JP2017537621A

JP2017537621A - Ｄｎａ抗体構築物及びその使用方法

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Publication number: JP2017537621A
Application number: JP2017529013A
Authority: JP
Inventors: ビー．ウェイナーデイビッド; ムスマニカルッピアー; フリンガイセリーケ; ワイ．サーデサイニランジャン
Original assignee: ザトラスティーズオブザユニバーシティオブペンシルバニア; イノビオファーマシューティカルズ，インコーポレイティド
Priority date: 2014-12-01
Filing date: 2015-12-01
Publication date: 2017-12-21
Anticipated expiration: 2035-12-01
Also published as: BR112017011556A2; US20170266282A1; EP3226892A1; EP3226892A4; MX2023009421A; WO2016089862A1; AU2019202433A1; MX2017007187A; JP2021052776A; AU2015355126A1; JP7268958B2; KR20170085131A; US11278619B2; ZA201703710B; CN114010802A; AU2021201586A1; AU2015355126B2; US20230023093A1; CA2969214A1; AU2015355126B9

Abstract

本明細書では、抗体をコードする組み換え核酸配列を含む組成物が開示される。本明細書では、組成物を対象に投与することによる対象内での合成抗体の生成方法も開示される。本開示は、前記組成物及び生成方法を用いて対象内の疾患の予防方法及び／または治療方法も提供する。【選択図】図１

Description

（関連出願の相互参照）
本願は、２０１４年１２月１日出願の米国仮特許出願第６２／０８６，１５７号、及び２０１５年９月２日出願の米国仮特許出願第６２／２１３，１６６号に対する優先権を主張するものであり、これらの出願は、参照することでそれら全体が本明細書に組み入れられる。

本発明は、半減期が延長された合成抗体を生成し、抗体依存性感染増強を排除し、抗体依存性細胞傷害性を高め、二重特異性結合をもたらし、二機能性をもたらし、かつ他のものをもたらし得る抗体への種々の変更を含む、合成抗体及びその断片をインビボ生成する組み換え核酸配列を含む組成物、及び前記組成物を投与することによる対象内の疾患の予防及び／または治療方法に関する。

免疫グロブリン分子は、システイン残基間のジスルフィド結合（Ｓ−Ｓとして示す）によって共有結合された軽（Ｌ）鎖及び重（Ｈ）鎖を２つずつ含む。重鎖（ＶＨ）及び軽鎖（ＶＬ）の可変ドメインは、抗体分子の結合部位に寄与する。重鎖定常領域は、３つの定常ドメイン（ＣＨ１、ＣＨ２、及びＣＨ３）と、（柔軟な）ヒンジ領域とからなる。軽鎖も、定常ドメイン（ＣＬ）を有する。重鎖及び軽鎖の可変領域は、４つのフレームワーク領域（ＦＲ；ＦＲ１、ＦＲ２、ＦＲ３、及びＦＲ４）と、３つの相補性決定領域（ＣＤＲ：ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、及びＣＤＲ３）とを含む。従って、これらは非常に複雑な遺伝系であり、インビボ組み立てが困難となっている。

標的モノクローナル抗体（ｍＡｂ）は、過去２５年間で最も重要な医療用治療の進歩の１つである。この種の免疫療法は今や、多数の自己免疫疾患、癌及び感染の治療に対して日常的に用いられている。悪性腫瘍に対して、現在用いられている免疫グロブリン（Ｉｇ）療法の多くは、腫瘍に向けた細胞毒性化学療法レジメンを併用する。この併用法により全体的な生存率が著しく改善されている。特定の癌に対して用いるｍＡｂ製剤が多数認可されており、例えば、非ホジキンリンパ腫治療のためのＣＤ２０を標的とするキメラｍＡｂであるリツキサン（リツキシマブ）、ならびにＣＴＬＡ−４を阻害し、黒色腫及び他の悪性腫瘍の治療に用いられているヒトｍＡｂであるイピリムマブ（エルボイ）が挙げられる。さらに、ベバシズマブ（アバスチン）は、ＶＥＧＦ及び腫瘍新血管形成を標的とし、大腸癌の治療に用いられているもう一つの代表的なヒト化ｍＡｂである。悪性腫瘍の治療に最も注目されているｍＡｂは、恐らくＨｅｒ２／ｎｅｕを標的とするヒト化製剤であるトラスツズマブ（ハーセプチン）であり、患者の一部の乳癌に対して大きな有効性を持つことが実証されている。さらに、多数のｍＡｂが、自己免疫及び特定の血液疾患の治療に用いられている。

癌治療に加えて、ジフテリア、Ａ型及びＢ型肝炎、狂犬病、破傷風、水痘、及び呼吸器合胞体ウイルス（ＲＳＶ）などの多くの感染に対する防御効力をポリクローナルＩｇの受動伝達により調節する。実際、いくつかのポリクローナルＩｇ製剤は、積極的なワクチン接種を介して防御Ｉｇを生成するのに十分な時間がない状況下の疾患流行地を旅行している個人において特定の感染性因子に対する一時的な防御をもたらす。さらに、免疫不全の子供において、ＲＳＶ感染を標的とするｍＡｂであるパリビズマブ（シナジス）は、ＲＳＶに対して防御することが臨床的に実証されている。

市場に存在する現在利用可能な治療抗体は、ヒトＩｇＧ１アイソタイプである。これらの抗体には、抗体定常領域（Ｆｃ）に結合した２つのＮ結合型二分岐複合型オリゴ糖をもつ糖タンパク質（オリゴ糖の大部分は、コアフコシル化されている）が含まれる。白血球受容体（ＦｃγＲ）または補体のいずれかとＦｃの相互作用を介して、抗体依存性細胞毒性（ＡＤＣＣ）及び補体依存性細胞障害（ＣＤＣ）のエフェクター機能を発揮する。治療抗体の（インビトロに対する）インビボ有効性を減少させる現象があるため、治療抗体を大量に、時には、数百ミリグラムの週用量で投与する必要が生じる。これは、ナチュラルキラー（ＮＫ）細胞上でのＦｃγＲＩＩＩａと結合する血清ＩｇＧと治療抗体の競合に主に起因する。内因性ヒト血清ＩｇＧは、治療抗体により誘発されたＡＤＣＣを阻害する。したがって、ヒト内での非フコシル化治療抗体の有効性を向上させることができる。非フコシル化治療抗体は、フコシル化ヒト血清ＩｇＧよりもＦｃγＲＩＩＩａに対する結合親和性がはるかに高く、これは、ヒト血漿ＩｇＧによる干渉を征服するための好ましい特徴である。

抗体ベースの治療はリスクがないわけではない。１つのかかるリスクは、抗体依存性感染増強（ＡＤＥ）であり、非中和性抗ウイルスタンパク質が宿主細胞へのウイルス侵入をしやすくする場合に起こり、細胞の感染性の増加につながる。いくつかの細胞は、ウイルスが侵入するのに用いる表面上に通常の受容体を有していない。抗ウイルスタンパク質（すなわち、抗体）は、細胞膜内で、これらの細胞のいくつかが有する抗体Ｆｃ受容体に結合する。ウイルスは、抗体の他方の末端で抗原結合部位に結合する。このウイルスは、このメカニズムを使用して、ヒトマクロファージに感染することができ、通常は軽症のウイルス感染を引き起こし、生命に関わるようになる。ＡＤＥの最も広く知られている例は、デングウイルス（ＤＥＮＶ）による感染の状況で発生する。それは、ある血清型のＤＥＮＶに以前感染したことがある人が、何カ月または何年も経ってから異なる血清型に感染する場合に観察される。かかる場合では、疾患の臨床経過はより深刻になり、これらの人は、ＡＤＥが起こっていない人と比べてより高いウイルス血症を有する。これは、一次（最初の）感染は、子供においてほとんどが軽症の疾患（ＤＦ）を引き起こすが、二次感染（後日での再感染）は、子供及び成人の双方において深刻な疾患（ＤＨＦ及び／またはＤＳＳ）と関連付けられやすくなるという観察を説明している。４つの抗原性の異なる血清型のＤＥＮＶ（ＤＥＮＶ−１〜ＤＥＮＶ−４）が存在する。ＤＥＮＶによる感染は、感染している血清型に対して終生免疫をもたらす中和同型免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）抗体の産生を誘発する。ＤＥＮＶによる感染は、他の３つの血清型に対してある程度の交差防御免疫ももたらす。中和異型抗体の誘発に加えて、ＤＥＮＶによる感染は、ウイルスを部分的にのみまたは全く中和しない異型抗体も誘発することができる。かかる交差反応性であるが非中和な抗体の産生が、より深刻な二次感染の理由かもしれない。いったん白血球内部へ入ると、ウイルスは検出されないまま複製し、最終的に、深刻な疾患を引き起こす非常に高いウイルス力価を生成する。

ｍＡｂ療法の臨床効力は素晴らしいものがある。しかしながら、この治療アプローチの使用及び普及を制限する問題が残っている。これらの問題のいくつかには、これらの複雑な生物製剤の製造コストが高いことが挙げられ、より広範な人口、とりわけ、大きな影響をもたらし得る発展途上国における使用を限定してしまう。さらに、有効性を達成し維持するためにｍＡｂを反復投与する必要性がしばしばあることもロジスティクス及び患者のコンプライアンスという点で障害になり得る。血清ＩｇＧとの競合により治療抗体の低いインビボ有効性を減少させるかまたは除去する新規の抗体が必要とされている。デング、ＨＩＶ、ＲＳＶ、及び他のものなどのウイルスにおける抗体依存性感染増強を除去することができる新規の抗体が必要とされている。二重特異性抗体、二官能性抗体、及び抗体カクテルは、治療的または予防的であることを証明することが可能ないくつかの機能を行うために必要である。ＤＮＡベースワクチンを含むワクチンによる免疫化を介した宿主系の免疫刺激と共に本明細書に記載の合成抗体を利用できる併用療法も必要である。また、これらの抗体製剤の長期安定性は短いことが多く、最適ではない。したがって、当該技術分野では、安全かつコスト効率のよい方法で対象に送達することができる合成抗体分子が必要とされている。

本発明は、対象内での合成抗体の生成方法に関する。本方法は、抗体またはその断片をコードする組み換え核酸配列を含む組成物を対象に投与することを含み得る。組み換え核酸配列は、対象内で発現されて合成抗体を生成し得る。

生成された合成抗体は、脱フコシル化されてもよい。生成された合成抗体は、Ｆｃ領域のＣＨ２領域において、２つのロイシンからアラニン突然変異を含んでもよい。

抗体は、重鎖ポリペプチドまたはその断片、及び軽鎖ポリペプチドまたはその断片を含み得る。重鎖ポリペプチドまたはその断片は、第１の核酸配列によってコードされ得、前記軽鎖ポリペプチドまたはその断片、第２の核酸配列によってコードされ得る。組み換え核酸配列は、第１の核酸配列及び第２の核酸配列を含み得る。組み換え核酸配列は、第１の核酸配列及び第２の核酸配列を単一転写産物として対象内で発現するプロモーターをさらに含み得る。プロモーターは、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターであってもよい。

組み換え核酸配列は、プロテアーゼ切断部位をコードする第３の核酸配列をさらに含み得る。第３の核酸配列は、第１の核酸配列と第２の核酸配列との間に位置し得る。対象のプロテアーゼは、プロテアーゼ切断部位を認識し、切断し得る。

組み換え核酸配列は、対象内で発現されて抗体ポリペプチド配列を生成し得る。抗体ポリペプチド配列は、重鎖ポリペプチドまたはその断片、プロテアーゼ切断部位、及び軽鎖ポリペプチドまたはその断片を含み得る。対象によって産生されたプロテアーゼは、抗体ポリペプチド配列のプロテアーゼ切断部位を認識し、切断することで、開裂重鎖ポリペプチド及び開裂軽鎖ポリペプチドを生成し得る。合成抗体は、開裂重鎖ポリペプチド及び開裂軽鎖ポリペプチドによって生成され得る。

組み換え核酸配列は、第１の転写産物として第１の核酸配列を発現する第１のプロモーターと、第２の転写産物として第２の核酸配列を発現する第２のプロモーターとを含み得る。第１の転写産物は、第１のポリペプチドに翻訳され得、第２の転写産物は、第２のポリペプチドに翻訳され得る。合成抗体は、第１及び第２のポリペプチドによって生成され得る。第１のプロモーターと第２のプロモーターは、同一であり得る。プロモーターは、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターであり得る。

重鎖ポリペプチドは、可変重領域及び定常重領域１を含み得る。重鎖ポリペプチドは、可変重領域、定常重領域１、ヒンジ領域、定常重領域２、及び定常重領域３を含み得る。軽鎖ポリペプチドは、可変軽領域及び定常軽領域を含み得る。

組み換え核酸配列は、Ｋｏｚａｋ配列をさらに含み得る。組み換え核酸配列は、免疫グロブリン（Ｉｇ）シグナルペプチドをさらに含み得る。Ｉｇシグナルペプチドは、ＩｇＥまたはＩｇＧシグナルペプチドを含み得る。

組み換え核酸配列は、配列番号１、２、５、４１、４３、４５、４６、４７、４８、４９、５１、５３、５５、５７、５９、６１、及び８０の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含み得る。組み換え核酸配列は、配列番号３、４、６、７、４０、４２、４４、５０、５２、５４、５６、５８、６０、６２、６３、及び７９の少なくとも１つの核酸配列を含み得る。

本発明は、対象内での合成抗体の生成方法にも関する。本方法は、重鎖ポリペプチドまたはその断片をコードする第１の組み換え核酸配列及び軽鎖ポリペプチドまたはその断片をコードする第２の組み換え核酸配列を含む組成物を対象に投与することを含み得る。第１の組み換え核酸配列は、対象内で発現されて第１のポリペプチドを生成し得、第２の組み換え核酸配列は、対象内で発現されて第２のポリペプチドを生成し得る。合成抗体は、第１及び第２のポリペプチドによって生成され得る。

第１の組み換え核酸配列は、第１のポリペプチドを対象内で発現する第１のプロモーターをさらに含み得る。第２の組み換え核酸配列は、第２のポリペプチドを対象内で発現する第２のプロモーターをさらに含み得る。第１のプロモーターと第２のプロモーターは、同一であり得る。プロモーターは、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターであり得る。

第１の組み換え核酸配列及び第２の組み換え核酸配列は、Ｋｏｚａｋ配列をさらに含み得る。第１の組み換え核酸配列及び第２の組み換え核酸配列は、免疫グロブリン（Ｉｇ）シグナルペプチドをさらに含み得る。Ｉｇシグナルペプチドは、ＩｇＥまたはＩｇＧシグナルペプチドを含み得る。

本発明はさらに、対象内の疾患の予防または治療方法に関する。本方法は、上記の方法のいずれか１つによって対象内での合成抗体を生成することを含み得る。合成抗体は、外来抗原に特異的であり得る。外来抗原は、ウイルス由来であり得る。ウイルスは、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、チクングニヤウイルス（ＣＨＩＫＶ）、またはデングウイルスであり得る。

ウイルスは、ＨＩＶであり得る。組み換え核酸配列は、配列番号１、２、５、４６、４７、４８、４９、５１、５３、５５、及び５７の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含み得る。組み換え核酸配列は、配列番号３、４、６、７、５０、５２、５５、５６、６２、及び６３の少なくとも１つの核酸配列を含み得る。

ウイルスは、ＣＨＩＫＶであり得る。組み換え核酸配列は、配列番号５９及び６１の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含み得る。組み換え核酸配列は、配列番号５８及び６０の少なくとも１つの核酸配列を含み得る。

ウイルスは、デングウイルスであり得る。組み換え核酸配列は、配列番号４５の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含み得る。組み換え核酸配列は、配列番号４４少なくとも１つの核酸配列を含む。

合成抗体は、自己抗原に特異的であり得る。自己抗原は、Ｈｅｒ２であり得る。組み換え核酸配列は、配列番号４１及び４３の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含み得る。組み換え核酸配列は、配列番号４０及び４２の少なくとも１つの核酸配列を含み得る。

合成抗体は、自己抗原に特異的であり得る。自己抗原は、ＰＳＭＡであり得る。組み換え核酸配列は、配列番号８０の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含み得る。組み換え核酸配列は、配列番号７９の少なくとも１つの核酸配列を含み得る。

本発明は、上述の方法のいずれか１つによって産生された生成物にも関する。生成物は、機能的抗体を発現することができる単一ＤＮＡプラスミドであり得る。生成物は、インビボで組み合わせて、機能的抗体を形成する、機能的抗体の成分を発現することができる２つ以上の異なるＤＮＡプラスミドからなり得る。

本発明は、病原体に特異的な合成抗体をコードするヌクレオチド配列を投与することを含む、病原体による感染からの対象の治療方法にも関する。本方法は、対象内に免疫応答を生成するために、病原体の抗体を投与することをさらに含み得る。

本発明は、ＡＤＣＣを誘発するために、癌マーカーをコードするヌクレオチド配列を投与することを含む、癌からの対象の治療方法にも関する。

本発明は、配列番号７９に記載の核酸配列の全長にわたって少なくとも約９５％の同一性を有する核酸配列を含む合成抗体をコードする核酸分子にも関する。

本発明は、配列番号７９に記載の核酸配列を含む合成抗体をコードする核酸分子にも関する。

本発明は、配列番号８０に記載のアミノ酸配列の全長にわたって少なくとも約９５％の同一性を有するタンパク質をコードする核酸配列を含む合成抗体をコードする核酸分子にも関する。

本発明は、配列番号８０に記載のアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする核酸配列を含む合成抗体をコードする核酸分子にも関する。

上述の核酸分子のいずれか１つは、発現ベクターを含み得る。

本発明は、上述の核酸分子の１つ以上を含む組成物にも関する。組成物は、薬学的に許容しうる賦形剤も含み得る。

実施例１に記載のＩｇＧ重鎖をコードする核酸配列を示す。実施例１に記載のＩｇＧ軽鎖をコードする核酸配列を示す。時間（時）対ＯＤ４５０ｎｍ（組織培養上清を１：１００に希釈）をプロットしたグラフを示す。ウエスタンブロットの画像を示す。ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂの生成及び発現確認を示す。（図５Ａ及び図５Ｂ）ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂ抗ｇｐ１２０Ｆａｂ発現構築物の環状プラスミドマップは、ＶＲＣ０１重（Ｈ）及び軽（Ｌ）可変鎖Ｉｇ遺伝子を用いて設計した。発現レベルを増すためにＦａｂプラスミドを構築する際にいくつかの修飾を含んだ。図５に示すように、ＦａｂＶＬ断片遺伝子及びＶＨ断片遺伝子は、ｐＶａｘ１ベクターのＢａｍＨ１及びＸｈｏ１制限部位間で別々にクローニングした。図５Ｃは、ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂのインビトロ発現を示す。グラフは、２９３Ｔ細胞トランスフェクション後のｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂ発現の時間的動態を示した。発現を示す値は、３列ウェルの平均値ＯＤ４５０ｎｍ±標準偏差である。対照として、２９３Ｔ細胞もｐＶａｘ１バックボーンでトランスフェクトした。ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂによる抗ＨＩＶＥｎｖ特異的Ｆａｂの時間的生成の測定を示す。図６Ａは、抗ＨＩＶ１Ｆａｂの経時的生成を示す。ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂの投与後、ＥＬＩＳＡ法によって１：１００に最終希釈した血清中で特異的Ｆａｂの産生を１０日間にわたって測定し、ＯＤ４５０ｎｍとして示した。ｐＶａｘ１投与されたマウスの血清を陰性対照として用いた。図６Ｂは、組み換えｇｐ１２０（ｒｇｐ１２０）で免疫化した後の抗ｇｐ１２０抗体反応の比較測定を示す。実施例２に記載のように、ｒｇｐ１２０を単回注射してマウスを免疫化した後、１０日目までの抗ｇｐ１２０抗体の産生を測定し、ＯＤ４５０ｎｍ値として示した。この研究において、ＰＢＳを陰性対照注射として用いた。図６Ｃは、免疫ブロット分析によって結合しているＨＩＶ１Ｅｎｖ−Ｆａｂの確認を示す。実施例に記載のように、５μｇまたは１０μｇいずれかのｇｐ１２０をＳＤＳ−ＰＡＧＥ及びニトロセルロースブロッティングに供したした後、ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂ投与されたマウスの血清とともにブロットを培養した。実験用血清が結合ｒｇｐ１２０を認識したことが免疫ブロットにより示され、生成されたＦａｂの特異性が確認された。図６Ｄは、ヒトＩｇＧ１Ｆａｂの時間的定量化を示す。ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂを投与後、マウス血清中のＩｇＧ１を測定した。標準ＥＬＩＳＡキットにより、示された時点でＩｇＧ１を測定し、Ｆａｂ（μｇ／ｍＬ）±標準偏差で表わした。ｐＶａｘ１投与されたマウスの血清を陰性対照として用いた。ｘ軸上に示された時点で血清サンプルを分析した。図６Ａ、図６Ｂ、及び図６Ｄに示すグラフの矢印は、ＤＮＡプラスミドを投与した時点を示す。ＨＩＶ１ＥｎｖＦａｂのクレードＡＨＩＶＥｎｖ糖タンパク質へのＦＡＣＳ結合分析を示す。図７Ａは、抗ＨＩＶ１Ｅｎｖ−ＦａｂのＨＩＶ−１クレードＡＥｎｖ糖タンパク質への結合を示すＦＡＣＳスキャニングを示す。コンセンサス（ｐＣｏｎ−Ｅｎｖ−Ａ）または「最適化」（ｐＯｐｔ−Ｅｎｖ−Ａ）ＨＩＶ−１クレードＡエンベロープのいずれかを発現するＤＮＡを２９３Ｔ細胞にトランスフェクトした。トランスフェクション２日後、精製された天然ＶＲＣ０１Ｉｇ、ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂ（プラスミド単回投与後４８時間で回収）から生成された血清、またはｐＩｇＧ−Ｅ１Ｍ２投与から生成された対照Ｉｇのいずれかで細胞を染色した。血清及びＶＲＣ０１抗体をＰＢＳ５０μｌ中でそれぞれ１：４または１：１００に希釈し、室温で３０分間培養した。その後、適切な二次フィコエリトリン（ＰＥ）に複合体化させたＩｇで細胞を染色し、ＦＡＣＳ分析用に単一及び生細胞としてゲートした。陽性細胞の結合率をスキャニングごとに示した。図７Ｂは、ＦＡＣＳ結合データのグラフ図を示す。Ｉｇ／血清試験群ごとに染色した細胞数（すなわち、発現レベルを示す）をバックグラウンド染色値で割り、試験した異なるＨＩＶクレードＡＥｎｖ製剤の関数としてｙ軸上に特異結合率（％）として示した。ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ投与されたマウスの血清によるＨＩＶ−１の経時中和を示す。中和活性の分析に用いた血清は、グラフに示された時点で回収した。中和分析をＨＩＶ−１偽型ウイルス：Ｂａｌ２６（図８Ａ；クレードＢ、Ｔｉｅｒ１）、Ｑ２３Ｅｎｖ１７（図８Ｂ；クレードＡ、Ｔｉｅｒ１）、ＳＦ１６２Ｓ（図８Ｃ；クレードＢ、Ｔｉｅｒ１）、及びＺＭ５３Ｍ（図８Ｄ；クレードＣ、Ｔｉｅｒ２）のパネルを用いてＴＺＭ−ＢＬ細胞で行った。実施例２に記載した通り、０．０１のＭＯＩで細胞を感染させ、ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂ投与から生成されたＦａｂを含む血清（最終希釈１：５０）の存在下で培養した。中和値を％で示す。この計算は実施例２に記載した。なお、グラフごとに示した横線は、実験用血清が５０％のウイルス中和を介在したおおよその時点を示す。実施例２〜７に記載のＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂの重鎖（ＶＨ−ＣＨ１）をコードする核酸配列を示す。実施例２〜７に記載のＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂの軽鎖（ＶＬ−ＣＬ）をコードする核酸配列を示す。ＨＩＶＥｎｖをコードするプラスミドでトランスフェクトした細胞の免疫蛍光を示す。ｐＶＡＸ１（左パネル）またはｐＨＩＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂ（右パネル）からの製剤で細胞を染色した。抗原の種類対血清濃度（ｎｇ／ｍＬ）をプロットしたグラフを示す。合成ヒトＩｇＧ１抗体をコードする構築物を模式的に示す。図１３の構築物によってコードされる組み立て抗体（発現時）を模式的に示す。ＶＲＣ０１ＩｇＧのアミノ酸配列を示す。図１６Ａは、ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇをコードする構築物の模式図を示す。図１６Ｂは、図１６Ａの構築物を含むベクターの模式図を示す。図１６Ｃは、染色したゲルの画像を示す。図１７Ａは、ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇをコードする構築物の模式図を示す。図１７Ｂは、図１７Ａの構築物を含むベクターの模式図を示す。図１７Ｃは、染色したゲルの画像を示す。フリンによる切断前のＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇのアミノ酸配列を示す。フリンによる切断前のＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇのアミノ酸配列を示す。図２０Ａは、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの重（ＶＨ−ＣＨ１）鎖をコードする構築物の模式図を示す。図２０Ｂは、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの重（ＶＬ−ＣＬ）鎖をコードする構築物を模式的に示す。ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの重（ＶＨ−ＣＨ１）または軽（ＶＬ−ＣＬ）鎖をコードする構築物を含む発現ベクターを模式的に示す。時単位の時間（ｈｒ）対ＯＤ４５０ｎｍをプロットしたグラフを示す。免疫ブロットの画像を示す。ＤＮＡ投与のタイミング、事前採血及び採血を模式的に示す。日単位の時間対ＯＤ４５０ｎｍをプロットしたグラフを示す。暴露後の日数対生存率（％）をプロットしたグラフを示す。マウス群対ＴＮＦ−αのｐｇ／ｍＬをプロットしたグラフを示す。マウス群対ＩＬ−６のｐｇ／ｍＬをプロットしたグラフを示す。ＶＨ−ＣＨ１をコードするプロモーター制御下の構築物を模式的に示す。ＶＬ−ＣＬをコードするプロモーター制御下の構築物を模式的に示す。発現ベクター内でクローニングした抗Ｈｅｒ−２ＦａｂのＶＨ−ＣＨ１またはＶＬ−ＣＬをコードする構築物を模式的に示す。抗Ｈｅｒ−２ＦａｂのＶＨ−ＣＨ１をコードする核酸配列を示す。図３２の核酸配列によってコードされるアミノ酸配列（すなわち、抗Ｈｅｒ−２ＦａｂのＶＨ−ＣＨ１のアミノ酸配列）を示す。抗Ｈｅｒ−２ＦａｂのＶＬ−ＣＬをコードする核酸配列を示す。図３４の核酸配列によってコードされるアミノ酸配列（すなわち、抗Ｈｅｒ−２ＦａｂのＶＬ−ＣＬのアミノ酸配列）を示す。トランスフェクト細胞の種類対ＩｇＧ濃度（μｇ／ｍＬ）をプロットしたグラフを示す。免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）重鎖の可変重領域（ＶＨ）、可変重定常領域１（ＣＨ１）、ヒンジ領域、可変重定常領域２（ＣＨ２）、及び可変重定常３（ＣＨ３）をコードし、かつ、ＩｇＧ軽鎖の可変軽領域（ＶＬ）及び可変軽定常領域（ＣＬ）をコードする構築物を模式的に示す。ＩｇＧの重鎖及び軽鎖は、プロテアーゼ切断部位によって分離され、各々は、（リーダー配列によってコードされる）シグナルペプチドによって先行される。抗デングウイルス（ＤＥＮＶ）ヒトＩｇＧをコードする核酸配列を示す。図３９の核酸配列によってコードされるアミノ酸配列（すなわち、抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧのアミノ酸配列）を示す。このアミノ酸配列では、重鎖及び軽鎖を２つの別々のポリペプチドに分離させるプロテアーゼ切断がまだ起こっていない。マウス群対ＯＤ４５０ｎｍをプロットしたグラフを示す。注射後の日数対ヒトＩｇＧ濃度（ｎｇ／ｍＬ）をプロットしたグラフを示す。図１の核酸配列（すなわち、配列番号６）によってコードされるアミノ酸配列を示す。このアミノ酸配列は、以下の実施例１に記載のＩｇＧ重鎖のアミノ酸配列である。図２の核酸配列に（すなわち、配列番号７）よってコードされるアミノ酸配列を示す。このアミノ酸配列は、以下の実施例１に記載のＩｇＧ軽鎖のアミノ酸配列である。図９の核酸配列（すなわち、配列番号３）によってコードされるアミノ酸配列を示す。このアミノ酸配列は、実施例２〜７に記載のＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂの重鎖（ＶＨ−ＣＨ１）のアミノ酸配列である。図１０の核酸配列（すなわち、配列番号４）によってコードされるアミノ酸配列を示す。このアミノ酸配列は、実施例２〜７に記載のＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂの軽鎖（ＶＬ−ＣＬ）のアミノ酸配列である。以下の実施例１１に記載のＨＩＶ−１ＰＧ９一本鎖Ｆａｂ（ｓｃＦａｂ）をコードする核酸配列を示す。図４６の核酸配列（すなわち、配列番号５０）によってコードされるアミノ酸配列を示す。このアミノ酸配列は、以下の実施例１１に記載のＨＩＶ−１ＰＧ９ｓｃＦａｂのアミノ酸配列である。以下の実施例１３に記載のＨＩＶ−１４Ｅ１０一本鎖Ｆａｂ（ｓｃＦａｂ）をコードする核酸配列を示す。図４８の核酸配列（すなわち、配列番号５２）によってコードされるアミノ酸配列を示す。このアミノ酸配列は、以下の実施例１３に記載のＨＩＶ−１４Ｅ１０ｓｃＦａｂのアミノ酸配列である。免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）重鎖の可変重領域（ＶＨ）、可変重定常領域１（ＣＨ１）、ヒンジ領域、可変重定常領域２（ＣＨ２）、及び可変重定常３（ＣＨ３）をコードする構築物を模式的に示す。ＩｇＧ重鎖をコードする核酸配列は、リーダー配列によって先行される。ＩｇＧ軽鎖の可変軽領域（ＶＬ）及び可変軽定常領域（ＣＬ）をコードする構築物を模式的に示す。ＩｇＧ軽鎖をコードする核酸配列は、リーダー配列によって先行される。以下の実施例９に記載のＨＩＶ−１ＶＲＣ０１ＩｇＧ１重鎖をコードする核酸配列を示す。図５２の核酸配列（すなわち、配列番号５４）によってコードされるアミノ酸配列を示す。このアミノ酸配列は、以下の実施例９に記載のＨＩＶ−１ＶＲＣ０１ＩｇＧ１重鎖のアミノ酸配列である。以下の実施例９に記載のＨＩＶ−１ＶＲＣ０１ＩｇＧ軽鎖をコードする核酸配列を示す。図５４の核酸配列（すなわち、配列番号５６）によってコードされるアミノ酸配列を示す。このアミノ酸配列は、以下の実施例９に記載のＨＩＶ−１ＶＲＣ０１ＩｇＧ軽鎖のアミノ酸配列である。以下の実施例１４に記載のＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの重鎖（ＶＨ−ＣＨ１）をコードする核酸配列を示す。図５６の核酸配列（すなわち、配列番号５８）によってコードされるアミノ酸配列を示す。このアミノ酸配列は、以下の実施例１４に記載のＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの重鎖（ＶＨ−ＣＨ１）のアミノ酸配列である。以下の実施例１４に記載のＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの軽鎖（ＶＬ−ＣＬ）をコードする核酸配列を示す。図５８の核酸配列（すなわち、配列番号６０）によってコードされるアミノ酸配列を示す。このアミノ酸配列は、以下の実施例１４に記載のＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの軽鎖（ＶＬ−ＣＬ）のアミノ酸配列である。以下の実施例１２に記載のＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇをコードする核酸配列を示す。以下の実施例１０に記載のＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇをコードする核酸配列を示す。ＶＲＣ０１ＩｇＧ（配列番号６４）をコードする核酸配列を示す。ヒト抗ＰＳＭＡ抗体の構築物設計としてヌクレオチド配列の直線配置の概略図を示す。抗ｈｕＰＳＭＡ−ＩｇＧ１抗体のインビトロ発現を提供するグラフを示す。左のグラフは、２９３Ｔトランスフェクト細胞中の抗ｈｕＰＳＭＡ発現を示す。右のグラフは、ｈｕＰＳＭＡタンパク質と（陰性対照：ｐＶａｘ１−空ベクター、及び陽性対照：ＰＳＭＡ−ｍＡｂｓ−市販のモノクローナル抗体に対する）インビトロトランスフェクト細胞との結合を示す。ヒトＰＳＭＡタンパク質に対する抗ｈｕＰＳＭＡ−ＩｇＧ１の定量化を提供するグラフを示す。Ｎｕ／Ｊマウスの免疫化及び出血スケジュールを上パネルに示し、Ｎｕ／Ｊマウス中の抗ｈｕＰＳＭＡＩｇＧ１結合のインビボ動態を下パネルに示す。抗ｈｕＰＳＭＡＩｇＧ１結合を確認するウエスタンブロットのゲル写真を示す。ヒト前立腺（ＬＮＣａＰ）細胞に結合する、処置マウスの血清（Ｎｕ／Ｊ）中の抗ｈｕＰＳＭＡＩｇＧ１の特異性についての情報を提供する、異なる対象のいくつかのフローサイトメトリーグラフを示す。抗ＰＳＭＡ−ＩｇＧＤＮＡで処置したマウス由来の血清の存在下または不在下においてＬｎＣａｐ細胞血清に対する細胞毒性についてエフェクター細胞を試験した際の抗ｈｕＰＳＭＡＩｇＧ１：ＡＤＣＣ活性を詳述するグラフを示す。抗体発現プラスミドの概略設計、及びＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ発現プラスミドの単回ＥＰ媒介注射後の抗体の発現及び結合速度の確認を示す。（Ａ）ＮＣＢＩデータベースから特定された選択された抗ＣＨＩＫＶヒトモノクローナルの可変軽鎖及び重鎖（ＶＬ及びＶＨ）ＩｇＧ断片遺伝子を、ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ及びＣＨＩＫＶ−ＩｇＧについて別々に、最適化ＤＮＡプラスミドベクターにクローニングした。（Ｂ）抗ＣＨＩＫＶＶＬ及びＶＨ−Ｆａｂ遺伝子またはＣＨＩＫＶ−ＩｇＧをコードするＤＮＡプラスミドを、ＥＬＩＳＡ法によってそれぞれのインビトロ発現を決定するために、２９３Ｔ細胞に一緒にトランスフェクトした。空の対照であるｐＶａｘ１プラスミドでトランスフェクトした細胞は、陰性対照として機能した。（Ｃ）ＥＰ介在送達後の抗ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ抗体のインビボ発現。マウス（Ｂ６．Ｃｇ−Ｆｏｘｎ１^ｎｕ／Ｊ）にＣＨＩＫＶ−ＩｇＧプラスミド（合計で１００μｇ）を単回筋肉内注射で投与した後、ＥＰを行った（１群当たりｎ＝５マウス）。空のｐＶａｘ１ベクターの注射は、陰性対照として用いた。（Ｄ）ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ抗原への特異的結合は、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ及び組み換えＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖで免疫化されたマウス由来の血清を回収したＥＬＩＳＡアッセイにより測定し、異なる時点で個々のマウスのＯＤ４５０ｎｍ値として表した。（Ｅ）ヒトＩｇＧ濃度の血清レベルは、材料及び方法に記載のように、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧを筋肉内に注射したマウスにおいて種々の時点で測定した。（Ｆ）抗体結合親和性及び特異性の評価。タンパク質を標的にするためのＣＨＩＫＶ−ＩｇＧを注射したマウス（１４日目）由来の血清の結合親和性機能性は、以下の実施例に記載のように、ＣＨＩＫＶ感染細胞由来の細胞溶解物を用いてウエスタンブロットによって試験した。図７１Ａ〜７１Ｃは、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ発現プラスミドの単回電気穿孔媒介注射後のＩｇＧの発現及び結合速度を示す。図７１Ａは、ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂを投与されたマウス由来の血清は、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ抗原に特異的であることを示す。ＥＬＩＳＡプレートを組み換えＣＨＩＫＶ−ＥｎｖまたはＨＩＶ−１Ｅｎｖ（亜型Ｂ；ＭＮ）タンパク質で被覆し、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧまたはｐＶａｘ１を注射したマウス由来の血清は、最初の注射後に示したように得られた。ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ抗原への特異的結合は、血清を回収したＥＬＩＳＡアッセイにより測定し、異なる時点で個々のマウスのＯＤ４５０ｎｍ値として表した。図７１Ｂは、ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂを投与されたマウスから生成されたＣＨＩＫＶ−Ｆａｂが、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ糖タンパク質に結合できたことが、免疫蛍光検査法（ＩＦＡ）結果により実証されたことを示す。ＣＨＩＫＶ感染ベロ細胞を感染後２４時間で固定し、次いで免疫蛍光検査法でＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ抗原発現（緑色）を検出した。細胞核をＤＡＰＩ（青色）で染色した。適量のＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖタンパク質発現が、ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ抗体をもつベロ細胞中で観察された。ｐＶａｘ１免疫化マウス血清を陰性対照として用いた。図７１Ｃは、プラスミドを注射したマウス由来の血清の、ＣＨＩＫＶ感染細胞への結合のＦＡＣＳ分析を示す。ｘ軸は、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖで補完したレンチウイルスＧＦＰ偽ウイルスを用いてＧＦＰ染色を示す。ｙ軸は、マウス中で産生された試験ヒトＩｇＧの染色を示す。二重陽性細胞は、ＣＨＩＫＶ感染細胞への血清結合の示唆／測定である。ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ＋ＥＰを注射したマウス由来の血清が、多数のＣＨＩＫＶ株に対して中和活性を呈すことを示す。図７２Ａ〜７２Ｆは、６つの異なるＣＨＩＫＶウイルス株：Ｒｏｓｓ、ＬＲ２００６−ＯＰＹ１、ＩＮＤ−６３−ＷＢ１、ＰＣ−０８、Ｂ４４８−Ｃｈｉｎａ、及びＢｉａｎｃｈｉに対して測定した、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧをＥＰで投与したマウス由来の血清の中和活性を示す。中和抗体（ｎＡｂ）力価は、ベロ細胞中でＣＰＥの少なくとも５０％阻害をもたらした血清の最大希釈としてプロットする。各実験において１群当たり少なくとも１０匹のマウスである２つの独立した実験において、同様の結果が観察された。ＩＣ−５０値は、ＰｒｉｓｍＧｒａｐｈＰａｄソフトウェアで行った。抗ＣＨＩＫＶ−ＥｎｖＩｇＧ及び血清の耐久性、及びＣＨＩＫＶ−Ｆａｂで免疫化した後の粘膜ＩｇＧ応答、並びにＩｇＧ発現及び暴露試験を示す。（Ａ）ＩｇＧプラスミド免疫化及びＣＨＩＫＶ暴露の概略図。（Ｂ〜Ｃ）ＢＡＬＢ／ｃマウスに、０日目にｐＶａｘ１、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ、またはＣＨＩＫＶ−Ｆａｂを注射し、２日目（Ｂ）または３０日目（Ｃ）にＣＨＩＫＶ−Ｄｅｌ−０３（ＪＮ５７８２４７）ＣＨＩＫＶ株（２５ｕｌの全容量中１×１０^７ＰＦＵ）で暴露した。マウスを毎日監視し、生存率は、ウイルス暴露後２０日間記録した。（Ｄ〜Ｅ）異なる経路のＣＨＩＫＶウイルス感染からのマウスの防御。２つの群のマウスは、筋肉内（ＩＭ）注射により１００ｕｇのＣＨＩＫＶ−ＩｇＧで免疫化し、皮下（ｓ．ｃ）（Ｄ）で２日目に暴露し（Ｄ）、別の群のマウスは、鼻腔内（ｉ．ｎ）により暴露した。（Ｅ）ＣＨＩＫＶを接種。マウスを毎日監視し、生存率は、ウイルス暴露後２０日間記録した。↑は、ＤＮＡ投与を示し；☆は、ウイルス暴露を示した。各群は、１０匹のマウスからなり、結果は、２つの独立した実験の代表例であった。ＣＨＩＫＶ暴露試験を介した即時的な防御及び持続的な防御の双方を示す。（Ａ）ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧワクチン接種及び暴露試験の概略図。Ｉ群暴露：ＢＡＬＢ／ｃマウスに、０日目にＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ、またはｐＶａｘ１を注射し、２日目にＣＨＩＫＶ−Ｄｅｌ−０３（ＪＮ５７８２４７）ウイルス株（２５ｕｌの全容量中１×１０^７ＰＦＵ）で暴露した。ＩＩ群暴露：ＢＡＬＢ／ｃマウスに、０日目に単回ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ免疫化または示した日に多数のＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ免疫化のいずれかを施した後、Ｉ群暴露と同じ条件下で３５日目に暴露した。↑は、ＤＮＡ投与を示し；☆は、ウイルス暴露を示した。各試験において、マウスを２０日間監視し、生存率を記録した。（Ｂ）Ｉ群暴露試験からのマウスの生存率曲線。１００％生存率は、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ免疫化マウスで記録された点に留意されたい。（Ｃ）ＩＩ群暴露試験からのマウスの生存率曲線。（Ｄ）抗ＣＨＩＫＶヒトＩｇＧレベルの濃度は、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ＋ＥＰで免疫化した後の示した時点で測定した。（Ｅ）マウスにおけるＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ及びＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ免疫化した後の抗ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ抗体の持続的かつ全身的な誘発。ＣＨＩＫＶによる感染に応答したエクスビボサイトカイン産生を示す。（Ａ）４５日目（すなわち、暴露後１０日目）のＩＩ群暴露試験からのＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ及びＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ投与マウスにおけるウイルス力価。各データポイントは、１０匹のマウスからの平均ウイルス力価を表す。ｐＶａｘ１免疫化マウスの群は、対照として機能した。ウイルス負荷は、ｐＶａｘ１マウスと比べてＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ（ｐ＝０．０２４４）及びＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ（ｐ＝０．０２２１）の両方において有意に減少した。（Ｂ＆Ｃ）ＣＨＩＫＶ感染マウスからの血清炎症性サイトカインレベル（ＴＮＦ−α及びＩＬ−６）の特徴付け。サイトカインレベルは、特異的ＥＬＩＳＡアッセイによって４５日目（暴露後１５日目）にマウスで測定した。ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ及びＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖを注射したマウスは、ＴＮＦ−α及びＩＬ−６の血清レベルが同様であり、かつ、対照群（ｐ＜０．０００１）よりもＴＮＦ−α及びＩＬ−６の血清レベルが有意に低かった。データは、マウス１匹当たり（１群当たりｎ＝１０）３つのウェルの平均を表す。（Ｄ）ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ及び／またはＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖで免疫化した後、ＣＨＩＫＶ特異的ペプチドで刺激したマウスの脾細胞におけるＴ細胞応答。示したデータは、少なくとも２つの別々の実験の代表例である。ＳＮＡＰｉによるヒト抗ＤＥＮＶ中和ｍＡｂのインビトロ発現を示す。（ａ）ＳＮＡＰｉに使用したＤＮＡプラスミドの概略図；抗体重鎖及び軽鎖配列は、フリン及び２Ａ切断部位の組み合わせによって分離する。（ｂ）ｐＤＶＳＦ−３ＷＴまたはＬＡＬＡをトランスフェクトした２９３Ｔ細胞の上清におけるヒトＩｇＧのＥＬＩＳＡ定量化分析。（ｃ）ＤＶＳＦ−３ＷＴを含有する、ｐＤＶＳＦ−３ＷＴをトランスフェクトした２９３Ｔ上清のウエスタンブロット分析。抗体をプロテインＡスピンカラムで精製し、還元（左）及び非還元（右）条件下でＳＤＳ−ＰＡＧＥで分離した。（ｄ）ベロ細胞を非感染（モック）かまたはＤＥＮＶ１、２、３、または４で感染させるかのいずれかの後、固定し、透過処理し、ｐＤＶＳＦ−３ＷＴまたはＬＡＬＡをトランスフェクトした２９３Ｔ細胞の上清で染色した。マウス血清中の中和ＤＥＮＶ抗体の長期発現のＳＮＡＰｉ結果を示す。（ａ）ヒトＩｇＧの全ての血清検出可能レベルは、抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧ抗体ＤＶＳＦ−１をコードするＤＮＡプラスミドをＦｏｘｎ１／ＮｕＪ免疫不全マウスに単回筋肉内注射した後、ＥＬＩＳＡ法で測定した。０〜４週目（左）及び１９週目（右）のヒトＩｇＧレベル。各線（左）または点（右）は、個々のマウスを表す（ｎ＝５）。（ｂ）血清中の全ヒトＩｇＧは、１２９／ＳｖマウスにｐＤＶＳＦ−３ＷＴまたはｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡプラスミドを筋肉内注射した後にＥＬＩＳＡ法で測定した（１群当たりｎ＝４〜５）。（ｃ）ベロ細胞を非感染（モック）かまたはＤＥＮＶ１、２、３、または４で感染させるかのいずれかの後、固定し、透過処理し、ｐＤＶＳＦ−３ＷＴまたはｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡのいずれかのＤＮＡ注射後０または７日目に採取した１２９／Ｓｖマウス血清で染色した（１群当たりｎ＝５）。（ｄ）中和は、ベロ細胞に追加する前にｐＤＶＳＦ−３ＷＴまたはｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡ（１群当たりｎ＝５）のいずれかのＤＮＡ注射後７日目に採取した１２９／Ｓｖマウス血清の連続希釈物でＤＥＮＶ１、２、３、または４をインキュベートすることで評価した。感染細胞の割合を示す。ＳＮＡＰｉが、ウイルスのみ及び抗体感染増強疾患に対して防御することを示す。（ａ）ウイルスのみ暴露：ＡＧ１２９マウスは、亜致死量のＤＥＮＶ２Ｓ２２１に暴露する５日前にｐＤＶＳＦ−３ＷＴ、ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡ、またはｐＶａｘ空ベクターのいずれかの筋肉内注射を受けた（１群当たりｎ＝５〜６；ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡ及びｐＤＶＳＦ−３ＷＴの比較に対するｐ≦０．００８４）。（ｂ）抗体依存性感染増強暴露：ＡＧ１２９マウスは、高用量の非中和抗ＤＥＮＶｍＡｂ２Ｈ２を投与する５日前にｐＤＶＳＦ−３ＷＴ、ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡ、またはｐＶａｘ空ベクターのいずれかの筋肉内注射を受けた。３０分後、マウスに亜致死量のＤＥＮＶ２Ｓ２２１を暴露した（１群当たりｎ＝５〜６；ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡ及びｐＤＶＳＦ−３ＷＴの比較に対するｐ≦０．００７２）。カプランマイヤー法による生存率曲線を示す（ａ〜ｂ）。ｐＤＶＳＦ−３ＷＴ及びＬＡＬＡコード抗体のインビトロ機能分析を示す。（ａ）精製した組み換えＤＥＮＶＥタンパク質に対する、ｐＤＶＳＦ−３ＷＴまたはＬＡＬＡをトランスフェクトした２９３Ｔ細胞の上清中のヒトＩｇＧのＥＬＩＳＡ結合分析。（ｂ）抗体依存性感染増強は、Ｋ５６２細胞に追加する前にｐＤＶＳＦ−３ＷＴまたはＬＡＬＡの上清の連続希釈物でＤＥＮＶ１、２、３、または４をインキュベートすることで評価した。感染細胞の割合を示す。ＳＮＡＰｉを送達した後のＡＧ１２９マウス中の抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧレベルの暴露前レベルを示す。（ａ）血清中のＤＶＳＦ−３ＷＴまたはＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡの全ヒトＩｇＧは、ＡＧ１２９マウス中のそれぞれのプラスミドをＤＮＡ筋肉内注射（ＤＥＮＶ２暴露１日前）及びＥＰした４日後にＥＬＩＳＡ法で測定した（１群当たりｎ＝５〜６；ｐＤＶＳＦ−３ＷＴ及びｐＶａｘの比較に対するｐ≦０．０００５；ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡ及びｐＶａｘの比較に対するｐ≦０．０００１）。マウスにおける多数のＤＥＮＶ抗体コードプラスミドの送達が、増加したＤＥＮＶ１−４抗血清を産生することを示す。（ａ）血清中のＤＶＳＦ−３ＷＴ、ＤＶＳＦ−１ＷＴ、またはＤＶＳＦ−３ＷＴ、及びＤＶＳＦ−１ＷＴの全ヒトＩｇＧは、１２９／Ｓｖマウス中のそれぞれのプラスミドをＤＮＡ筋肉内注射及びＥＰした７日後にＥＬＩＳＡ法で測定した（１群当たりｎ＝５；ｐＤＶＳＦ−１ＷＴ及びｐＤＶＳＦ−１＋３の比較に対するｐ≦０．００８８；ｐＤＶＳＦ−３ＷＴ及びｐＤＶＳＦ−１＋３の比較に対するｐ≦０．０２４０）。上部パネルには、ＤＶＳＦ−３ＷＴは、ヒトＦｃｙＲ１ａに結合するが、ＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡは、結合しないことを示す。下部の４つのパネルは、抗体依存性感染増強アッセイの結果を示す：ＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡによるＤＥＮＶのインキュベーションは、ヒト単球（Ｋ５６２細胞株）感染をもたらさないが、ＤＶＳＦ−３ＷＴは、感染を高める。回収した血清中のヒトＩｇＧ（μｇ／ｍＬ）の濃度に対する、抗ＰＳＭＡプラスミドをＣ５７ＢＬ／６ヌード（Ｂ６．Ｃｇ−Ｆｏｘｎ１ｎｕ／Ｊ）マウスに注射後の日数をプロットしたグラフを示す。ＯＤ４５０ｎｍに対する時間（日目）をプロットしたグラフを示す。グラフにした結果は、インビボ抗ＰＳＭＡ抗体のヒト組み換えＰＳＭＡへの結合を調べたＥＬＩＳＡからである。ヒトＩｇＧ（μｇ／ｍＬ）の濃度に対する、抗ＰＳＭＡプラスミドをＣ５７ＢＬ／６マウスに注射後の日数をプロットしたグラフを示す。各マウスは、凡例で示すように別々の線で示す。ヒトＩｇＧ（μｇ／ｍＬ）の濃度に対する、抗ＰＳＭＡプラスミドをＣ５７ＢＬ／６マウスに注射後の日数をプロットしたグラフを示す。示した結果は、グループ化したマウスである。相対光単位（ＲＬＵ）の発光に対する、ｌｏｇ１０の抗ＰＳＭＡ抗体（ｇ／ｍＬ）の濃度をプロットしたグラフを示す。ルシフェラーゼ活性の誘導倍率に対する試料型をプロットしたグラフを示す。ｐＶａｘ１または抗ＰＳＭＡＤＮＡプラスミドで免疫化したマウスの腫瘍移植（０日目）、免疫化（５または７日目）、及び腫瘍測定（７、１４、２１、２８、３５、４２、４９、５６、及び６３日目）のタイムラインを示す。腫瘍移植後の日数と、腫瘍移植後５日目にｐＶａｘ１で免疫化したマウスの腫瘍容積（ｍｍ^３）とをプロットしたグラフを示す。腫瘍移植後５日目に抗ＰＳＭＡＤＮＡプラスミドで免疫化したマウスの腫瘍容積（ｍｍ^３）に対する腫瘍移植後の日数をプロットしたグラフを示す。腫瘍移植後７日目に抗ＰＳＭＡＤＮＡプラスミドで免疫化したマウスの腫瘍容積（ｍｍ^３）に対する腫瘍移植後の日数をプロットしたグラフを示す。腫瘍をもつマウスの画像、及びそれぞれの腫瘍の測定を示す。マウスは、（１）腫瘍移植後５日目にｐＶａｘ１で免疫化したマウス、（２）腫瘍移植後５日目に抗ＰＳＭＡＤＮＡプラスミドで免疫化したマウス、または（３）腫瘍移植後７日目に抗ＰＳＭＡＤＮＡプラスミドで免疫化したマウスであった。示したマウス群の腫瘍容積（ｍｍ^３）に対する腫瘍移植後の日数をプロットしたグラフを示す。図９５Ａ〜９５Ｅは、最適化されたＰＳＭＡ−ｄＭＡｂプラスミドがインビトロでハイレベルなＩｇＧ産生をもたらすことを示す。図９５Ａは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂと本明細書で呼ばれる抗ＰＳＭＡモノクローナル抗体をコードする最適化された抗ＰＳＭＡ−ＩｇＧプラスミドの設計を示す。図図９５Ｂは、定量化ＥＬＩＳＡを示す。図９５Ｃは、ｐＶａｘ１−またはＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ−トランスフェクト２９３Ｔ細胞から４８時間で回収した上清の１：５０希釈の結合ＥＬＩＳＡを示す。図９５Ｄは、ｐＶａｘ１またはＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ−トランスフェクト２９３Ｔ細胞からの４８時間上清の滴定結合ＥＬＩＳＡを示す。図９５Ｅは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ−トランスフェクト２９３Ｔ細胞からの上清の１：５０希釈でプローブした組み換えＰＳＭＡ（ｒＰＳＭＡ）または無関係な組み換えＨＩＶ−Ｅｎｖ（ｒＨＩＶ−Ｅｎｖ）タンパク質のウエスタンブロット分析が、２９３Ｔ細胞で産生されたＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ−ＩｇＧの特異的結合を示すことを示す。図９６Ａ〜９６Ｃは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂプラスミドがマウス中でハイレベルなＩｇＧ産生をもたらすことを示す。図９６Ａは、１００ｕｇのＰＳＭＡ−ｄＭＡｂプラスミドの単回注射を筋肉内に接種した後、ＥＰを行ったＣ５７ＢＬ／６ヌード（Ｂ６．Ｃｇ−Ｆｏｘｎ１ｎｕ／Ｊ）マウスから回収した血清で行った定量化ＥＬＩＳＡを示す。１．２ｕｇ／ｍｌのピークＩｇＧ濃度が、Ｃ５７ＢＬ／６ヌードでは１４日目に得られた。図９６Ｂは、組み換えヒトＰＳＭＡで試験したマウスから回収した血清の滴定結合ＥＬＩＳＡを示す。図９６Ｃは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ−接種マウスからの血清の１：５０希釈でプローブした組み換えＰＳＭＡ（ｒＰＳＭＡ）または無関係な組み換えＨＩＶ−Ｅｎｖ（ｒＨＩＶ−Ｅｎｖ）タンパク質のウエスタンブロット分析が、マウスで産生されたＰＳＭＡ−ｄＭＡｂＩｇＧの特異的結合を示すことを示す。図９７Ａ〜９７Ｂは、ヌードマウスで産生されたＰＳＭＡ−ｄＭＡｂＩｇＧが、ＰＳＭＡを発現する細胞株に結合することを示す。図９７Ａは、空のｐＶａｘ１ベクターまたはＰＳＭＡ−ｄＭＡｂプラスミドのいずれかを接種したマウスからの１４日目の血清の１：５０希釈で染色した、ＰＳＭＡを発現するＬＮＣａＰ及びＴＲＡＭＰ−Ｃ２細胞株のフローサイトメトリー分析を示す。図９７Ｂは、ＬｎＣａｐ及びＴＲＡＭＰ−Ｃ２細胞染色の平均蛍光指数（ＭＦＩ）の定量化を示す。Ｃ５７ＢＬ／６ヌードマウスで産生されたＰＳＭＡ−ｄＭＡｂが、腫瘍組織中のＰＳＭＡを染色することを示す。図９９Ａ〜９９Ｃは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂがＬＮＣａＰ細胞上のＡＤＣＣを仲介することを示す。図９９Ａは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂのＡＤＣＣ活性を、ＡＤＣＣリポーターアッセイを用いて調べたことを示す。図９９Ｂは、無抗体の陰性対照と比較して、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ免疫化マウス血清により誘発されたＡＤＣＣ活性の誘導倍率を示す。図９９Ｃは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ血清がＬＮＣａＰ細胞の細胞死に与える影響を分析するためのフローサイトメトリーを示す。図１００Ａ〜１００Ｄは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂが、ＴＲＡＭＰ−Ｃ２腫瘍暴露マウスモデル中の抗腫瘍免疫を誘発することを示す。図１００Ａは、Ｃ５７ＢＬ／６マウスへの腫瘍投与、及びｐＶａｘ１またはＰＳＭＡ−ｄＭＡｂプラスミド投与のスキームを示す。図１００Ｂは、腫瘍投与後に最大１０週目までキャリパーで週１回測定した腫瘍容積を示す。図１００Ｃは、腫瘍投与後５０日目のｐＶａｘ１及びＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ群からの腫瘍をもつ代表的なマウスを示す。図１００Ｄは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ投与前の抗ＮＫ１．１ＩｇＧの単回注射によるＮＫ細胞の枯渇が、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂが腫瘍致死に与える保護効果を無効にしたことを示す。

本発明は、抗体、その断片、その変異体、またはその組み合わせをコードする組み換え核酸配列を含む組成物に関する。組成物を、それを必要とする対象に投与し、合成抗体のインビボ発現及び形成し易くすることができる。

特に、組み換え核酸配列から発現した重鎖及び軽鎖ポリペプチドは、合成抗体に組み立てることができる。重鎖ポリペプチド及び軽鎖ポリペプチドは、抗原に結合することができ、本明細書に記載のように組み立てられていない抗体に比べてより免疫原性が強く、かつ、抗原に対して免疫応答を引き起こすかもしくは誘導することが可能な合成抗体をアセンブリがもたらすように、互いに相互作用することができる。

また、これらの合成抗体は、抗原誘導の免疫応答に応じて産生される抗体よりもさらに速やかに対象内で生成される。合成抗体は、広範な抗原に効率的に結合し、中和することができる。合成抗体は、疾患に対して効率的に防御し、及び／または、疾患生存率を促進することもできる。

１．定義
特に定義していない限り、本明細書で使用する全ての技術的用語及び科学的用語は、当業者が一般的に理解するものと同じ意味を有する。矛盾が生じる場合には、定義を含めて本明細書が優先となる。本発明の実施または試験において、本明細書中に記載されたものと同様または同等の方法及び材料を用いることはできるが、好適な方法及び材料を以下に記載する。本明細書で言及する全ての刊行物、特許出願、特許、及び他の引用文献は、引用によりそれらの全体が組み入れられる。尚、本明細書で開示した材料、方法、及び実施例は単なる例示であり、限定することを意図していない。

本明細書で使用する「を含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅ（ｓ））」、「を含む（ｉｎｃｌｕｄｅ（ｓ））」、「を有する（ｈａｖｉｎｇ）」、「を有する（ｈａｓ）」、「できる（ｃａｎ）」、「を含む（ｃｏｎｔａｉｎ（ｓ））」という用語、及びその変形は、付加的な行為あるいは構造の可能性を妨げない、制限しない移行句、用語、または単語であることを意図している。単数形である「ａ」、「ａｎｄ」、及び「ｔｈｅ」は、文脈上例外が明記されていない限り、複数形の意味を持つこともある。本開示は、明示的に記載されているかどうかに関わらず、本明細書に示される実施形態または要素「を含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、「からなる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇｏｆ）」、及び「から実質的になる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇｅｓｓｅｎｔｉａｌｌｙｏｆ）」他の実施形態も企図する。

「抗体」は、クラスＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、もしくはＩｇＥの抗体、またはその断片もしくは誘導体（Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｄを含む）、ならびにその一本鎖抗体、及び誘導体を意味し得る。抗体は、哺乳動物の血清サンプルから単離された抗体、ポリクローナル抗体、親和性精製抗体、またはこれらの混合物のうち、所望のエピトープまたはそれに由来する配列に対する十分な結合特異性を示すものであり得る。

本明細書で互換的に使用する、「抗体断片」または「抗体の断片」は、抗原結合部位または可変領域を含む完全抗体の一部分を指す。この部分は、完全抗体のＦｃ領域のある特定の重鎖領域（すなわち、抗体アイソタイプに応じてＣＨ２、ＣＨ３またはＣＨ４）を含まない。抗体断片の例としては、Ｆａｂ断片、Ｆａｂ’断片、Ｆａｂ’−ＳＨ断片、Ｆ（ａｂ’）２断片、Ｆｄ断片、Ｆｖ断片、ダイアボディ、一本鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）分子、１つの軽鎖可変領域のみを含有する一本鎖ポリペプチド、軽鎖可変領域の３つのＣＤＲを含有する一本鎖ポリペプチド、１つの重鎖可変領域のみを含有する一本鎖ポリペプチド及び重鎖可変領域の３つのＣＤＲを含有する一本鎖ポリペプチドが挙げられるが、これらに限定されない。

「抗原」は、宿主内で免疫応答を引き起こすことが可能なタンパク質を指す。抗原は抗体により認識され結合される。抗原は体内または外部環境から生じる。

本明細書で使用する、「コード配列」または「コード化核酸」は、本明細書に記載の抗体をコードするヌクレオチド配列を含む核酸（ＲＮＡまたはＤＮＡ分子）を意味し得る。コード配列は、核酸の投与先である個体または哺乳動物の細胞中の発現を誘導できるプロモーター及びポリアデニル化シグナルを含む調節エレメントと機能的に連結した、開始及び終了シグナルをさらに含むことができる。コード配列は、シグナルペプチドをコードする配列をさらに含むことができる。

本明細書で使用する、「相補体」または「相補的」は、ある核酸が、ヌクレオチド間または核酸分子のヌクレオチド類似体間にワトソン・クリック（例えば、Ａ−Ｔ／Ｕ及びＣ−Ｇ）またはフーグスティーン塩基対を表わすことを意味し得る。

本明細書で使用する、「定電流」は、組織、または該組織を規定する細胞が、同組織に送達される電気パルスの持続期間中に受容するまたは経験する電流を定義する。電気パルスは、本明細書に記載の電気穿孔装置から送達される。この電流は、電気パルスの寿命期間中、該組織に定電流量で留まるが、それは、本明細書で提供される電気穿孔装置が、好ましくは瞬間的フィードバックを有する、フィードバック素子を有するからである。フィードバック素子は、パルスの持続期間中の組織（または細胞）の抵抗を測定し、電気穿孔装置に自身の電気エネルギー出力を変化させる（例えば、電圧を上げる）ようにすることができるので、同組織中の電流は、電気パルスの間ずっと（約マイクロ秒）、及びパルス間において、一定であり続ける。いくつかの実施形態において、フィードバック素子は、制御器を含む。

本明細書で使用する、「電流フィードバック」または「フィードバック」は互換的に使用されており、提供される電気穿孔装置の活発な応答を意味し得るが、これは、電極間の組織の電流を測定することと、電流を一定レベルで維持するために、ＥＰ装置が送達するエネルギー出力を適宜変化させることとを含む。この一定レベルは、パルスシーケンスまたは電気処理を開始する前に、ユーザーが予め設定する。電気穿孔装置の中の電気回路が、電極間の組織の電流を連続的にモニターし、そのモニターされた電流（または組織中の電流）を予め設定された電流と比較し、連続的にエネルギー出力の調整を行なって、モニターされた電流を予め設定されたレベルで維持することができるように、フィードバックは、電気穿孔装置の電気穿孔構成要素、例えば、制御器によって達成され得る。フィードバックループは瞬時のものであり得、それは、フィードバックループがアナログ閉ループフィードバックであるからである。

本明細書で使用する、「分散電流」は、本明細書に記載の電気穿孔装置の様々な針電極アレイから送達される電流のパターンを意味し得、これらのパターンは、電気穿孔される任意の組織領域に対する電気穿孔関連の熱ストレスの発生を最小限に抑えるか、または好ましくは消失させる。

本明細書で互換的に使用する、「電気穿孔」、「電気透過処理」、「界面動電増強」（「ＥＰ」）は、生体膜に微細経路（細孔）を生じさせるための膜貫通電場パルスの使用を意味し得る。こうした微細経路の存在により、プラスミド、オリゴヌクレオチド、ｓｉＲＮＡ、薬剤、イオン、及び水などの生体分子が、細胞膜の片側から他方の側に通過することが可能になる。

本明細書で使用する、「内因性抗体」は、体液性免疫応答を誘導するのに有効な量の抗原を投与されている対象内で生成される抗体を指し得る。

本明細書で使用する、「フィードバック機構」は、ソフトウェアまたはハードウェア（もしくはファームウェア）のいずれかによって実行されるプロセスであって、（エネルギーパルスの送達前、送達中、及び／または送達後の）所望の組織のインピーダンスを受容し、それを現在値、好ましくは電流と比較し、送達されるエネルギーパルスを調整して、予め設定された値を達成するプロセスを指し得る。フィードバック機構は、アナログ閉ループ回路により実施され得る。

「断片」は、機能、すなわち、所望の標的に結合でき、かつ、全長抗体と同じ意図した効果を有する抗体のポリペプチド断片を意味し得る。抗体の断片は、シグナルペプチド及び／または１位のメチオニンを備えているかまたは備えていないかのいずれの場合にも、Ｎ及び／またはＣ末端から少なくとも１つのアミノ酸が欠けている以外は全長と１００％同一であってもよい。断片は、付加された任意の異種シグナルペプチドを除き、特定の全長抗体の長さの２０％以上、２５％以上、３０％以上、３５％以上、４０％以上、４５％以上、５０％以上、５５％以上、６０％以上、６５％以上、７０％以上、７５％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上を含んでいてもよい。断片は、抗体に９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、または９９％以上同一で、かつ、同一率を計算する際に含まれないＮ末端メチオニンまたは異種シグナルペプチドをさらに含むポリペプチドの断片を含んでいてもよい。断片はさらに、免疫グロブリンシグナルペプチド、例えば、ＩｇＥまたはＩｇＧシグナルペプチドなどのＮ末端メチオニン及び／またはシグナルペプチドをさらに含んでいてもよい。Ｎ末端メチオニン及び／またはシグナルペプチドは、抗体の断片に結合し得る。

抗体をコードする核酸配列の断片は、シグナルペプチド及び／または１位のメチオニンをコードする配列を備えているかまたは備えていないかのいずれの場合にも、５’及び／または３’末端から少なくとも１つのヌクレオチドが欠けている以外は全長と１００％同一であってもよい。断片は、付加された任意の異種シグナルペプチドを除く特定の全長コード配列の長さの２０％以上、２５％以上、３０％以上、３５％以上、４０％以上、４５％以上、５０％以上、５５％以上、６０％以上、６５％以上、７０％以上、７５％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上を含んでいてもよい。断片は、抗体に９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、または９９％以上同一で、かつ、同一率を計算する際に含まれないＮ末端メチオニンまたは異種シグナルペプチドをコードする配列をさらに必要に応じて含むポリペプチドをコードする断片を含んでいてもよい。断片はさらに、免疫グロブリンシグナルペプチド、例えば、ＩｇＥまたはＩｇＧシグナルペプチドなどのＮ末端メチオニン及び／またはシグナルペプチドに対するコード配列をさらに含んでいてもよい。Ｎ末端メチオニン及び／またはシグナルペプチドをコードするコード配列は、コード配列の断片に結合し得る。

本明細書で使用する、「遺伝子構築物」は、抗体などのタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含むＤＮＡ分子またはＲＮＡ分子を指す。コード配列は、核酸分子の投与先である個体の細胞中の発現を誘導できるプロモーター及びポリアデニル化シグナルを含む調節エレメントと機能的に連結した、開始及び終了シグナルを含む。本明細書で使用する「発現可能な形態」という用語は、個体の細胞中に存在しているときにコード配列が発現するように、タンパク質をコードするコード配列に機能的に連結している必要な調節要素を含んでいる遺伝子構築物を指す。

本明細書において２つ以上の核酸またはポリペプチド配列の文脈で使用する「同一」または「同一性」は、当該配列が指定領域に渡って指定の割合の同一残基を有することを意味し得る。この割合を計算するには、２つの配列を最適に整列させ、指定領域に渡って２つの配列を比較し、両配列の同一残基が発生する位置の数を確定して一致位置の数を得て、一致位置の数を指定領域の総位置数で割り、計算結果に１００を掛けることにより、配列同一性のパーセント値が得られる。２つの配列の長さが異なるか、アライメントにより１つ以上の付着末端が生じ、指定の比較領域に単一配列のみが含まれる場合には、単一配列の残基を計算の分母に含めるが、分子には含めない。ＤＮＡとＲＮＡを比較する場合には、チミン（Ｔ）とウラシル（Ｕ）を同等とみなすことができる。同一性の計算は、手動で行っても、ＢＬＡＳＴ、ＢＬＡＳＴ２．０等のコンピューター配列アルゴリズムを使用して行ってもよい。

本明細書で使用する、「インピーダンス」は、フィードバック機構を論ずる際に用いられ、かつ、オームの法則に従って電流値に変換することができるため、予め設定された電流と比較することができる。

本明細書で使用する、「免疫応答」は、１つ以上の核酸及び／またはペプチドの導入に応答して、宿主の免疫系、例えば哺乳動物の免疫系が活性化することを意味し得る。この免疫応答は、細胞性もしくは体液性の形態、またはその両方であり得る。

本明細書で使用する、「核酸」または「オリゴヌクレオチド」または「ポリヌクレオチド」は、互いに共有結合している少なくとも２つのヌクレオチドを意味し得る。一本鎖を表現することにより、相補鎖の配列も定義される。したがって、核酸は、表現される一本鎖の相補鎖も包含する。ある核酸の多くの変異体を、所与の核酸として同一目的で使用できる。したがって、核酸は、実質的に同一の核酸及びその相補体も包含する。一本鎖は、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で標的配列とハイブリダイズできるプローブを提供する。したがって、核酸は、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下でハイブリダイズするプローブも包含する。

核酸は、一本鎖または二本鎖であってもよく、二本鎖と一本鎖の両方の配列の一部分を含むこともできる。核酸は、ＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ、ｃＤＮＡ、ＲＮＡ、またはハイブリッドであってもよく、核酸はデオキシリボヌクレオチドとリボヌクレオチドの組み合わせを含むことができ、ウラシル、アデニン、チミン、シトシン、グアニン、イノシン、キサンチン、ヒポキサンチン、イソシトシン、及びイソグアニンを含む塩基の組み合わせを含むことができる。核酸は、化学合成法または組み換え法により取得できる。

本明細書で使用する、「機能的に連結」は、遺伝子と空間的に接続しているプロモーターの制御下で遺伝子が発現することを意味し得る。プロモーターは、その制御下にある遺伝子の５’（上流）または３’（下流）に位置できる。プロモーターと遺伝子の間の距離は、プロモーターの派生元遺伝子において当該プロモーターが制御する遺伝子とプロモーターの間の距離とほぼ同一であってもよい。当技術分野で知られているように、プロモーター機能を失うことなく、この距離の変化に適応することができる。

本明細書で使用する、「ペプチド」、「タンパク質」、または「ポリペプチド」は、アミノ酸の結合配列を意味することができ、天然、合成、または、天然及び合成の修飾あるいはその組み合わせであってもよい。

本明細書で使用する、「プロモーター」は、核酸の細胞中発現を授与、活性化、または増強することのできる合成分子または天然由来分子を意味し得る。プロモーターは、発現をさらに増強し、かつ／または空間的発現及び／またはその一時的発現を改変する目的で、１つ以上の特定の転写調節配列を含むことができる。プロモーターは遠位のエンハンサーエレメントまたは抑制エレメントを含むこともでき、このエンハンサーエレメントまたは抑制エレメントは、転写開始部位から数千塩基対も離れた場所に位置できる。プロモーターは、ウイルス、細菌、真菌、植物、昆虫、及び動物を含む源に由来してよい。プロモーターは、発現が発生する細胞、組織、もしくは臓器に関して、もしくは発現が生じる発生段階に関して、恒常的もしくは差次的に遺伝子成分の発現を調節でき、または、例えば生理的ストレス、病原体、金属イオン、誘発剤等の外部刺激に応答して遺伝子成分の発現を調節できる。プロモーターの代表例として、バクテリオファージＴ７プロモーター、バクテリオファージＴ３プロモーター、ＳＰ６プロモーター、ｌａｃオペレータープロモーター、ｔａｃプロモーター、ＳＶ４０後期プロモーター、ＳＶ４０初期プロモーター、ＲＳＶ−ＬＴＲプロモーター、ＣＭＶＩＥプロモーター、ＳＶ４０初期プロモーター、ＳＶ４０後期プロモーター、及びＣＭＶＩＥプロモーターが挙げられる。

「シグナルペプチド」及び「リーダー配列」は、本明細書で互換的に使用され、本明細書に記載のタンパク質のアミノ末端に結合することができるアミノ酸配列を指す。一般に、シグナルペプチド／リーダー配列は、タンパク質の局在化を指示する。本明細書で使用するシグナルペプチド／リーダー配列は、タンパク質を産生する細胞からタンパク質を分泌し易くすることが好ましい。シグナルペプチド／リーダー配列は、細胞からの分泌時に、タンパク質（しばしば成熟タンパク質と呼ばれる）の残余から切断されることが多い。シグナルペプチド／リーダー配列は、タンパク質のＮ末端に結合する。

本明細書で使用する、「ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件」は、例えば核酸の複合混合物において、第１の核酸配列（例えばプローブ）が第２の核酸配列（例えばターゲット）とハイブリダイズする際の条件を意味し得る。ストリンジェントな条件は配列に依存するため、状況によって異なる。ストリンジェントな条件は、所定のイオン強度ｐＨにおける特定の配列に対する融点（Ｔ_ｍ）より約５〜１０℃低くなるように選択される。Ｔ_ｍは、（規定のイオン強度、ｐＨ、及び核酸濃度下で）標的に相補的なプローブの５０％が、平衡状態で標的配列にハイブリダイズする温度である（標的配列は過剰に存在するので、Ｔ_ｍにおいて、プローブの５０％が平衡状態で占有される）。ストリンジェントな条件は、塩濃度が、ｐＨ７．０〜８．３において約１．０Ｍ未満のナトリウムイオン、例えば約０．０１〜１．０Ｍのナトリウムイオン濃度（または他の塩）であり、温度が、短いプローブ（例えば１０〜５０ヌクレオチド）では最低約３０℃、長いプローブ（例えば約５０ヌクレオチド超）では最低約６０℃であり得る。ストリンジェントな条件は、ホルムアミド等の不安定化剤の添加によって達成することもできる。選択的または特異的ハイブリダイゼーションの場合、陽性シグナルはバックグラウンドハイブリダイゼーションの少なくとも２〜１０倍であり得る。ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件例には、以下の条件が含まれる：５０％ホルムアミド、５倍ＳＳＣ、及び１％ＳＤＳ、４２℃でのインキュベート。または、５倍ＳＳＣ、１％ＳＤＳ、６５℃でのインキュベート、０．２倍ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ中６５℃での洗浄。

本明細書で互換的に使用する、「対象」及び「患者」は、任意の脊椎動物を指し、哺乳動物（例えば、ウシ、ブタ、ラクダ、ラマ、ウマ、ヤギ、ウサギ、ヒツジ、ハムスター、モルモット、ネコ、イヌ、ラット、及びマウス）、非ヒト霊長類（例えば、カニクイザルもしくはアカゲザル、チンパンジーなどのサル）、及びヒトが挙げられるが、これらに限定されない。いくつかの実施形態において、対象は、ヒトあるいは非ヒトであってもよい。対象あるいは患者は、他の形態の治療を受けていてもよい。

本明細書で使用する、「実質的に相補的」は、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５、１００個またはそれ以上のヌクレオチドまたはアミノ酸の領域に渡って、第１の配列が第２の配列の相補体と少なくとも６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、または９９％同一であること、あるいは、２つの配列がストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下でハイブリダイズすることを意味し得る。

本明細書で使用する、「実質的に同一」は、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５、１００、２００、３００、４００、５００、６００、７００、８００、９００、１０００、１１００個またはそれ以上のヌクレオチドまたはアミノ酸の領域に渡って、第１の配列と第２の配列が少なくとも６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、または９９％同一であること、あるいは、核酸に関して、第１の配列が第２の配列の相補体と実質的に相補的である場合を意味し得る。

本明細書で使用する、「合成抗体」は、本明細書に記載の組み換え核酸配列によってコードされ、対象内で生成される抗体を指す。

本明細書で使用する、「治療」または「治療する」は、疾患を予防するか、抑制するか、抑圧するかまたは完全に除去することで対象を疾患から防御することを意味することができる。疾患を予防することは、その疾患の発症前に対象に本発明のワクチンを投与することを含む。疾患を抑制することは、その疾患の誘導後でその疾患の臨床的出現前に、対象に本発明のワクチンを投与することを含む。疾患を抑圧することは、その疾患の臨床的出現後に、対象に本発明のワクチンを投与することを含む。

核酸に関して本明細書で使用する、「変異体」は、（ｉ）基準ヌクレオチド配列の一部分もしくは断片；（ｉｉ）基準ヌクレオチド配列もしくはその一部分の相補体；（ｉｉｉ）基準核酸もしくはその相補体と実質的に同一の核酸；または（ｉｖ）ストリンジェントな条件下で、基準核酸、その相補体、もしくはその実質的に同一の配列とハイブリダイズする核酸を意味し得る。

ペプチドまたはポリペプチドに関して使用する、「変異体」は、アミノ酸の挿入、欠失、または保存的置換によりアミノ酸配列が異なっているが、少なくとも１つの生物活性を保持しているものである。また、変異体は、基準タンパク質と実質的に同一のアミノ酸配列を有し、少なくとも１つの生物活性を保持するアミノ酸配列を有するタンパク質も意味し得る。アミノ酸の保存的置換、すなわち、あるアミノ酸を類似特性（例えば、荷電領域の親水性、程度、及び分布）の別のアミノ酸に置換することは、当技術分野では、通常は軽微な変化を伴うものと認識されている。こうした軽微な変化は、当技術分野で理解されているように、アミノ酸の疎水性親水性指標（ｈｙｄｒｏｐａｔｈｉｃｉｎｄｅｘ）を検討することにより部分的に特定できる。Ｋｙｔｅら，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１５７：１０５−１３２（１９８２）。アミノ酸の疎水性親水性指標は、その疎水性と電荷の考察に基づく。類似の疎水性親水性指標を有するアミノ酸は置換可能であり、その後もタンパク質機能を維持することが当技術分野において公知である。一態様において、±２の疎水性親水性指標を有するアミノ酸が置換される。アミノ酸の親水性を用いて、生物機能を保持したタンパク質となる置換を明らかにすることもできる。ペプチドに関連してアミノ酸の親水性を検討することにより、そのペプチドの局所的な最大平均親水性を計算でき、抗原性及び免疫原性と良く相関すると報告されている有用な尺度となる。米国特許第４，５５４，１０１号（この文献は、参照により全体が本明細書に組み込まれる）。当技術分野で理解されているように、類似の親水性値を有するアミノ酸を置換すると、例えば免疫原性等の生物活性を保持したペプチドが得られる。親水性値が互いに±２以内のアミノ酸を用いて、置換を実施できる。アミノ酸の疎水性指標と親水性値の両方とも、そのアミノ酸の特定の側鎖の影響を受ける。こうした知見と一致して、生物機能に適合するアミノ酸置換とは、アミノ酸の相対的類似性、特に当該アミノ酸の側鎖の相対的類似性に依存するものと理解されており、この相対的類似性は、疎水性、親水性、電荷、サイズ、その他の特性により明らかになる。

変異体は、完全遺伝子配列またはその断片の全長にわたって実質的に同一な核酸配列であってもよい。核酸配列は、遺伝子配列またはその断片の全長にわたって８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、または１００％同一であってもよい。変異体は、アミノ酸配列またはその断片の全長にわたって実質的に同一なアミノ酸配列であってもよい。アミノ酸配列は、アミノ酸配列またはその断片の全長にわたって８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、または１００％同一であってもよい。

本明細書で使用する、「ベクター」は、複製起点を含む核酸配列を意味し得る。ベクターは、プラスミド、バクテリオファージ、細菌人工染色体、または酵母人工染色体であってもよい。ベクターは、ＤＮＡベクターまたはＲＮＡベクターであってもよい。ベクターは、自己複製過剰染色体ベクターまたは宿主ゲノムに組み込むベクターのいずれかであってもよい。

本明細書中の数値範囲の記述について、同程度の精度でその間に入る各数が明示的に企図される。例えば、６〜９という範囲の場合、６及び９に加えて７及び８という数が企図され、６．０〜７．０という範囲の場合、６．０、６．１、６．２、６．３、６．４、６．５、６．６、６．７、６．８、６．９、及び７．０という数が明示的に企図される。

２．組成物
本発明は、抗体、その断片、その変異体、またはその組み合わせをコードする組み換え核酸配列を含む組成物に関する。組成物は、それを必要とする対象に投与された場合、対象内で合成抗体の生成をもたらし得る。合成抗体は、対象内に存在する標的分子（すなわち、抗原）に結合することができる。かかる結合は、抗原を中和し、別の分子、例えば、タンパク質または核酸によって抗原の認識をブロックし、抗原に免疫応答を引き起こすかまたは誘発することができる。

合成抗体は、組成物を投与された対象内の疾患を治療する、予防する、及び／または防御することができる。抗原に結合することで合成抗体は、組成物を投与された対象内の疾患を治療する、予防する、及び／または防御することができる。合成抗体は、組成物を投与された対象内の疾患生存率を促進することができる。合成抗体は、組成物を投与された対象内の疾患生存率を少なくとも約５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、または１００％もたらすことができる。他の実施形態において、合成抗体は、組成物を投与された対象内の疾患生存率を少なくとも約６５％、６６％、６７％、６８％、６９％、７０％、７１％、７２％、７３％、７４％、７５％、７６％、７７％、７８％、７９％、または８０％もたらすことができる。

組成物は、対象に組成物を投与後少なくとも約１時間、２時間、３時間、４時間、５時間、６時間、７時間、８時間、９時間、１０時間、１１時間、１２時間、１３時間、１４時間、１５時間、２０時間、２５時間、３０時間、３５時間、４０時間、４５時間、５０時間、または６０時間以内にその対象内で合成抗体の生成をもたらし得る。組成物は、対象に組成物を投与後少なくとも約１日、２日、３日、４日、５日、６日、７日、８日、９日、または１０日以内にその対象内で合成抗体の生成をもたらし得る。組成物は、対象に組成物を投与後約１時間〜約６日、約１時間〜約５日、約１時間〜約４日、約１時間〜約３日、約１時間〜約２日、約１時間〜約１日、約１時間〜約７２時間、約１時間〜約６０時間、約１時間〜約４８時間、約１時間〜約３６時間、約１時間〜約２４時間、約１時間〜約１２時間、または約１時間〜約６時間以内にその対象内で合成抗体の生成をもたらし得る。

組成物は、それを必要とする対象に投与された場合、抗原を投与された対象内で内因性抗体を生成するよりも迅速に対象内で合成抗体の生成をもたらし、体液性免疫応答を誘発することができる。組成物は、抗原を投与された対象内で内因性抗体を生成する少なくとも約１日、２日、３日、４日、５日、６日、７日、８日、９日、または１０日前に合成抗体の生成をもたらし、体液性免疫応答を誘発することができる。

本発明の組成物は、安全であることなど、有効な組成物に必要な特徴を有しているため、組成物は、病気または死を引き起こさず、病気に対して防御し、投与し易く、副作用もほとんどなく、生物学的安定性や投与量当たりの低コスト化をもたらすことができる。

３．組み換え核酸配列
上述したように、組成物は、組み換え核酸配列を含んでいてもよい。組み換え核酸配列は、抗体、その断片、その変異体、またはその組み合わせをコードし得る。以下により詳細に抗体について記載する。

組み換え核酸配列は、異種核酸配列であってもよい。組み換え核酸配列は、少なくとも１つの異種核酸配列または１つ以上の異種核酸配列を含んでいてもよい。

組み換え核酸配列は、最適化核酸配列であってもよい。かかる最適化により抗体の免疫原性を増大あるいは変化させることができる。最適化により転写及び／または翻訳も改善することができる。最適化とは、以下の１つ以上を含んでいてもよい：低ＧＣ含量リーダー配列により転写を増大させる；ｍＲＮＡ安定性及びコドン最適化；ｋｏｚａｋ配列（例えば、ＧＣＣＡＣＣ）を追加して翻訳を増大させる；シグナルペプチドをコードする免疫グロブリン（Ｉｇ）リーダー配列を追加；シス作用配列モチーフ（すなわち、内部ＴＡＴＡボックス）を可能な限り取り除く。

ａ．組み換え核酸配列構築物
組み換え核酸配列は、１つ以上の組み換え核酸配列構築物を含んでいてもよい。組み換え核酸配列構築物は、１つ以上の構成要素を含んでいてもよい。以下により詳細に記載する。

組み換え核酸配列構築物は、重鎖ポリペプチド、その断片、その変異体、またはその組み合わせをコードする異種核酸配列を含んでいてもよい。組み換え核酸配列構築物は、軽鎖ポリペプチド、その断片、その変異体、またはその組み合わせをコードする異種核酸配列を含んでいてもよい。組み換え核酸配列構築物は、プロテアーゼまたはペプチダーゼ切断部位をコードする異種核酸配列も含んでいてもよい。組み換え核酸配列構築物は、１つ以上のリーダー配列を含んでいてもよく、各リーダー配列は、シグナルペプチドをコードする。組み換え核酸配列構築物は、１つ以上のプロモーター、１つ以上のイントロン、１つ以上の転写終結領域、１つ以上の開始コドン、１つ以上の終結または終止コドン、及び／または１つ以上のポリアデニル化シグナルを含んでいてもよい。組み換え核酸配列構築物は、１つ以上のリンカーまたはタグ配列も含んでいてもよい。タグ配列は、ヘマグルチニン（ＨＡ）タグをコードすることができる。

（１）重鎖ポリペプチド
組み換え核酸配列構築物は、重鎖ポリペプチド、その断片、その変異体、またはその組み合わせをコードする異種核酸を含んでいてもよい。重鎖ポリペプチドは、可変重鎖（ＶＨ）領域及び／または少なくとも１つの定常重鎖（ＣＨ）領域を含んでいてもよい。少なくとも１つの定常重鎖領域は、定常重鎖領域１（ＣＨ１）、定常重鎖領域２（ＣＨ２）、定常重鎖領域３（ＣＨ３）、及び／またはヒンジ領域を含んでいてもよい。

いくつかの実施形態において、重鎖ポリペプチドは、ＶＨ領域及びＣＨ１領域を含んでいてもよい。他の実施形態において、重鎖ポリペプチドは、ＶＨ領域、ＣＨ１領域、ヒンジ領域、ＣＨ２領域、及びＣＨ３領域を含んでいてもよい。

重鎖ポリペプチドは、相補性決定領域（「ＣＤＲ」）セットを含んでいてもよい。ＣＤＲセットは、ＶＨ領域の３つの超可変領域を含んでいてもよい。重鎖ポリペプチドのＮ−末端から開始して、これらのＣＤＲは、それぞれ、「ＣＤＲ１」、「ＣＤＲ２」、及び「ＣＤＲ３」と称せられる。重鎖ポリペプチドのＣＤＲ１、ＣＤＲ２、及びＣＤＲ３は、抗原への結合または抗原の認識に寄与することができる。

（２）軽鎖ポリペプチド
組み換え核酸配列構築物は、軽鎖ポリペプチド、その断片、その変異体、またはその組み合わせをコードする異種核酸配列を含んでいてもよい。軽鎖ポリペプチドは、可変軽鎖（ＶＬ）領域及び／または定常軽鎖（ＣＬ）領域を含んでいてもよい。

軽鎖ポリペプチドは、相補性決定領域（「ＣＤＲ」）セットを含んでいてもよい。ＣＤＲセットは、ＶＬ領域の３つの超可変領域を含んでいてもよい。軽鎖ポリペプチドのＮ−末端から開始して、これらのＣＤＲは、それぞれ、「ＣＤＲ１」、「ＣＤＲ２」、及び「ＣＤＲ３」と称せられる。軽鎖ポリペプチドのＣＤＲ１、ＣＤＲ２、及びＣＤＲ３は、抗原への結合または抗原の認識に寄与することができる。

（３）プロテアーゼ切断部位
組み換え核酸配列構築物は、プロテアーゼ切断部位をコードする異種核酸配列を含んでいてもよい。プロテアーゼ切断部位は、プロテアーゼまたはペプチダーゼによって認識することができる。プロテアーゼは、エンドペプチダーゼまたはエンドプロテアーゼであってもよく、フリン、エラスターゼ、ＨｔｒＡ、カルパイン、トリプシン、キモトリプシン、トリプシン及びペプシンが挙げられるが、これらに限定されない。プロテアーゼは、フリンであってもよい。他の実施形態において、プロテアーゼは、セリンプロテアーゼ、トレオニンプロテアーゼ、システインプロテアーゼ、アスパラギン酸プロテアーゼ、メタロプロテアーゼ、グルタミン酸プロテアーゼ、または内部ペプチド結合を切断する（すなわち、Ｎ−末端またはＣ−末端ペプチド結合を切断しない）任意のプロテアーゼであってもよい。

プロテアーゼ切断部位は、切断効率を促進するかまたは増大させる１つ以上のアミノ酸配列を含んでいてもよい。１つ以上のアミノ酸配列は、別々のポリペプチドの形成または生成効率を促進するかまたは増大させることができる。１つ以上のアミノ酸配列は、２Ａペプチド配列を含んでいてもよい。

（４）リンカー配列
組み換え核酸配列構築物は、１つ以上のリンカー配列を含んでいてもよい。リンカー配列は、本明細書に記載の１つ以上の構成要素を空間的に分離もしくは連結することができる。他の実施形態において、リンカー配列は、２つ以上のポリペプチドを空間的に分離もしくは連結するアミノ酸配列をコードすることができる。

（５）プロモーター
組み換え核酸配列構築物は、１つ以上のプロモーターを含んでいてもよい。１つ以上のプロモーターは、遺伝子発現を推進し、かつ、調節することが可能な任意のプロモーターであってもよい。かかるプロモーターは、ＤＮＡ依存ＲＮＡポリメラーゼ経由の転写に要するシス作用配列要素である。遺伝子発現の指示に用いられるプロモーターは、特定の用途に依って選択される。プロモーターは、組み換え核酸配列構築物の転写開始部から、これがその天然の設定における転写開始部位からの距離であるのとほぼ同じ距離に配置される。しかしながら、この距離の変動は、プロモーター機能の喪失を伴うことなく、適合されることができる。

プロモーターは、重鎖ポリペプチド及び／または軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列に機能的に連結していてもよい。プロモーターは、真核細胞中での発現に対して有効であることを示すプロモーターであってもよい。コード配列に機能的に連結したプロモーターは、ＣＭＶプロモーター、ＳＶ４０初期プロモーター及びＳＶ４０後期プロモーターなどのシミアンウイルス４０（ＳＶ４０）由来のプロモーター、マウス乳腺癌ウイルス（ＭＭＴＶ）プロモーター、ウシ免疫不全ウイルス（ＢＩＶ）長末端反復（ＬＴＲ）プロモーターなどのヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）プロモーター、モロニーウイルスプロモーター、トリ白血病ウイルス（ＡＬＶ）プロモーター、ＣＭＶ前初期プロモーター、エプステインバーウイルス（ＥＢＶ）プロモーター、またはラウス肉腫ウイルス（ＲＳＶ）プロモーターなどのサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターでよい。プロモーターは、ヒトアクチン、ヒトミオシン、ヒトヘモグロビン、ヒト筋肉クレアチン、ヒトポリヘドリン、またはヒトメタロチオネインなどのヒト遺伝子からのプロモーターであってもよい。

プロモーターは、構成的プロモーターまたは誘導的プロモーターであってもよく、後者は、宿主細胞がいくつか特定の外的刺激にさらされた場合にのみ転写を開始する。多細胞生物の場合、プロモーターは、特定の組織または臓器もしくは特定の発生段階に特異的であってもよい。プロモーターは、筋肉または皮膚特異的プロモーターなどの組織特異的プロモーターでよく、天然もしくは合成であってもよい。かかるプロモーターの例は、米国特許公開公報ＵＳ２００４０１７５７２７に記載され、その内容は全体として本明細書に組み入れられる。

プロモーターは、エンハンサーと関連していてもよい。エンハンサーは、コード配列の上流に位置してもよい。エンハンサーは、ヒトアクチン、ヒトミオシン、ヒトヘモグロビン、ヒト筋肉クレアチン、または、ＣＭＶ、ＦＭＤＶ、ＲＳＶ、またはＥＢＶなどのウイルスエンハンサーであってもよい。ポリヌクレオチド機能エンハンサーは、米国特許第５，５９３，９７２号、同第５，９６２，４２８号、及びＷ０９４／０１６７３７に記載されており、それぞれの内容は参照により全体が組み入れられる。

（６）イントロン
組み換え核酸配列構築物は、１つ以上のイントロンを含んでいてもよい。各イントロンは、機能的スプライスドナー部位及び機能的スプライスアクセプター部位を含んでいてもよい。イントロンは、スプライシングのエンハンサーを含んでいてもよい。イントロンは、効率のよいスプライシングに必要な１つ以上のシグナルを含んでいてもよい。

（７）転写終結領域
組み換え核酸配列構築物は、１つ以上の転写終結領域を含んでいてもよい。転写終結領域は、効率よい終結を提供するためにコード配列の下流であってもよい。転写終結領域は、上述のプロモーターと同じ遺伝子から得てもよいし、あるいは、１つ以上の異なる遺伝子から得てもよい。

（８）開始コドン
組み換え核酸配列構築物は、１つ以上の開始コドンを含んでいてもよい。開始コドンは、コード配列の上流に位置してもよい。開始コドンは、コード配列と共にインフレームであってもよい。開始コドンは、効率のよい翻訳開始に必要な１つ以上のシグナルと関連していてもよく、例えば、リボソーム結合部位と関連していてもよいが、これに限定されない。

（９）終結コドン
組み換え核酸配列構築物は、１つ以上の終結または終止コドンを含んでいてもよい。終結コドンは、コード配列の下流であってもよい。終結コドンは、コード配列と共にインフレームであってもよい。終結コドンは、効率のよい翻訳終結に必要な１つ以上のシグナルと関連していてもよい。

（１０）ポリアデニル化シグナル
組み換え核酸配列構築物は、１つ以上のポリアデニル化シグナルを含んでいてもよい。ポリアデニル化シグナルは、効率のよい転写産物のポリアデニル化に必要な１つ以上のシグナルを含んでいてもよい。ポリアデニル化シグナルは、コード配列の下流に位置してもよい。ポリアデニル化シグナルは、ＳＶ４０ポリアデニル化シグナル、ＬＴＲポリアデニル化シグナル、ウシ成長ホルモン（ｂＧＨ）ポリアデニル化シグナル、ヒト成長ホルモン（ｈＧＨ）ポリアデニル化シグナル、またはヒトβ−グロビンポリアデニル化シグナルであってもよい。ＳＶ４０ポリアデニル化シグナルは、ｐＣＥＰ４プラスミド（インビトロジェン、サンディエゴ、カリフォルニア州）からのポリアデニル化シグナルであってもよい。

（１１）リーダー配列
組み換え核酸配列構築物は、１つ以上のリーダー配列を含んでいてもよい。リーダー配列は、シグナルペプチドをコードすることができる。シグナルペプチドは、免疫グロブリン（Ｉｇ）シグナルペプチドであってもよく、例えば、ＩｇＧシグナルペプチド及びＩｇＥシグナルペプチドであるが、これらに限定されない。

ｂ．組み換え核酸配列構築物の配置構成
上述したように、組み換え核酸配列は、１つ以上の組み換え核酸配列構築物を含んでいてもよく、各々の組み換え核酸配列構築物は、１つ以上の構成要素を含んでいてもよい。１つ以上の構成要素は、先に詳しく説明した通りである。１つ以上の構成要素は、組み換え核酸配列構築物に含まれる場合、互いに任意の順序で配置してもよい。いくつかの実施形態において、１つ以上の構成要素は、後述の組み換え核酸配列構築物に配置される。

（１）配置構成１
一つの配置構成において、第１の組み換え核酸配列構築物は、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列を含んでいてもよく、第２の組み換え核酸配列構築物は、軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列を含んでいてもよい。

第１の組み換え核酸配列構築物は、ベクターに配置してもよい。第２の組み換え核酸配列構築物は、第２もしくは別々のベクターに配置してもよい。組み換え核酸配列構築物をベクターに配置することは、以下により詳細に記載する。

第１の組み換え核酸配列構築物は、プロモーター、イントロン、転写終結領域、開始コドン、終結コドン、及び／またはポリアデニル化シグナルも含んでいてもよい。第１の組み換え核酸配列構築物は、リーダー配列をさらに含んでもよく、該リーダー配列は、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列の上流（または５’）に位置する。従って、リーダー配列よってコードされるシグナルペプチドは、ペプチド結合によって重鎖ポリペプチドに連結する。

第２の組み換え核酸配列構築物は、プロモーター、開始コドン、終結コドン、及びポリアデニル化シグナルも含んでいてもよい。第２の組み換え核酸配列構築物は、リーダー配列をさらに含んでもよく、該リーダー配列は、軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列の上流（または５’）に位置する。従って、リーダー配列よってコードされるシグナルペプチドは、ペプチド結合によって軽鎖ポリペプチドに連結する。

従って、配置構成１の一例としては、ＶＨ及びＣＨ１を含む重鎖ポリペプチドをコードする第１のベクター（従って、第１の組み換え核酸配列構築物）と、ＶＬ及びＣＬを含む軽鎖ポリペプチドをコードする第２のベクター（従って、第２の組み換え核酸配列構築物）とが挙げられる。配置構成１の第２例としては、ＶＨ、ＣＨ１、ヒンジ領域、ＣＨ２、及びＣＨ３を含む重鎖ポリペプチドをコードする第１のベクター（従って、第１の組み換え核酸配列構築物）と、ＶＬ及びＣＬを含む軽鎖ポリペプチドをコードする第２のベクター（従って、第２の組み換え核酸配列構築物）とが挙げられる。

（２）配置構成２
第２の配置構成において、前記組み換え核酸配列構築物は、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列及び軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列を含んでいてもよい。重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列は、軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列の上流（または５’）に位置してもよい。あるいは、軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列は、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列の上流（または５’）に位置してもよい。

組み換え核酸配列構築物は、ベクターに配置してもよく、以下により詳細に記載する。

組み換え核酸配列構築物は、プロテアーゼ切断部位及び／またはリンカー配列をコードする異種核酸配列を含んでいてもよい。組み換え核酸配列構築物に含まれる場合、プロテアーゼ切断部位をコードする異種核酸配列は、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列と軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列との間に位置してもよい。従って、プロテアーゼ切断部位により発現時に重鎖ポリペプチド及び軽鎖ポリペプチドを別々のポリペプチドに分離することができる。他の実施形態において、リンカー配列が組み換え核酸配列構築物に含まれる場合、リンカー配列は、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列と、軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列との間に位置してもよい。

組み換え核酸配列構築物は、プロモーター、イントロン、転写終結領域、開始コドン、終結コドン、及び／またはポリアデニル化シグナルも含んでいてもよい。組み換え核酸配列構築物は、１つ以上のプロモーターを含んでいてもよい。組み換え核酸配列構築物は、１つのプロモーターが、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列と関連し、かつ、第２のプロモーターが、軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列と関連するように２つのプロモーターを含んでいてもよい。さらに別の実施形態において、組み換え核酸配列構築物は、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列及び軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列と関連する１つのプロモーターを含んでいてもよい。

組み換え核酸配列構築物は、２つのリーダー配列をさらに含んでもよく、このうち、第１のリーダー配列は、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列の上流（または５’）に位置し、第２のリーダー配列は、軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列の上流（または５’）に位置する。従って、第１のリーダー配列によってコードされる第１のシグナルペプチドは、ペプチド結合によって重鎖ポリペプチドに連結し、第２のリーダー配列によってコードされる第２のシグナルペプチドは、ペプチド結合によって軽鎖ポリペプチドに連結する。

従って、配置構成２の一例としては、ＶＨ及びＣＨ１を含む重鎖ポリペプチドと、ＶＬ及びＣＬを含む軽鎖ポリペプチドとをコードするベクター（従って、組み換え核酸配列構築物）が挙げられ、ここで、リンカー配列は、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列と、軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列との間に位置する。

配置構成２の第２例としては、ＶＨ及びＣＨ１を含む重鎖ポリペプチドと、ＶＬ及びＣＬを含む軽鎖ポリペプチドとをコードするベクター（従って、組み換え核酸配列構築物）が挙げられ、ここで、プロテアーゼ切断部位をコードする異種核酸配列は、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列と、軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列との間に位置する。

配置構成２の第３例としては、ＶＨ、ＣＨ１、ヒンジ領域、ＣＨ２、及びＣＨ３を含む重鎖ポリペプチドと、ＶＬ及びＣＬを含む軽鎖ポリペプチドとをコードするベクター（従って、組み換え核酸配列構築物）が挙げられ、ここで、リンカー配列は、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列と、軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列との間に位置する。

配置構成２の第４例としては、ＶＨ、ＣＨ１、ヒンジ領域、ＣＨ２、及びＣＨ３を含む重鎖ポリペプチドと、ＶＬ及びＣＬを含む軽鎖ポリペプチドとをコードするベクター（従って、組み換え核酸配列構築物）が挙げられ、ここで、プロテアーゼ切断部位をコードする異種核酸配列は、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列と、軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列との間に位置する。

ｃ．組み換え核酸配列構築物からの発現
上述したように、組み換え核酸配列構築物は、１つ以上の構成要素の中で、重鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列及び／または軽鎖ポリペプチドをコードする異種核酸配列を含んでいてもよい。従って、組み換え核酸配列構築物は、重鎖ポリペプチド及び／または軽鎖ポリペプチドを発現し易くすることができる。

上述の配置構成１を用いた場合、第１の組み換え核酸配列構築物は、重鎖ポリペプチドを発現し易くすることができ、第２の組み換え核酸配列構築物は、軽鎖ポリペプチドを発現し易くすることができる。上述の配置構成２を用いた場合、組み換え核酸配列構築物は、重鎖ポリペプチド及び軽鎖ポリペプチドを発現し易くすることができる。

発現時、例えば、限定されないが、細胞、生物、または哺乳動物内において、重鎖ポリペプチド及び軽鎖ポリペプチドを合成抗体に組み立てることができる。特に、重鎖ポリペプチド及び軽鎖ポリペプチドは、抗原に結合することが可能な合成抗体をアセンブリがもたらすように、互いに相互作用することができる。他の実施形態において、重鎖ポリペプチド及び軽鎖ポリペプチドは、本明細書に記載のように組み立てられていない抗体に比べて、より免疫原性である合成抗体をアセンブリがもたらすように、互いに相互作用することができる。さらに他の実施形態において、重鎖ポリペプチド及び軽鎖ポリペプチドは、抗原に対して免疫応答を引き起こすかもしくは誘導することが可能な合成抗体をアセンブリがもたらすように、互いに相互作用することができる。

ｄ．ベクター
上述の組み換え核酸配列構築物は、１つ以上のベクターに配置し得る。１つ以上のベクターは、複製起点を含んでいてもよい。１つ以上のベクターは、プラスミド、バクテリオファージ、細菌人工染色体、または酵母人工染色体であってもよい。１つ以上のベクターは、自己複製過剰染色体ベクターまたは宿主ゲノムに組み込むベクターのいずれかであってもよい。

１つ以上のベクターは、異種発現構築物であってもよく、これは、一般に、特定の遺伝子をターゲット細胞を導入するのに使用されるプラスミドである。発現ベクターがいったん細胞中に入ると、組み換え核酸配列構築物によってコードされる重鎖ポリペプチド及び／または軽鎖ポリペプチドは、細胞性−転写及び翻訳機械であるリボソーム複合体によって産生される。１つ以上のベクターは、大量の安定したメッセンジャーＲＮＡ、従って、大量のタンパク質を発現することができる。

（１）発現ベクター
１つ以上のベクターは、環状プラスミドまたは線状核酸であってもよい。環状プラスミド及び線状核酸は、適切な対象細胞中で特定のヌクレオチド配列の発現を誘導することができる。組み換え核酸配列構築物を含む１つ以上のベクターは、キメラであってもよい。これは、その構成要素のうちの少なくとも１つが、他の構成要素のうちの少なくとも１つに対して異種であることを意味する。

（２）プラスミド
１つ以上のベクターは、プラスミドであってもよい。プラスミドは、組み換え核酸配列構築物を備えた細胞をトランスフェクトするのに有用であり得る。プラスミドは、組み換え核酸配列構築物を対象に導入するのに有用であり得る。プラスミドは、調節配列も含んでもよく、これは、プラスミドを投与された細胞中での遺伝子発現に十分に適していてもよい。

プラスミドは、プラスミドを染色体外に維持し、かつ、細胞中でプラスミドの複数のコピーを産生するために哺乳類の複製起点も含んでいてもよい。プラスミドは、インビトロジェン（サンディエゴ、カリフォルニア州）からのｐＶＡＸＩ、ｐＣＥＰ４、またはｐＲＥＰ４であって、これらは、エプステイン・バー・ウイルスの複製起点と、核抗原ＥＢＮＡ−１のコード領域とを含んでいてもよく、統合しないで高いコピーのエピソーム複製を生じる。プラスミドのバックボーンは、ｐＡＶ０２４２であってもよい。プラスミドは、複製欠損アデノウイルス５型（Ａｄ５）プラスミドであってもよい。

プラスミドは、ｐＳＥ４２０（インビトロジェン、サンディエゴ、カリフォルニア州）であってもよく、それを大腸菌（Ｅ．Ｃｏｌｉ）中でのタンパク質産生のために用いてもよい。プラスミドは、ｐＹＥＳ２（インビトロジェン、サンディエゴ、カリフォルニア州）であってもよく、それを酵母のサッカロマイセス・セレビシエ株でのタンパク質産生に用いてもよい。プラスミドは、ＭＡＸＢＡＣ（商標）完全バキュロウイルス発現系（インビトロジェン、サンディエゴ、カリフォルニア州）のものであってもよく、それを昆虫細胞中でのタンパク質産生に用いてもよい。プラスミドは、ｐｃＤＮＡＩまたはｐｃＤＮＡ３（インビトロジェン、サンディエゴ、カリフォルニア州）であってもよく、それを哺乳類細胞、例えばチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞中でのタンパク質産生に用いてもよい。

（３）環状及び線状ベクター
１つ以上のベクターは、環状プラスミドであってもよく、これは、標的細胞を統合によって細胞性ゲノムに形質転換してもよく、あるいは、染色体外に存在してもよい（例えば、複製起点をもつ自律複製プラスミド）。ベクターは、ｐＶＡＸ、ｐｃＤＮＡ３．０、ｐｒｏｖａｘ、または、組み換え核酸配列構築物によってコードされる重鎖ポリペプチド及び／または軽鎖ポリペプチドを発現可能な任意の他の発現ベクターであってもよい。

また、本明細書で提供されるのは、線状核酸または線状発現カセット（「ＬＥＣ」）であり、これは、電気穿孔を介して対象に効率よく送達され、かつ、組み換え核酸配列構築物によってコードされる重鎖ポリペプチド及び／または軽鎖ポリペプチドを発現することができる。ＬＥＣは、任意のリン酸バックボーンを欠いた任意の線状ＤＮＡであってもよい。ＬＥＣは、任意の抗生物質抵抗性遺伝子及び／またはリン酸バックボーンをを含んでいなくてもよい。ＬＥＣは、所望の遺伝子発現に関連しない他の核酸配列を含んでいなくてもよい。

ＬＥＣは、線状にすることが可能な任意のプラスミド由来であってもよい。プラスミドは、組み換え核酸配列構築物によってコードされる重鎖ポリペプチド及び／または軽鎖ポリペプチドを発現可能であってもよい。プラスミドは、ｐＮＰ（プエルトリコ／３４）またはｐＭ２（ニューカレドニア／９９）であってもよい。プラスミドは、ＷＬＶ００９、ｐＶＡＸ、ｐｃＤＮＡ３．０、ｐｒｏｖａｘ、または、組み換え核酸配列構築物によってコードされる重鎖ポリペプチド及び／または軽鎖ポリペプチドを発現可能な任意の他の発現ベクターであってもよい。

ＬＥＣは、ｐｃｒＭ２であってもよい。ＬＥＣは、ｐｃｒＮＰであってもよい。ｐｃｒＮＰ及びｐｃｒＭＲは、それぞれｐＮＰ（プエルトリコ／３４）及びｐＭ２（ニューカレドニア／９９）由来であってもよい。

（４）ベクターを調製する方法
本明細書で提供されるのは、組み換え核酸配列構築物が配置されている１つ以上のベクターを調製する方法である。最終的なサブクローニングステップの後、ベクターを、当該技術分野で公知の方法を用いて、大規模発酵タンクで細胞培養物に接種するのに用いることができる。

他の実施形態において、最終的なサブクローニングステップの後、ベクターを１つ以上の電気穿孔（ＥＰ）装置で用いることができる。ＥＰ装置を以下により詳細に記載する。

１つ以上のベクターは、公知の装置及び技術の組み合わせを利用して配合または製造することができるが、好ましくはそれらは、２００７年３月２３日に出願された許諾対象である同時係属中の米国特許仮出願第６０／９３９，７９２号に記載されたプラスミド製造技術を用いて製造される。幾つかの例において、本明細書に記載のＤＮＡプラスミドは、１０ｍｇ／ｍＬ以上の濃度で配合させることができる。その製造技術は、米国特許出願第６０／９３９７９２号に記載されたものに加えて、２００７年７月３日発行の許諾対象特許である米国特許第７，２３８，５２２号に記載されたものをはじめとする、当業者に概ね公知の様々な装置及びプロトコルも含み、組み入れている。先に参照された出願及び特許である、米国特許出願第６０／９３９，７９２号及び米国特許第７，２３８，５２２号は、それぞれ全体が本明細書に組み入れられる。

４．抗体
上述したように、組み換え核酸配列は、抗体、その断片、その変異体、またはその組み合わせをコードすることができる。抗体は、抗原（以下により詳細に記載する）に結合するかまたは該抗原と反応することができる。

抗体は、重鎖及び軽鎖相補性決定領域（「ＣＤＲ」）セットを含んでいてもよく、それぞれは、ＣＤＲに対する支持体をもたらし、互いにＣＤＲの空間関係を規定する、重鎖及び軽鎖フレームワーク（「ＦＲ」）セットの間に介在する。ＣＤＲセットは、重鎖または軽鎖Ｖ領域の３つの超可変領域を含んでいてもよい。重鎖または軽鎖のＮ−末端から開始して、これらの領域は、それぞれ、「ＣＤＲ１」、「ＣＤＲ２」、及び「ＣＤＲ３」と称せられる。従って、抗原結合部位は、各々が重鎖及び軽鎖Ｖ領域からなるＣＤＲセットを含む６つのＣＤＲを含んでいてもよい。

タンパク質分解酵素パパインは、ＩｇＧ分子を優先的に切断して、いくつかの断片を生じさせ、そのうちの２つ（Ｆ（ａｂ）断片）は、各々無傷抗原結合部位を含む共有結合ヘテロ二量体を含む。酵素ペプシンは、ＩｇＧ分子を切断して、双方の抗原結合部位を含むＦ（ａｂ’）_２断片を含めたいくつかの断片を供することができる。従って、抗体は、ＦａｂまたはＦ（ａｂ’）_２であってもよい。Ｆａｂは、重鎖ポリペプチド及び軽鎖ポリペプチドを含んでいてもよい。Ｆａｂの重鎖ポリペプチドは、ＶＨ領域及びＣＨ１領域を含んでいてもよい。Ｆａｂの軽鎖は、ＶＬ領域及びＣＬ領域を含んでいてもよい。

抗体は、免疫グロブリン（Ｉｇ）であってもよい。Ｉｇは、例えば、ＩｇＡ、ＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、及びＩｇＧであってもよい。免疫グロブリンは、重鎖ポリペプチド及び軽鎖ポリペプチドを含んでいてもよい。免疫グロブリンの重鎖ポリペプチドは、ＶＨ領域、ＣＨ１領域、ヒンジ領域、ＣＨ２領域、及びＣＨ３領域を含んでいてもよい。免疫グロブリンの軽鎖ポリペプチドは、ＶＬ領域及びＣＬ領域を含んでいてもよい。

抗体は、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体であってもよい。抗体は、キメラ抗体、一本鎖抗体、親和性成熟抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体、または完全ヒト抗体であってもよい。ヒト化抗体は、非ヒト種由来の１つ以上の相補性決定領域（ＣＤＲ）及びヒト免疫グロブリン分子由来のフレームワーク領域を有する所望の抗原に結合する非ヒト種由来の抗体であってもよい。

抗体は、以下でより詳細に記載されるように、二重特異性抗体であってもよい。抗体は、やはり以下でより詳細に記載されるように、二官能性抗体であってもよい。

上述のように、抗体は、組成物を対象に投与した際に対象内で生成することができる。抗体は、対象内で半減期を有してもよい。いくつかの実施形態において、抗体は、対象内でその半減期を延長させるかまたは短縮させるように修飾されてもよい。かかる修飾は、以下でより詳細に記載される。

抗体は、以下でより詳細に記載されるように、脱フコシル化されてもよい。

抗体は、以下でより詳細に記載されるように、抗原と関連した疾患の抗体依存性感染増強（ＡＤＥ）を低減または予防するように修飾されてもよい。

ａ．二重特異性抗体
組み換え核酸配列は、二重特異性抗体、その断片、その変異体、またはその組み合わせをコードすることができる。二重特異性抗体は、２つの抗原、例えば、以下でより詳細に記載される抗原の２つに結合するかまたは該抗原と反応することができる。二重特異性抗体は、本明細書に記載の抗体の２つの断片からなってもよいため、二重特異性抗体は、２つの所望の標的分子に結合するかまたは該標的分子と反応することができる。該標的分子は、抗原（以下により詳細に記載する）、リガンド（例えば、受容体のリガンド）、受容体（例えば、受容体上のリガンド結合部位）、リガンド受容体複合体、及びマーカー（例えば、癌マーカー）を含み得る。

ｂ．二官能性抗体
組み換え核酸配列は、二官能性抗体、その断片、その変異体、またはその組み合わせをコードすることができる。二官能性抗体は、以下に記載される抗原に結合するかまたは該抗原と反応することができる。二官能性抗体は、抗原の認識及び抗原への結合を超えて、抗体にさらなる機能性を付与するように修飾されてもよい。かかる修飾は、因子Ｈまたはその断片へのカップリングであってもよいが、これに限定されない。因子Ｈは、補体活性化の可溶性調節因子であるため、補体介在性溶解（ＣＭＬ）を介して免疫応答に寄与し得る。

ｃ．抗体半減期の延長
上述のように、抗体は、対象中の抗体の半減期を延長させるかまたは短縮させるように修飾されてもよい。修飾は、対象の血清中の抗体の半減期を延長させるかまたは短縮させることができる。

修飾は、抗体の定常領域に存在してもよい。修飾は、抗体の定常領域における１つ以上のアミノ酸置換であってもよく、これは、１つ以上のアミノ酸置換を含有しない抗体の半減期と比べて抗体の半減期を延長させる。修飾は、抗体のＣＨ２ドメインにおける１つ以上のアミノ酸置換であってもよく、これは、１つ以上のアミノ酸置換を含有しない抗体の半減期と比べて抗体の半減期を延長させる。

いくつかの実施形態において、定常領域における１つ以上のアミノ酸置換には、定常領域におけるメチオニン残基をチロシン残基に置換すること、定常領域におけるセリン残基をスレオニン残基に置換すること、定常領域におけるスレオニン残基をグルタミン酸残基に置換すること、またはその任意の組み合わせを含んでもよく、それにより抗体の半減期を延長させる。

他の実施形態において、定常領域における１つ以上のアミノ酸置換には、ＣＨ２ドメインにおけるメチオニン残基をチロシン残基に置換すること、ＣＨ２ドメインにおけるセリン残基をスレオニン残基に置換すること、ＣＨ２ドメインにおけるスレオニン残基をグルタミン酸残基に置換すること、またはその任意の組み合わせを含んでもよく、それにより抗体の半減期を延長させる。

ＲＳＶ
ｄ．脱フコシル化
組み換え核酸配列は、フコシル化されていない抗体（すなわち、脱フコシル化された抗体または非フコシル化抗体）、その断片、その変異体、またはその組み合わせをコードすることができる。フコシル化には、分子へのフコース糖の付加、例えば、Ｎ−グリカン、Ｏ−グリカン及び糖脂質へのフコースの付着が含まれる。従って、脱フコシル化された抗体では、フコースは、定常領域の炭水化物鎖に付着していない。次に、このフコシル化の欠如は、フコシル化抗体と比較して、抗体によるＦｃγＲＩＩＩａ結合及び抗体指向性細胞傷害性（ＡＤＣＣ）活性を改善し得る。従って、いくつかの実施形態において、非フコシル化抗体は、フコシル化抗体と比較して、ＡＤＣＣ活性の増加を呈し得る。

抗体は、抗体のフコシル化を防ぐかまたは阻害するように修飾されてもよい。いくつかの実施形態において、そのような修飾抗体は、非修飾抗体と比較して、ＡＤＣＣ活性の増加を呈し得る。修飾は、重鎖、軽鎖、またはその組み合わせであってもよい。修飾は、重鎖の１つ以上のアミノ酸置換、軽鎖の１つ以上のアミノ酸置換、またはその組み合わせであってもよい。

ｅ．ＡＤＥ応答の低減
抗体は、抗原と関連する疾患の抗体依存性感染増強（ＡＤＥ）を低減または防止するが、抗原を中和するように修飾されてもよい。例えば、抗体は、以下でより詳細に記載されるＤＥＮＶと関連する疾患のＡＤＥを低減または防止するが、ＤＥＮＶを中和するように修飾されてもよい。

いくつかの実施形態において、抗体は、ＦｃｙＲ１ａへの抗体の結合を低減または防止する１つ以上のアミノ酸置換を含むように修飾されてもよい。１つ以上のアミノ酸置換は、抗体の定常領域であってもよい。１つ以上のアミノ酸置換は、抗体の定常領域におけるロイシン残基のアラニン残基への置換（すなわち、ＬＡ、ＬＡ突然変異、またはＬＡ置換としても本明細書で知られる）を含んでもよい。１つ以上のアミノ酸置換は、抗体の定常領域における２つのロイシン残基の各々のアラニン残基への置換（ＬＡＬＡ、ＬＡＬＡ突然変異、またはＬＡＬＡ置換としても本明細書で知られる）を含んでもよい。ＬＡＬＡ置換の存在は、抗体がＦｃｙＲ１ａに結合することを防止または遮断する場合があるため、修飾抗体は、抗体と関連する疾患のＡＤＥを高めるかまたは引き起こすことはないが、抗原を中和する。

５．抗原
合成抗体は、抗原またはその断片あるいはその変異体に向けられるものである。抗原は、核酸配列、アミノ酸配列、またはその組み合わせであってもよい。核酸配列は、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ｃＤＮＡ、その変異体、その断片、またはその組み合わせであってもよい。アミノ酸配列は、タンパク質、ペプチド、その変異体、その断片、またはその組み合わせであってもよい。

抗原は、任意の数の生物、例えば、ウイルス、寄生虫、細菌、真菌、または哺乳動物由来であってもよい。抗原は、自己免疫疾患、アレルギー、または喘息と関連し得る。他の実施形態において、抗原は、癌、ヘルペス、インフルエンザ、Ｂ型肝炎、Ｃ型肝炎、ヒト・パピローマウイルス（ＨＰＶ）、またはヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）と関連し得る。

いくつかの実施形態において、抗原は外来である。いくつかの実施形態において、抗原は自己抗原である。

ａ．外来抗原
いくつかの実施形態において、抗原は外来である。外来抗原は、体内に導入された場合、免疫応答を刺激することが可能な任意の非自己物質（すなわち、対象の外部由来）である。

（１）ウイルス抗原
外来抗原は、ウイルス抗原、またはその断片、またはその変異体であってもよい。ウイルス抗原は、以下の科：アデノウイルス科、アレナウイルス科、ブニヤウイルス科、カリシウイルス科、コロナウイルス科、フィロウイルス科、ヘパドナウイルス科、ヘルペスウイルス科、オルトミクソウイルス科、パポバウイルス科、パラミクソウイルス科、パルボウイルス科、ピコルナウイルス科、ポックスウイルス科、レオウイルス科、レトロウイルス科、ラブドウイルス科、またはトガウイルス科の一つからであってもよい。ウイルス抗原は、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、チクングニヤウイルス（ＣＨＩＫＶ）、デング熱ウイルス、パピローマウイルス、例えば、ヒトパピローマウイルス（ＨＰＶ）、ポリオウイルス、肝炎ウイルス、例えば、Ａ型肝炎ウイルス（ＨＡＶ）、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）、Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）、Ｄ型肝炎ウイルス（ＨＤＶ）、Ｅ型肝炎ウイルス（ＨＥＶ）、天然痘ウイルス（大痘瘡及び小痘瘡）、ワクシニアウイルス、インフルエンザウイルス、ライノウイルス、ウマ脳炎ウイルス、風疹ウイルス、黄熱病ウイルス、ノーウォークウイルス、Ａ型肝炎ウイルス、ヒトＴ−細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ−Ｉ）、毛様細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ−ＩＩ）、カリフォルニア脳炎ウイルス、ハンタウイルス（出血熱）、狂犬病ウイルス、エボラ出血熱ウイルス、マールブルグ・ウイルス、麻疹ウイルス、ムンプスウイルス、呼吸器合胞体ウイルス（ＲＳＶ）、１型単純ヘルペスウイルス（口腔ヘルペス）、２型単純ヘルペスウイルス（陰部ヘルペス）、帯状疱疹（水痘帯状疱疹、ａ．ｋ．ａ．、水痘）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）（例えば、ヒトＣＭＶ）、エプステイン・バー・ウイルス（ＥＢＶ）、フラビウイルス、口蹄疫ウイルス、ラッサ熱ウイルス、アレナウイルス、または発がん性ウイルス由来であってもよい。

（ａ）ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）抗原
ウイルス抗原は、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）ウイルス由来であってもよい。いくつかの実施形態において、ＨＩＶ抗原は、サブタイプＡエンベロープタンパク質、サブタイプＢエンベロープタンパク質、サブタイプＣエンベロープタンパク質、サブタイプＤエンベロープタンパク質、サブタイプＢＮｅｆ−Ｒｅｖタンパク質、ＧａｇサブタイプＡ、Ｂ、Ｃ、またはＤタンパク質、ＭＰｏｌタンパク質、核酸、またはＥｎｖＡ、ＥｎｖＢ、ＥｎｖＣ、ＥｎｖＤ、ＢＮｅｆ−Ｒｅｖ、Ｇａｇ、またはその任意の組み合わせのアミノ酸配列であってもよい。

ＨＩＶに特異的な合成抗体は、配列番号３の核酸配列によってコードされる配列番号４８のアミノ酸配列と配列番号４の核酸配列によってコードされる配列番号４９のアミノ酸配列とを含むＦａｂ断片を含んでいてもよい。合成抗体は、配列番号６の核酸配列によってコードされる配列番号４６のアミノ酸配列及び配列番号７の核酸配列によってコードされる配列番号４７のアミノ酸配列を含んでいてもよい。Ｆａｂ断片は、配列番号５０の核酸配列によってコードされる配列番号５１のアミノ酸配列を含む。Ｆａｂは、配列番号５２の核酸配列によってコードされる配列番号５３のアミノ酸配列を含んでいてもよい。

ＨＩＶに特異的な合成抗体は、配列番号５のアミノ酸配列を含むＩｇを含んでいてもよい。Ｉｇは、配列番号６２の核酸配列によってコードされる配列番号１のアミノ酸配列を含んでいてもよい。Ｉｇは、配列番号６３の核酸配列によってコードされる配列番号２のアミノ酸配列を含んでいてもよい。Ｉｇは、配列番号５４の核酸配列によってコードされる配列番号５５のアミノ酸配列及び配列番号５６の核酸配列によってコードされる配列番号５７のアミノ酸配列を含んでいてもよい。

（ｂ）チクングンヤ熱ウイルス
ウイルス抗原は、チクングニヤウイルス由来であってもよい。チクングニヤウイルスは、トガウイルス科のアルファウイルス属に属する。チクングニヤウイルスは、ヤブカ属などの感染蚊の刺咬によってヒトに伝染する。

ＣＨＩＫＶに特異的な合成抗体は、配列番号５８の核酸配列によってコードされる配列番号５９のアミノ酸配列と配列番号６０の核酸配列によってコードされる配列番号６１のアミノ酸配列とを含むＦａｂ断片を含んでいてもよい。

（ｃ）デングウイルス
ウイルス抗原は、デングウイルス由来であってもよい。デングウイルス抗原は、ウイルス粒子を形成する３つのタンパク質またはポリペプチド（Ｃ、ｐｒＭ、及びＥ）の１つであってもよい。デングウイルス抗原は、ウイルスの複製に関わる７つの他のタンパク質またはポリペプチド（ＮＳ１、ＮＳ２ａ、ＮＳ２ｂ、ＮＳ３、ＮＳ４ａ、ＮＳ４ｂ、ＮＳ５）の１つであってもよい。デングウイルスは、ＤＥＮＶ−１、ＤＥＮＶ−２、ＤＥＮＶ−３、及びＤＥＮＶ−４を含む、ウイルスの５つの株または血清型の１つであってもよい。抗原は、複数のデングウイルス抗原の任意の組み合わせであってもよい。

デングウイルスに特異的な合成抗体は、配列番号４４の核酸配列によってコードされる配列番号４５のアミノ酸配列を含むＩｇを含んでいてもよい。

（ｄ）肝炎抗原
ウイルス抗原は、肝炎ウイルス抗原（すなわち、肝炎抗原）、またはその断片、またはその変異体を含んでいてもよい。肝炎抗原は、Ａ型肝炎ウイルス（ＨＡＶ）、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）、Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）、Ｄ型肝炎ウイルス（ＨＤＶ）、及び／またはＥ型肝炎ウイルス（ＨＥＶ）の１つ以上由来の抗原または免疫原であってもよい。

肝炎抗原は、ＨＡＶ由来の抗原であってもよい。肝炎抗原は、ＨＡＶカプシドタンパク質、ＨＡＶ非構造タンパク質、その断片、その変異体、またはその組み合わせであってもよい。

肝炎抗原は、ＨＣＶ由来の抗原であってもよい。肝炎抗原は、ＨＣＶヌクレオカプシドタンパク質（すなわち、コアタンパク質）、ＨＣＶエンベロープタンパク質（例えば、Ｅ１及びＥ２）、ＨＣＶ非構造タンパク質（例えば、ＮＳ１、ＮＳ２、ＮＳ３、ＮＳ４ａ、ＮＳ４ｂ、ＮＳ５ａ、及びＮＳ５ｂ）、その断片、その変異体、またはその組み合わせであってもよい。

肝炎抗原は、ＨＤＶ由来の抗原であってもよい。肝炎抗原は、ＨＤＶデルタ抗原、その断片、またはその変異体であってもよい。

肝炎抗原は、ＨＥＶ由来の抗原であってもよい。肝炎抗原は、ＨＥＶカプシドタンパク質、その断片、またはその変異体であってもよい。

肝炎抗原は、ＨＢＶ由来の抗原であってもよい。肝炎抗原は、ＨＢＶコアタンパク質、ＨＢＶ表面タンパク質、ＨＢＶＤＮＡポリメラーゼ、Ｘ遺伝子によってコードされるＨＢＶタンパク質、その断片、その変異体、またはその組み合わせであってもよい。肝炎抗原は、ＨＢＶ遺伝子Ａ型コアタンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｂ型コアタンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｃ型コアタンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｄ型コアタンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｅ型コアタンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｆ型コアタンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｇ型コアタンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｈ型コアタンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ａ型表面タンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｂ型表面タンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｃ型表面タンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｄ型表面タンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｅ型表面タンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｆ型表面タンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｇ型表面タンパク質、ＨＢＶ遺伝子Ｈ型表面タンパク質、その断片、その変異体、またはその組み合わせであってもよい。

いくつかの実施形態において、肝炎抗原は、ＨＢＶ遺伝子Ａ型、ＨＢＶ遺伝子Ｂ型、ＨＢＶ遺伝子Ｃ型、ＨＢＶ遺伝子Ｄ型、ＨＢＶ遺伝子Ｅ型、ＨＢＶ遺伝子Ｆ型、ＨＢＶ遺伝子Ｇ型、またはＨＢＶ遺伝子Ｈ型由来の抗原であってもよい。

（ｅ）ヒト・パピローマウイルス（ＨＰＶ）抗原
ウイルス抗原は、ＨＰＶ由来の抗原を含んでいてもよい。ＨＰＶ抗原は、子宮頸癌、直腸癌、及び／またはその他の癌を引き起こすＨＰＶ型１６、１８、３１、３３、３５、４５、５２、及び５８由来であってもよい。ＨＰＶ抗原は、性器疣贅を引き起こし、かつ、頭部癌及び頸部癌の原因としても知られるＨＰＶ型６及び１１由来であってもよい。

ＨＰＶ抗原は、各ＨＰＶ型からのＨＰＶＥ６またはＥ７領域であってもよい。例えば、ＨＰＶ型１６（ＨＰＶ１６）において、ＨＰＶ１６抗原は、ＨＰＶ１６Ｅ６抗原、ＨＰＶ１６Ｅ７抗原、断片、変異体、またはその組み合わせを含んでいてもよい。同様に、ＨＰＶ抗原は、ＨＰＶ６Ｅ６及び／またはＥ７、ＨＰＶ１１Ｅ６及び／またはＥ７、ＨＰＶ１８Ｅ６及び／またはＥ７、ＨＰＶ３１Ｅ６及び／またはＥ７、ＨＰＶ３３Ｅ６及び／またはＥ７、ＨＰＶ５２Ｅ６及び／またはＥ７、ＨＰＶ５８Ｅ６及び／またはＥ７、断片、変異体、またはその組み合わせであってもよい。

（ｆ）ＲＳＶ抗原
ウイルス抗原は、ＲＳＶ抗原を含んでいてもよい。ＲＳＶ抗原は、ヒトＲＳＶ融合タンパク質（本明細書では、「ＲＳＶＦ」、「ＲＳＶＦタンパク質」、及び「Ｆタンパク質」と称することもある）、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。ヒトＲＳＶ融合タンパク質は、ＲＳＶサブタイプＡ及びＢの間で保存されてもよい。ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶ長株（ジェンバンク（ＧｅｎＢａｎｋ）ＡＡＸ２３９９４．１）由来のＲＳＶＦタンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶＡ２株（ジェンバンクＡＡＢ５９８５８．１）由来のＲＳＶＦタンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶＦタンパク質の単量体、二量体、三量体、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。

ＲＳＶＦタンパク質は、前融合形態または後融合形態であってもよい。ＲＳＶＦの後融合形態は、免疫動物中で高い中和抗体力価を引き起こし、該動物をＲＳＶ暴露から防御する。

ＲＳＶ抗原は、ヒトＲＳＶ付着糖タンパク質（本明細書では、「ＲＳＶＧ」、「ＲＳＶＧタンパク質」、及び「Ｇタンパク質」と称することもある）、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。ヒトＲＳＶＧタンパク質は、ＲＳＶサブタイプＡ及びＢ間で異なる。抗原は、ＲＳＶ長株（ジェンバンクＡＡＸ２３９９３）由来のＲＳＶＧタンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶサブタイプＢ単離体Ｈ５６０１、ＲＳＶサブタイプＢ単離体Ｈ１０６８、ＲＳＶサブタイプＢ単離体Ｈ５５９８、ＲＳＶサブタイプＢ単離体Ｈ１１２３由来のＲＳＶＧタンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。

他の実施形態において、ＲＳＶ抗原は、ヒトＲＳＶ非構造タンパク質１（「ＮＳ１タンパク質」）、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。例えば、ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶ長株（ジェンバンクＡＡＸ２３９８７．１）由来のＲＳＶＮＳ１タンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶ非構造タンパク質２（「ＮＳ２タンパク質」）、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。例えば、ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶ長株（ジェンバンクＡＡＸ２３９８８．１）由来のＲＳＶＮＳ２タンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。さらに、ＲＳＶ抗原は、ヒトＲＳＶヌクレオカプシド（「Ｎ」）タンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。例えば、ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶ長株（ジェンバンクＡＡＸ２３９８９．１）由来のＲＳＶＮタンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。ＲＳＶ抗原は、ヒトＲＳＶリン（「Ｐ」）タンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。例えば、ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶ長株（ジェンバンクＡＡＸ２３９９０．１）由来のＲＳＶＰタンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。ＲＳＶ抗原は、ヒトＲＳＶ基質（「Ｍ」）タンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。例えば、ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶ長株（ジェンバンクＡＡＸ２３９９１．１）由来のＲＳＶＭタンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。

さらに別の実施形態において、ＲＳＶ抗原は、ヒトＲＳＶ疎水性低分子（「ＳＨ」）タンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。例えば、ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶ長株（ジェンバンクＡＡＸ２３９９２．１）由来のＲＳＶＳＨタンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。ＲＳＶ抗原は、ヒトＲＳＶ基質２−１（「Ｍ２−１」）タンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。例えば、ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶ長株（ジェンバンクＡＡＸ２３９９５．１）由来のＲＳＶＭ２−１タンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。さらに、ＲＳＶ抗原は、ヒトＲＳＶ基質２−２（「Ｍ２−２」）タンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。例えば、ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶ長株（ジェンバンクＡＡＸ２３９９７．１）由来のＲＳＶＭ２−２タンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。ＲＳＶ抗原は、ヒトＲＳＶポリメラーゼＬ（「Ｌ」）タンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。例えば、ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶ長株（ジェンバンクＡＡＸ２３９９６．１）由来のＲＳＶＬタンパク質、またはその断片あるいはその変異体であってもよい。

別の実施形態において、ＲＳＶ抗原は、ＮＳ１、ＮＳ２、Ｎ、Ｐ、Ｍ、ＳＨ、Ｍ２−１、Ｍ２−２、またはＬタンパク質の最適化アミノ酸配列を有し得る。ＲＳＶ抗原は、ヒトＲＳＶタンパク質または組み換え抗原であってもよく、これは、ヒトＲＳＶゲノムによってコードされるタンパク質のいずれか一つである。

他の実施形態において、ＲＳＶ抗原は、ＲＳＶ長株由来のＲＳＶＦタンパク質、ＲＳＶ長株由来のＲＳＶＧタンパク質、最適化アミノ酸ＲＳＶＧアミノ酸配列、ＲＳＶ長株のヒトＲＳＶゲノム、最適化アミノ酸ＲＳＶＦアミノ酸配列、ＲＳＶ長株由来のＲＳＶＮＳ１タンパク質、ＲＳＶ長株由来のＲＳＶＮＳ２タンパク質、ＲＳＶ長株由来のＲＳＶＮタンパク質、ＲＳＶ長株由来のＲＳＶＰタンパク質、ＲＳＶ長株由来のＲＳＶＭタンパク質、ＲＳＶ長株由来のＲＳＶＳＨタンパク質、ＲＳＶ長株由来のＲＳＶＭ２−１タンパク質、ＲＳＶ長株由来のＲＳＶＭ２−２タンパク質、ＲＳＶ長株由来のＲＳＶＬタンパク質、ＲＳＶサブタイプＢ単離体Ｈ５６０１由来のＲＳＶＧタンパク質、ＲＳＶサブタイプＢ単離体Ｈ１０６８由来のＲＳＶＧタンパク質、ＲＳＶサブタイプＢ単離体Ｈ５５９８由来のＲＳＶＧタンパク質、ＲＳＶサブタイプＢ単離体Ｈ１１２３由来のＲＳＶＧタンパク質、またはその断片、またはその変異体であってもよいが、これらに限定されない。

（ｇ）インフルエンザ抗原
ウイルス抗原は、インフルエンザウイルス由来の抗原を含んでいてもよい。インフルエンザ抗原は、１つ以上のインフルエンザ血清型に対して哺乳動物中で免疫応答を引き起こすことができるものである。抗原は、全長翻訳産物ＨＡ０、サブユニットＨＡ１、サブユニットＨＡ２、その変異体、その断片、またはその組み合わせを含んでいてもよい。インフルエンザヘマグルチニン抗原は、複数株のＡ型インフルエンザ血清型Ｈ１、複数株のＡ型インフルエンザ血清型Ｈ２由来であっても、異なる複数株セットのＡ型インフルエンザ血清型Ｈ１由来のハイブリッド配列であっても、あるいは、複数株のＢ型インフルエンザ由来であってもよい。インフルエンザヘマグルチニン抗原は、Ｂ型インフルエンザ由来であってもよい。

インフルエンザ抗原は、免疫応答が誘発される特定のインフルエンザ免疫原に対して効果的な少なくとも１つの抗原エピトープを含んでいてもよい。抗原は、無傷インフルエンザウイルス内に存在する免疫原性部位及びエピトープの全てのレパートリーを供し得る。抗原は、血清型Ｈ１または血清型Ｈ２の複数のＡ型インフルエンザウイルス株など、１つの血清型の複数のＡ型インフルエンザウイルス株からのヘマグルチニン抗原配列由来であってもよい。抗原は、２つの異なるヘマグルチニン抗原配列またはその一部分の組み合わせ由来であるハイブリッドヘマグルチニン抗原配列であってもよい。２つの異なるヘマグルチニン抗原配列の各々は、血清型Ｈ１の複数のＡ型インフルエンザウイルス株など、１つの血清型の複数のＡ型インフルエンザウイルス株の異なるセット由来であってもよい。抗原は、複数のＢ型インフルエンザウイルス株からのヘマグルチニン抗原配列由来であるヘマグルチニン抗原配列であってもよい。

いくつかの実施形態において、インフルエンザ抗原は、Ｈ１ＨＡ、Ｈ２ＨＡ、Ｈ３ＨＡ、Ｈ５ＨＡ、またはＢＨＡ抗原であってもよい。

（ｈ）エボラウイルス
ウイルス抗原は、エボラウイルス由来であってもよい。エボラウイルス疾患（ＥＶＤ）またはエボラ出血熱（ＥＨＦ）としては、５つの公知のエボラウイルス、ブンディブギョウイルス（ＢＤＢＶ）、エボラウイルス（ＥＢＯＶ）、スーダンウイルス（ＳＵＤＶ）、及びタイフォレストウイルス（ＴＡＦＶ、コートジボワールエボラウイルス（象牙海岸エボラウイルス、ＣＩＥＢＯＶ）とも呼ばれる）の任意の４つが挙げられる。

（２）細菌性抗原
外来抗原は、細菌性抗原またはその断片あるいはその変異体であってもよい。細菌は、以下の門：アシドバクテリウム門、アクチノバクテリア門、アクウィフェクス門、バクテロイデス門、カルディセリクム門、クラミジア門、クロロビウム門、クロロフレクサス門、クリシオゲネス門、シアノバクテリア門、デフェリバクター門、デイノコックス・テルムス門、ディクチオグロムス門、エルシミクロビウム門、フィブロバクター門、フィルミクテス門、フソバクテリウム門、ゲマティモナス門、レンティスファエラ門、ニトロスピラ門、プランクトミケス門、プロテオバクテリア門、スピロヘータ門、シネルギステス門、テネリクテス門、サーモデスルフォバクテリア門、テルモトガ門、及びウェルコミクロビウム門の任意の１つ由来であってもよい。

細菌は、グラム陽性菌またはグラム陰性菌であってもよい。細菌は、好気性細菌または嫌気性細菌であってもよい。細菌は、独立栄養細菌または従属栄養細菌であってもよい。細菌は、中温菌、好中菌、好極限菌、好酸菌、好アルカリ菌、好熱菌、低温菌、好塩菌、または好濃菌であってもよい。

細菌は、炭疽菌、抗生物質耐性菌、病原菌、食中毒菌、感染性菌、サルモネラ菌、ブドウ球菌、連鎖球菌属細菌、または破傷風菌であってもよい。細菌は、抗酸菌、破傷風菌、ペスト菌、炭疽菌、メチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ）、またはクロストリジウム−ディフィシレ菌であってもよい。細菌は、結核菌であってもよい。

（ａ）結核菌抗原
細菌性抗原は、結核菌抗原（すなわち、ＴＢ抗原またはＴＢ免疫原）、またはその断片、またはその変異体であってもよい。ＴＢ抗原は、ＴＢ抗原のＡｇ８５科、例えば、Ａｇ８５Ａ及びＡｇ８５Ｂ由来であってもよい。ＴＢ抗原は、ＴＢ抗原のＥｓｘ科、例えば、ＥｓｘＡ、ＥｓｘＢ、ＥｓｘＣ、ＥｓｘＤ、ＥｓｘＥ、ＥｓｘＦ、ＥｓｘＨ、ＥｓｘＯ、ＥｓｘＱ、ＥｓｘＲ、ＥｓｘＳ、ＥｓｘＴ、ＥｓｘＵ、ＥｓｘＶ、及びＥｓｘＷ由来であってもよい。

（３）寄生虫抗原
外来抗原は、寄生虫抗原またはその断片あるいはその変異体であってもよい。寄生虫は、原虫、寄生蠕虫、または外部寄生虫であってもよい。寄生蠕虫（すなわち、蠕虫）は、扁虫（例えば、吸虫及び条虫）、鉤頭虫、または回虫（例えば、蟯虫）であってもよい。外部寄生虫は、シラミ、ノミ、マダニ、及びダニであってもよい。

寄生虫は、以下の疾患のうちの任意の１つの原因となる任意の寄生虫であってもよい：アカントアメーバ角膜炎、アメーバ症、回虫症、バベシア症、バランチジウム症、回虫症（Ｂａｙｌｉｓａｓｃａｒｉａｓｉｓ）、シャーガス病、肝吸虫症、コクリオミイヤ症、クリプトスポリジウム症、裂頭条虫症、メジナ虫症、エキノコックス症、象皮病、蟯虫症、肝蛭症、肥大吸虫症、フィラリア症、ランブル鞭毛虫症、顎口虫症、膜様条虫症、イソスポーラ症、片山熱、リーシュマニア症、ライム病、マラリア、メタゴニムス症、ハエ蛆症、オンコセルカ症、シラミ寄生症、疥癬、住血吸虫症、睡眠病、糞線虫症、条虫症、トキソカラ症、トキソプラズマ症、旋毛虫病、及び鞭虫症。

寄生虫は、アカントアメーバ、アニサキス、回虫（Ａｓｃａｒｉｓｌｕｍｂｒｉｃｏｉｄｅｓ）、ウマバエ、大腸バランチジウム、トコジラミ、条虫綱（条虫）、ツツガムシ、ラセンウジバエ、赤痢アメーバ、肝蛭、ランブル鞭毛虫、鉤虫、リーシュマニア、鼻腔舌虫、肝吸虫、ロア糸状虫、肺吸虫（肺吸虫）、蟯虫、熱帯熱マラリア原虫、住血吸虫、糞線虫、ダニ、条虫、トキソプラズマ原虫、トリパノソーマ、鞭虫、またはバンクロフト糸状虫であってもよい。

（ａ）マラリア抗原
外来抗原は、マラリア抗原（すなわち、ＰＦ抗原またはＰＦ免疫原）、またはその断片、またはその変異体であってもよい。抗原は、マラリアの原因となる寄生虫由来であってもよい。マラリア病原性の寄生虫は、熱帯熱マラリア原虫であってもよい。熱帯熱マラリア原虫抗原は、スポロゾイト周囲（ＣＳ）抗原を含んでいてもよい。

いくつかの実施形態において、マラリア抗原は、熱帯熱マラリア原虫免疫原ＣＳ；ＬＳＡ１；ＴＲＡＰ；ＣｅｌＴＯＳ；及びＡｍａ１の１つであってもよい。免疫原は、全長タンパク質またはその免疫原性断片であってもよい。

他の実施形態において、マラリア抗原は、ＳＳＰ２とも呼ばれるＴＲＡＰであってもよい。さらに別の実施形態において、マラリア抗原は、Ａｇ２とも呼ばれ、かつ、高度に保存されたプラスモジウム抗原であるＣｅｌＴＯＳであってもよい。別の実施形態において、マラリア抗原は、高度に保存されたプラスモジウム抗原であるＡｍａ１であってもよい。いくつかの実施形態において、マラリア抗原は、ＣＳ抗原であってもよい。

他の実施形態において、マラリア抗原は、本明細書に記載のＰＦタンパク質の２つ以上の組み合わせを含む融合タンパク質であってもよい。例えば、融合タンパク質は、互いに隣接して直接結合しているか、スペーサーと結合しているか、あるいは、１つ以上のアミノ酸の間で結合しているＣＳ免疫原、ＣｏｎＬＳＡ１免疫原、ＣｏｎＴＲＡＰ免疫原、ＣｏｎＣｅｌＴＯＳ免疫原、及びＣｏｎＡｍａ１免疫原の２つ以上を含んでいてもよい。いくつかの実施形態において、融合タンパク質は、２つのＰＦ免疫原を含み、いくつかの実施形態において、融合タンパク質は、３つのＰＦ免疫原を含み、いくつかの実施形態において、融合タンパク質は、４つのＰＦ免疫原を含み、いくつかの実施形態において、融合タンパク質は、５つのＰＦ免疫原を含む。２つのＰＦ免疫原を持つ融合タンパク質は、ＣＳ及びＬＳＡ１；ＣＳ及びＴＲＡＰ；ＣＳ及びＣｅｌＴＯＳ；ＣＳ及びＡｍａ１；ＬＳＡ１及びＴＲＡＰ；ＬＳＡ１及びＣｅｌＴＯＳ；ＬＳＡ１及びＡｍａ１；ＴＲＡＰ及びＣｅｌＴＯＳ；ＴＲＡＰ及びＡｍａ１；または、ＣｅｌＴＯＳ及びＡｍａ１を含んでいてもよい。３つのＰＦ免疫原を持つ融合タンパク質は、ＣＳ、ＬＳＡ１、及びＴＲＡＰ；ＣＳ、ＬＳＡ１、及びＣｅｌＴＯＳ；ＣＳ、ＬＳＡ１、及びＡｍａ１；ＬＳＡ１、ＴＲＡＰ、及びＣｅｌＴＯＳ；ＬＳＡ１、ＴＲＡＰ、及びＡｍａ１；または、ＴＲＡＰ、ＣｅｌＴＯＳ、及びＡｍａ１を含んでいてもよい。４つのＰＦ免疫原を持つ融合タンパク質は、ＣＳ、ＬＳＡ１、ＴＲＡＰ、及びＣｅｌＴＯＳ；ＣＳ、ＬＳＡ１、ＴＲＡＰ、及びＡｍａ１；ＣＳ、ＬＳＡ１、ＣｅｌＴＯＳ、及びＡｍａ１；ＣＳ、ＴＲＡＰ、ＣｅｌＴＯＳ、及びＡｍａ１；または、ＬＳＡ１、ＴＲＡＰ、ＣｅｌＴＯＳ、及びＡｍａ１を含んでいてもよい。５つのＰＦ免疫原を持つ融合タンパク質は、ＣＳまたはＣＳ−ａｌｔ、ＬＳＡ１、ＴＲＡＰ、ＣｅｌＴＯＳ、及びＡｍａ１を含んでいてもよい。

（４）真菌抗原
外来抗原は、真菌抗原またはその断片あるいはその変異体であってもよい。真菌は、アスペルギルス種、ブラストミセス・デルマチチジス、カンジダ属酵母（例えば、カンジダ・アルビカンス）、コクシジオイデス、クリプトコックス・ネオフォルマンス、クリプトコッカス・ガッティ、皮膚糸状菌、フザリウム属種、ヒストプラスマ‐カプスラーツム、ケカビ亜門、ニューモシスチス・イロベチ、スポロトリックス‐シェンキィ、エクセロヒルム、またはクラドスポリウムであってもよい。

ｂ．自己抗原
いくつかの実施形態において、抗原は、自己抗原である。自己抗原は、免疫応答を刺激することが可能な対象自身の体の構成要素であってもよい。いくつかの実施形態において、自己抗原は、対象が疾患状態、例えば、自己免疫疾患でなければ、免疫応答を誘発しない。

自己抗原としては、サイトカイン、ＨＩＶ及びデング熱を含む上に列挙したウイルスに対する抗体、癌の進行または発生に影響を及ぼす抗原、細胞表面受容体、または膜貫通タンパク質が挙げられるが、これらに限定されない。

（１）ＷＴ−１
自己抗原は、ウィルムス腫瘍抑制遺伝子１（ＷＴ１）、その断片、その変異体、またはその組み合わせであってもよい。ＷＴ１は、プロリン／グルタミンリッチＤＮＡ−結合領域をＮ−末端に、かつ、４つの亜鉛フィンガーモチーフをＣ−末端に含む転写因子である。ＷＴ１は、泌尿生殖器系の正常な発達に関与しており、多くの因子、例えば、腫瘍抑制因子として知られるｐ５３、及び細胞毒性薬による治療後に多数の部位でＷＴ１を切断するセリンプロテアーゼＨｔｒＡ２と相互作用する。ＷＴ１の突然変異により、腫瘍または癌形成、例えば、ＷＴ１を発現するウィルムス腫瘍または腫瘍がもたらされる。

（２）ＥＧＦＲ
自己抗原は、上皮成長増殖因子受容体（ＥＧＦＲ）、またはその断片あるいはその変異体を含んでいてもよい。ＥＧＦＲ（ＥｒｂＢ−１及びＨＥＲ１とも呼ばれる）は、細胞外タンパク質リガンドの上皮細胞増殖因子ファミリー（ＥＧＦファミリー）メンバーの細胞表面受容体である。ＥＧＦＲは、受容体のＥｒｂＢファミリーメンバーであり、４つの密接に関連した受容体チロシン・キナーゼであるＥＧＦＲ（ＥｒｂＢ−１）、ＨＥＲ２／ｃ−ｎｅｕ（ＥｒｂＢ−２）、Ｈｅｒ３（ＥｒｂＢ−３）、及びＨｅｒ４（ＥｒｂＢ−４）を含む。ＥＧＦＲ発現または活性に影響を及ぼす突然変異は癌になり得る。

抗原は、ＥｒｂＢ−２抗原を含んでいてもよい。Ｅｒｂ−２（ヒト上皮成長増殖因子受容体２）は、Ｎｅｕ、ＨＥＲ２、ＣＤ３４０（分化３４０のクラスター）、またはｐ１８５としても知られ、ＥＲＢＢ２遺伝子によってコードされる。この遺伝子の増幅または過剰発現が、ある侵攻性の乳癌の発生及び進行に役割を果たすことが実証されている。乳癌の女性の約２５〜３０％において、ＥＲＢＢ２遺伝子で遺伝子変化が起きており、腫瘍細胞の表面上でＨＥＲ２の産生量が増している。ＨＥＲ２の過剰発現により急速な細胞分裂が促進されるため、ＨＥＲ２は腫瘍細胞をマークする。

ＨＥＲ２に特異的な合成抗体は、配列番号４０の核酸配列によってコードされる配列番号４１のアミノ酸配列及び配列番号４２の核酸配列によってコードされる配列番号４３のアミノ酸配列を含むＦａｂ断片を含んでいてもよい。

（３）コカイン
自己抗原は、コカイン受容体抗原であってもよい。コカイン受容体は、ドーパミン輸送体を含む。

（４）ＰＤ−１
自己抗原は、プログラム死１（ＰＤ−１）を含んでいてもよい。プログラム死１（ＰＤ−１）及びそのリガンドであるＰＤ−Ｌ１及びＰＤ−Ｌ２は、Ｔ細胞活性化、耐性、及び免疫病理学間のバランスを調節する抑制シグナルを送達する。ＰＤ−１は、膜貫通領域及び細胞内尾部に続く細胞外ＩｇＶ領域を含む２８８アミノ酸細胞表面タンパク質分子である。

（５）４−１ＢＢ
自己抗原は、４−１ＢＢリガンドを含んでいてもよい。４−１ＢＢリガンドは、ＴＮＦ上科に属する２型の膜貫通糖タンパク質である。４−１ＢＢリガンドは、活性化Ｔリンパ球上で発現されてもよい。４−１ＢＢは、活性化誘発性Ｔ細胞共刺激分子である。４−１ＢＢ経由のシグナル伝達により、生存遺伝子が上方制御され、細胞分裂が高められ、サイトカイン産生が誘発され、Ｔ細胞の活性化誘発性細胞死が防止される。

（６）ＣＴＬＡ４
自己抗原は、ＣＤ１５２（分化１５２のクラスター）としても知られるＣＴＬＡ−４（細胞毒性Ｔリンパ球抗原４）を含んでいてもよい。ＣＴＬＡ−４は、Ｔ細胞の表面上に見られるタンパク質受容体であり、抗原への細胞性免疫攻撃をもたらす。抗原は、細胞外Ｖ領域、膜貫通領域、細胞質尾部、またはその組み合わせなどのＣＴＬＡ−４の断片であってもよい。

（７）ＩＬ−６
自己抗原は、インターロイキン６（ＩＬ−６）を含んでいてもよい。ＩＬ−６は、限定されないが、糖尿病、アテローム性動脈硬化症、鬱病、アルツハイマー病、全身性エリテマトーデス、多発性骨髄腫、癌、ベーチェット病、及び関節リウマチを含む多くの疾患において炎症及び自己免疫プロセスを刺激する。

（８）ＭＣＰ−１
自己抗原は、単球走化性タンパク質−１（ＭＣＰ−１）を含んでいてもよい。ＭＣＰ−１は、ケモカイン（Ｃ−Ｃモチーフ）リガンド２（ＣＣＬ２）または小誘導性サイトカインＡ２とも呼ばれる。ＭＣＰ−１は、ＣＣケモカインファミリーに属するサイトカインである。ＭＣＰ−１は、組織傷害または感染のいずれかによって産生された炎症部位に、単球、記憶Ｔ細胞、及び樹枝状細胞を補充する。

（９）アミロイドベータ
自己抗原は、アミロイドベータ（Ａβ）またはその断片あるいはその変異体を含んでいてもよい。Ａβ抗原は、Ａβ（Ｘ−Ｙ）ペプチドを含み、Ｘ及びＹ両方を含むヒト配列Ａβタンパク質のアミノ酸位置Ｘからアミノ酸位置Ｙのアミノ酸配列であり、特に、アミノ酸配列ＤＡＥＦＲＨＤＳＧＹＥＶＨＨＱＫＬＶＦＦＡＥＤＶＧＳＮＫＧＡＩＩＧＬＭＶＧＧＶＶＩＡＴＶＩＶＩ（アミノ酸位置１〜４７に対応；ヒトクエリ配列）のアミノ酸位置Ｘからアミノ酸位置Ｙのアミノ酸配列またはその変異体である。Ａβ抗原は、Ａβ（Ｘ−Ｙ）ポリペプチドのＡβポリペプチドを含んでいてもよく、Ｘは、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、３１、または３２であってもよく、Ｙは、４７、４６、４５、４４、４３、４２、４１、４０、３９、３８、３７、３６、３５、３４、３３、３２、３１、３０、２９、２８、２７、２６、２５、２４、２３、２２、２１、２０、１９、１８、１７、１６、または１５であってもよい。Ａβポリペプチドは、少なくとも１５、少なくとも１６、少なくとも１７、少なくとも１８、少なくとも１９、少なくとも２０、少なくとも２１、少なくとも２２、少なくとも２３、少なくとも２４、少なくとも２５、少なくとも３０、少なくとも３５、少なくとも３６、少なくとも３７、少なくとも３８、少なくとも３９、少なくとも４０、少なくとも４１、少なくとも４２、少なくとも４３、少なくとも４４、少なくとも４５、または少なくとも４６アミノ酸である断片を含んでいてもよい。

（１０）ＩＰ−１０
自己抗原は、インターフェロン（ＩＦＮ）ガンマ誘発タンパク質１０（ＩＰ−１０）を含んでいてもよい。ＩＰ−１０は、小誘導性サイトカインＢ１０またはＣ−Ｘ−Ｃモチーフケモカイン１０（ＣＸＣＬ１０）としても知られる。ＣＸＣＬ１０は、ＩＦＮ−γに応答して、単球、内皮細胞、及び線維芽細胞などのいくつかの細胞型から分泌される。

（１１）ＰＳＭＡ
自己抗原は、前立腺特異的膜抗原（ＰＳＭＡ）を含んでいてもよい。ＰＳＭＡは、グルタミン酸カルボキシペプチダーゼＩＩ（ＧＣＰＩＩ）、Ｎ−アセチル−Ｌ−アスパルチル−Ｌ−グルタミン酸ペプチダーゼＩ（ＮＡＡＬＡＤａｓｅＩ）、ＮＡＡＧペプチダーゼ、または葉酸加水分解酵素（ＦＯＬＨ）としても知られる。ＰＭＳＡは、前立腺癌細胞によって高発現される内在性膜タンパク質である。

いくつかの実施形態において、ＰＳＭＡ（抗ＰＳＭＡ抗体）に対する抗体をコードする組み換え核酸配列は、以下でより詳細に記載し、かつ、図６３に示す配置構成２における組み換え核酸配列構築物を含む、組み換え核酸配列であってもよい。図６３は、プロモーター、リーダー配列、ＩｇＧ重鎖、切断部位、第２のリーダー配列、ＩｇＧ軽鎖、及びポリ（Ａ）尾を含む組み換え核酸配列構築物を示す。

さらに他の実施形態において、組み換え核酸配列によってコードされる抗ＰＳＭＡ抗体は、本明細書で記載されるように修飾されてもよい。１つのそのような修飾は、実施例で示したように、市販の抗体と比較してＡＤＣＣ活性の増加を呈した、脱フコシル化された抗体である。修飾は、重鎖、軽鎖、またはその組み合わせであってもよい。修飾は、重鎖の１つ以上のアミノ酸置換、軽鎖の１つ以上のアミノ酸置換、またはその組み合わせであってもよい。

ＰＳＭＡに特異的であり、かつ、フコシル化されないように修飾された抗体は、配列番号７９に記載の核酸配列によってコードされてもよい。配列番号７９は、配列番号８０に記載のアミノ酸配列をコードする。

ｃ．他の抗原
いくつかの実施形態において、抗原は、外来抗原及び／または自己抗原以外の抗原である。

（ａ）ＨＩＶ−１ＶＲＣ０１
他の抗原は、ＨＩＶ−１ＶＲＣ０１であってもよい。ＨＩＶ−１ＶＣＲ０１は、ＨＩＶの中和ＣＤ４結合部位抗体である。ＨＩＶ−１ＶＣＲ０１は、ＨＩＶ−１のｇｐ１２０ループＤ、ＣＤ４結合ループ、及びＶ５領域内をはじめとするＨＩＶ−１の一部分と接触する。

（ｂ）ＨＩＶ−１ＰＧ９
他の抗原は、ＨＩＶ−１ＰＧ９であってもよい。ＨＩＶ−１ＰＧ９は、ＨＩＶ（ＨＩＶ−１）エンベロープ（Ｅｎｖ）糖タンパク質（ｇｐ）三量体に優先的に結合し、かつ、ウイルスを広く中和するグリカン依存ヒト抗体の拡大ファミリーの創立メンバーである。

（ｃ）ＨＩＶ−１４Ｅ１０
他の抗原は、ＨＩＶ−１４Ｅ１０であってもよい。ＨＩＶ−１４Ｅ１０は、中和抗ＨＩＶ抗体である。ＨＩＶ−１４Ｅ１０は、ＨＩＶ−１の膜近接外部領域（ＭＰＥＲ）にマップした線状エピトープに対するものであり、ｇｐ４１細胞外ドメインのＣ末端に位置する。

（ｄ）ＤＶ−ＳＦ１
他の抗原は、ＤＶ−ＳＦ１であってもよい。ＤＶ−ＳＦ１は、４つのデングウイルス血清型のエンベロープタンパク質に結合する中和抗体である。

（ｅ）ＤＶ−ＳＦ２
他の抗原は、ＤＶ−ＳＦ２であってもよい。ＤＶ−ＳＦ２は、デングウイルスのエピトープに結合する中和抗体である。ＤＶ−ＳＦ２は、ＤＥＮＶ４血清型に特異的であり得る。

（ｆ）ＤＶ−ＳＦ３
他の抗原は、ＤＶ−ＳＦ３であってもよい。ＤＶ−ＳＦ３は、デングウイルスエンベロープタンパク質のＥＤＩＩＩＡ鎖に結合する中和抗体である。

６．組成物の賦形剤及び他の成分
組成物は、薬学的に許容しうる賦形剤をさらに含んでいてもよい。薬学的に許容しうる賦形剤は、ビヒクル、担体、または希釈剤としての機能的分子であり得る。薬学的に許容しうる賦形剤は、界面活性剤を含みうるトランスフェクション促進剤、例えば免疫刺激複合体（ＩＳＣＯＭＳ）、フロイント不完全アジュバント、モノホスホリル脂質ＡをはじめとするＬＰＳ類似体、ムラミルペプチド、キノン類似体、スクアレン及びスクアレンなどの小胞、ヒアルロン酸、脂質、リポソーム、カルシウムイオン、ウイルスタンパク質、ポリアニオン、ポリカチオン、もしくはナノ粒子、または他の公知のトランスフェクション促進剤であり得る。

トランスフェクション促進剤は、ポリ−Ｌ−グルタマート（ＬＧＳ）をはじめとするポリアニオン、ポリカチオン、または脂質である。トランスフェクション促進剤は、ポリ−Ｌ−グルタマートであり、ポリ−Ｌ−グルタマートは、６ｍｇ／ｍｌ未満の濃度で組成物中に存在してもよい。トランスフェクション促進剤は、界面活性剤、例えば免疫刺激複合体（ＩＳＣＯＭＳ）、フロイント不完全アジュバント、モノホスホリル脂質ＡをはじめとするＬＰＳ類似体、ムラミルペプチド、キノン類似体、ならびにスクアレン及びスクアレンなどの小胞を含んでいてもよく、ヒアルロン酸を用いて、組成物と一体化させて投与してもよい。組成物は、トランスフェクション促進剤、例えば脂質、レシチンリポソームまたはＤＮＡリポソーム混合物（例えば、Ｗ０９３２４６４０参照）などの当該技術分野で公知の他のリポソームをはじめとするリポソーム、カルシウムイオン、ウイルスタンパク質、ポリアニオン、ポリカチオン、もしくはナノ粒子、または他の公知トランスフェクション促進剤を含んでいてもよい。トランスフェクション促進剤は、ポリ−Ｌ−グルタマート（ＬＧＳ）をはじめとするポリアニオン、ポリカチオン、または脂質である。ワクチン中のトランスフェクション剤の濃度は、４ｍｇ／ｍｌ未満、２ｍｇ／ｍｌ未満、１ｍｇ／ｍｌ未満、０．７５０ｍｇ／ｍｌ未満、０．５００ｍｇ／ｍｌ未満、０．２５０ｍｇ／ｍｌ未満、０．１００ｍｇ／ｍｌ未満、０．０５０ｍｇ／ｍｌ未満、または０．０１０ｍｇ／ｍｌ未満である。

組成物は、１９９４年４月１日出願の米国特許出願第０２１，５７９号に記載された遺伝子促進剤をさらに含んでいてもよく、参照により完全に組み入れられる。

組成物は、ＤＮＡを約１ナノグラム〜約１００ミリグラム；約１マイクログラム〜約１０ミリグラム；好ましくは約０．１マイクログラム〜約１０ミリグラム；さらに好ましくは約１ミリグラム〜約２ミリグラムの量で含んでいてもよい。いくつかの好ましい実施形態において、本発明による組成物は、ＤＮＡを約５ナノグラム〜約１０００マイクログラム含む。いくつかの好ましい実施形態において、組成物は、ＤＮＡを約１０ナノグラム〜約８００マイクログラム含んでいてもよい。いくつかの好ましい実施形態において、組成物は、ＤＮＡを約０．１〜約５００マイクログラム含んでいてもよい。いくつかの好ましい実施形態において、組成物は、ＤＮＡを約１〜約３５０マイクログラム含んでいてもよい。いくつかの好ましい実施形態において、組成物は、ＤＮＡを約２５〜約２５０マイクログラム、約１００〜約２００マイクログラム、約１ナノグラム〜１００ミリグラム；約１マイクログラム〜約１０ミリグラム；約０．１マイクログラム〜約１０ミリグラム；約１ミリグラム〜約２ミリグラム、約５ナノグラム〜約１０００マイクログラム、約１０ナノグラム〜約８００マイクログラム、約０．１〜約５００マイクログラム、約１〜約３５０マイクログラム、約２５〜約２５０マイクログラム、約１００〜約２００マイクログラム含んでいてもよい。

組成物は、用いられる投与様式に従って配合してもよい。注射可能な医薬組成物は、滅菌されたパイロジェンフリー及び微粒子フリーであってもよい。等張性配合剤または溶液が用いられてもよい。等張性のための添加剤として、塩化ナトリウム、デキストロース、マンニトール、ソルビトール及びラクトースを挙げることができる。組成物は、血管収縮剤を含んでいてもよい。等張性溶液は、リン酸緩衝生理食塩水を含んでいてもよい。組成物は、ゼラチン及びアルブミンをはじめとする安定化剤をさらに含んでいてもよい。ＬＧＳまたはポリカチオンまたはポリアニオンなどの安定剤により、配合剤を室温または周囲温度で長時間安定にさせることができる。

７．合成抗体の生成方法
また、本発明は、合成抗体の生成方法に関する。本方法は、組成物を、以下により詳細に記載の送達方法を用いてそれを必要とする対象に投与することを含んでいてもよい。従って、合成抗体は、組成物を対象に投与した際に、対象内もしくはインビボで生成される。

本方法は、組成物を１つ以上の細胞中に導入することも含んでいてもよい。従って、合成抗体は、１つ以上の細胞中で生成もしくは産生されてもよい。本方法は、組成物を、１つ以上の組織、例えば、限定されないが、皮膚及び筋肉中に導入することをさらに含んでもよい。従って、合成抗体は、１つ以上の組織中で生成もしくは産生されてもよい。

８．抗体の特定方法またはスクリーニング方法
さらに、本発明は、上述の抗原に反応するかもしくは結合する上述の抗体の特定方法またはスクリーニング方法に関する。抗体を特定またはスクリーニングする本方法を当業者に公知の方法論で抗原に用いて、抗体を特定またはスクリーニングすることができる。かかる手法としては、ライブラリ（例えば、ファージディスプレイ）からの抗体の選択、動物の免疫化、続いて、抗体の単離及び／または精製が挙げられるが、これらに限定されない。

９．組成物の送達方法
また、本発明は、組成物をそれを必要とする対象に送達する方法に関する。送達方法は、組成物を対象に投与することを含んでいてもよい。投与としては、インビボ電気穿孔付き及び無しのＤＮＡ注射、リポソーム介在送達、及びナノ粒子促進送達が挙げられるが、これらに限定されない。

組成物の送達を受ける哺乳動物は、ヒト、霊長類、非ヒト霊長類、ウシ、畜牛、ヒツジ、ヤギ、レイヨウ、バイソン、水牛、バイソン、ウシ属、シカ、ハリネズミ、ゾウ、ラマ、アルパカ、マウス、ラット、及びニワトリであってもよい。

組成物を、経口、非経口、舌下、経皮、経直腸、経粘膜、局所、吸入、口腔投与、胸腔内、静脈内、動脈内、腹腔内、皮下、筋肉内、鼻内、髄腔内、及び関節内、またはそれらの組み合わせをはじめとする異なる経路で投与してもよい。獣医学的使用では、通常の獣医学的実践に従い、組成物を適切に許容しうる配合剤として投与してもよい。獣医は、特定の動物に最も適した投与レジメン及び投与経路を、容易に決定することができる。組成物を、伝統的なシリンジ、針なし注射装置、「微粒子衝撃遺伝子銃」、または他の物理的方法、例えば電気穿孔法（ＥＰ）、「水力学的方法」、または超音波により投与してもよい。

ａ．電気穿孔
電気穿孔による組成物の投与は、細胞膜に可逆的な孔を形成させるのに効果的なエネルギーパルスを哺乳動物の所望の組織に送達するように構成することができる電気穿孔装置を用いて達成され得、好ましくは、エネルギーパルスは、ユーザーにより入力されたプリセット電流に近い定電流である。電気穿孔装置は、電気穿孔構成要素及び電極アセンブリまたはハンドルアセンブリを含んでいてもよい。電気穿孔構成要素は、制御器、電流波形発生器、インピーダンステスタ、波形ロガー、入力要素、ステータス報告要素、コミュニケーションポート、メモリー成分、電源、及び電源スイッチをはじめとする電気穿孔装置の１種以上の様々な要素を含み、それらを組み込んでいてもよい。電気穿孔は、プラスミドによる細胞のトランスフェクションを容易化するインビボ電気穿孔装置、例えば、ＣＥＬＬＥＣＴＲＡＥＰシステム（イノビオファーマシューティカルズ社製、ペンシルベニア州プリマス・ミーティング）またはＥｌｇｅｎエレクトロポレーター（イノビオファーマシューティカルズ社製、ペンシルベニア州プリマス・ミーティング）を用いて達成され得る。

電気穿孔構成要素は、電気穿孔装置の一要素として機能してもよく、他の要素は、電気穿孔構成要素と連通する別々の要素（または構成要素）である。電気穿孔構成要素は、電気穿孔装置の１つを超える要素として機能してもよく、それが電気穿孔構成要素とは別々の電気穿孔装置の他の要素とも連通していてもよい。１つの電気機械的または機械的装置の一部として存在する電気穿孔装置の要素は、その要素が１つの装置として、または互いに連通する別々の要素として機能しうるように限定しなくてもよい。電気穿孔構成要素は、所望の組織内で定電流を生成するエネルギーパルスを送達することができてもよく、フィードバック機構を含む。電極アセンブリは、空間的配置内に複数の電極を有する電極アレイを含んでいてもよく、電極アセンブリは、電気穿孔構成要素からエネルギーパルスを受け、電極を介して所望の組織にそれを送達する。複数の電極のうちの少なくとも１つは、エネルギーパルスの送達時にはニュートラルであり、所望の組織中のインピーダンスを測定して、そのインピーダンスを電気穿孔構成要素に連通する。フィードバック機構は、測定されたインピーダンスを受けてもよく、電気穿孔構成要素により送達されたエネルギーパルスを調整して定電流を維持することができる。

複数の電極が、分散パターンでエネルギーパルスを送達してもよい。複数の電極は、プログラムされたシーケンス下の電極制御を介して、分散パターンでエネルギーパルスを送達してもよく、プログラムされたシーケンスは、ユーザーにより電気穿孔構成要素に入力される。プログラムされたシーケンスは、順に送達された複数のパルスを含んでいてもよく、複数のパルスの各パルスが、インピーダンスを測定する１つのニュートラル電極を含む少なくとも２つの活性電極により送達され、複数のパルスの次のパルスが、インピーダンスを測定する１つのニュートラル電極を含む少なくとも２つの活性電極の異なる１つにより送達される。

フィードバック機構は、ハードウエアまたはソフトウェアのいずれかにより実施してもよい。フィードバック機構は、アナログ閉回路により実施してもよい。フィードバックは、５０μｓ、２０μｓ、１０μｓまたは１μｓごとに起こるが、好ましくは実時間フィードバックまたは瞬時（すなわち、応答時間を決定するための入手可能な技術により決定すると実質的に瞬時）である。ニュートラル電極で所望の組織中のインピーダンスを測定してもよく、そのインピーダンスをフィードバック機構に連通し、フィードバック機構がインピーダンスに応答してエネルギーパルスを調整し、プリセット電流と類似の値の定電流を維持する。フィードバック機構は、エネルギーパルスの送達時に定電流を連続及び瞬時的に維持してもよい。

本発明の組成物の送達を促進しうる電気穿孔装置及び電気穿孔法の例としては、内容が全体として参照により本明細書に組み入れられた、Ｄｒａｇｈｉａ−Ａｋｌｉらによる米国特許第７，２４５，９６３号、Ｓｍｉｔｈらにより提出された米国特許公開第２００５／００５２６３０号に記載されたそれらのものが挙げられる。組成物の送達を促進するのに用いられうる他の電気穿孔装置及び電気穿孔法としては、その全てが全体として参照により本明細書に組み入れられた、２００６年１０月１７日出願の米国特許仮出願第６０／８５２，１４９号及び２００７年１０月１０日出願の同第６０／９７８，９８２号に対して３５ＵＳＣ１１９（ｅ）による利益を主張する、２００７年１０月１７日出願の同時係属中及び共有の米国特許出願第１１／８７４０７２号に提供されたものが挙げられる。

Ｄｒａｇｈｉａ−Ａｋｌｉらによる米国特許第７，２４５，９６３号には、体内または植物内の選択された組織の細胞中への生体分子の導入を促進するためのモジュラー電極システム及びその使用が記載されている。モジュラー電極システムは、複数の針電極；皮下注射針；プログラム可能な定電流パルス制御器から複数の針電極への導電的連結を提供する電気コネクター；及び電源を含んでいてもよい。オペレータが、支持構造上に搭載された複数の針電極を掴み、体内または植物内の選択された組織にそれらをしっかりと挿入することができる。その後、皮下注射針を介して、生体分子を選択された組織へ送達する。プログラム可能な定電流パルス制御器を活性化して、定電流の電気パルスを複数の針電極に印加する。印加された定電流電気パルスは、複数の電極間での細胞への生体分子導入を促進する。米国特許第７，２４５，９６３号の全体的内容は、参照により本明細書に組み入れられる。

Ｓｍｉｔｈらにより提出された米国特許公開第２００５／００５２６３０号には、体内または植物内の選択された組織の細胞中への生体分子導入を効果的に促進するために用いられうる電気穿孔装置が記載されている。該電気穿孔装置は、操作がソフトウェアまたはファームウエアに特定される電気運動装置（「ＥＫＤ装置」）を含む。ＥＫＤ装置は、ユーザー制御に基づく一列の電極とパルスパラメータ入力との間で一連のプログラム可能な定電流パルスパターンを生成し、電流波形データの保存及び取得を可能にする。電気穿孔装置は、針電極、注射針用の中央注入チャネル、及び取り外し可能なガイドディスクのアレイを有する交換可能な電極ディスクも含む。米国特許公開第２００５／００５２６３０号の全体的内容は、参照により本明細書に組み入れられる。

米国特許第７，２４５，９６３号及び米国特許公開第２００５／００５２６３０号に記載された電極アレイ及び方法は、筋肉などの組織だけでなく、他の組織または臓器にも深く浸透させるように適合され得る。電極アレイの形態によって、注射針（選択された生体分子を送達する）が、ターゲット臓器にも完全に挿入され、電極によってあらかじめ描かれた領域のターゲット組織に垂直に注射投与される。米国特許第７，２４５，９６３号及び米国特許公開第２００５／００５２６３号に記載された電極は、好ましくは２０ｍｍ長及び２１ゲージである。

加えて、電気穿孔装置及びその使用を組み込んだいくつかの実施形態で予期される通り、以下の特許：１９９３年１２月２８日発行の米国特許第５，２７３，５２５号、２０００年８月２９日発行の米国特許第６，１１０，１６１号、２００１年７月１７日発行の同第６，２６１，２８１号、２００５年１０月２５日発行の同第６，９５８，０６０号、及び２００５年９月６日発行の米国特許第６，９３９，８６２号に記載された電気穿孔装置が存在する。さらに、様々な装置のいずれかを用いたＤＮＡの送達に関係する２００４年２月２４日発行の米国特許第６，６９７，６６９号、及びＤＮＡ注入の方法が注目された２００８年２月５日発行の米国特許第７，３２８，０６４号に提供された主題を含む特許が、本明細書で企図される。先の特許は、全体として参照により組み入れられる。

１０．治療方法
また、本明細書で提供されるのは、合成抗体を対象内で生成することで、疾患に対する治療、防御、及び／または予防を、それを必要とする対象において行う方法である。本方法は、組成物を対象に投与することを含んでいてもよい。対象への組成物の投与は、上述の送達方法を用いて行うことができる。

対象内で合成抗体を生成する際、合成抗体は、抗原に結合するかもしくは抗原と反応することができる。かかる結合により、抗原を中和し、別の分子、例えば、タンパク質または核酸による抗原の認識をブロックし、抗原への免疫応答を引き起こすかまたは誘発することにより、対象内の抗原と関連する疾患を治療、防御、及び／または予防することができる。

組成物の用量は、１μｇ〜１０ｍｇ有効成分／ｋｇ体重／時間であってもよく、２０μｇ〜１０ｍｇ有効成分／ｋｇ体重／時間であってもよい。組成物は、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、または３１日おきに投与することができる。効果的な治療のための組成物の投与回数は、１、２、３、４、５、６、７、８、９、または１０であってもよい。

本発明は、以下の非限定的な実施例によって示される多くの態様を有する。

１１.実施例
以下に実施例を用いて本発明をさらに説明する。これらの実施例は本発明の好ましい実施形態を示すものであるが、説明のためだけに記載されるものと理解されるべきである。上記の説明及びこれらの実施例から、当業者であれば、本発明の必須の特徴を確認することができ、本発明の精神及び範囲から逸脱することなく、種々の用途及び条件に適合させるために本発明の種々の変更例及び改変例を作ることができる。したがって、本明細書中に示され説明されているものに加え、本発明の種々の改変例が上記の説明から当業者には明らかであろう。そのような改変例も特許請求の範囲に含まれることが意図される。

インビボ免疫グロブリン（Ｉｇ）生成の高発現システムを構築した。具体的には、完全に組み立てられたＩｇ分子のインビボ発現を改善するために、２つの重鎖ポリペプチド及び２つの軽鎖ポリペプチドを含むＩｇ重鎖及び軽鎖配列を修飾した。ｇｐ１２０ＩｇＧ−重鎖分子及び軽鎖分子の構築物を作成し、ｐＶＡＸ１ベクター（ライフテクノロジーズ社、カリフォルニア州カールズバッド）に別々に挿入した。この抗体は、後述の特徴付け研究に用いることが可能な規定の特性を持つ。Ｉｇ発現を最適化する構築物を作成する際にいくつかの修飾を含んだ。最適化には、コドン最適化及びｋｏｚａｋ配列（ＧＣＣＡＣＣ）の導入を含んでいた。Ｉｇの重鎖及び軽鎖について最適化された構築物の核酸配列は、配列番号６及び配列番号７にそれぞれ記載されている（それぞれ図１及び図２）。図１及び図２において、下線及び二重下線は、構築物をｐＶＡＸ１ベクターにクローニングするのに用いたＢａｍＨＩ（ＧＧＡＴＣＣ）及びＸｈｏＩ（ＣＴＣＧＡＧ）制限酵素部位を示し、太字は、開始（ＡＴＧ）及び終止（ＴＧＡＴＡＡ）コドンを示す。配列番号６は、配列番号４６に記載のアミノ酸配列、すなわち、ＩｇＧ重鎖のアミノ酸配列（図４２）をコードする。配列番号７は、配列番号４７に記載のアミノ酸配列、すなわち、ＩｇＧ軽鎖のアミノ酸配列（図４３）をコードする。

天然Ｉｇ構築物（すなわち、非最適化）または配列番号６及び７を含む構築物（すなわち、最適化）のいずれかで細胞をトランスフェクトした。トランスフェクション後、トランスフェクト細胞からＩｇＧ分泌を測定した。ＩｇＧ合成の動態を図３に示す。図３に示すように、非最適化構築物及び最適化構築物の両方ともＩｇの重鎖及び軽鎖を発現して、ＩｇＧを形成したが、最適化構築物の方がＩｇＧ抗体の蓄積をより早くもたらした。配列番号６及び７（すなわち、最適化Ｉｇ配列）を含むプラスミドでトランスフェクトした細胞は、非最適化Ｉｇ配列を含むプラスミドでトランスフェクトした細胞よりも、完全に組み立てられたＩｇ分子のより多い産生を示した。従って、構築物の最適化または修飾によりＩｇ発現は実質的に増した。換言すれば、配列番号６及び７を含む構築物は、配列番号６及び７の作成に用いた最適化または修飾により、天然構築物と比較して顕著により高いＩｇ発現をもたらした。Ｉｇの重鎖及び軽鎖がプラスミドシステムからインビボで効率よく組み立てられることもこれらのデータにより実証された。

配列番号６及び７を含む構築物をさらに調べるため、配列番号６及び７に記載の配列を含むプラスミドをマウスに投与した。特に、電気穿孔を用いてプラスミドを投与した。投与後、免疫化マウスで免疫応答（すなわち、ＩｇＧレベル）の誘導をウエスタンブロット法（すなわち、マウスの血清を用いてｇｐ１２０抗原を検出した）により評価した。図４に示すように、配列番号６及び７を含むプラスミドを投与されたマウスは、抗体の結合がウエスタンブロット分析で観察されたため、強い抗体産生を示した。この抗体産生を観察するために要した投与はたった１回であった。

要するに、Ｉｇ重鎖及び軽鎖をコードする核酸配列が、ｐＶＡＸ１などの発現ベクターに含まれる場合、トランスフェクト細胞及び発現ベクターを投与されたマウスで、組み立てられたＩｇＧ（すなわち、重鎖及び軽鎖がまとまって、抗原に結合する抗体を形成する）の発現をもたらすことがこれらのデータにより示された。さらに、Ｉｇ重鎖及び軽鎖をコードする核酸配列を最適化または修飾することでＩｇ産生が著しく増大したこともこれらのデータにより示された。

実施例３〜７の材料及び方法
細胞及び試薬。２９３Ｔ細胞及びＴＺＭ−Ｂｌ細胞を、１０％ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）及び抗生物質を添加したダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ；Ｇｉｂｃｏ：インビトロジェン社製、カリフォルニア州）中で維持し、コンフルエンス時に継代させた。組み換えＨＩＶ−１ｐ２４及びｇｐ１２０Ｅｎｖ（ｒｇｐ１２０）タンパク質をプロテインサイエンス社（ＰｒｏｔｅｉｎＳｃｉｅｎｃｅＩｎｃ．）から取得し、ペルオキシダーゼ共役ストレプトアビジンをジャクソン研究所（ＪａｃｋｓｏｎＬａｂｏｒａｔｏｒｙ）から取得した。記載されている細胞株及び他の試薬は、ＡＩＤＳ研究及び参照用試薬プログラム（ＡＩＤＳＲｅｓｅａｒｃｈａｎｄＲｅｆｅｒｅｎｃｅＲｅａｇｅｎｔＰｒｏｇｒａｍ）、ＤｉｖｉｓｉｏｎｏｆＡＩＤＳ、ＮＩＡＩＤ、ＮＩＨから入手した。

動物、タンパク質、ならびにプラスミドの投与及び送達。雌ＢＡＬＢ／ｃマウス（８週齢）を、タコニックファームズ（ＴａｃｏｎｉｃＦａｒｍｓ）（ニューヨーク州ジャーマンタウン）から購入した。これらの投与には、体積５０μｌ（ｐＶａｘ１またはｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ）中のプラスミドＤＮＡ２５μｇを筋肉内注射（ＩＭ）した後、ＭＩＤ−ＥＰシステム（ＣＥＬＬＥＣＴＲＡ（登録商標）；イノビオ・ファーマシューティカルズ、ペンシルベニア州ブルーベル）によってＥＰ介在の送達を増強した。送達用パルスパラメータは、０．５アンペア定電流の３パルスで、１秒おきで５２ミリ秒の長さであった。各動物は、実験用プラスミド製剤または対照プラスミド製剤のいずれかの単回投与を受けた。ＪＲＦＬ株（ＩｍｍｕｎｅＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙＣｏｒｐ社から購入、ニューヨーク州）由来のＨＩＶ−１組み換えｇｐ１２０（ｒｇｐ１２０）をタンパク質免疫分析に用いた。タンパク質免疫研究では、ｒｇｐ１２０の単回用量２５μｇをＴｉｔｅｒＭａｘアジュバントと混合し、皮下注射した。ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂまたはｒｇｐ１２０を投与されたマウスの血清を特定の分析に応じて異なる時点で回収した。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＦａｂプラスミドＤＮＡの構築。抗ＥｎｖＶＲＣ０１ヒトｍＡｂからのＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ配列（ＶＨ及びＶＬ）を、いくつかの修飾を持つ合成オリゴヌクレオチドを用いて生成した。重鎖（ＶＨ−ＣＨ１）は、配列番号３に記載の核酸配列によってコードされ、軽鎖（ＶＬ−ＣＬ）は、配列番号４に記載の核酸配列によってコードされる（それぞれ図９及び図１０）。図９及び図１０において、下線及び二重下線は、コード化核酸配列をｐＶＡＸ１にクローニングするのに用いたＨｉｎｄＩＩＩ（ＡＡＧＣＴＴ）及びＸｈｏＩ（ＣＴＣＧＡＧ）制限酵素部位を示し、太字は、開始（ＡＴＧ）及び終止（ＴＧＡまたはＴＡＡ）コドンを示す。配列番号３は、配列番号４８に記載のアミノ酸配列、すなわち、ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＦａｂのＶＨ−ＣＨ１のアミノ酸配列（図４４）をコードする。配列番号４は、配列番号４９に記載のアミノ酸配列、すなわち、ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＦａｂのＶＬ−ＣＬのアミノ酸配列（図４５）をコードする。

発現を向上させるために、効率的なＩｇＥリーダー配列をＥｎｖ抗原遺伝子配列に組み込んだ。得られた修飾及び強化されたＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＦａｂＤＮＡ免疫原は、コドン及びＲＮＡ最適化され、ＧｅｎＳｃｒｉｐｔ（ニュージャージー州ピスカッタウェイ）によってｐＶａｘ１発現ベクターにクローニングした後、これらの構築物を大規模に産生した。ＶＨ及びＶＬ遺伝子（それぞれ配列番号３及び４）をＢａｍＨ１及びＸｈｏ１制限部位の間に挿入した。精製プラスミドＤＮＡに水を配合した後、マウスに投与した。陰性対照プラスミドとして、「無関係な」対照Ｉｇを生成するｐＩｇＧ−Ｅ１Ｍ２を用いた。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ発現及び免疫ブロット分析。製造者によって推奨された方法によって、非リポソームＦｕＧＥＮＥ６トランスフェクション試薬（プロメガ、ウィスコンシン州）を用いた発現分析に２９３Ｔ細胞株を利用した。簡単に言えば、細胞を５０〜７０％のコンフルエンス（３５ｍｍ培養皿のウェル２ｍＬあたり１〜３×１０^５細胞）で２４時間播種した後、５μｇのｐＶａｘ１対照またはｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂでトランスフェクトした。７０時間までの様々な時点で上清を回収し、標準的なＥＬＩＳＡ法によって特異的Ｆａｂ分子のレベルを評価した。ｐＶａｘ１トランスフェクト細胞からの上清を陰性対照として用いた。さらに、２９３Ｔ細胞をＨＩＶｇｐ１６０Ｅｎｖタンパク質遺伝子でトランスフェクトした。

さらに、生成されたＦａｂによる天然ＨＩＶ−１Ｅｎｖタンパク質の認識確認を免疫ブロット分析でを行った。この研究では、上述のｒｇｐ１２０を１２％ＳＤＳ−ＰＡＧＥ上で電気泳動を行った。ニトロセルロース膜（マサチューセッツ州ベッドフォードのミリポア）上でゲルをブロットし、ＰＢＳ−Ｔ（０．０５％）中で５％ｗ／ｖの脱脂粉乳でブロックした。その後、ニトロセルロースを別々のストリップに切断して、分析した。ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂ投与されたマウスの血清を、投与から４８時間後に回収し、ＰＢＳ中で１：１００に希釈し、個々のニトロセルロースストリップと１時間反応させた。その後、ストリップをトリス緩衝生理食塩水−０．２％ツイーンで４時間洗浄し、マウスＩｇＧ（ジャクソン研究所、メイン州）に対するペルオキシダーゼ結合抗血清と反応させ、ジアミノベンジジン基質（シグマ社、ミズーリ州セントルイス）とともに培養し、生成されたＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂのｇｐ１２０への適正な結合を視覚化させた。

Ｉｇ結合分析−ＥＬＩＳＡ。Ｆａｂまたは抗ｒｇｐ１２０抗体を生成したＤＮＡプラスミドのｒｇｐ１２０への結合をＥＬＩＳＡで評価した。ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂ、ｐＶａｘ１、またはｒｇｐ１２０タンパク質のいずれかを投与された個体動物の血清でＩｇ結合アッセイを行った。ここでも、基本的なＩｇ免疫測定分析において、ＤＮＡプラスミド単回投与から４８時間後に血清サンプルを回収した。簡単に言えば、９６ウェル高結合ポリスチレンプレート（ニューヨーク州コーニング）をクレードＢＨＩＶＭＮｒｇｐ１２０（２μｇ／ｍＬ）で一晩４℃でコーティングし、ＰＢＳで希釈した。翌日、プレートをＰＢＳ−Ｔ（ＰＢＳ、０．０５％ツイーン２０）で洗浄し、ＰＢＳ−Ｔ中の３％ＢＳＡで１時間ブロックし、免疫化マウス及びナイーブマウスの血清の１：１００希釈物とともに１時間３７℃で培養した。１：５，０００に希釈したヤギ抗マウスＩｇＧ−ＨＲＰ（リサーチ・ダイアグノスティックス社、ニュージャージー州）を用いて結合ＩｇＧを検出した。色原体基質溶液ＴＭＢ（Ｒ＆ＤＳｙｓｔｅｍｓ）を添加して結合酵素を検出し、Ｂｉｏｔｅｋ製ＥＬ３１２ｅＢｉｏ−Ｋｉｎｅｔｉｃｓｒｅａｄｅｒ上で４５０ｎｍで読んだ。全ての血清サンプルを２度重複して試験した。追加の免疫測定分析を行い、市販のＩｇＧ１定量ＥＬＩＳＡキットを用いてｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂ投与されたマウスの血清中のＦａｂ濃度を定量化した。この分析は、製造者仕様に従って行った。

フローサイトメトリー分析（ＦＡＣＳ）。フローサイトメトリー分析（ＦＡＣＳ）では、コンセンサスクレードＡＥｎｖプラスミド（ｐＣｏｎ−Ｅｎｖ−Ａ）、または、一次ウイルス単離体（Ｑ２３Ｅｎｖ１７）からＥｎｖを発現する最適化クレードＡプラスミド（ｐＯｐｔ−Ｅｎｖ−Ａ）のいずれかで２９３Ｔ細胞をトランスフェクトした。標準的な方法によってトランスフェクションを行った。トランスフェクションを確認後、細胞を氷冷した緩衝液Ａ（ＰＢＳ／０．１％ＢＳＡ／０．０１％ＮａＮ３）で洗浄し、一次Ｉｇ（精製ＶＲＣ０１、または、ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂまたは対照ｐＩｇＧ−Ｅ１Ｍ２プラスミドのいずれかを投与されたマウスの血清のいずれか、プラスミド投与から４８時間後に回収）の１：１００希釈物とともに２０分間４℃で培養した。次いで、これを洗浄し、フィコエリトリン（ＰＥ）に共役した蛍光標識二次Ｉｇの１：１００希釈物の５０μｌとともにさらに２０分間培養した。その後、細胞を洗浄し、フローサイトメーター（ＦＡＣＳ：ベクトン・ディッキンソン社製）で直ちに分析した。培養及び洗浄は全て氷冷した緩衝液Ａで４℃で行った。細胞をシングレット及び生細胞にゲートした。ＧＦＰを評価するため、ＧＦＰ陽性細胞の発現をＣｅｌｌＱｕｅｓｔソフトウェア（ＢＤＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）を用いたＦＡＣＳ−ＬＳＲ計器で行った。ＦｌｏｗＪｏソフトウェアでデータを分析した。

シングルサイクルＨＩＶ−１中和アッセイ。Ｆａｂ介在ＨＩＶ−１中和分析をＴＺＭ−ＢＩ（ＨｅＬａ細胞由来）ベースアッセイで測定し、ここで、ルシフェラーゼ遺伝子発現の減少を中和の終点として用い、次いで実験用血清または対照血清の存在下または非存在下でＥｎｖ偽型ウイルスに１ラウンド感染させた。ＴＺＭ−Ｂｌ細胞を操作して、ＣＤ４及びＣＣＲ５を発現させ、蛍ルシフェラーゼのレポーター遺伝子を含有させた。このアッセイでは、ｐＶａｘ１のみまたはｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂ投与されたマウスの血清をウェルで１：５０に希釈後、０．０１の感染多重度（ＭＯＩ）で、偽型ＨＩＶ−１Ｂａｌ２６、Ｑ２３Ｅｎｖ１７、ＳＦ１６２Ｓ、またはＺＭ５３Ｍ無細胞ウイルスを添加した。Ｂａｌ２６及びＳＦ１６２Ｓは両方ともクレードＢＴｉｅｒ１ウイルスであり、Ｔｉｅｒステータスは、ウイルスの中和感度が高かったもしくは平均以上であったことを示す。Ｑ２３Ｅｎｖ１７及びＺＭ５３Ｍは、それぞれ、クレードＡのＴｉｅｒ１ウイルス及びクレードＣのＴｉｅｒ２ウイルスである。Ｔｉｅｒ２ステータスは、ウイルスの中和感度が平均的もしくは中程度であったことを示す。次いで、このアッセイでは、１０^４ＴＺＭ−ＢＬ細胞を各ウェルに添加し、４８時間培養し、溶解させ、Ｂｒｉｇｈｔ−Ｇｌｏ基質（ルシフェラーゼアッセイシステム、プロメガ、ウィスコンシン州）を１００μｌ添加した後、ルミノメータを用いてルシフェラーゼを定量化した。このアッセイはＲＬＵ（相対発光量）で読み取った。ＲＬＵ減少率は、（１−（実験用サンプルの平均ＲＬＵ−対照）／対照からの平均ＲＬＵ−非添加対照ウェル））×１００として算出した。ＨＩＶ−１中和はＲＬＵの減少率（％）で表わし、これは、感染阻害率を示すものであった。

抗ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ発現構築物の生成
ヒトｍＡｂＶＲＣ０１を広く中和する抗ＨＩＶ−１エンベロープのＶＨ及びＶＬ−Ｉｇ（免疫グロブリン）鎖コード配列の両方のｃＤＮＡを、ＮＩＨＡＩＤＳＲｅｓｅａｒｃｈａｎｄＲｅｆｅｒｅｎｃｅＲｅａｇｅｎｔＰｒｏｇｒａｍ経由でＶＲＣ（ワクチンリサーチセンター、ＮＩＨ）から入手し、ｐＶａｘ１ベクターにクローニングした。上記の実施例２に示すように、生物活性のあるＩｇ分子の産生を最大化及び最適化するために、いくつかの修飾を発現ベクターに組み込んだ。すなわち、これらの修飾により、コドン及びＲＮＡの最適化及び安定化がもたらされ、リーダー配列の活用が増強され、プラスミドが高濃度で産生され、ＥＰ経由でインビボプラスミド送達が促進された。生成された構築物をヒトサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）由来の前初期プロモーターの制御下に置いた。これは、哺乳類細胞及び組織中で適切かつ効率のよい発現に重要である。この研究に用いた構築物の模式的なマップを図５Ａ及び図５Ｂに示す。

さらに、抗ＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂをｐＨＩＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂから調製し、これを用いて、ＨＩＶＥｎｖをコードするプラスミドでトランスフェクトした細胞を染色した。ｐＶＡＸ１を対照として用いた。図１１に示すように、抗ＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂが、ＨＩＶＥｎｖをコードするプラスミドでトランスフェクトした細胞を染色したため、ベクターｐＨＩＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂにより抗ＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂを調製できることが免疫蛍光染色により実証された。従って、抗ＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂは、ＨＩＶＥｎｖ糖タンパク質への結合に特異的であった。

トランスフェクト細胞によるＩｇ産生
ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂの発現を評価するため、構築物を２９３Ｔ細胞にトランスフェクトした。コンセンサスＨＩＶ−１クレードＢｇｐ１２０タンパク質を用いたＥＬＩＳＡ免疫測定により、トランスフェクション後早ければ２４時間でトランスフェクト２９３Ｔ細胞由来の上清中に抗ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂの存在が確認された（図５Ｃ）。トランスフェクション後２４〜７２時間で高ＯＤ４５０ｎｍ値（すなわち、約０．５〜０．８の範囲）が細胞抽出物中で検出され、４８時間でピーク及び平坦域に到達した。ＨＩＶＥｎｖ糖タンパク質に対する抗ＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂの特異性が、これらの結果により確認された。図５Ｃに示したデータの統計解析は以下の通りであった：ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ投与されたマウスの血清のＯＤ４５０ｎｍ値は、２２〜７２時間の時点における測定において、ｐＶａｘ１対照と比較して有意（ｐ＜０．０５、スチューデントｔ検定）であった。

ＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂのインビボ特性
ＤＮＡプラスミドからのインビボＦａｂ産生を実証するため、マウスにｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂを筋肉内経路で投与し、次いでＥＰを介して送達を増強させた。ＤＮＡプラスミドを単回注入で送達し、投与してから１２時間、１日、２日、３日、４日、７日、及び１０日後に血清を回収した。その後、図６Ａに示すように、ＥＬＩＳＡ分析により血清（１：１００の希釈）のＩｇ／Ｆａｂレベルを評価した。図６Ａのデータ（ｐＶａｘ１及びＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ両方の群からの個体マウスから）は、ＯＤ４５０ｎｍとして示され、Ｉｇ／Ｆａｂレベルに比例していた。ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂの単回投与後のＦａｂの相対レベルは、１日目に検出可能となり、その後、経時的に増大したことが、これらのデータにより実証された。比較の目的で、実施例２に記載されているようにｒｇｐ１２０の単回投与／免疫化をＢａｌｂ／Ｃマウスに施した後、血清を回収し、特定の抗ｇｐ１２０抗体レベルの程度及び寿命を判断するために、ＥＬＩＳＡで経時的な分析（１：１００希釈物）を行った。その結果を図６Ｂに示す。

このタンパク質送達研究では、バックグラウンド上で抗原特異的なＩｇレベルは、免疫化した後１０日目になってやっと検出可能となった。これは、ＯＤ４５０ｎｍ値が、投与後１日目で少なくとも０．１ＯＤ４５０ｎｍユニットに達し、１０日目で０．２８〜０．３５ＯＤユニット間のレベルで平坦域となったｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂ投与（図６Ａ）により引き起こされたＦａｂレベルと対照的であった。従って、ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂの送達により、従来のタンパク質免疫よりも特定のＦａｂのより急速な生成がもたらされた。この発見は、生物活性のあるＩｇの生成によるＤＮＡプラスミドの送達方法の潜在的な臨床的有用性を強調するものであった。

ＤＮＡ送達技術によって産生された組み換えＦａｂの質と量を確保するためにさらなる分析を行った。すなわち、電気泳動された後ブロットされた組み換えＨＩＶ−１ｇｐ１２０タンパク質を用いて免疫ブロット分析を行い、投与してから４８時間後にｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂマウスの血清でプローブした（図６Ｃ）。このブロットにより、ｇｐ１２０タンパク質の分子量に適したバンドであることが示され、機能的でありかつｇｐ１２０に結合可能であることが確認された。同様に、ヒトＦａｂ定量をＥＬＩＳＡによって行い、プラスミド投与後の時間（すなわち、日数）の関数として示した（図６Ｄ）。結果は、生成されたＦａｂレベルが２〜３μｇ／ｍｌでピークに達したことを示す。生成されたＶＲＣ０１ベースのＦａｂのＶＨ鎖及びＶＬ鎖のポリペプチドアセンブリが、正確であり、なおかつ、ＨＩＶ−１Ｅｎｖタンパク質を認識し、それに特異的に結合する能力を有することが、これらの結果により実証された。

図６に示したデータの統計解析は以下の通りである。図６Ａにまとめたデータでは、ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ投与されたマウスの血清のＯＤ４５０ｎｍ値は、１日目〜１０日目の時点の測定において、ｐＶａｘ１投与されたマウスの血清と比較して統計的（ｐ＜０．０５、スチューデントｔ検定）に増大した。図６Ｂにまとめたデータでは、ｒｐｇ１２０群からのＯＤ４５０ｎｍ値は、１０日目〜１４日目の時点の測定において、ＰＢＳ対照と比較して有意（ｐ＜０．０５、スチューデントｔ検定）に増大した。図６Ｄにまとめたデータでは、ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ投与されたマウスからのＯＤ４５０ｎｍ値は、２日目〜１０日目の時点の測定において有意（ｐ＜０．０５、スチューデントｔ検定）に増大した。

異なるＨＩＶ−１Ｅｎｖタンパク質を発現する細胞へのＦａｂ／Ｉｇｓの結合：ＦＡＣＳベース分析
ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ投与されたマウスの血清を用いて、生成されたＦａｂの、２９３Ｔ細胞によって一時的に発現された異なるＨＩＶ−Ｅｎｖタンパク質への結合について試験した。天然型のＶＲＣ０１−ｍＡｂを陽性対照として用いて、細胞の表面上にＥｎｖタンパク質を適切に発現させ、確実に検出した。先に示した通り、「無関係な／無関連な」Ｉｇ（Ｉｇ−Ｅ１Ｍ２）を陰性対照として用いた。図７Ａ及び図７Ｂに示した通り、基本的に、異なるＩｇｓ／ＦａｂｓでｐＶａｘ１（すなわち、Ｅｎｖインサートを欠いた）トランスフェクト細胞に背景染色しただけであった。しかしながら、精製ＶＲＣ０１ｍＡｂと、ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ投与されたマウスの血清との両方において、コンセンサスクレードＡＥｎｖプラスミド（ｐＣｏｎ−Ｅｎｖ−Ａ）、または、一次ＨＩＶ−１単離体であるｐＱ２３Ｅｎｖ１７からＥｎｖを発現する最適化クレードＣプラスミド（ｐＯｐｔ−Ｅｎｖ−Ａ）のいずれかを発現するトランスフェクト細胞で著しい正の染色があった。さらに、ｐＩｇ−Ｅ１Ｍ２投与されたマウスの血清では、ＨＩＶ１Ｅｎｖトランスフェクト細胞のいずれにおいてもバックグラウンドレベルを上回る染色が示されなかった。これらの結果を示すＦＡＣＳ分析を図７Ａに示す。この実験のＦＡＣＳ分析（すなわち、図７Ａ）からのデータを示す代表的なグラフを図７Ｂに示した。

図７Ｂに示したデータの統計解析は以下の通りである。天然ＶＲＣ０１抗体と、ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ投与されたマウスの血清間で、ｐＣｏｎ−Ｅｎｖ−Ａによって生成されたエンベロープ糖タンパク質への特異結合における有意差（ｐ＜０．０５、スチューデントｔ検定）はなかった。しかしながら、ｐＯｐｔ−Ｅｎｖ−Ａによって生成されたエンベロープ糖タンパク質へのＶＲＣ０１抗体の結合は、ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ投与されたマウスの血清による結合よりも有意に高かった（ｐ＜０．０５、スチューデントｔ検定）。

ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂによって産生されたＩｇのＨＩＶ中和活性
ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ投与されたマウスの血清を用いて、ＨＩＶ−ＥｎｖＦａｂの、トランスフェクト２９３Ｔ細胞によって一時的に発現されるＨＩＶ−１Ｅｎｖタンパク質への結合について試験した。ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂの投与６日後のマウスの血清を入手した。具体的に、クレードＡ、Ｂ、またはＣ株由来のＨＩＶ−１Ｅｎｖを発現するプラスミドで細胞をトランスフェクトした。クレードＡ、Ｂ、及びＣ株は、９２ＲＷ０２０、ＳＦ１６２、及びＺＭ１９７であった。図１２に示すように、ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ投与されたマウスの血清が、クレードＡ、Ｂ、及びＣＨＩＶ−１株由来のＨＩＶ−１Ｅｎｖに結合したことで、ＨＩＶ−１の多数のサブタイプ由来のＨＩＶ−１Ｅｎｖと交差反応した抗体（すなわち、ＨＩＶ−ＥｎｖＦａｂ）を血清が含んでいたことが示された。

この研究で製造されたＨＩＶ−ＥｎｖＦａｂの潜在的なＨＩＶ−１中和活性を評価するために、ＴＺＭ−Ｂｌ標的細胞を用いて蛍光ベース中和アッセイを行った。ＴＺＭ−Ｂｌ標的細胞を、実施例２に記載されているように、実験用血清または対照血清の存在下または非存在下で４つの異なる偽型ＨＩＶウイルス単離体に感染させた。

図８は、ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂ投与されたマウスの血清のＨＩＶ偽型ウイルスに対する中和曲線を示す。具体的には、ＨＩＶ−１Ｔｉｅｒ１ウイルスであるＢａｌ２６及びＳＦ１６２Ｓ（両方ともクレードＢ）ならびにＱ２３Ｅｎｖ（クレードＡ）について試験した。さらに、ＨＩＶ−１クレードＣＴｉｅｒ２ウイルスであるＺＭ５３Ｍに対しても血清を試験した。ＨＩＶ感染の中和率／阻害率としてデータを示した。グラフの水平斜線は、アッセイにおいて５０％の中和／阻害レベルを示した。この研究では、中和の陽性対照ｍＡｂ（データ不図示）を利用して、この分析法の有用性及び信頼性について確認した。簡単に言えば、ｍＡｂを中和する陽性対照は、４つ全てのウイルス偽型の感染を少なくとも５０％阻害することができた。

プラスミド投与してから経時的にＨＩＶ中和活性が増大し、Ｂａｌ２５、Ｑ２３Ｅｎｖ１７、及びＳＦ１６２Ｓに対する中和率が２日目で５０％に達したことが、ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂ投与されたマウスの血清により実証された。これら３つのウイルスに対する平坦域での中和率は、それぞれ、約６２、６０、及び７０％であった。ＺＭ５３Ｍに対しては、３日目まで５０％の中和閾値には到達せず、平坦域での中和率も５０％を超えなかった。試験した他の３つと比べたこのロバスト性の低い中和プロファイルは、ＺＭ５３Ｍが中和可能性の低いＴｉｅｒ２ウイルスであったことを反映しているようであった。要するに、この研究で生成されたＦａｂは、広範なＨＩＶ単離体を効果的に中和することができた。図８に示したデータの統計解析は以下の通りである。クラスカル・ワリスノンパラメトリック解析に基づいて、ｐＨＩＶ−１Ｅｎｖ−Ｆａｂ投与されたマウスの血清によって誘発されたＺＭ５３ＭクレードＣウイルス（図８Ｄ）のＨＩＶ中和レベルのみ、試験した他のウイルス（図８Ａ、図８Ｂ、及び図８Ｃ）と著しく異なっていた。この差は、５０％中和の達成に要する時間（日目）のみならず、達した最大の中和レベルでもあった。

実施例３〜７をまとめると、ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂ投与されたマウス中のＶＲＣ０１Ｆａｂの血清濃度は、注入してから１２日後に２〜３μｇ／ｍＬでピークに達した。この範囲は、ＦＤＡによって現在認可されている多くのモノクローナル抗体に匹敵するものであり、我々の抗体アプローチによって、有意かつ生物学的に関連したレベルの抗体が小動物モデル中で産生されたことが示された。特に、尋常性乾癬及び関節炎などの自己免疫疾患に対して使用される、ウステキヌマブ（商品名：Ｓｔｅｌａｒａ）及びゴリムマブ（Ｓｉｍｐｏｎｉ）の２つの抗体は、それぞれ、０．３１±０．３３μｇ／ｍＬ及び１．８±１．１μｇ／ｍＬの平均値±標準偏差の血清濃度を有する。さらに、ＴＮＦインヒビターであるアダリムマブ（Ｈｕｍｉｒａ）は、およそ６μｇ／ｍＬの平均血清濃度を有する。これに関し、抗体をコードするＤＮＡを生物に送達することで、有意かつ生物学的に関連したレベルの抗体が生物中に存在するように、インビボ組み立てがもたらされたことが、実施例４〜８に記載のデータにより実証された。

従来のタンパク質投与によって産生されたＩｇｓ（図６Ａ及び図６Ｂ）と比べて、ｐＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂのＥＰ増強単回投与後、Ｆａｂｓをインビボでさらに速やかに産生する能力がこれらのデータにより実証された。さらに、難しいワクチン標的に対しても機能性防御Ｉｇ様分子を生成する能力が示された。今日まで、積極的なワクチン接種後にＨＩＶ−１中和抗体を誘導することは非常に困難であり、一次感染中、伝染してから何年も後になるまで中和抗体は作り出されない。このＤＮＡプラスミドアプローチでは、送達後１〜２日内で中和力価が観察され、ピークの中和Ｆａｂ血清濃度（３．３１±０．１３μｇ／ｍＬ）は、投与後１週間で起こった（図６Ｄ）。このレベルのＩｇは、近年の研究において感染から完全に防御することが実証されている８．３μｇ／ｍＬ濃度と比較的同様であった。生物活性のあるＩｇ断片が急速に誘導されることがこれらのデータにより実証された。

中和抗体力価及びＨＩＶ−１一次単離体に対する反応がＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＦａｂＤＮＡ投与によってを引き起こされたこともこれらのデータにより示された。クレードＡ、Ｂ、及びＣの例を表わす、異なるウイルスtｉｅｒ１及びtｉｅｒ２ウイルス単離体のパネルに対して血清を試験した。これらのウイルスに対する潜在的な中和活性を生成する結果が示された（図８）。

従って、このＤＮＡプラスミドベースの方法により、特異的かつ生物活性のあるＦａｂまたはＩｇ分子をインビボ生成し、抗体生成において従来の抗原ベースのワクチン接種を用いる必要性を避けて、Ｉｇｓをインビトロで生成し精製する必要性を除去した。

ヒトＩｇ抗体をコードするプラスミドの構築
上述したように、Ｆａｂは、ＶＲＣ０１抗体、すなわち、ＨＩＶ−ＥｎｖＦａｂから生成され、これは、コード化核酸を対象に投与した際にインビボ生成された。これらの研究をさらに拡張するため、ＶＲＣ０１抗体由来のＩｇＧ１抗体をコードする核酸配列を作成した。図１３の模式図に示すように、ＩｇＧ重鎖及び軽鎖をコードする核酸配列を、フリン切断部位とＰ２Ａペプチド配列をコードする核酸配列とで分離した。Ｐ２Ａペプチド配列は、プロテアーゼによって切断効率が増すため、別々のポリペプチドが切断後にもたらされた。

ＩｇＧ重鎖は、可変重（ＶＨ）領域、定常重１（ＣＨ１）領域、ヒンジ領域、定常重２（ＣＨ２）領域、及び定常重３（ＣＨ３）領域を含んでいた。ＩｇＧ軽鎖は、可変軽（ＶＬ）領域及び定常軽（ＣＬ）領域を含んでいた。この構築物をサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーター、例えば、発現ベクターｐＶＡＸ１の制御下に置いた。この構築物により、ｇｐ１２０（すなわち、ＶＲＣ０１抗体によって認識された抗原）に反応性があった完全に組み立てられたＩｇＧ抗体（図１４示すように）の産生がもたらされた。本明細書では、この完全に組み立てられたＩｇＧのことを「ＶＲＣ０１ＩｇＧ」と呼ぶ。ＶＲＣ０１ＩｇＧ（フリンによる切断前の）のアミノ酸配列は、図１５に示し、配列番号５に記載されている。

特に、ＶＲＣ０１ＩｇＧ（フリンによる切断前；配列番号５及び図１５）のアミノ酸配列は、以下の構造を有する：免疫グロブリンＥ１（ＩｇＥ１）シグナルペプチド、可変重領域（ＶＨ）、定常重領域１（ＣＨ１）、ヒンジ領域、定常重領域２（ＣＨ２）、定常重領域３（ＣＨ３）、フリン切断部位、ＧＳＧリンカー、Ｐ２Ａペプチド、ＩｇＥ１シグナルペプチド、可変軽領域（ＶＬ）、及び定常軽領域（ＣＬ、特にカッパ）である。構造（その全ては、上述の順序かつ図１３に示すように配列番号１５内に含まれる）の各部分の配列を以下に示す。

ＶＲＣ−１ＩｇＧのＩｇＥ１シグナルペプチド−（配列番号８）。

ＶＲＣ０１ＩｇＧの可変重領域−（配列番号９）。

ＶＲＣ０１ＩｇＧの定常重領域１（ＣＨ１）−（配列番号１０）。

ＶＲＣ０１ＩｇＧのヒンジ領域−（配列番号１１）。

ＶＲＣ０１ＩｇＧの定常重領域２（ＣＨ２）−（配列番号１２）。

ＶＲＣ０１ＩｇＧの定常重領域３（ＣＨ３）−（配列番号１３）。

ＶＲＣ０１ＩｇＧのフリン切断部位−（配列番号１４）。

ＶＲＣ０１ＩｇＧのＧＳＧリンカー及びＰ２Ａペプチド−（配列番号１５）。

ＶＲＣ０１ＩｇＧのＩｇＥ１シグナルペプチド−（配列番号８）。

ＶＲＣ０１ＩｇＧの可変軽領域（ＶＬ）−（配列番号１６）。

ＶＲＣ０１ＩｇＧの定常軽領域（ＣＬ、カッパ）−（配列番号１７）。

２つのプラスミドによってコードされたＨＩＶ−１ＶＲＣ０１ＩｇＧ
上記の実施例２〜８に記載したように、Ｆａｂ（各鎖は別々のプラスミドから発現）は、ＶＲＣ０１抗体、すなわち、ＨＩＶ−ＥｎｖＦａｂから生成され、ＩｇＧ（単一プラスミドから発現）は、ＶＲＣ０１抗体、すなわち、ＶＲＣ０１ＩｇＧから生成された。これらの研究をさらに拡張するため、ＩｇＧは、ＶＲＣ０１抗体から生成され、ここで、重鎖（すなわち、可変重領域（ＶＨ）、定常重領域１（ＣＨ１）、ヒンジ領域、定常重領域２（ＣＨ２）、及び定常重領域３（ＣＨ３））及び軽鎖（すなわち、可変軽領域（ＶＬ）及び定常軽領域（ＣＬ））は、別々の構築物によってコードされた（図５０及び図５１）。本明細書では、このＩｇＧのことを「ＨＩＶ−１ＶＲＣ０１ＩｇＧ」と呼ぶ。

各構築物は、インビボでいったん生成された抗体の分泌を最適化するリーダー配列も含んでいた。各構築物をｐＶＡＸ１ベクターのＢａｍＨＩ及びＸｈｏＩ部位でクローニングすることで、構築物をサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターの制御下に置いた（図５０及び図５１）。従って、ＶＲＣ０１ＩｇＧをインビボ形成または生成するため、プラスミドの混合物、すなわち、重鎖をコードする構築物を含むプラスミドと軽鎖をコードする構築物を含むプラスミドとを対象に投与しなければならない。

また、各構築物をさらに最適化した。最適化には、ｋｏｚａｋ配列（ＧＣＣＡＣＣ）の添加及びコドン最適化を含んでいた。ＨＩＶ−１ＶＲＣ０１ＩｇＧのＩｇＧ１重鎖をコードする核酸配列は、配列番号５４及び図５２に記載されている。図５２において、下線及び二重下線は、核酸配列をｐＶＡＸ１ベクターにクローニングするのに用いたＢａｍＨＩ（ＧＧＡＴＣＣ）及びＸｈｏＩ（ＣＴＣＧＡＧ）制限酵素部位を示し、太字は、開始（ＡＴＧ）及び終止（ＴＧＡＴＡＡ）コドンを示す。配列番号５４は、配列番号５５及び図５３に記載のアミノ酸配列、すなわち、ＨＩＶ−１ＶＲＣ０１ＩｇＧのＩｇＧ１重鎖のアミノ酸配列をコードする。

ＨＩＶ−１ＶＲＣ０１ＩｇＧのＩｇＧ軽鎖をコードする核酸配列は、配列番号５６及び図５４に記載されている。図５４において、下線及び二重下線は、核酸配列をｐＶＡＸ１ベクターにクローニングするのに用いたＢａｍＨＩ（ＧＧＡＴＣＣ）及びＸｈｏＩ（ＣＴＣＧＡＧ）制限酵素部位を示し、太字は、開始（ＡＴＧ）及び終止（ＴＧＡＴＡＡ）コドンを示す。配列番号５６は、配列番号５７及び図５５に記載のアミノ酸配列、すなわち、ＨＩＶ−１ＶＲＣ０１ＩｇＧのＩｇＧ軽鎖のアミノ酸配列をコードする。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇ
ＶＲＣ０１ＩｇＧに加えて、ＨＩＶ−１Ｅｎｖに反応性のあるＩｇＧをコードする別の構築物を作成した。この構築物はＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９であり、これを最適化し、発現ベクター内でクローニングした（図１６Ａ及び図１６Ｂ）。最適化には、ｋｏｚａｋ配列（例えば、ＧＣＣＡＣＣ）、リーダー配列の導入及びコドン最適化を含んでいた。ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇをコードする核酸配列を含む発現ベクターが作成されたことが、図１６Ｃに示すような制限酵素消化によって確認された。図１６Ｃにおいて、レーン１は未消化の発現ベクターであり、レーン２はＢａｍＨＩ及びＸｈｏ１で消化された発現ベクターであり、レーンＭはマーカーであった。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇをコードする核酸配列は、配列番号６３及び図６１に記載されている。図６１において、下線及び二重下線は、核酸配列をｐＶＡＸ１ベクターにクローニングするのに用いたＢａｍＨＩ（ＧＧＡＴＣＣ）及びＸｈｏＩ（ＣＴＣＧＡＧ）制限酵素部位を示し、太字は、開始（ＡＴＧ）及び終止（ＴＧＡＴＡＡ）コドンを示す。配列番号６３は、配列番号２及び図１８に記載のアミノ酸配列、すなわち、ＨＩＶ−１ＥＮｖ−ＰＧ９Ｉｇ（フリンによる切断前）のアミノ酸配列をコードする。

このアミノ酸配列では、シグナルペプチドが、重鎖及び軽鎖の各々にペプチド結合で結合されることで、インビボ生成された抗体の分泌が向上する。また、Ｐ２Ａペプチドをコードする核酸配列が、重鎖及び軽鎖をコードする核酸配列間に位置するので、翻訳されたポリペプチドを、重鎖または軽鎖を含む別々のポリペプチドにより効率的に切断することができる。

特に、ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇ（フリンによる切断前；配列番号２及び図１８）のアミノ酸配列は、以下の構造を有する：ヒトＩｇＧ重鎖シグナルペプチド、可変重領域（ＶＨ）、定常重領域１（ＣＨ１）、ヒンジ領域、定常重領域２（ＣＨ２）、定常重領域３（ＣＨ３）、フリン切断部位、ＧＳＧリンカー、Ｐ２Ａペプチド、ヒトラムダ軽鎖シグナルペプチド、可変軽領域（ＶＬ）、及び定常軽領域（ＣＬ、特にラムダ）である。構造（その全ては、上述の順序で配列番号２内に含まれる）の各部分の配列を以下に示す。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９ＩｇのヒトＩｇＧ重鎖シグナルペプチド−（配列番号１８）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇの可変重領域−（配列番号１９）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇの定常重領域１（ＣＨ１）−（配列番号２０）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇのヒンジ領域−（配列番号２１）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇの定常重領域２（ＣＨ２）−（配列番号２２）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇの定常重領域３（ＣＨ３）−（配列番号２３）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇのフリン切断部位−（配列番号２４）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９ＩｇのＧＳＧリンカー及びＰ２Ａペプチド−（配列番号２５）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇのヒトラムダ軽鎖シグナルペプチド−（配列番号２６）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇの可変軽領域（ＶＬ）−（配列番号２７）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇの定常軽領域（ＣＬ、ラムダ）−（配列番号２８）。

ＨＩＶ−１ＰＧ９一本鎖Ｆａｂ（ｓｃＦａｂ）
上述のＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇに加えて、一本鎖Ｆａｂ（すなわち、単一転写産物に転写され、単一ポリペプチドに翻訳される核酸配列によってコードされたＶＨ／ＣＨ１及びＶＬ／ＣＬ）をＰＧ９抗体（本明細書では、「ＨＩＶ−１ＰＧ９ｓｃＦａｂ」と呼ぶ）に基づいて作成した。ＨＩＶ−１ＰＧ９ｓｃＦａｂをコードする核酸配列は、配列番号５０及び図４６に記載されている。図４６において、下線及び二重下線は、この核酸配列をｐＶＡＸ１ベクターにクローニングするのに用いたＢａｍＨＩ（ＧＧＡＴＣＣ）及びＸｈｏＩ（ＣＴＣＧＡＧ）を示し、太字は、開始（ＡＴＧ）及び終止（ＴＧＡＴＡＡ）コドンを示す。配列番号５０に記載の核酸配列は、ｋｏｚａｋ配列（ＧＣＣＡＣＣ）、コドン最適化、及びリーダー配列を含む最適化核酸配列であった。リーダー配列は、構築物の５’末端、すなわち、一本鎖Ｆａｂの前に位置していたため、リンカー配列によってコードされたシグナルペプチドは、一本鎖Ｆａｂのアミノ末端にペプチド結合で結合された。配列番号５０に記載の核酸配列は、ＶＨ／ＣＨ１をコードする核酸配列と、ＶＬ／ＣＬをコードする核酸配列との間に位置するリンカー配列も含んでいた。従って、配列番号５０によってコードされるポリペプチドにおいて、アミノ酸配列は、ＶＨ／ＣＨ１及びＶＬ／ＣＬを一緒にするリンカー配列によってコードされた。配列番号５０は、配列番号５１及び図４７に記載のアミノ酸配列、すなわち、ＨＩＶ−１ＰＧ９ｓｃＦａｂのアミノ酸配列をコードする。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇ
ＶＲＣ０１ＩｇＧ及びＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇに加えて、ＨＩＶ−１Ｅｎｖに反応性のあるＩｇＧをコードする別の構築物を作成した。この構築物はＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０であり、これを最適化し、発現ベクター内でクローニングした（図１７Ａ及び図１７Ｂ）。最適化には、ｋｏｚａｋ配列（例えば、ＧＣＣＡＣＣ）、リーダー配列の導入及びコドン最適化を含んでいた。ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇをコードする核酸配列を含む発現ベクターが作成されたことが、図１７Ｃに示すような制限酵素消化によって確認された。図１７Ｃにおいて、レーン１は未消化の発現ベクターであり、レーン２はＢａｍＨＩ及びＸｈｏ１で消化された発現ベクターであり、レーンＭはマーカーであった。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇをコードする核酸配列は、配列番号６２及び図６０に記載されている。図６０において、下線及び二重下線は、核酸配列をｐＶＡＸ１ベクターにクローニングするのに用いたＢａｍＨＩ（ＧＧＡＴＣＣ）及びＸｈｏＩ（ＣＴＣＧＡＧ）制限酵素部位を示し、太字は、開始（ＡＴＧ）及び終止（ＴＧＡＴＡＡ）コドンを示す。配列番号６２は、配列番号１及び図１９に記載のアミノ酸配列、すなわち、ＨＩＶ−１ＥＮｖ−４Ｅ１０Ｉｇ（フリンによる切断前）のアミノ酸配列をコードする。

このアミノ酸配列では、シグナルペプチドが、重鎖及び軽鎖の各々にペプチド結合で結合されることで、インビボ生成された抗体の分泌が向上する。また、Ｐ２Ａペプチドをコードする核酸配列は、重鎖及び軽鎖をコードする核酸配列間に位置するので、翻訳されたポリペプチドを、重鎖または軽鎖を含む別々のポリペプチドにより効率的に切断することができる。

特に、ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇ（フリンによる切断前；配列番号１及び図１９）のアミノ酸配列は、以下の構造を有する：ヒトＩｇＧ重鎖シグナルペプチド、可変重領域（ＶＨ）、定常重領域１（ＣＨ１）、ヒンジ領域、定常重領域２（ＣＨ２）、定常重領域３（ＣＨ３）、フリン切断部位、ＧＳＧリンカー、Ｐ２Ａペプチド、ヒトカッパ軽鎖シグナルペプチド、可変軽領域（ＶＬ）、及び定常軽領域（ＣＬ、特にカッパ）である。構造（その全ては、上述の順序で配列番号１内に含まれる）の各部分の配列を以下に示す。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０ＩｇのヒトＩｇＧ重鎖シグナルペプチド−（配列番号２９）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇの可変重領域−（配列番号３０）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇの定常重領域１（ＣＨ１）−（配列番号３１）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇのヒンジ領域−（配列番号３２）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇの定常重領域２（ＣＨ２）−（配列番号３３）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇの定常重領域３（ＣＨ３）−（配列番号３４）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇのフリン切断部位−（配列番号３５）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０ＩｇのＧＳＧリンカー及びＰ２Ａペプチド−（配列番号３６）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇのヒトカッパ軽鎖シグナルペプチド−（配列番号３７）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇの可変軽領域（ＶＬ）−（配列番号３８）。

ＨＩＶ−１Ｅｎｖ−４Ｅ１０Ｉｇの定常軽領域（ＣＬ、カッパ）−（配列番号３９）。

ＨＩＶ−１４Ｅ１０ＳｃＦａｂ
上述のＨＩＶ−１Ｅｎｖ−ＰＧ９Ｉｇに加えて、一本鎖Ｆａｂ（すなわち、単一転写産物に転写され、単一ポリペプチドに翻訳される核酸配列によってコードされたＶＨ／ＣＨ１及びＶＬ／ＣＬ）を４Ｅ１０抗体（本明細書では、「ＨＩＶ−１４Ｅ１０ｓｃＦａｂ」と呼ぶ）に基づいて作成した。ＨＩＶ−１４Ｅ１０ｓｃＦａｂをコードする核酸配列は、配列番号５２及び図４８に記載されている。図４８において、下線及び二重下線は、この核酸配列をｐＶＡＸ１ベクターにクローニングするのに用いたＢａｍＨＩ（ＧＧＡＴＣＣ）及びＸｈｏＩ（ＣＴＣＧＡＧ）を示し、太字は、開始（ＡＴＧ）及び終止（ＴＧＡＴＡＡ）コドンを示す。配列番号５２に記載の核酸配列は、ｋｏｚａｋ配列（ＧＣＣＡＣＣ）、コドン最適化、及びリーダー配列を含む最適化核酸配列であった。リーダー配列は、構築物の５’末端、すなわち、一本鎖Ｆａｂの前に位置していたため、リンカー配列によってコードされたシグナルペプチドは、一本鎖Ｆａｂのアミノ末端にペプチド結合で結合された。配列番号５２に記載の核酸配列は、ＶＨ／ＣＨ１をコードする核酸配列と、ＶＬ／ＣＬをコードする核酸配列との間に位置するリンカー配列も含んでいた。従って、配列番号５２によってコードされるポリペプチドにおいて、アミノ酸配列は、ＶＨ／ＣＨ１及びＶＬ／ＣＬを一緒にするリンカー配列によってコードされた。配列番号５２は、配列番号５３及び図４９に記載のアミノ酸配列、すなわち、ＨＩＶ−１４Ｅ１０ｓｃＦａｂのアミノ酸配列をコードした。

ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂ
上述したように、ＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂの重（ＶＨ−ＣＨ１）鎖及び軽（ＶＬ−ＣＬ）鎖をコードする核酸配列を細胞またはマウスに送達する際に、ＨＩＶ−１Ｅｎｖに反応性のあるＦａｂをインビボで組み立てたかもしくは生成した。コード化核酸配列を細胞または対象に送達する際に、他の抗原に反応性のあるＦａｂｓをインビボ生成することができるか判定するため、チクングニヤウイルス（ＣＨＩＫＶ）のエンベロープタンパク質（Ｅｎｖ）に反応性のある抗体の重（ＶＨ−ＣＨ１）鎖及び軽（ＶＬ−ＣＬ、ラムダ型）鎖をコードする構築物を作成した。各構築物は、図２０Ａ、図２０Ｂ、及び図２１に示すようにリーダー配列及びｋｏｚａｋ配列を含んでいた。ＶＨ−ＣＨ１及びＶＬ−ＣＬをコードする構築物を発現ベクター内でクローニングしたことで、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーター（図２１）の制御下に置いた。ＶＨ−ＣＨ１及びＶＬ−ＣＬをコードする構築物を含む発現ベクターは、それぞれ、ＣＨＩＫＶ−Ｈ及びＣＨＩＶ−Ｌとして知られている。ＣＨＩＫＶ−Ｈ及びＣＨＩＫＶ−Ｌベクターの混合物は、ｐＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂとして知られており、これは、インビボ（すなわち、細胞または対象内に導入時）生成されたＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂである。換言すれば、以下により詳細に記載のＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂをインビボ生成するには両方のベクターが必要であった。

構築物を発現のために最適化も行った。具体的に、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂのインビボ生成時にＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの分泌効率を増大させるため、各構築物にはリーダー配列が含まれた。各構築物をコドン最適化し、ｋｏｚａｋ配列（ＧＣＣＡＣＣ）を含んだ。ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの重鎖（ＶＨ−ＣＨ１）をコードする核酸配列は、配列番号５８及び図５６に記載されている。図５６において、下線及び二重下線は、核酸配列をｐＶＡＸ１ベクターにクローニングするのに用いたＢａｍＨＩ（ＧＧＡＴＣＣ）及びＸｈｏＩ（ＣＴＣＧＡＧ）制限酵素部位を示し、太字は、開始（ＡＴＧ）及び終止（ＴＧＡＴＡＡ）コドンを示す。配列番号５８は、配列番号５９及び図５７に記載のアミノ酸配列、すなわち、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの重鎖（ＶＨ−ＣＨ１）のアミノ酸配列をコードする。

ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの軽鎖（ＶＬ−ＣＬ）をコードする核酸配列は、配列番号６０及び図５８に記載されている。図５８において、下線及び二重下線は、核酸配列をｐＶＡＸ１ベクターにクローニングするのに用いたＢａｍＨＩ（ＧＧＡＴＣＣ）及びＸｈｏＩ（ＣＴＣＧＡＧ）制限酵素部位を示し、太字は、開始（ＡＴＧ）及び終止（ＴＧＡＴＡＡ）コドンを示す。配列番号６０は、配列番号６１及び図５９に記載のアミノ酸配列、すなわち、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの軽鎖（ＶＬ−ＣＬ）のアミノ酸配列をコードする。

ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂのインビボ生成の時間的動態を測定するため、ｐＶＡＸ１、ＣＨＩＫＶ−Ｈ、ＣＨＩＫＶ−Ｌ、またはｐＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂで細胞をトランスフェクトした。トランスフェクション後、ＥＬＩＳＡを用いて、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの経時的な生成レベルを測定した。図２２に示すように、ｐＶＡＸ１、ＣＨＩＫＶ−Ｈ、またはＣＨＩＫＶ−Ｌでトランスフェクトした細胞は、ＣＨＩＫＶＥｎｖ抗原に反応性のある抗体を産生しなかった。これに対し、ｐＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂでトランスフェクトした細胞は、ＣＨＩＫＶＥｎｖ抗原に反応性のある抗体（すなわち、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂ、ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂとしても知られる）を産生した。従って、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの重（ＶＨ−ＣＨ１）鎖及び軽（ＶＬ−ＣＬ）鎖をコードする核酸配列を送達することでＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ抗原に結合するかまたは該抗原に反応性のあるＦａｂが生成されたことが、これらのデータにより示された。

また、ｐＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖでトランスフェクトした細胞から得た溶解物のウエスタンブロットにＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂを用いた。これは、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ抗原をコードするプラスミドである。図２３に示すように、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ抗原がＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂを介して検出され、これは、このＦａｂが抗原に結合したことを示唆するものである。

ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂのインビボ生成またはインビボ組み立てをさらに調べるため、ｐＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂ（すなわち、１２．５μｇのＣＨＩＫＶ−Ｈと１２．５μｇのＣＨＩＫＶ−Ｌ）をマウスに投与した。さらに、２５μｇのｐＶＡＸ１、ＣＨＩＫＶ−Ｈ、及びＣＨＩＫＶ−Ｌを、対照としての第２群、第３群、及び第４群のマウスにそれぞれ投与した。具体的には、事前採血のサンプルを得た後、それぞれのマウス群に０日目にプラスミドを投与した。１日目、２日目、３日目、５日目、７日目、及び１０日目に血液を採取した（図２４）。これらの血液にＥＬＩＳＡ測定を行い、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ抗原に反応性のある抗体のレベルを測定した。図２５に示すように、ｐＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂを投与されたマウスは、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ抗原に反応性のある抗体（すなわち、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂ）を生成した。ｐＶＡＸ１、ＣＨＩＫＶ−Ｈ、またはＣＨＩＫＶ−Ｌを投与されたマウスは、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ抗原に著しい反応性を持つ抗体を生成しなかった。従って、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの重（ＶＨ−ＣＨ１）鎖及び軽（ＶＬ−ＣＬ）鎖をコードする核酸配列の送達時に、このＦａｂはインビボ（すなわち、マウス内）生成され、その抗原（すなわち、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ）に反応性のあることがこれらのデータにより実証された。これにより、Ｆａｂがインビボで正しく組み立てられたことが実証された。

ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−ＦａｂがＣＨＩＫＶ感染に対して防御することができるかどうか判断するため、Ｃ５７ＢＬ／６マウス（２〜３週齢；約２０〜２５グラム量）にｐＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂ（５０μｇ）またはｐＶＡＸ１を０日目に投与した。ｐＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂを投与してから６時間後、各マウスに全容量２５μｌ中の７ログ１０ＰＦＵを鼻腔内経路により接種した。その後毎日、各マウスの体重を測定し、体重減少３０％以上のマウスは犠牲にした。

図２６に示すように、ｐＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂを投与されたマウスのうち約７５％が、本研究１４日目の時点でＣＨＩＫＶ感染から生き残ったが、ｐＶＡＸ１を投与されたマウスは全て１４日目までに死んだ。さらに、ｐＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂを投与されたマウスは、ｐＶＡＸ１を投与されたマウスと比較して、低レベルのサイトカインＴＮＦ−α及びＩＬ−６を伴った（図２７及び図２８）。ＴＮＦ−α及びＩＬ−６のレベルを、マウスから得た血清で測定した。これらの生き残ったマウスは、病気や体重減少の兆候を示さず、サイトカインＴＮＦ−α及びＩＬ−６は低レベルであった。従って、ｐＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂの投与により、ＣＨＩＫＶ感染からマウスを防御し、ＣＨＩＫＶ感染からの生存が促進されたことが、これらのデータにより示された。換言すれば、マウス内におけるＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ−Ｆａｂのインビボ生成により、ＣＨＩＫＶ感染に対して防御し、ＣＨＩＫＶ感染からの生存が促進された。

抗Ｈｅｒ−２Ｆａｂ
上述したように、ＨＩＶ−１ＥｎｖＦａｂまたはＣＨＩＫＶＥｎｖ−Ｆａｂの重（ＶＨ−ＣＨ１）鎖及び軽（ＶＬ−ＣＬ）鎖をコードする核酸配列を細胞またはマウスに送達する際に、ＨＩＶ−１ＥｎｖまたはＣＨＩＫＶＥｎｖに反応性のあるＦａｂ（すなわち、ＶＨ／ＣＨ１及びＶＬ／ＣＬ）をインビボ組み立てまたはインビボ生成した。コード化核酸配列を細胞または対象に送達する際に、自己抗原（すなわち、Ｆａｂをコードする核酸配列を投与された対象における内因性の抗原）に反応性のあるＦａｂｓをインビボ生成することができるか判断するため、ヒト上皮成長増殖因子受容体２（Ｈｅｒ−２；Ｅｒｂ２としても知られる）に反応性のある抗体の重（ＶＨ−ＣＨ１）鎖及び軽（ＶＬ−ＣＬ、カッパ型）鎖をコードする構築物を作成した。各構築物は、リーダー配列及びｋｏｚａｋ配列（ＧＣＣＡＣＣ）を含み、これらは、図２８、図３０、及び図３１示すように抗Ｈｅｒ−２ＦａｂのＶＨ−ＣＨ１またはＶＬ−ＣＬをコードする核酸配列の前に来た。従って、これらの構築物は、リーダー配列及びｋｏｚａｋ配列の導入により最適化され、コドン使用にさらに最適化された。

ＶＨ−ＣＨ１及びＶＬ−ＣＬをコードする構築物をｐＶＡＸ１発現ベクター内、すなわち、ＢａｍＨＩ及びＸｈｏＩ制限部位間でクローニングしたことで、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターの制御下に置いた。具体的に、ＶＨ−ＣＨ１及びＶＬ−ＣＬをコードする構築物を２つの別々のｐＶＡＸ１ベクターにクローニングしたことで、得られた２つのプラスミドは、抗Ｈｅｒ−２Ｆａｂをインビボ生成するのに必要とされた。

抗Ｈｅｒ−２ＦａｂのＶＨ−ＣＨ１をコードする核酸配列が、配列番号４０及び図３２に記載されている。図３２において、下線及び二重下線は、核酸配列をｐＶＡＸ１ベクターにクローニングするのに用いたＢａｍＨＩ（ＧＧＡＴＣＣ）及びＸｈｏＩ（ＣＴＣＧＡＧ）制限酵素部位を示し、太字は、開始（ＡＴＧ）及び終止（ＴＧＡＴＡＡ）コドンを示す。配列番号４０は、配列番号４１に記載のアミノ酸配列、すなわち、抗Ｈｅｒ−２ＦａｂのＶＨ−ＣＨ１のアミノ酸配列（図３２及び図３３）をコードする。

抗Ｈｅｒ−２ＦａｂのＶＬ−ＣＬをコードする核酸配列が、配列番号４２及び図３４に記載されている。図３４において、下線及び二重下線は、核酸配列をｐＶＡＸ１ベクターにクローニングするのに用いたＢａｍＨＩ（ＧＧＡＴＣＣ）及びＸｈｏＩ（ＣＴＣＧＡＧ）制限酵素部位を示し、太字は、開始（ＡＴＧ）及び終止（ＴＧＡＴＡＡ）コドンを示す。配列番号４２は、配列番号４３に記載のアミノ酸配列、すなわち、抗Ｈｅｒ−２ＦａｂのＶＬ−ＣＬのアミノ酸配列（図３４及び図３５）をコードする。

抗Ｈｅｒ−２ＦａｂのＶＨ−ＣＨ１及びＶＬ−ＣＬをコードするプラスミドの混合物が抗Ｈｅｒ−２Ｆａｂをインビボ生成したかどうか判断するため、抗Ｈｅｒ−２ＦａｂまたはｐＶＡＸ１の重（ＶＨ−ＣＨ１）鎖及び軽（ＶＬ及びＣＬ）鎖をコードするプラスミドの混合物で２９３Ｔ細胞をトランスフェクトした。トランスフェクション後、図３６に示すように全ＩｇＧ濃度を測定した。図３６において、エラーバーは標準偏差を表わす。抗Ｈｅｒ−２ＦａｂのＶＨ−ＣＨ１またはＶＬ−ＣＬをそれぞれコードする２つのプラスミドを導入した際に、抗Ｈｅｒ−２Ｆａｂがインビボ生成されたことが、これらのデータにより示された。

抗デングウイルスヒトＩｇＧ
単一プラスミド系を作成して、抗デングウイルス（ＤＥＮＶ）ヒトＩｇＧ抗体をインビボ生成した。具体的には、図３７に模式的に示すように構築物を生成した。すなわち、リーダー配列を、ＩｇＧ重鎖（すなわち、可変重領域（ＶＨ）、定常重領域１（ＣＨ１）、ヒンジ領域、定常重領域２（ＣＨ２）、及び定常重領域３（ＣＨ３））をコードする核酸配列の上流に位置づけた。次に、プロテアーゼ切断部位をコードする配列を、ＩｇＧ重鎖をコードする核酸配列の下流に位置づけた。ＩｇＧ軽鎖（すなわち、可変軽領域（ＶＬ）及び定常軽領域（ＣＬ））をコードする核酸配列を、プロテアーゼ切断部位（すなわち、フリン切断部位）をコードする配列の後に置いた。この構築物によってコードされるシグナルペプチドは、同種のシグナルペプチドであるため、発現時に抗体の適切な分泌をもたらした。さらに、発現時に、単一転写産物は単一ポリペプチドに翻訳され、これは、プロテアーゼによって、抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧの重鎖及び軽鎖に対応するポリペプチドに処理される。これらの重鎖及び軽鎖ポリペプチドを、その後、機能性抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧ、すなわち、その同種抗原に結合する抗体に組み立てる。

この構築物を発現ベクターｐＶＡＸ１（すなわち、ＢａｍＨＩ及びＸｈｏＩ部位）にクローニングすることで、プロモーターの制御下に置いた。抗デングウイルスヒトＩｇＧをコードする構築物は、配列番号４４（図３８）に記載の核酸配列を持ち、これは、発現用に最適化されている。図３８において、下線及び二重下線は、構築物をｐＶＡＸ１ベクターにクローニングするのに用いたＢａｍＨＩ（ＧＧＡＴＣＣ）及びＸｈｏＩ（ＣＴＣＧＡＧ）制限酵素部位を示し、太字は、開始（ＡＴＧ）及び終止（ＴＧＡＴＡＡ）コドンを示す。最適化には、ｋｏｚａｋ配列（ＧＣＣＡＣＣ）の包含とコドン最適化とが含まれていた。配列番号４４は、配列番号４５及び図３９に記載のアミノ酸配列、すなわち、重鎖及び軽鎖をプロテアーゼによって２つの別々のポリペプチドに分離する前の抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧのアミノ酸配列をコードする。

抗デングウイルスヒトＩｇＧをコードする核酸配列を含むプラスミドをマウスに投与し、抗デングウイルスヒトＩｇＧがインビボ（すなわち、マウス内）生成されたかどうか判断した。プラスミドの投与後、マウスから血清を得て、ＥＬＩＳＡによって分析し、４つのデングウイルス血清型、すなわち、ＤＥＮＶ−１、ＤＥＮＶ−２、ＤＥＮＶ−３、及びＤＥＮＶ−４由来のデング熱Ｅタンパク質に反応性のある抗体を血清が含んでいたかどうか判定した。図４０に示すように、抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧをコードする核酸配列を含むプラスミドを投与されたマウスの血清は、血清型ＤＥＮＶ−１、−２、−３、及び−４由来のＤＥＮＶＥタンパク質に反応性があった。同形抗体を陽性対照として用いた。従って、プラスミドをマウス内に導入した際に、抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧをコードする核酸配列を転写し、ポリペプチドに翻訳され、処理されることで、抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧの重鎖及び軽鎖を含むポリペプチドを生成することが、これらのデータにより示された。これらのポリペプチドを抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧに組み立てることで、ＤＥＮＶＥタンパク質に結合するかまたは該タンパク質に反応性のある機能性抗体がもたらされた。
単一プラスミドの投与による抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧのインビボ生成をさらに調べるため、抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧをコードする核酸配列を含むプラスミドをマウスに注射投与した。具体的には、５０μｇまたは１００μｇのプラスミドをマウスに投与した。各群はマウス５匹であった。注射してから３日目及び６日目に、マウスの血清反応反転を調べた。図４１に示すように、両群のマウスは、抗ＤＥＮＶＩｇＧ抗体に対する血清反応が陽性であった。具体的には、５０μｇのプラスミドを投与されたマウスは、約１１０ｎｇ／ｍＬのヒトＩｇＧがあり、１００μｇのプラスミドを投与されたマウスは、約１７０ｎｇ／ｍＬのヒトＩｇＧがあった。従って、抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧをコードするプラスミドの投与後、抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧがインビボ生成されることが、これらのデータによりさらに実証された。また、抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧ抗体産生が１週間以内に起こったことで、抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧを急速に産生できることが、これらのデータにより実証された。

ＰＳＭＡ
ヒト抗ＰＳＭＡＩｇＧ１抗体は、抗ＰＳＭＡ抗体の文献検索によって得られた。実施例２に記載されたものと同様に、ヒト抗ＰＳＭＡＩｇＧ１は、図６３に示すような直線配置で構築された。発現を改善するために、効率的なＩｇＥリーダー配列（配列番号８）を抗ＰＳＭＡＩｇＧ１遺伝子配列に組み込んだ。得られた修飾かつ強化された抗ＰＳＭＡＩｇＧ１配列をコドン−及びＲＮＡ−最適化し、ＧｅｎＳｃｒｉｐｔ（Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ、ＮＪ）によってｐＶａｘ１発現ベクターにクローニングした後に、これらの構築物を大規模生産した。抗ＰＳＭＡ抗体遺伝子配列番号７９を、ＢａｍＨ１及びＸｈｏ１制限部位の間に挿入した。配列番号７９は、配列番号８０に記載のアミノ酸配列をコードする。

抗ＰＳＭＡ抗体は、単一プラスミド系中で発現した。インビボ発現は、脱フコシル化された抗体（すなわち、フコース残基が欠如している抗体）をもたらした。これは、ヒトＰＳＭＡに結合し、ＰＳＭＡ発現細胞の抗体指向性細胞傷害性（ＡＤＣＣ）殺傷の強化を示した。

インビトロ発現

５マイクログラムの抗ｈｕＰＳＭＡプラスミドを２９３Ｔ細胞中にトランスフェクトした。トランスフェクション後４８日目に試料を採取し、結合分析を行った。抗体力価結果を図６４に示す。図６４の右パネルは、ヤギ抗ヒトＩｇＧに対するヒト抗ＰＳＭＡＩｇＧ上清の結合を比較する。抗体結合の定量化を図６５に示す。プロットした棒グラフは、抗ＰＳＭＡプラスミド（５ｕｇ）でトランスフェクトした２９３Ｔ細胞を示し、３７℃及び５％ＣＯ_２で一晩インキュベートし、定量化に使用した最終上清をトランスフェクション後４８時間で採取した。

抗ＰＳＭＡＩｇＧ定量化マウス血清−Ｎｕ／Ｊマウス

５匹のＮｕ／Ｊマウスにヒト抗ＰＳＭＡ抗体プラスミドを０日目に投与した。抗ＰＳＭＡＤＮＡプラスミドをＣＥＬＬＥＣＴＲＡエレクトロポレーションデバイス（ＩｎｏｖｉｏＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ、ＰｌｙｍｏｕｔｈＭｅｅｔｉｎｇＰＡ）を用いて筋肉内に送達した。血清を種々の時点で回収した−図６６のタイムラインを参照されたい。血清をＰＢＳＴ＋１％ＦＢＳ中で１：１００に希釈した。ＩｇＧの濃度を図６６のグラフに示す。およそ１〜５ｕｇ／ｍＬの検出可能なヒトＩｇＧ１が、免疫不全マウスの血清中で得られた。

ＩｇＧ結合活性は、以下のように確認した：１マイクログラムの組み換えタンパク質をロードし、ＳＤＳ−ＰＡＧＥを施した後、図６７に示す種々の供給源（市販の供給源、注入マウス、及び組織培養）からの血清でブロットをインキュベーションした。イムノブロットは、抗体の特異性を示す。さらなる結合研究は、産生された抗ｈｕＰＳＭＡＩｇＧ１の特異性を明らかにする。抗ＰＳＭＡ血清（７日目から）のＬＮＣａＰ細胞への結合は、フローサイトメトリー分析によって調べた。ＰＳＭＡ陽性ＬＮＣａＰ細胞で強い反応性が観察された。試験した血清を分析のために１：４に希釈した。図６８を参照されたい。

抗ＰＳＭＡＩｇＧ定量化−マウス血清−Ｃ５７ＢＬ／６（Ｂ６．Ｃｇ−Ｆｏｘｎ１ｎｕ／Ｊ）マウス

さらに、５匹のＣ５７ＢＬ／６ヌード（Ｂ６．Ｃｇ−Ｆｏｘｎ１ｎｕ／Ｊ）マウスを１００μｇの抗ＰＳＭＡＤＮＡプラスミドで筋肉内にて免疫化した後、エレクトロポレーションを行った。図８３に示す時点で眼窩後方出血によってマウス血清を採取した。各時点でのＩｇＧの濃度も図８３に示す。インビボ抗ＰＳＭＡ抗体を発現させて、図８４に示すように組み換えヒトＰＳＭＡに結合させた；示したＥＬＩＳＡ結果において、抗ＰＳＭＡ抗体を１：５０に希釈した。１〜１．５μｇ／ｍＬの検出可能なヒトＩｇＧ１を産生した。

抗ＰＳＭＡＩｇＧ定量化−マウス血清−免疫能マウス

５匹のＣ５７ＢＬ／６マウスを１００μｇの抗ＰＳＭＡＤＮＡプラスミドで筋肉内にて免疫化した後、エレクトロポレーションを行った。図８５及び図８６に示す時点で眼窩後方出血によってマウス血清を採取した。免疫能マウス中のインビボ抗ＰＳＭＡ抗体は、ヒトＩｇＧの０．５〜０．９μｇ／ｍＬで検出された。具体的には、図８５は、マウスごとの抗ＰＳＭＡ抗体のＩｇＧ定量化を示す一方、図８６は、抗ＰＳＭＡ抗体のグループ化したＩｇＧ定量化を示す。

抗ヒトＰＳＭＡＩｇＧ１ＡＤＣＣ活性の測定

抗ヒトＰＳＭＡＩｇＧ１ＡＤＣＣ活性を測定した。免疫化マウス由来の血清の存在下または不在下で、ＬｎＣａｐ細胞に対する細胞毒性についてエフェクター細胞を試験した。図６９、図８７、及び図８８のグラフを参照されたい。ＬｎＣａｐ細胞に対するＰＳＭＡ血清の生物学的活性は、市販のＰＳＭＡ抗体よりもはるかに高いＡＤＣＣ活性を示した。抗ＰＳＭＡ抗体の脱フコシル化が、脱フコシル化されなかった市販のＰＳＭＡ抗体と比較してＡＤＣＣのトリガーを増加させることが、これらの結果により支持された。

また、図９５Ａ〜９５Ｅは、最適化されたＰＳＭＡ−ｄＭＡｂプラスミドがインビトロでハイレベルなＩｇＧ産生をもたらすことを示す。図９５Ａは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂと本明細書で呼ばれる抗ＰＳＭＡモノクローナル抗体をコードする最適化された抗ＰＳＭＡ−ＩｇＧプラスミドの設計を示す。図９５Ｂは、定量化ＥＬＩＳＡを示し、図９５Ｃは、ｐＶａｘ１−またはＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ−トランスフェクト２９３Ｔ細胞から４８時間で回収した上清の１：５０希釈の結合ＥＬＩＳＡを示す。図９５Ｄは、ｐＶａｘ１またはＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ−トランスフェクト２９３Ｔ細胞からの４８時間上清の滴定結合ＥＬＩＳＡを示す。図９５Ｅは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ−トランスフェクト２９３Ｔ細胞からの上清の１：５０希釈でプローブした組み換えＰＳＭＡ（ｒＰＳＭＡ）または無関係な組み換えＨＩＶ−Ｅｎｖ（ｒＨＩＶ−Ｅｎｖ）タンパク質のウエスタンブロット分析が、２９３Ｔ細胞で産生されたＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ−ＩｇＧの特異的結合を示すことを示す。

また、図９６Ａ〜９６Ｃは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂプラスミドがマウス中でハイレベルなＩｇＧ産生をもたらすことを示す。図９６Ａは、１００ｕｇのＰＳＭＡ−ｄＭＡｂプラスミドの単回注射を筋肉内に接種した後、ＥＰを行ったＣ５７ＢＬ／６ヌード（Ｂ６．Ｃｇ−Ｆｏｘｎ１ｎｕ／Ｊ）マウスから回収した血清で行った定量化ＥＬＩＳＡを示す。１．２ｕｇ／ｍｌのピークＩｇＧ濃度が、Ｃ５７ＢＬ／６ヌードでは１４日目に得られた。図９６Ｂは、組み換えヒトＰＳＭＡで試験したマウスから回収した血清の滴定結合ＥＬＩＳＡを示す。図９６Ｃは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ−接種マウスからの血清の１：５０希釈でプローブした組み換えＰＳＭＡ（ｒＰＳＭＡ）または無関係な組み換えＨＩＶ−Ｅｎｖ（ｒＨＩＶ−Ｅｎｖ）タンパク質のウエスタンブロット分析が、マウスで産生されたＰＳＭＡ−ｄＭＡｂＩｇＧの特異的結合を示すことを示す。

図９７Ａ〜９７Ｂは、ヌードマウスで産生されたＰＳＭＡ−ｄＭＡｂＩｇＧが、ＰＳＭＡを発現する細胞株に結合することを示す。図９７Ａは、空のｐＶａｘ１ベクターまたはＰＳＭＡ−ｄＭＡｂプラスミドのいずれかを接種したマウスからの１４日目の血清の１：５０希釈で染色した、ＰＳＭＡを発現するＬＮＣａＰ及びＴＲＡＭＰ−Ｃ２細胞株のフローサイトメトリー分析を示す。図９７Ｂは、ＬｎＣａｐ及びＴＲＡＭＰ−Ｃ２細胞染色の平均蛍光指数（ＭＦＩ）の定量化を示す。

図９８は、Ｃ５７ＢＬ／６ヌードマウスで産生されたＰＳＭＡ−ｄＭＡｂが、腫瘍組織中のＰＳＭＡを染色することを示す。ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ接種マウス由来の血清（１４日目の血清）によるヒトホルマリン固定パラフィン包埋（ＦＦＰＥ）組織切片中の膀胱及び腎臓の免疫染色は、各腫瘍組織にわたって均質に分散した強いレベルのＰＳＭＡ染色を示す。間接的な免疫蛍光分析を使用して、抗体発現を確認した。

図９９Ａ〜９９Ｃは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂがＬＮＣａＰ細胞上のＡＤＣＣを仲介することを示す。図９９Ａは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂのＡＤＣＣ活性を、ＡＤＣＣリポーターアッセイを用いて調べたことを示す。このアッセイで利用したエフェクター細胞は、ＦｃγＲＩＩＩａ受容体、Ｖ１５８（高親和性）変異体、及び蛍ルシフェラーゼの発現をもたらすＮＦＡＴ応答エレメントを安定的に発現する遺伝子改変Ｊｕｒｋａｔ細胞であった。抗体の生物学的活性は、ＮＦＡＴ経路活性化の結果として産生されたルシフェラーゼを介して測定する。標的ＬＮＣａＰ細胞を、遺伝子改変Ｊｕｒｋａｔエフェクター細胞、及び１４日目の試料由来の種々の希釈のＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ免疫化マウス血清で６時間インキュベートした後、ルシフェラーゼ活性を定量化した。図９９Ｂは、無抗体の陰性対照と比較して、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ免疫化マウス血清により誘発されたＡＤＣＣ活性の誘導倍率を示す。このデータは、ＡＤＣＣ活性が無抗体の陰性対照と比較して有意の上昇（Ｐ＜０．０５）したことを実証することによって、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂの機能プロファイルが強調される。図９９Ｃは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ血清がＬＮＣａＰ細胞の細胞死に与える影響を分析するためのフローサイトメトリーを示す。初期アポトーシス（ヒストグラムにおけるＱ２及びＱ３画分）及び後期アポトーシス及び壊死（ヒストグラムにおけるＱ２画分）の統計的に有意な増加が、異なる濃度の血清で処置したｐＶａｘ１対照細胞と比較して、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ血清で処置したＬＮＣａＰ細胞で観察された。ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ抗体と組み合わせたＰＢＭＣの添加は、ＡｎｎｅｘｉｎＶ／ＰＩ染色ＬｎＣａＰ細胞によって評価した場合に、細胞死の有意な誘発をもたらした。

チクングニヤＳＮＡＰｉ
ＣＨＩＫＶエンベロープ（Ｅｎｖ）タンパク質を標的にするＦａｂ断片（ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ）または全長抗体（ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ）のいずれかをコードする最適化ＤＮＡプラスミドを設計し、比較した。いずれかのＳＮＡＰｉ構築物をマウスに筋肉内送達することで、それらのコード抗体の急速な産生、並びにＣＨＩＫＶへの早期及び後期暴露からの予防効果が得られた。ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ免疫化マウス由来の血清も、多数の臨床ＣＨＩＫＶ分離株をエクスビボで中和できた。特に、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧによる単回免疫化により、従来の抗原誘導性ＤＮＡプラスミドよりも格段に優れた早期のウイルス暴露からの防御、並びにＣＨＩＫＶへの早期及び後期暴露からの同等レベルの防御が実証された。

材料及び方法

細胞

上述したように、ヒト胚腎臓（ＨＥＫ）２９３Ｔ細胞及びベロ細胞を、１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、１ｍｌ当たり１００ＩＵのペニシリン、１ｍｌ当たり１００ｕｇのストレプトマイシン、及び２ｍＭＬ−グルタミンが補充されたダルベッコ改変イーグル培地（Ｇｉｂｃｏ−インビトロゲン社）で維持した。

ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ及びＣＨＩＫＶ−ＩｇＧの構築。

抗ＣＨＩＫＶＥｎｖ抗体発現プラスミドを構築するため、抗体の可変重（ＶＨ）及び可変軽（ＶＬ）鎖セグメントを、いくつかの修飾をもつ合成オリゴヌクレオチドを使用するこで生成した。Ｆａｂ断片または全長抗体をクローニングするため、重鎖及び軽鎖、重鎖及び軽鎖の間の挿入フリン切断部位及びＰ２Ａ自己プロセシングペプチド部位を含有する単一オープンリーディングフレームを組み立てた。これは、単一オープンリーディングフレームから全長抗体を発現するために組み込んだ。両方のプラスミドで、発現を高めるために、リーダー配列を各遺伝子に組み込んだ。得られた配列をコドン及びＲＮＡ最適化で修飾及び強化し、ｐＶａｘ１発現ベクター中にクローニングし、得られた構築物を本研究用に大規模に産生した（ＧｅｎＳｃｒｉｐｔ、ニュージャージー州）。精製プラスミドＤＮＡに水を配合した後、マウスに投与した。空の対照ｐＶａｘ１発現ベクターを陰性対照をとして用いた。すなわち、本研究で使用した可変軽（ＶＬ）及び可変重（ＶＨ）（すなわち、Ｆａｂ）鎖または完全免疫グロブリン（Ｉｇ）のＤＮＡは、ＮＣＢＩデータベースからの配列に基づいて、確立された抗Ｅｎｖ特異的ＣＨＩＫＶ中和ヒトモノクローナル抗体／ハイブリドーマから生成された。

ウエスタンブロット分析によるＣＨＩＫＶＦａｂまたはＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ由来の抗ＣＨＩＫＶＥｎｖ抗体の発現の測定。

ＴｕｒｂｏＦｅｃｔｉｎ８．０トランスフェクション試薬（ＯｒｉＧｅｎｅ社）を用いて発現分析にヒト２９３Ｔ細胞株を利用した。これらの細胞を３５ｍｍ培養皿中で５０〜７０％のコンフルエンス（２ｍＬの総培地容積でウェルあたり１〜３×１０^５細胞）で２４時間播種した。２４時間後、細胞を１０μｇのｐＶａｘ１対照ベクター、ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ（５μｇのＶＨ及び５μｇのＶＬＤＮＡ）またはＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ（１００ｇ）でトランスフェクトした。トランスフェクションしてから４８時間後に上清を回収し、被覆抗原としてＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ組み換えタンパク質を用いてＥＬＩＳＡ法によって抗ＣＨＩＫＶ抗体レベルを評価した。ｐＶａｘ１試料からの上清を陰性対照として用いた。

ウエスタンブロット分析は、ＣＨＩＫＶ−ＦａｂまたはＣＨＩＫＶ−ＩｇＧによるトランスフェクションによって産生された抗体の特異的結合を確認するために行った。ＣＨＩＫＶエンベロープタンパク質の供給源を生成するため、２９３Ｔ細胞を、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖを発現する１０μｇのＤＮＡプラスミドでトランスフェクトした。トランスフェクション２日後、細胞を溶解させ、１２％ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上を電気泳動させた。ｉＢｌｏｔ２（ライフテクノロジーズ）を用いてゲルをニトロセルロース膜に転写した。試料をポリアクリルアミドゲル（１２％ＮｕＰＡＧＥＮｏｖｅｘ、インビトロゲン社）上に分離し、ＰＤＦ膜（インビトロゲン社）に転写した。市販の緩衝液（Ｏｄｙｓｓｅｙブロッキング緩衝液、ＬｉＣｏｒＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を用いて膜をブロックし、マウス中で育てた特異的一次抗体並びにβ−アクチン（サンタクルーズ）で４℃にて一晩インキュベートした。ＩＲＤｙｅ８００及びＩＲＤ７００ヤギ抗ウサギまたは抗マウス二次抗体を用いて検出した（ＬｉＣｏｒＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）。

ウイルス特異的結合アッセイ：免疫蛍光分析。

チャンバースライド（ナルジーン・ヌンク、ネーパービル、Ｉｌｌ．）に保存培養からベロ細胞（１×１０^４）を播種した。細胞をおおよそ８０％の密集度に到達するまで成長させた後、感染の多重度（ｍ．ｏ．ｉ．）１で細胞をＣＨＩＫＶに２時間感染させた。３７℃で２時間吸着させた後、ウイルス接種を吸引し、細胞シートをＩｓｃｏｖｅ−１０％ＦＢＳ培地で３回すすいだ。感染２４時間後、細胞をＰＢＳで２回洗浄し、冷メタノールで２０分間室温にて固定した後、空気乾燥させた。ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂを投与されたマウス由来の免疫血清（１：１００希釈物）を加湿チャンバーに９０分間３７℃で添加することで抗体結合を検出した。ＰＢＳで２回洗浄した後、ＦＩＴＣコンジュゲートヤギ抗ヒトＩｇＧ（サンタクルーズバイオテクノロジーズ社）で細胞を３７℃にて６０分間インキュベートした。４’，６−ジアミジノ−２−フェニルインドール（ＤＡＰＩ）で室温にて２０分間さらに核染色した。各インキュベーション工程後に１×ＰＢＳ洗浄を行った。その後、ＤＡＢＣＯを用いて試料をガラススライドに載せ、共焦点顕微鏡（ＬＳＭ７１０；カール・ツァイス）下で観察した。Ｚｅｎソフトウェア（カール・ツァイス）を用いて得られた画像を分析した。さらに、ＣＨＩＫ−ＩｇＧ免疫化血清の免疫反応をＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖウイルス感染ベロ細胞で偽型化したＨＩＶ−１ＧＦＰで試験し、フローサイトメトリーによって結合活性を試験した。

ＥＬＩＳＡ法による抗体定量化分析。

抗体構築物の発現速度、及びその標的抗原であるＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖに結合する能力を測定するために、ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ、またはｐＶａｘ１を投与したマウス由来の血清でＥＬＩＳＡアッセイを行った。血清試料をプラスミド注射マウスから種々の時点で回収した。回収した血清試料中の全ヒトＦａｂの定量化において、９６ウェル高結合ポリスチレンプレート（コーニング）を１μｇ／ウェルのヤギ抗ヒトＩｇＧ−Ｆａｂ断片抗体（ベチルラボラトリーズ）で４℃にて一晩被覆した。抗体構築物がその標的抗原であるＣＨＩＫＶＥｎｖタンパク質に結合する能力を測定するため、ＥＬＩＳＡプレートを組み換えＣＨＩＫＶＥｎｖタンパク質で一晩４℃にて被覆した。翌日、プレートをＰＢＳ−Ｔ（ＰＢＳ、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０）で洗浄し、ＰＢＳ−Ｔ中の３％ＢＳＡで１時間室温にてブロックした。さらに洗浄後、試料をＰＢＳ−Ｔ中の１％ＦＢＳで１：１００に希釈し、プレートに添加し、室温で１時間インキュベートした。プレートを洗浄し、ＨＲＰコンジュゲートヤギ抗ヒトカッパ軽鎖（ベチルラボラトリーズ）を室温で１時間添加した。その後、ＢｉｏｔｅｋＥＬ３１２ｅＢｉｏ−Ｋｉｎｅｔｉｃｓリーダーを用いてプレートを４５０ｎｍで読み取った。ＳＩＧＭＡＦＡＳＴＯＰＤ（シグマアルドリッチ社）で試料を検出した。定量化において、精製したヒトＩｇＧ／カッパ（ベチルラボラトリーズ）を用いて標準曲線を生成した。全ての血清試料を２通りで試験した。

ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ偽型産生及びＦＡＣＳ分析。

５μｇのｐＮＬ４−３ｅｎｖ−ＧＦＰ（３８）及び１０μｇのプラスミドコードＣＨＩＫＶウイルスエンベロープを用いてＣＨＩＫＶ−ＥｎｖＧＦＰ偽型を産生した。偽型ＶＳＶを産生した。２０％スクロースクッションを介して、ＳｏｒｖａｌｌＬｙｎｘ４００超高速遠心分離機（サーモサイエンティフィック）で２８，０００ｒｐｍで４℃にて１．５時間超遠心分離濃縮によって偽ウイルスを濃縮した。ペレットをＨＢＳＳ中で４℃にて一晩再懸濁した。ｐ２４ＥＬＩＳＡ分析後、レンチウイルス偽ウイルスを正規化し、同じ数のウイルス粒子を含むようにした。感染２４時間前に、４８ウェルプレート中の２．５×１０^４で細胞を播種した。感染１８時間後に細胞を剥がし、ＰＢＳ中の１％ＰＦＡで１０分間固定し、０．１％（ｗ／ｖ）サポニン洗浄剤溶液で透過処理した。ｐＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ投与マウス由来の血清とＡｌｅｘａ５９４コンジュゲートヤギ抗ヒトＩｇＧ二次抗体（ライフテクノロジーズ）とでＣＨＩＫＶ感染細胞をインキュベートした。フローサイトメトリー（Ｂｅｃｔｏｎ−Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）で感染を評価し、ＦｌｏｗＪｏソフトウェアを用いて感染を分析した。

マウスへのＩｇＧ投与及びＣＨＩＫＶ暴露試験。

Ｂ６．Ｃｇ−Ｆｏｘｎ１ｎｕ／Ｊ（ジャクソン研究所）マウスをＦａｂ及び全長ＩｇＧ生成、定量化、及び機能特徴付けのために使用した。ｐＶａｘ１ＤＮＡ（１００μｇ）、ＣＨＩＫＶ−ＦａｂＤＮＡ（５０μｇのＶＨ及び５０μｇのＶＬ）、またはＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ（１００μｇ）のいずれかを全容量５０ｕｌでマウスの大腿四頭筋に注射した。ＤＮＡプラスミドの投与後、直ちに最適化ＥＰ介在送達（ＣＥＬＬＥＣＴＲＡ（登録商標）；イノビオファーマシューティカルズ社）を行った。ＥＰ送達のパルスパラメータは、０．５アンペア定電流の３パルスで、１秒おきで５２ミリ秒の長さであった。

ＣＨＩＫＶ暴露試験では、ＣＨＩＫＶ−ＦａｂまたはＣＨＩＫＶ−ＩｇＧまたは空の対照ｐＶａｘ１プラスミド（１００μｇ）を全容量１００μｌでＢＡＬＢ／ｃマウスに筋肉内注射した後、上述のように直ちにＯｐｔ−ＥＰ介在送達を行った。ＤＮＡ送達２日後、各後足の背側における皮下経路を介して合計で１×１０^７ＰＦＵ（２５μｌ）のＣＨＩＫＶ−Ｄｅｌ−０３（ＪＮ５７８２４７）（４１）をマウスに暴露した。デジタルノギスを用いて、足の浮腫（縦横高さ）を０から１４ｄｐｉまで毎日測定した。暴露後の観察期間３週間にわたって生存率及び感染の兆候（すなわち、体重及び嗜眠）についてマウスを毎日監視した。３０％以上の体重を失った動物を安楽死させ、サイトカイン定量化及び他の免疫分析のために血清試料を回収した。暴露後７〜１４日目に尾部採血から血液試料を回収し、血小板アッセイ（ＰＦＵ／ｍｌ）によってウイルス血症を分析した。２つの独立した実験を行った。

免疫サイトカイン分析。

ＣＨＩＫＶ−ＦａｂまたはＣＨＩＫＶ−Ｉｇを注射してウイルス暴露したマウスから血清を回収した（暴露後１０日目）。製造者の指示に従ってＥＬＩＳＡ法を用いてＴＮＦ−α、ＩＬ−１β、ＩＰ−１０、及びＩＬ−６の血清サイトカインレベルを測定した（Ｒ＆Ｄシステムズ社）。

ＣＨＩＫＶ中和アッセイ。

ＣＨＩＫＶ−ＦａｂまたはＣＨＩＫＶ−ＩｇＧを投与したマウスの血清中のウイルス中和抗体力価を決定した。簡単に言えば、９６ウェルプレート（ヌンク社）に１ウェル当たり１５，０００個の細胞でベロ細胞（アメリカンタイプカルチャーコレクション）をプレートした。加熱不活性化されたマウス血清の連続２倍希釈物を９６ウェルプレートで３通りで調製し、ＣＨＩＫＶウイルス分離株懸濁液の１００ＴＣＩＤ５０を各ウェルに添加した。３７℃でインキュベーション１時間後、試料をベロ細胞単層に添加し、３日間インキュベートした。その後、ベロ細胞単層を固定し、０．０５％クリスタル・バイオレット、２０％メタノール（シグマアルドリッチ社）で染色した。中和力価は、最後の希釈物の逆数を取ることで決定し、ここで、ベロ細胞単層は、完全に無傷なままであり、細胞変性効果の１００％抑制をなおもたらす血清の最大希釈の逆数として表した。グラフ及び統計は、グラフパッドプリズム５ソフトウェアパッケージ（グラフパッドソフトウェア）で生成した。シグモイド用量応答（可変勾配）による非線形回帰フィッティングを用いて、ＩＣ５０を決定した。

統計分析。

スチューデントｔ検定またはノンパラメトリックスピアマン相関検定のいずれかを用いた統計分析を、グラフパッドプリズムソフトウェア（プリズム社）を用いて行った。対照群及び実験群における変数間の相関は、スピアマン・ランク相関検定を用いて統計的に評価した。全ての検定において、０．０５未満のｐ値は、有意であると見なした。

結果

ＣＨＩＫＶモノクローナル抗体の構築物及び機能性

ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ及び全長ＩｇＧ構築物は、発現を増大させるために最適化した。ＰｕｂＭｅｄで利用可能な配列（寄託番号）から産生したＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖに特異的な新規の完全ヒトｍＡｂを合成した。図７０Ａは、最適化された抗ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ及びＣＨＩＫＶ−ＩｇＧプラスミドの設計を示す。ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂにおいて、ＶＨ及びＶＬ遺伝子を次いで、実施例１４及び１７に上述のようにｐＶａｘ１プラスミドベクターに別々にクローニングした。

インビトロで産生したＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ及びＩｇＧの発現及び機能性を調べるため、ヒト２９３Ｔ細胞をＣＨＩＫＶ−Ｆａｂの等量の重鎖及び軽鎖両方のプラスミドまたはＣＨＩＫＶ−ＩｇＧのプラスミドでトランスフェクトし、トランスフェクト細胞からの上清をトランスフェクション後４８時間で回収した。図７０Ｂで示したように、ＣＨＩＫＶ−ＦａｂまたはＣＨＩＫＶ−ＩｇＧプラスミドでトランスフェクトした細胞のみが、組み換えＣＨＩＫＶエンベロープタンパク質を用いた結合ＥＬＩＳＡ法によって測定した際に、測定可能なレベルの抗ＣＨＩＫＶ抗体を産生し、これは、ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂまたは単一全長ＩｇＧの２つのプラスミド設計により、正しく組み立てられかつ機能的なＣＨＩＫＶ抗体がインビトロで生成できることを示している。

ＥＰ介在送達後のＣＨＩＫＶ−ＩｇＧのインビボ発現速度及び定量化の増大

モノクローナル抗体送達に対するこの新規のＤＮＡ送達アプローチを特徴付けするため、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧが機能的なＣＨＩＫＶ抗体をインビボ産生する能力の効果について次に試験し、上述の全長ＩｇＧ構築物を用いて検証試験を行った。Ｂ６．Ｃｇ−Ｆｏｘｎ１^ｎｕ／Ｊマウスには、ＩｇＧプラスミドまたはｐＶａｘ１ベクターをＩＭ注射で投与した後、直ちに図７０Ｃに示したようにＥＰを行った。比較の目的のためにＣＨＩＫＶ−ＩｇＧに加えて、組み換えＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖタンパク質の単回投与でもマウスを免疫化した。全てのマウス由来の血清を示したように実験中の種々の時点で回収し、ＣＨＩＫＶエンベロープタンパク質に結合している標的抗原をＥＬＩＳＡ法で測定した。ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧを投与したマウスは、ＣＨＩＫＶエンベロープタンパク質に結合することができる抗体を検出可能なレベルで産生し、投与後１〜３日目で誘発された。ここで、組み換えＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ免疫化マウスは、投与後８日目までに示し（図７０Ｄ）、従来のタンパク質投与よりもＩｇＧ送達が急速に生成されたことを示す。さらに、マウス中のＥＰによるＣＨＩＫＶ−ＩｇＧの単回投与により、血清中で検出可能なヒトＣＨＩＫＶ−Ａｂの急速な生成がもたらされた。ＣＨＩＫＶ−Ａｂの血清レベルは、５日目までに６００〜８００ｎｇ／ｍＬに到達し、１４日目に１３００〜１６００ｎｇ／ｍＬでピークに達し、３５日目まで＞８００ｎｇ／ｍＬのレベルを維持した（図７０Ｅ）。インビボ産生されたＣＨＩＫＶ−ＩｇＧの発現を調べるため、免疫化マウスから産生した抗ＣＨＩＫＶ抗体の結合特異性は、組み換えＣＨＩＫＶタンパク質を用いてウエスタンブロット分析によって確認され、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧのＩｇＧ−プラスミド設計により、正しく切断され組み立てられた機能的なＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ抗体がインビボ生成できることを示した（図７０Ｆ）。これらの実験は、ＤＮＡを送達したＣＨＩＫＶ−モノクローナル抗体は、インビトロだけでなく動物中でも複数日の期間にわたって安定しているというエビデンスを提供する。

ＣＨＩＫＶ感染細胞の結合特異性及び免疫組織化学の特徴付け

予備研究を拡張し、次に感染を用いて、新規のＤＮＡを送達する抗ＣＨＩＫＶモノクローナル抗体の治療可能性を特徴付けた。ＣＨＩＫＶ−ａｂは、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖに特異的に結合するが、他のタンパク質には特異的に結合しない。ＣＨＩＫＶ−Ａｂの特異性及び標的結合特性は、ＣＨＩＫＶ感染細胞を用いた結合ＥＬＩＳＡ法、ＦＡＣＳ分析、及び免疫組織化学によって評価した。検出抗体は、その標的抗原、すなわち、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖタンパク質に特異的に結合できるが、組み換えＨＩＶ−１エンベロープタンパク質には特異的に結合できないことが、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧまたはＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ抗体を注射した１４日目のマウスの試験連続希釈物により実証された（図７１Ａ）。インビボ産生された抗ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ抗体の結合特異性をさらに分析するため、マウス由来の血清をＣＨＩＫＶウイルスに感染している固定ベロ細胞でインキュベートした。免疫蛍光イメージングにより、ＣＨＩＫＶエンベロープタンパク質を発現する細胞上の結合抗ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧの存在が強調されるが、構築物ｐＶａｘ１のみのマウス由来のマウス血清では強調されない（図７１Ｂ）。加えて、感染細胞に対してインビボ産生した抗体をＦＡＣＳで分析した（図７１Ｃ）。ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ投与マウス由来の実験血清試料は、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ標的抗原に結合した。

ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ注射マウス由来の血清は、臨床ＣＨＩＫＶ分離株に対する広い中和活性を実証する。

ＣＨＩＫＶ−Ｉｇ投与マウスから回収した血清の潜在的な抗ＣＨＩＫＶ活性を評価するため、多数のＣＨＩＫＶ分離株、具体的には、ＣＨＩＫＶ株Ｒｏｓｓ、ＬＲ２００６−ＯＰＹ１、ＩＮＤ−６３ＷＢ１、Ｒｏｓｓ、ＰＣ０８、Ｂｉａｎｃｈｉ、及びＤＲＤＥ−０６に対する中和活性を測定した。ウイルス分離株ごとのＩＣ_５０値（少なくとも５０％の阻害をもたらした血清の最大希釈）を決定した（図７２Ａ〜７２Ｆ）。ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ注射マウス由来の血清は、試験した６つ全てのウイルス分離株を効果的に中和し、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧをコードするＤＮＡの単回注射によりマウス中でヒト抗ＣＨＩＫＶＩｇの中和力価を産生したことが実証された。その結果は、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧの投与から生成された抗体がインビボ送達後に関連性のある生物学的活性を呈することを示す。

ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧは、ハイレベルなウイルス特異的抗体活性に著しく寄与し、ＣＨＩＫＶ暴露からマウスを防御した。

現在のＣＨＩＫＶワクチンの限界は、恐らくは不十分な免疫原性による持続感染を除去することができないことである（４５）。さらに、従来の予防接種は、遅延期間の要件があり、生産的な免疫応答を高める。ますます多くの研究が、感染の結果を制御する鍵となる要因として、ウイルスへの早期免疫の発症に集中している（５、２０）。ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ構築物がＣＨＩＫＶへの早期暴露から防御をもたらし得るかどうかを決定するため、マウスの群に、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧまたはＣＨＩＫＶ−Ｆａｂプラスミドのいずれかを０日目に注射した後、２日目にウイルスに暴露した。マウスの第３群は、陰性対照として機能するように空のｐＶａｘ１プラスミドを受けた。生存率及び体重変化を２０日間記録した。ｐＶａｘ１プラスミドを注射した全てのマウスは、ウイルス暴露１週間以内に死亡した（図７３Ａ）。暴露したマウスでは、暴露後２０日間の観察期間中にＣＨＩＫＶ−ＩｇＧまたはＣＨＩＫＶ−Ｆａｂのいずれかを投与したマウスにおいて１００％の生存率が観察された。これは、両方のＣＨＩＫＶ構築物が送達後すぐにＣＨＩＫＶに対する防御免疫をもたらしたことを示唆している（図７３Ｂ）。

次に、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ及びＣＨＩＫＶ−Ｆａｂが長期にわたる防御免疫をもたらしたかどうかを評価した。ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ、ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ、またはｐＶａｘ１プラスミドを単回注射した後、マウスの群をＣＨＩＫＶウイルスに３０日間暴露した。その後、２０日間にわたってマウスの生存率を監視した。ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂを注射したマウスは、５０％の生存率を有したが、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧを注射したマウスは、暴露後の観察期間中に９０％の生存率が観察された。両方のＳＮＡＰｉ戦略構築物は、長期にわたる防御免疫をインビボでもたらし得るが、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧによりもたらされた防御は、ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ注射（ｐ＝０．００７５）で示されたものよりもより持続的で長期にわたり得ることが、これらの結果により示される（図７３Ｃ）。

ＣＨＩＫＶのような蚊媒介性ウイルスは、ヒト（７）に深刻な脳炎を引き起こし得る。ＣＨＩＫＶによるマウスの鼻腔内、皮下、及びフットパッド感染などの異なるモードのウイルス暴露は、感染後６〜９日以内に高い死亡率をもたらすことを、種々の群からの先行研究が示している（１３、１４）。加えて、ＣＨＩＫＶは、種々の度合いの病因をもつマウスに感染させた後６〜９日以内に高い死亡率を引き起こす。ウイルス感染に対するＣＨＩＫＶ抗体療法の有効性と鼻腔内及び皮下ウイルス暴露とを比較するために実験を行った。ｐＶａｘ１及びＣＨＩＫＶ−ＩｇＧの各々における２０匹のマウスは、単回免疫化を受け、各群のマウスの半分には、（２５μｌのＰＢＳ中）ＣＨＩＫＶの鼻腔内投与を介して暴露し、残りのマウスには、２日目にＣＨＩＫＶを皮下注射して暴露し、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧの防御効果は、体重減少、後肢衰弱、及び嗜眠を決定することで測定した。両方の免疫化は、皮下（図７３Ｄ）（ｐ＜０．００２４）または鼻腔内（図７３Ｅ）（ｐ＜０．００７３）でもたらされ、対照マウスと比べてＣＨＩＫＶ感染から有意な防御をもたらした。皮下暴露を受けたマウスは、鼻腔内暴露に対して平均体重減少が遅延した。我々のデータを一緒にすると、ＤＮＡを送達したＣＨＩＫＶ−ＩｇＧが、従来のＣＨＩＫＶ暴露並びに粘膜ＣＨＩＫＶ暴露に対して防御し得る広い反応性中和抗体応答を生成することが、結果により示される。

ウイルス暴露時の即時及び持続的なＣＨＩＫＶ特異的ＩｇＧ特異性の評価

ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧがＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ構築物と同じように急速であるがより持続的な防御免疫応答をインビボ生成したことを実証した後、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧによって生成した防御効果を、全長ＣＨＩＫＶエンベロープタンパク質（１７）を発現する従来のＤＮＡワクチンプラスミドであるＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖプラスミドと比べた。重要なことに、従来のワクチンストラテジーは標的抗原を認識し該抗原に応答する宿主免疫系に依存しているが、ＳＮＡＰｉ構築物は、宿主免疫応答とは独立した防御免疫をもたらす。この差を考えながら、ＳＮＡＰｉ構築物がＣＨＩＫＶへの早期暴露から防御液性免疫のより即時な供給源を提供できた。

従って、マウスの群にＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ、またはｐＶａｘ１の単回投与を施した後、プラスミド免疫化の２日後にＣＨＩＫＶに暴露した（図７４Ａ）。ＣＨＩＫＶ−ＥｎｖまたはｐＶａｘ１を投与した全てのマウスは、ウイルス暴露の６日間以内に死亡したが、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧで免疫化したマウスでは、１００％の生存率が観察された（図７４Ｂ）。これは、従来の抗原生成ＤＮＡワクチンであるＣＨＩＫＶ−ＥｎｖよりもＣＨＩＫＶ−ＩｇＧによる投与後に防御免疫がはるかに早くもたらすことを示す。

次いで、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ及びＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖによって生成された抗ＣＨＩＫＶ応答の持続期間を評価した。ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖによるロバストな免疫応答の誘導を確実にするように異なる免疫化レジメンを利用した。したがって、０日目にＣＨＩＫＶ−ＩｇＧの単回免疫化または３５日目にウイルス暴露前にＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ（０日目、１４日目、及び２８日目）の多数の免疫化のいずれかをマウスに施した。マウスの第３群には、０日目にｐＶａｘ１の単回免疫化、３５日目にウイルス暴露を受けた（図７４Ａ、ＩＩ群）。ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖによる複数回のブースト免疫化レジメンを受けたマウスの１００％生存率を記録し（図７４Ｃ）、これは、同じＤＮＡワクチンの単回注射で予め免疫化したマウスの生存率と際立って対照的であった（図７４Ｂ）。これらの所見は、適応免疫応答の速度と一致しており、これには、以下の抗原暴露を発症するのにおおよそ２週間かかり、防御免疫を生成するのに多数の抗原暴露を要することが多い。

さらに、２０日間の観察期間中にＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ接種マウスでは９０％の生存率が確認され（ｐ＝０．０００５）（図７４Ｃ）；図は、４３日までのＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ免疫化マウスにおけるの生存率が＜８０％であることを示す。しかしながら、プラスミド／ワクチン投与後の早期及び後期の時点でマウス血清中で検出された異なるレベルのヒトＩｇＧが上記の暴露結果にどのような影響を及ぼし得るかについて評価した。抗ＣＨＩＫＶＥｎｖ特異的ヒトＩｇＧは、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧの単回注射の４８時間以内に検出可能であり、ピークレベルは、注射後１４日目に測定した（〜１４００ｎｇ／ｍＬ）。重要なことは、ヒトＩｇＧは、２日目に最初に測定した値を上回るレベルで、注射後４５日目でも検出可能であった。この防御の低減は、抗ＣＨＩＫＶＩｇＧの測定血清レベルに対応する（図７４Ｄ）。防御抗体レベルの低減は、抗体の正常なクリアランスによる可能性が高く、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧのレベルは、再投与しなければ長い期間の後に防御を下回るレベルに減弱し得ることが示唆される。要するに、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧの単回注射により、複数回のブースト免疫化を要する従来のワクチン誘発免疫応答と質及び持続性において同様の防御応答を生成し得ることが、これらの所見により示される。

ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ及びＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ免疫化後の持続的かつ全身的な抗ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ抗体の誘発

ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ及びＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖの両方の防御応答が、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ及びＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖで免疫化したマウスで見られたことを考え、抗体レベルを評価するためにさらなる支援研究を行った。ＢＡＬＢ／ｃマウスを、０日目にＣＨＩＫＶ−ＩｇＧＤＮＡで免疫化するかまたは０、１４、及び２１日目にＣＨＩＫＶ−ＥｎｖＤＮＡで免疫化した。図７４Ｅは、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧまたはＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖのいずれかで免疫化したマウスからの示した時点での抗ＣＨＩＫＶＩｇＧのレベルを示す。重要な差は、抗ＣＨＩＫＶヒトＩｇＧは、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ免疫化マウスで測定し、抗ＣＨＩＫＶマウスＩｇＧは、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ免疫化マウスで測定したことである。ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ免疫化マウス中のヒトＩｇＧの早期検出及び急速な増加が、結果により示される。ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖによって誘発されたマウスＩｇＧの力価は、免疫化２週間以内に同様のピークレベルに到達するが、著しくゆっくりとしたレベルの抗体産生を呈する。

ＣＨＩＫＶウイルス負荷及びサイトカインレベルの低下は、対照の感染をもたらす。

ＣＨＩＫＶウイルス負荷及び前炎症性サイトカインのパネルを含む、ＣＨＩＫＶ関連疾患の重症度の多数の分子相関物が、先行研究により同定されている。したがって、ウイルス暴露後の早期及び後期時点でのこれらの関連疾患マーカーを抑制するＣＨＩＫＶ−ＩｇＧの能力を評価した。ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧまたはＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖのいずれかで免疫化したマウス由来の血清は、ｐＶａｘ１対照動物と比べて有意に減少したウイルス負荷を示した（それぞれ、ｐ＝０．０２４４及び０．０２２１）（図７５Ａ）。特に、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ免疫化マウスは、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖマウスと同等レベルのウイルス負荷低減を示した。選択した前炎症性サイトカインについても、ウイルス暴露後５日目のＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ免疫化マウス及びＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ免疫化マウスから測定した（ＴＮＦ−α及びＩＬ−６）。ｐＶａｘ１免疫化動物と比べて、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ及びＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖは、早期及び後期時点で両方のサイトカインの血清レベルを同様のレベルに劇的に減少させた（図７５Ｂ及び７５Ｃ）。ＣＨＩＫＶウイルス、ＴＮＦ−α、及びＩＬ−６の血清レベルは疾患の重症度と相関しているため、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧによる単回免疫化により、従来のＤＮＡワクチンに匹敵するレベルでＣＨＩＫＶ関連病変から持続的なレベルの防御をもたらし得ることが、これらの所見により示される。

ＣＴＬはウイルス感染細胞の排除に重要である場合があり、さらなる分析を行って、ワクチン誘発Ｔ細胞応答を評価し、これは、総Ｔ細胞応答のかなりの割合から成ったことを示すため、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ免疫化マウス中のＩＦＮ−γレベルを試験し、ＣＨＩＫＶペプチド刺激後に比較的高いバックグラウンドレベルのＩＦＮ−γ応答を示し、ＩＦＮ−γ産生細胞が全ての免疫化マウスで検出された。図７５Ｄは、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ、ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ、または両方で予め免疫化したマウスからＴ細胞応答の測定であった。ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖは、強いＴ細胞応答を誘発するが、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧは誘発しないことが、結果により示される。この別のマルチモーダルの新規アプローチは、ロバストで、即時、かつ持続的な全身性液性及び細胞性免疫を引き起こした。

ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ及びＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ試験では、全長ＩｇＧの急速な産生は、投与後最初の４８〜７２時間以内に見られた。産生の速度及びレベルは、早期時点で抗体のＦａｂ及びＩｇＧバージョンの間で同様であり、これは、感染性疾患の予防に重要である。両方の形態の抗体モダリティにより、免疫化の２日後の致死的なＣＨＩＫＶ暴露に対してマウスを防御した。しかしながら、ワクチン送達後の後期時点（免疫化の３０日後）でマウスを暴露した場合、防御の差は明らかであった：ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧで免疫化したマウスの９０％が生存したが、ＣＨＩＫＶ−Ｆａｂ免疫化マウスでは５０％の生存率を記録した。したがって、両方の抗体構築物は、同一の抗原特異性を有し、及び送達後に急速に発現したが、全長ＩｇＧは、Ｆａｂ構築物よりも長い半減期が実証され、これは、防御免疫を維持するのに重要であることが判明した。

ＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖと呼ばれる、ＣＨＩＫＶ感染用のＤＮＡベースワクチンが以前に生成されている。米国特許公開第２０１１／０１０４１９８号を参照されたい。ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧまたはＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖのいずれかの単回用量をマウスに注射し、２日後にウイルスで暴露した場合、ＣＨＩＫＶ−ＩｇＧ注射群の全てのマウスが生存し、これは、マウスが感染から１匹も生存しなかったＣＨＩＫＶ−Ｅｎｖ群と全く対照的である。しかしながら、完全免疫化レジメン（３週間の期間にわたって３回接種）後に、ＣＨＩＫＶ−ＥＮＶによる完全防御が観察された。特に、同様レベルの防御は、単回用量のＣＨＩＫＶ−ＩｇＧを投与したマウスで見られたが、この防御は、長期間にわたって７５％生存率に減少した。これらの所見は、各プラットフォームの利点を実証しており、組み合わせアプローチが即時かつ持続的な防御に必要な場合があることを示唆する。ＤＮＡベースワクチンは、抗ベクター免疫を干渉または生成しないため、組み合わせアプローチに対して理想的なプラットフォームを提供する。ＣＨＩＫＶ及び他の病原体に対して急速かつ長続きする免疫をもたらす手段としてのＳＮＡＰｉプラスミド及び従来のＤＮＡワクチンの順次送達または共送達は、現在、我々の研究所での活発な調査領域である。

ＤＮＡプラスミド介在抗体遺伝子伝達を用いた、ＤＥＮＶに対する交差反応性の中和抗体の血流への送達
ＦｃγＲ結合を無効にするＦｃ領域突然変異をもつ、抗ＤＥＮＶヒトＩｇＧ１ｎＡｂをコードするＤＮＡプラスミドの筋肉内送達は、ウイルスのみのＤＥＮＶ感染、及び抗体強化致死感染の両方からマウスを防御する。

ＤＥＮＶ１−３を中和する能力をもつヒトＩｇＧ１ｍＡｂである抗ＤＥＮＶ抗体ＤＶ８７．１の重鎖及び軽鎖をコードする高最適化ＤＮＡプラスミドを設計し、構築した。２つの最適化プラスミド：ＤＶ８７．１の重鎖及び軽鎖をコードするｐＤＶＳＦ−３ＷＴと、ＣＨ２領域における２つのロイシンをアラニン（ＬＡＬＡ）に突然変異させることでＦｃγＲ結合を無効にしたＦｃ領域修飾バージョンのＤＶ８７．１をコードするｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡとを構築した。これは、抗体依存性感染増強を排除するために行った。構築物中の重鎖及び軽鎖遺伝子は、フリン切断部位及びＰ２Ａ自己プロセシングペプチドによって分離した。各導入遺伝子を遺伝子的に最適化し、合成し、修飾ｐＶａｘ１哺乳類発現ベクターにサブクローニングした（図７６ａ）。

プラスミドをヒト胎児腎臓（ＨＥＫ）２９３Ｔ細胞中にトランスフェクトし、上清の分泌抗体レベルを酵素結合免疫吸着測定法（ＥＬＩＳＡ）によって４８時間後に定量化した（図７６ｂ）。両方のｐＤＶＳＦ−３ＷＴ及びｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡは、６００ｎｇ／ｍＬのヒトＩｇＧをもたらし、プラスミドがヒトＩｇＧを発現することができ、ＬＡＬＡ突然変異が抗体発現レベルにインビトロで効果を有さないことが確認された。適切な抗体アセンブリを確認するため、ＤＶＳＦ−３及びＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡ抗体をトランスフェクトＨＥＫ２９３Ｔ細胞の上清から回収し、ウエスタンブロット分析のＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルによって分離した（図７６ｃ）。重鎖及び軽鎖タンパク質は、それらの期待分子量であり、適切なタンパク質切断及び抗体アセンブリを示した。

抗体の生物学的活性を評価するため、抗体含有上清が組み換えＤＥＮＶ１−３Ｅタンパク質に結合できるかどうかを測定する結合ＥＬＩＳＡアッセイを最初に行った。ＤＶＳＦ−３ＷＴまたはＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡ抗体のいずれかを分泌したＨＥＫ２９３Ｔ細胞の上清は、ＤＥＮＶ１−３Ｅタンパク質を認識することができたが、ＤＥＮＶ４は、予想通り認識できなかった（図７９）。さらに、ＤＶＳＦ−３ＷＴ−及びＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡを含有する上清は、ＤＥＮＶ１−３に感染したベロ細胞を染色することができたが、ＤＥＮＶ４に感染したベロ細胞は、上清によって染色されなかった（図７６ｄ）。各構築物は、ＤＥＮＶ１−３のインビトロ中和を示し（データ不図示）、ＤＶＳＦ−３ＷＴは、ＦｃγＲ担持ヒトＫ５６２細胞のＤＥＮＶ感染を増強したが、ＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡは、そのようなＡＤＥ活性をインビトロで有さなかった（図７９ｂ）。

抗体産生速度をインビボで調査するために、ヌードマウス中のＤＮＡプラスミドコードヒトＩｇＧ発現の持続期間（これは、免疫適合宿主における抗体発現をモデリングする）を決定した。マウスに、別のヒトＩｇＧ１抗ＤＥＮＶ抗体をコードするＤＮＡプラスミドであるＤＶＳＦ−１ＷＴを１００μｇ筋肉内注射した後、直ちにＥＰを行った。血清中のヒトＩｇＧ濃度は、注射後５日以内に検出可能であり、そのピークレベルは、注射後２週間で約１０００ｎｇ／ｍＬであった（図２ａ、左パネル）。ヒトＩｇＧ発現の持続期間は、少なくとも１９週間続いたため（図７７ａ、右パネル）、ＤＮＡプラスミドで達成可能な持続的な発現レベルを示した。マウスＤＥＮＶ暴露モデルが、１２９／Ｓｖバックグラウンドからのマウスを用いたことを考えると、抗体コードＤＮＡプラスミド構築物を試験して、このバックグラウンド株における血清検出可能レベルのＤＶＳＦ−３ＷＴまたはＬＡＬＡの産生を決定した。ｐＤＶＳＦ−３ＷＴまたはｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡのいずれかを受けた１２９／Ｓｖマウス由来の血清は、同等のヒトＩｇＧレベルを示し（図７７ｂ）、ＤＥＮＶ１−３に感染したベロ細胞を染色した（図７７ｃ）。さらに、ＷＴ及びＬＡＬＡの両方を含有する血清は、ＤＥＮＶ１−３を中和することができた（図７７ｄ）。

ＤＮＡプラスミドコード抗ＤＥＮＶ中和ｍＡｂｓを発現するマウスがＤＥＮＶ暴露から防御されたかどうかを評価するため、ＡＧ１２９マウスモデルを用いた。このマウスモデルは、Ｉ型及びＩＩ型インターフェロン（ＩＦＮ）受容体を欠いており、ＤＥＮＶ感染時に、ヒト疾患の多くの態様を繰り返す。重要なことは、これらのマウスは、ＡＤＥを呈することを示し、低用量の血清型特異的及び交差反応性の抗体が両方とも感染を増強させた。これらの試験では、マウスをマウス適合ＤＥＮＶ２株Ｓ２２１に感染させ、これは、サブ中和量の抗ＤＥＮＶｍＡｂ２Ｈ２の存在下で、亜致死量でのＡＧ１２９マウスにおいて、抗体増強された深刻な疾患及び急性致死性（感染４〜６日後）を引き起こす。

ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡを発現するＡＧ１２９マウスがウイルスのみの感染及び抗体依存性感染増強（ＡＤＥ）に対して防御されたかどうかを評価するため、ＡＧ１２９マウスにｐＤＶＳＦ−３ＷＴまたはｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡを単回筋肉内注射した後、直ちにＥＰを行った。陰性対照は、ｐＶａｘ１空ベクターの単回筋肉内注射を受けた後、ＥＰを行った。５日後、外因性抗ＤＥＮＶｍＡｂ２Ｈ２の存在下（ＡＤＥ）または不在下（ウイルスのみ感染）でマウスを亜致死量（１×１０^９ＧＥ）のＤＥＮＶ２Ｓ２２１に暴露させた。ｐＤＶＳＦ−３ＷＴ、ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡ、及びｐＶａｘ１コホート中のマウスは、暴露１日前にそれぞれ、７５０ｎｇ／ｍＬ、１１３９ｎｇ／ｍＬ、及び検出不能なレベルの平均ヒトＩｇＧ濃度を有した（補足の図２；ｐＤＶＳＦ−３ＷＴとｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡの間の比較についてｐ≦０．０９３０）。ウイルスのみの感染条件下では、ＤＥＮＶとＤＶＳＦ−３ＷＴ抗体によって形成された免疫複合体は、感染の増大^１４をもたらさなければならないため、ｐＤＶＳＦ−３ＷＴ処置マウスは、ＡＤＥ及び急性致死性を示すと考えられる。反対に、ｐＶａｘ１−及びｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡ処置マウスは、深刻な疾患から防御されると考えられる。実際、ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡ処置マウス６匹のうちの５匹と、５匹全てｐＶａｘ１マウスは、深刻な疾患から防御され；全てのｐＤＶＳＦ−３ＷＴ処置マウスは、５日までに疾患で死亡し（図７８ａ；ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡとｐＤＶＳＦ−３ＷＴの間の比較についてｐ≦０．００８４）、ウイルスのみの感染に対するｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡの防御能力が実証された。ＡＤＥ条件下では、ｐＤＶＳＦ−３ＷＴ処置マウス及びｐＶａｘ１処置マウスの両方は、増強感染による急性致死性を受けると考えられるが、ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡ処置マウスは、深刻な疾患から防御されなければならない。ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡを受けた５匹のマウスは全てＡＤＥ条件下で生存したが、ｐＤＶＳＦ−３ＷＴまたはｐＶａｘ１空ベクターのいずれかを受けたマウスは、４〜５日以内に急性の抗体感染増強疾患で死亡した（図７８ｂ；ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡとｐＤＶＳＦ−３ＷＴの間の比較についてｐ≦０．００７２）。まとめると、ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡの注射により、ウイルスのみ及びＡＤＥの両方の条件下で深刻な疾患に対して防御したことが、これらのデータにより示され、このプラットフォームから機能的抗体を正確に処理し、発現する筋肉の概念が支持される。

修飾ヒト抗ＤＥＮＶ１−３中和抗体をコードするＤＮＡプラスミドの単回筋肉内注射により、ウイルスのみの疾患及び抗体増強ＤＥＮＶ疾患に対してマウスを防御することができた。ＳＮＡＰｉによって発現された抗ＤＥＮＶｍＡｂを中和することによりもたらされた防御は非常に急速であり、ｐＤＶＳＦ−３ＬＡＬＡ投与後１週間未満で暴露したマウスでは完全な生存率が得られる。さらに、プラスミドコード抗体送達は、送達後５日以内に防御をもたらし、これは、ワクチンによって誘起された防御よりも著しくより急速である。

ＤＮＡプラスミドが保護Ｆｃ領域修飾ＬＡＬＡ抗体をコードする能力は、ＤＥＮＶ予防接種または自然感染時に我々の免疫系ではＡＤＥ予防抗体変異体を産生することができないために新規である。

多価のＤＥＮＶワクチン

ＤＥＮＶ血清型は、中和を逃れる^１５ことが示されていることを考えると、１つの戦略は、予防のためのＤＥＮＶウイルス粒子上の多数のエピトープを標的にする抗体カクテルを設計することである。１２９／Ｓｖマウスの一方の足にｐＤＶＳＦ−３ＷＴ（抗ＤＥＮＶ１−３）を注射し、他方の足にｐＤＶＳＦ−１ＷＴ（抗ＤＥＮＶ１−４）を注射した。両方のプラスミドを注射したマウスは、単一プラスミドを受けたマウスと比べて７日目に著しく高い血清ヒト抗体レベルを有した（図８１；ｐＤＶＳＦ−１ＷＴとｐＤＶＳＦ−１＋３の間の比較についてｐ≦０．００８８；ｐＤＶＳＦ−３ＷＴとｐＤＶＳＦ−１＋３の間の比較についてｐ≦０．０２４０）。さらに、両方のプラスミドを注射したマウス由来の血清により、４つ全てのＤＥＮＶ血清型に感染したベロ細胞を染色した（データ不図示）。

抗ＰＳＭＡ抗体による腫瘍暴露
ＤＮＡプラスミドから発現された実施例１７の抗ＰＳＭＡ抗体を腫瘍暴露研究で調べた。具体的には、３つの群のＣ５７ＢＬ／６マウスには、１×１０^６個のＴＲＡＭＰ−Ｃ２細胞／マウスを皮下に接種した。各群には１０匹のマウスがいた。腫瘍移植後５日目に、対照群は、１００μｇのｐＶａｘ１プラスミドで免疫化し、１つの実験群は、１００μｇの抗ＰＳＭＡＤＮＡプラスミドで免疫化した。第２の実験群は、腫瘍移植後７日目に、１００μｇの抗ＰＳＭＡＤＮＡプラスミドで免疫化した。図８９は、群ごとの腫瘍移植及び免疫化のそれぞれのタイムラインを示す概略図を示す。腫瘍は、図８９に示す時点で週１回測定した。

ｐＶａｘ１免疫化群中の全てのマウスが腫瘍を発症した（１０／１０、１００％；図９０）。抗ＰＳＭＡの５日目に免疫化した群のマウスの半分が腫瘍を発症した（５／１０、５０％；図９１）。抗ＰＳＭＡの７日目に免疫化した群のマウスの約１／３が腫瘍を発症した（３／１０、３０％；図９２）。

さらなる分析を行って、マウスの各それぞれの群の平均腫瘍容積を決定した。この分析により、ｐＶａｘ１プラスミドで免疫化した群と比較して、抗ＰＳＭＡＤＮＡプラスミドで免疫化した両方の群における腫瘍サイズの減少が実証された。図９３及び図９４を参照されたい。図９３は、３つの群からのマウス及びそれぞれの腫瘍の画像を示す。ｐＶａｘ１免疫化群と抗ＰＳＭＡの７日目に免疫化された群の間には、統計的に異なる腫瘍サイズが観察された（ｐ＝０．０１８４、図９４）。

抗ＰＳＭＡ抗体を発現させたＤＮＡプラスミドの投与が腫瘍容積を減少させたことが、これらの結果により示された。この観察は、空ＤＮＡプラスミドｐＶａｘ１がレシピエントマウス中の腫瘍容積を減少させなかったため、抗ＰＳＭＡ抗体を発現するＤＮＡプラスミドに依存した。要するに、脱フコシル化され、ＡＤＣＣ活性の増加を呈した、抗ＰＳＭＡ抗体をコードするＤＮＡの送達は、この抗体の発現をもたらし、このＤＮＡを受けたマウス中の腫瘍容積を減少させた。

また、図１００Ａ〜１００Ｄは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂが、ＴＲＡＭＰ−Ｃ２腫瘍暴露マウスモデル中の抗腫瘍免疫を誘発することを示す。図１００Ａは、Ｃ５７ＢＬ／６マウスへの腫瘍投与、及びｐＶａｘ１またはＰＳＭＡ−ｄＭＡｂプラスミド投与のスキームを示す。マウスは、右脇腹の皮下に１×１０^６個のＴＲＡＭＰ−Ｃ２細胞を受け、一週間後に、１００ｕｇのプラスミドをマウスに筋肉内接種し、その後にＥＰを行った。図１００Ｂは、腫瘍投与後に最大１０週目までキャリパーで週１回測定した腫瘍容積を示す。ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂプラスミドを接種したマウスは、腫瘍成長の遅延を呈した。図１００Ｃは、腫瘍投与後５０日目のｐＶａｘ１及びＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ群からの腫瘍をもつ代表的なマウスを示す。図１００Ｄは、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂ投与前の抗ＮＫ１．１ＩｇＧの単回注射によるＮＫ細胞の枯渇が、ＰＳＭＡ−ｄＭＡｂが腫瘍致死に与える保護効果を無効にしたことを示す。

上記の詳細な説明及び付随する実施例は、単に例示的なものであり、付随した特許請求の範囲及びそれらの等価物によってのみ定義された、本発明の範囲の制限と見られるべきではないと理解すべきである。

開示された実施形態に対する種々の変化及び改変は、当業者に明らかになるであろう。化学構造、置換、誘導体、中間体、合成物、組成物、製剤、または本発明の使用の方法に関するものを限定されるものではないが含む、そのような変化及び改変は、この精神及び範囲から離れないで実施し得る。

条項１。対象内での合成抗体の生成方法であって、抗体またはその断片をコードする組み換え核酸配列を含む組成物を前記対象に投与することを含み、前記組み換え核酸配列は、前記対象内で発現されて前記合成抗体を生成する、前記方法。

条項２。前記抗体が、重鎖ポリペプチドまたはその断片、及び軽鎖ポリペプチドまたはその断片を含む、条項１に記載の方法。

条項３。前記重鎖ポリペプチドまたはその断片が、第１の核酸配列によってコードされ、かつ、前記軽鎖ポリペプチドまたはその断片が第２の核酸配列によってコードされる、条項２に記載の方法。

条項４。前記組み換え核酸配列が、前記第１の核酸配列及び前記第２の核酸配列を含む、条項３に記載の方法。

条項５。前記組み換え核酸配列が、前記第１の核酸配列及び前記第２の核酸配列を単一転写産物として前記対象内で発現するプロモーターをさらに含む、条項４に記載の方法。

条項６。前記プロモーターが、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターである、条項５に記載の方法。

条項７。前記組み換え核酸配列が、プロテアーゼ切断部位をコードする第３の核酸配列をさらに含み、前記第３の核酸配列が、前記第１の核酸配列と前記第２の核酸配列との間に位置する、条項５に記載の方法。

条項８。前記対象のプロテアーゼが、前記プロテアーゼ切断部位を認識し、切断する、条項７に記載の方法。

条項９。前記組み換え核酸配列が、前記対象内で発現されて抗体ポリペプチド配列を生成し、前記抗体ポリペプチド配列が、前記重鎖ポリペプチドまたはその断片、前記プロテアーゼ切断部位、及び前記軽鎖ポリペプチドまたはその断片を含み、前記対象によって産生されたプロテアーゼが、前記抗体ポリペプチド配列のプロテアーゼ切断部位を認識し、切断することで、開裂重鎖ポリペプチド及び開裂軽鎖ポリペプチドを生成し、前記合成抗体が、該開裂重鎖ポリペプチド及び該開裂軽鎖ポリペプチドによって生成される、条項８に記載の方法。

条項１０。前記組み換え核酸配列が、第１の転写産物として前記第１の核酸配列を発現する第１のプロモーターと、第２の転写産物として前記第２の核酸配列を発現する第２のプロモーターとを含み、前記第１の転写産物が、第１のポリペプチドに翻訳され、前記第２の転写産物が第２のポリペプチドに翻訳され、前記合成抗体が、前記第１及び第２のポリペプチドによって生成される、条項４に記載の方法。

条項１１。前記第１のプロモーターと前記第２のプロモーターが、同一である、条項１０に記載の方法。

条項１２。前記プロモーターが、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターである、条項１１に記載の方法。

条項１３。前記重鎖ポリペプチドが、可変重領域及び定常重領域１を含む、条項２に記載の方法。

条項１４。前記重鎖ポリペプチドが、可変重領域、定常重領域１、ヒンジ領域、定常重領域２、及び定常重領域３を含む、条項２に記載の方法。

条項１５。前記軽鎖ポリペプチドが、可変軽領域及び定常軽領域を含む、条項２に記載の方法。

条項１６。前記組み換え核酸配列が、Ｋｏｚａｋ配列をさらに含む、条項１に記載の方法。

条項１７。前記組み換え核酸配列が、免疫グロブリン（Ｉｇ）シグナルペプチドをさらに含む、条項１に記載の方法。

条項１８。前記Ｉｇシグナルペプチドが、ＩｇＥまたはＩｇＧシグナルペプチドを含む、条項１７に記載の方法。

条項１９。前記組み換え核酸配列が、配列番号１、２、５、４１、４３、４５、４６、４７、４８、４９、５１、５３、５５、５７、５９、６１、及び８０の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含む、条項１に記載の方法。

条項２０。前記組み換え核酸配列が、配列番号３、４、６、７、４０、４２、４４、５０、５２、５４、５６、５８、６０、６２、６３、及び７９の少なくとも１つの核酸配列を含む、条項１に記載の方法。

条項２１。対象内での合成抗体の生成方法であって、重鎖ポリペプチドまたはその断片をコードする第１の組み換え核酸配列及び軽鎖ポリペプチドまたはその断片をコードする第２の組み換え核酸配列を含む組成物を前記対象に投与することを含み、前記第１の組み換え核酸配列が、前記対象内で発現されて第１のポリペプチドを生成し、前記第２の組み換え核酸配列が、前記対象内で発現されて第２のポリペプチドを生成し、前記合成抗体が、前記第１及び第２のポリペプチドによって生成される、前記方法。

条項２２。前記第１の組み換え核酸配列が、前記第１のポリペプチドを前記対象内で発現する第１のプロモーターをさらに含み、前記第２の組み換え核酸配列が、前記第２のポリペプチドを前記対象内で発現する第２のプロモーターをさらに含む、条項２１に記載の方法。

条項２３。前記第１のプロモーターと第２のプロモーターが、同一である、条項２２に記載の方法。

条項２４。前記プロモーターが、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターである、条項２３に記載の方法。

条項２５。前記重鎖ポリペプチドが、可変重領域及び定常重領域１を含む、条項２１に記載の方法。

条項２６。前記重鎖ポリペプチドが、可変重領域、定常重領域１、ヒンジ領域、定常重領域２、及び定常重領域３を含む、条項２１に記載の方法。

条項２７。前記軽鎖ポリペプチドが、可変軽領域及び定常軽領域を含む、条項２１に記載の方法。

条項２８。前記第１の組み換え核酸配列及び前記第２の組み換え核酸配列が、Ｋｏｚａｋ配列をさらに含む、条項２１に記載の方法。

条項２９。前記第１の組み換え核酸配列及び前記第２の組み換え核酸配列が、免疫グロブリン（Ｉｇ）シグナルペプチドをさらに含む、条項２１に記載の方法。

条項３０。前記Ｉｇシグナルペプチドが、ＩｇＥまたはＩｇＧシグナルペプチドを含む、条項２９に記載の方法。

条項３１。対象内の疾患の予防または治療方法であって、条項１または２１に記載の方法によって対象内での合成抗体を生成することを含む、前記方法。

条項３２。前記合成抗体が、外来抗原に特異的である、条項３１に記載の方法。

条項３３。前記外来抗原が、ウイルス由来である、条項３２に記載の方法。

条項３４。前記ウイルスが、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、チクングニヤウイルス（ＣＨＩＫＶ）、またはデングウイルスである、条項３３に記載の方法。

条項３５。前記ウイルスが、ＨＩＶである、条項３４に記載の方法。

条項３６。前記組み換え核酸配列が、配列番号１、２、５、４６、４７、４８、４９、５１、５３、５５、及び５７の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含む、条項３５に記載の方法。

条項３７。前記組み換え核酸配列が、配列番号３、４、６、７、５０、５２、５５、５６、６２、及び６３の少なくとも１つの核酸配列を含む、条項３５に記載の方法。

条項３８。前記ウイルスが、ＣＨＩＫＶである、条項３４に記載の方法。

条項３９。前記組み換え核酸配列が、配列番号５９及び６１の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含む、条項３８に記載の方法。

条項４０。前記組み換え核酸配列が、配列番号５８及び６０の少なくとも１つの核酸配列を含む、条項３８に記載の方法。

条項４１。前記ウイルスが、デングウイルスである、条項３４に記載の方法。

条項４２。前記組み換え核酸配列が、配列番号４５、７０、７４、または７８の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含む、条項４１に記載の方法。

条項４３。前記組み換え核酸配列が、配列番号４４、６９、７３、または７７の少なくとも１つの核酸配列を含む、条項４１に記載の方法。

条項４４。前記合成抗体が、自己抗原に特異的である、条項３１に記載の方法。

条項４５。前記自己抗原が、Ｈｅｒ２である、条項４４に記載の方法。

条項４６。前記組み換え核酸配列が、配列番号４１及び４３の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含む、条項４５に記載の方法。

条項４７。前記組み換え核酸配列が、配列番号４０及び４２の少なくとも１つの核酸配列を含む、条項４５に記載の方法。

条項４８。前記自己抗原が、ＰＳＭＡである、条項４４に記載の方法。

条項４９。前記組み換え核酸配列が、配列番号８０の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含む、条項４８に記載の方法。

条項５０。前記組み換え核酸配列が、配列番号７９の少なくとも１つの核酸配列を含む、条項４８に記載の方法。

条項５１。２つのロイシンからアラニン突然変異をＦｃ領域のＣＨ２領域に導入する、条項２に記載の方法。

条項５２。インビボ産生された抗体が、脱フコシル化される、条項２に記載の方法。

条項５３。条項１〜５２の方法のいずれか１つによって産生された生成物。

条項５４。前記生成物が、機能的抗体を発現することができる単一ＤＮＡプラスミドである、条項５３に記載の生成物。

条項５５。前記生成物が、インビボで組み合わせて、機能的な抗体を形成する、機能的な抗体の成分を発現することができる２つ以上の異なるＤＮＡプラスミドからなる、条項５３に記載の生成物。

条項５６。病原体による感染からの対象の治療方法であって、前記病原体に特異的な合成抗体をコードするヌクレオチド配列を投与することを含む、前記方法。

条項５７。前記対象内に免疫応答を生成するために、前記病原体の抗体を投与することをさらに含む、条項５６に記載の方法。

条項５８。癌からの対象の治療方法であって、ＡＤＣＣを誘発するために、癌マーカーをコードするヌクレオチド配列を投与することを含む、前記方法。

条項５９。配列番号７９に記載の核酸配列の全長にわたって少なくとも約９５％の同一性を有する核酸配列を含む合成抗体をコードする核酸分子。

条項６０。配列番号７９に記載の核酸配列を含む合成抗体をコードする核酸分子。

条項６１。配列番号８０に記載のアミノ酸配列の全長にわたって少なくとも約９５％の同一性を有するタンパク質をコードする核酸配列を含む合成抗体をコードする核酸分子。

条項６２。配列番号８０に記載のアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする核酸配列を含む合成抗体をコードする核酸分子。

条項６３。前記核酸分子が、発現ベクターを含む、条項５９〜６２のいずれか１項に記載の核酸分子。

条項６４。条項５９〜６２のいずれか１項に記載の核酸分子を含む組成物。

条項６５。薬学的に許容しうる賦形剤をさらに含む、条項６４に記載の組成物。

Claims

対象内での合成抗体の生成方法であって、抗体またはその断片をコードする組み換え核酸配列を含む組成物を前記対象に投与することを含み、前記組み換え核酸配列は、前記対象内で発現されて前記合成抗体を生成する、前記方法。
前記抗体が、重鎖ポリペプチドまたはその断片、及び軽鎖ポリペプチドまたはその断片を含む、請求項１に記載の方法。
前記重鎖ポリペプチドまたはその断片が、第１の核酸配列によってコードされ、かつ、前記軽鎖ポリペプチドまたはその断片が第２の核酸配列によってコードされる、請求項２に記載の方法。
前記組み換え核酸配列が、前記第１の核酸配列及び前記第２の核酸配列を含む、請求項３に記載の方法。
前記組み換え核酸配列が、前記第１の核酸配列及び前記第２の核酸配列を単一転写産物として前記対象内で発現するプロモーターをさらに含む、請求項４に記載の方法。
前記プロモーターが、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターである、請求項５に記載の方法。
前記組み換え核酸配列が、プロテアーゼ切断部位をコードする第３の核酸配列をさらに含み、前記第３の核酸配列が、前記第１の核酸配列と前記第２の核酸配列との間に位置する、請求項５に記載の方法。
前記対象のプロテアーゼが、前記プロテアーゼ切断部位を認識し、切断する、請求項７に記載の方法。
前記組み換え核酸配列が、前記対象内で発現されて抗体ポリペプチド配列を生成し、前記抗体ポリペプチド配列が、前記重鎖ポリペプチドまたはその断片、前記プロテアーゼ切断部位、及び前記軽鎖ポリペプチドまたはその断片を含み、前記対象によって産生されたプロテアーゼが、前記抗体ポリペプチド配列のプロテアーゼ切断部位を認識し、切断することで、開裂重鎖ポリペプチド及び開裂軽鎖ポリペプチドを生成し、前記合成抗体が、前記開裂重鎖ポリペプチド及び前記開裂軽鎖ポリペプチドによって生成される、請求項８に記載の方法。
前記組み換え核酸配列が、第１の転写産物として前記第１の核酸配列を発現する第１のプロモーターと、第２の転写産物として前記第２の核酸配列を発現する第２のプロモーターとを含み、前記第１の転写産物が、第１のポリペプチドに翻訳され、前記第２の転写産物が、第２のポリペプチドに翻訳され、前記合成抗体が、前記第１及び第２のポリペプチドによって生成される、請求項４に記載の方法。
前記第１のプロモーターと前記第２のプロモーターが、同一である、請求項１０に記載の方法。
前記プロモーターが、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターである、請求項１１に記載の方法。
前記重鎖ポリペプチドが、可変重領域及び定常重領域１を含む、請求項２に記載の方法。
前記重鎖ポリペプチドが、可変重領域、定常重領域１、ヒンジ領域、定常重領域２、及び定常重領域３を含む、請求項２に記載の方法。
前記軽鎖ポリペプチドが、可変軽領域及び定常軽領域を含む、請求項２に記載の方法。
前記組み換え核酸配列が、Ｋｏｚａｋ配列をさらに含む、請求項１に記載の方法。
前記組み換え核酸配列が、免疫グロブリン（Ｉｇ）シグナルペプチドをさらに含む、請求項１に記載の方法。
前記Ｉｇシグナルペプチドが、ＩｇＥまたはＩｇＧシグナルペプチドを含む、請求項１７に記載の方法。
前記組み換え核酸配列が、配列番号８０の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含む、請求項１に記載の方法。
前記組み換え核酸配列が、配列番号７９の少なくとも１つの核酸配列を含む、請求項１に記載の方法。
対象内での合成抗体の生成方法であって、重鎖ポリペプチドまたはその断片をコードする第１の組み換え核酸配列及び軽鎖ポリペプチドまたはその断片をコードする第２の組み換え核酸配列を含む組成物を前記対象に投与することを含み、前記第１の組み換え核酸配列が、前記対象内で発現されて第１のポリペプチドを生成し、前記第２の組み換え核酸配列が、前記対象内で発現されて第２のポリペプチドを生成し、前記合成抗体が、前記第１及び第２のポリペプチドによって生成される、前記方法。
前記第１の組み換え核酸配列が、前記第１のポリペプチドを前記対象内で発現する第１のプロモーターをさらに含み、前記第２の組み換え核酸配列が、前記第２のポリペプチドを前記対象内で発現する第２のプロモーターをさらに含む、請求項２１に記載の方法。
前記第１のプロモーターと前記第２のプロモーターが、同一である、請求項２２に記載の方法。
前記プロモーターが、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターである、請求項２３に記載の方法。
前記重鎖ポリペプチドが、可変重領域及び定常重領域１を含む、請求項２１に記載の方法。
前記重鎖ポリペプチドが、可変重領域、定常重領域１、ヒンジ領域、定常重領域２、及び定常重領域３を含む、請求項２１に記載の方法。
前記軽鎖ポリペプチドが、可変軽領域及び定常軽領域を含む、請求項２１に記載の方法。
前記第１の組み換え核酸配列及び前記第２の組み換え核酸配列が、Ｋｏｚａｋ配列をさらに含む、請求項２１に記載の方法。
前記第１の組み換え核酸配列及び前記第２の組み換え核酸配列が、免疫グロブリン（Ｉｇ）シグナルペプチドをさらに含む、請求項２１に記載の方法。
前記Ｉｇシグナルペプチドが、ＩｇＥまたはＩｇＧシグナルペプチドを含む、請求項２９に記載の方法。
対象内の疾患の予防または治療方法であって、請求項１または２１に記載の方法によって対象内での合成抗体を生成することを含む、前記方法。
前記合成抗体が、自己抗原に特異的である、請求項３１に記載の方法。
前記自己抗原が、ＰＳＭＡである、請求項３２に記載の方法。
前記組み換え核酸配列が、配列番号８０の少なくとも１つのアミノ酸配列をコードする核酸配列を含む、請求項３３に記載の方法。
前記組み換え核酸配列が、配列番号７９の少なくとも１つの核酸配列を含む、請求項３３に記載の方法。
２つのロイシンからアラニン突然変異をＦｃ領域のＣＨ２領域に導入する、請求項２に記載の方法。
インビボ産生された抗体が、脱フコシル化される、請求項２に記載の方法。
請求項１〜３７の方法のいずれか１つによって産生された生成物。
前記生成物が、機能的抗体を発現することができる単一ＤＮＡプラスミドである、請求項３８に記載の生成物。
前記生成物が、インビボで組み合わせて、機能的抗体を形成する、機能的抗体の成分を発現することができる２つ以上の異なるＤＮＡプラスミドからなる、請求項３８に記載の生成物。
病原体による感染からの対象の治療方法であって、前記病原体に特異的な合成抗体をコードするヌクレオチド配列を投与することを含む、前記方法。
前記対象内に免疫応答を生成するために、前記病原体の抗体を投与することをさらに含む、請求項４１に記載の方法。
癌からの対象の治療方法であって、ＡＤＣＣを誘発するために、癌マーカーをコードするヌクレオチド配列を投与することを含む、前記方法。
配列番号７９に記載の核酸配列の全長にわたって少なくとも約９５％の同一性を有する核酸配列を含む合成抗体をコードする核酸分子。
配列番号７９に記載の核酸配列を含む合成抗体をコードする核酸分子。
配列番号８０に記載のアミノ酸配列の全長にわたって少なくとも約９５％の同一性を有するタンパク質をコードする核酸配列を含む合成抗体をコードする核酸分子。
配列番号８０に記載のアミノ酸配列を含むタンパク質をコードする核酸配列を含む合成抗体をコードする核酸分子。
前記核酸分子が、発現ベクターを含む、請求項４４〜４７のいずれか１項に記載の核酸分子。
請求項４４〜４８のいずれか１項に記載の核酸分子を含む組成物。
薬学的に許容しうる賦形剤をさらに含む、請求項４９に記載の組成物。