JP2002534966A - オリゴヌクレオチド媒介核酸組換え - Google Patents
オリゴヌクレオチド媒介核酸組換えInfo
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Classifications
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
- C12N15/102—Mutagenizing nucleic acids
- C12N15/1031—Mutagenizing nucleic acids mutagenesis by gene assembly, e.g. assembly by oligonucleotide extension PCR
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J2219/00—Chemical, physical or physico-chemical processes in general; Their relevant apparatus
- B01J2219/00274—Sequential or parallel reactions; Apparatus and devices for combinatorial chemistry or for making arrays; Chemical library technology
- B01J2219/0068—Means for controlling the apparatus of the process
- B01J2219/00686—Automatic
- B01J2219/00689—Automatic using computers
Abstract
Description
第09/408,392号「OLIGONUCLEOTIDE MEDIATE
D NUCLEIC ACID RECOMBINATION」の一部継続出願
である。米国特許出願第09/408,392号は、Crameriらによる1
999年2月5日出願の米国特許出願第60/118,813号「OLIGON
UCLEOTIDE MEDIATED NUCLEIC ACID RECO
MBINATION」の非仮出願であり、そしてまたCrameriらによる1
999年6月24日出願の米国特許出願第60/141,049号「OLIGO
NUCLEOTIDE MEDIATED NUCLEIC ACID REC
OMBINATION」の非仮出願である。
2−289−3US「METHODS FOR MAKING CHARACT
ER STRINGS,POLYNUCLEOTIDES AND POLYP
EPTIDES HAVING DESIRED CHARACTERISTI
CS」の一部継続出願である。代理人整理番号02−289−3USによる出願
は、Selifonovらによる1999年10月12日出願の米国特許出願第
09/416,375号「METHODS FOR MAKING CHARA
CTER STRINGS,POLYNUCLEOTIDES AND POL
YPEPTIDES HAVING DESIRED CHARACTERIS
TICS」の一部継続出願である。米国特許出願第09/416,375号は、
SelifonovおよびStemmerによる1999年1月19日出願の米
国特許出願第60/116,447号「METHODS FOR MAKING
CHARACTER STRINGS,POLYNUCLEOTIDES A
ND POLYPEPTIDES HAVING DESIRED CHARA
CTERISTICS」の非仮出願であり、そしてまたSelifonovおよ
びStemmerによる1999年2月5日出願の米国特許出願第60/118
,854号「METHODS FOR MAKING CHARACTER S
TRINGS,POLYNUCLEOTIDES AND POLYPEPTI
DES HAVING DESIRED CHARACTERISTICSの非
仮出願である。
号3271.002WO0(Majestic,Parsons,Sieber
t & Hsueによって出願)の同時出願した出願「METHODS OF
POPULATING DATA STRUCTURES FOR USE I
N EVOLUTIONARY SIMULATIONS」の一部継続出願であ
る。代理人整理番号3271.002WO0による出願は、Selifonov
およびStemmerによる1999年10月12日出願の米国特許出願第09
/416,837号「METHODS OF POPULATING DATA
STRUCTURES FOR USE IN EVOLUTIONARY
SIMULATIONS」の一部継続出願である。
第09/408,393号「USE OF CODON VARIED OLI
GONUCLEOTIDE SYNTHESIS FOR SYNTHETIC
SHUFFLING」に関連する。
120条に提供されるように、この節に列挙した出願の各々に対する優先権を主
張し、そして各々の利益を請求する。
権の保護を受けるものを含むことを示す。著作権者は、米国特許商標庁の特許フ
ァイルまたは記録に現れるので、特許書類または特許の開示の誰によるファクシ
ミリでの複製に対しても拒絶を有さないが、他の点では、どんなことでも全ての
著作権の権利を受ける。
ダイムシフトを提供した。本発明者らおよびその共同研究者らは、改善された工
業的、農業的、および治療的な遺伝子およびコードされるタンパク質を生成する
ための迅速な人工進化方法論を開発した。これらの方法、ならびにこれらの本発
明の方法を実施するための関連の組成物および装置は、本発明者らおよびその共
同研究者らによる開拓的な研究本体を示す。
ングが記載される。例えば、Stemmerら(1994)「Rapid Ev
olution of a Protein」Nature 370:389−
391;Stemmer(1994)「DNA Shuffling by R
andom Fragmentation and Reassembly:i
n vitro Recombination for Molecular
Evolution」,Proc.Natl.Acad.USA 91:107
47−10751;Stemmer、米国特許第5,603,793号、MET
HODS FOR IN VITRO RECOMBINATION;Stem
merら、米国特許第5,830,721号、DNA MUTAGENESIS
BY RANDOM FRAGMENTATION AND REASSEM
BLY;Stemmerら、米国特許第5,811,238号、METHODS
FOR GENERATING POLYNUCLEOTIDES HAVI
NG DESIRED CHARACTERISTICS BY ITERAT
IVE SELECTION AND RECOMBINATIONは、例えば
、種々の形式(例えば、変異誘発、シャッフリング、および選択の反復サイクル
による)でのインビトロおよびインビボでの核酸、DNA、およびタンパク質の
シャッフリング、ならびに提示されたペプチドおよび抗体のライブラリーの生成
方法を記載する。
により開発されている。上記の刊行物に加えて、Minshullら、米国特許
第5,837,458号、METHODS AND COMPOSITIONS
FOR CELLULAR AND METABOLIC ENGINEER
INGは、例えば、代謝経路の進化および反復シャッフリング技術によるバイオ
プロセシングの増強を提供する。Crameriら(1996)、「Const
ruction And Evolution Of Antibody−Ph
age Libraries By DNA Sguffling」Natur
e Medicine 2(1):100−103は、例えば、抗体ファージラ
イブラリーのための抗体シャッフリングを記載する。DNAシャッフリングに関
するさらなる詳細は、WO95/22625、WO97/20078、WO96
/33207、WO97/33957、WO98/27230、WO97/35
966、WO98/31837、WO98/13487、WO98/13485
、およびWO989/42832、ならびに本発明者らおよびその共同研究者ら
による多数の他の刊行物に見出され得る。
の多数の刊行物はまた、例えば、小さなフラグメントからの、またはさらにはオ
リゴヌクレオチドからの遺伝子の再アセンブリを提供することによりDNAシャ
ッフリングを容易にする技術を記載する。例えば、上記の刊行物に加えて、St
emmerら(1998)米国特許第5,834,252号、END COMP
LEMENTARY POLYMERASE REACTIONは、標的配列を
(例えば、核酸の混合物中で)増幅および検出するためのプロセス、ならびに大
きなポリヌクレオチドを核酸フラグメントからアセンブリするためのプロセスを
記載する。
的かつ強力な適用について重要な新規技術であることを示す。従って、遺伝子シ
ャッフリングを容易にする新規な技術が非常に所望される。本発明は、重要な新
規の遺伝子シャッフリングプロトコル、ならびに本開示の完全な概観から明らか
である多くの他の特徴を提供する。
のオリゴヌクレオチド補助アプローチは、ファミリーシャッフリング手順を特に
容易にして、実質的に単純化されたシャッフリングプロトコルを提供する。この
プロトコルは、全長の相同核酸を単離またはクローニングすることなく、ファミ
リーシャッフリングされた核酸を生成するために用いられ得る。さらに、本明細
書中のオリゴヌクレオチド補助アプローチは、さらに、非相同核酸のシャッフリ
ングにまで拡張され得、それにより、得られる組換え分子における、より大きな
配列スペースを増大し、従ってより大きな分子多様性を増大し得る。この技術は
また、古典的なDNAシャッフリングプロトコル(例えば、DNAse媒介方法
)と、または他の多様性生成手順(例えば、古典的変異誘発)と合わされて、こ
れらの方法の融通性および処理能力を増加させ得る。
。これらの方法の1つの局面では、重複するファミリー遺伝子シャッフリングオ
リゴヌクレオチドのセットがハイブリダイズおよび伸長され、所望の形質および
特性について選択され得る組換え核酸の集団を提供する。代表的には、重複する
ファミリーシャッフリング遺伝子のオリゴヌクレオチドのセットは、複数の相同
性標的核酸に由来するコンセンサス領域のサブ配列を有する複数のオリゴヌクレ
オチドメンバー型を含む。オリゴのセットは、必要に応じて、他の区別し得る特
徴(交差能力、コドンのバリエーションまたは選択などを含む)を提供する。
を提供し、次いでこの変性した組換え核酸が再アニーリングされ得る。得られる
組換え核酸もまた選択され得る。これらの任意のまたは全ての工程は、反復して
繰り返され得、複数の組換え事象および選択事象を提供して、所望の形質または
特性を有する核酸を生成する。
法は、ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドの集団を含む、少な
くとも1セットのフラグメント化核酸を有する組成物を提供する工程、および少
なくとも1つのフラグメント化核酸を少なくとも1つのファミリー遺伝子シャッ
フリングオリゴヌクレオチドと組換える工程により行われる。次いで、この少な
くとも1つのファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドに対応する核
酸サブ配列を有する組換え核酸が再生されて、代表的には全長分子(例えば、全
長タンパク質)をコードする。
酸配列をアラインメントして、配列同一性の保存された領域および配列多様性の
領域を選択することにより提供される。配列多様性の少なくとも1つの領域に対
応する複数のファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドは(連続して
、または並行して)合成される。対照的に、フラグメントのセットは、(例えば
、DNaseを用いて)1以上の相同核酸を切断するか、または少なくとも1つ
の核酸の複数の領域に対応する1セットのオリゴヌクレオチドを合成することに
より、提供される(代表的には、全長核酸に対応するオリゴヌクレオチドが1セ
ットの核酸フラグメントのメンバーとして提供される)。本明細書中のシャッフ
リング手順では、これらの切断フラグメントは、ファミリー遺伝子シャッフリン
グオリゴヌクレオチドと共に、例えば、1以上の組換え反応において用いられ得
る。 オリゴヌクレオチドシャッフリングの反復方法が提供される。本明細書中
で示すように、オリゴヌクレオチドを用いて合成により生成された組換え核酸は
、切断され得、そして標準的な核酸シャッフリング方法論によりシャッフリング
され得るか、またはこの核酸が配列決定され得、そしてこの組換え核酸を組換え
るために用いられる第2のセットのファミリーシャッフリングオリゴヌクレオチ
ドを設計するために用いられ得る。これらの反復技術の一方または両方が続く回
の組換えのために用いられ得、そしてまた組換え産物の選択の回で共に用いられ
得る。選択工程は、組換え核酸の所望の多様性に依存して、1回または数回の組
換えの後であり得る(組換えを行う回数が多いほど、得られる組換え核酸集団の
多様性が高い)。
レオチドの使用は、例えば、組換え反応により生じる組換え体が第2の核酸に対
応する配列内に埋め込まれた第1の核酸に由来する配列ドメインを有する組換え
核酸を提供し、例えば、第2の核酸に由来する埋め込まれた領域に最も類似する
領域が、組換え核酸に存在しない場合、相同な核酸の間での配列同一性ドメイン
または配列多様性ドメインのドメイン交換を提供する。
能力、またはさらに非相同核酸を組換える能力である。これらの方法では、1以
上のセットのフラグメント化核酸が、1セットの交差ファミリー多様性オリゴヌ
クレオチドと組換えられる。これらの交差オリゴヌクレオチドの各々は、低い配
列類似性を有する相同核酸または非相同核酸に由来する複数の配列多様性ドメイ
ンに対応する複数の配列多様性ドメインを有する。1以上の相同核酸または非相
同核酸に由来するフラグメント化オリゴヌクレオチドは、交差オリゴの1以上の
領域にハイブリダイズし得、組換えを容易にする。
リングPCRアンプリコンの方法もまた提供される。これらの方法では、複数の
非均質相同テンプレート核酸が提供される。この複数の非均質相同テンプレート
核酸にハイブリダイズする複数のPCRプライマーもまた提供される。複数のP
CRアンプリコンは、複数のPCRプライマーを用いる複数のテンプレート核酸
のPCR増幅により生成され、次いでこれは組換えられる。代表的には、PCR
プライマーについての配列が、複数の不均質相同テンプレート核酸の配列につい
てアラインメントし、そして配列類似性の領域に対応するPCRプライマーを選
択することにより選択される。
より得られる組成物もまた提供される。複数のオリゴヌクレオチドメンバー型の
オリゴヌクレオチドのライブラリーを含む組成物は、一例である。このライブラ
リーは、少なくとも約2、3、5、10、20、30、40、50、100以上
の異なるオリゴヌクレオチドメンバーを含み得る。このオリゴヌクレオチドメン
バー型は、選択されたセットの複数の相同標的配列の複数のメンバーの複数のサ
ブ配列領域に対応する。複数のサブ配列領域は、例えば、相同標的配列の選択さ
れたセットの複数の重複するかまたは重複しない配列領域を含み得る。オリゴヌ
クレオチドメンバー型は各々、代表的には、相同標的配列の選択されたセットの
少なくとも1つに由来する少なくとも1つのサブ配列に同一な配列を有する。上
記の、または本明細書のどこかに記載される、任意のオリゴヌクレオチド型およ
びセット(例えば、ファミリーシャッフリングオリゴヌクレオチド、交差オリゴ
ヌクレオチド、ドメイン交換オリゴヌクレオチドなど)は、本発明の組成物中に
含まれ得る。オリゴヌクレオチドメンバー型は、複数の相同標的配列に由来する
相同領域に対応する複数の相同オリゴヌクレオチドを含み得る。この実施態様で
は、複数の相同オリゴヌクレオチドの各々は、少なくとも1つの改変体サブ配列
を有する。本明細書中に示されるオリゴヌクレオチド媒介組換えを実施すること
により生じる、核酸およびコードされるタンパク質のライブラリーもまた、本発
明の1つの特徴である。
ゼ(例えば、熱安定性DNAポリメラーゼ(例えば、taq、vent、または
任意の多くの他の市販のポリメラーゼ))、リコンビナーゼ、核酸合成試薬、緩
衝剤、塩、マグネシウム、相同標的配列の選択されたセットの1以上の複数のメ
ンバーを有する1以上の核酸などを含む。
例えば、容器または他の包装材料中に含むキットもまた提供される。この方法を
実施するための本明細書中の組成物およびキットについての使用もまた提供され
る。
相同」である。自然進化の間に、2以上の子孫配列が、親配列から時間をかけて
、すなわち、変異および自然選択に起因して分岐する場合にこれは起きる。人工
的な条件下では、多様性は、例えば、2つの基本的方法のうちの一方において生
じる。第1に、所定の配列は、例えば、代表的なクローニングの間に生じるよう
に、人工的に別の配列と組換えられて子孫核酸を生じ得るか、または所定の配列
が化学的に改変され得るか、さもなければ得られる分子を改変するように操作さ
れ得る。あるいは、核酸は、選択された親核酸配列とは配列が異なる核酸を合成
することにより、新規に合成され得る。2つの核酸の先祖についての明白な知識
が存在しない場合、相同性は代表的には、2つの配列間の配列比較により推論さ
れる。2つの核酸配列が、各々の核酸の有意な部分にわたって配列類似性を示す
場合、この2つの核酸は共通の祖先を共有すると推論される。相同性を確立する
配列類似性の正確なレベルは、種々の因子に依存して、当該分野において変化す
る。本発明の目的のために、分岐中間体(2以上の関連する核酸の特徴を共有す
る、提案される配列)は相同な核酸である。
この2つの核酸分子間での直接的な組換えが生じるのを可能にする場合、相同で
あるとみなされる。代表的には、核酸は、ほぼ同じ距離間隔をあけた密接な類似
性の領域を利用して、組換えが生じるのを可能にする。組換えはインビトロまた
はインビボにおいてであり得る。
のよりもより遠く関連した核酸を組換える能力であることが認識されるべきであ
る。特に、遠く関連するか、さらには検出可能には関連しない2つの核酸由来の
配列は、2つ以上の異なる非相同標的核酸または2つ以上の遠く関連する核酸由
来のサブ配列を有する交差オリゴヌクレオチドを用いて組換えられ得る。しかし
、2つの核酸が、本明細書中に示すとおりのオリゴヌクレオチド中間体を用いて
間接的にしか組換え可能でない場合、これらは、本開示の目的のために「非相同
」であるとみなされる。
ョンをいい、代表的には、セットの意図される正確な用途に依存して、例えば、
少なくとも約5、10、50、100、500、1,000以上のメンバーを含
む。
酸の選択されたセットに由来する合成されたオリゴヌクレオチドのセットである
。これらオリゴヌクレオチドは、これらが(個々にまたは集合的に)1より多く
の相同核酸を伴う配列同一性の領域(および必要に応じて配列多様性の領域)を
有する場合、相同核酸の選択されたセットに由来する。集合的に、これらオリゴ
ヌクレオチドは、代表的に、相同核酸のセットの相同核酸の全長の実質的な部分
に対応する(例えば、相同核酸の長さの実質的な部分にわたって対応するオリゴ
ヌクレオチド)(例えば、セットのこれらオリゴヌクレオチドは、集合的に、相
同核酸の各々の全長の例えば25%以上、しばしば35%以上、一般に50%以
上、代表的に60%以上、より代表的に70%以上、そしていくつかの適用では
80%、90%、または100%に対応する)。最も通常では、これらファミリ
ー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドは、複数のメンバー型を含み、その
メンバー型の各々は、選択された相同核酸のセットの少なくとも1つのメンバー
(例えば、約2、3、5、10、50以上のメンバー型)に対する配列同一性領
域を有する。
された核酸のセットの少なくとも2つの異なるメンバーに対する配列同一性領域
を有する。
核酸は、種々の十分に特徴付けられた物理化学的力(例えば、水素結合、溶媒排
除、塩基スタッキングなど)に起因してハイブリダイズする。核酸のハイブリダ
イゼーションに対する広範なガイドは、Tijssen(1993)Labor
atory Techniques in Biochemistry and
Molecular Biology−−Hybridization wi
th Nucleic Acid Probes、第I部第2章、「Overv
iew of principles of hybridization a
nd the strategy of nucleic acid prob
e assays」,Elsevier,New York、ならびにAusu
bel、前出に見出される。
酸が他方のサブ配列である場合、または一方の配列が自然にもしくは人工操作に
よって他方に由来する場合、2つの核酸は、「対応する」。
この核酸は、「伸長」される。最も通常には、このことは、ポリメラーゼ(例え
ば、DNAポリメラーゼ)、例えば、核酸の3’末端で配列を付加するポリメラ
ーゼを用いて行われる。
核酸は「組換え」られる。2つの配列は、両方の核酸が組換えの基質である場合
、「直接的に」組換えられる。2つの配列は、これらの配列が交差オリゴヌクレ
オチドのような中間体を用いて組換えられる場合、「間接的に組換え」られる。
間接的組換えに関して、わずか1つの配列が組換えの実際の基質であり、そして
いくつかの場合(すなわち、この核酸に対応する1以上のオリゴヌクレオチドが
ハイブリダイズおよび伸長される場合)には、いずれの配列も組換えの基質では
ない。
レアーゼを用いて、または化学的切断を介して)切断することにより、または任
意の他の方法(例えば、相補的核酸の部分的鎖伸長)で親配列のサブ配列を生成
することにより誘導される核酸のコレクションである。
実質的に同じ配列ドメインを有するタンパク質である。このタンパク質は、少な
くとも95%が天然でコードされる遺伝子である限りは、(例えば、組換えおよ
び選択に起因して)対応する天然でコードされる遺伝子に対して改変された配列
を有し得る。
、DNAseIのような酵素である。広範な種々のDNase酵素が周知であり
、そして例えば、Sambrook,BergerおよびAusubel(全て
前出)に記載され、そしてその多くは市販される。
数の相同核酸の間で保存されてもよいし、保存されなくともよい。代表的には、
ドメインが、2以上の配列間の比較により詳述される。すなわち、配列間の配列
多様性領域が、「配列多様性ドメイン」であり、一方、類似性領域が「配列類似
性ドメイン」である。「ドメイン交換」とは、1つの核酸に由来する1つの核酸
領域を、第2の核酸に由来する第2のドメインと交換する能力をいう。
メータに設定された通常のプログラムBLASTを用いて)最大に対応するよう
にアラインメントされた場合に第2の選択された領域に対して90%以上同一で
ある領域をいう。「低い配列類似性」の領域は、(例えば、手動で、またはデフ
ォールトパラメータに設定されたBLASTを用いて)最大に対応するようにア
ラインメントされた場合に第2の選択された領域に対して60%以下が同一であ
り、より好ましくは40%以下が同一である。
れる核酸である。代表的には、この核酸は、選択された核酸のコピーである。「
PCRプライマー」は、適切な反応条件下で、テンプレート核酸にハイブリダイ
ズし、そして熱安定性ポリメラーゼを用いて鎖伸長を可能にする核酸である。
る。このセットは、プールされ得るかまたは個々に入手可能であり得る。オリゴ
ヌクレオチドは、DNA、RNA、またはRNAとDNAとの組合せ(例えば、
キメラプラスト(chimeraplast))であり得る。
されたオリゴヌクレオチドセットを組換えおよび/または遺伝子合成の基質とし
て使用することにより、シャッフリングプロセスを劇的に加速することが可能で
ある。さらに、オリゴヌクレオチド中間体を使用して、他の方法では組換えられ
得ない核酸を間接的に組換えることが可能である。結合されるべき配列に対応す
る物理的核酸への直接の接近は必要ではない。なぜなら、その配列は、オリゴヌ
クレオチド中間体を介して間接的に組換えられ得るからである。
の領域および多様性の領域を選択するために利用可能なコンピューターソフトウ
ェアを使用して整列される。少なくとも1つの多様性の領域(および通常、少な
くとも1つの類似性の領域)に対応する、複数(例えば、2、5、10、20、
50、75、または100以上)のオリゴヌクレオチドが合成される。これらの
オリゴヌクレオチドは直接シャッフルされ得るか、または1つ以上のそのファミ
リーの核酸と組換えられ得る。
的シャッフリング方法と組合せられ得る。例えば、相同的な核酸をシャッフルす
るために、現在利用可能な手順(例えば、核酸をDNaseで消化し、組換えを
生じさせ、次いで全長のテンプレートを再生することによる(例えば、Stem
mer(1998)DNA MUYAGENESIS BY RANDOM F
RAGMENTATION AND REASSEMBLY、米国特許第5,8
30,721号に記載される))がいくつか存在する。。従って、本発明の1つ
の実施態様において、少なくとも1つの相同的な核酸と同一な(または、相同的
な)全長核酸が提供され、DNAaseで切断され、そして得られた核酸フラグ
メントのセットが、複数のファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチド
と組換えられる。この組換え方法は有利であり得る。なぜなら、このDNAas
e切断フラグメントは、全長配列に再構成され得る「足場」を形成するからであ
り−この合成されたセット中で1つ以上の合成されたオリゴは欠損するという事
象における利点−からである。
その相同的核酸またはその切断フラグメントが組換え混合物中に存在しなくとも
、組換える能力である。得られたシャッフルされた核酸は、異なる核酸由来の多
様性領域を含み得、これは単一の核酸中に異なる多様性ドメインを組合せる能力
を提供する。このことは、天然の配列の多様性を評価する非常に強力な方法を提
供する。
提供する。この方法において、関連する相同的核酸のファミリーに対応するオリ
ゴヌクレオチドは、組換えられて選択可能な核酸を生成する。この技術を使用し
て、相同的な核酸配列、または非相同的核酸配列でさえ、組換え得る。相同的な
核酸を組換える場合に、重複するファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレ
オチドのセット(これらは、例えば、相同的核酸の比較、およびオリゴヌクレオ
チドフラグメントの合成により派生する)が、ハイブリダイズされ、そして伸長
され(例えば、再アセンブリPCRによって)、組換えられた核酸の集団を提供
する。この集団は、所望の特徴または特性ついて選択され得る。代表的には、重
複するファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドのセットは、複数の
相同的標的核酸由来のコンセンサス領域サブ配列を有する、複数のオリゴヌクレ
オチドメンバーのタイプを含む。
核酸配列を整列して配列同一性の保存領域および配列多様性の領域を選択するこ
とにより提供される。少なくとも1つの配列多様性領域に対応する複数のファミ
リー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドが(連続して、または並行して)
合成される。
ントのセットまたはフラグメントのサブセットは、1つ以上の相同核酸を(例え
ば、DNaseで)切断する工程によって、ならびに少なくとも1つの核酸の複
数の領域に対応するオリゴヌクレオチドのセットを合成する工程(代表的には、
部分的核酸または全長核酸に対応するオリゴヌクレオチドが、核酸「フラグメン
ト」(切断フラグメントおよび合成オリゴヌクレオチドの両方を包含する用語)
のセットのメンバーとして提供される)によって部分的に提供され得る。本明細
書中のシャッフリング手順において、これらの切断フラグメントは、例えば、1
つ以上の組換え反応において、ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオ
チドと組合せて使用されて、組換え核酸を生成し得る。
成、シャッフリング手順ならびに他の局面に関する、詳細および実施例を提供す
る。
選択すること) 1つの局面において、本発明は、配列同一性領域または配列類似性領域、およ
び多様性領域を決定するための、核酸配列の整列を提供する。重複するファミリ
ーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオチドのセットは、複数の相同的標的核酸
由来のコンセンサス領域サブ配列を含む、複数のオリゴヌクレオチドメンバータ
イプを含み得る。これらのコンセンサス領域のサブ配列を、相同核酸の整列、お
よび同一性領域の同定または類似性領域の同定によって決定する。
配列同一性の保存領域、および複数の配列多様性領域を選択する。複数の配列多
様性領域は、複数の配列多様性ドメインを提供する。代表的には、複数の配列多
様性ドメインに対応するファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドを
合成し、そして本明細書中に記載の種々の組換えプロトコルか、または他の利用
可能な種々の組換えプロトコルにおいて使用する。これらの組換え方法によって
合成される遺伝子は、必要に応じて、任意の利用可能な方法(組換えおよび/ま
たは変異誘発を含む)によって、さらにスクリーニングされるかまたはさらに多
様化される。
たは独自の核酸データベースのいずれかから利用可能な配列に対して、同一の核
酸、あるいは核酸類似性の領域を整列する工程を包含する。公のデータベース/
検索サービスは、Genbank(登録商標)、Entrez(登録商標)、E
MBL、DDBJ、およびNCBIに提供されるデータベース/検索サービスを
含む。多くのさらなる配列データベースが、インターネット上で、またはゲノム
情報の作成および/もしくは貯蔵を専門とする種々の企業からの契約ベースで、
利用可能である。
ポリペプチド配列の文脈において、最大の一致について比較および整列した場合
に、下記の配列比較アルゴリズム(または当業者が利用可能な他のアルゴリズム
)の1つを使用して測定した時または目視検査によって、同一な2つ以上の配列
もしくはサブ配列をいう。あるいは、最大の一致について比較および整列した場
合に、下記の配列比較アルゴリズム(または当業者が利用可能な他のアルゴリズ
ム)の1つを使用して測定した時または目視検査によって、同一の、特定のパー
センテージのアミノ酸残基もしくはヌクレオチドを有する、2つ以上の配列もし
くはサブ配列をいう。
いて、以下の配列比較アルゴリズムの1つを使用して測定した時または目視検査
によって、最大の一致について比較および整列した場合に、少なくとも約50%
、好ましくは80%、最も好ましくは90〜95%の、ヌクレオチド同一性また
はアミノ酸残基同一性を有する、2つ以上の配列あるいは部分配列をいう。この
ような「実質的に同一な」配列は、代表的には、相同性であると考えられる。
比較される参照配列として作用する。配列比較アルゴリズムを使用する場合、試
験配列および参照配列をコンピューターに入力し、必要ならば、配列座標を指定
し、そして配列アルゴリズムプログラムパラメーターを指定する。次いで、配列
比較アルゴリズムは、参照配列に対する試験配列の配列同一性パーセントを、指
定のプログラムパラメーターに基づいて計算する。
n、Adv.Appl.Math.2:482(1981)の局所的相同性アル
ゴリズム、NeedlemanおよびWunsch、J.Mol.Biol.4
8:443(1970)の相同性整列アルゴリズムによって、Pearsonお
よびLipman、Proc.Nat’l.Acad.Sci.USA 85:
2444(1988)の同様の方法のための検索によって、これらのアルゴリズ
ムのコンピューター化による実行(GAP、BESTFIT、FASTA、およ
びWisconsin Genetics Software Package
、Genetics Computer Group、575 Science
Dr.、Madison、WIのTFASTA)によって、または目視検査(
一般的には、Ausubelら、下記を参照のこと)によって行い得る。
ゴリズムの1つの例は、BLASTアルゴリズムであり、これは、Altsch
ulら、J.Mol.Biol.215:403〜410(1990)に記載さ
れている。BLAST解析を実行するためのソフトウェアは、National
Center for Biotechnology Informatio
n(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/)を通じて公
に利用可能である。このアルゴリズムは、最初に、問い合わせ配列中の長さWの
短いワードを同定することにより、高スコア配列対(HSP)を同定する工程を
包含する。このワードは、データベース配列中で同じ長さのワードを用いて整列
した場合に、ある正の値の閾値スコアTと一致するか、またはTを満たすかのい
ずれかである。Tは、隣接ワードスコア閾値と呼ばれる(Altschulら、
前出)。これらの最初の隣接ワードヒットは、それらを含むより長いHSPを発
見するための検索を開始するためのシード(seed)として働く。次いで、ワ
ードヒットは、各配列に沿って両方向に、累積整列スコアが増加し得る限りの間
伸長される。累積スコアは、ヌクレオチド配列については、パラメーターM(一
致する残基の対に関する褒賞スコア;常に>0)およびN(ミスマッチする残基
に関する罰則スコア;常に<0)を使用して算出される。アミノ酸配列について
は、スコアリングマトリックスを使用して累積スコアを算出する。各方向でのワ
ードヒットの伸長は、以下の場合に停止される:累積整列スコアが、その最大到
達値から量Xだけ減少する;1つ以上の負のスコアの残基整列の蓄積に起因して
、累積スコアがゼロ以下になる;またはいずれかの配列の末端に到達する。BL
ASTアルゴリズムパラメーターW、T、およびXは、整列の感度および速度を
決定する。BLASTプログラム(核酸配列に関する)は、デフォルトとして、
ワード長(W) 11、期待値(E) 10、カットオフ 100、M=5、N
=−4、および両方の鎖の比較を使用する。アミノ酸配列に関して、BLAST
Pプログラムは、デフォルトとして、ワード長(W) 3、期待値(E) 10
、およびBLOSUM62スコアリングマトリックスを使用する(Heniko
ffおよびHenikoff(1989)Proc.Natl.Acad.Sc
i.USA 89:10915を参照のこと)。
た、2つの配列間の類似性の統計的解析も実行する(例えば、Karlinおよ
びAltschul(1993)Proc.Nat’l.Acad.Sci.U
SA 90:5873〜5787を参照のこと)。BLASTアルゴリズムによ
り提供される類似性の1つの尺度は、最小の合計確率(P(N))であり、これ
は、2つヌクレオチド間またはアミノ酸間の一致が偶然生じる確率の指標を提供
する。例えば、参照核酸に対する試験核酸の比較における最小合計確率が約0.
1未満、より好ましくは約0.01未満、および最も好ましくは約0.001未
満である場合に、核酸は、参照配列に類似(従って、相同である可能性がある)
と考えられる。他の利用可能な配列整列プログラムは、例えば、PILEUPを
含む。
(代理人整理番号02−289−3US)、Selifonovら、による「M
ETHODS FOR MAKING CHARACTER STRINGS、
POLYNUCLEOTIDES AND POLYPEPTIDES HAV
ING DESIRED CHARACTERISTICS」に見出され得る。
対応する、複数のファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドを合成す
る工程を包含する。代表的には、ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレ
オチドのセットは、例えば、連続的オリゴヌクレオチド合成プロトコルまたは並
行オリゴヌクレオチド合成プロトコルにより、作製される。
リ方法における使用のためであろうと、またはファミリー遺伝子シャッフリング
オリゴヌクレオチドのセットを提供するためであろうと、代表的には、Beau
cageおよびCaruthers(1981)、Tetrahedron L
etts.22(20):1859〜1862に記載される固相ホスホルアミダ
イトトリエステル法に従って、例えば、Needham−VanDevante
rら(1984)Nucleic Acids Res.12:6159〜61
68に記載されるような自動化合成装置を使用して、化学的に合成される。広範
な種類の装置が、自動化オリゴヌクレオチド合成のために市販される。前出で議
論されるような、多重ヌクレオチド合成アプローチ(例えば、トリヌクレオチド
合成)もまた、有用である。
dland Certified Reagent Company(mcrc
@oligos.com)、The Great American Gene
Company(http://www.genco.com)、Expre
ssGen Inc.(www.expressgen.com)、Opero
n Technologies Inc.(Alameda、CA)およびその
他多数)のいずれかから、特別注文され得る。
る。例えば、目的の相同遺伝子を、上記のようにBLASTのような配列整列プ
ログラムを使用して整列する。相同体間のアミノ酸変化に対応するヌクレオチド
に注意する。合成遺伝子シャッフリングのためのオリゴを設計する。このオリゴ
は、整列された相同的配列のいずれに対しても1つ(以上)のヌクレオチドの差
異を含む。すなわち、第1の核酸と同一であるが、第1の核酸と相同であるが同
一ではない核酸の残基に対応する位置に、残基を組み込むオリゴを設計する。
クレオチド(例えば、約20、30、40、50、60、70、80、90、ま
たは100以上のヌクレオチド)の全てを作製する。これは、X個の配列変異に
つきX個のオリゴヌクレオチドを含む(ここで、Xは、1つの遺伝子座で異なる
配列の数である)。X個のオリゴヌクレオチドは、改変体ヌクレオチドを示すヌ
クレオチドを除いて、配列中ではほとんど同一である。この類似性のために、単
一の合成反応、または試薬のセットを使用して各オリゴヌクレオチドの共通部分
を作製する、並行合成ストラテジーあるいはプールされた合成ストラテジーを利
用することが、有利であり得る。これは、例えば、周知の固相核酸合成技術によ
って、または、例えば、アレイベースのオリゴヌクレオチド合成方法(例えば、
Fodorら(1991)Science、251:767〜777;Fodo
r(1997)「Genes,Chips and the Human Ge
nome」FASEB Journal.11:121〜121;Fodor(
1997)「Massively Parallel Genomics」Sc
ience.277:393〜395;およびCheeら(1996)「Acc
esing Genetic Information with High−
Density DNA Arrays」Science 274:610〜6
14を参照のこと)を利用して、実施され得る。さらなるオリゴヌクレオチド合
成ストラテジーは、例えば、本明細書とともに提出された(代理人整理番号02
−289−3US)、Selifonovら、による「METHODS FOR
MAKING CHARACTER STRINGS、POLYNUCLEO
TIDES AND POLYPEPTIDES HAVING DESIRE
D CHARACTERISTICS」に見出され得る。
、コードされるアミノ酸変化のみが考慮されるように選択する。このストラテジ
ーにおいて、相同的核酸のファミリーの整列後に、塩基変化によってコードされ
るポリペプチド配列において変更が生じる位置のみで縮重するように、ファミリ
ーシャッフリングオリゴを合成する。このことは、コードされる産物における同
程度の多様性を達成するために、より少ない縮重オリゴヌクレオチドしか必要と
せず、それによりファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドのセット
の合成が簡単になるという利点を有する。
いハイブリダイゼーションおよびアセンブリを保証するために、変化の領域の各
々の側と同一の配列の少なくと約10塩基を有する。しかし、同一の塩基に隣接
する領域は、同一の塩基をより少なく(例えば、5、6、7、8、または9)有
し得、そしてもちろん、同一のより大きい領域(例えば、11、12、13、1
4、15、16、17、18、19、20、25、30、50以上)を有し得る
。
て例えば、本明細書中に記載のように、そして当業者に公知のように、様々のポ
リメラーゼ媒介再アセンブリ方法のいずれかを使用して再アセンブリし得る。選
択されたオリゴヌクレオチドは、任意の選択された濃度の組換え混合物中に「ス
パイク」され、それにより所望の改変の優先的組み込みを引き起こし得る。
オチドは、核酸ポリメラーゼ(例えば、Taq、Klenowなど)およびdN
TP(すなわち、dATP、dCTP、dGTP、およびdTTP)の存在下で
インキュベートされる。配列同一性領域が大きい場合、Taqまたは他の高温ポ
リメラーゼを、およそ室温と、例えば、約65℃との間のハイブリダイゼーショ
ン温度で使用し得る。同一性領域が小さい場合、Klenow、Taq、または
ポリメラーゼを、室温より低いハイブリダイゼーション温度で使用し得る。ポリ
メラーゼを、オリゴヌクレオチドおよび他の組換え成分のハイブリダイゼーショ
ンの前、同時、または後に、核酸フラグメント(オリゴヌクレオチドおよび組任
意のさらなる核酸は、換え混合物を形成する)に添加し得る。本開示中の他の部
分で記載されるように、本発明の特定の実施態様は、得られた伸長された二本鎖
核酸配列を変性し、次いでそれらの配列を再びハイブリダイズおよび伸長する工
程を含み得る。このサイクルを、所望の任意の回数反復し得る。このサイクルは
、例えば、約2〜約100回反復される。
物(例えば、遺伝子の相同なセット由来の1つ以上の遺伝子のDNaseフラグ
メントの混合物)中に存在する核酸を変化し得る。1つの局面において、シャッ
フルされる全ての核酸を、上記のように整列する。アミノ酸変化に注意および/
または注目する(例えば、適切な配列整列ソフトウェアを実行するコンピュータ
ーを含む統合されたシステム中で、または、例えば、配列のプリントアウトもし
くは配列整列のプリントアウト上で手動で)。また、本明細書とともに提出され
た(代理人整理番号02−289−3US)、Selifonovら、による「
METHODS FOR MAKING CHARACTER STRINGS
、POLYNUCLEOTIDES AND POLYPEPTIDES HA
VING DESIRED CHARACTERISTICS」を参照のこと。
上記のように、整列された核酸についての天然の配列多様性によってコードされ
る、いくつかまたは全てのアミノ酸変異を組み込むように、ファミリーシャッフ
リングオリゴを設計する。整列された核酸の相同的なセットに対応する1つ以上
の核酸を切断する(例えば、DNaseを使用して、または化学的切断により)
。ファミリーシャッフリングオリゴを、切断された核酸の混合物中にスパイクし
、次いで、標準的技術を使用して、組換え、全長配列へと再アセンブリする。
る任意のアプローチを使用し得る。例えば、再アセンブリされた核酸を、クロー
ン化し得、および配列決定し得、または増幅し得(インビトロで、もしくは、例
えば、標準的クローニングベクターへのクローニングにより)、ならびにファミ
リーシャッフリングオリゴ中に存在するが、切断されたもともとの核酸中の同じ
位置に存在しない、特定の多型配列を特異的に認識する制限酵素により切断し得
る。
むが、サイレント置換に対応する核酸配列間の多型ヌクレオチド変異を除去する
、オリゴヌクレオチドを選択する。このストラテジーの1つの利点は、サイレン
ト置換の除去が、組換えのための所定の基質(例えば、選択された標的核酸)に
対してより類似する所定の配列を作製し得ることである。この類似性の増加は、
他の方法では、有効な組換えのためにはあまりにも多様であり得る配列の間での
、核酸組換えを可能にする。
れた核酸を切断し、ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドのライ
ブラリーと混合する。このファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチド
は、選択された核酸において見出されるのと同じサイレント置換のセットを含む
オリゴヌクレオチドを作製することにより、選択される核酸の対応する配列に可
能な限り類似するようにされている。このオリゴヌクレオチドを、選択される濃
度で切断混合物中にスパイクし、次いで、全長配列へと再アセンブリする。得ら
れたライブラリーの特性(例えば、このオリゴが、再アセンブリされた配列へ組
み込まれる頻度)を、上記のように、再アセンブリされた配列を、クローニング
(またはさもなければ増幅)および配列決定および/または制限酵素消化するこ
とにより、チェックする。
レオチドを使用してライブラリーを作製するために、使用し得る(例えば、WO
97/20078、WO 98/42832およびWO 98/01581も
また参照のこと)。
供する。これらの形式を、標準的組換え方法と、また必要ならば反復形式で、組
合せ得る。
性についてスクリーニングし、そして配列決定し得る。配列決定された組換え核
酸を整列し、そして同一性領域および多様性領域を同定する。次いで、ファミリ
ーシャッフリングオリゴヌクレオチドを、配列決定された組換え核酸の組換えの
ために選択する。活性な組換え核酸をスクリーニングし、配列決定し、そして活
性な組換え核酸を組換えるこのプロセスを、所望の特性を有する分子を得るまで
反復して繰り返し得る。
組換え核酸を、必要に応じて反復性である標準的組換え方法を使用して切断およ
びシャッフルし得る。標準的組換えを、オリゴヌクレオチドシャッフリングと組
合せて使用し得、そしていずれかの工程または両方の工程を、必要ならば反復し
て繰り返す。
ャッフリングの1つの有用な例は、極端な微粒子シャッフリングが所望される場
合に生じる。例えば、小さいタンパク質(例えば、デフェンシン(約50アミノ
酸の抗真菌性タンパク質)、EF40(約28アミノ酸の抗真菌性タンパク質フ
ァミリー)、ペプチド抗生物質、ペプチド殺虫性タンパク質、ペプチドホルモン
、多くのサイトカイン、および多くの他の小さいタンパク質)をコードする小さ
い遺伝子は、標準的方法により組換えることが困難である。なぜなら、組換えは
、しばしば、組換えられるべき遺伝子のサイズとほぼ同じ頻度で生じ、組換えか
ら生じる多様性を制限するからである。対照的に、オリゴヌクレオチド媒介組換
え方法は、任意の配列のセットにおける実質的に任意の多様性の領域を、選択さ
れた任意の塩基対で生じる組換え事象(例えば、交差)を用いて組換え得る。
リーを、必要に応じて、所望の特性についてスクリーニングおよび選択し、そし
て改良された(または、さもなければ所望の)クローンを、さらなる核酸ライブ
ラリーを作製するために反復されるプロセスによって、配列決定する(またはさ
もなければ、例えば、リアルタイムPCR分析(例えば、FRETもしくはTa
qMan)により、あるいは制限酵素分析を使用して、脱回旋(deconvo
luted)する)。従って、さらなる回の組換えを、標準的フラグメント化ベ
ースの組換え方法か、または陽性クローンの配列決定のいずれかによって実行し
、適切なファミリーシャフリングオリゴヌクレオチドを設計し、そして第2回の
組換え/選択を実行して、さらなるライブラリー(これは、記載されるように組
換えられ得る)を作製する。さらに、異なる回の組換えから作製されたライブラ
リーもまた、配列決定/オリゴヌクレオチド組換え、または標準的組換え方法の
いずれかによって、組換え得る。
シャッフリングを提供する。この実施態様において、PCR交差オリゴヌクレオ
チドを、第1の核酸由来の第1の領域、および第2の核酸に対応する第2の領域
を用いて設計する。第1の核酸または第2の核酸のいずれかに対応するさらなる
オリゴ、および交差オリゴに相補的(または同一)の配列を有するさらなるオリ
ゴを設計する。これらのオリゴを組換える(すなわち、連続するポリメラーゼ媒
介伸長反応中で、これらのオリゴをハイブリダイズさせ、次いで、そのハイブリ
ダイズされたオリゴヌクレオチドを伸長する)ことにより、第1の核酸または第
2の核酸のいずれかと組換え得る、そして他の核酸由来の配列を同時に組み込む
基質を提供する。
レオチド組換え) キメラプラスト(chimeraplast)は、「遺伝的手術」のために使
用されている合成RNA−DNAハイブリッド分子であり、ここで、キメラ分子
での組換えによってゲノムDNA中において1つまたはいくつかの塩基が変化さ
れる。キメラプラストは、分子の末端上に二重のヘアピンキャップを有する二重
鎖の立体配座におけるRNAおよびDNA残基の隣接ストレッチからなるキメラ
核酸である(Yoonら、(1996)PNAS 93:2071−2076)
。RNA−DNA配列は、キメラプラストでの組換えによって改変されるべき遺
伝子座の配列を用いて、その遺伝子座についての塩基配列において所望の変化を
有するキメラプラストと整列するように設計される。宿主細胞の修復機構は、宿
主細胞の配列をキメラプラストの配列に変換する。この技術の簡潔な総説として
、Bartlett(1998)Nature Biotechnology
16:1312;Strauss(1998)Nature Medicine
4:274−275を参照のこと。
の肝臓/腎臓/骨のアルカリホスファターゼについての遺伝子における、点変異
の標的化された修正のために使用されている(Yood、同上)。このストラテ
ジーはまた、リンパ芽球腫細胞中のゲノムDNAにおいて鎌状赤血球貧血の原因
である変異の修正のために使用された(Cole−Straussら(1996
)Science 1386−1389)。AlexeevおよびYoon(1
998)Nature Biotechnology 1343−1346は、
マウスチロシナーゼ遺伝子における点修正(これは、マウス細胞における白子変
異の修正、およびその細胞による黒色色素沈着の産生を生じる)を作製するため
の、ハイブリッドRNA−DNAオリゴヌクレオチド(「RDO」)の使用を記
載する。Krenら(1998)Nature Medicine 4(3):
285−290は、キメラRNA/DNAオリゴヌクレオチドによる、インビボ
での第IX因子遺伝子の部位特異的突然変異誘発を記載する。Xiangら(1
997)J.Mol.Med.75:829−835は、キメラRNA−DNA
オリゴヌクレオチドを使用した、哺乳動物のCD34+富化細胞集団における標
的化された遺伝子変換を記載する。Krenら(1997)Hepatolog
y 25(6):1462−1468は、キメラRNA−DNAオリゴヌクレオ
チドによって媒介される、Hu−H−7細胞のアルカリホスファターゼ遺伝子に
おける標的化されたヌクレオチド変換を記載する。
はキメラプラストである。この実施態様において、ファミリーシャッフリングす
るオリゴヌクレオチドは、本明細書中に示されるように作製されて、構造的なキ
メラプラストの特徴をさらに含む。例えば、上記の参考文献において、DNA−
RNAオリゴは、標準的なホスホラミダイト連結化学に従って合成される(利用
されるヌクレオチドは、必要に応じて標準的でないヌクレオチド(例えば、2−
Oメチル化RNAヌクレオチド)を含む)。このオリゴは、上記の参考文献に示
されるように、「二重のヘアピン」構造(例えば、構造の末端にTループを有す
る)を有する。
子と同一の領域、および目的の標的遺伝子において見出される多様性(すなわち
、特定の部分配列についての配列変異)に対応する多様性の領域を含む。図1に
示されるように、オリゴヌクレオチドのセットは、細胞(例えば、植物細胞)内
に形質導入される。ここで、キメラプラストは細胞のゲノム中の目的の配列と再
び結合し、それによって目的の標的遺伝子において少なくとも1つの多様性の領
域を有する細胞のライブラリーを作製する。次いで、本明細書中に記載のように
ライブラリーをスクリーニングし、そして選択する。必要に応じて、選択された
ライブラリーのメンバーを、同じかまたは異なるセットのキメラプラストオリゴ
ヌクレオチドを用いるキメラプラスト組換えのさらなる回、次いで記載されるよ
うな選択/スクリーニングアッセイに供する。
域に対応する配列を用いて合成される。すなわち、キメラプラストは各々、1つ
以上の標的配列内へのキメラプラストの組み込み後に、相同性遺伝子中に見出さ
れる部分配列への遺伝子の部分配列の変換を生じる、1つかまたはいくつかのヌ
クレオチドを含む。相同性のキメラプラスト配列のライブラリーを細胞の集団中
に形質導入することによって、細胞内の目的の標的遺伝子を、1つ以上の相同性
配列に由来する配列に対して1つ以上の位置で変換する。従って、キメラプラス
トライブラリーで細胞集団を形質導入することの効果は、標的配列に相同な遺伝
子において見出される配列多様性に対応する標的遺伝子のライブラリーを作製す
ることである。
遺伝子を変換するため(例えば、構造的または他の情報が、そのような変換の所
望性を示唆する場合)に、同様に用いられ得る。この実施態様において、キメラ
プラストは、非相同性の配列置換に対応する配列を含む。
、標的遺伝子をキメラプラストで組換えた細胞の選択または回収を可能にするよ
うに、配列タグ、選択マーカー、または他の構造的な特徴を組み込み得る。例え
ば、同時トランスフェクトされたDNAは、薬物耐性、または検出可能なマーカ
ー(例えば、LacZ、または緑色蛍光タンパク質)の発現のようなマーカーを
含み得る。
る。例えば、キメラプラストの一部分が、PCRプライマーに対して相補的であ
り得る。この実施態様において、PCRプライマーは、ライブラリーの細胞から
組換え遺伝子を合成するために使用される。同様に、PCRプライマーは目的の
領域(キメラプラストと標準的DNAとの間で組換えが生じる領域を含む)を一
まとめにし得る。他のPCR、制限酵素消化および/またはキメラプラストとの
間の組換えに起因する核酸の単離を生じるクローニングストラテジーもまた使用
して、組換え核酸を回収し得る。この組換え核酸を、必要に応じてさらなる核酸
と組換える。キメラプラスト媒介組換え、組換え核酸の回収、および回収された
核酸の組換えの反復サイクルを、標準的な組換え方法を使用して実施し得る。選
別サイクルは、所望の核酸について選択するための任意の組換え事象の後に実施
され得、または代わりに、選択工程を実施する前に数回の組換えを実施し得る。
チド配列の改変のために、一般的に有用な構造である。従って、キメラプラスト
の活性を最適化する構造が所望される。従って、上述のようなインビトロまたは
インビボでの組換え形式におけるキメラプラストの使用に加えて、本発明はまた
、インビトロおよびインビボでのキメラプラスト活性の最適化、ならびに多くの
関連ライブラリーおよび他の組成物を提供する。
マーカーは、キメラプラストと標的核酸との間での組換えに続いて、標的核酸中
に組み込まれる分子の領域内のキメラプラストの末端間に配置される。例えば、
マーカーは組換えの生じる細胞中で検出可能な表現型効果を生じ得るか、または
マーカーは単に、標準的な核酸配列検出技術(例えば、その配列またはその隣接
配列のPCR増幅、LCR、組換え事象によって作製される配列の制限酵素消化
、アレイに対する組換え核酸の結合(例えば、遺伝子チップ)、および/または
組換え核酸の配列決定など)によって検出され得る、標的配列における変化をも
たらし得る。通常は、配列が異なる領域を決定して、配列が組換え率を増加した
ことの指標を提供する。
カーに隣接するTループヘアピン領域の間の領域において配列開散性(dive
rgence)の領域を有するキメラプラストを含む。この開散性は、本明細書
中に記載のような異種配列の生成を提供する合成ストラテジーによって生成され
得る。
トを利用する合成的ストラテジーを、合成ストラテジーを単純化するために作製
する。この類似性の理由で、並行する合成ストラテジーまたはプールされた合成
ストラテジーが使用され得、ここでは単回の合成反応かまたは試薬のセットを使
用して各オリゴヌクレオチドの共通部分を作製する。これは、例えば、市販のオ
リゴヌクレオチド合成装置において、例えば、周知の固相の核酸合成技術によっ
て、または例えば、アレイに基づいたオリゴヌクレオチド合成方法(例えば、F
odorら(1991)Science 251:767−777;Fodor
(1997)「Genes、Chips and the Human Gen
ome」FASEB Journal.11:121−121;Fodor(1
997)「Massively Parallel Genomics」Sci
ence 277:393−395;およびCheeら(1996)「Acce
ssing Genetic Information with High−
Density DNA Arrays」Science 274:610−6
14を参照のこと)を利用することによって実施される。従って、本発明の1つ
の特徴は、これらの方法によって作製されるキメラプラストのライブラリー(す
なわち、共通の配列エレメント(例えば、共通のマーカーを含む)ならびに異な
る領域(例えば、分子のヘアピン領域における異なる配列)を共有するキメラプ
ラストのライブラリー)である。
加についてスクリーニングされる。増加した組換え率を有するとして同定される
ライブラリーのメンバーを、必要に応じて、それ自身で組換えて組換えキメラプ
ラストのライブラリーを生成する。組換えは通常、最初に増大した組換え率を示
すメンバーの配列をアッセイすること、次いでこれらのメンバーの少なくとも2
つに対して構造的な類似性を示すキメラプラストの合成によって実施され得る。
このプロセスは、増加した組換え活性を有する新たな「組換え」キメラプラスト
を作製するため、ならびにそのようなキメラプラストのライブラリーを作製する
ために反復的に繰り返され得る。
胞形質導入/形質転換ベクター中のCre−Lox部位、Chi部位および他の
組換えを促進する配列が上記と同様の様式で改変され、そして選択される。配列
が単純なDNA配列である場合、それらは本明細書中に述べられた合成方法、お
よび/または標準的なDNAシャッフリング方法のいずれかによって組換えられ
得る。
を有するオリゴヌクレオチドであり、ここでこの改変は少なくとも1つのコード
アミノ酸の差異に対応する。これはトリヌクレオチド(すなわち、コドンに基づ
くホスホラミダイト連結化学)を利用して合成され得る。ここで20個のアミノ
酸の全てについてのコドンを示す、トリヌクレオチドホスホラミダイトを使用し
て、この固相技術によって合成されるオリゴヌクレオチド配列中に完全なコドン
を導入する。好ましくは、選択される核酸配列を組み込んだ、選択される全ての
長さのオリゴヌクレオチド(例えば、約20、30、40、50、60、70、
80、90、もしくは100か、またはそれ以上のヌクレオチド)を合成する。
本発明において、コドン改変オリゴヌクレオチド配列は、選択される相同性核酸
のセット由来の配列に基づき得る。
それらの引き続いての使用、および関連の問題は、例えば、以下において記載さ
れる;Virnekas,B.ら、(1994)Nucleic Acids
Res.、22、5600−5607、Kayushin,A.L.ら(199
6)Nucleic Acids Res.、24、3748−3755、Hu
se、米国特許第5,264,563号「PROCESS FOR SYNTH
ESIZING OLIGONUCLEOTIDES WITH RANDOM
CODONS」、Lyttleら、米国特許第5,717,085号「PRO
CESS FOR PREPARING CODON AMIDITES」、S
hortleら、米国特許第5,869,644号、「SYNTHESIS O
F DIVERSE AND USEFUL COLLECTIONS OF
OLIGONUCLEOTIDES」;Greyson、米国特許第5,789
,577号「METHOD FOR THE CONTROLLED SYNT
HESIS OF POLYNUCLEOTIDE MIXTURES WHI
CH ENCODE DESIRED MIXTURES OF PEPTID
ES」;およびHuse、WO92/06176「SURFACE EXPRE
SSION LIBRARIES OF RANDOMIZED PEPTID
ES」。
、トリヌクレオチド合成形式および分断プール(split−pool)合成形
式)を使用して合成され得る。トリヌクレオチドおよび分断プールコドンの両方
のコドン改変オリゴヌクレオチドの合成方法に関連する化学は、当業者に周知で
ある。一般的に、両方の方法は、ホスホラミダイト固相化学合成を利用し、ここ
で核酸基質配列の3’末端を、固体支持体(例えば、コントロールの細孔ガラス
)に共有結合的に接着する。5’保護基は、例えば、トリフェニルメチル基(例
えば、ジメトキシルトリチル(DMT)またはモノメトキシトリチル);カルボ
ニル含有基(例えば、9−フルオレニルメチルオキシカルボニル(FMOC)ま
たはレブリノイル);酸クリアラブル(clearable)基(例えば、ピキ
シル(pixyl));フッ化物クリアラブルアルキルシリル基(例えば、te
rt−ブチルジメチルシリル(T−BDMSi)、トリイソプロピルシリル、ま
たはトリメチルシリル)であり得る。3’保護基は、例えば、β−シアノエチル
基であり得る。
の両方は、その上に保護基を有する)を有する基質配列を提供する工程を含む。
次いで、基質配列の5’保護基を、除去して5’脱保護された基質配列を提供し
、次いでこれは選択されたトリヌクレオチドホスホラミダイト配列と連結される
。トリヌクレオチドは、3’末端、5’末端、および3つの塩基(これらの各々
はその上に保護基を有する)を有する。連結工程は、伸長したオリゴヌクレオチ
ド配列を産生する。その後、この除去工程および連結工程を、必要に応じて反復
する。これらの工程を反復する場合、各々の反復の連結工程により産生される伸
長したオリゴヌクレオチド配列は、所望のコドン改変オリゴヌクレオチドが得ら
れるまで、次の反復される除去工程の基質配列となる。この基本的な合成形式は
、必要に応じて1つ以上の以下に挙げるヌクレオチドを共に連結する工程を含み
得る:モノヌクレオチド、トリヌクレオチドホスホラミダイト配列、およびオリ
ゴヌクレオチド。
両方は、その上に保護基を有する)を有する基質配列を提供する工程を含む。基
質配列の5’保護基を、除去して5’脱保護された基質配列を提供し、次いでこ
れを選択されたトリヌクレオチドホスホラミダイト配列と連結する。各トリヌク
レオチドは、3’末端、5’末端、および3つの塩基(これらは全て、その上に
保護基を有する)を有する。連結工程は、伸長したオリゴヌクレオチド配列を産
生する。その後、この除去工程および連結工程を、必要に応じて反復する。これ
らの工程を反復する場合、各々の反復される連結工程により産生される伸長オリ
ゴヌクレオチド配列は、伸長した中間体オリゴヌクレオチド配列が生成されるま
で、次の反復の除去工程の基質配列となる。
クレオチド配列を2つ以上の別々のプールへと分断する工程を含む。これを実施
した後、伸長した中間体オリゴヌクレオチド配列の5’保護基を除去して、5’
を脱保護した伸長した中間体オリゴヌクレオチド配列を2つ以上の別々のプール
中に提供する。これに続き、これらの5’を脱保護した中間体を、2つ以上の別
々のプール中で、1つ以上の選択されたモノヌクレオチド、トリヌクレオチドホ
スホラミダイト配列、またはオリゴヌクレオチドと連結し、さらに伸長した中間
体オリゴヌクレオチド配列を産生する。次に、これらのさらなる伸長配列を単一
のプール中にプールする。その後、基質配列の5’保護基の除去で始まり5’を
脱保護した基質配列を提供する工程を、必要に応じて反復する。これらの工程が
反復される場合、これらの特異的配列を生成する各々の反復された連結工程によ
り産生される、さらなる伸長したオリゴヌクレオチド配列は、所望のコドン改変
オリゴヌクレオチドが得られるまで、それらの特異的配列を含む、次の反復され
る除去工程の基質配列となる。
る自動合成装置において実施され得る。この局面は、文字ストリング情報をコン
ピューターに入力する工程を含み、次いでこの出力が、この自動合成装置が、所
望のコドン改変オリゴヌクレオチドを合成するために必要である工程を実施する
ように指向する。
VARIED OLIGONUCLEOTIDE SYNTHESIS FO
R SYNTHETIC SHUFFLING」Welchら、USSN 09
/408,393(1999年9月28日出願)に見出される。
)) 1つの局面において、等モルでない比のファミリーシャッフリングオリゴヌク
レオチドを使用して、本明細書中に記載の手順の間に組換えの偏りを生じさせる
。このアプローチにおいて、1セットのファミリーシャッフリングオリゴヌクレ
オチドにおける等モル比のファミリーシャッフリングを使用せずに、本明細書中
の特定の他の方法の場合のように、組換え核酸のライブラリーを作製する。代わ
りに、ファミリーシャッフリングオリゴヌクレオチドが由来する核酸のファミリ
ーの選択されるメンバーまたは選択されるメンバーのセットの配列に対応する、
特定のオリゴヌクレオチドの比率は、実施者によって選択される。
オチド媒介組換えを使用して、例えば、カエル遺伝子およびヒト遺伝子(これら
は50%同一性である)を組換える。全ての多型性の位置で、ヒト配列およびカ
エル配列の両方をコードするファミリーオリゴヌクレオチドを合成する。しかし
、等モル比のヒトおよびカエル由来オリゴヌクレオチドを使用するよりもむしろ
、この比率は、使用者が、最も密接に模倣させる(emulate)ことを望む
遺伝子に有利なように偏る。例えば、ヒト様の遺伝子を生成する場合、多型性の
位置でのヒト配列に対応するオリゴヌクレオチドの比率は、50%より多く(例
えば、約60%、約70%、約80%または約90%以上のオリゴがヒト配列に
対応し得、これは例えばカエル配列に対応する約40%、約30%、約20%、
約10%以下のオリゴを有する)偏り得る。同様に、カエル様遺伝子が所望され
る場合、多型性の位置でのカエル配列に対応するオリゴヌクレオチドの比率が5
0%より多く偏り得る。いずれの場合においても、次いで、得られる「混合」遺
伝子(すなわち、1つより多い親遺伝子の特徴を有する、得られた組換え遺伝子
)を、混合遺伝子に対する配列に密接に関連する遺伝子ファミリーのメンバーで
組換え得る。従って、上記の場合において、よりヒト様の混合遺伝子を生成する
ようにオリゴヌクレオチドの比率を選択する場合、混合遺伝子は、必要に応じて
本来のヒト遺伝子とより密接に類似する遺伝子を用いて、さらに組換えられる。
同様に、よりカエル様の混合遺伝子を生成するようにオリゴヌクレオチドの比率
を選択する場合、混合遺伝子は、必要に応じて本来のカエル遺伝子とより密接に
類似する遺伝子を用いて、さらに組換えられる。このストラテジーを図2に示す
。このストラテジーは、一般的に、オリゴヌクレオチド媒介組換えによる任意の
2つ以上の核酸の組換えに対して適用可能である。
成すること、または関連の遺伝子合成方法(例えば、上記のようなPCR合成方
法)に対して不均衡な量を単純に適用することにを含む、種々の様式で達成され
得る。
意のセットの組換えに適用され得る。配列は、進められる選択のために密接に類
似である必要はない。実際、生じる偏りの作製のために検出可能な程度に相同性
である必要さえない。この場合、「ファミリー」オリゴヌクレオチドは、コード
タンパク質の構造的類似性の考慮から導かれる非配列相同性のオリゴヌクレオチ
ドのセットに対して置換される。例えば、免疫グロブリンスーパーファミリーは
、ほとんどまたは全く検出可能な配列相同性を示さない(特に、核酸レベルにお
いて)、構造的に類似のメンバーを含む。これらの場合、非相同性の配列は、構
造的相同性を考慮することによって(例えば、機能的に類似のペプチド残基の整
列によって)「整列」される。目的の組換え領域は、整列によって提示されるア
ミノ酸多様性の全ての順列を含むことが規定され得る。関連する構造的に類似の
アミノ酸配列をコードする所望の比率のヌクレオチドを有する配列を混合するた
めに、上記の偏りの作製方法が必要に応じて使用される。
整列され得、そして配列を混合するために使用される偏りの作製方法は、任意の
所望の判断基準に基づく。これらは、配列相同性、構造的類似性、推定構造的類
似性(特定される任意の類似性判断基準に基づく)などを含む。定常性である構
造的コアが存在するが、コアの周辺に構築された多くの構造的な改変を有する状
況(例えば、Igドメインは構造的コアであり、そのコアに結合する多くの異な
るループ長および立体配座を有し得る)に対して、これらは適用され得る。
とは、混合されるべき2つの配列の全体的な配列同一性が、より標準的な方法に
よって組換えを生じる為に必要とされる同一性よりも低いものであり得るという
ことである。さらに、時としては選択される領域のみが組み換えられる。このこ
とは、いかにして混合遺伝子を構築するかを特定する際に、利用可能な任意の構
造的または機能的なデータを考慮に入れることを可能にする。従って、いくつか
の他のシャッフリングのプロトコルによって生成されない配列領域が、この混合
遺伝子アプローチによって利用可能であり、そして構造的な情報が考慮される場
合に、より高いパーセンテージで活性クローンを時として獲得し得る。構造的な
情報の考慮に関してのさらなる詳細は、「METHODS FOR MAKIN
G CHARACTER STRINGS、POLYNUCLEOTIDES
AND POLYPEPTIDES HAVING DESIRED CHAR
ACTERISTICS」Selifonovら、代理人整理番号02−289
−3USに見出される。
子のセットに対して適用可能である。例えば、配列同一性が約30%の範囲にあ
るTNF相同体の大きなファミリーが存在し、これは標準的なシャッフリングプ
ロトコルを達成させるを困難にする。もちろん、オリゴヌクレオチドの比率を選
択することによって組換えを調整することもまた、任意の2つの核酸(これは、
高類似性の相同体および低類似性の相同体の両方を含む)の組換えに対して、一
般的に適用可能である。2つ以上の配列を整列するために、任意の整列プロトコ
ルが選択され得、そして得られる整列は、組換えを達成するために適切なオリゴ
ヌクレオチドを作製ために使用され得る。そして、親の配列と比較して、配列の
相対的頻度においてあらゆる偏りの作製が達成され得る。
ャッフリングされ得る。数十万の既知の核酸を同定する試みは、全くなされてい
ない。上記のように、既知のタンパク質についての一般的な配列の寄託所として
は、GenBank、EMBL、DDBJ、およびNCBIが挙げられる。他の
寄託所は、インターネットを検索することによって容易に同定され得る。
ば、エリトロポイエチン(EPO)、インスリン、ヒト成長ホルモンのようなペ
プチドホルモン;上皮好中球活性化ペプチド−78、GROα/MGSA,GR
Oβ、GROγ、MIP−1α、MIP−1β、MCP−1、上皮増殖因子、線
維芽細胞増殖因子、肝細胞増殖因子、インスリン様増殖因子、インターフェロン
、インターロイキン、ケラチノサイト増殖因子、白血病阻害因子、オンコスタチ
ンM、PD−ECSF、PDGF、プレイオトロピン(pleiotropin
)、SCF、c−kitリガンド、VEGEF、G−CSFなどのような増殖因
子およびサイトカイン)が挙げられる。これらのタンパク質多くが市販され(例
えば、Sigma BioSciences 1997のカタログおよび価格表
を参照のこと)、そしてその対応する遺伝子は周知である。
な転写および発現のアクチベーターとしては、細胞の増殖、分化、調節などを調
節する遺伝子およびタンパク質が挙げられる。発現および転写のアクチベーター
は、原核生物、ウイルス、および真核生物(これは、真菌、植物、および動物(
これは、哺乳動物を含む)を含む)において見出され、これは広範な治療剤を提
供する。発現および転写のアクチベーターは、多くのメカニズム(例えば、レセ
プターへの結合、シグナル伝達カスケードの刺激、転写因子の発現の調節、プロ
モーターおよびエンハンサーへの結合、プロモーターおよびエンハンサーに結合
するタンパク質への結合、DNAの巻き戻し、プレmRNAのスプライシング、
RNAのポリアデニル化、およびRNAの分解によって転写を調節することが理
解される。発現アクチベーターとしては、サイトカイン、炎症性分子、増殖因子
、それらのレセプター、およびオンコジーン産物(例えば、インターロイキン(
例えば、IL−1、IL−2、IL−8など)、インターフェロン、FGF、I
GF−I、IGF−II、FGF、PDGF、TNF、TGF−α、TGF−β
、EGF、KGF、SCF/c−Kit、CD40L/CD40、VLA−4/
VCAM−1、ICAM−1/LFA−1およびヒアルリン(hyalurin
)/CD44);シグナル伝達分子および対応するオンコジーン産物(例えば、
Mos、Ras、Raf、およびMet);ならびに転写アクチベーターおよび
サプレッサー(例えば、p53、Tat、Fos、Myc、Jun、Myb、R
el、ならびにエストロゲン、プロゲステロン、テストステロン、アルドステロ
ン、LDLレセプターリガンドおよびコルチコステロンに対するレセプターのよ
うなステロイドホルモンレセプター)が挙げられる。
細書中の合成方法、特に遺伝子の混合を利用する合成方法についての好ましい標
的である。当業者は、カエルおよびヒトのRNアーゼの両方が公知であり、そし
て多くの重要な薬理学的活性を有することが公知であることを理解する。これら
の遺伝子の間の進化的多様性のため、オリゴヌクレオチド媒介の組換え方法は、
この核酸を組換える際に特に有用である。
物体からのタンパク質としては、以下が挙げられる:感染性真菌(例えば、As
pergillus、Candida種);細菌、特にE.coli(これは、
病原性細菌についてのモデルとして役立つ)、ならびに以下のような医学的に重
要な細菌:Staphylococci(例えば、aureus)、Strep
tococci(例えば、pneumoniae)、Clostridia(例
えば、perfringens)、Neisseria(例えば、gonorr
hoea)、Enterobacteriaceae(例えば、coli)、H
elicobacter(例えば、pylori)、Vibrio(例えば、c
holerae)、Campylobacter(例えば、jejuni)、P
seudomonas(例えば、aeruginosa)、Haemophil
us(例えば、influenzae)、Bordetella(例えば、pe
rtussis)、Mycoplasma(例えば、pneumoniae)U
reaplasma(例えば、urealyticum)、Legionell
a(例えば、pneumophilia)、Spirochetes(例えば、
Treponema、Leptospira、およびBorrelia)、My
cobacteria(例えば、tuberculosis、smegmati
s)、Actinomyces(例えば、israelii)、Nocardi
a(例えば、asteroides)、Chlamydia(例えば、trac
homatis)、Rickettsia、Coxiella、Ehrilic
hia、Rocholimaea、Brucella、Yersinia、Fr
ancisella、およびPasteurella;胞子虫のような原生動物
(例えば、Plasmodia)、根足虫(例えば、Entamoeba)およ
び鞭毛虫(Trypanosoma、Leishmania、Trichomo
nas、Giardiaなど);ウイルス(例えば、(+)RNAウイルス(例
としては、ポックスウイルス(例えば、ワクシニア);ピコルナウイルス(例え
ば、ポリオ);トガウイルス(例えば、風疹);フラビウイルス(例えば、HC
V);およびコロナウイルスが挙げられる)、(−)RNAウイルス(例として
は、ラブドウイルス(例えば、VSV);パラミクソウイルス(Paramyx
ovimses)(例えば、RSV);オルトミクソウイルス(Orthomy
xovimses)(例えば、インフルエンザ);ブンヤウイルス;およびアレ
ナウイルスが挙げられる)、dsDNAウイルス(例えば、レオウイルス属)、
RNA−DNAウイルス(すなわち、レトロウイルス(例えば、特にHIVおよ
びHILV))、ならびに特定のDNA−RNAウイルス(例えば、B型肝炎ウ
イルス)。
作物病害虫の毒素(例えば、昆虫、真菌、雑草植物など)はまた、オリゴヌクレ
オチドシャッフリングのための好ましい標的である。モノオキシゲナーゼ(例え
ば、p450)、プロテアーゼ、ヌクレアーゼ、およびリパーゼのような工業的
に重要な酵素もまた、好ましい標的である。例として、サブチリシンは、サブチ
リシンについての遺伝子の相同形態についてファミリーオリゴヌクレオチドをシ
ャッフリングすることによって進化され得る。Von der Ostenら、
J.Biotechnol.28:55〜68(1993)は、サブチリシンを
コードする核酸の例を提供し、そしてさらなる核酸はGENBANK(登録商標
)に存在する。シャペロニンのような折り畳みを助けるタンパク質もまた、好ま
しい標的である。
子としてはまた、以下が挙げられる:α−1アンチトリプシン、アンギオスタチ
ン(angiostatin)、抗溶血性因子、アポリポタンパク質、アポタン
パク質、心房性ナトリウム利尿因子、心房性ナトリウム利尿ポリペプチド、心房
性ペプチド、C−X−Cケモカイン(例えば、T39765、NAP−2、EN
A−78、Gro−a、Gro−b、Gro−c、IP−10、GCP−2、N
AP−4、SDF−1、PF−4、MIG)、カルシトニン、CCケモカイン(
例えば、単球化学誘引タンパク質(Monocyte chemoattrac
tant protein)−1、単球化学誘引タンパク質−2、単球化学誘引
タンパク質−3、単球炎症性タンパク質−1α、単球炎症性タンパク質−1β、
RANTES、I309、R83915、R91733、HCC1、T5884
7、D31065、T64262)、CD40リガンド、コラーゲン、コロニー
刺激因子(CSF)、補体因子5a、補体インヒビター、補体レセプター1、第
IX因子、第VII因子、第VIII因子、第X因子、フィブリノゲン、フィブ
ロネクチン、グルコセレブロシダーゼ、ゴナドトロピン、ヘッジホッグ(Hed
gehog)タンパク質(例えば、Sonic、Indian、Desert)
、ヘモグロビン(代用血液について;放射線増感について)、ヒルジン、ヒト血
清アルブミン、ラクトフェリン、ルシフェラーゼ、ニューロツリン(Neurt
urin)、好中球阻害因子(NIF)、骨原性タンパク質、上皮小体ホルモン
、プロテインA、プロテインG、レラキシン、レニン、サケカルシトニン、サケ
成長ホルモン、可溶性補体レセプターI、可溶性I−CAM1、可溶性インター
ロイキンレセプター(IL−1、2、3、4、5、6、7、9、10、11、1
2、13、14、15)、可溶性TNFレセプター、ソマトメジン、ソマトスタ
チン、ソマトトロピン、ストレプトキナーゼ、スーパー抗原(すなわち、ブドウ
球菌エンテロトキシン(SEA、SEB、SEC1、SEC2、SEC3、SE
D、SEE))、トキシックショック症候群毒素(TSST−1)、剥離作用性
(Exfoliating)毒素AおよびB、発熱性体外毒素A、B、およびC
、ならびにM.arthritidesマイトジェン、スーパーオキシドジスム
ターゼ、サイモシンα1、組織プラスミノゲンアクチベータ、腫瘍壊死因子β(
TNFβ)、腫瘍壊死因子レセプター(TNFR)、腫瘍壊死因子α(TNFα
)、ならびにウロキナーゼ。
ミノ酸の抗真菌類タンパク質)、ペプチド抗生物質、およびペプチド殺虫性タン
パク質のような低分子タンパク質もまた、好ましい標的であり、そして関連した
タンパク質のファミリーとして存在する。低分子タンパク質をコードする核酸は
、特に好ましい標的である。なぜなら、従来の組換え方法は、限定された産物の
配列多様性のみを提供するからである。これは、従来の組換え方法論が、約50
〜100塩基対毎の相同配列間に交差を生成するからである。これは、非常に短
い組換え標的に関して、標準技術によって1分子あたり約1回の交差が生じるこ
とを意味する。対照的に、本明細書中のオリゴヌクレオチドシャッフリング形式
は、当業者が所望の任意の「交差」を選択する場合、小さな核酸の組換えを提供
する。
FOR MAKING CHARACTER STRINGS,POLYNUCL
EOTIDES AND POLYPEPTIDES HAVING DESI
RED CHARACTERISTICS」、代理人整理番号02−289−3
USおよび本明細書中の他の参考文献に記載される。
フリング方法) 本発明の1つの局面は、ファミリーシャッフリングオリゴヌクレオチドを使用
する能力、および種々のDNAシャッフリング方法において組換えテンプレート
/中間体としてオリゴヌクレオチドを交差する能力である。さらに、本明細書中
の新しい合成技術によって作製される核酸は、他の利用可能なシャッフリング方
法論によって再びシャッフリングされ得る。
される方法を含む。以下の刊行物は、種々の再帰的な組換え手順および/または
本発明のプロセスに関連して実行され得る関連する方法を記載する:
び共同研究者らによる米国特許において見出される:Stemmerに対する米
国特許第5,605,793号(1997年2月25日)、「METHODS
FOR IN VITRO RECOMBINATION」;Stemmer
らに対する米国特許第5,811,238号(1998年9月22日)、「ME
THODS FOR GENERATING POLYNUCLEOTIDE
S HAVING DESIRED CHARACTERISTICS BY
ITERATIVE SELECTION AND RECOMBINATIO
N」;Stemmerらに対する米国特許第5,830,721号(1998年
11月3日)、「DNA MUTAGENESIS BY RANDOM FR
AGMENTATION AND REASSEMBLY」;Stemmerら
に対する米国特許第5,834,252号(1998年11月10日)、「EN
D−COMPLEMENTARY POLYMERASE REACTION」
、およびMinshullらに対する米国特許第5,837,458号(199
8年11月17日)、「METHODS AND COMPOSITIONS
FOR CELLULAR AND METABOLIC ENGINEERI
NG」。
PCTおよび外国特許出願公開において見出される:
に関するさらなる詳細を提供する:Pattenらによって1998年9月29
日(USSN60/102,362)、1999年1月29日(USSN60/
117,729)、および1999年9月28日(USSN PCT/US99
/22588)に出願された「SHUFFLING OF CODON ALT
ERED GENES」;del Cardyreらによって1998年7月1
5日(USSN09/166,188)、および1999年7月15日(USS
N09/354,922)に出願された「EVOLUTION OF WHOL
E CELLS AND ORGANISMS BY RECURSIVE S
EQUENCE RECOMBINATION」;Crameriらによって1
999年2月5日に出願され(USSN60/118,813)、そして199
9年6月24日に出願され(USSN60/141,049)、そして1999
年9月28日に出願された(USSN09/408,392)「OLIGONU
CLEOTIDE MEDIATED NUCLEIC ACID RECOM
BINATION」、ならびに、Welchらによって1999年9月28日に
出願された(USSN09/408,393)「USE OF CODON−B
ASED OLIGONUCLEOTIDE SYNTHESIS FOR S
YNTHETIC SHUFFLING」。最終的に、「関連出願の引用」と題
された節において、上記に列挙された出願が関連形式を提供する。
よび伸長するプロセスにおけるさらなる詳細を提供する。
合わせたファミリー遺伝子シャッフリングを使用するハイブリッド方法が、使用
される。例えば、活性な核酸は、所定の標的遺伝子に関して相同置換をほとんど
またはさらには全く有さないオリゴヌクレオチドから再アセンブリされ得る。再
アセンブリされる「骨格」核酸は、標準的な方法におけるようにDNaseで処
理され、そして生じるDNase処理フラグメントは、所定の核酸において配列
同一性および多様性の領域に対応する配列を含むファミリーオリゴヌクレオチド
でスパイクされる。次いで、この核酸は、以下の方法(例えば、PCR再アセン
ブリ、または他の再アセンブリ方法)によって相同配列のライブラリーへ再アセ
ンブリされる。この手順は、骨格核酸の使用を組み入れないオリゴヌクレオチド
合成方法に対して比較した場合に見出され、活性なクローンのパーセンテージの
増加を生じ得る。
行物は、DNAシャッフリングを容易にする技術(例えば、本発明に関連した小
さなフラグメント(オリゴヌクレオチドを含む)からの遺伝子の再アセンブリを
提供することによる)を記載する。例えば、Stemmerら(1998)米国
特許第5,834,252号のEND COMPLEMENTARY POLY
MERASE REACTIONは、(例えば、核酸の混合物中の)標的配列を
増幅および検出するためのプロセス、ならびにフラグメントから大きなポリヌク
レオチドをアセンブリするプロセスを記載する。Crameriら(1998)
Nature 391:288〜291は、Crameriら(1998)Bi
otechniques 18(2)194〜196のような、遺伝子の再アセ
ンブリについての基本的な方法論を提供する。
る核酸を改変するために使用され得、または、本明細書中の方法のためのテンプ
レートとして使用され得る。例えば、さらなる多様性は、個々のヌクレオチドま
たは連続した、もしくは連続していないヌクレオチドの群の変更を生じる方法(
すなわち、変異誘発方法)によって導入され得る。変異誘発方法としては、例え
ば以下が挙げられる:組換え(PCT/US98/05223;公開番号WO9
8/42727);オリゴヌクレオチド特異的変異誘発(総説についてはSmi
th、Ann.Rev.Genet.19:423〜462(1985);Bo
tsteinおよびShortle、Science 229:1193〜12
01(1985);Carter、Biochem.J.237:1〜7(19
86);Kunkel、Necleic acids & Molecular
Biology中の「The efficiency of oligonu
cleotide directed mutagenesis」、Eckst
einおよびLilley編、Springer Verlag、Berlin
(1987)を参照のこと)。これらの方法の中に含まれる方法としては、以下
が挙げられる:オリゴヌクレオチド特異的変異誘発(ZollerおよびSmi
th、Nucl.Acids Res.10:6487〜6500(1982)
、Methods in Enzymol.100:468〜500(1983
)、およびMethods in Enzymol.154:329〜350(
1987))、ホスホチオエート改変DNA変異誘発(Taylorら、Nuc
l.Acids Res.13:8749〜8764(1985);Taylo
rら、Nucl.Acids Res.13:8765〜8787(1985)
;NakamayeおよびEckstein、Nucl.Acids Res.
14:9679〜9698(1986);Sayersら、Nucl.Acid
s Res.16:791〜802(1988);Sayersら、Nucl.
Acids Res.16:803〜814(1988))、ウラシル含有テン
プレートを使用する変異誘発(Kunkel、Proc.Nat’l.Acad
.Sci.USA 82:488〜492(1985)、およびKunkelら
、Methods in Enzymol.154:367〜382);ギャッ
プを入れた(gapped)二重鎖DNAを使用する変異誘発(Kramerら
、Nucl.Acids.Res.12:9441〜9456(1984);K
ramerおよびFritz、Methods in Enzymol.154
:350〜367(1987);Kramerら、Nucl.Acids Re
s.16:7207(1988));ならびにFritzら、Nucl.Aci
ds Res.16:6987〜6999(1988))。さらなる方法として
は、以下が挙げられる:点ミスマッチ修復(Kramerら、Cell 38:
879〜887(1984))、修復欠損宿主株を使用する変異誘発(Cart
erら、Nucl.Acids Res.13:4431〜4443(1985
);Carter、Methods in Enzymol.154:382〜
403(1987))、欠失変異誘発(EghtedarzadehおよびHe
nikoff、Nucl.Acids Res.14:5115(1986))
、制限−選択および制限−精製(Wellsら、Phil.Trans.R.S
oc.Lond.A 317:415〜423(1986))、全遺伝子合成に
よる変異誘発(Nambiarら、Science 223:1299〜130
1(1984);SakamarおよびKhorana、Nucl.Acids
.Res.14:6361〜6372(1988);Wellsら、Gene
34:315〜323(1985);ならびにGrundstroemら、Nu
cl.Acids Res.13:3305〜3316(1985)。変異誘発
のためのキットは、市販されている(例えば、Bio−Rad、Amersha
m International、Anglian Biotechnolog
y)。
16号;米国特許第5,965,408号;Ostermeierら(1999
)「A combinatorial approach to hybrid
enzymes independent of DNA homology
」Nature Biotech 17:1205;米国特許第5,783,4
31号;米国特許第5,824,485号;米国特許第5,958,672号;
Jirholtら(1998)「Exploiting sequence s
pace:shuffling in vivo formed comple
mentarity determining regions into a
master framework」Gene 215:471;米国特許第
5,939,250号;WO99/10539;WO98/58085;WO9
9/10539など。これらの多様性を生成する方法は、使用者によって選択さ
れる任意の組合せにおいて互いに、またはシャッフリング反応もしくはオリゴシ
ャッフリング方法と組み合わせられて、任意の利用可能なスクリーニング方法を
使用してスクリーニングされ得る核酸の多様性を産生し得る。
性について選択され得る。本発明の状況において、これは、当該分野における任
意の関連するアッセイによって、任意の検出可能な活性またはアッセイ可能な活
性について試験し、そして同定することを含み得る。種々の関連する(または関
連していなくとも)特性は、任意の利用可能なアッセイを使用してアッセイされ
得る。
の形式もまた有用である。例えば、部位特異型またはオリゴヌクレオチド特異型
変異誘発方法を使用して、2つ以上の親遺伝子間(相同性であろうと、または非
相同性であろうと)でキメラを生成し得る。このことについては、本発明の1つ
の局面は、組換えられるべき核酸に対応するオリゴヌクレオチドのライブラリー
の連結による核酸間の組換えを実行する新しい方法に関する。
ヌクレオチドのセットは、1つ以上の組換え核酸、代表的には全長タンパク質を
コードする組換え核酸を産生するために連結される(しかし、連結はまた、次い
で組換えられ得る部分的核酸配列のライブラリーを作製して、例えば、部分的ま
たは全長組換え核酸を産生するために連結され得る)。オリゴヌクレオチドのセ
ットは、代表的に、少なくとも第1のオリゴヌクレオチド(これは、第1の領域
の配列多様性において少なくとも第1の親核酸に相補的である)、および少なく
とも第2のオリゴヌクレオチド(これは、第2の領域の多様性において少なくと
も第2の親核酸に相補的である)を含む。この親核酸は相同的であってもよいし
、または非相同的であってもよい。
的な形式において、オリゴヌクレオチドは、テンプレートとして作用する第1の
親核酸にハイブリダイズされ、そしてリガーゼを用いて連結される。このオリゴ
はまた、ポリメラーゼを用いて伸長され得、そして連結される。このポリメラー
ゼは、例えば、通常のDNAポリメラーゼまたは熱安定性のDNAポリメラーゼ
であり得る。このリガーゼは、例えば、通常のDNAリガーゼまたは熱安定性の
DNAリガーゼであり得る。多くのこのようなポリメラーゼおよびリガーゼは、
市販されている。
の共通要素は、プライマーがアニーリングされて、次いで、dNTPおよび適切
な緩衝液の存在下でDNAポリメラーゼによって伸長される、一本鎖テンプレー
トの調製である。ギャップを入れた二重鎖は、E.coliへの形質転換または
エレクトロポレーションの前に、リガーゼを用いて埋められ得る。新しく合成さ
れた鎖は複製され、そして一本鎖(ss)の親の状況においてオリゴからの寄与
を有するキメラ遺伝子を生成する。
ジングするために、プラスミドへのファージIG領域の組込み、およびM13K
O7(Pharmacia Biotech)またはR408のようなヘルパー
ファージの使用によって調製され得る。このssテンプレートはまた、二本鎖テ
ンプレートの変性およびプライマーの存在下でのアニーリングによって生成され
得る。この方法は、親のテンプレート鎖にわたって新しく合成されたキメラ鎖の
単離のための濃縮方法において変化する。二本鎖テンプレートの単離および選択
は、利用可能な方法を使用して実行され得る。例えば、以下を参照のこと:Li
ngら(1997)「Approaches to DNA mutagene
sis:an overview.」 Anal Biochem.12月15
日;254(2):157〜78;Daleら(1996)「Oligonuc
leotide−directed random mutagenesis
using the phosphorothioate method」 M
ethods Mol Biol.57:369〜74;Smith(1985
)「In vitro mutagenesis」 Ann.Rev.Gene
t.19:423〜462;BotsteinおよびShortle(1985
)「Strategies and applications of in
vitro mutagenesis」 Science 229:1193〜
1201;ならびにCarter(1986)「Site−directed
mutagenesis」 Biochem J.237:1〜7;Kunke
l(1987)「The efficiency of oligonucle
otide directed mutagenesis」 Nucleic
Acids & Molecular Biology(1987);Ecks
tein,F.およびLilley,D.M.J.編 Springer Ve
rlag,Berlin。
プレートを使用する。同様に、「Eckstein」方法は、ホスホロチオエー
ト改変DNAを使用する
得る(例えば、Carterら(1985)「Improved oligon
ucleotide site directed mutagenesis
using M13 vectors」 Nucleic Acids Res
.13、4431〜4443 Carter(1987)「Improved
oligonucleotide−directed mutagenesis
using M13 vectors.」 Methods in Enzy
mol.154:382〜403;Wells(1986)「Importan
ce of hydrogen bond formation in sta
bilizing the transition state of sub
tilisin.」Trans.R.Soc.Lond.A317、415〜4
23を参照のこと)。
無作為化、挿入、欠失をコードする合成オリゴヌクレオチド、相同性遺伝子の配
列多様性に基づくファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドなどであ
り得る。このプライマーはまた、ss親テンプレートに対してアニーリングされ
る相同性遺伝子のフラグメントであり得る。このようにして、2つ以上の親遺伝
子間のキメラが生成され得る。
キメラ遺伝子を作製するために伸長し得る。ファージT4またはファージT7か
らのDNAポリメラーゼのようなDNAポリメラーゼの使用は、これらがテンプ
レートから下流のプライマーを分解せず、また置換もしないので、この目的のた
めに適切である。
レートを使用して実行される。この実施態様において、目的の遺伝子は、糸状フ
ァージ遺伝子間(IG、ori)領域を含むE.coliプラスミドへクローニ
ングされる。一本鎖(ss)プラスミドDNAは、M13KO7(Pharma
cia)またはR408のようなヘルパーファージでの感染に際してファージ粒
子中にパッケージングされ、そしてフェノール/クロロホルム抽出およびエタノ
ール沈殿のような方法によって容易に精製され得る。このDNAがE.coli
のdut−ung−株において調製される場合、少数のウラシル残基は、正常な
チミン残基の代わりにその中へ組み込まれる。上記のような1つ以上のプライマ
ーまたは他のオリゴは、90℃までの加熱および室温までの緩徐な冷却によって
ssウラシル含有テンプレートにアニーリングされる。4つ全てのデオキシリボ
ヌクレオチド、T7 DNAポリメラーゼ、およびT4 DNAリガーゼを含む
適切な緩衝液を、アニーリングされたテンプレート/プライマー混合物に添加し
、そして室温と約37℃との間で1時間以上インキュベートする。T7 DNA
ポリメラーゼはプライマーの3’末端から伸長し、そしてプライマーを組み込む
テンプレートに対して相補的な鎖を合成する。DNAリガーゼは、新しく合成さ
れた鎖の3’末端とプライマーの5’末端との間のギャップを埋める。
され、停止し、そしてリガーゼはギャップを埋める。次いで、この反応物は、E
.coliのung+株中に形質転換され、そしてプラスミドについての抗生物
質の選択が適用される。宿主細胞中のウラシルN−グリコシラーゼ(ung遺伝
子産物)酵素は、テンプレート鎖中のウラシルを認識し、そしてウラシルを除去
し、複製されないかまたは宿主修復系が新しく合成された鎖をテンプレートとし
て使用することによってウラシルを訂正するかのいずれかである無ピリミジン部
位を作製する。得られるプラスミドは主に、目的であれば、遺伝子に所望の変化
を含む。複数のプライマーが使用される場合、単一の反応において、多くの変化
を同時に導入することが可能である。プライマーが相同性遺伝子のフラグメント
由来か、または相同性遺伝子のフラグメントに対応する場合、複数のキメラ遺伝
子が生成され得る。
ドは、親の配列(このオリゴヌクレオチドの起源)と比較してコドンの使用を変
えている。特に、例えば、コドンの優先を改変し、オリゴヌクレオチドシャフリ
ング手順の組換え産物が評価されるかまたは他の点で選択される細胞において、
発現を最適化することは有用である。組換え核酸を、選択されるべき特定の細胞
のコドンバイアスと一致させることは、代表的には組換え核酸の発現の最大化を
引き起こす。本明細書中の種々のストラテジーにおいて使用されるオリゴヌクレ
オチドは、代表的には合成的に作製されるので、最適なコドンの優先を選択する
ことは、周知のコドンバイアス表を参照することによって単純になされる。コド
ンベースの合成方法(前出に記載される)は、合成プロトコルにおいてコドンを
改変するために、必要に応じて使用される。
はまた、遠く隔たって関連する、組換えされるべき核酸の間の配列類似性を増大
するために使用され得る。コドンが特定の位置において使用されるように選択す
ることによって、核酸間での類似性を増大させることが可能であり、そして順に
、その核酸間での組換え頻度を増大させる。コドン改変手順についておよびそれ
らのDNAシャッフリングへの適用についてのさらなる詳細は、Patenおよ
びStemmer、USSN 60/102,362「SHUFFLING O
F CODON ALTERED NUCLEIC ACID」(1998年9
月29日出願)およびPatenおよびStemmerの関連出願(1999年
1月29日に出願、Attorney整理番号018097−028510、「
SHUFFLING OF CODON ALTERED NUCLEIC A
CID」と称される)に見出される。
的サブ配列ドメインから構成される。例えば、プロモーター配列は、転写因子を
結合する多くの機能的配列エレメントから作製され、そして遺伝子発現を調節す
る。エンハンサーエレメントは、プロモーターエレメントと結合し、所定の遺伝
子の発現を増強し得る。同様に、少なくともいくつかのエキソンはコードされる
タンパク質のモジュラードメインを示し、そしてエキソンは野生型遺伝子に関連
して多量体化または欠失され得、そして生じた核酸は、組換えられて、変化させ
た遺伝子(またはコードされたタンパク質)モジュールのライブラリー(すなわ
ち、核酸を挿入もしくは欠失したモジュールのライブラリー)を提供する。モジ
ュラー配列の数および配置、ならびにそれらの配列組成は、プロモーター、エキ
ソン、または他の遺伝子モジュールの全体活性に影響を及ぼし得る。
ク質について)のモジュールとしてのエキソンの概念が確立される。例えば、G
ilbertおよびGlynias(1993)Gene 137−144;D
olittleおよびBork(1993年10月)Scientific A
merican 50−56;ならびにPatthy(1991)Curren
t Opinions in Structural Biology 1:3
51−361を参照のこと。エキソンモジュールのシャッフリングは、エキソン
シャッフリングルールの理解によって最適化される。イントロン(および結果的
にエキソン)が、3つの異なるフェーズにおいて生じ、これはエキソン−イント
ロン境界でコドンのスプライス接合部に依存する。Stemmer(1995)
Biotechnology 13:549−553;Patthy(1994
)Current Opinions in Structural Biol
ogy 4:383−392およびPatthy(1991)Current
Opinions in Structural Biology 1:351
−361を参照のこと。
ンのスプライス接合部を有する「フェーズ適合性」である必要がある−そうでな
い場合、次いで、リーディングフレームにおけるシフトが生じ、エキソンモジュ
ールの情報が除去される。イントロンの3つの可能なフェーズは、イントロンが
生じるイントロン−エキソン境界でコドン内の塩基の位置についてフェーズ1、
2または0である。リーディングフレームに関連したそれらの位置に従うイント
ロンの分類は、以下である:フェーズ0イントロンは、隣接するエキソンの2つ
のコドンの間に位置する;フェーズ1イントロンは、コドンの第1ヌクレオチド
と第2のヌクレオチドとの間に位置し、そしてフェーズ2イントロンは、コドン
の第2のヌクレオチドと第3のヌクレオチドとの間に位置する。フェーズ1イン
トロンは、性質的に大部分が共通している。
(0(すなわち、エレメントの欠失)から所望のコピー数)、およびモジュール
の長さを変化させるためのモジュラー配列(例えば、プロモーターエレメントお
よびエキソンを含む)のシャッフリングである。特に、標準的なシャッフリング
の方法、および/または本明細書中のオリゴヌクレオチド媒介方法は、単に適切
に設計されたフラグメントまたはオリゴヌクレオチドを組換え混合物にスパイク
することによって、エレメントの複製および長さの改変のアプローチと組み合わ
せ得る。
るように設計された末端とともに、組換え反応にスパイクされる。これにより、
引き続く組換え反応において多量体の生成を引き起こす。これらの多量体は、最
終のシャッフリング産物に、多量体の末端での相同組換えによって、多量体化さ
れるモジュールのモル比に依存しているこのような多量体の全長と組込まれ得る
。多量体は、別々に生成され得るか、または前出で議論されるような遺伝子の再
集合/組換え反応においてオリゴであり得る。
間、オリゴは選択されて、多量体を生成および/または選択されたモジュール(
例えば、エキソン、プロモーターエレメント、エンハンサーなど)を欠失し、こ
れによって多量体またはモジュールの欠失を別々に含む核酸を作製する必要を回
避する。従って、1つの局面において、重複ファミリー遺伝子シャッフリングオ
リゴヌクレオチドのセットは、配列モジュールエレメントの欠失または多量体化
を提供するオリゴを含むように構築される。これらの「モジュールシャッフリン
グ」オリゴヌクレオチドは、相同な核酸を組換えるために本明細書中の他の任意
のアプローチとともに用いられ得る。従って、配列モジュールエレメントは、選
択される核酸の活性もしくは異なる成分の活性を提供する所定の核酸のサブ配列
のモジュールエレメントであり、一方、モジュールシャッフリングオリゴヌクレ
オチドは配列モジュールの挿入、欠失または多量体化を提供するオリゴヌクレオ
チドである。このようなオリゴヌクレオチドの例には、1つより多い配列モジュ
ール(選択された位置での介入配列の欠失および/またはモジュールの挿入を提
供する)に対応するサブ配列を有するオリゴヌクレオチド、オリゴヌクレオチド
混合物のハイブリダイゼーションおよび伸長などの間、1つ以上のオリゴヌクレ
オチド(および、必要に応じて関連配列の)の多量体化を許容する同一性の領域
を有する末端を有する1つ以上のオリゴヌクレオチドが挙げられる。
応するまたは相同な親の核酸に関連する所定のモジュールのコピー数および配置
を変化させる。このモジュールがエキソンである場合、代表的には、組換え方法
において使用されるオリゴヌクレオチドは、同じフェーズ(すなわち、同じリー
ディングフレームを有する)において結合されるエキソンを生じるよう選択され
て、任意の所定のライブラリーメンバーが機能的に活性である見込みを増大する
。これは、図3に模式的に例証される。異なって影がつけられたモジュールは、
別々のエキソンを示し、エキソンのフェーズを1、2、または0と示す。
いて、進化的中間体は、2つ以上の相同な配列の間の特徴において中間である(
例えば、配列が進化樹状図において分類される場合)人工構築物である。
(「樹形図」)に分類される。例えば、分岐学的分析は、生物体または形質(核
酸またはポリペプチド配列を含む)が、仮定される共通の祖先(多岐した形質ま
たは生物体の中間形態)からの起源を反映する基準に基づいて順に並べられ、そ
して分類される、分類方法である。分岐学的分析は主に、関連性を示す関連樹形
図(または樹状図)の分岐に関連するが、差異の程度はまた、評価され得る(差
異は時折、差異の程度を考慮し、そして進化樹状図における分岐点を単に決定す
る進化的分類学者の間で作製される(古典的分岐学的分析);しかし、本発明の
目的のために、いずれかの方法によって作製される関連樹形図は、進化的中間体
を作製し得る)。
々と、中間である核酸を選択することによって決定され得る。この配列は、天然
に存在しなくてもよいが、選択された天然の配列に類似する配列をなお示す(す
なわち、2つ以上の配列の中間体が2つ以上の現存する核酸の共通の祖先と類似
した配列を示す)。従って、進化的中間体は、それらが「擬似選択された」配列
を示すので、1つの好ましいシャフリング基質であり、そしてこれは、無作為に
選ばれた活性を有する配列よりも見込みがある。
うな配列に対応するオリゴヌクレオチドの使用の)1つの利点は、重要な配列多
様性がより少ない出発基質において示され得ることである(すなわち、親Aおよ
びBで出発する場合、単一の中間体「C」はAおよびBの両方の少なくとも部分
的代表である)。このことは、遺伝子の再構築/組換え方法についてのオリゴヌ
クレオチドの合成を簡単にし、手順の効率を改善する。さらに、進化的中間体を
用いた配列データーベースの検索により、標準的な検索プログラム(例えば、B
LAST)を使用して関連した核酸を同定する機会が増大する。
おいて示されない2つ以上の合成配列の間で選択され得る。このような合成配列
には、進化的中間体、提案された遺伝子配列、または配列に関連した目的の他の
配列が挙げられ得る。これらの「人工中間体」はまた、遺伝子の再構築方法の複
雑性を減少させる際、および進化のデーターベースを検索する能力の改善につい
て有用である。
提示する文字列は、アラインメントおよび配列関連ソフトウェア(BLAST、
PILEUPなど)を用いて最初に決定され、次いでオリゴヌクレオチド再構築
方法を用いて合成される。あるいは、中間体はまた、本明細書中の遺伝子再構築
方法において使用されるオリゴヌクレオチドの選択についての基礎を形成し得る
。
レッディングを用いたシリコンシャッフリングを含む)に関するさらなる詳細は
、同時に出願されたSelifonovらによる、「METHODS FOR
MAKING CHARACTER STRINGS、POLYNUCLEOT
IDES AND POLYPEPTIDES HAVING DESIRED
CHARACTERISTICS」Attorney整理番号02−289−
30USおよび同時に出願されたPCT出願(米国で称される)Selifon
ovらによる、「METHODS FOR MAKING CHARACTER
STRINGS、POLYNUCLEOTIDES AND POLYPEP
TIDES HAVING DESIRED CHARACTERISTICS
」Attorney整理番号02−289−30PCに示される。
性を評価するのに良好な方法である。しかし、目的の活性を提供するコードされ
たタンパク質の一部分のみをシャッフルすること、特に、タンパク質が多機能的
であり、かつ1つ以上の活性がタンパク質全体のサブ配列(ドメイン)にマッピ
ングされ得る場合は、有利であり得る。
:アクセプターおよび活性化糖ドナー。アクセプターを変えずに転移するべき糖
を変化させるために、糖結合ドメインのみをファミリーシャッフルすることは、
好ましくあり得る。なぜならば、糖アクセプタードメインのファミリーシャッフ
リングは、より少ない数の所望のアクセプターを生じ得るからである。
、eA〜eE(それぞれ500アミノ酸)が存在する。糖a〜eをアクセプター
Aに転移する酵素のライブラリーを作製するために、eA〜eEの糖結合ドメイ
ンをシャッフリングし、それらをeAのアクセプター結合ドメインと結合させる
ことは好ましくあり得る。
けるこのような機能的ドメインを同定するためのデータが不十分であり得ること
である。この場合、ライブラリーのセットは、無作為な酵素部分のファミリーシ
ャッフリングによって作製され得る。例えば、酵素eA〜eE(上記)のファミ
リーシャフリングに適用する場合、第1のライブラリーは、組換えおよび延長の
ためのオリゴヌクレオチドセットを適切に選択することによって、eA〜eEの
うちのいずれか1つの最後の400アミノ酸と組み合わせてeA〜eEの第1の
100アミノ酸をコードして作製され得る。第2のライブラリーは、ファミリー
が、eA〜Aeのいずれか1つの第1の100アミノ酸およびeA〜Aeのうち
いずれか1つの最後の300アミノ酸をコードしたものなどと組み合わせて、e
A〜eEの第2の100アミノ酸をファミリーシャッフルして作製され得る。こ
れらのライブラリーの小サブセットは、第1の所望の機能についてスクリーニン
グされる。第1の所望の機能(例えば、上記実施例におけるアクセプター活性)
を保持するライブラリーは、選択可能な機能(例えば、上記実施例における糖転
移)に加え、比較的高い割合の改変体を有する。
ク質の多様化のために使用され得る。このストラテジーは、保存されるべき特性
が複雑である場合(例えば、ポリケチド、非リボソームペプチドまたは他の天然
産物に対する基質特異性)、特に利点である。
チドの選択(既知の機能的サブ配列、または上記の未知の機能のサブ配列に対応
するかに関わらず)は、配列に関連したオリゴヌクレオチドの2つの一般的な型
を提供することによって、実施される。第1の型は、組換えが所望される領域に
対応する(すなわち、本明細書中にしるされるストラテジーに従って)配列に関
連した重複オリゴヌクレオチドセットを選択することによって提供されるが、第
2の型は、シャフルされるべきドメインとシャッフルされないドメインであるド
メインの間の組換え接合物(すなわち、本明細書中に記載の交差オリゴヌクレオ
チドと類似である)を提供する。シャッフルされないドメインは、単なるオリゴ
ヌクレオチド遺伝子の再構築方法によって(すなわち、オリゴヌクレオチドを結
合する連結またはポリメラーゼ媒介伸長反応を用いて)作製され得るか、または
シャッフルされないドメインは、より大きな核酸の酵素的切断によって作製され
得る。
走査) ファミリーに基づくオリゴシャッフリングは、遺伝子合成において組換えられ
るファミリーシャッフリングオリゴヌクレオチドのセットを作製することによる
相同な核酸の組換え、および前出で議論されたような組換えプロトコルを含む。
記載されるように、相同な核酸は、天然の相同体または非天然(例えば、人工の
)の相同体であり得る。
の空間が、生じた組換え核酸によって接近されることである。このさらなる多様
性は、天然の多様性を提示する核酸の組換えによって提供されない機能的特性の
発達または獲得を可能にする。
多くが、関連する特徴に関して機能的でないことである。これらの相同体につい
て、選択可能な配列空間において生じた増大の多くは、所望されない「ノイズ」
であり、これは集団から選択される必要がある。対照的には、天然の多様性は、
進化的に試験された分子を示し、このことは、より多くの、標的化された、組換
えが生じる潜在的な配列空間全体を示す。
法は、コードされる分子(タンパク質、RNAなど)の所望される機能的特性を
有意に退化させることなく所定の遺伝子において改変され得るそれらの位置を規
定することである。少なくとも2つの基本的なアプローチが使用され得る。
れ得る位置を規定するために実施され得る。原則として、機能に関して、基本的
に中性である点変異の大きなスペクトルを規定するために、全ての20アミノ酸
が各位置について試験され得る。次いで、シャッフリングオリゴのセットは、こ
れらの非天然(しかしなお活性化である)相同体を捕捉するよう作製される。多
くの市販の重要なタンパク質について、アラニン走査の情報はすでに入手可能で
ある。例えば、Youngら(1997)Protein Science 6
:1228−1236は、顆粒球コロニー刺激因子(G−CSF)のアラニン走
査を記載する。
タンパク質がどのようにリガンドと相互作用するか)、機能においてほとんど変
異しないかまたは全く変化しないと予想される領域が規定され得る。次いで、フ
ァミリーシャッフリングオリゴのセットは、これらの非天然(しかしなお活性化
であると予想される)の相同体を捕捉するように作製される。種々のタンパク質
の結晶構造が入手可能である(例えば、G−CSFの結晶構造:Hillら(1
993)PNAS 90:5167を含む)。
予測された構造が提供され得る。これをまた使用して、残基が、機能を変化する
ことなく変化され得ることが予測され得る。タンパク質の構造を予測するための
種々のタンパク質構造のモデリングプログラムは、市販されている。さらに、ス
ーパー構造(ヘリックス、β−シートなど)の領域を形成するアミノ酸の相対的
な傾向が良好に確立される。例えば、O’NeilおよびDeGrado Sc
ience v.250は、共通して生じるアミノ酸のヘリックスを形成する傾
向の議論を提供する。活性を形成する相対的な構造のアミノ酸についての表は、
残基が所定の部分において機能的に置換され得ると予測される置換表として使用
され得る。次いで、ファミリーシャッフリングオリゴのセットは、これらの非天
然(しかしなお活性化であると予測される)の相同体を捕捉するように作製され
る。
設計および最適化、ならびにタンパク質およびペプチドの設計について計算的に
駆動される1つの系である。代表的には、PDAは、タンパク質骨格構造で始ま
り、そしてタンパク質の特性を改変するためにアミノ酸配列を設計するが、一方
、三次元折り畳み特性を維持する。多数の配列は、PDAを用いて操作され得、
これはタンパク質構造(配列、サブ配列など)の設計を可能にする。PDAは、
例えば以下を含む多くの刊行物に記載される:MalakauskasおよびM
ayo(1998)「Design,Structure and Stabi
lity of a Hyperthermophilic Protein
Variant」Nature Struc.Biol.5:470;Dahi
yatおよびMayo(1997)「De Novo Protein Des
ign:Fully Automated Sequence Selecti
on」Science、278、82−87.DeGrado、(1997)「
Proteins from Scratch」Science、278:80
−81;Dahiyat、SariskyおよびMayo(1997)「De
Novo Protein Design:Towards Fully Au
tomated Sequence Selection」J.Mol.Bio
l.273:789−796;DahiyatおよびMayo(1997)「P
robing the Role of Packing Specifici
ty in Protein Design」Proc.Natl.Acad.
Sci.USA、94:10172−10177;Hellinga(1997
)「Rational Protein Design−Combining
Theory and Experiment」Proc.Natl.Acad
.Sci.USA、94:10015−10017;SuおよびMayo(19
97)「Coupling Backbone Flexibility an
d Amino Acid Sequence Selection in P
rotein Design」Proc.Sci.6:1701−1707;D
ahiyat,GordonおよびMayo(1997)「Automated
Design of Surface Positions of Prot
ein Helices」Prot.Sci.、6:1333−1337;Da
hiyatおよびMayo(1996)「Protein Design Au
tomation」Proc.Sci.,5:895−903。PDAに関する
さらなる詳細は、例えばhttp://www.xencor.com/で入手
可能である。PDAを使用して、活性を保持するようである改変体の配列を同定
し得、オリゴヌクレオチド媒介組換えについての基礎として使用され得る相同な
核酸のセットを提供する。
ング方法は、本発明の重要な局面ではない。一般に、当業者は、選択される活性
を参考として、適切なスクリーニング(すなわち、選択)方法を実施し得る。
特性、形質、または特徴を有する分子、形質転換細胞もしくは生物体についてス
クリーニングまたは選択する1つ以上のサイクルが続く。組換えサイクルがイン
ビトロで実施される場合、組換え産物(すなわち、組換えセグメント)は時折、
スクリーニング工程の前に細胞に導入される。組換えセグメントはまた、スクリ
ーニング前に、適切なベクターまたは他の調節配列に連結され得る。あるいは、
インビトロで生成した組換え産物は時折、スクリーニング前にウイルス中(例え
ば、バクテリオファージ)中にパッケージングされる。組換えがインビボで実施
される場合、組換え産物は時折、組換えが起こる細胞においてスクリーニングさ
れ得る。他の適用において、組換えセグメントは、細胞から抽出され、そして必
要に応じてスクリーニング前にウイルスのようにパッケージされる。
またはどの特性もしくは特徴の改善が求められるかに依存し、そして多くの実施
例を以下に記載する。特定の組換え産物(組換えセグメント)が、出発基質に対
して新しいまたは改善された特性もしくは特徴を獲得することによって分子の基
礎を理解することは、通常必要とされない。例えば、遺伝子は、多くの構成要素
配列を有し得、それぞれの配列は、種々の意図される役割(例えば、コード配列
、調節配列、標的配列、安定性を授与する配列、サブユニット配列および組込み
に影響を与える配列)を有する。これらの構成要素配列のそれぞれは、変化し得
、そして同時に組換えられ得る。次いで、例えば、このような改善がベクターの
任意の個々の構成要素配列に起因する必要なしに、細胞に対して活性を与える能
力を増大させる組換えセグメントについて、スクリーニング/選択が実施され得
る。
初回のスクリーニングは、時折、高いトランスフェクション効率でありかつ培養
が容易であるために、細菌細胞を用いて実施され得る。しかし、細菌の発現は、
しばしば実践的でもなく、所望もされず、そして酵母、真菌または他の真核動物
系がまた、ライブラリーの発現およびスクリーニングについて使用される。同様
に、細菌または単純な真核動物ライブラリー細胞においてスクリーニングしにく
いスクリーニングの他の型は、それらの意図する使用に近い環境における使用の
ために選択された細胞において実施される。最終回のスクリーニングは、意図さ
れる使用の正確な細胞型において実施され得る。
フルされた核酸産物(例えば、コードされた酵素)を増強された活性についてス
クリーニングするための大量並行する固相手順を使用することである。吸着、蛍
光またはFRETを用いる大量並行固相スクリーニング装置が入手可能である。
例えば、Bylinaら(1999)に対する米国特許第5,914,245号
を参照のこと;また、http://www.kairos−scientif
ic.com/;Youvanら(1999)「Fluorescence I
maging Micro−Spectrophotometer(FIMS)
」Biotechnology et alia<www.et−al.com
>1:1−16;Yangら(1998)「High Resolution
Imaging Microscope(HIRIM)」Biotechnol
ogy et alia,<www.et−al.com>4:1−20;なら
びにYouvanら(1999)「Calibration of Fluor
escence Resonance Energy Transfer in
Microscopy Using Genetically Engine
ered GFP Derivatives on Nickel Chela
ting Beads」www.kairos−scientific.com
に掲示される。これらの技術によるスクリーニング後、目的の配列が代表的には
単離され、必要に応じて配列決定され、そしてこの配列は、本明細書中に示され
るように使用され、新規のオリゴヌクレオチドシャッフリング方法を設計する。
ントおよび通常、初回のスクリーニング/選択で生存している組換えセグメント
の収集物は、さらなる回の組換えに供される。これらの組換えセグメントは、互
いに組換えられ得るか、または本来の基質もしくはそれらのさらなる改変体を提
示する外因性セグメントで組換えられ得る。再び、組換えをインビトロまたはイ
ンビボで行い得る。先のスクリーニング工程が所望の組換えセグメントを細胞の
構成要素として同定する場合、この構成要素はさらなるインビボでの組換えに供
され得るか、またはインビトロでのさらなる組換えに供され得るか、あるいはイ
ンビトロでの組換えの回を実行する前に単離され得る。逆に、先のスクリーニン
グ工程が所望の組換えセグメントを裸の形態において、またはウイルスの構成要
素として同定する場合、これらのセグメントは、細胞に導入され得、インビボの
組換えの回が実施される。2回目の組換えでは、実施方法に関係なく、前回に生
じた組換えセグメントに存在するものより、さらなる多様性を含むさらなる組換
えセグメントを生成する。
らなる回のスクリーニング/選択が行われ得る。スクリーニング/選択のストリ
ンジェンシーは、回数ごとに増大され得る。1つより多くの特性における改善が
所望される場合か、または1つより多くの新規な特性を獲得することが所望され
る場合、スクリーニングの性質およびスクリーニングされる特性もまた、回数ご
とに変化し得る。次いで、組換えセグメントが十分発達し、所望の新しいまたは
改善された特性もしくは機能を獲得するまで、さらなる回の組換えおよびスクリ
ーニングが実施され得る。
グのために細胞中にクローニングされる(または、インビトロ転写反応において
使用されて、スクリーニングされる産物を作製する)。さらに、この核酸は、配
列決定され得、発現され得、インビトロで増殖され得、または他の任意の一般的
な組換え方法において処置され得る。
養などを含む、本明細書において有用な分子生物学的技術を記載する一般的な教
科書としては、以下が挙げられる:BergerおよびKimmel,Guid
e to Molecular Cloning Techniques,Me
thods in Enzymology、第152巻、Academic P
ress,Inc.,San Diego,CA(Berger);Sambr
ookら、Molecular Cloning−A Laboratory
Manual(第2版)、第1巻〜第3巻、Cold Spring Harb
or Laboratory,Cold Spring Harbor,New
York,1989(「Sambrook」)およびCurrent Pro
tocols in Molecular Biology,F.M.Ausu
belら編、Current Protocols,Greene Publi
shing Associates,Inc.とJohn Wiley&Son
s,Inc.との間の合弁事業,(1998年までの補遺)(「Ausubel
」))。細胞(植物細胞および動物細胞を含む)を核酸を用いて形質導入する方
法は、そのような核酸によってコードされるタンパク質を発現する方法と同様に
一般的に利用可能である。Berger、AusubelおよびSambroo
kに加えて、動物細胞の培養についての有用な一般的な参考文献としては、Fr
eshney(Culture of Animal Cells,a Man
ual of Basic Technique、第三版 Wiley−Lis
s,New York(1994))およびそこで引用されている参考文献、H
umanson(Animal Tissue Techniques,第四版
W.H.Freeman and Company(1979))およびRi
cciardelliら、In Vitro Cell Dev.Biol.2
5:1016−1024(1989)が挙げられる。植物細胞クローニング、培
養および再生についての参考文献としては、Payneら(1992)Plan
t Cell and Tissue Culture in Liquid
Systems、John Wiley & Sons,Inc.New Yo
rk,NY(Payne);ならびにGamborgおよびPhillips(
編)(1995)Plant Cell,Tissue and Organ
Culture;Fundamental Methods Springer
Lab Manual,Springer−Verlag(Berlin H
eidelberg New York)(Gamborg)が挙げられる。種
々の細胞培養培地がAtlasおよびParks(編)The Handboo
k of Microbiological Media(1993)CRC
Press,Boca Raton,FL(Atlas)に記載されている。植
物細胞培養についてのさらなる情報は、Sigma−Aldrich,Inc.
(St Louis,MO)からのLife Science Researc
h Cell Culture Catalogue(1998)(Sigma
−LSRCCC)、および例えば、またSigma−Aldrich,Inc.
(St Louis,MO)からのPlant Culture Catalo
gueおよび補遺(1997)(Sigma−PCCS)のような市販の文献に
見出される。
、当業者にインビトロ増幅方法を指示するに十分な技術の例としては、ポリメラ
ーゼ連鎖反応(PCR)、リガーゼ連鎖反応(LCR)、Qβレプリカーゼ増幅
および他のRNAポリメラーゼ媒介技術(例えば、NASBA)が挙げられる。
これらの技術は、Berger、SambrookおよびAusubel(前出
)、ならびにMullisら、(1987)米国特許第4,683,202号;
PCR Protocols A Guide to Methods and
Applications(Innisら編)、Academic Pres
s Inc.San Diego、CA(1990)(Innis);Arnh
eim&Levinson(1990年10月1日)C&EN 36−47;T
he Journal Of NIH Research(1991)3、81
−94;Kwohら、(1989)Proc.Natl.Acad.Sci.U
SA 86,1173;Guatelliら(1990)Proc.Natl.
Acad.Sci.USA 87,1874;Lomellら(1989)J.
Clin.Chem 35,1826;Landegrenら、(1988)S
cience 241,1077−1080;Van Brunt(1990)
Biotechnology 8、291−294;WuおよびWallace
(1989)Gene 4、560;Barringerら(1990)Gen
e 89,117,ならびにSooknananおよびMalek(1995)
Biotechnology 13:563−564に見出される。インビトロ
で増幅された核酸をクローニングする改善された方法は、Wallaceら、米
国特許第5,426,039号に記載される。大きな核酸をPCRによって増幅
する改善された方法は、Chengら(1994)Nature 369:68
4−685およびその中の参考文献にまとめられる。そこでは、40kbまでの
PCRアンプリコンが生成される。当業者は、本質的に任意のRNAが、制限消
化、PCR拡張、ならびに逆転写酵素およびポリメラーゼを用いた配列決定につ
いて適切な、二本鎖DNAに変換され得ることを理解する。Ausubel、S
ambrookおよびBerger(すべて前出)を参照のこと。1つの好まし
い方法において、再アセンブルされた配列を、ファミリー遺伝子シャッフリング
オリゴヌクレオチドの取り込みについてチェックする。これは、その核酸をクロ
ーニングおよび配列決定することならびに/または制限消化によって(例えば、
Sambrook、BergerおよびAusubel(上記)に本質的に教示
されるように)なされ得る。さらに、配列は、PCR増幅され得、そして直接配
列決定され得る。従って、例えば、Sambrook、Berger、Ausu
belおよびInnis(前出および上記)に加えて,さらなるPCR配列決定
PCR配列決定方法論もまた、特に有用である。例えば、ホウ素化ヌクレアーゼ
抵抗性ヌクレオチドをPCRの間にそのアンプリコンに選択的に取り込むこと、
およびそのアンプリコンをヌクレアーゼで消化して、大きさ順のテンプレートフ
ラグメントを生成することによって、PCR生成したアンプリコンの直接の配列
決定がなされた(Porterら、(1997)Nucleic Acids
Research 25(8):1611−1617)。この方法において、1
つのテンプレートに対して4回のPCR反応を行った。その各々の反応において
、そのPCR反応混合物におけるヌクレオチド三リン酸の1つを、部分的に、2
’デオキシヌクレオシド5’−[P−ボラノ]−三リン酸に置換する。このホウ
素化ヌクレオチドを、そのテンプレートのPCRフラグメントのネスティドセッ
トにおいて、そのPCRアンプリコンにそって種々の位置で、化学量論的に、P
CR産物へ取り込ませる。取り込まれたホウ素化ヌクレオチドによってブロック
されるエキソヌクレアーゼを使用して、そのPCRアンプリコンを切断する。次
いで、この切断されたアンプリコンを、ポリアクリルアミドゲル電気泳動を用い
て大きさによって分離する。これは、そのアンプリコンの配列を提供する。この
方法の1つの利点は、それがPCRアンプリコンのサンガー式の標準的な配列決
定を実施するより少ない生化学的操作を使用することである。
ンピュータにおいて遺伝的演算子を用いて「仮想」シャッフリングを行う。本発
明に適用する場合、遺伝子配列ストリングを、コンピュータシステムにおいて組
換えし、そして例えば、本明細書において記載されるような合成オリゴヌクレオ
チドのPCRの再アセンブリによって、所望の産物が作製される。インシリコシ
ャッフリングは、詳細には、Selifonovらによる「METHODS F
OR MAKING CHARACTER STRINGS,POLYNUCL
EOTIDES AND POLYPEPTIDES HAVING DESI
RED CHARACTERISTICS」(代理人整理番号02−289−3
US、本願に同封する)に記載されている。
2本の鎖の組換えなどを表すアルゴリズム)を使用して、組換えまたは変異事象
をモデル化する。これらの事象は、例えば、核酸配列ストリング(例えば、相同
な核酸を表すものおよび組換え出力を予測するもののような)を整列すること(
標準的な整列ソフトウェアを使用するか、もしくは手動の調査および整列による
)によって、1つの以上の核酸において生じ得る。推測された組換え出力を使用
して、例えば、オリゴヌクレオチド合成および再アセンブリPCRによって、対
応する分子を生成する。
タおよび配列整列ソフトウェアを用いた核酸の整列である。同様に、適切なソフ
トウェアを有するコンピュータを使用して、物理的オリゴヌクレオチド合成の前
に、「インシリコ」シャッフリングを実施し得る。さらに、他の重要な一体化さ
れたシステム成分は、高処理スクリーニングアッセイ、ならびにそのようなアッ
セイを、オリゴヌクレオチド選択、合成および組換えと結びつけることを提供し
得る。
リガンドなどについての多くのアッセイが公知である。形式としては、固定され
た成分への結合、細胞または生物の生存性、レポーター組成物の産生などが挙げ
られる。
単一の日でスクリーニングすることが可能である。特に、マイクロタイタープレ
ートの各ウェルを使用して、別個のアッセイを行い得、または、濃度もしくはイ
ンキュベーション時間の効果を観察する場合は、5〜10ウェルごとに単一の改
変体を試験し得る。従って、単一の標準的なマイクロタイタープレートは、約1
00(例えば、96)の反応をアッセイし得る。1536ウェルプレートが使用
される場合は、単一のプレートは、約100〜約1500の異なる反応を容易に
アッセイし得る。1日あたりいくつかの異なるプレートをアッセイすることが可
能であり;約6,000〜20,000の異なるアッセイ(すなわち、異なる核
酸、コードタンパク質、濃度などを含む)までについてのスクリーニングをアッ
セイすることは、本発明の一体化されたシステムを用いて可能である。より最近
になって、試薬操作についての微小流体アプローチが、例えば、Caliper
Technologies(Mountain View,CA)によって開
発されている。
ク、胞子など)が固形培地上で分離されて個々のコロニー(またはプラーク)を
産生する。自動化コロニー採取機(例えば、Q−bot、Genetix、U.
K.)を用いて、コロニーまたはプラークを同定し、採取し、そして10,00
0個までの異なる変異体を、2つの3mmガラスボール/ウェルを含む96ウェ
ルマイクロタイターディッシュに接種する。Q−botは、コロニー全体を採取
するのではなく、むしろ、そのコロニーの中心を通るピンを挿入し、そして細胞
(または菌糸)および胞子(またはプラーク適用においてはウイルス)の小さな
サンプリングとともに抜け出る。このピンがそのコロニー内に存在する時間、そ
の培養培地に接種する浸漬物の数、およびそのピンがその培地に存在する時間は
各々、接種の大きさをもたらし、そして各々は、制御され得そして最適化され得
る。Q−botの均一なプロセスは、人間の手による誤差を減じ、そして培養物
を確立する速度を上昇させる(およそ10,000/4時間)。次いで、これら
の培養物を、温度および湿度が制御されたインキュベータ中で振盪する。マイク
ロタイタープレートにおけるガラスボールは、細胞の均一な通気を促進するよう
に作用し、そして醗酵層の羽根と同様に菌糸のフラグメントが分散することを促
進するにように作用する。目的の培養物からのクローンを、限界希釈によってク
ローニングし得る。上記にもまた記載したように、プラークまたは細胞が構成す
るライブラリーはまた、タンパク質の生産について、ハイブリダイゼーション、
タンパク質活性、抗体へのタンパク質の結合などのいずれかを検出することによ
って、直接スクリーニングされ得る。
相化学について開発されてきている。これらのシステムは、武田薬品工業株式会
社(日本国大阪府大阪市)によって開発された自動化合成装置、および科学者に
よって実施される手動の合成操作を模倣するロボットアーム(Zymate I
I、Zymark Corporation,Hopkinton,Mass;
Orca、Beckman Coulter、Inc.(Fullerton,
CA))を利用する多くのロボットシステムのような自動化ワークステーション
を含む。任意の上記デバイスが、本発明での使用について、例えば,本明細書に
おいて記載した種々のオリゴヌクレオチドセットから集めた分子の高処理スクリ
ーニングのために、適切である。(ある場合)一体化システムに関して本明細書
において議論されるように操作し得るような、これらのデバイスの改変の性質お
よび実行は、関連分野の当業者には明白である。
orp.,Hopkinton,MA;Air Technical Indu
stries,Mentor,OH;Beckman Instruments
,Inc.Fullerton、CA;Precision Systems,
Inc.Natick,MAなどを参照のこと)。これらのシステムは、代表的
に、全てのサンプルおよび試薬のピペッティング、液体分配、時限インキュベー
ション、およびそのアッセイについて適切な検出器におけるマイクロプレートの
最終読み取りを含む手順全体を自動化する。これらの構成可能なシステムは、高
処理および迅速な起動ならびに高度の可撓性およびカスタム化を提供する。この
ようなシステムの製造者は、種々の高処理についての詳細なプロトコルを提供す
る。従って、例えば、Zymark Corp.は、遺伝子転写、リガンド結合
などの調節を検出するためのスクリーニングシステムを記載する技術報を提供す
る。
イス)によって可視化される(および必要に応じて記録される)光学イメージは
、本明細書における任意の実施態様において必要に応じて、例えば、そのイメー
ジをデジタル処理すること、および/またはそのイメージをコンピュータにおい
て記録および分析することによってさらに処理される。例えば、PC(Inte
l x86またはPentium(登録商標)チップ互換DOSTM、OS2TM、 WINDOWSTM、WINDOWS NTTMまたはWINDOWS95TMベース のコンピュータ)、MACINTOSHTM、またはUNIX(登録商標)ベース (例えば、SUMTMワークステーション)のコンピュータを用いて、デジタルビ デオまたはデジタル化した光イメージのデジタル化、記録、および分析のための 種々の市販の末端装置およびソフトウェアが利用可能である。1つの従来システ ムは、当該分野において一般に使用される、アッセイデバイスから冷却した電荷 結合素子(CCD)カメラへの光を有する。CCDカメラは、画像素子(ピクセ ル)のアレイを含む。検体からの光は、CCD上で画像化される。その検体の領 域(例えば、生物学的ポリマーのアレイ上での個々のハイブリダイゼーション部 位)に対応する特定のピクセルをサンプリングして、各位置についての光強度読 み取りを入手する。複数のピクセルを並行に処理して、速度を上昇させる。本発 明の装置および方法は、例えば、蛍光暗場顕微鏡技術によって任意のサンプルを 概観するために、容易に使用される。
列ソフトウェアを備えたデジタルコンピュータおよび以下の1つ以上を含む:高
処理液体制御ソフトウェア、画像分析ソフトウェア、データ解釈ソフトウェアな
ど。
タルコンピュータに作動可能に連結され、そして入力デバイス(例えば、コンピ
ュータキーボード)は、例えば、ロボット液体制御電機子によって、高処理液体
移動、オリゴヌクレオチド合成などを制御するためのデジタルコンピュータへの
データを入力するために使用され得る。画像スキャナは、標識されたアッセイ成
分から標識シグナルをデジタル化するために使用され得る。画像スキャナは、画
像分析ソフトウェアを接続して、プローブ標識強度の測定を提供する。
例えば、コンピュータ、目的の核酸配列を有するデータベース、配列整列ソフト
ウェア、およびオリゴヌクレオチド選択ソフトウェア)を組み込んだ一体化され
たシステムを含み得る。さらに、このソフトウェアは、選択されたオリゴヌクレ
オチドを注文するため、および/または作動可能に連結されたオリゴヌクレオチ
ド合成機によるオリゴヌクレオチドの合成を指示するための構成要素を含み得る
。従って、本発明の一体化システムの構成要素に、必要に応じて、上記の成分の
いずれかを備えさせて、高処理組換えおよび選択を容易にする。これらの高処理
組換え構成要素が、システムにおいて選択アッセイを実行するための構成要素か
ら別個であり得るか、またはそれら2つが一体化され得ることが認識される。
セットのファミリーシャッフリングオリゴヌクレオチドのようなオリゴヌクレオ
チドのセットを選択するための指示セットとともに、コンピュータまたはコンピ
ュータ読み取り可能な媒体を含む。この指示セットは、相同な核酸を整列して、
類似性の領域および多様性の領域を同定し(例えば、BLASTのような代表的
な整列ソフトウェアにおけるように)、次いで類似性および多様性の領域を包含
する重複オリゴヌクレオチドのセットを選択する(必要に応じて、本明細書にお
いて記載した重み付け因子(例えば、本明細書における遺伝子混和方法における
ように、組換えされる1つ以上の核酸に対応するオリゴヌクレオチドの優性選択
)のいずれかを用いる)。このコンピュータまたはコンピュータ読み取り可能な
媒体は、必要に応じて、ユーザによる使用を容易にする特徴を備える(例えば、
(例えば、自動化合成機における)そのユーザによるオリゴヌクレオチド選択の
入力のための入力場、ユーザーが概観可能な出力を制御するためのディスプレー
出力システム(例えば、GUI)、オリゴヌクレオチドの合成を指示する出力フ
ァイルなど)。
)を、3つの架橋オリゴヌクレオチドを用いてシャッフルした。そのオリゴンは
、以下の通りであった:
フラグメントを用いて実施した。3つ全てのオリゴを、1×Taq−mix(7
070μlのH2O、100μlのTaq緩衝液、600μlのMgCl2(25
mM)、80μlのdNTP(100mM))合計容量60μlの反応物に1:
1で添加した。
(10×モル濃度)、および1500ng(20×モル濃度)を用いて実施した
。20μlのアセンブル混合物を、60μlの1×Taq mixに添加し、9
4℃(30秒)、40℃(30秒)、および72℃(30秒)での40回のサー
マルサイクルを実施した。次いで、得られた産物の1μl、2μl、4μl、お
よび8μlを、βラクタマーゼ遺伝子の末端領域についてのプライマーを用いて
、40サイクル(以前と同じサーマルサイクル条件)PCR増幅した。次いで、
得られた材料を、Sfiで一晩50℃にて消化し、ゲル精製し、そしてベクター
Sfi−BLA−Sfi(MG18)に連結し、TG1へと形質転換し、そして
Tet20にプレートした。50コロニーを、そのTet20プレートから選択
し、そしてコロニーPCRによって増幅した。次いで、PCRアンプリコンを、
37℃で一晩HinF1で消化した。制限分析によって、各親の遺伝子について
、2つのwt配列、およびに7つの異なる組換え産物(10×モル濃度反応につ
いて)または8つの異なるクローン(20×反応について)が産生されたことが
示された。
。DNA整列を、editseq.およびmegalig.を使用するDNA
starを用いて行った。オリゴは、50マイクロモル合成(BRL、Life
ch)である。アミノ酸260〜630の間の領域についてのオリゴを、cry
2Aについて、この領域の多様性に鑑み設計した。オリゴを200μlのH2O
中に再懸濁した。これらオリゴは以下のとおりである:
hniques 18(2):194−196に記載されるアセンブル混合物へ
オリゴをスパイクすることを除いて、Crameriら(1995)Natur
e 391:281−291に記載されるアセンブリ条件を使用して、行う。外
側プライマー 1 for ATGAATAATGTATTGAATAおよび1
rev TTAATAAAGTGGTGGAAGATTを用いたPCR反応を
、Taq/Pfu(9:1)混合物(QiagenからのTaq,Strata
geneからのPfu)、PCRプログラム(96℃(30秒)、50℃(30
秒)、72℃(1分)を25サイクル)を用いて、行う。この反応物を、10倍
希釈し、そしてさらなるサイクルを行う。この遺伝子を、ベクターに連結し、そ
してTGIコンピテント細胞へと形質転換し、そしてLB+Amp100プレー
トにプレートする。単一のコロニーをコロニーPCRのために拾い、次いで限界
希釈によって分析する。
多数の異なる部位について生成されたオリゴのライブラリーの間の核酸の組換え
を行う能力である。1つの標的遺伝子の異なる領域におけるランダム化の複雑な
組合せを有するライブラリーを生成することは、オリゴヌクレオチド媒介シャッ
フリングアプローチによって容易になる。
Fab)の抗原結合部位は、主に、6つの相補的決定領域(CDR)を含む。こ
れらはCDRは、適切に折り畳まれた分子の1つの面に存在するが、直鎖状の遺
伝子配列においては別個に存在する。合成オリゴヌクレオチドまたは1つ以上の
抗体遺伝子のPCRによって生成されたオリゴヌクレオチドを用いて、個々のC
DRでの配列多様性を生成し得る。このプロセスは、第二のCDRを用いて、次
いで、第三のCDRを用い、多様性抗体のライブラリーが形成されるまで、反復
され得る。DNAシャッフリング形式は、各々のCDRのライブラリーが同時に
生成されることを可能とし、そしてCDR間の組換え事象が、頻繁に生じて、異
なるCDRのすべての可能な組合せを潜在的に生成するという顕著な利点を有す
る。改良された形質または特性のための再帰性DNAシャッフリングおよびスク
リーニングを使用して、タンパク質機能を最適化し得る。
、長い連結ループとともに共有する。これらタンパク質のいくつかのためのレセ
プター結合部位が決定されており、そして直鎖状遺伝子配列において別個に存在
するタンパク質の2以上の領域に位置付けされている。関連するタンパク質のモ
デリングを使用して、ライブラリーを標的化するために未知のタンパク質の機能
的領域を予測し得る。これらの領域の各々におけるライブラリーは、合成オリゴ
、ファミリーシャッフリングオリゴ、相同遺伝子のフラグメントまたは本明細書
におけるようなそれらの組合せを使用して生成され得る。オリゴヌクレオチド媒
介シャッフリングによって、これらの領域の各々におけるライブラリーを同時に
生成すること、および各ライブラリー間の組換えを生成することが可能となる。
このようにして、各ライブラリーのメンバーの間の組合せは、改良された機能に
ついてスクリーニングされ得る。次いで、改良された機能を有するこれら単離物
は、逐次回のDNAシャッフリングに供され得る。このようにして、各ライブラ
リーにおいて最高の活性を有する単離物および異なるライブラリーのメンバー間
の潜在的相互作用が選択され得る。各ライブラリーを独立して最適化する他の方
法は、そのような相互作用を単離しないかもしれない。
おいて互いに近いが、その遺伝子の線形の配列において別個である残基を含む。
DNAシャッフリングは、基質と相互作用する各領域において同時にライブラリ
ーを生成し得る。DNAシャッフリングはまた、各ライブラリー間の変化のすべ
ての可能な組合せを生成することを可能とし、そして改良された形質または特性
について評価され得る。
においてこれまでに記載されてきた方法および材料に対して改変がなされ得、そ
して、本発明は、多数の異なる使用に供され得る。これは、以下を含む。
核酸の配列整列を含むプロセスによって)、および反復プロセスにおけるものを
含む、シャッフルされた核酸を、活性について試験するための、一体化されたシ
ステムの使用。
または基質のいずれか1つを利用するアッセイ、キットまたはシステム。キット
は、必要に応じて、方法またはアッセイを実施するための指示書、包装材料、ア
ッセイ、デバイスまたはシステム構成要素などを含む1つ以上の容器をさらに備
え得る。
するキットを提供する。本発明のキットは、必要に応じて、以下のうち1つ以上
を備える:(1)本明細書において記載されるような組換え成分;(2)本明細
書において記載される方法を実施するため、および/または本明細書におけるオ
リゴヌクレオチド合成またはアセンブルされた遺伝子選択手順を実行するための
指示書;(3)1つ以上のアッセイ成分;(4)核酸または酵素、他の核酸、ト
ランスジェニック植物、動物、細胞などを保持するための容器、(5)包装材料
、ならびに(6)標的核酸を整列するため、およびハイブリダイゼーションおよ
び伸長の際に、その標的核酸のシャッフリング形態を生ずるオリゴヌクレオチド
を選択するための指示書を備える、コンピュータまたはコンピュータ読み取り可
能な媒体。
の使用、本明細書における任意の方法またはアッセイの実施、および/あるいは
本明細書における任意のアッセイもしくは方法を実施するための任意の装置また
はキットの使用を提供する。
いるが、本開示を読めば、形態および詳細における種々の変更が、本発明の真の
範囲を逸脱することなくなされ得ることは、当業者には明らかである。例えば、
上記に記載のすべての技術および材料は、種々の組合せにおいて使用され得る。
本願において引用された全ての刊行物および特許文献は、各個々の刊行物または
特許文献が個々にそのように示されるのと同じ程度に、全ての目的でその全体が
参考として援用される。
リングを示す模式図である。
る。
Claims (104)
- 【請求項1】 相同核酸を組換える方法であって、該方法は、以下の工程、
(i)ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドのセットをハイブリ
ダイズする工程;および、 (ii)該ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドのセットを伸長
することにより、組換えた核酸の集団を提供する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項2】 前記ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドの
セットが重複している、請求項1に記載の方法。 - 【請求項3】 前記伸長工程が、ポリメラーゼまたはリガーゼを用いて行わ
れる、請求項1に記載の方法。 - 【請求項4】 前記ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドの
セットが、進化的に中間体である核酸をコードする、請求項1に記載の方法。 - 【請求項5】 請求項1に記載の方法であって、該方法がさらに、以下の工
程: (iii)組換え核酸の集団を変性させることにより、変性した組換え核酸を提
供する工程; (iv)該変性した組換え核酸を再アニーリングする工程; (v)得られる該再アニーリングした組換え核酸を伸展または連結する工程;お
よび、必要に応じて、 (vi)所望の特性について、1以上の得られる該組換え核酸を選択する工程、
を包含する、方法。 - 【請求項6】 前記再アニーリングした組換え核酸が、工程(vi)を行う
前に組換えられる、請求項5に記載の方法。 - 【請求項7】 請求項5に記載の方法であって、該方法がさらに、 (vii)得られる前記選択された組換え核酸を組み換える工程、 を包含する、方法。
- 【請求項8】 請求項7に記載の方法であって、該方法がさらに、 得られる前記複数回選択され複数回組換えられた核酸を、所望の形質または特
性について選択する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項9】 請求項1に記載の方法であって、該方法がさらに、以下の工
程: (iii)前記組換え核酸の集団を変性させることにより、変性した組換え核酸
を提供する工程; (iv)該変性した核酸を再アニーリングする工程; (v)得られる該再アニーリングした組換え核酸を伸展する工程;および 工程iii〜vを少なくとも1回反復する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項10】 請求項1に記載の方法であって、該方法がさらに、 1以上の得られる前記再アニーリングした組換え核酸を、所望の形質または特
性について選択する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項11】 請求項1に記載の方法であって、該方法がさらに、 1以上の前記組換え核酸の集団のメンバーを、所望の特性について選択する工
程、 を包含する、方法。 - 【請求項12】 請求項11に記載の方法であって、ここで、前記組換え核
酸の集団の複数のメンバーが、所望の特性についてスクリーニングされ、そして
該所望の特性を有することが決定され、それにより、初回のスクリーニングした
核酸を提供し、 該方法がさらに、以下の工程: 第2のファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドのセットをハイブ
リダイズする工程であって、該第2のファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌ
クレオチドのセットが、該初回のスクリーニングした核酸から誘導される、工程
;および 該第2のファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドのセットを伸長
することにより、さらに組換えた核酸の集団を提供する、工程、 を包含する、方法。 - 【請求項13】 前記第2のファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレ
オチドのセットが重複している、請求項12に記載の方法。 - 【請求項14】 請求項12に記載の方法であって、該方法がさらに、以下
の工程: 前記初回のスクリーニングした核酸を配列決定する工程であって、ここで、前
記第2のファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドのセットが、該初
回のスクリーニングした核酸における同一性領域および多様性領域を同定するよ
うに該初回のスクリーニングした核酸の配列を整列することによって、該初回の
スクリーニングした核酸から誘導される、工程、および、 該第2のファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドのセットを、複
数のオリゴヌクレオチドを含むように合成する工程であって、該複数のオリゴヌ
クレオチドの各々が、少なくとも1つの多様性領域に対応するサブ配列を含む、
工程、 を包含する、方法。 - 【請求項15】 前記初回のスクリーニングした核酸が、約50以下のアミ
ノ酸ポリぺプチドをコードする、請求項12に記載の方法。 - 【請求項16】 前記第2のファミリーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレ
オチドのセットが、複数の前記初回のスクリーニングした核酸に由来するコンセ
ンサスな領域のサブ配列を含む、複数のオリゴヌクレオチドのメンバー型を含む
、請求項12に記載の方法。 - 【請求項17】 前記ファミリーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオチド
のセットが、複数の相同標的核酸に由来するコンセンサス領域のサブ配列を含む
、複数のオリゴヌクレオチドのメンバー型を含む、請求項1に記載の方法。 - 【請求項18】 前記ファミリーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオチド
のセットが、少なくとも1つのモジュールシャッフリングオリゴヌクレオチドを
含む、請求項1に記載の方法。 - 【請求項19】 前記ファミリーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオチド
のセットが、複数のモジュールシャッフリングオリゴヌクレオチドを含み、該複
数のモジュールシャッフリングオリゴヌクレオチドの各々が、少なくとも、第1
の配列モジュールに由来する第1のサブ配列および第2の配列モジュールに由来
する第2のサブ配列を含む、請求項1に記載の方法。 - 【請求項20】 前記ファミリーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオチド
のセットが、複数のモジュールシャッフリングオリゴヌクレオチドを含み、ここ
で、1以上の複数のオリゴヌクレオチドの各々が、少なくとも、第1の配列モジ
ュールに由来する第1のサブ配列および第2の配列モジュールに由来する第2の
サブ配列を含む、請求項1に記載の方法。 - 【請求項21】 前記ファミリーシャッフリングオリゴヌクレオチドのセッ
トが、複数の、コドン改変オリゴヌクレオチドを含む、請求項1に記載の方法。 - 【請求項22】 複数のオリゴヌクレオチドのメンバー型を含む前記ファミ
リーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオチドのセットが、少なくとも3つのメ
ンバー型を含む、請求項1に記載の方法。 - 【請求項23】 複数のオリゴヌクレオチドのメンバー型を含む前記ファミ
リーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオチドのセットが、少なくとも5つのメ
ンバー型を含む、請求項1に記載の方法。 - 【請求項24】 複数のオリゴヌクレオチドのメンバー型を含む前記ファミ
リーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオチドのセットが、少なくとも10のメ
ンバー型を含む、請求項1に記載の方法。 - 【請求項25】 前記ファミリーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオチド
のセットが、複数の相同オリゴヌクレオチドのメンバー型を含み、ここで、該相
同オリゴヌクレオチドのメンバー型が約等モル量存在する、請求項1に記載の方
法。 - 【請求項26】 前記ファミリーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオチド
のセットが、複数の相同オリゴヌクレオチドのメンバー型を含み、ここで、該相
同オリゴヌクレオチドのメンバー型が非等モル量存在する、請求項1に記載の方
法。 - 【請求項27】 核酸を組換える間に核酸ファミリー多様性を導入するため
の方法であって、該方法は、以下の工程: 少なくとも1つのフラグメント化核酸のセットおよびファミリー遺伝子シャッ
該フリングオリゴヌクレオチドの集団を含む組成物を提供する工程; 少なくとも1つの前記ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドを
、少なくとも1つのフラグメント化核酸のセットの少なくとも1つの該フラグメ
ント化核酸を用いて組換える工程;ならびに 組換え核酸を再生し、それにより少なくとも1つの該ファミリー遺伝子シャッ
フリングオリゴヌクレオチドに対応する核酸サブ配列を含む再生された組換え核
酸を提供する工程 を包含する、方法。 - 【請求項28】 前記組み換え核酸が、1以上の所望の形質または特性につ
いて選択される、請求項27に記載の方法。 - 【請求項29】 請求項28に記載の方法であって、ここで、組換え核酸の
複数のメンバーが、所望の特性についてスクリーニングされ、そして所望の特性
を有することが決定され、それにより、初回のスクリーニングした核酸を提供し
、該方法がさらに、以下の工程: 第2の重複ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドのセットをハ
イブリダイズする工程であって、該第2の重複ファミリー遺伝子シャッフリング
オリゴヌクレオチドのセットが、該初回のスクリーニングした核酸に由来する、
工程;および 該第2の重複ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドのセットを
伸長することにより、さらに組み換えられた核酸の集団を提供する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項30】 請求項29に記載の方法であって、該方法がさらに、以下
の工程、 前記初回のスクリーニングした核酸を配列決定する工程であって、ここで、前
記第2の重複ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドのセットが、
該初回のスクリーニングした核酸における同一性領域および多様性領域を同定す
るように該初回のスクリーニングした核酸の配列を整列することによって、該初
回のスクリーニングした核酸から誘導される、工程、ならびに 該第2の重複ファミリーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオチドのセットを
、複数のオリゴヌクレオチドを含むように合成する工程であって、該複数のオリ
ゴヌクレオチドの各々が、少なくとも1つの多様性領域に対応するサブ配列を含
む、工程、 を包含する、方法。 - 【請求項31】 前記第2の重複ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌ
クレオチドのセットが、複数の前記初回のスクリーニングした核酸に由来するコ
ンセンサス領域のサブ配列を含む、複数のオリゴヌクレオチドのメンバー型を含
む、請求項29に記載の方法。 - 【請求項32】 前記重複ファミリーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオ
チドのセットが、少なくとも1つのモジュールシャッフリングオリゴヌクレオチ
ドを含む、請求項27に記載の方法。 - 【請求項33】 前記重複ファミリーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオ
チドのセットが、複数のモジュールシャッフリングオリゴヌクレオチドを含み、
該複数のモジュールシャッフリングオリゴヌクレオチドの各々が、少なくとも、
第1の配列モジュールに由来する第1のサブ配列および第2の配列モジュールに
由来する第2のサブ配列を含む、請求項27に記載の方法。 - 【請求項34】 前記重複ファミリーシャッフリング遺伝子オリゴヌクレオ
チドのセットが、複数のモジュールシャッフリングオリゴヌクレオチドを含み、
ここで、1以上の該複数のオリゴヌクレオチドの各々が、少なくとも、第1の配
列モジュールに由来する第1のサブ配列および第2の配列モジュールに由来する
第2のサブ配列を含む、請求項27に記載の方法。 - 【請求項35】 前記重複ファミリーシャッフリングオリゴヌクレオチドの
セットが、複数の、コドン改変オリゴヌクレオチドを含む、請求項27に記載の
方法。 - 【請求項36】 前記再生された組換え核酸が、全長タンパク質をコードす
る、請求項27に記載の方法。 - 【請求項37】 請求項27に記載の方法であって、ここで、少なくとも1
つのフラグメント化核酸およびファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオ
チドの集団を含む前記組成物が、以下の工程: 相同核酸配列を整列して、保存された配列同一性の領域および配列多様性の領
域を選択する工程; 少なくとも1つの配列多様性の領域に対応する複数のファミリー遺伝子シャッ
フリングオリゴヌクレオチドを合成する工程; 少なくとも1つの相同核酸に同一、または相同である全長核酸を提供する工程
; 該全長核酸をフラグメント化する工程;ならびに 得られる該核酸フラグメントのセットを該複数のファミリー遺伝子シャッフリ
ングオリゴヌクレオチドと混合することにより、フラグメント化核酸およびファ
ミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドの集団を含む該組成物を提供す
る工程、 によって提供される、方法。 - 【請求項38】 前記全長核酸が、DNase酵素での切断によってフラグ
メント化される、請求項36に記載の方法。 - 【請求項39】 前記全長核酸が、部分鎖伸長によってフラグメント化され
る、請求項36に記載の方法。 - 【請求項40】 請求項36に記載の方法であって、該方法がさらに、以下
の工程、 少なくとも第2の全長核酸を選択する工程、および 該選択された全長核酸を切断して、第2の核酸フラグメントのセットを提供す
る工程、 を包含し、ここで、 該第2の核酸フラグメントのセットがまた、前記遺伝子シャッフリングオリゴ
ヌクレオチドの集団と混合される、方法。 - 【請求項41】 請求項27に記載の方法であって、ここで、前記ファミリ
ー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドが、以下の工程: 相同核酸配列を整列し、そして少なくとも1つの保存された配列同一性の領域
および複数の配列多様性の領域を選択する工程であって、ここで、該複数の配列
多様性の領域が、複数の配列多様性のドメインを提供する工程、ならびに、 該複数の配列多様性のドメインに対応する複数のファミリー遺伝子シャッフリ
ングオリゴヌクレオチドを合成する工程、 によって前記組成物に提供される、方法。 - 【請求項42】 前記複数の配列多様性のドメインに対応する前記複数のフ
ァミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドの、前記フラグメント化核酸
との組換えが、前記相同核酸配列と比較して、前記再生された組換え核酸におけ
るドメイン交換を生じる、請求項40に記載の方法。 - 【請求項43】 前記複数の配列多様性のドメインに対応する前記複数のフ
ァミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドが、1以上の前記相同核酸配
列に対応する1以上の配列多様性のドメインをコードするファミリー遺伝子シャ
ッフリングオリゴヌクレオチドを合成することにより合成される、請求項40に
記載の方法。 - 【請求項44】 前記フラグメント化核酸が、以下の1以上の工程: (i)クローン化核酸を切断する工程、および (ii)核酸配列を選択し、そして該選択した核酸配列に対応するオリゴヌク
レオチドフラグメントを合成する工程、 により提供される、請求項27記載の方法。 - 【請求項45】 低い配列類似性を有する相同核酸配列または非相同核酸配
列を組換える方法であって、該方法は、以下の工程、 フラグメント化核酸の1以上のセットを、交差オリゴヌクレオチドの1つのセ
ットと組換える工程であって、該交差オリゴヌクレオチドのそれぞれが、低い配
列類似性を有する相同核酸または非相同核酸に由来する複数の配列多様性ドメイ
ンに対応する複数の配列多様性ドメインを含み、それにより組換え核酸を提供す
る、工程、 を包含する、方法。 - 【請求項46】 請求項44に記載の方法であって、該方法がさらに、 前記組換え核酸を、所望の形質または特性について選択する工程、 を包含する、方法。
- 【請求項47】 請求項44に記載の方法であって、該方法がさらに、 1以上の前記相同核酸または非相同核酸をフラグメント化することにより、前
記フラグメント化核酸のセットを提供する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項48】 前記1以上の前記相同核酸または非相同核酸が、DNas
e酵素でフラグメント化される、請求項46に記載の方法。 - 【請求項49】 請求項44に記載の方法であって、該方法がさらに、 1以上の相同核酸または非相同核酸に対応する複数のオリゴヌクレオチドフラ
グメントを合成し、それにより前記1以上のフラグメント化核酸を提供する工程
、 を包含する、方法。 - 【請求項50】 相同核酸の組換えのためのオリゴヌクレオチドセットを提
供する方法であって、該方法が、以下の工程: 複数の相同核酸配列を整列して、1以上の配列不均質性の領域を同定する工程
;および、 少なくとも1つの該1以上の不均質性の領域に対応する複数の異なるオリゴヌ
クレオチドメンバー型を合成し、それにより、少なくとも1つの該相同核酸に対
応する少なくとも1つの配列不均質性の領域を含む少なくとも1つのメンバー型
を含むオリゴヌクレオチドのセットを提供する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項51】 前記複数のオリゴヌクレオチドメンバー型が、連続してま
たは平行して合成される、請求項49に記載の方法。 - 【請求項52】 前記相同核酸配列が、配列整列に関するソフトウエアを有
するコンピューターを含むシステムにて整列されるか、または該相同配列が、手
動整列により整列される、請求項49に記載の方法。 - 【請求項53】 前記オリゴヌクレオチドセットを組換える工程、をさらに
包含する、請求項49に記載の方法。 - 【請求項54】 前記オリゴヌクレオチドセットを組み換えることにより生
じた任意の組換えオリゴヌクレオチドを、所望の形質または特性について選択す
る工程をさらに包含する、請求項52に記載の方法。 - 【請求項55】 前記オリゴヌクレオチドセットの1以上のメンバーを、1
以上の相同核酸配列に対応する1以上の相同核酸と組換える工程、 をさらに包含する、請求項49に記載の方法。 - 【請求項56】 ファミリーシャッフリングPCRアンプリコンの方法であ
って、該方法は、以下の工程: 複数の不均質な相同テンプレート核酸を提供する工程; 複数のPCRプライマーを提供する工程であって、該PCRプライマーが、複
数の該複数の非均質相同テンプレート核酸にハイブリダイズする、工程; 複数のPCRアンプリコンを、該複数のPCRプライマーを用いる該複数のテ
ンプレート核酸のPCR増幅により生成する工程;および、 複数のPCRアンプリコンを組換えることにより、組換え核酸を提供する工程
、 を包含する、方法。 - 【請求項57】 前記組換え核酸を選択する工程をさらに包含する、請求項
55に記載の方法。 - 【請求項58】 前記PCRプライマーについての配列が、前記複数の非均
質な相同テンプレート核酸についての配列を整列し、そして配列類似性の領域に
対応するPCRプライマーを選択することにより選択される、請求項55に記載
の方法。 - 【請求項59】 複数の親核酸を組換える方法であって、該方法が、以下の
工程: 複数のオリゴヌクレオチドのセットを連結または伸長する工程であって、該セ
ットが、全長タンパク質をコードする組換え核酸を生成するように複数の該親核
酸に由来する複数の核酸配列を含む、工程、 を包含する、方法。 - 【請求項60】 前記セットが、配列多様性の第1の領域の少なくとも第1
の前記親核酸に相補的な少なくとも第1のオリゴヌクレオチド、および多様性の
第2の領域の少なくとも第2の前記親核酸に相補的な少なくとも第2のオリゴヌ
クレオチドを含む、請求項59に記載の方法。 - 【請求項61】 前記核酸がリガーゼを用いて連結される、請求項59に記
載の方法。 - 【請求項62】 前記オリゴヌクレオチドが第1の親核酸にハイブリダイズ
されそしてリガーゼを用いて連結される、請求項59に記載の方法。 - 【請求項63】 前記親核酸が相同である、請求項59に記載の方法。
- 【請求項64】 前記オリゴヌクレオチドのセットが、ファミリー遺伝子シ
ャッフリングオリゴヌクレオチドのセットを含む、請求項59に記載の方法。 - 【請求項65】 請求項59に記載の方法であって、該方法が、さらに、 前記オリゴヌクレオチドのセットを1以上の前記親核酸にハイブリダイズする
工程、および該オリゴヌクレオチドを、実質的に全長のタンパク質をコードする
核酸を生成するようにポリメラーゼを用いて伸長する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項66】 組換え核酸を生成する方法であって、該方法が、以下の工
程: (i)細胞の集団に、重複ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチ
ドのセットを導入する工程;および (ii)該重複ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオチドのセット
と、該細胞の集団の複数の細胞内に含まれた1以上の核酸との間で組換えが生じ
ることを可能にし、それにより、得られる該組換え細胞の集団内に組換え核酸の
集団を提供する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項67】 前記組換え細胞の集団を所望の形質または特性について選
択する工程をさらに包含する、請求項66に記載の方法。 - 【請求項68】 前記組換え核酸の集団をPCR増幅する工程をさらに包含
する、請求項66に記載の方法。 - 【請求項69】 前記PCR増幅した核酸を細胞、ベクター、またはウイル
スに導入する工程をさらに包含する、請求項68に記載の方法。 - 【請求項70】 前記重複ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオ
チドのセットがキメラプラストである、請求項66に記載の方法。 - 【請求項71】 前記キメラプラストがコドン改変オリゴヌクレオチドであ
る、請求項70に記載の方法。 - 【請求項72】 前記重複ファミリー遺伝子シャッフリングオリゴヌクレオ
チドのセットが、複数のコドン改変オリゴヌクレオチドを含む、請求項64に記
載の方法。 - 【請求項73】 請求項66に記載の方法により生成される、組換え核酸の
集団。 - 【請求項74】 請求項66に記載の方法により生成される、前記組換え細
胞の集団。 - 【請求項75】 請求項68に記載の方法により生成される、増幅された核
酸。 - 【請求項76】 請求項69に記載の方法により生成される、細胞、ベクタ
ー、またはウイルス。 - 【請求項77】 複数のオリゴヌクレオチドメンバー型を含むオリゴヌクレ
オチドのライブラリーを含む組成物であって、該オリゴヌクレオチドメンバー型
が、選択された複数の相同標的配列のセットの複数のメンバーの複数のサブ配列
領域に対応する、組成物。 - 【請求項78】 前記ライブラリーが、少なくとも約10、20、30、4
0、50以上の異なるオリゴヌクレオチドメンバーを含む、請求項77に記載の
組成物。 - 【請求項79】 前記オリゴヌクレオチドメンバー型が非等モル量で存在す
る、請求項77に記載の組成物。 - 【請求項80】 前記複数のサブ配列領域が、前記選択された相同標的配列
のセットの複数の非重複配列領域を含む、請求項77に記載の組成物。 - 【請求項81】 前記オリゴヌクレオチドメンバー型の各々が、少なくとも
1つの前記選択された相同標的配列のセットに由来する少なくとも1つのサブ配
列に同一な配列を有する、請求項77に記載の組成物。 - 【請求項82】 前記オリゴヌクレオチドメンバー型が、前記複数の相同標
的配列に由来する相同領域に対応する複数の相同オリゴヌクレオチドを含み、こ
こで、該複数の相同オリゴヌクレオチドの各々が、少なくとも1つの改変サブ配
列を含む、請求項77に記載の組成物。 - 【請求項83】 請求項77に記載の組成物であって、さらに、1以上の以
下: ポリメラーゼ、熱安定性DNAポリメラーゼ、核酸合成試薬、緩衝液、塩、マグ
ネシウム、および前記選択された相同標的配列のセットの1以上の前記複数のメ
ンバーを含む1以上の核酸 を含む、組成物。 - 【請求項84】 請求項77に記載の組成物であって、ここで、前記複数の
オリゴヌクレオチドメンバー型が、前記複数の相同標的配列を整列し、少なくと
も1つの同一性の領域および少なくとも1つの変化の領域を決定し、そして該オ
リゴヌクレオチドを、該少なくとも1つの同一性の領域の少なくとも一部分、ま
たは該少なくとも1つの変化の領域の少なくとも一部分、あるいは該少なくとも
1つの同一性の領域および該少なくとも1つの変化の領域の両方の少なくとも一
部分をコードするように合成することによって選択される、組成物。 - 【請求項85】 請求項77に記載の組成物であって、ここで、前記複数の
オリゴヌクレオチドメンバー型が、少なくとも1つの配列多様性ドメインを含む
少なくとも1つのメンバー型を含む、組成物。 - 【請求項86】 請求項77に記載の組成物であって、ここで、前記複数の
オリゴヌクレオチドメンバー型が、複数の配列多様性ドメインを含む、組成物。 - 【請求項87】 請求項77に記載の組成物であって、ここで、前記ライブ
ラリーが、交差ファミリー多様性オリゴヌクレオチドのセットを含み、該交差フ
ァミリー多様性オリゴヌクレオチドのセットの各オリゴヌクレオチドのメンバー
が、複数の相同核酸に対応する複数の配列多様性ドメインを含む、組成物。 - 【請求項88】 請求項86に記載の組成物であって、ここで、前記配列多
様性ドメインが、前記相同核酸が整列される場合、複数の前記複数の相同配列核
酸上の隣接配列領域に対応する、組成物。 - 【請求項89】 2つ以上の配列を組換える方法であって、該方法が以下の
工程: (i)2つ以上の核酸を整列し、同一性の領域および多様性の領域を同定する
工程; (ii)少なくとも1つの多様性の領域の該2つ以上の核酸の少なくとも2つ
に配列において対応する複数のオリゴヌクレオチドを含む非等モル量のオリゴヌ
クレオチドのセットを提供する工程であって、該オリゴヌクレオチドが非等モル
量で存在する、工程;および、 (iii)該オリゴヌクレオチドをポリメラーゼを用いて伸長することにより
、複数の組換え核酸を提供する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項90】 前記2つ以上の核酸が相同である、請求項89に記載の方
法。 - 【請求項91】 前記2つ以上の核酸が非相同である、請求項89に記載の
方法。 - 【請求項92】 請求項89に記載の方法がさらに、以下の工程: (iv)前記複数の組換え核酸を、所望の形質または特性について選択する工
程、 を包含する、方法。 - 【請求項93】 請求項92に記載の方法であって、さらに、 工程(i)〜(iv)のいずれかの工程を反復する工程、 を包含する、方法。
- 【請求項94】 請求項89に記載の方法であって、さらに、 前記組換え核酸をさらなる核酸と組み換える工程、 を包含する、方法。
- 【請求項95】 請求項94に記載の方法であって、さらに、 得られる該さらなる組換え核酸を、所望の形質または特性について選択する工
程、 を包含する、方法。 - 【請求項96】 キメラプラストのライブラリーを作成する方法であって、
該方法が、以下の工程: 複数の相同キメラプラストを提供する工程であって、該複数の相同キメラプラ
ストの各々が、マーカーまたは他の類似する配列の領域、および少なくとも1つ
の異なる配列の領域を含み、それにより、キメラプラストのライブラリーを生成
する、工程 を包含する、方法。 - 【請求項97】 前記複数のキメラプラストが、コドン改変オリゴヌクレオ
チドである、請求項96に記載の方法。 - 【請求項98】 請求項96に記載の方法により生成される、ライブラリー
。 - 【請求項99】 請求項96に記載の方法であって、さらに、以下の工程: 細胞の集団を前記キメラプラストのライブラリーを用いて形質導入し、そして
前記マーカーまたは他の類似する領域の、細胞内の1つ以上の核酸での組換えを
検出し、そして該細胞内の1つ以上の核酸で組換えられた前記相同キメラプラス
トを同定することにより、活性な相同キメラプラストを同定する、工程、 を包含する、方法。 - 【請求項100】 請求項99に記載の方法であって、さらに、 複数の前記活性相同キメラプラストを組換えて、組換え活性相同キメラプラス
トのライブラリーを生成する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項101】 請求項100に記載の方法により生成される、ライブラ
リー。 - 【請求項102】 請求項100に記載の方法であって、さらに、前記組換
え活性相同キメラプラストのライブラリーを用いて第2の細胞の集団を形質導入
し、そして該組換え活性相同キメラプラストを、該細胞内の前記1以上の核酸と
組換えることにより、それにより、さらなる活性相同キメラプラストを同定する
、工程 を包含する、方法。 - 【請求項103】 請求項102に記載の方法であって、さらに、 前記さらなる活性相同キメラプラストのライブラリーを提供する工程、 を包含する、方法。
- 【請求項104】 請求項103に記載の方法により生成される、ライブラ
リー。
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