JP2005508884A - 受容体、その使用、およびそのマウス抗体 - Google Patents

Abstract

非常に増殖している細胞、特に胃癌細胞の表面膜上の、糖タンパク質から構築される受容体であって、該糖タンパク質の少なくとも１つの決定基がＣＦＲ−１タンパク質の決定基に対応し、そしてヒト抗体１０３／５１および／またはネズミ抗体５８／４７−６９（ＩｇＭ）が該糖タンパク質に特異的に結合する、前記受容体。

Description

本発明は、迅速に増殖している細胞、特に胃癌細胞の表面上に見られる受容体、その使用、および該受容体に特異的に結合するマウス抗体の構造に関する。

ハイブリドーマから生成したモノクローナル抗体を、臨床的アッセイおよび科学的アッセイに使用することは広く知られる。Ｂ細胞ハイブリドーマから産生したヒトモノクローナル抗体の投与は、腫瘍、ウイルス感染および微生物感染、抗体産生が減少したＢ細胞免疫不全、並びに免疫系の他の損傷の治療に有望である。

胃癌は、世界的に、最も頻繁に発生する癌の型の１つである。Ｌａｕｒｅｎ， “Ｔｈｅ ｔｗｏ ｈｉｓｔｏｌｏｇｉｃａｌ ｍａｉｎ ｔｙｐｅｓ ｏｆ ｇａｓｔｒｉｃ ｃａｒｃｉｎｏｍａ，” Ａｃｔａ Ｐａｔｈ． Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ． Ｓｃａｎｄ． ６４：３３１−４９によれば、胃癌は、組織学的に、散在性腺癌および腸性腺癌に分けられる。腸性胃癌には、しばしば、慢性Ｂ型胃炎、そして特に腸化生（ｍｅｔａｐｌａｓｉａ）が伴い、これらは形成異常（ｄｙｓｐｌａｓｔｉｃ）変化および胃癌の前駆症であるとみなされる。これらの２つの種類間の相違はまた、散在型の癌腫を有する患者が、しばしば血液型群Ａに属し、このことからこの癌のリスクに対して遺伝因子の影響があることが結論づけ可能である一方、腸型の癌腫の発生には、環境型因子、例えばヘリコバクター・ピロリ（Ｈｅｌｉｃｏｂａｃｔｅｒ ｐｙｌｏｒｉ）感染が重要である可能性があることにも示される。西側では、胃腺癌頻度の減少が達成されたが、現在、東側で胃腺癌発生が増加している。

胃癌の発展は、多段階および多因子過程である（Ｃｏｒｒｅａ， １９９２， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ５２：６７３５−６７４０）。分子機構に関しては、ほとんど知られていないが、高濃度の塩摂取、アルコール、ニトロソアミン、および細菌ヘリコバクター・ピロリ（Ｈ．ピロリ）感染などの要因は、胃癌発症の開始に関与していることが明確に立証されている。Ｈ．ピロリ感染および胃炎発生、形成異常および胃癌の発展が強く相関しているため、この細菌は、ＷＨＯによって、Ｉ型発癌因子と分類されてきた。Ｈ．ピロリは、粘膜環境において、深刻な前癌性細胞変化を直接誘導し、そしてまた、胃炎患者および胃癌患者に頻繁に観察される、自己抗体の増加にも関与している（Ｎｅｇｒｉｎｉら， １９９６， Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌ． １１１：６５５−６６５）。これらの抗体は、胃上皮において、胃病変およびアポトーシスを誘導可能である（Ｓｔｅｉｎｉｇｅｒら， １９９８， Ｖｉｒｃｈｏｗｓ Ａｒｃｈ． ４３３：１３−１８）。抗原の性質は今なお一部未知である。胃Ｈ＋／Ｋ（＋）−ＡＴＰアーゼ（Ｃｌａｅｙｓら， １９９８， Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ １１５：３４０−３４７）、インターロイキン−８（Ｃｒａｂｔｒｅｅら， １９９３， Ｓｃａｎｄ． Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． ３７：６５−７０；Ｍａら， １９９４， Ｓｃａｎｄ． Ｊ． Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌ． ２９：９６１−９６５）およびルイス血液型群抗原（Ａｐｐｅｌｍｅｌｋら， １９９７， Ｔｒｅｎｄｓ． Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ． ５：７０−７３）に対する抗体が、胃粘膜または胃癌にしばしば見られる。

今日まで、療法は、胃切除およびリンパ節切除に限定されてきた；しかし、それにもかかわらず予後が劣っているため、新たな付随療法に対する必要性が存在する。免疫系が悪性細胞と有効に戦うことが不能である場合であっても、細胞性活性および体液性活性は測定可能であり、しかし腫瘍細胞を破壊するのには不十分であることが、免疫学的研究によって示されている。ここで、有効なアプローチは、患者の免疫反応から生じる抗体を単離し、適切な方法でこれらを再生し（ｒｅｐｒｏｄｕｃｅ）、そして療法的に使用することである。したがって、例えば、肺癌、食道癌、および結腸癌を有する患者で生じる抗体を単離し、そして該抗体から、例えば腫瘍細胞の分化および増殖に直接影響を与える、ヒトモノクローナル抗体を得る。

アポトーシスは、ＤＮＡの断片化、細胞収縮、および小胞体の膨張、その後の細胞断片化、および膜結合小胞またはアポトーシス体の形成を通じた、プログラム細胞死、すなわち細胞の自殺である。細胞死の生理学的な型であるアポトーシスは、壊死の場合におけるような、炎症過程または組織外傷を誘発することなく、不要な細胞の迅速でそしてきれいな除去を保証する。病的状態下では、アポトーシスはまた、癌前駆細胞などの悪性細胞を除去するのにも用いられる。アポトーシスは、細胞傷害性Ｔリンパ球または腫瘍壊死因子などのサイトカイン、グルココルチコイド、および抗体など、非常に多様な刺激を通じて、誘発可能である。アポトーシスは、真核細胞の最も高頻度の死因であり、そして胚形成、変態、および組織萎縮中に起こる。ＮＧＦ／ＴＮＦファミリーのものなど、細胞表面上のアポトーシス受容体は、主に、リンパ球上で発現されるが、他の多様な細胞種上にも見られ、このため、これらは癌療法には不適切である。特に、これらの受容体のリガンドおよび抗体は、ｉｎ ｖｉｖｏ試験において、肝臓損傷を導いた。したがって、アポトーシス機能を有する腫瘍特異的受容体が、特に重要である。

最近の刊行物で、我々は、散在型腺癌の胃癌患者から単離され、Ｈ．ピロリおよび胃癌細胞と交差反応する、ヒト抗体１０３／５１を記載した（Ｖｏｌｌｍｅｒｓら， １９９４， Ｃａｎｃｅｒ ７４：１５２５−１５３２）。すべてのアッセイにおいて、ＤＳＭＺ−ドイツ微生物および細胞培養コレクションＧｍＢＨ， Ｍａｓｃｈｅｒｏｎｄｅｒ Ｗｅｇ １ｂ， ３８１２４ Ｂｒａｕｎｓｃｈｗｅｉｇに寄託番号ＡＣＣ２０１で寄託されている、既知の胃腺癌細胞株２３１３２を用いた。この抗体は、低用量で、１３０ｋＤ膜受容体に結合して、ｉｎ ｖｉｔｒｏで胃癌細胞の有糸分裂に影響を有する（Ｈｅｎｓｅｌら， １９９９， Ｉｎｔ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ８１：２２９−２３５）。この抗体は、１３０ｋＤ膜受容体に結合することによって、ｉｎ ｖｉｔｒｏで胃癌細胞の有糸分裂に何らかの影響を有する（Ｈｅｎｓｅｌら， １９９９， Ｉｎｔ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ８１：２２９−２３５）。抗体可変遺伝子領域を配列決定すると、抗体１０３／５１が自己反応抗体であることが同定された。免疫組織化学研究によって、抗体が胃癌細胞および腺性胃細胞と強く反応することが示される。

モノクローナル抗体１０３／５１の細胞性受容体は、以前は未知であった。本発明につながる実験の過程で、この細胞性受容体を同定することが可能であった。しかし、この同定は困難であることが示された。一方で、モノクローナル抗体１０３／５１は、ウェスタンブロット解析中、非常に特異的なストリンジェンシー条件下でのみ、該受容体と反応する。他方で、さらなるタンパク質のアレイを用いると、変性アーティファクトに引き起こされる、非特異的反応が見られる。

配列決定解析によって、該受容体がＣＦＲ−１タンパク質に対応するが、ＣＦＲ−１タンパク質と同一ではないことが示された。したがって、既知のＣＦＲ−１のものと対応する、１以上の決定基（リガンド）を有する糖タンパク質化合物を、さらに請求する。特に、本出願にしたがって、一次アミノ酸配列における少なくとも８０％の対応と定義されるべき相同性が必要である。したがって、この受容体は、ＣＦＲ−１のアイソフォームである。さらに、ヒト抗体１０３／５１および／またはネズミ抗体５８／４７−６９いずれかに対する特異的結合が必要である。

糖タンパク質上の特異的結合部位が炭水化物残基、すなわち糖残基である場合、特に対象となる。
特定の態様において、ＣＦＲ−１タンパク質は、決定基として、付属書類Ｓ、細胞株２３１３２にしたがったアミノ酸配列を有する。

抗体１０３／５１の細胞性受容体は、タンパク質ＣＦＲ−１のアイソフォームであり、腫瘍細胞、特に胃癌細胞に特異的であり、正常組織には存在しない。このアイソフォームの特異的受容体特性は、Ｎ連結を介してタンパク質主鎖に連結されている特別の糖構造に基づく。特異的結合パートナーを同定するためのスクリーニング法において、この腫瘍特異的受容体が使用可能である。本発明にしたがって、受容体に対する特異的結合パートナーは、ＣＦＲ−１の腫瘍特異的糖構造に選択的に結合し、そして好ましくは、アポトーシスを誘導する能力を有する化合物である。これらの特異的結合パートナーは、腫瘍治療用の療法剤産生に、そして診断剤産生に使用可能である。

該タンパク質化合物は、精製、配列決定、およびトランスフェクションによって、ＣＦＲ−１のアイソフォームと特徴付けられた。同一の反応および機能を有する精製分子からネズミ抗体を産生することにより、免疫組織化学染色および２つのＣＦＲ−１陰性細胞株のＭＴＴアッセイを通じて、抗原１０３／５１に関する特異性を確認した。ＣＦＲ−１分子のアイソフォームは、ヒト抗体およびネズミ抗体両方によって検出され、上皮細胞の細胞膜に局在し、そしてＣＦＲ−１に関して先に記載されたもの（Ｂｕｒｒｕｓら， １９９２， Ｍｏｌ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ． １２：５６００−５６０９）とは異なる発現パターンを有する。

ニワトリ線維芽細胞から高親和性ＦＧＦ結合タンパク質として単離されたＣＦＲ−１（Ｂｕｒｒｕｓら， １９９２， Ｍｏｌ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ． １２：５６００−５６０９）は、いくつかのＦＧＦに結合し、そして細胞増殖制御に役割を有する可能性がある。チャイニーズハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ）において、ＣＦＲ−１は、ゴルジ体のみで発現されることが見出された（Ｂｕｒｒｕｓら， １９９２， Ｍｏｌ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ． １２：５６００−５６０９）が、突然変異型で分泌されることも可能である（Ｚｕｂｅｒら， １９９７， Ｊ． Ｃｅｌｌ Ｐｈｙｓｉｏｌ． １７０：２１７−２２７）。ＣＦＲ−１には、生物に応じて検出される、２つの変異体、ＥＳＬ−１およびＭＧ−１６０があり、これらは８０％〜９５％の配列相同性を共有し（Ｂｕｒｒｕｓら， １９９２， Ｍｏｌ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ． １２：５６００−５６０９；Ｓｔｉｅｂｅｒら， １９９５， Ｅｘｐ． Ｃｅｌｌ Ｒｅｓ． ２１９：５６２−５７０；Ｓｔｅｅｇｍａｉｅｒら， １９９５， Ｎａｔｕｒｅ ３７３：６１５−６２０；Ｍｏｕｒｅｌａｔｏｓら， １９９６， ＤＮＡ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ． １５：１１２１−１１２８）、そして他の既知のタンパク質とはいかなる配列相同性も共有しないようである。ＣＦＲ−１およびその相同体（ｈｏｍｏｌｏｇｕｅ）の機能および細胞分布は、比較的未知であり、そして矛盾している。内側ゴルジ・シアロ糖タンパク質であり、そしてラット脳から精製されたＭＧ−１６０が、細胞内ＦＧＦ輸送に役割を果たしていることが示されている（Ｚｕｂｅｒら， １９９７， Ｊ． Ｃｅｌｌ Ｐｈｙｓｉｏｌ． １７０：２１７−２２７）。

最近の発見によって、このタンパク質の局在がゴルジ体に限定されないことが示されてきた。しかし、Ｃ末端で一部切除（ｔｒａｎｃａｔｅｄ）すると、このタンパク質を形質膜および糸状仮足に局在化させることが可能である（Ｇｏｎａｔａｓら， １９９８， Ｊ Ｃｅｌｌ Ｓｃｉ． １１１：２４９−２６０）。これはマウス好中球前駆細胞（３２Ｄｃｌ３）から単離された第三の相同体ＥＳＬ−１が、ゴルジ体とともに、細胞表面上の微絨毛にも局在するという知見と一致する（Ｓｔｅｅｇｍａｉｅｒら， １９９７， Ｊ． Ｃｅｌｌ Ｓｃｉ． １１０：６８７−６９４、Ｇｏｎａｔａｓら， １９９８， Ｊ． Ｃｅｌｌ Ｓｃｉ． １１１：２４９−２６０）。ＥＳＬ−１は、好中球におけるＥ−セレクチンのリガンドと同定され、およその分子量は１５０ｋＤであった。ＥＳＬ−１抗体を用いた免疫沈降によって、いくつかの癌性細胞株を含む多様な細胞から、このタンパク質の定義されていないアイソフォームを沈降可能であることが示された（Ｓｔｅｅｇｍａｉｅｒら， １９９５， Ｎａｔｕｒｅ ３７３：６１５−６２０）。

癌性細胞において、ＣＦＲ−１は主に膜に分布するため、記載した受容体がＣＦＲ−１のアイソフォームであると結論付けられる。ＣＦＲ−１およびその相同体の多様な細胞分布は、おそらく、言及した結果に関与し、そして他のタンパク質に関して知られる現象である（Ｓｍａｌｈｅｉｓｅｒ， １９９６， Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ． Ｃｅｌｌ ７：１００３−１０１４）。悪性細胞における異なるグリコシル化パターンが形質膜への輸送を導く可能性があり、これによって分布の改変が引き起こされている可能性がある。

組織分布によって、ＣＦＲ−１分子が、細胞活性化、および抗体Ｋｉ６７を用いた染色により立証される増殖と相関していることが示される（Ｒａｍｉｒｅｓら， １９９７， Ｊ． Ｐａｔｈｏｌ． １８２：６２−６７）。正常な胃粘膜は、測定可能な量でこの受容体を発現しないが、Ｈ．ピロリが浸潤した上皮および形成異常上皮は、この抗原を有する。どちらの組織も増殖し、そして胃癌前駆症である可能性がある。

有効性が高いことを理解するには、健康な細胞に見られるＣＦＲ−１の構造と対照的に、特徴付けられるアイソフォームが、健康な細胞には見られず、もっぱら、迅速に増殖している細胞、すなわち迅速に分裂している細胞、例えば増殖段階および対応する前駆症段階にある腫瘍細胞のみに見られることに注目することが重要である。該受容体の機能は、本質的に、該受容体が、細胞が栄養摂取するためのエネルギー受容体として用いられ、そして癌細胞などの頻繁に分裂する細胞に特に優勢に配分されていることに基づく。この受容体が、胃癌においてのみでなく、むしろ、本質的に同一の反応機構を有するすべての上皮腫瘍にも適用を有するであろうことに特に注目すべきである。胃腫瘍にくわえ、これらの受容体の存在は、以下の腫瘍の癌性組織においても示された：食道、胃、腸、直腸、肝臓、胆嚢、膵臓、肺、気管支、乳房、頚部、前立腺、心臓、バレット、卵巣、および／または子宮の腫瘍。本発明にしたがった受容体に結合する、腫瘍に対して有効である抗体は、したがって、癌性細胞にターゲティングされる活性を有する（そして健康な細胞に対しての活性は持たない）。

既知の方法を用いて、例えばゲル電気泳動を用いて、測定可能な分子量がおよそ１３０ｋＤであることから、該受容体構造が糖タンパク質であると同定可能であった。用語「およそ」は、当業者に認識可能であるように、この種のサイズ決定がどのような方法でも正確でなく、分子量決定法が変化するかまたは変動すると、測定値が変動するという事実に基づく。

この受容体の最も重要な適用分野は、診断および療法である。予防的適用には、該受容体の補助によってワクチン接種を達成することが可能であるように、抗体を刺激することを目的として、この受容体を薬剤用量で患者に投与する。抗体は、発生するいかなる腫瘍細胞の除去にも関与する。

しかし、腫瘍細胞が既に存在している場合の受容体の投与もまた、ありうる薬物療法である。投与された受容体は、抗体形成を強化し、そして増幅し、そしてしたがって、腫瘍細胞アポトーシスの上昇に、または補体が仲介する溶解に関与する。受容体の遮断は、増殖抑止を導くため、細胞は「餓死する」。

現時点までのアッセイによって、該受容体が以下の腫瘍前駆症を治療するのに特に適していることが立証されることが示された。胃の疾病に関しては、該受容体は、胃粘膜の形成異常および／または胃の腸化生を治療するのに適しており、そして／または細菌ヘリコバクター・ピロリに関連する胃粘膜の炎症を治療するのに適しており、そして胃の管状腺腫および管状絨毛腺腫を治療するのに適している。結腸の以下の疾患、特に結腸の管状腺腫、結腸の絨毛腺腫、および潰瘍性大腸炎における形成異常に対する適用もまた、示唆される。該受容体はまた、食道のバレット形成異常および食道のバレット化生にも適している。該受容体はまた、頚部の以下の疾患：頚部上皮内新形成（ｎｅｏｐｌａｓｉａ）Ｉ、頚部上皮内新形成ＩＩ、および頚部上皮内新形成ＩＩＩを治療するのにも適している。

最後に、上述の受容体はまた、気管支の扁平上皮化生および気管支の扁平上皮形成異常への投与にも適している。
上述の作用機構のため、該受容体は原則として、食道、胃、腸、直腸、肝臓、胆嚢、膵臓、肺、気管支、乳房、頚部、前立腺、心臓、バレット、卵巣、および／または子宮の腫瘍を治療するのに適している。

診断目的での該受容体の適用は、抗体が、特異的抗原／抗体相互作用のため、この受容体に結合する能力を使用する。この方法では、対応する抗体の存在、局在、および／または量に関する証拠を、受容体に結合する能力から得ることが可能である。同じ反応機構で、結合能を用いて、受容体を検出することが可能である。

特に抗体が腫瘍抗体である場合、これらを用いて腫瘍の存在を検出することが可能である。特に、該受容体を腫瘍マーカーとして使用可能である。
改良法において、該受容体を用いて抗腫瘍抗原を産生することが可能であり、ここで、該受容体に特異的に結合する能力に関して、腫瘍に対して潜在的に有効である化合物をアッセイして、そして陽性結果に際して、すなわち結合の発生に際して、この化合物を薬剤適用に用いる。もちろん、市場に出される薬剤を製造するのに、通常のように、適切に配合し、そして典型的な添加剤を添加することが必要である。

上述の受容体の補助によって、抗腫瘍医薬品を産生するために、ヒト抗体のみが考慮されるのでなく、むしろ、マウス抗体および／または任意の種いずれかのヒト化抗体も考慮されることに、明白に言及しなければならない。これはまた、抗体のタンパク質分解切断によって得られるような、ＦａｂおよびＦ（ａｂ）_２および／またはＦａｂ’断片などの抗体断片にもあてはまる。これらにはまた、一本鎖抗体および／または四量体および／または二量体抗体型および／または二特異性抗体も含まれる。

さらに、モノクローナルマウス抗体を生成するのに、マウスにおいて免疫原性であるヒト腫瘍抗原を用いることが知られ、そしてこうした抗体はヒト抗原を特異的に認識可能であり、そしてしたがってヒトにおいて療法的に使用するのに適していることも知られる。

［発明の開示］
本発明の目的は、受容体構造の確立および該構造の使用である。しかし、「外来（ｆｏｒｅｉｇｎ）」抗体および／またはマウス抗体をヒトに反復して注射すると、不都合な過敏性反応が生じ、そしてまた、循環抗体のクリアランス率の上昇が生じて、したがって抗体が標的位置に到達しないため、問題がある。

これらの理由から、マウス抗体の療法的な適切さを再度調べることが必要である。にもかかわらず、診断法と組み合わせた際の適切さは制限されない。ヒト化マウス抗体を得て、そしてこれらを療法目的に使用する可能性もまたある。これらの診断法の補助によって、存在する腫瘍だけでなく、前癌構造が性質決定される可能性もまた、明白である。

上述の受容体に加え、その構造が付属書類ＡおよびＢに定義される、該受容体に特異的に結合するマウス抗体に関しての保護もまた請求する。すべての抗体に同一である領域は再生されず；個々の抗体に特徴的な領域を請求し、そして示した。

結果として、構造を記載し、ＣＦＲ−１のアイソフォームと称すべき受容体によって、腫瘍のみならず、前癌構造の療法および診断が可能になる。さらに、該受容体に特異的に結合するマウス抗体の構造を記載する。

材料および方法
細胞培養および抗体精製
すべてのアッセイには、樹立胃腺癌細胞株２３１３２（Ｈｅｎｓｅｌら， １９９９， Ｉｎｔ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ８１：２２９−２３５）を用いた。１０％ＦＣＳおよびペニシリン／ストレプトマイシン（どちらも１％）を補ったＲＰＭＩ−１６４０（ＰＡＡ、オーストリア・ウィーン）中で、細胞を８０％集密（ｃｏｎｆｌｕｅｎｃｙ）まで増殖させた。記載するアッセイのため、トリプシン／ＥＤＴＡを用いて細胞を剥離し、そして使用前にリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で２回洗浄した。記載されるように（Ｖｏｌｌｍｅｒｓら， １９９４， Ｃａｎｃｅｒ ７４：１５２５−１５３２）、ヒトハイブリドーマ細胞株１０３／５１を産生し、そして増殖させた。別の箇所に記載されるように（Ｖｏｌｌｍｅｒｓら， １９９８， Ｏｎｃｏｌ． Ｒｅｐ． ５：５４９−５５２）、ＩｇＭ抗体の精製を行った。

膜抽出物の調製
Ｈｅｎｓｅｌら（Ｈｅｎｓｅｌら， １９９９， Ｉｎｔ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ８１：２２９−２３５）によって記載されるように、細胞株２３１３２を用いて、腫瘍細胞から膜タンパク質を単離した。簡潔には、集密腫瘍細胞をＰＢＳで２回洗浄し、細胞スクレーパーで採取し、そして遠心分離し、そして低張緩衝液（２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ、３ｍＭ ＫＣｌ、３ｍＭ ＭｇＣｌ_２）に再懸濁した。氷上で１５分間インキュベーションし、その後、５分間超音波処理した後、１０，０００ｇ、１０分間の遠心分離によって核をペレットにした。スイングアウトローター中、１００，０００ｇで３０分間、上清を遠心分離して、膜をペレットにした。低張緩衝液でペレットを洗浄した後、膜溶解緩衝液（５０ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐＨ７．４、０．１ｍＭ ＥＤＴＡ、１０％グリセロール、および１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００）に再懸濁した。すべての溶液に、プロテアーゼ阻害剤（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ， Ｍａｎｎｈｅｉｍ、ドイツ）を添加した。

ウェスタンブロッティング
別の箇所に記載されるような標準的プロトコルを用いて（Ｈｅｎｓｅｌら， １９９９， Ｉｎｔ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ８１：２２９−２３５）、タンパク質の１０％還元ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル電気泳動およびウェスタンブロッティングを行った。簡潔には、ブロッティングしたニトロセルロース膜を、２％低脂肪乳粉末を含有するＰＢＳでブロッキングした後、１０μｇ／ｍｌ精製抗体１０３／５１とともに１時間インキュベーションした。Ｐｉｅｒｃｅ（ＫＭＦ、ドイツ・セントオーガスチン）のＳｕｐｅｒＳｉｇｎａｌ化学発光キットを用いて、二次抗体（ペルオキシダーゼ結合ウサギ抗ヒトＩｇＭ抗体（Ｄｉａｎｏｖａ、ドイツ・ハンブルグ））を検出した。ＰＢＳ＋０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０で３回洗浄した後、二次抗体（ペルオキシダーゼ結合ウサギ抗ヒトＩｇＭ抗体（Ｄｉａｎｏｖａ、ドイツ・ハンブルグ））をインキュベーションした。該反応は、Ｐｉｅｒｃｅ（ＫＭＦ、ドイツ・セントオーガスチン）のＳｕｐｅｒＳｉｇｎａｌ化学発光キットの補助によって検出した。

抗原１０３／５１の精製
Ｐｈａｒｍａｃｉａ（ドイツ・フライブルグ）ＦＰＬＣ装置を用いたカラムクロマトグラフィーによって、抗原の精製を行った。サイズ排除クロマトグラフィーのため、Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｓｕｐｅｒｄｅｘ ２００カラム（ＸＫ１６／６０）に５ｍｇの膜調製物を装填し、そして緩衝液Ａ（１００ｍＭ Ｔｒｉｓ／Ｃｌ、ｐＨ７．５、２ｍＭ ＥＤＴＡ、４０ｍＭ ＮａＣｌ、１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００）を用いてクロマトグラフした。その後、溶出物を分画し、そして抗体１０３／５１との反応に関して、ウェスタンブロット解析で調べた。緩衝液Ａを用いて、陽性分画をＭｏｎｏＱ（５／５）カラムに装填した。緩衝液Ｂ（１００ｍＭ Ｔｒｉｓ／Ｃｌ、ｐＨ７．５、１Ｍ ＮａＣｌ、２ｍＭ ＥＤＴＡ、１Ｍ ＮａＣｌ、１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００）を用いて、結合タンパク質を直線勾配で溶出し、分画し、そしてクーマシー染色ＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびウェスタンブロット解析で調べた。陽性バンドをゲルから切り出し、そして配列決定するか、またはマウス免疫に用いた。

ＭＡＬＤＩペプチドマッピング
目的のバンドを切除し、そして約１ｍｍｘ１ｍｍの小片に切った。別の箇所に記載されるように（Ｓｈｅｖｃｈｅｎｋｏら， １９９６， Ａｎａｌ． Ｃｈｅｍ． ６８：８５０−８５８）、ゲル小片を洗浄し、ＤＴＴで還元し、ヨードアセトアミドでＳ−アルキル化し、そしてトリプシン（未修飾、配列決定等級、Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ）でゲル内消化した。３７℃で３時間消化した後、０．３μｌの消化溶液を取り除き、そして遅延引き出し機構（ｄｅｌａｙｅｄ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ）を備えたＢｒｕｋｅｒ反射ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ（Ｂｒｕｋｅｒ−Ｆｒａｎｚｅｎ、ドイツ・ブレーメン）上で、ＭＡＬＤＩペプチド・マスマッピングに供した。試料調製には、薄膜技術を採用した（Ｊｅｎｓｅｎら， １９９６， Ｒａｐｉｄ． Ｃｏｍｍｕｎ． Ｍａｓｓ． Ｓｐｅｃｔｒｏｍ． １０：１３７１−１３７８）。トリプシン・ペプチドマスを用い、自社開発したＰｅｐｔｉｄｅＳｅａｒｃｈソフトウェアプログラムによって、非重複タンパク質配列データベースを検索した。

ＣＦＲ−１アンチセンスベクターのクローニングおよびトランスフェクション
記載されるように（Ｈｅｎｓｅｌら， １９９９， Ｉｎｔ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ８１：２２９−２３５）、ＲＮＡ単離、ｃＤＮＡ合成、およびＰＣＲを行った。簡潔には、塩基対８０２〜１６９９の範囲の８９７ｂｐ断片を増幅するＰＣＲには、以下のプライマーを用いた：ＣＦＲ−Ｆｏｒ ５’ ＧＣＴＴＧＧＡＧＡＡＡＧＧＣＣＴＧＧＴＧＡＡ ３’、ＣＦＲ−Ｒｅｖ ５’ ＴＧＧＣＡＣＴＴＧＣＧＧＴＡＣＡＧＧＡＣＡＧ ３’。以下の周期プロフィールを用いて増幅を行った：９５℃２分間、その後、３５周期の９４℃３０秒間；６０℃３０秒間；７２℃６０秒間、および７２℃４分間の最終伸長。前述のように（Ｈｅｎｓｅｌら， １９９９， Ｉｎｔ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ８１：２２９−２３５）、ｐＣＲ−Ｓｃｒｉｐｔ Ａｍｐ ＳＫ（＋）ベクターへのクローニングおよびＤＮＡ配列決定を行った。挿入物をｐＨｏｏｋ−２ベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、オランダ・リーク）にサブクローニングし、そして再び、配列決定によって、クローニングを管理した。

供給者のマニュアルにしたがい、ＰｒｉｍｅＦｅｃｔｏｒ試薬（ＰＱＬａｂ、ドイツ・エルランゲン）を用いて、ｐＨＯＯＫ２−抗ＣＦＲ−１での細胞株２３１３２のトランスフェクションを達成した。簡潔には、プラスミドＤＮＡを１０μｇ／ｍｌに希釈し、そして１：１０の比で、プライム因子試薬を血清不含増殖培地に添加した。希釈したプラスミドＤＮＡ（４５０μｌ）、希釈したＰｒｉｍｅｆｅｃｔｏｒ試薬（９０μｌ）、および血清不含培地（４６０μｌ）を混合し、そして室温でインキュベーションした。６０ミリリットル細胞培養プレート（７０％集密）を血清不含培地で２回洗浄し、そしてその後、ＰｒｉｍｅＦｅｃｔｏｒ／ＤＮＡ混合物を一滴ずつ添加した。３７℃および７％ＣＯ_２で１８時間、細胞をインキュベーションし、その後、血清不含増殖培地を、１０％ＦＣＳを含有する増殖培地と交換し、そしてＣＦＲ−１発現を調べる前に、細胞をさらに２４時間インキュベーションした。

フローサイトメトリー
トランスフェクション４８時間後、トリプシン／ＥＤＴＡによって細胞株２３１３２を培養プレートから剥離し、洗浄し、そして続いて、抗体１０３／５１およびヒト・アイソタイプマッチ対照抗体（Ｃｈｒｏｍｏｐｕｒｅ、ヒトＩｇＭ）とともに、氷上で１５分間インキュベーションし、その後、ＦＩＴＣ標識ウサギ抗ヒトＩｇＭ抗体（Ｄｉａｎｏｖａ）とともに、氷上で１５分間インキュベーションした。０．０１％アジ化ナトリウムを含有するＰＢＳ中で、抗体を最適に希釈した。フローサイトメトリー（ＦＡＣＳｃａｎ；Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ、米国）によって細胞を解析した。

グリコシダーゼアッセイ
剥離し、そして洗浄した細胞を、１０％ＦＣＳを含有するＲＰＭＩ−１６４０に再懸濁し、そして氷上で１時間インキュベーションし、その後、計数し、そしてサイトスピンを調製した。風乾後、サイトスピン調製物をアセトン固定し（１０分間）、洗浄し、そして２０μＵ／ｍｌ Ｏ−グリコシダーゼまたは５ｍＵ／ｍｌ Ｎ−グリコシダーゼ（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ）とともに、３７℃で４時間インキュベーションした。その後、スライドを洗浄し、そして免疫組織化学的に染色した。

膜タンパク質の脱グリコシル化のため、脱グリコシル化緩衝液（５０ｍＭ ＰＯ_４緩衝液、ｐＨ７．４）中で希釈した１ｍＵ／ｍｌ Ｎ−グリコシダーゼとともに、膜抽出物を、３７℃で１６時間インキュベーションした。対照実験として、脱グリコシル化緩衝液のみと抽出物をインキュベーションした。その後、上述のように、ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって抽出物を分離し、そしてウェスタンブロットを行った。

ネズミモノクローナル抗体の産生
抗体１０３／５１の精製抗原５μｇを用いて、ＢＡＬＢ／ｃマウスを１７日以内に２回免疫し、そして第二の免疫の４日後に殺した。先に記載されるように（Ｖｏｌｌｍｅｒｓら， １９８５， Ｃｅｌｌ ４０：５４７−５５７）、脾臓を機械的に破壊し、そして１ｘ１０^７のＮＳ０細胞と融合させた。免疫組織化学染色およびウェスタンブロット解析における反応によって、抗体産生ハイブリドーマを試験した。陽性に反応するクローン５８／４７−６９をさらなる実験に用いた。

パラフィン切片の免疫組織化学染色
パラフィン包埋したヒト胃粘膜および腫瘍の切片を作成し（５μｍ）、脱パラフィン処理し、そしてＰＢＳで希釈したＢＳＡ（１５ｍｇ／ｍｌ）で３０分間ブロッキングした。ハイブリドーマ１０３／５１、または５８／４７−６９の上清、ＢＳＡ／ＰＢＳ（Ｄａｋｏ、ドイツ・ハンブルグ）で１：１５に希釈した、Ｋｉ６７（Ｌｏｘｏ、ドイツ・ドッセンハイム）またはマウス抗サイトケラチン８抗体とともに、切片を、加湿インキュベーター中で２時間インキュベーションした。その後、これらをＴｒｉｓ／ＮａＣｌで３回洗浄し、その後、ウサギ血清を含有するＰＢＳ（抗体１０３／５１）中、またはヒトＡＢ血漿を含有するＰＢＳ（抗体５８／４７−６９および抗サイトケラチン）中で、１：５０に希釈したペルオキシダーゼ標識ウサギ抗ヒトコンジュゲートまたはウサギ抗マウスコンジュゲート（Ｄａｋｏ）とともにインキュベーションした。Ｔｒｉｓ／ＮａＣｌで３回洗浄し、そしてＰＢＳ中で１０分間インキュベーションした後、ジアミノベンジジン（０．０５％）−過酸化水素（０．０２％）を用いて室温で１０分間染色した。流水下で反応を停止し、そして切片をヘマトキシリンで対比染色した。

生存細胞およびアセトン固定細胞の免疫組織化学染色
生存細胞染色のため、細胞を剥離し、洗浄し、そして１ｘ１０^６細胞／ｍｌに希釈した。１ｍｌの細胞懸濁物を１，５００ｇで５分間遠心分離した。完全ＲＰＭＩで４０μｇ／ｍｌに希釈した抗体を、最終体積１ｍｌまで添加し、そして氷上で９０分間インキュベーションした。その後、１，５００ｇで５分間遠心分離して細胞をペレットにし、そして５００μｌのＲＰＭＩに再懸濁した。細胞懸濁物２００μｌを用いてサイトスピン調製物を調製し、そして３０分間風乾した。細胞をアセトン中で３０分間固定し、そしてＴｒｉｓ／ＮａＣｌで３回洗浄した。ＨＲＰ結合ウサギ抗ヒトＩｇＭ（ＤＡＫＯ）をＰＢＳ／ＢＳＡ（０．１％）で１：５０に希釈し、そして室温で３０分間インキュベーションした。３回洗浄した後、上述のように染色を行った。

アセトン固定細胞の染色には、上述のように、サイトスピンを調製し、室温で風乾し、そしてアセトン中で固定した。その後、サイトスピンをＰＢＳ／ＢＳＡ（０．１％）で１５分間ブロッキングし、そして１０μｇ／ｍｌの一次抗体で３０分間インキュベーションした後、３回洗浄した。二次抗体でのインキュベーションおよび染色を、上述のように行った。

ＭＴＴ増殖アッセイ
樹立細胞株２３１３２を用いたＭＴＴアッセイを、記載されるように（Ｖｏｌｌｍｅｒｓら， １９９４， Ｃａｎｃｅｒ ７４：１５２５−１５３２）行った。簡潔には、トリプシン処理した細胞を、完全増殖培地中、１ｘ１０^６細胞／ｍｌに希釈し、そして細胞懸濁物５０μｌを９６ウェルプレートの各ウェルに添加した。その後、完全増殖培地を用いて、示した濃度に希釈した抗体５０μｌをウェルに添加し、そしてプレートを３７℃で１〜２日間、加湿インキュベーター中でインキュベーションした。測定のため、５０μｌのＭＴＴ（３（４，５ジメチルチアゾール）−２，５ジフェニルテトラゾリウムブロミド）溶液（５ｍｇ／ｍｌ）を各ウェルに添加し、そしてプレートを３０分間インキュベーションした。インキュベーション後、プレートを８００ｇで５分間遠心分離し、ＭＴＴ溶液を取り除き、染色した細胞ペレットを１５０μｌジメチルスルホキシドに溶解し、そして５４０ｎｍおよび６９０ｎｍの波長で、吸収を測定した。

ＣＦＲ−１の配列を決定する方法
ｃＤＮＡを合成するため、ＱｉａｇｅｎのＲＮｅａｓｙキットの補助によってＲＮＡを調製した。調製のため、１ｘ１０^６細胞を、氷冷ＰＢＳで２回洗浄し、そして１０００ｘｇで５分間遠心分離してペレットにし、そして製造者の説明にしたがってＲＮＡを調製した。５μｇのＲＮＡ（１〜５μｌ溶液）を１μｌのオリゴ−ｄＴ_１５（１μｇ／μｌ）および２μｌのランダムプライマー（４０μＭ）と混合し、そしてＨ_２Ｏを用いて８μｌの総体積にした。６５℃で１０分間、ＲＮＡを変性し、そして続いて試料を氷上で冷却した。その後、５．２μｌのＤＥＰＣ−Ｈ_２Ｏ、５μｌの５ｘ逆転写酵素緩衝液、２．５μｌのｄＮＴＰ（１０ｍＭあたり）、２．５μｌのＤＴＴ（２５０ｍＭ）、０．８μｌのＲＮａｓｉｎ（４００Ｕ）、および１μｌのＭ−ＭＬＶ逆転写酵素（２００Ｕ）からなる１７μｌのマスターミックスをピペットで添加した。３７℃で７０分間、ｃＤＮＡ合成を行い、そして続いて、９５℃に５分間加熱することによって、合成を終結させた。１〜５μｌのｃＤＮＡをＰＣＲマスターミックスと混合し、そしてＨ_２Ｏを用いて２５μｌの総体積にした。ＰＣＲマスターミックスは、２．５μｌの１０ｘＴａｑポリメラーゼ緩衝液、０．５μｌの１０ｍＭ ＮＴＰ、１．５〜２μｌの２５ｍＭのＭｇＣｌ_２、各０．５μｌの２０ｐＭ ３’プライマーおよび５’プライマー、並びに０．２μｌのＴａｑポリメラーゼ（１Ｕ）からなった。多様なＰＣＲ産物の増幅条件を以下の表に列挙する。

多様なｃＤＮＡの増幅に用いたＰＣＲプログラムの概観

プライマー配列
ＰＣＲに用いたオリゴヌクレオチドの配列

Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社の配列決定装置を用いて、配列決定を行った。クローニングしたＰＣＲ産物を配列決定するのに、以下のオリゴを用いた：

プラスミドＤＮＡ ３μｌを、プライマー１μｌ（３．２ｐＭ）、Ｈ_２Ｏ １１μｌ、およびＡｂｉＰｒｉｓｍ配列決定キットの反応混合物５μｌと混合し、そして以下のパラメーター：

を用いて、サーモサイクラー中で２５周期インキュベーションした。
オリゴおよびｄＮＴＰを除去するため、Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−５０カラムを通過させて反応混合物を精製した。この目的のため、１００μｌピペットチップの上端までカラム材料を装填し、そして２０００ｘｇで３分間遠心分離した。続いて、試料を適用し、そしてこの小カラムを再び遠心分離した。その後、２μｌ酢酸ナトリウム（ｐＨ５．２）および５０μｌ １００％エタノールによってＤＮＡを沈殿させ、そして１３，０００ｘｇで１５分間遠心分離することによってペレットにした。乾燥後、ＤＮＡを３μｌホルムアミド／２５ｍＭ ＥＤＴＡ（５：１）に入れ、そして配列決定装置中で解析した。

配列決定解析
すべてのクローニングから、少なくとも５クローンを配列決定した。Ｔａｑポリメラーゼを用いた増幅中および／または配列決定中に生じるエラーを除去するため、Ｗｉｎｄｏｗｓ用のＤＮＡｓｉｓソフトウェアの補助によって、クローニングしたＰＣＲ断片の配列を互いに比較し、そして両方の読み取り方向から、すべてのクローンのコンセンサス配列を確証した。ＤＮＡ配列をアミノ酸配列に書き直すことによって、サイレント突然変異の数およびアミノ酸置換突然変異の数を決定した。ＭＧ１６０およびＣＦＲの配列をＮＣＢＩデータバンクから得て、そしてＷｉｎｄｏｗｓ用のＤＮＡｓｉｓプログラムを用いて、配列決定したＰＣＲ産物の配列と比較した。

表
表１：異なる組織と抗体１０３／５１の反応パターン
抗体染色を以下のようにスコア付けした：−＝染色なし、＋＝中程度の染色、＋＋＝強い染色。ＨＣＣ＝肝細胞癌、^１増殖領域、腺小窩（ｇｌａｎｄｕｌａｒ ｆｏｖｅｏｌａ）、^２球状帯、索状帯（膜染色）、^３小胞体の集合管。
付属書類Ａ
付属書類Ｂ
付属書類Ｓ：既に公表されているＣＦＲ−１およびＭＧ１６０の配列に対する、細胞株２３１３２から得たＣＦＲ−１のアミノ酸配列の比較。

これらの実験的比較は主に、細胞株２３１３２から得たＣＦＲ−１タンパク質が、先に知られていたＣＦＲ−１配列と同一でなく、そのアイソフォームに相当することを示す。先に知られ、そして公表されていたＣＦＲ−１およびＭＧ１６０に関連する相違に加えて、該アミノ酸配列は、広く請求する受容体の特別の態様とみなされ、そして初めて、そして特別に同定された位置によって固有に特徴付けられる。

結果
抗原１０３／５１の精製および同定
ウェスタンブロット解析を用いて、抗体１０３／５１が胃癌細胞上のおよそ１３０ｋＤ膜タンパク質に結合することが示された。我々は、サイズ排除クロマトグラフィーおよび陰イオン交換クロマトグラフィーを連続して行って、このタンパク質を前精製した（図１ａ）。クーマシー染色した分離用ＳＤＳ−ＰＡＧＥからこのタンパク質を切除し、一部をマウスモノクローナル抗体の産生に用い（以下を参照されたい）、そして一部を、Ｓｈｅｖｃｈｅｎｋｏら（１９９６， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ． ９３：１４４４０−１４４４５）に概略される方法を用いて、タンパク質を同定するのに用いた。トリプシンで３時間、ゲル内消化した後、総消化体積の約１％を取り除き、そして高マス精度ＭＡＬＤＩペプチド・マスマッピングに供した（消化物の残りは、ＭＡＬＤＩ ＭＳが明確な同定につながらなかった場合に備え、ナノエレクトロスプレー解析のために取り置いた）。ＭＡＬＤＩ解析には、タンパク質消化物のフェントモル量を消費したが、それにもかかわらず、データベース検索によって、マス精度５０ｐｐｍ以内で、３５ペプチドがＣＦＲ−１配列にマッチした。これらのペプチドは、ＣＦＲ−１配列の２９％の範囲に渡り、したがって、およそ１３４ｋＤの計算分子量を有する該タンパク質を明確に同定した（Ｂｕｒｒｕｓら， １９９２， Ｍｏｌ． Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ． １２：５６００−５６０９）（図１ｂ）。

抗体１０３／５１の結合および生存細胞染色に対する、ＣＦＲアンチセンスベクターでの細胞株２３１３２の一過性トランスフェクションの影響
免疫組織化学およびフローサイトメトリーを用いて、胃癌細胞株２３１３２のアンチセンストランスフェクションの影響を調べた。これを行うため、８０２および１６９９塩基対の間の領域に隣接するＣＦＲの８９７ｂｐのＰＣＲ断片を、ＣＭＶプロモーターに対してアンチセンス方向で、ｐＨＯＯＫ−２ベクターにクローニングした。中間工程で、洗浄した細胞をｐＨＯＯＫ−ＣＦＲアンチセンスベクター、ｐＨＯＯＫ−ｌａｃＺ、およびｐＨＯＯＫベクターでトランスフェクションした。トランスフェクションは、β−ガラクトシダーゼアッセイによって管理した（データ未提示）。トランスフェクション４８時間後、サイトスピン調製物を調製し、そして抗体１０３／５１および対照としての抗サイトケラチン１８で染色した（データ未提示）。

免疫組織化学によって、モックトランスフェクション細胞と比較して、ｐＨＯＯＫ−ＣＦＲアンチセンスベクターでトランスフェクションした細胞において、染色の明らかな減少が示された（図２ａ〜ｂ）。これによって、抗体１０３／５１がＣＦＲ−１に結合することが確認された。どちらの染色にも見られた、細胞質のわずかな染色は、アセトン固定細胞に対するヒトＩｇＭ抗体での染色でしばしば観察される非特異的結合のためである可能性がある。また、膜発現およびトランスフェクションの影響をフローサイトメトリーによっても試験した（図２ｇ〜ｉ）。データによって、ＣＦＲ−１アンチセンスベクターで細胞をトランスフェクションした後、抗体１０３／５１の結合が減少することが示される。しかし、未処理細胞または対照ベクターｐＨＯＯＫ−２でトランスフェクションした細胞は、細胞株２３１３２に明らかな結合を示し、該細胞膜上でＣＦＲ−１が発現していることが示される。

ＣＦＲ−１アイソフォームの特定の膜分布を調べるため、細胞株２３１３２およびいくつかの非胃癌細胞株を用いて生存細胞染色を行った。細胞株２３１３２に対しては明らかな染色が見られた（図２ｃ、ｄ）が、ヒト肺腺癌細胞株Ｃｏｌｏ−６９９（図２ｅ、ｆ）およびヒト類表皮肺癌細胞株ＥＰＬＣ−２７２Ｈ（データ未提示）は、明らかに陰性であった。このデータによって、記載するＣＦＲ−１アイソフォームがすべての癌性細胞株に発現されているのではなく、そして２３１３２細胞に限定された膜染色によって、このＣＦＲ−１アイソフォームが、これまでにＣＦＲ−１に関して記載されてきたものとは異なる分布を有するようであることが示される。

グリコシダーゼアッセイ
ＣＦＲ−１は、５つのありうるＮ−グリコシル化部位を持つシアロ糖タンパク質であり、そしてグリコシダーゼＦでの処理によって、この分子がこれらの部位でグリコシル化されていることが示されている（Ｓｔｅｅｇｍａｉｅｒら， １９９５， Ｎａｔｕｒｅ ３７３：６１５−６２０）。腫瘍反応性抗体はしばしば、炭水化物残基と反応するため、抗体１０３／５１の場合もそうであるかどうかを調べた。細胞株２３１３２のサイトスピン調製物を、Ｏ−グリコシダーゼおよびＮ−グリコシダーゼとともに４時間インキュベーションし、そしてその後、抗体１０３／５１を用いた免疫組織化学染色に供した。Ｎ−グリコシダーゼで細胞を処理すると、１０３／５１染色の劇的な減少が導かれた（図３ｂ）が、脱リン酸化緩衝液（図３ａ）とのインキュベーション、またはＯ−グリコシダーゼでの消化（データ未提示）は、抗体１０３／５１の結合に影響を持たなかった。これによって、抗体１０３／５１結合の特異性は、糖残基に位置付けられるはずであり、そして一次タンパク質配列には位置付けられないことが示される。

この効果をさらに管理するため、細胞株２３１３２の膜抽出物を１６時間、脱グリコシル化し、そしてウェスタンブロットを調製して、そして抗体１０３／５１で染色した。対照溶解物に比較して、Ｎ−グリコシダーゼとインキュベーションした溶解物に対する反応には、減少が見られた（図３ｃ）。

ネズミ抗体の産生および胃腺癌のパラフィン切片の免疫組織化学染色
ＣＦＲ−１に対する商業的な抗体は入手不能であるため、特異性が強化され、そしてＣＦＲ−１発現をさらに性質決定するモノクローナル抗体を産生するために、クーマシー染色ＳＤＳ−ゲルから溶出した精製タンパク質を用いて、マウスを免疫した。ヘテロ骨髄腫（ｈｅｔｅｒｏｍｙｅｌｏｍａ）ＮＳ０と融合することによって、脾臓細胞を不死化した。免疫組織化学染色に関して、１５０のクローンを試験した。陽性クローンを再度クローニングし、そしてさらなる性質決定には、クローン５８／４７−４９（ＩｇＭ）を用いた。ヒト抗体１０３／５１およびネズミ抗体５８／４７−６９の結合特性を調べるため、１５の異なる胃腺癌および１つの腺腫のパラフィン切片を染色した。正常上皮組織の腺細胞の同一の染色、および癌細胞の強い染色が見られた（図４）。簡潔には、初期癌（ｎ＝２）は、どちらの抗体でも染色された。腸型癌腫に対しては、どちらの抗体も５つの症例のうち４つを染色し、散在型癌に対しては、すべての症例（ｎ＝４）が染色され、そして中間型は、どちらの抗体を用いても５０％（ｎ＝４）が陽性であった。これらの結果によって、胃癌の大部分の症例で、ＣＦＲ−１が高発現されていることが示される。調べた腺腫は、異なる染色パターンを示し、陽性細胞は、正常細胞から形質転換細胞への推移中にのみ見られた。

胃粘膜に対する抗体１０３／５１での免疫組織化学染色
胃粘膜に対する抗体１０３／５１の反応パターンを、より詳細に調べるため、炎症を伴わない胃組織、Ｈ．ピロリ関連慢性活性胃炎、高い等級の形成異常および胃腺癌に対して、免疫組織化学染色を行った。非炎症胃組織に対しては、反応は見られなかった（図５）。しかし、Ｈ．ピロリ胃炎患者の粘膜では、主に小窩細胞の基底領域に染色が見られた。抗体１０３／５１の染色パターンは、Ｋｉ６７染色によって示される活性化パターンと強い相関を示す（Ｒａｍｉｒｅｓら， １９９７， Ｊ． Ｐａｔｈｏｌ． １８２：６２−６５）。胃形成異常の増殖領域で、抗体１０３／５１のより強い染色が見られ、これもまた、Ｋｉ６７染色と相関していた。最も強い染色は、胃腺癌の増殖領域で見られた。

異なる組織に対する抗体１０３／５１および５８／４７−６９の免疫組織化学染色
抗体１０３／５１および５８／４７−６９を用いた、パラフィン切片の免疫組織化学染色によって、他の癌性組織および正常組織におけるＣＦＲ−１の発現を調べた。１５の癌性組織（胃癌とは異なる）のうち、抗体１０３／５１は１３の症例で染色を示した（図６、表１ａ）。肺の未分化（ａｎａｐｌａｓｔｉｃ）細胞に対しては陰性染色が観察され、これによって、免疫組織化学染色、並びに細胞株Ｃｏｌｏ−６９９およびＥＰＬＣ−２７２Ｈを用いたＭＴＴアッセイ由来の結果が確認された。このデータによって、ＣＦＲ−１の過剰発現および悪性形質転換細胞の細胞膜への分布が示される。試験した２８の正常組織上で、発現は、３つの腸臓器上のみに限定されていた（表１ｂ）。胃の腺小窩、並びに副腎の球状帯および索状帯上で膜染色が観察され、一方、腎臓の集合管ではゴルジ体の染色が見られた（図５）。これによってさらに、この抗原が、Ｂｕｒｒｕｓら（１９９２， Ｍｏｌ． Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ． １２：５６００−５６０９）に先に記載されているＣＦＲ−１と性質決定されることが確かめられた。

ヒトおよびネズミモノクローナル抗体での刺激
我々の先の刊行物（Ｖｏｌｌｍｅｒｓら， １９９４， Ｃａｎｃｅｒ ７４：１５２５−１５３２；Ｈｅｎｓｅｌら， １９９９， Ｉｎｔ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ８１：２２９−２３５）に記載するように、抗体１０３／５１は、ｉｎ ｖｉｔｒｏで細胞株２３１３２の刺激を導く。抗体１０３／５１でのこの刺激を、増殖の標準的なアッセイであるミトコンドリア・ヒドロキシラーゼアッセイ（ＭＴＴ）を用いて測定した（Ｃａｒｍｉｃｈａｅｌら， １９８７， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ４７：９３６−９４２）。抗体１０３／５１の刺激特性をさらに調べるため、細胞株２３１３２を多様な濃度の精製抗体とインキュベーションした。濃度依存刺激が見られ、最大活性は４μｇ／ｍｌで見られた（図７ａ）。濃度がこれより高いと、刺激のわずかな減少が示された。

ネズミ抗体５８／４７−６９が細胞増殖に同じ影響を有するかどうか試験するため、同程度の量の精製抗体を用いて、ＭＴＴ刺激アッセイを行った。図７ｂに見られるように、どちらの抗体もｉｎ ｖｉｔｒｏで細胞株２３１３２の刺激を導く。このことによって、どちらの抗体も同一の特異性を有することがさらに確認される。

抗体１０３／５１およびネズミ抗体５８／４７−６９の刺激がＣＦＲ−１への結合によって仲介されていることを確認するため、対照ベクターｐＨＯＯＫ−２およびＣＦＲ−１アンチセンスベクターで細胞をトランスフェクションし、そしてＭＴＴアッセイにおいて、トランスフェクション細胞を試験した。トランスフェクションの陽性対照として、細胞をまた、ｐＨＯＯＫ−２−ｌａｃＺベクターでもトランスフェクションし、その後、βガラクトシダーゼ染色した（データ未提示）。非トランスフェクション細胞および対照ベクターｐＨＯＯＫ−２でトランスフェクションした細胞で、同程度の刺激が観察されたため、トランスフェクション法によって両抗体の刺激効果が減少した可能性は排除される。対照的に、ＣＦＲ−１アンチセンスベクターでトランスフェクションした細胞は、明らかに、刺激の減少を示した（図７ｃ）。

最後に、抗体１０３／５１による刺激が、ＣＦＲ−１以外の受容体によって仲介されているのではないことを立証するため、細胞株２３１３２を用いてＭＴＴ刺激アッセイを行い、そしてこれをＣＦＲ−１陰性肺癌細胞株Ｃｏｌｏ−６９９およびＥＰＬＣ−２７２Ｈと比較した。細胞株２３１３２は上述のように刺激されるが、２つの肺癌細胞株は、抗体１０３／５１によるいかなる刺激も示さず（図７ｄ）、免疫組織化学で観察された結果が確認される。

抗体１０３／５１の抗原の同定を示す。ａ）胃癌細胞株２３１３２の膜抽出物からの抗原タンパク質精製。膜分画をクロマトグラフィー法によってプロセシングし、そして全膜分画（レーン２）、または精製タンパク質（レーン３）をクーマシーで染色した（レーン１：１０ｋＤａラダー）。細胞株２３１３２の膜分画に対する抗体１０３／５１を用いたウェスタンブロット解析によって、およそ１３０ｋＤの分子量のタンパク質との単一の反応が示された（レーン４）。プロセシングした膜抽出物の特異性を、１０３／５１を用いたウェスタンブロッティング（レーン５）によって管理した。矢印で示すタンパク質バンドを分離用ゲルから切除し、そしてＭＡＬＤＩマスマッピングおよびマウスの免疫に用いた。ｂ）高分解能ＭＡＬＤＩペプチド・マスマッピングによる、ゲル分離された１３０ｋＤａタンパク質の同定。「^＊」で示したピークは、５０ｐｐｍより優れたマス精度で、Ｕ２８８１１ヒト・システインリッチ線維芽細胞増殖因子受容体（ＣＦＲ−１）のトリプシンペプチドの計算されたマスにマッチする。「Ｔ」で示したピークは、トリプシン自己分解産物に対応する。挿入図は、ｍ／ｚ １７０７．８１８のピークのマス解像度（ｍ／Δｍ＝９０００）を示す。 抗体１０３／５１染色および生存細胞染色に対するＣＦＲ−１アンチセンストランスフェクションの影響（倍率２００ｘ）を示す。ａ）対照ベクターで一過性にトランスフェクションし、そしてアセトン固定した細胞株２３１３２は、抗体１０３／５１で強い染色を示す。ｂ）ＣＦＲ−１アンチセンスベクターで一過性にトランスフェクションした細胞では、染色の減少が見られる。ｃ）免疫組織化学染色において、バックグラウンド染色を減少させるため、細胞株２３１３２で生存細胞染色を行った。明らかな膜染色が見られる。ｄ）細胞株２３１３２に対する対照生存細胞染色（二次抗体のみ）。ｅ）抗体１０３／５１を用いた細胞株Ｃｏｌｏ−６９９に対する生存細胞染色が陰性であることによって、この細胞株がＣＦＲ−１発現に関して陰性であることが示される。ｆ）細胞株Ｃｏｌｏ−６９９に対する対照生存細胞染色（二次抗体のみ）。ｇ）抗体ＣｈｒｏｍｏｐｕｒｅヒトＩｇＭ（灰色）および１０３／５１を用いた細胞株２３１３２のフローサイトメトリー。ｈ）対照ベクターｐＨＯＯＫ−２でトランスフェクションした細胞の、フローサイトメトリーを用いた、トランスフェクション４８時間後の解析。ｉ）ＣＦＲ−１アンチセンスベクターでトランスフェクションした細胞は、抗体１０３／５１結合の明らかな減少を示す。 抗体１０３／５１を用いた染色に対する脱グリコシル化の影響を示す。ａ）脱グリコシル化緩衝液でインキュベーションし、そしてアセトン固定した細胞（２３１３２）は、抗体１０３／５１で強い染色を示す。ｂ）Ｎ−グリコシダーゼで処理し、その後、アセトン固定した細胞（２３１３２）は、染色の明らかな減少を示す。ｃ）ウェスタンブロット解析における抗体１０３／５１との反応に対する、細胞株２３１３２の膜抽出物の脱グリコシル化の影響。脱グリコシル化緩衝液（緩衝液）で１６時間インキュベーションした抽出物は、染色に関して、未処理抽出物（対照）といかなる相違も示さない。Ｎ−グリコシダーゼとインキュベーションすると、染色が明らかに減少する（Ｎ−グリコ）。 胃腺癌に対する、ネズミ抗体５８／４７−６９および１０３／５１での免疫組織化学染色を示す。抗体１０３／５１およびネズミ抗体５８／４７−６９の特異性が同一であることを示すため、散在型胃腺癌を、ヘマトキシリン−エオジン（ａ）、抗体１０３／５１（ｂ）および５８／４７−６９（ｃ）、および陽性対照としての抗サイトケラチン１８で染色した。（ｃ）および（ｄ）の染色が同一であることは、特異性が同一であることを示す（矢印＝腫瘍細胞）。 異なる胃組織に対する抗体１０３／５１の免疫組織化学染色を示す。胃組織の凍結切片を、ＨＥ、抗体Ｋｉ６７（増殖している細胞を示すための抗体）および抗体１０３／５１によって染色した（倍率ｘ１００）。ａ）炎症を起こした胃組織、ｂ）Ｈ．ピロリが誘導した胃炎（挿入図は、示した腺の拡大図を示す）、ｃ）形成異常、ｄ）胃腺癌。 異なる癌性組織および正常組織に対する、抗体１０３／５１での免疫組織化学染色を示す。以下の組織に対する抗体１０３／５１の染色を示す：ファーター膨大部の癌腫（ａ）、乳癌浸潤小葉（ｂ）、結腸の腺癌、および染色されない結腸の正常ビーカー状細胞上皮（ｃ）、肝細胞癌（ｄ）、副腎の球状帯および索状帯（ｅ）、ゴルジ体の腎臓特異的染色の集合管（矢印）（ｆ）。ａ〜ｄの矢印は腫瘍細胞を示し、（ｃ）の赤い矢印はビーカー状細胞であり、（ｆ）の矢印はゴルジ体を示す（倍率は、（ｇ）が２００ｘである以外、４００ｘ）。 比色ＭＴＴアッセイによって測定される抗体１０３／５１および５８／４７−６９を用いた細胞株の刺激を示す。ａ）精製抗体１０３／５１を用いた抗体価測定（ｔｉｔｒａｔｉｏｎ）によって、４μｇ／ｍｌまでの刺激の増加が示される。より高い濃度は、より高い刺激にはつながらない（ｃ＝対照、抗体を添加しない）。ｂ）等濃度（４μｇ／ｍｌ）の精製抗体１０３／５１および５８／４７−６９を用いたＭＴＴアッセイによって、インキュベーション１〜２日後、腫瘍細胞２３１３２の同程度の刺激が示される（対照１＝ｃｈｒｏｍｏｐｕｒｅヒトＩｇＭ、対照２、相関しないマウスＩｇＭ）。ｃ）細胞株２３１３２を対照ベクターｐＨＯＯＫ−２またはＣＦＲ−１アンチセンスベクターで一過性にトランスフェクションし、２４時間インキュベーションし、そして４μｇ／ｍｌの精製抗体１０３／５１で２４時間刺激した後、ＭＴＴアッセイで試験した。トランスフェクションしていない細胞もまた、対照としてインキュベーションした（対照、相関しないヒトＩｇＭ）。ｄ）異なる上皮腫瘍細胞株に対して、等濃度（４μｇ／ｍｌ）の抗体１０３／５１を用いたＭＴＴ−アッセイによって、抗体添加２４時間後、ＣＦＲ−１陽性細胞株２３１３２に対してのみ、刺激が示される。ＣＦＲ−１陰性細胞株Ｃｏｌｏ−６９９およびＥＰＬＣ−２７２Ｈは、抗体１０３／５１によるいかなる刺激も示さない。

【配列表】

Claims (16)

1. 非常に増殖している細胞、特に胃癌細胞の表面膜上の、糖タンパク質で構成される受容体であって、
   該糖タンパク質の少なくとも１つの決定基が、ＣＦＲ−１タンパク質の決定基に対応し；そしてヒト抗体１０３／５１および／またはネズミ抗体５８／４７−６９（ＩｇＭ）が該糖タンパク質に特異的に結合することで特徴付けられる、前記受容体。
2. 糖タンパク質上の特異的結合部位が、炭水化物残基（糖残基）であることで特徴付けられる、請求項１記載の受容体。
3. 糖タンパク質の一次アミノ酸配列が、ＣＦＲ−１のアミノ酸配列の少なくとも８０％に対応する（相同である）ことで特徴付けられる、請求項１記載の受容体。
4. 糖タンパク質の決定基が、付属書類Ｓ、細胞株２３１３２で再生される（ｒｅｐｒｏｄｕｃｅｄ）アミノ酸配列を有することで特徴付けられる、請求項１記載の受容体。
5. およそ１３０ｋＤの分子量によって特徴付けられる、請求項１〜４の１つに記載の受容体。
6. 受容体をｉｎ ｖｉｖｏで投与して、抗体形成を誘導することで特徴付けられる、先行する請求項の１つに記載の受容体の使用。
7. 受容体を疾病の発生前（予防のため）または発生とともに（療法のため）投与することで特徴付けられる、腫瘍治療のための、先行する請求項の１つに記載の受容体の使用。
8. 以下の腫瘍：食道、胃、腸、直腸、肝臓、胆嚢、膵臓、肺、気管支、乳房、頚部、前立腺、心臓、バレット、卵巣、および／または子宮の腫瘍の治療のための、先行する請求項の１つに記載の受容体の使用。
9. 以下の腫瘍前駆症：
   胃腫瘍の前駆症：
   −胃粘膜の形成異常（ｄｙｓｐｌａｓｉａ）
   −胃の腸化生（ｍｅｔａｐｌａｓｉａ）
   −ヘリコバクター・ピロリ（Ｈｅｌｉｃｏｂａｃｔｅｒ ｐｙｌｏｒｉ）関連胃炎
   −胃の管状腺腫および管状絨毛腺腫
   大腸腫瘍の前駆症：
   −結腸の管状腺腫
   −結腸の絨毛腺腫
   −潰瘍性大腸炎における形成異常
   食道における前駆症：
   −食道のバレット形成異常
   −食道のバレット化生
   頚部腫瘍の前駆症：
   −頚部上皮内新形成（ｎｅｏｐｌａｓｉａ）Ｉ
   −頚部上皮内新形成ＩＩ
   −頚部上皮内新形成ＩＩＩ
   肺腫瘍の前駆症：
   −気管支の扁平上皮化生
   −気管支の扁平上皮形成異常
   の治療のための、先行する請求項の１つに記載の受容体の使用。
10. 対応する抗体および／または受容体の存在、局在、および／または量に関する証拠が、抗体が受容体に結合する能力を介して得られることで特徴付けられる、診断目的のための、先行する請求項の１つに記載の受容体の使用。
11. 抗体が腫瘍抗体であることで特徴付けられる、請求項１０記載の使用。
12. 受容体が腫瘍マーカーであることで特徴付けられる、請求項１０記載の使用。
13. 先行する請求項の１つに記載の受容体を抽出する方法であって、以下の工程：
    ａ）ヒト腺癌細胞株２３１３２の細胞からの膜タンパク質の調製
    ｂ）サイズ排除クロマトグラフィーの実行および
    ｃ）陰イオン交換クロマトグラフィーの実行、並びに
    ｄ）分離用ＳＤＳ−ＰＡＧＥを通じた最終的な抽出
    によって特徴付けられる、前記方法。
14. 先行する請求項の１つに使用するためのネズミマウス抗体５８／４７−６９、および以下の特徴：
    重鎖可変部が付属書類Ａ記載のＩＧＨＶ １Ｓ １２５^＊０１に相同であり、ＤセグメントがＩＧＨＤ−ＳＴ ４^＊０１に相同であり、そしてＪセグメントがＩＧＨＪ４^＊０１に相同であり、そして軽鎖可変部が付属書類Ｂに記載の構造を有し、これがＩＧＫＶ−１７^＊０１に相同であり、ＪセグメントがＩＧＫＪ２^＊０１に相同であること
    によって特徴付けられる構造。
15. 先行する請求項の１つに記載の受容体を用いて、抗腫瘍剤を産生する方法であって、
    先行する請求項の１つに記載の受容体に特異的に結合する能力に関して、潜在的に抗腫瘍活性を持つ化合物を試験し、そして陽性結果の場合、薬剤投与のためにこの化合物を配合し、そしてこの目的のために典型的な添加剤とともに提供することで特徴付けられる、前記方法。
16. 請求項１５記載の受容体を用いて、抗腫瘍剤を産生する方法であって、
    化合物がヒト抗体および／またはマウス抗体および／またはヒト化マウス抗体および／またはＦａｂおよびＦ（ａｂ）_２およびＦａｂ’断片および／または一本鎖抗体および／または四量体および／または二量体抗体型および／または二特異性抗体であることで特徴付けられる、前記方法。

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