JP2017079602A - Culture apparatus and culture method of photosynthetic microorganism - Google Patents

Culture apparatus and culture method of photosynthetic microorganism Download PDF

Info

Publication number
JP2017079602A
JP2017079602A JP2015208791A JP2015208791A JP2017079602A JP 2017079602 A JP2017079602 A JP 2017079602A JP 2015208791 A JP2015208791 A JP 2015208791A JP 2015208791 A JP2015208791 A JP 2015208791A JP 2017079602 A JP2017079602 A JP 2017079602A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
culture
photosynthetic microorganisms
oxygen concentration
culturing
culture solution
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP2015208791A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP6740590B2 (en
Inventor
勇也 吉満
Yuya Yoshimitsu
勇也 吉満
さと子 小松
Satoko Komatsu
さと子 小松
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Denso Corp
Original Assignee
Denso Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Denso Corp filed Critical Denso Corp
Priority to JP2015208791A priority Critical patent/JP6740590B2/en
Publication of JP2017079602A publication Critical patent/JP2017079602A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP6740590B2 publication Critical patent/JP6740590B2/en
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a culture apparatus and a culture method of a photosynthetic microorganism which do not necessarily require a complicated structure, and in which the microorganism can be easily cultured.SOLUTION: A culture apparatus 1 of a photosynthetic microorganism comprises: agitation units 5,7 which agitate culture solution 17 in a culture tank 3 installed outdoors; an oxygen concentration detection unit 11 which detects dissolved oxygen concentration in the culture solution; a temperature detection unit 9 which detects the temperature of the culture solution; a saturated concentration calculation unit 25 which calculates the saturated concentration of oxygen in the culture solution at the temperature detected by the temperature detection unit; and an agitation control unit 27 which stops agitation by the agitation unit at least in a partial stop period out of a period in which the dissolved oxygen concentration detected by the oxygen concentration detection unit is the saturated concentration calculated by the saturated concentration calculation unit or lower.SELECTED DRAWING: Figure 1

Description

本発明は光合成微生物の培養装置及び培養方法に関する。   The present invention relates to a culture apparatus and a culture method for photosynthetic microorganisms.

光合成微生物を屋外の槽で培養する場合、光合成微生物を捕食する捕食生物が槽内に侵入することがある。特許文献1記載の技術は、光合成微生物を含む懸濁液を、昼間は平面池で保持し、夜間は外部に対し閉じた格納槽に移送する。特許文献1記載の技術は、格納槽内を酸欠状態にすることで捕食生物を死滅させる。   When photosynthetic microorganisms are cultured in an outdoor tank, predatory organisms that prey on the photosynthetic microorganisms may enter the tank. The technique described in Patent Document 1 holds a suspension containing photosynthetic microorganisms in a flat pond during the day and transfers it to a storage tank closed to the outside during the night. The technique described in Patent Document 1 kills predatory organisms by placing the inside of the storage tank in an oxygen deficient state.

特開平6−90735号公報Japanese Patent Laid-Open No. 6-90735

特許文献1記載の技術は、平面池と格納槽とを備えた複雑な培養装置を必要とする。また、特許文献1記載の技術は、平面池と格納槽との間での懸濁液の移送を必要とする。
本発明は、こうした問題にかんがみてなされたものであり、必ずしも複雑な構造を必要とせず、容易に培養を行うことができる光合成微生物の培養装置及び培養方法を提供することを目的としている。
The technique described in Patent Document 1 requires a complex culture apparatus including a flat pond and a storage tank. Moreover, the technique of patent document 1 requires the transfer of the suspension between a plane pond and a storage tank.
The present invention has been made in view of these problems, and an object of the present invention is to provide a culture apparatus and a culture method for photosynthetic microorganisms that can be easily cultured without necessarily requiring a complicated structure.

本発明の光合成微生物の培養装置は、屋外に設置された培養槽中の培養液を攪拌する攪拌ユニットと、培養液における溶存酸素濃度を検出する酸素濃度検出ユニットと、培養液の温度を検出する温度検出ユニットと、温度検出ユニットにより検出した温度での培養液における酸素の飽和濃度を算出する飽和濃度算出ユニットと、酸素濃度検出ユニットにより検出した溶存酸素濃度が、飽和濃度算出ユニットにより算出した飽和濃度以下である期間のうち、少なくとも一部の停止期間において攪拌ユニットによる攪拌を停止する攪拌制御ユニットとを備える。   The photosynthetic microorganism culturing apparatus of the present invention includes a stirring unit that stirs a culture solution in a culture tank installed outdoors, an oxygen concentration detection unit that detects a dissolved oxygen concentration in the culture solution, and a temperature of the culture solution. A temperature detection unit, a saturation concentration calculation unit for calculating a saturation concentration of oxygen in the culture solution at a temperature detected by the temperature detection unit, and a saturation calculated by the saturation concentration calculation unit for the dissolved oxygen concentration detected by the oxygen concentration detection unit. A stirring control unit that stops stirring by the stirring unit in at least a part of the stop period of the period that is equal to or lower than the concentration;

本発明の光合成微生物の培養装置は、培養液における溶存酸素濃度が飽和濃度以下である期間の少なくとも一部を停止期間とする。本発明の光合成微生物の培養装置は、停止期間において培養液の攪拌を停止する。そのことにより、夜間における培養液中の溶存酸素濃度が低下する。その結果、培養液における捕食生物の増殖を抑制するか、捕食生物を死滅させることができる。   In the apparatus for culturing photosynthetic microorganisms of the present invention, at least a part of the period in which the dissolved oxygen concentration in the culture solution is equal to or lower than the saturation concentration is set as the stop period. The culture apparatus for photosynthetic microorganisms of the present invention stops stirring of the culture solution during the stop period. As a result, the dissolved oxygen concentration in the culture solution at night falls. As a result, the growth of predatory organisms in the culture solution can be suppressed or the predatory organisms can be killed.

また、本発明の光合成微生物の培養装置は、必ずしも複数の槽を備えなくても、培養液における捕食生物の増殖を抑制するか、捕食生物を死滅させることができる。また、本発明の光合成微生物の培養装置は、必ずしも、別の槽に培養液を移送しなくても、培養液における捕食生物の増殖を抑制するか、捕食生物を死滅させることができる。   In addition, the photosynthetic microorganism culturing apparatus of the present invention can suppress the growth of predatory organisms in the culture solution or kill the predatory organisms without necessarily providing a plurality of tanks. In addition, the photosynthetic microorganism culture apparatus of the present invention can suppress the growth of predatory organisms in the culture solution or kill the predatory organisms without necessarily transferring the culture solution to another tank.

本発明の光合成微生物の培養方法は、屋外に設置された培養槽中の培養液を攪拌する光合成微生物の培養方法であって、培養液における溶存酸素濃度が飽和濃度以下である期間のうち、少なくとも一部の停止期間において培養液の攪拌を停止する。   The method for culturing photosynthetic microorganisms of the present invention is a method for culturing photosynthetic microorganisms that stirs a culture solution in a culture tank installed outdoors, and at least during a period in which the dissolved oxygen concentration in the culture solution is equal to or lower than a saturated concentration Stop the agitation of the culture medium during some stop periods.

本発明の光合成微生物の培養方法では、培養液における溶存酸素濃度が飽和濃度以下である期間の少なくとも一部を停止期間とする。本発明の光合成微生物の培養方法では、停止期間においては培養液の攪拌を停止する。そのことにより、夜間における培養液中の溶存酸素濃度が低下する。その結果、培養液における捕食生物の増殖を抑制するか、捕食生物を死滅させることができる。   In the method for culturing photosynthetic microorganisms of the present invention, at least a part of the period in which the dissolved oxygen concentration in the culture solution is equal to or lower than the saturation concentration is set as the stop period. In the method for culturing photosynthetic microorganisms of the present invention, the stirring of the culture solution is stopped during the stop period. As a result, the dissolved oxygen concentration in the culture solution at night falls. As a result, the growth of predatory organisms in the culture solution can be suppressed or the predatory organisms can be killed.

また、本発明の光合成微生物の培養方法では、必ずしも複数の槽を備えなくても、培養液における捕食生物の増殖を抑制するか、捕食生物を死滅させることができる。また、本発明の光合成微生物の培養方法では、必ずしも、別の槽に培養液を移送しなくても、培養液における捕食生物の増殖を抑制するか、捕食生物を死滅させることができる。   Further, in the method for culturing photosynthetic microorganisms of the present invention, the growth of predatory organisms in the culture solution can be suppressed or the predatory organisms can be killed without necessarily providing a plurality of tanks. In the method for culturing photosynthetic microorganisms of the present invention, the growth of predatory organisms in the culture solution can be suppressed or the predatory organisms can be killed without necessarily transferring the culture solution to another tank.

培養装置1の構成を表す説明図である。2 is an explanatory diagram illustrating a configuration of a culture apparatus 1. FIG. 培養槽3、水温計9、及び溶存酸素濃度センサ11の構成を表す側面図である。2 is a side view showing the configuration of a culture tank 3, a water thermometer 9, and a dissolved oxygen concentration sensor 11. FIG. 制御部15の機能的構成を表すブロック図である。3 is a block diagram illustrating a functional configuration of a control unit 15. FIG. 制御部15が実行する処理を表すフローチャートである。It is a flowchart showing the process which the control part 15 performs. 培養装置1における動作状態及びDOの推移を表すグラフである。It is a graph showing the operation | movement state in the culture apparatus 1, and transition of DO. DOの推移を表すグラフである。It is a graph showing transition of DO. 制御部15が実行する処理を表すフローチャートである。It is a flowchart showing the process which the control part 15 performs. 培養装置1における動作状態及びDOの推移を表すグラフである。It is a graph showing the operation | movement state in the culture apparatus 1, and transition of DO. 制御部15が実行する処理を表すフローチャートである。It is a flowchart showing the process which the control part 15 performs. 細胞濃度OD720を0.8とした場合におけるDOの推移を表すグラフである。It is a graph showing the transition of DO in the case where the cell density OD 720 was 0.8.

本発明の実施形態を図面に基づき説明する。
<第1実施形態>
1.培養装置1の構成
培養装置1の構成を図1〜図3に基づき説明する。培養装置1は、光合成微生物の培養を用途とする装置である。光合成微生物とは、光エネルギーと二酸化炭素とから油や炭化水素等の物質生産を行う微生物を意味する。光合成微生物は、光合成細菌も含む。培養装置1は、図1に示すように、培養槽3、攪拌パドル5、駆動モータ7、水温計9、溶存酸素濃度センサ11、光量子計13、及び制御部15を備える。
Embodiments of the present invention will be described with reference to the drawings.
<First Embodiment>
1. Configuration of Culture Device 1 The configuration of the culture device 1 will be described with reference to FIGS. The culture apparatus 1 is an apparatus for use in culturing photosynthetic microorganisms. A photosynthetic microorganism means a microorganism that produces substances such as oil and hydrocarbons from light energy and carbon dioxide. Photosynthetic microorganisms also include photosynthetic bacteria. As shown in FIG. 1, the culture apparatus 1 includes a culture tank 3, a stirring paddle 5, a drive motor 7, a water temperature meter 9, a dissolved oxygen concentration sensor 11, a photon meter 13, and a control unit 15.

培養槽3は屋外に設置されたレースウェイ型の槽である。培養槽3はその中に培養液17を収容する。培養槽3の上方は開放されており、培養液17は外気と接する。天候が晴天であれば培養液17に太陽光が入射する。培養液17には光合成微生物が含まれる。   The culture tank 3 is a raceway type tank installed outdoors. The culture tank 3 contains the culture solution 17 therein. The upper part of the culture tank 3 is open, and the culture solution 17 is in contact with the outside air. If the weather is fine, sunlight enters the culture solution 17. The culture solution 17 contains photosynthetic microorganisms.

攪拌パドル5は培養槽3に、回転可能に取り付けられる。攪拌パドル5の一部は培養液17中に浸漬されている。攪拌パドル5は駆動モータ7により駆動され、回転する。攪拌パドル5の回転により、培養液17が攪拌される。また、攪拌パドル5の回転により、培養液17に、培養槽3内を周回する流れが生じる。また、攪拌パドル5の回転により、培養液17中に酸素が取り込まれる。   The stirring paddle 5 is rotatably attached to the culture tank 3. A part of the stirring paddle 5 is immersed in the culture solution 17. The stirring paddle 5 is driven by a drive motor 7 and rotates. The culture solution 17 is stirred by the rotation of the stirring paddle 5. In addition, the rotation of the stirring paddle 5 causes the culture solution 17 to flow around the culture tank 3. In addition, oxygen is taken into the culture solution 17 by the rotation of the stirring paddle 5.

水温計9は培養槽3に取り付けられる。水温計9は培養液17の温度を検出し、検出信号を制御部15に送る。水温計9における検知部9Aは、図2に示すように、培養槽3における底面19付近に位置する。そのため、水温計9は、培養液17のうち、底面19付近の部分の温度を検出する。培養液17中に後述する堆積層29が形成されたとき、水温計9は、堆積層29中の温度を検出する。   The water temperature gauge 9 is attached to the culture tank 3. The water thermometer 9 detects the temperature of the culture solution 17 and sends a detection signal to the control unit 15. As shown in FIG. 2, the detection unit 9 </ b> A in the water temperature gauge 9 is located near the bottom surface 19 in the culture tank 3. Therefore, the water thermometer 9 detects the temperature of the portion of the culture solution 17 near the bottom surface 19. When a later-described deposit layer 29 is formed in the culture solution 17, the water thermometer 9 detects the temperature in the deposit layer 29.

溶存酸素濃度センサ11は培養槽3に取り付けられる。溶存酸素濃度センサ11は培養液17中の溶存酸素濃度(以下、DOとする)を検出し、検出信号を制御部15に送る。溶存酸素濃度センサ11における検知部11Aは、図2に示すように、底面19付近に位置する。そのため、溶存酸素濃度センサ11は、培養液17のうち、底面19付近の部分におけるDOを検出する。培養液17中に後述する堆積層29が形成されたとき、溶存酸素濃度センサ11は、堆積層29中のDOを検出する。   The dissolved oxygen concentration sensor 11 is attached to the culture tank 3. The dissolved oxygen concentration sensor 11 detects the dissolved oxygen concentration (hereinafter referred to as DO) in the culture solution 17 and sends a detection signal to the control unit 15. The detection part 11A in the dissolved oxygen concentration sensor 11 is located near the bottom surface 19 as shown in FIG. Therefore, the dissolved oxygen concentration sensor 11 detects DO in the portion of the culture solution 17 near the bottom surface 19. When a deposition layer 29 described later is formed in the culture solution 17, the dissolved oxygen concentration sensor 11 detects DO in the deposition layer 29.

光量子計13は培養槽3の近傍に設置される。光量子計13はその位置における明るさを検出し、その検出信号を制御部15に送る。
制御部15は、CPU21と、RAM、ROM、フラッシュメモリ等の半導体メモリ(以下、メモリ23とする)と、を有する周知のマイクロコンピュータを中心に構成される。
The photon meter 13 is installed in the vicinity of the culture tank 3. The photon meter 13 detects the brightness at that position and sends the detection signal to the control unit 15.
The control unit 15 is mainly configured by a known microcomputer having a CPU 21 and a semiconductor memory (hereinafter referred to as a memory 23) such as a RAM, a ROM, and a flash memory.

制御部15の各種機能は、CPU21が非遷移的実体的記録媒体に格納されたプログラムを実行することにより実現される。この例では、メモリ23が、プログラムを格納した非遷移的実体的記録媒体に該当する。また、このプログラムの実行により、プログラムに対応する方法が実行される。なお、制御部15を構成するマイクロコンピュータの数は1つでも複数でもよい。   Various functions of the control unit 15 are realized by the CPU 21 executing a program stored in a non-transitional physical recording medium. In this example, the memory 23 corresponds to a non-transitional tangible recording medium that stores a program. Further, by executing this program, a method corresponding to the program is executed. The number of microcomputers constituting the control unit 15 may be one or plural.

制御部15は、CPU21がプログラムを実行することで実現される機能の構成として、図3に示すように、飽和濃度算出ユニット25と、攪拌制御ユニット27とを備える。制御部15を構成するこれらの要素を実現する手法はソフトウェアに限るものではなく、その一部又は全部の要素を、論理回路やアナログ回路等を組み合わせたハードウェアを用いて実現してもよい。   As shown in FIG. 3, the control unit 15 includes a saturated concentration calculation unit 25 and an agitation control unit 27 as a function configuration realized by the CPU 21 executing the program. The method of realizing these elements constituting the control unit 15 is not limited to software, and some or all of the elements may be realized using hardware that combines a logic circuit, an analog circuit, and the like.

なお、攪拌パドル5及び駆動モータ7は攪拌ユニットに対応する。溶存酸素濃度センサ11は酸素濃度検出ユニットに対応する。水温計9は温度検出ユニットに対応する。光量子計13は日の入り検出ユニット及び日の出検出ユニットに対応する。   The stirring paddle 5 and the drive motor 7 correspond to a stirring unit. The dissolved oxygen concentration sensor 11 corresponds to an oxygen concentration detection unit. The water thermometer 9 corresponds to a temperature detection unit. The photon meter 13 corresponds to a sunset detection unit and a sunrise detection unit.

2.培養装置1が実行する培養方法
培養装置1が実行する培養方法を図4〜図6に基づき説明する。培養方法を実施するとき、培養槽3に培養液17を収容する。培養液17には、光合成微生物が含まれる。光合成微生物は、トレボウキシア藻綱のシュードココミクサ(Pseudococcomyxa)sp. KJである。
2. Culture Method Performed by Culture Device 1 The culture method performed by the culture device 1 will be described with reference to FIGS. When performing the culture method, the culture solution 17 is stored in the culture tank 3. The culture solution 17 contains photosynthetic microorganisms. The photosynthetic microorganism is Pseudococcomyxa sp. KJ of Trevoxia algae.

シュードココミクサ sp. KJは、2013年6月4日付で独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許生物寄託センター(NITE−IPOD)(千葉県木更津市かずさ鎌足2−5−8 120号室)に受託番号FERM P−22254として寄託されている。その後、2015年6月2日に、国際寄託へ移管されている。国際受託番号は、FERM BP−22254である。   Pseudocomicusa sp. KJ was commissioned on June 4, 2013 to the National Institute for Product Evaluation Technology Patent Biological Deposit Center (NITE-IPOD) (Room 2-5-8 Kazusa Kamashichi, Kisarazu City, Chiba Prefecture) Deposited under the number FERM P-22254. Later, on June 2, 2015, it was transferred to an international deposit. The international accession number is FERM BP-22254.

培養液17中には、培養装置1の使用者の意図によらず、捕食生物が含まれることがある。捕食生物としては、例えば、繊毛虫、鞭毛虫、アメーバ等が挙げられる。光合成微生物の細胞濃度OD720は、後述する停止期間のとき、1.0である。 The culture solution 17 may contain predatory organisms regardless of the intention of the user of the culture apparatus 1. Examples of predatory organisms include ciliates, flagellates, and amoeba. The cell concentration OD 720 of the photosynthetic microorganism is 1.0 at the stop period described later.

以下で説明する培養方法は、制御部15により制御される。制御部15は、図4に示す処理を所定時間ごとに繰り返し行う。
ステップ1では、現時点が停止期間中であるか否かを攪拌制御ユニット27が判断する。停止期間とは、攪拌パドル5が停止し、培養液17が攪拌されていない期間を意味する。停止期間は、後述するステップ8で開始され、後述するステップ12で終了する。なお、制御部15は、停止期間以外では、攪拌パドル5を回転させる。
The culture method described below is controlled by the control unit 15. The control unit 15 repeats the process shown in FIG. 4 at predetermined time intervals.
In step 1, the stirring control unit 27 determines whether or not the current time is in the stop period. The stop period means a period in which the stirring paddle 5 is stopped and the culture solution 17 is not stirred. The stop period starts at step 8 described later and ends at step 12 described later. The control unit 15 rotates the stirring paddle 5 except during the stop period.

現時点が停止期間中ではない場合はステップ2に進み、現時点が停止期間中である場合はステップ9に進む。
ステップ2では、現時点が夜間であるか否かを攪拌制御ユニット27が判断する。夜間とは、日の入りから日の出までの期間を意味する。攪拌制御ユニット27は、光量子計13を用いて検出した明るさが予め設定された閾値以下である場合、現時点が夜間であると判断し、それ以外の場合、現時点は夜間ではないと判断する。現時点が夜間であると判断した場合はステップ3に進み、現時点が夜間ではないと判断した場合は本処理を終了する。
If the current time is not in the stop period, the process proceeds to step 2. If the current time is in the stop period, the process proceeds to step 9.
In step 2, the stirring control unit 27 determines whether or not the current time is night. Night means the period from sunset to sunrise. The agitation control unit 27 determines that the current time is nighttime when the brightness detected using the photon meter 13 is less than or equal to a preset threshold, and otherwise determines that the current time is not nighttime. If it is determined that the current time is night, the process proceeds to step 3. If it is determined that the current time is not night, the process is terminated.

ステップ3では、攪拌制御ユニット27が、溶存酸素濃度センサ11を用いて、培養液17における溶存酸素濃度(以下、DOとする)を取得する。
ステップ4では、攪拌制御ユニット27が、直前の前記ステップ3で取得したDOと、その1回前の前記ステップ3で取得したDOとを対比する。前者の方が後者より低い場合はステップ5に進み、前者が後者以上である場合は本処理を終了する。なお、直前の前記ステップ10で取得したDOの方が、その1回前の前記ステップ10で取得したDOより低い場合とは、DOが時間の経過とともに下降している状態に対応する。
In step 3, the agitation control unit 27 acquires the dissolved oxygen concentration (hereinafter referred to as DO) in the culture solution 17 using the dissolved oxygen concentration sensor 11.
In step 4, the stirring control unit 27 compares the DO acquired in the previous step 3 with the DO acquired in the previous step 3. If the former is lower than the latter, the process proceeds to step 5. If the former is greater than or equal to the latter, the present process is terminated. Note that the case where the DO acquired at the previous step 10 is lower than the DO acquired at the previous step 10 corresponds to a state where the DO is descending as time passes.

ステップ5では、攪拌制御ユニット27が、水温計9を用いて培養液17の温度を取得する。
ステップ6では、飽和濃度算出ユニット25が、前記ステップ5で取得した温度での培養液17における酸素の飽和濃度(以下、飽和DOとする)を算出する。飽和濃度算出ユニット25は、予め、培養液17の温度と飽和DOとを関連付けたマップを備えており、そのマップに前記ステップ5で取得した温度を入力することで、飽和DOを算出する。
In step 5, the stirring control unit 27 acquires the temperature of the culture solution 17 using the water thermometer 9.
In step 6, the saturation concentration calculation unit 25 calculates the oxygen saturation concentration (hereinafter referred to as saturation DO) in the culture solution 17 at the temperature obtained in step 5. The saturation concentration calculation unit 25 is provided with a map that associates the temperature of the culture solution 17 with the saturation DO in advance, and calculates the saturation DO by inputting the temperature acquired in step 5 to the map.

ステップ7では、前記ステップ3で取得したDOが、前記ステップ6で算出した飽和DOと一致するか否かを攪拌制御ユニット27が判断する。ここで、一致するとは、DOと飽和DOとが完全に一致する場合だけではなく、両者の差が予め設定された閾値以下である場合も含む。DOが飽和DOと一致する場合はステップ8に進み、DOが飽和DOと一致しない場合は本処理を終了する。   In step 7, the stirring control unit 27 determines whether or not the DO acquired in step 3 matches the saturated DO calculated in step 6. Here, “matching” includes not only a case where DO and saturation DO completely match, but also a case where the difference between the two is equal to or less than a preset threshold value. If DO matches with saturated DO, the process proceeds to step 8; if DO does not match with saturated DO, this process ends.

ステップ8では、攪拌制御ユニット27が停止期間を開始する。すなわち、それまで回転していた攪拌パドル5を停止する。停止期間は、後述するステップ12を実行するまで継続する。   In step 8, the stirring control unit 27 starts a stop period. That is, the stirring paddle 5 that has been rotating until then is stopped. The stop period continues until step 12 described later is executed.

一方、前記ステップ1で否定判断した場合はステップ9に進む。ステップ9では、現時点が日の出の後であるか否かを攪拌制御ユニット27が判断する。攪拌制御ユニット27は、光量子計13を用いて検出した明るさが予め設定された閾値以上である場合、現時点が日の出の後であると判断し、それ以外の場合は、現時点が未だ日の出の前であると判断する。現時点が日の出の後であると判断した場合はステップ10に進み、現時点が未だ日の出の前と判断した場合は本処理を終了する。   On the other hand, if a negative determination is made in step 1, the process proceeds to step 9. In step 9, the stirring control unit 27 determines whether or not the current time is after sunrise. The agitation control unit 27 determines that the current time is after sunrise when the brightness detected using the photon meter 13 is equal to or greater than a preset threshold value. Otherwise, the current time is still before sunrise. It is judged that. If it is determined that the current time is after sunrise, the process proceeds to step 10. If it is determined that the current time is still before sunrise, the present process is terminated.

ステップ10では、攪拌制御ユニット27が、溶存酸素濃度センサ11を用いてDOを取得する。
ステップ11では、攪拌制御ユニット27が、直前の前記ステップ10で取得したDOと、その1回前の前記ステップ10で取得したDOとを対比する。前者の方が後者より高い場合はステップ12に進み、前者が後者以下である場合は本処理を終了する。なお、直前の前記ステップ10で取得したDOの方が、その1回前の前記ステップ10で取得したDOより高い場合とは、DOが時間の経過とともに上昇している状態に対応する。
In step 10, the agitation control unit 27 acquires DO using the dissolved oxygen concentration sensor 11.
In step 11, the agitation control unit 27 compares the DO acquired in the immediately preceding step 10 with the DO acquired in the previous step 10. If the former is higher than the latter, the process proceeds to step 12. If the former is equal to or less than the latter, the process is terminated. Note that the case where the DO acquired at the previous step 10 is higher than the DO acquired at the previous step 10 corresponds to a state where the DO is rising over time.

ステップ12では、攪拌制御ユニット27が、それまで継続していた停止期間を終了する。この時点以降、攪拌パドル5は回転する。
3.培養装置1における動作状態及びDOの推移
上述した培養方法を実施したときの培養装置1における動作状態の推移とDOの推移とを図5に示す。日の入りの前において、攪拌パドル5は回転している。日の入りの前において、DOは飽和DOより高い。これは、光合成微生物が光合成により培養液17中で酸素を生成することに加えて、攪拌パドル5の回転により酸素が培養液17中に取り込まれるためである。攪拌パドル5が回転しているとき、後述する堆積層29は形成されない。
In step 12, the stirring control unit 27 ends the stop period that has been continued until then. After this time, the stirring paddle 5 rotates.
3. FIG. 5 shows the transition of the operation state and the DO of the culture apparatus 1 when the culture method described above is performed. Prior to sunset, the stirring paddle 5 is rotating. Before sunset, DO is higher than saturated DO. This is because the photosynthetic microorganisms generate oxygen in the culture solution 17 by photosynthesis, and oxygen is taken into the culture solution 17 by the rotation of the stirring paddle 5. When the stirring paddle 5 is rotating, the later-described deposited layer 29 is not formed.

日の入りの後、DOは下降する。これは、光合成微生物による光合成が停止し、光合成微生物及び捕食生物が呼吸するためである。
日の入りの後、DOが下降してゆき、飽和DOに一致すると、停止期間が開始される。図5においてtは停止期間の開始時刻を表す。停止期間の開始後、DOは一層急激に下降する。これは、攪拌パドル5の回転による酸素の取り込みがなくなるためである。また、攪拌パドル5の回転が停止するため、図2に示すように、光合成微生物及び捕食生物を含む堆積層29が底面19上に形成される。堆積層29中では、高密度に存在する光合成微生物及び捕食生物が呼吸するため、DOが一層低い。
After sunset, DO falls. This is because photosynthesis by the photosynthetic microorganisms stops and the photosynthetic microorganisms and predators respire.
After sunset, when the DO falls and coincides with the saturated DO, the stop period is started. T 1 in FIG. 5 represents the start time of the stop period. After the start of the stop period, DO falls more rapidly. This is because oxygen uptake due to rotation of the stirring paddle 5 is lost. Further, since the rotation of the stirring paddle 5 is stopped, a deposition layer 29 containing photosynthetic microorganisms and predatory organisms is formed on the bottom surface 19 as shown in FIG. In the sedimentary layer 29, the photosynthetic microorganisms and predators that exist at high density respire, so the DO is even lower.

夜間を通して、DOは低いまま維持される。日の出の後、DOが上昇する。これは、光合成微生物が光合成により培養液17中で酸素を生成し始めるためである。日の出の後、DOが上昇すると、停止期間が終了する。図5においてtは停止期間の終了時刻を表す。停止期間の終了後、攪拌パドル5の回転により酸素が培養液17中に取り込まれるため、DOは一層急激に上昇し、飽和DOを超える。停止期間の終了後、光合成微生物及び捕食生物は培養液17中に均一に分散し、堆積層29は消滅する。 Throughout the night, DO remains low. After sunrise, DO rises. This is because the photosynthetic microorganism begins to generate oxygen in the culture solution 17 by photosynthesis. When DO rises after sunrise, the stop period ends. T 2 In FIG. 5 represents the end time of the stop period. After the stop period, since oxygen is taken into the culture solution 17 by the rotation of the stirring paddle 5, DO rises more rapidly and exceeds the saturated DO. After the end of the stop period, the photosynthetic microorganisms and predators are uniformly dispersed in the culture solution 17, and the deposited layer 29 disappears.

図6に、本実施形態の培養方法を実施したときのDOの推移を示す。また、図6に、比較例として、昼夜を問わず連続して攪拌パドル5を回転させ続けた場合のDOの推移を示す。図6において「停止期間あり」は、本実施形態の培養方法に対応し、「連続攪拌」は、昼夜を問わず連続して攪拌パドル5を回転させ続けた場合に対応する。本実施形態の培養方法を実施した場合、比較例よりも、夜間におけるDOを一層低下させることができた。   In FIG. 6, transition of DO when the culture method of this embodiment is implemented is shown. In addition, FIG. 6 shows a transition of DO when the stirring paddle 5 is continuously rotated regardless of day or night as a comparative example. In FIG. 6, “with a stop period” corresponds to the culture method of the present embodiment, and “continuous stirring” corresponds to the case where the stirring paddle 5 is continuously rotated regardless of day and night. When the culture method of this embodiment was implemented, DO at night could be further reduced as compared with the comparative example.

4.培養装置1及び培養方法が奏する効果
(1A)培養装置1は、DOが飽和DO以下である期間の一部を停止期間とする。培養装置1は、停止期間中は、攪拌パドル5による攪拌を停止する。そのことにより、夜間におけるDOが、常時攪拌を行う場合に比べて一層低下する。その結果、捕食生物の増殖を抑制するか、捕食生物を死滅させることができる。
4). Effects produced by the culture apparatus 1 and the culture method (1A) The culture apparatus 1 sets a part of a period during which DO is equal to or lower than the saturated DO as a stop period. The culture apparatus 1 stops stirring by the stirring paddle 5 during the stop period. Thereby, DO at night falls further compared with the case where stirring is always performed. As a result, the growth of predatory organisms can be suppressed or the predatory organisms can be killed.

(1B)培養装置1は、必ずしも複数の槽を備えなくても、捕食生物の増殖を抑制するか、捕食生物を死滅させることができる。また、培養装置1は、必ずしも、別の槽に培養液17を移送しなくても、捕食生物の増殖を抑制するか、捕食生物を死滅させることができる。   (1B) The culture apparatus 1 can suppress the growth of predatory organisms or kill the predatory organisms without necessarily including a plurality of tanks. Moreover, the culture apparatus 1 does not necessarily need to transfer the culture solution 17 to another tank, but can suppress the growth of predatory organisms or kill the predatory organisms.

(1C)培養装置1は、DOが飽和DO以上の値から飽和DOまで低下したとき、停止期間を開始する。そのことにより、夜間におけるDOが一層低下する。その結果、捕食生物の増殖を一層抑制するか、捕食生物を一層早期に死滅させることができる。   (1C) The culture apparatus 1 starts a stop period when DO falls from a value equal to or higher than the saturated DO to the saturated DO. Thereby, DO at night falls further. As a result, the growth of the predatory organisms can be further suppressed, or the predatory organisms can be killed earlier.

(1D)培養装置1は、DOが上昇を始めた時点で、停止期間を終了する。そのことにより、光合成微生物の増殖を促進することができる。
(1E)培養装置1は、光量子計13を用いて、現時点が日の入りの後であることを検出する。そして、日の入りの後であることを検出してから、停止期間を開始する。そのことにより、日の入りの前に誤って停止期間を開始することを抑制できる。
(1D) The culture apparatus 1 ends the stop period when DO starts to rise. Thereby, the proliferation of photosynthetic microorganisms can be promoted.
(1E) The culture apparatus 1 uses the photon meter 13 to detect that the current time is after sunset. Then, after detecting that it is after sunset, the stop period is started. Thereby, it is possible to prevent the stop period from being erroneously started before sunset.

(1F)培養装置1は、光量子計13を用いて、現時点が日の出の後であることを検出する。そして、日の出の後であることを検出してから、停止期間を終了する。そのことにより、日の出の前に誤って停止期間を終了することを抑制できる。   (1F) The culture apparatus 1 uses the photon meter 13 to detect that the current time is after sunrise. Then, after detecting that it is after sunrise, the stop period ends. As a result, it is possible to prevent the stop period from being ended accidentally before sunrise.

(1G)本実施形態の培養方法において、培養液17における細胞濃度OD720は1.0である。そのことにより、夜間におけるDOが一層低下する。その結果、捕食生物の増殖を一層抑制するか、捕食生物を一層早期に死滅させることができる。 (1G) In the culture method of the present embodiment, the cell concentration OD 720 in the culture solution 17 is 1.0. Thereby, DO at night falls further. As a result, the growth of the predatory organisms can be further suppressed, or the predatory organisms can be killed earlier.

(1H)本実施形態の培養方法では、停止期間中に生じる堆積層29中でDO及び温度を測定する。そのことにより、捕食生物の多くが存在する場所でのDO及び温度を測定することができる。
<第2実施形態>
1.第1実施形態との相違点
第2実施形態は、基本的な構成は第1実施形態と同様であるため、共通する構成については説明を省略し、相違点を中心に説明する。なお、第1実施形態と同じ符号は、同一の構成を示すものであって、先行する説明を参照する。
(1H) In the culture method of the present embodiment, DO and temperature are measured in the deposition layer 29 generated during the stop period. Thereby, DO and temperature in a place where many predatory organisms exist can be measured.
Second Embodiment
1. Differences from the First Embodiment Since the basic configuration of the second embodiment is the same as that of the first embodiment, description of the common configuration will be omitted, and differences will be mainly described. Note that the same reference numerals as those in the first embodiment indicate the same configuration, and the preceding description is referred to.

第2実施形態における培養方法を行うとき、制御部15は、図7に示す処理を所定時間ごとに繰り返し行う。図7のステップ21〜31は、第1実施形態におけるステップ1〜11と同様である。   When performing the culture method in 2nd Embodiment, the control part 15 repeats the process shown in FIG. 7 for every predetermined time. Steps 21 to 31 in FIG. 7 are the same as steps 1 to 11 in the first embodiment.

ステップ32では、攪拌制御ユニット27が、前記ステップ30で取得したDOが、予め設定された閾値T以上であるか否かを判断する。閾値Tは、0より大きく、飽和DOより小さい値である。DOが閾値T以上である場合はステップ33に進み、閾値T未満である場合は本処理を終了する。   In step 32, the stirring control unit 27 determines whether or not the DO acquired in step 30 is equal to or greater than a preset threshold value T. The threshold T is a value larger than 0 and smaller than the saturation DO. If DO is greater than or equal to the threshold value T, the process proceeds to step 33, and if it is less than the threshold value T, the present process is terminated.

2.培養装置1における状態及びDOの推移
本実施形態の培養方法を実施したときの培養装置1における動作状態の推移とDOの推移とを図8に示す。日の入りの前から日の出までの状態は、第1実施形態と同様である。
2. FIG. 8 shows changes in the operating state and changes in DO in the culture apparatus 1 when the culture method of the present embodiment is performed. The state from before sunset to sunrise is the same as in the first embodiment.

日の出の後、DOが上昇する。これは、光合成微生物が光合成により培養液17中で酸素を生成し始めるためである。日の出の後、DOが上昇し、閾値T以上になると、停止期間が終了する。図8においてtは停止期間の終了時刻を表す。停止期間の終了後、攪拌パドル5の回転により酸素が培養液17中に取り込まれるため、DOは一層急激に上昇し、飽和DOを超える。停止期間の終了後、光合成微生物及び捕食生物は培養液17中に均一に分散し、堆積層29は消滅する。 After sunrise, DO rises. This is because the photosynthetic microorganism begins to generate oxygen in the culture solution 17 by photosynthesis. When the DO rises after sunrise and exceeds the threshold T, the stop period ends. T 2 8 represents the end time of the stop period. After the stop period, since oxygen is taken into the culture solution 17 by the rotation of the stirring paddle 5, DO rises more rapidly and exceeds the saturated DO. After the end of the stop period, the photosynthetic microorganisms and predators are uniformly dispersed in the culture solution 17, and the deposited layer 29 disappears.

3.培養装置1及び培養方法が奏する効果
以上詳述した第2実施形態によれば、前述した第1実施形態の効果に加え、以下の効果が得られる。
3. Effects exhibited by the culture device 1 and the culture method According to the second embodiment described in detail above, the following effects are obtained in addition to the effects of the first embodiment described above.

(2A)培養装置1は、DOが上昇中であるとともに、DOが閾値T以上となった時刻tに、停止期間を終了する。ここで、閾値Tは、飽和DOより小さい値であるから、時刻tは、DOが飽和DOに達する時点よりも前の時点である。よって、培養装置1は、DOが上昇を始めた時点から、DOが飽和DOに達する時点までの間に、停止期間を終了する。そのことにより、光合成微生物の増殖を促進することができる。また、停止期間を過度に早く終了させてしまうことを抑制できる。
<第3実施形態>
1.第1実施形態との相違点
第3実施形態は、基本的な構成は第1実施形態と同様であるため、共通する構成については説明を省略し、相違点を中心に説明する。なお、第1実施形態と同じ符号は、同一の構成を示すものであって、先行する説明を参照する。
(2A) culture apparatus 1, together with DO is increasing, the time t 2 when DO is equal to or larger than the threshold value T, and ends the stop period. Here, the threshold value T, since the saturated DO value smaller than the time t 2, the DO is the time before the time of reaching the saturation DO. Therefore, the culture apparatus 1 ends the stop period between the time when DO starts to rise and the time when DO reaches saturation DO. Thereby, the proliferation of photosynthetic microorganisms can be promoted. Moreover, it can suppress that a stop period is terminated too early.
<Third Embodiment>
1. Differences from the First Embodiment Since the basic configuration of the third embodiment is the same as that of the first embodiment, the description of the common configurations will be omitted, and differences will be mainly described. Note that the same reference numerals as those in the first embodiment indicate the same configuration, and the preceding description is referred to.

第3実施形態における培養方法を行うとき、制御部15は、図9に示す処理を所定時間ごとに繰り返し行う。図9のステップ41〜44は、第1実施形態におけるステップ1、3、5、6と同様である。   When performing the culturing method in the third embodiment, the control unit 15 repeatedly performs the process shown in FIG. 9 every predetermined time. Steps 41 to 44 in FIG. 9 are the same as steps 1, 3, 5, and 6 in the first embodiment.

ステップ45では、飽和濃度算出ユニット25が、開始閾値を設定する。開始閾値は、前記ステップ44で算出した飽和DOと同じ値である。なお、開始閾値を、飽和DOより大きい値としてもよいし、飽和DOより小さい値としてもよい。   In step 45, the saturation concentration calculation unit 25 sets a start threshold value. The start threshold value is the same value as the saturated DO calculated in step 44. Note that the start threshold value may be a value larger than the saturation DO or a value smaller than the saturation DO.

ステップ46では、前記ステップ42で取得したDOが前記ステップ45で設定した開始閾値以下であるか否かを攪拌制御ユニット27が判断する。DOが開始閾値以下である場合はステップ47に進み、DOが開始閾値より大きい場合は本処理を終了する。   In step 46, the stirring control unit 27 determines whether or not the DO acquired in step 42 is equal to or less than the start threshold value set in step 45. If DO is less than or equal to the start threshold, the process proceeds to step 47, and if DO is greater than the start threshold, this process ends.

ステップ47では、攪拌制御ユニット27が停止期間を開始する。
一方、前記ステップ41で否定判断した場合はステップ48に進む。ステップ48〜50は、前記ステップ42〜44と同様である。
In step 47, the stirring control unit 27 starts a stop period.
On the other hand, if a negative determination is made in step 41, the process proceeds to step 48. Steps 48 to 50 are the same as steps 42 to 44 described above.

ステップ51では、飽和濃度算出ユニット25が、終了閾値を設定する。終了閾値は、前記ステップ50で算出した飽和DOと同じ値である。なお、終了閾値を、飽和DOより大きい値としてもよいし、飽和DOより小さい値としてもよい。   In step 51, the saturated concentration calculation unit 25 sets an end threshold value. The end threshold is the same value as the saturated DO calculated in step 50. Note that the end threshold value may be a value larger than the saturation DO or a value smaller than the saturation DO.

ステップ52では、前記ステップ48で取得したDOが前記ステップ51で設定した終了閾値以上であるか否かを攪拌制御ユニット27が判断する。DOが終了閾値以上である場合はステップ53に進み、DOが終了閾値未満である場合は本処理を終了する。   In step 52, the stirring control unit 27 determines whether or not the DO acquired in step 48 is equal to or greater than the end threshold set in step 51. If DO is greater than or equal to the end threshold value, the process proceeds to step 53. If DO is less than the end threshold value, this process ends.

ステップ53では、攪拌制御ユニット27が停止期間を終了する。
3.培養装置1及び培養方法が奏する効果
以上詳述した第3実施形態によれば、前述した第1実施形態の効果(1A)、(1B)、(1G)、(1H)に加え、さらに以下の効果が得られる。
In step 53, the stirring control unit 27 ends the stop period.
3. Effects exhibited by the culture apparatus 1 and the culture method According to the third embodiment described in detail above, in addition to the effects (1A), (1B), (1G), (1H) of the first embodiment described above, the following further An effect is obtained.

(3A)本実施形態の培養方法では、日の出及び日の入りを検出する必要が無いので、培養装置1の構成及び培養方法を簡略化できる。
(3B)本実施形態の培養方法では、DOが下降中であるか否かと、DOが上昇中であるか否かとを判断する必要が無い。そのため、培養方法を簡略化できる。
<その他の実施形態>
以上、本発明を実施するための形態について説明したが、本発明は上述の実施形態に限定されることなく、種々変形して実施することができる。
(3A) In the culture method of the present embodiment, since it is not necessary to detect sunrise and sunset, the configuration of the culture device 1 and the culture method can be simplified.
(3B) In the culture method of the present embodiment, it is not necessary to determine whether DO is descending or not. Therefore, the culture method can be simplified.
<Other embodiments>
As mentioned above, although the form for implementing this invention was demonstrated, this invention is not limited to the above-mentioned embodiment, It can implement in various deformation | transformation.

(1)停止期間中の培養液17における細胞濃度OD720は適宜設定できる。図10に、停止期間中の培養液17における細胞濃度OD720を0.8とした場合の、DOの推移を表す。この場合も、夜間のDOは十分に低くなる。 (1) The cell concentration OD 720 in the culture solution 17 during the stop period can be set as appropriate. FIG. 10 shows the transition of DO when the cell concentration OD 720 in the culture solution 17 during the stop period is 0.8. Again, the nighttime DO is sufficiently low.

(2)停止期間を開始する条件は他のものであってもよい。例えば、日の入りを検出したときに、停止期間を開始してもよい。また、DOが予め設定された開始閾値以下となったときに停止期間を開始してもよい。上記の開始閾値は、飽和DOより低くてもよいし、飽和DOと等しくてもよいし、飽和DOより高くてもよい。また、予め設定された開始時刻となったときに停止期間を開始してもよい。   (2) Other conditions may be used for starting the suspension period. For example, the stop period may be started when sunset is detected. Further, the stop period may be started when DO becomes equal to or less than a preset start threshold. The start threshold value may be lower than the saturated DO, may be equal to the saturated DO, or higher than the saturated DO. Further, the stop period may be started when a preset start time is reached.

(3)停止期間を終了する条件は他のものであってもよい。例えば、日の出を検出したときに停止期間を終了してもよい。また、予め設定された終了時刻となったときに停止期間を終了してもよい。   (3) Other conditions may be used for terminating the suspension period. For example, the stop period may be terminated when sunrise is detected. Further, the stop period may be ended when a preset end time is reached.

(4)培養装置1は、攪拌パドル5以外の攪拌ユニットを備えていてもよい。例えば、培養槽3を振動させる等の方法で培養液17を攪拌してもよい。
(5)培養槽3はレースウェイ以外の形式の槽であってもよい。
(4) The culture apparatus 1 may include a stirring unit other than the stirring paddle 5. For example, the culture solution 17 may be stirred by a method such as vibrating the culture tank 3.
(5) The culture tank 3 may be a tank of a type other than the raceway.

(6)培養装置1は培養槽を備えなくてもよい。この場合、培養装置1とは別体の槽に対し、培養装置1を組み付けることができる。
(7)光合成微生物は、トレボウキシア藻綱以外のものであってもよい。例えば、緑藻綱、紅藻綱に属する光合成微生物を適宜選択して用いることができる。
(6) The culture apparatus 1 may not include a culture tank. In this case, the culture apparatus 1 can be assembled to a tank separate from the culture apparatus 1.
(7) The photosynthetic microorganism may be other than Trevoxia algae. For example, photosynthetic microorganisms belonging to the green alga class and the red alga class can be appropriately selected and used.

(8)培養装置1は、光量子計13以外の手段により、日の出、日の入りを検出してもよい。例えば、培養装置1は時計を用いて時刻と日付とを取得し、それらに基づき、現時点が日の出の前であるか否か、及び日の入りの前であるか否かを判断してもよい。   (8) The culture apparatus 1 may detect sunrise and sunset by means other than the photon spectrometer 13. For example, the culture apparatus 1 may acquire time and date using a clock, and based on them, may determine whether the current time is before sunrise and whether it is before sunset.

(9)上記実施形態における1つの構成要素が有する機能を複数の構成要素として分散させたり、複数の構成要素が有する機能を1つの構成要素に統合させたりしてもよい。また、上記実施形態の構成の一部を省略してもよい。また、上記実施形態の構成の少なくとも一部を、他の上記実施形態の構成に対して付加又は置換してもよい。なお、特許請求の範囲に記載した文言のみによって特定される技術思想に含まれるあらゆる態様が本発明の実施形態である。   (9) The functions of one component in the above embodiment may be distributed as a plurality of components, or the functions of a plurality of components may be integrated into one component. Moreover, you may abbreviate | omit a part of structure of the said embodiment. In addition, at least a part of the configuration of the above embodiment may be added to or replaced with the configuration of the other embodiment. In addition, all the aspects included in the technical idea specified only by the wording described in the claim are embodiment of this invention.

(10)上述した培養装置の他、当該培養装置を構成要素とするシステム、当該培養装置の制御部としてコンピュータを機能させるためのプログラム、このプログラムを記録した半導体メモリ等の非遷移的実態的記録媒体等、種々の形態で本発明を実現することもできる。   (10) In addition to the culture apparatus described above, a system including the culture apparatus as a constituent element, a program for causing a computer to function as a control unit of the culture apparatus, and a non-transitory actual record such as a semiconductor memory storing the program The present invention can also be realized in various forms such as a medium.

1…培養装置、3…培養槽、5…攪拌パドル、7…駆動モータ、9…水温計、9A…検知部、11…溶存酸素濃度センサ、11A…検知部、13…光量子計、15…制御部、17…培養液、19…底面、21…CPU、23…メモリ、25…飽和濃度算出ユニット、27…攪拌制御ユニット、29…堆積層 DESCRIPTION OF SYMBOLS 1 ... Culture apparatus, 3 ... Culture tank, 5 ... Stir paddle, 7 ... Drive motor, 9 ... Water thermometer, 9A ... Detection part, 11 ... Dissolved oxygen concentration sensor, 11A ... Detection part, 13 ... Photoquantometer, 15 ... Control 17, culture medium, 19, bottom surface, 21, CPU, 23, memory, 25, saturation concentration calculating unit, 27, stirring control unit, 29, deposited layer

Claims (13)

屋外に設置された培養槽中の培養液を攪拌する攪拌ユニットと、
前記培養液における溶存酸素濃度を検出する酸素濃度検出ユニットと、
前記培養液の温度を検出する温度検出ユニットと、
前記温度検出ユニットにより検出した温度での前記培養液における酸素の飽和濃度を算出する飽和濃度算出ユニットと、
前記酸素濃度検出ユニットにより検出した前記溶存酸素濃度が、前記飽和濃度算出ユニットにより算出した前記飽和濃度以下である期間のうち、少なくとも一部の停止期間において前記攪拌ユニットによる攪拌を停止する攪拌制御ユニットと、
を備える光合成微生物の培養装置。
An agitation unit for agitating the culture solution in a culture tank installed outdoors;
An oxygen concentration detection unit for detecting a dissolved oxygen concentration in the culture solution;
A temperature detection unit for detecting the temperature of the culture solution;
A saturation concentration calculation unit for calculating a saturation concentration of oxygen in the culture solution at a temperature detected by the temperature detection unit;
An agitation control unit that stops the agitation by the agitation unit during at least a part of the stop period of the period in which the dissolved oxygen concentration detected by the oxygen concentration detection unit is equal to or less than the saturation concentration calculated by the saturation concentration calculation unit. When,
An apparatus for culturing photosynthetic microorganisms.
請求項1に記載の光合成微生物の培養装置であって、
前記攪拌制御ユニットは、前記酸素濃度検出ユニットにより検出した前記溶存酸素濃度が、前記飽和濃度以上の値から前記飽和濃度にまで低下したとき、前記停止期間を開始する光合成微生物の培養装置。
A culture apparatus for photosynthetic microorganisms according to claim 1,
The agitation control unit is a culturing apparatus for photosynthetic microorganisms that starts the stop period when the dissolved oxygen concentration detected by the oxygen concentration detection unit decreases from a value equal to or higher than the saturation concentration to the saturation concentration.
請求項1又は2に記載の光合成微生物の培養装置であって、
前記攪拌制御ユニットは、前記停止期間の開始後、前記酸素濃度検出ユニットにより検出した前記溶存酸素濃度が上昇を始めた時点から、前記溶存酸素濃度が前記飽和濃度に達する時点までの間に、前記停止期間を終了する光合成微生物の培養装置。
A photosynthetic microorganism culturing apparatus according to claim 1 or 2,
The stirring control unit, after the start of the stop period, between the time when the dissolved oxygen concentration detected by the oxygen concentration detection unit starts to rise and the time when the dissolved oxygen concentration reaches the saturation concentration, An apparatus for culturing photosynthetic microorganisms that terminates the suspension period.
請求項1〜3のいずれか1項に記載の光合成微生物の培養装置であって、
日の入りを検出する日の入り検出ユニットを備え、
前記攪拌制御ユニットは、前記日の入り検出ユニットが日の入りを検出した後に、前記停止期間を開始する光合成微生物の培養装置。
A culture apparatus for photosynthetic microorganisms according to any one of claims 1 to 3,
It has a sunset detection unit that detects sunset,
The agitation control unit is an apparatus for culturing photosynthetic microorganisms that starts the stop period after the sunset detection unit detects sunset.
請求項1〜4のいずれか1項に記載の光合成微生物の培養装置であって、
日の出を検出する日の出検出ユニットを備え、
前記攪拌制御ユニットは、前記日の出検出ユニットが日の出を検出した後に、前記停止期間を終了する光合成微生物の培養装置。
A culture apparatus for photosynthetic microorganisms according to any one of claims 1 to 4,
It has a sunrise detection unit that detects sunrise,
The agitation control unit is a culture apparatus for photosynthetic microorganisms that ends the stop period after the sunrise detection unit detects sunrise.
屋外に設置された培養槽中の培養液を攪拌する光合成微生物の培養方法であって、
前記培養液における溶存酸素濃度が飽和濃度以下である期間のうち、少なくとも一部の停止期間において前記培養液の攪拌を停止する光合成微生物の培養方法。
A method for culturing photosynthetic microorganisms that stirs a culture solution in a culture tank installed outdoors,
A method for culturing photosynthetic microorganisms, wherein stirring of the culture solution is stopped during at least a part of the stop period of the period in which the dissolved oxygen concentration in the culture solution is equal to or lower than a saturated concentration.
請求項6に記載の光合成微生物の培養方法であって、
前記溶存酸素濃度が、前記飽和濃度以上の値から前記飽和濃度にまで低下したとき、前記停止期間を開始する光合成微生物の培養方法。
A method for culturing photosynthetic microorganisms according to claim 6,
The method for culturing photosynthetic microorganisms, wherein the suspension period is started when the dissolved oxygen concentration decreases from a value equal to or higher than the saturated concentration to the saturated concentration.
請求項6又は7に記載の光合成微生物の培養方法であって、
前記停止期間の開始後、前記溶存酸素濃度が上昇を始めた時点から、前記溶存酸素濃度が前記飽和濃度に達する時点までの間に、前記停止期間を終了する光合成微生物の培養方法。
A method for culturing photosynthetic microorganisms according to claim 6 or 7,
A method for cultivating photosynthetic microorganisms that ends the suspension period from the time when the dissolved oxygen concentration starts to rise to the time when the dissolved oxygen concentration reaches the saturation concentration after the suspension period starts.
請求項6〜8のいずれか1項に記載の光合成微生物の培養方法であって、
日の入りの後に、前記停止期間を開始する光合成微生物の培養方法。
A method for culturing photosynthetic microorganisms according to any one of claims 6 to 8,
A method for culturing photosynthetic microorganisms, wherein the suspension period starts after sunset.
請求項6〜9のいずれか1項に記載の光合成微生物の培養方法であって、
日の出の後に、前記停止期間を終了する光合成微生物の培養方法。
A method for culturing photosynthetic microorganisms according to any one of claims 6 to 9,
A method for culturing photosynthetic microorganisms, which ends the suspension period after sunrise.
請求項6〜10のいずれか1項に記載の光合成微生物の培養方法であって、
前記停止期間のとき、前記培養液における細胞濃度OD720が1.0以上である光合成微生物の培養方法。
A method for culturing photosynthetic microorganisms according to any one of claims 6 to 10,
The method for culturing photosynthetic microorganisms, wherein the cell concentration OD 720 in the culture solution is 1.0 or more during the suspension period.
請求項6〜11のいずれか1項に記載の光合成微生物の培養方法であって、
前記停止期間のときに生じる前記光合成微生物を含む堆積層中で前記溶存酸素濃度及び前記培養液の温度を測定し、
前記温度に基づき前記飽和濃度を算出する光合成微生物の培養方法。
A method for culturing photosynthetic microorganisms according to any one of claims 6 to 11,
Measuring the dissolved oxygen concentration and the temperature of the culture in the sedimentary layer containing the photosynthetic microorganisms generated during the suspension period;
A method for culturing photosynthetic microorganisms, wherein the saturation concentration is calculated based on the temperature.
請求項6〜12のいずれか1項に記載の光合成微生物の培養方法であって、
前記光合成微生物が緑藻綱又はトレボウキシア藻綱である光合成微生物の培養方法。
A method for culturing photosynthetic microorganisms according to any one of claims 6 to 12,
A method for culturing a photosynthetic microorganism, wherein the photosynthetic microorganism is a green alga class or a Trevoxia algae class.
JP2015208791A 2015-10-23 2015-10-23 Photosynthetic microorganism culturing apparatus and culturing method Active JP6740590B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2015208791A JP6740590B2 (en) 2015-10-23 2015-10-23 Photosynthetic microorganism culturing apparatus and culturing method

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2015208791A JP6740590B2 (en) 2015-10-23 2015-10-23 Photosynthetic microorganism culturing apparatus and culturing method

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2017079602A true JP2017079602A (en) 2017-05-18
JP6740590B2 JP6740590B2 (en) 2020-08-19

Family

ID=58712242

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2015208791A Active JP6740590B2 (en) 2015-10-23 2015-10-23 Photosynthetic microorganism culturing apparatus and culturing method

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP6740590B2 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2019047769A (en) * 2017-09-11 2019-03-28 エイブル株式会社 Production method of culture vessels, and production method of parts for culture vessels
JP7102597B1 (en) 2021-11-04 2022-07-19 三菱化工機株式会社 Microalgae culture equipment

Citations (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0690735A (en) * 1992-09-08 1994-04-05 Toshiro Sekine Cultivation apparatus for photosynthetic microorganism and its operation
JPH06181742A (en) * 1992-08-22 1994-07-05 Yukong Ltd Micro-organism activity measurement device
JPH0723771A (en) * 1993-07-05 1995-01-27 Rafuooles Eng Kk Apparatus for determination of photosynthesis rate of photosynthetic microorganism
JP2001231539A (en) * 2000-02-25 2001-08-28 Research Institute Of Innovative Technology For The Earth Device for photosynthesis culture and method for the culture
JP2002534997A (en) * 1999-01-29 2002-10-22 インスティテュト フィア ヒェミ ウント ビオゼンゾリック ミュンシュター エー ファオ Method, container, and device for observing metabolic activity of cultured cells in a solvent
JP2006067964A (en) * 2004-09-06 2006-03-16 Suntory Ltd Method for culturing fungal cell body
WO2011148981A1 (en) * 2010-05-26 2011-12-01 株式会社日立プラントテクノロジー Method for producing biofuel
JP2012023978A (en) * 2010-07-20 2012-02-09 Hitachi Plant Technologies Ltd Apparatus and method for culturing photosynthetic microorganism
JP2012044943A (en) * 2010-08-27 2012-03-08 Hitachi Plant Technologies Ltd Culture vessel and culture device for biological cell
JP2012080865A (en) * 2010-10-13 2012-04-26 Toshiro Sekine Method and apparatus for culturing photosynthetic microorganism
US20130095544A1 (en) * 2011-10-13 2013-04-18 Exxonmobile Research And Engineering Company Pond System for Algae Growth and Harvesting
JP2013085534A (en) * 2011-10-20 2013-05-13 Eco Renaissance Entec:Kk Method for culturing microalgae
JP2013153730A (en) * 2012-01-31 2013-08-15 Euglena Co Ltd Method for producing euglena having high wax ester content
WO2014144270A1 (en) * 2013-03-15 2014-09-18 Heliae Development, Llc Large scale mixotrophic production systems
JP2014226123A (en) * 2013-05-27 2014-12-08 株式会社デンソー Algae culture method
JP2015015918A (en) * 2013-07-10 2015-01-29 株式会社デンソー Novel microalgae

Patent Citations (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH06181742A (en) * 1992-08-22 1994-07-05 Yukong Ltd Micro-organism activity measurement device
JPH0690735A (en) * 1992-09-08 1994-04-05 Toshiro Sekine Cultivation apparatus for photosynthetic microorganism and its operation
JPH0723771A (en) * 1993-07-05 1995-01-27 Rafuooles Eng Kk Apparatus for determination of photosynthesis rate of photosynthetic microorganism
JP2002534997A (en) * 1999-01-29 2002-10-22 インスティテュト フィア ヒェミ ウント ビオゼンゾリック ミュンシュター エー ファオ Method, container, and device for observing metabolic activity of cultured cells in a solvent
JP2001231539A (en) * 2000-02-25 2001-08-28 Research Institute Of Innovative Technology For The Earth Device for photosynthesis culture and method for the culture
JP2006067964A (en) * 2004-09-06 2006-03-16 Suntory Ltd Method for culturing fungal cell body
WO2011148981A1 (en) * 2010-05-26 2011-12-01 株式会社日立プラントテクノロジー Method for producing biofuel
JP2012023978A (en) * 2010-07-20 2012-02-09 Hitachi Plant Technologies Ltd Apparatus and method for culturing photosynthetic microorganism
JP2012044943A (en) * 2010-08-27 2012-03-08 Hitachi Plant Technologies Ltd Culture vessel and culture device for biological cell
JP2012080865A (en) * 2010-10-13 2012-04-26 Toshiro Sekine Method and apparatus for culturing photosynthetic microorganism
US20130095544A1 (en) * 2011-10-13 2013-04-18 Exxonmobile Research And Engineering Company Pond System for Algae Growth and Harvesting
JP2013085534A (en) * 2011-10-20 2013-05-13 Eco Renaissance Entec:Kk Method for culturing microalgae
JP2013153730A (en) * 2012-01-31 2013-08-15 Euglena Co Ltd Method for producing euglena having high wax ester content
WO2014144270A1 (en) * 2013-03-15 2014-09-18 Heliae Development, Llc Large scale mixotrophic production systems
JP2014226123A (en) * 2013-05-27 2014-12-08 株式会社デンソー Algae culture method
JP2015015918A (en) * 2013-07-10 2015-01-29 株式会社デンソー Novel microalgae

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2019047769A (en) * 2017-09-11 2019-03-28 エイブル株式会社 Production method of culture vessels, and production method of parts for culture vessels
JP7102597B1 (en) 2021-11-04 2022-07-19 三菱化工機株式会社 Microalgae culture equipment
JP2023068902A (en) * 2021-11-04 2023-05-18 三菱化工機株式会社 Microalgae culture device

Also Published As

Publication number Publication date
JP6740590B2 (en) 2020-08-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sato et al. Integrated approach to understanding the onset and pathogenesis of black band disease in corals
Marchant et al. Denitrifying community in coastal sediments performs aerobic and anaerobic respiration simultaneously
Germerodt et al. Pervasive selection for cooperative cross-feeding in bacterial communities
Malkin et al. Natural occurrence of microbial sulphur oxidation by long-range electron transport in the seafloor
Mills et al. Oxygen requirements of the earliest animals
Van Dam et al. Effect of Morris water maze diameter on visual-spatial learning in different mouse strains
Arthur et al. Return customers: Foraging site fidelity and the effect of environmental variability in wide-ranging Antarctic fur seals
Hancke et al. Temperature effects on respiration and photosynthesis in three diatom-dominated benthic communities
Vitalini et al. Circadian rhythmicity mediated by temporal regulation of the activity of p38 MAPK
Jacob et al. Cooperation‐mediated plasticity in dispersal and colonization
Malkin et al. Rapid redox signal transmission by “cable bacteria” beneath a photosynthetic biofilm
Chennu et al. Effects of bioadvection by Arenicola marina on microphytobenthos in permeable sediments
CN203772829U (en) Device for laboratory for simulating nitrogen and phosphorus release of water body sediments
Berry et al. Microsatellite DNA analysis and hydrodynamic modelling reveal the extent of larval transport and gene flow between management zones in an exploited marine fish (Glaucosoma hebraicum)
JP6740590B2 (en) Photosynthetic microorganism culturing apparatus and culturing method
Petroff et al. Hydrodynamics and collective behavior of the tethered bacterium Thiovulum majus
Davis et al. Three-dimensional spatial cognition in a benthic fish, Corydoras aeneus
Cytryn et al. Sulfide-oxidizing activity and bacterial community structure in a fluidized bed reactor from a zero-discharge mariculture system
Petroff et al. Biofilm growth and fossil form
Decrouy et al. Sediment penetration depths of epi-and infaunal ostracods from Lake Geneva (Switzerland)
Hense et al. A theoretical investigation of the diatom cell size reduction–restitution cycle
Poniecka et al. Rapid development of anoxic niches in supraglacial ecosystems
Newby et al. Pioneer cells established by the [SWI+] prion can promote dispersal and out-crossing in yeast
Depetris et al. Morphogenesis and oxygen dynamics in phototrophic biofilms growing across a gradient of hydraulic conditions
Markov et al. Evolutionary role of phenotypic plasticity

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20181001

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20190709

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20190723

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20190905

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20200121

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20200305

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20200623

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20200706

R151 Written notification of patent or utility model registration

Ref document number: 6740590

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R151

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250