JP2012166084A - 脈管アクセスを改善するための方法および組成物 - Google Patents

脈管アクセスを改善するための方法および組成物 Download PDF

Info

Publication number
JP2012166084A
JP2012166084A JP2012133043A JP2012133043A JP2012166084A JP 2012166084 A JP2012166084 A JP 2012166084A JP 2012133043 A JP2012133043 A JP 2012133043A JP 2012133043 A JP2012133043 A JP 2012133043A JP 2012166084 A JP2012166084 A JP 2012166084A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
cells
implantable material
item
graft
cell
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Withdrawn
Application number
JP2012133043A
Other languages
English (en)
Inventor
Helen Marie Nugent
マリー ニュージェント ヘレン
Elazer Edelman
エーデルマン エレザ
Dalal Anupam
ダラル アヌパン
Steve Bollinger
ボリンジャー スティーブ
Scott Epperly
エパリー スコット
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Pervasis Therapeutics Inc
Original Assignee
Pervasis Therapeutics Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from PCT/US2005/043967 external-priority patent/WO2006062909A2/en
Application filed by Pervasis Therapeutics Inc filed Critical Pervasis Therapeutics Inc
Publication of JP2012166084A publication Critical patent/JP2012166084A/ja
Withdrawn legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/069—Vascular Endothelial cells
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
    • A61L27/3804—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells characterised by specific cells or progenitors thereof, e.g. fibroblasts, connective tissue cells, kidney cells
    • A61L27/3808—Endothelial cells

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Prostheses (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • External Artificial Organs (AREA)

Abstract

【課題】脈管アクセス構造体に供給すると全般的に機能を高められる、生体適合性マトリクスと細胞とを含む移植可能材料の提供。
【解決手段】たとえば本発明の移植可能材料は、透析に適する成熟した機能的状態の瘻を長持ちさせるだけでなく、天然の動静脈瘻の成熟を増強することができる。さらに本発明により、機能的な末梢バイパスグラフトの形成を促進できるだけでなく、透析に適する機能的な動静脈グラフトの形成を促進できる。移植可能材料は、吻合または動静脈グラフト部、隣接または周辺部に体内移植するのに適した、可撓性の平面形態または保形性を有する流動可能組成物として構成されうる。本明細書に開示される方法によれば、移植可能材料は血管の外面に供給される。可撓性の平面形態の一定の実施形態は、スロットを画定する。本発明の材料および方法には、細胞、好ましくは内皮細胞または内皮細胞に類似する表現型を有する細胞が含まれる。
【選択図】図７

Description

（関連出願の説明）
２００６年６月５日に出願の仮特許出願でない本出願は、米国特許法第１１９条（ｅ）項にもとづき、２００５年６月２１日に出願の仮特許出願第６０／６９２，７０８号の利益を主張し、米国特許法第１２０条、３６３条および／または３６５条にもとづき、２００５年１２月６日に出願の同時係属中の国際出願ＰＣＴ／ＵＳ０５／４３９６７の優先権を主張する。同時係属中の国際出願ＰＣＴ／ＵＳ０５／４３９６７は、２００４年１２月８日に出願の仮特許出願第６０／６３４，１５５号；２００５年３月２１日に出願の仮特許出願第６０／６６３，８５９号；および２００５年５月１９日に出願の仮特許出願第６０／６８２，０５４号の優先権を主張するものである。以上の各全内容が、参照により本明細書に組み込まれる。
（発明の背景）
血液透析患者に末期腎疾患（ＥＳＲＤ）の処置のための医療を提供する場合の主な合併症は、脈管アクセス不全である。米国内のＥＳＲＤ患者の割合は１９８０年以来毎年増加している。２００１年には、有病率が前年比で２．４％増加し、ほぼ１００万人に１，４００人の割合に達した。年齢、人種、民族性および糖尿病体質における人口統計学的変化にもとづき、米国内のＥＳＲＤ有病患者人口は、２０３０年までに１３０万人まで増加すると予想される。現在では、ＥＳＲＤ有病患者人口の約６５％が血液透析を受けている（約２６４，７１０人）。１９９７年〜２００１年の間に、血液透析患者人口は毎年４．５％増加した。メディケアのデータを用いて測定されたところによると、２００１年までにＥＳＲＤ費用総額は＄１５５億に達し、＄２，４２０億のメディケア予算全体の６．４％を占めた（一切の費用を含めた費用総額は＄２２８億に達した）。米国内の脈管アクセスに関連する疾病の年間費用は現在、実に年間＄１０億を越えている。
脈管アクセス不全は、単独では血液透析患者の病状の最も重要な要因である。米腎疾患データシステム（ＵＳＲＤＳ）のデータを分析した最近の報告によれば、１年の一次自力アクセス開存率は、全体で５３％にとどまる。ｅＰＴＦＥ（登録商標）補綴ブリッジを伴う動静脈グラフト等の脈管アクセス構造体の場合の、１年一次自力アクセス開存率は４９％であり、動静脈（ＡＶ）瘻の場合は６２％であった。１年、３年および５年の初回アクセスの累積的開存率は、前腕部の瘻ではそれぞれ５４％、４６％および３６％、ＡＶグラフトでは５４％、２８％および０％であった。現在では、ｅＰＴＦＥ補綴ブリッジを伴うグラフトの使用が、米国内の血液透析アクセス手法の全体の７０％を占めているが、国立腎財団は、現在脈管アクセスの好ましい方法としてＡＶ瘻を推奨している。米国内の新規のＡＶ瘻の割合は、将来的に増加すると予想される。
自家動静脈瘻はこれまで、血液透析患者の脈管アクセスの最善の選択肢であると考えられてきた。ＡＶ瘻が外科的作製の後、良好に成熟すると、何年も機能する可能性があり、合併症のリスクも低く、修正手術の割合も低い。しかし、報告されているＡＶ瘻の非成熟割合には、ばらつきがありながらも、約２０〜５０％となっている。非成熟とは、透析のために瘻に繰り返しカニューレを挿入できないこと、または外科的作製後１２週間以内に十分な透析血流を得られないことと一般に定義される。ＡＶ瘻の非成熟の発生は、一部ＡＶ瘻の形成に使用される血管の質と大きさに依存する。血管特性の術前評価が、ＡＶ瘻形成に適した血管の識別に有益であることが分かっている。
脈管アクセス構造体不全は、特に吻合部のいわゆる「つま先」およびその下流周辺部における、種々の異なる急性および慢性徴候の蓄積作用に起因しうる。たとえばＡＶグラフトでは、吻合部の静脈吻合側に、グラフトに伴う狭窄およびグラフトに伴う閉塞が生じうる。公表された一報告書によれば、グラフトに伴う吻合部狭窄の患者から除去したセグメントの組織学検査においては、平滑筋細胞および細胞外マトリクスを含む内膜の過形成がみられた。グラフト血栓症も、ｅＰＴＦＥ透析グラフトにおける脈管アクセス機能不全に寄与しうる。さらに、一般に静脈と動脈の単離後に、静脈セグメントを動脈の血流および血圧にさらすことにより、不可避的に虚血および再かん流障害が起こりうる。縫合等の外科的処置も、静脈および動脈の中膜の内皮および平滑筋細胞を直接損傷しうる。自己血管またはグラフト吻合の作製中の、動脈および静脈内皮への損傷は、開存性および閉塞率を左右しうる。脈管アクセス構造体を形成する間の、静脈および動脈を切断および縫合することに伴う物理的損傷に加えて、壁応力およびせん断力の増加によっても、内皮に対する物理的および／または生化学的損傷がもたらされうる。動脈圧は、静脈中膜に形態的および生化学的変化を生じうるのみならず、内皮増殖を調節する化合物の正常な生産を変えるとされている。
脈管アクセス不全に対する現在の処置法は、外科的修正手術またはステントを伴うかまたは伴わない血管形成術である。外科的処置は、典型的に複数の病気を患う患者にはリスクがありうるし、血管形成およびステント術は、それら自体の失敗率のために長期的結果が一般に芳しくない。したがって、末梢循環だけでなく血液透析のための脈管アクセスの改良の目標は、元のグラフト部位の構造的完全性を維持することにより、透析治療を支える血流速度、または末梢バイパス部位の十分な血流を実現することである。
新規に作製した脈管アクセス構造体の良好な成熟、または既存の脈管アクセス構造体の持続的成熟に寄与する他の要素は、未だ捉えにくい。さらに、脈管アクセス不全防止の分野で行われている無作為臨床試験は比較的少ない。脈管アクセス不全の原因を評価した研究の結論にも一貫性がない。この問題が深刻であるにもかかわらず、機能する透析アクセス瘻を長期存続させるために臨床医が利用できる有効な外科的、治療的、または薬理学的な尺度は存在しないのが現状である。この患者治療の重要な領域においては、明らかに進歩する必要がある。
（発明の要旨）
本発明は、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料を、脈管アクセス構造体に局所的に供給すると、構造体を成熟した機能的状態で長持ちさせることができるだけでなく、構造体の形成を促進および／または成熟を増強できる、という発見を利用する。本発明によれば、移植可能材料は、脈管アクセス構造体部、隣接または周辺部の血管の外面上に配置される。本発明は、新規に作製した脈管アクセス構造体の一体化を有効に促進および／または成熟を増強し、既存の機能中の構造体の機能的寿命を促進および維持し、不全になりかけた、または不全の構造体の修復を助けうる。
一態様においては、本発明は、細胞と生体適合性マトリクスとを含み、脈管アクセス構造体の機能を促進するのに有効な移植可能材料を、当該構造体部、隣接または周辺部に配置するステップを含む、患者の脈管アクセス構造体を処置する方法である。下記の一定の実施形態によれば、脈管アクセス構造体は、透析のためのものである。
様々な実施形態によれば、脈管アクセス構造体は、天然の動静脈瘻、動静脈グラフト、末梢グラフト、静脈カテーテルまたは留置ポートである。一実施形態においては、動静脈グラフトは補綴ブリッジを含む。別の実施形態では、カテーテルは留置二重管腔カテーテルであり、留置二重管腔カテーテルの処置により、血液透析に十分な臨床的安定が促進される。
一実施形態では、脈管アクセス構造体の処置により、構造体内部または下流における正常またはほぼ正常な血流が促進される。たとえば、正常またはほぼ正常な血流は、血液透析中の再循環を防止するために十分な速度の血流である。さらなる実施形態によれば、脈管アクセス構造体の処置により、正常またはほぼ正常な血管直径が促進され、血液透析中の血流の再循環が減じられる。
天然の動静脈瘻の場合には、天然の動静脈瘻の処置により、血液透析を行うのに十分な臨床的成熟が増強され、天然の動静脈瘻の成熟の遅れが低減し、反復的カニューレ挿入が促進される。動静脈グラフトの場合には、動静脈グラフトの処置により、正常またはほぼ正常な循環を回復するのに十分な臨床的安定が促進される。様々な実施形態において、移植可能材料により、アクセス構造体を有する患者における修正手術の発生率が低下する。
一実施形態においては、成熟の増強は、透析のために瘻に反復的にカニューレを挿入できる能力を特徴とする。別の実施形態によれば、成熟の増強は、透析中に十分な血流を得られる能力を特徴とする。好ましくは、十分な血流には、約３５０ｍｌ／分の速度が含まれる。様々な実施形態によれば、動静脈瘻に対する生体適合性材料の適用は、治療薬の投与、物理的拡張またはステント術の後に、またはこれらと同時に行われる。動静脈瘻は、橈骨動脈―橈側皮静脈間、上腕動脈―橈側皮静脈間、または上腕動脈―尺側皮静脈間である。
一つの好ましい実施形態においては、本発明は、生体適合性マトリクスと血管内皮細胞とを含む移植可能材料を、瘻部、隣接または周辺部に配置することにより瘻の成熟不全を防止するステップを含む、動静脈瘻の体内成熟不全を防止する方法である。一実施形態では、成熟不全は、透析のために瘻に反復的にカニューレを挿入できないこと、または透析中に約３５０ｍｌ／分の血流速度を含む十分な血流を得られないことを特徴とする。他の実施形態では、成熟不全は、作製後少なくとも２ヵ月、少なくとも３ヵ月または少なくとも４ヵ月動静脈瘻にカニューレを挿入できないことを特徴とする。
別の実施形態では、本発明は、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料を供給するステップを含み、当該ステップにおいて、当該移植可能材料が、透析に十分なグラフトの血流速度を維持するのに効果的な量で、当該動静脈グラフトの静脈流出領域の補綴ブリッジ部、隣接または周辺部の当該動静脈グラフトの外面に設けられる、透析に十分な動静脈グラフトの血流速度を維持する方法である。一実施形態では、当該動静脈グラフトの静脈流出領域の血流速度は、当該流出領域の上流の血流速度とほぼ同じである。
別の実施形態では、本発明は、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料を供給するステップを含み、当該ステップにおいて当該移植可能材料が、末梢循環を維持するのに十分なバイパスグラフトの血流速度を維持するために効果的な量で、補綴ブリッジ部、隣接または周辺部の当該バイパスグラフトの外面に設けられる、末梢循環を維持するのに十分な末梢バイパスグラフトの正常な血流を維持する方法である。一実施形態においては、流入血流速度と流出血流速度は、ほぼ同じである。
別の実施形態では、本発明は、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料を供給するステップを含み、当該ステップにおいて当該移植可能材料が、透析に十分なグラフトの血圧を維持するのに効果的な量で、当該動静脈グラフトの静脈流出領域の補綴ブリッジ部、隣接または周辺部の当該動静脈グラフトの外面に設けられる、透析に十分な動静脈グラフトの血圧を維持する方法である。一実施形態では、当該動静脈グラフトの静脈流出領域の血圧は、当該流出領域の上流の血圧とほぼ同じである。補綴ブリッジは、伏在静脈、ウシヘテログラフト、臍静脈、ダクロン、ＰＴＦＥ、ｅＰＴＦＥ、ポリウレタン、ウシ腸間膜静脈、および凍結保存の大腿静脈アログラフトからなる群より選択される。好ましい実施形態においては、補綴ブリッジはｅＰＴＦＥである。
別の実施形態では、本発明は、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料を供給するステップを含み、当該ステップにおいて当該移植可能材料が、補綴ブリッジの組織一体化の促進に効果的な量で、当該補綴ブリッジ部、隣接または周辺部の当該動静脈グラフトまたは当該末梢バイパスグラフトの外面に設けられる、動静脈グラフトまたは末梢バイパスグラフトの補綴ブリッジの組織一体化を促進する方法である。一定の実施形態においては、移植可能材料は、当該補綴ブリッジの管腔内側表面または周辺部における平滑筋細胞の増殖または移動を促進し、または当該補綴ブリッジの管腔内側表面または周辺部における内皮細胞の増殖または移動を促進する。別の一定の実施形態においては、移植可能材料は、グラフト部、隣接または周辺部における平滑筋細胞および／または内皮細胞の増殖を促進する。
別の実施形態では、本発明は、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料を供給するステップを含み、当該ステップにおいて当該移植可能材料が、離開の発生を防止または低減するのに効果的な量で、当該動静脈グラフトの静脈流出領域の補綴ブリッジ部、隣接または周辺部の当該瘻または動静脈グラフトの外面に設けられる、動静脈瘻または動静脈グラフト離開の発生を防止または低減する方法である。
他の実施形態によれば、供給のステップは、天然の動静脈瘻不全の後、または天然のバイパスまたは伏在静脈末梢バイパス不全の後に、インターベンション処置として行われる。
別の態様においては、本発明は、脈管アクセス構造体の処置に適し、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料である。細胞は内皮細胞、または内皮細胞に類似する表現型を有する細胞である。生体適合性マトリクスは、可撓性の平面形態または流動可能組成物である。特に好ましい実施形態においては、細胞は血管内皮細胞である。可撓性の平面形態は、脈管アクセス構造体部、隣接または周辺部への移植のために構成される。一定の実施形態においては、この形態はスロットを画定する。流動可能組成物の一実施形態によれば、流動可能組成物は保形性を有する組成物である。
別の実施形態においては、本発明は、動静脈瘻の成熟不全を防止することにより、動静脈瘻の成熟を増強する方法において使用するのに適し、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料である。細胞は、内皮細胞または内皮細胞に類似する表現型を有する細胞であり、生体適合性マトリクスは、可撓性の平面形態または流動可能組成物である。一実施形態では、可撓性の平面形態は、天然の瘻部、隣接または周辺部への移植のために構成される。一定の実施形態においては、この形態はスロットまたは一連のスロットを画定するように構成される。流動可能組成物に関しては、保形性を有する組成物である。
別の実施形態においては、本発明は、補綴ブリッジ部、隣接または周辺部の血管の外面に設けられる、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料である。補綴ブリッジは、動静脈グラフトの静脈流出領域またはその付近におかれるか、または流出の付近におかれる。
別の態様では、本発明は、生体適合性マトリクスと植え付けられた細胞とを含む移植可能材料を貯蔵するための輸送培地組成物である。輸送培地組成物には、細胞の標準的な細胞培養温度より低温で当該輸送培地組成物に貯蔵される場合に、細胞生存率または抑制性の表現型が維持され、細胞が長期間生存しつづけるのに十分な量のＶＥＧＦが含まれる。
別の態様では、本発明は、生体適合性マトリクスと植え付けられた細胞とを含む移植可能材料を、細胞の標準的な細胞培養温度より低温で長期間貯蔵するための方法である。方法には、細胞生存率または抑制性の表現型を維持するのに十分な量のＶＥＧＦを含む輸送培地組成物に、当該移植可能材料を浸すステップが含まれる。細胞は、当該細胞の標準的な細胞培養温度より低温で当該輸送培地組成物に貯蔵される場合に、長期間生存しつづける。
一実施形態によれば、輸送培地組成物には、細胞生存率または抑制性の表現型が維持されるのに十分な量かつ細胞の標準的な細胞培養温度で必要な量よりも多い量のＶＥＧＦが含まれる。一実施形態によれば、ＶＥＧＦの量は約４ｎｇ／ｍＬである。
さらなる実施形態によれば、移植可能材料は、約３７℃より低温または周囲温度で、約１週間、約２週間、または約３週間の長期間、前記輸送培地組成物に貯蔵される。細胞は、貯蔵される場合にほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後である、内皮細胞または内皮細胞に類似する細胞であり、生存率が少なくとも約８０％である。
別の態様においては、本発明は、生体適合性マトリクスと植え付けられた細胞とを含む移植可能材料を凍結保存するための凍結保存培地組成物である。凍結保存培地組成物は、凍結保存剤、多糖類および血清を含む。少なくとも約−４℃で貯蔵される場合に、細胞生存率または抑制性の表現型およびマトリクスの完全性が長期間維持される。
一実施形態においては、凍結保存培地組成物中の血清の量は、細胞の通常培養における血清の量より多く、たとえば２０％または５０％の血清である。一実施形態においては、血清はウシ胎仔血清である。一実施形態においては、凍結保存培地組成物中の多糖類は、細胞の通常培養における多糖類の量より多く、たとえば少なくとも約４％の多糖類または少なくとも約４．５％の多糖類である。一実施形態においては、多糖類はデキストランである。別の実施形態では、凍結保存培地組成物は、約１０％のＤＭＳＯをさらに含む。
一実施形態によれば、凍結保存培地組成物は、少なくとも約−８０℃、少なくとも約−１４０℃、または少なくとも約−１６０℃での貯蔵のために使用される。様々な実施形態によれば、長期間とは約１ヶ月、約６ヶ月、または約１年である。一実施形態においては、細胞生存率は少なくとも約８０％である。
別の態様においては、本発明は、細胞を植え付けられた生体適合性マトリクスを含む凍結保存の移植可能材料、および、凍結保存中に細胞生存率または抑制性の表現型およびマトリクスの完全性を維持するのに十分な量であり、凍結保存剤、多糖類および血清を含む凍結保存培地組成物である。
別の態様においては、本発明は、生体適合性マトリクスと植え付けられた細胞とを含む移植可能材料を準備する方法である。方法には、細胞を含むワーキング・セル・バンクを準備するステップと、水和した生体適合性マトリクス材料を提供するステップと、ワーキング・セル・バンクからの細胞を水和した生体適合性マトリクス材料に播種するステップと、細胞を播種した生体適合性マトリクス材料を、インキュベータ内に配置して細胞接着を促進するステップと、細胞を播種した生体適合性マトリクス材料を、細胞がほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後となるまで、インキュベータ内に配置するステップと、細胞を播種した生体適合性マトリクス材料の、細胞数、細胞生存率および／または細胞機能性を評価するステップが含まれる。
一実施形態においては、方法にはさらに、細胞を播種した生体適合性マトリクス材料を、凍結保存に適したバイアル内に配置するステップと、ほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後の細胞を播種した生体適合性マトリクス材料に、凍結保存剤と、多糖類と血清とを含む凍結保存培地組成物を、材料の凍結保存中に、細胞生存率または抑制性の表現型およびマトリクスの完全性を保存するのに十分な量導入するステップと、細胞を播種した生体適合性マトリクス材料と、凍結保存培地組成物とを含むバイアルを、冷凍容器内に配置するステップと、冷凍容器に、冷凍速度を調節する薬剤を導入するステップと、当該薬剤を含む冷凍容器を、少なくとも約−４℃のフリーザ内に配置するステップと、冷凍容器を、少なくとも約−４℃のフリーザから取り出すステップと、冷凍容器を、少なくとも−８０℃のフリーザ内に配置するステップがさらに含まれる。
他の実施形態では、方法には、冷凍容器を、少なくとも約−８０℃のフリーザから取り出すステップと、冷凍容器を、少なくとも約−１６０℃のフリーザ内に配置するステップがさらに含まれる。
別の実施形態では、方法には、バイアルをフリーザから取り出すステップと、バイアルを周囲温度に約１５分間配置したあと、バイアルを周囲温度の水浴内に約１５分間配置するステップと、移植可能材料をバイアルから取り出すステップと、移植可能材料を、すすぎ培地組成物の中で約５分間すすぐステップと、移植可能材料を、細胞培養培地に約４８時間配置するステップがさらに含まれる。
別の実施形態では、方法には、バイアルをフリーザから取り出すステップと、バイアルを周囲温度に約１５分間配置したあと、バイアルを周囲温度の水浴内に約１５分間配置するステップと、移植可能材料をバイアルから取り出すステップと、移植可能材料を、すすぎ溶液組成物の中で約３０分間すすぐステップがさらに含まれる。
別の実施形態では、方法には、細胞を播種した生体適合性マトリクス材料を、貯蔵に適したバイアル内に配置するステップと、ほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後の細胞を播種した生体適合性マトリクス材料に、材料が輸送培地組成物中に貯蔵される間に細胞生存率または抑制性の表現型を維持するのに十分な量のＶＥＧＦを含む輸送培地組成物を導入するステップがさらに含まれる。
別の実施形態では、方法には、開示された方法による凍結保存、または開示された方法による貯蔵のために、細胞を播種した生体適合性マトリクス材料を準備するステップと、輸送のためにバイアルを準備するステップと、患者に適用するために、医療研究機関へ外箱を輸送するステップがさらに含まれる。
別の実施形態では、方法には、細胞を播種した生体適合性マトリクス材料を含むバイアルを、内箱内に配置するステップと、内箱を、断熱された外箱内に配置するステップと、製品添付文書を準備するステップがさらに含まれる。
方法の一実施形態では、細胞を播種した生体適合性マトリクス材料は治験材料であり、患者は治験の参加者である。方法の別の実施形態では、移植可能材料は、商業規模で準備される。別の態様においては、本発明は、開示の方法のいずれかを実施するための、ロボットシステムである。
別の態様においては、本発明は、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料を製造する方法であり、当該方法には、適切な試薬および条件を用いて生体適合性マトリクスを細胞に接触させるステップが含まれ、当該ステップにおいて細胞は、当該マトリクスで集団を形成して、ほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後となるまで成長するのに十分な量であり、さらにマトリクスは、細胞型にとらわれず、適合性も試験されず、マッチングもしていない細胞により集団を形成される。別の態様においては、本発明は、本方法により製造された移植可能材料を提供する方法である。さらなる態様においては本発明は、本方法により製造された、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料である。
例えば、本願発明は以下の項目を提供する。
（項目１）
患者の脈管アクセス構造体を処置する方法であって、細胞と生体適合性マトリクスとを含み、かつ該構造体の機能を促進するのに有効な移植可能材料を、該患者の該脈管アクセス構造体部、隣接または周辺部に配置するステップを含む、方法。
（項目２）
前記脈管アクセス構造体は、天然の動静脈瘻、動静脈グラフトまたは静脈カテーテルである、項目１に記載の方法。
（項目３）
前記動静脈グラフトは補綴ブリッジを含む、項目２に記載の方法。
（項目４）
前記カテーテルは留置二重管腔カテーテルである、項目２に記載の方法。
（項目５）
前記脈管アクセス構造体は、透析のためのものである、項目１に記載の方法。
（項目６）
前記動静脈瘻の処置により、反復的カニューレ挿入が促進される、項目２に記載の方法。
（項目７）
前記脈管アクセス構造体の処置により、前記構造体内部および下流における正常またはほぼ正常な血流が促進される、項目１に記載の方法。
（項目８）
血流が血液透析中の再循環を防止するために十分な速度である、項目７に記載の方法。
（項目９）
前記脈管アクセス構造体の処置により、正常またはほぼ正常な血管直径が促進される、項目１に記載の方法。
（項目１０）
前記脈管アクセス構造体の処置により、血液透析中の血流の再循環が減じられる、項目１に記載の方法。
（項目１１）
前記天然の動静脈瘻の処置により、血液透析を可能にするに十分な臨床的成熟が促進される、項目２に記載の方法。
（項目１２）
前記移植可能材料が前記天然の動静脈瘻の成熟の遅れを低減する、項目２に記載の方法。
（項目１３）
前記動静脈グラフトの処置により、正常またはほぼ正常な末梢循環を回復するのに十分な臨床的安定が促進される、項目２に記載の方法。
（項目１４）
前記留置二重管腔カテーテルが、血液透析を可能にするに十分な臨床的安定を促進する、項目２に記載の方法。
（項目１５）
前記移植可能材料が、前記患者における修正手術の発生率を低下させる、項目２に記載の方法。
（項目１６）
項目１に記載の方法とともに使用するのに適した、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料。
（項目１７）
前記細胞が内皮細胞、または内皮細胞に類似する表現型を有する細胞である、項目１６に記載の移植可能材料。
（項目１８）
前記生体適合性マトリクスが可撓性の平面材料または流動可能組成物である、項目１６に記載の移植可能材料。
（項目１９）
前記可撓性の平面材料が吻合部への移植のために構成される、項目１８に記載の移植可能材料。
（項目２０）
前記材料がスロットを画定する、項目１９に記載の移植可能材料。
（項目２１）
前記材料が図１または図２Ａのように構成される、項目１９に記載の移植可能材料。
（項目２２）
前記流動可能組成物が保形性を有する組成物である、項目１８に記載の移植可能材料。
（項目２３）
ヒトにおける動静脈瘻の成熟を増強する方法であって、生体適合性マトリクスと細胞とを含み、かつ該瘻の成熟を増強するのに有効な移植可能材料を、該瘻部、隣接または周辺部に配置するステップを含む、方法。
（項目２４）
成熟の増強が、透析のために前記瘻に反復的にカニューレを挿入できる能力を特徴とする、項目２３に記載の方法。
（項目２５）
成熟の増強が、透析中に十分な血流を得られる能力を特徴とする、項目２３に記載の方法。
（項目２６）
十分な血流が、約３５０ｍｌ／分の速度を含む、項目２５に記載の方法。
（項目２７）
前記動静脈瘻は、橈骨動脈―橈側皮静脈間、上腕動脈―橈側皮静脈間、または上腕動脈―尺側皮静脈間である、項目２３に記載の方法。
（項目２８）
前記動静脈瘻に対する前記生体適合性材料の適用は、治療薬の投与の後に、またはこれと同時に行われる、項目２３に記載の方法。
（項目２９）
前記動静脈瘻に対する前記生体適合性材料の適用は、物理的拡張の後に行われる、項目２３に記載の方法。
（項目３０）
ヒトにおける動静脈瘻の体内成熟不全を防止する方法であって、血管内皮細胞が移植された生体適合性マトリクスを、該ヒトの体内の瘻部、隣接または周辺部に配置することにより該瘻の成熟不全を防止するステップを含む、方法。
（項目３１）
成熟不全は、透析のために前記瘻に反復的にカニューレを挿入できないことを特徴とする、項目３０に記載の方法。
（項目３２）
成熟不全は、透析中に十分な血流を得られないことを特徴とする、項目３０に記載の方法。
（項目３３）
前記十分な血流が約３５０ｍｌ／分の速度を含む、項目３２に記載の方法。
（項目３４）
前記動静脈瘻は、橈骨動脈―橈側皮静脈間、上腕動脈―橈側皮静脈間、または上腕動脈―尺側皮静脈間である、項目３０に記載の方法。
（項目３５）
前記動静脈瘻に対する前記生体適合性材料の適用は、治療薬の投与の後に、またはこれと同時に行われる、項目３０に記載の方法。
（項目３６）
前記動静脈瘻に対する前記生体適合性材料の適用は、物理的拡張の後に行われる、項目３０に記載の方法。
（項目３７）
前記動静脈瘻は、発生後少なくとも２ヵ月カニューレを挿入できない、項目３１に記載の方法。
（項目３８）
前記動静脈瘻は、発生後少なくとも３ヵ月カニューレを挿入できない、項目３１に記載の方法。
（項目３９）
前記動静脈瘻は、発生後少なくとも４ヵ月カニューレを挿入できない、項目３１に記載の方法。
（項目４０）
項目２３に記載の方法とともに使用するのに適した、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料。
（項目４１）
前記細胞が内皮細胞、または内皮細胞に類似する表現型を有する細胞である、項目４０に記載の移植可能材料。
（項目４２）
前記生体適合性マトリクスが可撓性の平面材料または流動可能組成物である、項目４０に記載の移植可能材料。
（項目４３）
前記可撓性の平面材料が吻合部への移植のために構成される、項目４２に記載の移植可能材料。
（項目４４）
前記材料がスロットを画定する、項目４３に記載の移植可能材料。
（項目４５）
前記材料が図１または図２Ａのように構成される、項目４３に記載の移植可能材料。
（項目４６）
前記流動可能組成物が保形性を有する組成物である、項目４２に記載の移植可能材料。
（項目４７）
動静脈グラフトの血流速度を維持する方法であって、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料を供給するステップを含み、該移植可能材料は、該グラフトの血流速度を維持するのに効果的な量で、該動静脈グラフトの静脈流出領域の補綴ブリッジ部、隣接または周辺部の該動静脈グラフトの外面に設けられる、方法。
（項目４８）
前記動静脈グラフトの静脈流出領域の血流速度は、前記流出領域の上流の血流速度とほぼ同じであるか、または、該血流速度は透析を可能にするのに十分な速度である、項目４７に記載の方法。
（項目４９）
末梢循環を維持するのに十分な末梢バイパスグラフトの正常な血流を維持する方法であって、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料を供給するステップを含み、該移植可能材料は、末梢循環を維持するのに十分な該バイパスグラフトの血流速度を維持するために効果的な量で、補綴ブリッジ部、隣接または周辺部の該バイパスグラフトの外面に設けられる、方法。
（項目５０）
流入血流速度と流出血流速度がほぼ同じである、項目４９に記載の方法。
（項目５１）
動静脈グラフトまたは末梢バイパスグラフトの補綴ブリッジの組織一体化を促進する方法であって、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料を供給するステップを含み、該移植可能材料は、該ブリッジの組織一体化の促進に効果的な量で、補綴ブリッジ部、隣接または周辺部の該動静脈グラフトまたは該末梢バイパスグラフトの外面に設けられる、方法。
（項目５２）
前記移植可能材料は、前記補綴ブリッジの管腔内側表面または周辺部における平滑筋細胞の増殖または移動を促進する、項目５１に記載の方法。
（項目５３）
前記移植可能材料は、前記補綴ブリッジの管腔内側表面または周辺部における内皮細胞の増殖または移動を促進する、項目５１に記載の方法。
（項目５４）
動静脈瘻または動静脈グラフト離開の発生を防止または低減する方法であって、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料を供給するステップを含み、該移植可能材料は、該離開の発生を防止または低減するのに効果的な量で、該動静脈グラフトの静脈流出領域の補綴ブリッジ部、隣接または周辺部の該瘻または動静脈グラフトの外面に設けられる、方法。
（項目５５）
前記供給のステップは、天然の動静脈瘻不全の後に、インターベンション処置として行われる、項目４７に記載の方法。
（項目５６）
前記供給のステップは、天然または伏在静脈末梢バイパス不全の後に、インターベンション処置として行われる、項目４９に記載の方法。
（項目５７）
（ａ）細胞と；
（ｂ）生体適合性マトリクスと
を含む移植可能材料であって、該移植可能材料は、補綴ブリッジの周辺部、隣接またはこれに接して設けられ、該補綴ブリッジは、動静脈グラフトの静脈流出領域もしくはその付近、または末梢バイパスグラフトの流出もしくはその付近におかれる、移植可能材料。
（項目５８）
透析を可能にするに十分な動静脈グラフトの血圧を維持する方法であって、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料を供給するステップを含み、該移植可能材料は、透析を可能にするに十分な血圧を維持するのに効果的な量で、該動静脈グラフトの静脈流出領域の補綴ブリッジ部、隣接または周辺部の該動静脈グラフトの外面に設けられる、方法。
（項目５９）
前記動静脈グラフトの静脈流出領域の血圧は、前記流出領域の上流の血圧とほぼ同じである、項目５８に記載の方法。
（項目６０）
前記補綴ブリッジは、伏在静脈、ウシヘテログラフト、臍静脈、ダクロン、ＰＴＦＥ、ｅＰＴＦＥ、ポリウレタン、ウシ腸間膜静脈、および凍結保存の大腿静脈アログラフトからなる群より選択される、項目５８に記載の方法。
（項目６１）
前記補綴ブリッジはｅＰＴＦＥである、項目６０に記載の方法。
（項目６２）
項目４７または５８に記載の方法とともに使用するのに適した、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料。
（項目６３）
前記細胞が内皮細胞、または内皮細胞に類似する表現型を有する細胞である、項目６２に記載の移植可能材料。
（項目６４）
前記生体適合性マトリクスが可撓性の平面材料または流動可能組成物である、項目６２に記載の移植可能材料。
（項目６５）
前記可撓性の平面材料が吻合部、隣接または周辺部への移植のために構成される、項目６４に記載の移植可能材料。
（項目６６）
前記可撓性の平面材料は、動静脈グラフト部、隣接または周辺部への移植のために構成される、項目６５または６６に記載の移植可能材料。
（項目６７）
前記材料がスロットを画定する、項目６５または６６に記載の移植可能材料。
（項目６８）
前記材料が図１または図２Ａのように構成される、項目６５または６６に記載の移植可能材料。
（項目６９）
前記流動可能組成物が保形性を有する組成物である、項目６４に記載の移植可能材料。
（項目７０）
前記細胞が、コンフルエントな細胞集団、ほぼコンフルエントな細胞集団、コンフルエント後の細胞集団、および前述の細胞集団のいずれか１つの表現型を有する細胞からなる群より選択される、項目１６、１７、４０または５７に記載の移植可能材料。
（項目７１）
生体適合性マトリクスと植え付けられた細胞とを含む移植可能材料を貯蔵するための輸送培地組成物であり、前記輸送培地組成物が、細胞生存率または抑制性の表現型を維持するのに十分な量のＶＥＧＦを含み、前記細胞の標準的な細胞培養温度より低温で前記輸送培地組成物中に貯蔵されると、前記細胞が長期間生存しつづける、輸送培地組成物。
（項目７２）
前記細胞の標準的な細胞培養温度より低温において、細胞生存率または抑制性の表現型を維持するのに十分なＶＥＧＦの前記量が、前記細胞の標準的な細胞培養温度において必要なＶＥＧＦの量よりも多い、項目７１に記載の輸送培地組成物。
（項目７３）
前記移植可能材料が、前記輸送培地組成物中に約３７℃より低温で貯蔵される、項目７１に記載の輸送培地組成物。
（項目７４）
前記移植可能材料が、前記輸送培地組成物中に周囲温度で貯蔵される、項目７１に記載の輸送培地組成物。
（項目７５）
細胞生存率が少なくとも約８０％である、項目７１に記載の輸送培地組成物。
（項目７６）
前記細胞が、貯蔵される場合にほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後である、項目７１に記載の輸送培地組成物。
（項目７７）
前記長期間が、約１週間である、項目７１に記載の輸送培地組成物。
（項目７８）
前記長期間が、約２週間である、項目７１に記載の輸送培地組成物。
（項目７９）
前記長期間が、約３週間である、項目７１に記載の輸送培地組成物。
（項目８０）
前記細胞が、内皮細胞または内皮細胞に類似する細胞である、項目７１に記載の輸送培地組成物。
（項目８１）
ＶＥＧＦの前記量が、約４ｎｇ／ｍＬである、項目７１に記載の輸送培地組成物。
（項目８２）
生体適合性マトリクスと植え付けられた細胞とを含む移植可能材料を凍結保存するための凍結保存培地組成物であり、前記凍結保存培地組成物が凍結保存剤、多糖類および血清を含み、少なくとも約−４℃で貯蔵される場合に、細胞生存率または抑制性の表現型およびマトリクスの完全性が長期間維持される、凍結保存培地組成物。
（項目８３）
前記凍結保存培地組成物中の血清量が、前記細胞の通常培養のための血清量を上回る、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目８４）
少なくとも約２０％の血清を含む、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目８５）
少なくとも約５０％の血清を含む、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目８６）
前記血清が、ウシ胎仔血清である、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目８７）
前記凍結保存培地組成物中の前記多糖類が、前記細胞の通常培養のための多糖類量を上回る、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目８８）
少なくとも約２〜８％の多糖類を含む、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目８９）
少なくとも約４．５％の多糖類を含む、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目９０）
前記多糖類がデキストランである、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目９１）
約１０％のＤＭＳＯをさらに含む、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目９２）
貯蔵が少なくとも約−２０℃においてなされる、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目９３）
貯蔵が少なくとも約−８０℃においてなされる、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目９４）
貯蔵が少なくとも約−１４０℃においてなされる、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目９５）
前記長期間が約１ヶ月である、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目９６）
前記長期間が約６ヶ月である、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目９７）
前記長期間が約１年である、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目９８）
細胞生存率が少なくとも約８０％である、項目８２に記載の凍結保存培地組成物。
（項目９９）
細胞を植え付けられた生体適合性マトリクスと、凍結保存中に細胞生存率または抑制性の表現型およびマトリクスの完全性を維持するのに十分な量の凍結保存培地組成物とを含む、凍結保存移植可能材料であり、前記凍結保存培地組成物が凍結保存剤、多糖類および血清を含む、凍結保存移植可能材料。
（項目１００）
生体適合性マトリクスと植え付けられた細胞とを含む移植可能材料を、前記細胞の標準的な細胞培養温度よりも低温で長期間貯蔵する方法であり、前記方法が、
貯蔵中に細胞生存率または抑制性の表現型を維持するのに十分な量のＶＥＧＦを含む輸送培地組成物に、前記移植可能材料を浸すステップ
を含み、前記細胞の標準的な細胞培養温度より低温で前記輸送培地組成物中に貯蔵される場合に、前記細胞が長期間生存しつづけるか抑制性の表現型を維持する方法。
（項目１０１）
前記細胞の標準的な細胞培養温度より低温で、細胞生存率または抑制性の表現型を維持するのに十分なＶＥＧＦの前記量が、前記細胞の標準的な細胞培養温度で必要なＶＥＧＦの量よりも多い、項目１００に記載の方法。
（項目１０２）
輸送培地組成物の量の、移植可能材料の量に対する比率が約５０：１である、項目１００に記載の方法。
（項目１０３）
前記輸送培地組成物の量が約５０ｍＬである、項目１００に記載の方法。
（項目１０４）
前記輸送培地組成物のｐＨが約７．４である、項目１００に記載の方法。
（項目１０５）
前記移植可能材料が、約３７℃より低温で前記輸送培地組成物中に貯蔵される、項目１００に記載の方法。
（項目１０６）
前記移植可能材料が、周囲温度で前記輸送培地組成物中に貯蔵される、項目１００に記載の方法。
（項目１０７）
細胞生存率が少なくとも約８０％である、項目１００に記載の方法。
（項目１０８）
前記細胞が、貯蔵される場合にほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後である、項目１００に記載の方法。
（項目１０９）
前記長期間が約１週間である、項目１００に記載の方法。
（項目１１０）
前記長期間が約２週間である、項目１００に記載の方法。
（項目１１１）
前記長期間が約３週間である、項目１００に記載の方法。
（項目１１２）
前記細胞が、内皮細胞または内皮細胞に類似する細胞である、項目１００に記載の方法。
（項目１１３）
ＶＥＧＦの前記量が、約４ｎｇ／ｍＬである、項目１００に記載の方法。
（項目１１４）
生体適合性マトリクスと植え付けられた細胞とを含む移植可能材料を、約−４℃の温度で長期間凍結保存する方法であり、前記方法が、
凍結保存剤、多糖類および血清を含む凍結保存培地組成物に、前記移植可能材料を浸すステップ
を含み、約−４℃の温度で前記凍結保存培地組成物中に貯蔵される場合に、長期間前記細胞が生存しつづけるか抑制性の表現型を維持し、前記マトリクスが完全なままである方法。
（項目１１５）
前記凍結保存培地組成物中の血清量が、前記細胞の通常培養のための血清量を上回る、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１１６）
前記凍結保存培地組成物が、少なくとも約２０％の血清を含む、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１１７）
前記凍結保存培地組成物が、少なくとも約５０％の血清を含む、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１１８）
前記血清がウシ胎仔血清である、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１１９）
前記凍結保存培地組成物中の前記多糖類が、前記細胞の通常培養のための多糖類量を上回る、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１２０）
前記凍結保存培地組成物が、少なくとも約２〜８％の多糖類を含む、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１２１）
前記凍結保存培地組成物が、少なくとも約４．５％の多糖類を含む、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１２２）
前記多糖類がデキストランである、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１２３）
前記凍結保存培地組成物が、約１０％のＤＭＳＯをさらに含む、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１２４）
凍結保存培地組成物の量の、移植可能材料の量に対する比率が約５：１である、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１２５）
前記凍結保存培地組成物の量が、約５ｍＬである、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１２６）
貯蔵が少なくとも約−８０℃においてなされる、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１２７）
貯蔵が少なくとも約−１４０℃においてなされる、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１２８）
貯蔵が少なくとも約−１６０℃においてなされる、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１２９）
前記長期間が約１ヶ月である、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１３０）
前記長期間が約６ヶ月である、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１３１）
前記長期間が約１年である、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１３２）
細胞生存率が少なくとも約８０％である、項目１１４に記載の凍結保存方法。
（項目１３３）
生体適合性マトリクスと植え付けられた細胞とを含む移植可能材料を準備する方法であって、
前記方法が、
ワーキング・セル・バンクを準備するステップと、
水和生体適合性マトリクス材料を供給するステップと、
前記ワーキング・セル・バンクからの細胞を前記水和生体適合性マトリクス材料に播種するステップと、
前記細胞を播種した生体適合性マトリクス材料を、インキュベータ内に配置して細胞接着を促進するステップと、
前記細胞がほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後になるまで、前記細胞を播種した生体適合性マトリクス材料をインキュベータ内に配置するステップと、
前記細胞を播種した生体適合性マトリクス材料の細胞数、細胞生存率および／または細胞機能性を評価するステップと、
を含む方法。
（項目１３４）
前記細胞を播種した生体適合性マトリクス材料を、凍結保存に適したバイアル内に配置するステップと、
前記材料の凍結保存中に細胞生存率または抑制性の表現型およびマトリクスの完全性を保つのに十分な量の、凍結保存剤、多糖類および血清を含む凍結保存培地組成物を、前記ほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後の細胞を播種した生体適合性マトリクス材料に導入するステップと、
をさらに含む、項目１３３に記載の方法。
（項目１３５）
前記細胞を播種した生体適合性マトリクス材料と、凍結保存培地組成物とを含む前記バイアルを、冷凍容器内に配置するステップと、
前記冷凍容器に、前記冷凍速度を調節する薬剤を導入するステップと、
前記薬剤を含む前記冷凍容器を、少なくとも約−４℃のフリーザ内に配置するステップと、
前記冷凍容器を、前記少なくとも約−４℃のフリーザから取り出すステップと、
前記冷凍容器を、少なくとも−８０℃のフリーザ内に配置するステップと、
をさらに含む、項目１３４に記載の方法。
（項目１３６）
前記冷凍容器を、前記少なくとも約−８０℃のフリーザから取り出すステップと、
前記バイアルを、少なくとも約−１６０℃のフリーザ内に配置するステップと、
をさらに含む、項目１３５に記載の方法。
（項目１３７）
前記バイアルを、前記フリーザから取り出すステップと、
前記バイアルを周囲温度の空気中に約１５分間配置したあと、前記バイアルを周囲温度の水浴内に約１５分間配置するステップと、
前記移植可能材料を、前記バイアルから取り出すステップと、
前記移植可能材料を、すすぎ培地組成物中で約５分間すすぐステップと、
前記移植可能材料を、細胞培養培地に約４８時間配置するステップと、
をさらに含む、項目１３６に記載の方法。
（項目１３８）
前記バイアルを、前記フリーザから取り出すステップと、
前記バイアルを周囲温度の空気中に約１５分間配置したあと、前記バイアルを周囲温度の水浴内に約１５分間配置するステップと、
前記移植可能材料を、前記バイアルから取り出すステップと、
前記移植可能材料を、すすぎ溶液組成物中で約３０分間すすぐステップと、
をさらに含む、項目１３６に記載の方法。
（項目１３９）
前記細胞を播種した生体適合性マトリクス材料を、貯蔵に適したバイアル内に配置するステップと、
前記材料を輸送培地組成物中に貯蔵中に、細胞生存率または抑制性の表現型を維持するのに十分な量のＶＥＧＦを含むある容積の輸送培地組成物を、前記ほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後の細胞を播種した生体適合性マトリクス材料に導入するステップと、
をさらに含む、項目１３３に記載の方法。
（項目１４０）
項目１３４に記載の方法による凍結保存、または項目１３９に記載の方法による貯蔵のために、前記細胞を播種した生体適合性マトリクス材料を準備するステップと、
輸送のために前記バイアルを準備するステップと、
患者への投与のために、前記バイアルを医療研究機関へ輸送するステップと、
をさらに含む、項目１３３に記載の方法。
（項目１４１）
前記細胞を播種した生体適合性マトリクス材料を含む前記バイアルを、内箱内に配置するステップと、
前記内箱を、断熱された外箱内に配置するステップと、
製品説明書を供給するステップと、
をさらに含む、項目１４０に記載の方法。
（項目１４２）
前記細胞を播種した生体適合性マトリクス材料が、治験材料であり、前記患者が治験の参加者である、項目１４０に記載の方法。
（項目１４３）
前記移植可能材料が、商業規模で準備される、項目１３３に記載の方法。
（項目１４４）
項目１３３〜１４１のいずれか一つ以上に記載の方法を実施するための、ロボットシステム。
（項目１４５）
細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料を製造する方法であり、前記方法が、
適切な試薬および条件を用いて、前記生体適合性マトリクスを前記細胞と接触させるステップであり、前記細胞が、前記マトリクスで集団を形成して、ほぼコンフルエントな集団、コンフルエントな集団、またはコンフルエント後の集団まで増殖するのに十分な量であり、さらに前記マトリクスが、細胞型にとらわれず、適合性も試験されず、マッチングもされていない細胞によって集団を形成されるステップ
を含む方法。
（項目１４６）
項目１４５に記載の方法により製造された移植可能材料を供給するステップ
を含む、処置方法。
（項目１４７）
項目１４５に記載の方法により製造された、細胞と生体適合性マトリクスとを含む移植可能材料。
図１は、本発明の例示的実施形態による、管状解剖学的構造体の外面に投与するための可撓性の平面形態の移植可能材料の可概略斜視図である。 図２Ａは、本発明の例示的実施形態による、管状解剖学的構造体の外面に投与するための、輪郭成形した可撓性の平面形態の移植可能材料の概略斜視図である。 図２Ｂ、２Ｃ、２Ｄ、２Ｅ、２Ｆおよび２Ｇは、本発明の様々な例示的実施形態にしたがってスロットを含む、輪郭成形した可撓性の平面形態の移植可能材料の概略斜視図である。 図２Ｂ、２Ｃ、２Ｄ、２Ｅ、２Ｆおよび２Ｇは、本発明の様々な例示的実施形態にしたがってスロットを含む、輪郭成形した可撓性の平面形態の移植可能材料の概略斜視図である。 図２Ｂ、２Ｃ、２Ｄ、２Ｅ、２Ｆおよび２Ｇは、本発明の様々な例示的実施形態にしたがってスロットを含む、輪郭成形した可撓性の平面形態の移植可能材料の概略斜視図である。 図２Ｂ、２Ｃ、２Ｄ、２Ｅ、２Ｆおよび２Ｇは、本発明の様々な例示的実施形態にしたがってスロットを含む、輪郭成形した可撓性の平面形態の移植可能材料の概略斜視図である。 図２Ｂ、２Ｃ、２Ｄ、２Ｅ、２Ｆおよび２Ｇは、本発明の様々な例示的実施形態にしたがってスロットを含む、輪郭成形した可撓性の平面形態の移植可能材料の概略斜視図である。 図２Ｂ、２Ｃ、２Ｄ、２Ｅ、２Ｆおよび２Ｇは、本発明の様々な例示的実施形態にしたがってスロットを含む、輪郭成形した可撓性の平面形態の移植可能材料の概略斜視図である。 図３Ａおよび３Ｂは、本発明の例示的実施形態による、代表的な細胞増殖曲線である。 図３Ａおよび３Ｂは、本発明の例示的実施形態による、代表的な細胞増殖曲線である。 図４Ａ、４Ｂおよび４Ｃは、本発明の例示的実施形態により、複数の可撓性の平面形態の移植可能材料を、血管吻合部の外面に投与するための一連のステップを示す、上面斜視図である。 図４Ａ、４Ｂおよび４Ｃは、本発明の例示的実施形態により、複数の可撓性の平面形態の移植可能材料を、血管吻合部の外面に投与するための一連のステップを示す、上面斜視図である。 図４Ａ、４Ｂおよび４Ｃは、本発明の例示的実施形態により、複数の可撓性の平面形態の移植可能材料を、血管吻合部の外面に投与するための一連のステップを示す、上面斜視図である。 図５は、本発明の例示的実施形態により、血管吻合部の外面に投与された、輪郭成形した形態の移植可能材料の上面斜視図である。 図６は、本発明の例示的実施形態により、管状解剖学的構造体に投与された、可撓性の平面形態の移植可能材料の上面斜視図である。 図７は、本発明の例示的実施形態により、レシピエントに投与するために移植可能材料を準備、貯蔵、および輸送する方法の流れ図である。
図において、異なる図においても同様の参照符号は、通常同じ部分を示す。また、図面は必ずしも尺度どおりまたは比率どおりではない。むしろ、本発明の原則を示すことに全般的に重点が置かれている。
（発明の詳細な説明）
本明細書に説明されるように、本発明は脈管アクセス構造体の処置に細胞ベースの療法を利用しうるという発見に基づく。下記の教示は、本発明の材料および方法を製作し使用するための十分な指針を提供し、さらに、本発明の材料および方法の性能を試験、測定およびモニタリングするための適切な判定基準および対象を特定するための十分な指針を提供する。
したがって、脈管アクセスの合併症および／または不全を臨床的に管理するための細胞ベースの療法が開発された。本発明の例示的実施形態には、本明細書に記載の処置規範の用途に適した生体適合性マトリクスおよび細胞が含まれる。特に、一つの好ましい実施形態においては、移植可能材料には、生体適合性マトリクスおよび内皮細胞または内皮細胞に類似する細胞が含まれる。一実施形態では、移植可能材料は可撓性の平面形態であり、内皮細胞または内皮細胞に類似する細胞、好ましくはヒト大動脈内皮細胞と、生体適合性マトリクスＧｅｌｆｏａｍ（登録商標）ゼラチンスポンジ（ファイザー製薬、ニューヨーク州ニューヨーク、以下「Ｇｅｌｆｏａｍマトリクス」）とが含まれる。別の好ましい実施形態によれば、移植可能材料は流動可能な形態であり、内皮細胞または内皮細胞に類似する細胞、好ましくはヒト大動脈内皮細胞と、生体適合性マトリクスＧｅｌｆｏａｍ（登録商標）ゼラチン粒子または粉末（ファイザー製薬、ニューヨーク州ニューヨーク、以下「Ｇｅｌｆｏａｍ粒子」）とが含まれる。
本発明の移植可能材料には、生体適合性マトリクス上、中および／または内部に植え付けられた細胞が含まれる。植え付けられるとは、本明細書に開示の準備的手順の厳しさに細胞が耐えうるように、細胞と細胞の間および／または細胞とマトリクスの間の相互作用を介してしっかりと接着されていることを意味する。本明細書の他所で説明されるように、移植可能材料の有効な実施形態には、好ましい表現型を有するほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後の細胞集団が含まれる。当然のことながら、準備的手順の間に移植可能材料の実施形態が細胞を落とす可能性があり、および／または一定の細胞は他の細胞ほどしっかりと接着されていない。移植可能材料に、機能的または表現型的判定基準を満たす細胞が含まれていさえすればよい。
本発明の移植可能材料は、組織工学を主体に開発された、上記の臨床的ニーズに対処する新しいアプローチである。本発明の移植可能材料は、生体適合性マトリクス上、中および／または内部に植え付けられた生存細胞により、脈管アクセス構造体および関連の脈管構造に対して、生理学的フィードバック制御下において生理学的比率で複数の細胞ベースの生成物を供給できることを特色とする。本明細書の他所で説明されるように、移植可能材料の用途に適した細胞は、内皮細胞または内皮細胞に類似する細胞である。これらの細胞による複数の化合物の局所的送達、および生理学的変化にしたがった投与によって、脈管アクセス構造体の機能を維持したり脈管アクセスの合併症および／または不全の低減を左右したりするプロセスが、より有効に制御される。重要なことは、たとえば本発明の移植可能材料の内皮細胞が、血管の非管腔表面、たとえば外膜または血管の外面と接触して配置されるために、血管管腔内の血流による侵食から保護されることである。本発明の移植可能材料は、包んだり、堆積させたりすることにより外面の目標部位、すなわち吻合部および／またはその周辺に接触させると、ホメオスタシスを回復する働きをする。すなわち、本発明の移植可能材料は、有効な生理機能を模倣する環境を提供でき、脈管アクセス構造体の形成、成熟、一体化および／または安定化に資する。
本発明の目的においては、本明細書の他所で明らかにされるように、接触とは、管腔外部または非管腔表面と、直接的または間接的に相互作用することを意味する。一定の好ましい実施形態の場合には、有効であるために実際の物理的接触は必要とされない。他の実施形態では、実際の物理的接触が好ましい。本発明の実施に必要なのは、損傷または疾患部位、隣接または周辺部の管腔外部または非管腔部に、損傷または疾患部位の処置に効果的な量の移植可能材料を堆積させることだけである。一定の疾患または損傷の場合には、疾患または損傷部位が管腔内部表面に臨床的に現れることもある。他の疾患または損傷の場合には、疾患または損傷部位が、管腔外または非管腔表面に臨床的に現れうる。疾患または損傷によっては、疾患または損傷部位が、管腔内部表面と、管腔外または非管腔表面との両方に臨床的に現れることもある。本発明は、以上の臨床症状のいずれを処置する上でも効果的である。
たとえば、内皮細胞は様々な物質を放出し、これらの物質が合わさって脈管アクセス構造体作製後の急性合併症に関連する有害な生理学的現象を抑制または緩和できる。本明細書に例証されるとおり、正常な生理条件および投与を再現する組成物および使用方法が、脈管アクセス構造体の長期的な開存性を促進するだけでなく、脈管アクセス構造体の形成、成熟、一体化および／または安定化を増強する上で有用である。典型的には、処置には、脈管アクセス構造体部位、隣接または周辺部の、処置に関連する動脈および静脈の管腔外部の血管周囲スペース等に、本発明の移植可能材料を配置することが含まれる。包んだり、巻き付けたりすることにより損傷または疾患のある血管に接触させると、移植可能材料の細胞から、血管内の基礎となる平滑筋細胞等の脈管構造に対して、増殖を調節する化合物を供給できる。移植可能材料の細胞は、管腔外部の部位におかれると、血管組織を透過して管腔に到達できる複数の調節化合物を連続的に供給する一方、血管内の血流による負の力学的作用から細胞が保護されると考えられる。本明細書に記載されるとおり、一つの好ましい管腔外部の部位は、血管の外面である。
本発明の好ましい実施形態による処置により、正常またはほぼ正常の治癒および正常な生理条件を促進することができる。これに対して、本発明の好ましい実施形態による処置によらない場合には、正常な生理学的治癒が損なわれる。たとえば脈管アクセス構造体の作製後、天然の内皮細胞および平滑筋細胞が過増殖または無制御の速度で異常に増殖し、脈管アクセス構造体不全をはじめとする不都合な臨床的結果をもたらしうる。したがって、本明細書に予定されるとおり、本発明の移植可能材料による処置により、脈管アクセス構造体の開存性を維持するための、吻合部の天然組織の治癒が改善される。
本発明の目的においては、脈管アクセス構造体は様々な形態で形成されうる。脈管アクセス構造体には、自然に生じた動静脈瘻または外科的に作製された動静脈瘻、動静脈グラフト、末梢バイパスグラフト、留置静脈カテーテル、留置血管ポート、または患者の脈管アクセスを改善するために作製された他の血管吻合構造体が含まれうる。さらに、脈管アクセス構造体の様々な実施形態は、側側、端側、端端、および側端吻合を含む様々な形態で形成される。また、脈管アクセス構造体は、様々な解剖学的位置に配置されうる。
本発明の移植可能材料は、様々な形態で、処置する脈管アクセス構造体に配置されればよい。一定の実施形態によれば、本発明の移植可能材料は、吻合接合部に配置されてもよいし、吻合部の遠位の近位静脈セグメントに配置されてもよい。他の実施形態では、本発明の移植可能材料は、動脈セグメント上、近位静脈セグメント上、遠位静脈セグメント上に、および／または脈管アクセス構造体にブリッジして配置されればよい。別の実施形態では、移植可能材料は、吻合接合部のグラフト材料またはグラフト材料の一部の上に配置されうる。血管は、全体または一部接触しうる。たとえば、本発明の移植可能材料が、円周方向にまたは円弧形態で血管に適用されればよい。血管および／または脈管アクセス構造体が、脈管アクセス構造体の形成、成熟、一体化および／または安定化を改善するのに十分な量の移植可能材料と接触していれば足りる。
（動静脈瘻。）一定の実施形態によれば、脈管アクセスのための作製される動静脈瘻（「ＡＶ瘻」）を、本発明の移植可能材料で処置しうる。ＡＶ瘻は、頚部、手首、上腕および前腕への配置等を含めて、患者体内の様々な場所に配置されうる。臨床的なＡＶ瘻の形態には、橈骨動脈―橈側皮静脈間（撓骨動脈と橈側皮静脈の間）、Ｂｒｅｓｃｉａ−Ｃｉｍｉｎｏ（手首での撓骨動脈および橈側皮静脈の側側吻合）、上腕動脈―橈側皮静脈間（上腕動脈と橈側皮静脈の間）、上腕動脈―前肘静脈間（上腕動脈と前肘静脈の間）、上腕動脈―尺側皮静脈間（尺側皮静脈の転位による）、尺骨動脈―橈側皮静脈間（尺骨動脈と橈側皮静脈の間）、および伏在静脈ループ（伏在静脈と大腿動脈の右側）の瘻が含まれる。
ＡＶ瘻手術の合併症は、通常は三段階で生じる。これらの段階は、血栓症を特徴とすることが多い急性期と、瘻の成熟不全を臨床的兆候とする中間期と、最後に、進行性の静脈狭窄等に起因しうる、すでに確立されて機能している瘻の慢性的な不全である。
ＡＶ瘻の成熟の特徴には、透析のために瘻に反復的にカニューレを挿入できる能力等が含まれる。ＡＶ瘻の成熟の別の特徴は、血液透析に有用な十分な透析血流を得られる能力である。適切な血流は、少なくとも、再循環が起こらないように透析装置を使用した透析を支えるのに適切な血流速度である。本発明の目的において十分な透析血流は、瘻の作製後２４週以内、好ましくは２０週以内、最も好ましくは１６週以内の時点での、少なくとも約３５０ｍＬ／分の血流である。ＡＶ瘻の成熟不全のメカニズムには、現在理解されているところでは、瘻血管の早期の血栓症、吻合部またはその付近の狭窄、副側枝または静脈側枝を含む副静脈の存在、静脈内径が不十分であることを含めた静脈の大きさの不適切、進行性の狭窄による後期の瘻不全が含まれる。副静脈は、血流を変更し、瘻に付随する静脈がカニューレを挿入できる適切な大きさになるのを妨げることにより、瘻の発達を妨害しうる。副静脈は、たとえば瘻の狭窄の存在に応じて生じると現在では考えられている。ＡＶ瘻の成熟のメカニズムは多様であり、複数の臨床的徴候を評価することが通常必要である。狭窄がないというだけでは、成熟したＡＶ瘻の徴候として一般に不十分である。
さらに、透析の目的に適したＡＶ瘻には、瘻の成熟、すなわち瘻に反復的にカニューレを挿入できるための瘻の静脈セグメントに生じる変化と、透析を支える十分な血流との両方が必要である。血流がほとんどなくてもＡＶ瘻は開存性を保ちるが、開存したＡＶ瘻が必ずしも透析に適するとは限らない。本発明の目的においては、透析のために臨床的に適切な血流は、約１５０〜５００ｍＬ／分、好ましくは約３００〜５００ｍＬ／分、および最も好ましくは約３５０〜４００ｍＬ／分であり、適切な血圧は約５０〜１８０ｍｍＨｇ、好ましくは約５０〜１２０ｍｍＨｇである。
本発明の目的においては、本発明の移植可能材料による処置では、瘻作製時または後の段階で瘻の隣接または周辺部に配置されると、血栓症、狭窄、凝固および／または副静脈の成長等、ＡＶ瘻の成熟過程で一般的な合併症が低減される、有益なホメオスタシス環境が提供されると考えられる。この種の有益な環境によって、ＡＶ瘻が成熟に向かい、および／または成熟した状態を維持しうる。たとえばＡＶ瘻の静脈が厚くなり、高い血流速度および血圧の血液を通せるようになると、成熟が機能的に確立される。本明細書に提供される移植可能材料によるＡＶ瘻の処置により、瘻の成熟が促進され、および／または瘻の成熟不全が阻止される。当然のことながら本発明の目的においては、ＡＶ瘻の成熟の促進には、成熟形態の瘻の維持だけでなく、その形成、機能的な状態に達するために必要な時間を含む、瘻の機能の一切の改善が含まれる。
術後すぐの血栓症は、開存ＡＶ瘻の形成を妨げ、瘻の早期不全をもたらしうる。本明細書に説明されるとおり、手術時に本発明の移植可能材料で処置することにより、術後血栓症からくる瘻の即時不全を防止できる。たとえば、移植可能材料は、血栓症を減じる抗血栓媒介物質を放出し、瘻の形成および成熟の段階を通して開存瘻を維持できる。
手術時に移植可能材料をＡＶ瘻部または周辺部に配置することで、瘻の吻合部または周辺部の狭窄を減らし、瘻が透析を支える十分な血流を供給するのに適切な大きさになるのを可能とし、静脈および動脈の拡張を促進し、寄生的な副静脈の形成を抑え、天然の副静脈を維持して瘻の成熟を増強し、静脈の大きさを改善することにより、ＡＶ瘻の成熟を増強することもできる。
さらに、ＡＶ瘻は、ＡＶグラフトよりも成熟に時間がかかる。瘻の成熟中に、経皮または留置カテーテルを通常使用して血液透析が行われて感染のリスクが高まり、中心静脈の開存性が損なわれる。瘻の作製時にＡＶ瘻の部位に移植可能材料を配置することにより、瘻の成熟に要する時間を短縮でき、これにより、関連する感染のリスク、および中心静脈の開存性が損なわれるのを抑えることができる。移植可能材料を留置カテーテルの部位に配置することで、留置カテーテルに関連した血栓症、内膜過形成および再狭窄のリスクを減らすことができ、これにより感染および中心静脈の開存性が損なわれる付随的リスクを減らすことができる。
最後に、本明細書に記載の移植可能材料の使用により、ＡＶ瘻の成熟後の不全を低減できる。成熟したＡＶ瘻には、遅発性の進行性狭窄による、血流の減少および静脈狭窄の増加が生じることがある。血流が透析に必要なレベル以下に減少する程の瘻の狭窄または閉塞には、適切な血流レベルを回復するための瘻のインターベンションによる血管形成術またはステント術が必要となりうる。このようなインターベンション療法によって、静脈狭窄および閉塞のリスクが高まり、成熟したＡＶ瘻の形成がさらに阻害される。その上、ステント術によって、ステントの遠位および近位の血管の部分に、エッジ効果とよく呼ばれている、処置した血管の閉塞性の血栓症または再狭窄が起こることもある。
本移植可能材料の適用により、正のリモデリング（血管が拡張されると同時に、静脈新生内膜過形成が抑制される組み合わせ）がもたらされ、これによって、遅発性の進行性狭窄が阻止され、成熟した瘻の血流が増加し、閉塞した瘻の回復のための血管形成術またはステント術の必要性が低減され、ステントに伴うエッジ効果が防止され、成熟した瘻の寿命および有用性が延長される。
本発明の移植可能材料は、多くの異なる段階のいずれかにある瘻に提供されればよい。たとえば、手術時の処置により、ＡＶ瘻の成熟不全を阻止および／または瘻の成熟を増強できる。移植可能材料は、成熟したＡＶ瘻の形成後に、臨床的に安定した状態を維持するために提供されるだけでなく、全般的に治癒を早めるために初期の手術後に提供されてもよい。さらに、移植可能材料により、後に不全になる瘻をレスキューすることもでき、および／または成熟した瘻の寿命を延長することもできる。これらの状況は、ＡＶ瘻成熟の増強の非限定的な例である。したがって、当然のことながら移植可能材料は、ＡＶ瘻を作製するための初期手術時だけでなく、その後の時点においても（たとえば成熟したＡＶ瘻を維持するため、または成熟したＡＶ瘻が不全になるのを防ぐために）使用されうる。後の時点での投与は、外科的または非侵襲的に行うことができる。
（動静脈グラフト。）さらなる実施形態によれば、脈管アクセスのために作製された動静脈グラフト（「ＡＶグラフト」）を、本発明の移植可能材料で処置できる。ＡＶグラフトは、前腕ストレートグラフト、前腕ループグラフトまたは上腕グラフトの形態でありうる。動脈流入部位には総頚動脈、手首の撓骨動脈、肘前窩の上腕動脈、前腕部の上腕動脈、腋窩すぐ下の上腕動脈、腋窩動脈および大腿動脈等が含まれる。静脈流出部位には正中前肘静脈、近位橈側皮静脈、遠位橈側皮静脈、肘レベルの尺側皮静脈、上腕レベルの尺側皮静脈、腋窩静脈、頚静脈および大腿静脈等が含まれる。ＡＶグラフトの形成に適したその他の動脈および静脈の位置としては、胸壁（腋窩動脈と鎖骨下静脈）、下肢（大腿動脈／静脈、伏在静脈、または（前）脛骨動脈）、大動脈と大静脈、腋窩動脈と大腿静脈、または大腿動脈と腋窩静脈などがある。
本発明の目的においては、透析に適した補綴ブリッジを伴う機能的ＡＶグラフトは、補綴ブリッジ内に高血流速度、高血圧の血液を通すことができる。かかるＡＶグラフトでは、グラフトの静脈流出領域の血流速度は、グラフト流出領域の上流の血流速度とほぼ同じである。透析に適した血流速度は約１５０〜５００ｍＬ／分、好ましくは約３００〜５００ｍＬ／分、最も好ましくは約３５０〜４００ｍＬ／分であり、適切な血圧は約５０〜１８０ｍｍＨｇ、好ましくは約５０〜１２０ｍｍＨｇである。
ＡＶグラフト不全は通常、静脈グラフト吻合部または近位静脈セグメントにおける、グラフトに関連した内膜過形成とその後のグラフトに関連した血栓症によって生じる。ＡＶグラフト不全は、天然の血管と補綴ブリッジ材料の間の組織の一体化が不十分であるために、最終的には血管からブリッジ材料が離開することによっても生じやすい。
本発明の目的においては、本発明の移植可能材料による処置により、グラフト作製時でも後の段階でも、血栓症、狭窄、凝固および／または離開等の、ＡＶグラフトの一体化および成熟に伴う合併症が低減される、有益なホメオスタシス環境が提供される。この種の有益な環境によって、ＡＶグラフトに付随する血管が補綴ブリッジ材料と完全に一体化しうる。たとえば、ＡＶグラフトが一体化し、高血流速度および高血圧の血液を通せるようになると、成熟が機能的に確立される。本明細書に示されるとおり、移植可能材料によるＡＶグラフトの処置により、グラフトの一体化と成熟が促進される。当然のことながら本発明の目的においては、ＡＶグラフトの一体化および／または成熟の促進には、機能的形態のグラフトの維持だけでなく、その形成、機能的状態に達するために必要な時間を含めた、グラフトの機能の一切の改善が含まれる。
手術直後のグラフトに関連した血栓症は、組織の一体化と開存ＡＶグラフトの最終的な形成を妨げ、グラフトの早期不全をもたらしうる。本明細書に説明されるとおり、手術時の処置によって、術後血栓症によるグラフトの即時不全を防止できる。たとえば移植可能材料は、血栓症を減じる抗血栓媒介物質を放出し、グラフトの一体化および成熟の段階を通して開存グラフトを維持する。
手術時にＡＶグラフト吻合部、隣接または周辺部；グラフトの静脈流出領域、隣接または周辺部；および／またはグラフト部、隣接または周辺部に移植可能材料を配置することで、グラフト吻合部またはその付近の狭窄を低減することにより、一体化と成熟を増強することもできる。この治療効果により、グラフトが補綴ブリッジ材料と適切に一体化する十分な時間が与えられ、血管の血栓症および閉塞が低減され、透析に十分な血流を支えるのに適切な血管の内径が維持される。
移植可能材料の投与により、ＡＶグラフトの成熟後の不全も最小限に抑えられる。成熟したＡＶグラフトには、遅発性の進行性狭窄による、血流の減少および静脈狭窄の増加が生じうる。移植可能材料の適用により、正の静脈リモデリング（血管が拡張されると同時に、静脈新生内膜過形成が抑制される組み合わせ）がもたらされ、これによって、遅発性の進行性狭窄が阻止され、成熟したグラフトの血流が増加し、成熟したグラフトの寿命および有用性が延長される。
本明細書に示されるとおり、本発明の移植可能材料によるＡＶグラフト吻合部の処置により、透析に適した機能的ＡＶグラフトの形成が促進される。さらに、当然のことながら本発明の目的においては、機能的ＡＶグラフトの形成には、グラフトの臨床的機能の一切の改善、またはグラフト吻合の形成または補綴ブリッジの一体化のプロセスおよび／または離開の発生率低減を含む成熟形態のグラフト吻合を維持するプロセスに対する一切の改善が含まれる。
臨床医には当然のことながら、ＡＶグラフトが適切であるためには、グラフトが適切な血流を支えかつ維持することが必要である。血液透析に有用なＡＶグラフトの場合には、適切な血流は少なくとも、再循環が生じないように透析装置を使用した透析を支えるのに適切な血流速度である。臨床的に不全のＡＶグラフトとは、透析を支えるのに適切な血流を支えられないものをいう。本発明の好ましい実施形態は、透析に適した血流を支えられる機能的グラフトの形成を促進することにより、ＡＶグラフト不全の開始を遅延させまたは抑制することが期待される。
（末梢バイパスグラフト。）さらなる実施形態によれば、機能不全の末梢血管をバイパスするために作製される末梢バイパスグラフトを、本発明の移植可能材料で処置しうる。末梢バイパスグラフトは、膝の上下いずれかの脚の領域などの四肢を含む、様々な解剖学的位置に配置されうる。末梢バイパスグラフトを用いて、末梢血管または静脈のつまりを含め、つまった末梢血管をバイパスすることができる。末梢バイパスグラフトを使用して、四肢の正常な血流、たとえば正常またはほぼ正常な末梢循環を維持するために十分な血流速度を回復および／または維持できる。一定の実施形態によれば、末梢バイパスグラフトは、つまった領域の上からつまった領域の下へと形成される。一定の実施形態では、本発明を用いて、天然の材料を含むブリッジを有する末梢バイパスの機能、一体化、成熟および／または安定化を向上させることができる。別の一定の実施形態では、グラフトは補綴ブリッジを有する。
末梢バイパスグラフトの場合には、グラフトの一端または両端の血管の外面上および／またはグラフト材料の外面上に、移植可能材料を配置しうる。一定の実施形態では、移植可能材料は、末梢バイパスグラフトの一端または両端の接合部と接触しうる。他の一定の実施形態では、末梢バイパスグラフトの上流の血管の外面上にインプラントを配置しうる。
手術時に、末梢バイパスグラフトの流入または流出領域またはその付近に移植可能材料の好ましい実施形態を配置することにより、機能的グラフトの形成を増強し、一体化を促進し、および／または離開を阻止することもできる。本発明の目的においては、機能的末梢バイパスグラフトは、正常な血圧の正常な血流を通すことができる。膝下のバイパスグラフトの正常な血圧は、約５０〜１５０ｍＬ／分、好ましくは約８０〜１００ｍＬ／分であり、膝上では約５０〜１５０ｍＬ／分、好ましくは約８０〜１００ｍＬ／分であり、足部グラフトでは約２５〜３０ｍＬ／分である。適切な血圧は約５０〜１８０ｍｍＨｇ、好ましくは約５０〜１２０ｍｍＨｇである。
末梢バイパスグラフトが本明細書に記載のとおりに処置される場合には、流出速度は流入速度とほぼ同じである。本発明は、下肢への適切な血流を回復し、下肢への血流が悪いことに伴う症状を抑える。本発明の好ましい実施形態は、抹消循環を維持するのに十分な血流がある機能的末梢バイパスグラフトの形成を促進することにより、末梢バイパスグラフト不全の開始を遅延させまたは抑制する。
本発明の目的においては、ＡＶグラフトの場合には血液透析に必要な血流速度および血圧を、末梢バイパスグラフトの場合には末梢循環に必要な血流速度および血圧を支えるものであれば、いずれの補綴ブリッジ材料も脈管アクセス構造体の作製に適切である。補綴ブリッジは通常、好ましくは可撓性であり、細胞の集積に適合し、必要な血流速度を支えるのに適した寸法である。一つの好ましい実施形態は、ポリテトラフルオロエチレン・ブリッジのＰＴＦＥまたはｅＰＴＦＥを利用する。別の好ましい実施形態は、ダクロン（登録商標）（Ｅ・Ｉ・デュポン・ド・ヌムール・アンド・カンパニー）を利用する。補綴ブリッジは、改変されたＰＴＦＥ材料、ポリウレタン、カーボン被覆されたＰＴＦＥ、および複合グラフトからつくられてもよい。ＰＴＦＥグラフトは複数の濃度のＰＴＦＥを含み、テーパ型、ストレッチ型、リブ型、平滑型等、様々な物理的形状で作ることができる。補綴グラフトには、動脈と瘻の間に挿入される静脈パッチ、カラーおよびブーツを含め、遠位の改変が含まれてもよい。さらなる実施形態には、伏在静脈グラフト、臍静脈グラフト、大腿静脈アログラフト、およびウシ頸動脈およびウシ腸間膜静脈グラフト等の生物学的ヘテログラフトをはじめとする天然の材料が含まれる。以上のいずれかを含む複合グラフトも、本明細書に予定される。熟練した実務家は、適切な等価物を認識するだろう。
さらに重要なことには、ＡＶグラフトまたは末梢バイパスグラフトの場合には、正常またはほぼ正常な治癒によって、内皮細胞による補綴ブリッジの管腔表面での集団の形成が助長され、これによりグラフトと付随の脈管構造の一体化が促進される。移植可能材料の細胞により供給される治療因子が、血管壁に拡散して一体化を助長する。人工のグラフト材料の場合には、人工グラフトの管腔表面に増殖する細胞への治療因子の到達能力は、人工材料の多孔率にも影響される。
（ＰＴＦＥグラフト。）一定の好ましい実施形態においては、長さ１５〜２５ｃｍの内径０．６ｍｍのＰＴＦＥ管が、グラフトの形成に使用される（Ａｔｒｉｕｍ Ａｄｖａｎｔａ ＶＳ Ｓｔａｎｄａｒｄ Ｗａｌｌ ＰＴＦＥグラフト、０．６ｍｍ、アトリウム・メディカル・コーポレーション、ニューハンプシャー州ハドソン）。特に好ましいグラフト材料であるＰＴＦＥは、外科的手技に用いても血栓形成性がないことが分かっている可撓性ポリマーである。ＰＴＦＥに似た性質を有するダクロン（登録商標）等の代替的なポリマー材料を、グラフト材料として使用してもよいと考えられる。
グラフトは、特定の患者への正確な配置を可能にするために、所望の長さに切断されればよい。グラフトは、前腕ループグラフトまたはストレートグラフトでよい。グラフトの端部は、縫合のためにグラフト端部の表面積を増加させるか、あるいは特定の患者へのグラフトの順応性が高まるように、フランジを伴い、角度をつける等の形態で切断されればよい。グラフトの端部は、細胞接着を助けるように、凸凹をつける等の改変がなされてもよい。さらに、グラフト材料はゼラチン、アルブミンまたは他の治療薬により被覆されればよい。
最後に、不全になりかけているか不全のＡＶグラフトまたは末梢バイパスグラフトに対して移植可能材料を供給することは、元のグラフトの復旧につながり、これによりグラフトの機能が回復されうる。関連の状況においては、インターベンション療法として、不全の天然ＡＶ瘻を、本発明の移植可能材料と組み合わせたＡＶグラフトに置き換えることができる。
（脈管アクセス・カテーテル。）一定の実施形態によれば、脈管アクセスのために作製された留置静脈カテーテルを、本発明の移植可能材料で処置できる。カテーテルは、たとえば頚部、胸部および鼠径部への配置を含めて、患者体内の様々な位置に配置されうる。血液透析のために、術後に瘻が成熟しまたはグラフトが一体化する間の一時的脈管アクセスとして、二重管腔カテーテルを移植できる。
脈管アクセス・カテーテルの早期不全の原因は通常、静脈カテーテル吻合部または近位静脈セクションにおけるカテーテルに関連した内膜過形成と、これに続くカテーテルに関連した血栓症である。
本発明の目的においては、本発明の移植可能材料による処置では、カテーテル配置時でも後の段階でも、カテーテル部の血栓症、狭窄および／または凝固等の、脈管アクセス・カテーテルの機能に関連した合併症が低減される、有益なホメオスタシス環境が提供される。当然のことながら本発明の目的においては、脈管アクセス・カテーテルの機能の増強には、カテーテルの機能の一切の改善、または機能的状態のカテーテルの維持に対する一切の改善が含まれる。
（脈管アクセス・ポート。）一定の実施形態によれば、脈管アクセスのために作製された留置ポートを、本発明の移植可能材料で処置できる。ポートは、たとえば腕、胸部および鼠径部の静脈または動脈部への配置を含めて、患者体内の様々な位置に配置されうる。
脈管アクセス・ポートの早期不全の原因は通常、静脈ポート吻合部または近位静脈セクションにおけるポートに関連した内膜過形成と、これに続くポートに関連した血栓症である。
本発明の目的においては、本発明の移植可能材料による処置では、ポート配置時でも後の段階でも、ポート部の血栓症、狭窄および／または凝固等の、脈管アクセス・ポートの機能に関連した合併症が低減される、有益なホメオスタシス環境が提供される。当然のことながら本発明の目的においては、脈管アクセス・ポートの機能の増強には、ポートの機能の一切の改善、または機能的状態のポートの維持に対する一切の改善が含まれる。
（一般的な考慮事項。）本発明の一定の実施形態においては、移植可能材料の投与の前、これと同時および／または後に、追加的な治療剤が投与される。たとえば、血塊形成、血小板凝集や、つまりを阻止しまたは抑える他の類似の薬剤を投与できる。代表的な薬剤には、ヘパラン硫酸およびＴＧＦ―βなどが含まれる。インプラントが必要とされる臨床的徴候によっては、他のサイトカイン類または成長因子も移植可能材料に取り込まれうる。これには、再内皮化を促進するＶＥＧＦ、およびグラフトの一体化を促進するｂ−ＦＧＦが含まれる。他の種類の治療剤には、抗増殖剤および抗腫瘍剤等が含まれる。ラパマイシン、パクリタキセルおよびＥ２Ｆデコイ薬剤などがその例である。以上のいずれかを、局所的または全身的に投与できる。局所的に投与するのであれば、一定の薬剤が移植可能材料の中に含まれるか、または細胞によって与えられうる。
さらに、正の組織リモデリングを媒介する薬剤も、本明細書に記載の移植可能材料の実施形態と組み合わせて投与されうる。たとえば、一定の薬剤は、手術部位を含む血管損傷部位における、正常または正常に近い管腔再生または管腔組織のリモデリングを促進できる。ここでも、かかる薬剤は、移植可能材料の中に含まれるか、または細胞によって与えられうる。
臨床医には当然のことながら、血液透析に適した脈管アクセスには、脈管アクセス構造体の成熟と、十分な血流が必要である。本明細書の他所で説明されるように、成熟は、透析の間にカニューレを反復的に挿入することを可能とする、静脈で生じる解剖学的変化に関する。カニューレの反復的挿入を可能とする変化の一部は、血管の大きさおよび／または血管壁の厚化および／または管腔直径に関するものである。また、これも本明細書に説明されるとおり、これらの変化の一部は、透析を支える十分な血流速度を可能にする。さらに、本明細書の他所で説明されるように、臨床的に不全の脈管アクセス構造体とは、透析のためにカニューレを反復的に挿入できないもの、および透析を支えるのに適した血流を支えられないものである。これらの臨床的不全は、上記の解剖学的パラメータにおける機能不全と直接関連付けることができる。
したがって本発明は、脈管アクセス構造体部、隣接または周辺部に、上記のエンドポイントの一つ以上を達成するのに効果的な量の移植可能材料を設置するステップを含む、カニューレ挿入回数の改善、脈管アクセス構造体の血流の改善、血管壁厚の促進、管腔直径の維持、および／または以上の組み合わせを含む脈管アクセスに関連する臨床的エンドポイントを達成する方法も提供する。
さらに本発明は、反復的カニューレ挿入、透析中の再循環を防止する十分な血流、血管壁の厚化、透析中の血流を許容する十分な管腔直径という臨床的パラメータのいずれかをモニタするステップを含む、良好に成熟している脈管アクセス構造体を識別する方法も提供する。良好に成熟している脈管アクセス構造体は、上記のパラメータのうち少なくとも一つを有する。
本発明の移植可能材料は、ホメオスタシスを維持するために、インターベンション療法を要する任意の管状の解剖学的構造体に適用できる。管状の解剖学的構造体には、脳および脊髄の血管系統、生殖器系統、泌尿生殖系統、胃腸系統、肺系統、呼吸器系統および心室系統の構造体が含まれる。本明細書に予定されるところの管状の解剖学的構造体は、管腔内部表面および管腔外表面を有するものである。本発明の目的においては、管腔外表面は、管状構造体の外面でありうるがこれに限られない。一定の構造体において、管腔内部表面は内皮細胞層である。一定の他の構造体においては、管腔内部表面は非内皮細胞層である。
（細胞の供給源。）本明細書の記載どおり、本発明の移植可能材料には細胞が含まれる。細胞は、同種細胞、異種細胞または自家細胞でありうる。一定の実施形態では、生細胞の供給源は適切なドナーから得られる。一定の他の実施形態では、細胞の供給源は死体または細胞バンクから得られる。
一つの現在好ましい実施態様では、細胞は内皮細胞である。特に好ましい実施形態では、このような内皮細胞は血管組織、好ましくは動脈組織から得られるがこれに限られない。下記に例証されるとおり、使用に適した血管内皮細胞の一種類は、大動脈内皮細胞である。使用に適した別の種類の血管内皮細胞は、臍帯静脈内皮細胞である。そして、使用に適した別の種類の血管内皮細胞は、冠状動脈内皮細胞である。本発明による使用に適したさらに他のタイプの血管内皮細胞には、肺動脈内皮細胞および回腸動脈内皮細胞が含まれる。
現在好ましい別の実施態様では、適切な内皮細胞は、非血管組織から得られる。非血管組織は、本明細書で別に説明した任意の管状の解剖学的構造体から得られ、または任意の非血管組織または器官から得られる。
さらに別の実施態様では、内皮細胞は、内皮前駆細胞または幹細胞から得られる。さらに別の実施態様では、内皮細胞は、前駆細胞または幹細胞全般から得られる。別の好ましい実施態様では、細胞は、血管または非血管組織または器官から得られる同種、異種、または自家細胞でありうる。本発明には、以上のいずれかを遺伝的に変更、改変または加工したものも予定される。
さらなる実施態様では、本組成物を準備するために二種類以上の細胞が共培養される。たとえば、第一細胞が、生体適合性の移植可能材料に導入され、コンフルエントまで培養されうる。第一細胞の種類には、平滑筋細胞、繊維芽細胞、幹細胞、内皮前駆細胞、平滑筋細胞と繊維芽細胞の組み合わせ、他の任意の所望の細胞、または血管内皮細胞増殖を助ける環境をつくるのに適切な所望の細胞種の組み合わせ等が含まれうる。第一細胞がコンフルエントに達したら、第二細胞種が、コンフルエントの第一細胞種の上から、生体適合性マトリクスの中または内部に播種され、第一細胞種および第二細胞種の両方がコンフルエントになるまで培養される。第二細胞の種類には、たとえば内皮細胞または他の所望の細胞種、または細胞種の組み合わせが含まれうる。第一および第二細胞種は順に導入されてもよいし、単一の混合物として導入されてもよいと考えられる。細胞密度を改変して、内皮細胞に対する平滑筋細胞の比率を変えてもよいと考えられる。
平滑筋細胞または過増殖しやすい他の細胞種の過増殖を防止するために、手順が改変されうる。たとえば、第一細胞種がコンフルエントになった後、第二細胞種を導入する前に、第二細胞種に適した接着因子で培養物を被覆しうる。例示的な接着因子には、内皮細胞の接着を高めるために培養物をゼラチンで被覆することが含まれる。別の実施態様によれば、第二細胞種の培養中に培地にヘパリンを加えて、第一細胞種の増殖を減らし、第二細胞種に対する第一細胞種の所望の比率を最適化しうる。たとえば、最初に平滑筋細胞が成長した後にヘパリンを投与して、平滑筋細胞の増殖を制御し、平滑筋細胞に対する内皮細胞の比率を高くできる。
好ましい実施態様では、共培養は、まず生体適合性の移植可能材料に平滑筋細胞を播種して容器構造をつくることにより行われる。平滑筋細胞がコンフルエントに達したら、培養された平滑筋細胞の上から内皮細胞が移植可能材料に播種され、模擬血管が作製される。この実施態様は、本明細書に記載の方法に従い、たとえばＡＶグラフトまたは末梢バイパスグラフトに投与されて、補綴グラフト材料の一体化を促進できる。
本組成物の細胞に必要なのは、一つ以上の好ましい表現型または機能特性を有することだけである。本明細書中に既に記載したとおり、本発明は、容易に同定可能な表現型を有する細胞を、好ましいマトリクス（本明細書の他所で記載）と結びつけて、動静脈瘻または動静脈グラフト等の脈管アクセス構造体の処置に関連する血管内皮細胞の生理機能および／または管腔のホメオスタシスを促進、回復および／または調整できるという発見に基づく。
本発明の目的においては、本発明の細胞に典型的な、かかる好ましい容易に同定可能な表現型の一つは、下記のインビトロアッセイで測定される、血管平滑筋細胞の増殖を抑制または妨害する能力である。本明細書においてはこれを、抑制性の表現型と称する。
本発明の細胞の有する、別の容易に同定可能な表現型は、抗血栓性であるか血小板粘着および凝集を抑制できることである。抗血栓活性は、後述のインビトロヘパラン硫酸アッセイおよび／またはインビトロ血小板凝集アッセイを使用して測定できる。
本発明の代表的な有効な実施形態においては、細胞が前述の表現型を複数有する必要はない。一定の実施形態では、細胞は前述の表現型を複数有しうる。
前述の表現型は、血管内皮細胞等の機能的な内皮細胞に典型的であるが、このような表現型を有する非内皮細胞も、本発明の目的においては内皮細胞に類似すると考えられ、したがって本発明の用途に適している。内皮細胞に類似する細胞は、本明細書において内皮細胞の機能的アナログまたは内皮細胞の機能的模倣物とも称される。したがって、たとえば本明細書に開示される材料および方法の用途に適した細胞には、内皮細胞に類似する細胞を生じる幹細胞または前駆細胞、起源的には非内皮細胞であるが、本明細書に記載のパラメータを用いて内皮細胞のような機能をするといえる細胞；本明細書に記載のパラメータを用いて内皮細胞に類似する機能性を有するように加工または改変された、任意の起源の細胞も含まれる。
本発明の細胞は通常、ほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後の集団にあり、本明細書で別に説明したもの等の好ましい生体適合性マトリクスと結合されたときに、上記の表現型の一つ以上を有する。当業者には当然のことながら、ほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後の細胞集団は、様々な技術によって容易に同定可能であり、中でも最も一般的で広く容認されているのは、直接的な顕微鏡検査である。他の技術には、たとえば血球計算盤、コールターカウンタ等の標準的な細胞計測技術を用いた表面積あたりの細胞数の評価がある。
さらに、本発明の目的においては、内皮細胞に類似する細胞には、本明細書に記載のパラメータで測定されるところの、ほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後の内皮細胞の機能性または表現型を真似または模倣する細胞が含まれるがこれに限られない。
したがって、通常の実務家は後述の詳細な説明および指針を使用すれば、本明細書に開示される移植可能材料の有効な実施形態の作製、使用、試験、および同定方法が分かるだろう。すなわち、本明細書に提供される教示は、本発明の移植可能材料を作製および使用するために必要な一切を開示している。さらに、本明細書に提供される教示は、有効に等価の細胞を含む組成物を同定、作製および使用するために必要な一切を開示している。根本的に必要なのは、等価の細胞を含む組成物が、本明細書に開示される方法に従った脈管アクセス構造体の処置に効果的であることだけである。熟練した実務家には当然のことながら、本組成物の等価の実施形態は、本明細書に提供される教示とあわせたルーチン試験だけを使用して同定できる。
一定の好ましい実施形態では、本発明の移植可能材料に使用される内皮細胞は、ヒト死体提供者の大動脈から摘出される。ロットの各細胞は、内皮細胞の純度、生物学的機能、細菌、カビ、公知のヒト病原体および他の外来性の薬剤の有無につき広範囲に試験された単一または複数のドナーから得られる。細胞は、後に培養で増殖させ、続いて生体適合性の移植可能材料内に配合するために、周知の技術を使用して凍結保存およびバンク化される。
（細胞の調製。）上述のとおり、適切な細胞は、様々な種類の組織および細胞種から得られる。一定の好ましい実施形態では、移植可能材料に使用されるヒト大動脈内皮細胞が、死体提供者の大動脈から摘出される。別の実施態様では、ブタ大動脈内皮細胞（セルアプリケーションズ、カリフォルニア州サンディエゴ）が、ヒト大動脈内皮細胞の摘出に用いるのと同様の方法により、正常なブタ大動脈から摘出される。各ロットの細胞が、内皮細胞の生存度、純度、生物学的機能、マイコプラズマ、細菌、カビ、イースト菌、公知のヒト病原体および他の外来性の薬剤の有無につき広範囲に試験された単一または複数のドナーから得られる。後に培養・増殖し、生体適合性の移植可能材料内に配合するために、細胞をさらに増殖、特徴付けし、周知の技術を用いて３〜６継代においてワーキング・セル・バンクとして凍結保存する。
ヒトまたはブタ大動脈内皮細胞は、フラスコあたり約１５ｍｌの血管内皮細胞増殖培地を添加して前処理したＴ―７５フラスコ内で調製される。ヒト大動脈内皮細胞は、内皮増殖培地（ＥＧＭ―２、キャンブレックス・バイオサイエンス、ニュージャージー州イーストルサフォード）で調製される。ＥＧＭ―２は、２％ＦＢＳを含むＥＧＭ―２ｓｉｎｇｌｅｑｕｏｔｓを加えた内皮細胞基本培地（ＥＢＭ―２、キャンブレックス・バイオサイエンス）を含む。ブタ細胞は、５％ＦＢＳと５０μｇ／ｍｌのゲンタマイシンを加えたＥＢＭ―２で調製される。フラスコは、約３７℃およびＣＯ２５％／空気９５％、湿度９０％に維持されたインキュベータに、最低３０分間配置される。一本または二本のバイアルの細胞を、−１６０℃〜１４０℃のフリーザから取り出し、約３７℃で解凍する。解凍された各バイアルの細胞を、２つのＴ―７５フラスコに、好ましくは約３×１０３細胞／ｃｍ３の密度で、しかし１．０×１０３以上および７．０×１０３以下の密度で播種し、細胞を含むフラスコを、インキュベータに戻す。約８〜２４時間後に、スペント培地を除去し、新しい培地に置き換える。その後、細胞が好ましくは約８５〜１００％、しかし６０％以上かつ１００％以下のコンフルエンスに達するまで、培地を２〜３日毎に変える。移植可能材料が臨床応用を意図するものであるときは、ヒト大動脈内皮細胞の解凍後培養および本発明の移植可能材料の製造において、抗生物質を含まない培地だけが用いられる。
その後血管内皮細胞増殖培地を除去し、単層の細胞を１０ｍｌのＨＥＰＥＳ緩衝食塩水（ＨＥＰＥＳ）ですすぐ。ＨＥＰＥＳを除去し、２ｍｌのトリプシンを加えてＴ―７５フラスコの表面から細胞を剥離する。一旦剥離が生じたら、３ｍｌのトリプシン中和液（ＴＮＳ）を加えて酵素反応を止める。さらにＨＥＰＥＳを５ｍｌ加え、血球計を用いて細胞を数える。細胞懸濁液を遠心分離し、ヒト細胞の場合には、抗生物質を含まないＥＧＭ―２を使用して、約１．７５×１０６細胞／ｍｌの密度に調節し、またはブタ細胞の場合には、５％ＦＢＳと５０μｇ／ｍｌのゲンタマイシンを加えたＥＢＭ―２を使用して、約１．５０×１０６細胞の密度に調節する。
（生体適合性マトリクス。）本発明によれば、移植可能材料には、生体適合性マトリクスが含まれる。マトリクスは、マトリクスに対する、マトリクス上への、またはマトリクス内部の細胞増殖および接着を許容する。マトリクスは、可撓性および順応性である。マトリクスは固体、半固体または流動可能な多孔質の組成物でありうる。本発明の目的においては、流動可能組成物とは、針、シリンジまたはカテーテル等の、注入または注入タイプの送達デバイスを使用して投与しやすい組成物を意味する。押出、放出または圧出を用いる他の送達デバイスも、本明細書に予定される。多孔質のマトリクスが好ましい。好ましい流動可能組成物は、保形性である。マトリクスは、可撓性の平面形態であってもよい。マトリクスはゲル、フォーム、懸濁液、粒子、マイクロキャリア、マイクロカプセルまたは繊維構造体の形であってもよい。目下好ましいマトリクスは、粒状形態である。
マトリクスは、血管の外面等に移植されると、生腐食する前に、少なくとも約５６〜８４日間、好ましくは少なくとも約７日間、より好ましくは少なくとも約１４日間、最も好ましくは少なくとも約２８日間、移植部位に属しうる。
一つの好ましいマトリクスは、吸収ゼラチンスポンジのＧｅｌｆｏａｍ（登録商標）（ファイザー製薬、ニューヨーク州ニューヨーク）、（以下「Ｇｅｌｆｏａｍマトリクス」）である。Ｇｅｌｆｏａｍマトリクスは、特別処理、精製されたブタ皮膚ゼラチン溶液から調製される、多孔質の可撓性外科用スポンジである。
別の実施形態によれば、生体適合性マトリクス材料は、改変されたマトリクス材料でありうる。マトリクス材料の改変は、細胞がマトリクスと結合された時に、上述の細胞の表現型（たとえば抑制性の表現型）を含む細胞の機能が最適化および／または制御されるように選択されればよい。一実施形態によれば、マトリクス材料の改変には、平滑筋細胞の増殖を阻害し、炎症を抑え、ヘパラン硫酸の生産を増加させ、プロスタサイクリンの生産を増加させ、および／またはＴＧＦ―β１の生産を増加させる細胞の能力を増強する接着因子または接着ペプチドでマトリクスを被覆することが含まれる。例示的な接着因子には、たとえばフィブロネクチン、フィブリンゲル、および標準的な水溶性カルボジイミドの反応を利用して共有結合した細胞接着リガンド（ＲＧＤ等）が含まれる。その他の細胞接着リガンドには、ＲＧＤＹ、ＲＥＤＶＹ、ＧＲＧＤＦ、ＧＰＤＳＧＲ、ＧＲＧＤＹおよびＲＥＤＶを含むがこれに限定されない細胞接着認識配列を有するペプチドが含まれる。
別の実施形態によれば、マトリクスはＧｅｌｆｏａｍ以外のマトリクスである。他の例示的なマトリクス材料には、フィブリンゲル、アルギン酸塩、ポリスチレンスルフォン酸ナトリウムのマイクロキャリア、コラーゲンで被覆されたデキストランのマイクロキャリア、ＰＬＡ／ＰＧＡおよびｐＨＥＭＡ／ＭＭＡ共重合体（各共重合体の重合体比率１〜１００％）等が含まれる。好ましい実施形態によれば、これらその他のマトリクスは、上に詳述されるように接着因子または接着ペプチドを含むように改変される。例示的な接着因子には、たとえばゼラチン、コラーゲン、フィブロネクチン、フィブリンゲル、および標準的な水溶性カルボジイミドの反応を利用して共有結合した細胞接着リガンド（ＲＧＤ等）が含まれる。その他の細胞接着リガンドには、ＲＧＤＹ、ＲＥＤＶＹ、ＧＲＧＤＦ、ＧＰＤＳＧＲ、ＧＲＧＤＹおよびＲＥＤＶを含むがこれに限定されない細胞接着認識配列を有するペプチドが含まれる。
別の実施形態によれば、生体適合性マトリクス材料は、マトリクスに対する細胞接着性を高めるために、物理的に改変される。一実施形態によれば、マトリクスは力学的性質を増強し、細胞接着性および増殖性を高めるために架橋される。好ましい実施形態によれば、アルギン酸塩マトリクスが、まず硫酸カルシウムを用いて架橋され、次に塩化カルシウムおよび慣用的プロトコルを用いた第二の架橋ステップが行われる。
さらに別の実施形態によれば、生体適合性マトリクスの孔径が改変される。好ましいマトリクス孔径は、約２５μｍ〜約１００μｍ、好ましくは約２５μｍ〜５０μｍ、より好ましくは約５０μｍ〜７５μｍ、さらに好ましくは約７５μｍ〜１００μｍである。他の好ましい孔径には、約２５μｍより小さな孔径、および約１００μｍより大きな孔径が含まれる。一実施形態によれば、塩浸出技術を用いて孔径が改変される。塩化ナトリウムを、マトリクス材料と溶媒の溶液に混合し、溶液を型に注ぎ込み、溶媒を蒸発させる。その後マトリクス／塩のブロックを水に浸して塩を浸出させ、多孔質構造体を得る。マトリクスは溶液中に含まれるが塩は含まれないように、溶媒が選択される。代表的な溶液の一つには、ＰＬＡおよび塩化メチレンがある。
代替的な実施形態によれば、二酸化炭素気泡を非固体の形態のマトリクスに取り込み、その後適切な界面活性剤で安定化させる。その後減圧を用いて気泡を除去し、多孔質構造体を得る。
別の実施形態によれば、凍結乾燥技術を利用して、氷微粒子の冷凍速度を用いて異なる大きさの孔を形成して、マトリクスの孔径を制御する。たとえば、約０．１〜２％ブタまたはウシゼラチンのゼラチン溶液を、型またはディッシュに注ぎ込み、様々な異なる温度で予備冷凍した後、しばらく凍結乾燥させる。材料をその後、好ましくは、紫外線（２５４ｎｍ）を使用するかグルテルアルデヒド（ホルムアルデヒド）を加えて架橋しうる。予備冷凍温度（たとえば−２０℃、−８０℃または−１８０℃）、凍結乾燥温度（約−５０℃での凍結乾燥）、およびゼラチン濃度（０．１％〜２．０％。孔径は溶液中のゼラチン濃度に概して反比例する）の変動は、いずれもマトリクス材料に生じる孔径に影響し、好ましい材料をつくるために改変されうる。熟練した技術者には当然のことながら、適切な孔径とは、本明細書で別に説明した表現型を有する最適な細胞集団を促進および維持するものである。
（可撓性の平面形態。）本明細書に教示されるとおり、生体適合性マトリクスの平面形態は、様々な形状および大きさで構成でき、好ましくは瘻、グラフト、末梢グラフトまたは他の脈管アクセス構造体およびその周囲部、隣接または周辺部に移植するのに適し、アクセス構造体およびこれに付随する血管の表面の輪郭に順応できる形状および大きさである。好ましい実施形態によれば、単一のマトリクス片が、処置する個々の脈管アクセス構造体に適用するような大きさで構成される。
一実施形態によれば、生体適合性マトリクスは、可撓性の平面形態として構成される。血管等の管状構造体に投与するためまたは血管吻合部等の脈管アクセス構造体に投与するために構成された、例示的実施形態が図１に示される。図１においては、長さ、幅、厚みおよび表面積の特徴は、尺度どおりまたは比率どおりに示されていない。図１は、非限定的な例示的実施形態である。
図１においては、可撓性の平面形態２０は、適切な生体適合性マトリクス片から形成されている。必要なのは、可撓性の平面形態２０が可撓性で、血管等の管状構造体の外面の輪郭に対して順応および／または適応できるということのみである。可撓性の平面形態２０は血管の外面に接触でき、外面を包み、または外面に巻きつくことができる。
図２Ａに示される一つの例示的実施形態によれば、輪郭成形した可撓性の平面形態２０´は、タブ４０に接続されたブリッジ５０に接続されたボディ３０等の画定可能領域を含むように構成されうる。タブ４０は、ブリッジ５０によりボディ３０から分離できるが、数領域は連続した全体を形成する。一つの例示的実施形態によれば、これらの数領域の内部エッジは、輪郭成形した可撓性の平面形態２０´の内部スロット６０を画定するように調整される。好ましい実施形態によれば、内部スロット６０を画定するこれらの数領域は、輪郭成形した可撓性の平面形態２０´内部の第一成端点６２と、輪郭成形した可撓性の平面形態２０´の外部エッジ上の第二成端点６４と、幅６６とをさらに画定する。この特定の例示的実施形態においては、第一成端点６２は、タブ４０とブリッジ５０の間の境界にあり、第二成端点６４は、タブ４０とボディ３０の間の境界にある。
一定の実施形態では、上記のタブ４０、ボディ３０およびブリッジ５０により画定されるスロット６０の幅６６は、好ましくは約０．０１〜約０．０４、より好ましくは約０．０５〜約０．０８、最も好ましくは約０．０６インチであることが予定される。好ましくは、可撓性の平面形態２０´のスロット６０の幅６６は、植え付けられた細胞がスロット６０の幅６６にわたり連続的なコンフルエント層または細胞ブリッジを形成するのを阻止するために十分な寸法である。しかし、細胞が幅６６にわたったとしても、このような細胞層または細胞ブリッジを単に切断する等の方法により中断することにより、スロット６０およびスロット幅６６を画定する実施形態を本明細書の記載にしたがい使用できる。
本発明では、スロットが画定されるように平面形態を一部切断することを熟練技術者に指示することにより、図１の可撓性の平面形態２０´がスロット６０を使用直前に画定するようにしてもよい。
本明細書に開示される本発明は一部、輪郭成形したおよび／または順応性のある可撓性の平面形態であることにより、インプラントまたは植え付けられた細胞の完全性を損なうことなく移植可能材料を最適に管状構造体に適用できるという発見に基づく。一つの好ましい実施形態は、外科的に処置された血管組織に対する接触および順応を最適化し、移植可能材料の重複の程度を制御する。外膜スペースにおける移植可能材料の過度の重複は、処置した血管に圧点を生じ、血管による血流を制限し、ホメオスタシスおよび正常な治癒を遅らせおよび／または阻害しうる他の混乱を生じる可能性がある。熟練した技術者は、体内移植時の過度の重複を認識し、移植可能材料を再配置または変更する、たとえば切る等する必要を認識するだろう。さらに、他の実施形態では、移植可能材料の重複は、移植可能材料内で分散される治療剤の過剰投与につながりうる。本明細書の他所で記載のとおり、化学薬品または他の外因的に供給される治療剤が、インプラントに選択的に加えられうる。一定の他の実施形態においては、このような薬剤が、生体適合性マトリクスに加えられ、細胞の非存在下で投与されうるが、このように使用される生体適合性マトリクスは、選択的にスロットを画定する。
これに対して、移植可能材料が目標の管状構造体と適切に接触しないと、植え付けられた細胞が供給する臨床的利益を十分受けられず、あるいは移植可能材料に加えられた治療剤の投与が不足する可能性がある。熟練した技術者は、体内移植時の接触が最適を下回る場合には、再配置および／またはさらなる移植可能材料が必要となることを認識するだろう。
（流動可能組成物。）本明細書に予定される一定の実施形態においては、本発明の移植可能材料は、粒状の生体適合性マトリクスを含む流動可能組成物である。注射可能タイプの送達デバイスで使用され、血管の内部を誘導することによる腔内（血管内）投与、または経皮的局所投与が可能な、任意の非固体の流動可能組成物が本明細書で予定される。流動可能組成物は、好ましくは保形性のある組成物である。したがって、本明細書に予定される流動可能タイプの粒状マトリクスの中、上、または内部に細胞を含む移植可能材料は、内径が約２２〜約２６ゲージであり、好ましくは約１〜約３ｍｌに約１００万個の細胞を含む粒状材料を含む流動可能組成物を、約５０ｍｇ送達できる任意の注射可能送達デバイスによる使用のために調製されればよい。
目下好ましい実施形態によれば、流動可能組成物には、ブタ皮膚ゼラチンに由来する製品である、Ｇｅｌｆｏａｍ（登録商標）粒子、Ｇｅｌｆｏａｍ（登録商標）粉末、または粉砕Ｇｅｌｆｏａｍ（登録商標）等の生体適合性粒状マトリクス（ファイザー製薬、ニューヨーク州ニューヨーク、以下「Ｇｅｌｆｏａｍ粒子」）が含まれる。別の実施形態によれば、粒状マトリクスは、架橋したデキストランのマトリクスと結合した変性コラーゲンを含む、Ｃｙｔｏｄｅｘ―３（アマーシャム・バイオサイエンス、ニュージャージー州ピスキャタウェイ）マイクロキャリアである。
代替的な実施形態によれば、生体適合性の移植可能粒状マトリクスは、改変された生体適合性マトリクスである。改変には、移植可能マトリクス材料のために上述したものが含まれる。
この方法で用いるのに適切な流動可能組成物の例は、本明細書と同日付で出願されており全内容が参照により本明細書に組み込まれる同時係属中の出願、ＰＣＴ／ＵＳ＿＿（代理人整理番号ＥＬＶ―００８ＰＣと同じ）と、本明細書と同日付で出願されており全内容が参照により本明細書に組み込まれる同時係属中の出願、ＰＣＴ／ＵＳ＿＿（代理人整理番号ＥＬＶ―００９ＰＣと同じ）において開示されている。
（生体適合性マトリクスの細胞播種。）事前に切断した適切な生体適合性マトリクス片または適切な生体適合性の流動可能マトリクスのアリコートに、約３７℃、ＣＯ２５％／空気９５％で抗生物質を含まないＥＧＭ―２を加えて１２〜２４時間再水和させる。その後、移植可能材料を再水和容器から取り出し、個々の組織培養ディッシュに配置する。約１．５〜２．０×１０５細胞（１．２５〜１．６６×１０５細胞／ｃｍ３）の好ましい密度で生体適合性マトリクスに播種し、約３７℃およびＣＯ２５％／空気９５％、湿度９０％に維持されたインキュベータに３〜４時間配置し、細胞接着を促進する。その後、播種したマトリクスを、ＥＧＭ―２と０．２μｍフィルタを含むキャップを備えた個々の容器（アメリカンマスターテック、カリフォルニア州ローディ）チューブに配置し、約３７℃およびＣＯ２５％／空気９５％でインキューベートする。その後細胞がコンフルエンスに達するまで、培地を２〜３日ごとに変える。一つの好ましい実施形態における細胞は６継代であるが、それを下回るか上回る継代の細胞が使用されてもよい。本発明のさらなる実施形態によるさらなる移植可能材料の調製プロトコルは、＿＿に出願されており全内容が参照により本明細書に組み込まれる同時係属中の出願、ＰＣＴ／ＵＳ＿＿（代理人整理番号ＥＬＶ―００９ＰＣと同じ）に開示されている。
（細胞増殖曲線およびコンフルエンス。）移植可能材料の試料を、３日目または４日目、６日目または７日目、９日目または１０日目、および１２日目または１３日目、またはその前後で取り出し、細胞を計数し、生存率を評価し、増殖曲線を作製および評価して、増殖特性を評価し、ほぼコンフルエンス、コンフルエンス、またはコンフルエンス後に達しているか測定する。ブタ大動脈内皮細胞を移植したロットを含む移植可能材料の２つのプレパラートの代表的な増殖曲線が、図３Ａおよび３Ｂに示される。これらの例においては、移植可能材料は可撓性の平面形態である。一般に通常の技術者は、たとえば初期の時点での細胞数の増加の観察等、満足できる細胞増殖の徴候を認め（図３Ａでは約２〜６日目の間）、次いでほぼコンフルエントの時期を認め（図３Ａでは約６〜８日目の間）、次いでコンフルエンスに達すると細胞数が横ばいとなるのを認め（図３Ａでは約８〜１０日目の間）、そして細胞がコンフルエント後になると細胞数が維持されるのを認める（図３Ａでは約１０〜１４日目の間）等、初期、中期および後期の時点での許容できる細胞増殖の徴候を認めるだろう。本発明の目的においては、少なくとも７２時間横ばいである細胞集団が好ましい。
細胞数は、トリプシンとＥＤＴＡの溶液中０．８ｍｇ／ｍｌのコラゲナーゼ溶液で移植可能材料のアリコートを完全に分解して得られる。分解された移植可能材料の容積を測定した後、既知量の細胞懸濁液を０．４％トリパンブルーで希釈し（細胞対トリパンブルー４：１）、トリパンブルー排除により生存率を評価する。血球計算盤を使用して生存細胞、死細胞、および全細胞を数える。培養日数に対する生存細胞数をとって、増殖曲線を作製する。細胞は、コンフルエンスに達した後出荷され、移植される。
本発明の目的においては、コンフルエンスは、移植可能材料の可撓性の平面形態（１．０×４．０×０．３ｃｍ）に含まれる場合には少なくとも約４×１０５細胞／ｃｍ３の細胞が存在し、可撓性の組成物に含まれる場合には、好ましくは合計数約７×１０５〜１×１０６細胞／アリコート（５０〜７０ｍｇ）の細胞が存在することと定義される。いずれの場合も、細胞生存率は好ましくは少なくとも約９０％であるが、８０％は下回らない。細胞が１２日目または１３日目までにコンフルエントにならない場合は、培地を変えてもう一日培養を続ける。コンフルエンスに達するか、播種から１４日後までこのプロセスを続ける。１４日目に細胞がコンフルエントでない場合は、ロットを廃棄する。プロセス中のチェックを行った後に細胞がコンフルエントであると判定されたら、最後の培地交換を行う。この最後の培地交換は、フェノールレッドを含まず抗生物質も含まないＥＧＭ―２を用いて行う。培地交換の直後に、チューブに出荷用の無菌プラグ・シールキャップを取り付ける。
（機能性の評価。）本明細書に記載の発明の目的においては、移植可能材料は、体内移植の前にさらに機能性の徴候を試験される。たとえば、培養期間中に調整された培地を回収し、培養内皮細胞によって生産されるヘパラン硫酸、トランスフォーミング成長因子―β１（ＴＧＦ―β１）、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂ―ＦＧＦ）、および一酸化窒素の値を確認する。一定の好ましい実施形態では、可撓性の平面形態の総細胞数が少なくとも約２、好ましくは少なくとも約４×１０５細胞／ｃｍ３であり、生存細胞の割合が少なくとも約８０〜９０％、好ましくは９０％以上、最も好ましくは少なくとも約９０％であり、調整培地のヘパラン硫酸が少なくとも約０．５〜１．０、好ましくは少なくとも約１．０ｍｉｃｒｏｇ／１０６細胞／日であるときに、移植可能材料を本明細書に記載の目的に使用できる。調整培地のＴＧＦ―β１は少なくとも約２００〜３００、好ましくは少なくとも約３００ｐｉｃｏｇ／ｍｌ／日であり、調整培地のｂ―ＦＧＦは約２００ｐｉｃｏｇ／ｍｌを下回り、好ましくは約４００ｐｉｃｏｇ／ｍｌ以下である。
ヘパラン硫酸の値は、通常のジメチルメチレンブルー・コンドロイチナーゼＡＢＣ分解分光学的アッセイを用いて定量できる。硫酸グリコサミノグリカン（ＧＡＧ）の全量は、ジメチルメチレンブルー（ＤＭＢ）色素結合アッセイを使用して測定され、この方法では回収培地で希釈された既知量の精製コンドロイチン硫酸を用いて作られた標準曲線と未知試料が比較される。ＤＭＢ発色試薬を加える前に、さらなる調整培地の試料をコンドロイチナーゼＡＢＣと混合してコンドロイチンとデルマタン硫酸を分解する。すべての吸光度は、ＧＡＧ標準液と混合されたＤＭＢ染料の最大波長吸光度を測定し、通常５１５〜５２５ｎｍである。調整培地試料中の全体の硫酸グリコサミノグリカン濃度からコンドロイチンおよびデルマタン硫酸の濃度を減算することにより、ヘパラン硫酸濃度／１０６細胞／日が算出される。精製コンドロイチン硫酸の試料を分解することにより、コンドロイチナーゼＡＢＣの活性が確認される。精製コンドロイチン硫酸の分解が１００％を下回る場合は、調整培地試料が適切に是正される。ヘパラン硫酸のレベルは、モノクローナル抗体を利用したＥＬＩＳＡアッセイを用いて定量されてもよい。
ＴＧＦ―β１およびｂ―ＦＧＦの値は、モノクローナルまたはポリクローナル抗体、好ましくはポリクローナルを利用したＥＬＩＳＡアッセイを用いて定量できる。対照回収培地も、ＥＬＩＳＡアッセイを用いて定量でき、試料は、対照培地中のＴＧＦ―β１およびｂ―ＦＧＦの値をもとに適切に補正される。
一酸化窒素（ＮＯ）値は、標準的なグリース反応アッセイを用いて定量できる。一酸化窒素は過渡的で不安定な性質のため、ほとんどの検査法に適さない。しかし、一酸化窒素二つの安定した分解生成物である硝酸塩（ＮＯ３）と亜硝酸塩（ＮＯ２）は、通常の光度測定法を使用して検出できる。グリース反応アッセイは、硝酸還元酵素の存在下で酵素的に硝酸塩を亜硝酸塩に変換する。亜硝酸塩が、約５４０ｎｍの範囲の可視光を吸収するアゾ染料の着色生成物として、比色定量により検出される。硝酸塩を全て亜硝酸塩に変換し、未知試料中の亜硝酸塩の総濃度を測定し、その後、得られた亜硝酸塩の濃度を、既知量の硝酸塩を亜硝酸塩に変換して作った標準曲線と比較して、システム中の一酸化窒素の値が測定される。
前述の好ましい抑制性の表現型は、以下の平滑筋細胞の増殖および血栓症抑制の定量的インビトロアッセイだけでなく、上述のヘパラン硫酸、ＴＧＦ―β１、ＮＯおよび／またはｂ―ＦＧＦの定量アッセイを使用して評価される。本発明の目的においては、これらの代替的インビトロアッセイの一つ以上により、移植可能材料が好ましい抑制性の表現型を有することが確認された場合に、移植可能材料は体内移植の準備が整っている。
平滑筋細胞の増殖をインビトロで評価するために、培養内皮細胞に伴う抑制のマグニチュードを測定する。ブタまたはヒト大動脈平滑筋細胞を、２４穴組織培養プレートの平滑筋細胞増殖培地（ＳｍＧＭ―２、キャンブレックス・バイオサイエンス）に低密度に播種する。細胞を２４時間接着させる。その後培地を０．２％ＦＢＳを含む平滑筋細胞基本培地（ＳｍＢＭ）に４８〜７２時間置き換えて細胞増殖を停止させる。調整培地はコンフルエント後の内皮細胞培養地から調製され、２ＸＳＭＣ増殖培地により１：１で希釈され、培養地に加えられる。平滑筋細胞増殖抑制の正の対照が、各アッセイに含まれる。３〜４日後に、各試料の細胞数を、コールターカウンタを使用して数える。調整培地を加える直前のウェルあたりの平滑筋細胞の数と、調整培地および対照培地（増殖因子を添加したおよび添加しない標準の増殖培地）への曝露から３〜４日後のそれとを比較することにより、平滑筋細胞増殖に対する調整培地の影響を測定する。調整培地試料に伴う抑制のマグニチュードを、正の対照に伴う抑制のマグニチュードと比較する。好ましい実施形態によれば、調整培地が、ヘパリン対照が抑制できる分の約２０％を阻害する場合には、移植可能材料は抑制性であるとみなされる。
血栓症の抑制をインビトロで評価するために、培養内皮細胞に伴うヘパラン硫酸の値を測定する。ヘパラン硫酸は、抗増殖性および抗血栓性の両方の性質を有する。上に詳述した通常のジメチルメチレンブルー・コンドロイチナーゼＡＢＣ分光学的アッセイまたはＥＬＩＳＡアッセイのいずれかを用いて、１０６細胞あたりヘパラン硫酸濃度が算定する。調整培地のヘパラン硫酸が少なくとも約０．５〜１．０、好ましくは少なくとも約１．０ｍｉｃｒｏｇ／１０６細胞／日である場合に、移植可能材料を本明細書の目的で使用できる。
血栓症の抑制を評価する別の方法は、インビトロにおける多血小板血漿に伴う血小板凝集の抑制のマグニチュードを測定することを伴う。ブタ血液試料に、クエン酸ナトリウムを室温で加えてブタ血漿を得る。クエン酸血漿を低速で遠心分離して赤血球および白血球をペレットにし、血漿中に懸濁された血小板を得る。コンフルエント後の内皮細胞培養地から調整培地を調製し、多血小板血漿のアリコートに加える。血小板凝集物質（アゴニスト）を、対照として血漿に加える。血小板アゴニストには一般にアラキドン酸、ＡＤＰ、コラーゲン、エピネフリン、およびリストセチン（シグマアルドリッチ社、ミズーリ州セントルイスから販売）が含まれる。さらなる血漿のアリコートには血小板アゴニストまたは調整培地を加えず、ベースラインの自発的血小板凝集を評価する。各アッセイには、血小板凝集の抑制の正の対照も含まれる。例示的な正の対照には、アスピリン、ヘパリン、アブシキシマブ（ＲｅｏＰｒｏ（登録商標）、イーライ・リリー、インディアナ州インディアナポリス）、チロフィバン（Ａｇｇｒａｓｔａｔ（登録商標）、メルク、ニュージャージー州ホワイトハウスステーション）、またはエプチフィバチド（Ｉｎｔｅｇｒｉｌｉｎ（登録商標）、ミレニアム・ファーマスーティカルズ社、マサチューセッツ州ケンブリッジ）が含まれる。その後、全試験条件で生じた血小板凝集を、血小板凝集計を使用して測定する。血小板凝集計は、光学濃度をモニタすることにより血小板凝集を測定する。血小板が凝集するほど、多くの光が試料を通過できる。血小板凝集計の結果から「血小板凝集ユニット」、すなわち血小板が凝集する速度の関数が得られる。凝集は、アゴニストを加えてから６分後の凝集能として評価される。調整培地を加える前のベースラインの血小板凝集と、調整培地および正の対照に多血小板血漿を曝露した後のそれとを比較することにより、血小板凝集に対する調整培地の効果を測定する。結果は、ベースラインに対する比率として表される。調整培地試料に伴う抑制のマグニチュードを、正の対照に伴う抑制のマグニチュードと比較する。好ましい実施形態によれば、調整培地が、正の対照が抑制できる分の約２０％を抑制する場合は、移植可能材料は抑制性であるとみなされる。
体内移植の準備が整ったら、可撓性の平面形態を含む移植可能材料は、最終的な製品容器に準備される。好ましくは各製品容器には、約４５〜６０ｍｌ、好ましくは約５０ｍｌの、フェノールレッドも抗生物質も含まない内皮増殖培地（たとえば内皮増殖培地（ＥＧＭ―２）中の、立方センチあたりの生存細胞が少なくとも約９０％の、たとえばヒト大動脈内皮細胞等、単一の死体ドナー供給源から得た細胞を、好ましくは約５〜８×１０５細胞、好ましくは少なくとも４×１０５細胞／ｃｍ３伴う、１×４×０．３ｃｍ（１．２ｃｍ３）の無菌の材料片が含まれる。ブタ大動脈内皮細胞が使用される場合も、増殖培地はフェノールレッドを含まないＥＢＭ―２であるが、５％ＦＢＳおよび５０μｇ／ｍｌのゲンタマイシンが付加される。
他の好ましい実施形態では、流動可能な粒状形態を含む移植可能材料が最終的な製品容器に準備される。製品容器にはたとえば、フィルタキャップまたは予め取り付けたシリンジで改変した密閉組織培養容器が含まれ、その各々に、好ましくはアリコートにつき約４５〜６０ｍｌ、好ましくは約５０ｍｌの内皮増殖培地中の内皮細胞を全部で約７×１０５〜約１×１０６植え付けられた約５０〜６０ｍｇの粒状材料が含まれる。
（移植可能材料の貯蔵期限。）ほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後の細胞集団を含む移植可能材料は、室温で、安定して生存可能状態で少なくとも２週間維持できる。好ましくは、このような移植可能材料は、ＦＢＳを添加したまたは添加しない約４５〜６０ｍｌ、より好ましくは５０ｍｌの輸送培地中に維持される。輸送培地には、フェノールレッドを含まないＥＧＭ―２培地が含まれる。ＦＢＳは、輸送培地に対して最高約１０％ＦＢＳまで、または総濃度約１２％ＦＢＳまで添加されうる。しかし、ＦＢＳは体内移植の前に移植可能材料から除去しなければならないため、体内移植の前に必要なすすぎ時間を減らすために、輸送培地に使用するＦＢＳの量を制限することが好ましい。
（移植可能材料の凍結保存。）コンフルエントの細胞集団を含むコンフルエントの移植可能材料は、最終的に解凍した時に臨床的効力または完全性が減ぜられることなく、貯蔵および／または診療所への輸送のために凍結保存されうる。好ましくは、移植可能材料は１５ｍｌクリオバイアル（Ｎａｌｇｅｎｅ（登録商標）、ナルジェヌンク・インターナショナル、ニューヨーク州ロチェスター）で、約５％〜２０％のＤＭＳＯ、約２〜８％のデキストランおよび約５０〜７５％のＦＢＳを含む約５ｍｌのＣｒｙｏＳｔｏｒ ＣＳ―１０溶液（バイオライフ・ソリューションズ、ニューヨーク州オスウィーゴ）中に凍結保存される。クリオバイアルは、低温イソプロパノール（または冷凍速度を制御する任意の物質）の水浴に配置され、約−８０℃のフリーザへ移されて約４時間、その後液体窒素（約−１５０〜−１６５℃）へ移される。
凍結保存された移植可能材料のアリコートは、その後室温で約１５分間ゆっくり解凍され、次にさらに約１５分間室温の水浴で解凍される。その後材料は、洗浄用培地で約３度洗浄される。洗浄用培地には、フェノールレッドを含まず５０μｇ／ｍｌのゲンタマイシンを含むＥＢＭが含まれる。最初の二つのすすぎ手順は、室温で約５分間行われる。最後のすすぎ手順は、３７℃、５％ＣＯ２で、約３０分間行われる。
解凍およびすすぎ手順の後、凍結保存された材料は、約１０ｍｌの回復溶液中で約４８時間安置される。ブタ内皮細胞の場合は、回復溶液は３７℃、５％ＣＯ２で、５％ＦＢＳと５０μｇ／ｍｌゲンタマイシンを加えたＥＢＭ―２である。ヒト内皮細胞の場合には、回復溶液は抗生物質を含まないＥＧＭ―２である。使用および／または貯蔵または輸送のために梱包する前に、少なくとももう２４時間、さらに解凍後調整を行うことができる。
体内移植の直前に、培地がデカントされ、移植可能材料が約２５０〜５００ｍｌの無菌食塩水（ＵＳＰ）ですすがれる。最終製品の培地には、医療研究機関への輸送中に細胞の生存を維持するために、必要に応じて少量のＦＢＳが含まれる。ＦＢＳは、Ｔｉｔｌｅ９米国連邦規制基準（ＣＦＲ）：動物およびその製品（Ａｎｉｍａｌ ａｎｄ Ａｎｉｍａｌ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ）にしたがい細菌、カビおよび他のウイルス性因子の有無につき広範囲に試験されている。体内移植の直前にすすぎの手順が用いられ、これにより、輸送されたＦＢＳの量がインプラントあたり好ましくは０〜６０ｎｇに減少する。
ヒト患者一人あたりに移植される全細胞数は、好ましくは体重１ｋｇあたり約１．６〜２．６×１０４個であるが、体重１ｋｇあたり約２×１０３以上、約２×１０６以下である。
本明細書で意図されるように、本発明の移植可能材料には、好ましくは生存率が約９０％で、好ましくは可撓性の平面形態につき約４×１０５細胞／ｃｍ３の密度であり、コンフルエント時には少なくとも約０．５〜１．０、好ましくは少なくとも１．０ｍｉｃｒｏｇ／１０６細胞／日のヘパラン硫酸と、少なくとも約２００〜３００、好ましくは少なくとも約３００ｐｉｃｏｇ／ｍｌ／日のＴＧＦ―β１と、少なくとも約２１０ｐｉｃｏｇ／ｍｌを下回る、好ましくは約４００ｐｉｃｏｇ／ｍｌ以下のｂ―ＦＧＦとを含む調整培地をつくる細胞、好ましくは血管内皮細胞が含まれる。
（可撓性の平面形態の移植可能材料の送達）
（一般的な考慮事項。）移植可能材料は、様々な形態で脈管アクセス構造体に投与できる。一つの好ましい実施形態によれば、移植可能材料は、瘻、グラフト、末梢グラフトまたは他の脈管アクセス構造体およびその周囲に隣接して移植するのに適し、アクセス構造体およびこれに付随する血管の表面の輪郭に順応できる形状および大きさの、可撓性の平面形態である。
一つの好ましい実施形態によれば、単一の移植可能材料片が、処置する脈管アクセス構造体に適用されるために、大きさを定められる。別の実施形態によれば、可撓性の平面形態の複数の移植可能材料、たとえば２、３、４、５、６、７、８またはそれ以上のマトリクス材料片を、一つの脈管アクセスの箇所に適用できる。さらに、脈管アクセス構造体に沿った一つ以上の箇所を、一つ以上の移植可能材料片で処置できる。たとえば動静脈グラフトの場合には、近位静脈吻合部、遠位静脈吻合部、および遠位静脈セクションのそれぞれを、一つ以上の移植可能材料片で処置できる。
一つの非限定的な実施形態によれば、移植可能材料は、血管の外面に順応するように構成される。非限定的な平面形態の例が、図１に示される。図１においては、例示的な可撓性の平面形態２０は、長さ１２、幅１４、および高さ１６を有する。一つの好ましい実施形態によると、可撓性の平面形態２０の長さ１２は約２ｃｍ〜約６ｃｍであり、可撓性の平面形態２０の幅１４は約０．５ｃｍ〜約２ｃｍであり、可撓性の平面形態２０の高さ１６は約０．１ｃｍ〜約０．５ｃｍである。
別の実施形態によれば、可撓性の平面形態２０は、血管または脈管アクセス構造体の外面に順応する、解剖学的に輪郭成形した形状として構成されうる。脈管アクセス構造体への投与のために構成された、解剖学的に輪郭成形した可撓性の平面形態２０´が、例として図２Ａに示され、以下に詳述される。
本明細書で別に説明したとおり、図２Ａの輪郭成形した可撓性の平面形態２０´は、様々な幾何学的形態で構成されうる。たとえば、一実施形態によれば、輪郭成形した可撓性の平面形態２０´は、内部スロット６０を画定する数領域を含む。さらなる実施形態によれば、輪郭成形した可撓性の平面形態２０´のエッジおよび／または内部スロット６０のエッジは、角度がついているか湾曲している。別の実施形態によれば、輪郭成形した可撓性の平面形態２０´の高さ１６´は、長さ１２´および／または幅１４´にわたり変化する。さらに、輪郭成形した可撓性の平面形態２０´の構成および使用目的によっては、一つ以上のタブ４０、ブリッジ５０および／またはスロット６０がありうる。スロットの特徴に関しては、スロットは、輪郭成形した可撓性の平面形態２０´の中、上、または内部のどこに画定されてもよい。均一な幅のスロット、または様々な幅のスロットが画定されればよい。スロットは、線形、非線形または湾曲して画定されうる。
少なくとも一つのスロット６０を含む、本発明の輪郭成形した可撓性の平面形態２０´の複数の実施形態を示す図２Ｂ、２Ｃ、２Ｄおよび２Ｅでは、輪郭成形した可撓性の平面形態２０´は、一定の実施形態において一つ以上のスロットを画定し、本明細書に開示される方法に従って使用されうる。輪郭成形した可撓性の平面形態２０´の上または内部に画定されるスロット６０は、輪郭成形した可撓性の平面形態２０´の任意のエッジに合わせられるか、輪郭成形した形態２０´の内部を貫通しうる。次に図２Ｅでは、輪郭成形した可撓性の平面形態２０´の中または内部の幅６６またはスロット６０の全体の形状は、均一の幅または様々な幅で、線形、非線形または湾曲して画定されうる。
図２Ｆおよび２Ｇでは、輪郭成形した可撓性の平面形態２０´は、異なる幅６６および６６´をそれぞれ有する、スロット６０または６０´を画定しうる。
図示されるように、図２Ｇのスロット６０´および幅６６´は、本明細書の他所で触れたとおり、実務家が体内移植時に可撓性の平面形態２０´を切断し、それにより、図２Ｇに示される輪郭成形した可撓性の平面形態２０´に変える実施形態をあらわす。
一実施形態によれば、動静脈瘻等の血管吻合部の側端の結合を、本発明の移植可能材料を使用して処置できる。可撓性の平面形態の移植可能材料を端側血管吻合部に送達するための、例示的な方法のステップが、図４Ａ、４Ｂおよび４Ｃに示される。
図４Ａでは、第一移植可能材料片２２の中央部３２が、血管１００、１１０が合流する接合部１１２にくるまで、第一移植可能材料片２２の一端部３４または第二端部３６を、吻合セグメント１１０の下に通すことにより、第一移植可能材料片２２が脈管アクセス構造体に供給される。その後、移植可能材料を縫合線１１４の中心に保ちながら、端部３４、３６が接合部１１２の縫合線１１４に巻き付けられる。一実施形態によれば、第一移植可能マトリクス材料片２２の端部３４、３６は、第一移植可能マトリクス材料片２２を固定するのに十分なだけ重複しうる。別の実施形態によれば、第一移植可能マトリクス材料片２２の端部３４、３６は、重複しない。第一移植可能マトリクス材料片２２の端部３４、３６、または他の任意の移植可能マトリクス材料片同士は、合流する必要はないし、重複する必要はないし、血管１００あるいは１１０の周囲全体に巻き付く必要もない。一つの好ましい実施形態によれば、第一移植可能マトリクス材料片２２の端部３４、３６は、引き伸ばしたり裂いたりせずに、吻合接合部１１２のまわりに可能な限り巻き付けられる。血管の適切な被覆が達成されていれば足りる。熟練技術者は、移植可能材料の投与が正しくなされたかを見分けるだろう。
図４Ｂでは、別の実施形態にしたがって、第二移植可能材料片２４が選択的に適用され、第二移植可能材料片２４の中央部４２が、吻合接合部１１２、隣接または周辺部にあわせられる。第二移植可能材料片２４の端部４４、４６は、血管１００に巻き付けられる。図４Ａの第一移植可能材料片２２について述べたように、第二移植可能マトリクス材料片２４の端部４４、４６は、触れても、重複しても、血管１００または１１０全体の周りに巻き付けられてもよいが、そのようにすることは必要ではない。
図４Ｃでは、さらに別の実施形態に従って、第三移植可能材料片２６が、吻合接合部１１２の遠位の、処置される血管１００の近位血管セグメント１１６に選択的に配置される。一実施形態によれば、第三移植可能材料片２６は血管１００に沿って縦に配置され、第三移植可能材料片２６の第一端部５４は吻合接合部１１２、隣接または周辺部におかれ、第三移植可能材料片２６の第二端部５６は吻合接合部１１２の遠位におかれる。図４Ａの第一移植可能材料片２２について述べたように、第三移植可能マトリクス材料片２６の端部５４、５６は、触れても、重複しても、血管１００全体の周りに巻き付けられてもよいが、そのようにすることは必要ではない。
代替的な実施形態によれば、スロット６０を画定する、単一片の輪郭成形した可撓性の平面形態２０´、たとえば図２Ａに示される例示的な輪郭成形した形態が、たとえば端側吻合等の脈管アクセス構造体に供給される。スロット６０を画定する輪郭成形した可撓性の平面形態２０´の移植可能材料の、端側吻合部、隣接または周辺部への移植が、図５に示される。移植可能材料を巻き付ける方法で使用する場合は、吻合部および隣接する脈管構造の両方を処置するのに、単一の移植可能マトリクス材料片が適切であると考えられる。各輪郭成形した可撓性の平面形態２０´が、特定の脈管アクセス構造体に適用するための大きさで形成され、したがって当該特定の脈管アクセス構造体および隣接する脈管構造にホメオスタシス環境をつくるための適切な被覆率と、十分な値の内皮細胞因子および／または治療剤を供給するように予め成形される。
図５では、一実施形態にしたがい、タブ４０からボディ３０を切り離すことにより、スロットを画定する単一の輪郭成形した２０´が吻合部に供給される。ボディ３０は、主要血管１００の表面に沿って配置される。ブリッジ５０は、主要血管１００の表面および第二血管１１０の分岐の下に配置される。その後タブ４０が分岐血管１１０周辺にもってこられ、タブ４０が、分岐血管１１０の上面に沿って配置される。
図５によれば、単一片の輪郭成形した可撓性の平面形態２０´は、二つの基準点７０、８０を含む（図２Ａも参照）。図５に示されるとおり、端側吻合の部位に投与されると、二つの基準点７０、８０がそろう。第一基準点７０はタブ４０上に設置され、第二基準点８０はブリッジ５０上に設置される（図２Ａも参照）。輪郭成形した可撓性の平面形態２０´の一実施形態においては、移植前の基準点７０、８０は、約０．５インチ、好ましくは約１インチ未満、より好ましくは約１インチ、最も好ましくは１．５インチ以下離れている。輪郭成形した可撓性の平面形態２０´が吻合部位に投与されると、スロットの特徴により可能となる、分枝血管１１０の周りでの輪郭成形した可撓性の平面形態２０´の回転により、基準点７０、８０がそろう。
一実施形態によれば（再び図４Ａ、４Ｂおよび４Ｃを参照）、たとえば動静脈グラフトを処置する場合には、第一移植可能材料片２２と第二移植可能材料片２４が、近位静脈吻合部と遠位静脈吻合部の各々に適用される。さらに、第三移植可能材料片２６が、遠位静脈吻合部の下流の、遠位静脈に配置されうる。
図６に示されるさらに別の代替的例示的実施形態によれば、可撓性の平面形態の単一の移植可能材料片２０が、血管１００等の管状構造体に適用される。移植可能材料は、脈管アクセス構造体を含まない血管等の管状構造体に適用されうる。たとえば、処置される静脈部分の上流における、脈管アクセス構造体の形成や脈管アクセス構造体部の針刺を原因として、脈管アクセス構造体の下流の静脈部分に炎症、血栓症、再狭窄または閉塞が増加しうる。このような場合において、本発明の移植可能材料は、脈管アクセス構造体から離れたところで生じるこれらの症状を処置、管理および／または寛解できる。
（流動可能組成物の移植可能材料の送達）
（一般的な考慮事項。）本発明の移植可能材料が流動可能組成物である場合には、粒状の生体適合性マトリクスおよび細胞、好ましくは内皮細胞、より好ましくは血管内皮細胞が含まれる。これらの細胞は生存率が約９０％であり、約０．８×１０４細胞／ｍｇ、より好ましくは約１．５×１０４細胞／ｍｇ、最も好ましくは約２×１０４細胞／ｍｇの好ましい密度であり、少なくとも約０．５〜１．０、好ましくは少なくとも約１．０ｍｉｃｒｏｇ／１０６細胞／日のヘパラン硫酸と、少なくとも約２００〜３００、好ましくは少なくとも約３００ｐｉｃｏｇ／ｍｌ／日のＴＧＦ―β１と、約２００ｐｉｃｏｇ／ｍｌを下回る、好ましくは約４００ｐｉｃｏｇ／ｍｌ以下のｂ―ＦＧＦとを含む調整培地をつくることができ、前述の抑制性の表現型を有する。
一般に本発明の目的においては、流動可能な粒状材料の投与は脈管アクセス構造体、隣接または周辺の部位に局所的に行われる。移植可能材料の堆積部位は、管腔外である。本明細書に予定される、局所的な管腔外への堆積は、以下の通りに達成できる。
特に好ましい実施形態では、流動可能組成物はまず、経皮的に投与されて血管周囲スペースに入り、その後適切な針、カテーテルまたは他の適切な経皮注射タイプの送達デバイスを使用して、管腔外部位に堆積させられる。あるいは、流動可能組成物は、所望の管腔外部位への送達を助ける確認ステップと合わせて、針、カテーテルまたは他の適切な送達デバイスを使用して経皮的に送達される。確認ステップは、経皮的送達の前またはこれと同時に行いうる。確認ステップは、たとえば血管内超音波診断法、他の通常の超音波、透視法、および／または内視法などを使用して行いうる。確認ステップは選択的に行われ、本発明の方法を実施する上で必要なものではない。
流動可能組成物は、腔内投与、すなわち血管内に投与されてもよい。たとえば、血管内に挿入できる任意のデバイスによって組成物を送達できる。この場合には、このような腔内送達デバイスは、血管の管腔の壁を貫通して血管の非管腔表面に達するための、横断または貫通デバイスを備えている。その後、脈管アクセス構造体の部位、隣接または周辺部位の血管の非管腔表面に、流動可能組成物が堆積させられる。
本明細書においては、管腔外とも呼ばれる非管腔表面には、血管の外部表面または血管周囲表面が含まれ、または血管の外膜、中膜または内膜の内部でありうる。本発明の目的においては、非管腔または管腔外とは、管腔の内部表面以外の任意の表面をいう。
本明細書で検討される貫通デバイスは、脈管アクセス構造体を崩壊させずに血管の非管腔表面に流動可能組成物を送達できる、単一の送達地点、または所望の幾何学的構成に配置された複数の送達地点などが可能でありうる。複数の送達地点は、円、ブルズアイ、または線形配列の配置等に配置されうる。貫通デバイスは、複数の送達地点を含むバルーンステント等のステント穿孔器であってもよい。
本発明の好ましい実施形態によれば、貫通デバイスは、脈管アクセス構造体の部位の近位または遠位の、血管の管腔内部表面を通じて挿入される。脈管アクセス構造体の部位での貫通デバイスの挿入によって、臨床対象において脈管アクセス構造体が崩壊し、そして／または動静脈または末梢グラフトが離開する場合がある。したがって、そのような対象においては、脈管アクセス構造体から離れた位置で、好ましくは臨床医が具体的な状況に照らして判断する距離をおいて、貫通デバイスを挿入するように注意しなければならない。
流動可能組成物は、処置される脈管アクセス構造体の部位、または脈管アクセス構造体の部位の隣接もしくは周辺部のいずれかの血管周囲表面に堆積させられることが好ましい。たとえば近位吻合部、遠位吻合部や、両吻合部の隣接部のたとえば吻合部上流、吻合部の反対側の血管外側表面等、脈管アクセス構造体に対して様々な位置に組成物を堆積させうる。好ましい実施形態によれば、隣接部とは、脈管アクセス構造体の部位から約２ｍｍ〜２０ｍｍ以内である。別の好ましい実施形態では、部位は約２１ｍｍ〜４０ｍｍ以内であり、さらに別の好ましい実施形態では、部位は約４１ｍｍ〜６０ｍｍ以内である。別の好ましい実施形態では、部位は約６１ｍｍ〜１００ｍｍ以内である。あるいは、隣接部位とは、堆積した組成物が血管に対する所期の効果を発揮できる、臨床医が判断した脈管アクセス構造体付近の他の任意の隣接箇所である。
別の実施形態では、流動可能組成物は、脈管アクセス構造体部または隣接または周辺部の、外科的に露出した管腔外部位に直接送達される。この場合には、部位の直接観察により送達を誘導および指示する。さらに、この場合には、上述の確認ステップを同時に使用して送達を補助しうる。ここでも、確認ステップを行うかは任意である。
（管腔外への投与。）本発明の目的においては、流動可能組成物の投与は、処置を必要とする部位またはその隣接または周辺部位に局所的に行われる。本明細書で検討される、局所的な管腔外への堆積は、以下のようにして達成できる。
針、カテーテルまたは他の適切な送達デバイスを用いて、流動可能組成物が経皮的に送達される。あるいは、処置を必要とする部位への送達を容易にするための誘導方法を同時に使用して、流動可能組成物が経皮的に送達される。血管周囲のスペースに入ったら、臨床医は、処置を必要とする部位、隣接または周辺部の管腔外部位に流動可能組成物を堆積させる。通常の超音波、透視法、内視法等により、経皮的送達を最適に誘導および指示しうる。
別の実施形態では、流動可能な組成物は、処置を必要とする部位またはその隣接または周辺部の外科的に露出した管腔外部位に局所的に送達される。この場合には、処置を必要とする部位の直接観察により送達を誘導および指示する。また、この場合には、上述のように他の誘導方法を同時に使用して送達を補助しうる。
この方法での使用に適する流動可能組成物の例は、本明細書と同日付で出願されており全内容が参照により本明細書に組み込まれる同時係属中の出願、ＰＣＴ／ＵＳ＿＿（代理人整理番号ＥＬＶ―００８ＰＣと同じ）と、本明細書と同日付で出願されており全内容が参照により本明細書に組み込まれる同時係属中の出願、ＰＣＴ／ＵＳ＿＿（代理人整理番号ＥＬＶ―００９ＰＣと同じ）に開示されている。
（吻合部シーラント。）一定の他の実施形態では、本発明の流動可能組成物は、特に吻合部シーラントとしての役割をすることもできるし、または一般に外科用シーラントとしての役割をすることもできる。このような二つの目的の実施形態においては、組成物は、構造体の外面に接触させられたり、外面上に弓形に適用されたり、円周方向に適用されたりするときに、二つ以上の管状構造体の接合部を密閉したり、管状構造の空隙を密閉したりする効果もある。このようなシーラントは、血管組織をさらに傷つけ、たとえば管腔の内皮を損傷しうる縫合の必要をなくすことができる。このようなシーラントは、吻合周辺部をさらに安定させることもでき、これにより、縫合による修復を補強できる。必要とされるのは、この二つの目的の組成物のシーラントタイプの性質によって、同時に存在する細胞の所望の表現型の発現と組成物の細胞ベースの機能性とが、妨げられたり損なわれたりしないことだけである。
一定のシーラントの実施形態の目的においては、流動可能組成物には、内皮細胞性または内皮細胞に類似する細胞集団を支えるために必要な性質を有するとともにシーラントの性質を有するフィブリン網等の成分をそれ自体が含む、生体適合性マトリクスを含む。さらに、生体適合性マトリクス自体が、細胞集団を支えるために必要な性質だけでなく、シーラントの性質を有しうる。他の実施形態の場合には、少なくとも一部細胞によってシーラント機能が与えられうる。たとえば組成物に伴う細胞が、必要な細胞機能は発現／維持しながら、基体がシーラントの性質を得るように基体を改変しうる物質を生産することが考えられる。一定の細胞は本来的にこの物質を生産でき、他の細胞はそのように加工されうる。
（移植可能材料を調製、貯蔵、および輸送する方法）
（細胞を入手および調製する方法。）移植可能材料には、同種、異種または自家の内皮細胞または内皮細胞に類似する細胞が含まれる。内皮細胞は患者、死体または細胞バンクから得られる。内皮細胞は血管組織から、より好ましくは大動脈組織から、最も好ましくは冠状動脈組織、肺動脈組織または回腸動脈組織から得られる。あるいは、内皮細胞または内皮細胞に類似する細胞は、非血管組織または器官、内皮前駆細胞または他の前駆細胞、または幹細胞から得られる。さらなる実施形態によれば、細胞は遺伝子を改変、組み替えまたは操作される。
ドナーから得られた各ロットの細胞は、内皮細胞の純度、生物学的機能、マイコプラズマ、細菌、カビ、公知のヒト病原体および他の外来性の薬剤の有無につき広範囲に試験される。好ましい実施形態によれば、細胞は、Ｏ型血液のドナーから得られる。細胞は、後にワーキング・セル・バンクの調製、培養による増殖、移植可能材料への配合を行うために、第２または第４継代にさらに増殖させられ、特徴づけされ、周知の技術を用いてマスターセルバンクとして−１４０℃で凍結保存される。
選択されたマスターセルバンクはその後、血管内皮細胞増殖培地約１５ｍＬを含むＴ―７５フラスコ内で増殖させられ、ワーキング・セル・バンクが形成される。フラスコは、約３７℃およびＣＯ２５％／空気９５％、湿度９０％に維持されたインキュベータに最低３０分間配置される。１本または２本のバイアルの細胞を−１６０℃〜１４０℃のフリーザから取り出し、約３７℃で解凍する。解凍された各バイアルの細胞は、２つのＴ―７５フラスコに、好ましくは約３．０×１０３個／ｃｍ３、しかし１．０×１０３以上、７．０×１０３以下の密度で播種される。細胞を含むフラスコを、インキュベータに戻す。約８〜２４時間後にスペント培地を除去し、新しい培地に置き換える。その後、細胞が好ましくは約８５〜１００％、しかし６０％以上かつ１００％以下のコンフルエンスに達するまで、培地を２〜３日毎に変える。移植可能材料が臨床応用を意図するものである場合は、細胞の解凍後培養および本発明の移植可能材料の製造において、抗生物質を含まない培地だけが用いられる。
その後血管内皮細胞増殖培地を除去し、単層の細胞を１０ｍＬのＨＥＰＥＳ緩衝食塩水（ＨＥＰＥＳ）ですすぐ。ＨＥＰＥＳを除去し、２ｍＬのトリプシン（約０．２５ｍｇ／ｍＬ）を加えてＴ―７５フラスコの表面から細胞を剥離する。一旦剥離が生じたら、３ｍＬのトリプシン中和液（ＴＮＳ）を加えて酵素反応を止める。さらにＨＥＰＥＳを５ｍＬ加え、血球計を用いて細胞を数える。細胞懸濁液を遠心分離し、抗生物質を含まないＥＧＭ―２を使用して、約１．７５×１０６細胞／ｍＬの密度に調節する。
ワーキング・セル・バンクを形成するために細胞を冷凍する場合は、培地に１０％ＦＢＳ（最終的に１２％ＦＢＳ）と１０％ジメチルスホキシド（ＤＭＳＯ：ｄｉｍｅｔｈｙｌｓｕｆｏｘｉｄｅ）が加えられる。得られた細胞懸濁液１ミリリットル容量をクリオバイアルに分散し、−８０℃のフリーザに４〜２４時間配置する。その後冷凍細胞、すなわちワーキング・セル・バンクは、−１４０℃に設定されたフリーザへ移され、使用まで貯蔵される。ワーキング・セル・バンクは、第５継代において冷凍される。
（移植可能材料を調製する方法。）事前に切断した生体適合性マトリクス片または流動可能マトリクスのアリコートに、約３７℃、ＣＯ２５％／空気９５％で抗生物質なしのＥＧＭ―２を加えて、１２〜４８時間再水和させる。その後、マトリクス材料を再水和容器から取り出し、個々の組織培養ディッシュに配置する。ワーキング・セル・バンクからの細胞を、約１．５〜２．０×１０５細胞（１．２５〜１．６６×１０５細胞／ｃｍ３のマトリクス）の好ましい密度でマトリクス材料に播種し、約３７℃およびＣＯ２５％／空気９５％、湿度９０％に維持されたインキュベータに３〜４時間配置し、細胞接着を促進する。一実施形態によれば、その後、播種したマトリクスを、ＥＧＭ―２と０．２μｍフィルタを含むキャップを備えた個々の密閉可能容器またはチューブに配置し、約３７℃およびＣＯ２５％／空気９５％でインキューベートする。その後細胞がコンフルエンスに達するまで、培地を２〜３日ごとに変える。代替的な実施形態によれば、播種したマトリクスは、プラグ・シールキャップを備え１０％ＣＯ２でパージされた、個々の密閉可能容器またはチューブに配置される。この方法では、容器は培地交換のたびに１０％ＣＯ２でパージされる。
（細胞のコンフルエンスおよび機能性の測定方法。）移植可能材料の試料を、３日目または４日目、６日目または７日目、９日目または１０日目、および１２日目または１３日目、またはその前後で取り出し、細胞を計数し、生存率を評価し、増殖曲線を作製および評価して、増殖特性を評価し、コンフルエンス、ほぼコンフルエンス、またはコンフルエンス後に達しているか測定する。細胞数は、ＨＥＰＥＳ／ＣａＣｌ２溶液中０．５ｍｇ／ｍＬのコラゲナーゼ溶液で移植可能材料のアリコートを完全に分解して得られる。分解された移植可能材料の容積を測定した後、既知量の細胞懸濁液を０．４％トリパンブルーで希釈し（細胞対トリパンブルー４：１）、トリパンブルー排除により生存率を評価する。血球計算盤を使用して生存細胞、死細胞、および全細胞を数える。培養日数に対する生存細胞数をとって、増殖曲線を作製する。好ましくは、細胞を含む移植可能材料は、細胞がコンフルエンスに達した後移植されるが、コンフルエント後またはほぼコンフルエントの細胞を使用できる。細胞が１２日目または１３日目までにコンフルエントにならない場合は、培地を変えてもう一日培養を続ける。コンフルエンスに達するか、播種から１４日後までこのプロセスを続ける。１４日目に細胞がコンフルエントでない場合は、通常はロットを廃棄するが、これは必要ではない。プロセス中のチェックを行った後に細胞がコンフルエントであると判定されたら、最後の培地交換を行う。この最後の培地交換は、フェノールレッドを含まず抗生物質も含まないＥＧＭ―２を用いて行う。培地交換の直後に、チューブに出荷用の無菌プラグ・シールキャップを取り付ける。
移植可能材料は、体内移植の前にさらに機能性の徴候を試験される。たとえば、培養期間中に調整された培地を回収し、培養内皮細胞によって生産されるヘパラン硫酸、トランスフォーミング成長因子―β１（ＴＧＦ―β１）、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂ―ＦＧＦ）、および一酸化窒素（ＮＯ）の値、およびインビトロで平滑筋細胞増殖および血栓症を抑制する細胞の能力を確認する。前述のアッセイおよびパラメータにしたがい、調整培地を評価する。現在好ましいアッセイはヘパラン硫酸のアッセイであり、単独で用いて機能性を確認できる。あるいはこれを、植え付けられた細胞によって生産されるＴＧＦ―β１、ｂ―ＦＧＦおよびＮＯのアッセイの一つ以上と組み合わせて、および／または本明細書で別に説明したインビトロ平滑筋細胞抑制アッセイと組み合わせて使用してもよい。
（移植可能材料を凍結保存する組成物および方法。）生体適合性マトリクスに植え付けられたほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後の細胞集団を含む移植可能材料は、凍結保存して何ヶ月または何年という長期間、または無期限に貯蔵できる。製造時間および費用が減ることに加えて、凍結保存によって、臨床用の有効で、完全に試験され、生存可能で確認された、機能的移植可能材料が、生産または輸送に関連する遅れを伴わずにいつでも提供される。
移植可能材料は、細胞がほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後となったときに凍結保存できる。様々な実施形態によれば、移植可能材料は、生体適合性マトリクスに細胞を播種してから１０〜１４日、より好ましくは播種後１０〜１２日、最も好ましくは播種後１２日で凍結保存される。一般に内皮細胞は、播種後１０日またはその前後では、コンフルエント前またはコンフルエントであり、播種後１２日ではコンフルエント２〜３日後である。
凍結保存前および選択的に凍結保存後に、細胞数、生存率、および機能の徴候につき移植可能材料を評価する。例示的な細胞機能アッセイには、ヘパラン硫酸（ＨＳ）、トランスフォーミング成長因子（ＴＧＦ）―β１、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂ―ＦＧＦ）、および一酸化窒素（ＮＯ）の値の評価、および培養平滑筋細胞（ＳＭＣ）の増殖を抑制する能力の評価がある。さらに、製造業者および／または医師は、移植可能材料を患者に投与する前に、上に詳述したトリパンブルー・アッセイを使用して細胞の生存率を評価しうる。好ましい実施形態によれば、全細胞数が４００，０００個／ｃｍ３以上であり、８０％〜９０％以上の細胞が生存し、ヘパラン硫酸が０．２３μｇ／ｍＬ／日以上あり、ＴＧＦ―β１が３００ｐｇ／ｍＬ／日以上あれば、移植可能材料は許容範囲である。さらなる実施形態によれば、ｂ―ＦＧＦの値が３００ｐｇ／ｍＬ／日以下であれば、移植可能材料は許容範囲である。
一実施形態によれば、移植可能材料は、多糖類および血清を加えた凍結保存剤を含む凍結保存培地組成物中に凍結保存される。好ましい実施形態によれば、移植可能材料は、約１０％のＤＭＳＯを含み、約４．５％のデキストランと約５０％のＦＢＳを加えた約５ｍＬのＣｒｙｏＳｔｏｒ（商標）ＣＳ―１０溶液（バイオライフ・ソリューションズ、ニューヨーク州オスウィーゴ）を含む凍結保存培地組成物中に凍結保存される。さらなる実施形態によれば、ＦＢＳの濃度は、細胞培養で使用するＦＢＳの値より高く、約２０％〜８０％、より好ましくは約４０％〜６０％、および最も好ましくは約５０％である。さらなる実施形態によれば、ＤＭＳＯの濃度は約５％〜２０％のＤＭＳＯ、より好ましくは約７％〜１５％、最も好ましくは約１０％のＤＭＳＯである。さらなる実施形態によれば、デキストランの濃度は約２％〜８％、より好ましくは約４％〜６％、および最も好ましくは約４．５％である。一実施形態によれば、デキストランの分子量は約１０，０００〜５００，０００、より好ましくは約２０，０００〜２００，０００、最も好ましくは約７０，０００である。好ましい実施形態によれば、凍結保存培地組成物のｐＨは約６．８〜８．０、より好ましくは約７．２〜７．６、最も好ましくは約７．４である。
凍結保存の一方法によれば、移植可能材料は、細胞培養バイアルから１５ｍＬクリオバイアル（Ｎａｌｇｅｎｅ（登録商標）、ナルジェヌンク・インターナショナル、ニューヨーク州ロチェスター）へ移され、そこに約５ｍＬの凍結保存培地組成物が加えられる。さらなる実施形態によれば、クリオバイアルの容量は約６〜１０ｍＬ、より好ましくは約１０〜１５ｍＬ、最も好ましくは約１５ｍＬである。一実施形態によれば、凍結保存培地の量対クリオバイアル中の空気の量の比率はほぼ１：１〜１：２、より好ましくはほぼ１：１〜２：３、最も好ましくはほぼ１：１である。
凍結保存の一方法によれば、移植可能材料と凍結保存培地組成物とを含むクリオバイアルは、冷凍容器（Ｍｒ．Ｆｒｏｓｔｙ（商標）、ナルジェヌンク・インターナショナル、ニューヨーク州ロチェスター）に配置される。イソプロパノールを、冷凍容器の容積の半分程度を満たすように冷凍容器に加える。一実施形態によれば、その後冷凍容器は−２０℃のフリーザに移される。別の実施形態によれば、その後冷凍容器は−８０℃のフリーザに移される。さらなる実施形態によれば、−８０℃のフリーザで約１６時間後、冷凍容器は液体窒素気相（約−１４０℃〜−１６０℃）に移される。様々な実施形態によれば、冷凍容器は約−４℃〜−１６０℃、より好ましくは約−２０℃、約−８０℃または−１６０℃、および最も好ましくは約−１４０℃〜−１６０℃の温度に維持される。移植可能材料は、様々な実施形態により２ヵ月、４ヵ月、６ヵ月、８ヵ月、１０ヵ月、１２ヵ月およびそれ以上、凍結保存状態に維持されうる。
移植可能材料をゆっくり解凍しないと、生体適合材料が複数の部分に分裂して、マトリクスの完全性、細胞のコンフルエンシーおよび生存率が損なわれやすい。移植可能材料をゆっくり解凍することにより、材料の完全性が高まる。移植可能材料をゆっくり解凍する好ましい方法によれば、冷凍移植可能材料と凍結保存培地とを含むクリオバイアルをフリーザ（約−４℃〜−８０℃）または液体窒素気相（約−４０℃〜−１６０℃）から取り出され、室温で約１５分間解凍され、その後室温水浴内でさらに１５分解凍される。その後移植可能材料はクリオバイアルから取り出され、洗浄されて残る凍結保存培地が除去される。
一実施形態によれば、移植可能材料は、インビトロ評価のためにラボで解凍される。この実施形態によれば、移植可能材料は、５分間室温で１５ｍＬの洗浄用培地（ＥＢＭ―ＰＲＦおよび５０μｇ／ｍＬゲンタマイシン）で二回洗浄され、その後、約１５ｍＬの洗浄用培地で３０分間３７℃および５％ＣＯ２で最終洗浄される。洗浄手順に続き、移植可能材料は、３７℃および５％ＣＯ２の１０ｍＬのＥＧＭ―２に回復時間として約４８時間入れられる。移植可能材料は、臨床的に使用する前に、または後で移植可能材料を輸送用に梱包するために、さらに２４時間選択的に調整されうる。
別の実施形態によれば、移植可能材料は、患者への移植のために診療所で解凍される。この実施形態によれば、移植可能材料が、クリオバイアルから取り出され、約５００ｍＬの洗浄用培地で二回洗浄される。様々な実施形態によれば、洗浄用培地には、ＵＳＰ等級の生食水、乳酸化リンゲル溶液、およびＥＢＭ―ＰＲＦが室温で含まれる。移植可能材料は、第一洗浄用培地溶液に約１〜４０分間、より好ましくは約２〜２５分間、および第二洗浄用培地溶液に約１〜２０分間、より好ましくは約１〜１０分間とどめられる。第二洗浄用培地から移植可能材料を取り出し、患者に移植する。
（移植可能材料の保存寿命を延長する組成物および方法。）生体適合性マトリクスに植え込まれたほぼコンフルエント、コンフルエント、またはコンフルエント後の内皮細胞集団を含む移植可能材料の実施形態は、貯蔵および／または輸送のために、生存可能な安定保存状態において、室温で約２１〜２８日間維持できる。さらなる実施形態によれば、移植可能材料は、室温で少なくとも約１週間、少なくとも約２週、少なくとも約３週、または少なくとも約４週維持できる。
移植可能材料は、様々な実施形態にしたがい、生体適合材料に細胞を播種してから１０〜１４日後に、室温で貯蔵するために調製されうる。現在好ましい実施形態によれば、移植可能材料は、播種から１２日後に、室温での貯蔵のために調製される。別の現在好ましい実施形態によれば、移植可能材料は、播種から１０日後に、室温での貯蔵のために調製される。
輸送培地に貯蔵する前および選択的にその後に、細胞数、生存率および機能の徴候につき移植可能材料を評価しうる。例示的な細胞機能アッセイには、ヘパラン硫酸（ＨＳ）、トランスフォーミング成長因子（ＴＧＦ）―β１、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂ―ＦＧＦ）、および一酸化窒素（ＮＯ）の値の評価、および培養平滑筋細胞（ＳＭＣ）の増殖を抑制する能力の評価がある。さらに、製造業者および／または医師は、移植可能材料を患者に投与する前に、上に詳述したトリパンブルー・アッセイを使用して細胞の生存率を評価しうる。好ましい実施形態によれば、全細胞数が４００，０００個／ｃｍ３以上あり、８０％〜９０％以上の細胞が生存し、ヘパラン硫酸が０．２３μｇ／ｍＬ／日以上あり、ＴＧＦ―β１が３００ｐｇ／ｍＬ／日以上あれば、移植可能材料は許容範囲である。さらなる実施形態によれば、ｂ―ＦＧＦの値が３００ｐｇ／ｍＬ／日以下であれば、移植可能材料は許容範囲である。
移植可能材料は、添加ＥＧＭ―２を含む輸送培地組成物中に室温で貯蔵される。細胞培養のために使用する場合の、通常の無添加のＥＧＭ―２には、約２％のＦＢＳ、約０．２ｍｇ／ｍＬのヒドロコルチゾン、約２ｎｇ／ｍＬのＶＥＧＦ、約４ｎｇ／ｍＬのｈＦＧＦ、約５ｎｇ／ｍＬのＲ３―ＩＧＦ―１、約７５ｍｇ／ｍＬのアスコルビン酸、約１０ｎｇ／ｍＬのｈＥＧＦ、および約１ｎｇ／ｍＬのヘパリンが含まれる。さらなる実施形態によれば、無添加のＥＧＭ―２には、約３０μｇ／ｍＬのゲンタマイシンまたは約１５ｎｇ／ｍＬのアンホテリシンＢ等を含む抗生物質がさらに含まれる。
好ましい実施形態によれば、移植可能材料は、輸送培地中のＶＥＧＦの全体濃度が約４ｎｇ／ｍＬとなるように約２ｎｇ／ｍＬのＶＥＧＦを添加した、フェノールレッドを含まない約５０ｍＬのＥＧＭ―２（キャンブレックス・バイオサイエンス、ニュージャージー州イーストルサフォード）を含む輸送培地組成物中に室温で貯蔵される。さらなる実施形態によれば、通常のＥＧＭ―２に、約０．１〜４ｎｇ／ｍＬのＶＥＧＦ、より好ましくは約１〜３ｎｇ／ｍＬのＶＥＧＦ、および最も好ましくは約２ｎｇ／ｍＬのＶＥＧＦが添加される。好ましい実施形態によれば、細胞を曝露する前の輸送培地のｐＨは、約７．４〜８．０である。細胞の曝露が進むと輸送培地のｐＨは下がり、細胞曝露後の輸送培地のｐＨは、約６．８〜７．４となる。
別の実施形態によれば、移植可能材料は、輸送培地中のＦＢＳの全体濃度が約１０％となるように約８％のＦＢＳを添加した、フェノールレッドを含まない約５０ｍＬのＥＧＭ―２（キャンブレックス・バイオサイエンス、ニュージャージー州イーストルサフォード）を含む輸送培地組成物中に室温で貯蔵される。さらなる実施形態によれば、通常のＥＧＭ―２に、約１〜５０％のＦＢＳ、より好ましくは約２〜２０％のＦＢＳ、および最も好ましくは約８％のＦＢＳが添加される。
約３７Ｃより低温のたとえば室温で、最高約２１〜２８日間移植可能材料の生存率を維持する上で、輸送培地の量は重要な条件である。輸送培地の量は、細胞の老廃物の最適な濃度または希釈を提供するとともに、細胞が分泌する有益な生成物の最適な濃度を提供するために十分な量でなければならない。一般に、移植可能材料を維持する輸送培地の最適な量は、細胞の標準的な細胞培養温度である３７℃より低温になると増加する。好ましい実施形態によれば、移植可能材料は、約５０ｍＬの輸送培地中に室温で貯蔵される。さらなる実施形態によれば、移植可能材料は、約２８〜１５０ｍＬの輸送培地、より好ましくは約５０〜１００ｍＬの輸送培地、および最も好ましくは約５０ｍＬの輸送培地中に貯蔵される。一実施形態によれば、輸送バイアルには約４．２〜１７×１０５個／ｃｍ３の細胞のマトリクス材料が含まれる。別の実施形態によれば、輸送バイアルには約０．１〜０．４×１０５個／ｍＬの細胞の輸送培地が含まれる。
保存寿命における貯蔵の一方法によれば、移植可能材料は、貯蔵および／または輸送のために細胞培養バイアルにとどめられる。好ましい実施形態によれば、細胞培養バイアルは、５０ｍＬの細胞培養バイアル（エバーグリーンサイエンティフィック、カリフォルニア州ロサンゼルス；ベクトン・ディッケンソン社、ニュージャージー州フランクリンレイク）である。別の貯蔵方法によれば、移植可能材料は、３０ｍＬ細胞培養バイアルで培養され、その後、貯蔵および／または輸送の前に、より多量の輸送培地を収容するために細胞培養バイアルから５０ｍＬ輸送バイアルへ移される。さらなる貯蔵方法によれば、移植可能材料は、細胞培養バイアルから１５０ｍＬ輸送バイアルへ（Ｎａｌｇｅｎｅ（登録商標）、ナルジェヌンク・インターナショナル、ニューヨーク州ロチェスター）移される。様々な実施形態によれば、輸送バイアルの容量は約５３〜５８ｍＬ、より好ましくは約５４〜５６ｍＬ、および最も好ましくは約５７ｍＬである。好ましい実施形態によれば、輸送バイアルには少なくとも約５〜６ｍＬのＣＯ２５％／空気９５％が含まれ、または、空気の量対培地および移植可能材料の量の比率が約１：８〜１：１２、より好ましくは１：１０である。フィルタキャップがバイアルから除去され、バイアルはプラグ・シールキャップで密閉され（エバーグリーンサイエンティフィック、カリフォルニア州ロサンゼルス）、室温で貯蔵される前にキャップが締められる。
（移植可能材料の地上輸送および空輸のための梱包。）周囲温度での貯蔵のために梱包され、地上運送または航空運送による輸送を意図した移植可能材料の輸送バイアルは、以下の方法の一つにしたがって梱包される。一方法によれば、３本の輸送バイアルが２つの再封可能プラスチックバッグ内に配置され、バッグが密閉される。その後２つのバッグ（６本のバイアル）を、内箱に梱包する。別の方法では、各バイアルが、個々の再封可能プラスチックバッグ内に配置され、バッグが密閉される。その後４本のバイアルを、プラスチックシリンダに梱包する。記載の梱包形態はそれぞれ、熱影響、運送中の損害から製品を保護し、清潔な無菌環境を維持するための複数の境界層を提供するようにつくられている。その後、内箱またはプラスチックシリンダを、断熱された外側の出荷箱に梱包する。外側の出荷箱は、フォームインサートとゲルパック利用して所望の温熱環境（好ましくは約１５〜２５℃）を維持し、運送中の損害から保護する。各ロットに適切な添付文書が含まれる。内箱またはプラスチックシリンダおよび外側の出荷箱だけでなく、移植可能材料を含むバイアルにも、適切にラベルが貼られる。
−２０℃、−８０℃、または−１４０℃〜−１６０℃での貯蔵のために梱包され、地上運送または航空運送による輸送を意図した移植可能材料のクリオバイアルは、以下の方法の一つにしたがって梱包される。一方法によれば、各クリオバイアルが個々の再封可能プラスチックバッグ内に配置され、バッグが密閉される。その後クリオバイアルは、ドライアイスを含む断熱された内箱、たとえばＳｔｙｒｏｆｏａｍ（商標）（ダウ・ケミカル社、ミシガン州ミッドランド）の内箱に梱包される。クリオバイアルは、ドライアイスに埋められまたは沈められる。内箱はドライアイス（好ましくは約−８０℃）を利用して、所望の温熱環境（好ましくは約−８０℃〜−１６０℃）を維持し、運送中の損害からクリオバイアルを保護する。その後、Ｓｔｙｒｏｆｏａｍ（商標）の内箱は、断熱された外側の出荷箱に梱包される。一実施形態によれば、診療所に到着したクリオバイアルは、長期間の貯蔵のために−２０℃または−８０℃のフリーザに配置される。別の実施形態によれば、診療所に到着したクリオバイアルは、前述のすすぎおよび解凍手順を経て、直ちに患者に移植される。
様々な実施形態によれば、移植可能材料は、移植可能材料の生存率および機能性を維持しながら、使用の前にほぼ室温で輸送培地中に少なくとも約３週間の貯蔵した後、および／または前に、凍結保存培地中で凍結保存することにより約１ヵ月〜１年間維持できる。
移植の直前に、輸送、凍結保存または調整用培地から移植可能材料を取り出し、約２５０〜５００ｍＬの無菌生食水（ＵＳＰ）で二度または三度すすいで、ＦＢＳを含む残りの培地成分を除去する。移植の前に、製造業者および／または医師は、たとえば上に詳述したトリパンブルー・アッセイを用いて移植可能材料の試料アリコートの生存率を試験しうる。
申込者または申込者の代理人による移植可能材料の請求を受けると、以下に例証される一連の事象が開始される。上記の通り、凍結保存インプラントは、ドライアイスで輸送するために調製され、インプラントは、上記の通り室温で輸送するために調製されるか、またはインプラントは、生体適合性マトリクスに細胞を播種し、上記の機能的表現型の一つ以上を発現するまでインビトロ成長させることにより、調製される。播種のための細胞は、前述のとおり細胞バンクから得られ、またはインプラントの予定レシピエントから直接得てもよい。移植可能材料に含まれる細胞の供給源または種類に関わりなく、予定レシピエントとの細胞の適合性を最初に試験する必要はない。つまり、本発明の移植可能材料による処置は、製造または移植の前に予定レシピエントとの関係で細胞型、細胞マッチング、または細胞適合性試験を行う必要がない。本明細書に記載される教示に従って調製される場合、移植可能材料による処置は細胞の種類を問わず、細胞適合性も問われず、細胞マッチングもいらない処置方法である。本発明のこの特徴は、予定レシピエントと移植細胞、組織または器官がマッチするかを判断する予試験を通常必要とし、マッチしないと処置できない従来の細胞ベース、組織ベース、または器官ベースの処置ときわだって対照的である。本発明は、マッチの有無を判断する予試験の必要をなくすことにより、本明細書に記載の損傷または疾患のいずれかを処置するための、すぐに利用できる移植可能材料の連続的な供給を臨床医に提供する。
（実施例１：ヒトＡＶ瘻の研究）
この実施例は、瘻の成熟を増強および／または瘻の成熟不全を防止するために、血管内皮細胞含む移植可能材料の好ましい実施形態を試験および使用するための実験プロトコルを提供する。標準的な外科的手技を用いて、所望の解剖学的位置に動静脈瘻が作製される。その後、可撓性の平面形態の移植可能材料が、外科的に作製された瘻に隣接した血管周囲スペースに設けられる。一つの例示的な手順の詳細を以下に記載する。前述のように、移植可能材料の配置および構成は、臨床状態に合うように変えられうる。この研究においては、好ましい可撓性の平面形態の例が、少なくとも図１または２Ａに示される。
以下に記載の実験およびプロトコルは、十分な指針を提供する。
１．３ヵ月目の動静脈瘻成熟不全の評価
この研究においては、成熟不全とは、透析のために瘻に反復的にカニューレを挿入できないこと、および、３５〜５００ｍＬ／分、好ましくは少なくとも３５０ｍＬ／分の十分な透析血流を瘻の作製後約１２週間以内に得られないことと定義される。標準的処置方法が利用される。
２．５日目、２週間目、１ヵ月目、３ヵ月目および６ヵ月目およびその後の時点における、カラーフロー・ドップラー超音波によるアクセス流速および組織（％狭窄領域）の評価。
カラーフロー・ドップラー超音波で測定したベースライン測定値（術後５日）と術後６ヵ月の間の絶対的アクセスフローの減衰率。ドップラー超音波で６ヵ月目の狭窄のマグニチュードが測定され、ベースライン（術後５日目の値）と比較される。標準的処置方法が利用される。
３．同種細胞産物の使用に伴うＨＬＡ抗体の反応の評価。
術前の値に比較した、術後５日目、２週間目、１ヵ月目、３ヵ月目および６ヵ月目におけるドナーＨＬＡ抗体の定量的免疫学的評価。標準的処置方法が利用される。
特に研究には、動静脈瘻手術を受ける１０人のヒト尿毒症患者を含む。動静脈瘻手術を受けた患者は（手術直後に）、二つ（２）の１×４×０．３ｃｍ（１．２ｃｍ３）の可撓性の平面形態の実施形態の適用を受ける。一つ（ｉ）は吻合接合部に配置され、もう一つは、吻合部の遠位の近位静脈セグメントに縦に配置される。さらに５人の患者が登録されるが、インプラントは受けない。これらの５人の患者は、標準的な処置と比較するために使われる。
５日目、２週間目、１ヵ月目、３ヵ月目および６ヵ月目に臨床的追跡調査を行う。カラーフロー・ドップラー超音波を用いたアクセスフロー測定を５日目に行ってベースライン値を定め、その後術後２週間目、１ヵ月目、３ヵ月目および６ヵ月目に行う。絶対的流量が３５０ｍＬ／分より少ないか、先行測定から２５％を超えて流量が減少しているか、５０％を超える領域に狭窄がある（ドップラー超音波で測定）患者には、血管造影を行う。血管造影によって５０％を超す狭窄病変があると判断される場合には、血管形成術等の臨床的インターベンションが認められる。瘻が１２週以内に成熟しない患者には、画像診断を行う。１２週以内に成熟していない瘻の機能的成熟を助けるために、血管形成術および側枝を結紮し、または瘻を修正する手術を含む、標準的な臨床的インターベンション処置が認められる。各患者の研究参加期間は６ヵ月である。
したがって、合計１５人の患者が治験に登録される。１０人の患者が各々２つのインプラントを受け、５人の患者が標準的な処置を受けて比較される。血液透析アクセスのためにＡＶ瘻の配置を受ける患者も、登録される。
本発明の移植可能材料で処置された１０人の処置された患者は、以下の研究計画にしたがい、標準的なＡＶ瘻の配置、投薬、処置およびインプラントを受ける。これらの患者のうち最初の５人は、二つの可撓性の平面形態のインプラントを受け、一つは吻合部に配置され、一つは吻合部の遠位の近位静脈セグメントに縦に配置される。この第一群の中の最後の患者を処置した後、次の群を処置する前に１ヵ月の観察期間をもうける。最初の５人の患者の１ヵ月間のデータから良好な総括を得た後、最後の５人の患者が処置される。
５人の患者は治験に登録され、標準的なＡＶ瘻の配置、投薬、処置を受けるが、移植可能材料は受けない。これらの患者は標準的な処置と比較するために使われ、インプラント処置を受けた患者と同様の画像診断および免疫学的追跡調査を受ける。
標準的な手術法にしたがい、従来のＡＶ瘻の手術が行われる。瘻の完成後、しかし移植の前に、流出静脈直径が測定される。
歯のない鉗子を用いて、平面形態の移植可能材料をすすぎボウルから慎重に持ち上げる。アクセス手術が完了し、瘻を通る流れが確立され、全てのベースライン測定がなされた後に移植可能材料を適用する。移植可能材料を配置する前に、全ての出血を制御し、処置する領域をできるだけ乾かす。インプラント配置後には、領域を洗浄しない。吻合部を処置するために一つまたは二つのインプラントが用いられる。他のインプラントは、吻合部の遠位の近位静脈セグメントを処置するために用いられる。一定の実施形態においては、インプラントの中央部が血管の合流地点にくるまで、インプラントの端部を吻合部セグメントの下に通すことにより、側端の血管結合が処置される。その後、インプラントを縫合線の中心に保ちながら、両端部が縫合線に巻き付けられる。近位静脈セグメント（静脈と動脈の吻合部の遠位）は、吻合部から始まる静脈に沿って縦に移植可能材料を配置することにより処置される。移植可能材料は、静脈の周囲に完全に巻き付けられる必要はない。
ＡＶ瘻手術後に病院で回復中の患者は、標準的な看護手順により見守られる。バイタルサインを、厳密にモニタする。同時に投薬を記録する。５日目、２週間目、１ヵ月目、３ヵ月目および６ヵ月目に追跡調査のために通院する必要があることを患者に指示する。
５日目（ベースライン）、２週間目、およびその後は術後１ヵ月目、３ヵ月目および６ヵ月目にアクセスフローが記録される。狭窄の程度も、ドップラー超音波によって５日目に測定してベースライン値を定め、同様に比較のために２週間目、１ヵ月目、３ヵ月目および６ヵ月目に測定される。５ｃｃの全血試料をとって血清を得、術後５日目、２週間目、１ヵ月目、３ヵ月目および６ヵ月目の抗ＨＬＡ抗体値を判定する。
カラーフロー・ドップラー超音波を使用して、５日目（±２４時間）のアクセスフローを測定してベースライン測定値を定め、術後２週間目（±２日）、１ヵ月目（±４日）、３ヵ月目および６ヵ月目（±７日）に測定する。絶対的流量が３５０ｍＬ／分より少ないか、先行測定から流量が２５％を超えて減少しているか、５０％を超える領域に狭窄がある（ドップラー超音波で測定）患者には、血管造影を行う。血管造影によって５０％を超す狭窄の狭窄病変があると判断される場合には、血管形成術等の臨床的インターベンション処置が認められる。瘻が１２週以内に成熟しない患者には、画像診断を行う。１２週以内に成熟していない瘻の機能的成熟を助けるために、血管形成術および側枝を結紮し、または瘻を修正する手術を含む、標準的な臨床的インターベンションが認められる。このようなインターベンションの後に、修正された瘻の成熟を増強するため、および／または修正された瘻の機能を維持し、不全になりかけているか不全の瘻をレスキューするために、移植可能材料の体内移植を行うことができる。
（ＡＶ瘻研究の予想結果。）上記の通りに本発明の移植可能材料で処置された患者には、瘻の成熟の促進および／または瘻の成熟不全の防止の一つ以上の徴候がみられることが期待される。特に、処置された患者のそれぞれに、たとえば透析に十分な流量（たとえば３５〜５００ｍＬ／分、および好ましくは少なくとも３５０ｍｌ／分の血流）に至るまでの血流の改善、および／または透析のために瘻に反復的にカニューレを挿入する能力の改善等がみられるだろう。瘻の成熟の他の徴候は、静脈の壁厚である。良好に成熟したまたは成熟しつつある瘻は、静脈壁が厚化する。これは、標準的な医療による血管内超音波診断法（ＩＶＵＳ）を使用して測定される。簡潔にいうと、ＩＶＵＳを用いて静脈壁厚が測定され、内膜中膜肥厚が正確に測定される。処置された瘻または対照瘻にカニューレが挿入され、目標静脈および動脈内部に超音波探針が配置される。機能している瘻のさらに別の徴候は、適切な管腔直径である。本発明の移植可能材料により適切な管腔直径を維持でき、これにより、血流が妨げられず有効な透析に適切な速度、すなわち、透析装置のポンプ速度をわずかに上回る血流、または少なくとも透析中の再循環を防止する適切な血液速度になることが予想される。瘻の血管造影を使用して、管腔直径を連続的にモニタする。これは瘻の作製後遅くとも５日目に開始され、その後遅くとも術後３ヵ月目に行われる。標準的なドップラー超音波プロトコルを使用して、術後の管腔の狭小化を血流速度と関連づけする。本明細書に記載されるとおり、移植可能材料が、血流を透析に適切な速度以下に妨げる狭小化を阻止または遅延させることが予想される。不全の瘻を特徴づける管腔のこのような狭小化は、狭窄およびこれに伴う内膜の厚化により、または、厚化を伴わない血管の収縮および／または縮小により生じうる。現に厚化がみられる場合には、血管形成インターベンションが現在の標準的な臨床的手段である。負の組織リモデリングによる収縮および／または縮小の場合には、拡張法が現在標準的な臨床的インターベンションである。インプラントにより処置された瘻には、血管形成または拡張法が必要とされないことが予想される。
群としての処置された患者には、対照群と比較して、上記の成熟徴候のうちの少なくとも一つに、少なくとも増加差が見られることが予想される。
（実施例２：ＡＶグラフト動物試験）
この実施例は、動物被験体における機能的ＡＶグラフトの形成を促進するために、本発明の好ましい実施形態を試験および使用するための実験プロトコルを提供する。標準的な外科的手技を用いて、頸動脈と頚静脈の間にＡＶグラフトが作製された。その後、移植可能材料が、外科的に作製されたＡＶグラフト吻合部に隣接した血管周囲スペースに設けられた。一つの例示的な手順の詳細を以下に記載する。前述のように、移植可能材料の配置および構成は変えられうる。この研究においては、移植可能材料は、図４Ａ、４Ｂおよび４Ｃに図示されるような可撓性の平面形態であった。
特に研究には、ＡＶグラフト手術を受ける２６匹のブタの被験体を含んだ。標準の手術法による従来のＡＶグラフト手術が行われた。グラフト手術が完了し、グラフトを通る流れが確立された後に、以下の記載のように移植可能材料がＡＶグラフト吻合部およびその周辺に適用された。
ＡＶグラフト手術を受ける各被験体の、左総頚動脈と右外頚静脈の間に内径６ｍｍのＰＴＦＥグラフトが一つ配置された。６―０のプロリーン糸を用いて、グラフトの各端部に斜め端側吻合が作製された。全被験体が術中にヘパリンを受け、手術後毎日アスピリンを投与された。
手術当日、被験体のうちの十匹が、大動脈内皮細胞を含む移植可能材料を受けた。このようなインプラントが各被験体に五つ適用された。二つのインプラントは、二箇所の吻合部の各々に巻き付けられた。この状況において、インプラントの中央部が血管とグラフトの合流地点にくるまで、移植可能材料の一端部が吻合セグメントの下に通された。その後、インプラントを縫合線の中心に保ちながら、両端部が縫合線に巻き付けられた。端部を最小限に重複させて、材料を適所に固定した。もう一つのインプラントが、各被験体の、吻合部から始まる近位静脈セグメントに沿って縦に配置された。インプラントは、静脈の周囲に完全には巻き付けられなかった。
たとえば図４Ａおよび４Ｂに図示されるように、吻合部を移植可能材料で包んだ。さらに、たとえば図４Ｃに図示されるように、吻合部から始まる静脈に沿って縦に移植可能材料を配置することにより、（静脈と動脈の吻合部の遠位の）近位静脈セグメントが処置された。
十匹の被験体は、手術当日に、細胞を含まない対照インプラントを受けた。細胞を含まないこれらの対照インプラントは、たとえば図４Ａ、４Ｂおよび４Ｃに図示されるように吻合部に巻き付けられ、グラフトの近位静脈セグメントに配置された。もう６匹の被験体は、いずれの種類のインプラントも受けなかった。これら６体の研究対象は、標準の医療との比較のために使用された。体重に基づく細胞搭載量の合計は、１ｋｇあたり約２．５×１０５個であった。この細胞搭載量は、後述のヒト臨床研究において使用される推定細胞搭載量の少なくとも約６〜１０倍であることが予想される。
（外科的手技。）頚部の正中縦切開を行い、左総頚動脈、次いで右外頚静脈を分離した。８ｃｍの静脈セグメントを周囲組織から放し、静脈からの全支流を３―０の絹縫合糸で結紮した。左頸動脈をクランプし、直径７ｍｍの周囲動脈切開が行われた。６―０のプロリーン糸を用いて、動脈と内径６ｍｍのＰＴＦＥグラフトとの間に斜め端側吻合が作製された。作製が終わったら動脈クランプをはずし、グラフトをヘパリンと生食水の溶液で洗浄した。動脈内からグラフトへの血流が記録された。その後グラフトを胸鎖乳突筋の下にくぐらせ、右外頚静脈付近へ導いた。
外頚静脈で直接、直径７ｍｍの周囲静脈切開術が行われた。その後、６―０のプロリーン糸を用いたＰＴＦＥグラフトと右外頚静脈との間の斜め端側吻合により、動静脈グラフトを完成した（グラフトの長さは１５〜２５ｃｍであり、配置時に記録された）。全てのクランプをはずし、グラフト内の血流が確認された。ＰＴＦＥ吻合部の遠位の左頸動脈は、３―０の絹縫合糸で二重に結紮された。
吻合の終了につづき、キンクを防ぐためにＰＴＦＥ動静脈グラフトを配置した。ＰＴＦＥ動静脈グラフトの、頸動脈グラフト吻合部のすぐ遠位に、２３ゲージの翼状針で経皮的にカニューレを挿入した。配置を確認するため、１０ｃｃシリンジで血液をシステムに吸引した。その後、システムを１０ｃｃの生食水で洗浄した。その後、静脈グラフト吻合部と静脈流出路を視覚化しうるように、研究動物の頚部にＣアーム螢光透視装置を設置した。連続的な蛍光透視の下で、１０―１５ｃｃのヨード造影剤（レノグラフィン（Ｒｅｎｏｇｒａｆｆｉｎ）、全強）が注入された。シネ血管造影を記録し、殺す前の血管造影図との比較のために保存した。
血管造影の終了後、吻合部を湿った４”×４”ガーゼスポンジで包んだ。ガーゼスポンジを除去して吻合部を検査する前に、吻合部に約５分間圧力をかけた。血液の滲出によって止血がまだ達成されていないことが明らかな場合には、部位を再びさらに５分間包んだ。部位からの出血がひどい場合には、外科医の裁量でさらに縫合糸が配置された。止血が達成されたら、頚部傷口を無菌生食水で満たし、６ｍｍの遷音速流プローブを使用して、遠位の静脈流出路における血流プローブ分析を行った。必要に応じて生食水を除去し、吻合部をできるだけ乾かし、大動脈内皮細胞を含む移植可能材料または対照インプラントのいずれかで処置した。いずれの種類のインプラントによる部位の処置も、全ての出血が制御され、グラフト内の血流が確認され、領域ができるだけ乾くまで行わなかった。終了後、傷口を層状に閉じ、動物を麻酔から回復させた。
１００Ｕ／ｋｇのボーラス注射プラス３５Ｕ／ｋｇ／時間の連続注入としてヘパリンが手術前に投与され、手術の終了まで維持された。ＡＣＴ≧２００秒を維持するために、必要に応じてさらなるボーラス投与量（１００ｕ／ｋｇ）が投与された。
（グラフト開存性。）カラーフロー・ドップラー超音波および遷音速流プローブ（トランソニックシステムズ社、ニューヨーク州イサカ）を用いたアクセス流量の測定により、手術直後、術後３〜７日目、およびその後週に一度、ＡＶグラフト開存性が確認された。グラフトの血流を厳密にモニタした。
（病理学の手法。）ペントバルビタールナトリウム（６５ｍｇ／ｋｇ、ＩＶ）を用いて動物被験体に麻酔をかけた。ＰＴＦＥグラフトを露出し、ＰＴＦＥグラフトおよび静脈吻合部のデジタル写真撮影を行った。その後、２３ゲージ翼状針で、ＰＴＦＥ動静脈グラフトの、頸動脈グラフト吻合部のすぐ遠位に経皮的にカニューレを挿入した。配置を確認するため、１０ｃｃシリンジで血液をシステムに吸引した。その後、システムを１０ｃｃの生食水で洗浄した。その後、静脈グラフト吻合部と静脈流出路を視覚化しうるように、研究動物の頚部にＣアーム螢光透視装置を設置した。連続的な蛍光透視の下で、１０―１５ｃｃのヨード造影剤（レノグラフィン（Ｒｅｎｏｇｒａｆｆｉｎ）、全強）が注入された。ＰＴＦＥグラフトに対して０°および９０°の角度でシネ血管造影が記録された。配置後の血管造影図と比較した剖検血管造影図の盲目的検査により、グラフト開存性と静脈流出路の狭窄の程度が測定された。血管造影図は、血管造影図に観察される狭窄の程度によって、０〜５の尺度で等級付けされた。以下の等級付けスキームを用いた。０＝０％狭窄、１＝２０％狭窄、２＝４０％狭窄、３＝６０％狭窄、４＝８０％狭窄、および５＝１００％狭窄。本発明の移植可能材料で処置されたグラフトは、血管造影図の検査において対照と比較して狭窄率が低いことが予期された。
（組織学。）動物被験体の半分（細胞を植え付けたインプラントの被験体５匹、対照インプラントの被験体５匹、インプラントなしの被験体３匹）を、手術の３日後に安楽死させた。残りの動物被験体（細胞を植え付けたインプラントの被験体５匹、対照インプラントの被験体５匹、インプラントなしの被験体３匹）は、手術の一ヵ月後に安楽死させた。
全ての吻合および近位静脈部位を含む投与部位と、流入領域リンパ節を含む周囲組織のマクロ組織検査と定義される限定的剖検を、全ての被験体に行った。手術の１ヵ月後に安楽死させた全被験体の、脳、肺、腎臓、肝臓、心臓および脾臓を含む主な器官の組織を集めて保存した。体の外面のマクロ組織検査、または投与部位および周囲組織の顕微鏡検査で異常所見が認められた場合に限り、器官の分析を行うこととした。研究に登録された動物のいずれにも、主要器官のさらなる検査を根拠づけるような異常所見は認められなかった。
吻合された静脈と動脈の各々５ｃｍのセグメントを含めて、全てのＡＶグラフト吻合部および周囲組織が切り取られ、１０％のホルマリン（または等価物）で固定され、グリコールメタクリレート（または等価物）に包埋された。Ｃプロフィル・ステンレススチール製ナイフ（または等価物）で切断された厚さ約３μｍの切片を用いて、静脈グラフト吻合部、グラフト動脈吻合部、および静脈流出路の、少なくとも３つの領域から切片が準備された。静脈グラフト吻合部を横断して、三つの切片がつくられた。静脈流出路内で、五つの切片がつくられた（１．５ｃｍの流出静脈をカバーした）。グラフト動脈吻合部内に１ｍｍの間隔で、三つの切片がつくられた。ゼラチンコートの（または等価物）ガラススライドに、これらの切片を載置し、ヘマトキシリン−エオジンまたはＶｅｒｈｏｅｆｆのエラスチン染色で染色した。
血管周囲および管腔の急性（３日の被験体）および慢性（１ヵ月の被験体）の炎症が測定される。急性炎症は顆粒球、主に好中球によって評価され、慢性炎は、マクロファージおよびリンパ球によって評価される。さらに、切片は、以下の特定のマーカで染色されればよい。白血球を認識するための抗ＣＤ４５、Ｔ細胞を認識するための抗ＣＤ３、Ｂ細胞を認識するためのＣＤ７９ａ、および単球／マクロファージを認識するためのＭＡＣ３８７。
染色されたスライドは、平滑筋細胞および内皮細胞、ならびに動脈または静脈吻合部と人工グラフト材料との間の一体化の徴候について検査および採点される。静脈グラフト吻合部、グラフト動脈吻合部、および静脈流出路の、グラフト材料、内膜／仮性内膜、管腔付近の中膜の内側部、外膜付近の中膜の外側部、および外膜を含む、摘出組織の全ての切片が評価および採点される。内膜、中膜および外膜等の各々の組織区画のサイズがミクロン単位で測定される。各切片は、以下の各判定基準の有無および／または程度を評価される。好中球、リンパ球、マクロファージ、好酸球、巨大細胞および形質細胞の有無および程度等の、炎症の徴候が評価される。グラフトの切片は、繊維芽細胞、新血管新生、石灰化、出血、鬱血、フィブリン、グラフト線維化およびグラフト浸潤の有無を評価される。組織切片はさらに、変性、エラスチン減少および／または組織部分の欠如、平滑筋繊維の空胞化および／または組織の石灰化等の、変性の徴候を評価される。組織切片は、内皮細胞増殖、新血管新生等の内膜下の細胞増殖、および平滑筋繊維、繊維芽細胞および線維化の有無についても評価される。測定された各組織切片は、組織ネクローシスおよび異物の有無も評価される。点数は、０〜４の尺度の各変数に割り当てられる（０＝有意な変化なし、１＝最小、２＝軽度、３＝中度、および４＝高度）。
１ヵ月の動物被験体のみからの、動静脈グラフト吻合部のさらなる切片が、ガラススライドに載置されて染色（Ｖｅｒｈｏｅｆｆのエラスチン）され、形態測定解析が行われる。ビデオ顕微鏡とカスタマイズされたソフトウェアを伴うコンピューター化されたデジタル面積測定を使用して、各切片の管腔、中膜、内膜および全体の血管容量が測定される。内膜過形成の程度が、切片ごとに測定される。内膜過形成を定量化する一方法は、血管壁総面積により内膜面積を標準化するか［（内膜、ｍｍ２）／（内膜＋中膜、ｍｍ２）］、または残りの管腔を測定する［（管腔、ｍｍ２）／（管腔＋内膜、ｍｍ２）］ことによる。
（ＡＶグラフト動物被験体の結果。）上記の通りに本発明の移植可能材料で処置された被験体には、臨床的に機能的なＡＶグラフトの形成の一つ以上の徴候が見られた。本明細書に開示された材料および方法に従って処置されたＡＶグラフトは、透析ができる十分な血流速度を支えた。有効な透析には、透析装置のポンプ速度をわずかに上回るか、少なくとも透析中の再循環を防ぐために適切な速度の血流が必要である。また、処置された個々の被験体においては、ＰＴＦＥグラフトからの吻合静脈または動脈の分離と定義される離開の発生の減少と、補綴のブリッジ管腔の中または内部への平滑筋細胞または内皮細胞の増殖および／または移動と定義される、補綴ブリッジの一体化の改善とがみられた。静脈流出部位のＡ／Ｖグラフトから出る血流は、グラフト部位に入る血流と同等であった。本明細書で使用されるところの同等とは、臨床目的において実質的に同様であることを意味する。たとえば、所望の血流速度は約１５０〜５００ｍＬ／分、好ましくは約３００〜５００ｍＬ／分、より好ましくは約３５０〜４００ｍＬ／分である。
さらに、補綴ブリッジの中または内部への平滑筋細胞および／または内皮細胞の移動が、一体化の徴候として測定される。本発明の移植可能材料は、ブリッジの中への平滑筋細胞および内皮細胞の移動だけでなく、平滑筋細胞増殖および内皮細胞増殖を促進すると考えられる。ＰＴＦＥグラフト内の三つの５μｍの切片を得、ＳＭＣアクチンを染色および評価してＳＭＣ同定し、第ＶＩＩＩ因子（フォンヴィレブランド因子）および／またはＰＥＣＡＭ―Ｉを染色して内皮細胞を同定する。内皮細胞は、顕微鏡検査／形態計測およびカスタム・ソフトウェアを使用して定量される。
機能するＡ／Ｖグラフトのさらに別の徴候は、適切な管腔直径である。本発明のインプラントにより血管狭窄を減じることにより、適切な管腔直径を維持でき、これにより、血流が妨げられずに有効な透析のために適切な速度になった。すなわち、有効な透析には、透析装置のポンプ速度をわずかに上回るか、少なくとも透析中の再循環を防ぐために適切な速度の血流が必要である。動静脈グラフトの作製日と、３０日目の殺害直前に、動静脈グラフト吻合の血管造影を使用して管腔直径および狭窄率をモニタした。標準的なドップラー超音波プロトコルを使用して、術後の管腔の狭小化を血流速度と関連づけした。
本発明の移植可能材料により、対照インプラントと比較して、処置された吻合部では狭窄の発症および程度が減った。研究において処置した各被験体の血管造影で測定された狭窄率が、下表１に示される。対照動物の４６％から細胞を含むインプラントを受けた動物では２．５％へと、移植可能材料により狭窄が平均して９５％減った（［４６−２．５］／４６×１００）。結果は、組織学的に確認される。これらの研究から、血流を透析に適切な速度以下に減らす狭小化が本発明によって防止または遅延され、したがってＡ／Ｖグラフト吻合の機能が促進されたことが分かる。
Figure 2012166084
 （実施例３：ヒトＡＶグラフト臨床研究）
この実施例は、ヒトの臨床研究の被験者における機能的ＡＶグラフトの形成を促進するために、本発明の好ましい実施形態を試験および使用するための実験プロトコルを提供する。標準的な外科的手技を用いて、ＡＶグラフト吻合が所望の解剖学的位置に作製され、ｅＰＴＦＥ補綴ブリッジが動脈と静脈の吻合部の間に配置される。その後、移植可能材料が、外科的に作製されたＡＶグラフト吻合部に隣接した血管周囲スペースに設けられる。一つの例示的な手順の詳細を以下に記載する。前述のように、移植可能材料の配置および構成は、熟練した実務家により通常の方法で変えられる。
特に研究には、ＡＶグラフト手術を受けるヒトの被験者を含む。標準の手術法による従来のＡＶグラフト手術が行われる。グラフト手術が完了し、グラフトを通る流れが確立された後に、以下の記載のように本発明の移植可能材料がＡＶグラフト吻合部およびその周辺に適用される。
手術当日、ヒトの臨床研究の被験者は、一つ以上の移植可能材料の部分を受ける。各被験者にこのような部分が二つから三つ適用される。移植可能材料の一つの部分は、各吻合部に巻き付けられる。その後、巻きの中央部が血管とグラフトの合流地点にくるまで、一端部が吻合セグメントの下に通される。その後、インプラントを縫合線の中心に保ちながら、両端部が縫合線に巻き付けられる。端部を重複させて、材料を適所に固定すればよい。移植可能材料のもう一つの部分が、各被験者の動静脈グラフトの近位静脈セグメントに、吻合部から始まる静脈に沿って縦に配置される。移植可能材料を、静脈の周囲に完全に巻き付ける必要はない。
吻合部は、たとえば図４Ａ、４Ｂおよび４Ｃに図示されるように、または図５に図示されるように、好ましいインプラントで処置される。さらに、一定の患者においては、吻合部から始まる静脈に沿って縦に好ましいインプラントを配置することにより、（静脈と動脈の吻合部の遠位の）近位静脈セグメントが処置される。体重に基づく細胞搭載量の合計は、１ｋｇあたり約２．０×１０４個〜１ｋｇあたり約６．０×１０４個となると思われる。
５日目、２週間目、１ヵ月目、３ヵ月目および６ヵ月目に臨床的追跡調査を行う。カラーフロー・ドップラー超音波を用いたアクセスフロー測定を５日目に行ってベースライン値を定め、その後術後２週間目、１ヵ月目、３ヵ月目および６ヵ月目に行うことが要求される。絶対的流量が３５０ｍＬ／分より少ないか、先行測定から流量が２５％を超えて減少しているか、５０％を超える領域に狭窄がある（ドップラー超音波で測定）被験者には、血管造影を行う。血管造影によって５０％を超す狭窄病変があると判断される場合には、血管形成術等の臨床的インターベンションが認められる。
動脈および静脈吻合部だけでなく、グラフトのコントラスト血管造影が、ベースラインと３ヶ月目に行われる。領域ごとに管腔直径が算定され、収縮期最高血流速度が測定される。
（ヒトＡＶグラフト臨床研究の予想結果。）上記の通りに本発明の移植可能材料で処置された被験者には、臨床的に機能するＡＶグラフトの形成の一つ以上の徴候がみられることが期待される。特に、処置された被験者のそれぞれに、たとえば少なくとも透析に十分な流量（たとえば３５〜５００ｍＬ／分、および好ましくは少なくとも３５０ｍｌ／分の血流）に至るまでの血流の改善、ＰＴＦＥグラフトからの吻合静脈または動脈の分離と定義される離開の発生の減少、グラフト周囲の漿液性の貯留および偽動脈瘤の発生の減少、および／または補綴ブリッジ管腔の中または内部への平滑筋細胞または内皮細胞の増殖および／または移動と定義される、補綴ブリッジの一体化の改善がみられるはずである。静脈流出部位のＡ／Ｖグラフトから出る血流は、グラフト部位に入る血流と同等になる。同等とは、臨床目的において実質的に同様であることを意味する。たとえば、所望の血流速度は約１５０〜５００ｍＬ／分、好ましくは約３００〜５００ｍＬ／分、より好ましくは約３５０〜４００ｍＬ／分である。
さらに、補綴ブリッジの中または内部への平滑筋細胞および／または内皮細胞の移動が、一体化の徴候として血管内超音波診断法により測定される。本発明の移植可能材料は、本明細書に記載のとおりに使用されると、ブリッジの中への平滑筋細胞および内皮細胞の移動だけでなく、平滑筋細胞増殖および内皮細胞増殖を促進すると考えられる。
機能するＡ／Ｖグラフトのさらに別の徴候は、適切な管腔直径である。本発明のインプラントにより適切な管腔直径を維持でき、これにより、血流が妨げられずに有効な透析のために適切な速度になることが予想される。すなわち、有効な透析には、透析装置のポンプ速度をわずかに上回るか、少なくとも透析中の再循環を防ぐために適切な速度の血流が必要である。ベースライン（動静脈グラフト作製から大体５日後）と、その後遅くとも手術の３ヶ月後に、動静脈グラフト吻合の血管造影を使用して管腔直径をモニタする。標準的なドップラー超音波プロトコルを使用して、術後の管腔の狭小化を血流速度と関連づけする。本発明を本明細書に記載のとおりに使用すると、本明細書に記載されるとおり、血流を透析に適切な速度以下に減らす狭小化が防止または遅延されることが期待される。
ＡＶグラフトの場合において、本発明の移植可能材料により、離開の発生が防止または低減されることが期待される。
群としての処置された被験者には、対照群と比較して、上記の機能性の徴候のうちの少なくとも一つに、少なくとも増加差が見られることが期待される。
（実施例４：末梢グラフトの研究）
この実施例は、被験体における機能的末梢グラフトの形成を促進するために、本発明の好ましい実施形態を試験および使用するための実験プロトコルを提供する。標準的な外科的手技を用いて、末梢グラフト吻合が所望の解剖学的位置に作製され、ｅＰＴＦＥ補綴ブリッジが吻合部の間に配置される。その後、移植可能材料が、外科的に作製された末梢グラフト吻合部に隣接した血管周囲スペースに設けられる。一つの例示的な手順の詳細を以下に記載する。前述のように、移植可能材料の配置および構成は変えられうる。
特に研究には、末梢グラフト手術を受ける被験体を含む。標準の手術法による従来の末梢グラフト手術が行われる。グラフト手術が完了し、グラフトを通る流れが確立された後に、以下の記載のように移植可能材料が末梢グラフト吻合部およびその周辺に適用される。
手術当日、被験体は、一つ以上の好ましい移植可能材料を受ける。各被験体にこのようなインプラントが二つから三つ適用される。このようなインプラントの一つは、各吻合部に巻き付けられる。その後、巻きの中央部が血管とグラフトの合流地点にくるまで、移植可能材料の一端部が吻合セグメントの下に通される。その後、インプラントを縫合線の中心に保ちながら、両端部が縫合線に巻き付けられる。端部を重複させて、材料を適所に固定すればよい。もう一つのインプラントが、各被験体の末梢グラフトの近位静脈セグメントに、吻合部から始まる静脈に沿って縦に配置される。インプラントを、静脈の周囲に完全に巻き付ける必要はない。
吻合部は、たとえば図４Ａ、４Ｂおよび４Ｃに図示されるように、または図５に図示されるように、移植可能材料で包まれる。さらに、吻合部から始まる血管に沿って縦に移植可能材料を配置することにより、（吻合部の遠位の）近位静脈セグメントが処置される。体重に基づく細胞搭載量の合計は、１ｋｇあたり約２．０×１０４個〜１ｋｇあたり約６．０×１０４個となる。
５日目、２週間目、１ヵ月目、３ヵ月目および６ヵ月目に臨床的追跡調査を行う。カラーフロー・ドップラー超音波を用いた血流測定を５日目に行ってベースライン値を定め、その後術後２週間目、１ヵ月目、３ヵ月目および６ヵ月目に行うことが要求される。絶対的流量が３５０ｍＬ／分より少ないか、先行測定から流量が２５％を超えて減少しているか、５０％を超える領域に狭窄がある（ドップラー超音波で測定）被験者には、血管造影を行う。血管造影によって５０％を超す狭窄病変があると判断される場合には、血管形成術等の臨床的インターベンションが認められる。
吻合部だけでなく、グラフトのコントラスト血管造影が行われる。領域ごとに管腔直径が算定され、収縮期最高血流速度が測定される。
（末梢グラフト被験体の予想結果。）上記の通りに本発明の移植可能材料で処置された被験体には、臨床的に機能する末梢グラフトの形成の一つ以上の徴候がみられることが期待される。本明細書に開示された材料および方法に従って処置された末梢グラフトは、臨床的に許容できる血液循環を回復または維持するのに十分な血流を支える。また、処置された被験体のそれぞれに、たとえばＰＴＦＥグラフトからの吻合静脈の分離と定義される離開の発生の減少、および／または補綴ブリッジ管腔の中または内部への平滑筋細胞または内皮細胞の増殖および／または移動と定義される、補綴ブリッジの一体化の改善がみられるはずである。静脈流出部位の末梢グラフトから出る血流は、グラフト部位に入る血流と同等になる。本明細書で使用されるところの同等とは、臨床目的において実質的に同様であることを意味する。たとえば、所望の血流速度は約１５０〜５００ｍＬ／分、好ましくは約３００〜５００ｍＬ／分、より好ましくは約３５０〜４００ｍＬ／分である。
さらに、補綴ブリッジの中または内部への平滑筋細胞および／または内皮細胞の移動が、一体化の徴候として測定される。本発明の移植可能材料は、ブリッジの中への平滑筋細胞および内皮細胞の移動だけでなく、平滑筋細胞増殖および内皮細胞増殖を促進すると考えられる。
機能する末梢グラフトのさらに別の徴候は、適切な管腔直径である。本発明のインプラントにより適切な管腔直径を維持でき、これにより、血流が妨げられずに、末梢循環を維持するのに十分な速度になることが予想される。ベースラインと、グラフト作製から遅くとも３ヶ月後に、末梢グラフトの血管造影を使用して管腔直径をモニタする。標準的なドップラー超音波プロトコルを使用して、術後の管腔の狭小化を血流速度と関連づけする。本発明の移植可能材料により、本明細書に記載されるとおり、血流を末梢循環に適切な速度以下に減らす狭小化が防止または遅延されることが予想される。
末梢バイパスグラフトの場合において、本発明の移植可能材料による処置により、臨床的に許容できる循環を可能にする血流速度、または正常な速度に近い血流速度がもたらされることが予想される。グラフトに入る血流と出る血流は同等になる。同等とは、臨床目的において実質的に同様であることを意味する。たとえば、所望の血流速度は約１５０〜５００ｍＬ／分、好ましくは約３００〜５００ｍＬ／分、より好ましくは約３５０〜４００ｍＬ／分である。さらに、処置により、補綴または天然グラフト内への平滑筋細胞および／または内皮細胞の増殖および移動が促進されると予想される。
末梢グラフトの場合において、本発明の移植可能材料により、離開の発生が防止または低減されることが期待される。
群としての処置された被験者には、対照群と比較して、上記の機能性の徴候のうちの少なくとも一つに、少なくとも増加差が見られることが予想される。
本発明は、その精神または主要な特徴から逸脱することなく、他のいろいろな形で実施されうる。したがって本実施形態は例示的であり、限定的とみなされるべきではなく、本発明の範囲は、以上の記載によってではなく添付の請求の範囲によって示され、したがって請求項と等価の意義および範囲に該当する一切の変更が包含されることが意図される。

Claims (1)

  1. 本願明細書に記載された発明。
JP2012133043A 2005-06-21 2012-06-12 脈管アクセスを改善するための方法および組成物 Withdrawn JP2012166084A (ja)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US69270805P 2005-06-21 2005-06-21
US60/692,708 2005-06-21
PCT/US2005/043967 WO2006062909A2 (en) 2004-12-08 2005-12-06 Methods and compositions for enhancing vascular access
USPCT/US2005/043967 2005-12-06

Related Parent Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2008518189A Division JP5632580B2 (ja) 2005-06-21 2006-06-05 脈管アクセスを改善するための方法および組成物

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JP2012166084A true JP2012166084A (ja) 2012-09-06

Family

ID=39892157

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2008518189A Expired - Fee Related JP5632580B2 (ja) 2005-06-21 2006-06-05 脈管アクセスを改善するための方法および組成物
JP2012133043A Withdrawn JP2012166084A (ja) 2005-06-21 2012-06-12 脈管アクセスを改善するための方法および組成物

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2008518189A Expired - Fee Related JP5632580B2 (ja) 2005-06-21 2006-06-05 脈管アクセスを改善するための方法および組成物

Country Status (10)

Country Link
US (2) US20090035346A1 (ja)
EP (2) EP2361591A3 (ja)
JP (2) JP5632580B2 (ja)
CN (3) CN102743792B (ja)
AU (1) AU2006262682B2 (ja)
CA (2) CA2612751A1 (ja)
ES (1) ES2541684T3 (ja)
IL (2) IL188263A (ja)
SG (2) SG195537A1 (ja)
WO (1) WO2007001744A2 (ja)

Families Citing this family (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP5174656B2 (ja) 2005-04-21 2013-04-03 マサチューセッツ インスティテュート オブ テクノロジー 同系または非同系の細胞、組織または器官を含む、外因性免疫原および内因性免疫原に対する免疫応答を改変するための材料および方法
US20090035346A1 (en) 2005-06-21 2009-02-05 Pervasis Therpeutics, Inc. Methods and Compositions for Enhancing Vascular Access
WO2008057590A2 (en) * 2006-11-07 2008-05-15 Pervasis Therapeutics, Inc. Methods and compositions for modulating tissue modeling
CN101583367B (zh) * 2006-11-07 2013-05-01 夏尔再生医学公司 用于治疗和控制血管生成介导的疾病的材料和方法
WO2009097218A1 (en) * 2008-01-28 2009-08-06 Biomet 3I, Llc Implant surface with increased hydrophilicity
KR20200051841A (ko) 2011-04-28 2020-05-13 아브락시스 바이오사이언스, 엘엘씨 나노입자 조성물의 혈관내 전달 및 그의 용도
CN102763642B (zh) * 2012-08-14 2014-04-02 郑州赛英科干细胞技术有限公司 一种冷冻保护液以及冷冻保存人胎盘羊膜和绒毛膜的方法
EP3148601A1 (en) * 2014-05-27 2017-04-05 Novahep AB Bioengineered allogeneic valve
WO2016145202A1 (en) * 2015-03-10 2016-09-15 Stent Tek Limited Surgical system, device and methods of use thereof for the percutaneous creation of an arteriovenous fistula (avf)
US12017032B1 (en) 2017-11-13 2024-06-25 Sbr Innovations, Llc Arteriovenous graft and method of using thereof
US11389622B1 (en) * 2017-11-13 2022-07-19 Simon B. Rayhanabad Patch for providing dialysis
US11918223B2 (en) 2018-02-02 2024-03-05 University Of Louisville Research Foundation, Inc. Sutureless graft anastomotic quick connect system
JP2021534906A (ja) * 2018-08-31 2021-12-16 ウィスコンシン アラムニ リサーチ ファンデーション 動脈内皮細胞を播種した血管移植片の生成
CN115376392B (zh) * 2022-08-18 2024-04-26 昆明理工大学 主动脉老化对血管生物力学影响的模拟装置及方法
EP4439070A1 (de) * 2023-03-27 2024-10-02 Siemens Healthcare Diagnostics Products GmbH Automatisches analysesystem

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH03133901A (ja) * 1989-10-19 1991-06-07 Osaka Gas Co Ltd 生体細胞の凍結保存方法
JPH0646840A (ja) * 1992-08-04 1994-02-22 Nippon Zenyaku Kogyo Kk 細胞凍結保存液
JP2000507547A (ja) * 1996-03-25 2000-06-20 アドバンスド リプロダクション テクノロジーズ，インコーポレイテッド 細胞凍結保存培地中のアラビノガラクタンの使用
WO2001070021A1 (fr) * 2000-03-24 2001-09-27 Menicon Co., Ltd. Procede de conservation d'equivalent au tissu et equivalent au tissu conserver a l'etat congele
WO2001095717A2 (en) * 2000-06-09 2001-12-20 Organ Recovery Systems Cryopreservation method using cryoprotective composition of propanediol and a vehicle solution

Family Cites Families (83)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4418691A (en) * 1981-10-26 1983-12-06 Massachusetts Institute Of Technology Method of promoting the regeneration of tissue at a wound
US4787900A (en) * 1982-04-19 1988-11-29 Massachusetts Institute Of Technology Process for forming multilayer bioreplaceable blood vessel prosthesis
US4820626A (en) * 1985-06-06 1989-04-11 Thomas Jefferson University Method of treating a synthetic or naturally occuring surface with microvascular endothelial cells, and the treated surface itself
IL78950A (en) 1985-06-06 1991-12-15 Univ Jefferson Coating for prosthetic devices
US4732155A (en) * 1985-08-27 1988-03-22 The Children's Medical Center Corporation Implantable chemoattractant system
US5863531A (en) * 1986-04-18 1999-01-26 Advanced Tissue Sciences, Inc. In vitro preparation of tubular tissue structures by stromal cell culture on a three-dimensional framework
US5804178A (en) * 1986-11-20 1998-09-08 Massachusetts Institute Of Technology Implantation of cell-matrix structure adjacent mesentery, omentum or peritoneum tissue
US5567612A (en) * 1986-11-20 1996-10-22 Massachusetts Institute Of Technology Genitourinary cell-matrix structure for implantation into a human and a method of making
US6309635B1 (en) * 1986-11-20 2001-10-30 Children's Medical Center Corp. Seeding parenchymal cells into compression resistant porous scaffold after vascularizing in vivo
CA1340581C (en) * 1986-11-20 1999-06-08 Joseph P. Vacanti Chimeric neomorphogenesis of organs by controlled cellular implantation using artificial matrices
US5736372A (en) * 1986-11-20 1998-04-07 Massachusetts Institute Of Technology Biodegradable synthetic polymeric fibrous matrix containing chondrocyte for in vivo production of a cartilaginous structure
US5073492A (en) * 1987-01-09 1991-12-17 The Johns Hopkins University Synergistic composition for endothelial cell growth
US5145769A (en) * 1987-08-21 1992-09-08 Cryolife Inc. Method for cryopreserving blood vessels
US5202120A (en) * 1987-09-11 1993-04-13 Case Western Reserve University Methods of reducing glial scar formation and promoting axon and blood vessel growth and/or regeneration through the use of activated immature astrocytes
US4945086A (en) 1988-05-03 1990-07-31 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Smooth muscle cell growth inhibitor
US5575815A (en) * 1988-08-24 1996-11-19 Endoluminal Therapeutics, Inc. Local polymeric gel therapy
US5843156A (en) * 1988-08-24 1998-12-01 Endoluminal Therapeutics, Inc. Local polymeric gel cellular therapy
CH676195A5 (ja) * 1988-10-07 1990-12-28 Sulzer Ag
WO1991007154A1 (en) * 1989-11-13 1991-05-30 President And Fellows Of Harvard College EXTRALUMINAL REGULATION OF THE GROWTH AND REPAIR OF TUBULAR STRUCTURES ιIN VIVO
US5527532A (en) * 1989-11-13 1996-06-18 President And Fellows Of Harvard College Extraluminal regulation of the growth and repair of tubular structures in vivo
US5540928A (en) * 1991-02-27 1996-07-30 President And Fellows Of Harvard College Extraluminal regulation of the growth and repair of tubular structures in vivo
CA2071137A1 (en) * 1991-07-10 1993-01-11 Clarence C. Lee Composition and method for revitalizing scar tissue
ATE237682T1 (de) 1991-07-15 2003-05-15 Oklahoma Med Res Found Universale spenderzellen
US5336615A (en) 1992-01-06 1994-08-09 Yale University Genetically engineered endothelial cells exhibiting enhanced migration and plasminogen activator activity
US5399665A (en) * 1992-11-05 1995-03-21 Massachusetts Institute Of Technology Biodegradable polymers for cell transplantation
US5981568A (en) * 1993-01-28 1999-11-09 Neorx Corporation Therapeutic inhibitor of vascular smooth muscle cells
US6491938B2 (en) * 1993-05-13 2002-12-10 Neorx Corporation Therapeutic inhibitor of vascular smooth muscle cells
GB9306449D0 (en) * 1993-03-29 1993-05-19 Nat Heart Research Fund Tissue equivalents
US5709854A (en) * 1993-04-30 1998-01-20 Massachusetts Institute Of Technology Tissue formation by injecting a cell-polymeric solution that gels in vivo
US5645829A (en) * 1993-06-18 1997-07-08 Beth Israel Hospital Association Mesothelial cell gene therapy
US6176874B1 (en) * 1993-10-18 2001-01-23 Masschusetts Institute Of Technology Vascularized tissue regeneration matrices formed by solid free form fabrication techniques
US6608182B1 (en) * 1994-03-08 2003-08-19 Human Genome Sciences, Inc. Human vascular endothelial growth factor 2
AU2399495A (en) 1994-04-29 1995-11-29 W.L. Gore & Associates, Inc. Improved blood contact surfaces using endothelium on a subendothelial extracellular matrix
US5834029A (en) * 1994-07-20 1998-11-10 Cytotherapeutics, Inc. Nerve guidance channel containing bioartificial three-dimensional hydrogel extracellular matrix derivatized with cell adhesive peptide fragment
US6911216B1 (en) * 1994-10-12 2005-06-28 Genzyme Corporation Targeted delivery via biodegradable polymers
WO1996011671A1 (en) * 1994-10-12 1996-04-25 Focal, Inc. Targeted delivery via biodegradable polymers
US5914268A (en) * 1994-11-21 1999-06-22 National Jewish Center For Immunology & Respiratory Medicine Embryonic cell populations and methods to isolate such populations
US6281015B1 (en) * 1994-12-16 2001-08-28 Children's Medical Center Corp. Localized delivery of factors enhancing survival of transplanted cells
US5716404A (en) * 1994-12-16 1998-02-10 Massachusetts Institute Of Technology Breast tissue engineering
US5855610A (en) * 1995-05-19 1999-01-05 Children's Medical Center Corporation Engineering of strong, pliable tissues
US5766584A (en) * 1995-06-02 1998-06-16 Massachusetts Institute Of Technology Inhibition of vascular smooth muscle cell proliferation with implanted matrix containing vascular endothelial cells
US6615071B1 (en) * 1995-09-20 2003-09-02 Board Of Regents, The University Of Texas System Method and apparatus for detecting vulnerable atherosclerotic plaque
US6886568B2 (en) * 1998-04-08 2005-05-03 The Johns Hopkins University Method for fabricating cell-containing implants
CA2351671A1 (en) * 1998-11-24 2000-06-08 Regents Of The University Of Minnesota Transgenic circulating endothelial cells
US6328762B1 (en) * 1999-04-27 2001-12-11 Sulzer Biologics, Inc. Prosthetic grafts
US6387116B1 (en) * 1999-06-30 2002-05-14 Pharmasonics, Inc. Methods and kits for the inhibition of hyperplasia in vascular fistulas and grafts
US6461631B1 (en) * 1999-11-16 2002-10-08 Atrix Laboratories, Inc. Biodegradable polymer composition
WO2001062241A1 (en) * 2000-02-23 2001-08-30 Smithkline Beecham Corporation Method for the prevention or reduction of vascular access dysfunction
JP4871476B2 (ja) * 2000-03-13 2012-02-08 バイオコンパティブルズ ユーケー リミテッド 塞栓組成物
CA2400319C (en) * 2000-03-15 2008-09-16 Orbus Medical Technologies Inc. Coating that promotes endothelial cell adherence
US6506398B1 (en) * 2000-04-28 2003-01-14 Hosheng Tu Device for treating diabetes and methods thereof
WO2002007749A2 (en) 2000-07-21 2002-01-31 Board Of Regents, The University Of Texas System Device providing regulated growth factor delivery for the regeneration of peripheral nerves
WO2002028387A1 (en) * 2000-10-03 2002-04-11 Oncopharmaceutical, Inc. Inhibitors of angiogenesis and tumor growth for local and systemic administration
JP2002200161A (ja) * 2000-10-24 2002-07-16 Menicon Co Ltd 培養皮膚代替物の製造方法およびそれにより得られる培養皮膚代替物
US6565601B2 (en) * 2000-11-15 2003-05-20 Micro Therapeutics, Inc. Methods for vascular reconstruction of diseased arteries
WO2002058588A2 (en) * 2000-12-27 2002-08-01 Ortec International, Inc. Processes for making cryopreserved composite living constructs and products resulting therefrom
RU2345719C2 (ru) * 2001-01-16 2009-02-10 Васкулар Терапиез, Ллс. Способ предотвращения или лечения уменьшения доступа для гемодиализа сосудов и устройство для его осуществления и другие сосудистые графты
US6723131B2 (en) 2001-02-28 2004-04-20 The Cleveland Clinic Foundation Composite bone marrow graft material with method and kit
AU2002330131A1 (en) 2001-09-28 2003-04-07 Goldberg, Eugene, P. Biopolymer and biopolymer-cell compositions for nerve tissue repair
US7297540B2 (en) * 2002-01-15 2007-11-20 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem Methods of generating tissue using devitalized, acellular scaffold matrices derived from micro-organs
US20040047843A1 (en) * 2002-02-12 2004-03-11 Uab Research Foundation Method for spinal cord reconnection
WO2003083044A2 (en) * 2002-03-25 2003-10-09 Condros, Inc. Tissue analogs for in vitro testing and method of use therefor
US20050008629A1 (en) * 2002-05-08 2005-01-13 Interpore Orthopaedics, A Delaware Corporation Encapsulated AGF cells
US20060013852A1 (en) * 2002-06-28 2006-01-19 Prescott Margaret F Use of organic compounds
FR2845691B1 (fr) * 2002-10-10 2004-12-10 Centre Nat Rech Scient Nouvelles cellules endotheliales, anticorps diriges contre ces cellules et leur utilisation, notamment pour le criblage de substances inhibant l'angiogenese
US20040156878A1 (en) * 2003-02-11 2004-08-12 Alireza Rezania Implantable medical device seeded with mammalian cells and methods of treatment
WO2004111207A1 (en) * 2003-06-09 2004-12-23 Centelion Multicellular in vitro model of angiogenesis and methods for using the same
US8192348B2 (en) * 2003-07-01 2012-06-05 Regents Of The University Of Minnesota Engineered blood vessels
GB0322789D0 (en) * 2003-09-30 2003-10-29 Lifeforce Group Plc Blood pack for leukocyte banking
WO2005052138A1 (en) * 2003-11-19 2005-06-09 Wisconsin Alumni Research Foundation Cryopreservation of pluripotent stem cells
US8067368B2 (en) * 2004-01-27 2011-11-29 The Ohio State University Research Foundation Vascular endothelial growth factors and methods of their use
EP1747265B1 (en) * 2004-04-23 2011-04-20 BioE LLC Multi-lineage progenitor cells
FR2869533B1 (fr) 2004-05-03 2006-07-28 Sedat Sa Seringue pour interventions medicales et necessaire de reconstitution de substances extemporanees comportant une telle seringue
US7842304B2 (en) 2004-10-29 2010-11-30 Nexeon Medsystems, Inc. Methods and apparatus for treating an injured nerve pathway
EP1824417A2 (en) * 2004-12-08 2007-08-29 Pervasis Therapeutics, Inc. Materials and methods for treating and managing plaque disease
WO2006062871A2 (en) 2004-12-08 2006-06-15 Pervasis Therapeutics, Inc. Materials and methods for minimally-invasive administration of a cell-containing flowable composition
WO2006062909A2 (en) * 2004-12-08 2006-06-15 Pervasis Therapeutics, Inc. Methods and compositions for enhancing vascular access
JP5174656B2 (ja) 2005-04-21 2013-04-03 マサチューセッツ インスティテュート オブ テクノロジー 同系または非同系の細胞、組織または器官を含む、外因性免疫原および内因性免疫原に対する免疫応答を改変するための材料および方法
GB0509845D0 (en) 2005-05-13 2005-06-22 Btg Int Ltd Preparation of therapeutic foam
US20090035346A1 (en) 2005-06-21 2009-02-05 Pervasis Therpeutics, Inc. Methods and Compositions for Enhancing Vascular Access
US20090222086A1 (en) 2005-10-12 2009-09-03 Ge Ming Lui Resorbable Cornea Button
US7882863B2 (en) * 2005-10-19 2011-02-08 Cd Solutions, Llc Apparatus and method for mixing and transferring medications
AU2006348410B2 (en) * 2005-11-07 2011-12-15 Industrie Borla S.P.A. Vented safe handling vial adapter

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH03133901A (ja) * 1989-10-19 1991-06-07 Osaka Gas Co Ltd 生体細胞の凍結保存方法
JPH0646840A (ja) * 1992-08-04 1994-02-22 Nippon Zenyaku Kogyo Kk 細胞凍結保存液
JP2000507547A (ja) * 1996-03-25 2000-06-20 アドバンスド リプロダクション テクノロジーズ，インコーポレイテッド 細胞凍結保存培地中のアラビノガラクタンの使用
WO2001070021A1 (fr) * 2000-03-24 2001-09-27 Menicon Co., Ltd. Procede de conservation d'equivalent au tissu et equivalent au tissu conserver a l'etat congele
WO2001095717A2 (en) * 2000-06-09 2001-12-20 Organ Recovery Systems Cryopreservation method using cryoprotective composition of propanediol and a vehicle solution

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
NATHAN,A. ET AL.: "Tissue engineered perivascular endothelial cell implants regulate vascular injury.", PROC. NATL. ACAD. SCI. USA, vol. 92, no. 18, JPN6013017931, 29 August 1995 (1995-08-29), pages 8130 - 4, XP055000095, ISSN: 0002871192, DOI: 10.1073/pnas.92.18.8130 *

Also Published As

Publication number Publication date
SG195537A1 (en) 2013-12-30
WO2007001744A2 (en) 2007-01-04
US20130210142A1 (en) 2013-08-15
AU2006262682A1 (en) 2007-01-04
IL220806A0 (en) 2012-08-30
EP1901680B1 (en) 2015-04-15
IL188263A (en) 2014-05-28
JP5632580B2 (ja) 2014-11-26
CN101878757A (zh) 2010-11-10
AU2006262682B2 (en) 2012-07-05
WO2007001744B1 (en) 2007-12-21
WO2007001744A3 (en) 2007-10-04
ES2541684T3 (es) 2015-07-23
EP2361591A2 (en) 2011-08-31
US20090035346A1 (en) 2009-02-05
CN101257861B (zh) 2012-12-05
EP1901680A2 (en) 2008-03-26
SG161258A1 (en) 2010-05-27
US9023377B2 (en) 2015-05-05
EP2361591A3 (en) 2011-12-21
CN101257861A (zh) 2008-09-03
JP2008546406A (ja) 2008-12-25
CN102743792A (zh) 2012-10-24
CA2612751A1 (en) 2007-01-04
IL188263A0 (en) 2009-02-11
CA2818182A1 (en) 2007-01-04
CA2818182C (en) 2015-04-14
IL220806A (en) 2014-05-28
CN102743792B (zh) 2014-09-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP5632580B2 (ja) 脈管アクセスを改善するための方法および組成物
AU2005314263B2 (en) Methods and compositions for enhancing vascular access
US20100204783A1 (en) Methods and compositions for enhancing vascular access
WO2006062871A2 (en) Materials and methods for minimally-invasive administration of a cell-containing flowable composition
ES2348961T3 (es) Composiciones y su uso para aumentar el acceso vascular.
WO2006062909A2 (en) Methods and compositions for enhancing vascular access
AU2012238220B2 (en) Methods and compositions for enhancing vascular access
AU2011211370B2 (en) Methods and compositions for enhancing vascular access

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20120612

A711 Notification of change in applicant

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A711

Effective date: 20130118

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20131204

A601 Written request for extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601

Effective date: 20140128

A602 Written permission of extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A602

Effective date: 20140131

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20140604

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20140805

A601 Written request for extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601

Effective date: 20140924

A602 Written permission of extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A602

Effective date: 20140929

A761 Written withdrawal of application

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A761

Effective date: 20150127