JP2015119698A - アセチル化スフィンゴイドの製造方法 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】スフィンゴイドをアセチル化する活性を有するポリペプチドをコードする異種生物由来の遺伝子が導入されたスターメレラ属微生物、並びに該微生物を培養する、アセチル化スフィンゴイドの製造方法。
【選択図】なし
Description
(1)スフィンゴイドをアセチル化する活性を有するポリペプチドをコードする異種生物由来の遺伝子が導入されたスターメレラ属微生物を培養する、アセチル化スフィンゴイドの製造方法。
(2)スフィンゴイドをアセチル化する活性を有するポリペプチドをコードする異種生物由来の遺伝子が導入されたスターメレラ属微生物。
また、本明細書では、スフィンゴイドをアセチル化する活性を有するポリペプチドをコードする遺伝子をアセチルトランスフェラーゼ遺伝子ともいい、SLI1をコードする遺伝子をSLI1遺伝子ともいう。
さらに、本明細書において異種生物由来とは、スターメレラ属以外に分類される微生物若しくは生物由来であることを意味する。
(a)配列番号2に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(b)配列番号2で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(c)配列番号2に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。
(d)配列番号4に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(e)配列番号4で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(f)配列番号4に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。
(g)配列番号6に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(h)配列番号6で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(i)配列番号6に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。
また(a)〜(i)のポリペプチドをコードする遺伝子は、アミノ酸配列が(a)〜(i)に該当する限り、いかなるコドンを選択してもよい。例えば、スターメレラ属微生物に適したコドンを選択することが好ましい。
すなわち、例えば、配列番号1に示すSLI1遺伝子のN末端開始コドンを含む配列からなるオリゴヌクレオチドA、及び該遺伝子の終始コドンを含む配列と相補的な配列からなるオリゴヌクレオチドBを化学合成し、これらのオリゴヌクレオチドAとBを1セットにし、ウィッカーハモミセス シフェリイのDNAをテンプレートとしてPCR反応を行なうことにより得ることができる。また、こうして得られる遺伝子断片を効率よくプラスミドベクター等にクローニングを行なうために、オリゴヌクレオチドプライマーの5’末端側に制限酵素切断のための配列を付加して用いることもできる。ここで、プライマーとしては、SLI1遺伝子の塩基配列に関する情報をもとにして化学合成されたヌクレオチド等が一般的に使用できるが、既に取得されたSLI1遺伝子やその断片も良好に利用できる。当該ヌクレオチドとしては、配列番号1に対応する部分ヌクレオチド配列であって、10〜50個の連続した塩基、好ましくは15〜35個の連続した塩基等が挙げられる。
また、PCRの条件は、例えば98℃2分、(98℃10秒、55℃5秒、72℃1分)×30サイクルが挙げられる。
このような断片は、(1)そのまま核酸断片として、あるいはプラスミドベクター等に導入された核酸断片として導入すること、(2)その両端に宿主が有する染色体の一部配列からなる核酸断片が付加された核酸断片として導入すること、により宿主微生物に遺伝的に安定に保持させることができる。導入する遺伝子のコピー数は何ら限定されず、シングルコピーで当該遺伝子を導入しても良いし、マルチコピーで当該遺伝子を導入しても良い。
(1)の核酸断片の宿主微生物内への導入方法としては、エレクトロポレーション法、酢酸リチウム法等が挙げられる。
また、(2)の断片を導入すれば、核酸断片に付加された宿主染色体が有する配列に相当する部位において相同組換えが起こり、導入した核酸断片が微生物内の染色体に組み込まれる。
後記実施例に示すように、本発明の微生物を用いることにより、スフィンゴイドの炭素鎖長が19又は20のアセチル化スフィンゴイド(例えば、アセチル化C19フィトスフィンゴシンやアセチル化C20フィトスフィンゴシン)が製造できる。更に、培地に、ペンタデカン酸アルキルエステル又はヘプタデカン酸アルキルエステル又はノナデカン酸アルキルを添加して当該微生物を培養することにより、スフィンゴイドの炭素鎖長が19のアセチル化スフィンゴイドの生産量又は生産比率を増加させることができる。また、培地にオクタデカン酸アルキルエステルを添加して当該微生物を培養することにより、スフィンゴイドの炭素鎖長が20のアセチル化スフィンゴイドの生産比率を増加させることができる。
ここで、アルキルエステルとしては、炭素数1〜4のアルキルエステルが挙げられ、好ましくはメチルエステル又はエチルエステルである。
また、当該脂肪酸アルキルエステルの添加量は、好ましくは1質量%以上で、好ましくは30質量%以下、より好ましくは10%以下、更に好ましくは3%以下である。また、好ましくは1〜30質量%、より好ましくは1〜10質量%、更に好ましくは1〜3質量%である。
<1>スフィンゴイドをアセチル化する活性を有するポリペプチドをコードする異種生物由来の遺伝子が導入されたスターメレラ属微生物を培養する、アセチル化スフィンゴイドの製造方法。
<2>スフィンゴイドをアセチル化する活性を有するポリペプチドが以下の(a)〜(i)から選ばれるアミノ酸配列からなる、<1>記載のアセチル化スフィンゴイドの製造方法。
(a)配列番号2に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(b)配列番号2で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(c)配列番号2に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。
(d)配列番号4に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(e)配列番号4で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(f)配列番号4に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。
(g)配列番号6に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(h)配列番号6で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(i)配列番号6に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。
<3>前記(b)、(e)、(h)の1〜数個が、1〜80個、好ましくは1〜40個、さらに好ましくは1〜20個、さらに好ましくは1〜10個である、<2>記載のアセチル化スフィンゴイドの製造方法。
<4>前記(c)のポリペプチドが、配列番号2のアミノ酸配列と好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上の同一性を有するアミノ酸配列であり、(f)のポリペプチドが、配列番号4に示すアミノ酸配列と好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上の同一性を有するアミノ酸配列であり、(i)のポリペプチドが、配列番号6に示すアミノ酸配列と好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上の同一性を有するアミノ酸配列である<2>記載のアセチル化スフィンゴイドの製造方法。
<5>スターメレラ属微生物が、スターメレラ ボンビコーラである<1>〜<4>のいずれかに記載のアセチル化スフィンゴイドの製造方法。
<6>スターメレラ ボンビコーラがスターメレラ ボンビコーラ KSM36株又はスターメレラ ボンビコーラ NBRC10243株である<4>記載のアセチル化スフィンゴイドの製造方法。
<7>アセチル化スフィンゴイドがアセチル化フィトスフィンゴシンである<1>〜<6>のいずれかに記載の製造方法。
<8>アセチル化スフィンゴイドが、炭素鎖長が19又は20のアセチル化スフィンゴイドである、<1>〜<7>のいずれかに記載のアセチル化スフィンゴイドの製造方法。
<9>炭素鎖長が19又は20のアセチル化スフィンゴイドが、炭素鎖長が19又は20のアセチル化フィトスフィンゴシンである、<8>記載のアセチル化スフィンゴイドの製造方法。
<10>培地にペンタデカン酸アルキルエステル、ヘプタデカン酸アルキルエステル、オクタデカン酸アルキルエステル及びノナデカン酸アルキルエステルから選ばれる1以上の脂肪酸アルキルエステルを添加する、<1>〜<9>のいずれかに記載のアセチル化スフィンゴイドの製造方法。
<11>脂肪酸アルキルエステルが炭素数1〜4のアルキルと脂肪酸のエステルである<10>記載のアセチル化スフィンゴイドの製造方法。
<12>脂肪酸アルキルエステルの培地への添加量が、好ましくは1〜30質量%、より好ましくは1〜10質量%、更に好ましくは1〜3質量%である<10>又は<11>記載のアセチル化スフィンゴイドの製造方法。
<13>スフィンゴイドをアセチル化する活性を有するポリペプチドをコードする異種生物由来の遺伝子が導入されたスターメレラ属微生物。
<14>スフィンゴイドをアセチル化する活性を有するポリペプチドが以下の(a)〜(i)から選ばれるアミノ酸配列からなる、<13>記載のスターメレラ属微生物。
(a)配列番号2に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(b)配列番号2で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(c)配列番号2に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。
(d)配列番号4に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(e)配列番号4で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(f)配列番号4に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。
(g)配列番号6に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(h)配列番号6で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(i)配列番号6に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。
<15>前記(b)、(e)、(h)の1〜数個が、1〜80個、好ましくは1〜40個、さらに好ましくは1〜20個、さらに好ましくは1〜10個である、<14>記載のスターメレラ属微生物。
<16>前記(c)のポリペプチドが、配列番号2のアミノ酸配列と好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上の同一性を有するアミノ酸配列であり、(f)のポリペプチドが、配列番号4に示すアミノ酸配列と好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上の同一性を有するアミノ酸配列であり、(i)のポリペプチドが、配列番号6に示すアミノ酸配列と好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上の同一性を有するアミノ酸配列である<14>記載のスターメレラ属微生物。
<17>スターメレラ属微生物が、スターメレラ ボンビコーラである<13>〜<16>のいずれかに記載のスターメレラ属微生物。
<18>スターメレラ ボンビコーラがスターメレラ ボンビコーラ KSM36株又はスターメレラ ボンビコーラ NBRC10243株である<17>記載のスターメレラ属微生物。
(1)導入遺伝子断片の構築
スターメレラ ボンビコーラのコドン使用頻度に合わせて人工合成したウィッカーハモミセス シフェリイ由来アセチルトランスフェラーゼ遺伝子(WcSLI1)(配列番号7)をテンプレートとして配列番号10、12または11,12のプライマーを用いてPCRすることにより、WcSLI1遺伝子断片を得た。PCRの条件は、例えば98℃2分、(98℃10秒、55℃5秒、72℃1分)×30サイクルが挙げられる。WcSLI1の発現には、Glyceraldehyde−3−phosphate dehydrogenase(5’−GAPDH)とUDP−glucosyltransferase(5’−UGT)遺伝子のプロモータを使用した。それぞれの配列は配列番号13と14、15と16のプライマーを用いてスターメレラ ボンビコーラ KSM36株のゲノムDNAをテンプレートとしてPCRすることにより得た。さらに、Cytochrome c(3’−CYC)のターミネータを使用した。3’−CYC配列は配列番号17と18のプライマーを用いてスターメレラ ボンビコーラ KSM36株のゲノムDNAをテンプレートとしてPCRすることにより得た。これらをSOE−PCRを用いて連結し、[5’−GAPDH or 5’−UGT][WcSLI1][3’−CYC]の遺伝子断片を得た。この遺伝子断片とプラスミドpHsp70A/RbcS2−Chlamy(Chlamydomonas Resource Center)を制限酵素SacIとNcoIで処理したものをin−Fusion cloning kit(Clontech)を用いて連結させ、プラスミド1を得た。形質転換の選抜にはハイグロマイシン耐性遺伝子(配列番号19)を使用した。ハイグロマイシン耐性遺伝子は配列番号20と21のプライマーでハイグロマイシン耐性遺伝子を有するプラスミドloxP−PGK−gb2−hygro−loxP(Gene Bridges)をテンプレートとしてPCRし、URA3遺伝子のプロモータ、ターミネータを配列番号22と23または24と25でスターメレラ ボンビコーラ KSM36株のゲノムDNAをテンプレートとしてそれぞれPCRした増幅物とSOE−PCRにて連結し[5’−URA3][ハイグロマイシン耐性遺伝子][3’−URA3]の遺伝子断片を得た。さらに、プラスミドpUC−Arg7−lox−B ARG7を配列番号26と27のプライマーを用いたPCRでARG7以外の領域を増幅し、in−Fusion cloning kit(Clontech)を用いてSOE−PCRの増幅物と連結し、プラスミド2を得た。プラスミド1とプラスミド2のloxP配列を利用してcre recombinase反応によって連結させ、[5’−GAPDH or 5’−UGT][WcSLI1][3’−CYC]−[5’−URA3][ハイグロマイシン耐性遺伝子][3’−URA3]のように連結したプラスミド3を得た。プラスミド3を配列番号13と25または15と25のプライマーでPCRすることにより、WcSLI1導入遺伝子断片を得た。
また、cyp52M1を欠損させるための遺伝子導入断片としてcyp52M1遺伝子の上流領域を配列番号28と29のプライマー、下流領域を配列番号30と31のプライマー、またURA3遺伝子を配列番号32と33のプライマーを用いて、それぞれスターメレラ ボンビコーラ KSM36株のゲノムDNAをテンプレートとしてPCRを行い、得られた3断片をSOE−PCRにて連結した。この断片をcyp52M1欠損遺伝子断片として使用した。
実施例1において使用したプライマーを表1にまとめる。
スターメレラ ボンビコーラ KSM36株(FERM BP−799)を0.68%
Yeast Nitrogen Base w/o amino acids、2% グルコース、0.03%ウラシルおよび1.5%Agarを含むSD−U寒天培地に接種したのち、30℃で1ヶ月間培養し、得られた菌体を1mLの0.8%食塩水に一白金耳懸濁し、0.68%Yeast Nitrogen Base w/o amino acids、2%グルコース、0.03%ウラシル、および5−フルオロオロチン酸、1.5%Agarを含むSD-UF寒天培地に100μL塗抹し30℃で2週間培養した。生育したコロニーを再度SD−UF寒天培地で培養した後、それぞれについてウラシル要求性、5−フルオロオロチン酸耐性を確認し、ウラシル要求性株を取得した。
スターメレラ ボンビコーラ KSM36株および得られたウラシル要求性株を50g/LのYPD Broth(日本BD製)5mLを含む100mL容試験管に一白金耳植菌し、30℃、250rpmで48時間培養した。培養液1mLを5000rpm、4℃で5分間遠心して集めた菌体からGenとるくんTM(TAKARAバイオ)を用い、添付の方法に従ってゲノムDNAを抽出した。表1記載のプライマー(配列番号32、33)およびKOD−plus.ver2(TOYOBO)を用いてウラシル生合成に関わるオロチジンデカルボキシラーゼをコードするURA3遺伝子を増幅し、PCR産物を鋳型としてURA3遺伝子の配列をシーケンス解析し、スターメレラ ボンビコーラ NBRC10243株の配列(GenBank accession No.DQ916828)と比較した。その結果、スターメレラ ボンビコーラ KSM36株はスターメレラ ボンビコーラ NBRC10243株のURA3遺伝子と同じ配列を有すること、ウラシル要求性株は皆54位のシステインがチロシンに変異していることが確認された。取得した、ウラシル要求性株をスターメレラ ボンビコーラ KSM36−ura3株として使用した。
(2)において、ウラシル要求性株の変異位置が確定されたので、例えば下記の遺伝子組換え手段を用いて容易にウラシル要求性株の調製が可能である。
スターメレラ ボンビコーラ KSM36株のゲノムDNAをテンプレートとしてURA3遺伝子を配列番号32、33のプライマーを用いて増幅する。増幅した遺伝子断片を適当なベクターに導入し、54位のシステインをチロシンに変更する点変異を導入する。点変異を導入したベクターを配列番号32,33のプライマーを用いて増幅し、URA33遺伝子に変異の導入された形質転換断片を得る。スターメレラ ボンビコーラ KSM36を、5mLのYPD Brothを含む100mL容試験管に一白金耳植菌し、30℃、250rpmで24時間培養する。得られた培養液を、YPD Broth50mLを含む坂口フラスコに1%植菌し、30℃、120rpmでOD600=1〜2になるまで培養する。増殖した菌体を3000rpm、4℃で5分間遠心して集菌した後、氷上で冷やした滅菌水20mLで2回洗浄する。菌体を氷冷した1mLの1Mソルビトール溶液に懸濁し、5000rpm、4℃で5分間遠心し、上清を捨てたのち、400μLの1Mソルビトール溶液を加えて氷上におき、ピペッティングで懸濁する。この酵母懸濁液を50μLずつ分注し、形質転換用のDNAを1μg加える。酵母懸濁液を氷冷した0.2cmギャップのチャンバーに移したのち、GENE PULSER II(BIO−RAD)を用いて25uF,350Ω、2.5kVのパルスをかける。氷冷した1Mソルビトール入りYPD Brothを加えて1.5mL容チューブに移し、30℃で2時間振とうした後、5000rpm、4℃で5分間遠心して菌体を回収し、200μLの1Mソルビトール溶液に再懸濁して100μLずつ選択培地に塗抹し、30℃で約1週間培養する。選択培地には、0.68%Yeast Nitrogen Base w/o amino acids、2%グルコース、0.03%ウラシル、および5−フルオロオロチン酸、1.5%Agarを含むSD-UF寒天培地を使用する。生育したコロニーを再度SD−UF寒天培地で培養した後、それぞれについてウラシル要求性、5−フルオロオロチン酸耐性を確認し、ウラシル要求性株を取得することができる。
上記スターメレラ ボンビコーラ KSM36−ura3株を、5mLのYPD Brothを含む100mL容試験管に一白金耳植菌し、30℃、250rpmで24時間培養した。得られた培養液を、YPD Broth50mLを含む坂口フラスコに1%植菌し、30℃、120rpmでOD600=1〜2になるまで培養した。増殖した菌体を3000rpm、4℃で1分間遠心して集菌した後、氷上で冷やした滅菌水20mLで2回洗浄した。菌体を氷冷した1mLの1Mソルビトール溶液に懸濁し、5000rpm、4℃で5分間遠心し、上清を捨てたのち、400μLの1Mソルビトール溶液を加えて氷上におき、ピペッティングで懸濁した。この酵母懸濁液を50μLずつ分注し、形質転換用のDNA(cyp52M1欠損遺伝子断片)を1μg加えた。酵母懸濁液を氷冷した0.2cmギャップのチャンバーに移したのち、GENE PULSER II(BIO−RAD)を用いて25uF,350Ω、2.5kVのパルスをかけた。氷冷した1Mソルビトール入りYPD Brothを加えて1.5mL容チューブに移し、30℃で2時間振とうした後、5000rpm、4℃で1分間遠心して菌体を回収し、200μLの1Mソルビトール溶液に再懸濁して100μLずつ選択培地に塗抹し、30℃で約1週間培養した。選択培地には、0.68% Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids,2% グルコース、0.077% CSM−ura(フナコシ)及び1.5% Agarを含むSD−ura寒天培地を使用した。生育したコロニーを配列番号28、31のプライマーを用いてKOD−FX−Neo(TOYOBO)によりコロニーPCRし、増幅される配列長が変化していることを確認したのち、cyp52M1遺伝子欠損株を得た。
上記スターメレラ ボンビコーラ cyp52M1遺伝子欠損株およびスターメレラ ボンビコーラ KSM36株を、5mLのYPD Brothを含む100mL容試験管に一白金耳植菌し、30℃、250rpmで24時間培養した。得られた培養液を、YPD Broth50mLを含む坂口フラスコに1%植菌し、30℃、120rpmでOD600nm=1〜2になるまで培養した。増殖した菌体を3000rpm、4℃で5分間遠心して集菌した後、氷上で冷やした滅菌水20mLで2回洗浄した。菌体を氷冷した1mLの1Mソルビトール溶液に懸濁し、5000rpm、4℃で1分間遠心し、上清を捨てたのち、400μLの1Mソルビトール溶液を加えて氷上におき、ピペッティングで懸濁した。この酵母懸濁液を50μLずつ分注し、形質転換用のDNA(WcSLI1導入遺伝子断片)を1μg加えた。酵母懸濁液を氷冷した0.2cmギャップのチャンバーに移したのち、GENE PULSER II(BIO−RAD)を用いて25uF,350Ω、2.5kVのパルスをかけた。氷冷した1Mソルビトール入りYPD Brothを加えて1.5mL容チューブに移し、30℃で2時間振とうした後、5000rpm、4℃で1分間遠心して菌体を回収し、200μLの1Mソルビトール溶液に再懸濁して100μLずつ選択培地に塗抹し、30℃で約1週間培養した。選択培地には、0.68% Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids,2% グルコース、0.077% CSM−ura(フナコシ),200μg/mL ハイグロマイシン及び1.5% Agarを含むSD−ura+ハイグロマイシン寒天培地を使用した。生育したコロニーを配列番号13と18又は15と18のプライマーを用いてKOD−FX−Neo(TOYOBO)によりコロニーPCRし、遺伝子がゲノムに挿入されていることを確認したのち、スターメレラ ボンビコーラ cyp52M1欠損株に遺伝子導入したΔcyp52M1/pGAPDH−WcSLI1株(GAPDHプロモータを使用)、Δcyp52M1/pUGT−WcSLI1株(UGTプロモータを使用)、およびスターメレラ ボンビコーラ KSM36株に遺伝子導入したpGAPDH−WcSLI1株、pUGT−WcSLI1株を得た。またコントロールとしてハイグロマイシン耐性遺伝子のみを導入した株を得た。
(1)遺伝子導入株の脂質組成の解析
コントロール株(ハイグロマイシン耐性遺伝子を)、Δcyp52M1/pGAPDH−WcSLI1株、Δcyp52M1/pUGT−WcSLI1株をYPD寒天培地に塗抹し、生育したコロニーを5 mLのSD−Ura培地を含む100mL容試験管に一白金耳植菌し、30℃、250rpmで24時間培養した。得られた培養液 500 μLを5 mLのSD−Ura培地を含む100mL容試験管に植菌し、30℃、250rpmで24〜72時間培養し、脂質の組成を解析した。
培養液を1mL回収後、クロロホルム:メタノール(2:1)混合溶液を4mL添加し、ボルテックスした後、15min静置した。3000rpm、15min遠心し、下層(クロロホルム層)を回収した。回収した液を窒素にて乾固させた後、1mLのメタノールに懸濁、適宜希釈し、フィルターろ過後のサンプルをLCMSにて測定した。LCMSの条件は以下の通りである。
LC条件:Capcell core C18 2.7 umφ2.1×50mm(資生堂)、Oven Temp. 40℃、Sol.A: 0.1% HCO2H in water、Sol.B: MECN、(A60%、B40%) 0.5min→[(A60%、B40%)→(A0%、B100%)5.5min]→B100% 2min、[(A0%、B100%)→(A60%、B40%)0.01min]→(A60%、B40%)2min、Flow rate 0.6ml/min.、Inject 5μl、MS/MS装置:API3200QTrap(AB SCIEX)
表3および表4に、培養72時間目のアセチル化フィトスフィンゴシンの生産量および生産物の割合を示す。
Δcyp52M1/pGAPDH−WcSLI1株をYPD寒天培地に塗抹し、生育したコロニーを5 mLのSD−Ura培地を含む100mL容試験管に一白金耳植菌し、30℃、250rpmで24時間培養した。得られた培養液 100μLを5mLのSD−Ura培地および炭素鎖長C15〜C19の脂肪酸エチルエステルを50mM含む100mL容試験管に植菌し、30℃、250rpmで72時間培養し、実施例2と同様の方法で脂質の組成を解析した。
Δcyp52M1/pGAPDH−WcSLI1株、pGAPDH−WcSLI1株、Δcyp52M1/pUGT−WcSLI1株およびpUGT−WcSLI1株をYPD寒天培地に塗抹し、生育したコロニーを5 mLのYPD培地を含む100mL容試験管に一白金耳植菌し、30℃、250rpmで24時間培養した。得られた培養液 100μLを5mLの改良YPD培地(10% グルコース、10%ヘキサデカン酸エチル、2% Peptone、1% Yeast Extract、25mM CaCl2・2H2O、50mM L−セリン)を含む100mL容試験管に植菌し、30℃、250rpmで7日間培養し、実施例2と同様の方法で脂質の組成を解析した。脂質解析の結果を表7に示す。また、本培養液1mLを2mLのヘキサンで抽出し、ヘキサン層を回収したのち、残った水層に2mLの酢酸エチルを加えて抽出し、酢酸エチル層を回収した。乾燥させた酢酸エチル層の解析からΔcyp52M1/pGAPDH−WcSLI1株およびΔcyp52M1/pUGT−WcSLI1株ではソホロリピッドは生産されず、pGAPDH−WcSLI1株およびpUGT−WcSLI1株ではソホロリピッドが生産されたことを確認した。
(1)導入用断片の作製
配列番号34、35のプライマーを用いてスターメレラ ボンビコーラ KSM36株のゲノムDNAをテンプレートにPCRにてCYP52M1遺伝子の上流部分を増幅させ、配列番号36、37のプライマーで増幅させたプラスミド1とin−Fusion cloning kit(Clontech)を用いて連結することにより、GAPDHプロモーターの前方にCYP52M1遺伝子の上流部分を挿入し、プラスミド1−Aとした。次に配列番号22、25のプライマーを用いてスターメレラ ボンビコーラ KSM36株のゲノムDNAをテンプレートにPCRにてURA3遺伝子のプロモーターおよびターミネータを含む領域を増幅させ、さらに配列番号26、27を用いてプラスミドpUC−Arg7−lox−B ARG7のARG7以外の領域を増幅し、in−Fusion cloning kit(Clontech)を用いてURA3の増幅物と連結した。得られたプラスミドをプラスミド2−Aとした。さらに、配列番号38、39のプライマーを用いてスターメレラ ボンビコーラ KSM36株のゲノムDNAをテンプレートにPCRにてCYP52M1遺伝子の下流部分を増幅させ、配列番号40、41のプライマーを用いて増幅させたプラスミド2−Aをin−Fusion cloning kit(Clontech)を用いて連結することにより、URA3ターミネータの後方にCYP52M1遺伝子の下流部分を挿入し、プラスミド2−Bとした。プラスミド1−Aおよび2−BをCre Recombinase反応によって連結させ、プラスミド4とした。配列番号28、31のプライマーを用いてプラスミド4をテンプレートにPCRにてcyp52M1::pGAPDH−WcSLI1断片を得た。
サッカロマイセス セルビシエ(Saccharomyces cerevisiae)およびピチア パストリス(Pichia pastris)由来SLI1をスターメレラボンビコーラのコドン使用頻度に合わせて人工合成し、それぞれ配列番号8、9の配列を得た。これらをテンプレートに配列番号42、43および44、45のプライマーを用いてPCRし、ScSLI1、およびPpSLI1断片を得た。次にプライマー46、47を用いてプラスミド4をテンプレートにPCRにてWcSLI1以外の領域を増幅した。ScSLI1断片またはPpSLI1断片をプラスミドとin−Fusion cloning kit(Clontech)で連結させ、それぞれプラスミド5、6とした。配列番号28、31のプライマーを用いてプラスミド5または6をテンプレートにPCRにてcyp52M1::pGAPDH−ScSLI1断片、cyp52M1::pGAPDH−PpSLI1断片を得た。
上記スターメレラ ボンビコーラ KSM36−ura3株を、5mLのYPD Brothを含む100mL容試験管に一白金耳植菌し、30℃、250rpmで24時間培養した。えられた培養液を、YPD Broth50mLを含む坂口フラスコに1%植菌し、30℃、120rpmでOD600=1〜2になるまで培養した。増殖した菌体を3000rpm、4℃で5分間遠心して集菌した後、氷上で冷やした滅菌水20mLで2回洗浄した。菌体を氷冷した1mLの1Mソルビトール溶液に懸濁し、5000rpm、4℃で1分間遠心し、上清を捨てたのち、400μLの1Mソルビトール溶液を加えて氷上におき、ピペッティングで懸濁した。この酵母懸濁液を50μLずつ分注し、形質転換用のDNAを1μg加えた。酵母懸濁液を氷冷した0.2cmギャップのチャンバーに移したのち、GENE PULSER II(BIO−RAD)を用いて25uF,350Ω、2.5kVのパルスをかけた。氷冷した1Mソルビトール入りYPD Brothを加えて1.5mL容チューブに移し、30℃で2時間振とうした後、5000rpm、4℃で1分間遠心して菌体を回収し、200μLの1Mソルビトール溶液に再懸濁して100μLずつ選択培地に塗抹し、30℃で約1週間培養した。選択培地には、0.68% Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids,2% グルコース、0.077% CSM−ura(フナコシ)及び1.5% Agarを含むSD−ura寒天培地を使用した。生育したコロニーを配列番号28,31のプライマーを用いてKOD−FX−Neo(TOYOBO)によりコロニーPCRし、増幅される配列長が変化していることを確認したのち、cyp52M1::pGAPDH−WcSLI1株、cyp52M1::pGAPDH−ScSLI1株、cyp52M1::pGAPDH−PpSLI1株を得た。実施例4において使用したプライマーを表8にまとめる。
実施例4で得られた3株およびcyp52M1欠損株をYPD寒天培地に塗抹し、生育したコロニーを5 mLのSD−Ura培地を含む100mL容試験管に一白金耳植菌し、30℃、250rpmで24時間培養した。得られた培養液 100μLを5mLのSD−Ura培地を含む100mL容試験管に植菌し、30℃、250rpmで120時間培養し、実施例2と同様の方法で脂質の組成を解析した。表9および表10として培養120時間目におけるC18〜C20アセチル化フィトスフィンゴシン生産量および生産物の割合を示す。
Claims (10)
- スフィンゴイドをアセチル化する活性を有するポリペプチドをコードする異種生物由来の遺伝子が導入されたスターメレラ属微生物を培養する、アセチル化スフィンゴイドの製造方法。
- スフィンゴイドをアセチル化する活性を有するポリペプチドが以下の(a)〜(i)から選ばれるアミノ酸配列からなる、請求項1記載のアセチル化スフィンゴイドの製造方法。
(a)配列番号2に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(b)配列番号2で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(c)配列番号2に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。
(d)配列番号4に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(e)配列番号4で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(f)配列番号4に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。
(g)配列番号6に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(h)配列番号6で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(i)配列番号6に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。 - スターメレラ属微生物が、スターメレラ ボンビコーラである請求項1又は2記載の製造方法。
- スフィンゴイドの炭素鎖長が19又は20である請求項1〜3のいずれか1項記載の製造方法。
- アセチル化スフィンゴイドがアセチル化フィトスフィンゴシンである請求項1〜4のいずれか1項記載の製造方法。
- 培地に、ペンタデカン酸アルキルエステル又はヘプタデカン酸アルキルエステル又はノナデカン酸アルキルエステルを添加し、スフィンゴイドの炭素鎖長が19であるアセチル化スフィンゴイドを製造する請求項1〜5のいずれか1項記載の製造方法。
- 培地に、オクタデカン酸アルキルエステルを添加し、スフィンゴイドの炭素鎖長が20であるアセチル化スフィンゴイドを製造する請求項1〜5のいずれか1項記載の製造方法。
- スフィンゴイドをアセチル化する活性を有するポリペプチドをコードする異種生物由来の遺伝子が導入されたスターメレラ属微生物。
- スフィンゴイドをアセチル化する活性を有するポリペプチドが以下の(a)〜(i)から選ばれるアミノ酸配列からなる、請求項8記載のスターメレラ属微生物。
(a)配列番号2に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(b)配列番号2で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(c)配列番号2に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。
(d)配列番号4に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(e)配列番号4で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(f)配列番号4に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。
(g)配列番号6に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(h)配列番号6で示されるアミノ酸配列において1〜数個のアミノ酸残基が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(i)配列番号6に示すアミノ酸配列と80%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチド。 - スターメレラ ボンビコーラである請求項8又は9記載のスターメレラ属微生物。
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