JP2014511139A - 新規心筋細胞マーカー - Google Patents
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Abstract
Description
以上の結果から、本発明者らは、心筋細胞および/または心筋前駆細胞を単離精製することに成功し、本発明を完成するに至った。
本発明の他の態様は、PDGFRβが陰性であることを指標として心筋細胞および/または心筋前駆細胞を抽出する工程をさらに含む、前記方法を提供することである。
本発明の他の態様は、N-カドヘリンが陽性であることを指標として心筋細胞および/または心筋前駆細胞を抽出する工程をさらに含む、前記方法を提供することである。
本発明の他の態様は、前記心筋細胞および/または心筋前駆細胞がヒト心筋細胞および/またはヒト心筋前駆細胞である、前記方法を提供することである。
本発明の他の態様は、前記心筋細胞および/または心筋前駆細胞を含有する細胞集団が、多能性幹細胞から分化誘導された細胞集団または摘出組織細胞から成る細胞集団である、前記方法を提供することである。
本発明の他の態様は、前記心筋細胞および/または心筋前駆細胞への分化誘導が、サイトカインを含有する培地で培養する工程を含む分化誘導である、前記方法を提供することである。
本発明の他の態様は、前記サイトカインが、アクチビンAおよびBMP4(bone morphogenetic protein 4)から成る群より少なくとも一つ選択されるサイトカインである、前記方法を提供することである。
本発明の他の態様は、心筋細胞および/または心筋前駆細胞を含有する細胞集団よりVCAM1が陽性であることを指標として心筋細胞および/または心筋前駆細胞を検出する工程を含む、心筋細胞および/または心筋前駆細胞の検出方法を提供することである。
本発明の他の態様は、PDGFRβが陰性であることを指標として心筋細胞および/または心筋前駆細胞を検出する工程をさらに含む、前記方法を提供することである。
本発明の他の態様は、N-カドヘリンが陽性であることをさらに指標として心筋細胞および/または心筋前駆細胞を検出する工程を含む、前記方法を提供することである。
本発明の他の態様は、前記心筋細胞および/または心筋前駆細胞がヒト心筋細胞および/またはヒト心筋前駆細胞である、前記方法を提供することである。
本発明の他の態様は、前記心筋細胞および/または心筋前駆細胞を含有する細胞集団が、多能性幹細胞から分化誘導された細胞集団または摘出組織細胞から成る細胞集団である、前記方法を提供することである。
本発明の他の態様は、VCAM1に親和性を有する試薬を含む心筋細胞および/または心筋前駆細胞抽出または検出用キットを提供することである。
本発明の他の態様は、PDGFRβに親和性を有する試薬をさらに含む、前記キットを提供することである。
本発明の他の態様は、N-カドヘリンに親和性を有する試薬をさらに含む、前記キットを提供することである。
本発明の他の態様は、前記心筋細胞および/または心筋前駆細胞がヒト心筋細胞および/またはヒト心筋前駆細胞である、前記キットを提供することである。
本発明は、上記のとおり、心筋細胞および/または心筋前駆細胞を含有する細胞集団よりVCAM1が陽性であることを指標として心筋細胞および/または心筋前駆細胞を抽出する工程を含む、心筋細胞および/または心筋前駆細胞の製造方法、または心筋細胞および/または心筋前駆細胞を含有する細胞集団よりVCAMが陽性であることを指標として心筋細胞および/または心筋前駆細胞を検出する工程を含む、心筋細胞および/または心筋前駆細胞の検出方法に関する。
r receptor, beta polypeptideまたはPDGFR1として知られる細胞表面受容体である。例えば、ヒトの場合、PDGFRβをコードする遺伝子はNCBIのアクセッション番号NM_002609に記載された配列を有する。
心筋細胞および心筋前駆細胞とは、心筋マーカーである心筋トロポニン(cTnTまたはtroponin T type 2)陽性および/またはαMHC(α myosin heavy chain)陽性であることによって特徴づけられる。
本発明で使用可能な多能性幹細胞は、生体に存在するすべての細胞に分化可能である多能性を有し、かつ、増殖能をも併せもつ幹細胞であり、それには、以下のものに限定されないが、例えば胚性幹(ES)細胞、核移植により得られるクローン胚由来の胚性幹(ntES)細胞、精子幹細胞(「GS細胞」)、胚性生殖細胞(「EG細胞」)、人工多能性幹(iPS)細胞などが含まれる。好ましい多能性幹細胞は、ES細胞、ntES細胞、およびiPS細胞である。
ES細胞は、ヒトやマウスなどの哺乳動物の初期胚(例えば胚盤胞)の内部細胞塊から樹立された、多能性と自己複製による増殖能を有する幹細胞である。
Biochem. Biophys. Res. Commun., 345:926-932; M. Ueno et al. (2006), Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 103:9554-9559; H. Suemori et al. (2001), Dev. Dyn., 222:273-279;H. Kawasaki et al. (2002), Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 99:1580-1585;Klimanskaya I, et al. (2006), Nature. 444:481-485などに記載されている。
ヒトES細胞株は、例えばWA01(H1)およびWA09(H9)は、WiCell Reserch Instituteから、KhES-1、KhES-2及びKhES-3は、京都大学再生医科学研究所(京都、日本)から入手可能である。
精子幹細胞は、精巣由来の多能性幹細胞であり、精子形成のための起源となる細胞である。この細胞は、ES細胞と同様に、種々の系列の細胞に分化誘導可能であり、例えばマウス胚盤胞に移植するとキメラマウスを作出できるなどの性質をもつ(M. Kanatsu-Shinohara et al. (2003) Biol. Reprod., 69:612-616; K. Shinohara et al. (2004), Cell, 119:1001-1012)。神経膠細胞系由来神経栄養因子(glial cell line-derived neurotrophic factor (GDNF))を含む培養液で自己複製可能であるし、またES細胞と同様の培養条件下で継代を繰り返すことによって、精子幹細胞を得ることができる(竹林正則ら(2008),実験医学,26巻,5号(増刊),41〜46頁,羊土社(東京、日本))。
胚性生殖細胞は、胎生期の始原生殖細胞から樹立される、ES細胞と同様な多能性をもつ細胞であり、LIF、bFGF、幹細胞因子(stem cell factor)などの物質の存在下で始原生殖細胞を培養することによって樹立しうる(Y. Matsui et al. (1992), Cell, 70:841-847; J.L. Resnick et al. (1992), Nature, 359:550-551)。
人工多能性幹(iPS)細胞は、特定の初期化因子を、DNA又はタンパク質の形態で体細胞に導入することによって作製することができる、ES細胞とほぼ同等の特性、例えば分化多能性と自己複製による増殖能、を有する体細胞由来の人工の幹細胞である(K. Takahashi and S. Yamanaka (2006) Cell, 126:663-676; K. Takahashi et al. (2007), Cell, 131:861-872; J. Yu et al. (2007), Science, 318:1917-1920; Nakagawa, M.ら,Nat. Biotechnol. 26:101-106 (2008);国際公開WO 2007/069666)。初期化因子は、ES細胞に特異的に発現している遺伝子、その遺伝子産物もしくノンコーディング RNAまたはES細胞の未分化維持に重要な役割を果たす遺伝子、その遺伝子産物もしくはノンコーディング RNA、あるいは低分子化合物によって構成されてもよい。初期化因子に含まれる遺伝子として、例えば、Oct3/4、Sox2、Sox1、Sox3、Sox15、Sox17、Klf4、Klf2、c-Myc、N-Myc、L-Myc、Nanog、Lin28、Fbx15、ERas、ECAT15-2、Tcl1、beta-catenin、Lin28b、Sall1、Sall4、Esrrb、Nr5a2、Tbx3、Glis1等が例示され、これらの初期化因子は、単独で用いても良く、組み合わせて用いても良い。初期化因子の組み合わせとしては、WO2007/069666、WO2008/118820、WO2009/007852、WO2009/032194、WO2009/058413、WO2009/057831、WO2009/075119、WO2009/079007、WO2009/091659、WO2009/101084、WO2009/101407、WO2009/102983、WO2009/114949、WO2009/117439、WO2009/126250、WO2009/126251、WO2009/126655、WO2009/157593、WO2010/009015、WO2010/033906、WO2010/033920、WO2010/042800、WO2010/050626
、WO 2010/056831、WO2010/068955、WO2010/098419、WO2010/102267、WO 2010/111409、WO 2010/111422、WO2010/115050、WO2010/124290、WO2010/147395、WO2010/147612、Huangfu D, et al. (2008), Nat. Biotechnol., 26: 795-797、Shi Y, et al. (2008), Cell Stem Cell, 2: 525-528、Eminli S, et al. (2008), Stem Cells. 26:2467-2474、Huangfu
D, et al. (2008), Nat Biotechnol. 26:1269-1275、Shi Y, et al. (2008), Cell Stem
Cell, 3, 568-574、Zhao Y, et al. (2008), Cell Stem Cell, 3:475-479、Marson A, (2008), Cell Stem Cell, 3, 132-135、Feng B, et al. (2009), Nat Cell Biol. 11:197-203、R.L. Judson et al., (2009), Nat. Biotech., 27:459-461、Lyssiotis CA, et al.
(2009), Proc Natl Acad Sci U S A. 106:8912-8917、Kim JB, et al. (2009), Nature.
461:649-643、Ichida JK, et al. (2009), Cell Stem Cell. 5:491-503、Heng JC, et al. (2010), Cell Stem Cell. 6:167-74、Han J, et al. (2010), Nature. 463:1096-100、Mali P, et al. (2010), Stem Cells. 28:713-720、Maekawa M, et al. (2011),Nature. 474:225-229に記載の組み合わせが例示される。
shRNA Constructs against HDAC1 (OriGene)等)等の核酸性発現阻害剤など]、MEK阻害剤(例えば、PD184352、PD98059、U0126、SL327およびPD0325901)、Glycogen synthase kinase-3阻害剤(例えば、BioおよびCHIR99021)、DNAメチルトランスフェラーゼ阻害剤(例えば、5-azacytidine)、ヒストンメチルトランスフェラーゼ阻害剤(例えば、BIX-01294 等の低分子阻害剤、Suv39hl、Suv39h2、SetDBlおよびG9aに対するsiRNAおよびshRNA等の核酸性発現阻害剤など)、L-channel calcium agonist (例えばBayk8644)、酪酸、TGFβ阻害剤またはALK5阻害剤(例えば、LY364947、SB431542、616453およびA-83-01)、p53阻害剤(例えばp53に対するsiRNAおよびshRNA)、ARID3A阻害剤(例えば、ARID3Aに対するsiRNAおよびshRNA)、miR-291-3p、miR-294、miR-295およびmir-302などのmiRNA、Wnt Signaling(例えばsoluble Wnt3a)、神経ペプチドY、プロスタグランジン類(例えば、プロスタグランジンE2およびプロスタグランジンJ2)、hTERT、SV40LT、UTF1、IRX6、GLISl、PITX2、DMRTBl等の樹立効率を高めることを目的として用いられる因子も含まれており、本明細書においては、これらの樹立効率の改善目的にて用いられた因子についても初期化因子と別段の区別をしないものとする。
S)、FLAGなどのレポーター遺伝子配列などを含むことができる。また、上記ベクターには、体細胞への導入後、初期化因子をコードする遺伝子もしくはプロモーターとそれに結合する初期化因子をコードする遺伝子を共に切除するために、それらの前後にLoxP配列を有してもよい。
L, (2010) Cell Stem Cell. 7:618-630)。
この他にも、血清を含有しない培地を用いて培養する方法も例示される(Sun N, et al. (2009), Proc Natl Acad Sci U S A. 106:15720-15725)。さらに、樹立効率を上げるため、低酸素条件(0.1%以上、15%以下の酸素濃度)によりiPS細胞を樹立しても良い(Yoshida Y, et al. (2009), Cell Stem Cell. 5:237-241またはWO2010/013845)。
胞)をいう。体細胞には、非限定的に、胎児(仔)の体細胞、新生児(仔)の体細胞、及び成熟した健全なもしくは疾患性の体細胞のいずれも包含されるし、また、初代培養細胞、継代細胞、及び株化細胞のいずれも包含される。具体的には、体細胞は、例えば(1)神経幹細胞、造血幹細胞、間葉系幹細胞、歯髄幹細胞等の組織幹細胞(体性幹細胞)、(2)組織前駆細胞、(3)リンパ球、上皮細胞、内皮細胞、筋肉細胞、線維芽細胞(皮膚細胞等)、毛細胞、肝細胞、胃粘膜細胞、腸細胞、脾細胞、膵細胞(膵外分泌細胞等)、脳細胞、肺細胞、腎細胞および脂肪細胞等の分化した細胞などが例示される。
nt ES細胞は、核移植技術によって作製されたクローン胚由来のES細胞であり、受精卵由来のES細胞とほぼ同じ特性を有している (T. Wakayama et al. (2001), Science, 292:740-743; S. Wakayama et al. (2005), Biol. Reprod., 72:932-936; J. Byrne et al.
(2007), Nature, 450:497-502)。すなわち、未受精卵の核を体細胞の核と置換することによって得られたクローン胚由来の胚盤胞の内部細胞塊から樹立されたES細胞がnt ES(nuclear transfer ES)細胞である。nt ES細胞の作製のためには、核移植技術(J.B. Cibelli et al. (1998), Nature Biotechnol., 16:642-646)とES細胞作製技術(上記)との組み合わせが利用される(若山清香ら(2008),実験医学,26巻,5号(増刊), 47〜52頁)。核移植においては、哺乳動物の除核した未受精卵に、体細胞の核を注入し、数時間培養することで初期化することができる。
多能性幹細胞から心筋細胞および/または心筋前駆細胞への分化誘導方法は特に限定されないが、例えば、以下の方法を用いることができる。
を包含する。例えば、T、KDR、FOXF1、FLK1およびBMP4と言ったマーカーの発現により示される。好ましくは、KDRまたはFLK1を発現する細胞である。
好ましい培地として、B27-サプリメントを含有するRPMI 1640培地が例示され、さらに薬剤を加える場合、培養時期ごと加える薬剤を変えてもよい。
このように製造された心筋細胞および/または心筋前駆細胞は、心筋細胞および/または心筋前駆細胞のみからなる細胞集団でもよいが、通常は、他の種類の細胞が含有された細胞集団である。後者の場合、心筋細胞および/または心筋前駆細胞の純度を上げるため、本発明の方法によって心筋細胞および/または心筋前駆細胞を抽出する必要がある。
心筋細胞および/または心筋前駆細胞を含有する細胞集団より心筋細胞および/または心筋前駆細胞の抽出または検出のために、VCAM1、PDGFRβまたはN-カドヘリンに特異的親和性を有する試薬であれば何でもよく、抗体、アプタマー、ペプチドまたは特異的に認識する化合物などを用いることができ、好ましくは、抗体もしくはその断片である。
本発明において、抗体はポリクローナルまたはモノクローナル抗体であってよい。これらの抗体は、当業者に周知の技術を用いて作成することが可能である(Current protocol
s in Molecular Biology edit.Ausubel et al.(1987) Publish.John Wiley and Sons.Section 11.12-11.13)。具体的には、抗体がポリクローナル抗体の場合には、常法に従って大腸菌等で発現し精製したVCAM1、PDGFRβまたはN-カドヘリンがコードするタンパク質、あるいは部分アミノ酸配列を有するオリゴペプチドを合成して、家兎等の非ヒト動物に免疫し、該免疫動物の血清から常法に従って得ることが可能である。一方、モノクローナル抗体の場合には、上述の免疫された非ヒト動物から得られた脾臓細胞と骨髄腫細胞とを細胞融合させて調製したハイブリドーマ細胞の中から得ることができる(Current protocols in Molecular Biology edit.Ausubel et al.(1987) Publish.John Wiley and Sons.Section 11.4-11.11)。抗体の断片としては、抗体の一部(たとえばFab断片)または合成抗体断片(たとえば、一本鎖Fv断片「ScFv」)が例示される。FabおよびF(ab)2断片などの抗体の断片もまた、遺伝子工学的に周知の方法によって作製することができる。
心筋細胞および/または心筋前駆細胞を検出する方法には、たとえば、フローサイトメーターまたは単離精製した後、別途細胞を検出する方法(例えば、プロテインチップ)を用いることが含まれる。
ヒトES細胞(KhES-1およびKhES-3)は、京都大学再生医科学研究所より受領した(Suemori H, et al. Biochem Biophys Res Commun. 345: 926-32, 2006)。ヒトiPS細胞(201B6、201B7、253G1、253G4、TIG107-3F1、TIG107-4F1、TIG114-4F1およびTIG120-4F1)は、京都大学の山中教授より受領した(Takahashi K, et al. Cell. 131: 861-72, 2007およびNakagawa M, et al. Nat Biotechnol. 26: 101-6, 2008)。ヒトES細胞およびヒトiPS細胞は、growth factor-reduced Matrigel (#354230; Becton-Dickinson)でコートしたディッシュ上でMEF(Mouse Embryo Fibroblast)の馴化培地(MMC(mitomycin C)処理後のMEFを1日間、20%KSR、4ng/mL bFGF , 1 mM L-glutamine, 0.1 mM β-mercaptoethanolおよ
び1% nonessential amino acids含有 DMEMで培養した培養上清)を用いて培養した。
心筋細胞/心筋前駆細胞の誘導法
ヒトES細胞またはiPS細胞を20〜35×104個/200mm2の濃度でマトリゲルコートしたディッシュへ播種し、MEFの馴化培地(MMC処理後のMEFを1日間、20%KSR、4ng/mL bFGF, 1 mM L-glutamine, 0.1 mM β-mercaptoethanolおよび1% nonessential amino acids含有 DMEMで培養した培養上清)で2日間培養した。続いて、B27サプリメント(without insulin)(Invitrogen)および2mM L-glutamineを含有したRPMI1640(Invitrogen)(RPMI/B27)へ100ng/mlのアクチビンA(R & D Systems)を添加した培地へ交換した。翌日、10ng/mlのBMP4(R & D Systems)を添加したRPMI/B27へ培地交換し、4日間培養した。続いて、培地をRPMI/B27のみへ交換した。2日毎にRPMI/B27を交換すると、RPMI/B27へ交換後、4日目以後に拍動する細胞が観察できた。
上述した方法により誘導したヒトiPS細胞由来の心筋細胞/心筋前駆細胞を(1)VCAM1陰性N-カドヘリン陽性、(2)VCAM1陽性N-カドヘリン陽性、(3)VCAM1陰性N-カドヘリン陰性および(4)VCAM1陽性N-カドヘリン陰性の4つのカテゴリーに分けてソーティングした後、0.1%ゼラチンをコートしたディッシュへ播種し、3日間 10%FBS含有・MEM(Invitrogen)にて培養したところ、VCAM1陽性N-カドヘリン陽性細胞にcTnT陽性細胞が最も多く、続いてVCAM1陽性N-カドヘリン陰性細胞であることが確認された(図1)。
以上より、VCAM1のみ、またはVCAM1およびN-カドヘリンを指標とすることで、心筋細胞/心筋前駆細胞の識別が可能であることが示唆された。
心筋細胞/心筋前駆細胞の誘導法
ヒトES細胞またはiPS細胞を20〜35×104個/200mm2の濃度でマトリゲルコートしたディッシュへ播種し、4ng/mL のbFGF を再添加したMEFの馴化培地(MMC処理後のMEFを1日間、20%KSR、4ng/mL bFGF、1 mM L-glutamine、0.1 mM β-mercaptoethanolおよび1% nonessential amino acidsを含有したknockout DMEMで培養した培養上清)で培養した後、マトリゲルを添加し1日間培養を継続した。続いて、B27サプリメント(Invitrogen)および2mM L-glutamineを含有したRPMI1640(Invitrogen)(RPMI/B27)へ100ng/mlのアクチビンA(R & D Systems)を添加した培地へ交換した。翌日、10ng/mlのBMP4(R & D Systems)および10ng/ml bFGFを添加したRPMI/B27へ培地交換し、4日間培養した。さらに、10ng/ml Dkk1を含有するRPMI/B27へ交換した。その後、RPMI/B27培地へ交換し2日毎に培地を交換し4日間培養を続けた。本プロトコールを図2へ示す。RPMI/B27培地へ交換後1から2日目に拍動する細胞が観察できた。
上述した方法で誘導したヒトiPS細胞(201B6)由来の心筋細胞/心筋前駆細胞を誘導7日目、9日目、11日目にVCAM1抗体(BioLegend)およびcTnT抗体(NeoMarker)にて染色し、フローサイトメトリーを用いて評価したところ、誘導11日目には、VCAM1の陽性とcTnTの陽性に相関がみられた(図3A)。また、この誘導11日目のVCAM1陽性細胞を純化した場合、約95%の細胞がcTnT陽性であることが確認された(図3BおよびC)。
また、誘導11日目に純化した細胞をさらに7日間培養したところ、cTnTと共にアクチン線維が確認できた(図4)。さらに、他のヒトES細胞株(KhES1)またはiPS細胞株(201B7、253G1および253G4)においても同様の方法によりVCAM1が陽性であることを指標として心筋細胞/心筋前駆細胞を効率よく単離できることが確認された(図5)。以上より、VCAM1が陽性であることを指標として心筋細胞/心筋前駆細胞を効率よく単離精製することができることが確認された。
また、上述した方法により誘導したヒトES細胞(KhES1およびKhES3)およびiPS細胞(253G1)由来の心筋細胞/心筋前駆細胞をVCAM1、cTnTおよびPDGFRβにて染色し、FACSにより解析したところ、いずれの細胞においてもVCAM1陽性およびPDGFRβ陰性の細胞群では、ほとんどがcTnT陽性細胞であることが確認された(図6)。以上より、VCAM1の陽性に加えPDGFRβが陰性であることを指標とすることで、心筋細胞/心筋前駆細胞のより効率的な識別が可能であることが示唆された。
Claims (16)
- 心筋細胞および/または心筋前駆細胞を含有する細胞集団よりVCAM1が陽性であることを指標として心筋細胞および/または心筋前駆細胞を抽出する工程を含む、心筋細胞および/または心筋前駆細胞の製造方法。
- PDGFRβが陰性であることを指標として心筋細胞および/または心筋前駆細胞を抽出する工程をさらに含む、請求項1に記載の方法。
- N-カドヘリンが陽性であることを指標として心筋細胞および/または心筋前駆細胞を抽出する工程をさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記心筋細胞および/または心筋前駆細胞がヒト心筋細胞および/またはヒト心筋前駆細胞である、請求項1に記載の方法。
- 前記心筋細胞および/または心筋前駆細胞を含有する細胞集団が、多能性幹細胞から分化誘導された細胞集団または摘出組織細胞から成る細胞集団である、請求項1に記載の方法。
- 前記心筋細胞および/または心筋前駆細胞への分化誘導が、サイトカインを含有する培地で培養する工程を含む分化誘導である、請求項5に記載の方法。
- 前記サイトカインが、アクチビンAおよびBMP4から成る群より少なくとも一つ選択されるサイトカインである、請求項6に記載の方法。
- 心筋細胞および/または心筋前駆細胞を含有する細胞集団よりVCAM1が陽性であることを指標として心筋細胞および/または心筋前駆細胞を検出する工程を含む、心筋細胞および/または心筋前駆細胞の検出方法。
- PDGFRβが陰性であることを指標として心筋細胞および/または心筋前駆細胞を検出する工程をさらに含む、請求項8に記載の方法。
- N-カドヘリンが陽性であることをさらに指標として心筋細胞および/または心筋前駆細胞を検出する工程を含む、請求項8に記載の方法。
- 前記心筋細胞および/または心筋前駆細胞がヒト心筋細胞および/またはヒト心筋前駆細胞である、請求項8に記載の方法。
- 前記心筋細胞および/または心筋前駆細胞を含有する細胞集団が、多能性幹細胞から分化誘導された細胞集団または摘出組織細胞から成る細胞集団である、請求項8に記載の方法。
- VCAM1に親和性を有する試薬を含む心筋細胞および/または心筋前駆細胞抽出または検出用キット。
- PDGFRβに親和性を有する試薬をさらに含む、請求項13に記載のキット。
- N-カドヘリンに親和性を有する試薬をさらに含む、請求項13に記載のキット。
- 前記心筋細胞および/または心筋前駆細胞がヒト心筋細胞および/またはヒト心筋前駆細胞である、請求項13に記載のキット。
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