JP2009503092A - 抗真菌ペプチドおよびその使用の方法 - Google Patents
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Abstract
Description
CAP37(Mr37kDaのカチオン性抗微生物タンパク質)は、当初、ヒト好中球(PMN)の酸素とは独立の殺傷機構の成分として同定され、そしてSalmonella typhimurium、Escherichia coli、およびPseudomonas aeruginosaを含むグラム陰性生物に対する強い殺菌活性を有することが示された(Shaferら、1984;Shaferら、1986;Spitznagel 1990)。細菌に対するその影響とは別個に、ネイティブCAP37タンパク質は、宿主細胞に対する強い調節効果を有する。それは、単球(Pereiraら、1990)、小神経膠細胞(Pereiraら、2002)およびマクロファージ(Larrickら、1991)のような単核食細胞システムの細胞の有効なレギュレーターである。それはまた、角膜上皮機能(Ruanら、2002)、内皮機能(Leeら、2002;Leeら、2003)および平滑筋細胞機能(Gonzalezら、2004)を調節する。
Pereira,H.A.,I.Erdem,J.Pohl、およびJ.K.Spitznagel.1993.Synthetic bactericidal peptide based on CAP37:a 37KDa human neutrophil granule−associated cationic antimicrobial protein chemotactic for monocytes. Proc.Natl.Acad.Sci.(USA).90:4733−4737 Brackett,D.J.,M.R.Lerner,M.A.Lacquement,R.He,およびH.A.Pereira.1997.A synthetic lipopolysaccharide−binding peptide based on the neutrophil−derived protein CAP37 prevents endotoxin−induced responses in conscious rats.Infect.Immun.65:2803−2811
本明細書に示されるのは、抗生物質タンパク質CAP37のネイティブ配列に基づくペフチドの抗真菌活性である。このペプチドは、特に、Candida種に対する抗真菌薬剤として用いられ得る。
(ペプチド合成)
ペプチドは、先に記載されるように(Pereiraら、PNAS 1993)、ペプチド合成器上の固相合成によって合成された。ペプチドの純度は確認された。ペプチドの質量は、質量分析法で確認された。ペプチドは、残基20〜44からなるCAP37のネイティブなアミノ酸配列に基づく合成ペプチド(CAP37(20−44)nat)が多くのグラム陰性生物に対する強い殺菌活性を有したという先の知見(Pereiraら、PNAS 1993)から推定して合成された。位置26および42におけるシステイン残基がセリン残基によって置換されたこのペプチドの不活性アナログ(CAP37(20−44)ser26/42)(Pereiraら、PNAS 1993)を、不活性コントロールペプチドとして用いた。さらに、2つのその他のペプチドアナログが合成された。1つのペプチドは、位置26のシステイン残基がセリンによって置換され(CAP37(20−44)ser26)、そして他方は位置42のシステイン残基がセリンによって置換された(CAP37(20−44)ser42)。
この研究で用いられた単離株には、Candida albicans(ATCC28367)、A−22、A−111およびA−155と称されるC.albicansの3つのフルコナゾール感受性粘膜単離株、A−46、A−5、およびA−20と称されるC.albicansのフルコナゾール耐性粘膜単離株、およびWDOと称されるC.albicansの血液単離株を含めた。単離株は、−70℃で凍結されて貯蔵され、そしてSabouraud Dextrose Agar(Sigma、St.Louis、MO)プレートに画線培養し、そしてプレート上で4℃で維持され、これらの研究の持続期間のほぼ10日毎に新たなプレート上に継代した。フルコナゾール耐性が評価された。C.glabrataの3つの臨床単離株、C.dubliniensisの2つの臨床単離株、およびC.krusei、C.guilliermondii、C.parapsilosis、C.pseudotropicalisおよびC.tropicalis各々の1つの単離株、およびSaccharomyces cerevisiaeの2つの単離株がまたこの研究で用いられ、そしてSabouraud Dextrose Agarプレート上4℃で維持された。単一の酵母コロニーを、0.1%のD−グルコース(Sigma)を添加した1%ファイトンペフトンブロース(Becton Dickinson、Sparks MD)中、33℃で一晩培養した。
菌糸形成を誘導するために、Sabouraud Dextrose AgarプレートからのC.albicans単離株A−5、A−20、A−22、A−46、A−11およびA−155の単一コロニーを、0.1グルコース添加の1%ファイトンペプトンブロースに移し、そして33℃で一晩増殖させた。一晩培養物のアリコート(500μl)を、10%のウシ胎児血清(Invitrogen、Grand Island、NY)を添加した5mlのRPMI−1640(Cellgro Mediatech Inc、Herndon、VA)中、37℃で90分継代培養した。菌糸形成は、位相差顕微鏡下で決定された。
すべてのペプチドのストック溶液を、灌注のために滅菌されたエンドトキシンフリー水(Baxter、Deerfield、IL)中、1mg/mlの濃度に調整した。次の希釈はすべて、トリプトン生理食塩水pH5.5(Shaferら、Infect Immun、1984)中でなされた。0.1%グルコースを添加した1%ファィトンペプトンブロース中、33℃で増殖された単一コロニーの一晩培養物のアリコート(100μl)を、0.1%グルコースを添加した5mlの1%ファィトンペプトンブロース中で継代培養し、そして33℃で90分間、振とうして水浴中でインキュベートし(80振動/分、Precision、Winchester、VA)、対数増殖培養物を得た。これら条件下の細胞培養物は、位相差顕微鏡によって決定されるとき、分芽胞子を優勢に構成することが見出された。光学密度を読み取り、そしてこの培養物を、500分芽胞子/100μlのトリプトン生理食塩水pH5.5(Shaferら、Infet Immun、1984)に調節した。96ウェルの滅菌ポリスチレンマイクロタイタープレート(Becton Dickinson、Franklin Lakes、NJ)中の100μlのこの生物懸濁物に、100μlの上記ペプチド(400μg/mlおよび200μg/mlの最終濃度)または100μlのトリプトン生理食塩水を添加した。後者を、コントロールとして供した。このマイクロタイタープレートは、37℃で4時間インキュベートされ、そして各ウェルからの100μlの内容物を、Sabouraud Dextrose Agarプレート上に撒き、そして37℃で一晩インキュベートした。コロニー形成単位(cfu)を計数し、そして抗真菌活性は、殺傷%として表され、そして以下の等式に従って算出された:[(コントロールcfu−試験cfu)/コントロールcfu]×100=殺傷%。コントロールcfuは、ペプチドの不在下のトリプトン生理食塩水のみの中での60分のインキュベーションの後に存在するコロニーの数によって示される。試験cfuは、ペプチドを含むトリプトン生理食塩水中のインキュベーションの後に存在するコロニーの数を計数することにより決定される。各実験点は3回実施された。
酵母の生存率はまた、FUN−1 Live/Dead Yeast Viability Kit(Molecular Probes、Eugene、OR)を用いて評価した。採用された方法は、蛍光顕微鏡との使用のためにメーカーによって提供されるプロトコールに本質的に従った。要約すれば、酵母培養物は、上記に記載のように正確に調製された。C.glabrate、C.pseudotropicalis、C.albicans(フルコナゾール感受性単離株)およびS.cerevisiae(100μlのトリプトン生理食塩水中、5×105cfu)を、ペプチド(CAP37(20−44)natおよびCAP37(20−44)ser26/42)の存在下または不在下、400μg/mlの最終濃度でインキュベートした(37℃、2時間)。インキュベーション期間の終わりに、サンプルを、微小遠心分離チューブに移し、そして遠心分離した(室温で10,000×g、3分間)。上清液を除去し、そしてペレットを、メーカーによって提供される技術データシートに記載のように、25μlのGH溶液(2%D−グルコース含有10mM Na−HEPES、pH7.2)中に再懸濁した。FUN−1試薬の作用溶液(10μMの100μl)を、10mMのストック溶液から調製し、そして25μl(最終濃度5μM)を酵母に添加し、そして室温で30分間インキュベートした。サンプル(10μl)を顕微鏡スライド上に置き、そしてLeica TCS NT共焦点顕微鏡下、Ar−488およびKr−568レーザー、および63× Plan APO 1.2NA 水浸漬対物レンズを用い、染色を観察した。画像を走査し、そしてLeica TCSソフトウェアを用いて分析した。
データは、3回実施された3または4つの独立の実験からの平均±標準誤差として表した。
(ペプチドの合成)
これらの研究のために合成されたペプチドは、表1に提示される。CAP37(20−44)natは、ネイティブCAP37分子中にジスルフィド架橋を形成するネイティブCAP37タンパク質の位置26および42に対応する2つのシステイン残基(Pohlら、FEBS Lett 1990)を含む。従って、これら2つのシステイン残基の重要性は、システイン残基およびセリン残基の両方で(CAP37(20−44)ser26/42)、または1つのシステインを位置26(CAP37(20−44)ser26)または42(CAP37(20−44)ser42)で置換することによるペプチドの活性について評価された。いずれか1つまたは両方のシステイン残基の置換は、このペプチドにジスルフィド結合を形成する能力を無くし、そしてそれ故、環状構造の可能な形成を妨害する。理論に拘束されることを希望することなく、いずれかの位置における1つのシステインの置換は、環状構造の形成を妨害するが、2量体化はなお可能である。
C.albicans(ATCC28367)を、インビトロ殺傷アッセイを標準化するために用いた。本発明者らは、最適増殖条件(温度および時間、25℃5時間および33℃90分)、ウェルあたりの分芽胞子の数(200、400、500、600、800、および1000cfu)、ペプチド濃度の範囲(750、500、400、200および100μg/ml)および殺傷が生じるペプチドとCandiaとの間の接触時間(1、2および4時間)を調査した。データは、25℃で5時間または33℃で90分増殖したCandidaの使用の間に有意な差はなかったことを示した。この90分のインキュベーションが技術的により簡便であり、そしてそれ故、慣用的に採用された。ウェルあたりのcfuの最適数は500であること、そしてCandidaとペプチドとの間の37℃における4時間のインキュベーション時間が最適殺傷を得るために必要であった。用量依存的殺傷が、CAP37(20−44)natの変動する濃度とともに得られた。しかし、活性と不活性ペプチドとの間の最良の区別は、400μg/mlまたは150μMで観察された。
ペプチドCAP37(20−44)nat、CAP37(20−44)ser26、およびCAP37(20−44)ser42は、400μg/mlでフルコナゾール感受性臨床単離株A−155、A−22およびA−111に対して強力に活性であり、単離株に依存して60%と94%との間で殺傷される活性の範囲であった(図1)。単離株A−155は、80〜94%の生物が殺傷され、最も感受性であるようであった。任意の所定の単離株に対して3つのペプチドの活性の間には統計学的な差異はなかった。これら3つのペプチドの活性とは著しく対照的なのは、両方のシステイン残基がセリン残基によって置換されたCAP37(20−44)ser26/42の活性の欠如であった。
上記CAP37ペプチドは、分芽胞子に対するそれらの活性と比較したとき、C.albicansの上記臨床単離株の菌糸形態に対して活性がより少なかった(図2)。ペプチドCAP37(20−44)nat、CAP37(20−44)ser26、およびCAP37(20−44)ser42間の活性を比較するとき、その他のCAP37ペプチドより、CAP37(20−44)ser42でより大きな活性が、菌糸形態に対して得られるようだ。
CAP37ペプチドの影響は、試験されたCandidaの異なる種に依存して変動した(図3)。CAP37ペプチドは、C.guilliermondiiおよびC.parapsilosisに対して最も有効であった。100μg/ml(37.5μM)程度の低いペプチド濃度は、これに2つの種に対して抗真菌的であった。C.pseudotropicalisはまた、すべてのCAP37ペプチドに対し極度に感受性であった。C.guilliermondiiおよびC.parapsilosisとでは、いくらかの活性がまた、ペプチドCAP37(20−44)ser26/42とで得られたが、その他の3つのCAP37ペプチドとより有意に少なかった。C.tropicalis、およびCandidaの血液単離株もまた、ペプチドCAP37(20−44)nat、CAP37(20−44)ser26、およびCAP37(20−44)ser42によって殺傷された。上記の種のすべてに対する活性は、静真菌的であるよりはむしろ抗真菌的であった。これらのCAP37ペプチド(CAP37(20−44)nat、CAP37(20−44)ser26、およびCAP37(20−44)ser42)は、C.dubliniensisの両方の単離株およびC.glabrataの1つの単離株に対して有効であったが、その程度はより小さかった。これらCAP37ペプチドは、2つのC.glabrata単離株、C.kruseiおよび2つのS.cerevisiae単離株に対しては有効でなかった。
本発明者らは、細胞生存率を評価するために共焦点顕微鏡法と蛍光色素FUN−1を用いた。本発明者らは、CAP3720−44に感受性であったフルコナゾール感受性C.albicans単離株およびC.pseudotropicalis、ならびにCFUアッセイによって決定されるとき、上記ペプチドによって影響されなかった真菌の例としてC.glabrataおよびS.cerevisiae単離株の1つを選択した。この技法を用い、本発明者らは、コロニーカウントを用いる先のデータとこの顕微鏡評価との間の良好な相関を観察した。共焦点データの代表的な図(図4)は、すべてのC.albicans射出分生胞子のほぼ70〜80%が緑または緑−黄色に染色され、CAP37(20−44)natペプチドとインキュベートされるとき、酵母細胞大多数が死んでいたことを示す。他方で、比較的不活性であるペプチド(CAP37(20−44)ser26/42)は、わずか30%の射出分生胞子が生存していることを示した。C.pseudotropicalisのペプチドCAP37(20−44)natでの処理は、細胞の>95%の殺傷を示した。類似の結果が、不活性ペプチド(CAP37(20−44)ser26/42)で得られ、本発明者らが、コロニー形成ユニットアッセイで得た結果を確認した。C.glabrataおよびS.cerevisiaeで実施した研究は、コロニー形成ユニットアッセイで得た結果を反映し;約10〜15%の細胞が、上記活性ペプチドによって殺傷され、そして実質的にすべての細胞が、不活性ペプチドの存在下で生存していた。酵母細胞がペプチドの不在下でインキュベートされたコントロールは、生存率に対する影響はなかった。
本発明に従って、抗真菌治療薬として用いられ得るペプチドは、本明細書中に記載されるペプチド、および、米国特許番号第6,107,460号;同第6,514,701号;および同第6,730,659号に記載されるペプチドを含み、それら各々の明細書は、本明細書によりその全体を参考として本明細書中に明示して援用される。
Claims (24)
- 被験体における真菌感染を処置または阻害する方法であって:
20〜25のアミノ酸であって、そして配列番号15または配列番号5を含むペプチド、または配列番号5のペプチド誘導体であって、少なくとも1つのシステイン残基がセリンまたはスレオニン残基で置換されるペプチド誘導体の治療的に有効な量を投与する工程を包含する、方法。 - 前記ペプチド誘導体が、N−末端に最も近いシステイン残基をセリンまたはスレオニンで置換した配列番号5を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記ペプチド誘導体が、C−末端に最も近いシステイン残基をセリンまたはスレオニンで置換した配列番号5を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記配列番号5のペプチド誘導体が:
チロシンで置換されたフェニルアラニン;
アラニンで置換されたグリシン;
アラニン、ロイシン、またはイソロイシンで置換されたバリン;
ロイシン、イソロイシンまたはバリンで置換されたアラニン;
アラニン、イソロイシンまたはバリンで置換されたロイシン;
バリン、ロイシンまたはアラニンで置換されたイソロイシン;
ヒスチジン、アルギニン、またはリジンで置換されたセリン;および
セリンで置換されたスレオニン、を含む少なくとも1つの置換をさらに含む、請求項1〜3のいずれか1項に記載の方法。 - 前記処置または阻害される真菌感染が、Candida spp.、Saccharomyces cerevisiae、Histoplasma spp.、Aspergillus spp.、およびCryptococcusによって引き起こされる、請求項1〜4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記被験体が、哺乳動物である、請求項1〜5のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ペプチドが、該ペプチドのN−末端上に1〜3の付加的アミノ酸、および該ペプチドのC−末端上に1〜2の付加的アミノ酸を有する、請求項1〜6のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ペプチドが、以下の配列(配列番号15):
X3は、phe、tyr、arg、lysまたはhisであり;
X4は、cys、ser、thr、arg、lysまたはhisであり;
X5は、gly、ala、arg、lysまたはhisであり;
X6は、gly、ala、arg、lysまたはhisであり;
X8〜X9、X17、およびX18は、ala、leu、ileまたはvalであり;
X7、X11およびX14は、ala、leu、ile、val、arg、lys、またはhisであり;
X13は、pheまたはtyrであり;
X16は、serまたはthrであり;
X19は、ser、thr、his、argまたはlysであり;
X20は、ser、cysまたはthrであり;
Rは、argであり;
Hは、hisであり;そして
Mは、metである、
請求項1〜7のいずれか1項に記載の方法。 - 前記X4がcysであり、そして前記X20がserまたはthrである、請求項8に記載の方法。
- 前記X20がcysであり、そして前記X4がserまたはthrである、請求項8に記載の方法。
- 前記ペプチドが、ペグ化される、請求項1〜10のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ペプチドが、1〜15のアミノ酸を含むリンカー分子によりポリエチレングリコール分子に共有結合でペグ化される、請求項11に記載の方法。
- 被験体における真菌感染を処置または阻害するための医薬の調製のためのペプチドの使用であって、該ペプチドが、20〜25のアミノ酸を有し、そして配列番号15または配列番号5を含むペプチド、または配列番号5のペプチド誘導体であって、少なくとも1つのシステイン残基がセリンまたはスレオニン残基で置換されるペプチド誘導体を含む、使用。
- 前記配列番号5のペプチド誘導体のN−末端に最も近いシステイン残基がセリンまたはスレオニンで置換される、請求項13に記載の医薬のペプチド。
- 前記配列番号5のペプチド誘導体のC−末端に最も近いシステイン残基がセリンまたはスレオニンで置換される、請求項13に記載の医薬のペプチド。
- 前記配列番号5のペプチド誘導体が:
チロシンで置換されたフェニルアラニン;
アラニンで置換されたグリシン;
アラニン、ロイシン、またはイソロイシンで置換されたバリン;
ロイシン、イソロイシンまたはバリンで置換されたアラニン;
アラニン、イソロイシンまたはバリンで置換されたロイシン;
バリン、ロイシンまたはアラニンで置換されたイソロイシン;
ヒスチジン、アルギニン、またはリジンで置換されたセリン;および
セリンで置換されたスレオニン、を含む少なくとも1つの置換をさらに含む、請求項13〜15のいずれか1項に記載の医薬のペプチド。 - 前記処置または阻害される真菌感染が、Candida spp.、Saccharomyces cerevisiae、Histoplasma spp.、Aspergillus spp.、およびCryptococcusによって引き起こされる、請求項13〜16のいずれか1項に記載の医薬のペプチド。
- 前記被験体が、哺乳動物である、請求項13〜17のいずれか1項に記載の医薬のペプチド。
- 前記ペプチドが、該ペプチドのN−末端上に1〜3の付加的アミノ酸、および該ペプチドのC−末端上に1〜2の付加的アミノ酸を有する、請求項13〜18のいずれか1項に記載の医薬のペプチド。
- 前記ペプチドが、以下の配列(配列番号15):
X3は、phe、tyr、arg、lysまたはhisであり;
X4は、cys、ser、thr、arg、lysまたはhisであり;
X5は、gly、ala、arg、lysまたはhisであり;
X6は、gly、ala、arg、lysまたはhisであり;
X8〜X9、X17、およびX18は、ala、leu、ileまたはvalであり;
X7、X11およびX14は、ala、leu、ile、val、arg、lys、またはhisであり;
X13は、pheまたはtyrであり;
X16は、serまたはthrであり;
X19は、ser、thr、his、argまたはlysであり;
X20は、ser、cysまたはthrであり;
Rは、argであり;
Hは、hisであり;そして
Mは、metである、
請求項13〜19のいずれか1項に記載の医薬のペプチド。 - 前記X4がcysであり、そして前記X20がserまたはthrである、請求項20に記載の医薬のペプチド。
- 前記X20がcysであり、そして前記X4がserまたはthrである、請求項20に記載の医薬のペプチド。
- 前記ペプチドが、ペグ化される、請求項13〜22のいずれか1項に記載の医薬のペプチド。
- 前記ペプチドが、1〜15のアミノ酸を含むリンカー分子によりポリエチレングリコール分子に共有結合でペグ化される、請求項23に記載の医薬のペプチド。
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