JP2014073412A - 足場 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】組織インプラントをインビトロで調製する方法であって、
(a)適切な組織源から単離された細胞を提供する段階;
(b)前記細胞を、高分子繊維で形成された少なくとも2つの第1の足場に播種し、前記細胞が細胞外マトリックスを分泌して細胞凝集体を形成するのに十分な時間、これらの足場を培養する段階;および
(c)(b)で得られた少なくとも2つの足場を、高分子繊維で形成された第2の足場に添加する段階
を含む方法の提供。
【選択図】なし
Description
(a)適切な組織源から単離された細胞を提供する段階;
(b)細胞を少なくとも2つの第1の足場に播種し、細胞が細胞外マトリックスを分泌するのに十分な時間、これらの足場を培養する段階;および
(c)(b)で得られた少なくとも2つの足場を第2の足場に添加する段階
を含む。
(a)適切な組織源から細胞を得る段階;
(b)細胞を少なくとも2つの第1の足場に播種し、細胞が細胞外マトリックスを分泌するのに十分な時間、第1の足場を培養する段階;
(c)(b)で得られた少なくとも2つの足場を第2の足場に添加する段階;および
(d)対象内の部位に第2の足場を移植する段階
を含む。
(a)適切な組織源から単離された細胞を提供する段階;
(b)複数の繊維を提供する段階;および
(c)細胞が細胞外マトリックスを分泌し、細胞凝集体を形成するのに十分な時間、細胞と繊維を一緒に培養する段階
を含む。
(a)適切な組織源から細胞を得る段階;
(b)複数の繊維を提供する段階;
(c)細胞が細胞外マトリックスを分泌し、細胞凝集体を形成するのに十分な時間、細胞と繊維を一緒に培養する段階;および
(d)対象内の部位に凝集体を移植する段階
を含む。
(工程1:第1の足場の調製)
ポリグリコール酸(PGA)不織布フェルトは、ポリ(L-ラクチド-co-グリコール酸)(PLLGA)の溶液にフェルトを浸すことによってPLLGAで補強し、乾燥する。直径が約0.5mm×1mmの間、深さが約0.5〜3mmの間のディスクを打ち抜いた。
ヒツジ骨髄幹細胞を、約250,000細胞/足場の細胞数で45個の第1の足場に播種した。第1の足場を、ファルコンチューブ中で、10%HIFCS、2mM L-グルタミン、1%非必須アミノ酸、100IU/mlペニシリン、100μg/ストレプトマイシン、50μg/mlアスコルビン酸および5mg/ml FGF-2を含む、全量が5mlのαMEM培地に播種した。細胞および足場をスピロミックス(spiromix)プラットフォーム上で一晩培養し、細胞を含む培地に常に足場を浸した。24時間後、培地の体積を25mlに調整し、非接着性の通気された組織培養用の三角フラスコに移した。細胞をさらに数週間、平床式シェーカー上で一定に撹拌しながら培養し、培地を2〜3日ごとに交換した。図2は、1週間培養した細胞播種足場の例を示し、足場への細胞の浸潤を示す。
1週間後、細胞播種足場は、下記の1×10-7Mデキサメタゾン、50μg/mlアスコルビン酸、1×ITS(インスリン、トランスフェリング、亜セレン酸)、40μg/mlプロリン、1mMピルビン酸ナトリウムおよび20ng/ml TGFβ3を含む、2mM L-グルタミン、1%非必須アミノ酸、100IU/mlペニシリンおよび100μg/mlストレプトマイシンを含む低グルコースDMEMからなる軟骨細胞分化培地に移した。足場は、平床式シェーカー上で一定に撹拌しながら、三角フラスコ中のこの培地で最大28時間培養し、培地を3〜4日ごとに交換した。
図3は、ヒツジ骨髄幹細胞が、培養期間中に、グリコサミノグリカンを含む細胞外マトリックスを分泌する軟骨細胞に分化したことを示す。
次に、第1の細胞播種足場を、PLLGAで補強された不織布PGAフェルトで形成されたカップ状の第2の足場に播種し、移植/保存前に最大7日間、さらに培養した。図4は、培養前に35個の第1の細胞播種足場を播種したカップ状の足場の例を示す。
(工程1:第1の足場の調製)
ポリグリコール酸(PGA)不織布フェルトは、ポリ(L-ラクチド-co-グリコール酸)(PLLGA)の溶液にフェルトを浸すことによってPLLGAで補強し、乾燥する。直径が約0.5mm×1mmの間、深さが約0.5〜3mmの間のディスクを打ち抜いた。
成人ヒト骨髄幹細胞を蘇生し、90%のコンフルエントになるまで2D培養で増殖した。トリプシン(0.05%w/v)およびEDTA(0.02%w/v)溶液を用いてフラスコから細胞を脱着させ、次に10%FCSを含むα-MEM培地を細胞懸濁液に添加し、トリプシンの活性を中和した。細胞を計数し、体積を調整して、培地500μlあたり250,000細胞である細胞濃度を得た。
細胞播種ディスクを、20ng/ml TGFβ-3を補足された培地中で最大18日間インキュベートし、定期的に培地を交換した。
図5は、培養18日後、サフラニンOを用いた足場の染色を示す。矢印は染色強度の異なるレベルを示し、次の通りである:
1:非常に強いサフラニンO染色
2:強いサフラニンO染色
3:中程度のサフラニンO染色
4:PGA繊維の非特異的なサフラニンO染色
5:非染色
(工程1:第1の足場の調製)
ポリグリコール酸(PGA)不織布フェルトは、ポリ(L-ラクチド-co-グリコール酸)(PLLGA)の溶液にフェルトを浸すことによってPLLGAで補強し、乾燥する。直径が約0.5mm×1mmの間、深さが約0.5〜3mmの間のディスクを打ち抜いた。
成体ヒツジ軟骨細胞を蘇生し、90%のコンフルエントになるまで2D培養で増殖した。トリプシン(0.05%w/v)およびEDTA(0.02%w/v)溶液を用いてフラスコから細胞を脱着させ、次に10%FCSを含むα-MEM培地を細胞懸濁液に添加し、トリプシンの活性を中和した。細胞を計数し、体積を調整して、培地500μlあたり250,000細胞である細胞濃度を得た。
細胞播種ディスクを、20ng/ml TGFβ-3を補足された培地中で最大18日間インキュベートし、定期的に培地を交換した。
図5は、培養18日後、サフラニンOを用いた足場の染色を示す。矢印は染色強度の異なるレベルを示し、次の通りである:
1:非常に強いサフラニンO染色
2:強いサフラニンO染色
3:中程度のサフラニンO染色
4:PGA繊維の非特異的なサフラニンO染色
5:非染色
(工程1:第1の足場の調製)
ポリグリコール酸(PGA)繊維は、繊維を0.5〜3mmの長さに切り刻むことによって生成した(図1)。
工程1に従って調製した65μgの繊維は、2mM L-グルタミン、1%非必須アミノ酸、100IU/mlペニシリン、100μg/mlストレプトマイシン、50μg/mlアスコルビン酸、1×10-7Mデキサメタゾン、50μg/mlアスコルビン酸、1×ITS(インスリン、トランスフェリン、亜セレン酸)、40μg/mlプロリン、1mMピルビン酸ナトリウムおよび20ng/ml TGFβ3を含む、全量が5mlのDMEM培地に懸濁させた。1μgの繊維あたり40,000細胞の濃度(5ml繊維および上述した培地における全細胞数が5×106個である)の細胞(ヒトおよびヒツジの骨髄由来の間充織幹細胞)を繊維懸濁液に添加した。次に、上記の懸濁液を試料あたり500μlの体積で、無菌の2mlの深さであるポリプロピレン製の96ウェルプレートの個々のウェルに等分し、200gで5分間遠心分離して、細胞および繊維をともにコンパクトにした(図2を参照)。これにより10細胞/繊維ペレットを生成した。試料周辺のウェルにPBSを満たし、試料周辺の微環境の湿度を上昇させた。次に、試料を37℃、5%CO2、および90%湿度で10日間インキュベートし、図3に示されるペレットを得た。
図4は、ヒト骨髄由来の幹細胞が、培養期間中に、グリコサミノグリカンを含む細胞外マトリックスを分泌する軟骨細胞に分化したことを示す。図5は、ヒツジ骨髄幹細胞を用いて得られた同様の結果を示す。
細胞/繊維を、PLLGAで補強された不織布PGAフェルトで形成されたカップ状の第2の足場に播種し、移植/保存前に最大7日間、さらに培養した。図6は、培養前に6個の第1の細胞播種足場を播種したカップ状の足場の例を示す。
Claims (1)
- 組織インプラントをインビトロで調製する方法であって、
(a)適切な組織源から単離された細胞を提供する段階;
(b)前記細胞を少なくとも2つの第1の足場に播種し、前記細胞が細胞外マトリックスを分泌するのに十分な時間、これらの足場を培養する段階;および
(c)(b)で得られた少なくとも2つの足場を第2の足場に添加する段階
を含む方法。
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