JP2012520085A - 生物活性rnaの送達のための組成物及び方法 - Google Patents

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Abstract

本発明は、生物活性RNA分子の細胞への送達のための新規な化合物、組成物及び方法を提供する。具体的には、本発明は、生物活性RNAの細胞への送達に有用な新規な核酸分子、ポリペプチド及びRNA−タンパク質複合体、並びにそれらをコードするポリヌクレオチドを提供する。本発明はまた、そのポリヌクレオチドを発現するためのベクターをも提供する。更に、本発明は、トランスフェクション試薬として使用され得る新規な化合物及びベクターを含む細胞及び組成物を提供する。本発明は、それらの化合物、ベクター、細胞及び組成物の作製方法を更に提供する。更に、生物活性RNA分子を細胞及び/又は組織に送達するためのベクター及び方法が提供される。新規な化合物、ベクター、細胞及び組成物は、例えば、対象又は生物における疾患、障害又は状態の診断、予防、寛解及び/又は治療における標的遺伝子発現を調節するために生物活性RNA分子を細胞に送達する場合に有用である。

Description

本出願は、図面を含めて、両出願が参照により本明細書に完全に組み込まれている2009年3月13日に出願の米国出願シリアル番号第61/160287号及び2009年3月13日に出願の米国出願シリアル番号第61/160288号に基づく優先権を主張するものである。
本発明は、生物活性RNA分子の細胞への送達のための新規な化合物、組成物及び方法を提供する。具体的には、本発明は、生物活性RNAの細胞への送達に有用な新規な核酸分子、ポリペプチド及びRNA−タンパク質複合体、並びにそれらをコードするポリヌクレオチドを提供する。本発明はまた、そのポリヌクレオチドを発現するためのベクターをも提供する。更に、本発明は、とりわけ、トランスフェクション試薬として使用され得る新規な化合物及びベクターを含む細胞及び組成物を提供する。本発明は、それらの化合物、ベクター、細胞及び組成物の作製方法を更に提供する。更に、生物活性RNA分子、例えば、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)及び短鎖ヘアピンRNA(shRNA)分子を細胞及び/又は組織に送達するためのベクター及び方法が提供される。新規な化合物、ベクター、細胞及び組成物は、例えば、対象又は生物における疾患、障害又は状態の診断、予防、寛解及び/又は治療における標的遺伝子発現を調節するために生物活性RNA分子を細胞に送達する場合に有用である。
RNA分子は、インビトロ及びインビボにおける遺伝子発現の強力な調節因子としての役割を果たす能力を有する。これらの分子は、細胞タンパク質との特異的相互作用又は他のRNA分子との塩基対合相互作用のいずれかを利用する多くの機序を通して機能し得る。この調節は、RNA−タンパク質及びタンパク質−タンパク質相互作用を破壊するRNAアプタマーと同様に細胞機構に対抗して、又は内因性RNAi機構を選択標的に向け直すことによって作用するsiRNAsと同様に細胞プロセスと協力して作用することができる。RNAエフェクター分子を介した遺伝子発現の調節は、形成される調節複合体(それらがRNA−タンパク質複合体又はRNA−RNA複合体である場合)がしばしば非常に特異的であるので大きな治療能力を有する(Aagaardら、2007、Adv Drug Deliv Rev.、59:75〜86;de Fougerollesら、2007、Nat Rev Drug Discov.、6:443〜53;Grimmら、2007、J Clin Invest.、117:3633−411−4;Rayburnら、2008、Drug Discov Today.、13:513〜21)。この特異性が塩基対合の十分に確立された法則によって決定される場合、この調節機構の特定の遺伝子産物へのターゲッティングは、実験計画を方向づけるために利用できるようになる。
遺伝子発現を調節するRNA分子は、多くの異なる形態を取ることができる。おそらく、全てについての有力な例は、アンチセンスRNA分子である。この阻害性RNAは、典型的には、それがターゲッティングするmRNA転写産物の直接の相補物であり、翻訳機構に対する障害を示すことによって、更に細胞ヌクレアーゼによる分解の転写産物をターゲッティングすることによって機能する。別の関連且つ重複するクラスは、転写後遺伝子サイレンシング又はRNAi経路を通して作用する低分子阻害性RNA(siRNA)である。これらのRNAは、典型的には長さが約21〜23ヌクレオチドであり、特異的な細胞タンパク質と会合してRNA誘導サイレンシング複合体(RISC)を形成する。また、これらの低分子RNAは、それらのmRNA標的の中の配列に対して相補的でもあり、これらの複合体の結合は、転写産物の翻訳サイレンシング又は分解をもたらす(Faraziら、2008、Development.、135:1201−145−7;Sontheimerら、2005、Nat Rev Mol Cell Biol.、6:127〜38;Zamoreら、2005、Science.、309:1519〜24)。
遺伝子発現及び活性を調節し得るRNA分子の2つの更なるクラスは、触媒性RNAリボザイム及び競合的RNAアプタマーである。リボザイムは、RNA基質における化学反応、多くの場合ホスホジエステル骨格の加水分解を触媒するRNA系酵素である。触媒性活性部位の形成はリボザイムとRNA基質との間の塩基対合を必要とするため、適切なガイド配列を提供することによって所望の基質にリボザイム活性をターゲッティングすることもできる(Woodら、2007、PLoS Genet.、3:e109;Schererら、2007、Gene Ther.、14:1057〜64;Trangら、2004、Cell Microbiol.、6:499〜508)。mRNA転写産物をターゲッティングする場合、リボザイムは、それらの転写産物を切断する能力を有し、会合タンパク質の下方制御をもたらす(Liuら、2007、Cancer Biol Ther.、6:697〜704;Songら、2008、Cancer Gene Ther.、;Wengら、2005、Mol Cancer Ther.、4:948〜55;Liら、2005、Mol Ther.12:900〜9)。RNAアプタマーは、典型的には、標的分子(しばしばタンパク質分子)と相互作用するその能力によってランダムRNA配列のプールから選択される。結合が塩基対合相互作用によって定義されないので、RNAアプタマーを操作することはあまり簡単でないが、一旦有効な配列が明らかにされると、その結合の特異性及び親和性は、しばしば抗体−抗原相互作用のものに対抗する(Miら、2008、Mol Ther.、16:66〜73;Leeら、2007、Cancer Res.、67:9315〜21;Iresonら、2006、Mol Cancer Ther.、12:2957〜62;Cerchiaら、2005、PLoS Biol.、3:e1230)。RNAアプタマーはまた、標的分子のより大きな範囲を有し、多くの異なる機序を介して遺伝子活性を改変する能力を有する。
阻害性RNA分子を細胞に送達するための2つの方法が標準的技法になっている。第1の方法は、精製されたポリメラーゼ及びDNA鋳型を用いることによる又は直接的化学合成を通した試験管内におけるRNA分子の作製を含む。次いで、これらのRNA分子を精製して、合成担体、典型的にはポリマー、リポソーム又はペプチドと混合し、標的細胞に送達することができる(Aignerら、2007、Appl Microbiol Biotechnol.、76:9〜21;Julianoら、2008、Nucleic Acids Res.、36:4158〜71;Akhtarら、2007、J Clin Invest.、117:3623〜32)。これらの分子を、それらのmRNA又はタンパク質標的に直接又は調節複合体の形成を通してそれらが結合する細胞質に送達する。第2の方法は、標的細胞に生物活性RNAをコードするプラスミド分子をトランスフェクトすることを含む。再度、精製プラスミド分子を試験管内の合成担体と結合させ、標的細胞に送達する(Fewellら、2005、J Control Release.、109:288〜98;Wolffら、2008、Mol Ther.、16:8〜15;Garyら、2007、J Control Release.、121:64〜73)。
この場合、プラスミド鋳型を、DNAが生物活性RNA分子に転写される細胞核に送達しなければならない。次いで、このRNAを、それが調節複合体及び特異的mRNA転写産物標的に到達するまでの途中にある細胞質に搬出する。これらのアプローチの各々において、細胞集団の中における遺伝子調節の程度は、送達系のトランスフェクション効率によって限定される。生物活性RNAをコードする生物活性RNA分子又はプラスミドでトランスフェクトされない細胞は、調節シグナルを受信するための機序を有さない。培養において成長する細胞にとって高トランスフェクション効率が可能であるにもかかわらず、トランスフェクションの同様の程度を達成することは、インビボにおいて困難である。この送達問題は、特定の遺伝子が細胞集団において調節され得る程度をそれが限定するので、現在、インビボにおけるRNAに基づいた治療薬の適用に対する主要な禁止要因である。したがって、生物活性RNAを細胞及び組織に効率的に送達するための有効な送達系の必要性が残っている。
本発明は、生物活性RNA分子の哺乳動物の細胞及び組織への送達における低トランスフェクション効率を伴う現在の問題を回避するための新規なアプローチを提供する。1つのアプローチは、1つ又は複数の生物活性RNA分子、例えば、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)及び短鎖ヘアピンRNA(shRNA)分子、並びに1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードするRNA転写物を産生し、続いて分泌する1つ又は複数の「バイオリアクター」細胞を使用し、それによって前記分子(単数又は複数)を細胞外マトリックス並びに周囲の細胞及び組織に送達することを含む。バイオリアクター細胞は、対象となる1つ又は複数の遺伝子をターゲッティングする少なくとも1種の生物活性RNA分子と生物活性RNA分子(単数又は複数)を細胞外マトリックス並びに/又は隣接する細胞及び組織に送達し得る融合タンパク質とを含むRNA−タンパク質複合体を産生するように設計された1つ又は複数の発現ベクターを細胞に投与することによって作製される。
RNA−タンパク質複合体のRNA部分は、少なくとも認識RNA配列と1つ又は複数の生物活性RNA配列とを含む。RNA−タンパク質複合体のタンパク質部分は、少なくともRNA結合ドメインと輸送ペプチドとを含む融合タンパク質である。適切な輸送ペプチドの例としては、限定されるものではないが、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン及び融合ペプチドから選択される1つ又は複数のペプチドが挙げられる。RNA−タンパク質複合体のRNA部分及びタンパク質部分は、トランスフェクトされたバイオリアクター細胞の核内において1つ又は複数のベクターから発現され、細胞質に輸送され、そこで融合タンパク質が翻訳され、生物活性RNAを含むRNA配列に結合し、それによってRNA−タンパク質複合体が産生される。RNA−タンパク質複合体は、バイオリアクター細胞から分泌され、細胞外マトリックスにおいて無傷のままである。RNA−タンパク質複合体は、細胞外マトリックス内に残ることができ、そこでそれは細胞外マトリックスの中で又は隣接する標的細胞の細胞表面においてその修飾作用を発揮する。別の場合、RNA−タンパク質複合体は、標的細胞の表面において融合タンパク質が標的細胞の細胞質への生物活性RNAの移入を促進するように設計され得る。
したがって、本質的には、トランスフェクト細胞は、RNA−タンパク質複合体として分泌される生物活性RNA分子を産生し、細胞外マトリックス及び/又は他の隣接する細胞に送達する「バイオリアクター」に転化される。このアプローチは、プラスミド鋳型から生物活性RNA分子を合成するように細胞機構を方向づけることによって提供される調節シグナルの増幅を利用する。したがって、調節シグナルは、単一の送達事象の初期トランスフェクション効率によってもはや結合されないが、持続した期間に亘って多くの細胞に到達する能力を有する。
かかるバイオリアクター細胞は、本明細書に記載されている発現ベクターの内の1つ又は複数による適切な細胞のトランスフェクションによって細胞培養において作製することもできる。本質的には、トランスフェクト細胞は、培養において、生物活性RNA分子を産生し、他の細胞に送達するバイオリアクターに転化される。したがって、バイオリアクター細胞は、治療用送達系としてのインビボ及びエクスビボでの適用、並びに新規なトランスフェクション剤としてのインビトロ及びインビボでの適用を有する。
バイオリアクター細胞の目的は、細胞外マトリックスの中で若しくは隣接する標的細胞の細胞表面において次いで機能し得る又は隣接する標的細胞に送達され得る形態で細胞外マトリックスに生物活性RNA分子を分泌することである。ウイルスパッケージング細胞は、同じ目的(生物活性RNA分子の分泌及び送達)に役立つことができる。しかし、各種源から得られる個々のドメインから構築された融合タンパク質を産生するバイオリアクターとは対照的に、ウイルス粒子は、一方の細胞からもう一方に核酸を転移する目的のために進化してきた(したがって、可動遺伝因子)。両RNA及びDNAウイルスは、核酸調節因子のための可能な担体として利用され得る。RNAウイルスの場合、生物活性RNA分子をコードするポリヌクレオチドは、ウイルスの非構造遺伝子をコードするウイルス転写産物に付加される。この転写産物は、ウイルスプロセスを担うウイルスタンパク質のための鋳型として及びウイルス粒子中にパッケージされるゲノムとしての両方の役割を果たす。生物活性RNAがウイルス粒子に組み込まれるように、生物活性RNAは、非構造遺伝子をコードするRNAと結合する。DNAウイルスの場合、ウイルス転写産物の合成が同様に生物活性RNAを産生するように、生物活性RNAをコードするDNA断片は、ウイルスDNAに付加される。ウイルス粒子は、ヘルパープラスミドから産生された転写産物によってコードされる構造タンパク質から構築される。同様に、生物活性RNA及び融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチドは、非構造ウイルス遺伝子をコードするウイルス転写産物に付加され得る(RNAウイルスの場合)か、又はウイルスDNAに付加され得る(DNAウイルスの場合)。したがって、ウイルス非構造遺伝子をコードするための配列と生物活性RNA又は本発明の生物活性RNA−タンパク質複合体のいずれかをコードするための配列とを含む発現ベクターをトランスフェクトした細胞は、本明細書において記載されるように、バイオリアクター細胞と同じ方法で使用され得る。
これらのアプローチは、プラスミドに基づいたRNA仲介治療薬の適用における重要な問題、即ちプラスミド送達に伴う低トランスフェクション効率に直接対処する。RNA仲介効果が、生物活性RNAのインビボ産生、並びに周囲の細胞及び組織への送達を通して増幅されるので、記載されたバイオリアクター細胞の使用は、高効率トランスフェクションの必要性を回避する。
したがって、本発明は、生物活性RNA分子の哺乳動物細胞及び組織への送達に有用な、新規な核酸分子、ポリペプチド、RNA−タンパク質複合体、ポリヌクレオチド及びベクターを提供する。更に、本発明は、前記核酸分子、ポリペプチド、RNA−タンパク質複合体、ポリヌクレオチド及びベクターを含む組成物を提供する。本発明はまた、本発明の核酸分子、ポリペプチド、RNA−タンパク質複合体、ポリヌクレオチド及びベクターを含む細胞をも提供する。更に、本発明は、本発明の核酸分子、ポリペプチド、RNA−タンパク質複合体、ポリヌクレオチド、ベクター、組成物及び細胞の作製方法、並びにインビトロ、エクスビボ及びインビボで本発明の分子を使用するための治療方法を提供する。
本発明は、本発明の核酸分子、ポリペプチド及びRNA−タンパク質複合体の作製に有用な、新規な発現ベクターを提供する。一実施形態において、本発明は、本発明のRNA−タンパク質複合体を発現する発現ベクターを提供する。したがって、一実施形態において、本発明は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチドを含み、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを提供する。発現ベクターから発現されるRNA−タンパク質複合体のRNA部分及びタンパク質部分は、トランスフェクトされたバイオリアクター細胞の核内において発現され、別々に細胞質へ輸送され、そこで融合タンパク質が翻訳され、生物活性RNAを含むRNA配列に結合し、それによってRNA−タンパク質複合体が産生される。RNA−タンパク質複合体は、本明細書において考察されるようにバイオリアクター細胞から分泌される。1つ又は複数の生物活性RNA配列は、同じ遺伝子標的に向けられた1つ又は複数の異なる型の生物活性RNA配列であり得るか、又は異なる遺伝子標的に向けられた生物活性RNA配列であり得る。
更なる一実施形態において、発現ベクターは、第1プロモーター配列、終止配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列、第2プロモーター配列、ポリA付加配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を更に含み、第1生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列をコードするポリヌクレオチドは、第1プロモーター配列及び終止配列に作動可能に連結し、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチド配列をコードするポリヌクレオチドは、第2プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結する。
別の一実施形態において、発現ベクターは、ウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼと1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質とをコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を更に含む。更なる一実施形態において、ベクターは、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数のポリA付加配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を更に含み、ウイルスポリメラーゼ(単数又は複数)とウイルスアクセサリータンパク質(単数又は複数)とをコードするポリヌクレオチド配列(単数又は複数)は、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する。ウイルスポリメラーゼ及びアクセサリータンパク質配列を含むベクターは、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質と1つ又は複数のウイルス融合タンパク質とをコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと共に使用され得る。更なる一実施形態において、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質と1つ又は複数のウイルス融合タンパク質とをコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターは、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列を更に含むことができ、ウイルスコートタンパク質(単数又は複数)とウイルス融合タンパク質(単数又は複数)とをコードするポリヌクレオチド配列(単数又は複数)は、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する。
記載された発現ベクターのある種の実施形態において、生物活性RNA配列は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される。特定の一実施形態において、生物活性RNA配列は、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である。別の特定の一実施形態において、生物活性RNA配列は、アプタマーである。ある種の実施形態において、認識RNA配列は、U1ループ、グループIIイントロン、NREステムループ、S1Aステムループ、バクテリオファージBoxBR、HIV Rev応答エレメント、AMVCP認識配列及びARE配列から選択される。一実施形態において、末端ミニヘリックス配列は、アデノウイルスVA1 RNA分子に由来する。ある種の実施形態において、RNA結合ドメインは、U1A、CRS1、CRM1、ヌクレオリンRBD12、hRBMY、バクテリオファージタンパク質N、HIV Rev、アルファルファ−モザイクウイルスコートタンパク質(AMVCP)及びトリステトラプロリンアミノ酸配列から選択される。ある種の実施形態において、1つ又は複数の輸送ペプチドは、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド及びエンドソーム放出ドメイン、並びにそれらのあらゆる組合せから選択される。特定の一実施形態において、輸送ペプチドは細胞貫通ペプチドである。ある種の特定の実施形態において、細胞貫通ペプチドは、ペネトラチン、トランスポルタン、MAP、HIV TAT、Antp、Rev、FHVコートタンパク質、TP10及びpVEC配列から選択される。別の特定の一実施形態において、輸送ペプチドは非古典的分泌ドメインである。ある種の特定の実施形態において、非古典的分泌ドメインは、Galcetin−1ペプチド、ガレクチン−3ペプチド、IL−1α、IL−1β、HASPB、HMGB1、FGF−1、FGF−2、IL−2シグナル、分泌トランスグルタミナーゼ、アネキシン−1、HIV TAT、ヘルペスVP22、チオレドキシン、ロダネーゼ及びプラスミノーゲンアクチベーターシグナル配列から選択される。特定の一実施形態において、輸送ペプチドは、細胞貫通ペプチド、並びに非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド及びエンドソーム放出ドメインから選択される1つ又は複数の輸送ペプチドである。特定の実施形態において、輸送ペプチドは、細胞貫通ペプチド及び非古典的分泌ドメインである。ある種の実施形態において、ウイルス非構造及び構造遺伝子(ウイルスポリメラーゼ、アクセサリータンパク質、コートタンパク質及び融合タンパク質)は、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、単純ヘルペスウイルスレンチウイルス、レトロウイルス、シンドビスウイルス及びフォーミーウイルスが含まれるがこれらに限定されないDNAウイルス及びRNAウイルスから選択される。
上記の実施形態の内のいずれかにおいて、発現ベクターは、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする更なるポリヌクレオチド配列を更に含むことができる。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列及びRNA認識配列を含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、発現ベクターは、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチドを更に含む。ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列のいずれも認識RNA配列を含まない。
別の一実施形態において、発現ベクターは、第1発現カセット及び第2発現カセットを含み、第1発現カセットは、プロモーター配列、1つ又は複数の標的遺伝子に向けられた1つ又は生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、終止配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を含み、生物活性RNA配列(単数又は複数)、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列は、プロモーター配列及び終止配列に作動可能に連結し、第2発現カセットは、プロモーター配列、RNA結合ドメイン配列、輸送ペプチド配列、ポリA付加配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を含み、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチド配列は、プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結する。更なる一実施形態において、発現ベクターは、第3発現カセットを更に含み、第3発現カセットは、1つ又は複数のプロモーター配列、ウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼと1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質とをコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列、1つ又は複数のポリA付加配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を含み、ウイルスポリメラーゼ(単数又は複数)とウイルスアクセサリータンパク質(単数又は複数)とをコードするポリヌクレオチド配列(単数又は複数)は、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する。ウイルスポリメラーゼとアクセサリータンパク質配列とを含む第3発現カセットを含むベクターは、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質と1つ又は複数のウイルス融合タンパク質とをコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと共に使用され得る。更なる一実施形態において、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質と1つ又は複数のウイルス融合タンパク質とをコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターは、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列を更に含むことができ、ウイルスコートタンパク質(単数又は複数)とウイルス融合タンパク質(単数又は複数)とをコードするポリヌクレオチド配列(単数又は複数)は、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する。
上記の発現ベクターの一実施形態において、RNA−タンパク質複合体のRNA部分を含む(即ち、RNA認識配列、1つ又は複数の生物活性RNA及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む)発現カセットは、融合タンパク質(即ち、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド)のための発現カセットの中の人工イントロン中にライゲーションされる。この発現ベクターにおいて、Sec−RNAは、融合タンパク質をコードするmRNA配列の中に配置した人工イントロンの中でコードされる。Sec−RNA分子又は融合タンパク質をコードするDNA断片は、PCRによって調製される。Sec−RNA分子をコードするDNA断片は、融合タンパク質配列の中の固有の制限部位中にサブクローニングするためのスプライスドナー及び受容体部位並びに制限部位を含むプライマーにより調製される。融合タンパク質をコードするDNA断片は、上記のプラスミド中にサブクローニングするための制限部位を含むプライマーにより調製される。転写後、Sec−RNAは、バイオリアクター細胞に対して内在性のスプライシング機構によって融合タンパク質をコードするmRNAから放出される。
これらの実施形態のいずれかにおいて、生物活性RNA配列は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される。認識RNA配列は、U1ループ、グループIIイントロン、NREステムループ、S1Aステムループ、バクテリオファージBoxBR、HIV Rev応答エレメント、AMVCP認識配列及びARE配列から選択される。末端ミニヘリックス配列は、アデノウイルスVA1 RNA分子から選択される。RNA結合ドメインは、U1A、CRS1、CRM1、ヌクレオリンRBD12、hRBMY、バクテリオファージタンパク質N、HIV Rev、アルファルファ−モザイクウイルスコートタンパク質(AMVCP)及びトリステトラプロリンアミノ酸配列から選択される。1つ又は複数の輸送ペプチドは、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド及びエンドソーム放出ドメイン、並びにそれらのあらゆる組合せから選択される。
上記の実施形態のいずれかにおいて、発現ベクターは、更なる発現カセットを更に含むことができ、更なる発現カセットは、1つ又は複数のプロモーター配列、更なる遺伝子転写物をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列及び1つ又は複数のポリA付加配列を含み、更なる遺伝子転写物をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列は、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子転写物をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列及びRNA認識配列を含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列のいずれも認識RNA配列を含まない。
一実施形態において、本発明は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを提供する。一実施形態において、発現ベクターは、1つ又は複数の生物活性RNA配列及びウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼと1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質とをコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む。ある種の実施形態において、発現ベクターは、核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含み、生物活性RNA配列は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される。特定の一実施形態において、発現ベクターは、核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含み、生物活性RNA配列は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である。別の特定の一実施形態において、発現ベクターは、核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含み、生物活性RNA配列はアプタマーである。ある種の実施形態において、発現ベクターは、核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含み、認識RNA配列は、U1ループ、グループIIイントロン、NREステムループ、S1Aステムループ、バクテリオファージBoxBR、HIV Rev応答エレメント、AMVCP認識配列及びARE配列から選択される。一実施形態において、末端ミニヘリックス配列は、アデノウイルスVA1 RNA分子に由来する。
本発明はまた、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターをも提供する。ある種の実施形態において、RNA結合ドメインは、U1A、CRS1、CRM1、ヌクレオリンRBD12、hRBMY、バクテリオファージタンパク質N、HIV Rev、アルファルファ−モザイクウイルスコートタンパク質(AMVCP)及びトリステトラプロリンアミノ酸配列から選択される。ある種の実施形態において、1つ又は複数の輸送ペプチドは、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド及びエンドソーム放出ドメイン、並びにそれらのあらゆる組合せから選択される。一実施形態において、本発明は、RNA結合ドメイン及び細胞貫通ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを提供する。ある種の特定の実施形態において、細胞貫通ペプチドは、ペネトラチン、トランスポルタン、MAP、HIV TAT、Antp、Rev、FHVコートタンパク質、TP10及びpVEC配列から選択される。別の一実施形態において、本発明は、RNA結合ドメイン及び非古典的分泌ドメインを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを提供する。ある種の特定の実施形態において、非古典的分泌ドメインは、Galcetin−1ペプチド、ガレクチン−3ペプチド、IL−1α、IL−1β、HASPB、HMGB1、FGF−1、FGF−2、IL−2シグナル、分泌トランスグルタミナーゼ、アネキシン−1、HIV TAT、ヘルペスVP22、チオレドキシン、ロダネーゼ及びプラスミノーゲンアクチベーターシグナル配列から選択される。一実施形態において、本発明は、RNA結合ドメイン、細胞貫通ペプチド、並びに非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド及びエンドソーム放出ドメインから選択される1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを提供する。一実施形態において、本発明は、RNA結合ドメイン、細胞貫通ペプチド及び非古典的分泌ドメインを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを提供する。
したがって、本発明は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む第1発現ベクターと、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド、例えば、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド及びエンドソーム放出ドメインから選択されるペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む第2発現ベクターとを提供する。第1発現ベクターから発現したRNA−タンパク質複合体のRNA部分と第2発現ベクターから発現したRNA−タンパク質複合体のタンパク質部分とは、トランスフェクトされたバイオリアクター細胞の核内において発現し、別々に細胞質へ輸送され、そこで融合タンパク質が翻訳され、生物活性RNAを含むRNA配列に結合し、それによってRNA−タンパク質複合体が産生される。RNA−タンパク質複合体は、本明細書において考察されるようにバイオリアクター細胞から分泌される。
本発明の発現ベクターのいずれかにおいて、認識RNA配列、個々の生物活性RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン及び輸送ペプチド(単数又は複数)、並びにウイルス配列、プロモーター、プライマー、終止配列及びポリA配列が含まれるあらゆる他の配列を含む配列の内の1つ又は複数は、1つ又は複数の介在又は付加配列の付加なしで直接結合する。別の場合、認識RNA配列、個々の生物活性RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン及び輸送ペプチド(単数又は複数)、並びにウイルス配列、プロモーター、プライマー、終止配列及びポリA配列が含まれるあらゆる他の配列を含む配列の内の1つ又は複数は、1つ又は複数の介在又は付加配列の付加と共に結合する。上記の実施形態のいずれかにおいて、個々の生物活性RNA配列自体は、いずれの介在若しくは付加配列もなしで直接結合するか又は1つ若しくは複数の介在若しくは付加配列の付加と共に結合する。上記の実施形態のいずれかにおいて、認識RNA配列と生物活性RNAのいずれかとは、1つ若しくは複数のリンカー、スペーサー若しくは他の配列の付加なしで直接結合するか又は1つ若しくは複数のリンカー、スペーサー及び/若しくは他の配列の付加と共に結合する。上記の実施形態のいずれかにおいて、RNA結合ドメインと個々の輸送ペプチドのいずれかとは、1つ若しくは複数のリンカー、スペーサー若しくは他の配列の付加なしで直接結合するか又は1つ若しくは複数のリンカー、スペーサー及び/若しくは他の配列の付加と共に結合する。
本発明の発現ベクターのいずれかにおいて、ベクターは、適切なバックボーンベクターから選択される。適切なベクターの例としては、pCI、pET、pSI、pcDNA、pCMV等に由来するものが挙げられる。ある種の実施形態において、ベクターは、pEGEN1.1、pEGEN2.1、pEGEN3.1及びpEGEN4.1から選択される。pEGENベクターは、pSI(Promega、製品#E1721)、pCI(Promega、製品#E1731)、pVAX(Invitrogen、製品#12727−010)及び会社の構築物における他のものに由来する。一実施形態において、ベクターはpUC複製開始点を含む。一実施形態において、発現ベクターは薬剤耐性遺伝子を含む。適切な薬剤耐性遺伝子の非限定的な例としては、ピューロマイシン、アンピシリン、テトラサイクリン及びクロラムフェニコール耐性遺伝子、並びに本技術分野において公知で記載されている他のあらゆる薬剤耐性遺伝子から選択されるものが挙げられる。
本発明はまた、本発明の1つ又は複数の発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む組成物をも提供する。組成物の発現ベクターは、本明細書に記載される発現ベクターのいずれかであってよい。一実施形態において、組成物は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド、並びにRNA結合ドメインを含むポリペプチド及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列(例えば、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド)をコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む。一実施形態において、組成物は、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む第2発現ベクターを更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、1つ又は複数の更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列及びRNA認識配列を含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、発現ベクターは、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチドを更に含む。
一実施形態において、組成物は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、並びにRNA結合ドメインを含むポリペプチド及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列(例えば、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド)をコードするポリヌクレオチド配列、並びにダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む。
一実施形態において、組成物は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド、並びにRNA結合ドメインを含むポリペプチド及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、並びに第1プロモーター配列、終止配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列、第2プロモーター配列、ポリA付加配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を含む発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む。本実施形態において、第1生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列をコードするポリヌクレオチドは、第1プロモーター配列及び終止配列に作動可能に連結し、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチド配列をコードするポリヌクレオチドは、第2プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結する。
一実施形態において、組成物は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド、RNA結合ドメインを含むポリペプチド及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列をコードするポリヌクレオチド、並びにダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド、並びに第1プロモーター配列、第1終止配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列、第2プロモーター配列、ポリA付加配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列、並びに1つ又は複数の更なるプロモーター配列、1つ又は複数の更なる終止配列及び1つ又は複数のプライマー配列を含む発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む。本実施形態において、第1生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列をコードするポリヌクレオチドは、第1プロモーター配列及び第1終止配列に作動可能に連結し、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチド配列をコードするポリヌクレオチドは、第2プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結し、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列をコードするポリヌクレオチドは、1つ又は複数の更なるプロモーター配列及び1つ又は複数の更なる終止配列に作動可能に連結する。
一実施形態において、組成物は、医薬的に許容し得る担体中において、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド、並びにRNA結合ドメインを含むポリペプチド及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列をコードするポリヌクレオチド、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む第1発現ベクターと、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む第2発現ベクターとを含む。ある種の実施形態において、これらの組成物の発現ベクターは、第1プロモーター配列、終止配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列、第2プロモーター配列、ポリA付加配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列、並びに1つ又は複数の更なるプロモーター配列、1つ又は複数の更なるポリA付加配列及び場合によって1つ又は複数の更なるプライマー配列を更に含み、第1生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列をコードするポリヌクレオチドは、第1プロモーター配列及び終止配列に作動可能に連結し、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチド配列をコードするポリヌクレオチドは、第2プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結し、1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチドは、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結し、ウイルスコートタンパク質(単数又は複数)及びウイルス融合タンパク質(単数又は複数)をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列は、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する。
一実施形態において、組成物は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む。
一実施形態において、組成物は、RNA結合ドメインを含むポリペプチド及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列(例えば、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド)をコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む。
一実施形態において、組成物は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む第1発現ベクターと、RNA結合ドメインを含むポリペプチド及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列(例えば、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド)をコードするポリヌクレオチドを含む第2発現ベクターと、医薬的に許容し得る担体とを含む。一実施形態において、組成物は、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む第3発現ベクターを更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列及びRNA認識配列を含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、発現ベクターは、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチドを更に含む。
一実施形態において、組成物は、医薬的に許容し得る担体中において、1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む第1発現ベクターと、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む第2発現ベクターとを含む。
一実施形態において、組成物は、第1発現カセットが、第1プロモーター配列、1つ又は複数の標的遺伝子に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、終止配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を含み、第2発現カセットが、第2プロモーター配列、RNA結合ドメイン配列、輸送ペプチド配列、ポリA付加配列及び場合によって1以上のプライマー配列を含む、第1発現カセット及び第2発現カセットを含む発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む。これらの実施形態において、生物活性RNA配列(単数又は複数)、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列は、第1プロモーター配列及び終止配列に作動可能に連結し、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチド配列は、第2プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結する。
別の一実施形態において、組成物は、第1発現カセットが、第1プロモーター配列、1つ又は複数の標的遺伝子に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、終止配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を含み、第2発現カセットが、第2プロモーター配列、RNA結合ドメイン配列、輸送ペプチド配列、ポリA付加配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を含み、第3発現カセットが、1つ又は複数のプロモーター配列、ウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列、1つ又は複数のポリA付加配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を含む、第1発現カセット、第2発現カセット及び第3発現カセットを含む第1発現ベクターと、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列、1つ又は複数のポリA付加配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を含む第4発現カセットを含む第2発現ベクターと、医薬的に許容し得る担体とを含む。これらの実施形態において、生物活性RNA配列(単数又は複数)、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列は、第1プロモーター配列及び終止配列に作動可能に連結し、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチド配列は、第2プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結し、ウイルスポリメラーゼ(単数又は複数)及びウイルスアクセサリータンパク質(単数又は複数)をコードするポリヌクレオチド配列(単数又は複数)は、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結し、ウイルスコートタンパク質及びウイルス融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド配列(単数又は複数)は、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する。
本発明の発現ベクター及び組成物は、本発明のRNA−タンパク質複合体を産生する「バイオリアクター」細胞を作製するために使用され得る。RNA−タンパク質複合体のRNA部分は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む。RNA−複合体のタンパク質部分は、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含む。転写産物は、細胞核から細胞質へ搬出され、そこでRNA結合ドメイン及び輸送ペプチド配列(単数又は複数)を含む転写産物が翻訳される。翻訳されたペプチドのRNA結合ドメインは、RNA部分の認識RNA配列と相互作用し、RNA−タンパク質複合体を形成する。タンパク質−RNA複合体が、続いて細胞から分泌され、細胞外マトリックス及び/又は隣接する細胞に移入され、そこで生物活性RNAが作用して遺伝子発現を調節する。
一実施形態において、本発明は、本明細書において提供される発現ベクター及びそれらの組成物のいずれかを含む細胞を提供する。一実施形態において、本発明は、生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、並びにRNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを含む細胞を提供する。
一実施形態において、本発明は、生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターとを含む細胞を提供する。
一実施形態において、本発明は、生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、並びに1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする更なるポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを含む細胞を提供する。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列及びRNA認識配列を含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
一実施形態において、本発明は、生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、ウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列、並びに1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)(例えば、ダイサー及び/又はドローシャ遺伝子標的)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする更なるポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターとを含む細胞を提供する。
一実施形態において、本発明は、生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターとを含む細胞を提供する。
一実施形態において、本発明は、生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターとRNA結合ドメイン配列及び1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターとを含む細胞を提供する。一実施形態において、細胞は、第1発現ベクター中における生物活性RNAの遺伝子標的(単数又は複数)とは異なる1つ又は複数の遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む第3発現ベクターを更に含む。一実施形態において、第3発現ベクターは、1つ又は複数の遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列及びRNA認識配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む。別の一実施形態において、第1発現ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、第3発現ベクターは、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む。
本発明はまた、本発明のバイオリアクター細胞と医薬的に許容し得る担体とを含む組成物をも提供する。組成物は、本明細書に記載されるバイオリアクター細胞のいずれかと医薬的に許容し得る担体とを含むことができる。一実施形態において、組成物は、本発明の発現ベクターを含む1つ又は複数の細胞と医薬的に許容し得る担体とを含む。細胞は、本明細書に記載される発現ベクターのいずれかの内の1つ又は複数を含むことができる。一実施形態において、本発明は、本発明のRNA−複合体を発現する1つ又は複数のバイオリアクター細胞と医薬的に許容し得る担体とを含む組成物を提供する。一実施形態において、組成物は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むRNA−タンパク質複合体を発現する1つ又は複数の細胞を含む。一実施形態において、組成物は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン及び細胞貫通ペプチド配列を含むRNA−タンパク質複合体を発現する1つ又は複数の細胞と医薬的に許容し得る担体とを含む。一実施形態において、組成物は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン及び非古典的分泌ドメインを含むRNA−タンパク質複合体を発現する1つ又は複数の細胞と医薬的に許容し得る担体とを含む。一実施形態において、組成物は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン、細胞貫通ペプチド配列及び非古典的分泌ドメインを含むRNA−タンパク質複合体を発現する1つ又は複数の細胞と医薬的に許容し得る担体とを含む。
本発明の1つ又は複数の発現ベクターを含むバイオリアクター細胞は、本発明のRNA−タンパク質複合体を産生し、分泌することが可能である。更に、バイオリアクター細胞は、1つ又は複数の生物活性RNA(単数又は複数)の他の標的細胞及び組織への送達のための新規なトランスフェクション試薬としてインビトロ、エクスビボ及びインビボで有用である。したがって、本発明は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン配列及び(例えば、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン及び融合ペプチド配列から選択される)1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むRNA−タンパク質複合体をコードする発現ベクターを調製するステップ、(b)培養細胞にステップ(a)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現する1つ又は複数のバイオリアクター細胞を作製するステップ、及び(c)トランスフェクション試薬としてのステップ(b)の培養細胞を回収するステップを含む、1つ又は複数のバイオリアクター細胞を含むトランスフェクション試薬を作製する方法を提供する。一実施形態において、方法は、(d)RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を決定するために(c)の細胞を試験すること、及び(e)トランスフェクション試薬としての使用のための他の培養細胞からバイオリアクター細胞を単離することを更に含む。発現ベクターは、本明細書に記載される発現ベクターのいずれかであってよい。RNA−タンパク質複合体は、本明細書に記載されるRNA−タンパク質複合体のいずれかであってよい。一実施形態において、RNA−タンパク質複合体の生物活性RNAは、shRNAである。別の一実施形態において、RNA−タンパク質複合体の生物活性RNAは、アプタマーである。一実施形態において、ステップ(b)の細胞に発現ベクターを安定してトランスフェクトする。
別の一実施形態において、本発明は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、並びに1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする更なるポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)培養細胞にステップ(a)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現する1つ又は複数のバイオリアクター細胞を作製するステップ、及び(c)トランスフェクション試薬としてのステップ(b)の培養細胞を回収するステップを含む、1つ又は複数のバイオリアクター細胞を含むトランスフェクション試薬を作製するための方法を提供する。一実施形態において、方法は、(d)RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を決定するために(d)の細胞を試験すること、及び(e)トランスフェクション試薬としての使用のための他の培養細胞からバイオリアクター細胞を単離することを更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列及びRNA認識配列を含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
別の一実施形態において、本発明は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及びステップ(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現する1つ又は複数のバイオリアクター細胞(この場合、ウイルス産生細胞)を作製するステップ、及び(d)トランスフェクション試薬としてのステップ(c)の培養細胞を回収するステップを含む、1つ又は複数のバイオリアクター細胞を含むトランスフェクション試薬を作製するための方法を提供する。一実施形態において、方法は、(e)RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を決定するために(d)の細胞を試験すること、及び(f)トランスフェクション試薬としての使用のための他の培養細胞からバイオリアクター細胞を単離することを更に含む。
別の一実施形態において、本発明は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする更なるポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及びステップ(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現する1つ又は複数のバイオリアクター細胞(この場合、ウイルス産生細胞)を作製するステップ、及び(d)トランスフェクション試薬としてのステップ(c)の培養細胞を回収するステップを含む、1つ又は複数のバイオリアクター細胞を含むトランスフェクション試薬を作製するための方法を提供する。一実施形態において、方法は、(e)RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を決定するために(d)の細胞を試験すること、及び(f)トランスフェクション試薬としての使用のための他の培養細胞からバイオリアクター細胞を単離することを更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列及びRNA認識配列を含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
別の一実施形態において、本発明は、(a)1つ又は複数の生物活性RNAを含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及びステップ(b)の発現ベクターを投与して、生物活性RNAを発現する1つ又は複数のバイオリアクター細胞(この場合、ウイルス産生細胞)を作製するステップ、及び(d)トランスフェクション試薬としてのステップ(c)の培養細胞を回収するステップを含む、1つ又は複数のバイオリアクター細胞を含むトランスフェクション試薬を作製するための方法を提供する。一実施形態において、方法は、(e)RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を決定するために(d)の細胞を試験すること、及び(f)トランスフェクション試薬としての使用のための他の培養細胞からバイオリアクター細胞を単離することを更に含む。
別の一実施形態において、本発明は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及びステップ(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現する1つ又は複数のバイオリアクター細胞を作製するステップ、及び(d)トランスフェクション試薬としてのステップ(c)の培養細胞を回収するステップを含む、1つ又は複数のバイオリアクター細胞を含むトランスフェクション試薬を作製するための方法を提供する。一実施形態において、方法は、(e)RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を決定するために(d)の細胞を試験すること、及び(f)トランスフェクション試薬としての使用のための他の培養細胞からバイオリアクター細胞を単離することを更に含む。
本発明はまた、インビトロ、エクスビボ及びインビボの標的細胞が含まれる標的細胞への生物活性RNAの送達のためのバイオリアクター細胞を使用する方法をも提供する。一実施形態において、生物活性RNAを標的細胞に送達する方法は、(a)生物活性RNA、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン、並びに細胞貫通ドメイン、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、融合ペプチド及び受容体結合ドメインから選択される1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むRNA−タンパク質複合体をコードする発現ベクターを調製するステップ、(b)培養細胞にステップ(a)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(c)ステップ(b)の培養細胞を回収するステップ、及び(d)1つ又は複数の標的細胞とステップ(c)において回収された培養細胞(単数又は複数)とを混合して、生物活性RNAを標的細胞に送達するステップを含む。一実施形態において、標的細胞は培養細胞である。別の一実施形態において、標的細胞は、対象、例えばヒト対象が含まれる哺乳動物対象から得られた培養細胞である。一実施形態において、ステップ(a)の発現ベクターは、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする更なるポリヌクレオチド配列を更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列及びRNA認識配列を含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
別の一実施形態において、生物活性RNAを標的細胞に送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及びステップ(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現する1つ又は複数のバイオリアクター細胞(この場合、ウイルス産生細胞)を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、及び(e)1つ又は複数の標的細胞とステップ(d)において回収された培養細胞(単数又は複数)とを混合して、生物活性RNAを標的細胞に送達するステップを含む。一実施形態において、標的細胞は培養細胞である。別の一実施形態において、標的細胞は、対象、例えばヒト対象が含まれる哺乳動物対象から得られた培養細胞である。一実施形態において、ステップ(a)の発現ベクターは、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする更なるポリヌクレオチド配列を更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列及びRNA認識配列を含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
別の一実施形態において、生物活性RNAを標的細胞に送達するための方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNAを含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及びステップ(b)の発現ベクターを投与して、生物活性RNAを発現する1つ又は複数のバイオリアクター細胞(この場合、ウイルス産生細胞)を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、及び(e)1つ又は複数の標的細胞とステップ(d)において回収された培養細胞(単数又は複数)とを混合して、生物活性RNAを標的細胞に送達するステップを含む。一実施形態において、標的細胞は培養細胞である。別の一実施形態において、標的細胞は、対象、例えばヒト対象が含まれる哺乳動物対象から得られた培養細胞である。
別の一実施形態において、生物活性RNAを標的細胞に送達するための方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及びステップ(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現する1つ又は複数のバイオリアクター細胞を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、(e)1つ又は複数の標的細胞とステップ(d)において回収された培養細胞(単数又は複数)とを混合して、生物活性RNAを標的細胞に送達するステップを含む。一実施形態において、標的細胞は培養細胞である。別の一実施形態において、標的細胞は、対象、例えばヒト対象が含まれる哺乳動物対象から得られた培養細胞である。
一実施形態において、標的細胞は、対象、例えばヒト対象が含まれる哺乳動物対象から摘出された細胞である。したがって、一実施形態において、生物活性RNAを標的細胞に送達する方法は、(a)生物活性RNA、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン、並びに細胞貫通ドメイン、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、融合ペプチド及び受容体結合ドメインから選択される1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むRNA−タンパク質複合体をコードする発現ベクターを調製するステップ、(b)培養細胞にステップ(a)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(c)ステップ(b)の培養細胞を回収するステップ、及び(d)対象から摘出された1つ又は複数の標的細胞とステップ(c)において回収された培養細胞(単数又は複数)とを混合して、生物活性RNAを標的細胞に送達するステップを含む。一実施形態において、方法は、対象、例えばヒト対象が含まれる哺乳動物対象にステップ(d)の細胞を投与するステップを更に含む。別の一実施形態において、方法は、標的細胞を対象に投与する前にステップ(d)の標的細胞からバイオリアクター細胞を分離するステップを更に含む。一実施形態において、ステップ(a)の発現ベクターは、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする更なるポリヌクレオチド配列を更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列及びRNA認識配列を含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
一実施形態において、生物活性RNAを標的細胞に送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及びステップ(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現する1つ又は複数のバイオリアクター細胞(この場合、ウイルス産生細胞)を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、及び(e)対象から摘出された1つ又は複数の標的細胞とステップ(c)において回収された培養細胞(単数又は複数)とを混合して、生物活性RNAを標的細胞に送達するステップを含む。一実施形態において、方法は、対象、例えばヒト対象が含まれる哺乳動物対象にステップ(e)の細胞を投与するステップを更に含む。別の一実施形態において、方法は、標的細胞を対象に投与する前にステップ(e)の標的細胞からバイオリアクター細胞を分離するステップを更に含む。一実施形態において、ステップ(a)の発現ベクターは、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする更なるポリヌクレオチド配列を更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列及びRNA認識配列を含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
別の一実施形態において、生物活性RNAを標的細胞に送達するための方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNAを含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及びステップ(b)の発現ベクターを投与して、生物活性RNAを発現する1つ又は複数のバイオリアクター細胞(この場合、ウイルス産生細胞)を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、及び(e)対象から摘出された1つ又は複数の標的細胞とステップ(c)において回収された培養細胞(単数又は複数)とを混合して、生物活性RNAを標的細胞に送達するステップを含む。一実施形態において、方法は、対象、例えばヒト対象が含まれる哺乳動物対象にステップ(e)の細胞を投与するステップを更に含む。別の一実施形態において、方法は、標的細胞を対象に投与する前にステップ(e)の標的細胞からバイオリアクター細胞を分離するステップを更に含む。
別の一実施形態において、生物活性RNAを標的細胞に送達するための方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及びステップ(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現する1つ又は複数のバイオリアクター細胞を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、及び(e)対象から摘出された1つ又は複数の標的細胞とステップ(c)において回収された培養細胞(単数又は複数)とを混合して、生物活性RNAを標的細胞に送達するステップを含む。一実施形態において、方法は、対象、例えばヒト対象が含まれる哺乳動物対象にステップ(e)の細胞を投与するステップを更に含む。別の一実施形態において、方法は、標的細胞を対象に投与する前にステップ(e)の標的細胞からバイオリアクター細胞を分離するステップを更に含む。
本発明は、バイオリアクター細胞から1つ又は複数の生物活性RNA分子を分泌するための方法と、インビボ、エクスビボ及びインビトロで標的遺伝子発現を調節するための方法とを提供する。本発明は、対象となる1つ又は複数の遺伝子をターゲッティングする少なくとも1つの生物活性RNA分子と、細胞外マトリックス並びに/又は隣接する細胞及び組織に生物活性RNA分子(単数又は複数)を送達し得る融合タンパク質とを含むRNA−タンパク質複合体を産生するように設計された発現ベクターを提供する。インビボ、エクスビボ及びインビトロでの細胞への発現ベクターの投与は、RNA−タンパク質複合体として分泌される生物活性RNA分子を産生し、細胞外マトリックス及び/又は他の隣接する細胞に送達する「バイオリアクター」に細胞を転化させる。したがって、RNA仲介効果は、生物活性RNAの産生並びに周囲の細胞及び組織への送達を通して増幅される。
一実施形態において、本発明は、本発明の1つ又は複数の発現ベクターを対象に投与することを含む、対象における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法を提供する。別の一実施形態において、本発明は、本発明の1つ又は複数の発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む組成物を対象に投与することを含む、対象における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法を提供する。別の一実施形態において、本発明は、本発明の1つ又は複数の発現ベクターを含む細胞と医薬的に許容し得る担体とを対象に投与することを含む、対象における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法を提供する。発現ベクターは、本明細書に記載される本発明の発現ベクターのいずれかであってよい。
一実施形態において、本発明は、本発明の1つ又は複数のバイオリアクター細胞を対象に投与することを含む、対象における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法を提供する。別の一実施形態において、本発明は、本発明の1つ又は複数のバイオリアクター細胞と、リン酸緩衝食塩水(PBS)、生理食塩水又は5%デキストロースが含まれるが限定されない医薬的に許容し得る担体とを含む組成物を対象に投与することを含む、対象における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法を提供する。バイオリアクター細胞(単数又は複数)は、本明細書に記載される本発明のバイオリアクター細胞(単数又は複数)のいずれかであってよい。一実施形態において、バイオリアクター細胞(単数又は複数)は、標的遺伝子(単数又は複数)に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン配列、並びに例えば細胞貫通ペプチド配列、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン及び融合ペプチドから選択される1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むRNA−タンパク質複合体を産生し、分泌する。
本明細書に記載される対象における遺伝子発現を調節する方法のいずれかにおいて、対象は、例えばヒト、齧歯動物、ネズミ、ウシ、イヌ、ネコ、ヒツジ、ウマ及びサル対象が含まれる哺乳動物対象であってよい。
本発明は、本発明の1つ又は複数の発現ベクターを対象に投与することを含む、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する方法を更に提供する。一実施形態において、本発明は、本発明の1つ又は複数の発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む組成物を対象に投与することを含む、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する方法を提供する。一実施形態において、本発明は、本発明の1つ又は複数の発現ベクターを含む細胞と医薬的に許容し得る担体とを対象に投与することを含む、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する方法を提供する。発現ベクターは、本明細書に記載される本発明の発現ベクターのいずれかであってよい。
特定の一実施形態において、本発明は、本発明の発現ベクターを標的細胞に投与することを含む、標的細胞中における標的遺伝子の発現を調節するための方法であって、標的細胞が本発明のRNA−タンパク質複合体を産生且つ分泌し、続いてRNA−タンパク質複合体が細胞外マトリックス又は他の標的細胞に送達される、上記方法を提供する。別の一実施形態において、本発明は、本発明の発現ベクターを含む組成物を標的細胞に投与することを含む、標的細胞中における標的遺伝子の発現を調節するための方法であって、標的細胞が本発明のRNA−タンパク質複合体を産生且つ分泌し、続いてRNA−タンパク質複合体が細胞外マトリックス又は他の標的細胞に送達される、上記方法を提供する。別の一実施形態において、本発明は、本発明の発現ベクターを含む細胞を標的細胞に投与することを含む、標的細胞中における標的遺伝子の発現を調節するための方法であって、標的細胞が本発明のRNA−タンパク質複合体を産生且つ分泌し、続いてRNA−タンパク質複合体が細胞外マトリックス又は他の標的細胞に送達される、上記方法を提供する。発現ベクターは、本明細書に記載される本発明のいずれかの発現ベクターであってよい。
本発明はまた、エクスビボでの標的細胞中における標的遺伝子の発現を調節するための方法を提供する。一実施形態において、本発明は、本発明の1つ又は複数の発現ベクターをエクスビボで標的細胞に投与することを含む、エクスビボでの標的細胞中における標的遺伝子の発現を調節するための方法を提供する。別の一実施形態において、本発明は、本発明の1つ又は複数の発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む組成物をエクスビボで標的細胞に投与することを含む、エクスビボでの標的細胞中における標的遺伝子の発現を調節するための方法を提供する。別の一実施形態において、本発明は、本発明の1つ又は複数の発現ベクターを含むバイオリアクター細胞と医薬的に許容し得る担体とをエクスビボで標的細胞に投与することを含む、エクスビボでの標的細胞中における標的遺伝子の発現を調節するための方法を提供する。発現ベクターは、本明細書に記載される本発明の発現ベクターのいずれかであってよい。
本発明はまた、培養細胞中における遺伝子発現を調節するための方法をも提供する。一実施形態において、本発明は、培養細胞中における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法であって、本発明の1つ又は複数の発現ベクターを前記細胞に投与することを含む上記方法を提供する。別の一実施形態において、本発明は、培養細胞中における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法であって、本発明の1つ又は複数の発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む組成物を前記細胞に投与することを含む上記方法を提供する。別の一実施形態において、本発明は、培養細胞中における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法であって、本発明の1つ又は複数の発現ベクターを含むバイオリアクター細胞と医薬的に許容し得る担体とを前記細胞に投与することを含む上記方法を提供する。発現ベクターは、本明細書に記載される本発明の発現ベクターのいずれかであってよい。
一実施形態において、本発明は、培養細胞中における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法であって、標的遺伝子に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードする第1発現ベクターと、RNA結合ドメイン、並びに例えば細胞貫通ペプチド配列、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン及び受容体結合ドメインから選択される1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードする第2発現ベクターとを前記細胞に投与することを含む上記方法を提供する。
更に、本発明は、形質転換パッケージング細胞から1つ又は複数の生物活性RNA分子を担持し、分布させる複製欠損又は複製不能ウイルス粒子から構築される発現ベクターを提供する。一実施形態において、本発明は、本明細書に記載される核酸分子のいずれかをコードするポリヌクレオチドを含むウイルスベクターを提供する。一実施形態において、本発明は、1つ又は複数の生物活性RNA配列及び認識RNA配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含むウイルスベクターを提供する。別の一実施形態において、本発明は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含むウイルスベクターを提供する。生物活性RNA配列は、本明細書に記載され、それ以外の場合、本技術分野において公知の生物活性RNA配列のいずれかであってよい。一実施形態において、ウイルスベクターは、生物活性RNA配列が、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される、核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む。特定の一実施形態において、ウイルスベクターは、生物活性RNA配列が短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である、核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む。特定の一実施形態において、ウイルスベクターは、生物活性RNA配列がアプタマーである、核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む。認識RNA配列は、本明細書に記載され、それ以外の場合、本技術分野において公知の認識RNA配列のいずれかであってよい。一実施形態において、ウイルスベクターベクターは、認識RNA配列が、U1ループ、グループIIイントロン、NREステムループ、S1Aステムループ、バクテリオファージBoxBR、HIV Rev応答エレメント、AMVCP認識配列及びARE配列から選択される、核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む。末端ミニヘリックス配列は、本明細書に記載され、それ以外の場合、本技術分野において公知の末端ミニヘリックス配列のいずれかであってよい。一実施形態において、末端ミニヘリックス配列は、アデノウイルスVA1 RNA分子から選択される。
別の一実施形態において、ウイルスベクターは、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを更に含む。これらのポリヌクレオチドのいずれも、RNA結合ドメインをコードしない。一実施形態において、ポリヌクレオチドは、単一の生物活性RNA配列を含む核酸分子をコードする。別の一実施形態において、ポリヌクレオチドは、2つ以上の生物活性RNA配列を含む核酸分子をコードする。ある種の実施形態において、生物活性RNA配列は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される。
本発明の核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含むウイルスベクターの上記実施形態のいずれかにおいて、ポリヌクレオチドは、認識RNA配列、個々の生物活性RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列及び他のあらゆる含まれる配列が1つ若しくは複数の介在若しくは付加配列の付加と共に結合するか又は介在配列の付加なしで直接結合する配列を含むことができる。
別の一実施形態において、ウイルスベクターは、RNA結合ドメイン、並びに細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、エンドソーム放出ドメイン及び融合ペプチドから選択される1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む。一実施形態において、ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドは、プロモーター配列、終止配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を更に含む。別の一実施形態において、ウイルスベクターは、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを更に含む。その上更なる一実施形態において、核酸分子をコードするポリヌクレオチドは、プロモーター配列、終止配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を更に含む。その上別の一実施形態において、ウイルスベクターは、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列、並びに場合によってプロモーター配列、終止配列及び1つ又は複数のプライマー配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを更に含む。したがって、一実施形態において、ウイルスベクターは、RNA結合ドメイン、並びに細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、エンドソーム放出ドメイン及び融合ペプチドから選択される1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含み、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを更に含む。一実施形態において、このウイルスベクターは、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを更に含むことができる。これらの実施形態のいずれかにおいて、ウイルスベクターは、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数の終止配列及び1つ又は複数のプライマー配列を場合によって含むことができる。
ウイルスベクターの上記実施形態のいずれかにおいて、ポリヌクレオチドは、RNA結合ドメイン、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、融合ペプチド及び他のあらゆる含まれる配列(即ち、プロモーター、終止、プライマー、生物活性RNA、認識RNA、末端ミニヘリックス配列等)のいずれかが1つ若しくは複数の介在若しくは付加配列の付加と共に結合するか又は介在配列の付加なしで直接結合する配列を含むことができる。上記実施形態のいずれかにおいて、ベクターは、個々のドメイン及びペプチドの配列(単数又は複数)が1つ又は複数のリンカー、スペーサー又は他の配列の付加なしで又は付加と共に結合するポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含むことができる。
本発明はまた、形質転換パッケージング細胞から標的細胞へ生物活性RNAを送達するための操作された複製欠損ウイルスをも提供する。一実施形態において、本発明は、2つの非依存性ウイルスRNAをコードするプラスミドによるレシピエント細胞のトランスフェクションによって作製されるパッケージング細胞を提供するものであって、一方はウイルス構造遺伝子をコードし、他方は非構造遺伝子及び生物活性RNA配列をコードする。一実施形態において、ウイルス非構造及び構造遺伝子は、DNAウイルス及びRNAウイルスから選択され、適切なウイルスの非限定的な例としては、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、単純ヘルペスウイルスレンチウイルス、レトロウイルス、シンドビスウイルス、フォーミーウイルスがある。生物活性RNA配列は、本明細書に記載され、それ以外の場合、本技術分野において公知の生物活性RNA配列のいずれかであってよい。一実施形態において、生物活性RNA配列は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される。特定の一実施形態において、生物活性RNA配列は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である。別の特定の一実施形態において、生物活性RNA配列はミクロRNA(miRNA)である。
両プラスミドの成功した同時トランスフェクションは、複製欠損ウイルス粒子を産生し得るパッケージング細胞を生じる。一実施形態において、本発明は、インビトロ、エクスビボ又はインビボでの細胞のトランスフェクションによって作製されたパッケージング細胞を提供する。更なる一実施形態において、パッケージング細胞を回収し、インビトロで標的細胞と混合する。別の一実施形態において、パッケージング細胞を回収し、インビボで標的細胞中において投与する。更なる一実施形態において、パッケージング細胞を回収し、エクスビボで標的細胞に移す。
生物活性RNA分子のベクターに基づいた送達のためのインビボでの作用機序を例示する非限定的な概略図であって、その例示的な生物活性RNA分子はshRNAである。示されるように、発現ベクター(pBioR)は、認識RNA配列及びshRNAを含む核酸分子、並びにRNA結合ドメイン(RBD)及び細胞貫通ペプチド(CPP)を含む融合タンパク質を発現する。融合タンパク質は、細胞質中において翻訳され、そこで翻訳された融合タンパク質のRNA結合ドメインが核酸の認識RNA配列に結合し、RNA−タンパク質複合体を形成する。RNA−タンパク質複合体は、細胞外マトリックス中に分泌され、隣接する細胞によって取り込まれ、そこでshRNAが作用して対象となる標的遺伝子(GOI)を調節する。
生物活性RNA分子のベクターに基づいた送達のためのインビボでの作用機序を例示する非限定的な概略図であって、その例示的な生物活性RNA分子はshRNAである。示されるように、発現ベクター(pBioR)は、認識RNA配列及びshRNAを含む核酸分子、並びにRNA結合ドメイン(RBD)、非古典的分泌ドメイン(NCS)及び細胞貫通ペプチド(CPP)を含む融合タンパク質を発現する。融合タンパク質は、細胞質中において翻訳され、そこで翻訳された融合タンパク質のRNA結合ドメインが核酸の認識RNA配列に結合し、RNA−タンパク質複合体を形成する。RNA−タンパク質複合体は、細胞外マトリックス中に分泌され、隣接する細胞によって取り込まれ、そこでshRNAが作用して対象となる標的遺伝子(GOI)を調節する。
生物活性RNA分子のベクターに基づいた送達のためのインビボでの作用機序を例示する非限定的な概略図であって、その例示的な生物活性RNA分子は、特異的細胞表面受容体をターゲッティングするアプタマーである。示されるように、発現ベクター(pBioR)は、認識RNA配列及び特異的細胞表面受容体をターゲッティングするアプタマーを含む核酸分子、並びにRNA結合ドメイン(RBD)及び非古典的分泌ドメイン(NCS)を含む融合タンパク質を発現する。融合タンパク質は、細胞質中において翻訳され、そこで翻訳された融合タンパク質のRNA結合ドメインが核酸の認識RNA配列に結合し、RNA−タンパク質複合体を形成する。RNA−タンパク質複合体は、細胞外マトリックス中に分泌される。アプタマーは、標的細胞表面受容体と結合し、受容体リガンドが受容体と結合することを阻止する。
生物活性RNA分子のベクターに基づいた送達のためのインビボでの作用機序を例示する非限定的な概略図であって、その例示的な生物活性RNA分子は、特異的細胞外マトリックスタンパク質をターゲッティングするアプタマーである。示されるように、発現ベクター(pBioR)は、認識RNA配列及び特異的細胞外マトリックスタンパク質をターゲッティングするアプタマーを含む核酸分子、並びにRNA結合ドメイン(RBD)及び非古典的分泌ドメイン(NCS)を含む融合タンパク質を発現する。融合タンパク質は、細胞質中において翻訳され、そこで翻訳された融合タンパク質のRNA結合ドメインが核酸の認識RNA配列に結合し、RNA−タンパク質複合体を形成する。RNA−タンパク質複合体は、細胞外マトリックス中に分泌される。アプタマーは、細胞外マトリックスタンパク質と結合し、細胞外マトリックスタンパク質が標的細胞に侵入することを阻止する。細胞外マトリックスタンパク質は、とりわけ細胞表面受容体リガンドであってよく、それによってアプタマーはリガンドに結合し、それがその受容体(図示せず)に結合することを阻止する。
バックボーンプラスミドpEGEN1.1の概略図を示す。pEGEN1.1は、SV40プロモーター配列(1)、イントロン配列(2)、多重クローニング配列(MCS)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。
バックボーンプラスミドpEGEN2.1の概略図を示す。pEGEN2.1は、ニワトリ−アクチンプロモーター配列(1)、イントロン配列(2)、多重クローニング配列(MCS)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。
バックボーンプラスミドpEGEN3.1の概略図を示す。pEGEN3.1は、CMVプロモーター配列(1)、イントロン配列(2)、多重クローニング配列(MCS)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。
バックボーンプラスミドpEGEN4.1の概略図を示す。pEGEN4.1は、ヒトU6プロモーター配列(1)、多重クローニング配列(MCS)、ポリTターミネーター配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。
本発明の例示的なRNA−タンパク質複合体をコードする発現ベクターpBioR Pol IIの概略図を示す。ベクターは、Sec−RNA配列(3)の上流のSV40プロモーター(1)及びイントロン配列(2)、並びに下流のhGHポリA配列(4)を含む。ベクターはまた、融合タンパク質配列(6)の上流のβ−アクチンプロモーター(5)、及び下流のhGHポリA配列(4)をも含む。ベクターはまた、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)をも含む。
本発明の例示的なRNA−タンパク質複合体をコードする発現ベクターpBioR Pol IIIの概略図を示す。ベクターは、Sec−RNA配列(3)の上流の上流のhU6プロモーター(1)及びイントロン配列(2)、並びに下流のPol−IIIポリTターミネーター配列(4)を含む。ベクターはまた、融合タンパク質配列(6)の上流のβ−アクチンプロモーター(5)、及び下流のhGHポリA配列(4)をも含む。ベクターはまた、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)をも含む。
本発明の例示的なRNA−タンパク質複合体をコードする発現ベクターpBioR Pol II comboの概略図を示す。ベクターは、β−アクチンプロモーター(1)、イントロン配列(2)、融合タンパク質カセット(6)、融合タンパク質に対して内部のフランキングイントロン(2)を有するSec−RNAカセット(3)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。
本発明の例示的なRNA−タンパク質複合体をコードする発現ベクターpBioR Pol II stableの概略図を示す。ベクターは、CTS調節因子(9)、PGKプロモーター(1)、ピューロマイシン耐性遺伝子(10)、ニワトリ−アクチンプロモーター(5)、融合タンパク質カセット(6)、融合タンパク質に対して内部のフランキングイントロン(2)を有するSec−RNAカセット(3)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。
本発明の例示的なRNA−タンパク質複合体をコードする発現ベクターpBioR Pol II ダイサーの概略図を示す。ベクターは、SV40プロモーター(1)、イントロン配列(2)、shRNA配列(3)、hGHポリAテイル配列(4)、ニワトリβ−アクチンプロモーター(5)、融合タンパク質カセット(6)、融合タンパク質に対して内部のフランキングイントロン(2)を有するSec−RNAカセット(11)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。
図14Aは、バイオリアクター細胞を作製し、CPP−ルシフェラーゼ/CPP−アルカリホスファターゼレポーター系を使用してそれらの分泌活性を試験するための例示的なトランスフェクションアッセイを示す非限定的な概略図である。図14Bは、CT26細胞からのルシフェラーゼレポータータンパク質のTAT仲介分泌についての結果を示す。CT26細胞に、ルシフェラーゼ又はCPP−ルシフェラーゼ融合タンパク質を発現するプラスミドをトランスフェクトした。アッセイされるCPPドメインは、TAT、REV、FHV及びペネトラチン(Pen)を含む。48時間後、細胞培地をPBSと交換し、細胞を37℃で更に1時間、3時間又は6時間インキュベートした。PBS上清を回収し、細胞をTENT緩衝液中に溶解させた。標準法を使用して、可溶化細胞タンパク質及びPBS上清の当量についてルシフェラーゼ活性を測定した。細胞分画及び上清分画中に存在する相対ルシフェラーゼ活性は、両画分において認められた総ルシフェラーゼ活性の百分率として示される。
分泌RNA及びバイオリアクター融合タンパク質の発現のためのプラスミドの構築についての概略図を示す。図15Aに示されるように、pE3.1Sec−レポーターは、CMVプロモーター配列(1)、イントロン配列(2)、分泌RNAレポーターコード配列(Box B配列及びグルカゴン様ペプチド1)(3)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。図15Bに示すように、pE1TAT−RBDは、SV40プロモーター配列(1)、イントロン配列(2)、融合タンパク質コード配列(即ち、RNA結合ドメイン(RBD)及び細胞貫通ペプチド(TAT))(6)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。図15C〜Eは、pE3.1 Sec−レポーター及びpE1TAT−RBDプラスミドの制限酵素分析を示す。図15Cは、新規なEcoNI制限部位がRNA発現インサートと共に導入されたpE3.1Sec−レポーターの制限酵素分析を示す。図15D及び15Eは、2つのpE1TAT−RBDプラスミド(一方は、タンパク質N RNA結合ドメイン(TAT+)に融合したTAT細胞貫通ペプチドを有する融合タンパク質を発現するもの、他方は、Rev RNA結合ドメイン(TAT−)に融合したTAT細胞貫通ペプチドを有する融合タンパク質を発現するもの)の制限酵素及びPCR分析をそれぞれ示す。これらの図において、(M)は、サイズマーカーレーンを示す。図15Cにおいて、Sec−レポーター(−)は、pE3.1Sec−レポータープラスミドだけを指し、Sec−レポーター(+)は、RNA発現インサートを有するpE3.1Sec−レポータープラスミドを指す。図15D及び15Eにおいて、p1.1は、pE1.1プラスミドだけを指し、TAT(−)は、Rev RNA結合ドメインに融合したTAT細胞貫通ペプチドを含む融合タンパク質インサートを有するpE1.1プラスミドを指し、TAT(+)は、タンパク質N RNA結合ドメインに融合したTAT細胞貫通ペプチドを含む融合タンパク質インサートを有するpE1.1プラスミドを指す。
図16A及び16Bは、分泌RNA及びバイオリアクター融合タンパク質に対する発現産物を示す。図16Aに示された分泌RNAレポーター転写産物分析のために、CT26細胞にpE3.1Sec−レポーター(図15A)をトランスフェクトした。48時間後、未処置の対照細胞及びトランスフェクト細胞からトータル細胞RNAを回収し、精製RNAをRT−PCRを用いて増幅し、3%低融解アガロースゲル(1×TAE)上で分離させた。非トランスフェクト対照細胞(「U」)は18S rRNA内部対照(18S)だけを示すのに対して、トランスフェクト細胞は、18S rRNA産物と、プラスミドのみに対応する親レポーターRNA産物(「R」)又はプラスミド及びSec−RNA配列インサートに対応する分泌レポーターRNA産物(「SR」)との両方を示す。図16Bは、バイオリアクター融合タンパク質を発現するプラスミドをCT26細胞にトランスフェクトした融合タンパク質発現分析を示す。48時間後、未処置の細胞、並びにpE3.1Sec−レポーター及びpE1.1TAT+(タンパク質N RNA結合ドメイン及び6×ヒスチジンエピトープ標識に融合したTAT)又はpE2.1TAT+(タンパク質N RNA結合ドメイン及び6×ヒスチジンエピトープ標識に融合したTAT)のいずれかをトランスフェクトした細胞からの細胞溶解物をブロッティング抗体に対する陽性対照タンパク質と共にPVDF膜にスポットした。ブロットを色素形成基質によって発生させ、イメージドキュメンテーションセンターによって記録した。「His+」は陽性対照の結果を示し、「Unt」は非トランスフェクトCT26細胞の結果を示す。ブロットを色素形成基質によって発生させ、イメージドキュメンテーションセンターによって記録した。「His+」は、精製His標識タンパク質(陽性対照)によって得られた色素形成シグナルを示し、「Unt」は、非トランスフェクトCHO細胞から回収されたタンパク質溶解物によって得られたバックグラウンドシグナルを示し、pE1.1TAT+は、pE1.1TAT−タンパク質N−6×HisをトランスフェクトしたCHO細胞から回収されたタンパク質溶解物によって得られたシグナルを示し、pE2.1TAT+は、pE2.1TAT−タンパク質N−6×HisをトランスフェクトしたCHO細胞から回収されたタンパク質溶解物によって得られたシグナルを示す。
図17A及び17Bは、図15A及び15Bに記載される2つの成分プラスミドを用いたバイオリアクター活性を示す。未処置の対照CT26細胞、並びに分泌RNA及びバイオリアクター融合タンパク質を発現するpE3.1Sec−レポーター及びpE1TAT−RBDプラスミドをトランスフェクトしたCT26細胞からのRNAを回収し、RT−PCR増幅反応のための鋳型として用いた。RNAを細胞培養培地からも回収し、精製し、増幅した。増幅産物をDNAサイズ標準物質と共に3%低融解アガロースゲル(1×TAE)上で分離した。図17A及び17Bは、pE3.1Sec−レポーター及びpE1.1TAT(+)(適切なRBDに融合したTAT)又はpE1.1TAT(−)(陰性対照RBDに融合したTAT)のいずれかによるトランスフェクションアッセイの結果を示す。図17Aの左側のパネルは、親レポータープラスミド(「R」)、sec−RNA配列インサート(「SR」)を含有するレポータープラスミド、pE1.1TAT(+)(「TAT(+)」(タンパク質N RNA結合ドメインに融合したTAT)又はpE1.1TAT(−)(「TAT(−)」(陰性対照RBDとしての役割を果たすRev RNA結合ドメインに融合したTAT)を同時トランスフェクトしたsec−RNAレポータープラスミドをトランスフェクトした細胞から回収された細胞溶解物に対するRT−PCR産物を示す。図17Aの右側のパネルは、sec−RNAレポータープラスミド及びpE1.1TAT(+)(「TAT(+)」(タンパク質N RNA結合ドメインに融合したTAT)又はpE1.1TAT(−)(「TAT(−)」(Rev RNA結合ドメインに融合した))を同時トランスフェクトした細胞からの細胞溶解物(「C」)及び細胞外培地試料(「M」)の両方を示す。図17Bは、第1実験において認められた培地の18S rRNAコンタミネーションをなくすためにステップを行った第2アッセイの結果(第1と同じ)を示す。
GFPレポーター系を用いてバイオリアクター細胞の移入活性を生成し、試験する例示的なトランスフェクションアッセイを示す非限定的な概略図である。
図19Aは、本発明のバイオリアクター細胞によって産生されたオンコスタチンMをターゲッティングするアプタマーの分泌及び活性を示す概略図である。図19Bは、レポーター系とオンコスタチンMタンパク質(gp130受容体仲介シグナル伝達経路の活性化因子)をターゲッティングする分泌RNAアプタマーとを用いてバイオリアクター細胞の分泌活性を決定するための例示的なトランスフェクションアッセイを示す非限定的な概略図である。
図20Aは、本発明のバイオリアクター細胞によって産生されたHER3にターゲッティングするアプタマーの分泌及び活性を示す概略図である。図20Bは、レポーター系とHER3をターゲッティングする分泌RNAアプタマーとを用いてバイオリアクター細胞の分泌活性を決定するための例示的なトランスフェクションアッセイを示す非限定的な概略図である。
バイオリアクター細胞の分泌活性と標的細胞の細胞質への阻害性shRNAの後続の送達とを決定するための例示的なトランスフェクションアッセイを示す非限定的な概略図である。
生物活性阻害性RNA分子を含有するウイルスパッケージング細胞を作製するために必要な2つの構築物を示す非限定的な概略図である。
ウイルス粒子及び生物活性RNA分子を含有するウイルスパッケージング細胞の作製を示す非限定的な概略図である。概略図は、標的細胞中への生物活性RNA分子の転移を更に示す。
ウイルス粒子、バイオリアクター融合タンパク質及び生物活性RNA分子を含有するウイルスパッケージング細胞の作製を示す非限定的な概略図である。概略図は、第1の標的細胞(第2のバイオリアクター細胞)へのウイルス粒子を介したバイオリアクター発現カセットの転移と第2の標的細胞中への生物活性RNA分子の後続の転移とを更に示す。
定義
本明細書において用いられる場合、「生物活性RNA」という用語は、標的とされた遺伝子産物の遺伝子発現又は遺伝子活性を調節する任意のRNA配列を指すものとする。
本明細書において用いられる場合、「認識RNA配列」という用語は、RNA結合ドメインを含むペプチドが特異的に結合する任意のRNA配列を指すものとする。
本明細書において用いられる場合、「RNA結合ドメイン」という用語は、対応する認識RNA配列に特異的に結合する任意のタンパク質又はペプチド配列を指すものとする。
本明細書において用いられる場合、「輸送ペプチド」という用語は、細胞の細胞膜を越えるカーゴの移動、細胞からのカーゴの分泌及びエンドソームからのカーゴの放出、並びに細胞移動の他の手段を促進することを含む、細胞(単数又は複数)の中の任意の付着カーゴの移動を促進する任意のペプチド配列を指すものとする。具体的な、しかし非限定的な例において、輸送ペプチドは、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌配列、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン及び融合ペプチドから誘導された配列であり得る。
本明細書において用いられる場合、「細胞貫通ペプチド」という用語は、細胞の膜等の脂質二重層を越える任意の付着カーゴの移動を促進する任意のペプチド配列を指すものとする。
本明細書において用いられる場合、「非古典的分泌配列」という用語は、ER−ゴルジ体非依存性経路を介した細胞からの任意の付着カーゴの分泌をもたらす任意のタンパク質又はペプチド配列を指すものとする。
本明細書において用いられる場合、「エンドソーム放出ドメイン」という用語は、細胞のエンドソームからの任意の付着カーゴの放出を促進する任意のペプチド配列を指すものとする。
本明細書において用いられる場合、「受容体結合ドメイン」という用語は、表面結合細胞受容体と相互作用し得る任意のRNA又はタンパク質ドメインを指すものとする。
本明細書において用いられる場合、「融合ペプチド」という用語は、細胞のエンドソームからのカーゴの流出を促進する任意のペプチド配列を指すものとする。
本明細書において用いられる場合、「sec−RNA」という用語は、本発明のRNA−タンパク質複合体のRNA部分を指す。典型的には、「sec−RNA」は、1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む。本発明の融合タンパク質と複合体を形成する場合、sec−RNAは細胞から分泌される。
本明細書において用いられる場合、「sec−shRNA」という用語は、本発明のRNA−タンパク質複合体のshRNA部分を指す。典型的には、「sec−shRNA」は、1つ又は複数の短鎖ヘアピンRNA、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む。本発明の融合タンパク質と複合体を形成する場合、sec−shRNAは細胞から分泌される。
本明細書において用いられる場合、「融合タンパク質」という用語は、作動可能に連結した、典型的には異なる源に由来する少なくとも2つのポリペプチドを指すものとする。ポリペプチドに関して、作動可能に連結したという用語は、2つのポリペプチドが、各ポリペプチドがその意図した機能を果たすことができるような様式で連結されることを意味することが意図される。典型的には、2つのポリペプチドは、ペプチド結合を介して共有結合する。融合タンパク質は、標準的な組み換えDNA技術によって産生され得る。例えば、第1ポリペプチドをコードするDNA分子は、第2ポリペプチドをコードする別のDNA分子にライゲーションされ、結果として生じるハイブリッドDNA分子が宿主細胞中において発現されて融合タンパク質を産生する。DNA分子は、ライゲーション後にコードされたポリペプチドの翻訳フレームが改変されないように5’から3’方向に互いにライゲーションされる(即ち、DNA分子が各々の他のインフレームにライゲーションされる)。具体例において、融合タンパク質は、RNA結合ドメイン配列及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むペプチドを指す。
本明細書において用いられる場合、「バイオリアクター細胞」又は「バイオリアクター」という用語は、Sec−RNA分子を産生し、分泌する任意の細胞を指すものとする。
本明細書において用いられる場合、「pBioRプラスミド」という用語は、少なくともRNA結合ドメイン配列、輸送ペプチド配列をコードするポリヌクレオチドと生物活性RNA及び認識RNA配列をコードするポリヌクレオチドとを含む任意のプラスミドを指すものとする。
本明細書において用いられる場合、「発現カセット」という用語は、終止シグナルに作動可能に連結され得る対象となるヌクレオチド配列に作動可能に連結したプロモーターを含むことができる特定のヌクレオチド配列の発現を方向づけ得る核酸配列を指すものとする。また、それは、ヌクレオチド配列の適切な翻訳のために必要な配列をも含み得る。コード領域は、対象となるペプチドをコードすることができるが、対象となる生物活性RNAをコードすることもできる。対象となるヌクレオチド配列を含む発現カセットはキメラであってよい。発現カセットは、天然に存在するものであってもよいが、異種発現に有用な組み換え型において得られたものであってもよい。具体例において、発現カセットは、プロモーター配列、ペプチド配列をコードするポリヌクレオチド又はRNA配列及びターミネーター配列をコードするポリヌクレオチドを含む核酸配列を含む。
「作動的に連結した」という用語は、こうして記載されるフランキング配列がその通常の機能を実施するように構成されるか又は構築されるフランキング配列の配置を指すために本明細書において用いられる。コード配列に作動可能に連結したフランキング配列は、コード配列の複製、転写及び/又は翻訳を行うことが可能であってよい。例えば、コード配列は、プロモーターがそのコード配列の転写を方向づけ得る場合にプロモーターに作動可能に連結する。フランキング配列は、それが正確に機能する限り、コード配列に隣接する必要はない。したがって、例えば、介在、非翻訳で、その上転写された配列は、プロモーター配列とコード配列との間に存在することができ、プロモーター配列は、なお、コード配列に「作動可能に連結する」と考えることができる。
ベクターに基づいた送達系についての作用機序
本発明は、プラスミドが、生物活性RNA分子を産生し、分泌し得るRNAバイオリアクターにトランスフェクト細胞を転化させる、ベクターに基づいたRNA送達系を提供する。プラスミドは、生物活性RNA分子と、バイオリアクターからのその分泌、並びに細胞外マトリックス及び/又は周囲の標的細胞への送達を促進し得る融合タンパク質との両方をコードすることによってこれを達成する。一旦標的細胞に送達されると、生物活性RNA分子は、任意の細胞中における場合と同様に機能する。このアプローチは、プラスミドに基づいたRNAi仲介治療薬の適用における重要な問題、即ちプラスミド送達に伴う低トランスフェクション効率に直接対処する。バイオリアクター細胞の初期のトランスフェクションは、標準的な遺伝子送達方法に伴う技術的困難に限定され得るが、本発明のプラスミドに基づいた送達系の後続の発現は、従来の限定を、それがバイオリアクター細胞からの活性RNA及び関連タンパク質の持続的且つ連続的な送達を可能にするように軽減する。RNA仲介ノックダウンは、バイオリアクター細胞の細胞産生及び生物活性RNAの周囲の細胞及び組織への送達を通して増幅される。
プラスミドに基づいた送達系の中心的成分は、分泌及び/又は送達を促進する融合タンパク質である。ER−ゴルジ体を介したタンパク質分子の古典的搬出は共翻訳であり、このことは、タンパク質が、それが作製される際にER膜を越えて転位することを意味する。これは、RNA結合ドメインが、Sec−RNA分子を有する細胞質中にごくわずかの時間だけ存在し、膜を越える輸送がRNA−タンパク質の相互作用を破壊する可能性があるので、バイオリアクター細胞中における古典的輸送機序の使用を阻止する。その代わり、細胞質中における十分に翻訳され且つ折り畳まれたタンパク質は、続いて、生物活性RNAカーゴを有する非古典的機序を介して共に分泌され得る。ますます多くのタンパク質がER−ゴルジ装置とは独立した非古典経路を介して分泌されることが現在知られている。これらの系のための搬出の正確な機序は十分に特性評価されていないが、それらのタンパク質は、細胞質中において翻訳されることが知られており、したがって、それらを分泌させ得る配列モチーフを含有し、バイオリアクター中における使用に適切である。
バイオリアクター細胞機能における早期ステップは、RNA−タンパク質複合体のRNA及びタンパク質成分の合成、並びにそれらの成分の細胞質への局在化である。RNA分子のプロモーター駆動転写は、十分に確立されている機序を介して生じ、バイオリアクターとして使用される細胞型のために最適化され得る。融合タンパク質をコードする転写産物の搬出は、核孔複合体を介して典型的なPol−II mRNA経路を辿る。別の場合、Sec−RNA分子は、ミクロRNA及びshRNAによって利用されるエクスポルチン−5経路を介してそれが搬出されるというような方法で構築され得る。更に別の場合、RNA分子は、核からのSec−RNAの搬出を促進するためのアデノウイルスVA1ミニヘリックスドメインを含有することができる。Pol−IIプロモーターからSec−RNA構築物を発現し、hGHポリアデニル化シグナルによって終止することも可能であり、その結果、Sec−RNAをキャップし、核孔複合体を介して核から搬出することができる。
一旦細胞質中において共局在すると、生物活性RNA及び融合タンパク質は、一緒になってRNA−タンパク質複合体を形成するはずである。この結合事象は、融合タンパク質中における高親和性RNA結合ドメインと、生物活性RNA分子を含む核酸中における対応する配列特異的認識部位とを含むことによって達成される安定な複合体の均質集団を提供する特異的な高親和性相互作用を含む。RNA結合ドメイン及びRNA認識配列は、バイオリアクター細胞の細胞質中において相互作用し、標的細胞への分泌及び送達のために必要なタンパク質機構に生物活性RNA配列を結合させる。その相互作用の特異性は、バイオリアクター細胞に対して内在性の他のRNAの分泌を最小限に抑え、高親和性は、細胞外空間中において複合体を維持することを助ける。
RNA−タンパク質複合体
考察されるように、本発明は、プラスミドが、生物活性RNA分子を産生且つ分泌し得るRNAバイオリアクター中にトランスフェクト細胞を転化させるベクターに基づいたRNA送達系を提供する。バイオリアクタープラスミドは、送達融合タンパク質に対する認識配列に連結した任意の生物活性RNA分子をコードし、分布させる能力を有する。したがって、本発明の発現ベクターは、1つ又は複数の生物活性RNA配列、RNA認識配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、並びに/又はRNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む。生物活性RNA分子は、それらが相互作用する細胞成分に応じた多くの異なる機序を通して生物学的効果を発揮することができる。ほとんどの生物活性RNAは、mRNA分子の翻訳サイレンシング又は分解を引き起こす特異的mRNA転写産物との塩基対合相互作用を通して機能する。阻害性RNAの2つの関連クラスは、アンチセンスRNA分子及び低分子阻害性RNA分子である。アンチセンスRNAは、典型的には、それがターゲッティングするmRNA転写産物の直接の相補物であり、翻訳機構に対して障害を提示し、更に細胞ヌクレアーゼによる分解に対する転写産物をターゲッティングすることによって機能する。低分子阻害性RNA(siRNA)分子は、転写後遺伝子サイレンシング(PTGS)経路を通して又はRNA干渉(RNAi)経路を通して作用する。これらのRNAは、長さが約22ヌクレオチドであり、特異的な細胞タンパク質と会合してRNA誘導型サイレンシング複合体(RISC)を形成する。これらの低分子RNAは、それらのmRNA標的中の配列に対して相補的でもあり、これらの複合体の結合は、転写産物の翻訳サイレンシング又は分解を引き起こす。
遺伝子発現を調節し得るRNA分子の2つの更なるクラスは、触媒性RNAリボザイム及びRNAアプタマーである。リボザイムは、RNA基質に対する化学反応、多くの場合ホスホジエステル骨格の加水分解を触媒するRNAに基づく酵素である。触媒性活性部位の形成は、リボザイムとRNA基質との間の塩基対合を必要とするので、リボザイム活性は、適切なガイド配列を提供することによって所望の基質をターゲッティングすることもできる。mRNA転写産物をターゲッティングする場合、リボザイムは、それらの転写産物を分解させ、関連のタンパク質の下方制御を引き起こす能力を有する。RNAアプタマーは、典型的には、標的分子(しばしばタンパク質分子)と相互作用するそれらの能力によってランダムRNA配列のプールから選択される。結合は塩基対合相互作用によって定義されないので、RNAアプタマーを操作することはあまり簡単ではないが、一旦有効な配列が分かると、結合の特異性及び親和性は、しばしば抗体−抗原相互作用と拮抗する。RNAアプタマーはまた、より大きな範囲の標的分子、及び多くの異なる機序を介して遺伝子活性を改変する能力をも有する。これは、タンパク質又はそれを産生するmRNA転写産物の分解の必要がない標的分子の生物学的活性の直接的阻害を含む。
本発明のある種の実施形態において、RNA−タンパク質複合体の1つ又は複数の生物活性RNA配列は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物、並びにそれらのあらゆる組合せから選択される。一実施形態において、生物活性RNA配列の内の1つ又は複数は、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である。別の一実施形態において、生物活性RNA配列の内の1つ又は複数は、アプタマーである。1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物である生物活性RNAに関して、例示的なペプチドとしては、癌抑制遺伝子によってコードされるペプチド、アポトーシス促進因子、及び癌系に対する細胞内抗体、又は機能若しくは欠失変異の喪失から生じる疾患系における遺伝子機能を回復させるタンパク質から選択されるものが挙げられる。核酸分子の生物活性RNA配列は、対象となるあらゆる標的遺伝子に対して向けられ得る。例えば、生物活性RNAは、例えばNational Center for Biotech Information(NCBI)において見出されるデータベースのいずれかが含まれる一般公開されているあらゆる遺伝子配列データベースにおいて見出されるあらゆる遺伝子に対して向けられ得る。特定の一実施形態において、生物活性RNA配列は、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である。別の特定の一実施形態において、生物活性RNAは、アプタマーである。適切なshRNA配列の非限定的な例としては、Mmp2、血管内皮成長因子(VEGF)、血管内皮成長因子受容体(VEGFR)、カベオリン−1(Cav−1)、上皮成長因子受容体(EGFR)、ハーベイ−レトロウイルス関連DNA配列(H−Ras)、B細胞CCL/リンパ腫2(Bcl−2)、スルビビン、焦点接着キナーゼ(FAK)、シグナル伝達兼転写活性化因子3(STAT−3)、ヒト上皮成長因子受容体3(HER−3)、ベータ−カテニン、及びとりわけ本明細書に記載され、本技術分野において公知のSrc shRNA配列が挙げられる。表Iは、非限定的で例示的な生物活性RNA配列のヌクレオチド配列を提供する。ある種の実施形態において、生物活性RNA配列は、配列番号1〜15のいずれかから選択される1つ又は複数の配列を含む。
生物活性RNA配列を含む核酸は、認識RNA配列を更に含み、その配列は、本発明の融合タンパク質中に位置するRNA結合ドメインによって認識され、それに特異的に結合する。(RNA配列中における)認識RNA配列と(タンパク質配列中における)RNA結合ドメインと間の特異的な高親和性相互作用の多くの例は、本技術分野において公知であり、記載されている。本発明の認識RNA配列は、ポリペプチドのRNA結合ドメインに結合することが公知の本技術分野において記載されているいずれのRNA配列でもあってよい。一実施形態において、認識RNA配列は、長さが少なくとも約10ヌクレオチドである。一実施形態において、認識RNA配列は、約10ヌクレオチドから約250ヌクレオチドである。ある種の特定の実施形態において、認識RNA配列は、例えば、約10〜15ヌクレオチド、約16〜20ヌクレオチド、約21〜25ヌクレオチド、約26〜30ヌクレオチド、約31〜35ヌクレオチド、約36〜40ヌクレオチド、約41〜45ヌクレオチド、約46〜50ヌクレオチド、約51〜75ヌクレオチド、約76〜100ヌクレオチド、約101〜125ヌクレオチド、約126〜150ヌクレオチド、約151〜175ヌクレオチド、約176〜200ヌクレオチド又は約201〜250ヌクレオチドである。一実施形態において、認識RNA配列は、少なくとも約100nMの解離定数(K)を有する。特定の一実施形態において、解離定数は、約100nMから約1pMである。(RNA配列中における)認識RNA配列と(タンパク質配列中における)RNA結合ドメインと間の特異的な高親和性相互作用の非限定的な例としては、とりわけ、U1A配列を有するU1ループ配列、CRS1配列を有するグループIIイントロン配列のドメインI又はドメインIV、ヌクレオリン配列を有するNREステムループ配列、hRBMY配列を有するS1Aステムループ配列、バクテリオファージタンパク質Nを有するバクテリオファージBoxBR配列、HIV Revタンパク質を有するHIV Rev応答エレメント、AMVCPタンパク質を有するアルファルファ−モザイクウイルスコートタンパク質認識配列(AMVCP)及びトリステトラプロリン配列を有するAREステムループ配列が挙げられる。ある種の特定の実施形態において、核酸の認識RNA配列は、U1ループ、グループIIイントロン、NREステムループ、S1Aステムループ、バクテリオファージBoxBR、HIV Rev応答エレメント、アルファルファ−モザイクウイルスコートタンパク質認識配列(AMVCP)及びARE配列から選択される配列を含む。表IIは、非限定的な例示的認識RNA配列のヌクレオチド配列を提供する。ある種の特定の実施形態において、認識RNA配列は、配列番号16〜23のいずれかの配列を含む。
ある種の実施形態において、核酸分子は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び末端ミニヘリックス配列を含む。末端ミニヘリックス配列は、RNA分子の5’及び3’末端をアニールする約17ヌクレオチドの短配列である。この配列は、Pol−IIIプロモーターから誘導されるRNA分子の核外搬出を促進することを示し、バイオリアクター細胞中におけるRNA−融合タンパク質複合体の形成を駆動することを助けることができる。適切な末端ミニヘリックス配列の例は、本明細書に記載され、それ以外の場合、本技術分野において公知である。一実施形態において、末端ミニヘリックス配列は、長さが少なくとも約17ヌクレオチドである。特定の一実施形態において、末端ミニヘリックス配列は、長さが約10ヌクレオチドから約100ヌクレオチドである。一実施形態において、末端ミニヘリックス配列は、アデノウイルスVA1 RNA分子に由来する。
更に、本発明の発現ベクターは、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含むポリペプチドをコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含むことができる。これらの実施形態の配列のいずれも、RNA認識配列を含まない。生物活性RNA配列の内の1つ又は複数が短鎖干渉性RNA、(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)及び短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、かかるポリペプチドは有用である。
上記の核酸分子のいずれかにおいて、核酸分子は、認識RNA配列、個々の生物活性RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列が介在又は付加配列の付加なしで直接結合する配列を含むことができる。別の場合、上記の核酸分子のいずれかにおいて、核酸分子は、認識RNA配列、個々の生物活性RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列を含む配列の内の1つ又は複数が1つ又は複数の介在又は付加配列の付加と共に結合する配列を含むことができる。同様に、上記の核酸分子のいずれかにおいて、核酸分子は、個々の生物活性RNA配列自体が1つ若しくは複数の介在若しくは付加配列の付加なしで直接結合するか又は1つ若しくは複数の介在若しくは付加配列の付加と共に結合する配列を含むことができる。
生物活性RNA分子を分泌し、隣接する細胞に送達するバイオリアクター細胞の能力は、pBioRプラスミド(単数又は複数)から産生されたRNA−タンパク質複合体の特性に由来する。第1に、(RNA結合ドメイン及び場合によって他の配列を含む)融合タンパク質は、(RNA認識配列を介して)生物活性RNAに結合し、バイオリアクター細胞から分泌される。細胞外マトリックスにおいて、RNA−タンパク質複合体は、標的細胞に達するのに十分長く、無傷のままである。一旦標的細胞の表面にあると、融合タンパク質は、標的細胞の細胞質への生物活性RNAの移入を促進する。
RNA−タンパク質複合体の分泌は、融合タンパク質のRNA結合ドメインによるSec−RNAの効率的結合によって最適化される。融合タンパク質−Sec−RNA複合体の形成を駆動するため、融合タンパク質は、ウイルス又は細菌由来の高親和性RNA結合ドメインを含有する。非ネイティブ高親和性相互作用の利用は、バイオリアクター細胞に対して内在性のRNA分子の非特異的結合から最小限の拮抗で安定な複合体の均質集団を得る見込みを向上させる。
したがって、一実施形態において、融合タンパク質は、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチドを含む。新規な融合タンパク質のRNA結合ドメインは、対応するRNA認識モチーフを認識し得るいずれのアミノ酸配列であってもよい。一実施形態において、RNA結合ドメインは、約25アミノ酸から約300アミノ酸である。ある種の特定の実施形態において、RNA結合ドメインは、例えば、約25〜49アミノ酸、約50〜75アミノ酸、約76〜100アミノ酸、約101〜125アミノ酸、約126〜150アミノ酸、約151〜175アミノ酸、約176〜200アミノ酸、約201〜225アミノ酸、約226〜250アミノ酸、約251〜275アミノ酸又は約276〜300アミノ酸である。融合ポリペプチドのRNA結合ドメインは、本技術分野において公知で記載されているいずれのRNA結合ドメインであってもよい。ある種の特定の実施形態において、融合ポリペプチドのRNA結合ドメインは、U1A、CRS1、CRM1、ヌクレオリンRBD12、hRBMY、バクテリオファージタンパク質N、HIV Rev、アルファルファ−モザイクウイルスコートタンパク質(AMVCP)及びトリステトラプロリンアミノ酸配列から選択されるアミノ酸配列を含む。RNA結合ドメイン配列の非限定的な例のアミノ酸配列は、表IIIに示される。ある種の特定の実施形態において、RNA結合ドメインは、配列番号24〜31のいずれかから選択される配列を含む。
融合タンパク質の別の成分は、RNA−タンパク質複合体の分泌を促進するドメインである。非古典的分泌経路を辿るタンパク質は、古典的搬出機序を方向づける典型的な分泌シグナルを欠き、ER−ゴルジ体ネットワークから排除され、ER−ゴルジ体輸送を阻害する薬物の存在下で分泌され得る。膜の小胞形成、小胞及び非小胞非古典的輸送、能動的及び受動的膜輸送体、並びに膜フリップフロップを含む幾つかの機序が、非古典的分泌経路について提案されている。ER−ゴルジ体ネットワークのものに依存しない分泌経路に接近するタンパク質からのペプチド配列は、本発明の生物活性RNA分子の分泌に有用である。RNA−タンパク質複合体の分泌を促進するために有用な別の群の配列は、細胞貫通ペプチドである。これらのペプチドの侵入の正確な機序は十分に知られていないが、一部のデータが非エンドソーム機序を示唆するもののエンドソーム経路を含むことができる。
融合ポリペプチドの輸送ペプチドは、細胞外マトリックス並びに/又は隣接する細胞及び組織への核酸、ペプチド、融合タンパク質、RNA−タンパク質複合体及び/又は他の生物学的分子の送達を促進するいずれのアミノ酸配列であってもよい。輸送ペプチドの一例は、標的細胞中へのSec−RNAの移入を促進する細胞貫通ペプチドである。本技術分野において公知の多くの細胞貫通ペプチドがあるが、それらのペプチド配列は、原形質膜を越えることが可能である。かかるペプチドは、しばしば、転写因子、例えばホメオドメインタンパク質及びウイルスタンパク質、例えばHIV−1のTAT中に存在する。細胞貫通ペプチドを介した細胞の細胞質へのRNA−タンパク質複合体の送達は、実験的に確立されている。例えば、U1A RNA結合ドメイン及びTAT細胞貫通ペプチドから成る精製融合タンパク質によるCHO細胞へのsiRNAの送達が報告されている。ビオチン−ストレプトアビジン連結を利用する更なる報告は、TATペプチドを介した各種カーゴ分子の成功した送達を示す。標的細胞の細胞質へのカーゴ分子のTAT仲介送達は、エンドソーム放出を促進するために更なる融合ペプチドを必要とすると思われないが、TATへのかかるペプチドの付加は、送達の効率を改善させ得る。送達系の一部としての融合ペプチドの必要性は、融合タンパク質において使用される細胞貫通ペプチドの同一性に依存し得る。
したがって、一実施形態において、輸送タンパク質は、細胞貫通ペプチドである。典型的には、かかる配列は、正に帯電する側基を有するアミノ酸、即ち、塩基性アミノ酸、例えば、ヒスチジン、リシン及びアルギニンが豊富なポリカチオン性又は両親媒性配列である。細胞貫通ペプチドの多くの例は、本技術分野において公知であり、記載されている。適切な細胞貫通ペプチドの非限定的な例としては、転写因子、例えばホメオドメインタンパク質及びウイルスタンパク質、例えばHIV−1のTAT中に存在するタンパク質膜トランスダクションドメインから誘導されるものが挙げられる。一実施形態において、細胞貫通ペプチドは、例えば、約10〜15アミノ酸、約16〜20アミノ酸、約21〜25アミノ酸、約26〜30アミノ酸、約31〜35アミノ酸、約36〜40アミノ酸、約41〜45アミノ酸及び約46〜50アミノ酸を含む約10アミノ酸から約50アミノ酸である。ある種の特定の実施形態において、ポリペプチドの細胞貫通ペプチドは、ペネトラチン、トランスポルタン、MAP、HIV TAT、Antp、Rev、FHVコートタンパク質、TP10及びpVECアミノ酸配列から選択されるアミノ酸配列を含む。細胞貫通ペプチド配列の非限定的な例のアミノ酸配列は、表IVに示される。ある種の特定の実施形態において、細胞貫通ペプチドは、配列番号32〜40のいずれかから選択される配列を含む。
輸送ペプチドの別の一例は、非古典的分泌ドメインである。非古典的分泌ドメインは、ペプチド及び/又は他の生物学的分子をタンパク質分泌の古典経路(単数又は複数)以外の経路を介して細胞から分泌するように向けるいずれのアミノ酸配列であってもよい。生物学的分子は、細胞外マトリックス中に分泌され得、且つ/又は周囲の細胞及び組織に送達され得る。非古典的分泌ドメインの多くの例は、本技術分野において公知であり、記載されている。一実施形態において、非古典的分泌ドメインは、約50アミノ酸から約250アミノ酸である。ある種の特定の実施形態において、非古典的分泌ドメインは、例えば、約50〜75アミノ酸、約76〜100アミノ酸、約101〜125アミノ酸、約126〜150アミノ酸、約151〜175アミノ酸、約176〜200アミノ酸、約201〜225アミノ酸又は約226〜250アミノ酸である。ある種の特定の実施形態において、非古典的分泌ドメインは、Galcetin−1ペプチド、ガレクチン−3ペプチド、IL−1α、IL−1β、HASPB、HMGB1、FGF−1、FGF−2、IL−2シグナル、分泌トランスグルタミナーゼ、アネキシン−1、HIV TAT、ヘルペスVP22、チオレドキシン、ロダネーゼ及びプラスミノーゲンアクチベーターシグナルアミノ酸配列から選択されるアミノ酸配列を含む。非古典的分泌ドメイン配列の非限定的な例は、表Vに示される。ある種の特定の実施形態において、非古典的分泌ドメインは、配列番号41〜48のいずれかから選択される配列を含む。
適切な輸送ペプチドの他の例としては、限定されるものではないが、受容体結合ドメイン、融合ペプチド及びエンドソーム放出ドメインから誘導される配列が挙げられる。一実施形態において、輸送ペプチドは、受容体結合ドメインから誘導される配列を含む。受容体結合ドメインは、標的細胞膜の細胞外側面上の表面受容体複合体に特異的に結合するいずれのアミノ酸配列であってもよい。ある種の特定の実施形態において、受容体結合ドメインは、EGFタンパク質、VEGFタンパク質、血管ホーミングペプチド、gp30タンパク質(若しくは他のErb B−2結合タンパク質)又はガレクチン−1タンパク質(若しくは他のCA125結合タンパク質)から選択されるアミノ酸配列を含む。
別の一実施形態において、輸送ペプチドは、エンドソーム放出ドメインから誘導される配列を含む。エンドソーム放出ドメインは、標的細胞のエンドソーム区画からのRNA−タンパク質複合体の放出を促進するいずれのアミノ酸配列であってもよい。ある種の特定の実施形態において、エンドソーム放出ドメインは、インフルエンザ由来の血球凝集素タンパク質、セムリキ森林ウイルス由来のE1タンパク質、又はポリヒスチジンモチーフから選択されるアミノ酸配列を含む。
別の一実施形態において、輸送ペプチドは、融合ペプチドから誘導される配列を含む。表VIは、適切な融合ペプチドの非限定的な例を提供する。したがって、ある種の特定の実施形態において、融合ペプチドは、配列番号50〜54のいずれかから選択される配列を含む。
融合タンパク質ポリペプチドの上記実施形態のいずれかにおいて、ポリペプチドは、個々のドメイン及びペプチドが1つ又は複数のリンカー、スペーサー又は他の配列の付加なしで直接結合する配列(単数又は複数)を含むことができる。別の一実施形態において、ポリペプチドは、個々のドメイン及びペプチドが1つ又は複数のリンカー、スペーサー及び/又は他の配列の付加と共に結合する配列(単数又は複数)を含むことができる。
したがって、本発明の発現ベクターのある種の特定の実施形態において、生物活性RNA配列(単数又は複数)は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される。認識RNA配列は、U1ループ、グループIIイントロン、NREステムループ、S1Aステムループ、バクテリオファージBoxBR、HIV Rev応答エレメント、AMVCP認識配列及びARE配列から選択される。RNA結合ドメインは、U1A、CRS1、CRM1、ヌクレオリンRBD12、hRBMY、バクテリオファージタンパク質N、HIV Rev、AMVCP及びトリステトラプロリンアミノ酸配列から誘導されるアミノ酸配列を含む。輸送ペプチドは、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド及びエンドソーム放出ドメインから選択される。適切な細胞貫通ペプチド配列としては、限定されるものではないが、ペネトラチン、トランスポルタン、MAP、HIV TAT、Antp、Rev、FHVコートタンパク質、TP10及びpVECアミノ酸配列から誘導されるアミノ酸配列を有するそれらのペプチドが挙げられる。適切な非古典的分泌ドメイン配列としては、限定されるものではないが、Galcetin−1ペプチド、ガレクチン−3ペプチド、IL−1α、IL−1β、HASPB、HMGB1、FGF−1、FGF−2、IL−2シグナル、分泌トランスグルタミナーゼ、アネキシン−1、HIV TAT、ヘルペスVP22、チオレドキシン、ロダネーゼ及びプラスミノーゲンアクチベーターシグナルアミノ酸配列から誘導されるアミノ酸配列を有するペプチドが挙げられる。適切な融合ペプチド配列としては、限定されるものではないが、インフルエンザ由来のHA、HIV由来のGp41、メリチン、GALA及びKALAから誘導されるアミノ酸配列を有するペプチドが挙げられる。
RNA−タンパク質複合体の本明細書に記載される実施形態のいずれかにおいて、核酸分子は、認識RNA配列、個々の生物活性RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列が1つ又は複数の介在又は付加配列の付加なしで直接結合する配列を含むことができる。別の場合、RNA−タンパク質複合体の上記実施形態のいずれかにおいて、核酸分子は、認識RNA配列、個々の生物活性RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列が1つ又は複数の介在又は付加配列の付加と共に結合する配列を含むことができる。RNA−タンパク質複合体の上記実施形態のいずれかにおいて、核酸分子は、個々の生物活性RNA配列自体が1つ又は複数の介在又は付加配列の付加と共に又は付加なしで結合する配列を含むことができる。RNA−タンパク質複合体の上記実施形態のいずれかにおいて、RNA−タンパク質複合体のポリペプチド部分は、個々のドメイン及びペプチドのいずれかがリンカー、スペーサー及び/又は他の配列の付加と共に又は付加なしで結合する配列(単数又は複数)を含むことができる。
発現ベクター
一実施形態において、発現ベクターは、1つ又は複数の生物活性RNA配列、RNA結合ドメイン(Sec−RNA)に対する認識RNA部位、及び場合によってミニ末端ヘリックス配列を含むRNA分子をコードするポリヌクレオチド配列を含む第1発現カセットを含む。発現ベクターは、RNA結合ドメインとRNA−タンパク質複合体の分泌及び細胞外マトリックス又は標的細胞への生物活性RNAの送達を促進する1つ又は複数の輸送ペプチドとを含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド配列を含む第2発現カセットを更に含む。更なる一実施形態において、発現ベクターは、第3発現カセットが、ウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む、第3発現カセットを更に含む。場合によって、発現ベクターは、第4発現カセットを更に含むことができるか、又は別の発現ベクターは、1つ若しくは複数の生物活性RNA、場合によって認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列をコードするポリヌクレオチド配列を含む発現カセットを含むことができる。一実施形態において、第4発現カセットの1つ又は複数の生物活性RNA配列は、第1発現カセットの生物活性RNA配列(単数又は複数)がターゲッティングする同じ標的遺伝子であり得る又はあり得ない標的遺伝子に向けられる。別の一実施形態において、第4発現カセットの1つ又は複数の生物活性RNA配列は、バイオリアクター細胞の中のダイサータンパク質及び/又はドローシャタンパク質に向けられる。このカセットは、RNA結合ドメインに対する認識RNA配列を含まないので、バイオリアクター細胞から分泌されない。
一実施形態において、第1及び第2発現カセットは、融合タンパク質をコードするRNAの中の人工イントロン中にSec−RNA配列を配置することによって組み合わせられる。このベクターは、全体的なプラスミドのサイズを減少させる利点を提供し、単一プロモーターの制御下における全てのバイオリアクター成分の転写を配置する。細胞への発現ベクターの投与の際、RNA−タンパク質複合体は、単一のRNA転写物として又は1つ若しくは複数のRNA転写物としてベクターから発現され得る。例えば、RNA−タンパク質複合体は、(1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む)RNA−タンパク質複合体のRNA部分と(RNA結合ドメイン、並びに例えば細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、融合ペプチド及び受容体結合ドメインから選択される1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含む)RNA−複合体のタンパク質部分とを含む単一の転写産物としてベクターから発現され得る。Sec−RNAは、5’非翻訳領域(UTR)中又は融合タンパク質に対するコード配列の中のいずれかにおいて配置される人工イントロンの中でコードされる。Sec−RNA配列は、適切な制限部位を用いて人工イントロンのスプライスドナー及びスプライス受容体部位の間でサブクローニングされる。転写後、Sec−RNAは、バイオリアクター細胞に対して内在性のスプライシング機構によって融合タンパク質をコードするmRNAから放出される。別々の転写産物が細胞核から細胞質に搬出され、そこでRNA結合ドメイン配列及び任意の他の配列(単数又は複数)を含む転写産物が翻訳される。翻訳されたペプチドのRNA結合ドメインがRNAの認識RNA配列と相互作用し、RNA−タンパク質複合体を形成する。
他の実施形態において、第1及び第2発現カセット、並びに任意の第3及び第4発現カセットは、プロモーター配列、1つ又は複数の制限酵素部位を含む配列、プライマー配列、GC塩基対配列、開始コドン、翻訳開始部位及び終止配列から選択される1つ又は複数の配列を更に含む。適切なプロモーターとしては、限定されないがシミアンウイルス40(SV40)、サイトメガロウイルス(CMV)、β−アクチン、ヒトアルブミン、ヒトHIF−α、ヒトゲルソリン、ヒトCA−125、ユビキチン及びPSAプロモーターが含まれるPol IIプロモーターが挙げられる。別の一実施形態において、プロモーターは、Pol IIIプロモーターである。適切なPol IIIプロモーターの非限定的な例としては、限定されるものではないが、ヒトH1及びヒトU6プロモーターが挙げられる。別の一実施形態において、カセットは、1つ又は複数の終止配列を更に含む。適切な終止配列の非限定的な例としては、限定されるものではないが、ヒト成長ホルモン(hGH)ポリアデニル化配列、ウシ成長ホルモン(BGH)ポリアデニル化配列、シミアンウイルス40(SV40)大型Tポリアデニル化配列及び単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ(HSV−tk)ポリアデニル化配列が挙げられる。一実施形態において、発現カセットは、制限酵素部位、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数の終止配列を含有し得る1つ又は複数のプライマー配列を更に含む。
発現ベクターの上記実施形態のいずれかにおいて、ポリヌクレオチドは、生物活性RNA配列、認識RNA配列、RNA結合ドメイン配列、輸送ペプチド配列、ウイルスポリペプチド及びあらゆる他の含まれる配列(即ち、プロモーター、終止配列、プライマー等)のいずれかが1つ若しくは複数の介在若しくは付加配列の付加と共に結合するか又は介在配列の付加なしで直接結合する配列を含むことができる。上記実施形態のいずれかにおいて、発現ベクターは、個々のドメイン及びペプチドの配列(単数又は複数)が1つ又は複数のリンカー、スペーサー又は他の配列の付加なしで又は付加と共に結合するポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含むことができる。
更なる一実施形態において、発現ベクターは、1つ又は複数の多重クローニング部位配列を更に含む。また、発現ベクターは、1つ又は複数の薬剤耐性遺伝子配列を更に含むことができる。適切な薬剤耐性遺伝子の例としては、限定されるものではないが、カナマイシン、アンピシリン、ピューロマイシン、テトラサイクリン及びクロラムフェニコール耐性遺伝子、並びに本技術分野において公知で、記載されているあらゆる他の薬剤耐性遺伝子が挙げられる。発現ベクターは、pUC複製開始点を更に含むことができる。
バイオリアクタープラスミドのタンパク質又はRNA成分に対する発現カセットは、適切なフォワード及びリバースプライマーを用いてそれぞれcDNAクローン又はRNA発現プラスミドからの関連配列のPCR増幅によって調製される。プライマーには、対象となるドメイン又は生物活性RNA配列、サブクローニングの際に使用される制限酵素に対する部位、及び制限酵素による消化を促進するための各プライマーの5’末端における約6個のGC塩基対に対して相補的な配列が含まれる。Sec−RNA発現構築物を作製するため、生物活性RNA配列の5’末端に対応するプライマーに認識RNA配列を付加する。この発現構築物は、ヒトU6プロモーター配列の下流及びPol IIIポリT終止配列の上流にSec−RNA発現カセットを配置するpEGEN4.1構築物中にサブクローニングするための適切な制限酵素によって消化される。別の場合、CMV Pol−IIプロモーターの制御下でRNA発現を配置し、ヒトGHポリアデニル化シグナルによって終止するpEGEN3.1中にSec−RNA発現カセットをサブクローニングすることができる。
図5〜13に、幾つかの例示的な発現ベクターを示す。1つの例示的な発現ベクターは、図5に示されるpEGEN1.1である。示されるように、pEGEN1.1は、SV40プロモーター配列(1)、イントロン配列(2)、多重クローニング配列(MCS)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。Sec−RNA分子又は融合タンパク質をコードするDNA断片を、多重クローニング配列中へのサブクローニングのための制限部位を含むプライマーによるPCRによって調製する。PCR産物及びpEGEN1.1プラスミドを、適切な制限酵素によって消化し、ライゲーション前に精製する。Sec−RNA分子、又は融合タンパク質をコードするmRNAは、人工イントロン及びポリAテイル配列を有するSV40プロモーター配列から転写される。
別の例示的な発現ベクターは、図6に示されるpEGEN2.1である。示されるように、pEGEN2.1は、ニワトリβ−アクチンプロモーター配列(1)、イントロン配列(2)、多重クローニング配列(MCS)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。Sec−RNA分子又は融合タンパク質をコードするDNA断片を、多重クローニング配列中へのサブクローニングのための制限部位を含むプライマーによるPCRによって調製する。PCR産物及びpEGEN2.1プラスミドを、適切な制限酵素によって消化し、ライゲーション前に精製する。Sec−RNA分子、又は融合タンパク質をコードするmRNAは、人工イントロン及びポリAテイル配列を有するニワトリ−アクチンプロモーター配列から転写される。
別の例示的な発現ベクターは、図7に示されるpEGEN3.1である。示されるように、pEGEN3.1は、CMVプロモーター配列(1)、イントロン配列(2)、多重クローニング配列(MCS)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。Sec−RNA分子又は融合タンパク質をコードするDNA断片を、多重クローニング配列中へのサブクローニングのための制限部位を含むプライマーによるPCRによって調製する。PCR産物及びpEGEN3.1プラスミドを、適切な制限酵素によって消化し、ライゲーション前に精製する。Sec−RNA分子、又は融合タンパク質をコードするmRNAは、人工イントロン及びポリAテイル配列を有するCMVプロモーター配列から転写される。
別の例示的な発現ベクターは、図8に示されるpEGEN4.1である。示されるように、pEGEN4.1は、ヒトU6プロモーター配列(1)、多重クローニング配列(MCS)、ポリTターミネーター配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。Sec−RNA分子をコードするDNA断片を、多重クローニング配列中へのサブクローニングのための制限部位を含むプライマーによるPCRによって調製する。PCR産物及びpEGEN4.1プラスミドを、適切な制限酵素によって消化し、ライゲーション前に精製する。Sec−RNA分子は、U6プロモーター配列から転写され、ポリTターミネーター配列により終止する。
別の例示的な発現ベクターは、本発明の例示的なRNA−タンパク質複合体をコードするpBioR Pol II(図9に示される)である。ベクターは、Sec−RNA配列(3)の上流のSV40プロモーター(1)と下流のhGHポリA配列(4)とを含む。ベクターはまた、融合タンパク質配列(6)の上流のβ−アクチンプロモーター(5)と下流のhGHポリA配列(4)とを含む。ベクターはまた、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)をも含む。
別の例示的な発現ベクターは、本発明の例示的なRNA−タンパク質複合体をコードする図10に示されるpBioR Pol IIIである。ベクターは、Sec−RNA配列(3)の上流(1)のhU6プロモーターと下流のPol−IIIポリTターミネーター配列(4)とを含む。ベクターはまた、融合タンパク質配列(6)の上流のβ−アクチンプロモーター(5)と下流のhGHポリA配列(4)とを含む。ベクターはまた、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)をも含む。
別の例示的な発現ベクターは、本発明の例示的なRNA−タンパク質複合体をコードする図11に示されるpBioR Pol II comboである。ベクターは、β−アクチンプロモーター(1)、イントロン配列(2)、融合タンパク質(6)、融合タンパク質に対して内部のフランキングイントロン(2)を有するSec−RNA(3)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。この発現ベクターにおいて、Sec−RNAは、融合タンパク質をコードするmRNA配列中において配置される人工イントロン中においてコードされる。Sec−RNA分子又は融合タンパク質をコードするDNA断片をPCRによって調製する。Sec−RNA分子をコードするDNA断片は、融合タンパク質配列の中の固有の制限部位中にサブクローニングするためのスプライスドナー及び受容体部位並びに制限部位を含むプライマーにより調製される。融合タンパク質をコードするDNA断片は、上記のプラスミド中にサブクローニングするための制限部位を含むプライマーにより調製される。転写後、Sec−RNAは、バイオリアクター細胞に対して内在性のスプライシング機構によって融合タンパク質をコードするmRNAから放出される。
別の例示的な発現ベクターは、本発明の例示的なRNA−タンパク質複合体をコードする図12に示されるpBioR Pol II stableである。ベクターは、CTS調節因子(9)、PGKプロモーター(1)、ピューロマイシン耐性遺伝子(10)、ニワトリβ−アクチンプロモーター(5)、融合タンパク質(6)、融合タンパク質に対して内部のフランキングイントロン(2)を有するSec−RNA(3)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。Sec−RNA配列は、表I及びIIから選択され得、融合タンパク質配列は、表III、IV及びVから選択され得る。
別の例示的な発現ベクターは、本発明の例示的なRNA−タンパク質複合体をコードする図13に示されるpBioR Pol II ダイサーである。ベクターは、SV40プロモーター(1)、イントロン配列(2)、生物活性RNA配列及び認識RNA配列(3)、hGHポリAテイル配列(4)、ニワトリ−アクチンプロモーター(5)、融合タンパク質(6)、融合タンパク質に対して内部のフランキングイントロン(2)を有するSec−RNA(3)、ヒト成長ホルモンポリAテイル配列(4)、カナマイシン耐性遺伝子(7)及びpUC複製開始点(8)を含む。Sec−RNA配列は、表I及びIIから選択され得、融合タンパク質配列は、表III、IV及びVから選択され得る。
他の実施形態において、発現ベクターは、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードする第1ポリヌクレオチド配列と、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードする第2ポリヌクレオチド配列とを含む。別の一実施形態において、発現ベクターは、1つ又は複数の生物活性RNA配列、場合によって認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードする第3ポリヌクレオチドを更に含む。一実施形態において、第1ポリヌクレオチド及び第3ポリヌクレオチドの生物活性RNAは、対象となる1つ又は複数の標的遺伝子をターゲッティングする。別の一実施形態において、第1ポリヌクレオチドの生物活性RNAは、対象となる1つ又は複数の標的遺伝子をターゲッティングする短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)及び短鎖ヘアピンRNA(shRNA)から選択され、第3ポリヌクレオチドの生物活性RNAは、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする。
更なる一実施形態において、発現ベクターは、第1プロモーター配列、終止配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列、第2プロモーター配列、ポリA付加配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を更に含み、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列をコードする第1ポリヌクレオチドは、第1プロモーター配列及び終止配列に作動可能に連結し、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチド配列をコードする第2ポリヌクレオチドは、第2プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結する。更に、ベクターは、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数の終止配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を更に含むことができ、1つ又は複数の生物活性RNA配列、場合によって認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードする第3ポリヌクレオチド配列(単数又は複数)は、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数の終止配列に作動可能に連結する。
別の一実施形態において、発現ベクターは、ウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を更に含む。更なる一実施形態において、ベクターは、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数のポリA付加配列及び場合によって1つ又は複数のプライマー配列を更に含み、ウイルスポリメラーゼ(単数又は複数)及びウイルスアクセサリータンパク質(単数又は複数)をコードするポリヌクレオチド配列(単数又は複数)は、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する。
一実施形態において、本発明は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを提供する。一実施形態において、発現ベクターは、1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドと、ウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列とを含む。
本発明はまた、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターをも提供する。
したがって、本発明は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む第1発現ベクターと、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド、例えば細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド及びエンドソーム放出ドメインから選択されるペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む第2発現ベクターとを提供する。
本発明の発現ベクターのいずれかにおいて、認識RNA配列、個々の生物活性RNA配列、場合による末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン及び輸送ペプチド(単数又は複数)を含む配列、並びにウイルス配列、プロモーター、プライマー、終止配列及びポリA配列が含まれるあらゆる他の配列の内の1つ又は複数は、1つ又は複数の介在又は付加配列の付加なしで直接結合する。別の場合、認識RNA配列、個々の生物活性RNA配列、場合による末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン及び輸送ペプチド(単数又は複数)を含む配列、並びにウイルス配列、プロモーター、プライマー、終止配列及びポリA配列が含まれるあらゆる他の配列の内の1つ又は複数は、1つ又は複数の介在又は付加配列の付加と共に結合する。上記実施形態のいずれかにおいて、個々の生物活性RNA配列自体は、いずれの介在若しくは付加配列なしで直接結合するか又は1つ若しくは複数の介在若しくは付加配列の付加と共に結合する。上記実施形態のいずれかにおいて、認識RNA配列及び生物活性RNAのいずれかは、1つ若しくは複数のリンカー、スペーサー若しくは他の配列の付加なしで直接結合するか又は1つ若しくは複数のリンカー、スペーサー及び/若しくは他の配列の付加と共に結合する。上記実施形態のいずれかにおいて、RNA結合ドメイン及び個々の輸送ペプチドのいずれかは、1つ若しくは複数のリンカー、スペーサー若しくは他の配列の付加なしで直接結合するか又は1つ若しくは複数のリンカー、スペーサー及び/若しくは他の配列の付加と共に結合する。
記載される発現ベクターのある種の実施形態において、生物活性RNA配列は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される。特定の一実施形態において、生物活性RNA配列は、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である。別の特定の一実施形態において、生物活性RNA配列は、アプタマーである。ある種の実施形態において、認識RNA配列は、U1ループ、グループIIイントロン、NREステムループ、S1Aステムループ、バクテリオファージBoxBR、HIV Rev応答エレメント、AMVCP認識配列及びARE配列から選択される。一実施形態において、末端ミニヘリックス配列は、アデノウイルスVA1 RNA分子に由来する。ある種の実施形態において、RNA結合ドメインは、U1A、CRS1、CRM1、ヌクレオリンRBD12、hRBMY、バクテリオファージタンパク質N、HIV Rev、アルファルファ−モザイクウイルスコートタンパク質(AMVCP)及びトリステトラプロリンアミノ酸配列から選択される。ある種の実施形態において、1つ又は複数の輸送ペプチドは、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド及びエンドソーム放出ドメイン、並びにそれらのあらゆる組合せから選択される。特定の一実施形態において、輸送ペプチドは細胞貫通ペプチドである。ある種の特定の実施形態において、細胞貫通ペプチドは、ペネトラチン、トランスポルタン、MAP、HIV TAT、Antp、Rev、FHVコートタンパク質、TP10及びpVEC配列から選択される。別の特定の一実施形態において、輸送ペプチドは非古典的分泌ドメインである。ある種の特定の実施形態において、非古典的分泌ドメインは、Galcetin−1ペプチド、ガレクチン−3ペプチド、IL−1α、IL−1β、HASPB、HMGB1、FGF−1、FGF−2、IL−2シグナル、分泌トランスグルタミナーゼ、アネキシン−1、HIV TAT、ヘルペスVP22、チオレドキシン、ロダネーゼ及びプラスミノーゲンアクチベーターシグナル配列から選択される。特定の一実施形態において、輸送ペプチドは、細胞貫通ペプチド、並びに非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド及びエンドソーム放出ドメインから選択される1つ又は複数の輸送ペプチドである。特定の一実施形態において、輸送ペプチドは、細胞貫通ペプチド及び非古典的分泌ドメインである。ある種の実施形態において、ウイルス非構造及び構造遺伝子(ウイルスポリメラーゼ、アクセサリータンパク質、コートタンパク質及び融合タンパク質)は、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、単純ヘルペスウイルスレンチウイルス、レトロウイルス、シンドビスウイルス及びフォーミーウイルスが含まれるがこれらに限定されないDNAウイルス及びRNAウイルスから選択される。
更に、本発明は、形質転換されたパッケージング細胞から1つ又は複数の生物活性RNA分子を担持し、分布させる複製可能又は複製不能ウイルス粒子から構築された発現ベクターを提供する。一実施形態において、本発明は、部分的ウイルスゲノムを含むウイルスベクター、及び部分的ウイルスゲノムと本明細書に記載される核酸分子のいずれかをコードするポリヌクレオチドとを含む第2ウイルスベクターを提供する。一実施形態において、本発明は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチド、並びに1つ又は複数の融合タンパク質、即ちRNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含むウイルスベクターを提供する。生物活性RNA配列は、本明細書に記載され、それ以外の場合、本技術分野において公知の生物活性RNA配列のいずれかであってよい。一実施形態において、ウイルスベクターは、生物活性RNA配列が、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される、核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む。特定の一実施形態において、ウイルスベクターは、生物活性RNA配列が短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である、核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む。特定の一実施形態において、ウイルスベクターは、生物活性RNA配列がアプタマーである、核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む。認識RNA配列は、本明細書に記載され、それ以外の場合、本技術分野において公知の認識RNA配列のいずれかであってよい。一実施形態において、ウイルスベクターベクターは、認識RNA配列が、U1ループ、グループIIイントロン、NREステムループ、S1Aステムループ、バクテリオファージBoxBR、HIV Rev応答エレメント、AMVCP認識配列及びARE配列から選択される、核酸分子をコードするポリヌクレオチドを含む。末端ミニヘリックス配列は、本明細書に記載され、それ以外の場合、本技術分野において公知の末端ミニヘリックス配列のいずれかであってよい。本発明はまた、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターをも提供する。ある種の実施形態において、RNA結合ドメインは、U1A、CRS1、CRM1、ヌクレオリンRBD12、hRBMY、バクテリオファージタンパク質N、HIV Rev、アルファルファ−モザイクウイルスコートタンパク質(AMVCP)及びトリステトラプロリンアミノ酸配列から選択される。ある種の実施形態において、1つ又は複数の輸送ペプチドは、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド及びエンドソーム放出ドメイン、並びにそれらのあらゆる組合せから選択される。一実施形態において、本発明は、RNA結合ドメイン及び細胞貫通ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを提供する。ある種の特定の実施形態において、細胞貫通ペプチドは、ペネトラチン、トランスポルタン、MAP、HIV TAT、Antp、Rev、FHVコートタンパク質、TP10及びpVEC配列から選択される。別の一実施形態において、本発明は、RNA結合ドメイン及び非古典的分泌ドメインを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを提供する。ある種の特定の実施形態において、非古典的分泌ドメインは、Galcetin−1ペプチド、ガレクチン−3ペプチド、IL−1α、IL−1β、HASPB、HMGB1、FGF−1、FGF−2、IL−2シグナル、分泌トランスグルタミナーゼ、アネキシン−1、HIV TAT、ヘルペスVP22、チオレドキシン、ロダネーゼ及びプラスミノーゲンアクチベーターシグナル配列から選択される。一実施形態において、本発明は、RNA結合ドメイン、細胞貫通ペプチド、並びに非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド及びエンドソーム放出ドメインから選択される1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを提供する。一実施形態において、本発明は、RNA結合ドメイン、細胞貫通ペプチド及び非古典的分泌ドメインを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを提供する。
別の一実施形態において、ウイルスベクターは、部分的ウイルスゲノム、並びにダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドを更に含む。これらのポリヌクレオチドのいずれも、RNA結合ドメインをコードしない。一実施形態において、ポリヌクレオチドは、単一の生物活性RNA配列を含む核酸分子をコードする。別の一実施形態において、ポリヌクレオチドは、2つ以上の生物活性RNA配列を含む核酸分子をコードする。ある種の実施形態において、生物活性RNA配列は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される。
バイオリアクター細胞
バイオリアクター細胞は、本発明の発現ベクター、例えばpBioRプラスミド(単数又は複数)をインビトロでレシピエント細胞系にトランスフェクトすることによって作製される。いかなる細胞型も、pBioRプラスミドのいずれかが含まれる発現ベクター(単数又は複数)のためのレシピエント細胞としての役割を果たすことができる。可能なバイオリアクター細胞の源は、融合タンパク質中において使用されるドメインの同一性と遺伝子ノックダウンに対してターゲッティングされる細胞の同一性とに応じて変化し得る。バイオリアクターは、融合タンパク質の産生、Sec−RNAの産生、融合タンパク質によるSec−RNAの結合、及びRNA−タンパク質複合体の分泌が可能である。融合タンパク質の産生は、タンパク質をコードするプラスミド由来mRNA転写産物を検出するRT−PCRに基づいたアッセイ、及びタンパク質自体を検出する抗体に基づいたアッセイを通して確認され得る。Sec−RNAの成功した産生は、RNA(生物活性RNA及び認識RNA配列)の転写と核からのその転写産物の搬出との両方を含む。プラスミド由来Sec−RNA分子の産生を示すためにRT−PCRアッセイを用いることができ、細胞質中におけるRNAの蓄積を実証するために細胞分画を用いることができる。融合タンパク質によるSec−RNA分子の結合は、融合タンパク質のドメインの内の1つに対する抗体を用いた、又は、別の場合、融合タンパク質配列へのエピトープ標識(FLAG、HA等)の付加を介したRNA−タンパク質複合体の免疫沈降によって実証され得る。RNA−タンパク質複合体の分泌は、細胞外マトリックス中における、又は培養細胞の場合は培地中におけるSec−RNAの検出によって確認され得る。無傷のRNA−タンパク質複合体を、上記の通りの免疫沈降を介して培地から単離することができるか、又はトータルRNAを、Tri−Reagent(Sigma−Aldrich、製品#T9424)を用いて調製することができる。Sec−RNAは、ノーザンブロットによって、又は上記の通りのRT−PCRによって検出される。
バイオリアクター細胞は、本発明の発現ベクターによる適切な細胞の一過性トランスフェクションによって又は安定にトランスフェクトした細胞の発生によって作製することができ、そこでプラスミドがバイオリアクター細胞のゲノム中に組み込まれる。本明細書に記載され、それ以外の場合、本技術分野において公知の方法を用いてリポソーム若しくはポリマー送達剤を介して又はエレクトロポレーションを介して本発明の発現ベクターを細胞に一過性にトランスフェクトすることができる。この種のトランスフェクションの効率によって、後続の送達ステップにおいて不活性出発材料として機能する非トランスフェクト細胞からのバイオリアクター細胞(即ち、トランスフェクト細胞)の精製の必要性がなくなる。対照的に、本発明の発現ベクターを安定してトランスフェクトし、レシピエント細胞のゲノム由来の融合タンパク質及びSec−RNAを発現する細胞系の発生は、トランスフェクト細胞の個々のコロニーの単離を必要とし、各々は、単一の組み込み事象を表し、バイオリアクター細胞の均質集団を生じる。これらの細胞は、連続的に分泌複合体を産生し、インビトロ及びインビボの用途において有用である。
バイオリアクター細胞をトランスフェクション剤として用いて、細胞へのSec−RNA分子の送達を促進することができる。バイオリアクター細胞を、Sec−RNA分子がターゲッティングする遺伝子産物をノックダウンする目的のためにインビトロ、エクスビボ又はインビボで標的細胞に適用することもできる。トランスフェクションにおいて用いられる特定の発現ベクター及びレシピエント細胞は、対象となる遺伝子標的及び標的細胞同一性によって決定される。同様に、標的細胞に対するバイオリアクター細胞の最適比は、細胞及び遺伝子標的の各系について実験的に決定される。RNA及び/又はタンパク質試料は、mRNA転写産物又はタンパク質のノックダウンをアッセイするためにバイオリアクター細胞の付加の約24〜72時間後に標的細胞からそれぞれ回収される。標的遺伝子のmRNAレベルは、RT−PCR、ノーザンブロット及び本技術分野において公知の他の方法を介して測定され得る。標的遺伝子のタンパク質レベルは、公知の方法、例えばウエスタンブロット及び免疫沈降を用いて測定され得る。
バイオリアクター細胞は、本発明の発現ベクターの内の1つ又は複数を投与することによって作製され得る。一実施形態において、本発明は、本明細書において提供される発現ベクター及びそれらの組成物のいずれかを含むバイオリアクター細胞を提供する。一実施形態において、本発明は、生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列と、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列とを含む発現ベクターを含む細胞を提供する。
一実施形態において、本発明は、生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターとを含む細胞を提供する。
一実施形態において、本発明は、生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、並びに1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする更なるポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを含む細胞を提供する。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列とRNA認識配列とを含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
一実施形態において、本発明は、生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、RNA結合ドメイン配列及び輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、ウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列、並びに1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)(例えば、ダイサー及び/又はドローシャ遺伝子標的)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする更なるポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターとを含む細胞を提供する。
一実施形態において、本発明は、生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターとを含む細胞を提供する。
一実施形態において、本発明は、生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと、RNA結合ドメイン配列及び1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターとを含む細胞を提供する。一実施形態において、細胞は、第1発現ベクター中における生物活性RNAの遺伝子標的(単数又は複数)と異なる1つ又は複数の遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む第3発現ベクターを更に含む。一実施形態において、第3発現ベクターは、1つ又は複数の遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列とRNA認識配列とを含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む。別の一実施形態において、第1発現ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、第3発現ベクターは、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む。
本明細書に記載されるバイオリアクター細胞は、とりわけ、標的細胞に生物活性RNAを送達するために使用され得る。一実施形態において、標的細胞に生物活性RNAを送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン、並びに細胞貫通ドメイン、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム解放ドメイン、融合ペプチド及び受容体結合ドメインから選択される1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むRNA−タンパク質複合体をコードする発現ベクターを調製するステップ、(b)培養細胞にステップ(a)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(c)ステップ(b)の培養細胞を回収するステップ、(d)RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を決定するために(c)の細胞を試験するステップ、並びに(e)他の培養細胞からバイオリアクター細胞を単離するステップ、並びに(f)1つ又は複数の標的細胞とステップ(e)における単離したバイオリアクター細胞とを混合して、標的細胞に生物活性RNAを送達するステップを含む。一実施形態において、(f)の標的細胞は、細胞培養における標的細胞である。一実施形態において、(f)の標的細胞は、哺乳動物が含まれる生物から抽出された標的細胞である。一実施形態において、哺乳動物は、ヒトである。発現ベクターは、本明細書に記載されるいずれの発現ベクターであってもよい。RNA−タンパク質複合体は、本明細書に記載されるいずれのRNA−タンパク質複合体であってもよい。一実施形態において、RNA−タンパク質複合体の生物活性RNAは、shRNAである。別の一実施形態において、RNA−タンパク質複合体の生物活性RNAは、アプタマーである。一実施形態において、ステップ(b)の細胞に、発現ベクターを安定にトランスフェクトする。方法のある種の実施形態において、ステップ(a)の発現ベクターは、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列とRNA認識配列とを含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
別の一実施形態において、標的細胞に生物活性RNAを送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及び(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、(e)RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を決定するために(d)の細胞を試験するステップ、及び(f)他の培養細胞からバイオリアクター細胞を単離するステップ、及び(g)1つ又は複数の標的細胞とステップ(f)における単離したバイオリアクター細胞とを混合して、標的細胞に生物活性RNAを送達するステップを含む。一実施形態において、(g)の標的細胞は、細胞培養における標的細胞である。一実施形態において、(g)の標的細胞は、哺乳動物が含まれる生物から抽出された標的細胞である。一実施形態において、哺乳動物は、ヒトである。一実施形態において、ステップ(c)の細胞に、発現ベクターを安定にトランスフェクトする。
方法のある種の実施形態において、ステップ(a)の発現ベクターは、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列とRNA認識配列とを含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
別の一実施形態において、標的細胞に生物活性RNAを送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNAを含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及び(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、(e)RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を決定するために(d)の細胞を試験するステップ、及び(f)他の培養細胞からバイオリアクター細胞を単離するステップ、及び(g)1つ又は複数の標的細胞とステップ(f)における単離したバイオリアクター細胞とを混合して、標的細胞に生物活性RNAを送達するステップを含む。一実施形態において、(g)の標的細胞は、細胞培養における標的細胞である。一実施形態において、(g)の標的細胞は、哺乳動物が含まれる生物から抽出された標的細胞である。一実施形態において、哺乳動物は、ヒトである。一実施形態において、ステップ(c)の細胞に、発現ベクターを安定にトランスフェクトする。
別の一実施形態において、標的細胞に生物活性RNAを送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及び(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、(e)RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を決定するために(d)の細胞を試験するステップ、及び(f)他の培養細胞からバイオリアクター細胞を単離するステップ、及び(g)1つ又は複数の標的細胞とステップ(f)における単離したバイオリアクター細胞とを混合して、標的細胞に生物活性RNAを送達するステップを含む。一実施形態において、(g)の標的細胞は、細胞培養における標的細胞である。一実施形態において、(g)の標的細胞は、哺乳動物が含まれる生物から抽出された標的細胞である。一実施形態において、哺乳動物は、ヒトである。一実施形態において、ステップ(c)の細胞に、発現ベクターを安定にトランスフェクトする。
別の一実施形態において、方法は、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む第3発現ベクターを調製し、投与することを含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列とRNA認識配列とを含む核酸をコードする。別の一実施形態において、第1ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
本発明はまた、標的細胞への生物活性RNAの送達のためのエクスビボでのバイオリアクター細胞の使用方法をも提供する。一実施形態において、エクスビボで標的細胞に生物活性RNAを送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の標的ペプチド配列を含むRNA−タンパク質複合体をコードする発現ベクターを調製するステップ、(b)培養細胞にステップ(a)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(c)ステップ(b)の培養細胞を回収するステップ、(d)対象から標的細胞を得るステップ、(e)ステップ(d)において得られた1つ又は複数の標的細胞とステップ(c)において回収された培養細胞(単数又は複数)とを混合して、標的細胞に生物活性RNAを送達するステップを含む。一実施形態において、方法は、(f)対象にステップ(e)における細胞を投与するステップを更に含む。一実施形態において、方法は、バイオリアクター細胞を標的細胞から分離した後、標的細胞を対象に投与するステップを更に含む。一実施形態において、ステップ(f)の対象は、標的細胞を得たステップ(d)における対象と同じ対象である。別の一実施形態において、ステップ(f)の対象は、標的細胞を得たステップ(d)における対象とは異なる対象である。方法のある種の実施形態において、ステップ(a)の発現ベクターは、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列とRNA認識配列とを含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
別の一実施形態において、標的細胞に生物活性RNAを送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルスの複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及び(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、(e)対象から標的細胞を得るステップ、(f)ステップ(e)において得られた1つ又は複数の標的細胞とステップ(d)において回収された培養細胞(単数又は複数)とを混合して、標的細胞に生物活性RNAを送達するステップを含む。一実施形態において、方法は、(g)対象にステップ(d)における細胞を投与するステップを更に含む。一実施形態において、方法は、バイオリアクター細胞を標的細胞から分離した後、標的細胞を対象に投与するステップを更に含む。一実施形態において、ステップ(g)の対象は、標的細胞を得たステップ(e)における対象と同じ対象である。別の一実施形態において、ステップ(g)の対象は、標的細胞を得たステップ(e)における対象とは異なる対象である。
方法のある種の実施形態において、ステップ(a)の発現ベクターは、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列とRNA認識配列とを含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
別の一実施形態において、標的細胞に生物活性RNAを送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNAを含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及び(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、(e)対象から標的細胞を得るステップ、(f)ステップ(e)において得られた1つ又は複数の標的細胞とステップ(d)において回収された培養細胞(単数又は複数)とを混合して、標的細胞に生物活性RNAを送達するステップを含む。一実施形態において、方法は、(g)対象にステップ(d)における細胞を投与するステップを更に含む。一実施形態において、方法は、バイオリアクター細胞を標的細胞から分離した後、標的細胞を対象に投与するステップを更に含む。一実施形態において、ステップ(g)の対象は、標的細胞を得たステップ(e)における対象と同じ対象である。別の一実施形態において、ステップ(g)の対象は、標的細胞を得たステップ(e)における対象とは異なる対象である。
別の一実施形態において、標的細胞に生物活性RNAを送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及び(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、(e)対象から標的細胞を得るステップ、(f)ステップ(e)において得られた1つ又は複数の標的細胞とステップ(d)において回収された培養細胞(単数又は複数)とを混合して、標的細胞に生物活性RNAを送達するステップを含む。一実施形態において、方法は、(g)対象にステップ(d)における細胞を投与するステップを更に含む。一実施形態において、方法は、バイオリアクター細胞を標的細胞から分離した後、標的細胞を対象に投与するステップを更に含む。一実施形態において、ステップ(g)の対象は、標的細胞を得たステップ(e)における対象と同じ対象である。別の一実施形態において、ステップ(g)の対象は、標的細胞を得たステップ(e)における対象とは異なる対象である。
上記の方法のいずれかにおいて、方法は、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を決定するために(c)又は(d)の細胞を試験するステップ、及び他の培養細胞からバイオリアクター細胞を単離した後、対象から標的細胞を得るステップを更に含むことができる。
これらの方法のいずれかにおいて、ステップの対象は、ヒトが含まれる哺乳動物である。本明細書に記載されるエクスビボでの方法のいずれかにおいて、標的細胞が得られる対象及び細胞が投与される対象は、例えばヒト対象が含まれる哺乳動物対象である。発現ベクターは、本明細書に記載される発現ベクターのいずれかであってよい。RNA−タンパク質複合体は、本明細書に記載されるRNA−タンパク質複合体のいずれかであってよい。一実施形態において、RNA−タンパク質複合体の生物活性RNAは、shRNAである。別の一実施形態におい、RNA−タンパク質複合体の生物活性RNAは、アプタマーである。一実施形態において、発現ベクターによってコードされるRNA−タンパク質複合体は、非古典的分泌ドメイン配列を含む。別の一実施形態において、発現ベクターによってコードされるRNA−タンパク質複合体は、細胞貫通ペプチドを含む。別の一実施形態において、発現ベクターによってコードされるRNA−タンパク質複合体は、細胞貫通ペプチド及び非古典的分泌ドメインを含む。一実施形態において、ステップ(b)又はステップ(c)の細胞に、発現ベクターを安定にトランスフェクトする。
本発明はまた、標的細胞及び/又は組織への生物活性RNAの送達のためのインビボでのバイオリアクター細胞の使用方法をも提供する。一実施形態において、インビボで標的細胞に生物活性RNAを送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列(即ち、細胞貫通ドメイン、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、融合ペプチド及び受容体結合ドメインから選択される)を含むRNA−タンパク質複合体をコードする発現ベクターを調製するステップ、(b)培養細胞にステップ(a)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(c)ステップ(b)の培養細胞を回収するステップ、(d)対象にステップ(c)における細胞を投与するステップを含む。一実施形態において、ステップ(d)の対象は、哺乳動物である。一実施形態において、哺乳動物は、ヒト対象である。
方法のある種の実施形態において、ステップ(a)の発現ベクターは、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列とRNA認識配列とを含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
本発明はまた、標的細胞及び/又は組織への生物活性RNAの送達のためのインビボでのバイオリアクター細胞の使用方法をも提供する。一実施形態において、インビボで標的細胞に生物活性RNAを送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含むRNA−タンパク質複合体をコードする発現ベクターを調製するステップ、(b)1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及びステップ(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、(e)対象にステップ(d)における細胞を投与するステップを含む。一実施形態において、ステップ(e)の対象は、哺乳動物である。一実施形態において、哺乳動物は、ヒト対象である。
方法のある種の実施形態において、ステップ(a)の発現ベクターは、1つ又は複数の更なる遺伝子標的(単数又は複数)をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を更に含む。一実施形態において、更なるポリヌクレオチド配列は、更なる遺伝子標的をターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列とRNA認識配列とを含む核酸をコードする。別の一実施形態において、ベクター中における生物活性RNA配列の内の1つが、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)又は短鎖ヘアピンRNA(shRNA)である場合、更なるポリヌクレオチド配列は、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードする。
本発明はまた、標的細胞及び/又は組織への生物活性RNAの送達のためのインビボでのバイオリアクター細胞の使用方法をも提供する。一実施形態において、インビボで標的細胞に生物活性RNAを送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNAを含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及び(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、(e)対象にステップ(d)における細胞を投与するステップを含む。一実施形態において、ステップ(e)の対象は、哺乳動物である。一実施形態において、哺乳動物は、ヒト対象である。
本発明はまた、標的細胞及び/又は組織への生物活性RNAの送達のためのインビボでのバイオリアクター細胞の使用方法をも提供する。一実施形態において、インビボで標的細胞に生物活性RNAを送達する方法は、(a)1つ又は複数の生物活性RNA、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(b)RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターを調製するステップ、(c)培養細胞にステップ(a)の発現ベクター及び(b)の発現ベクターを投与して、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を作製するステップ、(d)ステップ(c)の培養細胞を回収するステップ、(e)対象にステップ(d)における細胞を投与するステップを含む。一実施形態において、ステップ(e)の対象は、哺乳動物である。一実施形態において、哺乳動物は、ヒト対象である。
上記の方法のいずれかにおいて、方法は、RNA−タンパク質複合体を発現するバイオリアクター細胞を決定するために(c)又は(d)の細胞を試験するステップ、及び他の培養細胞からバイオリアクター細胞を単離した後、対象に細胞を投与するステップを更に含むことができる。一実施形態において、対象は、哺乳動物である。一実施形態において、哺乳動物は、ヒト対象である。
治療方法
一実施形態において、本発明は、本発明の発現ベクターを対象に投与することを含む、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する方法を提供する。本明細書に記載される発現ベクターのいずれかを、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療するための方法において使用することができる。
一実施形態において、本発明は、標的遺伝子に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド、並びにRNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列(即ち、細胞貫通ペプチド配列、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン及び受容体結合ドメインから選択される)を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを対象に投与することを含む、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する方法を提供する。一実施形態において、発現ベクターは、標的遺伝子(単数又は複数)に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、場合によって認識RNA結合ドメイン及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む更なる核酸をコードするポリヌクレオチドを更に含む。一実施形態において、更なる核酸の標的遺伝子(単数又は複数)は、ダイサー及び/又はドローシャから選択される。
一実施形態において、本発明は、標的遺伝子に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド、並びにRNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターとを対象に投与することを含む、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する方法を提供する。一実施形態において、発現ベクターは、標的遺伝子(単数又は複数)に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、場合によって認識RNA結合ドメイン及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む更なる核酸をコードするポリヌクレオチドを更に含む。一実施形態において、更なる核酸の標的遺伝子(単数又は複数)は、ダイサー及び/又はドローシャから選択される。
一実施形態において、本発明は、標的遺伝子に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターとを対象に投与することを含む、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する方法を提供する。
一実施形態において、本発明は、標的遺伝子に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードする第1発現ベクターと、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列(即ち、細胞貫通ペプチド配列、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン及び受容体結合ドメインから選択される)を含むポリペプチドをコードする第2発現ベクターとを対象に投与することを含む、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する方法を提供する。一実施形態において、方法は、標的遺伝子(単数又は複数)に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、場合によって認識RNA結合ドメイン及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードする第3発現ベクターを対象に投与することを更に含む。一実施形態において、第2核酸の標的遺伝子(単数又は複数)は、ダイサー及び/又はドローシャから選択される。
上記の方法のいずれかにおいて、発現ベクターは、発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む組成物として投与され得る。
本発明は、本発明の1つ又は複数のバイオリアクター細胞を対象に投与することを含む、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する方法を更に提供する。一実施形態において、本発明は、本発明の1つ又は複数のバイオリアクター細胞と、限定されるものではないが、リン酸緩衝食塩水、生理食塩水又は5%デキストロースが含まれる医薬的に許容し得る担体とを含む組成物を対象に投与することを含む、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する方法を提供する。バイオリアクター細胞(単数又は複数)は、本明細書に記載される本発明のバイオリアクター細胞(単数又は複数)のいずれかであってよい。一実施形態において、バイオリアクター細胞は、標的遺伝子に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン配列、並びに細胞貫通ペプチド配列、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン及び融合ペプチドから選択される1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むRNA−タンパク質複合体をコードする。
別の一実施形態において、本発明は、1つ又は複数のバイオリアクター細胞と、限定されるものではないが、リン酸緩衝食塩水、生理食塩水又は5%デキストロースが含まれる医薬的に許容し得る担体とを含む組成物を対象に投与することを含む、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する方法であって、バイオリアクター細胞(単数又は複数)が、標的遺伝子(単数又は複数)に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン配列、細胞貫通ペプチド配列、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメインから選択される1つ又は複数の輸送ペプチド配列を含むRNA−タンパク質複合体を産生し、分泌し、ダイサー及び/又はドローシャに向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列を含むRNAを更に産生する、上記方法を提供する。
欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する上記方法のいずれかにおいて、適切な遺伝子ターゲッティングしては、Mmp2、血管内皮成長因子(VEGF)、血管内皮成長因子受容体(VEGFR)、Cav−1、上皮成長因子受容体(EGFR)、H−Ras、Bcl−2、スルビビン、FAK、STAT−3、HER−3、ベータ−カテニン及びSrcが挙げられる。
したがって、一実施形態において、本発明は、1つ又は複数の発現ベクターと医薬的に許容し得る担体とを含む組成物を対象に投与することを含む、対象における欠損標的遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する方法であって、発現ベクター(単数又は複数)が、標的遺伝子に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン配列、並びに細胞貫通ペプチド配列、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン及び融合ペプチドから選択される1つ又は複数の配列を含むRNA−タンパク質複合体をコードする、上記方法を提供する。例示的な標的遺伝子としては、Mmp2、血管内皮成長因子(VEGF)、血管内皮成長因子受容体(VEGFR)、Cav−1、上皮成長因子受容体(EGFR)、H−Ras、Bcl−2、スルビビン、FAK、STAT−3、HER−3、ベータ−カテニン及びSrcが挙げられる。
別の一実施形態において、本発明は、1つ又は複数のバイオリアクター細胞と医薬的に許容し得る担体とを含む組成物を対象に投与することを含む、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療する方法であって、欠損遺伝子発現及び/又は活性が、欠損Mmp2、血管内皮成長因子(VEGF)、血管内皮成長因子受容体(VEGFR)、Cav−1、上皮成長因子受容体(EGFR)、H−Ras、Bcl−2、スルビビン、FAK、STAT−3、HER−3、ベータ−カテニン及びSrc発現及び/又は活性から選択され、バイオリアクター細胞(単数又は複数)が、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン配列、及び細胞貫通ペプチド配列、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメインから選択される1つ又は複数の配列を含むRNA−タンパク質複合体を産生し、分泌し、生物活性RNA(単数又は複数)が、Mmp2、血管内皮成長因子(VEGF)、血管内皮成長因子受容体(VEGFR)、Cav−1、上皮成長因子受容体(EGFR)、H−Ras、Bcl−2、スルビビン、FAK、STAT−3、HER−3、ベータ−カテニン及びSrcから選択される遺伝子(単数又は複数)に向けられ、生物活性RNA(単数又は複数)が、欠損発現及び/又は活性を有する遺伝子(単数又は複数)をターゲッティングする、上記方法を提供する。
本発明のポリヌクレオチド及びポリペプチド
本発明は、細胞への生物活性RNAの送達のための核酸分子、ポリペプチド、RNA−タンパク質複合体及びそれらを含む発現ベクターの産生に有用な新規なポリヌクレオチドを提供する。一実施形態において、本発明は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードする単離されたポリヌクレオチドを提供する。特定の一実施形態において、単離されたポリヌクレオチドは、1つ又は複数の短鎖ヘアピンRNA、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードする。別の一実施形態において、単離されたポリヌクレオチドは、1つ又は複数のアプタマー、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードする。別の一実施形態において、単離されたポリヌクレオチドは、1つ又は複数のリボザイム、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードする。別の一実施形態において、単離されたポリヌクレオチドは、1つ又は複数のアンチセンス核酸、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸分子をコードする。更に、本発明は、ダイサーをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸分子をコードする単離されたポリヌクレオチド、例えば配列番号49を含むポリヌクレオチドを提供する。
更に、本発明は、上記の核酸配列の認識RNA配列と結合するアミノ酸配列(RNA結合ドメイン)と、細胞からの上記の生物活性RNAの輸送及び分泌を促進するアミノ酸配列(輸送ペプチド)とを含む新規な融合タンパク質を提供する。したがって、一実施形態において、融合タンパク質は、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチドを含む。融合ポリペプチドの輸送ペプチドは、細胞外マトリックス並びに/又は隣接する細胞及び組織への核酸、ペプチド、融合タンパク質、RNA−タンパク質複合体及び/又は他の生体分子の送達を促進するいずれのアミノ酸配列であってもよい。
本発明はまた、本明細書に記載されるポリペプチド分子のいずれかをコードする単離されたポリヌクレオチドを提供する。一実施形態において、本発明は、RNA結合ドメインのアミノ酸配列を含むポリペプチドと、例えば非古典的分泌ドメイン、細胞貫通ペプチド、受容体結合ドメイン、エンドソーム放出ドメイン及び融合ペプチドから選択される1つ又は複数の輸送ペプチド配列のアミノ酸配列を含むポリペプチドとをコードする単離されたポリヌクレオチドを提供する。
本発明の核酸又はポリペプチドをコードする単離されたポリヌクレオチドの上記実施形態のいずれかにおいて、単離されたポリヌクレオチドは、個々の配列、ドメイン及びペプチドが、1つ若しくは複数のリンカー、スペーサー若しくは他の配列の付加なしで直接結合するか又は1つ若しくは複数のリンカー、スペーサー及び/若しくは他の配列の付加と共に結合する配列を含むことができる。
本発明はまた、本セクション及び本出願における他の場所に記載されるポリヌクレオチドのいずれかの相補配列をも提供する。本明細書において用いられる場合、「相補的」という用語は、ヌクレオチドの間、例えば、二本鎖ポリヌクレオチドの2本の鎖の間又はオリゴヌクレオチドプライマーと増幅若しくは配列決定すべき一本鎖ポリヌクレオチド上のプライマー結合部位との間のハイブリダイゼーション又は塩基対合を指す。2つの一本鎖ヌクレオチド分子は、適切なヌクレオチド挿入、欠失又は置換により最適にアラインメントされた一方の鎖のヌクレオチドが、他方の鎖のヌクレオチドの少なくとも約80%と対合する場合、相補的であると言われる。
本発明の「ポリヌクレオチド」としては、本明細書に記載されるポリヌクレオチド又はそれらの相補物のいずれかとストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下でハイブリダイズし得るそれらのポリヌクレオチドが挙げられる。「ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件」は、一般に、定義されたイオン強度及びpHにおける特異的配列に対する熱融解点(T)よりも約5℃低くなるように選択される。ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件の一例は、50%ホルムアミド、5×SSC(750mM NaCl、75mMクエン酸ナトリウム)、50mMリン酸ナトリウム(pH7.6)、5×デンハルト溶液、10%デキストラン硫酸及び20μg/mlの変性され、剪断されたサケ精子DNAを含む溶液中における42℃での終夜のインキュベーションの後、約65℃の0.1×SSC中においてフィルターを洗浄することである。
本発明はまた、本発明のポリヌクレオチドのいずれかとそれらの全長に亘って少なくとも80%の同一性、例えば、少なくとも85%、少なくとも90%の同一性、少なくとも95%の同一性、少なくとも98%の同一性及び少なくとも99%の同一性を有するヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドにも関する。したがって、ある種の特定の実施形態において、本発明は、配列番号1〜15から選択される1つ又は複数の配列と配列番号16〜23から選択される配列とを含む核酸分子をコードするポリヌクレオチドとその全長に亘って少なくとも80%の同一性(即ち、少なくとも85%、90%、95%、98%又は99%の同一性)を有するヌクレオチド配列を含む単離されたポリヌクレオチドを提供する。
一実施形態において、本発明は、配列番号24〜31から選択されるアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとその全長に亘って少なくとも80%(即ち、少なくとも85%、90%、95%、98%又は99%の同一性)の同一性を有するヌクレオチド配列を含む単離されたポリヌクレオチドを提供する。別の一実施形態において、本発明は、配列番号24〜31から選択されるアミノ酸配列と配列番号32〜40から選択される配列とを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとその全長に亘って少なくとも80%の同一性を有するヌクレオチド配列を含む単離されたポリヌクレオチドを提供する。別の一実施形態において、本発明は、配列番号50〜54から選択されるアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとその全長に亘って少なくとも80%の同一性を有するヌクレオチド配列を含む単離されたポリヌクレオチドを提供する。別の一実施形態において、本発明は、配列番号24〜31から選択されるアミノ酸配列と配列番号41〜48から選択される配列とを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとその全長に亘って少なくとも80%の同一性を有するヌクレオチド配列を含む単離されたポリヌクレオチドを提供する。別の一実施形態において、本発明は、配列番号24〜31から選択されるアミノ酸配列と配列番号32〜40から選択される配列と配列番号41〜48から選択される配列とを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとその全長に亘って少なくとも80%の同一性を有するヌクレオチド配列を含む単離されたポリヌクレオチドを提供する。
本発明はまた、ポリヌクレオチド及びポリペプチド変異体にも関する。「ポリヌクレオチド変異体」は、本発明のポリヌクレオチドと異なるが、その不可欠な特性を保持するポリヌクレオチドを指す。同様に、「ポリペプチド変異体」は、本発明のポリペプチドと異なるが、その不可欠な特性を保持するポリペプチドを指す。ある種の実施形態において、本発明は、配列番号1〜23から選択される配列のポリヌクレオチド変異体を提供する。ある種の実施形態において、本発明は、配列番号24〜54から選択される配列のポリペプチド変異体をコードするポリヌクレオチドを提供する。
変異体としては、限定されるものではないが、スプライス変異体及び対立遺伝子変異体、並びに付加、欠失、トランケーション及び置換変異体が挙げられる。「対立遺伝子変異体」は、生物の染色体上の所定の遺伝子座を占める遺伝子の幾つかの代替形態の内の1つを指す天然に存在する変異体である。(Genes II、Lewin,B.編、John Wiley & Sons、New York(1985)。)これらの対立遺伝子の変異体は、ポリヌクレオチド及び/又はポリペプチドレベルのいずれかで変化し得る。別の場合、天然に存在しない変異体は、突然変異誘発技術によって又は直接合成によって作製され得る。
変異体としては、「保存的アミノ酸置換」を有する配列を挙げることができ、その用語は、その位置におけるアミノ酸残基の極性又は電荷に対する効果がほとんどないような非ネイティブ残基を有するネイティブアミノ酸残基の置換を指す。例えば、保存的置換は、他のいずれかの無極性残基によるポリペプチド中における無極性残基の置換から生じる。保存的置換の別の例は、別の酸性残基による酸性残基の置換である。また、変異体としては、「オルソログ」を挙げることもでき、その用語は、異なる種から同定されるポリペプチドに対応するポリペプチドを指す。
特定の一実施形態において、輸送ポリペプチドは、ネイティブ輸送ポリペプチドの生物活性が実質的に減少しないように1つ又は複数の置換、欠失、トランケーション、付加及び/又は挿入を含む。換言すれば、輸送ポリペプチド変異体の生物活性は、ネイティブタンパク質に対して50%未満、好ましくは20%未満減少してよい。
好ましくは、輸送ポリペプチド変異体は、保存的置換を含む。「保存的置換」は、ペプチド化学の当業者によってポリペプチドの2次構造及び疎水性親水性が実質的に不変であると期待されるように同様の特性を有する別のアミノ酸をアミノ酸と置換したものである。アミノ酸置換は、一般に、残基の極性、電荷、溶解性、疎水性、親水性及び/又は両親媒性における類似性に基づいて行われ得る。例えば、負に荷電したアミノ酸としては、アスパラギン酸及びグルタミン酸が挙げられ、正に荷電したアミノ酸としては、リシン及びアルギニンが挙げられ、同様の親水性値を有する非荷電性極性頭部基を有するアミノ酸としては、ロイシン、イソロイシン及びバリン、グリシン及びアラニン、アスパラギン及びグルタミン、並びにセリン、スレオニン、フェニルアラニン及びチロシンが挙げられる。変異体は、又は別の場合、非保存的変化をも含む。特定の一実施形態において、変異体ポリペプチドは、アミノ酸の置換、欠失又は付加によってネイティブ配列と異なる。変異体は(又は別の場合)、例えば、ポリペプチドの生物活性、2次構造及び疎水性親水性に対してほとんど影響を及ぼさないアミノ酸の欠失又は付加によって修飾することもできる。
本発明は、生物学的試料から輸送ポリペプチド活性を有するポリペプチドをコードする核酸を単離するか又は回収するための方法であって、(a)対象となるポリペプチドをコードする核酸を増幅するための増幅プライマー配列対を提供するステップであって、前記プライマー対が本発明の核酸を増幅し得る、ステップ、(b)前記試料中における核酸が前記増幅プライマー対とのハイブリダイゼーションのために利用可能であるように生物学的試料から核酸を単離するか又は生物学的試料を処置するステップ、及び(c)ステップ(b)の核酸とステップ(a)の前記増幅プライマー対とを組み合わせて、生物学的試料から核酸を増幅することによって、生物学的試料から輸送ポリペプチド活性を有するポリペプチドをコードする核酸を単離するか又は回収するステップを含む上記方法を提供する。増幅プライマー配列対の1つ又は各メンバーは、本発明の配列の少なくとも約10〜50の連続した塩基を含むオリゴヌクレオチドを含むことができる。一態様において、生物学的試料は、細菌細胞、原生動物細胞、昆虫細胞、酵母細胞、植物細胞、真菌細胞又は哺乳動物細胞に由来し得る。
本発明は、輸送ポリペプチド活性を有する輸送ポリペプチドをコードする核酸の変異体を作製する方法であって、(a)本発明の核酸を含む鋳型核酸を提供するステップ、及び(b)鋳型配列中における1つ若しくは複数のヌクレオチド又はそれらの組合せを修飾するか、欠失させるか又は付加して、鋳型核酸の変異体を作製するステップを含む上記方法を提供する。一態様において、方法は、変異体輸送ポリペプチドポリペプチドを作製するために変異体核酸を発現することを更に含むことができる。修飾、付加又は欠失は、エラープローンPCR、シャフリング、オリゴヌクレオチド特異的突然変異誘発、アセンブリPCR、性的PCR突然変異誘発、インビボ突然変異誘発、カセット突然変異誘発、再帰的アンサンブル突然変異誘発、指数的アンサンブル突然変異誘発、部位特異的突然変異誘発、遺伝子再構築、遺伝子部位飽和突然変異誘発(GSSM)、合成ライゲーション再構築(SLR)又はそれらの組合せを含む方法によって導入され得る。別の一態様において、修飾、付加又は欠失は、組み換え、再帰的配列組み換え、ホスホチオエート修飾DNA突然変異誘発、ウラシル含有鋳型突然変異誘発、ギャップドデュプレックス突然変異誘発、点ミスマッチ修復突然変異誘発、修復欠損宿主株突然変異誘発、化学的突然変異誘発、放射線突然変異誘発、欠失突然変異誘発、制限−選択突然変異誘発、制限−精製突然変異誘発、人工遺伝子合成、アンサンブル突然変異誘発、キメラ核酸マルチマークリエーション及びそれらの組合せを含む方法によって導入される。
一態様において、方法は、鋳型核酸によってコードされるポリペプチドのものから改変されたか若しくは異なる活性又は改変されたか若しくは異なる安定性を有する輸送ポリペプチドが産生されるまで反復的に繰り返すことができる。一態様において、方法は、鋳型核酸のものから改変されたコドン利用を有する輸送タンパク質コード配列が産生されるまで反復的に繰り返すことができる。別の一態様において、方法は、鋳型核酸のものからより高い又はより低いレベルのメッセージ発現又は安定性を有する輸送タンパク質が産生されるまで反復的に繰り返すことができる。
本発明は、宿主細胞中におけるその発現を増大させる輸送タンパク質活性を有するポリペプチドをコードする核酸中におけるコドンを修飾するための方法であって、以下の、(a)輸送タンパク質活性を有するポリペプチドをコードする本発明の核酸を提供するステップ、及び(b)ステップ(a)の核酸中における好ましくないか又はあまり好ましくないコドンを同定し、置換されたコドンと同じアミノ酸をコードする好ましいか又は中立的に使用されるコドンとそれを置換するステップであって、好ましいコドンが、宿主細胞中における遺伝子中におけるコード配列中において過剰に現れるコドンであり、好ましくないか又はあまり好ましくないコドンが、宿主細胞中における遺伝子中におけるコード配列中において過少に現れるコドンであり、それによって核酸を修飾して宿主細胞中におけるその発現を増大させるステップを含む上記方法を提供する。
本発明は、輸送タンパク質活性を有するポリペプチドをコードする核酸中におけるコドンを修飾するための方法であって、以下の、(a)本発明の核酸を提供するステップ、及び(b)ステップ(a)の核酸のコドンを同定し、置換されたコドンと同じアミノ酸をコードする異なるコドンとそれを置換し、それによって輸送タンパク質をコードする核酸中におけるコドンを修飾するステップを含む上記方法を提供する。
本発明は、宿主細胞中におけるその発現を増大させる輸送タンパク質活性を有するポリペプチドをコードする核酸中におけるコドンを修飾するための方法であって、以下の、(a)輸送タンパク質ポリペプチドをコードする本発明の核酸を提供するステップ、及び(b)ステップ(a)の核酸中における好ましくないか又はあまり好ましくないコドンを同定し、置換されたコドンと同じアミノ酸をコードする好ましいか又は中立的に使用されるコドンとそれを置換するステップであって、好ましいコドンが、宿主細胞中における遺伝子中におけるコード配列中において過剰に現れるコドンであり、好ましくないか又はあまり好ましくないコドンが、宿主細胞中における遺伝子中におけるコード配列中において過少に現れるコドンであり、それによって核酸を修飾して宿主細胞中におけるその発現を増大させるステップを含む上記方法を提供する。
本発明は、宿主細胞中におけるその発現を低下させる輸送タンパク質活性を有するポリペプチドをコードする核酸中におけるコドンを修飾するための方法であって、以下の、(a)本発明の核酸を提供するステップ、及び(b)ステップ(a)の核酸中における少なくとも1つの好ましいコドンを同定し、置換されたコドンと同じアミノ酸をコードする好ましくないか又はあまり好ましくないコドンとそれを置換するステップであって、好ましいコドンが、宿主細胞中における遺伝子中におけるコード配列中において過剰に現れるコドンであり、好ましくないか又はあまり好ましくないコドンが、宿主細胞中における遺伝子中におけるコード配列中において過少に現れるコドンであり、それによって核酸を修飾して宿主細胞中におけるその発現を低下させるステップを含む上記方法を提供する。一態様において、宿主細胞は、細菌細胞、真菌細胞、昆虫細胞、酵母細胞、植物細胞又は哺乳動物細胞であり得る。
本発明は、複数の修飾輸送タンパク質活性部位又は基質結合部位をコードする核酸のライブラリーを作製するための方法であって、前記修飾活性部位又は基質結合部位が、第1活性部位又は第1基質結合部位をコードする配列を含む第1核酸から誘導され、以下の、(a)第1核酸配列が、本発明の核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする配列を含み、核酸が、輸送タンパク質活性部位又は輸送タンパク質基質結合部位をコードする、第1活性部位又は第1基質結合部位をコードする第1核酸を提供するステップ、(b)第1核酸中における複数の標的コドンにおける天然に存在するアミノ酸変異体をコードする突然変異誘発性オリゴヌクレオチドのセットを提供するステップ、及び(c)突然変異誘発性オリゴヌクレオチドのセットを用いて、突然変異を起こした各アミノ酸コドンにおけるアミノ酸変異の範囲をコードする活性部位コード又は基質結合部位コード変異体核酸のセットを作製することによって、複数の修飾輸送タンパク質活性部位又は基質結合部位をコードする核酸のライブラリーを作製するステップを含む上記方法を提供する。一態様において、方法は、最適化特異的発生系、遺伝子部位飽和突然変異誘発(GSSM)、合成ライゲーション再構築(SLR)、エラープローンPCR、シャフリング、オリゴヌクレオチド特異的突然変異誘発、アセンブリPCR、性的なPCR突然変異誘発、インビボ突然変異誘発、カセット突然変異誘発、再帰的アンサンブル突然変異誘発、指数的アンサンブル突然変異誘発、部位特異的突然変異誘発、遺伝子再構築、遺伝子部位飽和突然変異誘発(GSSM)、合成ライゲーション再構築(SLR)及びそれらの組合せを含む方法によってステップ(a)の第1核酸に突然変異を起こさせることを含む。別の一態様において、方法は、組み換え、再帰的配列組み換え、ホスホチオエート修飾DNA突然変異誘発、ウラシル含有鋳型突然変異誘発、ギャップドデュプレックス突然変異誘発、点ミスマッチ修復突然変異誘発、修復欠損宿主株突然変異誘発、化学的突然変異誘発、放射線突然変異誘発、欠失突然変異誘発、制限−選択突然変異誘発、制限−精製突然変異誘発、人工遺伝子合成、アンサンブル突然変異誘発、キメラ核酸マルチマークリエーション及びそれらの組合せを含む方法によってステップ(a)の第1核酸又は変異体に突然変異を起こさせることを含む。
したがって、本発明は、記載された置換、欠失、トランケーション及び挿入変異体、並びに対立遺伝子変異体、スプライス変異体、断片、誘導体及びオルソログを含む本発明の核酸又はポリペプチドをコードするそれらのポリヌクレオチドを含む。したがって、本発明のポリヌクレオチド配列は、両方の天然に存在する配列並びに変異体型を含む。同様に、本発明のポリペプチドは、両方の天然に存在するタンパク質、並びに変異及びそれらの修飾型を包含する。かかる変異体は、所望の活性を有し続ける。本明細書に包含されるポリペプチド配列の欠失、挿入及び置換が、ポリペプチドの特性の根本的な変化を生じさせるとは考えられない。しかし、それを行う前の置換、欠失又は挿入の正確な効果を予測することが困難である場合、当業者は、通常のスクリーニングアッセイによって効果が評価されることを理解する。
発現ベクターの投与
本発明の発現ベクターは、例えば欠損標的遺伝子発現及び/又は活性に伴う障害の治療、予防及び/又は寛解において標的遺伝子発現を調節するように細胞及び/又は哺乳動物対象に投与される。
本発明の発現ベクター及びそれらの製剤は、局所又は全身投与によって送達され得、経口、局所、直腸を含む様々な経路によって、又は非経口、鼻腔内、皮内、動脈内、静脈内及び筋肉内の経路を介して、並びに患部組織への直接注入によって投与され得る。非経口という用語は、経皮、皮下、血管内、筋肉内並びに脊髄内注射又は注入技術等を含むものとする。発現ベクターは、脳に直接注射され得る。別の場合、前記ベクターは、脳及び脊髄の状態のために髄腔内で導入され得る。他の一例において、ベクターは、筋肉内で導入され得る。本発明のベクターの直接注入は、皮下、筋肉内又は皮内であるにせよ、標準的針及び注射器の方法を用いて、又は公知の無針技術によって行うことができる。CNS送達に対する伝統的なアプローチは、公知であり、例えば、髄腔内及び脳室内投与、カテーテル及びポンプの埋込み、傷害若しくは病変の部位における直接注入若しくは灌流、脳動脈系への注入、又は血液脳関門の化学的若しくは浸透性開放によるものが含まれる。本発明のベクター及びそれらの製剤は、肺内送達を介して、例えば、関連の肺組織中へのベクターの迅速な局所的取込みを提供する吸入装置又はネブライザによって投与されるエアゾル剤又は噴霧乾燥製剤の吸入によって投与され得る。本発明の組成物は、本技術分野において公知の通りの局所、皮膚又は経皮投与のための乳剤、ゲル剤、噴霧剤、油剤及び他の適切な組成物として製剤化し、使用することもできる。
投与頻度は、使用される製剤中における発現ベクターの薬物動態パラメータに依存する。典型的には、臨床医は、所望の効果を達成する用量に達するまでその組成物を投与する。したがって、その組成物は、時間に亘って(同一量の所望のベクターを含有してもしなくてもよい)単回投与として若しくは2回以上の投与として、又は埋込み装置若しくはカテーテルを介した連続注入として投与され得る。適切な用量の更なる改善は、当業者によって通常行われ、当業者によって通常実施される課題の範囲内である。したがって、本発明による発現ベクターの投与は、1回の投与で行われるか、又は、例えば、レシピエントの生理学的状態、投与の目的が治療的であるのか予防的であるのか、及び当業者に公知の他の要素に応じて、治療経過に亘って連続的若しくは間欠的に投与され得る。本発明の発現ベクターの投与は、予め選択された期間に亘って本質的に連続的であり得るか、又は一連の間隔を置いた投与においてあり得る。
加えるべきベクターの有効量は、実験的に決定され得る。投与の最も有効な手段及び用量を決定する方法は、当業者に周知であり、ベクター、標的細胞及び治療される対象によって変化する。例えば、投与すべき量は、限定されるものではないが、哺乳動物のRNA−タンパク質複合体、障害、体重、身体状態及び年齢、並びに達成すべきなのは予防なのか治療なのかが含まれる幾つかの因子に依存する。かかる因子は、動物モデル又は本技術分野において周知の他の試験系を用いて臨床医によって容易に決定され得る。例えば、適切な用量は、適切な用量反応データを用いることにより確認され得る。したがって、単回及び多回投与は、治療医によって選択される投与レベル及びパターンによって実施され得る。医薬的に有効な用量は、疾患状態の出現を予防し、阻害する又は疾患状態を治療する(症状を軽減する)ために必要なその用量である。一般に、上述のように、医薬的に有効な用量は、疾患の型、使用される組成物、投与経路、治療される哺乳動物の型、検討中の特定の哺乳動物の身体特性、併用薬、及び医学の当業者が認識する他の要素に依存する。一般に、0.1mg/kgから100mg/kg体重/日の間の量の活性成分が投与される。
エクスビボで本発明によるベクターの医薬組成物を使用することも望ましくあり得る。かかる例において、対象から摘出された細胞、組織又は器官をベクター医薬組成物に曝露し、その後、続いて、細胞、組織及び/又は器官を対象中に移植して戻す。
医薬組成物
本発明は、安定剤、緩衝剤、可溶化剤、乳化剤、保存剤及び/又は補助剤等、許容し得る担体中における本発明の1つ又は複数の発現ベクターを含む医薬組成物を提供する。好ましくは、許容し得る製剤材料は、用いられる用量及び濃度においてレシピエントに対して無毒性である。本発明のベクターは、医薬組成物を形成するための安定剤、緩衝剤等を有する又は有さない任意の標準的手段によって対象に投与され得る。薬理学的組成物又は製剤は、投与のために適切な形態、例えば全身又は局所投与で、例えばヒトが含まれる細胞又は対象中への本発明のベクターの有効な分布を可能にする組成物又は製剤を指す。適切な形態は、部分的に、例えば経口、経皮又は注射による投入の使用又は経路に依存する。かかる形態は、所望の活性のために最も適切な身体位置において投与されるべきであり、組成物又は製剤が標的細胞に到達することを妨げるべきでない。一実施形態において、医薬組成物は、治療上有効量、即ち、当該の疾患状態の症状を減少若しくは寛解させるために十分な量、又は所望の有益性を付与するために十分な量のRNA−タンパク質複合体を産生するために十分なベクターを含む。医薬組成物は、医薬的に許容し得る賦形剤、例えば、ソルビトール、Tween80及び液体、例えば、水、生理食塩水、グリセロール及びエタノールを含有することもできる。その中に、医薬的に許容し得る塩、例えば、鉱酸塩、例えば、塩酸塩、臭化水素酸塩、リン酸塩、硫酸塩等、及び有機酸の塩、例えば、酢酸塩、プロピオン酸塩、マロン酸塩、安息香酸塩等が含まれ得る。更に、かかるビヒクル中に、補助的物質、例えば、湿潤又は乳化剤、pH緩衝物質等が存在してよい。
ある種の実施形態において、医薬組成物は、例えば、組成物のpH、容量オスモル濃度、粘度、清澄度、色、等浸透圧、匂い、無菌性、安定性、溶解若しくは放出の速度、吸着又は浸透を修飾、維持又は保存するための製剤材料を含んでよい。かかる実施形態において、適切な製剤材料としては、限定されるものではないが、アミノ酸(例えば、グリシン、グルタミン、アスパラギン、アルギニン又はリシン)、抗菌剤、抗酸化剤(例えば、アスコルビン酸、亜硫酸ナトリウム又は亜硫酸水素ナトリウム)、緩衝剤(例えば、ボレート、バイカルボネート、トリス−hcl、シトレート、ホスフェート又は他の有機酸)、増量剤(例えば、マンニトール又はグリシン)、キレート剤(例えば、エチレンジアミン四酢酸(edta))、錯化剤(例えば、カフェイン、ポリビニルピロリドン、ベータ−シクロデキストリン又はヒドロキシプロピル−ベータ−シクロデキストリン)、充填剤、単糖、二糖及び他の炭水化物(例えば、グルコース、マンノース又はデキストリン)、タンパク質(例えば、血清アルブミン、ゼラチン又は免疫グロブリン)、着色、着香及び希釈剤、乳化剤、親水性ポリマー(例えば、ポリビニルピロリドン)、低分子量ポリペプチド、塩形成対イオン(例えば、ナトリウム)、保存剤(例えば、塩化ベンザルコニウム、安息香酸、サリチル酸、チメロサール、フェネチルアルコール、メチルパラベン、プロピルパラベン、クロルヘキシジン、ソルビン酸又は過酸化水素)、溶媒(例えば、グリセリン、プロピレングリコール又はポリエチレングリコール)、糖アルコール(例えば、マンニトール又はソルビトール)、懸濁化剤、界面活性剤又は湿潤剤(例えば、プルロニック、peg、ソルビタンエステル、ポリソルベート、例えば、ポリソルベート20、ポリソルベート80、triton、トロメタミン、レシチン、コレステロール、チロキサポール)、安定性増強剤(例えば、スクロース又はソルビトール)、張性増強剤(例えば、ハロゲン化アルカリ金属、好ましくは、塩化ナトリウム又は塩化カリウム、マンニトールソルビトール)、送達ビヒクル、希釈剤、賦形剤及び/又は医薬補助剤が挙げられる。REMINGTON’S PHARMACEUTICAL SCIENCES、第18版、(A.R.Gennaro編)、1990、Mack Publishing Companyを参照すること。
本発明の発現ベクター及びそれらの製剤は、従来の無毒性の医薬的に許容し得る担体、補助剤及び/又はビヒクルを含有する用量単位製剤中において、経口、局所、非経口、吸入若しくは噴霧により又は直腸投与され得る。経口的使用が意図される組成物は、医薬組成物の製造のための本技術分野に公知の任意の方法に従って調製することができ、かかる組成物は、美味な調製物を提供するために1種又は複数種のかかる甘味剤、着香剤、着色剤又は保存剤を含有することができる。
水性懸濁剤は、水性懸濁剤の製造のために適切な賦形剤との混合物中において活性材料を含有する。かかる賦形剤としては、例えば、懸濁化剤、例えば、ナトリウムカルボキシメチルセルロース、メチルセルロース、ヒドロプロピル−メチルセルロース、アルギン酸ナトリウム、ポリビニルピロリドン、トラガカントゴム及びアラビアゴムが挙げられ、分散又は湿潤剤は、天然に存在するリン脂質、例えば、レシチン、又はアルキレンオキシドと脂肪酸との縮合生成物、例えば、ポリオキシエチレンステアレート、又はエチレンオキシドと長鎖脂肪族アルコールとの縮合生成物、例えば、ヘプタデカエチレンオキシセタノール、又はエチレンオキシドと脂肪酸及びヘキシトールから誘導される部分エステルとの縮合生成物、例えば、ポリオキシエチレンソルビトールモノオレエート、又はエチレンオキシドと脂肪酸及び無水ヘキシトールから誘導される部分エステルとの縮合生成物、例えば、ポリエチレンソルビタンモノオレエートであり得る。水性懸濁剤はまた、1種又は複数種の保存剤、例えば、エチル又はn−プロピルp−ヒドロキシベンゾエート、1種又は複数種の着色剤、1種又は複数種の着香剤及び1種又は複数種の甘味剤、例えば、スクロース又はサッカリンを含有することもできる。
シロップ剤及びエリキシル剤を、甘味剤、例えば、グリセロール、プロピレングリコール、ソルビトール、グルコース又はスクロースと共に製剤化することができる。かかる製剤はまた、粘滑剤、保存剤、並びに着香及び着色剤を含有することもできる。医薬組成物は、無菌注射用水性又は油性懸濁剤の形態であってよい。この懸濁剤は、上述したそれらの適切な分散又は湿潤剤及び懸濁化剤を用いる公知の技術に従って製剤化され得る。無菌注射用製剤は、無毒性の非経口的に許容し得る希釈剤又は溶媒中における無菌注射用溶液又は懸濁液であってもよく、例えば、1,3−ブタンジオール中における溶液としてあってもよい。用いることができる許容し得るビヒクル及び溶媒の中では、水、リンガー溶液及び等張食塩液がある。更に、溶媒又は懸濁媒として無菌固定油が従来用いられる。この目的のために、合成モノ−又はジグリセリドが含まれる任意の滅菌固定油を用いることができる。更に、オレイン酸等の脂肪酸が、注射剤の調製において使用される。
遺伝子発現の調節方法
本発明の発現ベクター及び本発明のバイオリアクターをインビトロ、エクスビボ及びインビボで使用して、対象となる標的遺伝子の発現を調節することができる。本発明は、細胞外マトリックス並びに/又は隣接する細胞及び組織に生物活性RNA分子(単数又は複数)を送達し得る、対象となる1つ又は複数の遺伝子をターゲッティングする少なくとも1つの生物活性RNA分子及び融合タンパク質を含むRNA−タンパク質複合体を産生するように設計された発現ベクターを提供する。インビボ、エクスビボ及びインビトロでの細胞への発現ベクターの投与は、RNA−タンパク質複合体として分泌される生物活性RNA分子を産生し、細胞外マトリックス及び/又は他の隣接する細胞に送達する「バイオリアクター」に細胞を転化させる。
本発明は、本発明の1つ又は複数の発現ベクター又はその組成物(単数又は複数)を対象に投与することを含む、対象における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法を提供する。一実施形態において、対象における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法は、生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド、並びにRNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド(即ち、細胞貫通ペプチド配列、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン及び融合ペプチドから選択される配列)を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを対象に投与することを含む。一実施形態において、発現ベクターは、更なる核酸の標的遺伝子(単数又は複数)が第1核酸の標的遺伝子と異なる、標的遺伝子(単数又は複数)に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、場合によって認識RNA結合ドメイン及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む更なる核酸を含む。一実施形態において、標的遺伝子は、ダイサー及び/又はドローシャから選択される。
一実施形態において、対象における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターとを対象に投与することを含む。一実施形態において、発現ベクターは、更なる核酸の標的遺伝子(単数又は複数)が第1核酸の標的遺伝子と異なる、標的遺伝子(単数又は複数)に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、場合によって認識RNA結合ドメイン及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む更なる核酸を含む。一実施形態において、標的遺伝子は、ダイサー及び/又はドローシャから選択される。
一実施形態において、対象における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法は、1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む核酸をコードするポリヌクレオチド配列、並びにウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターと、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を含む発現ベクターとを対象に投与することを含む。
別の一実施形態において、対象における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法は、標的遺伝子に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードする第1発現ベクターと、RNA結合ドメイン及び1つ又は複数の輸送ペプチド配列(即ち、細胞貫通ペプチド配列、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン及び融合ペプチドから選択される)を含むポリペプチドをコードする第2発現ベクターとを、又は両発現ベクターを含む組成物(単数又は複数)を対象に投与することを含む。方法は、標的遺伝子(単数又は複数)がダイサー及び/又はドローシャから選択される、標的遺伝子(単数又は複数)に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、場合によって認識RNA結合ドメイン及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードする更なる発現ベクターを対象に投与することを更に含むことができる。
本発明はまた、バイオリアクター細胞(単数又は複数)が、標的遺伝子に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン配列、1つ又は複数の輸送ペプチド(即ち、細胞貫通ペプチド配列、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン及び融合ペプチドから選択される配列)を含むRNA−タンパク質複合体を産生し、分泌する、本発明の1つ又は複数のバイオリアクター細胞又はその組成物を対象に投与することを含む、対象における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法をも提供する。
対象は、例えば、ヒト、齧歯動物、ネズミ、ウシ、イヌ、ネコ、ヒツジ、ウマ及びサル対象が含まれる哺乳動物対象であってよい。生物活性RNA配列は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物であってよく、認識RNA配列は、U1ループ、グループIIイントロン、NREステムループ、S1Aステムループ、バクテリオファージBoxBR、HIV Rev応答エレメント、AMVCP認識配列及びARE配列であってよく、RNA結合ドメインは、U1A、CRS1、CRM1、ヌクレオリンRBD12、hRBMY、バクテリオファージタンパク質N、HIV Rev、AMVCP及びトリステトラプロリン配列であってよく、細胞貫通ペプチドは、ペネトラチン、トランスポルタン、MAP、HIV TAT、Antp、Rev、FHVコートタンパク質、TP10及びpVEC配列であってよく、非古典的分泌ドメインは、Galcetin−1ペプチド、ガレクチン−3ペプチド、IL−1α、IL−1β、HASPB、HMGB1、FGF−1、FGF−2、IL−2シグナル、分泌トランスグルタミナーゼ、アネキシン−1、HIV TAT、ヘルペスVP22、チオレドキシン、ロダネーゼ及びプラスミノーゲンアクチベーターシグナルヌクレオチド配列であってよい。バイオリアクター細胞は、本明細書に記載されるバイオリアクター細胞のいずれかであってよい。
方法を用いて、対象における欠損遺伝子発現及び/又は活性に伴う疾患又は状態を予防し、寛解させ及び/又は治療することができる。適切な遺伝子ターゲッティングしては、例えば、Mmp2、血管内皮成長因子(VEGF)、血管内皮成長因子受容体(VEGFR)、Cav−1、上皮成長因子受容体(EGFR)、H−Ras、Bcl−2、スルビビン、FAK、STAT−3、HER−3、ベータ−カテニン及びSrcが挙げられる。これらの遺伝子の欠損発現に伴う障害は、表Vにおいて列挙される。
本発明はまた、エクスビボで標的細胞中における標的遺伝子の発現を調節するための方法をも提供する。一実施形態において、本発明は、本発明の1つ又は複数の発現ベクター又はその組成物(単数又は複数)をエクスビボで標的細胞に投与することを含む、エクスビボで標的細胞中における標的遺伝子の発現を調節するための方法を提供する。特定の一実施形態において、方法は、(a)対象から標的細胞を得るステップ、(b)発現ベクター(単数又は複数)が本発明のRNA−タンパク質複合体をコードする、ステップ(a)の標的細胞に本発明の1つ又は複数の発現ベクター(単数又は複数)と医薬的に許容し得る担体とを含む組成物を投与するステップ、及び(c)前記対象にステップ(b)における細胞を投与するステップを含む。別の一実施形態において、本発明は、本発明の1つ又は複数のバイオリアクター細胞又はその組成物をエクスビボで標的細胞に投与することを含む、エクスビボで標的細胞中における標的遺伝子の発現を調節するための方法であって、上記方法が、(a)対象から標的細胞を得るステップ、(b)バイオリアクター細胞(単数又は複数)が本発明のRNA−タンパク質複合体を産生し、分泌する、ステップ(a)の標的細胞に本発明の1つ又は複数のバイオリアクター細胞(単数又は複数)を投与するステップ、及び(c)前記対象にステップ(b)における細胞を投与するステップを含む、上記方法を提供する。
本発明はまた、培養細胞中における遺伝子発現を調節するための方法であって、本発明の1つ又は複数の発現ベクター又はその組成物(単数又は複数)を前記細胞に投与することを含む上記方法をも提供する。更に、本発明は、培養細胞中における1つ又は複数の標的遺伝子(単数又は複数)の発現を調節するための方法であって、前記細胞に本発明の1つ又は複数のバイオリアクター細胞又はその組成物を投与することを含む上記方法を提供する。
ウイルスに基づいた送達系のための作用機序
ウイルスに基づいたRNA送達系は、操作、複製可能又は複製欠損ウイルスを利用して、形質転換されたパッケージング細胞から標的細胞に生物活性RNAを送達する。この系は、インビトロで(Lund PEら、Pharm Res.2009年12月9日;Koerber JTら、Mol Ther.2008年10月;16(10):1703〜9;Cascante A、Gene Ther.2007年10月;14(20):1471〜80;Ring CJ.J Gen Virol.2002年3月;83(Pt3):491〜502;Parada Cら、Cancer Gene Ther.2003年2月;10(2):152〜60;Tiede Aら、Gene Ther.2003年10月;10(22):1917〜25;Lee YJ、Cancer Gene Ther.2001年6月;8(6):397〜404;Nestler Uら、Gene Ther.1997年11月;4(11):1270〜7)及びインビボで(Tseng JCら、Gene Ther.2009年2月;16(2):291〜6;Kikuchi Eら、Clin Cancer Res.2007年8月1日;13(15Pt1):4511〜8;Bourbeau Dら、Cancer Res.2007年4月1日;67(7):3387〜95;Hiraoka Kら、Cancer Res.2007年6月1日;67(11):5345〜53;Hiraoka Kら、Clin Cancer Res.2006年12月1日;12(23):7108〜16;Varghese Sら、Cancer Res.2007年10月1日;67(19):9371〜9;Varghese Sら、Clin Cancer Res.2006年5月1日;12(9):2919〜27;Qiao Jら、Gene Ther.2006年10月;13(20):1457〜70;Heinkelein Mら、Cancer Gene Ther.2005年12月;12(12):947〜53)ウイルス粒子が標的細胞の内部に核酸を効果的に送達するために有する能力を利用する。多くの研究は、siRNAのウイルスの送達系がインビトロ及びインビボで有効なRNAi応答をもたらすことを実証している(Anesti AMら、Nucleic Acids Res.2008年8月;36(14):e86;Gorbatyuk Mら、Vision Res.2007年4月;47(9):1202〜8;Scherr Mら、Nucleic Acids Res.2007;35(22):e149;Chen Wら、J Virol.2006年4月;80(7):3559〜66;Raoul Cら、Nat Med.2005年4月;11(4):423〜8;Bromberg−White JLら、J Virol.2004年5月;78(9):4914〜6;Scherr Mら、Cell Cycle.2003年5月〜6月;2(3):251〜7)。本発明は、哺乳動物細胞中へのトランスフェクションの際にウイルス粒子(又は偽ウイルス粒子)を産生する構築プラスミドベクター(pVir)を提供する。これらのウイルスは、ウイルス又は宿主発現機構によってそれらの阻害性配列の発現を可能にする部分的ウイルスゲノムの一部として対象となる生物活性RNA標的遺伝子を担持する。ウイルスパッケージング細胞を標的細胞又は組織に付加する場合、次いで、送達されたRNAは、各感染標的細胞の中の遺伝子発現を調節することができる。複製可能ウイルスについては、ウイルス複製がプロドラッグの付加によって阻害され得るように自殺遺伝子をウイルス配列に付加する。これによって、プロドラッグの使用が無制御なウイルス複製を阻止することが可能になる。複製欠損ウイルスについては、周辺組織への分布のためのパッケージング細胞中だけにウイルス粒子を産生し、パッケージされたウイルスゲノムは、生物活性RNAを含むが、ウイルス粒子形成のために必要な構造遺伝子を欠く。この配置は、ウイルスの無制御な複製を阻止する。この系は、高効率ウイルス感染効率及び複製機構を利用して、阻害性シグナルを送達し、増幅する。したがって、このアプローチは、我々のプラスミドに基づいたバイオリアクター送達系に対する直接の賛辞である。
ウイルスパッケージング細胞が送達系として機能するためには、ウイルス粒子は、生物学的シグナル(例えば、阻害性シグナル)をパッケージ且つ分布させなければならない。この生物学的シグナルは、生物学的RNA自体又は生物学的RNAをコードするDNA分子の形態をとることができる。したがって、ウイルスに基づいた送達系の構築のためのバックボーンベクターは、DNA及びRNAウイルスの両方を含み、前者は、発現のための適切なプロモーター及びターミネーターを含み、後者は、効率的なダイサー基質を提供する。RNAウイルスは、標的細胞の細胞質に(生物学的RNAを含む)部分的ウイルスゲノムを送達することだけが必要であるが、DNAウイルスは、DNA鋳型からの生物学的RNAの転写のための核へのDNAゲノムの送達を必要とする。細胞質の送達は、RNAウイルスによってより効率的であり得るのに対して、核送達は、複数の生物活性RNAが単一の鋳型分子から産生され得るので、更なる増幅のための機会を提供する。
ウイルスパッケージング細胞は、2つの非依存性ウイルスRNAをコードするプラスミド(一方がウイルス構造遺伝子をコードし、他方が非構造遺伝子及び生物活性RNA分子をコードする)によるレシピエント細胞のトランスフェクションによって作製される。両プラスミドの成功した同時トランスフェクションは、複製欠損ウイルス粒子を産生し得るパッケージング細胞を生じる。DNA又はRNAウイルスゲノムのパッケージングは、パッケージング細胞からの分泌及び標的細胞への移入等の天然のウイルスプロセスによって駆動される。一旦標的細胞の内部にあると、細胞機序は、特定の生物学的分子の同一性に応じて特異的な生物学的プロセスを引き継ぐ。この送達系は、標的細胞の遺伝子発現を調節するために作用する本明細書に記載の生物活性RNAのいずれかを収容することができる。
ウイルスに基づいた送達は、pVirプラスミドによる初期トランスフェクションが生物活性RNAのための発現カセットと融合タンパク質のための発現カセットとの両方を担持するウイルスの産生をもたらすようにDNAウイルスにおけるタンパク質に基づいた送達と組み合わせることができる。この態様において、ウイルスパッケージング細胞から放出されたウイルスは、一次標的細胞に感染し、それらをタンパク質系バイオリアクター細胞に形質転換する。次いで、これらのバイオリアクター細胞は、二次標的細胞への分泌及び分布のための融合タンパク質及び生物活性RNAの両方を産生する。生物活性RNA及び融合タンパク質のための発現カセットは、本明細書に記載される発現カセットのいずれかであってよい。
ウイルスバックボーン
DNA及びRNAウイルスの両方は、阻害性シグナルのための可能な担体として利用される。多くの一般的に用いられるウイルスベクターは、この種の適用のために適切であり、上記の通りのインビトロ及びインビボの適用において特徴づけられている。特定のウイルス系の適用は、所望の標的細胞に依存し、過剰発現したラミニン受容体との特異的相互作用によるシンドビスウイルス粒子の腫瘍特異的送達(Tseng JCら、Gene Ther.2009年2月;16(2):291〜6;Tseng JCら、J Natl Cancer Inst.2002;94:1790〜1802)から、フォーミーウイルス粒子と同様の組織の広域スペクトルへの非特異的送達(Heinkelein Mら、Cancer Gene Ther.2005年12月;12(12):947〜53;Falcone Vら、Curr Top Microbiol Immunol.2003;277:161〜180)に変化し得る。生物学的RNAは、複製欠損ウイルス粒子中に最終的にパッケージするための非構造的ウイルス遺伝子のための発現カセット中に組み込まれる。
遺伝子ノックダウンが必要であるが、標的細胞の溶解が望ましくない場合、複製欠損ウイルスの使用は適切である。これらのウイルスは、生物学的RNA鋳型又は分子が含まれる細胞の内部にそれらの核酸カーゴを効率的に送達する。しかし、送達された核酸が、新規なウイルス粒子を産生し得る完全なゲノムを含有しないのであれば、ウイルス複製や後続の細胞溶解はない。癌細胞等の標的細胞の溶解が所望である場合、複製可能腫瘍崩壊性ウイルスの使用が最も適切であり得る。これらのウイルスは、それらの最終的溶解が生じる癌標的細胞中において選択的に複製される(Ring CJ、J Gen Virol.2002年3月;83(Pt3):491〜502、Varghese Sら、Cancer Res.2007年10月1日;67(19):9371〜9;Varghese Sら、Clin Cancer Res.2006年5月1日;12(9):2919〜27;Reinblatt M.ら、Surgery 2004;136:579〜584)。ヒト細胞に感染することが可能であるが、通常はそうしないウイルス、例えば他の霊長類由来のウイルスの使用(Lund PEら、Pharm Res.2009年12月9日;Lund PEら、Pharm Res.2009年12月9日;Heinkelein Mら、Cancer Gene Ther.2005年12月;12(12):947〜53;Falcone Vら、Curr Top Microbiol Immunol.2003;277:161〜180)は、ヒトが自然宿主であるウイルスに対して存在することができる中和抗体を回避する際に有用であり得る。
インビトロでのウイルスパッケージング細胞の適用
インビトロで成長するウイルスパッケージング細胞中において産生されたウイルス粒子は、最終的にパッケージング細胞から培養培地中に放出される。これらの粒子は、成長培地から通常回収され、濃縮され、生物活性RNAのためのトランスフェクション試薬として使用される(Heinkelein Mら、Cancer Gene Ther.2005年12月;12(12):947〜53;Anesti AMら、Nucleic Acids Res.2008年8月;36(14):e86;Gorbatyuk Mら、Vision Res.2007年4月;47(9):1202〜8;Scherr Mら、Nucleic Acids Res.2007;35(22):e149;Chen Wら、J Virol.2006年4月;80(7):3559〜66;Raoul Cら、Nat Med.2005年4月;11(4):423〜8;Bromberg−White JLら、J Virol.2004年5月;78(9):4914〜6;Scherr Mら、Cell Cycle.2003年5月〜6月;2(3):251〜7)。更に2つの培養物が共通の培地を共有することを可能にするウイルス産生及び標的細胞を物理的に分離することによって、ウイルスパッケージング細胞から培地のいかなる処理を行うことなく培養において成長する標的細胞を感染させることが可能であり得る。これは、細胞培養プレート中において適合するように設計されたインサートを用いて、又は産生から標的細胞への培地の手動の転移によって達成される。この場合、パッケージング細胞の同一性は、ウイルス産生に対してのみ最適化される。ウイルスのバックボーンは、細胞培養培地中における粒子安定性と濃縮なしで最高の可能な力価を最適化するように選択される。
標的細胞へのパッケージング細胞の直接の付加によってインビトロで成長する細胞にトランスフェクトするために、ウイルスパッケージング細胞をも用いる。一態様において、(中間濃縮ステップなしの)ウイルス送達生物学的RNAは、ウイルス産生細胞とレポータープラスミドをトランスフェクトした標的細胞との記載された型の共培養を用いて直接転移される。特異的レポーターの存在は、ウイルス産生及び標的細胞の区別を必要とせず、代わりに、生物活性RNAのウイルスに基づいた送達の直接のリードアウトを提供する。標的内在性遺伝子に対するウイルス系を用いる場合、生物活性RNAによる遺伝子発現の調節のためのリードアウトは、標的細胞に対して固有でなければならず、タンパク質系バイオリアクター細胞による実験と同様のウイルス産生細胞によって共有されてはならない。ウイルス送達系に対するレシピエント細胞は、標的細胞の同一性によって影響され、その結果、種特異的リードアウトは、mRNA及びタンパク質ノックダウンの分析を単純化する。標的細胞に対するウイルスパッケージング細胞の最適比は、標的細胞及び標的遺伝子の組合せごとに実験的に決定される。
インビボでの遺伝子発現の調節
インビボ系に対するウイルスパッケージング細胞の適用が、マウスモデル系におけるタンパク質分子の過剰発現のために開発されたトランス核埋込みの方法に続く。タンパク質系バイオリアクター細胞と同様に、マウス腫瘍細胞系(SCCVII又はRenka)とマウス由来のウイルスパッケージング細胞との同時埋込みを利用するインビボ試験系(例29及び30参照)を使用する。これらの細胞型の混合物を、動物の脾腹への皮下注射によってマウスに埋め込む。ウイルス粒子は、VEGF又はMmp2をターゲッティングするshRNAを送達する。活性を、埋め込みの領域中における標的遺伝子の成功したノックダウンによって、又は腫瘍成長及び転移に対する生理学的影響によってアッセイする。
マウス由来のウイルスのパッケージング細胞(NIH3T3繊維芽細胞又はmESC)をマウスにも埋め込み、周囲のマウス組織へのウイルス分泌及び送達をアッセイする。この場合、生物活性RNA分子を含有するウイルス粒子は、ヒト疾患のためのマウスモデルの内在性組織をターゲッティングする(例31〜32参照)。関連の疾患組織を各動物から回収し、標的遺伝子発現を、RT−PCRを用いて転写産物レベルで、又はELISAアッセイを用いてタンパク質レベルで評価する。ウイルスに基づいた送達系の機能と疾患の治療に対する遺伝子標的の有効性との両方を評価するために、治療及び無治療対照マウスの中で、疾患進行の生理学的アッセイをも測定し、比較する。
キット
本発明は、本明細書に記載される方法において用いることができるキットを更に提供する。例えば、本発明は、発現ベクターが本発明のRNA−タンパク質複合体を発現する、発現ベクターを構築するためのキットを提供する。一実施形態において、キットは、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列(以下、「RNA配列」と呼ぶ)を含む核酸分子をコードする第1ポリヌクレオチドと、RNA結合ドメイン及び(非古典的分泌ドメイン、細胞貫通ペプチド、受容体結合ドメイン及びエンドソーム放出ドメインから選択される場合によって1つ又は複数の輸送ペプチド配列(以下、「タンパク質配列」と呼ぶ)を含むポリペプチドをコードする第2ポリヌクレオチドとを含む。別の一実施形態において、キットは、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列(以下、「ダイサー/ドローシャ配列」と呼ぶ)を含む核酸分子をコードする第3ポリヌクレオチドを更に含む。
したがって、一実施形態において、キットは、(RNA結合配列(単数又は複数)が含まれる)RNA配列をコードするポリヌクレオチドを増幅するための1つ又は複数のプライマー配列を更に含む。一実施形態において、プライマー配列(単数又は複数)は、(RNA結合配列(単数又は複数)が含まれる)RNA配列をコードするポリヌクレオチドに対して相補的な1つ又は複数の配列、1つ又は複数の制限酵素部位配列、及び場合によって少なくとも4つのGC塩基対を含む1つ又は複数の配列を含む。別の一実施形態において、キットは、(RNA結合配列(単数又は複数)が含まれる)RNA配列をコードするポリヌクレオチドを発現するために適切なプロモーター配列を更に含む。別の一実施形態において、キットは、(RNA結合配列(単数又は複数)が含まれる)RNA配列をコードするポリヌクレオチドを発現するために適切な終止配列を更に含む。別の一実施形態において、キットは、タンパク質配列をコードするポリヌクレオチドを増幅するための1つ又は複数のプライマー配列を更に含む。一実施形態において、プライマー配列(単数又は複数)は、タンパク質配列をコードするポリヌクレオチドに対して相補的な1つ又は複数の配列、1つ又は複数の制限酵素部位配列、及び場合によって少なくとも4つのGC塩基対を含む1つ又は複数の配列を含む。別の一実施形態において、プライマー配列(単数又は複数)は、1つ又は複数の開始コドン配列及び1つ又は複数の翻訳開始部位配列を更に含む。別の一実施形態において、キットは、タンパク質配列をコードするポリヌクレオチドを発現するために適切なプロモーター配列を更に含む。別の一実施形態において、キットは、タンパク質配列をコードするポリヌクレオチドを発現するために適切な終止配列を更に含む。
代替の実施形態において、キットは、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、場合によって1つ又は複数の生物活性RNA配列、1つ又は複数のプライマー配列、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数の終止配列を含むポリヌクレオチドを含む。一実施形態において、ポリヌクレオチドは、生物活性RNA配列が、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される、1つ又は複数の生物活性RNA配列を含む。生物活性RNAは、例えば、VEGF、VEGFR、MMP2、Cav−1、EGFR、H−RAs、Bcl−2、スルビビン、FAK、STAT3、Her−3、ベータ−カテニン、hRET受容体型チロシンキナーゼが含まれる、対象となる任意の遺伝子標的をターゲッティングすることができる。別の一実施形態において、ポリヌクレオチドは、生物活性RNA配列を含まず、その配列は、キットの個々の使用者によって供給される。一実施形態において、プライマー配列(単数又は複数)は、(生物活性RNAが含まれる)RNA配列をコードするポリヌクレオチドに対して相補的な1つ又は複数の配列、1つ又は複数の制限酵素部位配列、及び場合によって少なくとも4つのGC塩基対を含む1つ又は複数の配列を含む。代替の実施形態の別のものにおいて、キットは、RNA結合ドメイン、非古典的分泌ドメイン、細胞貫通ペプチド、受容体結合ドメイン、エンドソーム放出ドメインから選択される1つ又は複数の配列、1つ又は複数のプライマー配列、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数の終止配列を含むポリヌクレオチドを更に含む。一実施形態において、プライマー配列(単数又は複数)は、タンパク質配列をコードするポリヌクレオチドに対して相補的な1つ又は複数の配列、1つ又は複数の制限酵素部位配列、場合によって少なくとも4つのGC塩基対を含む1つ又は複数の配列、1つ又は複数の開始コドン配列及び1つ又は複数の翻訳開始部位配列を含む。別の代替の一実施形態において、キットはまた、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列、1つ又は複数のプライマー配列、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数の終止配列を含むポリヌクレオチドをも含む。
記載されたキットの実施形態のいずれかにおいて、(生物活性RNAが含まれる)RNA配列をコードするポリヌクレオチドは、認識RNA配列、個々の生物活性RNA配列、場合による末端ミニヘリックス配列及びあらゆる他の含まれる配列が、直接結合するか、又は1つ若しくは複数の介在若しくは付加配列の付加と共に結合する、配列を含むことができる。記載されたキットの実施形態のいずれかにおいて、タンパク質配列をコードするポリヌクレオチドは、RNA結合ドメイン及び非古典的分泌ドメイン、細胞貫通ペプチド、受容体結合ドメイン及びエンドソーム放出ドメイン配列、並びにあらゆる他の含まれる配列が、直接結合するか、又は1つ若しくは複数の介在若しくは付加配列の付加と共に結合する、配列を含むことができる。したがって、ある種の実施形態において、キットは、RNA配列をコードするポリヌクレオチド及びタンパク質配列をコードするポリヌクレオチドの各種の配列及びドメインを結合するためのリンカー配列を更に含む。
記載されたキットの実施形態のいずれかにおいて、認識RNA配列は、U1ループ、グループIIイントロン、NREステムループ、S1Aステムループ、バクテリオファージBoxBR、HIV Rev応答エレメント、AMVCP認識配列及びARE配列から選択され得る。記載されたキットの実施形態のいずれかにおいて、RNA結合ドメインは、U1A、CRS1、CRM1、ヌクレオリンRBD12、hRBMY、バクテリオファージタンパク質N、HIV Rev、AMVCP及びトリステトラプロリン配列から選択され得る。記載されたキットの実施形態のいずれかにおいて、細胞貫通ペプチドは、ペネトラチン、トランスポルタン、MAP、HIV TAT、Antp、Rev、FHVコートタンパク質、TP10及びpVEC配列から選択され得る。記載されたキットの実施形態のいずれかにおいて、非古典的分泌ドメインは、Galcetin−1ペプチド、ガレクチン−3ペプチド、IL−1α、IL−1β、HASPB、HMGB1、FGF−1、FGF−2、IL−2シグナル、分泌トランスグルタミナーゼ、アネキシン−1、HIV TAT、ヘルペスVP22、チオレドキシン、ロダネーゼ及びプラスミノーゲンアクチベーターシグナル配列から選択され得る。キットの実施形態のいずれかにおいて、プロモーターは、Pol IIプロモーターである。適切なPol IIプロモーターの非限定的な例としては、限定されるものではないが、シミアンウイルス40(SV40)、サイトメガロウイルス(CMV)、β−アクチン、ヒトアルブミン、ヒトHIF−α、ヒトゲルソリン、ヒトCA−125、ユビキチン及びPSAプロモーターが挙げられる。別の一実施形態において、プロモーターは、Pol IIIプロモーターである。適切なPol IIIプロモーターの例としては、限定されるものではないが、ヒトH1及びヒトU6プロモーターが挙げられる。適切な終止配列の非限定的な例としては、限定されるものではないが、ヒト成長ホルモン(hGH)ポリアデニル化配列、ウシ成長ホルモン(BGH)ポリアデニル化配列、シミアンウイルス40(SV40)大型Tポリアデニル化配列及び単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ(HSV−tk)ポリアデニル化配列が挙げられる。
更に別の一実施形態において、キットは、(生物活性RNAが含まれる)RNA配列をコードするポリヌクレオチド及び/又はタンパク質配列をコードするポリヌクレオチド及び/又はダイサー/ドローシャ配列をコードするポリヌクレオチドが挿入され得る1つ又は複数のバックボーンベクターを更に含む。一実施形態において、RNA配列をコードするポリヌクレオチドは、第1バックボーンベクターに挿入され、タンパク質配列をコードするポリヌクレオチドは、第2バックボーンベクターに挿入される。別の一実施形態において、RNA配列をコードするポリヌクレオチド及びタンパク質配列をコードするポリヌクレオチドは、単一のバックボーンベクターに挿入される。一実施形態において、ダイサー/ドローシャ配列をコードするポリヌクレオチドは、第3バックボーンベクターに挿入され得る。別の一実施形態において、ダイサー/ドローシャ配列をコードするポリヌクレオチドは、RNA配列をコードするポリヌクレオチドと同じベクターに挿入され得る。適切なバックボーンベクターの非限定的な例としては、pCI、pET、pSI、pcDNA、pCMV等が挙げられる。上記実施形態のいずれかにおいて、バックボーンベクターは、pUC複製開始点を更に含む。一実施形態において、バックボーンベクターは、カナマイシン、アンピシリン、ピューロマイシン、テトラサイクリン及びクロラムフェニコール耐性遺伝子、並びに本技術分野において公知で、記載されているあらゆる他の薬剤耐性遺伝子から選択される1つ又は複数の薬剤耐性遺伝子を更に含む。
他の実施形態において、キットは、例えば1つ又は複数の制限酵素、フォスファターゼ、キナーゼ、リガーゼ及びポリメラーゼが含まれる、(生物活性RNAが含まれる)RNA配列をコードするポリヌクレオチド、タンパク質配列をコードするポリヌクレオチド及びダイサー/ドローシャ配列をコードするポリヌクレオチドを増幅、クローニング及び/又は発現するために有用な緩衝剤、酵素及び溶液を更に含む。
別の一実施形態において、キットは、例えば、ポリヌクレオチド配列マップ及びプラスミドマップが含まれる、発現ベクターを構築するための指示書を更に含む。
別の一実施形態において、キットは、市販用のキットをパッケージするための材料を更に含む。
更に、本発明は、標的遺伝子の発現を調節するために有用な発現ベクターを含むキットを提供する。キットは、インビボ、エクスビボ及びインビトロで遺伝子発現を調節するために使用され得る本発明のRNA−タンパク質複合体を産生する1つ又は複数の発現ベクターを提供する。一実施形態において、キットは、RNA−タンパク質複合体のRNA部分及びRNA−タンパク質複合体の融合タンパク質部分を発現するための別々の発現ベクターを含む。RNA−タンパク質複合体のRNA部分及びタンパク質部分のための別々の発現ベクターを含むキットの利点の内の1つは、標的細胞に生物活性RNAを含むベクターをトランスフェクトすることによって生物活性RNAの活性を確認することができるということである。融合タンパク質を発現するベクターの非存在下で、生物活性RNAを発現するベクターの遺伝子調節を、標的細胞中において直接確認することができる。別の一実施形態において、キットは、RNA−タンパク質複合体を発現するための単一の発現ベクターを含む。
一実施形態において、キットは、生物活性RNA配列(単数又は複数)、認識RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列がプロモーター配列の下流にある、標的遺伝子に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数の終止配列、制限酵素部位、プライマー配列及び場合によってGC塩基対配列を含む発現ベクターを提供する。生物活性RNAは、本明細書に記載されるか、又はそれ以外の場合、本技術分野において公知のいずれかの生物活性RNAであってもよい。生物活性RNA配列は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択され得る。生物活性RNAは、例えば、VEGF、VEGFR、MMP2、Cav−1、EGFR、H−RAs、Bcl−2、スルビビン、FAK、STAT3、Her−3、ベータ−カテニン、hRET受容体型チロシンキナーゼが含まれる、対象となる任意の遺伝子標的をターゲッティングすることができる。別の一実施形態において、発現ベクターは、生物活性RNA配列を含まず、その配列は、キットの個々の使用者によって供給される。したがって、一実施形態において、キットは、認識RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列がプロモーター配列の下流にある、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数の終止配列、制限酵素部位、プライマー配列及び場合によってGC塩基対配列を含む発現ベクターを提供する。制限酵素部位は、使用者の生物活性RNA配列の挿入のための好都合クローニング部位を提供するように位置する。別の代替の一実施形態において、キットはまた、ダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする1つ又は複数の生物活性RNA配列、1つ又は複数のプライマー配列、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数の終止配列を含むポリヌクレオチドをも含む。
上記実施形態のいずれかにおいて、認識RNA配列は、U1ループ、グループIIイントロン、NREステムループ、S1Aステムループ、バクテリオファージBoxB、HIV Rev応答エレメント、AMVCP認識配列及びARE配列から選択され得る。一実施形態において、プロモーター配列は、PolIIIプロモーターである。適切なPolIIIプロモーターの非限定的な例としては、ヒトU6polIIIプロモーター及びヒトH1polIIIプロモーターが挙げられる。一実施形態において、プロモーター配列は、polIIプロモーターである。適切なpolIIプロモーターの非限定的な例としては、SV40、β−アクチン、ヒトアルブミン、ヒトHIF−α、ヒトゲルソリン、ヒトCA−125、ヒトユビキチン、PSA及びサイトメガロウイルス(CMV)プロモーターが挙げられる。一実施形態において、生物活性RNA配列及び認識RNA配列は、プロモーター配列に作動可能に連結する。一実施形態において、終止配列は、Pol−IIIポリT終止配列である。
上記実施形態のいずれかにおいて、発現ベクターは、pUC複製開始点を更に含む。上記実施形態のいずれかにおいて、発現ベクターは、1つ又は複数の薬剤耐性遺伝子を更に含む。適切な薬剤耐性遺伝子の例としては、限定されるものではないが、カナマイシン、アンピシリン、ピューロマイシン、テトラサイクリン及びクロラムフェニコール耐性遺伝子、並びに本技術分野において公知で、記載されているあらゆる他の薬剤耐性遺伝子が挙げられる。
一実施形態において、キットは、RNA結合ドメイン、並びに細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、エンドソーム放出ドメイン及び融合ペプチドから選択される1つ又は複数の配列を含む発現ベクターを更に含み、更に、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数の終止配列、制限酵素部位、プライマー配列、場合によってGC塩基対配列、開始コドン及び翻訳開始部位を含み、RNA結合ドメイン及び細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、エンドソーム放出ドメイン及び融合ペプチドは、プロモーター配列の下流にある。一実施形態において、プロモーター配列は、Pol IIプロモーターである。適切なpolIIプロモーターの非限定的な例としては、SV40、β−アクチン、ヒトアルブミン、ヒトHIF−α、ヒトゲルソリン、ヒトCA−125、ヒトユビキチン、PSA及びサイトメガロウイルス(CMV)プロモーターが挙げられる。終止配列は、ポリアデニル化配列、例えば、hGHから誘導されるポリアデニル化配列であってよい。ある種の実施形態において、RNA結合ドメインは、U1A、CRS1、CRM1、ヌクレオリンRBD12、hRBMY、バクテリオファージタンパク質N、HIV Rev、AMVCP及びトリステトラプロリンアミノ酸配列から選択されるアミノ酸配列を含む。ある種の実施形態において、細胞貫通ペプチドは、ペネトラチン、トランスポルタン、MAP、HIV TAT、Antp、Rev、FHVコートタンパク質、TP10及びpVECアミノ酸配列から選択されるアミノ酸配列を含む。ある種の実施形態において、非古典的分泌ドメインは、Galcetin−1ペプチド、ガレクチン−3ペプチド、IL−1α、IL−1β、HASPB、HMGB1、FGF−1、FGF−2、IL−2シグナル、分泌トランスグルタミナーゼ、アネキシン−1、HIV TAT、ヘルペスVP22、チオレドキシン、ロダネーゼ及びプラスミノーゲンアクチベーターシグナルアミノ酸配列から選択されるアミノ酸配列を含む。
上記実施形態のいずれかにおいて、発現ベクターは、pUC複製開始点を更に含む。一実施形態において、発現ベクターは、カナマイシン、アンピシリン、ピューロマイシン、テトラサイクリン及びクロラムフェニコール耐性遺伝子、並びに本技術分野において公知で、記載されているあらゆる他の薬剤耐性遺伝子から選択される1つ又は複数の薬剤耐性遺伝子を更に含む。
一実施形態において、キットは、生物活性RNA配列(単数又は複数)及び場合による末端ミニヘリックス配列がプロモーター配列の下流にあり、生物活性RNA配列(単数又は複数)がダイサー及び/又はドローシャをターゲッティングする、1つ又は複数の生物活性RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数の終止配列、制限酵素部位、プライマー配列及び場合によってGC塩基対配列を含む発現ベクターを場合によって更に含むことができる。ある種の実施形態において、生物活性RNA配列は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される。一実施形態において、プロモーター配列(単数又は複数)は、例えばヒトU6polIIIプロモーター及びヒトH1polIIIプロモーターが含まれるPolIIIプロモーターである。一実施形態において、プロモーター配列は、例えばSV40、β−アクチン、ヒトアルブミン、ヒトHIF−α、ヒトゲルソリン、ヒトCA−125、ヒトユビキチン、PSA及びサイトメガロウイルス(CMV)プロモーターが含まれるpolIIプロモーターである。一実施形態において、終止配列(単数又は複数)は、Pol−IIIポリT終止配列である。上記実施形態のいずれかにおいて、発現ベクターは、pUC複製開始点を更に含む。一実施形態において、発現ベクターは、カナマイシン、アンピシリン、ピューロマイシン、テトラサイクリン及びクロラムフェニコール耐性遺伝子、並びに本技術分野において公知で、記載されているあらゆる他の薬剤耐性遺伝子から選択される1つ又は複数の薬剤耐性遺伝子を更に含む。
別の一実施形態において、キットは、指示書と、市販用のキットをパッケージするための材料とを更に含む。
別の場合、キットは、本発明のRNA−タンパク質複合体をコードする単一の発現ベクターを含む。一実施形態において、キットは、第1発現カセット、第2発現カセット及び場合によって第3発現カセットを含む発現ベクターを含む。第1発現カセットは、生物活性RNA配列(単数又は複数)、認識RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列がプロモーター配列の下流にある、標的遺伝子(単数又は複数)に向けられた1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数の終止配列、制限酵素部位、プライマー配列及び場合によってGC塩基対配列を含む。ある種の実施形態において、生物活性RNA配列は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される。標的遺伝子は、例えばMmp2、血管内皮成長因子(VEGF)、血管内皮成長因子受容体(VEGFR)、Cav−1、上皮成長因子受容体(EGFR)、H−Ras、Bcl−2、スルビビン、FAK、STAT−3、HER−3、ベータ−カテニン及びSrc遺伝子標的が含まれるいずれの標的遺伝子であってもよい。ある種の実施形態において、認識RNA配列は、U1ループ、グループIIイントロン、NREステムループ、S1Aステムループ、バクテリオファージBoxBR、HIV Rev応答エレメント、AMVCP認識配列及びARE配列から選択される。一実施形態において、プロモーター配列は、例えばヒトU6polIIIプロモーター及びヒトH1polIIIプロモーターから選択されるプロモーターが含まれるPolIIIプロモーターである。一実施形態において、プロモーター配列は、例えばSV40、β−アクチン、ヒトアルブミン、ヒトHIF−α、ヒトゲルソリン、ヒトCA−125、ヒトユビキチン、PSA及びサイトメガロウイルス(CMV)プロモーターから選択されるプロモーターが含まれるpolIIプロモーターである。一実施形態において、終止配列は、Pol−IIIポリT終止配列である。
キットの発現ベクターは、第2発現カセットが、RNA結合ドメイン配列、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、エンドソーム放出ドメイン及び融合ペプチドから選択される1つ又は複数の配列、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数の終止配列、制限酵素部位、プライマー配列、GC塩基対配列、開始コドン及び翻訳開始部位を含み、RNA結合ドメイン及び細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、受容体結合ドメイン、エンドソーム放出ドメイン及び融合ペプチドがプロモーター配列の下流にある、第2発現カセットを更に含む。ある種の実施形態において、RNA結合ドメインは、U1A、CRS1、CRM1、ヌクレオリンRBD12、hRBMY、バクテリオファージタンパク質N、HIV Rev、AMVCP及びトリステトラプロリン配列から選択される。ある種の実施形態において、細胞貫通ペプチドは、ペネトラチン、トランスポルタン、MAP、HIV TAT、Antp、Rev、FHVコートタンパク質、TP10及びpVECアミノ酸配列から選択される。ある種の実施形態において、非古典的分泌ドメインは、ガレクチン−1ペプチド、ガレクチン−3ペプチド、IL−1α、IL−1β、HASPB、HMGB1、FGF−1、FGF−2、IL−2シグナル、分泌トランスグルタミナーゼ、アネキシン−1、HIV TAT、ヘルペスVP22、チオレドキシン、ロダネーゼ及びプラスミノーゲンアクチベーターシグナル配列から選択される。一実施形態において、プロモーター配列は、例えばSV40、β−アクチン、ヒトアルブミン、ヒトHIF−α、ヒトゲルソリン、ヒトCA−125、ヒトユビキチン、PSA及びサイトメガロウイルス(CMV)プロモーターから選択されるプロモーターが含まれるpolIIプロモーターである。一実施形態において、終止配列は、ポリアデニル化配列である。一実施形態において、ポリアデニル化配列は、hGHから誘導される。
キットの発現ベクターは、第3発現カセットが、1つ又は複数の生物活性RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数の終止配列、制限酵素部位、プライマー配列及び場合によってGC塩基対配列を含み、生物活性RNA配列(単数又は複数)及び場合による末端ミニヘリックス配列がプロモーター配列の下流にある、第3発現カセットを更に含む。上記の発現ベクターのある種の実施形態において、生物活性RNA配列は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される。一実施形態において、生物活性RNA配列の内の1つ又は複数は、ダイサー及び/又はドローシャに向けられる。一実施形態において、プロモーターは、PolIIIプロモーターである。適切なPolIIIプロモーターの非限定的な例としては、ヒトU6polIIIプロモーター及びヒトH1polIIIプロモーターが挙げられる。一実施形態において、プロモーター配列は、polIIプロモーターである。適切なpolIIプロモーターの非限定的な例としては、SV40、β−アクチン、ヒトアルブミン、ヒトHIF−α、ヒトゲルソリン、ヒトCA−125、ヒトユビキチン、PSA及びサイトメガロウイルス(CMV)プロモーターが挙げられる。一実施形態において、生物活性RNA配列は、プロモーター配列に作動可能に連結する。一実施形態において、終止配列は、Pol−IIIポリT終止配列である。
発現ベクターは、pUC複製開始点を更に含む。一実施形態において、発現ベクターは、カナマイシン、アンピシリン、ピューロマイシン、テトラサイクリン及びクロラムフェニコール耐性遺伝子、並びに本技術分野において公知で、記載されているあらゆる他の薬剤耐性遺伝子から選択される1つ又は複数の薬剤耐性遺伝子を更に含む。
代替の一実施形態において、キットは、第1発現カセットが、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数の終止配列、制限酵素部位、プライマー配列及び場合によってGC塩基対配列を含み、認識RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列がプロモーター配列の下流にある、第1発現カセット、第2発現カセット及び場合によって第3発現カセットを含む発現ベクターを含む。キットは、生物活性RNA配列を含まず、その配列は、キットの個々の使用者によって供給される。キットは、発現ベクターへの好都合なクローニングのための生物活性RNA配列にライゲーションされ得る制限酵素部位を含む1つ又は複数のプライマー配列を場合によって含む。第2発現カセット及び任意の第3発現カセットは、上記の第2及び第3発現カセットのいずれかであってよい。
代替の一実施形態において、キットは、第2発現カセット及び場合によって第3発現カセットを含む発現ベクターを含む。キットは、第1の発現カセットが、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、1つ又は複数のプロモーター配列、1つ又は複数の終止配列、制限酵素部位、プライマー配列及び場合によってGC塩基対配列を含み、認識RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列がプロモーター配列の下流にある、発現ベクターにライゲーションされ得る第1発現カセットを含む単離されたポリヌクレオチドを更に含む。キットは、生物活性RNA配列を含まず、その配列は、キットの個々の使用者によって供給される。キットは、第1発現カセットへの好都合な挿入のための生物活性RNA配列にライゲーションされ得る1つ又は複数のプライマー配列を場合によって含む。次いで、第1発現カセットを、第2発現カセット及び第3発現カセットを含む発現ベクターにクローニングすることができる。キットは、発現ベクターへの好都合クローニングのための第1発現カセットにライゲーションされ得る発現ベクターと適合性の制限部位を含む1つ又は複数のプライマー配列を場合によって含む。第2発現カセット及び第3発現カセットは、上記の第2及び第3発現カセットのいずれかであってよい。発現ベクターが第2発現カセットだけを含む実施形態において、キットは、発現ベクターにライゲーションされ得る第3発現カセットを含む単離されたポリヌクレオチドを更に含むことができる。第3発現カセットは、上記の第3発現カセットのいずれかであってよい。キットは、発現ベクターへの好都合なクローニングのための第3発現カセットにライゲーションされ得る発現ベクターと適合性の制限部位を含む1つ又は複数のプライマー配列を場合によって含む。
これらの実施形態のいずれかにおいて、発現ベクターは、pUC複製開始点を更に含む。一実施形態において、発現ベクターは、カナマイシン、アンピシリン、ピューロマイシン、テトラサイクリン及びクロラムフェニコール耐性遺伝子、並びに本技術分野において公知で、記載されているあらゆる他の薬剤耐性遺伝子から選択される1つ又は複数の薬剤耐性遺伝子を更に含む。
本発明はまた、インビボ、エクスビボ及びインビトロで遺伝子発現を調節するために使用され得る本発明のRNA−タンパク質複合体を産生する1つ又は複数のバイオリアクター細胞を含むキットをも提供する。本発明は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン配列、並びに細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン及び融合ペプチド配列から選択される1つ又は複数の配列を含むRNA−タンパク質複合体を産生し、分泌するバイオリアクター細胞の溶液を提供する。一実施形態において、バイオリアクター細胞は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合による末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン配列及び細胞貫通ペプチド配列を含むRNA−タンパク質複合体を産生する。別の一実施形態において、バイオリアクター細胞は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合による末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン配列及び非古典的分泌ドメイン配列を含むRNA−タンパク質複合体を産生する。更に別の一実施形態において、バイオリアクター細胞は、1つ又は複数の生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合による末端ミニヘリックス配列、RNA結合ドメイン配列、細胞貫通ペプチド配列及び非古典的分泌ドメイン配列を含むRNA−タンパク質複合体を産生する。
バイオリアクター細胞を含む上記のキットのある種の実施形態において、生物活性RNA配列(単数又は複数)は、リボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び1つ又は複数の生物活性ペプチドをコードする転写産物から選択される。生物活性RNA配列(単数又は複数)は、限定されるものではないが、Mmp2、血管内皮成長因子(VEGF)、血管内皮成長因子受容体(VEGFR)、Cav−1、上皮成長因子受容体(EGFR)、H−Ras、Bcl−2、スルビビン、FAK、STAT−3、HER−3、ベータ−カテニン及びSrc遺伝子標的が含まれるいずれの遺伝子をターゲッティングしてもよい。上記の細胞のある種の実施形態において、認識RNA配列は、U1ループ、グループIIイントロン、NREステムループ、S1Aステムループ、バクテリオファージBoxBR、HIV Rev応答エレメント、AMVCP認識配列及びARE配列から選択される。上記の細胞のある種の実施形態において、RNA結合ドメインは、U1A、CRS1、CRM1、ヌクレオリンRBD12、hRBMY、バクテリオファージタンパク質N、HIV Rev、AMVCP及びトリステトラプロリン配列から選択される。上記の細胞のある種の実施形態において、細胞貫通ペプチドは、ペネトラチン、トランスポルタン、MAP、HIV TAT、Antp、Rev、FHVコートタンパク質、TP10及びpVECアミノ酸配列から選択される配列を含む。上記の細胞のある種の実施形態において、非古典的分泌ドメインは、Galcetin−1ペプチド、ガレクチン−3ペプチド、IL−1α、IL−1β、HASPB、HMGB1、FGF−1、FGF−2、IL−2シグナル、分泌トランスグルタミナーゼ、アネキシン−1、HIV TAT、ヘルペスVP22、チオレドキシン、ロダネーゼ及びプラスミノーゲンアクチベーターシグナル配列から選択される配列を含む。
適切な細胞の非限定的な例としては、NIH 3T3、Cos−1、Cos−7、SCCVII、HEK293、PC−12、Renka、A549、CT26、CHO、HepG2、Jurkat及びHeLa細胞、並びに本技術分野において公知で、記載されているあらゆる他の細胞が挙げられる。
前述の記載及び以下の実施例において特に記載されるもの以外に本発明を実施することができることは明らかである。本発明の多くの修正及び変更は、本明細書における教示に鑑みて可能であり、したがって添付の特許請求の範囲の範囲内である。
実施例
(例1)−本発明のバイオリアクタープラスミドの一般的構築
単離したプラスミドバックボーンと、RNA(sec−RNA)及びタンパク質(融合タンパク質)成分の両方に対するPCR増幅発現カセットとから発現ベクターを構築する。適切なバックボーンベクターの例としては、pCI、pET、pSI、pcDNA、pCMV等から誘導されるものが挙げられる。発現ベクターは、少なくとも以下の成分、細菌における調製のための複製開始点、抗生物質選択可能マーカー、RNA発現のためのプロモーター(Pol−II又はPol−III)、プロモーター配列に適切なターミネーター配列、融合タンパク質発現のためのプロモーター及びポリAテイル配列を含むべきである。適切なバックボーンベクターの一例は、pSI(Promega、製品#E1721)、pCI(Promega、製品#E1731)、pVAX(Invitrogen、製品#12727−010)及び会社構築物における他のものから誘導される本明細書に記載される各種pEGENバックボーンベクターから選択される。pEGENベクター、例えば、pEGEN1.1、pEGEN2.1、pEGEN3.1及びpEGEN4.1は、pUC複製開始点と、ベクターを細菌中において複製し、カナマイシンの存在下で培養することを可能にするカナマイシン耐性遺伝子とを含む。他の適切なバックボーンベクター、例えば、pCI、pSI、pcDNA、pCMV等は、周知であり、商業的に入手可能である。標準熱ショック法を介してpEGENベクターをXL1−Blueコンピテント細胞に形質転換する。形質転換細胞をLB−カナマイシンプレート上の成長によって選択し、個々のコロニーを用いて5mLのLB−カナマイシン液体培養物を播種し、37℃で終夜成長させる。結果として生じた培養物を用いて、標準法を用いて精製プラスミドストックを調製する。
バイオリアクタープラスミドのタンパク質成分のための発現カセットを、適切なフォワード及びリバースプライマーを用いてcDNAクローンからの関連配列のPCR増幅によって調製する。プライマーは、典型的には、対象となるドメイン(単数又は複数)(例えば、RNA結合ドメイン、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド等)に対して相補的な配列、サブクローニングにおいて用いられる制限酵素に対する部位、及び各プライマーの5’末端における少なくとも4つのGC塩基対を含み、制限酵素による消化を促進する。他の有用なプライマーは、対象となるドメイン(単数又は複数)(例えば、RNA結合ドメイン、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド等)に対して相補的な配列、サブクローニングにおいて用いられる制限酵素に対する部位、及び組み換えクローニング(In−fusion Advantage PCRクローニングキット、Clontech、カタログ#639620)において用いるための制限部位にフランクするベクター配列の15塩基を含むことができる。他の適切なプライマーは、タンパク質ドメイン(単数又は複数)に対して相補的な配列、サブクローニングにおいて用いられる制限酵素に対する部位、及び各プライマーの5’末端における6つのGC塩基対を含む。開始コドン及び最適化Kozak翻訳開始部位を、転写産物の5’末端に対応する各プライマーに付加し、各融合タンパク質のN末端ドメインの翻訳を促進する。制限部位を転写産物の3’末端に対応するプライマーに付加し、RNA結合ドメインによる送達ドメインの構築を促進する。典型的なPCR反応は、50μLの反応につき、10mM トリス−HCl pH9.0、50mM KCl、1.5mM MgCl、0.1% トリトンX−100、200μM 各dNTP、1.0μM センスプライマー、1.0μM アンチセンスプライマー、100ng DNA鋳型及び1.0UのTaqポリメラーゼを含む。反応を、3つの温度ステップ(95℃で30秒間の変性ステップ、50℃〜60℃で30秒間のアニーリングステップ及び72℃で1分間の伸長ステップ)を通して繰り返す。典型的には、繰り返しの総数は、特異的増幅反応に応じて、20回から35回の繰り返しの範囲に及ぶ。
ドメインは、互いに直接連結し得るか、又はアルファヘリックスリンカー若しくは他のリンカードメインをコードする配列を介して連結し得る。これらのリンカーは、起こり得る立体化学の問題を回避するために2つの機能ドメインの間の分離を提供する。各場合において、各ドメインをコードするDNAの制限消化は、方向性ライゲーションのための適合性の末端を生じる。典型的な制限消化は、10mMトリス(pH8.0)、100mM NaCl、5mM MgCl、1mM DTT、0.1〜1単位の各制限酵素及び1μgのDNAを含み、37℃で1時間消化する。産物を1×TAE中において2%アガロースゲルのランニング上で精製し、切り出したバンドを、QiagenのQiaex IIゲル精製システムを使用して回収する。これらの発現カセットを、対象となるインサートにマッチする制限酵素を用いてpEGENベクターの多重クローニング部位にクローニングする。典型的なライゲーション反応は、30mMトリス(pH7.8)、10mM MgCl、10mM DTT、1mM ATP、100ng DNAベクター、100〜500ng DNAインサート、1単位T4DNAリガーゼを含み、16℃で終夜ライゲーションする。別の典型的な再結合反応は、1×In−fusion反応緩衝液、100ngの線状化プラスミド、50〜200ngのインサート、1単位のIn−fusion酵素を含み、それをまず37℃で15分間インキュベートし、次いで50℃で15分間インキュベートする。このプロセスは、強力なPol IIプロモーター配列の下流及びhGHポリAシグナル配列の上流に発現カセットを配置する。図5〜7に示すように、pEGEN1.1に対するPol IIプロモーターはSV40プロモーターを含み、pEGEN2.1に対するPol IIプロモーターは、ニワトリβ−アクチンプロモーターを含み、pEGEN3.1に対するPol IIプロモーターは、CMVプロモーターを含む。プラスミドベクターへのPCR産物の成功したクローニングは、挿入位置にフランクする部位を有する酵素を用いる制限マッピングによって、及び挿入配列に特異的なプライマーを用いるPCRによって確認することができる(例えば、図15参照)。
融合タンパク質カセットを含むベクターを用いて、以下に記載する本発明のSec−RNAを含むベクターと組み合わせて細胞にトランスフェクトすることができる。
バイオリアクタープラスミドのRNA成分(例えばリボザイム、アンチセンス核酸、アロザイム、アプタマー、短鎖干渉性RNA(siRNA)、二重鎖RNA(dsRNA)、ミクロRNA(miRNA)、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、及び生物活性ペプチドをコードするRNA転写物が含まれる認識RNA配列及び生物活性RNA配列等)に対する発現カセットを、適切なフォワード及びリバースプライマーを用いたRNA発現プラスミドからの関連配列のPCR増幅によって調製する。プライマーは、生物活性RNA配列(単数又は複数)に対して相補的な配列、サブクローニングにおいて用いられる制限酵素に対する部位、及び各プライマーの5’末端における少なくとも4つのGC塩基対を含み、制限酵素による消化を促進する。他の適切なプライマーは、対象となるドメイン(単数又は複数)(例えば、RNA結合ドメイン、細胞貫通ペプチド、非古典的分泌ドメイン、エンドソーム放出ドメイン、受容体結合ドメイン、融合ペプチド等)に対して相補的な配列、サブクローニングにおいて用いられる制限酵素に対する部位、及び組み換えクローニング(In−fusion Advantage PCRクローニングキット、Clontech、カタログ#639620)において用いるための制限部位にフランクするベクター配列の15塩基を含むことができる。具体例において、プライマーは、生物活性RNA配列(単数又は複数)に対して相補的な配列、サブクローニングにおいて用いられる制限酵素に対する部位、及び各プライマーの5’末端における6つのGC塩基対を含む。Sec−RNA発現構築物を作製するために、認識RNA配列を生物活性RNA配列の5’末端に対応するプライマーに付加する。この発現構築物を、強力なPol−IIIプロモーター配列(pEGEN4.1に対するヒトU6プロモーター及びpEGEN5.1に対するヒトH1プロモーター)から下流及びPol IIIポリT終止配列の上流にSec−RNA発現カセットを配置するpEGEN4.1構築物にサブクローニングするための適切な制限酵素によって消化する。図8を参照すること。別の場合、発現構築物を、ヒトH1プロモーター配列(Pol−IIIプロモーター)の下流及びPol IIIポリT終止配列の上流にSec−RNA発現カセットを配置するpEGEN5.1構築物にサブクローニングする。別の場合、Sec−RNA発現カセットは、それぞれSV40、β−アクチン及びCMV Pol−IIプロモーターの制御下でRNA発現を配置し、ヒトGHポリアデニル化シグナルによって終止するpEGEN1.1、2.1又は3.1にサブクローニングすることができる。別の場合、Sec−RNA発現カセットを、pEGEN6.1〜11.1のいずれかにサブクローニングすることができる。
Sec−RNA発現カセットを含むベクターを用いて、上記の本発明の融合タンパク質を含むベクターと組み合わせて細胞にトランスフェクトすることができる。
プラスミドベクターへのPCR産物の成功したクローニングは、挿入位置にフランクする部位を有する酵素を用いる制限マッピングによって、及び挿入配列に特異的なプライマーを用いるPCRによって確認することができる。例えば、図15は、制限酵素分析(15C及びD)、並びにsec−RNAプラスミド(15C)及び融合タンパク質プラスミド(15D及びE)のPCR増幅分析(15E)を示す。図15Cは、新規なEcoNI制限部位がRNA発現インサートと共に導入されるpE3.1 Sec−レポーターの制限酵素分析を示す。図15D及び15Eは、それぞれ、2つのpE1 TAT−RBDプラスミドの制限酵素及びPCR分析を示す。図15Cにおいて、Sec−レポーター(−)は、pE3.1 Sec−レポータープラスミドだけを指し、Sec−レポーター(+)は、sec−RNA発現インサートを有するpE3.1 Sec−レポータープラスミドを指す。図15D及び15Eにおいて、p1.1は、pE1.1プラスミドだけを指し、TAT(−)は、Rev RNA結合ドメインに融合したTAT細胞貫通ペプチドを含む融合タンパク質インサートを有するpE1,1プラスミドを指し、TAT(+)は、タンパク質N RNA結合ドメインに融合したTAT細胞貫通ペプチドを含む融合タンパク質インサートを有するpE1.1プラスミドを指す。(挿入の部位にフランクする)XcmI及びAleI酵素による各プラスミドの制限消化は、空の親プラスミド(99bp産物)とインサート(245bp産物)の成功したサブクローニングとの間を区別するアガロースゲル分析を可能にする。融合タンパク質インサートのコーディング鎖にアニールする一方のプライマーとポリA配列の非コード鎖にアニールする第2のプライマーとを用いる挿入部位のPCR増幅は、適切に配向されたインサートに対する416bpの産物を産生する。プラスミドインサートの同一性を、DNA塩基配列決定により確認した。
Sec−RNA発現カセット及び融合タンパク質カセットが単一ベクター中にある本発明のそれらの実施形態において、最終サブクローニングステップは、単一プラスミドベクター(pBioRプラスミド)中に融合タンパク質発現カセットをSec−RNA発現カセットと結合する。一実施形態において、Sec−RNA発現カセット(例えば、プライマー、プロモーター、認識RNA配列、生物活性RNA及び終止配列)を、融合タンパク質を含むpEGENプラスミドにライゲーションして、完全なpBioRプラスミドを作製する。例えばpEGEN4.1(図8)又はpEGEN5.1(図示せず)におけるSec−RNAにおいて示されるように、発現カセットにフランクする制限部位をプラスミドからインサートを放出し、次いで、それを1×TAE中において2%アガロースゲルのランニング上で精製し、切り出したバンドを、例えばQiagenのQiaex IIゲル精製システムを使用して回収する。融合タンパク質に対する発現カセットを含むプラスミドを、Sec−shRNA発現カセットにフランクする同じ制限酵素によって消化する。次いで、Sec−RNA発現カセットを、融合タンパク質を含むプラスミドにライゲーションして、完全なpBioRプラスミドを作製する。
(例2)−CPP−RBD融合タンパク質によって送達されるSec−shRNAによるバイオリアクタープラスミドpBioR(1)の構築
ここで、バイオリアクター融合タンパク質及び分泌shRNA(Sec−shRNA)を発現し得る発現ベクターについて記載する。表I及び表VIIに列挙される遺伝子標的のいずれかをターゲッティングするSec−shRNA、並びにあらゆる他の標的mRNAの産生及び送達を、2つの親プラスミドから構築されるプラスミドpBioR(1)によって達成する。第1親プラスミド(pEGENFP)は、融合タンパク質を発現し、例1に記載されるプラスミド及び方法を用いて、表IIIからのRNA結合ドメイン配列と表IVからの細胞貫通ペプチド配列とを含む融合タンパク質カセットを表VIIIからのpEGENベクターの多重クローニング部位にクローニングすることによって構築される。一実施形態において、このプロセスは、強力なPol IIプロモーター配列(ニワトリβ−アクチンプロモーター)の下流及びhGHポリAシグナル配列の上流に融合タンパク質カセットを配置する。アルファヘリックスリンカードメインにより又はなしで、RNA結合ドメイン及び細胞貫通ペプチド融合タンパク質を構築することができる。このベクターを、pEGENSRベクターと組み合わせてトランスフェクトすることができる。
第2親プラスミド(pEGENSR)は、分泌RNAを発現し、例1に記載されるプラスミド及び方法を用いて、表IIからのRNA認識エレメントと表Iからの生物活性RNAとを含む分泌RNAカセットをpEGEN4.1又はpEGEN5.1ベクター(表VIII参照)の多重クローニング部位にクローニングすることによって構築される。このプロセスは、Pol IIIプロモーター(pEGEN4.1に対するヒトU6プロモーター、pEGEN5.1に対するヒトH1プロモーター)からの下流及びPol IIIポリT終止配列の上流にSec−RNAカセットを配置する。このベクターをpEGENFPベクターと組み合わせて細胞にトランスフェクトすることができる。別の場合、このSec−shRNA(例えば、プライマー、プロモーター、表IIからの認識RNAヘアピン、shRNA及びPol IIIポリT終止配列)に対する発現カセットを、適切な制限酵素によりpEGENSRプラスミドから放出し、融合タンパク質を含むpEGEN FPベクターにライゲーションして、最終プラスミドpBioR(1)を作製する。
各種CPP−RBD融合タンパク質によって送達される各種Sec−shRNAの具体例は、表Iに示され、更に、USSN61/160287及び61/160288(例1〜20)に記載されており、それらの両方は、それらの全体が参照により本明細書に組み込まれる。
また、異なる生物活性RNA配列、例えば、アンチセンス、リボザイム、アプタマー、アロザイム、siRNA、miRNA、又は本明細書に記載される他の生物学的活性分子のいずれかを用いて、記載されるpEGENSRベクター中においてshRNA配列を置換することもできる。
(例3)−CPP−NCS−RBD融合タンパク質によって送達されるSec−shRNAによるバイオリアクタープラスミドpBioR(2)の構築。
表I及び表VIIからの遺伝子標的並びにあらゆる他の遺伝子標的のいずれかをターゲッティングするSec−shRNAの送達をも、例1及び2に記載される同じ方法を用いて構築されるプラスミドpBioR(2)によって達成する。pBioR2は、表IIIからのRNA結合ドメインと表IVからの細胞貫通ペプチドとに融合した表Vからの非古典的分泌ドメインを含む融合タンパク質をコードする。この融合タンパク質を、アルファヘリックスリンカー又は他のリンカードメインにより又はなしで構築する。融合タンパク質及びSec−shRNAに対する発現カセットを、例1及び2に記載される方法を用いて表VIIIからのpEGENプラスミドにライゲーションする。各種CPP−NCS−RBD融合タンパク質によって送達される各種Sec−shRNAの具体例は、表Iに示され、更に、USSN61/160287及び61/160288(例21〜26)に記載されており、それらの両方は、それらの全体が参照により本明細書に組み込まれる。
(例4)−CPP−NCS−RBD融合タンパク質によって送達されるSec−shRNAによるバイオリアクタープラスミドpBioR(3)の構築。
表I及び表VIIからの遺伝子標的並びにあらゆる他の遺伝子標的のいずれかをターゲッティングするSec−shRNAの送達をも、プラスミドpBioR(3)によって達成する。プラスミドpBioR(3)は、pBioR(1)の構築について例1に記載される同じ方法を用いて構築され、バイオリアクター細胞のダイサータンパク質をターゲッティングするshRNA分子をコードする更なる発現カセットをそれが含むことを以外はpBioR(2)と同様である。ダイサーをターゲッティングするshRNAは、以下の配列、TTGGCTTCCTCCTGGTTATGTTCAAGAGACATAACCAGGAGGAAGCCAAを有する。融合タンパク質及びSec−shRNAに対する発現カセットを、例1及び2に記載される方法を用いて表VIIIからのpEGENプラスミドにライゲーションする。ダイサーをターゲッティングするshRNAは、ヒトH1プロモーターから発現し、Pol−IIIポリTターミネーターにより終止する。ダイサータンパク質をターゲッティングするshRNA分子をコードする更なるカセットを有するプラスミドの一例を図13に示す。
(例5)−NCS−RBD−CPP融合タンパク質によって送達されるSec−shRNAによるバイオリアクタープラスミドpBioR(14)の構築。
表I及び表VIIからの遺伝子標的並びにあらゆる他の遺伝子標的のいずれかをターゲッティングするSec−shRNAの送達を、プラスミドpBioR(14)によって達成する。プラスミドpBioR(14)は、pBioR(1)の構築について例1及び2に記載される同じ方法を用いて構築され、Sec−shRNAに対する発現カセットの位置以外はpBioR(2)と同様である。Sec−shRNAは、表IIIからのRNA結合ドメインと表IVからの細胞貫通ペプチドとに融合した表Vからの非古典的分泌ドメインを含む融合タンパク質を伴う。このプラスミドにおいて、5’非翻訳領域(UTR)又は融合タンパク質に対するコード配列の中のいずれかに配置した人工イントロンの中で、Sec−shRNAをコードする。適切な制限部位を用いて、人工イントロンのスプライスドナー及びスプライスアクセプター部位の間で、Sec−shRNA配列をサブクローニングする。この多機能性転写産物は、ニワトリβ−アクチンプロモーターから発現し、ヒト成長ホルモンポリアデニル化シグナルによって終止する。この種の構築を有するプラスミドの例を図11及び12に示す。
(例6)−NCS−RBD−CPP融合タンパク質によって送達されるSec−リボザイムによるバイオリアクタープラスミドpBioR(15)の構築。
表I及び表VIIにおいて列挙される遺伝子標的並びにあらゆる他の遺伝子標的のいずれかをターゲッティングするSec−リボザイムの送達を、表IIIからのRNA結合ドメインと表IVからの細胞貫通ペプチドとに融合した表Vからの非古典的分泌ドメインを含む融合タンパク質をコードするpBioR(1)の構築について例1及び2に記載される同じ方法を用いて構築したプラスミドpBioR(15)によって達成する。この特定の融合タンパク質を伴うSec−リボザイムは、表IIからのRNA認識エレメントと、表I及び表VIIにおいて列挙される遺伝子標的のmRNA転写産物のいずれかをターゲッティングするRNAリボザイムとを含む。融合タンパク質及びSec−リボザイムに対する発現カセットをpEGEN2.1プラスミドにライゲーションする。融合タンパク質は、ニワトリβ−アクチンプロモーターから発現し、ヒト成長ホルモンポリアデニル化シグナルにより終止し、Sec−リボザイムは、ヒトU6プロモーターから発現し、Pol−IIIポリTターミネーターにより終止する。Sec−リボザイムRNA及びCPP−NCS−RBD融合タンパク質に対する発現ベクターの具体例は、USSN61/160287及び61/160288(例39及び40)に記載されており、それらの両方は、それらの全体が参照により本明細書に組み込まれる。
(例7)−NCS−RBD−CPP融合タンパク質によって送達されるSec−アンチセンスRNA(Sec−asRNA)によるバイオリアクタープラスミドpBioR(16)の構築。
表I及び表VIにおいて列挙される遺伝子標的並びにあらゆる他の遺伝子標的のいずれかをターゲッティングするSec−asRNAの送達を、表IIIからのRNA結合ドメインと表IVからの細胞貫通ペプチドとに融合した表Vからの非古典的分泌ドメインを含む融合タンパク質をコードするpBioR(1)の構築について例1及び2に記載される同じ方法を用いて構築したプラスミドpBioR(16)によって達成する。この特定の融合タンパク質を伴うSec−asRNAは、表IIからのRNA認識エレメントと、表I及び表VIIにおいて列挙される遺伝子標的のmRNA転写産物のいずれかに対して相補的なアンチセンスRNAとを含む。融合タンパク質に対する発現カセットは、pEGEN2.1プラスミドにライゲーションされ、ニワトリβ−アクチンプロモーターから発現し、ヒト成長ホルモンポリアデニル化シグナルにより終止する。Sec−asRNAに対する発現カセットは、pEGEN1.1プラスミドにライゲーションされ、SV40プロモーターから発現し、ヒト成長ホルモンポリアデニル化シグナルによって終止する。このSec−asRNA(プライマー、U6プロモーター、表IIからの認識RNAヘアピン、asRNA及びPol IIIポリT終止配列)に対する発現カセットを、例2に記載したように、適切な制限酵素によりpEGEN1.1プラスミドから放出し、融合タンパク質を含むpEGEN2.1/FPベクターにライゲーションして、最終プラスミドpBioR(16)を作製する。Sec−asRNA及びCPP−NCS−RBD融合タンパク質に対する発現ベクターの具体例は、USSN61/160287及び61/160288(例41及び42)に記載されており、それらの両方は、それらの全体が参照により本明細書に組み込まれる。
(例8)−NCS−RBD−CPP融合タンパク質によって送達されるSec−アンチセンスRNA(Sec−asRNA)によるバイオリアクタープラスミドpBioR(17)の構築。
表I及び表VIIからの遺伝子標的並びにあらゆる他の遺伝子標的のいずれかをターゲッティングするSec−asRNAの送達を、表IIIからのRNA結合ドメインと表IVからの細胞貫通ペプチドとに融合した表Vからの非古典的分泌ドメインを含む融合タンパク質をコードするpBioR(1)の構築について例1及び2に記載される同じ方法を用いて構築したプラスミドpBioR(17)によって達成する。この特定の融合タンパク質を伴うSec−asRNAは、表IIからのRNA認識エレメントと、表I及び表VIIにおいて列挙される遺伝子標的のmRNA転写産物のいずれかに対して相補的なアンチセンスRNAとを含む。融合タンパク質及びSec−asRNAに対する発現カセットは、pEGEN2.1プラスミドにライゲーションされ、ニワトリβ−アクチンプロモーターから発現し、ヒト成長ホルモンポリアデニル化シグナルにより終止する。このプラスミドにおいて、5’非翻訳領域(UTR)又は融合タンパク質に対するコード配列の中のいずれかに配置した人工イントロンの中で、Sec−asRNAをコードする。この多機能性転写産物は、ニワトリβ−アクチンプロモーターから発現し、ヒト成長ホルモンポリアデニル化シグナルによって終止する。
(例9)−NCS−RBD融合タンパク質によって分泌されるSec−アプタマーによるバイオリアクタープラスミドpBioR(18)の構築。
表I及び表VIIにおいて列挙される細胞外受容体タンパク質並びにあらゆる他の細胞外受容体タンパク質のいずれかをターゲッティングするSec−アプタマーの送達を、表IIIからのRNA結合ドメインに融合した表Vからの非古典的分泌ドメインを含む融合タンパク質をコードするpBioR(1)の構築について例1及び2に記載される同じ方法を用いて構築したプラスミドpBioR(18)によって達成する。この特定の融合タンパク質を伴うSec−アプタマーは、表IIからのRNA認識エレメントと、表I及び表VIIにおいて列挙される細胞外受容体タンパク質のいずれかをターゲッティングするアプタマー配列とを含む。融合タンパク質及びSec−アプタマーに対する発現カセットをpEGEN2.1プラスミドにライゲーションする。融合タンパク質は、ニワトリβ−アクチンプロモーターから発現し、ヒト成長ホルモンポリアデニル化シグナルにより終止し、Sec−アプタマーは、ヒトU6プロモーターから発現し、Pol−IIIポリTターミネーターにより終止する。
Sec−アプタマー及びNCS−RBD融合タンパク質に対する発現ベクターの具体例は、USSN61/160287及び61/160288(例43及び44)に記載されており、それらの両方は、それらの全体が参照により本明細書に組み込まれる。
(例10)−NCS−RBD−CPP融合タンパク質によって分泌されるSec−アプタマーによるバイオリアクタープラスミドpBioR(19)の構築
表I及び表VIIにおいて列挙される細胞タンパク質並びにあらゆる他の細胞タンパク質のいずれかをターゲッティングするSec−アプタマーの送達を、表IIIからのRNA結合ドメインと表IVからの細胞貫通ペプチドとに融合した表Vからの非古典的分泌ドメインを含む融合タンパク質をコードするpBioR(1)の構築について例1及び2に記載される同じ方法を用いて構築したプラスミドpBioR(19)によって達成する。この特定の融合タンパク質を伴うSec−アプタマーは、表IIからのRNA認識エレメントと、表I及び表VIIにおいて列挙される細胞内タンパク質のいずれかをターゲッティングするアプタマー配列とを含む。融合タンパク質及びSec−アプタマーを同じ方法で構築し、pBioR(1)について例1及び2において記載したものと同じプロモーターから発現させる。
Sec−アプタマー及びCPP−NCS−RBD融合タンパク質に対する発現ベクターの具体例は、USSN61/160287及び61/160288(例45及び46)に記載されており、それらの両方は、それらの全体が参照により本明細書に組み込まれる。
(例11)−ポリマー仲介トランスフェクションを用いたHeLa培養細胞へのバイオリアクタープラスミドの投与。
インビトロで、レシピエント細胞系、例えばHeLa細胞にpEGENFP及びpEGENSRを同時トランスフェクトする(例2参照)ことによってバイオリアクター細胞を作製する。HeLa細胞を、ポリマー送達剤によるトランスフェクションのための調製において80%コンフルエントの密度にDMEM+10%ウシ胎児血清(2mLの総体積)中において6ウェルプレート中において培養する。成長培地を細胞から除去し、37℃に予熱した1mLのDMEMのみ(無血清)で置き換える。室温で20分間のDMEM中におけるインキュベーションによって送達試薬とpBioRプラスミドとの間でトランスフェクション複合体を形成する(各適用について最適化したDNA及び試薬濃度)。トランスフェクション複合体を、各培養物への滴下によってHeLa細胞に加え、37℃のインキュベーターに戻す。5時間のインキュベーション後、DMEM+20%血清をトランスフェクション培地に加え、10%の終濃度の血清を最終的な体積2mLで生成する。一過性にトランスフェクトした細胞を、標的細胞に加えることによってバイオリアクターとしての使用のために準備する。
(例12)−ポリマー仲介トランスフェクションを用いた培養細胞へのバイオリアクタープラスミドの投与。
インビトロでレシピエント細胞系にpBioRプラスミド(本出願のどこか他の場所において、及び前の実施例において記載したいずれかのプラスミド)をトランスフェクトすることによってバイオリアクター細胞を作製する。一過性にトランスフェクトしたバイオリアクター細胞の作製のためのトランスフェクションプロトコールは、HeLa細胞に基づいたバイオリアクターの作製について例11に記載されたものと同様である。適切なレシピエント培養細胞の非限定的な例としては、A549細胞、Jurkat細胞、HepG2細胞、NIH3T3細胞、Renka細胞、CT26細胞、PC−12細胞、Cos−1細胞、Cos−7細胞及びCHO細胞が挙げられる。例11に記載される方法を、これらの培養細胞と、他の公知の樹立細胞系とに適用することができる。
(例13)−エレクトロポレーション仲介トランスフェクションを用いたHeLa培養細胞へのバイオリアクタープラスミドの投与。
バイオリアクター細胞を、エレクトロポレーションによるpBioRプラスミドによるトランスフェクションによってHeLaレシピエント細胞から産生する。HeLa細胞を、エレクトロポレーションのための調製において80%コンフルエントの密度にDMEM+10%ウシ胎仔血清(15mLの総体積)中において100mm培養皿中において培養する。細胞を、トリプシンによりウェルから放出し、遠心分離(4℃で5分間、500×g)によって回収する。細胞ペレットを成長培地中において再懸濁し、血球計数器を用いて細胞密度を測定し、最終的な体積を成長培地によって調整し、5×10細胞/mLを生じる。細胞を、20ugのpBioRプラスミドと共にエレクトロポレーションキュベットに移し、電極間に配置する。エレクロトポレーターを260V(静電容量=1000μF、無限内部抵抗)で放電し、キュベットを2分間静止させる。次いで、エレクトロポレートした細胞を、成長培地によるキュベットの2回の洗浄処理と共に、培養皿に移す。細胞を、5%のCO下で37℃で48時間成長させる。
バイオリアクター細胞を、HeLa細胞に基づいたバイオリアクターの作製について上記した通りのpBioRプラスミドによるトランスフェクションによって他のレシピエント細胞から産生する。適切なレシピエント培養細胞の非限定的な例としては、A549細胞、Jurkat細胞、HepG2細胞、NIH3T3細胞、Renka細胞、CT26細胞、PC−12細胞、Cos−1細胞、Cos−7細胞及びCHO細胞が挙げられる。バイオリアクター細胞の機能を実証するアッセイは、例16において記載される通りである。
(例14)−ウイルス仲介トランスフェクションを用いたHeLa培養細胞へのバイオリアクタープラスミドの投与。
単離したプラスミドバックボーン、ウイルスの構造的及び非構造的成分に対する発現カセット、及び生物活性RNAに対する発現カセットからウイルスベクターを構築する。発現カセットのPCR増幅、プラスミドバックボーンへの発現カセットのサブクローニング、結果として生じるウイルス産生ベクターの増幅及び単離、並びにプラスミド配列の後続の確認を、全て例1に記載したように実施する。幾つかのDNAウイルス発現カセット、例えば、アデノウイルス及びアデノ関連ウイルス(2〜3、7、11、19、21)並びに単純ヘルペスウイルス(5、14〜15、18)又はRNAウイルス発現カセット、例えば、レンチウイルス(6、20、22、24)、シンドビスウイルス(9)、マウス白血病ウイルス(10、12〜13、16)又はフォーミーウイルス(8、17)、及び本出願のどこか他の場所において、及び前の実施例において記載した生物活性RNA分子のいずれかの内の1つからウイルスベクターを構築する。ウイルスごと、ウイルスコートタンパク質及び融合タンパク質をコードする構造遺伝子を、pVir1を作製するPol−IIプロモーター配列からの発現のためのpEGENバックボーンプラスミドのいずれかにサブクローニングする。それとは別に、ポリメラーゼ及びアクセサリータンパク質をコードする非構造遺伝子を、生物活性RNA配列及び融合タンパク質配列と結合させ、pVir2を作製するPol−IIプロモーター配列からの発現のための第2pEGENプラスミドにサブクローニングする。プラスミドpVir1及びpVir2をレシピエント細胞に同時トランスフェクトして、ウイルス産生細胞を作製する。次いで、バイオリアクター細胞へのバイオリアクター発現カセットの投与における使用のためにウイルス粒子を精製し、濃縮する。
(例15)−ポリマー仲介トランスフェクション及び安定な細胞系の作製を用いたHeLa培養細胞へのバイオリアクタープラスミドの投与。
バイオリアクター細胞を、例11〜14に記載したようにpBioRプラスミドによるトランスフェクションによってHeLaレシピエント細胞から産生する。レシピエント細胞ゲノムへのpBioRプラスミドの安定な組み込みを、選択培地中における拡大成長によって達成する。安定な組み込みのためのpBioRプラスミドは、pUC開始点及びカナマイシン耐性遺伝子の他に、ピューロマイシン耐性遺伝子又はG418/ネオマイシン耐性遺伝子を含む。新しくトランスフェクトした細胞を、完全な非選択培地中において48時間回収することができる。これらの細胞を、次いで選択培地に移し、3日ごとに培地交換を行いながら5%のCO2下で37℃で成長させる。安定に組み込まれたプラスミドを有する細胞の個々の単離物を個々のウェルに移し、増殖させる。次いで、これらの増殖した細胞系を最適バイオリアクター活性についてアッセイする。バイオリアクター細胞の機能を実証するアッセイは、例16に記載される通りである。
(例16)−細胞培養におけるRNA−タンパク質複合体の産生及び分泌を確認するためのアッセイ
例11〜14に記載した方法を用いてpBioR発現ベクター又はヌルベクターを細胞にトランスフェクトする。バイオリアクター細胞の成功した作製を、以下の、(1)融合タンパク質の産生、(2)Sec−RNAの産生、(3)融合タンパク質によるSec−RNAの結合、及び(4)RNA−タンパク質複合体の成功した分泌、の1つ又は複数を確認するアッセイによって確認する。融合タンパク質の産生を、融合タンパク質をコードするプラスミド由来mRNA転写産物を検出するRT−PCRに基づいたアッセイと、融合タンパク質自体を検出する抗体に基づいたアッセイとを通して確認することができる。融合タンパク質を検出する目的のために、商業的に入手可能な抗体によって認識される短い「タンパク質標識」を融合タンパク質の配列中に含めることができる。これらのタンパク質標識を、バイオリアクター細胞の機能を確認するために使用するが、必ずしも機能的バイオリアクター融合タンパク質中に含めるというわけではない。
プラスミド由来mRNA転写産物を検出するため、製造業者のプロトコールに従ってTri−Reagent(Sigma−Aldrich、製品#T9424)を用いて、pBioRトランスフェクト、ヌルベクタートランスフェクト及び非トランスフェクト細胞、即ち、HeLa細胞、又は本明細書に記載され、それ以外の場合、本技術分野において公知の他の細胞のいずれかからトータルRNAを調製する。cDNAライブラリーを、ポリTプライマーを用いてトータルRNAから調製し、PCR増幅のための鋳型として用いる。各々が異なるサイズの産物を産生する2つの別々の増幅反応のためのプライマー((1)β−アクチン又はGAPDH等の内部対照遺伝子に由来する配列を増幅するプライマー、及び(2)融合タンパク質をコードするmRNAに特異的な配列を増幅するプライマー)を、PCR反応中に含める。産物を、1×TAE中における2%アガロースゲルのランニング上、又は1×TBE中における10%アクリルアミドゲルのランニング上で分解する。臭化エチジウムで染色し、302nmのUV光の照射を行うことによって、産物を非トランスフェクト細胞(陰性対照)、ヌルベクター(融合タンパク質のないバックボーンベクター)をトランスフェクトした細胞、及び潜在的なバイオリアクター(即ち、pBioRをトランスフェクトした細胞)について比較する。非トランスフェクト対照細胞は、内部対照遺伝子に対する単一のPCR産物を有するが、成功したバイオリアクターは、内部対照遺伝子と融合タンパク質をコードする転写産物との両方に対する産物を有する。
融合タンパク質の直接検出を、pBioRトランスフェクト、ヌルベクタートランスフェクト及び非トランスフェクト細胞、並びにそれらの細胞が成長する培地からの総タンパク質の回収によって達成する。総タンパク質をアセトン沈殿によって各試料から濃縮し、濃縮タンパク質をELISA分析用ネイティブ緩衝液又はウエスタンブロット分析用変性緩衝液のいずれかの中で再懸濁する。各アッセイは、標準法と、融合タンパク質中に存在する内部対照遺伝子(β−アクチン又はGAPDH)及びタンパク質標識に特異的な抗体とを利用する。考察されるように、タンパク質標識を、バイオリアクター細胞の機能を確認するための好都合な手段として融合タンパク質中に含める。非トランスフェクト及びヌルベクタートランスフェクト対照細胞は、内部対照遺伝子に対して検出される単一タンパク質を有するが、成功したバイオリアクターは、内部対照タンパク質及び融合タンパク質の両方を有する。
Sec−RNAの成功した産生は、RNAの転写と核からのその転写産物の搬出との両方を含む。プラスミド由来Sec−RNA分子の産生を示すためにRT−PCRアッセイを用い、細胞質中におけるRNAの蓄積を実証するために細胞分画を用いる。製造業者のプロトコールに従って、PARIS RNA単離キット(Ambion、製品#1921)によって細胞分画を達成する。cDNAライブラリーを、ランダムヘキサマー非特異的プライマーを用いて分画RNAから調製し、PCR増幅のための鋳型として用いる。各々が異なるサイズの産物を産生する2つの別々の増幅反応のためのプライマー((1)β−アクチン又はGAPDH等の内部対照遺伝子に由来する配列を増幅するプライマー、及び(2)Sec−RNAに特異的な配列を増幅するプライマー)を、PCR反応中に含める。産物を、1×TAE中における2%アガロースゲルのランニング上、又は1×TBE中における10%アクリルアミドゲルのランニング上で分解する。臭化エチジウムで染色し、302nmのUV光の照射を行うことによって、産物をヌルベクタートランスフェクト及び非トランスフェクト細胞(陰性対照)並びに潜在的なバイオリアクターについて比較する。ヌルベクタートランスフェクト及び非トランスフェクト対照細胞は、内部対照遺伝子に対する単一のPCR産物を有するが、成功したバイオリアクターは、内部対照遺伝子とSec−RNAとの両方に対する産物を有する。
図16は、Sec−RNA及び融合タンパク質の発現を確認するための実験の結果を示す。図16Aに示される分泌RNAレポーター転写産物分析のために、CT26細胞にpE3.1 Sec−レポーター(図15A)をトランスフェクトした。48時間後、製造業者の推奨プロトコールに従ってQuigenのRNEasyキットを用いてトータル細胞RNAを非トランスフェクト対照細胞及びトランスフェクトバイオリアクター細胞から回収し、精製RNAをRT−PCRを用いて増幅し、3%低融解アガロースゲル(1×TAE)上において分離した。sec−RNAに対するRT−PCR反応は、18S rRNA(内部対照、196bp産物)と分泌RNAレポーター(100bp産物)との両方を増幅するためのプローブ及びプライマーを含んだ。非トランスフェクト対照細胞(「U」)は、18S rRNA内部対照(18S)だけを示すが、トランスフェクト細胞は、18S rRNA産物と、プラスミドだけに対応する親レポーターRNA産物(「R」)又はプラスミド及びSec−RNA配列インサートに対応する分泌レポーターRNA産物(「SR」)との両方を示す。図16Bは、CT26細胞にバイオリアクター融合タンパク質を発現するプラスミドをトランスフェクトした融合タンパク質発現分析を示す。48時間後、細胞を、TENT緩衝液中において採取し、5分間沸騰させ、16,000×Gで15分間スピンして細胞デブリを除去し、細胞溶解物(総タンパク質)の回収を可能にした。非トランスフェクト細胞、並びにpE3.1 Sec−レポーター及びpE1.1 TAT+(タンパク質N RNA結合ドメイン及び6×ヒスチジンエピトープ標識に融合したTAT)又はpE2.1TAT+(タンパク質N RNA結合ドメイン及び6×ヒスチジンエピトープ標識に融合したTAT)のいずれかをトランスフェクトした細胞からの細胞溶解物のアリコートを、ブロッティング抗体に対する陽性対照タンパク質と共にPVDF膜にスポットした。ブロットを、色素形成基質によって発生させ、イメージドキュメンテーションセンターによって記録した。
融合タンパク質によるSec−RNA分子の結合を、上記記載のペプチド標識を介したRNA−タンパク質複合体の免疫沈降によって実証する。内部対照遺伝子(β−アクチン又はGAPDH)又は融合タンパク質中に存在するタンパク質標識に特異的な抗体をプロテインAセファロース(PAS)ビーズ又はプロテインGセファロース(PGS)ビーズに結合する。ビーズを細胞溶解緩衝液中において再水和し、抗体を、4℃で終夜、ビーズによるインキュベーションによって結合する。非特異的抗体(しばしば、免疫前血清)を免疫沈降アッセイのための陰性対照として用いる。抗体結合ビーズを溶液からスピンし(1500×gで5分間)、上清を除去し、抗体結合ビーズを細胞溶解緩衝液によって洗浄する。タンパク質を、pBioRトランスフェクト、ヌルベクタートランスフェクト及び非トランスフェクト細胞、並びにそれらの細胞が成長する培地から調製する。その厳密な組成物を特異的な精製に調整するRNA−タンパク質複合体を保存するために、タンパク質をネイティブ細胞溶解緩衝液中において回収する。典型的な細胞溶解緩衝液組成は、20mMトリス(pH7.5)、150mM NaCl、1mM EDTA及び0.05%Nonidet P−40である。タンパク質抽出物を抗体結合ビーズに加え、反応ごとに最適化した条件下で免疫沈降を行う。典型的な沈殿物を室温で2〜4時間インキュベートする。単離したRNA−タンパク質複合体を溶液からスピンし、上清を沈殿投入物として回収する。ビーズを繰り返し洗浄して、非特異的に結合したタンパク質を除去するが、洗浄の総回数は、沈殿ごとに実験的に決定する。単離した複合体を、抗体上に存在する結合部位に対して競合する融合タンパク質標識のものにマッチするペプチドを有するビーズから溶出する。次いで、単離したRNAを、ノーザンブロットによって、又は上記の通りのRT−PCRによって検出する。
RNA−タンパク質複合体の成功した分泌を、細胞外マトリックス、又は培養細胞の場合は培地中におけるSec−RNAの検出によって確認する。無傷のRNA−タンパク質複合体を、上記のように免疫沈降を介して培地から単離することができるか、又はトータルRNAを、製造業者のプロトコールに従ってTri−Reagent(Sigma−Aldrich、製品#T9424)を用いて調製することができる。Sec−RNAを、ノーザンブロットによって、又は上記の通りのRT−PCRによって検出する。
図17は、バイオリアクター細胞からのRNA−タンパク質複合体の分泌を確認するための実験の結果を示す。非トランスフェクト対照CT26細胞、並びにpE3.1 Sec−レポーターと分泌RNA及びバイオリアクター融合タンパク質を発現するpE1TAT−RBDプラスミドとをトランスフェクトしたCT26細胞に由来するトータル細胞RNAを、製造業者の推奨プロトコールに従ってQiagenのRNEasyキットを用いて48時間のトランスフェクションの後で回収した。また、細胞培養培地からRNAをも回収し、RNAeasyキットを用いて精製した。精製RNAをRT−PCR増幅反応のための鋳型として用い、増幅産物を、DNAサイズ標準品と共に3%低融解アガロースゲル(1×TAE)上で分離した。RT−PCRを、18S rRNA(内部対照)及び分泌RNAレポーターに対するプローブ及びプライマーによって実施した。図17A及び17Bは、pE3.1 Sec−レポーター及びpE1.1 TAT(+)(適切なRBDに融合したTAT)又はpE1.1 TAT(−)(陰性対照RBDに融合したTAT)のいずれかによるトランスフェクションアッセイの結果を示す。図17Aの左側パネルは、親レポータープラスミド(「R」)、sec−RNA配列インサート(「SR」)を含むレポータープラスミド、pE1.1 TAT(+)又はpE1.1 TAT(−)を同時トランスフェクトしたsec−RNAレポータープラスミドをトランスフェクトした細胞から回収した細胞溶解物に対するRT−PCR産物を示す。図17Aの右側パネルは、sec−RNAレポータープラスミド及びpE1.1 TAT(+)又はpE1.1 TAT(−)を同時トランスフェクトした細胞に由来する細胞溶解物(「C」)及び細胞外培地試料(「M」)の両方を示す。示されるように、pE3.1 Sec−レポーター及びpE1TAT(+)プラスミドをトランスフェクトした細胞において、RNA−タンパク質複合体は培地中に分泌されるが、一方で、pE3.1 Sec−レポーター及びpE1TAT(−)プラスミド(陰性対照RBDに融合したTAT)をトランスフェクトした細胞において、融合タンパク質(sec−RNA)は培地中に存在しなかった。
(例17)−ルシフェラーゼ/アルカリホスファターゼレポーター遺伝子のCPP仲介分泌活性をアッセイすること。
図14Aは、CPP−ルシフェラーゼ/CPP−アルカリホスファターゼレポーターシステムを用いてバイオリアクター細胞の分泌活性を生成し、試験するための例示的なトランスフェクションアッセイを示す非限定的な概略図である。細胞貫通ペプチドをルシフェラーゼレポーター遺伝子に融合する融合タンパク質カセットを、PCRを介して作製する。これらのPCR産物は、SV40プロモーターとhGHポリAテイル配列との間に融合タンパク質カセットを配置するpEGEN1.1プラスミドへのサブクローニングを促進するためにDNAの各末端において制限部位を含む。例11〜14に記載したように、結果として生じるプラスミドをインビトロで多くの異なる細胞型にトランスフェクトして、バイオリアクターレポーター細胞を作製する。総タンパク質を成長培地及び細胞から回収し、両方においてルシフェラーゼ活性を測定して、細胞の内側及び外側における標識されたルシフェラーゼ分子の分布を確立する。分泌のための必要条件を、ルシフェラーゼ/アルカリホスファターゼ単独及びスクランブルCPPドメインに融合したルシフェラーゼ/アルカリホスファターゼを含む対照タンパク質との比較を通して確立する。
図14Bは、レポータープラスミドをトランスフェクトし、インビトロで培養した細胞からのルシフェラーゼレポータータンパク質のCPP仲介分泌を示す。CT26細胞に、ルシフェラーゼ又はTAT−ルシフェラーゼ融合タンパク質を発現するプラスミドをトランスフェクトした。48時間後、細胞培地をPBSと置き換え、細胞を更に3時間、37℃でインキュベートした。PBS上清を回収し、細胞をTENT緩衝液中に溶解した。標準法を用いて、可溶化細胞タンパク質及びPBS上清の当量についてルシフェラーゼ活性を測定した。細胞及び上清画分中に存在する相対ルシフェラーゼ活性は、両画分において観察される総ルシフェラーゼ活性の百分率として示す。ルシフェラーゼレポータータンパク質にTAT細胞貫通ペプチドを加えることによって、トランスフェクト細胞からの及び上清中へのルシフェラーゼ活性の分布がシフトする。
(例18)−スプリットGFPレポーター遺伝子のCPP仲介送達をアッセイすること
図18は、GFPレポーターシステムを用いてバイオリアクター細胞の移入活性を生成し、試験するための例示的なトランスフェクションアッセイを示す非限定的な概略図である。スプリットGFPレポーターシステムからの単離したドメインに細胞貫通ペプチドを融合する融合タンパク質カセットをPCRによって作製する。別々のPCR反応は、GFP相補的断片をコードするタンパク質カセットを作製する。これらのPCR産物は、SV40プロモーターとhGHポリAテイル配列との間に融合タンパク質カセット及びGFP相補的断片カセットを配置するpEGEN1.1プラスミドへのサブクローニングを促進するためにDNAの各末端において各々制限部位を含む。結果として生じるプラスミドをインビトロで細胞に独立してトランスフェクトして、CPP−GFP融合タンパク質を発現するバイオリアクターレポーター細胞とGFP相補的断片を発現する標的細胞とを作製する。バイオリアクター細胞と標的細胞とを混合することによって実験を開始する。バイオリアクター細胞からのCPP融合タンパク質の分泌と標的細胞への後続の移入とを、結果として生じるGFPシグナルによるGFP相補的断片への活性化領域のドッキングの際に検出する。
(例19)−培養におけるmRNA転写産物ノックダウンの目的のためのHeLa細胞へのバイオリアクター細胞トランスフェクション試薬の適用
例11〜14から産生したものや例16に記載した方法を用いて確認したもの等のバイオリアクター細胞を、Sec−RNA分子がターゲッティングする遺伝子産物をノックダウンする目的のために標的細胞に直接適用する。トランスフェクションにおいて用いられる特定のpBioRプラスミド及びレシピエント細胞を、対象となる遺伝子標的及び標的細胞同一性によって決定する。本例において、VEGF転写産物をターゲッティングするshRNAを有するSec−shRNA−融合タンパク質複合体を分泌するNIH3T3バイオリアクター細胞をHeLa標的細胞にトランスフェクトする。マウス由来バイオリアクター細胞を用いてヒト由来標的細胞にトランスフェクトする場合、種特異的プライマーセットを用いることにより、ヒト標的細胞においてVEGF転写産物のノックダウンを観察することが可能である。ヒト細胞におけるVEGFタンパク質の欠乏と、分泌されたタンパク質の量の後続の減少とを、ヒトタンパク質に特異的なVEGF抗体によるアッセイを用いて培地中において検出することもできる。
例11〜14に記載したように、pBioRプラスミドによるNIH3T3細胞のトランスフェクションによってNIH3T3レシピエント細胞からバイオリアクター細胞を産生する。例16に記載したアッセイによってバイオリアクター機能をも確認する。NIH3T3細胞の一過性トランスフェクションの後にバイオリアクター細胞を分離又は精製することは必要でない。HeLa細胞を、50%コンフルエントの密度にDMEM+10%ウシ胎児血清(2mLの総体積)中において6ウェルプレート中において培養する。トリプシン処理及び遠心分離(500×gで5分間)によってバイオリアクター細胞を回収する。HeLa標的細胞のために用いた同じ成長培地中において細胞ペレットを再懸濁し、血球計数器を用いて細胞密度を測定する。HeLa標的細胞にバイオリアクター細胞を加え、組み合わせた培養物を5%CO下で37℃でインキュベートする。標的細胞に対するバイオリアクター細胞の最適比を、細胞及び遺伝子標的の各系について実験的に決定する。例16に記載したように、それぞれmRNA転写産物又はタンパク質のノックダウンをアッセイするために、バイオリアクター細胞を加えた48〜96時間後に各細胞培養物からRNA又はタンパク質試料を回収する。
(例20)−細胞外マトリックスへのRNAアプタマーのバイオリアクター仲介送達
本例は、アプタマー、例えば、gp130受容体仲介シグナル伝達経路の活性化因子であるオンコスタチンMタンパク質をターゲッティングするアプタマーを分泌するバイオリアクター細胞の分泌活性を決定するための例示的なトランスフェクションアッセイを記載する(図19参照)。アッセイは、レポーターシステムと、オンコスタチンMタンパク質をターゲッティングする分泌RNAアプタマーとの使用を用いる。例11〜14に記載したように、融合タンパク質に対する発現プラスミド(pEGENFP、例2)と、オンコスタチンMをターゲッティングするRNAアプタマーに対する発現プラスミド(pEGENSR、例2)とを、インビトロで多くの異なる細胞型にトランスフェクトして、RNAアプタマーを分泌するバイオリアクター細胞を作製する。gp130仲介STAT3シグナル伝達経路(SABiosciences、Cignal Reporter Assays、カタログ#CCS−9028)に応答するプロモーターエレメントの制御下でルシフェラーゼタンパク質を発現するレポータープラスミドをインビトロでHepG2細胞(gp130発現細胞)にトランスフェクトして、標的(レポーター)細胞を作製する。48時間後、細胞培地を、オンコスタチンMに対するアプタマーを分泌するバイオリアクター細胞から回収し、室温で3時間、組み換えオンコスタチンMタンパク質(0.2〜20ng/mL)と共にインキュベートし、標的タンパク質への分泌アプタマーの結合を可能にする。次いで、培地を標的(レポーター)細胞に移し、培養物を37℃で24時間インキュベートする。対照には、レポーター細胞への直接の組み換えオンコスタチンMタンパク質、非トランスフェクト細胞からの培地と共にインキュベートしたオンコスタチンM、プラスミド(pEGENSR)を発現するRNAアプタマーだけをトランスフェクトしたバイオリアクター細胞からの培地と共にインキュベートしたオンコスタチンM、ミスマッチRNA結合ドメインを発現する細胞からの培地と共にインキュベートしたオンコスタチンM、及びpEGENSRトランスフェクト細胞から精製したRNAアプタマーにより処置したオンコスタチンMの添加が含まれる。例17に記載したようにルシフェラーゼアッセイを実施する。オンコスタチンMをターゲッティングするアプタマーを含む培地と共にインキュベートしたレポーター細胞は、オンコスタチンM単独と共にインキュベートした又はオンコスタチンM及び対照培地と共にインキュベートしたレポーター細胞より低いルシフェラーゼ活性を有する。バイオリアクター細胞からの他のアプタマーの分泌を、適切なルシフェラーゼ又は他のレポーターベクターシステムによる同様の方法を用いてアッセイすることができる。
(例21)−細胞外マトリックスへのRNAアプタマーのバイオリアクター仲介送達。
本例は、アプタマー、例えば、HER3をターゲッティングするアプタマーを分泌するバイオリアクター細胞の分泌活性を決定するための例示的なトランスフェクションアッセイを記載する(図20参照)。アッセイは、レポーターシステムと、HER3タンパク質をターゲッティングする分泌RNAアプタマーとの使用を用いる。例11〜14に記載したように、融合タンパク質に対する発現プラスミド(pEGENFP、例2)と、HER3をターゲッティングするRNAアプタマーに対する発現プラスミド(pEGENSR、例2)とを、インビトロで多くの異なる細胞型にトランスフェクトして、RNAアプタマーを分泌するバイオリアクター細胞を作製する。HER3受容体タンパク質(例えば、MCF7)を発現するレポーター細胞を別々に培養する。48時間後、細胞培地を、HER3に対するアプタマーを分泌するバイオリアクター細胞から回収し、HER3発現レポーター細胞に移し、培養物を37℃で24〜72時間インキュベートする。対照には、非トランスフェクト細胞からの培地、RNAアプタマー発現プラスミド(pEGENSR)だけをトランスフェクトしたバイオリアクター細胞からの培地、ミスマッチRNA結合ドメインを発現する細胞からの培地、及びpEGENSRトランスフェクト細胞から精製したRNAアプタマーの添加が含まれる。細胞成長を、製造業者のプロトコールに従ってPromegaのCellTiter 96 Aqueous Non−Radioactive Cell Proliferation Assay(カタログ#G5421)を用いてモニタする。HER3をターゲッティングするアプタマーを含む培地と共にインキュベートしたレポーター細胞は、対照培地と共にインキュベートしたレポーター細胞より低い細胞成長を示す。バイオリアクター細胞からの他のアプタマーの分泌を、適切なレポーターベクターシステムによる同様の方法を用いてアッセイすることができる。
(例22)−標的細胞の細胞質へのshRNAのバイオリアクター仲介送達。
本例は、バイオリアクター細胞の分泌活性を決定するための例示的なトランスフェクションアッセイと、標的細胞の細胞質への阻害性shRNAの後続の送達とを記載する(図21参照)。例11〜14に記載したように、融合タンパク質に対する発現プラスミド(pEGENFP、例2)と、shRNAに対する発現プラスミド(pEGENSR、例2)とを、インビトロで多くの異なる細胞型にトランスフェクトして、バイオリアクター細胞を作製する。shRNAがターゲッティングするmRNA転写産物を発現する標的細胞を別々に培養する。48時間後、細胞培地を、バイオリアクター細胞から回収し、標的細胞に移し、培養物を37℃で24〜72時間インキュベートする。対照には、非トランスフェクト細胞からの培地、shRNA発現プラスミド(pEGENSR)だけをトランスフェクトしたバイオリアクター細胞からの培地、ミスマッチRNA結合ドメインを発現する細胞からの培地、及びpEGENSRトランスフェクト細胞から精製したshRNAの添加が含まれる。トータルRNAを標的細胞から調製し、RT−PCR分析を例11に記載したように実施する。標的遺伝子のノックダウンを、非ターゲッティング内部対照遺伝子との比較によって評価する。別の場合、バイオリアクター細胞及び標的細胞を、RT−PCRアッセイにおいて用いるプライマー及びプローブがバイオリアクター細胞中における対応する転写産物を認識しない場合、実験の間に一緒に培養することができる。これは、バイオリアクター細胞に対するある種に由来する細胞系と、標的細胞に対する異なる種に由来する細胞系とを用いることによって最も容易に達成される。この場合、バイオリアクター細胞を、トランスフェクションの24時間後に回収し、RT−PCR分析によってアッセイされる通りのバイオリアクター活性の直接アッセイのために標的細胞と混合することができる。shRNAがターゲッティングするmRNA転写産物を発現する標的細胞を別々に培養する。バイオリアクター細胞からの他のshRNAの分泌を、適切な標的細胞による同様の方法を用いてアッセイすることができる。
(例23)−細胞へのpBioR発現ベクターのエクスビボでの投与
バイオリアクター細胞を、例11〜14に記載したようにpBioRプラスミドによるトランスフェクションによってNIH3T3レシピエント細胞から産生する。バイオリアクター機能を、例16に記載したアッセイによって確認する。本例において、NIH3T3バイオリアクター細胞は、VEGF転写産物をターゲッティングするshRNAを有するSec−shRNA−融合タンパク質複合体を分泌する。バイオリアクター細胞をSCCVII標的細胞(マウス扁平上皮癌系)と混合し、混合物を、各動物の脾腹への皮下注射によってヌードマウス(免疫低下)中に移植する。バイオリアクター活性を、対照と比較したVEGF転写産物と、移植部位を囲む組織中におけるタンパク質レベルとの評価によってモニタする。バイオリアクター/SCCVII移植片中における腫瘍成長をSCCVII細胞単独又は非機能的バイオリアクター細胞(非特異的shRNA又は送達低下融合タンパク質)と共にSCCVII細胞が投与された対照マウスと比較することによってインビボでバイオリアクター機能をも評価する。
(例24)−マウス筋組織へのバイオリアクター細胞のインビボでの投与。
バイオリアクター細胞を、例11〜14に記載したようにpBioRプラスミドによるトランスフェクションによって初代マウス筋芽細胞レシピエント細胞から産生する。バイオリアクター機能を、例16に記載したアッセイを用いて確認する。本例において、バイオリアクター細胞は、ミオスタチン(骨格筋成長の負の調節因子)に対するmRNA転写産物をターゲッティングするshRNAを有するSec−shRNA−融合タンパク質複合体を分泌する。バイオリアクター細胞を、mdxマウス(デュシェンヌ型筋ジストロフィーのためのモデル系)の脛骨筋に移植する(Li S、Kimura E、Ng R、Fall BM、Meuse L、Reyes M、Faulkner JA、Chamberlain JS.、デュシェンヌ型筋ジストロフィーの細胞及び遺伝子治療研究のための高機能ミニジストロフィン/GFP融合遺伝子(A highly functional mini−dystrophin/GFP fusion gene for cell and gene therapy studies of Duchenne muscular dystrophy.)、Hum Mol Genet.2006年5月15日;15(10):1610〜22)。バイオリアクター活性を、ミオスタチン転写産物と、移植部位を囲む組織中におけるタンパク質レベルとの評価によってモニタする。Tri−Reagent(Sigma−Aldrich、製品#T9424)を用いて、未処置マウス、非特異的Sec−shRNAを分泌するバイオリアクター細胞を移植したマウス、及びミオスタチン転写産物をターゲッティングするshRNAを分泌するバイオリアクター細胞を移植したマウスから回収した脛骨筋からRNA及びタンパク質試料を調製する。次いで、ミオスタチン転写産物及びタンパク質の相対レベルを、例16に記載したように、それぞれRT−PCR又はELISAによって評価することができる。バイオリアクター細胞又は非機能バイオリアクター細胞が投与されていない対照マウスに対してバイオリアクター移植片中における体重、筋肉質量、筋肉サイズ及び筋力を比較することによって、インビボでバイオリアクター機能をも評価する(Bogdanovich S、Krag TO、Barton ER、Morris LD、Whittemore LA、Ahima RS、Khurana TS.、ミオスタチン遮断によるジストロフィー筋の機能的改善(Functional improvement of dystrophic muscle by myostatin blockade.)、Nature.2002年11月28日;420(6914):418〜21)。
(例25)−マウス神経組織へのバイオリアクター細胞のインビボでの投与
例11〜14に記載したように、pBioRプラスミドによるトランスフェクションによってマウス神経幹細胞(mNSC)からバイオリアクター細胞を産生する。例16に記載したアッセイによってバイオリアクター機能を確認する。本例において、mNSCバイオリアクター細胞は、変異ハンチンチン(htt)タンパク質のCAGリピート伸長に対するmRNA転写産物をターゲッティングするshRNAを有するSec−shRNA−融合タンパク質複合体を分泌する。バイオリアクター細胞をハンチントン病についてのマウスモデルの脳に移植して、httタンパク質の変異形に対するmRNA転写産物のバイオリアクター仲介ノックダウンの有効性を評価する。Tri−Reagent(Sigma−Aldrich、製品#T9424)を用いて、未処置マウス、非特異的Sec−shRNAを分泌するバイオリアクター細胞を移植したマウス、及び変異ハンチンチン転写産物をターゲッティングするshRNAを分泌するバイオリアクター細胞を移植したマウスから回収したマウス脳組織からRNA試料を調製する。次いで、ハンチンチン転写産物の相対レベルを、例16に記載したように、RT−PCRによって評価することができる。ハンチントン病についてのマウスモデルはまた、線条体組織中における異常タンパク質形成及び異常歩行をも示し、それらの両方は、バイオリアクター活性の生理学的リードアウトを提供することができる。Yang CR、Yu RK.、トレハロース摂取と組み合わせた神経幹細胞の脳内移植は、ハンチントン病のマウスモデルにおける病状を軽減する(Intracerebral transplantation of neural stem cells combined with trehalose ingestion alleviates pathology in a mouse model of Huntington’s disease.)、J Neurosci Res.2008年8月5日;87(1):26〜33.;DiFiglia M、Sena−Esteves M、Chase K、Sapp E、Pfister E、Sass M、Yoder J、Reeves P、Pandey RK、Rajeev KG、Manoharan M、Sah DW、Zamore PD、Aronin N.、siRNAによる変異ハンチンチンの治療的サイレンシングは、線条体及び皮質の神経病理学及び行動性欠損を減少させる(Therapeutic silencing of mutant huntingtin with siRNA attenuates striatal and cortical neuropathology and behavioral deficits.)、Proc Natl Acad Sci USA.2007年10月23日;104(43):17204〜9を参照すること。
(例26)−ヒト滑液へのバイオリアクター細胞の投与
例11〜14に記載したように、pBioRプラスミドによるトランスフェクションによってヒト滑膜線維芽細胞からバイオリアクター細胞を産生する。例16に記載したアッセイによってバイオリアクター機能を確認する。本例において、繊維芽細胞バイオリアクター細胞は、IL−1β、IL−6又はIL−18炎症誘発性サイトカインに対するmRNA転写産物をターゲッティングするshRNAを有するSec−shRNA−融合タンパク質複合体を分泌する。抗生物質による選択成長を介して一過性トランスフェクト細胞の注射又は安定細胞の作製のためにトランスフェクト細胞を増殖させる。バイオリアクター細胞を、1×PBS(Ca2+もMg2+も有さない)中に再懸濁し、関節炎患者の関節に注射する(Evans CH、Robbins PD、Ghivizzani SC、Wasko MC、Tomaino MM、Kang R、Muzzonigro TA、Vogt M、Elder EM、Whiteside TL、Watkins SC、Herndon JH.、ヒト関節への遺伝子導入:関節炎の遺伝子治療への進歩(Gene transfer to human joints:progress toward a gene therapy of arthritis.)、Proc Natl Acad Sci USA.2005年6月14日;102(24):8698〜703)。繊維芽細胞バイオリアクター細胞によって産生されたSec−shRNA−融合タンパク質複合体をインターロイキン産生単球に送達し、滑液中に存在するサイトカインの量を減少させる。滑液中に存在するIL−1α、IL−6、IL−18及びTNFαタンパク質の量、並びに疾患の生理学的適応をモニタリングすることによってバイオリアクター機能を評価する。(Khoury M、Escriou V、Courties G、GaIy A、Yao R、Largeau C、Scherman D、Jorgensen C、Apparailly F.、組み合わせた抗サイトカイン低分子干渉RNAリポプレックスによるマウス関節炎の効率的抑制(Efficient suppression of murine arthritis by combined anticytokine small interfering RNA lipoplexes.)、Arthritis Rheum.2008年8月;58(8):2356〜67)。
(例27)−ウイルスベクターの構築
単離したプラスミドバックボーン、ウイルス構造的及び非構造的成分に対する発現カセット、及び生物活性RNAに対する発現カセットからウイルスベクターを構築する。発現カセットのPCR増幅、プラスミドバックボーンへの発現カセットのサブクローニング、結果として生じるウイルス産生ベクターの増幅及び単離、並びにプラスミド配列の後続の確認を、全て例1に記載したように実施する。幾つかのDNAウイルス発現カセット、例えば、アデノウイルス及びアデノ関連ウイルス(2〜3、7、11、19、21)並びに単純ヘルペスウイルス(5、14〜15、18)又はRNAウイルス発現カセット、例えば、レンチウイルス(6、20、22、24)、シンドビスウイルス(9)、マウス白血病ウイルス(10、12〜13、16)又はフォーミーウイルス(8、17)、及び本出願のどこか他の場所において、及び前の実施例において記載した生物活性RNA分子のいずれかの内の1つからウイルスベクターを構築する。ウイルスごとに、ウイルスコートタンパク質及び融合タンパク質をコードする構造遺伝子を、pVir1を作製するPol−IIプロモーター配列からの発現のためのpEGENバックボーンプラスミドのいずれかにサブクローニングする。それとは別に、ポリメラーゼ及びアクセサリータンパク質をコードする非構造遺伝子を、生物活性RNA配列と結合させ、pVir2を作製するPol−IIプロモーター配列からの発現のための第2pEGENプラスミドにサブクローニングする。pVir2の中のプロモーター配列の配置は、異なるウイルスのバックボーンのために変化することができる。生物活性RNA分子に対するウイルス非構造遺伝子及び鋳型は、ネイティブウイルスに内在性の又は表VIII内からの共通又は非依存性プロモーター配列のいずれかから発現することができる。プラスミドpVir1及びpVir2をレシピエント細胞に同時トランスフェクトして、ウイルス産生細胞を作製する。
ウイルス産生細胞の成功した作製を、多くの異なる実験的アッセイを介して確認することができる。ウイルス転写産物に特異的なプライマーによるRT−PCRと、ウイルスタンパク質に特異的な抗体によるELISAとを用いて、ウイルス構造遺伝子の発現を評価することができる。ウイルス転写産物に特異的なプライマーと、更に非構造的遺伝子及び生物活性RNAを架橋するプライマーとによるRT−PCRによって、ウイルス非構造遺伝子の発現を評価することもできる。ウイルス産生細胞が成長している培地を回収し、その培地からタンパク質、DNA又はRNAを単離し、次いで、ELISA、PCR又はRT−PCRを用いてウイルスタンパク質又は核酸についてアッセイすることによって、ウイルス粒子の分泌を評価することができる。ヘルパーウイルスを担持する細胞系を利用するプラークアッセイを介して機能的ウイルス粒子を検出することができる。
(例28)−標的培養細胞へのウイルスパッケージング細胞の投与
例11〜14に記載したように、pVirプラスミドによるトランスフェクションによってMDCKレシピエント細胞からウイルスパッケージング細胞を産生する。例29に記載されるアッセイによってウイルスパッケージ機能を確認する。本例において、ウイルスパッケージング細胞は、VEGFタンパク質をターゲッティングするshRNAを担持する複製欠損ウイルスを産生する。これらのウイルス産生細胞を用いて、HeLa細胞中においてVEGFタンパク質をノックダウンして、ウイルス産生マウス細胞をヒト標的細胞から区別するための機序を提供する。RT−PCRにおいて種特異的プライマーセットを、ELISAにおいて種特異的抗体をそれぞれ用いて、ヒト細胞中におけるVEGF mRNA転写産物の欠乏と、分泌タンパク質の量の後続の減少とを検出することができる。HeLa細胞を、50%コンフルエントの密度にDMEM+10%ウシ胎児血清(2mLの総体積)中において6ウェルプレート中において培養する。トリプシン処理及び遠心分離(500×gで5分間)によってウイルスパッケージング細胞を回収する。HeLa標的細胞のために用いた同じ成長培地中において細胞ペレットを再懸濁し、血球計数器を用いて細胞密度を測定する。HeLa標的細胞にウイルスパッケージング細胞を加え、組み合わせた培養物を5%CO下で37℃でインキュベートする。標的細胞に対するウイルスパッケージング細胞の最適比を、細胞及び遺伝子標的の各系について実験的に決定する。それぞれmRNA転写産物又はタンパク質のノックダウンをアッセイするために、ウイルスパッケージング細胞を加えた48〜96時間後に各細胞培養物からRNA又はタンパク質試料を回収する。
(例29)−細胞培養における組み換えウイルスの産生及び分泌を確認するためのアッセイ
例11〜14に記載した方法を用いてpVir発現ベクター又はヌルベクターを細胞にトランスフェクトする。ウイルス産生細胞の成功した作製を、以下の、(1)ウイルスタンパク質成分の産生、(2)生物活性RNA鋳型又は分子を含む部分的ウイルスゲノムの産生、(3)ウイルス粒子中へのSec−RNAのカプセル化、及び(4)ウイルス産生細胞からのウイルス粒子の成功した放出、の1つ又は複数を確認するアッセイによって確認する。ウイルスタンパク質成分の産生を、それらのタンパク質をコードするプラスミド由来mRNA転写産物を検出するRT−PCRに基づいたアッセイと、それらのタンパク質自体を検出する抗体に基づいたアッセイとを通して確認することができる。ウイルスタンパク質を検出する目的のために、商業的に入手可能な抗体によって認識される短い「タンパク質標識」をウイルスタンパク質の配列中に含めることができる。これらのタンパク質標識を、ウイルス産生細胞の機能を確認するために使用するが、必ずしも機能的ウイルス粒子中に含めるというわけではない。
プラスミド由来mRNA転写産物を検出するため、製造業者のプロトコールに従ってTri−Reagent(Sigma−Aldrich、製品#T9424)を用いて、pVirトランスフェクト、ヌルベクタートランスフェクト及び非トランスフェクト細胞、即ち、HeLa細胞、又は本明細書に記載され、それ以外の場合、本技術分野において公知の他の細胞のいずれかからトータルRNAを調製する。cDNAライブラリーを、ポリTプライマーを用いてトータルRNAから調製し、PCR増幅のための鋳型として用いる。各々が異なるサイズの産物を産生する2つの別々の増幅反応のためのプライマー((1)β−アクチン又はGAPDH等の内部対照遺伝子に由来する配列を増幅するプライマー、及び(2)融合タンパク質をコードするmRNAに特異的な配列を増幅するプライマー)を、PCR反応中に含める。産物を、1×TAE中における2%アガロースゲルのランニング上、又は1×TBE中における10%アクリルアミドゲルのランニング上で分解する。臭化エチジウムで染色し、302nmのUV光の照射を行うことによって、産物を非トランスフェクト細胞(陰性対照)、ヌルベクター(融合タンパク質のないバックボーンベクター)をトランスフェクトした細胞、及び潜在的なウイルス産生細胞(即ち、pVirをトランスフェクトした細胞)について比較する。非トランスフェクト対照細胞は、内部対照遺伝子に対する単一のPCR産物を有するが、成功したバイオリアクターは、内部対照遺伝子と融合タンパク質をコードする転写産物との両方に対する産物を有する。
ウイルスタンパク質の直接検出を、pVirトランスフェクト、ヌルベクタートランスフェクト及び非トランスフェクト細胞、並びにそれらの細胞が成長する培地からの総タンパク質の回収によって達成する。総タンパク質をアセトン沈殿によって各試料から濃縮し、濃縮タンパク質をELISA分析用ネイティブ緩衝液又はウエスタンブロット分析用変性緩衝液のいずれかの中で再懸濁する。各アッセイは、標準法と、ウイルスタンパク質中に存在する内部対照遺伝子(β−アクチン又はGAPDH)及びタンパク質標識に特異的な抗体とを利用する。考察されるように、タンパク質標識を、ウイルス産生細胞の機能を確認するための好都合な手段としてウイルスタンパク質中に含める。非トランスフェクト及びヌルベクタートランスフェクト対照細胞は、内部対照遺伝子に対して検出される単一タンパク質を有するが、成功したウイルス産生細胞は、内部対照タンパク質及びウイルスタンパク質の両方を有する。
阻害性RNA鋳型又は分子を有する部分的ウイルスゲノムの成功した産生を、DNA又はRNA産物の増幅を通して確認することができる。プラスミド由来部分的ウイルスゲノムの産生を示すためにRT−PCRアッセイを用い、細胞質中におけるこの核酸の蓄積を実証するために細胞分画を用いる。製造業者のプロトコールに従って、PARIS RNA単離キット(Ambion、製品#1921)によって細胞分画を達成する。cDNAライブラリーを、ランダムヘキサマー非特異的プライマーを用いて分画RNAから調製し、PCR増幅のための鋳型として用いる。各々が異なるサイズの産物を産生する2つの別々の増幅反応のためのプライマー((1)β−アクチン又はGAPDH等の内部対照遺伝子に由来する配列を増幅するプライマー、及び(2)部分的ウイルスゲノムに特異的な配列を増幅するプライマー)を、PCR反応中に含める。産物を、1×TAE中における2%アガロースゲルのランニング上、又は1×TBE中における10%アクリルアミドゲルのランニング上で分解する。臭化エチジウムで染色し、302nmのUV光の照射を行うことによって、産物をヌルベクタートランスフェクト及び非トランスフェクト細胞(陰性対照)並びに潜在的なウイルス産生細胞について比較する。ヌルベクタートランスフェクト及び非トランスフェクト対照細胞は、内部対照遺伝子に対する単一のPCR産物を有するが、成功したウイルス産生細胞は、内部対照遺伝子と部分的ウイルスゲノムとの両方に対する産物を有する。
部分的ウイルスゲノム及び阻害性RNA鋳型又は分子のカプセル化を、CsCl勾配による超遠心分離によってウイルス粒子の単離を通して実証する。ウイルス粒子を、pVirトランスフェクト、ヌルベクタートランスフェクト及び非トランスフェクト細胞から採取し、CsCl勾配精製に供する。核酸を、単離したウイルス粒子から調製し、上記の通りのPCR分析(DNAウイルスバックボーン)又はRT−PCR(RNAウイルスバックボーン)のいずれかのための鋳型として用いる。ウイルス粒子の成功した放出を、細胞外マトリックス、又は培養細胞の場合は培地中におけるウイルスタンパク質又は部分的ウイルスゲノムの検出によって確認する。無傷のウイルス粒子を、培地から、及び上記の通りのPCR又はRT−PCR分析のための鋳型として精製及び使用した核酸から精製し、濃縮することができる。
(例30)−細胞培養において完全なバイオリアクターカセットを担持する組み換えウイルスを産生するウイルスベクターの構築
単離したプラスミドバックボーン、ウイルス構造的及び非構造的成分に対する発現カセット、並びに生物活性RNA及び融合タンパク質に対する発現カセットからウイルスベクターを構築する。発現カセットのPCR増幅、プラスミドバックボーンへの発現カセットのサブクローニング、結果として生じるウイルス産生ベクターの増幅及び単離、並びにプラスミド配列の後続の確認を、全て例1に記載したように実施する。これらのウイルスのベクターは、ウイルス粒子がバイオリアクター発現カセットを担持するようにDNAウイルス(例28において列挙したいずれかのもの)を利用する。ウイルスごとに、ウイルスコートタンパク質及び融合タンパク質をコードする構造遺伝子を、pVir1を作製するPol−IIプロモーター配列からの発現のためのpEGENバックボーンプラスミドのいずれかにサブクローニングする。それとは別に、ポリメラーゼ及びアクセサリータンパク質をコードする非構造遺伝子を、生物活性RNA(単数又は複数)及び融合タンパク質に対する発現カセットと結合させ、pVir3を作製するPol−IIプロモーター配列からの発現のための第2pEGENプラスミドにサブクローニングする。プラスミドpVir1及びpVir3をレシピエント細胞に同時トランスフェクトして、ウイルス産生細胞を作製する。例11〜14に記載した方法を用いて、細胞にpVir発現ベクター又はヌルベクターをトランスフェクトする。
(例31)−細胞培養において完全なバイオリアクターカセットを担持する組み換えウイルスの産生及び分泌を確認するためのアッセイ。
pVirプラスミドをトランスフェクトした細胞は、ウイルス産生細胞になり、標的細胞の感染の際にその標的細胞をバイオリアクター細胞に転化するウイルス粒子を産生する。ウイルス産生細胞の成功した作製を、以下の、(1)ウイルスタンパク質成分の産生、(2)生物活性RNA鋳型又は分子、並びに融合タンパク質のための鋳型を含む部分的ウイルスゲノムの産生、(3)ウイルス粒子中への生物活性RNA鋳型及び融合タンパク質鋳型のカプセル化、(4)ウイルス産生細胞からのウイルス粒子の成功した放出、及び(5)感染標的細胞の中のバイオリアクター活性の成功した生成の1つ又は複数を確認するアッセイによって確認する。ウイルスタンパク質成分の産生を、例27に記載したアッセイを用いて確認する。ウイルスゲノム及びバイオリアクター発現成分の産生を、例16に記載したアッセイを用いて確認する。必要とする核酸のカプセル化を、例29に記載したアッセイを用いて確認する。ウイルス粒子の成功した放出と、感染標的細胞中におけるバイオリアクター活性の生成とを、例16に記載したアッセイを用いて確認する。
(例32)−細胞培養におけるmRNA転写産物のノックダウンの目的のためのHeLa細胞へのウイルス産生細胞の投与
ウイルス産生細胞、例えば、例30〜31から産生したもの及び例31に記載した方法を用いて確認されたものを、生物活性RNA分子がターゲッティングする遺伝子産物をノックダウンする目的のために標的細胞に直接適用する。トランスフェクションにおいて用いられる特定のpVirプラスミド及びレシピエント細胞を、対象となる遺伝子標的及び標的細胞同一性によって決定する。本例において、HeLa標的細胞を、バイオリアクター融合タンパク質とVEGF(又は表VIIに列挙される転写産物のいずれか)をターゲッティングする分泌shRNAとに対する発現カセットを担持するウイルス粒子を作製するMDCKウイルス産生細胞と共培養する。次いで、感染HeLa細胞は、融合タンパク質−Sec−shRNA複合体を産生し、その複合体を増殖培地中に分泌することが可能なバイオリアクター細胞になる。次いで、この培地を、トランスフェクション及び後続のVEGFノックダウンのための2次標的細胞(HeLa又は他の細胞系)に移すことができる。別の場合、標的細胞への適用の前に、6×ヒスチジンエピトープ標識による沈殿を通して融合タンパク質−Sec−shRNA複合体を精製することができる。種特異的プライマーセット及びRT−PCRを用いることにより、ヒト標的細胞中におけるVEGF転写産物のノックダウンを観察することが可能である。ヒト細胞におけるVEGFタンパク質の欠乏と、分泌されたタンパク質の量の後続の減少とを、ヒトタンパク質に特異的なVEGF抗体によるアッセイを用いて培地中において検出することもできる。
(例33)−インビボでのウイルスパッケージング細胞の投与
ウイルスパッケージング細胞を、例11〜14に記載したようにpVirプラスミドによるトランスフェクションによってNIH3T3レシピエント細胞から産生する。ウイルスパッケージ機能を、例29に記載したアッセイによって確認する。本例において、NIH3T3ウイルスパッケージング細胞は、VEGFタンパク質をターゲッティングするshRNAを担持する複製欠損ウイルスを産生する。ウイルスパッケージング細胞をSCCVII標的細胞(マウス扁平上皮癌系)と混合し、混合物を、各動物の脾腹への皮下注射によってヌードマウス(免疫低下)中に移植する。活性を、VEGF転写産物と、移植部位を囲む組織中におけるタンパク質レベルとの評価によってモニタする。Tri−Reagent(Sigma−Aldrich、製品#T9424)を用いて、未処置マウス、非特異的Sec−shRNAを分泌するバイオリアクター細胞を移植したマウス、及びVEGF転写産物をターゲッティングするshRNAを分泌するバイオリアクター細胞を移植したマウスの脾腹から回収した組織からRNA試料を調製する。次いで、VEGF転写産物の相対レベルを、例11に記載したように、RT−PCRによって評価することができる。ウイルス産生/SCCVII移植片中における腫瘍成長をSCCVII細胞単独又は非機能的ウイルス産生細胞(非特異的shRNA又は送達低下ウイルス)と共にSCCVII細胞が投与された対照マウスと比較することによってインビボでウイルスパッケージ機能をも評価する。
(例34)−マウス筋組織へのウイルスパッケージング細胞のインビボでの投与
ウイルスパッケージング細胞を、例11〜14に記載したようにpVirプラスミドによるトランスフェクションによって初代マウス筋芽細胞レシピエント細胞から産生する。ウイルス機能を、例29に記載したアッセイを用いて確認する。本例において、ウイルスパッケージング細胞は、ミオスタチン(骨格筋成長の負の調節因子)に対するmRNA転写産物をターゲッティングするshRNAを有する複製不能ウイルス粒子を産生する。ウイルスパッケージング細胞を、mdxマウス(デュシェンヌ型筋ジストロフィーのためのモデル系)の脛骨筋に移植する(Li S、Kimura E、Ng R、Fall BM、Meuse L、Reyes M、Faulkner JA、Chamberlain JS.、デュシェンヌ型筋ジストロフィーの細胞及び遺伝子治療研究のための高機能ミニジストロフィン/GFP融合遺伝子(A highly functional mini−dystrophin/GFP fusion gene for cell and gene therapy studies of Duchenne muscular dystrophy.)、Hum Mol Genet.2006年5月15日;15(10):1610〜22)。ウイルス活性を、ミオスタチン転写産物と、移植部位を囲む組織中におけるタンパク質レベルとの評価によってモニタする。Tri−Reagent(Sigma−Aldrich、製品#T9424)を用いて、未処置マウス、非特異的shRNAを有するウイルス粒子を産生するウイルス産生細胞を移植したマウス、及びミオスタチン転写産物をターゲッティングするshRNAを有するウイルスパッケージング細胞を移植したマウスから回収した脛骨筋からRNA及びタンパク質試料を調製する。次いで、ミオスタチン転写産物及びタンパク質の相対レベルを、例16に記載したように、それぞれRT−PCR又はELISAによって評価することができる。ウイルスパッケージング細胞又は非機能ウイルスパッケージング細胞が投与されていない対照マウスに対してウイルスパッケージング細胞移植片中における体重、筋肉質量、筋肉サイズ及び筋力を比較することによって、インビボでウイルス機能をも評価する(Bogdanovich S、Krag TO、Barton ER、Morris LD、Whittemore LA、Ahima RS、Khurana TS.、ミオスタチン遮断によるジストロフィー筋の機能的改善(Functional improvement of dystrophic muscle by myostatin blockade.)、Nature.2002年11月28日;420(6914):418〜21.)。
(例35)−マウス神経組織へのウイルスパッケージング細胞の投与
例11〜14に記載したように、pVirプラスミドによるトランスフェクションによってマウス神経幹細胞(mNSC)からウイルスパッケージング細胞を産生する。例29に記載したアッセイによってウイルス機能を確認する。本例において、mNSCウイルスパッケージング細胞は、変異ハンチンチン(htt)タンパク質のCAGリピート伸長を有するmRNA転写産物をターゲッティングするshRNAを担持する複製欠損ウイルスを産生する。ウイルス産生細胞をハンチントン病についてのマウスモデルの脳に移植して、httタンパク質の変異形に対するmRNA転写産物のウイルス仲介ノックダウンの有効性を評価する。Tri−Reagent(Sigma−Aldrich、製品#T9424)を用いて、未処置マウス、非特異的shRNAを含むウイルス粒子を産生するウイルス産生細胞を移植したマウス、及び変異ハンチンチン転写産物をターゲッティングするshRNAを有するウイルス産生細胞を移植したマウスから回収したマウス脳組織からRNA試料を調製する。次いで、ハンチンチン転写産物の相対レベルを、例11に記載したように、RT−PCRによって評価することができる。
(参考文献)
Lund PE, Hunt RC, Gottesman MM, Kimchi-Sarfaty C. Pseudovirions as Vehicles for the Delivery of siRNA. Pharm Res. 2009 Dec 9.
Koerber JT, Jang JH, Schaffer DV. DNA shuffling of adeno-associated virus yields functionally diverse viral progeny. Mol Ther. 2008 Oct;16(10):1703-9.
Cascante A, Abate-Daga D, Garcia-Rodriguez L, Gonzalez JR, Alemany R, Fillat C. GCV modulates the antitumoural efficacy of a replicative adenovirus expressing the Tat8-TK as a late gene in a pancreatic tumour model. Gene Ther. 2007 Oct;14(20):1471-80.
Ring CJ. Cytolytic viruses as potential anti-cancer agents. J Gen Virol. 2002 Mar;83(Pt 3):491-502.
Parada C, Hernandez Losa J, Guinea J, Sanchez-Arevalo V, Fernandez Soria V, Alvarez-Vallina L, Sanchez-Prieto R, Ramon y Cajal S. Adenovirus E1a protein enhances the cytotoxic effects of the herpes thymidine kinase-ganciclovir system. Cancer Gene Ther. 2003 Feb;10(2):152-60.
Tiede A, Eder M, von Depka M, Battmer K, Luther S, Kiem HP, Ganser A, Scherr M. Recombinant factor VIII expression in hematopoietic cells following lentiviral transduction. Gene Ther. 2003 Oct;10(22):1917-25.
Lee YJ, Galoforo SS, Battle P, Lee H, Corry PM, Jessup JM. Replicating adenoviral vector-mediated transfer of a heat-inducible double suicide gene for gene therapy. Cancer Gene Ther. 2001 Jun;8(6):397-404.
Nestler U, Heinkelein M, Lucke M, Meixensberger J, Scheurlen W, Kretschmer A, Rethwilm A. Foamy virus vectors for suicide gene therapy. Gene Ther. 1997 Nov;4(11):1270-7.
Tseng JC, Daniels G, Meruelo D. Controlled propagation of replication-competent Sindbis viral vector using suicide gene strategy. Gene Ther. 2009 Feb;16(2):291-6.
Kikuchi E, Menendez S, Ozu C, Ohori M, Cordon-Cardo C, Logg CR, Kasahara N, Bochner BH. Highly efficient gene delivery for bladder cancers by intravesically administered replication-competent retroviral vectors. Clin Cancer Res. 2007 Aug 1;13(15 Pt 1):4511-8.
Bourbeau D, Lau CJ, Jaime J, Koty Z, Zehntner SP, Lavoie G, Mes-Masson AM, Nalbantoglu J, Massie B. Improvement of antitumor activity by gene amplification with a replicating but nondisseminating adenovirus. Cancer Res. 2007 Apr 1;67(7):3387-95.
Hiraoka K, Kimura T, Logg CR, Tai CK, Haga K, Lawson GW, Kasahara N. Therapeutic efficacy of replication-competent retrovirus vector-mediated suicide gene therapy in a multifocal colorectal cancer metastasis model. Cancer Res. 2007 Jun 1;67(11):5345-53.
Hiraoka K, Kimura T, Logg CR, Kasahara N. Tumor-selective gene expression in a hepatic metastasis model after locoregional delivery of a replication-competent retrovirus vector. Clin Cancer Res. 2006 Dec 1;12(23):7108-16.
Varghese S, Rabkin SD, Nielsen GP, MacGarvey U, Liu R, Martuza RL. Systemic therapy of spontaneous prostate cancer in transgenic mice with oncolytic herpes simplex viruses. Cancer Res. 2007 Oct 1;67(19):9371-9.
Varghese S, Rabkin SD, Nielsen PG, Wang W, Martuza RL. Systemic oncolytic herpes virus therapy of poorly immunogenic prostate cancer metastatic to lung. Clin Cancer Res. 2006 May 1;12(9):2919-27.
Qiao J, MorenoJ, Sanchez-Perez L, Kottke T, Thompson J, Caruso M, Diaz RM, Vile R. VSV-G pseudotyped, MuLV-based, semi-replication-competent retrovirus for cancer treatment. Gene Ther. 2006 Oct;13(20):1457-70.
Heinkelein M, Hoffmann U, Lucke M, Imrich H, Muller JG, Meixensberger J, Westphahl M, Kretschmer A, Rethwilm A. Experimental therapy of allogeneic solid tumors induced in athymic mice with suicide gene-transducing replication-competent foamy virus vectors. Cancer Gene Ther. 2005 Dec;12(12):947-53.
Anesti AM, Peeters PJ, Royaux I, Coffin RS. Efficient delivery of RNA Interference to peripheral neurons in vivo using herpes simplex virus. Nucleic Acids Res. 2008 Aug;36(14):e86.
Gorbatyuk M, Justilien V, Liu J, Hauswirth WW, Lewin AS. Suppression of mouse rhodopsin expression in vivo by AAV mediated siRNA delivery. Vision Res. 2007 Apr;47(9):1202-8.
Scherr M, Venturini L, Battmer K, Schaller-Schoenitz M, Schaefer D, Dallmann I, Ganser A, Eder M. Lentivirus-mediated antagomir expression for specific inhibition of miRNA function. Nucleic Acids Res. 2007;35(22):e149.
Chen W, Liu M, Jiao Y, Yan W, Wei X, Chen J, Fei L, Liu Y, Zuo X, Yang F, Lu Y, Zheng Z. Adenovirus-mediated RNA interference against foot-and-mouth disease virus infection both in vitro and in vivo. J Virol.2006 Apr;80(7):3559-66.
Raoul C, Abbas-Terki T, Bensadoun JC, Guillot S, Haase G, Szulc J, Henderson CE, Aebischer P. Lentiviral-mediated silencing of SOD1 through RNA interference retards disease onset and progression in a mouse model of ALS. Nat Med. 2005 Apr;11(4):423-8.
Bromberg-White JL, Webb CP, Patacsil VS, Miranti CK, Williams BO, Holmen SL. Delivery of short hairpin RNA sequences by using a replication-competent avian retroviral vector. J Virol.2004 May;78(9):4914-6.
Scherr M, Battmer K, Ganser A, Eder M. Modulation of gene expression by lentiviral-mediated delivery of small interfering RNA. Cell Cycle. 2003 May-Jun;2(3):251-7.
Tseng JC, Levin B, Hirano T, Yee H, Panpeno C, Meruelo D. In vivo antitumor activity of sindbis viral vectors. J Natl Cancer Inst. 2002; 94: 1790-1802.
Falcone V, Schweizer M, Neumann-Haefelin C. Replication of primate foamy viruses in natural and experimental hosts. Curr Top Microbiol Immunol. 2003; 277: 161-180.
Reinblatt M. Pin RH, Federoff HJ, Fong Y. Carcinoembryonic antigen directed herpes viral oncolysis improves selectivity and activity in colorectal cancer. Surgery 2004; 136: 579-584.
引用される各文献の全ての開示(特許、特許出願、雑誌論文、要約、実験室マニュアル、本又は他の開示が含まれる)は、これによってその全体が参照により本明細書に組み込まれる。更に、これと共に提出される配列表は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本発明が、その好ましい実施形態を参照して特に示され、記載されたが、形態及び詳細の各種変更が添付の特許請求の範囲によって包含される本発明の範囲から逸脱することなくその中で為され得ることは、当業者によって理解される。
前述の記載及び実施例において特に記載されるもの以外に本発明を実施することができることは明らかである。本発明の多くの修正及び変更は、上記教示に鑑みて可能であり、したがって添付の特許請求の範囲の範囲内である。








Claims (36)

  1. 第1ポリヌクレオチドが、標的遺伝子転写物に向けられた第1生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードし、
    第2ポリヌクレオチドが、RNA結合ドメイン配列及び細胞貫通ペプチド配列を含むポリペプチドをコードする、
    第1ポリヌクレオチド及び第2ポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
  2. 第1ポリヌクレオチドが、標的遺伝子転写物に向けられた生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合によって末端ミニヘリックス配列を含む核酸をコードし、
    第2ポリヌクレオチドが、RNA結合ドメイン配列及び非古典的分泌ドメイン配列を含むポリペプチドをコードする、
    第1ポリヌクレオチド及び第2ポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
  3. 第2ポリヌクレオチドが、非古典的分泌ドメイン配列を更に含むポリペプチドをコードする、請求項1に記載の発現ベクター。
  4. 前記ベクターが、第1プロモーター配列及び終止配列、並びに第2プロモーター配列及びポリA付加配列を更に含み、第1生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列をコードするポリヌクレオチドが、第1プロモーター配列及び終止配列に作動可能に連結し、RNA結合ドメイン配列及び細胞貫通ペプチド配列をコードするポリヌクレオチドが、第2プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結する、請求項1に記載の発現ベクター。
  5. 前記ベクターが、第1プロモーター配列及び終止配列、並びに第2プロモーター配列及びポリA付加配列を更に含み、第1生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列をコードするポリヌクレオチドが、第1プロモーター配列及び終止配列に作動可能に連結し、RNA結合ドメイン配列及び非古典的分泌ドメイン配列をコードするポリヌクレオチドが、第2プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結する、請求項2に記載の発現ベクター。
  6. 前記ベクターが、第1プロモーター配列及び終止配列、並びに第2プロモーター配列及びポリA付加配列を更に含み、第1生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列をコードするポリヌクレオチドが、第1プロモーター配列及び終止配列に作動可能に連結し、RNA結合ドメイン配列、細胞貫通ペプチド及び非古典的分泌ドメイン配列をコードするポリヌクレオチドが、第2プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結する、請求項3に記載の発現ベクター。
  7. 第1発現カセットが、プロモーター配列、標的遺伝子に向けられた第1生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列及び終止配列を含み、第1生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列が、プロモーター配列及び終止配列に作動可能に連結し、
    第2発現カセットが、プロモーター配列、RNA結合ドメイン配列、細胞貫通ペプチド配列及びポリA付加配列を含み、RNA結合ドメイン配列及び細胞貫通ペプチド配列が、プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結する
    第1発現カセット及び第2発現カセットを含む発現ベクター。
  8. 第1発現カセットが、プロモーター配列、標的遺伝子に向けられた第1生物活性RNA配列、認識RNA配列、場合によって末端ミニヘリックス配列及び終止配列を含み、第1生物活性RNA配列、認識RNA配列及び場合による末端ミニヘリックス配列が、プロモーター配列及び終止配列に作動可能に連結し、
    第2発現カセットが、プロモーター配列、RNA結合ドメイン配列、非古典的分泌ドメイン配列及びポリA付加配列を含み、RNA結合ドメイン配列及び非古典的分泌ドメイン配列が、プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結する
    第1発現カセット及び第2発現カセットを含む発現ベクター。
  9. 第2発現カセットが、非古典的分泌ドメイン配列を更に含み、RNA結合ドメイン配列、細胞貫通ペプチド配列及び非古典的分泌ドメイン配列が、プロモーター配列及びポリA付加配列に作動可能に連結する、請求項7に記載の発現ベクター。
  10. 発現ベクターが、ウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を更に含む、請求項1に記載の発現ベクター。
  11. 前記ベクターが、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列を更に含み、ウイルスポリメラーゼ(単数又は複数)及びウイルスアクセサリータンパク質(単数又は複数)をコードするポリヌクレオチド配列(単数又は複数)が、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する、請求項10に記載の発現ベクター。
  12. 第3発現カセットが、1つ又は複数のプロモーター配列、ウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列、並びに1つ又はポリA付加配列を含み、ウイルスポリメラーゼ(単数又は複数)及びウイルスアクセサリータンパク質(単数又は複数)をコードするポリヌクレオチド配列(単数又は複数)が、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する、第3発現カセットを更に含む、請求項7に記載の発現ベクター。
  13. 発現ベクターが、ウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列を更に含む、請求項2に記載の発現ベクター。
  14. 前記ベクターが、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列を更に含み、ウイルスポリメラーゼ(単数又は複数)及びウイルスアクセサリータンパク質(単数又は複数)をコードするポリヌクレオチド配列(単数又は複数)が、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する、請求項13に記載の発現ベクター。
  15. 第3発現カセットが、1つ又は複数のプロモーター配列、ウイルス複製のために必要な1つ又は複数のウイルスポリメラーゼ及び1つ又は複数のウイルスアクセサリータンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列、並びに1つ又はポリA付加配列を含み、ウイルスポリメラーゼ(単数又は複数)及びウイルスアクセサリータンパク質(単数又は複数)をコードするポリヌクレオチド配列(単数又は複数)が、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する、第3発現カセットを更に含む、請求項8に記載の発現ベクター。
  16. 請求項4に記載の発現ベクターを含む細胞。
  17. 請求項5に記載の発現ベクターを含む細胞。
  18. 請求項6に記載の発現ベクターを含む細胞。
  19. 請求項11に記載の発現ベクターと、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列を含む発現ベクターと、医薬的に許容し得る担体とを含む組成物であって、該ウイルスコートタンパク質(単数又は複数)及び該ウイルス融合タンパク質(単数又は複数)をコードする該ポリヌクレオチド配列(単数又は複数)が、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する、上記組成物。
  20. 請求項14に記載の発現ベクターと、1つ又は複数のウイルスコートタンパク質及び1つ又は複数のウイルス融合タンパク質をコードする1つ又は複数のポリヌクレオチド配列、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列を含む発現ベクターと、医薬的に許容し得る担体とを含む組成物であって、該ウイルスコートタンパク質(単数又は複数)及び該ウイルス融合タンパク質(単数又は複数)をコードする該ポリヌクレオチド配列(単数又は複数)が、1つ又は複数のプロモーター配列及び1つ又は複数のポリA付加配列に作動可能に連結する、上記組成物。
  21. 請求項19に記載の組成物を含む細胞。
  22. 請求項20に記載の組成物を含む細胞。
  23. 請求項4に記載の発現ベクターを細胞に投与して、バイオリアクター細胞を作製することを含む、標的細胞中における1つ又は複数の標的遺伝子の発現を調節するための方法であって、バイオリアクター細胞が、標的細胞への送達のための生物活性RNAを産生し、分泌する、上記方法。
  24. 請求項16に記載の細胞を対象に投与することを含む、対象における標的細胞中における1つ又は複数の標的遺伝子の発現を調節するための方法。
  25. 請求項21に記載の細胞を対象に投与することを含む、対象における標的細胞中における1つ又は複数の標的遺伝子の発現を調節するための方法。
  26. 請求項4に記載の発現ベクターを対象に投与することを含む、対象における標的細胞中における1つ又は複数の標的遺伝子の発現を調節するための方法。
  27. 請求項19に記載の組成物を対象に投与することを含む、対象における標的細胞中における1つ又は複数の標的遺伝子の発現を調節するための方法。
  28. 請求項21に記載の組成物を対象に投与することを含む、対象における標的細胞中における1つ又は複数の標的遺伝子の発現を調節するための方法。
  29. 請求項22に記載の組成物を対象に投与することを含む、対象における標的細胞中における1つ又は複数の標的遺伝子の発現を調節するための方法。
  30. 請求項4に記載の発現ベクターを細胞に投与することを含む、細胞から生物活性RNA分子を分泌するための方法。
  31. 請求項5に記載の発現ベクターを細胞に投与することを含む、細胞から生物活性RNA分子を分泌するための方法。
  32. 請求項6に記載の発現ベクターを細胞に投与することを含む、細胞から生物活性RNA分子を分泌するための方法。
  33. 請求項19に記載の組成物を細胞に投与することを含む、細胞から生物活性RNA分子を分泌するための方法。
  34. 請求項20に記載の組成物を細胞に投与することを含む、細胞から生物活性RNA分子を分泌するための方法。
  35. 請求項21に記載の細胞を第2細胞に投与することを含む、第2細胞から生物活性RNA分子を分泌するための方法。
  36. 請求項22に記載の細胞を第2細胞に投与することを含む、第2細胞から生物活性RNA分子を分泌するための方法。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2017505638A (ja) * 2014-02-14 2017-02-23 シンヴィヴォ コーポレイション ハイブリッドタンパクおよびその使用

Families Citing this family (37)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU2011207563B2 (en) 2010-01-19 2016-03-10 Northwestern University Synthetic nanostructures including nucleic acids and/or other entities
WO2011113054A2 (en) * 2010-03-12 2011-09-15 Aurasense Llc Crosslinked polynucleotide structure
US9593347B2 (en) 2010-04-16 2017-03-14 University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education Identification of mutations in herpes simplex virus envelope glycoproteins that enable or enhance vector retargeting to novel non-HSV receptors
US8822663B2 (en) 2010-08-06 2014-09-02 Moderna Therapeutics, Inc. Engineered nucleic acids and methods of use thereof
HUE058896T2 (hu) 2010-10-01 2022-09-28 Modernatx Inc N1-metil-pszeudo-uracilt tartalmazó ribonukleinsavak és azok felhasználásai
US8710200B2 (en) 2011-03-31 2014-04-29 Moderna Therapeutics, Inc. Engineered nucleic acids encoding a modified erythropoietin and their expression
US9880151B2 (en) * 2011-05-23 2018-01-30 Phylogica Limited Method of determining, identifying or isolating cell-penetrating peptides
US9464124B2 (en) 2011-09-12 2016-10-11 Moderna Therapeutics, Inc. Engineered nucleic acids and methods of use thereof
RS62993B1 (sr) 2011-10-03 2022-03-31 Modernatx Inc Modifikovani nukleozidi, nukleotidi, i nukleinske kiseline, i njihove upotrebe
CN104114572A (zh) 2011-12-16 2014-10-22 现代治疗公司 经修饰的核苷、核苷酸和核酸组合物
CA2860228A1 (en) * 2011-12-23 2013-06-27 Egen, Inc. Compositions and methods for the delivery of biologically active rnas
US20140371302A1 (en) * 2011-12-29 2014-12-18 Modema Therapeutics, Inc. Modified mrnas encoding cell-penetrating polypeptides
US9572897B2 (en) 2012-04-02 2017-02-21 Modernatx, Inc. Modified polynucleotides for the production of cytoplasmic and cytoskeletal proteins
US9283287B2 (en) 2012-04-02 2016-03-15 Moderna Therapeutics, Inc. Modified polynucleotides for the production of nuclear proteins
DE18200782T1 (de) 2012-04-02 2021-10-21 Modernatx, Inc. Modifizierte polynukleotide zur herstellung von proteinen im zusammenhang mit erkrankungen beim menschen
US9303079B2 (en) 2012-04-02 2016-04-05 Moderna Therapeutics, Inc. Modified polynucleotides for the production of cytoplasmic and cytoskeletal proteins
EP4074834A1 (en) 2012-11-26 2022-10-19 ModernaTX, Inc. Terminally modified rna
EP2970976A4 (en) * 2013-03-15 2016-11-02 Techulon Inc ANTISENSE MOLECULES FOR THE TREATMENT OF STAPHYLOCOCCUS AUREUS INFECTIONS
US8980864B2 (en) 2013-03-15 2015-03-17 Moderna Therapeutics, Inc. Compositions and methods of altering cholesterol levels
WO2015002956A1 (en) * 2013-07-01 2015-01-08 Ohio State Innovation Foundation Exosome delivery system
ES2750608T3 (es) 2013-07-25 2020-03-26 Exicure Inc Construcciones esféricas a base de ácido nucleico como agentes inmunoestimulantes para uso profiláctico y terapéutico
WO2015023797A1 (en) 2013-08-13 2015-02-19 Northwestern University Lipophilic nanoparticles for drug delivery
EP3052106A4 (en) 2013-09-30 2017-07-19 ModernaTX, Inc. Polynucleotides encoding immune modulating polypeptides
MX2016004249A (es) 2013-10-03 2016-11-08 Moderna Therapeutics Inc Polinulcleotidos que codifican el receptor de lipoproteina de baja densidad.
ES2781852T3 (es) 2013-10-28 2020-09-08 Univ Pittsburgh Commonwealth Sys Higher Education Vector de HSV oncolítico
ES2725948T3 (es) 2014-06-04 2019-09-30 Exicure Inc Suministro multivalente de inmunomoduladores mediante ácidos nucleicos esféricos liposomales para aplicaciones profilácticas o terapéuticas
EP3204499A4 (en) 2014-10-06 2018-04-25 Exicure, Inc. Anti-tnf compounds
US9816080B2 (en) * 2014-10-31 2017-11-14 President And Fellows Of Harvard College Delivery of CAS9 via ARRDC1-mediated microvesicles (ARMMs)
US10078092B2 (en) 2015-03-18 2018-09-18 Northwestern University Assays for measuring binding kinetics and binding capacity of acceptors for lipophilic or amphiphilic molecules
EP4089166A1 (en) 2016-01-27 2022-11-16 Oncorus, Inc. Oncolytic viral vectors and uses thereof
US11639371B2 (en) * 2016-02-17 2023-05-02 The Chinese University Of Hong Kong Peptidylic inhibitors of nucleolin (NCL) targeting CAG-repeat RNA toxicity and methods for reducing polyQ-mediated toxicity in polyQ diseases
JP2019515654A (ja) 2016-03-16 2019-06-13 ザ ジェイ. デヴィッド グラッドストーン インスティテューツ 肥満及び/又は糖尿病を処置するための方法及び組成物、並びに候補処置薬剤を識別するための方法及び組成物
SG11201811600PA (en) 2016-06-30 2019-01-30 Oncorus Inc Pseudotyped oncolytic viral delivery of therapeutic polypeptides
RU2771110C2 (ru) 2017-07-26 2022-04-26 Онкорус, Инк. Онколитические вирусные векторы и их применение
WO2019133847A1 (en) 2017-12-29 2019-07-04 Oncorus, Inc. Oncolytic viral delivery of therapeutic polypeptides
EP3818167A4 (en) * 2018-07-05 2022-04-13 The Regents of The University of California COMPOSITIONS AND METHODS FOR DELIVERING RNA TO A CELL
WO2023244760A1 (en) * 2022-06-15 2023-12-21 Duke University Protein library display systems and methods thereof

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000039311A1 (en) * 1998-12-31 2000-07-06 Advanced Research And Technology Institute Human fibroblast growth factor receptor 1 is a co-receptor for infection by adeno-associated virus 2
WO2003060101A2 (en) * 2002-01-11 2003-07-24 University Of Southern California Gene delivery system and methods of use
WO2004041852A2 (en) * 2002-11-05 2004-05-21 Glaxo Group Limited Hiv vaccine
WO2008098933A1 (en) * 2007-02-15 2008-08-21 Dsm Ip Assets B.V. A recombinant host cell for the production of a compound of interest

Family Cites Families (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5585263A (en) * 1994-05-20 1996-12-17 University Of Alabama At Birmingham Research Foundation Purified retroviral constitutive transport enhancer and its use to facilitate mRNA transport, and to produce recombinant, attenuated HIV
US6451592B1 (en) * 1996-04-05 2002-09-17 Chiron Corporation Recombinant alphavirus-based vectors with reduced inhibition of cellular macromolecular synthesis
US20040241845A1 (en) * 1998-05-22 2004-12-02 Luc Desgroseillers Mammalian staufen and use thereof
WO2002027031A2 (en) * 2000-09-28 2002-04-04 Cellomics, Inc. Methods and reagents for live-cell gene expression quantification
CU23225A1 (es) * 2001-12-20 2007-08-30 Ct Ingenieria Genetica Biotech PéPTIDOS PARA EL TRATAMIENTO DEL CáNCER ASOCIADO AL VIRUS PAPILOMA HUMANO (VPH) Y DE OTROS TUMORES EPITELIALES
US20040005593A1 (en) * 2002-03-06 2004-01-08 Rigel Pharmaceuticals, Inc. Novel method for delivery and intracellular synthesis of siRNA molecules
US20050074865A1 (en) * 2002-08-27 2005-04-07 Compound Therapeutics, Inc. Adzymes and uses thereof
WO2004028471A2 (en) * 2002-09-28 2004-04-08 Massachusetts Institute Of Technology Influenza therapeutic
US20040147027A1 (en) * 2003-01-28 2004-07-29 Troy Carol M. Complex for facilitating delivery of dsRNA into a cell and uses thereof
US20070036773A1 (en) * 2005-08-09 2007-02-15 City Of Hope Generation and application of universal T cells for B-ALL
CN101415816A (zh) * 2006-02-02 2009-04-22 雷格内泰克公司 表征生物活性化合物的方法
EP1984399A4 (en) * 2006-02-10 2010-03-03 Univ California TRANSDUCIBLABLE DELIVERY OF SIRANA BY MEANS OF DSRNA BINDEDOMADE FUSIONS TO PTD / CPPS
US9085778B2 (en) * 2006-05-03 2015-07-21 VL27, Inc. Exosome transfer of nucleic acids to cells
CN100549179C (zh) * 2006-08-07 2009-10-14 汪运山 胃癌靶向AFP基因的siRNAs表达载体及其用途
EP3023495B1 (en) * 2010-02-24 2019-05-08 Arrowhead Pharmaceuticals, Inc. Compositions for targeted delivery of sirna

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000039311A1 (en) * 1998-12-31 2000-07-06 Advanced Research And Technology Institute Human fibroblast growth factor receptor 1 is a co-receptor for infection by adeno-associated virus 2
WO2003060101A2 (en) * 2002-01-11 2003-07-24 University Of Southern California Gene delivery system and methods of use
WO2004041852A2 (en) * 2002-11-05 2004-05-21 Glaxo Group Limited Hiv vaccine
WO2008098933A1 (en) * 2007-02-15 2008-08-21 Dsm Ip Assets B.V. A recombinant host cell for the production of a compound of interest

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BIOCONJUGATE CHEM., 2008, VOL.19, P.1017-1024, JPN6014026576, ISSN: 0002841311 *
MOLECULAR THERAPY, 2005, VOL.12, NO.5, P.842-851, JPN6014026570, ISSN: 0002841309 *
NATURE BIOTECHNOLOGY, 2006, VOL.24, NO.6, P.697-702, JPN6014026573, ISSN: 0002841310 *
ウイルス, 2002, VOL.52, NO.1, P.89-94, JPN6014026578, ISSN: 0002841312 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2017505638A (ja) * 2014-02-14 2017-02-23 シンヴィヴォ コーポレイション ハイブリッドタンパクおよびその使用

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