JP2015117181A

JP2015117181A - 敗血症治療剤

Info

Publication number: JP2015117181A
Application number: JP2012035965A
Authority: JP
Inventors: 藤秀次佐; Hidetsugu Sato; 藤武後; Takeshi Goto; 森直哉大; Naoya Omori; 貴真江; Takamasa Ko; 田弥生島; Yayoi Shimada
Original assignee: Josai University
Current assignee: Josai University
Priority date: 2012-02-22
Filing date: 2012-02-22
Publication date: 2015-06-25
Also published as: CN104379165B; WO2013125687A1; EP2815763A4; CN104379165A; TWI605059B; EP2815763A1; EP2815763B1; IN2014DN07875A; TW201350502A; KR102159412B1; KR20140138699A; US20170096478A1; US20150079090A1

Abstract

【課題】新規な敗血症治療剤の提供。
【解決手段】ＳＳＶＬＹＧＧＰＰＳＡＡ（配列番号１）で表わされるアミノ酸配列からなるペプチドまたは該ペプチドと薬学上許容可能な担体との結合体と結合する、モノクローナル抗体またはその抗原結合断片を含んでなる、敗血症治療剤を用いる。
【選択図】図７

Description

本発明は、モノクローナル抗体またはその抗原結合断片を有効成分とする、新規な敗血症治療剤に関する。

敗血症は感染症、肝硬変、腎不全、糖尿病、異常分娩といったような疾病や、留置カテーテル、輸液器具、透析、気管切開といったようなケガや病気に対する治療が原因となって、細菌感染巣から絶えずまたは断続的に細菌が血液に侵入してくる重症全身性感染症である。また敗血症は、広く微生物による宿主の侵襲に限定されるものではなく、感染症の臨床的症状、つまり（１）体温＞３８℃ないし＜３６℃；（２）心拍数＞９０拍／分；（３）呼吸数＞２０呼吸／分ないしＰａＣＯ２＜３２ｍｍＨｇ；（４）白血球数＞１２０００／μｌ、＜４０００／μｌ、ないし桿状核好中球＞１０％のうち2項目以上を満たす病態を定義している。最近ではこのような症状を示す病態は全身性炎症反応症候群（Ｓｙｓｔｅｍｉｃｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙｒｅｓｐｏｎｓｅｓｙｍｄｒｏｍｅ：ＳＩＲＳ）と呼ばれている（非特許文献１：Ｃｒｉｔ．ＣａｒｅＭｅｄ．，２０：８６４−８７４，１９９２）。さらに敗血症は臓器機能障害、低潅流あるいは低血圧を合併して重症敗血症、乳酸性アシドーシス、乏尿、意識障害を合併する敗血症性ショックなども包含する（非特許文献２：Ｃｈｅｓｔ，１０１：１６４４−１６５５，１９９２）。そして病態は重症敗血症、敗血症ショックから、播種性血管内凝固症候群（ＤＩＣ）、成人呼吸窮迫症候群（ＡＲＤＳ）、多臓器機能障害（ＭＯＤＳ）を招来する。

このような敗血症の原因菌としてはブドウ球菌、レンサ球菌、大腸菌、緑膿菌、クレブシエラ、エンテロバクターなどが主に認められる。これらの細菌感染により高熱、悪寒、頻脈、強い全身症状を示し、しばしば、動・静脈血、髄液、骨髄液に感染菌が確認されるようになる。

近年では、各種の強力な抗生物質の開発によりこれらの菌を原因とした敗血症は少なくなってきているが、ＭＲＳＡを代表とする耐性遺伝子を獲得した新たな病原菌による敗血症が増加している。また留置カテーテルや輸液器具を用いた処置、あるいは人工透析、気管切開等の侵襲的処置・手術の汎用を反映して、敗血症の発生は大病院ほど増加傾向にある。更に感染に対して抵抗力の低い新生児、高齢者、造血器腫瘍患者での発症頻度、および副腎皮質ホルモンや抗癌剤を投与し、免疫力が低下した患者での敗血症の発症頻度が増加している。これらのことから敗血症は医療の進歩とは裏腹に増加し続けている。

このような敗血症の予防・治療方法として、現在は、原因菌を検出しその抗生物質感受性を測定してから、起因菌に対して最適な抗生物質を投与するとともに、補液、電解質補正、低タンパク血症の改善、栄養の補給、γ−グロブリンの投与といったような、宿主の防衛力につとめる方法などが知られる。また、不幸にしてショックにおちいった場合は、外科手術による病巣の除去、循環障害の改善、オプソニン活性化物質の投与、副腎皮質ホルモンの投与、合成プロテアーゼ阻害剤の投与といった処置がなされている。しかしながら、基礎疾患の症状と敗血症の症状がオーバーラップしているために、明確な診断がなされにくく、敗血症の予防・治療に困難をきたす場合もしばしばみられる。さらに敗血症性ショックなどにおちいった場合は、その予防・治療は困難であり、敗血症は現在においても高い死亡率をきたす疾患である。

敗血症の死亡率は１０％〜２０％台から５０％まで報告により異なる。敗血症ショックは敗血症例の４０％に合併し、ショック例の予後は不良で７７〜９０％の死亡率の報告もある。それゆえ、敗血症性ショックの予防が治療の第一目標になり、特にショックの初期段階に起こる変化を把握し早期診断が出来れば、早期治療が可能となり予後の改善が期待できる。しかしこれまで、多くの有効と考えられる抗ショック薬や治療法の臨床効果が検討されてきたが、そこで有効と判定されるものはほとんどなかった。

敗血症は、感染刺激（菌自体、エンドトキシンやペプチドグリカン/タイコ酸複合体の細胞壁成分および外毒素など）により単球、マクロファージ、血管内皮細胞などから過剰に産生される腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）、インターロイキン1（ＩＬ−１）、インターロイキン6（ＩＬ−６）およびインターロイキン8（ＩＬ−８）などの炎症性サイトカインが原因で発症すると考えられてきた。過剰に産生された炎症性サイトカインにより、エイコサノイドや血小板活性化因子の脂質メディエーターも放出され、それらの相互作用によりサイトカインネットワークが活性化されて炎症反応が増幅する。この過程の中で、補体系、凝固系、キニン系、副腎皮質刺激ホルモン/エンドルフィン系も活性化され、血管内皮障害を基礎病態とする全身性の炎症反応が惹起される。特に循環障害や組織障害の発現には顆粒球由来のエラスターゼや活性酸素の関与が示されている。

そのため炎症性サイトカインを阻害するような物質の投与等に代表される炎症性サイトカイン抑制療法の臨床治験が数多く行われてきた。しかしそれらは全くの失敗に終わっている（非特許文献３：Ｌａｎｃｅｔ，３５１：９２９−９３３，１９９８、ＪＡＭＡ，２７１：１８３６−１８４３，１９９４）。

このような種々の治療方法が検討されているにもかかわらず、敗血症の死亡率は依然として高いままであり、効果的な治療薬もほとんど無い。その理由は敗血症の病態が未だ完全には理解されていないことにある（非特許文献４：Ｎａｔｈ．Ｊ．Ｍｅｄ．，５５：１３２−１４１，１９９９）。したがって、優れた敗血症治療剤を創出することが依然として求められている。

Ｃｒｉｔ．ＣａｒｅＭｅｄ．，２０：８６４−８７４，１９９２Ｃｈｅｓｔ，１０１：１６４４−１６５５，１９９２Ｌａｎｃｅｔ，３５１：９２９−９３３，１９９８、ＪＡＭＡ，２７１：１８３６−１８４３，１９９４Ｎａｔｈ．Ｊ．Ｍｅｄ．，５５：１３２−１４１，１９９９

本発明者らは、今般、ＳＳＶＬＹＧＧＰＰＳＡＡ（配列番号１）で表わされるアミノ酸配列からなるペプチドを特異的に認識しうるモノクローナル抗体またはその抗原結合断片が、優れた敗血症治療効果を奏することを見出した。本発明はかかる知見に基づくものである。
したがって、本発明は、新規な敗血症治療剤の提供を目的とする。

そして、本発明によれば、ＳＳＶＬＹＧＧＰＰＳＡＡ（配列番号１）で表わされるアミノ酸配列からなるペプチドまたは該ペプチドと薬学上許容可能な担体との結合体と結合するモノクローナル抗体または抗原結合断片を含んでなる、敗血症治療剤が提供される。

本発明のモノクローナル抗体または抗原結合断片によれば、敗血症を効果的に治療することができる。

本発明のモノクローナル抗体（以下、「SSVmAb」ともいう）のアイソタイプの同定試験の結果を示す。本発明のモノクローナル抗体（SSVmAb）に関して、ヒストンH１、ヒストンH2A、H2B、H3またはH4への結合親和性を比較した試験の結果を示す。参考例；受託番号ＦＥＲＭＢＰ−１０４１３のもと寄託されたハイブリドーマ16G9の産生するモノクローナル抗体（以下、「16G9mAb」ともいう）に関して、ヒストンH１、ヒストンH2A、H2B、H3またはH4への結合親和性を比較した試験の結果を示す。本発明のモノクローナル抗体（SSVmAb）および16G9mAbを用いた混合リンパ球反応（ＭＬＲ）試験の結果を示す。本発明のモノクローナル抗体（SSVmAb）および16G9mAbのT細胞に対する反応性をフローサイトメトリーにより比較した結果を示す。 Aは、本発明のモノクローナル抗体（SSVmAb）および対照試薬（Isotype IgG1）に関する、ATP合成酵素をsiRNAによりノックダウンしていない脾臓細胞を用いたＭＬＲ試験の結果を示す。Bは、本発明のモノクローナル抗体（SSVmAb）および対照試薬（Isotype IgG1）に関する、ATP合成酵素をsiRNAによりノックダウンした脾臓細胞を用いたＭＬＲ試験の結果を示す。本発明のモノクローナル抗体（SSVmAb）が敗血症モデルにおける動物の生存率を高めることを示す図である。

発明の具体的説明

寄託
本発明のハイブリドーマMouse-Mouse hybridoma SSV-C93-3は、原寄託日を２０１０年８月１７日として、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（住所：日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8バイオテクノロジー本部）において、受託番号NITE BP-972のもと寄託されている。

モノクローナル抗体およびハイブリドーマ
本発明のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片は、ＳＳＶＬＹＧＧＰＰＳＡＡ（配列番号１）で表わされるアミノ酸配列からなるペプチドまたは該ペプチドと薬学上許容可能な担体との結合体と結合することを一つの特徴としている。かかるモノクローナル抗体またはその抗原結合断片が、優れた敗血症治療効果を奏することは意外な事実である。

本発明の好ましい態様によれば、上記抗体またはその抗原結合断片は、ＳＳＶＬＹＧＧＰＰＳＡＡ（配列番号１）で表わされるアミノ酸配列からなるペプチドまたは該ペプチドと薬学上許容可能な担体に対するものである。

また、本発明の一つの態様によれば、上記抗体またはその抗原結合断片は、リンカーヒストン（ヒストンH１）に対する結合親和性よりも、コアヒストン対する結合親和性が高い。

また、本発明の好ましい態様によれば、コアヒストンは、ヒストンH2A、H2B、H3またはH4であり、より好ましくはH2A、H3またはH4である。

また、本発明の抗体またはその抗体結合断片は、重鎖および／または軽鎖を含むことができる。各軽鎖および重鎖はそのN-末端に可変領域を有することができ、各可変領域では４つのフレームワーク領域(framework region)(FR)と、３つの相補性決定領域(CDR)とを交互に含んでいてよい。可変領域中の残基はKabatらによって考えられた系に従って慣用的に番号付けられている。この系はKabatら、1987、Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Departement of Health and Human Services, NIH,USAに述べられている。特に示さない限り本明細書でこの番号付け体系が使用される。このようなKabatらの方法に基づく番号付けは、例えば、Webサイトhttp://www.bioinf.org.uk/abysis/tools/analyze.cgiを用いて簡易に行うことができる。

Kabat残基命名法はアミノ酸残基の直線的番号付けと必ずしも直接一致しない。実際の直線的アミノ酸配列は、基本可変領域構造の構造的要素、フレームワークまたはCDRのいずれにせよ、その短縮または挿入に対応して、厳格なKabat番号付けにおけるよりも少ないまたは追加のアミノ酸を有することがある。残基の正確なKabatの番号付けは、与えられた抗体について、「標準的」Kabat番号付けされた配列と抗体の配列中の相同性残基を整列させることによって決定されるであろう。

一つの態様によれば、本発明の抗体またはその抗原結合断片の軽鎖可変領域は、ＲＡＳＳＳＶＳＹＭＨ（配列番号２）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ１、ＡＴＳＮＬＡＳ（配列番号３）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ２、およびＱＱＷＳＳＮＰＷＴ（配列番号４）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３を含んでなる。さらに好ましい態様によれば、上記軽鎖可変領域は、配列番号６の第２３番〜第１２８番で表されるアミノ酸配列を含んでなる。

また、別の態様によれば、本発明の抗体またはその抗原結合断片の重鎖可変領域は、ＧＹＮＭＮ（配列番号７）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ１、ＮＩＮＰＹＹＧＳＴＳＹＮＱＫＦＫＧ（配列番号８）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ２、およびＳＰＹＹＳＮＹＷＲＹＦＤＹ（配列番号９）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３を含んでなる。さらに好ましい態様によれば、上記重鎖可変領域は、配列番号１１の第２０番〜第１４１番で表されるアミノ酸配列を含んでなる。

また、本発明のより一層好ましい態様によれば、本発明の抗体またはその抗原結合断片は、ＲＡＳＳＳＶＳＹＭＨ（配列番号２）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ１、ＡＴＳＮＬＡＳ（配列番号３）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ２、およびＱＱＷＳＳＮＰＷＴ（配列番号４）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３を含んでなる軽鎖可変領域と、ＧＹＮＭＮ（配列番号７）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ１、ＮＩＮＰＹＹＧＳＴＳＹＮＱＫＦＫＧ（配列番号８）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ２、およびＳＰＹＹＳＮＹＷＲＹＦＤＹ（配列番号９）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３を含んでなる重鎖可変領域を含んでなる重鎖可変領域とを含んでなる。

また、本発明のより一層好ましい態様によれば、本発明の抗体またはその抗原結合断片は、配列番号６の第２３番〜第１２８番で表されるアミノ酸配列を含んでなる軽鎖可変領域と、配列番号１１の第２０番〜第１４１番で表されるアミノ酸配列を含んでなる重鎖可変領域とを含んでなる。

また、本発明の好ましい態様によれば、上記モノクローナル抗体またはその抗原結合断片は、ATP合成酵素活性をダウンレギュレーションすることができる。また、本発明のより好ましい態様によれば、上記ATP合成酵素はミトコンドリアのATP合成酵素である。

本発明のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片の上記結合親和性およびATP合成酵素活性のダウンレギュレーション活性は、例えば、本願明細書の試験例２および４に記載の手法により確認される。

また、本発明のモノクローナル抗体は、好ましくは、キメラ抗体、ヒト型化抗体または完全ヒト型抗体である。これら抗体は、例えば、Morrison,S.L., Oi, V.T., “immunoglobulin genes” Academic Press(London), 260-274(1989)、Roguska, M.L. et. Al., Humanization of murine monoclonal antibodies through variable domain resurfacing, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 91, 969-973(1994)、Tomizuka, K. et.al. Functional expression and germline transmission of a human chromosome fragment in chimaeric mice, Nature Genet., 16, 133-143(1997)、Winter, G. et.al., Making antibodies by phage display technology, Ann. Rev. Immunol., 12, 433-455(1994)、Griffiths, A.D. et. al., Isolation of high affinity human antibodies directly from large synthetic repertoires, EMBO. J., 13, 3245-3260(1994)等に記載の当該技術分野の公知技術に基づき、当業者は製造することができる。

また、本発明の好ましい態様によれば、上記抗原結合断片は、好ましくは、Fab、Fab’、（Fab’）_２、FvまたはscFvである。

また、本発明の別の好ましい態様によれば、上記モノクローナル抗体またはその抗原結合断片は、ハイブリドーマはMouse-Mouse hybridoma SSV-C93-3により産生されたものである。

本発明のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片、およびハイブリドーマは、例えば、次のようにして製造することができる。すなわち、まず、本発明のハイブリドーマは、ＳＳＶＬＹＧＧＰＰＳＡＡ（配列番号１）で表わされるアミノ酸配列からなるペプチドまたは該ペプチドと薬学上許容可能な担体との結合体を感作抗原として使用し、この感作抗原にて免疫した哺乳動物の形質細胞（免疫細胞）を、哺乳動物のミエローマ細胞と融合させ、得られるハイブリドーマをクローニングし、そのハイブリドーマ中から選別することによりを得ることができる。そして、本発明のモノクローナル抗体は、本発明のハイブリドーマを培養し、これが産生する抗体を回収することにより得ることができる。

哺乳動物を免疫する方法としては、当該技術分野における一般的投与法を用いることができ、具体的には、腹腔内注射、脾臓内注射、筋肉内注射、皮下注射、皮内注射、経口投与、経粘膜投与、経皮投与などを挙げることができるが、好ましくは腹腔内注射、脾臓内注射である。感作抗原の投与間隔は、感作抗原の投与量および哺乳動物の種類などに応じて適宜決定されるが、例えば、１ヶ月間に数回毎とすることができる。

免疫される哺乳動物は、特に限定されないが、細胞融合に使用するミエローマ細胞との適合性などを考慮して選択することが好ましく、例えば、マウス、ラット、ハムスターなどを挙げることができるが、好ましくはマウスである。
また、免疫細胞としては、好ましくは脾細胞を使用する。

本発明に用いるミエローマ細胞としては、例えば、Ｐ３（Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８．６５３）（J．Immunol., 123，1548, 1978）、ｐ３−Ｕ１（Current Topics in Micro-biology and Immunology, 81, 1-7,1978）、ＮＳ−１（Eur. J. Immunol., 6，511-519, 1976）、ＭＰＣ−１１（Cell, 8, 405-415, 1976）、Ｓｐ２／０−Ａｇ１４（Nature, 276, 269-270, 1978）、ＦＯ（J. Immunol. Meth．，35, 1-21, 1980）、Ｓ１９４（J. Exp. Med., 148, 313-323, 1978）、およびＲ２１０（Nature, 277, 131-133, 1979）などが挙げられるが、好ましくはＰ３またはｐ３−Ｕ１であり、より好ましくはＰ３である。

免疫細胞とミエローマ細胞との細胞融合は、例えば、ミルシュタインら（Milstein et. al．）の方法（Methods Enzymol., 73, 3-46, 1981）などに準じて行うことができる。具体的には、細胞融合は、例えば、融合促進剤の存在下、培地中にて免疫細胞とミエローマ細胞とを混合することにより実施することができる。そして、細胞融合において、適宜培地を添加して遠心分離する操作を繰り返してハイブリドーマを生成することができる。

細胞融合に用いる培地としては、例えば、ＲＰＭＩ−１６４０培地、ＭＥＭ培地などの細胞融合において通常使用される培地が挙げられる。また、牛胎児血清（ＦＢＳ）などの血清補液を適宜併用することができる。
また、細胞融合温度は、好ましくは２５〜３７℃であり、より好ましくは３０〜３７℃である。
また、ミエローマ細胞と免疫細胞との混合比率は、好ましくは１：１〜１：１０程度である。

融合促進剤としては、例えば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、センダイウイルス（ＨＶＪ）などを挙げることができるが、好ましくはＰＥＧである。ＰＥＧの分子量は適宜選択することができ、例えば、平均分子量１，０００〜６，０００程度とすることができる。また、培地中のＰＥＧの濃度は、好ましくは約３０〜６０％（Ｗ／Ｖ）である。
また、所望によりジメチルスルホキシドなどの補助剤を培地に適宜添加することができる。

本発明のハイブリドーマの選択は、細胞融合により得られるハイブリドーマを、例えば、ＨＡＴ培地などの通常の選択培地にて培養し、通常の限界希釈法を用い、例えば、ＳＳＶＬＹＧＧＰＰＳＡＡ（配列番号１）で表わされるアミノ酸配列からなるペプチドまたは該ペプチドと薬学上許容可能な担体との結合体に対する抗体価など指標としてスクリーニングすることにより実施することができる。ＨＡＴ培地による培養期間は、目的とするハイブリドーマ以外の細胞（未融合細胞）が死滅するのに充分な時間であり、通常、数日〜数週間とすることができる。このようにして得られる本発明のハイブリドーマは、通常の培地で継代培養することが可能であり、また、液体窒素中で長期保存することができる。

また、本発明のモノクローナル抗体またはその抗体結合断片を回収する方法としては、例えば、ハイブリドーマを常法に従って培養してその培養上清からモノクローナル抗体等を得る方法、またはハイブリドーマをこれと適合性のある哺乳動物に投与して増殖させその腹水からモノクローナル抗体等を得る方法などを挙げることができる。ここで、前者の方法は高純度の抗体を得るのに好ましく、一方、後者の方法は抗体を大量に生産にするのに好ましい。

さらに、本発明のモノクローナル抗体またはその抗体結合断片は、塩析法、ゲル濾過法、アフィニティークロマトフラフィーなどの方法により、高純度に精製することができる。

本発明のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片は、上述の通り、優れた敗血症治療効果を有している。したがって、本発明の別の態様によれば、敗血症治療剤の製造における、本発明のモノクローナル抗体の使用が提供される。本発明のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片は、そのまま用いてもよく、薬学的に許容される添加剤などとともに、医薬組成物として用いてもよい。したがって、本発明の一つの態様によれば、本発明のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片を含んでなる、医薬製剤が提供される。

本発明の敗血症治療剤は、例えば、本発明のモノクローナル抗体を、注射用生理食塩水、注射用蒸留水、注射用緩衝溶液などに溶解して調製することができる。さらに、本発明の免疫抑制用組成物には、適当な溶剤、溶解補助剤、保存剤、安定剤、乳化剤、懸濁剤、無痛化剤、等張化剤、緩衝剤、賦形剤、増粘剤、着色剤、公知のキャリア（各種リポソーム、ポリアミノ酸キャリア、合成高分子、天然高分子など）などを含有させることができる。

また、本発明の別の態様によれば、有効量の本発明のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片を投与することを含んでなる、敗血症の治療方法が提供される。ここで、「治療」とは、確立された病態を改善することを意味する。また、本発明の別の態様によれば、被検体の敗血症の発生リスクを軽減する方法であって、有効量の本発明のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片を、被検体に投与することを含んでなる、方法が提供される。

また、本発明のモノクローナル抗体またはその抗原結合断は、顕著な免疫抑制作用を奏することができる。敗血症治療に用いうる上記モノクローナル抗体またはその抗原結合断が、免疫抑制作用も生じうることは意外な事実である。したがって、一つの態様によれば、本発明のモノクローナル抗体またはその抗原結合断は、免疫抑制剤として用いられる。

また、一つの態様によれば、上記被検体としては、好ましくは哺乳動物であり、より好ましくはヒトである。

また、本発明のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片は、敗血症に用いられる他の薬剤と組み合わせて同時または逐次に哺乳動物に投与してもよい。

また、本発明のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片は、全身的または局所的に投与することができ、具体的な投与方法としては、点滴、静脈内注射、筋肉内注射、皮下注射、皮内注射、経口投与、経粘膜投与、経皮投与などが挙げられる。

また、本発明のモノクローナル抗体または抗原結合断片の有効量は、特に限定されず、被検体の種類、性質、性別、年齢、症状等に応じて当業者によって、適宜決定される。例えば、かかる有効量としては、０．０５〜４０ｍｇ／体重ｋｇ／日、好ましくは２〜１０ｍｇ／体重ｋｇ／日を１回または数回等が挙げられる。

以下、実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。

実施例１：モノクローナル抗体(SSVmAb)の製造
抗原物質の製造
抗原物質としては、配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるペプチドおよびＫＬＨの結合体を使用した。

抗原物質の調製においては、まず、配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるペプチドは、Ｆｍｏｃペプチド固相合成法（製造装置；ABI４３０型アプライバイオシステムズ社製）により合成した。さらに、上記ペプチドおよびＫＬＨ（ＳＩＧＭＡ社製）の結合体は、上記ペプチド５ｍｇ、ＫＬＨ約２０ｍｇおよびグルタルアルデヒド３０μｇ（片山化学工業株式会社）をリン酸緩衝液（pH 8.0）中、室温で約６時間撹拌して合成した。

ハイブリドーマの製造
免疫
ＰＢＳ中に抗原物質を溶解させた溶液０．８ｍＬ（抗原物質濃度：０．５ｍｇ／ｍＬ）とフロイトコンプリートアジュバンド（和光純薬株式会社製）０．８ｍＬとを混合し、懸濁液（抗原濃度：０．２５ｍｇ／ｍＬ）を得た。次に、この懸濁液０．２ｍＬをBALB/cマウスに腹腔内投与した。さらに、この懸濁液を２週間毎に同量にてマウスに投与した。そして、投与開始から１６週間後、ＰＢＳ中抗原を溶解させた溶液０．２ｍＬ（抗原濃度：６００〜１０００ｍｇ/ｍＬ）をマウス腹腔内へ最終投与した。なお、投与の際には、眼底静脈より採血を行ってＥＬＩＳＡにより抗体価を測定した。最終投与の４日後、全採血を行い、得られた血液を遠心分離（２０００ｒｐｍ、２０分）し、抗血清を得て以下の実験のコントロール抗血清として用いた。また、全採血後、ラットより脾臓を摘出し、得られた脾細胞を以下の細胞融合に用いた。

細胞融合
上記の脾細胞およびミエローマ細胞（P3X63-Ag.8.653）を脾細胞：ミエローマ細胞＝１０：１〜１０にて混合して遠心分離（１５００ｒｐｍ，５分）した。遠心分離した後、アスピレーターを用いて上清を除去し、得られた細胞ペレットに３７℃のポリエチレングリコール4000（５０％ＰＢＳ溶液）１ｍＬを１分間かけて添加して混合液とした。この混合液を３７℃にて１分間静置した後、３７℃のＩＭＤＭ培地（計９ｍＬ）を３０秒毎に1 ｍＬずつ加えた後、遠心分離（１５００ｒｐｍ、５分）した。遠心分離後、上清を吸引除去し、３７℃の１５％ＦＣＳ（JRH BIOSCIENCES製）含有ＩＭＤＭ（GIBCO製）培地を適量添加した。得られた懸濁液を９６ウェル培養プレートに１００ｍＬずつ分注を行い、３７℃／５％ＣＯ_２インキュベーターにて１日培養した。さらにＨＡＴ培地（ＨＡＴ粉末（HAT MEDIA SUPPLEMENT（×50）、SIGMA製)を無血清ＩＭＤＭ培地１０ｍＬに溶かし、１０％ＦＣＳ含有ＩＭＤＭ培地にて５０倍希釈したものである。）を１００ｍＬ添加し、３７℃／５％ＣＯ_２インキュベーターにて培養した。ＨＡＴ培地の交換は２〜３日毎に行い、１０日後にはＨＴ培地（ＨＴ粉末（HT MEDIA SUPPLEMENT、SIGMA製)を無血清ＩＭＤＭ培地１０ｍＬに溶かし、１０％ＦＣＳ含有ＩＭＤＭ培地にて５０倍希釈したものである。）に切り替え、３日間、３７℃／５％ＣＯ_２インキュベーターにて培養を行った。以後２〜３日ごとに培地(ＨＴ培地)の交換を行った。細胞増殖を顕微鏡により確認した後、培養上清（約100 ｍＬ）を回収した。この培養上清を用いて、抗体価測定によるハイブリドーマのスクリーニングを行った。

ハイブリドーマ細胞のスクリーニング
抗体価測定
上記抗原物質（５ｍｇ）を含む緩衝液（Baicarbonate buffer：100 mM NaHCO₃-NaOH、ｐＨ９．２〜９．５、ペプチド濃度：１μｇ/ｍＬ) を１ウェル当り５０μＬずつ９６ウェル平底プレートへ添加し、室温にて２時間静置してコーティングした。プレートを洗浄バッファー（ＰＢＳＴ）にて３回洗浄し、ブロッキングバッファー（３％スキムミルク１％ＢＳＡ、ＰＢＳ）を２００〜２５０μＬ/ウェルにて加え、４℃にて一昼夜反応させた後、３回洗浄した。そして、ハイブリドーマの培養上清を１００μＬ/ウェルにて加え、３７℃にて４時間または４℃にて一昼夜反応させた。プレートを３回洗浄した後、希釈バッファー（10 mM Tris-HCl ( pH 8.0 )、0.9 % ( W/V ) NaCl、0.05 % ( W/V ) Tween20）にて１００００倍希釈したビオチン標識抗マウスＩｇＧ（Biotion-labeled anti-mouse IgG 、SIGMA)を５０μＬ/ウェルにて加え、室温にて２時間反応させた。その後６回洗浄した後、希釈バッファーにて１０００倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識ストレプタリジン（Streptaridin）を５０μＬ/ウェルにて加え、室温にて１〜２時間反応させた。その後６回洗浄を行い、蛍光基質バッファー（Attophos substrate buffer、ロシュダイアグノスティックス社製）を５０μＬ/ウェル加えてプレートを遮光し発色させた。蛍光強度はCytoFluorII（パーセプティブ社製）にて測定した。

ハイブリドーマの選別
上記抗体価測定にて陽性の結果を示したウェル（１×１０^５細胞／ｍＬ）に１５％ＦＣＳ１０％ＨＣＦ（Hybridoma cloning factor、オリジン社製）含有ＩＭＤＭ培地を加えて、約２００細胞／ウェルとなるように９６ウェル培養プレートに分注し、３７℃５％ＣＯ_２インキュベーターにて培養を行った。そして、上記と同様に抗体価測定を行い、抗体産生量の多いハイブリドーマを選択した。

さらに限界希釈を行い、選択したハイブリドーマが０．５〜１細胞／ウェルになるように１５％ＦＣＳ１０％ＨＣＦ含有ＩＭＤＭ培地で希釈し、３７℃／５％ＣＯ_２インキュベーターにて約３〜４日間培養した後、上記と同様に抗体価測定を行い、抗体産生量の多いハイブリドーマを選択した。さらに限界希釈を繰り返し、上記抗原物質に対するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを得た。このうち、抗体価が最も高いハイブリドーマを選択してMouse-Mouse hybridoma SSV-C93-3と命名した。

モノクローナル抗体の取得
ハイブリドーマMouse-Mouse hybridoma SSV-C93-3は、１５％ＦＣＳ含有ＲＰＭＩ培地を用いて培養した（１×１０^６細胞／ｍＬ）。次に、ハイブリドーマ培養液を回収し、死細胞片を除くためにフィルターでろ過した。次に、終濃度４０％となるように、培養上清に硫酸アンモニウムを加え、４０℃で１時間撹拌した。次に、遠心分離（3000g、30分、４℃）を行い、上清を捨て沈殿を回収した。この沈殿を上記培養上清の１/１０量のPBSで溶解し、PBSを外液として一晩透析した。
次に、上記沈殿を２０mMリン酸ナトリウム緩衝液（pH７．０）で２倍希釈し、1Mトリス-HCｌ緩衝液とともに、HiTrapNHS活性化カラムに添加した。さらに、0.1Mグリシン−HCl溶液(pH2.7)で抗体の溶出し、フラクションチューブに回収した。

試験例１：SSVmAbのアイソタイプの同定
実施例１のモノクローナル抗体(SSVmAb)のアイソタイプを同定するため、Mouos Monoclonal Antibody Isotyping Reagents（シグマ）を用いたアイソタイプ同定試験を行った。
結果は、図１に示される通りであり、IgG1が最も高い値を示した。

また、マウスIgG1（eBioscience社）および実施例１のモノクローナル抗体(SSVmAb)を２−メルカプトエタノールで還元し、SDS-PAGEで処理したところ、いずれも同様の位置 (50 KD、25KD)に重鎖および軽鎖に相当するバンドが確認された。一方、マウスIgG1の代わりにマウスIgM（eBioscience社）を用いて同様の実験を行ったところ、同様のバンドは確認されなかった。
図１およびSDS-PAGEの結果から、実施例１のモノクローナル抗体(SSVmAb)のアイソタイプはIgG1であることが確認された。

試験例２： SSVmAbのコアヒストンに対する親和性の確認
ＷＯ２００６／０２５５８０号公報には、免疫抑制に用いることができ、配列番号１で表わされるアミノ酸配列からなるペプチドと結合する抗H1モノクローナル抗体として、ハイブリドーマ16G9（受託番号ＦＥＲＭＢＰ−１０４１３）の産生するモノクローナル抗体(16G9mAb)が報告されている。
そこで、ＷＯ２００６／０２５５８０号公報に記載の抗体(16G9mAb)を参考例１とし、実施例１のモノクローナル抗体(SSVmAb)との抗原に対する親和性の比較を行った。
抗原としては、参考例１（16G9mAb）の抗原であるヒストンH1、およびヒストンH1類似抗原であるコアヒストンH2A、H2B、H3およびH4を選択した。

ヒストンH1またはコアヒストンと、SSVmAbとの親和性をELISAで決定した。
96wellマイクロプレートをヒストンH1、H2A、H2B、H3またはH4でコートした。それぞれのヒストンは、100mM炭酸ナトリウム緩衝液(pH9.3)に溶解させたものを用いた。そのプレートをPBS-tween20(0.05%)で洗浄し、3%スキムミルクと1%BSAで１時間ブロッキングした。SSVmAb 5μg/mLを各wellに添加し、1時間インキュベーションした。結合したSSVmAbをペルオキシダーゼ（HRP）コンジュゲートanti mouse IgG1 Ab（シグマ）を用いて検出し、１時間インキュベーションした。結合したSSVmAbをABTS[2,2’-azino-bis（3-ethylbenzothiazoline-sulfonic acid) ]基質溶液を用いた検出し、Multiskan Ascent(Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, MA)を用いて405nmの吸光度を測定した。

結果は、図２および３に示される通りであった。
図２に示される通り、実施例１(SSVmAb)では、ヒストンH１に対する親和性よりも、ヒストンH2A、H2B、H3またはH4に対する親和性が高かった。
一方、図３に示される通り、参考例１（16G9）では、ヒストンH2A、H2B、H3およびH4に対する親和性よりも、ヒストンH１に対する親和性の方が高かった。

試験例３：ＭＬＲ試験
無処理のDAラット由来の脾臓リンパ球（応答細胞）およびマイトマイシンＣ（協和発酵工業株式会社製）処理を行ったLEWラット由来の脾臓リンパ球（刺激細胞）を用いた。応答細胞は１０％ＦＣＳ−ＲＰＭＩ培地にて５×１０^５細胞／ｍＬに調整し、刺激細胞は１０％ＦＣＳ−ＲＰＭＩ培地にて８×１０^６細胞／ｍＬに調整した。この応答細胞懸濁液および刺激細胞懸濁液をそれぞれ１００μＬを９６穴丸底プレート（ＮｕｎｃＢｒａｎｄＰｒｏｄｕｃｔｓ社製）に播種した後、混合培養開始時に参考例１のモノクローナル抗体16G9mAb（０．１、２、４または６μg／mL／ウェル）または実施例１のモノクローナル抗体SSVmAb（４μg／mL／ウェル）を添加し、３７℃，５％ＣＯ_２／９５% airの条件下にて３．５日以上培養した。また、陽性対照として、免疫抑制剤タクロリムス（ＦＫ５０６：藤沢薬品社製、1nM／ウェル）を添加した。さらに、培養終了１５時間前にブロモデオキシウリジン（ＢｒｄＵ）１０μＬを添加した。そして、ＢｒｄＵラベリング＆ディテクションキットＩＩＩ（ロシュ・ダイアグノスティクス社製）を用いて、細胞内ＤＮＡに取り込まれたＢｒｄＵ量を指標として、免疫抑制物質により処理された細胞の増殖能を測定し、免疫抑制レベルの指標とした。

結果は、図４に示される通りであった。
実施例１（SSVmAb）では、ＢｒｄＵ量取り込みを示す吸光度は、参考例１（16G9mAb）およびタクロリムス（ＦＫ５０６）のそれより低かった。特に、実施例１(SSV mAb)の吸光度0.552±0.114（平均±S.E.）と、同添加量（４μg／mL／ウェル）の参考例１（16G9mAb）の吸光度1.351±0.389（平均±S.E.）とを比較すると、実施例１の平均値は、参考例１のそれの約４１％程度であった。

試験例４：モノクローナル抗体(SSVmAb)T細胞に対する反応性の確認
以下の手法により、C57BL/6マウス（5週齢、メス、日本チャールズリバー社製）より脾臓を摘出し、全脾細胞を調製した。
まず、5 mlのRPMI1640培地（Sigma-Aldrich社製R-8758）を入れた5 ml培養ディッシュ（BD Bioscience社製FALCON 351007）中で脾臓を解剖用ハサミとピンセットにて良くほぐして脾細胞を懸濁後、15 ml遠心チューブ（BD Bioscience社製FALCON 352096）に移した。続いて5 mlディッシュ上をphosphate-buffered saline（PBS, Invitrogen社製20012-027）にて数回洗浄し、これらも先の細胞懸濁液に加えて静置後、上清を別の15 ml遠心チューブに回収した。さらに残渣の不溶性脾臓組織にも再びRPMI1640培地5 mlを加えて静置後上清のみを回収し、これと上記の細胞懸濁液を合わせて1,500 rpm, 5 minの遠心分離を行った。回収した細胞にlysis buffer（150 mM NH₄Cl/15 mM NaHCO₃/0.1 mM EDTA-Na₂, pH 7.3）2 mlを加えてタッピングにより溶血後、PBS 10 mlを加えて1,500 rpm, 5 minにて３回遠心洗浄した細胞を全脾細胞とした。

次に、以下に記載の手法に準じて、本脾細胞から全T細胞をPan T Cell Isolation Kit, mouse（Miltenyi Biotec社製130-090-861）を用い、磁気ソーティング（MACS）により精製した。
まず、脾細胞をMACS buffer (0.5% bovine serum albumin (BSA, ナカライテスク社製08777-36)/PBS)にて 5 x 10⁷ cells/200μlの割合で懸濁し、50μl Biotin-antibody cocktail / 5 x 10⁷ cellsを添加して4 ℃, 10 minインキュベートした。これを150 μl MACS buffer / 5 x 10⁷ cellsに懸濁後、100μl anti-biotin micro beads /5 x 10⁷ cellsを添加して4 ℃, 15 minインキュベートした。これにMACS buffer（10 ml）を添加して1500 rpm, 5 min遠心洗浄後、回収細胞をMACS buffer 500μlに懸濁した。MACSカラム (MSカラム、Miltenyi Biotec社製130-042-201) をマグネット（MiniMACS separation Unit、Miltenyi Biotec社製130-090-312）にセットして500μl MACS bufferにてカラムを平衡化後、上述の細胞懸濁液を供した。素通り画分500μlおよびその後のMACS bufferによるカラム洗浄画分（1.5 ml）を回収して精製未刺激T細胞とした(純度約97%)。

上記の未刺激と16G9 mAbまたはSSV mAbとの反応性をフローサイトメトリー（FACS）により解析した。
まず、各T細胞サンプル（1 x 10⁶ cells）を89μlのFACS buffer (0.5% FBS/PBS/0.02% NaN₃)に懸濁後、1μgのanti-mouse CD16/32-blocks Fc binding（eBioscience社製14-0161-85）を加えて4℃, 20 minインキュベートした。これに1次抗体として16G9 mAbまたはSSV mAb （100μg/ml）10μlを加えて4℃, 60 minインキュベートした。FACS bufferにて細胞を2回遠心洗浄後、2次抗体（Biotin-conjugated rat anti-mouse IgM mAb（eBioscience社製13-5780-85）またはBiotin-conjugated rat anti-mouse IgG1 mAb（BD Biosciences社製553441）、各1μg/ml）を100μl加えて4℃, 30 minインキュベートした。再びFACS bufferにて細胞を2回遠心洗浄後、Streptavidin-PE-Cy7（BD Biosciences社製556463、 1μg/ml）を100μl加え、これにFITC-conjugated rat anti-mouse CD3 mAb（BD Biosciences社製553062）を終濃度1 μg/mlになるように添加して4℃, 30 minインキュベートした。FACS bufferにて2回遠心洗浄および40 μmセルストレーナー（BD Bioscience社製FALCON 352340）にてろ過処理後、各サンプルをFACSCaliburフローサイトメーターおよびCellQuestソフトウェア（BD Bioscience社製）に供して16G9 mAbまたはSSV mAb陽性/CD3陽性T細胞数を解析した。

結果は、図５に示される通りであった。
参考例１（16G9 mAb）および実施例１（SSV mAb）を比較すると、CD3陽性T細胞に対する反応性に有意差は認められず、これら抗体は同等の反応性を示した（student t-test、ｐ＜0.05）。

試験例５：SSV mAbによるダウンレギュレーションのターゲットの特定
実施例１（SSV mAb）によりダウンレギュレーションされる候補タンパク質をプロテオーム解析にて７種同定した。
そして、７種の候補タンパク質うち、ATP合成酵素が実施例１（SSV mAb）のターゲット抗原であることを以下の手法により確認した。
まず、サーモフィッシャー社のAccell siRNAキットを用いて、ミトコンドリアATP合成酵素のノックダウンされたBalb/cマウス由来のT細胞を取得した。
次に、試験例２の手法に準じて、得られたT細胞を用いて、実施例１（SSV mAb）を試験物質としてMLR試験を行った。
ここで、対照試薬としてはIsotype IgG1（eBioscience社）を用いた。また、コントロール試験として、ATP合成酵素をノックダウンしていないマウス由来のT細胞を用いた同様の試験を行った。

結果は、図６AおよびBに示される通りであった。
図６Aに記載の通り、ATP合成酵素をノックダウンしない場合には、実施例１（SSV mAb）は、Isotype IgG1と比較して有意に細胞増殖を阻害していた。
一方、図６Bに記載の通り、ATP合成酵素をノックダウンした場合には、細胞増殖の阻害に関し、実施例１（SSV mAb）とIsotype IgG1との間には有意差は認められなかった。
図６AおよびBでは、ATP合成酵素のノックダウンによりSSV mAbの免疫抑制活性が低下しており、SSV mAb が、免疫抑制の際に、ATP合成酵素活性をダウンレギュレーションしていることが示唆される。

試験例６：SSV mAbの軽鎖および重鎖の可変領域配列の同定
ハイブリドーマcDNAの合成
FastPure RNA Kit（TaKaRa社製）を使って、試験例１で取得したハイブリドーマ（Mouse-Mouse hybridoma SSV-C93-3）1.6×10⁷cellsからtotal RNAを調製した。Poly (A)⁺ Isolation Kit from Total RNA（NIPPON GENE製）を使って、240 μgのtotal RNAからmRNAを調製した。Etachinmate（NIPPON GENE社製）を使ってエタノール沈殿を行い、mRNAを沈殿した。75% エタノールで洗浄した後、mRNAを乾燥した。これにRNase free waterを10 μL加え、mRNAを溶解した。得られたmRNA溶液は-80℃で保存した。 SMARTer RACE cDNA Amplification Kit（Clontech社製）を使って、1 μgのSSVハイブリドーマmRNAから5’-RACE用のcDNAを合成した。得られたcDNA溶液は-20℃で保存した。

SSV mAb 軽鎖および重鎖における相補性決定領域（CDR）の同定
マウスIgG1 重鎖定常領域の塩基配列をもとに、プライマー 5’- CAC CAT GGA GTT AGT TTG GGC AGC AG -3’ （配列番号１２）を作製した。マウス軽鎖κ定常領域の塩基配列をもとにプライマー 5’- CAC GAC TGA GGC ACC TCC AGA TG -3’（配列番号１３）を作製した。それぞれのプライマーとUniversal Primer A Mix（SMARTer RACE cDNA Amplification Kit付属プライマー）を用いて、cDNAをテンプレートとした5'-RACEを行った。RACE反応はAdvantage2 PCR Kit（Clontech社製）を用いた。反応液をアガロース電気泳動し、約600 bpの重鎖5’-RACE産物および約550 bpの軽鎖5’-RACE産物を、E.Z.N.A. Gel Extraction Kit（OMEGA bio-tek社製）を用いてゲルから精製した。これをpGEM-T Easy Vector（Promega社製）に連結し、Competent high E.coli DH5α（TOYOBO社製）を形質転換した。得られた形質転換体から、E.Z.N.A. Plasmid Miniprep KitＩ（OMEGA bio-tek社製）を用いてプラスミドを調製した。調製したプラスミドをテンプレートとして、BigDye Terminator v3.1 Cycle Sequencing Kit（Applied Biosystems社製）を用いてサイクル反応を行った。

次に、DNAシークエンサー（Applied Biosystems製）を用いて、軽鎖および重鎖可変領域の塩基配列を解析した。
その結果、軽鎖可変領域の塩基配列は、配列番号５の第６７番〜第３８４番で表されるものであった。
また、重鎖可変領域の塩基配列は、配列番号１０の第５８番〜第４２３番で表されるものであった。
なお、翻訳開始コドンとKabatらの方法により決定したFR（定常領域）１の位置に基づき、配列番号５の第１番〜第６６番は軽鎖シグナルペプチドの塩基配列であり、および配列番号１０の第１番〜第５７番は重鎖のシグナルペプチドの塩基配列であると推定した。

次に、得られた塩基配列から軽鎖および重鎖の可変領域のアミノ酸配列を推定し、Kabatらの方法に従ってCDR領域を同定した。

その結果、軽鎖の可変領域のアミノ酸配列は、配列番号６の第２３番〜第１２８番で表されるものであった。ここで、配列番号６の第１番〜第２２番は軽鎖シグナルペプチドのアミノ酸配列である。
また、軽鎖可変領域可変領域のアミノ酸配列のうち、ＣＤＲ１はＲＡＳＳＳＶＳＹＭＨ（配列番号２）で表わされ、ＣＤＲ２はＡＴＳＮＬＡＳ（配列番号３）で表わされ、ＣＤＲ３はＱＱＷＳＳＮＰＷＴ（配列番号４）で表わされることを確認した。

また、重鎖の可変領域のアミノ酸配列は、配列番号１１の第２０番〜第１４１番で表されるものであった。ここで、配列番号１１の第１番〜第１９番は重鎖シグナルペプチドのアミノ酸配列である。
また、重鎖可変領域のアミノ酸配列のうち、ＣＤＲ１はＧＹＮＭＮ（配列番号７）で表わされ、ＣＤＲ２はＮＩＮＰＹＹＧＳＴＳＹＮＱＫＦＫＧ（配列番号８）で表わされ、ＣＤＲ３はＳＰＹＹＳＮＹＷＲＹＦＤＹ（配列番号９）で表わされることを確認した。

試験例７：敗血症治療作用の評価
BALB/cマウス（実験開始時体重２０ｇ−３０ｇ、n=６）をＳＰＦ、恒温恒湿（２２±１度、５５±５％）にて、プラスティック製ケージ内で１２時間明暗サイクルの条件下で飼育した。餌および水は自由摂取とした。実験的敗血症モデルとして一般的に用いられるリポポリサッカライド（ＬＰＳ）誘発致死的敗血症をＬＰＳ４０ｍｇ／ｋｇの腹腔内投与により誘発した。生理食塩水に溶解したSSV mAbを腹腔内にＬＰＳ投与30分前、ＬＰＳ投与6時間後、12時間後の3回、SSV mAb量として１００μｇ／回で腹腔内に投与した。その後の動物個体の生存を調べた。なお、対照はSSV mAbの代わりに生理食塩水に溶解したIgG（ＳＩＧＭＡ社製）を同様に投与した。
その結果を図７に示した。ＬＰＳ投与（敗血症誘導）後７０時間の生存率は対照群（ＩｇＧ）が２０％（累積生存割合０．２）であったのに対しSSV mAb投与群では７０％（累積生存割合０．７）であった。ＬＰＳ投与（敗血症誘導）後７０時間の生存率は、SSV mAb投与群（SSV）が対照群（IgG）の約３．５倍であり、SSV mAb投与群の方が有意に高かった(p<0.05)。

Claims

ＳＳＶＬＹＧＧＰＰＳＡＡ（配列番号１）で表わされるアミノ酸配列からなるペプチドまたは該ペプチドと薬学上許容可能な担体との結合体と結合する、モノクローナル抗体またはその抗原結合断片を含んでなる、敗血症治療剤。
ＲＡＳＳＳＶＳＹＭＨ（配列番号２）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ１、ＡＴＳＮＬＡＳ（配列番号３）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ２、およびＱＱＷＳＳＮＰＷＴ（配列番号４）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３を含んでなる軽鎖可変領域を含んでなる、請求項１に記載の敗血症治療剤。
前記モノクローナル抗体またはその抗原結合断片の軽鎖可変領域が、配列番号６の第２３番〜第１２８番で表されるアミノ酸配列を含んでなる、請求項１または２に記載の敗血症治療剤。
ＧＹＮＭＮ（配列番号７）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ１、ＮＩＮＰＹＹＧＳＴＳＹＮＱＫＦＫＧ（配列番号８）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ２、およびＳＰＹＹＳＮＹＷＲＹＦＤＹ（配列番号９）で表わされるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３を含んでなる重鎖可変領域を含んでなる、請求項１〜３のいずれか一項に記載の敗血症治療剤。
前記モノクローナル抗体またはその抗原結合断片の重鎖可変領域が、配列番号１１の第２０番〜第１４１番で表されるアミノ酸配列を含んでなる、請求項１〜４のいずれか一項に記載の敗血症治療剤。
前記モノクローナル抗体またはその抗原結合断片が、前記ペプチドまたはペプチドと薬学上許容可能な担体に対するものである、請請求項１〜５のいずれか一項に記載の敗血症治療剤。
前記モノクローナル抗体またはその抗原結合断片が、ヒストンH１に対する結合親和性よりも、コアヒストンに対する結合親和性が高い、請請求項１〜６のいずれか一項に記載の敗血症治療剤。
前記コアヒストンが、ヒストンH2A、H2B、H3およびH4から選択される少なくとも一つのものである、請求項７に記載の敗血症治療剤。
前記薬学上許容可能な担体が、キーホールリンペットヘモシアニン、オボアルブミンまたはウシ血清アルブミンである、請求項１〜８のいずれか一項に記載の敗血症治療剤。
前記モノクローナル抗体またはその抗原結合断片が、ATP合成酵素活性をダウンレギュレーションしうる、請求項１〜９のいずれか一項に記載の敗血症治療剤。
前記モノクローナル抗体が、キメラ、ヒト化、またはヒト抗体である、請求項１〜１０のいずれか一項に記載の敗血症治療剤。
前記モノクローナル抗体が、ハイブリドーマMouse-Mouse hybridoma SSV-C93-3により産生される、請求項１〜１１のいずれか一項に記載の敗血症治療剤。
前記抗原結合断片が、Fab、Fab’、（Fab’）_２、FvまたはscFvである、請求項１〜１２のいずれか一項に記載の敗血症治療剤。
医薬として用いられる、請求項１〜１３のいずれか一項に記載の敗血症治療剤。