JP2018507906A - 新規な1,4−ビス(3−アミノプロピル)ピペラジン誘導体及びその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、式I:
1)タウタンパクのリン酸化を低下させること;
2)タウタンパクの異性化産物を増加させること。
(i)式Iの化合物を所望の酸と反応させる;
(ii)適切な酸を用いて、あるいは適切なイオン交換カラムの手段によって、式Iの化合物の塩を別の塩に変換させる
ことによって調製することができる。
以下の定義及び説明は、本明細書及び特許請求の範囲を含む出願全体を通して用いられている用語に関するものである。
以下の略語は本明細書を通して用いられる:
℃:セルシウス温度、BINAP:2,2'-ビス (ジフェニルホスフィノ)-1,1ビナフチル、dba:ジベンジリデンアセトン、DCE:ジクロロエタン、DCM:ジクロロメタン、δ:ppm単位で表したNMR化学シフト、eq:当量、Et:エチル、g:グラム、HPLC:高速液体クロマトグラフィー、L:リットル、LCMS:マススペクトルと連結したHPLC、Me:メチル、mg:ミリグラム、min:分、mL:ミリリットル、mol:モル、mmol:ミリモル、μmol:マイクロモル、MS:マススペクトル、NMR:核磁気共鳴、ppm:百万分の1、RH:相対湿度、rm:反応混合物、rpm:1分当たりの回転数、rt:保持時間(リテンションタイム)、RT:室温(約15〜25℃)、Xantophos:4,5-ビス(ジフェニルホスフィノ)-9,9-ジメチルキサンテン、rt:保持時間。
化学品及び溶媒は、商業的な供給源から入手し、特に指定しない限りさらに精製することなく使用した。反応は、Macherey-Nagel Alugram(登録商標)Sil 6O/UV254シート(厚さ0.2 mm)で実施するTLCによってモニターした。生成物の精製は、Macherey-Nagelシリカゲル(230-400メッシュ)を用いるカラムクロマトグラフィーによるかまたはよらずに実施した。
オーブンで乾燥したフラスコに、窒素雰囲気下、ジオキサン(7.45 mL)中の9-クロロ- 1,2,3,4-テトラヒドロアクリジン(0.50 g, 2.3 mmol)、Cs2CO3 (1.05 g, 3.22 mmol)を入れた。この混合物を、それに窒素流を通すことによって脱気した。Xantphos (0.20 g, 0.35 mmol)及びPd2(dba)3 (0.11 g, 0.12 mmol)を添加した。次いで、J. Med. Chem. 2003, 46, 542-557に従って調製したtert-ブチル N-{3-[4-(3-アミノプロピル)ピペラジン-1-イル]プロピル}カルバメート1.1 (0.83 mg, 2.76 mmol)をジオキサン(7.45 mL)に溶解させたものを、この混合物に添加した。この混合物を24時間撹拌した。溶液を、セライトパッドを通してろ過し、蒸発させた。残渣をフラッシュクロマトグラフィーによって精製した(溶離液:DCM/MeOH 0〜10 %、次いでNH3を飽和させたDCM/MeOH 0〜4 %)。表題化合物が黄色オイルとして得られた(1.00 g、収率90%)。
1H NMR (300 MHz), δ (ppm, CDCI3): 7.95 (dd, 3J = 1.1 Hz, 3J = 8.5 Hz, 1H); 7.82 (dd, 3J = 0.9 Hz, 3J = 8.6 Hz, 1H); 7.45 (ddd, 4J = 1.2 Hz, 3J = 6.8 Hz, 3J = 8.2 Hz, 1H); 7.24 (ddd, 4J= 1.2 Hz, 3J= 6.8 Hz, 3J= 8.3 Hz, 1H); 5.53 (br t, 3J= 5.2 Hz, 1H); 5.06 (br t, 3J= 5.4 Hz, 1H); 3.48 (m, 2H); 3.12 (m, 2H); 2.98 (t, 3J= 6.0 Hz, 2H); 2.66 (t, 3J= 6.0 Hz, 2H); 2.55 - 2.32 (M, 12H); 1.85 - 1.72 (M, 6H); 1.59 (m, 2H), 1.35 (s, 9H)。
13C NMR (75 MHz), δ (ppm, CDCI3): 158.4; 156.0; 151.0; 147.5; 128.7; 128.0; 123.3; 123.0; 120.3; 115.9; 78.7; 57.0; 53.2; 48.9; 39.8; 34.0; 28.4; 27.2; 26.4; 25.7; 22.9。
LC-MS (ESI) mlz 計算値: 482.3、測定値: 482.4 [M+H]+, 382.2 [M+H-Boc]+; rt: 1.8 min。
tert-ブチル N-[3-(4-{ 3-[(1,2,3,4-テトラヒドロアクリジン-9-イル)アミノ]プロピル}ピペラジン-1-イル)プロピル] カルバメート 1.2 (90 mg, 0.19 mmol)を、HClを飽和させたジオキサン(5 mL)中に溶解させた。この反応混合物を、15時間撹拌した。溶媒を蒸発させた。残渣を、MeOH(NH3)に溶解させ、2時間撹拌した。溶媒を蒸発させた。残渣を15 mLのDCMに溶解させ、飽和NaHCO3溶液で洗浄した(3x10 mL)。有機相を、MgSO4で無水にし、ろ過し、蒸発させた。残渣をカラムクロマトグラフィーによって精製した(溶離液:DCM/MeOH(NH3) 9.4:0.6 (v/v))。表題化合物が黄色オイルとして得られた(70 mg、収率98 %)。
1H NMR (300 MHz), δ (ppm, CDCI3): 8.01 (dd, 4J = 0.9 Hz, 3J = 8.5 Hz, 1H); 7.87 (dd, 4J = 0.9 Hz, 3J = 8.5 Hz, 1H); 7.51 (ddd, 4J = 1.4 Hz, 3J = 6.8 Hz, 3J = 8.3 Hz, 1H); 7.30 (ddd, V= 1.3 Hz, 3J= 6.8 Hz, 3J= 8.3 Hz, 1H); 5.13 (br s, 1H); 3.55 (t, 3J= 6.0 Hz, 2H); 3.04 (t, 3J= 6.4 Hz, 2H); 2.71 (M, 4H); 2.65 - 2.37 (M, 12H); 1.91 - 1.79 (M, 8H); 1.64 (m, 2H)。
13C NMR (75 MHz), δ (ppm, CDC13): 158.4; 151.1; 147.5; 128.7; 128.1; 123.4;123.0; 120.3; 115.9; 57.0; 53.4; 49.0; 40.8; 34.0; 30.5; 27.2; 25.7; 22.9。
LC-MS (ESI) mlz 計算値:: 382.3、測定値:: 382.2 [M+H]+; rt: 1.3 min。
トルエン(5 mL)中のN-{ 3-[4-(3-アミノプロピル)ピペラジン-1-イル]プロピル}-1,2,3,4-テトラヒドロアクリジン-9-アミン 1.3 (100 mg, 0.26 mmol)に、イソブチルアルデヒド(0.04 mL, 0.4 mmol)を添加した。この反応混合物を、Dean-Stark装置を用いて(水の滴下がみられなくなるまで)1時間還流させた。トルエンを蒸発させ、残渣をDCE (5 mL)に溶解させた。NaBH4 (15 mg, 0.4 mmol)を添加し、混合物を15時間撹拌した。飽和NaHCO3溶液10 mLを添加した。混合物を1時間撹拌した。DCM 5 mLを添加し、相を分離した。有機相を、飽和NaHCO3溶液で洗浄した(2 x 10 mL)。有機相を、MgSO4で無水にし、ろ過し、蒸発させた。この化合物を、精製することなく次の工程に使用した。
1H NMR (300 MHz), δ (ppm, CDC13): 8.03 (dd, 4J = 1.0 Hz, 3J = 8.5 Hz, 1H); 7.90 (dd, 4J = 0.9 Hz, 3J = 8.5 Hz, 1H); 7.54 (ddd, 4J = 1.3 Hz, 3J = 6.8 Hz, 3J = 8.3 Hz, 1H); 7.33 (ddd, 4J= 1.3 Hz, 3J= 6.8 Hz, 3J= 8.3 Hz, 1H); 5.14 (br s, 1H); 3.57 (m, 2H); 3.05 (t, 3J= 6.2 Hz, 2H); 2.74 (t, 3J= 5.5 Hz, 2H); 2.65 (t, 3J= 6.9 Hz, 2H); 2.56 - 2.40 (M, 14H); 1.94 - 1.66 (M, 11H); 0.92 (d, 3J= 6.6 Hz, 6H)。
13C NMR (75 MHz), δ (ppm, CDC13): 158.5; 151.1 ; 147.6; 128.8; 128.1 ; 123.4; 123.0; 120.3; 116.0; 58.2; 57.4; 53.5; 49.0; 34.1 ; 28.5; 27.2; 25.7; 23.0; 20.7。
LC-MS (ESI) mlz 計算値:438.3、測定値: 438.3 [M+H]+; rt: 1.5 min。
<N-メトキシ-2-(2H3)メチル-N-メチル(2H4)プロパンアミド>
DCM (3.8 mL)中の2-(2H3)メチル(2H4)プロパン酸(93μL, 1 mmol)に、N-メチルモルホリン(0.715 mL, 6.5 mmol)、EDC 1HC1 (249 mg, 1.3 mmol)、HOBt (175 mg, 1.3 mmol)、及びΝ,Ο-ジメチルヒドロキシルアミン塩酸塩(204 mg, 2.1 mmol)を添加した。この混合物を15時間撹拌した。5 mLのDCMを、この反応混合物に添加し、有機相を飽和NaHCO3溶液(2 x 5 mL)、HCl 1M溶液(2 x 5 mL)、及び塩水(1 x 5 mL)で洗浄した。この有機相を、蒸発すること及び精製することなく次の工程に使用した。
1H NMR (300 MHz), δ (ppm, CDC13): 3.70 (s, 3H, Hb); 3.19 (s, 3H, Ha)。
13C NMR (75 MHz), δ (ppm, CDCI3): 178.3; 61.4; 32.3; 29.1; 18.3。
LC-MS (ESI) mlz 計算値:139.2, 測定値:139.8 [M+H]+。
DCM中のN-メトキシ-2-(2H3)メチル-N-メチル(2H4)プロパンアミド(5 mL, 1 mmol)に、LiAlH4 (0.9 mL, 0.9 mmol)を添加した。この混合物を1時間撹拌した。飽和KHSO4溶液(4.2 mL)を滴下により添加した。5 mLのDCMを添加し、有機相を飽和NaHCO3溶液(2 x 5 mL)、HCl 1M 溶液(2 x 5 mL)、及び塩水(1 x 5 mL)で洗浄した。有機相を無水にし、ろ過し、そのまま使用した。
<第一のプロトコル(iv)>
N-[3-(4-{3-[(2-メチルプロピル)アミノ]プロピル}ピペラジン-1-イル)プロピル]-1,2,3,4-テトラヒドロアクリジン-9-アミン 1.4 (230 mg, 0.52 mmol)のトルエン(10 mL)中の撹拌した溶液に、イソブチルアルデヒド(0.07 mL, 0.8 mmol)を添加した。この反応混合物をDean-Stark装置を用いて(水の滴下がみられなくなるまで)1時間加熱した。トルエンを蒸発させ、残渣をDCE (10 mL)に溶解させた。NaBH4 (30 mg, 0.8 mmol)を添加し、混合物を15時間撹拌した。飽和NaHCO3溶液15 mLを添加した。混合物を1時間撹拌した。DCM 10 mLを添加し、相を分離した。有機相を、飽和NaHCO3溶液で洗浄した(2 x 10 mL)。有機相を、MgSO4で無水にし、ろ過し、蒸発させた。残渣を、カラムクロマトグラフィーによってアルミナ上で精製した(溶離液:DCM/MeOH(NH3) 9.8:0.2 (v/v))。
表題化合物が無色オイルとして得られた(30 mg、収率12%)。
イソブチルアルデヒド-d7を含有する有機相(例4)に、N-{3-[4-(3-アミノプロピル)ピペラジン-1-イル]プロピル}-1,2,3,4-テトラヒドロアクリジン-9-アミン 1.3 (80 mg, 0.21 mmol)を添加した。この混合物を1時間撹拌し、STAB (190 mg, 0.899 mmol)を添加した。この混合物を15時間撹拌した。5 mLの飽和NaHCO3溶液を添加し、混合物を1時間撹拌した。相を分離し、有機相を飽和NaHCO3溶液(2 x 5 mL)で洗浄した。有機相を無水にし、ろ過し、蒸発させた。残渣を、フラッシュクロマトグラフィーによって精製した(溶離液:DCM/MeOH(NH3), 10:0〜9.5:0.5 (v/v))。
表題化合物が無色オイルとして得られた(36 mg、収率34%)。
オーブンで乾燥したフラスコに、窒素雰囲気下、9-クロロ-1,2,3,4-テトラヒドロアクリジン(257 mg, 1.12 mmol)、(+/-) BINAP (167 mg, 0.15当量)、Cs2CO3 (546 mg, 1.4当量)、Pd2(dba)3 (162 mg, 0.15eq)、及び3 mLの無水1,4-ジオキサンを入れた。Ryckebusch Aら、J. Med. Chem. 2003, 46, 542-557に従って調製したN-[3-[4-(3-アミノプロピル)ピペラジン-1-イル]プロピル]-N-イソブチル-2-メチル-プロパン-1-アミン 1.5 (349 mg, 2.07 mmol)の無水ジオキサン(3 mL)中のものを添加し、混合物を90℃にて12時間撹拌した。この溶液をセライトパッドを通してろ過し、蒸発させた。残渣をフラッシュクロマトグラフィーによってシリカゲル上で精製した(CH2Cl2/MeOH//95/5)。
表題化合物が無色オイルとして得られた(419 mg、収率12%)。
1H NMR (300 MHz), δ (ppm, CD3OD): 3.05 (t, 3 J = 1.2 Hz, 2H); 3.00 - 2.60 (M, 18H,); 2.10 - 1.80 (M, 6H); 1.02 (d, 3J = 6.5 Hz, 12H)。
13C NMR (75 MHz), δ (ppm, CD3OD): 61.1 ; 53.8; 53.5; 50.7; 37.6; 24.2; 22.5; 21.3; 19.5。
LC-MS (ESI) m/z 計算値:313.3、測定値:313.2 [M+H]+; rt: 1.15 min。
1H−化合物
1H NMR (300 MHz), δ (ppm, CDC13): 8.45 (d, 3J = 8.6 Hz, 1H); 7.8 - 7.9 (M, 2H); 7.64 (ddd, 3J= 8.6Hz, 3J= 6.7Hz, 4J= 1.1 Hz, 1H); 4.14 (t, 3J= 6.6 Hz, 2H); 3.6 - 4.1 (M, 8H); 3.35-3.55 (M, 6H); 3.11 (d, 3J = 6.8 Hz, 4H); 3.0 - 3.1 (M, 2H); 2.79 (m, 2H); 2.5 - 2.3 (M, 4H); 2.20 (sept, 3J= 6.6 Hz, 2H); 1.9 - 2.0 (M, 4H); 1.09 (d, 3J= 6.5 Hz, 12H)。
13C NMR (75 MHz), δ (ppm, CDC13): 156.5; 150.9; 138.2; 132.8; 125.5; 124.9; 118.8; 115.9; 112.2; 61.1; 51.2; 44.3; 28.1 ; 24.7; 24.0; 21.6; 20.4; 19.5; 19.4; 18.1。
LC-MS (ESI) m/z 計算値:494.4, 測定値:494.4 [M+H]+; rt: 1.4 min。
1H NMR (300 MHz), δ (ppm, CDC13): 8.04 (dd, 4J = 0.9 Hz, 3J = 8.6 Hz, 1H, H5); 7.90 (dd, 4J= 0.7 Hz, 3J= 7.7 Hz, 1H, H8); 7.54 (ddd, 4J= 1.3 Hz, 3J= 6.8 Hz, 3J= 8.2 Hz, 1H, H7); 7.32 (ddd, 4J = 1.2 Hz, 3J = 6.8 Hz, 3J = 8.3 Hz, 1H, H6); 5.27 (br s, 1H, NH); 3.59 (m, 2H, Hd); 3.07 (t, 3J = 5.4 Hz, 2H, H4); 2.73 (t, 3J = 5.8 Hz, 2H, H1; 2.57 - 2.40 (M, 14H, Ha, Ha', Hb, Hb', Hd'; 2.04 (s, 4H, He'); 1.96 - 1.82 (M, 6H, H2, H3, Hc); 0.92 (m, 2H, Hc')。
13C NMR (75 MHz), δ (ppm, CDC13): 158.3; 151.2; 147.3; 128.6; 128.2; 123.4; 123.1 ; 120.2; 115.8; 63.7; 57.4; 53.5; 49.2; 33.9; 27.2; 25.8; 22.9; 20.4; 19.4。
LC-MS (ESI) m/z 計算値:508.5、測定値:508.4 [M+H]+; rt: 1.5 min。
例5の第三のプロトコルに従って得た例5の1H化合物の塩酸塩を、MeOH/HClで処理することによって形成させた。例5の化合物をMeOHに溶解させ、HC1 1Mを用いてpH=1になるまで処理した後、凍結乾燥させた。
材料及び方法
<抗体>
汎タウ(Pan-Tau)抗体及びホスホ依存性Tau抗体には、Tau-Nter(M19G、1/10 000、Sergeantら、1999)、Tau-Cter(1/10 000、Sergeantら、1999、Le Frechedら、2012)、Tau-1(1/5000、Merck Millipore)、S199P(ホスホセリン199に対するもの、1/4000、Sergeantら、1999)、Tau-Phospho S396(ホスホセリン399に対するもの、1/10000、Lifetechnologies)、Tau-Phospho 404(1/10 000、Lifetechnologies)、422(クローン2H9、ヒト脳Tau-441アイソフォームにしたがって番号付けしてタウのリン酸化セリン422残基を有するホスホペプチドに対して開発された、自家製モノクローナル抗体)、AT8(1/1000、Thermo Scientific)、AT270(1/2000、Thermo Scientific)、AT100(1/1000、Thermo Scientific)が含まれる。ニューロン特異的エノラーゼ(1/10 000)、β-アクチン(1/5000)及びβ-チューブリン(1/10 000)は、Sigma-Aldrichから入手した。
ヒトTauアイソフォーム412(エキソン2及び10コード配列を有する)(すなわちSY5Y-Tau46)を発現するヒト神経芽腫細胞株SKNSH-SY5Y細胞は、以前Brettevilleら、2009に記載された通りであった。
ヒトTauアイソフォーム412(エキソン2及び10のコード配列を有する)を発現する神経芽細胞腫SKNSH-SY5Y細胞を、Brettevilleら、2009に記載された通りに、培地中に希釈されたN-[3-(4-{3-[ビス(2-メチルプロピル)アミノ]プロピル}ピペラジン-1-イル)プロピル]-1,2,3,4-テトラヒドロアクリジン-9-アミンの塩酸塩(例6、以下、「化合物I・HCl」と称する)の10μMで処理した。
3ヶ月齢の野生型C57BL/6J動物をCharles Rivers Laboratories(フランス)で購入し、処置前に少なくとも1週間は動物施設において順応させた。 Thy-Tau22トランスジェニックコロニー(C57BL/6J遺伝的背景)は、ヘテロ接合Thy-Tau22雄をC57BL/6 WT雌と交配することによって得られた。Thy-Tau22マウストランスジェニック系統は、運動障害のない進行性ニューロン特異的アルツハイマー病様タウ病変を示す。このモデルでは、行動障害に並行する、海馬及び扁桃体におけるNFTの進行性の進展が観察される(Schindowskiら、2006)。さらに、海馬では、過剰及び異常にリン酸化されたタウ種が細胞体樹状領域内に蓄積する(Schindowskiら、2006)。
行動試験の前に、処理動物及び未処理動物の探索及び移動をオープンフィールド(OF)25cm×25cm領域で評価した。結合された領域内の4つ区画からの情報収集を同時に行った。各マウスを特定の領域に入れ、少なくとも5分間探検させた。 Etho Visionビデオトラッキング装置とソフトウェア(Noldus、Information Technology、パリ、フランス国)を専用ルーム内で使用して、ビデオ記録によって距離、速さ(speed)、速度(velocity)を含むパラメータを取得した。記憶試験を妨げうる不安は、高架式十字迷路試験(EPM)によって評価した。床から50cmのところに持ち上げた、2つの10cm幅の開いたアーム(オープンアーム)と2つの閉じたアーム(クローズドアーム)からなる十字形状の迷路の中央にマウスを置いた。運動量、距離、速さ、及び速度を測定するのと並んで、アームエントリーの数、オープンアーム対クローズドアームで費やした時間、オープンアームエントリーのパーセンテージ及びオープンアームでの1分あたりの時間を合計5分間のテストで測定した。
空間学習及び記憶能力は、モリス水迷路タスクの標準的な隠れプラットフォームの獲得及び保持バージョン(Van der Jeugdら、2013)で評価した。90cmの円形プールに無毒の白色塗料で不透明化した水を満たし、21℃に保った。 10cmの丸いレスキュープラットフォームを、水面下1cmで固定した位置に隠した。タンクの縁の周りの4つの位置を、それを4つの象限を描く4つの主要な点(北、東、西及び南)に分割するために任意に指定した。ターゲット四分円には、レスキュープラットフォームが含まれ、隣接する四分円とそれに対向する四分円に囲まれている。獲得試験では、各マウスを連続して4日間試験し、1日当たり4回の水泳試験を行わせ、試験と試験との間には少なくとも10分の合間をもうけた。開始位置は、試験を通じて偽ランダム化した。隠されたプラットフォームを2分以内に見つけられなかったマウスは、プラットフォーム上に手で配置した。マウスはケージに戻す前に15秒間そのままにしておいた。隠れたレスキュープラットフォーム(エスケープ・レイテンシ)を見つけるために必要な時間を、空間学習指数として使用し、Ethovision XTビデオ追跡システム(Noldus France)を使用して記録した。水泳速度と総距離も測定した。獲得段階の72時間後に、隠れたプラットホームを取り除き、60秒のプローブ試験で空間的記憶を評価した。目標四分円と他の四分円において費やされた時間の比を、空間的記憶指標と考えた。
行動評価後、血液を1.5mLのポリプロピレンチューブ(Eppendorf、フランス国)に集め、マウスを頚椎脱臼により犠牲にし、麻酔の手段による変化を避けた(Lefrecheら、2012)。海馬及び皮質を切開し、1.5mLチューブ(エッペンドルフ)中で急速冷凍した。組織を320mMスクロース、プロテアーゼ阻害剤(Complete mini EDTA-free、Roche)を含有するTris-HCl緩衝液(10mM pH7.4)中でホモジナイズし、超音波処理し、4℃で10分間12,000xgで回転させた。上清を回収し、BCAタンパク質定量アッセイキット(Pierce)を用い、製造者の指示に従ってタンパク質濃度測定を達成した。上清をさらに生化学的分析のために処理したか、または-80℃で保存した。 IDまたは2Dゲルについては、同じ溶解緩衝液を使用した。したがって、トリス緩衝液中の同量のタンパク質に、7M尿素、2%SDSを含む2Mチオウレアを含有する溶液を加え、60Hz 30パルスで超音波処理した。
タウタンパク質のウエスタンブロット分析のために、Bis-Tris 4-12%勾配アクリルアミドゲル(NuPage(登録商標)Bis-Tris PreCast 12ウェル、Life Technologies)を使用して、製造業者の指示に従ってSDS-PAGEを実施した。分子量マーカー(Novex及びMagic Marks、Life Technologies)を用いて見かけの分子量を較正した。電気泳動は、1時間、100V /ゲルの連続張力下で行った。タンパク質は、Ponceau Redで可逆的に染色し、タンパク質移動の有効性の質を確認した。ウエスタンブロッティングのために、膜を25mM Tris-HCl pH8.0、150mM NaCl、0.1%Tween-20(v / v)(TBS-T)及び5%(w / v)の脱脂乳(TBS -M)中で30分間インキュベート(ブロッキング)し、一次抗体で4℃で一晩インキュベートした。ニトロセルロースメンブレンをTBS-T中でそれぞれ10分間穏やかに振盪することにより3回すすぐ。次に膜を室温で1時間、二次抗体(ペルオキシダーゼ標識抗ウサギIgG(H+L鎖)、Vector Laboratories)を用いてインキュベートした。 ECL(登録商標)ウエスタンブロッティングキットを使用して免疫反応性複合体を明らかにし、LAS-3000ルミネセンスイメージアナライザー(FujiFilm Lifesciences)またはAmersham Hyperfilm ECL(商標)(G&Eヘルスケア)に曝露して画像取得を行った。デジタル化された画像は、ImageJ Software(NIH)で処理した。
最近公表された手順(Fernandez-Gomezら、2014)に従って2次元ゲル電気泳動を行った。簡単に説明すると、細胞をPBSで1回すすぎ、UTS緩衝液(7M尿素、2Mチオ尿素、2%SDS)に溶解し、60Hz 30パルスで超音波処理した。溶解物をメタノール/クロロホルムで沈殿させた。クロロホルム/メタノール手順を使用して50μgのタンパク質を沈殿させ、ペレットを2D緩衝液[尿素7M、チオ尿素2M、4%CHAPS、及び0.6%Pharmalytes 3-10(G&E Healthcare)]に溶解した。固定化されたpH勾配ストリップ3-11 Immobiline(商標)Dry Strip 11cm(G&E Healthcare)を最終量50μgのタンパク質を含む200μlで再水和させ、IPGPhor III(G&E Healthcare)を使用しメーカーの指示に従って等電点電気泳動を達成した。ストリップを4〜12%Bis-TrisポリアクリルアミドゲルXT(商標)Precast Criterion(BioRad)上に重ね、1D SDS-PAGEについて記載したように100Vの一定の張力で流した。ウェスタンブロットは、1D SDS-PAGE及びウェスタンブロッティング法について上述したように行った。
hTauの投与量は、全タウ及びホスホ-181 hTau Innotest(登録商標)ELISAキット(Fujirebio Europe)を用いて製造元の説明書に従って達成された。25μLまたは75μLの血漿を用いてhTauまたはホスホタウの投与を行った。
神経芽細胞腫SY5Y-APPWT細胞を細胞培養チャンバースライド(Labtek)に播き、10%ウシ胎仔血清を補充したDMEM中で増殖させた。化合物による処理は、薬物処理パラグラフに記載したのと同じプロトコールに従って実施した。 48時間後、細胞を、室温で15分間、0.1Mリン酸緩衝液(PBS)中の4%パラホルムアルデヒドで固定した。細胞を氷冷PBSで3回洗浄し、1%BSAを補充したPBSでブロッキングした。抗体をPBS-BSA中で4℃で一晩インキュベートし、氷冷PBSで3回濯ぎ、二次FTICまたはローダミン結合二次抗体(Lifesciences Technologies)と共にインキュベートした。カバースリップを、DAPI封入剤(Vector laboratories)及びVectashieldを用いてスライドに取り付けた。画像は、Zeiss Apotome顕微鏡またはLeica共焦点顕微鏡で取得した。すべてのデータは、生の画像を変更することなく、Photoshop Element 6ソフトウェア(Adobe)を使用して分析した。
同じ脳座標(George Paxinosら)の連続した冠状切片(n = 3)をリン酸依存性AT100またはAT8抗体とともにインキュベートした。それらはそれぞれ残基Thr 212〜Ser 214及びSer 202〜Thr 205でタウのホスホエピトープを認識した。標識されたニューロンの定量は、NIH-Image Jソフトウェアを用いて達成し、任意の単位(A.U)で表した。
結果は平均± SEMとして報告した。スチューデントのt検定、一元配置分散分析(ワンウェイANOVA)とそれに続くGraphPad Prism 6ソフトウェアを用いた事後検定フィッシャーのLSD検定を用いて平均値間の差を評価した。 P値<0.05を有意と考えた。
<Tauリン酸化反応及びタウ分解の調節効果>
Tauリン酸化反応に対する式Iの化合物の効果をインビトロ及びインビボで分析した。ヒトTauアイソフォーム412(エクソン2及び10のコード配列を有するもの)を発現する神経芽細胞腫SKNSH-SY5Y細胞を10μMの式Iの化合物で処理した。
発現及び全リン酸化を、リン酸依存性及び汎タウ(pan-Tau)抗体を用いた1D及び2Dゲル電気泳動によって評価した(図1及び2)。リン酸化依存性タウ抗体S199Pは、リン酸化されたセリン199残基(最長のヒトTauアイソフォームによるナンバリング)に向けられ、神経原繊維変性時のタウの高リン酸化の初期マーカーである(Maurageら、2003)。S396抗体は、タウのリン酸化セリン396(441アミノ酸の最長脳タウアイソフォームによるナンバリング)を含むエピトープを対象とする。タウ発現はテトラサイクリン処理によって誘導され、その後、細胞を式Iの化合物で処理した。タウ発現またはリン酸化の変化を、誘発はされたが未処置の条件と比較する。
タウ代謝に対する式Iの化合物の効果をさらに決定するために、野生型C57/BL6動物を0.5及び1mg / Kgの式Iの化合物で1ヶ月間処理し、内因性MAPT発現を2Dゲル電気泳動によって評価した。タウタンパク質アイソバリアントは、pI 10〜6の3つのシリーズからなる。主要で最も基本的なアイソバリアントは、唯一のエキソン10コード配列を含むマウスタウアイソフォームに対応する。64及び69kDaの分子量の2つの他の一連のアイソフォームは、タウアイソフォームの等価物であり、これらは、エキソン10に加えて、エキソン2またはエキソン2+3コード配列をそれぞれ含む。
Thy-Tau22におけるNFTの海馬発達は、空間記憶の障害と相関する(Laurentら、2015)。空間的記憶は、自発運動(Belarbiら、2011)または免疫療法(Troquierら、2012)によって保持され、Thy-Tau22を薬物の有益な効果または有害な影響を試験するのに適したモデルにすることができる。 Thy-Tau22マウスを0.5mg/kgの化合物I・HClで4ヶ月間処置し、モリス水迷路を使用して空間記憶を評価した。
未処置及び化合物I・HClで処理されたThy-Tau22動物由来の(海馬の)脳タンパク質を1D SDS-PAGEにより分析し、タウタンパク質をPan-Tau抗体(N-ter、C-ter)で標識した。これらの抗体で検出された異化産物は、f-Nter及びf-Cterとして示される。タウのリン酸化変異体は、pSer199(リン酸化セリン199に対するもの)、pSer262(リン酸化セリン262に対するもの)、pSer396(リン酸化セリン396に対するもの)、pSer404(リン酸化セリン404に対するもの)、pSer422(リン酸化セリン422に対するもの )及びTau-1(アミノ酸残基198〜205の間に含まれる非リン酸化エピトープに対するもの)を含む。各リン酸化エピトープの定量化は、N-ter染色によって決定された総hTauシグナルに対するリン酸化エピトープの比として表される。この比は対照条件(未処理Thy-Tau22動物)に対する変動の%として与えられ、対照条件の値は100%の値を任意に与えられる。
Claims (7)
- 式(I):
を有する化合物又は薬学的に許容可能なその塩若しくは溶媒和物。 - 請求項1に記載の化合物又は薬学的に許容可能なその塩若しくは溶媒和物と、少なくとも1つの薬学的に許容可能な担体、希釈剤、賦形剤、及び/又はアジュバントとを含む医薬組成物。
- 医薬として使用するための、請求項1に記載の化合物又は薬学的に許容可能なその塩若しくは溶媒和物。
- タウオパチーの治療及び/又は予防において使用するための、請求項1に記載の化合物又は薬学的に許容可能なその塩若しくは溶媒和物。
- タウオパチーが、アルツハイマー病、筋萎縮性側索硬化症及びパーキンソニズム−認知症複合症、嗜銀顆粒性疾患、慢性外傷性脳疾患、脳アミロイド血管症、大脳皮質基底核変性症、クロイツフェルト・ヤコブ病、ボクサー認知症、石灰化を伴うびまん性神経原線維変性症、ダウン症候群、家族性英国認知症、家族性デンマーク認知症、前頭側頭型認知症(FTD)、17番染色体に関連するパーキンソニズムを伴う前頭側頭型認知症(FTDP-17)、前頭側頭葉変性症、ゲルストマン・シュトロイスラー・シャインカー病、グアドループパーキンソニズム、ハラーフォルデン・シュパッツ病、封入体筋炎、多系統萎縮症、筋強直性ジストロフィー、脳鉄蓄積による神経変性、ニーマン・ピック病、神経原線維のもつれを伴う非グアム運動神経線維疾患、ピック病、脳炎後パーキンソニズム、プリオンタンパク脳アミロイド血管症、進行性皮質下グリオーシス、進行性核上性麻痺(PSP)、SLC9A6関連の精神遅滞、亜急性硬化性全脳炎、神経原線維型老年認知症、多発脳梗塞性認知症、虚血性脳卒中、慢性外傷性脳症(CTE)、外傷性脳損傷(TBI)、脳卒中、及び球状神経膠を伴う白質タウオパチーから選択される、請求項4に記載の化合物又は薬学的に許容可能なその塩若しくは溶媒和物。
- タウオパチーが、アルツハイマー病、17番染色体に関連するパーキンソニズムを伴う前頭側頭型認知症(FTDP-17)、進行性核上性麻痺(PSP)、大脳皮質基底核変性症、ピック病、及び前頭側頭型認知症(FTD)から選択される、請求項4又は5に記載の化合物又は薬学的に許容可能なその塩若しくは溶媒和物。
- タウオパチーが、17番染色体に関連するパーキンソニズムを伴う前頭側頭型認知症(FTDP-17)、進行性核上性麻痺(PSP)、大脳皮質基底核変性症、ピック病、及び前頭側頭型認知症(FTD)から選択される、請求項4又は5に記載の化合物又は薬学的に許容可能なその塩若しくは溶媒和物。
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