JP2014516580A - Csp−b5’−sar因子を含む動物細胞発現ベクター、及びそれを利用した組換えタンパク質の製造方法 - Google Patents
Csp−b5’−sar因子を含む動物細胞発現ベクター、及びそれを利用した組換えタンパク質の製造方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP2014516580A JP2014516580A JP2014515713A JP2014515713A JP2014516580A JP 2014516580 A JP2014516580 A JP 2014516580A JP 2014515713 A JP2014515713 A JP 2014515713A JP 2014515713 A JP2014515713 A JP 2014515713A JP 2014516580 A JP2014516580 A JP 2014516580A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- vector
- sar
- promoter
- cell
- sequence
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 210000004102 animal cell Anatomy 0.000 title claims abstract description 60
- 239000013604 expression vector Substances 0.000 title claims abstract description 52
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title claims abstract description 46
- 102000007056 Recombinant Fusion Proteins Human genes 0.000 title claims abstract description 27
- 108010008281 Recombinant Fusion Proteins Proteins 0.000 title claims abstract description 27
- 239000013598 vector Substances 0.000 claims abstract description 249
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims abstract description 85
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims abstract description 36
- 230000008488 polyadenylation Effects 0.000 claims abstract description 14
- 102000001398 Granzyme Human genes 0.000 claims description 67
- 108060005986 Granzyme Proteins 0.000 claims description 67
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 62
- OXCMYAYHXIHQOA-UHFFFAOYSA-N potassium;[2-butyl-5-chloro-3-[[4-[2-(1,2,4-triaza-3-azanidacyclopenta-1,4-dien-5-yl)phenyl]phenyl]methyl]imidazol-4-yl]methanol Chemical compound [K+].CCCCC1=NC(Cl)=C(CO)N1CC1=CC=C(C=2C(=CC=CC=2)C2=N[N-]N=N2)C=C1 OXCMYAYHXIHQOA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 19
- 241000701022 Cytomegalovirus Species 0.000 claims description 15
- 108090000394 Erythropoietin Proteins 0.000 claims description 12
- 108010006025 bovine growth hormone Proteins 0.000 claims description 12
- 108020004440 Thymidine kinase Proteins 0.000 claims description 10
- 102000006601 Thymidine Kinase Human genes 0.000 claims description 9
- 101001012157 Homo sapiens Receptor tyrosine-protein kinase erbB-2 Proteins 0.000 claims description 8
- 102100030086 Receptor tyrosine-protein kinase erbB-2 Human genes 0.000 claims description 8
- 102000003951 Erythropoietin Human genes 0.000 claims description 7
- 229940105423 erythropoietin Drugs 0.000 claims description 7
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 claims description 6
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 claims description 6
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 claims description 6
- 102000014150 Interferons Human genes 0.000 claims description 5
- 108010050904 Interferons Proteins 0.000 claims description 5
- 241000700584 Simplexvirus Species 0.000 claims description 5
- 238000012258 culturing Methods 0.000 claims description 5
- 229940079322 interferon Drugs 0.000 claims description 5
- 210000003734 kidney Anatomy 0.000 claims description 5
- 102000010292 Peptide Elongation Factor 1 Human genes 0.000 claims description 4
- 108010077524 Peptide Elongation Factor 1 Proteins 0.000 claims description 4
- DIGQNXIGRZPYDK-WKSCXVIASA-N (2R)-6-amino-2-[[2-[[(2S)-2-[[2-[[(2R)-2-[[(2S)-2-[[(2R,3S)-2-[[2-[[(2S)-2-[[2-[[(2S)-2-[[(2S)-2-[[(2R)-2-[[(2S,3S)-2-[[(2R)-2-[[(2S)-2-[[(2S)-2-[[(2S)-2-[[2-[[(2S)-2-[[(2R)-2-[[2-[[2-[[2-[(2-amino-1-hydroxyethylidene)amino]-3-carboxy-1-hydroxypropylidene]amino]-1-hydroxy-3-sulfanylpropylidene]amino]-1-hydroxyethylidene]amino]-1-hydroxy-3-sulfanylpropylidene]amino]-1,3-dihydroxypropylidene]amino]-1-hydroxyethylidene]amino]-1-hydroxypropylidene]amino]-1,3-dihydroxypropylidene]amino]-1,3-dihydroxypropylidene]amino]-1-hydroxy-3-sulfanylpropylidene]amino]-1,3-dihydroxybutylidene]amino]-1-hydroxy-3-sulfanylpropylidene]amino]-1-hydroxypropylidene]amino]-1,3-dihydroxypropylidene]amino]-1-hydroxyethylidene]amino]-1,5-dihydroxy-5-iminopentylidene]amino]-1-hydroxy-3-sulfanylpropylidene]amino]-1,3-dihydroxybutylidene]amino]-1-hydroxy-3-sulfanylpropylidene]amino]-1,3-dihydroxypropylidene]amino]-1-hydroxyethylidene]amino]-1-hydroxy-3-sulfanylpropylidene]amino]-1-hydroxyethylidene]amino]hexanoic acid Chemical compound C[C@@H]([C@@H](C(=N[C@@H](CS)C(=N[C@@H](C)C(=N[C@@H](CO)C(=NCC(=N[C@@H](CCC(=N)O)C(=NC(CS)C(=N[C@H]([C@H](C)O)C(=N[C@H](CS)C(=N[C@H](CO)C(=NCC(=N[C@H](CS)C(=NCC(=N[C@H](CCCCN)C(=O)O)O)O)O)O)O)O)O)O)O)O)O)O)O)N=C([C@H](CS)N=C([C@H](CO)N=C([C@H](CO)N=C([C@H](C)N=C(CN=C([C@H](CO)N=C([C@H](CS)N=C(CN=C(C(CS)N=C(C(CC(=O)O)N=C(CN)O)O)O)O)O)O)O)O)O)O)O)O DIGQNXIGRZPYDK-WKSCXVIASA-N 0.000 claims description 3
- 102000007469 Actins Human genes 0.000 claims description 3
- 108010085238 Actins Proteins 0.000 claims description 3
- 241000699802 Cricetulus griseus Species 0.000 claims description 3
- 102000003792 Metallothionein Human genes 0.000 claims description 3
- 108090000157 Metallothionein Proteins 0.000 claims description 3
- 241000700605 Viruses Species 0.000 claims description 3
- 210000001672 ovary Anatomy 0.000 claims description 3
- 210000003501 vero cell Anatomy 0.000 claims description 3
- 241000699800 Cricetinae Species 0.000 claims description 2
- 102000004127 Cytokines Human genes 0.000 claims description 2
- 108090000695 Cytokines Proteins 0.000 claims description 2
- 108010017213 Granulocyte-Macrophage Colony-Stimulating Factor Proteins 0.000 claims description 2
- 101001002657 Homo sapiens Interleukin-2 Proteins 0.000 claims description 2
- 101100321817 Human parvovirus B19 (strain HV) 7.5K gene Proteins 0.000 claims description 2
- 108010002350 Interleukin-2 Proteins 0.000 claims description 2
- 102000000588 Interleukin-2 Human genes 0.000 claims description 2
- 108090000542 Lymphotoxin-alpha Proteins 0.000 claims description 2
- 108010079855 Peptide Aptamers Proteins 0.000 claims description 2
- 241000700618 Vaccinia virus Species 0.000 claims description 2
- 229940088597 hormone Drugs 0.000 claims description 2
- 239000005556 hormone Substances 0.000 claims description 2
- 241000701161 unidentified adenovirus Species 0.000 claims description 2
- 241000829100 Macaca mulatta polyomavirus 1 Species 0.000 claims 3
- 241000282465 Canis Species 0.000 claims 1
- 102000001301 EGF receptor Human genes 0.000 claims 1
- 108060006698 EGF receptor Proteins 0.000 claims 1
- 102000004457 Granulocyte-Macrophage Colony-Stimulating Factor Human genes 0.000 claims 1
- 210000003714 granulocyte Anatomy 0.000 claims 1
- 102000055277 human IL2 Human genes 0.000 claims 1
- 229940116978 human epidermal growth factor Drugs 0.000 claims 1
- 210000002540 macrophage Anatomy 0.000 claims 1
- 230000014509 gene expression Effects 0.000 abstract description 65
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 25
- 230000001629 suppression Effects 0.000 abstract description 6
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 5
- 101000726064 Escherichia coli (strain K12) Cold shock-like protein CspB Proteins 0.000 abstract 1
- 102100030385 Granzyme B Human genes 0.000 abstract 1
- 101001009603 Homo sapiens Granzyme B Proteins 0.000 abstract 1
- 238000003752 polymerase chain reaction Methods 0.000 description 95
- 108091008146 restriction endonucleases Proteins 0.000 description 45
- 108010019673 Darbepoetin alfa Proteins 0.000 description 35
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 29
- 108010005774 beta-Galactosidase Proteins 0.000 description 28
- 102000005936 beta-Galactosidase Human genes 0.000 description 27
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 21
- BRZYSWJRSDMWLG-CAXSIQPQSA-N geneticin Chemical compound O1C[C@@](O)(C)[C@H](NC)[C@@H](O)[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](C(C)O)O2)N)[C@@H](N)C[C@H]1N BRZYSWJRSDMWLG-CAXSIQPQSA-N 0.000 description 13
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 12
- 238000000034 method Methods 0.000 description 12
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 11
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 10
- 108091005904 Hemoglobin subunit beta Proteins 0.000 description 8
- 102100021519 Hemoglobin subunit beta Human genes 0.000 description 8
- 241000282326 Felis catus Species 0.000 description 7
- 108010076504 Protein Sorting Signals Proteins 0.000 description 7
- 238000012790 confirmation Methods 0.000 description 7
- 108010077544 Chromatin Proteins 0.000 description 5
- 101000899111 Homo sapiens Hemoglobin subunit beta Proteins 0.000 description 5
- 210000004978 chinese hamster ovary cell Anatomy 0.000 description 5
- 210000003483 chromatin Anatomy 0.000 description 5
- 101150074155 DHFR gene Proteins 0.000 description 4
- 101000987586 Homo sapiens Eosinophil peroxidase Proteins 0.000 description 4
- 230000013595 glycosylation Effects 0.000 description 4
- 238000006206 glycosylation reaction Methods 0.000 description 4
- 102000044890 human EPO Human genes 0.000 description 4
- 101150066555 lacZ gene Proteins 0.000 description 4
- 210000000822 natural killer cell Anatomy 0.000 description 4
- 102220147056 rs150475750 Human genes 0.000 description 4
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 4
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 4
- 238000002965 ELISA Methods 0.000 description 3
- 102000002464 Galactosidases Human genes 0.000 description 3
- 108010093031 Galactosidases Proteins 0.000 description 3
- 108060001084 Luciferase Proteins 0.000 description 3
- 239000005089 Luciferase Substances 0.000 description 3
- 102000016943 Muramidase Human genes 0.000 description 3
- 108010014251 Muramidase Proteins 0.000 description 3
- 108010062010 N-Acetylmuramoyl-L-alanine Amidase Proteins 0.000 description 3
- 229930193140 Neomycin Natural products 0.000 description 3
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 3
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 description 3
- 101150001899 lacY gene Proteins 0.000 description 3
- 229960000274 lysozyme Drugs 0.000 description 3
- 239000004325 lysozyme Substances 0.000 description 3
- 235000010335 lysozyme Nutrition 0.000 description 3
- 239000007758 minimum essential medium Substances 0.000 description 3
- 229960004927 neomycin Drugs 0.000 description 3
- 238000013519 translation Methods 0.000 description 3
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 description 2
- 101001054334 Homo sapiens Interferon beta Proteins 0.000 description 2
- 101000666730 Homo sapiens T-complex protein 1 subunit alpha Proteins 0.000 description 2
- 230000004988 N-glycosylation Effects 0.000 description 2
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 2
- 239000012124 Opti-MEM Substances 0.000 description 2
- 108091081024 Start codon Proteins 0.000 description 2
- 102100038410 T-complex protein 1 subunit alpha Human genes 0.000 description 2
- 108010022394 Threonine synthase Proteins 0.000 description 2
- 229960000723 ampicillin Drugs 0.000 description 2
- AVKUERGKIZMTKX-NJBDSQKTSA-N ampicillin Chemical compound C1([C@@H](N)C(=O)N[C@H]2[C@H]3SC([C@@H](N3C2=O)C(O)=O)(C)C)=CC=CC=C1 AVKUERGKIZMTKX-NJBDSQKTSA-N 0.000 description 2
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 2
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 2
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 2
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 2
- 210000000349 chromosome Anatomy 0.000 description 2
- 238000010367 cloning Methods 0.000 description 2
- 230000005757 colony formation Effects 0.000 description 2
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 2
- 102000004419 dihydrofolate reductase Human genes 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- 230000003394 haemopoietic effect Effects 0.000 description 2
- 210000003917 human chromosome Anatomy 0.000 description 2
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 2
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 2
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 2
- 229960000575 trastuzumab Drugs 0.000 description 2
- 238000011144 upstream manufacturing Methods 0.000 description 2
- BFSVOASYOCHEOV-UHFFFAOYSA-N 2-diethylaminoethanol Chemical compound CCN(CC)CCO BFSVOASYOCHEOV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101150058502 Acaca gene Proteins 0.000 description 1
- DCXYFEDJOCDNAF-UHFFFAOYSA-N Asparagine Natural products OC(=O)C(N)CC(N)=O DCXYFEDJOCDNAF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000271566 Aves Species 0.000 description 1
- 206010006187 Breast cancer Diseases 0.000 description 1
- 206010007558 Cardiac failure chronic Diseases 0.000 description 1
- 108091026890 Coding region Proteins 0.000 description 1
- 108020004705 Codon Proteins 0.000 description 1
- 235000006481 Colocasia esculenta Nutrition 0.000 description 1
- 240000004270 Colocasia esculenta var. antiquorum Species 0.000 description 1
- 229920002307 Dextran Polymers 0.000 description 1
- 239000006145 Eagle's minimal essential medium Substances 0.000 description 1
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 description 1
- 102100039620 Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor Human genes 0.000 description 1
- 241000238631 Hexapoda Species 0.000 description 1
- 101000920686 Homo sapiens Erythropoietin Proteins 0.000 description 1
- 101000746373 Homo sapiens Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor Proteins 0.000 description 1
- 101100232919 Homo sapiens IL4 gene Proteins 0.000 description 1
- XQFRJNBWHJMXHO-RRKCRQDMSA-N IDUR Chemical compound C1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1N1C(=O)NC(=O)C(I)=C1 XQFRJNBWHJMXHO-RRKCRQDMSA-N 0.000 description 1
- DCXYFEDJOCDNAF-REOHCLBHSA-N L-asparagine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CC(N)=O DCXYFEDJOCDNAF-REOHCLBHSA-N 0.000 description 1
- ROHFNLRQFUQHCH-YFKPBYRVSA-N L-leucine Chemical compound CC(C)C[C@H](N)C(O)=O ROHFNLRQFUQHCH-YFKPBYRVSA-N 0.000 description 1
- ROHFNLRQFUQHCH-UHFFFAOYSA-N Leucine Natural products CC(C)CC(N)C(O)=O ROHFNLRQFUQHCH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000012097 Lipofectamine 2000 Substances 0.000 description 1
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 description 1
- 102000008297 Nuclear Matrix-Associated Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010035916 Nuclear Matrix-Associated Proteins Proteins 0.000 description 1
- 230000004989 O-glycosylation Effects 0.000 description 1
- 108090000854 Oxidoreductases Proteins 0.000 description 1
- 102000004316 Oxidoreductases Human genes 0.000 description 1
- 239000012980 RPMI-1640 medium Substances 0.000 description 1
- 241000283984 Rodentia Species 0.000 description 1
- 241000555745 Sciuridae Species 0.000 description 1
- 102000012479 Serine Proteases Human genes 0.000 description 1
- 108010022999 Serine Proteases Proteins 0.000 description 1
- 108020005038 Terminator Codon Proteins 0.000 description 1
- 238000007792 addition Methods 0.000 description 1
- 238000004115 adherent culture Methods 0.000 description 1
- 125000000539 amino acid group Chemical class 0.000 description 1
- 150000001413 amino acids Chemical group 0.000 description 1
- 208000007502 anemia Diseases 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 229940034982 antineoplastic agent Drugs 0.000 description 1
- 239000002246 antineoplastic agent Substances 0.000 description 1
- 229960001230 asparagine Drugs 0.000 description 1
- 235000009582 asparagine Nutrition 0.000 description 1
- 238000003149 assay kit Methods 0.000 description 1
- SQVRNKJHWKZAKO-UHFFFAOYSA-N beta-N-Acetyl-D-neuraminic acid Natural products CC(=O)NC1C(O)CC(O)(C(O)=O)OC1C(O)C(O)CO SQVRNKJHWKZAKO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 1
- 230000004071 biological effect Effects 0.000 description 1
- 229910000389 calcium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 description 1
- 235000011010 calcium phosphates Nutrition 0.000 description 1
- 125000000837 carbohydrate group Chemical group 0.000 description 1
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 1
- 210000003855 cell nucleus Anatomy 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 229960005029 darbepoetin alfa Drugs 0.000 description 1
- 238000012217 deletion Methods 0.000 description 1
- 230000037430 deletion Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 1
- 238000007876 drug discovery Methods 0.000 description 1
- 230000005611 electricity Effects 0.000 description 1
- 230000000925 erythroid effect Effects 0.000 description 1
- 210000003527 eukaryotic cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000001605 fetal effect Effects 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 108091008053 gene clusters Proteins 0.000 description 1
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 1
- 239000003102 growth factor Substances 0.000 description 1
- 102000046157 human CSF2 Human genes 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 229960000318 kanamycin Drugs 0.000 description 1
- 229930027917 kanamycin Natural products 0.000 description 1
- SBUJHOSQTJFQJX-NOAMYHISSA-N kanamycin Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CN)O[C@@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](N)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N SBUJHOSQTJFQJX-NOAMYHISSA-N 0.000 description 1
- 229930182823 kanamycin A Natural products 0.000 description 1
- 239000002502 liposome Substances 0.000 description 1
- 210000004185 liver Anatomy 0.000 description 1
- 210000004962 mammalian cell Anatomy 0.000 description 1
- 101150065676 mct gene Proteins 0.000 description 1
- 230000001404 mediated effect Effects 0.000 description 1
- 108020004999 messenger RNA Proteins 0.000 description 1
- 238000000520 microinjection Methods 0.000 description 1
- 239000011259 mixed solution Substances 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 238000002703 mutagenesis Methods 0.000 description 1
- 231100000350 mutagenesis Toxicity 0.000 description 1
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 1
- 210000000299 nuclear matrix Anatomy 0.000 description 1
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 1
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 1
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 description 1
- 230000002018 overexpression Effects 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 230000008569 process Effects 0.000 description 1
- 102000005962 receptors Human genes 0.000 description 1
- 108020003175 receptors Proteins 0.000 description 1
- 238000005215 recombination Methods 0.000 description 1
- 230000006798 recombination Effects 0.000 description 1
- 102000037983 regulatory factors Human genes 0.000 description 1
- 108091008025 regulatory factors Proteins 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 230000000241 respiratory effect Effects 0.000 description 1
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 1
- SQVRNKJHWKZAKO-OQPLDHBCSA-N sialic acid Chemical compound CC(=O)N[C@@H]1[C@@H](O)C[C@@](O)(C(O)=O)OC1[C@H](O)[C@H](O)CO SQVRNKJHWKZAKO-OQPLDHBCSA-N 0.000 description 1
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 description 1
- 238000006467 substitution reaction Methods 0.000 description 1
- 230000001360 synchronised effect Effects 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- 230000009466 transformation Effects 0.000 description 1
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H tricalcium bis(phosphate) Chemical compound [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 1
- 210000004881 tumor cell Anatomy 0.000 description 1
- 108700026220 vif Genes Proteins 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/10—Cells modified by introduction of foreign genetic material
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/48—Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
- C12N9/50—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
- C12N9/64—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
- C12N9/6402—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from non-mammals
- C12N9/6405—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from non-mammals not being snakes
- C12N9/6408—Serine endopeptidases (3.4.21)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2830/00—Vector systems having a special element relevant for transcription
- C12N2830/46—Vector systems having a special element relevant for transcription elements influencing chromatin structure, e.g. scaffold/matrix attachment region, methylation free island
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2830/00—Vector systems having a special element relevant for transcription
- C12N2830/80—Vector systems having a special element relevant for transcription from vertebrates
- C12N2830/85—Vector systems having a special element relevant for transcription from vertebrates mammalian
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
【選択図】なし
Description
(a)細胞毒性セリンプロテアーゼ−B(CSP−B)の5’−足場又はマトリックス付着領域(5’−SAR)と、(b)動物細胞で作動する(operable)プロモーターと、(c)ポリアデニル化配列。
(a)本発明のベクターは、CSP−B 5’−SARを含むベクターであって、動物細胞に導入した外来遺伝子の位置による遺伝子発現抑制現象を克服する効果を有し、目的タンパク質の発現率を大きく向上させる。
(b)本発明のベクターは、医薬品用組換えタンパク質(例えば、EPO)または抗体(例えば、抗HER2抗体)を動物細胞で効果的に発現させる。
(c)本発明のベクター及びそれを利用した組換えタンパク質の製造方法は、医薬品の産業的量産に非常に有用に使われる。
ヒトCSP−B 5’−SAR及び3’−SAR因子の準備
GenBank M62717及びAL136018に登録されたヒトCSP−B 5’−SAR DNAをPCR(Polymerase Chain Reaction)で増幅するために、ヒト天然殺傷細胞(natural killer細胞、NK細胞、及びATCC CRL−2407)のゲノム(genomic)DNAを準備した。DNA分離キット(Dneasy Blood&Tissue Kit,Qiagen,Cat.No.69504)を使ってNK細胞からゲノムDNAを準備し、これを5’−SAR DNA PCRの鋳型として使った。
GenBank L22754とNW_001838021とに登録されたヒトβグロビンMAR DNAをPCRで増幅するために、ヒトG2細胞のゲノムDNAを準備した。DNA分離キットを使ってG2細胞からゲノムDNAを準備し、これを5’ MAR DNA PCRの鋳型として使った。G2細胞のゲノムDNAを鋳型としてBg5MF−100F−NheIプライマー(aattg ctagc ttgta ttctg tttcg tgagg caagg ttt;配列リスト第11配列)及びBg5MR−100R−XhoIプライマー(aattc tcgag ttcct ctcta tgttg gctca aatgt cct;配列リスト第12配列)を使ってPCRを行った。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で3分20秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpcDNA3.3−TOPOベクター(Invitrogen,Cat.No.K8300−01)にクローニングして、pcDNA3.3−Bg5Mベクターを製造した。
pC06ベクターの製造
サイトメガロウイルス(Cytomegalovirus、CMV)プロモーター、多数制限酵素クローニング部位(Multiple Cloning Sites、MCS)、及び牛成長ホルモン(Bovine Growth Hormone、BGH)ポリアデニル化配列(polyadenylation sequence、pA)を順次に含むpC06ベクターを製造するために、次のような実験を行った。まず、pcDNA3.1(−)ベクター(Invitrogen,Cat.No.V795−20)を鋳型としてV6_Fプライマー(aagct tggat ccgaa ttcat cgatg gccgg ccggt accct cgagc tgtgc cttct agttg ccagc;配列リスト第13配列)及びV6_Rプライマー(gctag ctaga gcccc agctg gttct ttccg;配列リスト第14配列)を使ってPCRを行った。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で1分の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpcDNA3.3−TOPOベクター(Invitrogen)にクローニングして、pC06ベクターを製造した。
SV40プロモーター、コザック配列(Kozak sequence、gccatc)、dhfr(dihydrofolate reductase)遺伝子、及びTK(Herpes Simplex Virus thymidine kinase)pAを順次に含むpC04’ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pcDNA3.3ベクターを鋳型としてPsvApaDraFプライマー(aaaat tgggc cccac tacgt gctgt ggaat gtgtg tcagt taggg t;配列リスト第15配列)及びPsvKzDHRプライマー(tggtcgaacc atgat ggcgc gaaac gatcc tcatc ctgtc tct;配列リスト第16配列)を使ってPCRを行い、pOptiVEC−TOPOベクター(Invitrogen,Cat.No.12744−017)を鋳型としてDHKzPsvFプライマー(ggatc gtttc gcgcc atcat ggttc gacca ttgaa ctgca tcg;配列リスト第17配列)及びTKNheNdeRプライマー(tgtgt gcata tggct agcga taaca atttc acaca ggaaa cag;配列リスト第18配列)を使ってPCRを行った。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で1分の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、この2種のPCR産物を、重複(overlapping)PCRを通じて連結し、pGEM−TベクターのApaI及びNdeI制限酵素部位にクローニングして、pC04’ベクターを製造した。
pC04’ベクターが含むSV40プロモーターで72bp(ggtgt ggaaagtccc caggc tcccc agcag gcaga agtat gcaaa gcatg catct caatt agtca gcaac ca;配列リスト第19配列)のエンハンサー(enhancer)1つを除去(SV40dE1プロモーター)したpC04ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pC04’ベクターをSphI制限酵素で切断し、次いで、大きなDNA切片を自己ライゲーション(self−ligation)させてpC04ベクターを製造した。
pC06ベクターのBGH pAとSV40プロモーターとの間に、SV40dE1プロモーター、コザック配列、dhfr遺伝子、及びTK pAが挿入されたpCLS07ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pC04ベクターを鋳型としてPsvApaDraFプライマー及びTKNheNdeRプライマーを使ってPCRを行った。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で1分20秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物とpC06ベクターとをDraIII及びNheI制限酵素でそれぞれ切断し、ここで得た2つの大きなDNA切片をライゲーションさせてpCLS07ベクターを製造した。
pCLS07ベクターのNheI制限酵素部位にMCSを挿入して、pCLS08ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pGEM−Tベクターにクローニングされているエリスロポエチン遺伝子を鋳型としてNhAsE1Fプライマー(aattg ctagc atata gcgat cgcgc aggac agcttccgac agcag ggcca gg;配列リスト第20配列)及びBbPsSbNhE1Rプライマー(aattg ctagc atata cctgc aggtatatgg gccca tatag ctgag gttga atgag aatat cactg tccca gacac;配列リスト第21配列)を使ってPCRを行って、MCSを製造した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で15秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpCLS07ベクターのNheI制限酵素部位にクローニングして、pCLS08ベクターを製造した。
pCLS08ベクターのHindIIIとXhoI制限酵素部位との間に、lacZ及びlacY遺伝子を挿入して、pCLS08G1ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pSV−β−Galactosidaseベクター(Promega,Cat.No.TB094)を鋳型としてgalHinFプライマー(aattaagctt ctcgc gcaac ctatt ttccc ctcga ac;配列リスト第22配列)及びgalXhoRプライマー(aattc tcgag ccgag tttgt cagaa agcag accaa ac;配列リスト第23配列)を使ってPCRを行って、lacZ及びlacY遺伝子を増幅した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で3分30秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpCLS08ベクターのHindIII及びXhoI制限酵素部位にクローニングして、pCLS08G1ベクターを製造した。
pCLS08G1ベクターの2つのNheI制限酵素部位の間にあるMCSを他のMCSに変えて、pCLS09G1ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pGEM−Tベクターにクローニングされているエリスロポエチン遺伝子を鋳型としてNhSbE1Fプライマー(aattg ctagc atata cctgc aggtt gaatg agaat atcac tgtcc cagac a;配列リスト第24配列)とNhAsSfPsE1Rプライマー(aattg ctagc atata gcgat cgcta tatgg ccatg atggc catat agggc ccagg acagc ttccg acagc agggc caggc;配列リスト第25配列)とを使ってPCRを行って、新たなMCSを製造した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で15秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、pCLS08G1ベクターの2つのNheI制限酵素部位の間にある既存のMCSを除去し、ここにPCRで新たに作ったMCSをクローニングして、pCLS09G1ベクターを製造した。pCLS09G1ベクターのマップ(map)は、図1に示した。
pCLS09G1t1ベクターの製造
pCLS09G1ベクターのSbfI及びPspOMI制限酵素部位の間にCSP−B3’−SAR因子を挿入して、pCLS09G1t1ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pGEMT−CS3S.1.2kベクターを鋳型としてcs3sSbf1Fプライマー(aattc ctgca gggga tccca ttctc cttga tgtac taat;配列リスト第26配列)及びcs3sPsp1Rプライマー(aattg ggccc gaatt caaac aactc aatag caaga aac;配列リスト第27配列)を使ってPCRを行って、CSP−B 3’−SAR因子を増幅した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で2分30秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpCLS09G1ベクターのSbfI及びPspOMI制限酵素部位にクローニングして、pCLS09G1t1ベクターを製造した。
pCLS09G1ベクターのSbfI及びPspOMI制限酵素部位の間にCSP−B5’−SAR因子を挿入して、pCLS09G1f1ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pGEMT−CS5S.3.0kベクターを鋳型としてcs5sSbf1Fプライマー(aattc ctgca gggaa ttcct aaaca gagca attag gtaag;配列リスト第28配列)及びcs5sPsp1Rプライマー(aattg ggccc gaatt ccagt gtaaa cgtct tcctt gt;配列リスト第29配列)を使ってPCRを行って、CSP−B 5’−SAR因子を増幅した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で2分30秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpCLS09G1ベクターのSbfI及びPspOMI制限酵素部位にクローニングして、pCLS09G1f1ベクターを製造した。
pCLS09G1ベクターのSbfI及びPspOMI制限酵素部位の間にβグロビンMAR因子を挿入して、pCLS09G1g1ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pcDNA3.3−Bg5Mベクターを鋳型としてglmSbf1Fプライマー(aattc ctgca ggttg tattc tgttt cgtga ggcaa ggttt;配列リスト第30配列)及びglmPsp1Rプライマー(aattg ggccc ttcct ctcta tgttg gctca aatgt cct;配列リスト第31配列)を使ってPCRを行って、βグロビンMAR因子を増幅した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で3分20秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpCLS09G1ベクターのSbfI及びPspOMI制限酵素部位にクローニングして、pCLS09G1g1ベクターを製造した。
pCLS09G1t1ベクターのPspOMI及びSfiI制限酵素部位の間にCSP−B 3’−SAR因子を挿入して、pCLS09G1t2ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pGEMT−CS3S.1.2kベクターを鋳型としてcs3sPsp2Fプライマー(aattg ggccc ggatc ccatt ctcct tgatg tacta at;配列リスト第32配列)及びcs3sSfi2Rプライマー(aattg gccat gatgg ccgaa ttcaa acaac tcaat agcaa gaaac;配列リスト第33配列)を使ってPCRを行って、CSP−B 3’−SAR因子を増幅した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で2分30秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpCLS09G1t1ベクターのPspOMI及びSfiI制限酵素部位にクローニングして、pCLS09G1t2ベクターを製造した。
pCLS09G1f1ベクターのPspOMI及びSfiI制限酵素部位の間にCSP−B 5’−SAR因子を挿入して、pCLS09G1f2ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pGEMT−CS5S.3.0kベクターを鋳型としてcs5sPsp2Fプライマー(aattg ggccc gaatt cctaa acaga gcaat taggt aag;配列リスト第34配列)及びcs5sSfi2Rプライマー(aattg gccat gatgg ccgaa ttcca gtgta aacgt cttcc ttgt;配列リスト第35配列)を使ってPCRを行って、CSP−B 5’−SAR因子を増幅した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で2分30秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpCLS09G1f1ベクターのPspOMI及びSfiI制限酵素部位にクローニングして、pCLS09G1f2ベクターを製造した。
pCLS09G1t1ベクターのPspOMI及びSfiI制限酵素部位の間にCSP−B 5’−SAR因子を挿入して、pCLS09G1tfベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pGEMT−CS5S.3.0kベクターを鋳型としてcs5sPsp2Fプライマー(aattg ggccc gaatt cctaa acaga gcaat taggt aag;配列リスト第34配列)及びcs5sSfi2Rプライマー(aattg gccat gatgg ccgaa ttcca gtgta aacgt cttcc ttgt;配列リスト第35配列)を使ってPCRを行って、CSP−B 5’−SAR因子を増幅した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で2分30秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpCLS09G1t1ベクターのPspOMI及びSfiI制限酵素部位にクローニングして、pCLS09G1tfベクターを製造した。
pCLS09G1f2ベクターのCMVプロモーター及びblaプロモーターの間にあるBglII制限酵素部位にCSP−B 5’−SAR因子を挿入して、pCLS09G1f3ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pGEMT−CS5S.3.0kベクターを鋳型としてcs5sBgl3Fプライマー(aatta gatct gaatt cctaa acaga gcaat taggt aag;配列リスト第36配列)及びcs5sBgl3Rプライマー(aatta gatct gaatt ccagt gtaaa cgtct tcctt gt;配列リスト第37配列)を使ってPCRを行って、CSP−B 5’−SAR因子を増幅した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で2分30秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpCLS09G1f2ベクターのBglII制限酵素部位にクローニングして、pCLS09G1f3ベクターを製造した。
pCLS09G1f1ベクターのCMVプロモーター及びblaプロモーターの間にあるBglII制限酵素部位にCSP−B 5’−SAR因子を挿入して、SARが目的遺伝子であるlacZ及びlacY遺伝子の両側に位置するpCLS09G1f4ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pGEMT−CS5S.3.0kベクターを鋳型としてcs5sBgl3Fプライマー(aatta gatct gaatt cctaa acaga gcaat taggt aag;配列リスト第36配列)及びcs5sBgl3Rプライマー(aatta gatct gaatt ccagt gtaaa cgtct tcctt gt;配列リスト第37配列)を使ってPCRを行って、CSP−B 5’−SAR因子を増幅した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で2分30秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpCLS09G1f1ベクターのBglII制限酵素部位にクローニングして、pCLS09G1f4ベクターを製造した。
pCLS09G1、pCLS09G1f1、pCLS09G1t1、またはpCLS09G1g1ベクターを使った形質転換
CSP−B 5’−SAR、CSP−B 3’−SAR、及びβグロビンMAR因子をベクターに1コピーずつ導入し、次のようにその効果を調べるために、次のような方法でCHO DG44細胞(Invitrogen,Cat.No.12609)を形質転換した。
βガラクトシダーゼ分析キット(Stratagen,Cat.No.200383)を使って形質転換した安定的細胞に対するβガラクトシダーゼ活性を確認し、ベクターによるβガラクトシダーゼ活性とpCLS09G1ベクターを基準とした相対的(relative)βガラクトシダーゼ活性とを求めた。表1及び図7に示したように、SAR/MAR因子が導入されていないpCLS09G1ベクターに比べて、SAR/MAR因子を導入したベクターは、いずれもβガラクトシダーゼ活性が増加した。また、βグロビンMAR因子を導入したpCLS09G1g1ベクターに比べて、CSP−B 5’−SAR因子を導入したpCLS09G1f1ベクターの場合、さらに高いβガラクトシダーゼ活性の増加を示した。したがって、目的タンパク質の発現率の増加のために、ベクターにCSP−B 5’−SARを導入することが望ましい。
CSP−B 5’−SAR因子が目的タンパク質の発現率を増加させるということを確認し、ベクターに導入するSAR因子のコピー数によって、目的タンパク質の発現率の増加が如何に変わるのか調べるために、次のような実験を行った。pCLS09G1f1、pCLS09G1f2、pCLS09G1f3、またはpCLS09G1f4ベクターでDG44細胞を形質転換し、ジェネティシン培地で選別して細胞プールを得た。形質転換した安定的細胞に対するβガラクトシダーゼ活性を確認し、ベクターによるβガラクトシダーゼ活性を求めた。表2と図8とに示したように、SAR因子を1コピーまたは3コピー導入したベクターに比べて、SAR因子を2コピー導入したベクターがさらに高いβガラクトシダーゼ活性を示した。すなわち、SAR因子による目的タンパク質の発現率の増加は、SAR因子のコピー数によって変わり、SAR因子をベクターに2コピー導入することによって、目的タンパク質の発現率を最大に増加させるということを確認した。
エリスロポエチン遺伝子の準備
GenBank M11319(human fetal liver genomic erythropoietin gene)及びGenBank NM000799(human erythropoietin mRNA)に登録されている582bpのエリスロポエチン遺伝子をクローニングするために、次のような実験を進行した。まず、Human liver Marathon−Ready cDNA library(BD,Cat.No.7407−1)を鋳型としてIE1ATGFプライマー(atggg ggtgc acgaa tgtcc tgcct;配列リスト第38配列)及びIE1TGARプライマー(tcatc tgtcc cctgt cctgc aggcc t;配列リスト第39配列)を使ってPCRを行った。98℃で10秒、58℃で30秒、そして、72℃で1分の条件で40回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpGEM−Tベクターにクローニングした。
大韓民国特許出願番号第1995−0701453号の請求項3に明示されたエリスロポエチン類似体NESP(A30N、H32T、P87V、W88N、P90T)の遺伝子を製造するために、次のような実験を進行した。まず、A30N及びH32T類似体の遺伝子を製造するために、pGEM−Tベクターにクローニングされているエリスロポエチン遺伝子を鋳型としてM13Rプライマー(gaaac agcta tgacc atg;配列リスト第40配列)及びIA1g1Rプライマー(ctcat tcaag ctgca tgttt catta cagcc cgtcg tgat;配列リスト第41配列)を使ってPCRを行い、M13Fプライマー(caggg ttttc ccagt cacga;配列リスト第42配列)及びIA1g1Fプライマー(atcacgacgg gctgt aatga aacat gcagc ttgaa tgag;配列リスト第43配列)を使ってPCRを行った。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で40秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、この2種のPCR産物を重複PCRを通じて連結し、pGEM−TベクターのNdeI及びSphI制限酵素部位にクローニングした。
前記NESP遺伝子のPCR産物をpCLS07ベクターのMCSのうち、HindIII及びXhoI制限酵素部位にクローニングして、pCLS07A1ベクターを製造した。
pCLS10A1ベクターの製造
NESPを動物細胞で発現することができるpCLS07A1ベクターのNheI制限酵素部位にSARまたはMAR因子を導入するためのMCSを挿入して、pCLS10A1ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pcDNA3.1(−)ベクターを鋳型としてNhAsf1Fプライマー(aattg ctagc atataggcgc gccaa cttga ttagg gtgat ggttc acgta g;配列リスト第48配列)及びNhClPaPsf1Rプライマー(aattg ctagc atata atcga ttata tttaa ttaaa tatagggccc ttgag tgttg ttcca gtttg gaaca aga;配列リスト第49配列)を使ってPCRを行った後、MCSを得た。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で15秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。このPCR産物をpCLS07A1ベクターのNheI制限酵素部位にクローニングして、pCLS10A1ベクターを製造した。
pCLS10A1ベクターのAscI及びPspOMI制限酵素部位の間にCSP−B3’−SAR因子を挿入して、pCLS10A1t1ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pGEMT−CS3S.1.2kベクターを鋳型としてcs3sAsc1Fプライマー(aattg gcgcg ccgga tccca ttctc cttga tgtac taat;配列リスト第50配列)及びcs3sPsp1Rプライマー(aattg ggccc gaatt caaac aactc aatag caaga aac;配列リスト第51配列)を使ってPCRを行って、CSP−B 3’−SAR因子を増幅した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で2分30秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpCLS10A1ベクターのAscI及びPspOMI制限酵素部位にクローニングして、pCLS10A1t1ベクターを製造した。
pCLS10A1ベクターのAscI及びPspOMI制限酵素部位の間にCSP−B5’−SAR因子を挿入して、pCLS10A1f1ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pGEMT−CS5S.3.0kベクターを鋳型としてcs5sAsc1Fプライマー(aattg gcgcg ccgaa ttcct aaaca gagca attag gtaag;配列リスト第52配列)及びcs5sPsp1Rプライマー(aattg ggccc gaatt ccagt gtaaa cgtct tcctt gt;配列リスト第53配列)を使ってPCRを行って、CSP−B 5’−SAR因子を増幅した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で2分30秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpCLS10A1ベクターのAscI及びPspOMI制限酵素部位にクローニングして、pCLS10A1f1ベクターを製造した。
pCLS07A1、pCLS10A1f1、またはpCLS10A1t1ベクターに形質転換したDG44細胞プールのNESP発現率の確認
βガラクトシダーゼ活性実験を通じて確認したSAR因子の効果が他の組換えタンパク質の発現にも適用されるかを調べるために、目的タンパク質であるNESPとSAR因子とを含むpCLS07A1、pCLS10A1f1、またはpCLS10A1t1ベクターをDG44細胞に形質転換し、ジェネティシン含む培地で選別した後、細胞プールを得て、ELISA(Enzyme−Linked Immunosorbent Assay)方法でNESPの発現率を確認した。表3及び図9に示したように、SAR因子が導入された場合、発現量が増加することを確認し、特に、CSP−B 5’−SAR因子をNESP遺伝子の下位に導入した場合、導入していない場合よりもNESPの発現率が11.2倍増加することを確認した。
外来遺伝子の位置による遺伝子発現抑制現象を克服することができるSAR因子の効果を確認するために、pCLS07A1、pCLS10A1t1、またはpCLS10A1f1ベクターをDG44細胞に形質転換した後、96ウェルプレートを使って単一コロニー(single colony)を作った。顕微鏡観察を通じて各ベクターのコロニー形成頻度を確認し、培養液を採取して発現率を測定して、各ベクターごとにNESPを発現する陽性クローン形成頻度を求めた。表4及び表5に示したように、SAR因子未導入時に、82%のコロニー形成頻度が表われ、CSP−B 5’−SAR因子導入時に、90%、3’−SAR因子導入時に、50%のウェルでコロニーが形成された。また、陽性クローンの頻度は、SAR因子未導入時に、及び3’−SAR因子導入時に、約40%程度に表われ、5’−SAR因子導入時に、59%に増加した。すなわち、5’−SAR因子導入時に、外来遺伝子の位置による遺伝子発現抑制現象が克服されて、目的遺伝子であるNESPを発現するクローンがさらに多く形成されることを確認することができた。
NESPの発現が確認された96ウェルプレート上の陽性クローンのうち、任意にベクター当たり24つを選んで24ウェルプレートに継代した後、培養液を採取して発現率を測定した。図10と図11とに示したように、CSP−B 5’−SAR因子を導入したベクターの場合、任意に選択した24つの陽性クローンのうち、10μg/ml以上の発現率を表わす高発現クローンが13つ表われ、SAR因子未導入ベクターの場合、5つ表われた。すなわち、ベクターに5’−SAR因子を導入時に、高発現クローンの出現頻度数が増加することを確認した。
pC01ベクターの製造
ネオマイシン抵抗遺伝子、アンピシリン抵抗遺伝子、CMVプロモーター、MCS、及びBGH pAを順次に含むpC01ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pcDNA3.1(−)ベクターを鋳型としてV1_Fプライマー(aagct tcctc agcat cgatg gccgg ccgga tccct gtgcc ttcta gttgc cagcc atctg t;配列リスト第54配列)及びV1_Rプライマー(tagag cccca gctgg ttctt tccgc ctcag;配列リスト第55配列)を使ってPCRを行った。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で1分の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpcDNA3.3−TOPOベクターにクローニングして、pC01ベクターを製造した。
CMVプロモーター、pC01ベクターのMCSと他のMCS及びBGH pAを順次に含むpC02ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pcDNA3.1(−)ベクターを鋳型としてV2_Fプライマー(gaatt ctgta caggt acccc tgcag gctcg agctg tgcct tctagttgcc agcca tctgt;配列リスト第56配列)及びV2_Rプライマー(tagag cccca gctgg ttctt tccgc ctcag;配列リスト第57配列)を使ってPCRを行った。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で1分の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpcDNA3.3−TOPOベクターにクローニングして、pC02ベクターを製造した。
pC01ベクターに含まれたネオマイシン抵抗遺伝子、アンピシリン抵抗遺伝子、CMVプロモーター、最初のMCS、BGH pA、pC02ベクターに含まれたCMVプロモーター、二番目のMCS及びBGH pAを順次に含むpC03ベクターを製造するために、次のような実験を行った。まず、pC01ベクターをDraIII及びAgeI制限酵素で切断し、大きなDNA切片を得た。次いで、pC02ベクターを鋳型としてPcmvAgeFプライマー(aatct gaccg gtgtt aggcg ttttg cgctg cttcg cg;配列リスト第58配列)及びBGHNheDraRプライマー(ttact acact acgtg gatcg agcta gctag agccc cagct ggttc tttcc g;配列リスト第59配列)を使ってPCRを行い、このPCR産物をDraIII及びAgeI制限酵素で切断した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で1分の条件で30回繰り返してPCRを行った。最後に、pC01ベクターをDraIII及びAgeI制限酵素で切断したDNA切片と、このPCR産物をライゲーションさせてpC03ベクターを製造した。
140pC03ベクターのBGH pAとSV40プロモーターとの間に、SV40dE1プロモーター、コザック配列、dhfr遺伝子、及びTK pAが挿入されたpCLS05ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、pC04ベクターを鋳型としてPsvApaDraFプライマー及びTKNheNdeRプライマーを使ってPCRを行った。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で1分30秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物とpC03ベクターとをDraIII及びNheI制限酵素でそれぞれ切断し、ここで得た2つの大きなDNA切片をライゲーションさせてpCLS05ベクターを製造した。
pCLS05ベクターのEcoRI及びXhoI制限酵素部位の間に抗HER2抗体重鎖(heavy chain)遺伝子を挿入して、pCLS05H1ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。まず、合成した抗HER2抗体遺伝子を鋳型としてH1ssFプライマー(ctctt cttgg tagca acagc tacag gtgtc cactc cgagg tccaa ctggt cgaaa gcggt gga;配列リスト第60配列)とH1TGAXhoRプライマー(aattctcgag tcatt taccc ggaga caggg agagg ctctt;配列リスト第61配列)とを使ってPCRを行って、シグナル配列(signal sequence)の一部がある重鎖遺伝子を増幅し、このPCR産物を鋳型としてH1ssEcoFプライマー(aattg aattc gccac catgg gatggagctg tatca tcctc ttctt ggtag caaca gctac agg;配列リスト第62配列)とH1TGAXhoRプライマー(配列リスト第61配列)とを使ってPCRを行って、コザック配列とシグナル配列とがある重鎖遺伝子を増幅した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で1分30秒の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpGEM−Tベクターにクローニングし、EcoRI及びXhoI制限酵素で切断してコザック配列とシグナル配列とがある重鎖遺伝子を得た後、pCLS05ベクターのEcoRI及びXhoI制限酵素部位にクローニングして、pCLS05H1ベクターを製造した。
pCLS05H1ベクターのHindIII及びBamHI制限酵素部位の間に抗HER2抗体軽鎖(light chain)遺伝子を挿入して、pCLS05H2ベクターを製造するために、次のような実験を行った。まず、合成した抗HER2抗体遺伝子を鋳型としてH2ssFプライマー(ctctt cttgg tagca acagc tacag gtgtc cactc cgata tccag atgac ccagagtccc tct;配列リスト第63配列)とH2TGABamRプライマー(aattg gatcc tcaac actct cccct gttga agctc tttgt;配列リスト第64配列)とを使ってPCRを行って、シグナル配列の一部がある軽鎖遺伝子を増幅し、このPCR産物を鋳型としてH2ssHinFプライマー(aatta agctt gccac catgg gatgg agctg tatca tcctc ttctt ggtag caaca gctac agg;配列リスト第65配列)とH2TGABamRプライマー(配列リスト第64配列)とを使ってPCRを行って、コザック配列とシグナル配列とがある軽鎖遺伝子を増幅した。98℃で10秒、60℃で30秒、そして、72℃で1分の条件で30回繰り返してPCRを行った。次いで、このPCR産物をpGEM−Tベクターにクローニングし、HindIII及びBamHI制限酵素で切断してコザック配列とシグナル配列とがある軽鎖遺伝子を得た後、pCLS05H1ベクターのHindIII及びBamHI制限酵素部位にクローニングして、pCLS05H2ベクターを製造した。pCLS05H2ベクターのマップは、図12Aに示した。
pCLS05H2f2ベクターの製造
抗HER2抗体を動物細胞で発現することができるpCLS05H2ベクターのMCT遺伝子とdhfr遺伝子との間にCSP−B 5’−SAR因子を2コピー導入して、pCLS05H2f2ベクターを製造するために、次のような実験を進行した。pCLS05H2ベクター及びpCLS09G1f2ベクターをXhoI及びBssHII制限酵素でそれぞれ切断し、ここで得た2つの大きなDNA切片をライゲーションさせてpCLS05H2f2ベクターを製造した。pCLS05H2f2ベクターのマップは、図12Bに示した。
pCLS05H2またはpCLS05H2f2ベクターに形質転換したDG44細胞プールの抗HER2抗体発現率の確認
抗HER2抗体の発現が確認された96ウェルプレート上の陽性クローンを任意に選んで24ウェルプレートに継代した後、培養液を採取して発現率を測定した。図14と図15とに示したように、CSP−B 5’−SAR因子を2コピー導入したベクターの場合、任意に選択した19つの陽性クローンのうち、5μg/ml以上の発現率を表わす高発現クローンが10個表われ、SAR因子未導入ベクターの場合、6つ表われた。すなわち、ベクターに5’−SAR因子を導入時に、相対的に組換えタンパク質を高発現するクローンの出現頻度数が増加することを確認した。
Claims (10)
- 次を含む動物細胞用発現ベクター:
(a)細胞毒性セリンプロテアーゼ−B(CSP−B)の5’−足場又はマトリックス付着領域(5’−SAR)と、
(b)動物細胞で作動するプロモーターと、
(c)ポリアデニル化配列。 - 前記ベクターは、発現しようとするタンパク質をコードするヌクレオチド配列をさらに含むことを特徴とする請求項1に記載の動物細胞用発現ベクター。
- 前記5’−SARは、2コピー(copies)で存在することを特徴とする請求項1に記載の動物細胞用発現ベクター。
- 前記動物細胞で作動するプロモーターは、サイトメガロウイルス(CMV)プロモーター、アデノウイルス後期プロモーター、ワクシニアウイルス7.5Kプロモーター、サルウイルス40(SV40)プロモーター、SV40E1プロモーター、単純ヘルペスウイルス(HSV)のtkプロモーター、RSウイルス(RSV)プロモーター、エロンゲーションファクター−1α(EF1α)プロモーター、メタロチオネインプロモーター、β−アクチンプロモーター、ヒトインターロイキン−2(IL−2)遺伝子のプロモーター、ヒトインターフェロン(IFN)遺伝子のプロモーター、ヒトインターロイキン−4(IL−4)遺伝子のプロモーター、ヒトリンホトキシン遺伝子のプロモーター、またはヒト顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM−CSF)遺伝子のプロモーターであることを特徴とする請求項1に記載の動物細胞用発現ベクター。
- 前記ポリアデニル化配列は、牛成長ホルモンポリアデニル化配列、HSV由来チミジンキナーゼ(TK)ポリアデニル化配列、またはSV40由来ポリアデニル化配列であることを特徴とする請求項1に記載の動物細胞用発現ベクター。
- 前記動物細胞は、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞、VERO細胞、HeLa細胞、WI38細胞、ベビーハムスター腎臓(BHK)細胞、COS細胞、またはメイディン・ダービー・イヌ腎臓(MDCK)細胞であることを特徴とする請求項1に記載の動物細胞用発現ベクター。
- 前記タンパク質は、ホルモン、サイトカイン、抗体、ペプチドアプタマー、アドネクチン、アフィボディ、アビマー、またはクニッツドメインであることを特徴とする請求項2に記載の動物細胞用発現ベクター。
- 前記タンパク質は、エリスロポエチン(EPO)、EPO類似体、または抗ヒト表皮増殖因子受容体2(HER2)抗体であることを特徴とする請求項7に記載の動物細胞用発現ベクター。
- 前記請求項1ないし請求項8のうち何れか一項に記載の発現ベクターによって形質転換された動物細胞。
- 前記請求項9の形質転換された動物細胞を培養する段階を含む組換えタンパク質の製造方法。
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
KR1020110056685A KR101420274B1 (ko) | 2011-06-13 | 2011-06-13 | Csp-b 5'sar 인자를 포함하는 동물세포 발현 벡터 및 이를 이용한 재조합 단백질의 제조방법 |
KR10-2011-0056685 | 2011-06-13 | ||
PCT/KR2012/003995 WO2012173344A2 (ko) | 2011-06-13 | 2012-05-21 | Csp-b 5'-sar 인자를 포함하는 동물세포 발현 벡터 및 이를 이용한 재조합 단백질의 제조방법 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2014516580A true JP2014516580A (ja) | 2014-07-17 |
JP5795434B2 JP5795434B2 (ja) | 2015-10-14 |
Family
ID=47357566
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2014515713A Expired - Fee Related JP5795434B2 (ja) | 2011-06-13 | 2012-05-21 | Csp−b5’−sar因子を含む動物細胞発現ベクター、及びそれを利用した組換えタンパク質の製造方法 |
Country Status (7)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US9228218B2 (ja) |
EP (1) | EP2719764B1 (ja) |
JP (1) | JP5795434B2 (ja) |
KR (1) | KR101420274B1 (ja) |
CN (1) | CN103797123B (ja) |
ES (1) | ES2611402T3 (ja) |
WO (1) | WO2012173344A2 (ja) |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2012134215A2 (ko) * | 2011-03-30 | 2012-10-04 | (주)팬젠 | 동물세포 발현벡터 |
BR112015027373A2 (pt) * | 2013-05-03 | 2017-08-29 | Fujifilm Diosynth Biotechnologies Uk Ltd | Processo de expressão |
KR101599138B1 (ko) * | 2014-06-17 | 2016-03-03 | 한국생명공학연구원 | 재조합 단백질 발현 증진을 위한 유전자 절편을 포함하는 벡터 및 이의 용도 |
KR101757346B1 (ko) | 2017-03-27 | 2017-07-26 | 아주대학교산학협력단 | 항-emap ii 항체 및 이의 용도 |
KR102078292B1 (ko) | 2017-05-30 | 2020-02-19 | 주식회사 종근당 | 신규한 항 c-Met 항체 및 이의 용도 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20040038394A1 (en) * | 2000-07-29 | 2004-02-26 | Kim Jong-Mook | Expression vector using for animal cell |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR100529281B1 (ko) * | 2000-12-15 | 2005-11-17 | 주식회사 팬젠 | 인터페론 베타 mar 인자를 포함하는 동물세포 발현벡터 |
US7259010B2 (en) * | 2000-12-15 | 2007-08-21 | Pangen Biotech Inc. | Expression vector for animal cell containing nuclear matrix attachment region of interferon beta |
KR20060096383A (ko) * | 2005-03-04 | 2006-09-11 | 주식회사 셀트리온 | 1 카피 이상의 mar dna 서열이 유전자의전사종결영역의 3′말단에 삽입된 동물세포 발현 벡터 및그를 이용한 외래 유전자의 발현 방법 |
EP2097538A4 (en) * | 2006-12-07 | 2011-11-30 | Switchgear Genomics | TRANSCRIPTION REAGULATION ELEMENTS OF BIOLOGICAL PATHS, TOOLS AND METHODS |
-
2011
- 2011-06-13 KR KR1020110056685A patent/KR101420274B1/ko active IP Right Grant
-
2012
- 2012-05-21 JP JP2014515713A patent/JP5795434B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 2012-05-21 US US14/125,705 patent/US9228218B2/en not_active Expired - Fee Related
- 2012-05-21 EP EP12800088.2A patent/EP2719764B1/en active Active
- 2012-05-21 CN CN201280029037.6A patent/CN103797123B/zh not_active Expired - Fee Related
- 2012-05-21 ES ES12800088.2T patent/ES2611402T3/es active Active
- 2012-05-21 WO PCT/KR2012/003995 patent/WO2012173344A2/ko active Application Filing
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20040038394A1 (en) * | 2000-07-29 | 2004-02-26 | Kim Jong-Mook | Expression vector using for animal cell |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
JPN6015010919; J.Biotechnol.,2004,107(2),p.95-105 * |
JPN6015010920; Biotechnol.Prog.,2005,21(3),p.933-7 * |
JPN6015010921; Blood,1992,79(3),p.610-8 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO2012173344A2 (ko) | 2012-12-20 |
EP2719764A2 (en) | 2014-04-16 |
JP5795434B2 (ja) | 2015-10-14 |
WO2012173344A3 (ko) | 2013-03-28 |
KR20120137683A (ko) | 2012-12-24 |
CN103797123B (zh) | 2016-04-20 |
KR101420274B1 (ko) | 2014-07-21 |
EP2719764A4 (en) | 2014-12-24 |
ES2611402T3 (es) | 2017-05-08 |
US9228218B2 (en) | 2016-01-05 |
CN103797123A (zh) | 2014-05-14 |
US20140093914A1 (en) | 2014-04-03 |
EP2719764B1 (en) | 2016-10-26 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP5795434B2 (ja) | Csp−b5’−sar因子を含む動物細胞発現ベクター、及びそれを利用した組換えタンパク質の製造方法 | |
US9605058B2 (en) | Antibodies against the CXC-ELR family of chemokines | |
CA3077413A1 (en) | Formulations | |
JP2023065343A (ja) | 発現困難タンパク質のための多部位ssi細胞 | |
US20210261607A1 (en) | Purification of chimeric fviii molecules | |
EP2935319B1 (en) | Production of therapeutic proteins in genetically modified mammalian cells | |
JP2010213718A (ja) | 外来性分子の一過性の発現もしくは安定な発現のための発現カセットおよび発現ベクター | |
EP2898077B1 (en) | Expression vectors comprising chimeric cytomegalovirus promoter and enhancer sequences | |
WO2014061735A1 (ja) | ヒトβ-ヘキソサミニダーゼBの基質特異性を変換し、且つ、プロテアーゼ抵抗性を付与した新規高機能酵素 | |
CN108473969A (zh) | 用于增强生产的rna相关酶的修饰 | |
US20040115775A1 (en) | Homogeneity and secretion of recombinant proteins in mammalian systems | |
AU2002222454A1 (en) | Improvement of homogeneity and secretion of recombinant proteins in mammalian systems | |
JP2001000194A (ja) | 神経成長因子を真核生物細胞において発現させるための遺伝子ベクター | |
JP2024515300A (ja) | ユニバーサルクローニングアダプターを含むアルファウイルスベクター | |
WO2010128032A1 (en) | Cho / cert cell lines | |
RU2500816C1 (ru) | РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК рАК380, КОДИРУЮЩАЯ ПОЛИПЕПТИД РЕКОМБИНАНТНОГО ФАКТОРА IХ СВЕРТЫВАЕМОСТИ КРОВИ ЧЕЛОВЕКА, ЛИНИЯ КЛЕТОК Cricetulus griseus CHO 1E6 - ПРОДУЦЕНТ РЕКОМБИНАНТНОГО ФАКТОРА IХ СВЕРТЫВАЕМОСТИ КРОВИ ЧЕЛОВЕКА И СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПОЛИПЕПТИДА, ОБЛАДАЮЩЕГО АКТИВНОСТЬЮ РЕКОМБИНАНТНОГО ФАКТОРА IХ | |
US20240016915A1 (en) | Cell culture process for producing RSV F protein | |
JP6087149B2 (ja) | タンパク質の生産方法 | |
JP2022513319A (ja) | 予測可能かつ安定な導入遺伝子発現を有するssi細胞および形成の方法 | |
KR20090124204A (ko) | 아미노 말단의 메티오닌이 제거된 재조합 사람 변이인터페론-베타 단백질을 생산하는 재조합 대장균 및 이의제조방법 | |
WO2022254319A1 (en) | Cell culture method for producing sfgfr3 polypeptide |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20140109 |
|
A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20140109 |
|
A711 | Notification of change in applicant |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A711 Effective date: 20140715 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20140716 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20150324 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20150601 |
|
TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20150714 |
|
A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20150812 |
|
R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 5795434 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |