JP2018024594A - コアジュバント組成物およびこれを含むワクチン組成物 - Google Patents
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Abstract
Description
1.HMGB1阻害剤を含む、コアジュバント組成物。
2.HMGB1阻害剤が、グリチルリチン、ガベキサート、ナファモスタットおよびシベレスタットもしくはその医薬上許容される塩、またはこれらの水和物からなる群から選択される、前記1に記載の組成物。
3.HMGB1阻害剤が、グリチルリチン酸一アンモニウム、グリチルリチン酸二カリウム、ガベキサートメシル酸塩、ナファモスタットメシル酸塩およびシベレスタットナトリウム水和物からなる群から選択される、前記1または2に記載の組成物。
4.自然免疫レセプターアゴニストと併用される、前記1〜3のいずれかに記載の組成物。
5.自然免疫レセプターアゴニストが、TLRアゴニスト、RLRアゴニスト、STINGアゴニスト、NLRアゴニストまたはCLRアゴニストである、前記1〜4のいずれかに記載の組成物。
6.自然免疫レセプターアゴニストがTLRアゴニストである、前記5に記載の組成物。
7.TLRアゴニストがイミキモド、レシキモド、モノホスホリルリピドAおよびCpG-ODNからなる群から選択される、前記6に記載の組成物。
8.TLRアゴニストがイミキモドまたはレシキモドである、前記7に記載の組成物。
9.アジュバントと別の製剤に含まれる、前記1〜8のいずれかに記載の組成物。
10.抗原と別の製剤に含まれる、前記1〜9のいずれかに記載の組成物。
11.アジュバントと別の投与経路で投与される、前記1〜10のいずれかに記載の組成物。
12.抗原と別の投与経路で投与される、前記1〜11のいずれかに記載の組成物。
13.アジュバントと別の投与部位に投与される、前記1〜12のいずれかに記載の組成物。
14.抗原と別の投与部位に投与される、前記1〜13のいずれかに記載の組成物。
15.ワクチンと併用される、前記1〜14のいずれかに記載の組成物。
16.ワクチンががんワクチンである、前記15に記載の組成物。
17.ワクチンががん抗原ペプチドを含む、前記16に記載の組成物。
18.細胞免疫療法において用いられる、前記1〜10のいずれかに記載の組成物。
19.HMGB1阻害剤が、グリチルリチンもしくはその医薬上許容される塩、またはこれらの水和物ではない、前記1〜18のいずれかに記載の組成物。
20.HMGB1阻害剤が、ガベキサート、ナファモスタットおよびシベレスタットもしくはその医薬上許容される塩、またはこれらの水和物からなる群から選択される、前記1〜19のいずれかに記載の組成物。
21.HMGB1阻害剤が、ガベキサートメシル酸塩、ナファモスタットメシル酸塩およびシベレスタットナトリウム水和物からなる群から選択される、前記1〜20のいずれかに記載の組成物。
22.炭素数10〜12のホスファチジルコリン、炭素数12〜18のポリオキシエチレンソルビタンモノ脂肪酸エステル、炭素数16〜18のソルビタン脂肪酸エステル、モノオレイン酸グリセロール、ジラウリン酸グリセロール、ジステアリン酸グリセロール、ジオレイン酸グリセロール、ポリオキシエチレンヒマシ油およびα−トコフェロールからなる群から選択される両親媒性物質を含まない、前記1〜21のいずれかに記載の組成物。
23.炭素数10〜12のホスファチジルコリン、炭素数12〜18のポリオキシエチレンソルビタンモノ脂肪酸エステル、炭素数16〜18のソルビタン脂肪酸エステル、モノオレイン酸グリセロール、ジラウリン酸グリセロール、ジステアリン酸グリセロール、ジオレイン酸グリセロール、ポリオキシエチレンヒマシ油およびα−トコフェロールからなる群から選択される両親媒性物質と併用されない、前記1〜22のいずれかに記載の組成物。
1’.抗原、アジュバント、および前記1に記載のコアジュバント組成物を含む、ワクチン組成物。
2’.コアジュバント組成物が、グリチルリチン、ガベキサート、ナファモスタットおよびシベレスタットもしくはその医薬上許容される塩、またはこれらの水和物からなる群から選択されるHMGB1阻害剤を含む、前記1’に記載のワクチン組成物。
3’.コアジュバント組成物が、グリチルリチン酸一アンモニウム、グリチルリチン酸二カリウム、ガベキサートメシル酸塩、ナファモスタットメシル酸塩およびシベレスタットナトリウム水和物からなる群から選択されるHMGB1阻害剤を含む、前記1’または2’に記載のワクチン組成物。
4’.アジュバントが自然免疫レセプターアゴニストである、前記1’〜3’のいずれかに記載の組成物。
5’.自然免疫レセプターアゴニストが、TLRアゴニスト、RLRアゴニスト、STINGアゴニスト、NLRアゴニストまたはCLRアゴニストである、前記1’〜4’のいずれかに記載の組成物。
6’.自然免疫レセプターアゴニストがTLRアゴニストである、前記5’に記載の組成物。
7’.TLRアゴニストがイミキモド、レシキモド、モノホスホリルリピドAおよびCpG-ODNからなる群から選択される、前記6’に記載の組成物。
8’.TLRアゴニストがイミキモドまたはレシキモドである、前記7’に記載の組成物。
9’.抗原ががん抗原ペプチドである、前記1’〜8’のいずれかに記載の組成物。
10’.HMGB1阻害剤が、グリチルリチンもしくはその医薬上許容される塩、またはこれらの水和物ではない、前記1’〜9’のいずれかに記載の組成物。
11’.HMGB1阻害剤が、ガベキサート、ナファモスタットおよびシベレスタットもしくはその医薬上許容される塩、またはこれらの水和物からなる群から選択される、前記1’〜10’のいずれかに記載の組成物。
12’.HMGB1阻害剤が、ガベキサートメシル酸塩、ナファモスタットメシル酸塩およびシベレスタットナトリウム水和物からなる群から選択される、前記1’〜11’のいずれかに記載の組成物。
13’.炭素数10〜12のホスファチジルコリン、炭素数12〜18のポリオキシエチレンソルビタンモノ脂肪酸エステル、炭素数16〜18のソルビタン脂肪酸エステル、モノオレイン酸グリセロール、ジラウリン酸グリセロール、ジステアリン酸グリセロール、ジオレイン酸グリセロール、ポリオキシエチレンヒマシ油およびα−トコフェロールからなる群から選択される両親媒性物質を含まない、前記1’〜12’のいずれかに記載の組成物。
14’.炭素数10〜12のホスファチジルコリン、炭素数12〜18のポリオキシエチレンソルビタンモノ脂肪酸エステル、炭素数16〜18のソルビタン脂肪酸エステル、モノオレイン酸グリセロール、ジラウリン酸グリセロール、ジステアリン酸グリセロール、ジオレイン酸グリセロール、ポリオキシエチレンヒマシ油およびα−トコフェロールからなる群から選択される両親媒性物質と併用されない、前記1’〜13’のいずれかに記載の組成物。
1’’.アジュバントの効果を増強する方法であって、HMGB1阻害剤を対象に投与することを含む方法。
2’’.免疫応答を増強する方法であって、HMGB1阻害剤をアジュバントともに対象に投与することを含む方法。
3’’.アジュバントの効果の増強に使用するための、HMGB1阻害剤。
4’’.免疫応答の増強に使用するための、アジュバントと併用される、HMGB1阻害剤。
5’’.コアジュバント組成物の製造のための、HMGB1阻害剤の使用。
マウスおよび腫瘍細胞
8-12週齢の雌C57BL/6J (B6) マウス(CLEA Japan (Tokyo, Japan))を全ての実験で使用した。OT-I T細胞受容体トランスジェニックマウスは、Taconic (Hudson, NY) より入手た。E.G7-OVA (本明細書中、E.G7とも記載する) はATCC (Manassas, VA)より入手し、高グルコースRPMI1640(50μM 2-メルカプトエタノール (2-ME)、0.4 mg/mL G418および10% ウシ胎児血清 (FBS; TRACE Scientific, Melbourne, Australia)含有)で維持した。EL-4はJCRB Cell Bank (Osaka, Japan)より入手し、10% FBS含有RPMI1640(2-MEおよびG418不含、通常濃度のグルコース)で維持した。
オボアルブミン由来のH-2Kb拘束性CTLエピトープペプチドであるSIINFEKL (OVA257-264)(配列番号1)は、American Peptide (Sunnyvale, CA)より購入した。グリチルリチン (Neo-Minophagen C, Eisai, Tokyo, Japan、成分:グリチルリチン酸一アンモニウム、グリシン、L-システイン塩酸塩水和物)、ガベキサートメシル酸塩 (Reminaron, Alfresa, Osaka, Japan)、ナファモスタットメシル酸塩 (Nafamostat, Shionogi, Osaka, Japan)、およびシベレスタットナトリウム水和物 (Elaspol, Ono Pharmaceutical, Osaka, Japan)をHMGB1阻害剤として使用した。5%イミキモド含有ベセルナクリーム(Mochida Pharmaceuticals, Tokyo, Japan)、CpG-ODN (ODN2395) (InvivoGen, San Diego, CA)、モノホスホリルリピドA (MPL) (InvivoGen) 、およびMontanide ISA51VG (Seppic, Paris, France)をアジュバントとして使用した。
免疫の1〜3日前に、B6マウスの背側皮膚の毛を剃った。5%イミキモド (ベセルナクリーム; 約25 mg/匹) を、麻酔下でマウス背側皮膚に局所的に塗布した。30分後、OVA257-264を含む抗原溶液 (CFSE増殖アッセイでは0.3μg、その他のアッセイでは5μg)を、グリチルリチン(20μg/匹)または他のHMGB1阻害剤(200μg/匹)とともに、全量0.1 mLで同じ領域に皮下注射した。
抗原誘発T細胞増殖は、OT-I細胞のトランスフェクションにより評価した。OT-Iマウスの脾臓細胞を、5μMのCSFE (5- or 6-(N-Succinimidyloxycarbonyl) fluorescein 3',6'-diacetate) (Molecular Probes, Eugene, OR)と37℃で15分間インキュベートして標識した。細胞を2回洗浄した後、3 x 106 細胞 (0.2 mL) を各B6マウスの静脈内へ注入した(3-4マウス/群)。注入の1日後、OT-I細胞注入B6マウスを、OVA257-264と各種アジュバントおよびHMGB1阻害剤とで免疫した。イミキモドは前記のとおり投与し、他のアジュバント(100μg/匹 CpG-ODN (ODN2395)、2μg/匹 MPL、50μL/匹 Montanide ISA51VG)は抗原ペプチドと共に、全量0.1 mLで皮下注射した。ワクチン投与の3日後、ワクチン投与したB6マウス由来の脾臓細胞を回収し、抗マウスCD8a-PerCP/Cy5.5 (BioLegend, San Diego, CA)で染色し、OT-I CD8 T細胞の増殖をFACS CantoII system (BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ)により解析した。
CTL応答は、IFN-γ ELISPOTアッセイにより評価した。各処理群につき5匹のマウスを、1週間隔で2回免疫した。ワクチン投与したB6マウスから、最終ワクチン投与の1週間後に脾臓細胞を回収し、RBC溶解バッファーに再懸濁し、次いで107 細胞/mLにてX-VIVO 15 (Lonza, Walkersville, MD) (10 mM HEPES、2 mM GlutaMax、および0.05 mM 2-ME含有)に再懸濁した。106 細胞の脾臓細胞 (0.1 mL)を、抗マウスIFN-γ抗体 (AN18) (Mabtech, Nacka Strand, Sweden)でコートした96ウェルプレート (Multi-Screen Filter Plate (MSHAS4510)) (Merck Millipore, Darmstadt, Germany)に播種した。等量のX-VIVO 15(20μg/mL OVA257-264含有またはOVA257-264不含)を各ウェルに添加した。37℃で18時間インキュベートした後、プレートをビオチン結合抗マウスIFN-γ (R4-6A2) (Mabtech)と室温で2時間インキュベートし、その後、ExtrAvidin-Alkaline Phosphatase (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO)と室温で1時間インキュベートした。IFN-γスポットは、SIGMAFAST BCIP/NBT (Sigma-Aldrich)で可視化した。ELISPOTプレートは、ImmunoCapture version 6. 4 (Cellular Technology, Ltd., Shaker Heights, OH)により解析した。
E.G7 細胞 (1 x 106 細胞、0.1 mL中) を剃毛したB6マウスの左背側皮膚に皮下注射した。腫瘍塊が直径7-8 mmに達した時にワクチン投与を開始した。イミキモド塗布処理をした後、OVA257-264 (5μg)をグリチルリチンとともに全量0.1 mLでマウス背側皮膚に皮下投与した。ワクチン投与は1週間隔で3回行った。腫瘍の増殖は2日または3日毎に測定した。腫瘍サイズは以下のように表した:腫瘍サイズ (mm2) = 長径 (mm) x 短径 (mm)。
各種免疫関連遺伝子のレベルをリアルタイムPCRにより測定した。ワクチン投与部位の皮膚 (10 mm x 15 mm) および脾臓標本を、ワクチン投与の6、12、および24時間後にマウスから得た。これら標本をRNAlater (Ambion, Austin, TX)に浸漬し、4℃で保存した。RNAの抽出および精製は、RNeasy Plus Universal Mini KitをTissueRuptorシステム (Qiagen, Hilden, Germany) とともに製造元の推奨にしたがい使用して行った。cDNAは、500 ngのトータルRNAからReverTra Ace qPCR RT Master Mix with gDNA Remover (Toyobo, Osaka, Japan)を用いて合成した。リアルタイムPCRは、THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix (Toyobo) を用いてStepOnePlus (Applied Biosciences, Foster City, CA)で行った。
統計学的解析は、JMP version 11 software (SAS Institute, Cary, NC)を用いて行った。
OT-I T細胞の抗原誘発増殖に対するグリチルリチンの効果
OT-Iマウス由来のCFSE標識脾臓細胞をB6マウスに移植し、1日後、アジュバントとしてTLR7アゴニストであるイミキモドを局所投与し、同じ領域にOVA257-264ペプチドとグリチルリチンとを混合して皮下注射した。OT-I CD8 T細胞の増殖を免疫の2日または3日後にFACS解析により評価した(図1)。本実験において、OVA257-264+イミキモド投与群で大部分のOT-I CD8 T細胞の増殖が誘導され、OVA257-264+イミキモド+グリチルリチン投与群と比較して全増殖細胞数に相違は見られなかった。一方、3回以上増殖した細胞の数を比較すると、グリチルリチンはOVA257-264およびイミキモドの免疫による効果を有意に増強した。このグリチルリチンの増強効果は、イミキモドを用いずにOVA257-264を免疫した群では観察されなかった。これらの結果は、グリチルリチンは、単独ではアジュバント効果を示さないが、コアジュバント効果を有することを示す。
グリチルリチンはHMGB1の選択的阻害剤である。それゆえ、次に、OVA257-264誘発T細胞増殖に対するグリチルリチンの効果が他のHMGB1阻害剤(ガベキサートメシル酸塩、ナファモスタットメシル酸塩およびシベレスタットナトリウム水和物)で観察されるかを検討した。図3に示すように、ガベキサートメシル酸塩およびナファモスタットメシル酸塩はOVA257-264誘発OT-I CD8 T細胞増殖を有意に増強し、シベレスタットナトリウム水和物も、統計学的に有意ではないものの増強する傾向を示した。ガベキサートメシル酸塩およびナファモスタットメシル酸塩はセリンプロテアーゼ阻害活性を有し、シベレスタットナトリウム水和物は好中球エラスターゼ阻害活性を有するが、グリチルリチンはかかる活性を有さない。これらの結果は、グリチルリチンで観察された増強効果が他のHMGB1阻害剤でも観察されることを示す。
B6マウスにおけるOVA257-264誘発CTL誘導をELISPOTアッセイにより解析した。B6マウスに、イミキモドの局所投与後、グリチルリチンと混合したOVA257-264または混合してないOVA257-264を皮下注射により1週間隔で2回投与して免疫した。最終免疫の1週間後に脾臓細胞を得て、インビトロでの抗原特異的T細胞の増殖は行わず、IFN-γ ELISPOTアッセイに供した。各マウスにおける、OVA257-264に応答するIFN-γ産生細胞の数を図4に示す。OVA257-264単独で免疫したマウスのIFN-γ産生細胞数の平均+2SDより値が高かった場合に、応答が増強されたと判定し、全マウスに対する増強率を示した。増強されたマウスの割合は、OVA257-264+イミキモド+グリチルリチン投与群においてのみ、OVA257-264単独投与群より有意に高かった (4/5と0/5、p<0.05)。かかるグリチルリチンの増強効果は、イミキモドを用いずにOVA257-264のみで免疫した群では観察されなかった。
グリチルリチンのコアジュバント効果を、治療用ワクチンモデルを用いて更に検討した。E.G7腫瘍細胞を、B6マウスに皮下注射により移植した。移植したE.G7細胞が固形腫瘍塊を形成したことを確認した後、イミキモドおよび/またはグリチルリチンを用いて、あるいはこれらを用いずに、OVA257-264によりマウスを免疫した。各群のマウスの腫瘍増殖および全生存期間を図5aに示す。OVA257-264+イミキモド投与群またはOVA257-264単独投与群と比較して、OVA257-264+イミキモド+グリチルリチン投与群では腫瘍増殖が抑制されているようであった。OVA257-264+イミキモド投与群およびOVA257-264+イミキモド+グリチルリチン投与群の14日目から26日目の各マウスの腫瘍増殖のプロットにより、この2つの群の腫瘍増殖が有意に異なることが明らかとなった。次いで、腫瘍特異性について検討した。E.G7細胞または親株のEL4細胞 (OVA陰性)をB6マウスに移植し、腫瘍塊の形成後、OVA257-264ワクチン投与とともに、またはOVA257-264を投与せずに、イミキモドおよびグリチルリチンの処理を開始した。図5bに示すように、OVA257-264投与による腫瘍増殖阻害はEG.7移植マウスにおいてのみ観察され、EL4移植マウスでは観察されなかった。すなわち、本実験で観察された腫瘍増殖阻害は抗原特異的であった。
ワクチン投与部位の皮膚組織における免疫6-24時間後の各種免疫関連遺伝子のmRNA発現レベルをリアルタイムPCRにより解析した(図6)。グリチルリチン非処理のOVA257-264+イミキモド投与群と比較して、OVA257-264+イミキモド+グリチルリチン投与群では、IL-1β、IL-6、IL-10、COX-2、INF-αおよびTNF-αの発現が皮膚免疫部位において低下していた。Arg1の発現はイミキモドにより抑制され、OVA257-264+イミキモド+グリチルリチン投与群の発現レベルも、OVA257-264単独投与群より低かった。グリチルリチン単独では、これら免疫関連サイトカインのレベルは変化しなかった(データ非提示)。これらの結果は、HMGB1阻害剤が自然免疫レセプターを介して誘導される炎症反応を抑制することを示す。
OT-I T細胞の抗原誘発増殖に対するHMGB1阻害剤の投与経路を検討した。OT-Iマウス由来のCFSE標識脾臓細胞をB6マウスに移植し、1日後に、イミキモドを背側皮膚に局所投与した。30分後、イミキモドと同じ領域にOVA257-264とグリチルリチンとを混合して皮下投与(sc mix群)、もしくはOVA257-264とグリチルリチンとを近接する位置で別々に皮下投与(sc proximal群)するか、または、OVA257-264をイミキモドと同じ領域に皮下投与し、グリチルリチンを腹腔内投与(ip群)した。OT-I CD8 T細胞の増殖を免疫の3日後にFACS解析により評価した(図7)。いずれの投与経路によっても、グリチルリチンの併用により、OT-I CD8T 細胞の増殖が増強された。これらの結果は、HMGB1阻害剤が、抗原またはアジュバントとの同時混合投与のみならず、別の投与部位または投与経路によっても投与可能であることを示す。
Claims (16)
- HMGB1阻害剤を含む、コアジュバント組成物。
- HMGB1阻害剤が、グリチルリチン、ガベキサート、ナファモスタットおよびシベレスタットもしくはその医薬上許容される塩、またはこれらの水和物からなる群から選択される、請求項1に記載の組成物。
- 自然免疫レセプターアゴニストと併用される、請求項1または2に記載の組成物。
- 自然免疫レセプターアゴニストがTLRアゴニストである、請求項3に記載の組成物。
- TLRアゴニストがイミキモド、レシキモド、モノホスホリルリピドAおよびCpG-ODNからなる群から選択される、請求項4に記載の組成物。
- アジュバントと別の製剤に含まれる、請求項1〜5のいずれかに記載の組成物。
- アジュバントと別の投与経路で投与される、請求項1〜6のいずれかに記載の組成物。
- アジュバントと別の投与部位に投与される、請求項1〜7のいずれかに記載の組成物。
- ワクチンと併用される、請求項1〜8のいずれかに記載の組成物。
- ワクチンががん抗原ペプチドを含む、請求項9に記載の組成物。
- 抗原、アジュバント、および請求項1に記載のコアジュバント組成物を含む、ワクチン組成物。
- コアジュバント組成物が、グリチルリチン、ガベキサート、ナファモスタットおよびシベレスタットもしくはその医薬上許容される塩、またはこれらの水和物からなる群から選択されるHMGB1阻害剤を含む、請求項11に記載のワクチン組成物。
- アジュバントが自然免疫レセプターアゴニストである、請求項11または12に記載の組成物。
- 自然免疫レセプターアゴニストがTLRアゴニストである、請求項13に記載の組成物。
- TLRアゴニストがイミキモド、レシキモド、モノホスホリルリピドAおよびCpG-ODNからなる群から選択される、請求項14に記載の組成物。
- 抗原ががん抗原ペプチドである、請求項11〜15のいずれかにに記載のワクチン組成物。
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