JP2009225697A

JP2009225697A - Ａｂｃａ１２遺伝子機能欠損マウス

Info

Publication number: JP2009225697A
Application number: JP2008072866A
Authority: JP
Inventors: Hiroshi Shimizu; 宏清水; Shinji Akiyama; 真志秋山; Teruki Yanagi; 輝希柳
Original assignee: Hokkaido University NUC
Current assignee: Hokkaido University NUC
Priority date: 2008-03-21
Filing date: 2008-03-21
Publication date: 2009-10-08

Abstract

【課題】皮膚バリア機能障害を有する非ヒトモデル動物を提供すること、及び当該モデル動物を利用して皮膚バリア機能障害を治療若しくは改善、さらには予防することのできる薬物を探索する方法を提供すること。
【解決手段】Ａｂｃａ１２遺伝子がノックアウトされた、皮膚バリア機能障害モデルマウス。本発明にかかる遺伝子欠損マウスは、重篤な皮膚バリア機能障害、特に魚鱗癬の症状を呈するモデル動物として利用可能であり、当該モデル動物を用いることで、皮膚バリア障害を治療又は改善することのできる物質を個体レベルでスクリーニングすることが可能となる。
【選択図】なし

Description

本発明は、Ａｂｃａ１２遺伝子の機能がノックアウトされた、皮膚バリア機能障害モデルマウス、及び乾癬などの皮膚疾患の治療、あるいは皮膚疾患によって失われた皮膚バリア機能の回復に有効な薬物、さらには乾癬などの皮膚疾患に対して有効な予防薬のスクリーニング方法または同定方法に関する。

近年の発生工学的技術の発展は、特定の外来遺伝子を導入したトランスジェニック動物や染色体上の特定の遺伝子の機能が破壊されたノックアウト動物の作製を可能にしてきた。この様な遺伝子操作動物は、導入あるいは破壊される遺伝子に依存した表現形質を示し得ることが知られている。そのため、遺伝子組み換え動物は、当該組み換えられる遺伝子と表現形質との関係を確認するために作製される他、疾患と密接な関係を有する表現形質すなわち病態を示す動物は、当該疾患モデル動物あるいは病態モデル動物としての価値を有する。

一方、皮膚疾患に関しては、適切な疾患モデル動物或いは病態モデル動物が少なく、このことが皮膚疾患を治療する方法や、皮膚疾患の治療・予防薬の開発を困難なものとしている。中でも皮膚バリア障害は、患者に対して多くの場合致死的であり、したがってそのモデル動物を作製することは極めて困難であった。

最も重篤な皮膚バリア機能障害を伴う疾患の一つに、道化師様魚鱗癬がある。この疾患は、常染色体劣性遺伝性の先天性魚鱗癬であり、患者は出生時から全身が板状の厚い鱗屑で覆われ、多くの場合、皮膚バリア機能障害に伴う呼吸不全、感染症、及び／又は水分多損失により、出生後１〜２週間以内に死亡する。そのため、皮膚バリア機能障害を改善することが、前記疾患患者の生存に不可欠である。

近年、Ａｋｉｙａｍａらによって、Ａｂｃａ１２遺伝子の機能損失が道化師様魚鱗癬の原因であることが明らかにされた（非特許文献１、非特許文献２）。Ａｂｃａ１２遺伝子は、ＡＢＣ（ＡＴＰｂｉｎｄｉｎｇｃａｓｓｅｔｔｅｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ）をコードするスーパーファミリーに属する遺伝子の一種である。このスーパーファミリーは、細菌からヒトに至るまで進化中に非常によく保存されており、細胞外および細胞内の様々な物質の輸送、例えば塩素チャンネル、多剤耐性、胆汁酸塩輸送、グルタチオン抱合体輸送、ＨＬＡクラスＩ抗原輸送、スルホニル尿素受容体、オリゴＡ結合タンパク質、または脂質誘導（コレステロール、ホスファチジルセリン）輸送に関与していることが報告されている。

ヒトのＡｂｃａ１２遺伝子は、特許文献１（特表２００４−５２７２３７）にその塩基配列とそれにコードされるタンパク質のアミノ酸配列が記載され、またマウスのＡｂｃａ１２遺伝子は、ＷａｔｅｒｓｔｏｎＲ．Ｈ．ら（非特許文献３）に記載されている。

前記Ａｋｉｙａｍａらは、ヒトＡｂｃａ１２遺伝子がヒト表皮顆粒層細胞、特に層板顆粒において強く発現し、セラミド等の脂質輸送に関与していることを確認し、さらに、道化師様魚鱗癬疾患患者から分離して調製された患者培養表皮細胞に正常なヒトＡｂｃａ１２遺伝子を導入することで、前記患者培養表皮細胞のセラミド輸送障害を改善することを実験的に確認している。このことから、Ａｂｃａ１２遺伝子又はその発現産物の機能欠失が、皮膚バリア機能に重要な角層細胞間脂質層の形成不全をもたらし、ヒトにおける道化師様魚鱗癬を発症する原因となっていると推察される。
Ａｋｉｙａｍａら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．、２００５年、第１１５巻、第７号、第１７７７−１７８４頁秋山真志ら、最新医学、２００７年、第６２巻、第１１号、第２４８２−２４８８頁ＷａｔｅｒｓｔｏｎＲ．Ｈ．ら、Ｎａｔｕｒｅ、２００２年、第４２０巻、第５２０−５６２頁特表２００４−５２７２３７号

本発明の目的は、皮膚バリア機能障害を有する非ヒトモデル動物を提供すること、及び当該モデル動物を利用して皮膚バリア機能障害を治療若しくは改善、さらには予防することのできる薬物を探索する方法を提供することにある。

本発明者らは、Ａｂｃａ１２遺伝子がノックアウトされたマウスを作出することに成功し、当該マウスが重篤な皮膚バリア機能障害を有することを見いだし、下記の各発明を完成した。

（１）Ａｂｃａ１２遺伝子の機能がノックアウトされた、皮膚バリア機能障害モデルマウス。

（２）Ａｂｃａ１２遺伝子のエクソン３０を破壊することで当該遺伝子の機能がノックアウトされた、（１）に記載のモデルマウス。

（３）ホモノックアウトマウスである、（１）又は（２）に記載のモデルマウス。

（４）皮膚バリア機能障害が魚鱗癬による障害である、（１）〜（３）のいずれかに記載のモデルマウス。

（５）（１）〜（４）の何れかに記載のモデルマウス又はその皮膚組織に物質を投与する工程、及び該モデルマウス又はその皮膚組織の皮膚バリア機能障害の改善効果を確認する工程を含む、皮膚バリア障害を治療又は改善することのできる物質をスクリーニングする方法。

（６）（１）〜（４）の何れかに記載のモデルマウスを受胎した親マウスに物質を投与する工程、及び胎児マウスの出生率を測定する工程を含む、皮膚バリア障害を治療又は改善することのできる物質をスクリーニングする方法。

本発明にかかる遺伝子欠損マウスは、これまでに報告のない重篤な皮膚バリア機能障害、特に道化師様魚鱗癬の症状を呈するモデル動物として利用可能であり、当該モデル動物を用いることで、皮膚バリア障害を治療又は改善することのできる物質を個体レベルでスクリーニングすることが可能となる。

本発明は、Ａｂｃａ１２遺伝子の機能がノックアウトされたマウスを、皮膚バリア機能障害モデル動物として使用することを特徴とする。ヒトのＡｂｃａ１２遺伝子にコードされるタンパク質は、２５９５アミノ酸残基からなるトランスポータータンパク質（以下、ヒトＡｂｃａ１２蛋白と表す）である。このヒトＡｂｃａ１２蛋白は、表皮細胞の層板顆粒へのセラミドなどの脂質輸送に関与しており、層板顆粒に輸送された脂質が角層細胞間脂質層を形成することで、皮膚バリア機能の要となることが、前記Ａｋｉｙａｍａらによって明らかにされている。そして、このヒトＡｂｃａ１２遺伝子に何らかの変異が生じ、機能的なヒトＡｂｃａ１２蛋白が発現されないことによって、角層細胞間脂質層が十分に形成されず、皮膚バリア機能障害を来し、また魚鱗癬を発症することになる。

一方、マウスにもヒトＡｂｃａ１２遺伝子に対応するマウスＡｂｃａ１２遺伝子が存在する。マウスＡｂｃａ１２遺伝子のｃＤＮＡ及びゲノムＤＮＡは既にクローニングされており、それらの塩基配列も、ＮＣＢＩにアクセッション番号ＸＭ＿００１００２３０８とＮＣ＿００００６７．５としてそれぞれ登録されている。アクセッション番号ＸＭ＿００１００２３０８には、全２５９２アミノ酸残基からなるタンパク質（以下、マウスＡｂｃａ１２蛋白と表す）をコードする全７７７９ｂｐのマウスＡｂｃａ１２遺伝子のｃＤＮＡの塩基配列情報が登録されている。このマウスＡｂｃａ１２蛋白のアミノ酸配列は、ヒトＡｂｃａ１２蛋白のアミノ酸配列に対して８９％の同一性を有している。一方のアクセッション番号ＮＣ＿００００６７．５には、５２個のイントロンと５３個のエクソンからなる構造を有する、約１７１ｋｂｐのゲノムＤＮＡの塩基配列情報が登録されている。このマウスＡｂｃａ１２遺伝子のゲノムＤＮＡは、マウスの第1染色体上に位置している。

マウスにおけるＡｂｃａ１２遺伝子の機能は、ヒトのそれと比べて詳細には知られていないが、コードされる蛋白質間の同一性が８９％と高いことから、マウスにおいてもヒトＡｂｃａ１２遺伝子と同様の役割を果たしているものと推察される。

本発明における「Ａｂｃａ１２遺伝子がノックアウトされたマウス」とは、前記のマウス染色体上のＡｂｃａ１２遺伝子に導入された変異により、変異が導入されていない正常な遺伝子と比較して、その機能的な遺伝子の転写発現が著しくあるいは完全に抑制されたマウス、あるいはマウスＡｂｃａ１２蛋白の活性の殆どが失われた変異Ａｂｃａ１２蛋白を発現するマウスを意味する。特に好ましくは、機能的なＡｂｃａ１２遺伝子の転写発現が完全に抑制されるか、またはマウスＡｂｃａ１２蛋白の脂質輸送活性が完全に消失した変異Ａｂｃａ１２蛋白を発現するマウスを意味する。

かかる変異の導入は、ニトロソグアニジンのような化学的手段、放射線照射のような物理的手段、遺伝子組み換えのような生物学的手段など、如何なる手段によってもよいが、特に、マウス染色体上のＡｂｃａ１２遺伝子にターゲティングベクターを用いて外来遺伝子を挿入させる、いわゆる相同組み換え（ｈｏｍｏｌｏｇｏｕｓｒｅｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ）による導入が好ましい。相同組み換えによる外来遺伝子の挿入は、染色体上のマウスＡｂｃａ１２遺伝子の機能的な転写発現が阻害される限り、当該遺伝子の任意の位置に行ってもよく、好ましくは当該染色体上のマウスＡｂｃａ１２遺伝子のプロモーター領域又は当該遺伝子を構成する１又は２以上のエクソンの読み取り枠を破壊するように、外来遺伝子を導入することが好ましい。特にエクソン３０を破壊する相同組み換えが好ましい。

上記の相同組換えによる染色体上のＡｂｃａ１２遺伝子への変異の導入は、ターゲッティングベクターを用いてノックアウトマウスを作製する一般的な方法により、行うことができる。その典型例は、次の通りである。

ＮＣＢＩアクセッション番号ＸＭ＿００１００２３０８及び／又はＮＣ＿００００６７．５として特定されるマウスＡｂｃａ１２遺伝子の塩基配列情報を基に、相同組換え用ターゲティングベクターを作製する。相同組換え用ターゲティングベクターは、染色体上のＡｂｃａ１２遺伝子の一部を欠いた塩基配列からなる核酸を有するように、もしくは染色体上のＡｂｃａ１２遺伝子の上流及び下流の塩基配列によってＡｂｃａ１２遺伝子とは異なる異種遺伝子の５’側及び３’側を囲んだ塩基配列からなる核酸を有するように、ベクター上の塩基配列を設計し、構築すればよい。

ターゲティングベクターは、ベクターが取り込まれた細胞や、目的とする相同組換え体を選択するための適当なマーカー遺伝子を有することが好ましい。このようなマーカー遺伝子としては、例えばネオマイシン耐性遺伝子（ｎｅｏ）、ジフテリアトキシンＡフラグメント遺伝子（ＤＴ−Ａ）、ハイグロマイシン耐性遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、テトラサイクリン耐性遺伝子、ストレプトマイシン耐性遺伝子、ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ遺伝子（ＨＳＶ−ｔｋ）等、薬剤耐性選択に通常用いられる、それぞれ公知の薬剤耐性遺伝子を用いることができる。

また、ターゲティングベクターは、相同的組み換えによって染色体上に組み込まれる位置にレポーター遺伝子を有していてもよい。この場合、例えばＡｂｃａ１２遺伝子の翻訳領域の配列を一部もしくは全部欠失させるかまたは非相同な別の塩基配列に置き換えた上、レポーター遺伝子の翻訳フレームがＡｂｃａ１２遺伝子の翻訳フレームと一致するように設計することが好ましい。レポーター遺伝子は、例えば大腸菌のβ−ガラクトシダーゼ遺伝子（ＬａｃＺ）、β−グルコニダーゼ遺伝子（ＧＵＳ）、ルシフェラーゼ遺伝子（Ｌｕｃ）、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、エクオリン遺伝子、タウマリン遺伝子等のような、一般に用いられるものであればいずれを用いてもよい。

相同組換え用ターゲティングベクターの構築には、一般的な遺伝子工学的手法を用いて、上記の核酸、マーカー遺伝子、レポーター遺伝子等をＰＣＲや合成リンカーＤＮＡ等を適宜用いて、通常のＤＮＡ組換え技術により容易に行うことができる。

次に、相同組換え用ターゲティングベクターを適当な標的細胞へ導入する。この細胞へのターゲティングベクターの導入方法も、今や当業者に周知であり、その典型例はエレクトロポレーション法、マイクロインジェクション法などを挙げることができる。標的細胞は、胚性幹細胞（ＥｍｂｒｙｏｎｉｃＳｔｅｍＣｅｌｌ、ＥＳ細胞）等、通常キメラ動物の作出に用いられるものが好ましい。マウスのＥＳ細胞としては、ＥＫ細胞（Ｅｖａｎｓら、Ｎａｔｕｒｅ、１９８４年、第３０９巻、第２５５頁）、ＥＳ−Ｄ３細胞（Ｄｏｅｔｓｃｈｍａｎら、Ｊ．Ｅｍｂｒｙｏｌ．Ｅｘｐ．Ｍｏｌｐｈ．、１９８１年、第８７巻、第２７頁）、ＣＣＥ細胞（Ｒｏｂｅｒｔｓｏｎら、Ｎａｔｕｒｅ、１９８６年、第３２３巻、第４４５頁）、１２９Ｓｖ／Ｅｖ由来マウスＥＳ細胞（文献出典・・・・・・）その他の既に樹立されたものを用いればよく、また上記の論文に記載された方法その他の既知の方法に準じて、新たにＥＳ細胞を樹立して用いてもよい。

ターゲティングベクターが取り込まれた細胞では、染色体の標的遺伝子、すなわちＡｂｃａ１２遺伝子が、ターゲティングベクター上の２つの相同な塩基配列部分との間で組換えを起こし、前記２つの相同な領域に囲まれたベクター上の核酸領域が染色体上に取り込まれ、変異が導入される。こうして変異が導入された細胞は、ベクター由来のマーカー遺伝子の発現に基づいて選択することができる。こうして選択された細胞のうち、所望の位置に変異が導入された細胞は、ＰＣＲ法やサザンブロッティング法等により確認、選択することができる。また、核型分析により正常染色体数を確認し、キメラマウス作製に適した細胞を選択することができる。

次に、上記方法で作製された変異が導入された細胞を用いて、注入法や凝集法その他の一般的な方法（例えば、細胞工学、第１０巻、第４０３頁、１９９１年、又は「発生工学実験マニュアル」、野村達次監修、勝木元也編、講談社、１９８７年などを参照）に従ってキメラマウスを作出し、キメラ動物と適当な系統のマウスと交配させて産仔を得、得られる産仔の表現型、あるいはＡｂｃａ１２遺伝子座をＰＣＲ法やサザンブロッティング法等により解析して、その生殖細胞がＥＳ細胞に由来して、導入された変異を子孫に伝播することができる親キメラマウスを同定する。

前記親キメラマウス同士を交配させることで、ヘテロ型のＡｂｃａ１２遺伝子ノックアウトマウス（以下、ヘテロ型Ａｂｃｄ１２ＫＯマウスと表す）を得ることができる。さらに得られたヘテロ型Ａｂｃｄ１２ＫＯマウス同士を交配させて、ホモ型のＡｂｃａ１２遺伝子ノックアウトマウス（以下、ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスと表す）を得ることができる。Ａｂｃａ１２遺伝子がヘテロ型もしくはホモ型にノックアウトされていることは、作出されたマウスの染色体ＤＮＡをＰＣＲ法やサザンブロッティング法等で解析することにより、確認することができる。本発明のマウスは、ヘテロ型Ａｂｃｄ１２ＫＯマウス及びホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスが挙げられるが、好ましくはホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスである。

本発明のＡｂｃａ１２遺伝子がノックアウトされたマウス、特にホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスは、多くの場合、母体内で死亡し、出生率が極めて低い。また出生したマウスは、体重変化が確認できるほどの皮膚からの水分ロスが認められる他、トルイジンブルーを用いて染色するとわずか５分で染色されるなど、出生時から重篤な皮膚バリア機能障害を呈する。また、全身が紅色で、皮膚は鎧状で硬く柔軟性がなく、道化師様魚鱗癬と同様の外観を呈する。さらに、ＨＥ染色によりｃｏｍｐａｃｔｈｙｐｅｒｋｅｒａｔｏｓｉｓが認められる一方、セラミド染色では角層の染色が観察されず、さらに皮膚組織の電子顕微鏡観察によって、角層内に多量の脂肪滴が観察される。

したがって、本発明のＡｂｃａ１２遺伝子がノックアウトされたマウスに化合物を病態部位に対して外用的に投与するか、あるいは経口的に、または注射などにより投与し、ノックアウトマウスの皮膚バリア機能の改善効果を確認することにより、皮膚バリア障害を治療又は改善することのできる物質をスクリーニングすることができ、本発明は、かかるスクリーニング方法を提供するものである。また本発明のＡｂｃａ１２遺伝子がノックアウトされたマウスは、出生後の生存率を改善することのできる物質の探索、あるいは医学的なあるいは薬学的な方法の開発にも利用することができる。さらに、出生後のあるいは出生前の胎児の状態の本発明のＡｂｃａ１２遺伝子がノックアウトされたマウスから外科的に皮膚又は皮膚組織を取り出し、当該取り出した皮膚又は皮膚組織を用いて、またはそれらを正常マウスに移植して、物質のスクリーニングに使用してもよい。

また、本発明のＡｂｃａ１２遺伝子がノックアウトされたマウスを受胎している親マウスに外用的に、経口的に、注射などにより、又は子宮内に物質を投与し、胎児マウスすなわちＡｂｃａ１２遺伝子がノックアウトされたマウスの出生率を測定することにより、多くの胎児マウスにとって致死的である皮膚バリア機能障害を治療又は改善することのできる物質をスクリーニングすることができ、本発明は、かかるスクリーニング方法も提供するものである。

以下、実施例を挙げて本発明を具体的具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。なお、下記実施例において、特に明示がない限り、各操作はＳａｍｂｒｏｏｋＪ．ら（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ、ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ、１９８９年発刊）その他の実験操作マニュアルに記載の方法、又は各種市販の試薬乃至キットに添付された指示書に従って行った。

＜実施例１＞ノックアウトマウスの製造
ＢＡＣＰＡＣＲｅｓｏｕｒｃｅｓＣｅｎｔｅｒ（Ｃｈｉｌｄｒｅｎ’ｓＨｏｓｐｉｔａｌＯａｋｌａｎｄＲｅｓｅａｒｃｈＩｎｓｔｉｔｕｔｅ、米国カリフォルニア州オークランド）から、１２９Ｓｖ／Ｅｖゲノムを含むＢＡＣクローンを購入し、１０．６ｋｂマウスゲノムＤＮＡフラグメントをクローニングした。このフラグメントは、マウスＡｂｃａ１２のゲノムＤＮＡのエクソン３０を有する。

エクソン３０の４７ｂｐ上流部位（イントロン２９）から、エクソン３０の２０３ｋｂ下流部位（イントロン３０内部）までの領域を、ホスホグリセリン酸キナーゼプロモーター／ネオマイシン抵抗遺伝子カセット（ＰＧＫ−ｎｅｏ）で置換した。置換された領域は、５’−ＣＡＣＴＧＡＴＴＧＴＧＡＡＣＡＣＡＡＴＡＧＣＡＣＣ−３’（配列番号１）で開始しており、５’−ＴＣＡＣＴＧＴＧＡＧＴＴＡＡＡＴＴＡＴＣＧＡ−３’（配列番号２）で終結している。

このストラテジーによって、エクソン３０のコード領域と、イントロン２９および３０の一部とが、ＰＧＫ−ｎｅｏで置換された改変フラグメントを得た。これにより、遺伝子転写がＰＧＫ−ｎｅｏでトラップされ、エクソン３０よりも下流のエクソン配列が発現されなかった。

さらに改変フラグメントを、プラスミドベクターｐＳＰ７２（プロメガ株式会社）の改変物に組み込んで、ターゲッティングベクターを得た。ｐＳＰ７２の改変物の塩基配列を、後述の配列表に示した（配列番号３）。ターゲッティングベクターの前記ターゲッティングベクターは、ｉｎＧｅｎｉｏｕｓＴａｒｇｅｔｉｎｇＬａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｉｎｃ．に委託して製造された。

得られたターゲッティングベクターをＮｏｔＩによって線状化して、１２９Ｓｖ／Ｅｖ胎生期幹細胞（ＷＷ１セルライン、米国ＮａｔｉｏｎａｌＩｎｓｔｉｔｕｔｅｓｏｆＨｅａｌｔｈに登録されている）に、エレクトロポレーションによってトランスフェクトした。トランスフェクトされた細胞を、抗生物質Ｇ４１８を含む（５００ｍｇ／ｍｌ）、ＥＳ細胞用の１０％ＦＣＳ−ＤＭＥＭ培地において３７℃で培養し、組み換えクローンを選択した。

選択された２００の抵抗性コロニーを拡張させ、以下の条件でＰＣＲを行い、組み換えクローンを同定した。まず、ターゲッティング構築物を得るために用いられる領域外のショートホモロジーアーム（ｓｈｏｒｔｈｏｍｏｌｏｇｙａｒｍ）の下流側（３’）へのプライマーＡ１（５’−ＴＧＡＧＡＣＴＴＴＣＧＴＧＣＴＧＡＡＴＧＧＡＧ−３’）（配列番号４）と、Ｎｅｏカセットの５’末端へのプライマーＮ１（５’−ＴＧＣＧＡＧＧＣＣＡＧＡＧＧＣＣＡＣＴＴＧＴＧＴＡＧＣ−３’）（配列番号５）を得た。プライマーＡ１とＮ１を用いて、０．３５ｍＭのＭｇＣｌ_２存在下、「９５℃で３０秒間、６４℃で３０秒間、さらに７２℃で１５０秒間」３５サイクルのＰＣＲ反応により、２．２ｋｂフラグメントを増幅させた。

適切にターゲッティングされたマウス胚幹細胞を、Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウス（ＪａｃｋｓｏｎＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）から得られた胚盤胞にマイクロインジェクトして、キメラ胚を得た。得られたキメラ胚を、Ｃ５７ＢＬ／６Ｊメスマウスに着床して、キメラマウスであるヘテロ型Ａｂｃｄ１２ＫＯマウス（Ｃ５７ＢＬ／６Ｊメスと交雑されている）を発生させた。Ｆ１のヘテロ接合体を、６週齢を超えるＣ５７ＢＬ／６Ｊと交雑させ、インタークロスさせてホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスであるＡＢＣＡ１２−／−マウスを得た。

成体マウス、および新生仔マウスについて、4つのＰＣＲプライマー（Ａ１、Ｎ１、ＷＴ１（５’−ＣＡＣＣＴＣＡＣＴＧＡＡＧＡＣＧＴＡＴＣ−３’、配列番号６）、ＷＴ２（５’−ＴＣＧＡＧＴＴＡＴＧＡＣＴＧＴＧＣＣＡＴ−３’、配列番号７））を用いて、その遺伝子型を同定した。Ａ１およびＮ１のプライマーペアを用いたＰＣＲでは２．２ｋｂｐ変異バンドが増幅され、一方、ＷＴ１およびＷＴ２のプライマーペアを用いたＰＣＲでは、野生型ゲノムＡｂｃａ１２ＤＮＡの３１０ｂｐフラグメントが増幅された。

ヘテロ型Ａｂｃｄ１２ＫＯマウス、ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウス及び野生型マウスについて、Ａｂｃａ１２遺伝子ｃＤＮＡの部分配列をプローブとして用いて、Ａｂｃａ１２遺伝子の発現をＲＴ−ＰＣＲ法により確認した。

野生型マウスでは、ＰＣＲ産物２５６ｂｐのバンドが認められたが、ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスでは全くシグナルは検出されず、タンパク質が翻訳され得ない状態にあることが確認された。また、ヘテロ型Ａｂｃｄ１２ＫＯマウスでは２５６ｂｐのバンドを確認した。

＜実施例２＞Ａｂｃａ１２遺伝子がノックアウトされたマウスの表現型
Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウス（野生型）の新生児マウスと比較したときの、実施例１で作成したヘテロ型Ａｂｃｄ１２ＫＯマウス及びホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスの特徴は、次のようにまとめられる。

１）ヘテロ型Ａｂｃｄ１２ＫＯマウス）
・外見
野生型と比べて差異なし。

・体重
野生型と比べて差異なし。

・寿命
野生型と比べて差異なし。

・光学顕微鏡病理所見
皮膚の構造について、及び他臓器にいずれも差を認められない。

・電子顕微鏡所見
層板顆粒の形成、角質細胞間脂質の形成に差は認められない。

２）ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウス
・外見
皮膚は硬く、鎧のような外見を呈しており、柔軟性がない（図１Ａ）。また、四肢の短縮を認められる他、体に亀裂を生じたホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウス（図１Ｂ）も認められた。これらはヒト道化師様魚鱗癬患者の特徴である。

・体重
出生直後から３時間後の体重が、野生型は２％（９５％信頼区間０−５％）の減少であるのに対して、ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスは１４％（９５％信頼区間１１−１７％）減少と、著明な体重減少が認められた。

・トルイジンブルー染色
出生直後の新生児を１００％メタノールにて脱水後、０．１％トルイジンブルー液に全身を５分間浸けた結果、野生型マウスでは染色されないのに対して、ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスは全身が青く染色され（図２）、ＫＯマウスの皮膚透過性が亢進していることが確認された。

・ＨＥ染色
出生直後の新生児をホルマリン固定し、パラフィン包埋、ヘマトキシリン・エオジン染色を行った結果、野生型では正常角化（ｂａｓｋｅｔｗｅａｖｅａｐｐｅａｒａｎｃｅ）を認めたが、ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスの皮膚では認められず、過角化を認め、道化師様魚鱗癬と同様の特徴を有することが確認された（図３）。一方、全身他臓器も観察を行ったが、野生型・ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスの間に明らかな差を認めなかった。

・セラミド染色
出生直後の新生児皮膚をＯＣＴ凍結包埋し、クリオスタットにて５μm厚切片を作成した。一次抗体ウサギ抗グルコシルセラミド抗を１０倍稀釈、二次抗体Ａｌｅｘａ４８８標識抗ウサギＩｇＧ抗体を５０倍稀釈して、試料を染色した。その結果、野生型では角層での染色を認める一方、ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスの皮膚では角層での染色が認められないという、道化師様魚鱗癬と同様の特徴が確認された。

・電子顕微鏡観察
出生直後の新生児皮膚を５％グルタルアルデヒドにて固定、続いてルテニウム固定法を行い、電子顕微鏡用切片を作成し、電子顕微鏡で観察した。その結果、ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスにおいてのみ、角層内に多量の脂肪滴が認められたが、角質細胞間脂肪層は形成されていないという、道化師様魚鱗癬と同様の特徴が確認された。

・経表皮水分喪失量の測定
新生児マウスに対して、バポススキャンＡＳ−ＶＴ１００ＲＳ（ＡＳＡＨＩＢＩＯＭＥＤ）を使用して直接、経表皮水分喪失量を測定した。その結果、野生型マウスの水分損失は３．６（±１．５）ｇ／ｈ／ｍ^２であるのに対して、ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスのそれは４６．２(±２．７）ｇ／ｈ／ｍ^２と、野生型に比べて著明に経表皮水分喪失量が上昇していることが確認された。

ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウス（左）と野生型マウス（右）の外見を示す写真である。体に亀裂を生じたホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウスの外見を示す写真である。ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウス（左）と野生型マウス（右）の新生児をトルイジンブルー染色した結果を示す。ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウス（左）と野生型マウス（右）の新生児皮膚をＨＥ染色した結果を示す。ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウス（左）と野生型マウス（右）の新生児皮膚をセラミド染色した結果を示す。ホモ型Ａｂｃａ１２ＫＯマウス（左）と野生型マウス（右）の新生児皮膚組織を電子顕微鏡観察した結果を示す。

Claims

Ａｂｃａ１２遺伝子の機能がノックアウトされた、皮膚バリア機能障害モデルマウス。
Ａｂｃａ１２遺伝子のエクソン３０を破壊することで当該遺伝子の機能がノックアウトされた、請求項１に記載のモデルマウス。
ホモノックアウトマウスである、請求項１又は２に記載のモデルマウス。
皮膚バリア機能障害が魚鱗癬による障害である、請求項１〜３のいずれかに記載のモデルマウス。
請求項１〜４の何れかに記載のモデルマウス又はその皮膚組織に物質を投与する工程、及び該モデルマウス又はその皮膚組織の皮膚バリア機能障害の改善効果を確認する工程を含む、皮膚バリア障害を治療又は改善することのできる物質をスクリーニングする方法。
請求項１〜４の何れかに記載のモデルマウスを受胎した親マウスに物質を投与する工程、及び胎児マウスの出生率を測定する工程を含む、皮膚バリア障害を治療又は改善することのできる物質をスクリーニングする方法。