JP2005506052A

JP2005506052A - サイトカインタンパク質のファミリー

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Publication number: JP2005506052A
Application number: JP2002583602A
Authority: JP
Inventors: オー．シェパード，ポール; エー．フォックス，ブライアン; エム．クラッチャー，ケビン; ダブリュ．タフト，デイビッド; アール．カインズボーゲル，ウェイン
Original assignee: ザイモジェネティクス，インコーポレイティド
Priority date: 2001-04-20
Filing date: 2002-04-19
Publication date: 2005-03-03
Anticipated expiration: 2022-04-19
Also published as: ES2311622T3; DE60237791D1; CN1620510A; RU2003133748A; ATE482272T1; CA2441958A1; EP1501936A2; EP1501936A4; CN100482684C; DK1501936T3; EP1942187A1; WO2002086087A3; EP1501936B1; AU2002307510A1; ATE403726T1; CA2441958C; WO2002086087A2; RU2321594C2; EP1942187B1; JP4350950B2

Abstract

本発明は、アミノ酸配列レベルでインターフェロン−αに最も密接に関連する、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25のタンパク質についてのポリヌクレオチド及びポリペプチド分子に関する。このタンパク質ファミリーのための受容体は、クラスIIサイトカイン受容体である。本発明は、ウィルス感染を低め、そして単球計数を高める方法を包含する。本発明はまた、zcyto20ポリペプチドに対する抗体、及びポリヌクレオチド及びポリペプチドの生成方法を包含する。

Description

【技術分野】
【０００１】
【背景技術】
【０００２】
多細胞生物の細胞分化は、ホルモン及びポリペプチド成長因子により制御される。それらの拡散できる分子は、細胞によるお互いとの伝達、及び組織及び器官の形成に関しての細胞の作用、及び損傷を受けた組織の修復及び再生を可能にする。ホルモン及び成長因子の例は、中でも、ステロイドホルモン、副甲状腺ホルモン、卵胞刺激ホルモン、インターフェロン、インターロイキン、血小板由来の成長ホルモン、上皮成長因子及び顆粒状−マクロファージコロニー刺激因子を包含する。
【０００３】
ホルモン及び成長因子は、受容体タンパク質に結合することによって細胞代謝に影響を及ぼす。一定の受容体が、細胞外のホルモン又は成長因子を結合し、そして細胞内のシグナル経路、例えば“第２メッセンジャーシステムに結合される膜内在性タンパク質である。他の種類の受容体は可溶性細胞内分子である。
【０００４】
サイトカインは一般的に、造血系の細胞の増殖又は分化を刺激し、又は身体の免疫及び炎症応答に関係している。造血に影響を及ぼすサイトカインの例は、赤血球細胞の成長を刺激するエリトロポエチン（EPO）；巨核球系の細胞の成長を刺激するトロンボポエチン（TPO）；及び好中球の成長を刺激する顆粒球−刺激因子（G−CSF）である。それらのサイトカインは、貧血、血小板減少症及び好中球減少症を有する患者における正常な血液細胞レベルの回復、又は癌のための化学療法の受容において有用である。
【０００５】
サイトカインは、造血及び免疫応答の調節において重要な役割を演じ、そしてリンパ球成長に影響を及ぼすことができる。ヒトII型サイトカインファミリーは、インターフェロン−α（IFN−α）サブタイプ、インターフェロン−β（IFN−β）、インターロイキン−γ（IFN−γ）、IL−10、IL−19（アメリカ特許第5,985,614号）、MDA−７（Jiangなど., Oncogene 11、2477−2486（1995））、IL−20（Jiangなど., Oncogene 11, 2477-2486 (1995)）、IL−22（Xieなど., J. Biol. Chem. 275, 31335-31339 (2000)）、及びAK−155（Knappeなど., L. Virol. 74, 3881-3887 (2000)）を包含する。
【０００６】
ほとんどのサイトカインは、I型又はII型サイトカイン受容体を通してシグナルを結合し、そして形質導入する。ヒトII型サイトカイン受容体ファミリーのメンバーは、次のものを包含する：インターフェロンαR1（IFN−αR1）、インターフェロン−γ−R2（IFN−γ−R2）、インターフェロン−γR1（IFN−γR1）、インターフェロン−γR2（IFN−γR2）、IL−10R（Liuなど., J. Immunol. 152, 1821-1829 (1994)）、CRF2−4（Lutfallaなど., Genomics 16, 360-373 (1993)）、IL−20Rβ（Blumbergなど., Cell 104, 9-19 (2001)）(また、zcytor7 (アメリカ特許第5,945,511号) 及びCRF2−8（Kotenkoなど., Oncogene 19, 2557-1565 (2000) として知られている）、IL−20Rβ（Blumbergなど., 前記（2001））（また、DIRS1 (PCT WO99/46379号)としても知られている）、IL−22RA１（許可のためにHUGOに提供されているIL−22受容体−α１）（また、IL−22R（Xieなど., J. Biol. Chem. 275, 31335-31339 (1000) としても知られている）、Zcytor11（アメリカ特許第5,965,704号）、及びCRF2-9 (Kotenkoなど., Oncogene 19, 2557-2565 (2000))、並びに組織因子。
【０００７】
II型サイトカイン受容体は典型的には、２種の異なった受容体鎖、すなわちα及びβ受容体サブユニットから成るヘテロダイマーである（Stahlなど., Cell74, 587-590（1993））。一般的に、αサブユニットは、一次サイトカイン結合タンパク質であり、そしてβサブユニットは、高親和性結合部位の形成、及びシグナルトランスダクションのために必要とされる。例外は、両サブユニットがIL−20結合のために必要とされるIL−20である（Blumbergなど., 前記（2001））。
【０００８】
II型サイトカイン受容体は、受容体の細胞外部分における約200個のアミノ酸の保存されたサイトカイン−結合ドメイン（D200）により同定される。このサイトカイン−結合ドメインは、それぞれ約100個のアミノ酸の２種のフィブロネクチンIII型（Fn III）ドメインから構成される（Bazan J.F. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87, 6934-6938 (1990); Thoreauなど., FEBS Lett. 282, 16-31 (1991)）。個々のFn IIIドメインは、免疫グロブリンの不変ドメインに類似する７個のβ−鎖の特徴的な折りたたみパターンを決定する保存されたCys、Pro及びTrp残基を含む（Uzeなど., J. Interferon Cytokine Res. 15, 3-26 (1995)）。II型サイトカイン受容体ファミリーの保存された構造要素は、一次アミノ酸配列相同性に基づいて、このファミリーの新規メンバーの同定を可能にする。
【０００９】
これまで、本発明者は、II型サイトカイン受容体ファミリーの２種の新規メンバー、すなわちzcytor7（アメリカ特許第5,945,511号）（また、IL−20Rα（Blubergなど., 前記（2001）として知られている）、及びzcytor11（アメリカ特許第5,965,704号）（また、IL−22R（Blumbergなど., 前記（2001））としても知られている）を、このアプローチを用いて同定している。II型サイトカイン受容体ファミリーの追加の新規メンバーの同定は、サイトカインが生物学的応答の調節において重要な役割を演じるので、興味あることである。
【００１０】
IL−TIF（IL−10関連のT細胞−由来の誘発因子）としても知られているIL−22（Dumoutierなど., J. Immunology 164, 1814-1819 (2000)）は、最近記載されたIL−10相同体である。マウスIL−22は、T細胞及び肥満細胞においてインビトロでIL−９により誘発される遺伝子として本来、同定されている（Dumoutierなど., J. Immunology 164, 1814-1819 (2000)）。急性相反応体誘発活性が、IL−22注入に基づいてマウス肝臓において観察され、そしてIL−22発現は、リポ多糖（LPS）注入の後に急速に誘発され、このことは、IL−22がインビボで、炎症応答に寄与することを示唆する（Dumoutierなど., Pro. Natl. Acad. Sci. USA, 97, 10144-10149 (2000)）。
【００１１】
インターロイキンは、炎症を包含する免疫学的応答を仲介するサイトカインのファミリーである。インターロイキンは、種々の炎症病理学を仲介する。免疫応答の中枢は、抗原に対して多くのサイトカイン及び適応免疫性を誘発するT細胞である。T細胞により生成されるサイトカインは、タイプ１及びタイプ２として分類されて来た（Kelso, A. Immun. Cell Biol. 76: 300-317, 1998）。タイプ１サイトカインは、IL−２、IFN−γ、IT−αを包含し、そして炎症応答、ウィルス免疫性、細胞内寄生体免疫性及び同種移植片拒絶に包含される。タイプ２サイトカインは、IL−４、IL−５、IL−６、IL−10及びIL−13を包含し、そして体液性応答、寄生虫免疫性及びアレルギー応答に包含される。タイプ１とタイプ２との間の共有されるサイトカインは、IL−３、GM−CSF及びINF−αを包含する。タイプ１及びタイプ２生成T細胞集団は、異なったタイプの炎症組織中に選択的に移動する。
【００１２】
治療的観点から、インターフェロンは特に興味あるものである（インターフェロンに関する再考は、De Maeyer and De Maeyer-Guignard, “Interferons” in The Cytokine Handbook, 3^rd Edition, Thompson (ed.), Pages 491-516 (Academic Press Ltd. 1998)、及びWalsh, Biopharmaceuticals: Biochemistry and Biotechnology, Pages 158-188 (John Wiley & Sons 1998)により提供される）。インターフェロンは、種々の生物学的生活を示し、そして一定の自己免疫疾患、特定の癌の処理、及び感染剤、例えばウィルス、細菌、菌類及び原生動物に対する免疫応答の増強のために有用である。今日まで、６種の形のインターフェロンが同定されており、それらは２種の腫瘍グループに分類されている。いわゆる、“Ｉ型”インターフェロンは、インターフェロン−α、インターフェロン−β、インターフェロン−ω、インターフェロン−δ及びインターフェロンτを包含する。現在、インターフェロンγ及び1つのサブクラスのインターフェロン−αは唯一II型インターフェロンである。
【００１３】
同じ先祖の遺伝子に由来すると思われるＩ型インターフェロンは、同じ細胞表面受容体により作用するのに十分な類似する構造を保持している。ヒトインターフェロン−α/β受容体のα−鎖は、II型サイトカイン受容体の特徴を有する細胞外N−末端ドメインを含む。インターフェロン−γは、I型インターフェロン又はII型インターフェロン−αサブタイプと有意な相同性を共有しないが、しかしI型インターフェロンと多くの生物学的活性を共有する。
【００１４】
ヒトにおいては、少なくとも16種の非対立遺伝子が異なったサブタイプのインターフェロン−αをコードし、そしてインターフェロン−β及びωは、単一の遺伝子によりコードされる。I型インターフェロン遺伝子は染色体９の短いアームにおいて群れをなしている。典型的なヒト構造遺伝子とは異なって、インターフェロン−α、インターフェロン−β及びインターフェロン−ωはイントロンを欠いている。ヒトインターフェロン−γのための単一の遺伝子が染色体12上に位置し、そして３個のイントロンを含む。今日まで、インターフェロン−τは家畜及び羊においてのみ記載されており、そしてインターフェロン−δは、ブタにおいてのみ記載されて来た。
【００１５】
臨床医は、広範囲の病状を処理するために、タンパク質を用いることによってインターフェロンの複数の活性を利用することができる。例えば、1つの形のインターフェロン−αは、医学的な状態、例えば毛細胞白血病、腎細胞癌、基底細胞癌、悪性メラノーマ、AIDS−関連カポジ肉腫、多発性骨髄腫、慢性骨髄性白血病、非−Hodgkinリンパ腫、喉頭乳頭腫症、菌状息肉腫、尖圭コンジローム、慢性B型肝炎、C型肝炎、慢性D型肝炎及び慢性非−A、非−B/C肝炎の処理のために50以上の個々での使用のために許可されている。U.S. Food and Drug Administration は、多発性硬化症、神経系の慢性疾患を処理するためにインターフェロン−βの使用を許可している。インターフェロン−γは慢性肉芽腫病を処理するために使用され、ここでインターフェロンは、感染性細胞、菌類及び原生病原体に応答して患者の免疫応答を増強する。臨床研究は、インターフェロンγがAIDS、リーシュマニア症及びらい腫らいの処理において有用であることを示唆している。
【００１６】
サイトカインファミリーの例示されたインビボ活性は、他のサイトカイン、サイトカインアゴニスト及びサイトカインアンタゴニストの莫大な臨床学的可能性及びそれらの必要性を説明する。本発明は、造血細胞系の細胞を刺激する新規サイトカイン、並びに関連する組成物及び方法を提供することにより、それらの必要性と取り組む。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１７】
本発明を詳細に記載する前、次の用語を定義することで本発明の理解を助けることができる：
“親和性標識”とは、第２ポリペプチドの精製又は検出を提供し、又は基質への第２ポリペプチドの結合のための部位を供給するために、第2ポリペプチドに結合され得るポリペプチドセグメントを示すために本明細書において使用される。主に、抗体又は、他の特異的結合剤が利用できるいずれかのペプチド又はタンパク質が親和性標識として使用され得る。親和性標識は、ポリ−ヒスチジン系、すなわちプロテインA (Nilsson など., EMBO J. 4: 1075, 1985; Nilsson など., Methods Enzymol. 198: 3, 1991), グルタチオンＳトランスフェラーゼ（Smits and Johnson, Gene 67; 31, 1988）, Glu-Glu親和性標識（Grussenmeyerなど., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82: 7952-4, 1985）, 物質Ｐ、すなわちFlag^TM ペプチド（Hoppなど., Biotechnology 6: 1204-1210, 1988）、ストレプタビジン結合ペプチド、又は他の抗原性エピトープ又は結合ドメインを包含する。一般的に、Ford など., Protein Expression and Purification 2:95-107, 1991を参照のこと。親和性標識をコードするDNAは、商品供給者（例えばPharmacia Biotech, Piscataway, NJ; Eastman Kodak, New Heven, CT; New England Biolabs, Beverly, MA）から入手できる。
【００１８】
用語“対立遺伝子変異体”とは、同じ染色体遺伝子座を占める遺伝子の複数の遺伝子の二者択一形のいずれかを示すために、本明細書において使用される。対立遺伝子変異は、突然変異を通して天然では生じ、そして集団内の表現型多型現象をもたらすことができる。遺伝子突然変異は、サイレントであり(コードされたポリペプチドにおいて変化がない)、又は変更されたアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードすることができる。用語、対立遺伝子変異体はまた、遺伝子の対立遺伝子変異体によりコードされるタンパク質を示すために本明細書において使用される。
【００１９】
用語“アミノ−末端”及び“カルボキシル−末端”とは、ポリペプチド内の位置を示すために本明細書において使用される。その情況が可能である場合、それらの用語は、接近性又は相対的位置を示すためにポリペプチドの特定の配列又は一部に関して使用される。例えば、ポリペプチド内の対象配列のカルボキシル末端側に位置する一定の配列は、その対象配列のカルボキシル末端に隣接して位置するが、しかし完全なポリペプチドのカルボキシル末端では必ずしも必要ではない。
【００２０】
用語“相補体／抗−相補体対”とは、適切な条件下で、非共有的に会合される安定した対を形成する非同一性成分を示す。例えば、ビオチン及びアビジン(又はストレプタビジン)は、相補体／抗−相補体対の基本型メンバーである。他の典型的な相補体／抗−相補体対は、受容体／リガンド対、抗体／抗原(又はハプテン又はエピトープ)対、センス／アンチセンスポリヌクレオチド対、及び同様のものを包含する。相補体／抗−相補体対の続く解離が所望される場合、その相補体／抗−相補体対は好ましくは、＜１０⁹Ｍ^-1の結合親和性を有する。
【００２１】
用語“ポリヌクレオチド分子の補体”とは、相補的塩基配列、及び対照配列に比較して逆の配向を有するポリペプチド分子である。例えば、配列5’ ATGCACGGG 3’ は、5’ CCCGTGCAT 3’に対して相補的である。
用語“縮重ヌクレオチド配列”とは、１又は複数の縮重コドンを含むヌクレオチドの配列（ポリペプチドをコードする対照ポリヌクレオチドに比較して）を示す。縮重コドンは、ヌクレオチドの異なったトリプレットを含むが、しかし同じアミノ酸残基をコードする（すなわち、GAU及びGACトリプレットはそれぞれAspをコードする）。
【００２２】
用語“発現ベクター”とは、その転写を提供する追加のセグメントに作用可能に連結される興味あるポリペプチドをコードするセグメントを含んで成る線状又は環状DNA分子を示すために使用される。そのような追加のセグメントは、プロモーター及びターミネーター配列及び複製の１又は複数の起点、１又は複数の選択マーカー、エンハンサー、ポリアデニル化シグナル、及び同様のものを包含する。発現ベクターは一般的に、プラスミド又はウィルスDNAから誘導され、又は両者の要素を含むことができる。
【００２３】
用語“単離された”とは、ポリヌクレオチドに適用される場合、ポリヌクレオチドがその天然の遺伝的環境から除去され、そして従って、他の無関係な又は所望しないコード配列を有さず、そして遺伝子的に構築されたタンパク質生成システム内での使用のために適切な形で存在することを示す。そのような単離された分子は、それらの天然の環境から分離され、そしてcDNA及びゲノムクローンを含む分子である。本発明の単離されたDNA分子は、通常関係しない他の遺伝子を含まないが、しかし天然において存在する5’及び3’未翻訳領域、例えばプロモーター及びターミネーターを含むことができる。関連する領域の同定は、当業者に明らかであろう(例えば、Dynan and Tijan, Nature 316: 774―78, 1985を参照のこと)。
【００２４】
“単離された”ポリペプチド又はタンパク質は、その生来の環境以外の条件、例えば血液及び動物組織とは別の条件下で見出されるポリペプチド又はタンパク質である。好ましい形においては、単離されたポリペプチドは、他のポリペプチド、特に動物起源の他のポリペプチドを実質的に含まない。高く精製された形、すなわち９５％以上の純度、より好ましくは９９％以上の純度でポリペプチドを供給することが好ましい。この情況下で使用される場合、用語“単離された”とは、他の物理的形、例えばダイマー形又は他のグリコシル化された又は誘導体化された形での同じポリペプチドの存在を排除しない。
【００２５】
用語“新形成”とは、細胞を言及する場合、新規で且つ異常な増殖を受ける細胞、特に増殖において、制御できなく、且つ前進性であり、特に新形成をもたらす組織を示す。腫瘍性細胞は、悪性、すなわち侵襲性で且つ転移性であるか、又は良性であり得る。
“作用可能に連結された”とは、DNAセグメントに適用される場合、前記セグメントが、それらの意図された目的のために協力して機能し、例えば転写がプロモーターにおいて開始し、そしてコードセグメントを通してターミネーターに進行するよう配列されることを示す。
【００２６】
用語“オルト体（orthology）”とは、異なった種からのポリペプチド又はタンパク質の機能的相対物である、１つの種から得られるポリペプチド又はタンパク質を示す。オルト体間の配列の差異は、特定化の結果である。
“パラ体（paralogs）”とは、生物によって製造される、異なっているが，しかし構造的に関連するタンパク質である。パラ体は、遺伝子重複を通して生じると思われる。例えば、α−グロビン、β−グロビン及びミオグロビンは、お互いパラ体である。
【００２７】
“ポリヌクレオチド”は、5’末端から3’末端に読み取られるデオキシリボヌクレオチド又はリボヌクレオチド塩基の一本鎖又は二本鎖ポリマーである。ポリヌクレオチドは、RNA及びDNAを包含し、そして天然源から単離され、インビトロで合成され、又は天然及び合成分子の組み合わせから調製され得る。ポリヌクレオチドのサイズは、塩基対(略語“bp”)、ヌクレオチド（“nt”）、又はキロ塩基（“kb”）として表される。ここで、後者の２つの用語は、一本鎖又は二本鎖であるポリヌクレオチドを記載する。この用語が二本鎖分子に適用される場合、それは全体の長さを示すために使用され、そして用語、“塩基対”に等しいことが理解されるであろう。二本鎖ポリヌクレオチドの二本の鎖は長さにおいてわずかに異なり、そしてその末端が酵素分解の結果として異なることは、当業者により理解されており；従って、二本鎖ポリヌクレオチド分子内のすべてのヌクレオチドは一対に成り得ない。
【００２８】
“ポリペプチド”は、天然において生成されても又は合成的に生成されてもいずれにせよ、ペプチド結合により連結されるアミノ酸残基のポリマーである。約 10個以下のアミノ酸残基のポリペプチドが、通常“ポリペプチド”として言及される。
用語“プロモーター”とは、RNA ポリメラーゼの結合及び転写の開始を提供するDNA配列を含む遺伝子の部分を示すために本明細書において使用される。プロモーター配列は通常、遺伝子の5’ 非コード領域に見出されるが、しかし必ずしもそうではない。
【００２９】
用語“タンパク質”は、1又は複数のポリペプチド鎖を含んで成る高分子である。タンパク質はまた、非ペプチド成分、例えば炭水化物基を含むことができる。炭水化物及び他の非ペプチド置換基は、タンパク質が生成される細胞により付加され、そして細胞型により変化するであろう。タンパク質は、それらのアミノ酸主鎖により本明細書において定義され；置換基、例えば炭水化物基は一般的に、特定されないが、しかしそれにもかかわらず、存在することができる。
【００３０】
用語“受容体”は、生物活性分子(すなわち“リガンド”)に結合し、そして細胞上のリガンドの効果を仲介する細胞関連タンパク質を示す。膜結合受容体は、細胞外リガンド結合ドメイン、及び典型的には、シグナルトランスダクションに関与する細胞内エフェクタードメインを含んで成る多ペプチド構造により特徴づけられる。受容体へのリガンドの結合は、細胞におけるエフェクタードメインと他の分子との間の相互作用を引き起こす受容体におけるコンホメーション変化をもたらす。この相互作用は、細胞の代謝の変更を誘導する。受容体−リガンド相互作用に連結される代謝現象は、遺伝子転写、リン酸化、脱リン酸化、AMP生成の上昇、細胞カルシュウムの代謝、膜脂質の代謝、細胞付着、イノシトール脂質の加水分解、及びリン脂質の加水分解を包含する。一般的に、受容体は、膜結合され、シトソール性又は核性であり；モノマー(例えば甲状腺刺激ホルモン受容体、β−アドレナリン性受容体)、又はマルチマー(例えばPDGF受容体、成長ホルモン受容体、IL−３受容体、GM―CSF受容体、G−CSF受容体、エリトロポイエチン受容体及びIL―6受容体)であり得る。
【００３１】
用語“分泌シグナル配列”とは、それが合成される細胞の分泌路を通してより大きなポリペプチドを、より大きなポリペプチドの成分として方向ずけるポリペプチド（“分泌ペプチド”）をコードするDNA配列を示す。前記のより大きなポリペプチドは、分泌路を通しての移動の間、分泌ペプチドを除去するために通常分解される。
【００３２】
用語“スプライス変異体”とは、遺伝子から転写されるRNAの二者択一の形を示すために、本明細書において使用される。スプライス変異は、転写されたRNA分子内の、又は通常低いが、別々に転写されたRNA分子間の二者択一のスプライシング部位の使用を通して天然において生じ、そして同じ遺伝子から転写されるいくつかのmRNAをもたらすことができる。スプライス変異体は、変更されたアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードすることができる。用語スプライス変異体はまた、遺伝子から転写されるmRNAのスプライス変異体によりコードされるタンパク質を示すために本明細書において使用される。
【００３３】
不正確な分析方法（例えば、ゲル電気泳動）により決定されるポリマーの分子量及び長さは、おおよその値であることが理解されるであろう。そのような値が“約”X又は“おおよそ”Xとして表される場合、その言及されたXの値は、正確には±１０％であることが理解されるであろう。
本明細書に引用されるすべての文献はそれらのすべてを引用により組み込まれる。
【００３４】
本発明は、インターフェロンに対する技能的及び構造的類似性を有するポリヌクレオチド及びポリペプチド分子類を包含する。zcyto20（配列番号１及び２）、zcyto21（配列番号４及び５）、zcyto22（配列番号６及び７）、zcyto24（配列番号８及び９）、zcyto25（配列番号10及び11）と称する分子を包含するこの新規ファミリーにおいては、zcyto20, 21及び22はヒト配列であり、そしてzcyto24及び25はマウス配列である。ヌクレオチド及びアミノ酸レベルでの前記ファミリー内の相同性が表１に示されており、ここでヌクレオチドレベルで約72％〜98％、及びアミノ酸レベルで51％〜97％の範囲である。
【００３５】
【表１】

【００３６】
表2は、アミノ酸レベルでのzcyto20, zcyto21, zcyto22, IFNα、IFNβ、IFNγ及びIL10間での配列同一性の例示である。
【００３７】
【表２】

【００３８】
前記ファミリーのすべてのメンバーは、zcytor19受容体と称する同じクラスIIサイトカイン受容体に結合することが示される。さらに、一定の生物学的活性が、そのファミリーにおける個々の分子により表されることが示される。それらの活性は、例えば抗ウィルス活性及び上昇する循環骨髄性細胞レベルを包含する。理論により拘束されることを所望しないが、それらの分子は、同じ経路を経てzcytor17受容体を通してすべてシグナル化するように思える。
【００３９】
zcyto20遺伝子は、配列番号２に示されるような205個のアミノ酸のポリペプチドをコードする。zcyto20についてのシグナル配列は、配列番号２のアミノ酸残基１（Met）〜アミノ酸残基21（Ala）を含んで成るものとして推定され得る。zcyto20についての成熟ペプチドは、アミノ酸残基22（Val）で開始する。
zcyto21遺伝子は、配列番号５に示されるような200個のアミノ酸のポリペプチドをコードする。zcyto21についてのシグナル配列は、配列番号５のアミノ酸残基１（Met）〜アミノ酸残基19（Ala）を含んで成るものとして推定され得る。zcyto21についての成熟ペプチドは、アミノ酸残基20（Gly）で開始する。zcyto21は、PCT出願WO02/02627号に記載されている。
【００４０】
zcyto22遺伝子は、配列番号７に示されるような205個のアミノ酸のポリペプチドをコードする。zcyto22についてのシグナル配列は、配列番号７のアミノ酸残基１（Met）〜アミノ酸残基21（Ala）を含んで成るものとして推定され得る。zcyto22についての成熟ペプチドは、アミノ酸残基22（Val）で開始する。
zcyto24遺伝子は、配列番号９に示されるような202個のアミノ酸のポリペプチドをコードする。zcyto24分泌シグナル配列は、配列番号９のアミノ酸残基１（Met）〜アミノ酸残基28（Ala）を含んで成る。分泌シグナル配列の分解についての他の部位は、アミノ酸残基20（Thr）で見出され得る。成熟ペプチドは、アミノ酸残基29（Asp）〜アミノ酸残基202（Val）を含んで成る。
【００４１】
zcyto25遺伝子は、配列番号11に示されるような202個のアミノ酸のポリペプチドをコードする。zcyto25分泌シグナル配列は、配列番号11のアミノ酸残基１（Met）〜アミノ酸残基28（Ala）を含んで成る。分泌シグナル配列の分解についての他の部位は、アミノ酸残基24（Thr）で見出され得る。成熟ペプチドは、アミノ酸残基29（Asp）〜アミノ酸残基202（Val）を含んで成る。
zcyto20, zcyto21及びzcyto22遺伝子は、ヒト染色19q13.13にマッピングされている。それらの遺伝子の発現に基づけば、染色体19のこの領域は、インターフェロン−様遺伝子群を含んで成るものとして同定されている。これが新規ファミリーである。さらなる表示は、マウス染色体７上のシンテニック遺伝子群、すなわちzcyto24（配列番号８）及びzcyto25（配列番号10）の同定である。
【００４２】
下記に記載されるように、本発明は、配列番号２のアミノ酸残基22〜205、又は配列番号２のアミノ酸残基１〜205、又はそのいくらかのフラグメントのいずれかに対して70％、少なくとも80％、又は少なくとも90％、95％、96％、97％又は99％同一であるアミノ酸配列を有する単離されたポリペプチドを提供する。本発明はまた、第１アミノ酸配列に対してアミノ−末端位置に存在するシグナル分泌配列を含んで成るポリペプチドを包含し、ここで前記シグナル分泌配列は配列番号２のアミノ酸配列のアミノ酸残基１〜21を含んで成る。
【００４３】
もう１つの態様においては、本発明は、配列番号７のアミノ酸残基22〜205、又は配列番号７のアミノ酸残基１〜205のいずれかに対して70％、少なくとも80％、又は少なくとも90％、95％、96％、97％又は99％同一であるアミノ酸配列を有する単離されたポリペプチドを提供する。本発明はまた、第１アミノ酸配列に対してアミノ−末端位置に存在するシグナル分泌配列を含んで成るポリペプチドを包含し、ここで前記シグナル分泌配列は配列番号７のアミノ酸配列のアミノ酸残基１〜21を含んで成る。
【００４４】
一般的に、エリトロポイエチン（EPO）のようにサイトカインは、リガンド−受容体相互作用において最も重要であるヘリックスA、C及びDを有する４−αヘリックス構造を有することが予測され、そしてファミリーのメンバー間でより高く保存される。しかしながら、インターフェロン（INF）、及びインターフェロン−α及びインターフェロン−τは、６個のヘリックス束として特徴づけられる。EPOヘリックスAはzcyto20のヘリックスAと同等であり；EPOヘリックスBはzcyto20のヘリックスCと同等であり；EPOヘリックスCはzcyto20のヘリックスDと同等であり；そしてEPOヘリックスDはzcyto20のヘリックスFと同等である。従って、EPOのABループとDCループとの間のループは、zcyto20の短いヘリックスB及びEを含むよりzcyto20において拡張される。zcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25のヘリックス構造は、インターフェロンに見出される６−ヘリックス構造に類似する。
【００４５】
タンパク質における二次構造の境界は一般的に、タンパク質の３−次モデルからのタンパク質主鎖のPHI及びPSI角度の範囲に従って定義される。モデルは、例えば結晶学又はNMRデータ、又は解決された構造に基づいての相同性モデリングから構成され得る。使用される技法、例えば結晶形成及び柔軟なNMR分解構造決定のための条件に依存して、それらの二次構造の境界がわずかに変更され得る。従って、当業者は、ヘリックス境界、及び二次構造は一般的に、境界に依存して、2, 3, 4又はそれ以上の残基によりシフトすることができるが、しかしヘリックス領域は実質的に下記に記載される通りであることを認識することであろう。（Brandon and loosze, Introduction to Protein structure, Garland Publishing Co, Inc. New York, 1991; Anderson, など., Structure, 10(2): 175-84, 2002を参照のこと。）
【００４６】
Zcyto20ヘリックスは次の通りに予測される：配列番号２に示されるように、ヘリックスAはアミノ酸残基52（Ala）〜66（Leu）により定義され；ヘリックスBはアミノ酸残基78（Arg）〜87（Val）により定義され；ヘリックスCはアミノ酸残基91（Pro）〜108（Thr）により定義され；ヘリックスDはアミノ酸残基116（Val）〜138（Ser）により定義され；ヘリックスEはアミノ酸残基151（Thr）〜172（Lys）により定義され；そしてヘリックスFはアミノ酸残基177（Gly）〜197（Cys）により定義される。
【００４７】
４個のシステイン残基は、Zcyto20、Zcyto21及びINF−α間に保存される。さらに、Zcyto20は３個の追加のシステインを有する。アミノ酸残基204でのシステインは、追加のZcyto20分子と共にホモダイマーを形成するために分子間ジスルフィド結合を形成することができる。複数の一列整列に基づくZcyto20のさらなる分析は、アミノ酸残基34及び136、69及び197、及び71及び178でのシステイン（配列番号２に示されるように）が、分子間自スルフィド結合を形成するであろうことを予測する。本明細書に記載されるZcyto20ポリペプチド領域、ドメイン、モチーフ、残基及び配列をコードするその対応するポリヌクレオチドは、配列番号１に示される通りである。
【００４８】
Zcyto21ヘリックスは次の通りに予測される：配列番号５に示されるように、ヘリックスAはアミノ酸残基49（Ser）〜63（Leu）により定義され；ヘリックスBはアミノ酸残基76（Asn）〜84（Val）により定義され；ヘリックスCはアミノ酸残基89（Val）〜104（Ala）により定義され；ヘリックスDはアミノ酸残基111（Glu）〜133（Gln）により定義され；ヘリックスEはアミノ酸残基137（Thr）〜158（Lys）により定義され；そしてヘリックスFはアミノ酸残基163（Gly）〜189（Leu）により定義される。
【００４９】
システイン残基は、Zcyto21〜INF−α間に保存され、そして特に、追加のZcyto21分子と共にホモダイマーを形成するために分子間ジスルフィド結合を形成することができる。複数の一列整列に基づくZcyto21のさらなる分析は、アミノ酸残基34及び131、及び68及び164でのシステインが、分子間自スルフィド結合を形成するであろうことを予測する。残基190でのシステインは任意であり、そして分子間ジスルフィド会合を形成することができる。本明細書に記載されるZcyto21ポリペプチド領域、ドメイン、モチーフ、残基及び配列をコードするその対応するポリヌクレオチドは、配列番号４に示される通りである。
【００５０】
Zcyto22ヘリックスは次の通りに予測される：配列番号７に示されるように、ヘリックスAはアミノ酸残基52（Ala）〜66（Leu）により定義され；ヘリックスBはアミノ酸残基78（Arg）〜87（Val）により定義され；ヘリックスCはアミノ酸残基91（Pro）〜108（Thr）により定義され；ヘリックスDはアミノ酸残基116（Val）〜138（Ser）により定義され；ヘリックスEはアミノ酸残基151（Thr）〜172（Lys）により定義され；そしてヘリックスFはアミノ酸残基177（Gly）〜197（Cys）により定義される。４個のシステイン残基は、Zcyto22、Zcyto21及びINF−α間に保存される。
【００５１】
さらに、Zcyto22は３個の追加のシステインを有する。アミノ酸残基204でのシステインは、追加のZcyto22分子と共にホモダイマーを形成するために分子間ジスルフィド結合を形成することができる。複数の一列整列に基づくZcyto22のさらなる分析は、アミノ酸残基37及び136、69及び197、及び71及び178でのシステイン（配列番号７に示されるように）が、分子間自スルフィド結合を形成するであろうことを予測する。本明細書に記載されるZcyto22ポリペプチド領域、ドメイン、モチーフ、残基及び配列をコードするその対応するポリヌクレオチドは、配列番号６に示される通りである。
【００５２】
zcyto24についての保存されたシステインは、配列番号９の残基44, 78, 141及び175で示される。複数の一致整列に基づくzcyto24のさらなる分析は、ジスルフィド結合がアミノ酸残基44及び141；78及び175（配列番号９に示されるような）でのシステイン間に形成されることを予測する。本明細書に記載されるzcyto24ポリペプチド領域、ドメイン、モチーフ、残基及び配列をコードする対応するポリヌクレオチドは、配列番号９に示される通りである。zcyto24（配列番号９に示されるような）における予測されるヘリックスは次の通りである：残基59−73（ヘリックスA）；残基85−94（ヘリックスB）；残基98−115（ヘリックスC）；残基121−143（ヘリックスD）；残基147−169（ヘリックスE）；残基174−194（ヘリックスF）。
【００５３】
zcyto25についての保存されたシステインは、配列番号11の残基44, 78, 141及び175で示される。複数の一致整列に基づくzcyto25のさらなる分析は、ジスルフィド結合がアミノ酸残基44及び141；78及び175（配列番号11に示されるような）でのシステイン間に形成されることを予測する。本明細書に記載されるzcyto25ポリペプチド領域、ドメイン、モチーフ、残基及び配列をコードする対応するポリヌクレオチドは、配列番号11に示される通りである。zcyto25（配列番号11に示されるような）における予測されるヘリックスは次の通りである：残基59−73（ヘリックスA）；残基85−94（ヘリックスB）；残基98−115（ヘリックスC）；残基121−143（ヘリックスD）；残基147−169（ヘリックスE）；残基174−194（ヘリックスF）。
【００５４】
ネズミIL-2の詳細な突然変異分析（Zurawskiなど., EMBO J. 12: 5113-5119，1993）は、ヘリックスA及びCにおける残基がIL-2Rβへの結合のために重要であり；決定的な残基がAsp₃₄，Asn₉₉及びAsn₁₀₃であることを示す。ネズミIL-2ループA/B及びヘリックスルB内の複数の残基は、IL-2Rα結合のために重要であり、そしてヘリックスDにおける単一の残基、すなわちGln₁₄₁のみが、IL-2Rαとの結合のために活動的である。同様に、ヘリックスA及びCは、IL-4及びIL-4Rα（IL-2Rαに構造的に類似する）間の相互作用の部位であり、そしてヘリックスD内の残基は、IL-2Rα相互作用のために活動的である（Wangなど., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94: 1657-1662, 1997; Kruseなど., EMBO J. 11:3237-3244, 1992）。特に、ヒトIL-4における突然変異（Tyr₁₂₁→Asp）は、IL−４Rαと結合するが、しかしIL-2Rαとは結合せず、そして従って、シグナルであり得ないアンタゴニストを創造する（Kruseなど., 前記、1992）。
【００５５】
４−ヘリカル束サイトカインはまた、それらの成分ヘリックスの長さにより分類される。“長い−ヘリックス”形のサイトカインは一般的に、24〜30個の残基のヘリックスから成り、そしてIL-6、繊毛好中球因子（CNTF）、白血病阻害因子（LIF）及びヒト成長ホルモン（hGH）を包含する。“短い−ヘリックス”形のサイトカインは一般的に、18〜21個の残基のヘリックスから成り、そしてIL−2, IL-4及びGM-CSFを包含する。CNTF及びIL-6を用いての研究は、CNTFヘリックスがIL-6における相当のヘリックスにより交換され得、キメラにCTNF−結合性質を付与することを示した。
【００５６】
従って、４−ヘリカルサイトカインの機能的ドメインが配列同一性に関係なく、構造的相同性に基づいて決定され、そしてキメラにおいて機能的に組み込みを維持することができると思われる（Kallenなど., J. Biol. Chem. 274: 11859-11867, 1999）。従って、zcyto20、zcyto21、zcyto22、zcyto24及びzcyto25のヘリカルドメインは、受容体結合特異性を決定し、そして調節するために他のインターフェロンを有するキメラ融合分子を調製するために有用であろう。インターフェロン及びサイトカイン、例えばINF-α、IL-10、ヒト成長ホルモンからのヘリカル及びループドメインを結合する融合タンパク質が特に興味の対象である。
【００５７】
zcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25は、Zcytor19と称する孤児受容体と複合体を形成することが示されている。Zcytor19は、特許出願PCT/U501/44808号に記載されている。zcyto22, zcyto21及びzcyto24は、Zcytor19を結合するか、又はそれを通してシグナル化することが示されており、そしてさらに、このことは、zcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25が同じサイトカインファミリーのメンバーであることを支持する。Zcytor19受容体は、クラスIIサイトカイン受容体である。クラスIIサイトカイン受容体は通常、４−ヘリックス−束のサイトカインに結合する。例えば、インターロイキン−10及びインターフェロンは、このクラスにおける受容体（例えば、インターフェロン−γ受容体、α及びβ鎖及びインターフェロン−α/β受容体、α及びβ鎖）を結合する。
【００５８】
クラスIIサイトカイン受容体は、それらのドメインに１又は複数のサイトカイン受容体モジュール（CRM）の存在により特徴づけられる。他のクラスIIサイトカイン受容体は、zcytor11（通常、アメリカ特許第5,965,704号所有の）、CRF2-4 (Genbank受託番号Z17227号)、IL−10R（Genbank受託番号U00672号及びNM_001558号）、DIRS1、zcytor7（通常、アメリカ特許第5,945,511号所有の）、zcytor16、及び組織因子を包含する。インターフェロン−α/β受容体α鎖を除いて、すべての既知のクラスII受容体と同様にzcytor19は、その細胞外ドメインに単一のクラスII CRMのみを有する。
【００５９】
Zcytor19 (配列番号26) をコードするヒトcDNAクローンの分析は、分泌シグナル配列（配列番号27の残基１（Met）〜20（Gly））及び成熟zcytor19サイトカイン受容体ポリペプチド（配列番号27の残基21（Arg）〜520（Arg））を含んで成る520個のアミノ酸（配列番号27）をコードする読み取り枠、約206個のアミノ酸残基（配列番号27の残基21（Arg）〜226（Asn））の細胞外リガンド−結合ドメイン、約23個のアミノ酸残基（配列番号27の残基227（Trp）〜249（Trp））のトランスメンブランドメイン、及び約271個のアミノ酸残基（配列番号27の残基250（Lys）〜520（Arg））の細胞内ドメインを表した。
【００６０】
細胞外リガンド−結合ドメインにおいては、２種のフィブロネクチンIII型ドメイン及びリンカー領域が存在する。前記第１フィブロネクチンIII型ドメインは配列番号27の残基21（Arg）〜119（Tyr）を含んで成り、リンカーは配列番号27の残基120（Leu）〜124（Glu）を含んで成り、そして第２フィブロネクチンIII型ドメインは、配列番号27の残基125（Pro）〜223（Pro）を含んで成る。従って、配列番号27のアミノ酸21（Arg）〜223（Pro）を含んで成るポリペプチドが、リガンド結合フラグメントと思われる。さらに、典型的には、クラスII受容体に保存されるように、配列番号27に示されるような残基43（Trp）及び68（Trp）を含んで成る保存されたトリプトファン残基及び、配列番号27の位置74, 82, 195, 217での保存されたシステイン残基が存在する。
【００６１】
さらに、30個のアミノ酸欠失を有するZcytor19 変異体をコードするヒトcDNAクローンが、同定された。このZcytor19 変異体（配列番号23に示されるような）は、分泌シグナル配列（配列番号24の残基１（Met）〜20（Gly））及び成熟zcytor19サイトカイン受容体ポリペプチド（配列番号24の残基21（Arg）〜491（Arg））を含んで成る491個のアミノ酸（配列番号24）をコードする読み取り枠、約206個のアミノ酸残基（配列番号24の残基21（Arg）〜226（Asn））の細胞外リガンド−結合ドメイン、約23個のアミノ酸残基（配列番号24の残基227（Trp）〜249（Trp））のトランスメンブランドメイン、及び約242個のアミノ酸残基（配列番号24の残基250（Lys）〜491（Arg））の細胞内ドメインを含んで成る。
【００６２】
細胞外リガンド−結合ドメインにおいては、２種のフィブロネクチンIII型ドメイン及びリンカー領域が存在する。前記第１フィブロネクチンIII型ドメインは配列番号24の残基21（Arg）〜119（Tyr）を含んで成り、リンカーは配列番号24の残基120（Leu）〜124（Glu）を含んで成り、そして第２フィブロネクチンIII型ドメインは、配列番号24の残基125（Pro）〜223（Pro）を含んで成る。従って、配列番号24のアミノ酸21（Arg）〜223（Pro）を含んで成るポリペプチドが、リガンド結合フラグメントと思われる。さらに、典型的には、クラスII受容体に保存されるように、配列番号24に示されるような残基43（Trp）及び68（Trp）を含んで成る保存されたトリプトファン残基及び、配列番号24の位置74, 82, 195, 217での保存されたシステイン残基が存在する。
【００６３】
zcytor19受容体mRNAの切断された可溶性形が天然において発現されると思われる。Zcytor19 (配列番号29) をコードするヒトcDNAクローンの分析は、分泌シグナル配列（配列番号29の残基１（Met）〜20（Gly））及び成熟zcytor19サイトカイン受容体ポリペプチド（配列番号29の残基21（Arg）〜211（Arg））を含んで成る211個のアミノ酸（配列番号29）をコードする読み取り枠、約143個のアミノ酸残基（配列番号29の残基21（Arg）〜163（Trp））の切断された細胞外リガンド−結合ドメインを表し、トランスメンブランドメインは存在しないが、しかし約48個のアミノ酸残基（配列番号29の残基164（Lys）〜211（Ser））の追加のドメインを表した。切断された細胞外リガンド−結合ドメインにおいては、２種のフィブロネクチンIII型ドメイン及びリンカー領域が存在する。
【００６４】
前記第１フィブロネクチンIII型ドメインは配列番号29の残基21（Arg）〜119（Tyr）を含んで成り、リンカーは配列番号29の残基120（Leu）〜124（Glu）を含んで成り、そして第２フィブロネクチンIII型ドメインは、配列番号29の残基125（Pro）〜163（Trp）を含んで成る。従って、配列番号29のアミノ酸21（Arg）〜163（Trp）を含んで成るポリペプチドが、リガンド結合フラグメントと思われる。さらに、典型的には、クラスII受容体に保存されるように、配列番号29に示されるような残基43（Trp）及び68（Trp）を含んで成る保存されたトリプトファン残基が存在し、そして、この切断された可溶性形のzcytor19受容体における保存されたシステイン残基は配列番号29の位置74及び82で存在する。
【００６５】
Zcytor19受容体は、クラスIIサイトカイン受容体と同じ受容体サブファミリーであり、そしてこのサブファミリーにおける受容体は、シグナルを形質導入するホモダイマーを形成するために会合することができる。サブファミリーのいくつかのメンバー（例えば、インターフェロン、IL-10, IL-19及びIL-TIFを結合する受容体）は、リガンドを結合し、そしてシグナルを形質導入するために、第２サブユニット（β−サブユニットと称する）と結合する。しかしながら、多くの場合、特定のβ−サブユニットは、多くの特定のサイトカイン受容体サブユニットと会合する。
【００６６】
例えば、クラスIIサイトカイン受容体、例えばzcytor11（アメリカ特許第5,965,704号）及びCRF2-4受容体ヘテロダイマーは、サイトカインIL-TIFを結合するためにホモダイマー化する（WIPO公開WO00/24758号；Dumontiernado., J. Immunol. 164: 1819, 2000; Spencer, SDなど., J. Exp. Med. 187: 571-578, 1998; Gibbs, Vc and Pennica Gene 186: 97-101, 1997 (CRF2-4 cDNA) ; Xie, MHなど., J. Biol. Chem. 275: 31335-31339, 2000を参照のこと）。IL−10β受容体は、CRF2-4と同意語であると思われる（Dumoutier, L. など., Proc. Nat’l. Acad. Sci. 97: 10144-10149, 2000; Liu Y. など., J. Immunol. 152: 1821-1829, 1994 (IL-10R cDNA)）。
【００６７】
従ってzcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25が、モノマー、ホモダイマー、ヘテロダイマー及びマルチマーZcytor19受容体のいずれかを結合することを予測できる。実験証拠は、zcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25が、生理学、例えば生来の免疫系及び炎症応答システムに影響を及ぼす免疫調節システムにおいては重要な役割を演じる追加の支持を提供する、Zcytor19のための推定上の結合パートナーとしてCRF2−4（配列番号40及び41）を同定した。
【００６８】
リガンド/受容体対のための受容体の発現の局在化は、リガンドが作用する標的細胞又は組織を同定するために有意である。これは、受容体/リガンド複合体が、サブユニットの１つが広く発現され、そしてサブユニットのもう１つが空間的に又は一時的に制限された態様で発現されるヘテロダイマー受容体を包含する場合、特に有用である。現場ハイブリダイゼーションを用いて、Zcytor19の発現は、皮膚癌サンプルにおいて同定されており、ここで癌粒状表皮が強く陽性であるが、ところが陽性シグナルは正常な皮膚においては観察されていない。Zcytor19を発現するものとして同定される他の組織は、胎児肝臓を包含し、ここでシグナル洞様空間における混合された単離細胞集団において観察され；肺においては、発現はタイプII肺飽上皮において観察され；そしてマクロファージ−様単核組織においては、介在性組織において観察された。Zcytorのノザン分析は、Burkittリンパ腫（RAJI）細胞系及びSW−480結腸直腸癌細胞系の他に、心臓、骨髄筋、膵臓及び前立腺組織において最高に存在する約4.5kbの転写体の発現を同定した。
【００６９】
本発明はまた、ポリヌクレオチド分子、例えば本明細書に開示されるzcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドをコードするDNA及びRNA分子を提供する。当業者は、遺伝子コードの縮重の観点から、相当の配列変動がそれらのポリヌクレオチド分子間で可能であることを容易に認識するであろう。配列番号３は、配列番号２のZcyto20ポリペプチドをコードするすべてのDNAを包含する縮重DNA配列である。当業者はまた、配列番号３の変性配列がUとTとを置換することによって、配列番号2をコードするすべてのRNA配列も供給することを理解するであろう。
【００７０】
従って、配列番号３のヌクレオチド１又は64−615を含んで成るZcyto20ポリペプチド−コードのポリヌクレオチド及びそれらのRNA相当物は、本発明により包含される。表３は、縮重ヌクレオチド位置を示すために、配列番号３内に使用される1文字コードを示す。“解”は、コード文字により示されるヌクレオチドである。“相補体”とは、相補的ヌクレオチドのためのコードを示す。例えば、コードYはC又はTのいずれかを示し、そしてその相補体RはA又はGを示し、AはTに対して相補的であり、そしてGはCに対して相補的である。
【００７１】
配列番号46は、配列番号７のZcyto22ポリペプチドをコードするすべてのDNAを包含する縮重DNA配列である。当業者はまた、配列番号46の変性配列がUとTとを置換することによって、配列番号７をコードするすべてのRNA配列も供給することを理解するであろう。従って、配列番号46のヌクレオチド１又は64−615を含んで成るZcyto22ポリペプチド−コードのポリヌクレオチド及びそれらのRNA相当物は、本発明により包含される。表３は、縮重ヌクレオチド位置を示すために、配列番号46内に使用される1文字コードを示す。“解”は、コード文字により示されるヌクレオチドである。“相補体”とは、相補的ヌクレオチドのためのコードを示す。例えば、コードYはC又はTのいずれかを示し、そしてその相補体RはA又はGを示し、AはTに対して相補的であり、そしてGはCに対して相補的である。
【００７２】
【表３】

【００７３】
与えられたアミノ酸のためのすべての可能なコドンを包含する配列番号3に使用される縮重コドンが表４に示される。
【００７４】
【表４】

【００７５】
当業者は、いくらかのあいまいさが、個々のアミノ酸をコードするすべての可能なコドンの代表である縮重コドンの決定において導入されることを理解するであろう。例えば、セリン（WSN）のための縮重コドンは、ある環境下で、アルギニン（AGR）をコードすることができ、そしてアルギニン（MGN）のための縮重コドンは、ある環境下で、セリン（AGY）をコードすることができる。類似する関係が、フェニルアラニン及びロイシンをコードするコドン間に存在する。従って、縮重配列により包含されるいくつかのポリヌクレオチドは、変異体アミノ酸配列をコードすることができるが、しかし当業者は、配列番号２及び７のアミノ酸配列への参照によりそのような変異体配列を容易に同定することができる。変異体配列は、本明細書に記載のようにして官能性について容易に試験され得る。
【００７６】
当業者はまた、異なった種が“選択的コドン使用法”を示すことも理解するであろう。一般的には、Grantham,など., Nuc. Acids Res. 8: 1893−912, 1980; Haas, など., Curr. Biol. 6: 315−24, 199６; Wain−Hobson、など.,Gene 13：355−64，1981；Grosjean and Fiera，Gene 18：199−209、1982；Holm,Nuc．Acids Res．14：3075−87、1986；Ikemura，Ｊ．Mol．Biol．158：573−97，1982を参照のこと。本明細書において使用される場合、用語、“選択的コドン使用法”又は“選択的コドン”とは、一定の種の細胞に最も頻繁に使用され、従って個々のアミノ酸をコードする可能なコドンの１又は少数の代表を好むタンパク質翻訳コドンを言及する技術的用語である(表３を参照のこと)。
【００７７】
例えば、アミノ酸トレオニン（Thr）は、ACA、ACC、ACG、又はACTによりコードされるが、しかし哺乳類細胞においては、ACCが最も通常に使用されるコドンであり；他の種においては、例えば昆虫細胞、酵母、ウィルス又は細菌においては、異なったThrコドンが好ましい。特定の種のための選択的コドンは、当業界において知られている種々の方法により、本発明のポリヌクレオチド中に導入され得る。例えば、組換えDNA中への選択的コドン配列の導入は、特定の細胞型又は種内でタンパク質の翻訳により効果的にすることによって、そのタンパク質の生成を増強する。従って、配列番号３及び46に開示される縮重コドン配列は、当業界において通常使用され、そして本明細書において開示される種々の細胞型及び種においてポリペプチドの発現を最適化するための鋳型として作用する。選択コドンを含む配列は、種々の種における発現について試験され、そして本明細書に開示される官能性について試験され得る。
【００７８】
前で示されたように、本発明の単離されたポリヌクレオチドは、DNA及びRNAを包含する。DNA及びRNAを調製するための方法は、当業界において良く知られている。一般的には、RNAは、多量のzcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25 RNAを生成する組織又は細胞から単離される。そのような組織及び細胞は、ノザンブロット（Thomas, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77: 5201, 1980）により、又は標的細胞又は組織上の活性についての種々の細胞型からのならし培地のスクリーニングにより同定される。
【００７９】
前記活性、又はRNA生成細胞又は組織が同定されると、全RNAは、グアニジウム HCl抽出、続くCsClグラジエントにおける遠心分離による単離により調製され得る（Chirgwinなど.,Biochemistry 18:52−94, 1979）。ポリ（A）⁺ RNAは、Aviv and Leder (Proc.Natl. Acad. Sci.USA 69: 1408−1412, 1972 )の方法を用いて全RNAから調製される。相補的DNA(ｃDNA)は、既知の方法を用いて、ポリ（A）⁺ RNAから調製される。他方では、ゲノムDNAが単離され得る。次に、zcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドが、例えばハイブリダイゼーション又はポリメラーゼ鎖反応により同定され、そして単離される。
【００８０】
zcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25をコードするより十分な長さのクローンは、従来のクローニング方法により得られる。相補的DNA（cDNA）クローンが好ましいが、但し、いくつかの用途（例えば、トランスジェニック動物における発現）に関しては、ゲノムクローンを使用し、又は少なくとも１つのゲノムイントロンを含むようcDNAクローンを修飾することが好ましい。cDNA及びゲノムクローンを調製するための方法は、よく知られており、そして当業者のレベルの範囲内であり、そしてライブラリーをプローブし又は感作するために、本明細書に開示される配列又はその一部の使用を包含する。発現ライブラリーは、Zcytor19受容体フラグメントに対する抗体、受容体フラグメント、又は他の特定の結合パートナーによりプローブされ得る。
【００８１】
本発明はさらに、他の種（オルト体）からの相対物リガンド及びポリヌクレオチドを供給する。これらの種は、哺乳類、鳥類、両性類、ハ虫類、魚類、昆虫及び他の脊椎及び無脊椎動物種を包含するが、但しそれらだけには限定されない。特に興味あるものは、他の哺乳類種、例えばネズミ、ブタ、羊、ウシ、犬、ネコ、馬及び他の霊長類リガンドからのzcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドである。ヒトzcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25のオルト体は、従来のクローニング技法と組合して、本発明により供給される情報及び組成物を用いてクローン化され得る。例えば、ｃDNAは、zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22を発現する組織又は細胞型から得られるｍRNAを用いてクローン化され得る。ｍRNAの適切な源は、本明細書に開示される配列から企画されたプローブによりノザンブロットをプローブすることによって同定され得る。
【００８２】
次に、ライブラリーが陽性の組織又は細胞系のｍRNAから調製される。次に、zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22コードのｃDNAが種々の方法、例えば完全な又は部分的なヒトｃDNAにより、又は前記開示される配列に基づく１又は複数の変性プローブにより、プローブすることによって単離され得る。ｃDNAはまた、本明細書に開示される代表的なヒトzcyto20配列から企画されたプライマーを用いて、ポリメラーゼ鎖反応（PCR）（Mullis, アメリカ特許第4,683,202号）を用いてもクローン化され得る。さらなる方法においては、ｃDNAライブラリーが宿主細胞を形質転換し、又はトランスフェクトするために使用され、そして興味あるｃDNAの発現がzcyto20ポリペプチドに対する抗体により検出され得る。類似する技法がまた、ゲノムクローンの単離に適用され得る。
【００８３】
当業者は、それぞれ、配列番号１、４及び６に開示される配列がヒトzcyto20, zcyto21, 及びzcyto22バンドの単一の対立遺伝子を表し、そして対立遺伝子変動及び交互のスプライシングが生じることが予測されることを認識するであろう。この配列の対立遺伝子変異体は、標準の方法に従って、異なった個人からのcDNA又はゲノムライブラリーをプローブすることによってクローン化され得る。配列番号１、４及び６に示されるDNA配列の対立遺伝子変異体、例えばサイレント突然変異を含むそれらの変異体及び突然変異がアミノ酸配列変更をもたらすそれらの変異体は、配列番号２、５及び７の対立遺伝子変異体であるタンパク質と同じように、本発明の範囲内である。
【００８４】
zcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドの性質を保持する、もう１つのスプライスされたmRNAから生成されるcDNAは、そのようなcDNA及びmRNAによりコードされるポリペプチドと同じように、本発明の範囲内に包含される。それらの配列の対立遺伝子変異体及びスプライス変異体は、当業界において知られている標準の方法に従って、異なった個人又は組織からのcDNA又はゲノムライブラリーをプローブすることによってクローン化され得る。
【００８５】
本発明はまた、診断用途に使用できる試薬も提供する。例えば、zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22遺伝子、zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22 DNA又はRNAを含んで成るプローブ、又はそれらの副配列が、zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22遺伝子がヒト染色体、例えば染色体19上に存在するかどうか、又は遺伝子突然変異が生じたかどうか決定するために使用され得る。zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22は、染色体19のq13.13領域に位置する。zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22遺伝子座での検出できる染色体異常型は、異数体、遺伝子コピー数の変化、異質性の損失（LOH）、トランスロケーション、挿入、欠失、制限部位の変化及び転位を包含するが、但しそれらだけには限定されない。そのような異常型は、分子遺伝子技法、例えば制限フラグメント長さ多型現象（RFLP）分析、PCRを用いての短いタンデム反復体（STR）分析、及び当業界において知られている他の遺伝子連鎖分析技法を用いることによって、本発明のポリヌクレオチドを用いて検出され得る（Sambrookなど., 前記；Ausubelなど., 前記；Marian, Chest 108: 255-65, 1995）。
【００８６】
遺伝子の位置の正確な知識は、多くの目的、例えば１）配列が存在するコンティグ（contig）の一部であるかどうかを決定し、そして追加の周囲遺伝子配列を種々の形、例えばYAC、BAC又はcDNAクローンの形で得るために；２）同じ染色体領域への連鎖を示す遺伝性疾病のための可能な候補体遺伝子を供給するために；及び３）特定遺伝子が何の機能を有するかの決定を助けることができるモデル生物、例えばマウスを相互参照するために有用である。
例えば、Delague., (Am. J. Hum. Genet. 67: 236-243, 2000)は、Charcot-Marie-Tooth病が19q13.1-13.3に位置することを同定した（Delagueなど., Am. J. Hum. Genet. 67: 236-243, 2000)。
【００８７】
診断は、疾病のタイプ及び適切な関連する治療の決定において医者を助けることができるか、又は遺伝的カウンセリングを助けることができる。それ自体、本発明の抗−zcyto20抗体、ポリヌクレオチド及びポリペプチドは、zcyto20 ポリペプチド、mRNA又は抗−zcyto20 抗体の検出のために使用され、従って当業界において知られており、そして本明細書において記載される方法を用いて、本明細書に記載されるようにして、遺伝的疾病又は癌の検出のためのマーカーとして作用し、そしてそのために直接的に使用される。
【００８８】
さらに、zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22 ポリヌクレオチドプローブは、染色体19ｑ13.13欠失、及びヒト疾病に関連するトランスロケーション、又は腫瘍の悪性進行に関与する他のトランスロケーション、又は悪性又は他の癌における染色体転移に関与すると思われる他の19q13.13突然変異に関連する他のトランスロケーションに関連する異常性又は遺伝子型を検出するために使用され得る。同様に、zcyto20ポリヌクレオチドプローブは、染色体19q13.13トリソミーに関連する異常性又は遺伝子型、及びヒト疾病又は自然流産に関連する染色体欠失を検出するために使用され得る。従って、zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22ポリヌクレオチドプローブは、それらの欠陥に関連する異常性又は遺伝子型を検出するために使用され得る。
【００８９】
一般的に、患者における遺伝子異常性又は異常型を検出するために、遺伝子連鎖分析に使用される診断方法は、当業界において知られている。分析用プローブは一般的に少なくとも20ntの長さであるが、但し幾分、短いプローブも使用され得る（例えば、14〜17nt）。PCRプライマーは、少なくとも5ntの長さ、好ましくは15nt又はそれ以上、より好ましくは20〜30ntである。遺伝子又は染色体DNAの全体的な分析のためには、zcyto20ポリヌクレオチドは完全なエキソン又はそれ以上を含んで成ることができる。エキソンは、zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22配列（それぞれ、配列番号１、４及び６）とzcyto20, zcyto21, 及びzcyto22についてのゲノムDNAとを比較することによって、当業者により容易に決定される。
【００９０】
一般的に、患者における遺伝子異常性又は異常型を検出するために、遺伝子連鎖分析に使用される診断方法は、当業界において知られている。ほとんどの診断方法は、（ｉ）潜在的に疾病の患者、疾病の患者又は劣性疾病対立遺伝子の可能性ある非疾病キャリヤーから遺伝子サンプルを得；（ii）zcyto20ポリヌクレオチドプローブと共に遺伝子サンプルをインキュベートすることにより（ここで、前記ポリヌクレオチドは、RFIP分析においては、相補的ポリヌクレオチド配列にハイブリダイズするであろう）、又は適切なPCR反応条件下でPCR反応において、センス及びアンチセンスプライマーと共に遺伝子サンプルをインキュベートすることにより、第１反応生成物を生成し；（iii）前記第１反応生物を、電気泳動及び/又は他の既知方法により可視化し、例えば、前記第１反応生成物を、zcyto20ポリヌクレオチドプローブ（ここで、前記ポリヌクレオチドは第１反応の相補的ポリヌクレオチド配列にハイブリダイズするであろう）により可視化し、そして（iV）野生型患者からの遺伝子サンプルの第２対照反応生成物と、前記可視化された第１反応生成物とを比較する段階を含んで成る。
【００９１】
第１反応生成物と対照反応生成物との間の差異は、疾病又は潜在的に疾病の患者における遺伝子異常性の、又は非疾病患者についてのヘテロ接合性劣性キャリヤー表現型の存在の、又は疾病患者からの腫瘍における遺伝子欠陥の存在の、又は胎児又は移植前胚における遺伝子異常性の存在の表示である。例えば、制限フラグメントパターン、PCR生成物の長さ、zcyto20遺伝子座の反復性配列の長さ、及び同様のもの差異は、遺伝子異常性、遺伝子異常型、又は正常な野生型対照に比較しての対立遺伝子差異の表示である。対照は、サンプルの試験及び利用性に依存して、影響されていないファミリーメンバー又は無関係の個人からであり得る。本発明内への使用のための遺伝子サンプルは、患者からのいずれかの組織又は他の生物学的サンプル、例えば血液、唾液、精子、胚細胞、羊水及び同様のもの（但し、それらだけには限定されない）から単離されたゲノムDNA、mRNA及びcDNAを包含する。
【００９２】
ポリヌクレオチドプローブ又はプライマーは、RNA又はDNAであり得、そして配列番号１の一部、配列番号１の補体、又はそれらのRNA同等物を含んで成る。ヒト疾病表現型ヘの遺伝子連鎖分析を示すそのような方法は、当業界において良く知られている。診断における、PCRに基づく方法の参照のためには、一般的、次の文献を参照のこと：Mathew (ed.), Protocols in Human Molecular Genetics (Humana Press, Inc. 1991), White (ed), PCR Protocols; Current Methods and Applications (Humana Press, Inc, 1993), Cotter (ed), molecular Diagnosis of Cancer (Humana Press, Inc. 1996), Hanausek and Walaszek (eds.), Tumor Marker Protocols。(Humana Press, Inc. 1998). Lo (ed), Clinical Application of PCR (Humana Press, Inc. 1998), 及びMeltzer (ed), PCR in Bioanalysis (Humana Press. Inc. 1998))。
【００９３】
zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22遺伝子座に関連する突然変異は、直接的な突然変異分析のための標準方法、例えば制限フラグメント長さ多型現象分析、RCR技法を用いての短いタンデム反復体分析、増幅―無反応性突然変異システム分析、一本鎖コンホメーション多型現象検出、RNアーゼ分解方法、変性グラジエントゲル電気泳動、蛍光−助力のミスマッチ分析、及び当業界において知られている他の遺伝子分析技法を用いることにより、本発明の核酸分子を用いて検出され得る（例えば、次の文献を参照のこと：Mathew (ed), Protocols in Human Molecular Genetics (Humana Press, Inc. 1991),Marian, Chest 108:255 (1995). Coleman and Tsongalis, molecular Diagnostics (Human Press, Inc. 1996), Elles (ed.) Molecular Diagnosis of Genetic Diseases (Humana Press. Inc. 1996), Landegren (ed.) Laboratory Protocols for Mutation Detection (Oxford University Press 1996), Birren など. (eds.) Genome Analysis Vol. 2: Detecting Genes (Cold Spring Harbor Laboratory Press 1998). Dracopoli など. (eds.) Current Protocols in Human Genetics (John Wiley & Sons 1998). 及びRichards and Ward, “Molecular Diagnostic Testing,” in Preineiples of Molecular Medicine, pages 83-88 (Humana Press , luc. 1998)。突然変異についてのzyto20遺伝子の直接的な分析は、対象のゲノムDNAを用いて行われ得る。例えば、末梢血液リンパ球から得られるゲノムDNAを増幅するための方法は、当業者に良く知られている（例えば、Dracopoliなど. (eds.), Current Protocols in Human Genetics, p7.1.6-7.1.6 (John Wiley & Sons 1998) を参照のこと。
【００９４】
本発明の態様においては、単離されたzcyto20−コードの核酸分子は、緊縮条件下で、配列番号１のヌクレオチド配列を有する核酸分子、配列番号１のヌクレオチド64〜618のヌクレオチド配列を有する核酸分子、又は配列番号１に対して相補的なヌクレオチド配列を有する核酸分子にハイブリダイズすることができる。一般的に、緊縮条件は、定義されたイオン強度及びpHで、特定の配列のための熱溶融点（Tm）よりも約５℃低くなるよう選択される。Tmは、標的配列の50％が好ましく適合されたプローブにハイブリダイズする温度（定義されたイオン強度及びpH下で）である。本発明の態様においては、単離されたzcyto−コードの核酸分子は、緊縮条件下で、配列番号６のヌクレオチド配列を有する核酸分子、配列番号６のヌクレオチド64〜618のヌクレオチド配列を有する核酸分子、又は配列番号６に対して相補的なヌクレオチド配列を有する核酸分子にハイブリダイズすることができる。
【００９５】
１対の核酸分子、例えばDNA-DNA, RNA-RNA及びDNA-RNAは、ヌクレオチド配列がいくらかの程度の相補性を有する場合、ハイブリダイズすることができる。ハイブリッド二重ヘリックスにおけるミスマッチ塩基対を許容できるが、しかしハイブリッドの安定性はミスマッチの程度により影響される。ミスマッチハイブリッドのTmは、１〜1.5％の塩基対ミスマッチごとに１℃低下する。ハイブリダイゼーション条件の緊縮性の変更は、ハイブリッドに存在するであろうミスマッチの程度に対する制御を可能にする。緊縮性の程度は、ハイブリダイゼーション温度が上昇し、そしてハイブリダイゼーション緩衝液のイオン強度が低下するにつれて、上昇する。
【００９６】
特定のポリヌクレオチドハイブリッドとの使用のためのそれらの条件を適合することは、当業者の能力内である。特定標的配列のためのTmは、標的配列の５０％が完全に適合されたプローブ配列にハイブリダイズするであろう温度（定義された条件下で）である。Tmに影響を及ぼすそれらの条件は、ポリヌクレオチドプローブのサイズ及び塩基対含有率、ハイブリダイゼーション溶液のイオン強度、及びハイブリダイゼーション溶液における不安定化剤の存在を包含する。
【００９７】
Tmを計算するための多くの等式は、当業界において知られており、そしてDNA, RNA及びDNA-RNAハイブリッド、及び種々の長さのポリヌクレオチドプローブに対して特異的である（例えば、Sambrookなど., Molecular Cloing: A Lavoratory Manual, Second Edition (Cold Spring Harbor Press 1989); Ausubel など., (eds.), Current Protocols in Molecular Biology (John Wiley and Sons, Inc. 1987); Berger and Kimmel (eds.), Guide to Molecular Cloning Techniques, (Academic Press, Inc. 1987); 及びWetmur, Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol. 26: 227 (1990) を参照のこと）。
【００９８】
配列分析ソフトウェア、例えばOLIGO6.0 (LSR; Long Lake, MN) 及びPrimer Premier 4.0 (Premier Biosoft Inter National; Palo Alto, CA), 並びにインターネット上のサイトが、所定の配列を分析し、そして使用者の定義された基準に基づいてTmを計算するための入手できる手段である。そのようなプログラムはまた。定義された条件下で所定の配列を分析し、そして適切なプローブ配列を同定することもできる。典型的には、50個以上の塩基対の長いポリヌクレオチド配列のハイブリダイゼーションは、計算されたTmよりも約２０〜２５℃低い温度で行われる。より小さなプローブ、すなわち50個以下の塩基対のプローブに関しては、ハイブリダイゼーションは典型的には、Tm又はそれよりも5〜10℃低い温度で実施される。これは、DNA-DNA及びDNA-RNAハイブリッドに関するハイブリダイゼーションの最大の速度を可能にする。
【００９９】
ハイブリダイゼーションに続いて、核酸分子は、緊縮条件下で、又は高い緊縮条件下で、ハイブリダイズされなかった核酸分子を除去するために洗浄され得る。典型的な緊縮洗浄条件は、0.1％ドデシル硫酸ナトリウム（SDS）を含む0.5×〜２×SSC溶液による５５〜６５％での洗浄を包含する。すなわち、変異体zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22ポリペプチドをコードする核酸分子は、緊縮洗浄条件下で、それぞれ、配列番号１、４及び６のヌクレオチド配列（又はその補体）を有する核酸分子とハイブリダイズし、ここで前記洗浄緊縮性は、55〜65℃での、0.1％SDSを含む0.5×〜２×SSC溶液、例えば55℃での、0.1％SDSを含む0.5×SSC溶液、又は65℃での0.1％SDSを含む２×SSC溶液に等しい。当業者は、例えば洗浄溶液におけるSSCをSSPEにより置換することによって同等の条件を容易に製造することができる。
【０１００】
典型的な高い緊縮洗浄条件は、50〜65℃での0.1％ドデシル硫酸ナトリウム（SDS）を含む0.1×〜0.2×SSCの溶液による洗浄を包含する。換言すれば、変異体zcyto20ポリペプチドをコードする核酸分子は、高い緊縮洗浄条件下で、配列番号１のヌクレオチド配列（又はその補体）を有する核酸分子とハイブリダイズし、ここで前記洗浄緊縮性は、50〜65℃での、0.1％SDSを含む0.１×〜0．２×SSC溶液、例えば５0℃での、0.1％SDSを含む0.1×SSC溶液、又は65℃での0.1％SDSを含む0.２×SSC溶液に等しい。
【０１０１】
本発明はまた、それぞれ、配列番号２、５，７，９、及び11のポリペプチド又はそれらのオルト体に対して実質的に類似する配列同一性を有する単離されたzcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドも提供する。用語“実質的に類似する配列同一性”とは、それぞれ、配列番号２、５，７，９、及び11で示される配列又はそれらのオルト体に対して少なくとも70％、少なくとも80％、少なくとも90％、少なくとも95％、又は95％、96％、97％、98％又は99％以上の配列同一性を有するポリペプチドを示すために本明細書において使用される。本発明はまた、配列番号２又は７のアミノ酸残基１−205又は21−205の配列に対して少なくとも70％、少なくとも80％、少なくとも90％、少なくとも95％、又は95％、96％、97％、98％又は99％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んで成るポリペプチドも包含する。本発明はさらに、そのようなポリペプチドをコードする核酸分子も包含する。％同一性を決定するための方法は、下記に記載される。
【０１０２】
本発明はまた、２種の次の基準を用いて同定され得る変異体zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22核酸分子を企画する：上記記載のような、それぞれ、配列番号２、５，７，９、及び11のアミノ酸配列とコードされたポリペプチドとの間の類似性の決定、及びハイブリダイゼーションアッセイ。そのようなzcyto20変異体は、（１）55〜65℃での0.1％SDSを含む0.5×〜２×SSC溶液に等しい緊縮洗浄条件下で、それぞれ、配列番号１、４，６，８、及び10のヌクレオチド配列（又はその補体）を有する核酸分子とハイブリダイズし、そして（２）配列番号２のアミノ酸配列に対して少なくとも70％、少なくとも80％、少なくとも90％、少なくとも95%又は95％、96％、97％、98％又は99％以上の配列同一性を有するポリペプチドをコードする核酸分子を包含する。
【０１０３】
他方では、zcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25変異体は、（１）50〜65℃での0.1％SDSを含む0.1×〜0.2×SSC溶液に等しい、高い緊縮洗浄条件下で、配列番号１、４，６，８および10のヌクレオチド配列（又はその補体）を有する核酸分子とハイブリダイズし、そして（２）配列番号２、５，７，９及び11のアミノ酸配列に対して少なくとも70％、少なくとも80％、少なくとも90％、少なくとも95％又は95％以上の配列同一性を有するポリペプチドをコードする核酸分子として特徴づけられ得る。
【０１０４】
％配列同一性は、従来の方法により決定される。例えば、Altschulなど., Bull. Math. Bio. 48 : 603−616, 1986及びhenikoff and Henikoff, Pruc.Natl. Acad. Sci. USA 89 :10915−10919, 1992を参照のこと。手短に言及するば、２種のアミノ酸配列が、10のギャップ開始ペナルティー、１のギャップ拡張ペナルティー、及び表３（アミノ酸は標準の１文字コードにより示される）に示されるようなHenikoff and Henikoff （前記）の“blosum 62”評点マトリックスを用いて、その整合評点を最適化するために整合される。次に、％同一性が次のようにして計算される：
【０１０５】
【数１】

【０１０６】
【表５】

【０１０７】
当業者は、２種のアミノ酸配列を整列するために多くの確立されたアルゴリズムが存在することを理解している。Pearson and Lipmanの“FASTA”類似性調査アルゴリズムは、本明細書に開示されるアミノ酸配列及び推定上の変異体zcyto20のアミノ酸配列により共有される同一性のレベルを試験するための適切なタンパク質整列方法である。前記FASTAアルゴリズムは、Pearson and Lipman, Proc. Nat’l Acad. Sci. USA 85: 2444 (1988), 及びPearson, Meth. Enzymol. 183: 63 (1990) により記載される。
【０１０８】
手短には、FASTAがまず、問題の配列（例えば、配列番号２）及び保存性アミノ酸置換、挿入又は欠失を考慮しないで、最高密度の同一性（ktup変数が１である場合）又は対の同一性（ktup＝2である場合）のいずれかを有する試験配列により共有される領域を同定することによって配列を特徴づける。次に、最高密度の同一性を有する10の領域が、アミノ酸置換マトリックスを用いて、すべての対合されたアミノ酸の類似性を比較することによって再評価され、そして前記領域の末端が、最高の評点に寄与するそれらの残基のみを含むよう“整えられる”。“カットオフ”値（配列の長さ及びktup値に基づいて予定された式により計算される）よりも高い評点を有するいくつかの領域が存在する場合、その整えられた初期領域が、その領域がギャップとのおおよその一列配列を形成するために結合され得るかどうかを決定するために試験される。
【０１０９】
最終的に、２種のアミノ酸配列の最高評点領域が、アミノ酸挿入及び欠失を可能にする、Needleman-Wunsch アルゴリズム（Needleman and winsch, J. Mol. Biol. 48: 444, 1970; Sellers, SIAM J. Appl. Math. 26: 787, 1974）の変法を用いて整列される。FASTA 分析のための例示的なパラメーターは次のものである：ktup＝１、ギャップ開始ペナルティー＝10、ギャップ拡張ペナルティー＝１及び置換マトリックス＝BLOSUM62。それらのパラメーターは、Appendix 2 of Pearson, 1990 (前記)に説明されるように、評点マトリックスを調節することによってFASTAプログラム中に導入され得る。
【０１１０】
FASTAはまた、上記に開示されるような割合を用いて、核酸分子の配列同一性を決定するためにも使用され得る。ヌクレオチド配列比較のためには、ktup値は、誤りとして設定される他のパラメーターを伴って、１〜６、好ましくは４〜６であり得る。
変異体zcyto20, zcyto21, 及びzcyto22ポリペプチド及び実質的に類似する配列同一性は、１又は複数のアミノ酸置換、欠失又は付加を有するものとして特徴づけられる。それらの変化は、好ましくは、保存性アミノ酸置換（表５を参照のこと）及びタンパク質及びポリペプチドの折りたたみ又は活性に実質的に影響を及ぼさない他の置換；小さな欠失、典型的には１〜約30個のアミノ酸の欠失；及び小さなアミノ−又はカルボキシル−末端の延長、例えばアミノ−末端メチオニン残基、約20〜25個までの残基の小さなリンカーペプチドの延長、又は親和性標識の延長である。
【０１１１】
従って、本発明は、配列番号２のその対応する領域に対して、少なくとも70％、好ましくは少なくとも90％、及びより好ましくは95％、96％、97％、98％、99％又はそれ以上の同一性を有する配列を含んでなる、約154〜235個のアミノ酸残基のポリペプチドを包含する。親和性標識を含んで成るポリペプチドはさらに、zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25ポリペプチドと親和性標識との間にタンパク質分解部位を含む。好ましいそのような部位は、トロンビン分解部位及び第Xa因子分解部位を含む。
【０１１２】
【表６】

【０１１３】
構造統合性の維持に対して決定的である領域又はドメインを含んで成るアミノ酸残基の決定が行われ得る。それらの領域内で、多かれ少なかれ、変化に耐性であり、そして分子の全体的な三次構造を維持するであろう特定の残基を決定することができる。配列構造を分析するための方法は、高いアミノ酸又はヌクレオチド同一性を有する複数配列の一列整列、二次構造性質、二元パターン、相補的パッケージング及び埋もれた極性相互作用を包含するが、但しそれらだけには限定されない（Barton, Current Opin. Struct. Biol. 5:372-376, 1995及びCordesなど., Current Opin. Struct. Biol. 6: 3-10, 1996）。一般的に、分子への修飾を企画するか又は特定のフラグメントを同定する場合、構造の決定は、修飾された分子の活性を評価することによって付随されるであろう。
【０１１４】
アミノ酸配列の変更が、生物学的活性に対して必須である高次構造体の破壊を最少にするためにzcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25ポリペプチドにおいて行われる。例えば、zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25ポリペプチドが１又は複数のヘリックスを含む場合、アミノ酸残基の変更が、分子のヘリックス幾何学的及び他の成分を破壊しないよう行われ、ここでコンホメーションの変化が、いくらかの決定的な機能、例えば分子の、その結合パートナーへの結合を妨害する。アミノ酸配列の変更の効果は、例えば上記に開示されるようなコンピューターモデルにより予測され得、又は結晶構造の分析により決定され得る（例えば、Lapthornなど., Nat. Struct. Biol. 2: 266-268, 1995）。
【０１１５】
当業界において良く知られている他の技法は、標準の分子（例えば、生来のタンパク質）と変異体タンパク質の折りたたみを比較する。例えば、変異体及び標準の分子におけるシステインパターンの比較が行われ得る。質量分光及び還元及びアルキル化を用いての化学的修飾は、ジスルフィド結合に関連するか又はそのような関連を有さないシステイン残基を決定するための方法を提供する（Beanなど., Anal. Biochem. 201: 216-226, 1992; Gray, Protein Sci. 2: 1732-1748, 1993: 及びPattersonなど., Anal. Chem. 66: 3727-3732, 1994）。
【０１１６】
一般的に、修飾された分子が標準の分子と同じシステインパターンを有さない場合、折りたたみが影響を及ぼされると思われる。折りたたみを測定するためのもう1つの良く知られており、且つ許容できる方法は、円ニ色性（CD）である。修飾された分子及び標準の分子により生成されるCDスペクトルの測定及び比較は、通常のことである（Johnson, Protein 7:205-214, 1990）。結晶学は、折りたたみ及び構造を分析するためのもう1つの良く知られた方法である。核磁気共鳴（NMR）、消化ペプチドマッピング及びエピトープマッピングはまた、タンパク質とポリペプチドとの間の折りたたみ及び構造的類似性を分析するための既知方法でもある（Schaananなど., Science 257: 961-964, 1992）。
【０１１７】
配列番号２に示されるようなzcyto20タンパク質配列のHopp/Woods親水性プロフィールが生成され得る（Hoppなど．，Proc Natl. Acad. Sci. 78: 3828, 1981; Hopp, J. Immun. Meth. 88: 1-18, 1986及びTriquierなど., Protein Engineering 11: 153-169, 1998）。前記プロフィールは、スライドする６−残基窓（sliding six-residue window）に基づかれている。埋もれたG, S及びT残基及び暴露されたH, Y及びW残基は無視された。例えば、zcyto20においては、親水性領域は、配列番号２のアミノ酸残基169(Glu)−174(Glu)、配列番号２のアミノ酸残基54(Lys)−59(Ala)、配列番号２のアミノ酸残基63(Phe)−58(Asp)、配列番号２のアミノ酸残基168(Gln)−173(Lys)、及び配列番号２のアミノ酸残基154(Pro)−159(Arg)を含む。
【０１１８】
配列番号７に示されるようなzcyto22タンパク質配列のHopp/Woods親水性プロフィールが生成され得る（Hoppなど．，Proc Natl. Acad. Sci. 78: 3828, 1981; Hopp, J. Immun. Meth. 88: 1-18, 1986及びTriquierなど., Protein Engineering 11: 153-169, 1998）。前記プロフィールは、スライドする６−残基窓（sliding six-residue window）に基づかれている。埋もれたG, S及びT残基及び暴露されたH, Y及びW残基は無視された。例えば、zcyto22においては、親水性領域は、配列番号７のアミノ酸残基169(Glu)−174(Glu)、配列番号７のアミノ酸残基54(Lys)−59(Ala)、配列番号７のアミノ酸残基63(Phe)−58(Asp)、配列番号７のアミノ酸残基168(Gln)−173(Lys)、及び配列番号７のアミノ酸残基154(Pro)−159(Arg)を含む。
【０１１９】
当業者は、親水性又は疎水性が、全体的な構造及び生物学的プロフィールを破壊しないよう、zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25ポリペプチドのアミノ酸配列における修飾を企画する場合、考慮されるであろうことを認識するであろう。Val, Leu及びIleから成る群、又はMet, Gly, Ser, Ala, Tyr及びTrpから成る群から選択された疎水性残基の置換が特に興味の対象である。
【０１２０】
必須アミノ酸の正体はまた、インターフェロン−αと、zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25のファミリーのメンバー（表１及び２に示されるような）との間の配列類似性の分析から推定され得る。前に記載された“FASTA”分析のような方法を用いて、高い類似性の領域が、タンパク質ファミリー内に同定され、そして保存された領域のためのアミノ酸配列を分析するために使用される。構造に基づいて変異体オリゴヌクレオチドを同定するためのもう1つのアプローチは、可能性ある変異体zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25遺伝子をコードする核酸分子が、上記で論じられたように、配列番号１、４、６、８又は10のヌクレオチド配列を有する核酸分子にハイブリダイズできるかどうかを決定することである。
【０１２１】
本発明のポリペプチドにおける必須アミノ酸を同定する他の方法は、当業界において知られている方法、例えば特定部位の突然変異誘発又はアラニン走査突然変異誘発である（Cunningham and Wells. Science 244: 1081 (1989)；Bass など., Pro. Nat. Acad. Sci. USA 88: 4498 (1991); Coombs and Gorey, “Site-Directed Mutagenesis and Protein Engineering”, in Proteins. Aualysis and Design, Angeletti (ed.), P. 259-311 (Academic Press, Inc. 1998)）。後者の技法においては、単一のアラニン突然変異が分子におけるあらゆる残基で導入され、そして得られる変異体分子が、分子の活性に対して決定的であるアミノ酸残基を同定するために、下記に開示されるように、生物学的又は生化学的活性について試験される。また、Hiltonなど., J. Biol. Chem. 271: 4699 (1996) を参照のこと。
【０１２２】
本発明はまた、zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25ポリペプチドの機能的フラグメント及びそのような機能的フラグメントをコードする核酸分子を包含する。本明細書に定義されるように、“機能的” zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25又はフラグメントは、その増殖又は分化活性により、特殊化された細胞機能を誘発し、又は阻害するその能力により、又は抗−zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25抗体又はZcytor19受容体（可溶性であるか又は固定されている）に対して特異的に結合するその能力により特徴づけられる。
【０１２３】
本明細書においてこれまでに記載されたように、zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25ポリペプチドは、６−ヘリカル−束構造により特徴づけられる。従って、本発明はさらに、（ａ）上記に記載される１又は複数のヘリックスを含んで成るポリペプチド分子；及び（ｂ）１又は複数のそれらのヘリックスを含んで成る機能的フラグメントを包含する融合タンパク質を提供する。融合タンパク質の他のポリペプチド部分は、もう1つのヘリカル−束サイトカイン又はインターフェロン、たとえばINF−アルファにより、又は融合タンパク質の分泌を促進する、非生来の及び/又は関連しない分泌シグナルペプチドにより寄与され得る。
【０１２４】
本発明のzcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25ポリペプチド、例えば十分な長さのポリペプチド、生物学的活性のフラグメント及び融合ポリペプチドは、従来の技法に従って、前記ポリペプチドをコードする発現ベクターを組み込まれている細胞を用いて生成され得る。本明細書において使用される場合、“発現ベクターを組み込まれている細胞”とは、外因性DNA分子の導入により直接的に操作されている細胞及び導入されたDNAを含むその子孫の両者を包含する。適切な宿主細胞は、外因性DNAにより形質転換又はトランスフェクトされ得、そして培養において増殖され得るそれらの細胞型であり、そして細菌、菌類細胞、及び培養された高等真核細胞を包含する。クローン化されたDNA分子を操作し、そして種々の宿主細胞中に外因性DNAを導入するための技法は次の文献に開示される：Sambrool など., Molecular Cloning : A Laboratory Manual, 2^nd ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, 1989, 及びAusubel など., eds., Current Protocol in Molecular Biology, John Wiley and Sons, Ins., NY, 1987。
【０１２５】
一般的に、本発明のzcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25ポリペプチドをコードするDNA配列は、その発現のために必要とされる他の遺伝子的要素、例えば一般的に、発現ベクター内の転写プロモーター及びターミネーターに作用可能に連結される。ベクターはまた、通常、１又は複数の選択マーカー及び１又は複数の複製の起点を含むであろうが、しかし当業者は、一定のシステム内で、選択マーカーが別のベクター上に供給され得、そして外因性DNAの複製が宿主細胞ゲノム中への組み込みにより供給され得ることを認識するであろう。プロモーター、ターミネーター、選択マーカー、ベクター及び要素の選択は、当業者のレベルの範囲内の通常のことである。多くのそのような要素は文献に記載されており、そして商業的供給者を通して入手できる。
【０１２６】
zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25ポリペプチドを、宿主細胞の分泌路中に方向づけるためには、分泌シグナル配列（又は、シグナル配列、リーダー配列、プレプロ配列又はプレ配列としても知られている）が、発現ベクターに供給される。分泌シグナル配列は、zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25の配列であり得、又はもう１つの分泌されたタンパク質（例えばt−PA；アメリカ特許第5,641,655号を参照のこと）に由来し、又は新たに合成され得る。
【０１２７】
分泌シグナル配列は、zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25 DNA配列に作用可能に連結され、すなわち２つの配列は正しく読み取り枠を整合して連結され、そして宿主細胞の分泌経路中に新しく合成されたポリヌクレオチドを方向づけるように配置される。分泌シグナル配列は通常、興味あるポリペプチドをコードするDNA配列の5’ 側に位置するが、但し一定の分泌シグナル配列は、興味あるDNA配列の他の場所に位置することもできる（例えば、Welchなど.,アメリカ特許第5,037,743号；Hollandなど., アメリカ特許第5,143,830号を参照のこと）。
【０１２８】
培養された哺乳類細胞または、本発明内の適切な宿主である。外因性DNAを、哺乳類宿主細胞中に導入するための方法は、リン酸カルシュウム−仲介トランスフェクション（Wiglerなど., Cell 14 : 725, 1978; Corsaro and Pearson, Somatic Cell Genetics 7 :603, 1981; Graham など., Virology 52; 456, 1973）,エレクトロポレーション( Neumann など., EMBO J. 1: 841−845, 1982 ); DEAE−デキストラン仲介トランスフェクション（Ausubel など., 前記）、及びリポソーム−仲介トランスフェクション（Hawley −Nelson など., Focus 15: 73, 1993; Ciccarone など.,Focus 15: 80, 1993 ）を包含する。
【０１２９】
培養された哺乳類細胞における組換えポリペプチドの生成は、例えばlevinson など., アメリカ特許第4,713,339 号; Hagen など., アメリカ特許第4,784,950 号; Palmiter など., アメリカ特許第 4,579,821 号; 及びRingold, アメリカ特許第 4,656,134 号により開示される。培養された適切な哺乳類細胞は、COS−1（ATCC No. CRL 165）、COS−7（ATCC No. CRL 1651）、BHK（ATCC No. CRL 1632）、BHK 570 （ATCC No. CRL 10314 ）、293（ATCC No. CRL 1573 ; Graham など., J. Gen. Viro. 36: 59−72, 1977 ）、及びチャイニーズハムスター卵巣(例えば CHO−K1; ATCC No. CCL61 )細胞系を包含する。
【０１３０】
追加の適切な細胞系は当業界において知られており、そして公的な寄託所、例えば American Type Culture Collection,Manassas,VAから入手できる。一般的に、強い転写プロモーター、例えばSV−40 又はサイトメガロウィルスからのプロモーターが好ましい。例えば、アメリカ特許第4,956,288 号を参照のこと。他の適切なプロモーターは、メタロチオネイン遺伝子からのプロモーター（アメリカ特許 4,579,821 号及び第 4,601,978 号）、アデノウィルス主要後期プロモーターを包含する。哺乳類細胞に使用するための発現ベクターは、それぞれ、American Type Culture Collection, Manassa, VA USAに受託番号98669及び98668として寄託されているpZP-1及びpZP-9を包含する。
【０１３１】
薬物選択は一般的に、外来性DNAが挿入されている、培養された哺乳類細胞を選択するために使用される。そのような細胞は通常、“トランスフェクタント”として言及される。選択剤の存在下で培養され、そしてそれらの子孫に興味ある遺伝子を伝達することができる細胞は、“適切なトランスフェクタント”として言及される。好ましい選択マーカーは、抗生物質ネオマイシンに対する耐性をコードする遺伝子である。選択は、ネオマイシン型薬物、例えばG−418又は同様のもの存在下で実施される。
【０１３２】
“増幅”として言及される方法である選択システムは、興味ある遺伝子の発現レベルを高めるためにも使用される。増幅は、低レベルの選択剤の存在下でトランスフェクタントを培養し、そして次に、導入された遺伝子の生成物を高レベルで生成する細胞を選択するために選択剤の量を高めることによって実施される。好ましい増幅可能選択マーカーは、メトトレキセートに対する耐性を付与するジヒドロ葉酸レダクターゼである。他の耐薬物性遺伝子(例えば、ヒグロマイシン耐性、複数薬物耐性、ピューロマイシンアセチルトランスフェラーゼ)もまた、使用され得る。
【０１３３】
アデノウィルスシステムはまた、インビトロでのタンパク質生成のためにも使用され得る。アデノウィルス感染された非−293細胞を、その細胞が急速に分裂しないような条件下で培養することによって、前記細胞は長時間、タンパク質を生成することができる。例えば、BHK細胞は、細胞工場において集密性まで増殖され、次に興味ある分泌されたタンパク質をコードするアデノウィルスベクターに暴露される。次に、細胞が、有意な細胞分裂を伴わないで、感染された細胞の数週間の生存を可能にする血清フリー条件下で増殖せしめられる。
【０１３４】
他方では、アデノウィルスベクター感染された293S細胞が、有意な量のタンパク質を生成するために、比較的高い細胞密度で、付着細胞として、又は懸濁培養において増殖せしめられ得る（ Garnier など., Cytotechnol. 15: 145−55, 1994 を参照のこと）。いずれかのプロトコールにより、発現され、分泌された異種タンパク質が、細胞における発現されたタンパク質の素因に依存して、細胞培養物上清液、溶解物又は、膜画分から反復して単離され得る。感染された293S 細胞生成プロトコールにおいては、分泌されていないタンパク質が効果的に得られる。
【０１３５】
昆虫細胞は、当業界において知られている方法に従って、オートグラファ・カリホルニカ（ Autographa californica ）核多角体病ウィルス（AcNPV）に通常由来する組換えバキュロウィルスにより感染され得る。好ましい方法においては、組換えバキュロウィルスは、Luckow ( Luckow, VA, など., J. Virol 67: 4566−79, 1993 ) により記載されるトランスポゾンの使用を通して生成される。トランスファーベクターをそ用するこのシステムは、キット形（Bac−to−Bac^TMキット；Life Technologies, Rockville, MD）として市販されている。
【０１３６】
このトランスファーベクター（pFastBacl^TM ；Life Technologies）は、“bacmid” と呼ばれる大きなプラスミドとして、E.コリに維持されるバキュロウィルスゲノム中に、興味あるタンパク質をコードするDNAを移動せしめるために、Tn7トランスポゾンを含む。Hill−Perkins, M.S. and Possee, R.D., J. Gen. Virol. 71: 971−6, 1990; Bonning, B.C. など., J. Gen. Virol. 75: 1551−6, 1994; 及びChazenbalk, G. D., and Rapoport, B., J. Biol Chem. 270: 1543−9,1995 を参照のこと。さらに、トランスファーベクター上記に開示されるようなポリペプチド延長又は親和性標識をコードするDNAとのイン−フレーム融合体を含むことができる。
【０１３７】
当業界において知られている技法を用いて、zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25−コードの配列を含むトランスファーベクターにより、E.コリ宿主細胞を形質転換し、そして前記細胞が、組換えバキュロウィルスの表示である断続的lacZ遺伝子を含むbacmida についてスクリーンされる。組換えバキュロウィルスゲノムを含むbacmid DNA が、通常の技法を用いて単離され、そしてスポドプテラ・フルギペルダ（ Spodoptera frugiperda ）細胞、例えばSf9 細胞をトランスフェクトするために使用される。zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25タンパク質を発現する組換えウィルスが結果的に生成される。組換えウィルスストックは、当業者において通常使用される方法により製造される。
【０１３８】
タンパク質生成に関しては、組換えウィルスは、次の宿主細胞をトランスフェクトするために使用される：典型的には、シロナヤガに由来する細胞系、スポドプテラフルギペルダ（Spodoptera frugiperda）（例えばSf9 又は、Sf21細胞）又はトリコプルシア・ニ（Trichoplusia ni）（例えば、HIGH Five^TM 細胞；Invitrogen, Carlsbad, CA）。例えば、アメリカ特許第5,300,435号を参照のこと。血清フリー培地が、細胞の増殖及び維持のために使用され得る。適切な培地形成は、当業者において知られており、そして市販の業者から得られる。細胞は典型的には、組換えウィルスストックが0.1〜10、より典型的には、約３の感染の多重度（MOI）で添加される時点で、約２〜５×10⁵個の細胞１〜２×10⁶個の細胞の接種密度で増殖される。使用される方法は、一般的に当業界において知られている。
【０１３９】
他の高等真核細胞、例えば植物細胞、及び鳥類細胞もまた、宿主として使用され得る。植物細胞において遺伝子を発現するためのベクターとしてのアグロバクテリウム・リゾゲネス（Agrobacterium rhizogenes ）の使用は、Sinkarなど.、J. Biosci. ( Bangalore ) 11: 47−58, 1987 により再考されている。
【０１４０】
菌類細胞、例えば酵母細胞はまた、本発明内で使用され得る。これに関して、特に興味ある酵母種は、サッカロミセス・セレビシアエ（Saccharomyces cerevisiae）, ピチア・パストリス（Pichia pastoris）及びピチア・メタノリカ(pichia methanolica) を包含する。外因性DNAによりS. セレビシアエ細胞を形質転換し、そしてそれから組換えポリペプチドを生成するための方法は、例えばKawasaki, アメリカ特許第4,599,311号；Kawasaki など., アメリカ特許第4,931,373号；Brake, アメリカ特許第4,870,008号；Welchなど., アメリカ特許第5,037,743号；及びMurray など., アメリカ特許第4,845,075号により開示される。形質転換された細胞は、選択マーカー、通常、耐薬物性、又は、特定の栄養物（例えばロイシン）の不在下で増殖する能力により決定される表現型により選択される。
【０１４１】
サッカロミセス・セレビシアエへの使用のための好ましいベクターシステムは、グルコース含有培地における増殖により形質転換された細胞の選択を可能にする、Kawasaki など. (アメリカ特許第4,931,373号)により開示されるPOT１ベクターシステムである。酵母への使用のための適切なプロモーター及びターミネーターは、解糖酵素遺伝子（例えば、Kawasaki, アメリカ特許第4,599,311号；Kingsmanなど., アメリカ特許第4,615,974号；及びBitter, アメリカ特許第4,977,092 号を参照のこと）及びアルコールデヒドロゲナーゼ遺伝子からのものを包含する。また、アメリカ特許第4,990,446 号；第5,063,154号；第5,139,936 号；及び第4,661,454号を参照のこと。
【０１４２】
他の酵素、例えばハンセヌラ・ポリモルファ（Hansenula polymorpha）、シゾサッカロミセス・ポンベ（ Schizosaccharomyces pombe ）、クルイベリミセス・ラクチス（ Kluyveromyces lactis ）、クルイベリミセス・フラギリス（Kluyveromyces fragilis ）、ウスチラゴ・マイジス（Ustilago maydis ）、ピチア・パストリス（ Pichia pastoris ）、ピチア・メタノリカ（Pichia methanolica）、ピチア・グイレルモンジ（ Pichia guillermondii ）、及びカンジタ・マルトサ（Candida maltosa ）のための形質転換システムは、当業界において知られている。例えば、Gleeson など., J. Gen. Microbiol. 132: 3459−3465, 1986 及びCregg, アメリカ特許第4,882,279 号；及びRaymondなど., Yeast 14, 11-23, 1998を参照のこと。
【０１４３】
アスペルギラス細胞は、Mcknight など.,アメリカ特許第4,935,349号の方法に従って使用され得る。アクレモニウム・クリソゲナム（Acremonium chrysogenum）を形質転換するための方法は、Sumino ., アメリカ特許第5,162,228号により開示される。ニューロスポラ（Neurospora）を形質転換するための方法は、Lambowitz, アメリカ特許第4,486,533号により開示される。ピチア・メタノリカにおける組換えタンパク質の生成は、アメリカ特許第5,716,808号、第5,736,383号、第5,854,039号及び第5,888,768号に開示される。
【０１４４】
原核宿主細胞、例えば細菌E.コリ、バシラス及び他の属の菌株はまた、本発明において有用な宿主細胞である。それらの宿主を形質転換し、そしてそこにクローン化される外来性DNA配列を発現するための技法は、当業界において良く知られている（例えば、Sambrookなど., 前記を参照のこと）。細菌、例えばE.コリにおいてzcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25ポリペプチドを発現する場合、そのポリペプチドは、典型的には不溶性顆粒として細胞質に保持され得、又は細菌の分泌配列により細胞周辺腔に向けられ得る。前者の場合、細胞は溶解され、そして顆粒が回収され、そして例えばグアニジンイソチオシアネート又はウレアを用いて変性される。
【０１４５】
次に、変性されたポリペプチドが再生され、そして例えばウレア、及び還元された及び酸化されたグルタチオンの組み合わせの溶液に対する透析、続く緩衝溶液に対する透析により、前記変成体を希釈することによってニ量体化され得る。後者の場合、ポリペプチドは、細胞周辺腔の内容物を開放するために細胞を破壊し（例えば、音波処理又は浸透ショックにより）、そしてタンパク質を回収することによって、細胞周辺腔から可溶性及び機能性形で回収され、それにより、変性及び再生のための必要性を回避することができる。
【０１４６】
形質転換され又はトランスフェクトされた宿主細胞は、選択された宿主細胞の増殖のために必要とされる栄養物及び他の成分を含む培養培地において、従来の方法に従って培養される。種々の適切な培地、例えば定義された培地及び複合培地は、当業界において知られており、そして一般的には、炭素源、窒素源、必須アミノ酸、ビタミン及び鉱物を含む。培地はまた、必要とされる場合、成長因子又は血清のような成分も含むことができる。増殖培地は一般的に、外因的に付加されたDNAを含む細胞を、例えば発現ベクター上に担持される選択マーカーにより補足され、又は宿主細胞中に同時トランスフェクトされる必須栄養物における薬物選択又は栄養欠乏により選択するであろう。液体培養物は、従来の手段、例えば小さなフラスコの振盪又は発酵器のスパージングにより十分なエアレーションを提供される。
【０１４７】
本発明のポリペプチド及びタンパク質を80％以上の純度、より好ましくは90％以上の純度、さらに好ましくは95％以上の純度に精製することが好ましく、そして汚染性高分子、特に他のタンパク質及び核酸に対して、99.9％以上の純度であり、そして感染性及び発熱性剤を有さない医薬的に純粋な状態が特に好ましい。好ましくは、精製されたポリペプチド又はタンパク質は、他のポリペプチド又はタンパク質、特に動物起源のそれらを実質的に有さない。
【０１４８】
発現された組換えzcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25タンパク質（キメラポリペプチド及びマルチマータンパク質を包含する）は、従来のタンパク質精製方法、典型的にはクロマトグラフィー技法の組合せにより精製される。一般的には、Affinity Chromatography: Principles & Methods, Pharmacia LKB Biotechnology, Uppsala, Sweden, 1988; 及びScopes, Protein Purification: Principles and Practice, Springer-Verlag, New York, 1994を参照のこと。
【０１４９】
ポリヒスチジン親和性標識（典型的には、約６個のヒスチジン残基）を含んで成るタンパク質は、ニッケルキレート樹脂上での親和性クロマトグラフィーにより精製される。例えば、Houchuliなど., Bio/Technol. 6: 1321-1325, 1988を参照のこと。glu-glu標識を含んで成るタンパク質は、従来の方法に従って、免疫親和性クロマトグラフィーにより精製され得る。例えば、Grussenmeyerなど., 前記を参照のこと。マルトース結合タンパク質融合体は、当業界において知られている方法に従って、アミロースカラム上で精製される。
【０１５０】
zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25ポリペプチドはまた、当業界において知られている方法に従って、化学合成、例えば排除固相合成、部分固相方法、フラグメント縮重又は従来の溶液合成を通して調製され得る。例えばMerrifield, J. Am. Chem. Soc. 85: 2149, 1963; Stewartなど., Solid Phase Peptide Synthesis (2^nd Edition), Pierce Chemical Co., Rockford, IL, 1984; Bayer and Rapp, Chem. Pept. Prot. 3:3, 1986; 及びAthertonなど., Solid Phase Peptide Synthesis: A Practical Approach. IRL Press, Oxford, 1989を参照のこと。インビトロ合成は、小さなポリペプチドの調製のために特に好都合である。
【０１５１】
当業界において知られている方法を用いて、zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25タンパク質は、モノマー又はマルチマーとして調製され得；グリコシル化されても又はグリコシル化されなくても良く；ペギレート化されても又はペギレート化されなくても良く；そして初期メチオニンアミノ酸を含んでも又は含まなくとも良い。
【０１５２】
zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25活性アッセイに使用するための標的細胞は、血管細胞（特に、内皮細胞及び平滑筋細胞）、造血（骨髄性又はリンパ）細胞、肝臓細胞（例えば、肝細胞、有窓性内皮細胞、Kupffer細胞及びIto細胞）、線維芽細胞（例えばヒト皮膚線維芽細胞及び肺線維芽細胞）、胎児肺細胞、関節性骨膜細胞、周皮細胞、軟骨細胞、骨芽細胞及び前立腺上皮細胞を包含する。内皮細胞及び造血細胞は、共通する先祖細胞、すなわち血管芽細胞に由来する（Choiなど., Development 125: 725-732, 1998）。
【０１５３】
本発明のzcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25タンパク質は、それらの活性、すなわち相当する細胞型の増殖、分化、移動、付着又は代謝の調節により特徴づけられる。zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25タンパク質の生物学的活性は、細胞増殖、分化、移動又は付着を検出するよう企画されたインビトロ又はインビボアッセイ；又は細胞代謝（例えば、他の成長因子又は他の高分子の生成）の変化によりアッセイされる。多くの適切なアッセイは当業界において知られており、そして代表的なアッセイが本明細書に開示される。培養された細胞を用いてのアッセイは、アミノ酸置換、欠失又は挿入の効果をスクリーニングするために、例えば決定するために最も便利である。
【０１５４】
しかしながら、発育工程（例えば、脈管形成、創傷治癒）の複雑性の観点から、インビボアッセイは一般的に、生物学的活性を確かめ、そしてさらに特徴づけるために使用されるであろう。一定のインビトロモデル、例えばPepperなど. (Biochem. Biophys. Res. Comm. 189: 824-831, 1992) の三次元コラーゲンゲルマトリックスモデルは、組織学的効果をアッセイするために十分に複雑化される。アッセイは、外因的に生成されたタンパク質を用いて行われ得るか、又は興味あるポリペプチドを発現する細胞を用いて、インビボ又はインビトロで行われ得る。アッセイは、zcyto20タンパク質のみを用いて、又は他の成長因子、例えばVEGFファミリー又は造血サイトカイン（例えば、EPO、TPO、G―CSF、幹細胞因子）のメンバーと組み合わせて行われ得る。
【０１５５】
zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25タンパク質の活性は、培養された細胞を用いてインビトロで、又は本発明の分子を適切な動物モデルに投与することによってインビボで測定され得る。細胞増殖又は分化を測定するアッセイは、当業界において良く知られている。
【０１５６】
たとえば、増殖を測定するアッセイは、次のようなアッセイを包含する：中性赤色素に対する化学感受性（Caranaugh など., Investigational New Drags 8: 347-354, 1990; 引用により本明細書に組み込まれる）、放射性ラベルされたヌクレオチドの組み込み（Raines and Ross, Methods Enzymol. 109: 749-773, 1985; Wahiなど., Mol. Cell Biol. 8: 5016-5025, 1988; 及びCooK など., Analytical Biochem. 179: 1-7, 1989; 引用により本明細書に組み込まれる）、増殖する細胞のDNAへの５-ブロモー２’-デオキシウリジン（BrdU）の組み込み（Porstmann など., J. Immunol. Methods 82: 169-179, 1985; 引用により本明細書に組み込まれる）、及びテトラゾリウム塩の使用（Mosmann, J. Immunol. Methods 65: 55-63, 1983; Alley など., Cancer Res. 48: 589-601, 198; Marshall など., Growth Reg. 5: 69-84, 1995; 及びScudiero など., Cancer Res. 48: 4827-4833, 1988; すべては引用により本明書に組み込まれる）。
【０１５７】
分化は、より成熟した表現型に分化するよう誘発され得る適切な前駆体細胞を用いてアッセイされ得る。分化を測定するアッセイは、たとえば組織の段階−特異的発現に関連する細胞表面マーカー、酵素活性、官能的活性、又は形態変化の測定を包含する（Watt, FASEB 5: 281-284, 1991; Francis, Differentiation 57 : 63-75, 1994; Raes, Adv. Anim. Cell Biol. Technol. Bioprocesses, 1i61-171, 1989; すべては引用により本明細書に組み込まれる）。
【０１５８】
zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25活性はまた、１又は複数の追加の成長因子又は他の高分子のZcyto21−誘発された生成を測定するよう企画されたアッセイを用いて検出され得る。好ましいそのようなアッセイは、肝細胞成長因子（HGF）、上皮成長因子（EGF）、形質転換成長因子α（TGFα）、インターロイキン−６（IL―6）、VEGF、酸性線維芽成長因子（aFGF）、アンジオゲニル、及び肝臓により生成される他の高分子の存在を決定するためのアッセイを包含する。適切なアッセイは、興味ある高分子に応答する標的細胞を用いての有糸分裂誘発アッセイ、受容体−結合アッセイ、競争結合アッセイ、免疫学的アッセイ（例えば、ELISA）、及び当業界において知られている他の形式を包含する。
【０１５９】
メタロプロテアーゼ分泌は、処理された一次ヒト皮膚線維芽細胞、骨膜細胞及び軟骨細胞から測定される。zcyto20, zcyto21, zcyto22，zcyto24及びzcyto25タンパク質の存在下での培養に応答して生成される、コラゲナーゼ、ゼラチナーゼ及びストロマリシンの相対的レベルは、ザイモグラムゲルを用いて測定される（Loita and Stetler-Stevenson, Cancer Biology 1: 96-106, 1990）。試験タンパク質に応答して皮膚線維芽細胞及び軟膏細胞によるプロコラーゲン/コラーゲン合成は、発生期分泌されたコラーゲン中への³H−プロリン組み込みを用いて測定される。
【０１６０】
³H−ラベルされたコラーゲンは、SDS−PAGE、続いてのオートラジオグラフィーにより可視化される（Unemori and Amento, J. Biol. Chem. 265: 10681-10685, 1990）。皮膚線維芽細胞及び軟骨細胞からのムコ多糖（GAG）分泌は、１，９−ジメチルメチレンブルー色素結合アッセイを用いて測定される（Farndaleなど.,Biochem. Biophys. Acta 883: 173-177, 1986）。コラーゲン及びGAGアッセイはまた、それらのサイトカインに対する確立された応答を改良するzcyto20タンパク質の能力を試験するために、IL−１α又はTGF−αの存在下で行われる。
【０１６１】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25を含んで成るタンパク質ファミリーの一定メンバーが、インビボで循環単球数を高めることが示されている。単球活性化は、生来及び適応免疫性において重要である。例えば、単球の活性化は、いくつかの機構により抗原提供を刺激することが示されている。抗原提供は、T−細胞、すなわち細胞毒性及びヘルパーT細胞の活性化及び増殖を促進する。樹状突起細胞の成熟及び活性化はまた、T細胞、及び生来及び適応免疫性の活性化を促進する。
【０１６２】
活性化された単球及びマクロファージの上昇はまた、細胞溶解活性を高めることが示されている。従って、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25は、生来の、細胞介在性及び体液免疫応答を増強する抗感染剤として有用であろう。CD14＋単球におけるICAM染色の上昇は、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25が単球活性化において役割を演じることを示唆している。データは、ファミリーメンバーがウィルスに対する抗ウィルス応答を促進することを示していると共に、細菌及び寄生体もまた、影響され得る。
【０１６３】
単球活性化アッセイは、（１）単球活性化をさらに刺激するzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25タンパク質の能力を得るために、及び（２）結合−誘発された又は内毒素―誘発された単球活性化を調節するzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25タンパク質の能力を試験するために行われる（Fuhlbriggeなど., J. Immunol. 138: 3799-3802, 1987）。活性化に応答して生成されるIL−１α及びTNFαは、ELISAにより測定される（Biosource, Inc. Camarillo, CA）。単球/マクロファージ細胞は、CD14（LPS受容体）のおかげで、内毒素に対して敏感であり、そして適切なレベルの内毒素様活性を有するタンパク質それらの細胞を活性化するであろう。
【０１６４】
単球の高められたレベルは、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25が骨髄における骨髄性前駆体細胞に対して直接的な効果を有することを示唆する。骨髄性前駆体細胞の単球への上昇する分化は、例えば化学療法の後、免疫能力の回復において必須である。従って、化学療法を受ける患者へのzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25の投与は、それらの回復、及び化学療法レジメに通常関連する感染を阻止する能力を促進する。従って、本発明の分子と共に骨髄又は末梢血液細胞を培養することによって単球前駆体細胞の数を高めるための方法が提供され、この結果、インビトロ又はエクスビボでこの効果を達成するための単球又は単級前駆体細胞が上昇する。
【０１６５】
本発明はまた、高められた単球又は単球前駆体細胞を必要とする哺乳類への本発明の分子のインビボ投与を提供する。高められた単球及び単球前駆体細胞は、臨床医、医者及び当業者に良く知られている方法を用いて測定され得る。単球細胞は、造血細胞の骨髄系に含まれ、その結果、その系統における他の細胞に対する効果は、異常ではない。例えば、１つの因子が骨髄又はリンパ系における１つのタイプの細胞の分化又は増殖を促進する場合、これは、通常の前駆体又は幹細胞による他の細胞の生成に影響を及ぼすことができる。
【０１６６】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25タンパク質の造血活性が、培養における種々の造血細胞に対してアッセイされ得る。好ましいアッセイは、当業界において知られている、一次骨髄コロニーアッセイ及び後期段階の系統−制限されたコロニーアッセイを包含する（例えば、Hollyなど., WIPO Publication WO 95/21920号）。適切な半固体培地（例えば、15％ウシ胎児血清、10％ウシ血清アルブミン及び0.6％PSN抗生物質混合物を含む50％メチルセルロース）上にプレートされた骨髄細胞が、試験ポリペプチドの存在下でインキュベートされ、次に、コロニー形成について顕微鏡により試験される。既知の造血因子が対照として使用される。造血細胞系に対するzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドの有糸分裂活性は、上記に開示されるようにして測定され得る。
【０１６７】
細胞移動は、Kahlerなど. (Arteriosclerosis. Thrombosis and Vascular Biology 17: 932-939, 1997) により実質的に開示されるようにして、アッセイされる。タンパク質は、それが低タンパク質濃度の領域から高タンパク質濃度の領域への移動を誘発する場合、走化性であると思われる。典型的なアッセイは、２つのチャンバーを分離するポリスチレン膜（Transwell; Corning Costar Corp.）を有する改良されたBoydenチャンバーを用いて行われる。１％BSAを含む培地に希釈された試験サンプルが、Transwellを含む24−ウェルプレートの低部チャンバーに添加される。次に、細胞が0.2％ゼラチンにより前処理されたTranswell挿入体に配置される。
【０１６８】
細胞移動が、37℃での４時間のインキュベーションの後に測定される。非移動性細胞はTranswell膜の上部から除かれ、そして膜の低表面に結合される細胞が固定され、そして0.1％結晶バイオレットにより染色される。次に、染色された細胞が10％酢酸により抽出され、そして吸光度が600nmで測定される。次に、移動が標準の検量曲線から計算される。細胞移動はまた、Grantなど. (“Angiogenesis as a component of epithelial-mesenchymal interactions” in Goldberg and Rosen, Epithelial-Mesenchymal Interaction in Cancer, Birkhauser Verlag, 1995, 235-248; Baatout, Anticancer Tesearch 17: 451-456, 1997) のマトリゲル方法を用いて測定され得る。
【０１６９】
細胞付着活性は、LaFleurなど. (J. Biol. Chem. 272: 32798-32803, 1997) により開示されるようにして、実質的にアッセイされる。手短には、マイクロタイタープレートが、試験タンパク質により被覆され、非特異的部位がBSAによりブロックされ、そして細胞（例えば、平滑筋細胞、白血球又は内皮細胞）が、約10⁴〜10⁵個の細胞/ウェルの密度でプレートされる。ウェルが37℃で（典型的には約60分間）インキュベートされ、次に、非付着性細胞が軽い洗浄により除去される。付着された細胞が従来の方法により（例えば、結晶バイオレットにより染色され、細胞を溶解し、そして溶解物の光学密度を決定することにより）、定量化される。対照ウェルは、既知の付着タンパク質、例えばフィブロネクチン又はビトロネクチンにより被覆される。
【０１７０】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25タンパク質の活性は、受容体結合及び続く生理学的細胞応答に関連する細胞外酸性化速度又はプロトン排泄を測定する珪素基材のバイオセンサーマイクロフィジオメーターにより測定され得る。典型的な装置は、Molecular device, Sunnyvale, CAにより製造されるCytosensor^TM Microphysiometerである。種々の細胞応答、たとえば細胞増殖、イオン輸送、エネルギー生成、炎症応答、調節及び受容体活性化及び同様のものが、この方法により測定され得る。例えば、McConnell, H.M. など., Science 257: 1905-1912, 1992; Pitchford, S. など., Meth. Enzymol. 228: 84-108, 1997; Arimilli, S. など., J. Immunol. Meth. 212: 49-59, 1998; Van Liefde, I. など., Eur. J. Pharmacol. 346: 87-95, 1998を参照のこと。
【０１７１】
マイクロフィジオメーターは、付着性又は非付着性真核又は原核細胞をアッセイするために使用され得る。時間にわたって細胞培地における細胞外酸性化の変化を測定することによって、マイクロフィジオメーターは、種々の刺激、例えばzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25タンパク質、それらのアゴニスト又はアンタゴニストに対する細胞応答を直接的に測定する。好ましくは、マイクロフィジオメーターは、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドに対して応答しない対照の真核細胞に比較して、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−応答性真核細胞の応答を測定するために使用される。
【０１７２】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−応答性真核細胞は、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25のための受容体がトランスフェクトされ、それにより、Zcyto21に対して応答性である細胞を創造し、そして天然においてzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25に対して応答性の細胞を包含する。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25に対して暴露されない対照に比較して、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドに対して暴露された細胞の応答における細胞外酸性化の上昇又は低下により測定される差異が、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−調節された細胞応答の直接的に測定である。
【０１７３】
さらに、そのようなzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−調節された応答は、種々の刺激下でアッセイされ得る。従って、本発明は、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドに対して応答性の細胞を供給し、前記細胞の第１部分を試験化合物の不在下で培養し、前記細胞の第２部分を試験化合物の存在下で培養し、そして前記細胞の第１部分に比較して、前記細胞の第２部分の細胞応答の上昇又は低下の変化を検出することを含んでなる、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドのアゴニスト及びアンタゴニストを同定するための方法が提供される。
【０１７４】
細胞応答の変化は、細胞外酸性化速度の測定できる変化として示される。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25タンパク質の存在及び試験化合物の存在下での細胞の第３部分の培養が、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−応答細胞のための陽性対照、及びzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドの活性と試験化合物のアゴニスト活性を比較するための対照を提供する。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25のアンタゴニストは、試験化合物の存在及び不在下でzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25タンパク質に細胞を暴露することによって同定され得、それにより、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−刺激された活性の低下が、試験化合物におけるアンタゴニスト活性の表示である。
【０１７５】
動物におけるzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリヌクレオチドの発現が、インビボのタンパク質活性の過剰生成又は阻害の生物学的効果のさらなる研究においてのモデルを提供する。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−コードのポリヌクレオチド及びアンチセンスポリヌクレオチドは、ウィルスベクター又は裸DNAを用いて、試験動物、例えばマウス中に導入され得、又はトランスジェニック動物が生成され得る。
【０１７６】
本発明のタンパク質をアッセイするための１つのインビボアプローチは、ウィルス供給システムを包含する。この目的のための典型的なウィルスは、アデノウィルス、ヘルペスウィルス、ワクシニアウィルス及びアデノ関連ウィルス（AAV）を包含する。アデノウィルス、すなわち二本鎖DNAウィルスは現在、異種拡散の供給のための最も研究されている遺伝子トランスファーベクターである（T. C. Becker など., Meth. Cell Bio. 43: 161−89, 1994; 及びJ. T. Douglas and D.T. Curiel, Science & Medicine 4: 44−53, 1997 を参照のこと）。
【０１７７】
アデノウィルスシステムは次のいくつかの利点を付与する：（ i ）アデノウィルスは比較的大きなDNA挿入体を適応せしめることができ；（ ii ）高い力価に増殖され得；（ iii ）広範囲の哺乳類細胞型を感染せしめ；そして（ iv ）多数の異なったプロモーター、例えば偏在する、組織特異的、及び調節可能なプロモーターと共に使用され得る。また、アデノウィルスは血流において安定しているので、それらは静脈内注射により投与され得る。
【０１７８】
アデノウィルスゲノムの一部を欠失することによって、異種DNAの大きな挿入体（７kbまでの）が提供され得る。それらの挿入体は、直接的な結合により又は同時トランスフェクトされたプラスミドとの相同組換えにより、ウィルスDNA中に組み込まれ得る。典型的なシステムにおいては、必須E1遺伝子がウィルスベクターから欠失され、そしてウィルスは、E１遺伝子が宿主細胞（例えば、ヒト293細胞系）により供給されなければ、複製しないであろう。損なわれていない動物に静脈内投与される場合、アデノウィルスは主に、肝臓を標的化する。
【０１７９】
アデノウィルス供給システムがE１遺伝子欠失を有する場合、ウィルスは宿主細胞において複製することができない。しかしながら、宿主の組織（例えば、肝臓）は、異種タンパク質を発現し、そしてプロセッシングするのであろう(そして、分泌シグナル配列が存在する場合、分泌する)。分泌されたタンパク質は高く血管化された肝臓において循環に入り、そして感染された動物に対する効果が決定され得る。
【０１８０】
遺伝子供給の他の方法は、身体から細胞を除去し、そして裸DNAプラスミドとして細胞中にベクターを導入することを含んで成る。裸DNAベクターは、当業界において知られている方法、例えばトランスフェクション、エレクトロポレーション、マイクロインジェクション、トランスダクション、細胞融合、DEAEデキストラン、リン酸カルシュウム沈殿、遺伝子ガンの使用、又はDNAトランスポーター使用により宿主細胞中に導入される。Wuなど., J. Biol. Chem. 263: 14621-14624, 1988; Wuなど., J. Biol. Chem. 267: 963-967, 1992; 及びJohnston and Tang, Meth, Cell. Biol. 43: 353-365, 1994を参照のこと。
【０１８１】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25遺伝子を発現するよう構築されたトランスジェニックマウス、又は“ノックアウトマウス”として言及される、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25遺伝子機能の完全な存在を示すマウス（Snouwaertなど., Science 257: 1083, 1992）がまた、生成され得る（Lowellなど., Nature 366: 740-742, 1993）。それらのマウスは、インビボシステムにおけるzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25遺伝子、及びそれによりコードされるタンパク質を研究するために使用され得る。
【０１８２】
トランスジェニックマウスは、それらが特定因子の過剰又は過少発現に起因する成長性異常及び遮断の同定を可能にすることにおいて、初期成長におけるzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25タンパク質の役割を調べるために特に有用である。また、Maisonpierreなど., Science 277: 55-60, 1997, 及びHanehan，Science 277: 48-50, 1997を参照のこと。トランスジェニック発現のための好ましいプロモーターは、メタロチオネイン及びアルブミン遺伝子からのプロモーターを包含する。
【０１８３】
筋肉収縮の正常な阻害制御の損失は、選択されたγ−アミノ酪酸−分泌ニューロンの損傷又は心配に関連している。例えば、Stiff Man Syndromeは、それらのγ−アミノ酪酸（GABA）生成ニューロンの機能の妨害を通して介在されると思われる、筋肉組織の著しい硬直性を示す。他の関連する神経筋肉障害は、ミオトニー、代謝性ミオパシー、アイザック症候群、ジストニー及び強直性収縮を包含する（Valldeoriola, J. Neurol. 246: 423-431, 1999）。
【０１８４】
同様に、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドの直接的な測定、又は組織における発現のその損失が、それらが腫瘍の進行を受けるにつれて、組織又は細胞において決定され得る。前癌又は癌状態における細胞の侵襲性及び運動性の上昇、又はzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25の発現の獲得又は損失が、正常な組織に比較して、腫瘍進行における形質転換、侵襲性及び転移についての診断として作用することができる。進行又は転移の腫瘍段階の知識は、所定の個々の癌患者のために、最も適切な治療又は処理の攻撃性を選択する上で医薬を助けるであろう。
【０１８５】
発現（mRNA又はタンパク質のいずれかの）の獲得及び損失を測定する方法は、当業界において良く知られており、そして本明細書に記載されており、そしてzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25発現に適用され得る。例えば、細胞運動性を調節するポリペプチドの出現又は消出が、前立腺癌の診断及び予後を助けるために使用され得る（Banyard, J. and Zetter, B. R., Cancer and Metast. Rev. 17: 449-458, 1999）。細胞運動性、活性化、増殖又は分化のエフェクターとして、発現のzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25獲得又は損失が脳及び他の癌についての診断分析として作用することができる。
【０１８６】
さらに、正常対照に対して、患者におけるzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチド又は抗−zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25抗体の高められたレベルが、前立腺特異的抗原（PSA）に類似して、脳及び他の癌の表示である（例えば、Mulders, TMT，など., Eur. J. Surgical Oncol. 16: 37-40, 1990を参照のこと）。Zcyto21を発現することが通常見出されていない組織における強いzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25発現が、細胞又は組織型における異常性、すなわち非肝臓組織中への癌性肝臓組織の侵入又は転移の診断として作用し、そしてさらなる試験又は調査の指図において医者を助け、又は治療の指図を助ける。
【０１８７】
さらに、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリヌクレオチドプローブ及び抗−zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25抗体、並びに組織におけるzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドの存在の検出は、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25を通常発現することが見出されている脳又は他の組織が、例えば、疾病又は癌性肝臓又は神経組織の切除を包含する手術の後に存在するかどうかを評価するために使用され得る。
【０１８８】
本発明のポリヌクレオチド、ポリペプチド及び抗体は、すべての組織が手術の後、例えば脳及び他の癌についての手術の後、切除されたかどうかを決定するための助剤として使用され得る。そのような場合、癌からの回復を最大にし、そして再発を最少にするために、すべての可能性ある疾病組織を除去することが特に重要である。好ましい態様は、組織学的に又は現場使用され得る、蛍光性、放射性ラベルされた、又は比色的にラベルされた抗−zcyto20抗体及びzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチド結合パートナーを包含する。
【０１８９】
さらに、腫瘍進行及び転移に対するzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25の活性及び効果が、インビボで測定され得る。いくつかの同系マウスモデルが、腫瘍進行に対するポリペプチド、化合物又は他の処理の影響を研究するために開発されて来た。それらのモデルにおいては、培養継代された腫瘍細胞が、腫瘍ドナーと同じ株のマウス中に移植される。細胞は、受容体マウスにおいて類似する特徴を有する腫瘍中に増殖し、そして転移がまた、そのモデルのいくつかにおいて生じるであろう。本発明者の研究のための適切な腫瘍モデルは、中でも、Lewis肺癌（ATCC No. CRL-1642）及びB16黒色腫（ATCC No. Crl-6323）を包含する。
【０１９０】
それらは、インビトロで容易に培養され、そして操作される、C57BL6/Jマウスと同種の通常使用される腫瘍系である。それらの細胞系のいずれかの移植に起因する腫瘍は、C57BL6/Jマウスの肺に転移することができる。Lewis肺癌モデルが最近、脈管形成のインヒビターを同定するためにマウスに使用されている（O’Reilly MS, など. Cell 79: 315-328, 1994）。C57BL6/Jマウスが、組換えタンパク質、アゴニスト又はアンタゴニストの毎日の注入、又は組換えアデノウィルスの１回の注入を通して、実験剤により処理される。この処理に続いて３日で、10⁵〜10⁶個の細胞が背面の皮膚下に移植される。
【０１９１】
他方では、細胞自体が、タンパク質が全身的によりもむしろ腫瘍部位で又は細胞内で合成されるよう、移植の前、組換えアデノウィルス、例えばzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25を発現するアデノウィルスにより感染され得る。マウスは、通常５日以内に眼に見える腫瘍を進行する。腫瘍が３週間までの間、増殖され、この間、それらは対照の処理グループにおいて1500−1800mm³のサイズに達することができる。腫瘍サイズ及び体重が、その実験を通して注意してモニターされる。殺害の時点で、腫瘍が、肺及び肝臓と共に除去され、そして計量される。肺の重量が、転移性腫瘍負荷量と相互関係することが示された。さらなる測定として、肺表面転移が計数される。
【０１９２】
切除された腫瘍、肺及び肝臓が、当業界において知られており、そして本明細書に記載される方法を用いて、組織学的試験、免疫組織化学及び現場ハイブリダイゼーションのために調製される。従って血管構造を回復し、そして転移を受ける腫瘍の能力に対する、問題の発現されたポリペプチド、例えばzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25の影響が評価され得る。さらに、アデノウィルスとは別に、移植された細胞がzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25により一時的にトランスフェクトされ得る。
【０１９３】
安定したZcyto21トランスフェクトの使用、及びインビボでのzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25発現を活性化する誘発性プロモーターの使用は、当業界において知られており、そして転移のzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25誘発を評価するためにこのシステムに使用され得る。さらに、精製されたzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25又はzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−ならし培地が、このマウスモデルに直接的に注入され、そして従って、このシステムに使用される。一般的な文献については、O’Reilly MS, など. Cell 79: 315-328, 1994, 及びRusciano D, など、Murine Models of Liver Metastasis, Invasion Metastasis 14: 349-361,1995を参照のこと。
【０１９４】
抗血清方法は、インビボでzcyto20遺伝子転写の阻害の効果を試験するためにそのような転写を阻害するために使用され得る。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−コードのポリヌクレオチド（例えば、配列番号１に示されるようなポリヌクレオチド）のセグメントに対して相補的であるポリヌクレオチドが、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−コードのmRNAに結合し、そしてそのようなmRNAの翻訳を阻害するよう企画される。そのようなアンチセンスオリゴヌクレオチドはまた、細胞培養におけるzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチド−コードの遺伝子の発現を阻害するためにも使用され得る。
【０１９５】
ほとんどのサイトカイン、及び活性化されたリンパ球により生成される他のタンパク質は、身体中の細胞の細胞分化、活性化、レクルートメント及び恒常性において重要な生物学的役割を演じる。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25、及びそれらの活性のインヒビターは、種々の治療用途を有することが予測される。そのような治療用途は、免疫調節を必要とする疾病、例えば自己免疫疾患、例えばリウマチ様関節炎、多発性硬化症、重症筋無力症、全身性エリテマトーデス及び糖尿病の処理を包含する。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25は、炎症の調節において重要であり、そして従って、リウマチ様関節炎、ぜん息及び敗血症の処理において有用である。
【０１９６】
腫瘍形成の介在においてzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25の役割が存在し、それによりzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25アンタゴニストが癌の処理において有用である。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25が免疫系の調節において有用であり、それによりzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25及びzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25アンタゴニストは、移植片拒絶を低めるために、対宿主性移植片病を妨げるために、感染性疾病に対する免疫性を追加するために、免疫無防備状態の患者（例えば、HIV⁺患者）を処理するために、及びワクチンの改良のために使用され得る。
【０１９７】
本発明のタンパク質ファミリーのメンバーは、インターフェロンαに類似する抗ウィルス効果を有することが示されている。インターフェロンは、次のような疾病の処理のためにアメリカ合衆国において許可されている：自己免疫疾患、尖圭コンジローム、慢性C型肝炎、膀胱癌、頸部癌、喉頭乳頭腫症、菌状息肉腫、慢性B型肝炎、ヒト免疫欠損ウィルスにより感染された患者におけるカポジ肉腫、悪性メラノーマ、ヘアリー・セル白血病及び多発生硬化症。
【０１９８】
さらに、zcyto25及びzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25は、細胞増殖を阻害することによって、動脈硬化症、例えばアテローム硬化症の形を処理するために使用され得る。従って、本発明は、そのような病状を処理し、そして網膜症を処理するためへのzcyto20活性を有するタンパク質、ポリペプチド及びペプチドの使用を企画する。本発明はまた、リンパ増殖障害、例えばB−細胞リンパ腫、慢性リンパ性白血病、慢性骨髄性白血病を処理するためへのzcyto25及びzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25活性を有するタンパク質、ポリペプチド及びペプチドの使用を企画する。
【０１９９】
インターフェロンはまた、培養された細胞により抗原の発現を誘発することが示されている（例えば、Authなど., Hepatology18: 546 (1993), Guadagniなど., Int. J. Biol. Markers 9: 53 (1994), Girolomoniなど., Eur. J. Immunol. 25: 2163 (1995), 及びMaciejewskiなど., Blood 85: 3183 (1995) を参照のこと）。この活性は、インビトロで新規腫瘍関連の抗原を同定する能力を増強する。
【０２００】
さらに、ヒト腫瘍抗原の発現のレベルを高めるインターフェロンの能力は、インターフェロンが、免疫療法のためのアジュバント設定において有用であるか、又は抗―腫瘍抗原抗体を用いてイムノシンチグラフィーを増強できることを示す（Guadagniなど., Cancer Immunol. Immunother. 26: 222 (1988); Guadagniなど., Int. J. Biol. Markers 9:53 (1994)）。従って、本発明は、免疫療法のためのアジュバントとして、又は抗−腫瘍抗原抗体を用いてイムノシンチグラフィーを改良するために、zcyto25及びzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25活性を有するタンパク質、ポリペプチド及びペプチドの使用を包含する。
【０２０１】
ウィルス感染の検出及び診断方法は、当業者に良く知られている。本発明の分子の投与に応答してのウィルスの低下を測定するために使用される正確な方法は、患者、ウィルス感染の型、及び同様のものに依存するであろう。例えば、方法は、CD4細胞計数の変化の測定、血清学試験、従来の及び同時定量ポリメラーゼ鎖反応アッセイによるウィルスのDNA及びRNAの測定、ウィルス誘発された抗体レベル、免疫蛍光及び酵素−結合されたイムノソルベントアッセイ、細胞障害効果、及び組織学を包含するが、但しそれらだけには限定されない。
【０２０２】
さらに、zcyto25及びzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25は、CD4又はもう１つの白血球受容体を結合し、そして例えばヒト免疫欠損ウィルス（HIV）又はヒトT−細胞リンパ栄養性ウィルス（HTLV）に対する抗ウィルス効果を示すことができる。他方では、zcyto20ポリペプチドは、ウィルス感染を阻止するためにウィルス受容体又は補受容体と競争することができる。zcyto20は、ウィルス感染を防げるために、又は前進するウィルス複製及び再感染を低めるために非経口投与され得る（Gayowski，T. など., Transplantation 64: 433-426, 1997）。従って、zcyto20は、例えばウィルス性白血病（HTLV）、AIDS（HIV）、又はロタウィルス、カリチウィルス（例えば、Norwalk Agent）及び病原性アデノウィルス、B及びC型肝炎ウィルスの一定株により引き起こされる胃腸ウィルス感染のための抗ウィルス治療剤として使用され得る。
【０２０３】
zcyto25及びzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25はまた、心筋炎、すなわち熱が炎症工程に包含される場合に生じる障害を処理するためにも使用され得る。リンパ球の浸潤及び筋細胞融解は、ウィルス、細菌、菌類又は寄生体による感染の後にもたらされると思われる（例えば、Brodisonなど., J. Infection 37: 99 (1998) を参照のこと）。zcyto25及びzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25は、心筋炎に関連する感染を処理するために、静脈内又は皮下注射され得る。zcyto25及びzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25はまた、自己免疫心筋炎の処理において免疫調節サイトカインとして静脈内投与され得る。インターフェロン用量は、A/Jマウスにおける心筋炎の自己免疫モデルを用いて推定され得る（Donermeyerなど., J. Exp. Med. 182: 1291 (1995)）。
【０２０４】
羊におけるインターフェロン−τの外因性投与が妊娠割合を高める（Aggarwal, Human Cytokines III, (Blackwell Science 1997)）。本明細書に記載されるように、zcyto20 mRNAは、胎盤において発現される。従って、本発明は、胎児の成長を促進し、そして保護するために、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25、例えば開示されるヒトzcyto20, zcyto21及びzcyto22の使用を包含する。例示されるように、zcyto20, zcyto21及びzcyto22は、ウィルス感染（例えば、ヒト免疫欠損ウィルス、ヒト乳頭腫ウィルス及び同様のもの）から胎児の成長を保護するために使用され得る。さらに、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25は、インビトロでの受精を促進するために使用され得る。
【０２０５】
最近の報告は、初期のウィルス感染の間、膵臓B細胞において強い抗ウィルス状態を誘発することにより、ウィルス誘発された糖尿病の予防におけるI型インターフェロンの役割を強調する（Flodstroemなど., Nature Immunology 3. 373-382 (2002)）。これは、ウィルス誘発された細胞死、及びそれに付随する自己免疫性のためにβ細胞の損失を妨げる。zcyto20, zcyto21及びzcyto22はまた、それらの受容体Zcytor19を発現する細胞において抗ウィルス状態を誘発する。
【０２０６】
Zcytor19は、膵臓組織において高く発現され、そして従って、zcyto20, zcyto21及びzcyto22は、β細胞死のために、ウィルス誘発された糖尿病の予防において役割を演じることができる。さらに、ウィルス誘発された糖尿病の予防においてI型インターフェロンの役割は、他のウィルス感染された自己免疫に拡張され得、そして従って、zcyto20, zcyto21及びzcyto22はまた、他の疾病、例えば筋肉硬化症、狼瘡、及びzcyto20, zcyto21及びzcyto22受容体、Zcytor19を発現する組織におけるウィルス誘発された自己免疫疾患の予防における役割を演じることができる。
【０２０７】
I型インターフェロンの慢性全身性発現はまた、I型糖尿病の病因に関連している。生物学的活性及び遺伝子誘発に関してzcyto20, zcyto21及びzcyto22へのI型インターフェロンの類似性が与えられる場合、zcyto20, zcyto21及びzcyto22の慢性全身性発現はまた、I型糖尿病の病因において役割を演じることができる。従って、膵臓におけるzcyto20, zcyto21及びzcyto22活性のインヒビターは、I型糖尿病の予防において有益である。
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドは、単独で、又は他の脈管形成剤、例えばVEGFと組合して投与され得る。追加の剤と組合してzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25を用いる場合、それらの２種の化合物は、処理される特定の条件のために適切なように、同時に又は連続的に投与され得る。
【０２０８】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25は腫瘍形成の処理において有用であり、そして従って、癌の処理において有用である。抗−IgM刺激された正常B−細胞のzcyto20 の阻害及び類似する効果が、B−細胞腫瘍系において観察され、このことは、B細胞腫瘍細胞を低い増殖状態に誘発するために、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25による患者の処理において治療的効果が存在することを示している。リガンドは、従来の化学療法剤及び免疫調節剤、例えばインターフェロンαの両者を包含する使用において、他の剤と組合して投与され得る。α/βインターフェロンは、いくつかの白血病及び動物疾患モデルの処理において効果的であることが示されており、そしてインターフェロンのα及びzcyto20の成長阻害効果は、B−細胞腫瘍由来の細胞系に対して付加的であり得る。
【０２０９】
本発明は、新生B又はT細胞の増殖を低めるのに十分な量のzcyto20の組成物を、B又はT細胞新生を有する哺乳類に投与することを含んで成る、新生B又はT細胞の増殖を低めるための方法を提供する。骨髄前駆体からの溶解性NK細胞のzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25刺激及び抗原受容体の活性化に続いてのT細胞の増殖は、同種骨髄移植を受ける患者のための処理を増強し、そして従って、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25は、ドナーリンパ球の注入を伴なって又はそれを伴なわないで、抗−腫瘍応答の生成を増強するであろう。
【０２１０】
もう1つの態様においては、本発明は、新生B又はT細胞の増殖を低めるのに十分な量のzcyto20アンタゴニストの組成物を、B又はT細胞新生を有する哺乳類に投与することを含んで成る、新生B又はT細胞の増殖を低めるための方法を提供する。さらに、zcyto20アンタゴニストは、リガンド/毒素融合タンパク質であり得る。
【０２１１】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−サポリン融合毒素が、類似する組の白血病及びリンパ腫に対して使用され得、これがzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25により処理され得る白血病の範囲を拡張する。zcyto20受容体の融合毒性介在性活性化が、標的細胞の増殖を阻害する次の２種の独立した手段を提供し、ここで前記第１の手段はリガンドのみにより見られる効果と同一であり、そして第２の手段は受容体インターナリゼーションを通しての毒性の供給による手段である。
【０２１２】
医薬使用のためには、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25タンパク質は、従来の方法に従って、非経口、特に静脈内又は皮下供給のために配合される。一般的に、医薬製剤は、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドを、医薬的に許容できるビークル、例えば塩溶液、緩衝溶液、水中、５％デキストロース、又は同様のものと共にを含むであろう。製剤はさらに、１又は複数の賦形剤、保存剤、溶解剤、緩衝剤、バイアル表面上のタンパク質損失を妨げるためのアルブミン、等を含むことができる。配合方法は、当業界において良く知られており、そして例えば、Remington: The Science and Practice of Pharmacy, Gennaro, ed., Mack Publishing Co., Easton, PA, 19^th ed., 1995に開示される。
【０２１３】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25は、好ましくは、10〜100μg/ml合計体積の濃度で使用され得るが、但し１ng/ml〜1000μg/mlの範囲の濃度が使用され得る。局部適用、例えば創傷治癒の増進に関しては、タンパク質は、0.1〜10μg/cm²の創傷領域の範囲で適用され、そして正確な用量は、処理される病状の性質及び重症度、患者の形質、等を考慮して、許容される標準に従って、医者により決定される。用量の決定は、当業者のレベルの範囲内である。投与は、処理の期間、毎日又は断続的である。静脈内投与は、１〜数時間の典型的な期間にわたって、ボーラス注射又は注入によってであろう。持効性配合物もまた使用され得る。一般的に、zcyto20の治療的有効量とは、処理される病状の臨床学的に有意な変化、例えば造血又は免疫機能の臨床学的に有意な変化、羅病率の有意な低下、又は有意に高められた組織学的評点を生成するのに十分な量である。
【０２１４】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25タンパク質、アゴニスト及びアンタゴニストは、一次細胞及び培養される細胞系の両者を包含する応答細胞型の拡張、増殖、活性化、分化、移動又は代謝を調節するために有用である。これに関する特に興味あるものは、造血細胞、間葉細胞（幹細胞、成熟骨髄性細胞及びリンパ細胞を包含する）、内皮細胞、外皮細胞、平滑筋細胞、線維芽細胞、肝細胞、神経細胞及び胚幹細胞である。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドは、約10pg/ml〜約100ng/mlの濃度で、それらの細胞型のための組織培養培地に添加される。当業者は、zcyto20タンパク質が培養培地において他の成長因子と共に都合良く組合され得ることを認識するであろう。
【０２１５】
実験室調査においては、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25タンパク質は、タンパク質の循環レベルを決定するためのアッセイにおいて、例えばzcyto20タンパク質の過剰又は過少生成により特徴づけられる疾病の診断において、又は細胞表現型の分析において、分子量標準又は試薬としても使用され得る。
【０２１６】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25タンパク質はまた、その活性のインヒビターを同定するためにも使用され得る。試験化合物は、zcyto20タンパク質の活性を阻害する化合物を同定するために、本明細書に開示されるアッセイに添加される。本明細書に開示されるそれらのアッセイの他に、サンプルは、受容体結合を測定するよう企画された種々のアッセイ内のZcyto20活性の阻害、又はzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−依存性細胞応答の刺激／阻害について試験され得る。例えばzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−応答性細胞系は、Zcyto21−刺激された細胞経路に応答するレポーター遺伝子構造体によりトランスフェクトされ得る。
【０２１７】
このタイプのレポーター遺伝子構造体は、当業界において知られており、そして一般的に、アッセイできるタンパク質、例えばルシフェラーゼをコードする遺伝子に作用可能に連結されるzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−活性化された血清応答要素（SRE）を含むであろう。候補体化合物、溶液、混合物又は抽出物は、レポーター遺伝子発現のzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25刺激の低下により明らかなように、標的細胞に対するzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25の活性を阻害する能力について試験される。このタイプのアッセイは、細胞−表面受容体に結合するzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25を直接的にブロックする化合物、及びこの受容体−リガンド結合に続く細胞経路における工程をブロックする化合物を検出するであろう。
【０２１８】
他方では、化合物又は他のサンプルが、検出できるラベル（例えば¹²⁵I、ビオチン、ホースラディシュペルオキシダーゼ、FITC、及び同様のもの）により標識されるzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25を用いて、受容体へのzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25結合の直接的なブロッキングについて試験され得る。このタイプのアッセイにおいては、受容体へのラベルされたzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25の結合を阻害する試験サンプルの能力は、二次アッセイを通して確かめられ得る阻害活性の表示である。結合アッセイ内に使用される受容体は、細胞受容体、又は単離され、固定された受容体であり得る。
【０２１９】
本明細書で使用される場合、用語“抗体”とは、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、その抗原結合フラグメント、例えばF(ab’)₂及びFabフラグメント、一本鎖抗体及び同様のもの（遺伝子的に構築された抗体を包含する）を包含する。非ヒト抗体は、ヒト骨格及び不変領域上に非ヒトCDRのみを移植することによって、又は完全な非ヒト可変ドメインを組み込むことによって（任意には、暴露された残基の置換によってヒト−様表面によりそれらのドメインを“おおう（cloaking）”ことによって；ここで結果物は“張り合わされた”抗体である）、ヒト適合され得る。多くの場合、ヒト適合された抗体は、正しい結合特性を増強するために、ヒト可変領域骨格ドメイン内に非ヒト残基を保持することができる。
【０２２０】
ヒト適合化抗体を通して、生物学的半減期が高められ、そしてヒトへの投与に基づく有害な免疫反応の可能性が低められる。当業者は、特定の不変ドメインと関連する種々の免疫機能を促進するか、又は阻害するために、特定の及び異なった不変ドメイン（すなわち、異なったIgサブクラス）を有するヒト適合された抗体を生成することができる。抗体は、それらが対照（非−zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25）ポリペプチド又はタンパク質に対する結合親和性よりも少なくとも10倍高い親和性を伴なってzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチド又はタンパク質に結合する場合、特異的に結合するとして定義される。モノクローナル抗体の親和性は、当業者により容易に決定され得る（例えば、Scatchard, ann. NY. Acad. Sci. 51: 660-672, 1949を参照のこと）。
【０２２１】
ポリクローナル及びモノクローナル抗体を調製し、そして単離するための方法は、当業界において良く知られている（例えば、Hurrell, J.G.R., Ed., Monoclonal Hybridoma Antibodies: Techniques and Applications, CRC Press, Inc., Boca Raton, FL, 1982 を参照のこと）。配列番号２に示されるように、残基155（Glu）〜160（Glu）; 残基51（Lys）〜56（Ala）; 残基50（Phe）〜55（Asp）; 残基140（Pro）〜145（Arg）;及び残基154（Gln）〜159（Lys）を包含する親水性抗原性部位に対する抗体を生成することが、特に興味ある対象である。当業者に明らかなように、ポリクローナル抗体は、種々の温血動物、例えば馬、ウシ、ヤギ、羊、犬、鶏、ウサギ、マウス、及びラットから生成され得る。
【０２２２】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドの免疫性は、アジュバント、例えばミヨウバン（水酸化アルミニュウム）又はフロイント完全又は不完全アジュバントの使用により高められ得る。免疫化のために有用なポリペプチドはまた、免疫グロブリンポリペプチド又はマルトース結合タンパク質との融合体ポリペプチド、例えばzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチド又はその一部の融合体を包含する。ポリペプチド免疫原は、十分な長さの分子又はその一部であり得る。ポリペプチド部分が“ハプテン−様”である場合、そのような部分は、免疫化のために、高分子キャリヤー（例えば、カサガイヘモシアニン（KLH）、ウシ血清アルブミン（BSA）又は破傷風トキソイド）に都合良く連結又は結合され得る。
【０２２３】
抗体を生成し、そして選択するためのもう１つの技法は、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドに対するリンパ球のインビトロ暴露、及びファージ又は類似するベクターにおける抗体表示ライブラリーの選択（例えば、固定された又はラベルされたzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドの使用を通して）を包含する。ヒト抗体は、WIPO公開WO98/24893号に開示されるように、ヒト免疫グロブリン遺伝子を含むよう構築されたトランスジェニック非−ヒト動物において生成される。好ましくは、それらの動物における内因性免疫グロブリン遺伝子は、相同組換えにより不活性化されるか又は排除される。
【０２２４】
当業者に知られている種々のアッセイがzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドに特異的に結合する抗体を検出するために使用され得る。典型的なアッセイは、Antibodies: A Laboratory Manual, Harlow and lane (Eds.), Cold Speing Harbor Laboratory Press, 1988 に詳細に記載されている。そのようなアッセイの代表的な例は次のものを包含する:同時免疫電気泳動、ラジオイムノアッセイ、ラジオイムノ沈殿、酵素結合の免疫吸着アッセイ（ELISA）、ドットブロット又はウェスターンブロットアッセイ、阻害又は競争アッセイ。及びサンドイッチアッセイ。
【０２２５】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25に対する抗体が、タンパク質の循環レベルを決定するための診断アッセイ内でのタンパク質の親和性精製のために；基礎をなす病理学又は疾病のマーカーとしての可溶性zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドの検出又は定量化のために；完全な動物又は組織断片内の免疫位置決定、例えば免疫診断適用のために；免疫組織化学のために；及びインビトロ及びインビボでのタンパク質活性を阻止するためのアンタゴニストとして使用され得る。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25に対する抗体はまた、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25を発現する細胞の標的化のために；zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチド及びタンパク質の親和性精製のために；FACSを用いる分析方法において；発現ライブラリーのスクリーニングのために；及び抗−イディオタイプ抗体の生成のために使用され得る。
【０２２６】
抗体は、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25のための受容体を発現する細胞へのそれらの化合物の標的化を提供するために、既知方法を用いて、治療剤及び診断剤を包含する他の化合物に連結され得る。インビトロ及びインビボ診断を包含する一定の用途に関しては、ラベルされた抗体を使用することが好都合である。適切な直接的な標識又はラベルは、放射性核種、酵素、基質、補因子、インヒビター、蛍光マーカー、化学ルミネセントマーカー、磁気粒子及び同様のものを包含し；関節的な標識又はラベルは、中間体としてのビオチン−アビジン又は補体/抗−補体対の使用を特徴とする。本発明の抗体はまた、薬剤、毒素、放射性核種及び同様のものに直接的に又は間接的に接合され得、そしてそれらの接合体は、インビボ診断又は治療の用途（例えば、細胞増殖の阻害）のために使用され得る。一般的には、Ramakrishnanなど., Cancer Res. 56: 1324-1330, 1996 を参照のこと。
【０２２７】
本発明のポリペプチド及びタンパク質は、受容体を同定し、そして単離するために使用され得る。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25受容体は、肝臓における増殖調節、血管形成及び他の成長工程に包含され得る。例えば、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25タンパク質及びポリペプチドがカラム上に固定され、そして膜調製物がそのカラム上に通される（一般的には、Immobilized Affinity Ligand Techniques, Hermanson など., eds., Academic Press, San Diego, CA, 1992, pp.195-202に開示されるようにして）。
【０２２８】
タンパク質及びポリペプチドがまた、放射性ラベルされ（Methods in Enzymol., vol. 182, “Guide to Protein Purification”, M. Deutscher, ed., Acad. Press, San Diego, 1990, 721-737）、又は光親和性ラベルされ（Brunner など., Ann. Rev. Biochem. 62: 483-514, 1993及びFedan など., Biochem. Pharnacol. 33: 1176-1180, 1984）、そして特定の細胞−表面タンパク質を標識するために使用され得る。類似する態様においては、放射性ラベルされたzcyto20タンパク質及びポリペプチドは、発現cDNAライブラリーによりトランスフェクトされた細胞を用いての結合アッセイにおいて同起源受容体をクローン化するために使用され得る。
【０２２９】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドはまた、分析熟練、例えば、質量分析学、コンホメーション、特に４個のαヘリックスを決定するために、円ニ色性を、原子の立体構造を詳細に決定するために、X−線結晶学を、溶液におけるタンパク質の構造を表すために、核磁気共鳴分光学を教授するためにも使用され得る。例えば、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25を含むキットが、学生の分析熟練を開発するために与えられ得る。アミノ酸配列は教師によっては知られており、すなわちタンパク質は学生の熟練を決定し、又はその熟練を進展せしめるための試験として学生に提供されるので、教師は、学生がポリペプチドを正しく分析したかどうかを知ることができる。あらゆるポリペプチドはユニークであるので、zcyto20の教育的利用はそれ自体ユニークであろう。
【０２３０】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25に対して特異的に結合する抗体は、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25を精製し、抗体をコードするポリヌクレオチドをクローニングし、そして配列決定するために、親和性クロマトグラフィーカラムをいかにして調製するかを学生に教授するための教授援助として、及び従って、ヒト適合された抗体をいかにして企画するかを学生に教授するための実習課目として使用され得る。次に、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25遺伝子、ポリペプチド又は抗体は、試薬会社によりパッケージされ、そして学生が分子生物学の分野において熟練を得るために教育機関に市販される。個々の遺伝子及びタンパク質はユニークであるので、個々の遺伝子及びタンパク質は、実験実習課目における学生のためのユニークな挑戦及び学習経験を創造する。zcyto20遺伝子、ポリペプチド又は抗体を含むそのような教育用キットは、本発明の範囲内で有ると思われる。
【０２３１】
要約すると、本発明は、（ａ）アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；（ｂ）アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；（ｃ）アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号９に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；及び（ｄ）アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号11に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチドから成る群から選択されたポリペプチドに対して少なくとも80％、95％又は100％の同一性を有する単離されたポリペプチドを提供する。
【０２３２】
もう１つの態様においては、前記単離されたポリペプチドは、モノマー又はホモダイマー受容体としての配列番号24, 27又は29に示されるような受容体、又はヘテロダイマー受容体としての配列番号41と組合しての配列番号24, 27又は29に示されるような受容体を結合する。
もう１つの観点においては、本発明は、アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるようなアミノ酸配列、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるようなアミノ酸配列を含んで成る単離されたポリペプチを包含する。
【０２３３】
もう１つの観点においては、本発明は、アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるようなアミノ酸配列、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるようなアミノ酸配列を含んで成る単離されたポリペプチドを包含する。
もう１つの観点においては、本発明は、アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号９に示されるようなアミノ酸配列、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基202の配列番号９に示されるようなアミノ酸配列を含んで成る単離されたポリペプチドを包含する。
もう１つの観点においては、本発明は、アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号11に示されるようなアミノ酸配列、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基202の配列番号11に示されるようなアミノ酸配列を含んで成る単離されたポリペプチドを包含する。
【０２３４】
もう１つの観点においては、本発明は、アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるような、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるような少なくとも14個の連続したアミノ酸である、哺乳類において抗原性応答を刺激する単離されたポリペプチドを包含する。
もう１つの観点においては、本発明は、アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるような、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるような少なくとも14個の連続したアミノ酸である、哺乳類において抗原性応答を刺激する単離されたポリペプチドを包含する。
【０２３５】
もう１つの観点においては、本発明は、アミノ酸残基29〜アミノ酸残基205の配列番号９に示されるような、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基202の配列番号９に示されるような少なくとも14個の連続したアミノ酸である、哺乳類において抗原性応答を刺激する単離されたポリペプチドを包含する。
【０２３６】
もう１つの観点においては、本発明は、アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号11に示されるような、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基202の配列番号11に示されるような少なくとも14個の連続したアミノ酸である、哺乳類において抗原性応答を刺激する単離されたポリペプチドを提供する。
本発明は、医薬的に許容できるビークルにおける本明細書に記載されるポリペプチドを含んで成る医薬組成物を包含する。
本発明はまた、本明細書に記載されるポリペプチドを含んで成る融合タンパク質を包含する。
【０２３７】
他の観点においては、本発明は、ポリペプチドをコードする単離されたポリヌクレオチドを包含し、ここで前記核酸分子が、（ａ）配列番号３のヌクレオチド配列を含んで成るポリヌクレオチド、（ｂ）配列番号１のヌクレオチド64〜618のヌクレオチド配列、又は配列番号１のヌクレオチド64〜618のヌクレオチド配列の補体から成るポリヌクレオチドに対して、緊縮洗浄条件下でハイブリダイズされたまま存続するポリヌクレオチドから成る群から選択される。
【０２３８】
もう１つの観点においては、本発明は、ポリペプチドをコードする単離されたポリヌクレオチドを包含し、ここで前記核酸分子が、（ａ）配列番号36のヌクレオチド配列を含んで成るポリヌクレオチド、（ｂ）配列番号６のヌクレオチド64〜618のヌクレオチド配列、又は配列番号６のヌクレオチド64〜618のヌクレオチド配列の補体から成るポリヌクレオチドに対して、緊縮洗浄条件下でハイブリダイズされたまま存続するポリヌクレオチドから成る群から選択される。
【０２３９】
もう１つの観点においては、本発明は、ヌクレオチド64〜ヌクレオチド618の配列番号１に示されるようなヌクレオチド配列、又はヌクレオチド１〜ヌクレオチド618の配列番号１に示されるようなヌクレオチド配列を含んで成る単離されたポリヌクレオチドを包含する。
もう１つの態様においては、本発明は、ヌクレオチド64〜ヌクレオチド618の配列番号６に示されるようなヌクレオチド配列、又はヌクレオチド１〜ヌクレオチド618の配列番号６に示されるようなヌクレオチド配列を含んで成る単離されたポリヌクレオチドを包含する。
【０２４０】
もう１つの態様においては、本発明は、ヌクレオチド67〜ヌクレオチド606の配列番号８に示されるようなヌクレオチド配列、又はヌクレオチド１〜ヌクレオチド606の配列番号８に示されるようなヌクレオチド配列を含んで成る単離されたポリヌクレオチドを包含する。
もう１つの態様においては、本発明は、ヌクレオチド67〜ヌクレオチド606の配列番号10に示されるようなヌクレオチド配列、又はヌクレオチド１〜ヌクレオチド606の配列番号10に示されるようなヌクレオチド配列を含んで成る単離されたポリヌクレオチドを包含する。
【０２４１】
本発明は、本明細書に記載される単離された核酸分子、転写プロモーター及び転写ターミネーターを含んで成る発現ベクターを提供し、ここで前記プロモーターが前記核酸分子と作用可能に連結され、そして前記核酸分子が前記転写ターミネーターと作用可能に連結される。
本発明は、本明細書に記載される発現ベクターを含んで成る組換え宿主細胞を提供し、ここで前記宿主細胞が、細菌、酵母細胞、菌類細胞、昆虫細胞、哺乳類細胞及び植物細胞から成る群から選択される。
【０２４２】
もう１つの観点においては、本発明は、ポリペプチドの生成方法提供し、ここで前記方法は本明細書に記載される発現ベクターを含んで成り、そして前記ポリペプチドを生成する組換え宿主細胞を培養し、そして前記培養された宿主細胞から前記ポリペプチドを単離する段階を含んで成る。
本発明は、本明細書に記載されるポリペプチドと特異的に結合する抗体又は抗体フラグメントを提供する。
【０２４３】
もう１つの態様においては、本発明は、単級細胞又は単級細胞前駆体の拡張方法を提供し、ここで前記方法は、投与されるポリペプチドの不在下で培養される骨髄又は末梢血液細胞に比較して、骨髄又は末梢血液細胞における単級細胞又は単級細胞前駆体の数を高めるのに十分な量の本明細書に記載されるポリペプチドを含んで成る組成物と共に、骨髄又は末梢血液細胞を培養することを含んで成る方法。
【０２４４】
本発明は、抗原又は病原体に暴露される哺乳類における免疫応答を刺激するための方法を提供し、ここで前記方法は、（１）抗原−又は病原体−特異的抗体のレベルを決定し；（２）医薬的に許容できるビークルにおける本明細書に記載されるポリペプチドを含んで成る組成物を投与し；（３）抗原−又は病原体−特異的抗体の後投与レベルを決定し；そして（４）段階（３）における抗体のレベルに、段階（１）における抗体のレベルを比較することを含んで成り、ここで抗体レベルの上昇が免疫応答の刺激の表示である。
【０２４５】
もう１つの観点においては、本発明は、哺乳類における抗−ウィルス応答を生成する方法を提供し、ここで前記方法は、ウィルスの低下を示すのに十分な量の本発明に記載されるポリペプチドの組成物を、ウィルス感染を有する哺乳類に投与することを含んで成る。
本発明は、次の例により一層容易に理解されるが、但しそれらの例は本発明を制限するものではない。
【実施例】
【０２４６】
例１.哺乳類発現プラスミド
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25をコードするポリヌクレオチドを含む発現プラスミドを、相同組換えにより構成することができる。cDNAのフラグメント、例えばzcyto20 cDNAを、zcyto20挿入点を両端に有するベクター配列に対応する5’及び3’末端でのフランキング領域を有する配列番号１のポリヌクレオチドを用いて、PCRにより単離する。プライマーZC40923及びZC40927は、それぞれ配列番号12及び13で染めされる。
PCR反応混合物を、１％アガ−ロスゲル上で展開し、そして挿入体のサイズに対応するバンドを、QIAquick^TM Gel Extractionn Kit( Qiagenn, Valencia, CA )を用いてゲル抽出する。
【０２４７】
プラスミドpZMP21は、MPSVプロモーター、コード配列の挿入のための複数の制限部位、停止コドン、複数のE．コリ起点を有する発現カセット；SV40プロモーター、エンハンサー及び複製の起点、DHFR遺伝子及びSVターミネーターを含んで成る哺乳類選択マーカー発現単位；及びS.セレビシアエにおける選択及び複製のために必要とされるURA3及びCEN−ARS配列を含む哺乳類発現ベクターである。
【０２４８】
それを、pZP9（受託番号98668号として、American Type Culture Collection, 10801 University Boulevard, Manassas, VA 20110-2209に寄託されている）、及びpRS316（受託番号77145号として、American Type Culture Collection, 10801 University Boulevard, Manassas, VA 20110-2209に寄託されている）から取られた酵母遺伝子要素、ポリオウィルスから内部リボソーム侵入部位（IRES）要素、並びにトランスメンブラントドメインのC−末端で切断されたCD8の細胞外ドメインから構成した。プラスミドpZMP21を、BglIIにより消化し、そしてPCR挿入体との組換えのために使用した。
【０２４９】
100μlのコンピテント酵母（S. セレビシアエ）細胞を、それぞれ、上記からの種々のDNA混合物10μlと共に組合し、そして0.2cmのエレクトロポレーションキュベットに移す。酵母/DNA混合物を、0.75kV (5kV/cm)、∞オーム、25μFの電力供給（BioRad Laboratories, Hercules CA）設定を用いて、電気パルスする。個々のキュベットに、1.2Mのソルビトール600μlを添加し、そして酵母を、１つのURA−Dプレート上に２種の300μlアリコートでプレートし、そして30℃でインキュベートする。約48時間の後、単一のプレートからのUra⁺酵母形質転換体を、1mlの水に再懸濁し、そして軽く回転せしめ、酵母細胞をペレット化する。
【０２５０】
細胞ペレットを、1mlの溶解緩衝液（２％のTriton X-100, 1％のSDS、100mMのNaCl、10mMのトリス、pH8.0，1mMのEDTA）に再懸濁する。500μlの溶解混合物を、300μlの酸−洗浄されたガラスビーズ及び200μlのクロロホルムを含むEppendorf管に添加し、１分の間、２又は３度、かきまぜ、そして最大速度でEppendorf遠心分離機により５分間、回転せしめる。300μlの水性相を、新しい管に移し、そしてDNAを、600μlのエタノール（EtOH）により沈殿し、続いて、4℃で10分間、遠心分離する。DNAペレットを、10μlの水に再懸濁する。
【０２５１】
エレクトロコンピテントE．コリ宿主細胞（Electromax DH10B^TM 細胞；Life Technologies, Inc., Gaithersburg, MDから得られた）の形質転換を、0.5〜2mlの酵母DNA調製物及び30μlの細胞により行う。細胞を1.7kV, 25μF及び400オームで電気パルスする。エレクトロポレーションに続いて、1mlのSOC（２％のBacto^TM Tryptone (Difco, Detroit, MI), 0.5％の酵母抽出物（Ditco）、10mMのNaCl、2.5mMのKCl、10mMのMgCl₂、10mMのMgSO₄、20mMのグルコース）を、４個のLB AMPプレート（LBブイヨン（Lennox）、1.8％のBacto^TM 寒天（Difco）、100mg/lのアンピシリン）上に、250μlのアリコートでプレートする。
【０２５２】
zcyto20のための正しい発現構造体を有する個々のクローンを、制限消化により同定し、zcyto20挿入体の存在を確かめ、そして種々のDNA配列がお互い正しく連結されていることを確かめる。陽性クローンの挿入体を、配列分析にゆだねる。大規模プラスミドDNAを、市販のキット（QIAGEN Plasmid Maci Kit, Qiagen, Valencia, CA）を用いて、製造業者の説明書に従って単離する。正しい構造体を、zcyto20-CEE/pZMP21と命名する。
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25を含むプラスミドは、ヌクレオチド−特異的プライマーを用いて、同様にして調製される。
【０２５３】
例２.チャイニーズハムスター卵巣細胞における発現
CHO DG44細胞（Chasinなど., Som. Cell. Molec. Genet. 12: 555-666, 1986）を、10cmの組織培養皿にプレートし、そしてHam’s F12/FBS培地（Ham’sF12培地（Life Technologies）、５％ウシ胎児血清（Hyclone，Logan, UT）、１％のL−グルタミン（JRH Biosciences, Lenexa, KS）、１％のピルビン酸ナトリウム（Life Technologies））において、37℃で５％CO₂下で、一晩、約50％〜70％の集密性まで増殖する。次に、細胞を、血清フリー（SF）培地配合物（Ham’s f12, 10mg/mlのトランスフェリン、5mg/mlのインスリン、2mg/mlのフェチュイン、１％のL−グルタミン及び１％のピルビン酸ナトリウム）における、膜濾過された水中ポリカチオン脂質２，３−ジオレイルオキシ−N−［２−（スペルミンカルボキサミド）エチル］−N, N−ジメチル−１−プロパニミニウム−トリフルオロアセテート及び中性脂質ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン（Lipofectamine^TM Reagent, Life Technologies）の３：１（w/w）リポソーム配合物を用いて、リポソーム−介在性トランスフェクションにより、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25、すなわちzcyto20を含むプラスミドにより形質転換する。
【０２５４】
Zcyto20/pZMP6を、15mlの管において、SF培地により希釈し、640μlの最終体積にする。35μlのLipofectamine^TM を、605μlのSF培地と共に混合する。その得られる混合物を、DNA混合物に添加し、そして室温で約30分間インキュベートする。5mlのSF培地を、DNA：Lipofectamine^TM 混合物に添加する。細胞を5mlのSF培地により１度すすぎ、吸引し、そしてDNA: Lipofectamine^TM 混合物を添加する。
【０２５５】
細胞を37℃で５時間インキュベートし、次に6.4mlのHam’s F12/10％FBS、１％PSN培地を個々のプレートに添加する。プレートを37℃で一晩インキュベートし、そしてDNA：Lipofectamine^TM 混合物を、次の日、新鮮な5％FBS/Ham’s培地により交換する。トランスフェクションの３日後、細胞を、増殖培地を含むT−175フラスコ中に分割する。トランスフェクションの7日後、細胞を、FTTC−抗−CD8モノクローナル抗体（Pharminger, San Diego, CA）により染色し、続いて抗−FTTC−接合された磁気ビーズ（Miltenyi Biotech）により処理する。CD8−陽性細胞を、市販のカラム（mini-MACSカラム；Miltenyi Biotec）を用いて、製造業者の説明書に従って分離し、そしてヌクレオシドを有さないが、しかし50nMのメトトレキセートを有するDMEM/Ham’s 12/5% FBS (選択培地)中に添加する。
【０２５６】
細胞を、選択培地を含む96−ウェル皿において、0.5、１及び５個の細胞/ウェルの密度でサブクローニングするためにプレートし、そして約２週間、増殖せしめる。ウェルを、培地の蒸発について調べ、そしてその工程の間、必要な場合、200μl/ウェルに戻す。プレートにおけるコロニーの％が集密性近くになる場合、100μlの培地を、ドットプロットによる分析のために個々のウェルから集め、そして細胞に新しい選択培地を供給する。上清液を、ドットブロット装置におけるニトロセルロースフィルターに適用し、そしてフィルターを、真空オーブンにおいて100℃で処理し、タンパク質を変性する。
【０２５７】
フィルターを、625mMのトリス−グリシン、pH9.5、5mMのβ−メルカプトエタノール溶液において、65℃で10分間、次に、2.5％脱脂ドライミルクWesternA緩衝液（0.25％ゼラチン、50mMのトリス−HCl、pH7.4、150mMのNaCl, 5mMのEDTA、0.05％のIgepal CA-630）において、回転振盪機上で４℃で一晩インキュベートする。フィルターを、2.5％脱脂ドライミルクWesternA緩衝液において、回転振盪機上で室温で１時間、抗体−HRP接合体と共にインキュベートする。
【０２５８】
次に、このフィルターを、PBS＋0.01％Tween20により室温で３度（15分/洗浄）、洗浄する。フィルターを、化学ルミネセンス試薬（ECL^TM 直接的ラベリングキット；Amersham Corp., Arlington Heights, IL）により、製造業者の説明書に従って展開し、そしてフィルム（Hyperfilm ECL, Amersham Corp.）に約５分間、感光する。96ウェル皿からの陽性クローンをトリプシン処理し、そして増大及びウェスターンブロットによる分析のために、選択培地を含む６−ウェル皿に移す。
【０２５９】
例３.子供ハムスター腎臓細胞における発現
十分な長さのzcyto24及びzcyto25タンパク質を、BHK細胞において生成する。例えば、BHK細胞はzcyto24-CEE/pZMP21又はzcyto25-CEE/pZMP21（例１）によりトランスフェクトされた。BHK570細胞（ATCC CRL-10314）を、T75組織培養皿にプレートし、そして増殖培地（SL7V4、５％ウシ胎児血清（Hyclone, Logan, UT）、１％ペニシリン/ストレプトマイシン）において、37℃で一晩、５％CO₂下で、約50〜70％の集密性まで増殖する。次に、細胞を、血清フリー（SF）培地において、リポソーム−介在性トランスフェクション（Lipofectamine^TM；Life Technologiesを用いて）に従って、zcyto24-CEE/pZMP21又はzcyto25-CEE/pZMP21によりトランスフェクトする。プラスミドを15mlの管においてSF培地に希釈し、640μlの合計最終体積にする。
【０２６０】
脂質混合物35μlを、SF培地605μlと共に混合し、そしてその得られる混合物を、室温で約30分間インキュベートする。次に、6mlのSF培地を、DNA：脂質混合物に添加する。細胞を5mlのSF培地により１度すすぎ、吸引し、そしてDNA：脂質混合物を添加する。細胞を、37℃5時間インキュベートし、次に5mlの増殖培地を個々のプレートに添加する。プレートを37℃で一晩インキュベートし、そしてDNA：脂質混合物を、次の日、選択培地（SL7V4、５％ウシ胎児血清（Hyclone, Logan, UT）、１％ペニシリン/ストレプトマイシン、１μMのMTX）により交換する。トランスフェクションの約７〜10日後、個々のトランスフェクションからのメトトレキセート耐性コロニーを、トリプシン処理し、そして細胞をプレートし、そしてT−162フラスコ中にプレートし、そして大規模培養に移す。
【０２６１】
例４.アデノウィルスベクターの構成
アデノウィルスベクターの構成のために、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25のタンパク質コード領域を、それぞれ、5’及び3’末端でPmeI及びAscI制限部位を付加するプライマーを用いて、PCRにより増幅する。増幅を、次の通りに、PCR反応において十分な長さのcDNA鋳型により行う：95℃で５分（１サイクル）；続いて95℃で１分、61℃で１分及び72℃で1.5分（15サイクル）；続いて72℃で７分；続いて４℃でのソーキング。PCR反応生成物を、TAE緩衝液（0.04Mのトリス−酢酸塩、0.001MのEDTA）中、1.2％の低溶融−温度アガロースゲル上に負荷する。
【０２６２】
Zcyto21 PCR生成物をゲルから切除し、そしてシリカゲル膜回転カラム（QIAQuick（商標）PCR精製キット及びキット；Qiagln, Inc.）を含んで成る市販のキットを用いて、そのキットの説明書に従って、精製する。次にPCR生成物を、PmeI及びAscIにより消化し、フェノール/クロロホルム抽出し、EtOH沈殿し、そして20mlのTE（トリス/EDTA，PH8）に再水和化する。次に、zcyto20フラグメントを、トランスジェニックベクターpTG12-8のPmeI−AscI部位中の連結し、そしてエレクトロポレーションによりE．コリDH10B^TM コンピテント細胞を形質転換する。ベクターpTG12−8は、NruI部位中へのラットインスリンIIイントロン（約200bp）及びポリリンカー（FseI/PmeI/AscI）の挿入により、p2999B4（Palomiterなど., Mol. Cell Biol. 13: 5266-5275, 1993）から誘導された。
【０２６３】
前記ベクターは、マウスメタロチオネイン（MT−１）プロモーター（約750bp）、及びヒト成長ホルモン（hGH）未翻訳領域、10kbのMT−１ 5’フランキング配列及び7kbのMT−１ 3’フランキング配列を両端に有するポリアデニル化シグナル（約650bp）を含んで成る。cDNAを、インスリンIIとhGH配列との間に挿入する。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25cDNAを含むクローンを、プラスミドDNA miniprepにより同定し、続いてPmeI及びAseIにより消化する。陽性クローンを配列決定し、構造体における欠失又は他の異常性が存在しなかったことを確かめる。
【０２６４】
DNAを市販のキット（Maxi Kit, Qiagen, Inc.）を用いて調製し、そしてcDNAを、PmeI及びAscI酵素を用いて、pTG12−8ベクターから開放する。cDNAを、１％低溶解温度アガロースゲル上で単離し、そしてゲルから切除する。ゲルスライスを70℃で融解し、そしてDNAを等体積のトリス−緩衝されたフェノールにより２度、抽出し、EtOHにより沈殿し、そして10μlの水に再懸濁する。
【０２６５】
cDNAを、修飾されたpAdTrack−CMV（He, T-C. など., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95: 2509-2514, 1998）のEcoRV−AscI部位中にクローン化する。この構造体は、緑色蛍光タンパク質（GFP）マーカー遺伝子を含む。GFP発現由来のCMVプロモーターを、SV40プロモーターにより置換し、そしてSV40ポリアデニル化シグナルを、ヒト成長ホルモンポリアデニル化シグナルにより置換する。さらに、生来のポリリンカーを、FseI、EcoRV及びAscI部位により置換する。pAdTrack-CMVのこの修飾された形を、pZyTrackと命名する。連結を、市販のDNA連結及びスクリーニングキット（Fast−Link（商標）キット；Epicentre Technologies, Madison, WI）を用いて行う。zcyto20を含むクローンを、FseI及びAscIによるminiprep DNAの消化により同定する。
【０２６６】
プラスミドを線状化するために、約５μgのその得られるpZyTrack zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25プラスミドを、PmeIにより消化する。約１μgの線状化されたプラスミド及び200ngのスーパーコイルpAdEasy（Heなど., 前記）を用いて、E．コリBJ5183細胞（Heなど., 前記）を同じ形質転換する。同時形質転換は、2.5kV, 200オーム及び25μFaで、Bio−Rad Gene Pulserを用いて行われる。完全な同時形質転換混合物を、25μg/mlのカナマイシンを含む４LBプレート上にプレートする。最少のコロニーを採取し、そしてLB/カナマイシンにおいて拡張し、そして組換えアデノウィルスDNAを、標準のDNA miniprep方法により同定する。組換えアデノウィルスminiprep DNAを用いて、E．コリDH10B^TM コンピテント細胞を形質転換し、そしてDNAを、Maxiキット（Qiagen，Inc.）を用いて、その説明書に従って調製する。
【０２６７】
約５μgの組換えアデノウィルスDNAを、20〜30UのPacIを含む反応体積100μlにおいて、37℃で３時間、PacI酵素（New England Biolabs）により消化する。消化されたDNAを等体積のフェノール/クロロホルムにより２度、抽出し、そしてエタノールにより沈殿する。DNAペレットを、10μlの蒸留水に再懸濁する。その日までに接種され、そして60〜70％の集密性まで増殖されたQBI−293A細胞（Quantum Biotechnologies, Inc. Montreal, Qc. Canada）のT25フラスコを、PacI−消化されたDNAによりトランスフェクトする。PacI−消化されたDNAを、無菌のHBS（150mMのNaCl、20mMのHEPES）により、合計50μlの体積まで希釈する。別の管において、20μlの1mg/mlのN−［１−（２，３−ジオレオイルオキシ）プロピル］−N, N, N−トリメチル−アンモニウム塩（Boehringer Mannheim, Indianapolis, IN）を、HBSにより、100μlの合計体積に希釈する。
【０２６８】
DNAをDOTAPに添加し、ピペットを上下することによって軽く混合し、そして室温で15分間、放置する。培地を293A細胞から除去し、そして1mMのピルビン酸ナトリウム、0.1mMのMEM非必須アミノ酸及び25mMのHEPES緩衝液（Life Technologies, Gaithersburg, MDから得られた試薬）を含む、5mlの血清フリーの最少必須培地（MEM）αにより洗浄する。5mlの血清フリーのMEMを、293A細胞に添加し、そして37℃で維持する。DNA/脂質混合物を、293A細胞のT25フラスコに滴下し、軽く混合し、そして37℃で４時間インキュベートする。４時間後DNA/脂肪混合物を含む培地を吸引し、そして５％ウシ胎児血清を含む完全MEM 5mlにより交換する。トランスフェクトされた細胞を、GFP発現、及び焦点の形成（ウィルスプラーク）についてモニターする。
【０２６９】
組換えアデノウィルスDNAによる293A細胞のトランスフェクションの７日後、細胞はGFPタンパク質を発現し、そして焦点（ウィルス“プラーク”）を形成し始める。粗ウィルス溶解物を、細胞剥離機を用いて集め、293A細胞のすべてを集める。その溶解物を50mlの円錐状管に移す。細胞からウィルス粒子のほとんどを開放するために、３回の凍結/融解サイクルを、ドライアイス/エタノール浴及び37℃の水浴において行う。
【０２７０】
粗溶解物を増幅し（一次増幅）、zcyto20 rAdV溶解物の作業用“原液”を得る。ほぼ集密性（80〜90％）の293A細胞の10個の10cmのプレートを、前もって20時間に設定し、200mlの粗rAdV溶解物を個々の10cmプレートに添加し、そして細胞を、白色光顕微鏡下でのCPE（細胞変性効果）、及び蛍光顕微鏡下でのCFPの発現について、48〜72時間モニターする。293A細胞のすべてがCPEを示す場合、上記のようにして、この原液溶解物を集め、そして凍結/融解サイクルを行う。
【０２７１】
次に、zcyto20 rAdVの二次増幅を行う。293A細胞の20個の15cmの組織培養皿を、細胞が80〜90％の集密になるよう調製する。すべてではないが、しかし20mlの５％MEM培地を除去し、そして個々の皿を、300〜500mlの一次増幅されたrAdV溶解物と共にインキュベートする。48時間後、293Aの細胞をウィルス生成から溶解し、溶解物を250mlのポリプロピレン遠心分離ボトル中に集め、そしてrAdVを精製する。
【０２７２】
NP−40界面活性剤を、すべての細胞を溶解するために、粗溶解物のボトルに添加し、0.5％の最終濃度にする。ボトルを、ボトルが落ちないようできるだけ早く、10分間の撹拌のために、回転プラットフォーム上に配置する。残骸を、20,000xgでの15分間の遠心分離によりペレット化する。上清液を、250mlのポリカーボネート遠心分離ボトルに移し、そして0.5体積の20％PEG8000/2.5MのNaCl溶液を添加する。ボトルを氷上で一晩、振盪する。ボトルを、20,000xgで15分間、遠心分離し、そして上清液を漂白溶液に捨てる。無菌の細胞スクレーパを用いて、２つのボトルからのウィルス/PEG沈殿物を、2.5mlのPBSに再懸濁する。
【０２７３】
得られるウィルス溶液を、2mlのマイクロ遠心分離管に入れ、そしてマイクロ遠心分離機において14,000xgで10分間、遠心分離し、いずれかの追加の細胞残骸を除去する。2mlのマイクロ遠心分離管からの上清液を、15mlのポリプロピレンスナップ管中に移し、そしてCsClにより1.34g/mlの密度に調節する。溶液を、3.2mlのポリカーボネート厚壁遠心分離管に移し、そして348,000xgで３〜４時間、25μCで回転する。ウィルスは白色バンドを形成する。広口ピペット先端を用いて、ウィルスバンドを集める。
【０２７４】
市販のイオン交換カラム（例えば、Sephadex（商標）G-25Mにより予備充填されたPD-10カラム；Pharmacia Biotech, Piscataway, NJ）を用いて、ウィルス調製物を脱塩する。カラムを、20mlのPBSにより平衡化する。ウィルスを充填し、そしてカラムを運転する。5mlのPBSをカラムに添加し、そして８〜10滴の画分を集める。個々の画分の１：50希釈溶液の光学密度を、分光計上で260nmで決定する。ピーク画分をプールし、そして１：25希釈溶液の光学密度（OD）を決定する。ODを、次の式：（260nmでのOD）（25）（1.1×10¹²）＝ビリオン/mlを用いて、ウィルス濃度に転換する。
【０２７５】
ウィルスを貯蔵するために、グリセロールを、精製されたウィルスに添加し、15％の最終濃度にし、軽くではあるが、しかし効果的に混合し、そして−80μCでアリコートにおいて貯蔵する。
【０２７６】
Quantum Bitoechnologies, Inc. (Montreal. Canada) により開発されたプロトコールに従って、組換えウィルス感染性を測定する。手短には、２個の96−ウェル組織培養プレートを、アッセイされるべき個々の組換えウィルスのための２％ウシ胎児血清を含むMEMにおいて、ウェル当たり１×10⁴個の293A細胞により接種する。24時間後、個々のウィルスの10倍希釈（１×10^-2〜１×10^-4）を、２％ウシ胎児血清を含むMEMにおいて行う。100μlの個々の希釈溶液を、個々の20ウェルに配置する。37℃での５日後、ウェルを、CPEについて正又は負のいずれかで読み取り、そして“プラーク形成単位/ml”（PFU）についての値を計算する。
【０２７７】
例５．zcyto20 ， zcyto21, zcyto22, zcyto24 及び zcyto25 のクローニング
A：zcyto20及びzcyto22：
予測されるコード配列内においてzcyto20及びzcyto22の両者に共通するPCRプライマーを企画した。それらを、ZC39339（配列番号47）及びZC39393（配列番号48）と命名する。PCRを、異なった組織からの一連のヒトcDNAライブラリーに対して行なった。生成物は、脳、ランゲルハンス島（膵臓）、前立腺、精巣、HPVS（前立腺上皮）及びCD３＋ライブラリーにおいて観察された。次に、PCRプライマーを、開始メチオニンの5’側及びzcyto20（zcyto22に対して高い類似性を有する）のための終結コドンの3’側のゲノム配列から企画した。
【０２７８】
それらは、ZC39340（配列番号49）及びZC39341（配列番号50）と命名された。PCRを、前に同定されたライブラリーに対して行なった。４種のライブラリーは、十分な長さのクローンを含んだ。それらのライブラリーから生成されたPCR生成物の配列決定は、zcyto22を含む３種のライブラリー（前立腺、精巣及びCD３＋）及びzcyto20を含む１種のライブラリー（前立腺上皮）をもたらした。zcyto22の予測されるコード配列に対して特異的なプライマーを用いてのPCRをまた行なった。それらは、ZC39295（配列番号51）及びZC39298（配列番号52）と命名された。このPCRによる陽性のライブラリーは、脳、前立腺、CD3＋及び精巣であった。配列決定は、zcyto22配列を確立した。
【０２７９】
B：zcyto24及びzcyto25：
推定されるコード配列内におけるzcyto24及びzcyto25の両者に対して共通するPCRプライマーを企画した。それらは、ZC39687（配列番号53）及びZC39741（配列番号54）と命名される。PCRを、異なった組織からの一連のマウスcDNAライブラリーに対して行なった。生成物は次のライブラリーにおいて観察された：心臓、肺、膵臓、Torrres前立腺、皮膚、小腸、精巣及び胸腺。次に、PCRプライマーを、出発メチオニンの5’側及び終結コドンで企画した。
【０２８０】
5’プライマーを、ZC39732（配列番号55）と命名し、そしてzcyto24及びzcyto25配列の両者と適合する。zcyto24 3’側プライマーを、ZC39701（配列番号56）と命名する。Zcyto25 3’側を、ZC39688（配列番号57）を命名する。PCRを、上記に記載される陽性ライブラリーに対して行なった、zcyto24に関しては、心臓及びTorres前立腺を除くすべてのライブラリーは陽性であった。配列決定は、胎盤、精巣及び小腸ライブラリーからのzcyto24配列を確かめた。
【０２８１】
例６．バキュロウィルスにおける発現
A：zcyto20の発現のための構造体：
発現ベクターpzBV37L：zCyto20を、昆虫細胞においてzcyto20ポリペプチドを発現するための調製した。zcyto20の配列及びそれぞれ、5’及び3’末端上のコードされたBspE1及びXba1制限部位を含む536bpのフラグメントを、Expand High Fidelity PCR System（Boerhinger Mannheim）を用いて、その製造業者の説明書に従って、プライマーZC41932（配列番号14）及びZC41933（配列番号15）を用いて、プラスミドzcyto20からPCR増幅のためにより生成した。
【０２８２】
PCR条件は次の通りであった：94℃で４分（１サイクル）、94℃で30秒、50℃で30秒、及び72℃で１分（30サイクル）、72℃で４分（１サイクル）、続いて4℃でのソーキング。PCR生成物の小部分を、ゲル電気泳動（１％NuSieveアガロース）により可視化し、そして約550bpのフラグメントの長さを確かめた。反応混合物の残りを、Qiagen PCR生成キットにより、その製造業者の説明書に従って精製し、そして30μl水に溶出した。cDNAを、適切な緩衝液中、Bspe1及び Xba1（New England Biolabs, Beverly, MA）を用いて、37℃で36μlの体積で消化した。
【０２８３】
消化されたPCR生成物バンドを、１％アガロースTAEゲル上で展開し、切除し、そしてQIAquick^TM Gel Extraction Kit (Qiagen カタログ番号28704) を用いて抽出し、そして30μlのEB緩衝液に溶出した。消化されたzcyto20 PCR生成物を、Bspe1及びXba1部位でベクターpZBV37Lの複数クローニング部位（MCS）中に連結した。pZBV37Lベクターは、pFastBac1^TM (Life Technologies) 発現ベクターの修飾体であり、ここで多面体プロモーターが除去され、そして後期活性化基本タンパク質プロモーター及びMCSの上流のEGTリーダーシグナル配列により置換されている。５μlの制限酵素消化されたzcyto20 PCRフラグメント及び４μlのその対応するpZBV37Lベクターを、適切な緩衝液条件下で20μlの体積で、72時間、15℃で連結した。
【０２８４】
５μlの連結混合物を用いて、33μlのElectoMAX^TM DH12s^TM 細胞（Life Technologies, カタログ番号18312-017）を、2mmのギャップエレクトロポレーションキュベット（BTX, Model No. 620）において、400オーム、2.00kV及び25μFでのエレクトロポレーションにより形質転換した。形質転換された細胞を、500μlのLB培地に希釈し、そして37℃で１時間、増殖し、そして10μlの及び20μlの希釈溶液を、100μg/mlのアンピシリンを含むLBプレート上にプレートした。クローンをPCRにより分析し、そして陽性クローンを選択し、プレートし、そして配列決定のために提供した。次に、配列を確かめた。
【０２８５】
B．標的化されたzcyto20の構成及び発現：
発現ベクターpZBV32L：zCyto20ceeを、昆虫細胞においてzcyto20ceeポリペプチドを発現するために調製した。pZBV32L：zCyto20ceeを、C−末端GLU−GLU標識（配列番号16）を有するzcyto20ポリペプチドを発現するために企画した。この構造体を用いて、シグナルペプチドが切断された後、zcyto20のN−末端アミノ酸配列を決定した。
【０２８６】
１．pZBV37L: zCyto20ceeの構成：
それぞれ5’及び3’末端上にBamHI及びXbaI制限部位を含む、625bpのzcyto20フラグメントを、次のプライマーを用いて、zcyto20 cDNAを含むプラスミドからのPCR増幅により生成した：zc40240及びzc40241（それぞれ、配列番号17及び配列番号18）。PCR反応条件は、10％DMSOを含む100μlの体積の反応について、Expand High Fidelity PCR System (Boehringer Mannheim) を用いて、次の通りであった：94℃で４分（１サイクル）；94℃で30秒、50℃で30秒、及び72℃で65秒（30サイクル）；72℃で４分（１サイクル）；続いて、4℃でのソーキング。
【０２８７】
5μlの反応混合物を、ゲル電気泳動（１％MuSieveアガロース）により可視化した。反応混合物の残りを、Qiagen PCR精製キットを通して、製造業者の説明書に従って精製し、そして30μlの水に溶出した。cDNAを、37℃で２時間、適切な緩衝液条件下でBamHI及びXbaI（New England Biolabs, Beverly, MA）を用いて35μlの体積において消化した。消化されたPCR生成物バンドを、１％アガロースTAEゲルを通して試験し、切除し、QIQUICK Gel Extraction Kit (Qiagen)を用いて抽出し、そして30μlの水に溶出した。精製され、消化されたzCyto20cee PCR生成物を、前に調製され、そして制限酵素消化された（BamHI及びXbaI）ベクターpZBV37LのMCS中に連結した。
【０２８８】
pZBV37Lベクターは、ポリへドロンプロモーターが除去され、そして後期活性化Basic Protein Promoterにより置換され、そしてGlu-Glu標識（配列番号10）及び停止シグナルが複数クローニング領域の3’末端で挿入されている、pFastBac1^TM（Life Technologies）の修飾体である。5μlの制限消化されたzCyto20挿入体及び約40ngのその対応するpZBV37Lベクターを、20μlの体積において16℃で一晩、連結した。5μlの連結混合物を用いて、2mmのギャップエレクトロポレーションキュベットにおいて、400オーム、2.00kV及び25μFでのエレクトロポレーションにより、50μlのElectoMAX^TM細胞（Life Technologies）を形質転換した。
【０２８９】
形質転換された細胞を、50 0μlのSOS培地（2％ Bacto Tryptone, 0.5％ Bacto Yeast Extract, 10mlの１MのNaCl、1.5mMのKCl、10mMのMgCl₂、10mMのMgSO₄及び20mMのグルコース）により希釈し、そして50μlの希釈溶液を、100μg/mlのアンピシリンを含むLBプレート上にプレートした。クローンをPCR及び制限消化により分析した。陽性クローンを選択し、プレートし、そして配列決定のために提供した。正しい配列が確かめられると、25ngの陽性クローンDNAを用いて、42℃での熱ブロックにおける45秒間の熱ショックにより、66 μlのDH10Bac^TM MAX EFFICIENCYコンピテント細胞（GIBCO-BRL）を形質転換した。
【０２９０】
形質転換されたDH10BAC細胞を、6 00μlのSOC培地（１％Bacto Trypton, 0.5％Bacto Yeast Extract, 10mlの１MのNaCl、1.5mMのKCl, 10mMのMgCl₂、10mMのMgSO₄及び20mMのグルコース）により希釈し、37℃で１時間増殖し、そしてその100μlを、50μg/mlのカナマイシン、7μg/mlのゲンタマイシン、10μg/mlのテトラサイクリン、40μg/mlのIPTG及び200μl/mlのBLUO−GALを含むLuria寒天プレート上にプレートした。プレートを37℃で48時間インキュベートした。色彩選択を用いて、転移されたウィルスDNA（“bacmid”として言及される）を有するそれらの細胞を同定した。白色のそれらのコロニーを分析のために採取した。コロニーをPCRにおいて分析し、そして陽性コロニー（所望するbacmidを含む）を、増殖及び続くbacmid DNA精製のために選択した。
【０２９１】
クローンを、bacmidにおける転移因子に対する次のプライマー：ZC447（配列番号19）及びZC976（配列番号20）を用いて、DNAのPCR増幅により正しい分子量の挿入体についてスクリーンした。PCR反応条件は次通りであった：94℃で４分（１サイクル）；94℃で30秒、50℃で30秒及び72℃で2.5分（25サイクル）；72℃で４分（１サイクル）；続いて４℃でのソーキング。PCR生成物を、１％アガロースゲル上で展開し、挿入体サイズを確かめた。正しいサイズの挿入体を有するそれらを用いて、スポドプテラ・フルギペルダ（Sf9）細胞をトランスフェクトした。
【０２９２】
２．トランスフェクション：
Sf9細胞を、６−ウェルプレートに、１×10⁶個の細胞/ウェルで接触し、そして27℃で１時間、付着せしめた。約5μgのbacmid DNAを、100μlのSf−900II SFM (Life Technologies) により希釈した。20μlのLIPOFECTAMINE試薬（Life Technologies）を、100μlのSf−900II SFMにより希釈した。bacmid DNA及び脂質溶液を軽く混合し、そして室温で45分間インキュベートした。800μlのSf−900II SFMを、前記脂質−DNA混合物に添加した。培地をウェルから吸引し、そして1mlのDNA−脂質混合物を細胞に添加した。細胞を27℃で一晩インキュベートした。DNA−脂肪混合物を個々のウエルから吸引し、そして2mlのSf−900II培地により置換した。プレートを、27℃、90％湿度で、約７日間インキュベートし、そしてウィルスを収穫した。
【０２９３】
３．増幅：
Sf9細胞を、2mlのSF−900IIを含む６−ウェルプレートに、１×10⁶個の細胞/ウェルで接種した。トランスフェクションプレートからの500μlのウィルスを、ウェルにプレートし、そしてプレートを、27℃、90％湿度で96時間インキュベートし、この後、ウィルスを、収穫した（一次増幅）。
第２回目の増幅を、一次増幅プレートからのウィルス100μlを１×10⁶個の細胞/ウェルを含むウェルにプレートに移すことによって行なった。プレートを、収穫の前，96時間インキュベートした。
【０２９４】
追加の増幅を行うことができる（三次増幅）。Sf9細胞を、250mlの振盪フラスコにおける50mlのSf−900II SFMにおいて、１×10⁶個の細胞/mlのおおよその密度まで増殖する。次に、それらを上記プレートからの１mlのウィルス原液により感染せしめ、そして27℃で６日間インキュベートし、この後、ウィルスを収穫する。
このウィルス原液を、増殖阻害曲線により滴定し、そして１のMOIを示す滴定培養物を合計48時間、進行せしめる。上清液を、Glu-Glu標識に対して特異的な一次モノクローナル抗体、続いてHRP接合されたヤギ抗体−ネズミ二次抗体を用いて、還元ウェスターンにより分析した。結果は、約20kDaのバンドを示した。上清液をまた、活性分析のために使用することができる。
【０２９５】
多量のウェルス原液を次の方法により生成する：Sf9細胞を、2800mlの振盪フラスコにおける1LのSf−900II SFMにおいて、１×10⁶個の細胞/mlのおおよその密度まで増殖する。次に、それらを、上記フラスコからのウィルス原液５mlにより感染し、そして27℃で４日間インキュベートし、この後、ウィルスを収穫する。
大規模感染を完結し、下流の精製のための材料を供給することができる。
同様に、zcyti21及びzcyti22を、バキュロウィルスにおいて発現した。
【０２９６】
例７．タンパク質の精製
組換えタンパク質を、本明細書に記載されるタンパク質のいずれかのために製造する。
A．zcyto20の精製：
組換えカルボキシル末端Glu−Glu標識されたzcyto20を、組換えバキュロウィルス感染された昆虫細胞、又は安定しているか又は過渡的なBHK細胞系のいずれかから生成した。培養物を収穫し、そして培地を、0.2μmのフィルターを用いて無菌濾過した。
【０２９７】
タンパク質を、抗−Glu−Glu（抗−EE）ペプチド抗体親和性クロマトグラフィー及びSuperdex75ゲル排除クロマトグラフィーの組合せにより、ならし培地から精製した。BVからの培養培地（pH6.0, 7mSの導電率）を、pH6.7に調節した。次に、BV及びBHK培地の両者を、NaClに添加し、300mMにし、この後、10×70mm（5mlのカラム体積）Poros Protein A抗−EE抗体親和性カラム上に、２〜４ml／分の流速で負荷した。次に、カラムを、５体積（CV）の５×PBS（pH7.2）により洗浄した。結合されたタンパク質を、0.5Mの酢酸、0.5MのNaCl溶液（pH3.0）により溶出した。2mlの画分を集め、そして溶出物を追加の2Mのトリスにより中和した。
【０２９８】
抗−EE抗体親和性カラムからのサンプルを、zcyto20タンパク質の存在について、銀染色及びウェスターンブロットと共にSDS−PAGEにより分析した。zcyto20タンパク質含有画分をプールし、そしてBiomax−5濃縮機（Millipore）を用いて約2mlに濃縮し、そして16×600mmのSuperdex 75ゲル濾過カラム（Amersham Pharmacia Biotech）上に負荷した。精製されたzcyto20タンパク質を含む画分をプールし、0.2μmのフィルターを通して濾過し、それぞれ100μlにアリコートし、そして−80℃で凍結した。最終の精製されたタンパク質の濃度を、BCAアッセイ（Pierce, Rockford, IL）及びHPLC−アミノ酸分析により決定した。
【０２９９】
B．zcyto21タンパク質のSDS−PAGE及びウェスターンブロット分析：
組換えzcyto20タンパク質を、銀染色方法（Fast Silver, Geno Technology, Inc., St. Louis, MO）及び抗−EE抗体を用いてのウェスターンブロットと共に、SDS−PAGE（Nupage 4-12% Bis-Tris, Invitrogen, Calsbad, CA）により分析した。ならし培地又は精製されたタンパク質のいずれかを、Xcell II^TM MINL-CELL (Invitrogen, Calsbad, CA) を用いて電気泳動し、そしてXcell II^TM ブロットモジュール（Invitorogen）を用いて、室温で撹拌しながらニトロセルロース（0.2μm；Bio−Rad Laboratories, Hercules, CA）に、その装置マニュアルに提供される説明書に従って移行した。
【０３００】
その移行は、25mMのトリス塩基、200mMのグリシン及び20％メタノールを含む緩衝液において、500mAで45分間、行なわれた。次に、フィルターを、PBS中、10％脱脂粉乳により室温で10分間、ブロックした。ニトロセルロースをすばやく、すすぎ、そして次に、一次抗体を、2.5％脱脂粉乳を含むPBSに添加した。ブロットを、室温で２時間、又は４℃で一晩、軽く振盪しながらインキュベートした。インキュベーションに続いて、ブロットを、PBSによりそれぞれ10分間、洗浄した。2.5％脱脂粉乳を含むPBSにより１：200に希釈された二次抗体（ホースラディシュペルオキシダーゼに接合されたウサギ抗−マウスIgG；Pierce Chemical Co., Rockford, IL）を添加し、そしてブロットを室温で２時間、軽く振盪しながらインキュベートした。
【０３０１】
次に、ブロットを、PBSによりそれぞれ10分間、３度洗浄し、次に水によりすばやくすすいだ。ブロットを、市販の化学発光基質試薬（SuperSignal（商標）ULTRA試薬１及び２の１：１混合物；Pierce Chemical Co. から得られた試薬）を用いて進行せしめ、そしてシグナルを10秒〜５分間又は必要により、Lumi−Imager’s Lumi Analyst 3.0ソフトウェア（Boehringer Mannheim GmbH, Germany）を用いて捕獲した。
【０３０２】
C．タンパク質精製及び分析の要約：
BV培地からの精製されたzcyto20−CEEタンパク質は、４〜12％のBis−Trisゲル上で21kDaのモノマーとして移動し、そしてマイナーな36kDaのダイマーバンドもまた観察された。ダイマータンパク質は、還元剤を用いての還元に基づいてモノマーバンドになり、このことは、ジスルフィド結合によるzcyto21-CEEの二量体化を示唆し、そしてそれは鎖間ジスルフィド結合をもたらす奇数（合計７）のシステイン残基と一致する。
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリペプチドを、類似する態様で精製した。
【０３０３】
例 8．zcyto20 のインターフェロン−様転写調節領域
特徴づけられたIFN−α、IFN−β、IFN−γプロモーターの局部配列一列整列、及びzcyto20, zcyto21及びzcyto24の上流領域と他の多くのサイトカインとのそれらの一列整列が、それらの遺伝子が同時調節されるかどうかを決定するために行なわれた。遺伝子調節の通常の性質が遺伝子の上流の領域の配列類似性において影響される仮説が存在した。
【０３０４】
TFの低い結合特異性のために、個々の結合部位の予測は、高い割合の誤った陽正を有する。従って、インビボで機能的役割を有する結合部位の同定のための単離における部位予測は有用ではない。しかしながら、配列特異的機能をたぶん有する予測される結合部位は、保存に基づくフィルターにより選択され得る。調節領域がしばしば、他の非コード領域よりも種間でより強く保存される生物学的観察は、系統発生的フットプリントと呼ばれる保存のパターンを示すために定量化され得る（Fickett, など., Curr. Opin. Biotechnol. 11: 19-24, 2000）。特に、ヒト−囓歯動物比較は、機能的調節要素の同定のための価値ある手段であることが判明している（Wassermanなど., Nat. Genet. 26: 225-228, 2000）。
【０３０５】
一列配列は、種々のIFN−α遺伝子のプロモーター間での主に有意な適合性を示し、ところが、この分析に基づけば、zcyto20−22のプロモーターと他のサイトカインとの間の類似性についての証拠はほとんど存在しない。
【０３０６】
対様配列一列整列がDBAにより行なわれた（Jareborgなど., Genome. Res. 9：815−924、1999）。個々の転写因子結合部位についての調査は、TRANSFACデータベース（バージョン23.0、Wingenderなど., Nucleic Acids Res. 28: 316-319, 2000）から得られた標準位置重量マトリックス（Fickett, Mol. Cell. Biol. 16:437-441, 1996）によりおこなわれ、そして領域１−４の一列整列はSSEARCH、バージョン3.1t12により計算された（Pearson， Genomics 11:635-650, 1991）。他の組のTFを包含する公開された研究に基づけば、マウスとヒトとの間に十分に保存されるほとんどの天然の結合部位は、使用される評点範囲において検出されることが予測され得る（Fickett，Mol．Cell．Biol. 16：437−441、1996；Wasserman など., J. Mol. Biol-278, 1998）。
【０３０７】
コンピューター結果は、配列類似性により影響される、zcyto20ファミリー及び他のサイトカインの調節に共通の特徴は、延長された領域を包含する適合よりもむしろ個々の結合部位のレベルに基づいて予測されることを示唆する。
【０３０８】
１組の32TFの結合部位の研究に基づけば、インターフェロンの転写調節に包含されることが知られている限定された数の因子の推定部位の同定が行なわれた。その比較の結果は、IFN−β[NF−κB、ISRE（IRFを結合する要素）]及びIFN−γ（AP−１, CREB, GATA, NF-κB, NF-AT）の転写調節における重要な役割を演じるTFの推定上の結合部位がまた、保存された非コード領域にも存在することを示す。例えば、領域における１対の隣接するAP−１/NF-AT部位は、多くのサイトカインプロモーターに存在する協同結合の十分に証明された例である（Hollowayなど., Mol. Immunol. 38: 567-580, 2000）。
【０３０９】
サイトカイン調節のために決定的なものとして同定されたTFのための結合部位は、zcyto20のプロモーター領域における一連の転写因子結合部位が機能的領域のための候補体であることを示唆する。
既知サイトカインのグループと領域２との一列整列は、Knappeなど. (J. Virol. 74: 3881-3887, 2000) に与えられるように、AK155の転写開始部位に関して、位置−415でのAK155プロモーターにおける適合性を生成した。zcyto20プロモーターにおけるその位置に推定のNF-κB結合部位が存在する事実は、AK155プロモーターにおけるNF−κBの可能性ある存在を示す。
【０３１０】
例９．トランスジェニック動物
Zcyto21遺伝子を発現するトランスジェニック動物を、成熟した受精能雄（スタッド）（B6C3f1、生後２〜８ヶ月（Taconic Farms, Germantown, NY））、精管切除された雄（ダッド）（CD１、生後２〜８ヶ月（Taconic Farms））、成熟直前の受胎能雌（ドナー）（B6C3f1、生後４〜５週（Taconic Farm））及び成熟した受胎能雌（受容体）（CD1、生後２〜４ヶ月、（Taconic Farm））を用いて生成する。
【０３１１】
ドナーを１週間、気候順化し、そしてマウス当たり約８IUのPregnant Mare’s Serumゴナドトロピン（Sigma, St. Louis, MO）をL.P.注射し、そして46〜47時間後、マウス当たり８IUのヒト絨毛性ゴナドトロピン(hCF Sigma)) をI.P.注射し、過排卵を誘発する。ドナーを、ホルモン注射に続いて、スタッドと交配する。排卵は一般的に、hCG注射の13時間以内に生じる。交接は、次の交配の朝、膣栓の存在により確かめられる。
【０３１２】
受精された卵を、手術用スコープ（Leica MZ12 Stereo Microscope, Leica, Watzlar, DE）下で集める。卵管を集め、そして卵を、ヒアルロニダーゼを含む尿検査スライド（Sigma）中に開放する。卵をヒアルロニダーゼにより１度、及び５％CO₂, ５％O₂，及び90％N₂と共に37℃でインキュベートされたWhitten’s W640培地（表７）により２度、洗浄する。次に、卵を、マイクロインジェクションまで、37℃/５％CO₂インキュベーターに貯蔵する。
Zcyto21遺伝子のcDNAを含むプラスミドDNA10〜20μgを、線状化し、ゲル精製し、そして10mMのトリス（pH7.4）、0.25mMのEDTA（pH8.0）に、マイクロインジェクションのためのμl当たり５〜10ngの最終濃度で再懸濁する。
【０３１３】
プラスミドDNAを、暖かなCO₂−平衡化された鉱油により被覆された１滴のW640培地に含まれる収穫された卵中にマイクロインジェクトする。DNAを、注射針中に吸引し（0.75mmのID、１mmのODの硼珪酸塩ガラス細管から押出される）、そして個々の卵中に注入する。個々の卵の一倍体前核の１つ又は両者中に、注射針を注入する。
数ピコリッターのDNAを、前核中に注入し、そして注射針を、核と接触しないで引き抜く。この工程を、すべての卵が注入されるまで反復する。都合良くマイクロインジェクトされた卵を、37℃/５％CO₂のインキュベーターにおいての一晩の貯蔵のために、ガス抜きされたW640培地を有する器官組織−培養皿中に移す。
【０３１４】
次の日、前日の注射からの12〜17個の健康な２−細胞胚を、受容体中に移す。拡大された膨大部を位置決定し、そしてその膨大部と嚢との間に卵管を保持し、卵管のニックを、その膨大部又は嚢を引き裂かないことを確かめて、嚢に接近して28gの針により製造する。胚をこのニックを通して移植し、そして腹膜壁上に保持することによって、生殖器官を、腹腔中に戻す。
受容体対でケージに戻し、そして19〜21日間の妊娠を可能にする。Zcyto21 cDNAにより注射された動物は、誕生の前、死亡した。
【０３１５】
【表７】

すべての試薬は、Sigmaから入手できる。
【０３１６】
例 10．抗体生成
A：zcytor19ポリクローナル抗体：
ポリクローナル抗体を、精製された組換えタンパク質huzcytor19/MBP-6Hにより２匹の雌New Zealand 白ウサギを免疫化することにより調製する。ウサギは、完全フロイントアジュバント中、200μgの精製されたタンパク質の初期腹腔内（ip）注射、続いて、不完全フロイントアジュバント中、100μgのペプチドの追加の免疫化ip注射を３週ごとに与えられる。第２回目の追加免疫注射（合計３回の注射）の投与の７〜10日後、動物を放血し、そして血清を集める。次に、動物を追加免疫化し、そして３週ごとに放血する。
【０３１７】
huzcytor19/MBP-6H特異的ウサギ血清を、1gのCNBr−SEPHAROSE当たり10mgの精製された組換えMBPを用いて精製されるCNBr−SEPHAROSE 4Bタンパク質カラム（Pharmacia LKB, Peapack, N. J.）を用いて、抗−MBP抗体からプレ吸着する。huzcytor19−特異的ポリクローナル抗体を、10mgの特異的抗原精製された組換えタンパク質huzcytor19/MBP-6Hを用いて調製されるCNBr−SEPHAROSE 4Bタンパク質カラムを用いて、ウサギ血清から親和性精製し、続いて、PBSにおいて一晩、透析する。huzcytor19−特異的抗体を、500ng/mlの精製された組換えタンパク質huzcytor19/MBP-6H又はhuzcytor19-Fc4を抗体標的物として用いてのELISAにより特徴づける。その特異的精製された組換え抗原huzcytor19/MBP-6H及び精製された組換えhuzcytor19−Fc4に基づいてのウサギ抗−huzcyor19/MBP−6H親和性精製された抗体の検出の下限（LLD）を決定する。
【０３１８】
B：zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25ポリクローナル抗体：
ポリクローナル抗体を、精製された組換えタンパク質zcyto20/MBP-6H, zcyto21/MBP-6H及びzcyto22/MBP-6H, 並びにマウスzcyto24/MBP-6H又はzcyto25/MBP-6Hにより雌のNew Zealand白ウサギを免疫化することにより調製する。ウサギは、完全フロイントアジュバント中、200μgの精製されたタンパク質の初期腹腔内（ip）注射、続いて、不完全フロイントアジュバント中、100μgのペプチドの追加の免疫化ip注射を３週ごとに与えられる。第２回目の追加免疫注射（合計３回の注射）の投与の７〜10日後、動物を放血し、そして血清を集める。次に、動物を追加免疫化し、そして３週ごとに放血する。
【０３１９】
zcyto20/MBP-6H, zcyto21/MBP-6H，zcyto22/MBP-6H, zcyto24/MBP-6H又はzcyto25/MBP-6H特異的ウサギ血清を、1gのCNBr−SEPHAROSE当たり10mgの精製された組換えMBPを用いて精製されるCNBr−SEPHAROSE 4Bタンパク質カラム（Pharmacia LKB, Peapack, N. J.）を用いて、抗−MBP抗体からプレ吸着する。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25−特異的ポリクローナル抗体を、10mgの特異的抗原精製された組換えタンパク質を用いて調製されるCNBr−SEPHAROSE 4Bタンパク質カラムを用いて、ウサギ血清から親和性精製し、続いて、PBSにおいて一晩、透析する。抗体を、500ng/mlの精製された組換えタンパク質を抗体標的物として用いてのELISAにより特徴づける。その特異的精製された組換え抗原に基づいての精製された抗体の検出の下限（LLD）を決定する。
【０３２０】
ポリクローナル抗体を、zcyto21-CEE標識されたタンパク質によりウサギを免疫化することにより、類似するプロトコールを用いて、zcyto21ために調製し、そして抗体を精製する。
【０３２１】
例 11．ポリイノシン酸−ポリシチジル酸誘発に続いての zcyto20 ， zcyto21, zcyto22, zcyto24 及び zcyto25 遺伝子の発現
A：種々の細胞型：
一次細胞（正常ヒト気管支上皮細胞、正常ヒト皮膚線維芽細胞、ヒト臍静脈内皮細胞、ヒト微小血管内皮細胞及びヒト平滑筋細胞；CLONETICS Corporation; Walkersville, MD）及びヒト絨毛癌細胞系（Jar, BeWo, 及び3A-Sub E細胞；ATCC, Manassas, VA）の培養物を、ポリイノシン酸−ポリシチジル酸（ポリI：C、100μg/ml）(SIGMA；St. Louis, MO)の存在下で又は培地のみにおいて増殖した。４時間インキュベーションの後、全RNAを細胞から単離し、そしてRNアーゼ−フリーのDNアーゼにより処理した。
【０３２２】
１μgの全RNAを、AdvantageRT−for−PCRキットを用いて、その製造業者（Clontech, Palo Alto, CA）により提案されるようにして、第１鎖cDNA合成のために使用した。5％のcDNA反応を、次のプライマー対を用いて、製造業者（Clontech）により提案されるようにして、ポリメラーゼ鎖反応のために使用した：zcyto20, ZC40134 (配列番号30), ZC40214 (配列番号31)；zcyto21, ZC40209 (配列番号32), ZC40213 (配列番号33)；zcyto22, ZC39295 (配列番号34) 及びZC39298 (配列番号35)。G3PDHに対するプライマーを、対照として使用した。
【０３２３】
zcyto20 mRNAを、試験されるすべての細胞において低レベルで検出した。高められたzcyto20 mRNAレベルが、ポリI：Cにより刺激されたNHBE, HUVEC, JAR, 3A Sub E及びBeWo細胞において見出された。zcyto22 mRNAを、試験されたすべての細胞型において低レベルで検出した。高められたzcyto22 mRNAレベルを、ポリI：Cにより刺激されたNHBE, JAR, 3-A Sub E及びBeWo細胞において見出した。それらの結果は、zcyto20及びzcyto22 mRNA合成が既知のインターフェロンインジューサー、ポリI：Cにより刺激されることを示す。
【０３２４】
zcyto21 mRNAを試験されるすべての細胞型において低レベルで検出した。高められたzcyto21 mRNAレベルを、ポリI：Cにより刺激されたNHBE, HUVEC, NHDF, SMC, HMVEC, JAR, 3-A Sub E及びBeWo細胞において見出した。高められたzcyto21 mRNAレベルがまた、IL1b−処理された3-A Sub E胎盤細胞において見出された。それらの結果は、zcyto21 mRNA合成が、既知インターフェロンインジューサーポリI：Cにより刺激され、そしてまた、ある細胞型においては、サイトカインIL1bにより刺激され得ることを示す。
【０３２５】
B．末梢血液単核細胞：
全末梢血液単核細胞を、Ficoll Hypagueを用いて、ヒト血液から単離した。T細胞を、VarioMacs陽性選択カラムにより、製造業者の説明書（Miltenyi Biotec Inc., Auburn, CA）に従って、末梢血液単核細胞から精製した。個々の集団からのサンプルを、染色し、そして蛍光抗体細胞分類（FACS）（Bectin Dickinson, San Jose, CA）により分析し、％富化率を決定した。CD3＋T−細胞を、約95％精製した。全末梢血液白血球又はCD3＋T細胞を、ポリI：C（100μg/ml）の存在下で又は培地のみにおいて増殖した。
【０３２６】
インキュベーションの４時間後、全RNAを、細胞から単離し、そしてRNアーゼ−フリーDNアーゼにより処理した。RT−PCRを、100ngの全RNAを、cDNA合成のための鋳型として用いて、Platinum Tagキット（Invitrogen, Frederick, MD）と共に、Superscript One-Step RT-PCRにより行なった。使用されるPCRプライマー対は次の通りであった：zcyto20：ZC40134 (配列番号30) 及びZC40214 (配列番号31)；zcyto21：ZC40209 (配列番号32)及びZC40213 (配列番号33)；zcyto22：ZC39295（配列番号34）及びZC39298（配列番号35）。個々のRNAのアリコートをまた、対照として、MHC Class I (Clontech) に対して特異的なプライマー対により試験した。
【０３２７】
zcyto20 mRNAを、ポリI：Cにより刺激された全末梢血液単核細胞において検出した。その結果は、zcyto20 mRNA合成が末梢血液単核細胞において既知のインターフェロンインジューサー、ポリI：Cにより刺激されることを示す。
【０３２８】
zcyto21 mRNAを、ポリI：Cにより刺激された全末梢血液単核細胞及びCD3＋T細胞において検出した。その結果は、zcyto21 mRNA合成が、CD3＋T細胞を包含する末梢血液単核細胞において既知インターフェロンインジューサー、ポリI：Cにより刺激されることを示す。
zcyto22 mRNAを、ポリI：Cにより刺激された全末梢血液単核細胞及びCD3＋T細胞において検出した。その結果は、zcyto22 mRNA合成が、CD3＋T細胞を包含する末梢血液単核細胞において既知インターフェロンインジューサー、ポリI：Cにより刺激されることを示す。
それらの結果は、zeyto24及びzcyto25、並びに他のファミリーメンバーに対するポリI：Cの効果を示す。
【０３２９】
例 12．RT − PCR を用いてのヒト一次免疫細胞及び免疫細胞系の発現分析
一次ヒト免疫細胞集団及びヒト免疫細胞系からのRNAのパネルを、TRT−PCRを用いて、zcyto20, zcyto21及びzcyto22発現についてスクリーンした。パネルは、実験室において製造され、そして下記に記載されるように、16種の種々の休止及び活性化された細胞からのRNAを含んだ。すべての一次免疫細胞集団を、いくつかの匿名のドナーの血液から単離した。次に、種々の免疫細胞サブセット（CD3＋、CD14＋、CD19＋及びCD56＋）を、ラベルされた微小ビーズ及びMiltenyi BiotecからのMagnetic Cell Separation Systemを用いて単離した。RNAを、Rneasy Midiprep^TM Kit (Qiagen, Valencia, CA) を用いて、その製造業者の説明書に従って調製した。CD56＋ NK細胞RNAを、それらの休止状態における細胞から単離した。
【０３３０】
１つのCD3+集団を、500ng/mlのイノマイシン及び5.0ng/mlのPMA（ホルボール12−ミリステート13アセテート）の組み合わせを用いて活性化した。もう１つのCD3＋集団を、コンコナバリンAにより刺激されたラット脾臓細胞の上清液、サイトカインに富んでいることが知られている培地及び成長因子を用いる刺激した。CD3+細胞を、0、4及び16時間の活性化時間でRNA単離のために集めた。CD19＋サンプルを、ヒト扁桃から単離し、そして0.5μg/mlのイノマイシン及び10ng/mlのPMAにより活性化した。次に、細胞を、0、4及び24時間で集め、そしてRNAを単離した。ヒトCD14＋単球を、0.1ng/mlのリポ多糖（LPS）又は1.0ng/mlのLPSのいずれかにより20時間、活性化した。次に、休止及び活性化された細胞を集め、そしてRNAを単離した。さらに、RNAを、休止及び活性化されたヒト単球細胞系HL−60、THP−１及びU937から単離した。
【０３３１】
HL−60細胞を、10ng/mlのPMAにより一晩、活性化した。THP−１細胞を、1.0ng/mlのLPS及び10ng/mlのIFN−γにより一晩、活性化した。最終的に、U937細胞を、10ng/mlのPMAにより一晩、活性化した。RT−PCRを、cDNA合成のための鋳型として100ngの全RNAを用いて、Platinum Tagキット（Invitrogen）と共にSuperscript One-Step RT-PCRにより行なった。使用されるPCRプライマー対は次の通りであった：zcyto20：ZC40632（配列番号36）及びZC40633（配列番号37）；zcyto21：ZC40209（配列番号32）及びZC40213（配列番号33）；及びzcyto22：ZC40638（配列番号38）及びZC40639（配列番号39）。個々のRNAのアリコートをまた、対照としてMHC ClassI (Clontech) に対して特異的なプライマー対により試験した。
【０３３２】
zcyto21 mRNAを、LPS及びインターフェロン−γにより処理されたTHP−１において検出した。zcyto20 mRNAをまた、PMAにより４時間、処理されたCD3＋細胞においても検出した。zcyto21 mRNAを、休止U937細胞及び休止THP−１細胞において低レベルで検出した。zcyto20のレベルは、LPS及びインターフェロン−γによるTHP−１の処理に基づいて高められた。zcyto21 mRNAをまた、PMAにより４時間、処理されたCD3＋細胞において検出した。zcyto22 mRNAを、LPS及びインターフェロン−γにより処理されたTHP−１細胞において検出した。zcyto22 mRNAをまた、PMAにより４及び６時間、処理されたCD3＋細胞、及びコンコナバリンAにより16時間、処理されたCD3＋細胞において検出した。それらの結果は、zcyto20, zcyto21及びzcyto22 mRNA合成が単球細胞系及び一次CD3＋免疫細胞の活性化により刺激されることを示す。
【０３３３】
それらの結果は、zcyto24及びzcyto25、並びに他のファミリーメンバーに対するポリI：Cの効果を示す。
【０３３４】
例 13．抗ウィルス活性： Hela 及び L929 細胞における細胞障害効果
抗ウィルス活性についての初期機能的アッセイを、一次的にトランスフェクトされたヒト胚腎臓（HEK）細胞からのならし培地を用いて行なった。このならし培地の生成は、次の通りに記載される。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24又はzcyto25のための十分な長さのcDNAを、標準方法を用いて、pzp7Zベクター中にクローン化した。zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24又はzcyto25構造体を、293HEK細胞中にトランスフェクトした。手短には、個々の構造体に関しては、700,000細胞/ウェル（６ウェルプレート）を、約18時間プレートし、その後、2mlのDMEM−10％ウシ胎児血清においてトランスフェクトした。
【０３３５】
ウェル当たり、1.5μgのzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24又はzcyto25 DNA及び0.5μgのpIRES2-EGFP DNA (Clontech)を、合計100μlのDMEM中、６μlのFugene6試験（Roche Biochemicals）に添加した。２μgのpIRES2-EGFP DNAを、負の対照として使用した。それらのトランスフェクション混合物を、30分後、予備にプレートされた293細胞に添加した。24時間後、細胞培地を除去し、そしてDMEM＋0.1％ウシ血清アルブミンを添加した。ならし培地を、48時間後、集め、0.45ミクロンのフィルターを通して濾過し、そして抗ウィルス及びレポーターアッセイのために使用した。
【０３３６】
抗ウィルスアッセイを、ヒト頸部癌細胞（HeLa）及びマウス線維芽細胞（L929）を用いて行なった。第１日目、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24又はzcyto25を含むならし培地（例10を参照のこと）を、希釈し、そして96−ウェル平底マイクロタイタープレートにおいて50,000個の細胞と共にプレートした。37℃での24時間のインキュベーションの後、培地を除去し、そして０．１の感染の多重度で脳心筋炎ウィルスを含む培地により置換した。細胞を再び37℃で24時間インキュベートした。次に、培養物ウェルを、細胞障害効果の存在について４点尺度に基づいて可視的に評点を付け、次にこれを、表８に示されるように％CPEに転換した。CFPのみ及び精製されたヒトインターフェロン−a−2a又はネズミインターフェロン−αによりトランスフェクトされた細胞からのならし培地が、対照として包含された。
【０３３７】
【表８】

【０３３８】
表９は、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25を含むならし培地が用量−依存性態様でHeLa細胞におけるウィルス感染（％CPE）を阻害したが、ところが対照のGFPならし培地は細胞障害効果の出現を有意に阻止することには失敗したことを示す。表10に示されるように、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25を含むならし培地は、L929細胞においてウィルス感染を阻害しなかった。両実験においては、精製されたインターフェロンは、正の抗ウィルス活性を示した。
【０３３９】
【表９】

【０３４０】
【表１０】

【０３４１】
追跡調査として、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25を発現するバキュロウィルスにより感染されたSf9細胞からのならし培地を、抗ウィルスアッセイに使用した。野生型バキュロウィルスにより感染されたSf9細胞からのならし培地を、負の対照として使用した。
バキュロウィルス由来のならし培地を用いての抗ウィルスアッセイの結果は、293により一時的に感染されたならし培地を用いてのその効果に類似した。表11は、zcyto21を含むバキュロウィルス由来のならし培地が用量依存性態様で、HeLa細胞におけるウィルス感染を阻害したが、ところが対照のならし培地は細胞障害効果の出現を阻止するのに失敗したことを示す。
【０３４２】
【表１１】

バキュロウィルス構造体及びならし培地の生成は、上記に記載される。
【０３４３】
例 14．抗ウィルス活性は、ヒトインターフェロン−α受容体鎖２βに対する抗体により阻止され得ない
追加の抗ウィルスアッセイを、ヒト頸部癌（HeLa）を用いて行なった。第１日目、抗−hu−IFN−受容体MAb（Research Diagnostics Inc.）及びイソタイプ−適合された負の対照MAbを、96−ウェル平底マイクロタイタープレートに希釈した。zcyto20, zcyto21又はzcyto22を発現するバキュロウィルスにより感染されたSf9細胞からのならし培地を添加し、0.0625× CMの最終濃度を得、そしてウェル当たり50,000のHeLa細胞をプレートした。
【０３４４】
37℃での24時間のインキュベーションに続いて、培地を除き、そして0.1の感染の多重度で脳心筋炎ウィルスを含む培地により置換した。細胞を再び、37℃で24時間インキュベートした。次に、培養物ウェルを、表８に示されるように、細胞障害効果（CPE）の存在について視覚的に評点を付けた。0.01ng/mlの濃度での精製されたヒトインターフェロン−a−2aを、陽性対照として包含した。
【０３４５】
表12は、zcyto21, zcyto21及びzcyto22を含むならし培地がヒトインターフェロンα受容体鎖２βに対する中和抗体の存在又は不在下でのHeLa細胞における抗ウィルス活性（ゼロ％CPEにより示されるような）を有したことを示す。対照的に、インターフェロン−a−2aの抗ウィルス活性は、特にヒトインターフェロンα受容体鎖２βに対する中和抗体の存在下で、用量−依存性態様で阻害した。それらのデータは、zcyto20, zcyto21及びzcyto22がヒトインターフェロンα受容体以外の受容体と相互作用するか、又はヒトインターフェロン−a−Zaよりも異なった機構を有するヒトインターフェロンα受容体と相互作用することを示す。
【０３４６】
【表１２】

【０３４７】
例 15．BaF3 細胞系を用いての抗増殖アッセイ
BaF3を用いて、Zcyto20が抗−増殖性質を有するかどうかを決定する。子供ハムスター腎臓（BHK）細胞を、Zcyto20 cDNA、又はZα30と呼ばれる無関係のcDNAの上流にCMVプロモーター及びイントロンAを含む発現ベクターにより、BRLリポフェクタミンを用いて安定してトランスフェクトする。安定してトランスフェクトされた細胞を、細胞工場において血清フリー培地に接種し、そしてならし培地が収穫される前、３日間、増殖し、そして５Kフィルターにより10倍に濃縮する。濃縮されたならし培地サンプルを4℃で貯蔵する。
【０３４８】
次のアッセイを用いて、BaF3の抗−増殖について試験する。96ウェルプレートにおいて、８個の１：２希釈溶液を、増殖培地のみ（RPMI 1640, 10％ウシ胎児血清、1mMのピルビン酸ナトリウム、2mMのL−グルタミン）、又はネズミIL−３（増殖培地において50pg/mlで開始する）から製造する（100μlの最終体積）。50μlの次のものを、増殖培地のみ又はmIL−３希釈レーンに添加する：ヒトインターフェロンα（増殖培地に希釈された、100ng/ml, 10ng/ml又は1ng/ml）、ヒトインターフェロンβ（増殖培地に希釈された、100ng/ml, 10ng/ml又は1ng/ml）、ネズミインターフェロン−α（増殖培地に希釈された、100ng/ml, 10ng/ml又は1ng/ml）、ネズミインターフェロン−β（増殖培地に希釈された、100ng/ml, 10ng/ml又は1ng/ml）、Zcyto20（2.5×、0.5×又は0.1×で）、及びネズミZα30（2.5×、0.5×又は0.1×で）。
【０３４９】
BaF3細胞系を、増殖培地により３度、洗浄し、ペレットを増殖培地に再懸濁し、細胞を計数し、そして増殖培地に希釈し、5,000個の細胞/50μlにする。次に、50μlの希釈された細胞を、サンプルの個々の溶液に添加する。アッセイプレートを、37℃のインキュベーターにおいて３〜４日間インキュベートする。次に、20μlのAlomarブルーを個々のウェルに添加し、そしてプレートを37℃で一晩インキュベートする。プレートを蛍光プレートリーダ上で、544の励起波長及び590の発光波長で読み取る。
【０３５０】
例 16．インターフェロン−応答経路を通してのシグナル化
１型インターフェロンとそれらの特異的な受容体との相互作用は、それらの抗ウィルス/抗増殖活性を担当する多くの遺伝子の誘発を導く。それらは、2’−5’オリゴアデニル酸シンセターゼ（２−５Aシンセターゼ）、二本鎖RNA依存性Pkrキナーゼ（Pkr）、リン脂質スクランブラーゼ及び細胞間付着分子−１（ICAM−１）を包含する。まだ未知である機能を有する遺伝子、例えば56kDaのインターフェロン刺激された遺伝子生成物（ISG−56k）の誘発がまた存在する。それらの遺伝子のいくつか又はすべてがzcyto20による細胞の処理に基づいて誘発されるかどうかを決定するために、ヒトDaudi Bリンパ様細胞を、zcyto20を発現するバキュロウィルスにより感染されたSf9細胞からのならし培地により72時間、処理した。
【０３５１】
野生型バキュロウィルスにより感染されたSf9細胞化らのならし培地を、負の対照として使用した。処理に続いて、細胞を集め、そして全RNAの単離のために溶解した。１μgの全RNAを、逆転写酵素を用いてcDNAに転換し、そして上記に記載されるヒトインターフェロン刺激された遺伝子に対して特異的なオリゴヌクレオチドプライマーを用いて、ポリメラーゼ鎖応答のための鋳型として使用した。ヒトグリセロール−３−リン酸デヒドロゲナーゼ（G3PDH）のためのオリゴヌクレオチドプライマーを、非インターフェロン刺激された遺伝子対照として使用した。その結果は、zcyto20による細胞の処理に続いて、ISG−56k, Pkr, 2-5Aシンセターゼ及びリン脂質スクランブラーゼの明白な誘発を示す。誘発は、ICAM−１、又は非インターフェロン刺激された遺伝子対照、G3PDHに関しては見出されなかった。
【０３５２】
例 17．zcyto21 のための受容体としての zcytor19 の同定
ビオチニル化されたzcyto21を、既知又は孤児サイトカイン受容体への結合について試験した。サイトカイン受容体（ヒトIFNαR1, IFNβR2, IFNβ2, IL−10R, CRF2-4, ZcytoR7, DIRS1, Zcytor19及び組織因子）のcDNAを含むpZP7発現ベクターを、COS細胞中にトランスフェクトし、そしてトランスフェクトされたCOS細胞へのビオチニル化されたzcyto20の結合を、下記に記載される分泌トラップアッセイを用いて行なった。このアッセイにおける陽性結合は、受容体−リガンド対を示す。
【０３５３】
COS 細胞トランスフェクション：
COS細胞トランスフェクションを次の通りに行なった：COS細胞を、フィブロネクチン被覆された、12−ウェル組織培養プレート（Becton Dickinson, Bedford, MA）上にプレートし（１×10⁵個の細胞/ウェル）、そして37℃で一晩インキュベートした。サイトカイン受容体DNA（0.75μg）を、50μlの血清フリーDMEM培地（500mlのDMEM中、55mgのピルビン酸ナトリウム、146mgのL−グルタミン、５mgのトランスフェリン、2.5mgのインスリン、１μgのセレニウム及び5mgのフェツュイン）と共に混合し、次に、45μlの血清フリーDMEM培地中、５μlのLipofectamine^TM (Invitrogen, Carlsbad, CA) と共に混合し、そして室温で30分間インキュベートした。
【０３５４】
追加の400μlの血清フリーDMEM培地を添加した。細胞を、血清フリーDMEMによりすすぎ、そして500μlのDNA混合物を、添加した。細胞を37℃で５時間インキュベートし、この時点で、追加の500μlの20％FBS DMEM培地（500mlのDMEM中、100mlのFBS、55mgのピルビン酸ナトリウム及び146mgのL−グルタミン）を添加し、そして細胞を一晩インキュベートした。
【０３５５】
分泌トラップアッセイ：
分泌トラップを次の通りに行なった：培地を吸引し、そして細胞をPBS中、１％BSAにより２度、すすいだ。細胞を、水中、TNB（0.1Mのトリス−HCl、0.15MのNaCl及び0.5％のBlocking Reagent (NEN Renaissance TSA-Direct Kit, NEN Life Science Products, Boston, MA)）により１時間、阻止した。細胞を、TNB中、３μg/mlのビオチニル化されたzcyto21タンパク質（例27）と共に１時間インキュベートした。次に、細胞を、PBS中、１％BSAにより３度、洗浄し、そしてTNB中、１：300に希釈されたStreptavidin−HRP（NENキット）と共にさらに１時間インキュベートした。再び細胞を、PBS中、１％BSAにより３度、洗浄し、そして次に、PBS中、1.8％ホルムアルデヒドにより15分間、固定した。次に、細胞を、TNT（水中、0.1Mのトリス−HCl, 0.15MのNaCl及び0.05％のTween−20）により３度、洗浄した。
【０３５６】
陽性結合を、希釈緩衝液（NENキット）に１：50で希釈されたフルオレセインチラミド試薬により検出し、4.5分間インキュベートし、そしてTNTにより洗浄した。細胞を、TNTにより１：５に希釈されたVectashield Mounting Media (Vector Labs Burlingame, CA) により保存した。細胞を、蛍光顕微鏡上でのFITCフィルターを用いて可視化した。
【０３５７】
陽性結合を、ヒトzcytor19 cDNAによりトランスフェクトされ、そしてビオチニル化されたzcyto21と共にインキュベートされた細胞上で検出した。他のトランスフェクトされた受容体はzcyto21を結合せず、そしてzcytor19は対照のビオチニル化されたタンパク質を結合しなかった。それらのデータは、zcytor19がzcyto21のための受容体であることを示す。
さらなる実験は、ビオチニル化されたzcyto21によるヒト及びマウスZcytor19間の陽性結合を示した。陽性結合はまた、ヒトzcytor19 cDNAによりトランスフェクトされ、そしてビオチニル化されたzcyto20及びzcyto24と共にインキュベートされた細胞上に検出された。
【０３５８】
例 18．シグナルトランスダクション受容体アッセイ
シグナルトランスダクションレオーターアッセイを用いて、zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25とzcytor19との機能的相互作用を決定した。ヒト胚腎臓（HEK）細胞を、クラスIIサイトカイン受容体（ヒトDIRS1, IFNαRI, IFNαRZ及びZcytor19（配列番号23及び26）を包含する）のためのcDNAを含むpZP7発現ベクターの存在又は不在下でルシフェラーゼレポーター遺伝子の転写を駆動する、インターフェロン−刺激された応答要素（ISRE）を含むレポータープラスミドによりトランスフェクトした。クラスIIリガンド（zcyto21（配列番号１）、zcyto21（配列番号4）、zcyto22（配列番号6）、zcyto10, huIL10及びhuIFNa−2aを包含する）による、トランスフェクトされた細胞の刺激に続くルシフェラーゼ活性は、細胞表面上のトランスフェクトされた及び天然のサイトカイン受容体とリガンドとの相互作用に影響を及ぼす。
【０３５９】
細胞トランスフェクション：
293HEK細胞を次の通りにトランスフェクトした：800,000の293細胞/ウェル（６ウェルプレート）を、2mlのDMEM＋10％ウシ胎児血清におけるトランスフェクションの約18時間前、プレートした。ウェル当たり、１μgのpISER−Luciferase DNA (Stratagene), 1μgのサイトカイン受容体DNA及び１μgのpIRES2-EGFP DNA (Clontech) を、合計100μlのDMEM中、９μgのFugene6試薬（Roche Biochemicals）に添加した。サイトカイン受容体DNAが包含されていない場合、２μgのpIRES２−EGFP DNAが使用された。このトランスフェクション混合物を、30分後、プレ−プレートされた293細胞に添加した。24時間後、トランスフェクトされた細胞を、トリプシン−EDTAを用いてプレートから除き、そして96ウェルマイクロタイタープレートにおけるウェル当たり約25,000の細胞で置換した。リガンド刺激の約18時間前、培地を、DMEM＋0.5％FBSに換えた。
【０３６０】
シグナルトランスダクションレポーターアッセイ：
シグナルトランスダクションレポーターアッセイを次の通りに行なった：DMEM＋0.5％FBSにおける37℃での18時間のインキュベーションに続いて、トランスフェクトされた細胞を、次のクラスIIリガンドの希釈溶液（DMEM＋0.5％FBSにおける）により刺激した：zcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto10, huIL10及びhuIFNa-2a。37℃での４時間のインキュベーションに続いて、細胞を溶解し、そして相対的光単位（RLU）を、ルシフェラーゼ基質の添加の後、ルミノメーター上で測定した。その得られる結果は、培地のみの対照よりも実験サンプルのRLUの倍率誘発（fold induction）として示される（実験サンプルRLU/培地のみのRLU＝倍率誘発）。
【０３６１】
表14は、zcyto20, cyto21及びzyto22が、培地のみよりもルシフェラーゼ活性において15〜17倍の誘発を付与するISRE−ルシフェラーゼによりトランスフェクトされた293細胞においてISREシグナル化を誘発することを示す。トランスフェクション混合物へのzcyto19 DNAの添加は、104〜125倍の合計誘発を付与する、zcyto20, zcyto21及びzcyto22によるISREシグナルにおける６〜８倍の追加の誘発をもたらす。他のトランスフェクトされたクラスIIサイトカイン受容体DNAは、高められたISREシグナル化をもたらさなかった。それらの結果は、zcyto20, zcyto21及びzcyto21がzcytor19サイトカイン受容体と機能的に相互作用することを示す。
【０３６２】
表13はまた、huIFNa−2aが、培地のみに比較して、ルシフェラーゼ活性の205倍誘発を付与する、ISRE−ルシフェラーゼトランスフェクトされた細胞においてISREシグナル化を誘発できることを示す。しかしながら、トランスフェクションへのzcytor19 DNAの添加は、ISRE−シグナル化において11倍の低下を導き（ISRE−ルシフェラーゼDNAのみに比較して）、このことは、zcytor19過剰表現が、zcyto20, zcyto21及びzcyto22シグナル化に対するzcytor19の過剰発現の陽性効果に比較して、インターフェロンシグナル化をもたらすことを示唆する。
【０３６３】
【表１３】

【０３６４】
例 19．zcytor19 のための受容体サブユニットとしての IL10Rb （ CRF2-4 ）の同定
A ： IL10Rb 中和化抗体は ISRE シグナル化を阻害する：
シグナルトランスダクションレポーターアッセイを用いて、zcytor19及びIL10Rb（CRF2-4）とzcyto20, zcyto21及びzcyto22との機能的相互作用を決定した。ヒト胚腎臓（HEK）細胞、又は安定してヒトzcytoR19を過剰発現するヒト胚腎臓（HEK）細胞を、ルシフェラーゼレポーターの転写を駆動するインターフェロンー刺激された応答要素（ISRE）を含むレポータープラスミドによりトランスフェクトした。IL10Rb（CRF2−4）に対する中和抗体の存在又は不在下でクラスIIリガンド（zcyto20, zcyto21, zcyto22及びhuIFNa-2aを包含する）による、トランスフェクトされた細胞の刺激に続いてのルシフェラーゼ活性は、細胞表面上でのサイトカイン受容体とリガンドとの相互作用に影響を及ぼす。この結果及び方法は下記に記載される。
【０３６５】
細胞トランスフェクション：
ヒトzcytoR19を安定して過剰発現する293HEK細胞を生成するために、293細胞を次の通りにしてトランスフェクトした：300,000個の293細胞/ウェル（６ウェルプレート）を、2mlのDMEM＋10％ウシ胎児血清におけるトランスフェクションの約６時間前、プレートした。ウェル当たり、ヒトzcytoR19（配列番号23）のcDNAを含むp2P7発現ベクター2μgを、合計100μlのDMEM中、6μlのFugene6試薬（Roche Biochemicals）に添加した。このトランスフェクション混合物を、30分後、プレ−プレートした293細胞に添加した。48時間後、トランスフェクトされた細胞を、２μg/mlのプロマイシン選択下に配置した。プロマイシン耐性細胞を、細胞集団として使用した。
【０３６６】
293HEK細胞（野生型、又はヒトzcytoR19を過剰発現する）を、次の通りにしてトランスフェクトした：700,000個の293細胞/ウェル（６ウェルプレート）を、2mlのDMEM＋10％ウシ胎児血清においてトランスフェクションの約18時間前、プレートした。ウェル当たり、１μgのpISER−Luciferase DNA (Stratagene), 1μgのサイトカイン受容体DNA及び１μgのpIRES2-EGFP DNA (Clontech) を、合計100μlのDMEM中、９μgのFugene6試薬（Roche Biochemicals）に添加した。このトランスフェクション混合物を、30分後、プレ−プレートされた293細胞に添加した。24時間後、トランスフェクトされた細胞を、トリプシン−EDTAを用いてプレートから除き、そして96ウェルマイクロタイタープレートにおけるウェル当たり約25,000の細胞で置換した。リガンド刺激の約18時間前、培地を、DMEM＋0.5％FBSに換えた。
【０３６７】
シグナルトランスダクションレポーターアッセイ：
シグナルトランスダクションレポーターアッセイを次の通りにして行なった：DMEM＋0.5％FBSにおける37℃での18時間のインキュベーションに続いて、トランスフェクトされた細胞を、IL10Rb（zcyto21のために2.5μg/ml、zcyto20及びzcyto22のために8μg/ml、R & D Systems）に対する中和ポリクローナルヤギ抗体又はPBSにより37℃で１時間、前処理した。ヒトzcytoR19を安定して過剰発現するヒト胚腎臓（HEK）細胞をまた、zcyto20及びzcyto22を包含する実験のための抗体対照としてのIFNAR1（8μg/ml、R & D Systems）に対する非中和ポリクローナルヤギ抗体により前処理した。
【０３６８】
前処理された細胞を、次のクラスIIリガンドの希釈溶液（DMEM＋0.5％FBS中）により刺激した：zcyto20, zcyto21又はzcyto22。対照として、huIFNa−2aを個々の実験において使用した。37℃での４時間のインキュベーションに続いて、細胞を溶解し、そして相対的光単位（RLU）を、ルシフェラーゼ基質の添加の後、ルミノメーター上で測定した。その得られる結果は、培地のみの対照よりも実験サンプルのRLUの倍率誘発（fold induction）として示される（実験サンプルRLU/培地のみのRLU＝倍率誘発）。
【０３６９】
表14及び15は、zcyto20によるISREシグナル化の誘発が、IL10Rbに対する中和抗体による、野生型293細胞又はヒトzcytoR19を過剰発現する293細胞の前処理により阻害されることを示す。ISREシグナル化のhuIFNa−2a誘発の阻害はまったくか又はほとんど見れない。それらの結果は、zcyto20がISREシグナル化の最大誘発のためにIL10Rb（CRF−4）との相互作用を必要として、そしてzcyto20のための受容体がzcytoR19 及びIL10Rb（CRF2-4）のへテロダイマー組合せであることを示唆する。
【０３７０】
【表１４】

【０３７１】
【表１５】

【０３７２】
表16及び17は、zcyto21によるISREシグナル化の誘発が、IL10Rbに対する中和抗体による、野生型293細胞又はヒトzcytoR19を過剰発現する293細胞の前処理により阻害されることを示す。ISREシグナル化のhuIFNa−2a誘発の阻害は見れない。それらの結果は、zcyto21がISREシグナル化の最大誘発のためにIL10Rb（CRF−4）との相互作用を必要として、そしてzcyto21のための受容体がzcytoR19 及びIL10Rb（CRF2-4）のへテロダイマー組合せであることを示唆する。
【０３７３】
【表１６】

【０３７４】
【表１７】

【０３７５】
表18及び19は、zcyto22によるISREシグナル化の誘発が、IL10Rbに対する中和抗体による、野生型293細胞又はヒトzcytoR19を過剰発現する293細胞の前処理により阻害されることを示す。ISREシグナル化のhuIFNa−2a誘発の阻害はまったくか又はほとんど見れない。それらの結果は、zcyto22がISREシグナル化の最大誘発のためにIL10Rb（CRF−4）との相互作用を必要として、そしてzcyto20のための受容体がzcytoR19 及びIL10Rb（CRF2-4）のへテロダイマー組合せであることを示唆する。
【０３７６】
【表１８】

【０３７７】
【表１９】

【０３７８】
B ：抗− IL10Rb 抗体は抗ウィルス活性を阻止する：
抗ウィルスアッセイを行ない、zcyto20の抗ウィルス活性を阻止する抗−IL10Rb抗体の能力を決定した。アッセイは、293HEK細胞（野生型、又はヒトzcytor19を過剰発現する）を用いて行なわれた。第１日目、抗体（抗−ヒトIL10Rβ、抗−ヒトLeptin受容体、R & D Systems）を、５μg/mlで細胞培地に希釈し、そして次に、ウェル当たり50,000個の細胞と共に、96−ウェルプレート中にプレートした。37℃で１時間のインキュベーションに続いて、zcyto20−CEE（例３からの）（野生型293細胞のために200ng/ml, ヒトzcytoR19を過剰発現する293細胞のために0.5ng/ml）又はヒトインターフェロン−a−2a（野生型293細胞のために1ng/ml, ヒトzcytoR19を過剰発現する293細胞のために100ng/ml）を、ウェルに添加し、そして37℃で一晩インキュベートした。
【０３７９】
次の日、培地を除き、そして0.1の感染の多重度で脳心筋炎ウィルス（EMCV）を含む培地により置換した。次に、細胞を37℃で一晩インキュベートした。続いて、25μlの5mg/mlのメチルチアゾールテトラゾリウム（MTT）（Sigma）を個々のウェルに添加し、37℃で２時間インキュベートし、そして次に、ウェルを、100μlの抽出緩衝液（12.5％SDS, 45％DMF）により抽出した。37℃での一晩インキュベーションに続いて、570nmでの光学密度を、Spectromaxプレートリーダー（Molecular Devices, CA）上で測定した。
【０３８０】
低められた光学密度（570nm）は、低められた細胞生存性を示す（抗ウィルス活性の損失）。異なった実験条件下についての光学密度（570nm）が下記表20に示される。その結果は、ヒトIL10受容体βの阻止がインターフェロン−a−2a活性をもたらさないで、zcyto20の抗ウィルス活性を特異的に中和することを示す。これは、ヒトIL10受容体βがzcyto20抗ウィルス活性に包含される受容体複合体（ヒトzcytoR19を包含する）の一部であることを示す。
【０３８１】
【表２０】

【０３８２】
C：zcyto20, zcyto21 及び zcyto22 シグナル化が zcytoR19 及び IL10Rb の同時発現により増強される：
シグナルトランスダクションレポーターアッセイを行ない、zcytor19及びIL10Rb (CRF2-4) とzcyto20, zcyto21及びzcyto22との機能的相互作用を決定した。ハムスター肝臓（BHK）細胞を、クラスIIサイトカイン受容体zcyto19及びIL10Rb（CRF2-4）のためのcDNAを含むpZP7発現ベクターの存在又は不在下でルシフェラーゼレポーター遺伝子の転写を駆動するインターフェロン−刺激された応答要素（ISRE）を含むレポータープラスミドによりトランスフェクトした。クラスIIリガンド（zcyto20, zcyto21及びzcyto22を包含する）による、トランスフェクトされた細胞の刺激に続くルシフェラーゼ活性は、細胞表面上でのトランスフェクトされた及び天然のサイトカイン受容体とリガンドの相互作用に影響を及ぼす。それらの結果及び方法は、下記に記載される。
【０３８３】
細胞トランスフェクション：
BHK−570細胞を、次の通りにしてトランスフェクトした：200,000個のBHK細胞/ウェル（６ウェルプレート）を、2mlのDMEM＋５％ウシ胎児血清におけるトランスフェクションの約５時間前、プレートした。ウェル当たり、１μgのpISER−Luciferase DNA (Stratagene), 1μgのサイトカイン受容体DNA及び１μgのpIRES2-EGFP DNA (Clontech) を、合計100μlのDMEM中、９μgのFugene6試薬（Roche Biochemicals）に添加した。サイトカイン受容体DNAが包含されていない場合、２μgのpIRES２−EGFP DNAが使用された。このトランスフェクション混合物を、30分後、プレ−プレートされたBNK細胞に添加した。24時間後、トランスフェクトされた細胞を、トリプシン−EDTAを用いてプレートから除き、そして96ウェルマイクロタイタープレートにおけるウェル当たり約25,000の細胞で置換した。リガンド刺激の約18時間前、培地を、DMEM＋0.5％FBSに換えた。
【０３８４】
シグナルトランスダクションレオーターアッセイ：
シグナルトランスダクションレポーターアッセイを次の通りに行なった：DMEM＋0.5％FBSにおける37℃での18時間のインキュベーションに続いて、トランスフェクトされた細胞を、次のクラスIIリガンドの希釈溶液（DMEM＋0.5％FBSにおける）により刺激した：zcyto20, zcyto21, zcyto22, zcyto24,及びzcyto25リガンド。37℃での４時間のインキュベーションに続いて、細胞を溶解し、そして相対的光単位（RLU）を、ルシフェラーゼ基質の添加の後、ルミノメーター上で測定した。その得られる結果は、培地のみの対照よりも実験サンプルのRLUの倍率誘発（fold induction）として示される（実験サンプルRLU/培地のみのRLU＝倍率誘発）。
【０３８５】
表21は、zcyto20, cyto21及びzyto22が、ISRE−ルシフェラーゼ及びzcytiR19により用量−依存性態様でトランスフェクトされたBHK細胞においてISREシグナル化を誘発することを示す。トランスフェクション混合物へのIL10Rb（CRF2−4）DNAの添加は、10〜100倍低いサイトカイン容量でのシグナル化の最大誘発の半分をもたらす。ISREトランスフェクションのみによる応答は見出されなかった。それらの結果は、インターフェロン刺激された応答要素を通してシグナル化するzcyto20, zcyto21及びzcyto22の能力がzcytoR19及びIL10Rb（CRF2−4）の同時発現により増強されることを示し、このことは、zcyto20, zcyto21及びzcyto22のための受容体がzcytoR19及びIL10Rb（CRF2−4）のへテロダイマー組合せであることを示す。
【０３８６】
【表２１】

【０３８７】
例 20．次の zcytor19 可溶性受容体を発現する哺乳類発現ベクターの構成： zcytor19 CEE, zcytor19 CFLG ， zcytor19 CHIS 及び zcytor19 − Fc4
発現ベクター、すなわちpZp9zcytor19CEEを、zcytor19ポリペプチドの可溶性、細胞外ドメインの発現のために調製し、ここで前記構造体は、予測される開始メチオニンから成り、そして予測されるトランスメンブランドメインに隣接して切断され、そしてC−末端Glu−Glu標識（配列番号16）を有するzcytor19ポリペプチドを発現するよう企画されている。
【０３８８】
本明細書に記載されるzcytor19細胞外又はサイトカイン結合ドメインを含んで成るzcytor19 DNAフラグメントを、PCRを用いて創造し、そして標準方法を用いて精製する。切除されたDNAを、シグナルペプチド、例えば生来のzcytor19シグナルペプチドを有するプラスミド発現ベクター中にサブクローン化し、そしてzcytor19ポリペプチドコードのポリヌクレオチド配列のC−末端にGlu−Glu標識（配列番号16）を結合する。そのような哺乳類発現ベクターは、哺乳類プロモーター、コード配列の挿入のための複数の制限部位、停止コドン及び哺乳類ターミネーターを有する発現カセットを含む。このプラスミドはまた、複製のE．コリ起点、SV40プロモーター、エンハンサー及び複数の起点を有する哺乳類選択マーカー発現単位、DHFR遺伝子及びSV40ターミネーターも有することができる。
【０３８９】
制限消化されたzcytor19挿入体及び前に消化されたベクターを、標準の分子生物学技法を用いて連結し、そしてDH10Bコンピテント細胞（GIBCO BRL, Gaithersburg, MD）中に、その製造業者の説明書に従ってエレクトロポレートし、そして50μg/mlのアンピシリンを含むLBプレート上にプレートし、そして一晩インキュベートした。コロニーを、個々のコロニーから調製されたDNAの制限分析によりスクリーンした。陽性クローンの挿入体配列を、配列分析により確かめた。大規模プラスミド調製を、QIAGEN（商標）Maxi prepキット（Qiagen）を用いて、製造業者の説明書に従って行った。
【０３９０】
同じ方法を用いて、一列に並んでの６個のHis残基から成るC−末端his標識及びC−末端フラッグ（配列番号42）標識、すなわちzcytor19 CF1.AGを有するzcytor19可溶性受容体を調製した。それらの構造体を調製するためには、前記ベクターは、glu-glu標識（配列番号16 ）の変わりにHIS又はFLAG（商標）標識のいずれかを有する。
【０３９１】
発現ベクター、zcytor19/Fc4/pzmp20を調製し、BHK細胞においてzcytor19のC末端Fc4標識された可溶性型（ヒトzcytor19−Fc4）を発現した。zcytor19受容体の細胞外ドメインからのポリヌクレオチド配列を含む、zcytor19 cDNAのフラグメントを、Fc4ポリヌクレオチド配列（配列番号43）に整合して融合し、zcytor19−Fc4融合体を生成した。Pzmp20ベクターは、Fc4ポリヌクレオチド配列、及び標準の分子生物学技法を用いてC−末端Fc4融合体の急速な構成を可能にするクローニング部位を含む哺乳類発現ベクターである。
【０３９２】
ヒトzcytor19の細胞外ドメイン、及びそれぞれ、5’及び3’末端上にコードされるBamHI及びBgl2部位と共にを含む、630塩基対のフラグメントをPCRにより生成した。このPCRフラグメントを、ヒト脳cDNAライブラリーからの増幅により、プライマーZC37967（配列番号44）及びZC37972（配列番号45）を用いて生成した。PCR反応条件は次の通りであった：94℃で20秒及び68℃で２分；（30サイクル）；68℃で４分（１サイクル）；続いて10℃でのソーキング。フラグメントを、BamHI及びBgl2制限エンドヌクレアーゼにより消化し、そして続いて、１％ゲル電気泳動、及びQiaQuickゲル抽出キット（Qiagen）を用いてのバンド精製により精製した。得られる精製されたDNAを、BamHI及びBgl2部位のFc4 3’を含む、BamHI及びBgl2により前もって消化されたpzmpベクター中に、室温で５時間、連結した。
【０３９３】
１μlの連結混合物を、37μlのDH10BエレクトロコンピテントE．コリ（Gibco）において、製造業者の説明書に従ってエレクトロポレートした。形質転換された細胞を、400μlのLB培地に希釈し、そして100μg/mlのアンピシリンを含むLBプレート上にプレートした。クローンを制限消化により分析し、そして陽性クローンをDNA配列決定のために送り、融合構造体の配列を確かめた。
【０３９４】
例 21．zcytor19 可溶性受容体ポリペプチドのトランフェクション及び発現
BHK570細胞（ATCC No: CRL-10314）を、T−75組織培養フラスコにプレートし、そしてDMEM/FBS培地（DMEM、Gibco/BRL High Glucose, (Gibco BRL, Gaithersburg, MD)、５％ウシ胎児血清、1mMのL−グルタミン（JRH Biosciences, Lenea, KS）、1mMのピルビン酸ナトリウム（Gibco BRL））において、37℃で５％CO₂において、約50〜70％の集密性まで増殖した。次に、細胞を、血清フリー（SF）培地配合物（DMEM、10mg/mlのトランスフェリン、5mg/mlのインスリン、2mg/mgのフェチュイン、１％のL−グルタミン及び１％のピルビン酸ナトリウム）において、Lipofectamine^TM (Gibcco BRL) を用いて、zcytor19/Fc4/pzmp20（例4B）を含むプラスミドによりトランスフェクトした。
【０３９５】
10μgのプラスミドDNA zcytor19/Fc4/pzmp20（例４B）を、15mlの管中に希釈し、SF培地により500μlの最終合計体積にした。50μlのLipofectamineを、450μlのSF培地と共に混合した。そのLipoFectamine混合物を、DNA混合物に添加し、そして室温で約30分間インキュベートした。4mlのSF培地を、DNA：Lipofectamine混合物に添加した。細胞を5mlのSF培地により1度すすぎ、吸引し、そしてDNA：Lipofectamine混合物を添加した。細胞を37℃で５時間インキュベートし、そして次に、5mlのDMEM/10％FBS培地を添加した。
【０３９６】
フラスコを37℃で一晩インキュベートし、この後、細胞を、１：２、１：10及び１：50で、150mmのプレートに1μMのメトトレキセート又は10μMのメトトレキセート（Sigma Chemical Co., St. Louis, MO）を含む上記からの選択培地（DMEM/PBS培地）中に分けた。トランスフェクションの約10日後、１μMのメトトレキセート耐性コロニーの１つの150mmプレートを、トリプシン処理し、細胞をプールし、そして細胞の半分を10μMのメトトレキセートに再プレートし、zcytor19/Fc4タンパク質の発現をさらに増殖した。この増幅された細胞のプールからのならし培地サンプルを、SDS−PAGE及びウェスターン分析を用いて、発現レベルについて試験した。
【０３９７】
可溶性受容体を発現する単一のクローンを、単離し、スクリーンし、そして細胞培養培地において増殖し、そして標準技法を用いて精製した。さらに、CHO細胞はまた、そのような目的のための適切な細胞である。
【０３９８】
例 22．ORIGEN アッセイを用いての zcytor19 受容体へテロダイマー化の評価
可溶性zcytor19受容体を、5倍モル過剰のスルホ−NHS−LC−ビオチン（Piece， Inc., Rockford, IL）との反応により、製造業者のプロトコールに従って、ビオチニル化する。可溶性zcytor19受容体及び他の可溶性受容体サブユニット、例えば可溶性クラスIIサイトカイン受容体、例えばCRF2-4（配列番号40）を、5倍モル過剰のRu−BPY−NHS（Igen、Inc., Gaithersburg, MD）により、製造業者のプロトコールに従って、ラベルする。可溶性zcytor19受容体のビオチニル化され、そしてRu−BPY−NHP−ラベルされた形は、それぞれBio− zcytor19受容体及びRu− zcytor19と命名され；他の可溶性受容体サブユニットのビオチニル化され、そしてRu−BPY−NHS−ラベルされた形も同様に命名され得る。アッセイを、ならし培地を用いて、又は精製されたリガンドを用いて行うことができる。
【０３９９】
初期受容体結合特徴化のために、上記に言及されるサイトカイン又はならし培地を、それらがzcytor19受容体ホモダイマー化を介在することができるかどうか、及びそれらが上記の可溶性サブユニットzcytor19受容体へのヘテロダイマー化を介在できるかどうかを決定するために試験する。これを行うために、50μlのならし培地又はTBS−B含有の精製されたサイトカインを、例えば400ng/mlのRu− zcytor19受容体及びBio− zcytor19、又は400ng/mlのRu− zcytor19受容体及びBio−CRF2-4、又は400ng/mlのRu− CRF2-4及びBio− zcytor19を含むTBS−B（20mMのトリス、150mMのNaCl、1mg/mlのBSA、pH7.2）50μlと組合す。
【０４００】
室温での１時間のインキュベーションに続いて、30μgのストレプタビジン被覆された、2.8mmの磁気ビーズ（Dynal, Inc., Oslo, Norway）を添加し、そしてその反応を、室温でさらに１時間インキュベートする。次に、200μlのORIGENアッセイ緩衝液（Igen, Inc., Gaithersburg, MD）を添加し、そして受容体会合の程度を、M8 ORIGEN分析機（Igen，Inc.）を用いて測定する。
【０４０１】
例 23．zcytor19 受容体へテロダイマーを生成するための構造体
分泌されたヒトzcytor19へテロダイマーを発現するベクターを、zcytor19の細胞外サイトカイン−結合ドメインを、IgGガンマ１（IgGγ1）のH鎖に融合し、そしてヘテロマ−サイトカイン受容体サブユニット（例えば、クラスIIサイトカイン受容体、例えば、CRF2-4）の細胞外部分を、ヒトカッパL鎖（ヒトκL鎖）に融合することによって構成する。
【０４０２】
ａ .IgG γ１及びヒトκ L 鎖融合ベクターの構成：
IgGγ１のH鎖を、Zem229R哺乳発現ベクター（ATCC寄託番号69447号）中にクローン化し、その結果、5’EcoRI及び3’NheI部位を有するいずれかの所望するサイトカイン受容体細胞外ドメインをクローン化でき、N−末端細胞外ドメイン−C−末端IgGγ１融合体をもたらすことができる。この構造体に使用されるIgGγ１フラグメントを、鋳型としてClontech hFetal Liver cDNAライブラリーからIgGγ１配列を単離するために、PCRを用いることにより製造する。PCR生成物を、本明細書に記載される方法を用いて、精製し、そしてMluI及びEcoRI（Boerhinger-Mannheim）により消化し、エタノール沈殿し、そして本明細書に開示される標準の分子生物学技法を用いて、MluI及びEcoRIにより前もって消化されたZem229中にMluI/EcoRIリンカーを含んで成る、オリゴと共に連結する。
【０４０３】
ヒトκL鎖を、Zem228R哺乳類発現ベクター（ATCC寄託番号69446号）においてクローン化し、その結果、5’EcoRI部位及び3’KpnI部位を有する、いずれかのサイトカイン受容体細胞外ドメインがクローン化し、N−末端サイトカイン細胞外ドメイン−C−末端ヒトκL鎖融合体をもたらすことができる。KpnI部位はヒトκL鎖配列内に位置するので、特定のプライマーが、サイトカイン受容体の所望する細胞外ドメインの3’末端を、このKpnI部位中にクローン化するよう企画される。前記プライマーは、その得られるPCR生成物が、KpnI部位までのヒトκL鎖のセグメントと共に、所望するサイトカイン受容体細胞外ドメインを含むよう企画される。
【０４０４】
このプライマーは好ましくは、ヒトκL鎖に5’側で融合される所望するサイトカイン受容体細胞外ドメインの3’末端の少なくとも10個のヌクレオチドの部分を含んで成る。この構造体に使用されるヒトκL鎖フラグメントを、上記で使用されるのと同じClontechヒト胎児肝臓cDNAライブラリーからヒトκL鎖配列を単離するために、PCRを用いることによって製造する。PCR生成物を、本明細書に記載される方法を用いて精製し、そしてMluI及びEcoRI（Boerhinger-Mannheim）により消化し、エタノール沈殿せしめ、そして本明細書に開示される標準の分子生物学技法を用いて、MluI及びEcoRIにより前もって消化されたZem228R中に、上記MluI/EcoRIリンカーにより連結する。
【０４０５】
ｂ . 融合ベクター構造体中への zcytor19 受容体又はヘテロダイマーサブユニット細胞ドメインの挿入：
上記構造ベクターを用いて、IgGγ１に融合されるzcytor19を有する構造体を製造する。この構成は、標準方法及びEcoRI及びNheI制限部位を供給するオリゴを用いて、前立腺cDNAライブラリー（Clontech）又は活性化されたリンパ球cDNAライブラリーからの本明細書に記載されるzcytor19受容体の細胞外サイトカイン−結合ドメインを、PCR処理することによって行われる。その得られるPCR生成物を、本明細書に記載のようにして、EcoRI及びNheIにより消化し、ゲル精製し、そして上記の前もってEcoRI及びNheI消化され、そしてバンド−精製されたZem229R/IgGγI中に連結する。得られるベクターを、配列決定し、zcytor19/IgGガンマ１融合体（zcytor19/Ch1 IgG）が正しいことを確認する。
【０４０６】
κL鎖に融合されるヘテロダイマーサイトカイン受容体サブユニット、すなわちＣＲＦ２−４、細胞外ドメインを有する別々の構造体をまた、上記のようにして構成する。サイトカイン受容体/ヒトκL鎖の構成を、標準方法を用いて、例えばリンパ球cDNAライブラリー（Clontech）、及びEcoRI及びKpnI制限部位を供給するオリゴから、PCRにより上記のようにして行う。得れれるPCR生成物を、EcoRI及びKpnIにより消化し、そして次に、この生成物を、上記のようにして、前もってEcoRI及びKpnI消化され、そしてバンド−精製されたZem228R/ヒトκL鎖ベクター中に連結する。得られるベクターを配列決定し、サイトカイン受容体サブユニット/ヒトκL鎖融合体が正しいことを確認する。
【０４０７】
ｃ． zcytor19 及びヘテロダイマーサイトカイン受容体サブユニット細胞外ドメインの同時−発現：
約15μgの個々の上記ベクターを、LipofectaminePlus^TM 試薬（Gibco/BRL）を用いて、製造業者の説明書に従って、哺乳類細胞、例えばBHK−570細胞（ATCC No. CRL-10314）中に同時トランスフェクトする。トランスフェクトされた細胞を、１μMのメトトレキセート（MTX）（Sigma，St. Louis, MO）及び0.5mg/mlのG418（Gibco/BRL）を含むDMEM＋5％FBS（Gibco/BRL）において、10日間、選択する。得られるトランスフェクタントのプールを、10μmのMTX及び0.5mg/mlのG418において再び選択する。
【０４０８】
得られる二重選択された細胞のプールを用いて、タンパク質を生成する。このプールの３種の画分（Nunc, Denmark）を用いて、血清フリーのならし培地10Lを生成する。このならし培地を、1mlのタンパク質−Aカラム上に通し、そして約10, 750μlの画分に溶出する。最高のタンパク質濃度を有する画分をプールし、そしてPBSに対して透析する（10kDのMWのカットオフ）。最終的に、透析された材料を、通常の方法を用いてのアミノ酸分析（AAA）のために提供する。
【０４０９】
ｄ．インビトロでの zcytor19 受容体の再構成：
zcytor19−シグナル化複合体に包含される成分を同定するために、受容体再構成の研究を、次の通りにして行う。例えば、ルシフェラーゼレポーター哺乳類発現ベクタープラスミドにより、本明細書に記載される標準方法を用いて、トランスフェクトされたBHK570細胞（ATCC No. CRL-10314）は、zcytor19リガンドの存在下でルシフェラーゼレポーターに対する、トランスフェクトされたzcytor19受容体複合体からのシグナルトランスダクション応答を測定するために、バイオアッセイ細胞系として作用する。BHK細胞は、BHK細胞がzcytor19受容体を内因的に発現しない場合において使用され得る。他の細胞系は使用され得る。
【０４１０】
典型的なルシフェラーゼレポーター哺乳類発現ベクターは、次の４種の遺伝子からのSTAT転写因子結合要素を含む相補的オリゴヌクレオチドにより構成されたKZ134プラスミドである：修飾されたc-fos Sis誘発性要素（m67SIE又はhSIE）(Sadowski, H. など., Science 261: 1739-1744, 1993)、 p21 WAF1遺伝子からのp21 SIE1（Chin，Y. など., Science 272: 719-722, 1996）、β−カゼイン遺伝子の乳腺応答要素（Schmitt-Ney, M. など., Mol. Cell. Biol. 11: 3745-3755, 1991）、及びFcg RI遺伝子のSTAT誘発性要素（Seidel，H. など., Proc. Natl. Acad. Sci. 92: 3041-3045, 1995）。
【０４１１】
それらのオリゴヌクレオチドは、Asp718−XhoI適合性末端を含み、そして同じ酵素により消化されたc-Fosプロモーター（Poulsen, L.K. など., J. Biol. Chem. 273: 6229-6232, 1998）を有し、そしてネオマイシン選択マーカーを含む受容体ホタルルシフェラーゼレポーターベクター中に、標準の方法を用いて連結された。KZ134プラスミドを用いて、BHK又はBaF3細胞を標準のトランスフェクション及び選択方法により安定してトランスフェクトし、それぞれ、BHK/KZ134又はBaF3/KZ134細胞系を製造する。
【０４１２】
バイオアッセイ細胞を、zcytor19受容体のみによりトランスフェクトし、zcytor19受容体及び種々の他の既知受容体サブユニットの1つにより同時にトランスフェクトする。受容体複合体は、zcytor19受容体のみ、クラスIIサイトカイン受容体、例えばインターフェロンγ、α及びβ鎖及びインターフェロン−α/β受容体α及びβ鎖、zcytor11 (通常、アメリカ特許第5,965,704号所有の)、CRF2-4、DIRS1、zcytor7（通常、アメリカ特許第5,945,511号所有の）受容体と、zcytor19受容体との種々の組み合わせを包含するが、但しそれらだけには限定されない。
【０４１３】
次に、個々の独立した受容体複合体細胞系を、サイトカイン−ならし培地又は精製されたサイトカインの存在下でアッセイし、そしてルシフェラーゼ活性を通常の方法を用いて測定する。トランスフェクトされていないバイオアッセイ細胞系は、バックグランドルシフェラーゼ活性のための対照として作用し、そして従って、種々の受容体複合体組み合わせによるシグナルを比較するための基線として使用される。正しい受容体複合体の存在下でzcytor19受容体を結合するならし培地又はサイトカインは、バックグラウンドよりも約５倍又はそれ以上のルシフェラーゼ読み取りを付与することが予測される。
【０４１４】
他方では、BaF3/ zcytor19細胞系が上記のように同時−トランスフェクトされ、そして増殖が、既知アッセイ、例えば標準Alamar Blue増殖アッセイを用いて、測定される類似するアッセイを行うことができる。
【０４１５】
例 24．可溶性受容体へのリガンドの結合
可溶性受容体へのリガンド（zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25）の結合を、ヨード−ビーズラベリング方法用いてアッセイすることができる。たとえば、¹²⁵Iラベルされたzcyto21−CEEをラベルする（1.2×10⁷CPM/ml；1.5ng/μl；及び8.6×10⁶CPM/μg）。
【０４１６】
50ngの¹²⁵Iラベルされたzcyto21-cEE（例３を参照のこと）（399,600CPM）を、1000ngの冷zcytor19/Fc4ホモダイマー受容体、1000ngの冷zcytor19/CRF2-4ヘテロダイマー受容体、又は対照としての1000ngの対照クラスIIサイトカイン受容体/Fc4受容体、及び競争体としての約10,000ngの冷zcyto21と組合す。サンプルを４℃で２時間インキュベートし、この後、30μlのプロテイン−G（Zymed San Francisco, CA）を個々のサンプルに添加する。サンプルを、４℃で１時間インキュベートし、そしてPBSにより３度、洗浄する。洗浄されたプロテイン−Gの放射能を、γカウンター（Packard Instruments, Downers Grove, IL）により測定する。
【０４１７】
例 25．zcyto20 及び zcyto21 −ビオチンによるヒト単球の流動細胞測定染色
末梢血液白血球（PBL）を、ヘパリン処理されたヒト血液からFicoll Hypagne (Amersham, Sweden) 分離により単離した。PBLを、６−ウェル組織培養プレートにおいて、１×10⁶個の細胞/mlの密度で標準培地において37℃で培養した。一晩のインキュベーションに続いて、PBLを収穫し、そしてビオチニル化されたzcyto20-cee（例18を参照のこと）により、10μg/mlの濃度で染色した。染色を、１：1000の希釈度で調製されたPhycoerythrin−レベルされたストレプタビジン（Pharmingen, CA, USA）により検出した。染色に続いて、PBLを２％パラホルムアルデヒドに固定し、そしてFacsaliber（Becton Dickinson, San Diego, CA）上で読み取った。データをCellquestソフトウェア（Becton Dickinson）を用いて分析した。結果は、ビオチニル化されたzcyto20-cee及びzcyto21-ceeが、末梢血液リンパ球の骨髄性ゲートにおける細胞を染色することを示す。骨髄性ゲートにおける細胞は、zcyto20-cee及びzcyto21-ceeを結合しない。
【０４１８】
例 26．PBL 上の活性化マーカーの発現に対する zcyto21-CEE 効果
末梢血液リンパ球（PBL）を、ヘパリン処理されたヒト血液から、Ficoll Hypaque分離により単離した。次に、PBLを、次のものから精製されたタンパク質又は培地対照により刺激した：１）zcyto21-CEE（２μg/ml）；２）zcyto21-cee（１μg/ml）；３）培地のみ；４）A141Fの負の対照のタンパク質（２μg/ml）；又は５）IFN−α−A（１ng/ml）(PBL Biomedical NJ, USA)。刺激されたPBLを、５％CO₂と共に37℃で、１×10⁶個の細胞/mlの細胞密度でインキュベートした。培養物を24及び48時間で収穫し、そして活性化マーカーのために染色した。
【０４１９】
PBLをPBSにより洗浄し、そして次に、Facs緩衝液（HBSS＋２％正常ヤギ血清、２％BSA、２％NaN₃）中、正常マウスIgGにより阻止し、続いて、次のマーカーについて抗体により染色した：CD19, CD14, CD3, HLA-DR, CD54, HLA-ABC (Pharmingen, CA, USA及びImmunotech, France)。細胞を洗浄し、そして次に、２％パラホルムアルデヒドに固定し、続いてFacscaliber（Becton Dickinson, CA, USA）上で分析した。その得られるデータは、Cellyuestソフトウェア（Becton Dickinson, CA, USA）を用いて分析された。
【０４２０】
結果は、培地のみの対照に比較して、zcyto21-cee刺激による24及び48時間での単球上での表面CD54（ICAM）発現の上昇を示した。zcyto21-ceeによる刺激はまた、24時間でのB−細胞上での主要組織適合性複合体I発現の上昇、及び48時間でのB−細胞及び単球の両者上でのMHCIの上昇をもたらした。
【０４２１】
例 27．リガンドのビオチニル化
zcyto21CEEを、sulfo-NHS-LC-ビオチンについてのPierce Chemical Companyによる改良されたプロトコールに従うことによってビオチニル化した。250μgのzcyto21CEE（0.5mlのPBS中）を、8.4μlのS−NHS−ビオチンストック（84μg）に添加し、そして揺り動かしながら室温で２時間インキュベートした。インキュベーション段階に続いて、20μlの２Mのトリス−HCl（pH8）を添加し、そしてその混合物を、揺り動かしながら、室温で20分間インキュベートした。ビオチニル化されたリガンド混合物を４℃で貯蔵した。zcyto20CEE, zcyto22CEE及びzcyto24CEEを、実質的に態様で調製した。
【０４２２】
例 28．ノザン分析による zcytor19 の発現
ノザンブロットを、zcytor19の組織分析を決定するためにプローブした。ヒトzcytor19 cDNAフラグメントを、遺伝子特異的プライマー、すなわち配列番号21で示されるような5’側ZC40285；及び配列番号22で示されるような3’側ZC40286と共にPCRを用いて得た。PCRフラグメントをゲル精製し、そして約25ngを、Prime−It（商標）Rm Tランダムプライムラベリングキット（Stratagene, LaJolla, CA）を用いて、P³²α−dCTPによりラベルした。
【０４２３】
次のノザンブロット（Clontech, Palo Alto, CA）を、zcytor19のmRNA発現のためにプローブした：（１）次の癌細胞系の個々のからのRNAサンプルを含むヒト癌細胞系ブロットC：前骨髄球性白血病HL−60、HELA、S3、慢性骨髄性白血病k-562, リンパ芽球性白血病MOLT−４、Burkitt’sリンパ腫RAJI、結腸直腸腺癌SW480、肺癌A549及び黒色腫G−361；（２）次の組織からのmRNAを含むヒトMTN Hブロット：心臓、完全な脳、胎盤、肺、肝臓、骨格筋、腎臓及び膵臓；（３）次の組織からのmRNAを含むヒトMTN H3：骨、胸腺、脊髄、リンパ節、気管支、副腎及び骨髄；及び（４）次の組織からのmRNAを含むヒトMTN H4：脾臓、胸腺、前立腺、精巣、子宮、小腸、結腸及び末梢血液白血球。
【０４２４】
ハイブリダイゼーションを、ULTRAhyb^TM Ultrasensitive Hybridization Buffer (Ambion, Austin, TX) において、その製造業者の推薦に従って行なった。但し、追加の0.2mg/mlのサケ精子DNAを、ハイブリダイゼーション及びプレハイブリダイゼーション緩衝液に添加し、低い非特異的ハイブリダイゼーションにした。ハイブリダイゼーションに続いて、非特異的放射性シグナルを、0.1× SSC/0.5％SDSによりブロットを50℃で処理することにより除去した。ブロットを、BioMax MRフィルム及び強化スクリーン（Eastmon Kodak, Rochester, NY）を用いて、製造業者の推薦に従って３日間、暴露した。
【０４２５】
約4.5kbの転写体の発現は、心臓、骨格筋、膵臓及び前立腺組織、並びにBurkitt’sリンパ腫（RAJI）細胞系において最高であった。より低いレベルが、複数の他の組織に見出された。さらに、大きな転写体よりも一般的に多くないが、しかし多くの組織及び細胞系において存在する約2kbの転写体が存在した。２及び4.5kbの転写体を有する他に、精巣組織はまた、約4kb及び1.4kbの転写体を有することができる。副腎は、4.5kb及び2kb野転写体の等レベルの発現を示した。
【０４２６】
例 29．現場分析による zcytor19 の発現
特異的ヒト組織を単離し、そして現場ハイブリダイゼーションにより、zcytor19発現についてスクリーンした。調製され、切片化され、そして現場ハイブリダイゼーションにゆだねられた種々のヒト組織は、正常及び癌性結腸、頸部癌、正常及び癌性卵巣、正常及び腫瘍性皮膚、胎児肝臓、心臓及びMFH（筋肉肉腫）を包含した。組織を10％緩衝化されたホルマリンに固定し、そして標準技法を用いて、パラフィンにおいてブロックした。組織を、４〜８ミクロンで切片化した。組織を標準技法を用いて調製した。手短に言及すれば、組織切片を、Histo-Clear（商標）(National Diagnostics, Atlanta, GA) により脱パラフィン化し、そして次に、エタノールにより脱水した。次に、それらを、プロテイナーゼK（50μg/ml）（Boehringer Diagnostics, Indianapolis, IN）により37度で２〜７分間、消化した。この段階に続いて、組織をアセチル化し、そして再水和化した。
【０４２７】
１つの現場プローブを、標準方法を用いて、zcytor19の3’UTRを含むヒトzcytor19（変異体×１）配列（配列番号25で示されるようなINC7128744）に対して企画した。T7 RNAポリメラーゼを用いて、アンチセンスプローブを生成した。プローブを、インビトロ転写システム（Riboprobe（商標）インビトロ転写システム、Promega, Madison, WI）を用いて、その製造業者の説明書に従ってラベルした。但しプローブジゴキシゲニンを、放射性ラベルされたrCTPの代わりに使用し、そして水がrNTPの低められた体積に適合するよう調節された。現場ハイブリダイゼーションを、ジゴキシゲニン−ラベルされたzcytor19プローブ（上記）により行なった。
【０４２８】
プローブを、１〜５pモル/mlの濃度でスライドに、60℃で12〜16時間、添加した。スライドを、２×SSC及び0.1×SSCにより55℃で連続的に洗浄した。シグナルを、TSA^TM (Tyramide Signal Amplification; PerkinElmer Life Sciences Inc., Boston, MA) を用いて増幅し、そしてVECTOR Red基質キット（Vector Laboratories, Burlingame, CA）により、その製造業者の説明書に従って可視化した。次に、スライドを、ヘマトキシリンにより対比染色した。
【０４２９】
シグナルを、いくつかの試験された組織において観察し；結腸癌組織においては、弱いシグナルを癌細胞及び少数の免疫浸潤物において観察した。しかしながら、正常な結腸及び腸、例えば粘膜固有層、上皮、免疫節及び末梢神経節細胞においては、陽性シグナルは観察されなかった。頸部癌組織においては、癌細胞及び免疫節におけるいくらかの細胞において弱いシグナルが存在する。子宮内膜癌組織においては、弱いシグナル癌細胞において存在する。正常子宮組織においては、陽性シグナルは観察されなかった。卵巣癌サンプルにおいては、いくらかの癌細胞が弱い陽性であった。正常卵巣サンプルにおいては、毛細管のいくらかの内皮及び大きな卵胞の上皮は弱い陽性であり得る。皮膚癌サンプルにおいては、癌顆粒性皮膚は強い陽性であるが、ところが正常皮膚においては、陽性シグナルは観察されない。
【０４３０】
胎児肝臓においては、シグナルは、洞様室間における単数細胞の混合された集団において観察される。肺においては、zcytor19は、タイプII肺胞上皮において陽性であると思われる。時折、気管支上皮はまた、弱い陽性であり得る。介在性組織におけるマクロファージ様単核細胞もまた陽性である。心臓においては、筋細胞は陰性であるが、ところがいくらかの循環性単核細胞は、zcytor19に対して陽性である。１つのサンプルにおいては、血管の内皮は、弱い陽性であり得る。他の組織、例えばMFH（筋肉肉腫）サンプル及びカポジ肉腫皮膚サンプルを試験した。それらの組織における決定的な陽性シグナルは存在しない。
【０４３１】
例 30．刺激された細胞−対―刺激されていない細胞の RT − PCR に基づいてのヒト zcytor19 の発現
zcytor19の遺伝子発現は、次の細胞型のRT-PCR分析を用いて試験された：Hela,293、Daudi、CD14＋、U937及びHL-60。
【０４３２】
全RNAから第１鎖cDNA合成を、市販のRT−PCRのための第１鎖合成システム（Invitrogen Life Technologies, Carlsbad, CA）を用いて行なった。続くPCR反応を、それぞれ80bpの生成物を生成する、zcytor19x1（配列番号23）及びzcytor19x2（配列番号28）特異的オリゴプライマーZC46288（配列番号58）及びZC40291（配列番号59）、Qiagen HotStarTaq DNA Polymerase and Buffer（Qiagen, Inc.,Valencia, CA）, GeneAmp dNTP (Applied Biosystems, Foster City, CA)，RediLoad^TM 色素（Research Genetics, Inc., Huntville, AL）、及びそれぞれの細胞型からの２μlの第１鎖cDNA（第１鎖反応10％）を用いて設定した。
【０４３３】
PCRサイクラー条件は次の通りであった：初期１サイクルの95℃での15分間の変性；94℃で45秒間変化、63℃で１分間アニーリング及び72℃で15秒間の延長（35サイクル）；続いて、７分間の最終１サイクルの延長。反応物を、２％アガロースゲル（EM Science, Gibbstown, NJ）上での電気泳動により分離し、そして臭化エチジウムによる染色により可視化した。
【０４３４】
正しいサイズのバンドは、Hela±IFN−β（892bpのバンドのみ）、293＋Parental Adv, Daudi±IFN−β、Daudi±IFN−α、活性化されたCD14＋、活性化されたHLにおいて見出された。バンドは、休止CD14＋、休止及び活性化されたU937、及び休止HL−60においては観察されなかった。それらの結果は、単球又は単球細胞系の活性化又は分化に基づいてのzcytor19発現の誘発を示す。
【０４３５】
例 31．RAW 細胞における NFKB レポーターの刺激
NFκβシグナルトランスダクション経路を通してシグナル化するzcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25の能力を、マウス単球/マクロファージレポーター細胞系を用いて試験した。この細胞系を、ルシフェラーゼレポーター遺伝子の転写を駆動するNFκβ応答要素を含むKZ170レトロウィルスレポーターによりRAW264.7細胞をトランスダクションすることにより生成した。
【０４３６】
zcyto20，zcyto21, zcyto22, zcyto24及びzcyto25活性を試験する初期レポーターアッセイを、抗ウィルスアッセイへの使用のために記載される293過渡的トランスフェクトされたならし培地を用いて行なった。RAW264−7/KZ170細胞を収穫し、そして96ウェルプレートに、50,000個の細胞/ウェルの密度でプレートした。細胞を、RPMI＋10％FBSにおいて、37℃で一晩インキュベートした。次の日、培地を付着細胞から除き、そして希釈されていないzcyto20−25ならし培地又はzcyto20−25ならし培地の希釈溶液（RPMI＋0.1％BSAに希釈された）を細胞に添加した。
【０４３７】
37℃での５時間のインキュベーションの後、細胞を溶解し、そしてルシフェラーゼ基質の添加の後、ルミノメーター上で読み取った。結果を、トランスフェクトされていない細胞ならし培地の相対的光単位にzcyto20-25ならし培地の相対的光単位（RLU）を比較することによって分析した。希釈されていないzcyto20-25ならし培地は、希釈されていない、トランスフェクトされていない細胞ならし培地よりも４〜９倍高くルシフェラーゼ発現を誘発した。それらの結果は、zcyto20−25がマウス単球/マクロファージ細胞系においてNFκβシグナル化経路を通してシグナル化することができることを示す。
【０４３８】
追加の調査として、zcyto20, zcyto21又はzcyto22を発現するバキュロウィルスにより感染されたSf9細胞からのならし培地を、レポーターアッセイに使用した。野生型バキュロウィルスを、負の対照として使用した。バキュロウィルス構造体及びならし培地の生成は、下記に記載されている。
バキュロウィルス由来のならし培地を用いてのRAW264.7 NFkb−レポーターアッセイの結果は、293過渡的トランスフェクトされたならし培地を用いてのそのアッセイ結果に類似した。Zcyto20−22を含むバキュロウィルス由来のならし培地は、用量依存性態様でルシフェラーゼ発現を誘発したが、ところがその対応する対照のならし培地は誘発しなかった。
【０４３９】
例 32．インビボ結果
zcyto24の毒性及び生物学的活性を、もう１つのクラスIIサイトカイン及び親アデノウィルスベクターに、並びに注射されていないマウスにおいて比較した。４種のグループの８匹のC57B16マウス（雌、生後９週目）を、次の通りに注射した：
グループ１：マウス当たり１×10¹¹個の粒子でAdzcyto24により注射し；
グループ２：１×10¹¹の粒子でクラスIIサイトカイン（Adzcyto）により注射し；
グループ３：１×10¹¹の粒子での親アデノウィルスベクター（Adzcyto）により注射し；そして
グループ４：処理されなかった。
【０４４０】
室温トランスポンダーを、−１日目にマウス上に置き、そしてウィルスを０日目に注射した。ケージ方式の食物摂取及び体重を、５日ごとにモニターし、そして血液を、CBC及びAbbot血液アナライザーを包含するアッセイのために、10日目にサンプルリングした（最大0.25ml）。すべてのマウスは、20日目に殺害された。
【０４４１】
Adzcyto24（グループ１）処理されたマウスを、10日目に放血し、そして血清を、zcyto24生活性の存在について試験した。ウィルスアッセイは、Adzcyto24グループにおける個々の及びあらゆるマウスに関して、１：500の最大希釈度で有意な抗ウィルス活性を示した。これは、約160ng/mlの精製されたzcyto24CEEに対応する。マウスインターフェロンを検出するための抗ウィルスアッセイは、Adzcyto24グループにおいて活性を検出しなかった。ISREと共にレポーターを用いるバイオアッセイはまた、Adzcyto24を注射されたマウスの血清において有意なzcyto24活性を検出したが、しかし他のグループにおいては、そうではなかった。
【０４４２】
温度プローブは、グループ２に関する平均体温が10日目までに５℃以上、低下し、そしてAdzcyto24（グループ１）マウスに関する平均体温が２℃以上、低下したことを示した。対照グループは、実験を通して１度以下の温度の変化を示した。
Adzcyto24（グループ１）マウスは、20日の実験の間、体重のわずかな上昇を示し、これは対照グループ（グループ３及び４）に相当する。グループ２のマウスは、体重が低下した。グループ２についての平均体重は、10日目までに約８％低下した。
【０４４３】
10及び20日目に与えられた血液のAbbot血清分析機による分析は、グループ１及び２において白血球計数の有意な変化を示した。図１は、他のグループに対して、Adzcyto24により処理されたマウスにおける単球計数の明白な上昇を示す。単球計数は、親ベクター（Adzpar）を注射さてたマウスに対するAdzcyto24を注射されたマウスにおいて、2.77倍高い。20日目までに、単球計数は幾分低下したが、しかし親ベクターを注射されたマウスよりも有意に高められた。図２は、クラスIIサイトカイン（Adzcyto）をコードするアデノウィルスによる注射が10日目で高められた好中球計数を導いたが、しかしzcyto24をコードするアデノウィルスに関しては、そうではなかったことを示す。
【０４４４】
Abbot血液分析機により検出される細胞型の正体を確かめるために、流動細胞測定を、実験の20日目から血液に対する系統−特異的MAbにより行なった。図３は、個々のマウスの末梢血液におけるCD11b陽性細胞、すなわち単球の％を示す。個々のグループに関する平均値をプロットする場合、図４は、親ベクターにより感染されたグループに対して、zcyto24により感染されたアデノウィルスにより感染されたグループにおける単球の％の有意な上昇を示す（p＝0.05）。これは、Abbot血液分析機により前に観察された変化を相互関係する。
【０４４５】
顆粒球（GR−１）に対して特異的なMAbによる同じ血液サンプルの分析は、Adzcyto24を注射されたマウスに関して顆粒球（すなわち、主に好中球）の％の有意な上昇を示さなかった。PBLをまた、B細胞（B220）に対して特異的なMAbにより染色し、そして有意な差異は、他のグループに対してAdzcyto24を注射されたマウスにおいては観察されなかった。
【０４４６】
特に、Adzcyto注射に関連する悪寒及び体重の低下は、Adzeyto24に関しては、明白でなかった。10及び20日眼にAbbot血液分析機により検出される単球における見掛けの上昇は、系統−特異的MAbによる20日目の血液の流動細胞分析により確かめられた。Adzcyto24により注射されたマウスのPBLにおける単級の％の明白な上昇は、アデノウィルス感染の情況においてzcyto24により直接的に又は間接的に介在されるユニーク活性であると思われる。Adzcyto24を注射されたマウスにおいて有意なレベルで発現されるzcyto24はたぶん、末梢組織からの単球を補充し、そして移動することによって、又は骨髄又は肝臓由来の前駆体細胞からの単級の生成を刺激することによって、抗ウィルス応答を促進する。この証拠は、単級/マクロファージがzcyto24及びzcyto21により活性化されることを示唆する。
【０４４７】
前述から、本発明の特定の態様を例示目的のために記載して来たが、種々の修飾が本発明の範囲内で行なわれ得ることは理解されるであろう。

Claims

（ａ）アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；
（ｂ）アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；
（ｃ）アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号９に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；及び
（ｄ）アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号11に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；
から成る群から選択されたポリペプチドに対して少なくとも80％の同一性を有する単離されたポリペプチド。
前記ポリペプチドが、モノマー又はホモダイマー受容体としての配列番号24, 27又は29に示されるような受容体、又はヘテロダイマー受容体としての配列番号41と組合しての配列番号24, 27又は29に示されるような受容体を特異的に結合する請求項１記載の単離されたポリペプチド。
（ａ）アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；
（ｂ）アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；
（ｃ）アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号９に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；及び
（ｄ）アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号11に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；
から成る群から選択されたポリペプチドに対して少なくとも95％の同一性を有する単離されたポリペプチド。
前記ポリペプチドが、モノマー又はホモダイマー受容体としての配列番号24, 27又は29に示されるような受容体、又はヘテロダイマー受容体としての配列番号41と組合しての配列番号24, 27又は29に示されるような受容体を特異的に結合する請求項３記載の単離されたポリペプチド。
アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるようなアミノ酸配列、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるようなアミノ酸配列を含んで成る単離されたポリペプチド。
アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるようなアミノ酸配列、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるようなアミノ酸配列を含んで成る単離されたポリペプチド。
アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号９に示されるようなアミノ酸配列、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基202の配列番号９に示されるようなアミノ酸配列を含んで成る単離されたポリペプチド。
アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号11に示されるようなアミノ酸配列、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基202の配列番号11に示されるようなアミノ酸配列を含んで成る単離されたポリペプチド。
アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるような、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるような少なくとも14個の連続したアミノ酸である、哺乳類において抗原性応答を刺激する単離されたポリペプチド。
アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるような、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるような少なくとも14個の連続したアミノ酸である、哺乳類において抗原性応答を刺激する単離されたポリペプチド。
アミノ酸残基29〜アミノ酸残基205の配列番号９に示されるような、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基202の配列番号９に示されるような少なくとも14個の連続したアミノ酸である、哺乳類において抗原性応答を刺激する単離されたポリペプチド。
アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号11に示されるような、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基202の配列番号11に示されるような少なくとも14個の連続したアミノ酸である、哺乳類において抗原性応答を刺激する単離されたポリペプチド。
医薬的に許容できるビークルに、アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるようなアミノ酸配列、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるようなアミノ酸配列を含んで成る医薬組成物。
医薬的に許容できるビークルに、アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるようなアミノ酸配列、又はアミノ酸残基１〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるようなアミノ酸配列を含んで成る医薬組成物。
少なくとも２種のポリペプチドを含んで成る融合タンパク質であって、前記ポリペプチドの少なくとも１つが、
（ａ）アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；
（ｂ）アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；
（ｃ）アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号９に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；及び
（ｄ）アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号11に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；
から成る群から選択されたポリペプチドを含んで成る融合タンパク質。
ポリペプチドをコードする単離されたポリヌクレオチドであって、前記核酸分子が、
（ａ）配列番号３のヌクレオチド配列を含んで成るポリヌクレオチド、
（ｂ）配列番号１のヌクレオチド64〜618のヌクレオチド配列、又は配列番号１のヌクレオチド64〜618のヌクレオチド配列の相補体から成るポリヌクレオチドに対して、緊縮洗浄条件下でハイブリダイズされたまま存続するポリヌクレオチドから成る群から選択される単離されたポリヌクレオチド。
ポリペプチドをコードする単離されたポリヌクレオチドであって、前記核酸分子が、
（ａ）配列番号36のヌクレオチド配列を含んで成るポリヌクレオチド、
（ｂ）配列番号６のヌクレオチド64〜618のヌクレオチド配列、又は配列番号６のヌクレオチド64〜618のヌクレオチド配列の相補体から成るポリヌクレオチドに対して、緊縮洗浄条件下でハイブリダイズされたまま存続するポリヌクレオチドから成る群から選択される単離されたポリヌクレオチド。
（ａ）アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号２に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；
（ｂ）アミノ酸残基22〜アミノ酸残基205の配列番号７に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；
（ｃ）アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号９に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；及び
（ｄ）アミノ酸残基29〜アミノ酸残基202の配列番号11に示されるようなアミノ酸配列を含んで成るポリペプチド；
から成る群から選択されたポリペプチドをコードする単離されたポリヌクレオチド。
前記核酸分子によりコードされるアミノ酸配列と、その対応するアミノ酸配列との間でのいずれかの差異が保存性アミノ酸置換のためである請求項18記載の単離されたポリヌクレオチド。
ヌクレオチド64〜ヌクレオチド618の配列番号１に示されるようなヌクレオチド配列、又はヌクレオチド１〜ヌクレオチド618の配列番号１に示されるようなヌクレオチド配列を含んで成る単離されたポリヌクレオチド。
ヌクレオチド64〜ヌクレオチド618の配列番号６に示されるようなヌクレオチド配列、又はヌクレオチド１〜ヌクレオチド618の配列番号６に示されるようなヌクレオチド配列を含んで成る単離されたポリヌクレオチド。
ヌクレオチド67〜ヌクレオチド606の配列番号８に示されるようなヌクレオチド配列、又はヌクレオチド１〜ヌクレオチド606の配列番号８に示されるようなヌクレオチド配列を含んで成る単離されたポリヌクレオチド。
ヌクレオチド67〜ヌクレオチド606の配列番号10に示されるようなヌクレオチド配列、又はヌクレオチド１〜ヌクレオチド606の配列番号10に示されるようなヌクレオチド配列を含んで成る単離されたポリヌクレオチド。
請求項20, 21, 22又は23記載の単離された核酸分子、転写プロモーター及び転写ターミネーターを含んで成る発現ベクターであって、前記プロモーターが前記核酸分子と作用可能に連結され、そして前記核酸分子が前記転写ターミネーターと作用可能に連結される発現ベクター。
請求項24記載の発現ベクターを含んで成る組換え宿主細胞であって、前記宿主細胞が、細菌、酵母細胞、菌類細胞、昆虫細胞、哺乳類細胞及び植物細胞から成る群から選択される組換え宿主細胞。
ポリペプチドの生成方法であって、請求項24記載の発現ベクターを含んで成り、そして前記ポリペプチドを生成する組換え宿主細胞を培養し、そして前記培養された宿主細胞から前記ポリペプチドを単離する段階を含んで成る方法。
請求項9, 10, 11又は12記載のポリペプチドと特異的に結合する抗体又は抗体フラグメント。
生物学的サンプルにおける遺伝子発現の存在を検出するための方法であって、
（a）核酸プローブと、（１）前記生物学的サンプルから単離された試験RNA分子、又は（２）単離されたRNA分子から合成された核酸分子とを、ハイブリダイゼーション条件下で接触せしめ、ここで前記プローブは、配列番号１のヌクレオチド配列の一部、配列番号１のヌクレオチド配列の補体、配列番号６のヌクレオチド配列の一部、配列番号６のヌクレオチド配列の補体を含んで成るヌクレオチド配列から成り、そして
（ｂ）前記核酸プローブ、及び前記試験RNA分子又は前記合成された核酸分子のいずれかのハイブリッドの形成を検出し、
ここで前記ハイブリッドの存在が前記生物学的サンプルにおけるRNAの存在を示し、又は
（a’）前記生物学的サンプルと、請求項27記載の抗体又は抗体フラグメントとを接触せしめ、ここで前記接触が前記生物学的サンプルへの前記抗体又は抗体フラグメントの結合を可能にする条件下で行われ、そして
（b’）前記結合された抗体又は結合された抗体フラグメントのいずれかを検出する段階を含んで成る方法。
単級細胞又は単級細胞前駆体の拡張方法であって、投与されるポリペプチドの不在下で培養される骨髄又は末梢血液細胞に比較して、骨髄又は末梢血液細胞における単級細胞または単級細胞前駆体の数を高めるのに十分な量の請求項9, 10, 11又は12記載のポリペプチドを含んで成る組成物と共に、骨髄又は末梢血液細胞を培養することを含んで成る方法。
抗原又は病原体に暴露される哺乳類における免疫応答を刺激するための方法であって、
（１）抗原−又は病原体−特異的抗体のレベルを決定し；
（２）医薬的に許容できるビークルにおける請求項9, 10, 11又は12記載のポリペプチドを含んで成る組成物を投与し；
（３）抗原−又は病原体−特異的抗体の後投与レベルを決定し；そして
（４）段階（３）における抗体のレベルに、段階（１）における抗体のレベルを比較することを含んで成り、ここで抗体レベルの上昇が免疫応答の刺激の表示である方法。