JP2009503451A - 磁性粒子を使用する横方向流アッセイおよびデバイス - Google Patents

Abstract

金属コロイドに結合した磁性粒子を含む複合体。該複合体は、被検物質を決定する方法で使用するための試薬の一部とすることができる。試薬は、被検物質に特異的な結合パートナーを含むことができる。試薬は、さらに、被検物質を検出するために使用される第２の標識とは区別可能な第１の標識を含むことができる。試薬は、サンプル中の被検物質を検出するためのキットおよび方法において使用される。それらの方法には、第１の標識がアッセイを較正するために使用される方法などの、免疫測定方法が含まれる。

Description

一般に、本発明は、サンプル中の被検物質の検出に関する。より詳細には、本発明は、横方向流マトリックスと磁性粒子とを含むデバイスおよびキットを使用する、被検物質の検出に関する。

生物学的または非生物学的流体中に存在し得る、目的とする物質の存在および／若しくは量または臨床的有意性を決定するために、様々な分析手法およびデバイスが、特異的結合アッセイにおいて一般的に使用されている。そのような物質は、一般に「被検物質（ａｎａｌｙｔｅｓ）」と呼ばれ、抗体、抗原、薬物、ホルモンなどが含まれる。

目的とする被検物質に特異的に結合する物質を使用しうることが、結合アッセイの使用に基づいた、急成長する診断デバイス市場を生み出してきた。結合アッセイは、抗体および抗原免疫反応物質によって代表される特異的結合メンバーを組み込み、ここでは、特異的結合対の１つのメンバーが、信号発生化合物（例えば、酵素で標識された抗体、蛍光化合物、化学発光化合物、放射性同位体、直接視覚的標識など）によって標識される。例えば、結合アッセイでは、被検物質を含有すると思われる試験サンプルを、標識された抗被検物質抗体、すなわち、コンジュゲートと混合し、免疫反応が起こるのに十分な時間にわたってインキュベートすることができる。続いて、反応混合物を分析して、被検物質／コンジュゲート複合体（結合したコンジュゲート）に結び付いた標識、または被検物質と複合体を形成していない標識（結合していないコンジュゲート）のいずれかを検出する。その結果、これらの種の１つにおける標識の量を試験サンプル中の被検物質の量と相関させることができる。

固相アッセイフォーマットは、一般的に使用される結合アッセイ技術である。被検物質の存在がコンジュゲートおよび／または固定化された相補的結合メンバーへの被検物質の結合によって示される、多数のアッセイデバイスおよび手法がある。固定化された結合メンバーは、ディップスティック、試験ストリップ、フロースルーパッド、紙、繊維マトリックス、または他の好適な固相材料などの固相に結合しており、またはアッセイの間にそれらの固相と結合する。被検物質とアッセイ試薬との間の結合反応は、固相上で固定化されたものと、結合していないままのものとの間で、コンジュゲートの分配をもたらす。試験サンプル中の被検物質の存在または量は、通常、コンジュゲートが固相材料上で固定化される程度によって示される。

特異的結合アッセイにおける、試薬を含浸させた試験ストリップの使用も周知である。そのような手法では、試験サンプルが、試験ストリップの一部分に適用されて、ストリップ材料を移動するか、または毛管作用によって吸い上げられる。ゆえに、検出若しくは測定されるべき被検物質は、材料内を、または材料に沿って通過し、これは試験サンプル自体若しくは別個に添加される溶液とすることのできる溶出液を利用して行ってもよい。被検物質は、試験ストリップ上の捕捉または検出ゾーンへと移動し、ここには、被検物質に対する相補的結合メンバーが固定化されている。被検物質が検出ゾーン内で結合する程度は、コンジュゲートを用いて決定することができ、これは試験ストリップに組み込んでもよく、別個に適用してもよい。

他の検出技術は、磁性粒子またはマイクロビーズを使用する。これは、時にはより具体的に超常磁性酸化鉄を含浸させたポリマービーズとも呼ばれる。これらのビーズは、試験しているサンプル中の標的被検物質と結合し、次いで、通常、磁気的に溶液から単離または分離される。単離が行われた後には、直接光学的にせよカメラを用いるにせよ、特定の画像を観察することなどの他の試験を実施することができる。

典型的な試験ストリップフォーマットアッセイは、対費用効果および使用の簡単さを有しているが、従来のフォーマットよりも精確でなく、精密でなく、被検物質の存在に対する感度が低い。そのような欠点の結果、試験ストリップフォーマットアッセイの利用は、半定量的または定性的なアッセイのみに限られてきた。試験ストリップフォーマットアッセイの不精確性および不精密性に寄与するより重要な因子としては、結合した捕捉ラインまたはスポットの製造および使用が挙げられる。常に一様な捕捉ラインを製造するためには、入念な材料管理と、狭い許容範囲内で作用しなければならない厳格な仕様を備えた製造プロセスとが必要であることが、一般に認識されている。さらに、適正に機能するためには、ほとんどの試験ストリップフォーマットは、検出されるべき被検物質が試験ストリップ上の精密な位置において精密な幾何学形状で一様に捕捉されなければならないことを必要とし、試験ストリップ製造の時点で存在する周囲湿度、そのような製造プロセスで使用される膜の種類、捕捉試薬受容体自体などの因子が、アッセイの不精確性および誤った読取値に大きく寄与する。

したがって、試験ストリップの対費用効果および使用の簡単さを有するが、少量の被検物質を定量的に検出するために必要な確度および精度を備えた、被検物質を検出する方法およびデバイスが必要とされている。

一態様では、本発明は、金属コロイドに結合した磁性ナノ粒子の複合体に関する。磁性ナノ粒子は、酸化鉄およびポリマーを含むことができ、約５０〜１０００ナノメートルの直径を有する。金属は、金、銀、または希土類金属とすることができる。第１の標識、例えば蛍光性の金属キレートを、コロイドに取り付けることができる。ナノ粒子またはコロイドのいずれかは、被検物質特異的結合パートナーを含むことができる。複合体、標識、および結合パートナーは、被検物質を検出する微粒子試薬を提供するように様々な方法で組み合わせることができる。

他の態様では、本発明は、被検物質を検出するためのデバイスおよびキットに関する。デバイスは、磁石を含む検出ゾーンと、金属コロイドに結合した磁性粒子の複合体を含む微粒子試薬の実質的に妨げられない横方向流れを可能にする平均孔隙サイズとを有する、多孔質キャリアマトリックスを含む。試薬がマトリックスに適用されるときに、磁場が試薬を引き付けて検出ゾーン内に実質的に閉じ込めるように、磁石を検出ゾーンに結び付けることができる。マトリックスは、また、検出ゾーンから横方向に離隔されたサンプル適用ゾーンを含むことができる。キットは、被検物質特異的結合パートナー若しくは被検物質類似体に結合した第２の標識を有する、コンジュゲート試薬を含む。第２の標識からの信号は、コロイドに取り付けられた標識からの信号とは区別可能である。

さらに他の態様では、本発明は、サンプル中の被検物質の存在または量を決定する方法に関する。該方法には、サンドイッチ免疫測定フォーマットおよび競合免疫測定フォーマットの両方が含まれる。例えば、競合方法は、サンプルと、第１の標識を有する微粒子試薬と、標識と被検物質若しくは被検物質類似体に特異的な結合パートナーとのコンジュゲート試薬と、の混合物を形成する工程を含む。混合物は、磁石を含む検出ゾーンを有する多孔質キャリアマトリックスを有するデバイスと接触させられる。マトリックスは、試薬の実質的に妨げられない横方向流れを可能にする平均孔隙サイズを有する。該方法は、さらに、検出ゾーンの領域でマトリックスから混合物を洗浄する工程と、検出ゾーン内の第１の標識および第２の標識からの信号を同時にまたは順次検出して、サンプル中の被検物質の存在または量を決定する工程とを含む。

本発明のさらに他の態様には、サンプル中の被検物質を検出するためのアッセイを較正する方法が含まれ、該アッセイは、サンプルと、被検物質特異的結合パートナー若しくは被検物質類似体に取り付けられた標識を有するコンジュゲート試薬とを接触させる工程を含む。該方法は、サンプルと標識を有する微粒子試薬との混合物を形成する工程を含む。混合物は、磁石を含む検出ゾーンを有する多孔質キャリアマトリックスを有するデバイスと接触させられる。多孔質キャリアは、微粒子試薬の実質的に妨げられない横方向流れを可能にする平均孔隙サイズを有する。検出ゾーン内の微粒子試薬の標識に関連した信号の量が測定され、それによってアッセイを較正する。

本発明は、多孔質キャリアマトリックス内を通る横方向流れの原理を使用して特異的結合対アッセイを実施する、サンプル中の選択された被検物質の定性的または定量的分析のためのデバイス、キット、および方法を提供する。本発明は、リガンド系および非リガンド系の両方の、多種多様なアッセイに使用することができる。利用可能なリガンド系の方法としては、限定されるものではないが、競合免疫測定法、非競合またはいわゆるサンドイッチ技術免疫測定法、およびブロッキングアッセイが挙げられる。本発明の使用は、いずれか特定の被検物質に限定されない。本明細書に記載の実施形態は、単に説明を目的とするものにすぎず、本発明の範囲を特定の結合パートナーの組またはアッセイフォーマットに制限しようとするものではない。

本発明は、被検物質特異的結合試薬および／または標識が結合している磁性粒子に関連する。さらに、本発明は、サンプルや他の液体試薬などのキャリア液体中に懸濁された磁性粒子の妨げられない流れを可能にする多孔質キャリアマトリックスを提供する。多孔質キャリアマトリックスは、磁石に結び付けられた、マトリックス内の粒子の流れを止めるが液体の流れは止めない地点への、磁性粒子を含む液体の横方向流れを可能にする。磁性粒子を運ぶ液体が磁場を通過するとき、粒子は、磁場に引き付けられて、マトリックス上の個々の場所に検出ゾーンを形成する。被検物質は、検出ゾーン内で捕捉され、標識によって検出される。

一態様では、粒子は、被検物質を検出するために使用される標識とは異なる独立した標識を含む。粒子に結び付けられた標識は、多孔質キャリア上の検出ゾーン内に存在する被検物質結合試薬の量の決定を可能にすることによって、アッセイの内部較正を可能にする。粒子に結び付けられた標識と、被検物質を検出するために使用される標識とは、同時に検出することも順次検出することもできる。粒子に結び付けられた標識に対応する信号の量を使用して、被検物質を検出するために使用される標識によって生成される信号に関連した被検物質の量を定量的に決定することができる。

被検物質特異的試薬を多孔質キャリアマトリックス上で共有結合させて乾燥させる必要がないので、そのような技術を必要とするシステムよりも試薬の反応性および多様性をより大幅に制御することができる。加えて、粒子に結び付けられた標識は、マトリックス内の粒子流れの効率、磁石における粒子捕捉の効率、並びに希釈およびピペッティング体積の変動性に関わる変数などの多数の変数を補償することによって、被検物質の量の精確な検出を可能にする。同様に、被検物質（例えば、被検物質類似体）の検出で使用される被検物質結合試薬または他の試薬の量の変動性など、試薬の凍結乾燥に起因する可能性のある変数は、粒子からの信号の量と被検物質検出に関連した信号の量とを比較することによって考慮することができる。

本発明について詳細に説明する前に、いくつかの用語を定義する。本明細書で使用するとき、文脈上他の意味を明確に指示する場合を除き、単数形「ａ」、「ａｎ」、および「ｔｈｅ」には、複数形の指示対象が含まれる。

「被検物質」は、検出されるべき分子または物質を意味する。例えば、本明細書で使用するとき、被検物質は、モノ−またはポリエピトープの、抗原性またはハプテン性である、リガンドであることができ；単一の化合物であっても、少なくとも１つの共通のエピトープ部位を共有する複数の化合物であってもよく；また、受容体または抗体であることができる。

「サンプル」は、目的とする被検物質を含有する、または含有すると思われる、任意の物質のアリコートを指す。例えば、サンプルとしては、動物から採取されるサンプル（例えば、唾液、全血、血清および血漿、尿、涙など）、細胞培養物、植物などの生物学的サンプル；環境サンプル（例えば、水）；並びに工業サンプルが挙げられる。サンプルは、本発明の方法で使用する前に調製する必要のある場合がある。例えば、サンプルは、本発明とともに使用する前に、希釈、フィルタ処理、遠心分離、または安定化を必要とする場合がある。本明細書の目的では、「サンプル」は、手を加えていないサンプルまたは調製済みサンプルを指す。

「結合特異性」または「特異的結合」は、第２の分子に対する第１の分子の実質的な認識、例えば、ポリペプチドおよび多クローン性若しくは単クローン性抗体、ポリペプチドに特異的な抗体フラグメント（例えば、Ｆｖ、単鎖Ｆｖ、Ｆａｂ’、若しくはＦ（ａｂ’）２フラグメント）、酵素−基質相互作用、並びにポリヌクレオチド・ハイブリダイゼーション相互作用を指す。

「非特異的結合」は、特定の表面構造から比較的独立した、分子間の非共有結合を指す。非特異的結合は、分子間の静電相互作用および疎水性相互作用を含めたいくつかの因子に起因する可能性がある。

「特異的結合対のメンバー」または「特異的結合パートナー」は、２つの異なる分子のうちの一方であって、表面上若しくはキャビティ内にある領域を有し、他方の分子の特定の空間的および極性構成に特異的に結合し、したがって他方の分子に相補的であるとして定義される分子を指す。特異的結合対のメンバーは、リガンドおよび受容体（アンチリガンド）と呼ばれる。これらは、通常、抗原−抗体などの免疫学的対のメンバーである。ただし、ビオチン−アビジン、ホルモン−ホルモン受容体、ＩｇＧ−プロテインＡ、ＤＮＡ−ＤＮＡやＤＮＡ−ＲＮＡなどのポリヌクレオチド対などの他の特異的結合対は、免疫学的対ではないが、本発明において特異的結合対メンバーの定義に含まれる。

「被検物質特異的結合パートナー」は、被検物質に特異的である特異的結合パートナーを指す。

「実質的結合」または「実質的に結合する」は、特定のアッセイ条件下におけるアッセイ混合物中の分子間のある量の特異的結合または認識を指す。その最も広い態様では、実質的結合は、第１の分子が第２の分子に結合不可能若しくは第２の分子を認識不可能であることと、第１の分子が第３の分子に結合可能若しくは第３の分子を認識可能であることの間の差に関し、この差は、分子の相対濃度並びにインキュベーションの時間および温度などの特定の組のアッセイ条件下で特異的結合を識別する意味のあるアッセイを実施できるようにするのに十分なものである。他の態様では、１つの分子は、交差反応性の意味で実質的に他の分子に結合不可能若しくは他の分子を認識不可能であり、その際、分子の相対濃度およびインキュベーションなどの特定の組のアッセイ条件下で、第１の分子が第２の分子に対して示す反応性は、第３の分子に対して示す反応性の２５％未満、好ましくは１０％未満、より好ましくは５％未満である。特異的結合は、広く知られている多くの方法、例えば、免疫組織化学法、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ：ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｎｋｅｄ ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ：ｒａｄｉｏｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ）、またはウエスタンブロット法を使用して試験することができる。

「リガンド」は、それに対する受容体が天然に存在するかまたは調製できる、任意の有機化合物を指す。

「被検物質類似体」または「被検物質の類似体」は、ある受容体について被検物質と競合できる、被検物質の修飾された形態を指しており、修飾は、被検物質を他の分子に結び付けるための手段を提供する。被検物質類似体は、通常、被検物質類似体をハブ（ｈｕｂ）または標識に連結する結合で水素が置き換えられている以外の点で被検物質とは異なるが、必ずしもそうである必要はない。被検物質類似体は、被検物質に類似の方式で受容体に結合することができる。

「受容体」は、分子の特定の空間的および極性構成、例えば、エピトープまたは決定部位を認識しうる任意の化合物または組成物を指す。例示的な受容体としては、天然に生ずる受容体、例えば、チロキシン結合グロブリン、抗体、酵素、Ｆａｂフラグメント、レクチン、核酸、プロテインＡ、相補的構成成分Ｃ１ｑなどが挙げられる。

「抗体」は、他の分子に特異的に結合し、したがって他の分子の特定の空間的および極性構成に相補的であるとして定義される、免疫グロブリンを指す。抗体は、単クローン性または多クローン性のものとすることができ、宿主の免疫化や血清の採取など、当業者に周知の技術によって（多クローン性）、または、連続するハイブリッド細胞株を調製し、分泌されるタンパク質を収集することによって（単クローン性）、または、天然の抗体の特異的結合に必要なアミノ酸配列を少なくともコードするヌクレオチド配列若しくはそれらの突然変異型をクローニングして発現させることによって、調製することができる。抗体には、完全な免疫グロブリンまたはその断片が含まれ、それらの免疫グロブリンとしては、ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａ、ＩｇＧ２ｂ、およびＩｇＧ３、ＩｇＭなど、様々なクラス並びにイソタイプが挙げられる。それらの断片としては、Ｆａｂ、Ｆｖ、およびＦ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’などが挙げられる。加えて、特定の分子に対する結合親和性が維持される限り、適切な場合には、免疫グロブリン若しくはそれらの断片の凝集体、重合体、およびコンジュゲートを使用することができる。

多孔質キャリアマトリックス
本発明は、液体試験サンプルおよび／または液体試薬に横方向流れを提供できる多孔質キャリアマトリックスを使用する。一般に、多孔質キャリアマトリックスは、適切な厚さ、孔隙サイズ、横方向流量、および色を有する利用可能な任意の材料から選択することができる。横方向流れは、サンプルのクロマトグラフィ分離など、液体の１つ若しくは複数の構成成分の選択的な保持とは対照的に、液体の溶解または分散した構成成分すべてが、ほぼ等しい速度で、マトリックスを横方向に通り抜ける比較的損なわれていない流れで運ばれる、液体の流れを指す。好適な多孔質キャリアマトリックスの例としては、ガラス繊維マット、不織合成マット、焼結微粒子構造、キャスト若しくは押出マトリックス材料、または材料内の接着力の存在によって特徴付けられる他の材料が挙げられる。これらの材料は、ナイロンやニトロセルロースなどの開孔構造から形成（成形若しくはキャスティング）することができる。多孔質キャリアマトリックスは、また、ガラス粒子やポリマー粒子などの微粒子材料とすることもできる。

多孔質キャリアマトリックスは、被検物質および試験試薬に対して低い親和性を有する材料から作製することができる。これは、被検物質および／若しくは試薬の非特異的結合を妨げるための試験マトリックスの前処理を最小限に抑えるまたは回避するためである。ただし、前処理を必要とする材料が、前処理を必要としない材料に優る利点をもたらす場合もある。したがって、単に前処理を必要とするという理由のみで材料を避ける必要はない。親水性マトリックスは、一般にマトリックスへの非特異的結合の量を低減する。

一態様では、多孔質キャリアマトリックスは、平均孔径１〜２５０マイクロメートル、他の態様では約３〜１００マイクロメートル、または約１０〜約５０マイクロメートルの開孔構造を有する。マトリックスは、２、３ｍｉｌ（０．００１インチ）〜数ｍｉｌ、通常は５若しくは１０ｍｉｌから最大２００ｍｉｌまでの範囲の厚さである。マトリックスは、該マトリックスの厚さ全体を通じた光および／若しくは色の視覚化または光度定量を可能にするために、半透明であるべきである。マトリックスは、概ね不透水性の層で裏打ちすることもでき、または完全に独立したものとすることもできる。

横方向流れが生じる好適な多孔質キャリアマトリックスの一例は、米国ジョージア州フェアバーン（Ｆａｉｒｂｕｒｎ）のポーレックス・テクノロジーズ社（Ｐｏｒｅｘ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｃｏｒｐ．）製の高密度または超高分子量ポリエチレンシート材料である。この材料は、超高分子量ポリエチレン（ＵＨＷＭ−ＰＥ）の融着球状粒子から焼結によって作製される。これは、平均孔隙サイズ８ミクロンの多孔質構造を作り出す。ポリエチレン表面は、酸素プラズマで処理され、次いでポリエチレンイミン（ＰＥＩ）とポリアクリル酸（ＰＡＡ）との交互の層でコーティングされて、７０秒／４ｃｍの吸上速度を有する界面活性剤フリーの親水性表面を作り出す。

ポリエチレン製のマトリックスは、きわめて満足のいくものであることがわかっているが、他のオレフィン若しくは他の熱可塑性材料、例えば、ポリ塩化ビニル、ポリ酢酸ビニル、ビニルアセテートとビニルクロリドとのコポリマー、ポリアミド、ポリカーボネート、ポリスチレンなどで形成される横方向流材料を使用することができる。好適な材料の例としては、ＧＥオスモニクス社（ＧＥ Ｏｓｍｏｎｉｃｓ）（ミネソタ州ミネトンカ（Ｍｉｎｎｅｔｏｎｋａ））のマグナナイロン支持膜（Ｍａｇｎａ Ｎｙｌｏｎ Ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ Ｍｅｍｂｒａｎｅ）、ＣＵＮＯ社（ＣＵＮＯ Ｉｎｃ．）（コネチカット州メリデン（Ｍｅｒｉｄｅｎ））のノビロンナイロン膜（Ｎｏｖｙｌｏｎ Ｎｙｌｏｎ Ｍｅｍｂｒａｎｅ）、ミリポア社（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）（マサチューセッツ州ビルリカ（Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ））のデュラポア膜（Ｄｕｒａｐｏｒｅ Ｍｅｍｂｒａｎｅ）が挙げられる。

マトリックス材料は、デバイスに組み込む前に、切込みを入れて、切断して、ダイカットして、または穴をあけて、様々な形状にすることができる。マトリックスの代替的な形状の例としては、円形、正方形／長方形、扁平楕円形、または三角形が挙げられる。本発明の焦点ではないが、所望であれば、所望の形状を形成する前または形成した後に、生物学的試薬を材料に適用することができる。生物学的試薬は、用途およびアッセイに応じて、利用可能な任意の方法によって、例えば、受動的に、拡散的に、非拡散的に、吸収によって、または共有結合的に、材料に取り付けることができる。

磁性ナノ粒子
本発明は、従来の磁石によって溶液から分離可能な磁性ナノ粒子を使用する。そのような粒子は、通常、それらがしばしば呼ばれるように、磁性流体またはフェロ流体（ｆｅｒｒｏｆｌｕｉｄｓ）として提供され、主に、キャリア液体中に懸濁されたナノサイズの酸化鉄粒子（Ｆｅ₃Ｏ₄またはγ−Ｆｅ₂Ｏ₃）から成る。本発明の粒子は、一般的に磁性により特徴付けられるが、超常磁性粒子も含まれる。これは、粒子を外部磁場によって容易に磁化させ、磁石が除去されるとすぐに再分散させることができることを意味する。粒子は、小さなサイズ分布および一様な表面特性をもつべきである。

磁性粒子は、確立された様々な方法によって、一般には、ポリマーの存在下での酸化鉄の沈殿によって、コア−シェル原理にしたがって酸化鉄をポリマーでコーティングすることによって、または高圧均質化によって、調製することができる。沈殿法は、一般に５０〜１００ナノメートルの直径を有する粒子を提供し、コアシェル法は、直径約２００〜５００ナノメートルの粒子を提供し、均質化技術は、一般に、それらの範囲の中間の粒子を提供する。

例えば、水酸化ナトリウムの存在下での第二鉄塩および第一鉄塩の沈殿と、その後の水による洗浄とにより、粒子を超常磁性酸化鉄によって調製することができる。酸化鉄コアのサイズは、光子相関分光法（ＰＣＳ：ｐｈｏｔｏｎ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ）によって決定することができる。酸化鉄コアは、デキストラン、デンプン、キトサン、およびフィセル（ｆｉｃｅｌｌ）などの多糖類でコーティングすることもでき、または、水へのポリマーの溶解度に応じた温度で、合成ポリマーであるポリエチレンイミンおよびポリビニルピロリジンでコーティングすることもできる。一般に、ポリマーの分子量は、磁性粒子のサイズに対応する。酸化鉄沈殿のために適用される塩基の温度および強度は、粒子のサイズおよび粒子内の酸化鉄のパーセンテージに影響を与えることがある。使用されるポリマーは、粒子中の酸化鉄の量にも影響を与えることがある。グリュットナー（Ｇｒｕｔｔｎｅｒ，Ｃ．）ら、「インビボ用途のための磁性ナノスフィアの調製および特性評価（Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍａｇｎｅｔｉｃ Ｎａｎｏｓｐｈｅｒｅｓ ｆｏｒ Ｉｎ Ｖｉｖｏ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ）」、磁性キャリアの科学的および臨床的応用（Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ ａｎｄ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｍａｇｎｅｔｉｃ Ｃａｒｒｉｅｒｓ）内、ヘフェリ（Ｈａｅｆｅｌｉ）ら編、プレナムプレス（Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ）、ニューヨーク、１９９７、５３〜６７頁を参照されたい。

他の例では、非毒性の生分解可能な磁性金属酸化物ナノ相（すなわち、Ｆｅ₃Ｏ₄またはγ−Ｆｅ₂Ｏ₃）と活性ｔ−ＰＡとの混合物を含む生分解可能な磁性ナノ粒子が、１００ｎｍ〜数ミクロンにわたるサイズを有する生分解可能なポリ（乳酸）（ＰＬＡ）ナノスフィア内に充填される。ＰＬＡナノスフィアは、サンプル構成成分との非特異的結合から保護するために、ポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）でカプセル化される。

磁性粒子は、粒子を分子または生体分子に結合させる表面を提供するように官能化させることができる。ポリマーに応じて、当業者にはすぐにわかる様々な官能基で表面を活性化することができる。これらの基には、例えば、アミノ、カルボキシ、アルコール、およびアルデヒド基が含まれる。本発明の一態様では、粒子は、金属コロイドに取り付けられる。共有結合的な付着、または特異的結合パートナーを通じた付着などの、様々な付着化学反応を使用することができる。また、連結分子を使用してもよい。

現時点で利用可能な粒子の形態は、大まかに、修飾されていない若しくは裸の粒子、一般的な特異性リガンドをもつ化学的に誘導体化された粒子（ストレプトアビジン、プロテインＡなど）、並びに単クローン性および多クローン性抗体などの特異的認識群をもつ化学的に誘導体化された粒子に分類することができる。５０〜１０００ナノメートルにわたる直径をもつ、様々な表面によって官能化された好適な粒子は、Ｍｉｃｒｏｍｏｄ Ｐａｒｔｉｋｅｌｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅ ＧｍｂＨ社（ドイツ、ロストク−バルネミュンデ（Ｒｏｓｔｏｃｋ−Ｗａｒｎｅｍｕｅｎｄｅ））、Ａｄｅｍｔｅｃｈ社（フランス、Ｐａｒｃ ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｑｕｅ Ｕｎｉｔｅｃ １，４， Ａｌｌｅｅ ｄｕ Ｄｏｙｅｎ Ｇｅｏｒｇｅ Ｂｒｕｓ，３３６００ Ｐｅｓｓａｃ）、およびＥＭＤバイオサイエンス社（ＥＭＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｉｎｃ．）、エスタポール（Ｅｓｔａｐｏｒ）（登録商標）マイクロスフィア（Ｍｉｃｒｏｓｐｈｅｒｅｓ）（生命科学製品部門（Ｄｉｖｉｓｉｏｎ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ）（米国イリノイ州ネイパービル（Ｎａｐｅｒｖｉｌｌｅ）１６５８Ａｐａｃｈｅ Ｄｒ．）を含め、いくつもの供給元から入手可能である。

標識
一態様では、本発明のアッセイ方法は、２つの標識を使用する。第１の標識は、本発明で使用される磁性粒子と結び付けられる。第２の標識は、標識と、被検物質特異的結合パートナー若しくは被検物質類似体とを含む、コンジュゲート試薬の一部である。「標識」は、他の分子または固体支持体に結合し（共有結合若しくは非共有結合手段によって、単独で若しくはカプセル化されて）、標識された分子の検出を可能にする特異的な特徴について選択される、任意の分子である。一般に、標識としては、限定されないが、次の種類：微粒子金属および金属誘導体、放射性同位体、触媒若しくは酵素に基づくの反応物質、発色性基質および発色団、蛍光および化学発光分子、並びに蛍光体が挙げられる。標識を利用すると、信号が生成され、これを電磁放射線の検出または直接視覚化などの手段によって検出でき、任意に測定できる。

本発明の一態様では、磁性ナノ粒子は、金属コロイドに取り付けられる。典型的な免疫測定法では、コロイド金が視覚的または定性的な検出のための標識を提供する。しかし、本発明の主態様では、コロイドは、異なる標識のためのキャリアの役割を果たす。混乱を避けるために、金属コロイドによって担持される標識を、この標識とコロイド自体とを区別するために、コロイドに取り付けられた標識と呼ぶ。例えば、近年、コロイド金粒子が蛍光金属キレートでコーティングされている。米国特許出願公開第２００４００８２７６８号は、コロイド金粒子上にコーティングされたユーロピウムキレートについて記載しており、その特許出願公開の全体を参照により本明細書に組み込む。また、コロイドは、例えば、フルオレセイン、ローダミン、テキサスレッド、ルミノール、アントラセン、ルシフェラーゼ、ペルオキシダーゼ、デヒドロゲナーゼ、およびその他のものなどの、従来の、並びにこれまでにない、他の蛍光、化学発光、および酵素標識に結び付けることもできる。コロイドに取り付けられた標識の可能性は広範にわたるが、標識は、コンジュゲート試薬の標識による信号生成とは区別可能な信号を生成しなければならない。本発明の一態様では、標識は、水性環境において、好ましくは従来の器具によって定量化可能な信号を生成可能なものであるべきである。

金属コロイドは、主に金および銀であるが、他の金属、特に希土類金属は、適している。取り付けられたときにコロイドおよび磁性粒子がキャリア液体中で懸濁液であり続けることができる限り、コロイドのサイズは、重要ではない。

本発明の特定の態様では、コロイドに取り付けられる標識には、Ｅｕ³⁺、Ｔｂ³⁺、およびＳｍ³⁺など、３価のランタニド陽イオンのキレートが含まれる。これらのキレートには、キレート配位子、増強イオン、および標識からの信号の強度を高めるための相乗剤を含めることができる。特定の態様では、コロイドに取り付けられた標識は、時間分解蛍光測定法の原理に基づいて、バックグラウンド信号の影響をなくし、アッセイの感度を高める働きをする。

３価のランタニド陽イオン、特に、Ｅｕ³⁺、Ｙｂ³⁺、およびＳｍ³⁺のキレートの蛍光特性は、時間分解蛍光測定法に特に適している。これらのキレートでは、強いイオン放出は、キレート内エネルギー移動によって生じ、その際、有機配位子が、紫外（ＵＶ）範囲の励起放射線を吸収し、励起エネルギーを放出イオンへと移動させる。イオンの周りの配位子場は、また、水溶液中で効率的な非活性化経路を生み出す傾向にある配位水分子によって引き起こされるクエンチングを妨げる。イオンに特異的な放出は、長いストークスシフト（２３０〜３００ｎｍ）を備え、長い波長（Ｔｂ³⁺ ５４４ｎｍ、Ｅｕ³⁺ ６１３ｎｍ、Ｓｍ³⁺ ６４３ｎｍ）において狭帯域線で現われる。この状況で最も重要な特徴は、バックグラウンドの効果的な除去のための時間分解検出の適用と感度の向上とを可能にする、１μｓから２ｍｓ以上にわたる長い蛍光寿命である。

ランタニド蛍光を増加させるための配位子として、β−ジケトンが最も広く使用されている。それらは、二座キレート剤として比較的安定したキレートを形成し、キレート構造に関与する六員環は、励起光を直接吸収し、エネルギーをキレート化されたイオンへと効率的に移動させる。ただし、一部のキレートの場合、蛍光は、基本的に有機溶媒に限られているため、それらのキレートは生物学的用途には魅力的でない、または実用的でない。本発明の一態様では、コロイドに取り付けられた標識は、米国特許出願第２００４００８２７６８号に記載のように、水性溶媒中でランタニド（ＩＩＩ）希土類金属イオンとともに蛍光キレートを形成するβ−ジケトンである。この標識は、３６０ｎｍ以上のエネルギーを標識に照射し、標識からの蛍光を検出することによって検出することができる。さらに、スー・Ｙ（Ｘｕ，Ｙ）ら、「時間分解蛍光免疫測定法における共蛍光効果：概説（Ｃｏ−ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ Ｅｆｆｅｃｔ ｉｎ Ｔｉｍｅ−ｒｅｓｏｌｖｅｄ Ｆｌｕｏｒｏｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ： Ａ Ｒｅｖｉｅｗ）」、アナリスト（Ａｎａｌｙｓｔ）１９９２（１１７：１０６１〜１０６９）に記載のように、他のいくつかのβ−ジケトンも公知の有効なキレート剤である：
テノイルトリフルオロアセトン（ＴＴＡ）
ベンゾイルトリフルオロアセトン（ＢＴＡ）
２−フロイルトリフルオロアセトン（ＦＴＡ）
ｐ−フルオロベンゾイルトリフルオロアセトン（ＦＢＴＡ）
β−ナフトイルトリフルオロアセトン（β−ＮＴＡ）
１，１，１，２，２−ペンタフルオロ−５−フェニルペンタン−３，５−ジオン（ＰＦＰＰ）
ジベンゾイルメタン（ＤＢＭ）
ジ−ｐ−フルオロベンゾイルメタン（ＤＦＢＭ）
ピバロイルトリフルオロアセトン（ＰＴＡ）
１，１，１−トリフルオロ−６−メチルヘプタン−２，４−ジオン（ＴＦＭＨ）
ジピバロイルメタン（ＤＰＭ）
１，１，１，５，５，５−ヘキサフルオロアセチルアセトン（ＨＦＡｃＡ）
１，１，１，２，２−ペンタフルオロヘキサン−３，５−ジオン（ＰＦＨ）
１，１，１，２．２−ペンタフルオロ−６，６−ジメチルヘプタン−３，５−ジオン（ＰＦＤＭＨ）
１，１，１２，２，２，３，３−ヘプタフルオロ−７，７−ジメチルオクタン−４，６−ジオン（ＨＦＤＭＯ）
１，１，１，２，２−ペンタフルオロテトラデカン−２，４−ジオン（ＰＦＴＤ）
１，１，１−トリフルオロトリデカン−２，４−ジオン（ＴＦＴＤ）
１，１，１−トリフルオロアセチルアセトン（ＴＦＡｃＡ）
アセチルアセトン（ＡｃＡ）

多くの場合、ランタニドβ−ジケトンキレートの強い蛍光強度は、非水性キレート環境を必要とする。例えば、トリス−キレート中の３つのβ−ジケトン分子は、イオンの利用可能な９つの配位部位のうちの６つしか占有せず、依然として水によるクエンチングの影響を受けやすい。相乗的な配位子（若しくは相乗剤）が配位子場から水分子に置き替わるようにキレート構造に関与する、「絶縁シート」として働くように、相乗剤配位子が導入されてきた。この剤は、シールドの役割を果たして、キレートを外部相互作用から保護し、したがって非放射性エネルギー劣化を効率的に低減することができる。共蛍光増強に利用可能な相乗的な配位子の例は、１，１０−フェナントロリン（Ｐｈｅｎ）およびその誘導体、例えば、４，７−（または５，６）−ジメチル−１，１０−フェナントロリン、４，７−ジフェニル−１，１０−フェナントロリン、２．９−ジメチル−４，７−ジフェニル−１，１０−フェナントロリン、ピリジン誘導体、例えば、２，２’−ジピリジル（ＤＰ）、２，２’−ジピリジルアミン、２，４．６−トリメチルピリジン、２，２’：６’，２’’−テトラピリジン、および１．３−ジフェニルグアニジンである。トリ−ｎ−オクチル−ホスフェンオキシド（ＴＯＰＯ）が最も効果的な相乗剤の１つであることがわかっている。通常、ランタニドキレート上の蛍光は、最大且つほぼ安定した蛍光に達するまで、相乗的な配位子の濃度増加とともに増加する。

他の態様では、蛍光標識を、増強イオンの存在下で使用することができる。一般に適用される増強イオンは、Ｇｄ³⁺、Ｔｂ³⁺、Ｌｕ³⁺、Ｌａ³⁺、およびＹｂ³⁺である。増強イオンは、時間分解蛍光測定法が関与するいくつかの条件下で、例えばＹｂ³⁺およびＤｙ³⁺によって弱い共蛍光増強効果が得られるので、有用である。これは、共蛍光増強系では、使用される増強イオンが、使用されるβ−ジケトンの励起三重項準位よりも下に位置する４ｆまたは４ｄ順位を励起させるはずがないからである。したがって、これらのキレートによって吸収されるエネルギーは、これらの存在しないエネルギー準位を通じて消失することがない。その代わりに、エネルギーは、分子間エネルギー移動を通じて蛍光イオンへと移される。増強イオンは、アクセプタ検出のための線形応答を保証するために三重項増感剤の過剰な高いモル濃度を提供するために必要とされる。高い濃度は、また、エネルギー移動に必要な凝集体を作り出すために必要とされる。

非イオン性洗剤が、キレートを非放射性プロセスに対して保護し、沈降を妨げることによってキレートを可溶化し、溶液を安定させることがわかっている。好適な洗剤の例としては、ＴＲＩＴＯＮ（登録商標）Ｘ−１００およびＴＷＥＥＮ（登録商標）２０が挙げられる。また、蛍光を増強させるために、水溶性の有機溶媒も使用することができる。

本発明の他の態様では、コンジュゲート試薬は、被検物質を検出するための標識を含む。この標識は、被検物質特異的結合パートナー若しくは被検物質類似体に取り付けられる。この標識は、コロイドに取り付けられた標識とは異なる独立したものであり、その信号は、コロイドに取り付けられた標識とは区別可能でなければならない。本発明の様々な態様では、２つの標識は、順次または同時に検出される。被検物質特異的結合パートナーへの標識の取付けは、当該技術分野で周知のように、直接的に、リンカーを通じて、または１対の特異的結合パートナー（例えば、ビオチン／アビジン）を通じて、達成することができる。コンジュゲート試薬上の標識とコロイドに取り付けられた標識との両方が蛍光標識である場合、それらの標識は、例えば、異なる波長での励起によって、または異なる発光スペクトルによって、区別可能であるべきである。

一態様では、本発明は、標識が取り付けられている金属コロイドを含む、サンプル中の被検物質を検出するための試薬に関する。該試薬は、また、抗体、抗原、ストレプトアビジン、若しくはビオチンなど、被検物質特異的結合パートナー、タンパク質、または他の（非被検物質）特異的結合パートナーのうちの１つ若しくは複数を含むことができる。（非被検物質）特異的結合パートナーおよびタンパク質を使用して、粒子上の相補的結合パートナーによって、または適切なリンカー分子を通じて、コロイドを磁性粒子に結び付けることができる。

微粒子試薬
本発明の一態様は、磁性粒子と金属コロイドとの複合体を含む微粒子試薬に関する。この態様では、金属コロイドは、該コロイドに取り付けられた標識によって官能化される。

コロイドと粒子とは、周知の連結化学反応を使用して取り付けることができる。これらの化学反応には、例えば、ＥＤＣなどのゼロリンカー（ｚｅｒｏ ｌｉｎｋｅｒｓ）および長鎖リンカーを使用する直接取付け、またはビオチンやアビジン／ストレプトアビジン／ニュートラアビジンなどの１対の結合パートナーを通じた間接的なものが含まれる。連結を助けるために、磁性粒子を、アミノ、アルデヒド、ヒドロキシル、またはカルボキシル基によって官能化することができる。

コロイド金は免疫測定法における標識として広く使用されている。したがって、コロイドを官能化し、それらを様々な分子に取り付ける方法は、十分に特徴付けられている。例えば、米国特許出願公開第２００４００８２７６８号は、ユーロピウムキレートでコーティングされ、抗体に結合した金コロイドについて記載している。

本発明の他の態様では、コロイドは、被検物質特異的結合パートナーを含む。標識および結合パートナーがともにコロイドに添加されるときには、初めに標識が添加されて、順次添加される。一般に、標識および結合パートナーの特定の濃度は、同じ濃度に保たれるが、結合パートナーに応じて濃度を多様にすることができる。３つの構成成分（すなわち、標識、特異的結合パートナー、および被検物質特異的結合パートナー）すべてがコロイド上に含まれるときには、構成成分は、標識、被検物質特異的結合パートナー、特異的結合パートナーの順序で添加される。

一般に、微粒子試薬は、コロイドに取り付けられた標識を含む。コンジュゲート試薬に結び付けられた第２の標識が、サンプル中の被検物質の存在または量を検出するために使用される。ただし、一実施形態では、第２の標識は、コロイドまたは粒子に（連結基を通じて、若しくは１対の結合パートナーを通じて）取り付けられる。ゆえに、この試薬は、サンプル中の被検物質の存在にかかわらず２つの信号を提供することになる。したがって、この試薬は、基質試薬など、アッセイにおいて他の試薬の品質を判定するための対照として使用することができる。

一態様では、微粒子試薬は、商用アッセイでのそれらの便利な使用を可能にする、凍結乾燥された形態で提供される。微粒子試薬は、標準的な凍結乾燥プロトコルによって凍結乾燥することができる。一般に、微粒子試薬は、トレハロース（若しくは他の任意の凍結保護物質）と混合され、個々のバイアルに分注される。それらは、次いで、標準的な凍結乾燥プロトコルを使用して凍結乾燥され、真空下若しくは乾燥窒素下で栓をされる。凍結乾燥後のメルトバックを軽減するために、凍結乾燥された材料は、凍結乾燥サイクルの完了後、上昇させた温度で長時間にわたって、例えば、４５℃で少なくとも６０時間にわたって乾燥される。

デバイス
他の態様では、本発明は、サンプル中の被検物質の存在を検出するためのデバイスを提供する。該デバイスは、多孔質キャリアマトリックスと磁石とを含む。デバイスの操作の一例では、サンプルと、微粒子試薬と、適切なリポーター分子で標識された検出試薬とを含有する溶液がデバイスに適用される。磁石は、磁場が粒子を引き付けてマトリックス上の個々の場所で実質的に保持するように、多孔質キャリアマトリックスと結び付けられる。

多孔質キャリアの形状は、アッセイを実施するのに好適なフォーマットを提供する範囲においてのみ重要である。その最も単純な形態では、キャリアは、サンプル適用ゾーンと検出ゾーンとを有するストリップであり、それらサンプル適用ゾーンと検出ゾーンとは、同一のゾーンであってもよい。磁場が磁性粒子を引き付けて検出ゾーン内で保持するように、磁石は、磁場が検出ゾーンを画定するように該検出ゾーンと結び付けられる。例えば、検出ゾーンを流れ過ぎる溶液中の粒子の横方向流れが止められるように、磁石を多孔質キャリアの下に配置することができる。溶液はマトリックスを横断し続けるが、粒子は、磁場によって適所で保持されることになる。

検出ゾーン内の磁場が、検出ゾーンをほぼすべての粒子が通過するのを妨げるのに十分に強いものであれば、磁性物質を、直接マトリックスに当てて保持しても、任意の程度までマトリックスから離隔させてもよい。「ほぼすべて」は、すべての粒子が検出ゾーン内で保持されていた場合とでアッセイの感度が大幅には異ならないように、粒子が検出ゾーンを通過するのを磁石が妨げることを意味する。ほぼすべての粒子は、粒子の少なくとも大部分であり、好ましくは粒子の少なくとも約７０％、約８０％、約９０％、または約９５％が検出ゾーン内で保持されるべきであり、より好ましくは約９９％以上が保持される。

磁性物質は、接着剤、クランプ、または磁石を検出ゾーン内の適所で維持する他の任意のデバイスによって適所で保持することができる。一態様では、多孔質キャリアマトリックスは、操作者による取扱いが便利なように剛体内で保持される。磁石およびマトリックスは、磁石の場所がマトリックスに対して固定されるように、剛体内の適所で保持することができる。剛体のための材料は、それがサンプルおよび試薬と適合性があり、磁場に影響を与えない限り、重要ではない。好ましくは、剛体は、容易且つ安価に製造され、包装される。

デバイスは、サンプル適用ゾーンを含むことができ、該サンプル適用ゾーンは、検出ゾーンから横方向に離隔されていてよい。サンプル適用ゾーンは、マトリックス上の個々の場所でのサンプル溶液および／若しくは他の試薬の適用を容易にする、別個のパッド、カップ、ウエル、または他の部材を含むことができる。サンプル適用ゾーンは、また、サンプル溶液が添加されると該溶液によってコンジュゲート試薬が可溶化されるように、マトリックス、別個のパッド、若しくは他の部材に非拡散的に結合したコンジュゲート試薬も含むことができる。

一般に、マトリックスの形状は、検出される１つ若しくは複数の被検物質に適したものであるべきである。マトリックスは、サンプル中の多数の被検物質を測定するための２つ以上の個々のチャネルを含むことができる。マトリックスは、チャネル間に流体不透過性バリアを設けること、またはマトリックスを液体流れ不透過性にする試薬でマトリックスの個々の領域を処理することなどによって、物理的に分割することができる。例えば、フルオロメタクリレートポリマーを使用して、マトリックスの一部分を液体不透過性にすることによってマトリックス中に個々のチャネルを作り出すことができる。

検出ゾーンの形状は、一般に、磁場の形状によって画定され、磁場の形状は、一般に、磁石の形状である。一例では、マトリックスは、ストリップであり、磁石は、ストリップの下に配置された円形ディスクである。操作時には、検出ゾーンは、円形のマトリックス表面形状を呈する。他の形状は、マトリックスの形状および検討中の被検物質の数と適合性があるべきである。磁性粒子が検出領域の上流に堆積され、磁石へと流されるときには、横方向に流れる溶媒の最前部が初めに磁場と接触する場所で粒子の大部分が保持されることがわかった。

２以上の被検物質を測定するデバイスでは、マトリックスのいくつかの個々の部分の下に位置する１つの磁石など、１つの磁石がいくつかの個々の検出ゾーンに磁場を与える働きをすることもでき、または各ゾーンがそれぞれ独自の磁石を有することもできる。２以上の磁石が使用されるときには、１つの磁石からの磁場は、他の（１つ若しくは複数の）磁石の磁場へと引き付けられることが意図される粒子を引き付けてはならない。

一般に、デバイスのサイズは、操作者による取扱いを容易にし、またさらに、視覚的に、光度測定的に、または分光光度測定的に信号を検出できるように、標識から十分な信号を提供する。一態様では、多孔質キャリアは、約６ｍｍ×約１００ｍｍのストリップであり、デバイスは、ストリップおよび磁石を固定された関係で保持するのに適したサイズの剛体を含む。

好適な磁石は、多数ある。一例は、０．２５インチ×０．２５インチの希土類ネオジム−鉄−ホウ素棒磁石である。この磁石は、４０ＭＧＯｅ（メガガウス・エルステッド）の強度をもつ。また、他のサイズの、ディスクおよびキューブなどの他の幾何学構造も適している。様々な強度の磁石が利用可能であるが、マトリックスから磁石までの距離は、粒子の捕捉効率に影響を与える。例えば、４０ＭＧＯｅ磁石がマトリックスから０．２５インチ離して置かれる場合、磁石がマトリックスの下側に触れているときにはわずか０．８％の粒子しか見られないことがわかった。

方法およびデバイスは、様々な試薬の使用を含む。これらの試薬は、サンプルとは別個にデバイスに添加することもでき、サンプルを含有する混合物に添加することもでき、またはデバイス上に載せられた状態で保管することもできる。試薬には、結合していない反応材料を検出ゾーンから除去する洗浄試薬、検出ゾーン内の被検物質の存在を検出する検出試薬、非特異的結合を低減するためにサンプルの添加前に多孔質マトリックスを処理するプレウェッティング試薬が含まれる。

洗浄試薬は、横方向流デバイスの技術分野の技術者には周知である。結合していない反応物質を検出ゾーンから除去可能な試薬が適している。これらの試薬は、一般に、低分子量キャリアタンパク質と、洗剤と、防腐剤との組み合わせである。そのような１つの試薬は、ＳＮＡＰ（登録商標）ＦｅＬＶ／ＦＩＶコンボアッセイ（ＩＤＥＸＸラボラトリーズ社（ＩＤＥＸＸ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ））の構成成分である。

コンジュゲート試薬上の標識が酵素であるときには、検出試薬は、検出ゾーン内で酵素と反応すると検出可能な信号を生み出す基質を含むことができる。例えば、十分に特徴付けられた酵素である西洋ワサビペルオキシダーゼは、基質４−クロロ−１−ナフトールと反応したときに有色の生成物を生成する。市販されている１つの基質溶液は、ＴＳＩインコーポレーテッド社（ＴＳＩ Ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄ）（マサチューセッツ州ウースター（Ｗｏｒｃｅｓｔｅｒ））から入手可能なＴＭブルー（ＴＭ Ｂｌｕｅ）である。また興味深いものは、過酸化水素の生成と、染料前駆体を酸化して染料にするための過酸化水素の使用を利用する酵素である。特定の組合せとしては、過酸化水素を使用して染料前駆体を酸化する酵素、例えば、ペルオキシダーゼ、マイクロペルオキシダーゼ、およびシトクロムＣオキシダーゼと結合した、サッカライドオキシダーゼ、例えば、グルコースおよびガラクトースオキシダーゼ、または、ウリカーゼやキサンチンオキシダーゼなどの複素環オキシダーゼが挙げられる。他の周知の酵素反応は、化学発光（例えば、ルミナル（ｌｕｍｉｎａｌ）およびＨＲＰ）、または蛍光（例えば、メチルウンベリフェロンおよびアルカリホスファターゼ）信号をもたらす。場合によっては、洗浄試薬と検出試薬とが同一の試薬であり、このことにより基質試薬は、検出反応にも関わりながら、結合していない反応物質を検出ゾーンから除去することができる。

洗浄試薬および検出試薬は、米国特許第５７２６０１０号に記載のように、破壊可能な貯蔵容器内で、デバイス上に載せられた状態で保管することができ、その特許の全体を参照により本明細書に組み込む。試薬は、試薬供給芯によって多孔質マトリックスに供給することができる。供給芯は、貯蔵容器に穴をあけ、流れマトリックスに試薬を供給する働きをする、ランスを含むことができる。この連結は、単一の動作で、保管された２つの液体試薬を放出することを容易にする。また、２つの試薬の順次使用、すなわち、洗浄試薬使用後に検出器試薬を使用することができる。試薬は、また、規定された場所において規定された速度および体積で試薬を多孔質マトリックス上に分注する、自動ピペッティングステーションを通じて供給することもできる。

本発明のデバイスは、また、過剰なサンプルおよび試薬を吸収する吸収剤リザーバを含むことができる。吸収剤リザーバとして使用するのに適した材料は、好ましくはきわめて吸収性が高く、流体サンプルと添加される液体試薬との体積を超える容量を提供し、２つの材料間の流体移動の唯一の手段としての物理的接触によって、流れマトリックスから液体を吸収することができる。様々な材料および構造がこれらの要件に合致している。セルロースや誘導体化されたセルロース（例えば、セルロースアセテート）などの天然および合成繊維の繊維状構造が、この用途に好ましい。材料の繊維は、特定の軸線に沿って配向（すなわち、整列）していてもよく、またはランダムであってもよい。本発明の好ましい一実施形態は、密度範囲が１立方センチメートル当たり０．１〜０．３グラムで、空隙容積が６０〜９５パーセントである、非整列セルロースアセテート繊維を使用する。そのような１つの材料は、アメリカン・フィルトロナ・コーポレーション社（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｆｉｌｔｒｏｎａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）（バージニア州リッチモンド（Ｒｉｃｈｍｏｎｄ））から入手可能なＲ−１３９４８トランソーブリザーバ（Ｒ−１３９４８ Ｔｒａｎｓｏｒｂ Ｒｅｓｅｒｖｏｉｒ）である。

デバイスの操作
本発明の方法およびデバイスは、サンドイッチまたは競合型の特異的結合アッセイを容易にする。本発明によれば、被検物質特異的結合パートナーは、該パートナーをマトリックスに直接的または間接的に取り付ける必要なしに検出ゾーン内で保持される。一般に、サンプルをデバイスに添加する前に、該サンプルに微粒子試薬を添加することができる。コンジュゲート試薬は、サンプルに添加することもでき、または微粒子試薬がサンプルと反応した後でデバイスに添加することもできる。別法として、サンプル溶液が試薬を可溶化するように、コンジュゲート試薬がデバイス上に可溶化可能な形態で存在してもよい。他の態様では、例えばデバイスの製造時など、試薬の添加前に微粒子試薬をデバイスに添加することができる。

サンドイッチアッセイの場合、被検物質特異的結合試薬（例えば、抗体）は、微粒子試薬上にそれが存在する結果として検出ゾーン内で固定化される。サンプル被検物質がその結合パートナーに結合した後、複合体は、コンジュゲート試薬上の標識によって検出される。被検物質は、微粒子試薬上の被検物質特異的結合パートナーとコンジュゲート試薬上の被検物質特異的結合パートナーとの間に挟まれる。被検物質特異的結合パートナーは、同一のものであっても異なるものであってもよい。

競合アッセイの場合、微粒子試薬の組成およびアッセイの順序に応じて、多くのアッセイフォーマットが可能である。競合フォーマットには、例えば、被検物質特異的結合パートナーを含有する微粒子試薬を同時にサンプルと標識された被検物質類似体とに接触させる、１段階アッセイが含まれる。１段階アッセイは、また、被検物質類似体が微粒子試薬上にあり、被検物質特異的結合パートナーが適切なリポーター分子で標識されている場合にも達成することができる。２段階の競合アッセイでは、サンプルを、１つのアッセイ構成成分（例えば、標識された被検物質類似体）と混合し、次いで一定期間のインキュベーション後に残りのアッセイ構成成分（すなわち、被検物質特異的結合パートナーを有する微粒子試薬）と混合する。１段階アッセイと同様に、被検物質類似体または被検物質特異的結合パートナーのいずれか一方を微粒子試薬上に配置し、他方を標識することができる。２段階フォーマットの一例では、微粒子試薬上に配置された被検物質類似体を、ある時間にわたってサンプルと混合する。次いで、標識された被検物質特異的結合パートナーを、反応混合物に添加して、第２のインキュベーションを行う。アッセイフォーマットにかかわらず、検出ゾーンで検出される標識の量は、サンプル中の被検物質の量に反比例する。

試薬およびサンプルを、サンプル適用ゾーンで多孔質マトリックスと接触させる。横方向流れを達成するデバイスの特性の結果として、液体試薬がサンプル適用ゾーンから検出ゾーンへと流れて該検出ゾーンを通り抜けるように、サンプル適用ゾーンは、通常、検出ゾーンの上流にある。過剰な液体は、吸収剤リザーバ内で捕捉することができる。洗浄および／若しくは検出試薬を添加することもでき、または洗浄および／若しくは検出試薬はデバイス上に載せられた状態で存在することもできる。サンプルおよび試薬をデバイスに添加するためには特別の方法は必要ない。液体サンプルおよび試薬をデバイス上に滴下することによってサンプルを適用してもよく、またはデバイスを試薬に浸漬してもよい。サンプル適用ゾーンは、任意に、サンプル液体と接触すると可溶化される乾燥試薬を含む別個のマトリックスを含むこともできる。例えば、コンジュゲート試薬は、乾燥形態で存在し、サンプル液体と接触したときに可溶化されて検出反応に関与することができる。試薬は、別個のマトリックス中に存在してもよいが、該試薬が検出ゾーンへと流れて検出反応に関与できるように、サンプル液体または他の液体による該試薬の可溶化を可能にする場所で多孔質マトリックス上に存在することができる。

サンプル適用ゾーンは、部分的にまたは完全に検出ゾーンに重なっていてよい。ただし、サンプル適用ゾーンが検出ゾーンから横方向に離隔された状態で、デバイスの最適な性能が達成されることがわかっている。その距離は、結合した材料と結合していない材料との分離を可能にし、このことにより例えばマトリックスとコンジュゲート試薬との間の非特異的結合を低減しうるものであることが望ましい。一般に、この距離は、約４ｍｍ〜１０ｍｍの間である。距離は、一般に、より大きな分離を可能にするより長い距離と、磁性試薬が磁石に引き付けられることに一部起因する、アッセイのスピードを高めるより短い距離との間の妥協である。サンプル適用ゾーンと検出ゾーンとの間の距離は、マトリックスの材料によって異なるであろう。横方向流量７０ｍｍ／４分を有する多孔質キャリアマトリックスを使用する本発明の一態様では、検出ゾーンは、サンプル適用ゾーンから約１０ｍｍにある。

マトリックスは、予め、すなわち、サンプルの添加前に、材料の疎水性を改善する試薬によって濡らすことができる。プレウェッティング試薬は、適用ゾーン、検出ゾーン、およびゾーン間の経路を含む領域全体を該試薬が流れる限り、マトリックスの任意の部分に添加することができる。プレウェッティング試薬の例としては、単独の、または予め混合された形態の２つ若しくは３つの試薬の組合せの、緩衝剤、洗剤、および低分子量のキャリアタンパク質が挙げられる。

デバイスへのサンプルおよび試薬の添加後、コンジュゲート試薬上の標識は、使用される標識に適した方法によって測定される。標識からの信号を視覚的に検出できるように、または、例えば光電子増倍管（ＰＭＴ）、アバランシェフォトダイオード（ＡＰＤ）、および電荷結合素子（ＣＣＤ）などの、光を測定若しくは検出可能な任意のデバイスによって検出できるように、デバイスは、検出ゾーンの領域に開口部または透明窓を提供すべきである。２つの標識が微粒子試薬と結び付けられるとき、例えば、コロイドに取り付けられた標識が化学発光標識であり、コロイドがコンジュゲート試薬を通じて結合した蛍光標識を有するときには、２つの標識からの信号は、順次検出される。コロイドに取り付けられた蛍光標識は、その標識を適切な波長で励起し、発光を検出することによって、検出される。化学発光信号は、酵素基質の添加後に直接読み取られる。同一の検出デバイスを使用して蛍光信号および化学発光信号の両方を測定することもでき、または、各信号を独立した検出システム上で読み取ることもできる。使用される検出システムは、同一のものであってもよく、または異なるタイプのものであってもよく、その際の主な要件は、感度がアッセイを実施するのに十分なことである。

較正
一態様では、本発明は、アッセイを較正する方法に関し、この方法は、未知のサンプル中の被検物質の測定と並行してまたはその測定の前に較正曲線を引くという標準技法に頼らない。

この態様では、本発明は、被検物質の存在に関連した信号（被検物質信号）とは無関係に微粒子試薬の量の定量化を可能にする。例えば、コロイドに取り付けられた標識は、検出ゾーンからの信号を提供し、この信号から検出ゾーン内の被検物質特異的結合パートナーの量を決定できる。検出ゾーン内の微粒子試薬の量は一般にアッセイ信号に比例するので、検出領域内の微粒子試薬の量の小さな変化に起因した被検物質特異的結合パートナーからの信号の小さな変化を考慮することが可能である。すなわち、例えば、コロイドに取り付けられた標識からの信号が１０％低下する場合、被検物質特異的結合パートナーからの信号の１０％低下を予想することができる。図１は、様々な濃度の微粒子試薬を使用する２つの実験の結果を示しており、これらの実施形態では、微粒子試薬は、化学発光標識および蛍光標識の両方を含む（粒子は、ＨＲＰ酵素でコーティングされた）。蛍光信号の変化は、化学発光信号の変化に比例する。

微粒子試薬のコロイド上に標識があると、これはサンプル中の被検物質の存在に関連した信号（被検物質信号）とは無関係な信号を提供するので、アッセイは、試薬の希釈およびピペッティングに起因する変動、並びにマトリックス内の試薬の動きの潜在的な変動に起因する、被検物質信号強度の変動を考慮することができる。また、較正システムは、試薬の移動の失敗や、検出ゾーンでの微粒子試薬の捕捉の失敗など、カタストロフ的な失敗を操作者に警告する作用もする。

同じく重要なことに、コロイド上の標識の存在は、凍結乾燥状態からの再水和後の微粒子試薬の濃度の決定を可能にする。例えば、本発明は、対照アッセイを実施することなく、または材料の濃度を独立して決定できる標識を用いて、再水和された材料の濃度の精確な決定を可能にする。本発明を使用すれば、凍結乾燥された微粒子試薬が誤って必要な液体の体積の２倍の体積で最水和されると、コロイドに取り付けられた標識から測定される信号は、通常予想される信号の半分となる。その場合、アッセイ試薬のこの変化を考慮することができ、アッセイを、それでもその操作パラメータを満たすように調節することができる。例えば、図２は、これを、蛍光標識および化学発光標識の両方を有する凍結乾燥された微粒子試薬の希釈として示す（化学発光標識は、コロイドに直接取り付けられた）。凍結乾燥前の粒子の体積は、５００μｌであった。試薬希釈の量が増加するにつれて、蛍光標識からの信号の量が減少する。希釈の結果としての化学発光標識の減少は、蛍光標識からの信号の減少に正比例する。

他の態様では、酵素で標識された磁性粒子と蛍光標識されたコロイドとから成る微粒子試薬を使用して、化学発光信号に使用される基質を較正することができる。そのような基質が経時的に劣化することは、周知である。基質が劣化するにつれて、用量応答の傾きも変化することになる。前述の試薬を使用すると、基質の劣化にかかわらず、基質の用量応答を決定することができる。化学発光および蛍光信号の両方が線形傾向を示すように、酵素信号を滴定すべきである。

例えば、図３Ａは、ＨＲＰ（過酸化水素）についての基質の活性成分が減少するにつれて、化学発光信号が減少することを示す。図３Ｂは、蛍光信号に変化がないので、この減少が使用される微粒子試薬の量の相違には起因しないことを示す。したがって、化学発光信号の変化は、基質活性の変化のみに起因するものと判定することができる。

図４は、基質活性の変化がアッセイの用量応答にどのように影響を与えるかを示す。基質の活性は、固定された量の微粒子試薬を使用して測定することができ、蛍光信号によって測定される。測定された活性を製造時の基質の活性と比較することができる。いかなる重大な変化（劣化）も、被検物質を決定するために使用される標準曲線の調節において考慮することができる。

キット
本発明の前述の諸実施形態のいずれかまたはすべてを、キットとして提供することができる。特定の一例では、そのようなキットは、特異的結合試薬、例えば、被検物質結合に特異的な非固定化コンジュゲート試薬および微粒子試薬、並びに洗浄試薬および検出器試薬を備えた、本発明のデバイスを含む。望ましいまたは適切な場合、陽性および陰性対照試薬も含めることができる。さらに、安定剤や緩衝剤など、他の添加剤も含めることができる。様々な試薬の相対的な量は、アッセイの感度を実質的に最適化する試薬の溶液中濃度をもたらすように、幅広く変化させることができる。特に、試薬は、溶解するとサンプルと結び付くのに適した濃度を有する試薬溶液をもたらすことになる、通常は凍結乾燥された乾燥粉末として提供することができる。

以下は、単に例示の目的で提供されるにすぎず、以上で大まかに記載した本発明の範囲を制限しようとするものではない。本開示で引用されるすべての参考文献を参照により本明細書に組み込む。

２００ｎｍ磁性粒子のビオチン化
カルボキシ官能化された２００ｎｍ微小粒子を以下の手順にしたがってビオチン化した。
材料：
２００ｎＭカルボキシ磁性粒子３．１％固体（アデムテック（Ａｄｅｍｔｅｃｈ）＃０２１２３）
ビオチンＰＥＯ−ＬＣ−アミン、ｆｗ４１８．６（ピアス（Ｐｉｅｒｃｅ）＃２１３４７）
ＭＥＳ、ｆｗ１９５．２（シグマ（Ｓｉｇｍａ）＃Ｍ−８２５０）
トリズマ塩基（Ｔｒｉｓｍａ Ｂａｓｅ）、ｆｗ１２１．１（シグマ＃Ｔ−１５０３）
トリトンＸ−１００（Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００）、（シグマ＃Ｘ−１００）
ＥＤＣ、（１−エチル−３−［３−ジメチルアミノプロピル］カルボジイミドヒドロクロリド）、ｆｗ１９１．７（ピアス（Ｐｉｅｒｃｅ）＃２２９８０）
ＢＳＡ、ウシ血清アルブミン（アメレスコ（Ａｍｅｒｅｓｃｏ）＃０３３２）

調製：
Ａ．５０ｍＭのＭＥＳ緩衝液、ｐＨ６．１：
９．７６ｇのＭＥＳを８００ｍＬの水に溶解させる。ｐＨを６．１に調整する。\１．０Ｌにする。
Ｂ．５０ｍＭのトリス緩衝液、ｐＨ９．０：
６．０６ｇのトリスを８００ｍＬの水に溶解させる。ｐＨを９．０に調整する。全量を１．０Ｌにする。
Ｃ．５０ｍＭのトリス／１％トリトンＸ−１００緩衝液、ｐＨ９．０：
６．０６ｇのトリスを８００ｍＬの水に溶解させる。１０ｍＬのトリトンＸ−１００を加える。ｐＨを９．０に調整する。全量を１．０Ｌにする。
Ｄ．ＭＥＳ緩衝液中の４８ｍＭビオチン：
３２ｍｇのビオチンＰＥＯ−ＬＣ−アミンを１．６ｍＬのＭＥＳ緩衝液に溶解させる。
Ｅ．ＭＥＳ緩衝液中の５０ｍＭのＥＤＣ：
３４ｍｇを３．５５ｍＬのＭＥＳ緩衝液に溶解させる。
Ｆ．ＭＥＳ緩衝液中の５％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）
５．０ｇのウシ血清アルブミンを８０ｍＬのＭＥＳに溶解させる。ｐＨを６．１に調整する。全量を１００ｍＬにする。

２．０ｍＬの２００ｎｍ粒子を遠心分離して固形物をペレット化する。上清をデカントする。粒子を１５ｍＬの５０ｍＭ ＭＥＳ緩衝液に懸濁させる。１５ｍＬの５０ｍＭ ＭＥＳ緩衝液によってさらに２回溶媒交換（洗浄）を繰り返す。最後に、粒子を３．４ｍＬの５０ｍＭ ＭＥＳ緩衝液に懸濁させる。

粒子に１．３ｍＬの４８ｍＭビオチン−ＰＥＯ−ＬＣ−アミンを加え、次いで１．３ｍＬの５０ｍＭ ＥＤＣを加える。室温で１時間上下回転させる。０．６ｍＬの、ＭＥＳ緩衝液中５％ＢＳＡを加える。室温で１時間上下回転させる。

遠心分離して固形物をペレット化する。上清をデカントする。粒子を１５ｍＬの５０ｍＭトリス／１％トリトン緩衝液に懸濁させる。１５ｍＬの５０ｍＭトリス／１％トリトンＸ−１００緩衝液によってさらに２回溶媒交換（洗浄）を繰り返す。

遠心分離して固形物をペレット化する。上清をデカントする。粒子を１５ｍＬの５０ｍＭトリス緩衝液に懸濁させる。１５ｍＬの５０ｍＭトリス緩衝液によってさらに２回溶媒交換（洗浄）を繰り返す。

最後に、粒子を６．０ｍＬの５０ｍＭトリス緩衝液に懸濁させる。固体％を決定し、使用まで４℃で保管する。

この時点で、これらの粒子は、ニュートラアビジンでコーティングされた蛍光１５ｎＭコロイド金粒子による蛍光「染色」の準備ができた状態にある。

二重反応性（ＦｅＬＶ抗原およびビオチン結合）蛍光１５ｎＭコロイド金試薬の調製
材料：
１５ｎｍコロイド金（ブリティッシュ・バイオセル（Ｂｒｉｔｉｓｈ Ｂｉｏｃｅｌｌ Ｉｎｃ．））
抗ＦｅＬＶ単クローン性抗体（ＩＤＥＸＸラボラトリーズ（ＩＤＥＸＸ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．））
ニュートラアビジン（ピアス（Ｐｉｅｒｃｅ））
塩化ユーロピウム、ｆｗ２５８．３（アルドリッチ（Ａｌｄｒｉｃｈ）、＃４２，９７３−２）
トリオクチルホスフィンオキシド、ｆｗ３８６．７（アルドリッチ＃２２３３０１）
３，５，ジ−フルオロ、フェニル、ナフチル、プロパンジオン、ｆｗ３１０．３（ＩＤＥＸＸラボラトリーズ）
ポリエチレングリコール、ｆｗ約１５〜２０，０００（シグマ＃Ｐ−２２６３）
メタノール（シグマ＃３２，２４１−５）
ジオキサン（シグマ＃２７，０５３−９）
ホウ砂（シグマＢ−３５４５）

調製：
Ａ．４０ｍＭのホウ酸塩ストック
１５．２５ｇのホウ砂を８００ｍＬの水に溶解させる。全量を１．０Ｌにする。
Ｂ．２ｍＭのホウ酸塩緩衝液、ｐＨ９．０
５０ｍＬの４０ｍＭホウ酸塩を８００ｍＬの水に加える。ｐＨを９．０にする。全量を１．０Ｌにする。
Ｃ．水中の１０％ポリエチレングリコール
１０ｇのポリエチレングリコールを８０ｍＬの水に溶解させる。全量を１００ｍＬにする。
Ｄ．２ｍＭホウ酸塩中の０．３％ポリエチレングリコール
５０ｍＬの４０ｍＭホウ酸塩および３０ｍＬの１０％ポリエチレングリコールを８００ｍＬの水に加える。ｐＨを７．１に調整する。全量を１．０Ｌにする。
Ｅ．抗ＦｅＬＶ抗体
２ｍＭホウ酸塩中へと抗体を脱塩／透析する。抗体を２ｍＭホウ酸塩で希釈して０．６ｍｇ／ｍＬにする（最適化された濃度）。
Ｆ．ニュートラアビジン
ニュートラアビジンを２ｍＭホウ酸塩に溶解させる。２ｍＭホウ酸塩中へとニュートラアビジンを脱塩／透析する。ニュートラアビジンを２ｍＭホウ酸塩で希釈して２．３ｍｇ／ｍＬにする（最適化された濃度）。
Ｇ．２ｍｍホウ酸塩中の２０ｍＭ塩化ユーロピウム
８．１ｍｇの塩化ユーロピウムを１．５６ｍＬの２ｍＭホウ酸塩に溶解させる。
Ｈ．メタノール中の４０ｍＭトリオクチルホスフィンオキシド
７１．２ｍｇを４．６ｍＬのメタノールに溶解させる。
Ｉ．ジオキサン中の２０ｍＭ３，５，ジ−フルオロ、フェニル、ナフチル、プロパンジオン
３３．２ｍｇを５．３５ｍＬのジオキサンに溶解させる。
Ｊ．６０％ジオキサン／２０％メタノール／２０％水中の４ｍＭユーロピウムキレート
ガラス管に、
０．２ｍＬの４０ｍＭトリオクチルホスフィンオキシド
０．６ｍＬの２０ｍＭ３，５，ジ−フルオロ、フェニル、ナフチル、プロパンジオン
０．２ｍＬの２０ｍＭ塩化ユーロピウムを加える。

手順：
３００ｍＬの１５ｎＭコロイド金に、
０．７５ｍＬの４ｍＭユーロピウムキレートを加える（急速撹拌しながら滴下添加）−混合しながら５分間おく。
３．０ｍＬの０．６ｍｇ／ｍＬ抗ＦｅＬＶ抗体を加える（急速撹拌しながら滴下添加）−混合しながら５分間おく。
３．０ｍＬの２．３ｍｇ／ｍＬニュートラアビジンを加える（急速撹拌しながら滴下添加）−混合しながら２０分間おく。
９．５ｍＬの１０％ポリエチレングリコールを加える（急速撹拌しながら滴下添加）−混合しながら２０分間おく。１５ｎｍの金を遠心分離して（１０．５ｋｒｐｍ、１時間）、金粒子をペレット化する。上清をデカントし、３００ｍＬの０．３％ポリエチレングリコール中に再懸濁させる。３００ｍＬの０．３％ポリエチレングリコールによってさらに２回溶媒交換（洗浄）を繰り返す。最後に、金を１０〜３０ｍｌの０．３％ポリエチレングリコールに懸濁させる。この時点で、蛍光１５ｎｍ金粒子は、使用する準備ができた状態にある。

磁性粒子への蛍光コロイド金試薬の特異的結合
実施例２のように調製された５００μｌの１５ｎｍニュートラアビジン−ＩｇＧ（抗−ＦＥＬＶ）蛍光コロイド金を、実施例１のように調製された５０μｌの２００ｎｍビオチン磁性粒子に加える。ボルテックスし、室温で１時間インキュベートする。インキュベーション後、６．１８μｌの１ｍｇ／ｍｌビオチン溶液（５０ｍＭトリス／０．０５％ツイーン（Ｔｗｅｅｎ）ｐＨ９で希釈された、ピアス（Ｐｉｅｒｃｅ）ＥＺ−リンク５−（ビオチンアミド）ペンチルアミン品番２１３４５）を加える。溶液を１インチ立方体磁石上に１０分間置いて粒子を収集する。上清を除去する。

５５０μｌの５０ｍＭトリス／０．０５％ツイーンｐＨ９中に再懸濁させる。６．１８μｌの１ｍｇ／ｍｌビオチン溶液を加える。前述のように磁石の上で粒子を捕捉する。上清を除去する。前述のように再懸濁させ、前述のようにビオチンを加える。前述のように粒子を捕捉し、上清を除去する。再懸濁させ、トリス緩衝液を使用して固体０．０４％（ビオチン磁性粒子に基づく）まで希釈する。

磁性粒子への蛍光コロイド金試薬の共有結合的取付け
材料：
２００ｎＭのカルボキシ磁性粒子３．１％固体（アデムテック（Ａｄｅｍｔｅｃｈ）＃０２１２３）
１５ｎＭ蛍光コロイド金試薬（ニュートラアビジンの添加なしに実施例２のように調製される）
ＭＥＳ、ｆｗ１９５．２（シグマ＃Ｍ−８２５０）
トリズマ塩基、ｆｗ１２１．１（シグマ＃Ｔ−１５０３）
ＥＤＣ（１−エチル−３−［３−ジメチルアミノプロピル］カルボジイミドヒドロクロリド）、ｆｗ１９１．７（ピアス＃２２９８０）

調製：
Ａ．５０ｍＭ ＭＥＳ緩衝液、ｐＨ６．１
９．７６ｇのＭＥＳを８００ｍＬの水に溶解させる。ｐＨを６．１に調整する。全量を１．０Ｌにする。
Ｂ．５０ｍＭトリス緩衝液、ｐＨ９．０
６．０６ｇのトリスを８００ｍＬの水に溶解させる。ｐＨを９．０に調整する。全量を１．０Ｌにする。
Ｃ．ＭＥＳ緩衝液中の３０ｕＭ ＥＤＣ
７．３ｍｇのＥＤＣを２．５４ｍＬのＭＥＳ緩衝液に溶解させる。ＭＥＳ緩衝液中に１：５００で希釈する。

手順：
０．０９ｍＬの２００ｎｍ粒子を遠心分離して、固形物をペレット化する。上清をデカントする。粒子を１．５ｍＬの５０ｍＭ ＭＥＳ緩衝液に懸濁させる。１．５ｍＬの５０ｍＭ ＭＥＳ緩衝液によってさらに２回溶媒交換（洗浄）を繰り返す。２００ｎｍ粒子を０．３ｍＬの５０ｍＭ ＭＥＳ緩衝液に懸濁させる。

０．７８７ｍＬの１５ｎｍ蛍光粒子を遠心分離して固形物をペレット化する。上清をデカントする。１５ｎｍ粒子を０．３ｍＬの５０ｍＭ ＭＥＳ緩衝液に懸濁させる。２００ｎｍ磁性粒子を１５ｎｍ蛍光粒子と組み合わせる。０．３ｍＬの３０ｕＭ ＥＤＣ溶液を粒子混合物に加える。室温で２時間上下回転させる。

磁気分離を使用して固形物をペレット化する。上清をデカントする。粒子ペレットを１．０ｍＬの５０ｍＭトリス緩衝液に懸濁させる。上清が透明になるまで磁気分離によって溶媒交換（洗浄）を繰り返す。最後に、粒子を１．０ｍＬの５０ｍＭトリス緩衝液に懸濁させる。固体％を決定し、使用まで４℃で保管する。

分析デバイス
米国ジョージア州フェアバーン（Ｆａｉｒｂｕｒｎ）のポーレックス・テクノロジーズ社（Ｐｏｒｅｘ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｃｏｒｐ．）製の超高分子量ポリエチレンシート材料であるポーレックス（Ｐｏｒｅｘ）マトリックスに固定された、直径０．２５インチの４０ＭＧＯｅ希土類ネオジム−鉄−ホウ素棒磁石を使用して、デバイスを準備した。この材料は、焼結によって超高分子量ポリエチレン（ＵＨＷＭ−ＰＥ）の融着球状粒子から作製される。これは、平均孔隙サイズ８ミクロンの多孔質構造を作り出す。ポリエチレン表面は、酸素プラズマで処理され、次いでポリエチレンイミン（ＰＥＩ）とポリアクリル酸（ＰＡＡ）との交互の層でコーティングされて、７０秒／４ｃｍの吸上速度を有する界面活性剤フリーの親水性表面を作り出す。マトリックスを約６．４ミリ×１００ｍｍのストリップに切断した。磁石およびマトリックスを単純なデバイスホルダによって適所で保持した。

ＦＥＬＶ（磁石に向かう流動反応混合物）の検出
以下の実施例では、ＩＤＥＸＸ ＦｅＬＶ／ＦＩＶ Ｃｏｍｂｏ ＳＮＡＰ（登録商標）試験を使用して、白血病ウイルス陽性のネコ試験からの５０μｌの血清サンプルを、実施例３または４のように調製された５０μｌの２重免疫反応性／蛍光性粒子（Ｄｕａｌ Ｉｍｍｕｎｏｒｅａｃｔｉｖｅ／Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｐａｒｔｉｃｌｅ）、並びに、防腐剤、タンパク質、血清、および緩衝塩の溶液中で２０μｇ／ｍｌに希釈された１２．５μｌのＩｇＧ ＨＲＰコンジュゲート（例えば、スタビルザイム（Ｓｔａｂｉｌｚｙｍｅ）（登録商標）、サーモディクス（ＳｕｒＭｏｄｉｃｓ）、ミネソタ州エデンプレーリー（Ｅｄｅｎ Ｐｒａｒｉｅ））と混合した。

混合物を、３７℃で１０分間、混合状態でインキュベートした。１５μｌのＳＮＡＰ（登録商標）洗浄試薬（ＩＤＥＸＸラボラトリーズ）を、実施例５のように準備されたデバイスホルダ内のポーレックスマトリックスの前端から約８．５ｍｍにスポットした。５μｌの反応混合物を、ポーレックスマトリックス上の、直径０．２５インチの磁石の前の約１０ｍｍにスポットした。磁石は、ポーレックスマトリックスの前端から約２０ｍｍにある。１５μｌのＳＮＡＰ（登録商標）洗浄試薬を２度目にスポットする。信号を検出するために、マトリックスを照光光度計または分光光度計のいずれかの読取りデバイス内に置く。化学発光信号を検出するためにＰＳ−アト基質（ＰＳ−ａｔｔｏ ｓｕｂｓｔｒａｔｅ）（ルミンゲン社（Ｌｕｍｉｎｇｅｎ， Ｉｎｃ．）をマトリックスの上に流す。蛍光標識の検出は、磁石の上の検出ゾーンのところで光源（例えば、３６５ｎｍのＬＥＤ）を輝かせることによって達成され、蛍光コロイド金上のフルオロフォアから発せられる光が測定される。

図５は、様々な既知のＦｅＬＶ濃度における、ＦｅＬＶについての多数のアッセイの結果を示す。検出限界は、約０．００５ｎｇ／ｍｌであった。図６は、ＦＥＬＶ濃度０．２５ｎｇ／ｍｌでのアッセイ（３０回のアッセイが２日連続で実施された）の再現性を示す。６０回のアッセイすべてについてのアッセイ誤差は、６．６％（ＣＶ＝６．６％）であった。

ＦｅＬＶの検出
実施例６のように反応混合物を調製した。混合物を３７℃で１０分間インキュベートした。デバイスホルダ内のポーレックスマトリックスをＳＮＡＰ（登録商標）洗浄試薬で予め２０秒間濡らした。５μｌの反応混合物を直径０．２５インチの磁石の真上でポーレックスマトリックス上にスポットした。磁石は、ポーレックスマトリックスの先端から約１０ｍｍにある。ＳＮＡＰ（登録商標）洗浄液を１分間流し、デバイスを読取り器内に置いた。化学発光および蛍光信号を実施例６のように検出した。

ＦｅＬＶの検出
５０μｌのネコサンプルを、実施例１のように調製された５０μｌの２００ｎｍビオチン磁性粒子、および１２．５μｌのＩｇＧ Ｇ３ ＨＲＰコンジュゲート、および実施例３のように調製された１３μｌの１５ｎｍニュートラアビジン−ＩｇＧ蛍光コロイド金と混合した。混合物を３７℃で１０分間インキュベートした。デバイスホルダ内のポーレックスマトリックスを、該マトリックスの前端から約８．５ｍｍに１５μｌのＳＮＡＰ（登録商標）洗浄試薬をスポットすることによって予め濡らした。５μｌの反応混合物を、ポーレックスマトリックス上の、直径０．２５インチの磁石の前の約１０ｍｍにスポットした。磁石は、マトリックスの前端から約２０ｍｍにある。１５μｌのＳＮＡＰ（登録商標）洗浄液を２度目にスポットした。化学発光および蛍光信号を実施例６のように検出した。

ＦｅＬＶの検出（磁石上への反応混合物の直接付着）
反応混合物およびデバイスを実施例８のように準備した。ポーレックスマトリックスをＳＮＡＰ（登録商標）洗浄試薬によって予め２０秒間濡らした。５μｌの反応混合物を、直径０．２５インチの磁石の真上でポーレックスマトリックス上にスポットした。磁石は、マトリックスの先端から約１０ｍｍであった。ＳＮＡＰ（登録商標）洗浄試薬をマトリックスの上に１分間流した。化学発光および蛍光信号を実施例６のように検出した。

Ｔ４の検出
様々なＴ４濃度を有する１０μｌのサンプルを、フィッツジェラルド・インターナショナル・インダストリーズ社（Ｆｉｔｚｇｅｒａｌｄ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ）（＃Ｍ９４２０７）から得られる抗体を使用して自家製造された、２０μｌの０．０５μｇ／ｍｌ抗Ｔ４抗体コンジュゲートＨＲＰと混合し、３７℃で５分間インキュベートした。１０μｌの磁性粒子をＴ３でコーティングし、さらに５分間インキュベートした。デバイスホルダ内のポーレックスマトリックスをＳＮＡＰ（登録商標）洗浄試薬で予め２０秒間濡らした。５μｌの反応混合物を、ポーレックスマトリックス上の、直径０．２５インチの磁石の前の約１０ｍｍにスポットした。磁石は、ポーレックスマトリックスの前端から約２０ｍｍにある。１５μｌのＳＮＡＰ（登録商標）洗浄試薬を２度目にスポットした。化学発光を実施例６のように検出した。

図７は、Ｔ４の様々なサンプル濃度でのＴ４アッセイの結果を示す。

本発明の様々な特定の実施形態を本明細書に記載したが、本発明がそれらの精密な諸実施形態のみに限定されず、本発明の範囲および趣旨から逸脱することなく当業者がそれらに様々な変更および修正を加えることができることを理解すべきである。

図１は、本発明の方法に関連した化学発光信号および蛍光信号の相関を示すグラフである。 図２は、再水和体積が凍結乾燥粒子の化学発光活性に及ぼす影響を監視するための蛍光の使用を示すグラフである。 図３Ａは、本発明のＨＲＰ−ＴＲＦ粒子による尿素Ｈ₂Ｏ₂の滴定の結果を示すグラフであり、化学発光と過酸化尿素濃度との間に線形関係があり、２つの信号の間にクロストークがなかったことを示す。 図３Ｂは、本発明のＨＲＰ−ＴＲＦ粒子による尿素Ｈ₂Ｏ₂の滴定の結果を示すグラフであり、一定の蛍光は、アッセイにおける一定の分注および捕捉効率を示す。 図４は、Ｈ₂Ｏ₂濃度に対するＦｅＬＶ用量応答の相関を示す図である。 図５は、本発明を使用するＦｅＬＶアッセイの感度を示すグラフである。 図６は、本発明を使用するＦｅＬＶについての６０回のアッセイの結果を示す一連のグラフである。 図７は、本発明を使用する様々なＴ４濃度における競合フォーマットでのＴ４アッセイの結果を示すグラフである。

Claims (107)

1. 金属コロイドに結合した磁性ナノ粒子を含む複合体。
2. 磁性ナノ粒子は、酸化鉄とポリマーとを含む、請求項１に記載の複合体。
3. 磁性ナノ粒子は、約５０〜１０００ナノメートルの直径を有する、請求項１に記載の複合体。
4. 磁性ナノ粒子は、約１００〜５００ナノメートルの直径を有する、請求項３に記載の複合体。
5. コロイドは、ナノ粒子に共有結合している、請求項１に記載の複合体。
6. 粒子は、第１の特異的結合パートナーを含み、コロイドは、第１の特異的結合パートナーに特異的である第２の特異的結合パートナーを含む、請求項１に記載の複合体。
7. （ｉ）第１の特異的結合パートナーがビオチンであり、第２の特異的結合パートナーが、アビジン、ストレプトアビジン、およびニュートラアビジンから成る群から選択されるか、或いは、（ｉｉ）第１の特異的結合パートナーが、アビジン、ストレプトアビジン、およびニュートラアビジンから成る群から選択され、第２の特異的結合パートナーがビオチンである、請求項６に記載の複合体。
8. ポリマーは、オレフィン系ポリマーまたはコポリマーを含む、請求項２に記載の複合体。
9. ポリマーは、多糖類を含む、請求項２に記載の複合体。
10. 磁性粒子は、ヒドロキシル、カルボキシル、アルデヒド、またはアミノから成る群から選択される官能基を含む、請求項１に記載の複合体。
11. 金属は、金、銀、または希土類金属である、請求項１に記載の複合体。
12. コロイドに取り付けられた第１の標識をさらに含む、請求項１に記載の複合体。
13. 第１の標識は、蛍光性の金属キレートを含む、請求項１２に記載の複合体。
14. ナノ粒子またはコロイドは、被検物質特異的結合パートナーを含む、請求項１に記載の複合体。
15. コロイドに取り付けられた第１の標識をさらに含む、請求項１４に記載の複合体。
16. 第１の標識は、蛍光性の金属キレートである、請求項１５に記載の複合体。
17. 標識が取り付けられている金属コロイドと、第１の特異的結合パートナーと、被検物質特異的結合パートナーとを含む、サンプル中の被検物質を検出するための試薬。
18. 金属は、金、銀、または希土類金属である、請求項１７に記載の試薬。
19. 第１の特異的結合パートナーは、ビオチン、アビジン、ストレプトアビジン、またはニュートラアビジンである、請求項１７に記載の試薬。
20. 標識は、蛍光性の金属キレートを含む、請求項１７に記載の試薬。
21. 請求項１４に記載の複合体を含む、サンプル中の被検物質を検出するための微粒子試薬であって、コロイドは、コロイドに取り付けられた第１の標識をさらに含む、微粒子試薬。
22. 金属は、金、銀、または希土類金属である、請求項２１に記載の試薬。
23. 標識は、蛍光性の金属キレートを含む、請求項２１に記載の試薬。
24. 磁性ナノ粒子は、酸化鉄とポリマーとを含む、請求項２１に記載の試薬。
25. 磁性ナノ粒子は、約５０〜１０００ナノメートルの直径を有する、請求項２１に記載の試薬。
26. 磁性ナノ粒子は、約１００〜５００ナノメートルの直径を有する、請求項２１に記載の試薬。
27. コロイドは、ナノ粒子に共有結合している、請求項２１に記載の試薬。
28. 粒子は、第１の特異的結合パートナーを含み、コロイドは、第１の特異的結合パートナーに特異的である第２の特異的結合パートナーを含む、請求項２１に記載の試薬。
29. ポリマーは、オレフィン系ポリマーまたはコポリマーを含む、請求項２４に記載の試薬。
30. ポリマーは、多糖類を含む、請求項２４に記載の試薬。
31. 磁性ナノ粒子は、ヒドロキシル、カルボキシル、アルデヒド、またはアミノから成る群から選択される官能基を含む、請求項２４に記載の試薬。
32. 請求項２４に記載の試薬を含む、凍結乾燥された試薬。
33. 多孔質キャリアマトリックスと、多孔質キャリアマトリックス上に検出ゾーンを画定する磁場を有する磁石とを含むデバイスであって、磁場は、請求項２１に記載の微粒子試薬を引き付けて検出ゾーン内で保持する、上記デバイス。
34. 金属は、金、銀、または希土類金属である、請求項３３に記載のデバイス。
35. 標識は、蛍光性の金属キレートを含む、請求項３３に記載のデバイス。
36. 磁性ナノ粒子は、酸化鉄とポリマーとを含む、請求項３３に記載のデバイス。
37. 磁性ナノ粒子は、約５０〜１０００ナノメートルの直径を有する、請求項３３に記載のデバイス。
38. 磁性ナノ粒子は、約１００〜５００ナノメートルの直径を有する、請求項３３に記載のデバイス。
39. サンプル中の被検物質を検出するためのキットであって、
    請求項１４に記載の複合体、および
    磁石を含む検出ゾーンを含む多孔質キャリアマトリックスを含むデバイス
    を含み、多孔質キャリアは、複合体の実質的に妨げられない横方向流れを可能にする平均孔隙サイズを有する、上記キット。
40. 複合体は、コロイドに取り付けられた第１の標識をさらに含む、請求項３９に記載のキット。
41. 金属は、金、銀、または希土類金属である、請求項３９に記載のキット。
42. 標識は、蛍光性の金属キレートを含む、請求項４０に記載のキット。
43. 被検物質特異的結合パートナー若しくは被検物質の類似体に結合した第２の標識を含むコンジュゲート試薬をさらに含み、第２の標識からの信号は、コロイドに取り付けられた第１の標識とは区別可能である、請求項３９に記載のキット。
44. 磁石は、複合体がマトリックスに適用されるときに磁場が複合体を引き付けて検出ゾーン内に実質的に閉じ込めるように、検出ゾーンと結び付けられている、請求項３９に記載のキット。
45. マトリックスは、複合体の直径の約３〜約５００倍の平均孔隙サイズを有する、請求項３９に記載のキット。
46. マトリックスは、磁性粒子の直径の約１０〜約２５０倍の平均孔隙サイズを有する、請求項３９に記載のキット。
47. マトリックスは、検出ゾーンから横方向に離隔されたサンプル適用ゾーンを有する、請求項３９に記載のキット。
48. 磁石は、少なくとも２０ＭＧＯｅの強度を有する、請求項３９に記載のキット。
49. 磁性ナノ粒子は、約５０〜１０００ナノメートルの直径を有する、請求項３９に記載のキット。
50. 磁性ナノ粒子は、約１００〜５００ナノメートルの直径を有する、請求項３９に記載のキット。
51. サンプル中の被検物質を検出するためのキットであって、請求項３３に記載のデバイスと、被検物質特異的結合パートナー若しくは被検物質の類似体に結合した第２の標識を含むコンジュゲート試薬とを含み、第１の標識からの信号は、第２の標識からの信号とは区別可能である、上記キット。
52. 金属は、金、銀、または希土類金属である、請求項５１に記載のキット。
53. 第１の標識は、蛍光性の金属キレートを含む、請求項５１に記載のキット。
54. サンプル中の被検物質を検出するためのキットであって、
    請求項２１に記載の微粒子試薬、
    多孔質キャリアマトリックスおよび多孔質キャリアマトリックス上に検出ゾーンを画定する磁場を有する磁石、ここで、磁場は、微粒子試薬がマトリックスに添加されたときに試薬を引き付けて検出ゾーン内で保持し、マトリックスキャリアは、微粒子試薬の実質的に妨げられない横方向流れを可能にする平均孔隙サイズを有しており、および
    被検物質特異的結合パートナー若しくは被検物質類似体に結合した第２の標識を含むコンジュゲート試薬であって、第２の標識からの信号は、コロイドに取り付けられた第１の標識からの信号とは区別可能であるコンジュゲート試薬、
    を含む、上記キット。
55. 金属は、金、銀、または希土類金属である、請求項５４に記載のキット。
56. 第１の標識は、蛍光性の金属キレートを含む、請求項５４に記載のキット。
57. 磁性ナノ粒子は、約５０〜１０００ナノメートルの直径を有する、請求項５４に記載のキット。
58. 磁性ナノ粒子は、約１００〜５００ナノメートルの直径を有する、請求項５４に記載のキット。
59. 微粒子試薬は、凍結乾燥された形態である、請求項５４に記載のキット。
60. サンプル中の被検物質の存在または量を決定する方法であって、
    サンプルと、請求項２１に記載の微粒子試薬と、第２の被検物質特異的結合パートナー若しくは被検物質の類似体に結合した第２の標識を含むコンジュゲート試薬とを含む混合物を形成し、
    混合物と、磁石を含む検出ゾーンを含む多孔質キャリアマトリックスを含むデバイスとを接触させ、ここで、マトリックスは、微粒子試薬の実質的に妨げられない横方向流れを可能にする平均孔隙サイズを有しており、
    検出ゾーンの領域でマトリックスから混合物を洗浄し、
    検出ゾーン内の第１の標識および第２の標識からの信号を同時にまたは順次検出して、サンプル中の被検物質の存在または量を決定する、
    の各工程を含む、上記方法。
61. 被検物質の量の決定は、第１の標識からの信号の量と第２の標識からの信号の量とを比較することを含む、請求項６０に記載の方法。
62. マトリックスは、検出ゾーンから横方向に離隔されたサンプル適用ゾーンをさらに含み、混合物をサンプル適用ゾーンと接触させる、請求項６０に記載の方法。
63. 混合物を検出ゾーンと接触させる、請求項６０に記載の方法。
64. 微粒子試薬は、凍結乾燥された形態である、請求項６０に記載の方法。
65. 液体サンプル中の被検物質の存在または量を決定する方法であって、
    請求項３３に記載のデバイスとサンプルとを接触させ、
    デバイスと、第２の被検物質特異的結合パートナー若しくは被検物質類似体に結合した第２の標識を含むコンジュゲート試薬とを接触させ、
    検出ゾーン内の第１の標識および第２の標識からの信号を同時にまたは順次検出して、サンプル中の被検物質の存在または量を決定する
    の各工程を含む、上記方法。
66. サンプルとコンジュゲート試薬とを、それらをデバイスと接触させる前に混合する、請求項６５に記載の方法。
67. 被検物質の量の決定は、第１の標識からの信号の量と第２の標識からの信号の量とを比較することを含む、請求項６５に記載の方法。
68. マトリックスは、検出ゾーンから横方向に離隔されたサンプル適用ゾーンをさらに含み、サンプルおよびコンジュゲート試薬の少なくとも一方を、サンプル適用ゾーンと接触させる、請求項６５に記載の方法。
69. サンプルおよびコンジュゲート試薬の少なくとも一方を、検出ゾーンと接触させる、請求項６５に記載の方法。
70. 微粒子試薬は、凍結乾燥された形態である、請求項６５に記載の方法。
71. 液体サンプル中の被検物質の存在または量を決定する方法であって、
    サンプルと請求項２１に記載の試薬とを含む混合物を形成し、
    混合物を、磁石を含む検出ゾーンを含む多孔質キャリアマトリックスを含むデバイスに適用し、ここで、多孔質キャリアは、磁性粒子の実質的に妨げられない横方向流れを可能にする平均孔隙サイズを有しており、
    マトリックスと、第２の被検物質特異的結合パートナー若しくは被検物質の類似体に結合した第２の標識を含むコンジュゲート試薬とを接触させ、
    検出ゾーン内の第１の標識および第２の標識からの信号を同時にまたは順次検出して、サンプル中の被検物質の存在または量を決定する、
    の各工程を含む、上記方法。
72. 被検物質の量の決定は、第１の標識からの信号の量と第２の標識からの信号の量とを比較することを含む、請求項７１に記載の方法。
73. マトリックスは、検出ゾーンから横方向に離隔されたサンプル適用ゾーンをさらに含み、、混合物を、サンプル適用ゾーンと接触させる、請求項７１に記載の方法。
74. 混合物を、検出ゾーンと接触させる、請求項７１に記載の方法。
75. 微粒子試薬は、凍結乾燥された形態である、請求項７１に記載の方法。
76. サンプル中の被検物質の存在または量を決定する方法であって、
    サンプルと、請求項２１に記載の試薬と、第２の被検物質特異的結合若しくは被検物質類似体に結合した第２の標識を含むコンジュゲート試薬とを含む混合物を形成し、
    混合物と、磁石を含む検出ゾーンを含む親水性の多孔質キャリアマトリックスを含むデバイスとを接触させ、ここで、多孔質キャリアは、微粒子試薬の実質的に妨げられない横方向流れを可能にする平均孔隙サイズを有しており、
    検出ゾーンの領域でマトリックスから混合物を洗浄し、
    検出ゾーン内の標識からの信号を同時にまたは順次検出して、サンプル中の被検物質の存在を決定する、
    の各工程を含む、上記方法。
77. 被検物質の量の決定は、第１の標識からの信号の量と第２の標識からの信号の量とを比較することを含む、請求項７６に記載の方法。
78. マトリックスは、検出ゾーンから横方向に離隔されたサンプル適用ゾーンをさらに含み、混合物を、サンプル適用ゾーンと接触させる、請求項７６に記載の方法。
79. 混合物を、検出ゾーンと接触させる、請求項７６に記載の方法。
80. 微粒子試薬は、凍結乾燥された形態である、請求項７６に記載の方法。
81. サンプル中の被検物質を検出するためのアッセイを較正する方法であって、アッセイは、サンプルと、第２の被検物質特異的結合パートナーに取り付けられた第２の標識を含むコンジュゲート試薬とを接触させることを含み、前記方法は、
    サンプルと請求項２１に記載の微粒子試薬との混合物を形成し、
    混合物と、磁石を含む検出ゾーンを含む親水性の多孔質キャリアマトリックスを含むデバイスとを接触させ、ここで、多孔質キャリアは、微粒子試薬の実質的に妨げられない横方向流れを可能にする平均孔隙サイズを有しており、
    検出ゾーン内の第１の標識に関連した信号の量を測定し、このことによりアッセイを較正する、
    の工程を含む、上記方法。
82. 金属は、金、銀、または希土類金属である、請求項８１に記載の方法。
83. 標識は、蛍光性の金属キレートを含む、請求項８１に記載の方法。
84. 磁性ナノ粒子は、酸化鉄とポリマーとを含む、請求項８１に記載の方法。
85. 磁性ナノ粒子は、約５０〜１０００ナノメートルの直径を有する、請求項８１に記載の方法。
86. 磁性ナノ粒子は、約１００〜５００ナノメートルの直径を有する、請求項８１に記載の方法。
87. コロイドは、ナノ粒子に共有結合している、請求項８１に記載の方法。
88. 粒子は第１の特異的結合パートナーを含み、コロイドは第１の特異的結合パートナーに特異的である第２の特異的結合パートナーを含む、請求項８１に記載の方法。
89. ポリマーは、オレフィン系ポリマーまたはコポリマーを含む、請求項８４に記載の方法。
90. ポリマーは、多糖類を含む、請求項８４に記載の方法。
91. 磁性ナノ粒子は、ヒドロキシル、カルボキシル、アルデヒド、またはアミノから成る群から選択される官能基を含む、請求項８４に記載の方法。
92. マトリックスは、複合体の直径の約３〜約５００倍の平均孔隙サイズを有する、請求項８１に記載の方法。
93. マトリックスは、磁性粒子の直径の約１０〜約２５０倍の平均孔隙サイズを有する、請求項８１に記載の方法。
94. マトリックスは、検出ゾーンから横方向に離隔されたサンプル適用ゾーンを有する、請求項８１に記載の方法。
95. 磁石は、少なくとも２０ＭＧＯｅの強度を有する、請求項８１に記載の方法。
96. 微粒子試薬は、凍結乾燥された形態である、請求項８１に記載の方法。
97. 化学発光検出方法で使用される基質を較正する方法であって、
    基質と請求項２４に記載の微粒子試薬とを接触させ、ここで、試薬は、基質と反応して化学発光信号を生成する酵素をさらに含み、そして
    標識それぞれからの信号の量を比較する、
    の各工程を含む、上記方法。
98. 金属は、金、銀、または希土類金属である、請求項９７に記載の方法。
99. 標識は、蛍光性の金属キレートを含む、請求項９７に記載の方法。
100. 磁性ナノ粒子は、酸化鉄とポリマーとを含む、請求項９７に記載の方法。
101. 磁性ナノ粒子は、約５０〜１０００ナノメートルの直径を有する、請求項１００に記載の方法。
102. 磁性ナノ粒子は、約１００〜５００ナノメートルの直径を有する、請求項１００に記載の方法。
103. コロイドは、ナノ粒子に共有結合している、請求項１００に記載の方法。
104. 粒子は第１の特異的結合パートナーを含み、コロイドは第１の特異的結合パートナーに特異的である第２の特異的結合パートナーを含む、請求項１００に記載の方法。
105. ポリマーは、オレフィン系ポリマーまたはコポリマーを含む、請求項１００に記載の方法。
106. ポリマーは、多糖類を含む、請求項１００に記載の方法。
107. 磁性ナノ粒子は、ヒドロキシル、カルボキシル、アルデヒド、またはアミノから成る群から選択される官能基を含む、請求項１００に記載の方法。