JP2016516205A - バイパシー医薬の調節効力の程度を測定する方法 - Google Patents

Abstract

本発明は、バイパシー医薬の調節効力の程度を測定する方法を含む。バイパシー医薬は、治療成分とホメオパシー成分とを含む医薬であって、前記ホメオパシー成分が、前記治療成分及び／又はその薬効に対して何らかの物理的、化学的、又は生物学的作用を有する医薬である。活性化増強型と相互作用する前に、治療型の少なくとも１つの特徴的なパラメータの分析測定を行う。治療型と活性化増強型との相互作用後にも同じ分析測定を行う。このデータを用いて、任意の調節された効力の存在が、活性化増強型中の分子型の存在によって引き起こされることを確認する。更に、活性化増強型と相互作用する前及び再度かかる相互作用後に治療型の少なくとも１つの特徴的なパラメータを請求の通り分析測定することは、活性化増強型に関連する調節効力の程度を相対無次元活性単位（放出活性）で定量するのに役立つ。【選択図】図１

Description

本願は、２０１３年３月１８日出願の露国特許出願第２０１３１１１９６１号に対する優先権を主張し、その全文を参照によって本明細書に援用する。

本発明は、医学の分野、具体的には、医薬品に関する。本発明は、薬物、特に、そのうちの少なくとも１つの成分がホメオパシー技術に従って調製されるバイパシー薬物の調節効力を、確実且つ再現可能に測定するために用いられる。

活性化増強型
ホメオパシー技術に従って調製される医薬は、担体（水又は水−アルコール溶媒）で複数回連続希釈して濃度を低下させるのと併せて各連続希釈物を振盪することを介して、ホメオパシー増強（活性化とも呼ばれる）によって調製されるものを含む。例えば、特許文献１〜４を参照。ホメオパシー増強による調製の結果、低用量又は超低用量の初期医薬を含有する医薬が得られ；１モル当たりの合計分子数がアボガドロ数（６．０２２×１０^２３モル^−１）によって与えられることに留意して、分子型の初期医薬１分子当たり担体が約１モル又は１モル超になるまで希釈を行ってよい。分子型という用語については、以下に更に定義する。固体の場合、希釈を研和（ｔｒｉｔｕｒａｔｉｏｎ）と呼ぶ。ホメオパシー技術を通して、担体は、調節効力を獲得することができ、この効力は、活性化増強型によって処理したときに出発物質の物理的、化学的、及び／又は生物学的性質を変化させる能力に現れる（特許文献５）。

用語「分子型」は、特定の化学物質の１以上の分子を示すために用いられる。したがって、分子型のアスピリンは、１分子のアセチルサリチル酸であってよく；分子型のアスピリン１モルは、６．０２２×１０^２３分子のアセチルサリチル酸からなり、重量は１８０．１５７グラムである。

用語「活性化増強型」は、物質の分子型を含む最初の溶液のホメオパシーポテンタイゼーション（ｐｏｔｅｎｔｉｚａｔｉｏｎ）の生成物を示すために用いられる。言い換えれば、物質の分子型、例えば、特定の抗体又は有機分子を含有する溶液を、ホメオパシー技術に従って繰り返し連続希釈し、得られた各溶液を複数回上下に振盪する。担体と呼ばれることが多い好ましい希釈剤は、水又は水−エチルアルコール混合物である。初期担体中の分子型の好ましい濃度は、約０．５ｍｇ／ｍＬ〜約５．０ｍｇ／ｍＬである。活性化増強型は、好ましくは、それぞれの直前の溶液１部を段階希釈することによって比例的に濃度を低下させる方法を用いて、ホメオパシー増強によって初期溶液から調製することができる。したがって、初期溶液１部を担体９９部（１００倍希釈の場合）と混合し、外部衝撃に供する。好ましくは、外部衝撃は、各希釈物を複数回上下に振盪する（ダイナマイゼーション）ことを含む。これにより、Ｃ１と称される第１の１００倍希釈物が得られる。第２の１００倍希釈物（Ｃ２）は、第１の１００倍希釈物（Ｃ１）１部と担体９９部とを混合することによって調製される。この手順を更に１０回繰り返して、第１２の１００倍希釈物Ｃ１２を調製する。通常、必要な希釈係数に至るまで、各後続の希釈物について別の容器を用いる。関連する希釈係数について同様の手順を行って、例えば、希釈物Ｃ３０、Ｃ５０、及びＣ２００を得る。この方法は、ホメオパシー分野において広く許容されている。例えば、記載する目的のために参照によって本明細書に援用される非特許文献１を参照。Ｃ１２、Ｃ３０、及びＣ２００は、それぞれ、抗体の一次マトリックス溶液（マザーチンキ）を１００^１２回、１００^３０回、及び１００^２００回希釈したものを表す。

好ましい活性化増強型は、多くの場合、その分子型の幾つかの１００倍希釈物の混合物である。例えば、Ｃ１２、Ｃ３０、及びＣ５０希釈物の混合物、又はＣ１２、Ｃ３０、及びＣ２００希釈物の混合物である。様々なホメオパシー希釈物の混合物を用いる場合、組成物の各成分、例えば、Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０、Ｃ２００は、最後から２番目の希釈物、即ち、それぞれＣ１１、Ｃ２９、及びＣ１９９が得られるまで上記手順に従って別々に調製し、次いで、混合組成に従って１つの容器内に各成分１部を添加し、必要な量、即ち、１００倍希釈の場合は９７部の担体と混合する。

ホメオパシー増強の例は、記載する目的のために全文が参照によって本明細書に援用される特許文献６及び７に記載されている。用語「活性化増強型」及び用語「超低用量」は、十分に支持的であり、元来互いに同義であることを意味する。

ホメオパシーバイパシー
特許文献８には、バイパシー医薬形態の概念が記載されている。バイパシー医薬製剤は、治療用量の医薬物質の治療効果と、前記医薬物質と化学的に同質であるが生物に対する作用機序が異なる活性化増強製剤の治療効果とを組み合わせたものである。言い換えれば、記載するバイパシー医薬製剤は、略その標準的な濃度の医薬物質の分子型と、同じ分子型に由来するが、存在するとしても超低濃度でしか存在しない分子型を有する活性化増強型とを組み合わせたものである。標準的な用量及び活性化増強型は、組み合わせるか又は略同時に投与すると、生物学的活性化を促進し、また、患者の個々の反応及び不所望の有害な副作用若しくは後作用のリスク低減とともに、活性医薬物質の治療効果増大に寄与する「全身適応」の形態の正の形態変化及び機能変化を誘導することが示されている。

更に、特許文献８に従って治療用量の医薬物質と活性化増強型とを「バイパシー的に」同時投与すると、（１）前記物質の用量を従来よりも少なくすることができ、（２）酵素「誘導」に起因する順応を防ぎ、（３）特定の器官及び全身の負のエネルギー及び刺激の中和により過量投与を防ぐ。特許文献８は、記載する目的のために全文が参照によって本明細書に援用される。

医薬の定性的／定量的評価
物質の生物学的活性を測定する方法は、例えば、特許文献９等、当技術分野において知られている。前記活性は、物質を添加する前後における試験サンプルに対する酵素応答の速度の比によって表される。「サンプル中の最適物質濃度」は、インビトロで測定される。しかし、この方法は、ホメオパシー技術に従って調製した医薬の効力の測定には適していない。

一定磁場に存在する活性化医薬に対してコヒーレント直線偏光を照射することによってホメオパシー医薬の効力を測定する方法が、当技術分野において知られている。試験媒体の様々な点からの、光バイアスモードにおけるその偏光成分強度の時間関連累積値を用いて、散乱伝搬放射線を測定する。分析を実施して、超低変動の伝搬強度の周波数スペクトルを計算し、データを標準的な試料と比較する。例えば、特許文献１０を参照。

また、ホメオパシー医薬又は活性化増強型の定性的測定の方法も知られている。前記方法は、試験媒体を標準的な試料で処理し、物理的及び化学的パラメータの変化を記録することを含む。測定されたホメオパシー医薬又は物質の増強型の構造及び／又は組成と構造及び／又は組成が略同様であるか又は同様の公知の物質のセットに加えて、これら公知の物質に対する抗体の構造及び／又は組成を用いる。ホメオパシー医薬又は物質の増強型の同定は、前記公知の物質に基づくものとし、ホメオパシー医薬又は物質の増強型を反応媒体に導入したときの適切な抗体との反応は、抗原−抗体反応に基づく免疫化学的分析方法を用いて記録される変化を伴う（特許文献１１）。

しかし、従来技術の方法は、薬物のアイデンティティ及び活性化増強型に関連する効力の確実且つ再現可能な定性的及び定量的測定を提供するものではない。これは、上記ホメオパシー技術に従って調製される活性化医薬を含む。

露国特許第２１９１６０１号明細書 露国特許第２１９２８８８号明細書 露国特許第２３３２２３６号明細書（英語バージョン：欧州特許第２ １２３ ３００号明細書） 露国特許第２４３８７０７号明細書（米国特許出願公開第２０１１／０００８４５２号明細書） 露国特許第２１６１９５５号明細書 米国特許第７，５７２，４４１号明細書 米国特許第７，５８２，２９４号明細書 米国特許第８，１７８，４９８号明細書 露国特許第２１８１８９０号明細書 露国特許第２１１２９７６号明細書 露国特許第２１９５６４８号明細書

Ｖ．Ｓｃｈｗａｂｅ"Ｈｏｍｅｏｐａｔｈｉｃ ｍｅｄｉｃｉｎｅｓ"，Ｍ．，１９６７，ｐ．１４−２９

物質の活性化増強型の活性を測定する方法であって、前記物質の活性化増強型を提供する工程と、前記活性化増強型中に前記物質の分子型が存在しないことを保証する工程と、前記物質の分子型を提供する工程と、好適な分析方法を用いて、前記物質の分子型の少なくとも１つの物理的パラメータ、化学的パラメータ、又は生物学的パラメータ（Ａ）を測定する工程と、前記物質の分子型を前記物質の活性化増強型で処理する工程と、前記分析方法を用いて、処理された前記物質の分子型の少なくとも１つの物理的パラメータ、化学的パラメータ、又は生物学的パラメータ（Ａｍ）を測定する工程とを含み、前記物質の活性化増強型の活性が、ＡとＡｍとの差の程度である方法。

前記方法は、式Ｘ＝Ｃ（Ａ−Ａ_Ｍ）／Ａに従って、物質の活性化増強型の活性を相対単位（Ｘ）で表すことを更に含む。

前記方法は、ｉ）第１の物質の活性化増強型で異なる物質の分子型を処理する工程と、ｉｉ）分析方法を用いて、前記異なる物質の分子型の少なくとも１つの物理的パラメータ、化学的パラメータ、又は生物学的パラメータ（Ｂ）を測定する工程と、ｉｉｉ）前記分析方法を用いて、処理された前記異なる物質の分子型の少なくとも１つの物理的パラメータ、化学的パラメータ、又は生物学的パラメータ（Ｂ_Ｍ）を測定して、前記方法の特異性を測定する工程とを更に含み、前記少なくとも１つの物理的パラメータ、化学的パラメータ、又は生物学的パラメータが、Ａ−Ａ_Ｍについては統計的に有意に変化するが、Ｂ−Ｂ_Ｍについては統計的に有意に変化しない場合に、前記方法が特異的であるとみなす。

分析方法が、高速液体クロマトグラフィーである前記方法。

分析方法が、免疫発酵分析である前記方法。

分析方法が、核磁気共鳴である前記方法。

物質の分子型が存在しないことを保証する工程が、前記物質の分子型を除去することを含む前記方法。

物質が、抗体である前記方法。

抗体が、ポリクローナル抗体である前記方法。

物質が、有機小分子である前記方法。

活性化増強型が、液体である前記方法。

活性化増強型が、固体担体に含浸している前記方法。

図１は、ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ＋ＡＣ及びＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ＋純水のＮＭＲスペクトルの重なりを示す。

本発明は、添付の特許請求の範囲と関連して定義される。特許請求の範囲に関して、関連する定義が上にもたらされ、更なる定義が以下にもたらされる。

「抗体」という用語は、本明細書で使用される場合、別の分子の特定の空間的な極性の構成に特異的に結合し、それにより、それと相補的であると定義される免疫グロブリンを意味するものとする。特許請求の範囲において列挙されている抗体は、天然、ポリクローナル又はモノクローナルであってよい完全な免疫グロブリン又はその断片を含んでよく、それらとしては、例えば、ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａ、ＩｇＧ２ｂ及びＩｇＧ３、ＩｇＭなどの種々のクラス及びアイソタイプを挙げることができる。その断片としては、Ｆａｂ、Ｆｖ及びＦ（ａｂ’）_２、Ｆａｂ’などを挙げることができる。単数形の「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｙ）」は、複数形の「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）」を含む。

「活性化増強型」又は「増強型」という用語は、抗体などの物質の分子型を含む最初の溶液のホメオパシーポテンタイゼーションの生成物を示すために使用される。抗体のホメオパシーポテンタイゼーションの例は、記載する目的のために全文が参照によって本明細書に援用される、米国特許第７，５７２，４４１号及び７，５８２，２９４号に記載されている。抗体は、３つの因子が存在すれば、「活性化増強」型又は「増強」型である。第１に、「活性化増強」型抗体は、ホメオパシーの技術分野では広く受け入れられている調製プロセスの生成物である。第２に、「活性化増強」型抗体は、現代薬理学において広く受け入れられている方法によって決定される生物活性を有さなければならない。第３に、「活性化増強」型抗体により示される生物活性は、ホメオパシーのプロセスの最終生成物に分子型抗体が存在することによっては説明することができない。

ヒト対象のホメオパシー治療に関してはかなりの量の議論がなされてきた。本発明は、「活性化増強」型抗体を得るために、受け入れられているホメオパシーのプロセスに依拠するが、本発明は、活性を証明するためにはヒト対象におけるホメオパシー単独に依拠するのではない。驚いたことに、本出願の発明者は、認められている薬理学的モデルにおいて、出発分子型抗体を連続して多数回希釈することから最終的に得られた溶媒が、標的希釈物中に分子型抗体の痕跡が存在することとは無関係の決定的な活性を有することを発見し、十分に実証した。また、特許請求された「活性化増強」型抗体は、その生物活性が、最初の出発溶液から残っている分子型抗体が存在することによっては説明することができない溶液又は固体調製物のみを包含する。言い換えれば、「活性化増強」型抗体は、最初の分子型抗体の痕跡を含有してよいことが意図されているが、連続して希釈した後に残った分子型抗体は非常に低濃度であるので、当業者は、認められている薬理学的モデルにおいて観察される生物活性が、いかなる程度の妥当性でも残りの分子型抗体に起因すると考えることができない。本発明は特定の理論に限定されるものではないが、本発明の「活性化増強」型抗体の生物活性は、最初の分子型抗体には起因しない。その中に含まれる分子型抗体の濃度が、認められている分析的な技法、例えば、キャピラリー電気泳動及び高速液体クロマトグラフィーなどの検出限界を下回る、液体又は固体の担体の「活性化増強」型抗体が好ましい。その中に含まれる分子型抗体の濃度がアボガトロ数（即ち、６．０２２×１０^２３個の担体分子当たり分子型１分子）未満である液体又は固体の形態の「活性化増強」型抗体が特に好ましい。

本発明の医薬組成物により、細菌感染症並びに急性及び慢性ウィルス感染症などの、感染性疾患の治療予防のために利用可能な調製物の集積が拡大する。

本発明のこの態様に係る組み合わせ医薬組成物は、液体の形態であっても固体の形態であってもよい。本発明に係る組み合わせ薬物の活性化増強成分を調製するための好ましい手順は、それぞれ１００倍単位ホメオパシー希釈物Ｃ１２、Ｃ３０、及びＣ５０に相当する、抗体の一次マトリックス溶液を１００^１２倍希釈、１００^３０倍希釈及び１００^５０倍希釈した３種の水−アルコール希釈物の混合物、又は、それぞれ１００倍単位ホメオパシー希釈物Ｃ１２、Ｃ３０及びＣ２００に相当する、抗体の一次マトリックス溶液を１００^１２倍希釈、１００^３０倍希釈及び１００^２００倍希釈した３種の水−アルコール希釈物の混合物を使用することである。固体剤形を調製するために、固体担体を、ホメオパシーのプロセスによって得られた所望の希釈物で処理する。本発明の組み合わせの固体単位剤形を得るために、担体塊に各希釈物を浸透させる。所望の組み合わせ剤形の調製には、いずれの浸透順序も好適である。

医薬組成物に含まれる活性化増強型が最初の分子型抗体から調製される場合、これは、ホメオパシーの技術分野で受け入れられているプロセスによって行われる。出発抗体は、公知のプロセスに従って、例えば、どちらも参照により本明細書に組み込まれる、Ｉｍｍｕｎｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ、Ｇ． Ｆｒｉｍｅｌ、Ｍ．、「Ｍｅｄｉｔｓｙｎａ」、１９８７年、９〜３３頁；「Ｈｕｍ． Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ． Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｄ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ， ３０ ｙｅａｒｓ ａｆｔｅｒ」、Ｌａｆｆｌｙ Ｅ．、Ｓｏｄｏｙｅｒ Ｒ．、２００５年、１４巻、１〜２号、３３〜５５頁に記載の通り調製されたモノクローナル抗体又はポリクローナル抗体であってよい。

モノクローナル抗体は、例えば、ハイブリドーマ技術によって得ることができる。このプロセスの最初の段階は、ポリクローナル抗血清の調製の過程ですでに開発された原理に基づく免疫化を含む。研究のさらなる段階は、同一の特異性を有する抗体のクローンを生成するハイブリッド細胞の作製を伴う。それらの別々の単離は、ポリクローナル抗血清調製物の場合と同じ方法を使用して実施する。

ポリクローナル抗体は、動物の能動免疫化によって得ることができる。この目的で、例えば、適切な動物（例えば、ウサギ）に、適切な抗原（サイトカイン及び受容体）の一連の注射を受けさせる。動物の免疫系により、対応する抗体が生成し、それを公知の様式で動物から採取する。この手順により、単一特異性の抗体が豊富な血清を調製することが可能になる。

所望であれば、抗体を含有する血清は、例えば、アフィニティークロマトグラフィー、塩析による分画、又はイオン交換クロマトグラフィーを使用することによって精製することができる。得られた精製抗体濃縮血清を、活性化増強型の抗体を調製するための出発材料として使用することができる。得られた、溶媒、好ましくは水又は水とエチルアルコールの混合物中の抗体の最初の溶液の好ましい濃度は、約０．５ｍｇ／ｍｌから約５．０ｍｇ／ｍｌまでに亘る。

ＣＤ４受容体に対するポリクローナル抗体からなる分子型を調製するための例示的な手順は、以下の通り説明することができる。血液試料を採取する７〜９日前に、所望の抗原を、ウサギに１〜３回静脈内注射して、ウサギの血流中のポリクローナル抗体のレベルを上昇させる。免疫化したら、抗体レベルを検査するために血液試料を取得する。一般には、可溶性抗原の免疫応答の最大レベルは、抗原を最初に注射した後４０〜６０日以内に実現される。第１の免疫化サイクルが達成されたら、ウサギを３０日のリハビリテーション期間におき、その後、更に１〜３回静脈内注射して再免疫化を実施する。所望の抗体を含有する抗血清を得るために、ウサギから、免疫化されたウサギの血液を採取し、５０ｍｌの遠心管に入れる。管の側面に形成された生成物である血餅を木べらで除去し、管の中心の血餅にロッドを入れる。次いで、血液を冷蔵庫に約４０℃の温度で一晩置く。次の日に、へらの上の血餅を除去し、残りの液体を１分当たり１３，０００回転で１０分間遠心分離する。上清の流体が標的抗血清である。得られた抗血清は一般には黄色である。抗血清に、２０％のＮａＮ_３（重量濃度）を最終濃度が０．０２％になるまで加え、使用する前に、−２０℃の温度で凍結した状態で保管する、又は、ＮａＮ_３なしで−７０℃の温度で保管する。ガンマインターフェロンに対する標的抗体を抗血清から分離するためには、以下の固相吸収の連続が適している：
ウサギの抗血清１０ｍｌを０．１５ＭのＮａＣｌで２倍希釈し、その後、６．２６ｇのＮａ_２ＳＯ_４を加え、混合し、４℃で１２〜１６時間インキュベートする。沈渣を遠心分離によって除去し、リン酸緩衝液１０ｍｌ中に希釈し、同じ緩衝液に対して外界温度で一晩にわたって透析する。沈渣を除去した後、溶液をリン酸緩衝液によって平衡させたＤＥＡＥ−セルロースカラムに適用する。溶出液の２８０ｎｍにおける光学濃度を測定することによって抗体画分を決定する。
単離された粗製の抗体を、アフィニティークロマトグラフィー法を使用し、得られた抗体を、クロマトグラフィー媒体の不溶性マトリックス上にあるＣＤ４抗原に付着させることによって精製し、その後濃縮した水性塩類溶液により溶出させる。
得られた緩衝溶液を、活性化増強型の抗体を調製するために用いるホメオパシー希釈プロセスのための最初の溶液として使用する。
ＣＤ４受容体に対する抗原精製ポリクローナルウサギ抗体の最初のマトリックス溶液の好ましい濃度は、０．５〜５．０ｍｇ／ｍｌであり、２．０〜３．０ｍｇ／ｍｌであることが好ましい。

好ましくは、固体単位剤形の医薬組成物は、活性化増強型抗体ＣＤ４受容体の水希釈物又は水−アルコール希釈物を予め染み込ませた薬学的に許容される担体の顆粒剤から調製する。固体剤形は、錠剤、カプセル剤、ロゼンジ、及びその他を含めた製薬技術分野で公知の任意の形態であってよい。不活性な医薬成分として、医薬品の製造において使用されるグルコース、スクロース、マルトース、デンプン、イソマルトース、イソマルト及び他の単糖、オリゴ糖及び多糖、並びに上記の不活性な医薬成分と、潤滑剤、崩壊剤、結合剤及び着色料を含めた他の薬学的に許容される賦形剤、例えば、イソマルト、クロスポビドン、シクラミン酸ナトリウム、サッカリンナトリウム、無水クエン酸など）との技術的混合物を使用することができる。好ましい担体は、ラクトース及びイソマルトである。薬剤剤形は、標準の製薬用賦形剤、例えば、結晶セルロース、ステアリン酸マグネシウム、及びクエン酸を更に含んでよい。

経口用の固体形態を調製するために、ラクトースの顆粒１００〜３００μｍを、ＣＤ４受容体に対する活性化増強型抗体の水溶液又は水−アルコール溶液に、ラクトース５ｋｇ又は１０ｋｇに対して抗体溶液１ｋｇ（１：５〜１：１０）の比率で浸透させる。浸透に影響を及ぼすために、ラクトース顆粒を、煮沸ベッドプラント（例えば、Ｈｕｔｔｌｉｎ ＧｍｂＨの「Ｈｕｔｔｌｉｎ Ｐｉｌｏｔｌａｂ」）中の流動煮沸ベッド中で染み込ませるための注水に曝露させ、その後、４０℃未満の加熱した空気の流れによって乾燥する。活性化増強型抗体を染み込ませた乾燥顆粒（１０〜３４重量部）の推定量をミキサーに入れ、２５〜４５重量部の「染み込ませていない」純粋なラクトース（処理効率を低下させることなく技術的なプロセスの費用を縮小し、それを単純化及び加速するために使用する）と、０．１〜１重量部のステアリン酸マグネシウム、及び３〜１０重量部の結晶セルロースと一緒に混合する。得られた錠剤集団を均一に混合し、（例えば、Ｋｏｒｓｃｈ−ＸＬ４００打錠機において）直接乾式プレスすることによって錠剤化して、１５０〜５００ｍｇ、好ましくは、３００ｍｇの丸剤を形成する。錠剤化した後、１００倍単位ホメオパシー希釈物Ｃ１２、Ｃ３０及びＣ５０の混合物の形態、又は１００倍単位ホメオパシー希釈物Ｃ１２、Ｃ３０及びＣ２００の混合物の形態で、ＣＤ４受容体に対する活性化増強型抗体の水−アルコール溶液（丸剤１粒当たり３．０〜６．０ｍｇ）を染み込ませた丸剤３００ｍｇを得る。

治療の目的で、本発明の組み合わせを、１日１回から１日４回まで、好ましくは１日２回、それぞれに１つ又は２つの組み合わせ単位剤形を含めて投与することが好ましい。

請求する発明によって求められる技術的結果は、ホメオパシー技術に従って調製される医薬、即ち、任意の実用的に検出可能な濃度の分子型を含有しない医薬を同定する方法の信頼性及び再現性を高めることである。更に、請求する発明は、医薬、即ち、活性化増強型に関連する薬学的調節効力を測定する方法の信頼性及び再現性を高めることを目的とする。これら方法は、インビトロ、即ち、体外で実施される。

本発明の技術的結果を達成する方法は、最終的に、活性化プロセス中に得られる活性化増強型に関連する調節効力の程度を測定することを目的とする。ホメオパシー技術によって調製される医薬、即ち、活性化増強型を得るための、分子型を含有する出発物質の加工は、担体で複数回連続希釈して、前記出発物質の濃度を低下させることを含む。

バイパシー医薬製剤において、活性化増強型の効力は、治療用量の物理的、化学的、及び／又は生物学的性質を変化させるか又は前記性質に作用する能力に現れる。即ち、請求する発明は、活性化増強型を添加した後に、分析方法を用いて治療用量の物理的パラメータの変化を測定することを含む。かかる分析方法は、治療用量中の活性化増強型の有無を測定することができる。前記分析方法は、活性化増強型と混合する前及び後に治療用量の１以上の物理的パラメータを測定する。活性化増強型と混合する前及び後の治療用量の効力の程度も、分析方法を用いて測定することができる。特徴的なパラメータの変化は、相対単位で提供され得る。

特徴的なパラメータの測定は、活性化増強型中に検出可能なレベルの分子型が存在することによって影響を受け得る。分子型の分子が検出可能なレベルで活性化増強型中に存在する場合、活性化増強型と治療用量とを混合する前に、これら分子を活性化増強型から除去する必要がある。サンプル中に分子型が存在しないとは、本発明主題において、前記分子型を検出できないことと同義である。活性化増強型から分子型を除去する／検出できなくする１つの手段は、例えば、ホメオパシー１００倍希釈等で更に希釈することである。別の手段は、分子篩を用いることである。分子篩は、正確且つ均一なサイズの非常に小さな穴を有する物質である。これら穴は、小さな分子は通過させるが、大きな分子はブロックすることができる程度に十分小さい。分子篩の例としては、活性炭及びシリカゲルが挙げられる。分子篩と同様に、担体は進行させるが、分子型は停止させるか又は更には減速させる傾向を有する任意の手順及び／又は装置を用いて分子型を除去するか又は検出できなくすることもできる。したがって、高圧液体クロマトグラフィー（「ＨＰＬＣ」）装置の固定相が分子型の進行を停止又は減速させるが、活性化増強型を含む移動相は、比較的スムーズに装置中を進むＨＰＬＣ等のプロセスを用いてもよい。固相に対する分子型の親和性等のパラメータに依存して、分子型は、少なくとも多少の公知の期間、ＨＰＬＣ装置の出力から完全に存在しなくなる。

更に、出発物質の分子が調節溶媒中に存在する場合、十分に確立された方法を用いて除去することができる。具体的には、出発物質として用いられるタンパク質の分子は、例えば、調節溶媒を加熱してタンパク質を変性させ、次いで、濾過することによって除去することができる。或いは、高濃度のアルカリ及びアルカリ土類金属の中性塩によってタンパク質を沈殿させ、次いで、濾過する脱塩方法を用いてもよい。他の可能な方法としては、電気透析、イオン交換樹脂を用いる脱イオン化、逆浸透、及びより大きな孔を通して予備的に濾過するか又は濾過しない限外濾過（分子濾過）が挙げられる。当技術分野において見出されている更なる例については、Ｂ．Ｍ．Ｓｔｅｗａｒｄ，Ｔｈｅ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｈｉｇｈ−ｐｕｒｉｔｙ ｗａｔｅｒ ｉｎ ｔｈｅ ｃｌｉｎｉｃａｌ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，ｖｏｌ．３１（１１），ｐｐ．６０５−６１１（２０００）；Ｊ．Ｇｒｉｍｍ，Ｄ．Ｂｅｓｓａｒａｂｏｖ，Ｒ．Ｓａｎｄｅｒｓｏｎ，Ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ ｅｌｅｃｔｒｏ−ａｓｓｉｓｔｅｄ ｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ ｗａｔｅｒ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ，Ｄｅｓａｌｉｎａｔｉｏｎ，ｖｏｌ．１１５（３），ｐｐ．２８５−２９４（１９９８）；Ｉ．Ａ．Ｋｏｚｎａｃｈｅｅｖ，ｅｔ ａｌ．，Ｗａｔｅｒ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｏｒｇａｎｉｃ ｉｎｆｕｓｉｏｎｓ ｉｎ ａ ｒｅｖｅｒｓｅ ｆｌｏｗ ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ ｃｏｍｂｕｓｔｉｏｎ ｒｅａｃｔｏｒ，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｈｅａｔ ａｎｄ Ｍａｓｓ Ｔｒａｎｓｆｅｒ，Ｖｏｌ．５４，ｐｐ．９３２−９３７（１９９８）；Ｌａｂｃｏｎｃｏ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ａ Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｗａｔｅｒ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ，Ａｎ Ｉｎｄｕｓｔｒｙ Ｓｅｒｖｉｃｅ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ（ｈｔｔｐ：／／ｂｉｏｒｅｓｅａｒｃｈｏｎｌｉｎｅ．ｃｏｍ／ｄｏｃ．ｍｖｃ／Ａ−Ｇｕｉｄｅ−ｔｏ−Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ−ＷａｔｅｒＰｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ）を参照。

請求する方法は、様々な定性的及び定量的測定方法を用いて実現することができるので、活性化増強型の存在及び効力の試験において高い感度及び再現性が確保される。定性的及び定量的方法としては、クロマトグラフィー質量分析等の質量分析、ガス液体クロマトグラフィー（「ＧＬＣ」）及び高速液体クロマトグラフィー（「ＨＰＬＣ」）、ＮＭＲ分光法、免疫酵素アッセイ（「ＩＥＡ」）が挙げられる。

クロマトグラフィーは、２つの不混和性相間の均一分布の差によって引き起こされる混合物の成分の分配に基づく。クロマトグラフィーにおける１つの相は、移動しない（吸着剤）が、別の相は、移動する（溶離剤）。高圧（４００ｂａｒ以下）及び溶媒スラリー（一般的に３μｍ〜５μｍ、現在では１．８μｍ以下）が、ＨＰＬＣの顕著な特徴である。ＨＰＬＣ分析を用いる定性的測定は、クロマトグラフィーピークの保持時間の評価に基づく。定量的測定は、ピーク面積の評価に基づく。

核磁気共鳴分光法（「ＮＭＲ分光法」）は、特定の原子核の磁性を利用する研究技術である。ＮＭＲは、含有されている原子又は分子の物理的及び化学的性質を測定する。ＮＭＲは、核磁気共鳴の現象に依拠し、分子の構造、運動、反応状態、及び化学的環境についての詳細な情報を提供することができる。分子中の原子の周りの分子内磁場は、共鳴周波数を変化させて、分子の電子構造の詳細が得られるようにする。ソフトウェアによってピークのシグナル強度を分析することができ、前記ピークは、最適緩和条件下において、その種のプロトンの数と相関する。シグナル強度の分析は、曲線化面積を計算する数学的方法である積分によって行われ、そのサイズは、面積に依存する。

免疫酵素アッセイ（「ＩＥＡ」）は、抗体又は免疫グロブリンの使用によって溶液中における巨大分子の存在又は濃度を測定する生物化学的試験である。免疫アッセイによって検出される巨大分子は、「アナライト」と呼ばれることが多い。理想的には、抗体は、アナライトに、また、アナライトのみに結合する。一旦アナライトに結合すると、抗体は、アナライトの単一分子の存在を示すシグナルを発する。このようなシグナルは、結合した際の光の光子の即時自然放出である場合もあり、又は何らかの「ポーリング」シグナルが発生した際のアナライトに結合している抗体による光の光子の放出である場合もある。同様に、アナライトに結合している抗体は、例えば、未結合抗体の除去及び残りの結合抗体の数の評価を可能にするＩＥＡの後続工程まで、未結合抗体とは異なる反応をし得る。更に、抗体は、電流が印加されたときに弾性変形する圧電性結晶に結合することもできる。交流電流（Ａ．Ｃ．）は、結晶において特徴的な周波数の定在波を発生させる。周波数は、結晶の弾性的性質に大きく依存し、この性質は、結晶に付着しているものによって影響を受ける。標的アナライトの抗体に対する結合により共鳴周波数が変化して、結合シグナルを与える。請求する方法を実現するために生物学的方法及び他の方法を適用可能である。例えば、Ｚｏｌｏｔｏｖ，Ｙｕ．Ａ．（編），Ｂａｓｉｃｓ ｏｆ ａｎａｌｙｔｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ（上下巻），Ｔｅｘｔｂｏｏｋ ｆｏｒ ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｉｅｓ，第３版（２００４）；Ｖａｓｉｌｙｅｖ，Ｖ．Ｐ．，Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，（１９８９）；Ｏｔｔｏ，Ｍ．，Ｕｐ−ｔｏ−ｄａｔｅ ｍｅｔｈｏｄｓ ｏｆ ａｎａｌｙｔｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，（２００３）を参照。

活性化増強担体の出発物質の分子を検出するための分析方法と、活性化増強担体と相互作用する前及び後に出発物質の少なくとも１つの特徴的なパラメータを分析方法によって測定することとを併用して、発明者らは、以下のことを実証（立証）する。第１に、担体に関連する調節活性は、出発物質の分子の存在によって説明されるものではなく、また、前記担体の物理的、化学的、及び／又は生物学的性質は、出発物質の物理的、化学的、及び／又は生物学的性質とは異なる。第２に、活性化増強担体は、出発物質を用いることによって得られ、この場合、活性化増強型は、出発物質の技術的処理中に使用され、前記担体を使用して前記出発物質の濃度を複数回段階的に低下させることによって代表される手順によって確保される。最後に、インビトロにおける証拠に基づいて、活性化増強担体を用いて調製した製剤についての信憑性及びアイデンティティを立証する。即ち、治療濃度の分子型から始めて、担体を用いて分子型の濃度を複数回段階的に低下させることによって活性化増強型が作製される。更に、活性化増強型と相互作用する前及び再度かかる相互作用後に治療型の少なくとも１つの特徴的なパラメータを請求の通り分析測定することは、活性化増強型に関連する調節効力の程度を相対無次元活性単位（放出活性）で定量するのに役立つ。

活性化増強型に関する調節効力の程度は、相対活性単位（放出活性）で表される特徴的なパラメータの定量的変化に基づいて測定される、式（１）：
Ｘ＝Ｃ（Ａ−Ａ_Ｍ）／Ａ （１）
Ｘは、活性単位（ＡＵ）数であり；
Ｃは、出発物質の初期の物理的、化学的、及び／又は生物学的性質を反映する特徴的なパラメータを測定するために用いられる分析方法、並びに特徴的なパラメータ値に付随する比例性無次元定数である。具体的には、例えば、Ｃ＝１０^ｋ（式中、ｋは、１、２、３等の数列の整数である）であり；
Ａは、活性化増強型（技術的に処理された担体）と相互作用する前の出発物質の特徴的なパラメータの値であり；
Ａ_Ｍは、活性化増強型（技術的に処理された担体）と相互作用した後の出発物質の同じ特徴的なパラメータの値である。

請求する方法は、様々な定性的及び定量的測定方法を用いて実現することができるので、分光法、特に質量分析、クロマトグラフィー質量分析（ガス液体クロマトグラフィー（「ＧＬＣ」））、及び２つの不混和性相間の均一分布の差によって引き起こされる混合物の成分の分離に基づく高速液体クロマトグラフィー（「ＨＰＬＣ」）等の超低濃度物質の試験において高い感度及び再現性が確保される。クロマトグラフィーにおける１つの相は、移動しない（吸着剤）が、別の相は、移動する（溶離剤）。高圧（４００ｂａｒ以下）及び溶媒スラリー（一般的に３μｍ〜５μｍ、現在では１．８μｍ以下）が、ＨＰＬＣの顕著な特徴である。ＨＰＬＣ分析を用いる定性的測定は、クロマトグラフィーピークの保持時間の評価に基づく。定量的測定は、ピーク面積の評価に基づく。

請求する方法の実現において用いられる別の技術は、特定の原子核の磁性を利用する核磁気共鳴分光法（「ＮＭＲ分光法」）である。ＮＭＲは、含有されている原子又は分子の物理的及び化学的性質を測定する。それは、核磁気モーメントの再配向によって誘導される周波数ν（所謂、ＮＭＲ周波数）における外部磁場に置かれたときのゼロスピン核を有する物質による電磁エネルギーの共鳴吸収及び放出に依拠し、この場合、所謂化学シフトが特徴的なパラメータである。更に、上述の技術は、免疫酵素アッセイ（ＩＥＡ）、その表面上における免疫複合体の形成及び破壊に起因する受容体で被覆された層の重量の増加又は減少によって生じる圧電共振子（Δｆ）の共鳴周波数の差によってその分析シグナルが表される圧電性イムノセンサの使用を含む。請求する方法を実現するために生物学的方法及び他の方法を適用可能である（例えば、Ｚｏｌｏｔｏｖ，Ｙｕ．Ａ．（編），Ｂａｓｉｃｓ ｏｆ ａｎａｌｙｔｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ（上下巻），Ｔｅｘｔｂｏｏｋ ｆｏｒ ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｉｅｓ，改訂増補第３版：Ｖｙｓｓｈａｙａ ｓｈｋｏｌａ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒ（２００４）；Ｖａｓｉｌｙｅｖ，Ｖ．Ｐ．，Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，（１９８９）；Ｏｔｔｏ，Ｍ．，Ｕｐ−ｔｏ−ｄａｔｅ ｍｅｔｈｏｄｓ ｏｆ ａｎａｌｙｔｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，（２００３）を参照）。

更に、調節溶媒中に出発物質の分子が存在する場合、十分に確立された方法を用いて除去することができる。具体的には、出発物質として用いられるタンパク質の分子は、例えば、調節溶媒を加熱してタンパク質を変性させ、次いで、濾過することによって除去することができる。或いは、高濃度のアルカリ及びアルカリ土類金属の中性塩によってタンパク質を沈殿させ、次いで、濾過する脱塩方法を用いてもよい。他の可能な方法としては、電気透析、イオン交換樹脂を用いる脱イオン化、逆浸透、及びより大きな孔を通して予備的に濾過するか又は濾過しない限外濾過（分子濾過）が挙げられる。当技術分野において見出されている更なる例については、Ｂ．Ｍ． Ｓｔｅｗａｒｄ，Ｔｈｅ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｈｉｇｈ−ｐｕｒｉｔｙ ｗａｔｅｒ ｉｎ ｔｈｅ ｃｌｉｎｉｃａｌ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ／／Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ．２０００．Ｖ．３１（１１）Ｐ．６０５−６１１；Ｊ．Ｇｒｉｍｍ，Ｄ．Ｂｅｓｓａｒａｂｏｖ，Ｒ．Ｓａｎｄｅｒｓｏｎ．Ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ ｅｌｅｃｔｒｏ−ａｓｓｉｓｔｅｄ ｍｅｔｈｏｄｓ ｆｏｒ ｗａｔｅｒ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ／／Ｄｅｓａｌｉｎａｔｉｏｎ．１９９８．Ｖ．１１５（３）Ｐ．２８５−２９４；Ｉ．Ａ． Ｋｏｚｎａｃｈｅｅｖ，ｅｔ ａｌ．，Ｗａｔｅｒ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｏｒｇａｎｉｃ ｉｎｃｌｕｓｉｏｎｓ ｉｎ ａ ｒｅｖｅｒｓｅ ｆｌｏｗ ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ ｃｏｍｂｕｓｔｉｏｎ ｒｅａｃｔｏｒ／／Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｈｅａｔ ａｎｄ Ｍａｓｓ Ｔｒａｎｓｆｅｒ １９９８．５４ Ｐ．９３２−９３７；Ｌａｂｃｏｎｃｏ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ａ ｇｕｉｄｅ ｔｏ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｗａｔｅｒ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ，Ａｎ Ｉｎｄｕｓｔｒｙ Ｓｅｒｖｉｃｅ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ．ｈｔｔｐ：／／ｂｉｏｒｅｓｅａｒｃｈｏｎｌｉｎｅ．ｃｏｍ／ｄｏｃ．ｍｖｃ／Ａ−Ｇｕｉｄｅ−ｔｏ−Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ−ＷａｔｅｒＰｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ
を参照。

活性化増強担体中の出発物質の分子を検出するための分析方法と、活性化増強担体と相互作用する前及び後に出発物質の少なくとも１つの特徴的なパラメータを分析方法によって測定することとを併用して、発明者らは、以下のことを実証（立証）する。第１に、担体に関連する調節活性は、出発物質の分子の存在によって説明されるものではなく、また、前記担体の物理化学的、及び／又は生物学的性質は、出発物質の物理化学的、及び／又は生物学的性質とは異なる。第２に、活性化増強担体は、出発物質を用いることによって得られ、この場合、活性化増強型は、出発物質の技術的処理中に使用される手順、即ち、前記担体を使用して前記出発物質の濃度を複数回段階的に低下させることによって確保される。最後に、インビトロにおける証拠に基づいて、活性化増強担体を用いて調製した製剤について信憑性及びアイデンティティを立証する。

更に、活性化増強担体と相互作用する前及び後に出発物質の少なくとも１つの特徴的なパラメータを請求の通り分析測定することは、担体に関連する調節効力の程度を相対無次元活性単位（放出活性）で定量するのに役立つ。

担体に関連する調節効力の程度を測定するために、以下の連続手順を実施する：
ａ． 担体を用いて濃度を段階的に低下させる複数の段階によって、出発物質の技術的加工（処理）の過程で増強される調節活性を有する担体を調製する工程であって、後者が、前記出発物質の分子型を含有しない工程；
ｂ． 工程ａで得られる溶液中に存在する物質の特異性を試験する工程であって、
ｉ． 工程ａ．）に記載した担体で前記出発物質の分子型を処理することと、
ｉｉ． 好ましくは、工程ａ．）に記載した担体で異なる物質及び／又は溶媒の分子型を処理することと、
ｉｉｉ． 前記出発物質の分子型の少なくとも１つの物理化学的及び／又は生物学的に特徴的なパラメータ（Ａ）、及び段落ｂ．）ｉ．）下における前記組み合わせ（Ａ_Ｍ）を分析的に測定する工程であって、段落ｂ．）ｉ．）の実現による前記特徴的なパラメータの変化が、統計的に有意である（且つ、段落ｂ．）ｉｉ．）の実現による変化が統計的に有意ではない）場合、前記担体は、効果を特異的に調節する−前記出発物質の物理化学的及び／又は生物学的性質を調節する能力が、その物質に特異的であるとみなすこととを含む工程；
ｃ． 等式（１）を用いて担体に関連する調節効力を相対活性単位で測定する工程：
Ｘ＝Ｃ（Ａ−Ａ_Ｍ）／Ａ （１）
Ｘ、Ｃ、Ａ、及びＡ_Ｍは、既に定義した通りであり、Ｃは、好ましくは、１００又は１，０００に等しい。

本発明を以下の実施例によって説明するが、前記実施例は、如何なる形であれ本発明の範囲を限定するものではない。

実施例で一般的に用いられる略記：
Ａｂ − 抗体
ＥＬＩＳＡ又はＩＥＡ − 固相酵素イムノアッセイ
ＯＤ − 光学密度
ＩＦＮ−ガンマ − インターフェロンガンマ
ＨＰＬＣ − 高速液体クロマトグラフィー
ＡＣ − 活性化増強型
ＰＢＳ − リン酸緩衝生理食塩水
ＡＰＢＳ − ホメオパシー技術に従って活性化されたリン酸緩衝生理食塩水
ＩｇＧ − インターフェロン−ガンマ（「ＩＦＮ−ガンマ」）に対する抗体を含む免疫グロブリンＧ
Ａ水 − ホメオパシー技術に従って活性化された水
ＵＶ／Ｖｉｓ − 紫外・可視分光法。

実施例１
実施例１の目的は、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの活性化増強型の調節効力の程度を測定することにある。ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの母液から始めて、複数回中間で振盪しながら複数回連続希釈して出発物質の濃度を低下させることによって、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの活性化増強型を調製した。希釈剤、即ち、担体は、水−アルコール溶液であった。分子型を、１００^１２部、１００^３０部、及び１００^５０部の担体で希釈した。即ち、１００倍ホメオパシー希釈物Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０を形成した。出発物質、即ち、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの物理的、化学的、及び／又は生物学的性質の変化を測定するために、物質の体積を特徴的なパラメータとして用いながら、ＨＰＬＣを適用した。

物質の定量的測定は、ＨＰＬＣを用いたピーク面積値の評価に基づいていた。ＩｇＧ＋ＡＣの混合物を試験サンプルとして選択した。対照サンプルとして、以下の混合物を用いた：ＩｇＧ＋Ａ水、ＩｇＧ＋水、及びＩｇＧ＋ＡＰＢＳ。

ＩｇＧ（５０ｍｇ／ｍＬ）及びＡＣ（又はＡ水又はＡＰＢＳ又は水）を１：２（ｖ／ｖ）の比で混合することによって、試験サンプルを調製した。得られた混合物を、酢酸セルロースメンブレンフィルタ（孔径−０．４５μｍ）を用いて濾過した。

勾配モードのＨＰＬＣ分離を用いて分析を実施した。アニオン交換カラムを固定相として適用し；２相（相１−アセトニトリル、相２−リン酸水素カリウム溶液及び塩化カリウム溶液）の混合物を移動相として用いた。検出目的のためにＵＶ−Ｖｉｓ検出機を適用した（波長−２８０ｎｍ）。

各分析前及び後にＵＶ−Ｖｉｓ検出機のベースラインの較正及びゼロ設定を実施した。

調製した混合物をバイアル瓶に移し、オートサンプラーを用いてクロマトグラフィーシステムに導入した。各試験サンプルの分析時間は、約２３分間であった。

分析が完了したら、分析の開始時と同様の移動相勾配条件下で一定流速にてクロマトグラフカラムの平衡化を実行した。

試験サンプルによって発せられるシグナルをクロマトグラムピークの形態で記録した。これらは、ＩｇＧの軽鎖及び重鎖に対応するはずである。分光ピークの第１の最大値（Ｍａｘ−１は、免疫グロブリンの重鎖に対応する）及び第２の最大値（Ｍａｘ−２は、免疫グロブリンの軽鎖に対応する）の面積を計算した。この分析の結果を表１に示す。

調節効力の程度は、等式（１）を用いて計算する：
（Ｘ＝Ｃ｜Ａ−Ａ_Ｍ｜／Ａ）
式中、Ｃ＝１００である。等式（１）をＩｇＧ＋ＡＣサンプル及びＩｇＧ＋水サンプルに適用すると、以下の結果が得られる：
（Ｍａｘ−１）Ａ＝３０２７０．２；Ａ_м＝１７２０７．９；Ｘ＝４３．２ＡＵ；
（Ｍａｘ−２）Ａ＝５５７７．４；Ａ_м＝４５８６０．６；Ｘ＝７２２．３ＡＵ。

この実験は、ＩＦＮ−ガンマに対するＡＣが、対照と比べて、ＩｇＧピークの第１の最大値の面積（Ｍａｘ−１は、免疫グロブリンの重鎖に対応する）を減少させ、ＩｇＧピークの第２の最大値の面積（Ｍａｘ−２は、免疫グロブリンの軽鎖に対応する）を増加させることを示す。

実施例１の結果は、以下の結論を支持する：
１． Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０ホメオパシー希釈物を調製するために用いる技術によって、これら３つのホメオパシー希釈物の混合物を含む活性化増強型は、先験的に、出発物質の分子を含有しない；
２． 活性化増強型によって処理された出発物質（ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂ）の物理的及び化学的性質の変化は、前記活性化増強型が出発物質（ＩＦＮ−ガンマ）に基づいて調製されたことの確実な証拠を提示する；
３． 活性化増強型によって処理された出発物質（ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂ）の物理的及び化学的性質の変化は、前記活性化増強型に関連する調節効力の程度をはっきりと確認し、ＨＰＬＣを用いることによって明らかになった前記調節効力を等式（１）に従って無次元活性単位で表す機会を提供する（表１）。

実施例２
実施例２の目的は、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの活性化増強型の調節効力の程度を測定することにある。ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの母液から始めて、複数回中間で振盪しながら複数回連続希釈して出発物質の濃度を低下させることによって、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの活性化増強型を調製した。希釈剤、即ち、担体は、水−アルコール溶液であった。分子型を、１００^１２部、１００^３０部、及び１００^５０部の担体で希釈した。即ち、１００倍ホメオパシー希釈物Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０を形成した。出発物質、即ち、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの物理的、化学的、及び／又は生物学的性質の変化を測定するために、物質の体積を特徴的なパラメータとして用いながら、ＨＰＬＣを適用した。

物質の定量的測定は、ＨＰＬＣを用いたピーク面積値の評価に基づいていた。ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ＋ＡＣの混合物を試験サンプルとして選択した。対照サンプルとして、以下の混合物を用いた：ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ＋Ａ水、ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ＋水、及びＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ＋ＡＰＢＳ。

ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ及びＡＣ（又はＡ水又はＡＰＢＳ又は水）を１：１（ｖ／ｖ）の比で混合することによって、試験サンプルを調製した。得られた混合物を、１５秒間ボルテックスし、室温で１８時間インキュベートし、次いで、ＡＣ、Ａ水、ＡＰＢＳ、又は水を添加した。

勾配モードのＨＰＬＣ分離を用いて分析を実施した。逆相オクタデシルシランカラムを固定相として適用し；２相（相１−酢酸及びトリフルオロ酢酸を添加したアセトニトリル、相２−メチル酸及びトリフルオロ酢酸を含む脱イオン水）の混合物を移動相として用いた。検出目的のためにＵＶ−Ｖｉｓ検出機を適用した（波長−２８０ｎｍ）。

各分析前及び後にＵＶ−Ｖｉｓ検出機のベースラインの較正及びゼロ設定を実施した。

調製した混合物をバイアル瓶に移し、オートサンプラーを用いてクロマトグラフィーシステムに導入した。各試験サンプルの分析時間は、約１５分間であった。

分析が完了したら、分析の開始時と同様の移動相勾配条件下で一定流速にてクロマトグラフカラムの平衡化を実行した。

試験サンプルによって発せられるシグナルを対応するタンパク質のクロマトグラムピークの形態で記録した。分光ピークの面積を計算した。この分析の結果を表２に示す。

ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂの活性化増強型が、対照と比べて、ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂのピーク面積を減少させることが示された。

実施例１の結果は、以下の結論を支持する：
１． Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０ホメオパシー希釈物を調製するために用いる技術によって、これら３つのホメオパシー希釈物の混合物を含む活性化増強型は、先験的に、出発物質の分子を含有しない；
２． 活性化増強型によって処理された出発物質（ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂ）の物理的及び化学的性質の変化は、意義深いことに、前記活性化増強型が出発物質（インターフェロン−ガンマに対するＡｂ（抗ＩＦＮ−ガンマ））に基づいて調製されたことを検証する；
３． 活性化増強型によって処理された出発物質（ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂ）の物理的及び化学的性質の変化は、前記活性化増強型に関連する調節効力の程度をはっきりと確認し、ＨＰＬＣを用いることによって明らかになった前記調節効力を等式（１）に従って無次元活性単位で表す機会を提供する（表２）。

実施例３
実施例３の目的は、ジクロフェナクナトリウムの活性化増強型の調節効力の程度を測定することにある。ジクロフェナクナトリウムの母液から始めて、複数回中間で振盪しながら複数回連続希釈して出発物質の濃度を低下させることによって、ジクロフェナクナトリウムの活性化増強型を調製した。希釈剤、即ち、担体は、水−アルコール溶液であった。分子型を、１００^１２部、１００^３０部、及び１００^２００部の担体で希釈した。即ち、１００倍ホメオパシー希釈物Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ２００を形成した。出発物質、即ち、ジクロフェナクナトリウムの物理的、化学的、及び／又は生物学的性質の変化を測定するために、物質の体積を特徴的なパラメータとして用いながら、ＨＰＬＣを適用した。

物質の定量的測定は、ＨＰＬＣを用いたピーク面積値の評価に基づいていた。ジクロフェナク＋ＡＣで飽和させたラクトースの混合物を試験サンプルとして選択した。対照サンプルとして、以下の混合物を用いた：ジクロフェナク＋ＡＰＢＳで飽和させたラクトース、及びジクロフェナク＋不飽和ラクトース。

試験サンプルは、ジクロフェナクナトリウム粉末、不飽和ラクトース、及びＡＣ（ＡＰＢＳ）で飽和させたラクトースの形態で提示した。粉末を蒸留水に溶解させた。秤量したジクロフェナクの量の秤量したラクトースの量に対する比は、１：３であり；溶解に用いた水の体積は、同一であった。調製した溶液を、１：３（ｖ／ｖ）の比でジクロフェナクナトリウム溶液と混合した。前記溶液を、１５秒間バイアル瓶を手で上下に振盪することによって混合した。再蒸留水を用いて溶液の混合物を希釈して、最終濃度を０．３μｇ／ｍＬにした。フラスコを上下に振盪することによって１５秒間溶液を手動で撹拌した。得られた混合物を室温で１８時間暗所にてインキュベートした。

勾配モードのＨＰＬＣ分離を用いて分析を実施した。シリカゲルを充填し、オクタデシルで修飾したカラムを固定相として適用し；２相（相１−ギ酸及びトリフルオロ酢酸を添加した蒸留水、相２−ギ酸及びトリフルオロ酢酸を含むアセトニトリル）の混合物を移動相として用いた。検出目的のためにＵＶ−Ｖｉｓ検出機を適用した（波長−２７６ｎｍ）。

各分析前にＵＶ−Ｖｉｓ検出機のベースラインの較正及びゼロ設定を実施した。

調製した混合物をバイアル瓶に移し、オートサンプラーを用いてクロマトグラフィーシステムに導入した。各試験サンプルの分析時間は、約１５分間であった。

分析が完了したら、分析の開始時と同様の移動相勾配条件下で一定流速にてクロマトグラフカラムの平衡化を実行した。

試験サンプルによって発せられるシグナルをジクロフェナクに対応するクロマトグラムピークの形態で記録した。分光ピークの面積を計算した。この分析の結果を表３に示す（検出は、２７６ｎｍで実施した）。

ＡＣと混合したジクロフェナクのピーク面積が、対照、即ち、不飽和ラクトース及びＡＰＢＳで飽和させたラクトースと混合したジクロフェナクのピーク面積よりも大きいことが示された。

実施例３の結果は、以下の結論を支持する：
１． Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０ホメオパシー希釈物を調製するために用いる技術によって、これら３つのホメオパシー希釈物の混合物を含む活性化増強型は、先験的に、出発物質の分子を含有しない；
２． ジクロフェナクの活性化増強型によって処理された出発物質（ジクロフェナク）の物理的及び化学的性質の変化は、意義深いことに、前記活性化増強型が出発物質（ジクロフェナク）に基づいて調製されたことを検証する；
３． ジクロフェナクの活性化増強型によって処理された出発物質（ジクロフェナク）の物理的及び化学的性質の変化は、前記活性化増強型に関連する調節効力の程度をはっきりと確認し、ＨＰＬＣを用いることによって明らかになった前記調節効力を等式（１）に従って無次元活性単位で表す機会を提供する（表３）。

実施例４
実施例４の目的は、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの活性化増強型の調節効力の程度を測定することにある。ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの母液から始めて、複数回中間で振盪しながら複数回連続希釈して出発物質の濃度を低下させることによって、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの活性化増強型を調製した。希釈剤、即ち、担体は、水−アルコール溶液であった。分子型を、１００^１２部、１００^３０部、及び１００^５０部の担体で希釈した。即ち、１００倍ホメオパシー希釈物Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０を形成した。出発物質、即ち、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの物理的、化学的、及び／又は生物学的性質の変化を測定するために、抗原−抗体複合体の数の変化を特徴的なパラメータとして用いながら、ＥＬＩＳＡを適用した。

分析を実施する前に、ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ及びＡＣ（又はプラセボとして用いられるＡＰＢＳ）を４℃で２４時間プレインキュベートし；インキュベート中にＩＦＮ−ガンマに対するＡｂが、溶液中に含有されているＩＦＮ−ガンマと結合した。インキュベート後、固相抗原表面を有するＥＬＩＳＡプレートに各サンプルを曝露した。ＩＦＮ−ガンマに既に結合しているＩＦＮ−ガンマに対するＡｂは、ＥＬＩＳＡプレートの固相に吸着された。ＩＦＮ−ガンマに結合していないＩＦＮ−ガンマに対するＡｂは、インキュベート後も溶液中に残っていた。

得られたサンプルをＥＬＩＳＡ手順に従って試験した。クロモゲン溶液の吸光反応（酵素のバックグラウンドにおける色の変化は、基質の分解を誘導した）を考慮しながら、プレートのウェル内における溶液の光学密度を測定することによって、固相に吸着している形成された抗原−抗体複合体の数を測定した。溶液の吸光を測定するために、単一波モードの４９０ｎｍの波長における分光測光技術を適用した。プレート上で形成される抗原−抗体複合体が多いほど、溶液中でＩＦＮ−ガンマに結合するＩＦＮ−ガンマに対するＡｂが少なくなった。

ＡＣと共にインキュベートした２つの類似の実験についてのサンプルの平均ＯＤは、０．６０３±０．０７５（ＡＣ又はプラセボを抗原及びＩＦＮ−ガンマに対するＡｂと直ちに混合し、２４時間インキュベートした場合）又は０．２５１±０．０２７（ＡＣ又はプラセボをＩＦＮ−ガンマに対するＡｂと混合し、４０分間インキュベートしている間に抗原を添加し、２４時間インキュベートした場合）であったが、一方、ＡＰＢＳと共にインキュベートしたＩＦＮ−ガンマについての光学密度値は、それぞれ、０．８１２±０．０８４及び０．３９１±０．０２３であった。

この実験は、ＡＣ水溶液が、対照に比べて、溶液中の抗原−抗体複合体の数を減少させることを示し、これにより、ヒトインターフェロン−ガンマに対するウサギ抗体（ＩＦＮγに対するＡｂ）を含有する薬物のアイデンティティが確認された。

実施例４の結果は、以下の結論を支持する：
１． Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０ホメオパシー希釈物を調製するために用いる技術によって、これら３つのホメオパシー希釈物の混合物を含む活性化増強型は、先験的に、出発物質の分子を含有しない；
２． 活性化増強型によって処理された出発物質（ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂ）の物理的及び化学的性質の変化は、意義深いことに、前記活性化増強型が出発物質（インターフェロン−ガンマに対するＡｂ（抗ＩＦＮ−ガンマ））に基づいて調製されたことを検証する；
３． 活性化増強型によって処理された出発物質（ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂ）の物理的及び化学的性質の変化は、前記活性化増強型に関連する調節効力の程度をはっきりと確認し、ＨＰＬＣを用いることによって明らかになった前記調節効力を等式（１）に従って無次元活性単位で表す機会を提供する（表２）。（プラセボと比較したときの）等式（１）を用いて計算した調節効力の程度は、２５．７ＡＵ〜３５．８ＡＵであった。

実施例５
実施例５の目的は、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの活性化増強型の調節効力の程度を測定することにある。ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの母液から始めて、複数回中間で振盪しながら複数回連続希釈して出発物質の濃度を低下させることによって、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの活性化増強型を調製した。希釈剤、即ち、担体は、水−アルコール溶液であった。分子型を、１００^１２部、１００^３０部、及び１００^５０部の担体で希釈した。即ち、１００倍ホメオパシー希釈物Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０を形成した。出発物質、即ち、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの物理的、化学的、及び／又は生物学的性質の変化を測定するために、圧電性イムノセンサの表面上に吸着している抗体の、活性化増強型によって処理された抗原に結合する能力を測定した。

実施例５に特有の略記：
Δｆ − 圧電性イムノセンサの振動周波数の変化
ＡＰＴＳ − γ−アミノプロピルトリエトキシシラン
Ｓ_ｒ − 標準偏差。

圧電性イムノセンサの分析シグナルは、バイオリアクターの質量の増加又は減少に依存して、水晶共振子の振動周波数の変化（Δｆ）を含む。かかる質量変化は、センサ表面における免疫複合体の形成又は破壊に起因している可能性がある。所与の研究中、センサの分析シグナルに対する分析サンプルの組成の効果を評価した。ＩＦＮ−ガンマとＩＦＮ−ガンマの活性化増強型（「ＡＣ」）との混合物を試験サンプルとして選択した。ＩＦＮ−ガンマとＡＰＢＳとの混合物を対照サンプルとして用いた。サンプルは、水溶液の形態で試験した。

イムノセンサを作製するために、ＡＰＴＳに基づく生体認識受容体層を圧電性素子上に形成した。センサのマイクロシリンジ表面を用い、その結果、金電極（直径：８ｍｍ）を８μＬのＡＰＴＳ（８０℃で２０分間乾燥機内にて乾燥させた）、５μＬのグルタルアルデヒド（蒸留水中２．５％の溶質）、次いで、５μＬのＩＦＮ−ガンマに対する抗体溶液（９．６ｎｇ／ｍＬ）でコーティングした。各測定について、新たな生体認識受容体層を形成した。

予備的なサンプル調製は、５０μＬのＩＦＮ−ガンマ（３０ｍｇ／ｍＬ）と５０μＬの試験サンプルとを混合することを含んでいた。次いで、サンプルを３７℃で４５分間加熱し、遠心分離（１，０００ｒｐｍ）によって１０分間混合した。ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂが固定化されているセンサ表面を２．５μＬの得られた溶液でコーティングし、３０分間保持し、蒸留水で洗浄し、一定重量まで乾燥させ、センサの静的シグナル測定を実施した。インターフェロン分子の質量変化から、抗原−抗体結合の変化を評価した。

８ｍｍの金電極（ＺＡＯ ＥＴＮＡ，Ｍｏｓｃｏｗ）を備えるＡＴ−カットの水晶から作製した圧電共振子をセンサとして用いた。分析シグナルを記録するために、パソコン及びＤｉＳｃｏｐｅトランスデューサ（ＮＰＰ Ｂａｆｉｋａ，Ｍｏｓｃｏｗ）を適用した。

実験結果を表４に示す。

この実験は、ＩＦＮ−ガンマの治療型に活性化増強型を添加すると、対照に比べて、その減少を誘導する圧電性共振子の周波数に影響を及ぼすことを示した。

実施例５の結果は、以下の結論を支持する：
１． Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０ホメオパシー希釈物を調製するために用いる技術によって、これら３つのホメオパシー希釈物の混合物を含む活性化増強型は、先験的に、出発物質の分子を含有しない；
２． 活性化増強型によって処理された出発物質（ヒトＩＦＮ−ガンマ）の物理的及び化学的性質の変化は、意義深いことに、前記活性化増強型が出発物質（インターフェロン−ガンマに対するＡｂ（抗ＩＦＮ−ガンマ））に基づいて調製されたことを検証する；
３． 活性化増強型によって処理された出発物質（ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂ）の物理的及び化学的性質の変化は、前記活性化増強型に関連する調節効力の程度をはっきりと確認し、圧電性センサを用いることによって明らかになった前記調節効力を等式（１）に従って無次元活性単位で表す機会を提供する（表４）。（プラセボと比較したときの）等式（１）を用いて計算した調節効力の程度は、２７６４．２ＡＵであった。

実施例６
ＩＦＮ−ガンマに対する放出活性抗体によって処理されたＩＦＮ−ガンマに対する抗体の中和活性の変化の分析；適用した方法は、中和活性の測定である。

実施例６の目的は、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの活性化増強型の調節効力の程度を測定することにある。ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの母液から始めて、複数回中間で振盪しながら複数回連続希釈して出発物質の濃度を低下させることによって、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの活性化増強型を調製した。希釈剤、即ち、担体は、水−アルコール溶液であった。分子型を、１００^１２部、１００^３０部、及び１００^５０部の担体で希釈した。即ち、１００倍ホメオパシー希釈物Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０を形成した。出発物質、即ち、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの物理的、化学的、及び／又は生物学的性質の変化を測定するために、ウイルス感染後の生存細胞の数の変化を特徴的なパラメータとして用いながら、ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂの活性化増強型によって処理されたＩＦＮ−ガンマに対するＡｂの中和活性の変化を用いた。

実施例６に特有の略記：
Ｒ（Ｘ） − ＲＰＭＩ−１６４０、Ｘ％のウシ胎児血清を含有する培養培地
ＮＡ − 中和活性
ＣＰＥ − 細胞変性効果。

抗体を含有する薬物の中和活性（ＮＡ／ｍＬとして測定）は、ＩＦＮ−ガンマと細胞膜上で発現するその受容体との結合の阻害に基づいている。

活性化増強型（「ＡＣ」）又は対照サンプル（蒸留水）の存在下における、培養培地［Ｒ（１）］中のＩＦＮ−ガンマに対するポリクローナルウサギＡｂのサンプルの中和活性。

培養したヒト胚性肺線維芽細胞ＨＥｐ−２細胞をトリプシン処理し、１０ｍＬのＲ（１０）に懸濁し、２．３×１０^５細胞／ウェル（１００μＬ／ウェル）の濃度でプレートにプロットした。前記細胞を、７％ＣＯ_２を含む加湿インキュベータ内にて３７℃で２４時間インキュベートした。ＩＦＮ−ガンマをＲ（１）で５００ｎｇ／ｍＬから３．９ｎｇ／ｍＬに段階的に希釈し、ウェルに挿入した。ＩＦＮ−ガンマに対するウサギポリクローナル抗体（千倍希釈から始めて（１）で２回連続希釈）を一定濃度（２５０ｎｇ／ｍＬ）のＩＦＮ−ガンマ及びＡＣ（Ｒ（１）中１０％（ｖ／ｖ））、又は蒸留水（Ｒ（１）中１０％（ｖ／ｖ））と混合した。プレートを３７℃で１時間インキュベートした。

インキュベート後、ウェルを空にし、１００μＬ／ウェルの量のＲ（１）中水胞性口炎ウイルスを添加した。その後、対照ラインのウェルにおけるＣＰＥが９０％を超えるまで、細胞を３７℃で２０時間〜２４時間インキュベートした。

培養培地を除去し、残りの細胞をＰＢＳ（２００μＬ／ウェル）で洗浄し、室温で１５分間、ホルマリン中クリスタルバイオレット（５０μＬ／ウェル）で処理した。全ての細胞が生存していた場合、単層１００％染色が観察され；細胞が死亡していた場合（ＣＰＥ）、単層染色は観察されなかった。

プレートを水で洗浄した。約５０％ＣＰＥを示す希釈液を含むウェルを目視で同定し、次いで、分光法を用いて試験した。

効果の評価は、生存細胞の数（細胞の総数に対する生存細胞の比）に基づく。ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂの中和活性の低下を、活性化増強型の効果の評価基準であるとみなした。薬物の中和活性を計算するために、以下の等式を適用した：Ｆ×Ａ×１０／Ｃ（式中、Ｆ＝抗体希釈物の逆数値であり、Ａ＝５０％ＣＰＥにおける標準的な薬物のＥＵ／ｍＬであり、Ｃ＝抗体濃度（ｍｇ／ｍＬ）である）。

この実験は、以下のことを示した：
− 水胞性口炎ウイルス（１．６×１０^５ＰＦＵ／ｍＬ）に感染させたヒト胚性線維芽細胞の肺由来の細胞株ＨＥｐ−２細胞（２．３×１０^５細胞／ウェル）と共にヒトＩＦＮ−ガンマ（５００ｎｇ／１ｍＬ（培養培地））をインキュベートした場合、ウイルスの細胞変性効果の完全阻害がみられた（感染細胞の１００％が生存していた）；
− 水胞性口炎ウイルス（１．６×１０^５ＰＦＵ／ｍＬ）に感染させたヒト胚性線維芽細胞の肺由来の細胞株ＨＥｐ−２細胞（２．３×１０^５細胞／ウェル）と共にヒトＩＦＮ−ガンマ（５００ｎｇ／１ｍＬ（培養培地））及びＩＦＮ−ガンマに対するウサギポリクローナルＡｂ（０．５２５μｇ／１ｍＬ（培養培地））をインキュベートした場合、ウイルスの細胞変性効果の５０％阻害がみられた（感染細胞の５０％が生存していた）；
− ヒトＩＦＮ−ガンマ（５００ｎｇ／１ｍＬ（培養培地））及びＩＦＮ−ガンマに対するウサギポリクローナルＡｂ（０．５２５μｇ／１ｍＬ（培養培地））、並びに水胞性口炎ウイルス（１．６×１０^５ＰＦＵ／ｍＬ）に感染した活性化増強型（培養培地の１０％（ｖ／ｖ））ヒト胚性線維芽細胞の肺由来の細胞株ＨＥｐ−２細胞（２．３×１０^５細胞／ウェル）をインキュベートした場合、ウイルスの細胞変性効果の７５％阻害がみられた（感染細胞の７５％が生存していた）。

更に、活性化増強型は、ポリクローナル抗体の調節活性に対する調節効果を引き起こすことが明らかになった。

実施例６の結果は、以下の結論を支持する：
１． Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０ホメオパシー希釈物を調製するために用いる技術によって、これら３つのホメオパシー希釈物の混合物を含む活性化増強型は、先験的に、出発物質の分子を含有しない；
２． 活性化増強型によって処理された出発物質（ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂ）の物理的及び化学的性質の変化は、意義深いことに、前記活性化増強型が出発物質（ヒトＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ）に基づいて調製されたことを検証する；
３． 上記活性化増強型によって処理された出発物質の物理的及び化学的性質の変化は、前記担体に関連する調節効力の程度をはっきりと確認し、前記調節効力を等式（１）に従って無次元活性単位で表す機会を提供し、前記効力は、中和活性測定に基づいて、５０ＡＵに等しかった。

実施例７
実施例７の目的は、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの活性化増強型の調節効力の程度を測定することにある。ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの母液から始めて、複数回中間で振盪しながら複数回連続希釈して出発物質の濃度を低下させることによって、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの活性化増強型を調製した。希釈剤、即ち、担体は、水−アルコール溶液であった。分子型を、１００^１２部、１００^３０部、及び１００^５０部の担体で希釈した。即ち、１００倍ホメオパシー希釈物Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０を形成した。出発物質、即ち、ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂの物理的、化学的、及び／又は生物学的性質の変化を測定するために、物質の分子構造に関する情報を特徴的なパラメータとして用いながら、分光法及びＮＭＲを用いた。

活性化増強型（「ＡＣ」）によって処理されたＩＦＮ−ガンマに対する抗体（ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ）の立体構造の変化を測定するために、ＮＭＲ分光法を適用した。精製水のホメオパシー希釈物を対照として用いた。

試験サンプルを調製するために、ＡＣ又は精製水を２：１の比でＩＦＮ−ガンマに対するＡｂの溶液と混合した。各サンプル中のＩＦＮ−ガンマに対するＡｂの最終濃度は、０．８ｍｇ／ｍＬであった。

Ｂｒｕｃｋｅｒ Ａｖａｎｃｅ ７００（動作周波数：７００ＭＨｇ）ＮＭＲ装置を用いて実験を実施した。試験サンプルを装置の磁場に導入した。磁気水素同位体１Ｈの励起が観察された。試験サンプルのシグナルをＮＭＲスペクトルの形態で記録し（１２時間に亘るシグナルの累積）、これによりＩＦＮ−ガンマに対するＡｂの構造及び立体構造を特徴付ける。

ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂの立体構造の状態の評価は、ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ＋ＡＣ又はＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ＋純水を含有するサンプルから取得したスペクトルの比較解析の枠組みで実施した。適切にスケーリングした際のスペクトルの重なりによって比較を実施した。

この研究結果は、ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂに活性化増強型を添加することにより、ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ＋純水のスペクトルと比べて、８ｐｐｍ〜８．５ｐｐｍ、７．６ｐｐｍ〜７．８ｐｐｍ、６ｐｐｍ〜６．６ｐｐｍの範囲でＩＦＮ−ガンマに対するＡｂのスペクトルを変化させることを示した。図１は、ＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ＋ＡＣ及びＩＦＮ−ガンマに対するＡｂ＋純水のスペクトルの重なりを示す。

この実験は、活性化増強型が、溶液中のＩＦＮ−ガンマに対するＡｂの立体構造に影響を与えることを示した。

実施例７の結果は、以下の結論を支持する：
１． Ｃ１２、Ｃ３０、Ｃ５０ホメオパシー希釈物を調製するために用いる技術によって、これら３つのホメオパシー希釈物の混合物を含む活性化増強型は、先験的に、出発物質の分子を含有しない；
２． 活性化増強型によって処理された出発物質（ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂ）の物理的及び化学的性質の変化は、意義深いことに、前記活性化増強型が出発物質（ヒトＩＦＮ−ガンマに対するウサギＡｂ）に基づいて調製されたことを検証する；
３． 活性化増強型によって処理された出発物質の物理的及び化学的性質の変化は、意義深いことに、前記活性化増強型に関連する調節効力の程度を検証する。

本明細書に含まれる説明、実施例、及び図面は、本発明の現在好ましい実施形態を表し、したがって、本発明によって広く検討される発明主題の代表的なものである。本発明の範囲は、当業者に明らかになり得る他の実施形態を完全に包含し、したがって、本発明の範囲は、添付の特許請求の範囲以外の何者にも限定されない。

Claims (12)

1. 物質の活性化増強型の活性を測定する方法であって、
   ａ）前記物質の活性化増強型を提供する工程と、
   ｂ）前記活性化増強型中に前記物質の分子型が存在しないことを保証する工程と、
   ｃ）前記物質の分子型を提供する工程と、
   ｄ）好適な分析方法を用いて、前記物質の分子型の少なくとも１つの物理的パラメータ、化学的パラメータ、又は生物学的パラメータ（Ａ）を測定する工程と、
   ｅ）前記物質の分子型を前記物質の活性化増強型で処理する工程と、
   ｆ）前記分析方法を用いて、処理された前記物質の分子型の前記少なくとも１つの物理的パラメータ、化学的パラメータ、又は生物学的パラメータ（Ａ_Ｍ）を測定する工程と
   を含み、
   前記物質の活性化増強型の活性が、ＡとＡ_Ｍとの差の程度であることを特徴とする方法。
2. 式Ｘ＝Ｃ（Ａ−Ａ_Ｍ）／Ａに従って、前記物質の活性化増強型の活性を相対単位（Ｘ）で表すことを更に含む請求項１に記載の方法。
3. ｉ）第１の物質の活性化増強型で異なる物質の分子型を処理する工程と、ｉｉ）前記分析方法を用いて、前記異なる物質の分子型の前記少なくとも１つの物理的パラメータ、化学的パラメータ、又は生物学的パラメータ（Ｂ）を測定する工程と、ｉｉｉ）前記分析方法を用いて、処理された前記異なる物質の分子型の前記少なくとも１つの物理的パラメータ、化学的パラメータ、又は生物学的パラメータ（Ｂ_Ｍ）を測定して、前記方法の特異性を測定する工程とを更に含み、前記少なくとも１つの物理的パラメータ、化学的パラメータ、又は生物学的パラメータが、Ａ−Ａ_Ｍについては統計的に有意に変化するが、Ｂ−Ｂ_Ｍについては統計的に有意に変化しない場合、前記方法が特異的であるとみなす請求項１に記載の方法。
4. 前記分析方法が、高速液体クロマトグラフィーである請求項１に記載の方法。
5. 前記分析方法が、免疫発酵分析である請求項１に記載の方法。
6. 前記分析方法が、核磁気共鳴である請求項１に記載の方法。
7. 前記物質の分子型が存在しないことを保証する工程が、前記物質の分子型を除去することを含む請求項１に記載の方法。
8. 前記物質が、抗体である請求項１に記載の方法。
9. 前記抗体が、ポリクローナル抗体である請求項８に記載の方法。
10. 前記物質が、有機小分子である請求項１に記載の方法。
11. 前記活性化増強型が、液体である請求項１に記載の方法。
12. 前記活性化増強型が、固体担体に含浸している請求項１に記載の方法。