JP2007526330A - 多成分系生物学的輸送系 - Google Patents
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Abstract
【選択図】図1
Description
本出願は、2000年7月21日に出願された米国仮出願第60/220244号の優先権を主張する、2001年7月20日に出願された米国特許出願第09/910432号の一部継続出願であり、これらの内容全体は、参照により本明細書に組み込まれる。
該当無し
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a)正に帯電した主鎖と、
b)i)複数の結合されたイメージング部分を有する、負に帯電した第1の主鎖、或いは、負に帯電した複数のイメージング部分、
ii)複数の結合された標的物質を有する、負に帯電した第2の主鎖、或いは、負に帯電した複数の標的部分、
iii)RNA、DNA、リボザイム、改変されたオリゴヌクレオチド、及び選択された導入遺伝子をコードするcDNAから選択される少なくとも1つのメンバー、
iv)少なくとも1つの持続因子(persistence factor)をコードするDNA、並びに
v)複数の結合された生物学的作用物質を有する、負に帯電した第3の主鎖、又は負に帯電した1つの生物学的作用物質
からなる群から選択される少なくとも2つのメンバーと
の非共有結合性複合体を含む組成物であって、
その複合体が正味の正電荷を有し、メンバーのうちの少なくとも1つがi)、ii)、iii)又はv)から選択される組成物を提供する。
i)複数の結合されたイメージング部分を有する、負に帯電した第1の主鎖、或いは、複数の負に帯電したイメージング部分、
ii)複数の結合された標的物質を有する、負に帯電した第2の主鎖、或いは、複数の負に帯電した標的部分、
iii)RNA、DNA、リボザイム、改変されたオリゴ核酸、及び選択された導入遺伝子をコードするcDNAから選択される少なくとも1つのメンバー、
iv)少なくとも1つの持続因子をコードするDNA、並びに
v)複数の結合された生物学的作用物質又は薬用化粧物質を有する、負に帯電した第3の主鎖、或いは負に帯電した1つの生物学的作用物質又は薬用化粧物質、
からなる群から選択される少なくとも2つのメンバーとを、
製薬上又は薬用化粧品用に許容される担体と組み合わせて、正味の正電荷を有する非共有結合性複合体を形成させることを含み、且つ、前記メンバーのうちの少なくとも1つがi)、ii)、iii)又はv)から選択されることを条件とする方法を提供する。
概要
本発明は、イメージング物質、遺伝子、又は他の治療物質を選択的且つ持続的に送達するための成分ベースの系を提供する。組成物の個々の特徴は、臨床用の(bedside)製剤において望ましい成分を指定することによって、選択することができる。さらに、一態様では、イメージング部分及び特異的な標的部分は、正に帯電した主鎖と非共有結合性イオン結合型複合体を形成する、負に帯電した別々の主鎖上で提供される。負に帯電した主鎖上にこれらの成分を配置することによって、本発明は、他の戦略(複雑性及び費用を増大し、立体的制約が原因で首尾良い組合せがまだ報告されていないレベルまで効率を低下させる)で使用される場合のように正に帯電した主鎖上の的確な位置に成分を結合させる必要性を回避する。
上記の内容を考慮して、本発明は、一態様では、
a)正に帯電した主鎖と、
b)i)複数の結合されたイメージング部分を有する、負に帯電した第1の主鎖、或いは、負に帯電した複数のイメージング部分、
ii)複数の結合された標的物質を有する、負に帯電した第2の主鎖、或いは、負に帯電した複数の標的部分、
iii)RNA、DNA、リボザイム、改変されたオリゴ核酸、及び選択された導入遺伝子をコードするcDNAから選択される少なくとも1つのメンバー、
iv)少なくとも1つの持続因子をコードするDNA、並びに
v)複数の結合された生物学的作用物質を有する、負に帯電した第3の主鎖、又は負に帯電した1つの生物学的作用物質、
からなる群から選択される少なくとも2つのメンバーとの
非共有結合性複合体を含む組成物であって、
その複合体が正味の正電荷を有し、メンバーのうちの少なくとも1つがi)、ii)、iii)又はv)から選択される組成物を提供する。
正に帯電した主鎖(正に帯電した「担体」とも呼ぶ)は、典型的には、原子の直鎖であり、生理的pHで正電荷を有する基を鎖中に含み、又は、主鎖から伸びた側鎖に結合された、正電荷を有する基を含む。好ましくは、正に帯電した主鎖それ自体は、所定の酵素活性又は生物活性を有していないと考えられる。直鎖状の主鎖は、炭化水素主鎖であり、いくつかの実施形態では、窒素、酸素、硫黄、ケイ素、及びリンから選択されるヘテロ原子が割り込んでいる。主鎖の原子の大半は、通常は、炭素である。さらに、主鎖は、しばしば、繰り返し単位(例えば、アミノ酸、ポリ(エチレンオキシ)、ポリ(プロピレンアミン)、ポリアルキレンイミンなど)のポリマーである。実施形態の1つの群では、正に帯電した主鎖は、いくつかのアミン窒素原子が、正電荷を有するアンモニウム基(4置換型)として存在するポリプロピレンアミンである。別の実施形態では、正に帯電した主鎖は、ポリアルキレンイミン、例えばポリエチレンイミン又はポリプロピレンイミンなど、約10,000〜約2,500,000、好ましくは約100,000〜約1,800,000、最も好ましくは約500,000〜1,400,000の分子量を有する、ヘテロポリマーでもホモポリマーでもよい非ペプチジルポリマーである。実施形態の別の群では、主鎖は、正に帯電した基(例えば、アンモニウム基、ピリジニウム基、ホスホニウム基、スルホニウム基、グアニジウム基、アミジニウム基)を含む複数の側鎖部分を結合している。実施形態のこの群における側鎖部分は、主鎖に沿って、距離が一定又は様々である間隔で配置されていてよい。さらに、側鎖の長さは類似していても異なっていてもよい。例えば、実施形態の1つの群では、側鎖は、1〜20個の炭素原子を有し、前述の正に帯電した基のうちの1つの(主鎖から離れた)末端で終わっている、直鎖状又は分枝状の炭化水素鎖でよい。本発明のすべての態様において、担体と生物学的に活性な作用物質との結合は、非共有結合性の相互作用によるものであり、例えば、イオン性相互作用、水素結合、ファンデルワールス力、又はそれらの組合せを挙げることができる。
正に帯電した主鎖成分に加えて、本発明の多成分系組成物は、以下のもの、即ち、
i)複数の結合されたイメージング部分を有する、負に帯電した第1の主鎖、或いは、複数の負に帯電したイメージング部分、
ii)複数の結合された標的物質を有する、負に帯電した第2の主鎖、或いは、複数の負に帯電した標的部分、
iii)RNA、DNA、リボザイム、改変されたオリゴ核酸、及び選択された導入遺伝子をコードするcDNAから選択される少なくとも1つのメンバー、
iv)少なくとも1つの持続因子をコードするDNA、並びに
v)複数の結合された生物学的作用物質を有する、負に帯電した第3の主鎖、又は負に帯電した1つの生物学的作用物質、
からなる群から少なくとも2つの成分を含む。
様々な診断用部分又はイメージング部分が本発明において有用であり、診断又は画像化される状態、投与経路、作用物質の感光度、作用物質の検出に使用される装置などに応じて変わると考えられる有効量で存在する。
様々な標的物質が、本明細書で説明する組成物において有用である。通常、標的物質は、上記のイメージング部分に関して説明した負に帯電した主鎖に結合されている。いくつかの実施形態では、標的物質及びイメージング部分は、構造的に且つ/又は化学的に異なる。例えば、イメージング部分及び標的物質は、どちらもホスファートではない。一般に、標的物質は、核酸、治療物質、又は組成物の他の成分の移動を特定の部位に向けること、或いは標的物質を含まない複合体の向性に比べて、その複合体の向性を変えることを可能にする任意の成分でよい。標的物質は、例えば、特定のタイプの細胞又は特定の所望の組織(腫瘍細胞、肝臓細胞、造血細胞など)に核酸の移動を誘導することを可能にする、細胞外標的物質でもよい。このような作用物質は、特定の細胞区画(例えばミトコンドリア、核など)に治療物質を誘導することを可能にする、細胞内標的物質でもよい。作用物質は、最も単純には、正味電荷分布を変えることによって、複合体の向性を、より陰性度の高い細胞表面及び細胞外マトリクス成分から、より多様な細胞へ、さらには詳細には最も陰性の高い表面から離れるように変える、小型の陰イオンでよい。
いくつかの実施形態では、組成物は、少なくとも1つの持続因子をコードするDNAも含むと考えられる。このようなDNAの例は、アデノウイルスの前末端タンパク質(preterminal protein)1をコードするDNAである(Lieber, et al. Nature Biotechnology 15(13):1383-1387 (1997)を参照されたい)。アデノウイルス前末端タンパク質1、又はそれをコードする核酸は、所望の治療用導入遺伝子をコードする核酸配列に対してシス又はトランスで提供することができる。この方式で提供される場合、前末端タンパク質1又は配列は、治療用核酸を安定な核エピソームとして維持し、それにより、治療用核酸の損失を防ぎ、治療用タンパク質発現の後期の低減を防止する。
治療物質及び薬用化粧物質の双方を含めて、様々な生物学的作用物質が本発明において有用であり、予防的に又は別の方法で治療される状態、投与経路、作用物質の有効性、並びに患者の大きさ及び治療計画に対する感受性に応じて変わると考えられる有効量で存在する。
イメージング部分、標的物質、及び治療物質を含めて、上記の群の成分の3つに関して、個々の化合物は、負に帯電した主鎖に結合されても、負に帯電した部分を導入するように共有結合的に修飾されても、又は、前述の正に帯電した主鎖へのイオン結合を与えるのに十分な負に帯電した部分をその化合物が含む場合は直接使用されてもよい。必要があれば、通常、その結合は、作用物質並びに主鎖上に存在する官能基を通じて、特定の作用物質を主鎖に共有結合させるのに使用される連結基を介している。様々な連結基が、本発明のこの態様において有用である。例えば、Hermanson, Bioconjugate Techniques, Academic Press, San Diego, CA (1996)、Wong, S.S., Ed., Chemistry of Protein Conjugation and Cross-Linking, CRC Press, Inc., Boca Raton, FL (1991)、Senter, et al., J. Org. Chem. 55:2975-78 (1990)、及びKoneko, et al., Bioconjugate Chem. 2:133-141 (1991)を参照されたい。
上記の正に帯電した担体を、インスリン及び約50,000以上の分子量を有するタンパク質、例えば、ボツリヌストキシン(BTX)など、治療的に血中グルコースレベルを変えないいくつかの他の生物学的に活性な作用物質、或いは、治療用の核酸ベースの作用物質、いくつかの抗真菌薬などの非タンパク質非核酸系治療物質、又は免疫化用の作用物質など他の生物学的に活性な作用物質の経皮送達のために使用できることが判明している。正に帯電した担体を使用すると、皮膚細胞の内外双方向へのタンパク質又はマーカー遺伝子の送達、及びその下の組織への有効量且つ活性型でのその送達が可能になる。例えば、インスリンは、注射を必要とせずに、皮膚を通してその下の毛細血管中に送達され、身体全体に輸送され得る。ボツリヌストキシンは、麻痺を生じ、弛緩を生じ、収縮を軽減し、痙攣を防止又は軽減し、腺分泌を低減させ、又は他の所望の効果を実現するのに有効な量で、その下の筋肉又は皮膚内の腺構造体に送達され得る。この方式の局所送達は、特にボツリヌストキシンの場合に、注射可能又は埋め込み可能な物質に比べて、投与量の減少をもたらし、毒性を低減し、所望の効果に対してより的確な投与量の最適化を可能にすることができる。この実施形態は、いくらかの好ましくは多価の小型陰イオン、例えば、リン酸、アスパラギン酸、又はクエン酸を含んでもよく、或いは、このようなポリアニオンが実質的に無い状況で実施してもよい。本発明のすべての態様において、担体と生物学的に活性な作用物質との結合は、非共有結合性の相互作用によるものであり、例えば、イオン性相互作用、水素結合、ファンデルワールス力、又はそれらの組合せを挙げることができる。
別の態様では、本発明は、薬剤組成物を調製するための方法であって、正に帯電した主鎖成分と、
i)複数の結合されたイメージング部分を有する、負に帯電した第1の主鎖、或いは、複数の負に帯電したイメージング部分、
ii)複数の結合された標的物質を有する、負に帯電した第2の主鎖、或いは、複数の負に帯電した標的部分、
iii)RNA、DNA、リボザイム、改変されたオリゴ核酸、及び選択された導入遺伝子をコードするcDNAから選択される少なくとも1つのメンバー、
iv)少なくとも1つの持続因子をコードするDNA、並びに
v)複数の結合された生物学的作用物質を有する、負に帯電した第3の主鎖、又は負に帯電した1つの生物学的作用物質、
からなる群から選択される少なくとも2つのメンバーとを、
製薬上許容される担体と組み合わせて、正味の正電荷を有する非共有結合性複合体を形成させることを含み、且つ、メンバーのうちの少なくとも1つがi)、ii)、iii)又はv)から選択されることを条件とする方法を提供する。
送達方法
様々な方法を用いて、インビボ又はエックスビボで、被験者、細胞、又は標的部位に本発明の組成物を送達することができる。実際には、治療すべき組織に最終的に組成物を接触させるのに通常使用される経路のうちの任意のものを使用することができる。好ましくは、組成物は、製薬上許容される担体と共に投与される。このような化合物を投与する適切な方法は、当業者にとって利用可能且つ周知であり、個々の組成物を投与するのに複数の経路を使用できるが、しばしば、特定の経路が、別の経路と比べてより即時的且つより効果的な反応をもたらし得る。製薬上許容される担体は、1つには、投与される個々の組成物によって、並びに、その組成物を投与するのに使用される個々の方法によって、決定される。したがって、本発明の薬剤組成物の多種多様な適切な製剤が存在する(例えば、Remington's Pharmaceutical Sciences, 17th ed.1985を参照されたい)。
当業者には、様々なイメージング用途に合わせて本発明の組成物を調整できることが理解されよう。一実施形態では、成分ベースの系をイメージングに用いて、仮想結腸鏡検査を実施することができる。現在のところ、仮想結腸鏡検査は、本質的には、結腸に造影剤を注入し、CT上で画像を可視化し、次いで、3D画像を復元するものである。MRに対しても同様の技術を使用することができる。しかし、大便、粘液、及び空気はすべて造影剤の妨害物となり、結腸壁の復元物に偽の表面を与えることがある。細胞標的の造影剤の添加は、これらの妨害物に打ち勝って真の壁復元物を実現するのに寄与し、また、偽陽性及び偽陰性の双方を回避するのに寄与すると考えられる。この場合に成分ベースの系を適用することができるいくつかの方法がある。最も単純には、陽イオン性の効率主鎖を、単一の造影剤、例えば、CT、MR、又は光学的なものと共に適用することができる。このようにして、細胞表面の層を可視化し、異常又は妨害物があれば、画像復元物の中で詳細にすることができる。しかし、成分ベースの系は、特異的な第2の作用物質の添加という追加の選択肢を提供する。この作用物質は、陽イオン性の効率主鎖、異なるイメージング部分、及び標的成分、例えば、結腸癌に特徴的な2種の抗原を標的とする成分からなり得た。単純なものから診断用までのイメージング部分は、1種がCT造影剤で、もう一方がMR造影剤となるように、又は、両方がMR造影剤で、1種がT2剤でもう一方がT1剤であるように、選択することができる。この方式では、以前のとおりに表面を復元することができ、また、腫瘍抗原に特異的な任意の領域を可視化し、元の復元物に重ねることができる。さらに、標的化診断システムにも同様に治療物質を組み入れることができる。(また一方では治療と組み合わせて)同様の戦略を限局性腸炎及び潰瘍性大腸炎に適用することができる。或いは、例えば、黒色腫を診断又は管理する場合に、好ましくは蛍光性イメージング部分と併用して、光学的なイメージング部分及び検出法を使用することができる。光学的イメージング物質は、例えば、Cy3、Cy3.5、Cy5、Cy5.5、Cy7、Cy7.5、オレゴングリーン488、オレゴングリーン500、オレゴン、グリーン514、緑色蛍光タンパク質、6−FAM、テキサスレッド、Hex、TET、及びHAMRAから選択することができる。
リジン側鎖の遊離アミンに対する末端グリシンのカルボキシルを介して、18%の飽和度で(即ち、100個のリジン残基毎に18個が−Gly3Arg7に共有結合している)、分子量150,000のポリリジンに−Gly3Arg7を共有結合させることによって、正に帯電した主鎖を構築した。第2のサイズのペプチジル担体を示すために、修飾された主鎖を「KNR2」と呼んだ。対照のポリカチオンは、同じサイズ及び同じロットの未修飾のポリリジン(「K2」と呼ぶ、Sigma Chemical社製、セントルイス、ミズーリ州)であった。別の対照ポリカチオン、即ち、活性化されたデンドリマーベースの作用物質である「スーパーフェクトSuperfect(登録商標)」(Qiagen社製)を、高いインビトロトランスフェクション速度の基準として選択した(即ち、同時に陽性対照及びインビトロの毒性に対する現況技術の効率の基準となる)。
サイトメガロウイルス(CMV)プロモーターによって駆動される、青色蛍光タンパク質(BFP)の導入遺伝子全体及びフランキング配列の一部分を含む8キロベースのプラスミド(pSportベースの鋳型、Gibco BRL社製、ゲーサーズバーグ(Gaithersburg)、メリーランド州)を使用した。BFPは、トランスフェクトされ、その後、その遺伝子を転写及び翻訳する細胞に対する同定可能なマーカーとしての機能を果たし、蛍光顕微鏡下で直接(即ち、さらに染色せずに)可視化することができる。したがって、有効搭載量(payload)の送達前に、複合体が原形質膜と核膜の双方を通過した細胞のみが、導入遺伝子を発現することができる。この特有のプラスミドは、約264万の分子量を有し、したがって、これらの複合体を介する極めて大型の治療薬の送達を評価するために選択された。
各事例において、過剰なポリカチオンを使用して、過剰な正電荷を有する最終複合体を構築した。電荷密度の増加によりサイズは大きくなる(即ち、より多くの主鎖が複合体1つにつき存在する)が、複合体当たりの効率因子密度の増加が、これらの変化を相殺することができる。したがって、最良の結果は、低い比率(即ち、大きさに基づいて)又は高い比率(即ち、効率因子密度に基づいて)で起こり得、ここでは、KNR2についてどちらも評価する。K2効率及びスーパーフェクト効率の最適な比は、製造業者の推奨及び最大効率に関する以前の報告に基づいて選択した。細胞培養において評価される組成物の合計体積及び最終pHと同様に、核酸治療薬の用量を全グループにわたって標準化した。
1)CMVプロモーターによって駆動される、青色蛍光タンパク質を発現するプラスミドの0.5mg/mL溶液に対して4:1の電荷比のK2。
2)CMVプロモーターによって駆動される、青色蛍光タンパク質を発現するプラスミドの0.5mg/mL溶液に対して15:1の比のKNR2。
3)CMVプロモーターによって駆動される、青色蛍光タンパク質を発現するプラスミドの0.5mg/mL溶液に対して10:1の比のKNR2。
4)CMVプロモーターによって駆動される、青色蛍光タンパク質を発現するプラスミドの0.5mg/mL溶液に対して4:1の比のKNR2。
5)CMVプロモーターによって駆動される、青色蛍光タンパク質を発現するプラスミドの0.5mg/mL溶液に対して1.25:1の比のKNR2。
6)CMVプロモーターによって駆動される、青色蛍光タンパク質を発現するプラスミドの0.5mg/mL溶液に対して5:1の電荷比の、製造業者の推奨によるスーパーフェクト。
細胞培養実験はすべて、処置群の正体について盲検化された観察者によって実施された。6ウェルプレートで、70%コンフルエントなHA−VSMC初代ヒト大動脈平滑筋細胞(21継代;ATCC、ロックビル(Rockville)、メリーランド州)に各溶液1.0mLを加え、10%血清を含むM−199中で、摂氏37度、10%CO2で48時間増殖させた。未処置の対照ウェルも同様に評価し、1群につきn=5ウェルで各群を評価した。
盲検化された観察者は、BFPフィルター及び平面アポクロマートレンズの付いたNikon E600エピ蛍光顕微鏡を用いて、各ウェルの表面から60度、180度、及び200度で、未処置の細胞プレートの低倍率写真(全体で10倍)を撮影した。Image Pro Plus 3.0画像解析セット(Media Cybernetics社製、シルバースプリング(SilverSpring)、メリーランド州)を用いて、陽性の細胞領域全体に対するパーセントを測定した。この結果をそれぞれについて細胞領域全体に標準化し、遺伝子送達の効率(検出可能なレベルで導入遺伝子を発現する全細胞の比率)として報告した。
続いて、盲検化された観察者は、色素排除アッセイ(生細胞は色素を排除するが、生育不能な細胞は排除できない)、続いて、リン酸緩衝化生理食塩水中の0.4%SDSへの可溶化で各ウェルを評価した。トランスフェクション剤の毒性の直接的な尺度として生育不能な細胞を定量的に評価するために、Spectronic Genesys 5 UV/VIS分光光度計により、595nm(青色)の波長で試料を評価した。OD595測定に先立って、一致するOD280値に濃度を調整することによって、細胞数が同一になるように試料を標準化した。
盲検化された観察者は、Image Pro Plusソフトウェア(Media Cybernetics社製、シルバースプリング、メリーランド州)を用いて、バッチ式(batch)画像解析によって陽性染色の総量を測定し、それぞれについて陽性染色のパーセントを決定するために、横断面領域全体にそれを標準化した。続いて、Statviewソフトウェア(Abacus社製、バークリー(Berkeley)、カリフォルニア州)を用いた、反復測定による1元配置分散分析における95%信頼度の有意性分析により、各群の平均値及び標準誤差を測定した。
結果
効率:
効率性の結果は以下のとおりであった(平均値±標準誤差)
1)0.163±0.106%
2)10.642±2.195%
3)8.797±3.839%
4)15.035±1.098%
5)17.574±6.807%
6)1.199±0.573%
第4回及び第5回の試験は、ポリリジン単独及びスーパーフェクトの双方と比べて、統計学的に有意な(Fisher PLSD及びTUKEY−A事後試験を用いる1因子反復測定分散分析によってP<0.05)遺伝子送達効率の向上を示している。
平均毒性データは以下のとおりである(OD595でのAUで示されている。生理食塩水単独の場合に示されるような低い値は、低い毒性と相関があり、条件1で示されるようなより高い値は、高い細胞毒性を示唆する。
生理食塩水−0.057A、
1)3.460A、
2)0.251A、
3)0.291A、
4)0.243A、
5)0.297A、
6)0.337A。
対照、さらには現在の基準であるスーパーフェクトのものより、より毒性が低くより効率的な遺伝子送達を、1.25対4.0の比率のKNR2及びDNAを用いて実現することができる。この実験は、この担体を用いて、極めて大型の治療用複合体を膜を通過して送達できる可能性を裏付ける。
リジン側鎖の遊離アミンに対する末端グリシンのカルボキシルを介して、18%の飽和度で(即ち、100個のリジン残基毎に18個が−Gly3Arg7に共有結合している)、分子量150,000のポリリジンに−Gly3Arg7を共有結合させることによって、正に帯電した主鎖を構築した。修飾された主鎖を先と同様に「KNR2」と呼んだ。対照のポリカチオンは、同じサイズ及び同じロットの未修飾のポリリジン(「K2」と呼ぶ、Sigma Chemical社製、セントルイス、ミズーリ州)であった。別の対照ポリカチオン、即ち、活性化されたデンドリマーベースの作用物質であるSuperfect(Qiagen社製)を、高いトランスフェクション速度の基準として選択した(即ち、同時に陽性対照及びインビトロの毒性に対する現況技術の効率の基準となる)。
本実験のために、サイトメガロウイルス(CMV)プロモーターによって駆動される、大腸菌βガラクトシダーゼ(βgal)の導入遺伝子全体及びフランキング配列の一部分を含む8.5キロベースのプラスミド(pSportベースの鋳型、Gibco BRL社製、ゲーサーズバーグ、メリーランド州)を使用した。この場合、βgalは、トランスフェクトされ、その後、その遺伝子を転写及び翻訳する細胞に対する同定可能なマーカーとしての機能を果たし、外来酵素に対する特異的染色後に直接可視化することができる。したがって、複合体が皮膚を通過し、次いで標的細胞に到達し、有効搭載量の送達前に、原形質膜と核膜の双方を通過した細胞のみが、導入遺伝子を発現することができる。この特有のプラスミドは、約2,805,000の分子量を有する。
各事例において、過剰なポリカチオンを使用して、過剰な正電荷を有する最終複合体を構築する。製造業者の推奨に基づき、最大効率を決定するインビトロ実験の前に、K2効率、KNR2効率、及びスーパーフェクト効率の最適な比を選択した。局所適用される組成物の合計体積及び最終pHと同様に、核酸治療薬の用量を全グループにわたって標準化した。以下のように試料を調製した。
AK1と名づけた群:最終アリコート当たり8マイクログラムのβgalプラスミド(p/CMV-sport-βgal)(即ち、合計80マイクログラム)及びペプチジル担体KNR2を電荷比4:1で混合して均質にし、リン酸緩衝化生理食塩水で200マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を1.8mlのセタフィル(Setaphil)保湿剤と混合して均質にし、インビボ実験のために200マイクロリットルずつ分取した。
AL1と名づけた群:最終アリコート当たり8マイクログラムのβgalプラスミド(p/CMV-sport-βgal)(即ち、合計80マイクログラム)及びK2を電荷比4:1で混合して均質にし、リン酸緩衝化生理食塩水で200マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を1.8mlのセタフィルと混合して均質にし、インビボ実験のために200マイクロリットルずつ分取した。
AM1と名づけた群:最終アリコート当たり8マイクログラムのβgalプラスミド(p/CMV-sport-βgal)(即ち、合計80マイクログラム)及びスーパーフェクトを電荷比5:1で混合して均質にし、リン酸緩衝化生理食塩水で200マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を1.8mlのセタフィルと混合して均質にし、インビボ実験のために200マイクロリットルずつ分取した。
処置を施す間、イソフルランの吸入によって動物を麻酔した。麻酔をかけた後、C57 black 6マウス(1群当たりn=4)は、計量した用量200マイクロリットルの適切な処置を、背部(dorsal back)皮膚の頭側部分(マウスの口や肢がこの領域に届かないために選択された)に適用された。動物は、脱毛処理は受けなかった。低体温を防止するために管理された熱環境において動物を回復させ、応答するようになった後、一晩、食物及び水を自由に与えた。処置の24時間後に、マウスをCO2吸入によって安楽死させ、盲検化された観察者が、処置した皮膚部分の全層を採取した。処置部分を3つの部分に等分し、頭側部分を10%中性緩衝ホルマリン中で12〜16時間固定し、次いで、パラフィン包埋するまで70%エタノール中で保存した。中央部分は、急速凍結し、以前に説明されているような切片上での摂氏37度のβ−ガラクトシダーゼ染色に直接使用した(Waugh, J.M., M. Kattash, J. Li, E. Yuksel, M.D. Kuo, M. Lussier, A.B. Weinfeld, R. Saxena, E.D. Rabinovsky, S. Thung, S.L.C. Woo, and S.M. Shenaq. Local Overexpression of Tissue Plasminogen Activator to Prevent Arterial Thrombosis in an in vivo Rabbit Model. Proc Natl Acad Sci U S A. 1999 96(3): 1065-1070. 同様に、Elkins CJ, Waugh JM, Amabile PG, Minamiguchi H, Uy M, Sugimoto K, Do YS, Ganaha F, Razavi MK, Dake MD. Development of a platform to evaluate and limit in-stent restenosis. Tissue Engineering 2002. Jun;8(3): 395-407)。尾側の処置部分は、可溶化調査のために急速凍結した。
上記の効率に関して分析したものに対する毒性を、対にした切片での色素排除によって評価した。これらの方法を併用することは確実ではないため、切片は、効率性又は毒性のいずれかについてのみ染色を受けた。毒性分析の場合、これらの切片を排除色素に5分間浸し、次いで、摂氏37度、10%CO2で30分間インキュベートした。この期間中に色素を排除しなかった細胞はすべて、生育不能とみなした。
データ収集及び画像解析は、盲検化された観察者が実施した。前述したように染色した切片の全体を、平面アポクロマートレンズの付いたNikon E600顕微鏡で撮影した。得られた画像を、β−ガラクトシダーゼ酵素活性(ここで使用した基質法では青色)又は細胞毒性に関して陽性の数を決定するために、マニュアルを確認しながら前述のImage Pro Plusソフトウェアを用いて、バッチ式画像解析処理にかけた。各々に対するヌクレアファーストレッド染色によって、これらの結果を横断面全体の細胞数に標準化し、横断面の陽性染色のパーセントとして表にした。次いで、Statviewソフトウェア(Abacus社製、バークリー(Berkeley)、カリフォルニア州)を用いた、反復測定による1元配置分散分析における95%信頼度の有意性分析により、各群の平均値及び標準誤差を続いて測定した。
結果を以下の表にまとめ、図3に示す。正に帯電したペプチジル経皮送達担体は、K2(本質的には陰性対照)及び効率のベンチマーク標準のスーパーフェクトの双方に対して、送達効率及び導入遺伝子発現の統計学的に有意な上昇を実現した。スーパーフェクトは、K2よりも統計学的に有意な改善を達成したが、KNR2は、このモデルの系のスーパーフェクトよりも1桁以上大きな送達効率の改善を示した。
実施例2:各処置群の全数に対するパーセントとしての、β−ガラクトシダーゼ陽性細胞の平均値及び標準誤差
ペプチジル経皮担体は、特に、先に考察した導入遺伝子発現及び複合体全体の大きさの制約を考慮すれば、高効率で、大型の複合体を皮膚を通過して輸送することができる。(1)方法が非常に簡略化されており、画像解析がより正確であること、(2)効率の点レベルの実証(point demonstration)が、すでにII.Bで結論的に与えられていたこと、(3)非細胞性成分が断面のかなりの部分を占めるため、領域測定が、インビボの結果を理解するためのより広い範囲を提供すること、(4)さらに大きな非ペプチジル担体複合体に対する比較が容易になることを理由として、ここでは、陽性の数ではなく陽性領域を分析に使用した。
リジン側鎖の遊離アミンに対する末端グリシンのカルボキシルを介して、18%の飽和度で(即ち、100個のリジン残基毎に18個が−Gly3Arg7に共有結合している)、分子量150,000のポリリジンに−Gly3Arg7を共有結合させることによって、正に帯電したペプチジル主鎖を構築した。修飾された主鎖を「KNR2」と呼んだ。対照のポリカチオンは、同じサイズ及び同じロットの未修飾のポリリジン(「K2」と呼ぶ、Sigma Chemical社製、セントルイス、ミズーリ州)であった。
本実験のために、サイトメガロウイルス(CMV)プロモーターによって駆動される、大腸菌βガラクトシダーゼ(βgal)の導入遺伝子全体及びフランキング配列の一部分を含む8.5キロベースのプラスミド(pSportベースの鋳型、Gibco BRL社製、ゲーサーズバーグ、メリーランド州)を使用した。この特有のプラスミドは、約2,805,000の分子量を有し、したがって、ペプチジル担体を介する、皮膚を通過しての極めて大型の治療薬の送達を評価するために選択された。
各事例において、過剰なポリカチオンを使用して、過剰な正電荷を有する最終複合体を構築した。実験の比は、先の実験で示した単回投与実験に対応するように選択した。局所適用される組成物の合計体積及び最終pHと同様に、核酸治療薬の用量を全グループにわたって標準化した。以下のように試料を調製した。
AK1と名づけた群:最終アリコート当たり8マイクログラムのβgalプラスミド(p/CMV-sport-βgal)(即ち、合計240マイクログラム)及びペプチジル担体KNR2を電荷比4:1で混合して均質にし、リン酸緩衝化生理食塩水で600マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を5.4mlのセタフィルと混合して均質にし、インビボ実験のために200マイクロリットルずつ分取した。
AL1と名づけた群:最終アリコート当たり8マイクログラムのβgalプラスミド(p/CMV-sport-βgal)(即ち、合計240マイクログラム)及びK2を電荷比4:1で混合して均質にし、リン酸緩衝化生理食塩水で600マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を5.4mlのセタフィルと混合して均質にし、インビボ実験のために200マイクロリットルずつ分取した。
処置を施す間、イソフルランの吸入によって動物を麻酔した。麻酔をかけた後、C57 black6マウス(1群当たりn=4)は、計量した用量200マイクロリットルの適切な処置を、背部皮膚の頭側部分(マウスの口や肢がこの領域に届かないために選択された)に適用された。動物は、脱毛処理は受けなかった。低体温を防止するために管理された熱環境において動物を回復させ、応答するようになった後、一晩、食物及び水を自由に与えた。この手順を1日のうちのほぼ同じ時間に1日1回、7日間繰り返した。7日間の処置後に、マウスをCO2吸入によって安楽死させ、盲検化された観察者が、処置した皮膚部分の全層を採取した。処置部分を3つの部分に等分し、頭側部分を10%中性緩衝ホルマリン中で12〜16時間固定し、次いで、パラフィン包埋するまで70%エタノール中で保存した。中央部分は、急速凍結し、以前に説明されているような切片上での摂氏37度のβ−ガラクトシダーゼ染色に直接使用した。尾側の処置部分は、可溶化調査のために急速凍結した。
データ収集及び画像解析は、盲検化された観察者が実施した。前述したように染色した切片の全体を、平面アポクロマートレンズの付いたNikon E600顕微鏡で撮影した。得られた画像を、β−ガラクトシダーゼ酵素活性に関して陽性の領域を決定するために、マニュアルを確認しながら前述のImage Pro Plusソフトウェアを用いて、バッチ式画像解析処理にかけた。これらの結果をそれぞれについて細胞の横断面領域全体に標準化し、横断面の陽性染色のパーセントとして表にした。次いで、Statviewソフトウェア(Abacus社製、バークリー、カリフォルニア州)を用いた、反復測定による1元配置分散分析における95%信頼度の有意性分析により、各群の平均値及び標準誤差を続いて測定した。
結果を以下の表にまとめ、図5に示す。ペプチジル経皮送達担体は、K2に対して、送達効率及び導入遺伝子発現の統計学的に有意な増大を実現した。
実施例3.各処置群に対して1日1回、計7回適用後の、全領域に対するパーセントとしての、β−ガラクトシダーゼの累積的導入遺伝子発現の平均値及び標準誤差
本実施例は、7日間連続の適用において本発明の正に帯電した非ペプチジル担体を用いることによる、皮膚を通過しての大型核酸ベースの治療薬の経皮送達を例示する。
PEI側鎖の遊離アミンに対する末端グリシンのカルボキシルを介して、30%の飽和度で(即ち、100個のリジン残基毎に30個が−GIy3Arg7に共有結合している)、分子量1,000,000のポリエチレンイミン(PEI)に−Gly3Arg7を共有結合させることによって、正に帯電した主鎖を構築した。大型の非ペプチジル担体を示すために、修飾された主鎖を「PEIR」と呼んだ。対照のポリカチオンは、同じサイズ及び同じロットの未修飾のPEI(「PEI」と呼ぶ、Sigma Chemical社製、セントルイス、ミズーリ州)であった。
本実験のために、サイトメガロウイルス(CMV)プロモーターによって駆動される、大腸菌βガラクトシダーゼ(βgal)の導入遺伝子全体及びフランキング配列の一部分を含む8.5キロベースのプラスミド(pSportベースの鋳型、Gibco BRL社製、ゲーサーズバーグ、メリーランド州)を使用した。この特有のプラスミドは、約2,805,000の分子量を有する。
各事例において、過剰なポリカチオンを使用して、過剰な正電荷を有する最終複合体を構築した。局所適用される組成物の合計体積及び最終pHと同様に、核酸治療薬の用量を全グループにわたって標準化した。以下のように試料を調製した。
ASと名づけた群:最終アリコート当たり8マイクログラムのβgalプラスミド(p/CMV-sport-βgal)(即ち、合計240マイクログラム)及び対照PEIを電荷比5:1で混合して均質にし、Tris−EDTA緩衝液で600マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を5.4mlのセタフィルと混合して均質にし、in vivo実験のために200マイクロリットルずつ分取した。
ATと名づけた群:最終アリコート当たり8マイクログラムのβgalプラスミド(p/CMV-sport-βgal)(即ち、合計240マイクログラム)及び複合体非ペプチジル担体PEIR(「PEIR」)を電荷比5:1で混合して均質にし、Tris−EDTA緩衝液で600マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を5.4mlのセタフィルと混合して均質にし、インビボ実験のために200マイクロリットルずつ分取した。
AUと名づけた群:最終アリコート当たり8マイクログラムのβgalプラスミド(p/CMV-sport-βgal)(即ち、合計240マイクログラム)及び高度に精製されたEssentia非ペプチジル担体PEIR(「純粋なPEIR」)を電荷比5:1で混合して均質にし、Tris−EDTA緩衝液で600マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を5.4mlのセタフィルと混合して均質にし、インビボ実験のために200マイクロリットルずつ分取した。
処置を施す間、イソフルランの吸入によって動物を麻酔した。麻酔をかけた後、C57 black6マウス(1群当たりn=3)は、計量した用量200マイクロリットルの適切な処置を、背部皮膚の頭側部分(マウスの口や肢がこの領域に届かないために選択された)に適用された。動物は、脱毛処理は受けなかった。低体温を防止するために管理された熱環境において動物を回復させ、応答するようになった後、一晩、食物及び水を自由に与えた。この手順を1日のうちのほぼ同じ時間に1日1回、7日間繰り返した。7日間の処置後に、マウスをCO2吸入によって安楽死させ、盲検化された観察者が、処置した皮膚部分の全層を採取した。処置部分を3つの部分に等分し、頭側部分を10%中性緩衝ホルマリン中で12〜16時間固定し、次いで、パラフィン包埋するまで70%エタノール中で保存した。中央部分は、急速凍結し、以前に説明されているような切片上での摂氏37度のβ−ガラクトシダーゼ染色に直接使用した。尾側の処置部分は、可溶化調査のために急速凍結した。
データ収集及び画像解析は、盲検化された観察者が実施した。前述したように染色した切片の全体を、平面アポクロマートレンズの付いたNikon E600顕微鏡で撮影した。得られた画像を、β−ガラクトシダーゼ酵素活性に関して陽性の領域を決定するために、マニュアルを確認しながらImage Pro Plusソフトウェアを用いて、バッチ式画像解析処理にかけた。これらの結果をそれぞれについて細胞の横断面領域全体に標準化し、横断面の陽性染色のパーセントとして表にした。次いで、Statviewソフトウェア(Abacus社製、バークリー、カリフォルニア州)を用いた、反復測定による1元配置分散分析における95%信頼度の有意性分析により、各群の平均値及び標準誤差を続いて測定した。
結果を以下の表にまとめ、図6に示す。非ペプチジル経皮送達担体は、複合型でも超高純度型でも、PEIに対して、送達効率及び導入遺伝子発現の統計学的に有意な増大を実現した。PEIRの超高純度型は、算出される試薬の特異的活性がより高いことと一致して、標準のPEIRより高い効率になる傾向を示した。
実施例4.各処置群に対して1日1回、計7回適用後の、全領域に対するパーセントとしての、β−ガラクトシダーゼの累積的導入遺伝子発現の平均値及び標準誤差
非ペプチジル経皮担体は、特に、先に考察した導入遺伝子発現及び複合体全体の大きさの制約を考慮すれば、高効率で、大型の複合体を皮膚を通過して輸送することができる。効率は、ペプチジル担体のより小型の複合体で得られたものほど高くはなかったが、著しい増加が実現された。注目すべきことに、大型非ペプチジル複合体による導入遺伝子発現の分布は、ほとんど専ら毛包に位置していたのに対し、ペプチジル担体に対する結果は、断面の全体にわたって広がっていた。したがって、サイズ及び主鎖の向性は、送達のナノ力学的な標的化に使用することができる。
リジン側鎖の遊離アミンに対する末端グリシンのカルボキシルを介して、18%の飽和度で(即ち、100個のリジン残基毎に18個が−Gly3Arg7に共有結合している)、分子量112,000のポリリジンに−Gly3Arg7を共有結合させることによって、正に帯電した主鎖を構築した。修飾した主鎖を「KNR」と呼んだ。対照のポリカチオンは、同じサイズ及び同じロットの未修飾のポリリジン(「K」と呼ぶ、Sigma Chemical社製、セントルイス、ミズーリ州)であった。
ボツリヌストキシンAの「Botox(登録商標)」ブランド(Allergan社製)を本実験のために選択した。その分子量は、約150,000である。
製造業者の取扱い説明書に従って、ボツリヌストキシンに水を加えて元に戻した。計算上12倍モル過剰のスルホNHS−LCビオチン(Pierce Chemical社製)を用いて、一定分量のタンパク質をビオチン標識した。標識した生成物を「Btox-b」と呼んだ。
「JMW−7」と名づけた群:アリコート当たり2.0ユニットのBtox-b(即ち、合計20U)及びペプチジル担体KNRを計算上の分子量比4:1で混合して均質にし、リン酸緩衝化生理食塩水で200マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を1.8mlのセタフィルと混合して均質にし、200マイクロリットルずつ分取した。
「JMW−8」と名づけた群:アリコート当たり2.0ユニットのBtox-b(即ち、合計20U)及びKを電荷比4:1で混合して均質にし、リン酸緩衝化生理食塩水で200マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を1.8mlのセタフィルと混合して均質にし、200マイクロリットルずつ分取した。
処置を施す間、イソフルランの吸入によって動物を麻酔した。麻酔をかけた後、C57 black6マウス(1群当たりn=4)は、背部皮膚の頭側部分(マウスの口や肢がこの領域に届かないために選択された)に適用される、計量した用量200マイクロリットルの適切な処置の局所適用を受けた。動物は、脱毛処理は受けなかった。初回の処置の30分後に、マウスをCO2吸入によって安楽死させ、盲検化された観察者が、処置した皮膚部分の全層を採取した。処置部分を3つの部分に等分し、頭側部分を10%中性緩衝ホルマリン中で12〜16時間固定し、次いで、パラフィン包埋するまで70%エタノール中で保存した。中央部分は急速凍結し、以下に要約するような、盲検化された観察者によるビオチン可視化に直接使用した。尾側の処置部分は、可溶化調査のために急速凍結した。
盲検化された観察者は、Image Pro Plusソフトウェア(Media Cybernetics社製、シルバースプリング、メリーランド州)を用いて、バッチ式画像解析によって陽性染色の総量を測定し、それぞれについて陽性染色のパーセントを決定するために、横断面領域全体にそれを標準化した。続いて、Statviewソフトウェア(Abacus社製、バークリー、カリフォルニア州)を用いた、反復測定による1元配置分散分析における95%信頼度の有意性分析により、各群の平均値及び標準誤差を測定した。
ビオチン標識したボツリヌストキシンに対して陽性な断面領域の平均を、KNR(「EB-Btox」)又はK(「nl」)のいずれかと共にBtox-bを1回局所投与した後の全領域に対するパーセントとして報告した。これらの結果を以下の表に示し、図7に例示する。図7では、標識に対して陽性の領域を、Btox-b及びペプチジル担体KNRを含む「EB-Btox」、並びに対照としてのポリカチオンKと共にBtoxbを含む「nl」による1日1回の処置を3日間行った後の全領域に対するパーセントとして決定した。各群について平均及び標準誤差を示す。
実施例5.KNR(JMW−7)又はK(JMW−8)と共にBtox-bを30分間、1回局所投与した後の、全断面に対するパーセントとしての、標識されたボツリヌストキシン領域の平均値及び標準誤差
「JMW−9」と名づけた群:アリコート当たり2.0ユニットのボツリヌストキシン(即ち、合計60U)及びペプチジル担体KNRを計算上の分子量比4:1で混合して均質にし、リン酸緩衝化生理食塩水で600マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を5.4mlのセタフィルと混合して均質にし、200マイクロリットルずつ分取した。
「JMW−10」と名づけた群:アリコート当たり2.0ユニットのボツリヌストキシン(即ち、合計60U)及びKを電荷比4:1で混合して均質にし、リン酸緩衝化生理食塩水で600マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を5.4mlのCetaphilと混合して均質にし、200マイクロリットルずつ分取した。
「JMW−11」と名づけた群:ポリカチオン無しの、アリコート当たり2.0ユニットのボツリヌストキシン(即ち、合計60U)をリン酸緩衝化生理食塩水で600マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を5.4mlのセタフィルと混合して均質にし、200マイクロリットルずつ分取した。
処置を施す間、イソフルランの吸入によって動物を麻酔した。麻酔をかけた後、C57 black6マウス(1群当たりn=4)は、つま先から大腿中央まで均一に適用される適切な処置の計量した用量400マイクロリットルの局所適用を受けた。両方の肢に処置し、両側に無作為に処置を施した。動物は、脱毛処理は受けなかった。初回の処置の30分後に、公表されているボツリヌストキシン投与後の足の可動性に関する指外転スコア(Aoki, KR.. A comparison of the safety margins of botulinum neurotoxin serotypes A, B, and F in mice. Toxicon. 2001 Dec; 39(12): 1815-20)に従って、マウスの指の外転能力を評価した。マウスの可動性も主観的に評価した。
2名の盲検化された観察者が、それぞれ独立に、指外転スコアを表にした。続いて、Statviewソフトウェア(Abacus社製、バークリー、カリフォルニア州)を用いた、反復測定による1元配置分散分析における95%信頼度の有意性分析により、各群の平均値及び標準誤差を測定した。
KNR(「JMW−9」)、K(「JMW−10」)、又はポリカチオン無しの希釈剤(「JMW−11」)と共にボツリヌストキシンを1回局所投与した後の平均指外転スコアを以下の表に示し、図8の代表的な顕微鏡写真において例示する。ペプチジル担体KNRは、互いに同等である両方の対照と比べて、統計学的に有意な、皮膚を通過してのボツリヌストキシンの機能的送達をもたらした。本実験をさらに独立して反復することにより(合計3回の独立した実験の全てで、KNRを伴う局所的ボツリヌストキシンから統計学的に有意な麻痺が起こり対照では起こらないという同一の結論が得られた)、本発明の研究結果が確認され、Kのある場合又は無い場合(即ち、双方の対照)に局所的ボツリヌストキシンの間で有意な差は明らかにされなかった。興味深いことに、マウスは、一貫して、麻痺した肢の方へ移動した(処置された動物の100%、並びに両対照群の対照の0%で起こった)。図8で示すように、対照のポリカチオンを加えたボツリヌストキシン、又はポリカチオン無しのボツリヌストキシン(「Btox単独」)で処置された肢は、(持ち上げられたときの防衛機構として)指を動かすことができるが、ペプチジル担体KNRを加えたボツリヌストキシン(「Essentia Btoxローション剤」)で処置された肢は動かすことができなかった。
実施例6.ペプチジル担体KNR(「JMW−9」)と共に、対照のポリカチオンK(「JMW−10」)と共に、又は単独(「JMW−11」)でボツリヌストキシンを1回局所適用した30分後の指外転スコア
本実験は、ペプチジル経皮担体が、治療薬を共有結合で修飾せずに、治療有効量のボツリヌス治療薬を皮膚を通過して輸送できることを実証するのに役立つ。本実験はまた、対照において局所適用された場合はボツリヌストキシンが機能しないことも裏付ける。
PEI側鎖の遊離アミンに対する末端グリシンのカルボキシルを介して、30%の飽和度で(即ち、100個のリジン残基毎に30個が−GIy3Arg7に共有結合している)、分子量1,000,000のポリエチレンイミン(PEI)に−Gly3Arg7を共有結合させることによって、正に帯電した主鎖を構築した。修飾された主鎖は、大型の非ペプチジル担体を示すために「PEIR」と呼んだ。対照のポリカチオンは、同じサイズ及び同じロットの未修飾のPEI(「PEI」と呼ぶ、Sigma Chemical社製、セントルイス、ミズーリ州)であった。実施例5と同じボツリヌストキシン治療物質を使用した。
「AZ」と名づけた群:アリコート当たり2.0ユニットのボツリヌストキシン(即ち、合計60U)及び超高純度型の非ペプチジル担体PEIRを計算上の分子量比5:1で混合して均質にし、リン酸緩衝化生理食塩水で600マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を5.4mlのセタフィルと混合して均質にし、200マイクロリットルずつ分取した。
「BA」と名づけた群:アリコート当たり2.0ユニットのボツリヌストキシン(即ち、合計60U)及びPEIを電荷比5:1で混合して均質にし、リン酸緩衝化生理食塩水で600マイクロリットルに希釈した。得られた組成物を5.4mlのセタフィルと混合して均質にし、200マイクロリットルずつ分取した。
処置を施す間、イソフルランの吸入によって動物を麻酔した。麻酔をかけた後、C57 black6マウス(1群当たりn=3)は、つま先から大腿中央まで均一に適用される適切な処置の計量した用量400マイクロリットルの局所適用を受けた。両方の肢に処置し、両側に無作為に処置を施した。動物は、脱毛処理は受けなかった。初回の処置の30分後に、公表されているボツリヌストキシン投与後の足の可動性に関する指外転スコア(Aoki, KR.. A comparison of the safety margins of botulinum neurotoxin serotypes A, B, and F in mice. Toxicon. 2001 Dec; 39(12): 1815-20)に従って、マウスの指の外転能力を評価した。マウスの可動性も主観的に評価した。
2名の盲検化された観察者が、それぞれ独立に、指外転スコアを表にした。続いて、Statviewソフトウェア(Abacus社製、バークリー、カリフォルニア州)を用いた、反復測定による1元配置分散分析における95%信頼度の有意性分析により、各群の平均値及び標準誤差を測定した。
超高純度PEIR(「AZ」)、又は対照のポリカチオンPEI(「BA」)と共に行うボツリヌストキシンの1回局所投与、及び再現(本実験の1回の独立した再現)後の平均の指外転スコアを以下の表に示す。非ペプチジル担体PEIRは、対照と比べて、統計学的に有意な、皮膚を通過してのボツリヌストキシンの機能的送達をもたらした。先と同様に、動物は、麻痺した肢の方向へ同じ所をめぐりながら歩くのが観察された。
実施例7.再現1。超高純度PEIR(「AZ」)、又は対照のポリカチオンPEI(「BA」)と共にボツリヌストキシンを1回局所投与した30分後の指外転スコア。平均値及び標準誤差を示す。
本実験は、非ペプチジル経皮担体が、ボツリヌストキシンを事前に共有結合で修飾せずに、治療量のボツリヌストキシンを皮膚を通過して輸送できることを実証した。これらの研究結果は、ペプチジル輸送物質によるものを補完する。治療効果を得るために非ペプチジル又はペプチジル担体の使用を選択できることにより、個々の状況、環境、及び適用方法に合わせることが可能になり、本発明の経皮送達の場の幅が広げられる。
側鎖保護基をすべて欠いているTAT断片GGGRKKRRQRRR(6mg、0.004mmol、Sigma Genosys社製、ヒューストン(Houston)、テキサス州)を1mlの0.1M MES緩衝液に溶解した。これに、EDC(3mg、0.016mmol)、続いてPEI 400k分子量の水中50%溶液(w:v)(約0.02ml、約2.5×10−5mmol)を加えた。試験紙によって、pHが7.5であることが測定された。さらに1ml分の0.1M MESを加え、HClを添加してpHを約5に調整した。さらにEDC(5mg、0.026mmol)を加え、pH約5の反応物を一晩攪拌した。翌朝、反応混合物を凍結し、凍結乾燥した。
1mlの0.1M MES、pH約4.5に溶かしたポリリジン(10mg 1.1×10−4mmol; Sigma社製)の溶液に、TAT断片(4mg、0.003mmol)、次いでEDC(3.5mg、0.0183mmol)を加えた。得られた反応混合物(pH約4.5)を室温で攪拌した。反応物を−78℃で一晩凍結させた。翌日、反応混合物を室温まで解凍し、飽和炭酸水素ナトリウムの添加によってpHを約8に調整した。前述したように構成し標準化したSephadex G-25カラムに、反応混合物を直接添加した。これは、5ml後から始まる7つの1ml画分に溶出された。UV280吸光度を測定し、画分2、3、及び4において対応するピークが明らかになった。凍結乾燥された画分のIRでは、画分1〜7における特徴的なグアニジンピーク(2800〜3000cm−1)が明らかになった。画分1は1730cm−1に強いピークを生じ、1600cm−1ではピークが無かったのに対し、画分2〜6の場合は反対の結果が当てはまった。したがって、ペプチジル担体、ポリリジンに対するTAT断片の共有結合の成功が確認された。
「JL−1」と名づけた群:アリコート当たり2.0ユニットのBtox-b(即ち、合計20U)及びPEITを電荷比4:1で混合して均質にし、リン酸緩衝化生理食塩水で200マイクロリットルに希釈した。
「JL−2」と名づけた群:アリコート当たり2.0ユニットのBtox-b(即ち、合計20U)及びKNTを電荷比4:1で混合して均質にし、リン酸緩衝化生理食塩水で200マイクロリットルに希釈した。
リジン側鎖の遊離アミンに対する末端グリシンのカルボキシルを介して、18%の飽和度で(即ち、100個のリジン残基毎に18個が−Gly3Arg7に共有結合している)、分子量150,000のポリリジンに−Gly3Arg7を共有結合させることによって、正に帯電したペプチジル主鎖を構築した。修飾された主鎖を「KNR2」と呼んだ。対照のポリカチオンは、同じサイズ及び同じロットの未修飾のポリリジン(「K2」と呼ぶ、Sigma Chemical社製、セントルイス、ミズーリ州)であった。
非共有結合性複合体は、抗体が無い場合の複合体の分布ではなく、抗体誘導体の向性に従う、光学的イメージング物質の分布を与えた。より注目すべきことには、これらの複合体は、図9に示されるように、着色された黒色腫細胞の分布に一致する分布に従った。
本実験は、局所送達に適した担体を用いる、皮膚を通過して輸送するための存続可能な複合体の作製、及び光学的技術による黒色腫の可視化を実証する。このような手法は、例えば、外科的な辺縁設定と組み合わせて使用することができ、又は、定期的な黒色腫観察で使用することができる。当業者には明らかであるように、他の皮膚関連障害の局所診断にも同様に、類似した戦略を容易に使用することができる。光学的イメージング部分の極めて高い感度を前提とすると、これらの非共有結合性複合体によって、これらの障害の検出改善がかなり有望になり得る。
Claims (240)
- 治療的に血中グルコースレベルを変えない生物学的に活性なタンパク質と、正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した主鎖を含み、経皮送達に有効な量で存在する担体とを含む組成物であって、担体と生物学的に活性なタンパク質との結合が非共有結合性である組成物。
- 担体が無い場合の作用物質に比べて、生物学的に活性なタンパク質のより多くの経皮送達を実現する、請求項1に記載の組成物。
- 生物学的に活性なタンパク質が治療活性を有する、請求項2に記載の組成物。
- 非タンパク質非核酸系の生物学的に活性な作用物質と、正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した主鎖を含み、経皮送達に有効な量で存在する担体とを含む組成物であって、担体と生物学的に活性な作用物質との結合が非共有結合性である組成物。
- 担体が無い場合の作用物質に比べて、生物学的に活性な作用物質のより多くの経皮送達を実現する、請求項4に記載の組成物。
- 生物学的に活性な作用物質が治療活性を有する、請求項5に記載の組成物。
- 治療用タンパク質が少なくとも50,000kDの分子量を有する、請求項3に記載の組成物。
- 主鎖が、正に帯電したポリペプチドを含む、請求項1に記載の組成物。
- 主鎖が、約10,000〜約1,500,000の分子量を有する正に帯電したポリペプチドを含む、請求項8に記載の組成物。
- 主鎖が、約25,000〜約1,200,000の分子量を有する正に帯電したポリペプチドを含む、請求項8に記載の組成物。
- 主鎖が、約100,000〜約1,000,000の分子量を有する正に帯電したポリペプチドを含む、請求項8に記載の組成物。
- 主鎖が、正に帯電したポリリジンを含む、請求項8に記載の組成物。
- 主鎖が、約10,000〜約1,500,000の分子量を有する正に帯電したポリリジンを含む、請求項12に記載の組成物。
- 主鎖が、約25,000〜約1,200,000の分子量を有する正に帯電したポリリジンを含む、請求項12に記載の組成物。
- 主鎖が、約100,000〜約1,000,000の分子量を有する正に帯電したポリリジンを含む、請求項12に記載の組成物。
- 主鎖が、正に帯電した非ペプチジルポリマーを含む、請求項1に記載の組成物。
- 非ペプチジルポリマー主鎖が、正に帯電したポリアルキレンイミンを含む、請求項16に記載の組成物。
- ポリアルキレンイミンがポリエチレンイミンである、請求項17に記載の組成物。
- ポリエチレンイミンが、約10,000〜約2,500,000の分子量を有する、請求項18に記載の組成物。
- ポリエチレンイミンが、約100,000〜約1,800,000の分子量を有する、請求項18に記載の組成物。
- ポリエチレンイミンが、約500,000〜約1,400,000の分子量を有する、請求項18に記載の組成物。
- 担体が、−(gly)n1−(arg)n2、HIV−TAT及びその断片、並びにアンテナペディアPTD及びその断片若しくは混合物(式中、下付き文字n1は、0〜約20の整数であり、下付き文字n2は、独立に、約5〜約25の奇数である)から独立に選択される正に帯電した分枝基を結合した正に帯電したポリマーを含む、請求項1に記載の組成物。
- 正に帯電した分枝基が、式−(gly)n1−(arg)n2を有する基から独立に選択される、請求項22に記載の組成物。
- 下付き文字n1が、約1〜約8の整数である、請求項23に記載の組成物。
- 下付き文字n1が、約2〜約5の整数である、請求項23に記載の組成物。
- 下付き文字n2が、約7〜約17の奇数である、請求項23に記載の組成物。
- 下付き文字n2が、約7〜約13の奇数である、請求項23に記載の組成物。
- 分枝基が、HIV−TAT及びその断片から選択される、請求項22に記載の組成物。
- 結合された正に帯電した分枝基が、式(gly)p−RGRDDRRQRRR−(gly)q、(gly)p−YGRKKRRQRRR−(gly)q、又は(gly)p−RKKRRQRRR−(gly)q(式中、下付き文字p及びqは、それぞれ独立に、0〜20の整数である)を有するHIV−TAT断片である、請求項28に記載の組成物。
- 分枝基が、アンテナペディアPTD基又はその断片である、請求項22に記載の組成物。
- 正に帯電したポリマーがポリペプチドを含む、請求項22に記載の組成物。
- ポリペプチドが、ポリリジン、ポリアルギニン、及びポリオルニチンから選択される、請求項31に記載の組成物。
- ポリペプチドがポリリジンである、請求項32に記載の組成物。
- ポリマーが、正に帯電した非ペプチジルポリマーを含む、請求項22に記載の組成物。
- 非ペプチジルポリマーが、正に帯電したポリアルキレンイミン含む、請求項34に記載の組成物。
- ポリアルキレンイミンがポリエチレンイミンである、請求項35に記載の組成物。
- 主鎖が、正に帯電したポリペプチドを含む、請求項4に記載の組成物。
- 主鎖が、約10,000〜約1,500,000の分子量を有する正に帯電したポリペプチドを含む、請求項37に記載の組成物。
- 主鎖が、約25,000〜約1,200,000の分子量を有する正に帯電したポリペプチドを含む、請求項37に記載の組成物。
- 主鎖が、約100,000〜約1,000,000の分子量を有する正に帯電したポリペプチドを含む、請求項37に記載の組成物。
- 主鎖が、正に帯電したポリリジンを含む、請求項37に記載の組成物。
- 主鎖が、約10,000〜約1,500,000の分子量を有する正に帯電したポリリジンを含む、請求項41に記載の組成物。
- 主鎖が、約25,000〜約1,200,000の分子量を有する正に帯電したポリリジンを含む、請求項41に記載の組成物。
- 主鎖が、約100,000〜約1,000,000の分子量を有する正に帯電したポリリジンを含む、請求項41に記載の組成物。
- 主鎖が、正に帯電した非ペプチジルポリマーを含む、請求項4に記載の組成物。
- 非ペプチジルポリマー主鎖が、正に帯電したポリアルキレンイミンを含む、請求項45に記載の組成物。
- ポリアルキレンイミンがポリエチレンイミンである、請求項46に記載の組成物。
- ポリエチレンイミンが、約10,000〜約2,500,000の分子量を有する、請求項47に記載の組成物。
- ポリエチレンイミンが、約100,000〜約1,800,000の分子量を有する、請求項47に記載の組成物。
- ポリエチレンイミンが、約500,000〜約1,400,000の分子量を有する、請求項47に記載の組成物。
- 担体が、−(gly)n1−(arg)n2、HIV−TAT及びその断片、並びにアンテナペディアPTD及びその断片若しくは混合物(式中、下付き文字n1は、0〜約20の整数であり、下付き文字n2は、独立に、約5〜約25の奇数である)から独立に選択される正に帯電した分枝基を結合した正に帯電したポリマーを含む、請求項4に記載の組成物。
- 正に帯電した分枝基が、式−(gly)n1−(arg)n2を有する基から独立に選択される、請求項51に記載の組成物。
- 下付き文字n1が、約1〜約8の整数である、請求項52に記載の組成物。
- 下付き文字n1が、約2〜約5の整数である、請求項52に記載の組成物。
- 下付き文字n2が、約7〜約17の奇数である、請求項52に記載の組成物。
- 下付き文字n2が、約7〜約13の奇数である、請求項52に記載の組成物。
- 分枝基が、HIV−TAT及びその断片から選択される、請求項51に記載の組成物。
- 結合された正に帯電した分枝基が、式(gly)p−RGRDDRRQRRR−(gly)q、(gly)p−YGRKKRRQRRR−(gly)q、又は(gly)p−RKKRRQRRR−(gly)q(式中、下付き文字p及びqは、それぞれ独立に、0〜20の整数である)を有するHIV−TAT断片である、請求項57に記載の組成物。
- 分枝基が、アンテナペディアPTD基又はその断片である、請求項51に記載の組成物。
- 正に帯電したポリマーがポリペプチドを含む、請求項51に記載の組成物。
- ポリペプチドが、ポリリジン、ポリアルギニン、ポリオルニチン、及びポリホモアルギニンから選択される、請求項60に記載の組成物。
- ポリペプチドがポリリジンである、請求項61に記載の組成物。
- ポリマーが、正に帯電した非ペプチジルポリマーを含む、請求項51に記載の組成物。
- 非ペプチジルポリマーが、正に帯電したポリアルキレンイミンを含む、請求項63に記載の組成物。
- ポリアルキレンイミンがポリエチレンイミンである、請求項64に記載の組成物。
- 約1×10−20〜約25重量%の生物学的に活性な作用物質、及び約1×10−19〜約30重量%の正に帯電した担体を含有する、請求項4に記載の組成物。
- 請求項4に記載の制御放出組成物。
- 生物学的に活性なタンパク質がボツリヌストキシンである、請求項1に記載の組成物。
- ボツリヌストキシンが、ボツリヌストキシンの血清型A、B、C、D、E、F、及びGから選択される、請求項68に記載の組成物。
- ボツリヌストキシンがボツリヌストキシン誘導体を含む、請求項68に記載の組成物。
- ボツリヌストキシンが組換型ボツリヌストキシンを含む、請求項68に記載の組成物。
- 生物学的に活性な作用物質を送達するための器具と、正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した主鎖を含み、経皮送達に有効な量で存在する担体とを含む、請求項1に記載の組成物を被験者に投与するためのキット。
- 生物学的に活性な作用物質がボツリヌストキシンである、請求項72に記載のキット。
- 組成物が、生物学的に活性なタンパク質を皮膚又は上皮を介して被験者に投与するための器具に含まれる、請求項72に記載のキット。
- 器具が皮膚パッチである、請求項74に記載のキット。
- 生物学的に活性なタンパク質を皮膚又は上皮に送達するための器具と、−(gly)n1−(arg)n2、HIV−TAT及びその断片、並びにアンテナペディアPTD及びその断片若しくは混合物(式中、下付き文字n1は、0〜約20の整数であり、下付き文字n2は、独立に、約5〜約25の奇数である)から独立に選択される、正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した担体を含む組成物とを含む、生物学的に活性なタンパク質を被験者に投与するためのキットであって、担体と生物学的に活性なタンパク質との結合は非共有結合性であるキット。
- 器具が皮膚パッチである、請求項76に記載のキット。
- 正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した主鎖を含む有効量の正に帯電した担体と共に、タンパク質を被験者の皮膚又は上皮に局所的に適用することを含む、治療的に血中グルコースレベルを変えない生物学的に活性なタンパク質を被験者に投与する方法であって、担体と生物学的に活性なタンパク質との結合は非共有結合性である方法。
- 組成物が、担体が無い場合の作用物質に比べて、生物学的に活性なタンパク質のより多くの経皮送達を実現する、請求項78に記載の方法。
- 生物学的に活性なタンパク質が治療活性を有する、請求項79に記載の方法。
- 正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した主鎖を含む有効量の正に帯電した担体と共に、生物学的に活性な作用物質を被験者の皮膚又は上皮に局所的に適用することを含む、非タンパク質非核酸系の生物学的に活性な作用物質を被験者に投与する方法であって、担体と生物学的に活性な作用物質との結合が非共有結合性である方法。
- 組成物が、担体が無い場合の作用物質に比べて、生物学的に活性な作用物質のより多くの経皮送達を実現する、請求項81に記載の方法。
- 生物学的に活性な作用物質が治療活性を有する、請求項82に記載の方法。
- 生物学的に活性なタンパク質及び担体が、双方の成分を含有する組成物の状態で被験者に投与される、請求項80に記載の方法。
- 生物学的に活性なタンパク質及び担体が、被験者に別々に投与される、請求項80に記載の方法。
- 生物学的に活性なタンパク質及び担体が、双方の成分を含有する組成物の状態で被験者に投与される、請求項83に記載の方法。
- 生物学的に活性な作用物質及び担体が、被験者に別々に投与される、請求項83に記載の方法。
- 組成物が、制御放出組成物又は持続放出組成物である、請求項80に記載の方法。
- 組成物が、制御放出組成物又は持続放出組成物である、請求項83に記載の方法。
- 治療用タンパク質がボツリヌストキシンである、請求項80に記載の方法。
- ボツリヌストキシンが、ボツリヌストキシンの血清型A、B、C、D、E、F、及びGから選択される、請求項90に記載の方法。
- ボツリヌストキシンがボツリヌストキシン誘導体を含む、請求項90に記載の方法。
- ボツリヌストキシンが組換型ボツリヌストキシンを含む、請求項90に記載の方法。
- 被験者に美容的及び/又は化粧的な利点を与えるためにボツリヌストキシンが投与される、請求項90に記載の方法。
- 筋肉痙攣又は痙攣を伴う症状を予防又は軽減するために、被験者にボツリヌストキシンが投与される、請求項90に記載の方法。
- ボツリヌストキシン及び正に帯電した担体が、被験者の顔の部位に局所的に投与される、請求項90に記載の方法。
- ボツリヌストキシン及び正に帯電した担体が、被験者の顔以外の部位に局所的に投与される、請求項90に記載の方法。
- 免疫化に適した抗原と、正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した主鎖を含み、経皮送達に有効な量で存在する担体とを含む組成物であって、担体と抗原との結合が非共有結合性である組成物。
- 主鎖が、正に帯電したポリペプチドを含む、請求項98に記載の組成物。
- 主鎖が、約10,000〜約1,500,000の分子量を有する正に帯電したポリペプチドを含む、請求項99に記載の組成物。
- 主鎖が、約25,000〜約1,200,000の分子量を有する正に帯電したポリペプチドを含む、請求項99に記載の組成物。
- 主鎖が、約100,000〜約1,000,000の分子量を有する正に帯電したポリペプチドを含む、請求項99に記載の組成物。
- 主鎖が、正に帯電したポリリジンを含む、請求項99に記載の組成物。
- 主鎖が、約10,000〜約1,500,000の分子量を有する正に帯電したポリリジンを含む、請求項103に記載の組成物。
- 主鎖が、約25,000〜約1,200,000の分子量を有する正に帯電したポリリジンを含む、請求項103に記載の組成物。
- 主鎖が、約100,000〜約1,000,000の分子量を有する正に帯電したポリリジンを含む、請求項103に記載の組成物。
- 主鎖が、正に帯電した非ペプチジルポリマーを含む、請求項98に記載の組成物。
- 非ペプチジルポリマー主鎖が、正に帯電したポリアルキレンイミンを含む、請求項107に記載の組成物。
- ポリアルキレンイミンがポリエチレンイミンである、請求項108に記載の組成物。
- ポリエチレンイミンが、約10,000〜約2,500,000の分子量を有する、請求項109に記載の組成物。
- ポリエチレンイミンが、約100,000〜約1,800,000の分子量を有する、請求項109に記載の組成物。
- ポリエチレンイミンが、約500,000〜約1,400,000の分子量を有する、請求項109に記載の組成物。
- 担体が、−(gly)n1−(arg)n2、HIV−TAT及びその断片、並びにアンテナペディアPTD及びその断片及び混合物(式中、下付き文字n1は、0〜約20の整数であり、下付き文字n2は、独立に、約5〜約25の奇数である)から独立に選択される、正に帯電した分枝基を結合した正に帯電したポリマーを含む、請求項98に記載の組成物。
- 正に帯電した分枝基が、式−(gly)n1−(arg)n2を有する基から独立に選択される、請求項113に記載の組成物。
- 下付き文字n1が、約1〜約8の整数である、請求項114に記載の組成物。
- 下付き文字n1が、約2〜約5の整数である、請求項114に記載の組成物。
- 下付き文字n2が、約7〜約17の奇数である、請求項114に記載の組成物。
- 下付き文字n2が、約7〜約13の奇数である、請求項114に記載の組成物。
- 分枝基が、HIV−TAT及びその断片から選択される、請求項113に記載の組成物。
- 結合された正に帯電した分枝基が、式(gly)p−RGRDDRRQRRR−(gly)q、(gly)p−YGRKKRRQRRR−(gly)q、又は(gly)p−RKKRRQRRR−(gly)q(式中、下付き文字p及びqは、それぞれ独立に、0〜20の整数である)を有するHIV−TAT断片である、請求項119に記載の組成物。
- 分枝基が、アンテナペディアPTD基である、請求項113に記載の組成物。
- 正に帯電したポリマーがポリペプチドを含む、請求項113に記載の組成物。
- ポリペプチドが、ポリリジン、ポリアルギニン、及びポリオルニチンから選択される、請求項122に記載の組成物。
- ポリペプチドがポリリジンである、請求項123に記載の組成物。
- ポリマーが、正に帯電した非ペプチジルポリマーを含む、請求項113に記載の組成物。
- 非ペプチジルポリマーが、正に帯電したポリアルキレンイミンを含む、請求項125に記載の組成物。
- ポリアルキレンイミンがポリエチレンイミンである、請求項126に記載の組成物。
- 約1×10−10〜約49.9重量%の抗原、及び約1×10−9〜約50重量%の正に帯電した担体を含有する、請求項98に記載の組成物。
- 請求項98に記載の制御放出組成物。
- 抗原がボツリヌストキシンである、請求項98に記載の組成物。
- ボツリヌストキシンが、ボツリヌストキシンの血清型A、B、C、D、E、F、及びGから選択される、請求項130に記載の組成物。
- ボツリヌストキシンがボツリヌストキシン誘導体を含む、請求項130に記載の組成物。
- ボツリヌストキシンが組換型ボツリヌストキシンを含む、請求項130に記載の組成物。
- 抗原が小児期の免疫化に適している、請求項98に記載の組成物。
- 皮膚又は上皮に抗原を送達するための器具、及び請求項98に記載の組成物を含む、免疫化に適した抗原を被験者に投与するためのキット。
- 特別仕様でつくられたアプリケーターをさらに含む、請求項135に記載のキット。
- 組成物が、免疫化に適した抗原を皮膚又は上皮を介して被験者に投与するための器具に含まれる、請求項135に記載のキット。
- 器具が皮膚パッチである、請求項137に記載のキット。
- 免疫化に適した抗原を皮膚又は上皮に送達するための器具と、(gly)n1−(arg)n2、HIV−TAT及びその断片、並びにアンテナペディアPTD及びその断片及び混合物(式中、下付き文字n1は、0〜約20の整数であり、下付き文字n2は、独立に、約5〜約25の奇数である)から独立に選択される、正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した担体を含む組成物とを含む、免疫化に適した抗原を被験者に投与するためのキットであって、担体と抗原との結合は非共有結合性であるキット。
- 器具が皮膚パッチである、請求項139に記載のキット。
- 正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した主鎖を含む有効量の正に帯電した担体と共に、免疫化に適した抗原を被験者の皮膚又は上皮に局所的に適用することを含む、免疫化に適した抗原を被験者に投与する方法であって、担体と抗原との結合は非共有結合性である方法。
- 免疫化に適した抗原及び担体が、双方の成分を含有する組成物の状態で被験者に投与される、請求項141に記載の方法。
- 免疫化に適した抗原及び担体が、被験者に別々に投与される、請求項141に記載の方法。
- 主鎖が、正に帯電したポリペプチドを含む、請求項141に記載の方法。
- 主鎖が、約10,000〜約1,500,000の分子量を有する正に帯電したポリペプチドを含む、請求項144に記載の方法。
- 主鎖が、約25,000〜約1,200,000の分子量を有する正に帯電したポリペプチドを含む、請求項144に記載の方法。
- 主鎖が、約100,000〜約1,000,000の分子量を有する正に帯電したポリペプチドを含む、請求項144に記載の方法。
- 主鎖が、正に帯電したポリリジンを含む、請求項144に記載の方法。
- 主鎖が、約10,000〜約1,500,000の分子量を有する正に帯電したポリリジンを含む、請求項148に記載の方法。
- 主鎖が、約25,000〜約1,200,000の分子量を有する正に帯電したポリリジンを含む、請求項148に記載の方法。
- 主鎖が、約100,000〜約1,000,000の分子量を有する正に帯電したポリリジンを含む、請求項148に記載の方法。
- 主鎖が、正に帯電した非ペプチジルポリマーを含む、請求項141に記載の方法。
- 非ペプチジルポリマー主鎖が、正に帯電したポリアルキレンイミンを含む、請求項152に記載の方法。
- ポリアルキレンイミンがポリエチレンイミンである、請求項153に記載の方法。
- ポリエチレンイミンが、約10,000〜約2,500,000の分子量を有する、請求項154に記載の方法。
- ポリエチレンイミンが、約100,000〜約1,800,000の分子量を有する、請求項154に記載の方法。
- ポリエチレンイミンが、約500,000〜約1,400,000の分子量を有する、請求項154に記載の方法。
- 担体が、−(gly)n1−(arg)n2、HIV−TAT及びその断片、並びにアンテナペディアPTD及びその断片若しくは混合物(式中、下付き文字n1は、0〜約20の整数であり、下付き文字n2は、独立に、約5〜約25の奇数である)から独立に選択される、正に帯電した分枝基を結合した正に帯電したポリマーを含む、請求項141に記載の方法。
- 正に帯電した分枝基が、式−(gly)n1−(arg)n2を有する基から独立に選択される、請求項158に記載の方法。
- 下付き文字n1が、約1〜約8の整数である、請求項159に記載の方法。
- 下付き文字n1が、約2〜約5の整数である、請求項159に記載の方法。
- 下付き文字n2が、約7〜約17の奇数である、請求項159に記載の方法。
- 下付き文字n2が、約7〜約13の奇数である、請求項159に記載の方法。
- 分枝基が、HIV−TAT及びその断片から選択される、請求項158に記載の方法。
- 結合された正に帯電した分枝基が、式(gly)p−RGRDDRRQRRR−(gly)q、(gly)p−YGRKKRRQRRR−(gly)q、又は(gly)p−RKKRRQRRR−(gly)q(下付き文字p及びqは、それぞれ独立に、0〜20の整数である)を有するHIV−TAT断片である、請求項164に記載の方法。
- 分枝基が、アンテナペディアPTD基である、請求項158に記載の方法。
- 正に帯電したポリマーがポリペプチドを含む、請求項158に記載の方法。
- ポリペプチドが、ポリリジン、ポリアルギニン、及びポリオルニチンから選択される、請求項167に記載の方法。
- ポリペプチドがポリリジンである、請求項168に記載の方法。
- ポリマーが、正に帯電した非ペプチジルポリマーを含む、請求項158に記載の方法。
- 非ペプチジルポリマーが、正に帯電したポリアルキレンイミンを含む、請求項170に記載の方法。
- ポリアルキレンイミンがポリエチレンイミンである、請求項171に記載の方法。
- 組成物が制御放出組成物である、請求項141に記載の方法。
- 免疫化に適した抗原がボツリヌストキシンである、請求項141に記載の方法。
- ボツリヌストキシンが、ボツリヌストキシンの血清型A、B、C、D、E、F、及びGから選択される、請求項174に記載の方法。
- ボツリヌストキシンがボツリヌストキシン誘導体を含む、請求項174に記載の方法。
- ボツリヌストキシンが組換型ボツリヌストキシンを含む、請求項174に記載の方法。
- 抗原が小児期の免疫化に適している、請求項141に記載の方法。
- 環境抗原に対する抵抗性を付与するために、免疫化に適した抗原が投与される、請求項141に記載の方法。
- 潜在的病原体に対する抵抗性を付与するために、免疫化に適した抗原が投与される、請求項141に記載の方法。
- 潜在的バイオハザードに対する抵抗性を付与するために、免疫化に適した抗原が投与される、請求項141に記載の方法。
- 生物学的に活性な作用物質が抗真菌薬である、請求項4に記載の組成物。
- 約1×10−10〜約49.9重量%の生物学的に活性な作用物質、及び約1×10−9〜約50重量%の正に帯電した担体を含有する、請求項182に記載の組成物。
- 請求項182に記載の制御放出組成物。
- 抗真菌薬が、アムホテリジンB、フルコナゾール、フルシトシン、イトラコナゾール、ケトコナゾール、クロトリマゾール、エコノゾール、グリセオフルビン、ミコナゾール、ナイスタチン、及びシクロピロクスから選択される、請求項182に記載の組成物。
- 被験者の皮膚又は上皮に抗真菌薬を送達するための器具、及び請求項182に記載の組成物を含む、抗真菌薬を被験者に投与するためのキット。
- 特別仕様のアプリケーターをさらに含む、請求項186に記載のキット。
- 組成物が、爪体又は隣接した解剖構造を介して被験者に抗真菌薬を投与するための器具に含まれる、請求項186に記載のキット。
- 器具が人工爪体又はラッカーである、請求項186に記載のキット。
- 生物学的に活性な作用物質が抗真菌薬である、請求項81に記載の方法。
- 抗真菌薬及び担体が、双方の成分を含有する組成物の状態で被験者に投与される、請求項190に記載の方法。
- 抗真菌薬及び担体が、被験者に別々に投与される、請求項190に記載の方法。
- 組成物が制御放出組成物である、請求項190に記載の方法。
- 抗真菌薬が、アムホテリジンB、フルコナゾール、フルシトシン、イトラコナゾール、ケトコナゾール、クロトリマゾール、エコノゾール、グリセオフルビン、ミコナゾール、ナイスタチン、及びシクロピロクスから選択される、請求項190に記載の方法。
- 真菌感染の症状及び徴候を治療するために抗真菌薬が投与される、請求項190に記載の方法。
- 爪体又は爪床の真菌感染の症状又は徴候を改善するために抗真菌薬が投与される、請求項190に記載の方法。
- −(gly)n1−(arg)n2、HIV−TAT及びその断片、並びにアンテナペディアPTD及びその断片及び混合物(式中、下付き文字n1は、0〜約20の整数であり、下付き文字n2は、独立に、約5〜約25の奇数である)から独立に選択される正に帯電した分枝基を結合した、正に帯電したポリペプチド又は非ペプチジルポリマー。
- 正に帯電した分枝基が、式−(gly)n1−(arg)n2を有する基から独立に選択される、請求項197に記載の正に帯電したポリペプチド又は非ペプチジルポリマー。
- 下付き文字n1が、約1〜約8の整数である、請求項198に記載の正に帯電したポリペプチド又は非ペプチジルポリマー。
- 下付き文字n1が、約2〜約5の整数である、請求項198に記載の正に帯電したポリペプチド又は非ペプチジルポリマー。
- 下付き文字n2が、約7〜約17の奇数である、請求項198に記載の正に帯電したポリペプチド又は非ペプチジルポリマー。
- 下付き文字n2が、約7〜約13の奇数である、請求項198に記載の正に帯電したポリペプチド又は非ペプチジルポリマー。
- 分枝基が、HIV−TAT及びその断片から選択される、請求項197に記載の正に帯電したポリペプチド又は非ペプチジルポリマー。
- 結合された正に帯電した分枝基が、式(gly)p−RGRDDRRQRRR−(gly)q、(gly)p−YGRKKRRQRRR−(gly)q、又は(gly)p−RKKRRQRRR−(gly)q(下付き文字p及びqは、それぞれ独立に、0〜20の整数である)を有するHIV−TAT断片である、請求項203に記載の正に帯電したポリペプチド又は非ペプチジルポリマー。
- 分枝基が、アンテナペディアPTD基又はその断片である、請求項197に記載の正に帯電したポリペプチド又は非ペプチジルポリマー。
- 正に帯電した担体がポリペプチドを含む、請求項197に記載の正に帯電したポリマー。
- ポリペプチドが、ポリリジン、ポリアルギニン、ポリオルニチン、及びポリホモアルギニンから選択される、請求項206に記載の正に帯電したポリマー。
- ポリペプチドがポリリジンである、請求項207に記載の正に帯電したポリマー。
- 正に帯電した担体が正に帯電した非ペプチジルポリマーを含む、請求項197に記載の正に帯電したポリマー。
- 非ペプチジルポリマーが、正に帯電したポリアルキレンイミンを含む、請求項209に記載の正に帯電したポリマー。
- ポリアルキレンイミンがポリエチレンイミンである、請求項210に記載の正に帯電したポリマー。
- a)正に帯電した主鎖と、
b)i)複数の結合されたイメージング部分を有する、負に帯電した主鎖、或いは、複数の負に帯電したイメージング部分、
ii)複数の結合された標的物質を有する、負に帯電した主鎖、或いは、複数の負に帯電した標的部分、
iii)RNA、DNA、リボザイム、改変されたオリゴヌクレオチド、及び選択された導入遺伝子をコードするcDNAから選択される少なくとも1つのメンバー、
iv)少なくとも1つの持続因子をコードするDNA、並びに
v)複数の結合された生物学的作用物質を有する、負に帯電した主鎖、或いは負に帯電した生物学的作用物質
からなる群から選択される少なくとも2つのメンバーと
の非共有結合性複合体を含む組成物であって、
複合体が正味の正電荷を有し、メンバーのうちの少なくとも1つが、i)、ii)、iii)又はv)から選択される組成物。 - 薬剤組成物又は薬用化粧組成物を調製するための方法であって、正に帯電した主鎖成分と、
i)複数の結合されたイメージング部分を有する、負に帯電した主鎖、或いは、複数の負に帯電したイメージング部分、
ii)複数の結合された標的物質を有する、負に帯電した主鎖、或いは、複数の負に帯電した標的部分、
iii)RNA、DNA、リボザイム、改変されたオリゴヌクレオチド、及び選択された導入遺伝子をコードするcDNAから選択される少なくとも1つのメンバー、
iv)少なくとも1つの持続因子をコードするDNA、並びに
v)複数の結合された生物学的作用物質又は薬用化粧物質を有する、負に帯電した主鎖、又は負に帯電した生物学的作用物質又は薬用化粧物質
からなる群から選択される少なくとも2つのメンバーと
を、製薬用又は薬用化粧品用に許容される担体と組み合わせて、正味の正電荷を有する非共有結合性複合体を形成させることを含み、且つ、それらのメンバーのうちの少なくとも1つがi)、ii)、iii)又はv)から選択される方法。 - インスリンと、正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した主鎖を含む、インスリンの経皮送達に有効な量の担体とを含む組成物であって、担体とインスリンとの結合が非共有結合性である組成物。
- インスリンと正に帯電した担体とを約30:1〜約1.01:1の重量比で含有する、請求項214に記載の組成物。
- 請求項214に記載の制御放出組成物。
- インスリンと、正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した主鎖を含み、経皮送達に有効な量で存在する担体とを含む、被験者にインスリンを投与するためのキットであって、担体とインスリンとの結合が非共有結合性であるキット。
- 組成物が、インスリンを皮膚又は上皮を介して被験者に投与するための器具に含まれる、請求項217に記載のキット。
- 正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した主鎖を含む有効量の正に帯電した担体と共に、インスリンを被験者の皮膚又は上皮に局所的に適用することを含む、インスリンを被験者に投与する方法であって、担体とインスリンとの結合が非共有結合性である方法。
- 組成物が制御放出組成物である、請求項219に記載の方法。
- イメージング部分及び標的物質と、正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した主鎖を含み、経皮送達に有効な量で存在する担体とを含む組成物であって、担体と生物学的に活性なタンパク質との結合が非共有結合性である組成物。
- イメージング部分及び標的物質が物理的又は化学的に異なる、請求項221に記載の組成物。
- イメージング部分及び標的物質の両方ともがホスファートであるとは限らない、請求項221に記載の組成物。
- イメージング物質が光学的イメージング物質である、請求項221に記載の組成物。
- イメージング物質が、Cy3、Cy3.5、Cy5、Cy5.5、Cy7、Cy7.5、オレゴングリーン488、オレゴングリーン500、オレゴン、グリーン514、緑色蛍光タンパク質、6−FAM、テキサスレッド、Hex、TET、及びHAMRAから選択される、請求項224に記載の組成物。
- イメージング物質が磁気共鳴画像法に適している、請求項221に記載の組成物。
- 標的物質が黒色腫を認識する、請求項221に記載の組成物。
- イメージング部分及び標的部分を送達するための器具と、正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した主鎖を含み、経皮送達に有効な量で存在する担体とを含む、請求項221に記載の組成物を被験者に投与するためのキット。
- 正に帯電した分枝基を結合した正に帯電した主鎖を含む有効量の正に帯電した担体と共に、イメージング部分及び標的物質を被験者の皮膚又は上皮に局所的に適用することを含む、イメージング部分及び標的物質を被験者に投与する方法であって、担体と生物学的に活性なタンパク質との結合が非共有結合性である方法。
- イメージング部分及び標的物質が物理的又は化学的に異なる、請求項229に記載の方法。
- イメージング部分及び標的物質の両方ともがホスファートであるとは限らない、請求項229に記載の方法。
- イメージング物質が光学的イメージング物質である、請求項229に記載の方法。
- イメージング物質が、Cy3、Cy3.5、Cy5、Cy5.5、Cy7、Cy7.5、オレゴングリーン488、オレゴングリーン500、オレゴン、グリーン514、緑色蛍光タンパク質、6−FAM、テキサスレッド、Hex、TET、及びHAMRAから選択される、請求項232に記載の方法。
- イメージング物質が磁気共鳴画像法に適している、請求項229に記載の方法。
- 標的物質が黒色腫を認識する、請求項229に記載の方法。
- 黒色腫の危険性のある患者をスクリーニングするために組成物が使用される、請求項229に記載の方法。
- 黒色腫の外科的切除を補助するために組成物が使用される、請求項229に記載の方法。
- 写真技術又は画像解析技術と共に組成物が使用される、請求項229に記載の方法。
- a)正に帯電した主鎖と、
b)i)複数の結合されたイメージング部分を有する、負に帯電した主鎖、又は複数の負に帯電したイメージング部分、
ii)複数の結合された標的物質を有する、負に帯電した主鎖、又は複数の負に帯電した標的部分、及び
iii)複数の結合された生物学的作用物質を有する負に帯電した主鎖、又は負に帯電した生物学的作用物質
からなる群から選択される少なくとも2つのメンバーと
の非共有結合性複合体を含む組成物であって、
その複合体が正味の正電荷を有し、メンバーのうちの少なくとも1つがi)、ii)、iii)又はv)から選択される組成物。 - 薬剤組成物又は薬用化粧組成物を調製する方法であって、
正に帯電した主鎖成分と、
i)複数の結合されたイメージング部分を有する、負に帯電した主鎖、或いは、複数の負に帯電したイメージング部分、
ii)複数の結合された標的物質を有する、負に帯電した主鎖、或いは、複数の負に帯電した標的部分、及び
iii)複数の結合された生物学的作用物質又は薬用化粧物質を有する、負に帯電した主鎖、又は負に帯電した1つの生物学的作用物質又は薬用化粧物質
からなる群から選択される少なくとも2つのメンバーと
を、製薬用又は薬用化粧品用に許容される担体と組み合わせて、正味の正電荷を有する非共有結合性複合体を形成させることを含み、且つ、メンバーのうちの少なくとも1つが、i)、ii)、iii)又はv)から選択されることを条件とする方法。
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