプローブ
2) カーボン90°パルス幅/ 励起角度/ 観測時間:10.0μ秒/ 30°/ 2.0〜3.0秒
3) 遅延時間/ スキャン数:2.0〜5.0秒/ 5,000超
3. COSY
1) NMR装置:Brucker AVANCE-400
2) プローブヘッド:Brucker 5 mm QNP
3) パルスシーケンス:cosygpパルスシーケンス
4) プロトン90°パルス幅/ 観測時間:11.0μ秒/ 0.4〜1.6秒
5) 遅延時間/ スキャン数/ ω1の実験回数:0.5〜2.0秒/ 32〜48/ 400〜500
4. HMBC
1) NMR装置:Brucker AVANCE-400
2) プローブヘッド:Brucker 5 mmインバースプローブ
3) パルスシーケンス:inv4gptpパルスシーケンス(HMQCについて)/ inv4gplprndパルスシーケンス(HMBCについて)
4) プロトン90°パルス幅/ カーボン90°パルス幅/ 観測時間:7.5μ秒/ 17〜18μ秒/ 0.15〜0.2秒
5) 遅延時間/ HMQCのスキャン数/ HMBCのスキャン数/ ω1の実験回数:1.0〜2.0秒/ 32〜96/ 224/ 128〜256
6) 温度/ 1/2(JCH):300K/ 3.5 m秒
比較例1並びに実施例1及び2において製造されるパクリタキセルの高分子ミセル組成物を、80℃のオーブン中に3週間保存し、その後、組成物をHPLCで分析して、類縁物質の量を比較した。試験溶液を、ミセル組成物を80%アセトニトリル水溶液に溶解させ、パクリタキセル濃度600ppmに希釈することにより、調製した。HPLC分析の結果スペクトルを図9に示しており、苛酷試験時間による類縁物質の量(%)の変化を下記表2に示す。
カラム:径2.7 μm, poroshell 120PFP(4.6×150 mm, 2.7 μm)(Agilent製カラム)
移動相
流速:0.6 mL/min
各類縁物質の量(%)=100(Ri/Ru)
Ri:試験溶液分析で検出された各類縁物質の面積
Ru:試験溶液分析で検出された全てのピーク面積の合計
RRT 0.96±0.02:パクリタキセル、オキセタン環開環化合物
RRT 1.00: パクリタキセル
RRT 1.10±0.02:パクリタキセル、L-ラクチド反応化合物
RRT 1.12±0.02:パクリタキセル、D-ラクチド反応化合物
RRT 1.44±0.05:パクリタキセル、水除去化合物
比較例1及び実施例1において製造されるパクリタキセルの高分子ミセル組成物をそれぞれ40℃の安定性試験機中に6カ月間保存することを除いて、実験例5と同様の方法により試験を行った。加速試験時間による類縁物質の量(%)の変化を下記表3に示す。
Claims (12)
- 親水性ブロック(A)と疎水性ブロック(B)とを含む精製された両親媒性ブロック共重合体;及び
パクリタキセル及びドセタキセルからなる群より選ばれる1種以上の難水溶性薬物
を含む、高分子ミセル医薬組成物であって、
該医薬組成物が、40℃で6カ月間保存したとき、難水溶性薬物の初期量100重量部に対して、下記一般式(1)
(式中、R1は、H又はCOCH3であり、R2は、フェニル又はO(CH3)3である。)
で示される類縁物質を0.17重量部未満の量で含む、医薬組成物。 - 一般式(1)の化合物が、下記一般式(1a)
の化合物である、請求項1に記載の医薬組成物。 - 難水溶性薬物の初期量100重量部に対して、一般式(1)の類縁物質を0.15重量部以下の量で含む、請求項1に記載の医薬組成物。
- 難水溶性薬物の初期量100重量部に対して、一般式(1)の類縁物質を0.1重量部以下の量で含む、請求項3に記載の医薬組成物。
- 難水溶性薬物の初期量100重量部に対して、一般式(1)の類縁物質を0.08重量部以下の量で含む、請求項4に記載の医薬組成物。
- 難水溶性薬物の初期量100重量部に対して、一般式(1)の類縁物質を0.04重量部以下の量で含む、請求項5に記載の医薬組成物。
- 80℃で3週間保存したとき、難水溶性薬物の初期量100重量部に対して、一般式(1)の類縁物質を0.76重量部未満の量で含む、請求項1に記載の医薬組成物。
- 親水性ブロック(A)が、ポリエチレングリコール又はその誘導体、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール、ポリアクリルアミド及びこれらの組み合わせからなる群より選ばれる1種以上を含む、請求項1に記載の医薬組成物。
- 疎水性ブロック(B)が、ポリラクチド、ポリグリコリド、ポリマンデル酸、ポリカプロラクトン、ポリジオキサン−2−オン、ポリアミノ酸、ポリオルトエステル、ポリ無水物、ポリカーボネート及びこれらの組み合わせからなる群より選ばれる1種以上を含む、請求項1に記載の医薬組成物。
- 親水性ブロック(A)が、ポリエチレングリコール又はモノメトキシポリエチレングリコールであり、疎水性ブロック(B)が、ポリラクチドである、請求項1に記載の医薬組成物。
- 親水性ブロック(A)の数平均分子量が、200〜20,000ダルトンであり、疎水性ブロック(B)の数平均分子量が、200〜20,000ダルトンである、請求項1に記載の医薬組成物。
- 両親媒性ブロック共重合体が、80℃以上120℃未満の温度、真空度10torr以下の圧力下、10〜74時間の昇華によって精製されたものである、請求項1に記載の医薬組成物。
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