JP2012501674A - 特徴的なマーカー作製方法 - Google Patents
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Abstract
Description
1) 興味のある形質の基礎をなす遺伝子の遺伝的位置の地図作成
2) 隣接したマーカーの同定
3) 密接に連鎖したマーカーの同定による遺伝子の細密な地図作成
4) 最も連鎖するマーカーのDNAマーカー配列の決定
5) 標的遺伝子の地図を作成するのに用いた親株ライン間のマーカー遺伝子座の配列多型の決定
6) 簡便なPCR解析の開発
7) 特徴的なマーカーをテストする、植物材料の遺伝的バックグラウンド(生殖質)における予測値のテスト。
―関心のある形質を選択する工程;
―形質に関連する遺伝子座を決定する工程;
―前記遺伝子座の遺伝子地図位置を決定する工程;
―前記遺伝子座から遺伝学的な距離の範囲に位置するマーカーを同定する工程;
―集団の各個体が前記マーカーを含む生物の集団を提供する工程;
―集団の各個体のマーカーのヌクレオチド配列を決定する工程;
―マーカーのヌクレオチド配列を整列する工程;
―集団のすべてのマーカーで同じヌクレオチドを含む、マーカー配列中の少なくとも一つの位置を選択する工程;
―前記少なくとも一つの位置の両側に近接するマーカー配列にハイブリダイズすることができるオリゴヌクレオチドをデザインする工程であって、前記オリゴヌクレオチドが、前記少なくとも一つの位置で、マーカー中の前記少なくとも一つの位置のヌクレオチドとは異なるヌクレオチド(マーカーヌクレオチド)を更に含む、工程;
―生物のDNA中に前記マーカーヌクレオチドを、前記オリゴヌクレオチドを用いた標的ヌクレオチド交換を使用して導入し、それにより形質と関連するマーカー中にユニークで選択可能なSNPを導入する工程。
―従来の特徴的なマーカーの作製のタイムスパンはかなり不確かであり、12〜36ヶ月が必要となる可能性があり、形質の遺伝子座と植物種に依存する。対照的に、本発明方法によるマーカー作製には13〜16ヶ月かかる。
―TNEにより人工的に導入したマーカーはユニークで、自然には存在しない。本方法では、前記形質およびマーカーを含む遺伝子移入切片は、知的財産の保護そのものの対象となりえ、ならびにそれらの利用と応用は市場でモニターしうる。
―任意の多型のマーカーが見つけにくい、綿、大豆、栽培されるトマト、スイカ、キュウリのような低い多型の農作物にとって、マーカーは前記に述べられた方法によって作製しうる。
―TNEは、繁殖プロセスの経過中に、植物材料内にマーカーの導入を可能にし、既存の優良な材料にマーカーを作製することさえ可能にする。
1) 従来方法の工程2におけるBSAによる細密な地図作製は、1cM間隔以内のマーカーを同定するために必要とされる。異なる遺伝子座の対立遺伝子間の相関が一般的に低い(すなわち、連鎖不平衡の全体の範囲が低い)農作物においては、形質遺伝子座と非常に密接に連鎖したDNAバリアントだけが有意に形質に関連する可能性がある。いくつかの場合では、対応する遺伝子それ自身のクローニングが必要とされうる。
2)単純なPCR検定のデザイン、および構築は、マーカー変換のための標的としてのコピー数の低いDNA配列を同定することが可能かどうかに依存する。特に大きなゲノムを伴う農作物、小麦、大麦、トウモロコシ、コショウおよびレタスにおいては、コンカレントなマーカー(concurrent marker)作成のための、コピー数の少ない配列の同定は簡単ではない。
タバコ、ニコチアナ タバキュム(Nicotiana tabacum)の品種、ぺティハバナ(Petet Havana)ラインSR1のin vitro 茎培養物を、0.8%のDifco寒天を含むMS20培地上、高ガラス広口瓶で、2000 luxの16/8時間明期、25℃、および60〜70 %の相対湿度において維持した。MS20培地は、2(w/v)%スクロースを含み、追加のホルモンを含まず、0.8%のDifco寒天を含む、基本的なMurashigeとSkoogの培地(Murashige, T. and Skoog, F., Physiologia Plantarum, 15: 473-497, 1962)である。3〜6週の成長した茎培養物の、十分に広がった葉を、回収した。前記の葉は1 mmの条片にスライスされ、45 ml MDE基本培地を含む、大きな(100 mm×100 mm)ペトリ皿に移され、30分間の前原形質分離処理をした。MDE基本培地は、総容量900 ml中に0.25 g KCl、1.0 g MgSO4.7H2O、0.136 g KH2PO4、2.5 g ポリビニルピロリドン (分子量 10,000)、6 mg ナフタレン酢酸および2 mg 6−ベンジルアミノプリンを含んでいた。前記の溶液の浸透圧はソルビトールで600 mOsm.kg‐1、pHは5.7に調整された。5 mlの酵素ストックSR1がその後に添加された。酵素ストックは、100 mlにつき、750 mg セルローゼ オノズカR10、500 mg ドライセラーゼ(driselase)および250 mgマセロザイム(macerozyme)R10から成り、ワットマンろ紙と滅菌フィルターでろ過した。葉組織の消化は25℃暗所で終夜行われた。消化された葉は50 umナイロンシーブで、滅菌したビーカーへろ過した。等量の冷KCl洗浄培地を、シーブをリンスするために使用し、プロトプラストの懸濁液とともにプールした。KCl洗浄培地は、540 mOsm.kg-1の浸透圧をもたらすために、リットルあたり2.0 g CaCl2.2H2Oおよび十分な量のKClから成っていた。懸濁液は10 mLチューブに移され、およびプロトプラストは10分間85×g、4℃でペレットにされた。上清は除去され、プロトプラストのペレットは、5 mLの、冷MLm洗浄培地へ注意深く再懸濁した。MLm洗浄培地は、MS 培地(Murashige, T. and Skoog, F., Physiologia Plantarum, 15: 473-497, 1962)の多量栄養で、通常の濃度の半分、リットルあたり2.2 g of CaCl2.2H2O および、540 mOsm.kg-1の浸透圧をもたらす量のマンニトールを含む。2チューブの内容物は組み合わされて、10分間、85×g、4℃で遠心分離された。前述の上清は除去され、およびプロトプラストのペレットは5 mLの、スクロースでマンニトールを置換したMLm培地である、冷MLs洗浄培地に注意深く再懸濁された。
オリゴヌクレオチドはEurogentec (Seraing, Belgium)により合成され、逆相HPLCによって精製され、滅菌ミリQ水に再懸濁された。使用する前に、オリゴヌクレオチドは5分間、95℃まで熱せられた。オリゴヌクレオチド06Q262は、タバコのSurA遺伝子(寄託番号 X07644)に、コドン位置P194で、CCAからCAA(P194Q)の変換をもたらす一塩基ミスマッチ(下線を引かれたヌクレオチド)を導入するために、デザインされた。同様に他のオリゴヌクレオチドも、CCAからCTA(P194L)、またはCCAからCGA(P194R)の変換を作製するためにデザインされた(オリゴヌクレオチド 06Q263 および 06Q264)。
06Q262 5’ TCAGTACCTATCATCCTACGTTGCACTTGACCTGTTATAG [配列番号1]
06Q263 5’ TCAGTACCTATCATCCTACGTAGCACTTGACCTGTTATAG [配列番号2]
06Q264 5’ TCAGTACCTATCATCCTACGTCGCACTTGACCTGTTATAG [配列番号3]
プロトプラスト懸濁液は85×g、10分間、5℃で遠心分離された。上清は除去され、プロトプラストのペレットはKCl洗浄培地中、終濃度106.mL-1になるように再懸濁された。10 mLチューブ中で、プロトプラスト懸濁液250 uL、オリゴヌクレオチド1.6 nmol、PEG溶液250uLはおだやかに、しかし徹底的に混合された。室温で20分インキュベーションした後、5 mL 冷0.275M Ca(NO3)2がドロップワイズで添加された。プロトプラスト懸濁液は10分、85×g、4℃で遠心分離された。上清は除去され、ペレットのプロトプラストは、50 ug.mL-1セフォタキシムおよび50 ug.mL‐1バンコマイシンの添加された1.25 mL To培養培地中で注意深く再懸濁された。To培養培地は、(リットルあたり、pH 5.7)950 mg KNO3、825 mg NH4NO3、220 mg CaCl2.2H2O、185 mg MgSO4.7H2O、85 mg KH2PO4、27.85 mg FeSO4.7H2O、37.25 mg Na2EDTA.2H2O、Hellerの培地 (Heller, R., Ann Sci Nat Bot Biol Veg 14: 1-223, 1953)による多量養素、MorelとWetmoreの培地 (Morel, G. and R.H. Wetmore, Amer. J. Bot. 38: 138-40, 1951)によるビタミン、 2% (w/v) スクロース、3 mg ナフタレン酢酸、1 mg 6-ベンジルアミノプリン、540 mOsm.kg-1の浸透圧をもたらす量のマンニトールを含んでいた。
10日間の培養の後で、アガローススラブは6個に均等に切り、20 nM クロルスルフロンが追加された22.5 mL MAP1AO培地を含むペトリ皿に移された。この培地は(リットルあたり、pH 5.7) 950 mg KNO3、825 mg NH4NO3、220 mg CaCl2.2H2O、185 mg MgSO4.7H2O、85 mg KH2PO4、27.85 mg FeSO4.7H2O、37.25 mg Na2EDTA.2H2O、MurashigeとSkoogの培地(Murashige, T. and Skoog, F., Physiologia Plantarum, 15: 473-497, 1962) による、独自濃度の10分の1の多量養素、MorelとWetmoreの培地(Morel, G. and R.H. Wetmore, Amer. J. Bot. 38: 138-40, 1951) によるビタミン, 6 mg ピルベート、 それぞれ12 mgの リンゴ酸、フマル酸およびクエン酸、3% (w/v) スクロース、6% (w/v) マンニトール、0.03 mg ナフタレン酢酸および0.1 mg 6-ベンジルアミノプリンから成っていた。サンプルは6〜8週間、25℃、弱光でインキュベートされた。その後、成長するカルスはMAP1培地に移され、さらに2〜3週間成長を促された。MAP1培地はMAP1AO培地と同じ組成を持つが、6%の代わりに3% (w/v)マンニトール、および46.2 mg.l−1ヒスチジン (pH 5.7)を伴う。前記の培地は0.8% (w/v) Difco agarで固形化した。
DNAはクロロスルフロン耐性のタバコカルスからDNeasyキット(Qiagen)を用いて分離し、PCR反応の鋳型として使用した。タバコSurA遺伝子中の標的コドンの変換は、プライマー5’GGTCAAGTGCCACGTAGGAT [配列番号4] および 5’GGGTGCTTCACTTTCTGCTC [配列番号 5]を用いて、前記遺伝子中のコドン194を含む、776 bpのフラグメントを増幅し、検出された。除草剤耐性のタバコカルスのヌクレオチド変換はPCR産物のpCR2.1::TOPO(Invitrogen)へのクローニング、および個々のプラスミドの配列決定によって確認された。タバコはALSの二つの対立遺伝子(SurAおよびSurB)を含んでいる。これら遺伝子座のいずれかのP194コドンにおけるヌクレオチドの変換は、クロロスルフロンに対する耐性を与えるのに十分である。タバコは異質四倍体であるので、タバコには、標的変異が生じた可能がある8カ所の標的が存在する可能性がある。8個のSur対立遺伝子のうち一つでも変化を経験すれば、クロロスルフロン耐性を獲得することが予想される。従って、七個の野生型相同遺伝子は変化がない配列を伴い、検出されるだろう。この点に従って、コドン194の塩基の変換を有するものを検出するために、PCR産物を含むプラスミドクローンを10よりも多く配列決定する必要があった。この方法を用いて、いくつかのタバコプロトプラスト形質移入実験からのクロロスルフロン耐性カルスにおいて、SurAまたはSurBのいずれかにおいて異なる塩基に変化した、6個のユニークなカルスを同定することが可能であった(表1)。
種は表1に示した前記のラインの三つから得た。これら3つのラインそれぞれから自家受粉した96個の種(M1)は土壌にまかれ、グリーンハウスで育てられた。植え付け36日後、DNA単離のために、タバコラインにつき48植物から、葉材料が回収された。37日齢の植物はその後再び、0.2 % Tween-20、10 % アセトンおよび140 uM クロロスルフロンの溶液を散布された。クロロスルフロンは、SurAおよびSurB遺伝子座によってコードされた、アミノ酸Leu、Ile、およびValの合成を導く最初の生合成工程を触媒する、酵素(アセト乳酸合成酵素(acetolactate synthase; ALS))を阻害する。ALSのP194変異は、クロロスルフロン非感受性である、ALSの酵素の変化形態を導く。散布された全ての植物は、散布されなかった植物に比較していくらか黄色に変化し、いくつかの葉はモザイクパターンを示したが、これは以前に報告された一時的な現象(イエローフラッシュ(yellow flash))であった。散布20日後、植物は3つのクラスに分類されることができた:感受性、半感受性、および、完全感受性(図1)。感受性植物は散布後成長せず、死ぬ植物さえあった。半感受性植物は成長が減少し、新しく形成される葉は「靴ひも」のような形状を示した。完全感受性の植物は表現型的には散布していないコントロール植物と同一であった。表現型決定のデータは表2に示されている。
SurA遺伝子内に作製した異なる変異に基づいて、対立遺伝子特異的な配列の多型由来(AD SPD)プライマーであり、前記プライマーの3’末端に一つの対立遺伝子選択的なLNA塩基を有することを特徴とするプライマーを、AlleleIDソフトウェアを用いてデザインし、Eurogentecから購入した。LNA(下線が引かれている)を含む対立遺伝子特異的なアンチセンスプライマーは:
野生型C対立遺伝子を検出する
Sur-581-C: 5’GCATCAGTACCGATCATCCTACGTG 3’
ならびに 、変異したG、TおよびA対立遺伝子をそれぞれ検出する
Sur-581-G: 5’GCATCAGTACCGATCATCCTACGTC 3’,
Sur-581-T: 5’GCATCAGTACCGATCATCCTACGTA 3’
および
Sur-581-A: 5’GCATCAGTACCGATCATCCTACGTT 3’
であった。
定量的PCRのための対立遺伝子特異的なプライマーはSurA配列に基づいてデザインされ、および、SurB配列内の(ALS変異サイトから13ヌクレオチド離れた)一ヌクレオチドが異なっていた。SurBに変異を含んでいるライン06および13からの定量的PCRの結果は、野生型対立遺伝子(CAA)と変異した対立遺伝子(CAA/CTA)の増幅を示した。これらSurAに基づくプライマーを使用すると、SurBにおける導入変異について、ヘテロ接合性とホモ接合性のどちらの植物かを区別できなかった。ライン25からの定量PCRの結果は、野生型対立遺伝子(CCA)および変異した対立遺伝子(CAA)の増幅を示しただけでなく、ヘテロ接合耐性とホモ接合耐性植物を区別することも可能であった。ホモ接合耐性植物の前記定量PCRの結果は、ヘテロ接合耐性植物のCt値と比較して、変異した対立遺伝子においてより低いCt値、野生型対立遺伝子においてより高いCt値を示した。
Claims (13)
- 以下の工程を含む、生物内に特徴的なマーカーを作製する方法:
―関心のある形質を選択する工程
―形質と関連する遺伝子座を決定する工程;
―前記遺伝子座の遺伝子地図位置を決定する工程;
―前記遺伝子座からの遺伝的距離の範囲に位置するマーカーを同定する工程;
―集団の各個体が前記マーカーを含む生物の集団を提供する工程;
―集団の各個体のマーカーのヌクレオチド配列を決定する工程;
―マーカーのヌクレオチド配列を整列する工程;
―集団のすべてのマーカーで同じヌクレオチドを含む、マーカー配列中の少なくとも一つの位置を選択する工程;
―前記少なくとも一つの位置の両側に近接するマーカー配列にハイブリダイズすることができるオリゴヌクレオチドをデザインする工程であって、前記オリゴヌクレオチドが、前記少なくとも一つの位置で、マーカー内の前記少なくとも一つの位置のヌクレオチドとは異なるヌクレオチド(マーカーヌクレオチド)を更に含む、工程;
―生物のDNA中に前記マーカーヌクレオチドを、前記オリゴヌクレオチドを用いた標的ヌクレオチド変換を使用して導入し、それにより形質と関連するマーカー内にユニークで選択可能なSNPを導入する工程。 - 前記マーカーが分子マーカー技術によって同定される、請求項1に記載の方法。
- 前記マーカーが、前記形質から最大1 cM、好ましくは最大0.1 cMの距離で位置している、請求項1または2に記載の方法。
- 独立して形質から最大2 cM、好ましくは最大0.2cMに位置して、二つ以上のマーカーが作製される、請求項1から3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記生物が植物、動物または微生物である、請求項1から4のいずれか一項に記載の方法。
- 前記生物が、低い多型生物、例えば、綿(Gossipyum hirsutum)、大豆(Glycine max)、栽培されたトマト(Solanum esculentum)、スイカ(Citrullus lanatus)、キュウリ(Cucumis sativa)である、請求項1から5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記分子マーカー技術が、多重マーカー技術、好ましくはAFLP、RAPD、SSR、SFPおよび/またはSNPから成る群から選択される、請求項1から5のいずれか一項に記載の方法。
- AFLP、RAPD、SSR、SFPおよび/またはSNPから成る群に由来する多重マーカー技術を用いて、少なくとも二つの分子マーカーが独立して得られる、請求項4に記載の方法。
- 前記生物のDNAが繁殖に適したドナーライン由来である、請求項1から8のいずれか一項に記載の方法。
- ユニークで選択可能なマーカーを、多コピーなDNA切片に導入するための、請求項1から9のいずれか一項に記載の方法。
- 既存の繁殖材料に、一つまたは複数の人工的なマーカーを作製する方法の使用。
- 遺伝的に改変させた材料に一つまたは複数のマーカーを導入する方法の使用。
- 繁殖材料にユニークなマーカーを作製するためのTNEの使用。
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