JP2008283974A - コンドロイチンシンターゼをコードする核酸セグメント、同セグメントなる組換えベクター、同ベクターからなる組換え宿主細胞、および、同宿主細胞を利用して、コンドロイチンポリマーを生産するための方法 - Google Patents

Abstract

【課題】家禽、家畜、ヒツジおよびブタの農業病原体であるパスツレラ・ムルトシダに関する新規ＨＡＳ（ヒアルロン酸シンターゼ）をコードする核酸セグメントの提供。
【解決手段】酵素的に活性な細菌ムルトシダ（ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｍｕｌｔｏｃｉｄａ）ヒアルロン酸シンターゼ（ＰｍＨＡＳ）をコードするコード領域セグメントを有する核酸セグメント、及びヒアルロン酸シンターゼとそのヒアルロン酸産物を産生する組換え細胞の調製におけるこの核酸セグメントの使用。ワクチン接種において使用するためのＰ．ムルトシダの「ノックアウト」突然変異菌株を構築する上でのＰｍＨＡＳの使用。家畜のＰ．ムルトシダ感染の圃場検査での診断試験におけるＰｍＨＡＳの使用。
【選択図】なし

Description

（関連出願についての関連資料）
本発明は、１９９８年４月２日に提出された「パスツレラ・ムルトシダ（ＰＡＳＴＵＲＥＬＬＡ ＭＵＬＴＯＣＩＤＡ）から得られる特徴的なヒアルロナンシンターゼ」と題される、全体的にここに参照して直ちに組込まれる米国仮特許出願第６０／０８０，４１４号に関連する。本発明は、１９９８年１０月２６日に提出された「ヒアルロナンシンターゼ遺伝子およびその使用」と題される、全体的にここに参照して直ちに組込まれる米国仮特許出願第０９／１７８，８５１号に対する一部継続でもある。

（発明の背景）
１．発明の分野
本発明は、パスツレラ・ムルトシダ（Ｐａｓｔｕｒｅｌｌａ ｍｕｌｔｏｃｉｄａ）から得られるヒアルロナンシンターゼをコードするＤＮＡ配列に関する。さらに詳細には、本発明は、外来宿主中でヒアルロナンシンターゼを発現することができるように、組換え構築にかける能力のあるパスツレラ・ムルトシダ（Ｐａｓｔｕｒｅｌｌａ ｍｕｌｔｏｃｉｄａ）から得られるヒアルロナンシンターゼをコードするＤＮＡ配列に関する。本発明は、（１）変化するサイズ分布のヒアルロナンポリマーを作り、（２）置換基または付加塩基糖を組込むヒアルロナンポリマーを作り、（３）新しくそして新規な動物ワクチンを開発し、そして（４）動物の病原体の検出および同定のための新しくそして新規な診断用試験を開発するために、パスツレラ・ムルトシダから得られるヒアルロナンシンターゼをコードするＤＮＡ配列を使用する方法にも関する。

２．背景技術の簡単な説明
多糖ヒアルロン酸（「ＨＡ」）またはヒアルロナンは、構造的そして認識の両方の役割を果たす高等動物の必須成分である。哺乳類および鳥類では、ＨＡは、皮膚、関節滑膜液、および眼球の硝子体液に多量に存在する。ある種の病原性細菌、特にグラム陽性ＡおよびＣ群のストレプトコッカス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ）およびグラム陰性のパステレラ・ムルトシダＡ型は、それらの脊椎動物宿主で見られるＨＡ分子と同じ化学構造を示すＨＡを含む細胞外莢膜を生じる。この「分子擬態」は、被包多糖に対する強力な抗体応答をさせる試みを阻止する。対照的に、他の細菌によって産生される様々な構造を示す莢膜多糖は、しばしば非常に抗原性がある。ＨＡ莢膜も、病原体が貧食作用を含む宿主防御をかわすのを明らかに助ける。

歴史的には、この分野の研究者らは、パスツレラ（Ｐａｓｔｕｒｅｌｌａ）から得られるヒアルロナン・シンターゼ（「ＨＡＳ」）をクローニングまたは同定するのに成功していない。ＡおよびＣ群のストレプトコッカスから得られる細菌ＨＡＳ酵素は同定され、そしてクローニングされている。ストレプトコッカス・ビオゲネス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ）から得られるＨａｓＡは、明確に同定されるべき最初のＨＡＳであった。この内在性膜タンパク質は、基質として細胞内ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよびＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃを活用する。新生ＨＡ鎖は、膜を通して押出されて、細胞外莢膜を形成する。キセノプスタンパク質ＤＧ４２も、ＨＡＳと決定された。ＨＡＳ１、ＨＡＳ２およびＨＡＳ３と称されるＤＧ４２のいくつかのヒトおよびネズミ相同体も同定されている。アミノ酸レベルでこれらの分子でクローン化された哺乳類の酵素の中に考慮すべき類似性があるが、しかしそれらは、様々な染色体上にある。Ｐ．ムルトシダから得られる特徴的なＨＡＳは、ストレプトコッカス、ＰＢＣＶ−１ウイルスまたは高等動物から得られる、先にクローン化された酵素に特には似てはいない一次構造を示す。

Ａ９８Ｒと呼ばれるＯＲＦを有するウイルス性ＨＡＳは、ストレプトコッカスの、そして脊椎動物の酵素に２８−３０％同一であると同定された。ＰＢＣＶ−１（パラメシウム・ブルサリア（Ｐａｒａｍｅｃｉｕｍ ｂｕｒｓａｒｉａ）のクロレラウイスル）は、そのクロレラ様緑色藻類宿主の感染の直後に確かなＨＡ多糖を産生する。Ａ９８Ｒは、炭化水素ポリマーを産生すると同定された最初にウイルスでコードされる酵素である。

家禽コレラの原因媒体であるカーターＡ型のＰ．ムルトシダは、米国の家禽産業での経済損失の大きな原因である。被包親株が素早く増え、そして１から２日以内に死をもたらす場合、Ｐ．ムルトシダの非莢膜突然変異体は、静脈注射後に、七面鳥の血流で繁殖しない。非莢膜である自然発生的突然変異株も、野生型より伝染性の強さが１０^５倍小さかったが、しかし開示された突然変異体（以降に記述されるとおり）以前の全ての事例で遺伝的欠陥の特性は、知られていなかった。

パスツレラの細菌性病原体は、米国農業に酷い損失を生じる。Ｐ．ムルトシダの細胞外多糖莢膜は、主要な毒性因子と提示された。Ａ型莢膜は、宿主の体内の正常な多糖と同一であり、したがって、免疫系に見分けがつかない多糖、主にＨＡから構成される。この「分子擬態」は、貧食作用および補体依存性溶解のような宿主防御を妨げる。さらに、ＨＡは、そのポリマーが宿主の体の正常な成分であるので、強力には免疫原性でない。しかし、異なる多糖から構成される他の細菌の莢膜は、通常、免疫応答の主要な標的である。莢膜ポリマーに対して発生される抗体は、しばしば、微生物の排除および長期免疫性の原因である。

病原体の毒力の原因である因子を知ることは、聡明にそして有効にその疾病に勝つ方法についての鍵を提供する。Ａ型Ｐ．ムルトシダでは、毒力因子の内の１つは、非免疫原性ＨＡの保護的シールト、つまり宿主防御のためのほとんど越えられない防御壁である。いくつかの株は、保護用のＨＡ莢膜に依存するように見えないが、しかし、宿主機構を保持するための他の未知の因子を活用する。選択的に、これらの株は、古典的試験によって検出されない、より小さな莢膜を保有する可能性がある。

家禽および特に七面鳥については、家禽コレラは、破壊的でありうる。数種の被包株の内のいくつかから１，０００個の細胞が、２４−４８時間で七面鳥を死滅させる。家禽コレラは、北米で経済的に重要な疾病である。１９８０年代後半に行われた研究では、七面鳥産業における家禽コレラの影響の内のいくつかが示される。すなわち、（ｉ）家禽コレラが、全ての病気の１４．７から１８％を引起こすこと、（ｉｉ）１つの州だけで、年間の損失は、６００，０００ドルであったこと、（ｉｉｉ）病気の一団を抗生物質で処置するのには、０．４０ドル／一羽を費やすこと、そして（ｉｖ）感染を防止するための処置には０．１２ドル／一羽を費やすことである。

Ａ型Ｐ．ムルトシダのある種の株は、肺炎の病巣を引起こし、そしてストレスの掛かった家畜に発熱をもたらす。飼育場での体重増における継続した減少は、重大な損失を引起こす。ウシの株は、家禽コレラ株とある程度区別がつくが、しかし、宿主範囲の優位性におけるこれらの差異についての分子的根拠はまだ明らかでない。Ａ型も、ブタでの肺炎の半分の原因となる。Ｄ型Ｐ．ムルトシダは、ブタでの非常に上位の疾病である萎縮性鼻炎でのその関わり合いについて最もよく知られている。

Ｄ型莢膜ポリマーは、ある種の型のグルイコサミノグリカンであると思われる未知構造を有する。これは、ＨＡを含むポリマーと同じファミリーである。この疾病は、ボルデテラ・ブロンキセプチカ（Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ ｂｒｏｎｃｈｉｓｅｐｔｉｃａ）によっても促進されるが、しかしその症状は、両方の細菌種が存在するときなおさら悪い。Ｆ型は、家禽コレラ事例の約１０％を引起こすと概算される。この場合に、莢膜ポリマーは、ＨＡではなくて、コンドロイチンと称される関連ポリマーである。

最近、家禽範囲での疾病防止は、厳密な衛生と同様に、２つの要素、ワクチンおよび抗生物質によって実現される。この分野には多くの血液型があり、そしてワクチンは、全病原体種の限定された部分集合に対してただ有効であるので、最初の選択の有用性は、制限される。死滅細胞のワクチンは、困難な強制注射によって行われ、そして得られる保護は高くない。したがって、この経路は、通常、交配動物のために保留される。さらに有効な生細胞ワクチンは、水供給を介して送出させることができるが、しかし数千の集団に均等に投与するのは困難である。さらに、生の「非毒性」ワクチンは、しばしばそれ自身が疾病を引起こす可能性があるか、そうでなければ鳥は、ストレスがかかるかまたは病気である。この予測不可能の最も共通の理由は、これらの毒性のない株が、未知または特徴づけられていない遺伝子での自発的変異から生じたことである。生および死滅ワクチンへの繰返しの選択的露出を利用するプロトコールは、いくつかの血液型での課題に対してのみ鳥類を保護することができる。

第二の疾病防止選択は、抗生物質である。これらは、感染を防止するために補助治療用量で、または感染鳥内で家禽コレラと戦うために高用量で使用される。疾病を有する鳥類の含有率は、薬剤治療で下降しうるが、しかし時期よくそして集中的な処置が必要である。抗生物質の遅れた投与または時期尚早な中止は、しばしば、慢性家禽コレラ、そして不治宣告および需要が逸するに至る膿瘍または病巣を有する病気の鳥になる。さらに、Ｐ．ムルトシダの耐性株は、継続して生じ、そして医薬品費用が高いので、この解決法は、長期傾向では魅力的でない。さらに、Ｆ型Ｐ．ムルトシダは、北米での家禽コレラの５−１０％を引起こしうる。Ａ型株に導かれるワクチンは、それが、将来、主要な病原体として現れる場合、この他の莢膜型に対して十分に保護できない。家畜およびブタ産業では、総体的に成功したワクチンはない。予防の抗生物質処置は、体重増での損失を回避するために使用されるが、しかしこの選択は、高価でありそして微生物耐性の問題を被りやすい。

本発明では、保護的細菌性ＨＡ莢膜を作成するときに含まれる酵素は、遺伝子／ＤＮＡレベルで同定された。これらの酵素の同定は、宿主にＨＡ生合成をさせない特異的阻害剤で病原体の莢膜合成を遮断することによって疾病介入に至る。例えば、ＨＡまたはＰ．ムルトシダＨＡシンターゼの制御因子を作るのに使用される基質を擬態する薬剤は、細菌のＨＡ多糖の産生を止め、そしてそれにより莢膜形成を遮断する。これは、微生物および宿主系での類似しない影響を示す多くの最近の抗生物質に対する直接相似である。Ｐ．ムルトシダＨＡシンターゼおよび脊椎動物ＨＡシンターゼはタンパク質レベルで非常に異なるので、このアプローチ法は好ましい。したがって、その酵素も、反応機構または基質結合部位の上で異なるようである。

その保護的莢膜のシールドをいったん奪われたＰ．ムルトシダは、宿主防御のための明らかにいっそう傷つきやすい標的である。貧食作用は、非莢膜微生物によって容易に巻込まれ、そして破壊される。宿主補体複合体は、細菌の感受性外側膜に到達し、そして引裂く。抗体は、Ｐ．ムルトシダ中の体細胞血液型を決定するリポ多糖および表面タンパク質のような、新たに暴露された免疫原に対してさらに容易に発生される。これらの抗体は、免疫応答の上で後に非莢膜細胞に結合することがいっそうできる。したがって、ワクチン注射からの免疫応答は、いっそう効果的であり、そしていっそう費用に効果的である。莢膜阻害薬剤は、家禽コレラの処置に対する実質的付加物である。

本発明およびＡ型Ｐ．ムルトシダの莢膜生合成の使用は、他の莢膜血液型の理解の助けとなる。ＤＮＡプローブは、ＤおよびＦ型が類似の相同体を保有することを立証するためにＡ型莢膜遺伝子に使用された。

高分子量のＨＡも、化粧品から眼科手術までに及ぶ広範な種々の有用な使用法を示す。高粘性についてのその能力およびその高い生物適合性のため、ＨＡは、硝子体液の代替として眼科手術での特定の使用法を見出す。ＨＡは、ＨＡの関節内注射による外傷性関節炎について競走馬を処置するのにも使用されており、髭剃りクリームでは、潤滑剤として、そして種々の化粧品では、高い粘性のその物理化学的特性および長期間湿度を保持するその能力のために使用される。実際に、１９９７年の８月には、米国食品医薬品局は、影響を及ぼされた関節に直接的にこのような高分子量ＨＡを注射することを通して、重篤な関節炎の処置における高分子量ＨＡの使用を認可した。一般に、使用されるＨＡの分子量が高ければそれだけよい。これは、ＨＡ溶液の粘性がその溶液中の個々のＨＡポリマーの分子の平均分子量とともに増加するからである。不幸にも、１０^７までの範囲内のもののような非常に高い分子量のＨＡは、最近利用できる単離手段によって得ることは困難であった。

これらまたは他の困難に向けて、純度が高いか、または製造の容易さのような、１つまたはそれ以上の改善された特性を示すＨＡを生成するために使用することができる新規方法および構築物の必要性がある。特に、最近、市販で入手可能であるものより、多量の比較的高い分子量で、比較的純粋なＨＡの生成のための方法論を開発する必要がある。改変された構造を示すＨＡ（ＨＡ_Δｍｏｄ）と同様に、改変されたサイズ分布を示すＨＡ（ＨＡ_Δサイズ）の生成についての方法論を開発することができる、さらに別の必要性がある。

したがって、本発明は、莢膜生合成に含まれるＡ型Ｐ．ムルトシダ遺伝子を機能的に特徴づけ、家禽コレラでの毒力因子として莢膜の役割を評価し、そしてＤおよびＦ型莢膜生合成に関与した相同性遺伝子を得た。この情報で、ワクチンは、ＨＡＳを産生しない「ノックアウト」Ｐ．ムルトシダ遺伝子を利用しながら開発された。これらの非莢膜の非毒性株は、家禽コレラ用のワクチンとして作用するか、発熱をもたらす能力を示す。

（発明の要旨）
本発明は、ＨＡを産生する新規ＨＡＳに関する。種々の分子生物学の技術を使用して、新規ＨＡＳについての遺伝子は、家禽コレラ病原体Ａ型Ｐ．ムルトシダで見出された。パスツレラ．ムルトシダから得られるこの新規ＨＡＳ（「ＰｍＨＡＳ」）を、クローン化し、そして他の種の細菌で機能性があることが示された。

したがって、ＨＡの新規源が同定された。ＰｍＨＡＳのＤＮＡ配列は、破壊バージョンとの相同な組換えによって正常な微生物遺伝子をノックアウトさせた後に、Ｐ．ムルトシダ細菌の強力に弱毒化したワクチン株を生成するのにも使用しうる。さらに、ＰｍＨＡＳのＤＮＡ配列は、家禽、家畜、ヒツジおよびブタの農業病原体である関連Ｐ．ムルトシダ型についての診断用細菌型プローブの製造を可能にする。

（発明の詳細な説明）
本発明の少なくとも１つの実施形態を詳細に説明する前に、本発明は、その用途について、以下の説明で規定されるか、または図面で例示される構成要素の構築および配列の詳細に限定されないと理解されるべきである。本発明は、他の実施形態、または種々の方法で実施または行う能力がある。さらに、ここに使用される言い回しおよび用語が、説明の目的のものであって、限定として考慮されるべきでないことも理解すべきである。

ここで使用される用語「核酸セグメント」および「ＤＮＡセグメント」は、相互交換可能に使用され、そして特定の種の総ゲノムＤＮＡなしに単離されたＤＮＡ分子に該当する。したがって、ここに使用される場合の「精製」ＤＮＡまたは核酸セグメントは、非関連のゲノムＤＮＡ、例えば総パスツレラ・ムルトシダまたは例えば哺乳類宿主ゲノムＤＮＡからまだ単離されていないか、またはそれなしに精製されていないヒアルロネートシンターゼ（「ＨＡＳ」）コーディング領域を含むＤＮＡセグメントに該当する。用語「ＤＮＡセグメント」に含まれるのは、ＤＮＡセグメントおよびそのようなセグメントの類似のフラグメント、さらに例えばプラスミド、コスミド、ファージ、ウイルスを含めた組換えベクターなどである。

同様に、単離または精製ＰｍＨＡＳ遺伝子を含むＤＮＡセグメントは、他の自然発生遺伝子またはタンパク質をコードする配列から実質的に単離されたＨＡＳコーディング配列を含めたＤＮＡセグメントに該当する。この点で、用語「遺伝子」は、機能性タンパク質、ポリペプチドまたはペプチドをコードする単位に該当することが簡便のために使用される。当業者に解釈されるように、この機能的用語は、ゲノム配列、ｃＤＮＡ配列またはその組合せを含む。「他のコーディング配列から実質的に単離された」は、目的の遺伝子、この場合ＰｍＨＡＳが、ＤＮＡセグメントのコーディング領域の明らかな部分を形成すること、およびＤＮＡセグメントが、大型染色体フラグメントまたは他の機能性遺伝子またはＤＮＡコーディング領域のような自然に生じるコーディングＤＮＡの大部分を含まないことを意味する。もちろん、これは、最初に単離されたときにＤＮＡセグメントに該当し、そして、ヒトの手によってセグメントに後に加えられたか、または意図して残された遺伝子またはコーディング領域を排除しない。

原核生物源の使用に関連したある種の利点のため、だれでも原核生物Ｐ．ムルトシダからのＨＡＳ遺伝子の単離での最高の利点を実感しそうである。そのような利点の１つは、一般的に、真核生物の酵素は、真核生物の宿主でのみ達成されうる明らかな後期翻訳修飾を必要としうることである。これは、得られる任意の真核生物のＨＡシンターゼ遺伝子の適用性を限定する傾向にある。さらに、当業者は、原核生物の酵素遺伝子が使用されると思われる遺伝的操作の時間および容易さの点で別の利点に気づきそうである。これらの追加の利点としては、（ａ）ゲノムのサイズが比較的小さく、したがって、対応するゲノムライブラリーのスクリーニングの量が減少されるため、原核生物の遺伝子の単離が容易なこと、および（ｂ）原核生物の遺伝子の全てのサイズのコーディング領域が、イントロンの不在によって明らかに小さいため、操作が容易なことが挙げられる。さらに、ＰｍＨＡＳ遺伝子（すなわち酵素）の産物が、後期翻訳修飾を必要とする場合、これらは、その遺伝子が由来する類似の原核生物の細胞環境（宿主）で達成されるのが最良である。

好ましくは、本発明に関するＤＮＡ配列は、さらに、選択組換え宿主中の配列の発現を可能にする遺伝子制御領域を含む。もちろん、使用される制御領域の特性は、一般に、想像される特定の使用法（例えば、宿主クローニング）によって変化する。

特定の実施形態では、本発明は、単離ＤＮＡセグメントおよびＰｍＨＡＳ遺伝子をコードするＤＮＡ配列を組込む組換えベクターに関し、そしてそれは、そのアミノ酸配列内に配列番号１によるアミノ酸配列を含む。さらに、他の特定の実施形態では、本発明は、パスツレラ・ムルトシダＨＡＳに対応する、単離ＤＮＡセグメントおよびそのアミノ酸配列内にＨＡＳ遺伝子またはＤＮＡのアミノ酸配列を含む遺伝子、そして特にＨＡＳ遺伝子またはｃＤＮＡをコードするＤＮＡ配列を組込む組換えベクターに関する。例えば、ＤＮＡセグメントまたはベクターが、全長のＨＡＳタンパク質をコードするか、またはＨＡＳタンパク質を発現するときに使用されることが意図される場合、好ましい配列は、基本的に、配列番号１で規定されるとおりのものである。

切断ＰｍＨＡＳも、配列番号１で規定されるとおりの好ましい配列の定義の範囲内にはいる。例えば、ｃ末端では、およそ２７０−２７２アミノ酸は、その配列から排除される可能性があり、そしてまだ機能するＨＡＳを有する。当業者は、ＰｍＨＡＳのいずれかの末端から簡単にアミノ酸を除去することは、達成することができる。このような切断配列がまだＨＡＳを産生する能力があるかどうかを決定するために、その配列の切断バージョンで、ＨＡＳ活性について簡単に確認しなければならない。

ＨＡシンターゼ活性を示す核酸セグメントは、ここに記述される方法によって単離されうる。用語「基本的に配列番号１で規定されるとおりの配列」は、その配列が、配列番号１の一部に実質的に対応し、そして配列番号１のアミノ酸と一致しないか、またはそれと生物学的に機能性の等価な、比較的少ないアミノ酸を有することを意味する。用語「生物学的に機能性の等価な」は、当業界で十分に理解され、そしてさらにここに詳細に、基本的に配列番号１に規定されるような配列を有し、ＨＡまたはヒアルロン酸被覆物を産生する原核生物の能力に関連する遺伝子として定義される。

当業界は、核酸セグメントに構造変化（すなわち、保存または半保存アミノ酸置換をコードすること）を起させ、そしてさらに、その酵素または機能性活性を保存する開業医の能力の例が充実している。例えば、（１）Ｒｉｓｌｅｒら、「構造的に関連性のあるタンパク質でのアミノ酸置換。パターン認識アプローチ法」、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２０４巻：１０１９−１０２９頁（１９８８年）[「アミノ酸側鎖の観察される交換性により…、ただ４つの群が概説される；（ｉ）ＩｌｅおよびＶａｌ；（ｉｉ）ＬｅｕおよびＭｅｔ、（ｉｉｉ）Ｌｙｓ、ＡｒｇおよびＧｌｎ、および（ｉｖ）ＴｙｒおよびＰｈｅ」]；（２）Ｎｉｅｆｉｎｄら、「タンパク質モデル化についてのアミノ酸類似性係数および主鎖折畳みアノールから由来される配列の並び」、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１９巻：４８１−４９７頁（１９９１年）［類似性パラメーターは、アミノ酸置換を設計させる］；および（３）Ｏｖｅｒｉｎｇｔｏｎら、「環境特異的アミノ酸置換表：タンパク質折畳みの第三テンプレートおよび検出」、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｃｉｅｎｃｅ、１巻：２１６−２２６頁（１９９２年）［「地域環境の関数として観察される置換のパターンの解析では、区別できるパターンがあることが示される．．．」、適合性変化が起りうる。］参照。

これらの資料および数えられないその他のものでは、当業者は、核酸配列が示されると、その機能性を変化させることなしに、核酸配列に対する置換および変化をなすことができたであろうことが示される。さらに、置換された核酸セグメントは、非常に一致し、そしてその純粋な親に関するそれの酵素的活性を保持する可能性があり、そしてさらにいっそうそこにハイブリッド形成することに失敗しうる。

本発明には、Ｐ．ムルトシダから得られる酵素的に活性なヒアルロネートシンターゼをコードする核酸セグメントＰｍＨＡＳが開示される。当業者は、本発明の範囲および請求項の外に逸脱することなしに、配列番号２に列記されるＰｍＨＡＳ核酸セグメントに置換が行われうることを予測する。標準化されそして受諾される機能的に等価なアミノ酸置換は、表Ａに表される。

本発明の別の好ましい実施形態は、配列番号１によるタンパク質をコードする精製核酸セグメントであり、そして組換えベクターとして定義される。ここで使用される用語「組換えベクター」は、ＨＡＳタンパク質をコードする核酸セグメント、またはそのフラグメントを含むように改変されたベクターに該当する。組換えベクターは、さらに、上記核酸セグメントをコードするＨＡＳに操作的に結合されたプロモーターを含む発現ベクターとして定義することもできる。

本発明の別の好ましい実施形態は、ＨＡＳ遺伝子を含む組換えベクターで組換えられた宿主細胞である。好ましい組換え宿主細胞は、原核生物細胞でありうる。別の実施形態では、組換え宿主細胞は、真核生物の細胞である。ここで使用される用語「操作された」または「組換え」細胞は、ＨＡＳをコードする遺伝子のような組換え遺伝子が導入された細胞に該当することが意図される。したがって、操作された細胞は、組換えで導入される遺伝子を含まない自然発生の細胞と区別しうる。操作された細胞は、ヒトの手を介して導入された遺伝子または遺伝子類を有するような細胞である。組換えで導入された遺伝子は、ｃＤＮＡ遺伝子の形態であるか、ゲノム遺伝子のコピーのいずれかであるか、または特定の導入遺伝子に自然には結合しないプロモーターに隣接して位置づけられる遺伝子を含む。

好ましい実施形態では、ＨＡシンターゼをコードするＤＮＡセグメントは、さらに、特定の宿主によって同類の配列の複製を可能にする、複製の起点または「レプリコン」として機能的に当業界で知られるＤＮＡセグメントを含む。このような起点は、ＨＡシンターゼＤＮＡ配列がライゲートされる、染色体外に配置されそして複製するキメラセグメントまたはプラスミドの製造を可能にする。さらに好ましい例では、使用される起点は、バイオテクノロジー用途に適切な細菌宿主での複製の能力のあるものである。しかし、クローニングされたＤＮＡセグメントのいっそうの多才さについては、その使用が達成される他の宿主系（シャトルベクターのような）によって認識される起点を選択的にまたは付加的にさえ使用することが望ましい可能性がある。

多数の高等生物でクローニングまたは発現について使用される可能性のあるＳＶ４０、ポリオーマまたはウシ乳頭腫ウイルス起点のような他の複製起点の単離および使用は、当業者によく知られている。ある種の実施形態では、本発明は、適切な複製起点と一緒に、そして、選択制御領域の制御下でＨＡシンターゼコーディング遺伝子配列を含む組換え形質転換ベクターの点で定義することができる。

したがって、本開示の点で、他の手段が、ＨＡＳ遺伝子またはｃＤＮＡを得るのに使用されうることは、当業者に予測される。例えば、パスツレラの他の株を含めた多数の源から、またはｃＤＮＡライブラリーのような真核生物の源から得られる遺伝子またはｃＤＮＡの全補体を含むポリメラーゼ連鎖反応またはＲＴ−ＰＣＲで産生されたＤＮＡフラグメントを得ることができる。実質的に、任意の分子クローニングアプローチ法は、本発明によるＤＮＡフラグメントの発生のために使用することができる。したがって、一般に、ＤＮＡ単離に使用される特定の方法での唯一の限定は、単離核酸が、生物学的に機能性の等価なＨＡシンターゼをコードすることである。

一旦、ＤＮＡが単離されると、それは、選択ベクターと一緒にライゲートされる。実質的に、任意のクローニングベクターを使用して、本発明による利点を認識することができる。典型的に有用なベクターとしては、原核生物に使用するためのプラスミドおよびファージ、そして真核生物に使用するためのウイルス性ベクターさえ挙げられる。例としては、ｐＫＫ２２３−３、ｐＳＡ３、組換えラムダ、ＳＶ４０、ポリオーマ、アデノウイルス、ウシ乳頭腫ウイルスおよびレトロウイルスが挙げられる。しかし、特定の利点は、ラクトコッカス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ）またはバシルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）株の両方およびイー・コリで複製の能力のあるベクターが使用される場合に最終的に認識されると考えられる。

ＤａｏおよびＦｅｒｒｅｔｔｉのｐＳＡ３ベクターまたはＴｒｉｅｕ−ＣｕｏｔらのｐＡＴ１９ベクターによって例示されるもののようなベクターは、イー・コリのような簡便に操作される宿主でクローナルコロニー選択を行い、続いてＨＡの産生用の食用等級のラクトコッカスまたはバシルス株に連続で差戻すことを可能にする。これらは良性で、そしてある種の食品およびバイオテクノロジー製品の生産に使用される十分に研究された生物である。これらは、ＨＡ前駆体の到達性を増加させるために遺伝子投与（すなわち、増幅によってＨＡシンターゼ遺伝子の余剰コピーを供すること）および／または追加の遺伝子の封入を通してＨＡを合成するラクトコッカスまたはバシルス株の能力を増すことができる点で有利である。ＨＡを合成する細菌の固有の能力も、ＨＡシンターゼ遺伝子を担持するプラスミドの余剰コピーの形成または増幅を通して増大されうる。この増幅は、プラスミドのコピー数で、したがって、ＨＡシンターゼ遺伝子コピー数で１０倍までの増加の要因となることができる。

ＨＡシンターゼ遺伝子コピー数を更に増す別の手段は、遺伝子の複数コピーをプラスミドへ挿入することである。別の技術は、ＨＡＳ遺伝子を染色体ＤＮＡに組込ませることを含む。この余剰増幅は、細菌性ＨＡシンターゼ遺伝子のサイズが小さいので、特に適している。ある種の計画では、染色体ＤＮＡをライゲートしたベクターが、選択宿主中で挿入ＤＮＡを発現する能力のあるベクターの使用を介して、イー・コリのような、クローナルスクリーニングの目的のために選択される宿主に、遺伝子導入するのに使用される。

ある種の特定の他の実施形態では、本発明は、基本的に配列番号２に規定されるとおりの核酸配列を、それらの配列内に含む単離ＤＮＡセグメントおよび組換えベクターに関する。用語「配列番号２に基本的に規定されるとおり」は、上に記述されるものと同じ意味で使用され、そして核酸配列は、配列番号２の部分に実質的に対応し、そして配列番号２のコドンに同一でないか、または機能的に等価である比較的少数のコドンを有することを意味する。用語「機能的に等価なコドン」は、アルギニンまたはセリンについての６個のコドンのように表Ａに規定されるのと同じアミノ酸をコードするコドンに該当してここに使用され、そして生物学的に等価なアミノ酸をコードするコドンにも該当する。

アミノ酸および核酸配列は、その配列が、タンパク質発現および酵素活性が考慮される生物学上のタンパク質活性の維持を含めて、上に規定される条件に適合する限り、付加ＮまたはＣ末端アミノ酸または５’または３’核酸配列のような付加残基を含み、そしてやはりまだ、ここに開示される配列の内の１つで基本的に規定されるとおりでありうることも分かる。末端配列の付加は、特に、例えば、コーディング領域の５’または３’部分のいずれかの間に挟まる種々の非コーディング配列を含みうるか、または遺伝子内に起ることが知られる種々の内部配列を含みうる核酸配列に行う。さらに、残基は、ＮまたはＣ末端アミノ酸から除去することができ、そして、その配列が、同様に上に規定される条件に適合する限り、やはりまだここに開示される配列の内の１つに基本的に規定されるとおりである。

保存および半保存置換と同様に遺伝子コードの縮重を可能にするので、配列番号２のヌクレオチドと一致する、約４０％と約８０％との間、またはより好ましくは、約８０％と約９０％との間、またはさらに好ましくは、約９０％と約９９％との間のヌクレオチドを示す配列は、「配列番号２に基本的に規定されるとおり」である配列である。配列番号２に規定されるものと基本的に同じである配列は、標準または低い緊縮ハイブリッド形成条件下で配列番号２の補体を含む核酸セグメントにハイブリッド形成する能力がある配列としても機能的に定義されうる。適切な標準ハイブリッド形成条件は、当業者によく知られており、そしてここに明確に規定される。

ここに使用される場合、用語「標準ハイブリッド形成条件」は、実質的に相補な核酸セグメントが、標準ワトソン−クリック塩基対を形成するような条件を記述するのに使用される。ｐＨ、温度、塩濃度、ホルムアミドおよびスルホン酸ジメチルのような薬剤の存在、ハイブリッド形成しているセグメントの長さ等のような結合またはハイブリッド形成の特異的を決定する多数の因子が知られている。短い核酸セグメントが、ハイブリッド形成に使用されることが予測されるとき、例えば、ハイブリッド形成のために約１４と約１００ヌクレオチドとの間のフラグメント、塩および温度の好ましい条件としては、４０−５０℃で、１．２−１．８×ＨＰＢが挙げられる。

当然、本発明は、配列番号２に規定される配列に相補であるか、または基本的に相補であるＤＮＡセグメントも包含する。「相補性」がある核酸配列は、標準ワトソン−クリック相補性規則による塩基対の能力のあるものである。ここに使用される場合、用語「相補的配列」は、上に規定されるのと同じヌクレオチド比較によって評価することができるとおり、または配列番号２の核酸セグメントにハイブリッド形成する能力があると規定されるとおり、実質的に相補性がある核酸配列を意味する。

コーディング配列それ自身の長さに関係なく、本発明の核酸セグメントは、プロモーター、ポリアデニル化シグナル、付加制限酵素部位、多クローニング部位、エピトープタグ、ポリヒスチジン領域、他のコーディングセグメント等のような、それらの全長が、相当に変化しうるような他のＤＮＡ配列と組合せることができる。したがって、ほとんど任意の長さの核酸フラグメントを、製造の容易さおよび意図される組換えＤＮＡプロトコールでの使用によって好ましく限定される総延長で使用できることが予想される。

当然、本発明が、配列番号１および２の特定のアミノ酸および核酸配列に限定されないことも分かる。したがって、組換えベクターおよび単離ＤＮＡセグメントは、ＨＡＳコーディング領域それら自身、塩基コーディング領域での選択された改変または修飾に耐えるコーディング領域を様々に含むことができるか、またはそれらは、ＨＡＳコーディング領域を含むにもかかわらず、大型ポリペプチドをコードすることができるか、または様々なアミノ酸配列を示す生物学的に機能性の等価なタンパク質またはペプチドをコードしうる。

本発明のＤＮＡセグメントは、生物学的に機能性の等価なＨＡＳタンパク質およびペプチドを包含する。このような配列は、核酸配列およびその結果コードされるタンパク質内で自然に発生することが知られているコドン縮重および機能的等価の結果として生じうる。選択的に、機能的に等価なタンパク質またはペプチドは、交換されるべきアミノ酸の特性を考慮することに基づいて、タンパク質構造での変化を操作することができる組換えＤＮＡ技術の使用を介して作成することができる。ヒトによって設計される変化は、分子レベルでＨＡシンターゼ活性を試験するために、部位依存性突然変異誘発技術の使用、例えば、酵素活性に対するか、またはＨＡＳタンパク質の抗原性に対する改善を導入すること、またはＨＡＳ突然変異体を試験することを導入することができる。

さらに、ＨＡＳコーディング配列に対する特異的変化は、改変されたサイズ分布または構造形態を示すＨＡを産生するようになることができる。当業者は、ＨＡＳコーディング配列が、様々なポリマーのサイズおよび／または機能的許容性を示すヒアルロン酸を産生する能力が順にある改変されたヒアルロネートシンターゼを産生する方法で操作することができることを予測する。例えば、ＨＡＳコーディング配列は、ヒアルロネートシンターゼが、改変糖基質特異性を示すような方法で改変されて、その結果ヒアルロネートシンターゼが、先に組込まれなかった糖または糖誘導体のような、様々な構造を組込む新たなヒアルロン酸様ポリマーを作成することができる。この新たに組込まれる糖は、様々な機能特性を示す改質ヒアルロン酸、小さいかまたは大きいポリマーサイズ／分子量を示すヒアルロン酸またはその両方を生じることができるであろう。そのＨＡＳコーディング配列を示された当業者によって予測されるとおり、変化および／または置換を、これらの望まれる特性および／またはサイズ修飾が達成できるようにＨＡＳコーディング配列に行うことができる。

ここで使用される用語「修飾構造」は、糖または誘導体を含むヒアルロン酸ポリマーが、天然に生じるＨＡ多糖で正常に見られないことを示す。用語「修飾されたサイズ分布」は、生来の酵素で正常に見られないサイズ分布のヒアルロン酸分子の合成に該当する。操作されたサイズは、正常なものよりはるかに小さいか、または大きい可能性がある。

異なるサイズの様々のヒアルロン酸産物は、医薬品送出の領域での使用を示し、そして改変された構造を示す酵素の発生は、異なるサイズのヒアルロン酸と混合することができる。新脈管形成および損傷治癒での使用は、約２０の単糖のヒアルロン酸ポリマーが、良好な量で製造することができる場合に潜在的に大きい。小型のヒアルロン酸オリゴ糖についての別の特定の使用法は、医療目的で使用される組換え・ヒトタンパク質の安定化にある。このようなタンパク質での主要な問題は、血液からのそれらのクリアランスおよび生物学上の半減期が短いことである。この問題に対する１つの解決策は、タンパク質が循環からあまり早く排除されることを避ける小型分子シールドを結合することである。非常に小さな分子量のヒアルロン酸は、この役割に十分に適応し、そして非免疫原性および生物適合性である。医薬品またはタンパク質に付着される大きな分子量のヒアルロン酸は、ヒアルロン酸の細胞内取り込レセプターを有する細網内皮細胞系を標的にするのに使用できる。

この開示を示された当業者は、ヒアルロネートシンターゼによって作られるヒアルロン酸ポリマーのサイズ分布が、様々のサイズを供するように制御できる数種の方法があることを予測する。第一に、製品サイズの速度論的制御は、温度を減少させ、酵素反応の時間を減少させることによって、そして１種または両方の糖ヌクレオチド基質の濃度を減少させることによって変えることができる。これらの変数のいくらかまたは全てを減らすと、量の少なくそしてサイズの小さなヒアルロン酸産物を供与する。これらのアプローチ法の欠点は、生成物の収量も減少され、そして日々またはバッチからバッチ毎の再現性を達成するのが困難である可能性がある。

第二は、大型のヒアルロン酸産物を合成する酵素の固有の能力の改変である。タンパク質に対する変化は、特異的アミノ酸の置換、欠失および付加（または代謝工程を介しての補欠分子族の導入さえ）を含めた組換えＤＮＡ技術によって操作できる。本質的に遅い酵素を生じるこのような変化は、その後、速度論的手段によってヒアルロン酸サイズの再現性制御をいっそう可能にできる。最終のヒアルロン酸のサイズ分布は、酵素の特定の特徴によって決定され、そしてそれは、配列中の特定のアミノ酸に依存する。ストレプトコッカスの酵素と真核生物のヒアルロネートシンターゼとの間で厳密に保存される２０％の残基の内でも、その酵素を作ることができるヒアルロン酸ポリマーのサイズを制御するか、またはそれに大いに影響を及ぼす特徴的な位置に一組のアミノ酸がある。これらの残基の内のいずれかでの特異的変化は、修飾されたサイズ分布を示すＨＡ産物を産生する改質ＨＡＳを産生できる。ヒアルロン酸が放出される前に酵素を作ることができるヒアルロン酸の固有のサイズを減らすｓｅＨＡＳ、ｓｐＨＡＳ、ｐｍＨＡＳまたはｃｖＨＡＳに対する操作変化は、生来の酵素より小さいかまたは潜在的に大きいサイズのヒアルロン酸産物を産生する強力な手段を提供する。

最後は、低分子量ヒアルロン酸を作成する特異的ヒアルロニダーゼで分解させて作成される大きな分子量のヒアルロン酸である。しかし、この実施は、再現性を達成するのが非常に困難であり、そしてだれもが、ヒアルロニダーゼおよび歓迎されない消化産物を除去するためにヒアルロン酸を注意深く再度精製しなければならない。

構造的に改質されたヒアルロン酸は、所望のＨＡＳまたはｓｐＨＡＳ中の特定のアミノ酸を変化させることによって、ヒアルロン酸産物のサイズ分布を変えるより概念的には差異がない。Ｎアセチル基が失われている（ＵＤＰ−ＧｌｃＮ）か、または別の化学的に有用な基に置換されているＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃの誘導体は、特に有用であると予測される。強力な基質特異性は、保存される２０％のものの中でアミノ酸の特定の部分集合に依るに違いない。これらの残基の１つまたはそれ以上に対する特異的変化は、生来の酵素より、１つまたはそれ以上の基質と特異性が低く相互作用する機能性シンターゼを作り出す。この改変酵素は、その後、選択的に天然または特定の糖ヌクレオチドを利用して、以下の目的のために様々な化学が使用されることを可能にするように設計された糖誘導体を組込むことができる。すなわち、（ｉ）共有結合する特異的医薬品、タンパク質、または一般のまたは標的にされる医薬品送出、放射性手段のための構造的に改質されたヒアルロン酸に対する毒素など、（ｉｉ）それ自身、またはゲル、または強力な物理特性を示す他の三次元生物材料を達成するための他の支持体と共有架橋結合するヒアルロン酸、および（ｉｉｉ）生物適合性フィルムまたは単層を作る表面と共有結合するヒアルロン酸である。

本発明は、ＨＡを産生する新規ＨＡＳに関する。種々の分子生物学技術を使用して、新規ＨＡＳ用の遺伝子は、家禽コレラ病原体Ａ型のパスツレラ・ムルトシダに見られる。パスツレラ・ムルトシダから得られるこの新たなＨＡＳすなわちＰｍＨＡＳは、クローン化され、そして他の種の細菌で機能性があることが示された。ＰｍＨＡＳタンパク質は、真正のＨＡ多糖を重合する。

ＰｍＨＡＳで形質転換された組換えイー・コリによって産生される炭化水素は、カートリッジＨＡ結合タンパク質によって認識され、そしてＨＡリアーゼ消化に感受性がある。これらの薬剤の両方は、当業者によって、ＨＡ多糖に特異的であると考えられる。さらに、ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよびＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃの両方は、生体外でのＨＡ合成のために必要とされる。アジド−ＵＤＰ−Ｇｌｃでなくて、アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよびアジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃは、ＰｍＨＡＳに特異的に光組込みされる。ストレプトコッカスのＨａｓＡおよびキセノプス（Ｘｅｎｏｐｕｓ）のＤＧ４２の場合のように、１つのポリペプチド種ＰｍＨＡＳは、２つの区別できる糖基を新生ＨＡ鎖に移行することは明らかである。

イー・コリ、ネイセリア・メヒンギチジス（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ）、およびヘモフィルス・インフルエンザエ（Ｈｅｍｏｐｈｉｌｕｓ ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ）を含めた多くの被包グラム陰性細菌は、オペロンで組織化される莢膜生合成の原因である遺伝子のクラスターを保有する。これらのオペロンは、しばしば、（ｉ）糖ヌクレオチド前駆体合成のために必要とされる酵素、（ｉｉ）エキソ多糖を重合するグリコシルトランスフェラーゼ、および（ｉｉｉ）多糖輸出に関連したタンパク質をコードする遺伝子を含有する。Ａ型Ｐ．ムルトシダＨＡ莢膜オペロンは、（ｉ）ＫｆａＡ類縁体、（ｉｉ）ＨＡシンターゼ、および（ｉｉｉ）推定ＵＤＰ−Ｇｌｃデヒドロゲナーゼを含む。Ｐ．ムルトシダ非莢膜突然変異体ＨおよびＬ中のＴｎ９１６構成要素は、ＨＡＳ遺伝子に直接介入されないが、しかしむしろＫｆａＡ相同遺伝子に配置された。

ＰｍＨＡＳが、多糖を作るのに必須である少なくとも数種の遺伝子の遺伝子座に存在するので、莢膜遺伝子の内のいずれか１つでの病巣または損傷は、パスツレラのＨＡ産生および莢膜形成に影響を及ぼし得る。したがって、隣接遺伝子を破壊することによって、ワクチンを作ることもできる。例えば、ＵＤＰ−Ｇｌｃデヒドロゲナーゼを除去または破壊する場合、入手可能なＨＡシンターゼのための前駆体糖はなく、そしてＨＡは作ることができない。さらに、Ｋｆａまたは他の輸送関連の遺伝子を死滅させる場合、それにより微生物によって表面ＨＡを作らない。したがって、天然のパスツレラ微生物中でのＨＡシンターゼの産物、すなわち、ＨＡ莢膜は、（ａ）前駆体形成を破壊するか、または（ｂ）重合機構を破壊するか、または（ｃ）輸送機構を破壊することによって停止させることができる。

アミノ酸レベルで、ＰｍＨＡＳは、当業者が予測するのと同じくらい他のクローン化ＨＡＳに類似ではない。２つの強力な短いモチーフ、ＰｍＨＡＳの残基４７７−４８０でのＤＧＳ（Ｓ／Ｔ）（配列番号１９）および残基５２７−５２９でのＤＳＤは、ＨａｓＡに存在する。別の類似のＤＧＳ含有モチーフは、ＰｍＨＡＳの残基１９６−１９８で繰返し見られる。第一のモチーフのＤＧおよびＤＳＤは、全ＨＡＳで保存される。しかし、全ての先にクローン化されたＨＡＳに見られる数種の完全に保存されたモチーフ（（Ｓ／Ｇ）ＧＰＬＸＸＹ（配列番号２０）、ＧＤＤＲＸＬＴＮ（配列番号２１）、およびＬＸＱＱＸＲＷＸＫＳ（Ｙ／Ｆ／Ｗ）（Ｆ／Ｃ）ＲＥ（配列番号２２））は、ＰｍＨＡＳには不在である。その代わりに、様々な細菌グリコシルトランスフェラーゼは、Ｐ．ムルトシダＨＡＳタンパク質の中心部分にある配列といっそう密接に整列する。ＧｌｃＮＡｃ、ガラクトース、またはＧａｌＮＡｃ基を移すことが示されたか、または検出されたこれらの酵素は、ＰｍＨＡＳの大まかに３分の１の大きさであり、そしてそれらのアミノ酸末端配列は、ＰｍＨＡＳポリペプチドの中央、すなわち残基４３０−５４０と一緒に並ぶ。

ＰｍＨＡＳの第一の４２０個の残基の区分は、哺乳類のＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃ：ポリペプチドＧａｌＮＡｃ−トランスフェラーゼの部分とある種の類似性を示す。これらの観察は、ＰｍＨＡＳ内の可能なドメイン構造の反映でありうる。ＰｍＨＡＳの最後のおよそ３４０個の残基は、配列データベース中の他の全てと明らかに類似でない。したがって、Ｐ．ムルトシダＨＡＳは、特徴的であり、そして最も、全ての新たなクラスのＨＡＳのプロトタイプのようである。

ＰｍＨＡＳは、それぞれ、ストレプトコッカスのウイルス、または脊椎動物のＨＡＳすなわち、９７２対４１７−５８８残基の大まかに二倍の大きさである。さらに、ＰｍＨＡＳおよび他の既知ＨＡＳの水治療法プロットは類似でない。ワールドワイドウェブ上で当業者に十分に知られそして入手可能なＴＭＰＲＥＤプログラムを利用して、ＰｍＨＡＳが、ただ２つの候補膜間螺旋状物（残基１７０と５１０に中心が置かれる）を有することが推定され、そしてそのタンパク質の両方の末端は、細胞質に配置される。幾何学的に、これらの推定は、Ｐ．ムルトシダのポリペプチド（約３４０残基）の三分の一が細胞質の外側に位置することを暗示する。他方、ＨＡＳの他のクラスについての様々な位相が、推定される。

ストレプトコッカスのＨＡＳのレポーター酵素融合解析では、様々の位相配列が、タンパク質のカルボキシルの半分で（ｉ）アミノ酸末端に近い２つの膜間螺旋状物、（ｉｉ）推定細胞質ドメイン、続いて（ｉｉｉ）３つの膜結合領域から構成されるこの酵素に存在することが確認される。膜結合領域の間の連結ループは、むしろ短く（４−１０残基）、したがって、そのポリペプチド鎖の大半部分は、おそらく、細胞外に露出しない。

以下の詳細な実験ステップおよび結果の検討では、本発明が新規で特徴的なＰｍＨＡＳに関することが確認される。

１．ＰｍＨＡＳの分子クローニング
Ｔｎ９１６挿入突然変異誘発およびプローブ発生を最初に完了した。Ｔｎ９１６を使用して、破壊し、そしてＰ．ムルトシダのＨＡ生合成遺伝子座をタグ付けした。非複製プラスミドｐＡＭ１５０上のＴｎ構成要素を、電気穿孔法によって野生型被包Ｐ．ムルトシダ株（ＡＴＣＣ番号１５７４２号）に導入した。改変コロニー形態を、斜め照射での黙視試験によって最初にスクリーニングした。野生型株は、虹色（赤色と緑色の色合い）を表す大型ムコイド（「湿潤」外観）コロニーを形成する。同様に、虹色を欠く「乾燥剤」コロニーを選択し、そして画線接種した。墨汁染色および光顕微鏡を第二のスクリーンとして使用して、被包の状態を評価した。突然変異染色体中のＴｎ構成要素の位置を、サザン分析によってマッピングした。

数種の独立に選択した突然変異体から得られるＴｎを破壊した部位でのＤＮＡ配列を、タグ付け染色体ＤＮＡの直接ジデオキシ配列分析によって得た。簡便には、Ｔｎ９１６構成要素の１２ｋｄ部分および突然変異染色体ＤＮＡのＨｈａＩ消化によって発生されるＰ．ムルトシダＤＮＡの短い領域から構成されるキメラＤＮＡフラグメントは、アガロースゲル電気泳動によって精製された（野生型ＨｈａＩゲノムフラグメントの全ては、７ｋｂより少ないか、または等しい）。キメラ・フラグメントは、^３３ＰターミネーターおよびＴｎ９１６右腕末端プライマー（５’−ＧＡＣＣＴＴＧＡＴＡＡＡＧＴＧＴＧＡＴＡＡＧＴＣＣ−３’（配列番号２３））を用いたサイクルシーケンシング反応でテンプレートとしての役割を果たす。配列データを、ＰＣＲプライマーを設計するのに使用した。ゲル精製ＰＣＲ産物を、ベーリング・マンハイム社（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ）によって製造され、そして当業者によく知られたハイプライムシステムを活用するジゴキシゲニンで標識した。

次のステップは、機能性ＨＡＳ遺伝子座の単離であった。Ｓａｕ３Ａで部分的に消化した野生型ＤＮＡのλライブラリーを、ストラタジーン社（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）によって製造されるＢａｍＨＩ切断λＺａｐ発現ベクターシステムを用いて作成した。プラーク釣り上げ物をジゴキシゲニン標識ＰＣＲ産物とのハイブリッド形成によってスクリーニングした。エッシェリキア・コリＸＬＩ−ＢｌｕｅＭＲＦ’を、個々の精製した陽性λクローンおよびＥｘＡｓｓｉｓｔヘルパーファージで同時感染させて、ファージミドを得た。生じたファージミドを、イー・コリＸＬＯＬＲ細胞に遺伝子導入させて、プラスミドを回収した。

プラスミドを、ＨＡ多糖産生により適切な宿主、すなわちイー・コリＫ５（株Ｂｉ８３３７−４１）に形質転換させた。この株は、ほとんどの実験室株では明らかなレベルで見ることができないＨＡ生合成のために必要とされる基質であるＵＤＰ−ＧｌｃＡを産生する。さらに、Ｋ５は、イー・コリでの莢膜多糖輸送に不可欠である多くの他の遺伝子を保有する。発現研究に使用される別の宿主は、ポリシアル酸莢膜を産生し、そして全ての同じ一般的莢膜多糖輸送機構をＫ５として保有するが、高レベルのＵＤＰ−Ｇｌｃデヒドロゲナーゼを有しないＫ１株の非莢膜誘導体であるイー・コリＥＶ５であった。

完全に定義された培地中で育成される候補プラスミドとしたイー・コリ形質転換体の培養物を、細胞ペレットを、摂氏９５度で、２分間、８Ｍ尿酸、０．０１％ＳＤＳで抽出したこと以外は先に記述したとおりＨＡ多糖産生について試験した。当業者によく知られているファルマシア・バイオテック社（Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ Ｉｎｃ．）によって製造されるＨＡ試験アッセイでは、０．１μｇ／ｍｌより大きいか、または等しい濃度で、ＨＡを検出するために特異的ＨＡ結合タンパク質が使用される。ＨＡ濃度の複数測定を平均化した。細菌培養物中のＨＡ濃度を、Ａ_６００値を測定し、そして細菌のμｇＨＡ／ｍｌ／Ａ_６００としてデータを表すことによって、細胞数での差異を正常化させた。５．８ｋｂ挿入物を有する１つのプラスミドｐＰｍ７Ａは、ＨＡを産生する能力を有するイー・コリＫ５を与えた。ベクタープラスミドだけを有する細胞によって産生されるＨＡはなかった。ｐＰｍΔ６ｅと呼ばれるおよそ３．３ｋｂ挿入物を含むｐＰｍ７Ａの切断誘導体は、イー・コリＫ５に形質転換させるときにＨＡの生合成を指示することができる。したがって、ｐＰｍΔ６ｅＤＮＡに対応するｐＰｍ７Ａプラスミドの両方の鎖の配列を決定した。我々がＰｍＨＡＳと称する単独の完全な９７２残基のＯＲＦが見出されたが、それは配列番号１で示される。対応のヌクレオチド配列は、配列番号２に示される。

その後、組換えＰ．ムルトシダＨＡＳの発現が始められる。ｐＰｍ７Ａ挿入物中のＰｍＨＡＳ ＯＲＦは、推定アミノ末端およびカルボキシル末端の近くの配列（大文字表記のコドン：センス、５’−ｇｃｇａａｔｔｃａａａｇｇａｃａｇａａａＡＴＧＡＡｃＡＣＡＴＴＡＴＣＡＣＡＡＧ−３’（配列番号２４）、およびアンチセンス、５’−ｇｇｇａａｔｔｃｔｇｃａｇｔｔａＴＡＧＡＧＴＴＡＴＡＣＴＡＴＴＡＡＴＡＡＴＧＡＡＣ−３’（配列番号２５）；開始および終止コドンはそれぞれ太文字で）に対応するＴａｑポリメラーゼおよびプライマーを用いて、１３サイクルのＰＣＲによって増幅された。コドン２（Ｔ→Ｃ）を、イー・コリ中のタンパク質産生を増加させるように改変（イタリック小文字）した。プライマーは、発現プラスミドｐＫＫ２２３−３（ｔａｃプライマー、ファルマシア社）へのクローニングを促進するＥｃｏＲＩおよびＰｓｔＩ制限部位（下線付き文字）も含む。生じた組換え構築物ｐＰｍＨＡＳを、イー・コリＳＵＲＥ細胞（ストラタジーン）に形質転換させ、そしてこの株を、生体外ＨＡＳアッセイのための膜製造の源として使用した。Ｌｏｇ層培養物（ＬＢブロス、摂氏３０度）を、収穫前の３時間、０．５ｍＭイソプロピルチオガラクトシドで誘導した。プラスミドを、イー・コリＫ５にも形質転換させた。生じた株を、光顕微鏡および浮遊密度遠心によって莢膜の存在について試験した。Ｋ５細菌培養物は、イソプロピルチオガラクトピラノシド付加が、ＬＢまたは明らかに定義された培地中のＨＡ濃度を増加させないので、日常的に誘導されなかった。

その後、生来のＰ．ムルトシダＨＡＳの光アフィニティー標識を行った。放射性標識ＵＤＰ糖類縁体［^３２Ｐ］アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＡ（３ｍＣｉ／μＭｏｌ）および［^３２Ｐ］アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ（２．５ｍＣｉ／μＭｏｌ）を製造し、そして文献に記述され、そして当業者に知られるとおり精製した。紫外線で照射する（２５４ｎｍ、９０秒）前に、氷上で３０秒間、５０ｍＭトリス、２０ｍＭのＭｇＣｌ_２、ｐＨ７（最終濃度、２０μＭ）中のＰ．ムルトシダ野生型から得られる膜製品を、いずれかのプローブでインキュベートした。ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動分析の前にそのタンパク質を、５％トリクロロ酢酸で沈殿させた。照射ステップが省かれた場合、組込まれる放射性標識はなかった。特異性対照として、１０倍モル過剰の正常なＵＤＰ糖を、プローブおよび膜と同時にインキュベートした。［^３２Ｐ］アジド−ＵＤＰ−Ｇｌｃ（３ｍＣｉ／μＭｏｌ）も、別の対照として使用した。

数回の巡回の突然変異誘発によって製造されるおよそ８×１０^４Ｔｎ含有形質転換体を、コロニー形態での差異についてスクリーニングした。墨汁を用い光顕微鏡によって、小さな虹色でないコロニー（ｎ＝４）から得た細胞は、検出可能な莢膜を保有しなかった（非莢膜）のに対して、培地等級分け虹色コロニー（ｎ＝８）から得られる細胞は、野性型の約１０−２５％の直径の莢膜（微細莢膜）を有するようである。同じＨｉｎｄＩＩＩまたはＢｓｔＸＩゲノムフラグメントにマッピングされるＴｎ構成要素を有するＨおよびＬと称される非莢膜突然変異体の内の２つは、およそ１０^−３の速度で、野生型コロニー形態に復帰した。各復帰突然変異体中のＴｎ構成要素は、サザン分析によって判断されるとおり、元の位置から削られ、そして異なる新たな位置に再挿入した。他方、全ての非莢膜サブクローンは、元の位置にＴｎ構成要素を保持した。明らかなＨＡＳ活性が、突然変異体Ｈ細胞から膜製品に検出されるものはなかったのに対して、実質的なＨＡＳ活性は、野生型細胞から得られた（それぞれ、０．７対１２０ピコモルの移入ＧｌｃＡ／ｍｇタンパク質／ｈより少ないか、または等しい）。これらの知見では、突然変異体ＨおよびＬ中のＴｎ構成要素が、実際に、ＨＡ生合成遺伝子座を破壊する原因であることが示唆される。

２つの非莢膜突然変異体のＴｎ挿入部位の間のギャップに橋渡しするために、突然変異体Ｌ染色体ＤＮＡテンプレートを用いたＰＣＲは、突然変異体Ｈ破壊部位ＰｍＨＦにある配列に由来するプライマー（５’−ＣＴＣＣＡＧＣＴＧＴＡＡＡＴＴＡＧＡＧＡＴＡＡＡＧ−３’（配列番号２６））、およびＴｎ９１６の左末端に対応するプライマーであるＴｎＬ２（５’−ＧＣＡＣＡＴＡＧＡＡＴＡＡＧＧＣＴＴＴＡＣＧＡＧＣ−３’（配列番号２７））で行われた。特異的なおよそ１ｋｂのＰＣＲ産物を得た。代替的に、ＰｍＨＲ（ＰｍＨＦの逆補体）またはＴｎ９１６右腕プライマーが置換される場合、形成される産物はなかった。ＰＣＲ産物を、ハイブリッド形成プローブとして使用して、Ｐ．ムルトシダＨＡＳの機能性コピーを得た。

およそ１０^４個のプラークをスクリーニングした後、６つの陽性ハイブリッド形成プラークが見られ、そしてこれらのプラークは、プラスミドに変換された。１つのプラスミドｐＰｍ７Ａは、イー・コリＫ５が、生体内でＨＡを生成させる（２０μｇＨＡ／ｍｌ／細菌のＡ_６００）ことが分かった。対照プラスミドを有するイー・コリＫ５は、ＨＡを産生しなかった（０．０５μｇＨＡ／ｍｌ／細菌のＡ_６００より少ないか、または等しい）。イー・コリＸＬＯＲまたはイー・コリＥＶ５細胞（ＵＤＰ−Ｇｌｃデヒドロゲナーゼ活性を欠く）は、それらがｐＰｍ７Ａプラスミドを含む場合でさえＨＡを産生しない（０．０５μｇＨＡ／ｍｌ／細菌のＡ_６００より少ないか、または等しい）。この遺伝上の証拠は、ｐＰｍ７Ａの挿入物が、機能性ＵＤＰ−Ｇｌｃデヒドロゲナーゼ酵素をコードしないことを暗示する。

ＨＡ生合成（８５μｇＨＡ／ｍｌ／Ｋ５細菌のＡ_６００）を指示する能力がある最小の挿入物ｐＰｍΔ６ｅを有するｐＰｍ７Ａプラスミドの切断誘導体は、配列番号１に示されるとおり９７２残基のタンパク質をコードする単独の完全なＯＲＦを含んだ。配列番号１中の明らかなプロモーターは存在しなかったが、太字のヌクレオチド−１０から−７に中心をとって標識された推定リボソーム結合部位があり、そしてＴＭＰＲＥＤによって推定される２つの推定膜間領域に下線を付けた（残基１６２−１８２、および５０３−５２２）。配列番号１のＰｍＨＡＳは、ストレプトコッカスＨａｓＡの大きさの２倍大きい。このタンパク質は、Ｐ．ムルトシダから得られるＨＡシンターゼＰｍＨＡＳである。推定Ｍ_ｒは、１１１，９２３であり、そして算定等電点は、６．８４である。配列番号２は、ＰｍＨＡＳについてのヌクレオチド配列である。

このＰｍＨＡＳは、タンパク質配列データベースのＢＬＡＳＴＰ調査での照会として使用された。ＰｍＨＡＳの中心の位置（残基４３６−５３６）は、ストレプトコッカス、ビブリオ（Ｖｉｂｒｉｏ）、ネイセリア（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ）およびスタフィロコッカスを含めた、リポ多糖のエキソ多糖または炭化水素部分を形成する広範な属から得られる細菌のグリコシルトランスフェラーゼに最も相同性がある（最小合計可能性、図１に示されるとおり１０^−２２−１０^−１０）。図１では、Ｐ．ムルトシダＨＡＳおよび他のグリコシルトランスフェラーゼの配列の列が図面で描かれる。ＭＵＬＴＡＬＩＮ列は、ＰｍＨＡＳの中心領域（残基４３６−５３６）は、他のエキソ多糖（ストレプトコッカス・サーモフィルス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）ＥｐｓＩ、１４型エス．ニューモニアエ（Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）Ｃｐｓ１４Ｊ）、またはリポ多糖の炭化水素部分（エイチ．インフルエンザエＬｇｔＤ相同）を産生する種々の酵素のアミノ酸末端部分に最も類似する。ほんのわずかの可能性のある実施例が、図１に示される。エス．ピオゲネス（Ｓ．ｐｙｏｇｅｎｅｓ）ＨａｓＡ（残基６１−１６８）は、ＰｍＨＡＳのこの表示領域に対する類似性を限定した。

最も注目すべき配列類似性は、ＤＧＳＴＤ（配列番号２８）およびＤＸＤＤ（配列番号２９）モチーフである。予想外に、０．３３の最小の合計可能性を示すＨＡＳＡを有するストレプトコッカス、ウイルスまたは脊椎動物のＨＡＳに対するＰｍＨＡＳの明らかな全体的類似性はなかった。ストレプトコッカスのＨａｓＡの唯一の短い領域が、ＰｍＨＡＳと共に納得する手段で並び、そして図１に示される。

ＰｍＨＡＳの最初の半分の少数のセグメントは、哺乳類のＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃ：ポリペプチドＧａｌＮＡｃ−トランスフェラーゼの部分とも類似である。そのトランスフェラーゼは、およそ１０^−３の最小の合計可能性を示すムチン型タンパク質のｏ−グリコシル化を開始させる酵素である（図２）。図２に示されるとおり、ＰｍＨＡＳの残基３４２−３８３の配列の列は、哺乳類のＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃ：ポリペプチドＧａｌＮＡｃ−トランスフェラーゼの残基３６２−４０４に最も類似である。図１および２の両方で、同一の残基は、太字でそして下線が付されており、そして共通シンボルは、ＩまたはＶで！、Ｎ、Ｄ、ＥまたはＱのいずれでも＃、ＦまたはＹで％である。酸性残基のクラスターは、配列を通してよく保存されている。

ＰｍＨＡＳの下流の部分的ＯＲＦ（２７残基）は、イー・コリ、サルモネラ・ティフィムリウム（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ）およびストレプトコッカス・ニューモニアエを含めた細菌から得られる数種のＵＤＰ−Ｇｌｃデヒドロゲナーゼのアミノ末端に非常に類似性がある（６７−７４％一致）。元来のｐＰｍ７Ａクローンでの重度の切断は、デヒドロゲナーゼ活性を完全に失う結果になることが予測される。ＰｍＨＡＳの上流の他のＯＲＦ（６２３残基）は、１０^−５２の最小の総可能性を示す、細胞の外に莢膜多糖を輸送するのに推定的に関与するタンパク質であるイー・コリＫ５ ＫｆａＡタンパク質に非常に相同性がある。

ＰｍＨＡＳについて推定サイズ９７２残基（１１２ｋＤａ）は、Ｐ．ムルトシダ野生型から得られる膜標品の光アフィニティー標識によって確認された。［^３２Ｐ］アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよび［^３２Ｐ］アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃプローブの両方が、ＵＶ依存性手段でおよそ１１０ｋＤａのタンパク質に光組込みを行った。図３は、ＵＤＰ−糖類縁体を有するＰｍＨＡＳの光アフィニティー標識である。［^３２Ｐ］アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよび［^３２Ｐ］アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃを、野生型Ｐ．ムルトシダから単離される膜標品（４５μｇのタンパク質）とインキュベートさせ、そしてＵＶ光で照射した。１０％ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルのオートラジオグラム（５日露出）は、図３に示される。両方のプローブは、ＵＶ依存性手段でおよそ１１０ｋＤａのタンパク質を光標識する（「−」レーン）。光組込みの特異性を評価するために、平行のサンプルは、反応混合液が１０倍過剰の非標識競合物（それぞれＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃまたはＵＤＰ−ＧｌｃＡ、「＋」レーンと記した）を含むこと以外は、同一に処理した。バンドの強さは、「−」レーンに比較して減っている。標準は、ｋＤａで記される。

対応の未標識の天然のＵＤＰ−糖前駆体との競合は、プローブ光組込みの範囲を下げた。平行する実験で、正常なＨＡ前駆体の類縁体である［^３２Ｐ］アジド−ＵＤＰ−Ｇｌｃは、この１１０ｋＤａのタンパク質を標識しなかった。さらに、Ｔｎ突然変異体に由来する膜は、このタンパク質へのアジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＡ光取込みの量がないか、または非常に低いかのいずれかを示した。図４に示されるおとり、野生型（Ｗ）または種々の非莢膜Ｔｎ突然変異体（Ａ、ＧまたはＨ）から得られる膜標品（６０μｇのタンパク質）を、［^３２Ｐ］アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＡで光標識にかけた。およそ１１０ｋＤａのタンパク質の付近にあるオートラジオグラムの領域は、図４に示される。ＡおよびＧサンプル中に光取込みは見られなかった。Ｈサンプル中の光標識の範囲が小さいのは、この特定の突然変異体で観察される逆行の速度が遅いためである。Ｗサンプル中の光アフィニティー標識タンパク質のサイズは、クローン化ＰｍＨＡＳのＯＲＦの推定Ｍ_ｒによく対応する。

ベクターｐＫＫ２２３−３のみを有する細胞から得られるサンプルでなく、ＰｍＨＡＳプラスミドを含むイー・コリＳＵＲＥ細胞に由来する膜は、ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよびＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃの両方で供給されるときにＨＡを生体外で合成した（それぞれ、２５に対して１．５ピコモルＧｌｃＡトランスファー／ｍｇタンパク質／時間より少ないか、または等しい）。ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃが排除される場合、または二価の金属イオンがＥＤＴＡとキレート化される場合、［^１４Ｃ］ＧｌｃＡの取込みは観察されなかった。組換えＨＡＳに由来するＨＡＳ活性は、Ｍｎ^２＋がＭｇ^２＋より少なくとも１０倍大きな活性を刺激するので、野生型Ｐ．ムルトシダの膜から得られる酵素に類似した。

組換えイー・コリの培養物は、標識ＨＡ結合タンパク質を利用する放射分析でＨＡ多糖の存在についても試験した。ＰｍＨＡＳを有するイー・コリＫ５は、４６０μｇＨＡ／ｍｌ／Ａ_６００を産生した。ｐＫＫ２２３−３ベクターのみを有するＫ５細胞は、ＨＡを産生しなかった（０．０５μｇＨＡ／ｍｌ／Ａ_６００より少ないかまたは等しい）。比較すると、同じ培地で育成される野生型Ｐ．ムルトシダ野生型は、１１００μｇＨＡ／ｍｌ／Ａ_６００を産生した。ＰｍＨＡＳを有するイー・コリＫ５は、細胞が被包されるこのような高いレベルのＨＡを生じた。図５、パネルＡに示されるとおり、墨汁染色を用いた組換えイー・コリの光マイクログラフ（１，０００×倍率）は、ＰｍＨＡＳを有するイー・コリＫ５細胞が、細胞の周囲を白色ハロとして表す実質的な莢膜を作ることを示す。

組換え株の莢膜の半径は、およそ０．２−０．５μｍ（０．５μｍの細菌細胞幅を呈する）であった。この莢膜は、ヒツジの精巣ヒアルニダーゼまたはストレプトマイセスＨＡリアーゼのいずれかで処理することによって取除くことができる。図５パネルＢで示されるとおり、莢膜材料は、ストレプトマイセスＨＡリアーゼで簡便に処理することによってイー・コリＫ５（ｐＰｍＨＡＳ）細胞から取除かれる。したがって、ＰｍＨＡＳは、ＨＡ多糖の重合を指示する。

生来のＫ５宿主株も、ｐＫＫ２２３−３ベクターを含む形質転換体のいずれも、光学顕微鏡によって測定されるときに、十分に観察しうる莢膜を保有しない。ｐＰｍＨＡＳを有するＫ５細胞は、浮遊密度遠心によって被包されるとも思われる。組換え細胞が、５８％ｍパコール（Ｐｅｒｃｏｌｌ）クッションの頂上に浮いていたのに対して、ベクター対照細胞またはヒアルロニダーゼ処理組換え細胞は、パコールクッションを通してペレット化した。

イー・コリＫ５中のｐ／ＰｍＨＡＳプラスミドは、組換えＨＡをＰｍＨＡＳで作成するための第一世代系である。他の最適化ベクターおよび／または宿主は、より多くの収量を示し、そしてこれらの多くの最適化ベクターおよび／または宿主は、本発明に使用されることがここに予測される。この開示を与えられると、当業者は、このようなベクターおよび／または宿主を最大限に利用する能力がある。

２．ＰｍＨＡＳの酵素学的特徴づけ
タンパク質は、ウシの血清アルブミン鎖を利用するクマシン染料結合アッセイによって測定した。多くのムコシドコロニーを形成する非常に毒性のある七面鳥株である、Ｐ．ムルトシダ野生型（アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション１５７４２）を、摂氏３７度で、好気性条件下で、脳／心臓融合培養基で維持した。ＴｎＡと称される、小さな「乾燥剤」コロニーを形成したその株の非莢膜突然変異体は、ここに記述される新たに記述されたＴｎ９１６挿入物の突然変異誘発法によって生成される。

ＨａｓＡを含む組換えプラスミドを用いて、イー・コリからＨＡシンターゼを生成する方法の改善によって、Ｐ．ムルトシダから得られる総量の膜を製造した。細胞を、激しく振盪させながら、中間対数期（０．４−０．８Ａ_６００）まで育成し、そしてその後ヒツジ精巣ヒアルロニダーゼ（シグマＶ型、２０単位／最終ｍＬ）を、加えて莢膜を除去した。４０分後、細胞を氷上で冷却し、そして遠心によって収穫した（１５分間、２０００×ｇ）。細胞を、懸濁および遠心の繰返しによって二回洗浄し、そして細胞ペレットを、摂氏−８０度で保存できた。特に示されないかぎり、氷上で以下のステップの全てを行った。

プロテアーゼ阻害剤ペプスタチンおよびロイペプチンを含有する、２０％しょ糖および３０ｍＭトリス（ｐＨ８．０）の最初の培養量を１／４００で、ピペット採取することによって、細胞を再懸濁させた。リソザイム消化（０．１ＭのＥＤＴＡ中に４ｍｇ／ｍＬ酵素の懸濁量の１／１０を添加、４０分インキュベーション）を使用し、続いて超音波破砕（電力設定３、３０秒のオン／オフの３回サイクル、小探針を有するヒートシステムＷ−３８０）することによって、細胞溶解を行った。超音波処理ステップの前に、チオグリコール酸ナトリウムをその混合液に添加し（最終濃度０．１ｍＭ）、続いてフッ化フェニルメタンスルホニルを添加した。残りの操作全てで、ＰＢＳも、新たに加えたチオグリコレートを同じ濃度で含有した。

溶解産物を、ＤｎエースおよびＲｎエース（各々１μｇ／ｍＬ、摂氏４度で１０分）で処理し、そして低速遠心分離（１時間、１００００×ｇ）によって、細胞破砕物を除去した。上清画分を、ＰＢＳで６倍に希釈し、そして膜画分を、超遠心分離（１時間、１０００００×ｇ）によって回収した。１０ｍＭのＭｇＣｌ_２を含むＰＢＳ中での懸濁を繰返し、続いて超遠心分離することによって、ペレットを二回洗浄した。金属特異性研究で使用される膜標品を生成するために、ＭｇＣｌ_２を除外し、そして洗浄ステップの間、０．２ｍＭのＥＤＴＡＡに交換した。膜標品を５０ｍＭトリス（ｐＨ７）および０．１ｍＭチオグリコレート中で、１−３ｍｇ／ｍＬタンパク質の濃度で懸濁させ、そして摂氏−８０度で保存した。

糖ヌクレオチド前駆体ＵＤＰ−［^１４Ｃ］ＧｌｃＡ（０．２７Ｃｉ／ミリモル、ＩＣＮ）から由来する放射性標識を、高い分子量の産物に組込むことによって、ＨＡシンターゼ活性を、定常的に検出させた。図面の凡例に記述される種々のアッセイ緩衝液は、０．３ｍＭのＤＴＴも含有した。反応混合液に膜を添加し、摂氏３７度でインキュベートすることによって、アッセイ（最終量１００μＬ）を開始させた。１時間後、ＳＤＳ（最終２％）を添加し、そして混合することによって、反応を終結させた。速度論的研究のために、ペーパークロマトグラフィー（６５：３５エタノール／１Ｍ酢酸アンモニウム（ｐＨ５．５）を用い、ワットマン３Ｍ）で降下させることによって、産物および前駆体を分離した。ペーパークロマトグラムの起点にあるＨＡ多糖を、液体シンチレーション計測の前に水で溶出させた。酵素の量を限定することによって、５％未満の前駆体が消費される条件下で、アッセイを典型的に行った。

真正のＨＡへの組込みを実証するための対照は、必要とされる第二の糖ヌクレオチド前駆体を除外すること、またはストレプトマイセス・ヒアルロリチカス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ ｈｙａｌｕｒｏｌｙｔｉｃｕｓ）から得られる特異的ヒアルロニダーゼを使用して消化させることを含む。ＰＢＳ中のセファクリルＳ−２００（ファルマシア社）を用いたゲル濾過クロマトグラフィーを、最適化アッセイ条件下で、生体外で形成される放射性標識ポリマーの分子量を評価するのに使用した。終結後、カラムにかける前に、それらを、２分間、摂氏９５度に加熱し、そして遠心分離（７分間、１５０００×ｇ）によって等級分けすることを除いて、ペーパークロマトグラフィーに関して、これらのサンプルを処理した。

ＥＤＴＡ（０．２ｍＭ）を使用して、アッセイ混合液中に存在する任意の金属イオンをキレート化させて、ＨＡＳ活性の金属依存性を実証した。Ｍｇ、Ｍｎ、Ｃｕ、ＣｏおよびＮｉを含めた種々の二価金属を、それらの塩化塩として試験した。他の放射性標識前駆体を、一定に、そして飽和濃度で保持しながら、糖ヌクレオチド濃度を滴定することによって、基質のＫ_ｍ値を概算した。これらの研究については、ＵＤＰ−［^１４Ｃ］ＧｌｃＡ前駆体と同様に、ＵＤＰ−［^３Ｈ］ＧｌｃＮＡｃ（３０Ｃｉ／ミリモル、ＮＥＮ）を使用した。

Ｐ．ムルトシダ細胞は、十分に目視できる細胞外ＨＡ莢膜を生じ、そしてストレプトコッカスのＨａｓＡは、膜間タンパク質であるので、家禽コレラ病原体の膜標品を試験した。初期の試験では、超音波処理のみに由来する粗膜画分は、ストレプトコッカスのＨＡＳ活性を測定するためのものに類似する条件下で分析されるときに、ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ依存性ＵＤＰ−［^１４Ｃ］ＧｌｃＡを、ＨＡ（約０．２ピコモルのＧｌｃＡ移入（μｇのタンパク質）^−１ｈ^−１）に組込む場合、非常に低い濃度を保持した。組換えＨａｓＡプラスミドを有するイー・コリから得られる酵素も、最初の単離に対する組換え体であった。これらの結果は、類似の方法によってストレプトコッカスから得られる簡単に検出できる量と対照的であった。

超音波処理と共同してプロテアーゼ阻害剤の存在下での氷冷リソザイム処理を用いた選択的製造プロトコールは、グラム陰性細菌の両方の種からのＨＡＳ活性の実質的な回収を可能にする。５−１０ピコモルのＧｌｃＡ移入（μｇのタンパク質）^−１ｈ^−１の特異的活性は、新規方法で野生型Ｐ．ムルトシダの粗膜について日常的に得られた。ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃの不在下で、ＵＤＰ−［^１４Ｃ］ＧｌｃＡから得られる放射性活性（両方の糖前駆体と同一のアッセイの１％未満）で、高い分子量材料に組込まれるものは実質的にない。非莢膜突然変異体から製造される膜ＴｎＡは、両方の糖ヌクレオチド前駆体で補足したときに、検出可能なＨＡ活性を保有しない。セファクリルＳ−２００カラムを用いたゲル濾過分析では、材料が、空隙体積に溶出するので、生体外合成される^１４Ｃ標識産物の主要部の分子マスが、≧８×１０^４Ｄａであることを示す。このような値は、少なくとも４００モノマーから構成されるＨＡ分子に対応する。この産物は、ストレプトマイセス・ヒアルロニダーゼ消化に対しても感受性があるが、プロナーゼ処理に対しては耐性がある。

ＨＡＳアッセイのパラメーターを、Ｐ．ムルトシダの膜によりＵＤＰ−糖の多糖への組込みを最大限にするのに変化させた。ストレプトコッカスのＨａｓＡは、Ｍｇ^２＋を必要とし、したがって、この金属イオンは、Ｐ．ムルトシダ膜の最初のアッセイに含まれる。Ｐ．ムルトシダＨＡＳは、トリス型緩衝液中でｐＨ６．５から８．６まで、最大限でｐＨ７で比較的活性がある（図７）。図７には、Ｐ．ムルトシダＨＡＳ活性のｐＨ依存性が描かれている。膜（３８μｇのタンパク質）によって触媒されたＨＡ多糖への［^１４Ｃ］ＧｌｃＡの組込みを、種々のｐＨ値（５０ｍＭトリス／２−（Ｎ−（モルフォリノ）エタンスルホン酸、ビス−トリス／ＨＣｌ、またはトリス／ＨＣｌ；主要な緩衝液イオン特異的効果で際立ったものはなかった）で緩衝される反応液中で測定した。インキュベーション混合液は、２０ｍＭのＭｇＣｌ_２、１２０μＭのＵＤＰ−ＧｌｃＡ（４．５×１０^４ｄｐｍ／アッセイ）、および３００μＭのＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃをも含んだ。最適な緩衝液ｐＨ７トリスを用いたアッセイの組込みを１００％活性に設定した。中性付近で最適な広範なｐＨが観察された。

ＨＡＳ活性は、少なくとも１時間、中性ｐＨで、インキュベーション時間に関して直線状であった。Ｐ．ムルトシダ酵素は、５０ｍＭトリス（ｐＨ７）および２０ｍＭのＭｇＣｌ_２を含有する反応液に１００ｍＭのＮａＣｌを添加すると、およそ５０％まで糖組込みが減少するので、高いイオン強度で明らかに活性が低かった。

Ｐ．ムルトシダＨＡＳの金属イオン特異性は、ｐＨ７で評価された（図８）。図８には、ＨＡＳ活性の金属依存性が描かれている。ＨＡの産生を、濃度が増加しているＭｇ（円）またはＭｎ（四角）イオンの存在下で測定した。０．２ｍＭのＥＤＴＡで再洗浄した膜（４６μｇのタンパク質）を、５０ｍＭトリス（ｐＨ７）、１２０μＭのＵＤＰ−ＧｌｃＡ（４．５×１０^４ｄｐｍ／アッセイ）、および３００μＭのＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ中の金属イオンの混合液中で、１時間インキュベートした。金属の存在しないバックグランド（２２ｄｐｍ）を、各点から減じた。Ｍｎは、Ｍｇよりいっそう効果的であった。

ＥＤＴＡの存在下、金属不含の条件下で、放射性標識した前駆体の多糖への組込みは、検出可能でなかった（最大のシグナルの＜０．５％）。Ｍｎ^２＋は、試験金属（Ｍｇ、Ｍｎ、Ｃｏ、ＣｕおよびＮｉ）について最低のイオン濃度で、最高の組込み速度を示した。Ｍｇ^２＋は、１０倍高い濃度であるが、Ｍｎ^２＋刺激の約５０％を示した。１０ｍＭにあるＣｏ^２＋またはＮｉ^２＋は、低いレベルの活性を支持したが（１ｍＭのＭｎ^２＋アッセイのそれぞれ２０％または９％）、１０ｍＭのＣｕ^２＋を補足された膜は不活性であった。実際に、１０ｍＭのＣｕ^２＋および２０ｍＭのＭｇ^２＋を膜標品と混合して、多糖への標識の組込みはほとんどなかった（Ｍｇのみの値の＜０．８％）。

Ｐ．ムルトシダＨＡＳの当初の特徴づけを、Ｍｇ^２＋の存在下で行った。その糖ヌクレオチド前駆体についての酵素の結合アフィニティーは、見かけのＫ_Ｍ値を測定することによって評価した。多糖への［^１４Ｃ］ＧｌｃＡまたは［^３Ｈ］ＧｌｃＮＡｃの組込みは、それぞれ、ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃまたはＵＤＰ−ＧｌｃＡの可変の濃度で監視された（それぞれ図９および図１０）。

図９では、ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ濃度へのＨＡＳ活性依存性が描かれている。５０ｍＭトリス（ｐＨ７）、２０ｍＭのＭｇＣｌ_２および８００μＭのＵＤＰ−ＧｌｃＡ（^１４Ｃの１．４×１０^５ｄｐｍ）を含む緩衝液中のＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃの濃度を増やしながら、膜（２０μｇのタンパク質）を１時間インキュベートした。バックグランド放射性活性（同一のアッセイであるが、ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃを添加せず）を各点から除した。滴定でのＨＡ（平均およそ７８０ｄｐｍ／時間）への最高の特異的組込み速度は、１００％までの正常化についてＶ_ＭＡＸと定義された。

図１０には、ＵＤＰ−ＧｌｃＡ濃度へのＨＡＳ活性依存性が描かれている。図９に記述されたものと平行な実験では、ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃの量を１ｍＭのＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ（^３Ｈの２．７×１０^５ｄｐｍ）で増加させて、同じ一般的緩衝液およびアッセイ条件下でインキュベートした。バックグランド放射性活性（ＵＤＰ−ＧｌｃＡを添加しないアッセイ）を各点から除した。データは、図９でのように表される。Ｖ_ＭＡＸでの特異的組込みは、およそ７３０ｄｐｍ／時間に平均化した。

Ｍｇ^２＋含有緩衝液では、ＵＤＰ−ＧｌｃＡについては〜２０μＭ、そしてＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃについては〜７５μＭの見かけのＫ_Ｍ値は、図１１に示される滴定データのハンス−ウルフプロット（［Ｓ］／ｖ対［Ｓ］）を利用して決定した。図１１には、Ｖ_ＭＡＸおよびＫ_Ｍのハンス−ウルフプロット評価が描かれている。図９（四角）および図１０（円）を生じるために使用される特定の組込みデータを、［Ｓ］／ｖ対［Ｓ］としてグラフ化した。１／Ｖ_ＭＡＸに対応する平行の斜面では、糖ヌクレオチド前駆体についての最大の速度が、等しかったことが示される。−Ｋ_Ｍを示すｘ軸切片は、それぞれ、ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃおよびＵＤＰ−ＧｌｃＡについては７５および２０μＭのＫ_Ｍを得た。

両方の糖のＶ_ＭＡＸ値は、斜面が平衡であるので同じであった。Ｍｇ^２＋を用いたアッセイから得られる結果の比較では、ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃについてのＫ_Ｍ値は、〜１０５μＭまで、約２５−５０％まで増大され、そして最大は、Ｍｎ^２＋の存在下で２−３倍の因子まで増大された。これらの値は、表Ｉで表される。

先に述べられたとおり、病原体Ｐ．ムルトシダおよびエス．ピオゲネス（Ｓ．ｐｙｏｇｅｎｅｓ）のＨＡ莢膜は、宿主防御の回避を助ける毒性因子である。いずれかの細菌源から得られるＨＡシンターゼ酵素は、ＵＤＰ−糖を利用するが、しかしそれらは、ｐＨおよび金属イオン依存性およびＫ_Ｍ値に関してある程度異なる速度論的最適条件を有する。両方の酵素は、ｐＨ７で最も活性である。しかし、ＰｍＨＡＳは、少なくともｐＨ８．６までのｐＨ最適条件のアルカリ側でよく機能する。他方、報告されたところによれば、ｓｐＨＡＳは、わずかに酸性のｐＨでいっそう活性を示し、そしてｐＨ７．４以上で比較的不活性である。Ｐ．ムルトシダ酵素は、生体外アッセイ条件下で、Ｍｇ^２＋よりいっそう有効にＭｎ^２＋を利用する。ＰｍＨＡＳは、ストレプトコッカスのＨａｓＡより密接にＵＤＰ−糖を結合する。粗膜中のＰｍＨＡＳについて測定されたＫ_Ｍ値は、ストレプトコッカスの膜で見られるＨＡＳから得られるものより各基質について約２−３倍低い。

３．ワクチン接種のためのＰｍＨＡＳの使用
ＰｍＨＡＳのＤＮＡ配列も、破壊バージョンを用いた相同な組換えによって、正常な微生物遺伝子をノックアウトした後、Ｐ．ムルトシダ細菌の潜在的に弱毒化したワクチン株を生成するのに使用することができる。さらに、ＰｍＨＡＳのＤＮＡ配列は、家禽、家畜、ヒツジおよびブタの農業病原体である関連Ｐ．ムルトシダ型についてのプローブの型を決める診断用細菌の生成を可能にする。

区別できる莢膜抗原を有する細菌病原体Ｐ．ムルトシダの少なくとも５つの異なる型がある。多くはＡ型株によって引起こされる家禽コレラまたは鳥類パスツレラ症は、市販の家禽での広範で、経済的に損傷を与える疾病である。家禽コレラの急性突発は、通常、鳥類が、ちょうど死の数時間前にしばしば現れる症状として急に死ぬときにのみ検出される。Ｐ．ムルトシダの毒性についての分子的根拠については、ほとんど知られていないが、明らかに、病原体の毒性株の内の１つは、多糖莢膜を保有し、そしてそれらのコロニーは、寒天プレート上でムコシドまたは「湿潤」形態を表す。白血球細胞は、細菌を巻込みそして不活性化することに困難を示し、そして補体複合体は、細菌膜と接触して、溶菌を起すことができない。おそらく、家禽コレラの疾病の９０−９５％の原因であるカーターＡ型Ｐ．ムルトシダの主要な莢膜成分は、多糖ＨＡであり、そしてＨＡは、動物界の実質的に全ての構成要素での免疫応答は是認しない。免疫応答が起るときでさえ、自己免疫反応の影響のため鳥類についての問題がある。Ａ型Ｐ．ムルトシダ株は、ブタおよびウシの肺炎性パスツレラ症の主要な原因でもあり、そして家畜に発熱を移す。

２つの他のＰ．ムルトシダ莢膜型、Ｄ型およびＦ型は、あまりよく研究されていないが、しかし北米では優勢な病原体である。Ｆ型は、家禽コレラの事例の約５−１０％から単離される。Ｄ型も、家畜、ヒツジおよびブタでの肺炎の原因である。これらの家畜動物の肺炎の病巣からの単離物は、莢膜型から分析され、そして約２５−４０％は、Ｄ型であり、そして残りはＡ型であった。さらに、Ｄ型株は、ブタの萎縮性鼻炎に密接に関与する。これらのＤ型およびＦ型微生物の莢膜は、未知構造を有する様々な多糖から構成されるが、それらは、明らかにコンドロイチンに類似し、脊椎動物の体内で優勢な分子である。（β１，４）ＧｌｃＡ（β１，３）ＧａｌＮＡｃ単位を繰返すコンドロイタンの一般的な骨格構造は、ＨＡに非常に類似する。したがって、Ｄ型およびＦ型多糖は、免疫原性が乏しいことは驚くべきことでない。

典型的には、先の感染（またはワクチン接種）から由来する細菌表面成分に対する抗体は、白血球細胞が、貧食作用中に細菌に付着するための重要な手段である。この特徴は、通常、疾病と戦う上で免疫応答を厳密に効果的にする。したがって、ＨＡまたはコンドロイタン様糖のような非免疫原性ポリマーから構成される莢膜の存在が、宿主防御の全ての層の効力を約束する。ヒトの病原体であるストレプトコッカス・ピオゲネスも、宿主防御からそれ自身を保護するために、分子「擬態」としてＨＡ莢膜を使用する。非莢膜性エス．ピオゲネス突然変異体は、血液中で生存できず、そしてマウスでの野生型より１００倍毒性が低い。多くの毒性イー・コリ株は、宿主分子を擬態し、そして免疫系をかわす上で細胞を助ける他の多糖から構成される莢膜を保有する。全てのこれらの病原性細菌の莢膜は、疾病に勝つために克服されなければならない賢明な進化適応物である。

先の調査は、Ｐ．ムルトシダの莢膜および毒性でのその役割に焦点を置いた。Ａ型家禽株に関しては、野生型被包細菌および種々の非莢膜形態を、単離宿主防御（白血球細胞および補体）による生存挑戦に対する、または生きている家禽の感染および死滅を起させるそれらの能力について試験した。非莢膜細胞は、特に、（ａ）自発的に生じる突然変異体、（ｂ）化学的に誘導された突然変異体、または（ｃ）特異的ＨＡ分解酵素であるヒアルロニダーゼ［ＨＡエース］で処理した野生型細菌であった。一般に、莢膜欠損Ａ型細菌は、生体外で宿主防御を単離することによっていっそう十分に死滅される。

七面鳥血清は、突然変異体およびＨＡエース処理細胞の両方を死滅させる一方で、野生型細胞は増大した。死滅能力が、細菌とインキュベートする前に血清の加熱またはカルシウムキレート剤処理によって失われるので、補体系は必然的に関与する。その被包野生型細胞は、複合体が結合するが、細胞を溶菌できないことを示す不活性化なしに、血清中の補体のレベルを消費するか、または減少させる。七面鳥マクロファージおよび異好球が、野生型細胞よりいっそう貪欲に非莢膜の毒性およびＨＡエース処理細胞の両方を貧食作用する。

生きている動物実験では、自発的突然変異体は、ＬＤ_５０（すなわち、試験動物の５０％についての死滅用量）によって評価されるとおり、対応する野生型親株より１０^３から１０^５倍毒性が低かった。この莫大な差異は、Ａ型株による貧食作用での莢膜の重要さを示す。生きている七面鳥での細菌の死も、被包に左右される。唯一野生型細菌が、肝臓で生存した。注射の１５から２４時間後、野生型細胞は、未被包突然変異体より１０^５倍高い濃度で血液中に見られた。ＨＡ莢膜の別の役割は、付着およびコロニー化である。脊椎動物の体内のある種の細胞は、それらの表面に特異的ＨＡ結合タンパク質を保有する。潜在的に、細菌は、このタンパク質／ＨＡ相互作用を介して宿主に付着することができるであろう。

同様に、Ｄ型およびＦ型Ｐ．ムルトシダの莢膜は、微生物に貧食作用に対する耐性を供与する毒性因子として関与している。Ｄ型またはＦ型細胞は、コンドロイチナーゼで処理し、それらの微生物は、それらの莢膜を失い、そして生体外でいっそう十分に貧食した。さらに、これらのポリマーは、強力な免疫原性ではない。生体内試験から、被包Ｄ型株は、ブタでさらに重篤な鼻内病巣を生じ、そして未被包変異体よりマウスで低いＬＤ_５０を示した（それぞれ１０^２対１０^７−８）。

しかし、上で研究されたＡおよびＤ型突然変異体の場合には、それらの欠陥の遺伝的特性は、知られておらず、そして突然変異をマッピングする容易な方法はなかった。特に、化学的突然変異誘発では、任意の表示された「突然変異体」中で１回以上の突然変異があるようである。さらに、ＨＡ産生は、「非莢膜」突然変異体中で完全に根絶されることは示されなかった。コロニー形態学、光学顕微鏡または化学的試験によって検出できない薄い莢膜は、まだ存在する可能性があった。小さな莢膜でさえ検出するために、さらに敏感な放射および浮遊密度アッセイが必要とされる。これらの新たな方法を利用すると、数種の毒性アッセイで使用され、そして非莢膜性であると報告される１つの株は、実際に非常に薄い莢膜を保有する。したがって、真正な非莢膜株からの影響を決定することが重要である。

歴史的には、Ｐ．ムルトシダの莢膜産生に関与する遺伝子は知られていなかった。関連属ヘモフィルス・インフルエンザエ（Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ）中の別の細胞の莢膜遺伝子座を残す数種の遺伝子がマッピングされ、そしてシーケンシングされたが、生合成装置の分子の詳細は、入手可能でなかった。非常によく研究されたグラム陰性生物であるイー・コリでさえ、莢膜形成の遺伝子座が、十分にマッピングされ、そして数種の莢膜型についてのＤＮＡ配列が得られたけれども、各々の推定遺伝子産物の正確な役割は、よく理解されてはいない。

ストレプトコッカス・ピオゲネスのＨＡ生合成遺伝子座のクローニングおよびシーケンシングが報告されている。Ｐ．ムルトシダのようなこの微生物は、ヒト防御をかわすためにＨＡ莢膜を利用する。ＨＡオペロンは、およそ４ｋｂのＤＮＡで前後に並んで配列される３つの遺伝子を含む。第一の遺伝子ｈａｓＡは、２つの糖ヌクレオチド前駆体ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよびＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃを重合してＨＡ多糖を形成する、４５．１ｋＤａのＨＡシンターゼをコードする。第二の遺伝子ｈａｓＢは、ＵＤＰ−グルコース（ＵＤＰ−Ｇｌｃ）を、ＨＡ生合成のためのＵＤＰ−ＧｌｃＡに変換する４５．５ｋＤａのＵＤＰ−グルコースデヒドロゲナーゼをコードする。第三の遺伝子ｈａｓＣは、ＵＴＰおよびグルコース−１−ホスフェートからＵＤＰ−Ｇｌｃを形成する３４ｋＤａのＵＤＰ−グルコースピロホスホリラーゼをコードする。莢膜生合成用のＵＤＰ−糖を形成することに打ち込んでいる補助的酵素がある。染色体中のどこにでも残る別の「ハウスキーピング」遺伝子は、細菌の正常な代謝経路のためのＵＤＰ−Ｇｌｃを供給する。ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃは、細胞壁合成でのその役割のため全ての真正細菌に存在する。したがって、ＨＡシンターゼおよびデヒドロゲナーゼは、異種細菌中のＨＡ多糖合成を指示するだた２つの内在性タンパク質である。膜間螺旋状物を有する膜タンパク質であると仮定されるエス．ピオゲネスＨＡシンターゼは、おそらく、ＨＡを重合し、そして細胞の外側に成長する多糖鎖を輸送する両方を行う。

上で先に検討されるとおり、Ｐ．ムルトシダ中のＨＡの莢膜産生の原因である遺伝子が単離され、そしてシーケンシングされている（例えば、配列番号１および２参照）。この遺伝子は、本発明の一部として開示され、そして請求される。先にも検討されたとおり、Ｐ．ムルトシダ莢膜のポリマーは、ジレンマを宿主防御に引起こす。ＰｍＨＡＳ遺伝子配列情報を用いて、ＨＡ合成遺伝子「ノックアウト」を有する組換えて生成されるＰ．ムルトシダ株は、Ｐ．ムルトシダの細菌莢膜の合成を破壊する。ワクチンとして「ノックアウト」株を用いて、宿主生物が、この分野にある病原体による誘発を防ぐことが可能になる。

上で検討されるとおり、多用途で証明されている変異原であるＴｎ９１６は、種々の明らかに準ランダムな位置でＰ．ムルトシダの染色体に挿入する。Ｔｎは、電気穿刺を介して「自殺」プラスミド、すなわち、Ｐ．ムルトシダで複製できないものの上の細胞に導入された。Ｔｎは集結し、約４，０００事象／マイクログラムのＤＮＡの頻度で、プラスミドを飛び去り（ｊｕｍｐｅｄ ｏｆｆ）、そしてゲノムに導入された。生じる子孫は、Ｔｎ９１６から得られるテトラサイクリン耐性遺伝子を保有し、そしてその薬剤によって容易に選択できた。

さらに上に検討されるのは、毒性の親株から得られる莢膜生合成で欠けている独立のトランスポゾン突然変異体のパネルが、発生されることであった。およそ１０^５遺伝子導入したコロニーの視覚的および生化学的スクリーニングの組合せを使用した後、２つのクラスの莢膜欠損は、微細莢膜の、または非莢膜の突然変異体を生じることが分かった。第一のクラス（７つの独立な株）は、ＨＡの非常に小さな莢膜を保有し、したがって微細莢膜と称される。被包野生型株は、培地プレート上の虹色コロニーである大型ムコイドを生じ、そして個々の細胞は、光学顕微鏡で測定すると細胞体の直径におよそ等しい厚みを有する莢膜を形成する。比較では、微細莢膜の株は、培地プレート上でいくぶん乾燥剤のようであるより小さな虹色のコロニーを形成する。個々の細胞の莢膜の厚みは、野生型の四分の一（またはそれ未満）の桁数である。

４つの突然変異体（４つの独立株）は、培地プレート上で小さな乾燥コロニーを形成する真に非莢膜性であるように見えた。光学顕微鏡によって検出される莢膜はなかった。被包の状態によって、非莢膜株の浮遊密度は、ヒアルロニダーゼ処理によってそれらの莢膜をはがれた野生型細胞と等しかった。これらの株も、ＨＡシンターゼ活性を欠いた。内在性放射標識ＵＤＰ−糖前駆体を、これらの突然変異体から由来する標品に添加したが、ＨＡ多糖は形成されなかった。

非莢膜性突然変異体の内の２つＴｎＨおよびＴｎＬは、約１０^−３の頻度で、興味ある特性を保有し、野生型莢膜表現型を示す偶発的な復帰突然変異体が、培地プレートに現れた。復帰突然変異体細胞は、ＨＡ多糖のための光学顕微鏡および放射アッセイによって考えられるとおり、野生型莢膜を保有した。分子上の説明では、時折、Ｔｎが、莢膜遺伝子（付加または欠失した塩基なし）から正確に削り、そして染色体内のどこかほかの所に介入することである。培地プレート上の生じた被包子孫は十分に観察可能である。この可逆的現象は、これらの２つの株の中のＴｎが、莢膜合成に必要な重要な部位を突然変異させる原因であったという古典的な遺伝的根拠である。しかし、この相対的不安定さのため、Ｔｎ由来の突然変異体は、弱毒化ワクチン株に適正でない。ある頻度で、毒性型が生じうる。

サザンブロティングを使用して、元来の非莢膜突然変異体と被包復帰突然変異体の両方でＴｎの位置をマッピングした。ＴｎＨおよびＴｎＬは、図１２に示されるとおりＨｉｎｄＩＩＩまたはＢｓｔＸＩ消化後のパターンによって考えられるのと同じ遺伝子座中にＴｎ構成要素を有する。図１２は、Ｔｎ突然変異体のサザンブロットマッピングである。莢膜突然変異体、被包復帰突然変異体および対照の寄せ集めから得られる染色体ＤＮＡを、ＨｉｎｄＩＩＩで消化させた。ＤＮＡを、ゲル電気泳動によって分離させ、そしてサザンブロット分析にかけた。Ｔｎプローブは、内部制限部位のため各トランスポゾンについての２つのバンドを認識した（大型の１０ｋｂおよび小型の５ｋｂの腕を形成する）。Ｔｎプローブは、Ｔｎなしで親株から得られるＤＮＡとハイブリッド形成しない（レーン０）。非莢膜性突然変異体ＴｎＨ（Ｈ）およびＴｎＬ（Ｌ）または個々の被包復帰突然変異体（下線付き文字で示される）の別々のコロニーに由来する複数のＤＮＡ標品を実行させた。Ｔｎの２個のコピーを通常に有する（予備培養した株の内の１つは、３個のコピーを有した）ＴｎＬ以外は、全ての突然変異体は、単回のＴｎ構成要素挿入を示した。ＴｎＷ（Ｗ）は、ムコイドＴｎ含有対照株である。２３．１、９．４および６．６ｋｂ（頂部から底部まで）についてのラムダＨｉｎｄＩＩＩマーカー（λ）の位置を印した。

非莢膜性突然変異体ＨおよびＬ（ＨＡシンターゼ活性を示さない）、および代表的微細莢膜の突然変異体ＴｎＤ（Ｄ）中のＴｎ構成要素は、同じ位置にマッピングする。ムコイド表現型に対する復帰で、関連のＴｎ構成要素は、それぞれの場合に新たな位置に移動した。突然変異体から得られる破壊ＤＮＡを、この遺伝子座から単離し、そしてプローブは、莢膜遺伝子のために生成された。

連続配列分析では、ＴｎＨおよびＴｎＬ挿入がおよそ１ｋｂ部分であることが決定された。全ての場合に、これらの突然変異体遺伝子座の復帰突然変異体は、当初の位置でＴｎを失い、そして異なる位置で新たなＴｎを得た（すなわち、図１２、下線付き文字を有するレーン）。代替的に、被包形態に対する微細莢膜の突然変異体の内のいずれかの観察された復帰は無かった。微細莢膜の突然変異体（ＴｎＤによって型分けされた）の全ての原因であるＴｎは、ＴｎＨおよびＴｎＬ突然変異体と同じ１７キロベースのＨｉｎｄＩＩＩフラグメントにマッピングした。同様に、ＢｓｔＸＩでマッピングすることによって、この同時位置決めを確認した。

他の非莢膜性突然変異体ＴｎＡおよびＴｎＧでは、Ｔｎ構成要素は、他の不適切な遺伝子中に配置され、そしてＨＡ莢膜遺伝子座に、自発的突然変異によって機能性を失わせた。偶発的で自発的な突然変異が予測されるべきである。実際、ストレプトコッカスの莢膜遺伝子座の同様の研究で、１３の株の内１２は、自発的突然変異の結果であった。

Ｔｎ９１６挿入の突然変異誘発を、Ｐ．ムルトシダのＨＡ莢膜生合成に関与したＤＮＡを同定し、そしてクローン化するのに使用した。この技術を達成させる上で、３つのステップが使用された。すなわち、（ｉ）Ｔｎ９１６の末端にあるＤＮＡに対応するプライマーを利用するＴｎ挿入部位にある宿主ＤＮＡをシーケンシングすること、（ｉｉ）新たな配列に基づいた莢膜遺伝子のためのＰＣＲプライマーを設計して、２つのＴｎ構成要素の間のＤＮＡセグメントを増幅すること、および（ｉｉｉ）ハイブリダイゼーションプローブとして莢膜遺伝子座特異的ＰＣＲ産物を利用する機能性クローンのためにラムダウイルス中にある野生型ゲノムライブラリーをスクリーニングすることである。

Ｔｎに隣接するＰ．ムルトシダＤＮＡを得る上で主要なステップは、ここに参照して完全に組込まれるＤｅＡｎｇｌｉｓ，Ｐ．Ｌ．、「パスツレラ・ムルトシダのトランスポゾンＴｎ９１６挿入性突然変異誘発および破壊部位の直接シーケンシング」、ＭｉｃｒｏｂｉａｌＰａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ（１９９８年）で完全に記述された最近処方された直接シーケンシング技術を使用することであった。全ての莢膜型から得られるＰ．ムルトシダ・ゲノムは、制限酵素ＨｈａＩについての多くの部位を含む。したがって、消化物中のほとんどすべてのＤＮＡフラグメントは、７キロベース（ｋｂ）より小さく、そして図１３、レーン「０」に示される。

図１３には、Ｔｎ破壊部位の配列分析についてのキメラＤＮＡテンプレートが表される。この方法を通して、Ｔｎ９１６構成要素によって中断される任意の遺伝子のＤＮＡ配列は、迅速にそして直接的に得ることができる。その方法は、Ｔｎ構成要素、および制限酵素ＨｈａＩに対するＡ型Ｐ．ムルトシダのゲノムの判別感受性で利用する。１６ｋｂＴｎ構成要素は、消化で１２および４ｋｂフラグメントになる唯一のＨｈａＩ部位を有する。したがって、Ｔｎ構成要素によって中断された任意の遺伝子は、別の１２ｋｂのＤＮＡを有する。ＨｈａＩフラグメントのサイズでの増加は、従来のアガロース電気泳動によって残りの染色体ＤＮＡからＴｎタグ付き遺伝子の解像を容易にさせる。この０．７％ゲルは、Ｔｎ無しの親株（レーン０）、および数種のＴｎ含有突然変異体（Ｔｎ突然変異体レーン）から得られる染色体ＤＮＡのＨｈａＩ消化パターンを示す。ラムダ／ＨｉｎｄＩＩＩマーカー（レーンＳ）は、ｋｂで印される。およそ１３−１７ｋｂで移行するキメラＴｎ／ゲノムＤＮＡフラグメント（矢印で印される）は、Ｔｎ突然変異体のみで見られる。レーンＬは、３つのキメラバンドを有すること、この特定の突然変異体は、３つのＴｎ構成要素を有することに注目されたい（図１２参照）。

キメラＤＮＡは、単離して、シーケンシングテンプレートとして直接使用されうる。必要とされるクローンまたはＰＣＲはない。アガロースゲル電気泳動によって残りの小さなゲノムフラグメントから十分に分離される、生じる大型キメラＤＮＡ分子は、サイクルシーケンシング反応中でテンプレートとしての役割を果たす。Ｔｎ９１６の右腕末端に対応するシーケンシングプライマーは、破壊ＤＮＡに外側に伸長を指示する。したがって、突然変異体ＤＮＡの破壊部位での配列データは、ＰＣＲ増幅またはテンプレートＤＮＡをクローニングすることなく、日常的に得ることができる。

新たな配列情報は、ＴｎＬおよびＴｎＨ突然変異体の間のＤＮＡの領域の増幅のためのＰＣＲプライマーを設計するのに使用した。Ａ型Ｐ．ムルトシダのＨＡ生合成遺伝子座の略図を示す図１４に概説されるとおり、特異的な１ｋｂ産物を、ハイブリダイゼーションプローブとして使用して、Ａ型Ｐ．ムルトシダの莢膜生合成オペロンの５．８ｋｂ部分を得た。図１４が描くとおり、イー・コリ中のＨＡの生合成を指示できるＡ型ゲノムＤＮＡクローンの挿入物をシーケンシングした。開放読取り枠が、多糖輸送中に関与されるイー・コリ分子に類似する２つのタンパク質ＫｐｓおよびＫｆａＡ、すなわち、ＨＡ多糖を重合するＨＡシンターゼ、および前駆体形成酵素、ＵＤＰ−グルコースデヒドロゲナーゼをコードすることが分かった。元のプラスミドの欠失分析では、無傷のＨＡシンターゼは、異種細菌中のＨＡ産生に不可欠であることが示された。ＴｎＨおよびＴｎＬに対応する元のＴｎ挿入の位置を、星印で印した。Ｔｎ挿入事象は、ＨＡシンターゼおよびデヒドロゲナーゼ遺伝子の下流の発現を終結させる極性の突然変異を明らかに引起こした。したがって、配列分析を使用することによって、イー・コリＫｆａＡに類似である新規ＰｍＨＡＳおよび推定多糖輸送相同体の無傷の開放読取り枠が見られた。データでは、ＵＤＰ−ＧｌｃＡ前駆体を作るＵＤＰ−Ｇｌｃデヒドロゲナーゼ相同体、および別の輸送媒体タンパク質イー・コリｋｐｓ遺伝子相同体は、ＨＡシンターゼの付近に存在することも示された。

Ｐ．ムルトシダから得られる単独の１１０ｋＤａのタンパク質ＰｍＨＡＳは、イー・コリ中のＨＡ莢膜産生を指示する。プラスミド上でＰｍＨＡＳと共に産生される組込み細胞の莢膜は、毒性の野生型株と同じ厚みであった。莢膜性材料は、特異的ＨＡリアーゼ消化に対するその過敏性、および選択的ＨＡ結合タンパク質とのその反応性によって真正なＨＡと考えられた。興味深くは、ＰｍＨＡＳは、アミノ酸レベルで他のＨＡＳにそれほど類似ではない。

Ｐ．ムルトシダの安定な同質遺伝子の突然変異体を作るために、ピー．ヘモリチカで使用される突然変異誘発法の修飾を使用した。ＨＡシンターゼの二重交差によって標的にされた不活性化のためのノックアウト・カセットを作成した。プロモーター無しのクロラムフェニコール耐性遺伝子（ｃａｔ）を、全ＰｍＨＡＳ開放読取り枠（ＸｈｏＩ部位で）の中央に挿入し、Ｐ．ムルトシダ中で安定には複製しないプラスミド（ｐＫＫ２２３−３）にクローン化させた。プラスミドを、被包野生型株に形質転換させ、そして細胞を、クロラムフェニコールを有する培地に載せた。標的遺伝子へ介入させたとき、無傷のＰｍＨＡＳタンパク質はもはや形成されない。ｃａｔ遺伝子は、内在性莢膜遺伝子プロモーターによって転写される。下流遺伝子であるＵＤＰ−グルコースデヒドロゲナーゼは、影響を及ぼされないにちがいない。したがって、真の同質遺伝子突然変異体が形成される。

３つの同質遺伝子の非莢膜性突然変異体が、単離された。これらの突然変異体の内、光学顕微鏡および墨汁染色下で莢膜を有すると検出されたものはなかった。ＨＡシンターゼは、ＤＮＡおよび生化学的レベルの両方で破壊された。例えば、表ＩＩ参照。ＰｍＨＡＳ酵素の一部に対して向けられた抗体を用いたウエスタンブロット分析によって、非莢膜のノックアウト突然変異体は、野生型親で見られるＰｍＨＡＳ酵素のものであるおよそ１１０ｋＤａバンドを失っていた。表ＩＩ中のデータとの組合せ（多糖産生を欠く）で、機能性ＰｍＨＡＳで、ノックアウト株に見られるものはなかった。

ある種の領域は、種々の莢膜型の遺伝子の間で共通であるか、または非常に類似する。これは、図１５で描かれるＤまたはＦ型ＤＮＡのサザンブロット分析で示される。図１５で描かれるとおり、Ａ、ＦまたはＤ型株から得られる染色体ＤＮＡは、ＨｉｎｄＩＩＩまたはＥｃｏＲＩ（各プローブについてそれぞれ、右または左レーン）で消化させ、そしてサザンブロットにかけた。Ａ型から得られるｋｆａＡ相同体（Ｋ）またはＨＡシンターゼ（Ｈ）遺伝子のいずれかの領域に対応するジゴキシゲニン標識ＰＣＲ産物プローブを、他の莢膜型の細菌中の相同な配列を検出するのに使用した（星印の付いたバンド）。ＫｆａＡ相同体は、ＦおよびＤ型の両方に現れる。非常に類似なシンターゼ相同体は、Ｆ型で見られたが、Ｄ型では見られなかった。プローブは、ライブラリーをスクリーニングするのに適切である。ラムダ／ＨｉｎｄＩＩＩ標準を、キロベースで印す。

Ｆ型は、両方のプローブに類似する領域を示す一方で、Ｄ型は、輸送媒体タンパク質プローブにのみ類似した。図１６に示されるとおり、ＰＣＲを、Ａ型配列に対応する数種の組のプライマーと共に使用して、ＤまたはＦ型ゲノムＤＮＡを増幅した。Ａ型プライマーを用いた異種ＤＮＡのＰＣＲは、図１６に描かれている。Ａ型株のｋｆａＡ相同遺伝子（パネルＡ）またはＨＡシンターゼ遺伝子（パネルＢ）に対応する種々のプライマー対を、様々の莢膜型と共に、数種の他のＰ．ムルトシダ株から単離されるゲノムＤＮＡを増幅するのに使用した。Ｔａｑ酵素を用いて４０サイクル（９４℃、３０秒；４２℃、３０秒；７２℃、６０秒）のポリメラーゼ連鎖反応を行った。

反応混合物を、１％アガロースゲル上で分離させ、そしてエチジウム（レーン：Ａ、Ａ型；Ｄ、Ｄ型；Ｆ、Ｆ型；０、テンプレートなしの対照）で染色した。標準（Ｓ）は、１００ｂｐラダーであり、１および０．５ｋｂバンドは、矢印で印をする。Ｐ−Ｉプライマー対は、全ての３つの莢膜型のための産物を示すが、しかしＤ型産物は、他の産物より小さい。Ｐ−ＩＩおよびＰ−ＩＩＩ対は、ＡおよびＦ型ＤＮＡのみを増幅する。対照的に、Ｐ−ＩＶおよびＰ−Ｖ対は、Ａ型のみを増幅する。ＡおよびＦ型莢膜遺伝子座が、Ｄ型より互いにいっそう類似するようである。Ｐ−Ｉプライマー対から得られるＰＣＲ産物は、他の型から得られる莢膜遺伝子座のための優れたハイブリダイゼーションプローブとして役割を果たす。

プライマーの全ての組合せが、異種テンプレートＤＮＡを有するＰＣＲ産物を得るとはかぎらない。ＨＡシンターゼまたは莢膜多糖輸送媒体の類縁体をコードするＦ型遺伝子の０．２−１ｋｂ部分を増幅した。さらに増幅されたのは、輸送媒体タンパク質をコードするＤ型ゲノムの１ｋｂ領域であった。数種のＰＣＲ産物の配列分析は、同質のなお区別しうる配列を示した。全体で、このデータは、ＡおよびＦ型株が、互いにいっそう関連し、そしてＤ型に類似しないことを示唆する。ＡおよびＦ型ＫｆａＡ相同体およびイー・コリＫｆａＡの配列比較は、図１７に示される。Ｐ−Ｉプライマーの組（図１６参照）を用いたＦ型ＤＮＡの増幅によって生成されるＰＣＲ産物を、ゲル精製し、そして元のプライマーの内の一つでシーケンシングした。ＡおよびＦ型配列は、アミノ酸レベルで非常に類似性があることが分かった。タンパク質配列のこの部分配列では、この領域で、配列が、いくつかのミスマッチを伴いおおかた同一であることが示された（差異は、図１７で下線を付された）。全体で、Ｐ．ムルトシダ配列は、イー・コリＫｆａＡタンパク質と全く相同であり、そしてそれは、多糖輸送に関与する（同一の残基は、図１７で太字にする）。これらのＰＣＲ産物は、ＤまたはＦ型ゲノムライブラリーから得られる機能性莢膜遺伝子座を得るためのハイブリダイセーションプローブとして有用でもある。クローン化ＤＮＡも、遺伝子ノックアウトプラスミドの構築を可能にする。ここで、生じる突然変異体株は、毒性アッセイまたはワクチンに有用である。

Ｐ．ムルトシダの細菌莢膜の産生は、少なくとも以下のステップを含む。すなわち、（ｉ）糖ヌクレオチド前駆体の合成、（ｉｉ）莢膜多糖を形成する前駆体の重合、および（ｉｉｉ）莢膜組立てが起る細胞外空間への多糖の輸出または輸送である。もちろん、酵素レベルまたは酵素活性を制御する潜在的制御遺伝子または因子があるが、しかし焦点は、その経路の主要な構造的酵素にある。イー・コリでは、この工程についての酵素をコードする候補２型莢膜遺伝子は、細菌染色体上の単独部位で共に配置される。様々な構造を有する莢膜を作るイー・コリ株は、上のステップ（ｉ）および（ｉｉ）のための酵素を変化させるが、しかし全ては、ステップ（ｉｉｉ）についての共通輸送／輸出機構を共有するようである。

エス．ピオゲネスで、単一の内在性膜酵素が、前駆体糖を重合し、そして膜を越えてＨＡ多糖を輸送することが知見された。Ａ型Ｐ．ムルトシダは、細菌の莢膜産生のための３つの生合成ステップの各々に関与する４つの異なる遺伝子を有する（図１４参照）。タンパク質レベルでのイー・コリ相同体に対するＰ．ムルトシダの多糖輸送媒体の類似性で、ある種の他の莢膜遺伝子の一般的機能性も、これら２つの種と類似性がありうることが示唆される。

家禽コレラでの毒性因子としての莢膜の役割が、評価された。細菌莢膜および毒性の研究に対抗される落し穴および警告を避けるために、定義した突然変異体を、野生型微生物と比較した。破壊された莢膜遺伝子を有する同質遺伝子のＡ型突然変異体を、生体内で生きている家禽を感染させるのと同様に、生体外で宿主防御を予め存在するか、予備免疫することを避けるそれらの能力について試験した。ここに上で記述される方法によって、安定な同質遺伝子の突然変異体を生成した。プラスミド上のＰｍＨＡＳ遺伝子の破壊バージョン（図１８参照）および相同の組換えを使用して、ヒアルロナン莢膜を作る能力を失った組換えＰ．ムルトシダ株を作り出した。株は、さらに、ＤＮＡおよび生化学レベルの両方で分析した。我々は、サザンブロットおよびＰＣＲ分析の両方により、機能性ＨＡシンターゼ遺伝子を、ｃａｔカセット破壊を含む欠損遺伝子に換えられることを知見した（図１９参照）。

遺伝子破壊の確認は、図１９で示される。パネルＡは、サザンブロット分析である。種々の株から得られる染色体ＤＮＡを、ＨｉｎｄＩＩＩで消化し、０．７％アガロースゲルで分離し、そしてニトロセルロースに移した。ブロットを、Ｐ．ムルトシダＨＡＳ遺伝子プローブとハイブリッド形成させた。ＰｍＨＡＳ遺伝子中の内部ＨｉｎｄＩＩＩ制限部位のため、２つのバンドを検出した。レーンＭは、ムコイド形質転換体であり、レーンＫＯは、非莢膜のノックアウト突然変異体であり、レーンＰは親株である。６７０ｂｐのｃａｔカセットの添加は、ＫＯレーン上の上部バンドのサイズ移行を起させる（矢印で印される）。

図１９のパネルＢは、ＰＣＲ分析である。種々の株から得られる細胞溶解産物中のＤＮＡを、ＰｍＨＡＳのＸｈｏＩ部位を挟む一対のオリゴヌクレオチドプライマーを用いた３５サイクルのＰＣＲによって増幅させた。正常の野生型遺伝子から得られるアンプリコンの長さは、６５０塩基対である。ＰＣＲ反応物は、１％アガロースゲル上で分離され、そして臭化エチジウムで可視化させた。レーンＭは、ムコイド形質転換体である。レーンＫＯは、非莢膜のノックアウト突然変異体である。レーンＰは、親株である。レーンＣは、クローン化ＰｍＨＡＳプラスミド対照である。そしてレーンＳは、サイズ標準である。ノックアウト突然変異体テンプレートによって産生されるＰＣＲ産物は、およそ１，３００ｂｐである（矢印で印を付けた）。このバンドは、６７０ｂｐのｃａｔカセットおよびＰｍＨＡＳに由来する６５０ｂｐから構成される。野生型アンプリコンで、ノックアウト株の反応物で検出されるものはなく、したがって、二重乗換現象によって導かれる相同な組換えが生じた。

さらに、ＨＡ多糖のための敏感な放射性化学アッセイを利用して、突然変異体株はＨＡを産生しないことが分かったが、種々の株のＨＡ産生を列記する表IIに示される。

表IIに列記される株は、ここに上で概略される特異的放射アッセイを用いてＨＡ多糖の存在について試験される種々の株の一夜培養物であった。分光光度計によって培養物を正常化させ、そしてデータは、６００ｎｍでの１．０の吸光度で培養物中のＨＡの濃度として表された。野生型親またはムコイドの被包形質転換体は、実質的な量のＨＡを合成した。対照的に、検出可能なＨＡで、非莢膜のノックアウト突然変異体（ＫＯ）によって産生されるものはない。したがって、毒性での莢膜の役割を評価できるであろう。使用される方法論は、Ｐ．ムルトシダの他の突然変異体を構築するのにも使用できるであろうし、そして本発明の開示を示された当業者は、このような手法を達成できるであろう。

動物試験は、相補突然変異体対照および野生型Ａ型Ｐ．ムルトシダに対するその突然変異体の生体内病原性を比較した。Ａ型パスツレラ・ムルトシダＡＴＣＣ１５７４２（家禽コレラを起す）のノックアウト株は、毒性試験のために、アイオワ州エイムス（Ａｍｅｓ，Ｉｏｗａ）にあるＵＳＤＡリサーチ・ステーションに届けられた。標的とされた相同の組換えを用いて、ノックアウト株の莢膜生合成を破壊し、そしてノックアウト株は、１，０００倍少ない毒性であることが推定された。

毒性試験は、ワクチン株としてＫＯ株の安全性を調べるために行った。七面鳥の卵を、クリーン条件下で孵化させ、そして２週齢まで育成させた。若鶏に種々の濃度の細菌（野生型親またはノックアウト株のいずれか）を注射した。細菌数は、プレート塗布後の分光学およびコロニー計測によって計測した。動物に筋肉内に注射し、そして生物学的混合ペンに載せた。接種した若鶏（１０倍ステップで約８０から１０^７個の細菌までの範囲における細菌投与当たり６または７の群）を観察した。一般的外観、活性のレベルおよび罹患率を６日間調べた。死亡または瀕死の鳥を、解剖し、そして病巣、腫瘍の存在、および臓器不全について調べた。
生体内実験の結果は、表IIIに要約される。

この型の試験の要点は、病原体の被包に関して感染の一般的傾向を評価することであった。各決定について、白色七面鳥を、滴定量の細菌ＩＭを接種した。七面鳥の症状および死を測定し、そして突然変異体の相対的毒性を比較するために表に表した。保護試験は、免疫した七面鳥が、野生型毒性生物による誘発を生き延びることができるかを決定するために実行する。

家畜およびウサギを感染するＡ型ノックアウト株も、製造された。免疫された動物が、野生型毒性生物での誘発に生き延びることができるかどうかを決定する保護試験と同様に、これらのノックアウト株の病原性の両方を決定するために、試験は、生体内で行われた。

２つの主要な型の保護実験を行った。最初に、消極的免疫化を行う。１匹のニワトリに、潜在性ワクチンＫＯ株を感染させ、そしてその血清のサンプル（保護的抗体を有する）を、接種後約１−２週に取る。この血清または誘導された精製抗体を、実験を受けたことのないニワトリに注射する。実験を受けたことのないニワトリを、野生型株で誘発させる。保護的抗体を受ける場合、トリは、ほかの致命的野生型細菌での誘発に生き残る。

第二に、有効な免疫化を行う。この場合に、同じニワトリは、強力なワクチンＫＯ株で連続して感染させ、そして数週間後、トリを、正常に致命的用量の野生型細菌で検証した。この場合に、抗体依存性および細胞依存性免疫を試験する。

本発明を使用して、多糖の親密な構造的類似性のために種々の被包型のＰ．ムルトシダの莢膜遺伝子座での類似性があることが推定される。本発明は、相同なＦ型Ｐ．ムルトシダ遺伝子（「ＰｍＣＳ」）にも関する。ＰｍＣＳ配列情報は、配列番号３で供される。Ｆ型遺伝子は、Ａ型遺伝子とおよそ８５％同一であり、そして配列比較は、図２０で示される。この相同性は、図１５、図１６および図１７に示されるとおり、サザンブロッティングおよびＰＣＲによって、クローン化Ａ型莢膜遺伝子とＤおよびＦ型ゲノムの特定の領域との間のＤＮＡレベルで見られる。ラムダファージ中のＦ型ゲノムＤＮＡのライブラリーを、スクリーニングして、相同な莢膜遺伝子座を単離した。ラムダファアージ中のＤ型ゲノムＤＮＡのライブラリーを、スクリーニングして、相同な莢膜遺伝子座を単離し、そして当業者は、Ｄ型莢膜遺伝子座が、ＡおよびＦ型と正確に同じ方法で測定することができることを予測し理解する。ＡおよびＦ型ＰｍＨＡＳ配列は、８９％類似である。

ＰＣＲ産物のハイブリダイゼーションプローブ（図１６）を使用し、ＨＡＳ相同体およびＫｆａ相同体を結合することによって、Ｆ型多糖シンターゼ遺伝子を得た。Ｆ型株から得られるゲノムＤＮＡおよびＫｆａから得られる適切なプライマーおよびシンターゼ領域を用いて、３ｋｂアンプリコンを産生した。この材料を、ジゴキシゲニンで標識させ、そしてクローン、および続いてラムダＺＡＰ発現ライブラリー中のＦ型ゲノムＤＮＡライブラリーから得られるプラスミドを得るのに使用した（Ａ型クローニングについて記述されるとおり）。陽性でハイブリッド形成するクローンをシーケンシングした。Ａ型ＨＡシンターゼ遺伝子ＰｍＨＡＳの場合のように、イー・コリ中のｐＫＫ２２３−３（ファルマシア）ベクター中の発現によって、機能を調べた。この酵素は、生体外で、ＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃおよびＵＤＰ−ＧｌｃＡを、コンドロイチン分子について予測されるとおりの高い分子量のポリマーに組込んだことが分かった。

莢膜の多糖シンターゼを、抗体およびウエスタンブロット分析で監視した。シンターゼ酵素の共有される相同な領域（１２−２０アミノ酸残基）に対応する合成ペプチドに対する抗体を発生させた。ウエスタンブロットでは、Ａ型およびＦ型Ｐ．ムルトシダの両方が、ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって、免疫反応性の１１０ｋＤａタンパク質を有することが確認された。

図２１は、生来の、そして組換えＰｍＨＡＳタンパク質のウエスタンブロット分析である。イー・コリ中で作成される生来のＰｍＨＡＳおよび種々の組換え切断ＰｍＨＡＳ由来のタンパク質を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上で比較した。組換えサンプルについては、総溶解産物（Ｔ）、膜（Ｍ）および細胞質（Ｃ）を、抗−ＰｍＨＡＳ抗体を用いたウエスタンブロッティングにかけた。生来のパスツレラ・ムルトシダに見られる元のタンパク質（Ｐｍ、レーンＷ；矢印で印された）が約１１０ｋＤａに移行する。ノックアウト・ワクチン株（ＫＯレーン）は、このバンドを失っている。生来のＰｍＨＡＳおよびカルボキシル末端の一部を失う組換えバージョン（ＰｍΔＣＣ）は、ＨＡシンターゼ活性を有した。他の切断構築物は、不活性であった。

４．診断用途でのＰｍＨＡＳの使用
本発明は、その分野でＡ、ＤおよびＦ型Ｐ．ムルトシダまたはピー．ヘモリチカの同定を促進する有用なプローブの産生にも関する。特定の株が、動物に存在するという診断は、最近、制限分析の後、血液学、凝集またはＤＮＡフィンガープリンティングによって決定される。先の２つの方法は、問題が多く、頻繁に誤った同定を生じ、そして抗血清をタイプ分けする源によって変化する。カーター型Ａ、ＤおよびＦ型の莢膜血液学は、これらのポリマーが、免疫原がこのように乏しいので抗体さえ使用しない。実際に、酵素的消化またはアクリフラビンとの細胞凝集に関与する困難なアッセイを、日常的に使用する。ＤＮＡフィンガープリンティングは、正確であるが、しかし、それは、ファイル上の莫大な型の株の集約的知識に依存する。莢膜特異的プライマーの組は、特に、最小限の取扱いで、そして予備培養なしに、半日で病原性単離物を同定する迅速で容易なＰＣＲ分析を使用することによって、これらの疫学的研究を十分に行うのに使用される。一旦、病原体が同定されると、抗生物質またはワクチンの選択に、いっそう洗練された決定をなすことができる。

Ｐ．ムルトシダの型を素早く確かめる莢膜ＤＮＡ情報の使用法の有用性は、最近のタイプ分け方法についての問題の点で明らかである。ハイブリダイゼーションまたはＰＣＲ基礎のタイプ分けのいずれかが、実施でき、敏感で、そして迅速であると想像される。１つの特定の実施形態は、その特徴の長所により、適切なハイブリダイセーション条件下で際立たせることができる（例えば、相補的遺伝子およびプローブは、ハイブリッド形成してシグナルを生じる一方で、別の莢膜型から得られる同一でない遺伝子は、ハイブリッド形成せず、したがって、シグナルが得られない）、適切に標識されたか、またはタグ付けされたシンターゼＤＮＡプローブ（または、莢膜型の中で異なる莢膜遺伝子座遺伝子を伸長させることによって）を保持することである。別の特定の実施形態は、莢膜型を区別できるＰＣＲプライマーを設計することである。正しいサイズのアンプリコンは、特定の莢膜型を示す。別の際立った莢膜型を示すアンプリコンはない。

技術の最近の現状で、単回反応で区別できるそして異なるサイズのバンドを示すいくつかのＰＣＲプライマー対が想像できる。このような複合法は、多くの反応を同時に行うことを可能にする。種々の莢膜生合成遺伝子座、特にシンターゼのＤＮＡ配列の知識は、これらの試験が種々の病原性株を迅速に区別させる。

したがって、本発明によって、上に規定される目的および利点を十分に満足させるＰ．ムルトシダの単離およびシーケンシングされたＰｍＨＡＳおよびノックアウト株を作成および使用する方法を供することのようである。本発明は、それらの特定の実施形態に関連して記述されているが、多くの改変、修飾および変動が、当業者に明らかであるという証拠である。したがって、付随の請求項の概念および広範な範囲内に入る全てのこのような改変、修飾および変動を受け入れることが意図される。

（配列表）

ＰｍＨＡＳのＰ．ムルトシダおよび他の細菌から得られる他のグリコトランスフェラーゼの部分的配列図である。図１におけるＰｍＨＡＳ配列は、配列番号１０であり、図１におけるＥｐｓＩ配列は、配列番号１１であり、図１におけるＣｐｓ１４Ｅ配列は、配列番号１２であり、図１におけるＬｇｔＤ配列は、配列番号１３であり、図１におけるＳｐＨａｓＡ配列は、配列番号１４であり、そして図１における共通配列は、配列番号１５である。 哺乳類ＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃ：ポリペプチドＧａｌＮＡｃ−トランスフェラーゼ（配列番号１７）の残基３６２−４０４に比較した場合のＰｍＨＡＳの残基３４２−３８３の配列図（配列番号１６）である。図２における共通配列は、配列番号１８である。 ＰｍＨＡＳのＵＤＰ−糖類縁体を用いた光アフィニティー標識研究のオートラジオグラム表示である。 ＰｍＨＡＳの種々のＴｎ突然変異体でのＰｍＨＡＳの減少されたか、または不在の光アフィニティー標識を表すオートラジオグラムである。 組換え・イー・コリ（Ｅ．ｃｏｌｉ）でのＨＡ産生を表示する光マイクログラフを示す。 組換え・イー・コリ（Ｅ．ｃｏｌｉ）でのＨＡ産生を表示する光マイクログラフを示す。 ＰｍＨＡＳの構築および発現ベクターへのそのサブクローニングを図で表す。 ＰｍＨＡＳの構築および発現ベクターへのそのサブクローニングを図で表す。 ＰｍＨＡＳ活性のｐＨ依存性を示す。 ＨＡＳ活性の金属依存性を示す。 ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ濃度でのＨＡＳ依存性を示す。 ＵＤＰ−ＧｌｃＡ濃度でのＨＡＳ依存性を示す。 Ｖ_ＭＡＸおよびＫ_ｍのハンス−ウルフプロット評価である。 Ｔｎ突然変異体のサザンブロットマッピングである。 Ｔｎ破壊部位の配列分析のためのキメラＤＮＡテンプレートを示す。 Ａ型Ｐ．ムルトシダのＨＡ生合成遺伝子座の部分の図表表示である。 Ａ型莢膜遺伝子プローブでの種々の莢膜型のＰ．ムルトシダのサザンブロット分析である。 種々のＡ型プライマーを用いたＡ型ＤＮＡおよび異種ＤＮＡのＰＣＲの電気泳動図である。 Ａ型（配列番号５）およびＦ型（配列番号４）ＫｆａＡ相同体およびイー・コリ（配列番号６）ＫｆａＡの部分的配列比較である。 野生型ＨＡＳ遺伝子対ノックアウト変異体遺伝子の概略図である。 サザンブロットおよびＰＣＲ分析による非莢膜性のノックアウト突然変異体の分子生物学的確認である。 Ａ型およびＦ型Ｐ．ムルトシダの配列比較である。図２０におけるＰｍＨＡＳ配列は、配列番号７であり、図２０におけるＰｍＣＳ配列は、配列番号８であり、そして図２０における共通配列は、配列番号９である。 Ａ型およびＦ型Ｐ．ムルトシダの配列比較である。図２０におけるＰｍＨＡＳ配列は、配列番号７であり、図２０におけるＰｍＣＳ配列は、配列番号８であり、そして図２０における共通配列は、配列番号９である。 Ａ型およびＦ型Ｐ．ムルトシダの配列比較である。図２０におけるＰｍＨＡＳ配列は、配列番号７であり、図２０におけるＰｍＣＳ配列は、配列番号８であり、そして図２０における共通配列は、配列番号９である。 Ａ型およびＦ型Ｐ．ムルトシダの配列比較である。図２０におけるＰｍＨＡＳ配列は、配列番号７であり、図２０におけるＰｍＣＳ配列は、配列番号８であり、そして図２０における共通配列は、配列番号９である。 Ａ型およびＦ型Ｐ．ムルトシダの配列比較である。図２０におけるＰｍＨＡＳ配列は、配列番号７であり、図２０におけるＰｍＣＳ配列は、配列番号８であり、そして図２０における共通配列は、配列番号９である。 生来の、そして組換えＰｍＨＡＳタンパク質のウエスタンブロット分析である。

Claims (6)

1. 酵素的に活性なコンドロイチンシンターゼをコードする精製・分離された核酸セグメントであって、前記コンドロイチンシンターゼは、コンドロイチン分子を形成するための、ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよびＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃの双方の組込みを触媒するタンパク質であり、精製・分離された前記核酸セグメントは、下記（ａ）項から（ｄ）項：
   （ａ）配列番号３のアミノ酸配列をコードする核酸セグメント；
   （ｂ）８０％から９９％の、（ａ）と同一のヌクレオチドを有する核酸セグメント；
   （ｃ）４０から５０℃で、１．２−１．８×ＨＰＢのハイブリッド形成条件において、（ａ）の相補的鎖でハイブリッド形成する核酸セグメント；および、
   （ｄ）遺伝子コードの縮重、または、機能的に等価なアミノ酸をコードするために、４０から５０℃で、１．２−１．８×ＨＰＢのハイブリッド形成条件において、（ａ）の相補的鎖でハイブリッド形成する核酸セグメント
   のうちの何れか１つであることを特徴とする核酸セグメント。
2. 請求項１に記載した核酸セグメントからなる組換えベクター。
3. コンドロイチンを生成する、請求項２に記載した組換えベクターからなる組換え宿主細胞。
4. （ａ）請求項３に記載した宿主細胞を培地で増殖させて、コンドロイチンを分泌させるステップと；
   （ｂ）前記コンドロイチンを回収するステップと
   を含む、コンドロイチンポリマーを生産するための方法。
5. 酵素的に活性なコンドロイチンシンターゼを、反応混合物中のＵＤＰ−ＧｌｃＡおよびＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃと反応させて、コンドロイチンを生成させるステップを含む、生体外で、コンドロイチンポリマーを生産するための方法において、前記酵素的に活性なコンドロイチンシンターゼが、請求項１に記載した核酸セグメントによってコードされることを特徴とする方法。
6. 前記コンドロイチンを回収するステップを更に含む、請求項５に記載の方法。

Images