JP2011182726A

JP2011182726A - 新規な成長ホルモン分泌促進因子受容体阻害ペプチド

Info

Publication number: JP2011182726A
Application number: JP2010052626A
Authority: JP
Inventors: Takafumi Sakai; 貴文坂井; Shingo Ueno; 真吾上野; Koichi Nishigaki; 功一西垣; Takehisa Miura; 健寿三浦
Original assignee: Daiichi Sankyo Co Ltd; Saitama University NUC
Current assignee: Daiichi Sankyo Co Ltd; Saitama University NUC
Priority date: 2010-03-10
Filing date: 2010-03-10
Publication date: 2011-09-22
Anticipated expiration: 2030-03-10
Also published as: JP5697127B2

Abstract

【課題】成長ホルモン分泌促進因子受容体（ＧＨＳ−Ｒ）に作用するアンタゴニストの提供をする。
【解決手段】特定のアミノ酸配列からなるペプチド、あるいは、特定のアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失又は付加をもつアミノ酸配列からなり、かつ、ＧＨＳ−Ｒアンタゴニスト活性を有するペプチド、該ペプチドをコードする核酸、該ペプチドを有効成分として含有する医薬、該ペプチドに対する抗体、該ペプチドの定量方法及び該ペプチドの製造方法。
【選択図】なし

Description

本発明は、成長ホルモン分泌促進因子受容体（ＧＨＳ−Ｒ）のアンタゴニストとして機能する新規ペプチドに関する。

成長ホルモン分泌促進因子受容体（ＧＨＳ−Ｒ）の内因性リガンドとして、グレリンが同定されている（非特許文献１）。グレリンは、２８アミノ酸からなるペプチドホルモンで、主に胃で産生されるが、視床下部、腸、腎臓、膵臓、心臓などでも少量ながら分泌されている。グレリンの受容体であるＧＨＳ−Ｒも視床下部、心臓、消化管、膵臓、甲状腺、血管などに広く発現している。
グレリンは成長ホルモン分泌促進作用のほかに、強力な摂食促進や脂肪代謝調節、胃酸分泌・胃運動亢進など様々な生理活性をもつことが報告されている。血中のグレリンは主に胃から供給されており、ヒトにおいて血漿グレリン濃度は各食事前に上昇し、食事後に基礎値に戻る（非特許文献２）。また、げっ歯類において絶食時に血漿グレリン濃度が増加し（非特許文献３）、グレリンの末梢投与によって摂食量および体重が増加する（非特許文献３、４、５及び６）。このような、同様の摂食亢進作用がヒトにおいても確認されており（非特許文献４及び７）、グレリンは末梢投与によって摂食亢進作用を示す唯一のホルモンである。

従って、ＧＨＳ−Ｒのアンタゴニストは摂食量と体重を減少させ、糖尿病や高血圧、高脂血症等の発症リスクの上昇に関与している肥満症への臨床応用の可能性が期待される。実際、抗グレリン抗体（非特許文献６）及びグレリン結合性ＲＮＡアプタマー（非特許文献８）の投与によって摂食抑制と体重減少を引き起こすことが報告されており、ペプチド性ＧＨＳ−Ｒアンタゴニストである［Ｄ−Ｌｙｓ−３］−ＧＨＲＰ−６のマウス末梢投与が摂食量と体重の減少をもたらすことが報告されている（非特許文献９）。これらのことから、ＧＨＳ−Ｒの働きを阻害することが肥満症の改善につながると見込まれる。
ＧＨＳ−Ｒアンタゴニストは、合成小分子によるものの開発が進んでいる。モンペリエ大グループによる１，２，４−ｔｒｉａｚｏｌｅ誘導体（非特許文献１０）、アボット社による２，４−ｄｉａｍｉｎｏｐｙｒｉｍｉｄｉｎｅ誘導体（非特許文献１１）、ｉｓｏｘａｚｏｌｅｃａｒｂｏｘａｍｉｄｅ誘導体（非特許文献１２）、ｔｅｔｒａｌｉｎｃａｒｂｏｘａｍｉｄｅ誘導体（非特許文献１３）、バイエル社によるｑｕｎａｚｏｌｉｎｏｎｅ誘導体（非特許文献１４）等が代表的なものである。各々、グレリンに対するＩＣ_５０は、数ｎＭと強く、ｉｎｖｉｖｏにおいて摂食抑制と体重減少が確認されているもの（非特許文献１０、１１及び１４）もある。特にアボット社による２，４−ｄｉａｍｉｎｏｐｙｒｉｍｉｄｉｎｅ誘導体とバイエル社によるｑｕｎａｚｏｌｉｎｏｎｅ誘導体は経口投与が可能と報告されている。しかしながら小分子化合物であることから標的特異性の低さによる副作用が懸念される。

一方、ペプチド性のＧＨＳ−Ｒアンタゴニストの報告は非常に少ない。最もよく知られているのは、人工の成長ホルモン放出ペプチドであるＧＨＲＰ−６の１アミノ酸置換体である［Ｄ−Ｌｙｓ−３］−ＧＨＲＰ−６（非特許文献１５）である。グレリンに対するＩＣ_５０は、数μＭと弱いが、一般的に入手可能なＧＨＳ−Ｒアンタゴニストとして基礎研究分野で広く使われている。また、［Ｄ−Ａｒｇ１，Ｄ−Ｐｈｅ５，Ｄ−Ｔｒｐ７，９，Ｌｅｕ１１］ＳｕｂｓｔａｎｃｅＰは、ニューロキニン受容体やボンベシン受容体とともにＧＨＳ−Ｒのアンタゴニストとでもあることが知られている。そのグレリンに対するＩＣ_５０は、やはり数μＭと弱いが、アンタゴニストとしての性質の他に、ＧＨＳ−Ｒの強力なインバースアゴニスト（ＥＣ_５０＝５．２ｎＭ）として働くことが報告されている（非特許文献１６）。［Ｄ−Ｌｙｓ−３］−ＧＨＲＰ−６と［Ｄ−Ａｒｇ１，Ｄ−Ｐｈｅ５，Ｄ−Ｔｒｐ７，９，Ｌｅｕ１１］ＳｕｂｓｔａｎｃｅＰのマウス末梢投与によって、摂食量の減少を引き起こすことが確認されている（非特許文献９）。グレリンの３番目セリンのオクタノイル化はＧＨＳ−Ｒの活性に必須であるが、３番目のセリンをトリプトファンに置換しても活性が維持することが知られている（非特許文献１７）

Ｋｏｊｉｍａら、Ｎａｔｕｒｅ１９９９；４０２：６５６−６６０．Ｃｕｍｍｉｎｇｓら、Ｄｉａｂｅｔｅｓ２００１；５０：１７１４−１７１９．Ｔｓｃｈｏｐら、Ｎａｔｕｒｅ２０００；４０７：９０８−９１３．Ｉｎｕｉ、ＮａｔＲｅｖＮｅｕｒｏｓｃｉ２００１；２：５５１−６０．Ａｓａｋａｗａら、Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ２００１；１２０：３３７−４５６．Ｎａｋａｚａｔｏら、Ｎａｔｕｒｅ２００１；４０９：１９４−８．Ｗｒｅｎら、ＪＣｌｉｎＥｎｄｏｃｒｉｎｏｌＭｅｔａｂ２００１；８６：５９９２−５Ｓｈｅａｒｍａｎら、Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ２００６；１４７：１５１７−１５２６．Ａｓａｋａｗａら、Ｇｕｔ２００３；５２：９４７−９５２．Ｍｏｕｌｉｎら、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．２００８；５１：６８９−６９３．Ｘｉｎら、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＭｅｄｉｃｉｎａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，２００６；４９：４４５９−４４６９．Ｘｉｎら、Ｂｉｏｏｒｇａｎｉｃ＆ＭｅｄｉｃｉｎａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙＬｅｔｔｅｒｓ，２００５；１５：１２０１−１２０４．Ｚｈａｏら、Ｂｉｏｏｒｇａｎｉｃ＆ＭｅｄｉｃｉｎａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙＬｅｔｔｅｒｓ，２００５；１５：１８２５−１８２８．Ｒｕｄｏｌｐｈら、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＭｅｄｉｃｉｎａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，２００７；５０：５２０２−５２１６．Ｃｈｅｎｇら、Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ，１９８９；１２４：２７９１−２７９８．Ｈｏｌｓｔら、ＭｏｌＥｎｄｏｃｒｉｎｏｌ，２００３；１７：２２０１−２２１０．Ｍａｔｓｕｍｏｔｏら、ＢｉｏｃｈｅｍｉｃａｌａｎｄＢｉｏｐｈｙｓｉｃａｌＲｅｓｅａｒｃｈＣｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ，２００１；２８７：１４２−１４６．

以上の状況に鑑み、本発明は、成長ホルモン分泌促進因子受容体（ＧＨＳ−Ｒ）に対するアンタゴニスト活性を持つ新規なペプチドの提供を目的とする。
また、本発明は、該ペプチドからなる摂食抑制剤、及び成長ホルモンの分泌過剰に起因する疾患の治療剤の提供を目的とする。
さらに、本発明は、上記ペプチドに対する抗体、当該抗体を用いる当該ペプチドの定量方法、および当該ペプチドの製造方法を提供することを目的とする。

本発明者らは、ｃＤＮＡディスプレイ法を用いてＧＨＳ−Ｒに対するアンタゴニストの探索を行った結果、アンタゴニストとしての活性を有する新規なペプチドを見出し、本発明を完成させた。
すなわち、本発明の以下の（１）〜（８）である。
（１）以下の（ａ）又は（ｂ）に示されるペプチド。
（ａ）配列番号１２で示されるアミノ酸配列からなるペプチド。
（ｂ）配列番号１２で示されるアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失又は付加をもつアミノ酸配列からなり、かつ、ＧＨＳ−Ｒアンタゴニスト活性を有するペプチド。
（２）上記（１）に記載のペプチドをコードする核酸。
（３）上記（１）に記載のペプチドを有効成分として含有する摂食抑制剤。
（４）上記（１）に記載のペプチドを有効成分として含有する成長ホルモン分泌抑制剤。
（５）上記（１）に記載のペプチドを有効成分として含有する成長ホルモンの分泌過剰に起因する疾患の治療剤。
（６）上記（１）に記載のペプチドに対する抗体。
（７）上記（１）に記載のペプチドを、当該ペプチドに対する抗体を用いて検出することを含む、当該ペプチドの定量方法。
（８）上記（１）のペプチドを遺伝子組み換え技術を用いて製造する方法であって、当該ペプチドをコードするＤＮＡを含有するベクターにより宿主細胞を形質転換すること；及び、
得られた形質転換細胞を培養して培養物から目的のペプチドを採取すること；
を含む方法。

本発明のペプチドは、成長ホルモン分泌促進因子受容体（ＧＨＳ−Ｒ）アンタゴニスト活性を有し、摂食抑制剤、成長ホルモン分泌抑制剤及び成長ホルモンの分泌過剰に起因する疾患の治療剤として用いることができる。

本発明のペプチドは、Ｌ−アミノ酸のみで構成した場合にも活性を有しており、特に、アンタゴニスト活性を有するペプチドの場合、従来はＤ−アミノ酸により構成されているものが多いことから、従来のアンタゴニストペプチドよりも調製コストを低減させることが可能である。

また、本発明のペプチドは、Ｌ−アミノ酸のみで構成しても活性を有するため、本発明のペプチドは、バイオリアクターでの大量生産も可能である。

さらに、本発明のペプチドは、Ｌ−アミノ酸のみで構成した場合、Ｄ−アミノ酸含有ペプチドに比べて生体内で分解されやすくなるため、薬効持続時間の必要以上の延長による副作用の軽減も可能である。

本発明のペプチドによるグレリン刺激性胃収縮の抑制について検討した結果を示す。

本発明の実施態様の一つは、以下の（ａ）又は（ｂ）に示されるペプチドである。
（ａ）配列番号１２で示されるアミノ酸配列からなるペプチド。
（ｂ）配列番号１２で示されるアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失又は付加をもつアミノ酸配列からなり、かつ、ＧＨＳ−Ｒアンタゴニスト活性を有するペプチド。
ここで、上述の「１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失又は付加」との記載中、「１若しくは数個」とは、好ましくは、１〜３個、より好ましくは１又は２個、最も好ましくは１個である。アミノ酸の置換、付加を行う場合、非天然アミノ酸で置換又は付加を行ってもよい。

本発明のペプチドのＣ末端は、通常カルボキシル基（−ＣＯＯＨ）又はカルボキシレート（−ＣＯＯ−）の他、当該カルボキシル基は、アミド（−ＣＯＮＨ_２）やエステル（−ＣＯＯＲ）等に化学修飾されていてもよい。ここで、エステル中のＲとしては、Ｃ１−６アルキル基（例えば、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル）、Ｃ３−８シクロアルキル基（例えば、シクロペンチル、シクロヘキシル）、Ｃ１−６アリール基（例えば、フェニル、α−ナフチル）、フェニル−Ｃ１−２アルキル基（例えば、ベンジル、フェネチル）、α−ナフチル−Ｃ１−２アルキル基（例えば、α−ナフチルメチル）等が挙げられる。その他、経口用エステルとして汎用されているピバロイルオキシメチルエステルとすることも可能である。本発明のペプチドがＣ末端以外にもそのペプチド鎖中にカルボキシル基を有する場合には、当該カルボキシル基がアミド化又はエステル化されているものも本発明のペプチドに含まれる。この場合のエステルとしては上記の各エステルが挙げられる。同様に、本発明のペプチドのＮ末端は、通常アミノ基（−ＮＨ_２）であるが、当該アミノ基は、ホルミル基、アセチル基等のＣ１−６アシル基等で化学修飾されていてもよい。その他、Ｎ端側が生体内で切断され生成したグルタミル基がピログルタミン酸化したものや、分子内のアミノ酸の側鎖上の置換基（例えば、−ＯＨ、−ＳＨ、アミノ基、イミダゾール基、インドール基、グアニジノ基など）が適当な官能基（例えば、ホルミル基、アセチル等）で化学修飾されているものや糖鎖の結合しているものも本発明のペプチドに含まれる。
また、本発明のペプチドには、非天然型のペプチド結合、例えば、ケトメチレン、チオアミドなどによって構成されるものも含まれる。

本発明のペプチドは、当該技術分野において周知の方法、例えば、ｃＤＮＡディスプレイ法(後述を参照のこと)など、によって取得されたｃＤＮＡを使用して、ｉｎｖｉｔｒｏにおける無細胞翻訳系や、生物学的に合成することで調製する他、化学的ペプチド合成法（固相法又は液相法）によって調製することができる。
化学的にペプチドを合成する場合、本発明のペプチドを構成するペプチドの一部もしくはアミノ酸と残余部分とを縮合させ、生成物が保護基を有する場合は保護基を脱離することにより目的のペプチドを製造することができる。合成反応後は通常の精製法、例えば、溶媒抽出、蒸留、カラムクロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー、再結晶などを組み合わせて本発明の部分ペプチドを単離精製することができる。
さらに、本発明には、本発明のペプチドをコードする核酸が含まれる。ここで核酸とは、ＤＮＡ、ＲＮＡのいずれであってもよく、また、一本鎖及び二本鎖のいずれであってもよい。当該核酸は、本発明のペプチドを合成するために使用することができる。当該核酸からの本発明のペプチドの合成は、当該技術分野において周知の方法などを利用して容易に実施することができる。例えば、当該ペプチドをコードするＤＮＡを含有するベクターにより宿主細胞を形質転換し、得られた形質転換細胞を培養して培養物から目的のペプチドを採取することにより、本発明のペプチドを得ることができる。

本発明のさらなる実施態様は、本発明のペプチドを有効成分として含有する摂食抑制剤、成長ホルモン分泌抑制剤及び成長ホルモンの分泌過剰に起因する疾患の治療剤である。ここで、成長ホルモンの分泌過剰に起因する疾患には、巨人症及び末端肥大症が含まれる。「治療」には、すでに疾患発症した諸症状を緩和し、完治せしめることの他、疾患の発症が疑われ又は予想される対象において、該疾患の発症を予め阻止する、予防的な治療も含まれる。治療の対象は、哺乳動物であり、この哺乳動物は、哺乳類に分類される任意の動物を意味し、特に限定はしないが、例えば、ヒトの他、イヌ、ネコ、ウサギなどのペット動物、ウシ、ブタ、ヒツジ、ウマなどの家畜動物などである。特に好ましい「哺乳動物」は、ヒトである。これらの剤は、通常、医薬製剤の形で治療対象に投与することができる。
本発明の医薬製剤の剤型は、特に限定はされず、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、散剤、シロップ剤、懸濁剤、座剤、軟膏、クリーム剤、ゲル剤、貼付剤、吸入剤、点滴剤、注射剤及び経鼻・経肺による吸入剤等が挙げられるが、点滴剤、注射剤、あるいは、経鼻・経肺による吸入剤の形態が好ましい。場合によっては、高分子などで被覆した徐放製剤を体内・皮下に直接投与することも可能である。
これらの製剤は常法に従って調製される。液体製剤にあっては、用時、水又は他の適当な溶媒に溶解又は懸濁する形であってもよい。また錠剤、顆粒剤は周知の方法でコーティングしてもよい。注射剤の場合には、本発明のペプチドを水、生理食塩水、あるいは、ブドウ糖溶液等の溶媒に溶解させて調製される、必要に応じて緩衝剤や保存剤を添加してもよい。

本発明の医薬製剤の製造に用いられる製剤用添加物の種類、有効成分に対する製剤用添加物の割合、又は医薬製剤の製造方法は、製剤の形態に応じて当業者が適宜選択することが可能である。製剤用添加物としては無機又は有機物質、あるいは、固体又は液体の物質を用いることができ、一般的には、有効成分重量に対して１重量％から９０重量％の間で配合することができる。具体的には、その様な物質の例として乳糖、ブドウ糖、マンニット、デキストリン、シクロデキストリン、デンプン、蔗糖、メタケイ酸アルミン酸マグネシウム、合成ケイ酸アルミニウム、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ヒドロキシプロピルデンプン、カルボキシメチルセルロースカルシウム、イオン交換樹脂、メチルセルロース、ゼラチン、アラビアゴム、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール、軽質無水ケイ酸、ステアリン酸マグネシウム、タルク、トラガント、ベントナイト、ビーガム、酸化チタン、ソルビタン脂肪酸エステル、ラウリル硫酸ナトリウム、グリセリン、脂肪酸グリセリンエステル、精製ラノリン、グリセロゼラチン、ポリソルベート、マクロゴール、植物油、ロウ、流動パラフィン、白色ワセリン、フルオロカーボン、非イオン性界面活性剤、プロピレングルコール等が挙げられる。

注射剤（点滴剤などを含む）を製造するには、有効成分を必要に応じて塩酸、水酸化ナトリウム、乳糖、乳酸、ナトリウム、リン酸一水素ナトリウム、リン酸二水素ナトリウムなどのｐＨ調整剤、塩化ナトリウム、ブドウ糖などの等張化剤と共に注射用蒸留水に溶解し、無菌濾過してアンプルに充填するか、更にマンニトール、デキストリン、シクロデキストリン、ゼラチンなどを加えて真空凍結乾燥し、用時溶解型の注射剤としてもよい。また、有効成分にレチシン、ポリソルベート８０、ポリオキシエチレン、硬化ヒマシ油などを加えて水中で乳化せしめ注射剤用乳剤とすることもできる。

本発明の医薬製剤の投与量及び投与回数は特に限定されず、治療対象疾患の悪化・進展の防止及び／又は治療の目的、疾患の種類、患者の体重や年齢などの条件に応じて、医師の判断により適宜選択することが可能である。一般的には、経口投与における成人一日あたりの投与量は０．０１〜１０００ｍｇ（有効成分重量）程度であり、一日１回又は数回に分けて、あるいは数日ごとに投与することができる。注射剤として用いる場合には、成人に対して一日量０．００１〜１００ｍｇ（有効成分重量）を連続投与又は間欠投与することが望ましい。

本発明の医薬製剤は、植込錠及びマイクロカプセルに封入された送達システムなどの徐放性製剤として、体内から即時に除去されることを防ぎ得る担体を用いて調製することができる。例えば、エチレンビニル酢酸塩、ポリ酸無水物、ポリグリコール酸、コラーゲン、ポリオルトエステル、及びポリ乳酸などの、生物分解性、生物適合性ポリマーを用いることができる。このような材料は、当業者によって容易に調製することができる。また、リポソームの懸濁液も薬剤的に受容可能な担体として使用することができる。有用なリポソームは、限定はしないが、ホスファチジルコリン、コレステロール及びＰＥＧ誘導ホスファチジルエタノール（ＰＥＧ−ＰＥ）を含む脂質組成物として、使用に適するサイズになるように、適当なポアサイズのフィルターを通して調製され、逆相蒸発法によって精製される。

本発明の医薬製剤は、キットの形態で、容器、パック中に投与の説明書と共に含めることができる。本発明に係る医薬製剤がキットとして供給される場合、該医薬製剤のうち複数の構成成分が別々の容器中に包装され、使用直前に混合される。このように構成成分を別々に包装するのは、活性構成成分の機能を失うことなく長期間の貯蔵を可能にするためである。
キット中に含まれる本発明のペプチドや製剤用添加物は、これらの構成成分が活性を長期間有効に持続し、容器の材質によって吸着されず、変質を受けないような何れかの種類の容器中に供給される。例えば、該容器がアンプルである場合には、窒素ガスのような中性で不反応性ガスと共に構成成分を収納してもよい。アンプルの材質としては、ガラス、ポリカーボネート、ポリスチレンなどの有機ポリマー、セラミック、金属、又は試薬を保持するために通常用いられる他の何れかの適切な材料などが使用される。アンプル以外でも、製剤の特徴や用途形態によって、試験管、バイアル、フラスコ、ボトル、シリンジ、又はその類似物を使用することができる。本発明のキットには使用説明書を添付してもよい。当該使用説明は、紙などに印刷され、及び／又はフロッピー（登録商標）ディスク、ＣＤ−ＲＯＭ、ＤＶＤ−ＲＯＭ、Ｚｉｐディスク、ビデオテープ、オーディオテープなどの電気的又は電磁的に読み取り可能な媒体に記録されて供給されてもよい。詳細な使用説明は、キット内に実際に添付されていてもよく、あるいは、キットの製造者又は分配者によって指定され又は電子メール等で通知されるウェブサイトに掲載されていてもよい。

本発明のさらなる実施態様は、本発明のペプチドに対する抗体である。本発明のペプチドを抗原とする抗体は、公知の方法により取得することができる。本発明の抗体はモノクローナル抗体またはポリクローナル抗体のいずれでもよい。また、本発明は、これらの抗体を用いた本発明のペプチドの定量方法である。例えば、被検試料中の抗原量に対応した抗体、抗原もしくは抗体-抗原複合体の量を化学的又は物理的手段により検出し、これを既知量の抗原を含む標準液を用いて作製した標準曲線より算出する測定法である。

以下に本発明を具体例によって説明するが、本発明の範囲はこれらの例によって限定されるものではない。

１．ピューロマイシンリンカーの作製
１−１．ピューロマイシンリンカーの合成
ピューロマイシンリンカーは、ＥＭＣＳ (N-(6-Maleimidocaproyloxy)succinimide)を用いて以下の２つの修飾オリゴヌクレオチドを架橋させることにより合成した。
Ｐｕｒｏ−Ｆ−Ｓ；5’-(S)-TC(T-FITC)-(Spc18)-(Spc18)-(Spc18)-(Spc18)-CC-(Puro)-3’
Ｂｉｏｔｉｎ−ｌｏｏｐ；5’-CCCGGTGCAGCTGTTTCATC(T-Biotin)CGGAAACAGCTGCACCCCCCGCCGCCCCCCG(T-NH2)CCT-3’（配列番号１）
ここで、(S)は5’-Thiol-Modifier-C6、(T-FITC)はFluorescein dT、(Puro)はピューロマイシン、(Spc18)はspacer 18、(T-NH2)はAmino-Modifier C6 dT、(T-Biotin)はBiotin-dTを表す。これら修飾ホスホロアミダイト試薬は、ＧｌｅｎＲｅｓｅａｒｃｈ社から購入した。

１−２．Ｐｕｒｏ−Ｆ−Ｓのチオール基の還元反応
０．７ｍＭＰｕｒｏ−Ｆ−Ｓ、０．７ｍＭリン酸バッファー（ｐＨ９．０）、０．３ｍＭＤＴＴの反応組成で室温、１時間反応させた。反応後、ＮＡＰ−５ｃｏｌｕｍｎ（ＧＥヘルスケア）により２０ｍＭリン酸バッファー（ｐＨ７．０）を用いて精製物を精製した。
１−３．Ｂｉｏｔｉｎ−ｌｏｏｐのＥＭＣＳ修飾
７０μＭＢｉｏｔｉｎ−ｌｏｏｐ、１４ｍＭＥＭＣＳ（同仁化学）、１４０ｍＭリン酸バッファー（ｐＨ７．０）の反応組成で３７℃、３０分反応させ、生成物をエタノールで沈殿させペレットにした。
１−４．Ｐｕｒｏ−Ｆ−ＳとＢｉｏｔｉｎ−ｌｏｏｐの架橋反応
ＥＭＣＳ修飾されたＢｉｏｔｉｎ−ｌｏｏｐのペレットを還元ｐｕｒｏ−Ｆ−Ｓ溶液に溶解し、４℃で一晩反応させることにより架橋物（ピューロマイシンリンカー）を得た。この溶液に、１００ｍＭのＤＴＴを加え室温で３０分反応させた後、エタノール沈殿により未反応のＰｕｒｏ−Ｆ−Ｓを除去した。これを、０．１ＭのＴＥＡＡで平衡化したクロマトグラフィーカラム（ＷａｔｅｒｓＳｙｍｍｅｔｒｙ３００Ｃ１８，４．６×２５０ｍｍ、粒径５μｍ）に負荷し、バッファーＡ：０．１ＭＴＥＡＡ、バッファーＢ：８０％アセトニトリル（バッファーＢ％：初期濃度１５％，終濃度３５％）を用いて流速０．５ｍｌ／ｍｉｎで３０分間の溶出を行うことにより、未反応のＢｉｏｔｉｎ−ｌｏｏｐを分離した。各分画を尿素変性ポリアクリルアミドゲルで解析し、目的の分画を濃縮遠心機で濃縮した後、エタノール沈殿し、ペレットを水に溶解後、分光光度計で濃度を算出した。

２．ｃＤＮＡ−ディスプレイ用ペプチドライブラリ作製の為のＤＮＡコンストラクトの作製
ＧＨＳ−Ｒの内因性リガンドであるグレリンは脊椎動物間でそのＮ末端７アミノ酸の相同性が高い。また、グレリンのＮ末端５アミノ酸が活性に必須（M. Matsumoto et al. BBRC 284, 655-659 (2001)）で、Ｎ末端1番目もしくは２番目のアミノ酸の置換によってアゴニスト・アンタゴニスト活性が変換する(Kang Cheng et al. Endocrinology 124(6) 2791-2798 (1989), K. Ohinata, et. al., PEPTIDES 27, 1632-1637 (2006))ことから、グレリンのＮ末端がＧＨＳ−Ｒへの結合に関与していると考えられる。また、グレリンからそのＣ末端を除くとin vivoでの活性が減少することから、グレリンのＣ末端はグレリンの安定性に関与していると考えられる。以上のことからグレリンのＮ末端８アミノ酸をランダム化したｃＤＮＡ−ディスプレイ用ペプチドライブラリを作製した。以下その作製法を示す。
Ｔ７プロモーター、タバコモザイクウイルスの翻訳促進配列（ＵＴＲ）、翻訳開始部位、スキャフォールドとしてＰＯＵＤＮＡ結合ドメイン（ＰＯＵ）、ヒスチジンタグ、ピューロマイシンリンカーのハイブリ部位を含む２本鎖ＤＮＡ；
5’-GATCCCGCGAAATTAATACGACTCACTATAGGGGAAGTATTTTTACAACAATTACCAACAACAACAACAAACAACAACAACATTACATTTTACATTCTACAACTACAAGCCACCATGGACCTTGAGGAGCTTGAGCAGTTTGCCAAGACCTTCAAACAAAGACGAATCAAACTTGGATTCACTCAGGGTGATGTTGGGCTCGCTATGGGGAAACTATATGGAAATGACTTCAGCCAAACTACCATCTCTCGATTTGAAGCCTTGAACCTCAGCTTTAAGAACATGTGCAAGTTGAAGCCACTTTTAGAGAAGTGGCTAAATGATGCAGAGGGGGGAGGCAGCCATCATCATCATCATCACGGCGGAAGCAGGACGGGGGGCGGCGGGGAAA-3’, Junichi Yamaguchi, et al. Nucleic Acids Research 37(16):e108 (2009)、配列番号２)
をテンプレートにして、１本鎖ＤＮＡ；
5’- GATCCCGCGAAATTAATACGACTCACTATA-3’ （配列番号３）
及び、ヒスチジンタグとＸａプロテアーゼ認識切断部位（Ｘａ）を含む一本鎖ＤＮＡ；5’-CGACCTTCAATGCCGCTTCCTGCGTGATGATGATGATGATGGCTGCCTCCCCC-3’ （配列番号４）
を用いてオーバーラップＰＣＲを行い、Ｔ７プロモーター、ＵＴＲ、翻訳開始部位、ＰＯＵ、ヒスチジンタグ、Ｘａを含む２本鎖ＤＮＡ；
5’-GATCCCGCGAAATTAATACGACTCACTATAGGGGAAGTATTTTTACAACAATTACCAACAACAACAACAAACAACAACAACATTACATTTTACATTCTACAACTACAAGCCACCATGGACCTTGAGGAGCTTGAGCAGTTTGCCAAGACCTTCAAACAAAGACGAATCAAACTTGGATTCACTCAGGGTGATGTTGGGCTCGCTATGGGGAAACTATATGGAAATGACTTCAGCCAAACTACCATCTCTCGATTTGAAGCCTTGAACCTCAGCTTTAAGAACATGTGCAAGTTGAAGCCACTTTTAGAGAAGTGGCTAAATGATGCAGAGGGGGGAGGCAGCCATCATCATCATCATCACGCAGGAAGCGGCATTGAAGGTCG?3’；配列番号５)
を作製した。

また、Ｘａ、ランダム化グレリンＮ末端領域を含む１本鎖ＤＮＡ；
5’-GAAGCGGCATTGAAGGTCGTNNKNNKNNKNNKNNKNNKNNKNNKCACCAGAGAGTCCAGCAGAGAAAGGAGTCG-3’,N=A/T/G/C, K=G/T；配列番号６)
及びグレリンＣ末端配列とピューロマイシンリンカーハイブリ部位を含む１本鎖ＤＮＡ；
5’-TTTCCCCGCCGCCCCCCGTCCTCCTCGGGGCTGCAGCTTGGCTGGTGGCTTCTTCGACTCCTTTCTCTGCTGGAC-3’（配列番号７）
を用いてオーバーラップＰＣＲを行い、Ｘａ、Ｎ末端８アミノ酸をランダム化したグレリン配列、ピューロマイシンリンカーハイブリ部位を含む２本鎖ＤＮＡ；
5’-GAAGCGGCATTGAAGGTCGTNNKNNKNNKNNKNNKNNKNNKNNKCACCAGAGAGTCCAGCAGAGAAAGGAGTCGAAGAAGCCACCAGCCAAGCTGCAGCCCCGAGGAGGACGGGGGGCGGCGGGGAAA-3’（配列番号８）
を作製した。

そして、配列番号５及び配列番号８で示されるＤＮＡを用いてオーバーラップＰＣＲを行い、Ｔ７プロモーター、ＵＴＲ、翻訳開始部位、ＰＯＵ、ヒスチジンタグ、Ｘａ、Ｎ末端８アミノ酸をランダム化したグレリン配列、ピューロマイシンリンカーハイブリ部位を含む２本鎖ＤＮＡ；
5’-GATCCCGCGAAATTAATACGACTCACTATAGGGGAAGTATTTTTACAACAATTACCAACAACAACAACAAACAACAACAACATTACATTTTACATTCTACAACTACAAGCCACCATGGACCTTGAGGAGCTTGAGCAGTTTGCCAAGACCTTCAAACAAAGACGAATCAAACTTGGATTCACTCAGGGTGATGTTGGGCTCGCTATGGGGAAACTATATGGAAATGACTTCAGCCAAACTACCATCTCTCGATTTGAAGCCTTGAACCTCAGCTTTAAGAACATGTGCAAGTTGAAGCCACTTTTAGAGAAGTGGCTAAATGATGCAGAGGGGGGAGGCAGCCATCATCATCATCATCACGCAGGAAGCGGCATTGAAGGTCGTNNKNNKNNKNNKNNKNNKNNKNNKCACCAGAGAGTCCAGCAGAGAAAGGAGTCGAAGAAGCCACCAGCCAAGCTGCAGCCCCGAGGAGGACGGGGGGCGGCGGGGAAA-3’（配列番号９）
を作製し。シリカメンブレンカラム（ＱｉａｑｕｉｃｋＰＣＲｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎｃｏｌｕｍｎ，ＱＩＡＧＥＮ）で精製した。

ＰＣＲ反応は、ｐｒｉｍｅＳＴＡＲｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（ｔａｋａｒａ）を使用し、
９８℃２分−［９８℃１０秒／５５℃５秒／７２℃３０秒］×２０サイクル−７２℃２分− ４℃∞、のプログラムで行った。配列番号３、４、６、及び７は、ホスホロアミダイト法によって化学合成した。各配列の下線部はオーバーラップＰＣＲの原料として用いる際のオーバーラップ領域を示している。

３．ＤＮＡコンストラクトの転写
２本鎖ＤＮＡ（配列番号９）をテンプレートにして、ｍ^７Ｇ（５’）ｐｐｐ（５’）ＧＲＮＡキャッピングアナログ（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）存在下、ＲｉｂｏＭＡＸＬａｒｇｅＳｃａｌｅＲＮＡＰｒｏｄｕｃｔｉｏｎＳｙｓｔｅｍ（Ｐｒｏｍｅｇａ）を用いて、Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼにより転写反応を行い、ｍＲＮＡを合成した。合成したｍＲＮＡはシリカメンブレンカラムを用いて精製した。

４．ピューロマイシンリンカーのｍＲＮＡへのライゲーション
ピューロマイシンリンカーとｍＲＮＡを、Ｔ４ＲＮＡＬｉｇａｓｅｂｕｆｆｅｒ（ｔａｋａｒａ）中で、９５℃で熱変性し、１５分かけて２５℃に下げることで、ハイブリ部位でアニーリングさせた。Ｔ４ポリヌクレオチドキナーゼとＴ４ＲＮＡリガーゼを加え、２５℃で２時間反応させることにより、ｍＲＮＡとピューロマイシンリンカーをライゲーションさせた。生成したライゲーション産物はシリカメンブレンカラムを用いて精製した。

５．ｃＤＮＡ−ペプチド複合体の形成（ｉｎｖｉｔｒｏ翻訳）
ｍＲＮＡ−ピューロマイシンリンカー複合体を、ＲｅｔｉｃＬｙｓａｔｅＩＶＴＫｉｔ（Ａｍｂｉｏｎ）を用いて３０℃で６０分間翻訳した後、７５ｍＭＫＣｌ及び２５０ｍＭＭｇＣｌ_２存在下で、３０℃６０分間インキュベートすることにより、ｍＲＮＡ−ピューロマイシンリンカー−蛋白質の複合体を形成させた。

６．翻訳産物の磁気ビーズへの固定
翻訳過程で生成したＲＮＡ−タンパク質複合体を、ストレプトアビジン磁気ビーズを用いて精製した。
７．逆転写反応
ＳＵＰＥＲｓｃｒｉｐｔＩＩＩ（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて逆転写反応を行い、ｃＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッドを形成した。
８．制限酵素処理
次に、ピューロマイシンリンカーのステム構造部位を制限酵素ＰｖｕＩＩで消化することにより、ｃＤＮＡ−ピューロマイシンリンカー−蛋白質複合体をストレプトアビジンビーズから離脱させた。
９．Ｎｉ−ＮＴＡ精製
離脱させた複合体をＮｉ−ＮＴＡ磁気ビーズを用いて精製した。
１０．ＦａｃｔｏｒＸａｐｒｏｔｅａｓｅ処理
ｆａｃｔｏｒＸａｐｒｏｔｅａｓｅでＰＯＵドメイン領域とランダム化グレリン領域の間を切断し、ｃＤＮＡ／ＲＮＡ−ピューロマイシンリンカー−ランダム化グレリンライブラリを作製した。

１１．スクリーニング
１ラウンド目は、ＧＨＳ−Ｒ非発現細胞によるプレセレクションを省き、直接ＧＨＳ−Ｒ発現細胞にライブラリーを作用させた。２ラウンド目以降は、ＧＨＳ−Ｒ非発現細胞でプレセレクションした後に、ＧＨＳ−Ｒ発現細胞を用いてセレクションを行った。
１１−１．スクリーニング (1 ラウンド目 )
細胞数２．４Ｅ７のＣＨＯ−ＧＨＳＲ６２細胞をスクリーニングバッファー（１０ｍＭＨＥＰＥＳ−ＮａＯＨ，ｐＨ７．４，１３５ｍＭＮａＣｌ，５ｍＭＫＣｌ，２．５ｍＭＣａＣｌ_２，０．８ｍＭＭｇＣｌ_２，１０ｍＭＧｌｕｃｏｓｅ，０．２％ＢＳＡ，０．６ｍＭＮａＨＣＯ_３）で２回洗浄したのち、ｃＤＮＡ−ペプチド複合体０．５ｐｍｏｌをスクリーニングバッファー１５ｍｌに溶解し、氷上でＣＨＯ−ＧＨＳＲ６２細胞にかけ、氷上で一時間インキュベートした。インキュベート後、スクリーニングバッファーで細胞を３回洗浄した。その後、細胞に０．１Ｍｇｌｙｃｉｎ−ＨＣｌ（ｐＨ３．５）を１５ｍｌかけ、室温で１０分間インキュベーションした後、上清を回収した。回収溶液に１ＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐＨ８．９を１２０μｌ加えｐＨを中性化した。その後、ブタノールで濃縮し、エタノール沈殿した。沈殿したペレットを水に溶解後、シリカメンブレンカラムで精製した。そして、精製産物をテンプレートに、
5’-GATCCCGCGAAATTAATACGACTCACTATAGGGGAAGTATTTTTACAACAATTACCAACA-3’（配列番号１０）
5’-TTTCCCCGCCGCCCCCCGTCCTC-3’（配列番号１１）
をプライマーにしてＰＣＲ増幅した。
ＰＣＲ反応は、ＥｘＴａｑｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（ｔａｋａｒａ）を使用し、９５℃ ２ｍｉｎ−［９８℃ １０ｓ／５５℃ １０ｓ／７２℃ ３０ｓ］×４０サイクル−４℃∞、のプログラムで行った。ＰＣＲ産物をＰＡＧＥ確認後、ＱＩＡｑｕｉｃｋＰＣＲｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎｃｏｌｕｍｎ（ＱＩＡＧＥＮ）で精製した。このＰＣＲ産物を元に、２ラウンド目の［転写］−［ピューロマイシンリンカーライゲーション］−［ｃＤＮＡ−ペプチド複合体の形成］を行った。

１１−２．スクリーニング（２ラウンド目以降）
細胞数１．０Ｅ７のＣＨＯ細胞（ＧＨＳ−Ｒ非発現）をスクリーニングバッファーで２回洗浄し、ｃＤＮＡ−ペプチド複合体０．０５ｐｍｏｌをスクリーニングバッファー７．５ｍｌに溶解し、ＣＨＯ細胞にかけ、一時間インキュベーションした。インキュベーション後、その上清を、スクリーニングバッファーで２回洗浄した細胞数１．０Ｅ７のＣＨＯ−ＧＨＳＲ６２細胞にかけ１時間インキュベーションした。インキュベーション後、スクリーニングバッファーで細胞を３回洗浄し、細胞に０．１Ｍｇｌｙｃｉｎ−ＨＣｌ（ｐＨ３．５）を７．５ｍｌかけ、室温で１０ｍｉｎインキュベーションした後、上清を回収した。回収した上清溶液に、１ＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐＨ８．９を６０μｌ加えｐＨを中性化した。その後、ブタノールで濃縮し、エタノール沈殿した。沈殿したペレットを水に溶解後、シリカメンブレンカラムで精製した。そして、精製産物をテンプレートに、
5’-GATCCCGCGAAATTAATACGACTCACTATAGGGGAAGTATTTTTACAACAATTACCAACA-3’（前述の配列番号１０に同じ）
5’-TTTCCCCGCCGCCCCCCGTCCTC-3’（前述の配列番号１１に同じ）
をプライマーにしてＰＣＲ増幅した。
ＰＣＲ反応は、ＥｘＴａｑｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（ｔａｋａｒａ）を使用し、９５℃ ２ｍｉｎ−［９８℃ １０ｓ／５５ ℃ １０ｓ／７２ ℃ ３０ｓ］×４０サイクル−４℃∞、のプログラムで行った。ＰＣＲ産物をＰＡＧＥ確認後、シリカメンブレンカラムで精製した。このＰＣＲ産物を元に、３ラウンド目以降の［転写］−［ピューロマイシンリンカーライゲーション］−［ｃＤＮＡ−ペプチド複合体の形成］を行った。
上記スクリーニングを５ラウンド行った。なお、ラウンド毎に、投入するｃＤＮＡ−ペプチド複合体の量および、細胞数等の反応スケールを減らした。スクリーニング反応スケールの減少に伴い、［転写］−［ピューロマイシンリンカーライゲーション］−［ｃＤＮＡ−ペプチド複合体の形成］の反応スケールも減らした。また、ラウンド毎に淘汰圧を強めるために、インキュベーション時間を短く、洗浄時間を長く、洗浄回数を多くした。

１１−３．配列決定
上記スクリーニングにより得られたＰＣＲ産物をｐＧＥＭ−Ｔｅａｓｙｖｅｃｔｏｒ（ｐｒｏｍｅｇａ）及びＥ．ｃｏｌｉＪＭ１０９を用いてクローニングし、ＳＰ６プライマーを用いてシーケンシングを行った。その結果、１４クローンを配列決定したところ、１１クローンが配列番号１２の配列、２クローンが配列番号１３の配列、１クローンが配列番号１４の配列であった。
配列番号１２：FQFLPFMF HQRVQQRKESKKPPAKLQPR
配列番号１３：FQFLPFMS HQRVQQRKESKKPPAKLQPR
配列番号１４：FQFLPVMF HQRVQQRKESKKPPAKLQPR

１２．ペプチド(配列番号１２)によるグレリン刺激依存的胃収縮の抑制
食虫目トガリネズミ科ジネズミ亜科ジャコウネズミ属の小型哺乳類であるスンクスの胃は、マグヌス装置を用いたｉｎｖｉｔｒｏ実験において、低濃度のモチリンで処理した後に、グレリンで累加刺激すると、グレリン用量依存的に収縮が起こることが知られている。そこで、この実験系を用いて、ペプチド(配列番号１２)の添加による胃収縮の抑制を確認した。
実験動物および組織の準備
ネパール、カトマンズ自然集団より確立した非近交系カトマンズ系成体スンクス(５−１２週齢、Ｂ．Ｗ４５−７０ｇ）を用いて実験を行った。動物は巣箱となるペットボトルや空き缶を入れたプラスチックケージで２１±２℃、８：００−２０：００の明暗周期、自由摂食及び自由飲水の条件下で飼育した。
実験に使用した個体は胃内容物を取り除くため、胃摘出開始前に暗期５時間、明期５−６時間の計１０±１時間絶食を行った。ただし、絶食時でも飲水は自由に行えるようにした。実験個体はジエチルエーテルによる深麻酔後、断頭にて屠殺した。その後開腹し、噴門部および十二指腸の位置で眼科バサミを用いて組織を摘出し、クレブス緩衝液（ＮａＣｌ，１１８ｍＭ；ＫＣｌ，４．７ｍＭ；ＣａＣｌ_２，１．９ｍＭ；ＭｇＳＯ_４，０．７ｍＭ；ＮａＨ_２ＰＯ_４，１．８ｍＭ；ＮａＨＣＯ_３，１９．６ｍＭ；グルコース，１０ｍＭ，ｐＨ７．２）内にてカミソリ刃により幽門部直上で切り、加えて胃底部に２ｍｍ程度の切り込みを入れ、クレブス緩衝液で胃組織内部を洗浄し、残渣を取り除いた。小型のセルフィンで胃底部頂端中央部と前底部の中央部の二点を、縦走筋方向に固定されるように挟んだ。クレブス緩衝液は３７±０．５℃の条件下で、Ｏ_２９５％，ＣＯ_２５％のガスで常にバブリングを行い、緩衝液のｐＨの調整は１ＮＨＣｌを用いて行った。組織に対する初期加重は１．０ｇとした。加えて、組織のマグヌス管内への設置後、組織を安定させるために４０分間静置し、それから各薬剤の投与を開始するようにした。

Ｏｒｇａｎｂａｔｈ実験
Ｉｎｖｉｔｒｏの消化管収縮測定実験として、マグヌス管を用いたｏｒｇａｎｂａｔｈ実験系を用いた。スンクス胃は１０ｍｌクレブス緩衝液の入ったマグヌス管内に吊るした。マグヌス管内は恒温槽から常に送られる温水により３７±０．５℃温度条件に保たれ、Ｏ_２９５％，ＣＯ_２５％のガスにより常にバブリングを行った。組織の両端を挟んでいるセルフィンのうち下端のものはマグヌス管内のＬ字フックに、上端のものはアイソメトリックトランスデューサーにつないだ。トランスデューサーはアンプを介してＡＤ変換機ＰｉｃｏＬｏｇへと接続した。組織の収縮データのサンプリングは１００ｍｓに１回の割合で行った。
データはＵＳＢケーブルを介してＷｉｎｄｏｗｓ（登録商標）上のＰｉｃｏＬｏｇＲｅｃｏｒｄｅｒソフトに出力した。試薬添加前の１分間の自律収縮の極大値の平均値を基底値としてとり、各濃度の試薬添加後の最大収縮値をそれぞれの試薬の反応値とし、基底値との差を各濃度の試薬の効果として算出した。アセチルコリン（１０μＭ）により引き起こされる収縮を組織の最大の収縮として、薬剤添加開始の前に２回および最後に１回記録し、その平均値に対する試薬の添加による収縮圧の割合をデータとして算出した。
アンプの感度調整は実験ごとに行い、トランスデューサーに１ｇの圧力変化が生じたときに０．１Ｖの電圧として出力されるように調整した。
試薬添加
配列番号１２のペプチド（終濃度１μＭ）と、モチリン（終濃度１００ｐＭ）の混合液を投与した３０秒後に、グレリン（終濃度１０ｐＭ−１００ｎＭ）を累加投与し、ペプチド（配列番号１２）の存在下及び非存在下での用量反応曲線をそれぞれ作成した。

測定の結果、配列番号１２のペプチド（１μＭ）による前処理によって、グレリン刺激による胃収縮が有意に抑制されることが確認できた（図１）。すなわち、本発明のペプチドは、ＧＨＳ−Ｒアンタゴニスト活性を有し、消化管の機能亢進を抑制することから、該ペプチドは摂食抑制剤及び成長ホルモン分泌抑制剤として有用であることが示された。

本発明は、摂食促進ホルモンであるグレリンの作用を阻害するペプチドを提供するものであり、摂食障害、成長ホルモンの分泌過剰に起因する疾患（例えば、巨人症及び末端肥大症など）に対する新たな治療法、あるいは、治療剤の開発に大きく貢献するものである。

Claims

以下の（ａ）又は（ｂ）に示されるペプチド。
（ａ）配列番号１２で示されるアミノ酸配列からなるペプチド。
（ｂ）配列番号１２で示されるアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失又は付加をもつアミノ酸配列からなり、かつ、ＧＨＳ−Ｒアンタゴニスト活性を有するペプチド。
請求項１に記載のペプチドをコードする核酸。
請求項１に記載のペプチドを有効成分として含有する摂食抑制剤。
請求項１に記載のペプチドを有効成分として含有する成長ホルモン分泌抑制剤。
請求項１に記載のペプチドを有効成分として含有する成長ホルモンの分泌過剰に起因する疾患の治療剤。
請求項１に記載のペプチドに対する抗体。
請求項１に記載のペプチドを、当該ペプチドに対する抗体を用いて検出することを含む、当該ペプチドの定量方法。
請求項１に記載のペプチドを遺伝子組み換え技術を用いて製造する方法であって、当該ペプチドをコードするＤＮＡを含有するベクターにより宿主細胞を形質転換すること；及び、
得られた形質転換細胞を培養して培養物から目的のペプチドを採取すること；
を含む方法。