JP2009526084A - 可溶性ＩＬ−１７ＲＣｘ４および炎症における使用法 - Google Patents

Abstract

本発明は、IL-17F、IL-17A、またはIL-17AとIL-17F両方のポリペプチド分子の活性を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和することに関する。IL-17AおよびIL-17Fは、炎症プロセスおよびヒト疾患に関与しているサイトカインである。IL-17RCは、IL-17AとIL-17Fに共通の受容体である。本発明は、炎症を治療するための可溶性IL-17RC受容体、IL-17RCx4の使用法を含む。

Description

発明の背景
サイトカインは、多くの細胞型の増殖および分化の調節を含む様々な生物学的作用を媒介する、可溶性の小型タンパク質である(例えば、Arai et al., Annu. Rev. Biochem. 59：783(1990)（非特許文献1）、Mosmann, Curr. Opin. Immunol. 3：311(1991)（非特許文献2）、Paul and Seder、Cell 76：241(1994)（非特許文献3）を参照されたい)。サイトカイン群を構成するタンパク質には、インターロイキン、インターフェロン、コロニー刺激因子、腫瘍壊死因子、および他の調節分子が含まれる。例えば、ヒトインターロイキン-17は、インターロイキン-6、細胞内接着分子1、インターロイキン-8、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子の発現、およびプロスタグランジンE2発現を刺激し、かつ、CD34+造血前駆体の好中球への優先的成熟において役割を果たしているサイトカインである(Yao et al., J. Immunol. 155：5483(1995)（非特許文献4）、Fossiez et al., J. Exp. Med. 183：2593(1996)（非特許文献5）)。

サイトカインに結合する受容体は、典型的には、高い親和力でサイトカインに結合し、かつ、特定の受容体サブユニットの細胞質内部分を介して、この結合事象を細胞に伝達する、1つまたは複数の内在性膜タンパク質から構成される。サイトカイン受容体は、細胞外のリガンド結合ドメインの類似性に基づいて、いくつかのクラスにグループ分けされている。

サイトカインおよびそれらの受容体の実証されたインビボ活性により、他のサイトカイン、サイトカイン受容体、サイトカインアゴニスト、およびサイトカインアンタゴニストの臨床上の可能性およびそれらの必要性が例示される。例えば、炎症誘発性サイトカインファミリーの実証されたインビボ活性により、炎症誘発性分子のアンタゴニストの並外れた臨床上の可能性およびそれらの必要性が例示される。

Arai et al., Annu. Rev. Biochem. 59：783(1990) Mosmann, Curr. Opin. Immunol. 3：311(1991) Paul and Seder、Cell 76：241(1994) Yao et al., J. Immunol. 155：5483(1995) Fossiez et al., J. Exp. Med. 183：2593(1996)

発明の詳細な説明
本発明は、炎症誘発性サイトカインIL-17AおよびIL-17Fに対するアンタゴニストを提供することによってこれらの必要に取り組む。具体的には、炎症誘発性サイトカインIL-17AおよびIL-17Fは、高度の配列類似性を有し、多くの生物学的特性を共有し、かつ両方とも、活性化T細胞によって産生される。これらは両方とも、関節リウマチおよび喘息を含む、様々な自己免疫性疾患および炎症性疾患の進行をもたらす因子として意味付けられている。実際に、IL-17A機能を打ち消す反応物は、ヒト疾患のいくつかのマウスモデルにおいて疾患の発生率および重症度を有意に改善する。IL-17Aは、その同族受容体であるIL-17 受容体 (IL-17R)との相互作用を介してその作用をもたらすが、IL-17Fの受容体はまだ同定されていなかった。本発明者らは、IL-17R関連分子であるIL-17RCをIL-17Fの受容体として同定したことを以下に報告する。しかしながら、本発明者らは、この受容体がIL-17AおよびIL-17Fの両方に同様の高い親和力で結合することにも注目した。その一方で、IL-17Rは、高い親和力でIL-17Aに結合するが、非常に低い親和力でIL-17Fに結合する。これと一致して、本発明者らは、可溶型のIL-17Rが、いずれかの受容体を発現する細胞においてIL-17A結合およびシグナル伝達を妨害するが、IL-17RCへのIL-17Fの結合にも機能にも干渉しないことを示した。一方、可溶型のIL-17RCは、いずれかの受容体を発現する細胞において、個々にまたは共にIL-17AおよびIL-17Fの両方と拮抗する。IL-17A介入は、いくつかの自己免疫疾患に対する有効な療法として提案されているため、IL-17A、IL-17F、またはIL-17AおよびIL-17Fの両方の活性を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和し得る、可溶性IL-17RC受容体および中和性抗IL-17RC抗体が含まれる、本発明のアゴニストを使用することは、これら2種のサイトカインのうち1種のみを標的とする療法よりも有利であると考えられる。本発明はさらに、炎症性疾患におけるその使用、ならびに関連する組成物および方法も提供する。

A)概要
免疫に関連した疾患および炎症性疾患は、正常な生理においては、傷害または損傷に応答し、傷害または損傷からの修復を開始し、かつ、外来の生物に対抗する先天性防御および後天性防御を始めるのに重要である、かなり複雑で、しばしば複数の相互に連結した生物学的経路の症状発現または結果である。疾患または病状は、これらの正常な生理学的経路が、応答の強度に直接関連して、異常な調節もしくは過度な刺激の結果として、自己に対する反応として、またはこれらの組合せとして、さらなる傷害または損傷を引き起こす場合に生じる。

これらの疾患の起源は、多くの場合、多段階経路、および、しばしば複数の異なる生物学的系/経路を含むが、1つまたは複数のこれらの経路中の重要な点への介入は、改善効果または治療的効果を有し得る。治療的介入は、有害なプロセス/経路への拮抗または有益なプロセス/経路の刺激のいずれかによって起こり得る。

多くの免疫関連疾患が公知であり、広範囲にわたって研究されている。このような疾患には、免疫介在性炎症性疾患(関節リウマチ、免疫介在性の腎疾患、肝胆道疾患、炎症性腸疾患(IBD)、乾癬、および喘息など)、非免疫介在性炎症性疾患、感染症、免疫不全疾患、新形成などが含まれる。

Tリンパ球(T細胞)は哺乳動物の免疫応答の重要な構成要素である。T細胞は、主要組織適合遺伝子複合体(MHC)内の遺伝子によってコードされる自己分子と結合している抗原を認識する。抗原は、抗原提示細胞、ウイルス感染細胞、癌細胞、移植片などの表面にMHC分子と共に提示され得る。T細胞系は、宿主哺乳動物に健康上の脅威を与えるこれらの改変細胞を排除する。T細胞には、ヘルパーT細胞および細胞障害性T細胞が含まれる。ヘルパーT細胞は、抗原提示細胞上の抗原-MHC複合体を認識した後に、大規模に増殖する。また、ヘルパーT細胞は様々なサイトカイン、すなわちリンホカインも分泌し、これは、B細胞、細胞障害性T細胞、および免疫応答に関与する様々な他の細胞の活性化において中心的な役割を果たす。

体液性免疫応答および細胞媒介性免疫応答の両方における中心的事象は、ヘルパーT細胞の活性化およびクローン増殖である。ヘルパーT細胞の活性化は、T細胞受容体(TCR)-CD3複合体と抗原提示細胞の表面上の抗原-MHCとの相互作用により開始される。この相互作用は、休止ヘルパーT細胞を誘導して細胞周期に移行させる(G0からG1に移行)生化学的事象のカスケードを媒介し、その結果、IL-2、および時にはIL-4に対する高親和性受容体の発現をもたらす。活性化されたT細胞は、周期を通じて発展して増殖し、かつ、記憶細胞またはエフェクター細胞に分化する。

TCRによって媒介されるシグナルに加えて、T細胞の活性化は、抗原提示細胞によって放出されるサイトカインによって、または抗原提示細胞およびT細胞上の膜結合型分子との相互作用を通じて誘導される付加的な同時刺激も伴う。サイトカインIL-1およびIL-6は、同時刺激シグナルを提供することが示されている。また、抗原提示細胞の表面に発現されるB7分子とT細胞表面で発現されるCD28分子およびCTLA-4分子との相互作用も、T細胞活性化をもたらす。活性化T細胞は、数の増加した細胞接着分子、例えば、ICAM-1、インテグリン、VLA-4、LFA-1、CD56などを発現する。

混合リンパ球培養物または混合リンパ球反応(MLR)におけるT細胞増殖は、化合物が免疫系を刺激する能力の確立された指標である。多くの免疫応答において、炎症細胞は、損傷部位または感染部位に浸潤する。遊走細胞は、罹患組織の組織学的検査によって決定することができるように、好中球性、好酸球性、単球性、またはリンパ球性でよい。Current Protocols in Immunology、John. E. Coligan編、1994, John Wiley & Sons, Inc.。

免疫関連疾患は、免疫応答を抑制することによって治療され得る。免疫刺激活性を有する分子を阻害する可溶性受容体および/または中和抗体を使用することは、免疫介在性疾患および炎症性疾患の治療において有用であると思われる。免疫応答を阻害する分子は、免疫応答を阻害し、それによって、免疫関連疾患を改善するのに使用され得る(タンパク質を直接使用、または抗体アゴニストの使用を介する)。

インターロイキン-17(IL-17A)は、Tリンパ球向性リスザルヘルペスウイルス(Herpes virus Saimiri)(HSV)によってコードされるタンパク質の細胞性相同分子種として同定されている[Rouvier et al., J. Immunol., 150(12)：5445-5456(19993)、Yao et al., J. Immunol., 122(12)：5483-5486(1995)、およびYao et al., Immunity, 3(6)：811-821(1995)を参照されたい]。その後の特徴付けにより、このタンパク質が、多種多様の末梢組織において炎症誘発性応答を誘導するために作用する強力なサイトカインであることが示された。IL-17Aは、活性化されたCD4+記憶T細胞によってのみ合成および分泌される、ジスルフィド結合した約32kDaのホモ二量体サイトカインである(Fossiez et al., Int. Rev. Immunol., 16：541-551 [1998]に総説がある)。具体的には、IL-17は、19〜23残基のN末端シグナル配列を有する155アミノ酸のポリペプチド前駆体として合成され、かつ、ジスルフィド結合したホモ二量体糖タンパク質として分泌される。IL-17Aは、WO9518826(1995)、WO9715320(1997)、およびWO9704097(1997)、ならびに米国特許第6,063,372号において開示されている。

組織分布が限局的であるにもかかわらず、IL-17Aは、様々な細胞型に対する多面的な生物活性を示す。IL-17Aは、多くのサイトカインの産生を刺激することが見出されている。これは、線維芽細胞、ケラチノサイト、上皮細胞、および内皮細胞のような接着細胞による、IL-6、IL-8、IL-12、白血病抑制因子(LIF)、プロスタグランジンE2、MCP-1、およびG-CSFの分泌を誘導する。IL-17Aはまた、ICAM-1の表面発現、T細胞増殖、ならびにCD34⁺ヒト前駆体の増殖および好中球への分化を誘導する能力も有する。IL-17Aはまた、骨代謝にも関係があるとされており、かつ、関節リウマチおよび骨移植片のゆるみなど活性化T細胞の存在およびTNF-α産生を特徴とする病理学的状態において重要な役割を果たしていることが示唆されている(Van Bezooijen et al., J. Bone Miner. Res. 14：1513-1521 [1999])。関節リウマチ患者に由来する滑膜組織の活性化T細胞は、正常な個体または変形性関節症患者に由来するものよりも、より多量のIL-17Aを分泌することが見出された(Chabaud et al., Arthritis Rheum. 42：963-970 [1999])。この炎症誘発性サイトカインが、関節リウマチにおける滑膜炎症に能動的に寄与することが示唆された。その炎症誘発性役割に加えて、IL-17Aは、さらに別のメカニズムによって関節リウマチの病理に寄与するようである。例えば、IL-17Aは、骨芽細胞において破骨細胞分化因子(ODF)mRNAの発現を誘導することが示されている(Kotake et al., J. Clin. Invest., 103：1345-1352 [1999])。ODFは、骨吸収に関与している細胞である破骨細胞への前駆細胞の分化を刺激する。

IL-17Aのレベルは、関節リウマチ患者の滑液において有意に上昇しているため、IL-17Aによって誘導される破骨細胞形成は、関節リウマチでの骨吸収において非常に重要な役割を果たしていると思われる。また、IL-17Aは、多発性硬化症のようないくつかの他の自己免疫障害においても重要な役割を果たすと考えられている(Matusevicius et al., Mult. Scler., 5：101-104 [1999])。IL-17Aは、細胞内シグナル伝達によって、ヒトマクロファージにおけるCa²⁺流入および[cAMP]の減少を刺激することもさらに示されている(Jovanovic et al., J. Immunol., 160：3513 [1998])。IL-17Aで処理された線維芽細胞は、NF-κBの活性化を誘導するのに対し[Yao et al., Immunity, 3：811(1995)、Jovanovic et al.、前記]、これで処理されたマクロファージは、NF-κBおよびマイトジェン活性化プロテインキナーゼを活性化する(Shalom-Barek et al., J.Biol. Chem., 273：27467 [1998])。

さらに、IL-17Aはまた、硬骨および軟骨の成長に関与している哺乳動物サイトカイン様因子7との配列類似性を共有する。IL-17Aポリペプチドが配列類似性を共有する他のタンパク質は、ヒト胚由来インターロイキン関連因子(EDIRF)およびインターロイキン-20である。

IL-17Aの広範囲の作用と一致して、IL-17Aに対する細胞表面受容体が多くの組織および細胞型において幅広く発現されていることが見出されている(Yao et al., Cytokine, 9：794 [1997])。ヒトIL-17A受容体(IL-17R)(866アミノ酸)のアミノ酸配列から、単一の膜貫通ドメインおよび525アミノ酸の長い細胞内ドメインを有するタンパク質が予想されるが、受容体配列は独特であり、サイトカイン/増殖因子受容体ファミリーに由来する受容体のいずれの配列にも類似していない。IL-17Aそれ自体が他の公知のタンパク質との類似性を欠くことと合わせて、このことから、IL-17Aおよびその受容体が、シグナル伝達タンパク質および受容体の新規なファミリーの一部分であり得ることが示唆される。IL-17A活性は、その独特な細胞表面受容体への結合によって媒介されることが実証されており、以前の研究により、T細胞と可溶型のIL-17A受容体ポリペプチドを接触させると、PHA、コンカナバリンA、および抗TCRモノクローナル抗体によって誘導されるT細胞増殖およびIL-2産生が阻害されたことが示されている(Yao et al., J. Immunol., 155：5483-5486 [1995])。したがって、公知のサイトカイン受容体、具体的にはIL-17A受容体に対する相同性を有する新規なポリペプチドを同定および特徴付けすることに大きな関心が寄せられている。

IL-17Fの発現パターンは、IL-17Aのものと同様であると思われ、これは、活性化されたCD4+T細胞および単球のみを含む(Starnes et al. J. Immunol. 167：4137-4140 [2001])。IL-17Fは、線維芽細胞におけるG-CSF、IL-6、およびIL-8(Hymowitz et al, EMBO J. 20：5322-5341 [2001])、ならびに内皮細胞におけるTGF-b(Starnes et al. J. Immunol. 167：4137-4140 [2001])を誘導することが実証された。樹状細胞によって産生されるサイトカインであるIL-23が、主に記憶T細胞においてIL-17AおよびIL-17Fの両方の産生を媒介できることが、最近報告された(Aggarwal et al. J. Biol. Chem. 278：1910-1914 [2003])。

さらに、IL-17AおよびIL-17Fの両方の過剰発現または上方調節が、関節炎の個体および喘息の個体において示されている(Moseley et al. CytokineGrowth Factor Rev 14：155-174 [2003]に総説がある)。関節炎に関しては、これらのサイトカインは、関節リウマチおよび変形性関節炎に関連する軟骨および関節の破壊に特徴的な様式で作用する。例えば、IL-17AおよびIL-17Fは、新しいプロテオグリカンおよびコラーゲンの合成を阻害しつつ、軟骨プロテオグリカングリコサミノグリカンおよびコラーゲン断片の放出によって関節軟骨移植片中の基質分解を促進することが実証されている(Cai et al. Cytokine 16：10-21 [2001]、Attur et al Arthritis Rheum 44：2078-2083 [2001])。

IL-17Aと同様に、マウスにおけるIL-17Fの過剰発現もまた、肺好中球動員を増加させ、かつ、IL-6、IFN-γ、IP-10、およびMIGを含む、肺中のTh1関連サイトカインの発現の増大をもたらすことが示されている(Starnes et al. J. Immunol. 167：4137-4140 [2001])。IL-17Fはまた、アレルゲンでチャレンジされた喘息患者に由来するT細胞において上方調節されており(Kawaguchi et al J. Immunol 167：4430-4435 [2001])、かつ、NHBEにおいてIL-6およびIL-8の産生を誘導することが見出された。IL-17Aと対照的に、IL-17Fは、インビトロで血管新生を阻害すると思われる(Starnes et al. J. Immunol. 167：4137-4140 [2001])。

IL-17F mRNAは、様々なヒト組織においてノーザンブロットによって検出されなかったが、CD4+ T細胞および単球が活性化されると、劇的に誘導された。前掲書。マウスにおいて、Th2細胞および肥満(mastr)細胞は、活性化されるとIL-17Fを発現することが見出された。Dumont, Expert Opin. Ther. Patents 13(3)(2003)を参照されたい。IL-17Aと同様に、IL-17Fの発現も、マウスにおいてIL-23によって上方調節されることが判明した。

IL-17サイトカイン/受容体ファミリーは、免疫応答および炎症応答の操作に対する革新的なアプローチを与えると考えられる、サイトカインネットワーク内の独特なシグナル伝達システムに相当すると思われる。したがって、本発明は、新規なIL-17ファミリー受容体IL-17RC、ならびにIL-17AおよびIL-17Fの両方へのその結合能力の発見に基づいている。

したがって、本発明のIL-17RC可溶性受容体のようなIL-17FおよびIL-17Aの活性に対するアンタゴニスト、ならびに抗ヒトIL-17RCモノクローナルおよび中和抗体を含む、それに対する抗体は、炎症性疾患の治療的処置において、特に、乾癬の治療における、単独または併用のIL-17FおよびIL-17Aの両方に対するアンタゴニストとして有用である。さらに、本発明のIL-17RC可溶性受容体のようなIL-17F活性に対するアンタゴニスト、ならびに抗ヒトIL-17RCモノクローナルおよび中和抗体を含む、それに対する抗体は、他の炎症性疾患の治療的処置において有用であり、例えば、アトピー性皮膚炎および接触性皮膚炎、IBD、結腸炎、内毒素血症、関節炎、関節リウマチ、乾癬性関節炎、成人呼吸器疾患(ARD)、敗血症ショック、多臓器不全、炎症性肺損傷、例えば、喘息、慢性閉塞性肺疾患(COPD)、気道応答性亢進、慢性気管支炎、アレルギー性喘息、細菌性肺炎など、乾癬、湿疹、ならびに、潰瘍性大腸炎およびクローン病などの炎症性腸疾患、ピロリ菌(Helicobacter pylori)感染症、腹膜炎症の結果としての(すなわち、感染、損傷などに起因する)腹腔内癒着および/または腹腔内膿瘍、全身性エリテマトーデス(SLE)、多発性硬化症、全身性硬化症、ネフローゼ症候群、臓器同種移植拒絶、移植片対宿主疾患(GVHD)、腎臓、肺、心臓などの移植拒絶、連鎖球菌細胞壁(SCW)によって誘発された関節炎、変形性関節症、歯ぎん炎/歯周炎、ヘルペス性間質角膜炎、前立腺癌、腎臓癌、結腸癌、卵巣癌、子宮頸部癌を含む癌、白血病、血管新生、再狭窄、および川崎病の治療において、IL-17FおよびIL-17Aを(個々にまたは共に)結合、妨害、阻害、低減、拮抗、または中和する。

サイトカイン受容体サブユニットは、リガンド結合ドメインおよび典型的にはシグナル伝達に関与しているエフェクタードメインを含むマルチドメイン構造を特徴とする。多量体サイトカイン受容体には、単量体、ホモ二量体(例えば、PDGF受容体ααアイソフォームおよびββアイソフォーム、エリスロポエチン受容体、MPL[トロンボポエチン受容体]、およびG-CSF受容体)、サブユニットがそれぞれリガンド結合ドメインおよびエフェクタードメインを有するヘテロ二量体(例えば、PDGF受容体αβアイソフォーム)、ならびに、異なる機能を有する構成要素サブユニットを有する多量体(例えば、IL-2、IL-3、IL-4、IL-5、IL-6、IL-7、およびGM-CSF受容体)が含まれる。いくつかの受容体サブユニットは、複数の受容体に共通である。例えば、それ自体ではリガンドに結合できないが細胞内シグナル伝達ドメインを含む、AIC2Bサブユニットは、IL-3受容体およびGM-CSF受容体の構成要素である。多くのサイトカイン受容体は、その構造および機能に基づいて、4種の関連ファミリーのうちの1つに分類することができる。例えば、クラスI造血受容体は、保存されているシステイン残基およびWSXWSモチーフ（SEQ ID NO：10）を含むドメインの存在を特徴とする。プロテインキナーゼドメイン、フィブロネクチンIII型ドメイン、および免疫グロブリンドメインを含む、ジスルフィド結合されたループを特徴とするその他のドメインは、いくつかの造血受容体中に存在する。サイトカイン受容体構造についての総説は、Urdal, Ann. Reports Med. Chem. 26：221-228, 1991およびCosman, Cytokine 5：95-106, 1993にある。一般に、生物が新しい生物学的機能を獲得する際の選択圧下で、新しい受容体ファミリーメンバーが、既存の受容体遺伝子の重複から生じて、多重遺伝子ファミリーの存在をもたらしたと考えられている。したがって、ファミリーメンバーは、先祖遺伝子の痕跡を含み、かつ、これらの特徴的な特徴は、その他のファミリーメンバーの単離および同定において活用することができる。

他の発明の中で、本発明は、「IL-17RC」または「可溶性IL-17RC」もしくは「sIL-17RC」と呼ばれる(これらはすべて、本明細書において同義的に使用され得る)可溶性受容体、または/およびIL-17RCサイトカイン受容体に対する中和抗体の新規な使用を提供する。本発明はまた、ヒトの炎症性疾患および自己免疫疾患において使用するための可溶性IL-17RCポリペプチド断片および融合タンパク質も提供する。本発明の抗IL-17RC中和抗体を含む、本発明の抗IL-17RC抗体および可溶性IL-17RC受容体は、炎症、ならびに乾癬、乾癬性関節炎、関節リウマチ、内毒素血症、炎症性腸疾患(IBD)、結腸炎、喘息、同種移植拒絶、免疫介在性腎疾患、肝胆道疾患、多発性硬化症、アテローム性動脈硬化症、腫瘍増殖の促進、または変性関節疾患、および本明細書において開示する他の炎症性状態などの炎症性疾患の治療において、IL-17FもしくはIL-17Aのいずれか、またはIL-17AおよびIL-17Fの両方の活性を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和するのに使用することができる。

ヒトIL-17RCをコードする例示的なヌクレオチド配列はSEQ ID NO：1によって提供され、コードされるポリペプチドはSEQ ID NO：2に示される。IL-17RCは、IL-17A(SEQ ID NO：13およびSEQ ID NO：14)ならびにIL-17F(SEQ ID NO：15およびSEQ ID NO：16)の両方に対する受容体として機能する。IL-17RCは、単量体、ホモ二量体、またはヘテロ二量体として作用することができる。好ましくは、IL-17RCは、IL-17Aおよび/またはIL-17Fの両方に対するホモ二量体受容体として作用する。IL-17RCはまた、IL-17関連サイトカインに対するヘテロ二量体受容体サブユニットとして作用することもできる。IL-17RCは、いずれもその全体が参照により本明細書に組み入れられる、本願の権利者が所有する米国特許出願第10/458,647号および本願の権利者が所有するWIPO公開WO01/04304において開示されている。IL-17RC(SEQ ID NO：1)をコードするヒトcDNAクローンの解析により、約20個のアミノ酸残基からなる推定上のシグナル配列(SEQ ID NO：2のアミノ酸残基1番〜20番)、約431個のアミノ酸残基からなる細胞外リガンド結合ドメイン(SEQ ID NO：2のアミノ酸残基21番〜452番;SEQ ID NO：3)、約20個のアミノ酸残基からなる膜貫通ドメイン(SEQ ID NO：2のアミノ酸残基453番〜473番)、および約203個のアミノ酸残基からなる細胞内ドメイン(SEQ ID NO：2のアミノ酸残基474番〜677番)を含む、692個のアミノ酸(SEQ ID NO：2)をコードするオープンリーディングフレームが明らかになった。さらに、リガンド結合ドメインは、SEQ ID NO：22によって表される。

「IL-17RC-1」と呼ばれる変種ヒトIL-17RCをコードするさらに別の例示的なヌクレオチド配列はSEQ ID NO：4によって提供され、コードされるポリペプチドはSEQ ID NO：5に示される。IL-17RC-1は、いずれもその全体が参照により本明細書に組み入れられる、本願の権利者が所有する米国特許出願第10/458,647号および本願の権利者が所有するWIPO公開WO01/04304において開示されている。配列解析により、IL-17RC-1が切断型の受容体ポリペプチドであることが明らかになった。すなわち、IL-17RC-1は、SEQ ID NO：2のアミノ酸残基1番〜113番を欠く。SEQ ID NO：10は、IL-17RCのN末端部分を含むIL-17RC-1ポリペプチドのアミノ酸配列を示す。

また、IL-17RCおよびIL-17RC-1のアミノ酸配列比較により、これら2種のポリペプチドが選択的にスプライシングされた変種に相当することも示された。IL-17RCのアミノ酸配列は、IL-17RC-1が欠いているアミノ酸17個のセグメント(SEQ ID NO：2のアミノ酸残基339番〜355番)を含むが、IL-17RCは、アミノ酸479番の後に、IL-17RC-1中に存在するアミノ酸13個のセグメント(SEQ ID NO：5のアミノ酸残基350番〜362番)を欠いている。両方のアミノ酸セグメントを含むポリペプチドはSEQ ID NO：11によって提供されるのに対し、SEQ ID NO：12は、アミノ酸13個およびアミノ酸17個のセグメントの両方を欠くポリペプチドのアミノ酸配列を示す。

「IL-17RC-6」と呼ばれる変種ヒトIL-17RCをコードするさらに別の例示的なヌクレオチド配列はSEQ ID NO：23によって提供され、コードされるポリペプチドはSEQ ID NO：24に示される。IL-17RC-6は、SEQ ID NO：2に例示されるIL-17RCと比べてアミノ酸残基25個の欠失を含む。具体的には、IL-17RC-6は、SEQ ID NO：2のアミノ酸残基94番〜アミノ酸残基 118番を含まない。IL-17RC-6 (SEQ ID NO：23)をコードするヒトcDNAクローンの解析により、約427個のアミノ酸残基からなる細胞外リガンド結合ドメイン(SEQ ID NO：24のアミノ酸残基1番〜427番)、約20個のアミノ酸残基からなる膜貫通ドメイン(SEQ ID NO：24のアミノ酸残基428番〜448番)、および約218個のアミノ酸残基からなる細胞内ドメイン(SEQ ID NO：24のアミノ酸残基449番〜667番)が明らかになった。

「IL-17RCx4」と呼ばれる変種ヒトIL-17RCをコードするさらに別の例示的なヌクレオチド配列は、SEQ ID NO：67およびSEQ ID NO：68のポリヌクレオチド配列およびポリペプチド配列によって提供される。IL-17RCx4をコードするヒトcDNAクローンの解析により、ポリヌクレオチド配列中の残基1番〜60番およびポリペプチド配列中の残基1番〜20番に由来する予測されたシグナルペプチド;ポリヌクレオチド配列中の残基61番〜1401番およびポリペプチド配列中の残基21番〜467番に由来する細胞外ドメイン;ポリヌクレオチド配列中の残基1402番〜1464番およびポリペプチド配列中の残基468番〜488番に由来する膜貫通ドメイン;ならびにポリヌクレオチド配列中の残基1465番〜2121番およびポリペプチド配列中の残基489番〜707番に由来する細胞内ドメインが明らかになった。

変種マウスIL-17RCをコードする例示的なヌクレオチド配列はSEQ ID NO：25によって提供され、コードされるポリペプチドはSEQ ID NO：26に示される。マウスIL-17RCは、マウスIL-17A(SEQ ID NO：17およびSEQ ID NO：18)ならびにマウスIL-17F(SEQ ID NO：19およびSEQ ID NO：20)の両方に対する受容体として機能する。IL-17RC(SEQ ID NO：1)をコードするマウスcDNAクローンの解析により、約449個のアミノ酸残基からなる細胞外リガンド結合ドメイン(SEQ ID NO：27)が明らかになった。さらに、リガンド結合ドメインは、SEQ ID NO：28によって表される。

変種マウスIL-17RCをコードするさらに別の例示的なヌクレオチド配列はSEQ ID NO：29によって提供され、コードされるポリペプチドはSEQ ID NO：30に示される。

IL-17RC遺伝子は、染色体3p25〜3p24中に存在する。下記に考察するように、この領域は、様々な障害および疾患に関連している。

ノーザン解析により、甲状腺組織、副腎組織、前立腺組織、および肝臓組織においてIL-17RC遺伝子が強く発現され、心臓組織、小腸組織、胃組織、および気管組織における発現はこれより少ないことが示される。一方、脳、胎盤、肺、骨格筋、腎臓、膵臓、脾臓、胸腺、精巣、卵巣、結腸、末梢血白血球、脊髄、リンパ節、および骨髄では、ほとんどまたは全く発現されない。これらの観察結果から、様々な組織を識別するのにIL-17RC配列を使用できることが示される。

後述するように、本発明は、SEQ ID NO：2の21番〜692番の参照アミノ酸配列と少なくとも70％、少なくとも80％、もしくは少なくとも90％、または95％超、例えば、96％、97％、98％、もしくは99％またはそれ以上同一であるアミノ酸配列を含み、SEQ ID NO：2のアミノ酸配列を含むポリペプチドと特異的に結合する抗体と特異的に結合する、単離されたポリペプチドを提供する。本発明はまた、(a)SEQ ID NO：2のアミノ酸残基21番〜452番、(b)SEQ ID NO：10のアミノ酸残基21番〜435番、(c)SEQ ID NO：2のアミノ酸残基21番〜677番、および(d)SEQ ID NO：2のアミノ酸残基1番〜692番からなる群より選択される参照アミノ酸配列と少なくとも70％、少なくとも80％、または少なくとも90％同一であるアミノ酸配列を含み、SEQ ID NO：2のアミノ酸配列またはSEQ ID NO：10のアミノ酸配列のいずれかからなるポリペプチドと特異的に結合する抗体と特異的に結合する、単離されたポリペプチドを提供する。例示的なポリペプチドには、SEQ ID NO：2、SEQ ID NO：10、SEQ ID NO：11、またはSEQ ID NO：12のアミノ酸配列を含むポリペプチドが含まれる。

本発明はまた、SEQ ID NO：2のアミノ酸配列のアミノ酸残基21番〜452番またはSEQ ID NO：10のアミノ酸配列のアミノ酸残基21番〜435番のいずれかを含む細胞外ドメインを含む単離されたポリペプチドも提供する。このようなポリペプチドは、細胞外ドメインに対してカルボキシル末端位置に存在し、SEQ ID NO：2のアミノ酸残基453番〜473番を含む膜貫通ドメインもさらに含んでよい。これらのポリペプチドはまた、膜貫通ドメインに対してカルボキシル末端位置に存在し、SEQ ID NO：2のアミノ酸残基474番〜677番またはSEQ ID NO：10のアミノ酸残基457番〜673番のいずれかを含む細胞内ドメイン、および任意で、細胞外ドメインに対してアミノ末端位置に存在し、SEQ ID NO：2のアミノ酸配列のアミノ酸残基1番〜20番を含むシグナル分泌配列も含んでよい。

本発明はまた、変種IL-17RCポリペプチドも含み、この変種ポリペプチドのアミノ酸配列は、SEQ ID NO：2のアミノ酸配列と、少なくとも70％の同一性、少なくとも80％の同一性、少なくとも90％の同一性、少なくとも95％の同一性、または95％を上回る同一性からなる群より選択される同一性を有し、かつ、変種ポリペプチドのアミノ酸配列とSEQ ID NO：2のアミノ酸配列との任意の差異は、1つまたは複数の保存的アミノ酸置換に起因する。

さらに、本発明はまた、IL-17F(例えば、SEQ ID NO：16に示されるヒトIL-17Fポリペプチド配列)に結合する、上記に開示した単離されたポリペプチドも提供する。ヒトIL-17Fポリヌクレオチド配列は、SEQ ID NO：15に示される。マウスIL-17Fポリヌクレオチド配列はSEQ ID NO：19に示され、対応するポリペプチドはSEQ ID NO：20に示される。本発明はまた、IL-17A(例えば、SEQ ID NO：14に示すヒトIL-17Aポリペプチド配列)に結合する、上記に開示した単離されたポリペプチドも提供する。ヒトIL-17Aポリヌクレオチド配列は、SEQ ID NO：13に示される。マウスIL-17Aポリヌクレオチド配列はSEQ ID NO：17に示され、対応するポリペプチドはSEQ ID NO：18に示される。

本発明はまた、SEQ ID NO：2またはSEQ ID NO：3のアミノ酸配列の少なくとも15個の連続したアミノ酸残基を含む、単離されたポリペプチドおよびエピトープも提供する。例示的なポリペプチドには、SEQ ID NO：2もしくはSEQ ID NO：3、その抗原エピトープ、またはその機能的なIL-17AもしくはIL-17F結合断片を含むか、またはそれらからなるポリペプチドが含まれる。さらに、本発明はまた、IL-17FまたはIL-17Aに結合するか、その活性を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和する、上記に開示した単離されたポリペプチドも提供する。

本発明はまた、変種IL-17RCポリペプチドも含み、この変種ポリペプチドのアミノ酸配列は、SEQ ID NO：2のアミノ酸残基と、少なくとも70％の同一性、少なくとも80％の同一性、少なくとも90％の同一性、少なくとも95％の同一性、または95％を上回る同一性、例えば、96％、97％、98％、もしくは99％またはそれ以上の同一性からなる群より選択される同一性を有し、かつ、変種ポリペプチドのアミノ酸配列とSEQ ID NO：2の対応するアミノ酸配列との任意の差異は、1つまたは複数の保存的アミノ酸置換に起因する。このような保存的アミノ酸置換は、本明細書において説明される。さらに、本発明はまた、IL-17FまたはIL-17Aに結合するか、その活性を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和する、上記に開示した単離されたポリペプチドも提供する。

本発明はさらに、このようなポリペプチドと特異的に結合する抗体および抗体断片も提供する。例示的な抗体には、中和抗体、ポリクローナル抗体、マウスモノクローナル抗体、マウスモノクローナル抗体に由来するヒト化抗体、およびヒトモノクローナル抗体が含まれる。例示的な抗体断片には、F(ab')₂、F(ab)₂、Fab'、Fab、Fv、scFv、および最小認識単位が含まれる。中和抗体は、好ましくはIL-17RCに結合し、その結果、IL-17AおよびIL-17FとIL-17RCとの相互作用は妨害、阻害、低減、拮抗、または中和される。IL-17AまたはIL-17FのいずれかのIL-17RCへの結合を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和する抗IL-17RC中和抗体もまた、本発明によって包含される。すなわち、本発明の中和性抗IL-17RC抗体は、IL-17AもしくはIL-17Fのそれぞれを個々に結合、妨害、阻害、低減、拮抗、もしくは中和し得るか、またはIL-17AおよびIL-17Fを共に結合、妨害、阻害、低減、拮抗、もしくは中和し得る。本発明はさらに、担体、および本明細書において説明するペプチド、ポリペプチド、または抗体を含む組成物も含む。

さらに、本発明は、薬学的に許容される担体およびそのような発現ベクターまたはそのような発現ベクターを含む組換えウイルスのうち少なくとも1種を含む薬学的組成物も提供する。本発明はさらに、薬学的に許容される担体、および本明細書において説明するポリペプチドまたは抗体を含む薬学的組成物も含む。

本発明はまた、SEQ ID NO：2のアミノ酸配列を含むポリペプチドまたはその断片に特異的に結合する抗体または抗体断片に特異的に結合する、抗イディオタイプ抗体または抗イディオタイプ抗体断片も企図する。例示的な抗イディオタイプ抗体は、SEQ ID NO：2からなるポリペプチドに特異的に結合する抗体に結合する。

本発明はまた、IL-17RCポリペプチドおよび免疫グロブリン部分を含む融合タンパク質も提供する。このような融合タンパク質において、免疫グロブリン部分は、ヒトFc断片のような免疫グロブリン重鎖定常領域でよい。本発明はさらに、このような融合タンパク質をコードする単離された核酸分子も含む。

本発明はまた、可溶性受容体を含む単量体受容体、ホモ二量体受容体、ヘテロ二量体、および多量体受容体などIL-17RC細胞外ドメインを含むポリペプチドに結合するポリクローナル抗体およびモノクローナル抗体も提供する。さらに、このような抗体は、IL-17RC受容体へのIL-17RCリガンド、IL-17F(SEQ ID NO：16)、およびIL-17A(SEQ ID NO：14)の結合と個々にまたは共に拮抗させるために使用され得る。

本発明のこれらの局面および他の局面は、以下の詳細な説明を参照すると、明らかになると考えられる。さらに、様々な参考文献が下記に特定され、かつ、それらの全体が参照により組み入れられる。

B)定義
以下の説明において、いくつかの用語が広範に使用される。以下の定義は、本発明の理解を容易にするために提供される。

本明細書において使用される場合、「核酸」または「核酸分子」は、デオキシリボ核酸(DNA)またはリボ核酸(RNA)などのポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、ポリメラーゼ連鎖反応法(PCR)によって作製された断片、ならびに、ライゲーション、切断、エンドヌクレアーゼ作用、およびエキソヌクレアーゼ作用のいずれかによって作製された断片を意味する。核酸分子は、天然のヌクレオチドである単量体(DNAおよびRNAなど)、もしくは天然のヌクレオチドの類似体(例えば、天然のヌクレオチドのα-鏡像異性型)、または両方の組合せから構成され得る。改変されたヌクレオチドは、糖部分および/またはピリミジンもしくはプリン塩基部分に変更を有してよい。糖改変には、例えば、ハロゲン、アルキル基、アミン、およびアジド基による1つもしくは複数のヒドロキシル基の置換が含まれ、または、糖は、エーテルもしくはエステルとして官能化されてよい。さらに、糖部分全体が、アザ糖および炭素環系糖類似体など立体的かつ電子的に類似した構造体で置換されてもよい。塩基部分の改変の例には、アルキル化されたプリンおよびピリミジン、アシル化されたプリンもしくはピリミジン、または他の周知の複素環系置換が含まれる。核酸単量体は、リン酸ジエステル結合またはそのような結合の類似体によって連結されてよい。リン酸ジエステル結合の類似体には、ホスホロチオアート、ホスホロジチオアート、ホスホロセレノアート、ホスホロジセレノアート、ホスホロアニロチオアート、ホスホルアニリダート、およびホスホルアミダートなどが含まれる。「核酸分子」という用語はまた、ポリアミド主鎖に結合された天然または改変された核酸塩基を含む、いわゆる「ペプチド核酸」も含む。核酸は、一本鎖または二本鎖のいずれかでよい。

「核酸分子の相補体」という用語は、参照ヌクレオチド配列と比べて相補的なヌクレオチド配列および反対の向きを有する核酸分子を意味する。例えば、配列5' ATGCACGGG 3'は、5' CCCGTGCAT 3'に相補的である。

「縮重ヌクレオチド配列」という用語は、あるポリペプチドをコードする参照核酸分子と比べて1つまたは複数の縮重コドンを含む、ヌクレオチド配列を示す。縮重コドンは、ヌクレオチドの異なるトリプレットを含むが、同じアミノ酸残基をコードする(すなわち、GAUおよびGACトリプレットは、それぞれAspをコードする)。

「構造遺伝子」という用語は、メッセンジャーRNA(mRNA)に転写され、次いで、特定のポリペプチドに特徴的なアミノ酸配列に翻訳される核酸分子を意味する。

「単離された核酸分子」は、生物のゲノムDNA中に組み込まれていない核酸分子である。例えば、細胞のゲノムDNAから分離された、増殖因子をコードするDNA分子は、単離DNA分子である。単離された核酸分子の別の例は、生物のゲノム中に組み込まれていない、化学合成された核酸分子である。特定の種から単離された核酸分子は、その種に由来する染色体の完全なDNA分子より小型である。

「核酸分子構築物」は、天然には存在しない配置で組み合わされ、かつ並べられた核酸のセグメントを含むように、ヒトの介入によって改変された、一本鎖または二本鎖の核酸分子である。

「直鎖DNA」は、遊離の5'末端および3'末端を有する非環状DNA分子を示す。直鎖DNAは、酵素的消化または物理的破壊によって、プラスミドのような閉じた環状DNA分子から調製することができる。

「相補的DNA(cDNA)」は、酵素逆転写酵素によってmRNA鋳型から形成される一本鎖DNA分子である。典型的には、mRNAの一部分に相補的なプライマーが、逆転写の開始のために使用される。また、当業者は、そのような一本鎖DNA分子およびその相補的DNA鎖からなる二本鎖DNA分子を指すために、「cDNA」という用語も使用する。「cDNA」という用語はまた、RNA鋳型から合成されたcDNA分子のクローンも意味する。

「プロモーター」は、構造遺伝子の転写を指示するヌクレオチド配列である。典型的には、プロモーターは、遺伝子の5'非コード領域中、構造遺伝子の転写開始部位の近位側に位置する。転写開始において機能するプロモーター内の配列エレメントは、しばしば、コンセンサスヌクレオチド配列を特徴とする。これらのプロモーターエレメントには、RNAポリメラーゼ結合部位、TATA配列、CAAT配列、分化特異的エレメント(DSE; McGehee et al., Mol. Endocrinol. 7：551(1993))、環状AMP応答エレメント(CRE)、血清応答エレメント(SRE; Treisman, Seminars in Cancer Biol. 1：47(1990))、糖質コルチコイド応答エレメント(GRE)、ならびに、CRE/ATF(O'Reilly et al., J. Biol. Chem. 267：19938(1992))、AP2(Ye et al., J. Biol. Chem. 269：25728(1994))、SP1、cAMP 応答エレメント結合タンパク質(CREB; Loeken, Gene Expr. 3：253(1993))、および八量体因子(一般に、Watson et al.編、Molecular Biology of the Gene、第4版(The Benjamin/Cummings Publishing Company, Inc. 1987)ならびにLemaigreおよびRousseau, Biochem. J. 303：1(1994)を参照されたい)など他の転写因子に対する結合部位が含まれる。プロモーターが誘導性プロモーターである場合には、転写速度は、誘導物質に応答して上昇する。一方、プロモーターが構成的プロモーターである場合には、転写速度は誘導物質によって調節されない。抑制プロモーターもまた、公知である。

「コアプロモーター」は、TATAボックスおよび転写開始部位を含む、プロモーター機能のために不可欠なヌクレオチド配列を含む。この定義により、コアプロモーターは、活性を増大させ得るか、または組織特異的な活性を与え得る特定の配列の不在下で検出可能な活性を有してもよく、または有さなくてもよい。

「調節エレメント」は、コアプロモーターの活性を調整するヌクレオチド配列である。例えば、調節エレメントは、特定の細胞、組織、または細胞小器官において排他的または優先的に転写を可能にする細胞因子と結合するヌクレオチド配列を含んでよい。これらのタイプの調節エレメントは、通常、「細胞特異的」、「組織特異的」、または「細胞小器官特異的」な様式で発現される遺伝子と結合している。

「エンハンサー」は、転写開始部位に対するエンハンサーの距離にも向きにも関わらず、転写の効率を高めることができるタイプの調節エレメントである。

「異種DNA」は、所与の宿主細胞内に天然には存在しない、DNA分子またはDNA分子の集団を意味する。特定の宿主細胞に異種のDNA分子は、宿主DNAが非宿主DNA(すなわち、外来性DNA)と結合していない限りにおいて、宿主細胞種に由来するDNA(すなわち、内在性DNA)を含んでよい。例えば、転写プロモーターを含む宿主DNAセグメントに機能的に連結された、あるポリペプチドをコードする非宿主DNAセグメントを含むDNA分子は、異種DNA分子とみなされる。逆に、異種DNA分子は、外来性プロモーターと機能的に連結された内在性遺伝子を含んでよい。別の例として、野生型細胞に由来する遺伝子を含むDNA分子は、そのDNA分子が、野生型遺伝子を欠く変異細胞中に導入される場合には、異種DNAとみなされる。

「ポリペプチド」は、天然に産生されるか合成的に作製されるかを問わず、ペプチド結合によって結合されたアミノ酸残基のポリマーである。約10アミノ酸残基未満のポリペプチドは、一般に「ペプチド」と呼ばれる。

「タンパク質」は、1つまたは複数のポリペプチド鎖を含む高分子である。タンパク質はまた、炭水化物基のような非ペプチド性構成要素を含んでもよい。炭水化物および他の非ペプチド性置換基は、タンパク質が産生される細胞によって、そのタンパク質に付加されてよく、かつ、細胞のタイプによって異なる。タンパク質は、本明細書において、そのアミノ酸主鎖の構造の観点から定義され、炭水化物基のような置換基は一般に特定されないが、それでもなお存在してよい。

非宿主DNA分子によってコードされるペプチドまたはポリペプチドは、「異種」ペプチドまたはポリペプチドである。

「クローニングベクター」は、プラスミド、コスミド、またはバクテリオファージなど、宿主細胞において自主的に複製する能力を有する核酸分子である。クローニングベクターは、典型的には、ベクターの極めて重要な生物学的機能を喪失せずに、決定可能な様式で核酸分子を挿入することを可能にする1つまたは小数の制限エンドヌクレアーゼ認識部位、ならびに、クローニングベクターで形質転換された細胞の同定および選別に使用するのに適しているマーカー遺伝子をコードするヌクレオチド配列を含む。マーカー遺伝子には、典型的には、テトラサイクリン耐性またはアンピシリン耐性を提供する遺伝子が含まれる。

「発現ベクター」は、宿主細胞において発現される遺伝子をコードする核酸分子である。典型的には、発現ベクターは、転写プロモーター、遺伝子、および転写ターミネーターを含む。遺伝子発現は、通常、プロモーターの制御下に置かれ、このような遺伝子は、プロモーター「に機能的に連結された」と言われる。同様に、調節エレメントがコアプロモーターの活性を調節する場合には、調節エレメントおよびコアプロモーターは、機能的に連結されている。

「組換え宿主」は、クローニングベクターまたは発現ベクターなどの異種核酸分子を含む細胞である。本発明の文脈において、組換え宿主の例は、発現ベクターからIL-17RCを産生する細胞である。一方、IL-17RCは、IL-17RCの「天然供給源」であり、かつ、発現ベクターを欠く細胞によって産生され得る。

「組込み形質転換体」は、異種DNAが細胞のゲノムDNA中に組み込まれた組換え宿主細胞である。

「融合タンパク質」は、少なくとも2種の遺伝子のヌクレオチド配列を含む核酸分子によって発現されるハイブリッドタンパク質である。例えば、融合タンパク質は、アフィニティマトリックスに結合するポリペプチドと融合されたIL-17RCポリペプチドの少なくとも一部分を含んでよい。このような融合タンパク質は、アフィニティクロマトグラフィーを用いて多量のIL-17RCを単離するための手段を提供する。

「受容体」という用語は、「リガンド」と呼ばれる生理活性分子に結合する、細胞関連タンパク質を示す。この相互作用は、細胞に対するリガンドの作用を媒介する。受容体は、膜結合型、細胞質ゾル内、または核内でよく、単量体(例えば、甲状腺刺激ホルモン受容体、β-アドレナリン作動性受容体)または多量体(例えば、PDGF受容体、成長ホルモン受容体、IL-3受容体、GM-CSF受容体、G-CSF受容体、エリスロポエチン受容体、およびIL-6受容体)でよい。膜結合型受容体は、細胞外のリガンド結合ドメインおよび典型的にはシグナル伝達に関与している細胞内のエフェクタードメインを含むマルチドメイン構造を特徴とする。ある種の膜結合型受容体において、細胞外のリガンド結合ドメインおよび細胞内のエフェクタードメインは、完全な機能的受容体を含む別々のポリペプチドに位置している。

一般に、受容体にリガンドが結合すると、受容体の立体配置が変化して、細胞中のエフェクタードメインと他の分子との相互作用が引き起こされ、その結果として、細胞の代謝が変更される。受容体-リガンド相互作用にしばしば関係があるとされる代謝事象には、遺伝子転写、リン酸化、脱リン酸化、環状AMP産生の増加、細胞カルシウムの動員、膜脂質の流動、細胞接着、イノシトール脂質の加水分解、およびリン脂質の加水分解が含まれる。

「可溶性受容体」は、細胞膜に結合していない受容体ポリペプチドである。可溶性受容体は、膜貫通ドメインおよび細胞質内ドメイン、ならびにグリコホスホイノシトール(gpi)を介する結合のような細胞膜への他の結合を欠く、最も一般的なリガンド結合受容体ポリペプチドである。可溶性受容体は、ポリペプチドの精製を提供するか、もしくは、基質へのポリペプチドの結合部位を提供するアフィニティータグ、または免疫グロブリン定常領域配列など付加的なアミノ酸残基を含んでよい。多くの細胞表面受容体は、タンパク分解によって産生されるか、または選択的にスプライシングされたmRNAから翻訳される、天然の可溶性対応物を有する。可溶性受容体は、単量体、ホモ二量体、ヘテロ二量体、または多量体でよく、多量体受容体は、一般に、9個を超えるサブユニットを含まず、好ましくは、6個を超えるサブユニットを含まず、および最も好ましくは、3個を超えるサブユニットを含まない。受容体ポリペプチドは、それぞれ膜固定またはシグナル伝達を提供するのに十分な膜貫通ポリペプチドセグメントおよび細胞内ポリペプチドセグメントの部分をそれらが欠いている場合、これらを実質的に含まないと言われる。サイトカイン受容体の可溶性受容体は、一般に、膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインを含まない細胞外サイトカイン結合ドメインを含む。例えば、代表的な可溶性受容体には、SEQ ID NO：21に示されるIL-17Rの可溶性受容体が含まれる。公知のサイトカイン受容体配列のどの配列が、膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインを含まない細胞外サイトカイン結合ドメインを含むかを正確に叙述することは、当業者が十分に対応できるレベルの範囲内である。さらに、当業者は、遺伝コードを用いて、このような可溶性受容体ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを容易に決定することができる。

「分泌シグナル配列」という用語は、より大型のポリペプチドの構成要素として、合成される場である細胞の分泌経路を介してその大型ポリペプチドを誘導するペプチド(「分泌ペプチド」)をコードするDNA配列を示す。この大型ポリペプチドは、一般に、分泌経路を介して移行する間に切断されて、分泌ペプチドが除去される。

「単離されたポリペプチド」は、炭水化物、脂質、または天然にポリペプチドに結合している他のタンパク質性の不純物など、混入した細胞成分を本質的に含まないポリペプチドである。典型的には、単離されたポリペプチドの調製物は、高度に精製された形態の、すなわち、少なくとも約80％の純度、少なくとも約90％の純度、少なくとも約95％の純度、95％超の純度、例えば、96％、97％、もしくは98％またはそれ以上の純度、または99％超の純度のポリペプチドを含む。特定のタンパク質調製物が単離されたポリペプチドを含むことを示す1つの方法は、そのタンパク質調製物のドデシル硫酸ナトリウム(SDS)ポリアクリルアミドゲル電気泳動およびゲルのクーマシーブリリアントブルー染色の後のシングルバンドの出現による。しかしながら、「単離された」という用語は、二量体あるいはグリコシル化型または誘導体化型など、代替の物理的形態の同じポリペプチドの存在を除外しない。

「アミノ末端」および「カルボキシル末端」という用語は、本明細書において、ポリペプチド内部の位置を示すために使用される。文脈が許す場合、これらの用語は、ポリペプチドの特定の配列または部分に関して、近接または相対的位置を示すために使用される。例えば、ポリペプチド内の参照配列に対してカルボキシ末端に位置した特定の配列は、その参照配列のカルボキシ末端の近位側に位置するが、必ずしも、ポリペプチド全体のカルボキシル末端にはない。

「発現」という用語は、遺伝子産物の生合成を意味する。例えば、構造遺伝子の場合、発現は、mRNAへの構造遺伝子の転写および1種または複数種のポリペプチドへのmRNAの翻訳を含む。

「スプライス変種」という用語は、本明細書において、ある遺伝子から転写されたRNAの代替形態を示すために使用される。スプライス変異は、転写されたRNA分子内の、または、頻度は低いものの、別々に転写されたRNA分子間の選択的スプライシング部位の使用を通じて天然に起こり、その結果、同じ遺伝子から転写されたいくつかのmRNAが生じ得る。スプライス変種は、アミノ酸配列が変更されたポリペプチドをコードする場合がある。また、スプライス変種という用語は、本明細書において、ある遺伝子から転写されたmRNAのスプライス変種によってコードされるポリペプチドを示すのにも使用される。

本明細書において使用される場合、「免疫調節物質」という用語は、サイトカイン、幹細胞増殖因子、リンホトキシン、共刺激分子、および造血因子など、ならびに、これらの分子の合成類似体を含む。

「相補体/抗相補体ペア」という用語は、適切な条件下で、非共有結合的に結合した安定なペアを形成する、非同一な部分を示す。例えば、ビオチンおよびアビジン(またはストレプトアビジン)は、相補体/抗相補体ペアの典型メンバーである。他の例示的な相補体/抗相補体ペアには、受容体/リガンドペア、抗体/抗原(またはハプテンもしくはエピトープ)ペア、およびセンス/アンチセンスポリヌクレオチドペアなどが含まれる。相補体/抗相補体ペアのその後の分離が望ましい場合、相補体/抗相補体ペアは、好ましくは、10⁹M^-1未満の結合親和力を有する。

「抗イディオタイプ抗体」は、免疫グロブリンの可変領域ドメインと結合する抗体である。本発明の文脈において、抗イディオタイプ抗体は、抗IL-17RC抗体の可変領域と結合し、したがって、抗イディオタイプ抗体は、IL-17RCのエピトープを模倣している。

「抗体断片」は、F(ab')₂、F(ab)₂、Fab'、およびFabなど抗体の一部分である。構造に関わらず、抗体断片は、完全な抗体によって認識される同じ抗原と結合する。例えば、抗IL-17RCモノクローナル抗体断片は、IL-17RCのエピトープと結合する。

「抗体断片」という用語はまた、軽鎖可変領域からなるポリペプチド、重鎖および軽鎖の可変領域からなる「Fv」断片、軽鎖可変領域および重鎖可変領域がペプチドリンカーによって連結されている組換え単鎖ポリペプチド分子(「scFvタンパク質」)、ならびに超可変領域を模倣するアミノ酸残基からなる最小認識単位など、特定の抗原に結合する合成ポリペプチドまたは遺伝的に操作されたポリペプチドも含む。

「キメラ抗体」は、げっ歯動物抗体に由来する可変ドメインおよび相補性決定領域を含むが、抗体分子の残りの部分はヒト抗体に由来する、組換えタンパク質である。

「ヒト化抗体」は、モノクローナル抗体のマウスの相補性決定領域が、マウス免疫グロブリンの重鎖可変鎖および軽鎖可変鎖からヒト可変ドメイン中に移入されている、組換えタンパク質である。マウス抗体に由来する、ヒトタンパク質に結合するか、または中和するもののようなヒトにおいて治療的に使用するためのヒト化抗体の構築は、当業者の技能の範囲内である。

本明細書において使用される場合、「治療物質」は、抗体部分に結合されて、治療法に有用である結合体を生じる、分子または原子である。治療物質の例には、薬物、毒素、免疫調節物質、キレート剤、ホウ素化合物、光活性物質または光活性色素、および放射性同位体が含まれる。

「検出可能な標識」は、抗体部分に結合されて、診断に有用な分子を生じることができる、分子または原子である。検出可能な標識の例には、キレート剤、光活性物質、放射性同位体、蛍光物質、常磁性イオン、または他のマーカー部分が含まれる。

「アフィニティータグ」という用語は、本明細書において、第2のポリペプチドに結合されて、第2のポリペプチドの精製もしくは検出を実現するか、または第2のポリペプチドが基質に結合するための部位を提供することができる、ポリペプチドセグメントを示すために使用される。主に、抗体または他の特異的結合物質がそれらに対して利用可能である任意のペプチドまたはタンパク質は、アフィニティータグとして使用され得る。アフィニティータグには、ポリヒスチジン領域、プロテインA(Nilsson et al., EMBO J. 4：1075(1985)、Nilsson et al., Methods Enzymol. 198：3(1991))、グルタチオンSトランスフェラーゼ(SmithおよびJohnson、Gene 67：31(1988))、Glu-Gluアフィニティータグ(Grussenmeyer et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82：7952(1985))、サブスタンスP、FLAGペプチド(Hopp et al., Biotechnology(6：1204(1988))、ストレプトアビジン結合ペプチド、または他の抗原エピトープもしくは結合ドメインが含まれる。一般に、Ford et al., Protein Expression and Purification 2：95(1991)を参照されたい。アフィニティータグをコードするDNA分子は、商業的な供給業者(例えば、Pharmacia Biotech, Piscataway, NJ)から入手可能である。

「裸抗体」は、抗体断片と対立するものとして、完全な抗体であり、治療物質と結合していない。裸抗体には、ポリクローナル抗体およびモノクローナル抗体の両方、ならびに、キメラ抗体およびヒト化抗体などある種の組換え抗体が含まれる。

本明細書において使用される場合、「抗体構成要素」という用語は、完全な抗体および抗体断片の両方を含む。

「免疫複合体」は、抗体構成要素と治療物質または検出標識との結合体である。

本明細書において使用される場合、「抗体融合タンパク質」という用語は、抗体構成要素およびIL-17RCポリペプチド構成要素を含む組換え分子を意味する。抗体融合タンパク質の例には、IL-17RC細胞外ドメインおよびFcドメインまたは抗原結合領域のいずれかを含むタンパク質が含まれる。

「標的ポリペプチド」または「標的ペプチド」は、少なくとも1つのエピトープを含み、かつ、腫瘍細胞または感染病原体抗原を保有する細胞などの標的細胞上で発現される、アミノ酸配列である。T細胞は、標的ポリペプチドまたは標的ペプチドに対して主要組織適合性複合体分子によって提示されるペプチドエピトープを認識し、かつ、典型的には、標的細胞を溶解するか、または標的細胞の部位に他の免疫細胞を動員し、それによって標的細胞を死滅させる。

「抗原ペプチド」は、主要組織適合性複合体分子と結合して、T細胞によって認識されるMHC-ペプチド複合体を形成し、それによって、T細胞に提示された際に細胞障害性リンパ球応答を誘導すると考えられるペプチドである。したがって、抗原ペプチドは、適切な主要組織適合性複合体分子に結合し、かつ、細胞溶解または抗原に結合するか、もしくは抗原を発現する標的細胞に対する特異的サイトカイン放出など細胞障害性T細胞応答を誘導することができる。抗原ペプチドは、クラスIまたはクラスII主要組織適合性複合体分子の場合、抗原提示細胞または標的細胞上で結合され得る。

真核生物において、RNAポリメラーゼIIは、構造遺伝子の転写を触媒して、mRNAを生成させる。RNA転写物が特定のmRNAの配列に相補的である配列を有する核酸分子は、RNAポリメラーゼII鋳型を含むように設計することができる。RNA転写物は、「アンチセンスRNA」と呼ばれ、アンチセンスRNAをコードする核酸分子は、「アンチセンス遺伝子」と呼ばれる。アンチセンスRNA分子は、mRNA分子に結合して、mRNA翻訳を阻害することができる。

「IL-17RCに特異的なアンチセンスオリゴヌクレオチド」または「IL-17RCアンチセンスオリゴヌクレオチド」は、(a)IL-17RC遺伝子の一部分と安定な三重鎖(triplex)を形成することができるか、または(b)IL-17RC遺伝子のmRNA転写物の一部分と安定な二重鎖を形成することができる配列を有するオリゴヌクレオチドである。

「リボザイム」は、触媒中心を含む核酸分子である。この用語は、RNA酵素、自己スプライシングRNA、自己切断RNA、およびこれらの触媒機能を果たす核酸分子を含む。リボザイムをコードする核酸分子は、「リボザイム遺伝子」と呼ばれる。

「外部ガイド配列」は、特定の種類の細胞内mRNAに内因性リボザイム、RNase Pを誘導して、RNase PによるmRNAの切断をもたらす核酸分子である。外部ガイド配列をコードする核酸分子は、「外部ガイド配列遺伝子」と呼ばれる。

「変種IL-17RC遺伝子」という用語は、SEQ ID NO：2の改変体であるアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードする核酸分子を意味する。このような変種には、IL-17RC遺伝子の天然の多型、ならびにSEQ ID NO：2のアミノ酸配列の保存的アミノ酸置換を含む合成遺伝子が含まれる。IL-17RC遺伝子のその他の変種型は、本明細書において説明するヌクレオチド配列の挿入または欠失を含む核酸分子である。変種IL-17RC遺伝子は、例えば、その遺伝子が、SEQ ID NO：1もしくはSEQ ID NO：4のヌクレオチド配列を有する核酸分子またはその相補体とストリンジェントな条件下でハイブリダイズするかどうかを判定することによって同定することができる。

あるいは、変種IL-17RC遺伝子は、配列比較によって同定することもできる。2つのアミノ酸配列のアミノ酸残基が、最大限一致するように整列された際に同じである場合には、2つのアミノ酸配列は「100％のアミノ酸配列同一性」を有する。同様に、2つのヌクレオチド配列のヌクレオチド残基が、最大限一致するように整列された際に同じである場合には、2つのヌクレオチド配列は「100％のヌクレオチド配列同一性」を有する。配列比較は、DNASTAR(Madison, Wisconsin)によって制作されているLASERGENEバイオインフォマティクス演算セットに含まれるもののような標準的ソフトウェアプログラムを用いて実施することができる。最適アライメントを決定することによって2つのヌクレオチド配列またはアミノ酸配列を比較するための他の方法は、当業者に周知である(例えば、PeruskiおよびPeruski、The Internet and the New Biology：Tools for Genomic and Molecular Research(ASM Press, Inc. 1997)、Wu et al.(編)、「Information Superhighway and Computer Databases of Nucleic Acids and Proteins」、Methods in Gene Biotechnology、123〜151頁(CRC Press, Inc. 1997)、およびBishop(編)、Guide to Human Genome Computing、第2版(Academic Press, Inc. 1998)を参照されたい)。配列同一性を決定するための具体的な方法は後述する。

変種IL-17RC遺伝子または変種IL-17RCポリペプチドを同定するために使用される個々の方法に関わらず、変種遺伝子または変種遺伝子によってコードされるポリペプチドは、抗IL-17RC抗体に特異的に結合する能力を機能的に特徴付けることができる。変種IL-17RC遺伝子または変種IL-17RCポリペプチドはまた、本明細書において説明する生物学的アッセイ法または生化学的アッセイ法を用いて、そのリガンド、例えば、IL-17Aおよび/またはIL-17Fに結合する能力を機能的に特徴付けることができる。

「対立遺伝子変種」という用語は、本明細書において、同じ染色体座位を占める、ある遺伝子の2つまたはそれ以上の代替形態のいずれかを示すために使用される。対立遺伝子変異は、突然変異によって天然に起こり、その結果、集団内の表現型多型をもたらし得る。遺伝子変異はサイレントでよく(コードされるポリペプチドは無変化)、または、変更されたアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードしてよい。対立遺伝子変種という用語はまた、本明細書において、遺伝子の対立遺伝子変種によってコードされるタンパク質を示すのにも使用される。

「オルソログ」という用語は、異なる種に由来するポリペプチドまたはタンパク質の機能的対応物である、1つの種から得られたポリペプチドまたはタンパク質を示す。オルソログ間の配列差異は、種分化の結果である。

「パラログ」は、生物によって産生される、独特であるが、構造的に関連したタンパク質である。パラログは、遺伝子重複によって発生すると考えられている。例えば、α-グロビン、β-グロビン、およびミオグロビンは、互いのパラログである。

本発明は、IL-17RC遺伝子の機能的断片を含む。本発明の文脈内で、IL-17RC遺伝子の「機能的断片」は、本明細書において説明するドメインであるか、または少なくとも、抗IL-17RC抗体と特異的に結合するIL-17RCポリペプチドの一部分をコードする核酸分子を意味する。

標準的な解析方法が不正確なため、ポリマーの分子量および長さは、概算値であると理解される。このような値が「約(about)」Xまたは「約(approximately)」Xとして表現される場合、表示されたXの値は、±10％まで正確であると理解される。

C)IL-17RCポリヌクレオチドまたは遺伝子の作製
ヒトIL-17RC遺伝子をコードする核酸分子は、SEQ ID NO：1またはSEQ ID NO：4に基づいたポリヌクレオチドプローブを用いて、ヒトcDNAライブラリーまたはゲノムライブラリーをスクリーニングすることによって得ることができる。これらの技術は標準的かつ十分に確立されており、商業的供給業者から入手可能なクローニングキットを用いて遂行することができる。例えば、Ausubel et al.(編)、Short Protocols in Molecular Biology、第3版、John Wiley & Sons 1995;Wu et al., Methods in Gene Biotechnology, CRC Press, Inc. 1997; AvivおよびLeder, Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 69：1408(1972); Huynh et al.、「Constructing and Screening cDNA Libraries in λgt10 and λgt11」、DNA Cloning：A Practical Approach 第1巻、Glover(編)、49頁(IRL Press, 1985); Wu(1997) 47〜52頁を参照されたい。

ヒトIL-17RC遺伝子をコードする核酸分子はまた、IL-17RC遺伝子またはcDNAのヌクレオチド配列に基づいているヌクレオチド配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーを用いたポリメラーゼ連鎖反応法(PCR)によって得ることもできる。PCRを用いてライブラリーをスクリーニングするための一般的方法は、例えば、Yu et al .、「Use of the Polymerase Chain Reaction to Screen Phage Libraries」、Methods in Molecular Biology、第15巻：PCR Protocols：Current Methods and Applications、White(編)、Humana Press, Inc., 1993によって提供されている。さらに、PCRを用いて関連遺伝子を単離するための技術は、例えば、Preston、「Use of Degenerate Oligonucleotide Primers and the Polymerase Chain Reaction to Clone Gene Family Members」、Methods in Molecular Biology、第15巻：PCR Protocols：Current Methods and Applications、White(編)、Humana Press, Inc. 1993によって説明されている。代替案として、IL-17RC遺伝子は、交互にプライミングする(mutually priming)長いオリゴヌクレオチドおよび本明細書において説明するヌクレオチド配列を用いて核酸分子を合成することによって得ることができる(例えば、Ausubel(1995)を参照されたい)。ポリメラーゼ連鎖反応法を用いる確立された技術により、少なくとも2キロベース長のDNA分子を合成することができる(Adang et al., Plant Molec. Biol. 21：1131(1993)、Bambot et al., PCR Methods and Applications 2：266(1993)、Dillon et al.、「Use of the Polymerase Chain Reaction for the Rapid Construction of Synthetic Genes」、Methods in Molecular Biology、第15巻：PCR Protocols：Current Methods and Applications、White(編)、263〜268頁、(Humana Press, Inc. 1993)、およびHolowachuk et al., PCR Methods Appl. 4：299(1995))。ポリヌクレオチド合成に関する総説については、例えば、GlickおよびPasternak、Molecular Biotechnology, Principles and Applications of Recombinant DNA(ASM Press 1994)、Itakura et al., Annu. Rev. Biochem. 53：323(1984)、およびClimie et al., Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 87：633(1990)を参照されたい。

D)IL-17RC遺伝子変種の作製
本発明は、本明細書において開示するIL-17RCポリペプチドをコードする、DNA分子およびRNA分子を含む様々な核酸分子を提供する。当業者は、遺伝コードの縮重を考慮して、かなりの配列変化がこれらのポリヌクレオチド分子の間で可能であることを容易に認識すると考えられる。さらに、本発明はまた、SEQ ID NO：2の受容体ポリペプチドに実質的に相同である少なくとも1つのIL-17RC受容体サブユニットを含む、単量体、ホモ二量体、ヘテロ二量体、および多量体の単離された可溶性受容体ポリペプチドも提供する。したがって、本発明は、SEQ ID NO：1 またはSEQ ID NO：4の縮重ヌクレオチドを含む、IL-17RCポリペプチドをコードする核酸分子およびそれらのRNA等価物を企図する。

当業者は、遺伝コードの縮重を考慮して、かなりの配列変化がこれらのポリヌクレオチド分子の間で可能であることを容易に認識すると考えられる。SEQ ID NO：7は、SEQ ID NO：2のIL-17RCポリペプチドをコードする全核酸分子を含む縮重ヌクレオチド配列である。当業者は、TをUで置換することによって、SEQ ID NO：7の縮重配列はSEQ ID NO：2をコードする全RNA配列も提供することを認識すると考えられる。したがって、本発明は、SEQ ID NO：1のヌクレオチド154番〜ヌクレオチド2229番を含む、IL-17RCポリペプチドをコードする核酸分子およびそれらのRNA等価物を企図する。同様に、TをUで置換することによって、SEQ ID NO：6のIL-17RC-1縮重配列はSEQ ID NO：5をコードする全RNA配列も提供する。

表1は、縮重したヌクレオチド位置を示す1文字記号を示す。「変換(Resolution)」は、記号文字によって示されるヌクレオチドである。「相補体」は、相補的ヌクレオチドの記号を示す。例えば、記号YはCまたはTのいずれかを示し、かつ、その相補体RはAまたはGを示し、AはTに相補的であり、GはCに相補的である。

所与のアミノ酸に対して存在し得る全コドンを包含する縮重コドンを表2に示す。

当業者は、あるアミノ酸をコードする存在し得る全コドン表す縮重コドンを決定する際に、いくらかの曖昧性が導入されることを理解すると考えられる。例えば、セリンの縮重コドン(WSN)は、いくつかの状況において、アルギニン(AGR)をコードすることができ、アルギニンの縮重コドン(MGN)は、いくつかの状況において、セリン(AGY)をコードする。同様の関係が、フェニルアラニンおよびロイシンをコードするコドン間で存在する。したがって、縮重配列に含まれるいくつかのポリヌクレオチドは、変種アミノ酸配列をコードし得るが、当業者は、SEQ ID NO：3のアミノ酸配列を参照することにより、そのような変種配列を容易に同定することができる。変種配列は、本明細書において説明するような機能性に関して容易に試験することができる。

異なる種は、「優先的コドン使用」を示し得る。一般に、Grantham et al., Nucl. Acids Res. 8：1893(1980)、Haas et al. Curr. Biol. 6：315(1996)、Wain-Hobson et al., Gene 13：355(1981)、GrosjeanおよびFiers、Gene 18：199(1982)、Holm, Nuc. Acids Res. 14：3075(1986)、Ikemura, J. Mol. Biol. 158：573(1982)、SharpおよびMatassi, Curr. Opin. Genet. Dev. 4：851(1994)、Kane, Curr. Opin. Biotechnol. 6：494(1995)、ならびにMakrides, Microbiol. Rev. 60：512(1996)を参照されたい。本明細書において使用される場合、「優先的コドン使用」または「優先コドン」という用語は、特定の種の細胞において最も頻繁に使用され、したがって、各アミノ酸をコードする存在し得るコドン(表2を参照されたい)のうち1つまたは少数の代表物を好んで使用する、タンパク質翻訳コドンを意味する技術用語である。例えば、アミノ酸トレオニン(Thr)は、ACA、ACC、ACG、またはACTによってコードされ得るが、哺乳動物細胞においては、ACCが最も一般に使用されるコドンであり、他の種、例えば、昆虫細胞、酵母、ウイルス、または細菌においては、異なるThrコドンが優先され得る。特定の種に対する優先コドンを、当技術分野において公知の様々な方法によって、本発明のポリヌクレオチド中に導入することができる。組換えDNA中への優先コドン配列の導入は、例えば、特定の細胞型または種内のタンパク質翻訳をより効率的にすることによって、タンパク質産生を促進することができる。したがって、本明細書において開示する縮重コドン配列は、当技術分野において一般に使用され、かつ本明細書において開示する様々な細胞型および種におけるポリヌクレオチドの発現を最適化するための鋳型として役立つ。優先コドンを含む配列は、様々な種における発現に関して試験および最適化することができ、かつ、本明細書において開示するような機能性に関して試験することができる。

IL-17RCをコードするcDNAは、完全もしくは不完全なヒトcDNAを用いたプロービングまたは開示する配列に基づいた1つもしくは複数の縮重プローブセットを用いたプロービングのような様々な方法によって単離することができる。また、cDNAは、本明細書において開示する代表的なヒトIL-17RC配列から設計されたプライマーを用いたポリメラーゼ連鎖反応法によってクローン化することもできる。さらに、cDNAライブラリーは、宿主細胞を形質転換もしくはトランスフェクトするために使用することができ、かつ、対象となるcDNAの発現は、IL-17RCポリペプチドに対する抗体を用いて検出することができる。

当業者は、SEQ ID NO：1に開示された配列がヒトIL-17RCの単一の対立遺伝子を表すこと、ならびに対立遺伝子変異および選択的スプライシングが生じると予測されることを認識すると考えられる。この配列の対立遺伝子変種は、標準手順に従って、様々な個体に由来するcDNAまたはゲノムライブラリーをプロービングすることによってクローン化することができる。サイレント変異を含むもの、および変異によってアミノ酸配列が変化しているものを含む、本明細書において開示するヌクレオチド配列の対立遺伝子変種は、本明細書において開示するアミノ酸配列の対立遺伝子変種であるタンパク質と同様に、本発明の範囲内である。IL-17RCポリペプチドの特性を保持している、選択的にスプライシングされたmRNAから作製されたcDNA分子は、そのようなcDNAおよびmRNAによってコードされるポリペプチドと同様に、本発明の範囲内に含まれる。これらの配列の対立遺伝子変種およびスプライス変種は、当技術分野において公知の標準手順に従って、様々な個体または組織に由来するcDNAまたはゲノムライブラリーをプロービングすることによってクローン化することができる。

上記の方法を用いて、当業者は、SEQ ID NO：1もしくはSEQ ID NO：4のいずれかに実質的に相同である、またはSEQ ID NO：2もしくはSEQ ID NO：5のいずれかのアミノ酸をコードする可溶性IL-17RC受容体サブユニット、またはその対立遺伝子変種を含み、かつ、野生型IL-17RC受容体のリガンド結合特性を保持している様々なポリペプチドを調製することができる。また、このようなポリペプチドは、本明細書において一般に開示するその他のポリペプチドセグメントも含んでよい。

本発明の特定の態様において、単離された核酸分子は、本明細書において開示するヌクレオチド配列を含む核酸分子に、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることができる。例えば、このような核酸分子は、SEQ ID NO：1もしくはSEQ ID NO：4のヌクレオチド配列を含む核酸分子、またはSEQ ID NO：1もしくはSEQ ID NO：4に相補的なヌクレオチド配列を含む核酸分子、またはそれらの断片にストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることができる。

一般に、ストリンジェントな条件は、所定のイオン強度およびpHにおける個々の配列の熱融点(T_m)より約5℃低くなるように選択される。T_mは、標的配列の50％が、完全にマッチしたプローブとハイブリダイズする(所定のイオン強度およびpHのもとの)温度である。ハイブリダイゼーション後、核酸分子を洗浄して、ストリンジェントな条件下または高度にストリンジェントな条件下でハイブリダイズしなかった核酸分子を除去することができる。例えば、Sambrook et al., Molecular Cloning：A Laboratory Manual、第2版(Cold Spring Harbor Press 1989); Ausubel et al.(編)、Current Protocols in Molecular Biology(John Wiley and Sons, Inc. 1987); BergerおよびKimmel(編)、Guide to Molecular Cloning Techniques(Academic Press, Inc. 1987); ならびにWetmur, Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol. 26：227(1990))を参照されたい。OLIGO 6.0(LSR; Long Lake, MN)およびPrimer Premier 4.0(Premier Biosoft International; Palo Alto, CA)などの配列解析ソフトウェア、ならびにインターネット上のサイトは、所与の配列を解析し、かつ使用者が定義した基準に基づいてT_mを計算するために利用可能な手段である。特定のポリヌクレオチドハイブリッドと共に使用するためにハイブリダイゼーション条件および洗浄条件を適応させることは、十分に当業者の能力の範囲内である。

本発明はまた、SEQ ID NO：2の配列のポリペプチドまたはそれらのオルソログと実質的に同様な配列同一性を有する、単離されたIL-17RCポリペプチドも提供する。「実質的に同様な配列同一性」という用語は、本明細書において、SEQ ID NO：2またはそれらのオルソログの配列に示される配列に対して、少なくとも70％、少なくとも80％、少なくとも90％、少なくとも95％、例えば、96％、97％、98％、または95％を超える配列同一性を有するポリペプチドを示すために使用される。例えば、変種IL-17RC受容体およびオルソロガスなIL-17RC受容体は、免疫応答を生じさせ、かつ、ヒトIL-17RCに対して交差反応性の抗体を産生させるのに使用することができる。このような抗体は、ヒト化し、本明細書において説明するように改変することができ、かつ、乾癬、乾癬性関節炎、IBD、結腸炎、内毒素血症を治療するために、ならびに本明細書において説明する他の治療的用途において、治療的に使用することができる。

本発明はまた、以下の2種の基準を用いて同定することができるIL-17RC変種核酸分子も企図する：コードされるポリペプチドとSEQ ID NO：2のアミノ酸配列の類似性の判定、およびハイブリダイゼーションアッセイ法。このようなIL-17RC変種には、(1)ストリンジェントな洗浄条件下(洗浄ストリンジェンシーは、0.1％SDSを含む0.5×〜2×SSC、55℃〜65℃に等しい)で、SEQ ID NO：1もしくはSEQ ID NO：4のヌクレオチド配列を有する核酸分子(またはその相補体)とハイブリダイズしたままである核酸分子、および(2)SEQ ID NO：2のアミノ酸配列に対して少なくとも70％、少なくとも80％、少なくとも90％、少なくとも95％、または95％を超える、例えば、96％、97％、98％、もしくは99％の配列同一性を有するポリペプチドをコードする核酸分子が含まれる。あるいは、IL-17RC変種は、(1)高度にストリンジェントな洗浄条件下(洗浄ストリンジェンシーは、0.1％SDSを含む0.1×〜0.2×SSC、50℃〜65℃に等しい)で、SEQ ID NO：1もしくはSEQ ID NO：4のヌクレオチド配列を有する核酸分子(またはその相補体)とハイブリダイズしたままである核酸分子、および(2)SEQ ID NO：2のアミノ酸配列に対して少なくとも70％、少なくとも80％、少なくとも90％、少なくとも95％、または95％を超える、例えば、96％、97％、98％、もしくは99％またはそれ以上の配列同一性を有するポリペプチドをコードする核酸分子として特徴付けることもできる。

配列同一性パーセントは、従来の方法によって決定される。例えば、Altschul et al., Bull. Math. Bio.48：603(1986)、ならびにHenikoffおよびHenikoff、Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89：10915(1992)を参照されたい。手短に言えば、ギャップ形成ペナルティ10、ギャップ伸長ペナルティ1、ならびに表3に示す(アミノ酸は、標準的な1文字記号によって示される)HenikoffおよびHenikoff(同書)の「BLOSUM62」スコアリングマトリックスを用いて、アライメントスコアを最適化するように2つのアミノ酸配列を整列させる。次いで、同一性パーセントを([同一マッチの総数]/[より長い配列の長さ+2つの配列を整列させるために、より長い配列中に導入されるギャップ数])(100)として計算する。

当業者は、2つのアミノ酸配列を整列させるために利用可能な多くの確立されたアルゴリズムがあることを理解する。PearsonおよびLipmanの「FASTA」類似性探索アルゴリズムは、本明細書において開示するアミノ酸配列および推定上のIL-17RC変種のアミノ酸配列によって共有される同一性のレベルを検査するための適切なタンパク質アライメント方法である。FASTAアルゴリズムは、PearsonおよびLipman、Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 85：2444(1988)、ならびにPearson, Meth. Enzymol.183：63(1990)によって記述されている。手短に言えば、FASTAは、最初に、保存的なアミノ酸置換も、挿入も、欠失も考慮せずに、クエリ配列(例えば、SEQ ID NO：2またはSEQ ID NO：3)および最も高い同一性(ktup変数が1である場合)または同一性のペア(ktup=2の場合)のいずれかを有する試験配列によって共有される領域を同定することによって、配列類似性を特徴付ける。次いで、アミノ酸置換行列を用いて全ペアのアミノ酸の類似性を比較することによって、同一性の最も高い10個の領域のスコアを再びつけ、かつ、最も高いスコアに寄与する残基のみを含むように、領域の末端を「切って整える」。「カットオフ値」(配列の長さおよびktup値に基づいて予め定められた式によって計算する)より大きなスコアを有するいくつかの領域がある場合には、整えられた最初の領域を検査して、それらの領域が連結してギャップを有する正確に近いアライメントを形成することができるかどうかを判定する。最後に、2つのアミノ酸配列の最もスコアの高い領域を、アミノ酸の挿入および欠失を可能にする、Needleman-Wunsch-Sellersアルゴリズム(NeedlemanおよびWunsch、J. Mol. Biol. 48：444(1970); Sellers, SIAM J. Appl. Math. 26：787(1974))の改良法を用いて整列させる。FASTA解析のための例示的なパラメーターは、ktup=1、ギャップ開始ペナルティ=10、ギャップ伸長ペナルティ=1、および置換行列=BLOSUM62である。これらのパラメーターは、Pearson, Meth. Enzymol. 183：63(1990)の補遺2に説明されているように、スコアリングマトリックスファイル(「SMATRIX」)を改良することによって、FASTA プログラムに導入することができる。

FASTAはまた、上記に開示する比率を用いて核酸分子の配列同一性を決定するのにも使用することができる。ヌクレオチド配列比較の際、ktup値は1〜6の間、好ましくは3〜6、最も好ましくは3の範囲でよく、他のパラメーターは、前述したように設定される。

本発明は、本明細書において開示するアミノ酸配列と比べて保存的アミノ酸変化を有するポリペプチドをコードする核酸分子を含む。例えば、以下のようなSEQ ID NO：2の1つまたは複数のアミノ酸置換を含む変種を得ることができる：IL-17RCアミノ酸配列中のアルキルアミノ酸が別のアルキルアミノ酸で置換されているもの、IL-17RCアミノ酸配列中の芳香族アミノ酸が別の芳香族アミノ酸で置換されているもの、IL-17RCアミノ酸配列中の硫黄含有アミノ酸が別の硫黄含有アミノ酸で置換されているもの、IL-17RCアミノ酸配列中のヒドロキシ含有アミノ酸が別のヒドロキシ含有アミノ酸で置換されているもの、IL-17RCアミノ酸配列中の酸性アミノ酸が別の酸性アミノ酸で置換されているもの、IL-17RCアミノ酸配列中の塩基性アミノ酸が別の塩基性アミノ酸で置換されているもの、または、IL-17RCアミノ酸配列中の二塩基性モノカルボキシアミノ酸が別の二塩基性モノカルボキシアミノ酸で置換されているもの。一般的なアミノ酸のうちで、例えば、「保存的アミノ酸置換」の例は、以下のグループのそれぞれの内でのアミノ酸間の置換である：(1)グリシン、アラニン、バリン、ロイシン、およびイソロイシン、(2)フェニルアラニン、チロシン、およびトリプトファン、(3)セリンおよびトレオニン、(4)アスパルタートおよびグルタマート、(5)グルタミンおよびアスパラギン、ならびに(6)リシン、アルギニン、およびヒスチジン。BLOSUM62表は、500グループを超える関連タンパク質の高度に保存された領域を表す、タンパク質配列セグメントの局所的マルチプルアラインメント約2,000個に由来するアミノ酸置換マトリックスである(HenikoffおよびHenikoff、Proc.Nat'l Acad. Sci. USA 89：10915(1992))。したがって、BLOSUM62置換頻度は、本発明のアミノ酸配列中に導入され得る保存的アミノ酸置換を定めるのに使用することができる。(前述の)化学的特性にのみ基づいてアミノ酸置換を設計することは可能であるが、「保存的アミノ酸置換」という用語は、好ましくは、-1より大きいBLOSUM62値によって示される置換を意味する。例えば、置換が、0、1、2、または3のBLOSUM62値を特徴とする場合、そのアミノ酸置換は保存的である。このシステムによれば、好ましい保存的アミノ酸置換は、少なくとも1(例えば1、2、または3)のBLOSUM62値を特徴とし、より好ましい保存的アミノ酸置換は、少なくとも2(例えば2または3)のBLOSUM62値を特徴とする。IL-17RCの特定の変種は、対応するアミノ酸配列(例えば、SEQ ID NO：2)に対して少なくとも70％、少なくとも80％、少なくとも90％、少なくとも95％、または95％を超える、例えば、96％、97％、98％、もしくは99％またはそれ以上の配列同一性を有することを特徴とし、アミノ酸配列中の変異は、1つまたは複数の保存的アミノ酸置換に起因する。

IL-17RC遺伝子中の保存的アミノ酸変化は、例えば、SEQ ID NO：1またはSEQ ID NO：4中で挙げられるヌクレオチドを別のヌクレオチドで置換することによって導入することができる。このような「保存的アミノ酸」変種は、オリゴヌクレオチド指定変異誘発、リンカースキャニング変異誘発、およびポリメラーゼ連鎖反応法を用いた変異誘発などによって得ることができる(Ausubel(1995);およびMcPherson(編)、Directed Mutagenesis：A Practical Approach(IRL Press 1991))を参照されたい。変種IL-17RCポリペプチドは、抗IL-17RC抗体に特異的に結合する能力によって同定することができる。

本発明のタンパク質はまた、非天然のアミノ酸残基を含み得る。非天然のアミノ酸には、trans-3-メチルプロリン、2,4-メタノプロリン、cis-4-ヒドロキシプロリン、trans-4-ヒドロキシプロリン、N-メチルグリシン、allo-トレオニン、メチルトレオニン、ヒドロキシエチルシステイン、ヒドロキシエチルホモシステイン、ニトログルタミン、ホモグルタミン、ピペコリン酸、チアゾリジンカルボン酸、デヒドロプロリン、3-および4-メチルプロリン、3,3-ジメチルプロリン、tert-ロイシン、ノルバリン、2-アザフェニルアラニン、3-アザフェニルアラニン、4-アザフェニルアラニン、および4-フルオロフェニルアラニンが含まれるが、それに限定されるわけではない。タンパク質中に非天然のアミノ酸残基を組み入れるためのいくつかの方法が、当技術分野において公知である。例えば、化学的にアミノアシル化させたサプレッサーtRNAを用いてナンセンスな変異が抑制される、インビトロ系が使用され得る。アミノ酸の合成およびtRNAのアミノアシル化のための方法は、当技術分野において公知である。ナンセンス変異を含むプラスミドの転写および翻訳は、典型的には、大腸菌(E. coli) S30抽出物ならびに市販の酵素および他の試薬を含む、無細胞系において実施される。タンパク質は、クロマトグラフィーによって精製される。例えば、Robertson et al., J. Am. Chem. Soc. 113：2722(1991)、Ellman et al., Methods Enzymol. 202：301(1991)、Chung et al., Science 259：806(1993)、およびChung et al., Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 90：10145(1993)を参照されたい。

第2の方法において、翻訳は、変異させたmRNAおよび化学的にアミノアシル化させたサプレッサーtRNAのマイクロインジェクションによって、アフリカツメガエル(Xenopus)卵母細胞中で実施される(Turcatti et al., J. Biol. Chem. 271：19991(1996))。第3の方法では、大腸菌細胞が、置換されるべき天然アミノ酸(例えばフェニルアラニン)の不在下、かつ所望の非天然アミノ酸(例えば、2-アザフェニルアラニン、3-アザフェニルアラニン、4-アザフェニルアラニン、または4-フルオロフェニルアラニン)の存在下で培養される。非天然アミノ酸は、その天然の対応物の代わりにタンパク質中に組み入れられる。Koide et al., Biochem. 33：7470(1994)を参照されたい。天然のアミノ酸残基は、インビトロの化学的改変によって非天然の種類に変換することができる。化学的改変を部位特異的変異誘発と組み合わせて、置換の範囲をさらに拡大することができる(WynnおよびRichards、Protein Sci. 2：395(1993))。

IL-17RCアミノ酸残基は、限定的な数の非保存的アミノ酸、遺伝コードによってコードされていないアミノ酸、非天然アミノ酸、および非自然アミノ酸で置換されてよい。

本発明のポリペプチド中の必須アミノ酸は、部位特異的変異誘発またはアラニンスキャニング変異誘発など当技術分野において公知の手順に従って同定することができる(CunninghamおよびWells、Science 244：1081(1989)、Bass et al., Proc. Nat 'l Acad. Sci. USA 88：4498(1991)、CoombsおよびCorey、「Site-Directed Mutagenesis and Protein Engineering」、Proteins：Analysis and Design, Angeletti(編)、259〜311頁(Academic Press, Inc. 1998))。後者の技術では、分子中のすべての残基に単一のアラニン変異が導入され、かつ、分子の活性に不可欠であるアミノ酸残基を同定するために、結果として生じる変異体分子の生物活性が試験される。Hilton et al., J. Biol. Chem. 271：4699(1996)も参照されたい。

配列解析を用いて、IL-17RCリガンド結合領域をさらに定めることができるが、(IL-17AもしくはIL-17Fのいずれか、または抗IL-17RC抗体へのIL-17RCの結合のような)IL-17RC結合活性において役割を果たしているアミノ酸は、推定上の接触部位アミノ酸の変異と組み合わせて、核磁気共鳴、結晶構造解析、電子解析、または光親和性標識などの技術によって決定されるように、構造の物理的解析によって決定することもできる。例えば、de Vos et al., Science 255：306(1992)、Smith et al., J. Mol. Biol. 224：899(1992)、およびWlodaver et al., FEBS Lett. 309：59(1992)を参照されたい。

Reidhaar-OlsonおよびSauer(Science 241：53(1988))またはBowieおよびSauer(Proc. Nat 'l Acad. Sci. USA 86：2152(1989))によって開示されたもののような変異誘発およびスクリーニングの公知の方法を用いて、複数のアミノ酸置換を行い、かつ試験することができる。手短に言えば、これらの著者は、ポリペプチド中の2つまたはそれ以上の位置を同時にランダム化し、機能的ポリペプチドを選択し、次いで、変異誘発されたポリペプチドの配列決定をして、各位置で許容できる置換の範囲を決定するための方法を開示している。使用され得る他の方法には、ファージディスプレイ(例えば、Lowman et al., Biochem. 30：10832(1991) 、Ladner et al.、米国特許第5,223,409号、Huse、国際公開WO 92/06204、および領域指定変異誘発(Derbyshire et al., Gene 46：145(1986)、およびNer et al., DNA 7：127,(1988))が含まれる。さらに、ビオチンまたはFITCで標識されたIL-17RCは、IL-17RCリガンドの発現クローニングのために使用され得る。

開示するIL-17RCヌクレオチドおよびポリペプチド配列の変種はまた、Stemmer, Nature 370：389(1994)、Stemmer, Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 91：10747(1994)および国際公開WO97/20078によって開示されるようなDNAシャッフリングによって作製することもできる。手短に言えば、ランダムに導入された点突然変異をもたらす、親DNAのランダム断片化とそれに続くPCRを用いた再構築によるインビトロの相同組換えによって、変種DNA分子が作製される。この技術は、対立遺伝子変種または異なる種に由来するDNA分子などの親DNA分子ファミリーを用いて、付加的な変異性をプロセスに導入することによって、改良することができる。続いて変異誘発およびアッセイ法をさらに繰り返す、所望の活性の選択またはスクリーニングは、同時に不利益な変化を避けて選択しつつ望ましい変異を選択することによって、配列の迅速な「進化」を提供する。

本明細書において開示する変異誘発方法は、宿主細胞中のクローン化され変異誘発されたポリペプチドの活性を検出するためのハイスループットな自動スクリーニング方法と組み合わせることができる。生物学的に活性なポリペプチドまたは抗IL-17RC抗体と結合するポリペプチドをコードする変異誘発されたDNA分子は、宿主細胞から回収し、かつ、最新の機器を用いて迅速に配列決定することができる。これらの方法により、関心対象のポリペプチド中の個々のアミノ酸残基の重要性を迅速に決定することが可能になり、かつ、これらの方法は、構造の不明なポリペプチドに適用することもできる。

本発明はまた、IL-17RCポリペプチドの「機能的断片」およびそのような機能的断片をコードする核酸分子も含む。核酸分子のルーチンな欠失解析を実施して、IL-17RCポリペプチドをコードする核酸分子の機能的断片を得ることができる。例として、SEQ ID NO：1またはSEQ ID NO：4のヌクレオチド配列を有するDNA分子をBal31ヌクレアーゼで消化して、一連の入れ子(nested)欠失を得ることができる。次いで、これらの断片を発現ベクターの適切なリーディングフレーム中に導入し、かつ、発現されたポリペプチドを単離し、抗IL-17RC抗体に結合する能力について試験する。エキソヌクレアーゼ消化の1つの代替方法は、オリゴヌクレオチド指定変異誘発を用いて、所望の断片の産生を指定する欠失または停止コドンを導入することである。あるいは、IL-17RC遺伝子の特定の断片は、ポリメラーゼ連鎖反応法を用いて合成することができる。

この一般的アプローチは、HorisbergerおよびDi Marco、Pharmac. Ther. 66：507(1995)によって要約されている、インターフェロンの一方または両方の末端での切断に関する研究によって例示されている。さらに、タンパク質の機能解析のための標準技術は、例えば、Treuter et al., Molec. Gen. Genet. 240：113(1993);Content et al., 「Expression and preliminary deletion analysis of the 42 kDa 2-5A synthetase induced by human interferon」、Biological Interferon Systems, Proceedings of ISIR-TNO Meeting on Interferon Systems、Cantell(編)、65〜72頁(Nijhoff 1987);Herschman、「The EGF Receptor」、Control of Animal Cell Proliferation、第1巻、Boynton et al.(編)169〜199頁(Academic Press 1985);Coumailleau et al., J. Biol. Chem. 270：29270(1995); Fukunaga et al., J. Biol. Chem. 270：25291(1995); Yamaguchi et al., Biochem. Pharmacol. 50：1295(1995)、およびMeisel et al., Plant Molec. Biol. 30：1(1996)によって記述されている。

本発明はまた、本明細書において開示するアミノ酸配列と比べてアミノ酸が変化しているIL-17RC遺伝子の機能的断片も企図する。変種IL-17RC遺伝子は、上述したように、開示されるヌクレオチドおよびアミノ酸配列との同一性レベルを決定することにより、構造に基づいて同定することができる。構造に基づいて変種遺伝子を同定することへの代替のアプローチは、潜在的な変種IL-17RC遺伝子をコードする核酸分子が、SEQ ID NO：1またはSEQ ID NO：4などのヌクレオチド配列を含む核酸分子にハイブリダイズすることができるかどうかを判定することである。

本発明はまた、IL-17RCポリペプチドの機能的断片、抗原エピトープ、IL-17RCポリペプチドのエピトープを有する部分、および、IL-17RCポリペプチドのそのような機能的断片、抗原エピトープ、エピトープを有する部分をコードする核酸分子を使用することも含む。このような断片は、IL-17AもしくはIL-17F、またはIL-17AおよびIL-17Fの両方に結合し、活性を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和する抗体および結合相手を作製する際に使用するためのポリペプチドを作製するのに使用される。本明細書において定義される「機能的」IL-17RCポリペプチドまたはその断片は、IL-17AもしくはIL-17Fの炎症活性、増殖活性、もしくは分化活性を妨害、阻害、低減、拮抗、もしくは中和する能力、特殊な細胞機能を誘導もしくは阻害する能力、または、抗IL-17RC抗体、細胞、IL-17A、もしくはIL-17Fに特異的に結合する能力を特徴とする。本明細書において前述したように、IL-17RCは、本明細書において説明する独特なサイトカイン受容体構造およびドメインを特徴とする。したがって、本発明はさらに、(a)前述の1つまたは複数のドメインを含むポリペプチド分子、および(b)1つまたは複数のこれらのドメインを含む機能的断片を含む融合タンパク質を使用することも企図する。融合タンパク質の他のポリペプチド部分は、IL-10R、IL-13R、IL-17R、IL-10RB(CRF2-4)など別のサイトカイン受容体によって、または、融合タンパク質の分泌を促進する、非ネイティブおよび/もしくは無関係な分泌シグナルペプチドによって付与され得る。

本発明はまた、本明細書において説明するIL-17RCポリペプチドのエピトープを有する部分を含む、ポリペプチド断片またはペプチドも提供する。このような断片またはペプチドは、完全なタンパク質が免疫原として使用される場合に抗体応答を誘発するタンパク質の一部分である、「免疫原エピトープ」を含んでよい。免疫原エピトープを有するペプチドは、標準的な方法を用いて同定することができる(例えば、Geysen et al., Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 81：3998(1983)を参照されたい)。

一方、ポリペプチド断片またはペプチドは、抗体が特異的に結合することができるタンパク質分子の領域である、「抗原エピトープ」を含んでよい。ある種のエピトープは、アミノ酸の直線状または連続したストレッチからなり、かつ、そのようなエピトープの抗原性は、変性剤によって破壊されない。あるタンパク質のエピトープを模倣することができる比較的短い合成ペプチドを使用して、そのタンパク質に対する抗体の産生を刺激できることは、当技術分野において公知である(例えば、Sutcliffe et al., Science 219：660(1983)を参照されたい)。したがって、本発明の抗原エピトープを有するペプチド、抗原ペプチド、エピトープ、およびポリペプチドは、本明細書において説明するポリペプチドと結合する抗体を産生させるため、かつ、(個々にまたは共に)IL-17FおよびIL-17Aの活性を中和している、およびそれらを結合、妨害、阻害、低減、拮抗、または中和し得る抗IL-17RCモノクローナル抗体を同定およびスクリーニングするために有用である。このような本発明のモノクローナル中和抗体は、IL-17RC抗原エピトープに結合することができる。Hopp-Woodsの親水性プロファイルを用いて、SEQ ID NO：2または4内で抗原性の最も高い可能性がある領域を決定することができる(Hopp et al., Proc. Natl. Acad. Sci.78：3824-3828, 1981; Hopp, J. Immun. Meth. 88：1-18, 1986、および Triquier et al., Protein Engineering 11：153-169, 1998)。プロファイルは、6残基のスライディングウィンドウに基づいている。埋もれたG残基、S残基、およびT残基ならびに露出したH残基、Y残基、およびW残基は無視した。IL-17RC中のこれらの領域は当業者によって決定され得る。さらに、例えばDNASTAR Proteanプログラム(DNASTAR Inc., Madison, WI)を用いて、Jameson-Wolfプロットによって予測されるSEQ ID NO：2または4内のIL-17RC抗原エピトープは、好ましい抗原エピトープとしての機能を果たし、かつ、当業者によって決定され得る。この解析の結果から、SEQ ID NO：2の以下のアミノ酸配列が適切な抗原ペプチドを提供すると考えられることが示された：アミノ酸26番〜33番(「抗原ペプチド1」)、アミノ酸41番〜46番(「抗原ペプチド2」)、74番〜81番(「抗原ペプチド3」)、アミノ酸95番〜105番(「抗原ペプチド4」)、アミノ酸109番〜119番(「抗原ペプチド5」)、アミノ酸95番〜119番(「抗原ペプチド6」)、アミノ酸178番〜185番(「抗原ペプチド7」)、アミノ酸200番〜206番(「抗原ペプチド8」)、アミノ酸231番〜238番(「抗原ペプチド9」)、アミノ酸231番〜241番(「抗原ペプチド10」)、アミノ酸264番〜270番(「抗原ペプチド11」)、アミノ酸274番〜281番(「抗原ペプチド12」)、アミノ酸317番〜324番(「抗原ペプチド13」)、アミノ酸357番〜363番(「抗原ペプチド14」)、アミノ酸384番〜392番(「抗原ペプチド15」)、アミノ酸398番〜411番(「抗原ペプチド16」)、アミノ酸405番〜411番(「抗原ペプチド17」)、アミノ酸423番〜429番(「抗原ペプチド18」)、およびアミノ酸434番〜439番(「抗原ペプチド19」)。本発明は、IL-17RCに対する抗体を作製するために抗原ペプチド1〜19のいずれか1種を使用することを企図する。本発明はまた、抗原ペプチド1〜19の少なくとも1種を含むポリペプチドも企図する。

好ましい態様において、本発明の中和抗体が結合する抗原エピトープは、例えば、(個々にまたは共に)IL-17RCおよびIL-17AまたはIL-17Fとのリガンド受容体結合に重要であるSEQ ID NO：2(およびSEQ ID NO：3の対応する残基)またはSEQ ID NO：5の残基を含む。

抗原エピトープを有するペプチドおよびポリペプチドは、本明細書において開示するアミノ酸配列の少なくとも4個〜10個のアミノ酸、少なくとも10個〜15個のアミノ酸、または約15個〜約30個のアミノ酸を含んでよい。このようなエピトープを有するペプチドおよびポリペプチドは、本明細書において説明するように、IL-17RCポリペプチドを断片化することによって、または化学的ペプチド合成によって作製され得る。さらに、エピトープは、ランダムペプチドライブラリーのファージディスプレイによって選択され得る(例えば、LaneおよびStephen、Curr. Opin. Immunol. 5：268(1993)、およびCortese et al., Curr. Opin. Biotechnol. 7：616(1996)を参照されたい)。エピトープを同定し、かつ、エピトープを含む小型ペプチドから抗体を作製するための標準的方法は、例えば、Mole、「Epitope Mapping」、Methods in Molecular Biology、第10巻、Manson(編)、105〜116頁(The Humana Press, Inc. 1992);Price、「Production and Characterization of Synthetic Peptide-Derived Antibodies」、Monoclonal Antibodies：Production, Engineering, and Clinical Application、RitterおよびLadyman(編)、60〜84頁(Cambridge University Press 1995)、ならびにColigan et al.(編)、Current Protocols in Immunology、9.3.1〜9.3.5頁および9.4.1〜9.4.11頁(John Wiley & Sons 1997)によって記述されている。

変種および融合タンパク質を含む、任意のIL-17RCポリペプチドに関して、当業者は、上記の表1および表2において示した情報を用いて、その変種をコードする十分に縮重したポリヌクレオチド配列を容易に作製することができる。さらに、当業者は、標準的なソフトウェアを用いて、本明細書において説明するヌクレオチドおよびアミノ酸配列に基づき、IL-17RC変種を考案することもできる。

E)IL-17RCポリペプチドの作製
完全長ポリペプチド;可溶性単量体受容体、ホモ二量体受容体、ヘテロ二量体受容体、および多量体受容体;完全長受容体;受容体断片(例えば、リガンド結合断片および抗原エピトープ)、機能的断片、ならびに融合タンパク質を含む、本発明のポリペプチドは、従来の技術に従って、組換え宿主細胞中で作製することができる。IL-17RC遺伝子を発現させるには、ポリペプチドをコードする核酸分子は、発現ベクターにおいて転写発現を制御する調節配列に機能的に連結されており、次いで、宿主細胞中に導入されなければならない。プロモーターおよびエンハンサーなどの転写調節配列に加えて、発現ベクターは、翻訳調節配列および発現ベクターを有する細胞の選択に適しているマーカー遺伝子を含んでよい。

真核細胞における外来タンパク質の作製に適している発現ベクターは、典型的には、(1)細菌宿主における発現ベクターの増殖および選択を提供するための細菌の複製起点および抗生物質耐性マーカーをコードする原核生物DNAエレメント、(2)プロモーターのような、転写開始を制御する真核生物DNAエレメント、ならびに(3)転写終結/ポリアデニル化配列のような転写物のプロセッシングを制御するDNAエレメントを含む。上述したように、発現ベクターはまた、宿主細胞の分泌経路中に異種ポリペプチドを誘導する分泌配列をコードするヌクレオチド配列も含んでよい。例えば、IL-17RC発現ベクターは、IL-17RC遺伝子および任意の分泌遺伝子に由来する分泌配列を含んでよい。

本発明のIL-17RCタンパク質は、哺乳動物細胞において発現され得る。適切な哺乳動物宿主細胞の例には、アフリカミドリザル腎臓細胞(Vero; ATCC CRL1587)、ヒト胚性腎臓細胞(293-HEK;ATCC CRL 1573)、仔ハムスター腎臓細胞(BHK-21、BHK-570;ATCC CRL8544、ATCC CRL10314)、イヌ腎臓細胞(MDCK; ATCC CCL34)、チャイニーズハムスター卵巣細胞(CHO-K1; ATCC CCL61; CHO DG44(Chasin et al., Som. Cell. Molec. Genet. 12：555, 1986))、ラット脳下垂体細胞(GH1; ATCC CCL82)、HeLa S3細胞(ATCC CCL2.2)、ラット肝癌細胞(H-4-II-E;ATCC CRL 1548)、SV40形質転換サル腎臓細胞(COS-1; ATCC CRL1650)、およびマウス胚性細胞(NIH-3T3; ATCC CRL1658)が含まれる。

哺乳動物宿主の場合、転写調節シグナルおよび翻訳調節シグナルは、哺乳動物ウイルス源、例えば、アデノウイルス、ウシ乳頭腫ウイルス、またはサルウイルスなどに由来してよく、その際、調節シグナルは、高レベルに発現される特定の遺伝子と結合している。適切な転写調節配列および翻訳調節配列はまた、哺乳動物遺伝子、例えば、アクチン、コラーゲン、ミオシン、およびメタロチオネインの遺伝子から得ることもできる。

転写調節配列は、RNA合成の開始を指示するのに十分なプロモーター領域を含む。適切な真核生物プロモーターには、マウスメタロチオネインI遺伝子のプロモーター(Hamer et al., J. Molec. Appl. Genet. 1：273(1982))、ヘルペスウイルスのTKプロモーター(McKnight, Cell 31：355(1982))、SV40 初期プロモーター(Benoist et al., Nature 290：304(1981))、ラウス肉腫ウイルスプロモーター(Gorman et al., Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 79：6777(1982))、サイトメガロウイルスプロモーター(Foecking et al., Gene 45：101(1980))、およびマウス乳癌ウイルスプロモーター(一般に、Etcheverry、「Expression of Engineered Proteins in Mammalian Cell Culture」、Protein Engineering：Principles and Practice、Cleland et al.(編)、163〜181頁(John Wiley & Sons, Inc. 1996))が含まれる。

あるいは、バクテリオファージT3 RNAポリメラーゼプロモーターのような原核生物プロモーターが、その原核生物プロモーターが真核生物プロモーターによって調節される場合には、哺乳動物細胞におけるIL-17RC遺伝子発現を制御するのに使用され得る(Zhou et al., Mol. Cell. Biol. 10：4529(1990)およびKaufman et al., Nucl. Acids Res. 19：4485(1991))。

特定の態様において、IL-17RC可溶性受容体ポリペプチド、またはIL-17RCポリペプチドの断片をコードするDNA配列は、発現ベクター内で、一般に転写プロモーターおよびターミネーターを含む、その発現のために必要とされる他の遺伝子エレメントに機能的に連結されている。ベクターはまた、普通、1つまたは複数の選択マーカーおよび1つまたは複数の複製起点も含むと考えられるが、当業者は、特定の系では、選択マーカーが別のベクター上で提供されてよく、かつ、外来性DNAの複製が、宿主細胞ゲノム中への組込みによって提供され得ることを認識すると考えられる。プロモーター、ターミネーター、選択マーカー、ベクター、および他のエレメントの選択は、当業者のレベルの範囲内のルーチンな設計の事柄である。多くのこのようなエレメントは文献に記載されており、かつ商業的な供給業者を通して入手可能である。可溶性受容体複合体の複数の構成要素は、個別の発現ベクター上で同時トランスフェクトされてよく、または、単一の発現ベクター中に含まれてもよい。タンパク質複合体の複数の構成要素を発現させるこのような技術は、当技術分野において周知である。

発現ベクターは、リン酸カルシウムトランスフェクション、リポソームを介したトランスフェクション、マイクロプロジェクタイルによる送達、およびエレクトロポレーションなどを含む様々な標準技術を用いて、宿主細胞中に導入することができる。トランスフェクトされた細胞を選択し、かつ増殖させて、宿主細胞ゲノム中に安定に組み込まれた発現ベクターを含む組換え宿主細胞を提供することができる。真核細胞中にベクターを導入するための技術、および優性の選択マーカーを用いてそのような安定な形質転換体を選択するための技術は、例えば、Ausubel(1995)によって、およびMurray(編)、Gene Transfer and Expression Protocols(Humana Press 1991)によって記述されている。

例えば、1つの適切な選択マーカーは、抗生物質ネオマイシンに対する耐性を提供する遺伝子である。この場合、選択は、G-418などのようなネオマイシン型薬物の存在下で実施される。選択系はまた、対象となる遺伝子の発現レベルを増大させる、「増幅」と呼ばれるプロセスのためにも使用され得る。増幅は、低レベルの選択物質の存在下でトランスフェクタントを培養し、次いで、導入された遺伝子の産生物を高レベルで産生する細胞を選択するために、選択物質の量を増加させることによって実施される。適切な増幅可能な選択マーカーは、メトトレキサートに対する耐性を与えるジヒドロ葉酸レダクターゼ(DHFR)である。他の薬物耐性遺伝子(例えば、ヒグロマイシン耐性、多剤耐性、ピューロマイシンアセチルトランスフェラーゼ)もまた、使用され得る。あるいは、緑色蛍光タンパク質のような表現型変更を導入するマーカー、またはCD4、CD8、クラスI MHC、胎盤アルカリホスファターゼなどの細胞表面タンパク質が、FACS選別または磁性ビーズ分離技術などの手段によって、非トランスフェクト細胞からトランスフェクトされた細胞を選別するのに使用され得る。

IL-17RCポリペプチドはまた、ウイルス送達系を用いて培養された哺乳動物細胞によって産生され得る。この目的のための例示的なウイルスには、アデノウイルス、レトロウイルス、ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルス、およびアデノ随伴ウイルス(AAV)が含まれる。アデノウイルスは二本鎖DNAウイルスであり、現在、異種核酸を送達するための最も良く研究された遺伝子トランスファーベクターである(総説については、Becker et al., Meth. Cell Biol. 43：161(1994)、ならびにDouglasおよびCuriel、Science & Medicine 4：44(1997)を参照されたい)。アデノウイルス系の利点には、比較的大きなDNA挿入物の収容力、高力価になるまで増殖する能力、広範囲の哺乳動物細胞型に感染する能力、および、様々なプロモーターを含む多数の入手可能なベクターと共に使用することを可能にする柔軟性が含まれる。

アデノウイルスゲノムを部分的に除去することによって、異種DNAのより大きな挿入物(最大7kb)が収容され得る。これらの挿入物は、直接的ライゲーションによって、または、同時トランスフェクトされるプラスミドを用いた相同組換えによってウイルスDNA中に組み入れることができる。1つの選択肢は、ウイルスベクターから不可欠なE1遺伝子を除去することであり、これにより、E1遺伝子が宿主細胞によって提供されない場合には、複製することができなくなる。例えば、アデノウイルスベクターに感染されたヒト293細胞(ATCC番号CRL-1573、45504、45505)は、接着細胞として、または懸濁培養において比較的高い細胞密度で増殖して、かなりの量のタンパク質を産生することができる(Garnier et al., Cytotechnol. 15：145(1994)を参照されたい)。

IL-17RCはまた、鳥類細胞、真菌細胞、昆虫細胞、酵母細胞、または植物細胞など他の高等真核細胞においても発現され得る。バキュロウイルス系は、クローン化されたIL-17RC遺伝子を昆虫細胞中に導入するための効率的な手段を提供する。適切な発現ベクターは、オートグラファカリフォルニカ(Autographa californica)多核多角体病ウイルス(AcMNPV)に基づいており、かつ、ショウジョウバエ(Drosophila)熱ショックタンパク質(hsp)70プロモーター、オートグラファカリフォルニカ核多角体病ウイルス最初期遺伝子プロモーター(ie-1)および後初期39Kプロモーター、バキュロウイルスp10プロモーター、ならびにショウジョウバエメタロチオネインプロモーターなど周知のプロモーターを含む。組換えバキュロウイルスを作製する第2の方法は、Luckow(Luckow, et al., J.Virol. 67：4566(1993))によって記述されているトランスポゾンに基づいた系を使用する。トランスファーベクターを使用するこの系は、BAC-to-BACキット(Life Technologies, Rockville, MD)において販売されている。この系は、Tn7トランスポゾンを含むトランスファーベクターPFASTBAC(Life Technologies)を用いて、IL-17RCポリペプチドをコードするDNAを、「バクミド」と呼ばれる大型プラスミドとして大腸菌中に保持されているバキュロウイルスゲノム中に移動させる。Hill-PerkinsおよびPossee、J. Gen. Virol. 71：971(1990)、Bonning, et al., J. Gen. Virol. 75：1551(1994)、ならびにChazenbalkおよびRapoport、J. Biol. Chem. 270：1543(1995)を参照されたい。さらに、トランスファーベクターは、発現されるIL-17RCポリペプチドのC末端またはN末端のエピトープタグ、例えばGlu-GluエピトープタグをコードするDNAとのインフレームの融合物を含んでよい(Grussenmeyer et al., Proc. Nat'l Acad. Sci. 82：7952(1985))。当技術分野において公知の技術を用いて、IL-17RC遺伝子を含むトランスファーベクターが大腸菌中に形質転換され、かつ、組換えバキュロウイルスを示す分断されたlacZ遺伝子を含むバクミドに関してスクリーニングされる。次いで、一般的な技術を用いて、組換えバキュロウイルスゲノムを含むバクミドDNAが単離される。

例示的なPFASTBACベクターは、かなりの程度まで改変されてよい。例えば、ポリヘドリンプロモーターは除去され、かつ、バキュロウイルス感染時により早期に発現されるバキュロウイルス塩基性タンパク質プロモーター(Pcor、p6.9、またはMPプロモーターとしても公知)で置換されてよく、分泌タンパク質を発現させるのに有利であることが示されている(例えば、Hill-PerkinsおよびPossee、J. Gen. Virol. 71：971(1990)、Bonning, et al., J. Gen. Virol. 75：1551(1994)、ならびにChazenbalkおよびRapoport、J. Biol. Chem. 270：1543(1995)を参照されたい)。このようなトランスファーベクター構築物において、塩基性タンパク質プロモーターの短い種類または長い種類が使用され得る。さらに、昆虫タンパク質に由来する分泌シグナル配列でネイティブなIL-17RC分泌シグナル配列を置換するトランスファーベクターが構築され得る。例えば、エクジステロイドグルコシルトランスフェラーゼ(EGT)、ミツバチメリチン(Invitrogen Corporation; Carlsbad, CA)、またはバキュロウイルスgp67(PharMingen：San Diego, CA)に由来する分泌シグナル配列が、ネイティブなIL-17RC分泌シグナル配列を置換するために構築物中で使用され得る。

組換えウイルスまたはバクミドは、宿主細胞をトランスフェクトするために使用される。適切な昆虫宿主細胞には、IPLB-Sf-21由来の細胞株、Sf9(ATCC CRL 1711)、Sf21AE、およびSf21(Invitrogen Corporation; San Diego, CA)などのスポドプテラ・フルギペルダ(Spodoptera frugiperda) 蛹卵巣細胞株、ならびにショウジョウバエシュナイダー-2細胞、およびイラクサギンウワバ(Trichoplusia ni)(米国特許第5,300,435号)に由来するHIGH FIVEO細胞株(Invitrogen)が含まれる。市販されている無血清培地が、細胞を増殖させ、かつ維持するために使用され得る。適切な培地は、Sf9細胞に対しては、Sf900 II(商標)(Life Technologies) または ESF 921(商標)(Expression Systems)であり、イラクサギンウワバ(T. ni)細胞に対してはEx-cellO405(商標)(JRH Biosciences, Lenexa, KS)またはExpress FiveO(商標)(Life Technologies)である。組換えウイルスが使用される場合、細胞は、典型的には、約2×10⁵〜5×10⁵細胞の接種密度から1×10⁶〜2×10⁶細胞の密度まで増殖させられ、この時、組換えウイルスストックが0.1〜10、より典型的には約3の感染多重度(MOI)で添加される。

バキュロウイルス系において組換えタンパク質を作製するための確立された技術は、Bailey et al.、「Manipulation of Baculovirus Vectors」、Methods in Molecular Biology、第7巻：Gene Transfer and Expression Protocols、Murray(編)、147〜168頁(The Humana Press, Inc. 1991)によって、Patel et al.、「The baculovirus expression system」、DNA Cloning 2：Expression Systems、第2版、Glover et al.(編)、205〜244頁(Oxford University Press 1995)によって、Ausubel(1995)、16-37〜16-57頁によって、Richardson(編)、Baculovirus Expression Protocols(The Humana Press, Inc. 1995)によって、およびLucknow、「Insect Cell Expression Technology」、Protein Engineering：Principles and Practice、Cleland et al.(編)、183〜218頁(John Wiley & Sons, Inc. 1996)によって提供される。

酵母細胞を含む真菌細胞もまた、本明細書において説明する遺伝子を発現させるために使用され得る。この点に関して特に対象となる酵母種には、サッカロミケス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)、ピキア・パストリス(Pichia pastoris)、およびピキア・メタノリカ(Pichia methanolica)が含まれる。酵母における発現に適したプロモーターには、GAL1(ガラクトース)、PGK(ホスホグリセリン酸キナーゼ)、ADH(アルコールデヒドロゲナーゼ)、AOX1(アルコールオキシダーゼ)、およびHIS4(ヒスチジノールデヒドロゲナーゼ)などに由来するプロモーターが含まれる。多くの酵母クローニングベクターが設計されており、容易に入手可能である。これらのベクターには、YIp5のようなYIpベースのベクター、YRp17のようなYRpベクター、YEp13のようなYEpベクター、およびYCp19のようなYCpベクターが含まれる。外来性DNAを用いてS.セレビシエ(S. cerevisiae)細胞を形質転換し、かつ、それらから組換えポリペプチドを産生させるための方法は、例えば、Kawasaki、米国特許第4,599,311号、Kawasaki et al.、米国特許第4,931,373号、Brake、米国特許第4,870,008号、Welch et al.、米国特許第5,037,743号、およびMurray et al.、米国特許第4,845,075号によって開示されている。形質転換細胞は、選択マーカー、一般に、薬物耐性または特定の栄養物(例えばロイシン)の不在下で増殖する能力によって決定される表現型に基づいて選択される。サッカロミケス・セレビシエにおいて使用するのに適したベクター系は、グルコースを含む培地における増殖に基づいて形質転換細胞を選択することを可能にする、Kawasaki et al.(米国特許第4,931,373号)によって開示されているPOT1ベクター系である。酵母において使用するためのその他の適切なプロモーターおよびターミネーターには、解糖系酵素遺伝子(例えば、Kawasaki、米国特許第4,599,311号、Kingsman et al.、米国特許第4,615,974号、およびBitter、米国特許第4,977,092号を参照されたい)およびアルコールデヒドロゲナーゼ遺伝子に由来するものが含まれる。また、米国特許第4,990,446号、同第5,063,154号、同第5,139,936号、および同第4,661,454号も参照されたい。

ハンセヌラ・ポリモルファ(Hansenula polymorpha)、シゾサッカロミケス・ポンベ(Schizosaccharomyces pombe)、クルイベロマイセス・ラクティス(Kluyveromyces lactis)、クルイベロマイセス・フラギリス(Kluyveromyces fragilis)、トウモロコシ黒穂菌(Ustilago maydis)、ピキア・パストリス、ピキア・メタノリカ、ピキア・グイリエルモンジイ(Pichia guillermondii)、およびカンジダ・マルトーサ(Candida maltosa)を含む、他の酵母用の形質転換系が当技術分野において公知である。例えば、Gleeson et al., J. Gen. Microbiol. 132：3459(1986)およびCregg、米国特許第4,882,279号を参照されたい。アスペルギルス属(Aspergillus)細胞は、McKnight et al.、米国特許第4,935,349号の方法に従って使用され得る。アクレモニウム・クリソゲナム(Acremonium chrysogenum)を形質転換させるための方法は、Sumino et al.、米国特許第5,162,228号によって開示されている。アカパンカビ属(Neurospora)を形質転換させるための方法は、Lambowitz、米国特許第4,486,533号によって開示されている。

例えば、組換えタンパク質の作製用の宿主としてのピキア・メタノリカの使用は、Raymond、米国特許第5,716,808号、Raymond、米国特許第5,736,383号、Raymond et al., Yeast 14：11-23(1998)、ならびに国際公開WO 97/17450、WO 97/17451、WO 98/02536、およびWO 98/02565において開示されている。P.メタノリカを形質転換する際に使用するためのDNA分子は、一般に、二本鎖の環状プラスミドとして調製され、好ましくは、形質転換の前に直鎖状にされる。P.メタノリカにおけるポリペプチド作製の場合、プラスミド中のプロモーターおよびターミネーターは、P.メタノリカアルコール使用遺伝子(AUG1またはAUG2)のようなP.メタノリカ遺伝子のものでよい。他の有用なプロモーターには、ジヒドロキシアセトン合成酵素(DHAS)遺伝子、ギ酸デヒドロゲナーゼ(FMD)遺伝子、およびカタラーゼ(CAT)遺伝子のものが含まれる。宿主染色体中へのDNAの組込みを容易にするには、プラスミドの発現セグメント全体の両末端が宿主DNA配列に隣接していることが好ましい。ピキア・メタノリカにおいて使用するのに適した選択マーカーは、P.メタノリカADE2遺伝子であり、これは、ホスホリボシル-5-アミノイミダゾールカルボキシラーゼ(AIRC;EC 4.1.1.21)をコードし、かつ、ade2宿主細胞がアデニンの不在下で増殖することを可能にする。メタノールの使用を最小限に抑えることが望ましい大規模な工業プロセスの場合、両方のメタノール使用遺伝子(AUG1およびAUG2)が欠失している宿主細胞が使用され得る。分泌タンパク質を作製する場合、宿主細胞は、液胞プロテアーゼ遺伝子(PEP4およびPRB1)が欠損していてよい。エレクトロポレーションは、P.メタノリカ細胞中への関心対象のポリペプチドをコードするDNAを含むプラスミドの導入を容易にするために使用される。P.メタノリカ細胞は、2.5kV/cm〜4.5kV/cm、好ましくは約3.75kV/cmの電界強度を有する指数的に減衰するパルス電界、および1ミリ秒〜40ミリ秒、最も好ましくは約20ミリ秒の時定数(t)を用いるエレクトロポレーションによって、形質転換され得る。

発現ベクターはまた、植物プロトプラスト、完全な植物組織、または単離された植物細胞中にも導入され得る。植物組織中に発現ベクターを導入するための方法には、アグロバクテリウム・チュメファシエンス(Agrobacterium tumefaciens)による植物組織の直接的な感染または共培養、マイクロプロジェクタイルによる送達、DNA注入、およびエレクトロポレーションなどが含まれる。例えば、Horsch et al., Science 227：1229(1985)、Klein et al., Biotechnology 10：268(1992)、およびMiki et al.、「Procedures for Introducing Foreign DNA into Plants」、Methods in Plant Molecular Biology and Biotechnology、Glick et al.(編)、67〜88頁(CRC Press, 1993)を参照されたい。

あるいは、IL-17RC遺伝子は、原核生物宿主細胞においても発現され得る。原核生物宿主においてIL-17RCポリペプチドを発現させるのに使用され得る適切なプロモーターは当業者に周知であり、T4ポリメラーゼ、T3ポリメラーゼ、Sp6ポリメラーゼ、およびT7ポリメラーゼを認識できるプロモーター、バクテリオファージλのP_RプロモーターおよびP_Lプロモーター、大腸菌のtrpプロモーター、recAプロモーター、熱ショックプロモーター、lacUV5プロモーター、tacプロモーター、lpp-lacSprプロモーター、phoAプロモーター、およびlacZプロモーター、枯草菌(B. subtilis)のプロモーター、バチルス属(Bacillus)のバクテリオファージのプロモーター、ストレプトミセス属のプロモーター、バクテリオファージλのintプロモーター、pBR322のblaプロモーター、ならびにクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ遺伝子のCATプロモーターが含まれる。原核生物プロモーターは、Glick, J. Ind. Microbiol. 1：277(1987)、Watson et al., Molecular Biology of the Gene、第4版(Benjamin Cummins 1987)、およびAusubel et al.(1995)によって概説されている。

適切な原核生物宿主には、大腸菌および枯草菌(Bacillus subtilus)が含まれる。大腸菌の適切な株には、BL21(DE3)、BL21(DE3)pLysS、BL21(DE3)pLysE、DH1、DH4I、DH5、DH5I、DH5IF''、DH5IMCR、DH10B、DH10B/p3、DH11S、C600、HB101、JM101、JM105、JM109、JM110、K38、RR1、Y1088、Y1089、CSH18、ER1451、およびER1647が含まれる(例えば、Brown(編)、Molecular Biology Labfax(Academic Press 1991)を参照されたい)。枯草菌の適切な株には、BR151、YB886、MI119、MI120、およびB170が含まれる(例えば、Hardy、「Bacillus Cloning Methods」、 DNA Cloning：A Practical Approach、Glover(編)(IRL Press 1985)を参照されたい)。

大腸菌のような細菌においてIL-17RCポリペプチドを発現させる場合、ポリペプチドは、典型的には不溶性顆粒として、細胞質中に保持されてよく、または、細菌分泌配列によって細胞周辺腔に誘導されてよい。前者の場合、細胞は溶解され、かつ、顆粒は回収され、例えば、グアニジンイソチオシアナートまたは尿素を用いて変性させられる。次いで、変性したポリペプチドは、例えば、尿素の溶液および還元型グルタチオンと酸化型グルタチオンの組合せに対する透析とそれに続く緩衝生理食塩水に対する透析によって、変性剤を希釈することによって、リフォールディングおよび二量体化することができる。後者の場合、ポリペプチドは、(例えば、超音波処理または浸透圧ショックによって)細胞を破壊して、細胞周辺腔の内容物を放出させ、かつ、タンパク質を回収し、それによって、変性およびリフォールディングの必要を回避することによって、可溶性かつ機能的な形態で細胞周辺腔から回収することができる。

原核生物宿主においてタンパク質を発現させるための方法は当業者に周知である(例えば、Williams et al.、「Expression of foreign proteins in E. coli using plasmid vectors and purification of specific polyclonal antibodies」、DNA Cloning 2：Expression Systems、第2版、Glover et al.(編)、15頁(Oxford University Press 1995)、Ward et al.、「Genetic Manipulation and Expression of Antibodies」、Monoclonal Antibodies：Principles and Applications、137頁(Wiley-Liss, Inc. 1995)、およびGeorgiou、「Expression of Proteins in Bacteria」、 Protein Engineering：Principles and Practice、Cleland et al.(編)、101頁(John Wiley & Sons, Inc. 1996)を参照されたい)。

細菌細胞、酵母細胞、昆虫細胞、および植物細胞中に発現ベクターを導入するための標準的方法は、例えば、Ausubel(1995)によって提供されている。

哺乳動物細胞系によって産生される外来タンパク質を発現および回収するための一般的方法は、例えば、Etcheverry、「Expression of Engineered Proteins in Mammalian Cell Culture」、Protein Engineering：Principles and Practice、Cleland et al.(編)、163頁(Wiley-Liss, Inc. 1996)によって提供される。細菌系によって産生されるタンパク質を回収するための標準技術は、例えば、Grisshammer et al.、「Purification of over-produced proteins from E. coli cells」、 DNA Cloning 2：Expression Systems、第2版、Glover et al.(編)、59〜92頁(Oxford University Press 1995)によって提供される。バキュロウイルス系から組換えタンパク質を単離するための確立された方法は、Richardson(編)、Baculovirus Expression Protocols(The Humana Press, Inc. 1995)によって記述されている。

代替案として、本発明のポリペプチドは、排他的な固相合成、部分的固相法、フラグメント縮合、または古典的な溶液合成によって合成され得る。これらの合成方法は当業者に周知である(例えば、Merrifield, J. Am. Chem. Soc. 85：2149(1963)、Stewart et al.、「Solid Phase Peptide Synthesis」(第2版)、(Pierce Chemical Co. 1984)、BayerおよびRapp、Chem.Pept.Prot. 3：3(1986)、Atherton et al., Solid Phase Peptide Synthesis：A Practical Approach(IRL Press 1989)、FieldsおよびColowick、「Solid-Phase Peptide Synthesis」、Methods in Enzymology Volume 289(Academic Press 1997)、ならびにLloyd- Williams et al., Chemical Approaches to the Synthesis of Peptides and Proteins(CRC Press, Inc. 1997)を参照されたい)。「ネイティブ化学ライゲーション」および「発現タンパク質のライゲーション」など総合的な化学合成戦略の変形法もまた、標準的である(例えば、Dawson et al., Science 266：776(1994)、Hackeng et al., Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 94：7845(1997)、Dawson, Methods Enzymol. 287：34(1997)、Muir et al., Proc. Nat 'l Acad. Sci. USA 95：6705(1998)、ならびにSeverinovおよびMuir、J. Biol. Chem. 273：16205(1998)を参照されたい)。

本発明のペプチドおよびポリペプチドは、SEQ ID NO：2または5の少なくとも6個、少なくとも9個、または少なくとも15個の連続したアミノ酸残基を含む。例として、ポリペプチドは、SEQ ID NO：2または5の少なくとも6個、少なくとも9個、または少なくとも15個の連続したアミノ酸残基を含んでよい。本発明の特定の態様において、ポリペプチドは、これらのアミノ酸配列の20個、30個、40個、50個、100個、またはそれ以上の連続した残基を含む。このようなペプチドおよびポリペプチドをコードする核酸分子は、ポリメラーゼ連鎖反応法のプライマーおよびプローブとして有用である。

さらに、IL-17RCポリペプチドおよびその断片は、高等真核細胞内で、単量体、ホモ二量体、ヘテロ二量体、または多量体として発現され得る。このような細胞は、少なくとも1つのIL-17RCポリペプチドを含む、単量体、ホモ二量体、ヘテロ二量体、および多量体のIL-17RC受容体ポリペプチド(「IL-17RCを含む受容体」もしくは「IL-17RCを含む受容体ポリペプチド」)を作製するのに使用されてよく、または、スクリーニング系においてアッセイ用細胞として使用されてよい。本発明の1つの局面において、IL-17RC細胞外ドメインを含む本発明のポリペプチドは、培養細胞によって産生され、かつ、その細胞は、天然リガンド、IL-17F、ならびにIL-17A、またはさらに天然リガンドのアゴニストおよびアンタゴニストを含む、受容体に対するリガンドをスクリーニングするのに使用される。このアプローチを要約すると、受容体をコードするcDNAまたは遺伝子が、発現に必要とされる他の遺伝子エレメント(例えば転写プロモーター)と組み合わされ、かつ、結果として生じる発現ベクターが宿主細胞中に挿入される。DNAを発現し、かつ、機能的受容体を産生する細胞が選択され、かつ、様々なスクリーニング系内で使用される。単量体、ホモ二量体、ヘテロ二量体、および多量体の受容体複合体の各構成要素は、同じ細胞において発現され得る。さらに、単量体、ホモ二量体、ヘテロ二量体、および多量体の受容体複合体の構成要素はまた、前述したような複合体組立およびトランスフェクタントのスクリーニングを可能にするために、膜貫通ドメインまたは他の膜融合部分に融合されてもよい。

本発明のIL-17AおよびIL-17Fのアンタゴニストポリペプチドならびに抗体を分析するために、IL-17RCを含む受容体またはIL-17AもしくはIL-17Fに結合することが公知の他の受容体を発現させ(例えば、IL-17Rを発現する細胞)、かつ、受容体を介したシグナルを伝達する際に使用するのに適した哺乳動物細胞には、IL-17RCと機能的な複合体を形成し得る他の受容体サブユニットを発現する細胞が含まれる。また、発現される受容体と同じ種に由来する細胞を使用することも好ましい。好ましい態様において、細胞は、増殖に関して、外因的に供給される造血性増殖因子に依存している。このタイプの好ましい細胞株は、GM-CSF依存性のヒト白血病細胞株であるヒトTF-1細胞株(ATCC番号CRL-2003)およびAML-193細胞株(ATCC番号CRL-9589)、ならびにIL-3依存性マウスプレB細胞株であるBaF3(PalaciosおよびSteinmetz、Cell 41：727-734,(1985))である。他の細胞株には、BHK細胞、COS-1細胞、およびCHO細胞が含まれる。適切な宿主細胞は、必要な受容体サブユニットまたは所望の細胞応答に必要とされる他の細胞構成要素を産生するように操作され得る。細胞株を操作して、任意の種に由来する受容体サブユニットを発現させ、それによって種特異性に起因する潜在的な制限を克服することができるため、このアプローチは有利である。ヒト受容体cDNAの種オルソログは、BaF3細胞株におけるマウスcDNAのように、同じ種に由来する細胞株内でクローニングし、かつ使用され得る。したがって、GM-CSFまたはIL-3などの1種の造血性増殖因子に依存している細胞株は、IL-17FまたはIL-17AなどIL-17RC受容体を介して作用する別のサイトカインに依存するように操作され得る。

機能的な受容体を発現する細胞が、スクリーニングアッセイ法において使用される。様々な適切なアッセイ法が当技術分野において公知である。これらのアッセイ法は、標的細胞における生物学的応答の検出に基づいている。1つのこのようなアッセイ法は細胞増殖アッセイ法である。細胞は試験化合物の存在下または不在下で培養され、かつ、細胞増殖が、例えば、トリチウムチミジンの取込みを測定することによって、または、3-(4,5-ジメチルチアゾール-2-イル)-2,5-ジフェニルテトラゾリウムブロミド(MTT)の代謝分解に基づいた比色アッセイ法によって(Mosman, J. Immunol. Meth. 65：55-63,(1983))、検出される。代替のアッセイ法形式では、レポーター遺伝子を発現するようにさらに操作されている細胞を使用する。レポーター遺伝子は、受容体と結合した経路に応答性であるプロモーターエレメントに連結されており、アッセイ法は、レポーター遺伝子転写の活性化を検出する。この点に関して好ましいプロモーターエレメントは、血清応答エレメントまたはSREである。例えば、Shaw et al., Cell 56：563-572,(1989)を参照されたい。好ましいこのようなレポーター遺伝子は、ルシフェラーゼ遺伝子である(de Wet et al., Mol. Cell. Biol. 7：725,(1987))。ルシフェラーゼ遺伝子の発現は、当技術分野において公知の方法(例えば、Baumgartner et al., J.Biol. Chem. 269：29094-29101,(1994); SchenbornおよびGoiffin, Promega_Notes 41：11, 1993)を用いて、ルミネセンスによって検出される。ルシフェラーゼ活性アッセイ法キットは、例えば、Promega Corp.(Madison, WI)から市販されている。このタイプの標的細胞株は、化学物質のライブラリー、細胞馴化培地、真菌培養液、土壌試料、および水試料などをスクリーニングするのに使用され得る。例えば、細胞馴化培地試料のバンクを標的細胞において分析して、リガンドを産生する細胞を同定することができる。次いで、陽性細胞を用いて、哺乳動物発現ベクター中でcDNAライブラリーが作製され、これはプールに分割され、宿主細胞中にトランスフェクトされ、かつ発現される。次いで、トランスフェクトされた細胞に由来する培地試料が分析され、その後、プールへの分割、再トランスフェクション、継代培養、および陽性細胞の再分析が行われて、リガンドをコードするクローン化cDNAが単離される。

本発明によって提供されるその他のスクリーニングアプローチは、ハイブリッド受容体ポリペプチドの使用を含む。これらのハイブリッドポリペプチドは、2つの一般的クラスに分類される。第1のクラスでは、IL-17RCの細胞内ドメインが、第2の受容体のリガンド結合ドメインに連結されている。第2のクラスのハイブリッド受容体ポリペプチドは、第2の受容体、好ましくは造血サイトカイン受容体の細胞内ドメインおよび膜貫通ドメインと共にIL-17RCの細胞外(リガンド結合)ドメイン(SEQ ID NO：3)を含む。この第2のクラスの本発明の受容体のハイブリッドIL-17RC単量体、ホモ二量体、ヘテロ二量体、および多量体は、第2の受容体によって伝達されるシグナルに応答できることが公知の細胞において発現される。総合すると、これら2つのクラスのハイブリッド受容体により、IL-17FまたはIL-17Aの検出用のアッセイ法を開発するための応答性細胞型を同定することが可能になる。さらに、このような細胞をIL-17FまたはIL-17Aの存在下で使用して、競合型のアッセイ法において本発明の可溶性受容体アンタゴニストを分析することができる。このようなアッセイ法において、本発明の可溶性受容体の存在下でIL-17FまたはIL-17Aの増殖またはシグナル伝達活性が減少する場合、アンタゴニスト活性が実証される。さらに、IL-17RC可溶性受容体結合アッセイ法、細胞ベースのアッセイ法もまた、可溶性受容体が、IL-17FまたはIL-17Aに結合し、活性を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和するかを評価するために使用され得る。

F)IL-17RC融合タンパク質および結合体の作製
1つの一般的クラスのIL-17RC類似体は、本明細書において開示するアミノ酸配列の変異体であるアミノ酸配列を有する変種である。IL-17RC類似体の別の一般的クラスは、後述するように、抗イディオタイプ抗体、およびその断片によって提供される。さらに、抗イディオタイプ可変ドメインを含む組換え抗体が、類似体として使用され得る(例えば、Monfardini et al., Proc. Assoc. Am. Physicians 108：420(1996)を参照されたい)。抗イディオタイプIL-17RC抗体の可変ドメインはIL-17RCを模倣するため、これらのドメインは、IL-17RC結合活性を提供し得る。抗イディオタイプの触媒抗体を作製する方法は当業者に公知である(例えば、Joron et al., Ann.N Y Acad. Sci. 672：216(1992)、Friboulet et al., Appl. Biochem. Biotechnol. 47：229(1994)、およびAvalle et al., Ann. N Y Acad. Sci. 864：118(1998)を参照されたい)。

IL-17RC類似体の同定に対する別のアプローチは、コンビナトリアルライブラリーの使用によって提供される。ファージディスプレイおよび他のコンビナトリアルライブラリーを構築およびスクリーニングするための方法は、例えば、Kay et al., Phage Display of Peptides and Proteins(Academic Press 1996)、Verdine、米国特許第5,783,384号、Kay, et. al.、米国特許第5,747,334号、およびKauffman et al.、米国特許第5,723,323号によって提供されている。

IL-17RCポリペプチドは、インビボ用途およびインビトロ用途の両方を有する。例として、IL-17RCの可溶型を細胞培養培地に添加して、培養細胞によって産生されるIL-17RCリガンド(すなわち、IL-17F、IL-17A、または両方)の作用を阻害することができる。

IL-17RCの融合タンパク質は、組換え宿主においてIL-17RCを発現させ、かつ、産生されたIL-17RCを単離するために使用され得る。後述するように、特定のIL-17RC融合タンパク質はまた、診断および治療法における用途も有する。1つのタイプの融合タンパク質は、組換え宿主細胞に由来するIL-17RCポリペプチドを導くペプチドを含む。真核生物宿主細胞の分泌経路中にIL-17RCポリペプチドを誘導するために、分泌シグナル配列(シグナルペプチド、リーダー配列、プレプロ配列、またはプレ配列としても公知)が、IL-17RC発現ベクター中で提供される。分泌シグナル配列はIL-17RCに由来してよいが、適切なシグナル配列はまた、別の分泌タンパク質に由来してもよく、または、新規に合成されてもよい。分泌シグナル配列は、IL-17RCをコードする配列に機能的に連結されており、その結果、これら2つの配列は正確なリーディングフレーム中で連結され、かつ、新規に合成されたポリペプチドを宿主細胞の分泌経路中に誘導するように配置されている。分泌シグナル配列は、一般に、関心対象のポリペプチドをコードするヌクレオチド配列に対して5'側に位置するが、ある種の分泌シグナル配列は、関心対象のヌクレオチド配列中の別の場所に位置してもよい(例えば、Welch et al.、米国特許第5,037,743号、Holland et al.、米国特許第5,143,830号を参照されたい)。

IL-17RCまたは哺乳動物細胞によって産生される別のタンパク質の分泌シグナル配列(例えば、米国特許第5,641,655号などに記載されているような組織型プラスミノーゲンアクチベーターシグナル配列)が、組換え哺乳動物宿主においてIL-17RCを発現させるために有用であるが、酵母細胞における発現のためには、酵母シグナル配列が好ましい。適切な酵母シグナル配列の例は、酵母接合フェロモンα因子(MFα1遺伝子にコードされる)、インベルターゼ(SUC2遺伝子にコードされる)、または酸性ホスファターゼ(PHO5遺伝子にコードされる)に由来するものである。例えば、Romanos et al. 、「Expression of Cloned Genes in Yeast」、DNA Cloning 2：A Practical Approach、第2版、GloverおよびHames(編)、123〜167頁(Oxford University Press 1995)を参照されたい。

IL-17RC可溶性受容体ポリペプチドは、細胞外ドメイン、例えば、SEQ ID NO：3を含むポリペプチド、または非ヒト受容体の対応する領域をコードする切断型DNAを発現させることによって、調製することができる。細胞外ドメインポリペプチドは、膜貫通ポリペプチドセグメントおよび細胞内ポリペプチドセグメントを実質的に含まない形態で調製されることが好ましい。宿主細胞からの受容体ドメインの搬出を指示するために、受容体DNAは、t-PA分泌ペプチドのような分泌ペプチドをコードする第2のDNAセグメントに連結されている。分泌された受容体ドメインの精製を容易にするために、ポリヒスチジンタグのようなC末端伸長、サブスタンスP、Flag(商標)ペプチド(Hopp et al., Biotechnology 6：1204-1210,(1988); Eastman Kodak Co., New Haven, CTから入手可能)、または、それに対する抗体もしくは他の特異的結合物質が入手可能な別のポリペプチドもしくはタンパク質を、受容体ポリペプチドに融合してよい。さらに、細胞外サイトカイン結合ドメインに由来するIL-17RC抗原エピトープもまた、前述したように調製される。

代替のアプローチにおいて、IL-17RCの受容体細胞外ドメインまたは他のサイトカイン受容体構成要素は、免疫グロブリン重鎖定常領域、典型的には、2つの定常領域ドメインおよびヒンジ領域を含むが、可変領域を欠いているF_c断片との融合物として発現され得る(Sledziewski, AZ et al.、米国特許第6,018,026号および同第5,750,375号を参照されたい)。本発明の可溶性IL-17RCポリペプチドには、このような融合物が含まれる。1つのこのような融合物をSEQ ID NO：64に示す。このような融合物は、典型的には、Fc部分が互いにジスルフィド結合されており、かつ、2つの受容体ポリペプチドが互いに接近して配列されている多量体分子として分泌される。このタイプの融合物は、リガンドを特異的に滴定することによってインビトロでシグナルを妨害、阻害、または低減させるためのインビトロのアッセイ法ツールとして、および、循環中のリガンドに結合し、かつ、それを血液循環から除くために非経口的にそれらを投与することによる、インビボでのアンタゴニストとして、溶液から同系リガンドをアフィニティー精製するために使用することができる。リガンドを精製するために、IL-17RC-Igキメラが、受容体-リガンド結合を促進する条件(典型的には、生理学的状態に近い温度、pH、およびイオン強度)下で、リガンドを含む試料(例えば、細胞馴化培地または組織抽出物)に添加される。次いで、キメラ-リガンド複合体が、固体支持体(例えば、不溶性の樹脂ビーズ)上に固定化されているプロテインAを用いた混合物によって分離される。次いで、リガンドは、塩またはpH勾配を用いるような従来の化学的技術を用いて溶離される。別の方法では、キメラ自体が固体支持体に結合されてよく、前述のように、結合および溶離が実施される。キメラは、血清アミロイドA(SAA)およびC反応性タンパク質(CRP)など、急性期応答を含む炎症応答を調節するためにインビボで使用され得る。結合親和性の高いキメラは、非経口的に(例えば、筋肉内注射、皮下注射、または静脈注射によって)投与される。循環中の分子はリガンドに結合し、かつ、通常の生理学的プロセスによって血液循環から除かれる。アッセイ法で使用する場合、キメラは、F_c領域を介して支持体に結合され、かつ、ELISA形式で使用される。

本発明の抗IL-17RCおよび結合相手の単離を支援するために、リガンド結合受容体(もしくは抗体、相補体/抗相補体ペアの1つのメンバー)またはその結合断片、および市販されているバイオセンサー機器(BIAcore, Pharmacia Biosensor, Piscataway, NJ)を使用するアッセイ法システムが有利に使用され得る。このような受容体、抗体、相補体/抗相補体ペアのメンバー、または断片は、受容体チップの表面に固定化される。この機器の使用は、Karlsson, J. Immunol. Methods 145：229-40, 1991ならびにCunninghamおよびWells、J. Mol. Biol. 234：554-63, 1993によって開示されている。受容体、抗体、メンバー、または断片は、フローセル内の金フィルムに結合されたデキストラン繊維に、アミンまたはスルフヒドリル化学反応によって共有結合的に結合される。試験試料に、そのセルを通過させる。リガンド、エピトープ、または相補体/抗相補体ペアの反対のメンバーが試料中に存在する場合には、それぞれ、固定化された受容体、抗体、またはメンバーに結合して、金フィルムの表面プラズモン共鳴の変化として検出される、媒体の屈折率の変化を引き起こすと考えられる。このシステムにより、結合速度および解離速度(これらから結合親和性を計算することができる)の決定、ならびに結合の化学量論の評価が可能になる。あるいは、リガンド/受容体結合は、SELDI(商標)技術(Ciphergen, Inc., Palo Alto, CA)を用いて解析することができる。さらに、前述のBIACORE技術は、様々なモノクローナル抗体が、IL-17RCポリペプチド上の同じまたは異なるエピトープに結合するかどうかを判定するために競合実験において使用することができ、したがって、IL-17FまたはIL-17AおよびIL-17Fの両方を結合、妨害、阻害、低減、拮抗、または中和する本発明の中和抗体のエピトープマッピングを支援するのに使用することができる。

リガンド結合受容体ポリペプチドはまた、当技術分野において公知の他のアッセイ系においても使用され得る。このような系には、結合親和性を決定するためのスキャッチャード解析(Scatchard, Ann. NY Acad. Sci. 51 ：660-72, 1949を参照されたい)および熱量測定アッセイ法(Cunningham et al., Science 253：545-48, 1991、Cunningham et al., Science 245：821-25, 1991)が含まれる。

本発明はさらに、様々な他のポリペプチド融合物および1つまたは複数のポリペプチド融合物を含む関連した多量体タンパク質を提供する。例えば、可溶性IL-17RC受容体は、米国特許第5,155,027号および同第5,567,584号において開示されている二量体化タンパク質に対する融合物として調製され得る。この点に関して好ましい二量体化タンパク質には、免疫グロブリン定常領域ドメイン、例えば、IgGγ1、およびヒトκ軽鎖が含まれる。免疫グロブリン-可溶性IL-17RC融合物は、様々な多量体IL-17RC受容体類似体を産生させるために遺伝的に操作された細胞において発現され得る。補助的ドメインを可溶性IL-17RC受容体に融合して、特定の細胞、組織、または高分子(例えば、コラーゲン、またはIL-17RCリガンド、IL-17F、もしくはIL-17Aを発現する細胞)にそれらを標的化することができる。IL-17RCポリペプチドは、精製用のアフィニティータグおよびターゲティングドメインなど2種またはそれ以上の部分に融合されてよい。ポリペプチド融合物はまた、特にドメイン間に、1つまたは複数の切断部位も含んでよい。Tuan et al., Connective Tissue Research 34：1-9, 1996を参照されたい。

細菌細胞では、発現されたタンパク質の毒性を減少させ、安定性を高め、かつ、回収を促進するために、異種タンパク質を融合タンパク質として発現させることがしばしば望ましい。例えば、IL-17RCは、グルタチオンS-トランスフェラーゼポリペプチドを含む融合タンパク質として発現され得る。グルタチオンS-トランスフェラーゼ融合タンパク質は、典型的には可溶性であり、かつ、固定化されたグルタチオンカラム上で、大腸菌溶菌液から容易に精製することができる。同様のアプローチにおいて、マルトース結合タンパク質ポリペプチドを含むIL-17RC融合タンパク質は、アミロース樹脂カラムを用いて単離することができ、切断型プロテインA遺伝子のC末端を含む融合タンパク質は、IgG-セファロースを用いて精製することができる。細菌細胞において異種ポリペプチドを融合タンパク質として発現させるための確立された技術は、例えば、Williams et al.、「Expression of Foreign Proteins in E. coli Using Plasmid Vectors and Purification of Specific Polyclonal Antibodies」、 DNA Cloning 2：A Practical Approach、第2版、GloverおよびHames(編)、15〜58頁(Oxford University Press 1995)によって記述されている。さらに、市販されている発現系が利用可能である。例えば、PINPOINT Xaタンパク質精製システム(Promega Corporation; Madison, WI)は、アビジンを含む樹脂を用いて、発現の間にビオチン化されるポリペプチドを含む融合タンパク質を単離するための方法を提供する。

原核生物細胞または真核生物細胞のいずれかによって発現される異種ポリペプチドを単離するために有用であるペプチドタグには、ポリヒスチジンタグ(ニッケルキレート化樹脂に対する親和性を有する)、c-mycタグ、カルモジュリン結合タンパク質(カルモジュリンアフィニティクロマトグラフィーを用いて単離される)、サブスタンスP、RYIRSタグ(抗RYIRS抗体と結合する)、Glu-Gluタグ、およびFLAGタグ(抗FLAG抗体と結合する)が含まれる。例えば、Luo et al., Arch. Biochem. Biophys. 329：215(1996)、Morganti et al., Biotechnol. Appl. Biochem. 23：67(1996)、およびZheng et al., Gene 186：55(1997)を参照されたい。このようなペプチドタグをコードする核酸分子は、例えば、Sigma-Aldrich Corporation(St. Louis, MO)から入手可能である。

別の形態の融合タンパク質は、IL-17RCポリペプチドならびに免疫グロブリン重鎖、典型的には、2つまたは3つの定常領域ドメインおよびヒンジ領域を含むが、可変領域を欠いているF_c断片を含む。例として、Chang et al.、米国特許第5,723,125号では、ヒトインターフェロンおよびヒト免疫グロブリンFc断片を含む融合タンパク質を記述している。インターフェロンのC末端は、ペプチドリンカー部分によって、Fc断片のN末端に連結されている。ペプチドリンカーの例は、免疫学的に不活性であるT細胞不活性配列を主に含むペプチドである。例示的なペプチドリンカーは、アミノ酸配列：GGSGG SGGGG SGGGG S(SEQ ID NO：9)を有する。この融合タンパク質において、例示的なFc部分は、ヒトγ4鎖であり、これは、溶液中で安定であり、かつ、補体活性化活性をほとんど持たないか、または全く持たない。したがって、本発明は、SEQ ID NO：2または5のアミノ酸配列を含むペプチドのように、IL-17RC部分のC末端がペプチドリンカーを介してFc断片のN末端に結合されている、IL-17RC部分およびヒトFc断片を含むIL-17RC融合タンパク質を企図する。IL-17RC部分は、IL-17RC分子またはその断片でよい。例えば、融合タンパク質はSEQ ID NO：3のアミノ酸とFc断片(例えばヒトFc断片)とを含む融合タンパク質であってもよい。

別の変形法において、IL-17RC融合タンパク質は、IgG配列、IgG配列のアミノ末端に共有結合されたIL-17RC部分、およびIL-17RC部分のアミノ末端に共有結合されたシグナルペプチドを含み、その際、IgG配列は、以下の順序の以下のエレメントからなる：ヒンジ領域、CH₂ドメイン、およびCH₃ドメイン。したがって、IgG配列はCH₁ドメインを欠く。IL-17RC部分は、IL-17RCリガンドと結合する能力のような、本明細書において説明するIL-17RC活性を示す。抗体部分および非抗体部分の両方を含む融合タンパク質の作製に対するこの一般的アプローチは、LaRochelle et al., EP 742830(WO 95/21258)によって記述されている。

IL-17RC部分およびFc部分を含む融合タンパク質は、例えば、インビトロのアッセイ法ツールとして使用され得る。例えば、生物試料中のIL-17RCリガンドの存在は、IL-17RC-免疫グロブリン融合タンパク質を用いて検出することができ、その際、IL-17RC部分は、リガンドに結合するために使用され、かつ、プロテインAまたは抗Fc抗体などの高分子は、融合タンパク質を固体支持体に結合させるのに使用される。このようなシステムを用いて、IL-17RCリガンド、例えば、IL-17FまたはIL-17AおよびIL-17Fの両方がそれらの受容体に結合するのを邪魔するアゴニストおよびアンタゴニストを同定することができる。

抗体融合タンパク質の他の例には、抗原結合ドメイン、およびIL-17RC細胞外ドメインを含むIL-17RC断片を含むポリペプチドが含まれる。このような分子を用いて、IL-17RC結合活性のために、特定の組織を標的とすることができる。

本発明はさらに、様々な他のポリペプチド融合物も提供する。例えば、生物学的機能を与えるドメインの一部または全体は、サイトカイン受容体ファミリーの別のメンバーに由来する機能的に等価なドメインと、本発明のIL-17RC間で交換することができる。ポリペプチド融合物を組換え宿主細胞において発現させて、様々なIL-17RC融合物類似体を作製することができる。IL-17RCポリペプチドは、精製用のアフィニティータグおよびターゲティングドメインなど2種またはそれ以上の部分またはドメインに融合されてよい。ポリペプチド融合物はまた、特にドメイン間に、1つまたは複数の切断部位も含んでよい。例えば、Tuan et al., Connective Tissue Research 34：1, 1996を参照されたい。

融合タンパク質は、当業者に公知の方法により、融合タンパク質の各構成要素を調製し、かつそれらを化学的に結合させることによって調製することができる。あるいは、適切なリーディングフレーム中で融合タンパク質の両方の構成要素をコードするポリヌクレオチドを、公知の技術を用いて作製し、かつ、本明細書において説明する方法によって発現させることもできる。融合タンパク質を酵素的切断および化学的切断するための一般的方法は、例えば、Ausubel(1995)、16-19〜16-25頁に記述されている。

IL-17RC結合ドメインは、IL-17RCリガンドアゴニストの推定上の接触部位アミノ酸の変異と組み合わせて、核磁気共鳴、結晶構造解析、電子解析、または光親和性標識などの技術によって決定されるように、構造の物理的解析によってさらに特徴付けることができる。例えば、de Vos et al., Science 255：306(1992)、Smith et al., J. Mol. Biol. 224：899(1992)、およびWlodaver et al., FEBS Lett. 309：59(1992)を参照されたい。

本発明はまた、IL-17RCポリペプチドがポリマーと連結されている、化学的に修飾されたIL-17RC組成物も企図する。例示的なIL-17RCポリペプチドは、SEQ ID NO：3のアミノ酸残基からなるポリペプチドなどの、機能的な膜貫通ドメインを欠いている可溶性ポリペプチドである。典型的には、ポリマーは水溶性であり、その結果、IL-17RC結合体は、生理学的環境のような水性環境において沈殿しない。適切なポリマーの例は、アシル化のための活性エステルまたはアルキル化ためのアルデヒドなど単一の反応性基を有するように修飾されたものである。このようにして、重合の程度を調節することができる。反応性アルデヒドの例は、ポリエチレングリコールプロピオンアルデヒド、またはそのモノ(C1-C10)アルコキシもしくはアリールオキシ誘導体である(例えば、Harris, et al.、米国特許第5,252,714号を参照されたい)。ポリマーは分枝状または非分枝状でよい。さらに、ポリマーの混合物は、IL-17RC結合体を作製するために使用され得る。

治療法用に使用されるIL-17RC結合体は、薬学的に許容される水溶性ポリマー部分を含んでよい。適切な水溶性ポリマーには、ポリエチレングリコール(PEG)、モノメトキシ-PEG、モノ-(C1-C10)アルコキシ-PEG、アリールオキシ-PEG、ポリ-(N-ビニルピロリドン)PEG、トレシルモノメトキシPEG、PEGプロピオンアルデヒド、ビス-スクシンイミジルカルボナートPEG、プロピレングリコールホモポリマー、ポリプロピレンオキシド/エチレンオキシド共重合体、ポリオキシエチル化されたポリオール(例えば、グリセロール)、ポリビニルアルコール、デキストラン、セルロース、または他の炭水化物ベースのポリマーが含まれる。適切なPEGは、例えば、5,000、12,000,、20,000、および25,000を含む、約600〜約60,000の分子量を有してよい。IL-17RC結合体はまた、このような水溶性ポリマーの混合物を含んでよい。

IL-17RC結合体の1つの例は、IL-17RC部分およびIL-17RC部分のN末端に結合されたポリアルキルオキシド部分を含む。PEGは、1つの適切なポリアルキルオキシドである。例として、IL-17RCは、PEGで修飾されてよく、「PEG化」として公知のプロセスである。IL-17RCのPEG化は、当技術分野において公知のPEG化反応のいずれかによって実施することができる(例えば、EP 0 154 316、Delgado et al., Critical Reviews in Therapeutic Drug Carrier Systems 9：249(1992)、DuncanおよびSpreafico、Clin. Pharmacokinet. 27：290(1994)、およびFrancis et al., Int J Hematol 68：1(1998)を参照されたい)。例えば、PEG化は、アシル化反応によって、または、反応性のポリエチレングリコール分子とのアルキル化反応によって実施することができる。代替のアプローチにおいて、IL-17RC結合体は、活性化PEGを縮合することによって形成され、その際、PEGの末端ヒドロキシ基またはアミノ基は、活性化リンカーによって置換されている(例えば、Karasiewicz et al.、米国特許第5,382,657号を参照されたい)。

アシル化によるPEG化は、典型的には、PEGの活性なエステル誘導体をIL-17RCポリペプチドと反応させることを要する。活性化PEGエステルの例は、N-ヒドロキシスクシンイミドにエステル結合しているPEGである。本明細書において使用される場合、「アシル化」という用語は、IL-17RCおよび水溶性ポリマー間の以下のタイプの結合を含む：アミド、カルバマート、およびウレタンなど。アシル化によってPEG化IL-17RCを調製するための方法は、典型的には、(a)1つまたは複数のPEG基がIL-17RCに結合する条件下で、IL-17RCポリペプチドを(PEGのアルデヒド誘導体の反応性エステルのような)PEGと反応させる段階、および(b)反応生成物を得る段階を含む。一般に、アシル化反応のために最適な反応条件は、公知のパラメーターおよび所望の結果に基づいて決定される。例えば、PEG：IL-17RCの比率が大きいほど、ポリPEG化IL-17RC生成物のパーセンテージが大きくなる。

アシル化によるPEG化の生成物は、典型的には、リシンε-アミノ基がアシル連結基を介してPEG化されている、ポリPEG化IL-17RC生成物である。連結結合の例は、アミドである。典型的には、結果として生じるIL-17RCは、少なくとも95％がモノペグ化、ジペグ化、またはトリペグ化されていると考えられるが、PEG化の程度がより高いいくつかの化学種が、反応条件に応じて形成され得る。PEG化された化学種は、透析、限外ろ過、イオン交換クロマトグラフィー、およびアフィニティクロマトグラフィーなど標準的な精製方法を用いて、非結合型IL-17RCポリペプチドから分離することができる。

アルキル化によるPEG化は、一般に、還元剤の存在下でPEGの末端のアルデヒド誘導体をIL-17RCと反応させることを含む。PEG基は、-CH₂-NH基を介してポリペプチドに結合され得る。

さらに、本発明の抗IL-17RC抗体または抗体断片は、当技術分野におけるものであり、本明細書において説明する方法を用いてPEG化することができる。

モノPEG化生成物を作製するための還元的アルキル化を介した誘導体化は、誘導体化のために利用可能な様々なタイプの第一級アミノ基の差次的な反応性を利用する。典型的には、反応は、リシン残基のε-アミノ基とタンパク質のN末端残基のα-アミノ基の間のpKa差異を利用することを可能にするpHで実施される。このような選択的誘導体化によって、アルデヒドのような反応性基を含む水溶性ポリマーのタンパク質への結合が制御される。ポリマーとの結合は、大部分はタンパク質のN末端で起こり、リシン側鎖アミノ基のような他の反応性基の顕著な修飾は伴わない。本発明は、IL-17RCモノポリマー結合体の実質的に均一な調製物を提供する。

モノポリマーIL-17RC結合体分子の実質的に均一な集団を作製するための還元的アルキル化は、(a)還元的アルキル化条件下、IL-17RCのアミノ末端のα-アミノ基の選択的修飾を可能にするのに適したpHで、IL-17RCポリペプチドを反応性PEGと反応させる段階、および(b)反応生成物を得る段階を含んでよい。還元的アルキル化のために使用される還元剤は、水溶液中で安定であり、かつ、還元的アルキル化の初期プロセスにおいて形成されるシッフ塩基のみを還元できることが望ましい。例示的な還元剤には、水素化ホウ素ナトリウム、シアノ水素化ホウ素ナトリウム、ジメチルアミンボラン、トリメチルアミンボラン、およびピリジンボランが含まれる。

モノポリマーIL-17RC結合体の実質的に均一な集団の場合、還元的アルキル化反応条件は、IL-17RCのN末端への水溶性ポリマー部分の選択的結合を可能にする反応条件である。このような反応条件は、一般に、リシンアミノ基とN末端のα-アミノ基の間のpKa差異を提供する。pHはまた、使用すべきポリマーとタンパク質の比率にも影響を及ぼす。一般に、pHが低い場合には、タンパク質に対してかなり過剰なポリマーが望ましいと考えられる。これは、N末端のα-基の反応性が低いほど、最適条件を実現するためにより多くのポリマーが必要とされるためである。pHが高い場合には、より多くの反応性基が利用可能であるため、ポリマー：IL-17RCの比率はそれほど大きい必要はない。典型的には、pHは、3〜9、または3〜6の範囲に収まると考えられる。この方法は、IL-17RCを含むホモ二量体、ヘテロ二量体、または多量体の可溶性受容体結合体を作製するために使用することができる。

考慮すべき別の因子は、水溶性ポリマーの分子量である。一般に、ポリマーの分子量が大きいほど、タンパク質に結合され得るポリマー分子の数は少ない。PEG化反応の場合、典型的な分子量は、約2kDa〜約100kDa、約5kDa〜約50kDa、または約12kDa〜約25kDaである。水溶性ポリマーとIL-17RCのモル比は、一般に、1：1〜100：1の範囲にある。典型的には、水溶性ポリマーとIL-17RCのモル比は、ポリPEG化の場合には1：1〜20：1、およびモノPEG化の場合は1：1〜5：1である。

ポリペプチドおよび水溶性ポリマー部分を含む結合体を作製するための一般的方法は、当技術分野において公知である。例えば、Karasiewicz et al.、米国特許第5,382,657号、Greenwald et al.、米国特許第5,738, 846号、Nieforth et al., Clin.Pharmacol. Ther. 59：636(1996)、Monkarsh et al., Anal. Biochem. 247：434(1997))を参照されたい。この方法は、IL-17RCを含むホモ二量体、ヘテロ二量体、または多量体の可溶性受容体結合体を作製するために使用することができる。

本発明は、本明細書において説明する可溶性受容体または抗体のようなペプチドまたはポリペプチドを含む組成物を企図する。このような組成物は、担体をさらに含んでよい。担体は、従来の有機担体または無機担体でよい。担体の例には、水、緩衝液、アルコール、プロピレングリコール、マクロゴール、ゴマ油、およびトウモロコシ油などが含まれる。

G)IL-17RCポリペプチドの単離
本発明のポリペプチドは、混入する高分子、特に他のタンパク質および核酸に関して、少なくとも約80％の純度まで、少なくとも約90％の純度まで、少なくとも約95％の純度まで、または95％を上回る、例えば96％、97％、98％、もしくは99％を超える純度まで、かつ、感染性物質および発熱性物質を含まないように、精製することができる。本発明のポリペプチドはまた、純度が99.9％を上回る、薬学的に純粋な状態まで精製することもできる。ある種の調製物において、精製されたポリペプチドは、他のポリペプチド、特に、動物起源の他のポリペプチドを実質的に含まない。

分別および/または従来の精製方法を用いて、天然供給源(例えばヒト組織供給源)から精製されたIL-17RC、合成IL-17RCポリペプチド、ならびに組換え宿主細胞から精製された組換えIL-17RCポリペプチドおよび融合IL-17RCポリペプチドの調製物を得ることができる。一般に、硫酸アンモニウム沈殿法および酸抽出またはカオトロープ抽出が、試料の分別のために使用され得る。例示的な精製段階には、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、サイズ排除クロマトグラフィー、FPLCクロマトグラフィー、および逆相高速液体クロマトグラフィーが含まれてよい。適切なクロマトグラフィー媒体には、誘導体化されたデキストラン、アガロース、セルロース、ポリアクリルアミド、および特殊シリカなどが含まれる。PEI誘導体、DEAE誘導体、QAE誘導体、およびQ誘導体が適切である。例示的なクロマトグラフィー媒体には、フェニル基、ブチル基、またはオクチル基で誘導体化された媒体、例えば、Phenyl- Sepharose FF(Pharmacia)、Toyopearl butyl 650(Toso Haas, Montgomeryville, PA)、およびOctyl-Sepharose(Pharmacia)など、またはAmberchrom CG71(Toso Haas)などのようなポリアクリル樹脂が含まれる。適切な固体支持体には、ガラスビーズ、シリカベースの樹脂、セルロース樹脂、アガロースビーズ、架橋されたアガロースビーズ、ポリスチレンビーズ、架橋されたポリアクリルアミド樹脂、および使用される条件下で不溶性である同種のものが含まれる。これらの支持体は、アミノ基、カルボキシル基、スルフヒドリル基、ヒドロキシル基、および/または炭水化物部分によってタンパク質との結合を可能にする反応性基で修飾されてよい。

結合化学反応の例には、臭化シアン活性化、N-ヒドロキシスクシンイミド活性化、エポキシド活性化、スルフヒドリル活性化、ヒドラジド活性化、ならびに、カルボジイミド結合化学反応の場合のカルボキシル誘導体およびアミノ誘導体が含まれる。これらの媒体および他の固体媒体は当技術分野において周知であり、広く使用されており、かつ、商業的供給業者から入手可能である。ポリペプチドを単離および精製するための特定の方法の選択は、ルーチンな計画の事柄であり、選択される支持体の特性によってある程度決定される。例えば、Affinity Chromatography：Principles & Methods(Pharmacia LKB Biotechnology 1988)、およびDoonan, Protein Purification Protocols(The Humana Press 1996)を参照されたい。

IL-17RCの単離および精製のその他の変形法は、当業者によって考案され得る。例えば、後述するように得られる抗IL-17RC抗体は、イムノアフィニティー精製によって大量のタンパク質を単離するのに使用され得る。

本発明のポリペプチドはまた、特定の特性を活用することによっても単離することができる。例えば、固定化金属イオン吸着(IMAC)クロマトグラフィーを用いて、ポリヒスチジンタグを含むものを含む、ヒスチジンに富むタンパク質を精製することができる。手短に言えば、最初に、二価金属イオンをゲルに添加してキレートを形成させる(Sulkowski, Trends in Biochem.3：1(1985))。ヒスチジンに富むタンパク質は、使用される金属イオンに応じて、様々な親和性でこのマトリックスに吸着されると考えられ、かつ、競合的溶出、pHの引き下げ、または強力なキレート剤の使用によって溶離される。他の精製方法には、レクチンアフィニティクロマトグラフィーおよびイオン交換クロマトグラフィーによる、グリコシル化タンパク質の精製が含まれる(M.Deutscher(編)、Meth.Enzymol. 182：529(1990))。本発明のさらなる態様において、精製を容易にするために、関心対象のポリペプチドおよびアフィニティータグ(例えば、マルトース結合タンパク質、免疫グロブリンドメイン)の融合物を構築することができる。さらに、IL-17RC細胞外ドメインのリガンド結合特性は、例えば、IL-17RCを含む可溶性受容体の精製のために活用することができる。例えば、アフィニティクロマトグラフィーを用いることにより、その場合、IL-17Fリガンドがカラムに結合され、IL-17RCを含む受容体が結合され、続いて、標準的なクロマトグラフィー法を用いて溶離される。

IL-17RCポリペプチドまたはそれらの断片はまた、前述したように、化学合成によって調製され得る。IL-17RCポリペプチドは単量体または多量体、グリコシル化または非グリコシル化、PEG化または非PEG化のものでよく、かつ、最初のメチオニンアミノ酸残基を含んでも含まなくてもよい。

H)IL-17RCタンパク質に対する抗体の作製
IL-17RCに対する抗体は、例えば、IL-17RC発現ベクターの産生物または天然供給源から単離されたIL-17RCを抗原として用いて、得ることができる。特に有用な抗IL-17RC抗体は、IL-17RCと「特異的に結合する」。抗体は、以下の2つの特性のうち少なくとも1つを示す場合、特異的に結合するとみなされる：(1)抗体が、閾値レベルの結合活性でIL-17RCに結合する、および(2)抗体が、IL-17RCに関連するポリペプチドと有意に交差反応しない。

第1の特徴に関して、抗体は、10⁶M^-1またはそれ以上、好ましくは10⁷M^-1またはそれ以上、より好ましくは10⁸M^-1またはそれ以上、および、最も好ましくは10⁹M^-1またはそれ以上の結合親和力(Ka)で、IL-17RCポリペプチド、ペプチド、またはエピトープに結合する場合、特異的に結合する。抗体の結合親和力は、当業者によって、例えば、スキャッチャード解析(Scatchard, Ann. NY Acad. Sci. 51：660(1949))により、容易に決定することができる。第2の特徴に関して、例えば、標準的なウェスタンブロット解析によって、抗体がIL-17RCを検出するが、現在公知のポリペプチドを検出しない場合、抗体は、関連するポリペプチド分子と有意に交差反応しない。関連する公知のポリペプチドの例には、公知のサイトカイン受容体が含まれる。

抗IL-17RC抗体は、抗原性のIL-17RCエピトープを有するペプチドおよびポリペプチドを用いて作製することができる。本発明の抗原性のエピトープを有するペプチドおよびポリペプチドは、SEQ ID NO：2、SEQ ID NO：3、SEQ ID NO：5、または本明細書において開示する別のアミノ酸配列内に含まれる少なくとも9個、または15個〜約30個の間のアミノ酸の配列を含む。しかしながら、30個〜50個のアミノ酸を含む、本発明のアミノ酸配列のより多くの部分を含むか、または本発明のポリペプチドのアミノ酸配列全体を含む長さまでの任意の長さを含むペプチドまたはポリペプチドもまた、IL-17RCに結合する抗体を導入するのに有用である。エピトープを有するペプチドのアミノ酸配列は、水溶性溶媒中で実質的な溶解性を提供するように選択されることが望ましい(すなわち、配列は、比較的親水性の残基を含み、疎水性残基は典型的には避けられる)。さらに、プロリン残基を含むアミノ酸配列もまた、抗体作製のために望ましい場合がある。

例として、IL-17RC中の潜在的な抗原性部位は、LASERGENE(DNASTAR;Madison, WI)のPROTEANプログラム(バージョン3.14)によって実行される、Jameson-Wolf法(JamesonおよびWolf、CABIOS 4：181 ,(1988))を用いて同定した。初期設定パラメーターをこの解析において使用した。

Jameson-Wolf法は、タンパク質構造予測に関する6つの主要なサブルーチンを組み合わせることによって潜在的な抗原決定基を予測する。手短に言えば、Hopp-Woods法(Hopp et al., Proc.Nat'l Acad.Sci.USA 78：3824(1981))を最初に用いて、局所的親水性が最大である領域に相当するアミノ酸配列を同定した(パラメーター：7残基の平均)。第2の段階において、Emini法(Emini et al., J.Virology 55：836(1985))を用いて表面確率を計算した(パラメーター：表面決定閾値(0.6)=1)。第3に、 Karplus-Schultz法(KarplusおよびSchultz, Naturwissenschaften 72：212 (1985))を用いて、主鎖柔軟性を予測した((パラメーター：柔軟性閾値(0.2) = 1)。解析の第4および第5の段階において、Chou-Fasman法(Chou、「Prediction of Protein Structural Classes from Amino Acid Composition」、Prediction of Protein Structure and the Principles of Protein Conformation、Fasman(編)、549〜586頁(Plenum Press 1990))およびGarnier-Robson法(Garnier et al., J.Mol.Biol. 120：97(1978))を用いて、2次構造予測をデータに適用した(Chou-Fasmanパラメーター：立体配座表=64タンパク質;α領域閾値=103;β領域閾値=105;Garnier-Robsonパラメーター：αおよびβ決定定数=0)。第6のサブルーチンにおいて、柔軟性パラメーターおよびヒドロパシー/溶媒接近容易性因子を組み合わせて、「抗原性指数」と呼ばれる表面輪郭値を決定した。最後に、内部領域と比べて、表面領域の可動性に由来する付加的な自由エネルギーを説明するために、各ピーク値の20％、40％、60％、または80％を加えることによって主要な表面ピークを広げるピーク広幅化関数を抗原指数に適用した。しかしながら、ヘリックス領域の柔軟性はより低い傾向があるため、ヘリックス領域に存在するどの主要ピークにもこの計算は適用しなかった。Hopp-Woodsの親水性プロファイルを用いて、SEQ ID NO：3内で抗原性の最も高い可能性がある領域を決定することができる(Hopp et al., Proc. Natl. Acad. Sci.78：3824-3828, 1981;Hopp, J. Immun. Meth. 88：1-18, 1986、およびTriquier et al., Protein Engineering 11：153-169, 1998)。プロファイルは、6残基のスライディングウィンドウに基づいている。埋もれたG残基、S残基、およびT残基ならびに露出したH残基、Y残基、およびW残基は無視した。さらに、例えばDNASTAR Proteanプログラム(DNASTAR Inc., Madison, WI)を用いて、Jameson-Wolfプロットによって予測されるSEQ ID NO：3内のIL-17RC抗原エピトープは、好ましい抗原エピトープとしての機能を果たし、かつ、当業者によって決定され得る。このような抗原エピトープには、(1)SEQ ID NO：3のアミノ酸残基73番〜アミノ酸残基82番、(2)SEQ ID NO：3のアミノ酸残基95番〜アミノ酸残基104番、(3)SEQ ID NO：3のアミノ酸残基111番〜アミノ酸残基119番、(4)SEQ ID NO：3のアミノ酸残基179番〜アミノ酸残基186番、(5)SEQ ID NO：3のアミノ酸残基200番〜アミノ酸残基205番、(6)SEQ ID NO：3のアミノ酸残基229番〜アミノ酸残基236番、(7)SEQ ID NO：3のアミノ酸残基264番〜アミノ酸残基268番、および(8)SEQ ID NO：3のアミノ酸残基275番〜アミノ酸残基281番が含まれる。本発明は、IL-17RCに対する抗体を作製するために、または本発明の中和性モノクローナル抗体をスクリーニングもしくは同定するためのツールとして、抗原性ペプチドX〜Yのいずれか一つを使用することを企図する。本発明はまた、抗原ペプチドX〜Yの少なくとも1種を含むポリペプチドも企図する。本発明は、IL-17RCに対する抗体を作製するため、ならびに、中和性であり、(個々にまたは共に)IL-17FおよびIL-17Aに結合し、その活性を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和し得る抗IL-17RCモノクローナル抗体を同定およびスクリーニングするために、本明細書において説明する任意の抗原ペプチドまたはエピトープを使用することを企図する。

さらに、適切な抗原には、ヘテロ二量体または多量体の可溶性IL-17RCポリペプチドなどを形成し得るもののような、別のサイトカイン細胞外ドメイン、例えばクラスIまたはクラスIIサイトカイン受容体ドメインと組み合わせて、上記に開示したIL-17RCサイトカイン結合ドメインまたはIL-17RC細胞外ドメインを含むIL-17RCポリペプチドも含まれる。

組換えIL-17RCタンパク質または天然供給源から単離されたIL-17RCに対するポリクローナル抗体は、当業者に周知の方法を用いて調製することができる。例えば、Green et al.、「Production of Polyclonal Antisera」、Immunochemical Protocols(Manson編)、1〜5頁(Humana Press 1992)およびWilliams et al.、「Expression of foreign proteins in E. coli using plasmid vectors and purification of specific polyclonal antibodies」、DNA Cloning 2：Expression Systems、第2版、Glover et al.(編)、15頁(Oxford University Press 1995)を参照されたい。IL-17RCポリペプチドの免疫原性は、ミョウバン(水酸化アルミニウム)またはフロイントの完全もしくは不完全アジュバントなどのアジュバントを用いて増大させることができる。また、免疫化のために有用なポリペプチドには、IL-17RCまたはその一部分と免疫グロブリンポリペプチドまたはマルトース結合タンパク質との融合物のような融合ポリペプチドが含まれる。ポリペプチド免疫原は、完全長分子またはその一部分でよい。ポリペプチド部分が「ハプテン様」である場合、そのような部分は、有利には、免疫化のために高分子担体(キーホールリンペットヘモシアニン(KLH)、ウシ血清アルブミン(BSA)、または破傷風トキソイドなど)に結合または連結され得る。

ポリクローナル抗体は典型的にはウマ、雌ウシ、イヌ、ニワトリ、ラット、マウス、ウサギ、モルモット、ヤギ、またはヒツジなどの動物において産生させられるが、本発明の抗IL-17RC抗体は、ヒトより下等な霊長類抗体に由来してもよい。ヒヒにおいて診断的および治療的に有用な抗体を産生させる一般的な技術は、例えば、Goldenberg et al.、国際特許国際公開WO91/11465およびLosman et al.、Int. J. Cancer 46：310(1990)において見出すことができる。

あるいは、モノクローナル抗IL-17RC抗体を作製することもできる。特定の抗原に対するげっ歯動物モノクローナル抗体は、当業者に公知の方法によって得ることができる(例えば、Kohler et al., Nature 256：495(1975)、Coligan et al.(編)、Current Protocols in Immunology、第1巻、2.5.1〜2.6.7頁(John Wiley & Sons 1991)[「Coligan」]、Picksley et al.、「Production of monoclonal antibodies against proteins expressed in E. coli」、DNA Cloning 2：Expression Systems、第2版、Glover et al.(編)、93頁(Oxford University Press 1995))。

手短に言えば、IL-17RC遺伝子産物を含む組成物をマウスに注射し、血清試料を採取することによって抗体産生の存在を確認し、脾臓を摘出してBリンパ球を得、Bリンパ球を骨髄腫細胞と融合させてハイブリドーマを作製し、ハイブリフドーマをクローニングし、抗原に対する抗体を産生する陽性クローンを選択し、抗原に対する抗体を産生するクローンを培養し、かつハイブリドーマ培養物から抗体を単離することによって、モノクローナル抗体を得ることができる。

さらに、本発明の抗IL-17RC抗体はヒトモノクローナル抗体に由来してもよい。ヒトモノクローナル抗体は、抗原チャレンジに応答して特異的ヒト抗体を産生するように操作されたトランスジェニックマウスから得られる。この技術において、ヒト重鎖座位およびヒト軽鎖座位のエレメントを、内因性の重鎖座位および軽鎖座位の標的化された破壊を含む胚性幹細胞株に由来するマウスの系統に導入する。トランスジェニックマウスは、ヒト抗原に対して特異的なヒト抗体を合成することができ、これらのマウスは、ヒト抗体を分泌するハイブリドーマを作製するために使用され得る。トランスジェニックマウスからヒト抗体を得るための方法は、例えばGreen et al.、Nature Genet. 7：13(1994)、Lonberg et al.、Nature 368：856(1994)、およびTaylor et al.、Int. Immun. 6：579(1994)によって記述されている。

モノクローナル抗体は、様々な十分に確立された技術によってハイブリドーマ培養物から単離および精製することができる。このような単離技術には、プロテイン-Aセファロースを用いたアフィニティクロマトグラフィー、サイズ排除クロマトグラフィー、およびイオン交換クロマトグラフィーが含まれる(例えば、Coligan、2.7.1〜2.7.12頁、および2.9.1〜2.9.3頁;Baines et al.、「Purification of Immunoglobulin G(IgG)」、Methods in Molecular Biology、10巻、79〜104頁(The Humana Press Inc. 1992)を参照されたい)。

特定の用途の場合、抗IL-17RC抗体の断片を調製することが望ましい場合がある。このような抗体断片は、例えば、抗体のタンパク分解性の加水分解によって得ることができる。抗体断片は、従来の方法による全抗体のペプシン消化またはパパイン消化によって得ることができる。例として、抗体断片は、F(ab')₂と表される5S断片を提供するように、ペプシンで抗体を酵素的に切断することによって作製することができる。この断片をチオール還元剤によってさらに切断して、一価の3.5S Fab'断片を作製することができる。任意で、ジスルフィド結合の切断に起因するスルフヒドリル基に対するブロック基を用いて、切断反応を実施してよい。代替の方法として、ペプシンを用いた酵素的切断では、一価のFab断片2つおよびFc断片1つが直接生じる。これらの方法は、例えば、Goldenbergの米国特許第4,331,647号;Nisonoff et al., Arch Biochem. Biophys. 89：230(1960);Porter, Biochem. J. 73：119, (1959);Edelman et al., Methods in Enzymology第1巻、422頁(Academic Press 1967);Coligan、2.8.1〜2.8.10頁および2.10〜2.10.4頁に記載されている。

一価の軽鎖-重鎖断片を形成するための重鎖の分離、断片のさらなる切断、または他の酵素的、化学的、もしくは遺伝的技術など抗体を切断する他の方法も、それらの断片が、完全な抗体によって認識される抗原に結合する限りにおいて、使用してよい。

例えば、Fv断片は、V_H鎖およびV_L鎖の結合を含む。この結合は、Inbar et al., Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 69：2659(1972)によって説明されているように、非共有結合性でよい。あるいは、これらの可変鎖は、分子間のジスルフィド結合によって連結され得るか、またはグルタルアルデヒドのような化学物質によって架橋され得る(例えば、Sandhu, Crit. Rev. Biotech. 12：437(1992)を参照されたい)。

Fv断片は、ペプチドリンカーによって連結されたV_H鎖およびV_L鎖を含んでよい。これら単鎖の抗原結合タンパク質(scFv)は、オリゴヌクレオチドによって連結されたV_HドメインおよびV_LドメインをコードするDNA配列を含む構造遺伝子を構築することによって調製される。構造遺伝子は、発現ベクター中に挿入され、続いて、このベクターは、大腸菌(E.coli)のような宿主細胞中に導入される。組換え宿主細胞は、2つのVドメインを架橋するリンカーペプチドを有する単一のポリペプチド鎖を合成する。scFvを作製するための方法は、例えば、Whitlow et al., Methods： A Companion to Methods in Enzymology 2：97(1991)によって説明されている(同様に、Bird et al., Science 242：423(1988)、Ladner et al.、米国特許第4,946,778号、Pack et al., Bio/Technology 11：1271(1993)、およびSandhu、前記も参照されたい)。

例として、scFVは、リンパ球をIL-17RCポリペプチドにインビトロで曝露させ、かつ、(例えば、固定化または標識したIL-17RCタンパク質またはIL-17RCペプチドの使用によって)ファージベクターまたは類似ベクターにおいて抗体ディスプレイライブラリーを選択することによって得ることができる。潜在的なIL-17RCポリペプチド結合ドメインを有するポリペプチドをコードする遺伝子は、ファージ上(ファージディスプレイ)または大腸菌のような細菌上にディスプレイされたランダムペプチドライブラリーをスクリーニングすることによって得ることができる。これらのポリペプチドをコードするヌクレオチド配列は、ランダム変異誘発およびランダムポリヌクレオチド合成によるなど、いくつかの方法で得ることができる。これらのランダムペプチドディスプレイライブラリーを使用して、タンパク質またはポリペプチド、例えば、リガンドもしくは受容体、生物学的巨大分子もしくは合成巨大分子、または有機物質もしくは無機物質などであり得る公知の標的と相互作用するペプチドをスクリーニングすることができる。このようなランダムペプチドディスプレイライブラリーを作製およびスクリーニングするための技術は、当技術分野において公知であり(Ladner et al.、米国特許第5,223,409号、Ladner et al.、米国特許第4,946,778号、Ladner et al.、米国特許第5,403,484号、Ladner et al.、米国特許第5,571,698号、およびKay et al., Phage Display of Peptides and Proteins(Academic Press, Inc. 1996))、かつ、ランダムペプチドディスプレイライブラリーおよびこのようなライブラリーをスクリーニングするためのキットは、例えば、CLONTECH Laboratories, Inc.(Palo Alto, CA)、Invitrogen Inc.(San Diego, CA)、New England Biolabs, Inc.(Beverly, MA)、およびPharmacia LKB Biotechnology Inc.(Piscataway, NJ)から市販されている。本明細書において開示するIL-17RC配列を用いてランダムペプチドディスプレイライブラリーをスクリーニングして、IL-17RCに結合するタンパク質を同定することができる。

抗体断片の別の形態は、単一の相補性決定領域(CDR)をコードするペプチドである。CDRペプチド(「最小認識単位」)は、関心対象の抗体のCDRをコードする遺伝子を構築することによって得ることができる。このような遺伝子は、例えば、ポリメラーゼ連鎖反応法を用いて、抗体産生細胞のRNAから可変領域を合成することによって、調製する(例えば、Larrick et al., Methods：A Companion to Methods in Enzymology 2：106(1991)、Courtenay-Luck、「Genetic Manipulation of Monoclonal Antibodies」、Monoclonal Antibodies：Production, Engineering and Clinical Application、Ritter et al.(編)、166頁(Cambridge University Press 1995)、およびWard et al.、「Genetic Manipulation and Expression of Antibodies」、Monoclonal Antibodies：Principles and Applications、Birch et al.(編)、137頁(Wiley-Liss, Inc. 1995)を参照されたい)。

あるいは、抗IL-17RC抗体は、「ヒト化」モノクローナル抗体に由来してもよい。ヒト化モノクローナル抗体は、マウス免疫グロブリンの重鎖および軽鎖の可変鎖に由来するマウスの相補性決定領域をヒト可変ドメイン中に移入することによって作製される。次いで、ヒト抗体の典型的な残基は、マウス対応物のフレームワーク領域において置換される。ヒト化モノクローナル抗体に由来する抗体構成要素を使用することにより、マウスの定常領域の免疫原性に関連する潜在的な問題が回避される。マウスの免疫グロブリン可変ドメインをクローニングするための一般的技術は、例えば、Orlandi et al., Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 86：3833(1989)によって説明されている。ヒト化モノクローナル抗体を作製するための技術は、例えば、Jones et al., Nature 321：522(1986)、Carter et al., Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 89：4285(1992)、Sandhu, Crit. Rev. Biotech. 12：437(1992)、Singer et al., J.Immun. 150：2844(1993)、Sudhir(編)、Antibody Engineering Protocols(Humana Press, Inc. 1995)、Kelley、「Engineering Therapeutic Antibodies」、Protein Engineering：Principles and Practice、Cleland et al.(編)、399〜434頁(John Wiley & Sons, Inc. 1996)およびQueen et al.、米国特許第5,693,762号(1997)によって説明されている。

さらに、本発明の抗IL-17RC抗体または抗体断片は、当技術分野におけるものであり、本明細書において説明する方法を用いてPEG化することができる。

ポリクローナル抗イディオタイプ抗体は、標準技術を用いて、抗IL-17RC抗体または抗体断片で動物を免疫化することによって調製することができる。例えば、Green et al.、「Production of Polyclonal Antisera」、Methods In Molecular Biology： Immunochemical Protocols, Manson(編)、1〜12頁(Humana Press 1992)を参照されたい。また、Coligan、2.4.1〜2.4.7頁も参照されたい。あるいは、モノクローナル抗イディオタイプ抗体は、前述の技術により、抗IL-17RC抗体または抗体断片を免疫原として用いて調製することもできる。別の代替方法として、ヒト化抗イディオタイプ抗体またはヒトより下等な霊長類の抗イディオタイプ抗体を、前述の技術を用いて調製することができる。抗イディオタイプ抗体を作製するための方法は、例えば、Irie、米国特許第5,208,146号、Greene, et. al.、米国特許第5,637,677号、ならびにVarthakaviおよびMinocha、J.Gen.Virol. 77：1875(1996)によって記述されている。

抗IL-17RC抗体を検出可能な標識と結合させて、抗IL-17RC免疫複合体を形成させることができる。適切な検出可能標識には、例えば、放射性同位体、蛍光標識、化学発光標識、酵素標識、生物発光標識、またはコロイド金が含まれる。このような検出可能となるように標識された免疫複合体を作製および検出する方法は当業者に周知であり、かつ、下記により詳細に説明する。

検出可能な標識は、オートラジオグラフィーによって検出される放射性同位体でよい。本発明の目的のために特に有用である同位体は、³H、¹²⁵I、¹³¹I、³⁵S、および¹⁴Cである。

抗IL-17RC免疫複合体はまた、蛍光性化合物で標識することもできる。蛍光標識した抗体の存在は、適切な波長の光にその免疫複合体を曝露させ、かつ、結果として生じる蛍光を検出することによって決定される。蛍光標識化合物には、フルオレセインイソチオシアナート、ローダミン、フィコエリテリン(phycoerytherin)、フィコシアニン、アロフィコシアニン、o-フタアルデヒド(phthaldehyde)、およびフルオレスカミンが含まれる。

あるいは、抗体構成要素を化学発光化合物に結合させることによって、抗IL-17RC免疫複合体を検出可能に標識することもできる。化学発光タグ付き免疫複合体の存在は、化学反応の過程を通じて生じる発光の存在を検出することによって決定される。化学発光標識化合物の例には、ルミノール、イソルミノール、芳香族アクリジニウムエステル、イミダゾール、アクリジニウム塩、およびシュウ酸エステルが含まれる。

同様に、生物発光化合物を使用して、本発明の抗IL-17RC免疫複合体を標識することもできる。生物発光は、触媒的タンパク質によって化学発光反応の効率が高められる生物学的系において見出される、あるタイプの化学発光である。生物発光タンパク質の存在は、発光の存在を検出することによって決定される。標識するのに有用な生物発光化合物には、ルシフェリン、ルシフェラーゼ、およびエクオリンが含まれる。

あるいは、抗IL-17RC免疫複合体は、抗IL-17RC抗体構成要素を酵素に結合させることによって、検出可能に標識することもできる。抗IL-17RC-酵素結合体を適切な基質の存在下でインキュベートすると、酵素部分は基質と反応して、例えば、分光光度的手段、蛍光定量的手段、または視覚的手段によって検出できる化学的部分を生成する。多特異性の免疫複合体を検出可能に標識するのに使用できる酵素の例には、β-ガラクトシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、ペルオキシダーゼ、およびアルカリホスファターゼが含まれる。

当業者は、本発明に従って使用できる他の適切な標識について知っていると考えられる。抗IL-17RC抗体へのマーカー部分の結合は、当技術分野において公知である標準的な技術を用いて実施することができる。この点に関する典型的な方法論は、Kennedy et al., Clin. Chim. Acta 70：1(1976)、Schurs et al., Clin. Chim. Acta 81：1(1977)、Shih et al., Int'l J. Cancer 46：1101(1990)、Stein et al., Cancer Res. 50：1330(1990)、およびColigan、前記によって説明されている。

さらに、免疫化学的検出の利便性および汎用性は、アビジン、ストレプトアビジン、およびビオチンと結合させた抗IL-17RC抗体を用いることによって高めることができる(例えば、Wilchek et al.(編)、「Avidin-Biotin Technology」、Methods In Enzymology、第184巻(Academic Press 1990)、およびBayer et al.、「Immunochemical Applications of Avidin-Biotin Technology」、Methods In Molecular Biology、第10巻、Manson(編)、149〜162頁(The Humana Press, Inc.1992を参照されたい)。

イムノアッセイ法を実施するための方法は、十分に確立されている。例えば、CookおよびSelf、「Monoclonal Antibodies in Diagnostic Immunoassays」、Monoclonal Antibodies：Production, Engineering, and Clinical Application、RitterおよびLadyman(編)、180〜208頁(Cambridge University Press, 1995)、Perry、「The Role of Monoclonal Antibodies in the Advancement of Immunoassay Technology」、Monoclonal Antibodies：Principles and Applications、BirchおよびLennox(編)、107〜120頁(Wiley-Liss, Inc. 1995)、ならびにDiamandis, Immunoassay(Academic Press, Inc. 1996)を参照されたい。

本発明はまた、IL-17RC遺伝子発現に関する免疫学的診断アッセイ法を実施するためのキットも企図する。このようなキットは、抗IL-17RC抗体または抗体断片を含む少なくとも1つの容器を含む。キットはまた、IL-17RC抗体または抗体断片の存在を示すことができる1種または複数種の反応物を含む第2の容器も含んでよい。このような指示反応物の例には、放射性標識、蛍光性標識、化学発光標識、酵素標識、生物発光標識、およびコロイド金などの検出可能な標識が含まれる。キットは、IL-17RC抗体または抗体断片がIL-17RCタンパク質を検出するために使用されることを使用者に知らせるための手段も含んでよい。例えば、書面の取扱い説明書において、同梱された抗体または抗体断片を用いてIL-17RCを検出できることを述べてよい。書面資料は容器に直接添付してよく、または、書面資料は包装挿入物の形態で提供してもよい。

I)IL-17FまたはIL-17AおよびIL-17Fの両方に結合するIL-17RCに拮抗するための抗IL-17RC抗体の使用
本明細書において有用な抗体を作製および選択するための代替の技術には、可溶性IL-17RC受容体ポリペプチドまたはその断片、例えば抗原エピトープへのリンパ球のインビトロでの曝露、およびファージベクターまたは類似ベクターにおける抗体ディスプレイライブラリーの選択(例えば、固定化または標識した可溶性IL-17RC受容体ポリペプチドまたはその断片、例えば抗原エピトープの使用による)が含まれる。可溶性IL-17RC受容体ポリペプチドまたはその断片、例えば抗原エピトープなど潜在的な結合ドメインを有するポリペプチドをコードする遺伝子は、ファージ上(ファージディスプレイ)または大腸菌のような細菌上にディスプレイされたランダムペプチドライブラリーをスクリーニングすることによって得ることができる。これらのポリペプチドをコードするヌクレオチド配列は、ランダム変異誘発およびランダムポリヌクレオチド合成によるなど、いくつかの方法で得ることができる。これらのランダムペプチドディスプレイライブラリーを使用して、タンパク質またはポリペプチド、例えば、リガンドもしくは受容体、生物学的巨大分子もしくは合成巨大分子、または有機物質もしくは無機物質などであり得る公知の標的と相互作用するペプチドをスクリーニングすることができる。このようなランダムペプチドディスプレイライブラリーを作製およびスクリーニングするための技術は、当技術分野において公知であり(Ladner et al.、米国特許第5,223,409号、Ladner et al.、米国特許第4,946,778号、Ladner et al.、米国特許第5,403,484号、およびLadner et al.、米国特許第5,571,698号)、かつ、ランダムペプチドディスプレイライブラリーおよびこのようなライブラリーをスクリーニングするためのキットは、例えば、Clontech(Palo Alto, CA)、Invitrogen Inc.(San Diego, CA)、New England Biolabs, Inc.(Beverly, MA)、およびPharmacia LKB Biotechnology Inc.(Piscataway, NJ)から市販されている。本明細書において開示する可溶性IL-17RC受容体ポリペプチドまたはその断片、例えば抗原エピトープポリペプチド配列を用いてランダムペプチドディスプレイライブラリーをスクリーニングして、IL-17RCを含む受容体ポリペプチドに結合するタンパク質を同定することができる。可溶性IL-17RCを含む受容体ポリペプチドと相互作用するこれらの「結合ポリペプチド」は、細胞にタグ付けするため、アフィニティ精製によってホモログポリペプチドを単離するために使用することができる。これらは、薬物、毒素、および放射性核種などに直接的または間接的に結合させることができる。これらの結合ポリペプチドはまた、例えば、(個々もしくは一緒の)IL-17AおよびIL-17Fへの結合、IL-17RCとの相互作用または受容体に対するウイルス結合の妨害、阻害、低減、拮抗、または中和に関して、発現ライブラリーおよび中和活性をスクリーニングするための方法のような分析方法において使用することもできる。結合ポリペプチドはまた、IL-17RCを含む可溶性受容体ポリペプチドの循環レベルを決定するため;根底にある病理または疾患のマーカーとして可溶性または非可溶性のIL-17RCを含む受容体を検出または定量するための診断アッセイ法に使用することもできる。これらの結合ポリペプチドはまた、可溶性もしくは膜結合型のIL-17RC単量体受容体、またはIL-17RCホモ二量体、ヘテロ二量体、もしくは多量体ポリペプチドの(例えばリガンドに対する)結合、ならびにインビトロおよびインビボでのシグナル伝達を妨害または阻害するための「アンタゴニスト」として作用することもできる。この場合もやはり、結合ポリペプチドは、抗IL-17RC単量体受容体、または抗IL-17RCホモ二量体、ヘテロ二量体、もしくは多量体ポリペプチドとしての機能を果たし、かつ、IL-17FまたはIL-17AおよびIL-17Fの両方の活性、ならびに受容体活性またはタンパク質結合を阻害するのに有用である。本発明の天然の受容体複合体に対して産生させた抗体、ならびにIL-17RCエピトープ結合抗体、および抗IL-17RC中和性モノクローナル抗体は、IL-17RCに対してより特異的に作用することができ、かつ、IL-17FまたはIL-17AおよびIL-17Fの両方を阻害することができるため、好ましい態様であり得る。さらに、本発明の抗体のアンタゴニスト活性および結合活性は、それぞれIL-17AまたはIL-17F、およびIL-17RCを含む可溶性受容体の存在下でのIL-17AまたはIL-17Fの増殖アッセイ法、シグナルトラップアッセイ法、ルシフェラーゼアッセイ法、または結合アッセイ法、ならびに本明細書において説明する他の生物学的アッセイ法または生化学的アッセイ法において分析することができる。

可溶性IL-17RC受容体ポリペプチドまたはその断片、例えば抗原エピトープに対する抗体(例えば、SEQ ID NO：3に対する抗体)は、IL-17A、IL-17F、またはIL-17AおよびIL-17Fの両方の炎症作用をインビボで阻害するため、炎症、ならびに乾癬、乾癬性関節炎、関節リウマチ、内毒素血症、炎症性腸疾患(IBD)、結腸炎、喘息、同種移植拒絶、免疫介在性腎疾患、肝胆道疾患、多発性硬化症、アテローム性動脈硬化症、腫瘍増殖の促進、または変性関節疾患、および本明細書において開示する他の炎症性状態などの炎症性疾患に対する治療的使用のため;IL-17RC受容体を発現する細胞にタグ付けするため;IL-17RCを含む可溶性受容体ポリペプチドをアフィニティ精製によって単離するため;IL-17RCを含む可溶性受容体ポリペプチドの循環レベルを決定するための診断アッセイ法のため;根底にある病理または疾患のマーカーとしてIL-17RCを含む可溶性受容体を検出または定量するため;FACSを使用する分析方法において;発現ライブラリーをスクリーニングするため;IL-17FアゴニストまたはIL-17Aアゴニストとして作用し得る抗イディオタイプ抗体を作製するため;ならびに、IL-17RC受容体に結合し、その機能を妨害、阻害、低減、もしくは拮抗するか、またはインビトロおよびインビボで(個々にもしくは共に)IL-17Fおよび/もしくはIL-17Aに結合し、その活性を妨害、阻害、低減、拮抗、もしくは中和する中和抗体またはアンタゴニストとして使用され得る。適切な直接的タグまたは標識には、放射性核種、酵素、基質、補助因子、ビオチン、阻害物質、蛍光マーカー、化学発光マーカー、および磁性粒子などが含まれる。間接的なタグまたは標識は、ビオチン-アビジンまたは他の相補体/抗相補体ペアを中間体として使用することを特徴とし得る。また、本明細書における抗体は、薬物、毒素、および放射性核種などに直接的または間接的に結合させてもよく、これらの結合体は、インビボで診断的応用または治療的応用のために使用され得る。さらに、IL-17RCを含む可溶性受容体ポリペプチドまたはその断片に対する抗体は、アッセイ法、例えばウェスタンブロットまたは当技術分野で公知の他のアッセイ法において、変性または非変性のIL-17RCを含む受容体ポリペプチドまたはその断片を検出するためにインビトロで使用してもよい。

可溶性IL-17RC受容体またはホモ二量体、ヘテロ二量体、もしくは多量体の可溶性IL-17RC受容体ポリペプチドに対する抗体は、対応する受容体を発現する細胞にタグを付け、それらの発現レベルを分析するために、アフィニティ精製のために、受容体ポリペプチドの循環レベルを決定するための診断アッセイ法において、蛍光活性化細胞選別を用いる分析方法において、有用である。さらに、二価抗体および抗イディオタイプ抗体は、IL-17RCリガンド、IL-17FまたはIL-17Aの作用を模倣するアゴニストとしても使用され得る。

また、本明細書における抗体は、薬物、毒素、および放射性核種などに直接的または間接的に結合させてもよく、これらの結合体は、インビボで診断的応用または治療的応用のために使用され得る。例えば、可溶性IL-17RC受容体またはホモ二量体、ヘテロ二量体、もしくは多量体の可溶性IL-17RC受容体ポリペプチドを認識する抗体または結合ポリペプチドを用いて、対応する抗相補的分子(すなわち、IL-17RCを含む可溶性受容体または膜結合受容体)を発現する組織または器官を同定または治療することができる。より具体的には、IL-17RCを含む可溶性受容体ポリペプチドまたはその生物活性断片もしくは部分に対する抗体を、検出可能分子または細胞障害性分子に結合させ、かつ、IL-17RC発現癌のようなIL-17RCを含む受容体を発現する細胞、組織、または器官を有する哺乳動物に送達することができる。

適切な検出可能分子は、「結合ポリペプチド」(上記に開示した結合ペプチドを含む)、抗体、またはその生物活性断片もしくは部分など、IL-17RCを含む受容体ポリペプチドに結合するポリペプチドに直接的または間接的に結合させてよい。適切な検出可能分子には、放射性核種、酵素、基質、補助因子、阻害物質、蛍光マーカー、化学発光マーカー、および磁性粒子などが含まれる。適切な細胞障害性分子は、ポリペプチドまたは抗体に直接的または間接的に結合させてよく、これらには、細菌毒素または植物毒素(例えば、ジフテリア毒素、シュードモナス(Pseudomonas)外毒素、リシン、およびアブリンなど)ならびにヨウ素-131、レニウム-188、またはイットリウム-90などの治療的放射性核種(ポリペプチドもしくは抗体に直接結合させるか、または例えばキレート部分を介して間接的に結合させる)が含まれる。結合ポリペプチドまたは抗体はまた、アドリアマイシンのような細胞障害性薬物に結合させてもよい。検出可能分子または細胞障害性分子に間接的に結合させる場合、検出可能分子または細胞障害性分子を、相補体/抗相補体ペアの1つのメンバーに結合させることができ、その際、もう一方のメンバーが、結合ポリペプチドまたは抗体部分に結合している。これらの目的に対して、ビオチン/ストレプトアビジンは、例示的な相補体/抗相補体ペアである。

別の態様において、結合ポリペプチド-毒素融合タンパク質または抗体-毒素融合タンパク質は、標的化された細胞または組織の阻害または除去のために(例えば、癌細胞または癌組織を治療するために)使用され得る。あるいは、結合ポリペプチドが複数の機能的ドメイン(すなわち、活性化ドメインまたはリガンド結合ドメイン、さらにターゲティングドメイン)を有する場合、ターゲティングドメインのみを含む融合タンパク質が、検出可能分子、細胞障害性分子、または相補的分子を対象となる細胞または組織型に向けるために適している可能性がある。単一のドメインのみを含む融合タンパク質が相補的分子を含む場合、抗相補的分子を検出可能な分子または細胞障害性分子に結合させることができる。したがって、このようなドメイン-相補的分子融合タンパク質は、一般的な抗相補的分子-検出可能/細胞障害性分子結合体の細胞/組織特異的送達のための一般的なターゲティング媒体となる。

別の態様において、IL-17RC結合ポリペプチド-サイトカイン融合タンパク質または抗体-サイトカイン融合タンパク質は、結合ポリペプチド-サイトカインまたは抗IL-17RC受容体抗体が過剰増殖性細胞を標的とする場合、標的組織(例えば、脾臓、膵臓、血液、リンパ系、結腸、および骨髄の癌)のインビボでの死滅化を増強するために使用することができる(一般的に、Hornick et al., Blood 89：4437-47, 1997を参照されたい)。記述される融合タンパク質は、所望の作用部位へのサイトカインのターゲティングを可能にし、それによってサイトカインの局所濃度の上昇を提供する。適切な単量体、ホモ二量体、ヘテロ二量体、または多量体の抗IL-17RC抗体は、望ましくない細胞または組織(すなわち、腫瘍または白血病)を標的とし、融合されたサイトカインの媒介により、エフェクター細胞による標的細胞の溶解が改善した。この目的に適したサイトカインには、例えば、インターロイキン2および顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)が含まれる。

あるいは、本明細書において説明するIL-17RC受容体結合ポリペプチドまたは抗体融合タンパク質は、IL-17RC受容体によって調節されるアポトーシス経路を直接刺激することによって標的組織のインビボでの死滅化を増強し、その結果、IL-17RCを含む受容体を発現する過剰増殖性細胞の細胞死をもたらすために使用することができる。

J)IL-17RC活性を有するポリペプチドまたはIL-17RCに対する抗体の治療的使用
可溶性IL-17RC活性を有するアミノ酸配列は、IL-17RCリガンドであるIL-17AおよびIL-17Fに結合し(個々にまたは共に)、それによって、IL-17RCリガンドと内因性IL-17RC受容体の結合を妨害することによって免疫系を調節するのに使用され得る。可溶性IL-17RCまたは抗IL-17RC抗体などのIL-17RCアンタゴニストもまた、IL-17RCリガンドと内因性IL-17RC受容体の結合を阻害することによって免疫系を調節するのに使用され得る。したがって、本発明は、IL-17RC活性を有するタンパク質、ポリペプチド、およびペプチド(可溶性IL-17RCポリペプチド、IL-17RCポリペプチド断片、IL-17RC類似体(例えば、抗IL-17RC抗イディオタイプ抗体)、およびIL-17RC融合タンパク質など)の、適切な量のこのポリペプチドを欠くか、または過剰なIL-17RCリガンドを産生する対象に対する使用を含む。IL-17RCアンタゴニスト(例えば抗IL-17RC抗体)はまた、IL-17RCリガンドまたはIL-17RCのいずれかを過剰に産生する対象を治療するのにも使用され得る。適切な対象には、ヒトのような哺乳動物が含まれる。例えば、このようなIL-17RCポリペプチドおよび抗IL-17RC抗体は、炎症および炎症性疾患、例えば、乾癬、乾癬性関節炎、関節リウマチ、内毒素血症、炎症性腸疾患(IBD)、結腸炎、喘息、同種移植拒絶、免疫介在性の腎疾患、肝胆道疾患、多発性硬化症、アテローム性動脈硬化症、腫瘍増殖の促進、または変性関節疾患、および本明細書において開示する他の炎症性状態などの治療において、IL-17AおよびIL-17Fを(個々にまたは共に)結合、妨害、阻害、低減、拮抗、または中和する際に有用である。

好ましい態様において、IL-17RCの可溶性受容体型、SEQ ID NO：3は、インビボでIL-17FおよびIL-17Aを(個々にまたは共に)結合、妨害、阻害、低減、拮抗、または中和する単量体、ホモ二量体、ヘテロ二量体、または多量体である。このようなIL-17RC単量体、ホモ二量体、ヘテロ二量体、または多量体に対する抗体および結合ポリペプチドはまた、本明細書において説明するように、IL-17RC活性のアンタゴニストとして、ならびにIL-17AおよびIL-17Fのアンタゴニスト(個々にまたは共に)としての機能も果たす。

さらに、本発明者らは、ポリクローナル中和性抗IL-17F抗体およびモノクローナル中和性抗IL-17F抗体の両方が、細胞ベースの中和アッセイ法においてIL-17FおよびIL-17Aに結合し、その活性を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和することを本明細書において説明する。IL-17RC cDNAに対応するmRNAの組織分布の解析により、IL-17RC遺伝子が甲状腺、副腎、前立腺、および肝臓組織において強く発現され、心臓、小腸、胃、および気管組織においてはより低い程度で発現されることが示された。特に、IL-17RCは、単球、B細胞、および骨髄系の細胞を含む非T細胞末梢血細胞株において一貫して発現されている。また、IL-17RC mRNAは、皮膚に由来する細胞株において確実に発現される。IL-17RCを発現する他の細胞株は、アレイ上に存在した大腸細胞株の5種すべてである。一方、脳、胎盤、肺、骨格筋、腎臓、膵臓、脾臓、胸腺、精巣、卵巣、結腸、末梢血白血球、脊髄、リンパ節、および骨髄では、ほとんどまたは全く発現されない。IL-17RCが結合するリガンド(IL-17Fおよび/またはIL-17A)は、炎症応答を誘導すること、ならびにIL-1b、IL-6、およびTNF-aを含む炎症メディエーター、ならびに好中球の増殖、成熟、および走化性に関与しているメディエーターの産生を増大させる能力を主に介して、炎症性疾患を引き起こすことに関係があるとされている(Witowski et al.Cell.Mol.Life Sci. 61：567-579 [2004]に総説がある)。

したがって、本発明の特定の態様は、炎症性および免疫性の疾患または状態、例えば、乾癬、乾癬性関節炎、アトピー性皮膚炎、炎症性皮膚病態、関節リウマチ、炎症性腸疾患(IBD)、クローン病、憩室症、喘息、膵炎、I型糖尿病(IDDM)、膵臓癌、膵炎、グレーブス病、結腸癌および腸癌、自己免疫疾患、敗血症、臓器移植もしくは骨髄移植;内毒素血症、外傷、外科手術、もしくは感染に起因する炎症;アミロイド症;脾腫;移植片対宿主疾患など、ならびに、炎症の抑制、免疫抑制、造血細胞、免疫細胞、炎症細胞、もしくはリンパ系細胞、マクロファージ、T細胞(Th1細胞およびTh2細胞を含む)の増殖の低減、病原体もしくは抗原に対する免疫応答の抑制が望ましい場合、またはIL-17FサイトカインもしくはIL-17Aサイトカインの阻害が望ましい他の場合における、アンタゴニストとしての可溶性IL-17RCおよび抗IL-17RC抗体の使用を対象としている。

さらに、本明細書において説明するIL-17RCポリペプチドに結合する抗体または結合ポリペプチド、およびIL-17RCポリペプチドそれら自体は、以下のことに有用である：
1)急性炎症、外傷、組織損傷、外科手術、敗血症、または感染の結果としての炎症、および喘息、炎症性腸疾患(IBD)、慢性結腸炎、脾腫、関節リウマチ、再発性の急性炎症エピソード(例えば、結核)などの慢性炎症性疾患の治療、ならびに、アミロイド症、およびアテローム性動脈硬化症、キャッスルマン病、喘息、および急性期応答の誘導に関連した他の疾患の治療において、IL-17A受容体またはIL-17F受容体を介したシグナル伝達を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和すること、
2)IDDM、多発性硬化症(MS)、全身性エリテマトーデス(SLE)、重症筋無力症、関節リウマチ、およびIBDなどの自己免疫疾患の治療においてIL-17A受容体またはIL-17F受容体を介したシグナル伝達を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和して、IL-17RCを介した免疫細胞(例えば、リンパ球、単球、白血球)におけるシグナル伝達を妨害または阻害すること。あるいは、IL-17RCを含む受容体に対するモノクローナル抗体(MAb)のような抗体もまた、望まれない免疫細胞を減少させて自己免疫疾患を治療するためのアゴニストとして使用され得る。喘息、アレルギー、および他のアトピー性疾患は、免疫応答を阻害するか、または不都合な細胞を減少させるために、例えば、可溶性IL-17RC可溶性受容体に対するMAbを用いて治療することができる。本発明のポリペプチドおよび抗体を用いて、IL-17RCを介したシグナル伝達を妨害、阻害、低減、または拮抗することはまた、膵臓、腎臓、脳下垂体、および神経細胞の疾患にも利益を与え得る。IDDM、NIDDM、膵炎、および膵臓癌は、利益を得ることができる。IL-17RCは、癌のMAb療法に対する標的としての機能を果たし得、その際、拮抗性のMAbは癌増殖を阻害し、かつ免疫を介した死滅を標的とする(Holliger PおよびHoogenboom、H：Nature Biotech. 16：1015-1016, 1998)。可溶性IL-17RCに対するMabはまた、糸球体硬化症、膜性神経障害(membranous neuropathy)、アミロイド症(他の組織のうちで腎臓も冒す)、腎動脈硬化症、様々な起源の糸球体腎炎、腎臓の線維増殖性疾患などの腎症、ならびに、SLE、IDDM、II型糖尿病(NIDDM)、腎腫瘍および他の疾患に関連した腎機能障害を治療するのにも有用な場合がある。
3)IDDM、MS、SLE、重症筋無力症、関節リウマチ、およびIBDなどの自己免疫疾患の治療において、IL-17A受容体またはIL-17F受容体を介したシグナル伝達を作用(agonize)、増強、増加、または開始させること。抗IL-17RC中和抗体およびモノクローナル抗体は、リンパ球または他の免疫細胞にシグナル伝達して、分化させるか、増殖を変更するか、または、自己免疫を改善するサイトカインもしくは細胞表面タンパク質の産生を変化させ得る。具体的には、代替パターンのサイトカイン分泌に対するTヘルパー細胞応答の調節により、自己免疫応答が逸脱して、疾患が改善され得る(Smith JA et al., J.Immunol. 160：4841-4849, 1998)。同様に、アゴニストの抗可溶性IL-17RC単量体、ホモ二量体、ヘテロ二量体 、および多量体モノクローナル抗体は、喘息、アレルギー、およびアトピー性疾患に関与している免疫細胞にシグナル伝達し、それらを枯渇させ、かつ逸脱させるのに使用され得る。IL-17RCを介したシグナル伝達はまた、膵臓、腎臓、脳下垂体、および神経細胞の疾患にも利益を与え得る。IDDM、NIDDM、膵炎、および膵臓癌は、利益を得ることができる。IL-17RCは、膵臓癌のMAb療法に対する標的としての機能を果たし得、その際、シグナルを伝達するMAbは癌増殖を阻害し、かつ免疫を介した死滅を標的とする(Tutt, AL et al., J Immunol. 161 ：3175-3185, 1998)。同様に、腎細胞癌は、本発明のIL-17RCを含む可溶性受容体に対するモノクローナル抗体で治療され得る。

本明細書において説明する可溶性IL-17RCポリペプチドは、自己免疫疾患、アトピー性疾患、NIDDM、膵炎、および前述の腎機能障害の治療において、IL-17F活性またはIL-17A活性を個々にまたは共に、結合、妨害、阻害、低減、拮抗、または中和するのに使用され得る。可溶型のIL-17RCは、Th細胞によって媒介される抗体応答を促進するか、かつ/またはリンパ球もしくは他の免疫細胞によるIL-4もしくは他のサイトカインの産生を促進するのに使用され得る。

本発明の可溶性のIL-17RCを含む受容体は、IL-17AサイトカインまたはIL-17Fサイトカインのアンタゴニストとして有用である。このような拮抗性の作用は、IL-17AまたはIL-17Fの直接的な中和または結合によって実現され得る。アンタゴニスト用途の他に、本発明の可溶性受容体は、IL-17Fに結合し、かつ、体内の様々な組織、器官、および細胞にリガンドを輸送するために、IL-17AサイトカインまたはIL-17Fサイトカインの担体タンパク質として作用することができる。したがって、本発明の可溶性受容体は、可溶性受容体-リガンド複合体を特定の部位、例えば、組織、特定の免疫細胞、または組織に誘導する分子、ポリペプチド、または化学的部分に融合または結合されてよい。例えば、急性の感染症またはいくつかの癌において、利益は、IL-17Fの作用による炎症および局所的急性期応答タンパク質の誘導の結果として生じ得る。したがって、本発明の可溶性受容体は、IL-17AまたはIL-17Fの作用を特異的に指示するために使用され得る。Cosman, D. Cytokine 5：95-106, 1993およびFernandez-Botran, R. Exp. Opin. Invest. Drugs 9：497-513, 2000を参照されたい。

さらに、本発明の可溶性受容体は、分解もしくはクリアランスされないようにリガンドを安定化することによって、または、体内の作用部位にリガンドを導くことによって、リガンドの生物学的利用能、治療的寿命、および/または有効性を増大させるために、IL-17FまたはIL-17Aを安定化させるのに使用され得る。例えば、天然のIL-6/可溶性IL-6R複合体は、IL-6を安定化させ、かつ、gp130受容体を介してシグナル伝達することができる。前記のCosman, D.および前記のFernandez-Botran, R.を参照されたい。さらに、IL-17RCは、リガンド/可溶性受容体複合体を含むように、IL-17Fのような同系リガンドと組み合わされてよい。このような複合体は、例えば、pDIRS1(IL-17ARB)またはCRF2-4(IL-10RB)などのコンパニオン受容体サブユニットを提示する細胞からの応答を刺激するために使用され得る。IL-17RC/リガンド複合体の細胞特異性は、単独で投与されたリガンドに対して認められる特異性とは異なる場合がある。さらに、複合体は、半減期、用量/応答、および器官特異性または組織特異性に影響を及ぼすような、独特の薬物動態学的特性を有する場合がある。したがって、IL-17RC/IL-17F複合体またはIL-17RC/IL-17A複合体は、免疫応答を増強するか、メサンギウム細胞を刺激するか、または肝細胞を刺激するアゴニスト活性を有する場合がある。あるいは、複合体とヘテロ二量体を形成するシグナル伝達サブユニットを発現する組織のみが、IL6/IL6R複合体に対する応答と同様に影響を受ける可能性がある(Hirota H. et al., Proc. Nat'l. Acad. Sci. 92：4862-4866, 1995;Hirano, T. 、Thomason, A.(編)、「The Cytokine Handbook」、第3版、208〜209頁)。IL-12およびCNTFに対する可溶性受容体/サイトカイン複合体は、同様の活性を示す。

さらに、炎症は、侵入物質を避けるための、生物による防御応答である。炎症は、多くの細胞性メディエーターおよび液性メディエーターを含むカスケード式の事象である。一方では、炎症応答を抑制すると、宿主が免疫無防備状態にされる場合がある;しかしながら、抑制されないままの場合には、炎症は、慢性炎症性疾患(例えば、乾癬、関節炎、関節リウマチ、多発性硬化症、および炎症性腸疾患など)、敗血症ショック、ならびに多臓器不全を含む重篤な合併症をもたらし得る。重要なことには、これらの多様な疾患状態は、共通の炎症メディエーターを共有する。炎症を特徴とする集合的疾患は、ヒトの罹患率および死亡率に大きな影響を与える。したがって、IL-17RCおよび抗IL-17RC抗体などの抗炎症性タンパク質が、喘息およびアレルギーから自己免疫および敗血症ショックに至る膨大な数のヒト疾患および動物疾患に対して非常に重要な治療可能性を有する可能性があることは明らかである。

1 関節炎
変形性関節炎、関節リウマチ、および損傷の結果としての関節炎関節などを含む関節炎は、本発明のIL-17RCポリペプチドのような抗炎症性タンパク質の治療的使用から利益を受けると考えられる一般的な炎症性状態である。例えば、関節リウマチ(RA)は、全身を冒す全身性疾患であり、関節炎の最も一般的な形態の一つである。これは、疼痛、こわばり、熱感、発赤、および腫脹を引き起こす関節の内側を覆う膜の炎症を特徴とする。炎症細胞は、骨および軟骨を消化し得る酵素を放出する。関節リウマチの結果として、炎症を起こした関節内層、すなわち滑膜が、骨および軟骨に浸潤し、かつ損傷を与えて、関節の変質および他の生理的作用の中でも重度の疼痛をもたらし得る。関与した関節は、その形状および配列を失って、疼痛および動作低下を起こし得る。

関節リウマチ(RA)は、重度の障害および死亡率の増加をもたらす炎症およびその後の組織損傷を特に特徴とする免疫介在性疾患である。様々なサイトカインが、リウマチ関節において局所的に産生される。多数の研究により、2種のプロトタイプの炎症誘発性サイトカインであるIL-1およびTNF-αが、滑膜の炎症および進行性の関節破壊に関与するメカニズムにおいて重要な役割を果たすことが実証された。実際、RA患者にTNF-αおよびIL-1阻害剤を投与すると、炎症の臨床徴候および生物学的徴候が劇的に改善され、かつ、骨侵食および軟骨破壊の放射線学的徴候が減少する。しかしながら、これらの励みになる結果にもかかわらず、かなりの比率の患者はこれらの作用物質に応答せず、他のメディエーターも同様に関節炎の病態生理学に関与していることが示唆されている(Gabay, Expert. Opin. Biol. Ther. 2(2)：135-149.,2002)。これらのメディエーターの一つは、IL-17AまたはIL-17Fである可能性があり、したがって、可溶性IL-17RC、IL-17RCポリペプチド、または抗IL-17RC抗体もしくは結合相手など、IL-17FもしくはIL-17Aに結合するか、またはそれらの活性を阻害する分子は、関節リウマチおよび他の関節炎疾患において炎症を減少させるための価値ある治療物質としての機能を果たし得る。

当技術分野において公知のいくつかの関節リウマチ動物モデルがある。例えば、コラーゲン誘発関節炎(CIA)モデルにおいて、マウスはヒトの関節リウマチに非常に似た慢性炎症性関節炎を発症する。CIAはRAと同様な免疫学的特徴および病理学的特徴を共有するため、これは、潜在的なヒト用抗炎症性化合物をスクリーニングするための理想的なモデルとなる。CIAモデルは、その発生が免疫応答および炎症応答の両方に依存する、周知のマウスモデルである。免疫応答は、抗原として与えられるコラーゲンに応答したB細胞およびCD4+T細胞の相互作用を含み、かつ、抗コラーゲン抗体の産生を招く。炎症相は、これらの抗体のいくつかがマウスの生来のコラーゲンと交差反応し、かつ補体カスケードを活性化させた結果としての炎症のメディエーターからの組織応答の結果である。CIAモデルを使用する際の利点は、病因の基本的なメカニズムが公知であることである。II型コラーゲン上の関連するT細胞エピトープおよびB細胞エピトープが同定されており、かつ、免疫介在性関節炎に関する様々な免疫学的パラメーター(例えば、遅延型過敏症および抗コラーゲン抗体)ならびに炎症性パラメーター(例えば、サイトカイン、ケモカイン、およびマトリックス分解酵素)が決定されており、したがって、これらを用いて、CIAモデルにおける試験化合物の有効性を評価することができる(Wooley, Curr. Opin. Rheum. 3：407-20, 1999; Williams et al., Immunol. 89：9784-788, 1992; Myers et al., Life Sci. 61：1861-78, 1997;およびWang et al., Immunol. 92：8955-959, 1995)。

抗マウスIL-17抗体は対照マウスと比べてマウスCIAモデルにおいて症状を減少させることが一つの研究グループによって示され、したがって、可溶性IL-17RC-Fcが、ヒト疾患の治療において有用となる可能性があることが概念的に示された。マウスIL-17に特異的なラット抗血清を1回投与すると、予防的に導入された場合、または関節炎の症状が既にモデルに存在していた後の場合、動物における関節炎の症状は軽減した(Lubberts et al., Arthritis Rheum. 50：650-9, 2004)。したがって、IL-17RC-Fcは、関節炎、乾癬、乾癬性関節炎、内毒素血症、炎症性腸疾患(IBD)、結腸炎、および本明細書において開示する他の炎症性状態など特定のヒト疾患の治療において、IL-17Aおよび/またはIL-17Fを中和するために使用され得る。

これらのCIAモデルマウスへのIL-17RC-Fc4または他のIL-17RC可溶性タンパク質および融合タンパク質など可溶性のIL-17RCを含むポリペプチド(IL-17RC)の投与を用いて、疾患の症状を改善するため、および疾患の経過を変更するために使用されるIL-17Fに対するアンタゴニストとしての可溶性IL-17RCの使用を評価する。さらに、IL-17RCによるIL-17Fの阻害を示す結果は、可溶性IL-17RCまたはそれに対する中和抗体など他のIL-17Fアンタゴニストもまた、疾患の症状を改善するため、および疾患の経過を変更するために使用され得るという概念の証拠を提供すると思われる。さらに、IL-17Aおよび/またはIL-17Fは、IL-1bおよびTNF-a(いずれも、関節リウマチの病因および進行に関係があるとされている)の産生を誘導するため、IL-17RC-Fc4のような可溶性IL-17RCを含むポリペプチドまたは他のIL-17F可溶性受容体(例えばIL-17RC；SEQ ID NO：3)および抗IL-17RC抗体、ならびに融合タンパク質の全身投与または局所投与は、RAにおける炎症応答を潜在的に抑制し得る。例として、非限定的に、マウス1匹当たりIL-17RC-Fc 10ug〜200ugを注射すると(1週1〜7回、非限定的に最長4週間、皮下、腹腔内、または筋肉内の投与経路による)、疾患スコア(足スコア、炎症または疾患の発生率)は有意に低下し得る。IL-17RC-Fc 投与の開始時期に応じて(例えば、コラーゲン免疫化前、もしくは免疫化時、または、疾患が既に進行している時点を含む、2回目のコラーゲン免疫化後の任意の時点)、IL-17RCは、関節リウマチの予防、ならびにその進行の防止に有効となり得る。他の潜在的な治療物質には、IL-17RCポリペプチド、抗IL-17RC抗体、または抗IL-17F抗体もしくは結合相手などが含まれる。

2 内毒素血症
内毒素血症は、細菌および他の感染症病原体などの感染病原体、敗血症、トキシックショック症候群に一般に起因するか、または日和見性感染症などにかかりやすい免疫無防備状態の患者において起こる重度の病態である。本発明のIL-17RCポリペプチドおよび抗体など治療的に有用な抗炎症性タンパク質は、ヒトおよび動物において内毒素血症を予防および治療する際に役立ち得る。IL-17RCポリペプチド、または抗IL-17RC抗体もしくは結合相手は、内毒素血症において炎症および病理学的作用を減少させるための貴重な治療物質として役立ち得る。

リポ多糖類(LPS)によって誘発される内毒素血症には、感染症において病理学的作用をもたらす炎症誘発性メディエーターの多くが関与しており、げっ歯動物におけるLPS誘発性内毒素血症は、潜在的な炎症誘発物質または免疫調節物質の薬理学的効果を研究するために広く使用され、かつ許容されているモデルである。グラム陰性菌において産生されるLPSは、敗血症ショックの病因論における主要な原因物質である(Glausner et al., Lancet 338：732, 1991)。ショック様の状態は、実際、LPSを動物に1回注射することによって実験的に誘導することができる。LPSに応答する細胞によって産生される分子は、直接または間接的に病原体を標的とすることができる。これらの生物学的応答は、侵入病原体から宿主を保護するが、それらはまた、害を引き起こす場合もある。すなわち、重度のグラム陰性菌感染の結果として起こる先天性免疫の強い刺激により、サイトカインおよび他の分子が過剰に産生され、かつ、発熱、低血圧、播種性血管内凝固、および多臓器不全を特徴とする、致死的症候群である敗血症ショック症候群が発症する(Dumitru et al. Cell 103：1071-1083, 2000)。

LPSのこれらの毒性作用は、多数の炎症性メディエーターの放出をもたらすマクロファージ活性化に主に関係しているこれらのメディエーターのうちで、TNFは、中和性抗TNF抗体の投与によるLPS毒性の予防によって示されるように、非常に重要な役割を果たしていると思われる(Beutler et al., Science 229：869, 1985)。大腸菌LPS 1ugをC57Bl/6マウスに注射すると、注射後約2時間で、循環中のIL-6、TNF-α、IL-1、および急性期タンパク質(例えばSAA)が有意に増加することは十分に確立されている。これらのメディエーターに対抗する受動免疫によって死亡率が減少し得るため、LPSの毒性は、これらのサイトカインによって媒介されていると思われる(Beutler et al., Science 229：869, 1985)。敗血症ショックの予防および/または治療のための潜在的な免疫介入戦略には、抗TNF mAb、IL-1受容体アンタゴニスト、LIF、IL-10、およびG-CSFが含まれる。

これらのLPS誘発性モデルへのIL-17RC-Fc4または他のIL-17RC可溶性タンパク質および融合タンパク質など可溶性IL-17RCを含むポリペプチドの投与を用いて、LPS誘発性疾患の症状を改善するため、および疾患の経過を変更するためのIL-17RCの使用を評価することができる。さらに、IL-17RCによるIL-17Fの阻害を示す結果は、可溶性IL-17RCまたはそれに対する抗体など他のIL-17Fアンタゴニストもまた、LPS誘発性モデルの症状を改善するため、および疾患の経過を変更するために使用され得るという概念の証拠を提供する。このモデルから、LPS注射によるIL-17Fの誘導、およびIL-17RCポリペプチドによる疾患の治療の可能性が示される。LPSは、おそらく内毒素血症の病理の一因となる炎症誘発性因子の産生を誘導するため、アンタゴニストであるIL-17RCポリペプチドによるIL-17F活性または他の炎症誘発性因子の中和を用いて、エンドトキシンショックにおいて認められる症状のような内毒素血症の症状を減少させることができる。他の潜在的な治療物質には、IL-17RCポリペプチド、抗IL-17RC抗体、または結合相手などが含まれる。

3 炎症性腸疾患IBD
米国では、約500,000名の人々が、結腸および直腸(潰瘍性大腸炎)またはその両方、小腸および大腸(クローン病)を冒し得る炎症性腸疾患(IBD)に罹患している。これらの疾患の病因は不明瞭であるが、これらは罹患組織の慢性の炎症を伴う。IL-17RCポリペプチド、抗IL-17RC抗体または結合相手は、IBDおよび関連疾患において炎症および病理学的作用を減少させるための貴重な治療物質として役立ち得る。

潰瘍性大腸炎(UC)は、結腸の粘膜または最内側の内壁の炎症および潰瘍を特徴とする、一般に結腸と呼ばれる大腸の炎症性疾患である。この炎症が原因で、結腸はしばしば空になり、結果として下痢が起こる。症状には、便のゆるみ、ならびに付随する腹部有痛性痙攣、発熱、および体重減少が含まれる。UCの正確な原因は不明であるが、最近の調査により、身体の天然防御が、身体が異物と考える身体中のタンパク質に対抗して作動していることが示唆されている(「自己免疫反応」)。おそらくは、それらが腸中の細菌タンパク質に似ているため、これらのタンパク質は、結腸の内層を破壊し始める炎症プロセスを扇動または刺激し得る。結腸内層が破壊されるにつれ、潰瘍が形成して、粘液、膿汁、および血液を放出する。この疾患は、通常、直腸領域で始まり、かつ、最終的に、大腸全体に拡大し得る。炎症エピソードの反復は、瘢痕組織を伴う腸および直腸の壁の肥厚を招く。結腸組織の死滅または敗血症が、重度の疾患と共に発生することがある。潰瘍性大腸炎の症状の重症度は様々であり、それらの発症は、漸進的または急激な場合がある。発病は、呼吸器感染症またはストレスを含む多くの要因によって誘発され得る。

現在、UCの治癒法は利用可能ではないが、治療は、結腸内壁における異常な炎症プロセスを抑制することに焦点を合わせている。コルチコステロイド、免疫抑制薬(例えば、アザチオプリン、メルカプトプリン、およびメトトレキサート)ならびにアミノサリチル酸を含む治療薬が、この疾患を治療するために利用可能である。しかしながら、コルチコステロイドおよびアザチオプリンなどの免疫抑制薬の長期の使用は、骨の希薄化、白内障、感染症、ならびに肝臓および骨髄への影響を含む重大な副作用をもたらし得る。現在の治療法が成功していない患者においては、外科手術が選択肢である。外科手術は、結腸全体および直腸の切除を含む。

慢性の潰瘍性大腸炎をある程度再現し得るいくつかの動物モデルがある。最も広く使用されているモデルは、結腸における慢性的な炎症および潰瘍形成を誘発する、2,4,6-トリニトロベンスルホン酸(trinitrobenesulfonic acid)/エタノール(TNBS)誘発性結腸炎モデルである。TNBSが、感受性の高いマウスの結腸に直腸内点滴注入によって導入された場合、これは、結腸粘膜においてT細胞性免疫応答を誘導して、この場合、大腸壁全体に広がるT細胞およびマクロファージの密な浸潤を特徴とする広範囲の粘膜炎症をもたらす。さらに、この組織病理学的病像は、進行性の体重減少(痩せ)、血性下痢、直腸脱、および大腸壁肥厚の臨床像を伴う(Neurath et al. Intern. Rev. Immunol. 19：51-62, 2000)。

別の結腸炎モデルは、硫酸デキストランナトリウム(DSS)を使用し、これは、血性下痢、体重減少、結腸の短縮化、および好中球浸潤を伴う粘膜潰瘍形成が認められる急性結腸炎を誘発する。DSS誘発性結腸炎は、組織学的に、リンパ様過形成、限局性の陰窩損傷、および上皮潰瘍形成を伴う、固有層中への炎症細胞の浸潤を特徴とする。これらの変化は、上皮に対するDSSの毒性作用に起因し、かつ、固有層細胞の食作用ならびにTNF-αおよびIFN-γの産生によって発生すると考えられている。一般的に使用されているものの、ヒト疾患との関連性に関するDSSのメカニズムについてのいくつかの問題は、依然として解明されていない。DSSは、SCIDマウスのようなT細胞欠損動物において観察されるため、T細胞非依存性モデルとみなされている。

これらのTNBSモデルまたはDSSモデルへのIL-17RC-Fc4または他のIL-17RC可溶性タンパク質および融合タンパク質など可溶性IL-17RCを含むポリペプチドの投与を用いて、胃腸疾患の症状を改善するため、および胃腸疾患の経過を変更するための可溶性IL-17RCの使用を評価することができる。さらに、IL-17RCによるIL-17Fの阻害を示す結果は、可溶性IL-17RCまたはそれに対する抗体など他のIL-17Fアンタゴニストもまた、結腸炎/IBDモデルの症状を改善するため、および疾患の経過を変更するために使用され得るという概念の証拠を提供する。

4 乾癬
乾癬は、700万人を超えるアメリカ人に発症する慢性皮膚病態である。乾癬は、新しい皮膚細胞が異常に増殖した結果、古い皮膚が十分な速さで剥がれ落ちていない、炎症を起こし、隆起し、かつ鱗屑を有する皮膚部分を生じる場合に発生する。最も一般的な型である尋常性乾癬は、銀白の鱗屑で覆われた、皮膚の炎症部分(「病変」)を特徴とする。乾癬は、少数のプラークに限定されるか、または中程度から広範囲の皮膚領域を含む場合があり、頭皮、膝、肘、および胴に最も一般的に現れる。極めて目立つが、乾癬は、接触感染性疾患ではない。これらの疾患の病因は、罹患組織の慢性的な炎症に関係する。IL-17RCポリペプチド、抗IL-17RC抗体または結合相手は、乾癬、他の炎症性皮膚疾患、皮膚アレルギーおよび粘膜アレルギー、ならびに関連した疾患における炎症および病理学的作用を減少させるための貴重な治療物質として役立ち得る。

乾癬は、かなりの不快感を引き起こし得る、皮膚のT細胞性炎症性障害である。これは、治癒法が無く、かつあらゆる年齢の人々に発症する疾患である。乾癬は、ヨーロッパ人および北米人の人口の約2％に発症する。軽度の乾癬に罹患している個体は、しばしば、局所剤を用いて疾患を制御することができるが、世界中の100万人を超える患者は、紫外線療法または全身的免疫抑制療法を必要とする。残念ながら、紫外線放射は不便でリスクがあり、かつ、多くの治療法は毒性があるため、長期の使用には制限がある。さらに、患者は、通常、乾癬を再発し、症例によっては、免疫抑制療法の中止後すぐに、元に戻る。

IL-17RC可溶性受容体ポリペプチドおよびそれに対する抗体もまた、IL-17FまたはIL-17Aリガンドの循環レベルを検出するための診断システム内、および急性期炎症応答に関連したIL-17Fの検出において使用され得る。関連した態様において、本発明のIL-17RC可溶性受容体に特異的に結合する抗体または他の作用物質は、循環中の受容体ポリペプチドを検出するのに使用することができる。逆に、IL-17RC可溶性受容体それら自体を用いて、循環中または局所的に作用しているIL-17FポリペプチドまたはIL-17Aポリペプチドを検出することもできる。リガンドまたは受容体ポリペプチドのレベルの上昇または低下は、炎症または癌を含む病理学的状態を示している場合がある。IL-17Fは、関連する急性期炎症応答を誘導することが公知である。さらに、IL-17AまたはIL-17Fなどの急性期タンパク質または分子の検出は、ある種の疾患状態(例えば、喘息、乾癬、関節リウマチ、結腸炎、IBD)における慢性炎症性状態を示し得る。このような状態の検出は、疾患の診断を助けるのに役立ち、かつ、医師が適切な治療法を選択するのに役立つ。

可溶性IL-17RCの子宮内投与を用いて、IL-17Fを過剰発現するIL-17Fトランスジェニック仔、またはIL-17Aを過剰発現するIL-17Aトランスジェニック仔に関連した表現型を減少または消失させることによって、疾患モデルにおけるインビボでの有効性を示すことができる。当技術分野において、中和性モノクローナル抗体(mAb)のようなアンタゴニストを用いた子宮内治療に関する先例がある。1つの例において、B細胞のB-1サブセットの発達は、B細胞特異的分子であるCD19に対して特異的なmAbで妊娠中の雌マウスを処置することによって、劇的に影響を受けた(例えば、Krop I.Et al., Eur.J.Immunol. 26(1)：238-42, 1996)。Kropらは、ラット抗マウスCD19 mAb(またはアイソタイプを一致させたラット対照Ab)500ugのPBS溶液を計画妊娠マウスに妊娠9日目から腹腔内注射し、その後、出産まで1日おきに注射した。仔にも、これらの抗体500ugを10日齢の時点で1回注射した。別の例において、Tanakaらは、IL-2受容体β鎖に対するモノクローナル抗体による子宮内処置が Thy-1+樹状表皮細胞の発達を完全に抑制することを発見した。IL-2受容体の2つの異なるサブユニット、すなわちα鎖(IL-2Rα)およびβ鎖(IL-2Rβ)は、胎仔胸腺個体発生の間一貫して、ほとんど相互に排他的に発現される。IL-2Rβに対する中和性mAbを投与することによって、IL-2Rのシグナル伝達構成要素であるIL-2Rβを妨害すると、Thy-1+皮膚樹状表皮細胞の完全かつ選択的な消失が起こった。他の任意のT細胞サブセットの発達は損なわれなかった。このことから、IL-2、が胎仔Vγ5+細胞およびその子孫の発達において非常に重要な役割を果たしていることが示された(Tanaka, T. et al., Int Immunol. 4(4)：487-9, 1992を参照されたい)。さらに、Schattemann GCらは、PDGF-Aが正常なマウス心血管発達に必要とされることを子宮内の系を用いて示した。いくつかの証拠から、血小板由来増殖因子A鎖(PDGF-A)が、正常な胎仔心血管発達に必要とされることが示唆されている。子宮内でマウス脱落膜に抗PDGF-A中和抗体を導入すると、インビボでのPDGF-Aリガンド-受容体相互作用が18時間〜24時間選択的に破壊され、PDGF-Aが心血管発達にとって必要であるかどうか、および必要とされる時期はいつかを評価することが可能になった(Schattemann GC et al., Dev. Biol. 176(1)：133-42. 1996を参照されたい)。これらの結果、ならびに当技術分野において説明される他の結果から、中和性mAbまたは可溶性受容体などのアンタゴニストが子宮内で強力な作用を引き出し得るという証拠が提供される。同様に、IL-17AおよびIL-17Fをそれぞれ過剰発現するIL-17AおよびIL-17Fトランスジェニック仔において認められる皮膚表現型を減少または消失させるための、疾患モデルにおけるインビボでの可溶性受容体および/またはモノクローナル抗体によるIL-17AもしくはIL-17Fの中和の有効性を示すデータも示すことができる。

本明細書において説明する他の疾患モデルに加えて、ヒト乾癬病変に由来する炎症組織に対する可溶性IL-17RCおよび/または抗IL-17RC抗体の活性は、重症複合免疫不全(SCID)マウスモデルを用いてインビボで測定することができる。ヒト細胞が免疫不全マウスに移植された、いくつかのマウスモデルが開発されている(まとめて、異種移植モデルと呼ばれる)。例えば、Cattan AR, Douglas E, Leuk. Res. 18：513-22, 1994、およびFlavell, DJ, Hematological Oncology 14：67-82, 1996を参照されたい。乾癬のインビボ異種移植モデルとして、ヒト乾癬皮膚組織をSCID マウスモデルに移植し、かつ、適切なアンタゴニストでチャレンジする。さらに、当技術分野における他の乾癬動物モデルも、IL-17AアンタゴニストおよびIL-17Fアンタゴニストを評価するのに使用することができ、例えば、AGR129マウスモデルにヒト乾癬皮膚移植片を移植し、かつ、適切なアンタゴニストでチャレンジする(例えば、参照により本明細書に組み入れられる、Boyman, O. et al., J. Exp. Med.オンライン出版番号20031482、2004を参照されたい)。IL-17FまたはIL-17AおよびIL-17Fの両方に結合し、活性を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和する可溶性IL-17RCまたは抗IL-17RC抗体が好ましいアンタゴニストである。しかしながら、抗IL-17Aおよび抗IL-22抗体(単独または併用)、可溶性IL-17RC、ならびに他のIL-17AアンタゴニストおよびIL-17Fアンタゴニストもこのモデルにおいて使用され得る。同様に、ヒト結腸炎、IBD、関節炎、または他の炎症性病変由来の組織または細胞をSCIDモデルにおいて使用して、本明細書において説明するIL-17AアンタゴニストおよびIL-17Fアンタゴニストの抗炎症特性を評価することができる。

可溶性IL-17RC、抗IL-17RC抗体、またはその誘導体、アゴニスト、結合体、もしくは変種を用いて炎症を消滅、遅延、または減少させるように計画された治療法は、ヒト炎症組織(例えば、乾癬病変など)を有するSCIDマウスまたは本明細書において説明する他のモデルに、抗IL-17RC抗体または可溶性IL-17RC化合物を投与することによって試験することができる。治療の有効性は、当技術分野において周知の方法を用いて、処置集団における抗炎症作用の経時的な増大として測定され、かつ統計学的に評価される。いくつかの例示的な方法には、例えば、乾癬モデルにおいて、表皮の厚さ、真皮上層中の炎症細胞の数、および錯角化のグレードを測定することが含まれるが、それに限定されるわけではない。このような方法は当技術分野において公知であり、かつ本明細書において説明される。例えば、Zeigler, M. et al. Lab Invest 81：1253, 2001; Zollner, T.M. et al. J. Clin. Invest. 109：671, 2002; Yamanaka, N. et al. Microbio.l Immunol. 45：507, 2001; Raychaudhuri, S.P. et al. Br. J. Dermatol. 144：931, 2001; Boehncke, W. H et al. Arch. Dermatol. Res. 291：104, 1999; Boehncke, W. H et al., J. Invest. Dermatol. 116：596, 2001; Nickoloff, B. J. et al. Am. J. Pathol. 146：580, 1995; Boehncke, W.H et al. J.Cutan. Pathol. 24：1, 1997; Sugai, J., M. et al. J. Dermatol. Sci. 17：85, 1998;およびVilladsen L.S. et al. J. Clin. Invest. 112：1571, 2003を参照されたい。また、フローサイトメトリー(またはPCR)のような周知の方法を用いて経時的に炎症をモニターして、試料中に存在する炎症細胞または損傷細胞の数、IBDに関するスコア(体重減少、下痢、直腸出血、結腸の長さ)、CIA RAモデルの足疾患スコアおよび炎症スコアを定量することもできる。例えば、このようなモデルにおいて試験するために適切な治療戦略には、可溶性IL-17RCとそのリガンドであるIL-17AおよびIL-17Fとの相互作用の破壊に基づいて、可溶性IL-17RC、抗IL-17RC抗体、他のIL-17AアンタゴニストおよびIL-17Fアンタゴニスト(単独もしくは併用)、または関連する結合体もしくはアンタゴニストを用いる直接的治療、または可溶性IL-17RCもしくは抗IL-17RC抗体またはその誘導体、アゴニスト、結合体、もしくは変種を利用した細胞に基づく治療法が含まれる。

さらに、乾癬は、過形成表皮ケラチノサイトならびにCD4+記憶T細胞、好中球、およびマクロファージを含む浸潤性単核細胞を伴う慢性炎症性皮膚疾患である(Christophers, Int. Arch. Allergy Immunol., 110：199, 1996)。疾患を開始し、かつ疾患の病状を引き起こすにあたって、環境抗原が重要な役割を果たしていると現在考えられている。しかしながら、乾癬の病状をもたらすと考えられているのは自己抗原に対する寛容性の喪失である。樹状細胞およびCD4⁺T細胞は、病状を招く免疫応答をもたらす抗原提示および認識において重要な役割を果たすと考えられている。本発明者らは、最近、CD4+CD45RB導入モデルに基づく乾癬モデルを開発した(Davenport et al., Internat. Immunopharmacol., 2：653-672)。本発明の可溶性IL-17RCまたは抗IL-17RC抗体をマウスに投与する。疾患スコア(皮膚病変、炎症性サイトカイン)が抑制される場合、乾癬におけるIL-17AアンタゴニストおよびIL-17Fアンタゴニスト、例えば抗IL-17RC抗体またはIL-17RC可溶性受容体の有効性が示される。

5 アトピー性皮膚炎
ADは、ヘルパーT細胞サブセット2(Th2)の活性化過剰サイトカインを特徴とする一般的な慢性炎症性疾患である。ADの正確な病因は不明であるが、活動過多のTh2免疫応答、自己免疫、感染、アレルゲン、および遺伝的素因を含む多数の要因が関係があるとされている。疾患の重要な特徴には、乾皮症(皮膚の乾燥)、そう痒症(皮膚の痒み)、結膜炎、炎症性皮膚病変、黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)感染、血液好酸球増加症の亢進、血清IgEおよびIgG1の上昇、ならびにT細胞、肥満細胞、マクロファージ、および好酸球の浸潤を伴う慢性皮膚炎が含まれる。黄色ブドウ球菌(S. aureus)によるコロニー形成または感染は、ADを増悪し、かつ、この皮膚疾患の慢性を持続させることが認識されている。

ADは喘息患者およびアレルギー性鼻炎患者において認められることが多く、しばしば、アレルギー性疾患の最初の症状発現である。西欧諸国の人口の約20％がこれらのアレルギー性疾患に罹患しており、先進諸国におけるADの発病率は理由が不明なものの上昇している。ADは典型的には小児期に始まり、しばしば、思春期から成人期まで持続し得る。ADの現在の治療法には、局所用コルチコステロイド、経口シクロスポリンA、タクロリムス(FK506軟膏)のような非コルチコステロイド免疫抑制薬、およびインターフェロンγが含まれる。ADの治療法は多様であるが、多くの患者の症状は改善しないか、または患者は薬剤投与に対する副作用を有するため、他のより効果的な治療物質を探す必要がある。本発明の中和性抗ヒトIL-17RC抗体を含む、本発明の可溶性IL-17RCポリペプチドおよび抗IL-17RC抗体は、アトピー性皮膚炎、炎症性皮膚病態、および本明細書において開示する他の炎症性状態など特定のヒト疾患の治療において、IL-17FおよびIL-17Aを中和するために使用することができる。

6 喘息
IL-17は、アレルゲンによって誘導されるT細胞活性化および気道中への好中球流入において重要な役割を果たす。IL-17の受容体は気道中で発現され(Yao, et al. Immunity 3：811(1995))、アレルギー性喘息においてIL-17によって媒介される好中球動員は、IL-17に刺激されたヒト気管支上皮細胞(HBEC)およびヒト気管支線維芽細胞によって産生される化学誘引物質IL-8、GRO-αおよびマクロファージ炎症タンパク質-2(MIP-2)によって大部分は誘導される(Yao, et al. J Immunol 155：5483(1995)); Molet, et al. J Allergy Clin Immunol 108：430(2001))。IL-17はまた、HBECを刺激して、好中球活性化因子であるL-6を放出させ(Fossiez, et al., J Exp Med 183：2593(1996)およびLinden, et al. Int Arch Allergy Immunol 126：179(2001))、かつ、TNF-αと協同して、インビトロでのヒト好中球の生存を延長することも示されている(Laan, et al. Eur Respir J 21：387(2003))。さらに、IL-17は、線維化促進(profibrotic)サイトカインであるIL-6およびIL-11、ならびに炎症メディエーターである顆粒球コロニー刺激因子(G-CSF)および顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)など気道の組織修復に関係があるとされているサイトカインの分泌を促進する能力によって、喘息における炎症応答を増幅することができる(Molet, et al. J Allergy Clin Immunol 108：430(2001))。

臨床エビデンスにより、喘息の急性かつ重度の増悪が、気道における好中球の動員および活性化に関連していることが示されており、したがって、IL-17は、喘息において重要な役割を果たしている可能性が高い。軽度の喘息患者は、遊離の可溶性IL-17Aタンパク質の局所濃度の検出可能な増加を示す(Molet, et al. J Allergy Clin Immunol 108：430(2001))のに対し、ブタの飼育舎(confinement)に曝露することによって重度の気道炎症を誘発させた健常なヒトボランティアは、気管支肺胞空間における遊離の可溶性IL-17Aタンパク質の濃度の顕著な増加を示す(Fossiez, et al, J Exp Med 183：2593(1996)およびLinden, et al. Int Arch Allergy Immunol 126：179(2001))。さらに、痰中のIL-17レベルは、気道の反応性亢進が増大した個体と相関関係があった(Barczyk, et al. Respir Med 97：726(2003))。

気道応答性亢進の動物モデルにおいて、感作マウスに卵白アルブミンを長期的に吸入させると、気管支の好中球増加と共に、気管支の好酸球性炎症および炎症を起こした肺組織におけるIL-17 mRNA発現の早期の誘導が起こった(Hellings, et al. Am J Respir Cell Mol Biol 28：42(2003))。抗IL-17モノクローナル抗体は、気管支への好中球流入を大きく減少させたが、気管支肺胞洗浄液および血清の両方におけるIL-5レベルを有意に上昇させ、かつ、アレルゲンに誘導された気管支への好酸球流入を悪化させたことから、IL-17Aが、抗原侵襲後の好中球および好酸球の蓄積のバランスを決定することに関与している可能性があることが示唆される(同書)。

IL-17ファミリーのメンバーのうちで、IL-17FがIL-17Aに最も密接に関連している。IL-17Fによって媒介される生物活性は、IL-17Aのものに類似しており、IL-17Fは、IL-6、IL-8、およびG-CSFの産生を刺激する(Hurst, et al. J Immunol 169：443(2002))。IL-17Fはまた、内皮細胞において、IL-2、形質転換増殖因子(TGF)-□、および単球走化性タンパク質(MCP)の産生も誘導する(Starnes, et al. J Immunol 167：4137(2001))。同様に、アレルゲンチャレンジにより、アレルギー性喘息患者において局所的IL-17Fを増加させることができる(Kawaguchi, et al. J Immunol 167：4430(2001))。マウス肺にIL-17Fを遺伝子導入すると、気管支肺胞空間中の好中球が増加するのに対し、IL-17F遺伝子を粘膜に移入すると、Agにより誘発された肺好中球増加およびメタコリンに対する気道応答性のレベルが上昇する(Oda, et al. Am J Respir Crit Care Med 171：12(2005))。

喘息以外に、いくつかの慢性炎症性気道疾患が、気道における好中球動員を特徴とし、IL-17は、慢性閉塞性肺疾患(COPD)、細菌性肺炎、および嚢胞性線維症などの呼吸器病態の病因において重要な役割を果たすことが報告されている(Linden, et al. Eur Respir J 15：973(2000)、Ye, et al. Am J Respir Cell Mol Biol 25：335(2001)、Rahman, et al. Clin Immunol 115：268(2005))。抗IL-17A治療的分子および/または抗IL-17F治療的分子は、慢性炎症性気道疾患に有効であることを炎症のインビトロモデルにおいて実証することができる。IL-17Aおよび/またはIL-17Fによって誘導される、培養されたHBECまたは気管支線維芽細胞からのサイトカインおよびケモカイン産生を阻害するための、IL-17RC可溶性受容体ならびに本発明の抗ヒトIL-17RCモノクローナル抗体および中和抗体を含むそれらに対する抗体などIL-17F活性および/またはIL-17A活性に対するアンタゴニストの能力は、IL-17Aおよび/またはIL-17F刺激に直接起因する炎症メディエーターの産生の防止におけるそのようなアンタゴニストの有効性の指標として使用することができる。IL-17RC可溶性受容体ならびに本発明の抗ヒトIL-17RCモノクローナル抗体および中和抗体を含むそれらに対する抗体などIL-17F活性および/またはIL-17A活性に対するアンタゴニストを添加すると、炎症メディエーターの産生および発現が著しく減少する場合には、慢性の気道炎症に付随する炎症局面において有効であることが予想される。

医薬用途の場合、本発明の可溶性IL-17RCまたは抗IL-17RC抗体は、従来の方法に従って、非経口送達、特に静脈内送達または皮下送達用に製剤化される。静脈内投与は、ボーラス注射、例えばミニポンプもしくは他の適切な技術を用いる制御放出によって、または、1時間〜数時間の典型的な期間に渡る輸注によって行われる。一般に、薬学的製剤は、生理食塩水、緩衝生理食塩水、または5％デキストロース水溶液など薬学的に許容されるビヒクルと共に造血タンパク質を含む。製剤はさらに、バイアル表面などの上でのタンパク質損失を防止するために、1種または複数種の賦形剤、保存剤、可溶化剤、緩衝剤、アルブミンを含んでよい。このような併用療法を利用する場合、サイトカインは、単一の製剤中に混合してもよく、または別々の製剤中で投与してもよい。調剤方法は当技術分野において周知であり、例えば、参照により本明細書に組み入れられる「Remington's Pharmaceutical Sciences」、Gennaro編、Mack Publishing Co., Easton PA, 1990において開示されている。治療用量は一般に、0.1mg/kg患者体重/日〜100mg/kg患者体重/日、好ましくは0.5mg/kg/日〜20mg/kg/日の範囲であり、正確な用量は、治療される病態の性質および重症度、患者の体質などを考慮に入れて、容認されている標準に従って臨床家が決定する。用量の決定は当業者のレベルの範囲内である。タンパク質は、一般に、化学療法もしくは骨髄移植後の最長28日の期間に渡って、または血小板数が20,000個/mm³、好ましくは50,000個/mm³を超えるまで投与される。より一般的に、タンパク質は、1週間またはそれ未満に渡って、しばしば1日〜3日間に渡って投与される。一般に、本発明の可溶性IL-17RCまたは抗IL-17RC抗体の治療的有効量は、リンパ系または骨髄系前駆細胞の増殖および/または分化の臨床的に有意な増大をもたらすのに十分な量であり、この増大は、成熟細胞(例えば、血小板または好中球)の循環レベルの上昇として顕在化する。したがって、血小板障害の治療は、血小板数が少なくとも20,000個/mm³、好ましくは50,000個/mm³に達するまで継続される。本発明の可溶性IL-17RCまたは抗IL-17RC抗体はまた、IL-3、IL-6、およびIL-11;幹細胞因子;エリスロポエチン;G-CSFおよびGM-CSFなど他のサイトカインと組み合わせて投与することもできる。併用療法の治療計画において、他のサイトカインの1日量は一般的に以下のとおりである：EPO、150U/kg;GM-CSF、5 lg/kg〜15 lg/kg;IL-3、1 lg/kg〜5 lg/kg;およびG-CSF、1 lg/kg〜25 lg/kg。例えば、EPOとの併用療法は、EPOレベルが低い貧血患者において適用される。

一般に、投与される可溶性IL-17RC(またはIL-17RC類似体もしくは融合タンパク質)、または抗IL-17RC抗体の投薬量は、患者の年齢、体重、身長、性別、全般的医学的状態、および既往歴などの要因に応じて変動すると考えられる。典型的には、約1pg/kg〜10mg/kg(作用物質の量/患者の体重)の範囲の投薬量の可溶性IL-17RCまたは抗IL-17RC抗体をレシピエントに提供することが望ましいが、これより少ない投薬量または多い投薬もまた、状況に応じて投与してよい。

対象への可溶性IL-17RCまたは抗IL-17RC抗体の投与は、静脈内、動脈内、腹腔内、筋肉内、皮下、胸膜腔内、くも膜下腔内、局所カテーテルによる灌流、または直接的な病巣内注射でよい。治療用タンパク質を注射によって投与する場合、投与は、持続輸注によって、または単回ボーラスもしくは複数回ボーラスによって行ってよい。

その他の投与経路には、経口、粘膜、肺、および経皮が含まれる。経口送達は、ポリエステルマイクロスフェア、ゼインマイクロスフェア、プロテイノイドマイクロスフェア、ポリシアノアクリラートマイクロスフェア、および脂質ベースの系に適している(例えば、DiBaseおよびMorrel、「Oral Delivery of Microencapsulated Proteins」、Protein Delivery：Physical Systems、SandersおよびHendren(編)、255〜288頁(Plenum Press 1997)を参照されたい)。鼻腔内送達の実現可能性は、インスリン投与のような様式によって示される(例えば、HinchcliffeおよびIllum、Adv. Drug Deliv. Rev. 35：199(1999)を参照されたい)。可溶性IL-17RCまたは抗IL-17RC抗体を含む乾燥粒子または液体粒子を調製し、乾燥粉末分散装置、液体エアロゾル発生装置、またはネブライザーを用いて吸入することができる(例えば、PettitおよびGombotz、TIBTECH 16：343(1998);Patton et al., Adv Drug. Deliv. Rev. 35：235(1999))。このアプローチは、エアロゾル化したインスリンを肺に送達する手持ち型電子吸入器であるAERX糖尿病管理システムによって例示される。研究により、低周波超音波の助けを借りて48,000 kDaほどの大型タンパク質が皮膚を通過して治療的濃度で送達されることが示されており、これは、経皮投与の実現可能性を示す(Mitragotri et al., Science 269：850(1995))。エレクトロポレーションを用いる経皮送達は、IL-17RC結合活性を有する分子を投与するための別の手段を提供する(Potts et al., Pharm. Biotechnol. 10：213(1997))。

可溶性IL-17RCまたは抗IL-17RC抗体を含む薬学的組成物は、薬学的に有用な組成物を調製するための公知の方法に従って調製することができ、それにより、治療用タンパク質は薬学的に許容される担体との混合物中に混合される。組成物は、その投与がレシピエント患者によって許容され得る場合、「薬学的に許容される担体」であると言われる。滅菌リン酸緩衝生理食塩水は、薬学的に許容される担体の一例である。他の適切な担体は当業者に周知である。例えば、Gennaro(編)、「Remington's Pharmaceutical Sciences」、第19版(Mack Publishing Company 1995)を参照されたい。

治療法のために、可溶性IL-17RCまたは抗IL-17RC抗体分子および薬学的に許容される担体は、治療的有効量で患者に投与される。本発明の治療的分子および薬学的に許容される担体の組合せは、投与される量が生理学的に有意である場合、「治療的有効量」で投与されると言われる。作用物質は、その存在により、レシピエント患者の生理機能に検出可能な変化がもたらされる場合、生理学的に有意である。例えば、炎症を治療するのに使用される作用物質は、その存在により、炎症応答が軽減される場合、生理学的に有意である。

IL-17RC(またはIL-17RC類似体もしくは融合タンパク質)または中和性抗IL-17RC抗体を含む薬学的組成物は、液状形態で、エアロゾルで、または固形形態で提供され得る。液状形態の例は、注射液剤および経口懸濁剤である。例示的な固形形態には、カプセル剤、錠剤、および制御放出形態が含まれる。後者の形態の例は、ミニ浸透圧ポンプおよび埋め込み剤である(Bremer et al., Pharm. Biotechnol. 10：239(1997); Ranade、「Implants in Drug Delivery」、Drug Delivery Systems、RanadeおよびHollinger(編)、95〜123頁(CRC Press 1995); Bremer et al.、「Protein Delivery with Infusion Pumps」、Protein Delivery：Physical Systems、SandersおよびHendren(編)、239〜254頁(Plenum Press 1997); Yewey et al.、「Delivery of Proteins from a Controlled Release Injectable Implant」、Protein Delivery：Physical Systems、SandersおよびHendren(編)、93〜117頁(Plenum Press 1997))。

リポソームは、静脈内に、腹腔内に、くも膜下腔内に、筋肉内に、皮下に、または、経口投与、吸入、もしくは鼻腔内投与を介して、対象に治療的ポリペプチドを送達するための1つの手段を提供する。リポソームは、水溶性の区画を取り囲む1つまたは複数の脂質二重層からなる顕微鏡的小胞である(一般に、Bakker-Woudenberg et al., Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 12(補遺1)：S61(1993)、Kim, Drugs 46：618(1993)、およびRanade、「Site-Specific Drug Delivery Using Liposomes as Carriers」、Drug Delivery Systems、RanadeおよびHollinger(編)、3〜24頁(CRC Press 1995)を参照されたい)。リポソームは、組成が細胞膜に類似しており、結果として、リポソームは安全に投与することができ、かつ生分解性である。調製方法によって、リポソームは、単層または多重層でよく、かつ、リポソームのサイズは様々でよく、直径は0.02μm〜10μm超の範囲である。様々な作用物質をリポソーム中に封入することができる。疎水性作用物質は二重層に分配し、親水性作用物質は内側の水溶性空間内に分配する(例えば、Machy et al., Liposomes In Cell Biology And Pharmacology(John Libbey 1987)、およびOstro et al., American J. Hosp. Pharm. 46：1576(1989)を参照されたい)。さらに、リポソームサイズ、二重層の数、脂質組成、ならびにリポソームの電荷および表面の特徴を変更することによって、封入された作用物質の治療的有効性を制御することも可能である。

リポソームは、実質的にどんなタイプの細胞にも吸着し、次いで、封入された作用物質をゆっくりと放出することができる。あるいは、吸着されたリポソームは、食作用を有する細胞によるエンドサイトーシスを受け得る。エンドサイトーシスの後に、リポソーム脂質のリソソーム内分解および封入された作用物質の放出が続く(Scherphof et al., Ann. N.Y. Acad. Sci. 446：368(1985))。静脈内投与後、小型リポソーム(0.1μm〜1.0μm)は、典型的には、肝臓および脾臓に主に位置する網内系の細胞によって取り込まれるが、3.0μmより大きいリポソームは、肺に蓄積される。網内系の細胞による小型リポソームのこの選択的取り込みは、マクロファージおよび肝臓の腫瘍に化学療法剤を送達するために用いられている。

網内系は、大量のリポソーム粒子による飽和、または薬理学的手段による選択的マクロファージ不活化を含むいくつかの方法によって回避することができる(Claassen et al., Biochim. Biophys. Acta. 802：428(1984))。さらに、糖脂質またはポリエテレン(polyethelene)グリコールで誘導体化したリン脂質をリポソーム膜中に組み込むと、網内系による取込みの有意な減少が起こることが示されている(Allen et al.,Biochim. Biophys. Acta. 1068：133(1991);Allen et al.,Biochim. Biophys. Acta. 1150：9(1993))。

リポソームはまた、リン脂質組成を変更することによって、または受容体もしくはリガンドをリポソーム中に挿入することによって、特定の細胞または器官を標的とするように調製することもできる。例えば、高い含有量の非イオン性界面活性剤を用いて調製されたリポソームは、肝臓を標的とするために用いられている(Hayakawa et al., 日本国特許第04-244,018号;Kato et al., Biol. Pharm. Bull. 16：960(1993))。これらの製剤は、大豆ホスファチジルコリン、α-トコフェロール、およびエトキシル化硬化ヒマシ油(HCO-60)をメタノール中で混合し、混合物を真空下で濃縮し、次いで、水で混合物を溶解することによって調製された。ダイズ由来ステリルグルコシド混合物(SG)およびコレステロール(Ch)を含むジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC)のリポソーム製剤もまた、肝臓を標的とすることが示されている(Shimizu et al., Biol. Pharm. Bull. 20：881(1997))。

あるいは、抗体、抗体断片、炭水化物、ビタミン、および輸送タンパク質など様々なターゲティングリガンドをリポソームの表面に結合させてもよい。例えば、リポソームを分枝型のガラクトシル脂質誘導体で修飾して、肝臓細胞表面で専ら発現される、アシアロ糖タンパク質(ガラクトース)受容体を標的にさせることができる(KatoおよびSugiyama、Crit. Rev. Ther. Drug Carrier Syst. 14：287, 1997、Murahashi et al., Biol. Pharm. Bull. 20：259, (1997))。同様に、Wu et al., Hepatology 27：772(1998)では、アシアロフェツインでリポソームを標識すると、リポソームの血漿半減期が短縮され、かつ、アシアロフェツイン標識リポソームの肝細胞による取込みが大幅に増強されたことが示された。一方で、分枝型ガラクトシル脂質誘導体を含むリポソームの肝臓蓄積は、アシアロフェツインを前もって注射することにより阻害され得る(Murahashi et al., Biol. Pharm. Bull. 20：259(1997))。ポリアコニチル化ヒト血清アルブミンリポソームは、肝臓細胞にリポソームをターゲティングするための別のアプローチを提供する(Kamps et al., Proc. Nat’l Acad. Sci. USA 94：11681(1997))。さらに、Gehoらの米国特許第4,603,044号では、肝臓の特殊な代謝細胞に関連した肝胆道受容体に対する特異性を有する、肝細胞を対象とするリポソーム小胞送達系を記載している。

組織ターゲティングに対するより一般的なアプローチでは、標的細胞は、標的細胞によって発現されるリガンドに特異的なビオチン化抗体で前標識される(Harasym et al., Adv. Drug Deliv. Rev. 32：99(1998))。遊離抗体を血漿から除去した後、ストレプトアビジンを結合させたリポソームが投与される。別のアプローチでは、ターゲティング抗体がリポソームに直接結合される(Harasym et al., Adv. Drug Deliv.Rev. 32：99(1998))。

ポリペプチドおよび抗体は、タンパク質マイクロカプセル化の標準的技術を用いて、リポソーム内に封入され得る(例えば、Anderson et al., Infect. Immun. 31：1099(1981)、Anderson et al., Cancer Res. 50：1853(1990)、およびCohen et al., Biochim. Biophys. Acta 1063：95(1991)、Alving et al. 「Preparaton and Use of Liposomes in Immunological Studies」、Liposome Technology、第2版、第3巻、Gregoriadis(編)、317頁(CRC Press 1993)、Wassef et al., Meth. Enzymol. 149：124(1987)を参照されたい)。上記のように、治療的に有用なリポソームは、様々な成分を含んでよい。例えば、リポソームは、ポリ(エチレングリコール)の脂質誘導体を含んでよい(Allen et al., Biochim. Biophys. Acta 1150：9(1993))。

分解性ポリマーマイクロスフェアは、治療タンパク質の高い全身レベルを維持するために設計された。マイクロスフェアは、ポリ(ラクチド-co-グリコリド)(PLG)、ポリ無水物、ポリ(オルトエステル)、非生分解性酢酸エチルビニルポリマーなどの分解性ポリマーから調製され、その際、タンパク質はポリマー中に閉じ込められる(GombotzおよびPettit、Bioconjugate Chem. 6：332(1995); Ranade、「Role of Polymers in Drug Delivery」、Drug Delivery Systems、RanadeおよびHollinger(編)、51〜93頁(CRC Press 1995);RoskosおよびMaskiewicz、「Degradable Controlled Release Systems Useful for Protein Delivery」、Protein Delivery：Physical Systems、SandersおよびHendren(編)、45〜92頁(Plenum Press 1997);Bartus et al., Science 281：1161(1998);PutneyおよびBurke、Nature Biotechnology 16：153(1998);Putney, Curr. Opin. Chem. Biol. 2：548(1998))。ポリエチレングリコール(PEG)でコーティングされたナノスフェアもまた、治療用タンパク質の静脈内投与のための担体を提供し得る(例えば、Gref et al., Pharm. Biotechnol. 10：167(1997)を参照されたい)。

本発明はまた、単量体、ホモ二量体、ヘテロ二量体、または多量体のIL-17RC可溶性受容体、およびIL-17RCアンタゴニスト、例えば抗IL-17RC抗体もしくは結合ポリペプチド、または中和性抗IL-17RC抗体などIL-17RC結合活性を有し、前述したようにポリペプチドがポリマーと結合している、化学的に修飾されたポリペプチドも企図する。

他の剤形は、例えば、AnselおよびPopovich、Pharmaceutical Dosage Forms and Drug Delivery Systems、第5版(Lea&Febiger 1990)、Gennaro(編)、Remington's Pharmaceutical Sciences、第19版(Mack Publishing Company 1995)によって、かつ、RanadeおよびHollinger、Drug Delivery Systems(CRC Press 1996)によって示されているように、当業者によって考案され得る。

例として、薬学的組成物は、IL-17RC細胞外ドメインを有するポリペプチド、例えば単量体、ホモ二量体、ヘテロ二量体、もしくは多量体のIL-17RC可溶性受容体、またはIL-17RCアンタゴニスト(例えば、IL-17RCポリペプチドに結合する抗体もしくは抗体断片、または中和性抗IL-17RC抗体)を含む容器を含むキットとして供給されてよい。治療的ポリペプチドは、単回投与もしくは複数回投与用の注射液剤の形態で、または、注射前に溶解される滅菌粉末として、提供され得る。あるいは、このようなキットは、治療的ポリペプチドを投与するための乾燥粉末分散装置、液体エアロゾル発生装置、またはネブライザーも含んでよい。このようなキットは、薬学的組成物の適応症および使用法に関する書面情報をさらに含んでよい。さらに、このような情報は、IL-17RC組成物がIL-17RCに対する過敏性が公知である患者には禁忌であるという記載も含んでよい。

抗IL-17RC抗体もしくは結合相手(もしくは抗IL-17RC抗体断片、抗体融合物、およびヒト化抗体など)、またはIL-17RC可溶性受容体を含む薬学的組成物は、液状形態で、エアロゾルで、または固形形態で提供され得る。液状形態の例は、注射液剤、エアロゾル、液滴、トポロジー(topological)液剤、および経口懸濁剤である。例示的な固形形態には、カプセル剤、錠剤、および制御放出形態が含まれる。後者の形態の例は、ミニ浸透圧ポンプおよび埋め込み剤である(Bremer et al., Pharm.Biotechnol. 10：239(1997); Ranade、「Implants in Drug Delivery」、Drug Delivery Systems、RanadeおよびHollinger(編)、95〜123頁(CRC Press 1995); Bremer et al.、「Protein Delivery with Infusion Pumps」、Protein Delivery：Physical Systems、SandersおよびHendren(編)、239〜254頁(Plenum Press 1997); Yewey et al.、「Delivery of Proteins from a Controlled Release Injectable Implant」、Protein Delivery：Physical Systems、SandersおよびHendren(編)、93〜117頁(Plenum Press 1997))。他の固形形態には、クリーム剤、パスタ剤、および他のトポロジー外用剤(topological application)などが含まれる。

リポソームは、静脈内に、腹腔内に、くも膜下腔内に、筋肉内に、皮下に、または、経口投与、吸入、もしくは鼻腔内投与を介して、対象に治療的ポリペプチドを送達するための1つの手段を提供する。リポソームは、水溶性の区画を取り囲む1つまたは複数の脂質二重層からなる顕微鏡的小胞である(一般に、Bakker-Woudenberg et al., Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 12(補遺1)：S61(1993)、Kim, Drugs 46：618(1993)、およびRanade、「Site-Specific Drug Delivery Using Liposomes as Carriers」、Drug Delivery Systems、RanadeおよびHollinger(編)、3〜24頁(CRC Press 1995)を参照されたい)。リポソームは、組成が細胞膜に類似しており、結果として、リポソームは安全に投与することができ、かつ生分解性である。調製方法によって、リポソームは、単層または多重層でよく、かつ、リポソームのサイズは様々でよく、直径は0.02μm〜10μm超の範囲である。様々な作用物質をリポソーム中に封入することができる。疎水性作用物質は二重層に分配し、親水性作用物質は内側の水溶性空間内に分配する(例えば、Machy et al., Liposomes In Cell Biology And Pharmacology(John Libbey 1987)、およびOstro et al., American J. Hosp. Pharm. 46：1576(1989)を参照されたい)。さらに、リポソームサイズ、二重層の数、脂質組成、ならびにリポソームの電荷および表面の特徴を変更することによって、封入された作用物質の治療的有効性を制御することも可能である。

リポソームは、実質的にどんなタイプの細胞にも吸着し、次いで、封入された作用物質をゆっくりと放出することができる。あるいは、吸着されたリポソームは、食作用を有する細胞によるエンドサイトーシスを受け得る。エンドサイトーシスの後に、リポソーム脂質のリソソーム内分解および封入された作用物質の放出が続く(Scherphof et al., Ann. N.Y. Acad. Sci. 446：368(1985))。静脈内投与後、小型リポソーム(0.1μm〜1.0μm)は、典型的には、肝臓および脾臓に主に位置する網内系の細胞によって取り込まれるが、3.0μmより大きいリポソームは、肺に蓄積される。網内系の細胞による小型リポソームのこの選択的取り込みは、マクロファージおよび肝臓の腫瘍に化学療法剤を送達するために用いられている。

網内系は、大量のリポソーム粒子による飽和、または薬理学的手段による選択的マクロファージ不活化を含むいくつかの方法によって回避することができる(Claassen et al., Biochim. Biophys. Acta. 802：428(1984))。さらに、糖脂質またはポリエテレン(polyethelene)グリコールで誘導体化したリン脂質をリポソーム膜中に組み込むと、網内系による取込みの有意な減少が起こることが示されている(Allen et al.,Biochim. Biophys. Acta. 1068：133(1991);Allen et al.,Biochim. Biophys. Acta. 1150：9(1993))。

リポソームはまた、リン脂質組成を変更することによって、または受容体もしくはリガンドをリポソーム中に挿入することによって、特定の細胞または器官を標的とするように調製することもできる。例えば、高い含有量の非イオン性界面活性剤を用いて調製されたリポソームは、肝臓を標的とするために用いられている(Hayakawa et al.、日本国特許第04-244,018号;Kato et al., Biol. Pharm. Bull. 16：960(1993))。これらの製剤は、大豆ホスファチジルコリン、α-トコフェロール、およびエトキシル化硬化ヒマシ油(HCO-60)をメタノール中で混合し、混合物を真空下で濃縮し、次いで、水で混合物を溶解することによって調製された。ダイズ由来ステリルグルコシド混合物(SG)およびコレステロール(Ch)を含むジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC)のリポソーム製剤もまた、肝臓を標的とすることが示されている(Shimizu et al., Biol. Pharm. Bull. 20：881(1997))。

あるいは、抗体、抗体断片、炭水化物、ビタミン、および輸送タンパク質など様々なターゲティングリガンドをリポソームの表面に結合させてもよい。例えば、リポソームを分枝型のガラクトシル脂質誘導体で修飾して、肝臓細胞表面で専ら発現される、アシアロ糖タンパク質(ガラクトース)受容体を標的にさせることができる(KatoおよびSugiyama、Crit. Rev. Ther. Drug Carrier Syst. 14：287(1997)、Murahashi et al., Biol. Pharm. Bull. 20：259(1997))。同様に、Wu et al., Hepatology 27：772(1998)では、アシアロフェツインでリポソームを標識すると、リポソームの血漿半減期が短縮され、かつ、アシアロフェツイン標識リポソームの肝細胞による取込みが大幅に増強されたことが示された。一方で、分枝型ガラクトシル脂質誘導体を含むリポソームの肝臓蓄積は、アシアロフェツインを前もって注射することにより阻害され得る(Murahashi et al., Biol. Pharm. Bull. 20：259(1997))。ポリアコニチル化ヒト血清アルブミンリポソームは、肝臓細胞にリポソームをターゲティングするための別のアプローチを提供する(Kamps et al., Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 94：11681(1997))。さらに、Gehoらの米国特許第4,603,044号では、肝臓の特殊な代謝細胞に関連した肝胆道受容体に対する特異性を有する、肝細胞を対象とするリポソーム小胞送達系を記載している。

組織ターゲティングに対するより一般的なアプローチでは、標的細胞は、標的細胞によって発現されるリガンドに特異的なビオチン化抗体で前標識される(Harasym et al., Adv. Drug Deliv. Rev. 32：99(1998))。遊離抗体を血漿から除去した後、ストレプトアビジンを結合させたリポソームが投与される。別のアプローチでは、ターゲティング抗体がリポソームに直接結合される(Harasym et al., Adv. Drug Deliv.Rev. 32：99(1998))。

抗IL-17RC中和抗体およびIL-17F結合活性もしくはIL-17A結合活性を有する結合相手、またはIL-17RC可溶性受容体は、タンパク質マイクロカプセル化の標準的技術を用いて、リポソーム内に封入され得る(例えば、Anderson et al., Infect. Immun. 31：1099(1981)、Anderson et al., Cancer Res. 50：1853(1990)、およびCohen et al., Biochim. Biophys. Acta 1063：95(1991)、Alving et al. 「Preparaton and Use of Liposomes in Immunological Studies」、Liposome Technology、第2版、第3巻、Gregoriadis(編)、317頁(CRC Press 1993)、Wassef et al., Meth. Enzymol. 149：124(1987)を参照されたい)。上記のように、治療的に有用なリポソームは、様々な成分を含んでよい。例えば、リポソームは、ポリ(エチレングリコール)の脂質誘導体を含んでよい(Allen et al., Biochim. Biophys. Acta 1150：9(1993))。

分解性ポリマーマイクロスフェアは、治療タンパク質の高い全身レベルを維持するために設計された。マイクロスフェアは、ポリ(ラクチド-co-グリコリド)(PLG)、ポリ無水物、ポリ(オルトエステル)、非生分解性酢酸エチルビニルポリマーなどの分解性ポリマーから調製され、その際、タンパク質はポリマー中に閉じ込められる(GombotzおよびPettit、Bioconjugate Chem. 6：332, 1995; Ranade、「Role of Polymers in Drug Delivery」、Drug Delivery Systems、RanadeおよびHollinger(編)、51〜93頁(CRC Press 1995);RoskosおよびMaskiewicz、「Degradable Controlled Release Systems Useful for Protein Delivery」、Protein Delivery：Physical Systems、SandersおよびHendren(編)、45〜92頁(Plenum Press 1997);Bartus et al., Science 281：1161(1998);PutneyおよびBurke、Nature Biotechnology 16：153(1998);Putney, Curr. Opin. Chem. Biol. 2：548(1998))。ポリエチレングリコール(PEG)でコーティングされたナノスフェアもまた、治療用タンパク質の静脈内投与のための担体を提供し得る(例えば、Gref et al., Pharm. Biotechnol. 10：167(1997)を参照されたい)。

本発明はまた、前述したようにポリマーと結合している、化学的に修飾された抗IL-17RC抗体または結合相手、例えば、抗抗IL-17RC抗体またはIL-17RC可溶性受容体も企図する。

他の剤形は、例えば、AnselおよびPopovich、Pharmaceutical Dosage Forms and Drug Delivery Systems、第5版(Lea&Febiger 1990)、Gennaro(編)、Remington's Pharmaceutical Sciences、第19版(Mack Publishing Company 1995)によって、ならびにRanadeおよびHollinger、Drug Delivery Systems(CRC Press 1996)によって示されているように、当業者によって考案され得る。

本発明は、抗IL-17F抗体の組成物、ならびに本明細書において説明する抗体、ペプチド、またはポリペプチドを含む方法および治療的使用を企図する。このような組成物は、担体をさらに含んでよい。担体は、従来の有機担体または無機担体でよい。担体の例には、水、緩衝液、アルコール、プロピレングリコール、マクロゴール、ゴマ油、およびトウモロコシ油などが含まれる。

K)トランスジェニックマウスの作製
トランスジェニックマウスは、全組織において、または組織特異的もしくは組織優先的な調節エレメントの制御下で、IL-17F遺伝子、IL-17A遺伝子、またはIL-17RC遺伝子のいずれかを過剰発現するように操作することができる。これらの過剰産生マウスは、過剰発現に起因する表現型を特徴付けるために使用することができ、かつ、トランスジェニック動物は、過剰なIL-17F、IL-17A、またはIL-17RCによって引き起こされるヒト疾患のモデルとして役立ち得る。また、これらのうちいずれかを過剰発現するトランスジェニックマウスは、大型動物の乳または血液中の可溶性IL-17RCのようなIL-17RCを作製するためのモデルバイオリアクターも提供する。トランスジェニックマウスを作製するための方法は当業者に周知である(例えば、Jacob、「Expression and Knockout of Interferons in Transgenic Mice」、Overexpression and Knockout of Cytokines in Transgenic Mice、Jacob(編)、111〜124頁(Academic Press, Ltd. 1994), MonasterskyおよびRobl(編)、Strategies in Transgenic Animal Science(ASM Press 1995)、ならびにAbbudおよびNilson、「Recombinant Protein Expression in Transgenic Mice」、Gene Expression Systems：Using Nature for the Art of Expression、FernandezおよびHoeffler(編)、 367〜397頁(Academic Press, Inc. 1999)を参照されたい)。

例えば、IL-17RC遺伝子を発現するトランスジェニックマウスを作製するための方法は、繁殖力のある成体雄マウス(種マウス)(B6C3f1、2月齢〜8月齢(Taconic Farms, Germantown, NY))、精管切除された雄マウス(繁殖不能)(B6D2f1、2月齢〜8月齢(Taconic Farms))、思春期前の妊娠可能な雌マウス(ドナー)(B6C3f1、4週齢〜5週齢(Taconic Farms))、および妊娠可能な成体雌マウス(レシピエント)(B6D2f1、2月齢〜4月齢、(Taconic Farms))を用いて始めることができる。ドナーを1週間順化させ、次いで、約8IU/マウスの妊馬血清ゴナドトロピン(Sigma Chemical Company; St.Louis, MO)を腹腔内注射し、かつ、46〜47時間後、8IU/マウスのヒト絨毛性ゴナドトロピン(hCG(Sigma))を腹腔内注射して、過剰排卵を誘導する。ホルモン注射の後に、ドナーを種マウスと交尾させる。排卵は、一般に、hCG 注射から13時間以内に起こる。交尾は、交尾後の朝に膣栓の存在によって確認する。

受精卵は、外科用スコープのもとで採取する。輸卵管を採取し、ヒアルロニダーゼ(Sigma)を含む尿検査スライドに卵を放出させる。ヒアルロニダーゼ中で1回、ならびに、5％CO₂、5％O₂、および90％N₂と共に37℃でインキュベートしておいたホイットン(Whitten)のW640培地(例えば、MeninoおよびO'Claray、Biol.Reprod. 77：159(1986)、ならびにDienhartおよびDowns、Zygote 4：129(1996)によって記述されている)中で2回、卵を洗浄する。次いで、マイクロインジェクションするまで、卵を37℃/5％CO₂インキュベーター中で保存する。

IL-17RCをコードする配列を含むプラスミドDNA 10マイクログラム〜20マイクログラムを直線化し、ゲル精製し、かつ、マイクロインジェクション用に、10mM Tris-HCl(pH7.4)、0.25mM EDTA(pH8.0)中に再懸濁して最終濃度5ナノグラム/マイクロリットル〜10ナノグラム/マイクロリットルにする。例えば、IL-17RCをコードする配列はSEQ ID NO：2のアミノ酸21〜452残基目を含むポリペプチドをコードすることができる。

温かいCO₂平衡化鉱油で覆われたW640培地の液滴中に含まれる採取した卵に、プラスミドDNAを微量注入する。DNAを注射針中に吸い上げ(内径0.75mm、外径1mmのホウケイ酸ガラス毛細管から引っ張る)、個々の卵中に注射する。各卵の一倍体前核の一方または両方に、注射針を貫通させる。

ピコリットルのDNAを前核中に注入し、かつ、核小体と接触しないように注射針を引き抜く。すべての卵に注入するまで、この手順を繰り返す。成功裡に微量注入された卵を、前もって気体を供給したW640培地を入れた器官組織培養皿中に移し、37℃/5％CO₂インキュベーター中で一晩保管する。

翌日、2細胞期胚を偽妊娠レシピエントに移入する。レシピエントは、精管切除された繁殖不能マウスと交尾させた後に、交尾栓の存在によって確認する。レシピエントに麻酔をかけ、背部左側を剪毛し、かつ、外科用顕微鏡に移す。胸郭、鞍状部、および後肢によって輪郭を描かれた腹部領域の中央、すなわち膝と脾臓の中間の皮膚および筋肉壁を通る小切開部を作る。小さな外科用ドレープ上に生殖器官を露出させる。脂肪パッドを外科用ドレープ上に広げ、小型止血小鉗子(Roboz, Rockville, MD)を脂肪パッドに取り付け、かつ、マウスの背中の上にぶら下がったままにして、器官が中に戻るのを防ぐ。

鉱油、続いて交互にW640および気泡を含む細い移入ピペットを用いて、前日の注入から得られる12〜17個の健常な2細胞期胚をレシピエント中に移入する。膨らんだ膨大部の位置を特定し、膨大部と嚢の間の輸卵管を保持し、膨大部にも嚢にも傷をつけないように確認しつつ、嚢の近くの輸卵管に28g針で切れ目を入れる。

輸卵管中の切れ目にピペットを入れ、胚を吹き入れて、最初の気泡がピペットから出て行くのを可能にする。脂肪パッドを穏やかに腹膜中に押し入れ、生殖器官を中に戻らせる。腹腔壁を一針縫って閉じ、皮膚を創傷クリップで閉じる。37℃のスライドウォーマー上で最低4時間、マウスを回復させる。

レシピエントを2匹1組でケージに戻し、19日〜21日間の妊娠期間を与える。出産後、19日〜21日間の出産後期間を与えた後、離乳する。離乳マウスの性別を区別し、別々の性別ケージに入れ、かつ、清潔なハサミを用いて、(遺伝子タイピングのために使用する)0.5cm生検を尾部から切り取る。

例えば、QIAGEN DNEASYキットを製造業者の取扱い説明書に従って用いて、尾部小片からゲノムDNAを調製する。IL-17RC遺伝子または同じプラスミド中に導入された選択マーカー遺伝子を増幅するように設計されたプライマーを用いるPCRによってゲノムDNAを解析する。動物がトランスジェニックであることを確認した後、雌トランスジェニックマウスを野生型雄マウスと一緒にすることによって、または雄トランスジェニックマウスを1匹もしくは2匹の野生型雌マウスと一緒にすることにより、それらを戻し交雑して近交系にする。仔マウスが産まれ、離乳すると、性別を分け、遺伝子タイピングのために尾部を切り取る。

生動物における導入遺伝子の発現を確認するために、部分的肝切除を実施する。剣状突起(zyphoid process)の真下の上腹部から外科的調製物を作製する。無菌的技法を用いて、胸骨下に1.5cm〜2cmの小切開を行い、肝臓の左側葉を露出させる。4-0シルクで下葉の周りを縛って、体腔の外側にそれを固定する。非外傷性クランプを用いて、結び目を保持しつつ、吸収性のDexon(American Cyanamid; Wayne, NJ.)の第2の輪を第1の結び目の近位に作る。遠位切断をDexonの結び目から行い、約100mgの切除された肝臓組織を、無菌ペトリ皿に入れる。切除された肝臓切片を、14mlのポリプロピレン製丸底試験管に移し、液体窒素中で急速凍結し、次いで、ドライアイス上で保存する。手術部位を縫合および創傷クリップによって閉じ、動物のケージを37℃の加熱パッド上に手術後24時間置く。手術後、動物を毎日検査し、創傷クリップを手術後7日〜10日目に取り外す。IL-17RC mRNAの発現レベルを、RNA溶液ハイブリダイゼーションアッセイ法またはポリメラーゼ連鎖反応法を用いて、個々のトランスジェニックマウスについて検査する。

IL-17F、IL-17A、またはIL-17RCを過剰発現するトランスジェニックマウスを作製することに加えて、これらの遺伝子のうちいずれかを異常に少なく発現するか、または全く発現しないトランスジェニックマウスを設計することも有用である。このようなトランスジェニックマウスは、IL-17F、IL-17A、またはIL-17RCの欠失に関連する疾患に関する有用なモデルを提供する。上述したように、IL-17RC遺伝子発現は、アンチセンス遺伝子、リボザイム遺伝子、または外部ガイド配列遺伝子を用いて阻害することができる。IL-17RC遺伝子を過小発現するトランスジェニックマウスを作製するためには、このような阻害配列にIL-17RC mRNAを標的とさせる。特定の遺伝子を異常に低く発現するトランスジェニックマウスを作製するための方法は、当業者に公知である(例えば、Wu et al.、「Gene Underexpression in Cultured Cells and Animals by Antisense DNA and RNA Strategies」、Methods in Gene Biotechnology、205〜224頁(CRC Press 1997)を参照されたい)。

IL-17RC遺伝子発現をほとんどまたは全く有さないトランスジェニックマウスを作製するための代替アプローチは、少なくとも1つの正常なIL-17RC対立遺伝子が非機能的IL-17RCによって置換されているマウスを作製することである。非機能的IL-17RCを設計する１つの方法は、選択マーカー遺伝子のような別の遺伝子を、IL-17RCをコードする核酸分子内に挿入することである。これらのいわゆる「ノックアウトマウス 」を作製するための標準的な方法は、当業者に公知である(例えば、Jacob、「Expression and Knockout of Interferons in Transgenic Mice」、Overexpression and Knockout of Cytokines in Transgenic Mice、Jacob(編)、111〜124頁(Academic Press, Ltd. 1994)、およびWu et al.、「New Strategies for Gene Knockout」、Methods in Gene Biotechnology、339〜365頁(CRC Press 1997))を参照されたい)。

本発明は、以下の非限定的な実施例によってさらに例示される。

実施例
実施例1
IL-17RC遺伝子の発現
ヒト多組織ブロット(CLONTECH Laboratories, Inc., Palo Alto, CA)を用いてノーザン解析を実施した。ゲル精製したPCR産物から2つのプローブを作製した。第1のプローブは

および

をプライマーとして用いて作製した。Amersham(Arlington Heights, IL)社製のMultiprime標識キットを製造業者のプロトコルに従って使用して、このプローブを放射性標識した。このプローブを、NUCTRAPプッシュカラム(STRATAGENE，La Jolla，CA)を用いて精製した。EXPRESSHYB(CLONTECH)溶液を、ノーザンブロット用のプレハイブリダイゼーション溶液およびハイブリダイゼーション溶液として用いた。ハイブリダイゼーションは65℃で一晩実施した。ハイブリダイゼーション後、以下のように0.1％SDSおよびSSCを含む溶液中でそれぞれ30分間、ブロットを洗浄した：2×SSC中、室温で2回;0.1×SSC中、50℃で3回;0.1×SSC中、55℃で1回;および0.1×SSC中、65℃で1回。これらの結果から、IL-17RC遺伝子が甲状腺、副腎、前立腺、および肝臓組織において強く発現され、心臓、小腸、胃、および気管組織においてはより低い程度で発現されることが実証された。一方、脳、胎盤、肺、骨格筋、腎臓、膵臓、脾臓、胸腺、精巣、卵巣、結腸、末梢血白血球、脊髄、リンパ節、および骨髄では、ほとんどまたは全く発現されない。

実施例2
PCRを用いた、細胞株パネルにおけるmRNAの分布
全RNAを、施設内で増殖させた休止中かつ刺激された細胞株から精製し、製造業者の取扱い説明書に従ってQiagen(Valencia, CA)RNeasyキットを用いて、または酸-フェノール精製プロトコル(ChomczynskiおよびSacchi、Analytical Biochemistry, 162： 156-9, 1987)を用いて、精製した。Agilent Bioanalyzerでアリコートを分析することによって、RNAの質を評価した。RNAが顕著に分解していた場合は、続いて第1鎖cDNAを作製するためにそれを使用しなかった。混入ゲノムDNAの存在は、遺伝子間ゲノムDNAの単一部位を増幅するプライマーであるzc41011

および

を用いて、RNAのアリコートに対するPCRアッセイ法を実施することによって評価した。混入ゲノムDNAを分析するためのPCR条件は、以下のとおりであった：10×緩衝液2.5μlおよびAdvantage 2 cDNAポリメラーゼミックス(BD Biosciences Clontech, Palo Alto, CA)0.5μl、2.5mM dNTPミックス(Applied Biosystems, Foster City, CA)2ul、10×Rediload(Invitrogen, Carlsbad, CA)2.5μl、ならびに20uM zc41011およびzc41012 0.5μl、最終体積25ul。サイクリング条件は、94℃で20秒;94℃で20秒、60℃で1分20秒を40サイクル、および72℃で7分を1サイクルであった。各反応物10ulをアガロースゲル電気泳動に供し、混入ゲノムDNAに由来するPCR産物の存在に関してゲルを検査した。混入ゲノムDNAが観察された場合、製造業者の取扱い説明書に従ってDNAフリー試薬(Ambion, Inc, Austin, TX)を用いて、全RNAをDNアーゼ処理し、次いで、前述のように再試験した。混入ゲノムDNAを含まないと思われたRNAのみを、続いて第1鎖cDNAの作製に使用した。

82種のヒト細胞株に由来する全RNA 20μgにそれぞれH₂Oを加えて98μlにし、次いで、それぞれ全RNA 10μgを含む49ulアリコート2つに分割し、かつ、96ウェルのPCRプレート2つに入れた。各アリコートに次の第1鎖cDNA合成用の試薬(Invitrogen First Strand cDNA Synthesis System, Carlsbad, CA)を添加した：25mM MgCl₂ 20μl 、10×RT緩衝液10ul 、0.1M DTT 10ul、オリゴdT 2μl、RNAseOut 2ul。次いで、各細胞株のアリコート1つに、Superscript II Reverse Transcriptase 2μlを添加し、かつ、対応する細胞株のアリコートに、H₂O 2μlを添加して、Reverse Transcriptase無しの陰性対照を作製した。全試料を以下のとおりインキュベートした：25℃で10分、42℃で50分、70℃で15分。試料を深型ウェルプレート中に並べ、H₂Oで1.7mlまで希釈した。Multipette(Saigan)ロボットを用いて、複数回、96ウェルPCRプレートの各ウェル中に16.5μlずつ入れて、細胞株の多数の1回用PCRパネルを作製し、次いでこれを密封し、-20℃で保存した。これらのパネル中の各ウェルは、全RNA約100ngに由来する第1鎖cDNAに相当する。82種の細胞株を2つのパネル、アレイ118A番および118B番に広げる。広範に発現されるが量は並でしかない2種の遺伝子、すなわちCLTC(クラスリン)およびTFRC(トランスフェリン受容体C)に対するプライマーを用いて、これらのパネルの1セットに対して多重PCRアッセイ法を実施することによって、パネル上の第1鎖cDNAの質を評価した。各0.5ulのクラスリンプライマー

を、10×緩衝液2.5μlおよびAdvantage 2 cDNAポリメラーゼミックス(BD Biosciences Clontech, Palo Alto, CA)0.5μl、2.5mM dNTPミックス(Applied Biosystems, Foster City, CA)2μl、10×Rediload(Invitrogen, Carlsbad, CA)2.5μlを混合し、アレイ118A番およびアレイ118B番のパネルの各ウェルに添加した。サイクリング条件は以下のとおりであった：94℃で20秒;94℃で20秒、67℃で80秒を35サイクル、および72℃で7分を1サイクル。各反応物10μlをアガロースゲル電気泳動に供し、各細胞株の+RTウェルに特異的な各遺伝子に対する強固なPCR産物の存在に関してゲルをスコアリングした。

IL-17RCのヒト第1鎖cDNAパネルにおけるmRNA発現を、センスオリゴ

およびアンチセンスオリゴ

を用いて、試料当たり以下のPCR条件下でPCRを実施することによって分析した：10×緩衝液2.5μlおよびAdvantage 2 cDNAポリメラーゼミックス(BD Biosciences Clontech, Palo Alto, CA)0.5μl、2.5mM dNTPミックス(Applied Biosystems)2μl、10×Rediload(Invitrogen, Carlsbad, CA)2.5ul、ならびに20uMの各センスプライマーおよびアンチセンスプライマー0.5μl。サイクリング条件は94℃で2分;94℃で1分、66℃で30秒、72℃で1.5分を35サイクル、および72℃で7分を1サイクルであった。各反応物10μlをアガロースゲル電気泳動に供し、IL-17RCの陽性発現または陰性発現に関してゲルをスコアリングした。

IL-17RC mRNAは、広範な組織型および細胞型に相当する多くの細胞株において広範に発現されている。特に、IL-17RCは、単球、B細胞、および骨髄系の細胞を含む非T細胞末梢血細胞系統において一貫して発現されている。また、IL-17RC mRNAは、皮膚に由来する細胞株において確実に発現される。IL-17RCを発現する他の細胞株は、アレイ上に存在した大腸細胞株の5種すべてである。

実施例3
RT PCRを用いた、マウス細胞株パネルにおけるmRNAの分布
全RNAを、施設内で増殖させた休止中かつ刺激された細胞株60種から精製し、製造業者の取扱い説明書に従ってQiagen(Valencia, CA)RNeasyキット、酸-フェノール精製プロトコル(ChomczynskiおよびSacchi、Analytical Biochemistry, 162：156-9, 1987)、またはトリゾール試薬プロトコル(Invitrogen, Carlsbad, CA)を用いて精製した。

各細胞株に由来する全RNA 5μgを深型ウェル96ウェルプレート中に並べ、3M NaOAc 125μlおよびPellet Paint(Novagen, Madison, WI)100μlを各ウェルに添加し、次いで、H₂Oを加えて最終体積を1.25mlに調整した。Multipette(Saigan)ロボットを用いて、複数回、96ウェルPCRプレートの各ウェル中にRNA混合物25μlずつ、続いてEtOH 75μlずつを入れて、細胞株の多数の1回用RT PCRパネルを作製し、次いでこれを密封し、-20℃で保存した。6000RPMで10分間、Qiagen(Valencia, CA)96ウェル遠心分離機中でパネルを最初に遠心分離することによってRT PCRスクリーニングを実施した。プレートを吸収紙上に伏せることによって上清を除去した。RNA沈殿物を70％EtOH 100μlで洗浄し、続いて、6000RPMで5分間遠心分離した。再び上清を除去し、残存EtOHが蒸発するまでプレートを風乾させた。RNA沈殿物をH₂O 15μl中に再懸濁した。

マウス細胞株RNAパネルにおけるIL-17RC mRNAの発現を、

および

を用いて、試料当たり以下のRT PCR条件下でRT PCRを実施することによって分析した：Platinum Taqキット(Invitrogen, Carlsbad, CA)を用いたSuperScript One-Step PCR。サイクリング条件は次のとおりであった：48℃で30分、94℃で2分を1サイクル、続いて、94℃で15秒、55℃で30秒、72℃で1.5分を35サイクル、続いて72℃で7分を1サイクル。各反応物10μlをアガロースゲル電気泳動に供し、IL-17RCの陽性発現または陰性発現に関してゲルをスコアリングした。

マウスIL-17RC mRNAはいくつかのマウス細胞株において、特に、骨芽細胞を含む骨髄由来の細胞株、脂肪細胞株、および前脂肪細胞株において発現されている。また、マウスIL-17RC mRNAは、膵臓間質細胞株、膵島細胞株、ならびに視床下部細胞株、唾液腺細胞株、および精巣細胞株など内分泌系由来のいくつかの試料においても表現されている。

実施例4
大腸菌において産生されたpIL-17Fのリフォールディングおよび精製
A)pIL-17Fの封入体単離および抽出
回分発酵または振とうフラスコ培養のいずれかでタンパク質発現を導入した後、1リットル瓶に入れた大腸菌培養液をSorvallスイングバケットローターにおいて3000 RPMで遠心分離をする。任意の培養液混入物を除去するための細胞ペースト洗浄は、200mM NaClおよび5mM EDTAを含む50mM Tris pH8.0を用いて、上清が清澄になるまで実施する。

次いで、細胞沈殿物を、600nmにおける光学濃度単位が10〜20になるまで、氷冷した溶解緩衝液(50mM Tris(pH8.0);5mM EDTA;200mM NaCl、10％スクロース(w/v);5mM DTT;5mMベンズアミジン)中に懸濁する。次いで、このスラリーを、冷却しておいたAPV 2000 Labホモジナイザーにおける8500psi〜9000psiでの粉砕に3回供して、破壊された細胞溶解物を生成させる。20,000×G、4℃で1時間、細胞溶解物を遠心分離することによって不溶性画分(封入体)を回収する。

20,000×Gの遠心脱水の結果として生じる封入体沈殿物を計量し、次いで、封入体1グラム当たり洗浄緩衝液10mlで、洗浄緩衝液(200mM NaCl、5mM EDTA、5mM DTT、5mMベンズアミジンを含む50mM Tris(pH8))中に再懸濁する。OMNI international社製ローターステーター型ジェネレーターを用いてホモジナイズすることによって、完全に分散させる。20,000×G、4℃で30分間、この懸濁液を遠心分離する。上清が清澄になるまで、この洗浄サイクルを3〜5回繰り返す。

最終の洗浄済み沈殿物を0.1M亜硫酸ナトリウムおよび0.02Mテトラチオン酸ナトリウムを含む40mM Tris緩衝液(pH8)中7M塩酸グアニジンに可溶化する。4℃で一晩、穏やかに攪拌しながら、抽出および亜硫酸分解反応を進行させる。結果として生じる桃色がかった色の溶液を35,000×g、4℃で1時間遠心分離し、かつ、可溶性pIL-17Fを含む清澄化された上清を0.45umのフィルターで濾過する。

B)pIL-17Fのリフォールディング手順
可溶化し亜硫酸分解させたpIL-17Fを、55mM MES、10.56mM NaCl、0.44mM KCl、0.055％PEG(3400K)、1.1mM EDTA、20％グリセロール、0.5M塩酸グアニジン、0.75Mアルギニン、および比率1：1のグルタチオン酸化還元対(1mM GSH：1mM GSSG)を含む氷冷リフォールディング緩衝液中に滴下希釈することによってリフォールディングさせる。リフォールディング緩衝液のpHをHClで6.5に調整し、かつ、pIL-17Fを最終濃度が100ug/mlになるまで添加する。希釈した後、混合物を冷室で72時間、緩徐に攪拌する。

C)生成物の回収および精製
ラボスケールTFFシステムにおいて10kDaカットオフ膜を用いて、リフォールディングされたpIL-17Fを10倍に濃縮する。次に、0.45ミクロン膜を用いてこれを濾過し、酢酸を添加してpHを5.1に調整する。50mM酢酸緩衝液(pH5.1)中で平衡化したPharmacia SP Fast Flowカラムによる陽イオン交換クロマトグラフィーによって、pHを調整した材料を捕捉する。平衡緩衝液と1：5で分配するインラインによって流速190cm/時でpIL-17Fを添加する。この希釈によってイオン強度が低下して、標的をマトリックスに効率的に結合させることが可能になる。試料添加が完了した後、ベースラインの吸光度になるまで平衡緩衝液でカラムを洗浄する。50mM酢酸緩衝液(pH5.1)中0.4M NaClでカラムを洗浄し、次いで、50mM酢酸緩衝液(pH5.1)中0.4M NaClから1.5M NaClまでの5カラム用量(CV)の勾配を用いて、結合されたタンパク質を溶出させる。タンパク質は、約1M NaClで溶出し、溶出液画分のSDS PAGE解析によると約85％が二量体である。pIL-17Fを含む画分を集め、Amicon攪拌細胞装置を用いて10kDaカットオフ限外ろ過膜を通して濃縮して、最終精製およびサイズ排除クロマトグラフィーによるバッファー交換に備える。

D)サイズ排除バッファー交換および調剤
濃縮された陽イオンプール(カラム容積(CV)の3％〜4％の体積)を、109mM NaClを含む50mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.2)中で平衡化したPharmacia Superdex 75サイズ排除カラム上に、流速30cm/時で注入する。生成物を含む対称的な溶出液ピークを、109mM NaClを含む50mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.2)中で1mg/mlの濃度まで希釈する。最後に、pIL-17Fを0.2ミクロンで滅菌濾過し、等分し、-80℃で保存する。最終的なプロセス収率は20％である。

実施例5
哺乳動物可溶性IL-17RC発現構築物の構築
ヒトIL-17RC[L21-K451]-mFc1(マウスBALB/c μ2a Fc)を含む発現構築物を、IL-17RCポリペプチド(SEQ ID NO：43)をコードするDNA断片(SEQ ID NO：42)、mFc1をコードするDNA断片(SEQ ID NO：44)、および発現ベクターpZMP20を用いるオーバーラップPCRおよび相同組換えによって構築する。PCR増幅によってこれらの断片を作製する。

IL-17RC[L21-K451]をコードするPCR断片は、pZMP20ベクター配列の最適化組織プラスミノーゲンアクチベータープレプロ分泌リーダー配列コード領域との5'オーバーラップ、IL-17RC細胞外ドメインをコードする[L21-K451]、およびmFc1コード領域との3'オーバーラップを含む。PCR増幅反応では、5'オリゴヌクレオチド

、3'オリゴヌクレオチド

、および鋳型としての予め作製されたIL-17RCのDNAクローンを使用する。

mFc1をコードするPCR断片は、IL-17RC配列との5'オーバーラップ、mFc1コード領域、およびpZMP20ベクターのポリオウイルス配列内リボソーム進入部位領域との3'オーバーラップを含む。PCR増幅反応では、5オリゴヌクレオチド

、3'オリゴヌクレオチド

、および鋳型としての予め作製されたmFc1のDNAクローンを使用する。

PCR増幅反応条件は以下のとおりである：94℃で5分を1サイクル;94℃で1分、続いて55℃で2分、続いて72℃で3分を35サイクル;72℃で10分を1サイクル。PCR反応混合物を1％アガロースゲル上で泳動させ、かつ、QIAquick(商標)Gel Extraction Kit(Qiagen、カタログ番号28704)を用いて、予想されるサイズに対応するDNA断片をゲルから抽出する。

2つのPCR断片をオーバーラップPCRによって連結する。5'オリゴヌクレオチド

、および3'オリゴヌクレオチド

を用いるPCR増幅反応において、2種のゲル抽出断片のそれぞれ約1μlを結合させる。使用するPCR条件は以下のとおりである：94℃で5分を1サイクル;94℃で1分、続いて55℃で2分、続いて72℃で3分を35サイクル;72℃で10分を1サイクル。PCR反応混合物を1％アガロースゲル上で泳動させ、かつ、QIAquick(商標)Gel Extraction Kit(Qiagen、カタログ番号28704)を用いて、挿入物のサイズに対応するDNA断片をゲルから抽出する。

プラスミドpZMP20は、MPSVプロモーター、酵母組換え前に直線化するためのBglII部位、otPAシグナルペプチド配列、ポリオウイルス由来の配列内リボソーム進入エレメント、膜貫通ドメインのC末端が切断されたCD8の細胞外ドメイン;大腸菌の複製起点;SV40のプロモーター、エンハンサー、および複製起点、DHFR遺伝子、およびSV40ターミネーターを含む、哺乳動物選択マーカー発現ユニット;ならびにS.セレビシエ(S.cerevisiae)における選択および複製のために必要とされるURA3配列およびCEN-ARS配列を有する発現カセットを含む、哺乳動物発現ベクターである。

プラスミドpZMP20をBglIIで消化した後、ゲル抽出したIL-17RC[L21-K451]-mFc1 PCR断片との組換えを酵母中で実施する。コンピテントな酵母(S.セレビシエ)細胞100μlをIL-17RC[L21-K451]-mFc1挿入DNA 10μlおよびBglIIで消化したpZMP20ベクター100ngと混合し、0.2cmエレクトロポレーションキュベットにこの混合物を移す。0.75kV(5kV/cm)、無限大オーム、および25μFの電源供給(BioRad Laboratories, Hercules, CA)設定を用いて、酵母/DNA混合物に電気パルスをかける。1.2Mソルビトール600μlをキュベットに添加し、かつ、URA-Dプレート2つに酵母を100μlおよび300μlずつ播種し、30℃でインキュベートする。約72時間後、1つのプレートのUra⁺酵母形質転換体をH₂O 1ml中に再懸濁し、短時間遠心脱水して、酵母細胞を沈殿させる。溶解緩衝液(2％TritonX-100、1％SDS、100mM NaCl、10mM Tris、pH8.0、1mM EDTA)0.5ml中に細胞沈殿物を再懸濁する。酸で洗浄したガラスビーズ250μlおよびフェノール-クロロホルム300μlを含むエッペンドルフチューブにこの溶解混合物500μlを添加し、3分間ボルテックスし、かつ、エッペンドルフ遠心分離機によって最大速度で5分間、遠心分離する。水性相300μlを新しい試験管に移し、エタノール600μlを加えてDNAを沈殿させ、続いて、最大速度で30分間、遠心分離する。試験管をデカントし、70％エタノール1mlで沈殿物を洗浄する。試験管をデカントし、10mM Tris(pH8.0)、1mM EDTA 30μl中にDNA沈殿物を再懸濁する。

酵母DNA調製物5μlおよび大腸菌細胞50μlを用いて、エレクトロコンピテント大腸菌宿主細胞(DH12S)を形質転換させる。これらの細胞に2.0kV、25μF、および400オームで電気パルスをかける。エレクトロポレーション後、SOC(2％Bacto(商標)トリプトン(Difco, Detroit, MI)、0.5％酵母抽出物(Difco)、10mM NaCl、2.5mM KCl、10mM MgCl₂、10mM MgSO₄、20mMグルコース)1mlを添加し、次いで、LB AMPプレート(LBブロス(Lennox)、1.8％Bacto(商標)寒天(Difco)、100mg/Lアンピシリン)2つに50μlおよび200μlずつ細胞を播種する。

構築物用の3種のDNAクローン挿入物を配列解析に供し、正確な配列を含む1つのクローンを選択する。製造業者の取扱い説明書に従って市販のキット(QIAGEN Plasmid Mega Kit, Qiagen, Valencia, CA)を用いて、大量のプラスミドDNAを単離する。

実施例6
IL-17RC-CEE、IL-17RC-CHIS、およびIL-17RC-CFLAGを発現する哺乳動物可溶性IL-17RC発現構築物の構築
Glu-Glu(CEE)、6His(CHIS)、またはFLAG(CFLAG)のいずれかのC末端タグを有するヒトIL-17RC[L21-K451]を含む発現構築物を、IL-17RC[L21-K451]をコードするDNA断片(SEQ ID NO：42)および発現ベクターpZMP20を用いたPCRおよび相同組換えによって構築する。

IL-17RCCEEをコードするPCR断片は、pZMP20ベクター配列の最適化組織プラスミノーゲンアクチベータープレプロ分泌リーダー配列コード領域との5'オーバーラップ、IL-17RC細胞外ドメインをコードする[L21-K451]、Glu-Gluタグの配列(Glu Glu Tyr Met Pro Met Glu;SEQ ID NO：53)、およびpZMP20ベクターのポリオウイルス配列内リボソーム進入部位領域との3'オーバーラップを含む。PCR増幅反応では、5'オリゴヌクレオチド

、3'オリゴヌクレオチド

、および鋳型としての予め作製されたIL-17RCのDNAクローンを使用する。

PCR増幅反応条件は以下のとおりである：94℃で5分を1サイクル;94℃で1分、続いて55℃で2分、続いて72℃で3分を35サイクル;72℃で10分を1サイクル。PCR反応混合物を1％アガロースゲル上で泳動させ、かつ、QIAquick(商標)Gel Extraction Kit(Qiagen、カタログ番号28704)を用いて、予想されるサイズに対応するDNA断片をゲルから抽出する。

プラスミドpZMP20をBglIIで消化した後、ゲル抽出したIL-17RCCEE PCR断片との組換えを酵母中で実施する。コンピテントな酵母(S.セレビシエ)細胞100μlをIL-17RCCEE挿入DNA 10μlおよびBglIIで消化したpZMP20ベクター100ngと混合し、0.2cmエレクトロポレーションキュベットにこの混合物を移す。0.75kV(5kV/cm)、無限大オーム、および25μFの電源供給(BioRad Laboratories, Hercules, CA)設定を用いて、酵母/DNA混合物に電気パルスをかける。1.2Mソルビトール600μlをキュベットに添加し、かつ、URA-Dプレート2つに酵母を100μlおよび300μlずつ播種し、30℃でインキュベートする。約72時間後、1つのプレートのUra⁺酵母形質転換体をH₂O 1ml中に再懸濁し、短時間遠心脱水して、酵母細胞を沈殿させる。溶解緩衝液(2％TritonX-100、1％SDS、100mM NaCl、10mM Tris、pH8.0、1mM EDTA)0.5ml中に細胞沈殿物を再懸濁する。酸で洗浄したガラスビーズ250μlおよびフェノール-クロロホルム300μlを含むエッペンドルフチューブにこの溶解混合物500μlを添加し、3分間ボルテックスし、かつ、エッペンドルフ遠心分離機によって最大速度で5分間、遠心分離する。水性相300μlを新しい試験管に移し、エタノール600μlを加えてDNAを沈殿させ、続いて、最大速度で30分間、遠心分離する。試験管をデカントし、70％エタノール1mlで沈殿物を洗浄する。試験管をデカントし、10mM Tris(pH8.0)、1mM EDTA 30μl中にDNA沈殿物を再懸濁する。

酵母DNA調製物5μlおよび大腸菌細胞50μlを用いて、エレクトロコンピテント大腸菌宿主細胞(DH12S)を形質転換させる。これらの細胞に2.0kV、25μF、および400オームで電気パルスをかける。エレクトロポレーション後、SOC(2％Bacto(商標)トリプトン(Difco, Detroit, MI)、0.5％酵母抽出物(Difco)、10mM NaCl、2.5mM KCl、10mM MgCl₂、10mM MgSO₄、20mMグルコース)1mlを添加し、次いで、LB AMPプレート(LBブロス(Lennox)、1.8％Bacto(商標)寒天(Difco)、100mg/Lアンピシリン)2つに50μlおよび200μlずつ細胞を播種する。

構築物用の3種のDNAクローン挿入物を配列解析に供し、正確な配列を含む1つのクローンを選択する。製造業者の取扱い説明書に従って市販のキット(QIAGEN Plasmid Mega Kit, Qiagen, Valencia, CA)を用いて、大量のプラスミドDNAを単離する。

同じプロセスを用いて、Gly Ser Gly Gly His His His His His Hisから構成されるC末端Hisタグを有するIL-17RC(IL-17RCCHIS;SEQ ID NO：51)またはGly Ser Asp Tyr Lys Asp Asp Asp Asp Lysから構成されるC末端FLAGタグを有するIL-17RC(IL-17RCCFLAG;SEQ ID NO：52)を調製する。これらの構築物を調製するために、SEQ ID NO：50の3'オリゴヌクレオチドの代わりに、3'オリゴヌクレオチド

を使用して、IL-17RCCHISを作製するか、または3'オリゴヌクレオチド

を使用して、IL-17RCCFLAGを作製する。

実施例7
IL-17RC-mFc1融合タンパク質、ならびにC末端タグ付きタンパク質IL-17RC-CEE、IL-17RC-CHIS、およびIL-17RC-CFLAGを発現する可溶性IL-17RC受容体発現構築物のトランスフェクションおよび発現
可溶性IL-17RC融合物発現構築物またはタグ付きの発現構築物それぞれ200μgの3セットを、37℃で3時間、PvuI 200ユニットで別々に消化し、イソプロピルアルコールで沈殿させ、かつ、1.5mLマイクロチューブ中で遠心分離する。デカントして沈殿物から上清を除き、この沈殿物を70％エタノール1mLで洗浄し、かつ、室温で5分間インキュベートさせる。微量遠心管中、14,000RPMで10分間、試験管を遠心脱水し、デカントして沈殿物から上清を除く。次いで、無菌環境でCHO細胞組織培養培地750μl中に沈殿物を再懸濁し、60℃で30分間インキュベートさせ、かつ、室温まで放冷する。試験管3本のそれぞれにおいて約5×10⁶個のCHO細胞を沈殿させ、かつ、DNA-培地溶液を用いて再懸濁させる。DNA/細胞混合物を0.4cmギャップのキュベット中に入れ、以下のパラメーターを用いてエレクトロポレーションする：950μF、高キャパシタンス、300V。次いで、キュベットの内容物を取り出し、集め、CHO細胞組織培養培地を加えて25mLまで希釈し、125mL振盪フラスコ中に入れる。振盪機上の37℃、6％CO₂のインキュベーターにフラスコを入れ、120RPMで振盪する。

栄養素選択、続いて200nMメトトレキサート(MTX)、次いで1μM MTXへの段階的増幅にCHO細胞を供する。ウェスタンブロットによって融合タンパク質またはタグ付きタンパク質の発現を確認し、かつ、タンパク質精製用の採取物を得るためにCHO細胞プールをスケールアップする。

実施例8
可溶性IL-17RCの発現
IL-17RC_TbxのDNA断片および発現ベクターpZMP40を用いた相同組換えによって、IL-17RC-Tbx-C(Fc9)(SEQ ID NO：64)を含む発現プラスミドを構築した。プライマーzc44531およびzc44545を用いたPCR増幅によって断片を作製した。

PCR断片IL-17RC_Tbxは、予め作製されたIL-17RCクローンを鋳型として用いて作製された、部分的なIL-17RC細胞外ドメインコード領域を含む。この断片は、pZMP40ベクター配列のotPAコード領域との5'オーバーラップ、IL-17RCセグメント(SEQ ID NO：2のアミノ酸残基21番〜451番)、リンカー配列、トロンビン切断部位、およびpZMP40ベクターのFc9コード領域との3'オーバーラップを含む。使用したPCR条件は以下のとおりであった：94℃で5分を1サイクル;94℃で1分、続いて55℃で2分、続いて72℃で3分を35サイクル;72℃で10分を1サイクル。

PCR反応混合物を1％アガロースゲル上で泳動させ、かつ、QIAquick(商標)Gel Extraction Kit(Qiagen、カタログ番号28704)を用いて、挿入物のサイズに対応するバンドをゲルから抽出した。

プラスミドpZMP40は、MPSVプロモーター、コード配列を挿入するための複数の制限部位、otPAシグナルペプチド配列、およびFc9の配列;ポリオウイルス由来の配列内リボソーム進入部位(IRES)エレメント、ならびに膜貫通ドメインのC末端が切断されたCD8の細胞外ドメイン;大腸菌の複製起点;SV40のプロモーター、エンハンサー、および複製起点、DHFR遺伝子、およびSV40ターミネーターを含む、哺乳動物選択マーカー発現ユニット;ならびにS.セレビシエにおける選択および複製のために必要とされるURA3配列およびCEN-ARS配列を有する発現カセットを含む、哺乳動物発現ベクターである。pZMP21(米国特許出願公開第2003/0232414 A1号、アメリカ培養細胞系統保存機関(American Type Culture Collection)に寄託され、ATCC番号PTA-5266に指定されている)からこれを構築した。

プラスミドpZMP40をBglIIで切断した後、PCR断片との組換えを酵母中で実施した。コンピテントな酵母(S.セレビシエ)細胞100μlを挿入DNA(SEQ ID NO：66)10μlおよび切断したpZMP40ベクター100ngと独立に混合し、0.2cmエレクトロポレーションキュベットにこの混合物を移した。0.75kV(5kV/cm)、無限大オーム、および25μFの電源供給(BioRad Laboratories, Hercules, CA)設定を用いて、酵母/DNA 混合物に電気パルスをかけた。1.2Mソルビトール600μlをキュベットに添加し、かつ、URA-Dプレート2つに酵母を100μlおよび300μlずつ播種し、30℃でインキュベートした。約72時間後、1つのプレートのUra⁺酵母形質転換体をH₂O 1ml中に再懸濁し、短時間遠心脱水して、酵母細胞を沈殿させた。溶解緩衝液(2％TritonX-100、1％SDS、100mM NaCl、10mM Tris、pH8.0、1mM EDTA)0.5ml中に細胞沈殿物を再懸濁した。酸で洗浄したガラスビーズ250μlおよびフェノール-クロロホルム300μlを含むエッペンドルフチューブにこの溶解混合物500マイクロリットルを添加し、3分間ボルテックスし、かつ、エッペンドルフ遠心分離機によって最大速度で5分間、遠心分離した。水性相300マイクロリットルを新しい試験管に移し、エタノール(EtOH)600μlを加えてDNAを沈殿させ、続いて、最大速度で30分間、遠心分離した。試験管をデカントし、70％エタノール1mLで沈殿物を洗浄した。試験管をデカントし、TE 30μl中にDNA沈殿物を再懸濁した。

酵母DNA調製物5μlおよび細胞50μlを用いて、エレクトロコンピテント大腸菌宿主細胞(DH12S)を形質転換させた。これらの細胞に2.0kV、25μF、および400オームで電気パルスをかけた。エレクトロポレーション後、SOC(2％Bacto(商標)トリプトン(Difco, Detroit, MI)、0.5％酵母抽出物(Difco)、10mM NaCl、2.5mM KCl、10mM MgCl₂、10mM MgSO₄、20mMグルコース)1mlを添加し、次いで、LB AMPプレート(LBブロス(Lennox)、1.8％Bacto(商標)寒天(Difco)、100mg/Lアンピシリン)2つに50μlおよび200μlずつ細胞を播種した。

構築物用の3種のクローン挿入物を配列解析に供し、各構築物に対して正確な配列を含む1つのクローンを選択した。製造業者の取扱い説明書に従って市販のキット(QIAGEN Plasmid Mega Kit, Qiagen, Valencia, CA)を用いて、大量のプラスミドDNAを単離した。

次いで、IL-17RC[L21-K451]_Tbx_C(Fc9)構築物200μgの3セットを、37℃で3時間、Pvu I 200ユニットでそれぞれ消化し、次いでIPAで沈殿させ、かつ、1.5mLマイクロチューブ中で遠心分離した。デカントして沈殿物から上清を除き、この沈殿物を70％エタノール1mLで洗浄し、かつ、室温で5分間インキュベートさせた。微量遠心管中、14,000 RPMで10分間、試験管を遠心脱水し、デカントして沈殿物から上清を除いた。次いで、無菌環境でPF-CHO培地750μl中に沈殿物を再懸濁し、60℃で30分間インキュベートさせ、かつ、室温まで放冷した。3本の各試験管において5E6 APFDXB11細胞を遠心沈殿させ、かつ、DNA-培地溶液を用いて再懸濁させた。DNA/細胞混合物を0.4cmギャップのキュベット中に入れ、以下のパラメーターを用いてエレクトロポレーションした：950μF、高キャパシタンス、および300V。次いで、キュベットの内容物を取り出し、集め、PF-CHO培地を加えて25mLまで希釈し、125mL振盪フラスコ中に入れた。振盪機上の37℃、6％CO₂のインキュベーターにフラスコを入れ、120RPMで振盪した。

栄養素選択、続いて200nMメトトレキサート(MTX)、次いで1μM MTXへの段階的増幅に細胞株を供した。ウェスタンブロットによって発現を確認し、かつ、細胞株をスケールアップし、続いてタンパク質を精製した。

実施例9
CHO細胞からの可溶性IL-17RCの精製
2つのBiomax 0.1 m² 30kD分子量カットオフ膜カセット(Millipore, Bedford, MA)を通過させるPellicon-II接線流システムを用いて、IL-17RC-TbX-Fc9(SEQ ID NO：64)を発現するCHO細胞に由来する馴化培地を約10倍に濃縮した。濃縮した培地を氷酢酸によってpH5.5に調整し、0.2μmで滅菌ろ過し、次いで、4℃で一晩、バッチクロマトグラフィーによってProtein Gセファロース高流速樹脂(Pharmacia, Piscataway, NJ)上に添加した。pH調整した馴化培地を添加する前に、5カラム容量(約150ml)の25mM酢酸ナトリウム、150mM NaCl(pH5.5)を用いてProtein G樹脂を予め平衡化した。濾過し、pH調整した馴化培地と樹脂の比率は33：1(v/v)であった。

バッチ式クロマトグラフィーの工程は周囲温度(約21℃)で実施した。1回分として処理し、pH調整し、0.22μmで濾過した馴化培地を空の5.5×20.5cmガラスカラム(BioRad, Hercules, CA)中に注ぎ、重力によって充填した。10カラム容量(約300ml)の25mM酢酸ナトリウム、150mM NaCl(pH5.5)でカラムを洗浄した。次いで、100mMグリシン(pH2.7)を用いて、結合されたタンパク質のpH溶離を実施した。9.0mlの画分を集め、2.0M Tris(pH8.0)1.0mlで直ちに中和した。集めた画分をSDS-PAGEクーマシー染色によって解析した。IL-17RC-Tbx-Fc9を含む画分をプールし、かつ、分子量カットオフ5kDのBiomax膜スピン濃縮装置(Millipore, Bedford, MA)を製造業者の取扱い説明書に従って用いて、約6倍に濃縮した。

次いで、プールした濃縮画分を、7kD分子量カットオフ膜を用いるSlide-A-Lyzer(Pierce, Rockford, IL)によって、1×リン酸緩衝化生理食塩水(pH7.3)(Sigma, St.Louis, MO)に対して徹底的に4℃で透析した。1×リン酸緩衝化生理食塩水(pH7.3)中で調製したIL-17RC-TbX-Fc9を0.22μmで滅菌ろ過した後、等分し、-80℃で保存した。

実施例10
ヒトIL-17RCへのIL-17AおよびIL-17Fの結合
A)トランスフェクトされた細胞に対するビオチン化サイトカインの結合
ヒトIL-17受容体(SEQ ID NO：21)、ヒトIL-17RC(SEQ ID NO：2)、またはこれらの受容体の両方をコードする発現ベクターでトランスフェクトされた仔ハムスター腎臓(BHK)細胞を、ビオチン化したヒトIL-17AおよびヒトIL-17Fへのそれらの結合能力に関して評価する。ベルセンを用いて細胞を回収し、計数し、かつ、染色培地(SM)(HBSSに1mg/mlウシ血清アルブミン(BSA)、10mM Hepes、および0.1％アジ化ナトリウム(w/v)を添加したもの)中に細胞10⁷個/mlの濃度まで希釈した。ビオチン化されたヒトIL-17A(SEQ ID NO：14)およびヒトIL-17F(SEQ ID NO：16)を様々な濃度で細胞と共に氷上で30分間インキュベートする。30分後、SMで過剰なサイトカインを洗い流し、フィコエリトリンと結合させたストレプトアビジン(SA-PE)の1：100希釈物と共に氷上で30分間、細胞をインキュベートする。過剰なSA-PEを洗い流し、細胞をフローサイトメトリーによって解析する。サイトカイン染色の平均蛍光強度からサイトカイン結合の量を定量した。この解析から、本発明者らは、ヒトIL-17AがヒトIL-17RおよびIL-17RCの両方に同程度結合することを見出す。また、ヒトIL-17FはIL-17RCに同様のレベルで結合するが、IL-17Rには検出可能な程度に結合し、IL-17Aの場合に認められたレベルよりもレベルはかなり低い。

B)ヒト末梢血単核細胞へのビオチン化サイトカインの結合
フィコール密度勾配遠心分離によって、全血からヒト末梢血単核細胞(PBMC)を調製した。細胞10⁷個/mlのPBMCを、1μg/mlのビオチン化したIL-17AまたはIL-17F、および様々な白血球系系統を識別するように設計された特異的な細胞表面タンパク質に対する蛍光色素結合抗体と共に同時にインキュベートした。これらのマーカーには、CD4、CD8、CD19、CD11b、CD56、およびCD16が含まれる。過剰な抗体およびサイトカインを洗い流し、かつ、前述したようにSA-PEと共にインキュベートすることによって特異的サイトカイン結合を検出する。フローサイトメトリーによって試料を解析し、この解析から、本発明者らは、ヒトIL-17Aは検査したPBMC集団のほぼ全てに結合するが、ヒトIL-17Fは、いかなる集団にも検出可能な程度に結合しないことを見出す。

C)非標識サイトカインによる、ビオチン化したヒトIL-17AおよびIL-17Fの特異的結合の阻害
過剰な非標識のヒトIL-17AおよびIL-17Fを結合反応に含めること以外は前述したようにして結合研究を実施する。BHK細胞を用いた研究において、非標識サイトカインの量はある範囲の濃度で変動した。本発明者らは、非標識のIL-17Aを添加すると、IL-17RCおよびIL-17Rの両方に対するIL-17AおよびIL-17Fの両方の結合に対して競合したことを見出す。しかしながら、非標識IL-17Fは、IL-17RCに対するIL-17AおよびIL-17Fの両方の結合に対して競合したが、IL-17Rへの結合に対しては効果的に競合しなかった。このことから、IL-17AおよびIL-17Fの両方がIL-17RCに特異的に結合すること、ならびに、それらが結合の際に交差競合するため、同一であるか、または顕著にオーバーラップしている部位にそれらが結合することが示唆される。また、IL-17Aは、IL-17Rに対するIL-17Fの比較的弱い結合に対して競合することから、これら2種のサイトカインはまた、IL-17Rの同様の領域に結合するが、IL-17Fは、IL-17RCと比べてかなり低い親和力でIL-17Rに結合することが示唆される。

D)可溶性IL-17RCおよびIL-17Rによる、ビオチン化したヒトIL-17AおよびIL-17Fの特異的結合の阻害
可溶型のIL-17RCまたはIL-17Rを結合反応に含める以外は前述したようにして結合研究を実施する。これらの可溶性受容体は、ヒトIgG1定常(Fc)領域に融合された各受容体の細胞外ドメインに由来する融合タンパク質である。本発明者らは、IL-17RおよびIL-17RCをトランスフェクトされたBHK細胞の両方に対するヒトIL-17AおよびIL-17Fの両方の結合を可溶性IL-17RCが阻害することを見出す。しかしながら、可溶性IL-17Rは、いずれかの受容体に対するIL-17Aの結合を阻害するが、IL-17RCへのIL-17Fの結合を効果的に妨害せず、これは、IL-17Rに対するIL-17Fの結合が弱いことと一致している。

実施例11
IL-17AおよびIL-17FはIL-17RCに結合する
A)非放射性リガンドによる結合阻害
hIL-17RC(SEQ ID NO：2)およびIL-17R(SEQ ID NO：21)でトランスフェクトしたBHK細胞を、アッセイ法の2日前に、40,000細胞/ウェルの濃度で24ウェルディッシュ(Costar 3527)に播種した。ヨードビーズ法によって放射性標識しておいたIL-17A(SEQ ID NO：14)およびIL-17F(SEQ ID NO：16)を、結合緩衝液(10mg/mlウシ血清アルブミン(Gibco 15260-037))を含むRPMI 1640培地(JRH 51502-500M))中に、トリプリケート、濃度10ng/mlで、合計250ul/ウェルとなるように、独立にウェルに添加した。非放射性の競争物を100倍モル過剰で添加した。試験した競争物には、IL-17A、IL-17B、IL-17C、IL-17D、IL-17E、IL-17F、およびIL-21が含まれた。氷上で1時間、ウェルをインキュベートした後、PBS(Invitrogen 20012-027)で2回洗浄し、高塩濃度溶液(1.5M NaCL、50mM HEPES pH7.4)で1回洗浄した。室温で30分間、0.8M NaOH 500ulでウェルを抽出し、かつ、ガンマカウンター(Packard Cobra II A5005)でカウント/分を測定した。

これらの結果から、100倍モル濃度の非放射性IL-17AおよびIL-17Fが、BHK hIL-17RCへの¹²⁵I IL-17Aの結合を約7分の1に減少させることができるのに対し、IL-17B、IL-17C、IL-17D、IL-17E、およびIL-21は、結合に全く影響を与えないことが示された。100倍モル濃度の非放射性IL-17Aが、BHK IL-17Rへの¹²⁵I IL-17Aの結合を約4分の1に減少させたのに対し、IL-17B、IL-17C、IL-17D、IL-17E、IL-17F、およびIL-21は、結合に全く影響をあたえなかった。100倍モル濃度の非放射性IL-17AおよびIL-17Fが、BHK hIL-17RCへの¹²⁵IL-17Fの結合をそれぞれ約4分の1および5分の1に減少させたのに対し、IL-17B、IL-17C、IL-17D、IL-17E、およびIL-21は、結合に全く影響をあたえなかった。

B)可溶性受容体による結合阻害
100倍モル過剰の可溶性hIL-17RCx1/Fc9(実施例8)および可溶性IL-17R/Fc(R&Dから入手;参照番号177-IR)を非放射性リガンドの代わりに競合において使用した以外はパート1と同じようにして、hzytor14(SEQ ID NO：2)およびIL-17R(SEQ ID NO：21)をトランスフェクトさせたBHK細胞に対する結合を実施した。パート1と同様にして、細胞を洗浄、抽出し、計数した。

可溶性hIL-17RC/Fcは、BHK hIL-17RCへの¹²⁵IL-17Fの結合を阻害し、3回の実験の平均IC₅₀は、10倍モル過剰であった。同じ細胞株における可溶性hIL-17RC/Fcによる¹²⁵I IL-17Aの阻害の平均IC₅₀は20倍モル過剰であり、可溶性IL-17R/Fcによる¹²⁵I IL-17Aの阻害の平均IC₅₀は20倍モル過剰であった。

C)結合飽和
トランスフェクトさせたBHK細胞をパート1と同様に24ウェルディッシュに播種した。放射性標識したIL-17AおよびIL-17Fを、結合緩衝液中に、濃度4nMで開始し、(濃度1.83pMまで)8回の1：3希釈を実施して、トリプリケートで、合計250μl/ウェルとなるように添加した。別に、100倍モル過剰の非放射性リガンドを各希釈ポイントで添加した。パート1と同様にして、細胞を洗浄、抽出し、計数した。各希釈ポイントの非競合カウント数から100倍過剰のカウント数を引くことによって、添加した放射性標識リガンドの濃度に対して個々のカウント/分をプロットした。次いで、標準化したデータをプロットして、放射性標識リガンドとトランスフェクトしたBHK細胞の各組合せに対する飽和結合曲線を作製した。表4は、3回の実験すべてから算出した親和性の値を示す。

ワンサイト結合曲線適合が、IL-17Rに対するIL-17AおよびIL-17Fの結合と最も接近して一致した。ツーサイト結合曲線適合は、hIL-17RCに対するIL-17AおよびIL-17Fの結合と最も接近して一致した。高親和性結合部位は、上記に示した値である。低親和性結合部位は、非常に低い親和性を有し、かつ、3回の実験の間で大きく変動した。

実施例12
マウスNih3t3細胞は、ヒトIL-17AおよびIL-17Fに応答する
A)細胞の平板培養およびkz142アデノウイルスレポーター感染
マウス繊維芽細胞に由来するNih3t3細胞(ATCCで記載)Nih3t3を、グルタミンを含みピルビン酸で修正したDMEM/10％FBSを用いて、固体白色の細胞培養用コーティング96ウェルプレート(カタログ番号3917.Costar)中に5000細胞/ウェルで播種し、37℃、5％CO₂で一晩培養した。2日目に、平板培養培地を取り出し、かつ、5000粒子/細胞の感染多重度のKz142アデノウイルス粒子を、グルタミンを含みピルビン酸で修正したDMEM/1％FBS中で調製し、37℃、5％CO₂で一晩培養した。

B)kz142アデノウイルスレポーター感染nih3t3細胞のIL-17AおよびIL-17F活性化を測定するルシフェラーゼアッセイ法
アデノウイルス粒子レポーターと共に一晩インキュベーションした後、ヒトIL-17AおよびIL-17Fリガンド処理物を、0.28％BSAに修正した無血清培地中で調製した。アデノウイルス粒子および培地を取り出し、適切なリガンド用量をトリプリケートで添加した。37℃、5％CO₂で4時間インキュベーションを継続した後、培地を取り出し、細胞を15分間溶解し、かつ、ルシフェラーゼアッセイ系および試薬(カタログ番号1531、Promega, Madison, WI)ならびにマイクロプレート照度計を用いて、平均蛍光強度(MFI)を測定した。ヒトIL-17AおよびIL-17Fの濃度範囲0.1ng/ml〜1000ng/mlで活性を検出して、両リガンドに関して約50ng/mlのEC50値を得た。これらのデータから、nih3t3細胞がこれらのリガンドに対する受容体を有すること、ならびにIL-17AおよびIL-17FがNfKb/Ap-1転写因子を活性化することが示唆される。

実施例13
マウスNih3t3細胞はIL-17受容体およびIL-17RC受容体の両方を発現する
nih3t3 RNAのRTPCR解析により、これらの細胞がIL-17受容体およびIL-17RC受容体の両方に対して陽性であることが実証され、これは、ヒトIL-17AおよびIL-17F媒介に対するそれらのnfkb/ap1応答がこれらの受容体の一方または両方によって媒介されていることと一致した。

RTPCRの詳細：
A)マウスcytor14PCR
標準方法を用いて、nih3t3細胞から単離した全RNAから第1鎖cDNA調製した。HotStarポリメラーゼおよび製造業者の推奨(Qiagen, Valencia, CA)を使用し、センスプライマー

およびアンチセンスプライマー

ならびに35サイクルの増幅を用いて、PCRを適用した。アガロースゲル電気泳動により、予測されたサイズ850bpの単一の強いアンプリコンが示された。

B)マウスIL-17R PCR
標準方法を用いて、nih3t3細胞から単離した全RNAから第1鎖cDNA調製した。HotStarポリメラーゼおよび製造業者の推奨(Qiagen, Valencia, CA)を使用し、センスプライマー

およびアンチセンスプライマー

ならびに35サイクルの増幅を用いて、PCRを適用した。アガロースゲル電気泳動により、予測されたサイズ498bpの単一の強いアンプリコンが示された。

実施例14
ap1/nfkb転写因子を発現する安定なNih3t3アッセイクローンの作製
前述のマウスnih3t3細胞株を、ネオマイシン選択マーカーを含むkz142 ap1/nfkbレポーター構築物で安定にトランスフェクトした。Neo耐性トランスフェクションプールを、クローン密度で播種した。クローニングリングを用いてクローンを単離し、かつ、ヒトIL-17Aリガンドを誘導物質として用いるルシフェラーゼアッセイ法によってスクリーニングした。平均蛍光強度(MFI)(ap1/NfkBルシフェラーゼによる)が最高であり、かつバックグラウンドが最小であるクローンを選択した。安定なトランスフェクタント細胞株を選択し、nih3t3/kz142.8と呼んだ。

実施例15
可溶性IL-17RCおよびIL-17受容体/FCキメラを用いた、マウスNih3t3細胞におけるヒトIL-17AおよびIL-17Fによる活性化の阻害
ルシフェラーゼアッセイ法におけるap1/nfkbエレメントのヒトIL-17AおよびIL-17F活性化のアンタゴニストとして、可溶型のIL-17RCまたはIL-17Rを使用した。これらの可溶性受容体は、ヒトIgG1定常(Fc)領域に融合された各受容体の細胞外ドメインに由来する融合タンパク質である。可溶性ヒトIL-17R FC融合タンパク質は購入した(組換えヒトIL-17R/FC キメラ、カタログ番号177-IR-100、R&D Systems, Inc., Minneapolis, Mn)。可溶性ヒトIL-17RC FCキメラ(IL-17RCsR/FC9)は、前述したようにして構築した。本発明者らは、過剰なIL-17RCsR/FC9およびヒトIL17RsR/FCキメラは、マウスnih3t3/kz142.8アッセイ細胞株のap1/nfkb活性化のヒトIL-17AおよびIL-17F媒介の両方のEC50レベルを抑制する、ということを見出す。

IL-17RCsR/FC9タンパク質はIL-17F活性化に拮抗する際に最大の効力を示し、IL17RsR/FCキメラはIL-17A活性化に拮抗する際に最大の効力を示した。

実施例16
IL-17F mRNAは、喘息のマウスモデルにおいて上方調節される
感作および気道チャレンジマウスモデルにおいてIL-17F mRNAレベルを測定した。0日目および7日目に、組換えヤケヒョウヒダニ(Dermatophagoides pteronyssinus)アレルゲン 1(DerP1)(Indoor biotechnologies, Cardiff, UK)10 ugの50 ％ Imject Alum(Pierce)溶液を腹腔内注射することによって、8週齢〜10週齢のマウス群を感作した。7日後、3日間連続して(14日目、15日目、および16日目)、DerP1 20ugの50 ul PBS溶液でマウスをチャレンジした。この群に相当するマウスは4匹であった。陰性対照は、リン酸緩衝化生理食塩水(PBS)感作とそれに続くPBSチャレンジを受けたマウス5匹を含んだ。さらに、3匹のマウスは、DerP1感作とそれに続くPBSチャレンジを受けた。アレルゲンチャレンジまたは対照チャレンジ後48時間目に、肺組織全体を採取し、かつ全RNAを単離した。

各対象に由来する同一量の全RNAを用いて、第1の鎖cDNAを調製した。Qiagenホットスターポリメラーゼ(Qiagen, Valencia, CA)および製造業者の推奨によって、IL-17F PCRを実施した。IL-17F PCRでは、センスプライマー

およびアンチセンスプライマー

を用いた35サイクルの増幅を使用した。鋳型の質が対象すべての間で均一であることを確かめるために、IL-17F増幅において使用される同量の各鋳型にβアクチンPCRを適用した。ΒアクチンPCRは、センスプライマー

およびアンチセンスプライマー

を用いた25サイクルのPCRを含んだ。

DerP1で感作し、DerP1でチャレンジした処置群(喘息摸擬)のマウス4匹はすべて、活発なIL-17F増幅を示した。一方、DerP1感作/PBSチャレンジ処置群に相当する対象3匹のうち3匹およびPBS感作/PBSチャレンジ処置群の対象5匹のうち5匹を含む陰性対照からは、弱いIL-17F増幅が認められた。Βアクチン増幅は、陰性対照に対して、喘息を模擬した対象の場合と少なくとも同じくらい活発であったことから、陰性対照の弱いIL-17F増幅は鋳型の問題が原因ではないことが実証された。

実施例17
COS細胞トランスフェクションおよび分泌トラップ
A)Cos細胞トランスフェクションアッセイ法および分泌トラップアッセイ法により、IL-17RCsR/Fc9およびIL-17Fが受容体/リガンドペアであることが示される。
分泌トラップアッセイ法を用いて、ヒトIL-17RC(SEQ ID NO：2)をヒトIL-17F(SE QID NO：16)とマッチさせた。可溶性IL-17RCsR/Fc9融合タンパク質(実施例8)を、分泌アッセイ法における結合試薬として用いた。ヒトIL-17B、IL-17C、IL-17D、IL-17E、およびIL-17FのcDNAを含む、SV40oriを含む発現ベクターを、COS細胞中に一過性にトランスフェクトした。後述する分泌トラップアッセイ法を用いて、トランスフェクトされたCOS細胞にIL-17RCsR/Fc9を結合させた。IL-17RCsR/Fc9の陽性結合は、ヒトIL-17Fに対してのみ認められた。これらの結果から、ヒトIL-17RCおよびIL-17Fが受容体/リガンドペアであるという新規な知見が実証される。

B)COS細胞トランスフェクション
COS細胞トランスフェクションを、以下のようにして実施した：無血清DMEM培地(ピルビン酸ナトリウム55mg、L-グルタミン146mg、トランスフェリン5mg、インスリン2.5mg、セレン1μg、およびフェチュイン5mgのDMEM 500mlの溶液)92μl中で、プールしたDNA 3μlおよびリポフェクタミン(商標)5μlを混合し、室温で30分間インキュベートし、次いで、無血清DMEM培地400μlを添加する。この混合物500μlを、12ウエル組織培養プレートに播種したCOS細胞1.5×10⁵個/ウェルに添加し、37℃で5時間インキュベートする。500μlの20％FBS DMEM培地(FBS 100ml、ピルビン酸ナトリウム55mg、およびL-グルタミン146mgのDMEM 500mlの溶液)を添加し、一晩インキュベートする。

C)分泌トラップアッセイ法
分泌トラップを、以下のようにして実施した：PBSで細胞から培地を洗い流し、次いで、PBS中1.8％ホルムアルデヒドで15分間固定した。次いで、細胞をTNT(0.1M Tris-HCL、0.15M NaCl、および0.05％Tween-20の水溶液)で洗浄し、PBS中0.1％Triton-Xを15分間浸透させ、再びTNTで洗浄した。細胞をTNB(0.1M Tris-HCL、0.15M NaCl、および0.5％ブロッキング試薬(NEN Renaissance TSA-Directキット)の水溶液)で1時間ブロッキングし、再びTNTで洗浄した。1μg/mlヒトIL-17RCx1sR/FC9可溶性受容体融合タンパク質と共に細胞を1時間インキュベートした。次いで、TNTで細胞を洗浄した。1：200で希釈したヤギ抗ヒトIg-HRP(Fc特異的)と共に、細胞をさらに1時間インキュベートした。細胞を再びTNTで洗浄した。

希釈緩衝液中で1：50希釈したフルオレセインチラミド試薬(NENキット)を用いて陽性結合を検出し、4〜6分間インキュベートし、TNTで洗浄した。TNT中で1：5希釈したVectashield Mounting Media(Vector Labs Burlingame, CA)を用いて細胞を保存した。蛍光顕微鏡上でFITCフィルターを用いて、細胞を可視化した。

実施例18
マウス抗ヒトIL-17RCモノクローナル抗体の作製
A.抗IL-17RC抗体の作製のための免疫化
1.可溶性IL-17RC-muFc
隔週スケジュールで、Ribiアジュバント(Sigma)と1：1(v/v)で混合した可溶性ヒトIL-17RC-muFcタンパク質(実施例23)25ug〜50ugを腹腔内注射することにより、6〜12週齢の無処置マウスまたはIL-17RCノックアウトマウスを免疫化する。3回目の免疫化後7日〜10日目に、眼窩後方から放血させて血液試料を採取し、血清を回収し、かつ、(例えば本明細書中において説明する)中和アッセイ法においてIL-17RCへのIL-17またはIL-17Fの結合を阻害する能力、およびFACS染色アッセイ法において非トランスフェクト293細胞に対してIL-17RCトランスフェクト細胞を染色する能力に関して評価した。中和力価が頭打ちになるまで、前述したようにマウスを免疫化し、血液試料を採取および評価し続けた。頭打ちになった時点で、中和力価が最も高いマウスにPBS中可溶性IL-17RC-Fcタンパク質25ug〜50ugを血管内注射した。3日後、これらのマウスから脾臓およびリンパ節を採取し、例えばマウス骨髄腫(P3-X63-Ag8.653.3.12.11)細胞または当技術分野における他の適切な細胞株を用いて、当技術分野において公知の標準方法(例えばKearney, J.F. et al., J Immunol. 123：1548-50, 1979;およびLane, R.D. J Immunol Methods 81：223-8, 1985を参照されたい)によってハイブリドーマを作製するために用いた。

2.可溶性IL-17RC、IL-17RC-CEE、IL-17RC-CHIS、IL-17RC-CFLAG
隔週スケジュールで、Ribiアジュバント(Sigma)と1：1(v/v)で混合した可溶性ヒトIL-17RC-CEE、IL-17RC-CHIS、またはIL-17RC-CFLAG 25ug〜50ugを腹腔内注射することにより、6〜12週齢の無処置マウスまたはIL-17RCノックアウトマウスを免疫化する。3回目の免疫化後7日〜10日目に、眼窩後方から放血させて血液試料を採取し、血清を回収し、かつ、(例えば本明細書中において説明する)中和アッセイ法においてIL-17RCへのIL-17またはIL-17Fの結合を阻害する能力、およびFACS染色アッセイ法において非トランスフェクト293細胞に対してIL-17RCトランスフェクト細胞を染色する能力に関して評価する。中和力価が頭打ちになるまで、前述したようにマウスを免疫化し、血液試料を採取および評価し続ける。頭打ちになった時点で、中和力価が最も高いマウスにPBS中の可溶性IL-17RC、IL-17RC-CEE、zcytor-CHIS、またはIL-17RC-CFLAG抗原タンパク質25ug〜50ugを血管内注射する。3日後、これらのマウスから脾臓およびリンパ節を採取し、例えばマウス骨髄腫(P3-X63-Ag8.653.3.12.11)細胞または当技術分野における他の適切な細胞株を用いて、当技術分野において公知の標準方法(例えばKearney, J.F. et al., J Immunol. 123： 1548-50, 1979;およびLane, R.D. J Immunol Methods 81：223-8, 1985を参照されたい)によってハイブリドーマを作製するために用いる。

3.IL-17RCを発現するP815トランスフェクタント
1×10⁵個のトランスフェクトされたP815生細胞、例えばP815/IL-17RC細胞の腹腔内注射(例えば2×10⁵細胞/mlの細胞濃度で0.5ml)により、6〜10週齢の雌DBA/2マウスを免疫化する。注射前に、細胞を指数増殖期で維持する。注射用に細胞を採取し、PBSで3回洗浄し、次いで、PBS中に再懸濁して2×10⁵細胞/mlの濃度にする。このモデルでは、マウスは2〜3週間以内に腹水腫瘍を発症し、トランスフェクトされた標的抗原に対する免疫応答が開始されない場合には、4〜6週目までに進行して死に至る。3週目に、腹部膨張(腹水を示す)が認められないマウスを、2〜3週間間隔で、上記のように再免疫化する。2回目の免疫化後7日〜10日目に、眼窩後方から放血させて血液試料を採取し、血清を回収し、かつ、(例えば本明細書中において説明する)中和アッセイ法においてIL-17またはIL-17RCへのIL-17またはIL-17Fの結合を阻害する能力、およびFACS染色アッセイ法において非トランスフェクト293細胞に対してIL-17RCトランスフェクト細胞を染色する能力に関して評価する。中和力価が頭打ちになるまで、前述したようにマウスを免疫化し、血液試料を採取および評価し続ける。頭打ちになった時点で、中和力価が最も高いマウスに1×10⁵個のトランスフェクトされたP815生細胞を腹腔内注射する。4日後、これらのマウスから脾臓およびリンパ節を採取し、例えばマウス骨髄腫(P3-X63-Ag8.653.3.12.11)細胞または当技術分野における他の適切な細胞株を用いて、当技術分野において公知の標準方法(例えばKearney, J.F. et al.、前記;およびLane, R.D.前記を参照されたい)によってハイブリドーマを作製するために用いる。

トランスフェクトされたP815生細胞を用いる上記の免疫化スキームの代替案は、2〜3週毎に1〜5×10⁶個の放射線照射済みトランスフェクト細胞を腹腔内注射することを含む。このアプローチでは、腹水を発症し、それで死亡する動物はいない。その代わりに、2回目の免疫化後の採血で開始して、上記に概説したようにそれらの血清中のIL-17RCに対する中和免疫応答に関して動物をモニターする。中和力価が最高レベルに達したら、力価が最も高いマウスに、5×10⁶個の放射線照射済み細胞の融合前(pre-fusion)腹腔内注入を施し、その4日後、これらのマウスから脾臓およびリンパ節を採取し、例えばマウス骨髄腫(P3-X63-Ag8.653.3.12.11)細胞または当技術分野における他の適切な細胞株を用いて、当技術分野において公知の標準方法(例えば Kearney, J.F. et al.、前記;およびLane, R.D.前記を参照されたい)によってハイブリドーマを作製するために用いる。

B.IL-17RCに結合し、IL-17RCへのIL-17またはIL-17Fの結合を阻害する抗体を得るためのハイブリドーマ融合物のスクリーニング
融合後8〜10日目に、ハイブリドーマ上清に対して3つの異なる一次スクリーニングを実施する。第1のアッセイ法の場合、HRP結合ヤギ抗マウスκおよび抗λ軽鎖第2ステップ試薬を用いるELISAによって結合されたマウス抗体を同定することにより、上清中の抗体を、プレートに結合された可溶性ヒトIL-17RC、IL-17RC-muFc、IL-17RC-CEE、IL-17RC-CHIS、またはIL-17RC-CFLAGタンパク質に結合するそれらの能力に関して試験した。IL-17RC融合タンパク質のIL-17RC部分に対する特異性を実証するために、同じマウスのFc領域(mG2a)、EE配列、HIS配列、またはFLAG配列に融合された無関係なタンパク質に関して、最初のアッセイ法での陽性上清を評価した。IL-17RC融合タンパク質と結合するが、無関係なmuFCまたは融合タンパク質配列を含む他のタンパク質と結合しない、それらの上清中の抗体は、IL-17RCに対して特異的であるとみなした。第2のアッセイ法では、ELISAにより、プレートに結合されたIL-17RC-muFcまたはIL-17RC-融合タンパク質へのビオチン化ヒトIL-17またはビオチン化ヒトIL-17Fの結合を阻害する能力に関して、すべてのハイブリドーマ上清中の抗体を評価した。

ELISAアッセイ法においてIL-17RCへのIL-17またはIL-17Fの結合を阻害したか否かを問わず、IL-17RCに特異的に結合した抗体を含む上清はすべて、続いて、IL-17RCをトランスフェクトされたBaf3細胞もしくはBHK細胞または正常なヒト気管支上皮細胞へのIL-17またはIL-17Fの結合を阻害する能力に関して試験した。IL-17もしくはIL-17Fの阻害アッセイ法のいずれか、またはIL-17およびIL-17Fの阻害アッセイ法の両方において中和陽性である上清はすべて、続いて、FACS解析により、非トランスフェクトBaf3細胞またはBHK細胞に対してIL-17RCをトランスフェクトされたそれらの細胞を染色する能力に関して評価した。この解析は、IL-17RCへのIL-17またはIL-17Fの結合の阻害が、実際は、IL-17RC受容体と特異的に結合する抗体に起因するということを確認するために設計された。さらに、FACS解析は抗IgG第2ステップ試薬を用いて実施したため、個々のFACS陽性結果から中和抗体がIgGクラスのものである可能性が高かったことが示唆される。これらの手段により、プレート結合ELISAにおいてIL-17RCに結合し、ELISAベースの阻害アッセイ法においてIL-17RCへのIL-17またはIL-17Fの結合を阻害し、IL-17およびIL-17FとIL-17RCをトランスフェクトされたBaf3細胞またはBHK細胞とのそれぞれの相互作用を妨害し、かつ、抗マウスIgG第2ステップ試薬によるIL-17RCをトランスフェクトされたBaf3細胞またはBHK細胞の染色に関して強い陽性を示したマスターウェルを同定した。

第3のアッセイ法は、IL-17RCを発現し、かつ、IL-17F処理に応答してIL-8またはIL-6を分泌するように誘導され得る初代ヒト気管支上皮細胞からなる。特異的モノクローナル抗体は、IL-17またはIL-17Fにより刺激されるこれらの細胞によるIL-8またはIL-6の産生を阻害する能力によって分析する。IL-17またはIL-17Fに応答したIL-8およびIL-6産生は、本明細書において説明するように分析される。

あるいは、NIH3T3または他のIL-17RCを含む細胞におけるIL-17またはIL-17F誘導性ルシフェラーゼ産生のモノクローナル抗体、抗IL-17RCを媒介とした阻害が、上記の生物活性中和アッセイ法のうちの1つとともに、またはその代わりに使用され得る。NIH3T3細胞におけるNFkB媒介性ルシフェラーゼアッセイ法は、本明細書において説明する。

C)抗IL-17RC特異的抗体を産生するハイブリドーマのクローニング
適切にトランスフェクトされたBaF3細胞またはBHK細胞へのIL-17およびIL-17Fの結合を交差中和した特異的抗IL-17RC mAbを産生するハイブリドーマ細胞株を、標準的な低濃度希釈(細胞1個未満/ウェル)アプローチによりクローン化する。播種後約5〜7日目に、例えば、プレートに結合したヒトIL-17RC-muFcに対するELISAと、それに続く、前述したように無関係なmuFc含有融合タンパク質に対するELISAによる陽性ウェルの再試験によって、クローンをスクリーニングする。上清がIL-17RC-muFcに結合するが無関係なmuFc含有融合タンパク質には結合しない選択クローンを、中和アッセイ法ならびにFACS解析の両方を繰り返すことにより、特異的抗体活性に関してさらに確認する。選択したIL-17RC抗体陽性クローンすべてを最低2回クローン化して、クローン性を保証し、かつ抗体産生の安定性を評価するのを助ける。好ましくは、結果として生じるクローンの少なくとも95％が中和性抗IL-17RC抗体産生に関して陽性になるまで、さらに何回かクローニングを実施し、前述したようにスクリーニングする。

D)抗IL-17RC mAbによって認識される分子の生化学的特徴付け
推定上の抗IL-17RC mAbによって認識される標的分子IL-17RCが、実際、IL-17RCであるという生化学的確認は、標準的な免疫沈降法とそれに続くSDS-PAGE解析またはウェスタンブロット法手順(両方とも、非トランスフェクトBaf3細胞またはBHK細胞に対してIL-17RCトランスフェクトBaf3細胞またはBHK細胞に由来する可溶性膜調製物を使用する)によって実施される。さらに、IL-17RCを発現する非トランスフェクト細胞株の可溶性膜調製物を用いて、mAbがネイティブ受容体鎖ならびにトランスフェクト受容体鎖を認識することを示す。あるいは、可溶性IL-17RC-muFcタンパク質を特異的に免疫沈降させるか、またはウェスタンブロットする能力に関してmAbを試験する。

実施例19
ヒトIL-17RCをトランスフェクトしたP815細胞を注射したマウスに由来する血清によるヒトIL-17RCの中和
細胞ベースの中和アッセイ法を用いて、ヒトIL-17RCトランスフェクトP815生細胞(実施例17)を注射したマウスに由来する血清を、1％、0.5％、0.25％、0.13％、0.06％、0.03％、0.02％、および0％の段階希釈液として添加する。アッセイプレートを37℃、5％CO₂で4日間インキュベートし、完了時に20μl/ウェルのAlamar Blue(Accumed, Chicago, IL)を添加する。37℃、5％CO₂で16時間、プレートを再びインキュベートする。結果から、これらの動物のうち4匹に由来する血清が、huIL-17およびhuIL-17Fの両方のシグナル伝達をヒトIL-17RCによって中和し得ることが示された。

これらのような結果から、例えば本発明のIL-17RCに対する中和モノクローナル抗体を介して(個々にまたは共に)IL-17またはIL-17Fに結合し、その活性を妨害、阻害、低減、拮抗、または中和することによってIL-17RCを効果的に妨害することが、インビボでのIL-17およびIL-17Fの作用を(単独または共に)を低減するのに有利となり得、かつ、例えば、乾癬、IBD、結腸炎、慢性閉塞性肺疾患、嚢胞性線維症、またはIL-17および/もしくはIL-17Fによって誘発される他の炎症性疾患(IBD、関節炎、喘息、乾癬性関節炎、結腸炎、炎症性皮膚病態、およびアトピー性皮膚炎を含む)において認められるもののような、IL-17および/またはIL-17Fによって誘発される炎症を低減し得るというさらなる証拠が提供される。

実施例20
抗ヒトIL-17RCモノクローナル抗体の薬物動態
試験モノクローナル抗体である抗ヒトIL-17RC mAbを、例えば濃度約1mg/mL(280nMでのUV吸光度により決定)の3×3mlアリコートで提供し、使用するまで−80℃で保存した。ビヒクルは、1×PBS(50mM NaPO₄、109mM NaCl)、pH7.3である。使用前にmAbを室温で解凍し、アリコート1および2を使用して、それぞれ100μgのIV投薬群およびSC投薬群を提供する。アリコート3の半量を1×PBS中で1：2希釈して50μg SC投薬群とし、アリコート3の残り半量を1×PBS中で1：10希釈して10μg SC投薬群とする。SCID雌マウス(n=96)をCharles River Labsから入手する。到着時に動物の健康状態を検査し、群別に収容する(動物3匹/ケージ)。マウスは、試験開始時に12週齢であり、平均体重は約22gである。

A)投薬プロトコル
SCID雌マウス(n=24/投薬群)を4つの投薬群にランダムに配置する(表5)。第1群には、尾静脈への約93μLのIV注射により抗ヒトIL-17RC mAbを投与した。第2、第3、および第4群には、頚部の首筋への約93μLのSC注射によりmAbを投与する。

B)試料収集
血液収集前に、ハロタンまたはイソフルオランでマウスを十分に麻酔した。168時間後の時点(眼からの採血によって収集し、504時間後の時点に心臓穿刺によって同じ動物から再び採血した)を除く全時点において心臓穿刺によって血液試料を収集した。血液を血清分離管中に採取し、15分間凝血させた。続いて、14,000rpmで3分間、試料を遠心分離した。遠心分離後、125uL〜150uLのアリコートをラベル付きエッペンドルフ管中に分注し、解析まで直ちに-80℃で保存した。

C)ELISAによる血清抗ヒトIL-17RC mAb濃度の定量
酵素結合免疫吸着測定法(ELISA)を発達させ、薬物動態試験中に抗IL-17RCmAbを投薬した動物に由来するマウス血清試料を解析するのに適格にする。このアッセイ法は、市販されている二次抗体およびTMBを用いた比色検出を活用するように設計する。検量線のために使用する希釈物を改良して、検量線の直線部分の明確さを改善した。2倍希釈物を用いた100ng/mL〜0.231ng/mLの範囲の検量線により、マウス血清試料の定量化が可能になる。QC試料を10％SCIDマウス血清中で1：100、1：1000、および1：10000に希釈し、検量線から逆算する。

D)薬物動態学的解析
薬物動態学的解析のために、血清濃度対時間データをWinNonlin Professional 4.0ソフトウエア(Pharsight, Inc.;Cary, NC)にダウンロードする。非コンパートメント解析を用いて、各時点での平均データに基づいて薬物動態学的パラメーターを決定する。

実施例21
抗ヒトIL-17RCモノクローナル抗体によるIL-17およびIL-17Fの活性の中和
細胞ベースの中和アッセイ法を用いて、精製したマウス抗ヒトIL-17RCモノクローナル抗体を、例えば10μg/ml、5μg/ml、2.5μg/ml、1.25μg/ml、625ng/ml、313ng/ml、156ng/ml、および78ng/mlの段階希釈液として添加する。アッセイプレートを37℃、5％CO₂で4日間インキュベートし、完了時に20μl/ウェルのAlamar Blue(Accumed, Chicago, IL)を添加する。37℃、5％CO₂で16時間、プレートを再びインキュベートする。このアッセイ法により、精製した抗ヒトIL-17RCモノクローナル抗体がヒトIL-17RCを介してhuIL-17およびhuIL-17Fの両方のシグナル伝達を中和できることを実証することができる。著しく効果的な抗体の場合、濃度約10μg/mlで使用される場合、その抗体はhuIL-17またはhuIL-17Fによって誘導される増殖を完全に中和し、この増殖阻害はより低い濃度では用量依存的に低減する。アイソタイプを一致させた陰性対照マウスmAbは、前述の濃度で試験した場合、いずれのサイトカインの増殖の阻害も提供しないと予想される。これらの結果から、IL-17RCに対するモノクローナル抗体が、低濃度で炎症誘発性リガンドIL-17およびIL-17Fの活性に実際に拮抗し得ることをさらに実証することができる。

実施例22
IL-17Aは、ヒト末梢血単核細胞中のIFN-γおよびTNF-αのレベルの上昇を誘導する
ヒト末梢血単核細胞(PBMC)をフィコール密度勾配遠心分離によって精製し、次いで、培地単独、50ng/ml抗ヒトCD3抗体、または50ng/ml抗ヒトCD3抗体と1μg/ml抗ヒトCD28抗体の組合せ中、37℃で一晩インキュベートする。これらの各条件に対する複製培養物を準備し、サイトカイン無し、25ng/mlヒトIL-17A、または25ng/mlヒトIL-17Fを与える。24時間インキュベーションした後、各培養物の上清を採取し、B-D Bioscience'sヒトTh1/Th2 Cytometric Bead Array(CBA)を用いてサイトカイン含有量を分析する。本発明者らは、抗CD3または抗CD3および抗CD28のいずれかで刺激され、かつ、IL-17Aを補充された培養物が、サイトカインを添加されなかった培養物またはIL-17Fを与えられた培養物よりも、有意に高いレベルのIFN-γおよびTNF-α(それぞれ3〜5倍上昇)を含むことを発見した。抗CD3刺激を与えられなかった培養物は、サイトカインレベルの有意な変化を示さなかった。さらに、IL-17A添加は、CBAを用いて分析した、IL-2、IL-4、IL-5、およびIL-10を含む他のサイトカインの有意な変化も誘導しなかった。このデータから、IL-17Aは、抗CD3または抗CD3および抗CD28で刺激したPBMC培養物におけるIFN-γおよびTNF-αの産生を増大させることができるが、IL-17Fはこれをできないことが示唆される。

実施例23
IL-17RC-Fcは、マウスコラーゲン誘発関節炎(CIA)モデルにおいて疾患の発生率および進行を低減させる
A)マウスコラーゲン誘発関節炎(CIA)モデル
10週齢のDBA/1J雄マウス(Jackson Labs)をマウス13匹/群の3群に分ける。21日前に、(Chondrex(Redmond, WA)によって調製された)完全フロイントアジュバント中で調製した1mg/mlニワトリII型コラーゲン50μl〜100μlを動物の尾部に皮内注射し、3週間後の0日目に、不完全フロイントアジュバン中で調製した以外は同じ注射液をそれらに注射する。IL-17RC-Fcは、1週3回、4週間、0日目からマウスの大多数が疾患の中程度の症状を示す日までの範囲の様々な時点に腹腔内注射によって投与する。マウス群には、10μg/動物/用量または100μg/動物/用量のIL-17RC-Fcのいずれかを与え、対照群には、ビヒクル対照のPBS(Life Technologies, Rockville, MD)を与える。動物は、2回目のコラーゲン注射後に関節炎の症状を示し始め、ほとんどの動物が1.5〜3週間以内に炎症を発症する。各足の疾患の程度を、足の厚みを測定するためのカリパスを用い、かつ、各足に対して以下の臨床スコア(0〜3)を割り当てることによって評価する：0＝正常、0.5＝足指の炎症、1＝軽度の足の炎症、2＝中等度の足の炎症、および3＝下記に詳述する重度の足の炎症。

B)疾患のモニタリング
動物は、2回目のコラーゲン注射後まもなく、足の炎症の徴候を示し始める場合があり、一部の動物は、2回目のコラーゲン注射前に足指の炎症の徴候を示し始める場合さえある。ほとんどの動物は、追加免疫注射から1.5〜3週間以内に関節炎を発症するが、一部の動物は、より長い期間を必要とする場合がある。このモデルにおける疾患の発生率は、典型的には95％〜100％であり、動物40匹を用いた研究では、典型的には非応答動物0匹〜2匹(6週間の観察後に判定)が認められる。炎症が始まると、多様な軽度の足炎症または足指炎症が一般的に一過性に発生し得ることに留意されたい。この理由から、動物は、顕著で持続的な足の腫脹を発症するまでは、確立された疾患を有するとみなされない。

全ての動物を毎日観察して、足の疾患の状態を評価する。これは、各足に定性的臨床スコアを割り当てることによって実施する。毎日、臨床疾患の状態に従って、各動物の4つの足を採点する。臨床スコアを決定するために、足は、3つの領域、すなわち足指、足それ自体(手または足)、および手首または足首の関節を有すると考えることができる。以下を含む、これらの領域に対する炎症の程度および重症度に注目する：各足指の腫脹の観察;爪の裂傷または足指の発赤;任意の足における浮腫または発赤の任意の証拠に関する記録;腱または骨の微細解剖学的境界の任意の消失に関する記録;手首または足首の任意の浮腫または発赤の評価;および、炎症が脚の基部方向に及んでいるかの記録。足スコア1、2、または3は、第1に重症度の全体的印象に基づき、第2に、いくつの領域が関与しているかに基づく。臨床スコアリングのために使用される尺度を以下に示す。
C)臨床スコア
0＝正常
0.5＝1つまたは複数の足指が関与しているが、足指のみが炎症を起こしている
1＝足を含む軽度の炎症(1つの領域)。1つまたは複数の足指を含んでよい
2＝足における中等度の炎症。足指および/または手首/足首のうちいくつかを含んでよい(2つの領域)
3＝足、手首/足首、および足指の一部または全体における重度の炎症(3つの領域)。

確立された疾患は、連続して2日間持続する、2またはそれ以上にランク付けされる定性的スコアの足炎症として定義される。確立された疾患が存在したら、その日付を記録し、「確立された疾患」を有する動物の最初の日と呼ぶ。

抗コラーゲン抗体の血清レベル、ならびに血清免疫グロブリンレベルおよびサイトカインレベルをモニターするために、実験を通して血液を採取する。血清中の抗コラーゲン抗体は、疾患の重症度とよく相関している。動物を21日目に安楽死させ、血清およびCBCを得るために血液を採取する。各動物から、1つの罹患足を組織学のために10％NBF中に採取し、かつ、1つを液体窒素中で凍結し、mRNA解析のために-80℃で保存する。同様に、脾臓1/2、胸腺1/2、腸間膜リンパ節1/2、肝葉1つ、および左腎臓をRNA解析用にRNAlater中に採取し、脾臓1/2、胸腺1/2、腸間膜リンパ節1/2、残りの肝臓、および右腎臓を組織学用に10％NBF中に採取する。免疫グロブリンアッセイ法およびサイトカインアッセイ法用に血清を採取し、-80℃で凍結する。

すべての時点のIL-17RC-Fcを与えられたマウス群は、足炎症の発生および/または進行の遅延を特徴とする。これらの結果から、IL-17RCが、このモデルに関連する炎症、ならびに疾患の発生率および進行を低減させ得ることが示唆される。これらの結果は、IL-17RC-Fcが、血清TNFa、IL-1b、および抗コラーゲン抗体のレベルの低下をもたらしたという観察結果によってさらに裏付けられる。

実施例24
ap1/nfkb転写因子を発現するマウスのアッセイ用細胞株Nih3t3/kz142.8におけるIL-17RCの安定な過剰発現
マウスnih3t3/kz142.8アッセイ用細胞株に、メトトレキサート耐性遺伝子(ジヒドロ葉酸還元酵素、DHFR)を有する発現ベクター中のヒトIL-17RCx1(SEQ ID NO：2)をトランスフェクトした。このトランスフェクションは、市販されているキットおよび製造業者の推奨(Mirus, Madison, WI. カタログ番号MIR218)を用いて実施した。ヒトIL-17RCX1導入遺伝子を含む発現ベクターを選択するために、1μM メトトレキサート(mtx)で修正した増殖培地に細胞を播種した。選択後、ヒトIL-17RCx1トランスフェクションプールを作製し、nih3t3/kz142.8/hcytor14x1と呼んだ。

A)nih3t3/kz142.8アッセイ用細胞株を用いたルシフェラーゼアッセイ法
nih3t3/kz142.8は安定なkz142レポーターを有するため、このレポーターを付加するためのアデノウイルス感染を必要としない。したがってルシフェラーゼアッセイ法プロトコルを短縮し、以下の方法を実施した。

1.細胞の平板培養
nih3t3/kz142.8細胞を、グルタミンを含みピルビン酸で修正したDMEM/10％FBSを用いて、固体白色の細胞培養用コーティング96ウェルプレート(カタログ番号3917.Costar)中に5000細胞/ウェルで播種し、37℃、5％CO₂で一晩培養した。この2日目に、平板培養培地を除去し、グルタミンを含みピルビン酸で修正したDMEM/1％FBSと交換し、37℃、5％CO₂で一晩培養した。

2.安定なkz142レポーターのIL-17AおよびIL-17F活性化を測定するルシフェラーゼアッセイ法
1％fbs、DMEM培地中で一晩インキュベーションした後、BSAで0.28％レベルに修正した無血清培地中でヒトIL-17AおよびIL-17Fリガンド希釈液を作製した。リガンド希釈液を添加した後、37℃、5％CO₂で4時間、細胞をインキュベーションし、その後培地を取り出し、細胞を15分間溶解し、かつ、ルシフェラーゼアッセイ系および試薬(カタログ番号e1531、Promega, Madison, WI)ならびにマイクロプレート照度計を用いて、平均蛍光強度(MFI)を測定した。活性は、0.1ng/ml〜1000ng/mlの範囲の濃度で両リガンドに関して検出した。nih3t3/kz142.8/hcytor14x1トランスフェクションプールは、マウスIL-17Aリガンドに対して親細胞株の場合と同様の活性を示した(実施例14)。しかしながら、cytor14x1トランスフェクタントプールは、これらのリガンド濃度が20フェムトグラム(femptogram)程度に低い場合でさえ、ヒトIL-17AおよびIL-17F処理に対する応答性の増大を示した。mIL-17Aシグナル伝達が親細胞株におけるシグナル伝達に匹敵する(実施例14)ということから、ヒトIL-17RC発現細胞に一般的な非特異的問題は存在しないということ、およびマウスIL-17Aがおそらくは内因性のマウスnih3t3細胞IL-17RまたはIL-17RC受容体を介してシグナル伝達しているということが示唆される。したがって、ヒトIL-17AおよびIL-17Fがこのような低リガンド濃度でMFIの増大を引き起こすということは、過剰発現されたヒトIL-17RC受容体によって媒介される、それらのリガンドに対する細胞の特異的応答性亢進を示し得る。

この結果は、重要な臨床的および生物学的な派生問題および有用性を有する。例えば、生理学的状況は、IL-17RC受容体の局所的上方調節を引き起こす場合があり、これは次に、IL-17AおよびIL-17Fに対するこれらの領域の応答性を亢進させ、結果として、IL-17RC過剰発現が無い場合に示される場合よりもはるかに低いリガンド濃度で生物学的活性化をもたらし得る。したがって、当業者が従来考えるかまたは認識していたよりもはるかに低い可溶性受容体レベルが、これらの仮説上より低いリガンド濃度に拮抗するのに十分であり得る。

実施例25
IL-17FおよびIL-17A活性に対するアンタゴニストは、炎症性腸疾患(IBD)モデルにおいて疾患の発生率および進行を低減させる
このモデルは、IBD患者由来の培養された腸組織が、健常な対照由来の組織と比べて、より高レベルの炎症メディエーターを産生することを示すために設計される。炎症メディエーター(IL-Ib、IL-4、IL-5、IL-6、IL-8、IL-12、IL-13、IL-15、IL-17AおよびIL-17F、IL-18、IL-23、TNF-a、IFN-g、MIPファミリーメンバー、MCP-1、G-CSFおよびGM-CSFなどを含むがこれらに限定されるわけではない)の産生のこの増大は、炎症経路および下流のエフェクター細胞の活性化に対する作用を介して、クローン病(CD)および潰瘍性大腸炎(UC)などのIBDに関連する症状および病理の一因となる。次いで、これらの経路および成分は、インビボで観察される組織および細胞の損傷/破壊をもたらす。したがって、このモデルは、IBDの炎症メディエーターが増強されたこの状況を模擬し得る。さらに、健常な対照またはヒト腸上皮細胞(IEC)株に由来する腸組織をこれらの炎症性成分の存在下で培養する場合、炎症経路シグナル伝達、ならびに組織および細胞の損傷の証拠が観察され得る。

ヒトIBDにおいてインビボで有効であると思われる治療薬は、炎症メディエーターの産生および/または存在を阻害および/または中和することによって、上記のエクスビボモデルまたはIECモデルにおいて作用するはずである。

このモデルでは、ヒト腸組織を、IBD患者もしくは腸生検、切除を受けた健常対照から、または死後の組織採集から採取し、Alexakis et al(Gut 53：85-90; 2004)の改変法を用いて処理する。無菌条件下で、大量のPBSで試料を穏やかに洗浄し、続いて、完全組織培養培地(および細菌の過剰増殖を防止するための抗生物質)の存在下で、細かく切った組織切片を培養する。細かく切った組織の同じプールに由来する試料を以下のうち1種で処理する：ビヒクル(PBS)、組換えヒト(rh)IL-17A、rhIL-17F、またはrhIL-17A+rhIL-17F。さらに、IL-17AまたはIL-17Fのいずれかのアンタゴニストを用いて、または用いずに、単独でまたは組み合わせて(可溶性IL-17RCなど)、これらを処理する。この実験プロトコールは、細胞が既存のストックから継代培養される点を除いて、ヒトIEC株を用いた研究用のプロトコールに従う。様々な期間(1時間〜数日間)培養した後、上清を採取し、上記に挙げたものを含む炎症メディエーターのレベルを解析する。IBD患者由来の試料において、またはrhIL-17Aおよび/もしくはrhIL-17Fで処理した試料において、炎症性サイトカインおよび炎症性ケモカインのレベルは、未処理の健常な対照組織試料と比べて上昇している。IL-17RA可溶性受容体ならびに本発明の抗ヒトIL-17RAモノクローナル抗体および中和抗体を含むそれらに対する抗体などIL-17F活性および/またはIL-17A活性に対するアンタゴニストを添加すると、炎症メディエーターの産生が著しく減少し、したがって、ヒトIBDおいて有効であることが予想される。

実施例26
IL-17FおよびIL-17A活性に対するアンタゴニストは、多発性硬化症(MS)モデルにおいて疾患の発生率および進行を低減させる
多発性硬化症(MS)は、リンパ球性および単核性の細胞炎症性浸潤物の存在ならびにCNSの全体にわたる脱髄を含む、いくつかの要因によって媒介されると考えられている複合疾患である。ミクログリアは、中枢神経系(CNS)に存在し、かつ、損傷または炎症の際に活性化されるマクロファージ様細胞である。ミクログリアは、MSを含む様々なCNS疾患において重大な役割を果たすと意味付けられており、疾患の開始、進行、および治療法のメカニズムを研究するために使用され得る(Nagai et al. Neurobiol Dis 8：1057-1068; 2001、Olson et al. J Neurosci Methods 128：33-43; 2003)。したがって、不死化されたヒトミクログリア細胞株および/または樹立されたヒトアストログリア細胞株は、これらの細胞型に対する炎症メディエーターの作用のいくつかおよび中和に対するそれらの可能性を研究するために使用することができる。炎症メディエーター(IL-Ib、IL-6、IL-8、IL-12、IL-13、IL-15、IL-17AおよびIL-17F、IL-18、IL-23、TNF-a、IFN-g、MIPファミリーメンバー、RANTES、IP-10、MCP-1、G-CSFおよびGM-CSFなどを含むがこれらに限定されるわけではない)は、炎症経路および下流のエフェクター細胞の活性化に対する作用を介して、MSに関連する症状および病理の一因となり得る。

IL-17AおよびIL-17Fの炎症誘発性作用、ならびにこれらの作用を中和または減少させるための、IL-17RC可溶性受容体ならびに本発明の抗ヒトIL-17RCモノクローナル抗体および中和抗体を含むそれらに対する抗体などIL-17F活性および/またはIL-17A活性に対するアンタゴニストの能力を評価するために、培養したグリア細胞を以下のうち1種で処理する：ビヒクル、rhIL-17A、rhIL-17F、rhIL-17A+IL-17F。さらに、IL-17AまたはIL-17Fのいずれかのアンタゴニストを用いて、または用いずに、単独でまたは組み合わせて(可溶性IL-17RCなど)、これらを処理する。様々な期間(1時間〜数日間)培養した後、上清および細胞を採取し、上記に挙げたものを含む炎症メディエーターのレベルおよび/または発現を解析する。炎症性サイトカインおよび炎症性ケモカインのレベルは、ビヒクルのみで処理した培養物と比べて、rhIL-17Aおよび/またはIL-17Fの存在下で上昇している。IL-17RC可溶性受容体ならびに本発明の抗ヒトIL-17RCモノクローナル抗体および中和抗体を含むそれらに対する抗体などIL-17F活性および/またはIL-17A活性に対するアンタゴニストを添加すると、炎症メディエーターの産生および発現が著しく減少し、したがって、ヒトMSに関連した炎症性状況において有効であることが予想される。

実施例27
IL-17FおよびIL-17A活性に対するアンタゴニストは、関節リウマチ(RA)および変形性関節症(OA)モデルにおいて疾患の発生率および進行を低減させる
このモデルは、ヒト滑膜培養物(滑膜マクロファージ、滑膜線維芽細胞、および関節軟骨細胞を含む)ならびにRA患者およびOA患者由来の外植片が、健常な対照に由来する培養物/外植片と比べて、より高いレベルの炎症メディエーターを産生することを示すために設計される。炎症メディエーター(オンコスタチンM、IL-Ib、IL-6、IL-8、IL-12、IL-15、IL-17AおよびIL-17F、IL-18、IL-23、TNF-a、IFN-g、IP-10、RANTES、RANKL、MIPファミリーメンバー、MCP-1、G-CSFおよびGM-CSF、一酸化窒素などを含むがこれらに限定されるわけではない)の産生のこの増大は、炎症経路および下流のエフェクター細胞の活性化に対する作用を介して、RAおよびOAに関連する症状および病理の一因となる。次いで、これらの経路および成分は、炎症性浸潤物、軟骨および基質の減少/破壊、骨量減少、ならびにプロスタグランジンおよびシクロオキシゲナーゼの上方調節をもたらす。したがって、このモデルは、インビトロ実験およびエクスビボ実験においてRAおよびOAの破壊的な炎症性状況を模擬することができる。さらに、健常な対照に由来する外植片および滑膜培養物が、これらの炎症性成分(例えば、オンコスタチンM、TNF-a、IL-1b、IL-6、IL-17AおよびIL-17F、IL-15など)のうちいくつかの存在下で培養される場合、炎症経路のシグナル伝達が観察され得る。ヒトRAにおいてインビボで有効であると思われる治療薬は、炎症メディエーターの産生および/または存在を阻害および/または中和することによって、上記のインビトロモデルおよびエクスビボモデルにおいて作用するはずである。

このモデルでは、ヒト滑膜外植片は、RA患者、OA患者、もしくは関節置換術を受けた健常な対照から、または死後の組織採取から採取し、かつ、WooleyおよびTetlow(Arthritis Res 2：65-70; 2000)ならびにvan't Hof et al(Rheumatology 39：1004-1008; 2000)の改変法を用いて処理する。同様に、滑膜線維芽細胞、滑膜マクロファージおよび関節の軟骨細胞の培養物も研究する。複製試料を以下のうち1種で処理する：ビヒクル(PBS)、組換えヒト(rh)IL-17A、rhIL-17F、またはrhIL-17A+rhIL-17F。一部の試料は、オンコスタチンM、TNF-a、IL-1b、IL-6、IL-17A、IL-17F、およびIL-15の様々な組合せを含む。さらに、IL-17RC可溶性受容体ならびに本発明の抗ヒトIL-17RCモノクローナル抗体および中和抗体を含むそれらに対する抗体などIL-17F活性および/もしくはIL-17A活性に対するアンタゴニストを用いて、または用いずに、これらを処理する。様々な期間(1時間〜数日間)培養した後、上清を採取し、上記に挙げたものを含む炎症メディエーターのレベルを解析する。RA患者もしくはOA患者由来の試料において、または(単独もしくは他の炎症性サイトカインと組み合わせて)rhIL-17Aおよび/もしくはrhIL-17Fで処理した試料において、炎症性サイトカインおよび炎症性ケモカインのレベルは、未処理の健常な対照外植片または未処理の細胞培養物と比べて上昇している。IL-17RC可溶性受容体ならびに本発明の抗ヒトIL-17RCモノクローナル抗体および中和抗体を含むそれらに対する抗体などIL-17F活性および/またはIL-17A活性に対するアンタゴニストを添加すると、炎症メディエーターの産生が著しく減少し、したがって、ヒトRAおよびOAおいて有効であることが予想される。

実施例28
IL-17AおよびIL-17Fの機能的応答
NIH-3T3/KZ142細胞を、ヒトIL-17RCx1(SEQ ID NO：1)およびマウスIL-17RCx1(SEQ ID NO：25)で安定にトランスフェクトした。前述したように、IL-17A、IL-17F、マウスIL-17F、および適切な対照の用量応答で7分間および15分間、各株を処理した。IL-17RCx1(SEQ ID NO：1)をトランスフェクトした場合、IL-17AおよびIL-17Fの両方とも、対照株からの固有のシグナル伝達より約30％高い、リン酸化IκB-αおよびp38MAPK転写因子の用量依存的応答を示した。IL-17AおよびIL-17Fは、マウスIL-17RCx1(SEQ ID NO：25)をトランスフェクトした場合、シグナル伝達増大を示さなかった。マウスIL-17Fは、ヒトまたはマウスのIL-17RCx1のいずれに対してもシグナル伝達の増大を示さなかった。

実施例29
マウス疾患モデルにおけるIL-17A、IL-17F、IL-17R、およびIL-17RCの発現
4種のマウス疾患モデル(喘息、DSS結腸炎、アトピー性皮膚炎、および実験的アレルギー性脳脊髄炎)を、公知の技術を用いて、IL-17A、IL-17F、IL-17R、およびIL-17RCの発現に関して分析した。

喘息モデルにおいて、IL-17AおよびIL-17Fは、罹患マウスおよび非罹患マウスの肺、脾臓、肺流入領域リンパ節、および肺浸潤細胞において非常に低いレベルから検出不可能なレベルで発現される。IL-17RCメッセージは、脾臓およびリンパ節よりも肺において高発現されることが判明したが、疾患によって調節されていなかった。IL-17Rは、肺よりも脾臓および肺流入領域リンパ節において高発現されていたが、やはり疾患によって調節されていなかった。

喘息モデルとは異なり、IL-17AおよびIL-17Fは、罹患マウスDSS結腸炎モデルの近位結腸および遠位結腸の両方において著しく上方調節されていたが、正常マウスのモデルでは上方調節されていなかった。どちらのサイトカインも、腸間膜リンパ節において有意に上方調節されていなかった。さらに、急性のDSS誘発性結腸炎において両方のサイトカインが上方調節されるが、慢性のDSS誘発性結腸炎においては上方調節されないことも判明した。IL-17Rは、近位結腸および遠位結腸と比べて腸間膜リンパ節において顕著に発現されることが判明したが、疾患によって調節されていなかった。一方、IL-17RCは、腸間膜リンパ節よりも近位の遠位結腸組織において高発現された。IL-17RC発現もまた、疾患によって調節されていなかった。

アトピー性皮膚炎において、IL-17A mRNAは検出可能ではなかった。IL-17Fは、皮膚および皮膚流入領域リンパ節の両方において発現されることが判明したが、疾患によって有意に調節されていないと思われた。IL-17R mRNAは、皮膚よりも皮膚流入領域リンパ節において高発現されていたが、疾患によって調節されていなかった。IL-17RCは、皮膚流入領域リンパ節よりも皮膚において高発現されていたが、やはり、疾患によって調節されていなかった。

実験的アレルギー性脳脊髄炎において、IL-17AおよびIL-17Fの両方とも、罹患マウスの脊髄において上方調節されているようであったが、健常マウスにおいてはそうではなかった。IL-17Fは、脊髄よりもリンパ節で高発現されている場合があったが、リンパ節における発現は疾患によって調節されていなかった。しかしながら、これらの組織における発現の総合的レベルは非常に低かった。IL-17Rは、脳および脊髄よりもリンパ節組織において高発現されていた。IL-17RCは試験しなかった。

要するに、IL-17AおよびIL-17Fの発現は、DSS誘発性結腸炎モデルおよび実験的アレルギー性脳脊髄炎モデルにおいては疾患によって調節されていると思われたが、喘息またはアトピー性皮膚炎の場合はそのように見受けられなかった。IL-17RおよびIL-17RCの発現は疾患によって調節されていると思われないが、IL-17R発現は、リンパ組織において強化されていると思われ、IL-17RC発現は、非リンパ組織において強化されていると思われる。

実施例30
IL-17RCはIL-17AおよびIL-17Fの両方に対する活性化のメディエーターである
マウスnih3t3/kz142.8アッセイ用細胞株を、メトトレキサート耐性遺伝子(ジヒドロ葉酸還元酵素、DHFR)を有する発現ベクター中のヒトIL-17RCX1(SEQ ID NO：2)でトランスフェクトした。ヒトIL-17RA(SEQ ID NO：21)を、この細胞株に同様にトランスフェクトした。トランスフェクションは、市販されているキットおよび製造業者の推奨(Mirus, Madison, WI. カタログ番号MIR218)を用いて実施した。発現構築物を含む発現ベクターを選択するために、1μM メトトレキサート(mtx)で修正した増殖培地に細胞を播種した。選択後、トランスフェクションプールを作製し、nih3t3/kz142.8/hcytor14X1およびnih3t3/kz142.8/IL-17Rと呼んだ。

A)nih3t3/kz142.8ベースの細胞株を用いたルシフェラーゼアッセイ法
nih3t3/kz142.8ベースの細胞株は安定なap1/nfkbレポーター(kz142)を有するため、このレポーターを付加するためのアデノウイルス感染を必要としない。したがって、ルシフェラーゼアッセイ法プロトコルを短縮し、以下の方法を実施した：

1.細胞の平板培養
細胞を、グルタミンを含みピルビン酸で改良したDMEM/10％FBSを用いて、固体白色の細胞培養用コーティング96ウェルプレート(カタログ番号3917.Costar)中に5000細胞/ウェルで播種し、37℃、5％CO₂で一晩培養した。この2日目に、平板培養培地を除去し、グルタミンを含みピルビン酸で改良したDMEM/1％FBSと交換し、37℃、5％CO₂で一晩培養した。

2.安定なkz142レポーターのIL-17AおよびIL-17F活性化を測定するルシフェラーゼアッセイ法
1％fbs、DMEM培地中で一晩インキュベーションした後、BSAで0.28％レベルに修正した無血清培地中でヒトIL-17AおよびIL-17Fリガンド希釈液を作製した。リガンド希釈液を添加した後、37℃、5％CO₂で4時間、細胞をインキュベーションし、その後培地を取り出し、細胞を15分間溶解し、かつ、ルシフェラーゼアッセイ系および試薬(カタログ番号e1531、Promega. Madison, WI)ならびにマイクロプレート照度計を用いて、平均蛍光強度(MFI)を測定した。活性は、0.1ng/ml〜100ng/mlの範囲の濃度で両リガンドに関して検出した。

下記に考察するEC₅₀は、少なくとも4回の実験の平均である。nih3t3/kz142.8/hcytor14x1トランスフェクションプールは、マウスIL-17Aリガンドに対して親細胞株の場合と同様の活性を示し、EC₅₀は約4ng/mlであった(実施例14)。hcytor14x1組換え株におけるmIL-17Aシグナル伝達が親細胞株におけるシグナル伝達に匹敵する(実施例14)ということから、マウスIL-17Aがおそらくは内因性マウスnih3t3細胞IL-17RAまたはIL-17RC受容体を介してシグナル伝達しており、かつ、hcytor14X1を介しては細胞を活性化しないということが示唆される。しかしながら、hIL-17RCX1トランスフェクタントプールは、ヒトIL-17A処理に対する応答性増大を示し、EC₅₀は親株における2.8ng/mlに対して0.41ng/ml(実験4回の平均)であった(組換え株においてEC₅₀は6.8倍強力)。さらに、hIL-17RCX1組換え株はhIL-17Fに対して増大した応答性を有し、EC₅₀は親株における10ng/mlに対して組換え株において0.61ng/mlであった(組換え株においてEC₅₀は17倍強力)。hIL-17RCX1株におけるhIL-17AおよびhIL-17Fに対する効力増大は、ヒトIL-17RCX1がヒトIL-17AおよびIL-17Fの両方に対する高親和性受容体であることと一致している。一方、hIL-17RA組換え株は、hIL-17Aに対してのみ感受性増大を示し、EC₅₀は親株における2.8ng/mlに対して0.6ng/mlであった。hIL-17RA組換え株におけるhIL-17FのEC₅₀の増大は認められず、IL-17F EC₅₀は親株における8.9ng/mlに対して12.4ng/mlであった。

この結果は、hIL-17AおよびhIL-17Fの両方に対する活性化のメディエーターとしてhIL-17RCX1を具体的に意味付けるため重要であり、かつ、hIL-17RAがhIL-17A活性化に対してのみシグナル伝達を媒介し、hIL-17F活性化に対しては媒介しないことを示唆する。

実施例31
IL-17RCx4はIL-17AおよびIL-17Fの両方に結合する
IL-17RCはIL-17FおよびIL-17Aの受容体であることが以前に示されている。具体的には、IL-17RCx1がIL-17FおよびIL-17Aの両方に結合することが示された。しかしながら、IL-17RCx4もまたIL-17FおよびIL-17Aの両方に結合することを以下に示す。

IL-17RCのヒトスプライス変異体の結合パターン
IL-17RCの様々なスプライス変異体を前提として、いくつかのヒトスプライス変異体の結合解析を実施した。ヒトにおけるスプライス変異体の数ははるかに多く、したがって、初期実験はこれらの分子の部分集団に対してのみ実施した。この解析のために選択されたものは、エキソン7およびエキソン12を含むか、または含まないかの点で異なっていた。これらの変異体をヒトIL-17RCx1、IL-17RCx4、IL-17RCx2、およびIL-17RCx7と呼び、下記の表6にも例示する。やはり、上記の実施例で説明したように、これらのスプライス変異体を293T細胞において一過性に発現させ、マウスおよびヒトのビオチン化IL-17AおよびIL-17Fに結合するそれらの能力に関して試験した。この結合データの定性的評価を表6に示す。先に提示した実験と一致して、ヒトIL-17RCx1はヒトIL-17AおよびIL-17Fの両方に結合したが、マウスサイトカインのいずれにも結合しなかった。ヒトIL-17RCx4もまた、両方のヒトサイトカインに結合し、かつ、マウスIL-17Fにも結合したが、マウスIL-17Aには結合しなかった。ヒトIL-17RCx2およびIL-17RCx7は、試験した4種のサイトカインのいずれにも結合できなかった。

様々なIL-17RCスプライス変異体がマウスおよびヒトのIL-17AおよびIL-17Fに結合する能力の検査により、サイトカイン結合に不可欠である受容体の2つの部分、および意外にも、マウスサイトカインとヒトサイトカインの結合特徴に微妙な違いがあることが明らかにされた。最も意外であるのは、これらの特徴が、検査した受容体の種に関わらずサイトカインに関して一貫していることである。表6に示すデータから、本発明者らは、エキソン12およびエキソン8のすべてが、ヒトIL-17AおよびIL-17FがIL-17RCに結合するために必要とされていると結論を下すことができる。これらの各アイソフォームは、エキソン7が含まれるか否かに関しては異なるが、エキソン8のすべておよびエキソン12を含む。このことから、エキソン7がヒトサイトカインの結合に必須ではないことが暗示される。

*IL-17RCスプライス変異体およびサイトカイン結合評価;各スプライス変異体にエキソン7、8、および12が含まれるかを示し、4種の各サイトカインに対する各変異体の結合能力を示す。
¹は、転写物に完全に含まれるエキソンを示す。マウス変異体の場合、エキソン8の3'末端は常に含まれるが、(-)記号はその5'末端が含まれないことを示す。
²(+)記号は、FACSを用いて蛍光の有意な増加によって評価される検出可能な有意なサイトカイン結合を示す。(-)記号は蛍光の有意な変化が無いことを示す。

前述の内容から、本発明の特定の態様が、例証のために本明細書において説明されるが、本発明の精神および範囲から逸脱することなく様々な修正を実施し得ることが、理解されると考えられる。従って、添付の特許請求の範囲を除いて本発明は限定されるものではない。

Claims (61)

1. SEQ ID NO：68に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む少なくとも1つのIL-17RCサブユニットを含む、単離された可溶性受容体。
2. ポリペプチドリンカーによって相互に連結されている2つのIL17RCサブユニットを含む、請求項1記載の可溶性受容体。
3. IL-17A(SEQ ID NO：14)またはIL-17F(SEQ ID NO：16)の炎症誘発性活性を減少させる、請求項1記載の可溶性受容体。
4. IL-17A(SEQ ID NO：14)およびIL-17F(SEQ ID NO：16)の両方の炎症誘発性活性を減少させる、請求項1記載の可溶性受容体。
5. ポリペプチドリンカーが約100個〜240個のアミノ酸残基を有する、請求項4記載の可溶性受容体。
6. SEQ ID NO：68のアミノ酸残基21番〜467番を含む少なくとも1つのIL17RCサブユニットを含む、単離された可溶性受容体。
7. ポリペプチドリンカーによって相互に連結されている2つのIL17RCサブユニットを含む、請求項6記載の可溶性受容体。
8. ポリペプチドリンカーが約100個〜240個のアミノ酸残基を有する、請求項7記載の可溶性受容体。
9. IL-17A(SEQ ID NO：14)またはIL-17F(SEQ ID NO：16)の炎症誘発性活性を減少させる、請求項6記載の可溶性受容体。
10. IL-17A(SEQ ID NO：14)およびIL-17F(SEQ ID NO：16)の両方の炎症誘発性活性を減少させる、請求項6記載の可溶性受容体。
11. IL-17Aによって誘発される炎症またはIL-17Fによって誘発される炎症を軽減させる方法であって、炎症を有する哺乳動物に、炎症を軽減させるのに十分な量の請求項1〜10のいずれか一項記載の可溶性受容体の組成物を投与する段階を含む方法。
12. IL-17Aによって誘発される炎症およびIL-17Fによって誘発される炎症を軽減させる方法であって、炎症を有する哺乳動物に、炎症を軽減させるのに十分な量の請求項1〜10のいずれか一項記載の可溶性受容体の組成物を投与する段階を含む方法。
13. 請求項1〜10のいずれか一項記載の可溶性受容体を投与する段階を含む、IL-17AまたはIL-17Fが役割を果たしている炎症性疾患に苦しむ哺乳動物を治療する方法であって、IL-17A(SEQ ID NO：14)またはIL-17F(SEQ ID NO：16)のいずれかの炎症性活性が減少する、方法。
14. 請求項1〜10のいずれか一項記載の可溶性受容体を投与する段階を含む、IL-17AおよびIL-17Fが役割を果たしている炎症性疾患に苦しむ哺乳動物を治療する方法であって、IL-17A(SEQ ID NO：14)およびIL-17F(SEQ ID NO：16)のいずれかの炎症性活性が減少する、方法。
15. 疾患が喘息である、請求項11〜14のいずれか一項記載の方法。
16. 疾患が慢性炎症性疾患である、請求項11〜14のいずれか一項記載の方法。
17. 疾患が、炎症性腸疾患、潰瘍性大腸炎、クローン病、関節炎、アトピー性皮膚炎、または乾癬を含む慢性炎症性疾患である、請求項16記載の方法。
18. 疾患が急性炎症性疾患である、請求項11〜14のいずれか一項記載の方法。
19. 疾患が、内毒素血症、敗血症、トキシックショック症候群、または感染症を含む急性炎症性疾患である、請求項18記載の方法。
20. IL-17AまたはIL-17Fが役割を果たしている炎症性疾患に苦しむ哺乳動物を治療する方法であって、IL-17AまたはIL-17Fのアンタゴニストを該哺乳動物に投与する段階を含み、該アンタゴニストが、
    i)IL17RCx4可溶性受容体、または
    ii)請求項1〜10のいずれか一項記載のIL17RC可溶性受容体、または
    iii)SEQ ID NO：68に示されるポリペプチドもしくはその断片
    からなる群より選択され、かつ、
    IL-17A(SEQ ID NO：14)またはIL-17F(SEQ ID NO：16)のいずれかの炎症性活性が減少する、方法。
21. 病理学的状態が喘息である、請求項20記載の方法。
22. 病理学的状態が慢性炎症性状態である、請求項20記載の方法。
23. 慢性炎症性状態が、炎症性腸疾患、潰瘍性大腸炎、クローン病、関節炎、アトピー性皮膚炎、または乾癬を含む、請求項22記載の方法。
24. 病理学的状態が急性炎症性状態である、請求項20記載の方法。
25. 急性炎症性状態が、内毒素血症、敗血症、トキシックショック症候群、または感染症を含む、請求項24記載の方法。
26. IL-17AおよびIL-17Fが役割を果たしている炎症性疾患に苦しむ哺乳動物を治療する方法であって、IL-17AおよびIL-17Fのアンタゴニストを該哺乳動物に投与する段階を含み、該アンタゴニストが、
    i)IL17RCx4可溶性受容体、または
    ii)請求項1〜10のいずれか一項記載のIL17RC可溶性受容体、または
    iii)SEQ ID NO：68に示されるポリペプチドもしくはその断片
    からなる群より選択され、かつ、
    IL-17A(SEQ ID NO：14)またはIL-17F(SEQ ID NO：16)のいずれかの炎症性活性が減少する、方法。
27. 病理学的状態が喘息である、請求項26記載の方法。
28. 病理学的状態が慢性炎症性状態である、請求項26記載の方法。
29. 慢性炎症性状態が、炎症性腸疾患、潰瘍性大腸炎、クローン病、関節炎、アトピー性皮膚炎、または乾癬を含む、請求項28記載の方法。
30. 病理学的状態が急性炎症性状態である、請求項26記載の方法。
31. 急性炎症性状態が、内毒素血症、敗血症、トキシックショック症候群、または感染症を含む、請求項30記載の方法。
32. IL-17RC活性に関連する、対象における病理学的状態を治療する方法であって、請求項1〜10のいずれか一項記載の可溶性受容体の有効量を投与し、それによって該病理学的状態を治療する段階を含む方法。
33. 病理学的状態が喘息である、請求項32記載の方法。
34. 病理学的状態が慢性炎症性状態である、請求項33記載の方法。
35. 慢性炎症性状態が、炎症性腸疾患、潰瘍性大腸炎、クローン病、関節炎、アトピー性皮膚炎、または乾癬を含む、請求項34記載の方法。
36. 病理学的状態が急性炎症性状態である、請求項32記載の方法。
37. 急性炎症性状態が、内毒素血症、敗血症、トキシックショック症候群、または感染症を含む、請求項36記載の方法。
38. 請求項1〜10のいずれか一項記載の可溶性受容体を含む、IL-17RCが役割を果たしている炎症性疾患に苦しむ哺乳動物を治療する方法であって、炎症性活性が減少する、方法。
39. 疾患が喘息である、請求項38記載の方法。
40. 疾患が慢性炎症性疾患である、請求項38記載の方法。
41. 疾患が、炎症性腸疾患、潰瘍性大腸炎、クローン病、関節炎、アトピー性皮膚炎、または乾癬を含む慢性炎症性疾患である、請求項40記載の方法。
42. 疾患が急性炎症性疾患である、請求項38記載の方法。
43. 疾患が、内毒素血症、敗血症、トキシックショック症候群、または感染症を含む急性炎症性疾患である、請求項42記載の方法。
44. IL-17RC活性に関連する、対象における病理学的状態を治療する方法であって、
    i)IL17RCx4可溶性受容体、または
    ii)請求項1〜10のいずれか一項記載のIL17RC可溶性受容体、または
    iii)SEQ ID NO：68に示されるポリペプチド配列のポリペプチドもしくはポリペプチド断片
    の有効量を投与し、それによって該病理学的状態を治療する段階を含む方法。
45. 病理学的状態が喘息である、請求項44記載の方法。
46. 病理学的状態が慢性炎症性状態である、請求項44記載の方法。
47. 慢性炎症性状態が、炎症性腸疾患、潰瘍性大腸炎、クローン病、関節炎、アトピー性皮膚炎、または乾癬を含む、請求項46記載の方法。
48. 病理学的状態が急性炎症性状態である、請求項44記載の方法。
49. 急性炎症性状態が、内毒素血症、敗血症、トキシックショック症候群、または感染症を含む、請求項48記載の方法。
50. 炎症が軽減されるようにIL17RCのアンタゴニストを該哺乳動物に投与する段階を含む、IL-17RCが役割を果たしている炎症性疾患に苦しむ哺乳動物を治療する方法であって、該アンタゴニストが、
    i)IL17RCx4可溶性受容体、
    ii)請求項1〜10のいずれか一項記載のIL17RC可溶性受容体、または
    iii)SEQ ID NO：68に示されるポリペプチド配列のポリペプチドもしくはポリペプチド断片
    を含み、かつ、
    炎症性活性が減少する、方法。
51. 疾患が喘息である、請求項50記載の方法。
52. 疾患が慢性炎症性疾患である、請求項50記載の方法。
53. 疾患が、炎症性腸疾患、潰瘍性大腸炎、クローン病、関節炎、アトピー性皮膚炎、または乾癬を含む慢性炎症性疾患である、請求項52記載の方法。
54. 疾患が急性炎症性疾患である、請求項50記載の方法。
55. 疾患が、内毒素血症、敗血症、トキシックショック症候群、または感染症を含む急性炎症性疾患である、請求項54記載の方法。
56. SEQ ID NO：68に示されるアミノ酸残基の配列を含むポリペプチドに結合し、かつ、IL-17A(SEQ ID NO：14)またはIL-17F(SEQ ID NO：16)のいずれかの炎症誘発性活性を減少させる、抗体または抗体断片。
57. IL-17A(SEQ ID NO：14)およびIL-17F(SEQ ID NO：16)の両方の炎症誘発性活性を減少させる、請求項56記載の抗体または抗体断片。
58. (a)ポリクローナル抗体、(b)マウスモノクローナル抗体、(c)(b)に由来するヒト化抗体、(d)抗体断片、または(e)ヒトモノクローナル抗体である、請求項57記載の抗体または抗体断片。
59. 抗体が、放射性核種、酵素、基質、補助因子、蛍光マーカー、化学発光マーカー、ペプチドタグ、磁性粒子、薬物、または毒素をさらに含む、請求項58記載の抗体または抗体断片。
60. さらにPEG化を含む、請求項59記載の抗体。
61. (a)ポリクローナル抗体、(b)マウスモノクローナル抗体、(c)(b)に由来するヒト化抗体、(d)抗体断片、または(e)ヒトモノクローナル抗体である、請求項60記載の抗体または抗体断片。