JP2005287512A - 組織形成因子誘導による神経の再生と修復 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】瀕死の状態にあるニューロンの生存性増強、ニューロンと神経経路の細胞性修復の誘導、およびそれらの分化した発現型細胞を維持することからなる。一つの実施態様では、ニューロン中にCAMの発現を増強する手段を提供する。さらにまた本発明は、哺乳動物のニューロパシー検出し、モニターする手段を含む神経組織の状態評価のための手段を提供する。方法、器具および組成物は治療上有効な濃度で哺乳動物に供給するモルフォゲン促進剤を含むものからなる。
【選択図】なし
Description
満足すべき方法は存在していない。この損傷としては多発性硬化症、筋萎縮性側索硬化症(ALS)、ハンチントン舞踏病、アルツハイマー病、パーキンソン病(パーキンソン症)
および肝性脳症のような代謝由来疾患などがある。近年、激しい外傷性病変あるいは脳および/または脊髄の神経変性病変を阻止することを目的とする、欠失したり、欠損のあるニューロンを機能的に他のものと換えるか、またはそのようなニューロンを補償するような試みにおいて、胎児ニューロンの移植が今日迄では第一義的なものとなっている。しかし、ヒト胎児細胞の移植研究は厳しく制限されている。さらにまた神経成長因子およびインシュリンライクグロースファクターのような神経栄養因子を投与することによってCNS
内の神経成長を促進させることが提案されている(例えば、特許文献1および非特許文献
1参照)。CNSに神経栄養因子を投与するには、血液脳関門(blood-brain barrier)を通過させる必要がある。バリアーは、直接注入によって、または化学的な変性や抱合のような、バリアー通過を促進するために分子を変性することによって、または分子トランケーションによって通過させることができる。さらにシュワン細胞が、損傷をうけた神経突起の成長を促進し、維持することを目的にCNS病変部位に移植されている。(例えば、非特
許文献2参照)。
中枢神経系の病巣をつなぎ合わせ、その正常なターゲット領域に軸索を戻させている。CNSニューロンとは対照的に、末梢神経系ニューロンは、軸索性の障害に反応して新しい末
梢突起を伸長させることができる。末梢神経系軸索のこの再生機能があることは、CNS軸
索に対する脊髄分節の移植を可能にするものと予想される。しかしながら、好ましい移植は、細胞本体に近接して得られる満足すべき移植に関係した複数の因子によって制限されている。この制限因子としては、バイパスを形成させるべきCNSの軸索障害の長さ、CNS神経性細胞本体から移植部位への距離がある。
同士のCAM-CAM結合を通じて、発達中のそして成熟した組織内での細胞と細胞のインター
ラクションを媒介している。現在までに多くの異なったCAMが特定された。これらの内で
、もっとも徹底して研究されたものはN-CAMとL-CAM(肝臓細胞接着分子)であり、いずれも様々な成熟した組織におけると同様に、発達の初期段階における全ての細胞から同定された。神経組織の発達において、N-CAMの発現は、組織形成、神経の遊走、神経・筋肉組
織接着、網膜形成、シナプス形成そして神経変性等において重要であると考えられている。さらにまた、N-CAMの発現の低下は神経機能不全と係わっていることが予想されている
。例えば、少なくとも1つのN-CAM、N-CAM-180型の発現は、ミエリン形成不全マウスで低
下している(例えば、非特許文献3参照)。またN-CAMのレベルの低下は正常な圧力の水
頭症と関連付けられており(例えば、非特許文献4参照)、タイプII精神分裂病についても同様である(例えば、非特許文献5参照)。さらに、N-CAMに対する抗体は、障害を受
けた神経の機能回復を妨げることが確認された(例えば、非特許文献6参照)。
ている。哺乳類に対して特定の化合物を投与することを含むような、ダメージをうけた神経回路を修復したり、ダメージの進行を抑制することを含むインビボで哺乳類の神経回路を維持するためのものである。上記の化合物は、哺乳類の生体において神経回路を保持するために十分な内因性のモルフォゲンの治療上有効な濃度を誘発するようなものである。これらの化合物は、ここではモルフォゲン促進剤と呼び、哺乳動物に投与した場合に、モルフォゲンを生産するかまたはモルフォゲンの生産が可能でありおよび/またはモルフォゲンを分泌する組織や臓器に作用する物質を包含するものであり、または、モルフォゲンの生体内濃度を変化させるものであると理解される。
ーロンと神経回路の細胞修復を促進する方法、組成物、器具を提供する。この修復促進は、末梢および中枢神経系の障害を受けた軸索を再生させることをふくんでいる。さらにまた、本発明は哺乳動物の血清または脳脊髄液に存在すモルフォゲンや内因性モルフォゲン抗体の濃度の変動をモニターすることによって、哺乳類の神経組織の状態を評価したり、ニューロパシーを検出してモニターするための手段を提供するものである。
記載されたように、ケーシングの内部表面に吸着させるかまたはその他の方法で結合させておく必要がある。さらに、ここに述べた神経案内導管は、一般的には形状としてはチューブ状であれば、種々の異なった形状を採用できることは当業者には明白である。案内導管の内腔が、例えば断面では長円形または方形であっても良い。さらに案内導管が、神経切断端を結び付けるように2またはそれ以上のパーツをつなぎあわせて構築されていても良い。神経の末端は、フィブリングルーのような生体内適合性のある接着物質による縫合手段か、あるいはまた医学的な技術として公知の手段によって、神経案内導管を確実に結合させておく。
与している細胞内において、内因性のモルフォゲンの発現および/または分泌を促進する物質を哺乳動物に投与することができる。
せる。ここで述べた方法で、基本的に神経組織中で神経細胞腫瘍の発生および/または増殖を阻害または減少させることが期待されている。本発明の方法は、網膜芽腫、神経芽腫、神経膠腫、神経膠腫等の神経組織由来の種々の腫瘍の作用を基本的に抑制する目的に有用であろうことが予測される。さらに本方法は、転移性組織によっておこる腫瘍性の病変を抑制する目的にも有効であると考えられる。転移性腫瘍はCNSの最も普通の腫瘍の一つ
であって、血流を介して頭蓋内室へ到達する。転移性腫瘍は、例えば正常神経組織の構造を破壊し、神経を圧迫し、脳組織に栄養供給している脳脊髄液や血液の流れをブロックし、および/または生体の免疫反応を促進することによって、神経回路に障害を与える。
のN-CAM発現を促進するための方法を提供する。CAMは組織形成のために必須の細胞−細胞間のインターラクションを行わせる分子として特定される。CAMは組織境界形成、胚誘導
および遊走を含む組織発達と組織の安定化と再生において、基本的なな制御作用を担当していると考えられている。CAMのレベル変化は先天性疾患、腫瘍および変性疾患を含む組
織変性の多くに関連している。
な神経細胞の発達と分化に関係している。N-CAMの異性体の1またはそれ以上の抑制は、正常な組織の発達を抑制することが知られている。N-CAM発現レベルの変化は、正常な内圧
の水頭症とタイプIIの分裂病を含む複数のニューロパシーと同様に、神経芽腫を含む腫瘍と関係している。治療するべきに細胞に直接モルフォゲンを投与したり、非経口的にまたは経口的に投与することによって行う全身的供給は、1またはそれ以上のCAM、特にN-CAM
の細胞性発現を誘導する目的で使用することができる。さらにまた、インビボでのモルフォゲンの発現および/または分泌を刺激するような物質を、好ましく傷害の部位に投与して、CAMの生産を誘導することができる。
だ特定されていない分子によって誘導される(Edelman,G.M.,1986,Ann. Rev. Cll Biol.,2:81-116を参照のこと)。どの特定のセオリーに制限されることなく、ここで説明したモルフォゲンはこの経路の物質として作用する。
は天然には神経組織に関連して見出されるが、その他の組織で合成されて、そして合成された組織から分泌後に神経組織に移送される。例えば、この蛋白質は骨組織中で活性であ
ることが見出されており、OP-1合成の一次ソースは泌尿器系の組織(腎臓および膀胱組織)であるらしい。第二の発現レベル箇所は脳、心臓、肺(下記)にあることがわかっている。さらにこの蛋白質は血清、唾液、種々の乳中から分離されている。さらにこの蛋白質の分泌型は、完全型のモルフォゲン配列のプロドメインと共に成熟型二量体からなっている。従って関連したモルフォゲンのプロドメインはインビボでは異なった組織に特異的なモルフォゲンを輸送するために作用している。
結合をもっていて、一般的な化学的手段でモルフォゲンに共有的に結合している。この結合は、骨の再構成部位の酸性条件下において選択的に切断される。
考慮しなければならない。いわゆる血液脳関門と呼ばれている脳の毛細血管壁の構造を通過しなければならない。この構造は、血液中に存在する分子の種類を選別して、脳内への通過を予防する。血液脳関門は、脳内へのモルフォゲンまたはモルフォゲン促進剤の直接注入によって、効果的にバイパスさせることができる。さらにまたモルフォゲンまたはモルフォゲン促進剤は、血液脳関門を超えて移送されやすくするために修飾することもできる。例えば、モルフォゲンまたはモルフォゲン促進剤の切断型は最も有望と考えられる。
送などを改善すると考えられる。
88: 4250-4254)、これらの蛋白質の配列は配列表配列番号5−14と表IIに示した
)。そして最近60Aの蛋白質が特定された(ショウジョウバエ由来、配列表配列番号24、Wharton 他、1991、PNAS 88:9214-9218)。蛋白質のTGFβスーパーファミリー
のメンバーを含むこのファミリーのメンバーは、C末端領域のアミノ酸配列に高いホモロジーを有する。この蛋白質は、典型的には30残基より少ないN末端シグナルペプチド配列を持つ前駆体として翻訳され、次いで「プロ」ドメインとなり、それが切断されて成熟配列となる。シグナルペプチドは、翻訳後速やかに切断され、Von Heijneの方法(1986,Nucleic Acids Research 14:4683-4691)を用いて特定のアミノ酸配列を予想すること
ができる。以下の表Iは、今日特定されている種々のモルフォゲンを示す。そのここで使
用されている学名と配列番号、配列表に含まれない全長蛋白質のアミノ酸配列を記載した出典を示しているが、これらの文献の開示内容は、引用によって本発明と一体化されている。
(表1)
OP-1
OP-1蛋白質をコードするDNA配列の全てまたは一部から発現された形態形成活
性蛋白質のグループを総称的にさす。対立形質型および種の変異型を含む。例
えばヒトOP-1(hOP-1,配列表配列番号5、成熟蛋白質アミノ酸配列)マウスOP-
1(mOP-1,配列表配列番号6、成熟蛋白質アミノ酸配列)保存された7個のシス
テイン骨格が配列表配列番号5、6の38から139番目の残基によって特定されて
いる。蛋白質の全長をコードするcDNA配列と全アミノ酸が配列表配列番号16と
17(hOP-1)および配列表配列番号18と19(mOP-1)に示されている。成熟蛋白
質は残基293-431(hOP-1)と292-430(mOP-1)によって特定されている。そこ
が切断されることにより成熟蛋白質が得られる。蛋白質のプロ領域は開裂し
て、成熟で、形態形成活性を有する蛋白質を生じるが、本質的に残基30-292
(hOP-1)と残基30-291(mOP-1)よって本質的に特定される。
OP-2
OP-2蛋白質をコードするDNA配列の全てまたは一部から発現された活性蛋白質
のグループを総称的にさす。対立形質型および種変異型を含む。例えばヒト
OP-2(hOP-2,配列表配列番号7、成熟蛋白質アミノ酸配列)マウスOP-2(mOP-
2,配列表配列番号8、成熟蛋白質アミノ酸配列)。保存された7個のシステイ
ン骨格が配列表配列番号7、8の38から139番目の残基によって特定されてい
る。蛋白質の全長をコードするcDNA配列と全アミノ酸が配列表配列番号20と21
(hOP-2)および配列表配列番号22と23(mOP-2)に示されている。成熟蛋白質
は残基264-402(hOP-2)と261-399(mOP-2)によって特定されている。蛋白質
のプロ領域は開裂して、成熟で形態形成活性を有する蛋白質が生じるが、本質
的に残基18-263(hOP-2)と残基18-260(mOP-1)よって本質的に特定される。
(両方のOP-2蛋白質とも上流21残基に別の開裂部位を有する。)
CBMP2
CBMP2蛋白質をコードするDNA配列から発現された形態形質活性蛋白質を総称的
にさす。対立形質型および種変異型を含む。ヒトCBMP2A(CBMP2A(fx))配列
表配列番号9、ヒトCBMP2B-DNA(CBMP2B(fx))配列表配列番号10。全長の蛋
白質のアミノ酸配列はBMP2AおよびBMP2BあるいはBMP2およびBMP4として文献、
Wozeny,et al.(1988) Science 242:1528-1534に示されている。BMP2
(BMP2A)のプロドメインは残基25-248または残基25-282を含む。成熟蛋白質
は残基249-396または残基283-396を含む。BMP4(BMP2B)のプロドメインは残
基25-256または残基25-292を含み成熟蛋白質は残基257-408または残基293-408
を含む。
DPP(fx)
ショウジョウバエDPP 遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保
存された7個のシステイン骨格(配列表配列番号11)で特定される。全長の蛋
白質のアミノ酸配列はPadgett,et al.(1987) Nature 325:81-84に示されて
いる。プロドメインはシグナルペプチドの開裂箇所から残基456までである。
成熟蛋白質の領域は残基457-588で特定されている。
Vgl(fx)
ツメガエルVgl遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保存され
た7個のシステイン骨格(配列表配列番号12)で特定される。全長の蛋白質の
アミノ酸配列はWeeks(1987) Cell 51:861-867に示されている。プロドメイ
ンはシグナルペプチド開裂部位から残基246までである。成熟蛋白質は残基
247-360で特定されている。
Vgr-1(fx)
マウスVgr-1遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保存された
7個のシステイン骨格(配列表配列番号13)で特定される。全長の蛋白質のア
ミノ酸配列はLyons, et al. (1989) PNAS 86: 4554-4558に示されている。
プロドメインはのシグナルペプチド開裂部位から残基299までである。成熟蛋
白質は残基303-438で特定されている。
GDF-1(fx)
ヒトGDF-1遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保存された7
個のシステイン骨格(配列表配列番号14)で特定される。全長蛋白質に対する
cDNAとコードされるアミノ酸配列が配列表配列番号32に示される。プロドメイ
ンはシグナルペプチド切断部位から残基2-14内までである。成熟蛋白質残基
215-372で特定されている。
60A
60A蛋白質(全長蛋白質に対するcDNAとコードされるアミノ酸配列が配列表配
列番号24に示されている)をコードしているDNA配列(ショウジョウバエ60A遺
伝子)の一部または全部より発現された形態形成性活性蛋白質をさす。60A
(fx)は保存された7個のシステイン骨格(配列表配列番号24の残基354から
455)で特定される蛋白配列をさす。プロドメインは、シグナルペプチド開裂
部位から残基324までである。成熟蛋白質は残基325-455で特定される。
BMP3(fx)
ヒトBMP3遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保存されている
7個のシステイン骨格で特定される(配列表配列番号26)。全長の蛋白質のア
ミノ酸配列はWozeny et al. (1988) Science242: 1528-1534に示されてい
る。プロドメインはシグナルペプチド開裂部位から残基290 までである。成熟
蛋白質は残基291-472で特定されている。
BMP5(fx)
ヒトBMP5遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保存されている
7個のシステイン骨格で特定される(配列表配列番号27)。全長の蛋白質のア
ミノ酸配列はCeleste,et al. (1991) PNAS 87: 9843-9847に示されてい
る。プロドメインはシグナルペプチド開裂部位から残基316までである。成熟
蛋白質は残基317-454で特定されている。
BMP6(fx)
ヒトBMP6遺伝子によってコードされている蛋白質配列をさし、保存されている
7個のシステイン骨格で特定された(配列表配列番号28)。全長の蛋白質のア
ミノ酸配列はCeleste,et al. (1990) PNAS 87: 9843-9847に示されている。
プロドメインはシグナルペプチド開裂部位から残基374までである。成熟蛋白
質は残基375-513で特定されている。
る。
ペプチド鎖は、配列表配列番号5の残基43-139によって特定されるC末端側の少なくとも6個のシステイン骨格からなるが、これらのシステインと機能的には等しいアレンジメント
を含む(即ち、配列中のシステインの直線的な配置を変えるようなアミノ酸の挿入や欠失を行っても折りたたみ構造におけるシステイン相互間の関係は変わらない)。すなわち、ポリペプチド鎖が折りたたまれる時、ポリペプチド鎖の1対からなっている2量体蛋白質
種は、適当な3次元構造をとる。この場合、ここに定義するようにモルフォゲンとして蛋
白質が活性であるように、鎖間または鎖内で適当なジスルヒド結合を含んでいる。特徴的なことには、モルフォゲンは、通常、形態形成的に許容される環境では、次の生物学的機能をの全てをそなえている。未分化細胞の増殖促進。未分化細胞の分化促進。分化細胞の増殖促進。分化細胞の成長と維持の補助。さらに、これらのモルフォゲンは、好ましい環境条件に拘束された細胞の再分化を誘導できることが期待される。
ある。Xaaは20の天然型L-型αアミノ酸またはその誘導体の一つを示している。一般配列1は保存された6つのシステイン骨格からなり、そして一般配列2はOP-2で確認される付加的なシステインを付けた保存された6 つのシステイン骨格からなる(配列表配列番号2、残
基36)。別の好ましい実例では、この配列はN末端に次の付加配列を結合させたものからなる。
1 5
上記の一般配列中の好ましいアミノ酸配列は次のものを含む。一般配列3(配列表配列番
号3)、一般配列4(配列表配列番号4)、一般配列5(配列表配列番号30)、一般配列6(
配列表配列番号31)、列リストは以下に示す。これらの一般配列は、表IIに示したこのモルフォゲンファミリーの種々の好ましいメンバーの中で共有されるホモロジーを、それらのアミノ酸配列に変化を加えたものと同様に含んでいる。特に一般配列3と4は表IIに表され配列表配列番号5-14で特定される次の蛋白質の複合アミノ酸配列である。ヒトOP-1(hOP-1,配列表配列番号5および16-17)、マウスOP-1(mOP-1,配列表配列番号6および18-19)、ヒトおよびマウスOP-2(配列表配列番号7、8および20-22)、CBMP2A(配列表配列番号9)、CBMP2B(配列表配列番号10)、DPP(ショウジョウバエ由来、配列表配列番号11)、Vgl(ツメガエル由来、配列表配列番号12)、Vgr-1(マウス由来、配列表配列番号13) GDF-1(マウス由来、配列表配列番号14)。一般配列は、配列中の可変位置の可変性残基と同様に、表IIの配列によって明示されたアミノ酸配列を含んでいる。これらの一般配列は、一般配列3または4の41または46位に分子間または分子内ジスルヒド結合を形成することができる適当なシステイン骨格を提供するような付加的システインを加えることができるし、蛋白質の三次元構造に影響を及ぼすある種の臨界的なアミノ酸を含む。
一般配列 3
Leu Tyr Val Xaa Phe
1 5
Xaa Xaa Xaa Gly Trp Xaa Xaa Trp Xaa
10
Xaa Ala Pro Xaa Gly Xaa Xaa Ala
15 20
Xaa Tyr Cys Xaa Gly Xaa Cys Xaa
25 30
Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
35
Xaa Xaa Xaa Asn His Ala Xaa Xaa
40 45
Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
50
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys
55 60
Cys Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
65
Xaa Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa
70 75
Xaa Xaa Xaa Xaa Val Xaa Leu Xaa
80
Xaa Xaa Xaa Xaa Met Xaa Val Xaa
85 90
Xaa Cys Gly Cys Xaa
95
ここでXaaは以下に示す1 またはそれ以上のアミノ酸の群から他とは無関係に、選択され
たものである。Res.は残基residue を意味している。res.4でのXaa=(Ser,AspまたはGlu
)。res.6でのXaa=(Arg,Gln,SerまたはLys)。res.7でのXaa=(AspまたはGlu)。res.8
でのXaa=(LeuまたはVal)。res.11でのXaa=(Gln,Leu, Asp,His,またはAsn)。res.12でのXaa=(Asp,Arg, またはAsn)。res.14でのXaa=(IleまたはVal)。res.15でのXaa=(IleまたはVal)。res.18でのXaa=(Glu,Gln,Leu,Lys,ProまたはArg)。res.20でのXaa=(TyrまたはPhe)。res.21でのXaa=(Ala,Ser,Asp,Met,His,LeuまたはGln)。res.23でのXaa=(Tyr,AsnまたはPhe)。res.26でのXaa=(Glu,His,Tyr,AspまたはGln)。res.28でのXaa=(Glu, Lys,Asp またはGln)。res.30でのXaa=(Ala,Ser,ProまたはGln)。res.31でのXaa=(Phe,LeuまたはTyr)。res.33でのXaa=(LeuまたはVal)。res.34でのXaa=(Asn,Asp,AlaまたはThr)。res.35でのXaa=(Ser,Asp,Glu,LeuまたはAla)。res.36でのXaa=(Tyr,Cys,His,SerまたはIle)。res.37でのXaa=(Met,Phe,GlyまたはLeu)。res.38でのXaa=(AsnまたはSer)。res.39でのXaa=(Ala,SerまたはGly)。res.40でのXaa=(The,Leuまた
はSer)。res.44でのXaa=(IleまたはVal)。res.45でのXaa=(ValまたはLeu)。res.46
でのXaa=(GlnまたはArg)。res.47でのXaa=(Thr,AlaまたはSer)。res.49でのXaa=(ValまたはMet)。res.50でのXaa=(HisまたはAsn)。res.51でのXaa=(Phe,Leu,Asn,Ser,AlaまたはVal)。res.52でのXaa=(Ile,Met,Asn,AlaまたはVal)。res.53でのXaa=(Asn,Lys,AlaまたはGlu)。res.54でのXaa=(ProまたはSer)。res.55でのXaa=(Glu,Asp,Asn,
またはGly)。res.56でのXaa=(Thr,Ala,Val,Lys,Asp,Tyr,SerまたはAla)。res.57でのXaa=(Val,Ala, またはLys)。res.58でのXaa=(ProまたはAsp)。res.59でのXaa=(LysまたはLeu)。res.60でのXaa=(ProまたはAla)。res.63でのXaa=(AlaまたはVal)。res.65でのXaa=(ThrまたはAla)。res.66でのXaa=(Gln,Lys,ArgまたはGlu)。res.67でのXaa=(Leu,Met, またはVal)。res.68でのXaa=(Asn,SerまたはAsp)。res.69でのXaa=(Ala,ProまたはSer)。res.70でのXaa=(Ile,ThrまたはVal)。res.71でのXaa=(SerまたはAla)。res.72でのXaa=(ValまたはMet)。res.74でのXaa=(TyrまたはPhe)。res.75でのXaa=(Phe,TyrまたはLeu)。res.76でのXaa=(AspまたはAsn)。res.77でのXaa=(Asp, Glu,Asn またはSer)。res.78でのXaa=(Ser,Gln,AsnまたはTyr)。res.79でのXaa=(Ser,Asn,AspまたはGlu)。res.80でのXaa=(Asn, Thr またはLys)。res.82でのXaa=(IleまたはVal)。res.84でのXaa=(LysまたはArg)。res.85でのXaa=(Lys,Asn,GlnまたはHis)
。res.86でのXaa=(TyrまたはHis)。res.87でのXaa=(Arg,GlnまたはGlu)。res.88でのXaa=(Asn,GluまたはAsp)。res.90でのXaa=(Val,ThrまたはAla)。res.92でのXaa=(Arg,Lys,Val,AspまたはGlu)。res.93でのXaa=(Ala,GlyまたはGlu)。res.97でのXaa=(HisまたはArg)。
一般配列 4
Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Leu Tyr Val Xaa Phe
1 5 10
Xaa Xaa Xaa Gly Trp Xaa Xaa Trp Xaa
15
Xaa Ala Pro Xaa Gly Xaa Xaa Ala
20 25
Xaa Tyr Cys Xaa Gly Xaa Cys Xaa
30 35
Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
40
Xaa Xaa Xaa Asn His Ala Xaa Xaa
45 50
Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
55
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys
60 65
Cys Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
70
Xaa Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa
75 80
Xaa Xaa Xaa Xaa Val Xaa Leu Xaa
85
Xaa Xaa Xaa Xaa Met Xaa Val Xaa
90 95
Xaa Cys Gly Cys Xaa
100
ここでXaaは以下に示すアミノ酸の1またはそれ以上の群から他とは無関係に、選択されたものである。Res.は残基residueを意味している。res.2でのXaa=(Lysまたは Arg)。res.3 でのXaa=(Lysまたは Arg) 。res.4でのXaa=(HisまたはArg)。res.5でのXaa=(Glu,Ser,His,Gly,ArgまたはPro)。res.9でのXaa=(Ser,AspまたはGlu)。res.11でのXaa=(Arg,Gln,SerまたはLys)。res.12でのXaa=(AspまたはGlu)。res.13でのXaa=(Leuまた
はVal)。res.16でのXaa=(Gln,Leu,Asp,HisまたはAsn)。res.17でのXaa=(Asp,ArgまたはAsn)。res.19でのXaa=(IleまたはVal)。res.20でのXaa=(IleまたはVal)。res.23
でのXaa=(Glu,Gln,Leu,Lys,Pro またはArg)。res.25でのXaa=(TyrまたはPhe)。res.26でのXaa=(Ala,Ser,Asp,Met,His,LeuまたはGln)。res.28でのXaa=(Tyr,AsnまたはPhe
)。res.31でのXaa=(Glu,His,Tyr,AspまたはGln)。res.33でのXaa=(Glu,Lys,Aspまた
はGln)。res.35でのXaa=(Ala,SerまたはPro)。res.36でのXaa=(Phe,LeuまたはTyz)
。res.38でのXaa=(LeuまたはVal)。res.39でのXaa=(Asn,Asp,AlaまたはThr)。res.40でのXaa=(Ser,Asp,Glu,LeuまたはAla)。res.41でのXaa=(Tyr,Cys,His,SerまたはIle)。res.42でのXaa=(Met,Phe,GlyまたはLeu)。res.44でのXaa=(Ala,SerまたはGly)。res.45でのXaa=(Thr,LeuまたはSer)。res.49でのXaa=(IleまたはVal)。res.50でのXaa=(ValまたはLeu)。res.51でのXaa=(GlnまたはArg)。res.52でのXaa=(Thr,AlaまたはSer)。res.54でのXaa=(ValまたはMet)。res.55でのXaa=(HisまたはAsn)。res.56でのXaa=(Phe,Leu,Asn,Ser,AlaまたはVal)。res.57でのXaa=(Ile,Met,Asn,AlaまたはVal)。res.58でのXaa=(Asn,Lys,AlaまたはGlu)。res.59でのXaa=(ProまたはSer)。res.60でのXaa=(Glu, Asp またはGly)。res.61でのXaa=(Thr,Ala,Val,Lys,Asp,Tyr,Serまた
はAla)。res.62でのXaa=(Val,AlaまたはIle)。res.63でのXaa=(ProまたはAsp)。res.64でのXaa=(LysまたはLeu)。res.65でのXaa=(ProまたはAla)。res.68でのXaa=(AlaまたはVal)。res.70でのXaa=(ThrまたはAla)。res.71でのXaa=(Gln,Lus,ArgまたはGlu)。res.72でのXaa=(Leu MetまたはVal)。res.73でのXaa=(Asn,SerまたはAsp)。res.74でのXaa=(Ala,ProまたはSer)。res.75でのXaa=(Ile,ThrまたはVal)。res.76でのXaa=(SerまたはAla)。res.77でのXaa=(ValまたはMet)。res.79でのXaa=(TyrまたはPh
e)。res.80でのXaa=(Phe,TyrまたはLeu)。res.81でのXaa=(AspまたはAsn)。res.82
でのXaa=(Asp,Glu,AsnまたはSer)。res.83でのXaa=(Ser,Gln,AsnまたはTyr)。res.84でのXaa=(Ser,Asn,Asp またはGlu)。res.85でのXaa=(Asn,ThrまたはLys)。res.87で
のXaa=(IleまたはVal)。res.89でのXaa=(LysまたはArg)。res.90でのXaa=(Lys,Asn,GlnまたはHis)。res.91でのXaa=(TyrまたはHis)。res.92でのXaa=(Arg,GlnまたはGlu)。res.93でのXaa=(Asn,GluまたはAsp)。res.95でのXaa=(Val,ThrまたはAla)。res.97でのXaa=(Arg,Lys,Val,AspまたはGlu)。res.98での。Xaa=(Ala,GlyまたはGlu)。res.102 でのXaa=(HisまたはArg)。
列番号5および16 17)、マウスOP-1(mOP-1, 配列表配列番号6および18 19)、ヒトおよ
びマウスOP-2( 配列表配列番号7,8および20 22)、CBMP2A(配列表配列番号9)、CBMP2B(配列表配列番号10)、DPP(ショウジョウバエ由来、配列表配列番号11)、Vgl(ツメガエル由来、配列表配列番号12)、Vgr-1(マウス由来、配列表配列番号13)、GDF-1(マウス由来、配列表配列番号14)、ヒトBMP3(配列表配列番号26)、ヒトBMP5( 配列表配列
番号27)、ヒトBMP6(配列表配列番号28)、60(A)(ショウジョウバエ由来、配列表配
列番号24 25)。一般配列は、配列中の可変位置の可変性残基と同様に、6および7個のシ
ステイン骨格(一般配列5と6に対応する) によって特定され、そしてC末端ドメイン中
のこれらの配列と同一のアミノ酸配列を含んでいる。一般配列3と4、一般配列5と6において、41位(一般配列5)あるいは46位(一般配列6)にシステインを更に付加することができ、適当なシステイン骨格を提供すると、分子間にまたは分子内にジスルヒド結合を形成させることができる。システインは付加物はその蛋白質の3次構造に影響を与えるある種
の臨界的なアミノ酸を含んでいる。
一般配列5
Leu Xaa Xaa Xaa Phe
1 5
Xaa Xaa Xaa Gly Trp Xaa Xaa Trp Xaa
10
Xaa Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Ala
15 20
Xaa Tyr Cys Xaa Gly Xaa Cys Xaa
25 30
Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
35
Xaa Xaa Xaa Asn His Ala Xaa Xaa
40 45
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
50
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys
55 60
Cys Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
65
Xaa Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa
70 75
Xaa Xaa Xaa Xaa Val Xaa Leu Xaa
80
Xaa Xaa Xaa Xaa Met Xaa Val Xaa
85 90
Xaa Cys Xaa Cys Xaa
95
ここでXaaは以下に示すアミノ酸の1 またはそれ以上の群から独立的に、選択されたもの
である。Res.は残基residue を意味している。res.2でのXaa=(TyrまたはLys)。res.3でのXaa=(ValまたはIle)。res.4でのXaa=(Ser,AspまたはGlu)。res.6 でのXaa=(Arg,Gln,SerまたはLys)。res.7でのXaa=(Asp,LysまたはGlu)。res.8でのXaa=(Leu,IleまたはVal)。res.11でのXaa=(Gln,Leu,Asp,His,Ser またはAsn)。res.12でのXaa=(Asp,Arg, Glu またはAsn)。res.14でのXaa=(IleまたはVal)。res.15でのXaa=(IleまたはVal)。res.16でのXaa=(AlaまたはSer)。 res.18 でのXaa=(Glu,Gln,Leu,Lys,ProまたはArg)。 res.19 でのXaa=(GlyまたはSer)。res.20でのXaa=(TyrまたはPhe)。res.21
でのXaa=(Ala,Ser,Asp,Met,His,LeuまたはGly)。res.23でのXaa=(Tyr,AsnまたはPhe)。res.26でのXaa=(Glu,His,Tyr,Asp,SerまたはGln)。res.28でのXaa=(Glu,Lys,Asp,AlaまたはGln)。res.30でのXaa=(Ala,Ser,Pro,AsnまたはGln)。res.31でのXaa=(Phe, Leu またはTyr)。res.33でのXaa=(Leu,MetまたはVal)。res.34でのXaa=(Asn,Asp,Ala,ProまたはThr)。res.35でのXaa=(Ser,Asp,Glu,Leu,LysまたはAla)。res.36でのXaa=(Tyr,Cys,His,SerまたはIle)。res.37でのXaa=(Met,Phe,GlyまたはLeu)。res.38でのXaa=(Asn,LysまたはSer)。res.39でのXaa=(Ala,Ser,ProまたはGly)。res.40でのXaa=(Thr,LeuまたはSer)。res.44でのXaa=(Ile,ValまたはThr)。res.45でのXaa=(Val,Ile
またはLeu)。res.46でのXaa=(GlnまたはArg)。res.47でのXaa=(Thr,AlaまたはSer)
。res.48でのXaa=(LeuまたはIle)。res.49でのXaa=(ValまたはMet)。res.50でのXaa=(His,ArgまたはAsn)。res.51でのXaa=(Phe,Leu,Asn,Ser,AlaまたはVal)。res.52でのXaa=(Ile,Met,Asn,Ala,LeuまたはVal)。res.53でのXaa=(Asn,Lys,Ala,Gly, Phe また
はGlu)。res.54でのXaa=(Pro,ValまたはSer)。res.55でのXaa=(Glu,Asp,Asn,Val,LysまたはGly)。res.56でのXaa=(Thr,Ala,Val,Lys,Asp,Tyr,Ser,Pro,HisまたはAla)。res.57でのXaa=(Val,Ala, またはIle)。res.58でのXaa=(ProまたはAsp)。res.59でのXaa=(Lys,GluまたはLeu)。res.60でのXaa=(ProまたはAla)。res.63でのXaa=(AlaまたはVal)。res.65でのXaa=(Thr, Glu またはAla)。res.66でのXaa=(Gln,Lys,ArgまたはGlu)。res.67でのXaa=(Leu,Met, またはVal)。res.68でのXaa=(Asn,Ser, Gly またはAsp)。res.69でのXaa=(Ala,ProまたはSer)。res.70でのXaa=(Ile,Thr,LeuまたはVal)
。res.71でのXaa=(Ser,ProまたはAla)。res.72でのXaa=(Val,IleまたはMet)。res.74でのXaa=(TyrまたはPhe)。res.75でのXaa=(Phe,Tyr,HisまたはLeu)。res.76でのXaa=(Asp,LeuまたはAsn)。res.77でのXaa=(Asp,Glu, Asn またはSer)。res.78でのXaa=(Ser,Gln,Asn,AspまたはTyr)res.79でのXaa=(Ser,Asn,Asp,LysまたはGlu)。res.80でのXaa=(Asn,ThrまたはLys)。res.82でのXaa=(IleAsn またはVal)。res.84でのXaa=(LysまたはArg)。res.85でのXaa=(Lys,Asn,Gln,ValまたはHis)。res.86でのXaa=(Tyrま
たはHis)。res.87でのXaa=(Arg,Gln,ProまたはGlu)。res.88でのXaa=(Asn,GluまたはAsp)。res.90でのXaa=(Val,Thr,IleまたはAla)。res.92でのXaa=(Arg,Lys,Val,AspまたはGlu)。res.93でのXaa=(Ala,Gly,GluまたはSer)。rer.95でのXaa =(GlyまたはAla)。res.97でのXaa=(HisまたはArg)。
一般配列 6
Cys Xaa Xaa Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa Phe
1 5 10
Xaa Xaa Xaa Gly Trp Xaa Xaa Trp Xaa
15
Xaa Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Ala
20 25
Xaa Tyr Cys Xaa Gly Xaa Cys Xaa
30 35
Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
40
Xaa Xaa Xaa Asn His Ala Xaa Xaa
45 50
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
55
Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa Cys
60 65
Cys Xaa Pro Xaa Xaa Xaa Xaa Xaa
70
Xaa Xaa Xaa Leu Xaa Xaa Xaa
75 80
Xaa Xaa Xaa Xaa Val Xaa Leu Xaa
85
Xaa Xaa Xaa Xaa Met Xaa Val Xaa
90 95
Xaa Cys Xaa Cys Xaa
100
ここでXaaは以下に示すアミノ酸の1またはそれ以上の群から他とは無関係に、選択されたものである。Res.は残基residueを意味している。res.2でのXaa=(Lys,Arg,AlaまたはPro)。res.3でのXaa=(Lys,ArgまたはMet)。res.4でのXaa=(His,ArgまたはGln)。res.5
でのXaa=(Glu,Ser,His,Gly,Arg,Pro,Thr,Tyr)。res.7でのXaa=(TyrまたはLys)。res.8でのXaa=(LeuまたはVal)。res.9でのXaa=(Ser,Aspまたは Glu)。res.11でのXaa=(Arg,Glu,Ser,AlaまたはLys)。res.12でのXaa=(Asp,GluまたはLys)。res.13でのXaa=(Leu,IleまたはVal)。res.16でのXaa=(Gln, Leu,Asp,His,Asn またはSer)。res.17でのXaa=(Asp,Arg,AsnまたはGlu)。res.19でのXaa=(IleまたはVal)。res.20でのXaa=(IleまたはVal)。res.21でのXaa=(AlaまたはSer)。res.23でのXaa=(Glu,Gln,Leu,Lys,Proまたは Arg) 。res.24でのXaa=(Glyまたは Ser)。res.25でのXaa=(Tyrまたは Phe)
。res.26でのXaa=(Ala,Ser,Asp,Met,His,Gln,LeuまたはGly)。res.28でのXaa=(Tyr,AsnまたはPhe)。res.31でのXaa=(Glu,His,Tyr,Asp,Glnまたは Ser)。res.33でのXaa=(Glu,Lys,Asp,Glnまたは Ser)。res.35でのXaa=(Ala,Ser,Pro,GlnまたはAsn)。res.36でのXaa=(Phe,LeuまたはTyr)。res.38でのXaa=(Leu,Valまたは Met)。res.39でのXaa=
(Asn,Asp,Ala,Thrまたは Pro)。res.40でのXaa=(Ser,Asp,Glu,Leu,AlaまたはLys)) 。res.41でのXaa=(Tyr,Cys,His,Serまたは Ile)。res.42でのXaa=(Met,Phe,GlyまたはLeu)。res.43でのXaa=(Asn,Serまたは Lys)。res.44でのXaa= (Ala,Ser,GlyまたはPro)。res.45でのXaa=(Thr,LeuまたはSer)。res.49でのXaa=(Ile,ValまたはThr)。res.50でのXaa=(Val,Leuまたは Ile)。res.51でのXaa=(GlnまたはArg)。res.52でのXaa=(Thr,AlaまたはSer)。res.53でのXaa=(LeuまたはIle)。res.54でのXaa=(ValまたはMet)。res.55でのXaa=(His,AsnまたはArg)。res.56でのXaa=(Phe,Leu,Asn,Ser,Alaま
たはVal)。res.57でのXaa=(Ile,Met,Asn,Ala,ValまたはLeu)。res.58でのXaa=(Asn,Lys,Ala,Glu,GlyまたはPhe)。res.59でのXaa=(Pro,SerまたはVal)。res.60でのXaa=(Glu,Asp,Gly,ValまたはLys)。res.61でのXaa=(Thr,Ala,Val,Lys,Asp,Tyr,Ser,Ala,ProまたはHis)。res.62でのXaa=(Ala,ValまたはIle)。res.63でのXaa=(ProまたはAsp)。res.64でのXaa=(Lys,LeuまたはGlu)。res.65でのXaa=(ProまたはAla)。res.68でのXaa=(AlaまたはVal)。res.70でのXaa=(Ala,ThrまたはGlu)。res.71でのXaa=(Gln,Lys,ArgまたはGlu)。res.72でのXaa=(Leu,ValまたはMet)。res.73でのXaa= (Asn,Ser, Asp
またはGly)。res.74でのXaa=(Ala,ProまたはSer)。res.75でのXaa=(Ile,Thr,Valま
たはLeu)。res.76でのXaa=(Ser,AlaまたはPro)。res.77でのXaa=(Val,MetまたはIle
)。res.79でのXaa=(TyrまたはPhe)。res.80でのXaa=(Phe,Tyr,LeuまたはHis)。res.81でのXaa=(Asp,Asnまたは Leu)。res.82でのXaa=(Asp,Glu,AsnまたはSer)。res.83
でのXaa=(Ser,Gln,AsnTyr またはAsp)。res.84でのXaa=(Ser,Asp,Asn,GluまたはLys)。res.85でのXaa=(Asn,ThrまたはLys)。res.87でのXaa=(Ile,ValまたはAsn)。res.89でのXaa=(LysまたはArg)。res.90でのXaa=(Lys,Asn,Gln, His またはVal)。res.91でのXaa=(TyrまたはHis)。res.92でのXaa=(Arg, Gln,Glu またはPro)。res.93でのXaa=(Asn,GluまたはAsp)。res.95でのXaa=(Val,Thr,AlaまたはIle)。res.97でのXaa=(Arg,Lys,Val,AspまたはGlu)。res.98でのXaa=(Ala,Gly,GluまたはSer)。res.100 でのXaa=(GlyまたはAla)。res.102 でのXaa=(HisまたはArg)。
らに、米国特許5,011,6911号に開示されているCOP-1,3-5,7,16のように一般配列からデ
ザインされた生物的合成物は有用性がある。その他の配列としては、インヒビン/アクチビン蛋白質( 米国特許4,968,590、5,011,691号を参照)が含まれる。さらにまた、その
他の有用性のある蛋白質は上記の配列のいずれかと少なくとも70%のアミノ酸配列ホモロジー「相似性」を好ましくは80%ホモロジーか相似性を持ち、形態形成活性を示す。これらの物質は、このモルフォゲン蛋白質ファミリーの新規メンバーと同様に、自然発生的であろうと生合成的に製造されたものであろうと対立形変異、種特異型およびその他の配列変異型(「ミューテイン」または「ミュータント」蛋白質)をもつことが予想される。
アミノ酸配列と60% 以上の同一性好ましくは65%以上の同一性を持つもつもである。こ
れらの最も好ましい配列は、ショウジョウバエ60A蛋白質を含むOP-1とOP-2蛋白質の対立
形質型と種変異型の両方を含む。さらにまた、本発明の別の好ましい観点において、有用なモルフォゲンは、「OPX」としてここに示した一般アミノ酸配列を有するポリペプチド
鎖の種類から構成される、活性な蛋白質を含んでいる。このOPXは、OP1およびOP2(配列
表配列番号29) の色々な同定された種とホモロジーを持つ。
それらの自然発生的なまたは生合成的な突然変異株、種々の切断または融合形成物を含む欠失または付加変異体も活性を有すると予想され、これらは保存性C末端システイン骨格を変更していても、折りたたみ構造においてこれらのシステインの相互関係を機能的に妨げないような骨格変更であればそれらも含まれる。さらにまた、このような活性型は、ここに開示し特徴的に述べられている構成物と等質であると考えられる。蛋白質は、次のような変異形態を含む。異なるグリコシレーションパターン、異なるN末端、アミノ酸配列ホモロジーの領域を有する関連蛋白質のファミリー、天然あるいは宿主細胞で遺伝子組換えDNAの発現によって調製した生物合成蛋白質の活性化切断型または変異型などである。
成的活性組成物を構成するために二重化される。現在好ましい宿主細胞としては、大腸菌、CHO、COS、BSC細胞のような哺乳動物細胞がある。本発明の方法、組成物および装置に
有用なモルフォゲンの詳細な説明は、1991年3月11日出願667,274および1991年8月30日出
願752,764の米国特許出願に開示されており、ここに引用することによって一体化して開
示される。
の宿主で発現させ、哺乳動物の神経回路を維持することのできる活性な蛋白質を大量に生産することができる。この神経回路保護には、瀕死のニューロンの生存性を増強するヒトを含む色々な哺乳動物における神経の再生と修復を促進することを包含するものである。
死のニューロンに有効である。そして哺乳類の神経回路を維持するために有効である。ここに開示したように、これら蛋白質(「モルフォゲン」)は非分裂性ニューロンの生存性を増強することができ、神経細胞性CAMの発現を刺激し、分化したニューロンの表現型発
現を維持し、神経由来の形質転換細胞の再分化を誘導し、そして神経突起の破壊部分、特に遠位軸索の大きなギャップを超えて軸索成長を促進する。さらにまた、この蛋白質は、免疫学的に関係した神経組織の損傷に伴なう組織破壊作用を緩和するために神経保護作用を与えることができる。最後に蛋白質は哺乳動物の神経組織の生存性をモニターするための方法の一部分として使用できる。
持った神経細胞の生存性を増強し、哺乳動物の神経回路を維持するための治療剤としてここに説明するモルフォゲンおよびモルフォゲン促進剤の適合性を説明し、2)モルフォゲ
ンとモルフォゲン促進剤としての候補物質の有効性を評価する分析方法を提供する。
細胞および分子の発達性カスケードを誘導して新しい臓器特異的組織の形成を導き、保存された少なくともC末端の6個のシステイン骨格またはそれと機能的に等価のもの(上
記参照)から構成されているものであるならば、ここに定義するように、その蛋白質は形態形成性である。特に、モルフォゲンは一般的には、形態形成可能環境においては、次の生物学的機能全てを示すことができる。始原細胞増殖促進、始原細胞分化促進、分化細胞増殖促進、分化細胞の成長と維持を手助けする。
用により本発明と一体化される(COP-1,COP-3,COP-4,COP-5,COP-7 COP-16等)
さらに、本発明の方法と組成物において有用なモルフォゲンは、上に述べた配列のいずれかと、そのアミノ酸配列のホモロジー(相似性)が70%、好ましくは80%である。形態発生的に活性の蛋白質として記述される。ここで「ホモロジー」は上記に定義したものである。
一般配列1,2,3,4,5,6)で記述できるものである。一般配列1と2はN末端に次の配列を
含む。
Cys Xaa Xaa Xaa Xaa (配列表配列番号15)
1 5
以下にしめした表IIは天然蛋白質の活性領域のアミノ酸配列を比較したもので、それはモルフォゲンとして特定され、次のものを含む。ヒトOP-1(hOP-1, 配列表配列番号5および16 17)、マウスOP-1(mOP-1, 配列表配列番号6および18 19)、ヒトおよびマウスOP-2(配列表配列番号7,8および20 23)、CBMP2A(配列表配列番号9)、CBMP2B(配列表配列
番号10)、BMP3(配列表配列番号26)、DPP(ショウジョウバエ由来、配列表配列番号11
)、Vgl(ツメガエル由来、配列表配列番号12)、Vgr-1(マウス由来、配列表配列番号13)、GDF-1(マウス由来、配列表配列番号14,32および33)、60(A)蛋白質(ショウジョ
ウバエ由来、配列表配列番号24 25)、BMP5(配列表配列番号27)、BMP6(配列表配列番
号28)。配列はNeedlemanらの方法(1970,J.Mol.Biol.48:443-453)を使用して、直列に
並べアラインプログラム(DNAstar,Inc)で同一性を計算した。表中の3つのドット(...)は、その位置のアミノ酸はhOP-1のアミノ酸と同じであることを示している。3つのダ
ッシュは、その位置にはアミノ酸がないことを示し、かつホモロジーを説明するために含まれている。例えば、CBMP-2AとCBMP-2Bの残基60は欠失している。もちろんこの領域の両方のアミノ酸配列はAsn-Ser(残基58、59)からなり、CBMP-2Aでは次にLysとIleが、CBMP-2BではSerとIleが続く。
(表II)
にもかかわらず、GDF-1配列は、hOP-1配列と70%以上のアミノ酸配列のホモロジー(或いは相似性)を持つ。ここで言う「ホモロジー」、「相似性」は、Dayoffらにより、Atlas of Protein Sequence and Structure : vol.5,Suppl.3,pp.345-362(M.O.Dyoff,ed.,Natl
BioMed.Research Fdn.,Washington,D.C. 1979)に示されている方法によって特定される、配列中の許容された保存性アミノ酸の変化を含む。
基43-139)の保存された6個のシステイン骨格で特定されるアミノ酸配列と60%以上、さ
らに好ましくは65%以上の同一性をもつ。これらの最も好ましい配列は、ショウジョウバエ60A蛋白質、OP-1, OP-2の対立形質および種変異体の双方を含む。さらに、他の好まし
い観点において、本発明は、7個のシステイン骨格を持ち、種々の特定されたマウスおよ
びヒトのOP1、OP20蛋白質に共通する、「OPX」としてここに示した一般アミノ酸配列を有するポリペプチドの種からなるモルフォゲンを含む。OPXは配列表配列番号29に示してい
る。そこに記載するように、夫々のXaaはその位置で、マウスまたはヒトOP1またはOP2の
C末端配列(配列表配列番号5-8および/または配列表配列番号16-23)の相当する位置で得られる残基から他とは無関係に選択される。
モルフォゲンは好ましい方法で個体に投与される。投与は好ましくは直接的(神経組織への注射のように局部的に)または全身的(非経口与または経口投与)である。モルホゲンは非経口的に投与できる。静脈内、皮下、筋肉、眼窩、目、頭蓋、関節嚢、心室、脳槽、腹膜、頬、直腸、膣、鼻腔内またはエアロゾール投与をあげることができる。モルホゲンは好ましくは水溶液にすることもできる。溶液は患者に対して所望のモルフォゲンを与えるのに加え、患者の電解質と容易バランスに負の影響を与えないので生理的に受容可能である。モルフォゲンの水性媒体は通常の生理食塩水(9.85%食塩、0.15M)pH7-7.4である。モルフォゲンを含有する水性溶液は、一例を上げると、0.1%トリフロロ酢酸(TFA)または0.1%塩酸含有アセトニトリルの50%エタノール溶液、あるいは同等の溶媒に蛋白
質を溶解させて調製することができる。得られた溶液1容量に10容量のリン酸緩衝食塩水
(PBS)を加え、さらに0.1-0.2%ヒト血清アルブミン(HSA)を加えてもよい。得られた
溶液は、好ましくは持続的に攪拌する。必要であれば、与えられたモルフォゲンはその他の適切な分子とを結合させて溶解度をあげることができる。例えばモルフォゲンのプロドメインを成熟2量体と結合させると、蛋白質の溶解性を相当あげることができる。(下記セクションII.1を参照)。実際、内因性蛋白質はこの形態で移送されると考えられる。溶解性を促進するものとして、特に経口投与に有用なその他の分子は、カゼインをあげることができる。例えば、0.2%カゼインの添加はOP-1の成熟活性型の溶解度を80%増加させ
る。牛乳および/または種々の血清蛋白質に見出されるその他の成分も有用である。
処方は、例えば、ポリオキシエチレン-9-ラウリルエーテル、グリココレート、デオキシ
コレートを含有する水性溶液あるいは油性溶液であって鼻腔内にゲルとして投与するかあるいは、鼻腔に滴下する形態のものである。非経口的処方はバッカル投与のためにグリコレートを含有するか、直腸内投与のためメトキシサリチレートを含有するか、膣内投与のためカットリック酸を含有するものである。
分泌物で、初乳および57日めの乳から同定されている。さらに乳腺分泌物から精製したOP-1はモルフォゲンの活性を有している。特に、米国特許4,968,590に開示されている、標
準的に採用されているインビボ骨アッセイ法を使用して、適切なマトリックス素材と共に皮下に移植した場合、この蛋白質は哺乳動物の軟骨形成を誘導する。さらに、モルフォゲンは血流から検出される(下記実施例9を参照)。最終的に、溶解型モルフォゲン、例え
ばプロドメインと結合させた成熟モルフォゲンは哺乳類の神経経路を維持する作用をを有している(下記実施例4および6を参照のこと)。これら知見は、経口および非経口投与物は、個体に対して投与した場合、モルフォゲンが生物活性を示すことを意味している。さらに、ここに示したモルフォゲンの成熟型は、典型的には非常に低い溶解性を示すが、乳(および乳腺分泌物と初乳)に見出されるモルフォゲンの形態は、非常にとけやすい。恐らく成熟型のモルフォゲン活性形が、完全な配列のプロドメインの一部または全部と結合するか、1つまたはそれ以上の乳成分と結合しているかによるのであろう。したがって、ここで提供される化合物はインビトロ、インビボでその溶解性を促進できる分子と結合させてもよい。
たモルフォゲンをその組織に方向づけることができる。さらにまた、神経組織に対してモルフォゲンをターゲッティングさせるための別な有用な分子は、モルフォゲンプロドメインの1部または全部であり、特に、自然に神経組織に結合することが確認されているOP-1
またはGDF-1のプロドメインの一部または全部はである。
与範囲は一日体重1kg当たり0.1μから100mgである。最適には、全ての場合において投与
されるモルフォゲンの量は、一日患者の体重1g当たり2-20μの間である。21日間連続して正常な成長期のラットに毎日成熟型モルフォゲン(OP-1,20μg)を投与した時、OP-1による生理学的問題はなにも認められない。さらに、正常な新生マウスに10日間毎日モルフォゲン(OP-1)を10μg全身的に注射したところ、どのような異常も発生しなかった。
生産および/または分泌を促進する物質を、哺乳動物に対して与えることができるが、これは治療されるべき神経組織に結合しているグリア細胞に対してモルフォゲンを直接投与して行なう。一定の組織中の内因性モルフォゲンのレベルを変更させることのできる物質の特定と試験を行うための方法は、ここでは実施例13に一般的に説明してあるが、国際出願US92/07359(WO93/015172)に詳細に説明してあり、引用によってここに一体化して開
示される。要約すれば、候補化合物は、試験組織の細胞によって生産されるモルフォゲンの生産、即ち発現および/または分泌にその化合物が影響を与えるのに十分な時間、試験組織またはその細胞と共にインビトロで試験化合物をインキュベートすることによって、同定し試験することができる。ここで適切な組織または培養された組織細胞は、このましくはニューロンおよび/またはグリア細胞からなっている。例えば、試験のための適切な組織は黒質、下垂体グリア細胞および類似組織から単離された培養細胞を含んでいる。
うな生体内適合性の接着物質で縫合するかあるいはその他公知の医学的手段で神経案内回路に結び付けられる。
水溶液の溶解性が改善され、本質的にアミノ酸で構成されている、治療用の製剤として有用なモルフォゲンの好ましい形態は、少なくとも100のアミノ酸ペプチド配列からなる
二量体モルフォゲン蛋白質またはその対立形質体、種変異体または他の配列変異体である。このアミノ酸ペプチド配列は、モルフォゲンファミリーのメンバーのプロ領域の一部または全部からなるペプチドと複合したモルフォゲンファミリーに特徴的な、7またはそれ
以上のシステイン残基のパターンを持つ。また対立形質、種特異的あるいはそれらの変異体からなるものである。好ましくは、二量体モルフォゲン蛋白質は2つのペプチドと複合
している。さらにまた、二量体モルフォゲン蛋白質は、好ましくは非共有的にプロ領域ペプチドまたはペプチドと複合している。また、プロ領域ペプチドは、好ましくはもとのモルフォゲンプロ領域を特定するN末端側18アミノ酸を少くとも持っている。もっとも好ましい実施態様では、実質的にプロ領域の全長を特定するペプチドが使用される。
れるようになっている。例えば、OP-1においては可能性のあるプロ配列は残基30-292(全長型)、48-292および158-292によって特定される配列を含む。溶解性OP-1コンプレック
スの安定性は、プロ領域が48-292切断型のような切断型であるよりも、むしろ全長型である時に増強される。なぜなら残基30-47は他のモルフォゲンのN末端部分と配列のホモロ
ジーを示していて、全てのモルフォゲン対してコンプレックスの安定性を増強するので有用性が高いと考えられている。したがって、一般的に好ましいプロ配列は、与えられたモルフォゲンのプロ領域の全長をコードしたものである。有用性のあることが期待されているその他のプロ配列は生物合成プロ配列であって、特に1またはそれ以上のモルフォゲン
プロ配列のN末端部に由来した配列を組み込んだものである。
別の可能性としては、1またはそれ以上の公知のプロ領域の合成配列の変異体をつくり出
すことである。
モルフォゲンは可溶性コンプレックスとして哺乳動物細胞に発現される。しかし、通常コンプレックスは、精製溶液中にしばしば添加される界面活性剤、アルコール、有機溶媒、カオトロピック剤および溶液のpH低下のために添加される化合物等の変質剤にさらされることによって、精製中に触離する。以下に示すものは、非変質条件下で調製された培地(または場合により、血清、脳脊髄液あるいは腹膜液のような体液)から可溶性蛋白質を精製するための一般的に好ましいプロトコールである。本方法は、素早く、再現可能であ
り、そして実質的に純粋な状態で単離された可溶性モルフォゲンコンプレックスを産出する。
般的には適用可能である。なお、変異体全てが以下に説明するプロトコールのマイナーな変更を行うだけで単離できると予想される。さらにまた他のプロトコールは与えられたモルフォゲンのプロドメイン(例えばプロテインA結合セファロースカラムに対して結合し
た)に対して特異的に結合する抗体を用いるなどの標準的な手法で作られたイムノアフィニティカラムにおいて有用性を持つことが想定している。イムノアフィニティカラムを調製するためのプロトコールは先行技術に開示されている(例えばGiede to Protein Purification, M.Deutscher,ed.,Academic Press,San Diego,1990, のセクションVIIとXIを特
に参照のこと)。
されたように哺乳動物細胞であるCHO(chinese hamster ovary)細胞で発現させた。0.5
%FBSを含むCHO細胞調整培地は最初にImmobilized Metal-Ion Affinity Chromatografy(IMAC)を使用して精製した。調製培地からの可溶性OP-1は非常に選択的にZn-IMAC樹脂に
結合し、高濃度のイミダゾール(50mM イミダゾールpH8.0)で結合したコンプレックスを効率的に溶出した。Zn-IMACのステップでは、フロースルーと35mMイミダゾールで洗浄し
たフラクションに溶け出す汚染性の血清蛋白質のブルクと可溶性OP-1とを分離する。Zn-IMACで精製した可溶性OP-1は、次いで50mM NaClを含む20mM NaPO4(pH7.0)で平衡化したS-セファロース 陽イオン交換樹脂カラムにかける。このS-セファロースステップはさらに精製を行い、そして次のゲル濾過ステップのための前処理として可溶性OP-1コンプレックスを濃縮する。蛋白質はTBSで平衡化したセファクリル S-200HRカラムにかける。基本的
には同一のプロトコールを用いて、可溶性のモルフォゲンを血清、脳脊髄液、腹腔内液などの1またはそれ以上の体液から単離することができる。IMACは、カラムの3倍容量の0.2M
ZnSO4でチャージしたキレート化セファロース(Pharmacia製)を使用して行う。調製培
地はpH7.0に調整し、500mM NaCl含有20mM HEPES(pH7.0)で平衡化したZn-IMAC樹脂に直
接負荷した。Zn-IMAC樹脂は、樹脂1mlあたり調製培地80mlを負荷させる。負荷後カラムを平衡化緩衝液で洗浄し、混入している他の蛋白質の大部分を35mMイミダゾールを含む平衡化緩衝液(pH7.0)で溶出した。次いで可溶性OP-1コンプレックスを50mMイミダゾール(pH8.0)を含む20mM HEPES-500mM食塩溶液で溶出した。
した。見たところでは溶性OP-1の分子は蛋白質分子量標準と比較して決定した。分子量標準はアルコールデヒドロゲナーゼ(ADH 150kDa)、ウシ血清アルブミン(BSA 68kDa)、
カルボニックアンヒドラーゼ(CA 30kDa)およびチトクロームC(cyt C 12.5kDa)である。S-200カラムのフラクションの精製度は標準的な15%SDS ポリアクリルアミドゲルのク
ーマシーブルー染色による分離によって決定した。成熟OP-1とプロドメインの特定は、標
準的な逆相C18HPLCを用いてプロドメインから成熟OP-1を分離してN末端アミノ酸配列を
分析して決定した。
コンプレックスの組成の予想値に一致した。最終的なコンプレックスの純度は還元型15%ポリアクリルアミドゲルに適切なフラクションを流下させて証明することができる。
解離し、プロドメインと成熟種は分離した種として溶出する。ついでこれらの分離した種は標準的な手法(例えばGuide to Protein Purification, M. Deutscher,ed.,Academic Press,San Diego,1990, 特に602-613ページを参照)を用いてN末端配列を決定する。そして分離した36kDaと39kDaの蛋白質は夫々成熟モルフォゲンおよび単離され、切断されたプロドメインであることが確認された。哺乳動物細胞の生産したOP-1からの単離したプロドメインのN末端配列は、プロ領域の2つの型を示していた。これは完全型(配列表配列番号16の残基30からはじまる)と切断型(配列表配列番号16の残基48からはじまる)である。単離した成熟種のポリペプチドサブユニットのN末端配列は成熟配列のN末端が配列表配列番号16の残基293、300、313、315、316および318からはじまっていることを明らかにした。さらにこれらのすべてが標準的な骨誘導分析法で活性を示していた。
培養培地または体液から可溶性コンプレックスを精製するかわりに、可溶性コンプレックスを精製したプロドメインと成熟型二量体種から構築することもできる。明らかに、上手なコンプレックス形成は、SS結合に影響しないように、これらの分子の折り畳み構造を緩めるのに十分な変性条件の下で成分を結合させることが必要となる。好ましくは、変性条件は、切断されたプロドメインが、緩められた折り畳み条件下で成熟型二量体種と結合する機会を持つように細胞内小嚢の条件に十分に似せておく。そのときの溶液中の変質剤の濃度は、二量体とプロドメインの結合を維持する一方で、二量体とプロ領域とが適切なリフォールディングを行えるように、好ましくは段階的にコントロールして減らしていく。有用な変質剤は、pH4-10、好ましくはpH6-8の緩衝溶液中に4-6M尿素またはグアニジン
塩酸塩(GuHCl)を含むものである。そのとき可溶性コンプレックスは、透析で制御する
か、または尿素あるいはGuHClの0.1-2M以下、好ましくは1-2M以下の最終変質剤濃度に溶
液を希釈することで形成される。尿素あるいはGuHCl濃度は、好ましくは生理的な緩衝液
で希釈する。蛋白質の精製/再生手段と要件は先行技術に開示されており、適切な再生プロトコールを開発するための詳細は、当業者によって容易に決定することができる。この問題に対する一つの有用なテキストは、Guide to Protein Purification, M.Deutscher,ed.,Academic Press,San Diego,1990,とくにセクションVをあげることができる。コンプレックス形成はまた、1またはそれ以上のシャペロン蛋白質を加えることで補助される。
生理学的緩衝液、例えばトリス緩衝食塩水(TBS)およびリン酸緩衝食塩水(PBS)中の高純度可溶性モルフォゲンコンプレックスの安定性は、多くの手段のうちどれでもで増強できる。一般的に好ましい方法は、少なくともプロ配列の最初の18アミノ酸配列表配列番号16のOP-1の残基30-47)からなるプロ領域を使用することであり、プロ領域の全長を使
うことは特に好ましい。残基30-47はその他のモルフォゲンのN末端部分と配列にホモロ
ジーがあり、そして全てのモルフォゲンにとってコンプレックス安定性を増強するために特に有用であると考えられている。可溶性モルフォゲンコンプレックスの安定性を増強するためのその他の有用な手段は、3種類の添加物を含む。これらの添加物は塩基性アミノ
酸(L-アルギニン、リジンおよびベタイン等)、非イオン性界面活性剤(Tween-80またはNonIdet p-120)およびキャリアー蛋白質(血清アルブミンおよびカゼイン等)を含む。
これらの添加物の有効濃度は塩基性アミノ酸の場合1-100mM、好ましくは50mMを含む10-70mMであり、非イオン性界面活性剤の場合0.01-1.0%、好ましくは0.1%(v/v)を含む0.05-0.2%、キャリアー蛋白質の場合0.01-1.0%、好ましくは0.1%(w/v)を含む0.05-0.2%である。
モルフォゲンの組織分布を測定することは、得られた組織で発現した異なるモルフォゲンを、関連するモルフォゲンと同様に、同定するために使用される。組織分布は、候補モルフォゲン誘導物質のスクリーニングと同定の為に有用なモルフォゲン生産組織を同定するのに使用される。組織分布はさらに候補モルフォゲン誘導物質をスクリーニングし同定する為に有用なモルフォゲン産生組織を同定するのに使用されるモルフォゲン(あるいはmRNAの転写)は、発現が低い組織でも、標準的な手法と一部変法を用いて異なった組織で容易に同定される。例えば、蛋白質の分布は標準的なウエスタンブロットや免疫蛍光操作とモルフォゲンあるいは目的のモルフォゲン群に特異的な抗体で同定できる。同様にモルフォゲンmRNAの分布は、標準的なノーザンハイブリダイセーション法とmRNA特異的プローブを用いて特定される。
列は、PvuII-SacI断片であり、非翻訳プロドメインと成熟N末端領域の両方をコードする265bpのフラグメントからなる(Lyons et al.(1989)PNAS 86:4554-4558にcDNA配列が記載されている。同様に、特に有用なmOP-1特異的プローブ配列がBstXI-BglI断片であり、mOP-1のプロ領域の殆ど2-3番目をカバーしている0.68kbの配列である。StuI-StuI断片、7
システインドメインの直前の上流配列0.2kb。EarI-PstIフラグメント、3'非翻訳配列の部分を含む0.3kbフラグメント(配列表配列番号18、プロ領域は残基30-291で必須として特
定されている)。同様のアプローチが使用され、例えばhOP-1(配列表配列番号16)、ヒ
トまたはマウスOP-2(配列表配列番号20および22)に使用。
腺、胃)から、Chomezyaskiらの方法(1987、Anal. Biochem 162:156-159)および以下に示した方法のような標準的な方法で調製した。ポリ(A)+RNAはオリゴ(dt)-セルロースクロマトグラフィー(ファルマシアLKB バイオテクノロジーInc.)を用いて調製した。各組織からのポリ(A)+RNA(通常15μg)を1%アガロース/ホルムアルデヒドゲルで分離
し、Nytran膜(Schleicher & Schuell)に移した。転移に続いて、メンブランは80℃に加温し、RNAはUV光で架橋させた(通常1mw/cm2で30秒間)。ハイブリダイゼーションに先立ち、加熱により適当なプローブを変性させた。
フィルターの非特異的カウントを洗浄した。
載した通常のプローブ技術を用いて、脳、脾臓、肺、心臓、肝臓および腎臓組織に対するこれらのモルフォゲンに特異的なプローブを使ったノーザンブロットハイブリダイゼーションは、腎臓関連組織がOP-1の最大の発現ソースであることを示しており、脳、心臓、肺組織が第二のソースであることを示している。OP-1 mRNAもまた、このプローブ法によっ
て唾液腺、特にラット耳下腺中に特定されている。肺組織は、Vgr-1, BMP5, BMP4およびBMP3の最大の組織発現ソースであるとおもわれる。Vgr-1の低レベルは腎臓と心臓組織に認められ、一方、肝臓はBMP5の第二の発現ソースであり、脾臓はBMP4の第二の発現ソースであることが示された。GDF-1は脳中で一番多く発現されている。今日ではOP2は、初期の栓塞組織において一番多く発現していることが確認されている。特異的にマウス胚と出生後6日めの動物のノーザンブロットでは、8日めの胚にOP2の発現が認められた。発現は17日
目の胚で顕著に減少し、出生後の動物では検出されなかった。
モルフォゲンは成長中および成熟ラットの脳および脊髄組織に特定されており、成長期および成熟ラットの神経組織(上記実施例1)から抽出したmRNAにたいしてモルフォゲン特異的プローブのノーザンブロット法と免疫組織学的研究法によって特定されている。例えば、成長期ラット組織のノーザンブロット分析ではCNS中で明らかにOP-1 mRNAの転写発現が確認されている(国際出願US92/01968(WO92/15323)、Ozkaynak et al.,1991,Biochem.Biophys. Res. Comm.,179:11623、Ozkaynak,et al., 1992,J.Biol.Chem.,267:25220-25227)。GDF-1 mRNAは成長期および成熟ラットの神経組織で最も多く発現することが確認されている。特に小脳および脳幹を含む脳、脊髄および末梢神経で確認されている(Lee,S.,1991,PNAS 88:4250-4254)。BMP2B(BMP4として先行技術を参照)およびVgr-1の転写
は神経組織で発現することが報告されている(Jones et al.,1991,Development,111:531-542)。しかし神経組織ではこれらの遺伝子の初期発現組織は知られていない(Ozkaynak,et al.,1992,J.Biol.Chem.,267:25220-25227)。特にCBMP2 の転写は、下垂体の発達に伴って間脳の領域で発現することが知られており、Vgr-1のmRNAは、発達中の神経管の底板
にきわめて隣接した細胞中と同様に、発達中の神経管の上衣板を含む、CNSの腹背軸で報
告されている。老齢ラットでは、Vgr-1のmRNAが、発達した海馬組織で報告されている。
さらにOP-1とBMP-2を本来的にコードする遺伝子は、ヒト海馬cDNAライブラリーをプロー
ブして特定された。
一のそして広い範囲に染色が、脳(1A)と脊髄(1B)に認められた。
の存在を示すことができる。同一のそして広い範囲に染色が、脳(1A)と脊髄(1B)に認められた。OP-1は、灰白質(神経細胞体)の細胞外マトリックスに一番多く分布していることが確認されており、細胞体それ自身を除いて全体に明らかに存在している。ミエリン鞘化した神経繊維で主に形成された白質には、染色は神経膠星状細胞(グリア細胞)限定されていることが確認された。さらにまた同様の染色パターンが新生ラット(10日齢)の脳部分に観察された。
しい神経突起の周辺に管腔形成とミエリン鞘形成誘導することを含む、ラット脊髄の神経繊維形成を促進することが発見された(Bung,1991,Exp.Neurology,114:254-257)。これ
らの細胞の再生能力はシュワン細胞によるモルフォゲンの分泌によって媒介させることができる。
ここに述べたモルフォゲンは細胞の生存性を増強するが、特に瀕死の神経細胞の生存性を増強する。例えば、十分に分化したニューロンは非分裂性であり、公知の合成培地あるいは低血清培地を用いて、標準的な哺乳動物細胞培養条件下で培養した時、インビトロでは死滅する(Charness,1986,J.Biol.Chem.,26:3164-3169、Freese et al.,1990,Brain Res.,521:254-264を参照のこと)。しかし、もし非分裂性神経細胞の初代培養がモルフォゲンで処理された場合、これらの細胞の生存性は大幅に増強される。例えば、成熟ラット脳の黒質から単離された線条体基底節の初代培養は、標準的な方法を使用して行われた。即ち黒質組織をパスツールピペットを使って均質化して分離し、標準的な組織培養プロトコールをを使用し、低血清培地、例えば50%DMEM(Dulbecco's modified Eagle's medium)、50%F-12培地、ペニシリン/ストレプトマイシン添加不動化馬血清、4g/lのグルコース
を用いて増殖させた。標準的な培養条件の下では、これらの細胞は無血清培地で培養した時3週間で明らかに死滅していった。細胞死は、細胞接着性の不活性化とその超微細構造
的な特徴の変化例えばクロマチン凝集とオルガネラ崩壊などにより、形態学的に明らかな事実であった。
かに増強され、添加したOP-1のレベルに依存していた。OP-1の濃度が細胞培養中で増加したとき、明らかに細胞死が減少した。特異的に、細胞は接着性を残し、生存分化ニューロンの形態学的特性の保持が持続した。モルフォゲン処理がない場合には、培養細胞の殆どが解離し、細胞壊死をきたした。
ここに述べたモルフォゲンは形質転換細胞を、非形質転換細胞に特徴的な形態学的特性への再分化を誘導する。特にモルフォゲンは神経由来の形質転換細胞を非形質転換ニューロンの形態学的特性への再分化を誘導することができる。神経由来の形質転換ヒトNG108-15株の再分化を誘導したモルフォゲンについて、以下に示す実施例で詳細を説明する。また形質転換細胞のモルフォゲン誘導再分化はマウス神経芽腫細胞(N1E-115)およびヒト
胎児カルシノーマ細胞についてである(国際出願US92/01968(WO92/15323)を参照)。
形態学的特徴を有している。即ち繊維芽細胞の形態学性を有している。特に細胞はポリゴナルな細胞体を有し、短い、スパイク様の突起を有し、近接細胞にまれに接触する(図1A)。NG108-15細胞を無血清の合成倍地中で0.1から300ng/mlのOP-1をいれて4時間インキュベーションすると、確実に濃度依存性の細胞形態学的変化が誘導される。
には2.5mlの合成培地中に細胞を40-50,000個を含有させた。3日めに0.025%のトリフルオロ酢酸を含む60%エタノールにOP-1 2.5μlを各ウエルに添加した。OP-1の濃度は0-300ng/mlで試験を行った。通常、培地は新しいOP-1のアリコートで毎日交換し、さらにモルフ
ォゲンは、OP-1での4時間のインキュベーションによって誘導できた。さらにOP-1の濃度
を10ng/mlにすることで再分化を十分誘導した。1日後に、hOP-1処理細胞は明らかにその
細胞の超微細構造が変化した。その変化は細胞体の周囲を含んでおり、相の鮮やかさが増加しそして短い神経突起が長くなった。2日後、OP-1で処理した細胞は上皮性シートを形
成し始めた。このシートは処理後3日目にはじまる多層凝集成長の基を供給している。4日目までにOP-1処理細胞の殆どが密着した多層凝集状態に結合した(図1B)。図2は、モル
フォゲン濃度の作用として、6つの独立した実験群からランダムに選択した20の視野中の
多層凝集あるいは細胞凝集の平均数をプロットしたものである。40ng/mlのOP-1は細胞凝
集の最大値の半分を誘導した。
ような変化ももたらさずに起こり、これは、形態学的変化が細胞の分化あるいはhOP-1の
毒性作用にとって2次的なものではないということを示している。さらにOP-1誘導性形態形成は、形質転換細胞の分化を増強することがわかっている酪酸塩、DMSO、レチノイン酸、フォルスコリンのようなその他の分子とは異なり、トリチウムチミジンの取り込みによって測定したように、細胞分裂を阻害しなかった。データは、OP-1が細胞の安定性と生存性を再分化誘導後も維持できることを示している。さらに効果はモルフォゲンに特異的であって、NG108-15細胞を0.1-40ng/mlのTGF-βでインキュベートした時には再分化は誘導
されなかった。
正常細胞の生存性を増強し、再分化細胞の細胞凝集および細胞−細胞接着を誘導するここに説明するモルフォゲンの機能は、モルフォゲンが化学的に引き起こされた損傷から回路を保護している細胞を保護していることによって、神経回路を維持するための治療剤として有用であることを示している。特にモルフォゲンはニューロンを保護することができる。これは、ニューロンの増殖と遊走を阻害し、細胞と細胞の接着を邪魔することが知られている毒物の作用からニューロンを保護して発達させることを含んでいる。このような毒物の例としてはエタノールが含まれ、タバコの煙中に含まれる1またはそれ以上の毒物
および種々の阿片化合物がある。ニューロンの発達におよぼすエタノールの毒性作用は、胎児性アルコール症候群であきらかにされた神経学的損傷を誘発させる。モルフォゲンはまた、グルタミン酸塩のような興奮性アミノ酸に関連した細胞毒性からニューロンを保護することができる。
んだ後の成人の血液中のアルコール濃度である。モルフォゲン誘導N-CAMレベルがエタノ
ールによって影響されないので、むしろエタノールはCAMの誘導より細胞とCAMの特異的な結合を恐らく障害している。さらに、抑制的な作用はモルフォゲン濃度に逆比例している。従って、エタノールのような毒物に露出することからの損害のリスクにあるニューロンであって、特に発達中のニューロンに対してモルフォゲンまたはモルフォゲン促進剤を投与することは、毒物の阻害作用を回復することによって神経組織の損害からこれらの細胞を保護することになると予想される。ここに述べたモルフォゲンは、これらの毒物に露出して誘導されたニューロパシーからもたされる損傷した神経経路を処置するための治療に有用である。
ここに説明したモルフォゲンは、形態形成誘導の一部としてCAMの発現を誘導し、特にN-CAM発現を誘導する。CAMは組織発達の必須段階として、全ての組織から同志された形態
形成制御分子である。N-CAMは少なくとも3種の異性体からなっており(N-CAM-180、N-CAM-140、N-CAM-120、ここで180、140、120はポリアクリルアミドゲル電気泳動で測定した
およその分子量である)少なくとも、一時的に発達中の組織で発現されており、そして神経組織では永続的である。N-CAM-180、N-CAM-140どちらの異性体も発達中の組織と成熟組織両方で発現している。N-CAM-120は、成熟組織のみで見出される。他に中間型CAMであるL1がある。
胞凝集、束化、シナプス形成等を含む。N-CAM特異的抗体を用いて分子を複合化すること
によるN-CAM生産の阻害は網膜の形成を阻害する。網膜の形成阻害には網膜の軸索の凝集
、標的の筋細胞への軸索の接合のような末梢神経系での軸索形成がある。さらに、物理学的あるいは化学的ニューロンの損傷、癌性形質転換およびなんらかの遺伝性神経疾患が、細胞の接着性と凝集性を変更する、CAMの発現における変化によって組み合わさっている
ことが明白な事実として示されている。特にN-CAMレベル増加はハンチントン舞踏病の線
条体(線条体基底節など)で増加し、接着性減少はアルツハイマー疾患で記録されている。
とL1の生産を刺激することが可能である。例えば、N-CAMの発現はモルフォゲン処理NG108-15細胞では顕著に促進されている。未処理NG108-15細胞は繊維芽細胞性の、あるいはほ
んの少しだけ分化した形態学的特性を示し通常は分化細胞に見られるN-CAMの180と140の
みを発現する。モルフォゲン処理に引き続いて、これらの細胞は成熟ニューロンの形態学的特性を示し、N-CAMの3種の異性体すべての発現レベルが増強された。下記の実施例に示したと同様なプロトコールを用いると、さらにまたモルフォゲン処理NG108-15細胞のL1発現が誘導された。
種の異性体全てに交差反応する抗体mAb H28.123 を用いたところ検出された。抗体はSigma Chemical Co.St.Louisから入手できる。異なった異性体はゲル電気泳動の異なった移効度によって区別することができる。対照のNG108-15細胞(未処理)は、100μgの蛋白質を用いてウエスタンブロットを行って確認した所、140kDaと180kDaの異性体を発現しているが、120kDaは発現していない。OP-1処理NG108-15細胞は、120kDa異性体を誘導すると同時に、濃度に依存して180kDaと140kDaの異性体の発現が増加する。図2A、図2BではmAb H28.123をプローブとして行ったOP-1処理NG108-15細胞抽出物のウエスタンブロットを示して
おり、3つの異性体全ての誘導が認められる。図2Aはモルフォゲン濃度の作用としてN-CAM-180とN-CAM-140の容量反応曲線をである。N-CAM-120はグラフ中に認められず、対照細
胞中では定量できなった。しかし図2Aのウエスタンブロットであきらかなように、N-CAM-120はモルフォゲン処理に応答して誘導されている。N-CAM-180とN-CAM-140の異性体に認
められる誘導の違いは、140異性体の構成的発現が最大値に近く、ことによるものと考え
られる。
較した。図3は6つの独立した実験でランダムに選択した20のフィールド当たりのモルフ
ォゲン濃度に対する、多層性凝集(凝集)の平均数をグラフ化したものである。120異性
体の誘導はモルフォゲン誘導された形質転換細胞の再分化は形質転換された発現型細胞からの細胞の再分化を促進するだけでなく、成熱細胞へ作用して発現型への分化も促進したことを示している。モルフォゲン処理細胞にmAb H28.123を用いて行った免疫組織学的研
究では、末梢と処理細胞の神経突起を結びつけるN-CAMクラスター形成が認められ、未処
理細胞では反応していなかった。さらにまた、モルフォゲン処理は、細胞数の計数またはトリチュウムチミジンの取り込みによって測定したところ、細胞分裂は抑制しなかった。最後に、フォルスコリンとジメチルスルフオキシドのような公知の化学的分化剤はN-CAM
生産を誘導しなかった。
レオチドの両者の濃度は、多層化細胞凝集の形成をも阻害する。特に0.3-3μMのN-CAMア
ンチセンスS-オリゴ、5-500μM非修飾N-CAMアンチセンスオリゴあるいはまた10μg/ml
mAb H28.123とモルフォゲン処理細胞をインキュベーションすると、明らかに細胞の凝集
が抑制される。阻害が完全でない場合には、モルフォゲンがその他のCAMを増強させるら
しい。
した方法を用いて、インビトロで評価できる。さらに形質転換細胞株に対するN-CAMの発
現は、ここに記載した方法に従って、神経性細胞またはグリア細胞の初代培養で評価できる。インビボでのN-CAM発現におけるモルフォゲン処置の有効性は、以下の実施例9で述べたような組織バイオプシーと、実施例11で述べた動物モデルを用いるかmAb H28.123のよ
うなN-CAM特異的抗体でN-CAM分子を検出することで評価できる。
ルは、モルフォゲン処置の効果を評価して検出できる。N-CAM分子は細胞表面から脱落す
ることが知られており、血清および脳脊髄液の両方から検出できる。さらに、可溶性N-CAMのレベルの変化は、正常圧の水頭症とタイプIIの分裂病に関係している。N-CAMの体液レベルは実施例9に述べた方法とmAb H28.123nのようなN-CAM特異抗体を用いることで検出できる。
ここに述べたモルフォゲンはまた、損傷神経回路の修復と再生を行って、引き離された距離を超えて末梢神経系の軸索の成長を促進させる。末梢神経系のニューロンは誘導なしに、損傷の後に新しい神経突起を発生させることができる一方で、この発生が適切に結合しないと死滅する。切断の長さは5または10mmの場合には、再生は困難であるか、まった
く不可能である。
生する。この特別な場合とは、生理食塩を満たした神経誘導集管に切断末端を挿入しギャップ中におく。この実験では神経の再生は12mmのギャップを越えて試験された。
た。皮膚の切開は、太腿骨に対して平行させ、そして、ちょうど後方側で行った。外側広筋と膝腱筋肉との間の無血管筋肉内平面が、座骨神経を取り巻く疎性線維輪紋状組織に対してくみこまれ、そして続いている。疎性組織が縦に分割されており、どの部分においても血流遮断なしに、座骨神経を十分に引き離してフリーにすることができる。外科手術顕微鏡下で座骨神経を微小鋏を用いてmid-thighで切断し、12mmに神経切断端を分離して、OP-1ゲル片を移植した。移植部分は、モルフォゲン溶液を満たした内部直径1.5mm、長さ20mmのシリコンチューブで包み込んだ。特に、チューブの中心12mmは、MATRIGEL(Collaborative Research,Inc.,Bedford,MA)の約100μlでCHOで遺伝子組換え生産した精製OP-1を1-5μgを混合して調製したOP-1ゲルからなっている。なおMATRIGELはマウス肉腫組織から
抽出した細胞外マトリックスで、可溶化した組織基底膜を含有している。可溶化組織基底膜はリン酸緩衝生理食塩水中にラミニン、タイプIVコラーゲン、ヘパリン硫酸塩、プロテオグリカン、エンタクチン等を含んでいる。OP-1を満たしたチューブは、損傷部分に直接移植し、神経の切断端を、チューブそれぞれの末端に4mmを入れる。両切断端はOP-1ゲル
に接しており、そして束保護鞘を神経上膜を通して市販の外科用10-0ナイロンで3針縫って、シリコンチューブ中にしっかりと固定しておく。
させたものであり、対照として移植した。全ての実験は4回繰り返した。すべての傷はき
ずクリップでとめて塞ぎ、10日後に除去した。全ラットとも両脚に移植を行った。3週間
目に動物を屠殺し、移植域を取り外し、すぐにドライアイスで凍結させた。次に凍結片の移植箇所を細かく切断し、フルロセイン(Sigma Chemical Co.から入手)でラベルした抗神経フィラメント抗体を用いて免疫蛍光染色によって軸索の再生を試験した。
インビボでの軸索の損傷に引き続き、CNSニューロンは再生ができない。さらにCNS神経組織の損傷、脊髄、視神経と網膜を含む損傷はこれらの細胞によって特定される神経回路の激しい障害と破壊を引き起こす。末梢神経の移植はCNS軸索の損傷をバイパスするため
にも有効に使われる。成功した自己移植修復は一般的には、移植部位がCNSニューロン細
胞体の近傍にあることが必要であり、そしてCNS軸索切除の最初の結果は神経細胞死であ
る。ここでCNS神経修復において説明したモルフォゲンの有効性は、Bignamiらによって説明され、引用によってここに一体化した開示内容(Bignam et al.,1979, Exp.Eye.Res. 28:63-69)のように、ラットの砕けた視神経モデルを用いて評価できる。最近それらに述
べられているように、実験ラット(Charse River Laboratories,Willmington,MA)を標準的な実験手法で麻酔し、眼窩から眼を丁寧に摘出して引っ張ることで視神経を押しつぶした。即ち眼球の後ろに時計用鉗子を挿入し、15秒間鉗子で視覚神経を絞り、30秒間間隔をおいて15秒間さらに鉗子を絞った。ラットは時間をおいた後屠殺した。その間隔は手術後48時間、3、4、11、15、18日である。視覚神経の修復手術に対するモルフォゲンの効果は、2回の繰り返し実験で評価した。その実験はモルフォゲンまたはPBS(25μlの溶液と25
μgのモルフォゲン)を操作前、操作中および操作後一定の間隔で視覚神経に与えて評価
した。
た。Bignam et al.,1974, J.Comp.Neur.153:27-38に記載されたように、市販の入手可能
なGFAに対する抗体(Sigma Chemical Co.,St. Lous)を使用して、空気乾燥によってクリオスタット切片の間接的蛍光染色を行った。GFAレベルの減少がモルフォゲン処理動物で
認められた。これはモルフォゲンの作用はグリアの傷形成阻害と視覚神経の再生を促進していることを表している。
神経組織のモルフォゲンの分布は神経の破壊またはニューロパシーを診断する方法の一部分として利用可能である。この方法は脳組織のニューロパシーを診断するのに特に有利である。特にバイオプシーによる脳組織は、公知技術を使用して患者のリスクを見ることに使う。バイオプシーした組織のモルフォゲンの発現は、モルフォゲン特異的抗血清またはモノクローナル抗体を使った標準的な免疫蛍光技術を使用した一般的な方法で評価できる。特に、バイオプシー組織は公知技術によって薄く切片を作り、蛍光ラベル化した(あるいは別の検出方法)抗体と組織を特異的な抗原−抗体コンプレックス形成させることのできるような条件でインキュベートする。形成したコンプレックスの存在と量を測定し、あらかじめ得た標準または参照値と比較する。組織のモルフォゲン変化レベルの検出は組織機能の指標として使用できる。さらにまた、モルフォゲンレベルの変動はモルフォゲンRNAに対して特異的にハイブリダイズするラベル化プローブを用い、先行技術に記載され
た標準的なハイブリダイゼーションプロトコールで、標準ノーザンブロット分析またはインサイチューハイブリダイゼーションによって、モルフォゲンの転写レベルをモニターすることで評価できる。
ンプルは適切な緩衝液で希釈して、この緩衝液はリン酸緩衝生理食塩水など、そして50μlアリコートをモルフォゲン特異的抗体を用いてプロコートしたマイクロタイタープレー
トのウエルの底に吸着させ、そして4℃で18時間インキュベートする。次いでプレートは
標準緩衝液で洗浄し、適切な緩衝液中のビオチンのような検出剤をコンジュゲートさせた第二のモルフォゲン特異抗体の液を50μl加えて室温で90分間インキュベートする。モル
フォゲン−抗体コンプレックスは一般的な方法で検出する。
、精製OP-1を血清から得るのに使用した。ヒト血清を次いでカラムに通過させ、3MK-チオシアン酸塩で溶出した。K-チオシアン酸塩のフラクションは6M尿素、20mM PO4、pH7.0 中で透析し、C8HPLCカラムにかけ、20分で25-50%アセトニトリル/0.1% TFAのグラジュエントで溶出した。遺伝子組み換え生産成熟型OP-1のホモダイマーは20−22分で溶出された。次いでフラクションを回収し、OP-1の存在をイムノブロットで試験した。図4は還元条
件と酸化条件のヒト血清中のOP-1のイムノブロットを示した。図においてレーン1とレー
ン4はOP-1の標準であり、酸化条件(レーン1)、還元条件(レーン4)で流した。レーン5は、17、27、39kDaの分子量標準である。レーン2とレーン3はヒト血清OP-1であり、酸化
条件下(レーン2)、還元条件下(レーン3)である。
ここに示したモルフォゲンは神経組織の免疫学的に関連した損傷を軽減するために使用できる。この損傷の詳細と損傷を軽減するためのモルフォゲンの使用は国際出願US92/07358(WO93/04692)に開示されている。神経組織に対するこのような損傷の最も重要な原因は、神経回路に対する低酸素症と血液供給の虚
血−再灌流である。これは血栓または手術操作によっておこる。国際出願US92/07358(WO93/04692)に開示されているように、モルフォゲンは組織に対する血液供給の虚血−再灌流につづく心筋組織に対する障害を軽減できることをしめしている。神経組織に対する免疫学的に関連した損傷を軽減することに関してモルフォゲンの効果は先行技術と公知技術による方法とモデルを用いて評価できる。
知の先行技術によってここに一体化している。要約すると、白色ニューイングランド ウ
サギ(2-3kg)麻酔し、人工呼吸器を取りつけた。次いで頭蓋内循環を選択的にセリンジ
ャーの方法でカテーテル化した。ベースラインの脳血管造影をデジタル基本ユニットによって行った。遠位内部頸動脈あるいはその枝血管を、18時間経過した自己血栓の0.035ml
を使用して選択的に閉塞させた。動脈性の閉塞は、栓塞後にただちに繰り返し血管造影をおこなって記録した。脳梗塞を発生させるために十分な時間経過後(15分または90分)、TPAアナログFB-FB-CF(0.8mg/kg以上2分間)のような再灌流剤を投与して、血流を再開させた。
をつけ、標準的な病理組織学的手段でパラフィンで処理し、神経組織の壊死の程度を肉眼的に測定した。モルフォゲン処理動物は、非処理動物との病理学的比較により、試験動物の脳虚血−再灌流のあとに起こる神経組織の壊死を減少させるか、あるいは明らかに抑制させると考えられた。
ここに述べたモルフォゲンのインビボ活性は、ここに述べた動物モデルで速やかに評価できる。好ましくは、適切な動物モデルは神経組織の損傷を示しており、例えば遺伝的あるいは環境的に誘発される。このモデルにpH7のリン酸緩衝食塩水のような適切な治療用
製剤中の有効量のモルフォゲンを脳室内に直接注射する。好ましくは、モルフォゲンは損傷ニューロンの領域に注入する。損傷組織は次の時点で切除し、そして組織は形態学的に評価し、そして/または適切な生化学マーカーの評価を行う(例えばモルフォゲンまたはN-CAMの分布、CNS神経栄養活性またはCNS組織損傷の生化学的マーカーによる投与量依存
性効果の測定、なお、例えばマーカーとしてはグリア線維性酸性蛋白質等を使用する)。投与量とインキュベーション時間は試験する動物で変化する。異なる種への適切な投与範囲は、樹立した動物モデルを比較して決定できる。以下に示したものはラットの脳穿刺モデルのための見本的なプロトコールである。
合し、動物を回復させる。
脳血液バリアを容易に通過するモルフォゲン種を選別する能力を評価するためのインビトロの方法を以下に説明する。モデルとプロトコールの詳細な説明はAudusらによって示
されており(Audus et al.,1987,Ann. N.Y. Acad.Sci.,507:9-18)、引用によってここに一体化されている。
て実験室まで輸送する。無菌条件でおおきな表面の血管と髄膜を標準的な手法で除去する。皮質の灰白質を吸引によって除き、1mmの大きさの立方体状に切断した。刻んだ灰白質
は、振盪ウオータバス中で37℃3時間、0.5%のディスパーゼ(BMB IndianapolisIN)とインキュベートした。3時間消化した後、混合液を遠心分離(1000×g10分)して濃縮し、13%デキストランに再度懸濁し、5800×gで10分間遠心分離した。上清の脂肪、細胞破片、
ミエリンは捨て、クルードな微小血管ペレットを1mg/mlのコラゲナーゼ/ディスパーゼに再懸濁させ、振盪ウオータバス中で37℃ 5時間、インキュベートした。5時間消化した後
、微小血管懸濁液は、予備調整した50%パーコルグラジエントにいれ、1000×gで10分間
遠心分離した。精製した内皮細胞(グラジエントの上から2番目の層)を含むバンドを回
収して、培養液(50%MEM/50%F-12培地の混合)で2回洗浄した。細胞は後で使用するた
め、10%ウマ血清と20%DMSOを含む培地で凍結させた(−80℃)。分離した後、およそ5
×105cells/cm2で、培養皿または、コラーゲンとフィブロネクチンでコートした5-12mμ
のポアサイズのポリカーボネートフィルターに播種した。細胞を播種後10-12日目に、セ
ルの単層膜が顕微鏡でコンフルエントになったことを検査する。
本来のモルフォゲンレベルに影響させるために投与することのできる候補物質は以下のスクリーニング方法を用いて見いだすことができる。測定可能なレベルのモルフォゲンを生産する細胞によって生産されるモルフォゲンのレベルは、細胞への化合物の作用を評価するために、培養細胞を化合物をインキュベートし、そして化合物を除去してインキュベートすることで測定される。これは蛋白質またはRNAレベルのいずれかによってモルフォ
ゲンを検出することによってもできる。また詳細な説明は国際出願US92/07358(WO92/0512)に開示されている。
13.1培養中の細胞増殖
腎臓、副腎、膀胱、脳、あるいはその他臓器の細胞培養は文献に開示されたようにして行うことができる。例えば、腎臓は出産直後、新生、若い、成熟齧歯類(マウスまたはラット)から移植でき、そして腎臓全体または切片(14mm)として器官培養に使用できる。
樹立し、そして一定時間(1−7日間)血清添加または無添加で培養を行う。例えば、細胞はDulbecco's Modified Essential培地(Gibco, Long Island,NY)あるいは無血清培地、必要によっては合成培地(インシュリン、トランスフェリン、グルコース、アルブミン、あるいはその他の成長因子を含む)中で培養する。
免疫沈降法によってOP-1の合成を評価した。
細胞型による形態形成蛋白質の生産を定量するために、イムノアッセイをモルフォゲンの検出に使用し、抗体は蛋白質に対する特異的ポリクローナルまたはモノクローナル抗体を用いた。例えば以下のようなELISAでOP-1特異的抗体を用いてOP-1の検出を行った。OP-1特異的アフィニティ精製ポリクローナルウサギIgGの1μg/100μlを96ウエルプレートの
各ウエルに加え、37℃で1時間インキュベートした。ウエルは、0.1%Tween20を含むpH8.2の0.15M NaCl-0.167Mホウ酸ナトリウム緩衝液(BSB)で4回洗浄した。非特異的吸着を最
小化するため、ウエルは0.1%ウシ血清アルブミン(BSA)を含むBSBで洗浄し、37℃で1時間インキュベートした。次いでウエルは0.1%Tween20を含むBSBで4回洗浄した。試験サンプルの細胞培養上清を適当に希釈した溶液100μlをトリプレットで各ウエルに加え、37℃で30分インキュベートした。インキュベーション後100μlのビオチン化ウサギ抗-OP-1血
清(保存溶液は約1g/ml、使用直前に1%BSAをBSBで1:400に希釈)を各ウエルに加え、37
℃で30分インキュベートした。次いでウエルは0.1%Tween20を含むBSBで4回洗浄した。100μアルカリ性ストレパビジン(Southern Biothecnology Associates,Inc. Birmingham, Alabama使用直前に0.1Tween20を含むBSBで1:400に希釈)を各ウエルに加え、37℃で30分
インキュベートした。プレートは0.5M Tris 緩衝生理食塩水(TBS)pH7.2で4回洗浄した
。50μlの基質(ELISAAmplification System Kit, Life Technologies, Inc., Bethesda,
MD)を各ウエルに加え、室温で15分インキュベートした。50μlのアンプリファイアー(同じアンプリフィケーションキットから)を各ウエルに加え、室温で15分インキュベートした。反応は50μlの0.3M硫酸を添加して停止させた。各ウエルの溶液を490nmのODを測定した。培養液中のOP-1を定量するために、OP-1の検量線を試験サンプルと平行して作製した。
複数箇所に皮下投与した。ウサギはフロインドの不完全アジュバントを用いて同じ方法で一ヶ月後にブースター処理した。試験のため耳静脈から7日後に採血を行った。OP-1に対
する抗体がELISA分析で血清中に検出されるまで、2回の追加ブースター投与と試験採血が一ヵ月の間隔をおいて行われた。次いでウサギは100μgの抗原でブースター処理し、ブースター処理後7日目と10日目に採血した(1回15ml)。モルフォゲンに特異的な抗体は以下のように調製できる。マウスにOP-1生産大腸菌を2回注射した。最初の注射ではフロイン
ドの完全アジュバント中に100μgのOP-1を含む液を皮下に注射した。2回目には、フロイ
ンドの不完全アジュバント中に50μgのOP-1を含む液を腹腔内に注射した。マウスには次
いで8カ月間に4回腹腔内投与し全量で230μgのOP-1(配列表配列番号5の307-431のアミノ酸配列)を投与した。融合に一週間先んじて、マウスの腹腔内に100μgのOP-1(307-431
)とシステインにウシ血清アルブミンをSMCC交差結合剤を用いて結合させた300μgのN末端ペプチド(Ser293-Asn-309Cys)をブースター投与した。ブースター投与は融合
の前5日(IP)、4日(IP)、3日(IP)、1日(IV)に行った。マウス脾臓はミエローマ(例えば653)細胞と1:1の比率でPEG1500(Boheringer Mannheim)を用いて融合させ、融合細胞はプレート化し、抗原としてOP-1(307-431)を用いてOP-1特異的抗体を選択した。
融合細胞と抗体のスクリーニングは先行技術で広く利用可能な標準的な方法によって行っ
た。
Claims (10)
- 哺乳動物のニューロパシーを検出するための、次の(a)〜(d)の工程を含む方法。
(a)該哺乳類からサンプルを採取する工程;
(b)結合蛋白質−モルフォゲンコンプレックスの形成のために、サンプル中に存在して
いると推測されるモルフォゲンに特異的に結合する結合蛋白質と該サンプルを接触する工程であって、該モルフォゲンが一対のポリペプチドからなる二量体蛋白質からなり、前記ポリペプチが下記のアミノ酸配列の1つを有するものである;
(i)配列番号5の残基38〜139に対して少なくとも70%相同であるC末端の7システ
インドメイン、
(ii)下記から選択される一種のアミノ酸配列に対して少なくとも70%相同であるアミノ酸配列:
配列番号5のヒトOP-1配列;
配列番号6のマウスOP-1配列;
配列番号7のヒトOP−2配列;
配列番号8のマウスOP-2配列;
配列番号9のCBMP2A(fx) 配列;
配列番号10のCBMP2B(fx)配列;
配列番号11のDPP(fx)配列;
配列番号12のVg1(fx)配列;
配列番号13のVgr(fx)配列;
配列番号14のGDF-l(fx)配列;
配列番号24の60A(fx)配列。
(iii)配列番号31で特定される配列、
ただし下記の番号で示す残基位置におけるアミノ酸残基は、下記の一種以上のアミノ酸の群から独立に選択される:
残基2=(Lys,Arg,AlaまたはGln);
残基3=(Lys,ArgまたはMet);
残基4=(His,ArgまたはGln);
残基5=(Glu,Ser,His,Gly,Arg,Pro,ThrまたはTyr);
残基7=(TyrまたはLys);
残基8=(Valまたはile);
残基9=(Ser,AspまたはGlu);
残基11=(Arg,Gln,Ser,LysまたはAla);
残基12=(Asp,GluまたはLys);
残基13=(Leu,Valまたはile);
残基16=(Gln,Leu,Asp,His,AsnまたはSer);
残基17=(Asp,Arg,AsnまたはGlu);
残基19=(ileまたはVal);
残基20=(ileまたはVal);
残基21=(AlaまたはSer);
残基23=(Glu,Gln,Leu,Lys,ProまたはArg);
残基24=(GlyまたはSer);
残基25=(TyrまたはPhe);
残基26=(Ala,Ser,Asp,Met,His,Gln,LeuまたはGly);残基28=(Tyr,AsnまたはPhe);
残基31=(Glu,His,Tyr,Asp,GlnまたはSer);
残基33=(Glu,Lys,Asp,GlnまたはAla);
残基35=(Ala,Ser,Pro,GlnまたはAsn);
残基36=(Phe,LeuまたはTyr);
残基38=(Leu,ValまたはMet);
残基39=(Asn,Asp,Ala,ThrまたはPro);
残基40=(Ser,Asp,Glu,Leu,AlaまたはLys);
残基41=(Tyr,Cys,His,Serまたはile);
残基42=(Met,Phe,GlyまたはLeu);
残基43=(Asn,SerまたはLys);
残基44=(Ala,Ser,GlyまたはPro);
残基45=(Thr,LeuまたはSer);
残基49=(ile,ValまたはThr);
残基50=(Val,Leuまたはile);
残基51=(GlnまたはArg)
残基52=(Thr,AlaまたはSer);
残基53=(Leuまたはile);
残基54=(ValまたはMet);
残基55=(His,AsnまたはArg);
残基56=(Phe,Leu,Asn,Ser,AlaまたはVal);
残基57=(ile,Met,Asn,Ala,ValまたはLeu);
残基58=(Asn,Lys,Ala,Glu,GlyまたはPhe);
残基59=(Pro,SerまたはVal);
残基60=(Glu,Asp,Gly,ValまたはLys);
残基61=(Thr,Ala,Val,Lys,Asp,Tyr,Ser,Ala,ProまたはHis);
残基62=(Val,Alaまたはile);
残基63=(ProまたはAsp);
残基64=(Lys,LeuまたはGlu);
残基65=(ProまたはAla);
残基68=(AlaまたはVal);
残基70=(Thr,AlaまたはGlu);
残基71=(Gln,Lys,ArgまたはGlu);
残基72=(Leu,MetまたはVal);
残基73=(Asn,Ser,AspまたはGly);
残基74=(Ala,ProまたはSer);
残基75=(ile,Thr,ValまたはLeu);
残基76=(Ser,AlaまたはPro);
残基77=(Val,Metまたはile);
残基79=(TyrまたはPhe);
残基80=(Phe,Tyr,LeuまたはHis);
残基81=(Asp,AsnまたはLeu);
残基82=(Asp,Glu,AsnまたはSer);
残基83=(Ser,Gln,Asn,TyrまたはAsp);
残基84=(Ser,Asn,Asp,GluまたはLys);
残基85=(Asn,ThrまたはLys);
残基87=(ile,ValまたはAsn);
残基89=(LysまたはArg);
残基90=(Lys,Asn,Gln,HisまたはVal);
残基91=(TyrまたはHis);
残基92=(Arg,Gln,GluまたはPro);
残基93=(Asn,GluまたはAsp);
残基95=(Val,Thr,Alaまたはile);
残基97=(Arg,Lys,Val,AspまたはGlu);
残基98=(Ala,Gly,GluまたはSer);
残基100=(GlyまたはAla);
残基102=(HisまたはArg)。
(iv)配列番号16の残基1036〜1341の配列にストリンジェントな条件でハイブリダイズする核酸にコードされた配列;または
(v)配列番号20の残基1390〜1695の配列にストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸にコードされた配列、
ただし、あるアミノ酸配列からのアミノ酸と、他のアミノ酸配列からの次のアミノ酸と
は、その2つのアミノ酸が互いに同一であるか、または両者が下記のアミノ酸からなる群(1)〜(5)から選択されたいずれかの同一クラスに属するものである場合に相同であるとする:
(1)セリン、トレオニン、プロリン、アラニン、グリシン;
(2)アスパラギン、アスパラギン酸、グルタミン酸、グルタミン;
(3)ヒスチジン、アルギニン、リジン;
(4)メチオニン、イソロイシン、ロイシン、バリン;及び
(5)フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン。
(c)該サンプル中の該モルフォゲンの生理学的濃度を測定するための上記コンプレック
スを検出する工程;
(d)検出前の基準値に対する該濃度を比較することで変動を検出する工程であって, 該
変動を神経細胞死の増加の指標とし、
該神経細胞死の増加をニューロパシーの指標とする。 - 哺乳動物のニューロパシーを検出するための、以下の(a)〜(d)の工程を含む方法。
(a)該哺乳類からサンプルを採取する工程:
(b)結合蛋白質−モルフォゲンコンプレックスの形成のために、サンプル中に存在して
いると推測されるモルフォゲン特異的な抗体に特異的に結合する結合蛋白質と該サンプルを接触する工程であって、該モルフォゲンが、モルフォゲン活性を有する二量体蛋白質からなり、前記ポリペプチが下記のアミノ酸配列の1つを有するものである:
(i)配列番号5の残基38〜139に対して70%相同である保存的なC末端の7システイ
ンドメイン、
(ii)下記から選択される一種のアミノ酸配列に対して少なくとも70%相同であるアミノ酸配列:
配列番号5のヒトOP-1配列;
配列番号6のマウスOP-1配列;
配列番号7のヒトOP−2配列;
配列番号8のマウスOP-2配列;
配列番号9のCBMP2A(fx) 配列;
配列番号10のCBMP2B(fx)配列;
配列番号11のDPP(fx)配列;
配列番号12のVg1(fx)配列;
配列番号13のVgr(fx)配列;
配列番号14のGDF-l(fx)配列;
配列番号24の60A(fx)配列。
(iii)配列番号31で特定される配列、
ただし下記の番号で示す残基位置におけるアミノ酸残基は、下記の一種以上のアミノ酸の群から独立に選択される:
残基2=(Lys,Arg,AlaまたはGln);
残基3=(Lys,ArgまたはMet);
残基4=(His,ArgまたはGln);
残基5=(Glu,Ser,His,Gly,Arg,Pro,ThrまたはTyr);
残基7=(TyrまたはLys);
残基8=(Valまたはile);
残基9=(Ser,AspまたはGlu);
残基11=(Arg,Gln,Ser,LysまたはAla);
残基12=(Asp,GluまたはLys);
残基13=(Leu,Valまたはile);
残基16=(Gln,Leu,Asp,His,AsnまたはSer);
残基17=(Asp,Arg,AsnまたはGlu);
残基19=(ileまたはVal);
残基20=(ileまたはVal);
残基21=(AlaまたはSer);
残基23=(Glu,Gln,Leu,Lys,ProまたはArg);
残基24=(GlyまたはSer);
残基25=(TyrまたはPhe);
残基26=(Ala,Ser,Asp,Met,His,Gln,LeuまたはGly);残基28=(Tyr,AsnまたはPhe);
残基31=(Glu,His,Tyr,Asp,GlnまたはSer);
残基33=(Glu,Lys,Asp,GlnまたはAla);
残基35=(Ala,Ser,Pro,GlnまたはAsn);
残基36=(Phe,LeuまたはTyr);
残基38=(Leu,ValまたはMet);
残基39=(Asn,Asp,Ala,ThrまたはPro);
残基40=(Ser,Asp,Glu,Leu,AlaまたはLys);
残基41=(Tyr,Cys,His,Serまたはile);
残基42=(Met,Phe,GlyまたはLeu);
残基43=(Asn,SerまたはLys);
残基44=(Ala,Ser,GlyまたはPro);
残基45=(Thr,LeuまたはSer);
残基49=(ile,ValまたはThr);
残基50=(Val,Leuまたはile);
残基51=(GlnまたはArg)
残基52=(Thr,AlaまたはSer);
残基53=(Leuまたはile);
残基54=(ValまたはMet);
残基55=(His,AsnまたはArg);
残基56=(Phe,Leu,Asn,Ser,AlaまたはVal);
残基57=(ile,Met,Asn,Ala,ValまたはLeu);
残基58=(Asn,Lys,Ala,Glu,GlyまたはPhe);
残基59=(Pro,SerまたはVal);
残基60=(Glu,Asp,Gly,ValまたはLys);
残基61=(Thr,Ala,Val,Lys,Asp,Tyr,Ser,Ala,ProまたはHis);
残基62=(Val,Alaまたはile);
残基63=(ProまたはAsp);
残基64=(Lys,LeuまたはGlu);
残基65=(ProまたはAla);
残基68=(AlaまたはVal);
残基70=(Thr,AlaまたはGlu);
残基71=(Gln,Lys,ArgまたはGlu);
残基72=(Leu,MetまたはVal);
残基73=(Asn,Ser,AspまたはGly);
残基74=(Ala,ProまたはSer);
残基75=(ile,Thr,ValまたはLeu);
残基76=(Ser,AlaまたはPro);
残基77=(Val,Metまたはile);
残基79=(TyrまたはPhe);
残基80=(Phe,Tyr,LeuまたはHis);
残基81=(Asp,AsnまたはLeu);
残基82=(Asp,Glu,AsnまたはSer);
残基83=(Ser,Gln,Asn,TyrまたはAsp);
残基84=(Ser,Asn,Asp,GluまたはLys);
残基85=(Asn,ThrまたはLys);
残基87=(ile,ValまたはAsn);
残基89=(LysまたはArg);
残基90=(Lys,Asn,Gln,HisまたはVal);
残基91=(TyrまたはHis);
残基92=(Arg,Gln,GluまたはPro);
残基93=(Asn,GluまたはAsp);
残基95=(Val,Thr,Alaまたはile);
残基97=(Arg,Lys,Val,AspまたはGlu);
残基98=(Ala,Gly,GluまたはSer);
残基100=(GlyまたはAla);
残基102=(HisまたはArg)。
(iv)配列番号16の残基1036〜1341の配列にストリンジェントな条件でハイブリダイズする核酸にコードされた配列;または
(v)配列番号20の残基1390〜1695の配列にストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸にコードされた配列; ただし、あるアミノ酸配列からのアミノ酸と、他のア
ミノ酸配列からの次のアミノ酸とは、その2つのアミノ酸が互いに同一であるか、または両者が下記のアミノ酸からなる群(1)〜(5)から選択されたいずれかの同一クラスに属するものである場合に相同であるとする:
(1)セリン、トレオニン、プロリン、アラニン、グリシン;
(2)アスパラギン、アスパラギン酸、グルタミン酸、グルタミン;
(3)ヒスチジン、アルギニン、リジン;
(4)メチオニン、イソロイシン、ロイシン、バリン;及び
(5)フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン。
(c)該サンプル中の該抗体の生理学的濃度を測定するための該コンプレックスを検出す
る工程;
(d)検出前の基準値に対する該濃度を比較することで変動を検出する工程であって, 該
変動を神経細胞死の増加の指標とする;
該神経細胞死の増加はニューロパシーの指標である。 - 該ニューロパシーが、神経変性病、神経の脱ミエリン化、ミエリン機能不全、ニューロンの新生組織形成または神経損傷による、請求項1または2に記載の方法。
- 該モルフォゲンの該アミノ酸配列が下記(a)〜(d)からなる、請求項1、2または
3に記載の方法:
(a)下記から選択される一種のアミノ酸配列に対して少なくとも80%相同であるアミノ
酸配列;
配列番号5のヒトOP-1配列;
配列番号6のマウスOP-1配列;
配列番号7のヒトOP−2配列;
配列番号8のマウスOP-2配列;
配列番号9のCBMP2A(fx) 配列;
配列番号10のCBMP2B(fx)配列;
配列番号11のDPP(fx)配列;
配列番号12のVg1(fx)配列;
配列番号13のVgr(fx)配列;
配列番号14のGDF-l(fx)配列;
配列番号24の60A(fx)配列。
(b)配列番号5の残基38〜139に対して少なくとも80%相同である配列;
(c)配列番号5のヒトOP-1の残基43〜139に対して60%以上同一である配列;又は、
(d)配列番号29で特定される配列、
ただし下記の番号で示す残基位置におけるアミノ酸残基は、下記の一種以上のアミノ酸の群から独立に選択される:
残基2=(LysまたはArg);
残基3=(LysまたはArg);
残基11=(ArgまたはGln);
残基16=(GlnまたはLeu);
残基19=(ileまたはVal);
残基23=(GluまたはGln);
残基26=(AlaまたはSer);
残基35=(AlaまたはSer);
残基39=(AsnまたはAsp);
残基41=(TyrまたはCys);
残基50=(ValまたはLeu);
残基52=(ThrまたはAla);
残基56=(PheまたはLeu);
残基57=(ileまたはMet);
残基58=(AsnまたはLys);
残基60=(Glu,AspまたはAsn);
残基61=(Thr,AlaまたはVal);
残基65=(ProまたはAla);
残基71=(GlnまたはLys);
残基73=(AsnまたはSer);
残基75=(ileまたはThr);
残基80=(PheまたはTyr);
残基82=(AspまたはSer);
残基84=(SerまたはAsn);
残基89=(LysまたはArg);
残基91=(TyrまたはHis);
残基97=(ArgまたはLys)。
ただし、あるアミノ酸配列からのアミノ酸と、他のアミノ酸配列からの次のアミノ酸とは、その2つのアミノ酸が互いに同一であるか、または両者が下記のアミノ酸からなる群(1)〜(5)から選択されたいずれかの同一クラスに属するものである場合に相同であるとする:
(1)セリン、トレオニン、プロリン、アラニン、グリシン;
(2)アスパラギン、アスパラギン酸、グルタミン酸、グルタミン;
(3)ヒスチジン、アルギニン、リジン;
(4)メチオニン、イソロイシン、ロイシン、バリン;及び
(5)フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン。 - 該モルフォゲンが、配列番号5のヒトOP-1の残基43〜139に対して65%以上同一である
アミノ酸配列を有する、請求項4に記載の方法。 - 該モルフォゲンが、配列番号5のヒトOP-1の残基43〜139のアミノ酸配列を有する、請
求項5に記載の方法。 - 該サンプルが下記(a)〜(c)のいずれかである、請求項1〜6のいずれかに記載の方
法。
(a)神経組織からなる生体サンプル
(b)脳脊髄液
(c)血清 - 哺乳動物のニューロパシーの検出または哺乳動物のニューロパシーを治療するための処置の有効性評価のための、下記(a)〜(c)からなるキット、
(a)哺乳動物から得られた細胞または体液を採取するための手段;
(b)結合蛋白質−モルフォゲンコンプレックスの形成のために、該サンプル中のモルフ
ォゲンに特異的に結合する結合蛋白質であって、該モルフォゲンが一対のポリペプチドからなる二量体蛋白質からなり、前記ポリペプチが下記のアミノ酸配列の1つを有するもの
である:
(i)配列番号5の残基38〜139に対して少なくとも70%相同であるC末端の7システ
インドメイン、
(ii)下記から選択される一種のアミノ酸配列に対して少なくとも70%相同であるアミノ酸配列:
配列番号5のヒトOP-1配列;
配列番号6のマウスOP-1配列;
配列番号7のヒトOP−2配列;
配列番号8のマウスOP-2配列;
配列番号9のCBMP2A(fx) 配列;
配列番号10のCBMP2B(fx)配列;
配列番号11のDPP(fx)配列;
配列番号12のVg1(fx)配列;
配列番号13のVgr(fx)配列;
配列番号14のGDF-l(fx)配列;
配列番号24の60A(fx)配列。
(iii)配列番号31で特定される配列、
ただし下記の番号で示す残基位置におけるアミノ酸残基は、下記の一種以上のアミノ酸の群から独立に選択される:
残基2=(Lys,Arg,AlaまたはGln);
残基3=(Lys,ArgまたはMet);
残基4=(His,ArgまたはGln);
残基5=(Glu,Ser,His,Gly,Arg,Pro,ThrまたはTyr);
残基7=(TyrまたはLys);
残基8=(Valまたはile);
残基9=(Ser,AspまたはGlu);
残基11=(Arg,Gln,Ser,LysまたはAla);
残基12=(Asp,GluまたはLys);
残基13=(Leu,Valまたはile);
残基16=(Gln,Leu,Asp,His,AsnまたはSer);
残基17=(Asp,Arg,AsnまたはGlu);
残基19=(ileまたはVal);
残基20=(ileまたはVal);
残基21=(AlaまたはSer);
残基23=(Glu,Gln,Leu,Lys,ProまたはArg);
残基24=(GlyまたはSer);
残基25=(TyrまたはPhe);
残基26=(Ala,Ser,Asp,Met,His,Gln,LeuまたはGly);残基28=(Tyr,AsnまたはPhe);
残基31=(Glu,His,Tyr,Asp,GlnまたはSer);
残基33=(Glu,Lys,Asp,GlnまたはAla);
残基35=(Ala,Ser,Pro,GlnまたはAsn);
残基36=(Phe,LeuまたはTyr);
残基38=(Leu,ValまたはMet);
残基39=(Asn,Asp,Ala,ThrまたはPro);
残基40=(Ser,Asp,Glu,Leu,AlaまたはLys);
残基41=(Tyr,Cys,His,Serまたはile);
残基42=(Met,Phe,GlyまたはLeu);
残基43=(Asn,SerまたはLys);
残基44=(Ala,Ser,GlyまたはPro);
残基45=(Thr,LeuまたはSer);
残基49=(ile,ValまたはThr);
残基50=(Val,Leuまたはile);
残基51=(GlnまたはArg)
残基52=(Thr,AlaまたはSer);
残基53=(Leuまたはile);
残基54=(ValまたはMet);
残基55=(His,AsnまたはArg);
残基56=(Phe,Leu,Asn,Ser,AlaまたはVal);
残基57=(ile,Met,Asn,Ala,ValまたはLeu);
残基58=(Asn,Lys,Ala,Glu,GlyまたはPhe);
残基59=(Pro,SerまたはVal);
残基60=(Glu,Asp,Gly,ValまたはLys);
残基61=(Thr,Ala,Val,Lys,Asp,Tyr,Ser,Ala,ProまたはHis);
残基62=(Val,Alaまたはile);
残基63=(ProまたはAsp);
残基64=(Lys,LeuまたはGlu);
残基65=(ProまたはAla);
残基68=(AlaまたはVal);
残基70=(Thr,AlaまたはGlu);
残基71=(Gln,Lys,ArgまたはGlu);
残基72=(Leu,MetまたはVal);
残基73=(Asn,Ser,AspまたはGly);
残基74=(Ala,ProまたはSer);
残基75=(ile,Thr,ValまたはLeu);
残基76=(Ser,AlaまたはPro);
残基77=(Val,Metまたはile);
残基79=(TyrまたはPhe);
残基80=(Phe,Tyr,LeuまたはHis);
残基81=(Asp,AsnまたはLeu);
残基82=(Asp,Glu,AsnまたはSer);
残基83=(Ser,Gln,Asn,TyrまたはAsp);
残基84=(Ser,Asn,Asp,GluまたはLys);
残基85=(Asn,ThrまたはLys);
残基87=(ile,ValまたはAsn);
残基89=(LysまたはArg);
残基90=(Lys,Asn,Gln,HisまたはVal);
残基91=(TyrまたはHis);
残基92=(Arg,Gln,GluまたはPro);
残基93=(Asn,GluまたはAsp);
残基95=(Val,Thr,Alaまたはile);
残基97=(Arg,Lys,Val,AspまたはGlu);
残基98=(Ala,Gly,GluまたはSer);
残基100=(GlyまたはAla);
残基102=(HisまたはArg)。
(iv)配列番号16の残基1036〜1341の配列にストリンジェントな条件でハイブリダイズする核酸にコードされた配列;または
(v)配列番号20の残基1390〜1695の配列にストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸にコードされた配列、
ただし、あるアミノ酸配列からのアミノ酸と、他のアミノ酸配列からの次のアミノ酸とは、その2つのアミノ酸が互いに同一であるか、または両者が下記のアミノ酸からなる群(1)〜(5)から選択されたいずれかの同一クラスに属するものである場合に相同であるとする:
(1)セリン、トレオニン、プロリン、アラニン、グリシン;
(2)アスパラギン、アスパラギン酸、グルタミン酸、グルタミン;
(3)ヒスチジン、アルギニン、リジン;
(4)メチオニン、イソロイシン、ロイシン、バリン;及び
(5)フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン。
(c)該コンプレックスを検出するための手段。 - 該結合蛋白質がモルフォゲンのプロ領域(pro region)の一部または全部によって特定されたエピトープに特異性を有している請求項8に記載のキット。
- 哺乳動物のニューロパシーの検出または哺乳動物のニューロパシーを治療するための処置の有効性評価のための、下記(a)〜(c)からなるキット。
(a)哺乳動物から得られた細胞または体液を採取するための手段;
(b)結合蛋白質−モルフォゲンコンプレックスの形成のために、サンプル中のモルフォ
ゲン特異的な抗体に特異的に結合する結合蛋白質であって、
該モルフォゲンが、一対のポリペプチドからなるモルフォゲン活性を有する二量体蛋白質からなり、前記ポリペプチドが下記ののアミノ酸配列の1つを有するものである:
(i)配列番号5の残基38〜139に対して少なくとも70%相同であるC末端の7システ
インドメイン、
(ii)下記から選択される一種のアミノ酸配列に対して少なくとも70%相同であるアミノ酸配列:
配列番号5のヒトOP-1配列;
配列番号6のマウスOP-1配列;
配列番号7のヒトOP−2配列;
配列番号8のマウスOP-2配列;
配列番号9のCBMP2A(fx) 配列;
配列番号10のCBMP2B(fx)配列;
配列番号11のDPP(fx)配列;
配列番号12のVg1(fx)配列;
配列番号13のVgr(fx)配列;
配列番号14のGDF-l(fx)配列;
配列番号24の60A(fx)配列。
(iii)配列番号31で特定される配列、
ただし下記の番号で示す残基位置におけるアミノ酸残基は、下記の一種以上のアミノ酸の群から独立に選択される:
残基2=(Lys,Arg,AlaまたはGln);
残基3=(Lys,ArgまたはMet);
残基4=(His,ArgまたはGln);
残基5=(Glu,Ser,His,Gly,Arg,Pro,ThrまたはTyr);
残基7=(TyrまたはLys);
残基8=(Valまたはile);
残基9=(Ser,AspまたはGlu);
残基11=(Arg,Gln,Ser,LysまたはAla);
残基12=(Asp,GluまたはLys);
残基13=(Leu,Valまたはile);
残基16=(Gln,Leu,Asp,His,AsnまたはSer);
残基17=(Asp,Arg,AsnまたはGlu);
残基19=(ileまたはVal);
残基20=(ileまたはVal);
残基21=(AlaまたはSer);
残基23=(Glu,Gln,Leu,Lys,ProまたはArg);
残基24=(GlyまたはSer);
残基25=(TyrまたはPhe);
残基26=(Ala,Ser,Asp,Met,His,Gln,LeuまたはGly);残基28=(Tyr,AsnまたはPhe);
残基31=(Glu,His,Tyr,Asp,GlnまたはSer);
残基33=(Glu,Lys,Asp,GlnまたはAla);
残基35=(Ala,Ser,Pro,GlnまたはAsn);
残基36=(Phe,LeuまたはTyr);
残基38=(Leu,ValまたはMet);
残基39=(Asn,Asp,Ala,ThrまたはPro);
残基40=(Ser,Asp,Glu,Leu,AlaまたはLys);
残基41=(Tyr,Cys,His,Serまたはile);
残基42=(Met,Phe,GlyまたはLeu);
残基43=(Asn,SerまたはLys);
残基44=(Ala,Ser,GlyまたはPro);
残基45=(Thr,LeuまたはSer);
残基49=(ile,ValまたはThr);
残基50=(Val,Leuまたはile);
残基51=(GlnまたはArg)
残基52=(Thr,AlaまたはSer);
残基53=(Leuまたはile);
残基54=(ValまたはMet);
残基55=(His,AsnまたはArg);
残基56=(Phe,Leu,Asn,Ser,AlaまたはVal);
残基57=(ile,Met,Asn,Ala,ValまたはLeu);
残基58=(Asn,Lys,Ala,Glu,GlyまたはPhe);
残基59=(Pro,SerまたはVal);
残基60=(Glu,Asp,Gly,ValまたはLys);
残基61=(Thr,Ala,Val,Lys,Asp,Tyr,Ser,Ala,ProまたはHis);
残基62=(Val,Alaまたはile);
残基63=(ProまたはAsp);
残基64=(Lys,LeuまたはGlu);
残基65=(ProまたはAla);
残基68=(AlaまたはVal);
残基70=(Thr,AlaまたはGlu);
残基71=(Gln,Lys,ArgまたはGlu);
残基72=(Leu,MetまたはVal);
残基73=(Asn,Ser,AspまたはGly);
残基74=(Ala,ProまたはSer);
残基75=(ile,Thr,ValまたはLeu);
残基76=(Ser,AlaまたはPro);
残基77=(Val,Metまたはile);
残基79=(TyrまたはPhe);
残基80=(Phe,Tyr,LeuまたはHis);
残基81=(Asp,AsnまたはLeu);
残基82=(Asp,Glu,AsnまたはSer);
残基83=(Ser,Gln,Asn,TyrまたはAsp);
残基84=(Ser,Asn,Asp,GluまたはLys);
残基85=(Asn,ThrまたはLys);
残基87=(ile,ValまたはAsn);
残基89=(LysまたはArg);
残基90=(Lys,Asn,Gln,HisまたはVal);
残基91=(TyrまたはHis);
残基92=(Arg,Gln,GluまたはPro);
残基93=(Asn,GluまたはAsp);
残基95=(Val,Thr,Alaまたはile);
残基97=(Arg,Lys,Val,AspまたはGlu);
残基98=(Ala,Gly,GluまたはSer);
残基100=(GlyまたはAla);
残基102=(HisまたはArg)。
(iv)配列番号16の残基1036〜1341の配列にストリンジェントな条件でハイブリダイズする核酸にコードされた配列;または
(v)配列番号20の残基1390〜1695の配列にストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸にコードされた配列、
ただし、あるアミノ酸配列からのアミノ酸と、他のアミノ酸配列からの次のアミノ酸とは、その2つのアミノ酸が互いに同一であるか、または両者が下記のアミノ酸からなる群(1)〜(5)から選択されたいずれかの同一クラスに属するものである場合に相同であるとする:
(1)セリン、トレオニン、プロリン、アラニン、グリシン;
(2)アスパラギン、アスパラギン酸、グルタミン酸、グルタミン;
(3)ヒスチジン、アルギニン、リジン;
(4)メチオニン、イソロイシン、ロイシン、バリン;及び
(5)フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン。
(c)該コンプレックスを検出するための手段。
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