JP2005132796A - 肉芽組織形成性疾患の治療のための医薬組成物および方法 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】 マクロファージ上のマクロファージガラクトース型C型レクチン(MGL)の機能を特異的に阻害することを含む、肉芽組織形成性疾患の予防および/または治療方法、および肉芽組織形成性疾患の予防および/または治療用の医薬組成物を提供する。
【選択図】図4
Description
肉芽組織は、典型的には、創傷治癒、ある種の組織の再生、種々の器質化、遅延型過敏症組織障害、増殖性炎、特異性炎等に際して形成される特徴的な組織である。該組織は、増殖の盛んな若い結合組織であって、組織が損傷を受けたとき等において該組織の防御・修復等において重要な役割を有しており、例えば、損傷を受けた組織の再生能が十分でない場合に、その組織に代わって増殖力の旺盛な肉芽組織がこれを代償し、増殖補充すると考えられている。通常、肉芽組織は、毛細血管に富み、これにより増殖力の旺盛な肉芽組織に対する栄養補給に当たるほか、該部位の病的産物の除去や遊走細胞の運搬を行う。更に、線維芽細胞や平滑筋細胞、中間的性状を示す筋線維芽細胞(myofibroblast)に加えて、好中球、好酸球、肥満細胞、リンパ球、形質細胞、単球、組織球、そしてマクロファージ等の遊走細胞等、多種の細胞が肉芽組織内に混在する。
マクロファージおよびミエロイド由来の関連細胞群は、ガレクチン−3(galectin-3)、シアロアドヘシン(sialoadhesin)、マンノース受容体等の細胞表面または可溶性糖タンパク質を認識する多様なレクチン類を発現していることが知られている。マクロファージ上のこれらのレクチンは、細胞間接着、造血新生、エンドサイトーシス、および壊死した細胞や分子の清掃に関与している。マクロファージガラクトース型C型レクチン(MGL)は(非特許文献1)、上記のレクチンの1種であり、マクロファージおよび未成熟樹状細胞上に発現する2型膜貫通型タンパク質である。本発明者等は、先に、該レクチンをクローニングした(非特許文献2、3および4)。その遺伝子産物(スプライシングバリアントを含む)である該レクチンは、in vitroにおいて、ガラクトース末端性糖タンパク質のエンドサイトーシスに関与していることを報告している(非特許文献5および6)。更に、本発明者等は、MGLに特異的な抗体が、皮膚の真皮や皮下組織或いは肺を含む各種の組織・臓器の血管周囲の結合組織中のマクロファージに結合することを示している(非特許文献7〜9)。また、本発明者等は、MGL陽性真皮マクロファージが、接触過敏症における感作段階で移動することも報告しているが、当該感作段階におけるMGL陽性マクロファージの役割については明らかにされていなかった(非特許文献10)。
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(1)マクロファージガラクトース型C型レクチン(MGL)に対する特異的結合パートナー、または
(2)機能的マクロファージガラクトース型C型レクチンをコードする遺伝子(Mgl)のマクロファージでの発現を阻害する核酸を投与することを含む。
I.方法
(1)マウス
C57BL/6を背景とするMGL欠失マウス(MGL1 −/−)は、Thandi M. Onami., Meei-Yun Lin, Dawne M. Page, Shirley A. Reynolds, Carol D. Katayama, Jamey D. Marth, Tatsuro Irimura, Ajit Varki, Nissi Varki, and Stephan M. Hedrick, "Generation of mice deficient for macrophage galactose- and N-acetylgalactosamine-specific lectin: Limited role in lymphoid and erythroid homeostasis and evidence for multiple lectins.", Mol. Cell. Biol., vol. 22, 5173-5181 (2002)に記載されている。MGL1 −/−およびMGL +/+(野生型)を得るためのヘテロ接合体(MGL1 +/−)は、東京大学大学院薬学系研究科の動物施設において繁殖させた。全ての実験は、東京大学動物実験実施マニュアル東京大学薬学部動物実験指針のガイドラインに従い、東京大学大学院薬学系研究科の動物実験委員会の許可を得て行った。
(2)抗原(Azobenzene arsonate−conjugated acetylated bovine serum albumin; ABA−AcBSA)の作製
牛血清アルブミン(BSA)を飽和酢酸ナトリウム(4.6M)に溶解し、無水酢酸を加えアセチル化した。その後pH4.0(HCl)にした後3300×g、4℃で遠心し、沈殿を回収、蒸留水に再懸濁し、pH8.0(NaOH)に調整して溶解させた。溶解後ろ過し、透析用セロハンチューブ(Viskase sales company: size 27/32, MWCO 12000)を用いて蒸留水に対し24時間透析した。透析終了後凍結乾燥を行い、アセチル化BSA(AcBSA)を得た。AcBSAを0.025Mホウ酸緩衝液に溶解し、ジアゾ化したアルサニル酸をpH9.70乃至9.74の条件下添加し反応させた後、0.1M NaClおよび蒸留水に対して透析した。透析終了後凍結乾燥を行い、凍結乾燥品を抗原ABA−AcBSAとした。
(3)抗原特異的空気嚢型炎症モデルの作製
抗原ABA−AcBSAを4mg/mlで生理食塩液に溶解し、同量のFreund’s complete adjuvant(DIFCO、USA:FCA)と混合して作製したエマルジョンを、マウス一匹あたり100μl(200μg/mouse as ABA−AcBSA)フットパッドに皮下注し、感作とした(「day −10」とする。)。次いで、該感作の9日後に、あらかじめ除毛したマウス背部皮下にエーテル麻酔下で空気2mlを注入して空気嚢を作製した(「day −1」とする。)。
オートクレーブ滅菌した2% sodium carboxylmethylcellurose(Wako Pure Chemicals, Japan:CMC-Na)生理食塩液溶液にABA−AcBSAを0.5mg/mlとなるように溶解し、さらにペニシリンGカリウムと硫酸ストレプトマイシンを各0.1mg/ml添加し、抗原液を作製した。この抗原液1mlを空気嚢作製の翌日に(「day 0」とする。)空気嚢内中に注入し、抗原特異的な炎症を誘発(惹起)した。
炎症誘発後、ABA−AcBSAを生理食塩液に0.5mg/mlとなるように溶解し、1mlを惹起5日後(「day 5」とする)に再び背部皮下に投与し抗原特異的炎症を再惹起した。惹起4日後(すなわち、day 4)および、再惹起後6日目および13日目(すなわち、day 11およびday 18)の空気嚢作製領域の皮膚を採取した。
(4)炎症反応の評価
上記(3)で採取した空気嚢作製領域の皮膚を、O.C.T. compoundを用いて包埋、液体窒素により凍結した。凍結サンプルはCryostat(サクラ精機)にて厚さ10μmの切片を作製し、ヘマトキシリンエオジン(H.E.)染色を行った。H.E.染色した組織切片(5切片/mouse)につき、顕微鏡下で、骨格筋と空気嚢の内表面との間の厚さを測定し(9視野)、その測定値(n=45)を平均してマウス一匹の新生組織の厚さとした。
(5)統計
一元分散分析の後、Dunnet’sの多重比較テストを行って、統計学的有意差を評価した。P<0.05を有意とした。
野生型のマウスにおいては、惹起後(day 4)皮下領域の肉芽組織形成が明瞭に認められたのに対し、MGL欠失マウスにおいてはそれが認められなかった。同様の結果は、再惹起後(day 11およびday 18)においても認められた。骨格筋と空気嚢の内表面との間の厚さ(肉芽組織厚)に関する定量的測定の結果を図1に示す。図からもわかるように、Mgl遺伝子を破壊したマウスにおいて、肉芽組織形成が顕著に傷害されることが判明し、肉芽組織形成におけるMGLの関与が実証された。
I.方法
(1)マウス
雌性未感染C57BL/6マウスはCharles River Inc. (Yokohama, Japan)またはSLC Japan Inc. (Shizuoka, Japan)から購入し、実験に用いた。
(2)抗原の作製
実施例1に記載した。
(3)抗体
抗MGL抗体として、Kimura., T., Imai, Y., and Irimura, T., "Calcium-dependent conformation of a mouse macrophage calcium-type lectin. Carbohydrate binding activity is stabilized by an antibody specific for a calcium-dependent epitope.", J. Biol. Chem., vol. 270, pp. 16056-16062 (1995)に記載の、ラット抗MGLモノクローナル抗体 LOM−8.7(IgG2a)を用いた。また、抗マウスIL−1αモノクローナル抗体(ハムスターIgG)は、Genzyme (MA, USA)より購入した。
(4)抗原特異的空気嚢型炎症モデルの作製
実施例1に記載した。但し、空気嚢作製領域の皮膚の採取は、再惹起後6日目、13日目、27日目(day 11、18、32)に行った。また、惹起のみ行い、再惹起を行わなかったマウスについても1日目から8日目(day 1乃至8)に皮膚を採取した。
(5)抗体の投与
ラット抗MGLモノクローナル抗体 LOM−8.7(25μg/マウス)および、抗マウスIL−1αモノクローナル抗体(5μg/マウス)は、各々、100μlの溶液として空気嚢内に投与した。対照として生理食塩水を投与した。投与は、再惹起後0、1および2日目に行い、再惹起後6日目、13日目(day 11、18)に皮膚を採取した。
(6)炎症反応の評価
実施例1に記載した。
(7)統計
実施例1に記載した。
II−1.抗原特異的炎症の経過
図2に、惹起のみを行い、再惹起を行わなかった際のday1乃至8における肉芽組織厚の測定結果を示す。図から、再惹起を行わない場合は、肉芽組織の厚さが炎症誘発(惹起)後から増加し、day 4で最大となり、以後、消退していくこと認められた。day 8では、当該領域の組織の厚さが惹起前のレベルに戻った。免疫組織学的染色は、当該肉芽組織内のMGL陽性細胞数が、惹起後、3乃至4日目に最大となり、以後、急速に減少したことを示した。
図4に、抗MGL抗体および抗IL−1α抗体の投与による、慢性の肉芽組織形成に対する影響を示した。図4から、対照として生理食塩水を投与した場合に比べて、抗MGL抗体の投与は、肉芽組織形成の著しい抑制を引き起こし、Mgl遺伝子の発現阻止と同様、慢性炎症の治療に有効であることを示した。同様の結果は、抗IL−1α抗体の投与においても観察され、従って、これらの同時投与の有効性を示唆した。
Claims (15)
- 肉芽組織形成性疾患の予防および/または治療のための医薬組成物であって、該組成物は:
(1)マクロファージガラクトース型C型レクチン(MGL)に対する特異的結合パートナー、または
(2)機能的マクロファージガラクトース型C型レクチンをコードする遺伝子(Mgl)のマクロファージでの発現を阻害する核酸
を含有することを特徴とする、前記医薬組成物。 - 前記MGLに対する特異的結合パートナーが、抗MGL抗体であることを特徴とする、請求項1に記載の医薬組成物。
- 前記機能的Mgl発現を阻害する核酸が、該遺伝子に対して不全性の変異を導入する核酸であることを特徴とする、請求項1に記載の医薬組成物。
- 前記不全性の変異が、Mglのエキソン2および3の欠失である、請求項3に記載の医薬組成物。
- 前記機能的Mgl発現を阻害する核酸が、該遺伝子に対するアンチセンス核酸であることを特徴とする、請求項1に記載の医薬組成物。
- 更に、抗IL−1α抗体を含有する、請求項1乃至5のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 肉芽形成性疾患が、肉芽腫性炎の生成を伴うことを特徴とする、請求項1乃至6のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 肉芽組織形成性疾患の予防および/または治療方法であって、該方法は、そのような処置の必要な患者において、マクロファージ上のマクロファージガラクトース型C型レクチン(MGL)の機能を特異的に阻害することを含む、前記方法。
- 前記機能の阻害が、そのような処置の必要な患者に対して、治療有効量の:
(1)マクロファージガラクトース型C型レクチン(MGL)に対する特異的結合パートナー、または
(2)機能的マクロファージガラクトース型C型レクチンをコードする遺伝子(Mgl)のマクロファージでの発現を阻害する核酸
を投与することを含む、請求項8に記載の方法。 - 前記MGLに対する特異的結合パートナーが、抗MGL抗体であることを特徴とする、請求項9に記載の方法。
- 前記機能的Mgl発現を阻害する核酸が、該遺伝子に対して不全性の変異を導入する核酸であることを特徴とする、請求項9に記載の方法。
- 前記不全性の変異が、Mglのエキソン2および3の欠失である、請求項11に記載の方法。
- 前記機能的Mgl発現を阻害する核酸が、該遺伝子に対するアンチセンス核酸であることを特徴とする、請求項9に記載の方法。
- 更に、抗IL−1α抗体を投与することを含む、請求項9乃至13のいずれか一項に記載の方法。
- 肉芽形成性疾患が、肉芽腫性炎の生成を伴うことを特徴とする、請求項8乃至14のいずれか一項に記載の方法。
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US20180043012A1 (en) * | 2015-03-06 | 2018-02-15 | Csl Behring Recombinant Facility Ag | Compounds for improving the half-life of von willebrand factor |
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