JP2004057193A - ４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法 - Google Patents
４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法 Download PDFInfo
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Abstract
【課題】４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを製造する方法を提供すること。
【解決手段】４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法であって、
一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を人為的に付与されてなる形質転換体又はその死菌化細胞に、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを作用させる工程、並びに生成した一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを採取する工程
を有することを特徴とする製造方法等が提供可能になった。
【選択図】 なし
【解決手段】４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法であって、
一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を人為的に付与されてなる形質転換体又はその死菌化細胞に、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを作用させる工程、並びに生成した一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを採取する工程
を有することを特徴とする製造方法等が提供可能になった。
【選択図】 なし
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、４−アセトキシ−３−ヒロドキシブタン酸エステルの製造方法等に関する。
【０００２】
【従来の技術及び発明が解決しようとする課題】
３，４−ジヒドロキシブタン酸の誘導体は医農薬中間体等として有用な化合物であり、例えば、抗高脂血症剤等の鍵中間体として重要である（特許特許文献１参照）。上記の誘導体を効率的に合成するには、４位のヒドロキシル基が保護された３，４−ジヒドロキシブタン酸の誘導体である４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルは極めて有用である。
このような４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを製造する方法としては、ブロモニトリルオキサイドをアリルアルコールに付加させ、イソオキサゾリン化合物を構築した後、さらに３工程を経る方法による、合計４工程での製造方法が知られている（非特許文献番号１）が、より効率的又は簡便な方法が求められている。
【０００３】
【特許文献１】
特許第３２４１７２３号公報（第２頁）
【０００４】
【特許文献２】
特開平１０−９４３９９号公報
【０００５】
【非特許文献１】
Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔｅｒｓ（１９８６）４６４７
【０００６】
【非特許文献２】
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃａｔａｌｙｓｉｓ Ｂ ６，１９９９，４１
【０００７】
【非特許文献３】
Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ １９９７，３７８３
【０００８】
【非特許文献４】
Ａｐｐｌ．Ｂｉｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈ ５２，１９９９，３８６
【０００９】
【課題を解決するための手段】
このような状況下、本発明者等は、４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法について鋭意検討した結果、一般式（１）
（式中、ＲはＣ１−Ｃ８アルキル基を表す。）
で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）
（式中、ＲはＣ１−Ｃ８アルキル基、＊は不斉炭素原子を示す。）
で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を人為的に付与されてなる形質転換体又はその死菌化細胞に、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを作用させる工程、並びに生成した一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを採取することにより、目的とする４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを効率的又は簡便に製造できることを見出し、本発明に至った。
【００１０】
即ち、本発明は、
１．４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法であって、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を人為的に付与されてなる形質転換体又はその死菌化細胞に、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを作用させる工程、並びに生成した一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを採取する工程を有することを特徴とする製造方法（以下、本発明製造方法と記すこともある。）；
２．形質転換体が、下記の２つの人為的に付与される能力を同時に有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを含有する１つのプラスミド、下記（ｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ及び下記（ｉｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを同時に有する１つのプラスミド、あるいは、
下記（ｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを含有するプラスミド及び下記（ｉｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを有するプラスミドからなる２つのプラスミド、
が少なくとも導入されてなる形質転換体であることを特徴とする請求項１記載の製造方法
＜人為的に付与される能力＞
（ｉ）一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力
（ｉｉ）上記（ｉ）の能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力；
３．形質転換体が大腸菌であることを特徴とする前項１記載の製造方法；
４．補酵素が、ＮＡＤＨ／ＮＡＤ＋（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド）もしくはＮＡＤＰＨ／ＮＡＤＰ＋（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸）であることを特徴とする前項１記載の製造方法；
５．脂肪族アルコールの存在下、形質転換体又はその死菌化細胞に一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを作用させることを特徴とする前項１記載の製造方法；
６．脂肪族アルコールが２００℃以下の沸点を持つアルコールであることを特徴とする前項５記載の製造方法；
７．脂肪族アルコールが２−プロパノールであることを特徴とする前項５記載の製造方法；
８．グルコースの存在下、形質転換体又はその死菌化細胞に一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを作用させることを特徴とする前項１記載の製造方法；
９．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、下記のアミノ酸配列群の中から選ばれるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする前項１記載の製造方法；
＜アミノ酸配列群＞
（ａ）配列番号１又は３で示されるアミノ酸配列
（ｂ）配列番号１又は３で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸配列が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｃ）配列番号２又は４で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列
（ｄ）配列番号２又は４で示される塩基配列からなるＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列を有し、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｅ）コリネバクテリウム属又はペニシリウム属に属する微生物由来の、一般式（１）で示される４‐アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列；
１０．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、下記のアミノ酸配列群の中から選ばれるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする請求項１記載の製造方法
＜アミノ酸配列群＞
（ａ）配列番号１で示されるアミノ酸配列
（ｂ）配列番号１で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸配列が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｃ）配列番号２で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列
（ｄ）配列番号２で示される塩基配列からなるＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列を有し、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｅ）コリネバクテリウム属に属する微生物由来の、一般式（１）で示される４‐アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列；
１１．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、下記のアミノ酸配列群の中から選ばれるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする前項１記載の製造方法
＜アミノ酸配列群＞
（ａ）配列番号３で示されるアミノ酸配列
（ｂ）配列番号３で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸配列が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｃ）配列番号４で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列
（ｄ）配列番号４で示される塩基配列からなるＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列を有し、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｅ）ペニシリウム属に属する微生物由来の、一般式（１）で示される４‐アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
１２．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、配列番号１で示されるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする前項１記載の製造方法；
１３．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする請求項１記載の製造方法；
１４．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、配列番号２で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする前項１記載の製造方法；
１５．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、配列番号４で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする前項１記載の製造方法；
１６．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成させるための触媒としての、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を人為的に付与されてなる形質転換体又はその死菌化細胞の使用；
１７．前工程として、４−ハロ−３−オキソブタン酸エステルの４位にあるハロゲン原子をアセトキシ基に置換することにより一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを得る工程を付加的に有することを特徴とする前項１記載の製造方法；
等を提供するものである。
【００１１】
本発明製造方法で用いられる形質転換体は、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を人為的に付与されてなる形質転換体である（以下、本形質転換体と記すこともある。）。このような形質転換体としては、例えば、下記の２つの人為的に付与される能力を同時に有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを含有する１つのプラスミド、
下記（ｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ及び下記（ｉｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを同時に有する１つのプラスミド、あるいは、
下記（ｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを含有するプラスミド及び下記（ｉｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを有するプラスミドからなる２つのプラスミド、
が少なくとも導入されてなる形質転換体等をあげることができる。
＜人為的に付与される能力＞
（ｉ）一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力
（ｉｉ）上記（ｉ）の能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力
【００１２】
このような形質転換体は、通常、（１）一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び当該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力
の２つの人為的に付与される能力を同時に有する酵素、や（２）一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素及び当該酵素が依存する補酵素を再生する能力を有する酵素の２種類の酵素、を含有している。（以下、前記（１）及び（２）の酵素を総じて本酵素と記すこともある。）。
【００１３】
また、「一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力」の具体的な例としては、例えば、下記のアミノ酸配列群の中から選ばれるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力をあげることができる。
＜アミノ酸配列群＞
（ａ１）配列番号１で示されるアミノ酸配列
（ａ２）配列番号３で示されるアミノ酸配列
（ｂ１）配列番号１で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸配列が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｂ２）配列番号３で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸配列が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｃ１）配列番号２で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列
（ｃ２）配列番号４で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列
（ｄ１）配列番号２で示される塩基配列からなるＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列を有し、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｄ２）配列番号４で示される塩基配列からなるＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列を有し、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｅ１）コリネバクテリウム属に属する微生物由来の、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｅ２）ペニシリウム属に属する微生物由来の、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
【００１４】
本形質転換体は、遺伝子工学的な手法を用いて作製すればよい。尚、このような形質転換体を作製する際に用いられる、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を少なくとも有する酵素（以下、本還元酵素と記すこともある。）のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する遺伝子（以下、本還元酵素遺伝子と記すこともある。）は、（１）天然に存在する遺伝子の中からクローニングされたものであってもよいし、（２）天然に存在する遺伝子であっても、このクローニングされた遺伝子の塩基配列において、その一部の塩基の欠失、置換又は付加が人為的に導入されてなる遺伝子（即ち、天然に存在する遺伝子を変異処理（部分変異導入法、突然変異処理等）を行ったものであってもよいし、（３）人為的に合成されたものであってもよい。
【００１５】
ここで、前記（ｂ）、（ｂ１）又は（ｂ２）にある「アミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列」や前記（ｄ）、（ｄ１）又は（ｄ２）にある「ストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列」には、例えば、配列番号１又は３で示されるアミノ酸配列を有する酵素が細胞内で受けるプロセシング、該酵素が由来する生物の種差、個体差、組織間の差異等により天然に生じる変異や、人為的なアミノ酸の変異等が含まれる。
前記（ｂ）、（ｂ１）又は（ｂ２）にある「（アミノ酸が）欠失、置換若しくは付加（された）」（以下、総じてアミノ酸の改変と記すこともある。）を人為的に行う場合の手法としては、例えば、配列番号１又は３で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列を有するＤＮＡに対して慣用の部位特異的変異導入を施し、その後このＤＮＡを常法により発現させる手法が挙げられる。ここで部位特異的変異導入法としては、例えば、アンバー変異を利用する方法（ギャップド・デュプレックス法、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．，１２，９４４１−９４５６（１９８４））、変異導入用プライマーを用いたＰＣＲによる方法等が挙げられる。
前記で改変されるアミノ酸の数については、少なくとも１残基、具体的には１若しくは数個、又はそれ以上である。かかる改変の数は、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を見出すことのできる範囲であればよい。
また前記欠失、置換若しくは付加のうち、特にアミノ酸の置換に係る改変が好ましい。当該置換は、疎水性、電荷、ｐＫ、立体構造上における特徴等の類似した性質を有するアミノ酸への置換がより好ましい。このような置換としては、例えば、▲１▼グリシン、アラニン；▲２▼バリン、イソロイシン、ロイシン；▲３▼アスパラギン酸、グルタミン酸、アスパラギン、グルタミン；▲４▼セリン、スレオニン；▲５▼リジン、アルギニン；▲６▼フェニルアラニン、チロシンのグループ内での置換が挙げられる。
【００１６】
本発明において「（アミノ酸が）欠失、置換若しくは付加（された）」には、例えば、２つの蛋白質間のアミノ酸配列に関する高い配列同一性（具体的には、８０％以上の配列同一性、好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上の配列同一性）が存在している必要がある。また「ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする」には２つのＤＮＡ間の塩基配列に関する配列同一性（具体的には、８０％以上の配列同一性、好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上の配列同一性）が存在している必要がある。
ここで「配列同一性」とは、２つのＤＮＡ又は２つの蛋白質間の配列の同一性及び相同性をいう。前記「配列同一性」は、比較対象の配列の領域にわたって、最適な状態にアラインメントされた２つの配列を比較することにより決定される。ここで、比較対象のＤＮＡ又は蛋白質は、２つの配列の最適なアラインメントにおいて、付加又は欠失（例えばギャップ等）を有していてもよい。このような配列同一性に関しては、例えば、Ｖｅｃｔｏｒ ＮＴＩを用いて、ＣｌｕｓｔａｌＷアルゴリズム（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．，２２（２２）：４６７３−４６８０（１９９４）を利用してアラインメントを作成することにより算出することができる。尚、配列同一性は、配列解析ソフト、具体的にはＶｅｃｔｏｒ ＮＴＩ、ＧＥＮＥＴＹＸ−ＭＡＣや公共のデータベースで提供される解析ツールを用いて測定される。前記公共データベースは、例えば、ホームページアドレスｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｄｄｂｊ．ｎｉｇ．ａｃ．ｊｐにおいて、一般的に利用可能である。
前記（ｄ）、（ｄ１）又は（ｄ２）にある「ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする」に関して、ここで使用されるハイブリダイゼーションは、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ Ｊ．， Ｆｒｉｓｃｈ Ｅ． Ｆ．， Ｍａｎｉａｔｉｓ Ｔ．著、モレキュラークローニング第２版（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ）、コールド スプリング ハーバー ラボラトリー発行（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｐｒｅｓｓ）に記載される方法や、「クローニングとシークエンス」（渡辺格監修、杉浦昌弘編集、１９８９年、農村文化社発行）に記載されているサザンハイブリダイゼーション法等の通常の方法に準じて行うことができる。また「ストリンジェントな条件下」とは、例えば、６×ＳＳＣ（９００ｍＭ ＮａＣｌ、９０ｍＭ クエン酸三ナトリウムを含む溶液。尚ここでは、ＮａＣｌ１７５．３ｇ、クエン酸三ナトリウム８８．２ｇを含む溶液を水８００ｍｌで溶解し、１０Ｎ ＮａＣｌでｐＨを調製した後、全量を１０００ ｍｌとした溶液を２０×ＳＳＣとする。）中で６５℃にてハイブリッドを形成させた後、２×ＳＳＣで５０℃にて洗浄するような条件（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆Ｓｏｎｓ， Ｎ． Ｙ． （１９８９）， ６．３．１−６．３．６）等を挙げることができる。洗浄ステップにおける塩濃度は、例えば、２×ＳＳＣで５０℃の条件（低ストリンジェンシーな条件）から０．１×ＳＳＣで６５℃までの条件（高ストリンジェンシーな条件）から選択することができる。洗浄ステップにおける温度は、例えば、室温（低ストリンジェンシーな条件）から６５℃（高ストリンジェンシーな条件）から選択することができる。また、塩濃度と温度の両方を変えることもできる。
【００１７】
本還元酵素遺伝子は、例えば、下記のような調製方法に準じて調製すればよい。
コリネバクテリウム・シュードジフテリティカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｄｉｐｈｔｅｒｉｔｉｃｕｍ）等のコリネバクテリウム属に属する微生物等から通常の遺伝子工学的手法に準じて染色体ＤＮＡを調製し、調製された染色体ＤＮＡを鋳型として、かつ適切なプライマーを用いてＰＣＲを行うことにより、配列番号１で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ、配列番号１で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ、配列番号２で示される塩基配列を有するＤＮＡ等を増幅して本還元酵素遺伝子を調製する。
ここでコリネバクテリウム・シュードジフテリティカム由来の染色体ＤＮＡを鋳型として、かつ配列番号５に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号６に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いてＰＣＲを行う場合には、配列番号２で示される塩基配列からなるＤＮＡを増幅して本還元酵素遺伝子を調製することになる。
当該ＰＣＲの条件としては、例えば、４種類のｄＮＴＰを各々２０μＭ、２種類のオリゴヌクレオチドプライマーを各々１５ｐｍｏｌ、Ｔａｑｐｏｌｙｍｅｒａｓｅを１．３Ｕ及び鋳型となるｃＤＮＡライブラリーを混合した反応液を９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）‐５０℃（０．５分間）‐７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）‐５５℃（０．５分間）‐７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回行い、さらに７２℃で７分間保持する条件が挙げられる。
尚、当該ＰＣＲに用いるプライマーの５’末端側には、制限酵素認識配列等を付加していてもよい。
上記のようにして増幅されたＤＮＡを、Ｓａｍｂｒｏｏｋ Ｊ．， Ｆｒｉｓｃｈ Ｅ． Ｆ．， Ｍａｎｉａｔｉｓ Ｔ．著「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ」（１９８９）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、「Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ」（１９８７）， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， Ｉｎｃ． ＩＳＢＮＯ−４７１−５０３３８−Ｘ等に記載されている方法に準じてベクターにクローニングして組換ベクターを得ることができる。用いられるベクターとしては、具体的には、例えば、ｐＵＣ１１９（宝酒造社製）、ｐＴＶ１１８Ｎ（宝酒造社製）、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ （東洋紡社製）、ｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）、ｐＴｒｃ９９Ａ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）、ｐＫＫ２２３−３（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）等が挙げられる。このようにしてベクターに組み込んだ形態で本還元酵素遺伝子を調製すれば、後の遺伝子工学的手法における使用において便利である。
【００１８】
また、ペニシリウム・シトリナム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｃｉｔｒｉｎｕｍ）等のペニシリウム属に属する微生物等から通常の遺伝子工学的手法（例えば、「新 細胞工学実験プロトコール」（東京大学医科学研究所制癌研究部編、秀潤社、１９９３年）に記載された方法）に準じてｃＤＮＡライブラリーを調製し、調製されたｃＤＮＡライブラリーを鋳型として、かつ適切なプライマーを用いてＰＣＲを行うことにより、配列番号３で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ、配列番号３で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ、配列番号４で示される塩基配列を有するＤＮＡ等を増幅して本還元酵素遺伝子を調製する。
ここでペニシリウム・シトリナム由来のｃＤＮＡライブラリーを鋳型として、かつ配列番号７に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号８に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いてＰＣＲを行う場合には、配列番号４で示される塩基配列からなるＤＮＡを増幅して本還元酵素遺伝子を調製することになる。
当該ＰＣＲの条件としては、例えば、４種類のｄＮＴＰを各々２０μＭ、２種類のオリゴヌクレオチドプライマーを各々１５ｐｍｏｌ、Ｔａｑｐｏｌｙｍｅｒａｓｅを１．３Ｕ及び鋳型となるｃＤＮＡライブラリーを混合した反応液を９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）‐５０℃（０．５分間）‐７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）‐５５℃（０．５分間）‐７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回行い、さらに７２℃で７分間保持する条件が挙げられる。
尚、当該ＰＣＲに用いるプライマーの５’末端側には、制限酵素認識配列等を付加していてもよい。
上記のようにして増幅されたＤＮＡを、Ｓａｍｂｒｏｏｋ Ｊ．， Ｆｒｉｓｃｈ Ｅ． Ｆ．， Ｍａｎｉａｔｉｓ Ｔ．著「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ」（１９８９）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、「Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ」（１９８７）， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， Ｉｎｃ． ＩＳＢＮＯ−４７１−５０３３８−Ｘ等に記載されている方法に準じてベクターにクローニングして組換ベクターを得ることができる。用いられるベクターとしては、具体的には、例えば、ｐＵＣ１１９（宝酒造社製）、ｐＴＶ１１８Ｎ（宝酒造社製）、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ （東洋紡社製）、ｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）、ｐＴｒｃ９９Ａ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）、ｐＫＫ２２３−３（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）等が挙げられる。このようにしてベクターに組み込んだ形態で本還元酵素遺伝子を調製すれば、後の遺伝子工学的手法における使用において便利である。
【００１９】
一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を有する酵素（以下、本補酵素再生酵素遺伝子と記すこともある。）は、例えば、本補酵素再生酵素遺伝子が本還元酵素とは異なる酵素である場合には、下記のような調製方法に準じて調製すればよい。
バシラス・メガテリウム（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）等のバシラス属に属する微生物等から通常の遺伝子工学的手法に準じて染色体ＤＮＡを調製し、調製された染色体ＤＮＡを鋳型として、かつ適切なプライマーを用いてＰＣＲを行うことにより、配列番号１２で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ、配列番号１２で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ、配列番号１１で示される塩基配列を有するＤＮＡ等を増幅して本補酵素再生酵素遺伝子を調製する。
ここでバシラス・メガテリウム由来の染色体ＤＮＡを鋳型として、かつ配列番号９に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号１０に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いてＰＣＲを行う場合には、配列番号１１で示される塩基配列からなるＤＮＡを増幅して本補酵素再生酵素遺伝子を調製することになる。
当該ＰＣＲの条件としては、例えば、４種類のｄＮＴＰを各々２０μＭ、２種類のオリゴヌクレオチドプライマーを各々１５ｐｍｏｌ、Ｔａｑｐｏｌｙｍｅｒａｓｅを１．３Ｕ及び鋳型となるｃＤＮＡライブラリーを混合した反応液を９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）‐５０℃（０．５分間）‐７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）‐５５℃（０．５分間）‐７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回行い、さらに７２℃で７分間保持する条件が挙げられる。
尚、当該ＰＣＲに用いるプライマーの５’末端側には、制限酵素認識配列等を付加していてもよい。
上記のようにして増幅されたＤＮＡを、Ｓａｍｂｒｏｏｋ Ｊ．， Ｆｒｉｓｃｈ Ｅ． Ｆ．， Ｍａｎｉａｔｉｓ Ｔ．著「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ」（１９８９）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、「Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ」（１９８７）， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， Ｉｎｃ． ＩＳＢＮＯ−４７１−５０３３８−Ｘ等に記載されている方法に準じてベクターにクローニングして組換ベクターを得ることができる。用いられるベクターとしては、具体的には、例えば、ｐＵＣ１１９（宝酒造社製）、ｐＴＶ１１８Ｎ（宝酒造社製）、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ （東洋紡社製）、ｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）、ｐＴｒｃ９９Ａ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）、ｐＫＫ２２３−３（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）等が挙げられる。このようにしてベクターに組み込んだ形態で本還元酵素遺伝子を調製すれば、後の遺伝子工学的手法における使用において便利である。
【００２０】
本形質転換体を調製する方法としては、例えば、（１）本還元酵素遺伝子と本補酵素再生酵素遺伝子との両遺伝子及び宿主細胞で機能可能なプロモーターが機能可能な形で接続されてなるＤＮＡのような、本遺伝子が宿主細胞中で発現できるような単一な組換プラスミドを作製し、これを宿主細胞に導入することにより作製する方法、（２）本還元酵素遺伝子と本補酵素再生酵素遺伝子との両遺伝子のうちの一方の遺伝子及び宿主細胞で機能可能なプロモーターが機能可能な形で接続されてなるＤＮＡのような、本遺伝子のうちの一方の遺伝子が宿主細胞中で発現できるような組換プラスミドを上記遺伝子毎に別々に作製し、これらを宿主細胞に導入することにより作製する方法等があげられる。さらに、一方の遺伝子又は両遺伝子を宿主細胞の染色体中に導入する方法も利用することができる。
尚、上記単一な組換プラスミドを宿主細胞に導入することにより作製する方法としては、例えば、プロモーター、ターミネーター等の発現制御に関わる領域をそれぞれの両遺伝子に連結して組換プラスミドを構築したり、ラクトースオペロンのような複数のシストロンを含むオペロンとして発現させるような組換プラスミドを構築する方法等をあげることができる。
ここで上記の組換プラスミドとしては、例えば、宿主細胞中で複製可能な遺伝情報を含み、自立的に増殖できるものであって、宿主細胞からの単離・精製が容易であり、宿主細胞中で機能可能なプロモーターを有し、検出可能なマーカーを持つ発現ベクターに、本酵素をコードする遺伝子が機能可能な形で導入されたものを好ましく挙げることができる。尚、発現ベクターとしては、各種のものが市販されている。
ここで、「機能可能な形で」とは、上記の組換プラスミドを宿主細胞に導入することにより宿主細胞を形質転換させた際に、本遺伝子（又は本遺伝子のうちの一方の遺伝子）が、プロモーターの制御下に発現するようにプロモーターと結合された状態にあることを意味する。プロモーターとしては、大腸菌のラクトースオペロンのプロモーター、大腸菌のトリプトファンオペロンのプロモーター、又は、ｔａｃプロモーターもしくはｔｒｃプロモーター等の大腸菌内で機能可能な合成プロモーター等をあげることができる。またコリネバクテリウム・シュードジフテリティカム、ペニシリウム・シトリナム、バシラス・メガテリウムにおいて本遺伝子の発現を制御しているプロモーターを利用してもよい。
また発現ベクターとしては、選択マーカー遺伝子（例えば、カナマイシン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子等の抗生物質耐性付与遺伝子等）を含むベクターを用いると、当該ベクターが導入された形質転換体を当該選択マーカー遺伝子の表現型等を指標にして容易に選択することができる。
さらなる高発現を導くことが必要な場合には、本還元酵素及び／又は本補酵素再生酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する遺伝子の上流にリボゾーム結合領域を連結してもよい。用いられるリボゾーム結合領域としては、Ｇｕａｒｅｎｔｅ Ｌ．ら（Ｃｅｌｌ ２０， ｐ５４３）や谷口ら（Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ｏｆ Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ Ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ，
ｐ２０２， 講談社）による報告に記載されたものを挙げることができる。
宿主細胞としては、原核生物（例えば、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ属、Ｂａｃｉｌｌｕｓ属、Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ属、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ属、Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ属）もしくは真核生物（例えば、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属、Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ属、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属）である微生物細胞、昆虫細胞又は哺乳動物細胞等を挙げることができる。例えば、本形質転換体の大量調製が容易になるという観点では、大腸菌等を好ましく挙げることができる。
本還元酵素及び／又は本補酵素再生酵素が宿主細胞中で発現できるようなプラスミドを宿主細胞に導入する方法としては、用いられる宿主細胞に応じて通常使われる導入方法であればよく、例えば、「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ」（１９８９）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、「Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ」（１９８７）， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， Ｉｎｃ． ＩＳＢＮＯ−４７１−５０３３８−Ｘ等に記載される塩化カルシウム法や、「Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｌｅｃｔｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ：Ｇｅｎｅ Ｐｕｌｓｅｒ ／Ｅ．ｃｏｌｉ Ｐｕｌｓｅｒ Ｓｙｓｔｅｍ」 Ｂｉｏ−Ｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ， （１９９３）等に記載されるエレクトロポレーション法等をあげることができる。
宿主細胞において本還元酵素遺伝子及び／又は本補酵素再生酵素遺伝子が宿主細胞中で発現できるようなプラスミドが導入された形質転換体を選抜するには、前記の如く、例えば、ベクターに含まれる選択マーカー遺伝子の表現型を指標にして選抜すればよい。
プラスミドが導入された宿主細胞（即ち、形質転換体）が本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生酵素遺伝子を保有していることは、例えば、「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ」（１９８９）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ等に記載される通常の方法に準じて、制限酵素部位の確認、塩基配列の解析、サザンハイブリダイゼーション、ウエスタンハイブリダイゼーション等を行うことにより、確認することができる。
【００２１】
本形質転換体の培養は、微生物培養、昆虫細胞もしくは哺乳動物細胞の培養に使用される通常の方法によって行うことができる。例えば大腸菌の場合、適当な炭素源、窒素源およびビタミン等の微量栄養物を適宜含む培地中で培養を行う。培養方法としては、固体培養、試験管振盪式培養、往復式振盪培養、ジャーファーメンター（Ｊａｒ Ｆｅｒｍｅｎｔｅｒ）培養、タンク培養等の液体培養のいずれの方法でもよく、好ましくは、通気撹拌培養法等の液体培養を挙げることができる。
培養温度は、本形質転換体が生育可能な範囲で適宜変更できるが、通常約１０〜５０℃、好ましくは約２０〜４０℃である。培地のｐＨは約６〜８の範囲が好ましい。培養時間は、培養条件によって異なるが通常約１日〜約５日が好ましい。
本形質転換体を培養するための培地としては、例えば、微生物等の宿主細胞の培養に通常使用される炭素源や窒素源、有機塩や無機塩等を適宜含む各種の培地を用いることができる。
炭素源としては、例えば、グルコース、デキストリン、シュークロース等の糖類、グリセロール等の糖アルコール、フマル酸、クエン酸、ピルビン酸等の有機酸、動物油、植物油及び糖蜜が挙げられる。これらの炭素源の培地への添加量は培養液に対して通常０．１〜３０％（ｗ／ｖ）程度である。
窒素源としては、例えば、肉エキス、ペプトン、酵母エキス、麦芽エキス、大豆粉、コーン・スティープ・リカー（Ｃｏｒｎ Ｓｔｅｅｐ Ｌｉｑｕｏｒ）、綿実粉、乾燥酵母、カザミノ酸等の天然有機窒素源、アミノ酸類、硝酸ナトリウム等の無機酸のアンモニウム塩、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機酸のアンモニウム塩、フマル酸アンモニウム、クエン酸アンモニウム等の有機酸のアンモニウム塩及び尿素が挙げられる。これらのうち有機酸のアンモニウム塩、天然有機窒素源、アミノ酸類等は多くの場合には炭素源としても使用することができる。これらの窒素源の培地への添加量は培養液に対して通常０．１〜３０％（ｗ／ｖ）程度である。
有機塩や無機塩としては、例えば、カリウム、ナトリウム、マグネシウム、鉄、マンガン、コバルト、亜鉛等の塩化物、硫酸塩、酢酸塩、炭酸塩及びリン酸塩を挙げることができる。具体的には、例えば、塩化ナトリウム、塩化カリウム、硫酸マグネシウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、塩化コバルト、硫酸亜鉛、硫酸銅、酢酸ナトリウム、炭酸カルシウム、リン酸水素一カリウム及びリン酸水素二カリウムが挙げられる。これらの有機塩及び／又は無機塩の培地への添加量は培養液に対して通常０．０００１〜５％（ｗ／ｖ）程度である。
さらに、ｔａｃプロモーター、ｔｒｃプロモーター及びｌａｃプロモーター等のアロラクトースで誘導されるタイプのプロモーターと、本酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する遺伝子とが機能可能な形で接続されてなるＤＮＡが導入されてなる形質転換体の場合には、本酵素の生産を誘導するための誘導剤として、例えば、ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ ｔｈｉｏ−β−Ｄ−ｇａｌａｃｔｏｓｉｄｅ（ＩＰＴＧ）を培地中に少量加えることもできる。
【００２２】
本形質転換体の取得は、例えば、前記の培養により得られた培養物を遠心分離等により形質転換体を沈殿物として回収すればよい。必要に応じて、回収前に当該形質転換体を、例えば、１００ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ６．５）等の緩衝液等を用いて洗浄してもよい。
【００２３】
さらに本形質転換体から、その死菌化細胞を下記の方法により調製することもできる。
死菌化処理方法としては、例えば、物理的殺菌法（加熱、乾燥、冷凍、光線、超音波、濾過、通電）や、化学薬品を用いる殺菌法（アルカリ、酸、ハロゲン、酸化剤、硫黄、ホウ素、砒素、金属、アルコール、フェノール、アミン、サルファイド、エーテル、アルデヒド、ケトン、シアン及び抗生物質）をあげることができる。尚、これらの殺菌法のうちできるだけ本酵素の酵素活性を失活させず、かつ反応系への残留、汚染などの影響が少ない処理方法を各種の反応条件に応じて適宜選択することがよい。
【００２４】
このようにして調製された形質転換体又はその死菌化細胞は、例えば、凍結乾燥細胞、有機溶媒処理細胞、乾燥細胞等の形態、あるいは、固定化された形態（固定化物）で利用してもよい。
【００２５】
固定化物を得る方法としては、例えば、担体結合法（シリカゲルやセラミック等の無機担体、セルロース、イオン交換樹脂等に本形質転換体又はその死菌化細胞を吸着させる方法）及び包括法（ポリアクリルアミド、含硫多糖ゲル（例えばカラギーナンゲル）、アルギン酸ゲル、寒天ゲル等の高分子の網目構造の中に本形質転換体又はその死菌化細胞を閉じ込める方法）が挙げられる。
【００２６】
続いて、本発明製造方法における触媒反応について説明する。
本発明製造方法において一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルに変換する反応は、４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルに本形質転換体又はその死菌化細胞を作用させることによって達成される。
当該反応は、通常、水の存在下で行われる。水は緩衝液の形態であってもよく、この場合に用いられる緩衝剤としては、例えば、リン酸ナトリウム、リン酸カリウム等のリン酸アルカリ金属塩、酢酸ナトリウム、酢酸カリウム等の酢酸のアルカリ金属塩が挙げられる。
尚、緩衝液を溶媒として用いる場合、その量は一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステル１重量部に対して、通常、１〜３００重量倍、好ましくは５〜１００重量倍である。
当該反応に際しては、一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを反応系内に連続又は逐次加えてもよい。
【００２７】
反応温度としては、本形質転換体又はその死菌化細胞に含まれた本酵素の安定性、反応速度の点から０〜７０℃程度をあげることができ、好ましくは約１０〜４０℃があげられる。
反応ｐＨとしては、反応が進行する範囲内で適宜変化させることができるが、例えば、ｐＨ５〜８をあげることができる。
【００２８】
反応は、水の他に有機溶媒の共存下に行うこともできる。この場合の有機溶媒としては、例えば、テトラヒドロフラン、ｔ−ブチルメチルエーテル、イソプロピルエーテル等のエーテル類、トルエン、ヘキサン、シクロヘキサン、ヘプタン、イソオクタン、デカン等の炭化水素類、ｔ−ブタノール、メタノール、エタノール、イソプロパノール、ｎ−ブタノール等のアルコール類、ジメチルスルホキサイドなどのスルホキサイド類、アセトン等のケトン類、アセトニトリル等のニトリル類及びこれらの混合物が挙げられる。
反応に使用する有機溶媒の量は、一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルに対して、通常、１００重量倍以下であり、好ましくは７０重量倍以下である。
【００２９】
反応はさらに、例えば、ＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨのような補酵素を加えて通常行うことがよい。
反応に用いられる補酵素の量は、一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルに対して、通常、０．５重量倍以下、好ましくは０．１重量倍以下である。
【００３０】
本発明製造方法における触媒反応では、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの還元反応において化学量論量の還元型補酵素（電子供与体）が消費された結果生じた酸化型補酵素（電子受容体）を、再び還元型補酵素（電子供与体）に変換する能力、即ち、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力、を有する酵素（即ち、本補酵素再生酵素）の利用が不可欠となる。この場合には、本補酵素再生酵素は、前記還元反応を行う本還元酵素とは異なる酵素であってもよいし、また本還元酵素が補酵素再生酵素としての機能を合わせ持つものであってもよい。もちろん両者の組み合わせであってもよい。
ここで、「本還元酵素が補酵素再生酵素としての機能を合わせ持つもの」であることは、例えば、単離された本還元酵素を用いて酸化型補酵素（電子受容体）の存在下で、補酵素再生酵素の基質である再生系原料化合物を酸化させる反応を行うことにより還元型補酵素（電子供与体）を生じるか否かを調べることにより確認すればよい。
本補酵素再生酵素としては、例えば、グルコース脱水素酵素、アルコール脱水素酵素、アルデヒド脱水素酵素、アミノ酸脱水素酵素及び有機脱水素酵素（リンゴ酸脱水素酵素等）等が挙げられる。中でも、脂肪族アルコール（例えば、２−プロパノール、２−ブタノール、２−ペンタノール、２−ヘキサノール、２−ヘプタノール、２−オクタノール等の２００℃以下の沸点をもつアルコール等）を還元することにより補酵素再生を行う補酵素再生酵素が好ましい。この場合に用いられる脂肪族アルコールの量は、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルに対して１００モル倍以下、好ましくは１０モル倍以下である。
【００３１】
反応は、例えば、水、一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステル、本形質転換体又はその死菌化細胞、及び必要に応じて補酵素、有機溶媒等を混合し、攪拌、振盪することにより行うことができる。
【００３２】
反応の終点は、例えば、反応液中の原料化合物の存在量を液体クロマトグラフィー、ガスクロマトグラフィー等により追跡することにより決定することができる。反応時間の範囲としては、通常、５分間〜１０日間、好ましくは３０分間〜４日間の範囲をあげることができる。
【００３３】
反応終了後は、触媒として酵素を使用して化合物を製造する方法において通常用いられる化合物の回収方法により目的物を採取すればよい。例えば、まず反応液をヘキサン、ヘプタン、ｔｅｒｔ−ブチルメチルエーテル、酢酸エチル、トルエン等の有機溶媒で抽出する。必要に応じて反応液を濾過したり、又は遠心分離等の処理により不溶物を除去した後に前記抽出操作を行なえばよい。次に抽出された有機層を乾燥した後、濃縮物として目的物を回収することができる。目的物は、必要によりカラムクロマトグラフィー等によりさらに精製することができる。
【００３４】
本発明製造方法では、その前工程として、４−ハロ−３−オキソブタン酸エステルの４位にあるハロゲン原子をアセトキシ基に置換することにより一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを得る工程を付加的に有してもよい。具体的には、本発明製造方法は、種々の医農薬の中間体に誘導されており、工業的に利用可能な化合物である、一般式（３）
（式中、ＲはＣ１−Ｃ８アルキル基、Ｘは塩素、臭素又はヨウ素を表す。）
で示される４−ハロ−３−オキソブタン酸エステルの４位ハロゲン原子をアセトキシ基に置換することにより一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを得る工程を前工程として付加的に有し、得られた一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルから一般式（２）で示される４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを得る製造方法であってもよい。
【００３５】
ここで出発化合物として用いられる一般式（３）で示される４−ハロ−３−オキソブタン酸エステルにおいて、Ｒで示されるＣ１−Ｃ８アルキル基としては、例えば、メチル基、エチル基、プロピル基、オクチル基等をあげることができる。一般式（３）で示される４−ハロ−３−オキソブタン酸エステルの具体的な例としては、４−ブロモ−３−オキソブタン酸エステル等をあげることができる。因みに、当該化合物は、アセト酢酸エステルのブロム化により容易に製造可能である。
【００３６】
一般式（３）で示される４−ハロ−３−オキソブタン酸エステルの４位ハロゲン原子をアセトキシ基に置換することにより一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを得る工程において用いられるアセトキシ化の反応試剤としては、例えば、酢酸カリウム、酢酸ナトリウム、酢酸リチウム、酢酸アンモニウム等の酢酸塩をあげられる。当該工程は、通常有機溶媒の存在下で行うが、必要に応じて無溶媒で実施することもできる。かかる溶媒として、例えば、メタノール、エタノール等のアルコール類、トルエン等の芳香族炭化水素類、酢酸エチル等のエステル類、アセトニトリル等のニトリル類、メチル ｔ‐ブチル エーテル、テトラヒドロフラン等のエーテル類、Ｎ，Ｎ‐ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド等の極性溶媒、シクロヘキサン、ヘプタン等の炭化水素溶媒、等を、単独で用いてもよいし、２種類以上を混合して用いてもよい。当該工程の反応温度は、反応を進行させるのに十分な温度であれば制限はないが、通常、０〜１００℃程度、好ましくは１０〜８０℃程度、より好ましくは２０〜７０℃である。
【００３７】
このようにして生成された一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルは、必要に応じて、一旦採取・精製してから次の工程に供してもよいしそのまま次の工程に供してもよい。採取・精製には、例えば、反応混合物に対し洗浄分液、濃縮等の処理操作を行う方法・クロマトグラフィー、蒸留、再結晶等の精製操作等の通常の方法を用いればよい。
【００３８】
【実施例】
以下、製造例等により本発明をさらに詳しく説明するが、本発明はこれらの例に限定されるものではない。
【００３９】
実施例１ （本還元酵素遺伝子の調製（その１）及び本還元酵素遺伝子を含有する形質転換体の調製）
配列番号２で示される塩基配列からなるＤＮＡを含有するプラスミドｐＫＡＲを以下のようにして調製した。
まず、Ａｐｐｌ Ｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ（１９９９）５２：３８６−３９２等に記載される公知のプラスミドｐＵＡＲ（受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−１８１２７）から、配列番号２で示されるＤＮＡを含むＤＮＡ断片を、ＰｓｔＩ及びＳｍａＩを用いて切り出した。切り出されたＤＮＡ断片を、ＰｓｔＩ／ＳｍａＩ処理したｐＫＫ２２３‐３ベクター（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ社製）のＴａｃプロモーターの下流に挿入した。このようにしてプラスミドｐＫＡＲを構築した。
構築されたプラスミドｐＫＡＲを用いてＥ． ｃｏｌｉ ＪＭ１０９株を形質転換した。
次に、フラスコに液体培地（水１０００ｍｌにトリプトン１０ｇ、酵母エキス５ｇ及び塩化ナトリウム５ｇを溶解した。この溶液に１Ｎ水酸化ナトリウム水溶液を滴下することによりｐＨを７．０に調整した。）１００ｍｌを入れ、滅菌した後、アンピシリンを１００μｇ／ｍｌ、ＺｎＣｌ２を０．０１％（ｗ／ｖ）、ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ ｔｈｉｏ−β−Ｄ−ｇａｌａｃｔｏｓｉｄｅ（ＩＰＴＧ）を０．４ｍＭになるように加えた。このようにして調製された培地に、上記で得られた形質転換体（Ｅ． ｃｏｌｉ ＪＭ１０９／ｐＫＡＲ株）が前記組成の液体培地で予め培養された培養液０．３ｍｌを接種し、これを３０℃で１４時間振盪培養した。
培養後、得られた培養液を遠心分離（１５０００×ｇ、１５分、４℃）することにより、菌体を回収した。回収された菌体を、５０ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ７．０）３０ｍｌに懸濁し、この懸濁液を遠心分離（１５０００×ｇ、１５分、４℃）することにより、本還元酵素遺伝子を含有する形質転換体である洗浄菌体を得た。
【００４０】
実施例２ （本還元酵素遺伝子の調製（その２））
（２−１）染色体ＤＮＡの調製
フラスコに液体培地（水１０００ｍｌにトリプトン５ｇ、酵母エキス２．５ｇ、塩化ナトリウム４ｇ、ゼラチン２．５ｇ、酢酸ナトリウム１．５ｇ及びスレオニン２．４ｇを溶解する。この溶液に１Ｎ水酸化ナトリウム水溶液を滴下することによりｐＨを７．０に調整する。）１００ｍｌを入れ、滅菌する。このようにして調製された培地に、特開平１０−９４３９９等に記載される公知のコリネバクテリウム・シュードジフテリティカム亜種（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｄｉｐｈｔｅｒｉｔｉｃｕｍ）ＳＴ−１０株（受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−１３１５０）が前記組成の液体培地で予め培養された培養液０．３ｍｌを接種し、これを３０℃で１０時間振盪培養する。
培養後、得られた培養液を遠心分離（１５０００×ｇ、１５分、４℃）することにより、菌体を回収する。回収された菌体を、５０ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ７．０）３０ｍｌに懸濁し、この懸濁液を遠心分離（１５０００×ｇ、１５分、４℃）することにより、洗浄菌体を得る。
このようにして得られる洗浄菌体を用いて、Ｊ．Ｃ．Ｗａｎｇらの方法（Ａｐｐｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ （１９９９）５２：３８６−３９２）によって染色体ＤＮＡを調製する。
【００４１】
（２−２）本還元酵素遺伝子を含有するプラスミドの調製（プラスミドｐＴｒｃＰＡＲの構築）
配列番号５で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号６で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに、前記（２−１）で調製される染色体ＤＮＡを鋳型にして下記反応液組成、反応条件でＰＣＲを行う。（ロシュ・ダイアグノスティック社製のＥｘｐａｎｄ Ｈｉｇｈ Ｆｉｄｅｌｉｔｙ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍを使用）
【００４２】
［反応液組成］
染色体ＤＮＡ １μｌ
ｄＮＴＰ（各２．５ｍＭ−ｍｉｘ） ０．４μｌ
プライマー（２０ｐｍｏｌ／μｌ） 各０．７５μｌ
１０ｘｂｕｆｆｅｒ（ｗｉｔｈ ＭｇＣｌ２） ５μｌ
ｅｎｚ．ｅｘｐａｎｄＨｉＦｉ （３．５ｘ１０３Ｕ／ｍｌ） ０．３７５μｌ
超純水 ４１．７２５μｌ
【００４３】
［反応条件］
上記組成の反応液が入った容器をＰＥＲＫＩＮ ＥＬＭＥＲ−ＧｅｎｅＡｍｐ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍ２４００にセットし、９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回行い、さらに７２℃で７分間保持する。
【００４４】
ＰＣＲ反応液を精製して得られたＰＣＲ増幅ＤＮＡ断片に２種類の制限酵素（ＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ＤＮＡ断片を２重消化する。次いで得られるＤＮＡ断片を精製する。
一方、ベクターｐＴｒｃ９９Ａ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）を２種類の制限酵素（ＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ベクターを２重消化する。次いで得られるＤＮＡ断片を精製する。
このようにして精製して得られる２種類のＤＮＡ断片を混合し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションする。得られるライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換する。
得られる形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いて本還元酵素遺伝子を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＴｒｃＰＡＲと記すこともある。）を取り出す。
【００４５】
実施例３ （本還元酵素遺伝子の調製（その３））
（３−１）ｃＤＮＡライブラリーの調製
５００ｍｌフラスコに培地（水にポテト・デキストロース・ブロース（ベクトン・ディッキンソン社製）を２４ｇ／Ｌの割合で溶解したもの）１００ｍｌを入れ、１２１℃で１５分間滅菌した。ここに同組成の培地中で培養（３０℃、４８時間、振盪培養）したペニシリウム・シトリナム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｃｉｔｒｉｎｕｍ）ＩＦＯ４６３１株の培養液０．５ｍｌを加え、３０℃で７２時間振盪培養した。その後、得られた培養液を遠心し（８０００ｘｇ、１０分）、生じた沈殿を集めた。この沈殿を２０ｍＭリン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．０）５０ｍｌで３回洗浄して、約１．０ｇの洗浄菌体を得た。
ペニシリウム・シトリナム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｃｉｔｒｉｎｕｍ）ＩＦＯ４６３１株の洗浄菌体を用いて、チオシアン酸グアニジンフェノールクロロホルム法で全ＲＮＡを調製した。調製された全ＲＮＡから、Ｏｌｉｇｏｔｅｘ（ｄＴ）３０−Ｓｕｐｅｒ（宝酒造社製）を用いてｐｏｌｙ（Ａ）を有するＲＮＡを得た。
ｃＤＮＡライブラリーの作製は、Ｇｕｂｌｅｒ ａｎｄ Ｈｏｆｆｍａｎ法に基づいて実施した。まず、上記のようにして得られたｐｏｌｙ（Ａ）を有するＲＮＡ、Ｏｌｉｇｏ（ｄＴ）１８−リンカープライマー（（含ＸｈｏＩサイト）宝酒造社製）、ＲＡＶ−２ Ｒｔａｓｅ及びＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＩＩ Ｒｔａｓｅを用いて一本鎖ｃＤＮＡを調製した。調製された一本鎖ｃＤＮＡ（を含む前記反応液）にＥ． ｃｏｌｉ ＤＮＡ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ、Ｅ． ｃｏｌｉ Ｒｎａｓｅ／Ｅ． ｃｏｌｉ ＤＮＡ Ｌｉｇａｓｅ Ｍｉｘｔｕｒｅ及びＴ４ ＤＮＡ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅを加えることにより、二本鎖ｃＤＮＡの合成及び当該二本鎖ｃＤＮＡの平滑末端化処理を行った。
このようにして得られた二本鎖ｃＤＮＡとＥｃｏＲＩ−ＮｏｔＩ−ＢａｍＨＩアダプター（宝酒造社製）とのライゲーションを行った。ライゲーション後に得られたＤＮＡを、以下の順で、リン酸化処理、ＸｈｏＩでの切断処理、スピンカラム（宝酒造社製）を用いる低分子量ＤＮＡの除去処理、λＺａｐＩＩ（ＥｃｏＲＩ−ＸｈｏＩ切断）とのライゲーションした後、ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｐａｃｋａｇｉｎｇ ｋｉｔ （ＳＴＲＡＴＡＧＥＮＥ社製）を用いてパッケージングすることにより、ｃＤＮＡライブラリー（以下、ｃＤＮＡライブラリー（Ａ）と記すこともある。）を調製した。
【００４６】
（３−２）本還元酵素遺伝子を含有するプラスミドの調製（プラスミドｐＴｒｃＲＰｃの構築）
配列番号７で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号８で示されるオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いて、前記（３−１）で調製されたｃＤＮＡライブラリーを鋳型にして下記反応液組成、反応条件でＰＣＲを行った。（ロシュ・ダイアグノスティック社製のＥｘｐａｎｄ Ｈｉｇｈ Ｆｉｄｅｌｉｔｙ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍを使用）
【００４７】
［反応液組成］
ｃＤＮＡライブラリー原液 １μｌ
ｄＮＴＰ（各２．５ｍＭ−ｍｉｘ） ０．４μｌ
プライマー（２０ｐｍｏｌ／μｌ） 各０．７５μｌ
１０ｘｂｕｆｆｅｒ（ｗｉｔｈ ＭｇＣｌ２） ５μｌ
ｅｎｚ．ｅｘｐａｎｄＨｉＦｉ （３．５ｘ１０３Ｕ／ｍｌ） ０．３７５μｌ
超純水 ４１．７２５μｌ
【００４８】
［反応条件］
上記組成の反応液が入った容器をＰＥＲＫＩＮ ＥＬＭＥＲ−ＧｅｎｅＡｍｐ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍ２４００にセットし、９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回行い、さらに７２℃で７分間保持した。
【００４９】
ＰＣＲ反応液を精製して得られたＰＣＲ増幅ＤＮＡ断片に２種類の制限酵素（ＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ＤＮＡ断片を２重消化させた。次いで得られたＤＮＡ断片を精製した。
一方、ベクターｐＴｒｃ９９Ａ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）を２種類の制限酵素（ＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ベクターを２重消化させた。次いで消化されたＤＮＡ断片を精製した。
このようにして精製して得られた２種類のＤＮＡ断片を混合し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションした。得られたライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換した。
得られた形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いて本還元酵素遺伝子を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＴｒｃＲＰｃと記すこともある。）を取り出した。
【００５０】
実施例４ （本補酵素再生酵素遺伝子の調製）
（４−１）酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド等を還元型に変換する能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する遺伝子を調製するための準備
フラスコにＬＢ培地（１％トリプトン、０．５％酵母エキス、１％塩化ナトリウム）１００ｍｌを入れ、滅菌した。このようにして調製された培地に、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ ＩＦＯ１２１０８株が前記組成の液体培地で予め培養された培養液０．３ｍｌを接種し、これを３０℃で１０時間振盪培養した。
培養後、得られた培養液を遠心分離（１５０００×ｇ、１５分、４℃）することにより、菌体を回収した。回収された菌体を、５０ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ７．０）３０ｍｌに懸濁し、この懸濁液を遠心分離（１５０００×ｇ、１５分、４℃）することにより、洗浄菌体を得た。
このようにして得られた洗浄菌体からＱｉａｇｅｎ Ｇｅｎｏｍｉｃ Ｔｉｐ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用い、それに付属するマニュアルに記載される方法に従って染色体ＤＮＡを精製した。
【００５１】
（４−２）酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド等を還元型に変換する能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する遺伝子の調製（その１：プラスミドｐＳＤＧＤＨ１２の構築）
Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｖｏｌ．２６４， Ｎｏ．１１， ６３８１−６３８５（１９８９）に記載された公知のＢａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ ＩＷＧ３由来のグルコース脱水素酵素のアミノ酸配列に基づいて配列番号９で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号１０で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとを合成する。配列番号９で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号１０で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いて、前記（４−１）で精製された染色体ＤＮＡを鋳型にして実施例２（２−２）に記載させる反応液組成、反応条件でＰＣＲを行う。（ロシュ・ダイアグノスティック社製のＥｘｐａｎｄ Ｈｉｇｈ Ｆｉｄｅｌｉｔｙ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍを使用）
ＰＣＲ反応液を精製して得られたＰＣＲ増幅ＤＮＡ断片を、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製ＴＯＰＯＴＭＴＡ ｃｌｏｎｉｎｇキットを用いてｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯベクターの既存「ＰＣＲ Ｐｒｏｄｕｃｔ挿入サイト」にライゲーションする。得られるライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換する。
得られる形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いてグルコース脱水素酵素を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＳＤＧＤＨ１２と記すこともある。）を取り出す。
次に、取り出されるプラスミドｐＳＤＧＤＨ１２を鋳型として、Ｄｙｅ Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ Ｃｙｃｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ＦＳ ｒｅａｄｙ Ｒｅａｃｔｉｏｎ Ｋｉｔ（パーキンエルマー製）を用いたシークエンス反応を行った後、得られるＤＮＡの塩基配列をＤＮＡシーケンサー３７３Ａ（パーキンエルマー製）で解析する。その結果を配列番号１１に示す。
【００５２】
（４−３）酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸等を還元型に変換する能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する遺伝子の調製（その２：プラスミドｐＡＧＤＨ１２の構築）
（４−３−１）プラスミドｐＴＧＤＨ１２の構築
配列番号１１で示される塩基配列を基にして配列番号１３で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号１４で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとを合成した。
配列番号１３で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号１４で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いて、前記（４−１）で精製された染色体ＤＮＡを鋳型にして以下の反応液組成、反応条件でＰＣＲを行った。（ロシュ・ダイアグノスティック社製のＥｘｐａｎｄ Ｈｉｇｈ Ｆｉｄｅｌｉｔｙ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍを使用）
【００５３】
［反応液組成］
染色体ＤＮＡ原液 １μｌ
ｄＮＴＰ（各２．５ｍＭ−ｍｉｘ） ０．４μｌ
プライマー（２０ｐｍｏｌ／μｌ） 各０．７５μｌ
１０ｘｂｕｆｆｅｒ（ｗｉｔｈ ＭｇＣｌ２） ５μｌ
ｅｎｚ．ｅｘｐａｎｄＨｉＦｉ （３．５ｘ１０３Ｕ／ｍｌ） ０．３７５μｌ
超純水 ４１．７２５μｌ
【００５４】
［ＰＣＲ反応条件］
上記組成に反応液が入った容器をＰＥＲＫＩＮ ＥＬＭＥＲ−ＧｅｎｅＡｍｐ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍ２４００にセットし、９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回、さらに７２℃で７分間保持した。
【００５５】
ＰＣＲ反応液を精製して得られたＰＣＲ増幅ＤＮＡ断片に２種類の制限酵素（ＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ＤＮＡ断片を２重消化させた。次いで得られたＤＮＡ断片を精製した。
一方、ベクターｐＴＶ１１８Ｎ（宝酒造社製）を２種類の制限酵素（ＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ベクターを２重消化させた。次いで消化されたＤＮＡ断片を精製した。
このようにして精製して得られた２種類のＤＮＡ断片を混合し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションした。得られたライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換した。
得られた形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いて本還元酵素遺伝子を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＴＧＤＨ１２と記すこともある。）を取り出した。
【００５６】
（４−３−２）プラスミドｐＣＧＤＨ１２の構築
ベクターｐＴＶ１１８Ｎ（宝酒造社製）の塩基配列を基にして配列番号１５で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを合成した。
配列番号１５で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号１４で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いて、プラスミドｐＴＧＤＨ１２を鋳型にして以下の反応液組成、反応条件でＰＣＲを行った。（ロシュ・ダイアグノスティック社製のＥｘｐａｎｄ Ｈｉｇｈ Ｆｉｄｅｌｉｔｙ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍを使用）
【００５７】
［反応液組成］
プラスミドｐＴＧＤＨ１２溶液 １μｌ
ｄＮＴＰ（各２．５ｍＭ−ｍｉｘ） ０．４μｌ
プライマー（２０ｐｍｏｌ／μｌ） 各０．７５μｌ
１０ｘｂｕｆｆｅｒ（ｗｉｔｈ ＭｇＣｌ） ５μｌ
ｅｎｚ．ｅｘｐａｎｄＨｉＦｉ （３．５ｘ１０３Ｕ／ｍｌ） ０．３７５μｌ
超純水 ４１．７２５μｌ
【００５８】
［ＰＣＲ反応条件］
上記組成に反応液が入った容器をＰＥＲＫＩＮ ＥＬＭＥＲ−ＧｅｎｅＡｍｐ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍ２４００にセットし、９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回、さらに７２℃で７分間保持した。
【００５９】
得られたＰＣＲ反応液とＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製ＴＯＰＯＴＭＴＡ ｃｌｏｎｉｎｇキットＶｅｒ．Ｅとを用いて、ＰＣＲによって得られた約１０００ｂｐのＤＮＡ断片をｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯベクターの既存「ＰＣＲ Ｐｒｏｄｕｃｔ挿入サイト」にライゲーションし、そのライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換した。
得られた形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いて本還元酵素遺伝子を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＣＧＤＨ１２と記すこともある。）を取り出した。
【００６０】
（４−３−３）プラスミドｐＡＧＤＨ１２の構築）
プラスミドｐＣＧＤＨ１２に制限酵素（ＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該プラスミドを消化した。次いで、得られるＤＮＡ断片（約１０００ｂｐ）を精製した。
一方、ベクターｐＡＣＹＣ１８４（ニッポンジーン社製）に制限酵素（ＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ベクターを消化した。次いで得られるＤＮＡ断片を精製した。さらに、セルフライゲーションを防ぐため、Ａｌｋａｌｉｎｅ Ｐｈｏｓｐａｔａｓｅ（宝酒造社製）を用いて脱リン酸化処理を行った。
【００６１】
このようにして精製して得られた２種類のＤＮＡ断片を混合し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションした。得られたライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換した。
得られた形質転換体を２０μｇ／ｍｌのクロラムフェニコールを含有するＬＢ寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から４コロニーを無作為に選抜した。この選抜されたコロニーをそれぞれ２０μｇ／ｍｌのクロラムフェニコールを含有する滅菌ＬＢ培地（２ｍｌ）に接種し、試験管中で振盪培養した（３０℃、２４時間）。それぞれの培養菌体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いてプラスミドを取り出した。取り出したプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素（ＢａｍＨＩ）により消化した後、当該消化物を電気泳動することにより、取り出されたプラスミド全てには前記ＤＮＡ断片（約１０００ｂｐ）が挿入されていることを確認した。（以下、取り出されたプラスミドをプラスミドｐＡＧＤＨ１２と記すこともある。）
【００６２】
実施例５ （本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生酵素遺伝子を含有するプラスミドの調製（その１）：プラスミドｐＴｒｃＰＡＲＳｂＧの構築）
実施例４（４−２）で調製されたプラスミドｐＳＤＧＤＨ１２に２種類の制限酵素（ＢａｍＨＩとＸｂａＩ）を加えることにより、当該プラスミドを２重消化させる。次いで消化されたＤＮＡ断片を精製する。
一方、実施例２で調製されるプラスミドｐＴｒｃＰＡＲに２種類の制限酵素（ＢａｍＨＩとＸｂａＩ）を加えることにより、当該プラスミドを２重消化させる。次いで得られるＤＮＡ断片を精製する。
このようにして精製して得られる２種類のＤＮＡ断片を混合し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションする。得られるライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉ ＤＨ５αを形質転換する。
得られる形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いて本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生遺伝子を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＴｒｃＰＡＲＳｂＧと記すこともある。）を取り出す。
【００６３】
実施例６ （本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生遺伝子を含有するプラスミドの調製（その２）：プラスミドｐＴｒｃＲＳｂＧ１２の構築）
実施例４（４−２）で調製されたプラスミドｐＳＤＧＤＨ１２に２種類の制限酵素（ＢａｍＨＩとＸｂａＩ）を加えることにより、当該プラスミドを２重消化させた。次いで消化されたＤＮＡ断片を精製した。
一方、実施例３で調製されるプラスミドｐＴｒｃＲＰｃに２種類の制限酵素（ＢａｍＨＩとＸｂａＩ）を加えることにより、当該プラスミドを２重消化させた。次いで消化されたＤＮＡ断片を精製した。
このようにして精製して得られた２種類のＤＮＡ断片を混合し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションした。得られたライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉ ＤＨ５αを形質転換した。
得られた形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いて本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生酵素遺伝子を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＴｒｃＲＳｂＧ１２と記すこともある。）を取り出した。
【００６４】
実施例７ （本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生酵素遺伝子を含有する形質転換体の調製（その１））
実施例５で調製されるプラスミドｐＴｒｃＰＡＲＳｂＧを用いてＥ．ｃｏｌｉ ＨＢ１０１を形質転換する。得られる形質転換体を０．４ｍＭのＩＰＴＧ、０．０１％（Ｗ／Ｖ）のＺｎＣｌ２及び５０μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有する滅菌ＬＢ培地（１００ｍｌ×３本）に接種した後、これを振盪培養する（３０℃、１８時間）。培養後、培養液を遠心分離・洗浄することにより、洗浄菌体を回収する。
【００６５】
実施例８ （本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生酵素遺伝子を含有する形質転換体の調製（その２））
実施例６で調製されたｐＴｒｃＲＳｂＧ１２プラスミドを用いてＥ．ｃｏｌｉ ＨＢ１０１を形質転換した。得られた形質転換体を０．１ｍＭのＩＰＴＧ及び５０μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有する滅菌ＬＢ培地（１００ｍｌ×３本）に接種した後、これを振盪培養した（３０℃、１８時間）。培養後、培養液を遠心分離・洗浄することにより、洗浄菌体１．２ｇを回収した。
【００６６】
実施例９ （本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生酵素遺伝子を含有する形質転換体の調製（その３））
実施例３で調製されるプラスミドｐＴｒｃＲＰｃ及び実施例４（４−３）で調製されたプラスミドｐＡＧＤＨ１２を用いてＥ．ｃｏｌｉ ＨＢ１０１を形質転換する。得られる形質転換体を０．４ｍＭのＩＰＴＧ、２０μｇ／ｍｌのクロラムフェニコール及び５０μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有する滅菌ＬＢ培地（１００ｍｌ×３本）に接種した後、これを振盪培養する（３０℃、１８時間）。培養後、培養液を遠心分離・洗浄することにより、洗浄菌体を回収する。
【００６７】
実施例１０ （４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法）
１００ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ７．０）１．５ｍｌに、実施例１で調製された洗浄菌体１５ｍｇ、ＮＡＤ＋１．３ｍｇ及び５％（ｖ／ｖ）の２−プロパノールを加えた。この混合物に、さらに１５ｍｇの４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸メチルを加えた。このようにして得られた混合物（反応液）を３０℃で２１時間攪拌することにより反応を行った。反応終了後、反応液に酢酸ブチル１．５ｍｌを注加攪拌し、次いで遠心分離することにより有機層及び水層を別々に回収した。回収された水層に再度酢酸エチル１．５ｍｌを加えて同様な操作を行った。このようにして得られた有機層を合一濃縮した後、これをクロロホルム３０ｍｌに溶解し、無水Ｎａ２ＳＯ４を用いて乾燥した。乾燥後、クロロホルムを留去することにより、４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸メチルを得た。収率２７％（ＧＣ分析）であった。
ＧＣ条件
カラム：ＤＢ−１（０．５３ｍｍΦ×３０ｍ、１．５μｍ）
注入口温度：１７０℃
検出器（ＦＩＤ）：３００℃
カラム室温度：５０℃（保持：５分）→５℃／分→１７０℃（保持：０分）→（昇温：３０℃／分）→２９０℃（保持：０分）
キャリアガス １０ｍＬ／分
４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸メチルの保持時間 １０分
【００６８】
実施例１１ （４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法（その２））
１００ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ７．０）１．５ｍｌに、実施例１で調製された洗浄菌体１５ｍｇ、ＮＡＤ＋１．３ｍｇ及び５％（ｖ／ｖ）の２−プロパノールを加える代わりに、１００ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ６．５）２０ｍｌに、実施例８で調製された洗浄菌体１５ｍｇ、ＮＡＤＰ＋１．２ｍｇ及びグルコース２．５ｇを加えること以外は実施例１０記載の方法と同様な方法によって４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸メチルを得た。収率３１％（ＧＣ分析）であった。
【００６９】
実施例１２ （４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法（その３））
１００ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ６．５）２０ｍｌに、実施例９で得られる洗浄菌体１ｇ、ＮＡＤＰ＋１２ｍｇ及びグルコース２．５ｇを加える。この混合物に、さらに２４０ｍｇの２‐オキソシクロヘキサンカルボン酸エチルを加えた後、当該混合物のｐＨを１５％炭酸ナトリウム水溶液で６．５に調製する。このようにして得られる混合物（反応液）を３０℃で４時間攪拌することにより反応を行う。反応終了後、反応液に酢酸エチル２５ｍｌを注加攪拌し、次いで遠心分離することにより有機層及び水層を別々に回収する。回収される水層に再度酢酸エチル２５ｍｌを加えて同様な操作を行う。このようにして得られる有機層を合一濃縮した後、これをクロロホルム３０ｍｌに溶解し、無水Ｎａ２ＳＯ４を用いて乾燥する。乾燥後、クロロホルムを留去することにより、２‐ヒドロキシシクロヘキサンカルボン酸エチルを得る。
【００７０】
参考例１ （一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する微生物の取得）
（１−１） 洗浄菌体の調製
市販の微生物又は土壌などから単離した微生物を滅菌ＬＢ培地（１０ｍｌ）に接種した後、これを振盪培養する（３０℃、１８時間）。培養後、培養液を遠心分離・洗浄することにより、洗浄菌体を回収する。
（１−２） スクリーニング
１００ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ６．５）２０ｍｌに、上記（１−１）で調製された洗浄菌体１ｇ、ＮＡＤＰ＋１２ｍｇ、ＮＡＤ＋１２ｍｇ及びグルコース２．５ｇを加える。この混合物に、さらに一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステル２４０ｍｇを加えた後、当該混合物のｐＨを１５％炭酸ナトリウム水溶液で６．５に調製する。このようにして得られる混合物（反応液）を３０℃で４時間攪拌することにより反応を行う。反応終了後、反応液に酢酸エチル２５ｍｌを注加攪拌し、次いで遠心分離することにより有機層及び水層を別々に回収する。回収される水層に再度酢酸エチル２５ｍｌを加えて同様な操作を行う。このようにして得られる有機層を合一濃縮した後、これをクロロホルム３０ｍｌに溶解し、無水Ｎａ２ＳＯ４を用いて乾燥する。乾燥後、クロロホルムを留去することにより残渣を得る。得られる残渣に、４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルが含まれていることを液体クロマトグラフィー又はガスクロマトグラフィーにて定性及び／定量分析により確認する。
【００７１】
参考例２ （４−アセトキシ−３−オキソブタン酸メチルの調製）
ＮＮ−ジメチルホルムアミド２５ｇに溶解した４−ブロモ−３−オキソブタン酸メチル５ｇに酢酸カリウム２．８ｇを加え、２０℃で攪拌２時間攪拌した。氷冷下、反応液に酢酸エチル１００ｍＬ、ヘキサン１５ｍＬ、水６０ｍＬを加えて洗浄分液した。水層にさらに酢酸エチル２０ｍＬ、ヘキサン１５ｍＬを加え抽出分液をおこなった。油層を合一し濃縮することにより目的の４−アセトキシ−３−オキソブタン酸メチルを得た（３．４ｇ、ＧＣ純度８４％）。目的物の同定はＨ−ＮＭＲにより行った。
ＧＣ条件
カラム：ＤＢ−１（０．５３ｍｍΦ×３０ｍ、１．５μｍ）
注入口温度：１７０℃
検出器（ＦＩＤ）：３００℃
カラム室温度：５０℃（保持：５分）→５℃／分→１７０℃（保持：０分）→（昇温：３０℃／分）→２９０℃（保持：０分）
キャリアガス １０ｍＬ／分
４−アセトキシ−３−オキソブタン酸メチルの保持時間 ８．７分
Ｈ−ＮＭＲ（δ，ｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）；２．２（３Ｈ， ｓ），３．５（２Ｈ， ｓ），３．８（３Ｈ， ｓ），４．８（２Ｈ， ｓ）
【００７２】
【発明の効果】
本発明により、４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを効率的又は簡便に製造することができる。
［配列表フリーテキスト］
配列番号５
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号６
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号７
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号８
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号９
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号１０
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号１３
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号１４
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号１５
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
【００７３】
【配列表】
【発明の属する技術分野】
本発明は、４−アセトキシ−３−ヒロドキシブタン酸エステルの製造方法等に関する。
【０００２】
【従来の技術及び発明が解決しようとする課題】
３，４−ジヒドロキシブタン酸の誘導体は医農薬中間体等として有用な化合物であり、例えば、抗高脂血症剤等の鍵中間体として重要である（特許特許文献１参照）。上記の誘導体を効率的に合成するには、４位のヒドロキシル基が保護された３，４−ジヒドロキシブタン酸の誘導体である４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルは極めて有用である。
このような４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを製造する方法としては、ブロモニトリルオキサイドをアリルアルコールに付加させ、イソオキサゾリン化合物を構築した後、さらに３工程を経る方法による、合計４工程での製造方法が知られている（非特許文献番号１）が、より効率的又は簡便な方法が求められている。
【０００３】
【特許文献１】
特許第３２４１７２３号公報（第２頁）
【０００４】
【特許文献２】
特開平１０−９４３９９号公報
【０００５】
【非特許文献１】
Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔｅｒｓ（１９８６）４６４７
【０００６】
【非特許文献２】
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃａｔａｌｙｓｉｓ Ｂ ６，１９９９，４１
【０００７】
【非特許文献３】
Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ １９９７，３７８３
【０００８】
【非特許文献４】
Ａｐｐｌ．Ｂｉｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈ ５２，１９９９，３８６
【０００９】
【課題を解決するための手段】
このような状況下、本発明者等は、４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法について鋭意検討した結果、一般式（１）
で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）
で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を人為的に付与されてなる形質転換体又はその死菌化細胞に、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを作用させる工程、並びに生成した一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを採取することにより、目的とする４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを効率的又は簡便に製造できることを見出し、本発明に至った。
【００１０】
即ち、本発明は、
１．４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法であって、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を人為的に付与されてなる形質転換体又はその死菌化細胞に、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを作用させる工程、並びに生成した一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを採取する工程を有することを特徴とする製造方法（以下、本発明製造方法と記すこともある。）；
２．形質転換体が、下記の２つの人為的に付与される能力を同時に有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを含有する１つのプラスミド、下記（ｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ及び下記（ｉｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを同時に有する１つのプラスミド、あるいは、
下記（ｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを含有するプラスミド及び下記（ｉｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを有するプラスミドからなる２つのプラスミド、
が少なくとも導入されてなる形質転換体であることを特徴とする請求項１記載の製造方法
＜人為的に付与される能力＞
（ｉ）一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力
（ｉｉ）上記（ｉ）の能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力；
３．形質転換体が大腸菌であることを特徴とする前項１記載の製造方法；
４．補酵素が、ＮＡＤＨ／ＮＡＤ＋（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド）もしくはＮＡＤＰＨ／ＮＡＤＰ＋（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸）であることを特徴とする前項１記載の製造方法；
５．脂肪族アルコールの存在下、形質転換体又はその死菌化細胞に一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを作用させることを特徴とする前項１記載の製造方法；
６．脂肪族アルコールが２００℃以下の沸点を持つアルコールであることを特徴とする前項５記載の製造方法；
７．脂肪族アルコールが２−プロパノールであることを特徴とする前項５記載の製造方法；
８．グルコースの存在下、形質転換体又はその死菌化細胞に一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを作用させることを特徴とする前項１記載の製造方法；
９．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、下記のアミノ酸配列群の中から選ばれるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする前項１記載の製造方法；
＜アミノ酸配列群＞
（ａ）配列番号１又は３で示されるアミノ酸配列
（ｂ）配列番号１又は３で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸配列が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｃ）配列番号２又は４で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列
（ｄ）配列番号２又は４で示される塩基配列からなるＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列を有し、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｅ）コリネバクテリウム属又はペニシリウム属に属する微生物由来の、一般式（１）で示される４‐アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列；
１０．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、下記のアミノ酸配列群の中から選ばれるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする請求項１記載の製造方法
＜アミノ酸配列群＞
（ａ）配列番号１で示されるアミノ酸配列
（ｂ）配列番号１で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸配列が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｃ）配列番号２で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列
（ｄ）配列番号２で示される塩基配列からなるＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列を有し、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｅ）コリネバクテリウム属に属する微生物由来の、一般式（１）で示される４‐アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列；
１１．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、下記のアミノ酸配列群の中から選ばれるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする前項１記載の製造方法
＜アミノ酸配列群＞
（ａ）配列番号３で示されるアミノ酸配列
（ｂ）配列番号３で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸配列が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｃ）配列番号４で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列
（ｄ）配列番号４で示される塩基配列からなるＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列を有し、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｅ）ペニシリウム属に属する微生物由来の、一般式（１）で示される４‐アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
１２．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、配列番号１で示されるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする前項１記載の製造方法；
１３．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする請求項１記載の製造方法；
１４．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、配列番号２で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする前項１記載の製造方法；
１５．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、配列番号４で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする前項１記載の製造方法；
１６．一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成させるための触媒としての、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を人為的に付与されてなる形質転換体又はその死菌化細胞の使用；
１７．前工程として、４−ハロ−３−オキソブタン酸エステルの４位にあるハロゲン原子をアセトキシ基に置換することにより一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを得る工程を付加的に有することを特徴とする前項１記載の製造方法；
等を提供するものである。
【００１１】
本発明製造方法で用いられる形質転換体は、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を人為的に付与されてなる形質転換体である（以下、本形質転換体と記すこともある。）。このような形質転換体としては、例えば、下記の２つの人為的に付与される能力を同時に有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを含有する１つのプラスミド、
下記（ｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ及び下記（ｉｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを同時に有する１つのプラスミド、あるいは、
下記（ｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを含有するプラスミド及び下記（ｉｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを有するプラスミドからなる２つのプラスミド、
が少なくとも導入されてなる形質転換体等をあげることができる。
＜人為的に付与される能力＞
（ｉ）一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力
（ｉｉ）上記（ｉ）の能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力
【００１２】
このような形質転換体は、通常、（１）一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び当該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力
の２つの人為的に付与される能力を同時に有する酵素、や（２）一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素及び当該酵素が依存する補酵素を再生する能力を有する酵素の２種類の酵素、を含有している。（以下、前記（１）及び（２）の酵素を総じて本酵素と記すこともある。）。
【００１３】
また、「一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力」の具体的な例としては、例えば、下記のアミノ酸配列群の中から選ばれるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力をあげることができる。
＜アミノ酸配列群＞
（ａ１）配列番号１で示されるアミノ酸配列
（ａ２）配列番号３で示されるアミノ酸配列
（ｂ１）配列番号１で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸配列が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｂ２）配列番号３で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸配列が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｃ１）配列番号２で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列
（ｃ２）配列番号４で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列
（ｄ１）配列番号２で示される塩基配列からなるＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列を有し、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｄ２）配列番号４で示される塩基配列からなるＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列を有し、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｅ１）コリネバクテリウム属に属する微生物由来の、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｅ２）ペニシリウム属に属する微生物由来の、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
【００１４】
本形質転換体は、遺伝子工学的な手法を用いて作製すればよい。尚、このような形質転換体を作製する際に用いられる、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を少なくとも有する酵素（以下、本還元酵素と記すこともある。）のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する遺伝子（以下、本還元酵素遺伝子と記すこともある。）は、（１）天然に存在する遺伝子の中からクローニングされたものであってもよいし、（２）天然に存在する遺伝子であっても、このクローニングされた遺伝子の塩基配列において、その一部の塩基の欠失、置換又は付加が人為的に導入されてなる遺伝子（即ち、天然に存在する遺伝子を変異処理（部分変異導入法、突然変異処理等）を行ったものであってもよいし、（３）人為的に合成されたものであってもよい。
【００１５】
ここで、前記（ｂ）、（ｂ１）又は（ｂ２）にある「アミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列」や前記（ｄ）、（ｄ１）又は（ｄ２）にある「ストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列」には、例えば、配列番号１又は３で示されるアミノ酸配列を有する酵素が細胞内で受けるプロセシング、該酵素が由来する生物の種差、個体差、組織間の差異等により天然に生じる変異や、人為的なアミノ酸の変異等が含まれる。
前記（ｂ）、（ｂ１）又は（ｂ２）にある「（アミノ酸が）欠失、置換若しくは付加（された）」（以下、総じてアミノ酸の改変と記すこともある。）を人為的に行う場合の手法としては、例えば、配列番号１又は３で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列を有するＤＮＡに対して慣用の部位特異的変異導入を施し、その後このＤＮＡを常法により発現させる手法が挙げられる。ここで部位特異的変異導入法としては、例えば、アンバー変異を利用する方法（ギャップド・デュプレックス法、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．，１２，９４４１−９４５６（１９８４））、変異導入用プライマーを用いたＰＣＲによる方法等が挙げられる。
前記で改変されるアミノ酸の数については、少なくとも１残基、具体的には１若しくは数個、又はそれ以上である。かかる改変の数は、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を見出すことのできる範囲であればよい。
また前記欠失、置換若しくは付加のうち、特にアミノ酸の置換に係る改変が好ましい。当該置換は、疎水性、電荷、ｐＫ、立体構造上における特徴等の類似した性質を有するアミノ酸への置換がより好ましい。このような置換としては、例えば、▲１▼グリシン、アラニン；▲２▼バリン、イソロイシン、ロイシン；▲３▼アスパラギン酸、グルタミン酸、アスパラギン、グルタミン；▲４▼セリン、スレオニン；▲５▼リジン、アルギニン；▲６▼フェニルアラニン、チロシンのグループ内での置換が挙げられる。
【００１６】
本発明において「（アミノ酸が）欠失、置換若しくは付加（された）」には、例えば、２つの蛋白質間のアミノ酸配列に関する高い配列同一性（具体的には、８０％以上の配列同一性、好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上の配列同一性）が存在している必要がある。また「ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする」には２つのＤＮＡ間の塩基配列に関する配列同一性（具体的には、８０％以上の配列同一性、好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上の配列同一性）が存在している必要がある。
ここで「配列同一性」とは、２つのＤＮＡ又は２つの蛋白質間の配列の同一性及び相同性をいう。前記「配列同一性」は、比較対象の配列の領域にわたって、最適な状態にアラインメントされた２つの配列を比較することにより決定される。ここで、比較対象のＤＮＡ又は蛋白質は、２つの配列の最適なアラインメントにおいて、付加又は欠失（例えばギャップ等）を有していてもよい。このような配列同一性に関しては、例えば、Ｖｅｃｔｏｒ ＮＴＩを用いて、ＣｌｕｓｔａｌＷアルゴリズム（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．，２２（２２）：４６７３−４６８０（１９９４）を利用してアラインメントを作成することにより算出することができる。尚、配列同一性は、配列解析ソフト、具体的にはＶｅｃｔｏｒ ＮＴＩ、ＧＥＮＥＴＹＸ−ＭＡＣや公共のデータベースで提供される解析ツールを用いて測定される。前記公共データベースは、例えば、ホームページアドレスｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｄｄｂｊ．ｎｉｇ．ａｃ．ｊｐにおいて、一般的に利用可能である。
前記（ｄ）、（ｄ１）又は（ｄ２）にある「ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする」に関して、ここで使用されるハイブリダイゼーションは、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ Ｊ．， Ｆｒｉｓｃｈ Ｅ． Ｆ．， Ｍａｎｉａｔｉｓ Ｔ．著、モレキュラークローニング第２版（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ）、コールド スプリング ハーバー ラボラトリー発行（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｐｒｅｓｓ）に記載される方法や、「クローニングとシークエンス」（渡辺格監修、杉浦昌弘編集、１９８９年、農村文化社発行）に記載されているサザンハイブリダイゼーション法等の通常の方法に準じて行うことができる。また「ストリンジェントな条件下」とは、例えば、６×ＳＳＣ（９００ｍＭ ＮａＣｌ、９０ｍＭ クエン酸三ナトリウムを含む溶液。尚ここでは、ＮａＣｌ１７５．３ｇ、クエン酸三ナトリウム８８．２ｇを含む溶液を水８００ｍｌで溶解し、１０Ｎ ＮａＣｌでｐＨを調製した後、全量を１０００ ｍｌとした溶液を２０×ＳＳＣとする。）中で６５℃にてハイブリッドを形成させた後、２×ＳＳＣで５０℃にて洗浄するような条件（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆Ｓｏｎｓ， Ｎ． Ｙ． （１９８９）， ６．３．１−６．３．６）等を挙げることができる。洗浄ステップにおける塩濃度は、例えば、２×ＳＳＣで５０℃の条件（低ストリンジェンシーな条件）から０．１×ＳＳＣで６５℃までの条件（高ストリンジェンシーな条件）から選択することができる。洗浄ステップにおける温度は、例えば、室温（低ストリンジェンシーな条件）から６５℃（高ストリンジェンシーな条件）から選択することができる。また、塩濃度と温度の両方を変えることもできる。
【００１７】
本還元酵素遺伝子は、例えば、下記のような調製方法に準じて調製すればよい。
コリネバクテリウム・シュードジフテリティカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｄｉｐｈｔｅｒｉｔｉｃｕｍ）等のコリネバクテリウム属に属する微生物等から通常の遺伝子工学的手法に準じて染色体ＤＮＡを調製し、調製された染色体ＤＮＡを鋳型として、かつ適切なプライマーを用いてＰＣＲを行うことにより、配列番号１で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ、配列番号１で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ、配列番号２で示される塩基配列を有するＤＮＡ等を増幅して本還元酵素遺伝子を調製する。
ここでコリネバクテリウム・シュードジフテリティカム由来の染色体ＤＮＡを鋳型として、かつ配列番号５に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号６に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いてＰＣＲを行う場合には、配列番号２で示される塩基配列からなるＤＮＡを増幅して本還元酵素遺伝子を調製することになる。
当該ＰＣＲの条件としては、例えば、４種類のｄＮＴＰを各々２０μＭ、２種類のオリゴヌクレオチドプライマーを各々１５ｐｍｏｌ、Ｔａｑｐｏｌｙｍｅｒａｓｅを１．３Ｕ及び鋳型となるｃＤＮＡライブラリーを混合した反応液を９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）‐５０℃（０．５分間）‐７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）‐５５℃（０．５分間）‐７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回行い、さらに７２℃で７分間保持する条件が挙げられる。
尚、当該ＰＣＲに用いるプライマーの５’末端側には、制限酵素認識配列等を付加していてもよい。
上記のようにして増幅されたＤＮＡを、Ｓａｍｂｒｏｏｋ Ｊ．， Ｆｒｉｓｃｈ Ｅ． Ｆ．， Ｍａｎｉａｔｉｓ Ｔ．著「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ」（１９８９）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、「Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ」（１９８７）， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， Ｉｎｃ． ＩＳＢＮＯ−４７１−５０３３８−Ｘ等に記載されている方法に準じてベクターにクローニングして組換ベクターを得ることができる。用いられるベクターとしては、具体的には、例えば、ｐＵＣ１１９（宝酒造社製）、ｐＴＶ１１８Ｎ（宝酒造社製）、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ （東洋紡社製）、ｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）、ｐＴｒｃ９９Ａ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）、ｐＫＫ２２３−３（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）等が挙げられる。このようにしてベクターに組み込んだ形態で本還元酵素遺伝子を調製すれば、後の遺伝子工学的手法における使用において便利である。
【００１８】
また、ペニシリウム・シトリナム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｃｉｔｒｉｎｕｍ）等のペニシリウム属に属する微生物等から通常の遺伝子工学的手法（例えば、「新 細胞工学実験プロトコール」（東京大学医科学研究所制癌研究部編、秀潤社、１９９３年）に記載された方法）に準じてｃＤＮＡライブラリーを調製し、調製されたｃＤＮＡライブラリーを鋳型として、かつ適切なプライマーを用いてＰＣＲを行うことにより、配列番号３で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ、配列番号３で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ、配列番号４で示される塩基配列を有するＤＮＡ等を増幅して本還元酵素遺伝子を調製する。
ここでペニシリウム・シトリナム由来のｃＤＮＡライブラリーを鋳型として、かつ配列番号７に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号８に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いてＰＣＲを行う場合には、配列番号４で示される塩基配列からなるＤＮＡを増幅して本還元酵素遺伝子を調製することになる。
当該ＰＣＲの条件としては、例えば、４種類のｄＮＴＰを各々２０μＭ、２種類のオリゴヌクレオチドプライマーを各々１５ｐｍｏｌ、Ｔａｑｐｏｌｙｍｅｒａｓｅを１．３Ｕ及び鋳型となるｃＤＮＡライブラリーを混合した反応液を９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）‐５０℃（０．５分間）‐７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）‐５５℃（０．５分間）‐７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回行い、さらに７２℃で７分間保持する条件が挙げられる。
尚、当該ＰＣＲに用いるプライマーの５’末端側には、制限酵素認識配列等を付加していてもよい。
上記のようにして増幅されたＤＮＡを、Ｓａｍｂｒｏｏｋ Ｊ．， Ｆｒｉｓｃｈ Ｅ． Ｆ．， Ｍａｎｉａｔｉｓ Ｔ．著「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ」（１９８９）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、「Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ」（１９８７）， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， Ｉｎｃ． ＩＳＢＮＯ−４７１−５０３３８−Ｘ等に記載されている方法に準じてベクターにクローニングして組換ベクターを得ることができる。用いられるベクターとしては、具体的には、例えば、ｐＵＣ１１９（宝酒造社製）、ｐＴＶ１１８Ｎ（宝酒造社製）、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ （東洋紡社製）、ｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）、ｐＴｒｃ９９Ａ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）、ｐＫＫ２２３−３（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）等が挙げられる。このようにしてベクターに組み込んだ形態で本還元酵素遺伝子を調製すれば、後の遺伝子工学的手法における使用において便利である。
【００１９】
一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を有する酵素（以下、本補酵素再生酵素遺伝子と記すこともある。）は、例えば、本補酵素再生酵素遺伝子が本還元酵素とは異なる酵素である場合には、下記のような調製方法に準じて調製すればよい。
バシラス・メガテリウム（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）等のバシラス属に属する微生物等から通常の遺伝子工学的手法に準じて染色体ＤＮＡを調製し、調製された染色体ＤＮＡを鋳型として、かつ適切なプライマーを用いてＰＣＲを行うことにより、配列番号１２で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ、配列番号１２で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ、配列番号１１で示される塩基配列を有するＤＮＡ等を増幅して本補酵素再生酵素遺伝子を調製する。
ここでバシラス・メガテリウム由来の染色体ＤＮＡを鋳型として、かつ配列番号９に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号１０に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いてＰＣＲを行う場合には、配列番号１１で示される塩基配列からなるＤＮＡを増幅して本補酵素再生酵素遺伝子を調製することになる。
当該ＰＣＲの条件としては、例えば、４種類のｄＮＴＰを各々２０μＭ、２種類のオリゴヌクレオチドプライマーを各々１５ｐｍｏｌ、Ｔａｑｐｏｌｙｍｅｒａｓｅを１．３Ｕ及び鋳型となるｃＤＮＡライブラリーを混合した反応液を９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）‐５０℃（０．５分間）‐７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）‐５５℃（０．５分間）‐７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回行い、さらに７２℃で７分間保持する条件が挙げられる。
尚、当該ＰＣＲに用いるプライマーの５’末端側には、制限酵素認識配列等を付加していてもよい。
上記のようにして増幅されたＤＮＡを、Ｓａｍｂｒｏｏｋ Ｊ．， Ｆｒｉｓｃｈ Ｅ． Ｆ．， Ｍａｎｉａｔｉｓ Ｔ．著「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ」（１９８９）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、「Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ」（１９８７）， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， Ｉｎｃ． ＩＳＢＮＯ−４７１−５０３３８−Ｘ等に記載されている方法に準じてベクターにクローニングして組換ベクターを得ることができる。用いられるベクターとしては、具体的には、例えば、ｐＵＣ１１９（宝酒造社製）、ｐＴＶ１１８Ｎ（宝酒造社製）、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ （東洋紡社製）、ｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）、ｐＴｒｃ９９Ａ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）、ｐＫＫ２２３−３（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）等が挙げられる。このようにしてベクターに組み込んだ形態で本還元酵素遺伝子を調製すれば、後の遺伝子工学的手法における使用において便利である。
【００２０】
本形質転換体を調製する方法としては、例えば、（１）本還元酵素遺伝子と本補酵素再生酵素遺伝子との両遺伝子及び宿主細胞で機能可能なプロモーターが機能可能な形で接続されてなるＤＮＡのような、本遺伝子が宿主細胞中で発現できるような単一な組換プラスミドを作製し、これを宿主細胞に導入することにより作製する方法、（２）本還元酵素遺伝子と本補酵素再生酵素遺伝子との両遺伝子のうちの一方の遺伝子及び宿主細胞で機能可能なプロモーターが機能可能な形で接続されてなるＤＮＡのような、本遺伝子のうちの一方の遺伝子が宿主細胞中で発現できるような組換プラスミドを上記遺伝子毎に別々に作製し、これらを宿主細胞に導入することにより作製する方法等があげられる。さらに、一方の遺伝子又は両遺伝子を宿主細胞の染色体中に導入する方法も利用することができる。
尚、上記単一な組換プラスミドを宿主細胞に導入することにより作製する方法としては、例えば、プロモーター、ターミネーター等の発現制御に関わる領域をそれぞれの両遺伝子に連結して組換プラスミドを構築したり、ラクトースオペロンのような複数のシストロンを含むオペロンとして発現させるような組換プラスミドを構築する方法等をあげることができる。
ここで上記の組換プラスミドとしては、例えば、宿主細胞中で複製可能な遺伝情報を含み、自立的に増殖できるものであって、宿主細胞からの単離・精製が容易であり、宿主細胞中で機能可能なプロモーターを有し、検出可能なマーカーを持つ発現ベクターに、本酵素をコードする遺伝子が機能可能な形で導入されたものを好ましく挙げることができる。尚、発現ベクターとしては、各種のものが市販されている。
ここで、「機能可能な形で」とは、上記の組換プラスミドを宿主細胞に導入することにより宿主細胞を形質転換させた際に、本遺伝子（又は本遺伝子のうちの一方の遺伝子）が、プロモーターの制御下に発現するようにプロモーターと結合された状態にあることを意味する。プロモーターとしては、大腸菌のラクトースオペロンのプロモーター、大腸菌のトリプトファンオペロンのプロモーター、又は、ｔａｃプロモーターもしくはｔｒｃプロモーター等の大腸菌内で機能可能な合成プロモーター等をあげることができる。またコリネバクテリウム・シュードジフテリティカム、ペニシリウム・シトリナム、バシラス・メガテリウムにおいて本遺伝子の発現を制御しているプロモーターを利用してもよい。
また発現ベクターとしては、選択マーカー遺伝子（例えば、カナマイシン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子等の抗生物質耐性付与遺伝子等）を含むベクターを用いると、当該ベクターが導入された形質転換体を当該選択マーカー遺伝子の表現型等を指標にして容易に選択することができる。
さらなる高発現を導くことが必要な場合には、本還元酵素及び／又は本補酵素再生酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する遺伝子の上流にリボゾーム結合領域を連結してもよい。用いられるリボゾーム結合領域としては、Ｇｕａｒｅｎｔｅ Ｌ．ら（Ｃｅｌｌ ２０， ｐ５４３）や谷口ら（Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ｏｆ Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ Ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ，
ｐ２０２， 講談社）による報告に記載されたものを挙げることができる。
宿主細胞としては、原核生物（例えば、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ属、Ｂａｃｉｌｌｕｓ属、Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ属、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ属、Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ属）もしくは真核生物（例えば、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属、Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ属、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属）である微生物細胞、昆虫細胞又は哺乳動物細胞等を挙げることができる。例えば、本形質転換体の大量調製が容易になるという観点では、大腸菌等を好ましく挙げることができる。
本還元酵素及び／又は本補酵素再生酵素が宿主細胞中で発現できるようなプラスミドを宿主細胞に導入する方法としては、用いられる宿主細胞に応じて通常使われる導入方法であればよく、例えば、「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ」（１９８９）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、「Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ」（１９８７）， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， Ｉｎｃ． ＩＳＢＮＯ−４７１−５０３３８−Ｘ等に記載される塩化カルシウム法や、「Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｌｅｃｔｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ：Ｇｅｎｅ Ｐｕｌｓｅｒ ／Ｅ．ｃｏｌｉ Ｐｕｌｓｅｒ Ｓｙｓｔｅｍ」 Ｂｉｏ−Ｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ， （１９９３）等に記載されるエレクトロポレーション法等をあげることができる。
宿主細胞において本還元酵素遺伝子及び／又は本補酵素再生酵素遺伝子が宿主細胞中で発現できるようなプラスミドが導入された形質転換体を選抜するには、前記の如く、例えば、ベクターに含まれる選択マーカー遺伝子の表現型を指標にして選抜すればよい。
プラスミドが導入された宿主細胞（即ち、形質転換体）が本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生酵素遺伝子を保有していることは、例えば、「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ」（１９８９）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ等に記載される通常の方法に準じて、制限酵素部位の確認、塩基配列の解析、サザンハイブリダイゼーション、ウエスタンハイブリダイゼーション等を行うことにより、確認することができる。
【００２１】
本形質転換体の培養は、微生物培養、昆虫細胞もしくは哺乳動物細胞の培養に使用される通常の方法によって行うことができる。例えば大腸菌の場合、適当な炭素源、窒素源およびビタミン等の微量栄養物を適宜含む培地中で培養を行う。培養方法としては、固体培養、試験管振盪式培養、往復式振盪培養、ジャーファーメンター（Ｊａｒ Ｆｅｒｍｅｎｔｅｒ）培養、タンク培養等の液体培養のいずれの方法でもよく、好ましくは、通気撹拌培養法等の液体培養を挙げることができる。
培養温度は、本形質転換体が生育可能な範囲で適宜変更できるが、通常約１０〜５０℃、好ましくは約２０〜４０℃である。培地のｐＨは約６〜８の範囲が好ましい。培養時間は、培養条件によって異なるが通常約１日〜約５日が好ましい。
本形質転換体を培養するための培地としては、例えば、微生物等の宿主細胞の培養に通常使用される炭素源や窒素源、有機塩や無機塩等を適宜含む各種の培地を用いることができる。
炭素源としては、例えば、グルコース、デキストリン、シュークロース等の糖類、グリセロール等の糖アルコール、フマル酸、クエン酸、ピルビン酸等の有機酸、動物油、植物油及び糖蜜が挙げられる。これらの炭素源の培地への添加量は培養液に対して通常０．１〜３０％（ｗ／ｖ）程度である。
窒素源としては、例えば、肉エキス、ペプトン、酵母エキス、麦芽エキス、大豆粉、コーン・スティープ・リカー（Ｃｏｒｎ Ｓｔｅｅｐ Ｌｉｑｕｏｒ）、綿実粉、乾燥酵母、カザミノ酸等の天然有機窒素源、アミノ酸類、硝酸ナトリウム等の無機酸のアンモニウム塩、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機酸のアンモニウム塩、フマル酸アンモニウム、クエン酸アンモニウム等の有機酸のアンモニウム塩及び尿素が挙げられる。これらのうち有機酸のアンモニウム塩、天然有機窒素源、アミノ酸類等は多くの場合には炭素源としても使用することができる。これらの窒素源の培地への添加量は培養液に対して通常０．１〜３０％（ｗ／ｖ）程度である。
有機塩や無機塩としては、例えば、カリウム、ナトリウム、マグネシウム、鉄、マンガン、コバルト、亜鉛等の塩化物、硫酸塩、酢酸塩、炭酸塩及びリン酸塩を挙げることができる。具体的には、例えば、塩化ナトリウム、塩化カリウム、硫酸マグネシウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、塩化コバルト、硫酸亜鉛、硫酸銅、酢酸ナトリウム、炭酸カルシウム、リン酸水素一カリウム及びリン酸水素二カリウムが挙げられる。これらの有機塩及び／又は無機塩の培地への添加量は培養液に対して通常０．０００１〜５％（ｗ／ｖ）程度である。
さらに、ｔａｃプロモーター、ｔｒｃプロモーター及びｌａｃプロモーター等のアロラクトースで誘導されるタイプのプロモーターと、本酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する遺伝子とが機能可能な形で接続されてなるＤＮＡが導入されてなる形質転換体の場合には、本酵素の生産を誘導するための誘導剤として、例えば、ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ ｔｈｉｏ−β−Ｄ−ｇａｌａｃｔｏｓｉｄｅ（ＩＰＴＧ）を培地中に少量加えることもできる。
【００２２】
本形質転換体の取得は、例えば、前記の培養により得られた培養物を遠心分離等により形質転換体を沈殿物として回収すればよい。必要に応じて、回収前に当該形質転換体を、例えば、１００ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ６．５）等の緩衝液等を用いて洗浄してもよい。
【００２３】
さらに本形質転換体から、その死菌化細胞を下記の方法により調製することもできる。
死菌化処理方法としては、例えば、物理的殺菌法（加熱、乾燥、冷凍、光線、超音波、濾過、通電）や、化学薬品を用いる殺菌法（アルカリ、酸、ハロゲン、酸化剤、硫黄、ホウ素、砒素、金属、アルコール、フェノール、アミン、サルファイド、エーテル、アルデヒド、ケトン、シアン及び抗生物質）をあげることができる。尚、これらの殺菌法のうちできるだけ本酵素の酵素活性を失活させず、かつ反応系への残留、汚染などの影響が少ない処理方法を各種の反応条件に応じて適宜選択することがよい。
【００２４】
このようにして調製された形質転換体又はその死菌化細胞は、例えば、凍結乾燥細胞、有機溶媒処理細胞、乾燥細胞等の形態、あるいは、固定化された形態（固定化物）で利用してもよい。
【００２５】
固定化物を得る方法としては、例えば、担体結合法（シリカゲルやセラミック等の無機担体、セルロース、イオン交換樹脂等に本形質転換体又はその死菌化細胞を吸着させる方法）及び包括法（ポリアクリルアミド、含硫多糖ゲル（例えばカラギーナンゲル）、アルギン酸ゲル、寒天ゲル等の高分子の網目構造の中に本形質転換体又はその死菌化細胞を閉じ込める方法）が挙げられる。
【００２６】
続いて、本発明製造方法における触媒反応について説明する。
本発明製造方法において一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルに変換する反応は、４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルに本形質転換体又はその死菌化細胞を作用させることによって達成される。
当該反応は、通常、水の存在下で行われる。水は緩衝液の形態であってもよく、この場合に用いられる緩衝剤としては、例えば、リン酸ナトリウム、リン酸カリウム等のリン酸アルカリ金属塩、酢酸ナトリウム、酢酸カリウム等の酢酸のアルカリ金属塩が挙げられる。
尚、緩衝液を溶媒として用いる場合、その量は一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステル１重量部に対して、通常、１〜３００重量倍、好ましくは５〜１００重量倍である。
当該反応に際しては、一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを反応系内に連続又は逐次加えてもよい。
【００２７】
反応温度としては、本形質転換体又はその死菌化細胞に含まれた本酵素の安定性、反応速度の点から０〜７０℃程度をあげることができ、好ましくは約１０〜４０℃があげられる。
反応ｐＨとしては、反応が進行する範囲内で適宜変化させることができるが、例えば、ｐＨ５〜８をあげることができる。
【００２８】
反応は、水の他に有機溶媒の共存下に行うこともできる。この場合の有機溶媒としては、例えば、テトラヒドロフラン、ｔ−ブチルメチルエーテル、イソプロピルエーテル等のエーテル類、トルエン、ヘキサン、シクロヘキサン、ヘプタン、イソオクタン、デカン等の炭化水素類、ｔ−ブタノール、メタノール、エタノール、イソプロパノール、ｎ−ブタノール等のアルコール類、ジメチルスルホキサイドなどのスルホキサイド類、アセトン等のケトン類、アセトニトリル等のニトリル類及びこれらの混合物が挙げられる。
反応に使用する有機溶媒の量は、一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルに対して、通常、１００重量倍以下であり、好ましくは７０重量倍以下である。
【００２９】
反応はさらに、例えば、ＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨのような補酵素を加えて通常行うことがよい。
反応に用いられる補酵素の量は、一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルに対して、通常、０．５重量倍以下、好ましくは０．１重量倍以下である。
【００３０】
本発明製造方法における触媒反応では、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの還元反応において化学量論量の還元型補酵素（電子供与体）が消費された結果生じた酸化型補酵素（電子受容体）を、再び還元型補酵素（電子供与体）に変換する能力、即ち、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力、を有する酵素（即ち、本補酵素再生酵素）の利用が不可欠となる。この場合には、本補酵素再生酵素は、前記還元反応を行う本還元酵素とは異なる酵素であってもよいし、また本還元酵素が補酵素再生酵素としての機能を合わせ持つものであってもよい。もちろん両者の組み合わせであってもよい。
ここで、「本還元酵素が補酵素再生酵素としての機能を合わせ持つもの」であることは、例えば、単離された本還元酵素を用いて酸化型補酵素（電子受容体）の存在下で、補酵素再生酵素の基質である再生系原料化合物を酸化させる反応を行うことにより還元型補酵素（電子供与体）を生じるか否かを調べることにより確認すればよい。
本補酵素再生酵素としては、例えば、グルコース脱水素酵素、アルコール脱水素酵素、アルデヒド脱水素酵素、アミノ酸脱水素酵素及び有機脱水素酵素（リンゴ酸脱水素酵素等）等が挙げられる。中でも、脂肪族アルコール（例えば、２−プロパノール、２−ブタノール、２−ペンタノール、２−ヘキサノール、２−ヘプタノール、２−オクタノール等の２００℃以下の沸点をもつアルコール等）を還元することにより補酵素再生を行う補酵素再生酵素が好ましい。この場合に用いられる脂肪族アルコールの量は、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルに対して１００モル倍以下、好ましくは１０モル倍以下である。
【００３１】
反応は、例えば、水、一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステル、本形質転換体又はその死菌化細胞、及び必要に応じて補酵素、有機溶媒等を混合し、攪拌、振盪することにより行うことができる。
【００３２】
反応の終点は、例えば、反応液中の原料化合物の存在量を液体クロマトグラフィー、ガスクロマトグラフィー等により追跡することにより決定することができる。反応時間の範囲としては、通常、５分間〜１０日間、好ましくは３０分間〜４日間の範囲をあげることができる。
【００３３】
反応終了後は、触媒として酵素を使用して化合物を製造する方法において通常用いられる化合物の回収方法により目的物を採取すればよい。例えば、まず反応液をヘキサン、ヘプタン、ｔｅｒｔ−ブチルメチルエーテル、酢酸エチル、トルエン等の有機溶媒で抽出する。必要に応じて反応液を濾過したり、又は遠心分離等の処理により不溶物を除去した後に前記抽出操作を行なえばよい。次に抽出された有機層を乾燥した後、濃縮物として目的物を回収することができる。目的物は、必要によりカラムクロマトグラフィー等によりさらに精製することができる。
【００３４】
本発明製造方法では、その前工程として、４−ハロ−３−オキソブタン酸エステルの４位にあるハロゲン原子をアセトキシ基に置換することにより一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを得る工程を付加的に有してもよい。具体的には、本発明製造方法は、種々の医農薬の中間体に誘導されており、工業的に利用可能な化合物である、一般式（３）
で示される４−ハロ−３−オキソブタン酸エステルの４位ハロゲン原子をアセトキシ基に置換することにより一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを得る工程を前工程として付加的に有し、得られた一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルから一般式（２）で示される４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを得る製造方法であってもよい。
【００３５】
ここで出発化合物として用いられる一般式（３）で示される４−ハロ−３−オキソブタン酸エステルにおいて、Ｒで示されるＣ１−Ｃ８アルキル基としては、例えば、メチル基、エチル基、プロピル基、オクチル基等をあげることができる。一般式（３）で示される４−ハロ−３−オキソブタン酸エステルの具体的な例としては、４−ブロモ−３−オキソブタン酸エステル等をあげることができる。因みに、当該化合物は、アセト酢酸エステルのブロム化により容易に製造可能である。
【００３６】
一般式（３）で示される４−ハロ−３−オキソブタン酸エステルの４位ハロゲン原子をアセトキシ基に置換することにより一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを得る工程において用いられるアセトキシ化の反応試剤としては、例えば、酢酸カリウム、酢酸ナトリウム、酢酸リチウム、酢酸アンモニウム等の酢酸塩をあげられる。当該工程は、通常有機溶媒の存在下で行うが、必要に応じて無溶媒で実施することもできる。かかる溶媒として、例えば、メタノール、エタノール等のアルコール類、トルエン等の芳香族炭化水素類、酢酸エチル等のエステル類、アセトニトリル等のニトリル類、メチル ｔ‐ブチル エーテル、テトラヒドロフラン等のエーテル類、Ｎ，Ｎ‐ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド等の極性溶媒、シクロヘキサン、ヘプタン等の炭化水素溶媒、等を、単独で用いてもよいし、２種類以上を混合して用いてもよい。当該工程の反応温度は、反応を進行させるのに十分な温度であれば制限はないが、通常、０〜１００℃程度、好ましくは１０〜８０℃程度、より好ましくは２０〜７０℃である。
【００３７】
このようにして生成された一般式（１）で示される４−アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルは、必要に応じて、一旦採取・精製してから次の工程に供してもよいしそのまま次の工程に供してもよい。採取・精製には、例えば、反応混合物に対し洗浄分液、濃縮等の処理操作を行う方法・クロマトグラフィー、蒸留、再結晶等の精製操作等の通常の方法を用いればよい。
【００３８】
【実施例】
以下、製造例等により本発明をさらに詳しく説明するが、本発明はこれらの例に限定されるものではない。
【００３９】
実施例１ （本還元酵素遺伝子の調製（その１）及び本還元酵素遺伝子を含有する形質転換体の調製）
配列番号２で示される塩基配列からなるＤＮＡを含有するプラスミドｐＫＡＲを以下のようにして調製した。
まず、Ａｐｐｌ Ｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ（１９９９）５２：３８６−３９２等に記載される公知のプラスミドｐＵＡＲ（受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−１８１２７）から、配列番号２で示されるＤＮＡを含むＤＮＡ断片を、ＰｓｔＩ及びＳｍａＩを用いて切り出した。切り出されたＤＮＡ断片を、ＰｓｔＩ／ＳｍａＩ処理したｐＫＫ２２３‐３ベクター（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ社製）のＴａｃプロモーターの下流に挿入した。このようにしてプラスミドｐＫＡＲを構築した。
構築されたプラスミドｐＫＡＲを用いてＥ． ｃｏｌｉ ＪＭ１０９株を形質転換した。
次に、フラスコに液体培地（水１０００ｍｌにトリプトン１０ｇ、酵母エキス５ｇ及び塩化ナトリウム５ｇを溶解した。この溶液に１Ｎ水酸化ナトリウム水溶液を滴下することによりｐＨを７．０に調整した。）１００ｍｌを入れ、滅菌した後、アンピシリンを１００μｇ／ｍｌ、ＺｎＣｌ２を０．０１％（ｗ／ｖ）、ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ ｔｈｉｏ−β−Ｄ−ｇａｌａｃｔｏｓｉｄｅ（ＩＰＴＧ）を０．４ｍＭになるように加えた。このようにして調製された培地に、上記で得られた形質転換体（Ｅ． ｃｏｌｉ ＪＭ１０９／ｐＫＡＲ株）が前記組成の液体培地で予め培養された培養液０．３ｍｌを接種し、これを３０℃で１４時間振盪培養した。
培養後、得られた培養液を遠心分離（１５０００×ｇ、１５分、４℃）することにより、菌体を回収した。回収された菌体を、５０ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ７．０）３０ｍｌに懸濁し、この懸濁液を遠心分離（１５０００×ｇ、１５分、４℃）することにより、本還元酵素遺伝子を含有する形質転換体である洗浄菌体を得た。
【００４０】
実施例２ （本還元酵素遺伝子の調製（その２））
（２−１）染色体ＤＮＡの調製
フラスコに液体培地（水１０００ｍｌにトリプトン５ｇ、酵母エキス２．５ｇ、塩化ナトリウム４ｇ、ゼラチン２．５ｇ、酢酸ナトリウム１．５ｇ及びスレオニン２．４ｇを溶解する。この溶液に１Ｎ水酸化ナトリウム水溶液を滴下することによりｐＨを７．０に調整する。）１００ｍｌを入れ、滅菌する。このようにして調製された培地に、特開平１０−９４３９９等に記載される公知のコリネバクテリウム・シュードジフテリティカム亜種（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｓｅｕｄｏｄｉｐｈｔｅｒｉｔｉｃｕｍ）ＳＴ−１０株（受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−１３１５０）が前記組成の液体培地で予め培養された培養液０．３ｍｌを接種し、これを３０℃で１０時間振盪培養する。
培養後、得られた培養液を遠心分離（１５０００×ｇ、１５分、４℃）することにより、菌体を回収する。回収された菌体を、５０ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ７．０）３０ｍｌに懸濁し、この懸濁液を遠心分離（１５０００×ｇ、１５分、４℃）することにより、洗浄菌体を得る。
このようにして得られる洗浄菌体を用いて、Ｊ．Ｃ．Ｗａｎｇらの方法（Ａｐｐｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ （１９９９）５２：３８６−３９２）によって染色体ＤＮＡを調製する。
【００４１】
（２−２）本還元酵素遺伝子を含有するプラスミドの調製（プラスミドｐＴｒｃＰＡＲの構築）
配列番号５で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号６で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに、前記（２−１）で調製される染色体ＤＮＡを鋳型にして下記反応液組成、反応条件でＰＣＲを行う。（ロシュ・ダイアグノスティック社製のＥｘｐａｎｄ Ｈｉｇｈ Ｆｉｄｅｌｉｔｙ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍを使用）
【００４２】
［反応液組成］
染色体ＤＮＡ １μｌ
ｄＮＴＰ（各２．５ｍＭ−ｍｉｘ） ０．４μｌ
プライマー（２０ｐｍｏｌ／μｌ） 各０．７５μｌ
１０ｘｂｕｆｆｅｒ（ｗｉｔｈ ＭｇＣｌ２） ５μｌ
ｅｎｚ．ｅｘｐａｎｄＨｉＦｉ （３．５ｘ１０３Ｕ／ｍｌ） ０．３７５μｌ
超純水 ４１．７２５μｌ
【００４３】
［反応条件］
上記組成の反応液が入った容器をＰＥＲＫＩＮ ＥＬＭＥＲ−ＧｅｎｅＡｍｐ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍ２４００にセットし、９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回行い、さらに７２℃で７分間保持する。
【００４４】
ＰＣＲ反応液を精製して得られたＰＣＲ増幅ＤＮＡ断片に２種類の制限酵素（ＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ＤＮＡ断片を２重消化する。次いで得られるＤＮＡ断片を精製する。
一方、ベクターｐＴｒｃ９９Ａ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）を２種類の制限酵素（ＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ベクターを２重消化する。次いで得られるＤＮＡ断片を精製する。
このようにして精製して得られる２種類のＤＮＡ断片を混合し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションする。得られるライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換する。
得られる形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いて本還元酵素遺伝子を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＴｒｃＰＡＲと記すこともある。）を取り出す。
【００４５】
実施例３ （本還元酵素遺伝子の調製（その３））
（３−１）ｃＤＮＡライブラリーの調製
５００ｍｌフラスコに培地（水にポテト・デキストロース・ブロース（ベクトン・ディッキンソン社製）を２４ｇ／Ｌの割合で溶解したもの）１００ｍｌを入れ、１２１℃で１５分間滅菌した。ここに同組成の培地中で培養（３０℃、４８時間、振盪培養）したペニシリウム・シトリナム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｃｉｔｒｉｎｕｍ）ＩＦＯ４６３１株の培養液０．５ｍｌを加え、３０℃で７２時間振盪培養した。その後、得られた培養液を遠心し（８０００ｘｇ、１０分）、生じた沈殿を集めた。この沈殿を２０ｍＭリン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．０）５０ｍｌで３回洗浄して、約１．０ｇの洗浄菌体を得た。
ペニシリウム・シトリナム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｃｉｔｒｉｎｕｍ）ＩＦＯ４６３１株の洗浄菌体を用いて、チオシアン酸グアニジンフェノールクロロホルム法で全ＲＮＡを調製した。調製された全ＲＮＡから、Ｏｌｉｇｏｔｅｘ（ｄＴ）３０−Ｓｕｐｅｒ（宝酒造社製）を用いてｐｏｌｙ（Ａ）を有するＲＮＡを得た。
ｃＤＮＡライブラリーの作製は、Ｇｕｂｌｅｒ ａｎｄ Ｈｏｆｆｍａｎ法に基づいて実施した。まず、上記のようにして得られたｐｏｌｙ（Ａ）を有するＲＮＡ、Ｏｌｉｇｏ（ｄＴ）１８−リンカープライマー（（含ＸｈｏＩサイト）宝酒造社製）、ＲＡＶ−２ Ｒｔａｓｅ及びＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＩＩ Ｒｔａｓｅを用いて一本鎖ｃＤＮＡを調製した。調製された一本鎖ｃＤＮＡ（を含む前記反応液）にＥ． ｃｏｌｉ ＤＮＡ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ、Ｅ． ｃｏｌｉ Ｒｎａｓｅ／Ｅ． ｃｏｌｉ ＤＮＡ Ｌｉｇａｓｅ Ｍｉｘｔｕｒｅ及びＴ４ ＤＮＡ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅを加えることにより、二本鎖ｃＤＮＡの合成及び当該二本鎖ｃＤＮＡの平滑末端化処理を行った。
このようにして得られた二本鎖ｃＤＮＡとＥｃｏＲＩ−ＮｏｔＩ−ＢａｍＨＩアダプター（宝酒造社製）とのライゲーションを行った。ライゲーション後に得られたＤＮＡを、以下の順で、リン酸化処理、ＸｈｏＩでの切断処理、スピンカラム（宝酒造社製）を用いる低分子量ＤＮＡの除去処理、λＺａｐＩＩ（ＥｃｏＲＩ−ＸｈｏＩ切断）とのライゲーションした後、ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｐａｃｋａｇｉｎｇ ｋｉｔ （ＳＴＲＡＴＡＧＥＮＥ社製）を用いてパッケージングすることにより、ｃＤＮＡライブラリー（以下、ｃＤＮＡライブラリー（Ａ）と記すこともある。）を調製した。
【００４６】
（３−２）本還元酵素遺伝子を含有するプラスミドの調製（プラスミドｐＴｒｃＲＰｃの構築）
配列番号７で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号８で示されるオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いて、前記（３−１）で調製されたｃＤＮＡライブラリーを鋳型にして下記反応液組成、反応条件でＰＣＲを行った。（ロシュ・ダイアグノスティック社製のＥｘｐａｎｄ Ｈｉｇｈ Ｆｉｄｅｌｉｔｙ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍを使用）
【００４７】
［反応液組成］
ｃＤＮＡライブラリー原液 １μｌ
ｄＮＴＰ（各２．５ｍＭ−ｍｉｘ） ０．４μｌ
プライマー（２０ｐｍｏｌ／μｌ） 各０．７５μｌ
１０ｘｂｕｆｆｅｒ（ｗｉｔｈ ＭｇＣｌ２） ５μｌ
ｅｎｚ．ｅｘｐａｎｄＨｉＦｉ （３．５ｘ１０３Ｕ／ｍｌ） ０．３７５μｌ
超純水 ４１．７２５μｌ
【００４８】
［反応条件］
上記組成の反応液が入った容器をＰＥＲＫＩＮ ＥＬＭＥＲ−ＧｅｎｅＡｍｐ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍ２４００にセットし、９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回行い、さらに７２℃で７分間保持した。
【００４９】
ＰＣＲ反応液を精製して得られたＰＣＲ増幅ＤＮＡ断片に２種類の制限酵素（ＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ＤＮＡ断片を２重消化させた。次いで得られたＤＮＡ断片を精製した。
一方、ベクターｐＴｒｃ９９Ａ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）を２種類の制限酵素（ＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ベクターを２重消化させた。次いで消化されたＤＮＡ断片を精製した。
このようにして精製して得られた２種類のＤＮＡ断片を混合し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションした。得られたライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換した。
得られた形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いて本還元酵素遺伝子を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＴｒｃＲＰｃと記すこともある。）を取り出した。
【００５０】
実施例４ （本補酵素再生酵素遺伝子の調製）
（４−１）酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド等を還元型に変換する能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する遺伝子を調製するための準備
フラスコにＬＢ培地（１％トリプトン、０．５％酵母エキス、１％塩化ナトリウム）１００ｍｌを入れ、滅菌した。このようにして調製された培地に、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ ＩＦＯ１２１０８株が前記組成の液体培地で予め培養された培養液０．３ｍｌを接種し、これを３０℃で１０時間振盪培養した。
培養後、得られた培養液を遠心分離（１５０００×ｇ、１５分、４℃）することにより、菌体を回収した。回収された菌体を、５０ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ７．０）３０ｍｌに懸濁し、この懸濁液を遠心分離（１５０００×ｇ、１５分、４℃）することにより、洗浄菌体を得た。
このようにして得られた洗浄菌体からＱｉａｇｅｎ Ｇｅｎｏｍｉｃ Ｔｉｐ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用い、それに付属するマニュアルに記載される方法に従って染色体ＤＮＡを精製した。
【００５１】
（４−２）酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド等を還元型に変換する能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する遺伝子の調製（その１：プラスミドｐＳＤＧＤＨ１２の構築）
Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｖｏｌ．２６４， Ｎｏ．１１， ６３８１−６３８５（１９８９）に記載された公知のＢａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ ＩＷＧ３由来のグルコース脱水素酵素のアミノ酸配列に基づいて配列番号９で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号１０で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとを合成する。配列番号９で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号１０で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いて、前記（４−１）で精製された染色体ＤＮＡを鋳型にして実施例２（２−２）に記載させる反応液組成、反応条件でＰＣＲを行う。（ロシュ・ダイアグノスティック社製のＥｘｐａｎｄ Ｈｉｇｈ Ｆｉｄｅｌｉｔｙ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍを使用）
ＰＣＲ反応液を精製して得られたＰＣＲ増幅ＤＮＡ断片を、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製ＴＯＰＯＴＭＴＡ ｃｌｏｎｉｎｇキットを用いてｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯベクターの既存「ＰＣＲ Ｐｒｏｄｕｃｔ挿入サイト」にライゲーションする。得られるライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換する。
得られる形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いてグルコース脱水素酵素を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＳＤＧＤＨ１２と記すこともある。）を取り出す。
次に、取り出されるプラスミドｐＳＤＧＤＨ１２を鋳型として、Ｄｙｅ Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ Ｃｙｃｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ＦＳ ｒｅａｄｙ Ｒｅａｃｔｉｏｎ Ｋｉｔ（パーキンエルマー製）を用いたシークエンス反応を行った後、得られるＤＮＡの塩基配列をＤＮＡシーケンサー３７３Ａ（パーキンエルマー製）で解析する。その結果を配列番号１１に示す。
【００５２】
（４−３）酸化型β−ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸等を還元型に変換する能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する遺伝子の調製（その２：プラスミドｐＡＧＤＨ１２の構築）
（４−３−１）プラスミドｐＴＧＤＨ１２の構築
配列番号１１で示される塩基配列を基にして配列番号１３で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号１４で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとを合成した。
配列番号１３で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号１４で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いて、前記（４−１）で精製された染色体ＤＮＡを鋳型にして以下の反応液組成、反応条件でＰＣＲを行った。（ロシュ・ダイアグノスティック社製のＥｘｐａｎｄ Ｈｉｇｈ Ｆｉｄｅｌｉｔｙ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍを使用）
【００５３】
［反応液組成］
染色体ＤＮＡ原液 １μｌ
ｄＮＴＰ（各２．５ｍＭ−ｍｉｘ） ０．４μｌ
プライマー（２０ｐｍｏｌ／μｌ） 各０．７５μｌ
１０ｘｂｕｆｆｅｒ（ｗｉｔｈ ＭｇＣｌ２） ５μｌ
ｅｎｚ．ｅｘｐａｎｄＨｉＦｉ （３．５ｘ１０３Ｕ／ｍｌ） ０．３７５μｌ
超純水 ４１．７２５μｌ
【００５４】
［ＰＣＲ反応条件］
上記組成に反応液が入った容器をＰＥＲＫＩＮ ＥＬＭＥＲ−ＧｅｎｅＡｍｐ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍ２４００にセットし、９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回、さらに７２℃で７分間保持した。
【００５５】
ＰＣＲ反応液を精製して得られたＰＣＲ増幅ＤＮＡ断片に２種類の制限酵素（ＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ＤＮＡ断片を２重消化させた。次いで得られたＤＮＡ断片を精製した。
一方、ベクターｐＴＶ１１８Ｎ（宝酒造社製）を２種類の制限酵素（ＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ベクターを２重消化させた。次いで消化されたＤＮＡ断片を精製した。
このようにして精製して得られた２種類のＤＮＡ断片を混合し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションした。得られたライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換した。
得られた形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いて本還元酵素遺伝子を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＴＧＤＨ１２と記すこともある。）を取り出した。
【００５６】
（４−３−２）プラスミドｐＣＧＤＨ１２の構築
ベクターｐＴＶ１１８Ｎ（宝酒造社製）の塩基配列を基にして配列番号１５で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを合成した。
配列番号１５で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号１４で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとをプライマーに用いて、プラスミドｐＴＧＤＨ１２を鋳型にして以下の反応液組成、反応条件でＰＣＲを行った。（ロシュ・ダイアグノスティック社製のＥｘｐａｎｄ Ｈｉｇｈ Ｆｉｄｅｌｉｔｙ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍを使用）
【００５７】
［反応液組成］
プラスミドｐＴＧＤＨ１２溶液 １μｌ
ｄＮＴＰ（各２．５ｍＭ−ｍｉｘ） ０．４μｌ
プライマー（２０ｐｍｏｌ／μｌ） 各０．７５μｌ
１０ｘｂｕｆｆｅｒ（ｗｉｔｈ ＭｇＣｌ） ５μｌ
ｅｎｚ．ｅｘｐａｎｄＨｉＦｉ （３．５ｘ１０３Ｕ／ｍｌ） ０．３７５μｌ
超純水 ４１．７２５μｌ
【００５８】
［ＰＣＲ反応条件］
上記組成に反応液が入った容器をＰＥＲＫＩＮ ＥＬＭＥＲ−ＧｅｎｅＡｍｐ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍ２４００にセットし、９７℃（２分間）に加熱した後、９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（１．５分間）のサイクルを１０回、次いで９７℃（０．２５分間）−５５℃（０．５分間）−７２℃（２．５分間）のサイクルを２０回、さらに７２℃で７分間保持した。
【００５９】
得られたＰＣＲ反応液とＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製ＴＯＰＯＴＭＴＡ ｃｌｏｎｉｎｇキットＶｅｒ．Ｅとを用いて、ＰＣＲによって得られた約１０００ｂｐのＤＮＡ断片をｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯベクターの既存「ＰＣＲ Ｐｒｏｄｕｃｔ挿入サイト」にライゲーションし、そのライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換した。
得られた形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いて本還元酵素遺伝子を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＣＧＤＨ１２と記すこともある。）を取り出した。
【００６０】
（４−３−３）プラスミドｐＡＧＤＨ１２の構築）
プラスミドｐＣＧＤＨ１２に制限酵素（ＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該プラスミドを消化した。次いで、得られるＤＮＡ断片（約１０００ｂｐ）を精製した。
一方、ベクターｐＡＣＹＣ１８４（ニッポンジーン社製）に制限酵素（ＢａｍＨＩ）を加えることにより、当該ベクターを消化した。次いで得られるＤＮＡ断片を精製した。さらに、セルフライゲーションを防ぐため、Ａｌｋａｌｉｎｅ Ｐｈｏｓｐａｔａｓｅ（宝酒造社製）を用いて脱リン酸化処理を行った。
【００６１】
このようにして精製して得られた２種類のＤＮＡ断片を混合し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションした。得られたライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉＤＨ５αを形質転換した。
得られた形質転換体を２０μｇ／ｍｌのクロラムフェニコールを含有するＬＢ寒天培地で培養し、生育してきたコロニーの中から４コロニーを無作為に選抜した。この選抜されたコロニーをそれぞれ２０μｇ／ｍｌのクロラムフェニコールを含有する滅菌ＬＢ培地（２ｍｌ）に接種し、試験管中で振盪培養した（３０℃、２４時間）。それぞれの培養菌体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いてプラスミドを取り出した。取り出したプラスミドのそれぞれの一部を制限酵素（ＢａｍＨＩ）により消化した後、当該消化物を電気泳動することにより、取り出されたプラスミド全てには前記ＤＮＡ断片（約１０００ｂｐ）が挿入されていることを確認した。（以下、取り出されたプラスミドをプラスミドｐＡＧＤＨ１２と記すこともある。）
【００６２】
実施例５ （本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生酵素遺伝子を含有するプラスミドの調製（その１）：プラスミドｐＴｒｃＰＡＲＳｂＧの構築）
実施例４（４−２）で調製されたプラスミドｐＳＤＧＤＨ１２に２種類の制限酵素（ＢａｍＨＩとＸｂａＩ）を加えることにより、当該プラスミドを２重消化させる。次いで消化されたＤＮＡ断片を精製する。
一方、実施例２で調製されるプラスミドｐＴｒｃＰＡＲに２種類の制限酵素（ＢａｍＨＩとＸｂａＩ）を加えることにより、当該プラスミドを２重消化させる。次いで得られるＤＮＡ断片を精製する。
このようにして精製して得られる２種類のＤＮＡ断片を混合し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションする。得られるライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉ ＤＨ５αを形質転換する。
得られる形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いて本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生遺伝子を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＴｒｃＰＡＲＳｂＧと記すこともある。）を取り出す。
【００６３】
実施例６ （本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生遺伝子を含有するプラスミドの調製（その２）：プラスミドｐＴｒｃＲＳｂＧ１２の構築）
実施例４（４−２）で調製されたプラスミドｐＳＤＧＤＨ１２に２種類の制限酵素（ＢａｍＨＩとＸｂａＩ）を加えることにより、当該プラスミドを２重消化させた。次いで消化されたＤＮＡ断片を精製した。
一方、実施例３で調製されるプラスミドｐＴｒｃＲＰｃに２種類の制限酵素（ＢａｍＨＩとＸｂａＩ）を加えることにより、当該プラスミドを２重消化させた。次いで消化されたＤＮＡ断片を精製した。
このようにして精製して得られた２種類のＤＮＡ断片を混合し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼでライゲーションした。得られたライゲーション液でＥ．ｃｏｌｉ ＤＨ５αを形質転換した。
得られた形質転換体からＱＩＡｐｒｅｐ Ｓｐｉｎ Ｍｉｎｉｐｒｅｐ Ｋｉｔ （Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いて本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生酵素遺伝子を含有するプラスミド（以下、プラスミドｐＴｒｃＲＳｂＧ１２と記すこともある。）を取り出した。
【００６４】
実施例７ （本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生酵素遺伝子を含有する形質転換体の調製（その１））
実施例５で調製されるプラスミドｐＴｒｃＰＡＲＳｂＧを用いてＥ．ｃｏｌｉ ＨＢ１０１を形質転換する。得られる形質転換体を０．４ｍＭのＩＰＴＧ、０．０１％（Ｗ／Ｖ）のＺｎＣｌ２及び５０μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有する滅菌ＬＢ培地（１００ｍｌ×３本）に接種した後、これを振盪培養する（３０℃、１８時間）。培養後、培養液を遠心分離・洗浄することにより、洗浄菌体を回収する。
【００６５】
実施例８ （本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生酵素遺伝子を含有する形質転換体の調製（その２））
実施例６で調製されたｐＴｒｃＲＳｂＧ１２プラスミドを用いてＥ．ｃｏｌｉ ＨＢ１０１を形質転換した。得られた形質転換体を０．１ｍＭのＩＰＴＧ及び５０μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有する滅菌ＬＢ培地（１００ｍｌ×３本）に接種した後、これを振盪培養した（３０℃、１８時間）。培養後、培養液を遠心分離・洗浄することにより、洗浄菌体１．２ｇを回収した。
【００６６】
実施例９ （本還元酵素遺伝子及び本補酵素再生酵素遺伝子を含有する形質転換体の調製（その３））
実施例３で調製されるプラスミドｐＴｒｃＲＰｃ及び実施例４（４−３）で調製されたプラスミドｐＡＧＤＨ１２を用いてＥ．ｃｏｌｉ ＨＢ１０１を形質転換する。得られる形質転換体を０．４ｍＭのＩＰＴＧ、２０μｇ／ｍｌのクロラムフェニコール及び５０μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有する滅菌ＬＢ培地（１００ｍｌ×３本）に接種した後、これを振盪培養する（３０℃、１８時間）。培養後、培養液を遠心分離・洗浄することにより、洗浄菌体を回収する。
【００６７】
実施例１０ （４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法）
１００ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ７．０）１．５ｍｌに、実施例１で調製された洗浄菌体１５ｍｇ、ＮＡＤ＋１．３ｍｇ及び５％（ｖ／ｖ）の２−プロパノールを加えた。この混合物に、さらに１５ｍｇの４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸メチルを加えた。このようにして得られた混合物（反応液）を３０℃で２１時間攪拌することにより反応を行った。反応終了後、反応液に酢酸ブチル１．５ｍｌを注加攪拌し、次いで遠心分離することにより有機層及び水層を別々に回収した。回収された水層に再度酢酸エチル１．５ｍｌを加えて同様な操作を行った。このようにして得られた有機層を合一濃縮した後、これをクロロホルム３０ｍｌに溶解し、無水Ｎａ２ＳＯ４を用いて乾燥した。乾燥後、クロロホルムを留去することにより、４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸メチルを得た。収率２７％（ＧＣ分析）であった。
ＧＣ条件
カラム：ＤＢ−１（０．５３ｍｍΦ×３０ｍ、１．５μｍ）
注入口温度：１７０℃
検出器（ＦＩＤ）：３００℃
カラム室温度：５０℃（保持：５分）→５℃／分→１７０℃（保持：０分）→（昇温：３０℃／分）→２９０℃（保持：０分）
キャリアガス １０ｍＬ／分
４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸メチルの保持時間 １０分
【００６８】
実施例１１ （４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法（その２））
１００ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ７．０）１．５ｍｌに、実施例１で調製された洗浄菌体１５ｍｇ、ＮＡＤ＋１．３ｍｇ及び５％（ｖ／ｖ）の２−プロパノールを加える代わりに、１００ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ６．５）２０ｍｌに、実施例８で調製された洗浄菌体１５ｍｇ、ＮＡＤＰ＋１．２ｍｇ及びグルコース２．５ｇを加えること以外は実施例１０記載の方法と同様な方法によって４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸メチルを得た。収率３１％（ＧＣ分析）であった。
【００６９】
実施例１２ （４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法（その３））
１００ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ６．５）２０ｍｌに、実施例９で得られる洗浄菌体１ｇ、ＮＡＤＰ＋１２ｍｇ及びグルコース２．５ｇを加える。この混合物に、さらに２４０ｍｇの２‐オキソシクロヘキサンカルボン酸エチルを加えた後、当該混合物のｐＨを１５％炭酸ナトリウム水溶液で６．５に調製する。このようにして得られる混合物（反応液）を３０℃で４時間攪拌することにより反応を行う。反応終了後、反応液に酢酸エチル２５ｍｌを注加攪拌し、次いで遠心分離することにより有機層及び水層を別々に回収する。回収される水層に再度酢酸エチル２５ｍｌを加えて同様な操作を行う。このようにして得られる有機層を合一濃縮した後、これをクロロホルム３０ｍｌに溶解し、無水Ｎａ２ＳＯ４を用いて乾燥する。乾燥後、クロロホルムを留去することにより、２‐ヒドロキシシクロヘキサンカルボン酸エチルを得る。
【００７０】
参考例１ （一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する微生物の取得）
（１−１） 洗浄菌体の調製
市販の微生物又は土壌などから単離した微生物を滅菌ＬＢ培地（１０ｍｌ）に接種した後、これを振盪培養する（３０℃、１８時間）。培養後、培養液を遠心分離・洗浄することにより、洗浄菌体を回収する。
（１−２） スクリーニング
１００ｍＭリン酸１カリウム−リン酸２カリウムバッファー（ｐＨ６．５）２０ｍｌに、上記（１−１）で調製された洗浄菌体１ｇ、ＮＡＤＰ＋１２ｍｇ、ＮＡＤ＋１２ｍｇ及びグルコース２．５ｇを加える。この混合物に、さらに一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステル２４０ｍｇを加えた後、当該混合物のｐＨを１５％炭酸ナトリウム水溶液で６．５に調製する。このようにして得られる混合物（反応液）を３０℃で４時間攪拌することにより反応を行う。反応終了後、反応液に酢酸エチル２５ｍｌを注加攪拌し、次いで遠心分離することにより有機層及び水層を別々に回収する。回収される水層に再度酢酸エチル２５ｍｌを加えて同様な操作を行う。このようにして得られる有機層を合一濃縮した後、これをクロロホルム３０ｍｌに溶解し、無水Ｎａ２ＳＯ４を用いて乾燥する。乾燥後、クロロホルムを留去することにより残渣を得る。得られる残渣に、４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルが含まれていることを液体クロマトグラフィー又はガスクロマトグラフィーにて定性及び／定量分析により確認する。
【００７１】
参考例２ （４−アセトキシ−３−オキソブタン酸メチルの調製）
ＮＮ−ジメチルホルムアミド２５ｇに溶解した４−ブロモ−３−オキソブタン酸メチル５ｇに酢酸カリウム２．８ｇを加え、２０℃で攪拌２時間攪拌した。氷冷下、反応液に酢酸エチル１００ｍＬ、ヘキサン１５ｍＬ、水６０ｍＬを加えて洗浄分液した。水層にさらに酢酸エチル２０ｍＬ、ヘキサン１５ｍＬを加え抽出分液をおこなった。油層を合一し濃縮することにより目的の４−アセトキシ−３−オキソブタン酸メチルを得た（３．４ｇ、ＧＣ純度８４％）。目的物の同定はＨ−ＮＭＲにより行った。
ＧＣ条件
カラム：ＤＢ−１（０．５３ｍｍΦ×３０ｍ、１．５μｍ）
注入口温度：１７０℃
検出器（ＦＩＤ）：３００℃
カラム室温度：５０℃（保持：５分）→５℃／分→１７０℃（保持：０分）→（昇温：３０℃／分）→２９０℃（保持：０分）
キャリアガス １０ｍＬ／分
４−アセトキシ−３−オキソブタン酸メチルの保持時間 ８．７分
Ｈ−ＮＭＲ（δ，ｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）；２．２（３Ｈ， ｓ），３．５（２Ｈ， ｓ），３．８（３Ｈ， ｓ），４．８（２Ｈ， ｓ）
【００７２】
【発明の効果】
本発明により、４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを効率的又は簡便に製造することができる。
［配列表フリーテキスト］
配列番号５
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号６
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号７
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号８
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号９
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号１０
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号１３
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号１４
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
配列番号１５
ＰＣＲのために設計されたプライマーであるオリゴヌクレオチド
【００７３】
【配列表】
Claims (17)
- ４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法であって、一般式（１）
（式中、ＲはＣ１−Ｃ８アルキル基を表す。）
で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）
（式中、ＲはＣ１−Ｃ８アルキル基、＊は不斉炭素原子を示す。）
で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を人為的に付与されてなる形質転換体又はその死菌化細胞に、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを作用させる工程、並びに生成した一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを採取する工程を有することを特徴とする製造方法。 - 形質転換体が、
下記の２つの人為的に付与される能力を同時に有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを含有する１つのプラスミド、
下記（ｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡ及び下記（ｉｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを同時に有する１つのプラスミド、あるいは、
下記（ｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを含有するプラスミド及び下記（ｉｉ）の人為的に付与される能力を有する酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡを有するプラスミドからなる２つのプラスミド、
が少なくとも導入されてなる形質転換体であることを特徴とする請求項１記載の製造方法。
＜人為的に付与される能力＞
（ｉ）一般式（１）
（式中、ＲはＣ１−Ｃ８アルキル基を表す。）
で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）
（式中、ＲはＣ１−Ｃ８アルキル基、＊は不斉炭素原子を示す。）
で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力
（ｉｉ）上記（ｉ）の能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力 - 形質転換体が大腸菌であることを特徴とする請求項１記載の製造方法。
- 補酵素が、ＮＡＤＨ／ＮＡＤ＋（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド）もしくはＮＡＤＰＨ／ＮＡＤＰ＋（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸）であることを特徴とする請求項１記載の製造方法。
- 脂肪族アルコールの存在下、形質転換体又はその死菌化細胞に一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを作用させることを特徴とする請求項１記載の製造方法。
- 脂肪族アルコールが２００℃以下の沸点を持つアルコールであることを特徴とする請求項５記載の製造方法。
- 脂肪族アルコールが２−プロパノールであることを特徴とする請求項５記載の製造方法。
- グルコースの存在下、形質転換体又はその死菌化細胞に一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを作用させることを特徴とする請求項１記載の製造方法。
- 一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、下記のアミノ酸配列群の中から選ばれるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする請求項１記載の製造方法。
＜アミノ酸配列群＞
（ａ）配列番号１又は３で示されるアミノ酸配列
（ｂ）配列番号１又は３で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸配列が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｃ）配列番号２又は４で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列
（ｄ）配列番号２又は４で示される塩基配列からなるＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列を有し、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｅ）コリネバクテリウム属又はペニシリウム属に属する微生物由来の、一般式（１）で示される４‐アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列 - 一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、下記のアミノ酸配列群の中から選ばれるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする請求項１記載の製造方法。
＜アミノ酸配列群＞
（ａ）配列番号１で示されるアミノ酸配列
（ｂ）配列番号１で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸配列が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｃ）配列番号２で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列
（ｄ）配列番号２で示される塩基配列からなるＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列を有し、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｅ）コリネバクテリウム属に属する微生物由来の、一般式（１）で示される４‐アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列 - 一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、下記のアミノ酸配列群の中から選ばれるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする請求項１記載の製造方法。
＜アミノ酸配列群＞
（ａ）配列番号３で示されるアミノ酸配列
（ｂ）配列番号３で示されるアミノ酸配列において１若しくは複数のアミノ酸配列が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列であって、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｃ）配列番号４で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列
（ｄ）配列番号４で示される塩基配列からなるＤＮＡに対し相補性を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡの塩基配列がコードするアミノ酸配列を有し、かつ、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列
（ｅ）ペニシリウム属に属する微生物由来の、一般式（１）で示される４‐アセトキシ−３−オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力を有する酵素のアミノ酸配列 - 一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、配列番号１で示されるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする請求項１記載の製造方法。
- 一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする請求項１記載の製造方法。
- 一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、配列番号２で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする請求項１記載の製造方法。
- 一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力が、配列番号４で示される塩基配列がコードするアミノ酸配列を有する酵素が持つ能力であることを特徴とする請求項１記載の製造方法。
- 一般式（１）
（式中、ＲはＣ１−Ｃ８アルキル基を表す。）
で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを還元して一般式（２）
（式中、ＲはＣ１−Ｃ８アルキル基、＊は不斉炭素原子を示す。）
で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成させるための触媒としての、一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルの３位にあるケトンを還元して一般式（２）で示される４‐アセトキシ‐３‐ヒドロキシブタン酸エステルを生成する能力及び該能力を有する酵素が依存する補酵素を再生する能力を人為的に付与されてなる形質転換体又はその死菌化細胞の使用。 - 前工程として、４−ハロ−３−オキソブタン酸エステルの４位にあるハロゲン原子をアセトキシ基に置換することにより一般式（１）で示される４‐アセトキシ‐３‐オキソブタン酸エステルを得る工程を付加的に有することを特徴とする請求項１記載の製造方法。
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|---|---|---|---|
| JP2002271294A JP2004057193A (ja) | 2002-06-05 | 2002-09-18 | ４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法 |
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| JP2002271294A JP2004057193A (ja) | 2002-06-05 | 2002-09-18 | ４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法 |
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|---|---|
| JP2004057193A true JP2004057193A (ja) | 2004-02-26 |
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| JP2002271294A Pending JP2004057193A (ja) | 2002-06-05 | 2002-09-18 | ４−アセトキシ−３−ヒドロキシブタン酸エステルの製造方法 |
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-
2002
- 2002-09-18 JP JP2002271294A patent/JP2004057193A/ja active Pending
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