JP2018500937A - Crispr/cas系タンパク質を使用する核酸の標的化枯渇、富化および分割のための組成物および方法 - Google Patents
Crispr/cas系タンパク質を使用する核酸の標的化枯渇、富化および分割のための組成物および方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP2018500937A JP2018500937A JP2017551579A JP2017551579A JP2018500937A JP 2018500937 A JP2018500937 A JP 2018500937A JP 2017551579 A JP2017551579 A JP 2017551579A JP 2017551579 A JP2017551579 A JP 2017551579A JP 2018500937 A JP2018500937 A JP 2018500937A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- nucleic acid
- sequence
- dna
- sample
- crispr
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6806—Preparing nucleic acids for analysis, e.g. for polymerase chain reaction [PCR] assay
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/16—Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
- C12N9/22—Ribonucleases RNAses, DNAses
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6869—Methods for sequencing
- C12Q1/6874—Methods for sequencing involving nucleic acid arrays, e.g. sequencing by hybridisation
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2310/00—Structure or type of the nucleic acid
- C12N2310/10—Type of nucleic acid
- C12N2310/20—Type of nucleic acid involving clustered regularly interspaced short palindromic repeats [CRISPRs]
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2800/00—Nucleic acids vectors
- C12N2800/80—Vectors containing sites for inducing double-stranded breaks, e.g. meganuclease restriction sites
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Description
本願は、2014年12月20日に出願した米国仮出願第62/094,980号および2015年7月28日に出願した米国仮出願第62/198,097号の優先権の利益を主張する。これらの出願の内容は、その全体がこれにより、本明細書中に参考として援用される。
本明細書で別段に定義されていない限り、本明細書で使用する全ての技術用語および科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者が一般に理解するのと同じ意味を有する。本明細書に記載のものと同様のまたは等価な任意の方法および材料を、本発明を実践または試験するのに使用することができるが、好適な方法および材料が記載されている。
上記に示した従来の方法および装置に関連した問題を考慮して、本発明の目的は、酵素媒介カッティング機構を使用して核酸試料から選択された核酸を枯渇させることである。
本発明の核酸(富化、分割、または枯渇のために標的にされる)は、一本鎖DNA、一本鎖RNA、二本鎖DNA、二本鎖RNA、人工DNA、人工RNA、合成DNA、合成RNA、およびRNA/DNAハイブリッドであり得る。
核酸中の、例えば、宿主由来のゲノムDNA中の標的化部位または標的化配列に相補的である(それに選択的である、それとハイブリダイズすることができる)ガイドRNA(gRNA)が本明細書に提供されている。一実施形態では、本発明は、枯渇または分割のために標的にされる核酸配列とハイブリダイズするように配置されたgRNAのコレクションを含むガイドRNAライブラリーを提供する。
試料中の、不要な核酸の枯渇および/または目的の配列の富化のための組成物および方法が本明細書に提供されている。これらの組成物および方法は、CRISPR/Cas系タンパク質を利用する。
一部の実施形態では、CRISPR/Cas系タンパク質は、Cas9を含む。本発明のCas9は、単離することができ、組換えで生成することができ、または合成で生成し得る。
一部の実施形態では、CRISPR/Cas系タンパク質の操作された例には、触媒不活性であるCRISPR/Cas系タンパク質が含まれる。用語「触媒不活性である」は一般に、不活化されたHNHヌクレアーゼおよびRuvCヌクレアーゼを有するCRISPR/Cas系タンパク質を指す。このようなタンパク質は、任意の核酸中の標的部位(標的部位は、ガイドRNAによって決定される)に結合することができるが、このタンパク質は、二本鎖DNAを切断またはニックすることができない。
一部の実施形態では、CRISPR/Cas系タンパク質の操作された例には、Casニッカーゼも含まれる。Casニッカーゼは、単一の不活性な触媒ドメインを含有するCRISPR/Cas系タンパク質の修飾バージョンを指す。
CRISPR/Cas系タンパク質をガイドRNAのライブラリーと組み合わせて使用して標的DNAのコレクションを効率的に枯渇させることができるが、大量(例えば、30pmole超)のCRISPR/Cas系タンパク質およびガイドRNAが必要であり得る。標的DNAを上回るこの通常100倍超の過剰量についての1つの理由は、切断後にこれらの標的DNAから完全に脱離するEcoRIなどの古典的制限酵素と異なり、CRISPR/Cas系タンパク質は、カッティング反応の完了後に完全に再利用されないことである。CRISPR/Cas系タンパク質、例えば、Cas9は、2つの娘DNA生成物分子の一方に結合したままであり得る(図11、左の白丸を参照)。結果として、より多くのCRISPR/Cas系タンパク質およびgRNAが、不要なDNAの完全な枯渇を達成するために提供されることが必要であり得る。
目的の配列の富化/標的化配列の枯渇
目的のものでない標的化配列(標的配列は、枯渇のために標的にされる配列である)を枯渇させることによって試料を目的の配列について富化する方法が本明細書に提供されている。
一部の実施形態では、本明細書に提供する方法は、枯渇のために使用される。しかし、アダプターを含有するライブラリーを切断する代わりに、ガイドRNAが、大きいサイズ(例えば、100bp〜10kbのいずれか)の断片化されたDNAのプール中で複数回切断するのに選択される。CRISPR/Cas系タンパク質−gRNA複合体を用いて切断された後、DNAは、サイズ選択に付されて小さい断片(例えば、インタクトな断片の平均サイズの少なくとも1/2または1/3)が除去される。これは、例えば、5’リン酸特異的エキソヌクレアーゼであるラムダエキソヌクレアーゼでの処理によって補助される。5’リン酸特異的エキソヌクレアーゼは、5’から3’方向に進行し、CRISPR/Cas系タンパク質で先にカットされた任意の断片を攻撃する。次いで得られるライブラリーを、シークエンシングアダプターを要求しない単一分子シーケンサーによる配列決定に付すことができるか、またはアダプターを下流解析のためにライゲーションすることができる。
別の実施形態では、試料中の切断された標的化配列を生成する方法は、(a)目的の配列および切断のための標的化配列を含む試料を準備するステップと;(b)試料を複数のCRISPR/Cas系タンパク質−gRNA複合体と接触させるステップであって、gRNAは、標的化配列に相補的であり、それによって切断された標的化配列を生成する、ステップと;(c)切断された標的化配列からCRISPR/Cas系タンパク質を解離させるステップと;(d)追加の切断された標的化配列を生成するステップと;(c)カットされなかった目的の配列を回収するステップとを含む。一部の実施形態では、CRISPR/Cas系タンパク質は、熱安定性である。一部の実施形態では、切断された標的化配列からのCRISPR/Cas系タンパク質の解離は、ステップ(b)の混合物の温度を少なくとも75°に上昇させることによって達成される。一部の実施形態では、追加の切断された標的化配列の生成は、ステップ(b)の混合物の温度を少なくとも50°に下げることによって達成される。
一部の実施形態では、不要な標的化核酸の枯渇は、CRISPR/Cas系タンパク質ニッカーゼを使用して実行することができる。一実施形態では、本方法は、除去されるDNA(例えば、目的のものでないヒトDNA)および目的のDNA(例えば、未知の病原体由来のDNA)を含むDNAシークエンシングライブラリーを作製するステップと;枯渇されるすべてのDNAが、反対のDNA鎖上で近接して(例えば、15塩基未満離れて)2つのガイドRNA結合部位を有するようにガイドRNAを設計するステップと;CRISPR/Cas系タンパク質ニッカーゼおよびガイドRNAをDNAライブラリーに加えるステップとを含む。本実施形態では、CRISPR/Cas系タンパク質ニッカーゼは、除去されるDNA上のその標的部位を認識することができ、1本の鎖のみをカットする。枯渇されるDNAに関して、2つの別個のCRISPR/Cas系タンパク質ニッカーゼは、近接している除去されるDNA(例えば、ヒトDNA)の両方の鎖をカットすることができ、除去されるDNA(例えば、ヒトDNA)のみが、近接して2つのCRISPR/Cas系タンパク質ニッカーゼ部位を有し、それが二本鎖切断を生じる。CRISPR/Cas系タンパク質ニッカーゼが目的のDNA(例えば、病原体DNA)上の部位を非特異的にまたは低親和性で認識する場合、これは1本の鎖のみをカットすることができ、それは、DNA分子の後続のPCR増幅または下流のプロセシングを防止しない。これは、図7に図解で表されている。本実施形態では、2つのガイドRNAが十分に近接している2つの部位を非特異的に認識する見込みは、無視できる(<1×10−14)。本実施形態は、標準のCRISPR/Cas系タンパク質媒介切断が目的のDNAをあまりにも多くカットする場合、特に有用である。
一部の実施形態では、CRISPR/Cas系タンパク質切断生成物は、ビオチンを使用して排除される。例えば、5%未満の目的のDNAおよび枯渇のために標的にされる95%超のDNAを最初に含む試料では、95%超のDNAは、断片化および枯渇され、ビオチン標識を含むカットされなかった(5%未満の目的のDNA)DNAは、ストレプトアビジンビーズへの結合によって精製される。本実施例は、エキソヌクレアーゼを使用しないCRISPR/Cas系タンパク質媒介切断後に不要なDNA(枯渇された断片化されたDNA)を除去する方法を例示する。
一部の実施形態では、PCR増幅または配列決定の前にカットされた断片を除去することが望ましい。
論じた実施形態では、陽性対照および/または陰性対照を提供することが望ましい。陽性対照は、標的核酸の枯渇が忠実に進行することを保証することができる。
配列決定を使用するトランスポサーゼアクセス可能クロマチンのアッセイ(ATAC−seq)技法が、クロマチン、すなわちそのアクセス可能な部位を研究するのに分子生物学において使用されている。この方法は、オープンクロマチン領域をトランスポサーゼによってシークエンシングアダプターでタグ付けすることに基づき、その結果これらのオープンクロマチン領域由来のDNA断片を増幅し、ハイスループットシークエンシングに付すことができる(WO2014/189957;Buenrostroら、Nature Methods、10巻、12号、2013年12月、1213頁)。ATAC−seqは、ゲノムワイドクロマチンアクセシビリティについての他のアッセイと比較してはるかに少ない出発材料を必要とするが、主な欠点の1つは、シークエンシングライブラリーは、高いパーセンテージのミトコンドリアDNA(これもオープンDNAである)が混入していることが多く、ヒトゲノムの標準的なアクセシビリティ研究、例えば、DNase−seqおよびFAIRE−seqについてはるかに多くのシークエンシングリードを要求することである(M. TsompanaおよびMJ. Buck、2014年)。したがって、配列決定コストを減少させるために、ATAC−Seq手順後にシークエンシングライブラリーから不要なミトコンドリアDNA汚染を除去する必要性が当技術分野において存在する。本開示は、ATAC−Seqを受けた試料からミトコンドリアDNAを選択的に枯渇させる方法を提供する。
本願は、アダプター、gRNA、gRNAライブラリーなどに限定されない、本明細書に記載の組成物のいずれか1つまたは複数を含むキットを提供する。
概要
図4で図示されるように、枯渇法を、先に配列決定され、94%ヒト核DNAおよび6%ミトコンドリアDNAからなることが示されている、ヒトDNAライブラリー(ライブラリー1)において検査した。枯渇を、組換えCas9およびミトコンドリアDNAに関して特異的に設計された25種のガイドRNAのライブラリーを用いて実施した。対照の枯渇を、ミトコンドリアDNAを標的にしない無関係のガイドRNAを用いて実施した。約40%のヒトミトコンドリアDNAを枯渇させた。枯渇を、20分間で完了し、次いでPCRでライブラリーを増幅させた。
Cas9(S.pyogenes由来)を、pET30発現ベクター(EMD biosciences)にクローニングして、Cas9開始コドンのすぐ上流にヘキサヒスチジンタグを挿入した。生じたプラスミドを、Rosetta(DE3)BL21細菌株(EMD biosciences)に形質転換し、1LのLB培地で激しく通気しながら、培養物の光学密度(600nmでのOD)が0.4に達するまで成長させた。温度を25℃に低下させ、0.2mM IPTGを加え、培養物をさらに4時間成長させた。細胞を、次に遠心分離(1,000×g、20分間、4℃)によって採集し、10ml結合緩衝液(20mM Tris pH8、0.5M NaCl、5mMイミダゾール、0.05%NP40)に再懸濁し、超音波処理(30%パワーで7×10秒のバースト、Sonifier250、Branson)によって溶解させた。不溶性の細胞残屑を、10,000×g、20分間での遠心分離によって除去し;可溶性タンパク質を含有する上清を、次に0.4mlのNTAビーズ(Qiagen)と混合し、カラムにロードした。ビーズを、4ml結合緩衝液で3回洗浄し、次に250mMイミダゾールを補充した3x0.5mlの結合緩衝液で溶出した。溶出した画分を次に濃縮し、緩衝液を30,000MWCOタンパク質濃縮器(Life Technologies)を用いて貯蔵緩衝液(10mM Tris pH8、0.3M NaCl、0.1mM EDTA、1mM DTT、50%グリセロール)で交換し、SDS PAGEによって検証し、次いでColloidal Blue染色(Life Technologies)し、定量し、次に−20℃で後に使用するまで貯蔵した。
25の構築物を、T7 RNAポリメラーゼプロモーター、20塩基対のミトコンドリアDNA特異的配列、およびS.pyogenes由来のガイドRNA足場を各自含有させて設計した。各構築物について、2種のオリゴヌクレオチドを注文し(配列については表1および表2を参照されたい)、5μl中に1μMの最終濃度で組み合わせ、次に98℃、3分間加熱し、次に5℃/分の割合で55℃に冷却し、最終的に55℃で5分間インキュベートした。
a. 55%超のGC含量を有する任意の20マーを排除した。
b. 塩基対を形成する13超のステムループ(例えば、MfoldまたはViennaソフトウェアのいずれかにより予測される)を有する任意の20マーを排除した。
c. 20マーの第1のヌクレオチドがA/Gではない場合、1つのG残基を5’末端に付加して21マーを得た。
d. 規則3: T7プロモーターおよびプライマー結合部位を付加して以下のプライマー(5’>3’)を得た:GCCTCGAGCTAATACGACTCACTATAG(G)NNNNNNNNNNNNNNNNNNNN
(G)は、20マーがプリンを5’末端に有していない場合に、Gが付加されることを示す。
ガイドライブラリーをガイドRNAに転写するため、本発明者らは、10μl精製ライブラリー(約500ng)、6.5μlのH2O、2.25μlのATP、2.25μlのCTP、2.25μlのGTP、2.25μlのUTP、2.25μl 10×反応緩衝液(NEB)および2.25μlのT7 RNAポリメラーゼミックスのin vitro転写反応混合物を作製した。反応物を37℃で24時間インキュベートし、次にH2O中で10倍希釈した。単一反応により、約40μgのRNAを生成した。RNA(約150塩基対)の収量およびサイズを、1μlの反応物を5%TBE/尿素ゲルで泳動し、SYBR Gold(Life Technologies)で染色することによって確認した。
希釈したガイドRNA(1μl、2pmolと等価)を、3μl 10×Cas9反応緩衝液(NEB)、20μl H2Oおよび1μlの組換えCas9酵素(NEB、1pmol/μl)と組み合わせた。以下の配列(5’−GGATTTATACAGCACTTTAA−3’)を標的にする対照ガイドRNAを用いる対照反応を、同じパラメータを用いて別々に実施した。この配列は、ヒト染色体DNAまたはミトコンドリアDNAのいずれかに非存在である。反応物を37℃で15分間インキュベートし、次に5μlの希釈したDNAライブラリー(50pg/μl)を補充し、37℃で連続的に90分間インキュベーションした。1:100希釈のRNaseA(Thermo Fisher Scientific)を添加し、98℃に5分間加熱し、次に室温に冷却し、100μl H2Oを添加して、反応を終結させた。反応物を、次に−20℃で使用まで貯蔵した。
各反応(各検査条件および対照ガイドRNAを用いる反応)について、2つの別々の5μl試料を、対照プライマーおよび検査プライマーの両方を用いてリアルタイムPCRによって解析した。対照プライマー反応について、試料を、2μl H2O、0.25μlの10μMプライマーP5(5’−AATGATACGGCGACCACCGA−3’)、および0.25μlの10μM P7、(5’−CAAGCAGAAGACGGCATACGA−3’)および7.5μlの2×Maxima SYBR Greenマスターミックス(Thermo Fisher Scientific)とインキュベートした。検査プライマー反応について、試料を、1.75μl H2O、0.5μlの10μMミトコンドリアプライマー(表1および表2を参照されたい)、および0.25μlの10μM P7(5’−CAAGCAGAAGACGGCATACGA−3’)および7.5μlの2×Maxima SYBR Greenマスターミックス(Thermo Fisher Scientific)とインキュベートした。反応物を、95℃で3分間、次いで95℃で10秒間、55℃で45秒間の40サイクルの2ステップサイクリング条件を用いてiCyclerリアルタイムPCRサーマルサイクラー(BioRad)中でインキュベートした。
概要
図5および図6で図示されるように、枯渇法を、先に配列決定され、55%ヒト核DNAおよび45%ミトコンドリアDNAからなることが示されている、ヒトDNAライブラリー(ライブラリー2)において検査した。枯渇を、組換えCas9およびミトコンドリアDNAに関して特異的に設計された90種のガイドRNAのライブラリーを用いて実施したところ、ミトコンドリアゲノム中のギャップは残っていなかった。対照の枯渇を、ミトコンドリアDNAを標的としない無関係のガイドRNAを用いて実施した。
Cas9(S.pyogenes由来)を、pET30発現ベクター(EMD biosciences)にクローニングして、Cas9開始コドンのすぐ上流にヘキサヒスチジンタグを挿入した。生じたプラスミドを、Rosetta(DE3)BL21細菌株(EMD biosciences)に形質転換し、1LのLB培地で激しく通気しながら、培養物の光学密度(600nmでのOD)が0.4に達するまで成長させた。温度を25℃に低下させ、0.2mM IPTGを加え、培養物をさらに4時間成長させた。細胞を、次に遠心分離(1,000×g、20分間、4℃)によって採集し、10ml結合緩衝液(20mM Tris pH8、0.5M NaCl、5mMイミダゾール、0.05%NP40)に再懸濁し、超音波処理(30%パワーで7×10秒のバースト、Sonifier250、Branson)によって溶解させた。不溶性の細胞残屑を、10,000×g、20分間での遠心分離によって除去し;可溶性タンパク質を含有する上清を、次に0.4mlのNTAビーズ(Qiagen)と混合し、カラムにロードした。ビーズを、4ml結合緩衝液で3回洗浄し、次に250mMイミダゾールを補充した3×0.5mlの結合緩衝液で溶出した。溶出した画分を次に濃縮し、緩衝液を30,000MWCOタンパク質濃縮器(Life Technologies)を用いて貯蔵緩衝液(10mM Tris pH8、0.3M NaCl、0.1mM EDTA、1mM DTT、50%グリセロール)で交換し、SDS PAGEによって検証し、次いでColloidal Blue染色(Life Technologies)し、定量し、次に−20℃で後に使用するまで貯蔵した。
T7−ガイドRNAオリゴヌクレオチド(表3)および別々のオリゴヌクレオチド、stlgR(配列、GT TTT AGA GCT AGA AAT AGC AAG TTA AAA TAA GGC TAG TCC GTT ATC AAC TTG AAA AAG TGG CAC CGA GTC GGT GCT TTT TTT GGA TCC GAT GC)を、注文し、合成した(IDT)。
ガイドライブラリーをガイドRNAに転写するため、本発明者らは、10μl精製ライブラリー(約500ng)、6.5μlのH2O、2.25μlのATP、2.25μlのCTP、2.25μlのGTP、2.25μlのUTP、2.25μl 10×反応緩衝液(NEB)および2.25μlのT7 RNAポリメラーゼミックスのin vitro転写反応混合物を作製した。反応物を37℃で24時間インキュベートし、次にH2O中で10倍希釈した。単一反応により、約40μgのRNAを生成した。RNA(約150塩基対)の収量およびサイズを、1μlの反応物を5%TBE/尿素ゲルで泳動し、SYBR Gold(Life Technologies)で染色することによって確認した。
複数のガイドRNA(単一のまたは複数のin vitro転写反応から)を選択して、枯渇される95%超の標的DNAが、少なくとも1つのガイドRNA標的配列を含有することを確実にした。これは、ライブラリーサイズの分布を測定し、平均(Nおよび標準偏差SD;N−2SD=95%超のライブラリーに関して最小サイズ)を決定することによって計算し、このサイズ当たり1つのガイドRNAが存在することを確実にして95%超の枯渇を保証することができる。これは、ガイドRNAの間の最大距離=ライブラリーサイズの平均−2×(ライブラリーサイズの標準偏差)として記載することもできる。ミトコンドリアライブラリーのケースでは、ライブラリーは、450塩基対の平均長で、標準偏差100である、DNA断片を含有する。これにより、ガイドRNA間で最大250bpがもたらされる。ここで、これらのライブラリー中のDNA断片は、450bpの平均長(100bpの推定標準偏差を有する)であり、5%未満のDNAは250bpよりも小さく、正規分布すると想定される。ガイドRNAがそれらの割り当てられた標的の100%を標的にすると想定すると、95%超の標的DNAは、少なくとも1つのガイドRNA部位を含有し、枯渇されるはずである。
PCR生成物を、PCRクリーンアップキットを用いて精製し、ハイスループットDNA配列決定(Illumina MiSeqまたはNextSeq)のための鋳型として使用した。
トランスクリプトームワイドgRNAライブラリー:
ガイドRNAが生成され、これは全体のトランスクリプトームにわたってタイルされる。設計は、血液トランスクリプトームに基づく。各転写物にわたって約100〜200bpごとに間隔をあけたガイドRNAの計算による選択についてのパイプラインは、平均でヒトゲノム中に約10〜20bpごとにNGG部位があるとの予想が存在するとの知識に基づいて開発される。この様式では、約200〜500bpの典型的なRNA−seqライブラリー挿入サイズを考慮して、各挿入物が標的部位を含有すると予想される。設計の完了に続いて、ガイドRNA標的配列および周辺モチーフ(surrounding motif)を含有するオリゴプールを、注文し、T7プロモーターおよびガイドRNA配列のインバリアント部分を引き続き付加させる。このアプローチにより、新しいプールの注文を必要とする前、一定期間にライブラリーの再生が可能となる。90,000エレメントのアレイサイズに基づいて、トランスクリプトームにわたって約200bpごとに間隔をあけたガイドRNAが、2つのアレイ(約30Mベースのトランスクリプトームサイズと想定される)で、生成されることが予想される。次いで、これらのガイドRNAをCas9と一緒に使用して、先の実施例に記載された通りRNA−seqライブラリーから全てのヒトDNAを枯渇させる。枯渇および配列決定データ解析は、先の実施例に記載されている通り行われる。
記載されたアプローチは、検査RNA−seqライブラリーで検査される。これらのRNA−seqライブラリーは、標的化される配列のタイプをシミュレートするために、ヒトとE.coliのRNAの混合物から作製される。ライブラリーの枯渇に続いて、配列決定を実施して、トランスクリプトームの約10倍のカバレッジを得る。上記の通り、枯渇の前後でヒトにマッピングされる全ての配列の比率が、測定される;クラスカル・ウォリス一元配置ANOVA検定を使用して枯渇の統計学的有意性を決定することができる。
既知の病原体(例えば、エボラ)または未知の病原体を保持するヒト血液試料を得、RNAを抽出し(例えば、PAXgene血液RNA抽出キット、Qiagenを用いて)、標準方法(例えば、KAPA RNA−seqライブラリー調製キットを用いて)を用いてシークエンシングライブラリーに変換する。cDNA作製およびアダプターライゲーションの後、ライブラリーを、次にCas9およびヒトトランスクリプトームにおいて約200塩基ごとに標的にするガイドRNAプールと混合する。反応物を、37Cで20分間インキュベートして、標的配列を含有する任意の断片をCas9によって切断する。次いで、ライブラリーを精製し、アダプター特異的プライマーを用いて増幅する。ヒト配列を、効果的に枯渇させる。未切断配列のみを増幅し、生じたライブラリーをウイルスまたは他の病原体由来配列について富化する。
この実施例では、本方法を使用してミルクおよび家畜におけるウイルスおよび他の病原体をモニターする。
この実施例は、アダプターを必要としない枯渇を支持する方法を示す。この実施例では、本方法は、上記実施例に記載されている通り、枯渇実験のために使用される。しかし、アダプターを含有するライブラリーを切断する代わりに、ガイドRNAが選択されて大きいサイズ(例えば、100bp〜10kbあたり)の断片化されたDNAのプールにおいて複数回切断する。Cas9/gRNA複合体での切断に続いて、DNAをサイズ選択に付し、小さい断片(例えば、インタクトな断片の平均サイズの少なくとも1/2または1/3)を除去する。これを、例えば、Lambdaエキソヌクレアーゼによる処理によって支援することができる。Lambdaエキソヌクレアーゼは5’リン酸特異的エキソヌクレアーゼであり、5’から3’方向に進行し、Cas9で前にカットされていた任意の断片を攻撃する。生じたライブラリーは次にシークエンシングアダプターを必要としない一分子シーケンサーでの配列決定に付されてもよい;またはアダプターを下流解析のためにライゲーションしてもよい。
一部の実施形態では、PCR増幅または配列決定の前にカットされた断片を除去することが望ましい。この実施例は、エキソヌクレアーゼIIIを使用して、切断されたDNAを分解するが、カットされなかった目的のDNAをインタクトなままにすることによる、Cas9媒介性切断後の不要なDNAを除去する方法を例示する。
一部の実施形態では、PCR増幅または配列決定の前にカットされた断片を除去することが望ましい。この実施例は、エキソヌクレアーゼBal−31を用いることにより、切断されたDNAを分解するが、カットされなかった目的のDNAをインタクトなままにする、Cas9媒介性切断後の不要なDNAを除去する代替法を例示する。
一部の実施形態では、Cas9切断生成物は、排除(例えば、95%超のミトコンドリアDNAが、排除される)され、ビオチン標識を含むカットされなかった(目的の5%未満のDNA)のDNAは、ストレプトアビジンビーズに結合させることによって精製される。この実施例は、エキソヌクレアーゼを用いることなく、Cas9媒介性切断後の不要なDNAを除去する方法を例示し、図10に図示される。
Cas9は、標的DNAのコレクションを効率的に枯渇させるためガイドRNAのライブラリーと組み合わせて使用することができるが、大量(>30pmol)のCas9およびガイドRNAが必要とされる。この標的DNAに対して通常>100倍過剰量である理由は、切断後それらの標的DNAから完全に脱離する、EcoRIなどの古典的な制限酵素とは異なり、Cas9は、カット反応の完了後に再利用されないからである。Cas9は、2つの娘DNA生成物分子の1つと密接に結合したままで残ることができる(図11を参照されたい、左の白丸)。その結果、不要なDNAの完全な枯渇を達成するために、より多くのCas9およびgRNAが提供されることが要求される。この問題を克服するため、ガイドRNA(例えば、ヒトDNAに対するgRNAライブラリー)と複合体形成された熱安定性Cas9(95℃で1分後に>90%活性を保持するものとして定義される)が、DNA混合物(例えば、95%のヒトDNAおよび5%のウイルスDNAを含有)のシークエンシングライブラリーに適用され得る。図11(右の灰色の丸)で図示されるように、Cas9により一定期間消化させた後に、試料混合物は、煮沸されてもよく、これがDNA変性ならびにgRNAおよびCas9のDNA標的からの解離を引き起こす。DNA変性にもかかわらず、Cas9とgRNAの結合は増加することができ、Cas9−gRNAがインタクトな複合体としてDNA標的から解離する。Cas9タンパク質構造が影響されないように、DNA変性に必要とされる温度を減少させるため、ジメチルスルホキシドが加えられ得る。Cas9はカットされていない標的部位に優先的に結合し、熱安定性Cas9は煮沸後に活性を保持する。これらの特性が理由で、反応物を煮沸し37℃に冷却することによって、熱安定性Cas9は、依然としてそのgRNAに結合し、より多くのその基質をカットすることができる。Cas9の再利用が可能となることによって、枯渇効率が増加し、より少ないCas9が、反応に必要とされるので、オフターゲットの(非特異的な)切断確率も減少する。
論じられた実施形態では、陽性対照および/または陰性対照を提供することが望ましい。陽性対照は、不要なDNAの枯渇が忠実度および効率性を伴って進行することを保証する。陰性対照は、オフターゲット切断が、最小または非存在であることを保証する。
Claims (70)
- 試料を目的の配列について富化する方法であって、
a.目的の配列および枯渇のための標的化配列を含む試料を準備するステップであって、該目的の配列は、該試料の30%未満を構成する、ステップと;
b.該試料を複数のCRISPR/Cas系タンパク質−gRNA複合体と接触させるステップであって、該gRNAは、該標的化配列に相補的であり、それによって該標的化配列が切断される、ステップと
を含む、方法。 - 前記試料から前記目的の配列および前記枯渇のための標的化配列を抽出するステップをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記抽出された配列を断片化するステップをさらに含む、請求項2に記載の方法。
- 前記抽出され断片化された配列の5’および3’末端をアダプターライゲーションするステップをさらに含む、請求項3に記載の方法。
- 前記切断された標的化配列が、サイズ排除によって、またはビオチンを使用して除去される、請求項1に記載の方法。
- 前記目的の配列を増幅するステップをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記試料を少なくとも102のユニークなCRISPR/Cas系タンパク質−gRNA複合体と接触させるステップを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記試料が、生体試料、臨床試料、法医学試料、または環境試料のいずれか1つである、請求項1に記載の方法。
- 前記試料が、枯渇のために標的にされる宿主核酸配列および目的の非宿主核酸配列を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記非宿主核酸配列が、微生物核酸配列を含む、請求項9に記載の方法。
- 前記微生物核酸配列が、細菌核酸配列、ウイルス核酸配列、または真核生物寄生虫核酸配列である、請求項10に記載の方法。
- 前記試料をCRISPR/Cas系タンパク質−gRNA複合体と接触させ、該gRNAが、ミトコンドリアDNAに相補的である、請求項1に記載の方法。
- 前記試料をCRISPR/Cas系タンパク質−gRNA複合体と接触させ、該gRNAが、リボソームRNA配列、グロビンタンパク質をコードする配列、トランスポゾンをコードする配列、レトロウイルス配列をコードする配列、テロメア配列を含む配列、サブテロメアリピートを含む配列、動原体配列を含む配列、イントロン配列を含む配列、Aluリピートを含む配列、SINEリピートを含む配列、LINEリピートを含む配列、二核酸リピートを含む配列、三核酸リピートを含む配列、四核酸リピートを含む配列、ポリ−Aリピートを含む配列、ポリ−Tリピートを含む配列、ポリ−Cリピートを含む配列、ポリ−Gリピートを含む配列、ATリッチ配列を含む配列、またはGCリッチ配列を含む配列に対応するDNAに相補的である、請求項1に記載の方法。
- 抽出された核酸が、一本鎖DNA、二本鎖DNA、一本鎖RNA、二本鎖RNA、cDNA、合成DNA、人工DNA、およびDNA/RNAハイブリッドのいずれか1つを含む、請求項2に記載の方法。
- 前記目的の配列が、抽出された核酸の10%未満を構成する、請求項1に記載の方法。
- 前記CRISPR/Cas系タンパク質が、Cas9である、請求項1に記載の方法。
- 前記CRISPR/Cas系タンパク質が、触媒不活性である、請求項1に記載の方法。
- 前記触媒不活性であるCRISPR/Cas系タンパク質が、dCas9である、請求項17に記載の方法。
- 前記CRISPR/Cas系タンパク質が、CRISPR/Cas系タンパク質ニッカーゼである、請求項1に記載の方法。
- 前記CRISPR/Cas系タンパク質ニッカーゼが、Cas9ニッカーゼである、請求項19に記載の方法。
- 前記CRISPR/Cas系タンパク質が、熱安定性である、請求項1に記載の方法。
- アダプター特異的PCRを使用してステップ(b)の生成物を増幅するステップをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- エキソヌクレアーゼ活性を有する酵素でステップ(b)の生成物を処理するステップをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記酵素が、エキソヌクレアーゼIIIまたはBAL−31である、請求項23に記載の方法。
- 前記試料が、全血、血漿、血清、涙、唾液、粘液、脳脊髄液、歯、骨、指の爪、糞便、尿、組織、および生検から選択される、請求項1に記載の方法。
- 試料を富化する方法であって、
a.宿主核酸および非宿主核酸を含む試料を準備するステップであって、該宿主核酸および非宿主核酸は、アダプターライゲーションされており、該アダプターは、該宿主核酸および該非宿主核酸の5’および3’末端にライゲーションされている、ステップと;
b.該試料を複数のCRISPR/Cas系タンパク質−gRNA複合体と接触させるステップであって、該gRNAは、該宿主核酸中の標的化部位に相補的であり、それによって一端のみでアダプターライゲーションされた宿主核酸、ならびに5’および3’末端の両方でアダプターライゲーションされた非宿主核酸を生成する、ステップと;
c.該試料を非宿主核酸について富化するステップと
を含む、方法。 - 前記試料を少なくとも102のユニークなCRISPR/Cas系タンパク質−gRNA複合体と接触させるステップを含む、請求項26に記載の方法。
- 前記核酸は、DNAであり、ステップ(b)の前記接触させるステップにより、5’末端でアダプターライゲーションされているが、3’末端でアダプターライゲーションされていない宿主DNA、ならびに5’および3’末端の両方でアダプターライゲーションされた非宿主DNAが生成される、請求項26に記載の方法。
- 前記CRISPR/Cas系タンパク質が、Cas9、Cpf1、Cas3、Cas8a−c、Cas10、Cse1、Csy1、Csn2、Cas4、Csm2、またはCm5である、請求項26に記載の方法。
- 前記CRISPR/Cas系タンパク質が、Cas9である、請求項29に記載の方法。
- 前記CRISPR/Cas系タンパク質が、dCas9である、請求項26に記載の方法。
- 前記CRISPR/Cas系タンパク質が、Cas9ニッカーゼである、請求項26に記載の方法。
- 前記CRISPR/Cas系タンパク質が、熱安定性である、請求項26に記載の方法。
- 前記宿主が、ヒト、ウシ、ウマ、ヒツジ、ブタ、サル、イヌ、ネコ、アレチネズミ、トリ、マウス、およびラットからなる群から選択される、請求項26に記載の方法。
- 前記非宿主が、原核生物である、請求項26に記載の方法。
- 前記非宿主が、真核生物、ウイルス、細菌、真菌、および原生動物からなる群から選択される、請求項26に記載の方法。
- 前記アダプターライゲーションされた宿主核酸および非宿主核酸が、50〜1000bpの範囲である、請求項26に記載の方法。
- 前記非宿主核酸が、前記試料中の全核酸の50%未満を構成する、請求項26に記載の方法。
- 前記試料が、生体試料、臨床試料、法医学試料、または環境試料のいずれか1つである、請求項26に記載の方法。
- ステップ(c)が、アダプター特異的PCRを使用してステップ(b)の生成物を増幅することを含む、請求項26に記載の方法。
- ステップ(c)が、エキソヌクレアーゼ活性を有する酵素でステップ(b)の生成物を処理することを含む、請求項26に記載の方法。
- 前記酵素が、エキソヌクレアーゼIIIまたはBAL−31である、請求項41に記載の方法。
- ステップ(c)が、サイズ排除によって前記宿主核酸を除去することを含む、請求項26に記載の方法。
- ステップ(c)が、ビオチンを使用して前記宿主核酸を除去することを含む、請求項26に記載の方法。
- アダプター特異的PCRを使用してステップ(b)の生成物を増幅するステップをさらに含む、請求項26に記載の方法。
- エキソヌクレアーゼ活性を有する酵素でステップ(b)の生成物を処理するステップをさらに含む、請求項26に記載の方法。
- 前記酵素が、エキソヌクレアーゼIIIまたはBAL−31である、請求項46に記載の方法。
- 陽性対照標的配列の使用を含めるステップをさらに含む、請求項26に記載の方法。
- 陰性対照gRNAの使用を含めるステップをさらに含む、請求項26に記載の方法。
- 前記試料が、全血、血漿、血清、涙、唾液、粘液、脳脊髄液、歯、骨、指の爪、糞便、尿、組織、および生検から選択される、請求項26に記載の方法。
- 試料中の標的化核酸を連続的に枯渇させるための方法であって、
a.宿主核酸および非宿主核酸を含む試料を準備するステップであって、該非宿主核酸は、少なくとも1種の既知の非宿主生物由来の核酸および少なくとも1種の未知の非宿主生物由来の核酸を含む、ステップと;
b.該試料を複数のCRISPR/Cas系タンパク質−gRNA複合体と接触させるステップであって、該gRNAは、該宿主核酸中の標的化配列にハイブリダイズするように配置されており、それによって該宿主核酸の一部が切断される、ステップと;
c.該試料を複数のCRISPR/Cas系タンパク質−gRNA複合体と接触させるステップであって、該gRNAは、該少なくとも1種の既知の非宿主核酸中の標的化配列にハイブリダイズするように配置されており、それによって該少なくとも1種の既知の非宿主核酸の一部が切断される、ステップと;
d.該未知の非宿主生物から該核酸を単離するステップと
を含む、方法。 - 前記試料を、前記宿主核酸中の標的化配列にハイブリダイズするように配置された少なくとも102のユニークなCRISPR/Cas系タンパク質−gRNA複合体と接触させるステップを含む、請求項51に記載の方法。
- 前記試料を、前記少なくとも1種の既知の非宿主核酸中の標的化配列にハイブリダイズするように配置された少なくとも102のユニークなCRISPR/Cas系タンパク質−gRNA複合体と接触させるステップを含む、請求項51に記載の方法。
- 前記試料が、全血、血漿、血清、涙、唾液、粘液、脳脊髄液、歯、骨、指の爪、糞便、尿、組織、および生検から選択される、請求項51に記載の方法。
- 未知の非宿主生物由来の核酸が、前記試料中の全核酸の5%未満を構成する、請求項51に記載の方法。
- 前記宿主がヒトである、請求項51に記載の方法。
- 第1のゲノム由来のDNAおよび第2のゲノム由来のDNAの混合物を含む組成物であって、該第1のゲノムDNAおよび該第2のゲノムDNAは、アダプターライゲーションされており、該第1のゲノムDNAは、gRNA−CRISPR/Cas系タンパク質複合体に複合体形成されている、組成物。
- 前記第1のゲノムが、宿主生物由来であり、前記第2のゲノムが、非宿主生物由来である、請求項57に記載の組成物。
- 前記CRISPR/Cas系タンパク質が、Cas9である、請求項57に記載の組成物。
- 前記CRISPR/Cas系タンパク質が、熱安定性である、請求項57に記載の組成物。
- a.CRISPR/Cas系タンパク質;および
b.ミトコンドリアDNAに相補的であるgRNA
を含むキット。 - a.CRISPR/Cas系タンパク質;
b.目的の標的に相補的であるgRNA;および
c.エキソヌクレアーゼ活性を有する酵素
を含むキット。 - a.熱安定性であるCRISPR/Cas系タンパク質;および
b.目的の標的に相補的であるgRNA
を含むキット。 - a.CRISPR/Cas系タンパク質;および
b.目的の標的配列に相補的であるgRNAの第1のセット;および
c.試薬の対照セット
を含むキット。 - 試薬の陽性対照セットをさらに含む、請求項64に記載のキット。
- 試薬の陰性対照セットをさらに含む、請求項64に記載のキット。
- a.細胞の集団からDNAを単離するための試薬;
b.挿入酵素;
c.CRISPR/Cas系タンパク質;および
d.ミトコンドリアDNAに相補的である複数のgRNA
を含むキット。 - 前記CRISPR/Cas系タンパク質が、Cas9である、請求項61から67のいずれか一項に記載のキット。
- 少なくとも102のユニークgRNAを含む、請求項61から67のいずれか一項に記載のキット。
- Y形アダプターまたはポリ−Gアダプターのコレクションをさらに含む、請求項61から67のいずれか一項に記載のキット。
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2021070442A JP7407762B2 (ja) | 2014-12-20 | 2021-04-19 | Crispr/cas系タンパク質を使用する核酸の標的化枯渇、富化および分割のための組成物および方法 |
JP2023123444A JP2023129696A (ja) | 2014-12-20 | 2023-07-28 | Crispr/cas系タンパク質を使用する核酸の標的化枯渇、富化および分割のための組成物および方法 |
Applications Claiming Priority (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US201462094980P | 2014-12-20 | 2014-12-20 | |
US62/094,980 | 2014-12-20 | ||
US201562198097P | 2015-07-28 | 2015-07-28 | |
US62/198,097 | 2015-07-28 | ||
PCT/US2015/066949 WO2016100955A2 (en) | 2014-12-20 | 2015-12-19 | Compositions and methods for targeted depletion, enrichment, and partitioning of nucleic acids using crispr/cas system proteins |
Related Child Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2021070442A Division JP7407762B2 (ja) | 2014-12-20 | 2021-04-19 | Crispr/cas系タンパク質を使用する核酸の標的化枯渇、富化および分割のための組成物および方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2018500937A true JP2018500937A (ja) | 2018-01-18 |
JP6947638B2 JP6947638B2 (ja) | 2021-10-13 |
Family
ID=56127883
Family Applications (3)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2017551579A Active JP6947638B2 (ja) | 2014-12-20 | 2015-12-19 | Crispr/cas系タンパク質を使用する核酸の標的化枯渇、富化および分割のための組成物および方法 |
JP2021070442A Active JP7407762B2 (ja) | 2014-12-20 | 2021-04-19 | Crispr/cas系タンパク質を使用する核酸の標的化枯渇、富化および分割のための組成物および方法 |
JP2023123444A Pending JP2023129696A (ja) | 2014-12-20 | 2023-07-28 | Crispr/cas系タンパク質を使用する核酸の標的化枯渇、富化および分割のための組成物および方法 |
Family Applications After (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2021070442A Active JP7407762B2 (ja) | 2014-12-20 | 2021-04-19 | Crispr/cas系タンパク質を使用する核酸の標的化枯渇、富化および分割のための組成物および方法 |
JP2023123444A Pending JP2023129696A (ja) | 2014-12-20 | 2023-07-28 | Crispr/cas系タンパク質を使用する核酸の標的化枯渇、富化および分割のための組成物および方法 |
Country Status (8)
Country | Link |
---|---|
US (3) | US10774365B2 (ja) |
EP (2) | EP3957745A1 (ja) |
JP (3) | JP6947638B2 (ja) |
CN (2) | CN107406875B (ja) |
AU (2) | AU2015364286B2 (ja) |
CA (1) | CA2971444A1 (ja) |
DK (1) | DK3234200T3 (ja) |
WO (1) | WO2016100955A2 (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2020534863A (ja) * | 2018-02-06 | 2020-12-03 | ジェネッカー カンパニー リミテッド | 突然変異細胞遊離遺伝子分離キット及びそれを用いた突然変異細胞遊離遺伝子分離方法 |
Families Citing this family (89)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP2734621B1 (en) | 2011-07-22 | 2019-09-04 | President and Fellows of Harvard College | Evaluation and improvement of nuclease cleavage specificity |
GB2533882B (en) | 2012-01-26 | 2016-10-12 | Nugen Tech Inc | Method of enriching and sequencing nucleic acids of interest using massively parallel sequencing |
US20150011396A1 (en) | 2012-07-09 | 2015-01-08 | Benjamin G. Schroeder | Methods for creating directional bisulfite-converted nucleic acid libraries for next generation sequencing |
US9163284B2 (en) | 2013-08-09 | 2015-10-20 | President And Fellows Of Harvard College | Methods for identifying a target site of a Cas9 nuclease |
US9359599B2 (en) | 2013-08-22 | 2016-06-07 | President And Fellows Of Harvard College | Engineered transcription activator-like effector (TALE) domains and uses thereof |
US9526784B2 (en) | 2013-09-06 | 2016-12-27 | President And Fellows Of Harvard College | Delivery system for functional nucleases |
US9388430B2 (en) | 2013-09-06 | 2016-07-12 | President And Fellows Of Harvard College | Cas9-recombinase fusion proteins and uses thereof |
US9340799B2 (en) | 2013-09-06 | 2016-05-17 | President And Fellows Of Harvard College | MRNA-sensing switchable gRNAs |
US11053481B2 (en) | 2013-12-12 | 2021-07-06 | President And Fellows Of Harvard College | Fusions of Cas9 domains and nucleic acid-editing domains |
DK3102722T3 (da) | 2014-02-04 | 2020-11-16 | Jumpcode Genomics Inc | Genom fraktionering |
PL3105328T3 (pl) | 2014-02-11 | 2020-10-19 | The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate | Umożliwiana przez CRISPR multipleksowa modyfikacja genomu |
CN113265394A (zh) | 2014-02-13 | 2021-08-17 | 宝生物工程(美国) 有限公司 | 从核酸的初始集合中耗尽靶分子的方法、以及用于实践其的组合物和试剂盒 |
US10077453B2 (en) | 2014-07-30 | 2018-09-18 | President And Fellows Of Harvard College | CAS9 proteins including ligand-dependent inteins |
US9879283B2 (en) * | 2014-10-09 | 2018-01-30 | Life Technologies Corporation | CRISPR oligonucleotides and gene editing |
EP3957745A1 (en) | 2014-12-20 | 2022-02-23 | Arc Bio, LLC | Compositions and methods for targeted depletion, enrichment, and partitioning of nucleic acids using crispr/cas system proteins |
US10968536B2 (en) | 2015-02-25 | 2021-04-06 | Jumpcode Genomics, Inc. | Methods and compositions for sequencing |
EP3337898B1 (en) | 2015-08-19 | 2021-07-28 | Arc Bio, LLC | Capture of nucleic acids using a nucleic acid-guided nuclease-based system |
IL310721A (en) | 2015-10-23 | 2024-04-01 | Harvard College | Nucleobase editors and their uses |
CA3006781A1 (en) * | 2015-12-07 | 2017-06-15 | Arc Bio, Llc | Methods and compositions for the making and using of guide nucleic acids |
US11339427B2 (en) | 2016-02-12 | 2022-05-24 | Jumpcode Genomics, Inc. | Method for target specific RNA transcription of DNA sequences |
LT3474669T (lt) | 2016-06-24 | 2022-06-10 | The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate | Barkodu pažymėtų kombinatorinių bibliotekų generavimo būdai |
CA3032699A1 (en) | 2016-08-03 | 2018-02-08 | President And Fellows Of Harvard College | Adenosine nucleobase editors and uses thereof |
AU2017308889B2 (en) | 2016-08-09 | 2023-11-09 | President And Fellows Of Harvard College | Programmable Cas9-recombinase fusion proteins and uses thereof |
WO2018035062A1 (en) * | 2016-08-16 | 2018-02-22 | The Regents Of The University Of California | Method for finding low abundance sequences by hybridization (flash) |
WO2018039438A1 (en) | 2016-08-24 | 2018-03-01 | President And Fellows Of Harvard College | Incorporation of unnatural amino acids into proteins using base editing |
KR101964746B1 (ko) * | 2016-09-07 | 2019-04-03 | 울산대학교 산학협력단 | dCas9 단백질 및 표적 핵산 서열에 결합하는 gRNA를 이용한 핵산 검출의 민감도 및 특이도 향상용 조성물 및 방법 |
EA201990599A1 (ru) | 2016-09-27 | 2019-10-31 | Способ и система для получения и секвенирования библиотеки на основе crispr | |
CN110214180A (zh) | 2016-10-14 | 2019-09-06 | 哈佛大学的校长及成员们 | 核碱基编辑器的aav递送 |
WO2018119359A1 (en) | 2016-12-23 | 2018-06-28 | President And Fellows Of Harvard College | Editing of ccr5 receptor gene to protect against hiv infection |
GB2559118B (en) * | 2017-01-19 | 2021-07-07 | Agency For Science Tech And Research Astarstar | Method for normalizing a nucleic acid sample |
EP3592853A1 (en) | 2017-03-09 | 2020-01-15 | President and Fellows of Harvard College | Suppression of pain by gene editing |
US11542496B2 (en) | 2017-03-10 | 2023-01-03 | President And Fellows Of Harvard College | Cytosine to guanine base editor |
CN110914426A (zh) | 2017-03-23 | 2020-03-24 | 哈佛大学的校长及成员们 | 包含核酸可编程dna结合蛋白的核碱基编辑器 |
US11867661B2 (en) | 2017-04-07 | 2024-01-09 | Sage Science, Inc. | Systems and methods for detection of genetic structural variation using integrated electrophoretic DNA purification |
WO2018209320A1 (en) | 2017-05-12 | 2018-11-15 | President And Fellows Of Harvard College | Aptazyme-embedded guide rnas for use with crispr-cas9 in genome editing and transcriptional activation |
EP4230746A3 (en) * | 2017-05-26 | 2023-11-01 | 10X Genomics, Inc. | Single cell analysis of transposase accessible chromatin |
US20200190508A1 (en) * | 2017-06-07 | 2020-06-18 | Arc Bio, Llc | Creation and use of guide nucleic acids |
CA3069938A1 (en) | 2017-06-13 | 2018-12-20 | Genetics Research, Llc, D/B/A Zs Genetics, Inc. | Isolation of target nucleic acids |
US10947599B2 (en) | 2017-06-13 | 2021-03-16 | Genetics Research, Llc | Tumor mutation burden |
US10527608B2 (en) | 2017-06-13 | 2020-01-07 | Genetics Research, Llc | Methods for rare event detection |
US10081829B1 (en) | 2017-06-13 | 2018-09-25 | Genetics Research, Llc | Detection of targeted sequence regions |
US9982279B1 (en) | 2017-06-23 | 2018-05-29 | Inscripta, Inc. | Nucleic acid-guided nucleases |
US10011849B1 (en) | 2017-06-23 | 2018-07-03 | Inscripta, Inc. | Nucleic acid-guided nucleases |
US20190048425A1 (en) * | 2017-06-28 | 2019-02-14 | Genetics Research, Llc, D/B/A Zs Genetics, Inc. | Tumor detection and monitoring |
US20190071716A1 (en) * | 2017-06-28 | 2019-03-07 | Genetics Research, Llc, D/B/A Zs Genetics, Inc. | Bodily fluid enrichment |
US20190002964A1 (en) * | 2017-06-28 | 2019-01-03 | Genetics Research, Llc, D/B/A Zs Genetics, Inc. | Bodily fluid target enrichment |
US20190085318A1 (en) * | 2017-06-28 | 2019-03-21 | Genetics Research, Llc, D/B/A Zs Genetics, Inc. | Solid phase negative enrichment |
CN107190008A (zh) * | 2017-07-19 | 2017-09-22 | 苏州吉赛基因测序科技有限公司 | 一种基于Crispr/cas9的捕获基因组目标序列的方法及其在高通量测序中的应用 |
CN111801345A (zh) | 2017-07-28 | 2020-10-20 | 哈佛大学的校长及成员们 | 使用噬菌体辅助连续进化(pace)的进化碱基编辑器的方法和组合物 |
WO2019030306A1 (en) * | 2017-08-08 | 2019-02-14 | Depixus | ISOLATION AND IN VITRO ENRICHMENT OF NUCLEIC ACIDS USING SITE-SPECIFIC NUCLEASES |
US11319532B2 (en) | 2017-08-30 | 2022-05-03 | President And Fellows Of Harvard College | High efficiency base editors comprising Gam |
AU2018352592A1 (en) | 2017-10-16 | 2020-06-04 | Beam Therapeutics, Inc. | Uses of adenosine base editors |
CN107893260B (zh) * | 2017-11-27 | 2021-01-12 | 广州市锐博生物科技有限公司 | 高效去除核糖体rna的构建转录组测序文库的方法及试剂盒 |
CN111448315B (zh) * | 2018-01-03 | 2023-09-22 | 苏州晶睿生物科技有限公司 | 一种Cas蛋白体系分离DNA的方法 |
AU2019233918A1 (en) * | 2018-03-15 | 2020-10-15 | Twinstrand Biosciences, Inc. | Methods and reagents for enrichment of nucleic acid material for sequencing applications and other nucleic acid material interrogations |
CA3067251C (en) | 2018-03-19 | 2024-02-27 | Illumina, Inc. | Methods and compositions for selective cleavage of nucleic acids with recombinant nucleases |
WO2019182887A1 (en) * | 2018-03-19 | 2019-09-26 | Illumina, Inc. | Methods and compositions for recombinase-mediated selective cleavage of nucleic acids |
US20210198660A1 (en) | 2018-06-07 | 2021-07-01 | Arc Bio, Llc | Compositions and methods for making guide nucleic acids |
EP3587590A1 (en) * | 2018-06-21 | 2020-01-01 | Progenika Biopharma, S.A. | Nucleic acid depletion and detection |
CN109182454A (zh) * | 2018-08-22 | 2019-01-11 | 杭州恺思医疗器械有限公司 | 一种捕获基因组特定dna片段的方法 |
EP4296373A3 (en) | 2018-10-04 | 2024-01-24 | Arc Bio, LLC | Normalization controls for managing low sample inputs in next generation sequencing |
EP3650555B1 (en) * | 2018-11-07 | 2024-02-21 | Siemens Healthineers AG | Target irrelevant guide rna for crispr |
CA3120176A1 (en) * | 2018-11-16 | 2020-05-22 | Depixus | Optimization of in vitro isolation of nucleic acids using site-specific nucleases |
AU2019390691A1 (en) * | 2018-11-28 | 2021-05-13 | Keygene N.V. | Targeted enrichment by endonuclease protection |
US11473124B2 (en) * | 2018-12-12 | 2022-10-18 | Depixus | Method of nucleic acid enrichment using site-specific nucleases followed by capture |
CN109652861A (zh) * | 2018-12-22 | 2019-04-19 | 阅尔基因技术(苏州)有限公司 | 一种生化试剂盒及其应用方法 |
KR20210121113A (ko) * | 2019-01-31 | 2021-10-07 | 빔 테라퓨틱스, 인크. | 비-표적 탈아미노화가 감소된 핵염기 편집기 및 핵염기 편집기를 특성규명하기 위한 분석 |
WO2020167795A1 (en) * | 2019-02-12 | 2020-08-20 | Jumpcode Genomics, Inc. | Methods for targeted depletion of nucleic acids |
WO2020172362A1 (en) * | 2019-02-20 | 2020-08-27 | Genetics Research, Llc | Regulated multiplex reactions in a single tube |
AU2020242032A1 (en) | 2019-03-19 | 2021-10-07 | Massachusetts Institute Of Technology | Methods and compositions for editing nucleotide sequences |
CA3136228A1 (en) * | 2019-04-09 | 2020-10-15 | Arc Bio, Llc | Compositions and methods for nucleotide modification-based depletion |
CN110041109A (zh) * | 2019-04-22 | 2019-07-23 | 刘坚 | 一种猪粪源生物肥的制备方法 |
CN110093409B (zh) * | 2019-04-26 | 2020-11-24 | 南京世和基因生物技术股份有限公司 | 一种基于高通量测序的感染线检测方法以及试剂盒 |
CN110205318A (zh) * | 2019-05-15 | 2019-09-06 | 杭州杰毅生物技术有限公司 | 基于CRISPR-Cas去除宿主基因组DNA的宏基因组提取方法 |
CN110272921A (zh) * | 2019-06-20 | 2019-09-24 | 武汉百翼生物科技有限公司 | 一种安全高效的CRISPR/Cas9基因编辑方法 |
CA3138663A1 (en) | 2019-06-25 | 2020-12-30 | Inari Agriculture Technology, Inc. | Improved homology dependent repair genome editing |
US20210079481A1 (en) * | 2019-09-16 | 2021-03-18 | Stitch Bio, Llc | Diagnostic assay for cancer |
EP3816299A1 (en) * | 2019-10-31 | 2021-05-05 | Siemens Healthcare GmbH | A method to prepare personalized target-irrelevant guide rna for crispr |
US20210155924A1 (en) * | 2019-11-27 | 2021-05-27 | Stitch Bio, Llc | Methods and compositions for inducing tumor cell death |
CN115298323A (zh) * | 2020-01-17 | 2022-11-04 | 嘉普科德基因组学公司 | 靶向测序方法 |
CN111471745B (zh) * | 2020-03-30 | 2021-09-07 | 华中农业大学 | 基于CRISPR/Cas9系统介导的DNA靶向捕获方法 |
CA3177481A1 (en) | 2020-05-08 | 2021-11-11 | David R. Liu | Methods and compositions for simultaneous editing of both strands of a target double-stranded nucleotide sequence |
EP4196604A2 (en) * | 2020-08-12 | 2023-06-21 | Jumpcode Genomics, Inc. | Methods for targeted depletion of nucleic acids |
WO2022074058A1 (en) * | 2020-10-06 | 2022-04-14 | Keygene N.V. | Targeted sequence addition |
US20240002904A1 (en) * | 2020-11-24 | 2024-01-04 | Keygene N.V. | Targeted enrichment using nanopore selective sequencing |
WO2023283343A1 (en) * | 2021-07-07 | 2023-01-12 | Arc Bio, Llc | Non-ribosomal sequence enrichment and single-stranded dna library for nucleic acid guided nuclease targeting |
WO2023173034A2 (en) * | 2022-03-10 | 2023-09-14 | Micronoma, Inc. | Disease classifiers from targeted microbial amplicon sequencing |
WO2024059516A1 (en) * | 2022-09-12 | 2024-03-21 | Jumpcode Genomics, Inc. | Methods for generating cdna library from rna |
CN117551746A (zh) * | 2023-12-01 | 2024-02-13 | 北京博奥医学检验所有限公司 | 一种检测目标核酸及其邻近区域核酸序列的方法 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2014150624A1 (en) * | 2013-03-14 | 2014-09-25 | Caribou Biosciences, Inc. | Compositions and methods of nucleic acid-targeting nucleic acids |
US20140356867A1 (en) * | 2013-05-29 | 2014-12-04 | Agilent Technologies, Inc. | Nucleic acid enrichment using cas9 |
WO2015122967A1 (en) * | 2014-02-13 | 2015-08-20 | Clontech Laboratories, Inc. | Methods of depleting a target molecule from an initial collection of nucleic acids, and compositions and kits for practicing the same |
WO2015183025A1 (ko) * | 2014-05-28 | 2015-12-03 | 주식회사 툴젠 | 표적 특이적 뉴클레아제를 이용한 표적 dna의 민감한 검출 방법 |
Family Cites Families (40)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5948902A (en) | 1997-11-20 | 1999-09-07 | South Alabama Medical Science Foundation | Antisense oligonucleotides to human serine/threonine protein phosphatase genes |
US7166432B2 (en) * | 1999-03-12 | 2007-01-23 | Integragen | Compositions and methods for genetic analysis |
US20050233340A1 (en) | 2004-04-20 | 2005-10-20 | Barrett Michael T | Methods and compositions for assessing CpG methylation |
US20090318305A1 (en) | 2008-06-18 | 2009-12-24 | Xi Erick Lin | Methods for selectively capturing and amplifying exons or targeted genomic regions from biological samples |
WO2012051327A2 (en) | 2010-10-12 | 2012-04-19 | Cornell University | Method of dual-adapter recombination for efficient concatenation of multiple dna fragments in shuffled or specified arrangements |
EP2635679B1 (en) | 2010-11-05 | 2017-04-19 | Illumina, Inc. | Linking sequence reads using paired code tags |
WO2013036929A1 (en) | 2011-09-09 | 2013-03-14 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior | Methods for obtaining a sequence |
US9528107B2 (en) | 2012-01-31 | 2016-12-27 | Pacific Biosciences Of California, Inc. | Compositions and methods for selection of nucleic acids |
US9637739B2 (en) * | 2012-03-20 | 2017-05-02 | Vilnius University | RNA-directed DNA cleavage by the Cas9-crRNA complex |
WO2013141680A1 (en) | 2012-03-20 | 2013-09-26 | Vilnius University | RNA-DIRECTED DNA CLEAVAGE BY THE Cas9-crRNA COMPLEX |
DE202013012242U1 (de) | 2012-05-25 | 2016-02-02 | Emmanuelle Charpentier | Zusammensetzungen für die durch RNA gesteuerte Modifikation einer Ziel-DNA und für die durch RNA gesteuerte Modulation der Transkription |
US9957549B2 (en) | 2012-06-18 | 2018-05-01 | Nugen Technologies, Inc. | Compositions and methods for negative selection of non-desired nucleic acid sequences |
US10847248B2 (en) | 2012-08-10 | 2020-11-24 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Techniques for determining haplotype by population genotype and sequence data |
US9133510B2 (en) * | 2012-10-15 | 2015-09-15 | Life Technologies Corporation | Compositions, methods, systems and kits for target nucleic acid enrichment |
US20140186843A1 (en) | 2012-12-12 | 2014-07-03 | Massachusetts Institute Of Technology | Methods, systems, and apparatus for identifying target sequences for cas enzymes or crispr-cas systems for target sequences and conveying results thereof |
DK2992114T3 (da) | 2013-05-04 | 2019-06-24 | Univ Leland Stanford Junior | Berigelse af DNA-sekvensering biblioteker fra prøver indeholdende små mængder af mål-DNA |
EP3470530B1 (en) | 2013-05-23 | 2020-11-25 | The Board of Trustees of the Leland Stanford Junior University | Transposition into native chromatin for analysis ofchromatin |
US10421957B2 (en) | 2013-07-29 | 2019-09-24 | Agilent Technologies, Inc. | DNA assembly using an RNA-programmable nickase |
US9340799B2 (en) | 2013-09-06 | 2016-05-17 | President And Fellows Of Harvard College | MRNA-sensing switchable gRNAs |
DK3066201T3 (en) | 2013-11-07 | 2018-06-06 | Editas Medicine Inc | CRISPR-RELATED PROCEDURES AND COMPOSITIONS WITH LEADING GRADES |
KR20240038168A (ko) | 2013-11-07 | 2024-03-22 | 더 보드 어브 트러스티스 어브 더 리랜드 스탠포드 주니어 유니버시티 | 인간 마이크로바이옴 및 그의 성분의 분석을 위한 무세포 핵산 |
WO2015075056A1 (en) | 2013-11-19 | 2015-05-28 | Thermo Fisher Scientific Baltics Uab | Programmable enzymes for isolation of specific dna fragments |
US9850525B2 (en) | 2014-01-29 | 2017-12-26 | Agilent Technologies, Inc. | CAS9-based isothermal method of detection of specific DNA sequence |
DK3102722T3 (da) | 2014-02-04 | 2020-11-16 | Jumpcode Genomics Inc | Genom fraktionering |
US9670485B2 (en) | 2014-02-15 | 2017-06-06 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Partitioning of DNA sequencing libraries into host and microbial components |
WO2015134552A1 (en) | 2014-03-03 | 2015-09-11 | Swift Biosciences, Inc. | Enhanced adaptor ligation |
US20160053304A1 (en) | 2014-07-18 | 2016-02-25 | Whitehead Institute For Biomedical Research | Methods Of Depleting Target Sequences Using CRISPR |
CA2955382C (en) | 2014-07-21 | 2023-07-18 | Illumina, Inc. | Polynucleotide enrichment using crispr-cas systems |
US10435685B2 (en) * | 2014-08-19 | 2019-10-08 | Pacific Biosciences Of California, Inc. | Compositions and methods for enrichment of nucleic acids |
WO2016028843A2 (en) | 2014-08-19 | 2016-02-25 | President And Fellows Of Harvard College | Rna-guided systems for probing and mapping of nucleic acids |
EP3957745A1 (en) | 2014-12-20 | 2022-02-23 | Arc Bio, LLC | Compositions and methods for targeted depletion, enrichment, and partitioning of nucleic acids using crispr/cas system proteins |
BR112017024747A2 (pt) | 2015-05-18 | 2018-11-13 | Karius Inc | composições e métodos para enriquecer populações de ácidos nucleicos |
WO2016196805A1 (en) | 2015-06-05 | 2016-12-08 | The Regents Of The University Of California | Methods and compositions for generating crispr/cas guide rnas |
EP3337898B1 (en) | 2015-08-19 | 2021-07-28 | Arc Bio, LLC | Capture of nucleic acids using a nucleic acid-guided nuclease-based system |
EP3360067A4 (en) | 2015-10-07 | 2019-06-12 | The Board Of Trustees Of The University Of the Leland Stanford Junior University | PROCESS FOR DETERMINING WHETHER A PERSON IS INCLUDED IN AN ENSEMBLE FROM GENOMIC DATA |
WO2017066588A2 (en) | 2015-10-16 | 2017-04-20 | Temple University - Of The Commonwealth System Of Higher Education | Methods and compositions utilizing cpf1 for rna-guided gene editing |
EP3433382B1 (en) | 2016-03-25 | 2021-09-01 | Karius, Inc. | Synthetic nucleic acid spike-ins |
WO2018035062A1 (en) | 2016-08-16 | 2018-02-22 | The Regents Of The University Of California | Method for finding low abundance sequences by hybridization (flash) |
US20180051320A1 (en) | 2016-08-22 | 2018-02-22 | The Regents Of The University Of California | Depletion of abundant sequences by hybridization (dash) |
US11749381B2 (en) | 2016-10-13 | 2023-09-05 | bioMérieux | Identification and antibiotic characterization of pathogens in metagenomic sample |
-
2015
- 2015-12-19 EP EP21184086.3A patent/EP3957745A1/en active Pending
- 2015-12-19 US US15/537,962 patent/US10774365B2/en active Active
- 2015-12-19 CN CN201580076214.XA patent/CN107406875B/zh active Active
- 2015-12-19 CN CN202111423939.5A patent/CN114438169A/zh active Pending
- 2015-12-19 EP EP15871259.6A patent/EP3234200B1/en active Active
- 2015-12-19 CA CA2971444A patent/CA2971444A1/en active Pending
- 2015-12-19 JP JP2017551579A patent/JP6947638B2/ja active Active
- 2015-12-19 DK DK15871259.6T patent/DK3234200T3/da active
- 2015-12-19 AU AU2015364286A patent/AU2015364286B2/en active Active
- 2015-12-19 WO PCT/US2015/066949 patent/WO2016100955A2/en active Application Filing
-
2018
- 2018-12-21 US US16/231,338 patent/US10669571B2/en active Active
-
2020
- 2020-08-03 US US16/983,388 patent/US11692213B2/en active Active
-
2021
- 2021-04-19 JP JP2021070442A patent/JP7407762B2/ja active Active
-
2022
- 2022-02-02 AU AU2022200686A patent/AU2022200686A1/en active Pending
-
2023
- 2023-07-28 JP JP2023123444A patent/JP2023129696A/ja active Pending
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2014150624A1 (en) * | 2013-03-14 | 2014-09-25 | Caribou Biosciences, Inc. | Compositions and methods of nucleic acid-targeting nucleic acids |
US20140356867A1 (en) * | 2013-05-29 | 2014-12-04 | Agilent Technologies, Inc. | Nucleic acid enrichment using cas9 |
WO2015122967A1 (en) * | 2014-02-13 | 2015-08-20 | Clontech Laboratories, Inc. | Methods of depleting a target molecule from an initial collection of nucleic acids, and compositions and kits for practicing the same |
WO2015183025A1 (ko) * | 2014-05-28 | 2015-12-03 | 주식회사 툴젠 | 표적 특이적 뉴클레아제를 이용한 표적 dna의 민감한 검출 방법 |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2020534863A (ja) * | 2018-02-06 | 2020-12-03 | ジェネッカー カンパニー リミテッド | 突然変異細胞遊離遺伝子分離キット及びそれを用いた突然変異細胞遊離遺伝子分離方法 |
JP7006873B2 (ja) | 2018-02-06 | 2022-02-10 | ジェネッカー カンパニー リミテッド | 突然変異細胞遊離遺伝子分離キット及びそれを用いた突然変異細胞遊離遺伝子分離方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN107406875A (zh) | 2017-11-28 |
AU2022200686A1 (en) | 2022-02-24 |
JP2023129696A (ja) | 2023-09-14 |
CN107406875B (zh) | 2021-12-07 |
US20180298421A1 (en) | 2018-10-18 |
EP3957745A1 (en) | 2022-02-23 |
CA2971444A1 (en) | 2016-06-23 |
US10669571B2 (en) | 2020-06-02 |
AU2015364286A1 (en) | 2017-07-06 |
JP7407762B2 (ja) | 2024-01-04 |
US20210189459A1 (en) | 2021-06-24 |
EP3234200B1 (en) | 2021-07-07 |
EP3234200A4 (en) | 2018-05-23 |
WO2016100955A3 (en) | 2016-08-18 |
CN114438169A (zh) | 2022-05-06 |
US10774365B2 (en) | 2020-09-15 |
US20190144920A1 (en) | 2019-05-16 |
DK3234200T3 (da) | 2021-08-23 |
EP3234200A2 (en) | 2017-10-25 |
WO2016100955A2 (en) | 2016-06-23 |
US11692213B2 (en) | 2023-07-04 |
JP6947638B2 (ja) | 2021-10-13 |
JP2021104060A (ja) | 2021-07-26 |
AU2015364286B2 (en) | 2021-11-04 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP7407762B2 (ja) | Crispr/cas系タンパク質を使用する核酸の標的化枯渇、富化および分割のための組成物および方法 | |
US20240132872A1 (en) | Capture of nucleic acids using a nucleic acid-guided nuclease-based system | |
JP6995751B2 (ja) | ガイド核酸を作製および使用するための方法および組成物 | |
CN111094565B (zh) | 指导核酸的产生和用途 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20181203 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20191205 |
|
A601 | Written request for extension of time |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601 Effective date: 20200304 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20200501 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20201023 |
|
A601 | Written request for extension of time |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601 Effective date: 20210120 |
|
A601 | Written request for extension of time |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601 Effective date: 20210322 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20210419 |
|
TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20210915 |
|
A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20210916 |
|
R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 6947638 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |