JP2011512394A - 慢性創傷の治療 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明によると、慢性創傷治癒を促進するための、少なくとも3リン酸塩単位を有する非結合ポリリン酸塩の使用が提供される。
褥瘡性潰瘍、糖尿病性潰瘍などの慢性外部創傷−これらの創傷の慢性は、コラゲナーゼ(MMP)、ヒアルロニダーゼおよびエラスターゼの過剰活性からもたらされる。
GI管の病変/潰瘍化などの慢性内部創傷−ECMを分解する酵素が、これらの内部創傷を引き起こす原因であり(ペプシン)、それらの慢性の原因である(ペプシン、コラゲナーゼ、ヒアルロニダーゼおよびエラスターゼ)。
本発明に使用されるポリリン酸塩の例は、トリメタリン酸塩(P3)およびヘキサメタリン酸塩(名目上はP6であるが、実際はほぼP12)である。
アゾコールは、ウシ皮膚から得られる市販のアゾ染料標識I型コラーゲン基質である。特定の酵素の存在下では、レッドアゾ染料は、コラーゲンから遊離し、得られた色変化を測定し、コラーゲン分解活性と相関させることができる。アゾコールアッセイを使用して、アゾ標識コラーゲン基質に対するペプシン、コラゲナーゼ、ヘビ毒メタロプロテアーゼ、ヒト胃液およびヒト慢性創傷液の作用へのポリリン酸塩の阻害効果を決定した。
0〜122mg/mlの提案した阻害剤を含有する一連の試験溶液を調製した。次に100μlのこの試験溶液を、100μlの関連する酵素溶液とボルテックスミキサーにより十分に混合した後、1000μlの緩衝アゾコール溶液を添加し混合した。次に阻害剤:酵素:アゾコール試料を、温水浴中37℃で3時間インキュベートし、このインキュベーション時間の間に30分毎で反転させた。次に試料をインキュベーターから取り出し、氷水の中に入れて冷却し、4000rpmで5分間遠心分離した(Fisher Scientific、accuSpin Model 400 Benchtop Centrifuge)。上澄みの吸光度を、脱イオン水をブランク液として使用して、540nmで測定した(Labsystems Multiskan Ascent 354、ThermoFisher Scientific、Horsham、West Sussex、UK)。酵素活性の阻害率は、阻害剤を含有する試験試料と0μg/mlの阻害剤を含有する試料の吸光強度を比較することにより、下記の方程式に従って計算した:
TCAアッセイは、M.L.Anson(1938).J General Physiol、22、79〜89に記載された方法に基づいている。基質であるウシヘモグロビンはペプシンにより消化される。次に残った未消化のヘモグロビンをTCAで沈殿させて、消化ヘモグロビンの生成物のみを含有する上澄みを生じる。上澄みにおけるヘモグロビン分解生成物の濃度を、分光光度的に測定し、プロテイナーゼ活性の指標を提示する。TCA沈殿アッセイを使用して、ヘモグロビンに対するペプシンの作用へのポリリン酸塩およびトリメタリン酸塩の阻害効果を決定した。
0〜306mg/mlの提案した阻害剤を含有する一連の試験溶液を調製した。次に100μlのこの試験溶液を100μlペプシン溶液とボルテックスミキサーにより十分に混合した後、1500μlの緩衝ウシヘモグロビン溶液を添加し混合した。次に阻害剤:酵素:ヘモグロビン試料を、温水浴中37℃で30分間インキュベートした。次に試料をインキュベーターから取り出し、2.0mlのTCA溶液と混合し、氷水中に30分間放置した。次に試料を4000rpmで5分間遠心分離した(Fisher Scientific、accuSpin Model 400 Benchtop Centrifuge)。上澄みの吸光度を、脱イオン水をブランク液として使用して、280nmで測定した(Labsystems Multiskan Ascent 354、ThermoFisher Scientific、Horsham、West Sussex、UK)。ペプシン活性の阻害率は、阻害剤を含有する試験試料と0μg/mlの阻害剤を含有する試料の吸光強度を比較することにより、下記の方程式に従って計算した:
エラスチンコンゴレッドは、発色団のコンゴレッドに含浸されている市販のエラスチン基質である。エラスターゼの存在下では、コンゴレッド染料は、エラスチンから遊離し、得られた色変化を測定し、エラスチン分解活性と相関させることができる。エラスチンコンゴレッドアッセイを使用して、エラスチンコンゴレッド基質に対するエラスターゼへのポリリン酸塩およびトリメタリン酸塩の阻害効果を決定した。
0〜306mg/mlの提案した阻害剤を含有する一連の試験溶液を調製した。次に100μlのこの試験溶液を100μlのエラスターゼ溶液とボルテックスミキサーで十分に混合した。次に1000μlの緩衝エラスチンコンゴレッド溶液を添加し混合した。次に、阻害剤:酵素:エラスチンコンゴレッド試料を温水浴中37℃で一晩インキュベートした。次に試料を温水浴から取り出し、氷水の中に30分間入れて冷却した後、13000rpmで5分間遠心分離(Fisher Scientific、accuSpin Model 400 Benchtop Centrifuge)した。上澄みの吸光度を、脱イオン水をブランク液として使用して、540nmで測定した(Labsystems Multiskan Ascent 354、ThermoFisher Scientific、Horsham、West Sussex、UK)。エラスターゼ活性の阻害率は、阻害剤を含有する試験試料と0μg/mlの阻害剤を含有する試料の吸光強度を比較することにより、下記の方程式に従って計算した:
ヒアルロニダーゼ活性アッセイは、BonnerおよびCantey(Clin.Chim.Acta、13(1966)746〜752)ならびにReissigら、J.Biol.Chem.、217(1955)959〜966の方法に基づいている。このアッセイは、ヒアルロン酸ナトリウムがヒアルロニダーゼの存在下で分解して、N−アセチルグルコサミン(NAG)末端基を有する糖類になることを利用したものである。次にNAGをアルカリ四ホウ酸塩と共に加熱して定量して、中間体を形成し、それをp−ジメチルアミノベンズアルデヒドと酸性媒質中で反応させて、着色生成物を形成することができる。色変化を測定し、ヒアルロニダーゼの活性と相関させることができる。ヒアルロニダーゼアッセイを使用して、ヒアルロン酸ナトリウム基質に対するヒアルロニダーゼの活性へのポリリン酸塩の阻害効果を決定した。
リゾチーム用量反応アッセイは、リゾチームの存在下、Micrococcus lysodeikticusの細胞懸濁液の光学濃度が減少するという知見に基づいている。光学濃度のこの減少速度を測定し、リゾチーム活性と相関させることができる。リゾチームアッセイを使用して、Micrococcus lysodeikticusの細胞懸濁基質に対するリゾチームの作用へのポリリン酸ナトリウム(68%のP2O5)の阻害効果を決定した。
2.5mlのMicrococcus lysodeikticus細胞懸濁液をキュベット(kartell使い捨てセミミクロPMMA、UV等級、パス長10mm、容量1.5ml、範囲280〜800nm、ThermoFisher Scientific Horsham、West Sussex、UK)に添加し、25℃に維持したサーモスタット制御UV分光光度計に設置した。次に、0〜61.2mg/mlの提案した阻害剤を含有する100μlの試験溶液をキュベットに添加し、反転により十分に混合した。次に、阻害剤:基質試料を室温で1時間インキュベートした後、100μlのリゾチーム溶液を添加し反転により混合した。阻害剤:基質:リゾチーム試験試料の吸光度を、450nmで3秒間の間隔で5分間測定した(Unicam UV 500、Thermo−Spectronic、Cambridge、UK)。緩衝液をブランク液として使用した。
キモトリプシン用量反応アッセイは、キモトルプシンの存在下、基質のNa−ベンゾイル−L−チロシンエチルエステル(BTEE)が分解して、Na−ベンゾイル−L−チロシン+エタノールになるという知見に基づいている。この変換は、253nmでの吸光度の増加により分光光度的に測定することができる。次に、吸光度の変化速度を測定し、キモトリプシン活性と相関させることができる。キモトリプシンアッセイを使用して、BTEE基質に対するキモトリプシンの作用へのポリリン酸ナトリウム(68%のP2O5)の阻害効果を決定した。
0〜61.2mg/mlの提案した阻害剤を含有する1.28mlの試験溶液を石英キュベットに添加し、25℃に維持したサーモスタット制御UV分光光度計に設置した。1.26mlのBTEE溶液および0.07mlの塩化カルシウム溶液もキュベットに添加し、反転により混合し、253nmでの吸光度が一定になるまで平衡にした。次に、0.09mlのキモトリプシン溶液をキュベットに添加し、反転により直ぐに混合した。阻害剤:基質:キモトリプシン試験試料の吸光度を、253nmで3秒間の間隔で5分間測定した(Unicam UV 500、Thermo Spectronic、Cambridge、UK)。緩衝液をブランク液として使用した。
以下の考察は、添付の図面を参照して行う。
図1は、ポリリン酸ナトリウム(68%のP2O5含有量)が濃度依存的にペプシンのタンパク質分解活性を阻害したことを示す。阻害は、広範囲の濃度のポリリン酸塩で生じた。阻害は、pH依存的でもあり、pH4で最大であることが見出された。pH4では、90%を超える阻害レベルが、4.59mg/mlを超える濃度のポリリン酸塩で達成された。
図5は、ポリリン酸ナトリウム(68%のP2O5含有量)が濃度依存的にコラゲナーゼのタンパク質分解活性を阻害したことを示す。阻害は、広範囲の濃度のポリリン酸塩で生じた。阻害は、pH依存的でもあり、pH7で最大であることが見出された。pH7では、70%を超える阻害レベルが、より高い濃度のポリリン酸塩で達成された。
図8は、ポリリン酸ナトリウム(68%のP2O5含有量)が濃度依存的にヒアルロニダーゼの消化活性を阻害したことを示す。阻害は、広範囲の濃度のポリリン酸塩で生じた。阻害は、pH依存的でもあり、pH4.5で最大であることが見出された。pH4.5では、90%を超える阻害レベルが、0.612mg/mlを超える濃度のポリリン酸塩で達成された。
図11は、ポリリン酸ナトリウム(68%のP2O5含有量)が濃度依存的にエラスターゼの消化活性を阻害したことを示す。阻害は、広範囲の濃度のポリリン酸塩で生じた。高濃度のポリリン酸塩では、90%を超える阻害レベルが達成された。
ポリリン酸ナトリウム(68%のP2O5)は、前述のものと同じ部類の他の酵素を阻害することも示した。
Claims (14)
- 慢性創傷治癒を促進するための、少なくとも3リン酸塩単位を有する非結合ポリリン酸塩の使用。
- ポリリン酸塩が、創傷治癒を防止または遅延することに寄与する少なくとも1つの酵素の作用を阻害する、請求項1に記載の使用。
- 酵素が、ペプシン、コラゲナーゼ、エラスターゼおよびヒアルロニダーゼの1つまたは複数である、請求項2に記載の使用。
- ポリリン酸塩が平均4〜40のリン酸塩単位を有する、請求項1から3のいずれかに記載の使用。
- ポリリン酸塩が、少なくとも55重量%のP2O5含有量を有する、請求項1から3のいずれかに記載の使用。
- ポリリン酸塩が、少なくとも60重量%のP2O5含有量を有する、請求項5に記載の使用。
- ポリリン酸塩が、60〜75重量%のP2O5含有量を有する、請求項6に記載の使用。
- ポリリン酸塩が、65〜70重量%のP2O5含有量を有する、請求項7に記載の使用。
- ポリリン酸塩がアルカリ金属塩である、請求項1から8のいずれかに記載の使用。
- ポリリン酸塩が、ナトリウム塩もしくはカリウム塩またはこれらの混合物である、請求項9に記載の使用。
- 慢性創傷治癒を促進する方法であって、少なくとも3リン酸塩単位を有するポリリン酸塩の治療有効量を投与することを含む方法。
- ポリリン酸塩の量が、1日投与量として300mg〜24,000mgである、請求項11に記載の方法。
- ポリリン酸塩が6〜8のpHで投与される、請求項11または請求項12に記載の方法。
- 少なくとも3リン酸塩単位を有するポリリン酸塩の治療有効量を、薬学的に許容されるアジュバント、希釈剤または担体と混合して含む、医薬組成物。
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