JP2009227679A - 組織形成因子誘導による神経の再生と修復 - Google Patents

組織形成因子誘導による神経の再生と修復 Download PDF

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Abstract

【課題】哺乳動物細胞の神経経路を維持するための治療的処置方法、組成物を提供する。
【解決手段】瀕死の神経細胞の生存性を増強するための方法であって、神経細胞の生存性増強のために充分な時間と濃度で神経細胞にモルフォゲンを含有する組成物を供給することからなる方法であり、該モルフォゲンが、OP-1、OP-2、CBMP2、Vgl(fx)、Vgr(fx)、DPP(fx)、GDF(fx)、60A(fx)からなる群から選択された配列の一つと少なくとも70%のアミノ酸配列ホモロジーを有しているものからなる。
【選択図】図１Ｂ

Description

本発明は、インビボで神経細胞の生存性を増強する方法、およびインビボで神経回路を
維持するための方法、組成物と器具に関する。
本発明は、瀕死の細胞の生存性を促進させる方法であって、神経の母細胞を形質転換さ
せて再分化させるための方法を包含する方法、および分化した神経細胞に形質発現を維持
させるための方法を提供する。さらにまた、本発明は、傷害を受けた神経回路を修復する
ための手段を提供する。この手段には長い距離にわたる軸索の成長を促進するための方法
を含んでおり、さらに免疫学的に関連している神経組織傷害を軽減するための方法を提供
するものである。本発明の代表的な実施態様としては、細胞中の細胞接着性分子の発現で
あって、特に神経細胞中の神経細胞接着性分子の発現を促進する方法を提供するものであ
る。最終的には、本発明は神経組織の鬱血状態を評価し、哺乳動物における神経系の機能
不全を評価するための手段を提供するものである。
哺乳動物の神経系は、末梢神経系（PNS）および中枢神経系（CNS、脳および脊髄からな
る）からなっており、二種類の代表的な細胞から構成されている。これはニューロンとグ
リア細胞である。グリア細胞はニューロンの間を満たしており、それを保護し、その機能
を調節している。PNS中のシュワン細胞とCNS中の寡突起神経膠細胞のような、ある種のグ
リア細胞は、神経軸索を取り巻き、保護している保護性ミエリン鞘を形成する。神経軸索
は、ニューロン細胞本体から延びて、ニューロンの電気的なインパルスを伝達してゆく突
起である。末梢神経系では、複数のニューロンの長軸索が束になって、神経または神経繊
維を形成している。次にこれらが何本か組みあわさって、神経束になる。ここにおいて神
経繊維は、神経内の血管補充と一緒になって、保護性の複層式鞘を結合させたゆるやかな
コラーゲンマトリックス中に埋め込まれた状態の神経束を形成している。中枢神経系では
、ニューロン細胞本体は、これらのミエリン鞘化された突起とは視覚的に見分けがつく。
そして夫々灰色と白の物質として言及されている。
成長中には、中枢神経系と末梢神経系からの分化したニューロンは、軸索を発生させる
。この軸索は成長し、目的の標的細胞に接続する。ある場合には、成長した軸索は、相当
な距離までとどく必要がある。あるものは、末梢にまで成長してゆくのに対して他のもの
は中枢神経系中にとどまる。哺乳動物において、神経発生の段階は、胎芽期間に完成し、
神経細胞は、一旦十分に分化すると増殖することはない。
従って、例えばニューロンが機械的あるいは化学的損傷をうけた場合、さらにはまた回
路を形成するニューロンを死の危険にさらすに十分な神経病変が起こった場合は、哺乳動
物の神経系は、特別に危険な状態になる。ある亜集団または末梢或いは中枢神経系におい
て神経の系統のみに影響を与えるような多くの神経病変（ニューロパシー）が、今日まで
に認識されている。神経細胞それ自身またはそれに付随するグリア細胞が影響を受けてい
るニューロパシーは、細胞代謝機能不全、感染、毒性物質に対する露出、自己免疫性機能
不全、栄養不全あるいは虚血などの原因によって起こる。それ以外にも、細胞の機能不全
が直接的な細胞死を誘発することがあると考えられている。その他の場合として、ニュー
ロパシーは、生体の免疫／炎症系を促進することで完全な組織壊死を引き起こすと考えら
れている。さらに最初の神経性障害に対する免疫応答メカニズムが、ニューロンおよびこ
れらのニューロンによって特定されている神経伝達系を破壊する。
現在、これらのニューロパシーによって引き起こされた下記の損傷を修復するための、
満足すべき方法は存在していない。この損傷としては多発性硬化症、筋萎縮性側索硬化症
（ALS）、ハンチントン舞踏病、アルツハイマー病、パーキンソン病（パーキンソン症）
および肝性脳症のような代謝由来疾患などがある。近年、激しい外傷性病変あるいは脳お
よび／または脊髄の神経変性病変を阻止することを目的とする、欠失したり、欠損のある
ニューロンを機能的に他のものと換えるか、またはそのようなニューロンを補償するよう
な試みにおいて、胎児ニューロンの移植が今日迄では第一義的なものとなっている。しか
し、ヒト胎児細胞の移植研究は厳しく制限されている。さらにまた神経成長因子およびイ
ンシュリンライクグロースファクターのような神経栄養因子を投与することによってCNS
内の神経成長を促進させることが提案されている（例えば、特許文献1および非特許文献
１参照）。CNSに神経栄養因子を投与するには、血液脳関門（blood-brain barrier）を通
過させる必要がある。バリアーは、直接注入によって、または化学的な変性や抱合のよう
な、バリアー通過を促進するために分子を変性することによって、または分子トランケー
ションによって通過させることができる。さらにシュワン細胞が、損傷をうけた神経突起
の成長を促進し、維持することを目的にCNS病変部位に移植されている。（例えば、非特
許文献２参照）。
神経経路障害は、CNSの軸索の障害によりおこるものの場合、自己末梢神経の移植が、
中枢神経系の病巣をつなぎ合わせ、その正常なターゲット領域に軸索を戻させている。CN
Sニューロンとは対照的に、末梢神経系ニューロンは、軸索性の障害に反応して新しい末
梢突起を伸長させることができる。末梢神経系軸索のこの再生機能があることは、CNS軸
索に対する脊髄分節の移植を可能にするものと予想される。しかしながら、好ましい移植
は、細胞本体に近接して得られる満足すべき移植に関係した複数の因子によって制限され
ている。この制限因子としては、バイパスを形成させるべきCNSの軸索障害の長さ、CNS神
経性細胞本体から移植部位への距離がある。
末梢神経系においては、ニューロンの細胞再生機能は、ダメージを受けた神経回路に対
して機能修復する能力に限定されている。特に、新しい軸索は、ランダムに伸長し、しば
しば方向を誤まり、そして異常な機能を引き起こすような不適切なターゲットに接続する
ことがある。たとえば、自律神経が障害を受けた場合、再生した軸索は、麻痺をもたらす
誤った筋肉に接続する場合がある。さらに切断された神経突起が、数ミリメーター以上、
例えば10mm以上の長さののギャップを形成する場合、好ましい神経再生とはならず、神経
突起が必要な長さに伸長しないか、方向違いの軸索の伸長となる場合がある。外科的な手
法によって末梢神経の障害を修復する試みは、特に障害が広い範囲にわたる場合には色々
な結果が生じる。場合によっては、切断された神経末端の適切な配列を得るために行われ
る縫合操作は、軸索の再生を阻害すると考えられる傷痕組織の形成を促進する。たとえ傷
痕の組織形成が元に戻ったしても、神経案内通路あるいはそれ以外の管状プロテーゼを用
いる場合、再生がうまくゆくのは一般的に、10mm以下の長さの神経損傷に限られている。
さらに、末梢ニューロンの修復能力は、障害やニューロパシーが細胞本体自身に影響を与
えるか、あるいはまた末端軸索の拡大性変性をもたらす場合には極端に抑制されてしまう
。
さらにまた、哺乳動物の神経回路は腫瘍性の病巣によって引き起こされる障害によって
もリスクにさらされる。ニューロンとグリア細胞両方の異常増殖が確認されている。一般
的には、神経由来の形質転換細胞は、正常な分化した細胞のしめす機能を喪失しており、
そしてその機能喪失によって神経回路を破壊する。さらに腫瘍の増殖は、正常な神経組織
を破壊し、神経を圧迫して経路の阻害を行い、脳脊髄液や血液の通過を阻害し、および／
または生体の免疫反応を促進することによって、病巣を発生させる。さらにまた、脳およ
び脊髄内の腫瘍性病巣の重要な原因である転移性の腫瘍は、神経回路に障害を与え、神経
細胞の死を引き起こす。
神経細胞の成長、分化および発達に関連のある形態形成正常化分子の一つのタイプは細
胞接着性分子（CAM）であり、特に特徴的なものとして神経細胞接着性分子（N-CAM）であ
る。CAMは免疫グロブリンスーパーファミリーに属し、特異的な結合即ち並んでいる細胞
同士のCAM-CAM結合を通じて、発達中のそして成熟した組織内での細胞と細胞のインター
ラクションを媒介している。現在までに多くの異なったCAMが特定された。これらの内で
、もっとも徹底して研究されたものはN-CAMとL-CAM（肝臓細胞接着分子）であり、いずれ
も様々な成熟した組織におけると同様に、発達の初期段階における全ての細胞から同定さ
れた。神経組織の発達において、N-CAMの発現は、組織形成、神経の遊走、神経・筋肉組
織接着、網膜形成、シナプス形成そして神経変性等において重要であると考えられている
。さらにまた、N-CAMの発現の低下は神経機能不全と係わっていることが予想されている
。例えば、少なくとも1つのN-CAM、N-CAM-180型の発現は、ミエリン形成不全マウスで低
下している（例えば、非特許文献３参照）。またN-CAMのレベルの低下は正常な圧力の水
頭症と関連付けられており（例えば、非特許文献４参照）、タイプII精神分裂病について
も同様である（例えば、非特許文献５参照）。さらに、N-CAMに対する抗体は、障害を受
けた神経の機能回復を妨げることが確認された（例えば、非特許文献６参照）。
米国特許第5,093,317 号
Lundborg,1987,Acta Orthop. Scand. 58:145-169 Paino et al.,1991,Exp.Neurology,114（2）:254-257 Bhat,1988,Brain Res.,452:373-377 erdelin,1989,ActaNeurol. Scand.,79:177-181 Lyons et al.,1988,Biol. Psychiatry,23:769-775 Remsen,1990,Exp.Neurobiol.110:268-273
本発明の目的の一つは、哺乳動物において死のリスクを持つニューロンの生存性を増強
するための方法を提供することである。さらに別の目的は、物理的化学的外傷、ニューロ
パシーまたは腫瘍性病巣等による神経組織の損傷またはそれに続くダメージの危険にさら
されている神経回路をインビボで維持するための方法を提供することにある。さらに別の
目的は、末梢神経系の神経回路のギャップを修復するための組成物または器具を提供する
ことにある。さらにその他の目的としては、神経回路を特徴付けている形質転換細胞であ
って特に神経由来の形質転換細胞を再分化させるための手段を提供することである。別の
目的は細胞におけるCAMの発現であって、特にN-CAMの発現を促進するための方法を提供す
るところにある。さらにまた別の目的は神経組織、血清および／または脳脊髄液中に存在
する蛋白質のレベルの変動をモニターすることによって神経組織の状態をモニタリングす
る方法を提供することである。本発明のこれらの目的と方法は以下に示す説明、図および
クレームから明白となるはずである。
本発明は、神経細胞の生存性を増強するための方法を含み、インビボで哺乳動物の神経
回路を維持するための方法と組成物を提供する。
一つの態様では、本発明は、神経回路の障害あるいはこのような障害が予見される場合
に対して、障害を受けた経路の修復あるいはそれらのが層のダメージを抑制することを含
む神経回路を維持するために十分な濃度と回数で、ここに定義する形態形成蛋白質（モル
フォゲン）の治療上有効な量を哺乳類に投与するためのステップからなる治療方法および
組成物を特徴としている。
別の態様において、本発明は組成物および治療方法を特徴としており、この治療法と組
成物とは、神経回路に障害を有しているかまたはこのような障害をうけることが予見され
ている。哺乳類に対して特定の化合物を投与することを含むような、ダメージをうけた神
経回路を修復したり、ダメージの進行を抑制することを含むインビボで哺乳類の神経回路
を維持するためのものである。上記の化合物は、哺乳類の生体において神経回路を保持す
るために十分な内因性のモルフォゲンの治療上有効な濃度を誘発するようなものである。
これらの化合物は、ここではモルフォゲン促進剤と呼び、哺乳動物に投与した場合に、モ
ルフォゲンを生産するかまたはモルフォゲンの生産が可能でありおよび／またはモルフォ
ゲンを分泌する組織や臓器に作用する物質を包含するものであり、または、モルフォゲン
の生体内濃度を変化させるものであると理解される。
例えばこの薬剤は内因性モルフォゲンの発現および／または分泌を刺激することにより
作用する。
特に、本発明は瀕死のニューロンの生存を増強するための方法を提供ものであり、神経
の傷害に対する生体の免疫／炎症反応に関連した組織破壊性の作用からニューロンを保護
する方法を含んでいる。さらにまた、本発明は分化した表現型を維持するようにニューロ
ンを刺激するための方法を提供するものであり、神経由来形質転換細胞を再分化させて非
形質転換ニューロンの形態学的特性を示すように誘導する方法を含んでいる。一つの実施
態様において、本発明は細胞内の細胞接着分子、特にニューロンの神経細胞付着分子（N-
CAM）の生産を促進するための手段を提供する。さらにまた、本発明は障害を受けたニュ
ーロンと神経回路の細胞修復を促進する方法、組成物、器具を提供する。この修復促進は
、末梢および中枢神経系の障害を受けた軸索を再生させることをふくんでいる。さらにま
た、本発明は哺乳動物の血清または脳脊髄液に存在すモルフォゲンや内因性モルフォゲン
抗体の濃度の変動をモニターすることによって、哺乳類の神経組織の状態を評価したり、
ニューロパシーを検出してモニターするための手段を提供するものである。
ここに使用する"神経回路"とは、刺激側から標的細胞側へ電気的信号を通過させるため
の神経回路を意味している。回路とは、電気的インパルスが伝達されるニューロンを含み
、相互接続しているニューロンの群、さらに束ねられた状態の神経軸索によって形成され
ている神経繊維およびニューロンを取り巻き、ニューロンに関係したグリア細胞を含むも
のである。
本発明の実施態様において、ここに説明するモルフォゲンとは末梢神経系の障害を受け
た神経回路の修復に有用である。特に、モルフォゲンは障害を受けた回路を修復するため
に有用である。この回路としては、神経それ自身または神経とシナプス後細胞のギャップ
を長い距離にわたって橋渡しして、神経突起とくに軸索の再生をさせることが必要な切断
や障害を受けた神経繊維（神経）をも含む。特にここで述べられているモルフォゲンは、
保護性ミエリン鞘の脈管形成と再構成を含む完全な軸索性神経再生を促進できるものであ
る。モルフォゲンは、好ましくは投与部位においてモルフォゲンを保持できる生体内適合
性であって生体吸収性のキャリアー物質中に分散させて、障害の部位に供給される。そし
て必要な場合には、切断されたニューロンまたは神経の近位側から遠位末端側に、軸索の
成長が向かうような方法で供給される。例えば軸索の成長を方向づける方法は、10mm以上
の長い距離にわたって神経再生を誘導させる場合に必要であるかもしれない。これらの機
能を備えた多数のキャリアーが想定されている。例えば有用なキャリアーとしては、以下
に示すような基本的に不溶解性の物質または以下に開示されているように調製された粘性
溶液を含む。これらは、ラミニン、ヒアルロン酸、コラーゲン、あるいはポリ乳酸、ポリ
グリコール酸、ポリ酪酸および／またはこれらの共重合体のような適当な合成された生体
内適合性のあるポリマー物質である。最近供給されているキャリアーとしては、現在好ま
れている実例を上げると、例えばマウスザルコマー細胞由来の細胞外マトリックス組成物
がある。また特に有用性が予想されるものとしては、脳組織由来細胞外マトリックスがあ
る。
特に好ましい実施態様としては、モルフォゲンは障害を受けた回路の距離にまたがって
いる神経案内導管中にモルフォゲンが分配する器具の部品として局所投与される。回路は
、軸索のような神経突起の成長を誘導するために、保護的なカバーとして、そして物理学
的手段としても作用する。有用な回路は、生体内適合性膜またはケーシングからなってお
り、チューブ状構造をとり、修復される神経のギャップまたは切断箇所を結びつけるのに
十分な大きさを有しており、分断された神経末端を受け入れるために開口されている。ケ
ーシングまたは膜はシリコンのような生体内適合性で、非刺激性の素材またはポリエチレ
ンやポリエチレンビニール酢酸のような生体内適合性ポリマーで作られる。さらにまた、
ケーシングは、例えばコラーゲン、ヒアルロン酸、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリ酪
酸を含む生体内適合性、生体吸収性ポリマーから構成される。
特に好ましい実施態様としては、回路の外部表面は基本的には不浸透性である。
モルフォゲンは生体内適合性のキャリアー物質を使用して導管中に分配される。この場
合モルフォゲンが、分断された神経の末端に接触できるように、米国特許5,011,486号に
記載されたように、ケーシングの内部表面に吸着させるかまたはその他の方法で結合させ
ておく必要がある。さらに、ここに述べた神経案内導管は、一般的には形状としてはチュ
ーブ状であれば、種々の異なった形状を採用できることは当業者には明白である。案内導
管の内腔が、例えば断面では長円形または方形であっても良い。さらに案内導管が、神経
切断端を結び付けるように２またはそれ以上のパーツをつなぎあわせて構築されていても
良い。神経の末端は、フィブリングルーのような生体内適合性のある接着物質による縫合
手段か、あるいはまた医学的な技術として公知の手段によって、神経案内導管を確実に結
合させておく。
またここに述べたモルフォゲンは、障害を受けたりまたは分離した網膜、視神経に対す
るその他の障害の修復のように、中枢神経系内に障害を受けた神経回路のバイパスを形成
させるために、自己の末梢神経分節を移植する際に有用であると推測される。ここでモル
フォゲンは移植部位で軸索の成長を促進させるために接続部位に投与される。特に、バイ
パスを形成させるべきダメージを受けた軸索の分節が、神経細胞本体から離れて発生する
場合に投与される。
さらにまた、ここで述べたモルフォゲンは、瀕死の神経細胞の生存性を増大させ、それ
によって神経回路に対するダメージを予防し、限定しあるいは抑制するのに有用である。
非有糸分裂性のニューロンは、死のリスクをもっており、この死はニューロパシーの結果
、または細胞死を誘発するニューロンあるいはグリア細胞の機能不全によって起こるか、
細胞またはその細胞を取り巻く組織に対する化学的または物理的傷害に引き続いておこる
。化学的な傷害は公知の毒性物質に由来しており、この毒性物質はタバコの煙と阿片中の
毒性物質と同様に鉛、エタノール、アンモニア、ホルムアルドヒドおよび複数の有機溶媒
を含むものである。さらにまたグルタミン酸塩のような興奮性アミノ酸もまた、神経細胞
死の原因として作用している（Freeseet al.,1990,Brain Res.,521:254-264）。神経細
胞死もまた、多くの神経変性疾患において明らかな寄与因子になると考えられている。神
経変性疾患にはアルツハイマー病、ハンチントン舞踏病、パーキンソン病、筋萎縮性遅延
型硬化症、多発性硬化症等がふくまれる。これらのニューロパシーの病因は、肝性脳症性
、感染性、毒物性、自己免疫性、栄養あるいはまた虚血性などを原因とする代謝性のもの
と考えられる。さらにエタノールといくつかの毒物は、神経変質性疾患においては明らか
な寄与性因子であるとして確認されている。ここで述べているモルフォゲンは、瀕死の細
胞に対して、それらの細胞の生存性を増大させて、神経回路の完全性を保護するために投
与することができる。モルフォゲンはその部位に直接投与するか、または全身的に投与す
ることもできる。さらにまた、上記に示したように、好ましくは目的とする神経組織に関
与している細胞内において、内因性のモルフォゲンの発現および／または分泌を促進する
物質を哺乳動物に投与することができる。
本発明の別の実施態様において、開示されている方法は、モルフォゲン処置細胞が非形
質転換細胞の形態学的特性を示すように、形質転換細胞、特に神経またはグリア細胞由来
の形質転換細胞を再分化させるために有用である。形質転換細胞が神経由来の細胞である
場合、モルフォゲン処理は好ましくは細胞を丸くし、細胞を凝集させ（クランピングさせ
）細胞−細胞の接着をおこさせ、神経突起の外成長と伸長を引き起こし、N-CAMを生産さ
せる。ここで述べた方法で、基本的に神経組織中で神経細胞腫瘍の発生および／または増
殖を阻害または減少させることが期待されている。本発明の方法は、網膜芽腫、神経芽腫
、神経膠腫、神経膠腫等の神経組織由来の種々の腫瘍の作用を基本的に抑制する目的に有
用であろうことが予測される。さらに本方法は、転移性組織によっておこる腫瘍性の病変
を抑制する目的にも有効であると考えられる。転移性腫瘍はCNSの最も普通の腫瘍の一つ
であって、血流を介して頭蓋内室へ到達する。転移性腫瘍は、例えば正常神経組織の構造
を破壊し、神経を圧迫し、脳組織に栄養供給している脳脊髄液や血液の流れをブロックし
、および／または生体の免疫反応を促進することによって、神経回路に障害を与える。
本発明の別の実施態様において、ここに述べたモルフォゲンは、神経組織に最初におこ
る損傷に対する生体の免疫／炎症反応に由来した神経回路の傷害を緩和するための、神経
保護効果を提供する目的に有用である。このような反応は、神経組織の損害にひきつづい
て起きる。神経組織の損傷はたとえば自己免疫性機能不全、腫瘍性病巣、感染、化学的ま
たは物理的外傷、ニューロンまたはグリア細胞への血流の停止による疾患（例えば虚血性
または低酸素性によるもの）さらには神経あるいは神経周囲の器官に対する傷害などによ
って起きる。例えば、閉塞性卒中のように神経への血液供給が閉塞したことによっておこ
る低酸素または虚血−再灌流によっておこる一次的な傷害は、免疫的に発生すると考えら
れている。さらに多くの初期的な脳腫瘍に伴なう傷害の少なくとも一部分は、免疫学的に
関連しあっていることが認められている。治療される細胞に直接モルフォゲンを投与する
か、哺乳動物に経静脈的にあるいは経口投与によって間接的な方法で全身的にモルフォゲ
ンを投与することは、神経傷害に対する免疫学的に関連した反応を緩和および／または抑
制するために使用される。さらにまた、好ましくは傷害の部位に、インビボでモルフォゲ
ンの発現および／または分泌を促進できる物質を投与することも採用できる。外科手術や
その他の積極的な医療的処置でで傷害が発生する場合には、モルフォゲンまたは作用薬は
リスクにある神経組織に対して神経保護的作用を与えるために傷害の誘発より前に投与す
ることもできる。
本発明のさらに別の態様では、ここに説明した発明は、ニューロンにその発現型を発現
させ続けることを含む、分化型ニューロンの成長と維持を支援するための方法をも提供す
る。この活性は、神経組織の疾病の治療に特に有用であると考えられる。神経組織の疾病
とは、細胞加齢によって発生し、アルツハイマー病で明らかにされていると考えれている
ような、細胞の代謝機能を減少または喪失、さらに細胞が老化し静止した状態になること
によって発生する機能喪失をさす。治療されるべきに細胞に直接モルフォゲンを投与した
り、非経口的にまたは経口的に投与することによって行う全身的供給は、あきらかに細胞
代謝機能不全の作用を抑制および／または逆転させ、それによってリスクを持った神経回
路を維持することによって、これらの細胞にその発現型を発現させ続けるように促進する
。さらにまた、インビボで内因性モルフォゲンの発現および／または分泌を促進できる物
質の投与も行っても良い。
本発明のさらに別の態様では、本発明は細胞内のCAMの発現レベル、特にニューロン中
のN-CAM発現を促進するための方法を提供する。CAMは組織形成のために必須の細胞−細胞
間のインターラクションを行わせる分子として特定される。CAMは組織境界形成、胚誘導
および遊走を含む組織発達と組織の安定化と再生において、基本的なな制御作用を担当し
ていると考えられている。CAMのレベル変化は先天性疾患、腫瘍および変性疾患を含む組
織変性の多くに関連している。
特に、N-CAMの発現は、網膜形成、シナプス形成および神経- 筋肉組織接着を含む正常
な神経細胞の発達と分化に関係している。N-CAMの異性体の1またはそれ以上の抑制は、正
常な組織の発達を抑制することが知られている。N-CAM発現レベルの変化は、正常な内圧
の水頭症とタイプIIの分裂病を含む複数のニューロパシーと同様に、神経芽腫を含む腫瘍
と関係している。治療するべきに細胞に直接モルフォゲンを投与したり、非経口的にまた
は経口的に投与することによって行う全身的供給は、1またはそれ以上のCAM、特にN-CAM
の細胞性発現を誘導する目的で使用することができる。さらにまた、インビボでのモルフ
ォゲンの発現および／または分泌を刺激するような物質を、好ましく傷害の部位に投与し
て、CAMの生産を誘導することができる。
CAMはまた、形質形成制御経路の一部であると仮定されている。この経路の活性は、ま
だ特定されていない分子によって誘導される（Edelman,G.M.,1986,Ann. Rev. Cll Biol.,
2:81-116を参照のこと）。どの特定のセオリーに制限されることなく、ここで説明したモ
ルフォゲンはこの経路の物質として作用する。
最終的に、内因性モルフォゲンレベルの変化は神経組織の機能不全を検出する方法の一
部としてモニターすることができる。特に内因性モルフォゲンレベルの変化は、神経組織
の変化を反映しているものと予想される。モルフォゲンの発現はバイオプシーした細胞、
脳脊髄液、血清から直接測定できる。さらにまた、モルフォゲンレベルはモルフォゲンに
対する内因性抗体のレベル変化を検出することで評価できる。例えば、哺乳動物から血清
サンプルを採取し、先行技術として公知の標準的な蛋白質検出手段によって溶液中のモル
フォゲンまたは抗体の含有量を検出できる。一例としては、抗モルフォゲン抗体のような
目的のモルフォゲンに特異的に作用する結合蛋白質は、標準的なイムノアッセイにおいて
モルフォゲン検出の目的に使用可能である。検出されたモルフォゲンレベルは、検出レベ
ルの変化をもちいて組織の状態を示すために、あらかじめ決定された標準または参照レベ
ルと比較することができる。
本発明の好ましい実施態様において、モルフォゲンまたはモルフォゲン促進剤は、経口
または非経口的に全身的に投与される。本発明のその他の実施態様では、モルフォゲンは
脳脊髄液または神経組織内に注入することによって神経組織に直接投与できる。
本発明のどの治療方法においても、「モルフォゲンの投与」とはモルフォゲン単独また
はそれ以外の分子と組み合わせて投与することを示している。例えば、モルフォゲンの成
熟型は、プレカーサである「プロ」ドメインを含む形で供給されるが、これは蛋白質の溶
解性を促進することが知られている。蛋白質の溶解性を促進することが知られているその
他の有用な分子としては、種々の血清蛋白質と同様にカゼインおよび乳成分が含まれる。
モルフォゲンまたはモルフォゲン促進剤に関連したその他の有用な分子としては、神経組
織に対してモルフォゲンまたはモルフォゲン促進剤を直接送り込むことのできる組織ター
ゲッティング分子が含まれる。本発明の治療プロトコールにおいて有用であると考えられ
る組織ターゲッティング性分子としては、抗体、抗体フラグメントあるいは神経組織細胞
の表面分子と特異的に作用する結合性蛋白質が含まれる。
また別の有用な組織ターゲティング分子はモルフォゲンのプレカーサ、「プロ」ドメイ
ン、特にOP-1またはGDF-1の「プロ」ドメインの一部または全部である。これらの蛋白質
は天然には神経組織に関連して見出されるが、その他の組織で合成されて、そして合成さ
れた組織から分泌後に神経組織に移送される。例えば、この蛋白質は骨組織中で活性であ
ることが見出されており、OP-1合成の一次ソースは泌尿器系の組織（腎臓および膀胱組織
）であるらしい。第二の発現レベル箇所は脳、心臓、肺（下記）にあることがわかってい
る。さらにこの蛋白質は血清、唾液、種々の乳中から分離されている。さらにこの蛋白質
の分泌型は、完全型のモルフォゲン配列のプロドメインと共に成熟型二量体からなってい
る。従って関連したモルフォゲンのプロドメインはインビボでは異なった組織に特異的な
モルフォゲンを輸送するために作用している。
さらにまた関連した組織ターゲッティングあるいは溶解性-増強分子は、酸−不安定性
結合をもっていて、一般的な化学的手段でモルフォゲンに共有的に結合している。この結
合は、骨の再構成部位の酸性条件下において選択的に切断される。
最後に、ここで提供されるモルフォゲンまたはモルフォゲン促進剤は神経成長因子およ
び抗炎症剤などを含む神経回路を維持するに有用であることが知られているその他の分子
と組み合わせて投与することができる。
モルフォゲンをCNSの障害を治療する目的で用いようとする場合には、付随的な問題を
考慮しなければならない。いわゆる血液脳関門と呼ばれている脳の毛細血管壁の構造を通
過しなければならない。この構造は、血液中に存在する分子の種類を選別して、脳内への
通過を予防する。血液脳関門は、脳内へのモルフォゲンまたはモルフォゲン促進剤の直接
注入によって、効果的にバイパスさせることができる。さらにまたモルフォゲンまたはモ
ルフォゲン促進剤は、血液脳関門を超えて移送されやすくするために修飾することもでき
る。例えば、モルフォゲンまたはモルフォゲン促進剤の切断型は最も有望と考えられる。
さらにモルフォゲンまたはモルフォゲン促進剤は、より親油性に変更するために修飾す
ることができ、また自然にバリアーを通過することのできるその他の分子と当業者には公
知の標準的手段を用いて共有結合させることができる。このような技術としてはPardridg
e,Endocrine Revew 7:314-330（1980）や米国特許4,801,575に記載された技術を例示す
ることができる。
従って、モルフォゲンの機能的な「アナログ」の用語は、蛋白質が形質形成性の生物活
性を有しているが、ここに定義したモルフォゲンと比較して付加的な構造的な違いを有す
るものをさす。例えばモルフォゲンの一部分が一般的でない付加的な化学成分を有してい
るものである。このような成分（例えば例を上げて示すと、アシル化、アルキル化、陽イ
オン化、グリコシル化反応あるいはその他モルフォゲンにこの成分を共有結合させるため
の手段） は分子の溶解性、吸収性、生物学半減期あるいは脳−血液バリアーを超えた移
送などを改善すると考えられる。
本発明における有用なモルフォゲン本来は骨形成蛋白質として特定される蛋白質である
。ＯＰ−１、ＯＰ−２、およびＣＢＭＰ蛋白質、同様なアミノ酸配列を持つ蛋白質として
、ＤＰＰ（ショウジョウバエ由来）、Ｖｇｌ（ツメガエル由来）、Ｖｇｒ−１（マウス由
来,米国特許5,011,691、Opperman 他）、ＧＤＦ−１（マウス由来、Lee （1991）PNAS
88: 4250-4254）、これらの蛋白質の配列は配列表配列番号５−１４と表IIに示した
）。そして最近６０Ａの蛋白質が特定された（ショウジョウバエ由来、配列表配列番号２
４、Wharton 他、1991、PNAS 88:9214-9218）。蛋白質のＴＧＦβスーパーファミリー
のメンバーを含むこのファミリーのメンバーは、Ｃ末端領域のアミノ酸配列に高いホモロ
ジーを有する。この蛋白質は、典型的には３０残基より少ないＮ末端シグナルペプチド配
列を持つ前駆体として翻訳され、次いで「プロ」ドメインとなり、それが切断されて成熟
配列となる。シグナルペプチドは、翻訳後速やかに切断され、Von Heijneの方法（1986,N
ucleic Acids Research 14:4683-4691）を用いて特定のアミノ酸配列を予想すること
ができる。以下の表Ｉは、今日特定されている種々のモルフォゲンを示す。そのここで使
用されている学名と配列番号、配列表に含まれない全長蛋白質のアミノ酸配列を記載した
出典を示しているが、これらの文献の開示内容は、引用によって本発明と一体化されてい
る。
（表１）
OP-1
OP-1蛋白質をコードするDNA配列の全てまたは一部から発現された形態形成活
性蛋白質のグループを総称的にさす。対立形質型および種の変異型を含む。例
えばヒトOP-1（hOP-1,配列表配列番号5、成熟蛋白質アミノ酸配列）マウスOP-
1（mOP-1,配列表配列番号6、成熟蛋白質アミノ酸配列）保存された７個のシス
テイン骨格が配列表配列番号5、6の38から139番目の残基によって特定されて
いる。蛋白質の全長をコードするcDNA配列と全アミノ酸が配列表配列番号16と
17（hOP-1）および配列表配列番号18と19（mOP-1）に示されている。成熟蛋白
質は残基293-431（hOP-1）と292-430（mOP-1）によって特定されている。そこ
が切断されることにより成熟蛋白質が得られる。蛋白質のプロ領域は開裂し
て、成熟で、形態形成活性を有する蛋白質を生じるが、本質的に残基30-292
（hOP-1）と残基30-291（mOP-1）よって本質的に特定される。
OP-2
OP-2蛋白質をコードするDNA配列の全てまたは一部から発現された活性蛋白質
のグループを総称的にさす。対立形質型および種変異型を含む。例えばヒト
OP-2（hOP-2,配列表配列番号7、成熟蛋白質アミノ酸配列）マウスOP-2（mOP-
2,配列表配列番号8、成熟蛋白質アミノ酸配列）。保存された７個のシステイ
ン骨格が配列表配列番号7、8の38から139番目の残基によって特定されてい
る。蛋白質の全長をコードするcDNA配列と全アミノ酸が配列表配列番号20と21
（hOP-2）および配列表配列番号22と23（mOP-2）に示されている。成熟蛋白質
は残基264-402（hOP-2）と261-399（mOP-2）によって特定されている。蛋白質
のプロ領域は開裂して、成熟で形態形成活性を有する蛋白質が生じるが、本質
的に残基18-263（hOP-2）と残基18-260（mOP-1）よって本質的に特定される。
（両方のOP-2蛋白質とも上流21残基に別の開裂部位を有する。）
CBMP2
CBMP2蛋白質をコードするDNA配列から発現された形態形質活性蛋白質を総称的
にさす。対立形質型および種変異型を含む。ヒトCBMP2A（CBMP2A（fx））配列
表配列番号9、ヒトCBMP2B-DNA（CBMP2B（fx））配列表配列番号10。全長の蛋
白質のアミノ酸配列はBMP2AおよびBMP2BあるいはBMP2およびBMP4として文献、
Wozeny,et al.（1988） Science 242:1528-1534に示されている。BMP2
（BMP2A）のプロドメインは残基25-248または残基25-282を含む。成熟蛋白質
は残基249-396または残基283-396を含む。BMP4（BMP2B）のプロドメインは残
基25-256または残基25-292を含み成熟蛋白質は残基257-408または残基293-408
を含む。
DPP（fx）
ショウジョウバエDPP 遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保
存された７個のシステイン骨格（配列表配列番号11）で特定される。全長の蛋
白質のアミノ酸配列はPadgett,et al.（1987） Nature 325:81-84に示されて
いる。プロドメインはシグナルペプチドの開裂箇所から残基456までである。
成熟蛋白質の領域は残基457-588で特定されている。
Vgl（fx）
ツメガエルVgl遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保存され
た７個のシステイン骨格（配列表配列番号12）で特定される。全長の蛋白質の
アミノ酸配列はWeeks（1987） Cell 51:861-867に示されている。プロドメイ
ンはシグナルペプチド開裂部位から残基246までである。成熟蛋白質は残基
247-360で特定されている。
Vgr-1（fx）
マウスVgr-1遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保存された
７個のシステイン骨格（配列表配列番号13）で特定される。全長の蛋白質のア
ミノ酸配列はLyons, et al. （1989） PNAS 86: 4554-4558に示されている。
プロドメインはのシグナルペプチド開裂部位から残基299までである。成熟蛋
白質は残基303-438で特定されている。
GDF-1（fx）
ヒトGDF-1遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保存された７
個のシステイン骨格（配列表配列番号14）で特定される。全長蛋白質に対する
cDNAとコードされるアミノ酸配列が配列表配列番号32に示される。プロドメイ
ンはシグナルペプチド切断部位から残基2-14内までである。成熟蛋白質残基
215-372で特定されている。
60A
60A蛋白質（全長蛋白質に対するcDNAとコードされるアミノ酸配列が配列表配
列番号24に示されている）をコードしているDNA配列（ショウジョウバエ60A遺
伝子）の一部または全部より発現された形態形成性活性蛋白質をさす。60A
（fx）は保存された７個のシステイン骨格（配列表配列番号24の残基354から
455）で特定される蛋白配列をさす。プロドメインは、シグナルペプチド開裂
部位から残基324までである。成熟蛋白質は残基325-455で特定される。
BMP3（fx）
ヒトBMP3遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保存されている
７個のシステイン骨格で特定される（配列表配列番号26）。全長の蛋白質のア
ミノ酸配列はWozeny et al. （1988） Science242: 1528-1534に示されてい
る。プロドメインはシグナルペプチド開裂部位から残基290 までである。成熟
蛋白質は残基291-472で特定されている。
BMP5（fx）
ヒトBMP5遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保存されている
７個のシステイン骨格で特定される（配列表配列番号27）。全長の蛋白質のア
ミノ酸配列はCeleste,et al. （1991） PNAS 87: 9843-9847に示されてい
る。プロドメインはシグナルペプチド開裂部位から残基316までである。成熟
蛋白質は残基317-454で特定されている。
BMP6（fx）
ヒトBMP6遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保存されている
７個のシステイン骨格で特定された（配列表配列番号28）。全長の蛋白質のア
ミノ酸配列はCeleste,et al. （1990） PNAS 87: 9843-9847に示されている。
プロドメインはシグナルペプチド開裂部位から残基374までである。成熟蛋白
質は残基375-513で特定されている。
OP-2蛋白質はこのファミリーのその他の蛋白質とおなじ保存されたシステイン骨格に加
えて、この領域（配列表配列番号7および8の残基4）に付加的なシステイン残基を持つ。G
DF-1蛋白質は保存された骨格（配列表配列番号14の残基44-47）に4個のアミノ酸が挿入さ
れている。しかしこの挿入は、折りたたみ構造においてはシステインの相互関係を阻害し
ないようだ。さらにCBMP2蛋白質はシステイン骨格からアミノ酸残基１個が失なわれてい
る。
モルフォゲンは還元すると失活する。しかし、酸化してできるホモダイマーは活性だし
、本発明の他のモルフォゲンと組み合わせて酸化すると活性化される。ここに示したよう
に、モルフォゲンは一対のポリペプチド鎖からなる2量体蛋白質であり、それぞれのポリ
ペプチド鎖は、配列表配列番号5の残基43-139によって特定されるＣ末端側の少なくとも6
個のシステイン骨格からなるが、これらのシステインと機能的には等しいアレンジメント
を含む（即ち、配列中のシステインの直線的な配置を変えるようなアミノ酸の挿入や欠失
を行っても折りたたみ構造におけるシステイン相互間の関係は変わらない）。すなわち、
ポリペプチド鎖が折りたたまれる時、ポリペプチド鎖の１対からなっている2量体蛋白質
種は、適当な3次元構造をとる。この場合、ここに定義するようにモルフォゲンとして蛋
白質が活性であるように、鎖間または鎖内で適当なジスルヒド結合を含んでいる。特徴的
なことには、モルフォゲンは、通常、形態形成的に許容される環境では、次の生物学的機
能をの全てをそなえている。未分化細胞の増殖促進。未分化細胞の分化促進。分化細胞の
増殖促進。分化細胞の成長と維持の補助。さらに、これらのモルフォゲンは、好ましい環
境条件に拘束された細胞の再分化を誘導できることが期待される。
好ましい一つの実例において、本発明のモルフォゲンは一般的なアミノ酸配列の2 種の
内の1つを含む。一般配列1（配列表配列番号1）または一般配列2（配列表配列番号2）で
ある。Xaaは20の天然型L-型αアミノ酸またはその誘導体の一つを示している。一般配列1
は保存された6つのシステイン骨格からなり、そして一般配列2はOP-2で確認される付加的
なシステインを付けた保存された6 つのシステイン骨格からなる（配列表配列番号2、残
基36）。別の好ましい実例では、この配列はＮ末端に次の付加配列を結合させたものから
なる。
Cys Xaa Xaa Xaa Xaa （配列表配列番号15）
1 5
上記の一般配列中の好ましいアミノ酸配列は次のものを含む。一般配列3（配列表配列番
号3）、一般配列4（配列表配列番号4）、一般配列5（配列表配列番号30）、一般配列6（
配列表配列番号31）、列リストは以下に示す。これらの一般配列は、表IIに示したこのモ
ルフォゲンファミリーの種々の好ましいメンバーの中で共有されるホモロジーを、それら
のアミノ酸配列に変化を加えたものと同様に含んでいる。特に一般配列3と4は表IIに表さ
れ配列表配列番号5-14で特定される次の蛋白質の複合アミノ酸配列である。ヒトOP-1（hO
P-1,配列表配列番号5および16-17）、マウスOP-1（mOP-1,配列表配列番号6および18-19）
、ヒトおよびマウスOP-2（配列表配列番号7、8および20-22）、CBMP2A（配列表配列番号9
）、CBMP2B（配列表配列番号10）、DPP（ショウジョウバエ由来、配列表配列番号11）、V
gl（ツメガエル由来、配列表配列番号12）、Vgr-1（マウス由来、配列表配列番号13） G
DF-1（マウス由来、配列表配列番号14）。一般配列は、配列中の可変位置の可変性残基と
同様に、表IIの配列によって明示されたアミノ酸配列を含んでいる。これらの一般配列は
、一般配列3または4の41または46位に分子間または分子内ジスルヒド結合を形成すること
ができる適当なシステイン骨格を提供するような付加的システインを加えることができる
し、蛋白質の三次元構造に影響を及ぼすある種の臨界的なアミノ酸を含む。

一般配列 3
Leu Tyr Val Xaa Phe
1 5
Xaa Xaa Xaa Gly Trp Xaa Xaa Trp Xaa
10
Xaa Ala Pro Xaa Gly Xaa Xaa Ala
15 20
Xaa Tyr Cys Xaa Gly Xaa Cys Xaa
25 30
Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
35
Xaa Xaa Xaa Asn His Ala Xaa Xaa
40 45
Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
50
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys
55 60
Cys Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
65
Xaa Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa
70 75
Xaa Xaa Xaa Xaa Val Xaa Leu Xaa
80
Xaa Xaa Xaa Xaa Met Xaa Val Xaa
85 90
Xaa Cys Gly Cys Xaa
95
ここでXaaは以下に示す1 またはそれ以上のアミノ酸の群から他とは無関係に、選択され
たものである。Res.は残基residue を意味している。res.4でのXaa=（Ser,AspまたはGlu
）。res.6でのXaa=（Arg,Gln,SerまたはLys）。res.7でのXaa=（AspまたはGlu）。res.8
でのXaa=（LeuまたはVal）。res.11でのXaa=（Gln,Leu, Asp,His,またはAsn）。res.12で
のXaa=（Asp,Arg, またはAsn）。res.14でのXaa=（IleまたはVal）。res.15でのXaa=（Il
eまたはVal）。res.18でのXaa=（Glu,Gln,Leu,Lys,ProまたはArg）。res.20でのXaa=（Ty
rまたはPhe）。res.21でのXaa=（Ala,Ser,Asp,Met,His,LeuまたはGln）。res.23でのXaa=
（Tyr,AsnまたはPhe）。res.26でのXaa=（Glu,His,Tyr,AspまたはGln）。res.28でのXaa=
（Glu, Lys,Asp またはGln）。res.30でのXaa=（Ala,Ser,ProまたはGln）。res.31でのXa
a=（Phe,LeuまたはTyr）。res.33でのXaa=（LeuまたはVal）。res.34でのXaa=（Asn,Asp,
AlaまたはThr）。res.35でのXaa=（Ser,Asp,Glu,LeuまたはAla）。res.36でのXaa=（Tyr,
Cys,His,SerまたはIle）。res.37でのXaa=（Met,Phe,GlyまたはLeu）。res.38でのXaa=（
AsnまたはSer）。res.39でのXaa=（Ala,SerまたはGly）。res.40でのXaa=（The,Leuまた
はSer）。res.44でのXaa=（IleまたはVal）。res.45でのXaa=（ValまたはLeu）。res.46
でのXaa=（GlnまたはArg）。res.47でのXaa=（Thr,AlaまたはSer）。res.49でのXaa=（Va
lまたはMet）。res.50でのXaa=（HisまたはAsn）。res.51でのXaa=（Phe,Leu,Asn,Ser,Al
aまたはVal）。res.52でのXaa=（Ile,Met,Asn,AlaまたはVal）。res.53でのXaa=（Asn,Ly
s,AlaまたはGlu）。res.54でのXaa=（ProまたはSer）。res.55でのXaa=（Glu,Asp,Asn,
またはGly）。res.56でのXaa=（Thr,Ala,Val,Lys,Asp,Tyr,SerまたはAla）。res.57でのX
aa=（Val,Ala, またはLys）。res.58でのXaa=（ProまたはAsp）。res.59でのXaa=（Lysま
たはLeu）。res.60でのXaa=（ProまたはAla）。res.63でのXaa=（AlaまたはVal）。res.6
5でのXaa=（ThrまたはAla）。res.66でのXaa=（Gln,Lys,ArgまたはGlu）。res.67でのXaa
=（Leu,Met, またはVal）。res.68でのXaa=（Asn,SerまたはAsp）。res.69でのXaa=（Ala
,ProまたはSer）。res.70でのXaa=（Ile,ThrまたはVal）。res.71でのXaa=（SerまたはAl
a）。res.72でのXaa=（ValまたはMet）。res.74でのXaa=（TyrまたはPhe）。res.75でのX
aa=（Phe,TyrまたはLeu）。res.76でのXaa=（AspまたはAsn）。res.77でのXaa=（Asp, Gl
u,Asn またはSer）。res.78でのXaa=（Ser,Gln,AsnまたはTyr）。res.79でのXaa=（Ser,A
sn,AspまたはGlu）。res.80でのXaa=（Asn, Thr またはLys）。res.82でのXaa=（Ileまた
はVal）。res.84でのXaa=（LysまたはArg）。res.85でのXaa=（Lys,Asn,GlnまたはHis）
。res.86でのXaa=（TyrまたはHis）。res.87でのXaa=（Arg,GlnまたはGlu）。res.88での
Xaa=（Asn,GluまたはAsp）。res.90でのXaa=（Val,ThrまたはAla）。res.92でのXaa=（Ar
g,Lys,Val,AspまたはGlu）。res.93でのXaa=（Ala,GlyまたはGlu）。res.97でのXaa=（Hi
sまたはArg）。

一般配列 4
Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Leu Tyr Val Xaa Phe
1 5 10
Xaa Xaa Xaa Gly Trp Xaa Xaa Trp Xaa
15
Xaa Ala Pro Xaa Gly Xaa Xaa Ala
20 25
Xaa Tyr Cys Xaa Gly Xaa Cys Xaa
30 35
Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
40
Xaa Xaa Xaa Asn His Ala Xaa Xaa
45 50
Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
55
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys
60 65
Cys Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
70
Xaa Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa
75 80
Xaa Xaa Xaa Xaa Val Xaa Leu Xaa
85
Xaa Xaa Xaa Xaa Met Xaa Val Xaa
90 95
Xaa Cys Gly Cys Xaa
100
ここでXaaは以下に示すアミノ酸の1またはそれ以上の群から他とは無関係に、選択された
ものである。Res.は残基residueを意味している。res.2でのXaa=（Lysまたは Arg）。res
.3 でのXaa=（Lysまたは Arg） 。res.4でのXaa=（HisまたはArg）。res.5でのXaa=（Glu
,Ser,His,Gly,ArgまたはPro）。res.9でのXaa=（Ser,AspまたはGlu）。res.11でのXaa=（
Arg,Gln,SerまたはLys）。res.12でのXaa=（AspまたはGlu）。res.13でのXaa=（Leuまた
はVal）。res.16でのXaa=（Gln,Leu,Asp,HisまたはAsn）。res.17でのXaa=（Asp,Argまた
はAsn）。res.19でのXaa=（IleまたはVal）。res.20でのXaa=（IleまたはVal）。res.23
でのXaa=（Glu,Gln,Leu,Lys,Pro またはArg）。res.25でのXaa=（TyrまたはPhe）。res.2
6でのXaa=（Ala,Ser,Asp,Met,His,LeuまたはGln）。res.28でのXaa=（Tyr,AsnまたはPhe
）。res.31でのXaa=（Glu,His,Tyr,AspまたはGln）。res.33でのXaa=（Glu,Lys,Aspまた
はGln）。res.35でのXaa=（Ala,SerまたはPro）。res.36でのXaa=（Phe,LeuまたはTyz）
。res.38でのXaa=（LeuまたはVal）。res.39でのXaa=（Asn,Asp,AlaまたはThr）。res.40
でのXaa=（Ser,Asp,Glu,LeuまたはAla）。res.41でのXaa=（Tyr,Cys,His,SerまたはIle）
。res.42でのXaa=（Met,Phe,GlyまたはLeu）。res.44でのXaa=（Ala,SerまたはGly）。re
s.45でのXaa=（Thr,LeuまたはSer）。res.49でのXaa=（IleまたはVal）。res.50でのXaa=
（ValまたはLeu）。res.51でのXaa=（GlnまたはArg）。res.52でのXaa=（Thr,AlaまたはS
er）。res.54でのXaa=（ValまたはMet）。res.55でのXaa=（HisまたはAsn）。res.56での
Xaa=（Phe,Leu,Asn,Ser,AlaまたはVal）。res.57でのXaa=（Ile,Met,Asn,AlaまたはVal）
。res.58でのXaa=（Asn,Lys,AlaまたはGlu）。res.59でのXaa=（ProまたはSer）。res.60
でのXaa=（Glu, Asp またはGly）。res.61でのXaa=（Thr,Ala,Val,Lys,Asp,Tyr,Serまた
はAla）。res.62でのXaa=（Val,AlaまたはIle）。res.63でのXaa=（ProまたはAsp）。res
.64でのXaa=（LysまたはLeu）。res.65でのXaa=（ProまたはAla）。res.68でのXaa=（Ala
またはVal）。res.70でのXaa=（ThrまたはAla）。res.71でのXaa=（Gln,Lus,ArgまたはGl
u）。res.72でのXaa=（Leu MetまたはVal）。res.73でのXaa=（Asn,SerまたはAsp）。res
.74でのXaa=（Ala,ProまたはSer）。res.75でのXaa=（Ile,ThrまたはVal）。res.76でのX
aa=（SerまたはAla）。res.77でのXaa=（ValまたはMet）。res.79でのXaa=（TyrまたはPh
e）。res.80でのXaa=（Phe,TyrまたはLeu）。res.81でのXaa=（AspまたはAsn）。res.82
でのXaa=（Asp,Glu,AsnまたはSer）。res.83でのXaa=（Ser,Gln,AsnまたはTyr）。res.84
でのXaa=（Ser,Asn,Asp またはGlu）。res.85でのXaa=（Asn,ThrまたはLys）。res.87で
のXaa=（IleまたはVal）。res.89でのXaa=（LysまたはArg）。res.90でのXaa=（Lys,Asn,
GlnまたはHis）。res.91でのXaa=（TyrまたはHis）。res.92でのXaa=（Arg,GlnまたはGlu
）。res.93でのXaa=（Asn,GluまたはAsp）。res.95でのXaa=（Val,ThrまたはAla）。res.
97でのXaa=（Arg,Lys,Val,AspまたはGlu）。res.98での。Xaa=（Ala,GlyまたはGlu）。re
s.102 でのXaa=（HisまたはArg）。
同様に一般配列5（配列表配列番号30）と一般配列6（配列表配列番号31）は、表IIに示
したモルフォゲン蛋白質のファミリーメンバーの間に共有されるホモロジーを含んでいる
。特に一般配列5および6は次のアミノ酸配列の複合である。ヒトOP-1（hOP-1, 配列表配
列番号5および16 17）、マウスOP-1（mOP-1, 配列表配列番号6および18 19）、ヒトおよ
びマウスOP-2（ 配列表配列番号7,8および20 22）、CBMP2A（配列表配列番号9）、CBMP2B
（配列表配列番号10）、DPP（ショウジョウバエ由来、配列表配列番号11）、Vgl（ツメガ
エル由来、配列表配列番号12）、Vgr-1（マウス由来、配列表配列番号13）、GDF-1（マウ
ス由来、配列表配列番号14）、ヒトBMP3（配列表配列番号26）、ヒトBMP5（ 配列表配列
番号27）、ヒトBMP6（配列表配列番号28）、60（A）（ショウジョウバエ由来、配列表配
列番号24 25）。一般配列は、配列中の可変位置の可変性残基と同様に、6および7個のシ
ステイン骨格（一般配列5と6に対応する） によって特定され、そしてＣ末端ドメイン中
のこれらの配列と同一のアミノ酸配列を含んでいる。一般配列3と4、一般配列5と6におい
て、41位（一般配列5）あるいは46位（一般配列6）にシステインを更に付加することがで
き、適当なシステイン骨格を提供すると、分子間にまたは分子内にジスルヒド結合を形成
させることができる。システインは付加物はその蛋白質の3次構造に影響を与えるある種
の臨界的なアミノ酸を含んでいる。

一般配列５
Leu Xaa Xaa Xaa Phe
1 5
Xaa Xaa Xaa Gly Trp Xaa Xaa Trp Xaa
10
Xaa Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Ala
15 20
Xaa Tyr Cys Xaa Gly Xaa Cys Xaa
25 30
Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
35
Xaa Xaa Xaa Asn His Ala Xaa Xaa
40 45
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
50
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys
55 60
Cys Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
65
Xaa Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa
70 75
Xaa Xaa Xaa Xaa Val Xaa Leu Xaa
80
Xaa Xaa Xaa Xaa Met Xaa Val Xaa
85 90
Xaa Cys Xaa Cys Xaa
95
ここでXaaは以下に示すアミノ酸の1 またはそれ以上の群から独立的に、選択されたもの
である。Res.は残基residue を意味している。res.2でのXaa=（TyrまたはLys）。res.3で
のXaa=（ValまたはIle）。res.4でのXaa=（Ser,AspまたはGlu）。res.6 でのXaa=（Arg,G
ln,SerまたはLys）。res.7でのXaa=（Asp,LysまたはGlu）。res.8でのXaa=（Leu,Ileまた
はVal）。res.11でのXaa=（Gln,Leu,Asp,His,Ser またはAsn）。res.12でのXaa=（Asp,A
rg, Glu またはAsn）。res.14でのXaa=（IleまたはVal）。res.15でのXaa=（IleまたはVa
l）。res.16でのXaa=（AlaまたはSer）。 res.18 でのXaa=（Glu,Gln,Leu,Lys,Proまたは
Arg）。 res.19 でのXaa=（GlyまたはSer）。res.20でのXaa=（TyrまたはPhe）。res.21
でのXaa=（Ala,Ser,Asp,Met,His,LeuまたはGly）。res.23でのXaa=（Tyr,AsnまたはPhe）
。res.26でのXaa=（Glu,His,Tyr,Asp,SerまたはGln）。res.28でのXaa=（Glu,Lys,Asp,Al
aまたはGln）。res.30でのXaa=（Ala,Ser,Pro,AsnまたはGln）。res.31でのXaa=（Phe, L
eu またはTyr）。res.33でのXaa=（Leu,MetまたはVal）。res.34でのXaa=（Asn,Asp,Ala,
ProまたはThr）。res.35でのXaa=（Ser,Asp,Glu,Leu,LysまたはAla）。res.36でのXaa=（
Tyr,Cys,His,SerまたはIle）。res.37でのXaa=（Met,Phe,GlyまたはLeu）。res.38でのXa
a=（Asn,LysまたはSer）。res.39でのXaa=（Ala,Ser,ProまたはGly）。res.40でのXaa=（
Thr,LeuまたはSer）。res.44でのXaa=（Ile,ValまたはThr）。res.45でのXaa=（Val,Ile
またはLeu）。res.46でのXaa=（GlnまたはArg）。res.47でのXaa=（Thr,AlaまたはSer）
。res.48でのXaa=（LeuまたはIle）。res.49でのXaa=（ValまたはMet）。res.50でのXaa=
（His,ArgまたはAsn）。res.51でのXaa=（Phe,Leu,Asn,Ser,AlaまたはVal）。res.52での
Xaa=（Ile,Met,Asn,Ala,LeuまたはVal）。res.53でのXaa=（Asn,Lys,Ala,Gly, Phe また
はGlu）。res.54でのXaa=（Pro,ValまたはSer）。res.55でのXaa=（Glu,Asp,Asn,Val,Lys
またはGly）。res.56でのXaa=（Thr,Ala,Val,Lys,Asp,Tyr,Ser,Pro,HisまたはAla）。res
.57でのXaa=（Val,Ala, またはIle）。res.58でのXaa=（ProまたはAsp）。res.59でのXaa
=（Lys,GluまたはLeu）。res.60でのXaa=（ProまたはAla）。res.63でのXaa=（Alaまたは
Val）。res.65でのXaa=（Thr, Glu またはAla）。res.66でのXaa=（Gln,Lys,ArgまたはGl
u）。res.67でのXaa=（Leu,Met, またはVal）。res.68でのXaa=（Asn,Ser, Gly またはAs
p）。res.69でのXaa=（Ala,ProまたはSer）。res.70でのXaa=（Ile,Thr,LeuまたはVal）
。res.71でのXaa=（Ser,ProまたはAla）。res.72でのXaa=（Val,IleまたはMet）。res.74
でのXaa=（TyrまたはPhe）。res.75でのXaa=（Phe,Tyr,HisまたはLeu）。res.76でのXaa=
（Asp,LeuまたはAsn）。res.77でのXaa=（Asp,Glu, Asn またはSer）。res.78でのXaa=（
Ser,Gln,Asn,AspまたはTyr）res.79でのXaa=（Ser,Asn,Asp,LysまたはGlu）。res.80での
Xaa=（Asn,ThrまたはLys）。res.82でのXaa=（IleAsn またはVal）。res.84でのXaa=（Ly
sまたはArg）。res.85でのXaa=（Lys,Asn,Gln,ValまたはHis）。res.86でのXaa=（Tyrま
たはHis）。res.87でのXaa=（Arg,Gln,ProまたはGlu）。res.88でのXaa=（Asn,Gluまたは
Asp）。res.90でのXaa=（Val,Thr,IleまたはAla）。res.92でのXaa=（Arg,Lys,Val,Aspま
たはGlu）。res.93でのXaa=（Ala,Gly,GluまたはSer）。rer.95でのXaa ＝（GlyまたはAl
a）。res.97でのXaa=（HisまたはArg）。

一般配列 6
Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa Phe
1 5 10
Xaa Xaa Xaa Gly Trp Xaa Xaa Trp Xaa
15
Xaa Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Ala
20 25
Xaa Tyr Cys Xaa Gly Xaa Cys Xaa
30 35
Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
40
Xaa Xaa Xaa Asn His Ala Xaa Xaa
45 50
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
55
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys
60 65
Cys Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
70
Xaa Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa
75 80
Xaa Xaa Xaa Xaa Val Xaa Leu Xaa
85
Xaa Xaa Xaa Xaa Met Xaa Val Xaa
90 95
Xaa Cys Xaa Cys Xaa
100
ここでXaaは以下に示すアミノ酸の1またはそれ以上の群から他とは無関係に、選択された
ものである。Res.は残基residueを意味している。res.2でのXaa=（Lys,Arg,AlaまたはPro
）。res.3でのXaa=（Lys,ArgまたはMet）。res.4でのXaa=（His,ArgまたはGln）。res.5
でのXaa=（Glu,Ser,His,Gly,Arg,Pro,Thr,Tyr）。res.7でのXaa=（TyrまたはLys）。res.
8でのXaa=（LeuまたはVal）。res.9でのXaa=（Ser,Aspまたは Glu）。res.11でのXaa=（A
rg,Glu,Ser,AlaまたはLys）。res.12でのXaa=（Asp,GluまたはLys）。res.13でのXaa=（L
eu,IleまたはVal）。res.16でのXaa=（Gln, Leu,Asp,His,Asn またはSer）。res.17でのX
aa=（Asp,Arg,AsnまたはGlu）。res.19でのXaa=（IleまたはVal）。res.20でのXaa=（Ile
またはVal）。res.21でのXaa=（AlaまたはSer）。res.23でのXaa=（Glu,Gln,Leu,Lys,Pro
または Arg） 。res.24でのXaa=（Glyまたは Ser）。res.25でのXaa=（Tyrまたは Phe）
。res.26でのXaa=（Ala,Ser,Asp,Met,His,Gln,LeuまたはGly）。res.28でのXaa=（Tyr,As
nまたはPhe）。res.31でのXaa=（Glu,His,Tyr,Asp,Glnまたは Ser）。res.33でのXaa=（G
lu,Lys,Asp,Glnまたは Ser）。res.35でのXaa=（Ala,Ser,Pro,GlnまたはAsn）。res.36で
のXaa=（Phe,LeuまたはTyr）。res.38でのXaa=（Leu,Valまたは Met）。res.39でのXaa=
（Asn,Asp,Ala,Thrまたは Pro）。res.40でのXaa=（Ser,Asp,Glu,Leu,AlaまたはLys））
。res.41でのXaa=（Tyr,Cys,His,Serまたは Ile）。res.42でのXaa=（Met,Phe,Glyまたは
Leu）。res.43でのXaa=（Asn,Serまたは Lys）。res.44でのXaa= （Ala,Ser,GlyまたはPr
o）。res.45でのXaa=（Thr,LeuまたはSer）。res.49でのXaa=（Ile,ValまたはThr）。res
.50でのXaa=（Val,Leuまたは Ile）。res.51でのXaa=（GlnまたはArg）。res.52でのXaa=
（Thr,AlaまたはSer）。res.53でのXaa=（LeuまたはIle）。res.54でのXaa=（ValまたはM
et）。res.55でのXaa=（His,AsnまたはArg）。res.56でのXaa=（Phe,Leu,Asn,Ser,Alaま
たはVal）。res.57でのXaa=（Ile,Met,Asn,Ala,ValまたはLeu）。res.58でのXaa=（Asn,L
ys,Ala,Glu,GlyまたはPhe）。res.59でのXaa=（Pro,SerまたはVal）。res.60でのXaa=（G
lu,Asp,Gly,ValまたはLys）。res.61でのXaa=（Thr,Ala,Val,Lys,Asp,Tyr,Ser,Ala,Proま
たはHis）。res.62でのXaa=（Ala,ValまたはIle）。res.63でのXaa=（ProまたはAsp）。r
es.64でのXaa=（Lys,LeuまたはGlu）。res.65でのXaa=（ProまたはAla）。res.68でのXaa
=（AlaまたはVal）。res.70でのXaa=（Ala,ThrまたはGlu）。res.71でのXaa=（Gln,Lys,A
rgまたはGlu）。res.72でのXaa=（Leu,ValまたはMet）。res.73でのXaa= （Asn,Ser, Asp
またはGly）。res.74でのXaa=（Ala,ProまたはSer）。res.75でのXaa=（Ile,Thr,Valま
たはLeu）。res.76でのXaa=（Ser,AlaまたはPro）。res.77でのXaa=（Val,MetまたはIle
）。res.79でのXaa=（TyrまたはPhe）。res.80でのXaa=（Phe,Tyr,LeuまたはHis）。res.
81でのXaa=（Asp,Asnまたは Leu）。res.82でのXaa=（Asp,Glu,AsnまたはSer）。res.83
でのXaa=（Ser,Gln,AsnTyr またはAsp）。res.84でのXaa=（Ser,Asp,Asn,GluまたはLys）
。res.85でのXaa=（Asn,ThrまたはLys）。res.87でのXaa=（Ile,ValまたはAsn）。res.89
でのXaa=（LysまたはArg）。res.90でのXaa=（Lys,Asn,Gln, His またはVal）。res.91で
のXaa=（TyrまたはHis）。res.92でのXaa=（Arg, Gln,Glu またはPro）。res.93でのXaa=
（Asn,GluまたはAsp）。res.95でのXaa=（Val,Thr,AlaまたはIle）。res.97でのXaa=（Ar
g,Lys,Val,AspまたはGlu）。res.98でのXaa=（Ala,Gly,GluまたはSer）。res.100 でのXa
a=（GlyまたはAla）。res.102 でのXaa=（HisまたはArg）。
本発明においてモルフォゲンとして使用するために特に有用な配列は、Ｃ末端ドメイン
を含むものである。この配列は次のものをさす。少なくとも保存された6または7個のシス
テイン骨格を含むもの全てで、60A,BMP3,BMP5 およびBMP6（配列表配列番号24 28） のＣ
末端ドメインからなる蛋白質と同様のVgl, Vgr-1,DPP,OP-1,OP-2,CBMP-2A,CBMP-2B,GDF-1
（配列表配列番号5 14および表II） のＣ末端96 102アミノ酸残基を持つものである。さ
らに、米国特許5,011,691１号に開示されているCOP-1,3-5,7,16のように一般配列からデ
ザインされた生物的合成物は有用性がある。その他の配列としては、インヒビン／アクチ
ビン蛋白質（ 米国特許4,968,590、5,011,691号を参照）が含まれる。さらにまた、その
他の有用性のある蛋白質は上記の配列のいずれかと少なくとも７０％のアミノ酸配列ホモ
ロジー「相似性」を好ましくは８０％ホモロジーか相似性を持ち、形態形成活性を示す。
これらの物質は、このモルフォゲン蛋白質ファミリーの新規メンバーと同様に、自然発生
的であろうと生合成的に製造されたものであろうと対立形変異、種特異型およびその他の
配列変異型（「ミューテイン」または「ミュータント」蛋白質）をもつことが予想される
。
ここにおいて用いている「アミノ酸配列のホモロジー」はアミノ酸配列の相似性を意味
していると理解される。ホモローガスの配列は同一または相似のアミノ酸を有し、相似性
のアミノ酸はDayoffらによって、Atlas of Protein Sequence and Structure: vol.5, Su
ppl.3,pp.345-362（M.O.Dyoff,ed.,Natl BioMed．esearch Fdn.,Washington,D.C. 1978）
に定義されたような保存性アミノ酸である。このように参照配列と７０％のアミノ酸配列
のホモロジーを持つ候補配列は、参照アミノ酸配列に続いて候補アミノ酸配列を並べてみ
た場合、候補配列中のアミノ酸の７０％は、参照配列のアミノ酸配列に一致しているか、
あるいは保存性アミノ酸変化を構成していることが必要とされる。「アミノ酸配列同一性
」は、二つの一連をなす配列の間でアミノ酸の同一性が必要であることと理解される。こ
のように参照配列に対して候補配列が６０％の同一性を有するということは、参照アミノ
酸配列と候補アミノ酸配列を並べたとき、候補アミノ酸配列中のアミノ酸の６０％が参照
アミノ酸の配列に一致することが必要である。
ここで使用したホモロジーと同一性の計算には参照配列としてOP-1を用いた。またここ
で使用した配列は、ホモロジーと同一性の計算のためにNeedleman らの方法（1970,J.Mol
.Biol.48:443-453）を使用して配列が並べられ、アラインプログラム（DNAstar,Inc） で
同一性を計算した。全例において、並べられた時の候補配列中の内部欠落とアミノ酸の挿
入は、ホモロジー／同一性計算を行っている時には無視した。
現在、本発明のモルフォゲンとして有用な最も好ましい蛋白質の配列は、hOPIの6 個の
保存されたシステイン骨格（例えば配列表配列番号5 の残基43-139） で特定されている
アミノ酸配列と60％ 以上の同一性好ましくは65％以上の同一性を持つもつもである。こ
れらの最も好ましい配列は、ショウジョウバエ60A蛋白質を含むOP-1とOP-2蛋白質の対立
形質型と種変異型の両方を含む。さらにまた、本発明の別の好ましい観点において、有用
なモルフォゲンは、「OPX」としてここに示した一般アミノ酸配列を有するポリペプチド
鎖の種類から構成される、活性な蛋白質を含んでいる。このOPXは、OP1およびOP2（配列
表配列番号29） の色々な同定された種とホモロジーを持つ。
本発明の別の好ましい観点において、有用なモルフォゲンは、以下のDNA またはRNA 配
列に厳密なハイブリダイゼーション条件下でハイブリダイズする核酸によってコードされ
るポリペプチド鎖から成る活性蛋白質を含む。このDNAまたはRNA配列は、OP1またはOP2の
保存されるシステインドメインを特定するＣ末端配列をコードするもので、夫々配列表配
列番号16と20のヌクレオチド1036〜1341、ヌクレオチド1390〜1695である。
本発明の装置、方法、組成物に有用なモルフォゲンは、上記のポリペプチド鎖のいずれ
かから構成される蛋白質であり、天然の原料から単離されるか、あるいは遺伝子組換えDN
Aまたはその他の合成方法で調製される。更にこれらの蛋白質の対立形質型と種変異型、
それらの自然発生的なまたは生合成的な突然変異株、種々の切断または融合形成物を含む
欠失または付加変異体も活性を有すると予想され、これらは保存性Ｃ末端システイン骨格
を変更していても、折りたたみ構造においてこれらのシステインの相互関係を機能的に妨
げないような骨格変更であればそれらも含まれる。さらにまた、このような活性型は、こ
こに開示し特徴的に述べられている構成物と等質であると考えられる。蛋白質は、次のよ
うな変異形態を含む。異なるグリコシレーションパターン、異なるＮ末端、アミノ酸配列
ホモロジーの領域を有する関連蛋白質のファミリー、天然あるいは宿主細胞で遺伝子組換
えDNAの発現によって調製した生物合成蛋白質の活性化切断型または変異型などである。
形態形成性蛋白質は、原核細胞または真核宿主細胞中で、完全または切断cDNAあるいは
合成DNAから発現させることができる。そして精製、切断、リフォールディング、形態形
成的活性組成物を構成するために二重化される。現在好ましい宿主細胞としては、大腸菌
、CHO、COS、BSC細胞のような哺乳動物細胞がある。本発明の方法、組成物および装置に
有用なモルフォゲンの詳細な説明は、1991年3月11日出願667,274および1991年8月30日出
願752,764の米国特許出願に開示されており、ここに引用することによって一体化して開
示される。
本開示を考慮すると、熟練した遺伝子技術者は、種々の異なる種のcDNAまたはゲノムラ
イブラリーから適切なアミノ酸配列をコードしている遺伝子を単離することができる。ま
たオリゴヌクレオチドからDNAを構築し、原核細胞と真核細胞の両方を含む種々のタイプ
の宿主で発現させ、哺乳動物の神経回路を維持することのできる活性な蛋白質を大量に生
産することができる。この神経回路保護には、瀕死のニューロンの生存性を増強するヒト
を含む色々な哺乳動物における神経の再生と修復を促進することを包含するものである。
本発明は、瀕死の細胞の生存性を促進させる方法であって、神経の母細胞を形質転換さ
せて再分化させるための方法を包含する方法、および分化した神経細胞に形質発現を維持
させるための方法を提供する。さらにまた、本発明は、傷害を受けた神経回路を修復する
ための手段を提供する。この手段には長い距離にわたる軸索の成長を促進するための方法
を含んでおり、さらに免疫学的に関連している神経組織傷害を軽減するための方法を提供
するものである。本発明の代表的な実施態様としては、細胞中の細胞接着性分子の発現で
あって、特に神経細胞中の神経細胞接着性分子の発現を促進する方法を提供するものであ
る。最終的には、本発明は神経組織の鬱血状態を評価し、哺乳動物における神経系の機能
不全を評価するための手段を提供するものである。
本発明の先に示した目的、特性、利点はその他の目的と特性および利点と共に、以下に
示す詳細な説明からより一層明白なものとなるであろう。
ここに説明した蛋白質はニューロンの生存性を増強するための有効物質であり、特に瀕
死のニューロンに有効である。そして哺乳類の神経回路を維持するために有効である。こ
こに開示したように、これら蛋白質（「モルフォゲン」）は非分裂性ニューロンの生存性
を増強することができ、神経細胞性CAMの発現を刺激し、分化したニューロンの表現型発
現を維持し、神経由来の形質転換細胞の再分化を誘導し、そして神経突起の破壊部分、特
に遠位軸索の大きなギャップを超えて軸索成長を促進する。さらにまた、この蛋白質は、
免疫学的に関係した神経組織の損傷に伴なう組織破壊作用を緩和するために神経保護作用
を与えることができる。最後に蛋白質は哺乳動物の神経組織の生存性をモニターするため
の方法の一部分として使用できる。
投与および使用方法、複数の限定されない実施例と同様に本発明の方法、組成物と装置
において有用な適切なモルフォゲンの詳細な説明が以下に開示される。1）死のリスクを
持った神経細胞の生存性を増強し、哺乳動物の神経回路を維持するための治療剤としてこ
こに説明するモルフォゲンおよびモルフォゲン促進剤の適合性を説明し、2）モルフォゲ
ンとモルフォゲン促進剤としての候補物質の有効性を評価する分析方法を提供する。
1.有用なモルフォゲン
細胞および分子の発達性カスケードを誘導して新しい臓器特異的組織の形成を導き、保
存された少なくともＣ末端の6個のシステイン骨格またはそれと機能的に等価のもの（上
記参照）から構成されているものであるならば、ここに定義するように、その蛋白質は形
態形成性である。特に、モルフォゲンは一般的には、形態形成可能環境においては、次の
生物学的機能全てを示すことができる。始原細胞増殖促進、始原細胞分化促進、分化細胞
増殖促進、分化細胞の成長と維持を手助けする。
本発明の方法において有用なモルフォゲンが、最初にどのように特定されたかは、モル
フォゲンをどのように製造し、使用し、モルフォゲン活性を試験するかと同様に国際出願
US92/01968（WO92/15323）に開示されており、引用により本発明と一体化する。ここに開
示するように、モルフォゲンは天然の原料や、ここに開示した遺伝子配列を用いた遺伝子
操作による原核宿主細胞や真核宿主細胞の生産物から精製できる。さらにまた、新規モル
フォゲン性配列がここに開示した方法に従って特定できる。
特に有用な蛋白質は、表IIに開示した天然由来の配列からなるものである。その他有用
な配列は、米国特許5,011,691に開示されているような生物合成物である。この開示は引
用により本発明と一体化される（COP-1,COP-3,COP-4,COP-5,COP-7 COP-16等）
さらに、本発明の方法と組成物において有用なモルフォゲンは、上に述べた配列のいず
れかと、そのアミノ酸配列のホモロジー（相似性）が70％、好ましくは80％である。形態
発生的に活性の蛋白質として記述される。ここで「ホモロジー」は上記に定義したもので
ある。
本発明の方法において有用なモルフォゲンは、また、ここに記述した6個の一般配列（
一般配列1,2,3,4,5,6）で記述できるものである。一般配列１と２はＮ末端に次の配列を
含む。
Cys Xaa Xaa Xaa Xaa （配列表配列番号15）
1 5
以下にしめした表IIは天然蛋白質の活性領域のアミノ酸配列を比較したもので、それは
モルフォゲンとして特定され、次のものを含む。ヒトOP-1（hOP-1, 配列表配列番号5およ
び16 17）、マウスOP-1（mOP-1, 配列表配列番号6および18 19）、ヒトおよびマウスOP-2
（配列表配列番号7,8および20 23）、CBMP2A（配列表配列番号9）、CBMP2B（配列表配列
番号10）、BMP3（配列表配列番号26）、DPP（ショウジョウバエ由来、配列表配列番号11
）、Vgl（ツメガエル由来、配列表配列番号12）、Vgr-1（マウス由来、配列表配列番号13
）、GDF-1（マウス由来、配列表配列番号14,32および33）、60（A）蛋白質（ショウジョ
ウバエ由来、配列表配列番号24 25）、BMP5（配列表配列番号27）、BMP6（配列表配列番
号28）。配列はNeedlemanらの方法（1970,J.Mol.Biol.48:443-453）を使用して、直列に
並べアラインプログラム（DNAstar,Inc）で同一性を計算した。表中の３つのドット（...
）は、その位置のアミノ酸はhOP-1のアミノ酸と同じであることを示している。３つのダ
ッシュは、その位置にはアミノ酸がないことを示し、かつホモロジーを説明するために含
まれている。例えば、CBMP-2AとCBMP-2Bの残基60は欠失している。もちろんこの領域の両
方のアミノ酸配列はAsn-Ser（残基58、59）からなり、CBMP-2Aでは次にLysとIleが、CBMP
-2BではSerとIleが続く。
（表ＩＩ）
先のアミノ酸配列の比較から明白になったように、意味のあるアミノ酸の変更を、モル
フォゲン活性を保持しつつ一般配列の範囲で行なうとが可能である。例えば、表IIに示し
たGDF-1蛋白質の配列は、ここに説明したhOP1と50％位しかアミノ酸の同一性を持たない
にもかかわらず、GDF-1配列は、hOP-1配列と70％以上のアミノ酸配列のホモロジー（或い
は相似性）を持つ。ここで言う「ホモロジー」、「相似性」は、Dayoffらにより、Atlas
of Protein Sequence and Structure : vol.5,Suppl.3,pp.345-362（M.O.Dyoff,ed.,Natl
BioMed.Research Fdn.,Washington,D.C. 1979）に示されている方法によって特定される
、配列中の許容された保存性アミノ酸の変化を含む。
本発明のモルフォゲンとして有用な特に好ましい配列は、hOP1（配列表配列番号5の残
基43-139）の保存された6個のシステイン骨格で特定されるアミノ酸配列と60％以上、さ
らに好ましくは65％以上の同一性をもつ。これらの最も好ましい配列は、ショウジョウバ
エ60A蛋白質、OP-1, OP-2の対立形質および種変異体の双方を含む。さらに、他の好まし
い観点において、本発明は、7個のシステイン骨格を持ち、種々の特定されたマウスおよ
びヒトのOP1、OP20蛋白質に共通する、「OPX」としてここに示した一般アミノ酸配列を有
するポリペプチドの種からなるモルフォゲンを含む。OPXは配列表配列番号29に示してい
る。そこに記載するように、夫々のXaaはその位置で、マウスまたはヒトOP1またはOP2の
Ｃ末端配列（配列表配列番号5-8および／または配列表配列番号16-23）の相当する位置で
得られる残基から他とは無関係に選択される。
2. 治療剤を投与するための製剤と方法
モルフォゲンは好ましい方法で個体に投与される。投与は好ましくは直接的（神経組織
への注射のように局部的に）または全身的（非経口与または経口投与）である。モルホゲ
ンは非経口的に投与できる。静脈内、皮下、筋肉、眼窩、目、頭蓋、関節嚢、心室、脳槽
、腹膜、頬、直腸、膣、鼻腔内またはエアロゾール投与をあげることができる。モルホゲ
ンは好ましくは水溶液にすることもできる。溶液は患者に対して所望のモルフォゲンを与
えるのに加え、患者の電解質と容易バランスに負の影響を与えないので生理的に受容可能
である。モルフォゲンの水性媒体は通常の生理食塩水（9.85％食塩、0.15M）pH7-7.4であ
る。モルフォゲンを含有する水性溶液は、一例を上げると、0.1％トリフロロ酢酸（TFA）
または0.1％塩酸含有アセトニトリルの50％エタノール溶液、あるいは同等の溶媒に蛋白
質を溶解させて調製することができる。得られた溶液1容量に10容量のリン酸緩衝食塩水
（PBS）を加え、さらに0.1-0.2％ヒト血清アルブミン（HSA）を加えてもよい。得られた
溶液は、好ましくは持続的に攪拌する。必要であれば、与えられたモルフォゲンはその他
の適切な分子とを結合させて溶解度をあげることができる。例えばモルフォゲンのプロド
メインを成熟２量体と結合させると、蛋白質の溶解性を相当あげることができる。（下記
セクションII.1を参照）。実際、内因性蛋白質はこの形態で移送されると考えられる。溶
解性を促進するものとして、特に経口投与に有用なその他の分子は、カゼインをあげるこ
とができる。例えば、0.2％カゼインの添加はOP-1の成熟活性型の溶解度を80％増加させ
る。牛乳および／または種々の血清蛋白質に見出されるその他の成分も有用である。
非経口的投与に有用な溶液は、製薬技術として公知の方法で、例えばRemngton's Pharm
aceutical Science（Gennaro,A,ed.）Mack Pul.,1990に記載されている方法で調製できる
。製剤化材料としては、ポリエチレングリコールのようなポリアルキレングリコール、植
物油、水素添加したフタレンおよび類似物があげられる。特に、直接投与製剤は、グリセ
ロールと高い粘度をもつ他の組成物を含む。例えばヒアルロン酸、コラーゲン、トリカル
シウムリン酸塩、ポリブチレート、ラクチド、ラクチド／グリコリド共重合ポリマーなど
を含む生体内適合性、好ましくは生体吸収性ポリマーがモルフォゲンのインビボ放出を制
御する賦型剤として有用である。このモルフォゲンを非経口的に投与するシステムとして
特に有用なものは、エチレンビニル酢酸共重合体粒子、浸透圧ポンプ、埋め込み式注入シ
ステム、リポゾームなどを含む。ラクトースを賦型剤として含有する吸入式投与のための
処方は、例えば、ポリオキシエチレン-9-ラウリルエーテル、グリココレート、デオキシ
コレートを含有する水性溶液あるいは油性溶液であって鼻腔内にゲルとして投与するかあ
るいは、鼻腔に滴下する形態のものである。非経口的処方はバッカル投与のためにグリコ
レートを含有するか、直腸内投与のためメトキシサリチレートを含有するか、膣内投与の
ためカットリック酸を含有するものである。
さらにまた、ここに説明したモルフォゲンは経口的に投与できる。一般的に、治療薬と
して蛋白質を経口投与することは、殆ど行われていない。大部分の蛋白質は、哺乳動物の
消化器系で消化酵素と酸によってすぐに分解されて、血液中に吸収されない。しかし、こ
こに述べたモルフォゲンは、典型的に酸に安定でプロテアーゼ抵抗性がある（たとえば米
国特許4,968,590を参照のこと）。さらに、少なくとも一つのモルフォゲン、OP-1は乳腺
分泌物で、初乳および57日めの乳から同定されている。さらに乳腺分泌物から精製したOP
-1はモルフォゲンの活性を有している。特に、米国特許4,968,590に開示されている、標
準的に採用されているインビボ骨アッセイ法を使用して、適切なマトリックス素材と共に
皮下に移植した場合、この蛋白質は哺乳動物の軟骨形成を誘導する。さらに、モルフォゲ
ンは血流から検出される（下記実施例9を参照）。最終的に、溶解型モルフォゲン、例え
ばプロドメインと結合させた成熟モルフォゲンは哺乳類の神経経路を維持する作用をを有
している（下記実施例4および6を参照のこと）。これら知見は、経口および非経口投与物
は、個体に対して投与した場合、モルフォゲンが生物活性を示すことを意味している。さ
らに、ここに示したモルフォゲンの成熟型は、典型的には非常に低い溶解性を示すが、乳
（および乳腺分泌物と初乳）に見出されるモルフォゲンの形態は、非常にとけやすい。恐
らく成熟型のモルフォゲン活性形が、完全な配列のプロドメインの一部または全部と結合
するか、１つまたはそれ以上の乳成分と結合しているかによるのであろう。したがって、
ここで提供される化合物はインビトロ、インビボでその溶解性を促進できる分子と結合さ
せてもよい。
ここで提供される化合物は、神経組織に対してモルフォゲンまたはモルフォゲン促進物
質をターゲッティングすることができる分子と結合させることもできる。例えば、神経ま
たはグリア細胞を含む神経組織細胞上の表面分子に特異的に作用する抗体、抗体フラグメ
ント、他の結合蛋白質は使用可能である。有用なターゲッティング分子は、米国特許5,09
1,513に開示された一本鎖結合部位技術を用いて、デザインすることができる。
上記したように、ここで提供されるモルフォゲンはＣ末端活性ドメインの配列にホモロ
ジーが高い。比較すると、プロドメインとして定義される配列では配列はかなり異なって
いる。したがって、プロドメインはモルフォゲン特異的といえる。今日迄に同定されてい
るモルフォゲンは、異なる組織で特異的に発現されることが公知である。さらに、どのよ
うな既存の理論に制限されることなく、体内での自然条件下では、一定の組織には、特に
選択されたモルフォゲンが典型的に作用しているらしい。さらに、溶液中のモルフォゲン
の活性型と結合していることが確認されたプロドメインの一部まは全部が、ここに記載し
たモルフォゲンに対するターゲット化物質として使用できる。例えば、プロドメインは、
ターゲット組織の1またはそれ以上の分子と特異的に反応するのでプロドメインと結合し
たモルフォゲンをその組織に方向づけることができる。さらにまた、神経組織に対してモ
ルフォゲンをターゲッティングさせるための別な有用な分子は、モルフォゲンプロドメイ
ンの1部または全部であり、特に、自然に神経組織に結合することが確認されているOP-1
またはGDF-1のプロドメインの一部または全部はである。
最後に、ここで提供されるモルフォゲンまたはモルフォゲン促進剤は単独で投与するか
、または神経経路の維持に有効であることが知られている神経成長因子と抗炎症剤とを含
むその他の分子と組み合わせて投与できる。
ここで提供される化合物は、薬剤学的に受容されうる無毒性の賦型剤およびキャリアー
と混合して製剤化できる。上記のように、このような組成物は以下のような投与のために
調製できる。非経口的投与、特に溶液あるいは懸濁液の形態；経口投与、特に錠剤あるい
はカプセル剤の形態；鼻腔内投与、特に粉末、鼻腔内滴下剤またはエアロゾール。
組成物は、治療上有効な量をヒトまたはその他の哺乳動物に非経口的または経口的に投
与するための形態に調製できる。治療上有効な量は、患者の病理学的な状態を除去するか
低減するために十分な時間にわたって適切な濃度で提供できる量であり、上記に述べた神
経学的な病気や障害を治療するのに十分な量である。さらにまたこの量は、神経組織に対
する傷害が予測される時に神経細胞の生存性を増強し、そして／またニューロンと神経経
路を保護することができる量である。
当業者には理解できるように、治療用組成物中に説明した化合物の濃度は多くの因子に
よって変動する。この因子は投与する薬剤の投与量、使用する化合物の化学的特性（疎水
性など）、投与経路などである。投与する薬剤の好ましい投与量もまた、以下のような変
動因子に依存している。これらの変動因子としては神経学的な疾患のタイプとその進行の
程度、個々の患者の全体的な健康状態、選定した化合物の相対的な生物学的な有効性、化
合物賦型剤の配合そしてその投与経路などである。一般的に言えば、本発明の化合物は、
非経口的投与のためには、約0.1-10％ W/Vの化合物を含有する水溶性の生理学的緩衝液と
して製造される。代表的な投与範囲は一日体重1kg当たり10ngから1gである。好ましい投
与範囲は一日体重1kg当たり0.1μから100mgである。最適には、全ての場合において投与
されるモルフォゲンの量は、一日患者の体重1g当たり2-20μの間である。21日間連続して
正常な成長期のラットに毎日成熟型モルフォゲン（OP-1,20μg）を投与した時、OP-1によ
る生理学的問題はなにも認められない。さらに、正常な新生マウスに10日間毎日モルフォ
ゲン（OP-1）を10μg全身的に注射したところ、どのような異常も発生しなかった。
脳血液関門を通過するための蛋白質および蛋白質フラグメントが脳−血液バリアを通過
する能力は、そのサイズ、親油性またはその実際のイオンチャージに関係しているため、
標準的な公知の方法を用いて、バリアを通過する機能を増強させるためにモルフォゲンの
適切な変換をすることができる（フェニルアラニンをペンタフロロフェニルアラニンに置
換するかまたはアルブミンのような陽イオン化された蛋白質と共役結合させる）。例えば
以下のものを参照のこと。Kastin et al.,Pharmac. Biochem.Behav.,1979,11:713-716; R
apoport et al.,Science,1980,207:84-86;Pardrige et al.,1987,Biochem.Biophys.Res.C
ommun., 146:307-313; Riekkine et al.,1987,Peptides,8,261-265。これらの機能的アナ
ログの有効性は、たとえばこれらの化合物が、ここに示した実施例に記述されているよう
に、形質転換細胞の再分化を誘導したり、瀕死のニューロンの生存性を増強したりする能
力を測定することによって評価できる。
本発明の方法において全身的にモルフォゲンを投与する場合に、好ましくは大容量の負
荷投与量が治療の初めに採用される。次いで治療は維持量で持続される。それに続く投与
は血液中のモルフォゲンレベルを一定間隔でモニターして決定することができる。
神経経路のニューロンに対する傷害が、例えば外科的な方法の一部として慎重に引き起
こされる場合、好ましくはモルフォゲンは傷害の誘発のほんの少し前に投与しておくか、
傷害の誘発と同時に投与される。好ましくは、モルフォゲンは手術の準備中に予防的に投
与しておく。最適な条件では、全ての場合に投与されるモルフォゲンの量は患者の体重キ
ログラム当たり2-20μgである。
さらにまた、内因性モルフォゲンレベルを促進できる物質の有効量は上記に説明したど
の様な投与経路であっても投与可能である。例えば、神経組織細胞からのモルフォゲンの
生産および／または分泌を促進する物質を、哺乳動物に対して与えることができるが、こ
れは治療されるべき神経組織に結合しているグリア細胞に対してモルフォゲンを直接投与
して行なう。一定の組織中の内因性モルフォゲンのレベルを変更させることのできる物質
の特定と試験を行うための方法は、ここでは実施例13に一般的に説明してあるが、国際出
願US92/07359（WO93/015172）に詳細に説明してあり、引用によってここに一体化して開
示される。要約すれば、候補化合物は、試験組織の細胞によって生産されるモルフォゲン
の生産、即ち発現および／または分泌にその化合物が影響を与えるのに十分な時間、試験
組織またはその細胞と共にインビトロで試験化合物をインキュベートすることによって、
同定し試験することができる。ここで適切な組織または培養された組織細胞は、このまし
くはニューロンおよび／またはグリア細胞からなっている。例えば、試験のための適切な
組織は黒質、下垂体グリア細胞および類似組織から単離された培養細胞を含んでいる。
候補化合物に対してさらされたとき、生成するモルフォゲンのレベルを測定するための
特に好ましい検出方法としては、モルフォゲンに対して特異的に反応し、さらにモルフォ
ゲンとのコンプレックスの一部として検出される抗体あるいは結合性蛋白質を用いたイム
ノアッセイがあげられる。イムノアッセイは、公知の一般的な技術とモルフォゲンに対し
て培養され、そのモルフォゲンに特異的である抗体を使用して行われる。ここに述べたよ
うに、モルフォゲンは天然の原料物質から単離するか、遺伝子操作によって調製できる。
内因性モルフォゲンを促進できる物質はここで説明するように製剤学的な方法によって製
剤化され、投与される。
モルフォゲンを軸索の再生を促進するためにある部位に投与する場合には、好ましくは
モルフォゲンは、インビボでその部位に蛋白質を保持できる適切な生体内適合性で好まし
くは生体吸収性のある、それを通じて神経突起が再生するところのキャリアーと共に投与
する。現在、好ましいキャリアーは、軸索の成長を方向づけるのを助けるのに十分な構造
をもったものからなっている。現在好ましいキャリアーとしては、コラーゲン、ヒアルロ
ン酸、ラミニンおよび／またはポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリ酪酸のような合成ポリ
マーまたは合成共重合体のような構造性分子である。現在もっとも好ましいキャリアーは
、組織細胞外マトリックスからなるものである。これらは、市販されている。さらにまた
、脳組織由来細胞外マトリックスは、引用によって本発明と一体化している国際出願US92
/01968（WO92/15323）に記載の手段、および／またはその他の公知手段によって調製でき
る。
神経経路特に末梢神経系の経路の切断を修復するための現在の好ましい手段としては、
切断を覆うために十分な大きさを持ち、切断神経末端を受け入れることができる開口部を
有する生体内適合性の隔膜またはケーシングを含む器具の一部分としてその部位にモルフ
ォゲンを供給することを含んでいる。モルフォゲンはケーシングに配置され、好ましくは
適切なキャリアー全体に分散され、そして切断された神経の末端に接触可能である。さら
にまた、モルフォゲンはケーシングの内部表面に吸着されるか、そこに結合する。さらに
現在の好ましいケーシングは不透過性の外表面を有している。ケーシングは神経の案内回
路として作用し、さらに軸索成長の方向付けを補助する。さらにまた、ケーシングは傷痕
組織の形成を助ける免疫関連物質から損傷をうけた神経を保護する。適切な回路とケーシ
ングの素材は、シリコンあるいはコラーゲン、ヒアルロン酸、ラミニン、ポリ乳酸、ポリ
グリコール酸、ポリ酪酸および類似物質等の生体吸収性物質を含む。さらに、ここに一般
的に説明した神経案内回路は、形状がチューブ状であるが、種々のその他の形状が使用さ
れ得ることが当業者には明らかである。案内回路の内腔は、例えば横断面が長円または方
形であっても良い。さらにまた案内回路は、神経の切断端を守るようにしっかりと結びつ
けられた2またはそれ以上のパーツで構築しても良い。神経末端はフィブリングルーのよ
うな生体内適合性の接着物質で縫合するかあるいはその他公知の医学的手段で神経案内回
路に結び付けられる。
2.1 可溶性モルフォゲンコンプレックス
水溶液の溶解性が改善され、本質的にアミノ酸で構成されている、治療用の製剤として
有用なモルフォゲンの好ましい形態は、少なくとも100のアミノ酸ペプチド配列からなる
二量体モルフォゲン蛋白質またはその対立形質体、種変異体または他の配列変異体である
。このアミノ酸ペプチド配列は、モルフォゲンファミリーのメンバーのプロ領域の一部ま
たは全部からなるペプチドと複合したモルフォゲンファミリーに特徴的な、7またはそれ
以上のシステイン残基のパターンを持つ。また対立形質、種特異的あるいはそれらの変異
体からなるものである。好ましくは、二量体モルフォゲン蛋白質は2つのペプチドと複合
している。さらにまた、二量体モルフォゲン蛋白質は、好ましくは非共有的にプロ領域ペ
プチドまたはペプチドと複合している。また、プロ領域ペプチドは、好ましくはもとのモ
ルフォゲンプロ領域を特定するＮ末端側18アミノ酸を少くとも持っている。もっとも好ま
しい実施態様では、実質的にプロ領域の全長を特定するペプチドが使用される。
その他のモルフォゲンの溶解型は、これらの蛋白質の切断されていないプロ型の二量体
、二量体の一つのサブユニットは蛋白質の切断されないプロ型であり、そしてもう一方の
サブユニットは蛋白質の成熟型である「半二量体」、さらにそれらの切断型を含んでおり
、好ましくは切断されたプロドメインペプチドに非共有的に結合している。
上記に示したように、有用なプロドメインは、プロ領域の全長または種々のこれらの切
断型を含んでいる。特にこの切断型はArg-Xaa-Xaa-Argのプロテアーゼ開裂部位で切断さ
れるようになっている。例えば、OP-1においては可能性のあるプロ配列は残基30-292（全
長型）、48-292および158-292によって特定される配列を含む。溶解性OP-1コンプレック
スの安定性は、プロ領域が48-292切断型のような切断型であるよりも、むしろ全長型であ
る時に増強される。なぜなら残基30-47は他のモルフォゲンのＮ末端部分と配列のホモロ
ジーを示していて、全てのモルフォゲン対してコンプレックスの安定性を増強するので有
用性が高いと考えられている。したがって、一般的に好ましいプロ配列は、与えられたモ
ルフォゲンのプロ領域の全長をコードしたものである。有用性のあることが期待されてい
るその他のプロ配列は生物合成プロ配列であって、特に1またはそれ以上のモルフォゲン
プロ配列のＮ末端部に由来した配列を組み込んだものである。
当業者には容易に理解されるように、プロ領域をコードする有用な配列は、公知のモル
フォゲンをコードする遺伝子配列から得ることができる。さらにまた、キメラのプロ領域
は1またはそれ以上の公知のモルフォゲンの配列から構築することができる。更にまた、
別の可能性としては、1またはそれ以上の公知のプロ領域の合成配列の変異体をつくり出
すことである。
別の好ましい実施態様においては、有用なプロ領域ペプチドは核酸配列によってコード
されるアミノ酸配列からなるポリペプチド鎖をふくんでいる。この核酸は、配列表配列番
号16および20のヌクレオチド136-192と152-211に夫々対応するOP1またはOP2のプロ領域配
列の少なくともＮ末端の18アミノ酸をコードするDNAまたはRNA配列と厳密な限定条件下で
ハイブリダイズするものである。
A.培養液または体液からの可溶性モルフォゲンコンプレックスの単離
モルフォゲンは可溶性コンプレックスとして哺乳動物細胞に発現される。しかし、通常
コンプレックスは、精製溶液中にしばしば添加される界面活性剤、アルコール、有機溶媒
、カオトロピック剤および溶液のpH低下のために添加される化合物等の変質剤にさらされ
ることによって、精製中に触離する。以下に示すものは、非変質条件下で調製された培地
（または場合により、血清、脳脊髄液あるいは腹膜液のような体液）から可溶性蛋白質を
精製するための一般的に好ましいプロトコールである。本方法は、素早く、再現可能であ
り、そして実質的に純粋な状態で単離された可溶性モルフォゲンコンプレックスを産出す
る。
可溶性モルフォゲンコンプレックスは、変性剤の存在下で行なわれる簡単な３ステップ
のクロマトグラフィプロトコールを使用して調製培地から単離することができる。プロト
コールには培地（あるいは体液）をアフィニティーカラムに流し、続いてイオン交換とゲ
ル濾過クロマトグラフィーを通過させることからなっている。ここに述べたアフィニティ
ーカラムはZn-IMACカラムである。本プロトコールはモルフォゲンの変異体の精製にも一
般的には適用可能である。なお、変異体全てが以下に説明するプロトコールのマイナーな
変更を行うだけで単離できると予想される。さらにまた他のプロトコールは与えられたモ
ルフォゲンのプロドメイン（例えばプロテインA結合セファロースカラムに対して結合し
た）に対して特異的に結合する抗体を用いるなどの標準的な手法で作られたイムノアフィ
ニティカラムにおいて有用性を持つことが想定している。イムノアフィニティカラムを調
製するためのプロトコールは先行技術に開示されている（例えばGiede to Protein Purif
ication, M.Deutscher,ed.,Academic Press,San Diego,1990, のセクションVIIとXIを特
に参照のこと）。
本実験において、OP-1は先行技術（例えば国際出願US90/05903（WO91/5802））に開示
されたように哺乳動物細胞であるCHO（chinese hamster ovary）細胞で発現させた。0.5
％FBSを含むCHO細胞調整培地は最初にImmobilized Metal-Ion Affinity Chromatografy（
IMAC）を使用して精製した。調製培地からの可溶性OP-1は非常に選択的にZn-IMAC樹脂に
結合し、高濃度のイミダゾール（50mM イミダゾールpH8.0）で結合したコンプレックスを
効率的に溶出した。Zn-IMACのステップでは、フロースルーと35mMイミダゾールで洗浄し
たフラクションに溶け出す汚染性の血清蛋白質のブルクと可溶性OP-1とを分離する。Zn-I
MACで精製した可溶性OP-1は、次いで50mM NaClを含む20mM NaPO4（pH7.0）で平衡化したS
-セファロース 陽イオン交換樹脂カラムにかける。このS-セファロースステップはさらに
精製を行い、そして次のゲル濾過ステップのための前処理として可溶性OP-1コンプレック
スを濃縮する。蛋白質はTBSで平衡化したセファクリル S-200HRカラムにかける。基本的
には同一のプロトコールを用いて、可溶性のモルフォゲンを血清、脳脊髄液、腹腔内液な
どの1またはそれ以上の体液から単離することができる。IMACは、カラムの3倍容量の0.2M
ZnSO4でチャージしたキレート化セファロース（Pharmacia製）を使用して行う。調製培
地はpH7.0に調整し、500mM NaCl含有20mM HEPES（pH7.0）で平衡化したZn-IMAC樹脂に直
接負荷した。Zn-IMAC樹脂は、樹脂1mlあたり調製培地80mlを負荷させる。負荷後カラムを
平衡化緩衝液で洗浄し、混入している他の蛋白質の大部分を35mMイミダゾールを含む平衡
化緩衝液（pH7.0）で溶出した。次いで可溶性OP-1コンプレックスを50mMイミダゾール（p
H8.0）を含む20mM HEPES-500mM食塩溶液で溶出した。
可溶性OP-1コンプレックスを含む50mMイミダゾール溶出液は20mM NaPO4（pH7.0）9倍容
量で希釈し、50mM NaClを含む20mM NaPO4（pH7.0）で平衡化したS-セファロース（Pharma
cia製） カラムにかけた。S-セファロース樹脂は、樹脂1mlあたり調製培地800mlを負荷し
た。負荷後、S-セファロースカラムを平衡化緩衝液で洗浄し、100mM NaClで溶出し、続い
て300mM、および500mM NaClを含む20mM NaPO4（pH7.0）で溶出した。300mM NaClのプール
はさらにゲル濾過クロマトグラフィーで精製した。300mM NaCl溶出液50mlを、トリス緩衝
食塩水（TBS）・50mM Tris・150mM NaCl（pH 7.4）で平衡化した5.0×90cmセファクリルS
-200HR（Pharmacia製）に適用した。カラムは5ml/分の流下速度で溶出し、10mlずつ分画
した。見たところでは溶性OP-1の分子は蛋白質分子量標準と比較して決定した。分子量標
準はアルコールデヒドロゲナーゼ（ADH 150kDa）、ウシ血清アルブミン（BSA 68kDa）、
カルボニックアンヒドラーゼ（CA 30kDa）およびチトクロームC（cyt C 12.5kDa）である
。S-200カラムのフラクションの精製度は標準的な15％SDS ポリアクリルアミドゲルのク
ーマシーブルー染色による分離によって決定した。成熟OP-1とプロドメインの特定は、標
準的な逆相C18HPLCを用いてプロドメインから成熟OP-1を分離してＮ末端アミノ酸配列を
分析して決定した。
可溶性OP-1コンプレックスはおよそ110kDaの分子量で溶出される。これは、２つのプロ
ドメイン（各39kDa）に１つの成熟OP-1二量体（35-36kDa）が結合したという可溶性OP-1
コンプレックスの組成の予想値に一致した。最終的なコンプレックスの純度は還元型15％
ポリアクリルアミドゲルに適切なフラクションを流下させて証明することができる。
コンプレックスのコンポーネントは、S-200またはS-200HRカラムからのコンプレックス
を含むフラクションを、標準的な手法によるアセトニトリルのグラジエント（0.1％TFA中
）で逆相C18HPLCカラムにかけ、溶出して決定できる。コンプレックスはこのステップで
解離し、プロドメインと成熟種は分離した種として溶出する。ついでこれらの分離した種
は標準的な手法（例えばGuide to Protein Purification, M. Deutscher,ed.,Academic P
ress,San Diego,1990, 特に602-613ページを参照）を用いてＮ末端配列を決定する。そし
て分離した36kDaと39kDaの蛋白質は夫々成熟モルフォゲンおよび単離され、切断されたプ
ロドメインであることが確認された。哺乳動物細胞の生産したOP-1からの単離したプロド
メインのＮ末端配列は、プロ領域の２つの型を示していた。これは完全型（配列表配列番
号16の残基30からはじまる）と切断型（配列表配列番号16の残基48からはじまる）である
。単離した成熟種のポリペプチドサブユニットのＮ末端配列は成熟配列のＮ末端が配列表
配列番号16の残基293、300、313、315、316および318からはじまっていることを明らかに
した。さらにこれらのすべてが標準的な骨誘導分析法で活性を示していた。
B.インビトロの可溶性モルフォゲンコンプレックス形成
培養培地または体液から可溶性コンプレックスを精製するかわりに、可溶性コンプレッ
クスを精製したプロドメインと成熟型二量体種から構築することもできる。明らかに、上
手なコンプレックス形成は、SS結合に影響しないように、これらの分子の折り畳み構造を
緩めるのに十分な変性条件の下で成分を結合させることが必要となる。好ましくは、変性
条件は、切断されたプロドメインが、緩められた折り畳み条件下で成熟型二量体種と結合
する機会を持つように細胞内小嚢の条件に十分に似せておく。そのときの溶液中の変質剤
の濃度は、二量体とプロドメインの結合を維持する一方で、二量体とプロ領域とが適切な
リフォールディングを行えるように、好ましくは段階的にコントロールして減らしていく
。有用な変質剤は、pH4-10、好ましくはpH6-8の緩衝溶液中に4-6M尿素またはグアニジン
塩酸塩（GuHCl）を含むものである。そのとき可溶性コンプレックスは、透析で制御する
か、または尿素あるいはGuHClの0.1-2M以下、好ましくは1-2M以下の最終変質剤濃度に溶
液を希釈することで形成される。尿素あるいはGuHCl濃度は、好ましくは生理的な緩衝液
で希釈する。蛋白質の精製／再生手段と要件は先行技術に開示されており、適切な再生プ
ロトコールを開発するための詳細は、当業者によって容易に決定することができる。この
問題に対する一つの有用なテキストは、Guide to Protein Purification, M.Deutscher,e
d.,Academic Press,San Diego,1990,とくにセクションVをあげることができる。コンプレ
ックス形成はまた、1またはそれ以上のシャペロン蛋白質を加えることで補助される。
C.可溶性モルフォゲンコンプレックスの安定性
生理学的緩衝液、例えばトリス緩衝食塩水（TBS）およびリン酸緩衝食塩水（PBS）中の
高純度可溶性モルフォゲンコンプレックスの安定性は、多くの手段のうちどれでもで増強
できる。一般的に好ましい方法は、少なくともプロ配列の最初の18アミノ酸配列表配列番
号16のOP-1の残基30-47）からなるプロ領域を使用することであり、プロ領域の全長を使
うことは特に好ましい。残基30-47はその他のモルフォゲンのＮ末端部分と配列にホモロ
ジーがあり、そして全てのモルフォゲンにとってコンプレックス安定性を増強するために
特に有用であると考えられている。可溶性モルフォゲンコンプレックスの安定性を増強す
るためのその他の有用な手段は、３種類の添加物を含む。これらの添加物は塩基性アミノ
酸（L-アルギニン、リジンおよびベタイン等）、非イオン性界面活性剤（Tween-80または
NonIdet p-120）およびキャリアー蛋白質（血清アルブミンおよびカゼイン等）を含む。
これらの添加物の有効濃度は塩基性アミノ酸の場合1-100mM、好ましくは50mMを含む10-70
mMであり、非イオン性界面活性剤の場合0.01-1.0％、好ましくは0.1％（v/v）を含む0.05
-0.2％、キャリアー蛋白質の場合0.01-1.0％、好ましくは0.1％（w/v）を含む0.05-0.2％
である。
このアミノ酸ペプチド配列は、モルフォゲンファミリーのメンバーのプロ領域の一部ま
たは全部からなるペプチドと複合したモルフォゲンファミリーに特徴的な、７またはそれ
以上のシステイン残基のパターンを持つ。
モルフォゲン発現組織の同定
モルフォゲンの組織分布を測定することは、得られた組織で発現した異なるモルフォゲ
ンを、関連するモルフォゲンと同様に、同定するために使用される。組織分布は、候補モ
ルフォゲン誘導物質のスクリーニングと同定の為に有用なモルフォゲン生産組織を同定す
るのに使用される。組織分布はさらに候補モルフォゲン誘導物質をスクリーニングし同定
する為に有用なモルフォゲン産生組織を同定するのに使用されるモルフォゲン（あるいは
mRNAの転写）は、発現が低い組織でも、標準的な手法と一部変法を用いて異なった組織で
容易に同定される。例えば、蛋白質の分布は標準的なウエスタンブロットや免疫蛍光操作
とモルフォゲンあるいは目的のモルフォゲン群に特異的な抗体で同定できる。同様にモル
フォゲンmRNAの分布は、標準的なノーザンハイブリダイセーション法とmRNA特異的プロー
ブを用いて特定される。
mRNAに特異的にハイブリダイズし、mRNAに関連したその他の者から目的のmRNAを区別す
るプローブを使用できる。なぜならば、ここでいうモルフォゲンはその活性Ｃ末端ドメイ
ンと高いホモロジーを以ているため、特異的なモルフォルゲンmRNAの組織識別が未成熟蛋
白質のプロドメイン、および／または成熟蛋白質のＮ末端領域をプローブを用いて識別で
きる。その他の有用な初列は3'非コード領域のフランキングとそれに続く明らかなストッ
プコドンである。配列のこの部分は、本発明のモルフォゲンの間でも、実質的に異なって
いる。そしてそれゆえに蛋白質特異的である。例えば特に有用なVgr-1特異的プローブ配
列は、PvuII-SacI断片であり、非翻訳プロドメインと成熟Ｎ末端領域の両方をコードする
265bpのフラグメントからなる（Lyons et al.（1989）PNAS 86:4554-4558にcDNA配列が記
載されている。同様に、特に有用なmOP-1特異的プローブ配列がBstXI-BglI断片であり、m
OP-1のプロ領域の殆ど2-3番目をカバーしている0.68kbの配列である。StuI-StuI断片、7
システインドメインの直前の上流配列0.2kb。EarI-PstIフラグメント、3'非翻訳配列の部
分を含む0.3kbフラグメント（配列表配列番号18、プロ領域は残基30-291で必須として特
定されている）。同様のアプローチが使用され、例えばhOP-1（配列表配列番号16）、ヒ
トまたはマウスOP-2（配列表配列番号20および22）に使用。
合成操作あるいはクローン化した配列から得たこのモルフォゲン特異的プローブを使い
、従来技術として良く知られている手法により、モルフォゲン転写を哺乳動物組織から同
定した。要約すると、全RNAは種々の成熟マウス組織（肝臓、腎臓、睾丸、心臓、脳、胸
腺、胃）から、Chomezyaskiらの方法（1987、Anal. Biochem 162:156-159）および以下に
示した方法のような標準的な方法で調製した。ポリ（A）+RNAはオリゴ（dt）-セルロース
クロマトグラフィー（ファルマシアLKB バイオテクノロジーInc.）を用いて調製した。各
組織からのポリ（A）+RNA（通常15μg）を1％アガロース／ホルムアルデヒドゲルで分離
し、Nytran膜（Schleicher & Schuell）に移した。転移に続いて、メンブランは80℃に加
温し、RNAはUV光で架橋させた（通常1mw/cm2で30秒間）。ハイブリダイゼーションに先立
ち、加熱により適当なプローブを変性させた。
ハイブリダイゼーションはローラーボトル中で回転しているルーサイト製シリンダー中
で行った。1rev／分、37℃15時間、40％フォルムアミド、5×Denhardts、5×SSPE、0.1％
SDSの条件とした。ハイブリダイゼーションに引き続いて、50℃で0.1％SDS,0.1×SSPEで
フィルターの非特異的カウントを洗浄した。
種々のモルフォゲンの組織分布を実施例に示している。Vgr-1,OP-1, MP2, MP3, MP4, B
MP5, GDF-1, OP-2について行い、成人組織について米国出願USSN 752,7264 に開示し、ま
たOzkaynaket al. 1991, Biochem. Biophys. Res. Commn. 179:116-123,およびOzkaynak
et al. 1992,JBC（印刷中）に開示しており、引用により本発明と一体化する。ここに記
載した通常のプローブ技術を用いて、脳、脾臓、肺、心臓、肝臓および腎臓組織に対する
これらのモルフォゲンに特異的なプローブを使ったノーザンブロットハイブリダイゼーシ
ョンは、腎臓関連組織がOP-1の最大の発現ソースであることを示しており、脳、心臓、肺
組織が第二のソースであることを示している。OP-1 mRNAもまた、このプローブ法によっ
て唾液腺、特にラット耳下腺中に特定されている。肺組織は、Vgr-1, BMP5, BMP4およびB
MP3の最大の組織発現ソースであるとおもわれる。Vgr-1の低レベルは腎臓と心臓組織に認
められ、一方、肝臓はBMP5の第二の発現ソースであり、脾臓はBMP4の第二の発現ソースで
あることが示された。GDF-1は脳中で一番多く発現されている。今日ではOP2は、初期の栓
塞組織において一番多く発現していることが確認されている。特異的にマウス胚と出生後
6日めの動物のノーザンブロットでは、8日めの胚にOP2の発現が認められた。発現は17日
目の胚で顕著に減少し、出生後の動物では検出されなかった。
神経系のモルフォゲンの分布
モルフォゲンは成長中および成熟ラットの脳および脊髄組織に特定されており、成長期
および成熟ラットの神経組織（上記実施例１）から抽出したmRNAにたいしてモルフォゲン
特異的プローブのノーザンブロット法と免疫組織学的研究法によって特定されている。例
えば、成長期ラット組織のノーザンブロット分析ではCNS中で明らかにOP-1 mRNAの転写発
現が確認されている（国際出願US92/01968（WO92/15323）、Ozkaynak et al.,1991,Bioch
em.Biophys. Res. Comm.,179:11623、Ozkaynak,et al., 1992,J.Biol.Chem.,267:25220-2
5227）。GDF-1 mRNAは成長期および成熟ラットの神経組織で最も多く発現することが確認
されている。特に小脳および脳幹を含む脳、脊髄および末梢神経で確認されている（Lee,
S.,1991,PNAS 88:4250-4254）。BMP2B（BMP4として先行技術を参照）およびVgr-1の転写
は神経組織で発現することが報告されている（Jones et al.,1991,Development,111:531-
542）。しかし神経組織ではこれらの遺伝子の初期発現組織は知られていない（Ozkaynak,
et al.,1992,J.Biol.Chem.,267:25220-25227）。特にCBMP2 の転写は、下垂体の発達に伴
って間脳の領域で発現することが知られており、Vgr-1のmRNAは、発達中の神経管の底板
にきわめて隣接した細胞中と同様に、発達中の神経管の上衣板を含む、CNSの腹背軸で報
告されている。老齢ラットでは、Vgr-1のmRNAが、発達した海馬組織で報告されている。
さらにOP-1とBMP-2を本来的にコードする遺伝子は、ヒト海馬cDNAライブラリーをプロー
ブして特定された。
公知技術の一般的な方法とここに一体化されている国際出願US92/01968（WO92/15323）
の開示内容を用いて免疫組織学的研究は、成長期と成熟ラットの脳および脊髄組織の特定
の領域にOP-1NO発現が極在化していることを確認した。公知の先行技術による標準的な抗
体のプロトコールを用いて作成し、好ましくはOP-1アフィニティーカラムで精製した標準
的なモルフォゲン特異的抗血清を用いて、特にウサギ抗-OP1抗血清を用いて、特異的にOP
-1蛋白質の発現が、成熟（2-3カ月齢）マウスおよび5-6日齢胎児性神経組織で評価されて
いる。抗体それ自身は標準的な蛍光ラベル化技術を用いてラベルし、あるいはラベル化抗
ウサギIgG分子が結合OP-1抗体を視覚化するために用いられている。
免疫染色によって成熟ラット中枢神経系（CNS）にOP-1の存在を示すことができる。同
一のそして広い範囲に染色が、脳（1A）と脊髄（1B）に認められた。
図1Aと図1Bに示すように、免疫蛍光染色によって成熟ラット中枢神経系（CNS）にOP-1
の存在を示すことができる。同一のそして広い範囲に染色が、脳（1A）と脊髄（1B）に認
められた。OP-1は、灰白質（神経細胞体）の細胞外マトリックスに一番多く分布している
ことが確認されており、細胞体それ自身を除いて全体に明らかに存在している。ミエリン
鞘化した神経繊維で主に形成された白質には、染色は神経膠星状細胞（グリア細胞）限定
されていることが確認された。さらにまた同様の染色パターンが新生ラット（10日齢）の
脳部分に観察された。
さらにまた、OP-1は特異的に黒質に分布しており、黒質は線条体基底節、大脳皮質に結
合している副運動ニューロン系および皮質脊髄を構成している。これらのサブポピュレー
ションあるいはニューロンの系の機能不全はハンチントン舞踏病とパーキンソン病を含む
多くのニューロパシーと関係している。OP-1はまたアデンデマグリア細胞に分布している
。これは脳脊髄液中に各種の因子を分泌することが知られており、成長期および成熟ラッ
トの心室弁、コロイド溝、脳の中心溝の周辺でみられる。
最終的に、成長期の胚のモルフォゲンの抑制が神経組織の発達を抑制している。特に、
標準的な条件でインビトロで培養している9-日目のマウス胚細胞を、遺伝子操作で調製し
、精製し、免疫源として用いて調製したOP-1特異的モノクローナル抗体の存在下および非
存在下でインキュベートを行った。抗体は先行技術と実施例13に一般的に開示した標準的
な抗体生産手段で生産した。２日後に成長期の胚への抗体の作用を組織学的に観察して評
価した。組織学的試験によって測定したところ、OP-1特異的抗体は、特異的に、成長期の
胚において眼葉の形成を阻害した。特に間脳の外成長が発達しなかった。さらに心臓は奇
形化した。さらにまた、ラベル化したOP-1特異的抗体を用いて胚の断面の免疫組織学的研
究方法で分離したところ、OP-1特異的抗体は神経上皮に分布した。
神経細胞に作用する内因性モルフォゲンは、神経組織細胞例えばニューロンおよび／ま
たはニューロンに結合するグリア細、胞によって発現し分泌され、脳脊髄液および／また
は血流によってニューロンへ移送される。最近、OP-1はヒト血液中に確認された（下記実
施例9）。さらに、最近になって移送されたシュワン細胞が、少なくとも、いくつかの新
しい神経突起の周辺に管腔形成とミエリン鞘形成誘導することを含む、ラット脊髄の神経
繊維形成を促進することが発見された（Bung,1991,Exp.Neurology,114:254-257）。これ
らの細胞の再生能力はシュワン細胞によるモルフォゲンの分泌によって媒介させることが
できる。
モルフォゲンによる神経細胞生存性の増強
ここに述べたモルフォゲンは細胞の生存性を増強するが、特に瀕死の神経細胞の生存性
を増強する。例えば、十分に分化したニューロンは非分裂性であり、公知の合成培地ある
いは低血清培地を用いて、標準的な哺乳動物細胞培養条件下で培養した時、インビトロで
は死滅する（Charness,1986,J.Biol.Chem.,26:3164-3169、Freese et al.,1990,Brain Re
s.,521:254-264を参照のこと）。しかし、もし非分裂性神経細胞の初代培養がモルフォゲ
ンで処理された場合、これらの細胞の生存性は大幅に増強される。例えば、成熟ラット脳
の黒質から単離された線条体基底節の初代培養は、標準的な方法を使用して行われた。即
ち黒質組織をパスツールピペットを使って均質化して分離し、標準的な組織培養プロトコ
ールをを使用し、低血清培地、例えば50％DMEM（Dulbecco's modified Eagle's medium）
、50％F-12培地、ペニシリン／ストレプトマイシン添加不動化馬血清、4g/lのグルコース
を用いて増殖させた。標準的な培養条件の下では、これらの細胞は無血清培地で培養した
時3週間で明らかに死滅していった。細胞死は、細胞接着性の不活性化とその超微細構造
的な特徴の変化例えばクロマチン凝集とオルガネラ崩壊などにより、形態学的に明らかな
事実であった。
この例においては、培養基底節は、0.1-100ng/mlのOP-1を配合した合成培地で処理した
。新鮮なモルフォゲン−調製培地は、3-4日ごとに細胞に供給した。細胞の生存性は明ら
かに増強され、添加したOP-1のレベルに依存していた。OP-1の濃度が細胞培養中で増加し
たとき、明らかに細胞死が減少した。特異的に、細胞は接着性を残し、生存分化ニューロ
ンの形態学的特性の保持が持続した。モルフォゲン処理がない場合には、培養細胞の殆ど
が解離し、細胞壊死をきたした。
黒質の基底節の機能不全は、インビボではハンチントン舞踏病とパーキンソン病に関係
している。ここで説明するニューロンの生存性を増強できるモルフォゲンの機能は、この
モルフォゲンがニューロパシまたは化学的、物理的傷害のため、インビボで、瀕死の神経
性細胞の生存性を増強する治療の一部分として有用であることを明示している。臨床応用
のためには、モルフォゲンを投与するか、あるいはまたモルフォゲン産生刺激剤を投与す
ることができる。
形質転換細胞のモルフォゲン誘導性再分化
ここに述べたモルフォゲンは形質転換細胞を、非形質転換細胞に特徴的な形態学的特性
への再分化を誘導する。特にモルフォゲンは神経由来の形質転換細胞を非形質転換ニュー
ロンの形態学的特性への再分化を誘導することができる。神経由来の形質転換ヒトNG108-
15株の再分化を誘導したモルフォゲンについて、以下に示す実施例で詳細を説明する。ま
た形質転換細胞のモルフォゲン誘導再分化はマウス神経芽腫細胞（N1E-115）およびヒト
胎児カルシノーマ細胞についてである（国際出願US92/01968（WO92/15323）を参照）。
NG108-15は神経芽腫とグリオマー細胞を融合させて作製した形質転換融合細胞株であり
（America Type Tissue Culture,Rockville,MD から入手）、形質転換胎児ニューロンの
形態学的特徴を有している。即ち繊維芽細胞の形態学性を有している。特に細胞はポリゴ
ナルな細胞体を有し、短い、スパイク様の突起を有し、近接細胞にまれに接触する（図1A
）。NG108-15細胞を無血清の合成倍地中で0.1から300ng/mlのOP-1をいれて4時間インキュ
ベーションすると、確実に濃度依存性の細胞形態学的変化が誘導される。
実験中NG108-15細胞は、ポリL-リジンコートの6穴プレートで予備培養した。各ウエル
には2.5mlの合成培地中に細胞を40-50,000個を含有させた。3日めに0.025％のトリフルオ
ロ酢酸を含む60％エタノールにOP-1 2.5μlを各ウエルに添加した。OP-1の濃度は0-300ng
/mlで試験を行った。通常、培地は新しいOP-1のアリコートで毎日交換し、さらにモルフ
ォゲンは、OP-1での4時間のインキュベーションによって誘導できた。さらにOP-1の濃度
を10ng/mlにすることで再分化を十分誘導した。1日後に、hOP-1処理細胞は明らかにその
細胞の超微細構造が変化した。その変化は細胞体の周囲を含んでおり、相の鮮やかさが増
加しそして短い神経突起が長くなった。2日後、OP-1で処理した細胞は上皮性シートを形
成し始めた。このシートは処理後3日目にはじまる多層凝集成長の基を供給している。4日
目までにOP-1処理細胞の殆どが密着した多層凝集状態に結合した（図1B）。図2は、モル
フォゲン濃度の作用として、6つの独立した実験群からランダムに選択した20の視野中の
多層凝集あるいは細胞凝集の平均数をプロットしたものである。40ng/mlのOP-1は細胞凝
集の最大値の半分を誘導した。
モルフォゲン誘導の再分化が、DNA合成、細胞分裂、または細胞の生存性などの、どの
ような変化ももたらさずに起こり、これは、形態学的変化が細胞の分化あるいはhOP-1の
毒性作用にとって２次的なものではないということを示している。さらにOP-1誘導性形態
形成は、形質転換細胞の分化を増強することがわかっている酪酸塩、DMSO、レチノイン酸
、フォルスコリンのようなその他の分子とは異なり、トリチウムチミジンの取り込みによ
って測定したように、細胞分裂を阻害しなかった。データは、OP-1が細胞の安定性と生存
性を再分化誘導後も維持できることを示している。さらに効果はモルフォゲンに特異的で
あって、NG108-15細胞を0.1-40ng/mlのTGF-βでインキュベートした時には再分化は誘導
されなかった。
また、実験は高純度可溶性モルフォゲン（成熟型OP-1とそのプロドメインを結合させた
もの等）を用いて行い、これはまた特異的にNG108-15細胞の再分化を誘導した。
従って、ここに述べたモルフォゲンは神経系の腫瘍或いは腫瘍性病変の処置の、特に網
膜芽腫瘍および神経膠腫を含む神経芽腫の処置において、有用な治療剤を提供する。モル
フォゲンそれ自身を投与することもできるし、さらにモルフォゲン産生刺激剤を投与する
こともできる。
化学的損害からの神経組織の保護
正常細胞の生存性を増強し、再分化細胞の細胞凝集および細胞−細胞接着を誘導するこ
こに説明するモルフォゲンの機能は、モルフォゲンが化学的に引き起こされた損傷から回
路を保護している細胞を保護していることによって、神経回路を維持するための治療剤と
して有用であることを示している。特にモルフォゲンはニューロンを保護することができ
る。これは、ニューロンの増殖と遊走を阻害し、細胞と細胞の接着を邪魔することが知ら
れている毒物の作用からニューロンを保護して発達させることを含んでいる。このような
毒物の例としてはエタノールが含まれ、タバコの煙中に含まれる1またはそれ以上の毒物
および種々の阿片化合物がある。ニューロンの発達におよぼすエタノールの毒性作用は、
胎児性アルコール症候群であきらかにされた神経学的損傷を誘発させる。モルフォゲンは
また、グルタミン酸塩のような興奮性アミノ酸に関連した細胞毒性からニューロンを保護
することができる。
例えば、エタノールは、モルフォゲン処理したNG108-15細胞の細胞−細胞接着作用に対
して、これらの細胞に20-50mM濃度で与えた時、これを阻害する。最大阻害の半量値は5-1
0mMエタノール濃度であることが試験されている。この濃度は一本のアルコール飲料を飲
んだ後の成人の血液中のアルコール濃度である。モルフォゲン誘導N-CAMレベルがエタノ
ールによって影響されないので、むしろエタノールはCAMの誘導より細胞とCAMの特異的な
結合を恐らく障害している。さらに、抑制的な作用はモルフォゲン濃度に逆比例している
。従って、エタノールのような毒物に露出することからの損害のリスクにあるニューロン
であって、特に発達中のニューロンに対してモルフォゲンまたはモルフォゲン促進剤を投
与することは、毒物の阻害作用を回復することによって神経組織の損害からこれらの細胞
を保護することになると予想される。ここに述べたモルフォゲンは、これらの毒物に露出
して誘導されたニューロパシーからもたされる損傷した神経経路を処置するための治療に
有用である。
モルフォゲン誘導CAM発現
ここに説明したモルフォゲンは、形態形成誘導の一部としてCAMの発現を誘導し、特にN
-CAM発現を誘導する。CAMは組織発達の必須段階として、全ての組織から同志された形態
形成制御分子である。N-CAMは少なくとも３種の異性体からなっており（N-CAM-180、N-CA
M-140、N-CAM-120、ここで180、140、120はポリアクリルアミドゲル電気泳動で測定した
およその分子量である）少なくとも、一時的に発達中の組織で発現されており、そして神
経組織では永続的である。N-CAM-180、N-CAM-140どちらの異性体も発達中の組織と成熟組
織両方で発現している。N-CAM-120は、成熟組織のみで見出される。他に中間型CAMである
L1がある。
N-CAMは適切な神経の発達に組み込まれている。この発達は適切な神経胚形成、神経細
胞凝集、束化、シナプス形成等を含む。N-CAM特異的抗体を用いて分子を複合化すること
によるN-CAM生産の阻害は網膜の形成を阻害する。網膜の形成阻害には網膜の軸索の凝集
、標的の筋細胞への軸索の接合のような末梢神経系での軸索形成がある。さらに、物理学
的あるいは化学的ニューロンの損傷、癌性形質転換およびなんらかの遺伝性神経疾患が、
細胞の接着性と凝集性を変更する、CAMの発現における変化によって組み合わさっている
ことが明白な事実として示されている。特にN-CAMレベル増加はハンチントン舞踏病の線
条体（線条体基底節など）で増加し、接着性減少はアルツハイマー疾患で記録されている
。
ここで説明したモルフォゲンはCAMの生産、特にN-CAM分子の全ての異性体を含むN-CAM
とL1の生産を刺激することが可能である。例えば、N-CAMの発現はモルフォゲン処理NG108
-15細胞では顕著に促進されている。未処理NG108-15細胞は繊維芽細胞性の、あるいはほ
んの少しだけ分化した形態学的特性を示し通常は分化細胞に見られるN-CAMの180と140の
みを発現する。モルフォゲン処理に引き続いて、これらの細胞は成熟ニューロンの形態学
的特性を示し、N-CAMの3種の異性体すべての発現レベルが増強された。下記の実施例に示
したと同様なプロトコールを用いると、さらにまたモルフォゲン処理NG108-15細胞のL1発
現が誘導された。
本実施例においてNG108-15細胞をOP-1を添加して濃度が増加した状態で４日間培養し、
そして標準的なウエスタンブロットを全細胞抽出物について行った。N-CAM異性体が、３
種の異性体全てに交差反応する抗体mAb H28.123 を用いたところ検出された。抗体はSigm
a Chemical Co.St.Louisから入手できる。異なった異性体はゲル電気泳動の異なった移効
度によって区別することができる。対照のNG108-15細胞（未処理）は、100μgの蛋白質を
用いてウエスタンブロットを行って確認した所、140kDaと180kDaの異性体を発現している
が、120kDaは発現していない。OP-1処理NG108-15細胞は、120kDa異性体を誘導すると同時
に、濃度に依存して180kDaと140kDaの異性体の発現が増加する。図2A、図2BではmAb H28.
123をプローブとして行ったOP-1処理NG108-15細胞抽出物のウエスタンブロットを示して
おり、３つの異性体全ての誘導が認められる。図2Aはモルフォゲン濃度の作用としてN-CA
M-180とN-CAM-140の容量反応曲線をである。N-CAM-120はグラフ中に認められず、対照細
胞中では定量できなった。しかし図2Aのウエスタンブロットであきらかなように、N-CAM-
120はモルフォゲン処理に応答して誘導されている。N-CAM-180とN-CAM-140の異性体に認
められる誘導の違いは、140異性体の構成的発現が最大値に近く、ことによるものと考え
られる。
N-CAM発現の増加は、多細胞凝集のモルフォゲン誘導に応答していた。図2Aと図3Bを比
較した。図3は６つの独立した実験でランダムに選択した20のフィールド当たりのモルフ
ォゲン濃度に対する、多層性凝集（凝集）の平均数をグラフ化したものである。120異性
体の誘導はモルフォゲン誘導された形質転換細胞の再分化は形質転換された発現型細胞か
らの細胞の再分化を促進するだけでなく、成熱細胞へ作用して発現型への分化も促進した
ことを示している。モルフォゲン処理細胞にmAb H28.123を用いて行った免疫組織学的研
究では、末梢と処理細胞の神経突起を結びつけるN-CAMクラスター形成が認められ、未処
理細胞では反応していなかった。さらにまた、モルフォゲン処理は、細胞数の計数または
トリチュウムチミジンの取り込みによって測定したところ、細胞分裂は抑制しなかった。
最後に、フォルスコリンとジメチルスルフオキシドのような公知の化学的分化剤はN-CAM
生産を誘導しなかった。
さらに、NG108-15細胞に対するOP-1の細胞凝集作用は抗N-CAM抗体またはアンチセンスN
-CAMオリゴヌクレオチドで抑制できる。アンチセンスオリゴヌクレオチドは公知技術の一
般的な手段でヌクレオチドシンセサイザーを使用して合成できる。好ましくはホスホロチ
オレートオリゴヌクレオチド（S-オリゴ）を調製して、細胞膜のヌクレオチドの透過を促
進させる。N-CAM誘導を阻害するために十分なN-CAM抗体とN-CAMアンチセンスオリゴヌク
レオチドの両者の濃度は、多層化細胞凝集の形成をも阻害する。特に0.3-3μMのN-CAMア
ンチセンスS-オリゴ、5-500μM非修飾N-CAMアンチセンスオリゴあるいはまた10μg/ml
mAb H28.123とモルフォゲン処理細胞をインキュベーションすると、明らかに細胞の凝集
が抑制される。阻害が完全でない場合には、モルフォゲンがその他のCAMを増強させるら
しい。
可溶性モルフォゲン（プロドメインを結合させた成熟OP-1）を用いて行った実験でも特
異的にCAM発現が誘導された。
ここに述べたモルフォゲンは、CAMレベル、特にN-CAMレベルを変えて、神経学的障害、
例えばハンチントン舞踏病およびアルツハイマー病それらの類似疾患を治療するための治
療剤として有用である。臨床的な応用ではモルフォゲンそれ自身を投与するか、あるいは
またモルフォゲン産生刺激剤を投与する。
ここに記載したN-CAM発現に影響するモルフォゲンの有効性は、適切な細胞とここに示
した方法を用いて、インビトロで評価できる。さらに形質転換細胞株に対するN-CAMの発
現は、ここに記載した方法に従って、神経性細胞またはグリア細胞の初代培養で評価でき
る。インビボでのN-CAM発現におけるモルフォゲン処置の有効性は、以下の実施例9で述べ
たような組織バイオプシーと、実施例11で述べた動物モデルを用いるかmAb H28.123のよ
うなN-CAM特異的抗体でN-CAM分子を検出することで評価できる。
さらに、脳脊髄液または血清のN-CAM蛋白質レベルまたは蛋白フラグメントの存在レベ
ルは、モルフォゲン処置の効果を評価して検出できる。N-CAM分子は細胞表面から脱落す
ることが知られており、血清および脳脊髄液の両方から検出できる。さらに、可溶性N-CA
Mのレベルの変化は、正常圧の水頭症とタイプIIの分裂病に関係している。N-CAMの体液レ
ベルは実施例9に述べた方法とmAb H28.123nのようなN-CAM特異抗体を用いることで検出で
きる。
モルフォゲン誘導神経ギャップ修復（PNS）
ここに述べたモルフォゲンはまた、損傷神経回路の修復と再生を行って、引き離された
距離を超えて末梢神経系の軸索の成長を促進させる。末梢神経系のニューロンは誘導なし
に、損傷の後に新しい神経突起を発生させることができる一方で、この発生が適切に結合
しないと死滅する。切断の長さは5または10mmの場合には、再生は困難であるか、まった
く不可能である。
本実施例ではモルフォゲンによる神経再生はラット座骨神経モデルを用いて評価する。
ラット座骨神経は、5mmのギャップ、特別な場合には10mmのギャップを越えて自発的に再
生する。この特別な場合とは、生理食塩を満たした神経誘導集管に切断末端を挿入しギャ
ップ中におく。この実験では神経の再生は12mmのギャップを越えて試験された。
体重230-250gの成熟雌性のスプラグ−ドーリューラット（Charles River Laboratories
,Inc.）をペントバルビタールナトリウム（35mg/kg体重）の腹腔内投与によって麻酔させ
た。皮膚の切開は、太腿骨に対して平行させ、そして、ちょうど後方側で行った。外側広
筋と膝腱筋肉との間の無血管筋肉内平面が、座骨神経を取り巻く疎性線維輪紋状組織に対
してくみこまれ、そして続いている。疎性組織が縦に分割されており、どの部分において
も血流遮断なしに、座骨神経を十分に引き離してフリーにすることができる。外科手術顕
微鏡下で座骨神経を微小鋏を用いてmid-thighで切断し、12mmに神経切断端を分離して、O
P-1ゲル片を移植した。移植部分は、モルフォゲン溶液を満たした内部直径1.5mm、長さ20
mmのシリコンチューブで包み込んだ。特に、チューブの中心12mmは、MATRIGEL（Collabor
ative Research,Inc.,Bedford,MA）の約100μlでCHOで遺伝子組換え生産した精製OP-1を1
-5μgを混合して調製したOP-1ゲルからなっている。なおMATRIGELはマウス肉腫組織から
抽出した細胞外マトリックスで、可溶化した組織基底膜を含有している。可溶化組織基底
膜はリン酸緩衝生理食塩水中にラミニン、タイプIVコラーゲン、ヘパリン硫酸塩、プロテ
オグリカン、エンタクチン等を含んでいる。OP-1を満たしたチューブは、損傷部分に直接
移植し、神経の切断端を、チューブそれぞれの末端に4mmを入れる。両切断端はOP-1ゲル
に接しており、そして束保護鞘を神経上膜を通して市販の外科用10-0ナイロンで３針縫っ
て、シリコンチューブ中にしっかりと固定しておく。
さらにOP-1ゲル移植に対して、空のシリコンチューブ、ゲルのみを満たしたチューブ、
および「反転」自己移植、これは動物の座骨神経の12mm切断断片を縫合の前に180度回転
させたものであり、対照として移植した。全ての実験は4回繰り返した。すべての傷はき
ずクリップでとめて塞ぎ、10日後に除去した。全ラットとも両脚に移植を行った。3週間
目に動物を屠殺し、移植域を取り外し、すぐにドライアイスで凍結させた。次に凍結片の
移植箇所を細かく切断し、フルロセイン（Sigma Chemical Co.から入手）でラベルした抗
神経フィラメント抗体を用いて免疫蛍光染色によって軸索の再生を試験した。
ギャップがOP-1ゲルで満たされている移植箇所の全長12mmにわたり、坐骨神経の再生が
起こっていた。これとは対照的に、空のシリコンチューブおよび反転自己移植は神経再生
が起こらず、ゲル含有の1移植箇所のみが軸索再生を示した。
モルフォゲン誘導神経ギャップの修復（CNS）
インビボでの軸索の損傷に引き続き、CNSニューロンは再生ができない。さらにCNS神経
組織の損傷、脊髄、視神経と網膜を含む損傷はこれらの細胞によって特定される神経回路
の激しい障害と破壊を引き起こす。末梢神経の移植はCNS軸索の損傷をバイパスするため
にも有効に使われる。成功した自己移植修復は一般的には、移植部位がCNSニューロン細
胞体の近傍にあることが必要であり、そしてCNS軸索切除の最初の結果は神経細胞死であ
る。ここでCNS神経修復において説明したモルフォゲンの有効性は、Bignamiらによって説
明され、引用によってここに一体化した開示内容（Bignam et al.,1979, Exp.Eye.Res. 2
8:63-69）のように、ラットの砕けた視神経モデルを用いて評価できる。最近それらに述
べられているように、実験ラット（Charse River Laboratories,Willmington,MA）を標準
的な実験手法で麻酔し、眼窩から眼を丁寧に摘出して引っ張ることで視神経を押しつぶし
た。即ち眼球の後ろに時計用鉗子を挿入し、15秒間鉗子で視覚神経を絞り、30秒間間隔を
おいて15秒間さらに鉗子を絞った。ラットは時間をおいた後屠殺した。その間隔は手術後
48時間、3、4、11、15、18日である。視覚神経の修復手術に対するモルフォゲンの効果は
、2回の繰り返し実験で評価した。その実験はモルフォゲンまたはPBS（25μlの溶液と25
μgのモルフォゲン）を操作前、操作中および操作後一定の間隔で視覚神経に与えて評価
した。
治療なしで、神経を押しつぶすことで外科的にグリアに傷をつけ、グリアの傷のマーカ
ー蛋白質であるグリア線維化酸性蛋白質（GFA）を免疫蛍光染色して、組織学的に判断し
た。Bignam et al.,1974, J.Comp.Neur.153:27-38に記載されたように、市販の入手可能
なGFAに対する抗体（Sigma Chemical Co.,St. Lous）を使用して、空気乾燥によってクリ
オスタット切片の間接的蛍光染色を行った。GFAレベルの減少がモルフォゲン処理動物で
認められた。これはモルフォゲンの作用はグリアの傷形成阻害と視覚神経の再生を促進し
ていることを表している。
神経組織の診断
神経組織のモルフォゲンの分布は神経の破壊またはニューロパシーを診断する方法の一
部分として利用可能である。この方法は脳組織のニューロパシーを診断するのに特に有利
である。特にバイオプシーによる脳組織は、公知技術を使用して患者のリスクを見ること
に使う。バイオプシーした組織のモルフォゲンの発現は、モルフォゲン特異的抗血清また
はモノクローナル抗体を使った標準的な免疫蛍光技術を使用した一般的な方法で評価でき
る。特に、バイオプシー組織は公知技術によって薄く切片を作り、蛍光ラベル化した（あ
るいは別の検出方法）抗体と組織を特異的な抗原−抗体コンプレックス形成させることの
できるような条件でインキュベートする。形成したコンプレックスの存在と量を測定し、
あらかじめ得た標準または参照値と比較する。組織のモルフォゲン変化レベルの検出は組
織機能の指標として使用できる。さらにまた、モルフォゲンレベルの変動はモルフォゲン
RNAに対して特異的にハイブリダイズするラベル化プローブを用い、先行技術に記載され
た標準的なハイブリダイゼーションプロトコールで、標準ノーザンブロット分析またはイ
ンサイチューハイブリダイゼーションによって、モルフォゲンの転写レベルをモニターす
ることで評価できる。
脳脊髄液または血液中のモルフォゲンレベルの変動は組織の生物活性を評価するために
使用できる。例えばモルフォゲンは下垂体細胞に関連して検出され、これは脳脊髄液中に
各種の因子を分泌することが知られている。そして一般的にはグリア細胞細胞に結合して
おり、細胞外マトリックスにはあるが神経細胞体には結合していない。したがって脳脊髄
液はモルフォゲン移送の自然の手段である。さらにモルフォゲンは脳脊髄液中の死細胞か
ら放出される。さらにOP-1はは最近ではヒト血液中に検出されており、血液もまた移送の
手段でありそして／また死細胞の内容物の環納所でもある。
脊髄液は、公知の医学的な方法を用いて標準的な腰椎穿刺によって得ることができる。
同様に血清サンプルは静脈穿刺によって血液を得て、3000RPM 10分間遠心分離して血清を
調製する。血清または脳脊髄液のモルフォゲンの存在は一般的なウエスタンブロット（イ
ムノブロット）、ELISAまたはRIA法によって評価できる。簡単には例えばELISAの場合サ
ンプルは適切な緩衝液で希釈して、この緩衝液はリン酸緩衝生理食塩水など、そして50μ
lアリコートをモルフォゲン特異的抗体を用いてプロコートしたマイクロタイタープレー
トのウエルの底に吸着させ、そして4℃で18時間インキュベートする。次いでプレートは
標準緩衝液で洗浄し、適切な緩衝液中のビオチンのような検出剤をコンジュゲートさせた
第二のモルフォゲン特異抗体の液を50μl加えて室温で90分間インキュベートする。モル
フォゲン−抗体コンプレックスは一般的な方法で検出する。
さらにモルフォゲン特異的アフィニティカラムは、カラムマトリックスに吸着させたモ
ルフォゲン特異的抗体を用いて作製することができる。そして目的のモルフォゲンを選択
的に抽出するためにマトリックスに液体サンプルを通過させる。適切な溶出緩衝液は、最
初にコントロール（例えば精製した遺伝子組換え生産モルフォゲン）と結合および溶出条
件を予測して測定することによって、経験的に定めることができる。次いでフラクション
は標準的なイムノブロットによってモルフォゲンの存在を試験し、Ｎ末端配列により確認
する。血清あるいはその他の体液中のモルフォゲン濃度は、吸光光度法、ELISAあるいはR
IAによる抗体分析法を含む、標準的な蛋白質定量方法を使用して測定する。この方法によ
りOP-1が血液中から特定された。
ヒト血液中から以下の分析方法によってOP-1が検出された。実施例13に記載され、公知
技術である免疫学的手法を用いて、遺伝子操作によって生産された哺乳動物細胞のモルフ
ォゲンに対して結合するモノクローナル抗体を、活性化アガロースゲル（Afi-Gel Bio-Ra
d Laboratories,Richmond,CA メーカーの使用説明に従って調製）を通過させて固定化し
、精製OP-1を血清から得るのに使用した。ヒト血清を次いでカラムに通過させ、3MK-チオ
シアン酸塩で溶出した。K-チオシアン酸塩のフラクションは6M尿素、20mM PO4、pH7.0 中
で透析し、C8HPLCカラムにかけ、20分で25-50％アセトニトリル／0.1％ TFAのグラジュエ
ントで溶出した。遺伝子組み換え生産成熟型OP-1のホモダイマーは20−22分で溶出された
。次いでフラクションを回収し、OP-1の存在をイムノブロットで試験した。図4は還元条
件と酸化条件のヒト血清中のOP-1のイムノブロットを示した。図においてレーン1とレー
ン4はOP-1の標準であり、酸化条件（レーン1）、還元条件（レーン4）で流した。レーン5
は、17、27、39kDaの分子量標準である。レーン2とレーン3はヒト血清OP-1であり、酸化
条件下（レーン2）、還元条件下（レーン3）である。
モルフォゲンは、体液のモルフォゲンレベルの変動を神経組織の状態の変化として示す
。体液サンプル中のモルフォゲンの量を予め得た対照値と比較して診断応用に使用するこ
とができる。さらにまた内因性モルフォゲン抗体レベルの変動はこの方法で測定でき、特
に好ましくは血清中であり、内因性モルフォゲン抗体に特異的に結合するその他の蛋白質
や抗体を使用する。内因性抗体レベルの変動の検出は組織状態の変化の指標とすることが
できる。
免疫反応介在性神経組織損傷の軽減
ここに示したモルフォゲンは神経組織の免疫学的に関連した損傷を軽減するために使用
できる。この損傷の詳細と損傷を軽減するためのモルフォゲンの使用は国際出願US92/073
58（WO93/04692）に開示されている。神経組織に対するこのような損傷の最も重要な原因
は、神経回路に対する低酸素症と血液供給の虚
血−再灌流である。これは血栓または手術操作によっておこる。国際出願US92/07358（WO
93/04692）に開示されているように、モルフォゲンは組織に対する血液供給の虚血−再灌
流につづく心筋組織に対する障害を軽減できることをしめしている。神経組織に対する免
疫学的に関連した損傷を軽減することに関してモルフォゲンの効果は先行技術と公知技術
による方法とモデルを用いて評価できる。
例えばウサギ栓塞モデルは、脳虚血と再灌流に続く組織損傷に対するモルフォゲンの作
用を評価するための有用な方法である。以下に開示したプロトコールは、本質的にPhilli
ps（Philips et al.,1989,Anals of Neurology,25,281-285）らの方法であり、引用と公
知の先行技術によってここに一体化している。要約すると、白色ニューイングランド ウ
サギ（2-3kg）麻酔し、人工呼吸器を取りつけた。次いで頭蓋内循環を選択的にセリンジ
ャーの方法でカテーテル化した。ベースラインの脳血管造影をデジタル基本ユニットによ
って行った。遠位内部頸動脈あるいはその枝血管を、18時間経過した自己血栓の0.035ml
を使用して選択的に閉塞させた。動脈性の閉塞は、栓塞後にただちに繰り返し血管造影を
おこなって記録した。脳梗塞を発生させるために十分な時間経過後（15分または90分）、
TPAアナログFB-FB-CF（0.8mg/kg以上2分間）のような再灌流剤を投与して、血流を再開さ
せた。
脳梗塞に対するモルフォゲンの効果は、OP-1のようなモルフォゲンを種々の濃度で、血
栓の形成および／または再灌流に続いて異なった時間で投与して評価できる。ウサギは栓
塞後3-14日めに屠殺し、その脳を神経病理学的試験の目的で10％の中性緩衝液へ少なくと
も2週間の液浸によって固定化して調製した。脳は冠状平面で2-3mm間隔で切片を作り番号
をつけ、標準的な病理組織学的手段でパラフィンで処理し、神経組織の壊死の程度を肉眼
的に測定した。モルフォゲン処理動物は、非処理動物との病理学的比較により、試験動物
の脳虚血−再灌流のあとに起こる神経組織の壊死を減少させるか、あるいは明らかに抑制
させると考えられた。
インビボでのモルフォゲンの有効性を評価するための動物モデル
ここに述べたモルフォゲンのインビボ活性は、ここに述べた動物モデルで速やかに評価
できる。好ましくは、適切な動物モデルは神経組織の損傷を示しており、例えば遺伝的あ
るいは環境的に誘発される。このモデルにpH7のリン酸緩衝食塩水のような適切な治療用
製剤中の有効量のモルフォゲンを脳室内に直接注射する。好ましくは、モルフォゲンは損
傷ニューロンの領域に注入する。損傷組織は次の時点で切除し、そして組織は形態学的に
評価し、そして／または適切な生化学マーカーの評価を行う（例えばモルフォゲンまたは
N-CAMの分布、CNS神経栄養活性またはCNS組織損傷の生化学的マーカーによる投与量依存
性効果の測定、なお、例えばマーカーとしてはグリア線維性酸性蛋白質等を使用する）。
投与量とインキュベーション時間は試験する動物で変化する。異なる種への適切な投与範
囲は、樹立した動物モデルを比較して決定できる。以下に示したものはラットの脳穿刺モ
デルのための見本的なプロトコールである。
要約すると、雄性ロングエバンス系ラット、これは市場で一般的に購入でき、これを麻
酔し、頭の部分を手術用に準備する。頭蓋冠は標準的な外科手法で露出させ、そして穴を
両耳の中心部にドリルであけ、0.035kのワイヤーを頭蓋冠に通す。モルフォゲン（OP-1 2
5μg）またはPBSのいずれかを含む25μlの溶液をハミルトンシリンジで穴に注入する。溶
液は表面から3mmの深さまでいれ、下にある皮質、脳梁および海馬に注入する。皮膚は縫
合し、動物を回復させる。
手術の３日後に、ラットは断頭で屠殺し、脳の病理切片を作成した。傷痕組織の形成を
定性的に、グリア傷痕のマーカー蛋白質であるグリア線維化酸性蛋白質を免疫蛍光染色し
て評価した。グリア線維化酸性蛋白質抗体は市販されている（Sigma Chemical Co.,St.Lo
uis,MO）。切片はまたOP-1の存在を確認するため抗OP-1抗体でプローブされる。グリア線
維化酸性蛋白質のレベルの減少は、モルフォゲン処理動物の組織切片においてモルフォゲ
ンの作用がグリアの傷痕形成を抑制し、神経再生を促進した証拠と考えられた。
モルフォゲン種の脳血液バリア通過を評価するためのインビトロモデル
脳血液バリアを容易に通過するモルフォゲン種を選別する能力を評価するためのインビ
トロの方法を以下に説明する。モデルとプロトコールの詳細な説明はAudusらによって示
されており（Audus et al.,1987,Ann. N.Y. Acad.Sci.,507:9-18）、引用によってここに
一体化されている。
要約すると、微小血管内皮細胞を新鮮なウシの脳の大脳灰白色質から単離する。脳は地
方の屠殺場から入手し、そして抗生物質を含む氷で冷却した最小必須培地（MEM）に入れ
て実験室まで輸送する。無菌条件でおおきな表面の血管と髄膜を標準的な手法で除去する
。皮質の灰白質を吸引によって除き、1mmの大きさの立方体状に切断した。刻んだ灰白質
は、振盪ウオータバス中で37℃3時間、0.5％のディスパーゼ（BMB IndianapolisIN）とイ
ンキュベートした。3時間消化した後、混合液を遠心分離（1000×g10分）して濃縮し、13
％デキストランに再度懸濁し、5800×gで10分間遠心分離した。上清の脂肪、細胞破片、
ミエリンは捨て、クルードな微小血管ペレットを1mg/mlのコラゲナーゼ／ディスパーゼに
再懸濁させ、振盪ウオータバス中で37℃ 5時間、インキュベートした。5時間消化した後
、微小血管懸濁液は、予備調整した50％パーコルグラジエントにいれ、1000×gで10分間
遠心分離した。精製した内皮細胞（グラジエントの上から2番目の層）を含むバンドを回
収して、培養液（50％MEM/50％F-12培地の混合）で2回洗浄した。細胞は後で使用するた
め、10％ウマ血清と20％DMSOを含む培地で凍結させた（−80℃）。分離した後、およそ5
×105cells/cm2で、培養皿または、コラーゲンとフィブロネクチンでコートした5-12mμ
のポアサイズのポリカーボネートフィルターに播種した。細胞を播種後10-12日目に、セ
ルの単層膜が顕微鏡でコンフルエントになったことを検査する。
これらの細胞の形態学的、組織学的、生化学的性質は、これらの細胞が脳血液バリアを
通過するという顕著な特性を有していることを示していた。これらの特徴は以下の通りで
ある。強固な細胞間結合、膜の開口部がなく、低レベルの細胞飲作用活性、ガンマ−グル
タミルトランスペプチダーゼ、アルカリホスファターゼ活性の存在、ファクターVIII抗原
活性。
極性結合または移送のモデルが必要な場合に、培養細胞は多方面の実験に使用
できる。マルチウエルプレート中の細胞をプレート化することによって、大分子と小分子
のレセプター結合と非レセプター結合を誘導することができる。移送内皮細胞のフラック
ス測定を行うために、細胞はポーラスなポリカーボネート（Nucleopore,Pleasanton,CA）
膜フィルターで成長する。大きなポアサイズのフィルター（5-12mμ）が、分子フラック
スに対する律連障害にならないよう使用された。大きなポアフィルターの使用はフィル
ターの下で細胞が成育することを受け入れないし、細胞単層の視覚検査ができる。
一度細胞がコンフルエントに達すると、それは平行放散細胞装置（Crown Glass, Somme
rvile,NJ）に置き換える。フラックス測定のため、拡散細胞の供給チャンバーは、試験物
質でパルス化して、次いで種々の時間にパルスを流し、アリコートは分析のためチャンバ
ーから回収する。放射能活性または蛍光ラベル化した物質は、分子のフラックスの信頼で
きる定量ができる。単層のインテグリティは、しょ糖やイヌリンのような非移送性試験物
質の添加によって同時に測定され、そして少なくとも４回の繰り返し測定は統計的有意差
を保証するために行われる。
内因性モルフォゲンレベルを変化させる候補化合物のスクリーニング法
本来のモルフォゲンレベルに影響させるために投与することのできる候補物質は以下の
スクリーニング方法を用いて見いだすことができる。測定可能なレベルのモルフォゲンを
生産する細胞によって生産されるモルフォゲンのレベルは、細胞への化合物の作用を評価
するために、培養細胞を化合物をインキュベートし、そして化合物を除去してインキュベ
ートすることで測定される。これは蛋白質またはRNAレベルのいずれかによってモルフォ
ゲンを検出することによってもできる。また詳細な説明は国際出願US92/07358（WO92/051
2）に開示されている。
13.1培養中の細胞増殖
腎臓、副腎、膀胱、脳、あるいはその他臓器の細胞培養は文献に開示されたようにして
行うことができる。例えば、腎臓は出産直後、新生、若い、成熟齧歯類（マウスまたはラ
ット）から移植でき、そして腎臓全体または切片（14mm）として器官培養に使用できる。
腎臓、副腎、膀胱、脳、乳房、あるいはその他の組織由来の初代培養組織または樹立細
胞株は、マルチウエルプレート（6または24ウエル）中で、従来の細胞培養技術を使って
樹立し、そして一定時間（１−７日間）血清添加または無添加で培養を行う。例えば、細
胞はDulbecco's Modified Essential培地（Gibco, Long Island,NY）あるいは無血清培地
、必要によっては合成培地（インシュリン、トランスフェリン、グルコース、アルブミン
、あるいはその他の成長因子を含む）中で培養する。
モルフォゲンの生産レベルを試験するサンプルは培養上清または細胞溶解液を含み、定
期的に回収を行い、OP-1の生産をイムノブロット分析（Sambrock et al.,eds.,1989, Mol
ecular Cloning, Cold Spring Harbor Press, Cold Spring Harbor, NY）によって評価し
た。あるいはまた細胞培養それ自身の一部を定期的に回収してRNA分析のためにpoly A+RN
Aを調製して使用した。新しいOP-1合成をモニターするために、培養物は３５Sメチオニン
／３５Sシステイン混合物を用いて従来技術によって6-24時間ラベル化し、次いで従来の
免疫沈降法によってOP-1の合成を評価した。
13. 2 形態形成蛋白質レベルの測定
細胞型による形態形成蛋白質の生産を定量するために、イムノアッセイをモルフォゲン
の検出に使用し、抗体は蛋白質に対する特異的ポリクローナルまたはモノクローナル抗体
を用いた。例えば以下のようなELISAでOP-1特異的抗体を用いてOP-1の検出を行った。OP-
1特異的アフィニティ精製ポリクローナルウサギIgGの1μg/100μlを96ウエルプレートの
各ウエルに加え、37℃で1時間インキュベートした。ウエルは、0.1％Tween20を含むpH8.2
の0.15M NaCl-0.167Mホウ酸ナトリウム緩衝液（BSB）で4回洗浄した。非特異的吸着を最
小化するため、ウエルは0.1％ウシ血清アルブミン（BSA）を含むBSBで洗浄し、37℃で1時
間インキュベートした。次いでウエルは0.1％Tween20を含むBSBで4回洗浄した。試験サン
プルの細胞培養上清を適当に希釈した溶液100μlをトリプレットで各ウエルに加え、37℃
で30分インキュベートした。インキュベーション後100μlのビオチン化ウサギ抗-OP-1血
清（保存溶液は約1g/ml、使用直前に1％BSAをBSBで1:400に希釈）を各ウエルに加え、37
℃で30分インキュベートした。次いでウエルは0.1％Tween20を含むBSBで4回洗浄した。10
0μアルカリ性ストレパビジン（Southern Biothecnology Associates,Inc. Birmingham,
Alabama使用直前に0.1Tween20を含むBSBで1:400に希釈）を各ウエルに加え、37℃で30分
インキュベートした。プレートは0.5M Tris 緩衝生理食塩水（TBS）pH7.2で4回洗浄した
。50μlの基質（ELISAAmplification System Kit, Life Technologies, Inc., Bethesda,
MD）を各ウエルに加え、室温で15分インキュベートした。50μlのアンプリファイアー（
同じアンプリフィケーションキットから）を各ウエルに加え、室温で15分インキュベート
した。反応は50μlの0.3M硫酸を添加して停止させた。各ウエルの溶液を490nmのODを測定
した。培養液中のOP-1を定量するために、OP-1の検量線を試験サンプルと平行して作製し
た。
ポリクローナル抗体は以下のようにして調製した。各ウサギに、フロインドの完全アジ
ュバント500μlを含む0.1％SDS液に入ったOP-1モノマー（配列表配列番号5の328-431のア
ミノ酸配列）を生産する大腸菌100μg/500μlで一次免疫した。抗原は動物の背と脇腹の
複数箇所に皮下投与した。ウサギはフロインドの不完全アジュバントを用いて同じ方法で
一ヶ月後にブースター処理した。試験のため耳静脈から7日後に採血を行った。OP-1に対
する抗体がELISA分析で血清中に検出されるまで、2回の追加ブースター投与と試験採血が
一ヵ月の間隔をおいて行われた。次いでウサギは100μgの抗原でブースター処理し、ブー
スター処理後7日目と10日目に採血した（1回15ml）。モルフォゲンに特異的な抗体は以下
のように調製できる。マウスにOP-1生産大腸菌を2回注射した。最初の注射ではフロイン
ドの完全アジュバント中に100μgのOP-1を含む液を皮下に注射した。2回目には、フロイ
ンドの不完全アジュバント中に50μgのOP-1を含む液を腹腔内に注射した。マウスには次
いで8カ月間に4回腹腔内投与し全量で230μgのOP-1（配列表配列番号5の307-431のアミノ
酸配列）を投与した。融合に一週間先んじて、マウスの腹腔内に100μgのOP-1（307-431
）とシステインにウシ血清アルブミンをSMCC交差結合剤を用いて結合させた300μgのＮ末
端ペプチド（Ser２９３-Asn-３０９Cys）をブースター投与した。ブースター投与は融合
の前5日（IP）、4日（IP）、3日（IP）、1日（IV）に行った。マウス脾臓はミエローマ（
例えば653）細胞と1:1の比率でPEG1500（Boheringer Mannheim）を用いて融合させ、融合
細胞はプレート化し、抗原としてOP-1（307-431）を用いてOP-1特異的抗体を選択した。
融合細胞と抗体のスクリーニングは先行技術で広く利用可能な標準的な方法によって行っ
た。
本発明は、その精神と必要な特性から外れることなくその特徴的な形態で実施可能であ
る。本発明の実施は、全てに関連して説明のように理解され、発明の範囲は上記説明によ
ってよりむしろ添付されたクレームによって示され、そして限定はされない。さらにクレ
ームに均等な手法と範囲から来る全ての変更は、これらの実施を改良することである。
本発明は、瀕死の細胞の生存性を促進させる方法であって、神経の母細胞を形質転換さ
せて再分化させるための方法を包含する方法、および分化した神経細胞に形質発現を維持
させるための方法を提供する。さらにまた、本発明は、傷害を受けた神経回路を修復する
ための手段を提供する。この手段には長い距離にわたる軸索の成長を促進するための方法
を含んでおり、さらに免疫学的に関連している神経組織傷害を軽減するための方法を提供
するものである。本発明の代表的な実施態様としては、細胞中の細胞接着性分子の発現で
あって、特に神経細胞中の神経細胞接着性分子の発現を促進する方法を提供するものであ
る。最終的には、本発明は神経組織の鬱血状態を評価し、哺乳動物における神経系の機能
不全を評価するための手段を提供するものである。
本発明それ自身と同じく、本発明の前述のおよび他の目的と特性および利点は、添付さ
れている図とともに読むことによって、以下の説明からより一層理解できるであろう。
形質転換された神経芽腫Xグリオマー細胞(１Ａ)を示した微小写真である。 １Ａを再分化させて、非形質転換ニューロンの形態形成特性をひきだすモルフォゲン（OP-1）の作用を示した微小写真である。 Ａは、モルフォゲン処理されたNG108-15細胞の180kDaと140kDaのN-CAM異性体の誘導に対する容量反応曲線である。 Ｂは、モルフォゲン処理されたNG108-15細胞からの全細胞抽出物のN-CAM特異的抗体によるウエスタンブロット写真である。 モルフォゲン濃度の函数として、ランダムに選択した20の領域中の細胞凝集の平均数をプロットしたものである。 ヒト血清中のOP-1の存在をイムノブロットで確認した写真である。

Claims (93)

  1. 瀕死の神経細胞の生存性を増強するための薬剤の生産へのモルフォゲンの使用。
  2. 瀕死の神経細胞の生存性を増強するための方法であって、上記1胞の生存性増強のために充分な時間と濃度で上記細胞にモルフォゲンを供給することからなる方法。
  3. 上記細胞が、上記細胞からなる神経組織に対する化学的または機械的損傷のため瀕死の状態にあるところの請求項1または2の発明。
  4. 上記損傷が神経切断からなる請求項3の発明。
  5. 上記モルフォゲンが上記損傷に対して先に上記細胞に供給されている請求項3の発明。
  6. 上記損傷が上記細胞の脱ミエリン化によるものである請求項3の発明。
  7. 上記損傷が細胞性毒物に対して上記細胞が露出したことによるものである請求項3の発明。
  8. 上記毒物がエタノールからなる請求項7の発明。
  9. 上記細胞がニューロパシーのため瀕死の状態にあるところの請求項1または2の発明。
  10. 上記ニューロパシーの病因が代謝、感染、毒物、自己免疫、栄養、虚血性である請求項9の発明。
  11. 上記ニューロパシーが、パーキンソン病、ハンチントン舞踏病、筋萎縮性側索硬化症、多発性硬化症、アルツハイマー病である請求項10の発明。
  12. 上記細胞が上記細胞からなる神経組織に関連した腫瘍性病変のため死のリスクにあるところの請求項1または2の発明。
  13. 上記病変が神経由来の細胞からなる腫瘍によりもたららされたものである請求項12の発明。
  14. 上記腫瘍が神経芽細胞腫または網膜芽細胞腫ある請求項13の発明。
  15. 上記病変がグリア細胞からなる腫瘍からもたらされたものである請求項12の方法。
  16. 上記瀕死の細胞が中枢神経系の部分からなるるところの請求項1または2の発明。
  17. 上記細胞が線条体基底神経節ニューロンからなる請求項16の発明。
  18. 上記細胞が黒質ニューロンからなる請求項16の発明。
  19. 瀕死の細胞が末梢神経系の部分である請求項1または2の発明。
  20. 上記モルフォゲンが上記細胞において細胞接着分子の生産を促進させるところの請求項1または2の発明。
  21. 上記細胞接着分子が神経細胞接着分子である請求項20の発明。
  22. 神経細胞接着分子が、N-CAM-120、N-CAM-140、N-CAM
    180からなる群から選択されたものであるである請求項21の発明。
  23. 上記モルフォゲンが、OP-1、OP-2、CBMP2、Vgl(fx)、Vgr(fx)、DPP(fx)、GDF(fx)、60A(fx)からなる群から選択された配列の一つと少なくとも70%のアミノ酸配列ホモロジーを有しているものからなる請求項1または2の発明。
  24. 上記モルフォゲンが、OP-1、OP-2、CBMP2、Vgl(fx)、Vgr(fx)、DPP(fx)、GDF(fx)、60A(fx)からなる群から選択された配列の一つと少なくとも80%のアミノ酸配列ホモロジーを有しているものからなる請求項23の発明。
  25. 上記モルフォゲンが、配列表配列番号5(hOP-1)の残基43-139で定義された配列と60%以上のアミノ酸配列の同一性を持つアミノ酸配列からなるものである請求項24の発明。
  26. 上記モルフォゲンが配列表配列番号5(hOP-1)の残基43-139で定義された配列と65%以上のアミノ酸配列の同一性を持つアミノ酸配列からなるものである請求項25の発明。
  27. 上記モルフォゲンが配列表配列番号5(hOP-1)の残基43-139で定義された配列であって対立形質遺伝子および種変異体を含むものからなるものである請求項22の発明。
  28. 哺乳動物の瀕死の状態にある神経細胞の生存性を増強するための方法であって、内因性モルフォゲンの生産を刺激することのできる物質の有効量を上記哺乳動物に投与するステップからなる方法。
  29. 上記物質が上記神経細胞からなる組織の内因性モルフォゲンの生産を刺激するところの請求項28の方法。
  30. 哺乳動物の神経回路を維持するために充分な時間と濃度で上記経路を特定するニューロンにモルフォゲンを供給することからなる神経回路維持のための方法。
  31. 上記モルフォゲンがあらかじめ上記回路に傷害に対して供給されている請求項30の方法。
  32. 上記モルフォゲンが損傷した神経回路の修復促進のために充分て供給されている請求項30の方法。
  33. 上記損傷した神経回路が上記回路に対して物理的化学的損傷により起こったものである請求項32の方法。
  34. 上記損傷が神経切断である請求項33の方法。
  35. 上記損傷が上記回路で特定されるニューロンの脱ミエリン化である請求項33の方法。
  36. 上記損傷が細胞性毒物に対して、上記回路で特定する細胞の露出からおこるものである請求項33の方法。
  37. 上記毒物がエタノールである請求項36の方法。
  38. 上記ダ損傷した神経回路が上記回路で特定される細胞のニューロパシーからもたらされたものである請求項30の方法。
  39. 上記ニューロパシーの病因が代謝、感染、毒物、自己免疫、栄養、虚血性である請求項38の方法。
  40. 上記ニューロパシーが、パーキンソン病、ハンチントン舞踏病、筋萎縮性遅発性硬化症、多発性硬化症、アルツハイマー病である請求項39の方法。
  41. 上記ニューロパシーが軸索の変性である請求項38の方法。
  42. 上記ニューロパシーが脱ミエリン化ニューロパシーである請求項38の方法。
  43. 上記損傷した神経回路が腫瘍性病変によるものである請求項30の方法。
  44. 上記腫瘍性病変が神経芽腫またはグリオマーによっておこるものである請求項43の方法。
  45. 上記モルフォゲンが上記回路で特定される細胞において細胞接着分子の生産を促進させるところの請求項30の方法。
  46. 上記細胞接着分子が神経細胞接着分子であるところの請求項45の方法。
  47. 神経細胞接着分子がN-CAM-120、N-CAM-140、N-CAM 180
    からなる群から選択されたものであるである請求項46の方法。
  48. 上記モルフォゲンがOP-1、OP-2、CBMP2、Vgl(fx)、Vgr(fx)、DPP(fx)、GDF(fx)、60A(fx)からなる群から選択された配列の一つと少なくとも70%のアミノ酸配列ホモロジーを有しているものからなる請求項30または45の方法。
  49. 上記モルフォゲンがOP-1、OP-2、CBMP2、Vgl(fx)、Vgr(fx)、DPP(fx)、GDF(fx)、60A(fx)からなる群から選択された配列の一つと少なくとも80%のアミノ酸配列ホモロジーを有しているものからなる請求項48の方法。
  50. 上記モルフォゲンが配列表配列番号5(hOP-1)の残基43-139で定義された配列と60%以上のアミノ酸配列の同一性を持つアミノ酸配列からなるものである請求項49の方法。
  51. 上記モルフォゲンが配列表配列番号5(hOP-1)の残基43-139で定義された配列と65%以上のアミノ酸配列の同一性を持つアミノ酸配列からなるものである請求項50の方法。
  52. 上記モルフォゲンが配列表配列番号5(hOP-1)の残基43-139で定義されたアミノ酸配列であって、その対立形質および種変異体を含むものからなるものである請求項51の方法。
  53. 上記モルフォゲンが配列表配列番号16のヌクレオチド
    1036-1341または配列表配列番号20のヌクレオチド1390-1695
    まで定義されたDNA配列と厳密な条件でハイブリダイズする核酸によってコードされたポリペプチド鎖からなるものである請求項1、2、30または46の発明。
  54. 上記モルフォゲンが、モルフォゲンファミリーまたは対立型、種特異型またはその他配列の変異体のプロドメインからなるペプチドとコンプレックスを形成した二量体蛋白質種からなるものである請求項1、2、26、30、45または51の発明。
  55. 上記二量体モルフォゲンが、上記ペプチドと非共有的に結合したものである請求項54の発明。
  56. 上記二量体モルフォゲンが、上記の2ペプチドと結合したものである請求項54または55の発明。
  57. 上記ペプチドが少なくとも、上記プロドメインドメインを特定する配列の少なくとも最初の18アミノ酸からなる請求項54または55の発明。
  58. 上記ペプチドが上記プロドメインの全長型である請求項57の発明。
  59. 上記ペプチドが配列表配列番号16のヌクレオチド136-192または配列表配列番号20のヌクレオチド157-211で定義されたDNA配列と厳密な条件でハイブリダイズする核酸によってコードされたポリペプチド鎖からなるものである請求項54または55の発明。
  60. 上記コンプレックスが塩基性アミノ酸、界面活性剤、キャリアー蛋白質で安定化されているものである請求項54または55の発明。
  61. 神経回路を特定する細胞に内因性モルフォゲンの生産を促進させることができる物質の有効量を哺乳動物に投与することからなる哺乳動物で神経回路を維持する方法。
  62. 以下のことからなる哺乳動物の損傷部位に神経回路の再生を促進させるための組成物;
    インビボでその部位に蛋白質を保持させるために、適切な生体内適合性、生体内吸収性キャリアーおよび、
    上記キャリアーに散布し上記損傷部位に供給した時上記のモルフォゲンのようなモルフォゲンが上記部位に神経回路の再生促進させる。
  63. 上記キャリアーが軸索の成長の方向性を助けるために構造的に充分であるところの請求項62の組成物。
  64. 上記キャリアーが高分子材料である請求項63の組成物。
  65. 上記キャリアーがラミニンまたはコラーゲンである請求項63の組成物。
  66. 神経回路の切断部を修復するための器具であって下記の内容からなる器具:
    生体内適合性のあるチューブ状ケーシングが内部表面と外部表面にあり神経突起が再生する回路を特定し、上記器具はなめらかで神経経路の切断を覆うために充分な容積を持ち、切断神経の末端をその開口部に受入れ、そして
    上記チューブ状管によって特定できる回路にモルフォゲンを散布し、神経経路の切断を特定する切断された神経を補助し、モルフォゲンが神経経路の再生を促進するように、上記回路に配置した場合に上記神経末端を補助することができる。
  67. 上記モルフォゲンが、インビボでの部位に蛋白質を保持するために適した生体内適合性、生体内吸収性キャリアーと共に上記導管に散布されるところの請求項66の器具。
  68. 上記キャリアーが、上記導管内で軸索成長の方向性を補助するための充分な構造をとるところの請求項67の器具。
  69. 上記ケーシングの外部表面が基本的に不浸透性である請求項67の器具。
  70. 上記キャリアーがポリマーである請求項66の器具。
  71. 上記キャリアーがラミニンまたはコラーゲンである請求項67の器具。
  72. 神経由来の形質転換細胞の細分化を誘導するための方法であって、下記のステップからなる方法:
    非形質転換神経細胞に特徴的な形態へ上記細胞の再分化を誘導するために充分な濃度と時間モルフォゲン組成物を上記形質転換細胞に接触させる。
  73. 上記非形質転換神経細胞に特徴的な形態が神経突起の外成長の形成を含む請求項72の方法。
  74. 上記非形質転換神経細胞に特徴的な形態が細胞凝集と細胞接着を含む請求項72の方法。
  75. 上記モルフォゲン組成物が上記細胞において神経細胞接着分子の生産誘導である請求項72の方法。
  76. 上記誘導神経細胞接着分子がN-CAM-180、N-CAM-140、N-CAM-120請求項72の方法。
  77. 上記形質転換細胞がニューロブラストーマである請求項72の方法。
  78. 哺乳動物のニューロパシーの検出のためと哺乳動物のニューロパシーを処置するための治療の有効性の評価とのキットであって、以下からなるキット:
    a)哺乳動物から得られた細胞または体液サンプルを採取するための手段;
    b)結合蛋白質-モルフォゲンコンプレックスの形成のために上記サンプルにモルフォゲン特異的に結合する結合蛋白質;
    c)上記コンプレックス検出手段
  79. 上記結合蛋白質がモルフォゲンのプロドメインの一部または全部によって特定されたエピトープに特異性を有している請求項78のキット。
  80. 哺乳動物のニューロパシーを検出するための方法であって、以下のステップからなる方法:
    上記哺乳動物血清または脳脊髄液中のモルフォゲンの生理学的濃度の変動を検出し、上記変動を神経細胞死の増加の指標とする。
  81. 哺乳動物のニューロパシーを検出するための方法であって、以下のステップからなる方法:
    上記哺乳動物血清または脳脊髄液中のモルフォゲン抗体のタイターの出現濃度の変動を検出し、上記変動を神経細胞死の増加の指標とする。
  82. 上記ニューロパシーが神経変性疾患、神経脱ミエリン化、ミエリン機能不全、神経性腫瘍、神経損傷等によるものである請求項78、80または81の発明。
  83. 以下のステップからなる組織中の細胞接着分子の生産促進の方法
    上記組織の細胞の細胞接着性分子の生産を誘導するために充分な濃度と時間上記組織にモルフォゲンを供給する。
  84. 上記細胞接着性分子が神経細胞接着分子である請求項83の方法。
  85. 上記細胞がニューロンである請求項84の方法。
  86. 上記モルフォゲンがOP-1、OP-2、CBMP2、Vgl(fx)、Vgr(fx)、DPP(fx)、GDF(fx)、60A(fx)からなる群から選択された配列の一つと少なくとも70%のアミノ酸配列ホモロジーを有しているものからなる請求項78、80または81の方法。
  87. 上記モルフォゲンがOP-1、OP-2、CBMP2、Vgl(fx)、Vgr(fx)、DPP(fx)、GDF(fx)、60A(fx)からなる群から選択された配列の一つと少なくとも80%のアミノ酸配列ホモロジーを有しているものからなる請求項86の方法。
  88. 上記モルフォゲンが配列表配列番号5(hOP-1)の残基43-139で定義された配列と60%以上のアミノ酸配列の同一性を持つアミノ酸配列からなるものである請求項87の方法。
  89. 上記モルフォゲンが配列表配列番号5(hOP-1)の残基43-139で定義された配列と65%以上のアミノ酸配列の同一性を持つアミノ酸配列からなるものである請求項88の方法。
  90. 上記モルフォゲンが配列表配列番号5(hOP-1)の残基43-139で定義されたアミノ酸配列であって、その対立形質および種変異体を含むものからなるものである請求項89の方法。
  91. 上記モルフォゲンが配列表配列番号16のヌクレオチド1036-1341または配列表配列番号20のヌクレオチド1390-1695まで定義されたDNA配列と厳密な条件でハイブリダイズする核酸によってコードされたポリペプチド鎖からなるものである請求項78、80または81の方法。
  92. 脳血液関門を通過する上記モルフォゲンの移送を促進することのできる分子に結合したモルフォゲンからなる、瀕死の神経細胞の生存性を増強するための組成物。
  93. 上記キャリアーが脳組織由来細胞外マトリックスである請求項62または67の発明。
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