JP2017533721A - タンパク質の調節のための化合物及び方法 - Google Patents
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- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
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Abstract
Description
本出願は、電子形式の配列表とともに出願されている。この配列表は、2015年11月11日に作成された72KbのサイズのCORE0132WOSEQ_ST25.txtという名前のファイルとして提供される。配列表の電子形式の情報は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
別途示されない限り、以下の用語は、以下の意味を有する。
ある特定の実施形態において、本発明は、アンチセンス化合物を提供する。ある特定の実施形態において、アンチセンス化合物は、修飾オリゴヌクレオチドを含む。ある特定の実施形態において、そのようなアンチセンス化合物は、修飾オリゴヌクレオチド、ならびに任意選択的に1個以上の共役基及び/または末端基を含む。ある特定の実施形態において、アンチセンス化合物は、修飾オリゴヌクレオチドからなる。ある特定の実施形態において、修飾オリゴヌクレオチドは、1個以上の化学修飾を含む。そのような化学修飾は、1個以上のヌクレオシドの修飾(糖部分及び/若しくは核酸塩基への修飾を含む)ならびに/または1個以上のヌクレオシド間結合への修飾を含む。
ある特定の実施形態において、少なくとも1個の修飾ヌクレオシドを含むオリゴヌクレオチドを含むか、またはそれからなるアンチセンス化合物が本明細書で提供される。そのような修飾ヌクレオシドは、修飾糖部分、修飾核酸塩基、または修飾糖部分及び修飾核酸塩基の両方を含む。
ある特定の実施形態において、本発明のアンチセンス化合物は、修飾糖部分を含む1個以上の修飾ヌクレオシドを含む。1個以上の糖修飾ヌクレオシドを含むそのようなアンチセンス化合物は、天然の糖部分を含むヌクレオシドのみを含むアンチセンス化合物と比較して、強化されたヌクレアーゼ安定性または増大した標的核酸との結合親和性等の望ましい特性を有し得る。ある特定の実施形態において、修飾糖部分は、置換糖部分である。ある特定の実施形態において、修飾糖部分は、二環式または三環式糖部分である。ある特定の実施形態において、修飾糖部分は、糖代理物である。そのような糖代理物は、置換糖部分のものに対応する1つ以上の置換を含み得る。
式中、
Xは、0、1、または2であり、
Nは、1、2、3、または4であり、
各Ra及びRbは、独立して、H、保護基、ヒドロキシル、C1−C12アルキル、置換C1−C12アルキル、C2−C12アルケニル、置換C2−C12アルケニル、C2−C12アルキニル、置換C2−C12アルキニル、C5−C20アリール、置換C5−C20アリール、複素環ラジカル、置換複素環ラジカル、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、C5−C7脂環式ラジカル、置換C5−C7脂環式ラジカル、ハロゲン、OJ1、NJ1J2、SJ1、N3、COOJ1、アシル(C(=O)−H)、置換アシル、CN、スルホニル(S(=O)2−J1)、またはスルホキシル(S(=O)−J1)であり、
各J1及びJ2は、独立して、H、C1−C12アルキル、置換C1−C12アルキル、C2−C12アルケニル、置換C2−C12アルケニル、C2−C12アルキニル、置換C2−C12アルキニル、C5−C20アリール、置換C5−C20アリール、アシル(C(=O)−H)、置換アシル、複素環ラジカル、置換複素環ラジカル、C1−C12アミノアルキル、置換C1−C12アミノアルキル、または保護基である。
Bxは、核酸塩基部分であり、
T3及びT4は、各々独立して、テトラヒドロピランヌクレオシド類似体をアンチセンス化合物に連結するヌクレオシド間連結基であるか、またはT3及びT4のうちの一方が、テトラヒドロピランヌクレオシド類似体をアンチセンス化合物に連結するヌクレオシド間連結基であり、かつT3及びT4のうちの他方が、H、ヒドロキシル保護基、連結された共役基、または5’末端基若しくは3’末端基であり、
q1、q2、q3、q4、q5、q6、及びq7は、各々独立して、H、C1−C6アルキル、置換C1−C6アルキル、C2−C6アルケニル、置換C2−C6アルケニル、C2−C6アルキニル、または置換C2−C6アルキニルであり、かつ
R1及びR2の各々は、水素、ハロゲン、置換若しくは非置換アルコキシ、NJ1J2、SJ1、N3、OC(=X)J1、OC(=X)NJ1J2、NJ3C(=X)NJ1J2、及びCNの中から独立して選択され、式中、Xは、O、S、またはNJ1であり、各J1、J2、及びJ3は、独立して、HまたはC1−C6アルキルである。
ある特定の実施形態において、本発明のヌクレオシドは、1個以上の非修飾核酸塩基を含む。ある特定の実施形態において、本発明のヌクレオシドは、1個以上の修飾核酸塩基を含む。
ある特定の実施形態において、ヌクレオシドは、任意のヌクレオシド間結合を使用して一緒に連結されて、オリゴヌクレオチドを形成し得る。ヌクレオシド間結合基の2つの主なクラスは、リン原子の存在または不在によって定義される。代表的なリン含有ヌクレオシド間結合としては、ホスホジエステル(P=O)、ホスホトリエステル、メチルホスホネート、ホスホラミデート、及びホスホロチオエート(P=S)が挙げられるが、これらに限定されない。代表的な非リン含有ヌクレオシド間結合基としては、メチレンメチルイミノ(−CH2−N(CH3)−O−CH2−)、チオジエステル(−O−C(O)−S−)、チオノカルバメート(−O−C(O)(NH)−S−)、シロキサン(−O−Si(H)2−O−)、及びN,N’−ジメチルヒドラジン(−CH2−N(CH3)−N(CH3)−)を含むが、これらに限定されない。修飾結合は、天然ホスホジエステル結合と比較して、オリゴヌクレオチドのヌクレアーゼ耐性を変化させる、典型的には増加させるために使用することができる。ある特定の実施形態において、キラル原子を有するヌクレオシド間結合は、ラセミ混合物として、または別個のエナンチオマーとして調製され得る。代表的なキラル結合は、アルキルホスホネート及びホスホロチオエートを含むが、これらに限定されない。リン含有及び非リン含有ヌクレオシド間結合の調製方法は、当業者に周知である。
ある特定の実施形態において、本発明は、修飾オリゴククレオチド(oligocucleotides)を提供する。ある特定の実施形態において、修飾オリゴヌクレオチドは、1個以上の修飾糖を含む。ある特定の実施形態において、修飾オリゴヌクレオチドは、1個以上の修飾核酸塩基を含む。ある特定の実施形態において、修飾オリゴヌクレオチドは、1個以上の修飾ヌクレオシド間結合を含む。ある特定の実施形態において、修飾(糖修飾、核酸塩基修飾、及び/または結合修飾)は、パターンまたはモチーフを定義する。ある特定の実施形態において、糖部分、ヌクレオシド間結合、及び核酸塩基の化学修飾のパターンは、互いに独立している。したがって、修飾オリゴヌクレオチドは、その糖修飾モチーフ、ヌクレオシド間結合モチーフ、及び/または核酸塩基修飾モチーフ(本明細書で使用されるとき、核酸塩基修飾モチーフは、核酸塩基の配列から独立している核酸塩基への化学修飾を説明する)によって説明され得る。
ある特定の実施形態において、本発明は、様々な範囲の長さのうちのいずれかの修飾オリゴヌクレオチドを提供する。ある特定の実施形態において、本発明は、X〜Y個の結合ヌクレオシドからなるオリゴマー化合物またはオリゴヌクレオチドを提供し、ここで、Xは、その範囲の最小数のヌクレオシドを表し、Yは、その範囲の最大数のヌクレオシドを表す。ある特定のそのような実施形態において、X及びYは、各々独立して、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、及び50から選択されるが、但し、XがY以下であることを条件とする。例えば、ある特定の実施形態において、本発明は、8〜9、8〜10、8〜11、8〜12、8〜13、8〜14、8〜15、8〜16、8〜17、8〜18、8〜19、8〜20、8〜21、8〜22、8〜23、8〜24、8〜25、8〜26、8〜27、8〜28、8〜29、8〜30、9〜10、9〜11、9〜12、9〜13、9〜14、9〜15、9〜16、9〜17、9〜18、9〜19、9〜20、9〜21、9〜22、9〜23、9〜24、9〜25、9〜26、9〜27、9〜28、9〜29、9〜30、10〜11、10〜12、10〜13、10〜14、10〜15、10〜16、10〜17、10〜18、10〜19、10〜20、10〜21、10〜22、10〜23、10〜24、10〜25、10〜26、10〜27、10〜28、10〜29、10〜30、11〜12、11〜13、11〜14、11〜15、11〜16、11〜17、11〜18、11〜19、11〜20、11〜21、11〜22、11〜23、11〜24、11〜25、11〜26、11〜27、11〜28、11〜29、11〜30、12〜13、12〜14、12〜15、12〜16、12〜17、12〜18、12〜19、12〜20、12〜21、12〜22、12〜23、12〜24、12〜25、12〜26、12〜27、12〜28、12〜29、12〜30、13〜14、13〜15、13〜16、13〜17、13〜18、13〜19、13〜20、13〜21、13〜22、13〜23、13〜24、13〜25、13〜26、13〜27、13〜28、13〜29、13〜30、14〜15、14〜16、14〜17、14〜18、14〜19、14〜20、14〜21、14〜22、14〜23、14〜24、14〜25、14〜26、14〜27、14〜28、14〜29、14〜30、15〜16、15〜17、15〜18、15〜19、15〜20、15〜21、15〜22、15〜23、15〜24、15〜25、15〜26、15〜27、15〜28、15〜29、15〜30、16〜17、16〜18、16〜19、16〜20、16〜21、16〜22、16〜23、16〜24、16〜25、16〜26、16〜27、16〜28、16〜29、16〜30、17〜18、17〜19、17〜20、17〜21、17〜22、17〜23、17〜24、17〜25、17〜26、17〜27、17〜28、17〜29、17〜30、18〜19、18〜20、18〜21、18〜22、18〜23、18〜24、18〜25、18〜26、18〜27、18〜28、18〜29、18〜30、19〜20、19〜21、19〜22、19〜23、19〜24、19〜25、19〜26、19〜29、19〜28、19〜29、19〜30、20〜21、20〜22、20〜23、20〜24、20〜25、20〜26、20〜27、20〜28、20〜29、20〜30、21〜22、21〜23、21〜24、21〜25、21〜26、21〜27、21〜28、21〜29、21〜30、22〜23、22〜24、22〜25、22〜26、22〜27、22〜28、22〜29、22〜30、23〜24、23〜25、23〜26、23〜27、23〜28、23〜29、23〜30、24〜25、24〜26、24〜27、24〜28、24〜29、24〜30、25〜26、25〜27、25〜28、25〜29、25〜30、26〜27、26〜28、26〜29、26〜30、27〜28、27〜29、27〜30、28〜29、28〜30、または29〜30個の結合ヌクレオシドからなるオリゴヌクレオチドを含む、修飾オリゴヌクレオチドを提供する。ある範囲またはある特定の数にかかわらず、オリゴマー化合物またはオリゴヌクレオチドのヌクレオシドの数が限定される実施形態において、オリゴマー化合物またはオリゴヌクレオチドは、それでもやはり、さらなる他の置換基をさらに含み得る。例えば、8〜30個のヌクレオシドを含むオリゴヌクレオチドは、31個のヌクレオシドを有するオリゴヌクレオチドを除外するが、別途示されない限り、そのようなオリゴヌクレオチドは、例えば、1個以上の共役体、末端基、または他の置換基をさらに含んでも良い。ある特定の実施形態において、修飾オリゴヌクレオチドは、上記の長さのいずれかを有する。
ある特定の実施形態において、本発明のオリゴヌクレオチドは、その修飾モチーフ及び全長によって特徴付けられる。ある特定の実施形態において、そのようなパラメータは各々、互いに独立している。
ある特定の実施形態において、本発明は、オリゴヌクレオチド(修飾または非修飾)、ならびに任意選択的に1個以上の共役基及び/または末端基からなるオリゴマー化合物を提供する。共役基は、1個以上の共役部分、及び共役部分をオリゴヌクレオチドに結合させる共役リンカーからなる。共役基は、オリゴヌクレオチドのいずれか若しくは両方の末端及び/または任意の内部位置に結合しても良い。ある特定の実施形態において、共役基は、修飾オリゴヌクレオチドのヌクレオシドの2’位に結合する。ある特定の実施形態において、オリゴヌクレオチドのいずれかまたは両方の末端に結合する共役基は、末端基である。そのようなある特定の実施形態において、共役基または末端基は、オリゴヌクレオチドの3’及び/または5’末端に結合する。そのようなある特定の実施形態において、共役基(または末端基)は、オリゴヌクレオチドの3’末端に結合する。ある特定の実施形態において、共役基は、オリゴヌクレオチドの3’末端付近に結合する。ある特定の実施形態において、共役基(または末端基)は、オリゴヌクレオチドの5’末端に結合する。ある特定の実施形態において、共役基は、オリゴヌクレオチドの5’末端付近に結合する。
Bxは、ウラシル、チミン、シトシン、5−メチルシトシン、アデニン、またはグアニンであり、
T2は、式IIeの化合物をオリゴマー化合物に結合させるホスホロチオエートヌクレオシド間結合基であり、
Gは、ハロゲン、OCH3、OCF3、OCH2CH3、OCH2CF3、OCH2−CH=CH2、O(CH2)2−OCH3、O(CH2)2−O(CH2)2−N(CH3)2、OCH2C(=O)−N(H)CH3、OCH2C(=O)−N(H)−(CH2)2−N(CH3)2、またはOCH2−N(H)−C(=NH)NH2である。
ある特定の実施形態において、本明細書に提供されるオリゴヌクレオチドまたはオリゴマー化合物は、1つ以上の共役基の共有結合によって修飾される。概して、共役基は、限定されないが、薬物動力学、薬物動態、安定性、結合、吸収、細胞分布、細胞取り込み、電荷、及びクリアランスを含む、結合したオリゴヌクレオチドまたはオリゴマー化合物の1つ以上の特性を改変する。本明細書で使用されるとき、「共役基」とは、オリゴヌクレオチドまたはオリゴマー化合物に結合される原子群を含むラジカル基を意味する。概して、共役基は、薬力学的特性、薬物動態学的特性、結合特性、吸収特性、細胞分布特性、細胞取り込み特性、電荷特性、及び/またはクリアランス特性を含むが、これらに限定されない、それらが結合する化合物の1つ以上の特性を修飾する。共役基は、化学分野で常用され、共役基をオリゴヌクレオチドまたはオリゴマー化合物に共有結合させる共役リンカーを含むことができる。ある特定の実施形態において、共役基は、共役基をオリゴヌクレオチドまたはオリゴマー化合物に共有結合させる切断可能な部分を含む。ある特定の実施形態において、共役基は、共役基をオリゴヌクレオチドまたはオリゴマー化合物に共有結合させる共役リンカー及び切断可能な部分を含む。ある特定の実施形態において、共役基は、一般式:
ある特定の実施形態において、本明細書に提供される修飾オリゴヌクレオチドは、アンチセンス化合物である。そのようなアンチセンス化合物は、標的核酸にハイブリダイズすることができ、少なくとも1つのアンチセンス活性をもたらす。ある特定の実施形態において、アンチセンス化合物は、1つ以上の標的核酸に特異的にハイブリダイズする。ある特定の実施形態において、特異的にハイブリダイズするアンチセンス化合物は、標的核酸に対して、ハイブリダイゼーションを可能にし、かつアンチセンス活性をもたらすのに十分な相補性と、任意の非標的に対して、特異的ハイブリダイゼーションが所望される条件下(例えば、インビボまたは治療的使用のために生理学的条件下、かつインビトロアッセイの場合、アッセイが実行される条件下)で任意の非標的核酸配列への非特異的ハイブリダイゼーションを回避するように不十分な相補性と、を有する領域を含む核酸塩基配列を有する。
ある特定の実施形態において、本明細書に記載される修飾オリゴヌクレオチドは、配列番号3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、45、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、または77の核酸塩基配列のいずれかの少なくとも14個の連続した核酸塩基を含む核酸塩基配列を有する。
5’−UTRは、多くの転写物の翻訳の調節において重要な役割を担うことが明らかになっている。ある特定の実施形態において、5’−UTRは、標的タンパク質の翻訳を抑制するように働く翻訳抑制要素(TSE)を含有する。ある特定の実施形態において、翻訳抑制要素はuORFである。ある特定の実施形態において、翻訳抑制要素はG−カルテットである。ある特定の実施形態において、翻訳抑制要素はステムループである。TSEの妨害は、所与の転写物の翻訳のTSEによる抑制を減少させるため、標的タンパク質の翻訳の増加をもたらすことになる。ある特定の実施形態においては、アンチセンス化合物を使用して、TSEを妨害し、標的タンパク質の翻訳を増加させる。
ある特定の実施形態において、本開示は、細胞におけるアンチセンス化合物の活性の増加方法を提供し、本方法は、細胞を翻訳抑制要素阻害剤と接触させることにより、アンチセンス化合物の活性を増加させることを含む。
ある特定の実施形態において、本明細書に記載されるアンチセンス化合物は、uORF領域または翻訳抑制要素に相補的であるマイクロRNAまたは他の天然の非コード転写物を標的とし得る。ある特定のそのようなアンチセンス化合物は、したがって、翻訳抑制要素またはuORFの効果を増加させることによって標的転写物の発現を阻害する。例えば、ある特定の実施形態において、マイクロRNA等の非コード転写物は、uORFまたはuORF領域に相補的であり、標的タンパク質の発現を増加させるように機能し得る。マイクロRNAに相補的なアンチセンス化合物がマイクロRNAを隔離し、その後uORFが標的タンパク質の翻訳を抑制する。そのようにして、アンチセンス化合物は標的タンパク質の発現を阻害する。
本開示は、少なくとも1つのuORFが標的タンパク質をコードする転写物上に存在することを条件に、任意の標的タンパク質の発現を増加させるために使用され得る化合物及び方法を提供する。本開示はまた、少なくとも1つのTSEが標的タンパク質をコードする転写物上に存在することを条件に、任意の標的タンパク質の発現を増加させるために使用され得る化合物及び方法を提供する。ある特定の実施形態において、少なくとも1つのTSEは、uORFを含む。ある特定の実施形態において、少なくとも2つのTSEが標的タンパク質をコードする転写物上に存在する。ある特定の実施形態において、少なくとも2つのTSEのいずれもuORFを含まない。ある特定の実施形態において、少なくとも2つのTSEの一方がuORFを含む。ある特定の実施形態において、少なくとも2つのTSEの両方がuORFを含む。ある特定の実施形態において、標的タンパク質の欠乏が疾患と関連するため、タンパク質の量または活性を増加させることが、疾患の1つ以上の症状を緩和するか、または疾患の1つ以上の症状の発症を遅延させると考えられる。以下の表1及び表2は、ある特定の遺伝子及び関連する疾患を列挙する。ある特定の実施形態において、標的転写物は、表1または表2に列挙される遺伝子によってコードされる。ある特定の実施形態において、表1または表2中の関連する疾患または障害は、そのような転写物を標的とする本発明のアンチセンス化合物の使用によって治療される。表1中の各遺伝子と関連する疾患には、対応するuORF含有遺伝子の不足に起因して生じるかまたはそれと相関する疾患、及び対応するuORF含有遺伝子の上方調節によって緩和され得る疾患が含まれる。表2中の各遺伝子と関連する疾患には、対応する遺伝子においてuORFを導入する突然変異またはSNPと相関する疾患が含まれる。
ある特定の実施形態において、本発明は、1個以上のアンチセンス化合物を含む薬学的組成物を提供する。ある特定の実施形態において、そのような薬学的組成物は、好適な薬学的に許容される希釈剤または担体を含む。ある特定の実施形態において、薬学的組成物は、滅菌生理食塩水溶液及び1つ以上のアンチセンス化合物を含む。ある特定の実施形態において、そのような薬学的組成物は、滅菌生理食塩水溶液及び1つ以上のアンチセンス化合物からなる。ある特定の実施形態において、滅菌生理食塩水は、医薬品グレードの生理食塩水である。ある特定の実施形態において、薬学的組成物は、1つ以上のアンチセンス化合物及び滅菌水を含む。ある特定の実施形態において、薬学的組成物は、1つ以上のアンチセンス化合物及び滅菌水からなる。ある特定の実施形態において、滅菌生理食塩水は、医薬品グレードの水である。ある特定の実施形態において、薬学的組成物は、1つ以上のアンチセンス化合物及びリン酸緩衝生理食塩水(PBS)を含む。ある特定の実施形態において、薬学的組成物は、1個以上のアンチセンス化合物及び滅菌リン酸緩衝生理食塩水(PBS)からなる。ある特定の実施形態において、滅菌生理食塩水は、医薬品グレードのPBSである。
ある特定の実施形態において、本明細書に記載される化合物及び組成物は、非経口投与される。
ある特定の実施形態において、1つ以上の薬学的組成物は、1つ以上の他の医薬品と共投与される。ある特定の実施形態において、そのような1つ以上の他の医薬品は、1つ以上の本明細書に記載される薬学的組成物と同じ疾患、障害、または病態を治療するように設計される。ある特定の実施形態において、そのような1つ以上の他の医薬品は、1つ以上の本明細書に記載される薬学的組成物とは異なる疾患、障害、または病態を治療するように設計される。ある特定の実施形態において、そのような1つ以上の他の医薬品は、1つ以上の本明細書に記載される薬学的組成物の望ましくない副作用を治療するように設計される。ある特定の実施形態において、1つ以上の薬学的組成物は、別の医薬品と共投与されて、その他の医薬品の望ましくない影響を治療する。ある特定の実施形態において、1つ以上の薬学的組成物は、別の医薬品と共投与されて、併用効果をもたらす。ある特定の実施形態において、1つ以上の薬学的組成物は、別の医薬品と共投与されて、相乗効果をもたらす。
本明細書に記載されるある特定の化合物、組成物、及び方法がある特定の実施形態に従って具体的に説明されているが、以下の実施例は、本明細書に記載される化合物を例証することのみに役立ち、それを限定するようには意図されていない。本出願に列挙される参考文献、GenBank受入番号等は各々、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
以下の実施例は、本発明のある特定の実施形態を示しており、限定的なものではない。さらに、特定の実施形態が提供される場合、本発明者らは、それらのある特定の実施形態の一般的適用を企図した。例えば、ある特定のモチーフを有するオリゴヌクレオチドの開示は、同じモチーフまたは同様のモチーフを有するさらなるオリゴヌクレオチドへの合理的な支持を提供する。同様に、例えば、ある特定の高親和性修飾がある特定の位置に出現する場合、同一の位置での他の高親和性修飾は、別途示されない限り、好適なものと見なされる。
ヒトRNase H1 mRNA(本明細書では配列番号1と表される、GENBANK受入番号NM_001286834.1)は、上流オープンリーディングフレーム(uORF)を含む。ヒトRNase H1のuORFの開始コドンを標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それらがインビトロのRNase H1発現に与える影響について試験した。表3に記載するこれらのアンチセンスオリゴヌクレオチドを、標的RNAの切断を含まないように均一に修飾した。表3に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号1上の位置を示す。標的のuORFは86位で始まる。HeLa細胞を、25nMの最終濃度のLipofectamine RNAiMAX(Life Technologies)及びアンチセンスオリゴヌクレオチドのうちの1つでトランスフェクトするか、または対照として模擬トランスフェクトした。トランスフェクションから30時間後、細胞を溶解し、RNase H1の発現をウエスタンブロット及びRT−PCRによって分析した。ウエスタンブロットに使用した一次抗体は、Wu et al.Determination of the Role of the Human RNase H1 in the Pharmacology of DNA−like Antisense Drugs.J.Biol.Chem.279,17181(2004)に記載されている通りに作製し、二次抗体は、Biorad(カタログ番号170−6515)から購入した。ウエスタンブロットを、Image Jを使用して定量化し、結果を、Annexin A2ローディング対照に対して正規化した後の模擬トランスフェクト細胞に対するタンパク質レベルのパーセントとして表3に示す。RT−PCR結果を、Ribogreenに対して正規化した後の模擬トランスフェクト細胞に対するmRNAレベルのパーセントとして表3に示す。結果は、uORF開始コドンを含むRNase H1 uORFの一部分を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドがRNase H1発現を増加させたことを示す。さらに、ある特定のアンチセンスオリゴヌクレオチドは、RNase H1 mRNAレベルに著しく影響せず、これは、これらのオリゴヌクレオチドが呈したRNase H1発現の増加が、主に翻訳の増加によって生じたことを示す。
HeLa細胞を25nMのIsis番号761909(表3参照)でトランスフェクトした。トランスフェクション後の様々な時点で、細胞を採取し、RNase H1発現を実施例1に記載のようにウエスタンブロットによって分析した。結果を、Annexin A2ローディング対照に対して正規化した後のアンチセンスオリゴヌクレオチド処理を受けなかった細胞(0時間の時点で採取)に対するRNase H1タンパク質発現のパーセントとして表4に示す。結果は、RNase H1発現の導入がトランスフェクション後4時間以内に観察され、最大の発現はトランスフェクション後約12時間で観察されたことを示す。
Isis番号761909(表3参照)を、インビトロのRNase H1発現に与えるその影響について5つの異なる用量で試験した。HeLa細胞を、表5に列挙する濃度の761909でトランスフェクトするか、または対照として処理しなかった。トランスフェクションの15時間後、RNase H1発現を実施例1に記載のように分析した。結果を、Annexin A2ローディング対照に対して正規化した後の未処理対照に対するタンパク質レベルのパーセント、及びRibogreenに対して正規化した後の未処理対照細胞に対するmRNAレベルとして、表5に示す。結果は、RNase H1のuORFの一部分を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドが、用量依存的にRNase H1タンパク質レベルを増加させ、かつmRNAレベルは増加しなかったことを示し、これは、アンチセンスオリゴヌクレオチドが翻訳の増加によってRNase H1発現を増加させたことを示す。
ヒトRNase H1のuORFの上流にある5’−非翻訳領域を標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それらがインビトロのRNase H1発現に与える影響について試験した。表6に記載するこれらのアンチセンスオリゴヌクレオチドを、標的RNAの切断を含まないように均一に修飾した。表6に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号1上の位置を示す。Isis761909を参照のため含めた。HeLa細胞を、20nMのアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照として模擬トランスフェクトした。トランスフェクションの15時間後、RNase H1発現を実施例1に記載のように分析した。結果を、γ−チューブリンローディング対照に対して正規化した後の模擬トランスフェクトした細胞に対するタンパク質発現のパーセント、及びRibogreenに対して正規化した後の模擬トランスフェクトした細胞に対するmRNAレベルのパーセントとして以下の表6に示す。結果は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが、標的の翻訳の増加を誘導するために必ずしもuORFの開始コドンを標的とする必要がないことを示す。uORFの上流にある5’−非翻訳領域を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチド、及びuORF自体の少なくとも一部分を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドは、標的の翻訳を誘導することができる。さらに、uORFの上流にある5’−非翻訳領域を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドはmRNAレベルを増加させず、このことは、それらが翻訳の増加によってRNase H1発現を増加させたことを示す。
ヒトRNase H1のuORFの少なくとも一部分を標的とするように設計される様々な長さのアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それらがインビトロのRNase H1発現に与える影響について試験した。表7に記載するこれらのアンチセンスオリゴヌクレオチドを、標的RNAの切断を含まないように均一に修飾した。表7に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号1上の位置を示す。HeLa細胞を、20nMのアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照として模擬トランスフェクトした。トランスフェクションの15時間後、RNase H1発現を実施例1に記載のように分析した。結果を、γ−チューブリンローディング対照に対して正規化した後の模擬トランスフェクトした細胞に対するタンパク質発現のパーセント、及びRibogreenに対して正規化した後の模擬トランスフェクトした細胞に対するmRNAレベルのパーセントとして以下の表7に示す。結果は、様々な長さのアンチセンスオリゴヌクレオチドが、主に標的の翻訳の増加によってRNase H1発現を増加させたことを示す。
マウスのロイシンリッチPPRモチーフ含有(LRPPRC)mRNA(本明細書では配列番号2と表される、GENBANK受入番号NM_028233.2)は、上流オープンリーディングフレームを含む。マウスLRPPRCのuORFの開始コドンを標的とするように設計される様々な長さ及びヌクレオシド間結合を持つアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それらがインビトロのLRPPRCタンパク質発現に与える影響について試験した。表8に記載するこれらのアンチセンスオリゴヌクレオチドを、標的RNAの切断を含まないように均一に修飾した。表8に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号2上の位置を示す。標的のuORFは70位で始まる。MHT細胞を、表8に列挙する濃度のLipofectamine RNAiMAX(Life Technologies)及びアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照として未処理とした。トランスフェクションの15時間後、細胞を溶解し、ウエスタンブロットを、Abcam(カタログ番号ab97505)から購入したLRPPRC抗体を用いて行い、LRPPRCの発現を分析した。ウエスタンブロットを、Image Jを使用して定量化し、結果を、ローディング対照(761932及び761933についてはAnnexin A2、759704及び761930についてはhnRNP K)に対して正規化した後の未処理対照細胞に対する発現のパーセントとして以下の表8に示す。結果は、ホスホジエステルヌクレオシド間結合を含むオリゴヌクレオチド及びホスホロチオエートヌクレオシド間結合を含むオリゴヌクレオチドを含む、マウスLRPPRCのuORFの開始コドンを標的とする様々な長さのアンチセンスオリゴヌクレオチドが、LRPPRC発現を増加させたことを示す。したがって、表8中の結果は、上記の実施例における結果とともに、uORFの少なくとも一部分を標的とする様々なアンチセンスオリゴヌクレオチドが、複数の種における複数の標的の発現を増加させ得ることを示す。
ヒトSideroflexin 3(SFXN3)mRNA(本明細書では配列番号20と表される、GENBANK受入番号NM_030971.3)は、上流オープンリーディングフレームを含む。ヒトSFXN3のuORFの開始コドンを標的とするように設計されたアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それがインビトロのSFXN3タンパク質発現に与える影響について試験した。表9に記載するアンチセンスオリゴヌクレオチドを、標的RNAの切断を含まないように均一に修飾した。表9に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号20上の位置を示す。標的のuORFは388位で始まる。HeLa細胞を、表9に列挙する濃度のLipofectamine RNAiMAX(Life Technologies)及びアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照として未処理とした。トランスフェクションから10時間後、細胞を溶解し、SFXN3 mRNA及びタンパク質発現を、それぞれRT−PCR及びウエスタンブロットによって分析した。ウエスタンブロットは、Abcamから購入したSFXN3抗体(カタログ番号ab181163)を用いて行い、Image Jを使用して定量化した。結果を、ローディング対照(Ku70、Abcam抗体で検出、カタログ番号ab3114)に対して正規化した後の未処理対照細胞(「UTC」)に対するタンパク質発現のパーセントとして以下の表9に示す。Ribogreenに対して正規化したSFXN3 mRNAレベルも示す。結果は、ヒトSFXN3のuORFの開始コドンを標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドが、SFXN3タンパク質発現を増加させたことを示す。SFXN3 mRNAレベルは増加せず、これは、アンチセンスオリゴヌクレオチドが翻訳の増加によってSFXN3発現を増加させたことを示す。
マウスミトコンドリアリボソームタンパク質L11(MRPL11)mRNA(本明細書では配列番号22と表される、GENBANK受入番号NM_025553.4)は、上流オープンリーディングフレームを含む。マウスMRPL11のuORFの開始コドンを標的とするように設計されたアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それがインビトロのMRPL11タンパク質発現に与える影響について試験した。表10に記載するアンチセンスオリゴヌクレオチドを、標的RNAの切断を含まないように均一に修飾した。表10に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号22上の位置を示す。標的のuORFは24位で始まる。bEND細胞を、表10に列挙する濃度のLipofectamine RNAiMAX(Life Technologies)及びアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照として未処理とした。トランスフェクションから10時間後、細胞を溶解し、MRPL11 mRNA及びタンパク質発現を、それぞれRT−PCR及びウエスタンブロットによって分析した。ウエスタンブロットは、Abcamから購入したMRPL11抗体(カタログ番号ab2066s)を用いて行い、Image Jを使用して定量化した。結果を、ローディング対照(GAPDH、Santa Cruz Biotechnology抗体で検出、カタログ番号sc−32233)に対して正規化した後の未処理対照細胞(「UTC」)に対するタンパク質発現のパーセントとして以下の表10に示す。Ribogreenに対して正規化したMRPL11 mRNAレベルも示す。結果は、マウスMRPL11のuORFの開始コドンを標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドが、MRPL11タンパク質発現を増加させたことを示す。MRPL11 mRNAレベルは増加せず、これは、アンチセンスオリゴヌクレオチドが翻訳の増加によってMRPL11発現を増加させたことを示す。
ヒトトロンボポエチン(THPO)mRNA(本明細書では配列番号24と表される、GENBANK受入番号NM_000460.3)は、7個の上流オープンリーディングフレームを含む。ヒトTHPOの最後のuORFの開始コドンを標的とするように設計されたアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それがインビトロのTHPOタンパク質発現に与える影響について試験した。表11に記載するアンチセンスオリゴヌクレオチドを、標的RNAの切断を含まないように均一に修飾した。表11に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号24上の位置を示す。標的のuORFは210位で始まる。Hep3B細胞を、表11に列挙する濃度のLipofectamine RNAiMAX(Life Technologies)及びアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または細胞を対照として未処理とした。トランスフェクションの10時間後、培地を無血清培地に変え、細胞をさらに12時間インキュベートした。培地からのタンパク質を、トリクロロ酢酸を使用して沈殿させ、THPOタンパク質発現を、Abcam(カタログ番号ab196026)から購入したTHPO抗体を使用するウエスタンブロットによって分析し、Image Jを使用して定量化した。結果を、ローディング対照(トランスフェリン)に対して正規化した後の未処理対照細胞(「UTC」)に対するタンパク質発現のパーセントとして以下の表11に示す。結果は、ヒトTHPOのuORFの開始コドンを標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドが、THPOタンパク質発現を増加させたことを示す。
アンチセンスオリゴヌクレオチドと標的配列との間に2つのミスマッチを持つヒトRNase H1のuORFの開始コドンを標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それらがインビトロのRNase H1発現に与える影響について試験した。表12に記載するこれらのアンチセンスオリゴヌクレオチドを、標的RNAの切断を含まないように均一に修飾した。表12に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号1上の位置を示し、ミスマッチのヌクレオチドは太字にする。標的のuORFは86位で始まる。HeLa細胞を、25nMの最終濃度のLipofectamine RNAiMAX(Life Technologies)及びアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照として模擬トランスフェクトした。トランスフェクションの24時間後、細胞を溶解し、RNase H1の発現を実施例1に記載のようにウエスタンブロットによって分析した。結果を、Ku70ローディング対照に対して正規化した後の模擬トランスフェクト細胞に対するタンパク質レベルのパーセントとして表12に示す。結果は、uORF開始コドンに対するまたはuORF開始コドンに対して近くのミスマッチを持つアンチセンスオリゴヌクレオチドが、RNase H1タンパク質発現にほとんどまたは全く影響しなかった一方で、uORF開始コドンからさらに離れたミスマッチを持つアンチセンスオリゴヌクレオチドは、RNase H1タンパク質発現を増加させたことを示す。
ヒトRNase H1(配列番号1)またはマウスLRPPRC(配列番号2)におけるuORFの開始コドンを標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドを、様々な長さならびにヌクレオシド間結合及び糖への様々な修飾を持つように設計した。これらのアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それらがインビトロの標的タンパク質発現に与える影響について試験した。HEK293細胞(RNase H1標的化オリゴヌクレオチド)またはMHT細胞(LRPPRC標的化オリゴヌクレオチド)を、以下の表に列挙する濃度のLipofectamine RNAiMAX(Life Technologies)及びアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトした。トランスフェクションの10時間後、細胞を溶解し、標的タンパク質発現を、実施例1(RNase H1について)または実施例6(LRPPRCについて)で記載したようにウエスタンブロットによって分析した。結果を、ローディング対照(Ku70、γ−チューブリン、Annexin A2、または一次抗体によって検出された非特異的帯)に対して正規化した後の未処理対照細胞(「UTC」)に対するタンパク質発現のパーセントとして以下の表に示す。結果は、様々な長さであり、修飾ヌクレオシド間結合ならびに様々な2’−修飾及び二環式ヌクレオシドを持つアンチセンスオリゴヌクレオチドが、標的タンパク質発現を増加させたことを示す。
Isis番号761933(実施例6参照)を、それがインビボのLRPPRCタンパク質発現に与える影響について試験した。生後7週の3匹または4匹の雄のBALB/cマウスの群に、以下の表に列挙する用量のIsis番号761933、または生理食塩水を、皮下注射により全身投与した。48時間後、動物を屠殺するか(表23)、または動物に第2の投薬を行った(表24)。第2の投薬を受けた動物を、第2の投薬の48時間後に屠殺した。肝臓ホモジネートを調製し、LRPPRCタンパク質発現を実施例6に記載のようにウエスタンブロットによって分析した。結果を、ローディング対照(GAPDHまたはhnRNP K)に対して正規化した後の生理食塩水処理動物に対する発現のパーセントとして以下の表に示す。結果は、LRPPRCタンパク質発現が、LRPPRCのuORFを標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドで処理した後、インビボで増加したことを示す。
マウストロンボポエチン(THPO)mRNA(本明細書では配列番号43と表される、GENBANK受入番号NM_009379.2)は、上流オープンリーディングフレームを含む。Isis番号809793(以下の表参照)を、マウスTHPOのuORFの開始コドンを標的とするように設計し、それがインビボのTHPOタンパク質発現に与える影響について試験した。表25に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号43上の位置を示す。3匹のマウスの群に、以下の表に列挙する用量のIsis番号809793、または生理食塩水を、皮下注射により全身投与した。48時間後に動物を屠殺し、血清及び骨髄を採取した。血清のTHPOタンパク質発現を実施例9に記載のようにウエスタンブロットによって分析し、骨髄のTHPO mRNA発現をRT−PCRによって分析した。骨髄のTHPO mRNAレベルは、アンチセンスオリゴヌクレオチド処理による影響を受けなかった(データは示さず)。以下の表に示す結果は、2つの独立した実験の平均であり、ローディング対照(トランスフェリン)に対して正規化した後の生理食塩水処理動物に対する発現のパーセントとして示す。結果は、THPOタンパク質発現が、THPOのuORFを標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドで処理した後、インビボで増加したことを示す。
uORFを標的とするオリゴヌクレオチドによって媒介される翻訳の増加が可逆的であるかどうかを試験するために、uORF標的化オリゴヌクレオチドに相補的なオリゴヌクレオチドの影響を、インビトロで試験した。HeLa細胞を、実施例1に記載のように20nMのIsis番号761909でトランスフェクトした。5時間後、細胞を、以下の表に列挙する濃度のIsis番号761909に相補的なIsis番号761929でトランスフェクトした。第2のトランスフェクションの5時間後、細胞を溶解し、RNase H1タンパク質発現を、γ−チューブリンをローディング対照として使用して実施例1に記載のように分析した。結果を、γ−チューブリンローディング対照に対して正規化した後の模擬トランスフェクト細胞に対する発現のパーセントとして以下の表に示す。結果は、uORF標的化オリゴヌクレオチドを標的とするオリゴヌクレオチドが、uORF標的化オリゴヌクレオチドの用量依存的に翻訳を増加させる能力を遮断したことを示す。
uORFを標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドによって媒介されるタンパク質発現の増加が、タンパク質安定性の増加に起因するかどうかを試験するために、翻訳をオリゴヌクレオチドのトランスフェクション後に遮断した。HeLa細胞を、Isis番号761909(実施例1参照)でトランスフェクトするか、または模擬トランスフェクトした。12時間後、細胞を、37℃にて、DMSOまたは15μg/mlのシクロヘキシミドで処理した。その後、細胞を様々な時点で収集し、細胞溶解物を調製し、実施例1に記載のように、ウェスタン分析を行った。複製SDS−PAGEゲルを銀染色し、ローディング対照とした。RNase H1タンパク質レベルを、ローディング対照に対して正規化した後の模擬トランスフェクト細胞に対して計算した。結果(データは示さず)は、シクロヘキシミド処理後のRNase H1タンパク質レベルの低減率が、模擬トランクフェクト細胞及びIsis番号761909トランスフェクト細胞と同様であったことを示した。したがって、これらの結果は、いくつかの上記の実施例で示したmRNAの増加の欠如とともに、uORFを標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドによって媒介されるタンパク質発現の増加が、タンパク質翻訳の増加に起因することを示す。
uORFを標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドが新たなタンパク質の翻訳の増加を媒介することをさらに確認するために、LRPPRCのパルスチェイス標識及び免疫沈降を行った。MHT細胞をIsis番号761930で7時間トランスフェクトし、メチオニンを欠く予熱した培地(Invitrogen、RPMI 1640)で37℃で30分間インキュベートした。その後、細胞を、20分間RPMI1640培地において35μCi/ml S35−メチオニンでパルス標識し、1mMのメチオニンで40分間追跡した。細胞を、10μg/mlのシクロヘキシミドを含有する冷PBSで洗浄し、細胞溶解物を、IP緩衝液(Life Technologies)を使用して調製した。免疫沈降を、抗LRPPRC抗体(Proteintech)を使用して4℃で3時間実施した。4回洗浄した後、沈降したタンパク質を4〜12%のSDS−PAGEゲルで分析し、膜に移し、オートラジオグラフィーによって可視化した。模擬トランスフェクト細胞からの免疫沈降物中のLRPPRC帯は、Isis番号761930処理細胞からの免疫沈降物(データ割愛)中のものよりも著しく軽く、uORFを標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドが、標的タンパク質翻訳の増加によってタンパク質発現を増加させることがさらに裏付られた。さらに、模擬トランスフェクト細胞とIsis番号761930トランスフェクト細胞との両方への溶解物の流入もオートラジオグラフィーによって分析すると、非常に類似しており、翻訳増加が標的特異的であったことを示した。
RNase H1のuORFを標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドによって媒介されるRNase H1タンパク質レベルの増加がRNase H1活性の増加をもたらすかどうかを試験するために、細胞を、まずIsis番号761909(実施例1参照)、またはRNase H1を標的としない対照オリゴヌクレオチドIsis番号759704でトランスフェクトし、次に、U16 snoRNAまたはNCL1 mRNAを標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトした。第1のトランスフェクションの10時間後、細胞を約50%の密集度で再度播種した。14時間後、細胞に対してIsis番号462026(U16)またはIsis番号110074(NCL1)でさらに4時間、2度目のトランスフェクトを行った。次に細胞を収集し、溶解し、U16 snoRNAまたはNCL1 mRNAレベルを、TaqManプライマープローブセットを使用してRT−qPCRによって分析した。使用したプライマープローブセット配列は、U16について、順方向:5´−CTTGCAATGATGTCGTAATTTGC−3´(配列番号46)、逆方向:5´−TCGTCAACCTTCTGTACCAGCTT−3´(配列番号47)、及びプローブ:5´−TTACTCTGTTCTCAGCGACAGTTGCCTGC−3´(配列番号48);NCL1について、順方向:5’−GCTTGGCTTCTTCTGGACTCA−3’(配列番号49)、逆方向:5’−TCGCGAGCTTCACCATGA−3’(配列番号50)、及びプローブ:5’−CGCCACTTGTCCGCTTCACACTCC−3’(配列番号51)であった。結果を、Ribogreenを使用して測定した総RNAに対して正規化した、いずれのオリゴヌクレオチドでもトランスフェクトしなかった未処理対照細胞に対するRNAレベルのパーセントとして以下の表に示す。結果は、RNase H1のuORFを標的とするIsis番号761909が、U16及びNCl1アンチセンスオリゴヌクレオチドのアンチセンス活性を増加させたことを示す。
ヒトRNase H1のuORFの上流にある5’−非翻訳領域を標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それらがインビトロのRNase H1発現に与える影響について試験した。以下の表に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号1上の位置を示す。HEK 293細胞を、20nMのアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照として模擬トランスフェクトした。トランスフェクションの10時間後、RNase H1タンパク質発現を実施例1に記載のように分析した。結果を、GAPDHローディング対照に対して正規化した後の模擬トランスフェクト細胞に対するタンパク質発現のパーセントとして以下の表に示す。結果は、RNase H1のuORFの上流にある5’−非翻訳領域を標的とする多くのアンチセンスオリゴヌクレオチドが標的の翻訳を誘導したことを示す。
uORFを含まない細胞質ホスホチロシンタンパク質ホスファターゼ(ACP1)の5’−非翻訳領域を標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それがインビトロのACP1タンパク質発現に与える影響について試験した。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、ヒトACP1 mRNA(本明細書では配列番号78と表されるGENBANK受入番号NM_004300.3)を標的とし、5’−非翻訳領域における少なくとも1つのステムループ構造を標的とするように設計した。以下の表に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号78上の位置を示す。HEK 293細胞を、以下の表に示す濃度のアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照としてトランスフェクトしなかった。トランスフェクションの10時間後、ACP1タンパク質発現を、ACP1に対するAbcam抗体(カタログ番号ab166896)を使用してウエスタンブロットによって分析した。結果を、p32ローディング対照に対して正規化した後の未処理対照細胞に対するタンパク質発現のパーセントとして以下の表に示す。結果は、ヒトACP1の5’−非翻訳領域を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドが標的の翻訳を誘導したことを示す。
ヒト嚢胞性線維症膜コンダクタンス制御因子(CFTR)のuORF開始コドンの下流にある5’−非翻訳領域を標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それらがインビトロのCFTRタンパク質発現に与える影響について試験した。以下の表に記載するこれらのアンチセンスオリゴヌクレオチドを、CFTR mRNA(本明細書では配列番号81と表されるGENBANK受入番号NM_000492.3)を標的とするように設計し、標的RNAの切断を含まないように均一に修飾した。以下の表に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号81上の位置を示す。1つのuORFは配列番号81の13位で始まる。Isis番号786455は、uORF開始コドンのすぐ下流にあるuORFの部分を標的とする。Isis番号786456は、さらに下流のステムループ構造を標的とする。
RNase H1 5’−UTR配列の一部がRNase H1発現に与える影響を試験するために、野生型及び変異型5’−UTR配列をプラスミドにクローニングし、蛍ルシフェラーゼに縮合した。レニラルシフェラーゼを正規化のための同じプラスミドにクローニングした。プラスミドをHeLa細胞にトランスフェクトし、蛍ルシフェラーゼ及びレニラルシフェラーゼ活性を、標準的な方法を使用して検出した。レニラルシフェラーゼ活性に対して正規化した野生型5’−UTRレポーターと比較した変異体及びそれらの蛍ルシフェラーゼ活性を以下の表に示す。以下の表で報告するヌクレオチド位置は、突然変異または欠失した配列番号1の5’−UTRの位置を指す。結果は、複数の実験の平均であり、uORFを含まない部分を含むRNase H1の5’−UTR配列の一部分の突然変異及び/または欠失が、レポーター系における発現の増加をもたらしたことを示し、このことは、突然変異した部分が翻訳抑制要素の一部であることを示す。
Isis番号806740(実施例11参照)を、それがインビボのLRPPRCタンパク質発現に与える影響について試験した。生後7週の3匹の雄のBALB/cマウスの群に、以下の表に列挙する用量のIsis番号806740、または生理食塩水を、皮下注射により全身投与した。48時間後、マウスに以下の表に列挙する第2の投薬を行った。第2の投薬の48時間後に動物を屠殺した。肝臓ホモジネートを調製し、LRPPRCタンパク質発現を実施例6に記載のようにウエスタンブロットによって分析した。結果を、ローディング対照(PSF)に対して正規化した後の生理食塩水処理動物に対する発現のパーセントとして以下の表に示す。結果は、LRPPRCタンパク質発現が、LRPPRCのuORFを標的とし、かつ二環式核酸を含むアンチセンスオリゴヌクレオチドで処理した後、インビボで増加したことを示す。
uORFを含まないACP1の5’−非翻訳領域を標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドの影響を上に示す(実施例19参照)。ACP1の5’−非翻訳領域を標的とするように設計した追加のアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それらがインビトロのACP1タンパク質発現に与える影響について試験した。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、ヒトACP1 mRNA(本明細書では配列番号78と表されるGENBANK受入番号NM_004300.3)を標的とする。以下の表に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号78上の位置を示す。HeLa細胞を、以下の表に示す25nMのアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照としてトランスフェクトしなかった。トランスフェクションの10時間後、ACP1タンパク質発現を、ACP1に対するAbcam抗体(カタログ番号ab166896)を使用してウエスタンブロットによって分析した。結果を、Annexin A2ローディング対照に対して正規化した後の未処理対照細胞に対するタンパク質発現のパーセントとして以下の表に示す。
ACP1の5’−非翻訳領域のIsis番号812658(実施例19及び23参照)と同じまたは同様の部位を標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドを、様々な修飾を考慮して設計し、それらがインビトロのACP1タンパク質発現に与える影響について試験した。以下の表に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号78上の位置を示す。HeLa細胞を、以下の表に示す濃度のアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照としてトランスフェクトしなかった。トランスフェクションの10時間後、ACP1タンパク質発現を、ACP1に対するAbcam抗体(カタログ番号ab166896)を使用してウエスタンブロットによって分析した。結果を、Annexin A2またはTMED9ローディング対照に対して正規化した後の未処理対照細胞に対するタンパク質発現のパーセントとして以下の表に示す。
マウスACP1の5’−非翻訳領域を標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それらがインビトロのACP1タンパク質発現に与える影響について試験した。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、マウスACP1 mRNA(本明細書では配列番号91と表されるGENBANK受入番号NM_021330.4)を標的とし、5’−UTRにおける少なくとも1つのステムループ構造を標的とするように設計した。以下の表に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号91上の位置を示す。MHT細胞を、以下の表に示す濃度のアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照としてトランスフェクトしなかった。トランスフェクションの10時間後、ACP1タンパク質発現をウエスタンブロットによって分析した。結果を、TCP−1βローディング対照に対して正規化した後の未処理対照細胞に対するタンパク質発現のパーセントとして以下の表に示す。結果は、マウスACP1の5’−非翻訳領域を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドが標的の翻訳を誘導したことを示す。
Isis番号827815(以下の表を参照)を、それがインビボのマウスACP1タンパク質発現に与える影響について試験した。生後7週の3匹の雄のBALB/cマウスの群に、以下の表に列挙する用量のIsis番号827815、または生理食塩水を、皮下注射により全身投与した。72時間後に動物を屠殺した。肝臓ホモジネートを調製し、ACP1タンパク質発現をウエスタンブロットによって分析した。結果を、TMED9ローディング対照に対して正規化した後の生理食塩水処理動物に対する発現のパーセントとして以下の表に示す。結果は、ACP1タンパク質発現が、ACP1 5’−UTRを標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドで処理した後、インビボで増加したことを示す。
マウスADP−リボシル化因子1(ARF1)の5’−非翻訳領域を標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それがインビトロのARF1タンパク質発現に与える影響について試験した。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、uORFを含まないマウスARF1 mRNA(本明細書では配列番号94と表されるGENBANK受入番号NM_007476.3)を標的とし、5’−UTRにおける少なくとも1つのステムループ構造を標的とするように設計した。以下の表に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号94上の位置を示す。MHT細胞を、以下の表に示す濃度のアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照としてトランスフェクトしなかった。トランスフェクションの10時間後、ARF1タンパク質発現をウエスタンブロットによって分析した。結果を、TCP−1βローディング対照に対して正規化した後の未処理対照細胞に対するタンパク質発現のパーセントとして以下の表に示す。結果は、マウスARF1の5’−非翻訳領域を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドが標的の翻訳を誘導したことを示す。
マウスユビキチン処理プロテアーゼ(USP16)の5’−非翻訳領域を標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それがインビトロのUSP16タンパク質発現に与える影響について試験した。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、マウスUSP16 mRNA(本明細書では配列番号96と表されるGENBANK受入番号NM_024258.2)を標的とし、5’−UTRにおける少なくとも1つのステムループ構造を標的とするように設計した。以下の表に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号96上の位置を示す。MHT細胞を、以下の表に示す濃度のアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照としてトランスフェクトしなかった。トランスフェクションの10時間後、USP16タンパク質発現をウエスタンブロットによって分析した。結果を、β−アクチン(ACTB)ローディング対照に対して正規化した後の未処理対照細胞に対するタンパク質発現のパーセントとして以下の表に示す。結果は、マウスUSP16の5’−非翻訳領域を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドが標的の翻訳を誘導したことを示す。
ヒトの低濃度リポタンパク質受容体(LDLr)の5’−非翻訳領域を標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それらがインビトロのLDLrタンパク質発現及びLDL取り込みに与える影響について試験した。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、ヒトLDLr mRNA(本明細書では配列番号98と表されるGENBANK受入番号NM_000527.4)を標的とし、5’−UTRにおける少なくとも1つのステムループ構造を標的とするように設計した。以下の表に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号98上の位置を示す。HEK293細胞またはHeLa細胞を、以下の表に示す濃度のアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照としてトランスフェクトしなかった。トランスフェクションから10時間後、LDLrタンパク質発現をELISA(R&D Systems、カタログ番号DLDLR0)によって分析した。結果を、未処理対照細胞に対するタンパク質発現のパーセントとして以下の表に示す。結果は、ヒトLDLrの5’−非翻訳領域を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドが標的の翻訳を誘導したことを示す。
ヒトCFTRのuORF開始コドンを標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それらがインビトロのCFTRタンパク質発現に与える影響について試験した。以下の表に記載するこれらのアンチセンスオリゴヌクレオチドを、CFTR mRNA(本明細書では配列番号81と表されるGENBANK受入番号NM_000492.3)を標的とするように設計し、標的RNAの切断を含まないように均一に修飾した。以下の表に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号81上の位置を示す。
ヒトの低濃度リポタンパク質受容体(LDLr)の5’−非翻訳領域を標的とするように設計したアンチセンスオリゴヌクレオチドを、それらがインビトロのLDLrタンパク質発現に与える影響について試験した。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、ヒトLDLr mRNA(配列番号98)を標的とし、5’−UTRにおける少なくとも1つのステムループ構造を標的とするように設計した。以下の表に列挙する開始部位及び終了部位は、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的とする配列番号98上の位置を示す。HEK293細胞を、以下の表に示す濃度のアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトするか、または対照としてトランスフェクトしなかった。トランスフェクションから16時間後、LDLrタンパク質発現をELISA(R&D Systems、カタログ番号DLDLR0)によって分析した。結果を、未処理対照細胞に対するタンパク質発現のパーセントとして以下の表に示す。結果は、ヒトLDLrの5’−非翻訳領域を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドが標的の翻訳を誘導したことを示す。
Hep3B細胞を、30nMのIsis番号842196(表45参照)及びLipofectamine 2000(Life Technologies)でトランスフェクトした。トランスフェクション後の様々な時点で、細胞を採取し、LDLrタンパク質発現を、実施例30及び31に記載のようにELISAによって分析した。結果を、アンチセンスオリゴヌクレオチド処理を受けなかった細胞(0時間の時点で採取)に対するLDLrタンパク質発現のパーセントとして表49に示す。結果は、LDLr発現が、48時間の時点で、Isis番号842196による基準発現と比較して4倍超増加したことを示す。
Claims (197)
- 細胞における標的タンパク質の翻訳の増加方法であって、前記細胞を、修飾オリゴヌクレオチドを含むアンチセンス化合物と接触させることを含み、前記標的タンパク質が、少なくとも1つの翻訳抑制要素を含む標的転写物によってコードされ、前記修飾オリゴヌクレオチドが、前記標的転写物の翻訳抑制要素領域内の標的部位に相補的であり、それによって前記細胞における前記標的タンパク質の翻訳を増加させる、前記方法。
- 細胞における標的タンパク質の翻訳の抑制の減少方法であって、前記細胞を、修飾オリゴヌクレオチドを含むアンチセンス化合物と接触させることを含み、前記標的タンパク質が、少なくとも1つの翻訳抑制要素を含む標的転写物によってコードされ、前記修飾オリゴヌクレオチドが、前記標的転写物の翻訳抑制要素領域内の標的部位に相補的であり、それによって前記細胞における前記標的タンパク質の翻訳の抑制を減少させる、前記方法。
- 細胞における標的タンパク質の量または活性の増加方法であって、前記細胞を、修飾オリゴヌクレオチドを含むアンチセンス化合物と接触させることを含み、前記標的タンパク質が、少なくとも1つの翻訳抑制要素を含む標的転写物によってコードされ、前記修飾オリゴヌクレオチドが、前記標的転写物の翻訳抑制要素領域内の標的部位に相補的であり、それによって前記細胞における前記標的タンパク質の量または活性を増加させる、前記方法。
- 細胞における標的タンパク質の量の増加方法であって、前記細胞を、修飾オリゴヌクレオチドを含むアンチセンス化合物と接触させることを含み、前記標的タンパク質が、少なくとも1つの翻訳抑制要素を含む標的転写物によってコードされ、前記修飾オリゴヌクレオチドが、前記標的転写物の翻訳抑制要素領域内の標的部位に相補的であり、それによって前記細胞における前記標的タンパク質の発現を増加させる、前記方法。
- 前記翻訳抑制要素領域が、5’非翻訳領域である、請求項1〜4のいずれかに記載の方法。
- 前記翻訳抑制要素領域が、前記5’非翻訳領域内にある、請求項1〜4のいずれかに記載の方法。
- 前記翻訳抑制要素領域が、1つのみのuORFを含む、請求項1〜6のいずれかに記載の方法。
- 前記翻訳抑制要素領域が、少なくとも1つのuORFを含有する、請求項1〜7のいずれかに記載の方法。
- 前記翻訳抑制要素が、uORFからなる、請求項1〜8のいずれかに記載の方法。
- 前記翻訳抑制要素領域が、1つ以上のuORFを含有し、前記1つ以上のuORFが、前記標的転写物の翻訳を抑制しない、請求項1〜8のいずれかに記載の方法。
- 前記翻訳抑制要素領域が、uORFを含有しない、請求項1〜6のいずれかに記載の方法。
- 前記翻訳抑制要素領域が、少なくとも1つのステムループ構造を含む、請求項1〜11のいずれかに記載の方法。
- 前記少なくとも1つのステムループが、翻訳抑制要素である、請求項12に記載の方法。
- 前記翻訳抑制要素が、突然変異から生じる、請求項1〜13のいずれかに記載の方法。
- 前記突然変異が、uORFを創出する、請求項14に記載の方法。
- 前記突然変異が、疾患を創出する、請求項14または15に記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、10〜40個の結合ヌクレオシドからなる、請求項1〜16のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、12〜22個の結合ヌクレオシドからなる、請求項1〜16のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、15〜22個の結合ヌクレオシドからなる、請求項1〜16のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、16〜20個の結合ヌクレオシドからなる、請求項1〜16のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、18〜20個の結合ヌクレオシドからなる、請求項1〜16のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、16〜18個の結合ヌクレオシドからなる、請求項1〜16のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、16個の結合ヌクレオシドからなる、請求項1〜16のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、17個の結合ヌクレオシドからなる、請求項1〜16のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、18個の結合ヌクレオシドからなる、請求項1〜16のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの少なくとも1つのヌクレオシドが、修飾糖部分を含む、請求項1〜25のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシドが、修飾ヌクレオシドまたは非修飾ヌクレオシドである、請求項1〜26のいずれかに記載の方法。
- 各非修飾ヌクレオシドが、2’−デオキシヌクレオシドである、請求項27に記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシドが、修飾ヌクレオシドである、請求項1〜26のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシドが、修飾ヌクレオシドであり、各々独立して、修飾糖部分を含む、請求項29に記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも15個の修飾ヌクレオシドを含み、各々独立して、修飾糖部分を含む、請求項1〜30のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、互いに同じである修飾糖部分を含む少なくとも2つの修飾ヌクレオシドを含む、請求項1〜30のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、互いに異なる修飾糖部分を含む少なくとも2つの修飾ヌクレオシドを含む、請求項1〜30のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも5個の連続した修飾ヌクレオシドの修飾領域を含む、請求項1〜30のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも10個の連続した修飾ヌクレオシドの修飾領域を含む、請求項1〜30のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも15個の連続した修飾ヌクレオシドの修飾領域を含む、請求項1〜30のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも18個の連続した修飾ヌクレオシドの修飾領域を含む、請求項1〜30のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも20個の連続した修飾ヌクレオシドの修飾領域を含む、請求項1〜21及び26〜30のいずれかに記載の方法。
- 少なくとも1つの修飾糖部分が、2’−置換糖部分である、請求項26〜38のいずれかに記載の方法。
- 前記少なくとも1つの2’−置換糖部分の2’−置換基が、2’−OMe、2’−F、及び2’−MOEの中から選択される、請求項39に記載の方法。
- 前記少なくとも1つの2’−置換糖部分の2’−置換基が、2’−MOEである、請求項40に記載の方法。
- 前記少なくとも1つの2’−置換糖部分の2’−置換基が、2’−OMeである、請求項40に記載の方法。
- 前記少なくとも1つの2’−置換糖部分の2’−置換基が、2’Fである、請求項40に記載の方法。
- 少なくとも1つの修飾糖部分が、二環式糖部分である、請求項26〜43のいずれかに記載の方法。
- 少なくとも1つの二環式糖部分が、LNAまたはcEtである、請求項44に記載の方法。
- 少なくとも1つの二環式糖部分が、LNAである、請求項44に記載の方法。
- 少なくとも1つの二環式糖部分が、cEtである、請求項44に記載の方法。
- 少なくとも1つの糖部分が、糖代理物である、請求項26〜47のいずれかに記載の方法。
- 少なくとも1つの糖代理物が、モルホリノである、請求項48に記載の方法。
- 少なくとも1つの糖代理物が、修飾モルホリノである、請求項48に記載の方法。
- 少なくとも1つの糖代理物が、ペプチド核酸である、請求項48に記載の方法。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの、第1、第2、及び第3の3’−最末端ヌクレオシドが、二環式糖部分である、請求項29に記載の方法。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの、第1、第2、第3、及び第4の3’−最末端ヌクレオシドが、二環式糖部分である、請求項29に記載の方法。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、第1、第2、第3、第4、及び第5の3’−最末端ヌクレオシドが、二環式糖部分である、請求項29に記載の方法。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、第1、第2、第3、第4、第5、及び第6の3’−最末端ヌクレオシドが、二環式糖部分である、請求項29に記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各二環式糖部分が、独立して、LNA及びcEtから選択される、請求項52〜55に記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの前記二環式糖部分が、cEtである、請求項52〜55に記載の方法。
- 二環式糖部分を含まない前記修飾オリゴヌクレオチドにおける各ヌクレオシドが、2’−F、2’−OMe、及び2’−MOEから選択される修飾糖部分を含む、請求項52〜57のいずれかに記載の方法。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの第1及び第2の3’−最末端ヌクレオシドが、2’−F修飾糖部分である、請求項29に記載の方法。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの第1、第2、及び第3の3’−最末端ヌクレオシドが、2’−F修飾糖部分である、請求項29に記載の方法。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの第1、第2、第3、及び第4の3’−最末端ヌクレオシドが、2’−F修飾糖部分である、請求項29に記載の方法。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの第1、第2、第3、第4、及び第5の3’−最末端ヌクレオシドが、2’−F修飾糖部分である、請求項29に記載の方法。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの第1、第2、第3、第4、第5、及び第6の3’−最末端ヌクレオシドが、2’−F修飾糖部分である、請求項29に記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの第1、第3、及び第5の3’−最末端ヌクレオシドが、cEtヌンクレオシドであり、前記修飾オリゴヌクレオチドの前記第2及び第4の3’−最末端ヌクレオシドが、2’−デオキシヌクレオシドであり、各残りのヌクレオシドが、2’−修飾ヌクレオシドである、請求項28に記載の方法。
- 各残りのヌクレオシドが、2’−OMeヌクレオシドである、請求項64に記載の方法。
- 各残りのヌクレオシドが、2’−MOEヌクレオシドである、請求項64に記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシド間結合が、ホスホジエステルヌクレオシド間結合である、請求項1〜66のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシド間結合が、ホスホロチオエートヌクレオシド間結合である、請求項1〜66のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも1個の修飾ヌクレオシド間結合を含む、請求項1〜66のいずれかに記載の方法。
- 前記修飾ヌクレオシド間結合が、ホスホロチオエートヌクレオシド間結合である、請求項69に記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシド間結合が、ホスホジエステルヌクレオシド間結合またはホスホロチオエートヌクレオシド間結合のいずれかである、請求項69または70に記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、ちょうど2個のホスホジエステルヌクレオシド間結合を有する、請求項71に記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、ちょうど3個のホスホジエステルヌクレオシド間結合を有する、請求項71に記載の方法。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、ちょうど4個のホスホジエステルヌクレオシド間結合を有する、請求項71に記載の方法。
- 前記アンチセンス化合物が、少なくとも1つの共役基を含む、請求項1〜74のいずれかに記載の方法。
- 前記共役基が、GalNAcを含む、請求項75に記載の方法。
- 前記アンチセンス化合物が、前記修飾オリゴヌクレオチドからなる、請求項1〜75のいずれかに記載の方法。
- 前記アンチセンス化合物が、ギャップマーではない、請求項1〜77のいずれかに記載の方法。
- 前記アンチセンス化合物が、RNase Hをリクルートしない、請求項1〜77のいずれかに記載の方法。
- 前記アンチセンス化合物が、前記標的核酸転写物の量を変化させない、請求項1〜79のいずれかに記載の方法。
- 前記アンチセンス化合物が、一本鎖である、請求項1〜80のいずれかに記載の方法。
- 前記アンチセンス化合物が、安定化ホスフェートを含む5’−末端基を有する、請求項81に記載の方法。
- 前記5’−末端安定化ホスフェートが、ビニルホスホネートである、請求項82に記載の方法。
- 前記細胞が、前記アンチセンス化合物のプロドラッグに接触する、請求項1〜83のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも10%増加する、請求項1〜84のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも20%増加する、請求項1〜84のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも30%増加する、請求項1〜84のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも50%増加する、請求項1〜84のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも100%増加する、請求項1〜84のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも120%増加する、請求項1〜84のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも150%増加する、請求項1〜84のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも200%増加する、請求項1〜84のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも250%増加する、請求項1〜84のいずれかに記載の方法。
- 前記細胞がインビトロに存在する、請求項1〜93のいずれかに記載の方法。
- 前記細胞が対象内に存在する、請求項1〜93のいずれかに記載の方法。
- 前記対象が、疾患または病態を有し、前記疾患または病態の少なくとも1つの症状が、緩和される、請求項95に記載の方法。
- 前記細胞が動物内に存在する、請求項94または95に記載の方法。
- 前記動物がヒトである、請求項97に記載の方法。
- 標的転写物の翻訳抑制要素領域内の標的部位に相補的な核酸塩基配列を有する10〜30個の結合ヌクレオシドからなる修飾オリゴヌクレオチドを含むアンチセンス化合物であって、前記修飾オリゴヌクレオチドが、4個超の連続した非修飾2’−デオキシヌクレオシドを有しない、前記アンチセンス化合物。
- 前記翻訳抑制要素領域が、5’非翻訳領域である、請求項99に記載のアンチセンス化合物。
- 前記翻訳抑制要素領域が、前記5’非翻訳領域内にある、請求項99に記載のアンチセンス化合物。
- 前記翻訳抑制要素領域が、1つのみのuORFを含む、請求項99〜101のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記翻訳抑制要素領域が、少なくとも1つのuORFを含有する、請求項99〜101のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記翻訳抑制要素が、uORFからなる、請求項99〜103のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記翻訳抑制要素領域が、1つ以上のuORFを含有し、前記1つ以上のuORFが、前記標的転写物の翻訳を抑制しない、請求項99〜104のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記翻訳抑制要素領域が、uORFを含有しない、請求項99〜101のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記翻訳抑制要素領域が、少なくとも1つのステムループ構造を含む、請求項99〜106のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 少なくとも1つのステムループが、翻訳抑制要素である、請求項107に記載のアンチセンス化合物。
- 前記翻訳抑制要素が、突然変異から生じる、請求項99〜108のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記突然変異が、uORFを創出する、請求項109に記載のアンチセンス化合物。
- 前記突然変異が、疾患を創出する、請求項109または110に記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、12〜22個の結合ヌクレオシドからなる、請求項99〜111のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、15〜22個の結合ヌクレオシドからなる、請求項99〜111のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、16〜20個の結合ヌクレオシドからなる、請求項99〜111のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、18〜20個の結合ヌクレオシドからなる、請求項99〜111のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、16〜18個の結合ヌクレオシドからなる、請求項99〜111のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、16個の結合ヌクレオシドからなる、請求項99〜111のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、17個の結合ヌクレオシドからなる、請求項99〜111のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、18個の結合ヌクレオシドからなる、請求項99〜111のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの少なくとも1つのヌクレオシドが、修飾糖部分を含む、請求項99〜119のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシドが、修飾ヌクレオシドまたは非修飾ヌクレオシドである、請求項99〜120のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 各非修飾ヌクレオシドが、2’−デオキシヌクレオシドである、請求項121に記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシドが、修飾ヌクレオシドである、請求項99〜120のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシドが、修飾ヌクレオシドであり、各々独立して、修飾糖部分を含む、請求項123に記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも15個の修飾ヌクレオシドを含み、各々独立して、修飾糖部分を含む、請求項99〜124のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、互いに同じである修飾糖部分を含む少なくとも2つの修飾ヌクレオシドを含む、請求項99〜124のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、互いに異なる修飾糖部分を含む少なくとも2つの修飾ヌクレオシドを含む、請求項99〜124のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも5個の連続した修飾ヌクレオシドの修飾領域を含む、請求項99〜124のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも10個の連続した修飾ヌクレオシドの修飾領域を含む、請求項99〜124のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも15個の連続した修飾ヌクレオシドの修飾領域を含む、請求項99〜124のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも18個の連続した修飾ヌクレオシドの修飾領域を含む、請求項99〜124のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも20個の連続した修飾ヌクレオシドの修飾領域を含む、先行請求項のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 少なくとも1つの修飾糖部分が、2’−置換糖部分である、請求項124〜132のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記少なくとも1つの2’−置換糖部分の2’−置換基が、2’−OMe、2’−F、及び2’−MOEの中から選択される、請求項133に記載のアンチセンス化合物。
- 前記少なくとも1つの2’−置換糖部分の2’−置換基が、2’−MOEである、請求項134に記載のアンチセンス化合物。
- 前記少なくとも1つの2’−置換糖部分の2’−置換基が、2’−OMeである、請求項134に記載のアンチセンス化合物。
- 前記少なくとも1つの2’−置換糖部分の2’−置換基が、2’Fである、請求項134に記載のアンチセンス化合物。
- 少なくとも1つの修飾糖部分が、二環式糖部分である、請求項124〜138のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 少なくとも1つの二環式糖部分が、LNAまたはcEtである、請求項138に記載のアンチセンス化合物。
- 少なくとも1つの二環式糖部分が、LNAである、請求項138に記載のアンチセンス化合物。
- 少なくとも1つの二環式糖部分が、cEtである、請求項138に記載のアンチセンス化合物。
- 少なくとも1つの糖部分が、糖代理物である、請求項124〜141のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 少なくとも1つの糖代理物が、モルホリノである、請求項142に記載のアンチセンス化合物。
- 少なくとも1つの糖代理物が、修飾モルホリノである、請求項142に記載のアンチセンス化合物。
- 少なくとも1つの糖代理物が、ペプチド核酸である、請求項142に記載のアンチセンス化合物。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの第1、第2、及び第3の3’−最末端ヌクレオシドが、二環式糖部分である、請求項123に記載のアンチセンス化合物。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの第1、第2、第3、及び第4の3’−最末端ヌクレオシドが、二環式糖部分である、請求項123に記載のアンチセンス化合物。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、第1、第2、第3、第4、及び第5の3’−最末端ヌクレオシドが、二環式糖部分である、請求項123に記載のアンチセンス化合物。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、第1、第2、第3、第4、第5、及び第6の3’−最末端ヌクレオシドが、二環式糖部分である、請求項123に記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各二環式糖部分が、独立して、LNA及びcEtから選択される、請求項146〜149に記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの前記二環式糖部分が、cEtである、請求項146〜149に記載のアンチセンス化合物。
- 二環式糖部分を含まない前記修飾オリゴヌクレオチドにおける各ヌクレオシドが、2’−F、2’−OMe、及び2’−MOEから選択される修飾糖部分を含む、請求項146〜151に記載のアンチセンス化合物。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの第1及び第2の3’−最末端ヌクレオシドが、2’−F修飾糖部分である、請求項123に記載のアンチセンス化合物。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの第1、第2、及び第3の3’−最末端ヌクレオシドが、2’−F修飾糖部分である、請求項123に記載のアンチセンス化合物。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの第1、第2、第3、及び第4の3’−最末端ヌクレオシドが、2’−F修飾糖部分である、請求項123に記載のアンチセンス化合物。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの第1、第2、第3、第4、及び第5の3’−最末端ヌクレオシドが、2’−F修飾糖部分である、請求項123に記載のアンチセンス化合物。
- 各修飾ヌクレオシドが、修飾糖部分を含み、前記修飾オリゴヌクレオチドの第1、第2、第3、第4、第5、及び第6の3’−最末端ヌクレオシドが、2’−F修飾糖部分である、請求項123に記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの第1、第3、及び第5の3’−最末端ヌクレオシドが、cEtヌンクレオシドであり、前記修飾オリゴヌクレオチドの前記第2及び第4の3’−最末端ヌクレオシドが、2’−デオキシヌクレオシドであり、各残りのヌクレオシドが、2’−修飾ヌクレオシドである、請求項122に記載のアンチセンス化合物。
- 各残りのヌクレオシドが、2’−OMeヌクレオシドである、請求項158に記載のアンチセンス化合物。
- 各残りのヌクレオシドが、2’−MOEヌクレオシドである、請求項158に記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシド間結合が、ホスホジエステルヌクレオシド間結合である、請求項99〜160のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシド間結合が、ホスホロチオエートヌクレオシド間結合である、請求項99〜160のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも1個の修飾ヌクレオシド間結合を含む、請求項99〜160のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾ヌクレオシド間結合が、ホスホロチオエートヌクレオシド間結合である、請求項163に記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシド間結合が、ホスホジエステルヌクレオシド間結合またはホスホロチオエートヌクレオシド間結合のいずれかである、請求項163または164に記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、ちょうど2個のホスホジエステルヌクレオシド間結合を有する、請求項165に記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、ちょうど3個のホスホジエステルヌクレオシド間結合を有する、請求項165に記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドが、ちょうど4個のホスホジエステルヌクレオシド間結合を有する、請求項165に記載のアンチセンス化合物。
- 少なくとも1つの共役基を含む、請求項99〜168のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記共役基が、GalNAcを含む、請求項169に記載のアンチセンス化合物。
- 前記修飾オリゴヌクレオチドからなる、請求項99〜170のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- ギャップマーではない、請求項99〜170のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- RNase Hをリクルートしない、請求項99〜170のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 前記標的核酸転写物の量を変化させない、請求項99〜173のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 一本鎖である、請求項99〜174のいずれかに記載のアンチセンス化合物。
- 安定化ホスフェートを含む5’−末端基を有する、請求項175に記載のアンチセンス化合物。
- 前記5’−末端安定化ホスフェートが、ビニルホスホネートである、請求項176に記載のアンチセンス化合物。
- 請求項99〜177のいずれかに記載のアンチセンス化合物のプロドラッグを含む薬学的組成物。
- 細胞を、請求項99〜178のいずれかに記載のアンチセンス化合物と接触させることを含む、方法。
- 細胞における標的タンパク質の翻訳の増加方法であって、細胞を請求項99〜178のいずれかに記載のアンチセンス化合物と接触させることを含む、前記方法。
- 細胞における標的タンパク質の翻訳の抑制の減少方法であって、細胞を請求項99〜178のいずれかに記載のアンチセンス化合物と接触させることを含む、前記方法。
- 細胞における標的タンパク質の量または活性の増加方法であって、細胞を請求項99〜178のいずれかに記載のアンチセンス化合物と接触させることを含む、前記方法。
- 細胞における標的タンパク質の量の増加方法であって、細胞を請求項99〜178のいずれかに記載のアンチセンス化合物と接触させることを含む、前記方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも10%増加する、請求項179〜183のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも20%増加する、請求項179〜183のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも30%増加する、請求項179〜183のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも50%増加する、請求項179〜183のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも100%増加する、請求項179〜183のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも120%増加する、請求項179〜183のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも150%増加する、請求項179〜183のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも200%増加する、請求項179〜183のいずれかに記載の方法。
- 前記標的タンパク質の発現、翻訳、または量若しくは活性が、少なくとも250%増加する、請求項179〜183のいずれかに記載の方法。
- 前記細胞がインビトロに存在する、請求項179〜192のいずれかに記載の方法。
- 前記細胞が対象内に存在する、請求項179〜192のいずれかに記載の方法。
- 前記対象が、疾患または病態を有し、前記疾患または病態の少なくとも1つの症状が、緩和される、請求項194に記載の方法。
- 前記細胞が動物内に存在する、請求項194または195に記載の方法。
- 前記動物がヒトである、請求項196に記載の方法。
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