JP2006515874A - ファルネシルベンゾジアゼピノンの製造方法及び薬剤としての使用 - Google Patents
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Abstract
【化2】
本発明は、ECO−04601と名付けられた新規のファルネシル化ジベンゾジアゼピノン、その薬学的に許容される塩及び誘導体、並びにかかる化合物を得る方法に関する。ECO−04601化合物を得る方法には、新規のMicromonospora sp.株、すなわち046−ECO11の培養による方法や、形質転換した宿主生物における生合成経路遺伝子の発現を伴う方法がある。本発明は更にMicromonospora sp.046−ECO11株に関し、ECO−04601並びにその薬学的に許容される塩及び誘導体の医薬組成物としての使用、特に、癌細胞の増殖、細菌細胞の増殖、哺乳類リポキシゲナーゼの阻害剤としての使用、及びECO−04601若しくはその薬学的に許容される塩又は誘導体を含む医薬組成物に関する。最後に、本発明は、新規のポリヌクレオチド配列及びそれによってコードされるタンパク質に関し、これらのポリヌクレオチド配列やタンパク質はECO−04601の生合成に関与する。
Description
したがって、薬理活性化合物を高収量且つ費用効率の高い方法で得ることが、非常に必要とされている。本発明は、試薬(例えば、ポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含むベクター、及び該ベクターを含む宿主細胞)だけでなく、強力な新規の治療用化合物を生成することができるMicromonosporaの新規株、及び化学合成ではなく新規の生合成によって新規の化合物を生成する方法を提供することによって、これらの問題が解決される。
Aは、−NH−、−NCH2R1、−NC(O)R1から選択され、
R1は、C1〜6アルキル、C2〜6アルケン(alkene)、アリール又はヘテロアリールから選択され、
R2、R3及びR4は、それぞれ独立してH、R5、−C(O)R6から選択され、
R5は、それぞれ独立してC1〜6アルキル、C2〜7アルカレン(alkalene)、アリール又はヘテロアリールから選択され、
R6は、それぞれ独立してH、C1−6アルキル、C2−7アルカレン、アリール又はヘテロアリールから選択されるか、その薬学的に許容される塩である)。
a)少なくとも1つの炭素原子源と少なくとも1つの窒素原子源を含む培養地において、好気条件下で培養が行われることを特徴とする、Micromonospora sp.[S01]046株を培養するステップ、及びb)ステップ(a)で培養された細菌からファルネシルジベンゾジアゼピノンを単離するステップ含む方法で得られるファルネシルジベンゾジアゼピノンを含む。ある実施の形態において、ファルネシルジベンゾジアゼピノンは式IIで表される化合物である。
本発明は更に、少なくとも1つの炭素原子源と少なくとも1つの窒素原子源を含む培地でMicromonospora sp.046−ECO11株を培養するステップ、及び化合物を単離し精製するステップを含む、ファルネシルジベンゾジアゼピノン化合物の製造方法を含む。
ある実施の形態においては、培養は好気条件下で行われる。
別の実施の形態においては、炭素原子源及び窒素原子源が表16に示される成分から選択される。
ある実施の形態において、該化合物はECO−04601である。
ある実施の形態においては、配列番号64を有する単離されたポリヌクレオチドが、配列番号66、68、70及び72からなる群から選択されるポリペプチドをコードする。
ある実施の形態においては、配列番号73を有する単離されたポリヌクレオチドが、配列番号75、77、79、81、83、85、87及び89からなる群から選択されるポリペプチドをコードする。
該ポリヌクレオチドは、ファルネシルジベンゾジアゼピノンドメイン、すなわちファルネシルジベンゾジアゼピノンを生成する生物のポリペプチド及びそのフラグメント、それらのポリヌクレオチドを含むベクター、並びにこれらのベクターで形質転換された宿主細胞をコードする。これらのポリヌクレオチド及びそのフラグメント、並びに該ポリヌクレオチドを含むベクターを、上述の方法において試薬として使用することができる。本明細書に開示されるポリヌクレオチド配列の部分は、DNAの増幅のプライマーとして又は他のファルネシルジベンゾジアゼピノンを生成する生物の関連ドメインを同定するためのプローブとしても有用である。
便宜上、本明細書、実施例、及び添付の請求の範囲で用いられる、特定の用語及びフレーズを、以下に示す。
ある実施の形態において、本発明は、本明細書で「ECO−04601」と称され、下記式で表される化学構造を有する、新規のファルネシルジベンゾジアゼピノンに関する。
Aは、−NH−、−NCH2R1、−NC(O)R1から選択され、
R1は、C1−6アルキル、C2−6アルケン、アリール又はヘテロアリールから選択され、
R2、R3及びR4は、それぞれ独立してH、R5、−C(O)R6から選択され、
R5は、それぞれ独立してC1−6アルキル、C2−7アルカレン、アリール又はヘテロアリールから選択され、
R6は、それぞれ独立してH、C1−6アルキル、C2−7アルカレン、アリール又はヘテロアリールから選択されるか、それらの薬学的に許容される塩である)。
以下は本発明の代表的な化合物である。
以下の第V節に検討するように、本発明の化合物を処方して、式1で表される化合物と薬学的に許容されるキャリアとを備える医薬組成物としてもよい。
ある実施の形態において、ECO−04601は、Micromonosporaの新規株、すなわちMicromonospora sp.046−ECO11株を培養することによって得られる。046−ECO11株は、2003年3月7日にカナダ保健省、微生物部、カナダ国際寄託当局(IDAC)(1015 Arlington Street, Winnipeg, Manitoba, Canada R3E 3R2)に、アクセッション番号第070303−01として寄託された。菌株の寄託は、特許手続き上の微生物の寄託の国際的承認に関するブダペスト条約に基づいて行われた。寄託株は、取り消すことはできず、制限や条件がない限り、特許が付与される際に公開される。寄託株は単に当業者に便利であるので提供され、米国特許法第112条で求められるように、寄託が実施可能要件に必要とされていることを承認するものではない。
本発明が046−ECO11という特定の株の使用に限定されないことは、理解されるであろう。むしろ、以下の第IV節に記載するように、X線照射、紫外線照射、ナイトロジェンマスタードによる治療、ファージ照射、抗生物質選択等の公知の手段によって、又はリコンビナント遺伝子工学技術の使用することによって046−ECO11から得られる、046−ECO11の突然変異体又は変異体等の他のECO−046011生成生物の使用を意図するものである。
別の実施の形態において、本発明は、ファルネシルベンゾジアゼピノン(farnesyl benzodiazepinone)の生成に有用なタンパク質をコードする、核酸分子に関する。特に、本発明はリコンビナントDNAベクター及び046−ECO11株の生合成遺伝子座の全部又は一部をコードする核酸分子を提供する。該生合成遺伝子座はECO−04601の生成に関し、本明細書では「046D」と称される。本発明は更に、ECO−04601の化学的変異体を生成するために、突然変異生成、不活性化、又は核酸の置換え等の従来の遺伝子組換え技術を用いる046Dの遺伝子改変を含む。
本発明のベクターは一般的に、外来性DNAを挿入された感染性病原体のDNAを含む。DNAのセグメントをDNAの別のセグメントに挿入する一般的な方法には、制限部位と呼ばれる特定の部位(特定のヌクレオチド群)でDNAを切断する、制限酵素と呼ばれる特定の酵素の使用が含まれる。「カセット」とは、規定された制限部位でベクターに挿入され得る発現生成物をコードする、DNAをコードする配列又はDNAのセグメントをコードするDNAに関する。カセット制限部位は、適切なリーディングフレームにカセットが確実に挿入するようなっている。一般的に、ファルネシルベンゾジアゼピノンの生成に有用なタンパク質をコードする核酸分子を、ベクターDNAの1又は2以上の制限部位に挿入し、次に形質転換によって、ベクターがActinomycetes等の原核生物に核酸分子を運ぶ(下記参照)。発現ベクター等の、挿入された又は付加されたDNAを有するDNAのセグメント又は配列は、「DNAコンストラクト」とも称される。通常のタイプのベクターは、一般的に二重鎖DNAの内蔵分子である「プラスミド」であり、通常細菌に由来しており、付加された(外来)DNAを容易に受け入れることができ、適当な宿主細胞に容易に導入することができる。プラスミドベクターは、コーディングDNAとプロモーターDNAとを有することが多く、外来DNAの導入に適する制限部位を1又は2以上有する。コーディングDNAは、特定のタンパク質又は酵素について特定のアミノ酸配列をコードするDNA配列である。本発明のある実施の形態において、コーディングDNAは、ファルネシルベンゾジアゼピノンの生合成に必要とされる、配列番号3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35、37、39、41、43、45、47、49、51、53、55、57、59、61、63、66、68、70、72、75、77、79、81、83、85、87又は89で表されるポリペプチドをコードする。
Actinomycetesを用いた使用に適する形質転換方法には、リゾチームを用いてActinomycetes培養物をスフェロプラストに形成することが含まれる。次に、ベクターを宿主細胞に導入するために、例えば、Thompson 又はKeiser(Thompson, C. J., et al., (1982), J. Bacteriol., 151, 668-677 or Keiser, T. et al. (2000), “Practical Streptomyces Genetics”, The John Innes Foundation, Norwich参照)のいずれかの方法を用いて、リコンビナントDNAベクターとポリエチレングリコールとを含む緩衝液を加える。チオストレプトン耐性遺伝子は、形質転換プラスミドにおいて、選択マーカーとして使用されることが多い(Hopwood, D.A., et al., (1987), “Methods in Enzymology” 153, 116, Aacademic Press, New York参照)が、本発明はこれに限定されない。Actinomycetesの形質転換の他の方法は、米国特許第5,393,665号に教示されている。
ファルネシルベンゾジアゼピノン生合成経路で1又は2以上のタンパク質をコードし、したがって、特定の欠陥の遺伝的相補作用によってファルネシルベンゾジアゼピノン生合成を回復する1又は2以上の発現ベクターで、ファルネシルジベンゾジアゼピノンの生合成に欠陥のあるActinomycetesを形質転換する。
本発明によって、本発明のファルネシルベンゾジアゼピノンの生合成に関与する酵素の遺伝子工学により、生合成遺伝子座046Dを直接的に操作することが可能となる。
当技術分野に公知の従来の部位特異的突然変異誘発方法は、配列のサブクローニングを行って、M13バクテリオファージベクター等のベクターに変異させることによる。この結果、1本鎖DNAテンプレートの単離が可能となる。これらの方法においては、突然変異誘発プライマー(すなわち、突然変異を起こす部位をアニーリングできるが、突然変異を起こす部位に1又は2以上のマッチしないヌクレオチドを有することができるプライマー)を、一重鎖テンプレートにアニ−リングして、次に突然変異誘発プライマーの3´末端から始まるテンプレートの補体を重合する。この結果生じる二本鎖を宿主細菌に形質転換し、目的とする突然変異について、プラークをスクリーニングする。
下記により詳細に記載するように、配列番号3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35、37、39、41、43、45、47、49、51、53、55、57、59、61、63、66、68、70、72、75、77、79、81、83、85、87、及び89の1つで表される単離し、精製し、又は濃縮した、核酸を使用して、配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86、及び88で表されるポリペプチドのうち1つをそれぞれ調製してもよいし、配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86、及び88で表されるポリペプチドのうち1つの、少なくとも50、75、100、200、300、500又はそれ以上の連続したアミノ酸を含むフラグメントを調製してもよい。
Tm=81.5+16.6(log[Na+]+0.41(フラクションG+C)−(600/N)。ここで、Nはオリゴヌクレオチドの長さである。
Tm=81.5+16.6(log[Na+]+0.41(フラクションG+C)−(0.63%ホルムアミド)−(600/N)。ここで、Nはプローブの長さである。
6×SSC、5×デンハート試薬、0.5%SDS、変性した断片化サケ精子DNA0.1mg/ml又は6×SSC、5×デンハート試薬、0.5%SDS、変性した断片化サケ精子DNA0.1mg/ml、50%ホルムアミド中で、プレハイブリダイゼーションを行ってもよい。SSC及びデンハート溶液の組成は、Sambrook et al., supraに記載されている。
或いは、相同的なポリペプチド又はフラグメントを、生化学的に縮合する又は精製する手順によって得てもよい。相同的なポリペプチド又はフラグメントの候補の配列は、タンパク質分解、ゲル電気泳動、及び/又はマイクロシーケンシングによって決定してもよい。相同的なポリペプチド又はフラグメントの候補の配列を、配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86、及び88で表されるポリペプチドの1つ、又は少なくともその5、10、15、20、25、30、35、40、50、75、100、若しくは150の連続したアミノ酸を含むフラグメントと比較することができる。
別の実施の形態において、本発明は、前述の項に記載のファルネシルジベンゾジアゼピノンと、以下に記載の薬学的に許容されるキャリアとを含む医薬組成物に関する。ファルネシルジベンゾジアゼピノンを含む医薬組成物は、癌、炎症及び細菌感染を含む様々な疾病や疾患の治療に有用である。
筋内投与用の調製に関しては、本発明の化合物の滅菌製薬、又は該化合物を形成する適切な可溶性塩を、注射用水(Water-for-Injection (WFI))、生理食塩水又は5%グルコース等の医薬用希釈剤に溶解し、投与することができる。該化合物の適当な不溶性の形態を、オレイン酸エステル等の長鎖脂肪酸のエステル等の水性の基剤又は薬学的に許容される油性の基剤に懸濁した懸濁液として、調製し、投与してもよい。
本発明による化合物を、患者又は動物の食事又は飼料に投与してもよい。動物の食餌は、該化合物を添加することができる通常の食餌とすることもできるし、プリミックスに該化合物を添加することもできる。
別の実施の形態において、本発明は腫瘍の増殖を阻害する方法に関する。本明細書に記載する化合物は、抗腫瘍活性を有することができる。該化合物は、白血病細胞、メラノーマ細胞、乳癌細胞、肺癌細胞、すい臓癌細胞、卵巣癌細胞、腎臓癌細胞、結腸癌細胞、前立腺癌細胞、及びグリオーマ細胞等の、哺乳動物の腫瘍細胞に対して有効である。本発明の抗腫瘍方法によって、腫瘍細胞が阻害される。「阻害」なる語は、抗腫瘍方法と共に用いられる場合は、腫瘍細胞の抑制、死滅、静止、又は破壊に関する。抗腫瘍方法によって、腫瘍細胞の侵入活性や関連する転移が好ましく予防される、減少する又は除去される。「効果的な量」なる語は、抗腫瘍方法と共に用いられる場合は、哺乳動物の腫瘍細胞を阻害するために十分な化合物の量に関する。
本発明の抗腫瘍方法に関しては、経口で又は非経口で投与される該化合物の効果的な投与量は一般的に、対象の体重の約5〜約100mg/kgであり、1日の投与量は対象の体重の約15〜約300mg/kgである。
別の実施の形態において、本発明は、哺乳動物、特にヒトの患者の罹患状態、特に5−リポキシゲナーゼ系及び/又はロイコトリエンB4並びにロイコトリエンC4、D4、E4及びF4の合成に起因する炎症を治療する方法も提供する。かかる方法には、効果的な量のECO−04601を患者に投与することが含まれる。肺の異常、炎症、心臓血管の異常、中枢神経系の異常又は皮膚の異常を含む炎症に関する罹患状態を治療又は予防するために、化合物ECO−04601を単独で使用してもよく、他の抗炎症化合物と組み合わせて使用してもよい。更に具体的な疾患には、胃炎、びらん性食道炎、炎症性腸疾患、エタノールによる出血性びらん、肝虚血、虚血性神経細胞障害(ischemic neuronal injury)、有害物質による肝臓、膵臓、腎臓、神経細胞若しくは心筋組織の障害或いは壊死、CCl4及びD−ガラクトサミン等の肝臓に有害な物質による(hapatoxic agent)肝実質障害、虚血性腎不全、疾患による肝障害、トラウマ又はストレスによる細胞障害、ぜんそく、多発性硬化症、虚血再潅流、水腫、関節リウマチ、ウイルス性脳炎、細菌性肺炎、神経変性、アルツハイマー病及びグリセロールによる腎不全が含まれる。
別の実施の形態において、本発明は、治療を必要とする哺乳動物の対象において細菌感染を治療する方法に関する。かかる方法は、本明細書に記載される化合物である、化合物ECO−04601又は薬学的に許容されるその誘導体若しくはそのプロドラッグを、治療に効果的な量哺乳動物に投与するステップを含む。
特別な記載がない限り、明細書及び請求の範囲に使用される分子量、反応条件、IC50等の材料の量又は属性を示す数字はすべて、全ての例において「約」なる語によって修正されることが理解されるであろう。したがって、矛盾する記載がない限り、本明細書及び添付の請求の範囲に示される数値変数は、近似値である。少なくとも、均等論の適用を請求の範囲に限定しようとするのではなく、それぞれの数値変数を、少なくとも通常の四捨五入の技術を適用して、また有効数字の数に照らして解釈しなくてはならない。本発明の広い範囲を示す数値の範囲と数値変数は近似値であるが、実施例、表及び図に示された数値はできるだけ正確に記載されている。あらゆる数値には、実験、試験の測定、統計分析等の変動性から生じる特定のエラーが本質的に含まれている。
実施例1:生成培養物の調製
特別な記載がない限り、すべての試薬をSigma Chemical社(St. Louis, MO), (Aldrich)から購入した。Micromonospora spp.(IDAC寄託アクセッション番号第070303−01)をISP2アガー(Difco Laboratories, Detroit, MI)のアガープレートに維持した。ポテトデキストリン24g、ビーフ抽出物3g、バクトカジトン5g、グルコース5g、酵母エキス5g、及びCaCO34gからなり、蒸留水を加えて1リットルにした無菌培地25mL(pH7.0)を含む125mLのフラスコに、アガープレートから、表面に増殖したMicromonospora spp.を転移することによって、生成期(production phase)の接種源を調製した。約28℃で約60時間、250rpmに設定した回転式振とう培養機で培養物を培養した。培養後、ポテトデキストリン20g/L、グリセロール20g/L、魚粉10g/L、バクトペプトン5g/L、CaCO32g/L、及び(NH4)2SO42g/Lを含有するpH7.0の無菌産生培地500mLを含む2Lのバッフルフラスコに、培養物10mLを移した。250rpmに設定した回転式振とう培養機で生成培養物を28℃で1週間培養して、発酵ブロスを調製した。
上述の実施例1に記載したように調製した発酵ブロス500mLに、エチルアセテート500mLを添加した。200rpmのオービタルシェーカーでかかる混合物を30分攪拌し、乳濁液を作成した。遠心分離とデカントによって層を分離した。4〜5gの無水MgSO4を有機層に添加し、次にろ過して溶媒を真空で除去した。
以下の代替のプロトコルにしたがって、式IIで表される化合物を単離した。培養期間の終わりに、実施例1のバッフルフラスコの発酵ブロスを遠心分離し、細菌の菌糸体を含むペレットから上清をデカントした。100mLの100%MeOHを菌糸体のペレットに添加し、サンプルを10分間攪拌し、15分間遠心分離を行った。メタノール上清をデカントし、取っておいた。次に100mLのアセトンを菌糸体のペレットに添加し、10分間攪拌した後、15分間遠心分離を行った。アセトンの上清をデカントし、メタノール上清と混合した。最後に、100mLの20%MeOH/H2Oを菌糸体のペレットに添加し、10分間攪拌し、15分間遠心分離を行った。アセトンの上清とメタノールの上清にその上清を混合した。
実施例1の全ブロス10リットルを等量のエチルアセテートで2度抽出し、2つの抽出物を混合し、乾燥するまで縮合する。乾燥した抽出物を測量し、乾燥抽出物1グラムにつき、100mLのMeOH−H2O(2:1、v/v)及び100mLのヘキサンを添加する。かかる混合物を静かによくかき混ぜ、溶解させる。2層を分離し、100mLのヘキサンで水層を洗浄する。2つのへキサン層を混合し、混合したヘキサン溶液を100mLのメタノール:水(2:1、v/v)で洗浄する。メタノール:水の2層を混合し、200mLのEtOAcと400mLの水とで処理する。それらの層を分離し、水層を200mLポーションのEtOAcで更に2回抽出する。EtOAc層を混合し、縮合する。得られた残留物は、上述のHSCC又はHPLCのいずれかを用いた最終的な精製に適している。この抽出プロセスによると、上記に使用され抽出プロトコルと比較して、10倍の精度が得られる。
質量分析、UV(紫外吸収)及びNMR(核磁気共鳴)スペクトロスコピーを含む分光分析データから、式IIで表される化合物の構造を導出した。エレクトロスプレー質量分析法によって質量が462.6(図1)、最大紫外線量が230nmでショルダーが290nm(図2)であると測定した。プロトンを含むMeOH−d4に溶解したNMRデータを回収し(図3)、多次元パルスは、gDQCOSY(図4)、gHSQC、(図5)、gHMBC(図6)及びNOESY(図7)をシーケンスしている。
最小発育阻止濃度(MIC)は、細菌数の99%より多くを阻害する薬剤の最低濃度であると定義される。ブロス微量希釈アッセイ(Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Test for Bacteria That Grow Aerobically; Approved Standard-Fifth Edition. NCCLS document M7-A5 (ISBN 1-56238-394-9). NCCLS, 940 West Valley Road, Suite 1400 Wayne, Pennsylvania 19087-1898 USA)を用いて、 細菌株(Bacillus subtilis−ATCC第23857、Micrococcus luteus−ATCC第9341)に対するECO−04601のMICが決定された。
培養条件:表4に列挙した細胞株を使用して、ヒト及び動物の腫瘍細胞株に対するECO−04601の細胞毒性を特徴付けた。これらの細胞株はマイコプラズマに感染していないことがわかり、10%の熱不活化ウシ胎児血清と1%のペニシリンストレプトマイシンを補充した適当な培地(表4)に、5%のCO2下、37℃で維持した。細胞を1週間に2回から3回継代培養した。0.25%トリパンブルーで着色することによって、生存度を調べ、細胞の生存度が95%>であるフラスコだけを今回の研究に使用した。
細胞増殖の50%阻害(CI50)を得るために必要なECO−04601濃度を決定するために、ヒト癌細胞株のパネルに対するECO−04601のインビトロでの抗癌活性を測定する研究が、国立癌研究所(国立衛生研究所、Bethesda, Maryland, USA)によって行われた。この独特のスクリーニングの操作には、白血病、メラノーマ、並びに肺癌、結腸癌、脳癌、卵巣癌、乳癌、前立腺癌、及び腎臓癌に代表される50の異なるヒト腫瘍細胞株が用いられる。
5%ウシ胎児血清とLグルタミン2mMとを含むPRMI1640培地で、癌スクリーニングパネルのヒト腫瘍細胞株を培養した。典型的なスクリーニングの実験については、各細胞株の倍加時間に応じて5000から40000細胞/ウェルの濃度で、細胞を100μLの96ウェルマイクロタイタープレートに播種した(表5)。播種後、実験薬を添加する前に、マイクロタイタープレートを5%、空気95%、及び相対湿度100%で24時間、37℃で培養した。24時間後、薬剤添加時(Tz)の各細胞株の細胞数の測定値を示すために、TCAを用いて各細胞株の2つのプレートをインサイチュで固定した。
ECO−04601は推定純度90+%の凍結乾燥粉末として提供された。該化合物を使用する日まで−20℃で保管した。ECO−04601を所望の最終的な最大テスト濃度の400倍のジメチルスルホキシド中で可溶化した。薬剤添加時に、凍結した濃縮物質のアリコートを解凍し、ゲンタマイシン50μg/mLを含む完全培地で所望の最終的な最大テスト濃度の2倍に希釈した。更に4倍、10倍又は1/2logの連続希釈を行い、全部で5種の薬剤濃度及びコントロールを得た。これらの異なる薬剤希釈液の100μlのアリコートを、既に100μlの培地を含む適当なマイクロタイターウェルに添加した結果、必要な最終的な薬剤濃度を得た(8.0×10−5Mから8.0×10−9M)。
NCLスクリーニングによって明らかになったように、ECO−04601は、いくつかのタイプの腫瘍に対しては顕著な抗腫瘍活性を示す。スクリーニングの結果を表5に示し、グリオーマに対する活性に関する更に詳細な結果を実施例7(表6)に示す。
表6に示すように、グリオーマ癌細胞株のパネルを用いてECO−04601の抗癌活性を評価し、細胞増殖の50%阻害(IC50)を測定した。
表6に列挙した細胞株はマイコプラズマに感染していないと見られ、5%CO2下、37℃で、10%熱不活化ウシ胎児血清と1%ペニシリンストレプトマイシンを補充したDMEM培地(表4)に維持された。細胞を1週間に1度継代培養した。使用の前に、5〜10分間トリプシンで処理することによって、かかる細胞を培養フラスコからカウントし、0.25%トリパンブルー排除法によって、生存度を調べた。細胞の生存度が95%>であるフラスコのみを今回の研究に使用した。
薬剤を含まず、10%血清を補充した培地100μL中、1ウェルあたり5×103細胞の細胞を、96ウェルのフラットボトムマイクロタイタープレートに播種し、処理の前に37℃で48時間培養した。
これらの細胞(トリプリケートウェル(triplicate well)中)を、5.0μg/ml(10μM)から始まる異なる濃度のECO−04601を含有する培地で、96時間培養した。該化合物を、D−MEN又はRPMI培地(又は他の同等な培地)で1%DMSO溶液に使用した。ECO−04601の濃度は、10μM(5.0μg/ml)、1μM(0.50μg/ml)、0.5μM(0.25μg/ml)、0.1μM(0.050μg/ml)、0.5μM(0.025μg/ml)、0.01μM(0.0050μg/ml)、0.001μM(0.00050μg/ml)であった。媒体のみ(培地中、1%DMSO)で処理した細胞をネガティブコントロールとした。増加濃度が4から6のシスプラチン(CDDP)で処理した細胞をポジティブコントロールとした(データ示さず)。各細胞株の増殖率を測定するために、培養前(0時間)及びそれに続く被験化合物による96時間の培養中、培養の光学濃度を測定した。
5−リポキシゲナーゼは、アラキドン酸の5−ヒドロキシエイコサテトラエン酸(5−HETE)への酸化的代謝に触媒作用を及す。この初期反応ではロイコトリエンが形成される。リポキシゲナーゼ又はシクロキシゲナーゼの作用によってアラキドン酸から生じたエイコサノイドが、神経変性(アルツハイマー病)、老化及び腫瘍の促進、進行、転移を含む様々な発癌のステップのみならず、急性炎症疾患及び慢性炎症疾患(すなわち、ぜんそく、多発性硬化症、関節リュウマチ、虚血、水腫)に関与することが見い出された。
フィコール−パーク密度勾配(Ficoll-Paque density gradient)で、ヒト末梢血単核細胞(PMN)を単離した。A23187(最終濃度30μM)を添加してPMNを刺激した。刺激したPMNをHBBS培地で5×106細胞/mLの密度に調節し、媒体コントロール(DMSO)、(最終濃度が0.1、0.5、1、2.5、5、及び10μMの)ECO−04601、及びポジティブコントロールとしての(最終濃度が3、1、0.3、0.1、及び0.03μMの)NDGAで、15分間37℃で培養した。培養後、サンプルをNaOHで中和し、遠心分離を行った。上清のロイコトリエンB4含有量を酵素免疫測定法(EIA)を用いて測定した。
明らかにIC50=0.93μM(ポジティブコントロールNDGAでは0.1μMであるのに対して)であり、図8に示す結果は、ECO−04601がヒト5−LOの活性を阻害したことを示している。したがって抗炎症性が示される。
本研究の目的は、i.p.ルートで投与されたECO−04601が、C6グリア芽腫細胞を有するマウスにおいて腫瘍の増殖を予防する又は遅らせるかをテストすること、及び効果的な投与計画を決定することである。
体重18〜25gの全部で60匹の6週齢の雌マウス(Mus musculus ヌードマウス)を、処理前7日間にわたって観察した。Ethical guidelines of animal experimentation (Charte du comite d’ethique du CNRS, Juillet 2003)、及びthe English guidelines for the welfare of animals in experimental neoplasia (WORKMAN, P., TWENTYMAN, P., BALKWILL, F., et al. (1998). United Kingdom Coordinating Committee on Cancer Research (UKCCCR) Guidelines for the welfare of animals in experimental neoplasia (Second Edition, July 1997; British Journal of Cancer 77: 1-10) に従って、動物実験を行った。死亡したマウス又は明らかに罹患したマウスは全て速やかに除去し、健康なマウスと取り替えた。罹患したマウスはケージから除去した直後に安楽死させた。温度(23±2℃)、湿度(45±5%)、光周期(明期12時間/暗期12時間)、及び換気での条件のコントロール下、部屋に動物を維持した。水と食餌を供給する設備を備えたポリカーボネートのケージ(5匹/1ケージ)に、動物を収容した。動物の寝床は滅菌したおが屑製とし、一日おきに取り替えた。食餌はケージ上部の金属の蓋の中に置かれ、任意に供給された。加熱殺菌した水道水は任意に供給された。水用のビンにはゴム製のストッパーとストロー管を備えつけた。水用のビンをきれいに洗浄し、滅菌し、週に1度取り替えた。2つの異なる数字を彫ったリングを2つ動物の耳につけて識別した。各ケージに特定のコードのラベルを付けた。
一連の別の培養及び動物の継代培養を行った後、Premont et al.(Premont J, Benda P, Jard S., [3H] 培養におけるラットグリア細胞によるノルエピネフリン結合。結合とアデニル化シクラーゼ活性化との相互関係の欠如。Biochim Biophys Acta. 1975 Feb 13; 381(2):386-76)によるN-nitrosomethyurea(NMU)によって誘発されたラットグリア腫瘍からC6細胞株のクローンを作成した。
被験物質に関して、次に再構成のために以下の手続きを行った(注射の直前に実施)。媒体は、ベンジルアルコール(1.5%)、エタノール(8.5%)、プロピレングリコール(27%)、PEG400(27%)、ジメチルアセトアミド(6%)、及び水(30%)からなる混合物で構成されていた。始めに、同種の液体を得るために、媒体溶液(vehicle solution)をボルテックスした。ボルテックスした媒体溶液0.6mLを、被験物質(ECO−04601)を含む各バイアルに添加した。1分間ボルテックスしてバイアルを十分に混合し、反転させ、勢いよく振盪した。各動物に注射する前にバイアルを再び混合した。
実験は0日(D0)に開始した。D0に、0.1mLのDMEM完全培地で、マウスの右後肢上部にC6腫瘍細胞(5×105細胞)の表皮筋肉注射を行った。
始めの一連の実験では、C6細胞の接種から24時間後に処理が開始された。処理日には、100μLの被験物質またはコントール物質をi.p.ルートで各マウスにゆっくり注射した。全ての群について、生理的食塩水で処理したマウス(群1)の腫瘍の大きさが約3cm3になるまで(16日頃)、処理を行った。群1のマウスには、生理的等浸透圧溶液で16日間毎日処理を行った。群2のマウスには、媒体溶液で16日間毎日処理を行った。群3のマウスには、10mg/kgのECO−04601で16日間毎日処理を行った。群3のマウスに、30mg/kgのECO−04601で16日間2日に1回、計8回処理を行った。群5のマウスには、30mg/kgのECO−04601で16日間3日に1回、計6回処理を行った。腫瘍が触診可能となった直後に、腫瘍の大きさの測定を開始し(>100mm3;接種後11日頃)、カリパスを使用した処理が終了するまで、1日おきに測定した。図7及び図9に示すように、ECO−04601で処理を行った全ての群の腫瘍の大きさの平均値(6匹/群)は、一元配置分散分析(Anova)テストや、それに続く処理群と生理的食塩水群とを比較するノンパラメトリックダネット多重比較テストによって示されるように、顕著に減少した。表7のP値カラムのアスタリスクは、統計的に重要な値を示し、「ns」は、重要ではないことを意味する。
有機化学の標準的なアプローチによって、ECO−04601分子の変異体、例えば、式III〜LIXとして本明細書に同定される変異体を産生することができる。本明細書に記載される化合物を作製し操作するために必要な、官能基、反応性及び一般的なプロトコルを含む有機化学の原則は、例えば”Advanced Organic Chemistry,” 3rd Edition by Jerry March (1985) に記載されており、参照することによって全体として本明細書に組み込まれる。更に、当業者であれば、特別な記載がなくても、本明細書に記載された合成方法で様々な保護基を使用してもよいことを理解するであろう。本明細書に使用される「保護基」は、多官能化合物の別の反応部位で選択的に反応が行われるように、酸素、硫黄、又は窒素を含む反応基等の1又は2以上の官能基を阻止するために使用される基を意味する。保護基の使用の原則として、特定の官能基の利用可能性及びその使用は、例えばT. H. Greene and P. G. M. Wuts, Protective Groups in Organic Synthesis, 3rd Edition, John Wiley & Sons, New York (1999)に記載されている。
式IIで表される化合物(ECO−04601)から、過安息香酸、モノペルフタル酸等の多くのエポキシド化試薬(epoxidizing reagent)のいずれか、若しくはより好ましくは、テトラヒドロフラン(THF)ジクロロメタン又は1,2−ジクロロエタン等の不活性溶媒中のm−クロロ過安息香酸で処理を行って、本発明のエポキシド化合物(例えば、例として式VII〜XIVで表される化合物)を作製する。1分子等量より少し大きいエポキシド化試薬の場合は、モノエポキシドの収量が最大となり、試薬、溶媒、濃度及び反応温度によって、特定のモノエポキシドの形成率が決定されることは、当業者には理解されるであろう。モノエポキシドが鏡像体混合物であり、ジエポキシド及びトリエポキシドをジアステロマーとして作成することができ、反応条件によって生成率が決定されることも理解されるであろう。当業者であれば、ほとんどの反応条件下で、作製物があらゆる可能なエポキシドの混合物となり、これらはクロマトグラフィーの標準的な方法によって分離することを理解するであろう。モノエポキシド、ジエポキシド及びトリエポキシドの産生に関するアプローチの例を下記に示す。
B)式IIで表される化合物のジ−エポキシド化による、式X、XI、及びXIIで表される化合物の合成。
C)式IIで表される化合物のトリ−エポキシド化による、式XIIで表される化合物の合成。
スキーム8:式VIIで表される化合物のエポキシドを開放すること(opening the epoxide)による式LIで表される化合物の合成。
スキーム9:式IIで表される化合物のオゾン分解による式XLVII、XLIX及びLIで表される化合物の合成。
Micromonospora sp.046−ECO11株は、本発明の化合物を生成するために有用な微生物の代表である。2003年3月7日に、カナダ保健省、微生物部、カナダ国際寄託当局(IDAC)、1015 Arlington Street, Winnipeg, Manitoba, Canada R3E 3R2)に046−ECO11株を寄託した。IDACアクセッション番号は第070303−01である。米国特許第10/232,370号、カナダ国特許第2,352,451号、及びZazopoulos et. al., Nature Biotechnol., 21, 187-190 (2003) に記載されたゲノムのスキャン方法を用いて、式IIで表される化合物を生成するための生合成遺伝子座をMicromonospora sp.046−ECO11株のゲノム中に同定した。
*3微量元素溶液には、1リットル当たり、ZnCl2(40mg)、FeCl36H2O(200mg)、CuCl22H2O(10mg)、MnCl2.4H2O、Na2B4O7.10H2O(10mg)、(NH4)6MO7O24.4H2O(10mg)が含まれる。
*5pHは、記載されているように、CaCo3の添加前に調整される。
Claims (79)
- 式Iで表される化合物
Aは、−NH−、−NCH2R1、−NC(O)R1から選択され、
R1は、C1−6アルキル、C2−6アルケン()、アリール又はヘテロアリールから選択され、
R2、R3及びR4は、それぞれ独立してH、R5、−C(O)R6から選択され、
R5は、それぞれ独立してC1−6アルキル、C2−7アルカレン(alkalene)、アリール又はヘテロアリールから選択され、
R6は、それぞれ独立してH、C1−6アルキル、C2−7アルカレン、アリール又はヘテロアリールから選択されるか、その薬学的に許容される塩である)。 - AがNHであることを特徴とする請求項3に記載の化合物又はその薬学的に許容される塩。
- Aが−NCH2R1であることを特徴とする請求項3に記載の化合物又はその薬学的に許容される塩。
- Aが−NC(O)R1であることを特徴とする請求項3に記載の化合物又はその薬学的に許容される塩。
- R2がHであることを特徴とする請求項3に記載の化合物又はその薬学的に許容される塩。
- R3がHであることを特徴とする請求項3に記載の化合物又はその薬学的に許容される塩。
- R4がHであることを特徴とする請求項3に記載の化合物又はその薬学的に許容される塩。
- R2、R3及びR4がそれぞれHであることを特徴とする請求項3に記載の化合物又はその薬学的に許容される塩。
- R2、R3及びR4がそれぞれHであり、W1が−CH=CH−であることを特徴とする請求項3に記載の化合物又はその薬学的に許容される塩。
- R2、R3及びR4がそれぞれHであり、W2が−CH=CH−であることを特徴とする請求項3に記載の化合物又はその薬学的に許容される塩。
- R2、R3及びR4がそれぞれHであり、W3が−CH=CH−であることを特徴とする請求項3に記載の化合物又はその薬学的に許容される塩。
- AがNHであり、R2、R3及びR4がそれぞれHであることを特徴とする請求項3に記載の化合物又はその薬学的に許容される塩。
- AがNHであり、W1、W2及びW3がそれぞれ−CH=CH−であることを特徴とする請求項3に記載の化合物又はその薬学的に許容される塩。
- 請求項3〜16のいずれか記載の化合物又はその薬学的に許容される塩と薬学的に許容されるキャリアとを含む医薬組成物。
- a)少なくとも1つの炭素原子源と少なくとも1つの窒素原子源とを含む培地において、好気条件下で培養が行われることを特徴とする、Micromonospora sp.[S01]046株を培養するステップ、及び
b)ステップ(a)で培養された細菌からファルネシルジベンゾジアゼピノンを単離するステップ
を備える方法から得られる、請求項1及び3〜16のいずれか記載の化合物。 - 基本的に図3に示すように、NMRスペクトルを発生させる請求項18に記載のファルネシルジベンゾジアゼピノン。
- 少なくとも1つの炭素原子源と少なくとも1つの窒素原子源とを含む培地でMicromonospora sp.046−ECO11株を培養するステップ、及び請求項1に記載の化合物を単離し精製するステップを含む、該化合物の製造方法。
- 少なくとも1つの炭素原子源と少なくとも1つの窒素原子源とを含む培地でMicromonospora sp.[S01]046株を培養するステップ、及び請求項1に記載の化合物を単離し精製するステップを含む、該化合物の製造方法。
- 前記培養が好気条件下で行われることを特徴とする請求項21記載の方法。
- 前記炭素原子源及び前記窒素原子源が、表16に示される成分から選択されることを特徴とする、請求項21に記載の方法。
- 前記培養が18〜40℃の温度で行われることを特徴とする、請求項21に記載の方法。
- 前記培養がpH6〜9で行われることを特徴とする、請求項21に記載の方法。
- IDAC(カナダ国際寄託当局)アクセッション番号第231203−01又はIDACアクセッション番号第070303−01を有するMicromonospora sp.。
- 癌細胞の増殖を阻害するために、癌細胞を請求項3に記載の化合物に接触させるステップを有する、癌細胞の増殖を阻害する方法。
- 癌細胞の増殖を阻害するために、癌細胞を請求項1に記載の化合物に接触させるステップを有する、癌細胞の増殖を阻害する方法。
- 哺乳動物における癌細胞の増殖を阻害するための請求項3に記載の化合物の使用。
- 哺乳動物における腫瘍細胞の増殖の治療での請求項3に記載の化合物の使用。
- 哺乳動物における前癌状態又は癌疾患を治療するための請求項3に記載の化合物の使用。
- 哺乳動物における前癌状態又は癌疾患を治療するための薬剤の調製における請求項3に記載の化合物の使用。
- 哺乳動物における細菌感染を治療するための請求項3に記載の化合物の使用。
- 哺乳動物における細菌感染を治療するための方法の製剤での請求項3に記載の化合物の使用。
- 哺乳動物における炎症を抑えるための請求項3に記載の化合物の使用。
- 哺乳動物における炎症を抑えるための薬剤の調製における請求項3に記載の化合物の使用。
- ファルネシルジベンゾジアゼピノンの生合成経路に関与するポリペプチドをコードすることを特徴とする、配列番号1、64、及び73を含む単離されたポリヌクレオチド。
- a)配列番号3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35、37、39、41、43、45、47、49、51、53、55、57、59、61、63、66、68、70、72、75、77、79、81、83、85、87及び89で表される核酸、
b)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86、及び88で表されるポリペプチドをコードする核酸、
c)a)又はb)の核酸と少なくとも75%の同一性を有する核酸であって、それぞれ配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86、及び88で表されるポリペプチドと同一の生物的機能を有するポリペプチドをコードする核酸、及び
d)a)、b)、又はc)の核酸に相補的な核酸
からなる群から選択される、ファルネシルジベンゾジアゼピンの生成のための、単離、精製、濃縮された核酸。 - a)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86、及び88で表されるポリペプチド、及び
b)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86、又は88で表されるポリペプチドに少なくとも85%の同一性を有するポリペプチドであって、配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86、及び88で表されるポリペプチドと同一の生物的機能を有するポリペプチド
からなる群から選択される、ポリペプチドをコードする核酸配列。 - a)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、及び82で表されるポリペプチド、及び
b)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、及び82で表されるポリペプチドに少なくとも85%の同一性を有するポリペプチドであって、配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、又は82のポリペプチドと同一の生物的機能を有するポリペプチド
からなる群から選択されるポリペプチドをコードする請求項38又は29に記載の核酸配列。 - a)配列番号3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35、37、39、41、43、45、47、49、51、53、55、57、59、61、63、66、68、70、72、75、77、79、81、83、85、87及び89で表される配列、及び
b)配列番号3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、35、27、29、31、33、35、37、39、41、43、45、47、49、51、53、55、57、59、61、63、66、68、70、72、75、77、79、81、83、85、87又は89で表される配列に少なくとも85%の同一性を示す配列であって、配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86及び88で表されるポリペプチドと同一の生物的機能を有するポリペプチドをコードする配列
からなる群から選択される配列を含む請求項38、39又は40に記載の核酸配列。 - a)配列番号3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35、37、39、41、43、45、47、49、51、53、55、57、59、61、63、66、68、70、72、75、77、79、81、83、85、87及び89で表される配列、及び
b)配列番号3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、35、27、29、31、33、35、37、39、41、43、45、47、49、51、53、55、57、59、61、63、66、68、70、72、75、77、79、81、83、85、87及び89で表される配列に少なくとも90%の同一性を示す配列
からなる群から選択される配列を含む請求項38〜41のいずれか記載の核酸配列。 - a)配列番号3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35、37、39、41、43、45、47、49、51、53、55、57、59、61、63、66、68、70、72、75、77、79、81、83、85、87及び89で表される配列、及び
b)配列番号3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35、37、39、41、43、45、47、49、51、53、55、57、59、61、63、66、68、70、72、75、77、79、81、83、85、87又は89で表される配列に少なくとも98%の同一性を示す配列
からなる群から選択される配列を含む請求項38〜42のいずれか記載の核酸配列。 - 請求項38〜43のいずれか記載の核酸配列のうち少なくとも2つをコードする核酸配列。
- 請求項38〜43のいずれか記載の核酸配列のうち少なくとも3つをコードする核酸配列。
- 請求項38〜43のいずれか記載の核酸配列のうち少なくとも5つをコードする核酸配列。
- ファルネシルジベンゾジアゼピンの生成のための、請求項38〜46のいずれか記載の核酸の使用。
- 請求項38〜46のいずれか記載の核酸を含む発現ベクター。
- 請求項48に記載の発現ベクターで形質転換した単離された宿主細胞。
- 請求項48に記載の発現ベクターで形質転換した細菌性の宿主細胞。
- 宿主細胞がPseudomonas属及びStreptomyces属の種から選択されることを特徴とする請求項49又は50に記載の宿主細胞。
- 宿主細胞がE.coliであることを特徴とする請求項49又は50に記載の宿主細胞。
- a)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86及び88で表される配列、及び
b)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、又は86で表されるポリペプチドに少なくとも75%の同一性を示すポリペプチドであって、それぞれ配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、又は86で表されるポリペプチドと同一の生物的機能を有するポリペプチド
からなる群から選択される単離されたポリペプチド配列。 - a)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86、88で表される配列、及び
b)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86又は88で表されるポリペプチドに少なくとも85%の同一性を示すポリペプチドであって、それぞれ配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、24、26、38、40、42、44、46、48、又は50で表されるポリペプチドと同一の生物的機能を有するポリペプチド
からなる群から選択される単離されたポリペプチド配列。 - a)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86、88で表される配列、及び
b)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86又は88で表されるポリペプチドと少なくとも85%の同一性を示すポリペプチドであって、それぞれ配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86、又は88で表されるポリペプチドと同一の生物的機能を有するポリペプチド
からなる群から選択される単離されたポリペプチド配列。 - a)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86、及び88で表される配列、及び
b)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86又は88で表されるポリペプチドに少なくとも90%の同一性を示すポリペプチド
からなる群から選択される単離されたポリペプチド配列。 - a)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86、及び88で表される配列、及び
b)配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、41、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、65、67、69、70、71、74、76、78、80、82、84、86又は88で表されるポリペプチドと少なくとも95%の同一性を示すポリペプチド
からなる群から選択される単離されたポリペプチド配列。 - 請求項53〜57のいずれか記載のポリペプチドから選択される配列を有するポリペプチドの作製方法であって、前記ポリペプチドをコードする核酸を宿主細胞へインビドロで導入するステップを含み、前記核酸が操作可能な状態でプロモーターに結合しているポリペプチドの作製方法。
- 請求項53〜57のいずれか記載のポリペプチドから選択される配列を有するポリペプチドの作製方法であって、前記ポリペプチドをコードする核酸を単離された宿主細胞へ導入するステップを含み、前記核酸が操作可能な状態でプロモーターに関連しているポリペプチドの作製方法。
- 請求項53〜57のいずれか記載のポリペプチドから選択される配列を有するポリペプチドの作製方法であって、前記ポリペプチドをコードする核酸を細菌性の宿主細胞へ導入するステップを含み、前記核酸が操作可能な状態でプロモーターに関連しているポリペプチドの作製方法。
- ファルネシルジベンゾジアゼピンの製造のための、少なくとも1つの請求項53〜57のいずれか記載のポリペプチドの使用。
- ファルネシルジベンゾジアゼピンの製造のための、少なくとも2つの請求項53〜57のいずれか記載のポリペプチドの使用。
- ファルネシルジベンゾジアゼピンの製造のための、少なくとも3つの請求項53〜57のいずれか記載のポリペプチドの使用。
- ファルネシルジベンゾジアゼピンの製造のための、少なくとも5つの請求項53〜57のいずれか記載のポリペプチドの使用。
- ファルネシルジベンゾジアゼピンが化合物ECO−04601であることを特徴とする請求項53〜57のいずれか記載の使用。
- IDAC(カナダ国際寄託当局)アクセッション番号第250203−06として寄託されたコスミド046KM。
- IDAC(カナダ国際寄託当局)アクセッション番号第250203−07として寄託されたコスミド046KQ。
- 生成物を発現させるために前記コスミドを宿主の原核生物に導入することを特徴とする請求項66又は67記載のコスミド。
- 前記宿主がE.coli、Streptomyces lividans、Streptomyces griseofuscus、Streptomyces ambofuchsus、Actinomycetes、Bacillus、Corynebacteria又はThermoactinomycesであることを特徴とする、請求項68記載のコスミド。
- ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で請求項66又は67記載のコスミドのDNAとハイブリダイズし、ファルネシルジベンゾジアゼピンの生成のための生合成経路をコードするDNA。
- 請求項66又は67記載のコスミドを使用してファルネシルベンゾジアゼピンの収量を増加させる方法であって、宿主の原核生物を請求項66又は67記載のコスミドで形質転換するステップと、ファルネシルジベンゾジアゼピンが発現する条件下で形質転換した宿主の原核生物を培養するステップとを含む方法。
- ポリペプチドがファルネシルジベンゾジアゼピノンの生合成経路に関与することを特徴とする、請求項53又は57のいずれか記載のポリペプチド。
- 請求項38〜46記載のポリヌクレオチドを1又は2つ以上含む発現ベクター。
- 請求項73記載の発現ベクターを1又は2つ以上含むリコンビナント原核生物。
- 生物がActinomyceteであることを特徴とする請求項74記載の生物。
- ファルネシルジベンゾジアゼピノンを合成するために、前記生物が前記発現ベクターを必要とすることを特徴とする、請求項74又は75記載の生物。
- (a)ファルネシルジベンゾジアゼピノンを合成することができない原核生物を提供するステップ、
(b)前記原核生物を請求項75記載の発現ベクターで形質転換するステップ、及び
(c)前記原核生物を培養するステップ、
を含み、前記培養によって前記原核生物においてファルネシルジベンゾジアゼピノンが合成されることを特徴とする、原核生物において新規のファルネシルジベンゾジアゼピノンを合成する方法。 - 前記原核生物がActinomyceteであることを特徴とする、請求項77記載の方法。
- 前記ベクターが請求項53〜57のいずれか記載のポリペプチドを発現することを特徴とする、請求項77記載の方法。
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