JP2004520811A - インターロイキン−２２ポリペプチド、それをコードする核酸並びに膵臓疾患の治療方法 - Google Patents

インターロイキン−２２ポリペプチド、それをコードする核酸並びに膵臓疾患の治療方法 Download PDF

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Abstract

本発明は、インターロイキン−２２ポリペプチド及びそれらポリペプチドをコードする核酸に関する。また、ここで提供されているのは、ベクター及びこれら核酸配列を含む宿主細胞、異種ポリペプチド配列と融合した本発明のポリペプチドを含むキメラポリペプチド分子、本発明のポリペプチドと結合する抗体、そして本発明のポリペプチドを産生する方法である。

Description

【０００１】
（発明の分野）
本発明は、一般的にインターロイキン−２２（ＩＬ−２２）の同定及び単離、そして膵臓疾患の治療の方法に関する。
【０００２】
（本発明の背景）
膵臓は、胃の後及び十二指腸の近くに位置する大きな腺である。それは、管を通して小腸に入る消化酵素を分泌する。これらの酵素は、タンパク質、脂肪及び炭水化物の消化を促進する。消化酵素に加えて、膵臓は、また、糖代謝において重要な役割を担うインシュリン及びグルカゴンを遊離する。
膵炎は、膵臓が炎症をおこす疾患である。膵臓への損傷は、消化酵素が活性化して腺を攻撃し始めると生じる。重傷の場合には、腺への出血、組織損傷、感染及び嚢胞形成があり得る。２つの形態の膵炎がある。突然に起こる急性型は、生命を脅かし得る。膵炎の慢性型は、患者が、膵臓の機能低下及びひどい痛みと体重減少を引き起こすアルコール飲酒を持続した場合に起こり得る。アメリカ合衆国では、毎年、およそ５０，０００から８０，０００ケースの急性膵炎が起こっている。それは、女性よりも男性によく見られる。
【０００３】
現在、膵炎の診断は難しい。通常、医者が十分な膵臓酵素が生成されているかを確かめることに膵臓機能試験が役立っている。ＣＡＴスキャンによって、例えば胆石のような、頻繁に疾病と関わっている腺そのものの異常があるかを確かめることができる。慢性膵炎は膵臓癌への主要な危険因子であるので、診断がなされた直ぐにそれは処置されるべきである。
膵臓は、約８０％の腺房細胞、１−２％の島細胞及び１０−１５％の立方骨管細胞で構成されている。腺房細胞癌は膵癌の１−２％を占め、膵癌のさらに１０−１５％は腺房細胞及び他の細胞型で構成されている［Ｎｏｍｕｒａら．， Ｕｌｔｒａ． Ｐａｔｈ． （１９９２） １６： ３１７−３２９］。急性膵炎のすべてのケースは、消化酵素の活性化及び滞留を引き起こす形で腺房細胞に作用し、それによって腺房細胞を傷つけ、サイトカインの遊離を引き起こす。サイトカインは、炎症細胞、特に好中球を誘引し、これがさらなるサイトカインの分泌につながる。遊離した炎症分子が膵臓水腫、及び局所的壊死を誘導することが示されている。ある研究によって、特定の臨床的状況では、サイトカインが膵炎の経過を改善し得ることが示唆されている。
【０００４】
インターロイキン−２２（ＩＬ−２２）は、新しく同定された活性化Ｔ細胞によって産生されるサイトカイインであり、インターロイキン−１０（ＩＬ−１０）に関連する。レセプター複合体を介するＩＬ−２２シグナルは、ＩＬ−１０Ｒβとしても知られているＣＲＦ２−４、及びクラスＩＩサイトカインレセプターファミリーの新規メンバーであるインターロイキン−２２レセプター（ＩＬ−２２Ｒ）からなる［Ｘｉｅら．， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．（２０００）２７５， ３１３５５−３１３３９］。このレセプター複合体のメンバーとして、ＩＬ−２２Ｒの発現は完全に限定されているが、膵臓での高発現を含めてＩＬ−１０Ｒβは幾つかの組織で発現しており、このことはＩＬ−２２ＲがＩＬ−２２の作用部位をコントロールしていることを示唆している。例としては、マウスＩＬ−２２は、急性膵炎にて過剰発現する遺伝子である膵炎関連タンパク質（ＰＡＰ１）を含む膵臓腺房細胞の幾つかの遺伝子の遺伝子発現における変化を誘導する［Ｉｏｖａｎｎａら．， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． （１９９１） ２６６， ２４６６４−２４６６９］。膵臓で高発現するレセプター複合体を介するＩＬ−２２シグナル伝達は、ＩＬ−２２シグナル伝達が膵臓での免疫／炎症応答を調節することができ、膵炎を含む膵臓の疾患に関わり得ることを示唆している。
【０００５】
（本発明の要約）
一実施態様では、本発明は、インターロイキン−２２（ＩＬ−２２）ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む単離された核酸分子を提供する。
一側面では、単離された核酸分子は、（ａ）図２（配列番号：２）の約１又は約３３から約１７９を含むアミノ酸残基の配列を有するインターロイキン−２２（ＩＬ−２２）ポリペプチドをコードするＤＮＡ分子、（ｂ）Ｘが図２（配列番号：２）の２９から３８の任意のアミノ酸である、約アミノ酸１からＸのシグナルペプチドを欠くアミノ酸配列、又はここで開示する完全長アミノ酸配列のその他の特に確定済みの断片、又は（ｃ）（ａ）のＤＮＡ分子の相補鎖に対して、少なくとも約８０％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８１％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８２％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８３％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８４％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８５％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８６％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８７％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８８％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８９％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９０％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９１％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９２％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９３％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９４％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９５％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９６％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９７％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９８％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９９％の核酸配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む。
【０００６】
他の側面では、単離された核酸分子は、（ａ）図１（配列番号：１）に開示したｃＤＮＡのヌクレオチド約５８又は約１５７から約５９４を含むの配列を含んでなるＤＮＡ分子、又は（ｂ）（ａ）のＤＮＡ分子の相補鎖に対して、少なくとも約８０％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８１％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８２％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８３％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８４％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８５％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８６％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８７％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８８％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８９％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９０％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９１％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９２％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９３％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９４％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９５％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９６％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９７％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９８％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９９％の核酸配列同一性を有しているヌクレオチド配列を含む。
【０００７】
さらなる側面では、本発明は、（ａ）１９９９年１２月７日にＡＴＣＣ寄託番号ＰＴＡ−１０３１（ＤＮＡ１２５１−２８０６）としてＡＴＣＣへ寄託したヒトタンパク質ｃＤＮＡによってコードされている同じ成熟ポリペプチドをコードするＤＮＡ分子、又は（ｂ）（ａ）のＤＮＡ分子の相補鎖に対して、少なくとも約８０％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８１％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８２％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８３％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８４％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８５％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８６％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８７％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８８％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８９％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９０％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９１％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９２％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９３％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９４％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９５％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９６％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９７％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９８％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９９％の核酸配列同一性を有しているヌクレオチド配列を含む単離された核酸分子に関する。
【０００８】
その他の実施態様は、ＩＬ−２２ポリペプチドコード化配列の断片、又はその補体に関し、それらには、例えば、場合によっては抗−ＩＬ−２２抗体に対する結合部位を含むポリペプチドをコードするＩＬ−２２ポリペプチドのコード化断片のハイブリダイゼーションプローブとして、又はアンチセンスオリゴヌクレオチドプローブとしての用途が見いだされ得る。このような核酸断片は、通常は少なくとも約１０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１５ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約２０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約３０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約４０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約５０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約６０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約７０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約８０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約９０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１００ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１１０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１２０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１３０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１４０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１５０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１６０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１７０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１８０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１９０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約２００ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約２５０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約３００ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約３５０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約４００ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約４５０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約５００ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約６００ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約７００ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約８００ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約９００ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１０００ヌクレオチド長であり、ここで「約」という語の内容は参照する長さのプラス又はマイナス１０％のヌクレオチド配列長を指すことを意味する。ＩＬ−２２ポリペプチドコード化ヌクレオチド配列の新規な断片は、多くの良く知られた配列アラインメントプログラムの任意のものを用いてＩＬ−２２ポリペプチドコード化ヌクレオチド配列と他の公知のヌクレオチド配列とを整列させ、いずれのＩＬ−２２ポリペプチドコード化ヌクレオチド配列断片が新規であるかを決定することにより、日常的な手法で同定してもよい。このようなＩＬ−２２ポリペプチドコード化ヌクレオチド配列のすべては、ここで考慮される。また、これらのヌクレオチド分子断片、好ましくは抗−ＩＬ−２２抗体に対する結合部位を含むＩＬ−２２ポリペプチド断片によってコードされるＩＬ−２２ポリペプチド断片も考慮される。
【０００９】
その他の実施態様では、本発明は、上記で特定された単離された核酸配列のいずれかによってコードされている単離されたＩＬ−２２ポリペプチドを提供する。
或る側面では、本発明は、（ａ）図２（配列番号：２）に開示された完全長アミノ酸配列を有するＩＬ−２２ポリペプチド、（ｂ）Ｘが図２（配列番号：２）の２９から３８の任意のアミノ酸である、約１からＸのシグナルペプチドを欠くアミノ酸配列、又はここで開示する完全長アミノ酸配列のその他の特に確定済みの断片に対して、少なくとも約８０％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８１％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８２％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８３％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８４％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８５％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８６％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８７％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８８％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８９％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９０％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９１％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９２％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９３％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９４％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９５％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９６％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９７％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９８％のアミノ酸配列同一性、そして、あるいは少なくとも約９９％のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含む単離されたＩＬ−２２ポリペプチドに関する。
【００１０】
さらなる態様では、本発明は、１９９９年１２月７日にＡＴＣＣ寄託番号ＰＴＡ−１０３１（ＤＮＡ１２５１−２８０６）としてＡＴＣＣへ寄託したヒトタンパク質ｃＤＮＡによってコードされているアミノ酸配列に対して、少なくとも約８０％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８１％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８２％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８３％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８４％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８５％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８６％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８７％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８８％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８９％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９０％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９１％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９２％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９３％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９４％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９５％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９６％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９７％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９８％のアミノ酸配列同一性、そして、あるいは少なくとも約９９％のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含む単離されたＩＬ−２２ポリペプチドに関する。
【００１１】
特別な側面では、本発明は、Ｎ−末端シグナル配列及び／又は開始メチオニンを持たず、上記したようなアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列によってコードされる単離されたＩＬ−２２ポリペプチドを提供する。これらを製造する方法もここに記載され、これらの方法は、適当なコード化核酸分子を含むベクターを含む宿主細胞をＩＬ−２２ポリペプチドの発現に適した条件下で培養し、培養培地からＩＬ−２２ポリペプチドを回収することを含む。
さらに他の実施態様では、本発明は、ここで同定される天然ＩＬ−２２ポリペプチドのアゴニスト及びアンタゴニストに関する。特別な実施態様では、アゴニスト又はアンタゴニストは抗−ＩＬ−２２抗体又は小分子である。
【００１２】
さらなる実施態様では、本発明は、ＩＬ−２２ポリペプチドのアゴニスト又はアンタゴニストを同定する方法に関し、それは、ＩＬ−２２ポリペプチドを候補分子と接触させ、前記ＩＬ−２２ポリペプチドによって媒介される生物学的活性をモニターすることを含む。好ましくは、ＩＬ−２２ポリペプチドは天然ＩＬ−２２ポリペプチドである。
またさらなる実施態様では、本発明は、ＩＬ−２２ポリペプチド、又はここに記載するＩＬ−２２ポリペプチドのアゴニスト又はアンタゴニスト、又は抗−ＩＬ−２２抗体を担体と組み合わせを含む組成物に関する。場合によっては、担体は製薬的に許容される担体である。
本発明のその他の実施態様は、ＩＬ−２２ポリペプチド、又は上記したようなそのアゴニスト又はアンタゴニスト、又は抗−ＩＬ−２２抗体の、ＩＬ−２２ポリペプチド、そのアゴニスト又はアンタゴニスト又は抗−ＩＬ−２２抗体に応答性のある症状の治療に有用な医薬の調製のための使用に関する。
【００１３】
本発明のさらなる実施態様では、本発明は、ここに記載の任意のポリペプチドをコードするＤＮＡを含むベクターを提供する。任意のそのようなベクターを含む宿主細胞も提供される。例としては、その宿主細胞はＣＨＯ細胞、大腸菌、又は酵母であってもよい。ここに記載の任意のポリペプチドの製造方法がさらに提供されており、それは、宿主細胞を所望のポリペプチドの発現に適した条件下で培養し、細胞培地から所望のポリペプチドを回収することを含む。
他の実施態様では、本発明は、異種ポリペプチド又はアミノ酸配列に融合した、ここに記載の任意のポリペプチドを含んでなるキメラ分子を提供する。そのようなキメラ分子の例は、エピトープタグ配列又は免疫グロブリンのＦｃ領域に融合したここに記載の任意のポリペプチドを含む。
【００１４】
その他の実施態様では、本発明は、上記又は下記のポリペプチドの任意のものに特異的に結合する抗体を提供する。場合によっては、抗体はモノクローナル抗体、ヒト化抗体、抗体断片又は一本鎖抗体である。
さらに他の実施態様では、本発明は、ゲノム及びｃＤＮＡヌクレオチド配列の単離、関連する遺伝子の発現を測定及び検出することにとって、又はアンチセンスプローブとして有用であり得るオリゴヌクレオチドプローブを提供し、それらのプローブは上記又は下記のヌクレオチド配列の任意のものから誘導され得る。
他の実施態様では、本発明は、膵臓疾患の疑いがある生物学的試料を接触させることによって膵臓疾患を検出、診断及び治療する方法を提供する。生物学的試料中の膵臓疾患を検出及び治療することには、ＩＬ−２２発現のレベルを確かめること、ＰＡＰ１に対するＩＬ−２２発現の効果、又はＩＬ−２２で生物学的試料を探索することを含めてもよい。治療には、生物学的試料をＩＬ−２２に対するアンタゴニストと接触させること、ＩＬ−２２発現の低下、又はレセプターへのＩＬ−２２結合の阻害を含めてもよい。
【００１５】
（好適な実施態様の詳細な説明）
Ｉ．定義
ここで使用される際の「ＩＬ−２２ポリペプチド」及び「ＩＬ−２２」という用語は、ここで記載されている特定のポリペプチド配列を指す。ここで記載されているＩＬ−２２ポリペプチドは、ヒト組織型又は他の供給源といった種々の供給源から単離してもよく、組換え又は合成方法によって調製してもよい。例えば、調製の、精製の、誘導の、抗体の形成、投与の、含有する組成物、疾患の治療、などの記述は、本発明の各ポリペプチドに個別に関係する。また、「ＩＬ−２２ポリペプチド」という用語には、ここに開示されているＩＬ−２２ポリペプチドの変異体が含まれる。
【００１６】
「天然配列ＩＬ−２２ポリペプチド」は、天然由来の対応するＩＬ−２２ポリペプチドと同一のアミノ酸配列を有するポリペプチドを含んでいる。このような天然配列ＩＬ−２２ポリペプチドは、自然から単離することもできるし、組換え又は合成手段により産生することもできる。「天然配列ＩＬ−２２ポリペプチド」という用語には、特に、特定のＩＬ−２２ポリペプチドの自然に生じる切断又は分泌形態（例えば、細胞外ドメイン配列）、自然に生じる変異形態（例えば、選択的にスプライシングされた形態）及びそのポリペプチドの自然に生じる対立遺伝子変異体が含まれる。本発明の一実施態様では、図２（配列番号：２）のアミノ酸１から１７９を含む天然配列ＩＬ−２２ポリペプチドは、完全長アミノ酸配列を含む成熟又は完全長天然配列ポリペプチドである。開始及び終止コドンは、太い書体及び下線で図１（配列番号：１）に示さている。しかし、図２（配列番号：２）に開示されているＩＬ−２２ポリペプチドがメチオニン残基で開始することが図２（配列番号：２）のアミノ酸位置１において示されているが、図２（配列番号：２）のアミノ酸位置１より上流又は下流のいずれかに位置する他のメチオニン残基が、ＩＬ−２２ポリペプチドの開始アミノ酸残基として用いられ得ることが考えられるし可能であり得る。
【００１７】
ここに開示する種々のＩＬ−２２ポリペプチドの「シグナルペプチド」の適切な位置は、本明細書及び／又は添付の図面に示される。しかし、注記するように、シグナルペプチドのＣ−末端境界は変化し得るが、それはここで最初に定義したようにシグナルペプチドＣ−末端境界のいずれかの側で約５アミノ酸未満である可能性が最も高く、シグナルペプチドのＣ−末端境界は、そのような型のアミノ酸配列エレメントを同定するのに日常的に使用される基準に従って同定し得る（例えば、Ｎｉｅｌｓｅｎら， Ｐｒｏｔ． Ｅｎｇ． １０： １−６ （１９９７）及びｖｏｎ Ｈｅｉｎｊｅら， Ｎｕｃｌ． Ａｃｉｄｓ． Ｒｅｓ． １４： ４６８３−４６９０ （１９８６））。さらに、幾つかの場合には、分泌ポリペプチドからのシグナルペプチドの切断は完全に均一ではなく、１つ以上の分泌種をもたらすことも認められる。シグナルペプチドがここに定義されるシグナルペプチドのＣ−末端境界の何れかの側の約５アミノ酸未満内で切断されるこれらの成熟ポリペプチド、及びそれらをコードするポリヌクレオチドは、本発明で考慮される。
【００１８】
「ＩＬ−２２ポリペプチド変異体」とは、上記又は下記に定義されるように、ここに開示される完全長天然配列ＩＬ−２２ポリペプチド、ここに開示されたシグナルペプチドを欠く完全長天然配列ＩＬ−２２ポリペプチド配列、ここに開示された完全長ＩＬ−２２の他の断片と少なくとも約８０％のアミノ酸配列同一性を有する活性ＩＬ−２２ポリペプチドを意味する。このようなＩＬ−２２ポリペプチド変異体には、例えば、完全長天然アミノ酸配列のＮ−又はＣ−末端において１つ又は複数のアミノ酸残基が付加、もしくは欠失したＩＬ−２２ポリペプチドが含まれる。通常、ＩＬ−２２ポリペプチド変異体は、（ａ）図２（配列番号：２）に開示しているＩＬ−２２ポリペプチド配列のアミノ酸約１又は約３３から約１７９、（ｂ）Ｘが図２（配列番号：２）の２９から３８の任意のアミノ酸である、図２（配列番号：２）に示すＩＬ−２２ポリペプチド配列のＸから１７９、（ｃ）図２（配列番号：２）に示す完全長ＩＬ−２２ポリペプチド配列の他の特に確定済みの断片と少なくとも約８０％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８１％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８２％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８３％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８４％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８５％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８６％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８７％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８８％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約８９％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９０％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９１％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９２％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９３％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９４％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９５％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９６％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９７％のアミノ酸配列同一性、あるいは少なくとも約９８％のアミノ酸配列同一性、そして、あるいは少なくとも約９９％のアミノ酸配列同一性を有している。通常は、ＩＬ−２２変異体ポリペプチドは、少なくとも約１０アミノ酸長、あるいは少なくとも約２０アミノ酸長、あるいは少なくとも約３０アミノ酸長、あるいは少なくとも約４０アミノ酸長、あるいは少なくとも約５０アミノ酸長、あるいは少なくとも約６０アミノ酸長、あるいは少なくとも約７０アミノ酸長、あるいは少なくとも約８０アミノ酸長、あるいは少なくとも約９０アミノ酸長、あるいは少なくとも約１００アミノ酸長、あるいは少なくとも約１５０アミノ酸長、あるいは少なくとも約２００アミノ酸長、あるいは少なくとも約３００アミノ酸長、又はそれ以上である。
【００１９】
ここに定義されるＩＬ−２２ポリペプチドに関してここで同定されている「パーセント（％）アミノ酸配列同一性」とは、最大のパーセント配列同一性を得るために、必要ならば配列を整列させ間隙を導入した後に、如何なる保存的置換も配列同一性の一部と考えない、特定のＩＬ−２２ポリペプチド配列のアミノ酸残基と同一である候補配列のアミノ酸残基のパーセントとして定義される。パーセントアミノ酸配列同一性を決定する目的のためのアラインメントは、当業者の技量の範囲にある種々の方法、例えばＢＬＡＳＴ、ＢＬＡＳＴ−２、ＡＬＩＧＮ、又はＭｅｇａｌｉｇｎ（ＤＮＡＳＴＡＲ）ソフトウエアのような公に入手可能なコンピュータソフトウエアを使用することにより達成可能である。当業者であれば、比較される配列の完全長に対して最大のアラインメントを達成するために必要な任意のアルゴリズムを含む、アラインメントを測定するための適切なパラメータを決定することができる。しかし、ここでの目的のためには、％アミノ酸配列同一性値は、ＡＬＩＧＮ−２プログラム用の完全なソースコードが下記の表１に提供されている配列比較プログラムＡＬＩＧＮ−２を使用することによって得られる。ＡＬＩＧＮ−２配列比較コンピュータプログラムはジェネンテック社によって作成され、下記の表１に示したソースコードは米国著作権事務所， ワシントンＤ．Ｃ．， ２０５５９に使用者用書類とともに提出され、米国著作権登録番号ＴＸＵ５１００８７の下で登録されている。ＡＬＩＧＮ−２はジェネンテック社、サウス サン フランシスコ， カリフォルニアから公的に入手可能であり、下記の表１に提供されたソースコードからコンパイルしてもよい。ＡＬＩＧＮ−２プログラムは、ＵＮＩＸオペレーティングシステム、好ましくはデジタルＵＮＩＸ Ｖ４．０Ｄでの使用のためにコンパイルされる。全ての配列比較パラメータは、ＡＬＩＧＮ−２プログラムによって設定され変動しない。
【００２０】
アミノ酸配列比較にＡＬＩＧＮ−２が用いられる状況では、与えられたアミノ酸配列Ａの、与えられたアミノ酸配列Ｂとの、又はそれに対する％アミノ酸配列同一性（あるいは、与えられたアミノ酸配列Ｂと、又はそれに対して或る程度の％アミノ酸配列同一性を持つ又は含む与えられたアミノ酸配列Ａと言うこともできる）は次のように計算される：
分率Ｘ／Ｙの１００倍
ここで、Ｘは配列アラインメントプログラムＡＬＩＧＮ−２のＡ及びＢのプログラムのアラインメントによって同一であると一致したスコアのアミノ酸残基の数であり、ＹはＢの全アミノ酸残基数である。アミノ酸配列Ａの長さがアミノ酸配列Ｂの長さと異なる場合、ＡのＢに対する％アミノ酸配列同一性は、ＢのＡに対する％アミノ酸配列同一性とは異なることは理解されるであろう。この方法を用いた％アミノ酸配列同一性の計算の例として、「ＩＬ−２２」が対象となる仮説的ＩＬ−２２ポリペプチドのアミノ酸配列を表し、「比較タンパク質」が対象となる「比較」タンパク質が比較されているアミノ酸配列を表し、そして「Ｘ」、「Ｙ」及び「Ｚ」の各々が異なった仮説的アミノ酸残基を表し、表２及び３は、「比較タンパク質」と称されるアミノ酸配列の「ＩＬ−２２」と称されるアミノ酸配列に対する％アミノ酸配列同一性の計算方法を示す。
【００２１】
特に断らない限りは、ここでの全ての％アミノ酸配列同一性値は上記のようにＡＬＩＧＮ−２配列比較コンピュータプログラムを用いて得られる。しかしながら、％アミノ酸配列同一性値は、ＷＵ−ＢＬＡＳＴ−２コンピュータプログラム（Ａｌｔｓｃｈｕｌら， Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ２６６： ４６０−４８０（１９９６））を用いて決定してもよい。さらに、殆どのＷＵ−ＢＬＡＳＴ−２検索パラメータは初期値に設定される。初期値に設定されない、即ち調節可能なパラメータは以下の値に設定する：オーバーラップスパン＝１、オーバーラップフラクション＝０．１２５、ワード閾値（Ｔ）＝１１、及びスコアリングマトリクス＝ＢＬＯＳＵＭ６２。ＷＵ−ＢＬＡＳＴ２が用いられた場合には、、％アミノ酸配列同一性値は、（ａ）天然ＩＬ−２２ポリペプチドから誘導された配列を有する対象とするＩＬ−２２ポリペプチドのアミノ酸配列と、対象とする比較アミノ酸配列（即ち、対象とするＩＬ−２２ポリペプチドが比較されるＩＬ−２２ポリペプチド変異体であってもよい配列）との間の、ＷＵ−ＢＬＡＳＴ−２によって決定した一致する同一アミノ酸残基の数を、（ｂ）対象とするＩＬ−２２ポリペプチドの残基の総数で除した商によって決定される。例えば、「アミノ酸配列Ｂに対して少なくとも８０％のアミノ酸配列同一性を持つ又は持っているアミノ酸配列Ａを含んでなるポリペプチド」という表現では、アミノ酸配列Ａが対象である比較アミノ酸配列であり、アミノ酸配列Ｂが対象であるＩＬ−２２ポリペプチドのアミノ酸配列である。
【００２２】
また、％アミノ酸配列同一性は、配列比較プログラムＮＣＢＩ−ＢＬＡＳＴ２（Ａｌｔｓｃｈｕｌら， Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２５： ３３８９−３４０２ （１９９７））を用いて決定してもよい。ＮＣＢＩ−ＢＬＡＳＴ２配列比較プログラムは、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖからダウンロードでき、又は別な方法で米国国立衛生研究所、ベセスダ、メリーランドから得ることができる。ＮＣＢＩ−ＢＬＡＳＴ２は幾つかの検索パラメータを使用し、それら検索パラメータの全ては初期値に設定され、例えば、ｕｎｍａｓｋ＝可、鎖＝全て、予測される発生＝１０、最小低複合長＝１５／５、マルチパスｅ−値＝０．０１、マルチパスの定数＝２５、最終ギャップアラインメントのドロップオフ＝２５、及びスコアリングマトリクス＝ＢＬＯＳＵＭ６２を含む。
【００２３】
アミノ酸配列比較にＮＣＢＩ−ＢＬＡＳＴ２が用いられる状況では、与えられたアミノ酸配列Ａの、与えられたアミノ酸配列Ｂとの、又はそれに対する％アミノ酸配列同一性（あるいは、与えられたアミノ酸配列Ｂと、又はそれに対して或る程度の％アミノ酸配列同一性を持つ又は含む与えられたアミノ酸配列Ａと言うこともできる）は次のように計算される：
分率Ｘ／Ｙの１００倍
ここで、Ｘは配列アラインメントプログラムＮＣＢＩ−ＢＬＡＳＴ２のＡ及びＢのプログラムのアラインメントによって同一であると一致したスコアのアミノ酸残基の数であり、ＹはＢの全アミノ酸残基数である。アミノ酸配列Ａの長さがアミノ酸配列Ｂの長さと異なる場合、ＡのＢに対する％アミノ酸配列同一性は、ＢのＡに対する％アミノ酸配列同一性とは異なることは理解されるであろう。
【００２４】
「ＩＬ−２２変異体ポリヌクレオチド」又は「ＩＬ−２２変異体核酸配列」とは、下記に定義されるように活性ＩＬ−２２ポリペプチドをコードし、ここで開示する完全長天然配列ＩＬ−２２ポリペプチド配列をコードする核酸配列、ここに開示するシグナルペプチドを欠いた完全長天然配列ＩＬ−２２ポリペプチド配列、又はここに開示する完全長ＩＬ−２２ポリペプチド配列の任意の他の断片と少なくとも約８０％の核酸配列同一性を有する核酸分子を意味する。通常、ＩＬ−２２変異体ポリペプチドは、ここで開示する完全長天然配列ＩＬ−２２ポリペプチド配列をコードする核酸配列、ここで開示するシグナルペプチドを欠く完全長天然配列ＩＬ−２２ポリペプチド配列、ここで開示するシグナルペプチドを有するか又は有しないＩＬ−２２ポリペプチドの細胞外ドメイン、又はここに開示する完全長天然配列ＩＬ−２２ポリペプチド配列のその他の断片と、少なくとも約８０％の核酸配列同一性、好ましくはあるいは少なくとも約８１％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８２％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８３％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８４％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８５％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８６％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８７％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８８％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約８９％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９０％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９１％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９２％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９３％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９４％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９５％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９６％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９７％の核酸配列同一性、あるいは少なくとも約９８％の核酸配列同一性、そして、あるいは少なくとも約９９％の核酸配列同一性を有している。
【００２５】
通常は、ＩＬ−２２変異体ポリヌクレオチドは、少なくとも約３０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約６０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約９０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１２０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１５０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約１８０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約２１０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約２４０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約２７０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約３００ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約４５０ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約６００ヌクレオチド長、あるいは少なくとも約９００ヌクレオチド長、又はそれ以上である。
【００２６】
ここで同定されるＩＬ−２２コード化核酸配列に対する「パーセント（％）核酸配列同一性」とは、最大のパーセント配列同一性を得るために必要ならば配列を整列させ間隙を導入した後に、対象であるＩＬ−２２核酸配列のヌクレオチドと同一である候補配列のヌクレオチドのパーセントとして定義される。パーセント核酸配列同一性を決定する目的のためのアラインメントは、当業者の知る範囲にある種々の方法、例えばＢＬＡＳＴ、ＢＬＡＳＴ−２、ＡＬＩＧＮ又はＭｅｇａｌｉｇｎ（ＤＮＡＳＴＡＲ）ソフトウエアのような公に入手可能なコンピュータソフトウエアを使用することにより達成可能である。ここでの目的のためには、％アミノ酸配列同一性値は、ＡＬＩＧＮ−２プログラム用の完全なソースコードが下記の表１に提供されている配列比較プログラＡＬＩＧＮ−２を使用することによって得られる。ＡＬＩＧＮ−２配列比較コンピュータプログラムはジェネンテック社によって作成され、下記の表１に示したソースコードは米国著作権事務所，ワシントン Ｄ．Ｃ．，２０５５９に使用者用書類とともに提出され、米国著作権登録番号ＴＸＵ５１００８７で登録されている。ＡＬＩＧＮ−２はジェネンテック社、サウス サン フランシスコ， カリフォルニアから公的に入手可能であり、下記の表１に提供されたソースコードからコンパイルしてもよい。ＡＬＩＧＮ−２プログラムは、ＵＮＩＸオペレーティングシステム、好ましくはデジタルＵＮＩＸ Ｖ４．０Ｄでの使用のためにコンパイルされる。全ての配列比較パラメータは、ＡＬＩＧＮ−２プログラムによって設定され変動しない。
【００２７】
核酸配列比較にＡＬＩＧＮ−２が用いられる状況では、与えられた核酸配列Ｃの、与えられた核酸配列Ｄとの、又はそれに対する％核酸配列同一性（あるいは、与えられたアミノ酸配列Ｄと、又はそれに対して或る程度の％核酸配列同一性を持つ又は含む与えられた核酸配列Ｃと言うこともできる）は次のように計算される：
分率Ｗ／Ｚの１００倍
ここで、Ｗは配列アラインメントプログラムＡＬＩＧＮ−２のＣ及びＤのプログラムのアラインメントによって同一であるとして一致したスコアの核酸残基の数であり、ＺはＤの全核酸残基数である。核酸配列Ｃの長さがアミノ酸配列Ｄの長さと異なる場合、ＣのＤに対する％核酸配列同一性は、ＤのＣに対する％核酸配列同一性とは異なることは理解されるであろう。この方法を用いた％核酸配列同一性の計算の例として、「ＩＬ−２２−ＤＮＡ」が対象となる仮説的ＩＬ−２２コード化核酸配列を表し、「比較ＤＮＡ」が対象となる「ＩＬ−２２−ＤＮＡ」核酸分子が比較されている核酸配列を表し、そして「Ｎ」、「Ｌ」及び「Ｖ」の各々が異なった仮説的アミノ酸残基を表し、表４及び５が「比較ＤＮＡ」と称される核酸配列の「ＩＬ−２２−ＤＮＡ」と称される核酸配列に対する％核酸配列同一性の計算方法を示す。
【００２８】
特に断らない限りは、ここでの全ての％核酸配列同一性値は、直上のパラグラフに示したようにＡＬＩＧＮ−２配列比較コンピュータプログラムを用いて得られる。しかし、％核酸配列同一性値は、ＷＵ−ＢＬＡＳＴ−２コンピュータプログラム（Ａｌｔｓｃｈｕｌら， Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ２６６： ４６０−４８０ （１９９６））を用いて決定してもよい。さらに、殆どのＷＵ−ＢＬＡＳＴ−２検索パラメータは初期値に設定される。初期値に設定されない、即ち調節可能なパラメータは以下の値に設定する：オーバーラップスパン＝１、オーバーラップフラクション＝０．１２５、ワード閾値（Ｔ）＝１１、及びスコアリングマトリクス＝ＢＬＯＳＵＭ６２。ＷＵ−ＢＬＡＳＴ−２が用いられた場合、％核酸配列同一性値は、（ａ）天然配列ＩＬ−２２ポリペプチドコード化核酸から誘導された配列を有している対象とするＩＬ−２２ポリペプチドコード化核酸分子の核酸配列と、対象とする比較核酸配列（即ち、対象とするＩＬ−２２ポリペプチドコード化核酸分子が比較されるＩＬ−２２ポリペプチド変異体であってもよい配列）との間の、ＷＵ−ＢＬＡＳＴ−２によって決定した一致する同一核酸残基の数を、（ｂ）対象とするＩＬ−２２ポリペプチドコード化核酸分子のヌクレオチドの総数で除した商によって決定される。例えば、「核酸配列Ｂに対して少なくとも８０％の核酸配列同一性を持つ又は持っている核酸配列Ａを含んでなるポリペプチド」という表現では、核酸配列Ａが対象とする比較核酸配列であり、核酸配列Ｂが対象とするＩＬ−２２ポリペプチドコード化核酸分子の核酸配列である。
【００２９】
また、％核酸配列同一性は、配列比較プログラムＮＣＢＩ−ＢＬＡＳＴ２（Ａｌｔｓｃｈｕｌら， Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２５： ３３８９−３４０２ （１９９７））を用いて決定してもよい。ＮＣＢＩ−ＢＬＡＳＴ２配列比較プログラムは、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖからダウンロードでき、又は別な方法で米国国立衛生研究所、ベセスダ、メリーランドから得ることができる。ＮＣＢＩ−ＢＬＡＳＴ２は幾つかの検索パラメータを使用し、それら検索パラメータの全ては初期値に設定され、例えば、ｕｎｍａｓｋ＝可、鎖＝全て、予測される発生＝１０、最小低複合長＝１５／５、マルチパスｅ−値＝０．０１、マルチパスの定数＝２５、最終ギャップアラインメントのドロップオフ＝２５、及びスコアリングマトリクス＝ＢＬＯＳＵＭ６２を含む。
【００３０】
核酸配列比較にＮＣＢＩ−ＢＬＡＳＴ２が用いられる状況では、与えられた核酸配列Ｃの、与えられた核酸配列Ｄとの、又はそれに対する％核酸配列同一性（あるいは、与えられた核酸配列Ｄと、又はそれに対して或る程度の％核酸配列同一性を持つ又は含む与えられた核酸配列Ｃと言うこともできる）は次のように計算される：
分率Ｗ／Ｚの１００倍
ここで、Ｗは配列アラインメントプログラムＮＣＢＩ−ＢＬＡＳＴ２のＣ及びＤのプログラムのアラインメントによって同一であると一致したスコアの核酸残基の数であり、ＺはＤの全核酸残基数である。核酸配列Ｃの長さが核酸配列Ｄの長さと異なる場合、ＣのＤに対する％核酸配列同一性は、ＤのＣに対する％核酸配列同一性とは異なることは理解されるであろう。
【００３１】
他の実施態様では、ＩＬ−２２変異体ポリペプチドヌクレオチドは、活性ＩＬ−２２ポリペプチドをコードし、好ましくはストリンジェントなハイブリダイゼーション及び洗浄条件下で、ここに開示する完全長ＩＬ−２２ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列にハイブリダイゼーションする核酸分子である。ＩＬ−２２変異体ポリペプチドは、ＩＬ−２２変異体ポリヌクレオチドにコードされるものであってもよい。
「単離された」とは、ここで開示された種々のポリペプチドを記述するために使用するときは、その自然環境の成分から同定され分離され及び／又は回収されたポリペプチドを意味する。その自然環境の夾雑成分とは、そのポリペプチドの診断又は治療への使用を典型的には妨害する物質であり、酵素、ホルモン、及び他のタンパク質様又は非タンパク質様溶質が含まれる。好ましい実施態様において、ポリペプチドは、（１）スピニングカップシークエネーターを使用することにより、少なくとも１５残基のＮ末端あるいは内部アミノ酸配列を得るのに充分なほど、あるいは、（２）クーマシーブルーあるいは好ましくは銀染色を用いた非還元あるいは還元条件下でのＳＤＳ−ＰＡＧＥによる均一性まで精製される。単離されたポリペプチドには、ＩＬ−２２ポリペプチドの自然環境の少なくとも１つの成分が存在しないため、組換え細胞内のインサイツのタンパク質が含まれる。しかしながら、通常は、単離されたポリペプチドは少なくとも１つの精製工程により調製される。
【００３２】
「単離された」ＩＬ−２２ポリペプチドコード化核酸又は他のポリペプチド核酸とは、同定され、ポリペプチドコード化核酸の天然源に通常は付随している少なくとも１つの夾雑核酸分子から分離した核酸分子である。単離されたＩＬ−２２ポリペプチドコード化核酸分子は、天然に見出される形態あるいは設定以外のものである。ゆえに、単離されたポリペプチドコード化核酸分子は、天然の細胞中に存在する特定のポリペプチドコード化核酸分子とは区別される。しかし、単離されたポリペプチドコード化核酸分子は、ポリペプチドを通常は発現する細胞に含まれるポリペプチドコード化核酸分子を含み、例えば、その核酸分子は天然細胞のものとは異なった染色体位置にある。
「コントロール配列」という用語は、特定の宿主生物において作用可能に結合したコード配列を発現するために必要なＤＮＡ配列を指す。原核生物に適したコントロール配列は、例えば、プロモーター、場合によってはオペレータ配列、及びリボソーム結合部位を含む。真核生物の細胞は、プロモーター、ポリアデニル化シグナル及びエンハンサーを利用することが知られている。
【００３３】
核酸は、他の核酸配列と機能的な関係にあるときに「作用可能に結合し」ている。例えば、プレ配列あるいは分泌リーダーのＤＮＡは、ポリペプチドの分泌に参画するプレタンパク質として発現されているなら、そのポリペプチドのＤＮＡに作用可能に結合している；プロモーター又はエンハンサーは、配列の転写に影響を及ぼすならば、コード配列に作用可能に結合している；又はリボソーム結合部位は、もしそれが翻訳を容易にするような位置にあるなら、コード配列と作用可能に結合している。一般的に、「作用可能に結合している」とは、結合したＤＮＡ配列が近接しており、分泌リーダーの場合には近接していて読みフェーズにあることを意味する。しかし、エンハンサーは必ずしも近接している必要はない。結合は簡便な制限部位でのライゲーションにより達成される。そのような部位が存在しない場合は、従来の手法に従って、合成オリゴヌクレオチドアダプターあるいはリンカーが使用される。
「抗体」という用語は最も広い意味において使用され、例えば、単一の抗−ＩＬ−２２ポリペプチドモノクローナル抗体（アゴニスト、アンタゴニスト、及び中和抗体を含む）、多エピトープ特異性を持つ抗−ＩＬ−２２抗体組成物、一本鎖抗−ＩＬ−２２抗体、及び抗−ＩＬ−２２抗体の断片を包含している（下記参照）。ここで使用される「モノクローナル抗体」という用語は、実質的に均一な抗体の集団、すなわち、構成する個々の抗体が、少量存在しうる自然に生じる可能性のある突然変異を除いて同一である集団から得られる抗体を称する。
【００３４】
ハイブリダイゼーション反応の「ストリンジェンシー」は、当業者によって容易に決定され、一般的にプローブ長、洗浄温度、及び塩濃度に依存する経験的な計算である。一般に、プローブが長くなると適切なアニーリングのための温度が高くなり、プローブが短くなると温度は低くなる。ハイブリダイゼーションは、一般的に、相補鎖がその融点に近いがそれより低い環境に存在する場合における変性ＤＮＡの再アニールする能力に依存する。プローブとハイブリダイゼーション可能な配列との間の所望のホモロジーの程度が高くなると、使用できる相対温度が高くなる。その結果、より高い相対温度は、反応条件をよりストリンジェントにするが、低い温度はストリンジェンシーを低下させる。さらに、ストリンジェンシーは塩濃度に逆比例する。ハイブリダイゼーション反応のストリンジェンシーの更なる詳細及び説明は、Ａｕｓｕｂｅｌら， Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｗｉｌｅｙ Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ， （１９９５）を参照のこと。
【００３５】
ここで定義される「ストリンジェントな条件」又は「高いストリンジェントな条件」とは、（１）洗浄のために低イオン強度及び高温度、例えば、５０℃で０．０１５Ｍの塩化ナトリウム／０．００１５Ｍのクエン酸ナトリウム／０．１％のドデシル硫酸ナトリウムを用いる；（２）ハイブリダイゼーションの間にホルムアミド等の変性剤、例えば、４２℃で７５０ｍＭの塩化ナトリウム、７５ｍＭクエン酸ナトリウムを含むｐＨ６．５の０．１％ウシ血清アルブミン／０．１％フィコール／０．１％ポリビニルピロリドン／５０ｍＭのリン酸ナトリウムバッファーによる５０％（ｖ／ｖ）ホルムアミドを用いる；（３）０．２ｘＳＳＣ（塩化ナトリウム／クエン酸ナトリウム）による４２℃での、及び５０％ホルムアミドによる５５℃での洗浄に５０％ホルムアミド、５ｘＳＳＣ（０．７５ＭのＮａＣｌ、０．０７５Ｍのクエン酸ナトリウム）、５０ｍＭのリン酸ナトリウム（ｐＨ６．８）、０．１％のピロリン酸ナトリウム、５ｘデンハード液、超音波処理サケ精子ＤＮＡ（５０μｇ／ｍｌ）、０．１％ＳＤＳ、及び１０％のデキストラン硫酸を用い、その後に５５℃でのＥＤＴＡを含む０．１ｘＳＳＣから成る高いストリンジェンシーによる洗浄が続くことによって同定され得る。
【００３６】
「中程度のストリンジェントな条件」は、Ｓａｍｂｒｏｏｋら， Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ （Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ： Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ， １９８９に記載されているように同定され、上記のストリンジェンシーより低い洗浄溶液及びハイブリダイゼーション条件（例えば、温度、イオン強度及び％ＳＤＳ）の使用を含む。中程度のストリンジェントな条件とは、３７℃で、２０％ホルムアミド、５ｘＳＳＣ（１５０ｍＭのＮａＣｌ、１５ｍＭのクエン酸三ナトリウム）、５０ｍＭリン酸ナトリウム（ｐＨ７．６）、５ｘデンハード液、１０％デキストラン硫酸、及び２０ｍｇ／ｍＬの変性剪断サケ精子ＤＮＡを含む溶液での終夜にわたるインキュベーション、それに続く３７−５０℃で１ｘＳＳＣでのフィルターの洗浄である。当業者であれば、プローブ長などの因子に適合させる必要に応じて、どのようにして温度、イオン強度等を調節するかを認識する。
【００３７】
「エピトープタグ」なる用語は、ここで用いられるときは、「タグポリペプチド」に融合したＩＬ−２２ポリペプチドを指す。タグポリペプチドは、その抗体が産生され得るエピトープ、又は幾つかの他の試薬によって同定できるエピトープを提供するに十分な数の残基を有しているが、その長さは対象とするＩＬ−２２ポリペプチドの活性を阻害しないよう十分に短い。また、タグポリペプチドは、好ましくは、抗体が他のエピトープと実質的に交差反応をしないようにかなり独特である。適切なタグポリペプチドは、一般に、少なくとも６のアミノ酸残基、通常は約８〜約５０のアミノ酸残基（好ましくは約１０〜約２０の残基）を有する。
【００３８】
ここで用いられる「イムノアドヘシン」なる用語は、異種タンパク質（「アドヘシン」）の結合特異性と免疫グロブリン定常ドメインとを結合した抗体様分子を指す。構造的には、イムノアドヘシンは、所望の結合特異性を持ち、抗体の抗原認識及び結合部位以外である（即ち「異種の」）アミノ酸配列と、免疫グロブリン定常ドメイン配列との融合物を含む。イムノアドヘシン分子のアドへシン部分は、典型的には少なくともレセプター又はリガンドの結合部位を含む隣接アミノ酸配列である。イムノアドヘシンの免疫グロブリン定常ドメイン配列は、ＩｇＧ−１、ＩｇＧ−２、ＩｇＧ−３又はＩｇＧ−４サブタイプ、ＩｇＡ（ＩｇＡ−１及びＩｇＡ−２を含む）、ＩｇＥ、ＩｇＤ又はＩｇＭなどの任意の免疫グロブリンから得ることができる。
【００３９】
ここで意図している「活性な」及び「活性」とは、天然又は天然発生ＩＬ−２２ポリペプチドの生物学的及び／又は免疫学的活性を保持するＩＬ−２２の形態を意味し、「生物学的」活性とは、天然又は天然発生ＩＬ−２２によって生ずる（阻害性又は刺激性の）生物学的機能であって、天然又は天然発生ＩＬ−２２が有する抗原性エピトープに対して抗体を生成する能力を除くものを意味し、「免疫学的」活性とは、天然又は天然発生ＩＬ−２２が有する抗原性エピトープに対して抗体を生成する能力を意味する。好ましい生物学的活性とは、ＰＡＰ１発現の誘導である。ＰＡＰ１は、栄養因子のＲＥＧファミリーに関連する分泌タンパク質であり、膵炎で高発現しているタンパク質として最初に特徴付けられた（Ｉｏｖａｎｎａら．， （１９９１）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．， ２６６， ２４６６４−２４６６９）。ＩＬ−２２のインビボでの注入によって、膵臓でのＰＡＰ１発現の急速な誘導が起こる。
【００４０】
「アンタゴニスト」なる用語は最も広い意味で用いられ、ここに開示した天然ＩＬ−２２ポリペプチドの生物学的活性を阻止、阻害、又は中和する任意の分子を指す。同様に「アゴニスト」なる用語は最も広い意味で用いられ、ここに開示した天然ＩＬ−２２ポリペプチドの生物学的活性を模倣する任意の分子を指す。好適なアゴニスト又はアンタゴニスト分子は特に、アゴニスト又はアンタゴニスト抗体又は抗体断片、天然ＩＬ−２２ポリペプチドの断片又はアミノ酸配列変異体、ペプチド、有機小分子、などを含む。ＩＬ−２２ポリペプチドのアゴニスト又はアンタゴニストの同定方法は、ＩＬ−２２ポリペプチドを候補アンタゴニスト又はアゴニストと接触させ、ＩＬ−２２ポリペプチドに通常は関連している１つ又は複数の生物学的活性の変化を測定することを含み得る。
【００４１】
ここで使用される「治療」とは、治癒的処置、予防的療法及び防止的療法の両方を意味し、目的は標的とする病理学的状態又は疾患を防止又は低下（減少）させることである。治療が必要なものとは、疾患に罹りやすいもの又は疾患が予防されるものだけでなく、既に疾患に罹っているものを含む。
「慢性」投与とは、急性様式とは異なり連続的な様式での薬剤を投与し、初期の治療効果（活性）を長時間に渡って維持することを意味する。「間欠」投与とは、中断無く連続的になされるのではなく、むしろ本質的に周期的になされる処理である。
治療の対象のための「哺乳動物」は、ヒト、家庭及び農業用動物、動物園、スポーツ、又はペット動物、例えばイヌ、ネコ、ウシ、ウマ、ヒツジ、ブタ、ウサギなどを含む哺乳類に分類される任意の動物を意味する。好ましくは、哺乳動物はヒトである。
１つ又は複数の治療薬と「組み合わせた」投与とは、同時（同時期）及び任意の順序での連続した投与を含む。
【００４２】
ここで用いられる「担体」は、製薬的に許容されうる担体、賦形剤、又は安定化剤を含み、用いられる用量及び濃度でそれらに暴露される細胞又は哺乳動物に対して非毒性である。生理学的に許容されうる担体は、水性ｐＨ緩衝溶液であることが多い。生理学的に許容されうる担体の例は、リン酸塩、クエン酸塩、及び他の有機酸塩のバッファー；アスコルビン酸を含む酸化防止剤；低分子量（約１０残基未満）ポリペプチド；タンパク質、例えば血清アルブミン、ゼラチン、又は免疫グロブリン；疎水性ポリマー、例えばポリビニルピロリドン；アミノ酸、例えばグリシン、グルタミン、アスパラギン、アルギニン又はリシン；グルコース、マンノース又はデキストランを含む単糖類、二糖類、及び他の炭水化物；ＥＤＴＡ等のキレート剤；マンニトール又は祖ルビトール等の糖アルコール；ナトリウム等の塩形成対イオン；及び／又は非イオン性界面活性剤、例えば、ＴＷＥＥＮ（商品名）、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、及びＰＬＵＲＯＮＩＣＳ（商品名）を含む。
【００４３】
「抗体断片」は、無傷の抗体の一部、好ましくは無傷の抗体の抗原結合又は可変領域を含む。抗体断片の例は、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、及びＦｖ断片；ダイアボディ（ｄｉａｂｏｄｉｅｓ）；直鎖状抗体（Ｚａｐａｔａら， Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇ． ８（１０）： １０５７−１０６２ ［１９９５］）；一本鎖抗体分子；及び抗体断片から形成された多重特異性抗体を含む。
抗体のパパイン消化は、「Ｆａｂ」断片と呼ばれる２つの同一の抗体結合断片を生成し、その各々は単一の抗原結合部位を持ち、残りは容易に結晶化する能力を反映して「Ｆｃ」断片と命名される。ペプシン処理はＦ（ａｂ’）２断片を生じ、それは２つの抗原結合部位を持ち、抗原を交差結合することができる。
【００４４】
「Ｆｖ」は、完全な抗原認識及び結合部位を含む最小の抗体断片である。この領域は、密接に非共有結合した１本の重鎖と１本の軽鎖の可変領域の二量体からなる。この配置において各ドメインの３つのＣＤＲが相互作用してＶＨ−ＶＬに量体の表面に抗原結合部位を決定する。正しくは、６つのＣＤＲが抗体に対する抗原結合特異性を与える。しかしながら、単一の可変ドメイン（又は抗原に特異的な３つのＣＤＲのみを含んでなるＦｖの半分）でさえ、結合部位全体よりは低い親和性であるが、抗原を認識し結合する能力を持つ。
【００４５】
また、Ｆａｂ断片は、軽鎖の定常ドメイン及び重鎖の第１の定常ドメイン（ＣＨ１）も含む。Ｆａｂ断片は、抗体ヒンジ領域からの１つ又は複数のシステインを含む重鎖ＣＨ１ドメインのカルボキシ末端に幾つかの残基が付加されていることによってＦａｂ’断片と相違する。ここで、Ｆａｂ’−ＳＨは、定常ドメインのシステイン残基が遊離のチオール基を持つＦａｂ’を表す。Ｆ（ａｂ’）２抗体断片は、最初はＦａｂ’断片の対として生成され、それらの間にヒンジシステインを有する。抗体断片の他の化学的結合も知られている。
【００４６】
任意の脊椎動物種からの抗体（免疫グロブリン）の「軽鎖」は、それらの定常ドメインのアミノ酸配列に基づいて、カッパ及びラムダと呼ばれる二つの明らかに異なる型の一方に分類される。
それらの重鎖の定常ドメインのアミノ酸配列によって、免疫グロブリンは異なるクラスに分類できる。免疫グロブリンの五つの主要なクラス：ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ及びＩｇＭがあり、それらの幾つかは更にサブクラス（アイソタイプ）、例えばＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ及びＩｇＡ２に分類される。
「一本鎖Ｆｖ」又は「ｓＦｖ」抗体断片は、抗体のＶＨ及びＶＬドメインを含む抗体断片を含み、これらのドメインは単一のポリペプチド鎖に存在する。好ましくは、Ｆｖポリペプチドは、ｓＦｖが抗原結合とって望ましい構造の形成を可能にする、ＶＨ及びＶＬドメイン間のポリペプチドリンカーを更に含む。ｓＦｖの概説については、Ｔｈｅ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ， ｖｏｌ． １１３， Ｒｏｓｅｎｂｕｒｇ及びＭｏｏｒｅ編， Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， ｐｐ． ２６９−３１５ （１９９４）のＰｌｕｃｋｔｈｕｎを参照のこと。
【００４７】
用語「ダイアボディ（ｄｉａｂｏｄｉｅｓ）」は、二つの抗原結合部位を持つ小型の抗体断片を指し、その断片は同じポリペプチド鎖（ＶＨ−ＶＬ）内で軽鎖可変ドメイン（ＶＬ）に結合した重鎖可変ドメイン（ＶＨ）を含む。同じ鎖の二つのドメイン間に対形成するには短すぎるリンカーを用いることにより、ドメインは強制的に他の鎖の相補的ドメインと対形成して二つの抗原結合部位を生成する。ダイアボディは、例えば、欧州特許第４０４，０９７号；国際公開９３／１１１６１；及びＨｏｌｌｉｎｇｅｒら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ９０： ６４４４−６４４８ （１９９３）で十分に記載されている。
【００４８】
「単離された」抗体は、その自然環境の成分から同定され分離及び／又は回収されたものである。その自然環境の夾雑成分とは、その抗体の診断又は治療への使用を妨害する物質であり、酵素、ホルモン、及び他のタンパク質様又は非タンパク質様溶質が含まれる。好ましい実施態様において、抗体は、（１）ローリー法で測定した場合９５％を越える抗体、最も好ましくは９９重量％を越えるまで、（２）スピニングカップシークエネーターを使用することにより、少なくとも１５残基のＮ末端あるいは内部アミノ酸配列を得るのに十分なほど、又は（３）クーマシーブルーあるいは好ましくは銀染色を用いた非還元又は還元条件下でのＳＤＳ−ＰＡＧＥによって均一となるまで精製される。単離された抗体には、抗体の自然環境の少なくとも１つの成分が存在しないため、組換え細胞内のインサイツの抗体が含まれる。しかしながら、通常は、単離された抗体は少なくとも１つの精製工程により調製される。
【００４９】
「特異的に結合する」又は「に対して特異的」抗体、又は特定のポリペプチド又は特定のポリペプチド上のエピトープへ特異的な抗体とは、他のポリペプチド又はポリペプチドエピトープとは実質的に結合せずに、特定のポリペプチド又は特定のポリペプチド上のエピトープへ結合するものである。
「標識」なる語は、ここで用いられる場合、「標識」抗体が生成されるように、抗体に直接又は間接的に抱合している検出可能な化合物又は組成物を意味する。標識は、それ自身検出可能でもよく（例えば、放射性標識又は蛍光標識）、又は酵素標識の場合、検出可能な基質化合物又は組成物の化学変換を触媒してもよい。
【００５０】
「固相」とは、本発明の抗体がそれに付着することのできる非水性マトリクスを意味する。ここに意図する固相の例は、部分的又は全体的に、ガラス（例えば、孔制御ガラス）、多糖類（例えばアガロース）、ポリアクリルアミド、ポリスチレン、ポリビニルアルコール及びシリコーンから形成されたものを含む。或る種の実施態様では、内容に応じて、固相はアッセイプレートのウェルを構成することができ；その他では精製カラム（例えばアフィニティクロマトグラフィーカラム）とすることもできる。また、この用語は、米国特許第４，２７５，１４９号に記載のような、別々の粒子の不連続な固相も含む。
【００５１】
「リポソーム」は、種々の型の脂質、リン脂質及び／又は界面活性剤からなる小型の小胞であり、哺乳動物への薬物（ＩＬ−２２ポリペプチド又はその抗体など）の輸送に有用である。リポソームの成分は、通常は生体膜の脂質配列に類似する二層形式に配列させる。
「小分子」とは、ここで、約５００ダルトン未満の分子量を持つと定義される。
ここで開示されたポリペプチドの「有効量」、或いはそのアゴニスト又はアンタゴニストとは、特別に言及された目的を実行するために十分な量のことである。「有効量」とは、言及された目的に関連して、経験的及び常套的方法によって決定することができる。
ここで定義される「活性化した膵臓」とは、膵臓の消化酵素が活性化して膵臓組織を攻撃し始める場合をである。
「生物活性分子」とは、ここで毒素、放射標識又は抗体として定義される。
【００５２】
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【００５３】
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【００５４】
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【００５５】
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【００５６】
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【００５７】
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【００５８】
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【００５９】
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【００６０】
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【００６１】
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【００６２】
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【００６３】
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【００６４】
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【００６５】
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【００６６】
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【００６７】
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【００６８】
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【００６９】
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【００７０】
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【００７１】
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【００７２】
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【００７３】
ＩＩ． 本発明の組成物と方法
Ａ．完全長ＩＬ−２２ポリペプチド
本発明は、本出願でＩＬ−２２ポリペプチドと呼ばれるポリペプチドをコードする新規に同定され単離された核酸配列を提供する。特に、下記の実施例でさらに詳細に説明するように、種々のＩＬ−２２ポリペプチドをコードするｃＤＮＡが同定され単離された。別々の発現ラウンドで生成されたタンパク質には異なるＩＬ−２２番号が与えられるが、ＵＮＱ番号は全ての与えられたＤＮＡ及びコード化タンパク質に独特であり、変わることはないことを記しておく。しかし、単純化のために、本明細書において、ここに開示した完全長天然核酸分子にコードされるタンパク質並びに上記のＩＬ−２２の定義に含まれるさらなる天然相同体及び変異体は、それらの起源又は調製形式に関わらず「ＩＬ−２２」で呼称する。
【００７４】
下記の実施例に開示するように、種々のｃＤＮＡクローンがＡＴＣＣに寄託されている。これらのクローンの正確なヌクレオチド配列は、この分野で日常的な方法を用いて寄託されたクローンを配列決定することにより容易に決定することができる。予測されるアミノ酸配列は、ヌクレオチド配列から常套的技量を用いて決定できる。ここに記載したＩＬ−２２ポリペプチド及びコード化核酸について、本出願人は、現時点で入手可能な配列情報と最も良く一致するリーディングフレームであると考えられるものを同定した。
【００７５】
Ｂ．ＩＬ−２２ポリペプチド変異体
ここに記載した完全長天然配列ＩＬ−２２ポリペプチドに加えて、ＩＬ−２２変異体も調製できると考えられる。ＩＬ−２２変異体は、ＩＬ−２２ＤＮＡに適当なヌクレオチド変化を導入することにより、及び／又は所望のＩＬ−２２ポリペプチドを合成することにより調製できる。当業者は、グリコシル化部位の数又は位置の変化あるいは膜固着特性の変化などのアミノ酸変化がＩＬ−２２ポリペプチドの翻訳後プロセスを変えうることを理解するであろう。
【００７６】
ここに記載した天然完全長配列ＩＬ−２２又はＩＬ−２２ポリペプチドの種々のドメインにおける変異は、例えば、米国特許第５，３６４，９３４号に記載されている保存的及び非保存的変異に関する任意の技術及び指針を用いてなすことができる。変異は、結果として天然配列ＩＬ−２２と比較してＩＬ−２２ポリペプチドのアミノ酸配列が変化するＩＬ−２２ポリペプチドをコードする１つ又は複数のコドンの置換、欠失又は挿入であってもよい。場合によっては、変異はＩＬ−２２ポリペプチドの１つ又は複数のドメインの任意の他のアミノ酸による少なくとも１つのアミノ酸の置換である。いずれのアミノ酸残基が所望の活性に悪影響を与えることなく挿入、置換又は欠失されるかの指針は、ＩＬ−２２ポリペプチドの配列をホモロジーの知られたタンパク質分子の配列と比較し、ホモロジーの高い領域内でなされるアミノ酸配列変化を最小にすることによって見出される。アミノ酸置換は、１つのアミノ酸の類似した構造及び／又は化学特性を持つ他のアミノ酸での置換、例えばロイシンのセリンでの置換、即ち保存的アミノ酸置換の結果とすることができる。挿入及び欠失は、場合によっては１から５のアミノ酸の範囲内とすることができる。許容される変異は、配列においてアミノ酸の挿入、欠失又は置換を系統的に作成し、得られた変異体を完全長又は成熟天然配列によって示される活性に関して試験するこよによって決定し得る。
【００７７】
ＩＬ−２２ポリペプチド断片がここに提供される。このような断片は、例えば、完全長天然タンパク質と比較した際に、Ｎ−末端又はＣ−末端で切断されてもよく、又は内部残基を欠いていてもよい。或る種の断片は、ＩＬ−２２ポリペプチドの所望の生物学的活性に必須ではないアミノ酸残基を欠いている。
ＩＬ−２２断片は、任意の多数の従来技術によって調製してもよい。所望のペプチド断片は化学合成してもよい。代替的方法は、酵素的消化、例えば特定のアミノ酸残基によって決定される部位のタンパク質を切断することが知られた酵素でタンパク質を処理することにより、あるいは適当な制限酵素でＤＮＡを消化して所望の断片を単離することによるＩＬ−２２断片の生成を含む。さらに他の好適な技術は、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）により、所望のポリペプチド断片をコードするＤＮＡ断片を単離し増幅することを含む。ＤＮＡ断片の所望の末端を規定するオリゴヌクレオチドは、ＰＣＲの５’及び３’プライマーで用いられる。好ましくは、ＩＬ−２２ポリペプチド断片は、ここに開示した天然ＩＬ−２２ポリペプチドと少なくとも１つの生物学的及び／又は免疫学的活性を共有する。
【００７８】
特別の実施態様では、対象とする保存的置換を、好ましい置換を先頭にして表６に示す。このような置換が生物学的活性の変化をもたらす場合、表６に例示的置換と名前を付けた又は以下にアミノ酸分類でさらに記載するように、より置換的な変化が導入され生成物がスクリーニングされる。
【００７９】
Figure 2004520811
【００８０】
ＩＬ−２２ポリペプチドの機能及び免疫学的同一性の置換的修飾は、（ａ）置換領域のポリペプチド骨格の構造、例えばシート又はら旋構造、（ｂ）標的部位の電荷又は疎水性、又は（ｃ）側鎖の嵩を維持しながら、それらの効果において実質的に異なる置換基を選択することにより達成される。天然発生残基は共通の側鎖特性に基づいてグループに分けることができる：
（１）疎水性：ノルロイシン， ｍｅｔ， ａｌａ， ｖａｌ， ｌｅｕ， ｉｌｅ；
（２）中性の親水性：ｃｙｓ， ｓｅｒ， ｔｈｒ；
（３）酸性：ａｓｐ， ｇｌｕ；
（４）塩基性：ａｓｎ， ｇｌｎ， ｈｉｓ， ｌｙｓ， ａｒｇ；
（５）鎖配向に影響する残基：ｇｌｙ， ｐｒｏ； 及び
（６）芳香族：ｔｒｐ， ｔｙｒ， ｐｈｅ。
【００８１】
非保存的置換は、これらの分類の一つのメンバーを他の分類に交換することを必要とするであろう。また、そのように置換された残基は、保存的置換部位、好ましくは残された（非保存）部位に導入され得る。
変異は、オリゴヌクレオチド媒介（部位特異的）突然変異誘発、アラニンスキャンニング、及びＰＣＲ突然変異誘発［Ｃａｒｔｅｒら， Ｎｕｃｌ． Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．， １３： ４３３１ （１９８６）； Ｚｏｌｌｅｒら， Ｎｕｃｌ． Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．， １０： ６４８７ （１９８７）］、カセット突然変異誘発［Ｗｅｌｌｓら， Ｇｅｎｅ， ３４： ３１５ （１９８５）］、制限的選択突然変異誘発［Ｗｅｌｌｓら， Ｐｈｉｌｏｓ． Ｔｒａｎｓ． Ｒ． Ｓｏｃ． Ｌｏｎｄｏｎ ＳｅｒＡ， ３１７： ４１５ （１９８６）］等のこの分野で知られた方法を用いてなすことができ、又は他の知られた技術をクローニングしたＤＮＡに実施してＩＬ−２２変異体ＤＮＡを作成することもできる。
【００８２】
また、隣接配列に沿って１つ又は複数のアミノ酸を同定するのにスキャンニングアミノ酸分析を用いることができる。好ましいスキャンニングアミノ酸は比較的小さく、中性のアミノ酸である。そのようなアミノ酸は、アラニン、グリシン、セリン、及びシステインを含む。アラニンは、ベータ炭素を越える側鎖を排除し変異体の主鎖構造を変化させにくいので、この群の中で典型的に好ましいスキャンニングアミノ酸である［Ｃｕｎｎｉｎｇｈａｍ及びＷｅｌｌｓ， Ｓｃｉｅｎｃｅ， ２４４： １０８１−１０８５ （１９８９）］。最もありふれたアミノ酸であるために、アラニンも典型的には好ましい。さらに、それは埋もれた位置及び露出した位置の両方に見出されることが多い［Ｃｒｅｉｇｈｔｏｎ， Ｔｈｅ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ， （Ｗ．Ｈ． Ｆｒｅｅｍａｎ ＆ Ｃｏ．， Ｎ．Ｙ．）； Ｃｈｏｔｈｉａ， Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ．， １５０：１（１９７６）］。アラニン置換によって十分な量の変異体を生じない場合は、アイソテリック（ｉｓｏｔｅｒｉｃ）アミノ酸を用いることができる。
【００８３】
Ｃ．ＩＬ−２２の修飾
ＩＬ−２２ポリペプチドの共有結合的修飾は本発明の範囲内に含まれる。共有結合的修飾の１つの型は、ＩＬ−２２ポリペプチドの標的とするアミノ酸残基を、ＩＬ−２２ポリペプチドの選択した側鎖又はＮ又はＣ末端残基と反応できる有機誘導体化試薬と反応させることである。例えば、抗−ＩＬ−２２抗体精製方法に使用、あるいはその逆の用途を目的としてＩＬ−２２を水不溶性支持体マトリクス又は表面と架橋させるために、二官能性試薬による誘導体化が有用である。通常用いられる架橋剤は、例えば、１，１−ビス（ジアゾアセチル）−２−フェニルエタン、グルタルアルデヒド、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステル、例えば４−アジドサリチル酸とのエステル、３，３’−ジチオビス（スクシンイミジルプロピオネート）等のジスクシンイミジルエステルを含むホモ二官能性イミドエステル、ビス−Ｎ−マレイミド−１，８−オクタン等の二官能性マレイミド、及びメチル−３−［（ｐ−アジドフェニル）−ジチオ］プロピオイミダート等の試薬を含む。
【００８４】
他の修飾は、グルタミニル及びアスパラギニル残基の各々対応するグルタミル及びアスパルチル残基への脱アミノ化、プロリン及びリシンのヒドロキシル化、セリル又はトレオニル残基のヒドロキシル基のリン酸化、リシン、アルギニン、及びヒスチジン側鎖のα−アミノ基のメチル化［Ｔ．Ｅ． Ｃｒｅｉｇｈｔｏｎ， Ｐｒｏｔｅｉｎｓ： Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ， Ｗ．Ｈ． Ｆｒｅｅｍａｎ ＆ Ｃｏ．， Ｓａｎ Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ， ｐｐ．７９−８６ （１９８３）］、Ｎ末端アミンのアセチル化、及び任意のＣ末端カルボキシル基のアミド化を含む。
本発明の範囲内に含まれるＩＬ−２２ポリペプチドの共有結合的修飾の他の型は、ポリペプチドの天然グリコシル化パターンの変更を含む。「天然グリコシル化パターンの変更」とは、ここで意図されるのは、天然配列ＩＬ−２２に見られる１又は複数の炭水化物部分の欠失（存在するグリコシル化部位の除去又は化学的及び／又は酵素的手段によるグリコシル化の削除のいずれかによる）、及び／又は天然配列ＩＬ−２２に存在しない１又は複数のグリコシル化部位の付加を意味する。さらに、この文節は、存在する種々の炭水化物部分の性質及び特性の変化を含む、天然タンパク質のグリコシル化における定性的変化を含む。
【００８５】
ＩＬ−２２ポリペプチドへのグリコシル化部位の付加はアミノ酸配列の変更を伴ってもよい。この変更は、例えば、１又は複数のセリン又はトレオニン残基の天然配列ＩＬ−２２（Ｏ−結合グリコシル化部位）への付加、又は置換によってなされてもよい。ＩＬ−２２アミノ酸配列は、場合によっては、ＤＮＡレベルでの変化、特に、ＩＬ−２２ポリペプチドをコードするＤＮＡを予め選択した塩基において変異させ、所望のアミノ酸に翻訳されるコドンを生成させることを通して変更されてもよい。
ＩＬ−２２ポリペプチド上に炭水化物部分の数を増加させる他の手段は、グリコシドのポリペプチドへの化学的又は酵素的結合による。このような方法は、この技術分野において、例えば、１９８７年９月１１日に発行された国際公開８７／０５３３０、及びＡｐｌｉｎ及びＷｒｉｓｔｏｎ， ＣＲＣ Ｃｒｉｔ． Ｒｅｖ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．， ｐｐ． ２５９−３０６ （１９８１）に記載されている。
【００８６】
ＩＬ−２２ポリペプチド上に存在する炭水化物部分の除去は、化学的又は酵素的に、あるいはグルコシル化の標的として提示されたアミノ酸残基をコードするコドンの変異的置換によってなすことができる。化学的脱グリコシル化技術は、この分野で知られており、例えば、Ｈａｋｉｍｕｄｄｉｎら， Ａｒｃｈ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｂｉｏｐｈｙｓ．， ２５９：５２ （１９８７）により、及びＥｄｇｅら， Ａｎａｌ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．， １１８： １３１ （１９８１）により記載されている。ポリペプチド上の炭水化物部分の酵素的切断は、Ｔｈｏｔａｋｕｒａら， Ｍｅｔｈ． Ｅｎｚｙｍｏｌ． １３８：３５０ （１９８７）に記載されているように、種々のエンド及びエキソグリコシダーゼを用いることにより達成される。
本発明のＩＬ−２２の共有結合的修飾の他の型は、ＩＬ−２２ポリぺプチドの、種々の非タンパク質様ポリマー、例えばポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、又はポリオキシアルキレンの一つへの、米国特許第４，６４０，８３５号；第４，４９６，６８９号；第４，３０１，１４４号；第４，６７０，４１７号；第４，７９１，１９２号又は第４，１７９，３３７号に記載された方法での結合を含む。
また、本発明のＩＬ−２２ポリペプチドを、他の異種ポリペプチド又はアミノ酸配列に融合したＩＬ−２２ポリペプチドを含むキメラ分子を形成する方法で修飾してもよい。
【００８７】
一実施態様では、このようなキメラ分子は、抗タグ抗体が選択的に結合できるエピトープを提供するタグポリペプチドとＩＬ−２２ポリペプチドとの融合を含む。エピトープタグは、一般的にはＩＬ−２２ポリペプチドのアミノ又はカルボキシル末端に位置する。このようなＩＬ−２２ポリペプチドのエピトープタグ形態の存在は、タグポリペプチドに対する抗体を用いて検出することができる。また、エピトープタグの提供は、抗タグ抗体又はエピトープタグに結合する他の型の親和性マトリクスを用いたアフィニティ精製によってＩＬ−２２ポリペプチドを容易に精製できるようにする。種々のタグポリペプチド及びそれら各々の抗体はこの分野で良く知られている。例としては、ポリ−ヒスチジン（ポリ−ｈｉｓ）又はポリ−ヒスチジン−グリシン（ｐｏｌｙ−ｈｉｓ−ｇｌｙ）タグ；ｆｌｕ ＨＡタグポリペプチド及びその抗体１２ＣＡ５［Ｆｉｅｌｄら， Ｍｏｌ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ．， ８：２１５９−２１６５ （１９８８）］；ｃ−ｍｙｃタグ及びそれに対する８Ｆ９、３Ｃ７、６Ｅ１０、Ｇ４、Ｂ７及び９Ｅ１０抗体［Ｅｖａｎら， Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ａｎｄ Ｃｅｌｌｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， ５：３６１０−３６１６（１９８５）］；及び単純ヘルペスウイルス糖タンパク質Ｄ（ｇＤ）タグ及びその抗体［Ｐａｂｏｒｓｋｙら， Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ， ３（６）：５４７−５５３ （１９９０）］を含む。他のタグポリペプチドは、フラッグペプチド［Ｈｏｐｐら， ＢｉｏＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， ６：１２０４−１２１０（１９８８）］；ＫＴ３エピトープペプチド［Ｍａｒｔｉｎら， Ｓｃｉｅｎｃｅ， ２５５：１９２−１９４ （１９９２）］；α−チューブリンエピトープペプチド［Ｓｋｉｎｎｅｒら， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．， ２６６：１５１６３−１５１６６ （１９９１）］；及びＴ７遺伝子１０タンパク質ペプチドタグ［Ｌｕｔｚ−Ｆｒｅｙｅｒｍｕｔｈら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８７：６３９３−６３９７（１９９０）］を含む。
【００８８】
それに換わる実施態様では、キメラ分子はＩＬ−２２の免疫グロブリン又は免疫グロブリンの特定領域との融合体を含んでもよい。キメラ分子の二価形態（「イムノアドヘシン」とも呼ばれる）については、そのような融合体はＩｇＧ分子のＦｃ領域であり得る。Ｉｇ融合体は、好ましくはＩｇ分子内の少なくとも１つの可変領域に換えてＩＬ−２２ポリペプチドの可溶化（膜貫通ドメイン欠失又は不活性化）形態を含む。特に好ましい実施態様では、免疫グロブリン融合体は、ＩｇＧ１分子のヒンジ、ＣＨ２及びＣＨ３、又はヒンジ、ＣＨ１、ＣＨ２及びＣＨ３領域を含む。免疫グロブリン融合体の製造については、１９９５年６月２７日発行の米国特許第５，４２８，１３０号を参照のこと。
【００８９】
Ｄ．ＩＬ−２２の調製
以下の説明は、主として、ＩＬ−２２核酸を含むベクターで形質転換又はトランスフェクションした細胞を培養することによりＩＬ−２２を産生する方法に関する。もちろん、当該分野においてよく知られている他の方法を用いてＩＬ−２２を調製することができると考えられる。例えば、ＩＬ−２２配列、又はその一部は、固相技術を用いた直接ペプチド合成によって産生してもよい［例えば、Ｓｔｅｗａｒｔら， Ｓｏｌｉｄ−Ｐｈａｓｅ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ， Ｗ．Ｈ． Ｆｒｅｅｍａｎ Ｃｏ．， サン フランシスコ， カリフォルニア（１９６９）；Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄ， Ｊ． Ａｍ． Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ．， ８５：２１４９−２１５４ （１９６３）参照］。手動技術又は自動化によるインビトロタンパク質合成を行ってもよい。自動合成は、例えば、アプライド・バイオシステムズ・ペプチド合成機（フォスター シティー， カリフォルニア）を用いて、製造者の指示により実施してもよい。ＩＬ−２２の種々の部分は、別々に化学的に合成され、化学的又は酵素的方法を用いて結合させて完全長ＩＬ−２２を産生してもよい。
【００９０】
１．ＩＬ−２２をコードするＤＮＡの単離
ＩＬ−２２をコードするＤＮＡは、ＩＬ−２２ｍＲＮＡを保有していてそれを検出可能なレベルで発現すると考えられる組織から調製されたｃＤＮＡライブラリから得ることができる。従って、ヒトＩＬ−２２ＤＮＡは、実施例に記載されるように、ヒトの組織から調製されたｃＤＮＡライブラリから簡便に得ることができる。またＩＬ−２２−コード化遺伝子は、ゲノムライブラリから又は公知の合成方法（例えば、自動化核酸合成）により得ることもできる。
ライブラリは、対象となる遺伝子あるいはその遺伝子によりコードされるタンパク質を同定するために設計されたプローブ（ＩＬ−２２に対する抗体又は少なくとも約２０−８０塩基のオリゴヌクレオチド等）によってスクリーニングできる。選択したプローブによるｃＤＮＡ又はゲノムライブラリのスクリーニングは、例えばＳａｍｂｒｏｏｋら， Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ（Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ： Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ， １９８９）に記載されている標準的な手順を使用して実施することができる。ＩＬ−２２をコードする遺伝子を単離する他の方法はＰＣＲ法を使用するものである［Ｓａｍｂｒｏｏｋら，上掲；Ｄｉｅｆｆｅｎｂａｃｈら， ＰＣＲ Ｐｒｉｍｅｒ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ， １９９５）］。
【００９１】
下記の実施例には、ｃＤＮＡライブラリのスクリーニング技術を記載している。プローブとして選択したオリゴヌクレオチド配列は、十分な長さで、疑陽性が最小化されるよう充分に明瞭でなければならない。オリゴヌクレオチドは、スクリーニングされるライブラリ内のＤＮＡとのハイブリダイゼーション時に検出可能であるように標識されていることが好ましい。標識化の方法は当該分野において良く知られており、３２Ｐ標識されたＡＴＰのような放射線標識、ビオチン化あるいは酵素標識の使用が含まれる。中程度のストリンジェンシー及び高度のストリンジェンシーを含むハイブリダイゼーション条件は、上掲のＳａｍｂｒｏｏｋらに示されている。
このようなライブラリースクリーニング法において同定された配列は、Ｇｅｎｂａｎｋらの公共データベース又は個人の配列データベースに寄託され公衆に利用可能とされている周知の配列と比較及びアラインメントすることができる。分子の決定された領域内又は全長に渡っての（アミノ酸又は核酸レベルのいずれかでの）配列同一性は、当該分野で知られた、及びここに記載した方法を用いて決定することができる。
タンパク質コード化配列を有する核酸は、初めてここで開示された推定アミノ酸配列を使用し、また必要ならば、ｃＤＮＡに逆転写されていないｍＲＮＡの生成中間体及び先駆物質を検出する上掲のＳａｍｂｒｏｏｋらに記述されているような従来のプライマー伸展法を使用して選択したｃＤＮＡ又はゲノムライブラリをスクリーニングすることによって得られる。
【００９２】
２．宿主細胞の選択及び形質転換
宿主細胞を、ここに記載したＩＬ−２２産生のための発現又はクローニングベクターでトランスフェクション又は形質転換し、プロモーターを誘導し、形質転換体を選択し、又は所望の配列をコードする遺伝子を増幅するために適当に変性された常套的栄養培地で培養する。培養条件、例えば培地、温度、ｐＨ等々は、過度の実験をすることなく当業者が選ぶことができる。一般に、細胞培養の生産性を最大にするための原理、プロトコール、及び実用技術は、Ｍａｍｍａｌｉａｎ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ： ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ， Ｍ．Ｂｕｔｌｅｒ編 （ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ， １９９１）及びＳａｍｂｒｏｏｋら， 上掲に見出すことができる。
【００９３】
真核生物細胞トランスフェクション及び原核生物細胞形質転換の方法、例えば、ＣａＣｌ２、ＣａＰＯ４、リポソーム媒介及びエレクトロポレーションは当業者に知られている。用いられる宿主細胞に応じて、その細胞に対して適した標準的な方法を用いて形質転換はなされる。前掲のＳａｍｂｒｏｏｋらに記載された塩化カルシウムを用いるカルシウム処理又はエレクトロポレーションが、一般的に原核生物に対して用いられる。アグロバクテリウム・トゥメファシエンスによる感染が、Ｓｈａｗら， Ｇｅｎｅ， ２３：３１５（１９８３）及び１９８９年６月２９日公開の国際公開８９／０５８５９に記載されているように、或る種の植物細胞の形質転換に用いられる。このような細胞壁のない哺乳動物の細胞に対しては、Ｇｒａｈａｍ及びｖａｎ ｄｅｒ Ｅｂ， Ｖｉｒｏｌｏｇｙ， ５２：４５６−４５７ （１９７８）のリン酸カルシウム沈降法が好ましい。哺乳動物細胞の宿主系形質転換の一般的な態様は米国特許第４，３９９，２１６号に記載されている。酵母への形質転換は、典型的には、Ｖａｎ Ｓｏｌｉｎｇｅｎら， Ｊ． Ｂａｃｔ．， １３０：９４６ （１９７７）及びＨｓｉａｏら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ７６：３８２９ （１９７９）の方法に従って実施される。しかしながら、ＤＮＡを細胞中に導入する他の方法、例えば、核マイクロインジェクション、エレクトロポレーション、無傷の細胞、又はポリカチオン、例えばポリブレン、ポリオルニチン等を用いる細菌プロトプラスト融合もまた用いることもできる。哺乳動物細胞を形質転換するための種々の技術については、Ｋｅｏｗｎら， Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ， １８５：５２７−５３７ （１９９０）及び Ｍａｎｓｏｕｒら， Ｎａｔｕｒｅ， ３３６：３４８−３５２ （１９８８）を参照のこと。
【００９４】
ここに記載のベクターのＤＮＡをクローニング又は発現するために適した宿主細胞は、原核生物、酵母菌、又は高等真核生物細胞である。適した原核生物は、限定するものではないが、真正細菌、例えばグラム陰性又はグラム陽性生物体、例えば大腸菌のような腸内細菌科を含む。種々の大腸菌株が公衆に利用可能であり、例えば、大腸菌Ｋ１２株ＭＭ２９４（ＡＴＣＣ３１，４４６）；大腸菌Ｘ１７７６（ＡＴＣＣ３１，５３７）；大腸菌株Ｗ３１１０（ＡＴＣＣ２７，３２５）及びＫ５７７２（ＡＴＣＣ５３，６３５）である。他の好ましい原核動物宿主細胞は、大腸菌、例えば、Ｅ． ｃｏｌｉ、エンテロバクター、エルビニア（Ｅｒｗｉｎｉａ）、クレブシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ）、プロテウス（Ｐｒｏｔｅｕｓ）、サルモネラ、例えば、ネズミチフス菌、セラチア、例えば、セラチア・マルセサンス（Ｓｅｒｒａｔｉａ ｍａｒｃｅｓｃａｎｓ） 、及び赤痢菌などの腸内細菌科、並びに桿菌、例えばバチルス・スブチルス（Ｂ． ｓｕｂｔｉｌｉｓ）及びバチルス・リチェニフォルミス（Ｂ． ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ）（例えば、１９８９年４月１２日発行のＤＤ２６６，７１０に記載されたバチルス・リチェニフォルミス４１Ｐ）、シュードモナス、例えば緑膿菌及びストレプトマイセスを含む。これらの例は限定ではなく例示である。株Ｗ３１１０は、組換えＤＮＡ生産物発酵のための共通の宿主株であるので一つの特に好ましい宿主又は親宿主である。好ましくは、宿主細胞は最小量のタンパク質分解酵素を分泌する。例えば、株Ｗ３１１０は、細胞に外来のタンパク質をコードする遺伝子における遺伝子変異をするように修飾してもよく、そのような宿主の例としては、完全な遺伝子型ｔｏｎＡを有する大腸菌Ｗ３１１０株１Ａ２；完全な遺伝子型ｔｏｎＡ ｐｔｒ３を有する大腸菌Ｗ３１１０株９Ｅ４；完全な遺伝子型ｔｏｎＡ ｐｔｒ３ ｐｈｏＡ Ｅ１５（ａｒｇＦ−ｌａｃ）１６９ ｄｅｇＰ ｏｍｐＴ ｋａｎｒを有する大腸菌Ｗ３１１０株２７Ｃ７（ＡＴＣＣ ５５，２４４）；完全な遺伝子型ｔｏｎＡ ｐｔｒ３ ｐｈｏＡ Ｅ１５ （ａｒｇＦ−ｌａｃ）１６９ ｄｅｇＰ ｏｍｐＴ ｒｂｓ７ ｉｌｖＧ ｋａｎｒを有する大腸菌Ｗ３１１０株３７Ｄ６；非カナマイシン耐性ｄｅｇＰ欠失変異を持つ３７Ｄ６株である大腸菌Ｗ３１１０株４０Ｂ４；及び１９９０年８月７日発行の米国特許第４，９４６，７８３号に開示された変異周辺質プロテアーゼを有する大腸菌株を含む。あるいは、クローニングのインビトロ法、例えばＰＣＲ又は他の核酸ポリメラーゼ反応が好ましい。
【００９５】
原核生物に加えて、糸状菌又は酵母のような真核微生物は、ＩＬ−２２コード化ベクターのために適したクローニング又は発現宿主である。サッカロマイセス・セレビジエは、通常用いられる下等真核生物宿主微生物である。他に、シ ゾ サ ッ カロマイセ ス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｒｏｍｂｅ）（Ｂｅａｃｈ及びＮｕｒｓｅ， Ｎａｔｕｒｅ， ２９０： １４０ ［１９８１］； １９８５年５月２日発行の欧州特許第１３９，３８３号）；クリュイベロミセス宿主（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ ｈｏｓｔｓ）（米国特許第４，９４３，５２９号； Ｆｌｅｅｒら， Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， ９： ９６８−９７５ （１９９１））、例えばクリュイベロミセス・ラクティス（Ｋ． ｌａｃｔｉｓ）（ＭＷ９８−８Ｃ， ＣＢＳ６８３， ＣＢＳ４５７４； Ｌｏｕｖｅｎｃｏｕｒｔら， Ｊ． Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１５４（２）： ７３７−７４２ ［１９８３］）、クリュイベロミセス・フラギリス（Ｋ． ｆｒａｇｉｌｉｓ）（ＡＴＣＣ １２，４２４）、クリュイベロミセス・ブルガリクス（Ｋ． ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ）（ＡＴＣＣ １６，０４５）、クリュイベロミセス・ウィケラミイ（Ｋ． ｗｉｃｋｅｒａｍｉｉ）（ＡＴＣＣ ２４，１７８）、クリュイベロミセス・ワルチイ（Ｋ． ｗａｌｔｉｉ）（ＡＴＣＣ ５６，５００）、クリュイベロミセス・ドロソフィラルム（Ｋ． ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａｒｕｍ）（ＡＴＣＣ ３６，９０６； Ｖａｎ ｄｅｎ Ｂｅｒｇら， Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， ８： １３５ （１９９０））、クリュイベロミセス・テモトレランス（Ｋ． ｔｈｅｒｍｏｔｏｌｅｒａｎｓ）及びクリュイベロミセス・マルキシアナス（Ｋ． ｍａｒｘｉａｎｕｓ）；ヤロウィア（ｙａｒｒｏｗｉａ）（欧州特許第４０２，２２６号）；ピキア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ）（欧州特許第１８３，０７０号； Ｓｒｅｅｋｒｉｓｈｎａら， Ｊ． Ｂａｓｉｃ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ， ２８： ２６５−２７８ ［１９８８］）；カンジダ；トリコデルマ・レーシア（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｒｅｅｓｉａ）（欧州特許第２４４，２３４号）；アカパンカビ（Ｃａｓｅら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ７６： ５２５９−５２６３ ［１９７９］）；シュワニオマイセス（Ｓｃｈｗａｎｎｉｏｍｙｃｅｓ）、例えばシュワニオマイセス・オクシデンタリス（Ｓｃｈｗａｎｎｉｏｍｙｃｅｓ ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｉｓ）（１９９０年１０月３１日発行の欧州特許第３９４，５３８号）；及び糸状真菌、例えば、ニューロスポラ、ペニシリウム、トリポクラジウム（Ｔｏｌｙｐｏｃｌａｄｉｕｍ）（１９９１年１月１０日発行の国際公開９１／００３５７）；及びアスペルギルス宿主、例えばアスペルギルスニダランス（Ｂａｌｌａｎｃｅら， Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｂｉｏｐｈｙｓ． Ｒｅｓ． Ｃｏｍｍｕｎ．， １１２： ２８４−２８９ ［１９８３］； Ｔｉｌｂｕｒｎら， Ｇｅｎｅ， ２６： ２０５−２２１ ［１９８３］； Ｙｅｌｔｏｎら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８１： １４７０−１４７４ ［１９８４］）及びアスペルギルス・ニガー（Ｋｅｌｌｙ及びＨｙｎｅｓ， ＥＭＢＯ Ｊ．， ４： ４７５−４７９ ［１９８５］）が含まれる。ここで好ましいメチロトロピック（Ｃ１化合物資化性、Ｍｅｔｈｙｌｏｔｒｏｐｉｃ）酵母は、これらに限られないが、ハンセヌラ（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ）、カンジダ、クロエケラ（Ｋｌｏｅｃｋｅｒａ）、ピキア（Ｐｉｃｈｉａ）、サッカロマイセス、トルロプシス（Ｔｏｒｕｌｏｐｓｉｓ）、及びロドトルラ（Ｒｈｏｄｏｔｏｒｕｌａ）からなる属から選択し、メタノールで成長可能な酵母を含む。この酵母の分類の例示である特定の種のリストは、Ｃ． Ａｎｔｈｏｎｙ， Ｔｈｅ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ｏｆ Ｍｅｔｈｙｌｏｔｒｏｐｈｓ， ２６９ （１９８２）に記載されている。
【００９６】
グリコシル化ＩＬ−２２の発現に適した宿主細胞は、多細胞生物から誘導される。無脊椎動物細胞の例としては、植物細胞だけでなくショウジョウバエ（Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ）Ｓ２及びスポドペトラ（Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ ）Ｓｆ９等の昆虫細胞が含まれる。有用な哺乳動物宿主株化細胞の例は、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）及びＣＯＳ細胞を含む。より詳細な例は、ＳＶ４０によって形質転換されたサル腎臓ＣＶ１株 （ＣＯＳ−７，ＡＴＣＣ ＣＲＬ １６５１）；ヒト胚腎臓株（２９３又は懸濁培養での増殖のためにサブクローン化された２９３細胞、Ｇｒａｈａｍら， Ｊ． Ｇｅｎ Ｖｉｒｏｌ．， ３６：５９ （１９７７））；チャイニーズハムスター卵巣細胞／−ＤＨＦＲ（ＣＨＯ， Ｕｒｌａｕｂ及びＣｈａｓｉｎ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ７７：４２１６ （１９８０））；マウスのセルトリ細胞（ＴＭ４， Ｍａｔｈｅｒ， Ｂｉｏｌ． Ｒｅｐｒｏｄ．， ２３：２４３−２５１ （１９８０））ヒト肺細胞 （Ｗ１３８，ＡＴＣＣ ＣＣＬ ７５）； ヒト肝細胞 （Ｈｅｐ Ｇ２，ＨＢ ８０６５）； 及びマウス乳房腫瘍細胞 （ＭＭＴ ０６０５６２，ＡＴＣＣ ＣＣＬ５１）を含む。適した宿主細胞の選択は、この分野の技術常識内にある。
【００９７】
３．複製可能なベクターの選択及び使用
ＩＬ−２２をコードする核酸（例えば、ｃＤＮＡ又はゲノムＤＮＡ）は、クローニング（ＤＮＡの増幅）又は発現のために複製可能なベクター内に挿入される。様々なベクターが公的に入手可能である。ベクターは、例えば、プラスミド、コスミド、ウイルス粒子、又はファージの形態とすることができる。適切な核酸配列が、種々の手法によってベクターに挿入される。一般に、ＤＮＡはこの分野で周知の技術を用いて適当な制限エンドヌクレアーゼ部位に挿入される。ベクター成分としては、一般に、これらに制限されるものではないが、１つ又は複数のシグナル配列、複製開始点、１つ又は複数のマーカー遺伝子、エンハンサーエレメント、プロモーター、及び転写終結配列を含む。これらの成分の１つ又は複数を含む適当なベクターの作成には、当業者に知られた標準的なライゲーション技術を用いる。
【００９８】
ＩＬ−２２は直接的に組換え手法によって産生されるだけではなく、シグナル配列あるいは成熟タンパク質あるいはポリペプチドのＮ−末端に特異的切断部位を有する他のポリペプチドである異種性ポリペプチドとの融合ペプチドとしても産生される。一般に、シグナル配列はベクターの成分であるか、ベクターに挿入されるＩＬ−２２−コード化ＤＮＡの一部である。シグナル配列は、例えばアルカリホスファターゼ、ペニシリナーゼ、ｌｐｐあるいは熱安定性エンテロトキシンＩＩリーダーの群から選択した原核生物シグナル配列であってよい。酵母の分泌に関しては、シグナル配列は、酵母インベルターゼリーダー、アルファ因子リーダー（サッカロマイセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）及びクルイベロマイシス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）α因子リーダーを含み、後者は米国特許第５，０１０，１８２号に記載されている）、又は酸ホスファターゼリーダー、カンジダ・アルビカンス（Ｃ．ａｌｂｉｃａｎｓ）グルコアミラーゼリーダー（１９９０年４月４日発行の欧州特許第３６２１７９号）、又は１９９０年１１月１５日に公開された国際公開９０／１３６４６に記載されているシグナルであり得る。哺乳動物細胞の発現においては、哺乳動物シグナル配列は、同一あるいは関連ある種の分泌ポリペプチド由来のシグナル配列並びにウイルス分泌リーダーのようなタンパク質の直接分泌に使用してもよい。
【００９９】
発現及びクローニングベクターは共に１つ又は複数の選択した宿主細胞においてベクターの複製を可能にする核酸配列を含む。そのような配列は多くの細菌、酵母及びウイルスに対してよく知られている。プラスミドｐＢＲ３２２に由来する複製開始点は大部分のグラム陰性細菌に好適であり、２μプラスミド開始点は酵母に適しており、様々なウイルス開始点（ＳＶ４０、ポリオーマ、アデノウイルス、ＶＳＶ又はＢＰＶ）は哺乳動物細胞におけるクローニングベクターに有用である。
発現及びクローニングベクターは、典型的には、選択可能なマーカーとも称される選択遺伝子を含む。典型的な選択遺伝子は、（ａ）アンピシリン、ネオマイシン、メトトレキセートあるいはテトラサイクリンのような抗生物質あるいは他の毒素に耐性を与え、（ｂ）栄養要求性欠陥を補い、又は（ｃ）複合培地から得られない重要な栄養素を供給するタンパク質をコードしており、例えばバシリのＤ−アラニンラセマーゼをコードする遺伝子である。
【０１００】
哺乳動物細胞に適した選択可能なマーカーの例は、ＤＨＦＲあるいはチミジンキナーゼのようにＩＬ−２２−コード化核酸を取り込むことのできる細胞成分を同定することのできるものである。野生型ＤＨＦＲを用いた場合の好適な宿主細胞は、Ｕｒｌａｕｂらにより Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ７７：４２１６ （１９８０）に記載されているようにして調製され増殖されたＤＨＦＲ活性に欠陥のあるＣＨＯ株化細胞である。酵母での使用に好適な選択遺伝子は酵母プラスミドＹＲｐ７に存在するｔｒｐ１遺伝子である［Ｓｔｉｎｃｈｃｏｍｂら， Ｎａｔｕｒｅ， ２８２：３９（１９７９）；Ｋｉｎｇｓｍａｎら， Ｇｅｎｅ， ７：１４１（１９７９）；Ｔｓｃｈｅｍｐｅｒら， Ｇｅｎｅ， １０：１５７（１９８０）］。ｔｒｐ１遺伝子は、例えば、ＡＴＣＣ番号４４０７６あるいはＰＥＰ４−１のようなトリプトファンで成長する能力を欠く酵母の突然変異株のための選択マーカーを提供する［Ｊｏｎｅｓ， Ｇｅｎｅｔｉｃｓ， ８５：１２ （１９７７）］。
発現及びクローニングベクターは、通常、ＩＬ−２２−コード化核酸配列に作用可能に結合し、ｍＲＮＡ合成を制御するプロモーターを含む。種々の可能な宿主細胞により認識される好適なプロモーターが知られている。原核生物宿主で使用するのに適したプロモーターはβ−ラクタマーゼ及びラクトースプロモーター系［Ｃｈａｎｇら， Ｎａｔｕｒｅ， ２７５：６１５ （１９７８）； Ｇｏｅｄｄｅｌら， Ｎａｔｕｒｅ， ２８１：５４４ （１９７９）］、アルカリホスファターゼ、トリプトファン（ｔｒｐ）プロモーター系［Ｇｏｅｄｄｅｌ， Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．， ８：４０５７ （１９８０）； 欧州特許第３６，７７６号］、及びハイブリッドプロモーター、例えばｔａｃプロモーター［ｄｅＢｏｅｒら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８０：２１−２５ （１９８３）］を含む。細菌系で使用するプロモータもまたＩＬ−２２をコードするＤＮＡと作用可能に結合したシャイン−ダルガーノ（Ｓ．Ｄ．）配列を有する。
【０１０１】
酵母宿主で使用するのに適したプロモーター配列の例としては、３−ホスホグリセラートキナーゼ［Ｈｉｔｚｅｍａｎ ら， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．， ２５５：２０７３ （１９８０）］又は他の糖分解酵素［Ｈｅｓｓ ら， Ｊ． Ａｄｖ． Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｇ．， ７：１４９ （１９６８）；Ｈｏｌｌａｎｄ， Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， １７：４９００（１９８７）］、例えばエノラーゼ、グリセルアルデヒド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸デカルボキシラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース−６−リン酸イソメラーゼ、３−ホスホグリセレートムターゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオセリン酸イソメラーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ、及びグルコキナーゼが含まれる。
他の酵母プロモーターとしては、成長条件によって転写が制御される付加的効果を有する誘発的プロモーターであり、アルコールデヒドロゲナーゼ２、イソチトクロムＣ、酸ホスファターゼ、窒素代謝と関連する分解性酵素、メタロチオネイン、グリセルアルデヒド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ、及びマルトース及びガラクトースの利用を支配する酵素のプロモーター領域がある。酵母での発現に好適に用いられるベクターとプロモータは欧州特許第７３，６５７号に更に記載されている。
【０１０２】
哺乳動物の宿主細胞におけるベクターからのＩＬ−２２転写は、例えば、ポリオーマウィルス、伝染性上皮腫ウィルス（１９８９年７月５日公開のＵＫ２，２１１，５０４）、アデノウィルス（例えばアデノウィルス２）、ウシ乳頭腫ウィルス、トリ肉腫ウィルス、サイトメガロウィルス、レトロウィルス、Ｂ型肝炎ウィルス及びサルウィルス４０（ＳＶ４０）のようなウィルスのゲノムから得られるプロモーター、異種性哺乳動物プロモーター、例えばアクチンプロモーター又は免疫グロブリンプロモーター、及び熱衝撃プロモーターから得られるプロモーターによって、このようなプロモーターが宿主細胞系に適合し得る限り制御される。
より高等の真核生物による所望のＩＬ−２２をコードするＤＮＡの転写は、ベクターにエンハンサー配列を挿入することによって増強され得る。エンハンサーは、通常は約１０から３００塩基対で、プロモーターに作用してその転写を増強するＤＮＡのシス作動要素である。哺乳動物遺伝子由来の多くのエンハンサー配列が現在知られている（グロビン、エラスターゼ、アルブミン、α−フェトプロテイン及びインスリン）。しかしながら、典型的には、真核細胞ウィルス由来のエンハンサーが用いられるであろう。例としては、複製起点の後期側のＳＶ４０エンハンサー（１００−２７０塩基対）、サイトメガロウィルス初期プロモーターエンハンサー、複製起点の後期側のポリオーマエンハンサー及びアデノウィルスエンハンサーが含まれる。エンハンサーは、ＩＬ−２２コード化配列の５’又は３’位でベクターにスプライシングされ得るが、好ましくはプロモーターから５’位に位置している。
【０１０３】
また真核生物宿主細胞（酵母、真菌、昆虫、植物、動物、ヒト、又は他の多細胞生物由来の有核細胞）に用いられる発現ベクターは、転写の終結及びｍＲＮＡの安定化に必要な配列も含む。このような配列は、真核生物又はウィルスのＤＮＡ又はｃＤＮＡの通常は５’、時には３’の非翻訳領域から取得できる。これらの領域は、ＩＬ−２２をコードするｍＲＮＡの非翻訳部分にポリアデニル化断片として転写されるヌクレオチドセグメントを含む。
組換え脊椎動物細胞培養でのＩＬ−２２の合成に適応化するのに適切な他の方法、ベクター及び宿主細胞は、Ｇｅｔｈｉｎｇら， Ｎａｔｕｒｅ， ２９３：６２０−６２５ （１９８１）； Ｍａｎｔｅｉら， Ｎａｔｕｒｅ， ２８１：４０−４６ （１９７９）；欧州特許第１１７，０６０号；及び欧州特許第１１７，０５８号に記載されている。
【０１０４】
４．遺伝子増幅／発現の検出
遺伝子の増幅及び／又は発現は、ここで提供された配列に基づき、適切に標識されたプローブを用い、例えば、従来よりのサザンブロット法、ｍＲＮＡの転写を定量化するノーザンブロット法［Ｔｈｏｍａｓ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ，７７：５２０１−５２０５ （１９８０）］、ドットブロット法（ＤＮＡ分析）、又はインサイツハイブリダイゼーション法によって、直接的に試料中で測定することができる。あるいは、ＤＮＡ二本鎖、ＲＮＡ二本鎖及びＤＮＡ−ＲＮＡハイブリッド二本鎖又はＤＮＡ−タンパク二本鎖を含む、特異的二本鎖を認識することができる抗体を用いることもできる。次いで、抗体を標識し、アッセイを実施することができ、ここで二本鎖は表面に結合しており、その結果二本鎖の表面での形成の時点でその二本鎖に結合した抗体の存在を検出することができる。
【０１０５】
あるいは、遺伝子の発現は、遺伝子産物の発現を直接的に定量する免疫学的な方法、例えば細胞又は組織切片の免疫組織化学的染色及び細胞培養又は体液のアッセイによって測定することもできる。試料液の免疫組織化学的染色及び／又はアッセイに有用な抗体は、モノクローナルでもポリクローナルでもよく、任意の哺乳動物で調製することができる。簡便には、抗体を、天然配列ＩＬ−２２ポリペプチドに対して、又はここで提供されるＤＮＡ配列をベースとした合成ペプチドに対して、又はＩＬ−２２ ＤＮＡに融合し特異的抗体エピトープをコードする外因性配列に対して調製してもよい。
【０１０６】
５．ポリペプチドの精製
ＩＬ−２２の形態は、培養培地又は宿主細胞可溶化液から回収することができる。膜結合性であるならば、適切な洗浄液（例えばトリトン−Ｘ１００）又は酵素的切断を用いて膜から引き離すことができる。ＩＬ−２２の発現に用いられた細胞は、凍結融解サイクル、超音波処理、機械的破壊、又は細胞溶解剤などの種々の化学的又は物理的手段によって破壊することができる。
【０１０７】
ＩＬ−２２を、組換え細胞タンパク又はポリペプチドから精製することが望ましい。次の方法は、適切な精製手法の典型である：イオン交換カラムでの分画；エタノール沈殿；逆相ＨＰＬＣ；シリカ又はカチオン交換樹脂、例えばＤＥＡＥによるクロマトグラフィー；クロマトフォーカシング；ＳＤＳ−ＰＡＧＥ；硫酸アンモニウム沈殿；例えばセファデックスＧ−７５を用いるゲル濾過；ＩｇＧのような夾雑物を除くプロテインＡセファロースカラム；及びＩＬ−２２のエピトープタグ形態を結合させる金属キレート化カラムである。この分野で知られ、例えば、Ｄｅｕｔｓｃｈｅｒ， Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ， １８２（１９９０）；Ｓｃｏｐｅｓ， Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ： Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ， Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ （１９８２）に記載された多くのタンパク質精製方法を用いることができる。選ばれる精製過程は、例えば、用いられる生産方法及び特に産生される特定のＩＬ−２２の性質に依存する。
【０１０８】
Ｅ．ＩＬ−２２の用途
ＩＬ−２２をコードする核酸配列（又はそれらの補体）は、ハイブリダイゼーションプローブとしての使用を含む分子生物学の分野において、染色体及び遺伝子マッピングにおいて、及びアンチセンスＲＮＡ及びＤＮＡの生成において種々の用途を有している。また、ＩＬ−２２核酸も、ここに記載される組換え技術によるＩＬ−２２ポリペプチドの調製に有用である。
【０１０９】
完全長天然配列ＩＬ−２２遺伝子又はその一部は、全長ＩＬ−２２ｃＤＮＡの単離又はここに開示した天然ＩＬ−２２配列に対して所望の配列同一性を持つ更に他のｃＤＮＡ（例えば、他の種からのＩＬ−２２の天然発生変異体又はＩＬ−２２をコードするもの）の単離のためのｃＤＮＡライブラリ用のハイブリダイゼーションプローブとして使用できる。場合によっては、プローブの長さは約２０〜約５０塩基である。ハイブリダイゼーションプローブは、少なくとも部分的に完全長天然ヌクレオチド配列の新規な領域から誘導してもよく、それらの領域は、過度の実験をすることなく、天然配列ＩＬ−２２のプロモーター、エンハンサー成分及びイントロンを含むゲノム配列から誘導され得る。例えば、スクリーニング法は、周知のＤＮＡ配列を用いてＩＬ−２２遺伝子のコード化領域を単離し、約４０塩基の選抜プローブを合成することを含む。ハイブリダイゼーションプローブは、３２Ｐ又は３５Ｓ等の放射性ヌクレオチド、又はアビディン／ビオチン結合系を介してプローブに結合したアルカリホスファターゼ等の酵素標識を含む種々の標識で標識してもよい。本発明のＩＬ−２２遺伝子に相補的な配列を有する標識されたプローブは、ヒトｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ又はｍＲＮＡのライブラリーをスクリーニングし、そのライブラリーの何れのメンバーがプローブにハイブッド形成するかを決定するのに使用できる。ハイブリダイゼーション技術は、以下の実施例において更に詳細に記載する。
【０１１０】
本出願で開示する任意のＥＳＴはプローブと同様に、ここに記載した方法で用いることができる。
ＩＬ−２２核酸の他の有用な断片は、標的ＩＬ−２２ ｍＲＮＡ（センス）又はＩＬ−２２ ＤＮＡ（アンチセンス）配列に結合できる一本鎖核酸配列（ＲＮＡ又はＤＮＡのいずれか）を含むアンチセンス又はセンスオリゴヌクレオチドを含む。アンチセンス又はセンスオリゴヌクレオチドは、本発明によると、ＩＬ−２２ ＤＮＡのコード化領域の断片を含む。このような断片は、一般的には少なくとも約１４ヌクレオチド、好ましくは約１４から３０ヌクレオチドを含む。与えられたタンパク質をコードするｃＤＮＡ配列に基づいて、アンチセンス又はセンスオリゴヌクレオチドを得る能力は、例えば、Ｓｔｅｉｎ及びＣｏｈｅｎ（Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ４８： ２６５９： １９８８）及び ｖａｎ ｄｅｒ Ｋｒｏｌら，（ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ６： ９５８， １９８８）に記載されている。
【０１１１】
アンチセンス又はセンスオリゴヌクレオチドの標的核酸配列への結合は二重鎖の形成をもたらし、それは、二重鎖の分解の促進、転写又は翻訳の期外停止を含む幾つかの方法の一つ、又は他の方法により、標的配列の転写又は翻訳を阻止する。よって、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、ＩＬ−２２タンパク質の発現を阻止するのに用いられる。アンチセンス又はセンスオリゴヌクレオチドは、修飾糖−ホスホジエステル骨格（又は他の糖結合、国際公開９１／０６６２９に記載のもの等）を有するオリゴヌクレオチドをさらに含み、そのような糖結合は内因性ヌクレアーゼ耐性である。そのような耐性糖結合を持つオリゴヌクレオチドは、インビボで安定であるが（即ち、酵素分解に耐えうるが）、標的ヌクレオチド配列に結合できる配列特異性は保持している。
センス又はアンチセンスオリゴヌクレオチドの他の例は、国際公開９０／１００４８に記載されているもののような、有機部分、及びオリゴヌクレオチドの標的核酸配列への親和性を向上させる他の部分、例えばポリ−（Ｌ−リジン）に共有結合したオリゴヌクレオチドを含む。さらにまた、エリプチシン等の挿入剤、アルキル化剤又は金属錯体をセンス又はアンチセンスオリゴヌクレオチドに結合させ、アンチセンス又はセンスオリゴヌクレオチドの標的ヌクレオチド配列への結合特異性を改変してもよい。
【０１１２】
アンチセンス又はセンスオリゴヌクレオチドは、例えば、ＣａＰＯ４−媒介ＤＮＡトランスフェクション、エレクトロポレーションを含む任意の遺伝子転換方法により、又はエプスタイン−バーウイルスなどの遺伝子転換ベクターを用いることにより、標的核酸配列を含む細胞に導入される。好ましい方法では、アンチセンス又はセンスオリゴヌクレオチドは、適切なレトロウイルスベクターに挿入される。標的核酸配列を含む細胞は、インビボ又はエキソビボで組換えレトロウイルスベクターに接触させる。好適なレトロウイルスベクターは、これらに限られないが、マウスレトロウイルスＭ−ＭｕＬＶから誘導されるもの、Ｎ２（Ｍ−ＭｕＬＶから誘導されたレトロウイルス）、又はＤＣＴ５Ａ、ＤＣＴ５Ｂ及びＤＣＴ５Ｃと命名されたダブルコピーベクター（国際公開９０／１３６４１参照）を含む。
また、センス又はアンチセンスオリゴヌクレオチドは、国際公開９１／０４７５３に記載されているように、リガンド結合分子との複合体の形成により標的配列を含む細胞に導入してもよい。適切なリガンド結合分子は、これらに限られないが、細胞表面レセプター、成長因子、他のサイトカイン、又は細胞表面レセプターに結合する他のリガンドを含む。好ましくは、リガンド結合分子の複合体形成は、リガンド結合分子がその対応する分子又はレセプターに結合する、あるいはセンス又はアンチセンスオリゴヌクレオチド又はその複合体の細胞への侵入を阻止する能力を実質的に阻害しない。
【０１１３】
あるいは、センス又はアンチセンスオリゴヌクレオチドは、国際公開９０／１０４４８に記載されたように、オリゴヌクレオチド−脂質複合体の形成により標的核酸配列を含む細胞に導入してもよい。センス又はアンチセンスオリゴヌクレオチド−脂質複合体は、好ましくは内因性リパーゼにより細胞内で分解される。
アンチセンス又はセンスＲＮＡ又はＤＮＡ分子は一般に少なくとも約５塩基長、約１０塩基長、約１５塩基長、約２０塩基長、約２５塩基長、約３０塩基長、約３５塩基長、約４０塩基長、約４５塩基長、約５０塩基長、約５５塩基長、約６０塩基長、約６５塩基長、約７０塩基長、約７５塩基長、約８０塩基長、約８５塩基長、約９０塩基長、約９５塩基長、約１００塩基長、あるいはそれ以上である。
【０１１４】
密接に関連したＩＬ−２２コード化配列の同定のための配列のプールを作成するために、このプローブもＰＣＲ技術に用いてもよい。
ＩＬ−２２をコードする遺伝子のマッピングのため、及び遺伝子疾患を持つ個体の遺伝子分析のためのハイブリダイゼーションプローブの作成のために、ＩＬ−２２をコードするヌクレオチド配列も使用することができる。インサイツハイブリダイゼーション、既知の染色体マーカーに対する連鎖分析、及びライブラリーのハイブリダイゼーションスクリーニング等の周知の技術を用いて、ここに提供されるヌクレオチド配列はを染色体及び染色体の特定領域にマッピングし得る。
【０１１５】
ＩＬ−２２のコード化配列が他のタンパク質に結合するタンパク質をコードする場合（例えば、ＩＬ−２２がレセプターである場合）、ＩＬ−２２を結合相互作用に関与している他のタンパク質又は分子を同定するためのアッセイに用いることができる。このような方法により、レセプター／リガンド結合性相互作用の阻害剤を同定することができる。このような結合性相互作用に含まれるタンパク質も、ペプチド又は小分子阻害剤又は結合性相互作用のアゴニストのスクリーニングに用いることができる。また、レセプターＩＬ−２２は関連するリガンドの単離にも使用できる。天然ＩＬ−２２又はＩＬ−２２のレセプターの生物学的活性を模倣するリード化合物を見出すために、スクリーニングアッセイを設計することができる。そのようなスクリーニングアッセイは、化学的ライブラリーの高スループットスクリーニングに従うアッセイを含み、そのアッセイを小分子候補薬剤の同定に特に適したものにする。予想される小分子は、合成有機又は無機化合物を含む。このアッセイは、この分野で良く知られ特徴付けられているタンパク質−タンパク質結合アッセイ、生物学的スクリーニングアッセイ、免疫検定及び細胞ベースのアッセイを含む種々の型式で実施される。
【０１１６】
また、ＩＬ−２２又はその任意の修飾型をコードする核酸は、トランスジェニック動物又は「ノックアウト」動物のいずれかを産生することに使用でき、これらは治療的に有用な試薬の開発やスクリーニングとって有用である。トランスジェニック動物（例えばマウス又はラット）とは、出生前、例えば胚段階で、その動物又はその動物の祖先に導入された導入遺伝子を含む細胞を有する動物である。導入遺伝子とは、トランスジェニック動物が発生する細胞のゲノムに組み込まれたＤＮＡである。一実施形態では、ＩＬ−２２をコードするｃＤＮＡは、ＩＬ−２２をコードするＤＮＡを発現する細胞を含むトランスジェニック動物を作製するために使用するゲノム配列及び確立された技術に基づいて、ＩＬ−２２をコードするゲノムＤＮＡをクローン化するために使用することができる。トランスジェニック動物、特にマウス又はラット等の特定の動物を産生する方法は、当該分野において常套的になっており、例えば米国特許第４，７３６，８６６号や第４，８７０，００９号に記述されている。典型的には、特定の細胞が組織特異的エンハンサーを伴うＩＬ−２２導入遺伝子の導入の標的であろう。胚段階で動物の生殖系列に導入されたＩＬ−２２コード化導入遺伝子のコピーを含むトランスジェニック動物は、ＩＬ−２２をコードするＤＮＡの増大した発現の影響を調べるために使用できる。このような動物は、例えばその過剰発現を伴う病理学的状態に対して保護をもたらすと思われる試薬のテスター動物として使用できる。本発明のこの態様においては、動物を試薬で治療し、導入遺伝子を有する未治療の動物に比べ病理学的状態の発症率が低ければ、病理学的状態に対する治療上の処置の可能性が示される。
【０１１７】
あるいは、動物の胚幹細胞に導入されたＩＬ−２２をコードする改変ゲノムＤＮＡと、ＩＬ−２２をコードする内在性遺伝子との間の相同的組換えによってＩＬ−２２をコードする欠陥又は変更遺伝子を有するＩＬ−２２「ノックアウト」動物を作成するために、ＩＬ−２２の非ヒト相同体を使用できる。例えば、確立された技術に従ってＩＬ−２２をコードするゲノムＤＮＡのクローニングするために、ＩＬ−２２をコードするｃＤＮＡを使用できる。ＩＬ−２２をコードするゲノムＤＮＡの一部を欠失させたり、又は組み込みを監視するために使用する選択可能なマーカーをコードする遺伝子等の他の遺伝子で置換することができる。典型的には、ベクターは無変化のフランキングＤＮＡ（５’と３’末端の両方）を数キロベース含む［例えば、相同的組換えベクターについてはＴｈｏｍａｓ及びＣａｐｅｃｃｈｉ， Ｃｅｌｌ， ５１：５０３（１９８７）を参照のこと］。ベクターは胚幹細胞に（例えばエレクトロポレーションによって）導入され、導入されたＤＮＡが内在性ＤＮＡと相同的に組換えられた細胞が選択された［例えば、Ｌｉら， Ｃｅｌｌ， ６９：９１５（１９９２）参照］。選択した細胞が次に動物（例えばマウス又はラット）の胚盤胞内に注入されて集合キメラを形成する［例えば、Ｂｒａｄｌｅｙ， Ｔｅｒａｔｏｃａｒｃｉｎｏｍａｓ ａｎｄ Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ： Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ， Ｅ． Ｊ． Ｒｏｂｅｒｔｓｏｎ， ｅｄ． （ＩＲＬ， Ｏｘｆｏｒｄ， １９８７）， ｐｐ． １１３−１５２参照のこと］。その後、キメラ性胚を適切な偽妊娠の雌性乳母に移植し、期間をおいて「ノックアウト」動物を作り出す。胚細胞に相同的に組換えられたＤＮＡを有する子孫は標準的な技術により同定され、それらを利用して動物の全細胞が相同的に組換えられたＤＮＡを含む動物を繁殖させることができる。ノックアウト動物を、ＩＬ−２２ポリペプチドの欠乏によるある種の病理的状態及びその病理的状態の進行に対する防御能力によって特徴付ることができる。
【０１１８】
ＩＬ−２２ポリペプチドをコードする核酸も遺伝子治療に使用してもよい。遺伝子治療用途においては、例えば欠陥遺伝子を置換するため、治療的有効量の遺伝子産物のインビボ合成を達成するために遺伝子が細胞へ導入される。「遺伝子治療」とは、１回の処理により継続的効果が達成される従来の遺伝子治療と、治療的に有効なＤＮＡ又はｍＲＮＡの１回又は繰り返し投与を含む遺伝子治療薬の投与の両方を含む。アンチセンスＲＮＡ及びＤＮＡは、ある種の遺伝子のインビボ発現を阻止する治療薬として用いることができる。細胞膜による制限された取り込みに起因する低い細胞内濃度にもかかわらず、短いアンチセンスオリゴヌクレオチドをそれが阻害剤として作用する細胞に移入できることは既に示されている（Ｚａｍｅｃｎｉｋら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ８３： ４１４３−４１４６ ［１９８６］）。オリゴヌクレオチドの取り込みを促進するために、例えば、その負に荷電したリン酸ジエステル基を非荷電基で置換することによって、オリゴヌクレオチドを修飾することができる。
【０１１９】
生存可能な細胞に核酸を導入するための種々の技術が存在する。これらの技術は、意図する宿主の細胞において、核酸が培養細胞にインビトロで、あるいはインビボで移入されるかに応じて変わる。核酸を哺乳動物細胞にインビトロで移入するのに適した方法は、リポソーム、エレクトロポレーション、マイクロインジェクション、細胞融合、ＤＥＡＥ−デキストラン、リン酸カルシウム沈殿法などを含む。現在好ましいインビボ遺伝子移入技術は、ウイルス（典型的にはレトロウイルス）ベクターでのトランスフェクション及びウイルス被覆タンパク質−リポソーム媒介トランスフェクションである（Ｄｚａｕら， Ｔｒｅｎｄｓ ｉｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １１， ２０５−２１０（１９９３））。ある状況では、核酸供給源を、細胞表面膜タンパク質又は標的細胞に特異的な抗体等の標的細胞を標的とする薬剤、標的細胞上のレセプターに対するリガンド等とともに提供するのが望ましい。リポソームを用いる場合、エンドサイトーシスを伴って細胞表面膜タンパク質に結合するタンパク質、例えば、特定の細胞型向性のキャプシドタンパク質又はその断片、サイクルにおいてインターナリゼーションを受けるタンパク質に対する抗体、細胞内局在化を標的とし細胞内半減期を向上させるタンパク質が、標的化及び／又は取り込みの促進のために用いられる。レセプター媒介エンドサイトーシスは、例えば、Ｗｕら， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２６２， ４４２９−４４３２ （１９８７）； 及びＷａｇｎｅｒら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ８７， ３４１０−３４１４ （１９９０）によって記述されている。遺伝子作成及び遺伝子治療のプロトコールの概説については、Ａｎｄｅｒｓｏｎら， Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５６， ８０８−８１３ （１９９２）を参照のこと。
【０１２０】
ここに記載したＩＬ−２２ポリペプチドをタンパク質電気泳動目的の分子量マーカーとして用いてもよく、単離された核酸配列を、これらのマーカーを組み換え発現に用いてもよい。
ここに記載したＩＬ−２２ポリペプチド又はその断片をコードする核酸分子は、染色体の同定に有用である。この点において、実際の配列に基づく染色体マーキング試薬は殆ど利用可能ではないため、新規な染色体マーカーの同定が必要である。本発明の各ＩＬ−２２核酸分子は染色体マーカーとして使用できる。
また、本発明のＩＬ−２２ポリペプチド及び核酸分子は組織タイピングに使用でき、本発明のＩＬ−２２ポリペプチドは、好ましくは同じ型の正常組織に比較して疾患性組織において、一方の組織で他方に比較して異なる発現をする。ＩＬ−２２核酸分子には、ＰＣＲ、ノーザン分析、サザン分析及びウェスタン分析のプローブ生成のための用途が見出されるであろう。
【０１２１】
ここに記載したＩＬ−２２ポリペプチドは治療薬として用いてもよい。本発明のＩＬ−２２ポリペプチドは、製薬的に有用な組成物を調製するのに知られた方法に従って製剤され、これにより、このＩＬ−２２生成物は製薬的に許容される担体媒体と混合される。治療用製剤は、凍結乾燥製剤又は水性溶液の形態で、任意的な製薬上許容可能なキャリア、賦形剤又は安定剤と、所望の純度を有する活性成分とを混合することにより（Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ， １６ｔｈ版， Ｏｓｏｌ， Ａ． 編．， ［１９８０］）、保管ために調製される。許容される担体、賦形剤又は安定剤は、用いる投与量及び濃度ではレシピエントに対して無毒性であり、リン酸、クエン酸及び他の有機酸等の緩衝液；アスコルビン酸を含む抗酸化剤；低分子量（残基数１０個未満）ポリペプチド；血清アルブミン、ゼラチン又は免疫グロブリン等のタンパク質；ポリビニルピロリドン等の親水性重合体；グリシン、グルタミン、アスパラギン、アルギニン又はリシン等のアミノ酸；グルコース、マンノース又はデキストリン等の単糖類、二糖類又は他の炭水化物、ＥＤＴＡ等のキレート剤、マンニトール又はソルビトール等の糖類、ナトリウム等の塩形成対イオン；及び／又はＴＷＥＥＮ（商品名）、ＰＬＵＲＯＮＩＣＳ（商品名）又はポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等の非イオン性界面活性剤を含む。
【０１２２】
インビボ投与に使用される製剤は滅菌されていなくてはならない。これは、凍結乾燥及び再構成の前又は後に、滅菌フィルター膜を通す濾過により容易に達成される。
ここで、本発明の製薬組成物は一般に、無菌のアクセスポートを具備する容器、例えば、皮下注射針で貫通可能なストッパーを持つ静脈内バッグ又はバイアル内に配される。
投与経路は周知の方法、例えば、静脈内、腹膜内、脳内、筋肉内、眼内、動脈内又は病巣内経路での注射又は注入、局所投与、又は徐放系による。
【０１２３】
本発明の製薬組成物の用量及び望ましい薬物濃度は、意図する特定の用途に応じて変化する。適切な用量又は投与経路の決定は、通常の内科医の技量の範囲内である。動物実験は、ヒト治療のための有効量の決定についての信頼できるガイダンスを提供する。有効量の種間スケーリングは、Ｔｏｘｉｃｏｋｉｎｅｔｉｃｓ ａｎｄ Ｎｅｗ Ｄｒｕｇ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ， Ｙａｃｏｂｉら， 編， Ｐｅｒｇａｍｏｎ Ｐｒｅｓｓ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ １９８９， ｐｐ． ４２−９６のＭｏｒｄｅｎｔｉ， Ｊ． 及びＣｈａｐｐｅｌｌ， Ｗ． 「Ｔｈｅ ｕｓｅ ｏｆ ｉｎｔｅｒｓｐｅｃｉｅｓ ｓｃａｌｉｎｇ ｉｎ ｔｏｘｉｃｏｋｉｎｅｔｉｃｓ」に記載された原理に従って実施できる。
【０１２４】
ＩＬ−２２ポリペプチド又はそのアゴニスト又はアンタゴニストのインビボ投与が用いられる場合、正常な投与量は、投与経路に応じて、哺乳動物の体重当たり１日に約１０ｎｇ／ｋｇから１００ｍｇ／ｋｇまで、好ましくは約１μｇ／ｋｇ／日から１０ｍｇ／ｋｇ／日である。特定の用量及び送達方法の指針は文献に提供されている；例えば、米国特許第４，６５７，７６０号、第５，２０６，３４４号、又は第５，２２５，２１２号参照。異なる製剤が異なる治療用化合物及び異なる疾患に有効であること、例えば一つの器官又は組織を標的とする投与には、他の器官又は組織とは異なる方式で送達することを必要とし得るとが予想される。
【０１２５】
ＩＬ−２２ポリペプチドの投与を必要とする任意の疾患又は疾病の治療に適した放出特性を持つ製剤でＩＬ−２２ポリペプチドの持続放出が望まれる場合、ＩＬ−２２ポリペプチドのマイクロカプセル化が考えられる。持続放出のための組換えタンパク質のマイクロカプセル化は、ヒト成長ホルモン（ｒｈＧＨ）、インターフェロン−（ｒｈＩＦＮ−）、インターロイキン−２、及びＭＮ ｒｇｐ１２０で成功裏に実施されている。Ｊｏｈｎｓｏｎら， Ｎａｔ． Ｍｅｄ．， ２： ７９５−７９９ （１９９６）； Ｙａｓｕｄａ， Ｂｉｏｍｅｄ． Ｔｈｅｒ．， ２７： １２２１−１２２３ （１９９３）； Ｈｏｒａら， Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， ８： ７５５−７５８ （１９９０）； Ｃｌｅｌａｎｄ，「Ｄｅｓｉｇｎ ａｎｄ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｓｉｎｇｌｅ Ｉｍｍｕｎｉｚａｔｉｏｎ Ｖａｃｃｉｎｅｓ Ｕｓｉｎｇ Ｐｏｌｙｌａｃｔｉｄｅ Ｐｏｌｙｇｌｙｃｏｌｉｄｅ Ｍｉｃｒｏｓｐｈｅｒｅ Ｓｙｓｔｅｍｓ」Ｖａｃｃｉｎｅ Ｄｅｓｉｇｎ： Ｔｈｅ Ｓｕｂｕｎｉｔ ａｎｄ Ａｄｊｕｖａｎｔ Ａｐｐｒｏａｃｈ， Ｐｏｗｅｌｌ 及び Ｎｅｗｍａｎ編， （Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ： Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， １９９５）， ｐ．４３９−４６２； 国際公開９７／０３６９２，国際公開９６／４００７２，国際公開９６／０７３９９；及び米国特許第５，６５４，０１０号。
【０１２６】
これらのタンパク質の持続放出製剤は、ポリ−乳酸−コグリコール酸（ＰＬＧＡ）ポリマーを用い、その生体適合性及び広範囲の生分解特性に基づいて開発された。ＰＬＧＡの分解生成物である乳酸及びグリコール酸は、ヒト身体内で即座にクリアされる。さらに、このポリマーの分解性は、分子量及び組成に依存して数ヶ月から数年まで調節できる。Ｌｅｗｉｓ， 「Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ ｒｅｌｅａｓｅ ｏｆ ｂｉｏａｃｔｉｖｅ ａｇｅｎｔｓ ｆｒｏｍ ｌａｃｔｉｄｅ／ｇｌｙｃｏｌｉｄｅ ｐｏｌｙｍｅｒ」： Ｍ． Ｃｈａｓｉｎ及び Ｒ． Ｌａｎｇｅｒ （編）， Ｂｉｏｄｅｇｒａｄａｂｌｅ Ｐｏｌｙｍｅｒｓ ａｓ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｓｙｓｔｅｍｓ （Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ： Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， １９９０）， ｐｐ． １−４１。
本発明は、ＩＬ−２２ポリペプチドを模倣する（アゴニスト）又はＩＬ−２２ポリペプチドの効果を阻害する（アンタゴニスト）ものを同定するための化合物のスクリーニング方法も包含する。アンタゴニスト候補薬のスクリーニングアッセイは、ここで同定した遺伝子にコードされているＩＬ−２２ポリペプチドと結合又は複合体形成する化合物、又はそうでなければコードされたポリペプチドと他の細胞性タンパク質との相互作用を妨害する化合物を同定するために設計される。このようなスクリーニングアッセイは、化学的ライブラリの高スループットスクリーニングに従うアッセイを含み、それらアッセイを特に小分子候補薬の同定に適したものにする。
【０１２７】
このアッセイは、この分野で良く特徴付けられた、タンパク質−タンパク質結合アッセイ、生化学的スクリーニングアッセイ、イムノアッセイ、及び細胞ベースのアッセイを含む種々の方式で実施される。
アンタゴニストについての全てのアッセイは、それらが候補薬をここで同定された核酸にコードされるＩＬ−２２ポリペプチドと、これら２つの成分が相互作用するのに十分な条件下及び時間で接触させることを必要とすることにおいて共通する。
【０１２８】
結合アッセイでは、相互作用は結合であり、形成された複合体は単離されるか、又は反応混合物中で検出される。特別な実施態様では、ここで同定された遺伝子によってコードされるＩＬ−２２ポリペプチド又は候補薬は、共有又は非共有結合により固相、例えばミクロタイタープレートに固定化される。非共有結合は、一般的に固体表面をＩＬ−２２ポリペプチドの溶液で被覆し乾燥させることにより達成される。あるいは、固定化されるＩＬ−２２ポリペプチドに特異的な固定化抗体、例えばモノクローナル抗体を、それを固体表面に固着させるために用いることができる。アッセイは、固定化成分、例えば固着成分を含む被覆表面に、検出可能な標識で標識されていてもよい非固定化成分を添加することにより実施される。反応が完了したとき、未反応成分を例えば洗浄により除去し、固体表面に固着した複合体を検出する。最初の非固定化成分が検出可能な標識を有している場合、表面に固定化された標識の検出は複合体形成が起こったことを示す。最初の非固定化成分が標識を持たない場合は、複合体形成は、例えば、固定化された複合体に特異的に結合する標識抗体によって検出できる。
【０１２９】
候補化合物が相互作用するが、ここに同定した遺伝子にコードされている特定のＩＬ−２２ポリペプチドと結合しない場合、候補化合物のそのポリペプチドとの相互作用は、タンパク質−タンパク質相互作用を検出するために良く知られている方法によってアッセイすることができる。そのようなアッセイは、架橋、同時免疫沈降、及び勾配又はクロマトグラフィーカラムを通す同時精製などの伝統的な手法を含む。さらに、タンパク質−タンパク質相互作用は、Ｃｈｅｖｒａｙ及びＮａｔｈａｎｓ［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ８９， ５７８９−５７９３ （１９９１）］に開示されているように、Ｆｉｅｌｄｓ及び共同研究者ら［Ｆｉｅｌｄｓ及びＳｏｎｇ， Ｎａｔｕｒｅ（Ｌｏｎｄｏｎ） ３４０， ２４５−２４６ （１９８９）； Ｃｈｉｅｎら， Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ８８， ９５７８−９５８２ （１９９１）］に記載された酵母ベースの遺伝子系を用いることによってモニターすることができる。酵母ＧＡＬ４などの多くの転写アクチベーターは、２つの物理的に別個のモジュラードメインからなり、一方はＤＮＡ結合ドメインとして作用し、他方は転写活性化ドメインとして機能する。前出の文献に記載の酵母発現系（一般に「２−ハイブリッド系」と呼ばれる）は、この特性の長所を利用し、並びに２つのハイブリッドタンパク質を用い、一方では標的タンパク質がＧＡＬ４のＤＮＡ結合ドメインに融合し、他方では候補となる活性化タンパク質が活性化ドメインに融合している。ＧＡＬ４活性化プロモーターの制御下でのＧＡＬ１−ｌａｃＺリポーター遺伝子の発現は、タンパク質−タンパク質相互作用を介したＧＡＬ４活性の再構成に依存する。相互作用するポリペプチドを含むコロニーは、β−ガラクトシダーゼのための色素産生基質で検出される。２−ハイブリッド技術を用いた２つの特定なタンパク質間のタンパク質−タンパク質相互作用を同定するための完成キット（ＭＡＴＣＨＭＡＫＥＲ（商品名））は、Ｃｌｏｎｔｅｃｈから商業的に入手可能である。また、この系は、特定のタンパク質相互作用に関わるタンパク質ドメインのマッピング、並びにこれら相互作用にとって重要なアミノ酸残基の特定へ拡大適用することができる。
【０１３０】
ここで同定されたＩＬ−２２ポリペプチドをコードする遺伝子と細胞内又は細胞外成分との相互作用を阻害する化合物は、次のように試験できる：通常、反応混合物は、遺伝子産物と細胞外又は細胞内成分を、これら２つの生成物の相互作用及び結合が可能な条件下と時間に渡って含むように調製される。候補化合物が結合を阻害する能力を試験するために、反応は試験化合物の非存在及び存在下で実施される。さらに、プラシーボを第３の反応混合物に添加してポジティブコントロールを提供してもよい。混合物中に存在する試験化合物と細胞内又は細胞外成分との結合（複合体形成）は上記のようにモニターされる。試験化合物を含有する反応混合物ではなく、コントロール反応における複合体の形成は、試験化合物が試験化合物とその結合パートナーとの相互作用を阻害することを示す。
【０１３１】
アンタゴニストをアッセイするためには、特定の活性についてスクリーニングされる化合物とともにＩＬ−２２ポリペプチドを細胞へ添加してもよく、ＩＬ−２２ポリペプチド存在下における対象活性を阻害する化合物の能力は、化合物がＩＬ−２２ポリペプチドのアンタゴニストであることを示す。あるいは、ＩＬ−２２ポリペプチドと膜結合ＩＬ−２２ポリペプチドレセプター又は組換えレセプターを有する潜在的アンタゴニストを競合的阻害アッセイに適した条件下で結合させることによって、アンタゴニストを検出してもよい。放射活性などでＩＬ−２２ポリペプチドを標識することが可能であり、潜在的アンタゴニストの有効性を判断するためにレセプターに結合したＩＬ−２２ポリペプチドの数を利用することができる。レセプターをコードする遺伝子は、当業者に知られた多くの方法、例えばリガンドパンニング及びＦＡＣＳソートによって同定できる。Ｃｏｌｉｇａｎら， Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｉｍｍｕｎ．， １（２）： 第５章（１９９１）。好ましくは、発現クローニングが用いられ、ポリアデニル化ＲＮＡがＩＬ−２２ポリペプチドに反応性の細胞から調製され、このＲＮＡから生成されたｃＤＮＡライブラリがプールに分配され、ＣＯＳ細胞又はＩＬ−２２ポリペプチドに対して反応性ではない他の細胞のトランスフェクションに使用される。スライドガラスで成長させたトランスフェクション細胞を、標識したＩＬ−２２ポリペプチドで曝露する。このＩＬ−２２ポリペプチドは、ヨウ素化又は部位特異的タンパク質キナーゼの認識部位の封入を含む種々の手段で標識できる。固定及びインキュベーションの後、スライドにオートラジオグラフィ分析を施す。ポジティブプールを同定し、相互作用サブプール化及び再スクリーニング工程を用いてサブプールを調製して再トランスフェクションし、最終的に推定レセプターをコードする単一のクローンを生成する。
【０１３２】
レセプター同定の代替的方法として、標識ＩＬ−２２ポリペプチドをレセプター分子を発現する細胞膜又は抽出調製物に光親和性結合させることができる。架橋材料をＰＡＧＥで分離し、Ｘ線フィルムへ暴露する。レセプターを含む標識複合体を励起し、ペプチド断片に分解し、タンパク質マイクロ配列決定を施すことができる。マイクロ配列決定から得たアミノ酸配列は、推定レセプターをコードする遺伝子を同定するｃＤＮＡライブラリをスクリーニングするための一組のデジェネレートオリゴヌクレオチドプローブの設計に用いられる。
アンタゴニストの他のアッセイでは、レセプターを発現する哺乳動物細胞又は膜調製物を、候補化合物の存在下で標識ＩＬ−２２ポリペプチドとともにインキュベートする。次いで、この相互作用を促進又は阻止する化合物の能力を測定する。
【０１３３】
潜在的なアンタゴニストのより特別な例は、免疫グロブリンとＩＬ−２２ポリペプチドとの融合体に結合するオリゴヌクレオチド、特に、限られないが、ポリ−及びモノクローナル抗体及び抗体断片、一本鎖抗体、抗−イディオタイプ抗体、及びこれらの抗体又は断片のキメラ又はヒト化形態、並びにヒト抗体及び抗体断片を含む抗体を含んでいる。あるいは、潜在的アンタゴニストは、密接に関連したタンパク質、例えば、レセプターを認識するが効果を与えず、従ってＩＬ−２２ポリペプチドの作用を競合的に阻害するＩＬ−２２ポリペプチドの変異形態であってもよい。
【０１３４】
他の潜在的なＩＬ−２２ポリペプチドアンタゴニストは、アンチセンス技術を用いて調製されたアンチセンスＲＮＡ又はＤＮＡ作成物であり、例えば、アンチセンスＲＮＡ又はＤＮＡ分子は、標的ｍＲＮＡにハイブリッド形成してタンパク質翻訳を妨害することによりｍＲＮＡの翻訳を直接阻止するように作用する。アンチセンス技術は、トリプルへリックス形成又はアンチセンスＤＮＡ又はＲＮＡを通して遺伝子発現を制御するのに使用でき、それらの方法はともに、ポリヌクレオチドのＤＮＡ又はＲＮＡへの結合に基づく。例えば、ここでの成熟ＩＬ−２２ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列の５’コード化部分は、約１０から４０塩基対長のアンチセンスＲＮＡオリゴヌクレオチドの設計に使用される。ＤＮＡオリゴヌクレオチドは、転写に含まれる遺伝子の領域に相補的であるように設計され（トリプルへリックス−Ｌｅｅら， Ｎｕｃｌ， Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．， ６： ３０７３ （１９７９）； Ｃｏｏｎｅｙら， Ｓｃｉｅｎｃｅ， ２４１： ４５６ （１９８８）； Ｄｅｒｖａｎら， Ｓｃｉｅｎｃｅ， ２５１： １３６０ （１９９１）参照）、それによりＩＬ−２２ポリペプチドの転写及び生成を防止する。アンチセンスＲＮＡオリゴヌクレオチドはインビボでｍＲＮＡにハイブリッド形成してｍＲＮＡ分子のＩＬ−２２ポリペプチドへの翻訳を阻止する（アンチセンス−Ｏｋａｎｏ， Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ．， ５６： ５６０ （１９９１）； Ｏｌｉｇｏｄｅｏｘｙｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ ａｓ Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ ｏｆ Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ （ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ： ボカラトーン， フロリダ， １９８８））。アンチセンスＲＮＡ又はＤＮＡがインビボで発現してＩＬ−２２ポリペプチドの産生を阻害し得るよう、上記のオリゴヌクレオチドは細胞に輸送される。アンチセンスＤＮＡが用いられる場合、翻訳開始部位から誘導されるオリゴデオキシヌクレオチド、例えば標的遺伝子ヌクレオチド配列の−１０から＋１０位置の間が好ましい。
【０１３５】
潜在的アンタゴニストは、ＩＬ−２２ポリペプチドの活性部位、レセプター結合部位、又は成長因子又は他の関連結合部位に結合し、それによりＩＬ−２２ポリペプチドの正常な生物学的活性を阻止する小分子を含む。小分子の例は、これらに限られないが、小型ペプチド又はペプチド様分子、好ましくは可溶性ペプチド、及び合成非ペプチジル有機又は無機化合物を含む。
リボザイムは、ＲＮＡの特異的切断を触媒できる酵素的ＲＮＡ分子である。リボザイムは、相補的標的ＲＮＡへの配列特異的ハイブリッド形成、次いで内ヌクレオチド結合分解性切断により作用する。潜在的ＲＮＡ標的内の特異的リボザイム切断部位は、既知の技術で同定できる。更なる詳細は、例えば、上掲のＲｏｓｓｉ， Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｂｉｏｌｏｇｙ ４：４６９−４７１ （１９９４）及びＰＣＴ公報番号国際公開９７／３３５５１（１９９７年９月１８日公開）を参照。
【０１３６】
転写阻害に用いられるトリプルヘリックス形成における核酸分子は一本鎖であり、デオキシヌクレオチドからなる。これらのオリゴヌクレオチドの基本組成は、一般的に二重鎖の一方の鎖上のプリン又はピリミジンのかなり大きな伸長を必要とするフーグスティン塩基対則を介するトリプルヘリックス形成を促進するように設計されている。さらなる詳細は、例えば、ＰＣＴ公報番号、国際公開９７／３３５５１、上掲を参照。
これらの小分子は、上記で検討した任意のスクリーニングアッセイの１つ又は複数のものにより及び／又は当業者に良く知られた他の任意のスクリーニング技術により同定できる。
ここで開示されている分子の診断的及び治療的利用も、下記に開示及び記載のポジティブ機能アッセイヒットに基づいている。
【０１３７】
Ｆ．抗−ＩＬ−２２抗体
本発明は、さらに抗−ＩＬ−２２抗体を提供する。典型的な抗体は、ポリクローナル、モノクローナル、ヒト化、二重特異性及びヘテロコンジュゲート抗体を含む。
【０１３８】
１．ポリクローナル抗体
抗−ＩＬ−２２抗体はポリクローナル抗体を含み得る。ポリクローナル抗体の調製方法は当業者に知られている。哺乳動物において、ポリクローナル抗体は、例えば免疫剤、及び所望するのであればアジュバントを、１つ又は複数回注射することで発生させることができる。典型的には、免疫剤及び／又はアジュバントを複数回皮下又は腹腔内注射により、哺乳動物に注射する。免疫剤は、ＩＬ−２２ポリペプチド又はその融合タンパク質を含み得る。免疫剤を、免疫性が与えられた哺乳動物において免疫原性が知られているタンパク質にコンジュゲートさせることは有用である。このような免疫原タンパク質の例は、これらに限られないが、キーホールリンペットヘモシアニン、血清アルブミン、ウシサイログロブリン及び大豆トリプシンインヒビターを含む。使用され得るアジュバントの例には、フロイント完全アジュバント及びＭＰＬ−ＴＤＭアジュバント（モノホスホリル脂質Ａ、合成トレハロースジコリノミコラート）が含まれる。免疫化プロトコールは、過度の実験なく当業者により選択され得る。
【０１３９】
２．モノクローナル抗体
あるいは、抗−ＩＬ−２２抗体はモノクローナル抗体であってもよい。モノクローナル抗体は、Ｋｏｈｌｅｒ及びＭｉｌｓｔｅｉｎ， Ｎａｔｕｒｅ， ２５６：４９５ （１９７５）に記載されているようなハイブリドーマ法を使用することで調製することができる。ハイブリドーマ法では、マウス、ハムスター又は他の適切な宿主動物を典型的には免疫剤により免疫化することで、免疫剤に特異的に結合する抗体を生成するか或いは生成可能なリンパ球を誘発する。あるいは、リンパ球をインビトロで免疫化することもできる。
【０１４０】
免疫剤は、典型的には対象とするＩＬ−２２ポリペプチド又はその融合タンパク質を含む。一般的に、ヒト由来の細胞が望まれる場合には末梢血リンパ球（「ＰＢＬｓ」）が使用され、又は非ヒト哺乳動物源が望まれている場合は、脾臓細胞又はリンパ節細胞が使用される。次いで、ポリエチレングリコール等の適当な融合剤を用いてリンパ球を不死化株化細胞と融合させ、ハイブリドーマ細胞を形成する［Ｇｏｄｉｎｇ， Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ： Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ， Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， （１９８６） ｐｐ． ５９−１０３］。不死化株化細胞は、通常は、形質転換した哺乳動物細胞、特に齧歯動物、ウシ、及びヒト由来の骨髄腫細胞である。通常、ラット又はマウスの骨髄腫株化細胞が使用される。ハイブリドーマ細胞は、好ましくは、未融合の不死化細胞の生存又は成長を阻害する一又は複数の物質を含有する適切な培地で培養してもよい。例えば、親細胞が、酵素のヒポキサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（ＨＧＰＲＴ又はＨＰＲＴ）を欠いていると、ハイブリドーマの培地は、典型的には、ヒポキサチン、アミノプチリン及びチミジンを含み（「ＨＡＴ培地」）、これら物質がＨＧＰＲＴ欠乏性細胞の増殖を阻止する。
【０１４１】
好ましい不死化株化細胞は、効率的に融合し、選択した抗体生成細胞による安定した高レベルの抗体発現を支え、ＨＡＴ培地のような培地に対して感受性である。より好ましい不死化株化細胞はマウス骨髄腫株であり、これは例えばカリフォルニア州サンディエゴのソーク研究所 セル ディストリビューション センターやヴァージニア州マナッサスのアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションより入手可能である。ヒトモノクローナル抗体を生成するためのヒト骨髄腫及びマウス−ヒト異種骨髄腫株化細胞も開示されている［Ｋｏｚｂｏｒ， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．， １３３：３００１ （１９８４）、Ｂｒｏｄｅｕｒら， Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ， Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ， Ｉｎｃ．， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， （１９８７） ｐｐ． ５１−６３］。
次いでハイブリドーマ細胞が培養される培養培地を、ＩＬ−２２に対するモノクローナル抗体の存在について検定する。好ましくは、ハイブリドーマ細胞によって生成されたモノクローナル抗体の結合特異性は免疫沈降又はラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）や酵素結合免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）等のインビトロ結合検定法によって測定する。このような技術及びアッセイは、当該分野において公知である。モノクローナル抗体の結合親和性は、例えばＭｕｎｓｏｎ及びＰｏｌｌａｒｄ， Ａｎａｌ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．， １０７：２２０ （１９８０）のスキャッチャード解析法によって測定することができる。
【０１４２】
所望のハイブリドーマ細胞が同定された後、クローンを限界希釈法によりサブクローニングし、標準的な方法で成長させてもよい［Ｇｏｄｉｎｇ， 上掲］。この目的のための適当な培地には、例えば、ダルベッコの改変イーグル培地及びＲＰＭＩ−１６４０培地が含まれる。あるいは、ハイブリドーマ細胞は、哺乳動物の腹水のように、インビボで成長させてもよい。
サブクローンによって分泌されたモノクローナル抗体は、例えばプロテインＡ−セファロース法、ヒドロキシルアパタイトクロマトグラフィー法、ゲル電気泳動法、透析法又はアフィニティークロマトグラフィー等の従来の免疫グロブリン精製方法によって培養培地又は腹水液から単離又は精製してもよい。
【０１４３】
モノクローナル抗体は、組換えＤＮＡ法、例えば米国特許第４，８１６，５６７号に記載された方法によっても作成し得る。本発明のモノクローナル抗体をコードするＤＮＡは、常套的な方法を用いて（例えば、マウス抗体の重鎖及び軽鎖をコードする遺伝子に特異的に結合可能なオリゴヌクレオチドプローブを使用して）、容易に単離し配列決定することができる。本発明のハイブリドーマ細胞は、そのようなＤＮＡの好ましい供給源となる。ひとたび単離されると、組換え宿主細胞内でモノクローナル抗体の合成をするために、後に宿主細胞、例えばサルＣＯＳ細胞、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、又は別な方法では免疫グロブリンタンパク質を生成しない骨髄腫細胞にトランスフェクションされる発現ベクター内に、このＤＮＡを配してもよい。また、このＤＮＡは、例えば、相同マウス配列に換えてヒト重鎖及び軽鎖定常ドメインのコード配列を置換することにより［米国特許第４，８１６，５６７号；Ｍｏｒｒｉｓｏｎら， 上掲］、又は免疫グロブリンコード配列に非免疫グロブリンポリペプチドのコード配列の一部又は全部を共有結合することにより修飾してもよい。そのような非免疫グロブリンポリペプチドは、本発明の抗体の定常ドメインを置換し、あるいは本発明の抗体の１つの抗原結合部位の可変ドメインを置換し、キメラ性二価抗体を生成することができる。
【０１４４】
抗体は一価抗体であってもよい。一価抗体の調製方法は当該分野においてよく知られてる。例えば、一つの方法は免疫グロブリン軽鎖と修飾重鎖の組換え発現を含む。重鎖は、一般的に、重鎖の架橋を防止するようにＦｃ領域の任意の点で切断されている。あるいは、関連するシステイン残基を他のアミノ酸残基で置換するか、又は欠失させて架橋を防止する。
一価抗体の調製には、インビトロ法も適している。抗体の断片、特にＦａｂ断片の生成のための抗体の消化は、当該分野において知られている慣用的技術を使用して達成できる。
【０１４５】
３．ヒト及びヒト化抗体
本発明の抗−ＩＬ−２２抗体は、さらにヒト化抗体又はヒト抗体を含む。非ヒト（例えばマウス）抗体のヒト化形態とは、非ヒト免疫グロブリンに由来する最小配列を含むキメラ免疫グロブリン、免疫グロブリン鎖又はその断片（例えばＦｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２あるいは抗体の他の抗原結合サブ配列）である。ヒト化抗体はレシピエントの相補性決定領域（ＣＤＲ）の残基が、マウス、ラット又はウサギのような所望の特異性、親和性及び能力を有する非ヒト種（ドナー抗体）のＣＤＲの残基によって置換されたヒト免疫グロブリン（レシピエント抗体）を含む。幾つかの例では、ヒト免疫グロブリンのＦｖフレームワーク残基は、対応する非ヒト残基によって置換されている。また、ヒト化抗体は、レシピエント抗体にも、移入されたＣＤＲもしくはフレームワーク配列にも見出されない残基を含んでいてもよい。一般的に、ヒト化抗体は、全て又は実質的には全てのＣＤＲ領域が非ヒト免疫グロブリンのものに対応し、全て又は実質的には全てのＦＲ領域がヒト免疫グロブリンコンセンサス配列のものである、少なくとも１つ、典型的には２つの可変ドメインの実質的には全てを含む。ヒト化抗体は、最適には免疫グロブリン定常領域（Ｆｃ）、典型的にはヒトの免疫グロブリンの定常領域の少なくとも一部も含む［Ｊｏｎｅｓら， Ｎａｔｕｒｅ， ３２１：５２２−５２５ （１９８６）； Ｒｉｅｃｈｍａｎｎら， Ｎａｔｕｒｅ， ３３２：３２３−３２９ （１９８８）； 及びＰｒｅｓｔａ， Ｃｕｒｒ． Ｏｐ Ｓｔｒｕｃｔ． Ｂｉｏｌ．， ２：５９３−５９６ （１９９２）］。
【０１４６】
非ヒト抗体をヒト化する方法はこの分野でよく知られている。一般的に、ヒト化抗体には、非ヒトである源由来の１つ又は複数のアミノ酸残基が導入されている。これら非ヒトアミノ酸残基は、大体は「移入」可変ドメインに由来する「移入」残基としばしば称される。ヒト化は、基本的には齧歯動物のＣＤＲ又はＣＤＲ配列でヒト抗体の該当する配列を置換することによって、ウィンター（Ｗｉｎｔｅｒ）及び共同研究者［Ｊｏｎｅｓら， Ｎａｔｕｒｅ， ３２１：５２２−５２５ （１９８６）；Ｒｉｅｃｈｍａｎｎら， Ｎａｔｕｒｅ， ３３２：３２３−３２７ （１９８８）；Ｖｅｒｈｏｅｙｅｎら， Ｓｃｉｅｎｃｅ， ２３９：１５３４−１５３６ （１９８８）］の方法に従って実施される。よって、このような「ヒト化」抗体はキメラ抗体（米国特許第４，８１６，５６７号）あり、無傷のヒト可変ドメインより実質的に少ない分が非ヒト種に由来する対応する配列で置換されている。実際には、ヒト化抗体は、典型的には、幾つかのＣＤＲ残基とおそらくは幾つかのＦＲ残基が齧歯類抗体にある類似部位の残基によって置換されたヒト抗体である。
【０１４７】
ヒト抗体は、ファージディスプレイライブラリ［Ｈｏｏｇｅｎｂｏｏｍ及びＷｉｎｔｅｒ， Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ．， ２２７：３８１（１９９１）；Ｍａｒｋｓら， Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ．， ２２２：５８１ （１９９１）］を含むこの分野で知られた種々の方法を用いて作成することもできる。Ｃｏｌｅら及びＢｏｅｒｎｅｒらの方法も、ヒトモノクローナル抗体の調製に利用することができる［Ｃｏｌｅら， Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ， Ａｌａｎ Ｒ． Ｌｉｓｓ． ｐ．７７（１９８５）及びＢｏｅｒｎｅｒら， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．， １４７（１）：８６−９５（１９９１） ］。同様に、ヒト抗体は、トランスジェニック動物、例えば内因性免疫グロブリン遺伝子が部分的又は完全に不活性化されているマウスにヒト免疫グロブリン座位を導入することによって産生することができる。厳密に調べると、ヒト抗体の産生が観察され、それは遺伝子再構成、アセンブリ、及び抗体レパートリーを含むあらゆる点においてヒトに見られるものに極めて類似している。このアプローチは、例えば米国特許第５，５４５，８０７号；同第５，５４５，８０６号；同第５，５６９，８２５号；同第５，６２５，１２６号；同第５，６３３，４２５号；同第５，６６１，０１６号、及び次の科学文献に記載されている：Ｍａｒｋｓら， Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １０， ７７９−７８３ （１９９２）； Ｌｏｎｂｅｒｇら， Ｎａｔｕｒｅ ３６８ ８５６−８５９ （１９９４）； Ｍｏｒｒｉｓｏｎ， Ｎａｔｕｒｅ ３６８， ８１２−１３ （１９９４）； Ｆｉｓｈｗｉｌｄら， Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １４， ８４５−５１ （１９９６）； Ｎｅｕｂｅｒｇｅｒ， Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １４， ８２６ （１９９６）； Ｌｏｎｂｅｒｇ及びＨｕｓｚａｒ， Ｉｎｔｅｒｎ． Ｒｅｖ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． １３ ６５−９３ （１９９５）。
【０１４８】
また、抗体は、上記に記載のような既知の選択及び／又は突然変異誘発法を利用して親和的に成熟し得る。好ましい親和性成熟抗体は、５倍、より好ましくは１０倍、さらにより好ましくは２０又は３０倍も成熟抗体の調製の元である出発抗体（一般的には、マウス、ヒト化又はヒト）より高い親和性を有する。
【０１４９】
４．二重特異性抗体
二重特異性抗体は、少なくとも２つの異なる抗原に対して結合特異性を有するモノクローナル抗体、好ましくはヒトもしくはヒト化抗体である。本発明の場合では、結合特異性の一方はＩＬ−２２に対してであり、他方は任意の他の抗原、好ましくは細胞表面タンパク質又はレセプター又はレセプターサブユニットに対してである。
二重特異性抗体を作成する方法は当該技術分野において周知である。伝統的には、二重特異性抗体の組換え産生は、二つの重鎖が異なる特異性を持つ二つの免疫グロブリン重鎖／軽鎖対の同時発現に基づく［Ｍｉｌｓｔｅｉｎ及びＣｕｅｌｌｏ， Ｎａｔｕｒｅ， ３０５：５３７−５３９ （１９８３）］。免疫グロブリンの重鎖と軽鎖の無作為な組み合わせのため、これらハイブリドーマ（クアドローマ）は、その内の一種のみが正しい二重特異性構造を有する１０種の異なる抗体分子の入った潜在的混合物を生成する。正しい分子の精製は、通常はアフィニティークロマトグラフィー工程によって達成される。同様の手順が１９９３年５月１３日公開の国際公開９３／０８８２９、及びＴｒａｕｎｅｃｋｅｒら， ＥＭＢＯ Ｊ．，１０：３６５５−３６５９ （１９９１）に開示されている。
【０１５０】
所望の結合特異性（抗体−抗原結合部位）を有する抗体可変ドメインを、免疫グロブリン定常ドメイン配列に融合することができる。この融合は、好ましくは、少なくともヒンジ部、ＣＨ２及びＣＨ３領域の一部を含む免疫グロブリン重鎖定常ドメインとでおこる。少なくとも一つの融合に軽鎖結合に必要な部位を含む第一重鎖定常領域（ＣＨ１）が存在することが望ましい。免疫グロブリン重鎖融合、そして所望するならば免疫グロブリン軽鎖ををコードするＤＮＡを、別々の発現ベクターに挿入し、適当な宿主生物に同時トランスフェクションする。二重特異性抗体の作成に関する更なる詳細については、例えばＳｕｒｅｓｈら， Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ， １２１：２１０（１９８６）を参照されたい。
【０１５１】
国際公開９６／２７０１１に記載の他の方法によると、一対の抗体分子間の境界面を操作して、組換え細胞培養から回収する異種二量体の割合を最大にすることができる。好ましい境界面は、抗体定常ドメインのＣＨ３領域の少なくとも一部を含む。この方法では、１番目の抗体分子の境界面の１つ又は複数の小さなアミノ酸側鎖がより大きな側鎖（例えばチロシン又はトリプトファン）で置き換えられる。大きなアミノ酸側鎖を小さいもの（例えばアラニン又はスレオニン）と置き換えることによって、大きな側鎖と同じ又は類似のサイズの相補的な「キャビティ」を、二番目の抗体分子の境界面上に作り出す。これは、ホモダイマーのような不要な他の最終産物に対してヘテロダイマーの収量を増大させるメカニズムを提供する。
【０１５２】
二重特異性抗体は、全長抗体又は抗体断片（例えば、Ｆ（ａｂ’）２二重特異性抗体）として調製できる。抗体断片から二重特異性抗体を産生する技術は文献に記載されている。例えば、化学結合を利用して二重特異性抗体を調製することができる。Ｂｒｅｎｎａｎら， Ｓｃｉｅｎｃｅ， ２２９：８１ （１９８５）には無傷の抗体をタンパク分解的に切断してＦ（ａｂ’）２断片を産生する手順が記載されている。近接するジチオールを安定化させ、分子間ジスルフィド形成を防止するために、これらの断片をジチオール錯体形成剤亜砒酸ナトリウムの存在下で還元する。次いで、産生されたＦａｂ’断片をチオニトロベンゾアート（ＴＮＢ）誘導体に転換する。次いで、メルカプトエチルアミンでの還元によってＦａｂ’−ＴＮＢ誘導体の一つをＦａｂ’−チオールに再転換し、他のＦａｂ’−ＴＮＢ誘導体の等モル量と混合して二重特異性抗体を形成させる。この生成した二重特異性抗体は、酵素の選択的固定化用の薬剤として使用することができる。
【０１５３】
Ｆａｂ’断片を大腸菌から直接回収し、これを化学的に結合して二重特異性抗体を形成してもよい。Ｓｈａｌａｂｙら， Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ．， １７５：２１７−２２５ （１９９２）には、完全にヒト化した二重特異性抗体Ｆ（ａｂ’）２分子の製造が記載されている。各Ｆａｂ’断片は大腸菌から別々に分泌され、インビトロで定方向化学共役を施されて二重特異性抗体を形成する。このようにして形成された二重特異性抗体は、ヒト乳房腫瘍標的に対するヒト細胞傷害性リンパ球の細胞溶解活性を誘因すると同時に、正常なヒトＴ細胞及びＥｒｂＢ２レセプターを過剰発現する細胞に結合可能である。
【０１５４】
組換え細胞培養から直接に二重特異性抗体断片を作成して分離する様々な方法も記述されている。例えば、二重特異性抗体は、ロイシンジッパーを使用して産生されている。Ｋｏｓｔｅｌｎｙら， Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ． １４８（５）：１５４７−１５５３ （１９９２）。Ｆｏｓ及びＪｕｎタンパク質のロイシンジッパーペプチドを、遺伝子融合によって二つの異なる抗体のＦａｂ’部分に結合させる。抗体ホモダイマーをヒンジ領域で還元してモノマーを形成し、次いで再酸化して抗体ヘテロダイマーを形成する。この方法は、抗体ホモダイマーの産生にも使用することができる。Ｈｏｌｌｉｎｇｅｒら， Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ９０：６４４４−６４４８ （１９９３）に記載されている「ダイアボディ」技術は、二重特異性抗体断片を作成するもう一つの仕組みを提供した。断片は、短すぎて同一鎖上の２つのドメイン間の対形成をできない短いリンカーによって結合している軽鎖可変ドメイン（ＶＬ）に重鎖可変ドメイン（ＶＨ）を含む。従って、一つの断片のＶＨ及びＶＬドメインは、他の断片の相補的ＶＬ及びＶＨドメインとの対形成せざるおえず、そのために２つの抗原結合部位を形成する。単鎖Ｆｖ（ｓＦｖ）ダイマーを利用して二重特異性抗体断片を製造する他の方策も報告されている。Ｇｒｕｂｅｒら， Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ． １５２：５３６８ （１９９４）を参照されたい。
二価より多い抗体が考えられる。例えば、三重特異性抗体を調製することができる。Ｔｕｔｔら Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ． １４７：６０（１９９１）。
【０１５５】
典型的な二重特異性抗体は、ここで示されたＩＬ−２２ポリペプチドの２つの異なるエピトープに結合し得る。あるいは、特定のＩＬ−２２ポリペプチド発現細胞に細胞防御機構を集中させるように、抗−ＩＬ−２２ポリペプチドのアームは、Ｔ細胞レセプター分子（例えばＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ２８、又はＢ７）等の白血球上のトリガー分子又はＦｃγＲＩ（ＣＤ６４）、ＦｃγＲＩＩ（ＣＤ３２）及びＦｃγＲＩＩＩ（ＣＤ１６）等のＩｇＧ（ＦｃγＲ）に対するＦｃレセプターに結合するアームと結合し得る。特定のＩＬ−２２ポリペプチドを発現する細胞に細胞毒性薬を局在化させるために、二重特異性抗体も使用してもよい。これらの抗体は、ＩＬ−２２結合アーム及び細胞毒性薬又はＥＯＴＵＢＥ、ＤＰＴＡ、ＤＯＴＡ、又はＴＥＴＡ等の放射性キレート化剤と結合するアームを有する。対象である他の二重特異性抗体はＩＬ−２２ポリペプチドに結合し、そしてさらに組織因子（ＴＦ）に結合する。
【０１５６】
５．ヘテロコンジュゲート抗体
ヘテロコンジュゲート抗体も本発明の範囲内にある。ヘテロコンジュゲート抗体は、２つの共有結合した抗体からなる。このような抗体は、例えば、免疫系細胞を不要な細胞に対してターゲティングさせるため［米国特許第４，６７６，９８０号］、そしてＨＩＶ感染の治療のために［国際公開９１／００３６０；国際公開９２／２００３７３；欧州特許第０３０８９号］提案されている。この抗体は、架橋剤に関連したものを含む合成タンパク化学における既知の方法を使用して、インビトロで調製することができると考えられる。例えば、ジスルフィド交換反応を使用するか又はチオエーテル結合を形成することにより、免疫毒素を作成することができる。この目的に適した試薬の例には、イミノチオレート及びメチル−４−メルカプトブチリミデート、及び例えば米国特許第４，６７６，９８０号に開示されたものが含まれる。
【０１５７】
６．エフェクター機能の加工
例えば癌治療における抗体の有効性を向上させるために、本発明の抗体をエフェクター機能について改変することは望ましであろう。例えば、システイン残基をＦｃ領域に導入し、それにより、この領域に鎖間ジスルフィド結合を形成するようにしてもよい。そのようにして生成された同種二量体抗体は、向上したインターナリゼーションの能力及び／又は増加した補体媒介細胞殺傷及び抗体−依存性細胞性細胞毒性（ＡＤＣＣ）を有する可能性がある。Ｃａｒｏｎら， Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ． １７６： １１９１−１１９５ （１９９２）及びＳｈｏｐｅｓ， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． １４８： ２９１８−２９２２ （１９９２）を参照せよ。向上した抗腫瘍活性を持つ同種二量体抗体は、Ｗｏｌｆｆら， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ５３： ２５６０−２５６５ （１９９３）に記載されている異種二官能性架橋を用いても調製してもよい。あるいは、抗体は、２つのＦｃ領域を有するように加工することができ、それにより向上した補体溶解及びＡＤＣＣ能力を有し得る。Ｓｔｅｖｅｎｓｏｎら， Ａｎｔｉ−Ｃａｎｃｅｒ Ｄｒｕｇ Ｄｅｓｉｇｎ ３： ２１９−２３０ （１９８９）参照。
【０１５８】
７．免疫コンジュゲート
また、本発明は、化学治療薬、毒素（例えば、細菌、真菌、植物又は動物由来の酵素活性毒素、又はその断片）などの細胞毒性薬、あるいは放射性同位体（即ち、放射性コンジュゲート）とコンジュゲートしている抗体を含む免疫コンジュゲートに関する。
このような免疫複合体の生成に有用な化学治療薬は、上に記載されている。用いることのできる酵素活性毒素及びその断片には、ジフテリアＡ鎖、ジフテリア毒素の非結合活性断片、（緑膿菌からの）外毒素Ａ鎖、リシンＡ鎖、アブリンＡ鎖、モデクシン（ｍｏｄｅｃｃｉｎ）Ａ鎖、アルファ−サルシン、アレウリテス・フォーディ（Ａｌｅｕｒｉｔｅｓ ｆｏｒｄｉｉ）タンパク質、ジアンチン（ｄｉａｎｔｈｉｎ）タンパク質、フィトラカ・アメリカーナ（Ｐｈｙｔｏｌａｃａ ａｍｅｒｉｃａｎａ）タンパク質（ＰＡＰＩ、ＰＡＰＩＩ、及びＰＡＰ−Ｓ）、モモルディカ・チャランチア（ｍｏｍｏｒｄｉｃａ ｃｈａｒａｎｔｉａ）インヒビター、クルシン（ｃｕｒｃｉｎ）、クロチン（ｃｒｏｔｉｎ）、サパオナリア・オフィシナリス（ｓａｐａｏｎａｒｉａ ｏｆｆｉｃｉｎａｌｉｓ）インヒビター、ゲロニン（ｇｅｌｏｎｉｎ）、ミトゲリン（ｍｉｔｏｇｅｌｌｉｎ）、レストリクトシン（ｒｅｓｔｒｉｃｔｏｃｉｎ）、フェノマイシン（ｐｈｅｎｏｍｙｃｉｎ）、エノマイシン（ｅｎｏｍｙｃｉｎ）及びトリコテセン（ｔｒｉｃｏｔｈｅｃｅｎｅ）が含まれる。放射性コンジュゲート抗体の生成には、様々な放射性ヌクレオチドが利用可能である。例としては、２１２Ｂｉ、１３１Ｉ、１３１Ｉｎ、９０Ｙ及び１８６Ｒｅが含まれる。抗体及び細胞毒性薬のコンジュゲートは、種々の二官能性タンパク質カップリング剤、例えば、Ｎ−スクシンイミジル−３−（２−ピリジルジチオール）プロピオネート（ＳＰＤＰ）、イミノチオラン（ＩＴ）、イミドエステルの二官能性誘導体（ジメチルアジピミデートＨＣＬ等）、活性エステル（ジスクシンイミジルスベレート等）、アルデヒド（グルタルアルデヒド等）、ビス−アジド化合物（ビス（ｐ−アジドベンゾイル）ヘキサンジアミン等）、ビス−ジアゾニウム誘導体（ビス−（ｐ−ジアゾニウムベンゾイル）−エチレンジアミン等）、ジイソシアネート（トリエン２，６−ジイソシアネート等）、及びビス−活性フッ素化合物（１，５−ジフルオロ−２，４−ジニトロベンゼン等）を用いて作成できる。例えば、リシン免疫毒素は、Ｖｉｔｅｔｔａら， Ｓｃｉｅｎｃｅ ２３８： １０９８ （１９８７）に記載されているように調製することができる。カーボン−１４−標識１−イソチオシアナトベンジル−３−メチルジエチレントリアミン五酢酸（ＭＸ−ＤＴＰＡ）は、放射性ヌクレオチドの抗体へのコンジュゲーションのためのキレート剤の典型例である。国際公開９４／１１０２６を参照せよ。
【０１５９】
他の実施態様では、、抗体−レセプターコンジュゲートを患者に投与し、次いで清澄化剤を用いて未結合コンジュゲートを循環から除去し、次に細胞毒性薬（例えば、放射性ヌクレオチド等）にコンジュゲートされた「リガンド」（アビジン等）を投与する腫瘍の予備標的化で用いるために、抗体を「レセプター」（ストレプトアビジン等）にコンジュゲートしてもよい。
【０１６０】
８．免疫リポソーム
また、ここに開示する抗体は、免疫リポソームとして調製してもよい。抗体を含むリポソームは、Ｅｐｓｔｅｉｎら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８２： ３６８８ （１９８５）；Ｈｗａｎｇら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ７７： ４０３０ （１９８０）； 及び米国特許第４，４８５，０４５号及び第４，５４４，５４５号に記載のような、この分野で知られた方法で調製される。向上した循環時間を持つリポソームは、米国特許第５，０１３，５５６号に開示されている。
特に有用なリポソームは、ホスファチジルコリン、コレステロール及びＰＥＧ−誘導ホスファチジルエタノールアミン（ＰＥＧ−ＰＥ）を含む脂質組成物による逆相蒸発法によって生成できる。所望の径を有するリポソームを生成するために、リポソームは、所定サイズのフィルターを通して押し出される。本発明の抗体のＦａｂ’断片は、Ｍａｒｔｉｎら， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２５７： ２８６−２８８ （１９８２）に記載のように、ジスルフィド交換反応を介してリポソームとコンジュゲートさせてよい。化学治療薬（ドキソルビシン等）は、場合によってはリポソーム内に含有される。Ｇａｂｉｚｏｎら， Ｊ． Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃａｎｃｅｒ Ｉｎｓｔ． ８１（１９） １４８４ （１９８９）を参照せよ。
【０１６１】
９．抗体の製薬組成物
上記に開示したスクリーニングアッセイによって同定された他の分子だけでなく、ここで同定されるＩＬ−２２ポリペプチドに特異的に結合する抗体は、種々の疾患の治療のために、製薬組成物の形態で投与することができる。
ＩＬ−２２ポリペプチドが細胞内にあり、全抗体が阻害剤として用いられる場合、インターナリゼーションされる抗体が好ましい。しかし、リポフェクション又はリポソームも、抗体、又は抗体断片を細胞に導入するために使用できる。抗体断片が用いられる場合、標的タンパク質の結合ドメインに特異的に結合する最小阻害断片が好ましい。例えば、抗体の可変領域配列に基づいて、標的タンパク質配列に結合する能力を保持したペプチド分子が設計できる。このようなペプチドは、化学的及び／又は組換えＤＮＡ技術によって生成できる。例えば、Ｍａｒａｓｃｏら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ９０， ７８８９−７８９３ （１９９３）参照。
【０１６２】
ここでの製剤は、治療すべき特定の徴候に必要な場合に複数の活性化合物、好ましくは互いに悪影響を及ぼさない相補的活性を有するものも含んでもよい。あるいは、又はその上に、組成物はその機能を高める薬剤、例えば細胞毒性薬、サイトカイン又は成長阻害剤を含んでもよい。これらの分子は、意図する目的に有効な量の組み合わせによって適切に存在する。
また、活性成分は、例えばコアセルベーション技術により又は界面重合により調製されたマイクロカプセル、例えば、各々ヒドロキシメチルセルロース又はゼラチン−マイクロカプセル及びポリ（メタクリル酸メチル）マイクロカプセル中、コロイド状薬物送達系（例えば、リポソーム、アルブミン小球、マイクロエマルション、ナノ粒子及びナノカプセル）中、又はマイクロエマルション中に包括されてもよい。これらの技術は、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ， 上掲に開示されている。
インビボ投与に使用される製剤は無菌でなけらばならない。これは、滅菌濾過膜を通した濾過により容易に達成される。
【０１６３】
徐放性製剤を調製してもよい。徐放性製剤の好適な例は、抗体を含有する固体疎水性ポリマーの半透性マトリクスを含み、このマトリクスは成形された物品、例えばフィルム、又はマイクロカプセルの形状である。除放性マトリクスの例は、ポリエステルヒドロゲル（例えば、ポリ（２−ヒドロキシエチル−メタクリレート）又はポリ（ビニルアルコール））、ポリルアクチド（米国特許第３，７７３，９１９号）、Ｌ−グルタミン酸及びγ−エチル−Ｌ−グルタメート、非分解性エチレン−酢酸ビニル、ＬＵＩＬ−２２ ＤＥＰＯＴ（商品名）（乳酸−グリコール酸コポリマーと酢酸リュープロリドで構成される注射可能な小球）などの分解性乳酸−グリコール酸コポリマー、及びポリ−Ｄ−（−）−３−ヒドロキシブチル酸を含む。エチレン−酢酸ビニル及び乳酸−グリコール酸などのポリマーは分子を１００日に渡って放出することができるが、ある種のヒドロゲルはより短時間でタンパク質を放出してしまう。カプセル化された抗体が身体内に長時間残ると、それらは３７℃の水分へ曝されることにより変性又は凝集し、その結果、生物学的活性の低下及び起こり得る免疫原性の変化が生じる。合理的な方法は、関与する機構に基づいた安定化のために、合理的な戦略を考案することが可能である。例えば、凝集機構がチオ−ジスルフィド交換を介する分子間Ｓ−Ｓ結合形成であると見出された場合、安定化はスルフヒドリル残基の修飾、酸性溶液からの凍結乾燥、水分含有量の制御、適切な添加剤の付加、及び特異的ポリマーマトリクス組成物の開発によって達成され得る。
【０１６４】
Ｇ．抗−ＩＬ−２２抗体の用途
本発明の抗−ＩＬ−２２抗体は様々な有用性を有している。例えば、抗−ＩＬ−２２抗体は、ＩＬ−２２の診断アッセイ、例えばその特定細胞、組織、又は血清での発現（及びある場合には、特異的発現）の検出に用いてもよい。競合的結合アッセイ、直接又は間接サンドウィッチアッセイ及び不均一又は均一相で行われる免疫沈降アッセイ［Ｚｏｌａ， Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ： Ａ Ｍａｎｕａｌ ｏｆ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ， ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ， Ｉｎｃ． （１９８７） ｐｐ． １４７−１５８］等のこの分野で知られた種々の診断アッセイ技術が使用されてもよい。診断アッセイで用いられる抗体を、検出可能な部位で標識できる。検出可能な部位は、直接又は間接的に、検出可能なシグナルを発生することができなければならない。例えば、検出可能な部位は、３Ｈ、１４Ｃ、３２Ｐ、３５Ｓ又は１２５Ｉ等の放射性同位体、フルオレセインイソチオシアネート、ローダミン又はルシフェリン等の蛍光又は化学発光化合物、又はアルカリホスファターゼ、ベータ−ガラクトシダーゼ又はセイヨウワサビペルオキシダーゼ等の酵素であってもよい。抗体に検出可能な部位をコンジュゲートさせるためにこの分野で知られた任意の方法を用いてもよく、その方法にはＨｕｎｔｅｒら， Ｎａｔｕｒｅ １４４：９４５ （１９６２）；Ｄａｖｉｄら， Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， １３： １０１４ （１９７４）；Ｐａｉｎら， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｍｅｔｈ．， ４０：２１９ （１９８１）；及びＮｙｇｒｅｎ， Ｊ． Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ． ａｎｄ Ｃｙｔｏｃｈｅｍ．， ３０：４０７ （１９８２）に記載の方法が含まれる。
【０１６５】
また、抗−ＩＬ−２２抗体は、組換え細胞培養又は天然供給源からＩＬ−２２のアフィニティー精製にとっても有用である。この工程では、当該分野でよく知られている方法を使用して、セファデックス樹脂や濾紙のような適切な支持体にＩＬ−２２に対する抗体を固定化する。次に、固定化抗体を精製すべきＩＬ−２２を含む試料と接触させ、その後で、試料中の固定化抗体と結合したＩＬ−２２を除く全ての物質をしっかりと除去するのに適した溶媒で支持体を洗浄する。最後に、抗体からＩＬ−２２を脱離させるのに適した他の溶媒でこの支持体を洗浄する。ＩＬ−２２との結合にも用途が見出され、従ってＰＡＰ１発現を阻害する抗−ＩＬ−２２抗体は、膵臓疾患の重症度を軽減することができる。
【０１６６】
以下の実施例は例示するためにのみ提供されるものであって、本発明の範囲を決して限定することを意図するものではない。
本明細書で引用した全ての特許及び参考文献の全体を、出典明示によりここに取り込む。
【０１６７】
（実施例）
実施例で言及されている全ての市販試薬は、特に示さない限りは製造者の使用説明に従い使用した。ＡＴＣＣ登録番号により以下の実施例及び明細書全体を通して特定されている細胞の供給源はアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション、マナッサス、バージニアである。
【０１６８】
実施例１： ＩＬ−２２のクローニング
公的（例えば、ＧｅｎＢａｎｋ）及び／又は私有の（ＬＩＦＥＳＥＱ（登録商標）， インサイト・ファーマスーティカルス， インコーポレーデッド，パロアルト， カリフォルニア）データベースからクラスターし、アセンブルしたＥＳＴ断片だけでなく、ＥＳＴｓにもジェネンテック・インコーポレーテッド（サウス サンフランシスコ，カリフォルニア）が独自に開発した配列発見アルゴリズムを適用することで、インターロイキン−２２（ＤＮＡ１２５１８５−２８０６）を同定した。このシグナル配列アルゴリズムは、検討中の配列又は配列断片の５’末端にある第１、場合によっては第２のメチオニンコドン（ＡＴＧ）の周囲のＤＮＡヌクレオチドの文字に基づいて分泌シグナル開始点を計算する。第１のＡＴＧに続くヌクレオチドには、停止コドンを持たない少なくとも３５のはっきりとしたアミノ酸がコードされていなければならない。第１のＡＴＧが必須のアミノ酸を有する場合、第２のものは検討しない。何れも要件を満たさない場合、候補配列に刻み線を付けない。ＥＳＴ配列が真正のシグナル配列を含むか否かを決定するために、分泌シグナルに関連することが知られている７つのセンサー（評価パラメータ）の一組を用いて、ＡＴＧコドンの周囲のＤＮＡ及び対応するアミノ酸配列に刻み線を付ける。
【０１６９】
上記のシグナル配列アルゴリズムの使用によって、Ｉｎｃｙｔｅデータベースからのここで５０８６１７３Ｈ１と命名されたＥＳＴクラスター配列の同定が可能となった。このＥＳＴクラスター配列を、次に、公的ＥＳＴデータベース（例えばＧｅｎＢａｎｋ）及び私有のＥＳＴ ＤＮＡデータベースＬＩＦＥＳＥＱ（登録商標）， インサイト・ファーマスーティカルス， インコーポレーデッド，パロアルト， カリフォルニア）を含む種々の発現配列タグ（ＥＳＴ）データベースと比較し、存在するホモロジーを同定した。このホモロジー検索は、コンピュータープログラムＢＬＡＳＴ又はＢＬＡＳＴ２（Ａｌｔｓｃｈｕｌら， Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ２６６： ４６０−４８０ （１９９６））を用いておこなった。既知のタンパク質をコードしない７０（又はある場合は９０）又はそれより大きいＢＬＡＳＴスコアをもたらしたこれらの比較を、プログラム「ｐｈａｒｐ」（Ｐｈｉｌ Ｇｒｅｅｎ， ワシントン大学，シアルトル，ワシントン）でコンセンサスＤＮＡへクラスター化及びアセンブルした。それから得られたコンセンサス配列は、ＤＮＡ１１０８８０とここで命名されている。
【０１７０】
ＤＮＡ１１０８８０配列とインサイト データベースのクローン第５０８８３８４号に含まれるＥＳＴ配列との間で観察される配列ホモロジーを考慮して、クローン第５０８８３８４号を購入し、ｃＤＮＡ挿入部分を得て配列を決定した。ここで、そのｃＤＮＡ挿入部分が完全長タンパク質をコードすることが見出された。このｃＤＮＡ挿入部分の配列は図１に示され、ここでＩＬ−２２（ＤＮＡ１２５１−２８０６）と命名されている。
【０１７１】
クローンＤＮＡ１２５１８５−２８０６は、はっきりとした翻訳開始部位をヌクレオチド位置５８−６０に有し、そしてヌクレオチド位置５９５−５９７の終止コドンで終止する単一のオープンリーディングフレームを含む（図１，配列番号：１）。予想されるポリペプチド前駆体は１７９アミノ酸長である（図２，配列番号：２）。図２に示す完全長ＩＬ−２２タンパク質は、約２０，０１１ダルトンの推定分子量と約８．１０のｐＩを有する。図２（配列番号：２）に示す完全長ＩＬ−２２配列の分析によって、図２に示す種々の重要なポリペプチドドメインの存在が明らかにされ、これら重要なポリペプチドドメインの位置は上記に示すようにおおよそのものである。ＩＬ−２２（ＤＮＡ１２５１−２８０６）は、１９９９年１２月７日にＡＴＣＣへ寄託され、ＡＴＣＣ寄託番号ＰＴＡ−１０３１が割り当てられている。
【０１７２】
実施例２： レセプター／リガンド相互作用の同定
本アッセイでは、レセプター／リガンド相互作用を同定する目的で、潜在的なレセプター又はリガンド分子の一団と結合する能力に関して、種々のＩＬ−２２ポリペプチドを試験した。既知のレセプターに対するリガンド、既知のリガンドに対するレセプター、或いは新規のレセプター／リガンド対の同定は、例えばレセプター又はリガンドを発現することが知られている細胞へ生物活性分子（リガンド又はレセプター）を標的化すること、組成物がリガンド又はレセプターを発現すると思われる細胞を含んでなるであろう場合に、リガンド又はレセプターを含むと思われる組成物中からリガンド又はレセプターの存在を検出するためにリガンド又はレセプターを試薬として利用すること、レセプター又はリガンドを発現或いはそれらへ応答することが知られている細胞の成長、又はその他の生物学的又は免疫活性を調節すること、細胞の免疫応答、或いはレセプター又はリガンドを発現する細胞に対する免疫応答を調節すること、レセプター又はリガンドを発現している細胞の成長又は生物学的又は免疫活性を調節するレセプター又はリガンドに対する アゴニスト、アンタゴニスト及び／又は抗体の調製を可能にすること、並びに当業者にとって直ぐにに明らかである種々の他の徴候を含む種々の徴候にとって有用である。
【０１７３】
このアッセイは、次のようにして行われた。レセプターに対するリガンドであると思われる本発明のＩＬ−２２ポリペプチドは、ヒトＩｇＧのＦｃドメイン（イムノアドへシン）を含有する融合タンパク質として発現する。レセプター−リガンド結合は、候補ＩＬ−２２ポリペプチドレセプターを発現する細胞（例えばＣｏｓ細胞）とイムノアドへシンポリペプチドの相互作用、Ｆｃ融合ドメインに対する蛍光試薬による結合イムノアドへシンの視覚化、そして顕微鏡による検査を可能にすることによって検出される。候補レセプターを発現する細胞は、同時に、レセプター分子として機能し得るＩＬ−２２ポリペプチドをコードするｃＤＮＡ発現ベクターライブラリの明かなサブセットの一過性トランスフェクションによって産生される。次いで、起こり得るレセプター結合に関して試験したＩＬ−２２ポリペプチドイムノアドへシンの存在下で、細胞を１時間に渡ってインキュベートする。そして、この細胞を洗浄し、パラホルムアルデヒドで固定化する。次いで、この細胞を、ＩＬ−２２ポリペプチドイムノアドへシンのＦｃ部分に対する蛍光コンジュゲート抗体（ＦＩＴＣコンジュゲート抗体（ヤギ抗−ヒト−Ｆｃ抗体）とインキュベートする。そして、この細胞を再び洗浄し、顕微鏡で検査した。ポジティブな相互作用は、特定のＩＬ−２２ポリペプチドレセプター又はレセプターのプールをコードするｃＤＮＡでトランスフェクションした細胞では蛍光標識化が認められること、及び同じように蛍光標識された他のｃＤＮＡ又はｃＤＮＡのプールでトランスフェクションした同じように調製された細胞では同じような蛍光標識化が認められないことによって判定される。ＩＬ−２２ポリペプチドイムノアドへシンとの相互作用に関して、ｃＤＮＡ発現ベクターの確定されたプールがポジティブと判定されたならば、ＩＬ−２２ポリペプチドイムノアドへシンと相互作用することが可能なレセプターをコードする特定のｃＤＮＡを確定するために、プールを構成する個々のｃＤＮＡ種が別々に試験される（プールは「分解」される）。
【０１７４】
本アッセイのその他の実施態様では、エピトープタグした潜在的なＩＬ−２２ポリペプチド（例えば、８ヒスチジン「Ｈｉｓ」タグ）は、ヒトＩｇＧのＦｃドメイン（イムノアドへシン）との融合体して発現した潜在的なレセプターＩＬ−２２ポリペプチド分子の一団と相互作用することが可能である。１時間に渡るエピトープタグＩＬ−２２ポリペプチドとの同時インキュベーションに続いて、候補レセプターをそれぞれプロテインＡビーズによって免疫沈降させ、そのビーズを洗浄した。潜在的なリガンド相互作用は、エピトープタグに対する抗体による免疫沈降複合体のウェスタンブロット分析によって確かめられる。候補化合物によるウェスタンブロト分析においてエピトープタグタンパク質の期待される分子量のバンドが観察されるが、潜在的レセプターの一団の他のメンバーによっては起こらないことが観察されるならば、相互作用は起こるものと判断される。
これらのアッセイを利用し、以下のレセプター／リガンド相互作用が同定されている：
１．ＩＬ−２２がＩＬ−１０Ｒβと結合。図１０（配列番号：３）
２．ＩＬ−２２がＩＬ−２２Ｒと結合。図１１（配列番号：４）
（また、［Ｘｉｅら．， Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ （２０００）２７５， ３１３３５−３１３３９］を参照せよ）
【０１７５】
実施例３： 複数のヒト組織でのＩＬ−２２レセプターの発現
複数の組織のノーザンブロットを、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ（パロアルト， カリフォルニア）から得た。３２Ｐ−γＡＴＰ及びＴ４ポリヌクレアーゼキナーゼを使用した５０−ｍｅｒ ＩＬ−２２レセプター特異的オリゴヌクレオチドの末端を標識することによって、これらのブロットをプローブとハイブリダイゼーションさせた。次いで、４２℃で２ＸＳＳＣ／０．２％ＳＤＳにより３Ｘ、そして０．２ＸＳＳＣ／０．１％ＳＤＳにより１Ｘ、ブロットを洗浄した。次いで、このブロットを１６時間にわたって増感紙でＸ−ＯＭＡＴフィルムに曝した。その結果は図３に示されている。その図は、ＩＬ−２２レセプターが膵臓で高発現し、小腸、肝臓、腎臓及び結腸では低いレベルのＩＬ−２２レセプターが観察されたことを示す。
【０１７６】
実施例４： Ｔａｑｍａｎ（商標名）分析
組織を溶解バッファーでホモジナイズし、その溶解物を塩化セシウム（５．７Ｍ ＣｓＣｌ／５０ｍＭ ＥＤＴＡ）の上に層状にし、そして１６時間にわたって３５，０００Ｘｇで遠心分離することによって全ＲＮＡを得た。次いで、この細胞ペレットをＲＮＡフリーの水に懸濁させた。次に、５０ナノグラムのＲＮＡをＴａｑｍａｎ（商標名）分析に用いた。発現の評価は、ハウスキーピング遺伝子のＧＡＰＤＨと関連して設定した。
【０１７７】
ＴａｑＭａｎ（商標名）反応とは、ＴａｑＤＮＡポリメラーゼ酵素の５’ヌクレアーゼ活性を利用して増幅をリアルタイムでモニターする蛍光ＰＣＲ−ベース技術である。２つのオリゴヌクレオチドプライマーを用いて、ＰＣＲ反応に特有なアンプリコンを生成する。三番目のオリゴヌクレオチド、又はプローブを設計して、２つのＰＣＲプライマーの間に位置するヌクレオチドを検出する。このプローブは、ＴａｑＤＮＡポリメラーゼ酵素によって伸長可能ではなく、レポーター蛍光色素及びクエンチャー蛍光色素で標識される。この２つの色素がプローブ上にあってそれらが近接して位置する場合には、このレポーター色素からの何れのレーザー誘導発光もクエンチャー色素で消光する。増幅反応の間、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ酵素は、テンプレートに依存した様式でプローブを切断する。この結果で生じたプローブ断片は、溶液中で解離し、遊離したレポーター色素からのシグナルは、二番目のフルオロフォアの消光効果の作用を受けない。各新規分子が合成されるとレポーター色素の１分子が遊離し、非消光レポーター色素の検出によってデータの定量的解釈の基礎が示される。
【０１７８】
ＴａｑＭａｎ（商品名）の結果は、デルタ（Δ）Ｃｔ単位によって報告する。ＴａｑＭａｎ（商品名）分析データは、最初はＣｔ、又は閾値サイクルで表された。これは、レポーター信号が蛍光のバックグラウンドレベルを超えて蓄積するサイクルとして定義される。ΔＣｔ値は、癌の結果を正常なヒトの結果と比較する場合に、核酸試料中の特定の標的配列の開始コピーの相対数の定量的測度として用いられる。１単位は、１ＰＣＲサイクル、又は標準に対しておよそ２倍の相対増幅に一致し、２単位は４倍相対増加に一致し、３単位は８倍相対増加に一致する等々である。定量化はプライマー及びＩＬ−２２レセプター（ＩＬ−２２Ｒ）コード化遺伝子から誘導したＴａｑＭａｎ（商品名）蛍光プローブを用いて得た。最も独特な核酸配列を含むと思われ、スプライシングされたイントロンを最も有しないと思われるＩＬ−２２Ｒの領域は、プライマー及びプローブ誘導、例えば３−非翻訳領域にとって好ましい。ＩＬ−２２遺伝子の増幅分析に使用されるプライマー及びプローブ（正、逆及びプローブ）の配列は次の通り：
１６５６０８．ｔｍ．ｆ１（正方向プライマー）
５’ ＴＧＣＡＡＣＣＴＧＡＣＧＧＴＧＧＡＧＡ ３’ （配列番号：５）
１６５６０８．ｔｍ．ｒ１（逆方向プライマー）
５’ ＡＧＡＧＡＧＣＴＧＡＡＣＣＴＧＴＣＡＧＴＣＡＴＣＴＴ ３’ （配列番号：６）
１６５６０８．ｔｍ．ｐ１（プローブ）
５’ ＣＡＧＴＧＣＧＧＧＡＧＧＣＣＧＧＴＣＡ ３’ （配列番号：７）
【０１７９】
ＴａｑＭａｎ（商品名）手法は、ＡＢＩ Ｐｒｉｓｍ ７７００ＴＭ のようなリアルタイム定量ＰＣＲ装置でおこなわれる。このシステムは、サーモサイクラー、レーザー、電荷結合素子（ＣＣＤ）カメラ、及びコンピュータからなる。このシステムは、サーモサイクラーの９６ウェルフォーマットで試料を増幅する。増幅の間、レーザー励起した蛍光シグナルが、９６ウェル全ての光ファイバーケーブルを通してリアルタイムで収集され、ＣＣＤで検出される。このシステムは、装置を作動し、データを分析するソフトウェアを装備している。
【０１８０】
次いで、蛍光定量的に測定されたｍＲＮＡの濃度を用いて、各試料をｄｄＨ２Ｏで１０ｎｇ／μｌに希釈した。これは、幾つかのアッセイをおこなうのに十分な材料で、単一ＴａｑＭａｎ（商品名）プレートアッセイのための全てのテンプレート試料上で同時におこなわれた。この試料は、ＴａｑＭａｎ（商品名）プライマー、及び正常ヒトｍＲＮＡ、逆転写酵素を添加せず、テンプレートコントロールが無い単一プレート上のＢ−アクチン及びＧＡＰＤＨの双方のプローブで３通りで試験された。使用された逆転写酵素は、Ｓｕｐｅｒ Ｓｃｒｉｐｔ ＩＩ（ライフ テクノロジー・インコーポレーテッド， グランドアイランド， ニューヨーク）であった。Ｔａｑポリメラーゼ、バッファー、及びｄＮＴＰについては、パーキンエルマー（パーキンエルマー， Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ Ｄｉｖｉｓｉｏｎ， フォスター シティー， カリフォルニア）からの供給を受けた。サーモサイクラーの条件は次の通りである。
Figure 2004520811
結果：
この結果は、図４に示す。
インターロイキン−２２レセプターは膵臓で最も高く発現し、胎児肝臓、成人肝臓、腎臓、腸及び結腸で発現が検出された。
【０１８１】
実施例５： 膵臓腺房細胞でのＳＴＡＴ活性化
２６６−６はマウス膵臓腺房細胞から誘導した細胞株で、ＡＴＣＣ（ＡＴＣＣ寄託番号ＣＲＬ−２１５１）から得た。これらの細胞を１０％ＦＢＳペニシリン／ストレプトマイシン及び２ｍＭＬ−グルタミン（ライフ テクノロジーズ ゲーサーズバーグ，メリーランド）を補充したＤＭＥＭで培養し、５％ＣＯ２加湿チャンバーで維持した。２６６−６細胞を、３７℃で１０分間、バキュロウイルス上清（１０％ ｖｏｌ／ｖｏｌ）を含むｈｉｓ−タグマウスＩＬ−２２のコントロールで刺激した。ＳＴＡＴスーパーシフト実験のに使用される抗体は、サンタ クルーズ バイオテクノロジー（サンタ クルーズ，カリフォルニア）から購入した。マウスＩＬ−２２によって誘導されたＳＴＡＴ結合タンパク質は、図５に示すように、抗体でＳＴＡＴ３へスーパーシフトすることができる。これは、Ｊａｎｕｓ Ｋｉｎａｓｅ （ＪＡＫ−ＳＴＡＴ）経路の活性化によって、そして特にＳＴＡＴ３を介して、膵臓腺房細胞細胞株２６６−６がマウスＩＬ−２２へ応答することを示している。膵臓ベーター細胞株（ＮＩＴ−１）は、ＪＡＫ−ＳＴＡＴ経路を利用しない（データは示さず）。
【０１８２】
実施例６： ＩＬ−２２は、膵炎関連タンパク質（ＰＡＰ１）の発現を増す。
膵炎関連タンパク質（ＰＡＰ１）は分泌タンパク質であり、急性膵炎で過剰発現し、正常膵臓では発現レベルが殆ど完全にない［Ｉｏｖａｎｎａら．， Ｊ Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． （１９９１）， ２６６， ２４６６４−２４６６９］。ＰＡＰ１の正確な機能は知られていないが、それはｃ−型レクチンの炭水化物認識ドメインと構造的に関連し、ＲＥＧファミリーの分子のメンバーである。報告は、ＲＥＧファミリーのメンバーの栄養活性を示唆している［Ｎｉｓｈｉｍｕｎｅら．， （２０００） Ｎａｔ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ ２（１２）， ９０６−１４］。他のサイトカインによるＰＡＰ１の誘導、例えばＩＬ−１又はＩＬ−６のいずれか単独又は組み合わせでは、ＰＡＰ１をアップレギュレーションできない［Ｄｕｓｅｔｔｉら．， （１９９５）Ｊ． Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２７０．， ２２４１７−２２４２１］。ＰＡＰ１が増加した血清レベルは、小腸疾患であるセリアック病［Ｃａｒｒｏｃｃｉｏら．， （１９９７） Ｄｉｇｅｓｔｉｏｎ ５８， ９８−１０３］の患者、そして嚢胞性線維症［Ｉｏｖａｎｎａら．， （１９９４） Ｃ．Ｒ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ ３１７， ５６１−５６４］の患者に見られる。
【０１８３】
２６６−６細胞を、６時間にわたって精製ｈｉｓ−タグマウスＩＬ−２２で処理した。溶解バッファーで細胞をホモジナイズし、この塩化セシウム（５．７Ｍ ＣｓＣｌ／５０ｍＭ ＥＤＴＡ）を含む細胞可溶化物を層状にすることによって、全ＲＮＡを抽出した。この細胞可溶化物を１６時間にわたって３５，０００Ｘｇで遠心分離した。細胞ペレットを、リボヌクレアーゼのない水に再懸濁した。ＲＮＡの２０マイクログラムをホルムアルデヒド変性ゲルを用いて溶解し、ニトロセルロース膜上へ移した。ハイブリダイゼーションは、ＰＡＰ１−特異的３２Ｐ−γＡＴＰ標識オリゴヌクレオチドプローブを使用しておこなった。４２℃で、２ＸＳＳＣ／０．２％ＳＤＳによって３Ｘ、そして０．２ｘＳＳＣ／０．１％ＳＤＳによって１Ｘ、ブロットを洗浄した。ブロットを、１６時間にわたって増感紙でＸ−ＯＭＡＴフィルムに曝した。このブロットを、次いで剥ぎ取り、そして３２Ｐ−γＡＴＰ標識ＧＡＰＤＨ特異的オリゴヌクレオチドプローブを用いて再プローブした。この結果を図６Ａに示す。２６６−６細胞のマウスＩＬ−２２とのインキュベーションは、ＰＡＰ１遺伝子発現の劇的な誘導を引き起こした。原発性膵臓腺房細胞がマウスＩＬ−２２に対しても応答することができるかどうかを確かめるために、コラゲナーゼ消化によって原発性腺房細胞をマウス膵臓から単離し、精製マウスＩＬ−２２とともに又はそれなしで、６時間にわたってインキュベーションした。ＲＮＡを上記のようにして調製し、ＰＡＰ１発現を調べた。２６６−６細胞株のように、マウスＩＬ−２２は、単離した原発性膵臓腺房細胞におけるＰＡＰ１発現の実質的なアップレギュレーションを誘導した。
【０１８４】
実施例７： ＩＬ−２２は、インビボでのＰＡＰ１遺伝子発現を誘導する。
マウスＩＬ−２２のインビボでの効果を調べるために、マウスの３つのグループへ２５マイクログラムのマウスＩＬ−２２又はＰＢＳを腹腔内に注射した。マウスを注射後の２，６又は２４時間目に収集し、それらの膵臓を取り出して即冷凍した。この組織のＲＮＡを調製し、ＰＡＰ１遺伝子特異的プローブを用いて実施例５に記載のノーザンブロッティング分析をおこなった。図７に示すように、ＰＡＰ１は、２時間のマウスＩＬ−２２注射の間にアップレギュレーションされ、約６時間で発現ピークに達し、そして２４時間でもまだ誘導された。
【０１８５】
実施例８： ＩＬ−２２膵臓応答
観察された膵臓の応答が、組み換えタンパク質の非特異的毒性よりもＩＬ−２２レセプター媒介シグナル伝達に起因していることを確かめるために、ｍＩＬ−２２をＩＬ−１０Ｒβ欠損マウスへ注射した。これらのマウスは、ＩＬ−２２シグナル伝達に関わるＩＬ−１０Ｒβ／ＩＬ−２２Ｒの１つの機能鎖を欠いてる。ＩＬ−１０Ｒβ欠損マウスは、以前、ＩＬ−１０に対する応答性を欠くことが報告されていた。ＩＬ−１０Ｒβ欠損マウスから単離した脾臓の単球は、リポ多糖（ＬＰＳ）の誘導によるＩＬ−６分泌（図８）又はＴＮＦ−アルファ（示されず）のＩＬ−１０媒介阻害を示さない。以前に知られていたように、ＩＬ−２２は、ＬＰＳへの単球の応答に作用するとは思われない（Ｘｉｅら．， （２０００） Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．， ２７５， ３１３３５−３１３３９）。ＩＬ−２２は、ＬＰＳへの単球の応答に作用するとは思われない。
【０１８６】
実施例９： ＩＬ−１０Ｒβ欠損マウスでのＩＬ−２２の応答
ＩＬ−１０Ｒβを欠いている又は「ノックアウト」しているマウスは、ＩＬ−２２シグナル伝達にとって必要なＩＬ−２２Ｒ／ＩＬ−１０Ｒβレセプター複合体の１つの機能鎖を欠き、そしてＩＬ−１０Ｒβ欠損マウスは、以前、ＩＬ−１０応答性を欠くものと報告された。ＩＬ−１０Ｒβ欠損マウス及び野生型マウスを、マウスＩＬ−２２で又はそれ無しで腹腔内に注射し、注射の１６時間後に収集し、そして以前に記載のようにＰＡＰ１プローブを用いて膵臓ＲＮＡについてノーザンブロット分析をおこなった。ＩＬ−１０Ｒβマウスが細胞内シグナルを伝達するのに必要な１つの鎖を欠くように、ＰＡＰ１の誘導がないことが図９にはっきりと示されている。対照的に、野生型マウスは、同じく図９に示されているように、ＰＡＰ１発現の強力な誘導を示した。
【０１８７】
実施例１０： ハイブリダイゼーションプローブとしてのＩＬ−２２の用途
以下の方法は、ＩＬ−２２をコードするヌクレオチド配列のハイブリダイゼーションプローブとしての用途を示す。
ここに開示されている完全長又は成熟ＩＬ−２２のコード化配列を含むＤＮＡは、ヒト組織ｃＤＮＡライブラリ又はヒト組織ゲノムライブラリでの同種ＤＮＡ（ＩＬ−２２の天然発生変異体をコードするもの等）のスクリーニングのためのプローブとして用いられる。
ハイブリダイゼーション及びいずれかのライブラリＤＮＡを含むフィルターの洗浄は、次の高いストリンジェントな条件によって実施する。放射標識ＩＬ−２２誘導プローブのフィルターへのハイブリダイゼーションを、５０％ホルムアミド、５ｘＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、０．１％ピロリン酸ナトリウム、５０ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ６．８、２ｘデンハード液、及び１０％デキストラン硫酸の溶液中で４２℃、２０時間おこなう。フィルターの洗浄は、０．１ｘＳＳＣ及び０．１％ＳＤＳ水溶液中で４２℃で実施する。
次いで、完全長天然配列ＩＬ−２２をコードするＤＮＡと所望の配列同一性を有するＤＮＡは、この分野で知られている標準的技術を用いて同定することができる。
【０１８８】
実施例１１： 大腸菌におけるＩＬ−２２の発現
この実施例は、大腸菌における組み換え発現によるＩＬ−２２の非グリコシル化型の調製を例証する。
ＩＬ−２２をコードするＤＮＡ配列を、選択したＰＣＲプライマーを用いて最初に増幅する。このプライマーは、選択した発現ベクター上の制限酵素部位に対応する制限酵素部位を含まなければならない。様々な発現ベクターを使用してもよい。適したベクターの例としては、アンピシリン及びテトラサイクリン耐性に関する遺伝子を含むｐＢＲ３２２（大腸菌由来；Ｂｏｌｉｖａｒら， Ｇｅｎｅ， ２：９５ （１９９７）を参照のこと）がある。ベクターを制限酵素によって消化し、脱リン酸化する。次いで、ＰＣＲで増幅した配列をベクターへライゲーションする。ベクターには、好ましくは抗生物質耐性遺伝子、ｔｒｐプロモーター、ポリｈｉｓリーダー（最初の６つのＳＴＩＩコドン、ポリｈｉｓリーダー、及びエンテロキナーゼ切断部位を含む）、ＩＬ−２２コード領域、ラムダ転写ターミネーター及びａｒｇＵ遺伝子をコードする配列が含まれる。
【０１８９】
次いで、Ｓａｍｂｒｏｏｋら， 上記に記載されている方法を用いて、このライゲーション混合物を利用して選択した大腸菌株を形質転換した。ＬＢ部レート上で成長する能力によって形質転換体を同定し、次いで抗生物質耐性コロニーを選択する。プラスミドＤＮＡは、単離して制限分析とＤＮＡシーケンシングによって確認することができる。
選択したクローンは、例えば抗生物質を補充したＬＢブロス等の液体培地で一晩にわたって成長させることができる。より大きなスケールの培養を接種するために、引き続いてこの一晩にわたる培養液を使用してもよい。そして、細胞を所望の光学密度に達するまで成長させ、その間までに発現プロモーターが作動する。
さらに数時間、細胞を培養した後、遠心分離によって細胞を収集することができる。当該分野で公知の様々な薬剤を使用して、遠心分離で得られた細胞ペレットを可溶化することができ、次いで、タンパク質の堅固な結合を可能にする条件下で金属キレート化カラムを用いて、この可溶性ＩＬ−２２タンパク質を精製すること可能である。
【０１９０】
以下の手法を用いて、ポリ−Ｈｉｓタグ形態のＩＬ−２２を大腸菌で発現させてもよい。ＩＬ−２２をコードするＤＮＡを、選択したＰＣＲプライマーを用いて最初に増幅する。このプライマーには、選択した発現ベクターの制限酵素部位に対応する制限酵素部位、及び効率的で信頼性のある翻訳開始、金属キレートカラムでの迅速な精製、及びエンテロキナーゼでのタンパク質分解的除去のための他の有用な配列が含まれる。次いで、ＰＣＲで増幅したポリ−Ｈｉｓタグ配列を発現ベクターへ結合させ、これを株５２（Ｗ３１１０ ｆｕｈＡ（ｔｏｎＡ） ｌｏｎ ｇａｌＥ ｒｐｏＨｔｓ（ｈｔｐＲｔｓ） ｃｌｐＰ（ｌａｃＩｑ））に基づく大腸菌宿主の形質転換に使用した。形質転換体を、最初に５０ｍｇ／ｍｌのカルベニシリンを含有するＬＢ中で、３０℃で振盪しながら３−５のＯ．Ｄ．６００に達するまで成長させる。ついで培養液をＣＲＡＰ培地（３．５７ｇの（ＮＨ４）２ＳＯ４、０．７１ｇのクエン酸ナトリウム・２Ｈ２Ｏ、１．０７ｇのＫＣｌ、５．３６ｇのＤｉｆｃｏ酵母抽出物、５００ｍＬ水中の５．３６ｇのＳｈｅｆｆｉｅｌｄ ｈｙｃａｓｅ ＳＦ、並びに１１０ｍＭのＭＰＯＳ、ｐＨ７．３、０．５５％（ｗ／ｖ）のグルコース及び７ｍＭのＭｇＳＯ４の混合して調製）で５０−１００倍希釈し、３０℃で振盪によって約２０−３０時間成長させた。ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより発現を確認するために試料を取り出し、バルク培地を遠心分離して細胞をペレットにする。精製及びリフォールディング（再折りたたみ）まで、細胞ペレットを凍結する。
【０１９１】
０．５から１Ｌの発酵（６−１０ｇペレット）による大腸菌ペーストを、７Ｍのグアニジン、２０ｍＭのトリス、ｐＨ８バッファーで１０容量（ｗ／ｖ）に再懸濁した。固体硫酸ナトリウム及びテトラチオン酸ナトリウムを添加して最終濃度を各々０．１Ｍ及び０．０２Ｍとし、溶液を４℃で終夜撹拌する。この工程により、すべてのシステイン残基が亜硫酸でブロックされた変性タンパク質が生じる。この溶液をベックマン 超遠心機で４０，０００ｒｐｍで３０分間濃縮する。その上清を金属キレートカラムバッファー（６Ｍのグアニジン、２０ｍＭのトリス、ｐＨ７．４）の３−５容量で希釈し、０．２２ミクロンフィルターで濾過して透明にする。その透明抽出物を、金属キレートカラムバッファーで平衡化した５ｍｌのＱｉａｇｅｎ Ｎｉ−ＮＴＡ金属キレートカラムに負荷する。そのカラムを、５０ｍＭのイミダゾール（カルバイオケム， Ｕｔｒｏｌ ｇｒａｄｅ）を含む添加バッファー、ｐＨ７．４で洗浄する。タンパク質を２５０ｍＭのイミダゾールを含有するバッファーで溶離する。所望のタンパク質を含有する分画をプールし、４℃で保存する。タンパク質濃度は、そのアミノ酸配列に基づいて計算した吸光係数を用いて、２８０ｎｍにおけるその吸収から推定する。
【０１９２】
試料を２０ｍＭのトリス、ｐＨ８．６、０．３ＭのＮａＣｌ、２．５Ｍの尿素、５ｍＭのシステイン、２０ｍＭのグリシン及び１ｍＭのＥＤＴＡからなる新たに調製した再生バッファー中で徐々に希釈することによって、タンパク質を再生させる。リフォールディング容量は、最終的なタンパク質濃度が５０〜１００マイクログラム／ｍｌとなるように選択する。そのリフォールディング溶液を４℃で１２−３６時間ゆっくり撹拌する。リフォールディング反応は、ＴＦＡを最終濃度が０．４％（約３のｐＨ）となるように添加することで停止させる。タンパク質のさらなる精製の前に、その溶液を０．２２ミクロンフィルターで濾過し、アセトニトリルを最終濃度が２−１０％となるように添加する。再生したタンパク質を、Ｐｏｒｏｓ Ｒ１／Ｈ逆相カラムで、１０〜８０％のアセトニトリル勾配での溶離による０．１％ＴＦＡの移動バッファーを用いるクロマトグラフにかける。Ａ２８０に吸収を示す分画のアリコートをＳＤＳポリアクリルアミドゲルで分析し、均一な再生タンパク質を含有する分画をプールする。一般的に、殆どの正しく再生したタンパク質種は、これらの種が逆相樹脂との相互作用から遮蔽されている疎水性内部で最もコンパクトであるために、最低濃度のアセトニトリルで溶離される。凝集した種は、通常はより高いアセトニトリル濃度で溶離する。逆相工程は、誤って再生したタンパク質を所望の形態から除くことの他に、試料からエンドトキシンも除去する。
【０１９３】
所望の再生したＩＬ−２２ポリペプチドを含有する分画をプールし、この溶液に窒素の弱い気流を直接あてることでアセトニトリルを除去する。タンパク質は、透析又は調製バッファーで平衡化したＧ２５ Ｓｕｐｅｒｆｉｎｅ（ファルマシア）樹脂及び滅菌濾過を用いて、０．１４Ｍの塩化ナトリウム及び４％のマンニトールを含む２０ｍＭのＨｅｐｅｓ、ｐＨ６．８に調製する。
ここで開示された多くのＩＬ−２２ポリペプチドは、上記の方法によって成功裏に発現した。
【０１９４】
実施例１２： 哺乳動物細胞におけるＩＬ−２２の発現
この実施例は、哺乳動物細胞での組み換え発現によって潜在的にグリコシル化した形態のＩＬ−２２の調製を例証する。
発現ベクターとしてベクターｐＲＫ５（１９８９年３月１５日公開の欧州特許第３０７，２４７号参照）を用いる。場合によっては、上記のＳａｍｂｒｏｏｋ等に記載のようなライゲーション方法を用いて、選択した制限酵素で、ＩＬ−２２ ＤＮＡをｐＲＫ５にライゲーションしてＩＬ−２２ＤＮＡを挿入する。得られたベクターを、ｐＲＫ５−ＩＬ−２２と称する。
【０１９５】
一実施態様では、選択する宿主細胞を２９３細胞にしてもよい。ヒト２９３細胞（ＡＴＣＣ ＣＣＬ １５７３）を、ウシ胎児血清及び場合によっては栄養成分及び／又は抗生物質を補充したＤＭＥＭなどの培地の組織培養プレートでコンフルエントになるまでに成長させる。約１０μｇのｐＲＫ５−ＩＬ−２２ＤＮＡを、約１μｇのＶＡ ＲＮＡ遺伝子コード化ＤＮＡ［Ｔｈｉｍｍａｐｐａｙａら， Ｃｅｌｌ， ３１：５４３ （１９８２））］と混同させ、５００μｌの１ｍＭ トリス−ＨＣｌ、０．１ｍＭ ＥＤＴＡ、０．２２７Ｍ ＣａＣｌ２に溶解させる。この混合物に、滴状の５００μｌの５０ｍＭ ＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．３５）、２８０ｍＭ ＮａＣｌ、１．５ｍＭ ＮａＰＯ４を添加し、２５℃、１０分間で析出物を形成させる。この析出物を懸濁し、２９３細胞に加えて３７℃、約４時間で定着させる。培地を吸引し、２ｍｌの２０％グリセロールのＰＢＳを３０秒間添加する。２９３細胞を、次いで無血清培地で洗浄し、新鮮な培地を添加し、その細胞を約５日間インキュベートする。
【０１９６】
トランスフェクションの約２４時間後、培地を除去し、培地（のみ）又は２００μＣｉ／ｍｌ３５Ｓ−システイン及び２００μＣｉ／ｍｌ３５Ｓ−メチオニンを含む培地で置換した。１２時間のインキュベーションの後、馴化培地を回収し、スピンフィルターで濃縮し、１５％ＳＤＳゲルに添加する。その処理ゲルを乾燥させ、ＩＬ−２２ポリペプチドの存在が明らかになるように選定時間の間フィルムに曝してもよい。トランスフェクト細胞を含む培地をさらにインキュベーションしてもよく（無血清培地で）、この培地を選択したバイオアッセイで試験する。
【０１９７】
これに換わる技術では、Ｓｏｍｐａｒｙｒａｃら， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．， １２：７５７５ （１９８１）に記載のデキストラン硫酸法を用いて、ＩＬ−２２を２９３細胞へ一過的に導入してもよい。２９３細胞をスピナーフラスコで最大密度に達するまで生育させ、７００μｇのｐＲＫ５−ＩＬ−２２ＤＮＡを添加する。細胞を、まずはスピナーフラスコから遠心分離によって濃縮し、ＰＢＳで洗浄する。ＤＮＡ−デキストラン沈殿物を細胞ペレット上で４時間インキュベートする。細胞を２０％グリセロールで９０秒間処理し、組織培地で洗浄し、組織培地、５μｇ／ｍｌウシインシュリン及び０．１μｇ／ｍｌウシトランスフェリンを含むスピナーフラスコに再度導入する。約４日後に、この馴化培地を遠心分離及び濾過し、細胞及び細胞片を除去する。次いで発現したＩＬ−２２を含む試料を濃縮し、透析及び／又はカラムクロマトグラフィー等の任意の選択した方法によって精製することができる。
【０１９８】
他の実施態様では、ＩＬ−２２をＣＨＯ細胞で発現させることができる。ｐＲＫ５−ＩＬ−２２は、ＣａＰＯ４又はＤＥＡＥ−デキストランなどの公知の試薬を用いてＣＨＯ細胞にトランスフェクションすることができる。上記したように、細胞培地をインキュベートし、培地を培養培地（のみ）又は３５Ｓ−メチオニン等の放射性標識を含む培地で置換することができる。ＩＬ−２２ポリペプチドの存在を確かめた後、培地を無血清培地で置換してもよい。好ましくは、培地を約６日間インキュベートし、次いで馴化培地を収集する。次いで、発現したＩＬ−２２を含む培地は、濃縮し、任意の選択した方法によって精製することができる。
【０１９９】
また、エピトープタグＩＬ−２２は、宿主ＣＨＯ細胞で発現させてもよい。ＩＬ−２２は、ｐＲＫ５ベクターからサブクローニングしてもよい。サブクローン挿入物は、ＰＣＲを施して、バキュロウイルス発現ベクター中のポリ−ｈｉｓタグ等の選択したエピトープタグを持つ枠に融合できる。このポリ−ｈｉｓタグＩＬ−２２挿入物は、次いで、安定なクローンの選択用の選択マーカー、例えばＤＨＦＲを含むＳＶ４０誘導ベクターにサブクローニングできる。最後的に、ＳＶ４０誘導ベクターでＣＨＯ細胞をトランスフェクション（上記のように）することができる。発現を確認するために、上記のように標識化を行ってもよい。発現されたポリ−ｈｉｓタグＩＬ−２２を含む培地は、次いで濃縮し、Ｎｉ２＋−キレートアフィニティクロマトグラフィー等の選択した方法により精製できる。
また、ＩＬ−２２は、一過性発現法によりＣＨＯ及び／又はＣＯＳ細胞で、又は他の安定な発現方法によりＣＨＯ細胞で発現させてもよい。
ＣＨＯ細胞での安定な発現は、以下の方法を用いて実施する。タンパク質は、それぞれのタンパク質の可溶化形態のコード配列（例えば、細胞外ドメイン）がＩｇＧ１のヒンジ、ＣＨ２及びＣＨ２ドメインを含む定常領域配列に融合したＩｇＧ作成物（イムノアドヘシン）、又はポリ−Ｈｉｓタグ形態として発現する。
【０２００】
ＰＣＲ増幅に続いて、対応するＤＮＡを、Ａｕｓｕｂｅｌら， Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｏｆ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｕｎｉｔ ３．１６， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ａｎｄ Ｓｏｎｓ （１９９７）に記載のような標準的技術を用いてＣＨＯ発現ベクターにサブクローニングする。ＣＨＯ発現ベクターは、対象とするＤＮＡの５’及び３’に適合する制限部位を有し、ｃＤＮＡの便利なシャトル化ができるように作成される。ＣＨＯ細胞での発現を用いるベクターは、Ｌｕｃａｓら， Ｎｕｃｌ． Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２４： ９， １７７４−１７７９ （１９９６）に記載の通りであり、対象とするｃＤＮＡ及びジヒドロ葉酸還元酵素（ＤＨＦＲ）の発現の制御にはＳＶ４０初期プロモーター／エンハンサーを用いる。ＤＨＦＲ発現は、トランスフェクション後のプラスミドの安定な維持に関する選択を可能にする。
所望するプラスミドＤＮＡの１２マイクログラムを、市販のトランスフェクション試薬であるＳｕｐｅｒｆｅｃｔ（登録商標）（Ｑｉａｇｅｎ）， Ｄｏｓｐｅｒ（登録商標）及びＦｕｇｅｎｅ（登録商標）（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ）を用いて、約１千万のＣＨＯ細胞へ導入する。細胞は、上記のＬｕｃａｓ等に記載のように成長させる。約３ｘ１０− ７細胞を、下記のような更なる成長及び産生のためにアンプル中で凍結させる。
【０２０１】
プラスミドＤＮＡを含むアンプルを水槽に配して解凍し、ボルテックスにより混合する。内容物を１０ｍＬの培地を含む遠心管にピペットして、１０００ｒｐｍで５分間遠心分離する。その上清を吸引して細胞を１０ｍＬの選択培地（５％の０．２μｍ透析濾過ウシ胎児血清を含む０．２μｍ濾過ＰＳ２０を添加）中に懸濁する。次いで、その細胞を９０ｍＬの選択培地を含む１００ｍＬスピナーに等分する。１−２日後、細胞を１５０ｍＬの選択培地で満たした２５０ｍＬスピナーに移し、３７℃でインキュベートする。さらに２−３日後、２５０ｍＬ、５００ｍＬ及び２０００ｍＬのスピナーを３ｘ１０５細胞／ｍＬで接種する。遠心分離及び産生培地での再懸濁により、細胞培地を新鮮培地と交換する。どんな適切なＣＨＯ培地を用いてもよいが、実際には１９９２年６月１６日に発行された米国特許第５，１２２，４６９号に記載の産生培地を使用する。３Ｌの生産スピナーを１．２ｘ１０６細胞／ｍＬで接種する。０日目に、細胞数とｐＨを測定する。１日目に、スピナーをサンプルし、濾過空気による散布を実施する。２日目に、スピナーをサンプルし、温度を３３℃に変え、３０ｍＬの５００ｇ／Ｌのグルコース及び０．６ｍＬの１０％消泡剤（例えば３５％ ポリジメチルシロキサン エマルジョン、ダウ・コーニング ３６５ 医療用グレード エマルジョン）を用いる。この産生を通して、ｐＨは７．２近傍に調節し維持する。１０日後、又は生存率が７０％を下回るまで、その細胞培地を遠心分離で回収し、０．２２μｍフィルターで濾過する。濾過物は、４℃で貯蔵するか、即座に精製用カラムに充填した。
【０２０２】
ポリ−Ｈｉｓタグ作成物に関しては、そのタンパク質をＮｉ−ＮＴＡカラム（Ｑｉａｇｅｎ）を用いて精製する。精製の前に、イミダゾールを馴化培地へ５ｍＭの濃度まで添加する。馴化培地を、０．３ＭのＮａＣｌ及び５ｍＭイミダゾールを含む２０ｍＭのＨｅｐｅｓ，ｐＨ７．４バッファーで平衡化した６ｍｌのＮｉ−ＮＴＡカラムへ４−５ｍｌ／分の流速によって４℃でポンプ供給する。充填後、カラムをさらに平衡バッファーで洗浄し、タンパク質を０．２５Ｍイミダゾールを含む平衡バッファーで溶離する。高度に精製されたタンパク質は、続いて１０ｍＭのＨｅｐｅｓ、０．１４ＭのＮａＣｌ及び４％のマンニトール，を含むｐＨ６．８の貯蔵バッファーにより２５ｍｌのＧ２５ Ｓｕｐｅｒｆｉｎｅ（ファルマシア）を用いて脱塩し、−８０℃で貯蔵する。
【０２０３】
イムノアドヘシン（Ｆｃ含有）作成物を、以下の通りに馴化培地から精製する。馴化培地を、２０ｍＭのリン酸ナトリウムバッファー，ｐＨ６．８で平衡化した５ｍｌのプロテインＡカラム（ファルマシア）へポンプ注入する。充填後、カラムを平衡バッファーで十分に洗浄した後、１００ｍＭのクエン酸，ｐＨ３．５で溶離する。溶離したタンパク質は、１ｍｌの分画を２７５μＬのｐＨ９の１Ｍトリスバッファーを含む管で回収することにより即座に中性化する。高度に精製されたタンパク質を、続いてポリ−Ｈｉｓタグタンパク質について上記した貯蔵バッファーで脱塩する。その均一性はＳＤＳポリアクリルアミドゲルとエドマン（Ｅｄｍａｎ）分解によるＮ−末端アミノ酸配列決定により評価する。
ここに開示したＩＬ−２２ポリペプチドの多くが上記のようにして成功裏に発現した。
【０２０４】
実施例１３： 酵母でのＩＬ−２２の発現
以下の方法は、酵母でのＩＬ−２２の組換え発現を記載する。
最初に、酵母発現ベクターを、ＡＤＨ２／ＧＡＰＤＨプロモーターによるＩＬ−２２の細胞内生産又は分泌のために作成する。ＩＬ−２２をコードするＤＮＡ、及びプロモーターを、ＩＬ−２２の細胞内発現を指示するように、選択したプラスミドの適当な制限酵素部位に挿入する。分泌のために、ＩＬ−２２をコードするＤＮＡを選択したプラスミドへ、ＡＤＨ２／ＧＡＰＤＨプロモーターをコードするＤＮＡ、天然ＩＬ−２２シグナルペプチド又は他の哺乳動物シグナルペプチド、又は、例えば酵母α因子又はインベルターゼ分泌シグナル／リーダー配列、及び（必要ならば）ＩＬ−２２の発現のためのリンカー配列とともにクローニングすることができる。
【０２０５】
酵母菌株ＡＢ１１０等の酵母を、次いで上記の発現プラスミドで形質転換し、選択した発酵培地中で培養できる。形質転換した酵母菌上清は、１０％トリクロロ酢酸での沈降及びＳＤＳ−ＰＡＧＥ、それに続くクマシーブルー染色によるゲルの染色による分離によって分析することができる。
続いて組換えＩＬ−２２は、発酵培地から遠心分離により酵母菌細胞を除去し、次いで選択したカートリッジフィルターを用いて培地を濃縮することによって単離及び精製できる。ＩＬ−２２を含む濃縮物は、選択したカラムクロマトグラフィー樹脂を用いてさらに精製してもよい。
ここに開示したＩＬ−２２ポリペプチドの多くが上記のようにして成功裏に発現した。
【０２０６】
実施例１４：バキュロウイルス感染昆虫細胞でのＩＬ−２２の発現
以下の方法は、バキュロウイルス感染昆虫細胞中におけるＩＬ−２２の組換え発現を記載する。
ＩＬ−２２コードする配列を、バキュロウイルス発現ベクターに含まれるエピトープタグの上流に融合させる。このようなエピトープタグは、ポリ−ｈｉｓタグ及び免疫グロブリンタグ（ＩｇＧのＦｃ領域など）を含む。ｐＶＬ１３９３（Ｎｏｖａｇｅｎ）などの、市販されているプラスミドから誘導されるプラスミドを含む種々のプラスミドを用いることができる。簡単には、ＩＬ−２２又はＩＬ−２２コード配列の所定部分、例えば膜貫通タンパク質の細胞外ドメインをコードする配列、又はタンパク質が細胞外である場合の成熟タンパク質をコードする配列などが、５’及び３’領域に相補的なプライマーによるＰＣＲで増幅する。５’プライマーは、隣接する（選択した）制限酵素部位を包含していてもよい。この生産物を、次いで、選択した制限酵素で消化し、発現ベクターへサブクローニングする。
【０２０７】
組換えバキュロウイルスは、上記のプラスミド及びＢａｃｕｌｏＧｏｌｄ（商品名）ウイルスＤＮＡ（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）を、Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ（「Ｓｆ９」）細胞（ＡＴＣＣ ＣＲＬ １７１１）中にリポフェクチン（ＧＩＢＣＯ−ＢＲＬから市販）を用いて同時トランスフェクションすることにより作成される。２８℃で４−５日インキュベートした後、放出されたウイルスを回収し、更なる増幅に用いる。ウイルス感染及びタンパク質発現は、Ｏ’Ｒｅｉｌｌｅｙら， Ｂａｃｕｌｏｖｉｒｕｓ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｖｅｃｔｏｒｓ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ， Ｏｘｆｏｒｄ： Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ （１９９４）に記載されているように実施する。
【０２０８】
次に、発現したポリ−ｈｉｓタグＩＬ−２２を、例えばＮｉ２＋−キレートアフィニティクロマトグラフィーにより次のように精製することができる。抽出は、Ｒｕｐｅｒｔら， Ｎａｔｕｒｅ， ３６２：１７５−１７９ （１９９３）に記載のように、ウイルス感染した組み換えＳｆ９細胞から調製する。簡単には、Ｓｆ９細胞を洗浄し、超音波処理用バッファー（２５ｍＬのＨｅｐｅｓ，ｐＨ７．９；１２．５ｍＭのＭｇＣｌ２；０．１ｍＭ ＥＤＴＡ；１０％グリセロール；０．１％のＮＰ−４０；０．４ＭのＫＣｌ）に再懸濁し、氷上で２回２０秒間超音波処理する。超音波処理物を遠心分離で透明化し、上清を負荷バッファー（５０ｍＭリン酸塩、３００ｍＭのＮａＣｌ、１０％グリセロール、ｐＨ７．８）で５０倍希釈し、０．４５μｍフィルターで濾過する。Ｎｉ２＋−ＮＴＡアガロースカラム（Ｑｉａｇｅｎから市販）を５ｍＬの総容積で調製し、２５ｍＬの水で洗浄し、２５ｍＬの負荷バッファーで平衡する。濾過した細胞抽出物は、毎分０．５ｍＬでカラムに負荷する。カラムを、分画回収が始まる点であるＡ２８０のベースラインまで負荷バッファーで洗浄する。次に、カラムを、結合タンパク質を非特異的に溶離する二次洗浄バッファー（５０ｍＭリン酸塩；３００ｍＭのＮａＣｌ、１０％グリセロール、ｐＨ６．０）で洗浄する。Ａ２８０のベースラインに再度到達した後、カラムを二次洗浄バッファーの０から５００ｍＭイミダゾール勾配で展開した。１ｍＬの分画を回収し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ及び銀染色又はアルカリホスファターゼ（Ｑｉａｇｅｎ）で複合したＮｉ２＋−ＮＴＡでのウェスタンブロットで分析する。溶離したＨｉｓ１０−タグＩＬ−２２を含む画分をプールして負荷バッファーで透析する。
あるいは、ＩｇＧタグ（又はＦｃタグ）ＩＬ−２２の精製は、例えば、プロテインＡ又はプロテインＧカラムクロマトグラフィーを含む公知のクロマトグラフィー技術を用いて実施できる。
ここに開示したＩＬ−２２ポリペプチドの多くが上記のようにして成功裏に発現した。
【０２０９】
実施例１５： ＩＬ−２２に結合する抗体の調製
この実施例は、ＩＬ−２２に特異的に結合できるモノクローナル抗体の調製を例示する。
モノクローナル抗体の産生のための技術は、この分野で知られていて、例えば、上記のＧｏｄｉｎｇに記載されている。用いてもよい免疫原は、精製ＩＬ−２２、ＩＬ−２２を含む融合タンパク質、細胞表面に組換えＩＬ−２２を発現する細胞を含む。免疫原の選択は、当業者が過度の実験をすることなくなすことができる。
Ｂａｌｂ／ｃ等のマウスを、完全フロイントアジュバントに乳化して皮下又は腹腔内に１−１００マイクログラムで注入したＩＬ−２２免疫原で免疫化する。あるいは、免疫原をＭＰＬ−ＴＤＭアジュバント（Ｒｉｂｉ Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ， ハミルトン， モンタナ）に乳化し、動物の後足蹠に注入してもよい。免疫化したマウスは、次いで１０から１２日後に、選択したアジュバント中に乳化した付加的免疫源で追加免疫する。その後、数週間、マウスをさらなる免疫化注射で追加免疫する。抗ＩＬ−２２抗体の検出のためのＥＬＩＳＡアッセイで試験するために、レトロオービタル出血からの血清試料をマウスから周期的に採取してもよい。
【０２１０】
適当な抗体力価が検出された後、抗体に「ポジティブ（陽性）」な動物に、ＩＬ−２２静脈内注射の最後の注入をすることができる。３から４日後、マウスを屠殺し、脾臓細胞を取り出す。次いで脾臓細胞を（３５％ポリエチレングリコールを用いて）、ＡＴＣＣから番号ＣＲＬ１５９７で入手可能なＰ３Ｘ６３ＡｇＵ．１等の選択したマウス骨髄腫株化細胞に融合させる。融合によりハイブリドーマ細胞が生成され、次いで、これを非融合細胞、骨髄腫ハイブリッド、及び脾臓細胞ハイブリッドの増殖を阻害するようにＨＡＴ（ヒポキサンチン、アミノプテリン、及びチミジン）培地を含む９６ウェル組織培養プレートにプレートすることができる。
ハイブリドーマ細胞は、ＩＬ−２２に対する反応性に関するＥＬＩＳＡによってスクリーニングされる。ＩＬ−２２に対する所望のモノクローナル抗体を分泌する「ポジティブ（陽性）」ハイブリドーマ細胞の決定は、技術常識の範囲内である。
陽性ハイブリドーマ細胞を、抗ＩＬ−２２モノクローナル抗体を含む腹水を生成するように、同系のＢａｌｂ／ｃマウスに腹腔内注入することができる。あるいは、ハイブリドーマ細胞を、組織培養フラスコ又はローラーボトルで成長させることもできる。腹水で生成したモノクローナル抗体の精製は、硫酸アンモニウム沈降、それに続くゲル排除クロマトグラフィ−を用いて行うことができる。あるいは、抗体のプロテインＡ又はプロテインＧへの親和性に基づくアフィニティクロマトグラフィーを用いることもできる。
【０２１１】
実施例１６： 特異的抗体を用いたＩＬ−２２ポリペプチドの精製
天然又は組換えＩＬ−２２ポリペプチドは、この分野の種々の標準的なタンパク質精製方法によって精製できる。例えば、プロ−ＩＬ−２２ポリペプチド、成熟ポリペプチド、又はプレ−ＩＬ−２２ポリペプチドは、対象とするＩＬ−２２ポリペプチドに特異的な抗体を用いた免疫親和性クロマトグラフィーによって精製される。一般的に、免疫親和性カラムは、抗ＩＬ−２２ポリペプチド抗体を活性化クロマトグラフィー樹脂へ共有結合することで作成する。
ポリクローナル免疫グロブリンは、硫酸アンモニウムによる沈殿又は固定化プロテインＡ（ファルマシア ＬＫＢ バイオテクノロジー， ピスカタウェイ， ニュージャージー）による精製のいずれかにより免疫血清から調製する。同様に、モノクローナル抗体は、硫酸アンモニウム沈殿又は固定化プロテインＡでのクロマトグラフィーによりマウス腹水液から調製する。部分精製した免疫グロブリンは、ＣｎＢｒ−活性化セファロース（商品名）（ファルマシア ＬＫＢ バイオテクノロジー）等のクロマトグラフィー樹脂に共有結合する。抗体が樹脂に結合し、樹脂がブロックされ、そして誘導体樹脂を製造者の指示に従って洗浄する。
【０２１２】
このような免疫親和性カラムは、可溶化形態のＩＬ−２２ポリペプチドを含有する細胞から分画を調製をすることによるＩＬ−２２ポリペプチドの精製で利用される。この調製物は、洗浄剤の添加又はこの分野で公知の方法による微分遠心分離を介して得られる全細胞又は細胞成分分画の可溶化により誘導される。あるいは、シグナル配列を含む可溶化ＩＬ−２２ポリペプチドは、細胞が成長する培地中に有用な量で分泌され得る。
可溶化ＩＬ−２２ポリペプチド含有調製物を免疫親和性カラムへ流し、そのカラムをＩＬ−２２ポリペプチドの優先的吸着を可能にする条件下（例えば、洗浄剤存在下の高イオン強度バッファー）で洗浄する。次いで、このカラムを抗体／ＩＬ−２２ポリペプチド結合を分解する条件下（例えば、約２−３といった低ｐＨ、高濃度の尿素又はチオシアン酸イオン等のカオトロープ）で溶離し、ＩＬ−２２ポリペプチドを回収する。
【０２１３】
実施例１７：薬物スクリーニング
本発明は、種々の薬物スクリーニング技術でＩＬ−２２ポリペプチド又はその結合断片を使用することによって化合物のスクリーニングすることにとって特に有用である。そのような試験に用いられるＩＬ−２２ポリペプチド又は断片は、溶液中での遊離状態でも、固体支持体に固定されても、細胞表面に担持されていても、或いは細胞内に位置していてもよい。薬剤スクリーニングの１つの方法では、ＩＬ−２２ポリペプチド又は断片を発現する組換え核酸で安定にトランスフェクションする真核生物又は原核生物宿主細胞を利用する。薬剤は、そのようなトランスフェクション細胞に対して、競合的結合アッセイによってスクリーニングされる。生存可能又は固定化形態のいずれかによって、このような細胞は標準的な結合アッセイで使用できる。例えば、ＩＬ−２２ポリペプチド又は断片と試験される試薬の間の複合体の形成を測定してもよい。あるいは、試験する試薬によって生ずるＩＬ−２２ポリペプチドとその標的細胞又は標的レセプター間の複合体形成の減少を試験することができる。
【０２１４】
従って、本発明は、ＩＬ−２２ポリペプチド関連疾患又は障害に作用することのできる薬剤又は任意の他の試薬のスクリーニング方法を提供する。これらの方法は、当該分野で良く知られており、その試薬をＩＬ−２２ポリペプチド又は断片に接触させ、（ｉ）試薬とＩＬ−２２ポリペプチド又は断片との間の複合体の存在について、又は（ｉｉ）ＩＬ−２２ポリペプチド又は断片と細胞との間の複合体の存在について検定することを含む。これらの競合結合アッセイでは、ＩＬ−２２ポリペプチド又は断片が典型的には標識される。適切なインキュベーションの後、遊離型ＩＬ−２２ポリペプチド又は断片を結合形態のものから分離し、遊離型又は未複合の標識の量が、特定の試薬がＩＬ−２２ポリペプチドに結合する又はＩＬ−２２ポリペプチド／細胞複合体を阻害する能力の尺度となる。
【０２１５】
薬剤スクリーニングのための他の技術は、ポリペプチドに対して適当な結合親和性を持つ化合物についての高スループットスクリーニングを提供し、１９８４年９月１３日に公開された国際公開８４／０３５６４に詳細に記載されている。簡単に述べれば、多数の異なる小型ペプチド試験化合物が、プラスチックピン等の固体支持体又は幾つかの他の表面上で合成される。ＩＬ−２２ポリペプチドに適用すると、ペプチド試験化合物はＩＬ−２２ポリペプチドと反応して洗浄される。結合したＩＬ−２２ポリペプチドはこの分野で良く知られた方法により検出される。精製したＩＬ−２２ポリペプチドは、上記の薬剤スクリーニング技術に使用するためにプレート上に直接被覆することもできる。さらに、非中和抗体は、ペプチドを捕捉し、それを固体支持体上に固定化するのに使用できる。
また、本発明は、ＩＬ−２２ポリペプチドに結合可能な中和抗体がＩＬ−２２ポリペプチド又はその断片について試験化合物と特異的に競合する競合薬剤スクリーニングアッセイも考慮する。この方法において、抗体は、ＩＬ−２２ポリペプチドと１つ又は複数の抗原決定基を持つ任意のペプチドの存在を検出するのに使用できる。
【０２１６】
実施例１８： 合理的薬物設計
合理的薬物設計の目的は、対象とする生物学的活性ポリペプチド（例えば、ＩＬ−２２ポリペプチド）又はそれらが相互作用する小分子、例えばアゴニスト、アンタゴニスト、又はインヒビターの構造類似物を製造することである。これらの例の任意のものが、ＩＬ−２２ポリペプチドのより活性で安定な形態又はインビボでＩＬ−２２ポリペプチドの機能を促進又は阻害する薬物の創作に使用できる（参考、Ｈｏｄｇｓｏｎ， Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， ９： １９−２１ （１９９１））。
【０２１７】
１つの方法において、ＩＬ−２２ポリペプチド、又はＩＬ−２２ポリペプチド−インヒビター複合体の三次元構造が、ｘ線結晶学により、コンピュータモデル化により、最も典型的には２つの方法の組み合わせにより決定される。分子の構造を解明し活性部位を決定するためには、ＩＬ−２２ポリペプチドの形状及び電荷の両方が確認されなければならない。数は少ないが、ＩＬ−２２ポリペプチドの構造に関する有用な情報が相同タンパク質の構造に基づいたモデル化によって得られることもある。両方の場合において、関連する構造情報は、類似ＩＬ−２２ポリペプチド様分子の設計又は効果的なインヒビターの同定に使用される。合理的な薬剤設計の有用な例は、Ｂｒａｘｔｏｎ及びＷｅｌｌｓ， Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， ３１： ７７９６−７８０１ （１９９２）に示されているような向上した活性又は安定性を持つ分子、又はＡｔｈａｕｄａら，Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．， １１３： ７４２−７４６ （１９９３）に示されているような天然ペプチドのインヒビター、アゴニスト、又はアンタゴニストとして作用する分子を含む。
【０２１８】
また、上記のような機能アッセイによって選択した標的特異的な抗体を単離し、その結晶構造を解明することもできる。この方法は、原理的には、それに続く薬剤設計が基礎をおくことのできるファーマコア（ｐｈａｒｍａｃｏｒｅ）を生成する。機能的な薬理学的に活性な抗体に対する抗−イディオタイプ抗体（抗−ｉｄｓ）を生成することにより、タンパク質結晶学をバイパスすることができる。鏡像の鏡像として、抗−ｉｄｓの結合部位は最初のレセプターの類似物であると予測できる。抗−ｉｄは、次いで、化学的又は生物学的に製造したペプチドのバンクからペプチドを同定及び単離するのに使用できる。単離されたペプチドは、ファーマコアとして機能するであろう。
本発明によって、Ｘ線結晶学などの分析実験を実施するために十分な量のＩＬ−２２ポリペプチドが入手可能である。さらに、ここに提供したＩＬ−２２ポリペプチドアミノ酸配列の知識は、Ｘ線結晶学に代わる又はそれに加わるコンピュータモデル化技術で用いられるガイダンスを提供する。
【０２１９】
材料の寄託
次の材料をアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション，１０８０１ ユニバーシティー ブルバード， マナサッス， バージニア， ２０１１０−２２０９ アメリカ合衆国（ＡＴＣＣ）に寄託した：
Figure 2004520811
【０２２０】
この寄託は、特許手続き上の微生物の寄託の国際的承認に関するブダペスト条約及びその規則（ブダペスト条約）の規定に従って行われた。これは、寄託の日付から３０年間、寄託の生存可能な培養が維持されることを保証するものである。寄託物はブダペスト条約の条項に従い、またジェネンテック社とＡＴＣＣとの間の合意に従い、ＡＴＣＣから入手することができ、これは、どれが最初であろうとも、関連した米国特許の発行時又は任意の米国又は外国特許出願の公開時に、寄託培養物の後代を永久かつ非制限的に入手可能とすることを保証し、米国特許法第１２２条及びそれに従う特許庁長官規則（特に参照番号８８６ ＯＧ ６３８の３７ＣＦＲ第１．１４条を含む）に従って権利を有すると米国特許庁長官が決定した者に子孫を入手可能とすることを保証するものである。
【０２２１】
本出願の譲受人は、寄託した材料が、適切な条件下で培養されていた場合に死亡もしくは損失又は破壊されたならば、材料は通知時に同一の他のものと即座に取り替えることに同意する。寄託材料の入手可能性は、特許法に従いあらゆる政府の権限下で認められた権利に違反して、本発明を実施するライセンスであるとみなされるものではない。
【０２２２】
上記の文書による明細書は、当業者に本発明を実施できるようにするために十分であると考えられる。寄託した態様は、本発明のある側面の一つの説明として意図されており、機能的に等価なあらゆる作成物がこの発明の範囲内にあるため、寄託された作成物により、本発明の範囲が限定されるものではない。ここでの物質の寄託は、ここに含まれる文書による説明が、そのベストモードを含む、本発明の任意の側面の実施を可能にするために不十分であることを認めるものではないし、それが表す特定の例証に対して請求の範囲を制限するものと解釈されるものでもない。実際、ここに示し記載したものに加えて、本発明を様々に改変することは、前記の記載から当業者にとっては明らかなものであり、添付の請求の範囲内に入るものである。
【図面の簡単な説明】
【図１】配列番号：１がここで「ＤＮＡ１２５１８５−２８０６」と命名したクローンである、天然配列ＩＬ−２２ｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号：１）を示す。
【図２】図１に示す配列番号：１のコード化配列から誘導したアミノ酸配列（配列番号：２）を示す。
【図３】インターロイキン−２２レセプタープローブでプローブしたノーザンブロットを示す。
【図４】Ｔａｑｍａｎ（商品名）分析によって分析した、種々のヒト組織のインターロイキン−２２レセプターＲＮＡの発現を示す。
【図５】ＩＬ−２２で刺激した膵臓腺房細胞株でのＳＴＡＴ活性化を示す。
【図６Ａ】ノーザンブロットによって分析した、ＩＬ−２２で刺激した膵臓腺房細胞株での膵炎関連タンパク質（ＰＡＰ１）ＲＮＡのアップレギュレーションを示す。
【図６Ｂ】ノーザンブロットによって分析した、ＩＬ−２２で刺激した単離された初期膵臓腺房細胞でのＰＡＰ１及びオステオポンチンＲＮＡのアップレギュレーションを示す。
【図７】ＩＬ−２２を注射したマウスを用い、そしてノーザンブロット分析によって追跡したインビボでの膵臓におけるＰＡＰ１のアップレギュレーションを示す。
【図８】野生型及びＩＬ−１０レセプターベータ（ＩＬ−１０Ｒβ）欠損マウスでのインターロイキン−６（ＩＬ−６）産生のレベルを示す。
【図９】ノーザンブロットによって分析した、ＩＬ−２２で治療したＩＬ−１０Ｒβ欠損マウスのインビボでの膵臓では、ＰＡＰ１の発現がアップレギュレーションされていないことを示す。
【図１０】ＩＬ−１０Ｒβポリペプチドのアミノ酸配列を示す。
【図１１】ＩＬ−２２Ｒポリペプチドのアミノ酸配列を示す。

Claims (52)

  1. （ａ）配列番号：２のアミノ酸１−１７９、又は（ｂ）Ｘが（配列番号：２）の２９−３８の任意のアミノ酸であるアミノ酸Ｘ−１７９をコードするヌクレオチド配列と、少なくとも８０％の核酸配列同一性を有する単離された核酸、又はその相補鎖。
  2. 図１（配列番号：１）に示すヌクレオチド配列と、少なくとも８０％の核酸配列同一性を有する単離された核酸、又はその相補鎖。
  3. 図１（配列番号：１）に示す完全長コード化配列のヌクレオチド配列と、少なくとも８０％の核酸配列同一性を有する単離された核酸、又はその相補鎖。
  4. １９９９年１２月７日にＡＴＣＣ番号ＰＴＡ−１０３１として寄託されたＤＮＡの完全長コード化配列と少なくとも８０％の核酸配列同一性を有する単離された核酸、又はその相補鎖。
  5. 配列番号：１に示す１１５２ヌクレオチド長の単離された核酸、及びその相補鎖。
  6. 請求項１の核酸を含んでなるベクター。
  7. ベクターで形質転換した宿主細胞によって認識されるコントロール配列と作用可能に結合している、請求項６のベクター。
  8. 請求項７のベクターを含んでなる宿主細胞。
  9. 前記細胞がＣＨＯ細胞、大腸菌又は酵母細胞である、請求項８の宿主細胞。
  10. 請求項８の宿主細胞をＩＬ−２２ポリペプチドの発現に適した条件下で培養し、培養細胞から前記ＩＬ−２２ポリペプチドを回収することを含んでなる、前記ＩＬ−２２ポリペプチドを産生するための工程。
  11. アミノ酸１から約３３を欠く、図２（配列番号：２）に示すアミノ酸配列、又は図２（配列番号：２）に示すアミノ酸配列と少なくとも８０％のアミノ酸配列同一性を有する単離されたポリペプチド。
  12. １９９９年１２月７日にＡＴＣＣ番号ＰＴＡ−１０３１として寄託されたＤＮＡの完全長コード化配列によってコードされるアミノ酸配列と、少なくとも８０％のアミノ酸配列同一性を有する単離されたポリペプチド。
  13. 異種アミノ酸配列と融合した請求項１２に記載のポリペプチドを含んでなるキメラ分子。
  14. 前記異種アミノ酸配列がエピトープタグ配列である、請求項１３のキメラ分子。
  15. 前記異種アミノ酸配列が免疫グロブリンのＦｃ領域である、請求項１４のキメラ分子。
  16. 請求項１１に記載のポリペプチドと結合する抗体。
  17. 前記抗体がモノクローナル抗体、ヒト化抗体又は一本鎖抗体である、請求項１６の抗体。
  18. 前記抗体がＩＬ−２２のレセプターとの結合を阻止する、請求項１５の抗体。
  19. 膵臓細胞を含んでなる系において、前記膵臓細胞によってＰＡＰ１のＩＬ−２２誘導発現を阻害するための方法であって、前記系をＩＬ−２２アンタゴニストと接触させることを含んでなり、それによって前記膵臓細胞によって前記ＰＡＰ１発現を阻害する前記方法。
  20. 前記アンタゴニストが抗−ＩＬ−２２抗体である、請求項１９の方法。
  21. 前記アンタゴニストがＩＬ−２２アンチセンス核酸である、請求項１９の方法。
  22. 接触の段階がインビトロでおこる、請求項１９の方法。
  23. 哺乳動物へＩＬ−２２アンタゴニストの有効量を投与することを含んでなる、前記哺乳動物における膵臓疾患を治療する方法。
  24. 膵臓疾患が急性膵炎、慢性膵炎、腺房細胞癌又は混合細胞集団膵癌を含む膵癌である、請求項２３の方法。
  25. 哺乳動物へＩＬ−２２アンタゴニストの有効量を投与することを含んでなる、哺乳動物における膵臓の活性化又は炎症症状を和らげる方法。
  26. 前記アンタゴニストが抗−ＩＬ−２２抗体である、請求項２５の方法。
  27. 前記アンタゴニストがＩＬ−２２アンチセンス核酸である、請求項２５の方法。
  28. 哺乳動物へＩＬ−２２ポリペプチド結合を阻害するＩＬ−２２Ｒ／ＩＬ−１０Ｒβ複合体アンタゴニスト、アンタゴニスト抗体、又はその断片の有効量を投与することを含んでなる、前記哺乳動物における膵臓の活性化又は炎症症状を和らげる方法。
  29. 哺乳動物へＩＬ−２２Ｒ／ＩＬ−１０Ｒβ複合体アンタゴニストの有効量を投与することを含んでなる、前記哺乳動物における膵臓疾患の発症を予防するための方法。
  30. 前記アンタゴニストがアンタゴニスト抗体である、請求項２９の方法。
  31. 前記アンタゴニストが抗体断片である、請求項２９の方法。
  32. 哺乳動物における膵臓の活性化又は炎症状態を診断する方法であって、哺乳動物の膵臓から得た生物学的試料をＩＬ−２２と接触させてＳＴＡＴ３ポリペプチドスーパーシフトを測定することを含んでなり、スーパーシフトの存在が前記疾患の存在を示す前記方法。
  33. ＩＬ−２２ポリペプチドをコードする遺伝子の発現を阻害する化合物を同定する方法であって、ＩＬ−２２ポリペプチドを正常に発現する細胞を候補化合物と接触させ、前記遺伝子の発現を欠くことを確かめることを含んでなる方法。
  34. 前記候補化合物がＩＬ−２２アンチセンス核酸を含む、請求項３３の方法。
  35. 組成物が哺乳動物の急性又は慢性膵炎のいずれかを和らげるために効果的であり、容器上の標識が組成物が膵臓疾患を治療することに使用することが可能であることを示し、及び組成物中の活性剤がＩＬ−２２ポリペプチドの活性又は発現を阻害する薬剤である、容器；
    容器に付した標識；及び
    容器内に含有されている活性剤を含んでなる組成物を含んでなる製造品。
  36. ＩＬ−２２ポリペプチドを含有すると思われる試料からＩＬ−２２ポリペプチドを検出する方法であって、コンジュゲートの形成が前記試料中でのＩＬ−２２ポリペプチドの存在を示す、前記試料とＩＬ−１０Ｒβポリペプチド（配列番号：３）又はＩＬ−２２Ｒポリペプチド（配列番号：４）を接触させ、前記試料中におけるＩＬ−２２／ＩＬ−１０Ｒβポリペプチドコンジュゲート又はＩＬ−２２／ＩＬ−２２Ｒポリペプチドコンジュゲートの形成を確かめることを含んでなる前記方法。
  37. 前記試料が前記ＩＬ−２２ポリペプチドを発現すると思われる細胞を含む、請求項３６に記載の方法。
  38. 前記ＩＬ−１０Ｒβポリペプチドが検出可能な標識で標識されているか、又は固体支持体に付着している、請求項３６に記載の方法。
  39. ＩＬ−２２Ｒポリペプチドが検出可能な標識で標識されているか、又は固体支持体に付着している、請求項３６に記載の方法。
  40. ＩＬ−２２Ｒポリペプチド又はＩＬ−１０Ｒβポリペプチドを含有すると思われる試料中でのＩＬ−２２Ｒポリペプチド又はＩＬ−１０Ｒβポリペプチドを検出する方法であって、コンジュゲートの形成が前記試料中でのＩＬ−２２Ｒポリペプチド又はＩＬ−１０Ｒβポリペプチドの存在を示す、前記試料をＩＬ−２２ポリペプチドと接触させ、前記試料中でのＩＬ−２２Ｒ／ＩＬ−２２ポリペプチドコンジュゲート又はＩＬ−１０Ｒβ／ＩＬ−２２ポリペプチドコンジュゲートの形成を確かめることを含んでなる前記方法。
  41. 前記試料がＩＬ−２２Ｒポリペプチド又はＩＬ−１０Ｒβポリペプチドを発現すると思われる細胞を含む、請求項４０に記載の方法。
  42. 前記ＩＬ−２２ポリペプチドが検出可能な標識で標識されるか、又は固体支持体に付着している、請求項４０に記載の方法。
  43. 生物活性分子をＩＬ−２２ポリペプチドを発現する細胞と結合させる方法であって、前記細胞を生物活性分子と結合しているＩＬ−２２Ｒポリペプチド又はＩＬ−１０Ｒβポリペプチドと接触させて、前記ＩＬ−２２ポリペプチドと前記ＩＬ−２２Ｒポリペプチド、又は前記ＩＬ−２２ポリペプチドと前記ＩＬ−１０Ｒβポリペプチドの結合を可能にすることを含んでなり、それによって前記生物活性分子と前記細胞を結合させる前記方法。
  44. 前記生物活性分子が毒素、放射標識又は抗体である、請求項４３に記載の方法。
  45. 前記生物活性分子が前記細胞の死を引き起こす、請求項４３に記載の方法。
  46. 生物活性分子をＩＬ−２２Ｒポリペプチド又はＩＬ−１０Ｒβポリペプチドを発現する細胞と結合させる方法であって、前記細胞を前記生物活性分子と結合しているＩＬ−２２ポリペプチドと接触させ、前記ＩＬ−２２ポリペプチドと前記ＩＬ−２２Ｒ、又は前記ＩＬ−２２ポリペプチドと前記ＩＬ−１０Ｒβポリペプチドの結合を可能にすることを含んでなり、それによって前記生物活性分子と前記細胞を結合させる前記方法。
  47. 前記生物活性分子が毒素、放射標識又は抗体である、請求項４６に記載の方法。
  48. 前記生物活性分子が前記細胞の死を引き起こす、請求項４７に記載の方法。
  49. ＩＬ−２２ポリペプチドを発現する細胞の少なくとも１つの生物学的活性を調節する方法であって、前記細胞を（ａ）ＩＬ−２２Ｒポリペプチド、（ｂ）ＩＬ−１０Ｒβポリペプチド又は（ｃ）抗−ＩＬ−２２ポリペプチド抗体と接触させ、これによって前記（ａ）ＩＬ−２２Ｒポリペプチド、（ｂ）ＩＬ−１０Ｒβポリペプチド又は（ｃ）抗−ＩＬ−２２ポリペプチド抗体が前記ＩＬ−２２ポリペプチドと結合することを含んでなり、その結果前記細胞の少なくとも１つの生物活性を調節する前記方法。
  50. 前記細胞が死滅する、請求項４９に記載の方法。
  51. ＩＬ−２２Ｒポリペプチド又はＩＬ−１０Ｒβポリペプチドを発現する細胞の少なくとも１つの生物学的活性を調節する方法であって、前記細胞を（ａ）ＩＬ−２２ポリペプチド、（ｂ）抗−ＩＬ−２２Ｒポリペプチド抗体又は（ｃ）抗−ＩＬ−１０Ｒβポリペプチド抗体と接触させ、それによって前記（ａ）ＩＬ−２２ポリペプチド、（ｂ）抗−ＩＬ−２２Ｒポリペプチド抗体又は（ｃ）抗−ＩＬ−１０Ｒβポリペプチド抗体が前記ＩＬ−２２Ｒポリペプチド又はＩＬ−１０Ｒβポリペプチドと結合することを含んでなり、その結果前記細胞の少なくとも１つの生物活性を調節する前記方法。
  52. 前記細胞が死滅する、請求項５１に記載の方法。
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