JP2015516982A - スフィンゴシン系化合物による材料の保護 - Google Patents
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Abstract
Description
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、OH又はFから選択され、好ましくはOHである。好ましくは、Xは、10から20個の炭素を有する線状アルキルであり、R1はHであり、R2はOHであり、R3はOHである。より好ましくは、この化合物はフィトスフィンゴシン(PHS)である。
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである。好ましくは、Xは、10から20個の炭素を有する線状アルキルであり、R1はHであり、R2はOHであり、R3はOHである。
R1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである。
R2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである。
R1はHであり、
R2はOHであり、
R3は、リン酸塩又はOHから選択される。
R1はHであり、
R2はOHであり、
R3はOHである。
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H、F及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、OH又はFから選択され、好ましくはOHである。
好ましくは、式Iは
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである。好ましくは、Xは、10から20個の炭素を有する線状アルキルであり、R1はHであり、R2はOHであり、R3はOHである。
R1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである。
X114、Brij 35、Brij 58、Nonidet P40、オクチルグリコシド及びエトキシル化ステアリルアルコール、並びに図19に列挙した任意の非イオン性洗剤は、共存することができる。
本明細書では「含む」及びその複合語は、その非限定的意味で使用され、その後に続く項目が含まれるが、明確に言及されていない項目が除外されないことを意味する。さらに、動詞「からなる」は、「から本質的になる」で置き換えることができ、本明細書に定義された化合物又は補助化合物が、明確に特定されたものとは別の成分(単数又は複数)を含むことができ、前記別の成分(単数又は複数)が本発明の独特な特性を変えないことを意味する。
アンダーソン(Anderson)P,ボレット−キヴォニュ(Bollet−Quivogne)FRG,ダウカー(Dowker)SEP,エリオット(Elliott)JC.、増加するイオン強度におけるエナメル質及びヒドロキシアパタイト凝集体中の脱ミネラル化(Demineralization in enamel and hydroxyapatite aggregates at increasing ionic strengths)アーカイブ・オブ・オーラル・バイオロジ(Arch Oral Biol)2004;49:199−207.
イエンスドッティール(Jensdottir)T,アルナドッティール(Arnadottir)IB,トルスドッティール(Thorsdottir)Iら、アイスランド人のう蝕、清涼飲料消費及び胃食道逆流の関係(Relationship between dental erosion, soft drink consumption, and gastroesophageal reflux among Icelanders)クリニカル・オーラル・インベスティゲーションズ(Clin Oral Investig)2004;8:91−96.
フェアマン(Veerman)ECI,ファレンタイン−ベンツ(Valentijn−Benz)M,ファント・ホフ(van’t Hof)W,ナズミ(Nazmi)K,ファント・マルル(van Marle)J,ニュー・アメロンゲン(Nieuw Amerongen)AV.、フィトスフィンゴシンは、カンジダ・アルビカンスの細胞膜を破壊することによってカンジダ・アルビカンスを死滅させる(Phytosphingosine kills Candida albicans by disrupting its cell membrane)バイオロジカル・ケミストリ(Biol.Chem)2010;391:65−71.
ナヴァゼッシュ(Navazesh)M,マリガン(Mulligan)RA,キプニス(Kipnis)V,デニー(Denny)PA,デニー(Denny)PC.、健康なコーカサス若年成人及び高齢者における全唾液流量及びムチン濃度の比較(Comparison of whole saliva flow rates and mucin concentration in healthy Caucasian young and aged adults)ジャーナル・オブ・デンタル・リサーチ(J Dent Res);1992;71:1275−1278.
歯エナメル質は、主としてヒドロキシアパタイト結晶(Ca10(PO4)6(OH)2からなる。高温で焼結すると、エナメル質に似た物理的特性(例えば、硬度及び密度)を有するヒドロキシアパタイトディスクを製造することができる(アンダーソンら、2004)。このヒドロキシアパタイトディスクを使用して、侵食性(酸性)溶液に浸漬後のヒドロキシアパタイトの重量減少を測定することによって溶液の侵食性を求めることができる(イエンスドッティールら、2005)。1250℃で焼結された比重98%のヒドロキシアパタイトディスクをSwerea、ストックホルム、スウェーデンから得た。ディスクの側面及び底面は、マニキュア液で覆われており、1面が被覆されていない。次に、ディスクを紙やすり(3M734 P600)で磨いて清浄にし、脱塩水でリンスし、37℃で終夜乾燥させ、秤量して、初期質量を測定した。ヒドロキシアパタイトディスクを12ウェル細胞培養プレート(グライナー・バイオ−ワン(Greiner bio−one)、フリッケンハウゼン、ドイツ)のウェル中に置き、それにフィトスフィンゴシン(唾液緩衝剤(2mMリン酸カリウム、50mM KCl、1mM CaCl2、0.1mM MgCl2、pH6.8に溶解させた種々の濃度のPHS)1.5mlを軽く振とうしながら37℃で3時間添加した。唾液緩衝剤4mlで3回リンスして、結合していないPHSを除去した後、0.1Mクエン酸(pH=3.0)4mlを含む新しいウェル中にディスクを置いた。30分後、クエン酸をピペットで取り除き、ディスクを脱塩水4mlで3回リンスし、37℃で終夜乾燥させ、秤量した。侵食処理の前後の重量差を侵食の尺度とした。実験を3つ組で実施し、少なくとも2回繰り返した。HAPディスク上の唾液薄膜は以下のように形成された:既述(ナヴァゼッシュ、1993)のように、意識的に刺激せずに唾液を収集した。唾液を10,000gで10分間遠心分離して細胞破片から取り除いた。上清(HWS)を収集し、HAPディスクを唾液薄膜で被覆するのに用いた。この目的のために、HAPディスクをHWS 4mlと一緒に37℃でインキュベートした。3時間後、ディスクを蒸留水で3回リンスして、結合していないタンパク質を除去した。続いて、被覆されていないHAPについて上述したように、唾液被覆HAPに対するPHSの保護作用を試験した。
HAPへの吸着(Absorbtion)
本発明者らは、HAP上へのPHS吸着によって、極性化合物の拡散を妨害し、微生物の付着を変える保護膜が形成され得ると予測した。本発明者らは、まず、PHSが実際にHAPに結合するかどうか確認した。このために、歯エナメル質のモデルとして焼結HAPディスクを濃度0から500μg/mlのPHSで処理した。PHSは水に適度に可溶性であるので、本発明者らは、結合実験をTris−Tween中で実施した。PHSはTris−Tweenに完全に可溶性であることが、10,000gの10分間の遠心分離ステップ前後のPHS濃度の測定によって確認された。最大吸着は、PHS60μg/ml以上の濃度で生じた。これらの条件下では、PHS約12μgがディスク表面に吸着した。HAPディスクを唾液と一緒に終夜インキュベートし、続いてPHSと一緒にインキュベーション後、対照(HAPディスクを唾液緩衝剤と一緒にインキュベートした)よりもさらに多量のPHSが吸着した(図14B)。図12は、固定PHS濃度における経時的吸着を示す。1分以内に、既にかなりの量のPHSが吸着した。全体的には、結合は二相の時間的経過に従い、最初の速い相では1時間以内に平衡に達し、続いて次の15時間で徐々に増加した。
種々の薬剤で処理後(図1参照)、HAPディスクを0.1Mクエン酸(pH=3)に30分間侵食曝露した。ウシ血清アルブミン又は唾液でディスクを前処理しても意味のある保護は得られなかった。PHSが唾液緩衝剤に難溶性である(フェアマンら、2010)にもかかわらず、HAPディスクと一緒にインキュベートすると、それに続く侵食曝露に対してかなりの保護が得られた(未処理対照ディスクよりも70〜80%少ない重量減少)。PHSで前処理すると、クエン酸による溶解に対して、唾液緩衝剤単独で前処理された、又はPHS溶液を調製するのに使用されたDMSOを含む唾液緩衝剤で前処理された対照ディスクよりも80%以上保護された。一方、1mg/ml BSA又は全唾液でHAPディスクを前処理しても、30分間持続する侵食攻撃に対して、たとえあるとしてもほとんど保護作用を示さなかった。保護作用がHAPディスク上の不溶性PHS凝集体の沈殿に起因するかどうかを調べるために、本発明者らは、Tris−Tweenに溶解させたPHSで実験を繰り返した。これは本質的に同じ保護を示し、唾液緩衝剤において認められた保護がHAP表面の不溶性PHS凝集体の沈殿に帰因しないことが裏付けられた。これは、PHSがHAP上に保護被膜を形成し、HAPがクエン酸による酸攻撃に対して保護されることを示唆している。
本発明者らは、さらに、HAPディスクへの初期細菌付着に対するPHSの効果を生体外でモデル微生物としてS.mutansを用いて試験した。PHS被覆ディスク及び対照ディスクをS.mutansの懸濁液に浸漬し、2時間後、付着細菌の数を平板培養によって求めた。その結果、基剤HAPに比べてPHS被覆HAPに付着した細菌の数は>100倍減少することが判明した(図11))。
HAディスクを緩衝剤又は100ug/ml PHSで3時間前処理し(図15、左側の2本の棒)、次いで0.1Mクエン酸(pH=3.0)で30分間処理した。PHS前処理は、クエン酸の侵食作用に対して保護作用を示す。HAディスクを緩衝剤又は100ug/ml PHSで前処理し、次いで100ug/ml PHSの存在下で0.1Mクエン酸に30分間曝露した(図15、右側の2本の棒)。侵食流体中に存在するPHSは、未処理HAPディスクでも侵食に対して保護作用を示す。(PHSは、クエン酸のpHに影響を及ぼさない。)
PHS、PHSリン酸塩、スフィンゴシン、スフィンガニン、ステアロイルPHS及びスフィンゴミエリンを含む6種類のスフィンゴ脂質を、2種類の初期生着菌、すなわち、Streptococcus sanguinis及びStreptococcus gordonii並びに後期生着菌Streptococcus mutansに対するその防汚性について試験した。
フィトスフィンゴシン(ドーサン・コーポレーション(Doosan Corporation)、フランス)は、P.エカルト(Ekhart)博士(イノパクト(Innopact)BV)の好意によって提供され、スフィンガニン、4−ヒドロキシスフィンガニン−1−リン酸塩、N−アセトイル(acetoyl)4−ヒドロキシスフィンガニン、N−オクタノイル4−ヒドロキシスフィンガニン、N−ステアロイル4−4−ヒドロキシスフィンガニン(すべてサッカロミセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)由来)、スフィンゴミエリン及びスフィンゴシンを、アヴァンティ・ポーラー・リピッド(Avanti Polar Lipids)(アラバスタ(Alabaster)、アラバマ)から入手した。ジ−ミロイスチル(myroistyl)ホスファチジルコリンをシグマアルドリッチから入手した。
侵食に対するHAPの保護は、侵食性(酸性)溶液に浸漬前後のHAPディスクの重量減少をザルトリウス(Sartorius)GD503分析精密天秤で測定することによって、基本的にイエンスドッティールら(2005)によって記述されたように求められた。侵食実験では、ディスクの側面及び底面がマニキュア液で覆われており、円形の上面が被覆されていないままであった。次に、ディスクを細かい紙やすり(3M734 P600)で磨いて清浄にし、脱塩水でリンスし、37℃で終夜乾燥させ、秤量して、初期質量を測定した。脂質の原液をエタノール中で濃度5mg/mlまで調製した。これらの原液を、使用緩衝剤で所望の濃度に更に希釈した。PHSの使用溶液を、唾液緩衝剤(2mMリン酸カリウム、50mM KCl、1mM CaCl2、0.1mM MgCl2、pH6.8)又は0.1%Tween 20を補充した20mM Tris(pH6.8)(Tris−Tween)中で調製した。HAPディスクを12ウェル細胞培養プレート(グライナー・バイオ−ワン、フリッケンハウゼン、ドイツ)のウェル中に置き、それに脂質溶液1.5mlを添加し、軽く振とうしながら37℃で3時間インキュベートした。インキュベーション緩衝剤4mlで3回リンスして結合していない脂質を除去した後、ディスクを0.1Mクエン酸(pH=3.0)4mlと一緒にインキュベートした。軽く振とうしながら37℃で30分間インキュベーション後、クエン酸をピペットで取り除き、ディスクを脱塩水4mlで3回リンスし、37℃で終夜乾燥させ、秤量した。侵食処理の前後の重量差を侵食の尺度とした。すべてのインキュベーションを3つ組で実施し、各実験を少なくとも2回繰り返した。
HAPディスク上の唾液薄膜は以下のように形成された:既述(ナヴァゼッシュら、1993)のように、意識的に刺激せずに唾液を収集した。HAPディスクをヒト全唾液(HWS:human whole saliva)4mlと一緒に37℃でインキュベートした。3時間後、ディスクを蒸留水で3回リンスして、結合していないタンパク質を除去した。続いて、被覆されていないHAPディスクについて上述したように、唾液被覆HAPに対する脂質の保護作用を試験した。研究は、アムステルダムのアカデミック・ホスピタル自由大学(Academic Hospital Vrije Universiteit)の施設倫理委員会(Institutional Ethical Board)によって認可され、インフォームドコンセントをドナーから得た。
PHSを0.1%Tween 20を補充した20mM Tris緩衝剤(pH6.8)(Tris−Tween)に濃度0から500μg/mlで溶解させた。Tween 20を添加して、PHSを溶液状態に維持した。ディスクをPHS溶液と一緒に18時間インキュベートし、次いで脱塩水で(3回)リンスして結合していないPHSを除去した。HAPに結合したPHSを、メタノール1.5mlと一緒に90分間インキュベートすることによって抽出した。マニキュア液はメタノールに溶解するので、結合実験においては、HAPディスクをマニキュア液なしで使用した。対照インキュベーションをディスクなしで実施することによって、PHSがプラスチックに吸着しないことを確認した。蒸発後、残留物をメタノール250μlに溶解させた。この溶液100μlに、結合したPHSの蛍光定量を可能にするオルト−フタルジアルデヒド試薬(OPA、シグマアルドリッチ)25μl。蛍光をFluostarマイクロプレートリーダーによって励起/発光波長380nm/450nmで測定した。PHSの検量線を基準にして絶対量を決定した。すべてのインキュベーションを3つ組で実施し、実験を2回繰り返した。
HAPディスクへの細菌付着は、基本的に既述(エキスターケイト(Exterkate)ら、2010)のように、活性付着モデルを用いて調べられた。このモデルは、S.mutansの付着の基層としてPHS処理及び緩衝剤処理HAPディスクを含む24個のクランプを有する特注のステンレス鋼蓋からなる。HAPディスク(直径:9.7mm直径、厚さ:1.7mm ヒメッド(Himed)、NY、USA)を、100μg/ml PHSと一緒に、又はPHSを用いずに、20mM Tris、0.1%Tween 20、pH6.8中で30℃で終夜インキュベートした。続いて、HAPディスクを、緩衝剤1.6mlを含む24ウェルプレートに蓋を移すことによって3回洗浄し、10回上下させて過剰のPHSを除去した。S mutansをBHI培地中で終夜培養し、強度が半分のBHI(18.5g BHI/l、50Mm/l PIPES、pH7.0)で1:10希釈して、最終密度約108細胞/mlにした。HAPディスクの付いた蓋を、希釈菌液1.5mlを含む24ウェルプレートの上に置き、37℃で2時間嫌気的にインキュベートした。HAPディスクを、システインペプトン水(CPW:cysteine peptone water)1.6mlを含むプレートに蓋を移すことによって2回洗浄して、付着していない細菌を除去した。続いて、ディスクを蓋から外し、CPW2mlに移し、細菌の付着層を1秒パルスで2分間超音波処理して分散させた。得られた懸濁液をBHIプレート上で異なる希釈度で培養し、37℃で48時間嫌気的にインキュベートした後、CFUを数えた。
Claims (28)
- 歯又は骨の被覆剤として使用され、
式中、Xは、8〜24個の炭素、好ましくは10から20個の炭素を有するアルキル又はアルケニル、より好ましくは線状アルキルであり、
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである、
式Iを有するスフィンゴシン化合物、又は前記化合物の複合物。 - 前記使用が、歯質脱灰、歯質脱灰障害、歯肉疾患及び/又は歯石形成を防止又は軽減する、請求項1に記載のスフィンゴシン化合物。
- 前記歯質脱灰障害が象牙質過敏である、請求項2に記載の化合物。
- 前記歯質脱灰障害がう蝕である、請求項2に記載の化合物。
- 前記スフィンゴシン化合物がフィトスフィンゴシンである、請求項1から4のいずれか一項に記載の化合物。
- 好ましくは酸蝕及び/又は塩の沈殿を軽減又は防止するための、ヒドロキシアパタイト表面を被覆する方法であって、
式中、Xは、8〜24個の炭素、好ましくは10から20個の炭素を有するアルキル又はアルケニル、より好ましくは線状アルキルであり、
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである、
式Iを有するスフィンゴシン化合物又は前記化合物の複合物と前記表面を接触させることを含む、方法。 - 前記スフィンゴシン化合物がフィトスフィンゴシンである、請求項6に記載の方法。
- 前記表面がヒドロキシアパタイトナノ粒子とも接触する、請求項6又は7に記載の方法。
-
式中、Xは、8〜24個の炭素、好ましくは10から20個の炭素を有するアルキル又はアルケニル、より好ましくは線状アルキルであり、
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである、
式Iを有するスフィンゴシン化合物又は前記化合物の複合物を含む、口腔ケア組成物。 - 前記スフィンゴシン化合物がフィトスフィンゴシンである、請求項9に記載の口腔ケア組成物。
- 練歯磨、チューインガム又は洗口剤から選択される、請求項9又は10に記載の口腔ケア組成物。
- 前記練歯磨が非イオン界面活性剤を含む、請求項11に記載の口腔ケア組成物。
- 前記組成物がさらにヒドロキシアパタイトナノ粒子を含む、請求項9から12のいずれか一項に記載の口腔ケア組成物。
- う蝕の防止又は軽減に使用される、請求項9から13のいずれか一項に記載の口腔ケア組成物。
-
式中、Xは、8〜24個の炭素、好ましくは10から20個の炭素を有するアルキル又はアルケニル、より好ましくは線状アルキルであり、
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである、
式Iを有するスフィンゴシン化合物又は前記化合物の複合物を含む、食品組成物。 - さらにヒドロキシアパタイトナノ粒子を含む、請求項15に記載の組成物。
- 口内乾燥又はその症候を防止、軽減又は処置するのに使用され、
式中、Xは、8〜24個の炭素、好ましくは10から20個の炭素を有するアルキル又はアルケニル、より好ましくは線状アルキルであり、
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである、
式Iを有するスフィンゴシン化合物又は前記化合物の複合物。 - ヒドロキシアパタイトを含む補綴歯であって、
式中、Xは、8〜24個の炭素、好ましくは10から20個の炭素を有するアルキル又はアルケニル、より好ましくは線状アルキルであり、
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである、
式Iを有するスフィンゴシン化合物又は前記化合物の複合物で被覆された補綴歯。 - 前記スフィンゴシン化合物がフィトスフィンゴシンである、請求項18に記載の補綴歯。
- 歯の変色を防止する美容処置であって、
式中、Xは、8〜24個の炭素、好ましくは10から20個の炭素を有するアルキル又はアルケニル、より好ましくは線状アルキルであり、
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである、
式Iを有するスフィンゴシン化合物又は前記化合物の複合物を前記歯に施すことを含む、美容処置。 - さらに前記歯にヒドロキシアパタイトナノ粒子を施すことを含む、請求項20に記載の美容処置。
- 抗歯石剤として使用され、
式中、Xは、8〜24個の炭素、好ましくは10から20個の炭素を有するアルキル又はアルケニル、より好ましくは線状アルキルであり、
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである、
式Iを有するスフィンゴシン化合物又は前記化合物の複合物。 - 表面への細菌付着を軽減又は防止するのに使用され、
式中、Xは、8〜24個の炭素、好ましくは10から20個の炭素を有するアルキル又はアルケニル、より好ましくは線状アルキルであり、
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである、
式Iを有するスフィンゴシン化合物又は前記化合物の複合物。 - 前記化合物が、PHS、PHSリン酸塩、ステアロイルPHS、スフィンガニン及びスフィンゴシンから選択される、請求項23に記載の化合物。
-
式中、Xは、8〜24個の炭素、好ましくは10から20個の炭素を有するアルキル又はアルケニル、より好ましくは線状アルキルであり、
R1は、H及びC(=O)C1〜20から選択され、好ましくはR1はHであり、
R2は、H及びOHから選択され、好ましくはR2はOHであり、
R3は、リン酸塩、OH又はFから選択され、好ましくはOHである、
式Iを有するスフィンゴシン化合物又は前記化合物の複合物で少なくとも部分的に被覆された物品。 - 前記物品が医療機器である、請求項25に記載の物品。
- 前記化合物が、PHS、PHSリン酸塩、ステアロイルPHS、スフィンガニン及びスフィンゴシンから選択される、請求項25又は26に記載の物品。
- 前記物品がヒドロキシアパタイト粒子で少なくとも部分的に被覆された、請求項25から27のいずれか一項に記載の物品。
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