JP2006519230A - イムノゲン付着とその製造法および使用法 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】前記抑制剤は、産卵年齢内またはその年齢に達する頃に雌の鳥にターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンを接種した後、ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンに対する抗体含有成分を卵内に含んだ卵が鳥の中に産生されるに充分な時間を経過させ、その鳥が産んだ卵を収穫し、殻から前記卵の抗体含有成分を分離することにより、製造される。
以上のような方法で生成された微生物付着抑制剤は、動物に投与されて、動物の気道においてターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンの付着を実質的に阻止するために用いられる。
Description
産卵期にある雌鳥の系統は、必要性と使用に応じて様々である。ニワトリ、七面鳥、アヒル、ガチョウ、ハト、ウズラ、ダチョウ、エミュまたは他の家禽も含めて、どんな産卵期の家禽雌鳥が接種されてもよい。好ましいのは産卵期にあるニワトリの一般的な系統であり、そして通常は、1年に産む卵の数、卵の大きさおよび住環境の手軽さによって選択される。ロード・アイランド・レッド、ホワイト・レグホーン、レッド・セックス・リンク・ハイブリッドは、卵の大きさ(ラージからエクストラ・ラージ、50〜65gm)に基づいて選択された動物であり、免疫処置スケジュールのために用いられた。1年間に一羽の雌鳥が産む卵の数に加えて、動物の取り扱いの容易さ、卵の大きさや均一性が観察された。如何なる産卵する鳥類の雌も使用可能であるが、費用および扱いの容易さから、これたのニワトリが最良と判明した。ホワイト・レグホーン、W98ハイブリッドが、最上の均一性と、より多くの1羽当りの卵数を与えた。これらの動物は、ラージからエクストラ・ラージ(50〜65gm)の卵を、一羽当り年間300個までの卵を産む。
Pasteurella Multicoda(ATCC 15743)がモデル・バクテリアとして使用された。組織体がウシから分離された。ストックの再水和のためのATCC法が次に行なわれた。該バクテリアは、TSBの1.0mlで再水和される。ブレイン・ハート・インフュージョン(BHI、Acumedia)を用いて、該バクテリア上のPM抗原を刺激する。ストックTSBは、BHIブロスに接種され、37℃で18〜24時間培養される。これは、バクテリア上で発達した体腔の抗原および付着した抗原を刺激する。BHIブロスの入ったフラスコは、BHI・ブロス・カルチャーで接種される。ゆっくりと攪拌しながら、フラスコは37℃で保温される。血液寒天培地プレートは、形態を確立するため、コロニーを分離するように画線培養される。良い成長が観察されるのは、22時間後である。フラスコは結合され、該物質の採取は、およそ3000rpmで30分間の遠心分離と滅菌生食水(0.9%)で行なわれる。採取された物は、チューブ内に集められる。濃度のチェックは、分光光度計目録およびマクフャーランド(McFarland)懸濁液内バクテリア計量器標準を用いて行なわれる。該物質は、およそ1×109/mlに希釈される。4%ナトリウム・デオキシ・コール酸塩(Difco)溶液が、0.9%滅菌生食水(Herzberg,1972)にカルチャーと共に1対1の割合で加えられ、およそ18時間、室温(22〜24℃)で攪拌される。該物質は攪拌されて、全ての細胞は取り除かれる。上澄みがPM抗原に対するストックとして使用される。乾燥重量は、およそ14.9mg/mlである。製品は滅菌PBSで、PMイムノゲンに対して1mg/mlでpH7.4に希釈される。
PH抗原に対するストックとして、ストックP.Haemolytyca(ATCC 14000)を使用する。組織体がウシから分離された。ストックの再水和のためのATCC法を次に行なわれた。該バクテリアは、TSBの1.0mlで再水和される。ブレイン・ハート・インフュージョン(BHI、Acumedia)を用いて、該バクテリア上のPM抗原を刺激する。ストックTSBは、BHIブロスに植え付けられ、37℃で18〜24時間培養される。これは、該バクテリア上で発達した体腔の抗原および付着した抗原を刺激する。BHIブロスの入ったフラスコは、BHI・ブロス・カルチャーで接種される。ゆっくりと攪拌しながら、フラスコは37℃で保温される。良い成長が観察されるのは、22時間後である。血液寒天培地プレートは、形態を確立するため、コロニーを分離するように画線培養される。フラスコは結合され、該物質の採取は、およそ3000rpmで30分間の遠心分離と滅菌生食水(0.9%)で行なわれる。採取された物は、チューブ内に集められる。濃度のチェックは、分光光度計目録およびマクフャーランド懸濁液内バクテリア計量器標準を用いて行なわれる。該物質は、およそ1×109/mlに希釈される。4%ナトリウム・デオキシ・コール酸塩(Difco)溶液が、0.9%滅菌生食水(Herzberg,1972)にカルチャーと共に1対1の割合で加えられ、およそ18時間、室温(22〜24℃)で攪拌される。該物質は攪拌され、全ての細胞は取り除かれる。上澄みがPH抗原に対するストックとして使用される。乾燥重量が測定される。製品は滅菌PBSで、PHイムノゲンに対して1mg/mlでpH7.4に希釈される。
ストックHaemophilus sommus(ATCC 43626)がHS抗原に対するストック・バクテリア・カルチャーとして使用することが出来る。組織体がウシから分離された。ストックの再水和のためのATCC法が次に行なわれた。該バクテリアはTSBの1.0mlで再水和される。ATCC媒質:814GC媒質を用いて、該バクテリア上のHS抗原を刺激する。ストックTSBは814GC媒質に植え付けられ、37℃、5%二酸化炭素中で18〜24時間培養される。これは、該バクテリア上で発達した体腔の抗原および付着した抗原を刺激する。良い成長が観察されるのは、22〜48時間後である。血液寒天培地プレートは、形態を確立するため、コロニーを分離するように画線培養される。フラスコは結合され、該物質の採取は、およそ3000rpmで30分間の遠心分離と滅菌生食水(0.9%)で行なわれる。採取された物は、チューブ内に集められる。濃度のチェックは、分光光度計目録およびマクフャーランド懸濁液内バクテリア計量器標準を用いて行なわれる。該物質は、およそ1×109/mlに希釈される。4%ナトリウム・デオキシ・コール酸塩(Difco)溶液が、0.9%滅菌生食水(Herzberg,1972)にカルチャーと共に1対1の割合で加えられ、およそ18時間、室温(22〜24℃)で攪拌される。該物質は攪拌されて、全ての細胞は取り除かれる。上澄みがHS抗原に対するストックとして使用される。乾燥重量が測定される。製品は滅菌PBSで、HSイムノゲンに対して1mg/mlでpH7.4に希釈される。
ストック用ブタインフルエンザ菌(ATCC 19417、H.parasuis)をHSa抗原に対するストックとして使用する。組織体がブタから分離された。ストックの再水和のためのATCC法が次に行なわれた。該バクテリアはTSBの1.0mlで再水和される。ATCC媒質5129:ヘモフィルス試験媒質を用いて、該バクテリア上のHSa抗原を刺激する。ストックTSBが#5129ブロスに植え付けられ、37℃で24〜48時間培養される。これは、該バクテリア上で発達した体腔の抗原および付着した抗原を刺激する。#5129ブロスを有するフラスコもしくは#814媒質を含有するプレートは、ストック・ブロス・カルチャーと一緒に接種される。フラスコは、37℃、5%二酸化炭素で保温される。良い成長が観察されるのは48時間後である。血液寒天培地プレートは、形態を確立するために、コロニーを分離するように画線培養される。フラスコは結合され、該物質の採取は、およそ3000rpmで30分間の遠心分離と滅菌生食水(0.9%)で行なわれる。採取された物は、チューブ内に集められる。濃度のチェックは、分光光度計目録およびマクフャーランド懸濁液内バクテリア計量器標準を用いて行なわれる。該物質は、およそ1×109/mlに希釈される。4%ナトリウム・デオキシ・コール酸塩(Difco)溶液が、0.9%滅菌生食水(Herzberg,1972)にカルチャーと共に1対1の割合で加えられ、およそ18時間、室温(22〜24℃)で攪拌される。該物質は攪拌されて、全ての細胞は取り除かれる。上澄みがHSa抗原に対するストックとして使用される。乾燥重量が測定される。製品は滅菌PBSで、HSaイムノゲンに対して1mg/mlでpH7.4に希釈される。
PH,PM,HSおよびHSaELISA:96ウェル・アッセイ・プレート(平坦底面コースター)が、pH9.6の炭素塩バッファ内で様々な濃度の抗原(10μg〜200μg/ml)10μl/mlを用いてコーティングされてた。プレートは22〜37℃の間で、18時間まで培養された。ウェルは相互汚染を避けるために吸引された。プレートは0.5%BSAの390μl/wellで封鎖され、37℃で1時間培養された。プレートは制御に対して能動的または受動的な二者択一の横筋(alternative rows)でコーティングされた。TweenTM20を含む洗浄バッファで、プレートを一度すすがれた。希釈されたサンプルのウェル一個あたり100マイクロリットルが二重のウェル内のウェルに加えられ、37℃で一時間培養された。ホースラディッシュ・ペルオキシダーゼ(Kirkegard and Perry 研究所;1:1000〜1:3000)と結合されたゴート・アンチ‐チキンIgG(Goat anti−chicken IgG)が加えられた。培養を一時間行なった後、製作者の支持に従って培養基(TMB,KPL)が加えられ、10分後に反応が0.1Mの燐酸で停止される。ウェルの光密度は、450nmで、ダイナテック・エリサ・リーダー(Dynatech ELISA Reader)を用いて測定され、更なるデータ解析のために、情報は記録される。
特異的な抗原に対する抗体反応をモニターするために、卵が、接種の期間において、様々な時間経過で選択された。選択されたニワトリが、第0日にモニターされ、一ヶ月を単位に4ヵ月後まで続けられた。全卵が殻から収集され、それから1mlのサンプルが取得された。このサンプルは、それから、抗体含有物を解析するため、バッファと一緒に取り出された。PH,PM,HSおよびHSaイムノゲンに対する標準的なELISAが解析に用いられた。ネガティブなリーディングはODリーディングから引き算された。
産卵期、およそ19週齢、の雌鳥、ホワイト・レグホーンを選び出して、ストックPHイムノゲンを注射した。4種類の注射(500μg、100μg、200μg、及び250μg)を一週間別々に(one week apart)与えた。最後の初期注射から二週間後に漿液サンプルを収集した。もし促進剤が必要なら、(6ヵ月ごとに)各促進剤に100μgが与えられた。4週間の内に、全ての雌鳥が卵内に素晴らしい抗体を創り出した。ELISA PHリーディングは平均して、1:10000希釈に対しては1.00ODおよび1:50000希釈に対しては0.265ODであった。
産卵期、およそ19週齢、の雌鳥、ホワイト・レグホーンを選び出して、ストックPMイムノゲンを注射した。4種類の注射(500μg、100μg、200μg、および250μg)を一週間別々に(one week apart)与えた。最後の初期注射(last initial injection)から二週間後に漿液サンプルを収集した。もし促進剤が必要なら、(6ヵ月ごとに)各促進剤に100μgが与えられた。4週間の内に、全ての雌鳥が卵内に素晴らしい抗体を創り出した。ELISA PMリーディングは平均して、1:10000希釈に対しては1.42ODおよび1:50000希釈に対しては0.68ODであった。
産卵期、およそ19週齢、の雌鳥、ホワイト・レグホーンを選び出して、ストックHSイムノゲンを注射した。4種類の注射(500μg、100μg、200μg、および250μg)を一週間別々に(one week apart)与えた。最後の初期注射(last initial injection)から二週間後に漿液サンプルを収集した。もし促進剤が必要なら、(6ヵ月ごとに)各促進剤に100μgが与えられた。4週間の内に、全ての雌鳥が卵内に素晴らしい抗体を創り出した。ELISA HSリーディングは平均して、1:10000希釈に対しては0.95ODおよび1:50000希釈に対しては0.250ODであった。
産卵期、およそ19週齢、の雌鳥、ホワイト・レグホーンを選び出して、ストックHSイムノゲンを注射した。4種類の注射(500μg、100μg、200μg、および250μg)を一週間別々に(one week apart)与えた。最後の初期注射(last initial injection)から二週間後に漿液サンプルを収集した。もし促進剤が必要なら、(6ヵ月ごとに)各促進剤に100μgが与えられた。4週間の内に、全ての雌鳥が卵内に素晴らしい抗体を創り出した。ELISA HSaリーディングは平均して、1:10000希釈に対しては1.40ODおよび1:50000希釈に対しては0.576ODであった。
選択された雌鳥が、全卵試薬のバッチを創り出すのに用いることが出来るように全部で4種類のイムノゲングループから結合(combine)された。スターリング(米国特許5753228号)では、卵の選択とその保管法に関して提案し、素晴らしい再検討を行なっている。卵は無作為に選択され、殻は取り除かれた。全卵はよく混合され、標準的な条件下((60℃(140°F.)3.5分間)、Charley,HおよびC.Weaver、第3刷、食物:科学的アプローチ、メリル‐プレンティスホール、350頁、1998年)で低温殺菌される。いちど低温殺菌を施すと、活性の試験を行なうために、乾燥するか担体上に吹き付けられるまで4℃で保管された。250μlのサンプルが解析された。
該物質のサンプルは3種類のバッチから収集された。サンプルの解析は、低温殺菌および保管後の活性をモニターするために行なわれ、PH,PM,HSおよびHSaイムノゲンに対してELISAシステムを用いて行なわれた。良い抗体反応が全卵バッチ工程の後に記録された。20種類の例示的生成方法から創り出した3種類のバッチによるデータを以下の表に示す:
2種類の異なった源(source)に由来する222頭の子牛のグループが、アイダホに輸送された。109頭の子牛は第0日に処置され、113頭は第2日に処置された。全ての子牛には通常のワクチンが接種され、病気のストレスを軽減し、平均的な日々の収益率(average daily gain)および摂食効率(feed efficiency)が増進するようにデザインされた抗生物質を含んだ工程が施された。グループの半数は、鼻腔内投与によって物質が与えられた。投与量は直接外鼻孔に注入された(片側に1.5cc:合計3ml)。該動物は標識を付けられ、35日間モニターされた。全ての子牛が同じ畜舎の中に収容された。テストグループはN=111、コントロールグループはN=111であった。以下の結果が得られた:
165頭の競売小屋の子牛が夏の中頃に輸送された。子牛は第0日と、第2日に処置された。全ての子牛には通常のワクチンが接種され、病気のストレスを軽減し、平均的な日々の収益率(average daily gain)および摂食効率(feed efficiency)が増進するようにデザインされた抗生物質を含んだ工程が施された。グループの半数は、鼻腔内投与によって該物質が与えられた。投与量は直接外鼻孔に注入された(片側に1.5cc:合計3ml)。動物は標識を付けられ、35日間モニターされる。全ての子牛が同じ畜舎の中に収容される。テストグループはN=82、コントロールグループはN=83であった。以下の結果が得られた:
子牛の2つのグループがアイダホに輸送された。第1グループ由来の77頭の子牛が第0日に処置された。グループの半数(n=39)はテストとして、もう半数(n=38)はコントロールとして処置された。78頭の第2グループは同じく第2日に処置された。子牛は全て、通常のワクチンが接種され、温められ、インプラントが与えられ、そして病気のストレスを軽減し且つ平均的な日々の収益率および摂食効率が増進するようにデザインされた抗生物質を含んだ工程が施された。テストグループには、鼻腔内投与によって該物質が与えられた。投与量は直接外鼻孔に注入された(片側に1.5cc:合計3ml)。動物は標識を付けられ、35日間モニターされた。病院へ連れて行かれたテストグループの動物は、射水路(chute)を通るたびに通常の処置に加えて、促進剤が与えられた。コントロール牛は、通常の処置のみが施された。テストグループはN=77,コントロールグループはN=78であった。以下のような結果が得られた:
子牛の4つのグループから、毎週およそ1000〜2000頭の子牛が離乳させられた。子牛は小さなグループとして扱われた。全ての子牛は通常のワクチンが接種され、温められ、インプラントが与えられ、そして病気のストレスを軽減し且つ平均的な日々の収益率および摂食効率が増進するようにデザインされた抗生物質を含んだ工程が施された。グループは全て、鼻腔内投与によって物質が与えられた。投与量は直接外鼻孔に注入された(片側に1.5cc:合計3ml)。動物は標識を付けられ、22日間モニターされた。病院へ連れて行かれたテストグループの動物は、射水路(chute)を通るたびに通常の処置に加えて、促進剤が与えられた。テストグループはN=5000であった。22日後、50頭の動物に対してのみ呼吸性の問題が生じた。
リックタブの製造工程は非常にシンプルで明快である。この例の製造は、前もって調整しておいた湿気を帯びた物質と蒸留した濃縮シロップ剤を標準的なタブに加え、水分量を高めるように調節することによって成される。我々は、より乾燥した材料と我々の液体物質を取り替えることで、同じような特性を有する申し分の無いタブを達成するよう一般に作られている標準的なタブと同じ水分量を達成するために、我々は、より乾燥した材料と我々の液体物質を置換えた。
可溶性物質を含有する乾燥蒸留穀物(DDGS) 1170ポンド
コーン・グルテン食物(Corn Gluten Meal) 1365ポンド
湿潤蒸留穀物(wet coke) 465ポンド
ビタミンとミネラルの予備混合物 750ポンド
酸化マグネシウム 600ポンド
混合抗体 540リットル
食用グレードの糖蜜(Food grade Molasses) 10ガロン
カビ抑制剤(Mold Inhibitor) 6ポンド
カギとなる調剤薬の一つが表面仕上げに用いられる。特殊な全卵が、全体量が7〜9LとなるようにPH,PM,HSおよびHAs抗原で接種を施した雌鳥から収集される。全卵材料は、2LのPBS、pH7.4、4.5Lの糖蜜および4Lの蒸留水に添加される。これはよく混合され、微生物の繁殖を抑えたりや貯蔵寿命を伸ばしたりするために、食用ビタミンE、バニラ、安息香酸ナトリウム、ソルビン酸カリウムおよびクエン酸ナトリウムといった保存料が添加される。全体量は18Lである。混合物は均一な溶液となるように攪拌される。それから混合物は、シュルーター・カンパニー(Schlueter Company)製の食品低温殺菌装置で低温殺菌される。該材料は、冷やされて、使用されるまで4℃で保存される。
カギとなる調剤薬の一つがエアロゾルまたはスプレーに用いられ得る。特殊な全卵が、全体量が10LとなるようにPH,PM,HSおよびHAs抗原で接種を施した雌鳥から収集される。全卵材料は、6LのPBS、pH7.4および2Lの糖蜜に添加される。これはよく混合され、微生物の繁殖を抑えたりや貯蔵寿命を伸ばしたりするために、食用ビタミンE、バニラ、安息香酸ナトリウム、ソルビン酸カリウムおよびクエン酸ナトリウムといった保存料が添加される。全体量は18Lである。混合物は均一な溶液となるように攪拌される。それから混合物は低温殺菌される。該材料は、冷やされて、使用されるまで4℃で保存される。
およそ60lbsである77頭の食用ブタのグループが、表面仕上げに関して実施例20で作成された材料を用いてテストされた。動物は表面仕上げした材料を第0日、7日、14日および21日に与えられた。この農場の過去5年間に亘って、呼吸疾患を原因とする損失の平均は、7.5%であり、30%以上が畜舎に入れられた最初の21日の間に投薬を受けていた。テスト期間である62日の間、動物は全て素晴らしい状態を維持し、スケジュールよりも優っていて、損失、投薬共に0%であった。
およそ50lbsである80頭の食用ブタのグループおよびグループの小牛も考慮して、表面仕上げに関して実施例20で作成された物質を用いてテストされた。動物は表面仕上げした物質を第0日、7日、14日および21日に与えられた。この農場の、呼吸疾患を原因とする損失の平均は、最初の21日で5%であり、30%以上が投薬を受けた。これらは昔であれば、元気にならなかった。これは、この農場の過去5年間に亘る平均である。テスト期間である55日の間、全ての動物は非常に良い状態を維持し、過去のデータよりも良い結果である損失1.25%および投薬0%という結果が得られた。
Claims (48)
- A.産卵年齢内またはその年齢に達する頃に、雌の鳥に、ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンを接種し;
B.該鳥の中で、該鳥の卵の中に、ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンに対する抗体含有成分が産生できるようになるに充分な時間を経過させ;
C.該鳥が産んだ該卵を収穫し;
D.該卵の該抗体含有成分を殻から分離する
ことからなる方法で製造され;動物に投与して、該動物の気道においてターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンの付着を実質的に阻止するための微生物付着抑制剤。 - 前記コロニー形成性イムノゲンが、呼吸疾患を引き起こすことで動物の摂食能力が低下することが知られているものである、請求項1記載の微生物付着抑制剤。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、P.Multicoda、M.haemolytica、H.somnusおよびH.suisを含む呼吸性バクテリアの群から選択される、請求項2記載の微生物付着抑制剤。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、マイコプラズマ胸膜肺炎、M.hypopneumoniaeおよびM.bovisを含む呼吸性バクテリアの群から選択される、請求項2記載の微生物付着抑制剤。
- 該抗体含有成分が、ニワトリ、七面鳥、アヒル、ガチョウ、キジ、エミュ、ハト、ダチョウ、ウズラの卵またはそれらの任意の組合せから誘導される、請求項1記載の方法。
- 前記コロニー形成性イムノゲンが、ヒトに呼吸疾患を引き起こすことが知られているものである、請求項1記載の微生物の付着抑制剤。
- 前記卵の該分離された抗体含有成分と担体材料との混合を含む、請求項1記載の微生物付着抑制剤。
- A.前記卵の該分離された抗体含有成分を混合すること;および
B.前記卵の該混合された分離された抗体含有成分を低温殺菌して、潜在する病原性微生物を取り除くこと
を含む、請求項1記載の微生物付着抑制剤。 - 前記卵の分離された抗体含有成分の該低温殺菌された混合物を担体材料上で貯蔵することを含む、請求項8記載の微生物付着抑制剤。
- 該担体材料が、大豆油、糖蜜、蒸留乾燥された穀物および甜菜パルプからなる材料の群から選択される、請求項9記載の微生物付着抑制剤。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、コンパニオンアニマルに呼吸疾患を引き起こすことが知られているものである、請求項1記載の微生物付着抑制剤。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、ウマ、動物学上の動物、および実験動物のような高価値の非食用動物に呼吸疾患を引き起こすことが知られているものである、請求項1記載の微生物付着抑制剤。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、ブタのインフルエンザ(H1N1、H3N2)を含む呼吸性ウィルスの群から選択される、請求項1記載の微生物付着抑制剤。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、ウシのRSウィルス(BRSV)、ウシのウィルス性下痢(BVD)、ウシのパラインフルエンザ‐3型(BPI3)、および感染性ウシ鼻気管炎(IBR)ウィルスを含む呼吸性ウィルスの群から選択される、請求項1記載の微生物付着抑制剤。
動物の気道においてターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンの付着を実質的に阻止するために動物に投与される微生物付着抑制剤。 - 食用動物に投与して、該食用動物の気道においてターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンの付着を実質的に阻止するための、微生物付着抑制剤であって、該ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンに対して特異的な抗体を含む卵内容物をからなることを特徴とする、微生物付着抑制剤。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、動物の摂食能力を低下させ、毎日の平均摂食量を低減すると知られている、請求項15記載の微生物付着抑制剤。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、ブタのインフルエンザ(H1N1,H3N2)を含む呼吸性ウィルスの群から選択される、請求項15記載の微生物付着抑制剤。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、ヒトに呼吸コンプレックスを引き起こすと知られている、請求項17記載の微生物付着抑制剤。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、ウシのRSウィルス(BRSV)、ウシのウィルス性下痢(BVD)、ウシのパラインフルエンザ‐3型(BPI3)、および感染性ウシ鼻気管炎(IBR)ウィルスを含む呼吸性ウィルスの群から選択される、請求項15記載の微生物付着抑制剤。
- A.産卵年齢内またはその年齢に達する頃に、雌の鳥に対してPRRS由来のP抗原を接種し;
B.PRRS由来のP抗原に対する抗体が該鳥および該鳥が産卵した卵の中に産生されるに充分な時間を経過させ;
C.鳥が産んだ卵を収穫し;
D. 前記卵の該抗体含有成分を分離する
ことからなる方法で製造され;
コロニー形成性イムノゲンの増殖を抑えるために、コロニー形成性イムノゲンの食用動物の気道への付着性を抑制することにより、前記食用動物の気道にコロニー形成性イムノゲンが存在することによって生じる呼吸ストレスを減らすことによって、食用動物の成長を促進するための、微生物付着抑制剤。 - 前記卵の該分離された抗体含有成分が、担体材料と前記卵の該抗体含有成分との混合によって得られる、請求項20記載の微生物付着抑制剤。
- 該担体材料が、大豆油、糖蜜、蒸留して得た乾いた穀物および甜菜パルプの群から選択される、請求項21記載の微生物付着抑制剤。
- 該抗体含有成分が、ニワトリ、七面鳥、アヒル、ガチョウ、キジ、エミュ、ハト、ダチョウ、ウズラの卵またはそれらの任意の組合せから誘導される、請求項20記載の微生物付着抑制剤。
- 前記コロニー形成性イムノゲンが、コンパニオンアニマルに呼吸疾患を引き起こすことが知られているものである、請求項20記載の微生物付着抑制剤。
- 前記コロニー形成性イムノゲンが、ウマ、動物学上の動物、および実験動物のような高価値の非食用動物に呼吸疾患を引き起こすことが知られているものである、請求項20記載の微生物付着抑制剤。
- イムノゲンの増殖を抑えるために、ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンの、動物の気道への付着性を抑制して、該イムノゲンの増殖性を低減することによって、動物の呼吸疾患を減少させる方法であって、前記方法が:
A.産卵年齢内またはその年齢に達する頃に、雌の鳥にターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンを接種し;
B.該ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンに対する抗体含有成分を卵内に含んだ卵が鳥の中に生産されるに充分な時間を経過させ;
C.該鳥が産んだ該卵を収穫し;
D.前記収穫された卵の全内容物を卵殻から分離し;
E.前記収穫された卵の該分離された内容物を混合し;
F.前記動物に、前記収穫された卵の混合された分離された内容物を投与し、それによって該ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンに対する該抗体が、該動物の気道に該ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが付着するのを抑制する
ことから成る、動物の呼吸疾患を減少させる方法。 - 前記コロニー形成性イムノゲンが、マイコプラズマ胸膜肺炎、M.hypopneumoniae、およびM.bovisを含む呼吸性バクテリアの群から選択される、請求項26記載の方法。
- 前記コロニー形成性イムノゲンが、P.multicoda、M.haemolytica、H.somnusおよびH.suisを含む呼吸性バクテリアの群から選択される、請求項26記載の方法。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、ウシのRSウィルス(BRSV)、ウシのウィルス性下痢(BVD)、ウシのパラインフルエンザ‐3型(BPI3)、および感染性ウシ鼻気管炎(IBR)ウィルスを含む呼吸性ウィルスの群から選択される、請求項26記載の方法。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、ブタのインフルエンザ(H1N1,H3N2)を含む呼吸性ウィルスの群から選択される、請求項26記載の方法。
- 前記収穫された卵の該混合された分離された内容物を担体材料との混合することを含む、請求項26記載の方法。
- 前記収穫された卵の該分離された内容物の混合物を低温殺菌して、潜在する病原性微生物を取り除くことを含む、請求項31記載の方法。
- 低温殺菌を施された分離された前記収穫された卵の該分離された内容物の該低温殺菌された混合物を、担体材料上で貯蔵することを含む、請求項32記載の方法。
- 前記卵の抗体含有成分が、前記卵の該抗体含有成分を有する材料を動物の飼料にスプレーする若しくは注ぎ込むことにより、動物に投与される、請求項26記載の微生物付着抑制剤。
- 該材料が、乳漿、糖蜜、PBS、および醤油油(soy oil)を含む材料の群から選択される、請求項34記載の微生物付着抑制剤。
- 該抗体含有成分が、動物の周囲に該抗体含有成分をスプレーすることにより、投与される、請求項26記載の方法。
- 該抗体含有成分が、該抗体含有成分を動物の鼻腔内に注入することにより投与される、請求項26記載の方法。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、マイコプラズマ胸膜肺炎、M.hypopneumoniae、およびM.bovisを含む呼吸性バクテリアの群から選択される、請求項26記載の方法。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、P.multicoda、M.haemolytica、H.somnusおよびH.suisを含む呼吸性バクテリアの群から選択される、請求項26記載の方法。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、ブタのインフルエンザ(H1N1,H3N2)を含む呼吸性ウィルスの群から選択される、請求項26記載の微生物付着抑制剤。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、ウシのRSウィルス(BRSV)、ウシのウィルス性下痢(BVD)、ウシのパラインフルエンザ‐3型(BPI3)、および感染性ウシ鼻気管炎(IBR)ウィルスを含む呼吸性ウィルスの群から選択される、請求項26記載の微生物付着抑制剤。
- ヒトに投与することで、ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンがヒトの気道に付着するのを抑制する微生物の付着抑制剤の製造方法で、前記方法が:
A.産卵年齢内またはその年齢に達する頃に、雌の鳥に対してターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンを接種し;
B.該ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンに対する抗体含有を卵内に含んだ卵が該鳥の中に産生されるに充分な時間を経過させ;
C.鳥が産んだ卵を収穫し;
D.前記収穫された卵の全内容物を卵殻から分離し;
E.前記収穫された該分離された卵の内容物を混合する;
ことから成る、微生物付着抑制剤の製造方法。 - 前記コロニー形成性イムノゲンが、ヒトに呼吸疾患を引き起こすことが知られているものである、請求項42記載の方法。
- 前記ターゲットとなるコロニー形成性イムノゲンが、ブタのインフルエンザ(H1N1,H3N2)を含む呼吸性ウィルスの群から選択される、請求項42記載の方法。
- 前記卵の該分離された抗体含有成分を担体材料と混合することを含む、請求項42記載の方法。
- A.分離された前記卵の抗体含有物を混合し;
B.前記卵の該混合され分離された抗体含有成分を低温殺菌して、潜在する病原性微生物を取り除くこと
を含む、請求項42記載の方法。 - 前記卵の分離された抗体含有成分の該低温殺菌された混合物を、担体材料上で貯蔵することを含む、請求項46記載の方法。
- 該担体材料が、大豆油、糖蜜、蒸留して得た乾いた穀物および甜菜パルプを含む材料の群から選択される、請求項47記載の方法。
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